natgillin/translations-raw huggingface dataset:
At higher densities, T as well as E2 production patterns are altered.
A beoltott lemezeket 37 °C-on 5 % CO2-t tartalmazó levegő atmoszférában 24 órán át inkubáljuk, hogy lehetővé tegyük a sejteknek a lyukakban való megtapadását.
Before conducting the assay the first time, it is recommended that different seeding densities between 200000 and 300000 cells per ml be tested, and the density resulting in 50-60 % confluency in the well at 24 hours be selected for further experiments.
MINŐSÉG-ELLENŐRZÉSI KÖVETELMÉNYEK
Photomicrograph of H295R cells at a seeding density of 50 % in a 24 well culture plate at 24 hours taken at the edge (A) and centre (B) of a well
Rendkívül fontos, hogy az adagolás során az oldatokból és mintákból pontos mennyiségeket helyezzünk el a lyukakban, mivel ezek a térfogatok határozzák meg azokat a koncentrációkat, amelyeket a vizsgálat eredményeinek számítása során használunk.
Necropsy P animals
A sejtkultúra megkezdése és bármely azt követő vizsgálat előtt minden laboratóriumnak bizonyítania kell a hormonmérési rendszerének érzékenységét (29–31. bekezdés).
Pre-mating
Ha ellenanyag-alapú hormonmérési vizsgálatokat tervezünk használni, a vizsgálandó vegyi anyagokat a vizsgálat megkezdése előtt meg kell vizsgálni, hogy zavarják-e a 32. bekezdésben körvonalazott, a T és E2 számszerűsítésére használt mérési rendszert.
Post-mating
A vizsgálathoz ajánlott oldószer a DMSO.
2 weeks
Ha alternatív oldószert alkalmazunk, akkor a következőket kell meghatározni:
6 weeks
citotoxicitás az oldószer koncentrációjának függvényében.
Pregnancy
Ajánlott, hogy a maximálisan megengedhető oldószer-koncentráció ne haladja meg az oldószer legkevésbé citotoxikus koncentrációjának 10-szeres hígítását.
Lactation
A vizsgálat először történő elvégzése előtt a laboratóriumnak el kell végeznie a 33–35. bekezdésben leírt minősítő kísérletet annak igazolására, hogy a laboratórium képes fenntartani és előállítani a kémiai vizsgálatokhoz szükséges megfelelő sejtkultúrát és kísérleti körülményeket.
In-utero development
Ha új sejttétellel kívánunk elindítani egy tesztelést, az új tétel használata előtt le kell futtatni egy kontroll lemezt a sejtek teljesítményének értékelése céljából a 36. és 37. bekezdésben leírtak szerint.
Pre-weaning
A hormonmérő rendszer teljesítménye
Post-weaning
A módszer érzékenysége, pontossága, precizitása és keresztreaktivitás a mintamátrixszal
Parental generation
Minden laboratórium az általa kiválasztott hormonmérési rendszert használhatja a H295R-sejtek T- és E2-termelésének elemzéséhez, amíg az megfelel a teljesítménykritériumoknak, beleértve a meghatározási határt (LOQ) is.
Cohort
Névlegesen ez 100 pg/ml a T és 10 pg/ml az E2 esetében, amelyek a validálási vizsgálatokban megfigyelt bazális hormonszinteken alapulnak.
Designation
Azonban magasabb vagy alacsonyabb szintek is megfelelőek lehetnek attól függően, hogy a vizsgálatot végző laboratórium milyen bazális hormonszintet ért el.
Animals/cohort
A QC-lemezek és a tesztek futtatásának megkezdése előtt a laboratóriumnak belső hormon kontrollal kezelt kiegészített táptalajok elemzésével bizonyítania kell, hogy a használandó hormonvizsgálat kellő pontossággal és precizitással tudja mérni a hormonkoncentrációkat a kiegészített táptalajban ahhoz, hogy megfeleljen az 1. és 5. táblázatban meghatározott QC-kritériumoknak.
Approximate age at necropsy (weeks)
A kiegészített táptalajba az egyes hormonoknak legalább három koncentrációját kell bevinni (pl. 100, 500 és 2500 pg/ml T, 10, 50 és 250 pg/ml E2; vagy a választott hormonmérési rendszer kimutatási határain alapuló legalacsonyabb koncentráció használható a T és E2 legalacsonyabb koncentrációjaként) és analizálni.
