natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Add 200 g of sodium chloride (NaCl). 
Tilsett 200 g natriumklorid (NaCl), la løsningen avkjøles og fyll opp til 1 l med vann.
Allow the flask to cool naturally for 30 minutes and then immerse it in a cold water-bath. 
La kolben avkjøles naturlig i 30 minutter og deretter ved nedsenking i kaldt vann.
Transfer the solution to a one-litre volumetric flask and make up to one litre. 
Hell 1 liter løsning over i en 1 l målekolbe.
This solution keeps satisfactorily for a month. 
Løsningen holder seg godt i en måned.
When it is to be used, neutralize the test sample (the solution being approximately 0,06 M acid) with sodium hydroxide solution. 
Før den skal brukes nøytraliseres analyseprøven (løsningens surhetsgrad er ca. 0,06 M) med en løsning av natriumhydroksid.
Mix 25 ml of the alkaline copper salt solution, 15 ml water and 10 ml of the clarified solution in a 300 ml conical flask. 
Bland 25 ml basisk kobbersaltløsning, 15 ml vann og 10 ml av den klarede løsning i en 300 ml erlenmeyerkolbe.
This volume of sugar solution must not contain more than 60 mg of invert sugar. 
Denne sukkerløsning må ikke inneholde mer enn 60 mg invertsukker.
Add a few small pieces of pumice stone. 
Tilsett noen få pimpsteinskorn.
Fit a reflux condenser to the flask and bring the mixture to the boil within two minutes. 
Kolben utstyres med en tilbakeløpskjøler, og blandingen varmes opp til kokepunktet i løpet av to minutter.
Keep the mixture boiling for exactly 10 minutes. 
Fortsett kokingen i nøyaktig ti minutter.
Cool the flask immediately in cold running water. 
Avkjøl straks kolben i kaldt, rennende vann.
When completely cool, add 10 ml of 30 % potassium iodide solution (4.1.2), 25 ml of 25 % sulphuric acid (4.1.3) and 2 ml of starch solution (4.1.4). 
Når den er helt avkjølt, tilsettes 10 ml 30 % kaliumjodidløsning (4.1.2), 25 ml 25 % svovelsyre (4.1.3) og 2 ml stivelsesløsning (4.1.4).
Also carry out a blank titration in which the 10 ml of sugar solution is replaced by 10 ml of distilled water. 
Gjennomfør også en blindtitrering der sukkerløsningen på 10 ml erstattes av 10 ml destillert vann.
Let n2 be the number of ml of sodium thiosulphate used. 
Antall ml benyttet natriumtiosulfat uttrykkes ved n'.
The quantity of sugar, expressed as invert sugar, contained in the test sample is given in the table below as a function of the number (n2 - n) of ml of sodium thiosulphate used. 
Mengden av sukker, uttrykt som invertsukker, i analyseprøven er oppført i tabellen nedenfor som en funksjon av det benyttede antall ml (n' - n) natriumtiosulfat.
The sugar content of the wine is to be expressed in grams of invert sugar per litre to one decimal place, account being taken of the dilution made during clarification and of the volume of the test sample. 
Vinens innhold av invertsukker angis i g/l med én desimal, under hensyn til de fortynninger som er gjort under klaringen og til analyseprøvens volum.
SUCROSE 
SUKROSE
sucrose is separated from other sugars using thin-layer chromatography on plate coated with cellulose. 
Sukrose atskilles fra andre sukkerarter ved tyntsjiktskromatografi på en plate belagt med cellulose.
The developing agent is urea-hydrochloric acid at 105 ° C. 
Som framkallingsreagens brukes urea-saltsyre ved 105 E C.
The result is quantified by reference to an external standard analysed under the same conditions. 
Resultatet kvantifiseres ved hjelp av en ekstern standard analysert under samme forhold.
Authentication of a must or of a wine may be checked by the method using NMR of deuterium described for detecting the enrichment of musts, rectified concentrated musts and wines. 
Ektheten av en most eller en vin kan kontrolleres ved hjelp av kjernemagnetisk resonans av deuterium, som benyttes til påvisning av anriking av most, konsentrert rektifisert most og vin. Ved undersøkelse og bestemmelse av sukrose kan det også brukes gasskromatografi, som beskrevet i kapittel 42 bokstav f).
