natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The chromatography of amino acids will vary slightly according to the type of analyser employed and resin used.
Kromatografien av aminosyrene vil variere noe alt etter hvilken type analysator og harpiks som benyttes.
The chosen system must be capable of separating the amino acids from each other and from the ninhydrin-positive materials.
Systemet som velges, må være i stand til å separere aminosyrene fra hverandre og fra de øvrige ninhydrinpositive stoffene.
In the range of operation the chromatographic system must give a linear response to changes in the amounts of amino acids added to the column.
Innenfor arbeidsområdet må det kromatografiske systemet gi en lineær respons på endringer i mengdene av aminosyrer som tilsettes kolonnen.
During the chromatography step the valley:peak height ratios mentioned below apply, when an equimolar solution (of the amino acids being determined) is analysed.
Ved analyse av en ekvimolar løsning (av aminosyrene som skal bestemmes) skal det ved kromatografien oppnås de forhold mellom bunn- og topphøyde som er angitt nedenfor.
This equimolar solution must contain at least 30 % of the maximum load of each amino acid which can be accurately measured with the amino acid analyser system (4.9).
Den ekvimolare løsningen må inneholde minst 30 % av den største mengden i hver aminosyre som kan måles nøyaktig med aminosyreanalysatorsystemet (4.9).
For separation of threonine-serine the valley:peak height ratio of the lower of the two overlapping amino acids on the chromatogram must not exceed 2:10.
Ved separasjon av treonin og serin skal forholdet mellom bunn og topp for den laveste av de to overlappende toppene på kromatogrammet ikke overskride 2:10.
(if only cyst(e)ine, methionine, threonine and lysine are determined, insufficient separation from adjoining peaks will adversely influence the determination).
(Dersom bare cyst(e)in, metionin, treonin og lysin skal bestemmes, vil utilstrekkelig separasjon fra nabotoppene innvirke negativt på bestemmelsen).
For all other amino acids the separation must be better than 1:10.
For alle andre aminosyrer skal separasjonen være bedre enn 1:10.
The system must ensure that lysine is separated from ‘lysine artifacts’ and ornithine.
Systemet må sikre at lysin separeres fra «lysin-artefakter» og ornitin.
The area of the sample and standard peaks is measured for each individual amino acid and the amount (X), in g amino acid per kg sample, is calculated as follows:
Arealet av toppene i prøveløsningene og standardløsningen måles for hver enkelt aminosyre, og mengden (X) beregnes i g aminosyre per kg prøve:
X= (A×c×M×V)/(B×m×1 000)If an internal standard is used multiply by:
X = (A × c × M × V) / (B × m × 1 000). Dersom det brukes en intern standard, multipliseres det med:
(D)/(C)
(D) / (C)
peak area, hydrolysate or extract
toppareal for hydrolysat eller ekstrakt
peak area, calibration standard solution
toppareal for standardkalibreringsløsning
peak area, internal standard in hydrolysate or extract
toppareal for intern standard i hydrolysat eller ekstrakt
peak area, internal standard, calibration standard solution
toppareal for intern standard, standardkalibreringsløsning
molar weight of the amino acid being determined
molvekt for de aminosyrene som bestemmes
concentration of standard in μmol/ml
standardløsningens konsentrasjon i μmol/ml
Cystine and cysteine are both determined as cysteic acid in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as cystine (C
Både cystin og cystein bestemmes som cysteinsyre i hydrolysater av den oksiderte prøven, men beregnes som cystin (C
Methionine is determined as methionine sulphone in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as methionine by using M of methionine:
Metionin bestemmes som metioninsulfon i hydrolysater av den oksiderte prøven, men beregnes som metionin ved bruk av M av metionin:
149,21 g/mol.
149,21 g/mol.
Added free methionine is determined after extraction as methionine, for the calculation the same M is used.
Tilsatt fri metionin bestemmes etter ekstraksjon som metionin, mens samme M benyttes til beregningen.
The total dilution volume of extracts (F) for determination of free amino acids (5.2) is calculated as follows:
Total fortynningsvolum av ekstrakter (F) for bestemmelse av frie aminosyrer (5.2) beregnes som følger:
F= ((100 ml×(10 ml+5 ml))/(10 ml))×((V)/(10))
F= ((100 ml × (10 ml + 5 ml)) / (10 ml)) × ((V) / (10))
Volume of final extract
volum av endelig ekstrakt
Evaluation of the method
Vurdering av metoden
The method has been tested in an intercomparison made at international level in 1990 using four different feed (mixed pig feed, broiler compound, protein concentrate, premixture).
