natgillin/translations-raw huggingface dataset:
(S = sediment weight (mg), c = correction factor (%) for the estimated portion of terrestrial animal bone constituents in the sediment, d = correction factor (%) for the estimated portion of fish bones and scale fragments in the sediment, f = correction factor for the proportion of bone in the constituents of animal origin in the sample examined, W = weight of the sample material for the sedimentation (mg)). 
(S = sedimentvekt (mg), c = korreksjonsfaktor (%) for den beregnede delen av bestanddeler av terrestriske dyrebein i sedimentet, d = korreksjonsfaktor (%) for den beregnede delen av fragmenter av fiskebein og skjell i sedimentet, f = korreksjonsfaktor for andelen av bein i bestanddelene av animalsk opprinnelse i prøven som undersøkes, W = vekt av prøvematerialet for sedimentering (mg)).
Expression of the result of the examination 
angivelse av resultatene av undersøkelsen
The report shall at least contain information on the presence of constituents derived from terrestrial animals and from fishmeal. 
Rapporten skal minst inneholde opplysninger om tilstedeværelsen av bestanddeler som stammer fra terrestriske dyr og fiskemel.
The different cases shall be reported in the following way: 
De ulike tilfellene skal rapporteres som følger:
With regard to the presence of constituents derived from terrestrial animals: 
Når det gjelder tilstedeværelse av bestanddeler som stammer fra terrestriske dyr:
as far as was discernible using a microscope, no constituents derived from terrestrial animals were found in the submitted sample, 
i den grad det har vært mulig å fastslå ved bruk av mikroskop, ble det ikke funnet bestanddeler som stammer fra terrestriske dyr i den innsendte prøven,
as far as was discernible using a microscope, constituents derived from terrestrial animals were found in the submitted sample. 
i den grad det har vært mulig å fastslå ved bruk av mikroskop, ble det funnet bestanddeler som stammer fra terrestriske dyr i den innsendte prøven,
and, with regard to the presence of fishmeal: 
og når det gjelder tilstedeværelsen av fiskemel:
as far as was discernible using a microscope, no constituents derived from fish were found in the submitted sample, 
i den grad det har vært mulig å fastslå ved bruk av mikroskop, ble det ikke funnet bestanddeler som stammer fra fisk i den innsendte prøven,
as far as was discernible using a microscope, constituents derived from fish were found in the submitted sample. 
i den grad det har vært mulig å fastslå ved bruk av mikroskop, ble det funnet bestanddeler som stammer fra fisk i den innsendte prøven,
In case constituents derived from fish or terrestrial animals are found, the report of the examination result, if required, can further indicate an estimation of the amount of constituents detected (x %, < 0,1 %, 0,1-0,5 %, 0,5-5 % or > 5 %), further specification of the type of terrestrial animal if possible and the animal constituents identified (muscle fibres, cartilage, bones, horn, hair, bristles, feathers, blood, egg shells, fish bones, scales). 
I de tilfeller der bestanddeler som stammer fra fisk eller terrestriske dyr påvises, kan undersøkelsesrapporten om nødvendig gi en nærmere beregning av mengden bestanddeler som er påvist (x %, < 0,1 %, 0,1–0,5 %, 0,5–5 % eller > 5 %), og om mulig en nærmere angivelse av typen terrestrisk dyr og hvilke animalske bestanddeler som er påvist (muskelfibre, brusk, bein, horn, hår, bust, fjær, blod, eggeskall, fiskebein, skjell).
For the case where the amount of animal ingredients is estimated the correction factor f used shall be mentioned. 
I de tilfeller der mengden av animalske bestanddeler er beregnet, skal det oppgis hvilken korreksjonsfaktor f som er brukt.
For the cases where bone constituents from terrestrial animals are identified, the report shall contain the additional clause: 
I de tilfeller der bestanddeler av bein fra terrestriske dyr påvises, skal rapporten inneholde følgende tilleggsopplysning:
‘The possibility that the above constituents are derived from mammals cannot be excluded.’ 
«Det kan ikke utelukkes at ovennevnte bestanddeler stammer fra pattedyr.»
This additional clause is not necessary in cases where the bone fragments from terrestrial animals have been specified as bone fragments from poultry or mammals. 
