natgillin/translations-raw huggingface dataset:
When appropriate, in order to optimise the reaction conditions and to suit the equipment and conditions in their own laboratory, the laboratories may apply modifications to the methods described in this Annex, provided that an equal sensitivity and specificity can be demonstrated. 
Laboratoriene kan for å optimalisere reaksjonsvilkårene og ta hensyn til utstyret og vilkårene i det aktuelle laboratoriet, eventuelt endre de metodene som er beskrevet i dette vedlegg, forutsatt at samme følsomhet og spesifisitet kan påvises.
OsHV-1 μvar is defined in Article 1 of this Regulation. 
OsHV-1 μvar er definert i artikkel 1 i denne forordning.
Equipment and environmental conditions 
Utstyr og miljøforhold
The diagnostic test used for OsHV-1 μvar detection and identific ation by PCR requires the equipment and environmental conditions classically used for PCR assays as follows: 
Den diagnostiske prøvingen som brukes til påvisning av OsHV-1 μvar og identifisering av PCR, krever samme utstyr og miljøforhold som tradisjonelt benyttes til PCR-analyser, det vil si:
A closed hood equipped with an UV producing system to eliminate potential contaminations when preparing PCR mix. 
et lukket avtrekksskap utstyrt med en innretning som sender ut UV-stråler for å fjerne eventuelle forurensninger ved tilberedning av PCR-blanding,
Two complete sets of pipettes (2 μl; 
to komplette sett med pipetter (2 μl,
20 μl; 
20 μl,
200 μl and 1000 μl), the first one for DNA extraction, and the second one for PCR mix preparation. 
200 μl og 1000 μl); det første for DNA-ekstraksjon, det andre for tilberedning av PCR-blanding,
Three different pipettes: one pipette (2 μl) to dispense samples in PCR mix, one pipette (20 μl) for EB sampling and another pipette (20 μl) to load PCR products in agarose gels. 
tre forskjellige pipetter: en pipette (2 μl) til å overføre prøver til PCR-blanding, en pipette (20 μl) til EB-prøvetaking og en pipette (20 μl) til å anbringe PCR-produkter i agarosegel.
Filter pipette tips (2 μl; 
pipettespisser med filter (2 μl,
200 μl and 1000 μl) for DNA extraction, PCR mix preparation and sample dispensing. 
200 μl og 1000 μl) for DNA-ekstraksjon, tilberedning av PCR-blanding og overføring av prøver,
Pipette tips (20 μl) to collect EB and to lo ad amplification products in agarose gel. 
pipettespisser (20 μl) til å samle inn EB og anbringe amplifikasjonsprodukter i agarosegel,
A thermal cycler to perform amplifications. 
en termosykler til å utføre amplifikasjoner,
A horizontal electrophoresis system for PCR products electrophoresis. 
en horisontal elektroforeseinnretning til elektroforese av PCR-produkter,
An UV table to observe PCR products after agarose gel electrophoresis. 
et UV-bord til observasjon av PCR-produkter etter elektroforese i agarosegel,
A system to acquire pictures of the gels. 
et system for å ta bilde av gelene.
The manipulator must wear a lab coat and some gloves during all the different steps described bellow. 
Vedkommende som utfører prøvingen, skal ha på seg laboratoriefrakk og hansker under alle de forskjellige trinnene som er beskrevet nedenfor.
Lab coat and gloves must be changed preferably after each main step: DNA extraction, preparation of PCR mix, sample dispensing, amplification and gel loading. 
Laboratoriefrakk og hansker skal helst skiftes etter hvert hovedtrinn: DNA-ekstraksjon, tilberedning av PCR-blanding, overføring av prøver, amplifikasjon og anbringelse av gel.
It is recommended to perform these different steps in different rooms. 
Det anbefales at disse forskjellige trinnene utføres i forskjellige rom.
More particularly, amplification and gel loading/electrophoresis should take place in a room separate from DNA extraction, PCR mix preparation and DNA dispensing. 
Mer bestemt bør amplifikasjon og anbringelse av gel/elektroforese skje i et annet rom enn der DNA-ekstraksjon, tilberedning av PCR-blanding og DNA-overføring skjer.
