natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Add 400 ml of water and 5 ml of Carrez solution I (3.2), mix for approximately 30 seconds and add 5 ml of Carrez solution II (3.3).
Adjunk hozzá 400 ml vizet és 5 ml Carrez I. oldatot (3.2.), keverjük kb. 30 másodpercig, majd adjunk hozzá 5 ml Carrez II. oldatot (3.3.).
Mix for 30 minutes in the tumbler.
Keverjük a forgódobon harminc percig.
Make up to volume with water, shake and filter.
Töltsük térfogatra vízzel, rázzuk fel, és szűrjük le.
Remove 5 ml of the transparent colourless filtrates, place in test tubes with ground-glass stoppers, add 5 ml of 4-DMAB solution (3.1) and mix.
Vegyünk el 5 ml-t az áttetsző, színtelen szűrletekből, öntsük csiszolt üvegdugóval ellátott kémcsövekbe, adjunk hozzájuk 5 ml 4-DMAB oldatot (3.1.), és keverjük fel.
Place the tubes in a water bath at 20 oC (+/- 4 oC).
Helyezzük a kémcsöveket vízfürdőbe 20 oC-on (+/- 4 oC).
Calibration curve
Kalibrációs görbe
Remove volumes of 1, 2, 4, 5 and 10 ml of the urea solution (3.5), place in 100 ml volumetric flasks and make up the volume with water.
Vegyünk el a karbamid oldatból (3.5.) 1, 2, 4, 5 és 10 ml-t, öntsük 100 ml-es mérőlombikokba, és töltsük fel őket térfogatra vízzel.
Remove 5 ml from each solution, add 5 ml of 4-DMAB solution (3.1) to each of them, homogenise and measure the optical density as shown above in comparison with a control solution containing 5 ml of 4-DMAB and 5 ml of water free from urea.
Vegyünk el 5 ml-t minden egyes oldatból, és mindegyikhez adjunk 5 ml 4-DMAB oldatot (3.1.), homogenizáljuk, és a fentiek szerint mérjük meg az optikai sűrűséget összehasonlítva az 5 ml 4-DMAB oldatot és 5 ml vizet tartalmazó karbamidmentes kontrolloldattal.
Plot the calibration curve.
Szerkesszük meg a kalibrációs görbét.
Determine the amount of urea in the sample using the calibration curve.
A kalibrációs görbe segítségével határozzuk meg a mintában lévő karbamidmennyiséget.
Express the result as a percentage of the sample.
Az eredményt a minta százalékában fejezzük ki.
In the case of contents of urea exceeding 3 %, reduce the sample to 1 g or dilute the original solution so that there are not more than 50 mg of urea in 500 ml.
3 %-ot meghaladó karbamidtartalom esetén, csökkentsük a minta nagyságát 1 g-ra vagy hígítsuk az eredeti oldatot úgy, hogy 500 ml-ben ne legyen több 50 mg karbamidnál.
In the case of low contents of urea, increase the sample as long as the filtrate remains transparent and colourless.
Alacsony karbamidtartalom esetén növeljük a minta nagyságát mindaddig, amíg a szűrlet áttetsző és színtelen marad.
If the sample contains simple nitrogenous compounds such as amino acids, the optical density shall be measured at 435 nm.
Ha a minta olyan egyszerű nitrogéntartalmú elegyeket tartalmaz, mint az aminosavak, akkor az optikai sűrűséget 435 nm-en kell mérni.
DETERMINATION OF VOLATILE NITROGENOUS BASES
AZ ILLÓ NITROGÉNBÁZISOK MEGHATÁROZÁSA
I. BY MICRODIFFUSION
I. MIKRODIFFÚZIÓVAL
This method makes it possible to determine the content of volatile nitrogenous bases, expressed as ammonia, in feed.
Ez a módszer lehetővé teszi a takarmányok ammóniában kifejezett illó nitrogénbázis-tartalmának meghatározását.
The sample is extracted with water and the solution clarified and filtered.
A mintát vízzel extraháljuk, majd az oldatot derítjük és szűrjük.
The volatile nitrogenous bases are displaced by microdiffusion using a solution of potassium carbonate, collected in a solution of boric acid and titrated with sulphuric acid.
Az illó nitrogénbázisokat mikrodiffúzióval, kálium-karbonát oldat használatával kiszorítjuk, bórsavas oldatban fogjuk fel, és kénsavval titráljuk.
Trichloroacetic acid, solution 20 % (w/v).
20 %-os (w/v) triklór-ecetsav oldat.
Indicator: dissolve 33 mg of bromocresol green and 65 mg of methyl red in 100 ml of 95 %-96 % (v/v) of ethanol.
Indikátor: oldjunk fel 33 mg brómkrezol-zöldet és 65 mg metilvöröst 100 ml 95–96 %-os (v/v) etanolban.