Det er ikke nødvendig å ta med denne tilleggsopplysningen der beinfragmentene fra terrestriske dyr allerede er angitt som beinfragmenter fra fjørfe eller pattedyr.
Optional protocol for analysing fat or oil 
valgfri protokoll for analyse av fett eller olje
The following protocol may be used for the analysis of fat or oil: 
Følgende protokoll kan benyttes for analyse av fett eller olje:
If the fat is solid, it is warmed for example in a microwave oven until it is liquid. 
Hvis fettet er i fast form, kan det f.eks. varmes opp i mikrobølgeovn til det blir flytende.
By using a pipette, 40 ml of fat is transferred from the bottom of the sample to a centrifugation tube. 
40 ml fett overføres med pipette fra bunnen av prøven til et sentrifugeringsrør.
Centrifugate during 10 minutes at 4000 r.p.m. 
Sentrifuger i 10 minutter ved 4000 opm.
If the fat is solid after centrifugation, it is warmed once more in an oven until it is liquid. 
Dersom fettet er i fast form etter sentrifugeringen, varmes det opp igjen i ovn til det blir flytende.
Repeat the centrifugation during 5 minutes at 4000 r.p.m. 
Gjenta sentrifugeringen i 5 minutter ved 4000 opm.
By using a small spoon or a spatula one half of the decanted impurities is transferred to a small Petri dish or a microscopic slide for microscopic identification of a possible content of animal constituents (meat fibres, feathers, bone fragments, …). 
Halvparten av de sedimenterte urenhetene overføres med en liten skje eller spatel til en liten petriskål eller et objektglass for mikroskopisk identifikasjon av mulig innhold av animalske bestanddeler (kjøttfibre, fjær, beinfragmenter osv.).
As embedding agent for microscopy paraffin oil or glycerol is recommended. 
Som prepareringsmiddel for mikroskopi anbefales parafinolje eller glyserol.
The remaining impurities are used for sedimentation as described in point 6.2. 
Resten av urenhetene brukes til sedimentering som beskrevet i 6.2.
METHOD OF CALCULATING THE ENERGY VALUE OF POULTRYFEED 
METODE FOR Å BEREGNE ENERGIVERDIEN I FJØRFEFÔR
Method of calculation and expression of energy value 
Beregningsmetode og angivelse av energiverdi
The energy value of compound poultry feed must be calculated in accordance with the formula set out below on the basis of the percentages of certain analytical components of the feed. 
Energiverdien i fôrblandinger for fjørfe skal beregnes etter formelen nedenfor ut fra visse analytiske bestanddelers prosentvise andel av fôrvaren.
This value is to be expressed in megajoules (MJ) of metabolisable energy (ME), corrected for nitrogen, per kilogram of compound feed: 
Verdien skal angis i megajoule (MJ) omsettelig energi (OE), korrigert for nitrogen, per kg fôrblanding:
MJ/kg of ME = 0,1551 × % crude protein +0,3431 × % crude fat +0,1669 × % starch +0,1301 × % total sugar (expressed as sucrose). 
MJ/kg OE = 0,1551 x % råprotein + 0,3431 x % råfett + 0,1669 x % stivelse + 0,1301 x % samlet sukkerinnhold (uttrykt som sukrose).
Tolerances applicable to declared values 
Toleranse for angitte verdier
If the official inspection reveals a discrepancy (increased or reduced energy value of the feed) between the result of the inspection and the declared energy value, a minimum tolerance of 0,4 MJ/kg of ME shall be permitted. 
Dersom det ved den offentlige kontrollen fastslås et avvik (økning eller reduksjon i fôrvarens energiverdi) mellom kontrollresultatet og den angitte energiverdi, skal det benyttes en minimumstoleranse på 0,4 MJ/kg av OE.
After application of the above formula, the result obtained must be given to one decimal place. 
Resultatet som oppnås ved anvendelsen av ovennevnte formel, skal angis med en nøyaktighet på én desimal.
Sampling and analysis methods 
Prøvetakings- og analysemetoder
Sampling of the compound feed and determination of the content of analytical components indicated in the method of calculation must be performed in accordance with the Community sampling methods and analysis methods for the official control of feed respectively. 
Prøvetaking av fôrblandinger og bestemmelse av innholdet av analytiske bestanddeler angitt i beregningsmetoden, skal foretas etter henholdsvis prøvetakings- og analysemetodene for offentlig kontroll av fôrvarer fastsatt av Fellesskapet.
