natgillin/translations-raw huggingface dataset:
To fortify at a level of 3 mg/kg, add 300 μl of the stock standard solution (3.6.1) to 10 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2). 
For å øke konsentrasjonen til 3 mg/kg, tilsettes 300 μl av standardstamløsningen (3.6.1) til 10 g blindprøve, bland og vent i 10 minutter før ekstraksjonen (5.2) innledes.
for the purpose of this method, the blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis halofuginone shall not be detected. 
Til denne metoden bør blindprøven være av tilsvarende type som prøven og ved analyse bør halofuginon ikke påvises i blindprøven.
Weigh to the nearest 0,1 g, 10 g of the prepared sample, into a 200 ml centrifuge tube, add 0,5 g of sodium ascorbate (3.10), 0,5 g of EDTA (3.13) and 20 ml of water and mix. 
Vei opp 10 g av den tillagde prøven med en nøyaktighet på 0,01 g i et 200 ml sentrifugerør, tilsett 0,5 g natriumaskorbat (3.10), 0,5 g EDTA (3.13) og 20 ml vann og bland.
Place the tube for 5 minutes in a water bath (80 o C). 
Sett røret i vannbad (80 o C) i 5 minutter.
After cooling down to room temperature, add 20 ml of sodium carbonate solution (3.15) and mix. 
Etter nedkjøling til romtemperatur, tilsett 20 ml natriumkarbonatløsning (3.15) og bland.
Add immediately 100 ml of ethyl acetate (3.4) and shake vigorously by hand for 15 seconds. 
100 ml etylacetat (3.4) tilsettes umiddelbart og røret ristes kraftig for hånd i 15 sekunder.
Then place the tube for three minutes in the ultrasonic bath (4.1) and loosen the stopper. 
Sett røret i ultralydbad (4.1) i 3 minutter og ta av proppen.
Centrifuge for two minutes and decant the ethyl acetate phase through a glass fibre filter (4.6), into a 500 ml separating funnel. 
Sentrifuger i 2 minutter og hell etylacetatfasen gjennom et glassfiberfilter (4.6) til en 500 ml skilletrakt.
Repeat the extraction of the sample with a second portion of 100 ml of ethyl acetate. 
Ekstraksjonen av prøven gjentas med en ny porsjon av 100 ml etylacetat.
Wash the combined extracts for one minute with 50 ml of sodium chloride saturated sodium carbonate solution (3.16) and discard the aqueous layer. 
Vask de blandede ekstraktene i 1 minutt med 50 ml natriumkloridmettet natriumkarbonatløsning (3.16) og fjern den vandige fasen.
Extract the organic layer for 1 min. with 50 ml of hydrochloric acid (3.17). 
Ekstraher den organiske fasen i 1 minutt med 50 ml saltsyre (3.17).
Run the lower acid layer into a 250 ml separating funnel. 
Hell den nederste syrefasen i en 250 ml skilletrakt.
Re-extract the organic layer for 1,5 minutes with a further 50 ml of hydrochlorid acid and combine with the first extract. 
Den organiske fasen ekstraheres igjen i 1,5 minutter med ytterligere 50 ml saltsyre og blandes med det første ekstraktet.
Wash the combined acid extracts by swirling for approximately 10 seconds with 10 ml of ethyl acetate (3.4). 
Vask de blandede syreekstraktene ved omristing i ca. 10 sekunder med 10 ml etylacetat (3.4).
Quantitatively transfer the aqueous layer into a 250 ml round-bottomed flask and discard the organic phase. 
Overfør den vandige fasen kvantitativt til en 250 ml rundbunnet kolbe og fjern den organiske fasen.
Evaporate all the remaining ethyl acetate from the acid solution using a rotary film evaporator (4.2). 
All resterende etylacetat fordampes fra syreløsningen ved bruk av en rotasjonsfordamper (2.4).
The temperature of the water bath must not exceed 40 o C. 
Temperaturen på vannbadet bør ikke overskride 40 o C.
Under a vacuum of approximately 25 mbar all of the residual ethyl acetate will be removed within 5 minutes at 38 o C. 
Under et vakuum på ca. 25 mbar vil all resterende etylacetat bli fjernet i løpet av 5 minutter ved 38 o C.
Clean up 
Rensing
Preparation of the Amberlite column 
Tillaging av amberlitekolonnen
An XAD-2 column is prepared for each sample extract. 
En XAD-2 kolonne lages til for hvert prøveekstrakt.
