natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Fresh infective allantoic fluid with a HA titre >1/16 (>2
Fersk, infisert allantoisvæske med en HA-titer >1/16 (>2
0,1 ml of the diluted virus is injected intravenously into each of ten six-week-old SPF or SAN chickens.
0,1 ml fortynnet virus injiseres intravenøst i ti seks uker gamle kyllinger som er fri for spesifikke sykdomsframkallende stoffer eller er seronegative (SPF- eller SAN-kyllinger).
Birds are examined at 24-hour intervals for 10 days.
Fuglene undersøkes med 24 timers mellomrom i ti dager.
At each observation, each bird is scored 0 if normal, 1 if sick, 2 if severely sick, 3 if dead.
Ved hver observasjon betegnes hver fugl som normal (0), syk (1), svært syk (2) eller død (3).
The judgement of sick and severely sick birds is a subjective clinical assessment.
Betegnelsen av syke og svært syke fugler er en subjektiv klinisk vurdering.
Normally, «sick» birds show one of the following signs and ‘severely sick’ more than one of the following signs:
Normalt vil «syke» fugler vise ett av de følgende tegnene, og ‘svært syke’ flere enn ett av de følgende tegnene:
respiratory involvement, depression, diarrhoea, cyanosis of the exposed skin or wattles, oedema of the face and/or head, nervous signs.
åndedrettsbesvær, medtatthet, diaré, cyanose på blottet hud eller hakelapper, ødem i hode, utslag fra nervesystemet.
Dead birds must be scored as 3 at each of the remaining daily observations after death.
Døde fugler skal betegnes som 3 på hver av de gjenværende daglige observasjonene etter at de er døde.
On welfare grounds when birds are too sick to eat or drink, they must be killed humanely and scored as dead at the next observation since they will die within 24 hours without intervention.
Av velferdshensyn skal fugler som er for syke til at de kan spise eller drikke, avlives humant og betegnes som døde ved neste observasjon, siden de kommer til å dø i løpet av 24 timer dersom de ikke avlives.
This approach is acceptable to accreditation authorities.
Denne metoden er akseptabel for akkrediteringsmyndighetene.
The IVPI is the mean score per bird per observation over the 10-day period.
IVPI er det gjennomsnittlige resultatet per fugl per observasjon i et tidsrom på ti dager.
An index of 3,00 means that all birds died within 24 hours, and an index of 0,00 means that no bird showed any clinical sign during the 10-day observation period.
En indeks på 3,00 betyr at alle fuglene døde i løpet av 24 timer, og en indeks på 0,00 betyr at ingen fugl viste kliniske tegn i løpet av observasjonstiden på ti dager.
A simple method for recording results and calculating indices is shown in the following example:
I eksemplet nedenfor vises en enkel metode for å registrere resultatene og beregne indekser:
Clinical signs
Kliniske tegn
Day after inoculation
Dag etter inokulering
Total score
Sammenlagt resultat
The labelling of a table-top sweetener containing polyols and/or aspartame and/or aspartame-acesulfame salt shall bear the following warnings:
Merkingen av bordsøtningsmidler som inneholder polyoler og/eller aspartam og/eller salt av aspartam og acesulfam, skal inneholde følgende advarsler:
By way of derogation from paragraph 1(a), the sales description of a table-top sweetener shall include the term ‘… -based table-top sweetener’, using the name(s) of the sweetener(s) used in its composition.
Som unntak fra nr. 1 bokstav a) skal bordsøtningsmidlers varebetegnelse inneholde angivelsen «bordsøtningsmiddel basert på …» fulgt av navnet eller navnene på de søtstoffer som er brukt i sammensetningen.
the name and E-number laid down in this Regulation in respect of each food additive or a sales description which includes the name and E-number of each food additive;
navnet og E-nummeret som er fastsatt i henhold til denne forordning, for hvert tilsetningsstoff eller en varebetegnelse som inneholder navnet og E-nummeret for hvert tilsetningsstoff,
Labelling of food additives intended for sale to the final consumer
Merking av tilsetningsstoffer i næringsmidler som er beregnet på salg til sluttforbrukeren
By way of derogation from paragraphs 1, 2 and 3, where food additives are supplied in tankers, all of the information may appear merely on the accompanying documents relating to the consignment which are to be supplied with the delivery.
