natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For determination of the NOEC/LOEC, at least five concentrations in a geometric series should be tested.
A vizsgált vegyi anyag kémiai sorsára (pl. szétterjedés, abiotikus és biotikus lebomlás, stb.) vonatkozó információk is hasznosak.
Four replicates for each test concentration treatment plus eight controls are recommended.
A vizsgálat elvégzését megnehezítő fizikai és kémiai tulajdonságokkal rendelkező vegyi anyagok vizsgálatára vonatkozóan a szakirodalom (16) nyújt további tájékoztatást.
A combined approach allows for determination of both the NOEC/LOEC and ECx.
Rendszeres időközönként referencia-vegyianyagokat is lehet vizsgálni annak ellenőrzésére, hogy a laboratóriumi populáció érzékenysége nem változott.
For this combined approach, eight treatment concentrations in a geometric series should be used.
A vízibolhákhoz hasonlóan elegendő lehet egy 48 órás akut vizsgálatot végezni (a 17. pontban hivatkozott szakirodalom szerint).
If no effects are observed at the highest concentration in the range-finding test (i.e. 1000 mg/kg), the reproduction test can be performed as a limit test, using a test concentration of 1000 mg/kg and the control.
Addig azonban, amíg nem áll rendelkezésre validált akut vizsgálati iránymutatás, az e melléklet C.28 fejezete szerinti krónikus vizsgálatot lehet megfontolni.
A limit test will provide the opportunity to demonstrate that there is no statistically significant effect at the limit concentration.
A vizsgálat érvényességéhez az alábbi feltételeknek kell teljesülniük:
The reproductive output is the main endpoint (e.g. the number of juveniles produced per test vessel).
a kontrollkezelésben az átlagos kikelési aránynak az expozíciós idő végén legalább 70 %-nak kell lennie mindkét generációban (1) (7);
The statistical analysis, e.g. ANOVA procedures, compares treatments by Student t-test, Dunnett's test, or Williams' test.
a C. riparius és a C. yoshimatsui esetében a kontrollkezelésben kikelt összes felnőtt szúnyog 85 %-ának mindkét generációban 12–23 nappal az első fejlődési stádiumban lévő lárvák edényekbe helyezése után kell megjelennie;
95 % confidence intervals are calculated for individual treatment means.
a C. dilutus esetében a 20–65 napos időtartam fogadható el;
The number of surviving adults in the untreated controls is a major validity criterion and should be documented.
Az oxigénkoncentrációnak minden vizsgálati edényben el kell érnie a levegőtelítettségi érték (ASV [9]) 60 %-át, a fedővíz pH-jának pedig 6 és 9 között kell lennie;
As in the range-finding test, all other harmful signs should be reported in the final report as well.
a víz hőmérséklete legfeljebb ± 1,0 °C-kal változhat.
LCx and ECx
Vizsgálati edények és tenyésztőketrecek
ECx-values, including their associated lower and upper 95 % confidence limits for the parameter, are calculated using appropriate statistical methods (e.g. logistic or Weibull function, trimmed Spearman-Karber method, or simple interpolation).
A lárvák expozíciójához 600 ml űrtartalmú és kb. 8,5 cm átmérőjű üveg főzőpoharakat használunk (lásd az 5. függeléket).
To compute the EC50 or any other ECx, the complete data set should be subjected to regression analysis.
Amennyiben biztosított az üledék és a fedővíz megfelelő mélysége, ettől eltérő edények is alkalmazhatók.
is usually estimated by probit analysis or similar analysis that takes into account the binomially distributed mortality data.
Lárvánként 2–3 cm2 nagyságú üledékfelületet kell biztosítani.
Appropriate statistical methods should be used according to OECD Document 54 on the Current Approaches in the Statistical Analysis of Ecotoxicity Data: a Guidance to Application (9).
Az üledékréteg és a fedővíz mélységének aránya kb. 1:4 legyen.
In general, adverse effects of the test chemical compared to the control are investigated using one-tailed hypothesis testing at p ≤ 0,05.
A tetején és minimum az egyik oldalán gézzel (lyukbőség: körülbelül 1 mm) lefedett tenyésztőketreceket (mindhárom irányban legalább 30 cm) kell használni (lásd az 5. függeléket).
Normal distribution and variance homogeneity can be tested using an appropriate statistical test, e.g. the Shapiro-Wilk test and Levene test, respectively (p ≤ 0,05).
