natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Settle or centrifuge the re-suspended sludge after thorough mixing, discard the supernatant liquid and again suspend the washed sludge in a further volume of mineral medium.
Az újraszuszpendált iszapot alapos keverést követően ülepítsük vagy centrifugáljuk, majd távolítsuk el a felülúszó folyadékot, és a mosott iszapot ismét szuszpendáljuk egy újabb adag ásványi közegben.
Repeat this procedure until the sludge is considered to be free from excess substrate or inhibitor.
Ezt az eljárást addig ismételjük, amíg az iszap a fölös szubsztrátumtól vagy gátló anyagoktól mentesnek tekinthető.
After complete re-suspension is achieved, or with untreated sludge, withdraw a sample just before use for the determination of the dry weight of the suspended solids.
A teljes újraszuszpendálódás elérése után, vagy ha kezeletlen iszapot használunk, vegyünk mintát közvetlenül a felhasználás előtt a lebegőanyagok száraz tömegének meghatározása céljából.
A further alternative is to homogenise activated sludge (3-5 g suspended solids/l).
Egy további lehetőség az eleveniszap homogenizálása (3–5 g/l lebegőanyag-koncentráció).
Treat the sludge in a Waring blender for 2 minutes at medium speed.
Az iszapot Waring laboratóriumi turmixgépben közepes sebességgel 2 percig keverjük.
Settle the blended sludge for 30 minutes or longer if required and decant liquid for use as inoculum at the rate of about 10 mg/l of mineral medium.
Az így kezelt iszapot 30 percen vagy szükség esetén hosszabb időn keresztül hagyjuk ülepedni, majd az oltóanyagként használni kívánt folyadékot dekantáljuk úgy, hogy az ásványi közeg minden literére körülbelül 10 mg oltóanyag jusson.
Still further reduction of the blank CO2 evolution can be achieved by aerating the sludge overnight with CO2-free air.
A vakpróbákban a CO2-fejlődés még tovább csökkenthető az iszap egy éjszakán keresztüli, CO2-mentes levegővel történő levegőztetésével.
Use 4 mg/l activated sludge solids as the concentration of the inoculum in this test (13).
Ebben a vizsgálatban olyan oltóanyagot használjunk, amelynek eleveniszap-eredetű lebegőanyag-koncentrációja 4 mg/l (13).
Secondary sewage effluent
Szennyvíztisztító tisztított elfolyó vize
Alternatively, the inoculum can be derived from the secondary effluent of a treatment plant or laboratory-scale unit receiving predominantly domestic sewage.
Alternatívaként elsősorban háztartási szennyvizet fogadó szennyvíztisztító telep vagy laboratóriumi méretű szennyvíztisztító berendezés tisztított elfolyó vizéből is származhat az oltóanyag.
Maintain the sample under aerobic conditions and use on the day of collection, or pre-condition if necessary.
A mintát aerob körülmények között kell tartani, és a gyűjtés napján fel kell használni, vagy szükség esetén előkondicionálni kell.
The effluent should be filtered through a coarse filter to remove gross particulate matter and the pH value is measured.
A durva szemcsés anyag eltávolítása végett az elfolyó vizet durva szűrőn át kell szűrni, és meg kell mérni a pH-ját.
To reduce its IC content, the filtrate is sparged with CO2-free air (paragraph 15-e) for 1 h while maintaining the pH at 6,5 using orthophosphoric acid (paragraph 20).
IC-tartalmának csökkentése érdekében 1 órán keresztül buborékoltassunk át a szüredéken CO2-mentes levegőt (15. bekezdés e) pont), miközben a pH-t foszforsav segítségével tartsuk 6,5 értéken (20. bekezdés).
The pH value is restored to its original value with sodium hydroxide (paragraph 21) and after settling for about 1 h a suitable volume of the supernatant is taken for inoculation.
Nátrium-hidroxiddal állítsuk vissza a pH eredeti értékét (21. bekezdés), és körülbelül 1 órás ülepítést követően vegyünk megfelelő mennyiségű felülúszó folyadékot oltóanyagnak.
This sparging procedure reduces the IC content of the inoculum.
Az átbuborékoltatás csökkenti az oltóanyag IC-tartalmát.
For example, when the maximum recommended volume of filtered sparged effluent (100 ml) per litre was used as inoculum, the amount of IC present in blank control vessels was in the range 0,4 to 1,3 mg/l (14), representing 2-6,5 % of test chemical C at 20 mg C/l and 4-13 % at 10 mg C/l.
