natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For the emergence ratio and sex ratio the Cochran-Armitage, Fisher's exact (with Bonferroni correction), or Mantel-Haentzal tests may be appropriate.
az elpárolgott vizsgálati víz pótlása a vizsgálati edényekben, ha történik ilyen;
A limit test may be performed (one test concentration and control(s)) if no effects are observed in the optional preliminary range-finding test up to a maximum concentration.
a kikelt hím és nőstény szúnyogok száma edényenként és naponta az 1. és a 2. generációban;
The purpose of the limit test is to indicate that any toxic effects of the test chemical are found at levels greater than the limit concentration tested.
a kifejlett és élő szúnyogok ivararánya kezelésenként az 1. és a 2. generációban;
For water, 100 mg/l and for sediment 1000 mg/kg (dry weight) are suggested.
a ki nem kelt lárvák száma edényenként az 1. és a 2. generációban;
Usually, at least eight replicates for both the treatment and control are necessary.
kikelési százalék/arány ismétlésenként és vizsgálati koncentrációnként (hím és nőstény szúnyogok összevonva) az 1. és a 2. generációban;
Adequate statistical power to detect a 20 % difference from the control at the 5 % level of significance (α = 0,05) should be demonstrated.
a kifejlett és élő szúnyogok átlagos fejlődési üteme ismétlésenként és kezelési arányonként (hím és nőstény szúnyogok külön-külön, illetve összevonva) az 1. és a 2. generációban;
With metric responses (e.g. development rate), the t-test is a suitable statistical method if data meet the requirements of this test (normality, homogeneous variances).
a kristályosító csészékben lerakott peteszalagok száma tenyésztőketrecenként és naponta;
An unequal-variance t-test or a non-parametric test, such as the Wilcoxon-Mann-Whitney test may be used, if these requirements are not fulfilled.
a petecsomók jellemzői (méret, forma és termékenység);
With the emergence ratio, Fisher's exact test is appropriate.
fekunditás – a petecsomók száma osztva a tenyésztőketrecben elhelyezett nőstények számával;
Preparation of the water-sediment system (water spiking)
termékenység – a termékeny petecsomók száma osztva a tenyésztőketrecben elhelyezett nőstények számával;
a.
a toxicitási végpontok – például az ECx (és a hozzá tartozó konfidenciaintervallum), valamint a NOEC – becsült értékei, valamint a meghatározásukhoz használt statisztikai módszerek;
Formulated sediment (see paragraphs 13-14 and Appendix 3) is added to each test vessel and crystallising dish to form a layer of at least 1,5 cm (for the crystallising dish it may be somewhat lower) but maximally 3 cm.
E melléklet C.28. fejezete: Árvaszúnyogok életciklusára ható toxicitás vizsgálata üledék-víz rendszerben, szennyezett víz használatával.
Water (see paragraph 15) is added so that the ratio of the depth of the sediment layer and the depth of the water does not exceed 1:4.
E melléklet C.27. fejezete: Árvaszúnyogok életciklusára ható toxicitás vizsgálata üledék-víz rendszerben, szennyezett üledék használatával.
After preparation of the test vessels the sediment-water system should be left under gentle aeration for approximately seven days prior to addition of the first instar larvae of the 1st or 2nd generation (see paragraph 14 and Appendix 3).
J. Amer.
The sediment-water system of the crystallising dishes is not aerated during the test, since they do not need to support larval survival (before hatching the egg ropes are already collected).
OECD (2006), Current Approaches in the Statistical Analysis of Ecotoxicity Data: a Guidance to Application, OECD Series on Testing and Assessment No.
To avoid separation of sediment ingredients and re-suspension of fine material during addition of test water in the water column, the sediment can be covered with a plastic disc while water is poured onto it.
54, 146 pp., ENV/JM/MONO(2006)18, OECD, Paris.
The disc is removed immediately afterwards.
Formulázott üledék, más néven kevert, mesterséges vagy műüledék a természetes üledék fizikai összetevőinek imitálására használt anyagkeverék.
Other devices may also be appropriate.
Fedővíz a vizsgálati edényben az üledék fölé kerülő víz.
Preparation of the water-sediment system (spiked sediment)
Szemcseközi víz vagy pórusvíz az üledék és a talaj szemcséi közötti helyet kitöltő víz.
b.
Szennyezett víz a vizsgált vegyi anyaggal szennyezett víz.
The spiked sediments prepared according to paragraph 16b are placed in the vessels and crystallising dish and overlying water is added to produce a sediment-water volume ratio of 1:4.
Ajánlások a Chironomus riparius tenyésztéséhez
The depth of the sediment layer should be in the range of 1,5 to 3 cm (it may be somewhat lower for the crystallising dish).
Az árvaszúnyoglárvákat kristályosító csészékben vagy nagyobb edényekben lehet tenyészteni.
To avoid separation of sediment ingredients and re-suspension of fine material during addition of test water in the water column, the sediment can be covered with a plastic disc while water is poured onto it, and the disc removed immediately afterwards.
Az edény aljára vékony rétegben (kb. 5–10 mm) kvarchomokot szórunk.
Appropriate equilibration time is sediment and chemical specific, and can be in the order of hours to days and in rare cases up to five weeks.
Ezt követően néhány centiméternyi, célnak megfelelő vizet töltünk az edénybe.
As this would leave time for degradation of many chemicals, equilibrium is not awaited but an equilibration period of 48 hours is recommended.
A vízszint fenntartása és a kiszáradás megelőzése érdekében az elpárolgott vizet szükség szerint pótolni kell.
However, when the degradation half-life of the chemical in sediment is known to be long (see paragraph 8), the equilibration time may be extended.
A vizet ki is lehet cserélni, ha szükséges.
At the end of this further equilibration period, the concentration of the test chemical should be measured in the overlying water, the pore water and the sediment, at least at the highest concentration and a lower one (see paragraph 38).
Gyenge levegőztetést kell biztosítani.
These analytical determinations of the test chemical allow for calculation of a mass balance and expression of results based on measured concentrations.
A lárvatenyésztő edényeket megfelelő ketrecben kell tartani, amelyből a kikelő kifejlett példányok nem tudnak kiszökni.
Test vessels should be covered (e.g. by glass plates).
A ketrecben elegendő helynek kell lennie a kifejlett példányok rajzásához, különben nem fognak párosodni (minimum kb. 30 × 30 × 30 cm).
If necessary, during the study the water levels may be topped up to the original volume in order to compensate for evaporation.
A ketreceket szobahőmérsékleten vagy 20 ± 2 °C állandó hőmérsékletű helyiségben kell tartani, 16 órán keresztül világosban (fényerő kb. 1000 lux) és 8 órán keresztül sötétben.
This should be performed using distilled or deionised water to prevent any build-up of salts.
A 60 % RH alatti légnedvesség dokumentáltan gátolhatja a szaporodást.
Crystallising dishes in the breeding cages are not covered and may, but do not need to be adjusted to compensate for water loss during the test period, since the egg ropes are only in contact with the water for about one day and the dishes are only used during a short phase of the test.
Bármilyen alkalmas természetes vagy mesterséges víz használható.
Addition of test organisms
Általában kútvizet, klórtalanított csapvizet vagy mesterséges közeget (például Elendt-féle »M4« vagy »M7« közeget, lásd lentebb) használunk.
Four to five days before adding the first instar larvae for the 1st generation, egg masses should be taken from the culture and placed in small vessels in culture medium.
Használat előtt a vizet levegőztetni kell.
Aged medium from the stock culture or freshly prepared medium may be used.
A tenyésztéshez használt vizet szükség esetén ki lehet cserélni.
In any case, a small amount of food, e.g. a few droplets of filtrate from a finely ground suspension of flaked fish food, should be added to the culture medium (see Appendix 2).
Ehhez a használt vizet leöntjük vagy kiszívjuk a tenyésztőedényekből ügyelve arra, hogy a lárvák által épített lakócsöveket ne pusztítsuk el.
Only freshly laid egg masses should be used.
A lárvák táplálása
Normally, the larvae begin to hatch a couple of days after the eggs are laid (2 to 3 days for C. riparius at 20 °C and 1 to 4 days for C. dilutus at 23 °C and C. yoshimatsui at 25 °C) and larval growth occurs in four instars, each of 4-8 days duration.
Az árvaszúnyog-lárvákat pelyhesített haleledellel (Tetra Min®, Tetra Phyll® vagy más márkájú hasonló haleledel) kell etetni, edényenként naponta körülbelül 250 mg mennyiségben.
First instar larvae (maximum 48 h post hatching) should be used in the test.
A haleledelt száraz, őrölt por vagy vizes szuszpenzió formájában lehet adagolni:
The instar stage of larvae can potentially be checked using head capsule width (7).
1,0 g pelyhesített eledelt adunk 20 ml hígítóvízhez, és összekeverjük, hogy homogén keveréket kapjunk.
Twenty first instar larvae for the 1st generation are allocated randomly to each test vessel containing the sediment-water system, using a blunt pipette.
Ezt a készítményt körülbelül 5 ml/edény/nap arányban lehet az állatoknak adni.
Aeration of the water is stopped whilst adding larvae to test vessels and should remain so for 24 hours following addition of larvae (see paragraph 32).
(Használat előtt felrázandó.)
According to the test design used (see paragraphs 19 and 20), the number of larvae used per concentration is at least 120 (6 replicates per concentration) for the ECX approach and 160 for the NOEC approach (8 replicates per concentration).
Az idősebb lárvák többet is kaphatnak.
In the spiked sediment design, exposure starts with the addition of the larvae.
A táplálék mennyiségét a vízminőséghez kell igazítani.
Spiking the overlying water
Ha a tenyésztőközeg zavarossá válik, akkor csökkenteni kell a mennyiséget.
Twenty-four hours after adding the first instar larvae for the 1st generation, the test chemical is spiked into the overlying water column, and slight aeration is again supplied (for possible amendments of the test design, see paragraph 7).
Az táplálékadagot szigorú ellenőrzés alatt kell tartani.
Small volumes of the test chemical stock solutions are applied below the surface of the water using a pipette.
Ha túl kevés a táplálék, akkor a lárvák a vízrétegbe vándorolnak, ha túl sok, akkor fokozódik a mikrobatevékenység és csökken az oxigénkoncentráció.
The overlying water should then be mixed with care not to disturb the sediment.
Mindkét körülmény a fejlődési ütem lassulását okozhatja.
In the spiked water design, exposure starts with the spiking of the water (i.e. one day after addition of the larvae).
Az újonnan létesített tenyésztőedényekhez zöldalga- (például Scenedesmus subspicatus, Chlorella vulgaris) sejtek is adhatók.
Collecting emerged adults
A kifejlett példányok táplálása
Emerged midges of the 1st generation are collected at least once, but preferably twice a day (see point 36) from the test vessels using an aspirator, exhauster or similar device (see Appendix 5).
Egyes kísérletek alapján a kifejlett példányok számára telített cukoroldatba mártott vattakorong adható táplálékként.
Special care should be taken not to damage the adults.
20 ± 2 °C hőmérsékleten a kifejlett példányok körülbelül 13–15 nap elteltével kezdenek megjelenni a lárvatenyésztő edényekben.
The collected midges from four test vessels within one treatment are released into a breeding cage to which they had been previously assigned.
A hímek tollas csápjuk és vékony testalkatuk alapján könnyen megkülönböztethetők.
At the day of first (male) emergence, crystallising dishes are spiked by pipetting a small volume of the test chemical stock solution below the water surface (spiked water design).
Petecsomók
The concentration of test chemical in the crystallising dish is nominally the same as in the treatment vessels which are assigned to that specific breeding cage.
Miután a felnőtt egyedek a tenyésztőketrecbe kerültek, a lárvatenyésztő edényekben hetente háromszor ellenőrizni kell, hogy raktak-e le kocsonyás petecsomókat.
For the spiked sediment design, the crystallising dishes are prepared at around day 11 after the start of the exposure (i.e. addition of the 1st generation larvae) so that they can equilibrate for about 48 hours before the first egg ropes are produced.
Ha vannak ilyen petecsomók, óvatosan el kell távolítani azokat.
Egg ropes are collected from the crystallising dish in the breeding cage using tweezers or a blunt pipette.
A petecsomókat át kell helyezni a tenyésztővízből vett mintát tartalmazó kis csészébe.
Each egg rope is placed into a vessel containing culture medium from the crystallising dish it was collected from (e.g. a well of a 12-well micro-plate together with at least 2,5 ml of medium).
A petecsomókat új tenyészetek létrehozására (például 2–4 petecsomó/edény) vagy toxicitási vizsgálatok céljára használjuk fel.
The vessels with the egg ropes are covered with a lid to prevent significant evaporation.
Az első fejlődési stádiumban lévő lárváknak 2–3 napon belül kell kikelniük.
Egg ropes are kept for observation for at least six days after they have been produced so that they can be classified as fertile or infertile.
Új tenyészetek létesítése
For starting the 2nd generation, at least three but preferably six fertile egg ropes are selected from each breeding cage and together with some food allowed to hatch.
A stabil tenyészetekből hetente vagy – a vizsgálati követelményektől függően – ritkábban friss lárvatenyészetek hozhatók létre, miközben a régebbi edényeket a kifejlett árvaszúnyogok megjelenését követően eltávolítjuk.
These egg ropes should have been produced at the peak of oviposition, which normally occurs around test day 19 in the controls.
Ezzel a rendszerrel minimális kezelést igénylő módon biztosítható a kifejlett példányok rendszeres utánpótlása.
Ideally, the 2nd generation of all treatments is initiated on the same day, but due to chemical related effects on larval development, this may not always be possible.
Az »M4« és »M7« vizsgálati oldat elkészítése
In such a case, the higher concentrations may be initiated later than the lower treatments and the (solvent) control.
Az »M4« közeg leírása Elendt (1990) munkájában található.
a.
Az »M7« közeget az »M4« közeggel megegyező módon állítjuk elő, azzal a különbséggel, hogy az 1. táblázatban megjelölt anyagok koncentrációja az »M7« közegben négyszer alacsonyabb, mint az »M4« közegben.
In the spiked water design, the sediment-water system for the 2nd generation is prepared by spiking the test chemical into the overlying water column ca.
A vizsgálati oldatot nem szabad Elendt és Bias (1990) szerint előállítani, mivel a NaSiO3 · 5H2O, a NaNO3, KH2PO4 és a K2HPO4 törzsoldat készítéséhez megadott koncentrációi nem megfelelőek.
1 hour before adding the first instar larvae to the test vessels.
Az »M7« közeg elkészítése
Small volumes of the test chemical solutions are applied below the surface of the water using a pipette.
A törzsoldatok (I) mindegyikét külön készítjük el, majd a törzsoldatokból (I) egy kombinált törzsoldatot (II) állítunk össze (lásd az 1. táblázatot).
After spiking, slight aeration is supplied.
Az »M7« közeg előállításához a kombinált törzsoldat (II) 50 ml-ét és az egyes makrotápanyagok törzsoldatainak a 2. táblázatban megadott mennyiségeit ioncserélt vízzel 1 literre hígítjuk.
b.
Vitamintörzsoldatot is készítünk, amelyhez három vitamint ioncserélt vízhez adunk a 3. táblázatban meghatározottak szerint, majd röviddel a felhasználás előtt a kombinált vitamintörzsoldatból 0,1 ml-t az »M7« közeghez adunk.
In the spiked sediment design, the exposure vessels containing the sediment-water system for the 2nd generation are prepared in the same way as for the 1st generation.
A vitamintörzsoldatot kis aliquot részekben, fagyasztott állapotban kell tárolni.
Twenty first instar larvae (maximum 48 h post hatching) of the 2nd generation are allocated randomly to each test vessel containing the spiked sediment-water system, using a blunt pipette.
A közeget levegőztetni és stabilizálni kell.
