natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Nuptial tubercles are located on the head (dorsal pad) of reproductively-active male fathead minnows, and are usually arranged in a bilaterally-symmetric pattern (Jensen et al.
A májmintákat tartalmazó 1,5 ml-es mikrocsöveket a mintadaraboknak a fagyasztócső-tartóállványon használt sorszámai szerinti sorrendben rendezzük el (a májakat nem kell felolvasztani).
2001).
Az előkezelés végrehajtása
Control females and juvenile males and females exhibit no tubercle development (Jensen et al.
A homogenizáló puffer hozzáadása
2001).
Ellenőrizzük a listán a homogenizáló puffernek az adott májmintához használandó térfogatát és állítsuk be a mikropipettát (térfogattartomány: 100–1000 μl) a megfelelő térfogatra.
There can be up to eight individual tubercles around the eyes and between the nares of the males.
Csatlakoztassunk egy tiszta hegyet a mikropipettához.
The greatest numbers and largest tubercles are located in two parallel lines immediately below the nares and above the mouth.
Szívjuk fel a homogenizáló puffert a reagenspalackból, és adjuk hozzá a puffert a májat tartalmazó 1,5 ml mikrocsőhöz.
In many fish there are groups of tubercles below the lower jaw;
A májat tartalmazó valamennyi 1,5 ml-es mikrocsőhöz adjuk hozzá a homogenizáló puffert a fent leírt eljárás szerint.
those closest to the mouth generally occur as a single pair, while the more ventral set can be comprised of up to four tubercles.
A mikropipetta hegyét nem kell kicserélni.
The actual numbers of tubercles is seldom more than 30 (range, 18-28; Jensen et al.
Ha azonban a pipettahegy szennyezett vagy feltehetően szennyezett, a hegyet ki kell cserélni.
2001).
A máj homogenizálása
The predominant tubercles (in terms of numbers) are present as a single, relatively round structure, with the height approximately equivalent to the radius.
A homogenizáláshoz csatlakoztassunk egy új mozsártörőt a mikrocső-homogenizátorhoz.
Most reproductively-active males also have, at least some, tubercles which are enlarged and pronounced such that they are indistinguishable as individual structures.
Vezessük be a mozsártörőt a 1,5 ml-es mikrocsőbe.
Some types of endocrine-disrupting chemicals can cause the abnormal occurrence of certain secondary sex characteristics in the opposite sex;
Tartsuk úgy a mikrocső-homogenizátort, hogy a májat a mozsártörő felülete és a 1,5 ml-es mikrocső belső fala közé préselje.
for example, androgen receptor agonists, such as 17β-methyltestosterone or 17β-trenbolone, can cause female fathead minnows to develop nuptial tubercles (Smith 1974; Ankley et al.
Kapcsoljuk be a mikrocső-homogenizátort 10–20 másodpercre.
2001; 2003), while oestrogen receptor agonists may decrease number or size of nuptial tubercles in males (Miles-Richardson et al.
A művelet során zúzott jéggel hűtsük a 1,5 ml-es mikrocsövet.
1999; Harries et al.
Emeljük ki a mozsártörőt a 1,5 ml-es mikrocsőből, és hagyjuk a csövet körülbelül 10 másodpercig nyugalomban.
2000).
Ezután vizuálisan ellenőrizzük a szuszpenzió állapotát.
Below is a description of the characterization of nuptial tubercles in fathead minnows based on procedures used at the U.S. Environmental Protection Agency lab in Duluth, MN.
Ha májdarabok figyelhetők meg a szuszpenzióban, ismételjük meg a (3) és (4) műveletet, hogy kielégítő minőségű májhomogenizátumot készíthessünk.
Specific products and/or equipment can be substituted with comparable materials available.
A centrifugálásig jégállványon hűtsük a szuszpendált májhomogenizátumot.
Viewing is best accomplished using an illuminated magnifying glass or 3X illuminated dissection scope.
A mozsártörőt minden homogenizátumhoz újra kell cserélni.
View fish dorsally and anterior forward (head toward viewer).
Az összes májat homogenizáljuk a homogenizáló pufferrel a fent leírt eljárás szerint.
Place fish in small Petri dish (e.g., 100 mm in diameter), anterior forward, and ventral down.
A szuszpendált májhomogenizátum centrifugálása
Focus viewfinder to allow identification of tubercles.
