natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Pipette 10,0 ml of stock standard solution (3.10.1) into a 100 ml graduated flask, make up to the mark with acidified methanol (3.8) and mix.
Overfør 10 ml av standardstamløsningen (3.10.1) til en målekolbe på 100 ml med pipette, fyll opp til merket med sur metanol (3.8) og bland.
HPLC equipment with injection system, suitable for injecting volumes of 20 μl.
HPLC-utstyr med injeksjonssystem, egnet til injeksjonsmengder på 20 μl.
Liquid chromatographic column 125 mm x 4 mm, reversed-phase C 18 , 5 μm packing or equivalent.
Væskekromatografikolonne, 125 mm × 4 mm, reversfase C 18 , 5 µm pakning eller tilsvarende.
Add 50 g of the blank feed, mix thoroughly and leave for 10 minutes mixing again several times before proceeding with the extraction step (5.2).
Tilsett 50 g av blindprøven, bland grundig og la prøven stå i 10 min. Bland igjen flere ganger før ekstraksjonen (5.2) påbegynnes.
Weigh to the nearest 0,01 g, from 5 g to 10 g of the sample into a 250 ml conical flask with stopper.
Vei opp 5–10 g av prøven med en nøyaktighet på 0,01 g og overfør til en 250 ml erlenmeyerkolbe med propp.
Place the flask in an ultrasonic bath (4.1) at approximately 40 o C for 20 minutes, then remove and cool to room temperature.
Kolben settes i ultralydbad (4.1) ved ca. 40 o C i 20 minutter, tas opp av ultralydbadet og avkjøles til romtemperatur.
Weigh to the nearest 0,001 g about 2 g of the unground premix into a 250 ml graduated flask.
Vei opp 2 g av den umalte prøven med en nøyaktighet på 0,001 g og overfør til en målekolbe på 250 ml.
Place the flask and contents in an ultrasonic bath (4.1) at approximately 40 o C for 20 minutes, then remove and cool to room temperature.
Kolben med innhold settes i ultralydbad (4.1) ved ca. 40 o C i 20 minutter, tas opp av ultralydbadet og avkjøles til romtemperatur.
125 mm × 4 mm, reversed-phase C 18 , 5 μm packing or equivalent
125 mm × 4 mm, reversfase C 18 , 5 μm pakning eller tilsvarende.
volume of the sample extract according to 5.2.1 in ml (i.e. 100)
prøveekstraktets volum iht. 5.2.1 i ml (dvs. 100)
The peak width, at half height, must be within ± 10 % of the original peak width produced by the unfortified sample extract.
Bredden av toppen, i halv høyde, skal være innenfor ± 10 % av den opprinnelige bredden av lasalocid-natrium-toppen av prøveekstraktet uten økt konsentrasjon.
15 % relative to the higher value for lasalocid sodium contents from 30 mg/kg to 100 mg/kg,
15 % av det høyeste resultatet for et innhold av lasalocid-natrium på mellom 30 og 100 mg/kg,
7,5 % relative to the higher value for lasalocid sodium contents of more than 200 mg/kg.
7,5 % av det høyeste resultatet for et innhold av lasalocid-natrium på over 200 mg/kg.
For the fortified (blank) feed sample, the recovery shall be at least 80 %.
Gjenfinningsprosenten for en blindprøve av fôrvarer tilsatt standard skal være minst 80 %.
For the fortified premixture samples, the recovery shall be at least 90 %.
Gjenfinningsprosenten for en blindprøve av premikser tilsatt standard skal være minst 90 %.
A collaborative study( ) was arranged in which 2 premixtures (samples 1 and 2) and 5 feeds (samples 3-7) were analysed by 12 laboratories.
I en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier( ) ble to prøver av premikser (prøve 1 og 2) og 5 prøver av fôrvarer (prøve 3–7) analysert av 12 laboratorier.
coefficient of variation of reproducibility, %.
variasjonskoeffisient for reproduserbarhet (%)
Propan-2-ol-hexane mixture: mix 60 parts by volume of propan-2-ol with 40 parts by volume of n -hexane.
Blanding av 2-propanol og heksan: 60 volumdeler 2-propanol blandes med 40 volumdeler n-heksan.
If the optical density in the blank test exceeds 0,022 , distil the aniline over zinc dust, discarding the first and last 10 % fractions of the distillate.
Dersom den optiske tettheten i blindprøven overskrider 0,022, destilleres anilinen over sinkstøv, og den første og siste fraksjonen på 10 % av destillatet slås ut.