Target is 20 litters per group
A nem extrahált minták mért hormonkoncentrációinak a névleges koncentrációkhoz képest 30 %-on belül kell lennie, és az azonos minta ismételt mérései közötti variáció nem haladhatja meg a 25 %-ot (további QC-kritériumokért lásd még a 8. táblázatot).
Surplus
Ezeknek a QC-kritériumoknak a teljesülése esetén azt feltételezzük, hogy a kiválasztott hormonmérési vizsgálat kellőképpen pontos, precíz, és nem ad olyan keresztreakciót a táptalaj komponenseivel (mintamátrix), hogy az jelentősen befolyásolná a vizsgálat eredményét.
Reproductive
Ebben az esetben nincs szükség a minták hormonmérés előtti extrakciójára.
Neurotoxicity
Abban az esetben, ha az 1. és 8. táblázatban foglalt QC-kritériumok nem teljesülnek, az jelentős mátrixhatásra utalhat, és a kísérletet extrahált kezelt táptalajjal kell elvégezni.
Immunotoxicity
A extrakciós eljárás egy példáját a validálási jelentés II. függeléke szemlélteti (4).
Spares
A hormonkoncentráció méréseit az extrahált mintákon három példányban kell elvégezni.
20 M + 20 F
Ha kimutatható, hogy a táptalaj komponensei az extrahálás után nem zavarják a hormonkimutatási módszert a QC-kritériumokban meghatározottak szerint, minden további kísérleteket extrahált minták felhasználásával kell elvégezni.
10 M + 10 F @
Ha az extrahálás után a QC-kritériumok nem teljesülnek, a felhasznált hormonmérő rendszer nem alkalmas a H295R szteroidogenezis vizsgálat céljára, és alternatív hormonkimutatási módszert kell használni.Standard görbe
14 or 20-25 if triggered
Az oldószer kontrollok (SC-k) hormonkoncentrációjának a standard görbe lineáris részén belül kell lennie.
The medium is pipetted off the culture flask, and the cells are rinsed 3 times with sterile PBS (without Ca2+Mg2+).
A táptalajok (vagy extraktok) mérendő hígításait ennek megfelelően kell kiválasztani.
An enzyme solution (in PBS) is added to detach the cells from the culture flask.
A lineáris kapcsolatot megfelelő statisztikai megközelítés segítségével kell meghatározni.
Following an appropriate time for detachment of the cells, the enzyme action should be stopped with the addition of supplemented medium at a ratio of 3 × the volume used for the enzyme treatment.
Kémiai interferencia teszt
Cells are placed into a centrifuge tube, centrifuged at room temperature, the supernatant is removed, and the pellet of cells is re-suspended in supplemented medium.
Ha ellenanyag-alapú vizsgálatokat, például enzimkötött immunoszorbens vizsgálatot (ELISA) és radioimmun vizsgálatot (RIA) fognak a hormonok mérésére használni, a vegyi anyagok tényleges tesztelésének megkezdése előtt a vegyi anyagok mindegyikét meg kell vizsgálni a használni tervezett hormonmérési rendszerrel való lehetséges interferencia tekintetében (validálási jelentés III. függeléke (4)), mert néhány vegyi anyag zavarhatja ezeket a vizsgálatokat (17).
The cell density is calculated using e.g. a haemocytometer or cell counter.
Ha a hormonanalízis a T és/vagy E2 bazális hormontermelés ≥ 20 %-ának megfelelő interferencia előfordulását mutatja ki, le kell futtatni egy kémiai hormonvizsgálati interferencia tesztet (például a validálási jelentés (4) III. függelékének 5.0. fejezetében leírt tesztet) a vizsgált vegyi anyag törzsoldatának összes hígításán annak a küszöbdózisnak a meghatározására, amely mellett jelentős (≥ 20 %) interferencia lép fel.
The cell solution should be diluted to the desired plating density and thoroughly mixed to assure homogenous cell density.
Ha az interferencia kisebb mint 30 %, az eredményeket korrigálni lehet az interferenciával.
The cells should be plated with 1 ml of the cell solution/well and the plates and wells labelled.
Ha az interferencia meghaladja a 30 %-ot, az adatok érvénytelenek, és az adott koncentráció adatait el kell vetni.
The seeded plates are incubated at 37 °C under 5 % CO2 in air atmosphere for 24 hours to allow the cells to attach to the wells.
Ha egy vizsgált vegyi anyag több mint egy nem citotoxikus koncentráció mellett is jelentős interferenciát mutat a hormonmérési rendszerrel, másik hormonmérési rendszert kell használni.
QUALITY CONTROL REQUIREMENTS
A szennyező vegyi anyagok által kiváltott interferencia elkerülése érdekében ajánlott, hogy a hormonokat alkalmas oldószerrel extraháljuk a táptalajból, a lehetséges módszerek megtalálhatók validálási jelentésben (4).
It is critical that exact volumes of solutions and samples are delivered into the wells during dosing because these volumes determine the concentrations used in the calculations of assay results.
A hormonmérő rendszer teljesítménykritériumai
Prior to the initiation of cell culture and any subsequent testing, each laboratory should demonstrate the sensitivity of its hormone measurement system (paragraphs 29-31).
Paraméter
If antibody-based hormone measurement assays are to be used, the chemicals to be tested should be analysed for their potential to interfere with the measurement system used to quantify T and E2 as outlined in paragraph 32 prior to initiating testing.
Kritérium
DMSO is the recommended solvent for the assay.
A mérési módszer érzékenysége
If an alternative solvent is utilised, the following should be determined:
Meghatározási határ (LOQ)
The solubility of the test chemical, forskolin and prochloraz in the solvent;
A hormonextrakció hatékonysága (kizárólag akkor, ha extrakcióra van szükség)
The cytotoxicity as a function of the concentration of solvent.
A bevitt hormonmennyiség átlagos visszanyerési aránya (a három mérés alapján) nem térhet el több mint 30 %-ban a bevitt mennyiségtől.
It is recommended that the maximum allowable solvent concentration should not exceed a 10 × dilution of the least cytotoxic concentration of the solvent.
Kémiai interferencia (kizárólag az antitest-alapú rendszerek esetében)
Prior to conducting testing for the first time, the laboratory should conduct a qualifying experiment demonstrating that the laboratory is capable of maintaining and achieving appropriate cell culture and experimental conditions required for chemical testing as described in paragraphs 33-35.
Nem fordul elő jelentős (az adott hormon bazális hormontermelése ≥ 30 %-ának megfelelő) keresztreaktivitás a sejtek által termelt semelyik hormonnal [19] [20]
When initiating testing using a new batch, a control plate should be run before using a new batch of cells to evaluate the performance of the cells as described in paragraphs 36 and 37.
Laboratóriumi jártassági teszt
Performance of the Hormone Measurement System
Ismeretlen vegyi anyagok vizsgálata előtt a laboratóriumnak egy laboratóriumi jártassági teszt lefuttatásával kell demonstrálnia, hogy képes előállítani és fenntartani a megfelelő sejtkultúrát és a vizsgálat sikeres lebonyolításához szükséges vizsgálati körülményeket.
Method sensitivity, accuracy, precision and cross-reactivity with sample matrix
Mivel egy vizsgálat végrehajtása közvetlenül összefügg a vizsgálatot végző laboratóriumi személyzettel, ezeket az eljárásokat részlegesen meg kell ismételni, ha változás következik be a laboratóriumi személyzetben.
Each laboratory may use a hormone measurement system of its choice for the analysis of the production of T and E2 by H295R cells so long as it meets performance criteria, including the Limit of Quantification (LOQ).
Ezt a jártassági tesztet a 38–40. bekezdésben felsoroltakkal megegyező feltételek mellett kell elvégezni, a sejteket erős, közepes és gyenge induktorok és inhibitorok 7 növekvő koncentrációjának, valamint egy negatív vegyi anyagnak kitéve (lásd a 2. táblázatot).
Nominally these are 100 pg/ml for T and 10 pg/ml for E2, which are based on the basal hormone levels observed in the validation studies.
Külön lemezeket futtatunk az egyes vegyi anyagokra a 6. táblázatban bemutatott sémának megfelelően.
However, greater or lower levels may be appropriate depending upon the basal hormone levels achieved in the performing laboratory.
A napi futtatásokba is be kell illeszteni egy QC-lemezt (4. táblázat, 36–37. bekezdés) a jártassági tesztanyagok részére.
Prior to initiation of QC plate and test runs, the laboratory should demonstrate that the hormone assay to be used can measure hormone concentrations in supplemented medium with sufficient accuracy and precision to meet the QC criteria specified in Tables 1 and 5 by analysing supplemented medium spiked with an internal hormone control.