Live or freshly dead (not decomposed) oysters, which can be previously frozen, are processed for DNA extraction. 
Levende eller nylig døde østers (som ikke er gått i oppløsning), som eventuelt tidligere har vært fryst, klargjøres med henblikk på DNA-ekstraksjon.
Samples are processed differently according to their size: 
Prøver tillages forskjellig avhengig av størrelse:
For larvae, pools of 50 mg of the whole animals (includ ing the shell) completed with 200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute. 
når det gjelder larver, knuses samleprøver på 50 mg hele dyr med skall og 200 μl destillert vann og sentrifugeres ved 1000 g i 1 minutt,
For spat smaller than or of 6 mm, pools of 300 mg of the whole animals (including the shell) completed with 1200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute. 
når det gjelder yngel på høyst 6 mm, knuses samleprøver på 300 mg heledyr med skall og 1200 μl destillert vann og sentrifugeres ved 1000 g i 1 minutt,
For spat between 6 and 15 mm in size, all the soft tissues of each animal are crushed individually. 
når det gjelder yngel med en størrelse på mellom 6 og 15 mm, knuses alt bløtvev fra hvert enkelt dyr for seg,
For animals bigger than 15 mm, pieces of gills and mantle are isolated. 
når det gjelder dyr som er større enn 15 mm, isoleres deler av gjeller og kappe.
DNA extraction is performed using the QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) and following the instructions for Tissue Test Protocol. 
DNA-ekstraksjon utføres ved hjelp av QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) og ifølge instruksjonene for Tissue Test Protocol.
The further sample preparation is performed in the following order: 
Videre tillages prøven slik:
Place 100 μl of supernatant for samples referred to in (a) and (b) or 10 to 50 mg of tissues for samples referred to point (c) and (d) in a 1,5 ml microcentrifuge tube and add 180 μl of Buffer ATL. 
Plasser 100 μl supernatant fra prøver nevnt i bokstav a) og b), eller 10-50 mg vev fra prøver nevnt i bokstav c) og d), i et 1,5 ml mikrosentrifugerør og tilsett 180 μl Buffer ATL.
Add 20 μl Proteinase K, mix by vortexing and incubate at 56 °C until the tissue is completely lysed (overnight). 
Tilsett 20 μl proteinase K, bland ved å vortekse og inkuber ved 56 °C til vevet er fullstendig lysert (natten over).
Vortex occasionally during incubation to disperse sample. 
Det vortekses av og til under inkubering for å dispergere prøven.
Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid. 
Sentrifuger kort 1,5 ml mikrosentrifugerøret for å fjerne dråper fra lokket.
Add 200 μl Buffer AL to the sample, mix by pulse-vortexing for 15 s and incubate at 70 °C for 10 minutes. 
Tilsett 200 μl Buffer AL i prøven, bland ved å pulsvortekse i 15 sekunder og inkuber ved 70 °C i 10 minutter.
Add 200 μl ethanol (96-100 %) to the sample, and mix by pulse-vortexing for 15 s. 
Tilsett 200 μl etanol (96-100 %) i prøven og bland ved å pulsvortekse i 15 sekunder.
Carefully apply the mixture from step 4 to the QIAamp Spin Column (in a 2 ml collection tube) without wetting the rim. 
Overfør forsiktig blandingen fra trinn 4 til QIAamp Spin-kolonnen (i et 2 ml oppsamlingsrør) uten å gjøre kanten våt.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. 
Steng lokket og sentrifuger ved 10000 o/min i 1 min.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the tube containing the filtrate. 
Sett QIAamp Spin-kolonnen i et rent 2 ml oppsamlingsrør (følger med settet) og kast røret med filtratet.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW1 without wetting the rim. 
Åpne forsiktig QIAamp Spin-kolonnen og tilsett 500 μl Buffer AW1 uten å gjøre kanten våt.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate. 
Sett QIAamp Spin-kolonnen i et rent 2 ml oppsamlingsrør (følger med settet) og kast oppsamlingsrøret med filtratet.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW2 without wetting the rim. 
Åpne forsiktig QIAamp Spin-kolonnen og tilsett 500 μl Buffer AW2 uten å gjøre kanten våt.