For the determination of free gossypol in cottonseed, cottonseed meal and cottonseed cake, the test sample shall not exceed 1 g; for compound feed, it may be as much as 5 g. A 10 ml aliquot part of filtrate is suitable in most cases; it shall contain 50 to 100 μg of gossypol.
For bestemmelse av fri gossypol i bomullsfrø, mel av bomullsfrø og bomullsfrøkaker bør prøven ikke være på over 1 g; for fôrblandinger kan den være på inntil 5 g. En delmengde på 10 ml av filtratet er passende i de fleste tilfeller; den bør inneholde 50–100 μg gossypol.
For the determination of total gossypol, the test sample shall be between 0,5 and 5 g, that a 2 ml aliquot part of filtrate will contain 40 to 200 μg of gossypol.
For bestemmelse av total gossypol bør prøven være på mellom 0,5 og 5 g; en delmengde på 2 ml av filtratet bør inneholde 40–200 μg gossypol.
The analysis shall be carried out at a room temperature of about 20 o C.
Analysen bør utføres ved en romtemperatur på ca. 20 o C.
Determine the optical density of the blank test solution (D) by comparison with the reference solution (C), and the optical density of the sample solution (B) by comparison with the reference solution (A), in the spectrophotometer at 440 nm using 1 cm glass cells.
Mål deretter den optiske tettheten i blindprøveløsningen (D) ved sammenligning med referanseløsningen (C) og den optiske tettheten i prøveløsningen (B) ved sammenligning med referanseløsningen (A) i et spektrofotometer ved 440 nm med 1 cm tykke glassceller.
E ((1 %)/(1 cm))= 625
E ((1 %)/(1 cm))= 625
(E × 1 250)/((E 1cm 1 % ) × p × a)where:
(E × 1 250)/((E 1cm 1 % ) × p × a) der:
15 %, in relative value to the higher level, for gossypol contents of less than 500 ppm,
15 % av den høyeste verdien for et innhold av gossypol på mindre enn 500 ppm,
10 %, in relative value to the higher value, for contents of more than 750 ppm.
10 % av den høyeste verdien for et innhold av gossypol på mer enn 750 ppm.
The quantitative requirements in relation to the control of substances or products uniformly distributed throughout the feed as provided for in point 5.A. of the Annex I have to be applied.
De kvantitative kravene i forbindelse med kontroll av stoffer eller produkter som er jevnt fordelt i fôrvarene, som fastsatt i punkt 5.A i vedlegg I, må anvendes.
The lot is non-compliant with the maximum level as laid down in Directive 2002/32/EC, if the upperbound( ) analytical result, confirmed by duplicate analysis( ), exceeds the maximum level beyond reasonable doubt taking into account the measurement uncertainty.
Partiet er ikke i samsvar med grenseverdien fastsatt i direktiv 2002/32/EF dersom analyseresultatet( ) som er bekreftet ved to analyser og beregnet som en middelverdi for minst to atskilte bestemmelser( ), overskrider grenseverdien utover rimelig tvil når det tas hensyn til måleusikkerheten.
by calculating the expanded uncertainty, using a coverage factor of 2 which gives a level of confidence of approximately 95 %.
Ved å beregne utvidet usikkerhet, ved hjelp av en dekningsfaktor på 2 som gir et konfidensnivå på ca. 95 %.
by establishing the decision limit (CCα) in accordance with Commission Decision 2002/657/EC( ) (point 3.1.2.5 of the Annex — the case of substances with established permitted level).
ved fastslå bestemmelsesgrensen (CCα) i samsvar med kommisjonsvedtak 2002/657/EF( ) (nr. 3.1.2.5 i vedlegget — tilfellet med stoffer med fastsatt tillatt nivå).
Monitoring for the presence of dioxins in feed can be performed by a strategy involving a screening method in order to select those samples with levels of dioxins and dioxin-like PCBs that are less than 25 % below or exceed the level of interest.
Forekomsten av dioksiner i fôrvarer kan overvåkes ved hjelp av en strategi der det brukes en screeningmetode til å velge ut prøver med et innhold av dioksiner og dioksinlignende PCB som enten ligger mindre enn 25 % under det aktuelle nivå, eller som overskrider det.
The general provisions on the preparation of samples for analysis as laid down in the Annex II are applicable.
De alminnelige bestemmelsene om tillaging av prøver for analyse som fastsatt i vedlegg II får anvendelse.
