natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For H5 and H7 viruses that do not have intravenous pathogenicity indices greater than 1,2, nucleotide sequencing of the haemagglutinin gene to determine whether or not there are multiple basic amino acids at the cleavage site of the haemagglutinin precursor protein must also be carried out immediately and the national reference laboratory and the competent authority in the country of origin must be informed as soon as the results are available so that control measures for HPAI can be fully implemented. 
For H5- og H7-virus som ikke har en intravenøs patogenisitetsindeks over 1,2, skal nukleotidsekvensering av hemagglutiningenet for å fastslå om det finnes eller ikke finnes flerbasiske aminosyrer i hemagglutininforløperproteinets kløyvingspunkt også foretas umiddelbart, og det nasjonale referanselaboratoriet og vedkommende myndighet i opprinnelsesstaten skal underrettes så snart resultatene foreligger, slik at bekjempelsestiltakene mot HPAI iverksettes fullt ut.
Given the changing epidemiological situation in relation to HPAI/LPAI, it may be possible by agreement with both the Commission and the Community reference laboratory for a derogation to be given to laboratories with full capabilities for rapid virus characterisation, to submit a subset of these viruses following inspection of data and for the Community reference laboratory to make a relevant selection. 
Siden den epidemiologiske situasjonen med hensyn til HPAI/LPAI veksler, er det ved avtale med både Kommisjonen og Fellesskapets referanselaboratorium mulig å gi unntak for laboratorier som har full kapasitet til rask viruskarakterisering, slik at de kan sende inn et delsett av disse virusene, etter at det er foretatt en undersøkelse av data og Fellesskapets referanselaboratorium har gjort et relevant utvalg.
This derogation must only be permitted where data can be rapidly generated by the national reference laboratory and shared with the Community reference laboratory. 
Dette unntaket skal bare tillates dersom data raskt kan genereres av det nasjonale referanselaboratoriet og deles med Fellesskapets referanselaboratorium.
Molecular tests and evaluation of results 
Molekylære undersøkelser og evaluering av resultater
The current definition of HPAI, allows the molecular identification of virulence factors and confirms the use of molecular techniques in the diagnosis of AI. 
Den gjeldende definisjonen av HPAI tillater molekylær identifikasjon av virulensfaktorer og bekrefter bruken av molekylærmetoder i diagnostiseringen av AI.
Recently there have been developments in their application for detection and characterisation of AI virus directly from clinical specimens from infected birds. 
I det siste har det vært en utvikling i deres anvendelse for påvisning og karakterisering av AI-virus direkte fra kliniske prøver av angrepne fugler.
Conventional RT-PCR techniques on clinical specimens could, with the correctly defined primers, result in rapid detection and subtype (at least of H5 and H7) identification, plus a PCR amplicon product that could be used for nucleotide sequencing and have been demonstrated to have an important application by rapidly identifying subsequent outbreaks once the primary infected premises has been detected and the virus characterised. 
Konvensjonelle RT-PCR-metoder på kliniske prøver kan, med korrekt definerte primere, gi rask påvisning og identifikasjon av undertype (i det minste av H5 og H7), samt et PCR-amplikon som kan brukes til nukleotidsekvensering, og som det er dokumentert kan ha stor betydning ved at man raskt kan identifisere utbrudd når det første infiserte stedet er påvist og viruset er karakterisert.
‘Real time’ single-step RT-PCR using primer/fluorogenic probe systems (rRT-PCR) allow even more rapid and sensitive diagnosis with detection of AI viruses and determination of subtype H5 or H7 in clinical samples. 
Ett-trinns RT-PCR i ‘sanntid’ med bruk av primer/fluorogensonde-systemer (rRT-PCR) gir mulighet for enda raskere og mer følsom diagnostisering med påvisning av AI-virus og bestemmelse av undertype H5 eller H7 i kliniske prøver.