Aeration of the water should be stopped while adding the first instar larvae to the test vessels and remain so for another 24 hours after addition of the larvae.
1. táblázat
According to the test design used (see paragraphs 19 and 20), the number of larvae used per concentration is at least 120 (6 replicates per concentration) for the ECX approach and 160 for the NOEC approach (8 replicates per concentration).
Nyomelem-törzsoldatok az M4 és M7 közeghez
It is necessary to feed the larvae in the test vessels, preferably daily or at least three times per week.
Ioncserélt vízzel 1 literre hígított mennyiség (mg)
Fish-food (a suspension in water or finely ground food, e.g. Tetra-Min or Tetra-Phyll; see details in Appendix 2) of 0,25 - 0,5 mg (0,35 - 0,5 mg for C. yoshimatsui) per larvae per day is an adequate amount of food for young larvae during the first 10 days of their development.
A kombinált törzsoldat (II) elkészítése:
Slightly more food may be necessary for older larvae:
keverjük össze a törzsoldatok (I) alábbi mennyiségét (ml), és hígítsuk fel 1 literre ioncserélt vízzel
0,5 - 1,0 mg per larvae per day should be sufficient for the rest of the test.
Végső koncentráció a vizsgálati oldatokban (mg/l)
The food ration should be reduced in all treatments and control if fungal growth is seen or if mortality is observed in controls.
MnCl2 × 4H2O [1]
If fungal development cannot be stopped the test should be repeated.
SrCl2 × 6H2O [1]
The toxicological relevance of exposure via ingestion is generally higher in chemicals with a high affinity for organic carbon or chemicals covalently binding to the sediment.
MoO4 × 2H2O [1]
Hence, when testing chemicals with such properties, the amount of food necessary to ensure survival and natural growth of the larvae may be added to the formulated sediment before the stabilisation period, depending on the regulatory demand.
CuCl2 × 2H2O [1]
To prevent deterioration of the water quality, plant material should be used instead of fish food, e.g. addition of 0,5 % (dry weight) finely ground leaves of stinging nettle (Urtica dioica), mulberry (Morus alba), white clover (Trifolium repens), spinach (Spinacia oleracea) or other plant material (Cerophyl or α-cellulose).
CaCl2 × 6H2O
Addition of the complete ration of an organic food source to the sediment before spiking is not trivial with respect to water quality and biological performance (21), nor a standardised method, but recent studies provide indications that this method works (19) (26).
EDTA × 2H2O [1] [2]
Adult midges in the breeding cage need no feeding normally, but fecundity and fertility are enhanced when a cotton wool pad soaked in a saturated sucrose solution is offered as a food source for emerged adults (34).
FeSO4 × 7H2O [1] [2]
Gentle aeration of the overlying water in the test vessels is supplied 24 hours after addition of the first instar larvae of both generations and is continued throughout the test (care should be taken that the dissolved oxygen concentration does not fall below 60 % of ASV).
Makrotápanyag-törzsoldatok az M4 és M7 közeghez
Aeration is provided through a glass Pasteur pipette of which the outlet is fixed 2-3 cm above the sediment layer giving a few bubbles/sec.
Ioncserélt vízzel 1 literre hígított mennyiség
When testing volatile chemicals, consideration should be given not to aerate the sediment-water system, while at the same time the validity criterion of minimal 60 % ASV (paragraph 10) should be fulfilled.
Makrotápanyag-törzsoldatok M4 és M7 közeg előállításához használt mennyisége
Further guidance is provided in (16).
Végső koncentráció a vizsgálathoz használt M4 és M7 oldatban
The test with C. riparius is conducted at a constant temperature of 20 °C (± 2 °C).
Vitamintörzsoldatok az M4 és M7 közeghez
For C. dilutus and C. yoshimatsui, recommended temperatures are 23 °C and 25 °C (± 2 °C), respectively.
A három vitaminoldatból egyetlen kombinált vitamintörzsoldatot készítünk.
A 16 hours photoperiod is used and the light intensity should be 500 to 1000 lux.