QUALITATIVE TESTING BY THIN-LAYER CHROMATOGRAPHY 
KVALITATIV ANALYSE VED TYNTSJIKTSKROMATOGRAFI
hromatograhic plates covered with a desired thickness of cellulose powder (e.g. MN 300) (20 × 20). 
Kromatografiske plater belagt med med den ønskede tykkelse cellulosepulver.
When the must or wine is strongly coloured, decolourize it by treating it with activated charcoal. 
Dersom mosten eller vinen er sterkt farget, avfarges den med aktivt kull.
For rectified concentrated musts, use the solution with a sugar concentration of 25 % by mass (25 ° Brix) prepared as described in the chapter 'pH of wine and must', section 4.1.2, and dilute it with water to a quarter of its concentration by making 25 ml up to 100 ml in a volumetric flask. 
Til konsentrert rektifisert most brukes en løsning med et sukkerinnhold på 25 masseprosent (25 E Brix) klargjort som beskrevet i kapittelet «pH-verdi», nr. 4.1.2, som fortynnes med vann til en firedel av konsentrasjonen ved å fortynne 25 ml til 100 ml i en målekolbe.
Obtaining the chromatogram 
Framstilling av kromatogram
Place on a parallel line 2,5 cm from the bottom edge of the plate: 
På en rett linje 2,5 cm fra platens nedre kant plasseres:
Place the plate in the tank, previously saturated with the vapour from the mobile phase. 
Platen plasseres i karet, som på forhånd er mettet med dampen fra den mobile fase.
Allow the mobile phase to migrate to within 1 cm of the top of the plate. 
La den mobile fase migrere til 1 cm fra platens øvre kant.
Remove the plate and dry it in a current of warm air. 
Fjern platen og tørk den i en varm luftstrøm.
Repeat the migration two more times, drying the plate each time. 
Gjenta migrasjonen to ganger, og tørk platen hver gang.
Spray the plate uniformly with 15 ml of colouring agent and place in the oven at 105 °C for approximately five minutes. 
Platen påføres så 15 ml framkallingsreagens i et jevnt lag, og plasseres i ovnen ved 105 °C i ca. fem minutter.
Saccharose and fructose appear as a deep blue spot on a white background: glucose gives a less intense green spot. 
Sukrose og fruktose viser seg som mørkeblå flekker på hvit bakgrunn, mens glukose gir en svakere grønnfarge.
TESTING AND DETERMINATION BY HIGH-PERFORMANCE LIQUID CHROMATOGRAPHY 
ANALYSE OG BESTEMMELSE VED HJELP AV HPLC
The chromatographic conditions are given for guidance 
De kromatografiske rammevilkår er bare veiledende.
High-performance liquid chromatograph equipped with: 
Høyoppløselig væskekromatograf utstyrt med:
Doubly distilled water. 
Dobbeldestillert vann.
This mobile phase must be outgassed before being used. 
Den mobile fase må avgasses før bruk.
Standard solution: 
Standardløsning:
Preparation of sample: 
Klargjøring av prøven
For wines and musts: filter using a 0,45 µm membrane filter. 
Vin og most: filtreres gjennom en membran (0,45 µm).
For rectified concentrated musts: use the solution obtained by diluting the rectified concentrated must to 40 % (m/v) as described in the chapter 'Total acidity', section 5.1.2., and filtering it using a 0,45 µm membrane filter. 
Konsentrert rektifisert most: bruk en løsning framstilt ved fortynning av den konsentrerte rektifiserte most til 40 % (m/v) som beskrevet i kapittelet «Totalt syreinnhold», nr. 5.1.2, og filtrer gjennom en membran (0,45 µm).
Inject in turn into the chromatograph 10 µl of the standard solution and 10 µm of the sample prepared as described in 3.3.1. 
I kromatografen innsprøytes vekselvis 10 µl av standardløsningen og 10 µl av prøven klargjort som beskrevet i nr. 3.3.1.
Repeat these injections in the same order. 
Gjenta innsprøytingene i samme rekkefølge.
For the calculation, use the average of two results for the standard solution and the sample. 
Ved beregningen brukes gjennomsnittet av de to resultater for standardløsningen og analyseprøven.
For rectified concentrated musts: let C be the sucrose concentration in g/l of the 40 % (m/v) solution of rectified concentrated must. 
Konsentrert rektifisert most: sukroseinnholdet i g/l i 40 % (m/v) løsningen av konsentrert rektifisert most uttrykkes ved C.