An important problem with RT-PCR and rRT-PCR systems is that, to date, different laboratories have developed different systems, which, although perfectly legitimate, have not been validated or subjected to tests with large numbers of samples in different laboratories. 
Et stort problem med RT-PCR- og rRT-PCR-systemer er at forskjellige laboratorier hittil har utviklet forskjellige systemer, som selv om det er helt legitimt, ikke har blitt validert eller har gjennomgått prøving med et stort antall prøver i forskjellige laboratorier.
The Community reference laboratory and specified national reference laboratories have been addressing this problem as part of an Community-funded project (EU AVIFLU) to produce ratified protocols for conventional RT-PCR and rRT-PCR that could be adopted by other national reference laboratories. 
Fellesskapets referanselaboratorium og visse nasjonale referanselaboratorier har arbeidet med dette problemet som et ledd i et fellesskapsfinansiert prosjekt (EU AVIFLU) for å utarbeide ratifiserte protokoller for konvensjonell RT-PCR og rRT-PCR som kan overtas av andre nasjonale referanselaboratorier.
If test parameters, such as cycling and ramp times, are varied from those recommended in the specified protocols they must be demonstrated as fit for purpose prior to use in accordance with point 6 of Chapter I of this diagnostic manual. 
Dersom prøvingsparameterne, for eksempel temperatursyklus og temperaturendringenes hastighet, varieres i forhold til dem som er anbefalt i de angitte protokollene, skal det før de tas i bruk, dokumenteres at de er egnet for formålet i samsvar med nr. 6 i kapittel I i denne diagnosehåndboken.
The standard protocols for those molecular tests and their evaluation as applied by the Community reference laboratory can be found on the following website: 
Standardprotokollene for disse molekylære undersøkelsene og evalueringen av dem, som anvendt av Fellesskapets referanselaboratorium, finnes på følgende nettsted:
In vivo pathogenicity test and the evaluation of results 
Patogenisitetsprøve in vivo og evaluering av resultater
The virulence for chickens of influenza A viruses isolated from birds must be estimated using the intravenous pathogenicity index (IVPI) test which must be carried out as follows: 
Virulensen for kyllinger når det gjelder influensa A-virus som isoleres fra fugler, skal beregnes ved bruk av intravenøs patogenisitetsindeksprøve (IVPI), som skal gjennomføres slik:
Fresh infective allantoic fluid with a HA titre >1/16 (>2 4 or >log 2 4 when expressed as the reciprocal) from the lowest passage level available, preferably from the initial isolation without any selection is diluted 1/10 in sterile isotonic saline. 
Fersk, infisert allantoisvæske med en HA-titer >1/16 (>2 4 eller >log 2 4 når den uttrykkes som den resiproke verdien) fra det lavest mulige nivå, helst fra den første isolasjonen uten forhåndsutvelging, fortynnes til 1/10 i steril isotonisk saltløsning.
0,1 ml of the diluted virus is injected intravenously into each of ten six-week-old SPF or SAN chickens. 
0,1 ml fortynnet virus injiseres intravenøst i ti seks uker gamle kyllinger som er fri for spesifikke sykdomsframkallende stoffer eller er seronegative (SPF- eller SAN-kyllinger).
Birds are examined at 24-hour intervals for 10 days. 
Fuglene undersøkes med 24 timers mellomrom i ti dager.
At each observation, each bird is scored 0 if normal, 1 if sick, 2 if severely sick, 3 if dead. 
Ved hver observasjon betegnes hver fugl som normal (0), syk (1), svært syk (2) eller død (3).
The judgement of sick and severely sick birds is a subjective clinical assessment. 
Betegnelsen av syke og svært syke fugler er en subjektiv klinisk vurdering.
Normally, «sick» birds show one of the following signs and ‘severely sick’ more than one of the following signs: 
Normalt vil «syke» fugler vise ett av de følgende tegnene, og ‘svært syke’ flere enn ett av de følgende tegnene:
respiratory involvement, depression, diarrhoea, cyanosis of the exposed skin or wattles, oedema of the face and/or head, nervous signs. 