A peterakás céljára minden ketrecbe vizsgálati vizet és üledéket tartalmazó, 2 l űrtartalmú kristályosító csészét helyezünk.
One-way Analysis of Variance (ANOVA) and subsequent multi-comparison tests can be performed.
Az üledékréteg és a fedővíz mélységének aránya a kristályosító csésze esetében is kb. 1:4 legyen.
Multiple comparisons (e.g. Dunnett's test) or step-down trend tests (e.g. Williams' test) can be used to calculate whether there are significant differences (p ≤ 0,05) between the controls and the various test chemical concentrations (selection of the recommended test according to OECD Document 54 (9)).
A petecsomók a kristályosító csészéből történő begyűjtés után egy 12-lyukú mikrotiterlemezre kerülnek (lyukanként egy szalag; minden lyuk legalább 2,5 ml vizet tartalmaz a szennyezett kristályosító edényből), majd a lemezeket egy fedővel lefedjük, hogy megakadályozzuk a jelentős mértékű párolgást.
Otherwise, non-parametric methods (e.g. Bonferroni-U-test according to Holm or Jonckheere-Terpstra trend test) could be used to determine the NOEC and the LOEC.
A petecsomók tartására egyéb alkalmas edények is használhatók.
the identity of the test chemical, batch, lot and CAS-number, purity;
A mikrotiterlemezeken kívül minden vizsgálati tartálynak és a vizsgált rendszerrel érintkezésbe kerülő egyéb berendezésnek teljes mértékben üvegből vagy más, kémiailag semleges anyagból kell készülniük (pl. politetrafluor-etilénből).
physico-chemical properties of the test chemical (e.g. log Kow, water solubility, vapour pressure, Henry's constant (H) and preferably information on the fate of the test chemical in soil) if available;
A vizsgálatot lehetőleg a Chironomus riparius fajjal kell végezni.
the formulation of the test chemical and the additives should be specified if not the pure chemical is tested;
A C. yoshimatsui faj is használható.
identification of species and supplier of the test organisms, description of the breeding conditions and age range of test organisms;
A C. dilutus is megfelelő, de nehezebben kezelhető, és hosszabb vizsgálati időszakot igényel.
detailed specification if natural soil is used (origin, history, particle size distribution, pH, organic matter content);
A C. riparius tenyésztésének módját a 2. függelék ismerteti részletesen.
water holding capacity of the soil;
Lehetőleg formulázott üledéket (más néven kevert, mesterséges vagy szintetikus üledéket) kell használni.
description of the technique used to apply the test chemical to the soil;
Ha azonban mégis természetes üledéket használunk, akkor azt jellemezni kell (legalább a pH-t és a szerves széntartalmat meg kell határozni, de más paraméterek, például a C/N arány és a szemcseméret-eloszlás vizsgálata is ajánlott), és mentesnek kell lennie mindenféle szennyeződéstől, valamint az árvaszúnyog-lárvákkal versengő vagy az azt fogyasztó egyéb organizmusoktól.
pH and water content of the soil at the start and end of the test (control and each treatment);
Az üledéket a vizsgálat előtt ajánlott hét napig vizsgálati körülmények között kondicionálni.
detailed description of the extraction method and extraction efficiency;
A következő – az (1) szakirodalmi hivatkozásban leírt – formulázott üledék használata ajánlott (1) (20) (21):
number of adults and their mortality (%) in each test vessel at the end of the test;
a.
a description of obvious physiological or pathological symptoms or distinct changes in behaviour;
4–5 % (száraz tömeg) tőzeg:
the NOEC/LOEC values, LCx for mortality and ECx for reproduction (mostly LC50, LC10, EC50, and EC10) together with 95 % confidence intervals.
a lehető legközelebb a pH = 5,5–6,0 értékhez;
A graph of the fitted model used for calculation, its function equation and its parameters (See (9));
a tőzeget finomra őrölt por formájában kell használni (részecskeméret ≤ 1 mm), és csak levegőn szárított tőzeg használható;
all information and observations helpful for the interpretation of the results;
b.
power of the actual test if hypothesis testing is done (9);
20 % (száraz tömeg) kaolinagyag (lehetőleg 30 % feletti kaolinittartalommal);
deviations from procedures described in this Test Method and any unusual occurrences during the test;
c.
validity of the test;
75–76 % (száraz tömeg) kvarchomok (túlnyomórészt finom homok, amely részecskéinek több mint 50 %-a 50 és 200 μm közötti szemcsemérettel rendelkezik);
for NOEC, when estimated, the minimal detectable difference.
d.