For most PCB congeners sensitivity in nanogram (10 -9 g) range is already sufficient.
For de fleste PCB-forbindelser er det tilstrekkelig med en følsomhet i størrelsesordenen nanogram (10 -9 g).
Accuracy is expressed as trueness (difference between the mean value measured for an analyte in a certified material and its certified value, expressed as percentage of this value) and precision (RSD R, relative standard deviation calculated from results generated under reproducibility conditions).
Nøyaktighet uttrykkes som «riktighet» (differansen mellom den gjennomsnittlige måleverdien for en analytt i et sertifisert materiale og dens sertifiserte verdi, uttrykt i prosent av denne verdien) og «presisjon» (RSD R , det vil si relativt standardavvik beregnet fra resultater som er oppnådd ved reproduserbarhetsforhold).
- 20 % to + 20 %
- 20 % til + 20 %
Addition of 13 C-labelled 2,3,7,8-chlorine substituted internal PCDD/F standards and of 13 C-labelled internal dioxin-like PCB standards must be carried out at the very beginning or start of the analytical method, e.g. prior to extraction in order to validate the analytical procedure.
For å validere analysemetoden må det tilsettes 13 C-merkede 2,3,7,8-klorsubstituerte interne PCDD/F-standarder og 13 C-merkede interne dioksinlignende PCB-standarder helt i begynnelsen av analysemetoden.
There shall be a clear preference, certainly in case of confirmatory methods, of using all 17 13 C-labelled 2,3,7,8-substituted internal PCDD/F standards and all 12 13 C-labelled internal dioxin-like PCB standards.
Det beste er likevel, særlig for bekreftelsesmetoder, å bruke alle de sytten 13 C-merkede 2,3,7,8-substituerte interne PCDD/F-standardene og alle de tolv 13 C-merkede interne dioksinlignende PCB-standardene.
Relative response factors shall also be determined for those congeners for which no 13 C-labelled analogue is added by using appropriate calibration solutions.
Ved hjelp av relevante kalibreringsløsninger skal dessuten relative responsfaktorer bestemmes for de forbindelser som det ikke tilsettes en 13 C-merket analog for.
For feed of plant origin and feed of animal origin containing less than 10 % fat, the addition of the internal standards is mandatory prior to extraction.
For fôrvarer av vegetabilsk og animalsk opprinnelse som inneholder mindre enn 10 % fett, skal interne standarder tilsettes før ekstraksjonen.
For feed of animal origin containing more than 10 % fat, the internal standards can be added either before extraction or after fat extraction.
For fôrvarer av animalsk opprinnelse som inneholder mer enn 10 % fett, kan de interne standardene tilsettes enten før ekstraksjonen eller etter fettekstraksjonen.
For confirmatory methods, the recoveries of the individual internal standards must be in the range of 60 % to 120 %.
For bekreftelsesmetoder skal gjenfinningen av de enkelte interne standardene ligge i området 60–120 %.
Lower or higher recoveries for individual congeners, in particular for some hepta- and octa- chlorinated dibenzodioxins and dibenzofurans, are acceptable on the condition that their contribution to the TEQ value does not exceed 10 % of the total TEQ value (based on sum of PCDD/F and dioxin-like PCBs).
For enkelte forbindelser, særlig visse hepta- og okta-klorerte dibenzodioksiner og dibenzofuraner, kan lavere eller høyere gjenfinningsprosenter godtas, forutsatt at deres bidrag til TEQ-verdien ikke utgjør mer enn 10 % av den samlede TEQ-verdien (basert på summen av PCDD/F og dioksinlignende PCB-er).
For screening methods, the recoveries must be in the range of 30 % to 140 %.
Gjenfinningsprosenten ved screeningmetoder bør ligge i området 30–140 %.
Gaschromatographic separation of isomers shall be sufficient ( &lt; 25 % peak to peak between 1,2,3,4,7,8-HxCDF and 1,2,3,6,7,8-HxCDF).
Isomerer bør være tilstrekkelig separert i gasskromatogrammet ( &lt; 25 % fra topp til topp mellom 1,2,3,4,7,8-HxCDF og 1,2,3,6,7,8-HxCDF).
The difference between upperbound level and lower bound level must not exceed 20 % for feed with a dioxin contamination in the range or above the maximum level.
Differansen mellom øvre og nedre konsentrasjon av forbindelsene bør ikke overskride 20 % for fôrvarer med en dioksinforurensing som ligger i området for eller over grenseverdien.