The sucrose concentration in g/kg of the rectified concentrated must is then: 
Sukroseinnholdet i g/kg konsentrert rektifisert most blir da:
The sucrose concentration in wines, musts and rectified concentrated musts is expressed in grams per litre for wines and musts and in grams per kilogram for rectified concentrated musts, each to one place of decimals. 
Sukroseinnholdet i vin og most uttrykkes i g/l, mens sukroseinnholdet i konsentrert rektifisert most uttrykkes i g/kg, begge med én desimal.
GLUCOSE AND FRUCTOSE 
GLUKOSE OG FRUKTOSE
Glucose and fructose may be determined individually by an enzymatic method, with the sole aim of calculating the glucose/fructose ratio. 
Glukose og fruktose kan bestemmes hver for seg ved hjelp av en enzymatisk metode, med det formål å beregne forholdet mellom glukose og fruktose.
Glucose and fructose are phosphorylated by adenosine triphosphate (ATP) during an enzymatic reaction catalysed by hexokinase (HK), and produce glucose 6-phosphate (G6P) and fructose 6-phosphate (F6P): 
Glukose og fruktose fosforyleres med adenosintrifosfat (ATP) ved en enzymatisk reaksjon som katalyseres av heksokinase (HK), og produserer glukose-6-fosfat (G6P) og fruktose-6-fosfat (F6P):
The glucose 6-phosphate is first oxidized to gluconate 6-phosphate by nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADP) in the presence of the enzyme glucose 6-phosphate dehydrogenase (G6PDH). 
Glukose-6-fosfat oksideres først til glukonat-6-fosfat med nikotinamid-adenin-dinukleotid-fosfat (NADP) i nærvær av enzymet glukose-6-fosfat-dehydrogenase (G6PDH).
The quantity of reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) produced corresponds to that of glucose 6-phosphate and thus to that of glucose. 
Den produserte mengde redusert nikotinamid-adenin-dinukleotid-fosfat (NADPH) tilsvarer mengden av glukose-6-fosfat og dermed også mengden av glukose.
The reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate is determined from its absorption at 340 nm. 
Det reduserte nikotinamid-adenin-dinukleotid-fosfat bestemmes ut fra dets absorpsjon ved 340 nm.
At the end of this reaction, the fructose 6-phosphate is converted into glucose 6-phosphate by the action of phosphoglucose isomerase (PGI): 
Reaksjonen avsluttes med at fruktose-6-fosfatet omdannes til glukose-6-fosfat ved hjelp av fosfoglukose-isomerase (PGI):
The glucose 6-phosphate again reacts with the nicotinamide adenine dinucleotide phosphate to give gluconate 6-phosphate and reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate, and the latter is then determined. 
Glukose-6-fosfatet reagerer igjen med nikotinamid-adenin-dinukleotid-fosfatet og danner glukonat-6-fosfat og redusert nikotinamid-adenin-dinukleotid-fosfat, som deretter bestemmes.
Absolute measurements are involved (i.e. calibration plots are not used but standardization is made using the extinction coefficient of NADPH), so that the wavelength scales of and absorbence values obtained from the apparatus must be checked. 
Da det dreier seg om absolutte målinger (det vil si at ekstinksjonskoeffisienten for NADPH brukes i stedet for kalibreringskurver), må apparatets bølgelengdeskalaer og absorbansverdier kontrolleres.
A spectrophotometer enabling measurements to be made at 340 nm, the wavelength at which absorption by NADPH is at a maximum. 
Et spektrofotometer som muliggjør målinger ved 340 nm, den bølgelengde der NADPH har sitt maksimale absorpsjonsnivå.
If not available, a spectrophotometer using a source with a discontinuous spectrum which enables measurements to be made at 334 nm or at 365 nm may be used. 
I mangel av et slikt spektofotometer kan det brukes et spektrofotometer med diskontinuerlig spektrum som muliggjør målinger ved 334 nm eller 365 nm.
Glass cells with optical path lengths of 1 cm or single-use cells. 
Optiske celler med 1 cm lysvei eller engangsceller.
Pipettes for use with enzymatic test solutions, 0,02, 0,05, 0,1, 0,2 ml. 
Pipetter til bruk ved enzymatiske prøveløsninger, 0,02, 0,05, 0,1, 0,2 ml.
