natgillin/translations-raw huggingface dataset:
3,5-Stigmastadienes
3,5-sztigmasztadiének
Method of determining stigmastadienes in vegetable oils
A növényi olajok sztigmasztadiénjeinek meghatározási módszere
Trans isomers of fatty acids
Zsírsavak transz-izomerjei
Annex X A
A. melléklet
Analysis by gas chromatography of methyl esters of fatty acids
A zsírsavak metil-észtereinek gázkromatográfiás elemzése
Annex X B
B. melléklet
Preparation of methyl esters of fatty acids
A zsírsavak metil-észtereinek preparátumai
Determination of the composition of triglycerides with ECN42 (difference between the HPLC data and theoretical content)
Az ECN42 trigliceridek összetételének meghatározása (a HPLC-adatok és az elméleti összetétel közötti különbség)
Erythrodiol and Uvaol
Eritrodiol és uvaol
Determination of the composition and content of sterols and triterpene dialcohols by capillary-column gas chromatography
A szterinek és triterpén-alkoholok összetételének és mennyiségének meghatározása kapillárisoszlop-gázkromatográfiával
Determination of wax content by capillary-column gas chromatography
A viasztartalom meghatározása kapillárisoszlop-gázkromatográfiával
Aliphatic alcohols
Alifás alkoholok
Determination of aliphatic alcohols content by capillary-column gas chromatography
Az alifás alkoholok mennyiségének meghatározása kapillárisoszlop-gázkromatográfiával
Saturated fatty acids in position 2
A 2-es pozíción található telített zsírsavak
Determination of the percentage of 2-glyceryl monopalmitate
A 2-gliceril-monopalmitát százalékának meghatározása
DETERMINATION OF THE COMPOSITION AND CONTENT OF STEROLS AND TRITERPENES DIALCOHOLS BY CAPILLARY-COLUMN GAS CHROMATOGRAPHY
A SZTERINEK ÉS TRITERPÉN-ALKOHOLOK ÖSSZETÉTELÉNEK ÉS MENNYISÉGÉNEK MEGHATÁROZÁSA KAPILLÁRISOSZLOP-GÁZKROMATOGRÁFIÁVAL
The method describes a procedure for determining the individual and total sterols and triterpene dialcohols content of olive oils and olive-pomace oils.
Ez a módszer az olívaolajok és olívapogácsa-olajok egyes és összes szterin- és a triterpén-alkohol-tartalmának meghatározására szolgáló eljárást írja le.
The oil, with added α-cholestanol as an internal standard, is saponified with potassium hydroxide in ethanolic solution and the unsaponifiable matter is then extracted with ethyl ether.
Az olajat, amelyhez belső standardként α-kolesztanolt adnak, etanolos kálium-hidroxid oldattal elszappanosítják, majd az el nem szappanosítható anyagot dietil-éterrel kivonják.
The sterols and triterpene dialcohols fraction is separated from the unsaponifiable matter by thin-layer chromatography on a basic silica gel plate.
A szterin- és triterpén-alkohol-frakciót vékonyréteg kromatográfiás módszerrel, bázisos szilikagél lemezen elválasztják az el nem szappanosítható anyagtól.
The fractions recovered from the silica gel are transformed into trimethylsilyl ethers and then analysed by capillary column gas chromatography.
A szilikagélből visszanyert szterineket trimetilszilil-éterré alakítják és kapillárisoszlop-gázkromatográfia alkalmazásával elemzik.
The usual laboratory equipment and in particular the following:
Hagyományos laboratóriumi felszerelés különös tekintettel a következőkre:
250 ml flask fitted with a reflux condenser with ground-glass joints.
250 ml térfogatú lombik visszafolyós hűtővel és csiszolatos üveg csatlakozásokkal.
500 ml separating funnel.
500 ml térfogatú választótölcsér.
250 ml flasks.
250 ml térfogatú lombikok.
Complete apparatus for analysis by thin-layer chromatography using 20 x 20 cm glass plates.