åndedrettsbesvær, medtatthet, diaré, cyanose på blottet hud eller hakelapper, ødem i hode, utslag fra nervesystemet.
Dead birds must be scored as 3 at each of the remaining daily observations after death. 
Døde fugler skal betegnes som 3 på hver av de gjenværende daglige observasjonene etter at de er døde.
On welfare grounds when birds are too sick to eat or drink, they must be killed humanely and scored as dead at the next observation since they will die within 24 hours without intervention. 
Av velferdshensyn skal fugler som er for syke til at de kan spise eller drikke, avlives humant og betegnes som døde ved neste observasjon, siden de kommer til å dø i løpet av 24 timer dersom de ikke avlives.
This approach is acceptable to accreditation authorities. 
Denne metoden er akseptabel for akkrediteringsmyndighetene.
The IVPI is the mean score per bird per observation over the 10-day period. 
IVPI er det gjennomsnittlige resultatet per fugl per observasjon i et tidsrom på ti dager.
An index of 3,00 means that all birds died within 24 hours, and an index of 0,00 means that no bird showed any clinical sign during the 10-day observation period. 
En indeks på 3,00 betyr at alle fuglene døde i løpet av 24 timer, og en indeks på 0,00 betyr at ingen fugl viste kliniske tegn i løpet av observasjonstiden på ti dager.
A simple method for recording results and calculating indices is shown in the following example: 
I eksemplet nedenfor vises en enkel metode for å registrere resultatene og beregne indekser:
Clinical signs 
Kliniske tegn
Day after inoculation 
Dag etter inokulering
Total score 
Sammenlagt resultat
The labelling of a table-top sweetener containing polyols and/or aspartame and/or aspartame-acesulfame salt shall bear the following warnings: 
Merkingen av bordsøtningsmidler som inneholder polyoler og/eller aspartam og/eller salt av aspartam og acesulfam, skal inneholde følgende advarsler:
By way of derogation from paragraph 1(a), the sales description of a table-top sweetener shall include the term ‘… -based table-top sweetener’, using the name(s) of the sweetener(s) used in its composition. 
Som unntak fra nr. 1 bokstav a) skal bordsøtningsmidlers varebetegnelse inneholde angivelsen «bordsøtningsmiddel basert på …» fulgt av navnet eller navnene på de søtstoffer som er brukt i sammensetningen.
the name and E-number laid down in this Regulation in respect of each food additive or a sales description which includes the name and E-number of each food additive; 
navnet og E-nummeret som er fastsatt i henhold til denne forordning, for hvert tilsetningsstoff eller en varebetegnelse som inneholder navnet og E-nummeret for hvert tilsetningsstoff,
Without prejudice to Directive 2000/13/EC, Council Directive 89/396/EEC of 14 June 1989 on indications or marks identifying the lot to which a foodstuff belongs( ) and Regulation (EC) No 1829/2003, food additives sold singly or mixed with each other and/or other food ingredients intended for sale to the final consumer may be marketed only if their packaging contains the following information: 
Uten at det berører direktiv 2000/13/EF, rådsdirektiv 89/396/EØF av 14. juni 1989 om angivelse eller merking for å identifisere et bestemt næringsmiddelparti( ) og forordning (EF) nr. 1829/2003, kan tilsetningsstoffer i næringsmidler som selges hver for seg eller blandet med hverandre og/eller med andre næringsmiddelingredienser, og som er beregnet på salg til sluttforbrukeren, bare markedsføres dersom følgende opplysninger angis på emballasjen:
Labelling of food additives intended for sale to the final consumer 
Merking av tilsetningsstoffer i næringsmidler som er beregnet på salg til sluttforbrukeren
By way of derogation from paragraphs 1, 2 and 3, where food additives are supplied in tankers, all of the information may appear merely on the accompanying documents relating to the consignment which are to be supplied with the delivery. 