Transfer 10 g of prepared Amberlite (3.19) into a glass column (4.5) with methanol (3.8). 
Overfør 10 g tillaget amberlite (3.19) til en glasskolonne (4.5) med metanol (3.8).
Add a small plug of glass-wool to the top of the resin bed. 
Sett en liten glassullpropp på toppen av harpiksen i kolonnen.
Drain the methanol from the column and wash the resin with 100 ml of water, stopping the flow as the liquid reaches the top of the resin bed. 
Hell metanolen ut av kolonnen og vask harpiksen med 100 ml vann. Stans hellingen når væsken når toppen av harpiksen.
Allow the column to equilibrate for 10 minutes before use. 
La kolonnen stå i 10 minutter for å stabilisere seg før bruk.
Never allow the column to run dry. 
Kolonnen må aldri bli tørr.
Sample clean up 
Rensing av prøven
Transfer the extract (5.2) quantitatively to the top of the prepared Amberlite column (5.3.1) and elute, discarding the eluate. 
Overfør ekstraktet (5.2) kvantitativt til toppen av den tillagde amberlitekolonnen (5.3.1), eluer og kast eluatet.
The rate of elution must not exceed 20 ml/min. 
Elueringshastigheten bør ikke overskride 20 ml/minutt.
Rinse the round-bottomed flask with 20 ml of hydrochlorid acid (3.17) and use this to wash the resin column. 
Skyll den rundbunnede kolben med 20 ml saltsyre (3.17) og bruk denne løsningen til å rense kolonnematerialet.
Blow through any remaining acid solution with a stream of air. 
Den resterende syreløsningen fjernes ved at luft blåses gjennom den.
Discard the washings. 
Fjern rensevæskene.
Add 100 ml of methanol (3.8) to the column and allow 5 to 10 ml to elute, collecting the eluate in a 250 ml round-bottomed flask. 
Tilsett 100 ml metanol (3.8) til kolonnen og la 5–10 ml eluere. Eluatet samles opp i en 250 ml rundbunnet kolbe.
Leave the remaining methanol for 10 minutes to equilibrate with the resin and continue the elution at a rate not exceeding 20 ml/min. collecting the eluate in the same round-bottomed flask. 
La den resterende metanolen stå i 10 minutter for å stabilisere seg med kolonnematerialet og fortsett elueringen ved en hastighet som ikke overskrider 20 ml/minutt. Eluatet samles opp i den samme rundbunnede kolben.
Evaporate the methanol on the rotary film evaporator (4.2), the temperature of the water bath must not exceed 40 o C. 
Metanolen fordampes med rotasjonsfordamperen (4.2); temperaturen på vannbadet bør ikke overskride 40 o C.
Transfer the residue quantitatively into a 10 ml calibrated flask using the mobile phase (3.21). 
Overfør restmengden kvantitativt til en 10 ml kalibreringskolbe ved bruk av mobil fase (3.21).
Make up to the mark with mobile phase and mix. 
Fyll opp til merket med mobil fase (3.21) og bland.
An aliquot is filtered through a membrane filter (4.7). 
En delmengde filtreres gjennom et membranfilter (4.7)
Reserve this solution for the HPLC determination (5.4). 
Denne løsningen forbeholdes HPLC-bestemmelsen (5.4).
The following conditions are offered for guidance, other conditions may be used provided they yield equivalent results. 
Følgende vilkår er veiledende. Andre parametere kan brukes forutsatt at de gir de samme resultater.
Liquid chromatographic column (4.4.1) 
Væskekromatografikolonne (4.4.1)
HPLC Mobile phase (3.21) 
HPLC mobil fase (3.21)
1,5 to 2 ml/min. 
1,52 ml/min.
Injection volume: 
Injeksjonsvolum:
40 to 100 μl. 
40-100 μl.
Check the stability of the chromatographic system, injecting the calibration solution (3.6.2) containing 3,0 μg/ml several times, until constant peak heights (or areas) and retention times are achieved. 
Kontroller stabiliteten til det kromatografiske systemet ved å injisere kalibreringsløsningen (3.6.2) som inneholder 3,0 μg/ml flere ganger, til det oppnås konstante topphøyder (eller -arealer) og retensjonstider.
Calibration graph 
Kalibreringskurve
Inject each calibration solution (3.6.2) several times and measure the peak heights (areas) for each concentration. 
Injiser hver kalibreringsløsning (3.6.2) flere ganger og mål topphøydene (-arealene) for hver konsentrasjon.
