natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Laboratory tests, as provided for in Chapter IX of Directive 2005/94/EC, must be performed on the vaccinated poultry or other captive birds using approved DIVA assays, where the field virus is known.
Laboratorieundersøkelser som fastsatt i kapittel IX i direktiv 2005/94/EF, skal gjennomføres på fjørfe eller andre fugler i fangenskap som er vaksinert, ved bruk av godkjente DIVA-prøver, dersom feltviruset er kjent.
When sentinel birds are used they must be present in each vaccinated flock, inspected clinically and be tested using the haemagglutination inhibition test (HI).
Når det brukes kontrollfugler, må de finnes i hver vaksinerte flokk, inspiseres klinisk og undersøkes ved hjelp av hemagglutinasjonshemmingsprøven (HI).
For that purpose, 20 blood samples from the unvaccinated sentinels in each vaccinated holding must be taken at least every 60 days.
For dette formål skal det hver 60. dag tas 20 blodprøver fra de uvaksinerte kontrollfuglene i hver vaksinerte driftsenhet.
Annex IX — Requirements for movements of poultry or other captive birds and poultry products applicable in relation to emergency vaccination
Vedlegg IX — Krav til forflytning av fjørfe eller andre fugler i fangenskap og fjørfeprodukter ved nødvaksinasjon
Strict monitoring measures must be applied to the movement of live poultry and other captive birds and their eggs in order to minimise the risk of a further spread of infection of AI.
Det må anvendes strenge overvåkingstiltak ved forflytning av levende fjørfe og andre fugler i fangenskap og deres egg for å redusere risikoen for en ytterligere spredning av AI-infeksjon så mye som mulig.
For that purpose, at the beginning of an emergency vaccination campaign the same monitoring measures must be applied in relation to the movement of live poultry and other captive birds and their eggs in order to minimise the risk of a further spread of AI infection within and out of the vaccination area.
For dette formål må de samme overvåkingstiltakene anvendes ved begynnelsen av en nødvaksinasjonskampanje i forbindelse med forflytning av levende fjørfe og andre fugler i fangenskap og deres egg, for å redusere risikoen for en ytterligere spredning av AI-infeksjon innenfor og ut av vaksinasjonssonen så mye som mulig.
Before the first movement within and out of the vaccination area of hatching eggs and table eggs and thereafter at least every 30 days, the official veterinarian must carry out the following measures:
Før den første forflytningen av rugeegg og egg beregnet på direkte konsum innenfor og ut av vaksinasjonssonen, og deretter minst hver 30. dag, skal den offentlige veterinæren treffe følgende tiltak:
a clinical inspection of unvaccinated parent or layer poultry in each production unit, including an evaluation of its clinical history and clinical examinations of the poultry, in particular those that appear sick; the standard samples must be taken from poultry from each production unit; or
en klinisk inspeksjon i hver produksjonsenhet av uvaksinert avlsfjørfe eller eggleggende fjørfe, herunder en evaluering av dens kliniske historie og kliniske undersøkelser av fjørfeet, særlig av dem som virker syke; det skal tas standardprøver av fjørfe fra hver produksjonsenhet, eller
a clinical inspection of vaccinated parent or layer poultry in each production unit, including an evaluation of its clinical history and clinical examinations of the sentinel birds present in those flocks; the standard samples must be taken from those sentinel birds.
en klinisk inspeksjon i hver produksjonsenhet av vaksinert avlsfjørfe eller eggleggende fjørfe, herunder en evaluering av dens kliniske historie og kliniske undersøkelser av kontrollfuglene i disse flokkene; det skal tas standardprøver av disse kontrollfuglene.
For the movement of live vaccinated poultry or other captive birds to other holdings or for the movement of live vaccinated poultry within and out of the vaccination area, the official veterinarian must carry out the following measures:
Når det gjelder forflytning av levende fjørfe eller andre fugler i fangenskap som er vaksinert, til andre driftsenheter, eller når det gjelder forflytning av levende, vaksinert fjørfe innenfor og ut av vaksinasjonssonen, skal den offentlige veterinæren treffe følgende tiltak:
a check of the production and health records of the holding.