This buffer solution may be kept for four weeks at +4 °C. 
Bufferløsningen kan oppbevares i fire uker ved +4 E C.
All solutions used above are available commercially. 
Alle ovennevnte løsninger finnes i handelen.
Preparation of sample 
Klargjøring av prøven
Depending on the estimated amount of glucose + fructose per litre, dilute the sample as follows: 
Avhengig av den anslåtte mengde glukose + fruktose per liter, fortynnes analyseprøven på følgende måte:
With the spectrophotometer adjusted to the 340 nm wavelength, make measurements using air (no cell in the optical path) or water as reference. 
Med spektrofotometeret innstilt på bølgelengden 340 nm, foretas målingene med luft (ingen celle i den optiske lysvei) eller vann som referanse.
Temperature between 20 and 25 °C. 
Temperatur mellom 20 og 25 °C.
Into two cells with 1 cm optical paths, place the following: 
I to optiske celler med 1 cm lysvei fylles følgende:
Mix, and after about three minutes read off the absorbence of the solutions (A1). 
Dette blandes, og løsningenes absorbans (A 1 ) leses av etter ca. tre minutter.
Start the reaction by adding: 
Reaksjonen startes ved å tilsette:
Mix; wait 15 minutes; read off the absorbence and check that the reaction has stopped after a further two minutes (A2). 
Bland og la væsken stå i 15 minutter. Les av løsningens absorbans og kontrollér at reaksjonen har stanset etter ytterligere to minutter (A 2 ) .
Mix; read off the absorbence after 10 minutes and check that the reaction has stopped after a further two minutes (A3). 
Bland væsken og les av løsningens absorbans etter ti minutter. Kontroller at reaksjonen har stanset etter ytterligere to minutter (A 3 ) .
Calculate the differences in the absorbences: 
Beregn absorbansdifferansene:
The time needed for the completion of enzyme activity may vary from one batch to another. 
Tiden for enzymvirkningen kan variere fra én prøve til en annen.
The above value is given only for guidance and it is recommended that it be determined for each batch. 
Ovenstående verdi er bare veiledende, og det anbefales at den bestemmes for hver enkelt prøve.
The general formula for calculating the concentrations is: 
Følgende generelle formel brukes ved beregning av konsentrasjoner:
If the sample was diluted during its preparation, multiply the result by the dilution factor F. 
Dersom prøven ble fortynnet på forhånd, multipliseres resultatet med fortynningsfaktoren F.
If the measurements are made at 334 or 365 nm, then the following expressions are obtained: 
Dersom målingene gjøres ved 334 eller 365 nm, oppnås følgende resultater:
DETECTING ENRICHMENT OF GRAPE MUSTS, CONCENTRATED GRAPE MUSTS, RECTIFIED CONCENTRATED GRAPE MUSTS AND WINES BY APPLICATION OF NUCLEAR MAGNETIC RESONANCE OF DEUTERIUM (SNIF-NMR/RMN-FINS) 
PÅVISNING AV ANRIKING AV DRUEMOST, KONSENTRERT DRUEMOST, KONSENTRERT REKTIFISERT DRUEMOST OG VIN VED ANVENDELSE AV KJERNEMAGNETISK RESONANS AV DEUTERIUM (SNIF-NMR/RMN-FINS)
The deuterium contained in the sugars and the water in grape must will be redistributed after fermentation in molecules I, II, III and IV of the wine: 
Deuteriumatomene i sukkerartene og vannet i druemost vil etter gjæring være fordelt i molekyl I, II, III og IV i vinen:
The addition of exogenous sugar (sugaring in the dry) before the must ferments will have an effect on the distribution of the deuterium. 
Tilsetting av eksogene sukkerarter før mosten gjærer vil ha innvirkning på fordelingen av deuteriumatomene.