Plot a calibration graph using the mean peak heights or areas of the calibration solutions as the ordinates and the corresponding concentrations in μg/ml as the abscissae. 
Trekk opp en kalibreringskurve ved bruk av de gjennomsnittlige topphøydene eller -arealene for kalibreringsløsningene som ordinater og de tilsvarende konsentrasjonene i μg/ml som abscisser.
Inject the sample extract (5.3.2) several times, using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the halofuginone peaks. 
Injiser prøveekstraktet (5.3.2) flere ganger ved bruk av samme mengde som for kalibreringsløsningene, og bestem den gjennomsnittlige topphøyden (-arealet) av halofuginontoppene.
Determine the concentration of the sample solution in μg/ml, from the mean height (area) of the halofuginone peaks of the sample solution by reference to the calibration graph (5.4.2). 
Konsentrasjonen i prøveløsningen i μg/ml bestemmes ut fra den gjennomsnittlige topphøyden (-arealet) av prøveløsningens halofuginontopper med henvisning til kalibreringskurven (5.4.2).
The content of halofuginone w (mg/kg) of the sample is given by the following formula: 
Innholdet av halofuginon w (mg/kg) i prøven beregnes etter følgende formel:
w=(c×10)/(m)in which: 
w=(c×10)/(m) der:
halofuginone concentration of the sample solution in μg/ml, 
prøveløsningens halofuginonkonsentrasjon i μg/ml,
weight of the test portion in grams. 
prøvemengdens masse i g.
Validation of the results 
Validering av resultatene
Identity 
Identitet
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract and the calibration solution (3.6.2) containing 6,0 μg/ml are compared. 
Identiteten til analytten kan bekreftes ved kromatografi med tilsetting av kjent mengde standard eller ved bruk av en diodearraydetektor som gjør det mulig å sammenligne spektrene til prøveekstraktet og kalibreringsløsningen (3.6.2) som inneholder 6,0 µg/ml halofuginon.
A sample extract is fortified by addition of an appropriate amount of a calibration solution (3.6.2). 
Et prøveekstrakt tilsettes en passende mengde kalibreringsløsning (3.6.2).
The amount of added halofuginone must be similar to the estimated amount of halofuginone found in the sample extract. 
Mengden tilsatt halofuginon bør være lik den beregnede mengden halofuginon som er funnet i prøveekstraktet.
Only the height of the halofuginone peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract. 
Bare høyden av halofuginontoppen bør øke etter at det er tatt hensyn til både den tilsatte mengden og fortynningen av ekstraktet.
The peak width, at half of its maximum height, must be within ± 10 % of the original width. 
Toppbredden skal ved den halve høyden være innenfor ± 10 % av den opprinnelige bredden.
The results are evaluated according to the following criteria: 
Resultatene vurderes etter følgende kriterier:
the wavelength of maximum absorption of the sample and of the standard spectra, recorded at the peak apex on the chromatogram, must be the same within a margin determined by the resolving power of the detection system. 
bølgelengden for maksimal absorpsjon for prøven og standardens spektre, målt ved toppens spiss på kromatogrammet, må være den samme innenfor en margin beregnet ut fra detektorsystemets oppløsningsevne.
For diode-array detection, this is typically within ± 2 nm; 
For diodearraydeteksjon er den vanligvis innenfor ± 2 nm,
between 225 and 300 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance. 
mellom 225 og 300 nm må prøven og standardens spektre, målt ved toppens spiss på kromatogrammet, ikke være forskjellige med hensyn til de delene av spekteret som ligger mellom 10 og 100 % av den relative absorbsjonen.
This criterion is met when the same maxima are present and at no observed point the deviation between the two spectra exceeds 15 % of the absorbance of the standard analyte; 
Dette kriteriet er oppfylt når de samme maksima er til stede og avviket mellom spektrene ikke på noe observert punkt overskrider 15 % av standardanalyttens absorbsjon,
This criterion is met when the same maxima are present and when at all observed points the deviation between the spectra does not exceed 15 % of the absorbance of the spectrum of the apex. 
Dette kriteriet er oppfylt når de samme maksima er til stede og avviket mellom spektrene ikke på noe observert punkt overskrider 15 % av spekterets absorbsjon i spissen.
If one of these criteria is not met the presence of the analyte has not been confirmed. 
Dersom ett av disse kriteriene ikke er oppfylt, er forekomsten av analytten ikke bekreftet.
The difference between results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 0,5 mg/kg for halofuginone contents up to 3 mg/kg. 