Vitamintörzsoldat M4 és M7 közeg előállításához használt mennyisége
For the breeding cages an additional one hour dawn and dusk phase may be included.
Tiamin-hidroklorid
Exposure duration
Cianokobalamin (B12)
Spiked water design:
Biotin
The exposure period of the 1st generation starts when the test chemical is spiked into the overlying water of the test vessels (which is one day after insertion of the larvae — for possible amendments of the exposure design, see paragraph 7).
Ezeknek az anyagoknak az esetében az M4 és az M7 a fent jelzett módon eltér.
Exposure of the 2nd larval generation starts immediately, since they are inserted into a sediment-water system that has been already spiked.
Ezeket az oldatokat külön kell elkészíteni, majd összeönteni és azonnal autoklávban kezelni.
The maximum exposure duration for the 1st generation is 27 days and for the 2nd generation 28 days (the 1st generation larvae spend one day in the vessels without exposure) for C. riparius and C. yoshimatsui.
Formulázott üledék elkészítése
Considering the overlap, the complete test duration is approximately 44 days.
AZ ÜLEDÉK ÖSSZETÉTELE
For C. dilutus, maximum exposure durations are 64 and 65 days, for the 1st and 2nd generation, respectively.
A formulázott üledék összetétele a következő:
The total duration is approximately 100 days.
Tőzegmoha, amelynek pH-ja a lehető legközelebb esik az 5,5–6,0 értékhez, és nem tartalmaz látható növénymaradványokat, finomra őrölve (részecskeméret ≤ 1 mm) és levegőn szárítva
exposure starts with the addition of the larvae and is maximum 28 days for both generations for C. riparius and C. yoshimatsui and maximum 65 days for both generations for C. dilutus.
a részecskék több mint 50 %-a az 50–200 μm-es tartományba esik
Emergence
CaCO3, porított, vegytiszta
Males are easily identified by their plumose antennae and thin body posture.
Vezetőképesség ≤ 10 μS/cm
Test vessels of both generations should be observed at least three times per week to make visual assessment of any abnormal behaviour of the larvae (e.g. leaving sediment, unusual swimming), compared to the control.
ELKÉSZÍTÉS
During the period of emergence, which starts about 12 days after insertion of the larvae for C. riparius and C. yoshimatsui (after 20 days for C. dilutus), emerged midges are counted and sexed at least once, but preferably twice a day (early morning and late afternoon).
A pH és a mikrobiológiai összetétel stabilizálása céljából a szuszpenziót 20 ± 2 °C hőmérsékleten lassú keveréssel legalább két napig kondicionáljuk.
After identification, the midges of the 1st generation are carefully removed from the vessels and transferred to a breeding cage.
Az ezt követően ismét megmért pH-nak 6,0 ± 0,5 értéket kell mutatnia.
Midges of the 2nd generation are removed and killed after identification.
A végtermékként kapott keverék pH-ját ismételten megmérjük, és szükség esetén CaCO3 hozzáadásával 6,5–7,5 értékre állítjuk be.
Any egg ropes deposited in the test vessels of the 1st generation should be collected individually and transferred with at least 2,5 ml native water to 12-well microplates (or other suitable vessels) which are covered with a lid to prevent significant evaporation.
Ezt követően – az árvaszúnyogokkal végzett toxicitási vizsgálatban való felhasználása előtt – ajánlott a mesterséges üledéket a vizsgálatban használni kívántakkal megegyező körülmények között hét napig kondicionálni.
The number of dead larvae and visible pupae that have failed to emerge should also be recorded.
TÁROLÁS
Examples of a breeding cage, test vessel and exhauster are provided in Appendix 5.
A mesterséges üledék előállításához használt száraz összetevők száraz, hűvös helyen, szobahőmérsékleten tárolhatók.
Reproduction
Az összeállított (nedves) üledék a vizsgálatban való felhasználás előtt nem tárolható.
Effects on reproduction are assessed via the number of egg ropes produced by the 1st generation of midges and the fertility of these egg ropes.
A formulázott üledéket az előállításának záró lépését képező 7 napos kondicionálási időszakot követően azonnal fel kell használni.