For feed with contamination levels well below the maximum level, the difference may be in the range of 25 %-40 %.
For fôrvarer med en dioksinforurensning som ligger godt under grenseverdien, kan det være en differanse på 25–40 %.
The coefficient of variation must be below 30 %.
Variasjonskoeffisienten bør ligge på under 30 %.
Actual false negative rates must be under 1 %.
Den faktiske andel av falske negative prøver skal ligge på under 1 %.
In addition, samples from a wide TEQ-range shall be confirmed by HRGC/HRMS (approximately 2 %-10 % of the negative samples).
I tillegg bør prøver innenfor et stort TEQ-intervall bekreftes med HRGC/HRMS (ca. 2–10 % av de negative prøvene).
When performing a bioassay, every test run requires a series of reference concentration of TCDD or a dioxin/furan mixture (full dose-response curve with a R 2 &gt; 0,95).
Når det gjennomføres biologiske prøver, kreves det for hver analyse en serie referansekonsentrasjoner av TCDD eller av en dioksin/furan-blanding (fullstendig dose/responskurve med R 2 &gt; 0,95).
The per cent standard deviation shall not be above 15 % in a triplicate determination for each sample dilution and not above 30 % between three independent experiments.
Standardavviket bør ikke overskride 15 % ved tredobbel bestemmelse av hver fortynnede prøve, og heller ikke overskride 30 % mellom tre innbyrdes uavhengige forsøk.
It shall be ensured that the kit-based bioassays have sufficient sensitivity and reliability to be applied for feed.
Det skal sikres at de prøvesettbaserte biologiske prøvene er tilstrekkelig følsomme og pålitelige til å kunne brukes for fôrvarer.
Thus, analytical results shall be reported as x +/- U whereby x is the analytical result and U is the expanded measurement uncertainty using a coverage factor of 2 which gives a level of confidence of approximately 95 %.
Analyseresultatene skal derfor rapporteres som x +/- U, der x er analyseresultatet og U den utvidede måleusikkerheten, ved bruk av en dekningsfaktor på 2 som gir et konfidensintervall på ca. 95 %.
These conditions shall be used when detection of constituents of animal origin (defined as products from processing bodies and body-parts of mammals, poultry and fish) in feed is carried out by means of microscopic examination in the framework of the coordinated inspection programme in the field of animal nutrition in accordance with Regulation (EC) 882/2004 of the European Parliament and of the Council( ).
Disse vilkårene skal brukes ved bestemmelse av bestanddeler av animalsk opprinnelse (definert som produkter som stammer fra bearbeiding av slakt og deler av slakt av pattedyr, fjørfe og fisk) i fôrvarer, utført ved hjelp av mikroskopiundersøkelse innenfor rammen av det samordnede inspeksjonsprogrammet på området fôrvarer i samsvar med europaparlaments- og rådsforordning (EF) 882/2004( ).
OJ L 165, 30.4.2004 p. 1; corrected by OJ L 191, 28.5.2004, p. 1.
EUT L 165 av 30.4.2004, s. 1. Rettet i EUT L 191 av 28.5.2004, s. 1.
Dependent on the nature of the constituents of animal origin, very small amounts ( &lt; 0,1 %) in feed can be detected.
Avhengig av den animalske bestandelens art kan svært små mengder ( &lt; 0,1 %) påvises i fôrvarer.
A representative sample, taken in accordance with the provisions laid down in Annex I which has undergone suitable preparation is used for the identification.
Til identifikasjon brukes en representativ prøve som er tatt i samsvar med bestemmelsene fastsatt i vedlegg I og som er tillaget på egnet måte.
Feed with an amount of moisture higher than 14 % shall be dried (condensed) prior to handling.
Fôrvarer med et vanninnhold på over 14 % skal tørkes (kondenseres) før håndtering.
