natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Gentle aeration of the overlying water in test vessels is supplied preferably 24 hours after addition of the larvae and is pursued throughout the test (care should be taken that dissolved oxygen concentration does not fall below 60 per cent of ASV). Aeration is provided through a glass Pasteur pipette fixed 2-3 cm above the sediment layer (i.e. one or few bubbles/sec). When testing volatile chemicals, consideration may be given not to aerate the sediment-water system.
A lárvák vizsgálati edényekbe történő behelyezését követően lehetőleg 24 órán keresztül finoman levegőztessük a fedővizet, és a vizsgálat egész időtartama alatt biztosítsunk gyenge levegőztetést (ügyelve arra, hogy az oldott oxigén koncentrációja ne süllyedjen a levegő telítettségi érték (ASV) 60 százaléka alá. A levegőt az üledékréteg fölött 2–3 cm-rel rögzített üveg Pasteur pipettán keresztül vezessük be (másodpercenként egy vagy néhány buborék). Illékony vegyi anyagok vizsgálata esetén megfontolandó, hogy az üledék-víz elrendezés levegőztetésétől eltekintsünk.
The test is conducted at a constant temperature of 20 °C (± 2 °C).
A vizsgálatot 20 °C (± 2 °C) állandó hőmérséklet mellett hajtsuk végre.
For C. tentans and C. yoshimatui recommended temperatures are 23 °C and 25 °C (± 2 °C), respectively.
C. tentans használata esetén 23 °C, a C. yoshimatui esetében pedig 25 °C az ajánlott hőmérséklet (± 2 °C).
A 16 hours photoperiod is used and the light intensity should be 500 to 1000 lux.
16 órás fényperiódust alkalmazzunk, 500–1000 lux fényintenzitással.
Exposure duration
Expozíciós időtartam
The exposure commences with the addition of larvae to the spiked and control vessels.
A kitétel a lárvák szennyezett vizet tartalmazó, illetve kontroll edényekbe történő behelyezésekor veszi kezdetét.
The maximum exposure duration is 28 days for C. riparius and C. yoshimatsui, and 65 days for C. tentans.
A maximális expozíciós időtartam a C. riparius és a C. yoshimatsui esetében 28 nap, C. tentans használata esetén 65 nap.
If midges emerge earlier, the test can be terminated after a minimum of five days after emergence of the last adult in the control.
Ha az árvaszúnyogok előbb kikelnek, akkor a vizsgálatot legalább öt nappal azt követően lehet befejezni, hogy a kontroll edényekben az utolsó kifejlett példány megjelent.
Emergence
Kikelés
The development time and the total number of fully emerged male and female midges are determined.
Meg kell határozni a fejlődési időt és a kikelt kifejlett hím és nőstény árvaszúnyogok összes számát.
Males are easily identified by their plumose antennae.
A hímek tollas csápjukról könnyen felismerhetők
The test vessels should be observed at least three times per week to make visual assessment of any abnormal behaviour (e.g. leaving sediment, unusual swimming), compared with the control.
A kísérleti edényekben legalább hetente háromszor kell ellenőrizni a kontroll edényekben megfigyelhetőhöz képest rendellenesnek értékelhető viselkedést (például üledék elhagyása, szokatlan úszás).
During the period of expected emergence a daily count of emerged midges is necessary.
A kikelés várható időszaka alatt naponta meg kell számolni a kikelt árvaszúnyogokat.
The sex and number of fully emerged midges are recorded daily.
Naponta fel kell jegyezni a kikelt kifejlett egyedek nemét és számát.
After identification the midges are removed from the vessels.
Az azonosítást követően az árvaszúnyogokat ki lehet engedni az edényekből.
Any egg masses deposited prior to the termination of the test should be recorded and then removed to prevent re-introduction of larvae into the sediment.
A vizsgálat befejezése előtt lerakott petecsomókat dokumentálni kell, és az új lárvák üledékbe kerülésének megelőzése érdekében el kell távolítani.
The number of visible pupae that have failed to emerge is also recorded.
Fel kell jegyezni továbbá a ki nem kelt bábok megfigyelhető számát.
Guidance on measurement of emergence is provided in Appendix 5.
A kikelés méréséhez az 5. függelék nyújt útmutatást.
Growth and survival
Fejlődés és túlélés
If data on 10-day larval survival and growth are to be provided, additional test vessels should be included at the start, so that they may be used subsequently.
Ha a lárvák 10 napos túlélési és fejlődési adatait is be kell mutatni, akkor már a vizsgálat kezdetétől fogva a későbbiekben használható kiegészítő kontroll edényeket kell alkalmazni.
The sediment from these additional vessels is sieved using a 250 μm sieve to retain the larvae.
Az ezekből származó üledéket átszitáljuk egy 250 μm-es szitán, amelyen a lárvák fennmaradnak.
Criteria for death are immobility or lack of reaction to a mechanical stimulus.
Az elhullás kritériumai a mozdulatlanság, illetve a mechanikai ingerekre adott válasz hiánya.
Larvae not recovered should also be counted as dead (larvae which have died at beginning of the test may have been degraded by microbes).
A hiányzó lárvákat is elhullottnak kell tekinteni (a vizsgálat elején elpusztult lárvákat a mikroorganizmusok már lebonthatták).
The (ash free) dry weight of the surviving larvae per test vessel is determined and the mean individual dry weight per vessel calculated.
Meghatározzuk a túlélő lárvák edényenkénti (elhullott lárvák maradványai nélküli) száraz tömegét, majd kiszámítjuk az egyedek egy edényre eső átlagos száraz tömegét.
It is useful to determine which instar the surviving larvae belong to; for that measurement of the width of the head capsule of each individual can be used.
A túlélő lárvák fejlődési szakaszának a meghatározása is hasznos; ezt a fejszélesség mérése segítségével tehetjük meg.
Concentration of the test substance
A vizsgált anyag koncentrációja
Prior to test commencement (i.e. addition of larvae), samples of bulk sediment are removed from at least one vessel per treatment for the analytical determination of the test substance concentration in the sediment.
A vizsgálat megkezdése (azaz a lárvák behelyezése) előtt kezelésenként legalább egy edényből vegyünk ömlesztett üledék mintát a vizsgált anyag koncentrációjának analitikai meghatározásához az üledékben.
It is recommended that, as a minimum, samples of the overlying water, the pore water and the sediment be analysed at the start (see paragraph 24) and at the end of the test, at the highest concentration and a lower one.
A fedővíz, a pórusvíz és az üledék legnagyobb és legkisebb koncentrációnál vett mintáit ajánlott legalább a vizsgálat kezdetén és végén analizálni (lásd a 24. bekezdést).
These determinations of test substance concentration inform about the behaviour/partitioning of the test substance in the water-sediment system.
A vizsgált anyag így meghatározott koncentrációja tájékoztatást nyújt a vizsgált anyag viselkedéséről/megoszlásáról a víz-üledék elrendezésben.
When intermediate measurements are made (e.g. at day 7) and if the analysis needs large samples which cannot be taken from test vessels without influencing the test system, analytical determinations should be performed on samples from additional test vessels treated in the same way (including the presence of test organisms) but not used for biological observations.
Ha a vizsgálat közben is végzünk méréseket (például a 7. napon), és az analízishez nagy minták szükségesek, amelyek nem gyűjthetők a kísérleti edényekből anélkül, hogy a mintavétel a vizsgálati elrendezésre hatással lenne, az analitikai meghatározásokat ugyanolyan kezelésnek alávetett (a vizsgálathoz használt organizmusokat is beleértve), de a biológiai megfigyelések céljára nem használt, külön vizsgálati edényekből származó mintákon kell elvégezni
In some cases it might not be possible to analyse concentrations in the pore water as the sample size is too small.
Ha a minta mérete túl kicsi, akkor előfordulhat, hogy nem analizálható a koncentráció a pórusvízben.
Physical-chemical parameters
Fizikai és kémiai paraméterek
pH and temperature of the test vessels should be measured in an appropriate manner (see paragraph 10).
A kísérleti edények pH-ját és hőmérsékletét megfelelő módon kell mérni (lásd a 10. bekezdést).
Hardness and ammonia should be measured in the controls and one test vessel at the highest concentration at the start and the end of the test.
A vizsgálat kezdetén és végén a legnagyobb koncentrációnál meg kell mérni a víz keménységét és ammónia tartalmát a kontroll edényekben és egy kísérleti edényben.
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the development rate and the total number of fully emerged male and female midges, or in the case of the 10-day test effects on survival and weight of the larvae.
E vizsgálat célja a vizsgált anyag kikelt kifejlett hím és nőstény árvaszúnyogok összes számára és fejlődési ütemére, illetve 10 napos vizsgálat esetében a lárvák túlélésére és súlyára gyakorolt hatásainak a meghatározása.
If there are no indications of statistically different sensitivities of sexes, male and female results may be pooled for statistical analyses.
Ha semmi nem utal a nemek statisztikailag eltérő érzékenységére, akkor a hímekre és a nőstényekre vonatkozó eredmények a statisztikai elemzés céljára összevonhatók.
The sensitivity differences between sexes can be statistically judged by e.g. a χ2-r × 2 table test.
Az érzékenység nemek közötti különbségének statisztikai megítélésére például a χ2-r x 2 próba alkalmazható.
Larval survival and mean individual dry weight per vessel must be determined after 10 days where required.
Szükség esetén 10 nap elteltével meg kell határozni a lárvák túlélését és az egyedek egy edényre eső átlagos száraz tömegét.
Effect concentrations expressed and based on dry weight, are calculated preferably based on measured sediment concentrations at the beginning of the test (see paragraph 38).
A száraz tömeg alapján meghatározott és kifejezett hatáskoncentrációkat lehetőleg a vizsgálat kezdetén mért üledékkoncentrációk alapján kell kiszámítani (lásd a 38. bekezdést).
To compute a point estimate for the EC50 or any other ECx, the per-vessel statistics may be used as true replicates.
Az EC50 vagy bármely más ECx pontbecsléséhez az edényenkénti statisztikákat valódi ismétléseknek kell tekinteni.
In calculating a confidence interval for any ECx the variability among vessels should be taken into account, or it should be shown that this variability is so small that it can be ignored.
Bármely ECx konfidencia intervallumának a kiszámítása során vagy figyelembe kell venni az edények közötti eltéréseket, vagy ki kell mutatni, hogy az eltérés elhanyagolható mértékű.
When the model is fitted by Least Squares, a transformation should be applied to the per-vessel statistics in order to improve the homogeneity of variance.
Ha a modell mérési pontokhoz illesztéséhez a legkisebb négyzetek módszerét használjuk, akkor a szóráshomogenitás javítása érdekében az edényenkénti statisztikákat transzformálni kell.
However, ECx values should be calculated after the response is transformed back to the original value.
Az ECx értékeket az eredeti válaszértékekre való visszatranszformálás után kell kiszámítani.
When the statistical analysis aims at determining the NOEC/LOEC by hypothesis testing, the variability among vessels needs to be taken into account, e.g. by a nested ANOVA.
Ha a statisztikai elemzés célja a NOEC/LOEC hipotézisvizsgálattal történő meghatározása, az edények közötti eltérések figyelembevételére például hierarchikus varianciaanalízist (nested ANOVA) kell végezni.
Alternatively, more robust tests (21) can be appropriate in situations where there are violations of the usual ANOVA assumptions.
Alternatívaként ennél robosztusabb próbák (21) is helyénvalók lehetnek olyan esetekben, amikor az ANOVA szokásos alapfeltevései nem teljesülnek.
Emergence ratio
Kikelési arány
Emergence ratios are quantal data, and can be analyzed by the Cochran-Armitage test applied in step-down manner where a monotonic dose-response is expected and these data are consistent with this expectation.
A kikelési arányok kvantális adatok, amelyek a Cochran-Armitage próbával elemezhetők a lefelé lépegető eljárást alkalmazva, amennyiben arra számítunk, hogy a dózis-válasz függvény monoton, és az adatok ennek az elvárásnak megfelelnek.
If not, a Fisher’s exact or Mantel-Haenszel test with Bonferroni-Holm adjusted p-values can be used.
Ha ez nem így van, akkor a Fisher-féle egzakt próbát vagy a Mantel-Haenszel próbát használhatjuk a p-értékek Bonferroni- vagy Holm-féle eljárással történő korrekciójával.
If there is evidence of greater variability between replicates within the same concentration than a binomial distribution would indicate (often referenced as “extra-binomial” variation), then a robust Cochran-Armitage or Fisher exact test such as proposed in (21), should be used.
Ha az ugyanazon koncentrációhoz tartozó ismétlések közötti eltérések bizonyítottan nagyobbak, mint amit a binomiális eloszlás indokolna (amelyet gyakran »extra-binomiális« variációnak neveznek), akkor egy robusztus Cochran-Armitage vagy Fisher-féle egzakt próbát kell alkalmazni, mint amilyet például a (21) javasol.
The sum of midges emerged per vessel, ne, is determined and divided by the number of larvae introduced, na:
Meg kell határozni az egy edényre jutó kikelt árvaszúnyogok számát (ne), majd el kell osztani a behelyezett lárvák számával (na):
emergence ratio
ER kikelési arány
number of midges emerged per vessel
kikelt árvaszúnyogok egy edényre jutó száma
number of larvae introduced per vessel
behelyezett lárvák egy edényre jutó száma
An alternative that is most appropriate for large sample sizes, when there is extra binomial variance, is to treat the emergence ratio as a continuous response and use procedures such as William’s test when a monotonic dose-response is expected and is consistent with these ER data.
Egy másik, legfőképp nagy minták és extra-binomiális variáció esetén alkalmazható lehetőség, hogy a kikelési arányt folyamatos változóként kezeljük, és amennyiben arra számítunk, hogy a dózis-válasz függvény monoton, és ez az elvárás összhangban áll a kapott ER adatokkal, a Williams próbához hasonló eljárást alkalmazunk.
Dunnett’s test would be appropriate where monotonicity does not hold.
Ha a monotonitás nem áll fenn, a Dunnett próbát lehet alkalmazni.
A large sample size is defined here as the number emerged and the number not emerging both exceeding five, on a per replicate (vessel) basis.
A nagy mintát itt úgy értelmezzük, hogy az egy ismétlésre (edényre) jutó kikelt és nem kikelt árvaszúnyogok száma egyaránt meghaladja az ötöt.
To apply ANOVA methods values of ER should first be transformed by the arcsin-sqrt-transformation or Freeman-Tukey transformation to obtain an approximate normal distribution and to equalise variances.
Az ANOVA módszerek alkalmazásához az ER értékeket először négyzetgyök arkusz-szinusz vagy Freeman-Tukey transzformáció segítségével átalakítjuk, hogy a normálishoz közeli eloszlást kapjunk, és a szórásokat kiegyenlítsük.
The Cochran-Armitage, Fisher’s exact (Bonferroni), or Mantel-Haenszel tests can be applied when using the absolute frequencies.
Abszolút gyakoriságok esetén a Cochran-Armitage, a Fisher-féle egzakt (Bonferroni) vagy a Mantel-Haenszel próbát használhatjuk.
The arcsin-sqrt transformation is applied by taking the inverse sine (sin-1) of the square root of ER.
A négyzetgyök arkusz-szinusz transzformáció az ER négyzetgyökének az arkusz szinuszát (sin–1) adja.
For emergence ratios, ECx-values are calculated using regression analysis (or e.g. probit (22), logit, Weibull, appropriate commercial software etc.).
A kikelési arányok meghatározásához regressziós analízissel (vagy például probit (22), logit, Weibull, kereskedelmi forgalomban kapható megfelelő szoftverrel) számítjuk ki az ECx értékeket.
If regression analysis fails (e.g. when there are less than two partial responses), other non-parametric methods such as moving average or simple interpolation are used.
Ha a regressziós analízis alkalmatlannak bizonyul (például kettőnél kevesebb részleges válasz esetén), más nemparaméteres módszert, például mozgóátlag-módszert vagy egyszerű interpolációt használunk.
Development rate
Fejlődési ütem
The mean development time represents the mean time span between the introduction of larvae (day 0 of the test) and the emergence of the experimental cohort of midges.
Az átlagos fejlődési idő a lárvák kísérleti edényekbe történő behelyezésétől (a vizsgálat 0. napjától) az árvaszúnyogok kikeléséig tartó átlagos időtartamot jelenti.
(For the calculation of the true development time, the age of larvae at the time of introduction should be considered).
(A valódi fejlődési idő kiszámításához figyelembe kell venni a lárvák életkorát a behelyezés időpontjában).
The development rate is the reciprocal of the development time (unit: 1/day) and represents that portion of larval development which takes place per day.
A fejlődési ütem a fejlődési idő reciproka (egysége: 1/nap), és a lárvafejlődés egy napra eső részét fejezi ki.
The development rate is preferred for the evaluation of these sediment toxicity studies as its variance is lower, and it is more homogeneous and closer to normal distribution as compared to development time.
Az ilyen jellegű üledék-toxicitási vizsgálatok értékeléséhez inkább a fejlődési ütemet használjuk, mivel kisebb a szórása, homogénebb és a normálishoz közelebb álló eloszlást mutat, mint a fejlődési idő.
Hence, powerful parametric test procedures may be used with development rate rather than with development time.
Ennélfogva a fejlődési ütem hatásosabb paraméteres vizsgálati eljárások alkalmazását teszi lehetővé, mint a fejlődési idő.
For development rate as a continuous response, ECx-values can be estimated by using regression analysis (e.g. (23), (24)).
A folyamatos változónak tekintett fejlődési ütemhez tartozó ECx értékek becslésére regressziós analízist használunk (például (23), (24)).
For the following statistical tests, the number of midges observed on inspection day × are assumed to be emerged at the mean of the time interval between day x and day x – l (l = length of the inspection interval, usually 1 day).
A következő statisztikai próbákhoz feltételezzük, hogy az x. ellenőrzési napon megfigyelt számú árvaszúnyog az x. nap és az x–1. nap (l = az ellenőrzések közötti intervallum hossza, általában 1 nap) közötti időintervallum közepén kelt ki. Az egy edényre jutó átlagos fejlődési ütemet a következő képlet szerint számítjuk ki:
The mean development rate per vessel (x) is calculated according to:
x m i
mean development rate per vessel
egy edényre jutó átlagos fejlődési ütem
i index of inspection interval
i ellenőrzési intervallum indexe
maximum number of inspection intervals
m ellenőrzési intervallumok maximális száma
number of midges emerged in the inspection interval i
az i ellenőrzési intervallumban kikelt árvaszúnyogok száma
total number of midges emerged at the end of experiment (=
kikelt árvaszúnyogok száma összesen a kísérlet végén (=
development rate of the midges emerged in interval i
az i ellenőrzési intervallumban kikelt árvaszúnyogok fejlődési üteme
inspection day (days since application)
ellenőrzési nap (a behelyezés óta eltelt napok száma)
length of inspection interval i (days, usually 1 day)
az i ellenőrzési intervallum hossza (napokban kifejezve, általában 1 nap)
The test report must at least provide the following information:
A vizsgálati jegyzőkönyvnek legalább a következő információkat kell tartalmaznia:
physical nature and, where relevant, physical-chemical properties (water solubility, vapour pressure, partition coefficient in soil (or in sediment if available), stability in water, etc.);
fizikai jelleg és adott esetben a fizikai és kémiai tulajdonságok (vízoldékonyság, páranyomás, talajra (vagy ha rendelkezésre áll, az üledékre) vonatkozó megoszlási hányados, stabilitás vízben, stb.),
chemical identification data (common name, chemical name, structural formula, CAS number, etc.) including purity and analytical method for quantification of test substance.
kémiai azonosító adatok (közönséges név, kémiai név, szerkezeti képlet, CAS-szám, stb.,) beleértve a kémiai tisztaságot és a vizsgált anyag mennyiségi meghatározásának analitikai módszerét.
Test species:
A vizsgálathoz felhasznált faj:
test animals used: species, scientific name, source of organisms and breeding conditions;
a vizsgálathoz felhasznált állatok: faj, tudományos elnevezés, az organizmusok származása és tenyésztési körülményei,
information on handling of egg masses and larvae;
a petecsomók és a lárvák kezelésére vonatkozó információk,
age of test animals when inserted into test vessels.
a vizsgálathoz felhasznált állatok életkora az edényekbe történő behelyezésükkor.
sediment used, i.e. natural or formulated sediment;
az alkalmazott üledék, azaz természetes vagy mesterséges üledék,
for natural sediment, location and description of sediment sampling site, including, if possible, contamination history; characteristics: pH, organic carbon content, C/N ratio and granulometry (if appropriate).
természetes üledék esetén az üledékminta gyűjtésének helye és a mintavételi hely leírása, beleértve lehetőség szerint a szennyezés történetét; jellemzők: pH, szerves széntartalom, C/N arány és szemcseszerkezet (ha indokolt),
preparation of the formulated sediment: ingredients and characteristics (organic carbon content, pH, moisture, etc. at the start of the test);
a mesterséges üledék előállítása: összetevők és jellemzők (szerves széntartalom, pH, nedvességtartalom, stb. a vizsgálat kezdetén),
preparation of the test water (if reconstituted water is used) and characteristics (oxygen concentration, pH, conductivity, hardness, etc. at the start of the test);
a vizsgálathoz használt víz előállítása (mesterségesen készített víz esetén) és jellemzői (oxigénkoncentráció, pH, vezetőképesség, keménység, stb. a vizsgálat kezdetén),
depth of sediment and overlying water;
az üledék és a fedővíz mélysége,
volume of overlying and pore water; weight of wet sediment with and without pore water;
a fedővíz és a pórusvíz mennyisége; a nedves üledék tömege pórusvízzel és pórusvíz nélkül,
test vessels (material and size);
vizsgálati edények (anyag és méret),
method of spiking sediment: test concentrations used, number of replicates and use of solvent if any;
az üledékszennyezés módszere: alkalmazott vizsgálati koncentrációk, ismétlésszám és esetlegesen használt oldószer,
stabilisation equilibrium phase of the spiked sediment-water system: duration and conditions;
a szennyezett üledék-víz elrendezés stabilizálódása és egyensúlyi fázisa: időtartam és körülmények,
incubation conditions: temperature, light cycle and intensity, aeration (frequency and intensity);
inkubációs körülmények: hőmérséklet, fényciklus és intenzitás, levegőztetés (gyakoriság és intenzitás),
detailed information on feeding including type of food, preparation, amount and feeding regime.
a táplálásra vonatkozó információk, beleértve a táplálék típusát, elkészítését, mennyiségét és a táplálás rendjét.
the nominal test concentrations, the measured test concentrations and the results of all analyses to determine the concentration of the test substance in the test vessel;
a névleges vizsgálati koncentrációk, a mért vizsgálati koncentrációk és a kísérleti edények vizsgált anyag koncentrációjának a meghatározására használt analízisek eredményei,
water quality within the test vessels, i.e. pH, temperature, dissolved oxygen, hardness and ammonia;
a víz minősége a vizsgálati edényekben, azaz pH, hőmérséklet, oldott oxigén, vízkeménység és ammóniatartalom,
replacement of evaporated test water, if any;
az elpárolgott víz pótlása a vizsgálati edényekben, ha pótoljuk,
number of emerged male and female midges per vessel and per day;
a kikelt hím és nőstény árvaszúnyogok egy edényre és napra eső száma,
number of larvae which failed to emerge as midges per vessel;
ki nem kelt lárvák egy edényre jutó száma,
mean individual dry weight of larvae per vessel, and per instar, if appropriate;
a lárvák egy edényre és – adott esetben – egy fejlődési szakaszra jutó átlagos száraz tömege,
percent emergence per replicate and test concentration (male and female midges pooled);
ismétlésenkénti és vizsgálati koncentrációnkénti százalékos kikelés (hím és nőstény árvaszúnyogok együttesen),