Ellenőrizzük a hűtött centrifugakamra hőmérsékletét (≤ 5 °C).
Gently and slowly roll fish from side to side to identify tubercle areas.
Helyezzük be a szuszpendált májhomogenizátumot tartalmazó 1,5 ml-es mikrocsöveket a hűtött centrifugába (egyensúlyozzuk ki, ha szükséges).
Count and score tubercles.
A szuszpendált májhomogenizátumot 10 percig centrifugáljuk ≤ 5 °C hőmérsékleten 13000 g-vel.
Repeat the observation on the ventral head surface by placing the fish dorsal anterior forward in the Petri dish.
Ugyanakkor ha a felülúszók megfelelően elválnak, a centrifugálás sebességét és időtartamát szükség szerint módosítani lehet.
Observations should be completed within 2 min for each fish.
A centrifugálás után ellenőrizzük, hogy a felülúszók megfelelően elkülönültek-e (felszín: lipid, középső réteg: felülúszó, alsó réteg: májszövet).
Tubercle Counting and Rating
Ha az elkülönülés nem megfelelő, azonos körülmények mellett ismét centrifugáljuk le a szuszpenziót.
Six specific areas have been identified for assessment of tubercle presence and development in adult fathead minnows.
Távolítsunk el minden mintadarabot a hűtött centrifugából, és helyezzük el azokat a fagyasztócső-tartóállványon a mintadarabok sorszámának megfelelően.
A template was developed to map the location and quantity of tubercles present (see end of this Appendix).
Vigyázzunk, nehogy a centrifugálás után újraszuszpendáljuk a már elválasztott rétegeket.
The number of tubercles is recorded and their size can be quantitatively ranked as:
A felülúszó gyűjtése
0- absence, 1-present, 2-enlarged and 3-pronounced for each organism (Fig.
Helyezzünk a csőtartó állványba négy db 0,5 ml-es mikrocsövet a felülúszó tárolására.
1).
Mikropipettával vegyünk ki 30 μl-t minden felülúszóból (a középső rétegben különül el), és töltsük át egy 0,5 ml-es mikrocsőbe.
Rate 0- absence of any tubercle.
Vigyázzunk, hogy ne szívjuk fel a felszínen található lipidet vagy az alsó réteg található májszövetet.
Rating 1-present, is identified as any tubercle having a single point whose height is nearly equivalent to its radius (diameter).
A fentebb leírtakkal megegyező módon gyűjtsük össze a felülúszót, és töltsük át két másik 0,5 ml-es mikrocsőbe.
Rating 2- enlarged, is identified by tissue resembling an asterisk in appearance, usually having a large radial base with grooves or furrows emerging from the centre.
Gyűjtsük össze a maradék felülúszót a mikropipettával (lehetőség szerint: ≥ 100 μl).
Tubercle height is often more jagged but can be somewhat rounded at times.
Ezután töltsük a felülúszót a fennmaradó 0,5 ml-es mikrocsőbe.
Rating 3- pronounced, is usually quite large and rounded with less definition in structure.
Zárjuk le a 0,5 ml-es mikrocső kupakját, és írjuk rá a címkére a felülúszó térfogatát.
At times these tubercles will run together forming a single mass along an individual or combination of areas (B, C and D, described below).
Ezután azonnal hűtsük le a mikrocsöveket a fagyasztócső-tartóállványon.
Coloration and design are similar to rating 2 but at times are fairly indiscriminate.
A mikropipetta hegyét minden felülúszónál cseréljük újra.
Using this rating system generally will result in overall tubercle scores of < 50 in a normal control male possessing a tubercle count of 18 to 20 (Jensen et al.
Ha nagy mennyiségű lipid halmozódik fel a mikropipetta hegyén, a májkivonat zsírral való szennyeződésének elkerülése érdekében azonnal cseréljük le egy új hegyre.
2001).
Az összes lecentrifugált felülúszót osszuk szét négy 0,5 ml-es mikrocsőbe a fent leírt eljárás szerint.
The actual number of tubercles in some fish may be greater than the template boxes (Appendix A) for a particular rating area.
Miután szétöntöttük a felülúszót a 0,5 ml-es mikrocsövekbe, helyezzük az azonosító címkével ellátott mikrocsöveket a csőtartó állványba, majd fagyasztóban azonnal fagyasszuk őket le.
If this happens, additional rating numbers may be marked within, to the right or to the left of the box.
Ha a VTG koncentrációját az előkezelés után azonnal megmérjük, tartsunk egy, a csőtartó állványban elhelyezkedő 0,5 ml-es mikrocsövet (a 30 μl felülúszót tartalmazó csövet) hűvös állapotban, és vigyük át arra a munkaállomásra, ahol az ELISA-vizsgálatot fogjuk végezni.
The template therefore does not need to display symmetry.
Ebben az esetben a többi mikrocsövet helyezzük a csőtartó állványba, és fagyasszuk le fagyasztóban.
An additional technique for mapping tubercles which are paired or joined vertically along the horizontal plane of the mouth could be done by double-marking two tubercle rating points in a single box.
A felülúszó begyűjtését követően a maradékot megfelelően semmisítsük meg.
Mapping regions:
A minta tárolása
A Tubercles located around eye.
A májhomogenizátum felülúszóját tartalmazó 0,5 ml-es mikrocsöveket az ELISA-vizsgálatban történő felhasználásig ≤ – 70 °C-on tároljuk.
Mapped dorsal to ventral around anterior rim of eye.
eljárás:
Commonly multiple in mature control males, not present in control females, generally paired (one near each eye) or single in females exposed to androgens.
Zebradánió, vérvétel farokvénából/-artériából
B Tubercles located between nares, (sensory canal pores).
A faroktövet közvetlenül az érzéstelenítés után keresztben átvágjuk, és heparinnal kezelt mikrohematokrit kapilláriscsővel felfogjuk a vért a farokvénából/-artériából.
Normally in pairs for control males at more elevated levels (2- enlarged or 3- pronounced) of development.
A vér térfogata a hal méretétől függően 5–15 μl.
Not present in control females with some occurrence and development in females exposed to androgens.
A mikrokapilláris-csőbe azonos térfogatú aprotinin puffert (6 μg/ml PBS-ben) adunk, és a vérplazmát centrifugálással (5 perc, 600 g) szeparáljuk a vérből.
C Tubercles located immediately anterior to nares, parallel to mouth.
A vérplazmát a kémcsövekben gyűjtjük össze, és a vitellogenin vagy az egyéb vizsgált fehérjék analizálásáig – 20 °C-on tároljuk.
Generally enlarged or pronounced in mature control males.
eljárás:
Present or enlarged in less developed males or androgen-treated females.
Zebradánió, vérvétel szívpunkcióval
D Tubercles located parallel along mouth line.
A véralvadás és a fehérjék lebomlásának elkerülése érdekében a mintákat heparint (1000 egység/ml) és aprotinin proteázinhibitort (2 TIU/ml) tartalmazó foszfáttal pufferolt sóoldatban (PBS) gyűjtjük.
Generally rated developed in control males.
A puffer összetevőjeként heparin-ammóniumsó és liofilizált aprotinin használata ajánlott.
Absent in control females but present in androgen-exposed females.
A vérvétel céljára fecskendő (1 ml) használata ajánlott rögzített vékony tűvel (pl. Braun Omnikan-F).
E Tubercles located on lower jaw, close to mouth, usually small and commonly in pairs.
A fecskendőt előre meg kell tölteni a pufferrel (körülbelül 100 μl), hogy teljesen feloldja a halakból származó kis vértérfogatokat.
Varying in control or treated males, and treated females.
A vérmintát szívpunkcióval vesszük.
F Tubercles located ventral to E. Commonly small and paired.
Először a halat MS-222 oldattal (100 mg/l) érzéstelenítjük.
Present in control males and androgen-exposed females.
Megfelelő érzéstelenítéssel kivehetővé válik a zebradánió szívverése.
Tubercle Template
A szív megszúrása közben enyhe nyomást fejtünk ki a fecskendő dugattyújára.
Numerical Rating
A begyűjthető vértérfogat 20–40 mikroliter között van.
resent
A szívpunkció után a vér-puffer keveréket a kémcsőbe töltjük.
Date
A vérplazmát a vérből centrifugálással (20 perc, 5000 g) különítjük el, és az analízisig – 80 °C-on tároljuk.
nlarged
eljárás:
Total Score
Szabványos eljárás:
ronounced
Zebradánió, fej/farok homogenizátum készítése
Appendix 5B
A halakat a vizsgálati leírásnak megfelelően érzéstelenítjük és elaltatjuk.