Metoden er blitt utprøvd ved en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier på internasjonalt plan i 1990 av fire forskjellige fôrvarer (svinefôrblanding, broilerfôrblanding, proteinkonsentrat, premiks).
Means in g/kg
Middelverdi i g/kg
Amino Acid
Aminosyre
Cyst(e)ine
Cyst(e)in
Mixed Pig Feed
Svinefôrblanding
n = 15
n = 15
Broiler Compound
Broilerfôrblanding
Protein Concentrate
Proteinkonsentrat
Premixture
Premiks
Number of participating laboratories.
antall deltakende laboratorier
The repeatability expressed as ‘within laboratory standard deviation’ of the abovementioned intercomparison is given in the tables below:
Repeterbarheten, uttrykt som «standardavvik i laboratorier» av de ovennevnte sammenlignende undersøkelser er oppført i tabellene nedenfor:
Within Laboratory Standard Deviation (S
Standardavvik (S
Coefficient of Variation (%) for Within Laboratory Standard Deviation (S
Variasjonskoeffisient (%) for standardavvik (S
Reference material
Referansemateriale
Reproducibility
Reproduserbarhet
The results for between laboratory standard deviation by the abovementioned intercomparison are given in the table below:
Resultatene av standardavvik mellom laboratorier ved ovennevnte sammenlignende undersøkelser er oppført i tabellene nedenfor:
Between Laboratory Standard Deviation (S
Standardavvik (S
Coefficient of Variation (%) for Between Laboratory Standard Deviation (S
Variasjonskoeffisient (%) for standardavvik (S
Use of reference materials
Bruk av referansemateriale
The correct application of the method shall be verified by making replicate measurements of certified reference materials when available.
Det skal kontrolleres at metoden brukes korrekt ved å foreta gjentatte målinger med sertifiserte referansematerialer, når slike finnes.
Calibration with certified amino acid calibration solution is recommended.
Det anbefales at sertifisert aminosyre-kalibreringsløsning brukes til kalibrering.
Because of differences between amino acid analysers the final concentrations of the calibration solutions of standard amino acids (see 3.27.4 and 3.27.5) and of the hydrolysate (see 5.3.4) shall be taken as a guideline.
På grunn av forskjellene mellom aminosyreanalysatorer bør de endelige konsentrasjonene av kalibreringsløsningene av standardaminosyrene (se 3.27.4 og 3.27.5) og av hydrolysatet (se 5.3.4) betraktes som veiledende
The range of linear response of the apparatus has to be checked for all amino acids.
Apparatets lineære responsområde skal kontrolleres for alle aminosyrer.
The standard solution is diluted with citrate buffer to give peak areas in the middle of the range.
Standardløsningen fortynnes med sitratbufferløsning for å oppnå topparealer på midten av området.
Where high performance liquid chromatographic equipment is used to analyse the hydrolysates, the experimental conditions must be optimised in accordance with the manufacturer's recommendations.
Dersom det benyttes utstyr for høytrykksvæskekromatografi til å analysere hydrolysater, skal prøveforholdene optimeres i samsvar med produsentens anbefalinger.
By applying the method to feed containing more than 1 % chloride (concentrate, mineral feeds, supplementary feeds) underestimation of methionine could occur and special treatment has to be done.
Dersom metoden anvendes på fôrvarer som inneholder mer enn 1 % klorid (konsentrat, mineralfôr, tilskuddsfôr), kan det forekomme undervurdering av metionin, og det må foretas en særlig behandling.
DETERMINATION OF TRYPTOPHAN
BESTEMMELSE AV TRYPTOFAN
The method makes the determination possible of the total and free tryptophan in feed.
Dette er en metode for bestemmelse av totalinnholdet av tryptofan og innholdet av fritt tryptofan i fôrvarer.
It does not distinguish between D- and L- forms.
Det skilles ikke mellom D-formen og L-formen.
For the determination of the total tryptophan, the sample is hydrolysed under alkaline conditions with saturated barium hydroxide solution and heated to 110
For bestemmelse av totalinnholdet av tryptofan hydrolyseres prøven i et basisk miljø med en mettet bariumhydroksidløsning og holdes oppvarmet ved 110
After hydrolysis internal standard is added.
Etter hydrolysen tilsettes intern standard.