Uten at det berører nr. 1, 2 og 3, når tilsetningsstoffer i næringsmidler leveres i tanker, er det tilstrekkelig at opplysningene angis i følgedokumentene for sendingen som skal framlegges samtidig med leveransen.
Where substances (including food additives or other food ingredients) are added to food additives to facilitate their storage, sale, standardisation, dilution or dissolution, their packaging or containers shall bear a list of all such substances in descending order of their percentage by weight of the total.
Når stoffer (herunder tilsetningsstoffer eller andre næringsmiddelingredienser) iblandes tilsetningsstoffer i næringsmidler for å forenkle lagring, salg, standardisering, fortynning eller oppløsning, skal emballasjen eller beholderen inneholde en fortegnelse over alle stoffene i synkende rekkefølge etter deres prosentdel av den totale vekten.
Where food additives are sold mixed with each other and/or with other food ingredients, their packaging or containers shall bear a list of all ingredients in descending order of their percentage by weight of the total.
Når tilsetningsstoffer i næringsmidler selges blandet med hverandre og/eller med andre næringsmiddelingredienser, skal emballasjen eller beholderen innholde en fortegnelse over alle ingrediensene i synkende rekkefølge etter deres prosentdel av den totale vekten.
where relevant, information on a food additive or other substances referred to in this Article and listed in Annex IIIa to Directive 2000/13/EC as regards the indication of the ingredients present in foodstuffs.
dersom det er relevant, opplysninger om et tilsetningsstoff eller andre stoffer som omhandlet i denne artikkel og oppført i vedlegg IIIa til direktiv 2000/13/EF med hensyn til angivelse av ingredienser i næringsmidler.
instructions for use, if the omission thereof would preclude appropriate use of the food additive;
bruksanvisning, dersom mangel av en slik vil kunne hindre riktig bruk av tilsetningsstoffet,
the name and/or E-number laid down in this Regulation in respect of each food additive or a sales description which includes the name and/or E-number of each food additive;
navnet og/eller E-nummeret som er fastsatt i henhold til denne forordning, for hvert tilsetningsstoff eller en varebetegnelse som inneholder navnet og/eller E-nummeret for hvert tilsetningsstoff,
Where food additives not intended for sale to the final consumer are sold singly or mixed with each other and/or other food ingredients and/or with other substances added to them, their packaging or containers shall bear the following information:
Når tilsetningsstoffer i næringsmidler som ikke er beregnet på salg til sluttforbrukeren, selges hver for seg eller blandet med hverandre og/eller med andre næringsmiddelingredienser og/eller med andre tilsatte stoffer, skal emballasjen eller beholderen merkes med følgende opplysninger:
General labelling requirements for food additives not intended for sale to the final consumer
Alminnelige krav til merking av tilsetningsstoffer i næringsmidler som ikke er beregnet på salg til sluttforbrukeren
10 birds observed for 10 days = 100 observations
10 fugler observert i 10 dager = 100 observasjoner
Index = mean score per bird per observation = 246/100 = 2,46
Indeks = gjennomsnittlig resultat per fugl per observasjon = 246/100 = 2,46
Any influenza A virus, regardless of subtype, giving a value of greater than 1,2 in an IVPI test is considered to be a HPAI virus.
Alle influensa A-virus, uansett undertype, som gir en verdi større enn 1,2 ved en IVPI-prøve, anses å være et HPAI-virus.
