natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Closed Hydrolysis 
Lukket hydrolyse
Place the bottle containing the mixture prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2 in an oven (4.3) at 110 o C. 
Plasser flasken med blandingen tillaget i samsvar med 5.3.2.1 eller 5.3.2.2, i en tørkeovn (4.3) ved 110 o C.
During the first hour in order to prevent a build up of pressure (due to the evolution of gaseous substances) and to avoid explosion, place the screw cap over the top of the vessel. 
For å hindre trykkoppbygging (på grunn av gassutvikling) og unngå eksplosjon legges skrulokket løst på flasken i den første timen.
Do not close the vessel with the cap . 
Flasken må ikke lukkes med skrulokket.
After one hour close the vessel with the cap and leave in the oven (4.3) for 23 hours. 
Etter én time lukkes flasken med skrulokket og får stå videre i tørkeovnen (4.3) i 23 timer.
On completion of hydrolysis, remove the bottle from the oven, carefully open the cap of the bottle and place the bottle in an ice-water bath. 
Etter at hydrolysen er avsluttet, tas flasken ut av ovnen, skrulokket åpnes forsiktig og flasken plasseres i isbad.
Depending on the procedure for pH adjustment (5.3.3), quantitatively transfer the contents of the bottle to a 250 ml beaker or a 250 ml round-bottom flask, using citrate buffer (3.24). 
Avhengig av metoden for justering av pH-verdien (5.3.3) overføres flaskens innhold kvantitativt med sitratbufferløsning (3.24) til et 250 ml begerglass eller en 250 ml rundbunnet kolbe.
Adjustment of pH 
Justering av pH
Depending on the sodium tolerance of the amino acid analyser (4.9) proceed according to 5.3.3.1 or 5.3.3.2 for the pH adjustment. 
Avhengig av aminosyreanalysatorens (4.9) natriumtoleranse foretas justering av pH-verdien etter 5.3.3.1 eller 5.3.3.2.
For Chromatographic Systems (4.9) requiring a low sodium concentration 
For kromatografisystemer (4.9) som krever lav natriumkonsentrasjon
It is advisable to use an internal stock standard solution (3.27.3) when amino acid analysers requiring a low sodium concentration are employed (when the acid volume has to be reduced). 
Det anbefales å bruke en intern standardstamløsning (3.27.3) dersom det benyttes aminosyreanalysatorer som krever lav natriumkonsentrasjon (når syreinnholdet må reduseres).
Add 2 drops of 1-octanol (3.15) to the hydrolysate obtained in accordance with paragraph 5.3.2.3 or 5.3.2.4. 
Tilsett to dråper 1-oktanol (3.15) til hydrolysatet tillaget i samsvar med 5.3.2.3 eller 5.3.2.4.
Using a rotary evaporator (4.7) reduce the volume to 5-10 ml under vacuum at 40 o C. 
Reduser volumet til 5–10 ml ved hjelp av rotasjonsfordamperen (4.7) under vakuum ved 40 o C.
If the volume is accidentally reduced to less than 5 ml the hydrolysate must be discarded and the analysis recommenced. 
Dersom volumet ved et uhell reduseres til under 5 ml, må hydrolysatet kasseres og analysen gjentas.
Adjust the pH to 2,20 with sodium hydroxide solution (3.18) and proceed to paragraph 5.3.4. 
Juster pH-verdien til 2,20 med natriumhydroksidløsning (3.18) og fortsett med 5.3.4.
For all other Amino Acid Analysers (4.9) 
For alle andre aminosyreanalysatorer (4.9)
Take the hydrolysates obtained in accordance with 5.3.2.3 or 5.3.2.4 and partly neutralise them by carefully adding with stirring, 17 ml of sodium hydroxide solution (3.17), ensuring that the temperature is kept below 40 o C. 