Például ha a szűrt és átbuborékoltatott elfolyó víz ajánlott maximális literenkénti mennyiségét (100 ml) használtuk oltóanyagként, a vakpróbákban az edényekben jelen lévő IC mennyisége a 0,4–1,3 mg/l tartományon belül volt (14), ami a vizsgált vegyi anyaggal bevitt szén 2–6,5 %-ának felel meg 20 mg C/l koncentráció alkalmazása esetén és 4–13 %-ának, ha az alkalmazott koncentráció 10 mg C/l.
Surface waters
Felszíni víz
A sample is taken of an appropriate surface water.
Megfelelő felszíni vízből mintát veszünk.
It should be kept under aerobic conditions and used on the day of collection.
A mintát aerob körülmények között kell tartani, és a mintavétel napján fel kell használni.
The sample should be concentrated, if necessary, by filtration or centrifugation.
A mintát szükség esetén szűréssel vagy centrifugálással koncentráljuk.
The volume of inoculum to be used in each test vessel should meet the criteria given in paragraph 26.
Az egyes kísérleti edényekben használandó oltóanyagnak meg kell felelnie a 26. bekezdésben meghatározott követelményeknek.
Soils
Talaj
A sample is taken of an appropriate soil, collected to a depth of up to 20 cm below the soil surface.
Megfelelő talajból mintát veszünk a talajfelszín alatt legfeljebb 20 cm mélységből.
Stones, plant remains and invertebrates should be removed from the sample of soil before it is sieved through a 2 mm mesh (if the sample is too wet to sieve immediately, then partially air dry to facilitate sieving).
A kövek, a növénymaradványok és a gerinctelen állatok eltávolítását követően a talajmintát 2 mm-es szitahálón átszitáljuk (ha a minta túl nedves az azonnali szitáláshoz, akkor a szitálás megkönnyítése érdekében levegőn kicsit szárítjuk). A mintát aerob körülmények között tartjuk, és a mintavétel napján felhasználjuk.
It should be kept under aerobic conditions and used on the day of collection (If the sample is transported in a loosely-tied black polythene bag, it can be stored at 2 to 4 °C in the bag for up to one month).
(Ha a mintát lazán bekötött fekete polietilén tasakban szállítjuk, akkor abban 2–4 °C hőmérsékleten legfeljebb egy hónapig tárolható.)
Preconditioning of inoculum
Az oltóanyag előkondicionálása
Inoculum may be pre-conditioned to the experimental conditions, but not pre-adapted to the test chemical.
Az oltóanyag előkondicionálható a kísérleti körülményekhez, de nem adaptálódhat előre a vizsgált vegyi anyaghoz a kísérlet megkezdése előtt.
Pre-conditioning can reduce the blank CO2 evolution.
Előkondicionálással csökkenthető a vakpróbákban tapasztalható CO2-fejlődés.
Pre-conditioning consists of aerating activated sludge after diluting in test medium to 30 mg/l with moist CO2-free air for up to 5-7 days at the test temperature.
Az előkondicionálás azt jelenti, hogy az eleveniszapot a vizsgálathoz használt közegben való, 30 mg/l koncentrációra történő feloldást követően CO2-mentes nedves levegővel legfeljebb 5–7 napig levegőztetjük a vizsgálat során alkalmazandó hőmérsékleten.
Number of bottles
A palackok száma
The number of bottles (paragraph 15-a) needed for a test will depend on the frequency of analysis and the test duration.
A vizsgálathoz szükséges palackok száma (lásd a 15. bekezdés a) pontját) az analízisek gyakoriságától és a vizsgálat időtartamától függ.
It is recommended that triplicate bottles be analysed after a sufficient number of time intervals such that the 10-d window may be identified.
Ajánlott a palackokat hármasával analízisnek alávetni olyan időintervallumonként, amely lehetőséget ad a »tíznapos ablak« meghatározására.
Also at least five test bottles (paragraph 15-a) from sets (a), (b) and (c) (see paragraph 42) are analysed at the end of the test, to enable 95 % confidence intervals to be calculated for the mean percentage biodegradation value.
Emellett a vizsgálat végén az a), a b) és a c) sorozatból (lásd a 42. bekezdést) legalább öt palackot (15. bekezdés a) pont) kell analizálni, hogy a százalékos biológiai lebomlás középértékének 95 %-os konfidenciaintervallumai kiszámíthatók legyenek.