Uten at det berører nr. 1, 2 og 3, når tilsetningsstoffer i næringsmidler leveres i tanker, er det tilstrekkelig at opplysningene angis i følgedokumentene for sendingen som skal framlegges samtidig med leveransen.
Where substances (including food additives or other food ingredients) are added to food additives to facilitate their storage, sale, standardisation, dilution or dissolution, their packaging or containers shall bear a list of all such substances in descending order of their percentage by weight of the total. 
Når stoffer (herunder tilsetningsstoffer eller andre næringsmiddelingredienser) iblandes tilsetningsstoffer i næringsmidler for å forenkle lagring, salg, standardisering, fortynning eller oppløsning, skal emballasjen eller beholderen inneholde en fortegnelse over alle stoffene i synkende rekkefølge etter deres prosentdel av den totale vekten.
Where food additives are sold mixed with each other and/or with other food ingredients, their packaging or containers shall bear a list of all ingredients in descending order of their percentage by weight of the total. 
Når tilsetningsstoffer i næringsmidler selges blandet med hverandre og/eller med andre næringsmiddelingredienser, skal emballasjen eller beholderen innholde en fortegnelse over alle ingrediensene i synkende rekkefølge etter deres prosentdel av den totale vekten.
where relevant, information on a food additive or other substances referred to in this Article and listed in Annex IIIa to Directive 2000/13/EC as regards the indication of the ingredients present in foodstuffs. 
dersom det er relevant, opplysninger om et tilsetningsstoff eller andre stoffer som omhandlet i denne artikkel og oppført i vedlegg IIIa til direktiv 2000/13/EF med hensyn til angivelse av ingredienser i næringsmidler.
instructions for use, if the omission thereof would preclude appropriate use of the food additive; 
bruksanvisning, dersom mangel av en slik vil kunne hindre riktig bruk av tilsetningsstoffet,
the name and/or E-number laid down in this Regulation in respect of each food additive or a sales description which includes the name and/or E-number of each food additive; 
navnet og/eller E-nummeret som er fastsatt i henhold til denne forordning, for hvert tilsetningsstoff eller en varebetegnelse som inneholder navnet og/eller E-nummeret for hvert tilsetningsstoff,
Where food additives not intended for sale to the final consumer are sold singly or mixed with each other and/or other food ingredients and/or with other substances added to them, their packaging or containers shall bear the following information: 
Når tilsetningsstoffer i næringsmidler som ikke er beregnet på salg til sluttforbrukeren, selges hver for seg eller blandet med hverandre og/eller med andre næringsmiddelingredienser og/eller med andre tilsatte stoffer, skal emballasjen eller beholderen merkes med følgende opplysninger:
General labelling requirements for food additives not intended for sale to the final consumer 
Alminnelige krav til merking av tilsetningsstoffer i næringsmidler som ikke er beregnet på salg til sluttforbrukeren
10 birds observed for 10 days = 100 observations 
10 fugler observert i 10 dager = 100 observasjoner
Index = mean score per bird per observation = 246/100 = 2,46 
Indeks = gjennomsnittlig resultat per fugl per observasjon = 246/100 = 2,46
Any influenza A virus, regardless of subtype, giving a value of greater than 1,2 in an IVPI test is considered to be a HPAI virus. 
Alle influensa A-virus, uansett undertype, som gir en verdi større enn 1,2 ved en IVPI-prøve, anses å være et HPAI-virus.
Serological tests and evaluation of results 
Serologiske undersøkelser og evaluering av resultater
The preferred method used to show the presence of influenza A virus is to demonstrate the possession of the nucleoprotein or matrix antigens which are shared by all influenza A viruses. 
For å påvise forekomst av influensa A-virus foretrekkes en metode som viser at det forekommer nukleoprotein- eller matriksantigener, som er felles for alle influensa A-virus.
It may be done in immunodoublediffusion tests involving either concentrated virus preparations or extracts from infected chorioallantoic membranes. 