Wiles JA and Krogh PH (1998) Testing with the collembolans I. viridis, F. candida and F. fimetaria.
Annyi ioncserélt víz, amennyi ahhoz szükséges, hogy végtermékként 30–50 % nedvességtartalmú keveréket kapjunk;
In Handbook of soil invertebrate toxicity tests (ed.
e.
H Løkke and CAM Van Gestel), pp. 131-156.
A végtermékként kapott üledékkeverék pH-jának 7,0 ± 0,5 értékre történő beállításához szükséges mennyiségű vegytiszta minőségű kalcium-karbonát (CACO3);
Chapter C.36 of this Annex, Predatory mite (Hypoaspis (Geolaelaps) aculeifer) reproduction test in soil.
f.
Toxicity testing with the collembolans Folsomia fimetaria and Folsomia candida and the results of a ringtest.
A végtermékként kapott keveréknek 2 % (± 0,5 %) szerves széntartalommal kell rendelkeznie, amelyet az a) és c) pont szerinti megfelelő mennyiségű tőzeg és homok hozzáadásával kell beállítani.
Danish Environmental Protection Agency, Environmental Project No. 1256, pp. 66.
A tőzegnek, a kaolinagyagnak és a homoknak ismert forrásból kell származnia.
In Soil Zoology (Kevan D.K. McE., Ed).
Ellenőrizni kell, hogy az üledék összetevőiben előfordulnak-e kémiai szennyeződések (például nehézfémek, szerves klórvegyületek, szerves foszforvegyületek).
Butterworths, London, pp. 412-416
A 3. függelék példával szemlélteti a formulázott üledék elkészítését.
Chemical is a substance or a mixture.
A száraz összetevők összekeverése is elfogadott, amennyiben bizonyítható, hogy a fedővíz hozzáadását követően az üledék nem esik szét összetevőire (például a vízben lebegő tőzegrészecskékre), és a tőzeget vagy az üledéket megfelelően kondicionáltuk.
Main actions and timetable for performing a collembolan test
Az elfogadható hígítóvíz 2. és 4. függelékben felsorolt kémiai tulajdonságaival rendelkező bármely víz alkalmas a vizsgálathoz.
Time (day)
Tenyésztővízként és vizsgálati vízként bármely alkalmas víz, természetes víz (felszíni vagy talajvíz), mesterséges víz (lásd a 2. függeléket) vagy klórtalanított csapvíz elfogadható, amelyben az árvaszúnyoglárvák a tenyésztés és a vizsgálat időszaka alatt életben maradnak anélkül, hogy stressz jeleit mutatnák.
Action
A vizsgálat kezdetén a vizsgálathoz alkalmazott víz pH-értékének 6 és 9 között kell lennie, összes keménysége pedig nem haladhatja meg a 400 mg CaCO3/l értéket.
23 to – 26
Ennél lágyabb vizet kell azonban alkalmazni akkor, ha gyanítható, hogy a keménységet okozó ionok és a vizsgált vegyi anyag között kölcsönhatás alakul ki (ezért ebben az esetben az Elendt-féle M4 közeg nem alkalmazható).
Preparation of synchronous F. fimetaria culture
Ugyanazt a víztípust kell használni a vizsgálat teljes időtartama alatt.
Check pH of artificial soil and adjust accordingly
A 4. függelékben felsorolt vízminőségi jellemzőket évente legalább kétszer meg kell mérni, illetve minden olyan alkalommal, amikor fennáll a gyanúja annak, hogy e jellemzők jelentős mértékben megváltoztak.
9 to – 12
Törzsoldatok: szennyezett víz
Preparation of synchronous F. candida culture
a.
2 to – 7
A vizsgálathoz használt koncentrációk kiszámítása a vízoszlopban – azaz az üledék feletti vízrétegben – mérhető koncentrációk alapján történik.
Pre-moist soil
A kiválasztott koncentrációk vizsgálathoz használt oldatait általában egy törzsoldat hígításával készítjük el.
Distribute juveniles into batches
A törzsoldatokat lehetőség szerint a vizsgált vegyi anyagnak a vizsgálathoz használt vízben való feloldásával kell elkészíteni.
Prepare stock solutions and apply test chemical if solvent required
Egyes esetekben oldószer vagy diszpergálószer használatára lehet szükség a megfelelő töménységű törzsoldat előállításához.
stock solutions and apply test chemical if solid chemical, water soluble or surface application is required.
Alkalmas oldószerek például a következők:
Measure soil pH and weigh the containers.
aceton, etilénglikol-monoetiléter, etilénglikol-dimetiléter, dimetilformamid és trietilén-glikol.
Add food.
A felhasználható diszpergálószerek:
Introduce collembolans.
Cremophor RH40, Tween 80, metilcellulóz (0,01 %-os) és HCO-40.
Range-finding test F. fimetaria:
b.
Definitive tests:
A vizsgált vegyi anyag ioncserélt vízben oldott törzsoldatát hengerszék vagy tápkeverő segítségével, vagy pedig kézzel keverjük el a mesterséges üledékkel.
Measure moisture content and replenish water and add 2-10 mg yeast
Ha a vizsgált vegyi anyag rosszul oldódik vízben, akkor a lehető legkisebb mennyiségű, célnak megfelelő szerves oldószerben (például hexán, aceton vagy kloroform) lehet feloldani.
Definitive F. fimetaria test:
Ezt követően a kapott oldatot vizsgálati edényenként 10 g finom kvarchomokkal keverjük el.
Range-finding F. candida:
Az oldószert hagyjuk elpárologni, mivel azt teljes egészében el kell távolítani a homokból;
Definitive F. candida test:
a homokot ezután összekeverjük a megfelelő mennyiségű üledékkel.
Guidance on rearing and synchronisation of F. fimetaria and F. candida
A vizsgált vegyi anyag oldódásának megkönnyítéséhez, diszpergálásához vagy emulgeálásához csak gyorsan párolgó szer használható.
The time and durations given in this guidance should be checked for each specific collembolan strain to ensure that timing will allow for sufficient synchronised juveniles.
Nem szabad elfelejteni, hogy az üledék elkészítése során a vizsgált vegyi anyag és a homok keverékéből származó homokot is figyelembe kell venni (azaz az üledéket kevesebb homokkal kell elkészíteni).
Basically, the incidence of oviposition after the adults are transferred to fresh substrate and egg hatching determines the appropriate day for egg collection and collection of synchronous juveniles.
A homogenitás fokát szükség esetén részminták analizálásával kell meghatározni.
It is recommended to have a permanent stock culture consisting of e.g. 50 containers/Petri dishes.
A vizsgálati terv a vizsgálat során alkalmazott koncentrációk számának és osztásközének, az egyes koncentrációkhoz használt edények számának, a lárvák edényenkénti számának, valamint a kristályosító csészék és tenyésztőketrecek számának megválasztását jelenti.
The stock culture should be kept in a good feeding condition by weekly feeding, watering and removal of old food and carcasses.
Az ECx és NOEC becslésének, valamint a határérték-vizsgálat tervét az alábbiakban ismertetjük.
Too few collembolans on the substrate may result in inhibition by more fungal growth.
A regresszióanalízis megtervezése
If the stock culture is used for egg production too often, the culture may get fatigue.
A vizsgálatnak le kell fednie a hatáskoncentrációt (ECx) és azt a koncentrációtartományt, amelyben a vizsgált vegyi anyag hatása releváns, hogy a végpontot ne kelljen a keletkezett adatok határain kívül extrapolálni.
Signs of fatigue are dead adults and mould on the substrate.
El kell kerülni a jóval a legalsó koncentráció alatti vagy a jóval a legmagasabb koncentráció feletti extrapolációt.
The remaining eggs from the production of synchronous animals can be used to rejuvenate the culture.
A C.27. vagy C.28. vizsgálati módszer szerinti előzetes dózisbehatároló vizsgálat hasznos segítséget nyújthat a megfelelő vizsgálati koncentrációtartomány kiválasztásában.
In a synchronous culture of F. fimetaria, males are distinguished from females primarily by size.
Az ECx értékének pontosításához legalább öt koncentráció és minden koncentráció esetében nyolc ismétlés szükséges.
Males are clearly smaller than females, and the walking speed of the males is faster than for females.
Minden koncentráció esetében két tenyésztőketrecet kell használni (A és B).
Correct selection of the gender requires little practice and can be confirmed by microscopic inspection of the genital area (13).
A nyolc ismétlést két négy ismétlésből álló csoportra kell osztani, amelyeket egy-egy tenyésztőketrechez kell rendelni.
