natgillin/translations-raw huggingface dataset:
That may have wider and easier application when an ELISA test is developed. 
Dette kan få bredere og enklere anvendelse når det blir utarbeidet en ELISA-prøve.
The use of vaccines containing only HA, such as recombinant vector vaccines, allows classical AGID tests or ELISA tests based on nucleoprotein, non-structural protein or matrix proteins to be used to detect infection in vaccinated birds. 
Bruk av vaksiner som inneholder bare HA, for eksempel rekombinante vektorvaksiner, gjør det mulig å bruke klassiske AGID-prøver eller ELISA-prøver basert på nukleoprotein, ikke-overflateassosierte proteiner eller matriksproteiner til å påvise infeksjon hos vaksinerte fugler.
For inactivated vaccines, a test that detects antibodies to the non-structural virus protein that are only produced during natural infection has been described. 
For inaktiverte vaksiner er det beskrevet en undersøkelse som påviser antistoffer mot det ikke-overflateassosierte virusproteinet som bare dannes ved naturlig infeksjon.
Such a system is yet to be validated in the field, but has the limitation that natural infection of a flock with any influenza virus, irrespective of subtype results in the production of antibodies directed against the non-structural protein. 
Et slikt system er ennå ikke validert i felten, men har den begrensningen at naturlig infeksjon i en flokk med ethvert influensavirus, uavhengig av undertype, fører til at det dannes antistoffer mot det ikke-overflateassosierte proteinet.
The development of rapid and sensitive virus-detection methods, especially those that can be automated, such as real time RT-PCR, means that these could be used for simple widespread and regular testing of vaccinated birds for the presence of field virus. 
Utviklingen av raske og følsomme viruspåvisningsmetoder, særlig slike som kan automatiseres, for eksempel sanntids RT-PCR, betyr at disse kan brukes til enkel, omfattende og regelmessig undersøkelse av vaksinerte fugler for forekomst av feltvirus.
Agent detection, however, will be limited to a short window in the acute phase of the infection and cannot be used to conclude that a flock was not exposed to the virus in the past. 
Påvisning av agens vil imidlertid være begrenset til et kort tidsrom i den akutte infeksjonsfasen, og kan ikke brukes til å fastslå at en flokk ikke har vært eksponert for viruset tidligere.
This approach is most appropriate to the testing of vaccinated birds prior to movement to demonstrate freedom from active infection. 
Denne metoden er særlig hensiktsmessig for undersøkelse av vaksinerte fugler før forflytning, for å dokumentere at de er fri for aktiv infeksjon.
The number of samples to be tested by the systems of choice must enable the exclusion of a prevalence of AI virus infection in a flock of more than 15 % with confidence level of 95 %. 
Antall prøver som skal undersøkes ved hjelp av de systemene som velges, skal gjøre det mulig å utelukke en prevalens av AI-virusinfeksjon i en flokk på mer enn 15 %, med et konfidensintervall på 95 %.
Strategies in the diagnosis of AI 
Strategier ved diagnostisering av AI
As set out in Annex IV to Directive 2005/94/EC, decisions to apply measures in specific areas or contact holdings and the severity of those measures may vary greatly with the magnitude of the risk. 
Som fastsatt i vedlegg IV til direktiv 2005/94/EF, kan beslutninger om å gjennomføre tiltak i særlige områder eller i kontaktenheter, og hvor omfattende disse tiltakene skal være, i høy grad variere etter hvor stor risikoen er.
Similarly, the required diagnostic confirmation of disease is likely to be balanced against the prevailing situation, the magnitude of the hazard and the degree of risk. 
På samme måte vil sannsynligvis den nødvendige diagnostiske bekreftelsen på sykdommen bli veid opp mot den rådende situasjonen, hvor stor faren er og graden av risiko.
Veterinary authorities need to make decisions on diagnostic evidence that balance the rapid control and eradication of disease against the potential impact of misdiagnosis. 