Chloral hydrate (aqueous, 60 % w/v)
Kloralhydrat (vandig, 60 % w/v)
Lye (NaOH 2,5 % w/v or KOH 2,5 % w/v) for sieve fractions
Lut (NaOH 2,5 % w/v eller KOH 2,5 % w/v) for siktefraksjoner
Iodine/potassium iodide solution (Dissolve 2 g potassium iodide in 100 ml water and add 1 g iodine while frequently shaking)
Jod/kaliumjodid-løsning (løs opp 2 g kaliumjodid i 100 ml vann og tilsett 1 g jod mens løsningen ristes)
Cystine reagent (2 g lead acetate, 10 g NaOH/100 ml H 2 O)
Cystinreagens (2 g blyacetat, 10 g NaOH/100 ml H 2 O)
Iodine/potassium iodide solution (dissolved in 70 % ethanol)
Jod/kaliumjodid-løsning (oppløst i 70 % etanol)
Commercial sodium hypochlorite solution (9,6 % active chlorine)
Natriumhypoklorittløsning som fås kjøp i handelen (9,6 % aktivt klor)
Analytical balance (accuracy of 0,01 g except for the concentrated sediment:
Analysevekt (nøyaktighet på 0,01 g med unntak for det konsentrerte sedimentet:
0,001 g).
0,001 g).
Material for grinding (grinding mill or a mortar, especially for feed containing &gt; 15 % fat on analysis).
Utstyr til oppmaling (kvern eller morter, særlig for fôrvarer som inneholder &gt; 15 % fett ved analyse).
Sieve fitted with sieve mesh with square meshes of width of 0,50 mm maximum.
Sikt med maskevidde på høyst 0,50 mm.
At least 50 g of the sample shall be treated (ground with care using the suitable grinding equipment (5.2) if necessary in order to achieve an appropriate structure).
Minst 50 g av prøven skal forbehandles (males om nødvendig grundig med egnet maleutstyr (5.2), for å oppnå passende struktur).
From the grinded material two representative portions shall be taken, one for the sieve fraction (at least 5 g) (6.1) and one for the concentrated sediment (at least 5 g) (6.2).
Fra det malte materialet tas to representative prøver, én til siktefraksjonen (minst 5 g) (6.1) og én til det konsentrerte sedimentet (minst 5 g) (6.2).
At least 5 g of the sample is sieved through the sieve (5.3) in two fractions
Minst 5 g av prøven siktes gjennom sikten (5.3) i to fraksjoner.
At least 5 g (accurate to 0,01 g) of the sample shall be transferred into a separation funnel or conical bottomed settling beaker and treated with at least 50 ml of tetrachloroethylene (4.3.1).
Minst 5 g (med en nøyaktighet på 0,01 g) av prøven overføres til en separasjonstrakt eller et begerglass for bunnfelling med konisk bunn og behandles med minst 50 ml tetrakloreten (4.3.1).
If an open beaker is used, the sediment shall be left to stand for at least 5 minutes before the sediment is separated off.
Dersom et åpent begerglass benyttes, skal sedimentet stå minst 5 minutter før det fraskilles.
The total sediment shall be dried and subsequently weighed (accurate to 0,001 g).
Hele sedimentet tørkes og deretter veies (med en nøyaktighet på 0,001 g).
Chloral hydrate (4.1.1):
Kloralhydrat (4.1.1):
Lye (4.1.2): either sodiumhydroxide or potassiumhydroxide clears the material of the feed, assisting the detection of muscle fibres, hairs and other keratin structures.
Lut (4.1.2): Natriumhydroksid eller kaliumhydroksid klarner fôrmaterialet og gjør det enklere å påvise muskelfibre, hår og annet vev som inneholder keratin.
Paraffin oil and glycerol (4.1.3):
Parafinolje eller glyserol (4.1.3):
Iodine/potassium Iodide solution (4.4.1):
Jod/kaliumjodid-løsning (4.4.1):
Alizarin red solution (4.4.2):
Alizarin rød-løsning (4.4.2):
Before drying the sediment (see section 6.2), the total sediment shall be transferred into a glass test tube and rinsed twice with approximately 5 ml alcohol (4.2.1) (each time a vortex shall be used, the solvent shall be let settle about one minute and poured off).
Før sedimentet tørkes (se 6.2), skal hele sedimentet overføres til et prøverør av glass og skylles to ganger med ca. 5 ml alkohol (4.2.1) (bruk et vortex blandeapparat begge ganger og la løsningen bunnfelle i ca. ett minutt før den tømmes av).
At least one slide shall be examined from the fine sieve fraction and from the fine fraction of the sediment under the compound microscope (see sections 6.1 and 6.2).
Minst ett objektglass av den finpartiklede siktefraksjonen og den finpartiklede fraksjonen av sedimentet skal undersøkes under sammensatt mikroskop (se 6.1 og 6.2).
the estimated proportion (weight %) of bone fragments in the concentrated sediment, and
den beregnede andelen (vekt %) av beinfragmenter i det konsentrerte sedimentet, og
the proportion (weight %) of bone in the constituents of animal origin.
andelen (vekt %) av bein i bestanddelene av animalsk opprinnelse.