Preparation of culturing substrate
Ugyanakkor a 2. generációban ismét nyolc ismétlés lesz, amelyeket a tenyésztőketrecekben expozíciónak kitett populációból kell képezni.
The culturing substrate is plaster of Paris (calcium sulphate) with activated charcoal.
Minden soron következő koncentráció legfeljebb az előző kétszerese lehet (kivételt képeznek azok az esetek, amikor a dózisválasz görbéje lapos).
This provides a moist substrate, with the function of the charcoal being to absorb waste gases and excreta (14) (15).
Az eltérő választ kiváltó vizsgálati koncentrációk számának emelése esetén az egyes kezeléseknél alkalmazott ismétlésszám hatra csökkenthető (tenyésztőketrecenként három).
Different forms of charcoal may be used to facilitate observations of the Collembola.
Az ismétlésszám növelése vagy a vizsgálat során alkalmazott koncentrációk közötti intervallum szűkítése általában az ECx konfidenciaintervallumának csökkenéséhez vezet.
For example, powdered charcoal is used for F. candida and F. fimetaria (producing a black/grey plaster of Paris):
A NOEC becslésének megtervezése
Substrate constituents:
A NOEC értékének pontosításához öt vizsgálati koncentrációt kell használni legalább nyolc ismétlésben (4 mindkét [A és B] tenyésztőketrecben), és a koncentrációk aránya nem lehet kettőnél nagyobb.
20 ml of activated charcoal
Az ismétlések számának elegendőnek kell lennie ahhoz, hogy megfelelő erejű statisztikai próbát biztosítson a kontrollhoz viszonyított 20 %-os különbség 5 %-os szignifikanciaszint (α = 0,05) melletti kimutatásához.
200 ml of distilled water
A fejlődés üteme, a fekunditás és a termékenység esetében általában megfelelő módszer a varianciaanalízis (ANOVA), amelyet Dunnett-féle próbának vagy Williams-féle próbának kell követnie (22–25).
200 ml of plaster of Paris
A kikelési arány és az ivararány esetében a Cochran–Armitage-féle próba, a Fisher-féle egzakt próba (Bonferroni-korrekcióval) vagy a Mantel–Haentzal-próba lehet alkalmas módszer.
50 g of activated pulverized charcoal
Határérték-vizsgálat (egy vizsgálati koncentráció és kontroll(ok)) végezhető akkor, ha az opcionális előzetes dózisbehatároló vizsgálat során a maximum koncentrációig nem tapasztalunk hatást.
260-300 ml of distilled water
A határérték-vizsgálat célja annak jelzése, hogy a vizsgált vegyi anyag a vizsgált határérték-koncentrációnál magasabb szinteken fejt-e ki toxikus hatást.
400 g plaster of Paris.
Víz esetében 100 mg/l, üledék esetében 1000 mg/kg (száraz tömeg) használata javasolt.
The substrate mixture is allowed to set before use.
Általában mind a kezelés, mind a kontroll esetében legalább nyolc ismétlés szükséges.
Breeding
Bizonyítani kell, hogy a kontrollhoz viszonyított 20 %-os különbség 5 %-os szignifikanciaszint (α = 0,05) mellett statisztikai próbával megfelelő valószínűséggel kimutatható.
Collembolans are held in containers such as Petri dishes (90 mm × 13 mm), with the bottom covered by a 0,5 cm layer of plaster /charcoal substrate.
A metrikus válaszok (pl. fejlődési ütem) esetében a t-próba alkalmas statisztikai módszer, amennyiben az adatok az alkalmazási feltéteknek (normalitás, szóráshomogenitás) megfelelnek.
They are cultured at 20 ± 1 °C at a light-dark cycle of 12-12 hours (400-800 Lux).
Ha a feltételek nem teljesülnek, akkor a nem egyenlő szórásnégyzeteket feltételező t-próba vagy egy nemparaméteres próba, például a Wilcoxon–Mann–Whitney-próba alkalmazható.
Containers are kept moist at all times ensuring that the relative humidity of the air within the containers is 100 %.
A kikelési arány esetében a Fisher-féle egzakt próba a megfelelő.
This can be guaranteed by presence of free water within the porous plaster, but avoiding generating a water film on the plaster surface.
A víz-üledék rendszer elkészítése (szennyezett víz)
Water loss can be prevented by providing a humid ambient air.
a.
Any dead individuals should be removed from the containers, as should any mouldy food.