Veterinærmyndighetene skal treffe beslutninger om diagnostiske bevis, der rask bekjempelse og utryddelse av sykdommen veies opp mot de mulige konsekvensene av feildiagnose.
Such judgements have to be made against the background of many factors at the time, but certain situations can be predicted. 
Slike vurderinger skal gjøres på bakgrunn av en rekke foreliggende faktorer, men visse situasjoner kan forutses.
Disease situation 
Sykdomssituasjon
Potential problem 
Mulige problemer
Diagnostic criteria 
Diagnostiske kriterier
Non specific signs, no official suspicion 
Ingen spesifikke tegn, ingen offisiell mistanke
Isolated holding 
Isolert driftsenhet
Carry out rapid detection based on M gene RT-PCR. 
Foreta rask påvisning basert på M-gen-RT-PCR.
Differential diagnosis as required 
Differensialdiagnostisering etter behov
Primary suspected outbreak 
Mistanke om primærutbrudd
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation 
Foreta full diagnostisk undersøkelse, virusisolasjon og karakterisering
Holding in densely populated poultry area 
Driftsenhet i område med stor tetthet av fjørfe
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation, but concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing( 1 ). 
Foreta full diagnostisk undersøkelse, virusisolasjon og karakterisering, men med konsentrasjon på metoder for rask påvisning og karakterisering, særlig de som bygger på RT-PCR og sekvensering( 1 ).
Second and subsequent suspected outbreaks 
Mistanke om sekundærutbrudd og etterfølgende utbrudd
Isolated holdings, epidemiologically linked to primary suspected outbreak 
Isolerte driftsenheter, epidemiologisk knyttet til mistenkt primærutbrudd
Concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing( 1 ). 
Konsentrasjon på metoder for rask påvisning og karakterisering, særlig de som bygger på RT-PCR og sekvensering( 1 ).
Holdings in densely populated poultry area or with many epidemiological links 
Driftsenheter i område med stor tetthet av fjørfe, eller med mange epidemiologiske forbindelser
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus( 1 ). 
Bruke metoder for rask påvisning som snarest mulig viser forekomst av AI-virus( 1 ).
Multiple suspected outbreaks or disease spreading rapidly including surveillance 
Mistanke om flere utbrudd eller rask spredning av sykdom, herunder overvåking
Spread will become uncontrollable without rapid intervention 
Spredning vil komme ut av kontroll uten rask inngripen
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus or rely on clinical signs( 1 ). 
Bruke metoder for rask påvisning som snarest mulig viser forekomst av AI-virus, eller vektlegge kliniske tegn( 1 ).
For these full sampling should be carried out and samples stored for later evaluation. 
Det bør foretas full prøvetaking, og prøvene bør lagres til senere evaluering.
Diagnosis of infection with AI viruses in pigs and other mammals 
Diagnostisering av infeksjon med AI-virus hos svin og andre pattedyr
AI in pigs 
AI hos svin
AI viruses readily infect pigs and although replication is in most cases relatively restricted, there is a potential that infected pigs could transmit the disease to poultry and other susceptible animals. 
AI-virus angriper lett svin, og selv om replikasjonen i de fleste tilfeller er relativt begrenset, er det en mulighet for at angrepne svin kan overføre sykdommen til fjørfe og andre mottakelige dyr.
To date, there is no evidence from the field that infected pigs transmit AI viruses of H5 and H7 subtypes. 
Hittil finnes det ingen konkrete eksempler fra felten på at angrepne svin overfører AI-virus av undertypene H5 og H7.
Experience gained during the outbreak in the Netherlands in 2003 indicated that H7N7 infected pigs did not show clinical signs that could be attributed to the H7N7-infection. 
Erfaringer fra utbruddet i Nederland i 2003 viste at H7N7-angrepne svin ikke viste kliniske tegn som kunne tilskrives H7N7-infeksjon.
Moreover, apparently no diseased pigs have been reported to date during the H5N1 outbreak in Asia and elsewhere. 