Close the cap and centrifuge at full speed (14000 rpm) for 3 min. 
Steng lokket og sentrifuger ved full hastighet (14000 o/min) i 3 min.
(Optional) Place the QIAamp Spin Column in a new 2ml collection tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate. 
(Valgfritt) Sett QIAamp Spin-kolonnen i et nytt 2 ml oppsamlingsrør (følger ikke med settet) og kast oppsamlingsrøret med filtratet.
Centrifuge at full speed (14000 rpm) for 1 min. 
Sentrifuger ved full hastighet (14000 o/min) i 1 min.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 1,5 ml microcentrifuge tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate. 
Sett QIAamp Spin-kolonnen i et rent 1,5 ml mikrosentrifugerør (følger ikke med settet) og kast oppsamlingsrøret med filtratet.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 100 μl of distilled water. 
Åpne forsiktig QIAamp Spin-kolonnen og tilsett 100 μl destillert vann.
Incubate 5 minutes at room temperature and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. 
Inkuber i 5 minutter ved romtemperatur og sentrifuger ved 10000 o/min i 1 min.
Control the quality and efficacy of the extraction (for example by measuring OD (260 nm) under spectrophotometer or after electrophoresis in agarose gel). 
Kontroller ekstraksjonens kvalitet og effektivitet (for eksempel ved å måle OD (260 nm) under spektrofotometer eller etter elektroforese i agarosegel).
Prepare dilution of your samples in order to have a final DNA concentration of 50-100 ng/ μl. 
Fortynn prøvene for å få en endelig DNA-konsentrasjon på 50-100 ng/μl.
DNA solutions are kept at 4 °C until PCR analyses are performed. 
DNA-løsninger oppbevares ved 4 °C til PCR-analysene er gjennomført.
Other commercial kits may be used for the DNA extractions provided they have been demonstrated to give similar results. 
Andre sett som er tilgjengelige i handelen, kan benyttes til DNA-ekstraksjon forutsatt at det er dokumentert at de gir tilsvarende resultater.
Polymerase Chain Reaction (PCR) 
Polymerasekjedereaksjon (PCR)
Reactives 
Reagenser
10 X Buffer (furnished with the Taq DNA polymerase) 
10 X Buffer (leveres med Taq DNA-polymerase)
MgCl 2 (furnished with the DNA polymerase) (25 mM) 
MgCl 2 (leveres med DNA-polymerase) (25 mM)
Taq DNA Polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl 
Taq DNA-polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20mM) must be diluted 10 fold (at 2 mM) before use 
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20 mM) skal fortynnes 10 ganger (til 2 mM) før bruk
d H 2 O (distilled H 2 O free of DNA and RNA) 
d H 2 O (destillert H 2 O fritt for DNA og RNA)
Primers 
Primere
The following primers ( ) must be used: 
Følgende primere( ) skal brukes:
These primers or descriptions thereof may be obtained from the Community Reference Laboratory for Mollusc Diseases (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, France). 
Disse primerne eller beskrivelsene av dem kan fŒs fra Fellesskapets referanselaboratorium for sykdommer hos bl¿tdyr (LGP-Ifremer, av. de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, Frankrike).
CF (10 μM) 
CF (10 μM)
CR (10 μM) 
CF (10 μM)
PCR mix 
PCR-blanding
PCR mix for each tube is: 
PCR-blandingen for hvert rør inneholder:
Volume per tube 
Volum per rør
Final concentration 
Endelig konsentrasjon
Buffer (10 X) 
Buffer (10 X)
5 μl 
5 μl
1 X 
1 X
MgCl 2 (25 mM) 
MgCl 2 (25 mM)
2,5 mM 
2,5 mM
dNTP (2 mM) 
dNTP (2 mM)
0,2 μM 
0,2 μM
Taq polymérase (5U/ μl) 
Taq-polymerase (5U/μl)
dH 2 O 
dH 2 O
49 μl of this PCR mix is dispensed in each PCR tube 
49 μl av denne PCR-blandingen fordeles i hvert PCR-rør
1 μl of extracted DNA (50-100 ng/μl) is added to each tube 
1 μl av ekstrahert DNA (50-100 ng/μl) tilsettes hvert rør
Two types of control are used: 
Det benyttes to typer kontroller:
Negative controls consist of dH 2 O (1 μl for 49 μl of PCR mix). 