Komplett elemzőberendezés vékonyréteg kromatográfiához, 20 × 20 nagyságú üveg tárgylemezekkel.
Ultraviolet lamp with a wavelength of 254 or 366 nm.
254 vagy 366 nm hullámhosszúságú ultraibolya lámpa.
100 μl and 500 μl microsyringes.
100 μl és 500 μl térfogatú mikrofecskendő.
Cylindrical filter funnel with a G3 porous septum (porosity 15-40 μm) of diameter approximately 2 cm and a depth of 5 cm, suitable for filtration under vacuum with male ground-glass joint.
Hengeres szűrőtölcsér G 3 porózus válaszfallal (15–40 μm porozitás), megközelítőleg 2 cm átmérőjű és megközelítőleg 5 cm magas, vákuum alatti szűrésre alkalmas, csiszolt üveg apacsatlakozóval.
50 ml vacuum conical flask with ground-glass female joint, which can be fitted to the filter funnel (point 3.7).
50 ml térfogatú vákuum Erlenmeyer lombik csiszolatos üveg anyacsatlakozóval a szűrőtölcsérrel (3.7. pont) való használathoz.
10 ml test tube with a tapering bottom and a sealing glass stopper.
10 ml térfogatú kúpos fenekű kémcső, csiszolatos üvegdugóval.
Gas chromatograph suitable for use with a capillary column with split injection system, consisting of:
Gázkromatográf split injektoros kapilláris oszloppal történő használatra, a következőkből felszerelve:
A thermostatic chamber for columns capable of maintaining the desired temperature with an accuracy of ± 1°C;
termosztatikus kamra az oszlopok számára (oszlopkemence) a kívánt hőmérséklet ± 1 °C pontosságon belüli tartásához;
A temperature-adjustable injection unit with a persilanised glass vaporising element and split system;
Szabályozható hőmérsékletű injektáló egység perszilán borítású üveges gőzölögtető berendezéssel és split rendszerrel;
A flame ionisation detector (FID);
lángionizációs detektor (FID);
Data acquisition system suitable for use with the FID detector (point 3.10.3.), capable of manual integration.
regisztráló-integrátor berendezés a lángionizációs detektorral (3.10.3. pont) történő használatra, mely alkalmas manuális integrációra.
Fused-silica capillary column of length 20 to 30 m, internal diameter 0,25 to 0,32 mm, coated with 5 % diphenyl - 95 % dimethylpolysiloxane (SE-52 or SE-54 stationary phase or equivalent), to a uniform thickness between 0,10 and 0,30 μm.
Ömlesztett szilícium-dioxidból készült, 20–30 m hosszúságú, 0,25–0,32 mm belső átmérőjű, egyenletes 0,10–0,30 μm vastagságú, 5 % difenil- és 95 % dimetil-polisziloxán összetételű bevonattal ellátott (SE-52 vagy SE-54 állófázis vagy annak megfelelő) kapilláris oszlop.
Microsyringe, of 10 ml capacity, for gas chromatography, with cemented needle suitable for split injection.
10 μl térfogatú mikrofecskendő gázkromatográfiához, split injektáláshoz alkalmas cementált tűvel.
Calcium dichloride desiccator
Kalcium-klorid szárítóberendezés
Potassium hydroxide minimum titre 85 %.
Kálium-hidroxid (minimum 85 %-os koncentrációjú).
Potassium hydroxide ethanolic solution, approximately 2 N.
Kálium-hidroxid, megközelítőleg 2 N etanolos oldat.
Dissolve 130 g of potassium hydroxide (point 4.1) with cooling in 200 ml of distilled water and then make up to one litre with ethanol (point 4.10).
130 g kálium-hidroxid (4.1. pont) hűtés közben feloldva 200 ml desztillált vízben, majd etanollal feltöltve egy liter mennyiségűre (4.10. pont).
Keep the solution in well-stoppered dark glass bottles and stored maximum two days.
Az oldatot jól lezárt, sötét színű üvegben kell tárolni, legfeljebb két napig.
Ethyl ether, for analysis quality.
Analízishez megfelelő tisztaságú dietil-éter.
Potassium hydroxide ethanolic solution, approximately 0,2 N.
Kálium-hidroxid, megközelítőleg 0,2 N etanolos oldat.
Dissolve 13 g of potassium hydroxide (point 4.1) in 20 ml of distilled water and make up to one litre with ethanol (point 4.10).
13 g kálium-hidroxid (4.1. pont) feloldva 20 ml desztillált vízben, majd etanollal feltöltve egy liter mennyiségűre (4.10. pont).
Anhydrous sodium sulphate, for analysis quality.
Analízishez megfelelő tisztaságú vízmentes nátrium-szulfát.
Glass plates (20x20 cm) coated with silica gel, without fluorescence indicator, thickness 0,25 mm (commercially available ready for use).
Szilikagél bevonatú, 0,25 mm vastagságú üveg tárgylemezek (20 × 20 cm), fluoreszencia indikátor nélkül (kereskedelmi fogalomban használatra készen kapható).
Toluene, for chromatography quality.
Toluol, kromatográfiás minőség.
Acetone, for chromatography quality.
Aceton, kromatográfiás minőség.
n-Hexane, for chromatography quality.
n-hexán, kromatográfiás minőség.
Ethyl ether, for chromatography quality.
Dietil-éter, kromatográfiás minőség.
Ethanol of analytical quality.
Analízishez megfelelő tisztaságú etanol.
Ethyl acetate of analytical quality.
Analízishez megfelelő tisztaságú etil-acetát.
Reference solution for thin-layer chromatography: cholesterol or phytosterols, and erythrodiol 5 % solution in ethyl acetate (point 4.11).
Referenciaoldat a vékonyréteg-kromatográfiához: koleszterin vagy fitoszterinek és eritrodiol 5 %-os oldata etil-acetátban (4.11. pont).
2,7-dichlorofluorescein, 0,2 % in ethanolic solution.
2,7–diklórfluoreszcein 0,2 %-os oldata etanolban.
Make slightly basic by adding a few drops of 2 N alcoholic potassium hydroxide solution (point 4.2).
Enyhén meglúgosítva néhány csepp 2 N alkoholos kálium-hidroxid oldat hozzáadásával (4.2. pont).
Anhydrous pyridine, for chromatography quality (see Note 5).
Vízmentes piridin, kromatográfiás minőség (lásd 5. megjegyzés).
Hexamethyl disilazane of analytical quality.
Analízishez megfelelő tisztaságú hexametildiszilazán.
Trimethylchlorosilane of analytical quality.
Analízishez megfelelő tisztaságú trimetilklórszilán.
Sample solutions of sterol trimethylsilyl ethers.
Szterin-trimetilszilil-éterek referenciaoldatai.
To be prepared at the time of use from sterols and erythrodiol obtained from oils containing them.
A felhasználáskor kell előállítani az azokat tartalmazó olajokból származó szterinekből és eritrodiolból.
α-cholestanol, purity more than 99 % (purity must be checked by GC analysis).
α-kolesztanol, 99 % feletti tisztaságú (a tisztaságot GC elemzéssel kell ellenőrizni).
α-cholestanol internal standard solution, 0,2 % solution (m/V) in ethyl acetate (point 4.11).
α-kolesztanol, 0,2 % (m/V) oldata etil-acetátban (belső standard).(4.11. pont).
Phenolphthalein solution, 10 g/L in ethanol (point 4.10).
Fenolftaleinoldat, 10 g/l etanolban (4.10. pont).
Carrier gas: hydrogen or helium, gas-chromatographic purity.
Vivőgáz: hidrogén vagy hélium, gázkromatográfiai felhasználáshoz megfelelő tisztaságú.
Auxiliary gases: hydrogen, helium, nitrogen and air, of gas-chromatographic purity.
Segédgázok: hidrogén, hélium, nitrogén és levegő, gázkromatográfiai felhasználáshoz megfelelő tisztaságú.
n-Hexane (point 4.9)/ethyl ether (point 4.10) mixture 65:35 (V/V).
n-hexán (4.9. pont)/etil-éter (4.10. pont) 65:35 (V/V) arányú keveréke.
Silylation reagent, consisting of a 9:3:1 (V/V/V) mixture of pyridine/hexamethyl disilazane/trimethylchlorosilane.
Szililező reagens piridin/hexametildiszilazán/trimetilklórszilán 9:3:1 (V/V/V) arányú keverékéből.
Preparation of the unsaponifiable matter.
El nem szappanosítható anyag készítése.
Using a 500 μl microsyringe (point 3.6) introduce into the 250 ml flask (point 3.1) a volume of the α-cholestanol internal standard solution (point 4.20) containing an amount of cholestanol corresponding to approximately 10 % of the sterol content of the sample.
Egy 500 μl mikrofecskendő (3.6. pont) segítségével tegyen a 250 ml-es lombikba (3.1. pont) olyan mennyiségű 0,2 %-os α-kolesztanol kloroformos oldatot (4.20. pont), amelyben a kolesztanol mennyisége az analízishez vett minta szterintartalmának megközelítőleg 10 %-a.
For example, for 5 g of olive oil sample add 500 μl of the α-cholestanol solution (point 4.20) and 1500 μl for olive-pomace oil.
Például 5 g mintához adjon 500 μl 0,2 %-os α-kolesztanol oldatot (4.20. pont), ha olívaolajat analizál, és 1500 μl-t, ha olívapogácsa-olajat analizál.
Evaporate until dryness with a gentle current of nitrogen in a warm water bath, after cooling the flask, weigh 5 ± 0,01 g of the dry filtered sample into the same flask.
Enyhe nitrogénáramban való párologtatással, meleg vízfürdőben, szárítsa ki, majd a lombik lehűtése után mérjen pontosan 5 ± 0,01 g-ot a száraz, szűrt mintából ugyanabba a lombikba.
Animal or vegetable oils and fats containing appreciable quantities of cholesterol may show a peak having a retention time close to cholestanol.
Az észlelhető mennyiségű koleszterint tartalmazó állati vagy növényi olajok és zsírok esetében olyan csúcsok jelennek meg, amelyek retenciós ideje közel van a kolesztanoléhoz.
If this occurs, the sterol fraction will have to be analysed in duplicate with and without internal standard.
Ennek előfordulása esetén a szterinfrakciót kétszer kell elemezni, egyszer belső standard nélkül, egyszer pedig belső standarddal.
Add 50 ml of 2 N ethanolic potassium hydroxide solution (point 4.2) and some pumice, fit the reflux condenser and heat to gentle boiling until saponification takes place (the solution becomes clear).
Adjon hozzá 50 ml 2 N etanolos kálium-hidroxid oldatot (4.2. pont) és néhány forrkövet, csatlakoztassa a visszafolyós hűtőt, és vízfürdőben fokozatosan hevítse forrásig, amíg a szappanképződés meg nem indul (az oldat tisztává válik).
Continue heating for a further 20 minutes, then add 50 ml of distilled water from the top of the condenser, detach the condenser and cool the flask to approximately 30 °C.
Folytassa a melegítést további 20 percen keresztül, majd adjon hozzá 50 ml desztillált vizet a kondenzátor tetején keresztül, ezután szerelje le a kondenzátort, és hűtse le a lombikot megközelítőleg 30 °C-ra.
Transfer the contents of the flask quantitatively into a 500 ml separating funnel (point 3.2) using several portions of distilled water (50 ml).
A lombik tartalmát töltse át egy 500 ml térfogatú választótölcsérbe (3.2. pont) több rész desztillált vízzel (50 ml) történő öblítés mellett.
Add approximately 80 ml of ethyl ether (point 4.10), shake vigorously for approximately 60 seconds, periodically releasing the pressure by inverting the separating funnel and opening the stopcock.
Adjon hozzá megközelítőleg 80 ml dietil-étert (4.10. pont) és körülbelül 60 másodpercen keresztül rázza erőteljesen; a nyomás kiengedéséhez időszakosan fordítsa át a választótölcsért és nyissa meg az elzárócsapot.
Perform two further extractions on the water-alcohol phase in the same way using 60 to 70 ml of ethyl ether (point 4.10).
Válassza le a szappanos oldatot amennyire csak lehetséges, és gyűjtse össze egy másik választótölcsérbe Végezzen két további kivonást a vizes-alkoholos fázison hasonló módon, esetenként 60–70 ml etil-éter felhasználásával (4.10. pont).
Note 2: Any emulsion can be destroyed by adding small quantities of ethanol (point 4.11).
2. megjegyzés: Az emulziók megszüntethetők hozzáadott kis mennyiségű etilalkohol segítségével (4.11. pont).
Combine the three ether extracts in one separating funnel containing 50 ml of water.
A három éterkivonatot keverje össze egy közös választótölcsérben 50 ml vízzel.
Continue to wash with water (50 ml) until the wash water no longer gives a pink colour on the addition of a drop of phenolphthalein solution (point 4.21).
Folytassa az átmosást vízzel (50 ml-enként), amíg a mosóvíz már nem válik rózsaszínűvé egy csepp fenolftaleinoldat hozzáadására (4.21. pont).
When the wash water has been removed, filter on anhydrous sodium sulphate (point 4.5) into a previously weighed 250 ml flask, washing the funnel and filter with small quantities of ethyl ether (point 4.10).
A mosóvíz eltávolítását követően, szűrje át vízmentes nátrium-szulfáton (4.5. pont) egy 250 ml térfogatú lombikba, amelynek súlyát előzőleg lemérte, a tölcsért és a szűrőt mossa ki több adagban, kis mennyiségű dietil-éterrel (4.10. pont).
Evaporate the solvent by distillation on a rotary evaporator at 30 °C under vacuum.
Desztillációval párologtassa el az oldószert egy rotációs bepárlóban, 30 °C-on, vákuumban.
Add 5 ml of acetone and remove the volatile solvent completely in a gentle current of air.
Adjon hozzá 5 ml acetont és az illékony oldószert teljesen távolítsa el enyhe légáramban.
Dry the residue in the oven at 103±2 °C for 15 min. Cool in desiccators and weigh to the nearest 0,1 mg.
Kemencében 103±2 °C-on hőmérsékleten szárítsa a maradékot 15 percen keresztül. Exszikkátorban hagyja kihűlni, és mérje meg a súlyát 0,1 mg pontossággal.
Separation of the sterol and triterpene dialcohols fraction (erythrodiol + uvaol)
A szterin- és triterpén-alkohol-frakciók (eritriol + uvaol) elkülönítése
Preparation of the basic thin layer chromatography plates.
A bázisos vékonyréteg kromatográfiás lemezek előkészítése.
Immerse the silica gel plates (point 4.6) about 4 cm in the 0,2 N ethanolic potassium hydroxide solution (point 4.5) for 10 seconds, then allow to dry in a fume cupboard for two hours and finally place in an oven at 100 °C for one hour.
Merítse be a szilikagél lapokat (4.6. pont) teljesen 0,2 N etanolos kálium-hidroxid oldatba (4.5. pont) 10 másodpercre, majd hagyja őket vegyifülke alatt száradni két óráig, végül helyezze őket 100 °C hőmérsékletű kemencébe egy órára.
Remove from the oven and keep in a calcium chloride desiccator (point 3.13) until required for use (plates treated in this way must be used within 15 days).
Vegye ki a lapokat a kemencéből, és felhasználásig tegye őket kalcium-kloridot tartalmazó exszikkátorba (3.13. pont) (az így kezelt lapokat 15 napon belül fel kell használni).
When basic silica gel plates are used to separate the sterol fraction there is no need to treat the unsaponifiable fraction with alumina.
Amennyiben bázikus szilikagél lapokat használ a szterinfrakció leválasztásához, akkor nincsen szükség az el nem szappanosítható anyagok timfölddel történő kezelésére.
In this way all compounds of an acid nature (fatty acids and others) are retained on the spotting line and the sterols band is clearly separated from the aliphatic and triterpene alcohols band.
Ebből az következik, hogy minden savas jellegű komponens (zsírsavak és egyéb savak) visszamarad a startvonalon, és a szterinek sávja egyértelműen elválik a nyílt szénláncú alkohol- és a triterpénalkohol-sávoktól.
Place hexane/ethyl ether mixture (point 4.24) (Note 4) into the development chamber, to a depth of approximately 1 cm.
Hexán/etil-éter elegyét (4.24. pont) (4. megjegyzés) vezesse be egy futtatókádba megközelítőleg 1 cm mélységben.
Close the chamber with the appropriate cover and leave thus for at least half an hour, in a cool place, so that liquid-vapour equilibrium is established strips of filter paper dipping into the eluent may be placed on the internal surfaces of the chamber.
Zárja le a kádat, és hagyja hűvös helyen megközelítőleg fél órán keresztül, hogy beálljon az egyensúly a gőz és a folyadék között. Futtatószerbe mártott szűrőpapírcsíkok erősíthetők a kád belső felületére.
This reduces developing time by approximately one-third and brings about more uniform and regular elution of the components.
Ezzel megközelítőleg egyharmadával csökkenthető a futtatási idő, és egyenletesebb lesz az összetevők eluálódása.
The developing mixture needs to be replaced for every test, in order to achieve perfectly reproducible elution conditions, alternative solvent 50:50 (V/V) n-hexane/ethyl ether may be used.
A futtatóelegyet minden vizsgálathoz ki kell cserélni, hogy tökéletesen reprodukálható futtatási körülményeket biztosítson; az előbbi helyett használhatja n-hexán/etil-éter 50:50 térfogatarányú (v/v) oldatát is.
Prepare an approximately 5 % solution of the unsaponifiable (point 5.1.5) in ethyl acetate (point 4.12) and, using the 100 μl microsyringe, depose 0,3 ml of the solution on a narrow and uniform streak on the lower end (2 cm) of the chromatographic plate (point 5.2.1).
Készítsen az el nem szappanosítható anyagból (5.1.5. pont) megközelítőleg 5 %-os etil-acetátos oldatot (4.12. pont), és a 100 μl térfogatú mikrofecskendő segítségével ebből az oldatból 0,3 ml-t vigyen fel egyenletes és vékony csíkokban egy kromatográfiás lap (5.2.1. pont) alsó részére (2 cm-re a szélétől).
In line with the streak, place 2 to 3 μl of the material reference solution (point 4.13), so that the sterol and triterpene dialcohols band can be identified after developing.
A szterin- és triterpén-alkoholsáv futtatás utáni azonosítására a csíkokhoz igazodva vigyen fel 2–3 μl referenciaoldatot (4.13. pont).
Place the plate in the developing chamber prepared as specified in point 5.2.2.
A lemezt helyezze az 5.2.2. pont szerint előkészített futtatókádba.
The ambient temperature should be maintained between 15 and 20 °C (Note 5).
A környezeti hőmérsékletet 15–20 °C között kell tartani (5. megjegyzés).
Immediately close the chamber with the cover and allow eluting until the solvent front reaches approximately 1 cm from the upper edge of the plate.
A kádat azonnal fedéllel zárja, le és a mintát hagyja eluálódni, ameddig az oldószerfront el nem éri a lemez felső szélétől számított 1 cm távolságot.
Remove the plate from the developing chamber and evaporate the solvent in a flow of hot air or by leaving the plate for a short while, under a hood.
Ekkor vegye ki a lemezt a futtatókádból, és meleglevegő-áram segítségével vagy rövid időre elszívófülkébe helyezve párologtassa el az oldószert.
Note 5: Higher temperature could worsen the separation.
5. megjegyzés: Magasabb hőmérséklet hatására romlik az elválasztás hatásfoka.
Spray the plate lightly and uniformly with the 2,7-dichlorofluorescein solution (point 4.14) and then leave to dry.
Kismértékben és egyenletesen permetezze be a lemezt 2,7–diklórfluoreszcein oldattal (4.14. pont), és hagyja megszáradni.
When the plate is observed under ultraviolet light, the sterols and triterpene dialcohols bands can be identified through being aligned with the spots obtained from the reference solution (point 4.13).
Mikor ultraibolya fényben nézi a lapot, a szterin- és triterpén-alkoholsávokat a referenciaoldat foltjaival történő összehasonlítás alapján lehet felismerni (4.13. pont).
Mark the limits of the bands along the edges of the fluorescence with a black pencil (see TLC plate figure 3).
A fluoreszkáló terület mentén jelölje be a sávok határait fekete ceruzával (lásd VRK-lemezek 3. ábra).
By using a metal spatula, scrape off the silica gel of the marked area.
A kijelölt területen található szilikagélt kaparja le egy fémspatulával.
Place the finely comminuted material removed into the filter funnel (point 3.7).
Az eltávolított és apróra zúzott anyagot tegye egy szűrőtölcsérbe (3.7. pont).
Add 10 ml of hot ethyl acetate (point 4.12), mix carefully with the metal spatula and filter under vacuum, collecting the filtrate in the conical flask (point 3.8.) attached to the filter funnel.
Adjon hozzá 10 ml forró etil-acetátot (4.12. pont), és alaposan keverje össze fémspatula segítségével, majd vákuumban szűrje le, a szűrletet gyűjtse össze a szűrőtölcsérhez csatlakoztatott Erlenmeyer lombikban (3.8. pont).
Wash the residue in the flask three times with ethyl ether (point 4.3) (approximately 10 ml each time), collecting the filtrate in the same flask attached to the funnel, evaporate the filtrate to a volume of 4 to 5 ml, transfer the residual solution to the previously weighed 10 ml test tube (point 3.9), evaporate to dryness by mild heating, in a gentle flow of nitrogen, make up again using a few drops of acetone (point 4.8), evaporate again to dryness,
A lombikban maradó anyagot mossa ki háromszor dietil-éterrel (4.3. pont) (minden alkalommal megközelítőleg 10 ml-rel), a szüredéket gyűjtse ugyanabba a tölcsérhez csatlakoztatott lombikba. Párolja be a szüredéket megközelítőleg 4–5 ml térfogatúra, és a maradék oldatot töltse egy 10 ml térfogatú kémcsőbe (3.9. pont), amelynek súlyát előzőleg lemérte; a kémcsövet gyenge nitrogénáramban, kismértékű melegítéssel párolja be, majd oldja be ismét pár csepp acetonban (4.8. pont) és bepárlással ismét szárítsa ki.
The residue contained in the test tube must consist of the sterol and triterpene dialchols fractions.
A kémcsőben maradt anyag a szterin- és triterpén-alkoholfrakció.
Preparation of the trimethylsilyl ethers.
Trimetilszilil-éterek készítése.
Add the silylation reagent (point 4.25) (Note 6), in the ratio of 50 μl for every milligram of sterols and triterpene dialcohols, in the test tube containing the sterol and triterpene fraction, avoiding any uptake of moisture (Note 7).
Töltse a szterin- és triterpén-alkohol-frakciót tartalmazó kémcsőbe a szililező reagenst (4.25. pont) (6. megjegyzés), a szterinek és triterpén-alkoholok minden milligrammjához 50 μl-nyi mennyiségben úgy, hogy az közben ne vegyen fel nedvességet (7. megjegyzés).
Ready for use solutions are available commercially.
A használatra kész oldatok kereskedelmi forgalomban kaphatók.