(The percentage of bone in the case of bone meals is of the order of 50 %-60 % and in the case of meat meals of the order of 20 %-30 %; in case of fish meals bone and scale contents vary according the category and origin of fish meal, normally in the order of 10-20 %).
(Prosentandelen av bein i beinmel er i størrelsesorden 50–60 % og i kjøttmel 20–30 %; i fiskemel varierer innholdet av bein og skjell alt etter fiskemelets kategori og opprinnelse, normalt i størrelsesordenen 10–20 %).
In case constituents derived from fish or terrestrial animals are found, the report of the examination result, if required, can further indicate an estimation of the amount of constituents detected (x %, &lt; 0,1 %, 0,1-0,5 %, 0,5-5 % or &gt; 5 %), further specification of the type of terrestrial animal if possible and the animal constituents identified (muscle fibres, cartilage, bones, horn, hair, bristles, feathers, blood, egg shells, fish bones, scales).
I de tilfeller der bestanddeler som stammer fra fisk eller terrestriske dyr påvises, kan undersøkelsesrapporten om nødvendig gi en nærmere beregning av mengden bestanddeler som er påvist (x %, &lt; 0,1 %, 0,1–0,5 %, 0,5–5 % eller &gt; 5 %), og om mulig en nærmere angivelse av typen terrestrisk dyr og hvilke animalske bestanddeler som er påvist (muskelfibre, brusk, bein, horn, hår, bust, fjær, blod, eggeskall, fiskebein, skjell).
MJ/kg of ME = 0,1551 × % crude protein +0,3431 × % crude fat +0,1669 × % starch +0,1301 × % total sugar (expressed as sucrose).
MJ/kg OE = 0,1551 x % råprotein + 0,3431 x % råfett + 0,1669 x % stivelse + 0,1301 x % samlet sukkerinnhold (uttrykt som sukrose).
for determining the crude fat content: procedure B of the method for the determination of crude oils and fats, laid down in Part H of Annex III.
ved bestemmelse av fettinnhold: framgangsmåte B i metode for bestemmelse av råoljer og -fett fastsatt i vedlegg III del H.
for determining the starch content: the polarimetric method, laid down in Part L of Annex III.
ved bestemmelse av stivelsesinnhold: den polarimetriske metode fastsatt i vedlegg III del L.
Methanesulfonic acid solution, c = 2 %
Metansulfonsyreløsning, c = 2 %.
Hydrochloric acid solution, c = 10 %
Saltsyreløsning, c = 10 %
Dilute 100 ml hydrochloric acid (ρ 20 1,18 g/ml) to 1000 ml with water.
Løs opp 100 ml saltsyre (ρ 20 1,18 g/ml) i vann til 1 000 ml.
Slurry 100 g resin with 500 ml hydrochloric acid solution (3.5) and heat on a hot plate to boiling, stirring continuously.
Bland 100 g harpiks med 500 ml saltsyreløsning (3.5) og varm opp til kokepunktet på en kokeplate under stadig omrøring.
Glass column (250 mm × 15 mm) fitted with a stopcock and reservoir of approximately 200 ml capacity
Glasskolonne (250 mm x 15 mm) utstyrt med stoppekran og en beholder med volum på ca. 200 ml
300 mm × 4 mm, C 18 , 10 μm packing or equivalent
300 mm × 4 mm, C 18 , 10 μm pakning eller tilsvarende.
To fortify at a level of 15 mg/kg, add 600 μl of the stock standard solution (3.7.1) to 20 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2).
For å øke konsentrasjonen til 15 mg/kg, tilsettes 600 μl av standardstamløsningen (3.7.1) til en 20 g blindprøve, bland og vent i 10 minutter før ekstraksjonen (5.2) innledes.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 20 g of the prepared sample and transfer to a 250 ml conical flask.
Vei opp 20 g av den tilberedte prøven med en nøyaktighet på 0,01 g i en 250 ml erlenmeyerkolbe.
Prepare a slurry of 5,0 g of the treated cation-exchange resin (3.6) with 50 ml of hydrochloric acid (3.5), pour into the glass column and allow to settle.
Lag til en oppslemming av 5,0 g av den behandlede kationebytterharpiksen (3.6) og 50 ml saltsyre (3.5), overfør blandingen til glasskolonnen, og gi den tid til å sette seg.