Assessment of secondary sex characteristics in medaka for the detection of certain endocrine active chemicals
A halak fejét és farkát az 1. ábrának megfelelően levágjuk.
Below is a description of the measurement of papillary processes, which are the secondary sex characteristics in medaka (Oryzias latipes).
Fontos:
After the excision of the liver (Appendix 6), the carcass is placed into a conical tube containing about 10 ml of 10 % neutral buffered formalin (upside: head, downside: tail).
A nem indukált hímek nőstényektől vagy indukált hímektől eredő »vitellogeninszennyeződésének« megelőzése céljából a boncolóeszközöket, valamint a vágódeszkát az egyes halak kezelése között le kell öblíteni és alaposan meg kell tisztítani (pl. 96 %-os etanollal).
If the gonad is fixed in a solution other than 10 % neutral buffered formalin, make a transverse cut across the carcass between anterior region of anal fin and anus using razor, taking care not to harm the gonopore and gonad itself (Fig.
Vágja ketté a hátúszó mögött
3).
Ivarmirigy-szövettanra
Place the cranial side of the fish body into the fixative solution to preserve the gonad, and the tail side of the fish body into the 10 % neutral buffered formalin as described above.
VTG-analízisre
After placing the fish body into 10 % neutral buffered formalin, grasp the anterior region of the anal fin with tweezers and fold it for about 30 seconds to keep the anal fin open.
VTG-analízisre
Measurement
(Más módszerek is használhatók, ha azokat jégen végzik, és homogén tömeget eredményeznek).
After fixing the fish body in the 10 % neutral buffered formalin for at least 24 hours, pick up the fish carcass from the conical tube and wipe the formalin on the filter paper (or paper towel).
A csöveket megfelelően meg kell számozni, hogy a halból származó fejet és farkat össze lehessen kapcsolni az ivarmirigy-szövettanhoz használt megfelelő törzsdarabbal.
Place the fish abdomen side up.
Ha homogén masszát kaptunk, a szövet tömegének 4-szeresét kitevő mennyiségű jéghideg homogenizáló puffert adunk hozzá.
Then cut the anal fin using small dissection scissors carefully (it is preferable to cut the anal fin with small amount of pterygiophore).
Dolgozzunk tovább a bibékkel, amíg a keverék homogén nem lesz.
Grasp the anterior region of the severed anal fin with tweezers and put it on a glass slide with a several drops of water.
Fontos megjegyzés:
Then cover the anal fin with a cover glass.
Minden halhoz új bibét kell használni.
Be careful not to scratch the papillary processes when grasping the anal fin with tweezers.
A mintákat a 4 °C-on 50000 g-vel 30 percig zajló centrifugálásig jégre tesszük.
Count the number of the joint plate with papillary processes using the counter under a biological microscope (upright microscope or inverted microscope).
A felülúszóból pipettával vigyünk át 20 μl térfogatú adagokat legalább két csőbe úgy, hogy a pipetta hegyét merítsük a felületen lévő zsírréteg alá és óvatosan szívjuk fel a zsír- vagy pelletfrakció nélküli felülúszót.
The papillary processes are recognized when a small formation of processes is visible on the posterior margin of joint plate.
A csöveket felhasználásig – 80 °C hőmérsékleten tároljuk.
Write the number of joint plate with papillary processes in each fin ray to the worksheet (e.g. first fin ray: 0, second fin ray: 10, third fin ray: 12, etc.) and enter the sum of this number on the Excel spreadsheet by individual fish.
Homogenizáló puffer:(50 mmol trisz-HCl, pH 7,4; 1 % proteázgátló koktél (Sigma)):
If necessary, take a photograph of the anal fin and count the number of joint plate with papillary processes on the photograph.
12 ml trisz-HCl pH = 7,4 + 120 μl proteázgátló koktél.TRIS:
After the measurement, put the anal fin into the conical tube described in (1) and store it.
TRIS-ULTRA PURE (ICN) pl. Bie & Berntsen, Dánia.Proteázgátló koktél:
Fig.1.
Sigmából (emlősszövetekhez) Termékszám P 8340.Megjegyzés:
Diagram showing sexual difference in shape and size of the anal fin.
A homogenizáló pufferoldatot a készítés napján fel kell használni.
A, male;
Használat közben helyezzük jégre.
B, female.
Dúsított vitellogeninminták és inter-assay (vizsgálatközi) referenciastandard
Fig.2.A.
Minden olyan napon, amikor vitellogeninvizsgálatokat végzünk, egy inter-assay referenciastandard felhasználásával készült dúsított mintát is analizálunk.
Processes on joint plates of anal fin-ray.
Az inter-assay referenciastandard készítéséhez használt vitellogeninnek az elvégzendő vizsgálat céljára készített kalibrációs standardokban használt vitellogenintől eltérő tételből kell származnia.
J.P., joint plate;
A dúsított minta ismert mennyiségű inter-assay standardnak egy kontrollhím vérplazmájából vett mintához történő hozzáadásával készül.
A.S., axial space;
A mintát azért kell feldúsítani, hogy a vitellogenin koncentrációja elérje a kontrollcsoportban lévő hím halakban várható vitellogeninszint 10–100-szorosát.
P., process.
A kontrollhím vérplazmájából vett dúsítandó minta származhat egyetlen halból vagy lehet több halból származó kompozit minta is.
B, Distal extremity of fin-ray.
A kontrollhímből vett vérplazma nem dúsított részmintáját legalább két lyukban analizáljuk.
Actinotrichia (Act.) are on the tip.
A dúsított mintát is legalább két lyukban analizáljuk.
Fig.3.
A várható koncentráció meghatározásához a vitellogeninnek a kontrollhím vérplazmájából vett két nem dúsított mintában mért átlagos mennyiségét hozzá kell adni a dúsított mintákhoz adott vitellogenin számított mennyiségéhez.
Photograph of fish body showing the cut site when the gonad is fixed in the fixing solution other than 10 % neutral buffered formalin.
E várható koncentrációnak a mért koncentrációhoz viszonyított arányát az adott napon elvégzett valamennyi vizsgálat eredményeivel együtt jegyzőkönyvezni kell.
In that case, the remaining body will be cut off between anterior region of anal fin and anal using razor (red bar), and the head side of fish body will be put into the fixing solution for gonad and the tail side of the fish body will be put into the 10 % neutral buffered formalin.
Döntési folyamatábra a statisztikai elemzési módszer kiválasztásához
Papillary processes normally appear only in adult males and are found on fin rays from the second to the seventh or eighth counting from the posterior end of the anal fin (Fig.1 and 2).
A beágyazott ANOVA normális
However, processes rarely appear on the first fin ray from the posterior end of the anal fin.
<= 3 ismétlés / koncentráció
This SOP covers the measurement of processes on the first fin ray (the fin ray number refers to the order from the posterior end of the anal fin in this SOP).
Az ismétlések átlagai normalitást és homogenitást mutatnak
Recommended procedures for sample collection for vitellogenin analysis
Az ismétlések átlagai nem normál eloszlásúak
Care should be taken to avoid cross-contamination between VTG samples of males and females.
Dunn-féle vagy Mann-Whitney féle próba az ismétlések átlagain
Procedure 1A:
Dunn-féle próba
Fathead Minnow, Blood Collection from the Caudal Vein/Artery
Normalizáló transzformáció?
After anaesthetisation, the caudal peduncle is partially severed with a scalpel blade and blood is collected from the caudal vein/artery with a heparinised microhematocrit capillary tube.
Normalizáló transzformáció?
After the blood has been collected, the plasma is quickly isolated by centrifugation for 3 min at 15000 g (or alternatively for 10 min. at 15000 g at 4 °C).
Tamhane-Dunnett-féle próba
If desired, percent hematocrit can be determined following centrifugation.
>= 4 ismétlés / koncentráció
The plasma portion is then removed from the microhematocrit tube and stored in a centrifuge tube with 0,13 units of aprotinin (a protease inhibitor) at – 80 °C until determination of vitellogenin can be made.
<= 3 ismétlés / koncentráció
Depending on the size of the fathead minnow (which is sex-dependent), collectable plasma volumes generally range from 5 to 60 microlitres per fish (Jensen et al.
Dunn-féle vagy Mann-Whitney-féle próba az ismétlések átlagain
2001).