Boric acid solution: in a 1 litre graduated flask dissolve 10 g of boric acid in 200 ml of 95 %-96 % (v/v) ethanol and 700 ml of water.
Bórsavas oldat: 1 literes mérőlombikban oldjunk fel 10 g bórsavat 200 ml, 95–96 %-os (v/v) etanolban és 700 ml vízben.
Add 10 ml of indicator (3.2).
Adjunk hozzá 10 ml indikátort (3.2.).
Mix and, if necessary, adjust the colour of the solution to light red by adding a solution of sodium hydroxide.
Keverjük össze, és ha szükséges, állítsuk be az oldat színét világos vörösre nátrium-hidroxid oldat hozzáadásával.
1 ml of this solution will fix a maximum of 300 μg of NH3.
Ezen oldat 1 ml-je maximum 300 μg NH3-t fog megkötni.
Saturated potassium carbonate solution: dissolve 100 g of potassium carbonate in 100 ml of boiling water.
Telített kálium-karbonát oldat: oldjunk fel 100 g kálium-karbonátot 100 ml forrásban lévő vízben.
Leave to cool, filter.
Hagyjuk lehűlni, majd szűrjük le.
Sulphuric acid 0,01 mol/litre.
0,1 mól/liter koncentrációjú kénsav.
Glass or plastic Conway cells (see diagram).
Üveg vagy műanyag Conway-küvetták (lásd az ábrát).
Microburettes graduated in 1/100 ml.
1/100 ml-es fokbeosztásos mikrobüretták.
Weigh 10 g of sample to the nearest 1 mg and place with 100 ml of water in a 200 ml graduated flask.
Mérjünk le 10 g mintát 1 mg pontossággal és tegyük egy 100 ml vizet tartalmazó 200 ml-es mérőlombikba.
Using a pipette, introduce 1 ml of boric acid solution (3.3) into the central part of the Conway cell and 1 ml of the sample filtrate into the crown of the cell.
Pipettázzunk 1 ml bórsavas oldatot (3.3.) a Conway-küvetta középső részébe és 1 ml mintaszűrletet a küvetta koronarészébe.
Cover partially with the greased lid.
Fedjük le részlegesen a bezsírozott fedéllel.
Drop 1 ml of saturated potassium carbonate solution (3.4) quickly into the crown and close the lid so that the cell is airtight.
Tegyünk 1 ml telített kálium-karbonát oldatot (3.4.) gyorsan a küvetta koronarészébe, majd zárjuk le légmentesen a küvettát a fedéllel.
Turn the cell carefully rotating it in a horizontal plane so that the two reagents are mixed.
Forgassuk el a küvettát óvatosan a vízszintes síkban úgy, hogy a két reagens összekeveredjen.
Leave to incubate either for at least four hours at room temperature or for one hour at 40 oC.
Hagyjuk inkubálódni legalább négy órán át szobahőmérsékleten vagy egy órán át 40 oC-on.
Using a microburette (4.3), titrate the volatile bases in the boric acid solution with sulphuric acid (3.5).
Mikrobüretta (4.3.) segítségével titráljuk az illó bázisokat a bórsavoldatban kénsavval (3.5.).
Carry out a blank test using the same procedure but without a sample to be analysed.
Végezzünk vakpróbát ugyanezzel az eljárással, de az analizálandó minta hozzáadása nélkül.
1 ml of H2SO40,01 mol/litre corresponds to 0,34 mg of ammonia.
1 ml 0,01 mól/liter koncentrációjú H2SO4 0,34 mg ammóniának felel meg.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample shall not exceed:
Az ugyanazon mintán végzett két párhuzamos meghatározás eredményének különbsége nem haladhatja meg:
10 %, in relative value, for ammonia contents of less than 1,0 %,
1,0 %-osnál alacsonyabb ammóniatartalom esetén relatív értékben a 10 %-ot,
0,1 %, in absolute value, for ammonia contents of 1,0 % or more.
1,0 %-os vagy annál magasabb ammóniartartalom esetén abszolút értékben a 0,1 %-ot.
If the ammonia content of the sample exceeds 0,6 %, dilute the initial filtrate.
Ha a minta ammóniatartalma meghaladja a 0,6 %-ot, az eredeti szűrletet hígítani kell.
Cross-section of the lid S2 S3
A fedél keresztmetszete S2 S3
Cross-section of the cell S S1
A küvetta keresztmetszete S S1
Plan view of the cell
A küvetta felülnézete
Plan view of the ground-glass lid
A csiszoltüveg fedél felülnézete
BY DISTILLATION
DESZTILLÁLÁSSAL
This method makes it possible to determine the content of volatile nitrogenous bases, expressed as ammonia, in fish-meal containing practically no urea.