Jártassági tesztanyagok és expozíciós koncentrációk
Supplemented medium should be spiked with at least three concentrations of each hormone (e.g. 100, 500 and 2500 pg/ml of T; 10, 50 and 250 pg/ml of E2; or the lowest possible concentrations based upon the detection limits of the chosen hormone measurement system can be used for the lowest spike concentrations for T and E2) and analysed.
Jártassági tesztanyag
Measured hormone concentrations of non-extracted samples should be within 30 % of nominal concentrations, and variation between replicate measurements of the same sample should not exceed 25 % (see also Table 8 for additional QC criteria).
Vizsgálati koncentrációk [μM]
If these QC criteria are fulfilled it is assumed that the selected hormone measurement assay is sufficiently accurate, precise and does not cross-react with components in the medium (sample matrix) such that a significant influence on the outcome of the assay would be expected.
Prokloráz
In this case, no extraction of samples prior to measurement of hormones is required.
Atrazin
In the case that the QC criteria in Tables 1 and 8 are not fulfilled, a significant matrix effect may be occurring, and an experiment with extracted spiked medium should be conducted.
Aminoglutetimid
An example of an extraction procedure is described in Appendix II to the validation report (4).
Biszfenol-A
Measurements of the hormone concentrations in the extracted samples should be made in triplicate.
A H295R jártassági tesztanyagoknak való expozícióját 24-lyukú lemezen kell elvégezni a laboratóriumi jártassági teszt során.
If it can be shown that after extraction the components of the medium do not interfere with the hormone detection method as defined by the QC criteria, all further experiments should be conducted using extracted samples.
Az adagolás μM-ban van megadva a vizsgált vegyi anyagok valamennyi dózisa esetében.
If the QC criteria cannot be met after extraction, the utilised hormone measurement system is not suitable for the purpose of the H295R Steroidogenesis Assay, and an alternative hormone detection method should be used.Standard curve
A dózisokat DMSO-hoz kell hozzáadni 0,1 térfogatszázalék arányban lyukanként.
The hormone concentrations of the solvent controls (SC) should be within the linear portion of the standard curve.
Az összes tesztkoncentrációt három lyukban kell vizsgálni (6. táblázat).
Preferably, the SC values should fall close to the centre of the linear portion to ensure that induction and inhibition of hormone synthesis can be measured.
Az egyes vegyi anyaghoz külön lemezeket kell futtatni.
Dilutions of medium (or extracts) to be measured are to be selected accordingly.
Minden napi futtatásba egy QC-lemezt is be kell illeszteni.
The linear relationship is to be determined by a suitable statistical approach.
A sejtek életképességének és a hormonoknak az elemzését a 42–46. bekezdésben előírtak szerint kell elvégezni.
Chemical interference test
A küszöbértéket (megfigyelhető hatást okozó legalacsonyabb koncentráció, LOEC) és a besorolásra vonatkozó döntést jegyzőkönyvezni kell, és össze kell hasonlítani a 3. táblázatban szereplő értékekkel.
If antibody-based assays such as Enzyme-Linked Immunosorbent Assays (ELISAs) and Radio-Immuno Assays (RIAs) are going to be used to measure hormones, each chemical should be tested for potential interference with the hormone measurement system to be utilised prior to initiation of the actual testing of chemicals (Appendix III to the validation report (4)) because some chemicals can interfere with these tests (17).
Az adatok elfogadhatónak tekinthetők, ha megfelelnek a 3. táblázatban foglalt LOEC-értékeknek és besorolási döntésnek.
If interference occurs that is ≥ 20 % of basal hormone production for T and/or E2 as determined by hormone analysis, the Chemical Hormone Assay Interference Test (such as described in Appendix III to the validation report (4) section 5.0) should be run on all test chemical stock solution dilutions to identify the threshold dose at which significant (≥ 20 % ) interference occurs.
A jártassági tesztanyagok küszöbértékei (LOEC) és besorolási döntései
If interference is less than 30 %, results may be corrected for the interference.
nem alkalmazható, mivel a negatív kontroll nem citotoxikus koncentrációjának való expozíció után nem történhet változás.
If interference exceeds 30 %, the data are invalid and the data at these concentrations should be discarded.