As compared with the figures for parameters for a natural control wine from the same region, the enrichment of an exogenous sugar will lead to the following variations: 
Sammenlignet med verdiene av parametrene i en naturlig kontrollvin fra samme region, vil tilsetting av eksogene sukkerarter medføre følgende variasjoner:
The parameters defined above (R,(D/H)I, (D/H)II) are determined by nuclear magnetic resonance of the deuterium in the ethanol extracted from the wine or from the fermentation products of the must, the concentrated must or the rectified concentrated must obtained under given conditions; 
Parameterne definert ovenfor (R, (D/H) I og (D/H) II ) bestemmes ved kjernemagnetisk resonans av deuteriumet i etanol ekstrahert fra vinen eller gjæringsproduktene fra mosten, den konsentrerte most eller den konsentrerte rektifiserte most, oppnådd under bestemte forhold.
they may be supplemented by determining the isotope ratio of the water extracted from the wine, 
De kan eventuelt suppleres med bestemmelse av isotopforholdet i vannet som er ekstrahert fra vinen,
Pending the creation of a Community data bank proceed as follows: 
I påvente av opprettelsen av en databank for Fellesskapet, gjelder følgende:
In the case of wines, control samples taken in the regions must be accompanied by natural control samples (at least three) of the same origin (geographical place and vintage); 
For vin må kontrollprøver tatt i de ulike regioner følges av minst tre naturlige kontrollprøver av samme opprinnelse (geografisk beliggenhet og årgang).
three series of such samples are to be taken.In the case of musts, concentrated musts and rectified concentrated musts, three series of control samples are to be made up of natural musts of the same origin (geographical place and vintage). 
Slike prøver skal tas i tre eksemplarer. For most, konsentrert most og konsentrert rektifisert most skal det tas kontrollprøver i tre eksemplarer bestående av naturlig most av samme opprinnelse (geografisk beliggenhet og årgang).
For checks on products prepared within their own territory and pending the establishment of a Community data bank, the Member States may on a transitional basis use a national data bank. 
Medlemsstatene kan i en overgangsperiode og i påvente av opprettelsen av en databank for Fellesskapet bruke en nasjonal databank med henblikk på kontroll av produkter framstilt innenfor deres eget territorium.
Extraction of ethanol and water in the wine 
Ekstraksjon av etanol og vann fra vinen
Any method for ethanol extraction can be used as long as 98 to 98,5 % of the total alcohol in the wine is recovered in a distillate which contains 92 to 93 % mas (95 % vol). 
Enhver metode for ekstraksjon av etanol kan benyttes, forutsatt at 98 til 98,5 % av det totale alkoholinnhold i vinen kan gjenvinnes i et destillat som inneholder 92 til 93 mas.% (95 vol.%).
Apparatus and reagents 
Apparatur og reagenser
Apparatus for extracting ethanol (Figure 1) comprising: 
Apparatur til ekstraksjon av etanol (figur 1) bestående av:
electric heating mantle with voltage regulator, 
elektrisk oppvarmet kolbe med spenningsregulator,
Cadiot column with rotating band (moving part in Teflon), 
Cadiot-kolonne med roterende bånd (den bevegelige del av teflon),
125 ml conical flasks with ground glass neck joints, 
125 ml erlenmeyerkolber med slip,
125 and 60 ml bottles with plastic stoppers. 
125 ml og 60 ml flasker med plastpropper.
Reagents for the determination of water by the Karl Fischer method (e.g. Merck 9241 and 9243). 
Reagenser til bestemmelse av vann ved hjelp av Karl Fischer-metoden (eksempelvis Merck 9241 og 9243).
Determine the alcoholic strength of the wine (tv) to better than the nearest 0,05 % vol. 
Vinens alkoholstyrke (t v ) bestemmes med en nøyaktighet på minst 0,05 vol.%.
Introduce a homogeneous sample of 500 ml of wine of alcoholic strength tv into the flask in the distillation apparatus with a constant reflux ratio of about 0,9. 
En homogen vinprøve på 500 ml med en alkoholstyrke på t v helles over i kolben i destillasjonsapparatet med et konstant tilbakestrømningsforhold på ca.
Place a 125 ml ground conical flask, calibrated beforehand, to receive the distillate. 
Plasser en 125 ml erlenmeyerkolbe med slip, kalibrert på forhånd, til oppsamling av destillatet.
Collect the boiling liquid between 78,0 and 78,2 °C, i.e. approximately 40 to 60 ml. 
Samle opp mellom 40 og 60 ml av væsken, som koker mellom 78,0 og 78,2 °C.
If the temperature exceeds 78,5 °C, discontinue collection for five minutes. 
Dersom temperaturen overstiger 78,5 °C, avbrytes oppsamlingen i fem minutter.
When the temperature returns to 78 °C, recommence collecting the distillate until 78,5 °C and repeat this operation until the temperature, after discontinuing collection and operating within a closed circuit, remains constant. 