Serological tests and evaluation of results
Serologiske undersøkelser og evaluering av resultater
The preferred method used to show the presence of influenza A virus is to demonstrate the possession of the nucleoprotein or matrix antigens which are shared by all influenza A viruses.
For å påvise forekomst av influensa A-virus foretrekkes en metode som viser at det forekommer nukleoprotein- eller matriksantigener, som er felles for alle influensa A-virus.
It may be done in immunodoublediffusion tests involving either concentrated virus preparations or extracts from infected chorioallantoic membranes.
Dette kan gjøres ved immunodobbeldiffusjonsprøver med enten konsentrerte viruspreparater eller ekstrakter fra infiserte korioallantoismembraner.
The preferred methods used for serological tests for AI virus antibodies are haemagglutination (HA) and haemagglutination inhibition (Hl) tests.
De metodene som foretrekkes for serologiske undersøkelser for AI-virusantistoffer, er hemagglutinasjonsprøver (HA-prøver) og hemagglutinasjonshemmingsprøver (HI-prøver).
Chapter 2.7.12 of the Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals of the World Organisation for Animal Health (OIE) contains detailed information on the laboratory techniques and the evaluation of the results.
I kapittel 2.7.12 i Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals fra Verdens dyrehelseorganisasjon (OIE) finnes det nærmere opplysninger om laboratoriemetoder og evaluering av resultater.
The standard protocols for serological tests and the evaluation of their results as applied by the Community reference laboratory can be found on the following website:
Standardprotokollene for serologiske undersøkelser og evalueringen av resultatene av dem, som anvendt av Fellesskapets referanselaboratorium, finnes på følgende nettsted:
Monitoring systems associated with vaccination
Overvåkingssystemer i forbindelse med vaksinasjon
Sections 2 and 3 of Chapter IX, of Directive 2005/94/EC allow the use of emergency and preventive vaccination under certain conditions.
Avsnitt 2 og 3 i kapittel IX i direktiv 2005/94/EF tillater bruk av nødvaksinasjon og forebyggende vaksinasjon på visse vilkår.
One of those conditions is that a ‘DIVA’ (Differentiating Infected from Vaccinated Animals) strategy is employed.
Ett av disse vilkårene er at det benyttes en ‘DIVA’-strategi (differensiering mellom angrepne og vaksinerte dyr).
Vaccination must be aimed at preventing the infection and subsequent spreading of virus between flocks.
Målet for vaksinasjonen skal være å forhindre infeksjon og senere spredning av virus mellom flokker.
There is indisputable evidence to show vaccination increases the amount of virus needed to infect birds and decreases the amount of virus excreted.
Det er klart dokumentert at vaksinasjon innebærer at det skal til en større mengde virus for å infisere fugler, og at det utskilles en mindre mengde virus.
However, although vaccinated birds do no longer develop clinical signs they can still spread virus when challenged.
Selv om vaksinerte fugler ikke lenger utvikler kliniske tegn, kan de imidlertid fortsatt spre viruset dersom organismen er angrepet.
Thus HPAI viruses of H5 and H7 subtypes could circulate unnoticed for some time in a flock with suboptimal levels of immunity in the same way that LPAI viruses could do in an unvaccinated flock.
På denne måten kan HPAI-virus av undertypene H5 og H7 ubemerket være i omløp i en viss tid i en flokk uten fullstendig immunitet, på samme måte som LPAI-virus kan være det i en uvaksinert flokk.
There is therefore a need to be able to identify virus positive vaccinated flocks that have become infected with field virus so that other control measures, such as stamping out, can be implemented.
Det er derfor nødvendig å kunne identifisere viruspositive vaksinerte flokker som er angrepet av feltvirus, slik at andre bekjempelsestiltak, for eksempel utslakting, kan gjennomføres.
Use of sentinels for monitoring infection
Bruk av kontrolldyr for å overvåke infeksjon
At the flock level, a simple method is to regularly monitor sentinel birds left unvaccinated in each vaccinated flock, but this approach does have some management problems, particularly in identifying the sentinels especially in large flocks.