Kontroll av driftsenhetens produksjons- og helsejournaler.
a clinical inspection in each production unit, including an evaluation of its clinical history and clinical examinations of the poultry or other captive birds within 72 hours prior to the time of departure with particular attention to the sentinel birds;
En klinisk inspeksjon i hver produksjonsenhet, herunder en evaluering av dens kliniske historie og kliniske undersøkelser av fjørfeet eller andre fugler i fangenskap, i løpet av de 72 timene før de skal sendes, med særlig oppmerksomhet rettet mot kontrollfuglene.
where the results of the checks and clinical inspection and examinations in (i) and (ii) are not satisfactory, the standard samples must be taken from the sentinels; however, where those results are satisfactory, the following samples must be taken from:
Dersom resultatene av kontrollene og de kliniske inspeksjonene og undersøkelsene i nr. i) og ii) ikke er tilfredsstillende, skal det tas standardprøver av kontrollfuglene; dersom imidlertid disse resultatene er tilfredsstillende, skal følgende prøver tas av:
the vaccinated poultry or other captive birds:
fjørfe eller andre fugler i fangenskap som er vaksinert:
at least 20 tracheal/oropharyngeal and 20 cloacal swabs and 20 blood samples for using an appropriate DIVA assay within 72 hours prior to the time of departure, and
minst 20 svaberprøver fra luftrør/svelg, 20 kloakksvaberprøver og 20 blodprøver for å gjennomføre en hensiktsmessig DIVA-prøve i løpet av de siste 72 timene før de skal sendes, og
sentinel birds:
kontrollfugler:
20 tracheal/oropharyngeal and 20 cloacal swabs and 20 blood samples for serology using the HI test prior to the time of departure.
20 svaberprøver fra luftrør/svelg, 20 kloakksvaberprøver og 20 blodprøver for å gjennomføre serologiske undersøkelser ved hjelp av HI-prøven før de skal sendes.
aspartame/aspartame-acesulfame salt:
aspartam/salt av aspartam og acesulfam:
‘excessive consumption may induce laxative effects’;
«overdreven bruk kan virke avførende»
Diagnostic virological tests and evaluation of results
Diagnostiske virologiske undersøkelser og evaluering av resultater
Until the advent and development of molecular-based tests, virus isolation by the inoculation of embryonated fowls' eggs was considered the most sensitive diagnostic test for AI by far and essential for subsequent identification and characterisation of the infecting virus.
Før det forelå og ble utviklet molekylærbiologiske undersøkelser, ble virusisolasjon ved inokulering av embryonerte hønseegg betraktet som den avgjort mest følsomme diagnostiske undersøkelsen for AI, og av avgjørende betydning for etterfølgende identifikasjon og karakterisering av det infiserende viruset.
The essential steps are set out in this Chapter.
Dette kapitlet inneholder en beskrivelse av de viktigste trinnene.
Sample processing
Behandling av prøver
Swabs if submitted ‘dry’ must be placed in sufficient antibiotic medium to ensure full immersion.
Dersom svaberprøver leveres «tørre», må de plasseres i en tilstrekkelig mengde antibiotisk medium for å sikre at de er helt nedsenket.
Samples may be pooled in batches in batches of five provided they are derived from the same species, time and epidemiological unit.
Prøvene kan grupperes i partier på fem, forutsatt at de kommer fra samme art, tilhører samme epidemiologiske enhet og er tatt på samme tidspunkt.
Carcases submitted to the laboratory must be subjected to post mortem examination and samples of the following organs must be taken:
Skrotter som er innlevert til laboratoriet, skal gjennomgå kontroll post mortem, og det skal tas prøver av følgende organer:
faeces or intestinal contents, brain tissue, trachea, lungs, liver, spleen and other obviously affected organs.
avføring eller tarminnhold, hjernevev, luftrør, lunger, lever, milt og andre tydelig berørte organer.