Inoculated medium
Beoltott közeg
The inoculum is used at a concentration of 4 mg/l activated sludge dry solids.
Az oltóanyagot úgy kell használni, hogy 4 mg/l eleveniszap-eredetű szárazanyag-koncentrációt kapjunk.
Prepare immediately before use sufficient inoculated medium by adding, for example, 2 ml suitably treated activated sludge (paragraphs 27 to 32) at 2000 mg/l to 1 litre of mineral salts medium (paragraph 19).
Közvetlenül a felhasználás előtt készítsünk elegendő mennyiségű beoltott közeget, például 2 ml megfelelően kezelt, 2000 mg/l koncentrációjú eleveniszap (27–32. bekezdés) 1 liter ásványisó-közeghez való hozzáadásával (19. bekezdés).
When secondary sewage effluent is to be used add up to 100 ml effluent (paragraph 33) to 900 ml mineral salts medium (paragraph 19) and dilute to 1 litre with medium.
Szennyvíztisztító tisztított elfolyó vizének használata esetén legfeljebb 100 ml elfolyó vizet (33. bekezdés) kell 900 ml ásványisó-közeghez adni (19. bekezdés), és a közeggel 1 literre hígítani.
Preparation of bottles
A palackok előkészítése
Aliquots of inoculated medium are dispensed into replicate bottles to give a headspace to liquid ratio of 1:2 (e.g. add 107 ml to 160 ml-capacity bottles).
A beoltott közeg aliquot részeit adagoljuk a palackokba úgy, hogy a gőztér és a folyadék térfogataránya 1:2 legyen (például egy 160 ml befogadóképességű palackba 107 ml kerüljön).
Other ratios may be used, but see the warning given in paragraph 11.
Ettől eltérő térfogatarány is alkalmazható, de a 11. bekezdésben foglaltakat figyelembe kell venni.
When using either type of inoculum, care must be taken to ensure that the inoculated medium is adequately mixed to ensure that it is uniformly distributed to the test bottles.
Mindegyik oltóanyagtípus esetében ügyelni kell arra, hogy a beoltott közeg megfelelően legyen elkeverve, és így a kísérleti palackok között egyformán elosztható legyen.
Sets of bottles (paragraph 15a) are prepared to contain the following:
Az előkészített palacksorozatoknak (15. bekezdés a) pont) a következőket kell tartalmazniuk:
Test vessels (denoted FT) containing the test chemical;
a kísérleti palackok (FT) tartalmazzák a vizsgált anyagot;
Blank controls (denoted FB) containing only the test medium plus inoculum; any chemicals, solvents, agents or glass fibre filters used to introduce the test chemical into the test vessels must also be added;
a vakpróbákhoz használt kontrollpalackok (FB) csak a vizsgálathoz használt közeget és az oltóanyagot tartalmazzák; ha a vizsgált anyag kísérleti edényekbe történő bejuttatásához bármilyen vegyi anyagot, oldószert, egyéb szert vagy üvegszálas szűrőt használtunk, akkor a palackoknak ezeket is tartalmazniuk kell;
Vessels (denoted FC) for checking the procedure containing the reference chemical;
az eljárás ellenőrzésére használt edények (FC) referencia-vegyianyagot tartalmaznak;
If needed, vessels (denoted FI) for checking a possible inhibitory effect of the test chemical containing both the test chemical and reference chemical at the same concentrations (paragraph 24) as in bottles FT and FC, respectively;
amennyiben szükségesek, a vizsgált vegyi anyag lehetséges gátló hatásának ellenőrzésére használt edények (FI) a vizsgált vegyi anyagot az FT, a referencia-vegyianyagot az FC palackokkal megegyező koncentrációban tartalmazzák (24. bekezdés);
Vessels (denoted FS) for checking a possible abiotic degradation as (a) plus 50 mg/l HgCl2 or sterilised by some other means (e.g. by autoclaving).
a lehetséges nem biológiai lebomlási folyamatok ellenőrzésére használt edényekhez (FS) az a) pontban leírtakon túl 50 mg/l HgCl2-t kell adni vagy az edényeket más módon (például autoklávban) sterilizálni kell.
Water-soluble test chemicals and reference chemicals are added as aqueous stock solutions (paragraphs 22, 23 and 24) to give a concentration of 10 to 20 mg C/l.