På flokknivå er en enkel metode å regelmessig kontrollere kontrollfugler som ikke er vaksinert i hver vaksinerte flokk, men det er visse styringsproblemer forbundet med denne metoden, særlig når det gjelder å identifisere kontrollfuglene i særlig store flokker.
The contact between the sentinels and the vaccinated birds must be ensured.
Det må sikres at det er kontakt mellom kontrollfuglene og de vaksinerte fuglene.
DIVA laboratory test for monitoring infection
DIVA-laboratorieundersøkelse for å overvåke infeksjon
As an alternative or in addition, testing for field exposure may be performed on the vaccinated birds itself by using DIVA laboratory tests.
Som et alternativ eller i tillegg, kan undersøkelse for naturlig eksponering foretas på de vaksinerte fuglene ved hjelp av DIVA-laboratorieundersøkelser.
Several test systems have been developed in recent years that also allow the detection of field challenge of vaccinated birds.
Det er i de siste årene utarbeidet flere undersøkelsessystemer som også gjør det mulig å påvise naturlig infeksjon hos vaksinerte fugler.
One method that has proved workable is the use of a vaccine containing a virus of the same haemagglutinin (H) subtype but a different neuraminidase (N) from the prevailing field virus.
En metode som har vist seg å fungere, er bruken av en vaksine som inneholder et virus av samme undertype av hemagglutinin (H), men en annen nevraminidase (N) enn det aktuelle feltviruset.
Antibodies to the N of the field virus act as natural markers of infection.
Antistoffer mot N av feltviruset fungerer som naturlige infeksjonsmarkører.
Vaccinated and field exposed birds were differentiated using a serological test to detect specific anti-N1 antibodies.
Det ble differensiert mellom vaksinerte fugler og naturlig eksponerte fugler ved hjelp av en serologisk undersøkelse for å påvise særlige anti-N1-antistoffer.
The same strategy was used to control LPAI caused by H7N3 in Italy in 2002 to 2003, in this case with an H7N1 vaccine and a serological test detecting antibodies against N3 specifically.
Samme strategi ble brukt til å bekjempe LPAI forårsaket av H7N3 i Italia i 2002-2003, i det tilfellet med en H7N1-vaksine og en serologisk undersøkelse som spesifikt påviser antistoffer mot N3.
In both cases vaccination with stamping out using this DIVA strategy resulted in eradication of the field virus.
I begge tilfeller medførte vaksinasjon kombinert med utslakting ved hjelp av denne DIVA-strategien at feltviruset ble utryddet.
Problems with that system arise if a field virus emerges that has the same N antigen as the existing field virus but are of another H subtype than H5 or H7 or if subtypes with the same N antigens are already circulating in the field.
Problemer med dette systemet oppstår dersom det oppstår et feltvirus som har samme N-antigen som det eksisterende feltviruset, men er av en annen H-undertype enn H5 eller H7, eller dersom undertyper med de samme N-antigenene allerede er i omløp i felten.
Particularly ducks are known to be carriers of more than one subtype.
Særlig er ender kjent for å være bærere av mer enn én undertype.
There was also a need to develop a suitable test that would allow the routine monitoring of flocks for anti-neuraminidase antibodies.
Det var også nødvendig å utarbeide en egnet undersøkelse som ville gjøre det mulig å rutineovervåke flokker med hensyn til anti-nevraminidase-antistoffer.
In Italy an ‘ad hoc’ serological test based on an indirect fluorescent antibody assay, using as an antigen N proteins expressed by baculovirus recombinants was developed and used.
I Italia ble det utarbeidet og brukt en ‘ad hoc’ serologisk undersøkelse basert på en indirekte fluorescens-antistoffteknikk, der man som et antigen brukte N-proteiner uttrykt ved bakulovirusrekombinanter.