Those organs and tissues may be pooled, but separate treatment of faecal material is essential.
Disse organene og dette vevet kan samles, men det er viktig at avføringsmateriale behandles for seg.
Faeces samples and organs must be homogenised (in an enclosed blender or using a pestle and mortar and sterile sand) in antibiotic medium and made to 10 to 20 % w/v suspensions in the medium.
Avføringsprøver og organer må homogeniseres (i en lukket blander eller med en pistill og morter og steril sand) i antibiotisk medium til en suspensjon på 10-20 % v/v i mediet.
The immersed swabs and suspensions must be left for approximately two hours at ambient temperature (or longer periods at 4
De nedsenkede svaberprøvene og suspensjonene skal stå i ca. to timer i romtemperatur (eller lenger ved 4
Virus isolation in embryonated fowls' eggs
Virusisolasjon i embryonerte hønseegg
The clarified supernatant fluid must be inoculated in 0,1 to 0,2 ml amounts into the allantoic cavity of each of a minimum of four embryonated fowls' eggs that have been incubated for nine to 11 days.
Mellom 0,1 og 0,2 ml klaret supernatant skal inokuleres i allantoishulen på hvert av minst fire embryonerte hønseegg som har vært ruget i ni til elleve dager.
Ideally, these eggs must be obtained from a specific pathogen free (SPF) flock, but when this is impracticable eggs obtained from a flock shown to be free of antibodies to AI (serum antibody negative — SAN), may be used.
Disse eggene skal helst komme fra en flokk som er fri for spesifikke sykdomsframkallende stoffer, men når dette ikke er praktisk mulig, kan det brukes egg fra en flokk som er konstatert fri for antistoffer mot AI (serumantistoffnegativ — SAN).
The inoculated eggs must be held at 37
De inokulerte eggene skal oppbevares ved 37
Eggs with dead or dying embryos as they arise, and all remaining eggs six days after inoculation must be chilled to 4
Egg med døde eller døende embryoer skal kjøles til 4
If no haemagglutination is detected, this procedure must be repeated using undiluted allantoic/amniotic fluid as inoculum.
Dersom det ikke påvises hemagglutinasjon, skal denne framgangsmåten gjentas ved hjelp av ufortynnet allantois-/amnionvæske som inokulat.
When haemagglutination is detected the presence of bacteria must be excluded by culture.
Dersom det påvises hemagglutinasjon, skal forekomst av bakterier utelukkes ved dyrking.
If bacteria are present, the fluids may be passed through a 450 nm membrane filter, further antibiotics added and inoculated into embryonated eggs as above.
Dersom det finnes bakterier, kan væskene siles gjennom et 450 nm membranfilter, tilsettes ytterligere antibiotika og inokuleres i embryonerte egg som angitt ovenfor.
To expedite diagnosis some laboratories have used two 3-day passages or 2-day and 4-day passages and reported comparable results to two 6-day passages, but this has not yet been fully evaluated.
For å påskynde diagnostiseringen har enkelte laboratorier forkortet inkuberingstiden til to 3-dagersperioder eller 2- og 4-dagersperioder, og har meldt om resultater som kan sammenlignes med to 6-dagersperioder, men dette er ennå ikke fullt ut evaluert.
Positive fluids need to be tested for freedom from bacteria.
Positive væsker må undersøkes for å fastslå om de er fri for bakterier.
If bacteria are present the fluids may be passed through a 450-nm membrane filter or centrifuged to remove bacteria and re-passaged in eggs after the addition of more antibiotics.
Dersom det finnes bakterier, kan væskene siles gjennom et 450 nm membranfilter eller sentrifugeres for å fjerne bakterier og igjen inokuleres i eggene etter tilsetting av ytterligere antibiotika.