Hydrolysatene framstilt etter 5.3.2.3 eller 5.3.2.4 nøytraliseres delvis ved forsiktig å tilsette 17 ml natriumhydroksidløsning (3.17) under omrøring, samtidig som temperaturen holdes under 40 o C.
Adjust the pH to 2,20 at room temperature using sodium hydroxide solution (3.17) and finally sodium hydroxide solution (3.18). 
Juster pH-verdien til 2,20 med natriumhydroksidløsning (3.17 og 3.18) ved romtemperatur.
Proceed to 5.3.4. 
Fortsett med 5.3.4.
Sample solution for chromatography 
Prøveløsning for kromatografi
Quantitatively transfer the pH adjusted hydrolysate (5.3.3.1 or 5.3.3.2) with citrate buffer (3.24) to a 200 ml graduated flask, and make up to the mark with buffer (3.24). 
Hydrolysatet (5.3.3.1 eller 5.3.3.2) som er justert til en pH-verdi på 2,2, overføres kvantitativt med sitratbufferløsning (3.24) til en 200 ml målekolbe som fylles opp med sitratbufferløsning (3.24) til merket.
If an internal standard has not already been used, add 2,00 ml of internal standard (3.27.3) and make up to the mark with citrate buffer (3.24). 
Dersom intern standard ikke allerede er brukt, tilsettes 2,00 ml intern standard (3.27.3), og det fylles opp med sitratbufferløsning (3.24) til merket.
Mix thoroughly. 
Bland grundig.
Proceed to the chromatography step (5.4). 
Fortsett med kromatografi (5.4).
Chromatography 
Kromatografi
Before chromatography bring the extract (5.2) or hydrolysate (5.3.4) to room temperature. 
Varm opp ekstraktet (5.2) eller hydrolysatet (5.3.4) til romtemperatur før kromatografien.
Shake the mixture and filter a suitable amount through a 0,22 μm membrane filter (4.5). 
Rist blandingen og filtrer en passende mengde gjennom et 0,22 μm membranfilter (4.5).
The resulting clear solution is subjected to ion exchange chromatography, using an amino acid analyser (4.9). 
Utfør ionebytterkromatografi på den klarede løsningen som er framstilt, ved hjelp av en aminosyreanalysator (4.9).
The injection may be performed manually or automatically. 
Injeksjonen kan foretas manuelt eller automatisk.
It is important that the same quantity of solution ±0,5 % is added to the column for the analysis of standards and samples except when an internal standard is used, and that the sodium:amino acid ratios in the standard and sample solutions are as similar as is practicable. 
Det er viktig at samme mengde løsning ± 0,5 % alltid tilsettes kolonnen for analyse av standardløsninger og prøveløsninger, unntatt der det brukes en intern standard, og forholdet mellom natrium og aminosyre i standardløsningene og prøveløsningene skal være så likt som mulig.
In general the frequency of calibration runs depends on the stability of the ninhydrin reagent and the analytical system. 
Generelt er antallet kalibreringsomganger avhengig av stabiliteten i ninhydrinreagensen og analysatorsystemet.
The standard or sample is diluted with citrate buffer (3.24) to give a peak area of the standard of 30 %-200 % of the sample amino acid peak area. 
Standardløsningen eller prøveløsningen fortynnes med sitratbufferløsning (3.24) slik at det blir et toppareal i standardløsningen på 30–200 % av topparealet for de enkelte aminosyrer i prøveløsningen.
The chromatography of amino acids will vary slightly according to the type of analyser employed and resin used. 
Kromatografien av aminosyrene vil variere noe alt etter hvilken type analysator og harpiks som benyttes.
The chosen system must be capable of separating the amino acids from each other and from the ninhydrin-positive materials. 
Systemet som velges, må være i stand til å separere aminosyrene fra hverandre og fra de øvrige ninhydrinpositive stoffene.
In the range of operation the chromatographic system must give a linear response to changes in the amounts of amino acids added to the column. 