Dette kan gjøres ved immunodobbeldiffusjonsprøver med enten konsentrerte viruspreparater eller ekstrakter fra infiserte korioallantoismembraner.
The preferred methods used for serological tests for AI virus antibodies are haemagglutination (HA) and haemagglutination inhibition (Hl) tests. 
De metodene som foretrekkes for serologiske undersøkelser for AI-virusantistoffer, er hemagglutinasjonsprøver (HA-prøver) og hemagglutinasjonshemmingsprøver (HI-prøver).
Chapter 2.7.12 of the Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals of the World Organisation for Animal Health (OIE) contains detailed information on the laboratory techniques and the evaluation of the results. 
I kapittel 2.7.12 i Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals fra Verdens dyrehelseorganisasjon (OIE) finnes det nærmere opplysninger om laboratoriemetoder og evaluering av resultater.
The standard protocols for serological tests and the evaluation of their results as applied by the Community reference laboratory can be found on the following website: 
Standardprotokollene for serologiske undersøkelser og evalueringen av resultatene av dem, som anvendt av Fellesskapets referanselaboratorium, finnes på følgende nettsted:
Monitoring systems associated with vaccination 
Overvåkingssystemer i forbindelse med vaksinasjon
Sections 2 and 3 of Chapter IX, of Directive 2005/94/EC allow the use of emergency and preventive vaccination under certain conditions. 
Avsnitt 2 og 3 i kapittel IX i direktiv 2005/94/EF tillater bruk av nødvaksinasjon og forebyggende vaksinasjon på visse vilkår.
One of those conditions is that a ‘DIVA’ (Differentiating Infected from Vaccinated Animals) strategy is employed. 
Ett av disse vilkårene er at det benyttes en ‘DIVA’-strategi (differensiering mellom angrepne og vaksinerte dyr).
Vaccination must be aimed at preventing the infection and subsequent spreading of virus between flocks. 
Målet for vaksinasjonen skal være å forhindre infeksjon og senere spredning av virus mellom flokker.
There is indisputable evidence to show vaccination increases the amount of virus needed to infect birds and decreases the amount of virus excreted. 
Det er klart dokumentert at vaksinasjon innebærer at det skal til en større mengde virus for å infisere fugler, og at det utskilles en mindre mengde virus.
However, although vaccinated birds do no longer develop clinical signs they can still spread virus when challenged. 
Selv om vaksinerte fugler ikke lenger utvikler kliniske tegn, kan de imidlertid fortsatt spre viruset dersom organismen er angrepet.
Thus HPAI viruses of H5 and H7 subtypes could circulate unnoticed for some time in a flock with suboptimal levels of immunity in the same way that LPAI viruses could do in an unvaccinated flock. 
På denne måten kan HPAI-virus av undertypene H5 og H7 ubemerket være i omløp i en viss tid i en flokk uten fullstendig immunitet, på samme måte som LPAI-virus kan være det i en uvaksinert flokk.
There is therefore a need to be able to identify virus positive vaccinated flocks that have become infected with field virus so that other control measures, such as stamping out, can be implemented. 
Det er derfor nødvendig å kunne identifisere viruspositive vaksinerte flokker som er angrepet av feltvirus, slik at andre bekjempelsestiltak, for eksempel utslakting, kan gjennomføres.
Use of sentinels for monitoring infection 
Bruk av kontrolldyr for å overvåke infeksjon
At the flock level, a simple method is to regularly monitor sentinel birds left unvaccinated in each vaccinated flock, but this approach does have some management problems, particularly in identifying the sentinels especially in large flocks. 
På flokknivå er en enkel metode å regelmessig kontrollere kontrollfugler som ikke er vaksinert i hver vaksinerte flokk, men det er visse styringsproblemer forbundet med denne metoden, særlig når det gjelder å identifisere kontrollfuglene i særlig store flokker.
The contact between the sentinels and the vaccinated birds must be ensured. 
Det må sikres at det er kontakt mellom kontrollfuglene og de vaksinerte fuglene.