Dessuten har det hittil tilsynelatende ikke blitt meldt om syke svin ved H5N1-utbruddet i Asia eller andre steder.
Therefore, clinical signs may not be relied upon to indicate whether pigs are infected although clinical presentation due to infection of pigs with other influenza viruses of avian origin, can occur once a virus has become adapted to the host. 
Man kan derfor ikke stole på kliniske tegn som indikasjon på om svin er angrepet, selv om kliniske symptomer på grunn av infeksjon hos svin med andre influensavirus av aviær opprinnelse, kan oppstå når et virus har tilpasset seg verten.
The diagnosis of AI virus infections of pigs is essentially similar to diagnosis for avian species, relying on virus isolation, molecular techniques and detection of specific antibodies using haemagglutination inhibition tests. 
Diagnostiseringen av AI-virusinfeksjoner hos svin er i store trekk lik diagnostiseringen hos fuglearter, idet det brukes virusisolasjon, molekylærmetoder og påvisning av særlige antistoffer ved hjelp av hemagglutinasjonshemmingsprøver.
There are, however, certain differences and none of the tests are fully validated for the use in pigs to confirm infection with AI viruses. 
Det er imidlertid visse forskjeller, og ingen av undersøkelsene er fullstendig validert for bruk på svin for å bekrefte infeksjon med AI-virus.
Samples for virus isolation 
Prøver til virusisolasjon
AI virus infections in pigs are usually restricted to the respiratory tract and samples must be respiratory tract tissues and, if appropriate, oropharyngeal or nasal swabs, preferably taken from pigs showing signs of that disease. 
AI-virusinfeksjoner hos svin er vanligvis begrenset til luftveiene, og prøvene må være vevsprøver fra luftveiene og eventuelt svaberprøver fra svelg eller nesehule, helst tatt av svin som viser tegn på den sykdommen.
These samples and swabs may be processed for virus isolation or molecular detection of virus, using the same techniques described above for samples from birds. 
Disse prøvene og svaberprøvene kan behandles med sikte på virusisolasjon eller molekylærpåvisning av virus, ved å bruke de samme metodene som er beskrevet ovenfor for prøver fra fugler.
However, when using PCR techniques, proper controls must be used to ensure that the amplification is not inhibited by substances in the samples from pigs. 
Når det brukes PCR-metoder, må man imidlertid sørge for riktig kontroll, for å sikre at amplifikasjonen ikke hemmes av stoffer i prøvene fra svin.
Inoculation and incubation of eggs 
Inokulering og ruging av egg
To isolate mammalian influenza viruses in 9- to 11-day-old embryonated fowls' eggs it is usual practice to inoculate each egg via the allantoic cavity and into the amniotic cavity. 
For å isolere influensavirus fra pattedyr i ni til elleve dager gamle embryonerte hønseegg, er det vanlig praksis å inokulere hvert egg via allantoishulen til amnionhulen.
However, when testing pigs in contact with AI viruses, when virus has had little opportunity to adapt, allantoic cavity inoculation is probably sufficient. 
Ved undersøkelse av svin som har vært i kontakt med AI-virus, når viruset har hatt liten mulighet til å tilpasse seg, er imidlertid inokulering i allantoishulen sannsynligvis tilstrekkelig.
Similarly, 35 o C is usually recommended for the incubation temperature for isolation of mammalian influenza A viruses, but again for viruses poorly adapted to pigs, 37 o C is not be detrimental to virus isolation. 
På samme måte anbefales vanligvis 35 o C som rugetemperatur ved isolasjon av influensa A-virus fra pattedyr, men når det dreier seg om virus som i liten grad har tilpasset seg svin, er 37 o C ikke skadelig for virusisolasjonen.
Test for specific antibodies in HI tests 
Undersøkelse for påvisning av særlige antistoffer i HI-prøver
Virus isolation or molecular detection are likely to be the most sensitive for determining AI virus infections of pigs. 
Virusisolasjon eller molekylær påvisning er sannsynligvis de mest følsomme metodene for å fastslå AI-virusinfeksjon hos svin.
However, serological responses in pigs have been detected in the absence of virus isolation or detection. 
Det er imidlertid påvist serologiske reaksjoner hos svin uten at virus er isolert eller påvist.
HI tests, using pig sera, require some modifications to the test used for avian sera referred to in Chapter VIII. 
HI-prøver der det brukes svineserum, krever visse endringer i forhold til den prøven som brukes til fugleserum, nevnt i kapittel VIII.
Pig sera are notorious for their property of non-specific inhibition in HI tests and therefore each serum sample must be treated with a receptor destroying enzyme (RDE) to prevent this from occurring. 
Svineserum er allment kjent for sine egenskaper til ikke-spesifikk hemming ved HI-prøver, og derfor må hver serumprøve behandles med et reseptorødeleggende enzym for å hindre at dette skjer.
The following method must be used: 
Følgende metode skal brukes:
To 100 ìl of pig antiserum add 400 ìl RDE (predetermined working dilution) and mix thoroughly. 
Til 100 μl svineantiserum tilsettes 400 μl RDE (forh åndsbestemt arbeidsfortynning), og dette blandes grundig.
Incubate at 37 o C for one hour. 
Inkuber ved 37 o C i én time.
Then incubate for 30 minutes at 56 o C. 
Inkuber deretter i 30 minutter ved 56 o C.
Cool samples at 4 o C for a minimum of 15 minutes. 
Avkjøl prøvene ved 4 o C i minst 15 minutter.
Add 10 ìl of 30 % (v/v packed cells) chick red blood cells and mix vigorously. 
Tilsett 10 μl av 30 % (pakket celle v/v) r øde blodlegemer fra kylling og bland grundig.
Incubate at 4 o C overnight. 
Inkuber ved 4 °C over natten.
Alternatively, if it is essential to use samples same day, incubate at 37 o C for one hour and centrifuge at 300 x g for five minutes. 
Dersom det er av avgjørende betydning å bruke prøvene samme dag, kan det alternativt inkuberes ved 37 o C i én time og sentrifugere ved 300 x g i fem minutter.
The treated serum is then used in HI tests as described for avian sera in paragraph [..], the initial dilution is 1:10. A set of sera of pigs with a known sero-negative status regarding AI must be used to assess the specificity of the HI test for the virus strain to be used (see use of virus strain for serology derived from the outbreak; Chapter VIII). 
Det behandlede serumet brukes deretter ved HI-prøver som beskrevet for fugleserum i nr. [..]; den første fortynningen er 1:10. Et sett med serum fra svin med kjent seronegativ status med hensyn til AI, skal brukes til å vurdere HI-prøvens spesifisitet for den virusstammen som skal brukes (se bruk av virusstammer fra utbruddet for serologisk undersøkelse; kapittel VIII).
During the outbreak in the Netherlands in 2003 up to 2,6 % non-specific reactors were detected in the HI test using pig sera that were collected independently of the outbreak 
Ved utbruddet i Nederland i 2003, ble det påvist opptil 2,6 % ikke-spesifikke reaktorer ved den HI-prøven der det ble brukt svineserum som var samlet inn uavhengig av utbruddet.
Sampling of pigs 
Prøvetaking på svin
Particularly on farms that keep both pigs and poultry, either mixed or in separate houses, pigs are at risk of becoming infected with AI directly or indirectly via contact with poultry or poultry products. 
Særlig på driftsenheter der det holdes både svin og fjørfe, enten blandet eller i atskilte hus, er det risiko for at svin blir angrepet av AI direkte eller indirekte ved kontakt med fjørfe eller fjørfeprodukter.
To exclude such infection, oropharyngeal or nasal swabs and blood samples must be collected according to the procedures described in point 8.21 of Chapter IV. 
For å utelukke slik infeksjon, må det tas svaberprøver fra nesehule/svelg og blodprøver etter framgangsmåten beskrevet i nr. 8.21 i kapittel IV.
Samples must be obtained from pigs that show clinical signs of the disease. 