Tamhane-Dunnett-féle próba
Procedure 1B:
Kombináljuk a kontrollokat, megtartva az alcsoportokat
Fathead Minnow, Blood Collection from Heart
Nem monoton
Alternatively, blood may also be collected by cardiac puncture using a heparinized syringe (1000 units of heparin per ml).
Dunn-féle vagy Mann-Whitney-féle próba
The blood is transferred into Eppendorf tubes (held on ice) and then centrifuged (5 min, 7000 g, room temperature).
Tamhane-Dunnett féle próba a beágyazott ANOVA-n
The plasma should be transferred into clean Eppendorf tubes (in aliquots if the volume of plasma makes this feasible) and promptly frozen at – 80 °C, until analyzed (Panter et al., 1998).
A beágyazott ANOVA normális
Procedure 2A:
Az ismétlések átlagain végzett lefelé lépegető trendpróba
Japanese Medaka, Excision of the Liver in Medaka
Dunn-féle próba az ismétlések átlagain
Removal of the test fish from the test chamber
KÉTÉLTŰ-ÁTALAKULÁSI VIZSGÁLAT
Test fish should be removed from the test chamber using the small spoon-net.
Ez a vizsgálati módszer egyenértékű az OECD 231. vizsgálati iránymutatásában (2009) leírt módszerrel.
Be careful not to drop the test fish into other test chambers.
A gerinces fajok pajzsmirigyrendszerében aktív vegyi anyagok kimutatására alkalmas vizsgálat kifejlesztése és validálása iránti igény azokból az aggodalmakból ered, hogy egyes vegyi anyagok a környezetben előforduló mennyiségben káros hatással lehetnek az emberekre és az élővilágra egyaránt.
In principle, the test fish should be removed in the following order:
1998-ban az OECD a meglévő vizsgálati iránymutatások felülvizsgálatára, valamint az endokrin rendszert esetlegesen károsító anyagok kiszűrését és vizsgálatát célzó új vizsgálati iránymutatások kidolgozására irányuló, kiemelt fontosságú tevékenységet indított.
control, solvent control (where appropriate), lowest concentration, middle concentration, highest concentration and positive control.
E tevékenység egyik eleme a gerinces fajok pajzsmirigyrendszerére ható vegyi anyagok kiszűrésére vonatkozó vizsgálati iránymutatás kidolgozása volt.
In addition, all males should be removed from one test chamber before the remaining females are removed.
A rágcsálókon végzett ismételt adagolású, 28 napos orális toxicitási vizsgálat (e melléklet B.7. fejezete) továbbfejlesztését, és a kétéltű-átalakulási vizsgálat (AMA) bevezetését egyaránt javasolták.
The sex of each test fish is identified on the basis of external secondary sex characteristics (e.g. the shape of the anal fin).
A továbbfejlesztett B.7. vizsgálati módszert validálási eljárásnak vetették alá, és kiadták a felülvizsgált vizsgálati módszert.
Place the test fish in a container for transport and carry it to the workstation for excision of the liver.
A kétéltű-átalakulási vizsgálat (AMA) laboratóriumon belüli és laboratóriumok közötti vizsgálatokból álló alapos ellenőrzési programon esett át, amely igazolta a vizsgálat relevanciáját és megbízhatóságát (1, 2).
Check the labels of the test chamber and the transport container for accuracy and to confirm that the number of fish that have been removed from the test chamber and that the number of fish remaining in the test chamber are consistent with expectation.
Ezt követően a vizsgálat validálását egy független szakértőkből álló testület szakértői értékelésének vetették alá (3).
If the sex cannot be identified by the fish's external appearance, remove all fish from the test chamber.
Ez a vizsgálati módszer a pajzsmirigyre ható vegyi anyagok kimutatására szolgáló validálási vizsgálatok során szerzett tapasztalatok, illetve az OECD más tagországaiban végzett munka eredménye.
In this case, the sex should be identified by observing the gonad or secondary sex characteristics under a stereoscopic microscope.
A kétéltű-átalakulási vizsgálat (Amphibian Metamorphosis Assay, AMA) egy szűrővizsgálat, amelynek célja, hogy empirikusan azonosítsa azokat a vegyi anyagokat, amelyek megzavarhatják a hipotalamusz-hipofízis-pajzsmirigy (HHP) tengely normális működését.
Excision of the liver
Az AMA egy általánosított gerinces modell abban a tekintetben, hogy a HHP-tengely konzervált struktúráin és funkcióin alapul.