Forskjellen mellom resultatene fra to parallelle bestemmelser som utføres på samme prøve, må ikke overskride 0,5 mg/kg for halofuginoninnhold opp til 3 mg/kg.
Recovery 
Gjenfinning
For the fortified blank sample the recovery shall be at least 80 %. 
For blindprøven med tilsetning bør gjenfinningsprosenten være minst 80 %.
A collaborative study( ) was arranged in which three samples were analysed by eight laboratories. 
I en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier( ) ble tre prøver analysert av åtte laboratorier.
The Analyst 108, 1983, pp. 1252 to 1256. 
The Analyst nr. 108, 1983, s. 1252–1256.
Sample A 
Prøve A
(blank) 
(blindprøve)
On receipt 
ved mottak
Sample B (Meal) 
Prøve B (mel)
Sample C (Pellets) 
Prøve C (pelleter)
After two months 
etter to måneder
Mean [mg/kg] 
Gjennomsnitt [mg/kg]
Rec. 
Gjenf.
not detected 
ikke påvist
coefficient of variation of reproducibility (%) 
variasjonskoeffisient for reproduserbarhet (%)
recovery (%) 
gjenfinning (%)
DETERMINATION OF ROBENIDINE 
BESTEMMELSE AV ROBENIDIN
1,3-bis [(4-chlorobenzylidene)amino]guanidine — hydrochloride 
1,3-bis[(klorbenzyliden)amino] guanidinhydroklorid
This method makes it possible to determine the levels of robenidine in feed. 
Denne metoden gjør det mulig å bestemme innholdet av robenidin i fôrvarer.
The sample is extracted with acidified methanol. 
Prøven ekstraheres med sur metanol.
The extract is dried and an aliquot portion subjected to a clean-up on an aluminium oxide column. 
Ekstraktet tørkes, og en delmengde renses på en aluminiumoksidkolonne.
Robenidine is eluted from the column with methanol, concentrated, and made up to a suitable volume with mobile phase. 
Robenidin elueres fra kolonnen med konsentrert metanol og økes til passende volum med mobil fase.
The content of robenidine is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) using an UV detector. 
Innholdet av robenidin bestemmes ved reversfase høytrykksvæskekromatografi (HPLC) ved bruk av en UV-detektor.
Acidified methanol. 
Sur metanol
Transfer 4,0 ml hydrochloric acid ( ρ 20 = 1,18 g/ml) into a 500 ml graduated flask, make up to the mark with methanol (3.1) and mix. 
Fyll 4,0 ml saltsyre ( ρ 20 = 1,18 g/ml) i en 500 ml målekolbe, fyll opp til merket med metanol (3.1) og bland.
This solution shall be freshly prepared before use. 
Løsningene skal blandes like før bruk.
Molecular sieve. 
Molekylgitter.
Type 3A, 8 to 12 mesh beads (1,6-2,5 mm beads, crystalline alumino-silicate, diameter of pores 0,3 mm). 
Kuler av type 3A 8–12 mesh (1,6–2,5 mm kuler, krystallinsk aluminiumsilikat, porediameter 0,3 nm).
Aluminium oxide acidic activity grade I for column chromatography. 
Aluminiumoksid, sur, aktivitetsgrad I for kolonnekromatografi.
Transfer 100 g aluminium oxide into a suitable container and add 2,0 ml of water. 
Anbring 100 g aluminiumoksid i en egnet beholder og tilsett 2,0 ml vann.
Stopper and shake for approximately 20 minutes. 
Sett propp i beholderen og rist ca. 20 minutter.
Store in a well stoppered container. 
Oppbevar væsken i en godt lukket beholder.
Potassium dihydrogen phosphate solution, c = 0,025 mol/l. 
Kaliumdihydrogenfosfatløsning, c = 0,025 mol/l.
Dissolve 3,40 g of potassium dihydrogen phosphate in water (HPLC grade) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark and mix. 
Løs opp 3,40 g kaliumdihydrogenfosfat i vann (HPLC-kvalitet) i en 1000 ml målekolbe, fyll opp til merket og bland.
Di-sodium hydrogen phosphate solution, c = 0,025 mol/l. 
Dinatriumhydrogenfosfatløsning, c = 0,025 mol/l.
Dissolve 3,55 g of anhydrous (or 4,45 g of dihydrate or 8,95 g of dodecahydrate) di-sodium hydrogen phosphate in water (equivalent to HPLC grade) in a 1 litre graduated flask, make up to the mark and mix. 