Prøvene skal tas av svin som viser kliniske tegn på sykdommen.
However, when they do not show any clinical signs, samples may be collected at random over all sections of the house. 
Når de ikke viser kliniske tegn, kan det imidlertid tas prøver tilfeldig i alle deler av huset.
If available in the laboratory, swabs must be tested in rapid molecular tests and/or virus isolation. 
Dersom laboratoriet har mulighet for det, skal svaberprøver undersøkes ved hurtige molekylære undersøkelser og/eller virusisolasjon.
The RT-PCR must have been appropriately validated and have a sensitivity at least equivalent to virus isolation in eggs for influenza A viruses. 
RT-PCR skal være validert riktig og ha en følsomhet som minst tilsvarer virusisolasjon i egg for influensa A-virus.
Two to four weeks after culling of the AI infected poultry, at least 60 blood samples must be collected from pigs in such a way that at least some samples are obtained from groups of pigs that are in direct contact with each other. 
To til fire uker etter avlivingen av det AI-angrepne fjørfeet, skal de tas minst 60 blodprøver fra svin på en slik måte at minst noen prøver tas fra grupper av svin som er i direkte kontakt med hverandre.
Samples must be tested in the HI test using virus derived from the poultry outbreak. 
Prøvene skal undersøkes ved HI-prøve med bruk av virus fra utbruddet hos fjørfe.
Samples from both the acute and convalescent phases must be tested in the same test. 
Prøvene fra både akutt- og rekonvalesensfasen skal undersøkes samtidig.
Positive samples can be confirmed using virus neutralisation and/or Western blot analyses. 
Positive prøver kan bekreftes ved bruk nøytralisasjons- og/eller Western blot-analyse.
When any of those samples test positive, an epidemiological investigation on all pig farms located within the protection zone must be carried out, irrespective whether they are of mixed type or not. 
Dersom noen av disse prøvene er positive, skal det foretas en epidemiologisk undersøkelse i alle driftsenheter for svin i vernesonen, uavhengig av om det dreier seg om blandede besetninger eller ikke.
AI viruses in other mammals other than pigs 
AI-virus hos andre pattedyr enn svin
Investigations in other mammals other than pigs which are susceptible to AI including cats must be undertaken. 
Det skal foretas undersøkelser av andre pattedyr enn svin som er mottakelige for AI, herunder katter.
With specific reference to HPAI H5N1, the following must be carried out for testing cats: 
Med særlig henvisning til HPAI H5N1, skal følgende utføres når det gjelder undersøkelse av katter:
Gross pathological lesions, associated with viral replication, concentrate on the lungs and liver, therefore samples for virological investigations must preferably be taken from these organs of dead animals. 
Store patologiske skader i tilknytning til virusreplikasjon er konsentrert på lunger og lever, og derfor skal prøver for virologisk undersøkelse helst tas fra disse organene på døde dyr.
In living animals, preferably tracheal/oropharyngeal swabs must be taken for virus detection. 
Hos levende dyr er det best å ta svaberprøver fra luftrør/svelg for å påvise virus.
In addition, faecal swabs can be taken separately. 
I tillegg kan det tas fekale svaberprøver separat.
Blood samples to be examined in HI assays require heat treatment for 56 o C for 30 minutes and RDE treatment can be omitted. 
Blodprøver som skal undersøkes ved HI-prøver, må varmebehandles ved 56 o C i 30 minutter, og RDE-behandling kan sløyfes.
Minimum safety requirements for the transport of samples 
Minstekrav til sikkerhet ved transport av prøver
The transport of samples in which pathogens are known to be present or suspected of being present are the subject of strict national and international regulations that must be adhered to at all times. 
Transport av prøver der man vet eller har mistanke om at det finnes sykdomsframkallende stoffer, er underlagt strenge nasjonale og internasjonale regler som må følges til enhver tid.
Virus isolates are not classified as diagnostic samples but must be packaged in accordance with international standards. 
Virusisolater er ikke klassifisert som diagnoseprøver, men skal emballeres i samsvar med internasjonale standarder.
The instructions set out in this chapter are for air transport, but similar packaging must be used for land or sea transport of samples. 
Anvisningene som er fastsatt i dette kapittel, gjelder for lufttransport, men lignende emballasje skal også brukes når prøvene transporteres på land eller til sjøs.
Packing diagnostic specimens for transport 
Emballering av diagnoseprøver for transport
Diagnostic specimens transported under the IATA Regulations are assigned to UN identification number 2814, 2900, or 3373, as relevant. 
Diagnoseprøver som transporteres i henhold til IATA-reglene, har identifikasjonsnummer UN 2814, 2900 eller 3373, avhengig av hva som er relevant.
The shipper and not the transport company is responsible for the shipment until the package reaches the consignee. 
Det er avsenderen, og ikke transportforetaket, som er ansvarlig for forsendelsen til pakken når fram til mottakeren.
Primary packaging 
Primæremballasje
Primary receptacle(s) must be water tight, for example, screw caps must be sealed with parafilm or adhesive tape or similar protections taken. 
Primærbeholdere skal være vanntette, for eksempel skal skrukorker være forseglet med parafilm eller tape, eller det skal brukes lignende beskyttelse.
Multiple primary receptacles must be wrapped individually to prevent breakage. 
Dersom det er flere primærbeholdere, skal de pakkes hver for seg for å hindre at de går i stykker.
When determining the volume of diagnostic specimens being shipped, the viral transport media must be taken into account. 
Når det skal bestemmes hvor mange diagnoseprøver som skal sendes, skal det tas hensyn til virusets transportmedium.
Primary receptacle(s) must not contain more than 500 ml or 500 g. 
En primærbeholder skal ikke inneholde mer enn 500 ml eller 500 g.
The entire contents of the primary receptacle is the diagnostic specimen. 
Primærbeholderen skal ikke inneholde noe annet enn diagnoseprøven.
Secondary packaging 
Sekundæremballasje
Enough absorbent material in the secondary container to absorb the entire contents of all primary receptacles in case of leakage or damage must be used. 
Det må brukes nok absorberende materiale i sekundærbeholderen til å kunne absorbere hele innholdet av alle primærbeholderne dersom det skulle oppstå lekkasje eller skade.
Secondary packaging must meet the IATA packaging requirements for diagnostic specimens including 1,2 metres (3,9 feet) drop test procedure. 
Sekundæremballasjen skal oppfylle IATAs emballasjekrav for diagnoseprøver, herunder fallprøven på 1,2 meter.
Since infectious substance packaging surpasses the requirements for diagnostic specimen packaging, in the IATA Packing Instruction 602, it may be used. 
Siden kravene til emballasje for smittefarlige stoffer er strengere enn kravene til emballasje for diagnoseprøver (IATAs emballeringsforskrift 602), kan disse brukes.
Infectious substance packaging must have the required specification markings on packaging (UN will be in a circle), for example: 
Emballasje for smittefarlige stoffer skal være utstyrt med påkrevd merking på emballasjen (med UN i en sirkel), for eksempel:
Secondary packaging must be watertight. 
Sekundæremballasje skal være vanntett.
The packaging manufacturer or other authorised party's packing instructions, included with the secondary packaging, must be followed. 
Emballeringsanvisningene fra emballasjeprodusenten eller annen godkjent part, som følger med sekundæremballasjen, skal følges.
Secondary packaging must be at least 100 mm (four inches) in the smallest overall external dimension. 
Sekundæremballasjens minste ytre mål skal være minst 100 mm.
Secondary packaging must be large enough for shipping documents, such as an air waybill. 
Sekundæremballasjen skal være stor nok til å romme forsendelsesdokumenter, for eksempel et luftfraktbrev.
Outer packaging 
Ytre emballasje
The outer packaging must not contain more than 4 l or 4 kg. 
Den ytre emballasjen skal ikke inneholde mer enn 4 l eller 4 kg.