natgillin/translations-raw huggingface dataset:
It is recommended establishing a sufficient number of additional reserve replicate vessels (e.g. eight) for treatment and control(s).
Ajánlatos elegendő számú (például nyolc) további tartalék ismétlést is biztosítani mind a kezelt, mind a kontroll edényekhez.
Frequency of soil quality measurements
A talajminőség-mérés gyakorisága
Soil pH, soil moisture content and the temperature (continuously) in the test room should be measured at the start and end of the uptake and elimination phases.
A vizsgálat kezdetén, valamint a felvételi és az ürülési fázisok végén meg kell mérni a talaj pH-ját és nedvességtartalmát, valamint a vizsgálat elvégzésére szolgáló helyiség (állandó) hőmérsékletét.
Once per week the soil moisture content should be controlled by weighing the test vessels and comparing actual weights with initial weights at test start.
A talaj nedvességtartalmát hetente egyszer ellenőrizni kell, amelyhez meg kell mérni a vizsgálati edények tömegét, és a tényleges értékeket össze kell hasonlítani a vizsgálat kezdetén mért kiindulási értékekkel.
Water losses should be compensated by adding deionised water.
A vízveszteséget ionmentesített víz hozzáadásával pótolni kell.
Sampling and analysis of worms and soil
A féreg- és talajminták gyűjtése és analízise
An example of schedule for the uptake and elimination phases in earthworm and enchytraeid bioaccumulation tests is given in Appendix 3.
A földigilisztával és televényféreggel végzett biológiai felhalmozódási vizsgálatok felvételi és ürítési fázisaira vonatkozó ütemterv egy példáját a 3. függelék mutatja be.
The soil is sampled from the test vessels for the determination of test chemical concentration before inserting the worms, and during the uptake and elimination phases.
A vizsgált vegyi anyag koncentrációjának a meghatározásához a férgek behelyezése előtt, valamint a felvételi és az ürülési fázis során talajmintákat kell venni a vizsgálati edényekből.
During the test the concentrations of test chemical are determined in the worms and the soil.
A vizsgálat során meg kell határozni a vizsgált vegyi anyag koncentrációjának alakulását a férgekben és a talajban.
In general, total soil concentrations are measured.
Általában a talajra jellemző összkoncentrációt szokás mérni.
As an option, concentrations in pore water may be measured; in such case, rationale and appropriate methods should be provided prior to initiation of a study, and included in the report.
Kiegészítésképpen a pórusvízre jellemző koncentráció is mérhető; ebben az esetben a vizsgálat megkezdése előtt ki kell dolgozni az indoklást és a megfelelő módszereket, amelyeknek a jegyzőkönyvben is szerepelniük kell.
The worms and soil are sampled at least at six occasions during the uptake and the elimination phases.
A felvételi és az ürülési fázis során legalább hat alkalommal kell féreg- és talajmintákat gyűjteni.
If the stability of a test chemical is demonstrated, the number of soil analyses can be reduced.
Ha a vizsgált vegyi anyag stabilitása bizonyított, a talajanalízisek száma csökkenthető.
It is recommended analysing at least three replicates at the beginning and at the end of the uptake phase.
A felvételi fázis kezdetén és végén ajánlott legalább három ismétlést analizálni.
If the concentration in soil measured at the end of the uptake phase deviates from the initial concentration by more than 30 %, the soil samples taken at other dates should also be analysed.
Ha a talajban mért koncentráció a felvételi fázis végén több mint 30 %-kal eltér a kezdeti koncentrációtól, akkor a más napokon vett talajmintákat is analizálni kell.
Remove the worms of a given replicate from the soil at each sampling time (e.g. after spreading the soil of the replicate on a shallow tray and picking the worms using soft jewellers’ tweezers), rinse them quickly with water in a shallow glass or steel tray.
Minden egyes mintavétel alkalmával el kell távolítani a férgeket az adott edény talajtartalmából (például az edény talajtartalmát egy nem túl mély tálon szétterítjük, majd egy puha ékszerész csipesszel kiemeljük a férgeket), és vízzel gyorsan át kell öblíteni egy nem túl mély pohárban vagy acéltálban.