The following are to be applied: 
Følgende metoder får anvendelse:
for determining the crude fat content: procedure B of the method for the determination of crude oils and fats, laid down in Part H of Annex III. 
ved bestemmelse av fettinnhold: framgangsmåte B i metode for bestemmelse av råoljer og -fett fastsatt i vedlegg III del H.
for determining the starch content: the polarimetric method, laid down in Part L of Annex III. 
ved bestemmelse av stivelsesinnhold: den polarimetriske metode fastsatt i vedlegg III del L.
METHODS OF ANALYSIS TO CONTROL ILLEGAL PRESENCE OF NO LONGER AUTHORISED ADDITIVES IN FEED 
ANALYSEMETODER FOR KONTROLL AV FOREKOMST I FÔRVARER AV TILSETNINGSSTOFFER SOM IKKE LENGER ER TILLATT
Important notes: 
Viktig:
More sensitive methods of analysis than the methods of analysis mentioned in this Annex can be used to detect the illegal presence of no longer authorised additives in feed. 
Mer følsomme metoder for analyse enn dem som er nevnt i dette vedlegg kan benyttes for påvisning fôrvarer av tilsetningsstoffer som ikke lenger er tillatt.
The methods of analysis mentioned in this Annex shall be used for confirmatory purposes. 
Analysemetodene som er omhandlet i dette vedlegg, skal benyttes for bekreftelsesformål.
DETERMINATION OF METHYL BENZOQUATE 
BESTEMMELSE AV METYLBENZOKAT
7-benzyloxy-6-butyl-3-methoxycarbonyl-4-quinolone 
7-benzyloksy-6-butyl-3-metoksykarbonyl-4-kinolon
This method makes it possible to determine the level of methyl benzoquate in feed. 
Denne metoden gjør det mulig å bestemme innholdet av metylbenzokat i fôrvarer.
Methyl benzoquate is extracted from the sample with methanolic methanesulfonic acid solution. 
Metylbenzokat ekstraheres fra prøven med en løsning av metansulfonsyre i metanol.
The extract is purified with dichloromethane, by ion-exchange chromatography and then again with dichloromethane. 
Ekstraktet renses med diklormetan, ved ionebytterkromatografi og deretter igjen med diklormetan.
The methyl benzoquate content is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) with an UV detector. 
Innholdet av metylbenzokat bestemmes ved reversfase høytrykksvæskekromatografi (HPLC) ved bruk av en UV-detektor.
HPLC mobile phase 
HPLC mobil fase
Mixture of methanol (3.2) and water (equivalent to HPLC grade) 75 + 25 (v + v). 
Blanding av metanol (3.2) og vann (HPLC-kvalitet) 75 + 25 (v + v).
Filter through a 0,22 μm filter (4.5) and degas the solution (e.g. by ultrasonification for 10 minutes). 
Filtrer løsningen gjennom et 0,22 μm filter (4.5) og fjern luften (f.eks. ved ultralydbehandling i 10 minutter).
Methanesulfonic acid solution, c = 2 % 
Metansulfonsyreløsning, c = 2 %.
Dilute 20,0 ml methanesulfonic acid to 1000 ml with methanol (3.2). 
Løs opp 20,0 ml metansulfonsyre i metanol (3.2) til 1000 ml.
Hydrochloric acid solution, c = 10 % 
Saltsyreløsning, c = 10 %
Dilute 100 ml hydrochloric acid (ρ 20 1,18 g/ml) to 1000 ml with water. 
Løs opp 100 ml saltsyre (ρ 20 1,18 g/ml) i vann til 1 000 ml.
Cation-exchange resin Amberlite CG-120 (Na), 100 to 200 mesh 
Kationebytterharpiks Amberlite CG-120 (Na), 100–200 mesh
The resin is pretreated before use. 
Harpiksen behandles før bruk.
Slurry 100 g resin with 500 ml hydrochloric acid solution (3.5) and heat on a hot plate to boiling, stirring continuously. 
Bland 100 g harpiks med 500 ml saltsyreløsning (3.5) og varm opp til kokepunktet på en kokeplate under stadig omrøring.
Allow to cool and decant off the acid. 
La blandingen kjølne, og hell av syren.
Filter through a filter paper under vacuum. 