For the determination of free tryptophan, the sample is extracted under mild acidic conditions in the presence of internal standard.
For bestemmelse av fritt tryptofan ekstraheres prøven i et svakt surt miljø ved hjelp av intern standard.
The tryptophan and the internal standard in the hydrolysate or in the extract are determined by HPLC with fluorescence detection.
Tryptofanet og den interne standarden i hydrolysatet eller ekstraktet bestemmes ved HPLC med fluorescensdetektor.
Double distilled water or water of equivalent quality must be used (conductivity < 10 μS/cm).
Dobbeltdestillert vann eller vann av tilsvarende kvalitet (konduktivitet < 10 μS/cm).
Standard substance: tryptophan (purity/content ≥ 99 %) dried under vacuum over phosphorous pentoxide.
Standard: tryptofan (renhet/innhold ≥ 99 %) tørket i vakuum over fosforpentoksid.
Internal standard substance: α-methyl-tryptophan (purity/content ≥ 99 %), dried under vacuum over phosphorous pentoxide.
Intern standard: α-metyltryptofan (renhet/innhold ≥ 99 %) tørket i vakuum over fosforpentoksid.
Barium hydroxide octa-hydrate (care shall be taken not to expose the Ba(OH)
Bariumhydroksidoktahydrat (unngå å utsette Ba(OH)
Ortho-phosphoric acid, w (w/w) = 85 %.
Ortofosforsyre, w (w/w) = 85 %.
Hydrochloric acid, ρ
Saltsyre, ρ
Methanol, equivalent to HPLC grade.
Metanol, HPLC-kvalitet.
Hydrochloric acid, c = 6 mol/l:
Saltsyre, c = 6 mol/l:
Hydrochloric acid, c = 0,1 mol/l:
Saltsyre, c = 0,1 mol/l:
Ortho-phosphoric acid, c = 0,5 mol/l:
Ortofosforsyre, c = 0,5 mol/l:
Take 34 ml ortho-phosphoric acid (3.6) and make up to 1 litre with water (3.1).
Fortynn 34 ml ortofosforsyre (3.6) med vann (3.1) til 1 l.
Concentrated solution of tryptophan (3.2), c = 2,50 μmol/ml:
Konsentrert tryptofanløsning (3.2), c = 2,50 μmol/ml:
In a 500 ml volumetric flask dissolve 0,2553 g tryptophan (3.2) in hydrochloric acid (3.13) and make up to the mark with hydrochloric acid (3.13).
Løs opp 0,2553 g tryptofan (3.2) i saltsyre (3.13) i en 500 ml målekolbe og fyll opp med saltsyre (3.13) til merket.
Concentrated internal standard solution, c = 2,50 μmol/ml:
Konsentrert intern standardløsning, c = 2,50 μmol/ml:
In a 500 ml volumetric flask dissolve 0,2728 g α-methyl-tryptophan (3.3) in hydrochloric acid (3.13) and make up to the mark with hydrochloric acid (3.13).
Løs opp 0,2728 g α-metyltryptofan (3.3) i saltsyre (3.13) i en 500 ml målekolbe og fyll opp til merket med saltsyre (3.13).
Store at - 18
Løsningen kan lagres ved –18
Calibration standard solution of tryptophan and internal standard:
Standardkalibreringsløsning av tryptofan og intern standard:
Take 2,00 ml concentrated solution of tryptophan (3.15), and 2,00 ml of concentrated internal standard (α-methyl-tryptophan) solution (3.16).
Fortynn 2,00 ml konsentrert tryptofanløsning (3.15) og 2,00 ml konsentrert løsning av intern standard (α-metyltryptofan) (3.16)
Dilute with water (3.1) and methanol (3.8) to approximately the same volume and to approximately the same concentration of methanol (10 %-30 %) as the finished hydrolysate.
med vann (3.1) og metanol (3.8) til omtrent samme volum og metanolkonsentrasjon (10–30 %) som det ferdige hydrolysatet.
This solution must be prepared freshly before use.
Denne løsningen skal tillages like før bruk.
Protect from direct sunlight during preparation.
Løsningen beskyttes mot direkte sollys under tillaging.
1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol.
1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol.
Ethanolamine w (w/w) > 98 %.
Etanolamin w (w/w) > 98 %
Solution of 1 g 1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol (3.19) in 100 ml methanol (3.8).
Løsning av 1 g 1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol (3.19) i 100 ml metanol (3.8).