Preliminary differentiation
Foreløpig differensiering
As it is important that control measures aimed at limiting the spread of the AI virus must be implemented as soon as possible, each national reference laboratory that has isolated a haemagglutinating virus must be in a position to identify it if it is an influenza A virus of H5 or H7 subtype or Newcastle disease virus.
Det er viktig å iverksette tiltak for å bekjempe spredning av AI-viruset så snart som mulig, og hvert nasjonale referanselaboratorium som har isolert et hemagglutinerende virus, må kunne identifisere om det er et influensa A-virus av undertypene H5 eller H7 eller et Newcastle disease-virus.
The haemagglutinating fluids must be used in haemagglutination inhibition tests as described in Chapter IX.
De hemagglutinerende væskene skal brukes i hemagglutinasjonshemmingsprøver som beskrevet i kapittel IX.
Positive inhibition, such as a titre within 2 to 3 log
Positiv hemming, for eksempel en titer mellom 2 og 3 log
Confirmatory identification
Bekreftende identifikasjon
Since there are 16 haemagglutinin subtypes and 9 neuraminidase subtypes of influenza viruses and variations occur within each of these it is neither practicable nor cost effective for each national reference laboratory to hold antisera that may allow a full subtype identification of influenza isolates.
Ettersom det finnes 16 undertyper hemagglutinin og 9 nevraminidase-undertyper av influensavirus samt variasjoner innenfor hver av disse undertypene, er det verken praktisk mulig eller lønnsomt for hvert nasjonale referanselaboratorium å oppbevare antisera som gjør det mulig å foreta en fullstendig undertypeidentifikasjon av influensaisolater.
However, each national reference laboratory must as a minimum:
Imidlertid må hvert nasjonale referanselaboratorium minst kunne:
confirm that the isolate is an influenza A virus using an immunodoublediffusion test to detect group antigens;
bekrefte at isolatet er et influensa A-virus ved en immunodobbeldiffusjonsprøve for å påvise gruppeantigener,
determine whether or not the isolate is of H5 or H7 subtype, positive identification requires implementation of the control measures for LPAI of H5 and H7 subtypes;
fastslå om isolatet er av undertype H5 eller H7, positiv identifikasjon krever at bekjempelsestiltakene for LPAI av undertypene H5 og H7 iverksettes,
immediately submit all HPAI and all H5 and H7 isolates to the Community reference laboratory for confirmation and full characterisation, unless a derogation is granted in accordance with point (d).
umiddelbart oversende alle HPAI-isolater og alle H5- og H7-isolater til Fellesskapets referanselaboratorium for bekreftelse og full karakterisering, med mindre det er gitt unntak i samsvar med bokstav d).
In addition it is desirable in laboratories with appropriate facilities to:
I tillegg er det ønskelig at laboratorier med egnet utstyr:
carry out an intravenous pathogenicity index test in six-week-old chickens as set out in Chapter VII.
foretar en intravenøs patogenisitetsindeksprøve på seks uker gamle kyllinger som beskrevet i kapittel VII.
Intravenous pathogenicity indices of greater than 1,2 indicate the presence of virus requiring a full implementation of control measures for HPAI.
En intravenøs patogenisitetsindeks over 1,2 er et tegn på virusforekomst, og krever full iverksettelse av bekjempelsestiltak mot HPAI.
National reference laboratories must also consider putting in place expertise and equipment that allow nucleotide sequencing of the haemagglutinin gene to determine whether or not there are multiple basic amino acids at the cleavage site of the haemagglutinin precursor protein for any LPAI H5 or H7 virus.
Nasjonale referanselaboratorier skal også vurdere å få på plass ekspertise og utstyr slik at det for alle LPAI H5- eller H7-virus kan foretas nukleotidsekvensering av hemagglutiningenet for å avgjøre om det finnes eller ikke finnes flerbasiske aminosyrer i hemagglutininforløperproteinets kløyvingspunkt.
Although the Community reference laboratory will conduct pathogenicity determination as a high priority, as part of the duties referred to in Annex VII, point 2(b) to Directive 2005/94/EC, such virus characterisation at the national level will greatly decrease the time taken for diagnosis and, when positive, for the full implementation of control measures for HPAI.
Selv om Fellesskapets referanselaboratorium vil foreta patogenisitetsbestemmelse som en høyt prioritert oppgave innenfor rammen av de pliktene som er nevnt i vedlegg VII nr. 2 bokstav b) til direktiv 2005/94/EF, vil slik viruskarakterisering på nasjonalt plan i stor grad redusere den tiden som brukes til diagnostisering, og, dersom prøven er positiv, den tiden som brukes til full iverksettelse av bekjempelsestiltakene mot HPAI.
Further typing and characterisation of isolates
Videre typebestemmelse og karakterisering av isolater
The Community reference laboratory must receive all haemagglutinating viruses from the National reference laboratories for further antigenic and genetic studies to enable a greater understanding of the epizootiology of the disease(s) within the Community in accordance with the functions and duties of the Community reference laboratory as set out in Annex VII to Directive 2005/94/EC.
Fellesskapets referanselaboratorium skal motta alle hemagglutinerende virus fra de nasjonale referanselaboratoriene for videre antigen- og genstudier som kan bidra til å øke kunnskapen om sykdommens eller sykdommenes epizootiologi i Fellesskapet i samsvar med oppgavene og pliktene til Fellesskapets referanselaboratorium som beskrevet i vedlegg VII til direktiv 2005/94/EF.
In addition to those functions and duties, the Community reference laboratory must carry out full antigenic typing for all influenza viruses received.
I tillegg til disse oppgavene og pliktene, skal Fellesskapets referanselaboratorium foreta fullstendig antigen-typebestemmelse for alle influensavirus det mottar.
For H5 and H7 viruses that do not have intravenous pathogenicity indices greater than 1,2, nucleotide sequencing of the haemagglutinin gene to determine whether or not there are multiple basic amino acids at the cleavage site of the haemagglutinin precursor protein must also be carried out immediately and the national reference laboratory and the competent authority in the country of origin must be informed as soon as the results are available so that control measures for HPAI can be fully implemented.
For H5- og H7-virus som ikke har en intravenøs patogenisitetsindeks over 1,2, skal nukleotidsekvensering av hemagglutiningenet for å fastslå om det finnes eller ikke finnes flerbasiske aminosyrer i hemagglutininforløperproteinets kløyvingspunkt også foretas umiddelbart, og det nasjonale referanselaboratoriet og vedkommende myndighet i opprinnelsesstaten skal underrettes så snart resultatene foreligger, slik at bekjempelsestiltakene mot HPAI iverksettes fullt ut.
Given the changing epidemiological situation in relation to HPAI/LPAI, it may be possible by agreement with both the Commission and the Community reference laboratory for a derogation to be given to laboratories with full capabilities for rapid virus characterisation, to submit a subset of these viruses following inspection of data and for the Community reference laboratory to make a relevant selection.
Siden den epidemiologiske situasjonen med hensyn til HPAI/LPAI veksler, er det ved avtale med både Kommisjonen og Fellesskapets referanselaboratorium mulig å gi unntak for laboratorier som har full kapasitet til rask viruskarakterisering, slik at de kan sende inn et delsett av disse virusene, etter at det er foretatt en undersøkelse av data og Fellesskapets referanselaboratorium har gjort et relevant utvalg.
This derogation must only be permitted where data can be rapidly generated by the national reference laboratory and shared with the Community reference laboratory.
Dette unntaket skal bare tillates dersom data raskt kan genereres av det nasjonale referanselaboratoriet og deles med Fellesskapets referanselaboratorium.
Molecular tests and evaluation of results
Molekylære undersøkelser og evaluering av resultater
The current definition of HPAI, allows the molecular identification of virulence factors and confirms the use of molecular techniques in the diagnosis of AI.