DIVA laboratory test for monitoring infection 
DIVA-laboratorieundersøkelse for å overvåke infeksjon
As an alternative or in addition, testing for field exposure may be performed on the vaccinated birds itself by using DIVA laboratory tests. 
Som et alternativ eller i tillegg, kan undersøkelse for naturlig eksponering foretas på de vaksinerte fuglene ved hjelp av DIVA-laboratorieundersøkelser.
Several test systems have been developed in recent years that also allow the detection of field challenge of vaccinated birds. 
Det er i de siste årene utarbeidet flere undersøkelsessystemer som også gjør det mulig å påvise naturlig infeksjon hos vaksinerte fugler.
One method that has proved workable is the use of a vaccine containing a virus of the same haemagglutinin (H) subtype but a different neuraminidase (N) from the prevailing field virus. 
En metode som har vist seg å fungere, er bruken av en vaksine som inneholder et virus av samme undertype av hemagglutinin (H), men en annen nevraminidase (N) enn det aktuelle feltviruset.
Antibodies to the N of the field virus act as natural markers of infection. 
Antistoffer mot N av feltviruset fungerer som naturlige infeksjonsmarkører.
That system was used in Italy following the re-emergence of a LPAI H7N1 virus in 2000. In order to supplement direct control measures, a DIVA strategy was implemented using a vaccine containing H7N3 to combat an H7N1 field infection. 
Dette systemet ble brukt i Italia etter at et LPAI H7N1-virus oppstod på nytt der i 2000. For å kunne supplere direkte bekjempelsestiltak, ble det iverksatt en DIVA-strategi ved hjelp av en vaksine som inneholdt H7N3 for å bekjempe en naturlig H7N1-infeksjon.
Vaccinated and field exposed birds were differentiated using a serological test to detect specific anti-N1 antibodies. 
Det ble differensiert mellom vaksinerte fugler og naturlig eksponerte fugler ved hjelp av en serologisk undersøkelse for å påvise særlige anti-N1-antistoffer.
The same strategy was used to control LPAI caused by H7N3 in Italy in 2002 to 2003, in this case with an H7N1 vaccine and a serological test detecting antibodies against N3 specifically. 
Samme strategi ble brukt til å bekjempe LPAI forårsaket av H7N3 i Italia i 2002-2003, i det tilfellet med en H7N1-vaksine og en serologisk undersøkelse som spesifikt påviser antistoffer mot N3.
In both cases vaccination with stamping out using this DIVA strategy resulted in eradication of the field virus. 
I begge tilfeller medførte vaksinasjon kombinert med utslakting ved hjelp av denne DIVA-strategien at feltviruset ble utryddet.
Problems with that system arise if a field virus emerges that has the same N antigen as the existing field virus but are of another H subtype than H5 or H7 or if subtypes with the same N antigens are already circulating in the field. 
Problemer med dette systemet oppstår dersom det oppstår et feltvirus som har samme N-antigen som det eksisterende feltviruset, men er av en annen H-undertype enn H5 eller H7, eller dersom undertyper med de samme N-antigenene allerede er i omløp i felten.
Particularly ducks are known to be carriers of more than one subtype. 
Særlig er ender kjent for å være bærere av mer enn én undertype.
There was also a need to develop a suitable test that would allow the routine monitoring of flocks for anti-neuraminidase antibodies. 
Det var også nødvendig å utarbeide en egnet undersøkelse som ville gjøre det mulig å rutineovervåke flokker med hensyn til anti-nevraminidase-antistoffer.
In Italy an ‘ad hoc’ serological test based on an indirect fluorescent antibody assay, using as an antigen N proteins expressed by baculovirus recombinants was developed and used. 
I Italia ble det utarbeidet og brukt en ‘ad hoc’ serologisk undersøkelse basert på en indirekte fluorescens-antistoffteknikk, der man som et antigen brukte N-proteiner uttrykt ved bakulovirusrekombinanter.