A vízben oldható vizsgált vegyi anyagok és referencia-vegyianyagok bejuttatása vizes törzsoldat formájában történik (22., 23. és 24. bekezdés) úgy, hogy 10–20 mg C/l koncentrációt kapjunk.
Insoluble test chemicals and insoluble reference chemicals are added to bottles in a variety of ways (see paragraph 22a-e) according to the nature of the test chemical, either before or after addition of the inoculated medium, depending on the method of treatment of the test chemical.
Az oldhatatlan vizsgált vegyi anyagok és referencia-vegyianyagok a vizsgált vegyi anyag természetének megfelelően különféle módszerekkel juttathatók a palackokba (lásd a 22. bekezdés a)–e) pontját) a beoltott közeg hozzáadása előtt vagy után, a vizsgált vegyi anyag kezelésének módszerétől függően.
If one of the procedures given in paragraph 22a-e is used, then the blank bottles FB (paragraph 42b) should be treated in a similar fashion but excluding the test chemical or reference chemical.
A 22. bekezdés a)–e) pontjában felsorolt eljárások alkalmazása esetén a vakpróbákhoz használt FB palackokat (42. bekezdés b) pont) hasonló módon kell kezelni, de a vizsgált vegyi anyag vagy a referencia-vegyianyag nélkül.
Volatile test chemicals should be injected into sealed bottles (paragraph 47) using a micro syringe.
Az illékony vizsgált vegyi anyagokat a lezárt palackokba kell befecskendezni (47. bekezdés) mikrofecskendő segítségével.
The dose is calculated from the volume injected and the density of the test chemical.
A dózist a befecskendezett mennyiség és a vizsgált vegyi anyag sűrűsége alapján kell kiszámítani.
Water should be added to vessels, where necessary, to give the same liquid volume in each vessel.
Az edényekbe szükség esetén vizet kell adagolni úgy, hogy mindegyik edényben egyforma legyen a folyadék mennyisége.
It must be ensured that the headspace to liquid ratio (usually 1:2) and concentration of the test chemical are such that sufficient oxygen is available in the headspace to allow for complete biodegradation.
A gőztér és a folyadék térfogatarányát (általában 1:2), valamint a vizsgált vegyi anyag koncentrációját úgy kell megválasztani, hogy a gőztérben elegendő oxigén álljon rendelkezésre a teljes biológiai lebomláshoz.
All bottles are then sealed for example, with butyl rubber septa and aluminium caps.
Ezt követően valamennyi palackot le kell zárni, például butilkaucsuk septummal ellátott alumínium kupakkal.
Volatile tests chemicals should be added at this stage (paragraph 45).
Az illékony vizsgált vegyi anyagokat ekkor kell bejuttatni (45. bekezdés).
If the decrease in DOC concentration of the test solution is to be monitored and for time zero analyses to be performed for initial IC concentration (sterile controls, paragraph 42e) or other determinands, remove an appropriate sample from the test vessel.
A vizsgálathoz használt oldat DOC-koncentrációja csökkenésének figyelése és a kezdeti IC-koncentráció vagy más meghatározandó tényezők nulladik időpontban végzett analízise esetén (steril kontrollok, 42. bekezdés e) pont), megfelelő mintát kell venni a kísérleti edényből.
The test vessel and its contents are then discarded.
A kísérleti edényt és tartalmát ezt követően meg kell semmisíteni.
The sealed bottles are placed on a rotary shaker (paragraph 15d), with a shaking rate sufficient to keep the bottle contents well mixed and in suspension (e.g. 150 to 200 rpm), and incubated in the dark at 20 °C, to be kept within ± 1 °C.
A lezárt palackokat (15. bekezdés d) pont) a tartalmuk alapos elkeverése és szuszpenzióban tartása céljára megfelelő rázási sebességet (pl. 150–200 rpm) biztosító rotációs rázókészülékre helyezzük (15. bekezdés d) pont), és sötétben, 20 °C ± 1 °C értéken tartott hőmérsékleten inkubáljuk.
The pattern of sampling will depend on the lag period and kinetic rate of biodegradation of the test chemical.
A mintavétel menete az alkalmazkodási fázis hosszától és a vizsgált vegyi anyag biológiai lebomlásának reakciósebességétől függ.
Bottles are sacrificed for analysis on the day of sampling, which should be at least weekly or more frequently (e.g. twice per week) if a complete degradation curve is required.
Az analízis céljára felhasznált palackokat a legalább hetente vagy – a teljes bomlási görbe megrajzolásához – gyakrabban (például hetente kétszer) végzett mintavétel napján megsemmisítjük.
The requisite number of replicate bottles is taken from the shaker, representing FT, FB and FC and, if used FI and FS (see paragraph 42).
Az FT, az FB és az FC, valamint – ha használjuk – az FI és az FS palackokból (42. bekezdés) a szükséges számú darabot levesszük a rázókészülékről.
The test normally runs for 28d.
A vizsgálat időtartama általában 28 nap.
If the biodegradation curve indicates that a plateau has been attained before 28d, the test may be concluded earlier than 28d.
Ha a biológiai bomlás görbéjéből arra lehet következtetni, hogy az állandósult állapot a 28. nap előtt beállt, akkor a 28. napnál korábban is be lehet fejezni a vizsgálatot.
Take samples from the five bottles reserved for the 28th day of the test for analysis and use the results to calculate the confidence limits or coefficient of variation of percentage biodegradation.
A százalékos biológiai lebomlás relatív szórását, illetve konfidenciahatárait a vizsgálat 28. napjára megmaradt öt palackból vett minták analízisének eredményeiből kell kiszámítani.
Bottles representing the checks for inhibition and for abiotic degradation need not be sampled as frequently as the other bottles; day 1 and day 28 would be sufficient.
A gátló hatás és a nem biológiai lebomlási folyamatok ellenőrzésére használt palackokból nem kell olyan gyakran mintát venni, mint a többi palackból: az 1. és a 28. napon végzett mintavétel elegendő.
Inorganic carbon (IC) analysis
Szervetlen szén (IC) analízise
production in the bottles is determined by measuring the increase in the concentration of inorganic carbon (IC) during incubation.
A palackokban végbemenő CO2-fejlődést a szervetlen szén (IC) koncentrációja inkubációs időszak alatti növekedésének mérésével határozzuk meg.
There are two recommended methods available for measuring the amount of IC produced in the test, and these are described immediately below.
A vizsgálat során keletkező IC-mennyiség mérésére két ajánlott módszer létezik, amelyeket az alábbiakban ismertetünk.
Since the methods can give slightly different results only one should be used in a test run.
Mivel a két módszer kissé eltérő eredményre vezethet, ugyanazon vizsgálatsorozaton belül csak az egyiket használjuk.
Method (a) is recommended if the medium is likely to contain remnants of, for example, a glass-filter paper and/or insoluble test chemical.
Az a) módszer alkalmazása akkor ajánlott, ha a közeg tartalmazhatja például az üvegszálas szűrőpapír és/vagy az oldhatatlan vizsgált vegyi anyag maradványait.
This analysis can be performed using a gas chromatograph if a carbon analyser is not available.
Ha szénanalizátor nem áll rendelkezésre, akkor gázkromatográfot is használhatunk ennek az analízisnek az elvégzéséhez.
It is important that the bottles should be at or close to the test temperature when the headspace gas is analysed.
Fontos, hogy a gőztér gáztartalmának elemzésekor a palackok hőmérséklete a vizsgálat során használt hőmérséklettel megegyező vagy ahhoz közeli legyen.
Method (b) can be easier for laboratories using carbon analysers to measure IC.
Az IC mérésére szénanalizátort használó laboratóriumok a b) módszert egyszerűbbnek találhatják.
It is important that the sodium hydroxide solution (paragraph 21) used to convert CO2 to carbonate is either freshly prepared or its IC content is known, so that this can be taken into account when calculating the test results (see paragraph 66-b.)
Fontos, hogy a CO2 karbonáttá alakításához használt nátrium-hidroxid-oldat (21. bekezdés) vagy frissen készüljön, vagy IC-tartalma ismert legyen, hogy a vizsgálat eredményeinek kiszámítása során ezt az értéket vehessük figyelembe (lásd a 66. bekezdés b) pontját).
Method (a):
módszer:
acidification to pH < 3
3 alatti pH-értéket eredményező savas kezelés
Before each batch of analyses, the IC analyser is calibrated using an appropriate IC standard (e.g. 1 % w/w CO2 in N2).
Az egyes analízissorozatok előtt az IC-analizátort megfelelő IC-etalonnal (pl. N2 -ben 1 tömegszázalék CO2) kalibrálni kell.