Løs opp 3,55 g vannfri (eller 4,45 g dihydrat eller 8,95 dodekahydrat) dinatriumhydrogenfosfat i vann (HPLC-kvalitet) i en 1 000 ml målekolbe, fyll opp til merket og bland.
HPLC mobile phase. 
HPLC mobil fase.
Mix together the following reagents: 
Bland følgende reagenser.
650 ml acetonitrile (3.3), 
650 ml acetonitril (3.3),
250 ml water (equivalent to HPLC-grade), 
250 ml vann, (HPLC-kvalitet),
50 ml potassium di-hydrogen phosphate solution (3.6), 
50 ml kaliumdihydrogenfosfatløsning (3.6),
50 ml di-sodium hydrogen phosphate solution (3.7). 
50 ml dinatriumhydrogenfosfatløsning (3.7).
Filter through a 0,22 μm filter (4.6) and degas the solution, (e.g. by ultrasonification for 10 minutes). 
Løsningen filtreres gjennom et 0,22 μm filter (4.6) og luften fjernes (f.eks. ved ultralydbehandling i 10 minutter).
Standard substance. 
Standard.
Pure robenidine: 
Ren robenidin:
1,3-bis [(4-chlorobenzylidene)amino]guanidine — hydrochloride. 
1,3-bis[(4-klorbenzyliden)amino] guanidinhydroklorid.
300 μg/ml 
300 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg, 30 mg of robenidine standard substance (3.9). 
Vei opp 30 mg robenidin standard (3.9) med en nøyaktighet på 0,1 mg.
Dissolve in acidified methanol (3.2) in a 100 ml graduated flask, make up to the mark with the same solvent and mix. 
Løs opp stoffet i sur metanol (3.2) i en 100 ml målekolbe, fyll opp til merket med samme løsning og bland.
Wrap the flask with aluminium foil and store in a dark place. 
Pakk kolben inn i aluminiumsfolie og oppbevar den mørkt.
Robenidine intermediate standard solution: 
Robenidin-standardmellomløsning:
Transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.9.1) into a 250 ml graduated flask, make up to the mark with the mobile phase (3.8) and mix. 
Overfør 10,0 ml av standardstamløsningen (3.9.1.) til en 250 ml målekolbe, fyll opp til merket med mobil fase (3.8) og bland.
Into a series of 50 ml calibrated flasks, transfer 5,0, 10,0, 15,0, 20,0 and 25,0 ml of the intermediate standard solution (3.9.2). 
Overfør henholdsvis 5,0, 10,0, 15,0, 20,0 og 25,0 ml av standardløsningen (3.9.2) til en rekke 50 ml målekolber.
Make up to the mark with mobile phase (3.8) and mix. 
Fyll opp til merket med mobil fase (3.8) og bland.
These solutions correspond to 1,2, 2,4, 3,6, 4,8 and 6,0 μg/ml of robenidine respectively. 
Disse løsningene har konsentrasjoner av robenidin på henholdsvis 1,2, 2,4, 3,6, 4,8 og 6,0 μg/ml.
Water equivalent to HPLC grade. 
Vann, HPLC-kvalitet.
Glass column. 
Glasskolonne
Constructed of amber glass fitted with a stopcock and a reservoir of approximately 150 ml capacity, internal diameter 10 to 15 mm, length 250 mm. 
Laget av brunt glass, utstyrt med stoppekran og med et innhold på ca. 150 ml, innvendig diameter 10–15 mm, lengde 250 mm.
HPLC equipment with variable wavelength ultraviolet detector or diode array detector operating in the range of 250 to 400 nm. 
HPLC-utstyr med UV-detektor med variabel bølgelengde eller diodearraydetektor som virker innenfor området 250–400 nm.
300 mm x 4 mm, C 18 10 μm packing or equivalent. 
300 mm x 4 mm, C 18 10 μm pakning eller tilsvarende.
Glass fibre filter paper (Whatman GF/A or equivalent). 
Glassfiberfilterpapir (Whatman GF/A eller tilsvarende).
Membrane filters, 0,22 μm. 
Membranfiltre, 0,22 μm.
Robenidine is light-sensitive. 
Robenidin er lysfølsomt.
Amber glassware shall be used in all operations. 
Det bør brukes brunt glass ved alle operasjoner.
A blank feed shall be analysed to check that neither robenidine nor interfering substances are present. 