Formulázott üledéket (lásd a 13. és 14. pontot, valamint a 3. függeléket) helyezünk minden vizsgálati edénybe, illetve kristályosító csészébe, hogy legalább 1,5 cm-es (a kristályosító csésze esetében ez valamivel alacsonyabb lehet), de maximum 3 cm-es réteget kapjunk.
To stimulate production of eggs it is necessary to transfer the adult animals to Petri dishes with newly prepared plaster of Paris/charcoal substrate.
A rendszerhez annyi vizet (lásd a 15. pontot) adunk, hogy az üledékréteg mélységének és a víz mélységének aránya nem haladja meg az 1:4 értéket.
Granulated dried baker's yeast is used as the sole food supply for both F. candida and F. fimetaria.
A vizsgálati edény előkészítése után az üledék-víz rendszert az első fejlődési stádiumban lévő 1. vagy 2. generációs lárvák hozzáadása előtt kb. hét napig enyhén levegőztetni kell (lásd a 14. pontot és a 3. függeléket).
Fresh food is provided once or twice a week, to avoid moulding.
A kristályosító csésze üledék-víz rendszerét a vizsgálat során nem levegőztetjük, mivel annak nem kell elősegítenie a lárvák túlélését (a petecsomókat már a peték kikelése előtt összegyűjtjük).
It is placed directly on the plaster of Paris in a small heap.
Az üledéket a vizsgálathoz használt víz ráöntése közben letakarhatjuk egy műanyag lappal, hogy a víz hozzáadása során az üledék ne essen szét összetevőire és a vízrétegben ne kavarodjon fel a finom anyag.
The mass of baker's yeast added should be adjusted to the size of the collembolan population, but as a general rule 2-15 mg is sufficient.
A lemezt ezután rögtön eltávolítjuk.
Synchronisation
Erre a célra más eszközök is alkalmasak lehetnek.
The test should be performed with synchronised animals to obtain homogeneous test animals of the same instar and size.
A víz-üledék rendszer elkészítése (szennyezett üledék)
Furthermore, the synchronisation enables discrimination of F. fimetaria males and females from the age of 3 weeks and onwards based on sexual dimorphism, i.e. size differences.
b.
The procedure below is a suggestion on how to obtain synchronised animals (the practical steps are optional).
A 16b. pont szerint előállított szennyezett üledékek az edényekbe, illetve a kristályosító csészébe kerülnek, és annyi fedővizet adunk hozzá, hogy az üledék-víz térfogatarány 1:4 legyen.
Synchronisation.
Az üledékréteg mélységének 1,5 és 3 cm között kell lennie (a kristályosító csésze esetében valamivel alacsonyabb is lehet).
Prepare containers with a 0,5 cm layer of plaster of Paris/charcoal substrate.
Az üledéket a vizsgálathoz használt víz ráöntése közben letakarhatjuk egy műanyag lappal, hogy a víz hozzáadása során az üledék ne essen szét összetevőire és a vízrétegben ne kavarodjon fel a finom anyag.
For egg laying transfer 150-200 adult F. fimetaria and 50-100 F. candida from the best 15-20 containers of the stock culture with 4-8 weeks old substrate to the containers and feed them 15 mg baker's yeast.
A lemezt ezután rögtön eltávolítjuk.
Avoid bringing juveniles together with adults as presence of juveniles may inhibit egg production.
A vízzel fedett szennyezett üledék előállítását követően hagyni kell, hogy a vizsgált vegyi anyag az üledékből a vízfázisba kerüljön, és abban eloszoljon (4) (5) (7) (18).
Keep the culture at 20 ± 1 °C (the mean should be 20 °C) and a light-dark cycle of 12-12 hours (400-800 Lux).
A kiegyensúlyozódási idő üledék- és vegyianyag-specifikus, tartama óráktól napokig terjedhet, de ritka esetekben öt hetet is igénybe vehet.
Ensure that fresh food is available and the air is water saturated.
Mivel ez alatt az idő alatt számos vegyi anyag lebomolhat, az egyensúlyi állapot beállásának megvárása helyett 48 órás kiegyensúlyozódási időszak alkalmazása ajánlott.
Lack of food may lead the animals to defecate on the eggs resulting in fungal growth on the eggs or F. candida may cannibalise its own eggs.
Ha azonban a vegyi anyag üledékben való bomlási felezési ideje közismerten hosszú (lásd a 8. pontot), a kiegyensúlyozódási időt meg lehet hosszabbítani.