Negative kontroller består av dH 2 O (1 μl til 49 μl PCR-blanding).
They aim at detecting potential reactive contamination or working environment. 
Deres oppgave er å påvise mulig reaktiv forurensning fra omgivelsene.
One negative control should be included every 10 samples or after each batch of samples. 
En negativ kontroll bør tas med for hver 10. prøve eller etter hvert parti med prøver.
Positive controls consist of plasmidic DNA containing the OsHV-1 target genome region CF-CR. 
Positive kontroller består av plasmid-DNA som inneholder OsHV-1-målgenomområdet CF-CR.
They aim at checking the efficacy of the PCR reaction. 
Deres oppgave er å kontrollere effektiviteten hos PCR-reaksjonen.
One positive control should be included for each PCR analysis. 
En positiv kontroll bør tas med for hver PCR-analyse.
Positive controls are available from the Community Reference Laboratory. 
Positive kontroller kan fås fra Fellesskapets referanselaboratorium.
Amplification 
Amplifikasjon
Amplification cycles are performed in a thermal cycle apparatus. 
Amplifikasjonssykluser utføres i en termosykler.
Initial denaturation: 2 min at 94 °C 
Innledende denaturering: 2 min ved 94 °C
Amplification: 35 cycles (1 min at 94 °C, 1 min at 50 °C and 1 min at 72 °C) 
Amplifikasjon: 35 sykluser (1 min ved 94 °C, 1 min ved 50 °C og 1 min ved 72 °C)
Final elongation: 5 min at 72 °C 
Endelig forlengelse: 5 min ved 72 °C
Electrophoresis 
Elektroforese
50 X TAE (can be bought directly ready for use): 
50 X TAE (kan kjøpes bruksklart):
Tris base (40 mM) 242 g 
Tris-base (40 mM) 242 g
Acetic glacial acid (40 mM) 57,1 ml 
Iseddik (40 mM) 57,1 ml
Na 2 EDTA.2H 2 O (1 mM) 18,61 g 
Na 2 EDTA.2H 2 O (1 mM) 18,61 g
dH 2 O for 1 liter 
dH 2 O til 1 liter
Ajust at pH 8 
Juster pH til 8
Agarose gel 2,5 % in 1 X TAE 
Agarosegel 2,5 % i 1 X TAE
Ethidium bromide (0,5 μg/ml) added after cooling the gel. 
Etidiumbromid (0,5 μg/ml) tilsatt etter kjøling av gelet.
Loading blue dye: 
Blå lastebuffer:
Bromophenol blue 0,25 % 
Bromofenolblått 0,25 %
Cyanol xylene FF 0,25 % 
Xylencyanol FF 0,25 %
Sucrose 40 % 
Sukrose 40 %
Keep at 4 °C. 
Oppbevares ved 4 °C.
Use diluted 6 times (2 μl of loading blue buffer for 10μl of PCR products). 
Fortynnes 6 ganger før bruk (2 μl blå lastebuffer til 10μl PCR-produkt).
Molecular weight marker: 
Molekylvektmarkør:
SmartLadder SF (Eurogentec): a ready-to-use molecular weight marker including 9 regularly spaced bands from 100 to 1000 bp. 
SmartLadder SF (Eurogentec): en bruksklar molekylvektmarkør med 9 jevnt fordelte bånd fra 100-1000 bp.
Agarose gel preparation 
Tilberedning av agarosegel
Weight 2,5 g of agarose, add 100 ml of 1 X TAE and heat until the mix is melted. 
Vei opp 2,5 g agarose, tilsett 100 ml 1 X TAE og varm opp til blandingen er smeltet.
After cooling the solution, ethidium bromide is added (5 μl for 100 ml of agarose gel) and the solution is disposed in a specific mould equipped with combs (to form slots). 
Etter kjøling av løsningen tilsettes etidiumbromid (5 μl til 100 ml agarosegel) og løsningen helles i en spesiell form som er utstyrt med kammer (for å danne brønner).
When gel is polymerised, combs are removed and gel is placed in a horizontal electrophoresis system containing enough 1 X TAE to the cover agarose gel. 