CAS-szám
Limit of Quantification (LOQ)
A minőség-ellenőrzési (QC) lemezt a H295R-sejtek standard tenyésztési körülmények közötti teljesítményének ellenőrzésére, valamint az oldószeres kontrollokban, a pozitív és negatív kontrollokban mért hormonkoncentrációk, valamint az egyéb QC-mérések történeti adatbázisának létrehozására használjuk.
Hormone Extraction Efficiency (only when extraction is needed)
A H295R-sejtek teljesítményét QC-lemez használatával kell értékelni minden egyes új ATCC tétel esetében vagy ha egy korábban lefagyasztott sejtállományt első alkalommal használunk, kivéve, ha a laboratórium jártassági tesztjét (32-34. bekezdés) ezzel a sejttétellel futtattuk le.
The average recovery rates (based on triplicate measures) for the spiked amounts of hormone should not deviate more than 30 % from amount that was added.
A QC-lemez teljes értékelést ad a vizsgálati feltételekről (pl. a sejtek életképessége, oldószeres kontrollok, negatív és pozitív kontrollok, valamint intra- és inter-assay variabilitás) a vegyi anyagok vizsgálata során, és azt minden tesztfuttatásba be kell építeni.
Chemical Interference (only antibody based systems)
A QC-vizsgálatra 24-lyukú lemezen kerül sor, és ugyanazokat az inkubációs, adagolási, sejt életképességi/citotoxicitási, hormonextrakciós és hormonelemzési eljárásokat követi, mint amelyeket a 38–46. bekezdés a vegyi anyagok tesztelésére leír.
No substantial (≥ 30 % of basal hormone production of the respective hormone) cross-reactivity with any of the hormones produced by the cells should occur [19] [20]
A lemezelrendezés részletes leírása a 4. táblázatban található.
Laboratory Proficiency Test
A QC-lemezen teljesítendő kritériumokat az 5. táblázat tartalmazza.
As the performance of an assay is directly linked to the laboratory personnel conducting the assay, these procedures should be partly repeated if a change in laboratory personnel occurs.
Az expozíciós kísérlet befejezése és a táptalaj eltávolítása után 70 %-os metanol oldatot adunk hozzá minden MeOH-lyukhoz, hogy pozitív kontrollként szolgáljanak a citotoxicitási vizsgálat során (a citotoxicitási vizsgálatot lásd a validálási jelentés III. függelékben (4))
This proficiency test will be conducted under the same conditions listed in paragraphs 38 through 40 by exposing cells to 7 increasing concentrations of strong, moderate and weak inducers and inhibitors as well as a negative chemical (see Table 2).
Vakpróba [23]
Specifically, chemicals to be tested include the strong inducer forskolin (CAS No 66575-29-9);
Vakpróba [23](+ MeOH) [24]
the strong inhibitor prochloraz (CAS No 67747-09-5);
(+ MeOH) [24]
the moderate inducer atrazine (CAS No 1912-24-9);
táblázat
the moderate inhibitor aminoglutethimide (CAS No 125-84-8);
A minőség-ellenőrzési lemez teljesítménykritériumai
the weak inducer (E2 production) and weak inhibitor (T production) bisphenol A (CAS No 80-05-7);
A hormon bazális termelődése az oldószeres kontrollban (SC)
and the negative chemical human chorionic gonadotropin (HCG) (CAS No 9002-61-3) as shown in Table 2.
Az LOQ ≥ 5-szöröse
Separate plates are run for all chemicals using the format as shown in Table 6.
Az LOQ ≥ 2,5-szöröse
One QC plate (Table 4, paragraphs 36-37) should be included with each daily run for the proficiency chemicals.
Indukció (10 μM forskolin)
Proficiency chemicals and exposure concentrations
Az SC ≥ 1,5-szöröse
Proficiency chemical
Az SC ≥ 7,5-szöröse
Test Concentrations [μM]
Inhibíció (1μM prokloráz)
Forskolin
VEGYIANYAG-EXPOZÍCIÓS ELJÁRÁS
Atrazine
Az előinkubált sejteket eltávolítjuk az inkubátorból (21. bekezdés) és az adagolást megelőzően mikroszkóp alatt ellenőrizzük, hogy jó állapotban vannak-e (tapadás, morfológia).
Aminoglutethimide
A sejteket biológiai biztonsági fülkében helyezzük el, a kiegészített táptalajt eltávolítjuk és új kiegészített táptalajjal váltjuk fel (1 ml/lyuk).
Bisphenol A
Ehhez a vizsgálati módszerhez oldószerként lehetőleg DMSO-t kell alkalmazni.
Exposure of H295R to proficiency chemicals should be conducted in 24 well plates during the laboratory proficiency test.
Ha azonban más oldószer használata indokolt, azt tudományos érvekkel kell alátámasztani.
Dosing is in μM for all test chemical doses.
A sejteket a vizsgált vegyi anyagnak úgy tesszük ki, hogy 1 ml kiegészített táptalajhoz (lyuk térfogata) hozzáadjuk a DMSO-ban feloldott megfelelő törzsoldat 1 μl-ét (lásd a validálási jelentés II. függelékét (4)).
All test concentrations should be tested in triplicate wells (Table 6).
A megfelelő elkeveredéshez általában előnyös, ha a vizsgált vegyi anyag DMSO-ban feloldott megfelelő törzsoldatát összekeverjük a kiegészített táptalajjal, hogy megkapjuk minden egyes dózis kívánt végső koncentrációját, és a keveréket közvetlenül a régi táptalaj eltávolítása után hozzáadjuk az egyes lyukakhoz.
Separate plates are run for each chemical.
Ha ezt az opciót használjuk, a DMSO koncentrációja (0,1 %) konzisztens marad az összes lyukban.
One QC plate is included with each daily run.
A két legnagyobb koncentrációt tartalmazó lyukat sztereomikroszkóp segítségével vizuálisan értékeljük csapadékok képződése vagy a zavarosság jelei szempontjából, amelyek a vizsgált vegyi anyag nem komplett oldhatóságára utalnak.
Cell viability and hormone analyses should be conducted as provided in paragraphs 42 through 46.
Ha ilyen körülmények (elfelhősödés, csapadék képződése) figyelhetők meg, a következő kisebb koncentrációt tartalmazó lyukakat is megvizsgáljuk (és így tovább), és azokat a koncentrációkat, amelyek nem teljesen mennek oldatba, ki kell zárni a további értékelésből és elemzésből.
The threshold value (lowest observed effect concentration, LOEC) and classification decision should be reported and compared with the values in Table 3.
A lemezt visszahelyezzük az inkubátorba, ahol 37 °C-on 5 % CO2-t tartalmazó levegő atmoszférában 48 órán keresztül inkubáljuk.
The data are considered acceptable if they meet the LOEC and decision classification in Table 3.
A vizsgált vegyi anyag lemez elrendezését a 6. táblázat mutatja.
n/a:
táblázat
not applicable as no changes should occur after exposure to non-cytotoxic concentrations of negative control.
Adagolási séma a H295R-sejtek vizsgált vegyi anyaggal való expozíciójához 24-lyukú lemezen
CAS No
törzsoldat
+ [22] (Inhibition)
törzsoldat
+ (Inhibition)
törzsoldat
+ (Induction)
törzsoldat
n/a
törzsoldat
Negative
törzsoldat
Quality Control Plate
törzsoldat
The quality control (QC) plate is used to verify the performance of the H295R cells under standard culture conditions, and to establish a historical database for hormone concentrations in solvent controls, positive and negative controls, as well as other QC measures over time.
48 óra elteltével az expozíciós lemezeket eltávolítjuk az inkubátorból, és mikroszkóp alatt minden lyukban ellenőrizzük a sejtek állapotát (tapadás, morfológia, összefolyás foka) és a citotoxicitás jeleit.
H295R cell performance should be assessed using a QC plate for each new ATCC batch or after using a previously frozen stock of cells for the first time unless the laboratory proficiency test (paragraphs 32-34) has been run with that batch of cells.
Minden egyes lyuk táptalaját két egyenlő mennyiségű részre osztjuk (egyenként körülbelül 490 μl), és átvisszük két megfelelően jelölt fiolába (azaz lyukanként egy alikvot tartalék mintaként szolgál).
A QC plate provides a complete assessment of the assay conditions (e.g. cell viability, solvent controls, negative and positive controls, as well as intra- and inter-assay variability) when testing chemicals and should be part of each test run.
A sejtek kiszáradásának megakadályozása érdekében egy időben egy sorból vagy oszlopból távolítjuk el a táptalajt, és helyére a sejtéletképességi/toxicitási vizsgálathoz szükséges táptalajt töltjük be.