Remove excess water (see paragraph 34).
A fölösleges vizet el kell távolítani (lásd a 34. bekezdést).
Transfer the worms carefully to a pre-weighed vessel, weigh them instantly, including gut content.
A férgeket óvatosan át kell helyezni egy előre lemért edénybe, majd azonnal le kell mérni a béltartalommal együtt.
The earthworms (Eisenia sp.) should then be allowed to purge their gut overnight e.g. on a moist filter paper in a covered petri dish (see paragraph 34).
Ezt követően hagyni kell, hogy a földigiliszták (Eisenia sp.) az éjszaka folyamán kiürítsék a béltartalmukat, például egy lefedett petri-csészében elhelyezett nedves szűrőpapíron (lásd a 34. bekezdést).
After purging, the weight of the worms should be determined in order to assess a possible decrease in biomass during the test (see validity criteria in paragraph 17).
A béltartalom ürítését követően a biomassza vizsgálat időszaka alatti esetleges csökkenésének az értékelése céljából meg kell határozni a férgek tömegét (lásd az érvényességi kritériumokat a 17. bekezdésben).
Weighing and tissue analysis of Enchytraeids is carried out without purging, as this is technically difficult due to the small size of these worms.
A televényférgek tömegének mérését és szövetelemzését a béltartalom ürítése nélkül kell elvégezni, ám ez a férgek kis mérete miatt technikailag nehezen lenne kivitelezhető.
After final weight determination, the worms should be killed immediately, using the most appropriate method (e.g. using liquid nitrogen, or freezing at temperatures below – 18 °C).
A végleges tömeg meghatározását követően a férgeket azonnal el kell pusztítani a lehető legmegfelelőbb módszert alkalmazva (például folyékony hidrogénnel vagy –18 °C alatti hőmérsékletre történő fagyasztással).
During the elimination phase, the worms replace contaminated gut contents with clean soil.
Az ürülési fázis során a férgek szennyezett béltartalma tiszta talajra cserélődik.
This means, measurements in un-purged worms (enchytraeids in this context) sampled immediately before the elimination phase include contaminated gut soil.
Ez azt jelenti, hogy ha a közvetlenül az ürülési fázis előtt vett mintában szereplő férgeken a béltartalom ürítése nélkül végezzük el a méréseket (televényférgek esetében), akkor azok a szennyezett talajból álló béltartalmat is tartalmazni fogják.
The soil and worm samples should be preferably analysed immediately after removal (i.e. within 1-2 days) in order to prevent degradation or other losses, and it is recommended calculating the approximate uptake and elimination rates as the test proceeds.
A lebomlás vagy egyéb veszteségek elkerülése érdekében a talaj- és féregmintákat lehetőleg közvetlenül az edényből való eltávolítást követően (vagyis 1–2 napon belül) kell analizálni, és ajánlott közelítő felvételi és ürülési sebesség értékeket számítani, ahogy a vizsgálat halad előre.
If the analysis is delayed, the samples should be stored by an appropriate method, e.g. by deep-freezing (≤ – 18 °C).
Ha az analízist késleltetni kell, akkor a mintákat megfelelő módszert alkalmazva, például mélyhűtve (≤ -18 °C) kell tárolni.
It should be checked that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as the recovery of the test chemical from soil and worm samples are satisfactory for the given method; the extraction efficiency, the limit of detection (LOD) and the limit of quantification (LOQ) should be reported.
Ellenőrizni kell, hogy a kémiai analízis pontossága és reprodukálhatósága, valamint a vizsgált vegyi anyag talaj- és féregmintákból való visszanyerése megfelel az adott módszernek; dokumentálni kell az extrakciós hatékonyságot, a kimutathatósági határértéket (LOD) és a mennyiségi meghatározás határértékét (LOQ).
Likewise it should be checked that the test chemical is not detectable in the control vessels in concentrations higher than background.
Hasonlóképpen ellenőrizni kell, hogy a vizsgált vegyi anyag nem mutatható ki a háttérnél nagyobb koncentrációban a kontroll edényekben.
When the concentration of the test chemical in the test organism Ca is > 0 in the control worms, this should be included in the calculation of the kinetic parameters (see Appendix 2).
Ha a vizsgált vegyi anyag koncentrációja a vizsgálathoz használt organizmusokban (Ca) a kontroll férgek esetében nagyobb, mint 0, ezt a kinetikai paraméterek számításánál figyelembe kell venni (lásd a 2. függeléket).
All samples should be handled throughout the test to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption of the test chemical on the sampling device).
A vizsgálat során a mintákat mindvégig úgy kell kezelni, hogy a szennyeződés és a veszteség (például a vizsgált vegyi anyag mintavevő eszközön való adszorbeálódása következtében) a lehető legkisebb mértékű legyen.
When working with radiolabelled test chemicals, it is possible to analyse parent and metabolites.
Radioaktívan jelölt vizsgált vegyi anyagok használata esetén lehetőség van a kiindulási anyag és a metabolitok analízisére.
Quantification of parent test chemical and metabolites at steady state or at the end of the uptake phase provides important information.
A vizsgált kiindulási vegyi anyag és a metabolitok mennyiségi meghatározása az állandósult állapotban vagy a felvételi fázis végén fontos információkat szolgáltat.
The samples should then be “cleaned up” so that the parent test chemical can be quantified separately.
A mintákat ezt követően »meg kell tisztítani«, hogy a vizsgált kiindulási vegyi anyag mennyisége külön is meghatározható legyen.
If single metabolites exceed 10 % of total radioactivity in the analysed sample(s), the identification of these metabolites is recommended.
Ajánlott azonosítani azokat a metabolitokat, amelyek önmagukban meghaladják az analizált minta (minták) összes radioaktivitásának 10 %-át.
The overall recovery, and the recovery of test chemical in worms, soil, and if used, in traps containing absorbents to retain evaporated test chemical, should be recorded and reported.
Dokumentálni és a jegyzőkönyvben is szerepeltetni kell az összes visszanyerést, a vizsgált vegyi anyag visszanyerését a férgekben, a talajban és – ha a vizsgálatban szerepelnek – az elpárolgott vizsgált anyag elnyelésére szolgáló abszorbenst tartalmazó csapdákban.
Pooling of the individuals sampled from a given test vessel is acceptable for enchytraeid worms which are smaller than earthworms.
Az adott vizsgálati edényből vett mintában szereplő egyedek összevonása a földigilisztánál kisebb televényférgek használata esetén elfogadható.
If pooling involves the reduction of the number of replicates, this limits the statistical procedures which can be applied to the data.
Az ismétlések számának csökkenésével járó összevonás azonban korlátozza az adatok feldolgozására alkalmazható statisztikai eljárásokat.
If a specific statistical procedure and power are required, then an adequate number of replicate test vessels should be included in the test to accommodate the desired pooling, procedure and power.
Ha egy adott statisztikai eljárást kell alkalmazni, vagy a próba erejének el kell érnie egy bizonyos szintet, akkor a vizsgálat során olyan számú ismétlést kell alkalmazni, amely a kívánt összevonás mellett az ezeknek a követelményeknek való megfelelést is biztosítja.
It is recommended that the BAF be expressed both as a function of total dry weight and, when required (i.e. for highly hydrophobic chemicals), as a function of the lipid content.
A BAF értékét ajánlott egyaránt kifejezni az összes száraz súly függvényében és – ha szükséges (azaz erősen hidrofób vegyi anyagok esetén) – a lipidtartalom függvényében.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (some existing methods – e.g. (31) (58) – should be adapted for this purpose).
A lipidtartalom meghatározására megfelelő módszereket kell alkalmazni (egyes létező módszerek – például (31) (58) – e célra történő adaptálásával).
These methods use a chloroform/methanol extraction technique.
Ezek a módszerek a kloroform/metanol extrakciós technikára épülnek.
However, to avoid the use of chlorinated solvents, a modification of the Bligh and Dyer method (9) as described in (17) should be used.
A klórozott oldószerek használata azonban kerülendő, a Bligh- és Dyer-féle módszer (9) szakirodalomban (17) leírt módosítását kell alkalmazni.
Since the various methods may not give identical values, it is important to give details of the method used.
Mivel előfordulhat, hogy a különböző módszerek eltérő értékeket eredményeznek, az alkalmazott módszert részletesen ismertetni kell.
When possible, i.e. if sufficient worm tissue is available, the lipid analysis should ideally be made on the same sample or extract as the one used for analysis of the test chemical, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically (49).
Amennyiben lehetséges, vagyis ha elegendő féregszövet áll rendelkezésre, akkor a lipidanalízist a vizsgált anyag analíziséhez használttal azonos mintán vagy extraktumon kell elvégezni, mivel a lipideket gyakran el kell távolítani az extraktumból ahhoz, hogy kromatográfiás módszerrel analizálható legyen (49).
Alternatively, control animals may be used to measure the lipid content, which can then be used to normalise BAF values.
A másik lehetőség, hogy kontroll állatokat használunk a lipidtartalom mérésére, amelyre majd a BAF értékeket vonatkoztathatjuk.
This latter approach reduces the contamination of equipment with the test chemical.
Ha ezt az utóbbi megközelítést használjuk, akkor a felszerelés kevésbé szennyeződik a vizsgált vegyi anyaggal.
The uptake curve of the test chemical is obtained by plotting its concentration in/on the worms during the uptake phase against time on arithmetic scales.
A vizsgált anyag felvételi görbéje az idő függvényében, aritmetikus skálán ábrázolja a vizsgált anyag férgekben/férgeken mért koncentrációjának alakulását a felvételi fázisban.
When the curve has reached a plateau, or steady state (see definitions in Appendix 1), the steady state bioaccumulation factor BAFss is calculated from:
Amennyiben a görbe kiegyenesedett, vagyis elérte az állandósult állapotot (a meghatározásokat lásd az 1. függelékben), az állandósult állapothoz tartozó BAFss biológiai felhalmozódási tényezőt a következőképpen kell kiszámítani:
at steady state or at end of uptake phase (mean)
az állandósult állapotban vagy a felvételi fázis végén (középérték)
Ca is the concentration of test chemical in the test organism
Ca a vizsgált vegyi anyag koncentrációja a vizsgálathoz használt organizmusban
Cs is the concentration of test chemical in the soil
Cs a vizsgált vegyi anyag koncentrációja a talajban
When no steady state is reached, the BAFK, based on the rate constants, should be determined instead of BAFss, as described below:
Ha nem állt be az állandósult állapot, akkor a BAFss helyett a kinetikai biológiai felhalmozódási tényezőt (BAFK) kell kiszámítani a sebességi állandók alapján, az alábbiak szerint:
Determine the accumulation factor (BAFK) as the ratio ks/ke.
A BAFK-t a ks és a ke hányadosaként kell meghatározni.
Uptake and elimination rates are preferably calculated simultaneously (see Equation 11 in Appendix 2)
A felvételi és az ürülési sebességet lehetőleg párhuzamosan kell kiszámítani (lásd a 11. egyenletet a 2. függelékben).
The elimination rate constant (ke) is usually determined from the elimination curve (i.e. a plot of the concentration of the test item in the worms during the elimination phase).
Az ürülési sebességi állandó (ke) meghatározása általában az ürülési görbe alapján történik (amely a vizsgált tétel férgekben mért koncentrációjának az alakulását ábrázolja az ürülési fázisban).
The uptake rate constant ks is then calculated given ke and a value of Ca which is derived from the uptake curve – See Appendix 2 for a description of these methods.
Ezt követően a felvételi sebességi állandó kiszámítható a ke adott értékéből, valamint a Ca felvételi görbéből levezetett értékéből – ezeknek a módszereknek a leírását lásd a 2. függelékben.
The preferred method for obtaining BAFK and the rate constants, ks, and ke, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer.
A BAFK és a sebességi állandók meghatározásához lehetőleg számítógéppel végzett nemlineáris paraméterbecslést kell használni.
If the elimination is obviously not first-order, then more complex models should be employed.
Ha az ürülés folyamata nyilvánvalóan nem az elsőrendű kinetikát követi, akkor összetettebb modelleket kell alkalmazni.
Any available information on acute or long term toxicity (e.g. ECx, LCx„ NOEC) of the test chemical towards soil-dwelling oligochaetes;
A vizsgált vegyi anyag talajban élő kevéssertéjűekre gyakorolt akut vagy hosszú távú toxikus hatására vonatkozóan rendelkezésre álló információk (például ECx, LCx, NOEC)
purity, physical nature and, physicochemical properties e.g. log Kow, water solubility;
kémiai tisztaság, fizikai jelleg, valamint fizikai és kémiai tulajdonságok, például log Kow, vízben való oldhatóság,
chemical identification data; source of the test item, identity and concentration of any solvent used;
kémiai azonosító adatok; a vizsgált tétel származása, a használt oldószer meghatározása és koncentrációja,
if radiolabelled test chemical is used, the precise position of the labelled atoms, the specific radioactivity, and the radiochemical purity.
radioaktívan jelölt vizsgált vegyi anyag használata esetén a jelölt atomok pontos elhelyezkedése, a fajlagos radioaktivitás és a radiokémiai tisztaság.
scientific name, strain, source, any pre-treatment, acclimation, age, size-range, etc..
tudományos név, törzs, származás, esetleges előkezelés, akklimatizáció, életkor, mérettartomány, stb.
test procedure used;
az alkalmazott vizsgálati eljárás,
type and characteristics of illumination used and photoperiod(s);
az alkalmazott megvilágítás típusa és jellemzői, valamint a fényperiódus(ok),
test design (e.g. number and size of test vessels, soil mass and height of soil layer, number of replicates, number of worms per replicate, number of test concentrations, duration of uptake and elimination phases, sampling frequency);
a vizsgálat kialakítása (például vizsgálati edények száma és mérete, talajtömeg és a talajréteg magassága, ismétlések száma, egy ismétlésre jutó férgek száma, vizsgálati koncentrációk száma, a felvételi és az ürítési fázisok időtartama, mintavételi gyakoriság),
rationale for the choice of test vessel material;
a vizsgálati edény anyagának indoklása,
method of test item preparation and application as well as reasons for choosing a specific method;
a vizsgálati tétel előkészítése és alkalmazása, valamint az adott módszer választásának okai,
the nominal test concentrations, the means of the measured values and their standard deviations in the test vessels, and the method by which these values were obtained;
a névleges vizsgálati koncentrációk, a vizsgálati edényekben mért értékek középértékei és szórásuk, valamint az ezen értékek előállításának módszere,
source of the constituents of the artificial soil or – if natural media are used – origin of the soil, description of any pre-treatment, results of the controls (survival, biomass development, reproduction), soil characteristics (pH, total organic carbon content, particle size distribution (percent sand, silt, and clay), WHCmax, percent water content at start and at end of the test, and any other measurements made);
a mesterséges talaj összetevőinek a forrása vagy – természetes közeg használata esetén – a talaj származása, esetleges előkezelés leírása, kontroll eredmények (túlélés, biomassza képződés, szaporodás), a talaj jellemzői (pH, összes szerves széntartalom, részecskeméret-eloszlás (homok, iszap és agyag százalékaránya), WHCmax, százalékos víztartalom a vizsgálat elején és végén, valamint az elvégzett egyéb mérések),
detailed information on the treatment of soil and worm samples, including details of preparation, storage, spiking procedures, extraction, and analytical procedures (and precision) for the test item in worms and soil, and lipid content (if measured), and recoveries of the test item.
a talaj- és féregminták kezelésének részletes bemutatása, beleértve az előkészítés részleteit, a tárolást, a szennyezési eljárásokat, az extrakciót és az analitikai eljárásokat (és pontosságukat) a férgekre és a talajra vonatkozóan, valamint a lipidtartalmat (ha a mérése szerepelt a vizsgálatban) és a vizsgált tétel visszanyerését.
mortality of the control worms and the worms in each test vessel and any observed abnormal behaviour (e.g. soil avoidance, lack of reproduction in a bioaccumulation test with enchytraeids);
a férgek mortalitása a kontroll és az egyes vizsgálati edényekben, bármely megfigyelt rendellenes viselkedés (például talajkerülés, televényférgekkel végzett biológiai felhalmozódási vizsgálat esetén a szaporodás hiánya),
the dry weight to wet weight ratio of the soil and the test organisms (useful for normalisation);
a talaj és a vizsgálathoz használt organizmusok száraz és nedves tömegének az aránya (hasznos a viszonyításhoz),
the wet weights of the worms at each sampling time; for earthworms, the wet weights at start of the test, and at each sampling time before and after gut purging;
a férgek nedves tömege az egyes mintavételi időpontokban; földigilisztáknál a vizsgálat kezdetén és az egyes mintavételi időpontokban a béltartalom ürítése előtt és után mért nedves tömeg,
the lipid content of the test organisms (if determined);
a vizsgálathoz használt organizmusok lipidtartalma (ha meghatározásra került),
curves, showing the uptake and elimination kinetics of the test chemical in the worms, and the time to steady state;
a vizsgált vegyi anyag férgek általi felvételének és férgekből való kiürülésének kinetikáját ábrázoló görbék, valamint az állandósult állapot eléréséhez szükséges idő,
Ca and Cs (with standard deviation and range, if appropriate) for all sampling times (Ca expressed in g kg–1 wet and dry weight of whole body, Cs expressed in g kg–1 wet and dry weight of soil).
a mintavételi időpontokhoz tartozó Ca és Cs (szórással és tartománnyal együtt, esettől függően) (a Ca a férgek nedves és száraz tömegének kg-jára jutó g-ban, a Cs a talaj nedves és száraz tömegéhez kg-jára jutó g-ban kifejezve).
If a biota-soil accumulation factor (BSAF) is required (e.g. for comparison of results from two or more tests performed with animals of differing lipid content), Ca may additionally be expressed as g kg–1 lipid content of the organism, and Cs may be expressed as g kg–1 organic carbon (OC) of the soil;
Ha a bióta-talaj felhalmozódási tényezőt (BSAF) is meg kell határozni (például a különböző lipidtartalmú állatokkal végzett kettő vagy több vizsgálat eredményeinek az összehasonlítása céljára), a Ca az organizmus lipidtartalmának kg-jára jutó g-ban, a Cs pedig a talaj szerves szén (OC) tartalmának kg-jára jutó g-ban is kifejezhető,
BAF (expressed in kg soil·kg–1 worm), soil uptake rate constant ks (expressed in g soil kg–1 of worm day–1), and elimination rate constant ke (expressed in day–1); BSAF (expressed in kg soil OC kg–1 worm lipid content) may be reported additionally;
ezeken kívül a jegyzőkönyvben szerepelhet még a BAF (amely azt fejezi ki, hogy a talaj hány grammja jut a férgek kilogrammjára), a talajból való felvétel sebességi állandója (amely azt fejezi ki, hogy egy napra vetítve a talaj hány grammja jut a férgek kilogrammjára), valamint a ke ürülési sebességi állandó (amely az egy napra jutó ürülés mértékét fejezi ki); a BSAF (amely azt fejezi ki, hogy a talaj szerves széntartalmának hány kilogrammja jut a férgek lipidtartalmának egy kilogrammjára),
if measured: percentages of parent chemical, metabolites, and bound residues (i.e. the percentage of test chemical that cannot be extracted with common extraction methods) detected in soil and test animals;
ha a vizsgálatban a mérése szerepelt, a következők talajban és a vizsgálathoz használt állatokban kimutatott százaléka: a kiindulási vegyi anyag, a metabolitok és a megkötött maradványok (azaz a vizsgált vegyi anyag közönséges extrakciós módszerekkel nem kinyerhető százaléka),