Når gelet er polymerisert, fjernes kammene og gelet plasseres i en horisontal elektroforeseinnretning som inneholder nok 1 X TAE til å dekke agarosegelet.
10 μl of PCR products are mixed with 2 μl of blue dye (6 X) and disposed in the slots. 
10 μl PCR-produkt blandes med 2 μl blå lastebuffer (6 X) og fylles i brønnene.
One whole is dedicated to the molecular weight marker (5 μl). 
En brønn er reservert for molekylvektmarkøren (5 μl).
A voltage of 50 to 150 volts is applied during 30 min to 1 hour depending on the gel size and thickness. 
Det tilføres en spenning på 50-150 volt i 30-60 minutter, avhengig av gelets størrelse og tykkelse.
Gel is observed under UV. 
Gel observeres under UV.
The presence of OsHV-1 μvar in a sample is indicated by the presence of a band of the appropriate size (157 bp instead of 173 bp for OsHV-1) on a 2,5 % agarose gel with all negative controls negative and all positive controls positive. 
Forekomst av OsHV-1 μvar i en prøve påvises ved forekomst av et bånd i riktig størrelse (157 bp i stedet for 173 bp for OsHV-1) på 2,5 % agarosegel, der alle negative kontroller er negative og alle positive kontroller er positive.
Definition of the containment area 
Avgrensning av sperreområdet
The following factors influencing the risks for the spread of the disease shall be taken into account when defining the containment area in accordance with Article 2(2): 
Følgende faktorer som påvirker risikoene for spredning av sykdommen, skal tas hensyn til ved avgrensning av sperreområdet i samsvar med artikkel 2 nr. 2:
the number, rate and distribution of molluscs on the farm or mollusc farming area infected; 
antall, prosentdel og fordeling av bløtdyr på det infiserte akvakulturanlegget eller akvakulturområdet for bløtdyr,
proximity to processing establishments, contact farms or contact mollusc farming areas; 
nærhet til foredlingsvirksomheter, kontaktanlegg eller kontaktområder for bløtdyr,
farming practices applied in the affected and the neighbouring farms or mollusc farming areas; and 
oppdrettsmetoder som anvendes i berørte og nærliggende akvakulturanlegg eller akvakulturområder for bløtdyr, og
hydrodynamic conditions and other factors of epizootiological significance identified. 
hydrodynamiske forhold og andre faktorer av epizootologisk betydning .
Model animal health certificate for the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas 
Modell for helsesertifikat for omsetning av Crassostrea gigas -østers beregnet på oppdretts- og gjenutleggingsområder
I.2.a. Local reference No 
I.2.a. Lokalt referansenummer
Approved aquaculture holding □ Other □ 
Godkjent akvakulturvirksomhet □ Annet □
For the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas 
For omsetning av Crassostrea gigas -østers beregnet på oppdretts- og gjenutleggingsområder
Il.a Certificate reference No 
II.a Sertifikatets referansenr.
( 1 )( 2 ) [II.1 
( 1 )( 2 ) [II.1
Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2 of Regulation (EU) No 175/2010 
Krav som gjelder Crassostrea gigas -østers med opprinnelse i et sperreområde opprettet i samsvar med artikkel 2 i forordning (EU) nr. 175/2010
I,the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate: 
Undertegnede offentlige inspektør attesterer at Crassostrea gigas -østers nevnt i del I av dette sertifikatet:
originate from an area subject to disease control measures regarding increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar;. 