Concentrated orthophosphoric acid (paragraph 20) is injected through the septum of each bottle sampled to lower the pH of the medium to < 3 (e.g. add 1 ml to 107 ml test medium).
A mintavételre felhasznált palackok mindegyikébe a septum kupakon keresztül tömény foszforsavat (20. bekezdés) fecskendezünk, hogy a pH-t 3 alatti értékre csökkentsük (például 107 ml vizsgálati közeghez 1 ml-t adunk).
The bottles are placed back on the shaker.
Ezt követően a palackokat visszahelyezzük a rázókészülékre.
After shaking for one hour at the test temperature the bottles are removed from the shaker, aliquots (e.g. 1 ml) of gas are withdrawn from the headspace of each bottle and injected into the IC analyser.
A vizsgálathoz használt hőmérsékleten egy óráig folytatott rázást követően a palackokat levesszük a rázókészülékről, és mindegyik palack gőzteréből aliquot résznyi (pl. 1 ml) mintát veszünk, amelyet az IC-analizátorba fecskendezünk.
The measured IC concentrations are recorded as mg C/l.
A mért IC-koncentrációt mg C/l mértékegységben jegyezzük fel.
The principle of this method is that after acidification to pH < 3 and equilibration at 20 °C, the equilibrium constant for the distribution of CO2 between the liquid and gaseous phases in the test bottles is 1,0 when measured as a concentration (13).
A módszer elve, hogy a 3 alatti pH-t eredményező savas kezelést és a 20 °C-on történő ekvilibrációt követően a folyadék- és a gázfázis közötti – koncentrációként mért – CO2-megoszlás egyensúlyi állandója 1,0 (13).
This should be demonstrated for the test system at least once as follows:
Ezt a következőképpen legalább egyszer ki kell mutatni a vizsgálati elrendezésre vonatkozóan:
Set up bottles containing 5 and 10 mg/l as IC using a solution of anhydrous sodium carbonate (Na2 CO3) in CO2-free water prepared by acidifying water to pH 6,5 with concentrated ortho-phosphoric acid (paragraph 20), sparging overnight with CO2-free air and raising the pH to neutrality with alkali.
Készítsünk 5 és 10 mg/l IC-koncentrációjú palackokat vízmentes nátrium-karbonát (Na2CO3) CO2-mentes vízben készített oldatát alkalmazva, amelyhez tömény foszforsavval (20. bekezdés) savasítsuk úgy a vizet, hogy a pH 6,5 legyen, és egy éjszakán buborékoltassunk át rajta CO2-mentes levegőt, majd lúggal emeljük a pH-t semleges szintre.
Ensure that the ratio of the headspace volume to the liquid volume is the same as in the tests (e.g. 1:2).
Gondoskodjunk arról, hogy a gőztér és a folyadék térfogatának aránya ugyanolyan legyen, mint a vizsgálatok során (pl. 1:2).
Acidify and equilibrate as described in paragraph 52, and measure the IC concentrations of both the headspace and liquid phases.
Az 52. bekezdésben leírtak szerint végezzük el a savas kezelést és az ekvilibrációt, majd mind a gőztérben, mind a folyadékfázisban mérjük meg az IC koncentrációját.
Check that the two concentrations are the same within experimental error.
Ellenőrizzük a két koncentráció kísérleti hibahatáron belüli egyezését.
If they are not, the operator should review the procedures.
Ha az egyezés nem áll fenn, akkor ellenőrizni kell az eljárást.
This check on the distribution of IC between liquid and gaseous phases need not be made every time the test is performed; it could presumably be made while performing the calibration.
Az IC folyadék- és gázfázis közötti megoszlásának ezt az ellenőrzését nem kell minden vizsgálat alkalmával elvégezni, valószínűleg a kalibráció során a legcélszerűbb végrehajtani.
Method (b):
módszer:
conversion of CO2 to carbonate
a CO2 karbonáttá alakítása
Before each batch of analyses, the IC analyser is calibrated using an appropriate standard — for example, a solution of sodium bicarbonate (NaHCO3) in CO2 free water (see paragraph 53) in the range 0 to 20 mg/l as IC.
Az egyes analízissorozatok előtt az IC-analizátort megfelelő etalonnal – például nátrium-bikarbonát (NaHCO3) CO2-mentes vízben készített, 0–20 mg/l tartományon belüli IC-koncentrációjú oldata (lásd az 53. bekezdést) felhasználásával – kalibrálni kell.