Når temperaturen er falt til 78 E C, gjenopptas oppsamlingen av destillat til temperaturen når 78,5 E C. Gjenta prosessen til temperaturen, etter avbrytelse av oppsamlingen og funksjon i lukket krets, holder seg konstant.
Complete distillation lasts approximately five hours. 
En fullstendig destillasjon varer i ca. fem timer.
This procedure enables between 98 and 98,5 % of the total alcohol in the wine to be recovered in a distillate with a strength of between 92 and 93 % mas (95 % vol), a strength for which the NMR conditions described in section 4 have been established. 
Ved denne framgangsmåte kan mellom 98 og 98,5 % av det totale alkoholinnhold i vinen opptas i et destillat med en styrke på mellom 92 og 93 mas.% (95 vol.%). NMR-vilkårene beskrevet i nr. 4 er fastsatt for denne alkoholstyrke.
The ethanol collected is weighed. 
Den oppsamlede etanol veies.
A homogeneous 60 ml sample of the residues is kept in a 60 ml flask and represents the water in the wine. 
En homogen 60 ml prøve av destillasjonsrestene oppbevares i en 60 ml kolbe, og representerer vanninnholdet i vinen.
Its isotope ratio may be determined if required. 
Isotopforholdet kan om nødvendig bestemmes.
If a spectrometer fitted with a 10 mm probe is available (cf. section 4), a homogeneous test sample of 300 ml of wine is sufficient. 
Dersom det brukes et spektrometer utstyrt med en 10 mm sonde (jf. nr. 4), er det tilstrekkelig med en homogen vinprøve på 300 ml.
Determination of the alcoholic strength of the alcohol extracted 
Bestemmelse av alkoholstyrken av den ekstraherte alkohol
The water content (p2 g) is determined by the Karl Fischer method using a sample of about 0,5 ml of alcohol of exactly known mass p. 
Vanninnholdet (p' g) bestemmes ved hjelp av Karl Fischer-metoden i en prøve på ca. 0,5 ml alkohol med nøyaktig kjent masse p.
Distillation apparatus for the extraction of ethanol 
Destillasjonsapparat til ekstraksjon av etanol
Fermentation of musts, concentrated musts and rectified concentrated musts 
Gjæring av most, konsentrert most og konsentrert rektifisert most
DIFCO Bacto Yeast Nitrogen Base without amino acids 
«DIFCO Bacto Yeast Nitrogen Base» uten aminosyrer.
Active dry yeasts (Saccharomyces cerevisae) 
Aktiv tørrgjær (Saccharomyses cerevisae).
If the isotope ratio of the must is known the yeast can be reactivated prior to use for 15 minutes in a minimum amount of lukewarm non-distilled water, so that the isotope ratio is similar to that of the must. 
Dersom isotopforholdet i mosten er kjent, kan gjæren før bruk reaktiveres i 15 minutter i en viss mengde lunkent, udestillert vann, slik at isotopforholdet tilsvarer isotopforholdet i mosten.
If the isotope ratio of the must is not known it is better to use fresh/direct. 
Dersom isotopforholdet i mosten ikke er kjent, bør gjæren brukes i uendret stand.
Fermentation vessel of a capacity of 1,5 litres fitted with a device to keep it airtight and to condense alcohol vapour, since no loss of ethanol during fermentation must be tolerated. 
Gjæringsbeholder med en kapasitet på 1,5 l påmontert utstyr som gjør at den er lufttett og kan kondensere alkoholdamp, da etanol ikke må gå tapt under gjæringen.
The rate of conversion of fermentable sugars into ethanol should be greater than 98 %. 
Omdanningsgraden for gjærbart sukker til etanol må være høyere enn 98 %.
Place one litre of must, whose concentration of fermentable sugars has been previously determined, in the fermentation vessel. 
Hell 1 l most, hvis konsentrasjon av gjærbart sukker er bestemt på forhånd, over i gjæringsbeholderen.
Add 1 g of dry yeast reactivated beforehand. 
Tilsett 1 g tørrgjær som på forhånd er reaktivert.
Insert device to keep it airtight. 
Beholderen lukkes slik at den er lufttett.
Allow fermentation to proceed at around 20 °C until the sugar is used up. 
La gjæringen pågå ved ca. 20 E C til sukkeret er omdannet.