har opprinnelse i et område som har vært omfattet av sykdomsbekjempelsestiltak for å redusere dødeligheten hos Crassostrea gigas -østers i forbindelse med OsHV-1 μvar,
( 1 )[II.1.2 
( 1 )[II.1.2
are allowed to be placed on the market according to Article 3(2)(a) of Regulation (EU) No 175/2010;] 
kan bringes i omsetning i samsvar med artikkel 3 nr. 2 bokstav a) i forordning (EU) nr. 175/2010,]
are originating from a part of the containment area not affected by the increased mortalities and the consignment has been subject to sampling and testing in accordance with Annex I to Regulation (EU) No 175/2010 in Crassostrea gigas oysters with negative result;]] 
har opprinnelse i en del av sperreområdet som ikke er berørt av den økte dødeligheten hos Crassostrea gigas -østers, og forsendelsen har gjennomgått prøvetaking og prøving i samsvar med vedlegg I til forordning (EU) nr. 175/2010 med negativt resultat,]]
( 1 )( 3 )[II.2 
( 1 )( 3 )[II.2
Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a Member State or compartment previously subjected to containment measures as regards increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in conn ection with OsHV-1 μvar and intended for Member States or compartments subject to a programme for the early detection of OsHV-1 μvar 
Krav som gjelder Crassostrea gigas-østers med opprinnelse i en medlemsstat eller et segment som tidligere er omfattet av tiltak for å motvirke spredning av sykdommen med hensyn til økt dødelighet hos Crassostrea gigas-østers i forbindelse med OsHV-1 μvar, som er beregnet på medlemsstater eller segmenter omfattet av et program for tidlig påvisning av OsHV-1 μvar
I, the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate: 
Undertegnede offentlige inspektør attesterer at Crassostrea gigas -østers nevnt i del I av dette sertifikatet:
II.2.1 
II.2.1
come from a farm or mollusc farming area where, according to the records of the farm or mollusc farming area, there is no indication of increased mortalities; 
kommer fra et akvakulturanlegg ellet et akvakulturområde for bløtdyr der det i henhold til registrene for akvakulturanlegget eller akvakulturområdet for bløtdyr ikke er noen tegn på økt dødelighet,
II.2.2 
II.2.2
originate from a compartment, where the absence of OsHV-1 μvar is demonstrated by a sampling an d testing carried out in accordance with Annex I to Regulation (EU) No 175/2010 in Crassostrea gigas oysters.] 
har opprinnelse i et segment der det ved prøvetaking og prøving utført i samsvar med vedlegg I til forordning (EU) nr. 175/2010, er dokumentert at OsHV-1 μVar ikke forekommer hos Crassostrea gigas -østers.]
II.3.1 
II.3.1.
the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate are placed under conditions, including with a water quality, that do not alter their health status; 
de Crassostrea gigas -østers som er nevnt i del I av dette sertifikatet, plasseres under forhold, herunder med en vannkvalitet, som ikke endrer deres helsetilstand,
II.3.2 
II.3.2.
the transport container prior to loading is clean and disinfected or previously unused; 
transportcontaineren er før lasting ren og desinfisert eller tidligere ubrukt,
II.3.3 
II.3.3.
( 1 )[ ‘ Crassostrea gigas oysters intended for farming/relaying in an area subject to a programme f or the early detection of OsHV-1 μvar ’ ] 
( 1 )[‘ Crassostrea gigas -østers beregnet på oppdrett/gjenutlegging i et område som er omfattet av et program for tidlig påvisning av OsHV-1 μvar﻿
( 1 )[‘ Crassostrea gigas oysters intended for farming/relaying in an area subject to disease control measures and originating from an area subject to disease control measures﻿ . 
( 1 )[‘ Crassostrea gigas -østers beregnet på oppdrett/gjenutlegging i et område som er omfattet av sykdomsbekjempelsestiltak og med opprinnelse i et område som er omfattet av sykdomsbekjempelsestiltak﻿ .
Box I.25: Use the option ‘Breeding’ if intended for farming, ‘Relaying’ if intended for relaying. 
Felt I.25: Sett kryss for «Oppdrett» dersom dyrene er beregnet på oppdrett, «Gjenutlegging» dersom dyrene er beregnet på gjenutlegging.
Il.a Certificate reference Nor 
II.a Sertifikatets referansenr.
Part II.1 of this certificate applies to consignments of Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2(2) of Regulation (EU) No 175/2010 and which according to Article 3(2)(a) or (b) of that Regulation is allowed to leave that area. 
Del II.1 av dette sertifikatet gjelder bare forsendelser av Crassostrea gigas -østers med opprinnelse i et sperreområde opprettet i samsvar med artikkel 2 nr. 2 i forordning (EU) nr. 175/2010 og som i henhold til artikkel 3 nr. 2 bokstav a) eller b) i nevnte forordning, har tillatelse til å forlate dette området.