Innenfor arbeidsområdet må det kromatografiske systemet gi en lineær respons på endringer i mengdene av aminosyrer som tilsettes kolonnen.
During the chromatography step the valley:peak height ratios mentioned below apply, when an equimolar solution (of the amino acids being determined) is analysed. 
Ved analyse av en ekvimolar løsning (av aminosyrene som skal bestemmes) skal det ved kromatografien oppnås de forhold mellom bunn- og topphøyde som er angitt nedenfor.
This equimolar solution must contain at least 30 % of the maximum load of each amino acid which can be accurately measured with the amino acid analyser system (4.9). 
Den ekvimolare løsningen må inneholde minst 30 % av den største mengden i hver aminosyre som kan måles nøyaktig med aminosyreanalysatorsystemet (4.9).
For separation of threonine-serine the valley:peak height ratio of the lower of the two overlapping amino acids on the chromatogram must not exceed 2:10. 
Ved separasjon av treonin og serin skal forholdet mellom bunn og topp for den laveste av de to overlappende toppene på kromatogrammet ikke overskride 2:10.
(if only cyst(e)ine, methionine, threonine and lysine are determined, insufficient separation from adjoining peaks will adversely influence the determination). 
(Dersom bare cyst(e)in, metionin, treonin og lysin skal bestemmes, vil utilstrekkelig separasjon fra nabotoppene innvirke negativt på bestemmelsen).
For all other amino acids the separation must be better than 1:10. 
For alle andre aminosyrer skal separasjonen være bedre enn 1:10.
The system must ensure that lysine is separated from ‘lysine artifacts’ and ornithine. 
Systemet må sikre at lysin separeres fra «lysin-artefakter» og ornitin.
The area of the sample and standard peaks is measured for each individual amino acid and the amount (X), in g amino acid per kg sample, is calculated as follows: 
Arealet av toppene i prøveløsningene og standardløsningen måles for hver enkelt aminosyre, og mengden (X) beregnes i g aminosyre per kg prøve:
X= (A×c×M×V)/(B×m×1 000)If an internal standard is used multiply by: 
X = (A × c × M × V) / (B × m × 1 000). Dersom det brukes en intern standard, multipliseres det med:
(D)/(C) 
(D) / (C)
peak area, hydrolysate or extract 
toppareal for hydrolysat eller ekstrakt
peak area, calibration standard solution 
toppareal for standardkalibreringsløsning
peak area, internal standard in hydrolysate or extract 
toppareal for intern standard i hydrolysat eller ekstrakt
peak area, internal standard, calibration standard solution 
toppareal for intern standard, standardkalibreringsløsning
molar weight of the amino acid being determined 
molvekt for de aminosyrene som bestemmes
concentration of standard in μmol/ml 
standardløsningens konsentrasjon i μmol/ml
Cystine and cysteine are both determined as cysteic acid in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as cystine (C 6 H 12 N 2 O 4 S 2 , M 240,30 g/mol) by using M 120,15 g/mol (= 0,5 x 240,30 g/mol). 
Både cystin og cystein bestemmes som cysteinsyre i hydrolysater av den oksiderte prøven, men beregnes som cystin (C 6 H 12 N 2 O 4 S 2 , M 240,30 g/mol) ved bruk av M 120,15 g/mol (= 0,5 x 240,30 g/mol).
Methionine is determined as methionine sulphone in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as methionine by using M of methionine: 
Metionin bestemmes som metioninsulfon i hydrolysater av den oksiderte prøven, men beregnes som metionin ved bruk av M av metionin:
149,21 g/mol. 
149,21 g/mol.
Added free methionine is determined after extraction as methionine, for the calculation the same M is used. 
Tilsatt fri metionin bestemmes etter ekstraksjon som metionin, mens samme M benyttes til beregningen.