Mobile phase for HPLC:
Mobil fase for HPLC:
3,00 g acetic acid (3.18) + 900 ml water (3.1) +50,0 ml solution (3.21) of 1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol (3.19) in methanol (3.8) (1g/100ml).
3,00 g eddiksyre (3.18) + 900 ml vann (3.1) + 50,0 ml løsning (3.21) av 1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol (3.19) i metanol (3.8) (1 g/100 ml).
Adjust pH to 5,00 using ethanolamine (3.20).
Juster pH til 5,00 med etanolamin (3.20).
Make up to 1000 ml with water (3.1).
Fyll på med vann (3.1) til 1 000 ml.
HPLC equipment with a spectrofluorometric detector.
HPLC-utstyr med spektrofluorimetrisk detektor.
Liquid chromatographic column, 125 mm x 4 mm, C
Væskekromatografikolonne, 125 mm × 4 mm, C
pH-meter.
pH-meter.
Polypropylene flask, capacity 125 ml, with wide neck and screw cap.
Polypropylenkolbe, 125 ml, med vid hals og skrukork.
Membrane filter, 0,45 μm.
Membranfilter, 0,45 μm.
Autoclave, 110 (± 2)
Autoklav, 110 (± 2)
Vortex mixer.
Vortex blandeapparat.
Preparation of samples
Tillaging av prøven
Samples with high fat content shall be extracted with light petroleum (3.9) prior to grinding.
Prøver med høyt fettinnhold må ekstraheres med petroleumseter (3.12) før de males.
Determination of free tryptophan (extract)
Bestemmelse av fritt tryptofan (ekstrakt)
Weigh to the nearest 1 mg an appropriate amount (1-5 g) of the prepared sample (5.1), into a conical flask.
Vei opp en passende mengde (1–5 g) av den tillagde prøven (5.1) med en nøyaktighet på 1 mg i en erlenmeyerkolbe.
Add 100,0 ml hydrochloric acid, (3.13) and 5,00 ml concentrated internal standard solution (3.16).
Tilsett 100,0 ml saltsyre (3.13) og 5,00 ml konsentrert intern standardløsning (3.16).
Shake or mix for 60 min. using a mechanical shaker or a magnetic stirrer (4.7).
Bland eller rist blandingen i 60 min med et mekanisk risteapparat eller en magnetrører (4.7).
Allow the sediment to settle and pipette 10,0 ml of the supernatant solution into a beaker.
Etter bunnfelling pipetteres 10,0 ml av supernatanten over i et begerglass.
Add 5 ml ortho-phosphoric acid (3.14).
Tilsett 5 ml ortofosforsyre (3.14)
Adjust the pH to 3 using sodium hydroxide (3.10).
og juster pH-verdien til 3,0 med natriumhydroksid (3.10).
Add sufficient methanol (3.8) to give a concentration of between 10 % and 30 % of methanol in the final volume.
Tilsett tilstrekkelig metanol (3.8) til at konsentrasjonen blir 10–30 % i sluttvolumet.
Transfer to a volumetric flask of appropriate volume and dilute with water to a volume necessary for the chromatography (approx. the same volume as the calibration standard solution (3.17)).
Overfør til en målekolbe av passende størrelse og fortynn med vann til en mengde som er nødvendig for kromatografien (omtrent samme mengde som standardkalibreringsløsningen (3.17)).
Protect standard solution and extracts against direct sunlight.
Standardløsning og ekstrakter må beskyttes mot direkte sollys.
If it is not possible to analyse the extracts the same day, the extracts may be stored at 5
Dersom ekstraktene ikke kan analyseres samme dag, kan de oppbevares ved 5
Determination of total tryptophan (hydrolysate)
Bestemmelse av totalinnhold av tryptofan (hydrolysat)
Weigh to the nearest 0,2 mg from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1) into the polypropylene flask (4.4).
Vei opp 0,1–1 g av den tillagde prøven (5.1) med en nøyaktighet på 0,2 mg i polypropylenkolben (4.4).
Mix on a vortex mixer (4.8) or magnetic stirrer (4.7).
Bland med et Vortex blandeapparat (4.8) eller en magnetrører (4.7).
Leave the teflon coated magnet in the mixture.
La den teflonbelagte magneten være igjen i blandingen.
Wash down the walls of the vessel with 4 ml water.
Veggene i beholderen vaskes ned med 4 ml vann.
Put on the screw cap and close the flask loosely.
Sett skrukorken løst på kolben
Transfer to an autoclave (4.6) with boiling water and steam for 30-60 minutes.
og sett den inn i autoklaven (4.6) med kokende vann i 30–60 minutter.
Close the autoclave and autoclave at 110 (± 2)
Lukk autoklaven og autoklaver ved 110 (± 2)
Before opening the autoclave reduce the temperature to just under 100
Før åpning senkes temperaturen i autoklaven til litt under 100
In order to avoid crystallisation of Ba(OH)
For å unngå krystallisering av Ba(OH)
Shake or stir gently.
Rist eller rør forsiktig.
Add 2,00 ml concentrated internal standard (α-methyl-tryptophan) solution (3.16).
Tilsett 2,00 ml konsentrert intern standardløsning (α-metyltryptofan) (3.16).
Cool the vessels on water/ice bath for 15 minutes.
Kjøl ned beholderne i vann/isbad i 15 minutter.
Then, add 5 ml ortho-phosphoric acid (3.14).
Tilsett deretter 5 ml ortofosforsyre (3.14).
Keep the vessel in the cooling bath and neutralise with HCl (3.11) whilst stirring and adjust the pH to 3,0 using HCl (3.12).
Mens beholderen står i kjølebadet, nøytraliseres løsningen med saltsyre (3.11) under omrøring. Juster pH til 3,0 med saltsyre (3.12).
Add sufficient methanol to give a concentration of between 10 % and 30 % of methanol in the final volume.
Tilsett tilstrekkelig metanol (3.8) til at konsentrasjonen blir 10–30 % i sluttvolumet.
Transfer to a volumetric flask of appropriate volume and dilute with water to the defined volume necessary for the chromatography (for example 100 ml).
Overfør til en målekolbe av passende størrelse og fortynn med vann til den mengde som er definert som nødvendig for kromatografien (f.eks. 100 ml).
The addition of methanol shall not cause precipitation.
Tilsettingen av metanol må ikke føre til utfelling.
Protect standard solution and hydrolysates against direct sunlight.
Standardløsning og hydrolysater må beskyttes mot direkte sollys.
If it is not possible to analyse the hydrolysates the same day, they may be stored at 5
Dersom hydrolysatene ikke kan analyseres samme dag, kan de oppbevares ved 5
HPLC determination
HPLC-bestemmelse
The following conditions for isocratic elution are offered for guidance; other conditions may be used, provided they yield equivalent results (see also observations 9.1 and 9.2):
Nedenstående betingelser for isokratisk eluering er veiledende. Det kan benyttes andre betingelser, forutsatt at de fører til tilsvarende resultater (se også 9.1 og 9.2):
Liquid chromatographic column (4.2):
Væskekromatografikolonne (4.2):
Column temperature:
Kolonnetemperatur:
Room temperature
Romtemperatur
Mobile phase (3.22):
Mobil fase (3.22):
3,00 g acetic acid (3.18) + 900 ml water (3.1) +50,0 ml solution (3.21) of 1,1,1-trichloro-2- methyl-2-propanol (3.19) in methanol (3.8) (1 g/100 ml).
3,00 g eddiksyre (3.18) + 900 ml vann (3.1) + 50,0 ml løsning (3.21) av 1,1,1-triklor-2-metyl-2-propanol (3.19) i metanol (3.8) (1 g/100 ml).
Make up to 1000 ml with water (3.1)
Fyll på med vann (3.1) til 1 000 ml.
1 ml/min.
1 ml/min.
Total run time:
Total gjennomløpstid:
approx. 34 min.
ca. 34 min
Detection wavelength:
Detektorbølgelengde:
excitation:
eksitasjon:
280 nm, emission:
280 nm, emisjon:
356 nm.
356 nm
Injection volume
Injeksjonsvolum:
20 μl
20 μl
The amount of tryptophane (X), in g per 100g sample, is calculated as follows:
Mengden tryptofan (X), uttrykt som g per 100 g prøve, beregnes som følger:
peak area of internal standard, calibration standard solution (3.17)
toppareal for intern standard, standardkalibreringsløsning (3.17)
peak area of tryptophan, extract (5.2) or hydrolysate (5.3)
toppareal for tryptofan, ekstrakt (5.2) eller hydrolysat (5.3)
volume in ml (2 ml) of concentrated tryptophan solution (3.15) added to the calibration solution (3.17)
volum i ml (2 ml) av konsentrert tryptofanløsning (3.15), tilsatt kalibreringsløsningen (3.17)
concentration in μmol/ml (= 2,50) of concentrated tryptophan solution (3.15) added to calibration solution (3.17)
konsentrasjon i µmol/ml (= 2,50) av konsentrert tryptofanløsning (3.15), tilsatt kalibreringsløsningen (3.17)
volume in ml of concentrated internal standard solution (3.16) added at the extraction (5.2) (= 5,00 ml) or to the hydrolysate (5.3) (= 2,00 ml)
volum i ml av konsentrert intern standardløsning (3.16), tilsatt ekstraktet (5.2) (= 5,00 ml) eller hydrolysatet (5.3) (= 2,00 ml)
peak area of internal standard, extract (5.2) or hydrolysate (5.3)
toppareal for intern standard, ekstrakt (5.2) eller hydrolysat (5.3)
peak area of tryptophan, calibration standard solution (3.17)
toppareal for tryptofan, standardkalibreringsløsning (3.17)
volume in ml (= 2,00 ml) of concentrated internal standard solution (3.16) added to calibration standard solution (3.17)
volum i ml (= 2,00 ml) av konsentrert intern standardløsning (3.16), tilsatt standardkalibreringsløsningen (3.17)
molar weight of tryptophan (= 204,23 g/mol)
molvekt for tryptofan (= 204,23 g/mol)
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 10 % relative to the highest result.
Forskjellen mellom resultatene av to parallelle bestemmelser som utføres på samme prøve, må ikke overskride 10 % av det høyeste resultatet.
Results of a collaborative study
Resultater av en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier
An EC collaborative study (4th intercomparison) was arranged in which three samples were analysed by up to 12 laboratories to certify the method for hydrolysis.
Det er gjennomført en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier i Fellesskapet (fjerde undersøkelse foretatt ved flere laboratorier) der tre prøver ble analysert av opptil 12 laboratorier for å sertifisere hydrolysemetoden..
The results are given in the following table:
Resultatene er oppført i tabellen nedenfor:
Sample 1
Prøve 1
Pig feed
Svinefôr
Pig feed supplemented with L-tryptophan
Svinefôr tilsatt L-tryptofan
Feed concentrate for pigs
Fôrkonsentrat til svin
Mean [g/kg]
Gjennomsnitt [g/kg]
number of laboratories submitting results
antall laboratorier som har levert inn resultater
number of single results retained eliminating outliers (identified by Cochran, Dixon outlier test)
antall enkeltverdier etter eliminering av store enkeltavvik (Cochran, Dixon outlier-test)
standard deviation of repeatability
standardavvik for repeterbarhet
standard deviation of reproducibility
standardavvik for reproduserbarhet
repeatability
repeterbarhet
reproducibility
reproduserbarhet
coefficient of variation of repeatability, %
variasjonskoeffisient for repeterbarhet (%)
coefficient of variation of reproducibility, %
variasjonskoeffisient for reproduserbarhet, %
Another EC collaborative study (3rd intercomparison) was arranged in which two samples were analysed by up to 13 laboratories to certify the method for extraction of free tryptophan.
Det er også gjennomført en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier i Fellesskapet (tredje undersøkelse foretatt ved flere laboratorier) der to prøver ble analysert av opptil 13 laboratorier for å sertifisere metoden for ekstraksjon av fritt tryptofan.
Wheat and soya mixture
Blanding av soya og hvete
Wheat and soya mixture (= sample 4) with added tryptophan (0,457g/kg1)
Blanding av soya og hvete (= prøve 4) tilsatt tryptofan (0,457g/kg1)
number of single results retained after eliminating outliers (identified by Cochran, Dixon outlier test)
antall enkeltverdier etter eliminering av store enkeltavvik (Cochran, Dixon outlier-test)
Another EC intercomparison study was arranged in which four samples were analysed by up to 7 laboratories with the aim of a tryptophan certification for hydrolysis.
Det er gjennomført enda en undersøkelse foretatt ved flere laboratorier i Fellesskapet der fire prøver ble analysert av opptil syv laboratorier for å sertifisere hydrolysemetoden for tryptofan.
Mixed pig feed
Fôrblanding til svin
Low fat fish meal
Fiskemel med lavt fettinnhold
Soybean meal
Soyamel
Following special chromatographic conditions may give better separation between tryptophan and α-methyl-tryptophan.
For å oppnå bedre separasjon mellom tryptofan og α-metyltryptofan, kan følgende særlige kromatografiske betingelser prøves: