natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Preparation of the artificial soil for use in the bioaccumulation tests and recommendations for the storage of artificial soil are given in Appendix 4.
A biológiai felhalmozódási vizsgálatokhoz való használatra szánt mesterséges talaj előállítását és a mesterséges talaj tárolására vonatkozó ajánlásokat a 4. függelék tartalmazza.
Air-dried artificial soil may be stored at room temperature until use.
A levegőn szárított mesterséges talaj a felhasználásig szobahőmérsékleten tárolható.
However, natural soils from unpolluted sites may serve as test and/or culture soil.
Szennyezésmentes helyről származó természetes talajok is szolgálhatnak a vizsgálathoz és/vagy a férgek tenyésztéséhez használt talajként.
Natural soils should be characterised at least by origin (collection site), pH, organic carbon content, particle size distribution (percent sand, silt, and clay), maximum water holding capacity (WHCmax), and percent water content (3).
A természetes talajokat jellemezni kell legalább a következőkkel: származás (gyűjtés helye), pH, szerves széntartalom, részecskeméret-eloszlás (homok, iszap és agyag százalékaránya), maximális víztartó képesség (WHCmax) és százalékos víztartalom (3).
Analysis of the soil or its constituents for micro-pollutants prior to use should provide useful information.
A talajban, illetve a talajösszetevőkben található mikro-szennyező anyagok analízise a felhasználás előtt hasznos információkat szolgáltathat.
If field soil from agricultural land is used, it should not have been treated with crop protection products or with manure from treated animals as fertilizers for at least one year and with organic fertilizers for at least six months prior to sampling (50).
Mezőgazdasági földterületről származó talaj használata esetén meg kell győződni arról, hogy a talajt nem kezelték növényvédőszerrel vagy kezelt állatoktól származó trágyával a mintavételt megelőző legalább egy évben, illetve szerves trágyával a mintavételt megelőző legalább fél évben (50).
Manipulation procedures for natural soils prior to use in ecotoxicological tests with oligochaetes in the laboratory are described in (3).
A természetes talajok kevéssertéjűekkel végzett ökotoxikológiai laboratóriumi vizsgálatok során történő felhasználás előtti kezelésének leírása a szakirodalomban megtalálható (3).
For natural soils the storage time in the laboratory should be kept as short as possible.
A természetes talajokat a lehető legrövidebb ideig szabad csak a laboratóriumban tárolni.
Application of the test chemical
A vizsgált anyag bevitele
The test chemical is incorporated into the soil.
A vizsgált vegyi anyagnak be kell épülnie a talajba.
The physicochemical properties of the test chemical should be taken into consideration.
Ehhez figyelembe kell venni a vizsgált vegyi anyag fizikai és kémiai tulajdonságait.
A water-soluble test chemical should be completely dissolved in water before it be mixed with the soil.
Ha a vizsgált vegyi anyag vízben oldható, akkor a talajba keverés előtt vízben fel kell oldani.
The recommended spiking procedure for poorly water-soluble test chemical involves coating of one or more of the (artificial) soil constituents with the test chemical.
Vízben rosszul oldódó vizsgált vegyi anyagok esetén egy vagy több (mesterséges) talajösszetevő vizsgált vegyi anyaggal való bevonása az ajánlott szennyezési eljárás.
For example, the quartz sand, or a portion thereof, can be soaked with a solution of the test chemical in a suitable organic solvent, which is then slowly evaporated to dryness.
A kvarchomokot vagy annak egy részét például át lehet itatni a vizsgált vegyi anyag megfelelő szerves oldószerrel készített oldatával, amelyet aztán lassan elpárologtatunk, amíg a homok megszárad.
The coated fraction can then be mixed into the wet soil.
Ezt követően a bevont részt össze lehet keverni a nedves talajjal.
The major advantage of this procedure is that no solvent is introduced into the soil.
Ennek az eljárásnak az a legfőbb előnye, hogy a talajba nem kerül oldószer.
When a natural soil is used, the test chemical may be added by spiking an air-dried portion of the soil as described above for the artificial soil, or by stirring the test chemical into the wet soil, with subsequent evaporating step if a solubilising agent is used.
Természetes talaj használata esetén a vizsgált vegyi anyag bejuttatásához szennyezhetjük a talaj egy levegőn szárított részét a vizsgált vegyi anyaggal a mesterséges talajra vonatkozóan az imént bemutatott módon, vagy a nedves talajba keverhetjük a vizsgált vegyi anyagot, majd a következő lépésben elpárologtatjuk az oldódást segítő szert, amennyiben ilyet használtunk.
In general, the contact of wet soil with solvents should be avoided as far as possible.
A nedves talaj oldószerekkel való érintkezését általában amennyire csak lehet kerülni kell.
The following should be considered (3):
Figyelembe kell venni a következőket (3):
If a solvent other than water is used, it should be one that is water-miscible and/or can be driven off (for example, evaporated), leaving only the test chemical on the soil.
Ha nem vizet használunk oldószerként, akkor olyan oldószert kell használni, amely vízzel elegyíthető, és/vagy eltávolítható (például elpárologtatható) úgy, hogy csak a vizsgált vegyi anyag maradjon a talajban.
If a solvent control is used, there is no need for negative control.
Az oldószer vizsgálatára szolgáló kontroll használata esetén negatív kontroll nem szükséges.
The solvent control should contain the highest concentration of solvent added to the soil and should use solvent from the same batch used to make the stock solution.
Az oldószer vizsgálatára szolgáló kontroll edénynek a legnagyobb koncentrációban kell tartalmaznia a talajhoz adott oldószert, amelynek ugyanabból a tételből kell származnia, mint amelyet a törzsoldat készítéséhez használtunk.
Toxicity and volatility of the solvent, and solubility of the test chemical in the chosen solvent should be the main criteria used for the selection of a suitable solubilising agent.
Az oldódást segítő megfelelő szer kiválasztásának fő szempontjai az oldószer toxikus hatása és illékonysága, valamint a vizsgált vegyi anyag választott oldószerben való oldhatósága.
For chemicals that are poorly soluble in water and in organic solvents, 2,0-2,5 g of finely ground quartz sand per test vessel can be mixed with the quantity of test chemical, e.g. using mortar and pestle, to obtain the desired test concentration.
Vízben és szerves oldószerekben rosszul oldódó vizsgált vegyi anyagok esetén a kívánt vizsgálati koncentráció eléréséhez vizsgálati edényenként 2,0–2,5 g finomra őrölt kvarchomokot összedolgozhatunk a vizsgált vegyi anyag megfelelő mennyiségével például mozsárban.
This mixture of quartz sand and test chemical is added to the pre-moistened soil and thoroughly mixed with an appropriate amount of de-ionised water to obtain the required moisture content.
A kvarchomok és a vizsgált vegyi anyag e keverékét hozzáadjuk az előnedvesített talajhoz, és alaposan elkeverjük megfelelő mennyiségű ionmentesített vízzel úgy, hogy a szükséges nedvességtartalmat kapjuk.
The final mixture is distributed to the test vessels.
A végtermékként kapott keveréket elosztjuk a vizsgálati edények között.
The procedure is repeated for each test concentration, and an appropriate control with 2,0-2,5 g of finely ground quartz sand per test vessel is also prepared.
Az eljárást minden egyes vizsgálati koncentráció esetén megismételjük, és egy vizsgálati edényenként 2,0–2,5 g finomra őrölt kvarchomokot tartalmazó, megfelelő kontroll edényt is készítünk.
The concentration of the test chemical in the soil should be determined after spiking.
A szennyezést követően meg kell határozni a vizsgált vegyi anyag koncentrációját a talajban.
The homogenous distribution of the test chemical into the soil should be verified before introducing the test organisms.
A vizsgálathoz használt organizmusok behelyezése előtt ellenőrizni kell a vizsgált vegyi anyag homogén eloszlását a talajban.
The method used for spiking, and the reasons for choosing a specific spiking procedure should be reported (24).
A szennyezési módszert és az adott szennyezési eljárás indoklását dokumentálni kell (24).
Equilibrium between the soil and the pore-water phase should ideally be established before adding the organisms; a time period of four days at 20 °C is recommended.
A talaj és a pórusvíz fázis közötti egyensúlynak ideális esetben a vizsgálathoz használt organizmusok behelyezése előtt be kell állnia; 20 °C hőmérsékleten erre négy napot ajánlott számítani.
For many poorly water-soluble organic chemicals the time required to reach a true equilibrium between adsorbed and dissolved fractions can be counted in days or months.
Számos vízben rosszul oldódó szerves vegyi anyag esetében az adszorbeálódott és oldott frakciók közötti valódi egyensúly eléréséhez napokra vagy hónapokra lehet szükség.
Depending on the purpose of the study, for example when the environmental conditions are to be mimicked, the spiked soil may be “aged” for a longer period, e.g. for metals three weeks at 20 °C (22).
A vizsgálat céljától függően, például ha a környezeti feltételeket kell utánozni, a mesterségesen szennyezett talaj hosszabb ideig »érlelhető«, például fémek esetében három héten keresztül 20 °C hőmérséklet mellett (22).
Culturing of the test organisms
A vizsgálathoz használt organizmusok tenyésztése
Worms should be preferably kept in permanent laboratory culture.
A férgeket lehetőleg állandó laboratóriumi tenyészetben kell tartani.
Guidance on laboratory culture methods for Eisenia fetida and Eisenia andrei, and Enchytraeid species, is provided in Appendix 5 (see also (48) (51) (52)).
Az Eisenia fetida és az Eisenia andrei, valamint a televényféreg fajok laboratóriumi körülmények közötti tenyésztésének módszereire vonatkozóan az 5. függelék ad útmutatást (lásd még (48) (51) (52)).
The worms used in the tests should be free from observable diseases, abnormalities and parasites.
A vizsgálathoz használt férgeken nem lehetnek megfigyelhető betegségek, rendellenességek és paraziták.
PERFORMANCE OF THE TEST
A VIZSGÁLAT ELVÉGZÉSE
The test organisms are exposed to the test chemical during the uptake phase.
A vizsgálathoz használt organizmusokat a felvételi fázisban tesszük ki a vizsgált vegyi anyag hatásának.
The uptake phase should be of 14 days (enchytraeids) or 21 days (earthworms) unless it is demonstrated that steady state has been reached.
A felvételi fázis 14 nap (televényférgeknél) vagy 21 nap (földigilisztáknál), kivéve, ha kimutatható, hogy az állandósult állapot elérése ennél előbb bekövetkezett.
For the elimination phase, the worms are transferred to a soil free of test chemical.
Az ürülési fázishoz a férgeket át kell helyezni a vizsgált vegyi anyagot nem tartalmazó talajba.
The first sample should be taken at 4-24 h after the start of elimination phase.
Az első mintavételt az ürülési fázis kezdete után 4 – 24 órával kell végezni.
Examples of sampling schedules for a 21-day uptake phase and a 21-day elimination phase are given in Appendix 3.
A 21 napos felvételi fázisra és 21 napos ürülési fázisra vonatkozó mintavételi ütemtervekre a 3. függelék mutat be példákat.
Test organisms
A vizsgálathoz használt organizmusok
For many species of terrestrial enchytraeids the individual weight is very low (e.g. 5-10 mg wet weight per individual for Enchytraeus albidus and less for Enchytraeus crypticus or Enchytraeus luxuriosus); in order to perform the weight measurements and chemical analysis, it may be necessary to pool the worms of the replicate test vessels (i.e. all the worms of a replicate vessel will be used for obtaining one analytical tissue result).
A szárazföldi televényférgek számos fajánál az egyedtömeg nagyon kicsi (például az Enchytraeus albidus esetében egy egyed nedves tömege 5–10 mg, az Enchytraeus crypticus vagy az Enchytraeus luxuriosus esetében pedig még kevesebb); a tömegmérések és a kémiai analízisek elvégzéséhez szükség lehet az egyes ismétlésekhez tartozó férgek együttes vizsgálatára (azaz az adott ismétléshez tartozó valamennyi férget fel kell használni ahhoz, hogy egyetlen analitikai szöveteredményt kapjunk).
20 individual enchytraeids are added to each replicate, and at least three replicates should be used.
Minden egyes ismétléshez 20 televényféreg egyedet kell használni, és legalább három ismétlést kell alkalmazni.
If the analytical detection limit of the test chemical is high, more worms may be necessary.
Ha a vizsgált vegyi anyag analitikai kimutathatósági határértéke magas, több féregre lehet szükség.
For test species with higher individual weight (Eisenia fetida and Eisenia andrei), replicate vessels containing one individual can be used.
Ha a vizsgálathoz nagyobb egyedtömeggel rendelkező fajokat használunk (Eisenia fetida és Eisenia andrei), akkor egy egyedet tartalmazó ismétlések is használhatók.
The earthworms used in a test should be of similar weight (e.g. Eisenia fetida and Eisenia andrei should have an individual weight of 250-600 mg).
A vizsgálathoz hasonló tömegű földigilisztákat (például az Eisenia fetida és az Eisenia andrei esetében 250–600 mg tömegű egyedeket) kell használni.
Enchytraeids (e.g. Enchytraeus albidus) should have a length of approximately 1 cm.
A televényférgeknek (például Enchytraeus albidus) körülbelül 1 cm hosszúnak kell lenniük.
All worms used in a particular test should come from the same source, and should be adult animals with clitellum (see Appendix 5).
Az egy adott vizsgálathoz használt valamennyi féregnek ugyanabból a forrásból kell származnia, és kifejlett állatnak kell lennie, amelynél a nyereg (clitellum) már kialakult (lásd az 5. függeléket).
Since the weight and age of an animal might have an effect on the BAF-values (e.g. due to varying lipid content and/or presence of eggs), these parameters should be recorded accurately and taken into account in the interpretation of results.
Mivel az állatok tömege és kora hatással lehet a BAF értékekre (például az eltérő lipdtartalom és/vagy a peték jelenléte következtében), ezeket a paramétereket pontosan dokumentálni kell, és figyelembe kell venni az eredmények értelmezése során.
In addition, cocoons can be deposited during the exposure period, which will also have an impact on the BAF values.
Az expozíciós időszak alatt lerakott gubók is befolyásolhatják a BAF értékeket.
It is recommended that a sub-sample of the test worms be weighed before the test in order to estimate the mean wet and dry weights.
Az átlagos nedves és a száraz tömeg becslése végett ajánlott a vizsgálat előtt lemérni a vizsgálathoz használt férgek egy részmintáját.
A high soil-to-worm ratio should be used in order to minimise the decrease of the test chemical concentration in the soil during the uptake phase.
A talaj férgekhez viszonyított arányának elég nagynak kell lennie ahhoz, hogy a felvételi fázisban minél kevésbé csökkenjen a vizsgált vegyi anyag koncentrációja a talajban.
For Eisenia fetida and Eisenia andrei a minimum amount of 50 g dry weight (d.w.) of soil per worm, and for enchytraeids, a minimum of 10-20 g d.w. of soil per test vessel are recommended.
Eisenia fetida, illetve Eisenia andrei használata esetén 50 g (száraz tömeg), a televényférgek esetében pedig 10–20 g (száraz tömeg) egy féregre jutó minimális talajmennyiség biztosítása ajánlott.
The vessels should contain a soil layer of 2-3 cm (enchytraeids) or 4-5 cm (earthworms).
Az edényeknek 2–3 cm (televényférgeknél), illetve 4–5 cm (földigilisztáknál) talajréteget kell tartalmazniuk.
The worms used in a test are removed from the culture (e.g. enchytraeids by using jeweller’s tweezers).
A tenyészetből kivesszük a vizsgálathoz használni kívánt férgeket (például ékszerész csipesszel televényférgek használata esetén).
Adult animals are transferred to non-treated test soil for acclimation, and fed (see paragraph 36).
A kifejlett állatokat nem kezelt kísérleti talajba helyezzük, hogy akklimatizálódjanak, és tápláljuk (lásd a 36. bekezdést).
If the test conditions differ from the culture conditions, an acclimation phase of 24-72 h should be sufficient to adapt the worms to the test conditions.
Ha a vizsgálati körülmények eltérnek a tenyésztési körülményektől, akkor 24–72 órás akklimatizálódási időszak szükséges ahhoz, hogy a férgek alkalmazkodjanak a vizsgálati körülményekhez.
After acclimation, earthworms are rinsed by transfer to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water, and subsequently weighed before they are added to the test soil.
Az akklimatizációt követően a földigilisztákat tiszta vizet tartalmazó üvegedényekbe (például petri-csészékbe) helyezzük, és leöblítjük, majd azt követően lemérjük a tömegüket, mielőtt a vizsgálathoz használt talajba helyeznénk őket.
Prior to weighing, excess water should be removed from the worms by gently touching them against the edge of the dish or by blotting them cautiously dry by using a slightly moistened paper towel.
A mérés előtt a férgeket finoman az edény széléhez kell ütögetni, vagy enyhén megnedvesített papírtörölközővel óvatosan meg kell őket törölgetni, hogy a felesleges vizet eltávolíthassuk róluk.
Burrowing behaviour of the test organisms should be observed and recorded.
A vizsgálathoz használt organizmusok viselkedését figyelni és dokumentálni kell.
In tests with earthworms, the animals (control and treatments) normally burrow in the soil within a period of a few hours; this should be checked no later than 24 h after addition of the worms to the test vessels.
A földigilisztákkal végzett kísérletekben az állatok (a kontroll és a kezelt csoport egyaránt) akkor mutatnak normális viselkedést, ha néhány órán belül beássák magukat a talajba; ezt a férgek vizsgálati edényekbe való behelyezését követő 24 órán belül ellenőrizni kell.
If the earthworms fail to burrow in the soil (e.g. more than 10 % over more than half of the uptake phase), this indicates that either the test conditions are not appropriate or the test organisms are not healthy.
Ha a földigiliszták nem ássák be magukat a talajba (például a felvételi fázis félidejét több mint 10 %-kal meghaladó időszak elteltével), az vagy arra utal, hogy a vizsgálati körülmények nem megfelelők, vagy arra, hogy a vizsgálathoz használt organizmusok nem egészségesek.
In such a case the test should be stopped and repeated.
Ilyen esetben a vizsgálatot le kell állítani, és meg kell ismételni.
Enchytraeids mainly live in the interstitial pores of the soil, and frequently their integument may be only partly in contact with the surrounding substrate; exposure of burrowing and non-burrowing enchytraeids is assumed to be equivalent and non-burrowing of the enchytraeids does not necessarily require the repetition of the test.
A televényférgek főként a talajszemcsék közti pórusokban élnek, és kültakarójuk gyakran csak részben érintkezik a környező szubsztrátummal; a televényférgek esetében az expozíciót egyenértékűnek tételezzük fel függetlenül attól, hogy beássák-e magukat a talajba, vagy sem, és az utóbbi esetben a vizsgálatot nem feltétlenül szükséges megismételni.
Feeding
Táplálás
Feeding should be envisaged when a soil with low total organic carbon content is used.
Ha a vizsgálathoz használt talaj összes szerves széntartalma alacsony, akkor a férgeket táplálni kell.
When an artificial soil is used, a weekly feeding rate (i.e. the worms should be fed once a week) of 7 mg of dried dung per g soil dry weight is recommended for earthworms, and a weekly rate of 2-2,5 mg of ground oat flakes per g soil dry weight is recommended for enchytraeids (11).
Mesterséges talaj használata esetén az ajánlott heti táplálékadag (amelyet hetente egyszer kell adni) a földigilisztáknál a talaj száraz tömegének minden grammjára 7 mg szárított istállótrágya, televényférgeknél pedig a talaj száraz tömegének minden grammjára 2–2,5 mg őrölt zabpehely (11).
The first food ration should be mixed with the soil immediately before the test organisms are added.
Az első táplálékadagot közvetlenül a vizsgálathoz használt organizmusok behelyezését követően kell a talajba keverni.
Preferably the same type of food like in the cultures should be used (see Appendix 5).
Lehetőleg ugyanolyan típusú táplálékot kell használni, mint a tenyésztés során (lásd az 5. függeléket).
Light and temperature
Fény és hőmérséklet
The tests should be carried out under a controlled 16/8 hours light/dark cycle, preferably 400 to 800 lx in the area of the test vessels (3).
A vizsgálatot szabályozott, 16 órás világos és 8 órás sötét periódusból álló ciklusokat alkalmazva kell végezni, lehetőleg úgy, hogy a vizsgálati edények 400–800 lx fényt kapjanak (3).
The test temperature should be 20 ± 2 °C throughout the test.
A vizsgálat teljes időszaka alatt 20 ± 2 °C hőmérsékletet kell biztosítani.
A single concentration is used.
A vizsgálathoz egyetlen koncentrációt használunk.
Situations where additional concentration(s) is(are) required should be justified.
A további koncentráció(k) szükségességét indokolni kell.
If toxicity (ECx) of the test chemical is close to the analytical detection limit, the use of radiolabelled test chemical with high specific radioactivity is recommended.
Az analitikai kimutathatósági határértékhez közeli toxicitású (ECx) vegyi anyag vizsgálata esetén nagy fajlagos aktivitást biztosító radioaktív jelölésre van szükség.
For metals, the concentration should be above the background level in tissue and soil.
Fémek esetén a koncentrációnak a szövetre és a talajra jellemző háttérszint felett kell lennie.
Replicates
Ismétlések
For the kinetic measurements (uptake and elimination phase), the minimum number of treated replicate vessels should be three per sampling point.
A kinetikai mérésekhez (a felvételi és az ürülési fázisban) mintavételi pontonként legalább három ismétlést kell alkalmazni minden egyes kezelt edény esetében.
The total number of replicates prepared should be sufficient to cover all sampling times during the uptake and the elimination phase.
Összességében az ismétlésszámnak elegendőnek kell lennie ahhoz, hogy a felvételi és az ürülési fázisban valamennyi mintavételt el lehessen végezni a megfelelő időpontban.
For the biological observations and measurements (e.g. dry-to-wet weight ratio, lipid content) and for the analysis of background concentrations in worms and soil, at least 12 replicate vessels of a negative control (four sampled at start, four at end of uptake, and four at end of elimination) should be provided if no solvent other than water is used.
A biológiai megfigyelésekhez és mérésekhez (például a száraz és nedves tömeg aránya, lipidtartalom), valamint a férgek és a talaj háttér-koncentrációjának analíziséhez használt negatív kontrollok esetében legalább 12 ismétlés szükséges (négy a vizsgálat kezdetén, négy a felvételi fázis végén és négy az ürülési fázis végén végzett mintavételekhez), amennyiben a vízen kívül más oldószert nem használunk.
If any solubilising agent is used for application of the test chemical, a solvent control (four replicate vessels should be sampled at start, four at the end of the uptake phase, and four at the end of the elimination phase) containing all constituents except for test item should be run in addition to the treated replicates.
Ha a vizsgált vegyi anyaggal való szennyezéshez oldódást segítő szert használtunk, akkor a kezelt ismétlések mellett a vizsgált vegyi anyagon kívül minden egyéb összetevőt tartalmazó kontrollokat is be kell állítani a szolubilizáló szer hatásának az ellenőrzésére (négy ismétlést a vizsgálat kezdetén, négyet a felvételi fázis végén és négyet az ürülési fázis végén végzett mintavételekhez).
In this case, four additional replicate vessels of a negative control (no solvent) may also be provided for optional sampling at the end of the uptake phase.
Ebben az esetben a negatív kontrollok esetében további négy ismétlésre (oldószert nem tartalmazó edények) lehet szükség a felvételi fázis végén végzett választható mintavételekhez.
These replicates can be compared biologically with the solvent control in order to gain information on a possible influence of the solvent on the test organisms.
Ezek az ismétlések az oldószer kontrollal való biológiai összehasonlításra szolgálnak, amelyből az oldószer vizsgálathoz használt organizmusokra gyakorolt lehetséges hatásáról kaphatunk tájékoztatást.