That may have wider and easier application when an ELISA test is developed.
Dette kan få bredere og enklere anvendelse når det blir utarbeidet en ELISA-prøve.
The use of vaccines containing only HA, such as recombinant vector vaccines, allows classical AGID tests or ELISA tests based on nucleoprotein, non-structural protein or matrix proteins to be used to detect infection in vaccinated birds.
Bruk av vaksiner som inneholder bare HA, for eksempel rekombinante vektorvaksiner, gjør det mulig å bruke klassiske AGID-prøver eller ELISA-prøver basert på nukleoprotein, ikke-overflateassosierte proteiner eller matriksproteiner til å påvise infeksjon hos vaksinerte fugler.
For inactivated vaccines, a test that detects antibodies to the non-structural virus protein that are only produced during natural infection has been described.
For inaktiverte vaksiner er det beskrevet en undersøkelse som påviser antistoffer mot det ikke-overflateassosierte virusproteinet som bare dannes ved naturlig infeksjon.
Such a system is yet to be validated in the field, but has the limitation that natural infection of a flock with any influenza virus, irrespective of subtype results in the production of antibodies directed against the non-structural protein.
Et slikt system er ennå ikke validert i felten, men har den begrensningen at naturlig infeksjon i en flokk med ethvert influensavirus, uavhengig av undertype, fører til at det dannes antistoffer mot det ikke-overflateassosierte proteinet.
The development of rapid and sensitive virus-detection methods, especially those that can be automated, such as real time RT-PCR, means that these could be used for simple widespread and regular testing of vaccinated birds for the presence of field virus.
Utviklingen av raske og følsomme viruspåvisningsmetoder, særlig slike som kan automatiseres, for eksempel sanntids RT-PCR, betyr at disse kan brukes til enkel, omfattende og regelmessig undersøkelse av vaksinerte fugler for forekomst av feltvirus.
Agent detection, however, will be limited to a short window in the acute phase of the infection and cannot be used to conclude that a flock was not exposed to the virus in the past.
Påvisning av agens vil imidlertid være begrenset til et kort tidsrom i den akutte infeksjonsfasen, og kan ikke brukes til å fastslå at en flokk ikke har vært eksponert for viruset tidligere.
This approach is most appropriate to the testing of vaccinated birds prior to movement to demonstrate freedom from active infection.
Denne metoden er særlig hensiktsmessig for undersøkelse av vaksinerte fugler før forflytning, for å dokumentere at de er fri for aktiv infeksjon.
The number of samples to be tested by the systems of choice must enable the exclusion of a prevalence of AI virus infection in a flock of more than 15 % with confidence level of 95 %.
Antall prøver som skal undersøkes ved hjelp av de systemene som velges, skal gjøre det mulig å utelukke en prevalens av AI-virusinfeksjon i en flokk på mer enn 15 %, med et konfidensintervall på 95 %.
Strategies in the diagnosis of AI
Strategier ved diagnostisering av AI
As set out in Annex IV to Directive 2005/94/EC, decisions to apply measures in specific areas or contact holdings and the severity of those measures may vary greatly with the magnitude of the risk.
Som fastsatt i vedlegg  IV til direktiv 2005/94/EF, kan beslutninger om å gjennomføre tiltak i særlige områder eller i kontaktenheter, og hvor omfattende disse tiltakene skal være, i høy grad variere etter hvor stor risikoen er.
Similarly, the required diagnostic confirmation of disease is likely to be balanced against the prevailing situation, the magnitude of the hazard and the degree of risk.
På samme måte vil sannsynligvis den nødvendige diagnostiske bekreftelsen på sykdommen bli veid opp mot den rådende situasjonen, hvor stor faren er og graden av risiko.
Veterinary authorities need to make decisions on diagnostic evidence that balance the rapid control and eradication of disease against the potential impact of misdiagnosis.