Fôr uten tilsetning (blindprøve) bør analyseres for å kontrollere at det verken er robenidin eller forstyrrende stoffer til stede.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed (5.1.1) which has been fortified by addition of a quantity of robenidine, similar to that present in the sample. 
En gjenfinningsprøve bør utføres ved å analysere blindprøven (5.1.1) som er tilsatt en mengde robenidin som tilsvarer mengden som finnes i prøven.
To fortify at a level of 60 mg/kg, transfer 3,0 ml of the stock standard solution (3.9.1) to a 250 ml conical flask. 
For å øke konsentrasjonen til 60 mg/kg overføres 3,0 ml av standardstamløsningen (3.9.1) til en 250 ml erlenmeyerkolbe.
Evaporate the solution to ca. 0,5 ml in a stream of nitrogen. 
La løsningen dampe inn til ca. 0,5 ml i en strøm av nitrogen.
Add 15 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2). 
Tilsett 15 g av blindprøven, bland og vent i 10 minutter før ekstraksjonen (5.2) innledes.
For the purpose of this method, the blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis robenidine shall not be detected. 
Til denne metoden bør blindprøven være av tilsvarende type som prøven, og ved analyse bør robenidin ikke påvises i blindprøven.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 15 g of the prepared sample. 
Vei opp ca. 15 g av den tillagde prøven med en nøyaktighet på 0,01 g.
Transfer to a 250 ml conical flask and add 100,0 ml of acidified methanol (3.2), stopper and shake for one hour on the shaker (4.2). 
Overfør dette til en 250 ml erlenmeyerkolbe, tilsett 100,0 ml sur metanol (3.2), sett propp i kolben og rist i en time på risteapparatet (4.2).
Filter the solution through a glass fibre filter paper (4.5) and collect the whole filtrate in a 150 ml conical flask. 
Filtrer løsningen gjennom et glassfiberfilter (4.5) og samle opp hele filtratet i 150 ml erlenmeyerkolbe.
Add 7,5 g molecular sieve (3.4), stopper and shake for five minutes. 
Tilsett 7,5 g molekylgitter (3.4), sett propp i kolben og rist i fem minutter.
Filter immediately through a glass-fibre filter paper. 
Filtrer umiddelbart løsningen gjennom et glassfiberfilter.
Retain this solution for the purification step (5.3). 
Oppbevar denne løsningen til rensingen (5.3).
Purification 
Rensing
Preparation of the aluminium-oxide column 
Tillaging av aluminiumoksidkolonnen
Insert a small glass-wool plug into the lower end of a glass column (4.1) and tamp it down using a glass rod. 
Sett en liten glassullpropp i den nederste enden av en glasskolonne (4.1) og dytt den helt ned med en glass-stang.
Weigh out 11,0 g of the prepared aluminium oxide (3.5) and transfer to the column. 
Vei opp og overfør 11,0 g av det tillagde aluminiumoksidet (3.5),til kolonnen.
Care shall be taken to minimise the exposure to the atmosphere during this stage. 
Eksponering for luft må minskes under denne operasjonen.
Gently tap the loaded column at its lower end to settle the aluminium oxide. 
Bank lett på kolonnens nederste ende for å få aluminiumoksidet til å sette seg.
Transfer onto the column by pipette 5,0 ml of the sample extract prepared in (5.2) Rest the pipette tip close to the column wall and allow the solution to be absorbed onto the aluminium oxide. 
Overfør 5,0 ml av det tillagde prøveekstraktet (5.2) med pipette til kolonnen. Hold spissen av pipetten nær kolonneveggen og la løsningen absorberes av aluminiumoksidet.
Elute the robenidine from the column using 100 ml methanol (3.1), at a flow rate of 2 to 3 ml/minute and collect the eluate in a 250 ml round bottomed flask. 
Eluer robenidin fra kolonnen med 100 ml metanol (3.1) med en gjennomstrømningshastighet på 2–3 ml/minutt, og samle opp eluatet i en 250 ml rundbunnet kolbe.
Evaporate the methanol solution to dryness under reduced pressure at 40 o C by means of a rotary film evaporator (4.3). 
La metanolløsningen fordampe til tørrhet under nedsatt trykk ved 40 o C ved hjelp av en rotasjonsfordamper (4.3).
Re-dissolve the residue in 3 to 4 ml of mobile phase (3.8) and transfer quantitatively to a 10 ml graduated flask. 
Løs opp restmengden i 3–4 ml mobil fase (3.8) og overfør den kvantitativt til en 10 ml målekolbe.