The total dilution volume of extracts (F) for determination of free amino acids (5.2) is calculated as follows: 
Total fortynningsvolum av ekstrakter (F) for bestemmelse av frie aminosyrer (5.2) beregnes som følger:
F= ((100 ml×(10 ml+5 ml))/(10 ml))×((V)/(10)) 
F= ((100 ml × (10 ml + 5 ml)) / (10 ml)) × ((V) / (10))
Volume of final extract 
volum av endelig ekstrakt
Evaluation of the method 
Vurdering av metoden
The method has been tested in an intercomparison made at international level in 1990 using four different feed (mixed pig feed, broiler compound, protein concentrate, premixture). 
Metoden er blitt utprøvd ved en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier på internasjonalt plan i 1990 av fire forskjellige fôrvarer (svinefôrblanding, broilerfôrblanding, proteinkonsentrat, premiks).
Means in g/kg 
Middelverdi i g/kg
Amino Acid 
Aminosyre
Cyst(e)ine 
Cyst(e)in
Mixed Pig Feed 
Svinefôrblanding
n = 15 
n = 15
Broiler Compound 
Broilerfôrblanding
Protein Concentrate 
Proteinkonsentrat
Premixture 
Premiks
Number of participating laboratories. 
antall deltakende laboratorier
The repeatability expressed as ‘within laboratory standard deviation’ of the abovementioned intercomparison is given in the tables below: 
Repeterbarheten, uttrykt som «standardavvik i laboratorier» av de ovennevnte sammenlignende undersøkelser er oppført i tabellene nedenfor:
Within Laboratory Standard Deviation (S r ) in g/kg 
Standardavvik (S r ) i laboratorier i g/kg
Coefficient of Variation (%) for Within Laboratory Standard Deviation (S r ) 
Variasjonskoeffisient (%) for standardavvik (S r ) i laboratorier
Reference material 
Referansemateriale
The results for between laboratory standard deviation by the abovementioned intercomparison are given in the table below: 
Resultatene av standardavvik mellom laboratorier ved ovennevnte sammenlignende undersøkelser er oppført i tabellene nedenfor:
Between Laboratory Standard Deviation (S R ) in g/kg 
Standardavvik (S r ) mellom laboratorier i g/kg
Coefficient of Variation (%) for Between Laboratory Standard Deviation (S R ) 
Variasjonskoeffisient (%) for standardavvik (S r ) mellom laboratorier
Use of reference materials 
Bruk av referansemateriale
The correct application of the method shall be verified by making replicate measurements of certified reference materials when available. 
Det skal kontrolleres at metoden brukes korrekt ved å foreta gjentatte målinger med sertifiserte referansematerialer, når slike finnes.
Calibration with certified amino acid calibration solution is recommended. 
Det anbefales at sertifisert aminosyre-kalibreringsløsning brukes til kalibrering.
Because of differences between amino acid analysers the final concentrations of the calibration solutions of standard amino acids (see 3.27.4 and 3.27.5) and of the hydrolysate (see 5.3.4) shall be taken as a guideline. 
På grunn av forskjellene mellom aminosyreanalysatorer bør de endelige konsentrasjonene av kalibreringsløsningene av standardaminosyrene (se 3.27.4 og 3.27.5) og av hydrolysatet (se 5.3.4) betraktes som veiledende
The range of linear response of the apparatus has to be checked for all amino acids. 
Apparatets lineære responsområde skal kontrolleres for alle aminosyrer.
The standard solution is diluted with citrate buffer to give peak areas in the middle of the range. 
Standardløsningen fortynnes med sitratbufferløsning for å oppnå topparealer på midten av området.
Where high performance liquid chromatographic equipment is used to analyse the hydrolysates, the experimental conditions must be optimised in accordance with the manufacturer's recommendations. 
Dersom det benyttes utstyr for høytrykksvæskekromatografi til å analysere hydrolysater, skal prøveforholdene optimeres i samsvar med produsentens anbefalinger.
By applying the method to feed containing more than 1 % chloride (concentrate, mineral feeds, supplementary feeds) underestimation of methionine could occur and special treatment has to be done. 
Dersom metoden anvendes på fôrvarer som inneholder mer enn 1 % klorid (konsentrat, mineralfôr, tilskuddsfôr), kan det forekomme undervurdering av metionin, og det må foretas en særlig behandling.
DETERMINATION OF TRYPTOPHAN 
BESTEMMELSE AV TRYPTOFAN
The method makes the determination possible of the total and free tryptophan in feed. 
Dette er en metode for bestemmelse av totalinnholdet av tryptofan og innholdet av fritt tryptofan i fôrvarer.
It does not distinguish between D- and L- forms. 
Det skilles ikke mellom D-formen og L-formen.
For the determination of the total tryptophan, the sample is hydrolysed under alkaline conditions with saturated barium hydroxide solution and heated to 110 o C for 20 hours. 
For bestemmelse av totalinnholdet av tryptofan hydrolyseres prøven i et basisk miljø med en mettet bariumhydroksidløsning og holdes oppvarmet ved 110 o C i 20 timer.
After hydrolysis internal standard is added. 
Etter hydrolysen tilsettes intern standard.
For the determination of free tryptophan, the sample is extracted under mild acidic conditions in the presence of internal standard. 
For bestemmelse av fritt tryptofan ekstraheres prøven i et svakt surt miljø ved hjelp av intern standard.
The tryptophan and the internal standard in the hydrolysate or in the extract are determined by HPLC with fluorescence detection. 
Tryptofanet og den interne standarden i hydrolysatet eller ekstraktet bestemmes ved HPLC med fluorescensdetektor.
Double distilled water or water of equivalent quality must be used (conductivity < 10 μS/cm). 
Dobbeltdestillert vann eller vann av tilsvarende kvalitet (konduktivitet < 10 μS/cm).
Standard substance: tryptophan (purity/content ≥ 99 %) dried under vacuum over phosphorous pentoxide. 
Standard: tryptofan (renhet/innhold ≥ 99 %) tørket i vakuum over fosforpentoksid.
Internal standard substance: α-methyl-tryptophan (purity/content ≥ 99 %), dried under vacuum over phosphorous pentoxide. 
Intern standard: α-metyltryptofan (renhet/innhold ≥ 99 %) tørket i vakuum over fosforpentoksid.
Barium hydroxide octa-hydrate (care shall be taken not to expose the Ba(OH) 2 .8 H 2 O excessively to air in order to avoid formation of BaCO 3 , which could disturb the determination) (see observation 9.3). 
Bariumhydroksidoktahydrat (unngå å utsette Ba(OH) 2 .8 H 2 O for større mengder luft, ettersom det da kan dannes BaCO 3 som kan forstyrre bestemmelsen) (se merknad 9.3).
Ortho-phosphoric acid, w (w/w) = 85 %. 
Ortofosforsyre, w (w/w) = 85 %.
Hydrochloric acid, ρ 20 1,19 g/ml. 
Saltsyre, ρ 20 1,19 g/ml.
Methanol, equivalent to HPLC grade. 
Metanol, HPLC-kvalitet.
Hydrochloric acid, c = 6 mol/l: 
Saltsyre, c = 6 mol/l:
Hydrochloric acid, c = 0,1 mol/l: 
Saltsyre, c = 0,1 mol/l:
Ortho-phosphoric acid, c = 0,5 mol/l: 
Ortofosforsyre, c = 0,5 mol/l:
Take 34 ml ortho-phosphoric acid (3.6) and make up to 1 litre with water (3.1). 
Fortynn 34 ml ortofosforsyre (3.6) med vann (3.1) til 1 l.
Concentrated solution of tryptophan (3.2), c = 2,50 μmol/ml: 
Konsentrert tryptofanløsning (3.2), c = 2,50 μmol/ml:
In a 500 ml volumetric flask dissolve 0,2553 g tryptophan (3.2) in hydrochloric acid (3.13) and make up to the mark with hydrochloric acid (3.13). 
Løs opp 0,2553 g tryptofan (3.2) i saltsyre (3.13) i en 500 ml målekolbe og fyll opp med saltsyre (3.13) til merket.
Concentrated internal standard solution, c = 2,50 μmol/ml: 
Konsentrert intern standardløsning, c = 2,50 μmol/ml:
In a 500 ml volumetric flask dissolve 0,2728 g α-methyl-tryptophan (3.3) in hydrochloric acid (3.13) and make up to the mark with hydrochloric acid (3.13). 
Løs opp 0,2728 g α-metyltryptofan (3.3) i saltsyre (3.13) i en 500 ml målekolbe og fyll opp til merket med saltsyre (3.13).
Store at - 18 o C for a maximum of 4 weeks. 
Løsningen kan lagres ved –18 o C i høyst fire uker.
Calibration standard solution of tryptophan and internal standard: 
Standardkalibreringsløsning av tryptofan og intern standard:
Take 2,00 ml concentrated solution of tryptophan (3.15), and 2,00 ml of concentrated internal standard (α-methyl-tryptophan) solution (3.16). 
Fortynn 2,00 ml konsentrert tryptofanløsning (3.15) og 2,00 ml konsentrert løsning av intern standard (α-metyltryptofan) (3.16)
Dilute with water (3.1) and methanol (3.8) to approximately the same volume and to approximately the same concentration of methanol (10 %-30 %) as the finished hydrolysate. 
med vann (3.1) og metanol (3.8) til omtrent samme volum og metanolkonsentrasjon (10–30 %) som det ferdige hydrolysatet.
This solution must be prepared freshly before use. 
Denne løsningen skal tillages like før bruk.
Protect from direct sunlight during preparation. 
Løsningen beskyttes mot direkte sollys under tillaging.
1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol. 
1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol.
Ethanolamine w (w/w) > 98 %. 
Etanolamin w (w/w) > 98 %
Solution of 1 g 1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol (3.19) in 100 ml methanol (3.8). 
Løsning av 1 g 1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol (3.19) i 100 ml metanol (3.8).
Mobile phase for HPLC: 
Mobil fase for HPLC:
3,00 g acetic acid (3.18) + 900 ml water (3.1) +50,0 ml solution (3.21) of 1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol (3.19) in methanol (3.8) (1g/100ml). 
3,00 g eddiksyre (3.18) + 900 ml vann (3.1) + 50,0 ml løsning (3.21) av 1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol (3.19) i metanol (3.8) (1 g/100 ml).
Adjust pH to 5,00 using ethanolamine (3.20). 
Juster pH til 5,00 med etanolamin (3.20).
Make up to 1000 ml with water (3.1). 
Fyll på med vann (3.1) til 1 000 ml.
HPLC equipment with a spectrofluorometric detector. 
HPLC-utstyr med spektrofluorimetrisk detektor.
Liquid chromatographic column, 125 mm x 4 mm, C 18 , 3 μm packing, or equivalent. 
Væskekromatografikolonne, 125 mm × 4 mm, C 18 , 3 µm kolonnepakking eller tilsvarende.
pH-meter. 
pH-meter.
Polypropylene flask, capacity 125 ml, with wide neck and screw cap. 
Polypropylenkolbe, 125 ml, med vid hals og skrukork.
Membrane filter, 0,45 μm. 
Membranfilter, 0,45 μm.
Autoclave, 110 (± 2) o C, 1,4 (±0,1) bar. 
Autoklav, 110 (± 2) o C, 1,4 (±0,1) bar.
Vortex mixer. 
Vortex blandeapparat.
Preparation of samples 
Tillaging av prøven
Samples with high fat content shall be extracted with light petroleum (3.9) prior to grinding. 
Prøver med høyt fettinnhold må ekstraheres med petroleumseter (3.12) før de males.
Determination of free tryptophan (extract) 
Bestemmelse av fritt tryptofan (ekstrakt)
Weigh to the nearest 1 mg an appropriate amount (1-5 g) of the prepared sample (5.1), into a conical flask. 
Vei opp en passende mengde (1–5 g) av den tillagde prøven (5.1) med en nøyaktighet på 1 mg i en erlenmeyerkolbe.
Add 100,0 ml hydrochloric acid, (3.13) and 5,00 ml concentrated internal standard solution (3.16). 
Tilsett 100,0 ml saltsyre (3.13) og 5,00 ml konsentrert intern standardløsning (3.16).
Shake or mix for 60 min. using a mechanical shaker or a magnetic stirrer (4.7). 
Bland eller rist blandingen i 60 min med et mekanisk risteapparat eller en magnetrører (4.7).
Allow the sediment to settle and pipette 10,0 ml of the supernatant solution into a beaker. 
Etter bunnfelling pipetteres 10,0 ml av supernatanten over i et begerglass.
Add 5 ml ortho-phosphoric acid (3.14). 
Tilsett 5 ml ortofosforsyre (3.14)
Adjust the pH to 3 using sodium hydroxide (3.10). 
og juster pH-verdien til 3,0 med natriumhydroksid (3.10).
Add sufficient methanol (3.8) to give a concentration of between 10 % and 30 % of methanol in the final volume. 
Tilsett tilstrekkelig metanol (3.8) til at konsentrasjonen blir 10–30 % i sluttvolumet.
Transfer to a volumetric flask of appropriate volume and dilute with water to a volume necessary for the chromatography (approx. the same volume as the calibration standard solution (3.17)). 
Overfør til en målekolbe av passende størrelse og fortynn med vann til en mengde som er nødvendig for kromatografien (omtrent samme mengde som standardkalibreringsløsningen (3.17)).
Protect standard solution and extracts against direct sunlight. 
Standardløsning og ekstrakter må beskyttes mot direkte sollys.
If it is not possible to analyse the extracts the same day, the extracts may be stored at 5 o C for a maximum of 3 days. 
Dersom ekstraktene ikke kan analyseres samme dag, kan de oppbevares ved 5 o C i høyst tre døgn.
Determination of total tryptophan (hydrolysate) 
Bestemmelse av totalinnhold av tryptofan (hydrolysat)
Weigh to the nearest 0,2 mg from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1) into the polypropylene flask (4.4). 
Vei opp 0,1–1 g av den tillagde prøven (5.1) med en nøyaktighet på 0,2 mg i polypropylenkolben (4.4).
Mix on a vortex mixer (4.8) or magnetic stirrer (4.7). 
Bland med et Vortex blandeapparat (4.8) eller en magnetrører (4.7).
Leave the teflon coated magnet in the mixture. 
La den teflonbelagte magneten være igjen i blandingen.
Wash down the walls of the vessel with 4 ml water. 
Veggene i beholderen vaskes ned med 4 ml vann.
Put on the screw cap and close the flask loosely. 
Sett skrukorken løst på kolben
Transfer to an autoclave (4.6) with boiling water and steam for 30-60 minutes. 
og sett den inn i autoklaven (4.6) med kokende vann i 30–60 minutter.
Close the autoclave and autoclave at 110 (± 2) o C for 20 hours. 
Lukk autoklaven og autoklaver ved 110 (± 2) o C i 20 timer.
Before opening the autoclave reduce the temperature to just under 100 o C. 
Før åpning senkes temperaturen i autoklaven til litt under 100 o C.
In order to avoid crystallisation of Ba(OH) 2 · 8 H 2 O, add to the warm mixture 30 ml water which is at room temperature. 
For å unngå krystallisering av Ba(OH) 2 · 8 H 2 O, tilsettes den varme blandingen 30 ml romtemperert vann.
Shake or stir gently. 
Rist eller rør forsiktig.