Veterinærmyndighetene skal treffe beslutninger om diagnostiske bevis, der rask bekjempelse og utryddelse av sykdommen veies opp mot de mulige konsekvensene av feildiagnose.
Such judgements have to be made against the background of many factors at the time, but certain situations can be predicted.
Slike vurderinger skal gjøres på bakgrunn av en rekke foreliggende faktorer, men visse situasjoner kan forutses.
Disease situation
Sykdomssituasjon
Potential problem
Mulige problemer
Diagnostic criteria
Diagnostiske kriterier
Non specific signs, no official suspicion
Ingen spesifikke tegn, ingen offisiell mistanke
Isolated holding
Isolert driftsenhet
Carry out rapid detection based on M gene RT-PCR.
Foreta rask påvisning basert på M-gen-RT-PCR.
Differential diagnosis as required
Differensialdiagnostisering etter behov
Primary suspected outbreak
Mistanke om primærutbrudd
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation
Foreta full diagnostisk undersøkelse, virusisolasjon og karakterisering
Holding in densely populated poultry area
Driftsenhet i område med stor tetthet av fjørfe
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation, but concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing(
Foreta full diagnostisk undersøkelse, virusisolasjon og karakterisering, men med konsentrasjon på metoder for rask påvisning og karakterisering, særlig de som bygger på RT-PCR og sekvensering(
Second and subsequent suspected outbreaks
Mistanke om sekundærutbrudd og etterfølgende utbrudd
Isolated holdings, epidemiologically linked to primary suspected outbreak
Isolerte driftsenheter, epidemiologisk knyttet til mistenkt primærutbrudd
Concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing(
Konsentrasjon på metoder for rask påvisning og karakterisering, særlig de som bygger på RT-PCR og sekvensering(
Holdings in densely populated poultry area or with many epidemiological links
Driftsenheter i område med stor tetthet av fjørfe, eller med mange epidemiologiske forbindelser
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus(
Bruke metoder for rask påvisning som snarest mulig viser forekomst av AI-virus(
Multiple suspected outbreaks or disease spreading rapidly including surveillance
Mistanke om flere utbrudd eller rask spredning av sykdom, herunder overvåking
Spread will become uncontrollable without rapid intervention
Spredning vil komme ut av kontroll uten rask inngripen
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus or rely on clinical signs(
Bruke metoder for rask påvisning som snarest mulig viser forekomst av AI-virus, eller vektlegge kliniske tegn(
For these full sampling should be carried out and samples stored for later evaluation.
Det bør foretas full prøvetaking, og prøvene bør lagres til senere evaluering.
Diagnosis of infection with AI viruses in pigs and other mammals
Diagnostisering av infeksjon med AI-virus hos svin og andre pattedyr
AI in pigs
AI hos svin
AI viruses readily infect pigs and although replication is in most cases relatively restricted, there is a potential that infected pigs could transmit the disease to poultry and other susceptible animals.
AI-virus angriper lett svin, og selv om replikasjonen i de fleste tilfeller er relativt begrenset, er det en mulighet for at angrepne svin kan overføre sykdommen til fjørfe og andre mottakelige dyr.
To date, there is no evidence from the field that infected pigs transmit AI viruses of H5 and H7 subtypes.
Hittil finnes det ingen konkrete eksempler fra felten på at angrepne svin overfører AI-virus av undertypene H5 og H7.
Experience gained during the outbreak in the Netherlands in 2003 indicated that H7N7 infected pigs did not show clinical signs that could be attributed to the H7N7-infection.
Erfaringer fra utbruddet i Nederland i 2003 viste at H7N7-angrepne svin ikke viste kliniske tegn som kunne tilskrives H7N7-infeksjon.
Moreover, apparently no diseased pigs have been reported to date during the H5N1 outbreak in Asia and elsewhere.
Dessuten har det hittil tilsynelatende ikke blitt meldt om syke svin ved H5N1-utbruddet i Asia eller andre steder.