Den gjeldende definisjonen av HPAI tillater molekylær identifikasjon av virulensfaktorer og bekrefter bruken av molekylærmetoder i diagnostiseringen av AI.
Recently there have been developments in their application for detection and characterisation of AI virus directly from clinical specimens from infected birds.
I det siste har det vært en utvikling i deres anvendelse for påvisning og karakterisering av AI-virus direkte fra kliniske prøver av angrepne fugler.
Conventional RT-PCR techniques on clinical specimens could, with the correctly defined primers, result in rapid detection and subtype (at least of H5 and H7) identification, plus a PCR amplicon product that could be used for nucleotide sequencing and have been demonstrated to have an important application by rapidly identifying subsequent outbreaks once the primary infected premises has been detected and the virus characterised.
Konvensjonelle RT-PCR-metoder på kliniske prøver kan, med korrekt definerte primere, gi rask påvisning og identifikasjon av undertype (i det minste av H5 og H7), samt et PCR-amplikon som kan brukes til nukleotidsekvensering, og som det er dokumentert kan ha stor betydning ved at man raskt kan identifisere utbrudd når det første infiserte stedet er påvist og viruset er karakterisert.
‘Real time’ single-step RT-PCR using primer/fluorogenic probe systems (rRT-PCR) allow even more rapid and sensitive diagnosis with detection of AI viruses and determination of subtype H5 or H7 in clinical samples.
Ett-trinns RT-PCR i ‘sanntid’ med bruk av primer/fluorogensonde-systemer (rRT-PCR) gir mulighet for enda raskere og mer følsom diagnostisering med påvisning av AI-virus og bestemmelse av undertype H5 eller H7 i kliniske prøver.
An important problem with RT-PCR and rRT-PCR systems is that, to date, different laboratories have developed different systems, which, although perfectly legitimate, have not been validated or subjected to tests with large numbers of samples in different laboratories.
Et stort problem med RT-PCR- og rRT-PCR-systemer er at forskjellige laboratorier hittil har utviklet forskjellige systemer, som selv om det er helt legitimt, ikke har blitt validert eller har gjennomgått prøving med et stort antall prøver i forskjellige laboratorier.
The Community reference laboratory and specified national reference laboratories have been addressing this problem as part of an Community-funded project (EU AVIFLU) to produce ratified protocols for conventional RT-PCR and rRT-PCR that could be adopted by other national reference laboratories.
Fellesskapets referanselaboratorium og visse nasjonale referanselaboratorier har arbeidet med dette problemet som et ledd i et fellesskapsfinansiert prosjekt (EU AVIFLU) for å utarbeide ratifiserte protokoller for konvensjonell RT-PCR og rRT-PCR som kan overtas av andre nasjonale referanselaboratorier.
If test parameters, such as cycling and ramp times, are varied from those recommended in the specified protocols they must be demonstrated as fit for purpose prior to use in accordance with point 6 of Chapter I of this diagnostic manual.
Dersom prøvingsparameterne, for eksempel temperatursyklus og temperaturendringenes hastighet, varieres i forhold til dem som er anbefalt i de angitte protokollene, skal det før de tas i bruk, dokumenteres at de er egnet for formålet i samsvar med nr. 6 i kapittel I i denne diagnosehåndboken.
The standard protocols for those molecular tests and their evaluation as applied by the Community reference laboratory can be found on the following website:
Standardprotokollene for disse molekylære undersøkelsene og evalueringen av dem, som anvendt av Fellesskapets referanselaboratorium, finnes på følgende nettsted:
In vivo pathogenicity test and the evaluation of results
Patogenisitetsprøve in vivo og evaluering av resultater
The virulence for chickens of influenza A viruses isolated from birds must be estimated using the intravenous pathogenicity index (IVPI) test which must be carried out as follows:
Virulensen for kyllinger når det gjelder influensa A-virus som isoleres fra fugler, skal beregnes ved bruk av intravenøs patogenisitetsindeksprøve (IVPI), som skal gjennomføres slik: