natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Since the individual weight in many species of aquatic oligochaetes is very low (5-10 mg wet weight per individual for Lumbriculus variegatus and Tubifex tubifex), the worms of a given replicate test chamber may be pooled for weighing and test chemical analysis.
szükség esetén pótoljuk az elpárolgott vizet;
For test species with higher individual weight (e.g. Branchiura sowerbyi) replicates containing one individual may be used, but in such cases the number of replicates should be increased to five per sampling point (11).
8–13
It should however be noted that B. sowerbyi was not included in the ring test (12), and is therefore not recommended as a preferable species in the method.
15–20
Worms of similar size should be used (for L. variegatus see Appendix 6).
22–27
They should come from the same source, and should be adult or large animals of the same age class (see Appendix 6).
a vízminőség mérése (lásd az 52. pontot);
The weight and age of an animal may have a significant effect on the BAF-values (e.g. due to different lipid content and/or presence of eggs);
a felvételi fázis vége;
these parameters should be recorded accurately.
elegendő féreg-részminta megőrzése az analitikai háttérértékek, a nedves és száraz tömeg, valamint a lipidtartalom meghatározásához;
To measure the mean wet and dry weight a sub-sample of worms should be weighed before starting the test.
a fennmaradó expozíciós ismétlésekből a férgek áthelyezése tiszta üledéket tartalmazó edényekbe az ürülési fázishoz (nincs bélürítés);
With Tubifex tubifex and Lumbriculus variegatus, reproduction is expected during the test period.
Az expozíció előtti tennivalókat (kiegyensúlyozódási fázis) a vizsgált anyag tulajdonságainak figyelembevételével kell ütemezni.
A lack of reproduction in a bioaccumulation test should be recorded, and considered when interpreting the test results.
Szükség esetén az előkészített üledék kondicionálása fedővíz alatt 20 ± 2 °C-on 7 napig;
High sediment-to-worm and water-to-worm ratios should be used in order to minimise the reduction of test substance concentration in the sediment during the uptake phase, and to avoid decreases in dissolved oxygen concentration.
ebben az esetben az üledéket korábban kell elkészíteni!
The chosen loading rate should also correspond to naturally occurring population densities of the chosen species (43).
A 2. napnál leírt tennivalókat minden nap el kell végezni (legalább munkanapokon).
For example, for Tubifex tubifex, a loading rate of 1-4 mg of worm tissue (wet weight) per gram of wet sediment is recommended (8)(11).
Ürülési fázis
References (1) and (6) recommend a loading rate of ≤ 1 g dry weight of worm tissue per 50 g sediment organic carbon for L. variegatus.
Az üledékösszetevők összekeverése;
The worms to be used in a test are removed from the culture by sieving the culture sediment.
inkubáció vizsgálati körülmények mellett;
The animals (adult or large worms without signs of recent fragmentation) are transferred to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water.
(a felvételi fázis 28. napja)
If the test conditions differ from the culture conditions, an acclimation phase of 24 h should be sufficient.
A vízminőség mérése (lásd az 52. pontot);
Prior to weighing, excess water should be removed from the worms.
a férgek áthelyezése a fennmaradó expozíciós ismétlésekből tiszta üledéket tartalmazó edényekbe;
This can be done by gently placing the worms on a pre-moistened paper tissue.
4–6 óraután az ismétlések eltávolítása víz-, üledék- és féregminták vételére a vizsgált anyag koncentrációjának meghatározása céljából;
It is not recommended to use absorbing paper to dry the worms as this may cause stress or damage to the worms.
a levegőellátás, a férgek viselkedése, a vízminőség ellenőrzése (lásd az 52. pontot);
recommend using non-blotted worms of approximately 1,33 times the target biomass.
8–9.
At the start of the uptake phase (day 0 of the test), the test organisms are removed from the acclimatisation chamber and distributed randomly to vessels (e.g. petri dishes) containing reconstituted water by adding groups of two worms to each vessel, until each vessel contains ten worms.
víz-, üledék- és féregminták vétele az oldószeres kontrollokból;
Each of these groups of worms are then randomly transferred to separate test vessels, e.g. using soft steel forceps.
mintavétel a csapdákban lévő oldatokból, ha vannak.
The test vessels are subsequently incubated under test conditions.
Az ürülési fázis kezdete előtt ugyanúgy kell elkészíteni az üledéket, mint a felvételi fázis előtt.
In order not to underestimate the exposure of the test organisms, e.g. by selectively feeding uncontaminated food, the food necessary for reproduction and growth of the test organisms should be added to the sediment once before or during application of the test substance (see Appendix 5).
AZ AJÁNLOTT MESTERSÉGES VÍZ ÖSSZETÉTELE
Sediment-water ratio
Ebben az oldatban a kalcium- és magnéziumionok összege 2,5 mmol/l.
The recommended sediment-water ratio is 1:4 (45).
A fedővíz pH-értékének a 6–9 tartományban kell lennie.
This ratio is considered suitable to maintain oxygen concentrations at appropriate levels, and to avoid the build-up of ammonia in the overlying water.
Mesterséges üledék – elkészítés és tárolás
The oxygen content in the overlying water should be maintained at ≥ 40 % saturation.
A C.8. vizsgálati módszer követelményeivel ellentétben (40) a száraz tömeg 10 %-a helyett 2 % tőzegtartalom ajánlott a mesterséges üledékben, hogy az üledék megfeleljen a természetes üledékek alacsony-közepes szervesanyag-tartalmának (58).
The overlying water of the test vessels should be gently aerated (e.g. 2 - 4 bubbles per second) via a pasteur pipette positioned approximately 2 cm above the sediment surface so as to minimise perturbation of the sediment.
A mesterséges üledék száraz összetevőinek százalékos aránya:
The photoperiod in the culture and the test is 16 hours (1)(6).
% száraz üledék
Light intensity in the test area should be kept at about 500-1000 lx.
Táplálékforrás
The temperature should be 20 ± 2 °C throughout the test.
Folia urticae, az Urtica-fajok (nagy csalán) porított levelei, finomra őrölve (részecskeméret ≤ 0,5 mm), vagy az Urtica-fajok porított leveleinek keveréke alfa-cellulózzal (1:1);
One test concentration (as low as possible) is used for determination of the uptake kinetics, but a second (higher) concentration may be used (e.g. (46)).
a gyógyszertári szabványoknak megfelelően, emberi fogyasztásra;
In that case, samples are taken and analysed at steady state or after 28 d to confirm the BAF measured at the lower concentration (11).
a száraz üledékhez hozzáadva
The higher concentration should be selected so that adverse effects can be excluded (e.g. by choosing approximately 1 % of the lowest known chronic effect concentration ECx as derived from relevant chronic toxicity studies).
Ha megemelkedett ammóniakoncentrációk várhatók – például ha a vizsgált anyagról ismert, hogy gátolja a nitrifikációt –, hasznos lehet a nitrogénben gazdag Urtica-por 50 %-át cellulózzal helyettesíteni (pl. α-cellulóz por, kémiailag tiszta, részecskeméret ≤ 0,5 mm).
The lower test concentration should be significantly higher than the detection limit in sediment and biological samples by the analytical method used.
A tőzeget levegőn megszárítjuk és finom porrá őröljük (szemcseméret ≤ 0,5 mm, látható növényi maradványok nélkül).
If the effect concentration of the test substance is close to the analytical detection limit, the use of radiolabelled test substance with high specific radioactivity is recommended.
A szükséges mennyiségű tőzegporból a száraz üledékhez adandó ioncserélt víz egy részével (a tőzeg száraz tömege 11,5-szeresének megfelelő vízmennyiséget elegendőnek találták a keverhető tőzegiszap elkészítéséhez (8)) szuszpenziót állítunk elő nagy teljesítményű homogenizáló készülék segítségével.
Treated and Control Replicates
A szuszpenzió pH-ját CaCO3 hozzáadásával 5,5 ± 0,5 értékre állítjuk be.
The minimum number of treated replicates for kinetic measurements should be three per sampling point (11) throughout uptake and elimination phase.
A pH és a mikrobiológiai összetétel stabilizálása céljából a szuszpenziót 20 ± 2 °C hőmérsékleten lassú keveréssel legalább két napig kondicionáljuk.
Additional replicates should be employed e.g. for optional additional sampling dates.
A végtermékként kapott keverék pH-ját ismételten megmérjük, és szükség esetén CaCO3 hozzáadásával 6,0 ± 0,5 értékre állítjuk be.
For the elimination phase, a matching number of replicates is prepared with non-spiked sediment and overlying water, so that the treated worms can be transferred from designated treated vessels to non-treated vessels at the end of the uptake phase.
Ezután az egész szuszpenziót összekeverjük a többi száraz összetevővel, figyelembe véve a szennyezéshez használt részt.
The total number of treated replicates should be sufficient for both uptake and elimination phase.
Hozzáadjuk a maradék ioncserélt vizet, hogy homogén üledéket kapjunk.
Alternatively, the worms designated for sampling during the elimination phase may be exposed in one large container containing spiked sediment of the same batch as used for uptake kinetics.
A pH-t ismételten megmérjük, és szükség esetén CaCO3 hozzáadásával 6,5–7,5 értékre állítjuk be.
It should be demonstrated that the test conditions (e.g. sediment depth, sediment water ratio, loading, temperature, water quality) are comparable to the replicates designated for the uptake phase.
Ha ammónia képződése várható, a mesterséges üledéket hét napig kondicionálni lehet olyan körülmények mellett, mint amelyek az ezt követő vizsgálat során, a vizsgált anyaggal történő szennyezés előtt érvényesülnek (pl. üledék-víz arány 1: 4, az üledékréteg magassága megegyezik a vizsgálati edényekben lévő magassággal), azaz fel kell önteni vízzel, amelyet levegőztetni kell.
At the end of the uptake phase, water, sediment and worm samples should be taken from this container for analysis, and a sufficient number of large worms that show no sign of recent fragmentation, should be removed carefully and transferred to the replicates prepared for the elimination phase (e.g. ten organisms per replicate vessel).
Az üledékből mintákat veszünk a száraz tömeg és az összes szerves széntartalom meghatározására (pl. 3 mintát).
If no solvent other than water is used, at least 9 replicates of a negative control (at least 3 sampled at start, 3 at end of uptake and 3 at end of elimination) should be provided for biological and background analysis.
Ezt követően minden kezelési szint esetében összekeverjük a szennyezett kvarchomokot az üledékkel, majd az üledéket szétosztjuk a párhuzamos kezelt edények között, és feltöltjük a vizsgálati vízzel (pl. üledék-víz arány 1: 4, az üledékréteg magassága megegyezik a vizsgálati edényekben lévő magassággal).
If any solubilising agent is used for application of the test substance, a solvent control should be run (at least 3 replicates should be sampled at start, 3 at the end of the uptake phase, and 3 at the end of the elimination phase).
A kiválasztott táplálékforrást az üledék vizsgált anyaggal való szennyezése előtt vagy alatt kell hozzáadni.
In this case, at least 4 replicates of a negative control (no solvent) should be provided for sampling at the end of the uptake phase.
Annak érdekében, hogy a táplálék elegendő ideig kontaktusban legyen a vizsgált anyaggal, a táplálékforrást legkésőbb azon a napon kell összekeverni az üledékkel, amikor az üledéket beszennyezik a vizsgált anyaggal.
These replicates can be compared biologically with the solvent control in order to gain information on possible influence of the solvent on the test organisms.
Kivételt lehet tenni, ha a kiegyensúlyozódási időszak hossza a táplálék túlzott mikrobiológiai lebomlásához vezet a vizsgált organizmusok hozzáadása előtt.
Details are given in Appendix 3.
Az üledékből mintákat veszünk a száraz tömeg és az összes szerves széntartalom meghatározására (pl. 3 mintát a szennyezett vagy kontroll üledékből).
Frequency of water quality measurements
A komponensek száraz tömegét (tőzeg, homok, kaolin) g-ban és a teljes száraz tömeg százalékában kell jegyzőkönyvezni.
As a minimum, the following water quality parameters should be measured in the overlying water during uptake and elimination phase:
A száraz komponensekhez az üledék elkészítése során hozzáadandó víztérfogatot is az összes száraz tömeg százalékában kell jegyzőkönyvezni (pl. a 100 % száraz tömeg + 46 % víz azt jelenti, hogy 1000 g száraz tömeg összesen 460 ml vizet kap, ami 1460 g nedves üledéket eredményez).
Temperature
A mesterséges üledék száraz összetevőit száraz, hűvös helyen vagy szobahőmérsékleten lehet tárolni.
in one vessel of each treatment level per sampling date, and in one control vessel once per week and at the start and the end of the uptake and elimination period;
Az elkészített nedves üledék 4 ± 2 °C-on, sötétben, az elkészítés napjától számított 2–4 héten át tárolható (csak a tenyészetben történő további használatra) (8).
temperature in the surrounding medium (ambient air or water bath) or in one representative test vessel may also be recorded e.g. in continuous or hourly intervals;
A vizsgált anyaggal szennyezett üledéket azonnal fel kell használni, kivéve, ha olyan információk állnak rendelkezésre, amelyek szerint az adott üledék tárolása nem befolyásolja a vizsgált anyag toxicitását és biológiai hozzáférhetőségét.
Dissolved oxygen content
A szennyezett üledékmintákat az adott vizsgált anyag esetében ajánlott körülmények között lehet tárolni az analízis elvégzéséig.
in one vessel of each treatment level, and in one control vessel per sampling date;
A biológiai felhalmozódás vizsgálatához ajánlott kevéssertéjű-fajok
expressed as mg/L and % ASV (air saturation value);
Tubifex tubifex (Müller), Tubificidae, Oligochaeta
Air supply
A tubificid kevéssertéjűek (Tubificidae, Oligochaeta) közé tartozó Tubifex tubifex (Müller) édesvízi üledékekben, nyálkával kibélelt csövekben él.
controlled at least once per day (workdays) and adjusted if needed;
A férgek fejjel lefelé laknak ezekben a csövekben, és üledékrészecskéket fogyasztanak, hasznosítva az azokhoz kötődő mikroorganizmusokat és szerves törmeléket.
in one treated vessel of each treatment level per sampling date, and in one control vessel once per week and at the start and the end of the uptake and elimination period;
A férgek hátsó vége általában a fedővízben hullámzik légzés céljából.
Total water hardness
Bár a Tubifex tubifex az egész északi féltekén, számos üledéktípusban megél, a viszonylag finom szemcseméretű üledékeket kedveli (59).
at least in one treated vessel and one control test vessel at the start and the end of the uptake and elimination period, expressed as mg/l CaCO3;
A faj ökotoxikológiai vizsgálatok céljára való megfelelőségét mutatja be például a (8) (29) (31) (39) (60) (62) (63) szakirodalom.
Total ammonia content
A férgeket állandó laboratóriumi tenyészetben kell tartani, hogy elegendő számú Tubifex tubifex álljon rendelkezésre a biológiai felhalmozódási vizsgálatok lefolytatására.
at least in one treated vessel and one control test vessel at the start and the end of the uptake and elimination period;
A T. tubifex tenyésztésre a C.8. vizsgálati módszer szerinti mesterséges talajon alapuló mesterséges üledékből (40) és a C.1. vizsgálati módszer szerinti mesterséges vízből álló rendszer ajánlott (8).
Sampling and analysis of worms, sediment, and water
Minden tenyésztőtartályba egy réteg – az 5. függelékben leírt módon előállított – nedves mesterséges üledéket kell tölteni.
Sampling Schedule
Az üledékréteg mélységének lehetővé kell tennie a férgek természetes üledékbe ásó viselkedését (T. tubifex esetén a minimális mélység 2 cm).
Examples of sampling schedules for a 28-day uptake phase and a 10-day elimination phase are given in Appendix 3.
A rendszerhez mesterséges vizet adunk.
Sample the water and sediment from the test chambers for determination of test substance concentration before adding the worms, and during both uptake and elimination phases.
Ügyelni kell arra, hogy csak minimális mértékben kavarjuk fel az üledéket.
During the test the concentrations of test substance are determined in the worms, sediment, and water in order to monitor the distribution of the test substance in the compartments of the test system.
A víztestet egy 2 cm-rel az üledékfelszín fölött elhelyezett Pasteur-pipettán keresztül óvatosan levegőztetjük (pl. 2 buborék másodpercenként, 0,45 μm pórusméretű szűrőn átszűrt levegőből).
Sample the worms, sediment, and water on at least six occasions during the uptake as well as the elimination phase.
Az ajánlott tenyésztési hőmérséklet 20 ± 2 °C.
Continue sampling until a plateau (steady state) has been established (see Appendix 1) or for 28 days.
A férgeket 20000 példány/m2 üledékfelület maximális betelepítési sűrűséggel adjuk hozzá a tenyészethez.
If the plateau has not been reached within 28 days, begin the elimination phase.
A nagyobb betelepítési sűrűség a növekedés és a szaporodás sebességének csökkenését okozhatja (43).
When beginning the elimination phase, transfer the designated worms to replicate chambers containing untreated sediment and water (see also paragraphs 17 and 18).
A mesterséges üledéket tartalmazó tenyészetekben a férgeket táplálni kell.
Sampling and sample preparation
A finomra őrölt haleledelből (pl. TetraMin®) álló étrend kiegészítő táplálékként szolgálhat (8);
Obtain water samples by decanting, siphoning or pipetting a volume sufficient for measuring the quantity of the test substance in the sample.
Klerks, 1994., személyes közlés.
The remaining overlying water is carefully decanted or siphoned from the test chamber(s).
A táplálási aránynak lehetővé kell tennie a férgek kielégítő növekedését és szaporodását, illetve minimális szinten kell tartania az ammónia felhalmozódását és gombák növekedését a tenyészetben.
Sediment samples should be taken carefully, causing minimal disturbance of the worms.
A táplálék hetente kétszer adható (pl. 0,6–0,8 mg/cm2 üledékfelszín).
Remove all worms from the test replicate at the sampling time, e.g. by suspending the sediment with overlying water and spreading the contents of each replicate on a shallow tray and picking the worms using soft steel forceps.
A gyakorlati tapasztalat azt mutatja, hogy az ioncserélt vízben szuszpendált és homogenizált táplálék alkalmazása megkönnyítheti a táplálék homogén eloszlását a tenyésztőtartályokban lévő üledék felszínén.
Rinse them quickly with water in a shallow glass or steel tray.
Az ammónia felhalmozódásának elkerülése érdekében a fedővizet cserélni kell, vagy átfolyásos rendszer használatával, vagy – legalább hetente egyszer – manuálisan.
Remove the excess water.
A törzstenyészetekben az üledéket háromhavonta kell cserélni.
Transfer the worms carefully to a pre-weighed vessel and weigh them.
A tenyészetből történő féregminta vétele céljából a tenyésztőüledéket 1 mm-es szitán kell átszitálni, ha csak felnőtt egyedekre van szükség.
Sacrifice the worms by freezing (e.g. ≤ – 18 °C).
A bábok visszatartására 0,5 mm-es szita, a fiatal férgek visszatartására pedig 0,25 mm-es szita alkalmas.
The presence and number of cocoons and/or juveniles should be recorded.
A szitákat az üledék áthaladása után mesterséges vízbe lehet helyezni.
In general, the worms should be weighed and sacrificed immediately after sampling without a gut purging phase to obtain a conservative BAF which includes contaminated gut content, and to avoid losses of body residues during any gut-purging period in water only (8).
A férgek elhagyják a hálót, és a vízből lágyacél csipesszel vagy tűzzel polírozott élű pipettával lehet összeszedegetni őket.
Substances with log Kow above 5 are not expected to be eliminated significantly during any gut-purging period in water only, while substances with log Kow lower than 4 may be lost in notable amounts (47).
Kizárólag a Tubifex tubifex ép és egyértelműen azonosított példányait (pl. (64)) lehet egy vizsgálat vagy új tenyészet elindításához használni.
During the elimination phase, the worms purge their gut in clean sediment.
A beteg vagy sérült férgeket, valamint a gombafonalakkal fertőzött bábokat meg kell semmisíteni.
This means, measurements immediately before the elimination phase include contaminated gut sediment, while after the initial 4-24 h of the elimination phase, most of the contaminated gut content is assumed to be replaced by clean sediment (11)(47).
A szinkron tenyészet megfelelő időközönként meghatározott korú férgeket biztosíthat.
The concentration in the worms of this sample may then be considered as the tissue concentration after gut purge.
Választott időközönként (pl. kéthetente) új tenyésztőedényeket állítunk be, amelyeket meghatározott korú állatokkal indítunk el (pl. bábokkal).
To account for dilution of the test substance concentration by uncontaminated sediment during the elimination phase, the weight of the gut content may be estimated from worm wet weight/worm ash weight or worm dry weight/worm ash weight ratios.
Az itt leírt tenyésztési körülmények mellett a férgek 8–10 hét után elérik a felnőtt kort.
If the purpose of a specific study is to measure the bioavailability and true tissue residues in the test organisms, then at least a sub-sample of treated animals (e.g. from three additional replicate vessels), preferably sampled during steady state, should be weighed, purged in clean water for a period of 6 hours (47), and weighed again before analysis.
A tenyészetből az állatokat akkor lehet begyűjteni, amikor a férgek már új bábokat raktak, pl. tíz hét után.
Data on worm weight and body concentration of this sub-sample can then be compared to values obtained from un-purged worms.
A mintázott felnőttek vizsgálatokhoz használhatók, míg a bábokkal új tenyészetek indíthatók.
The worms designated for measurement of elimination should not be purged before the transfer to clean sediment to minimise additional stress for the animals.
Lumbriculus variegatus (Müller), Lumbriculidae, Oligochaeta
Preferably analyse the water, sediment, and worm samples immediately (i.e. within 1-2 d) after removal in order to prevent degradation or other losses and to calculate the approximate uptake and elimination rates as the test proceeds.
A Lumbriculus variegatus (Lumbriculidae, Oligochaeta) szintén az édesvízi üledékek lakója világszerte, és széles körben használják ökotoxikológiai vizsgálatokhoz.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
A faj biológiájára, tenyésztési körülményeire és érzékenységére vonatkozó információk az (1) (6) (9) (36) szakirodalmi hivatkozásban találhatók.
Failing immediate analysis, the samples should be stored under appropriate conditions.
Bizonyos korlátozásokkal a Lumbriculus variegatus is tenyészthető a T. tubifex esetében ajánlott, a (8) szakirodalmi hivatkozás szerinti mesterséges üledékben.
Obtain information on the stability and proper storage conditions for the particular test substance before beginning the study, (e.g. duration and temperature of storage, extraction procedures, etc.).
Mivel a természetben a L. variegatus a T. tubifex-hez képest a durvább üledékeket kedveli (59), a T. tubifex esetében használt mesterséges üledékkel készített laboratóriumi tenyészetek 4–6 hónap után megszűnhetnek.
If such information is not available and it is judged to be necessary, spiked control tissues can be run concurrently to determine storage stability.
A gyakorlati tapasztalat azt mutatja, hogy a L. variegatus fajt a szubsztrátum megújítása nélkül több éven át lehet tartani homokos szubsztrátumban (pl. kvarchomok, apró szemcséjű kavics), átfolyásos rendszerben, táplálékforrásként haleledelt használva.
Quality of analytical method
A férgeket nagy akváriumokban (57–80 l) lehet tenyészteni, 23 °C-on, 16 óra világos és 8 óra sötét megvilágítási időszakkal (100–1000 lux), naponta megújított természetes víz felhasználásával (45–50 l/akvárium).