Filtrer deretter harpiksen gjennom filterpapir under vakuum.
Wash the resin twice with 500 ml portions of water and then with 250 ml of methanol (3.2). 
Vask harpiksen med 500 ml vann to ganger og deretter med 250 ml metanol (3.2).
Rinse the resin with a further 250 ml portion of methanol and dry by passing air through the filter cake. 
Skyll harpiksen med ytterligere 250 ml metanol, og tørk ved å sende en luftstrøm gjennom filterkaken.
Store the dried resin in a stoppered bottle. 
Oppbevar den tørkede harpiksen i en flaske med propp.
Standard substance: pure methyl benzoquate (7-benzyloxy-6-butyl-3-methoxycarbonyl-4-quinolone) 
Standard: ren metylbenzokat (7-benzyloksy-6-butyl-3-metoksykarbonyl-4-kinolon)
Methyl benzoquate stock standard solution, 500 μg/ml 
Metylbenzokat-standardstamløsning, 500 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg, 50 mg of standard substance (3.7), dissolve in methanesulfonic acid solution (3.4) in a 100 ml graduated flask, make up to the mark and mix. 
Vei opp 50 mg standard (3.7) med en nøyaktighet på 0,1 mg, løs opp stoffet i metansulfonsyreløsning (3.4) i en 100 ml målekolbe, fyll opp til merket og bland.
Methyl benzoquate intermediate standard solution, 50 μg/ml 
Metylbenzokat-standardmellomløsning, 50 μg/ml
Transfer 5,0 ml of methyl benzoquate stock standard solution (3.7.1) into a 50 ml graduated flask, make up to the mark with methanol (3.2) and mix. 
Overfør 5,0 ml av standardstamløsningen (3.7.1) til en 50 ml målekolbe, fyll opp til merket med metanol (3.2) og bland.
Transfer 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 and 5,0 ml of methyl benzoquate intermediate standard solution (3.7.2) into a series of 25 ml graduated flasks. 
Overfør henholdsvis 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 og 5,0 ml av standardløsningen (3.7.2.) til en rekke 25 ml målekolber.
Make up to the mark with the mobile phase (3.3) and mix. 
Fyll opp til merket med mobil fase (3.3) og bland.
These solutions have concentrations of 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 and 10,0 μg/ml methyl benzoquate respectively. 
Disse løsningene har konsentrasjoner av metylbenzokat på henholdsvis 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 og 10,0 μg/ml.
Laboratory shaker 
Risteapparat
Glass column (250 mm × 15 mm) fitted with a stopcock and reservoir of approximately 200 ml capacity 
Glasskolonne (250 mm x 15 mm) utstyrt med stoppekran og en beholder med volum på ca. 200 ml
300 mm × 4 mm, C 18 , 10 μm packing or equivalent 
300 mm × 4 mm, C 18 , 10 μm pakning eller tilsvarende.
A blank feed shall be analysed to check that neither methyl benzoquate nor interfering substances are present. 
En blindprøve bør analyseres for å kontrollere at det verken er metylbenzokat eller forstyrrende stoffer til stede.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of methyl benzoquate, similar to that present in the sample. 
En gjenfinningsprøve bør utføres ved å analysere blindprøven som er tilsatt like mye metylbenzokat som mengden som finnes i prøven.
To fortify at a level of 15 mg/kg, add 600 μl of the stock standard solution (3.7.1) to 20 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2). 
For å øke konsentrasjonen til 15 mg/kg, tilsettes 600 μl av standardstamløsningen (3.7.1) til en 20 g blindprøve, bland og vent i 10 minutter før ekstraksjonen (5.2) innledes.
Note for the purpose of this method, the blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis methyl benzoquate must not be detected. 
Merk at til denne metoden bør blindprøven være av tilsvarende type som prøven, og ved analyse skal metylbenzokat ikke påvises i blindprøven.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 20 g of the prepared sample and transfer to a 250 ml conical flask. 
Vei opp 20 g av den tilberedte prøven med en nøyaktighet på 0,01 g i en 250 ml erlenmeyerkolbe.
Add 100,0 ml of methanesulfonic acid solution (3.4) and shake mechanically (4.1) for 30 minutes. 
Tilsett 100,0 ml metanolsulfonsyreløsning (3.4) og rist i 30 minutter på risteapparatet (4.1).
Filter the solution through a filter paper and retain the filtrate for the liquid-liquid partition step (5.3). 
Filtrer løsningen gjennom et filterpapir og oppbevar filtratet for væske-væske-fordeling (5.3).
Liquid-liquid partition 
Væske-væske-fordeling
Transfer into a 500 ml separating funnel containing 100 ml of hydrochloric acid solution (3.5), 25,0 ml of the filtrate obtained in (5.2). 
Overfør 25,0 ml av filtratet (5.2) til en 500 ml skilletrakt som inneholder 100 ml saltsyreløsning (3.5).
Add 100 ml dichloromethane (3.1) to the funnel and shake for one minute. 
Tilsett 100 ml diklormetan (3.1) til trakten, og rist i ett minutt.
Allow the layers to separate and run off the lower (dichloromethane) layer into a 500 ml round-bottomed flask. 
Etter at de to fasene har skilt seg, tappes den nederste fasen (diklormetan) i en 500 ml rundbunnet kolbe.
Repeat the extraction of the aqueous phase with two further 40-ml portions of dichloromethane and combine these with the first extract in the round-bottomed flask. 
Gjenta ekstraksjonen av den vandige fasen med ytterligere to mengder diklormetan på 40 ml, og bland disse med det første ekstraktet i den rundbunnede kolben.
Dissolve the residue in 20 to 25 ml methanol (3.2), stopper the flask and retain the whole of the extract for ion-exchange chromatography (5.4). 
Løs opp restmengden i 20–25 ml metanol (3.2), sett propp i kolben, og oppbevar hele ekstraktet til ionebytterkromatografi (5.4).
Ion-exchange chromatography 
Ionebytterkromatografi
Preparation of the cation-exchange column 
Tillaging av kationebytterkolonnen
Insert a plug of glass wool into the lower end of a glass column (4.3). 
Sett en glassullpropp i den nederste enden av en glasskolonne (4.3).
Prepare a slurry of 5,0 g of the treated cation-exchange resin (3.6) with 50 ml of hydrochloric acid (3.5), pour into the glass column and allow to settle. 
Lag til en oppslemming av 5,0 g av den behandlede kationebytterharpiksen (3.6) og 50 ml saltsyre (3.5), overfør blandingen til glasskolonnen, og gi den tid til å sette seg.
Run out the excess acid to just above the resin surface and wash the column with water until the effluent is neutral to litmus. 
tapp av overskuddet av syre til like over harpiksoverflaten og vask kolonnen med vann til vaskevannet er nøytralt overfor lakmus.
Transfer 50 ml methanol (3.2) onto the column and allow to drain down to the resin surface. 
Overfør 50 ml metanol (3.2) til kolonnen og la den synke ned til harpiksoverflaten.
Column chromatography 
Kolonnekromatografi
By means of a pipette, carefully transfer the extract obtained in (5.3) onto the column. 
Overfør 5,0 ml av det tillagde ekstraktet (5.3) forsiktig med pipette til kolonnen.
Rinse the round-bottomed flask with two portions of 5 to 10 ml methanol (3.2) and transfer these washings to the column. 
Skyll den rundbunnede kolben med to mengder på 5–10 ml metanol (3.2), og overfør skyllevæsken til kolonnen.
Run the extract down to the resin surface and wash the column with 50 ml methanol, ensuring that the flow rate does not exceed 5 ml per minute. 
La ekstraktet synke til harpiksoverflaten og vask kolonnen med 50 ml metanol. Gjennomstrømningshastigheten må ikke overskride 5 ml per minutt.
Discard the effluent. 
Fjern den eluerte metanolen.
Elute the methyl benzoquate from the column using 150 ml of methanesulfonic acid solution (3.4) and collect the column eluate in a 250 ml conical flask. 
Eluer metylbenzokat fra kolonnen ved bruk av 150 ml metansulfonsyreløsning (3.4) og samle opp eluatet fra kolonnen i en 250 ml erlenmeyerkolbe.
Transfer the eluate obtained in (5.4.2) into a 1 litre separating funnel. 
Overfør eluatet fra operasjonen i (5.4.2) til en skilletrakt på 1 liter.
Rinse the conical flask with 5 to 10 ml methanol (3.2) and combine the washings with the contents of the separating funnel. 
Skyll erlenmeyerkolben med 5–10 ml metanol (3.2), og bland skyllevæsken med innholdet i skilletrakten.
Add 300 ml of hydrochloric acid solution (3.5) and 130 ml of dichloromethane (3.1). 
Tilsett 300 ml saltsyreløsning (3.5) og 130 ml diklormetan (3.1).
Shake for 1 minute and allow the phases to separate. 
Rist i ett minutt og la de to fasene skilles.
Run off the lower (dichloromethane) layer into a 500 ml round bottomed flask. 
Tapp den nederste fasen (diklormetan) i en 500 ml rundbunnet kolbe.
Repeat the extraction of the aqueous phase with two further 70 ml portions of dichloromethane and combine these extracts with the first in the round-bottomed flask. 
Gjenta ekstraksjonen av den vandige fasen med ytterligere to mengder diklormetan, hver på 70 ml, og bland disse ekstraktene med det første i den rundbunnede kolben.
Evaporate the dichloromethane extract down to dryness on the rotary evaporator (4.2) operating under reduced pressure at 40 o C. 
Damp inn diklormetanekstraktet til tørrhet på rotasjonsfordamperen (4.2) under redusert trykk ved 40 o C.
Dissolve the residue in the flask with approximately 5 ml of methanol (3.2) and transfer this solution quantitatively to a 10 ml graduated flask. 
Løs opp restmengden med ca. 50 ml metanol (3.2), og overfør løsningen kvantitativt til en 10 ml målekolbe.
Rinse the round-bottomed flask with a further two portions of 1 to 2 ml of methanol and transfer these to the graduated flask. 
Skyll den rundbunnede kolben med ytterligere to mengder på 1–2 ml metanol og overfør væsken til målekolben.
Make up to the mark with methanol and mix. 
Fyll opp til merket med metanol og bland.
An aliquot portion is filtered through a membrane filter (4.6). 
Filtrer en delmengde gjennom et membranfilter (4.6).
Reserve this solution for HPLC-determination (5.6). 
Oppbevar denne løsningen til HPLC-bestemmelsen (5.6).
The following conditions are offered for guidance, other conditions may be used provided that they give equivalent results: 
Følgende vilkår er veiledende. Andre vilkår kan brukes forutsatt at de gir de samme resultater.
liquid chromatographic column (4.4.1), 
Væskekromatografikolonne (4.4.1),
HPLC mobile phase: methanol-water mixture (3.3), 
– HPLC mobil fase: blanding av metanol og vann (3.3),
flow rate: 
gjennomstrømningshastighet:
1 to 1,5 ml/minute, 
1–1,5 ml/min,
detection wavelength: 
detektorbølgelengde:
Check the stability of the chromatographic system, injecting the calibration solution (3.7.3) containing 4 μg/ml several times, until constant peak heights or areas and retention times are achieved. 
Kontroller stabiliteten til det kromatografiske systemet ved å injisere kalibreringsløsningen (3.7.3) som inneholder 4 μg/ml flere ganger, til det oppnås konstante topphøyder og retensjonstider.
Inject each calibration solution (3.7.3) several times and measure the peak heights (areas) for each concentration. 
Injiser hver kalibreringsløsning (3.7.3) flere ganger og mål topphøydene (-arealene) for hver konsentrasjon.
Inject the sample extract (5.5) several times, using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the methyl benzoquate peaks. 
Injiser prøveekstraktet (5.5) flere ganger, ved bruk av samme mengde som for kalibreringsløsningene og bestem den gjennomsnittlige topphøyden (-arealet) av metylbenzokattoppene.
Determine the concentration of the sample solution in μg/ml from the mean height (area) of the methyl benzoquate peaks of the sample solution by reference to the calibration graph (5.6.2). 
Bestem konsentrasjonen i prøveløsningen i μg/ml ut fra den gjennomsnittlige topphøyden (-arealet) av prøveløsningens metylbenzokattopper med henvisning til kalibreringskurven (5.6.2).
The content of methyl benzoquate w (mg/kg) of the sample is given by the following formula: 
Innholdet av metylbenzokat w (mg/kg) i prøven beregnes etter følgende formel:
w =(c × 40)/(m)in which: 
w=(c×40)/(m) der:
methyl benzoquate concentration of the sample solution in μg/ml, 
prøveløsningens metylbenzokatkonsentrasjon i μg/ml,