Ez a módszer lehetővé teszi a karbamidot gyakorlatilag nem tartalmazó halliszt ammóniában kifejezett illó nitrogénbázis-tartalmának meghatározását.
It is applicable only to ammonia contents of less than 0,25 %.
Csak 0,25 %-nál alacsonyabb ammóniatartalom esetén alkalmazható.
The volatile nitrogenous bases are displaced at boiling point by adding magnesium oxide and collected in a specific quantity of sulphuric acid, the excess of which is back-titrated with a solution of sodium hydroxide.
Az illó nitrogénbázist forrásponton szorítjuk ki magnézium-oxid hozzáadásával, és meghatározott mennyiségű kénsavban fogjuk fel, amelynek feleslegét nátrium-hidroxid oldattal titráljuk vissza.
Magnesium oxide.
Magnézium-oxid.
Anti-foaming emulsion (e.g. silicone).
Habzásgátló emulzió (pl. szilikon).
Sulphuric acid 0,05 mol/litre.
0,5 mól/liter koncentrációjú kénsav.
Sodium hydroxide solution 0,1 mol/litre.
0,1 mól/liter koncentrációjú nátrium-hidroxid oldat.
Methyl red solution 0,3 % in 95 %-96 % (v/v) ethanol.
0,3 %-os metilvörös-oldat 95–96 % (v/v) etanolban.
Distilling apparatus of the Kjeldahl type.
Kjeldahl-féle lepárlókészülék.
Weigh 10 g of the sample to the nearest 1 mg and place with 100 ml of water in a 200 ml graduated flask.
Mérjünk le 10 g mintát 1 mg pontossággal, és tegyük egy 100 ml vizet tartalmazó 200 ml-es mérőlombikba.
Take a quantity of clear filtrate appropriate for the presumed content of volatile nitrogenous bases (100 ml is usually suitable).
Vegyünk a tiszta szűrletből elegendő mennyiséget, hogy a feltételezett illó nitrogénbázis-tartalmat meg tudjuk határozni (100 ml mennyiség rendszerint megfelel a célnak).
Dilute to 200 ml and add 2 g of magnesium oxide (3.2) and a few drops of anti-foaming emulsion (3.3).
Hígítsuk fel 200 ml-re, és adjunk hozzá 2 g magnézium-oxidot (3.2.), valamint néhány csepp habzásgátló emulziót (3.3.).
The solution must be alkaline to litmus paper; otherwise add some magnesium oxide (3.2).
Az oldatnak lakmuszpapírral mérve lúgos kémhatásúnak kell lennie; ha nem az, adjunk hozzá egy kevés magnézium-oxidot (3.2.).
Proceed according to 5.2 and 5.3 of the method of analysis for the determination of the crude protein content (Part C of this Annex).
Folytassuk a nyersfehérje meghatározására az 5.2. vagy 5.3. pontban ismertetett módszer szerint (e melléklet C. része).
1 ml of H2SO40,05 mol/litre corresponds to 1,7 mg of ammonia.
1 ml 0,05 mól/liter koncentrációjú H2SO41,7 mg ammóniának felel meg.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample shall not exceed, in relative value, 10 % of ammonia.
Az ugyanazon mintán végzett két párhuzamos meghatározás eredménye közötti különbség nem haladhatja meg relatív értékben az ammóniatartalom 10 %-át.
DETERMINATION OF AMINO ACIDS (EXCEPT TRYPTOPHANE)
AZ AMINOSAVAK MEGHATÁROZÁSA (A TRIPTOFÁN KIVÉTELÉVEL)
This method makes the determination possible of free (synthetic and natural) and total (peptide bound and free) amino acids in feed, using an amino acid analyser.
Ez a módszer a takarmányok szabad (szintetikus és természetes) és összes (peptidhez kötött és szabad) aminosav-tartalmának meghatározását teszi lehetővé, aminosav-analizátort használatával.
It is applicable to the following amino acids: cyst(e)ine, methionine, lysine, threonine, alanine, arginine, aspartic acid, glutamic acid, glycine, histidine, isoleucine, leucine, phenylalanine, proline, serine, tyrosine and valine.
A módszer a következő aminosavakra alkalmazható: cisztein, metionin, lizin, treonin, alanin, arginin, aszparaginsav, glutaminsav, glicin, hisztidin, izoleucin, leucin, fenilalanin, prolin, szerin, tirozin és valin.
The method does not distinguish between the salts of amino acids and it cannot differentiate between D and L forms of amino acids.
A módszer nem tesz különbséget az aminosav sói között, és nem különbözteti meg az aminosavak D és L formáit.
It is not valid for the determination of tryptophan or hydroxy analogues of amino acids.
A módszer nem érvényes triptofán vagy az aminosavak hidroxi analógjainak meghatározására.
Free amino acids
Szabad aminosavak
The free amino acids are extracted with diluted hydrochloric acid.
A szabad aminosavakat híg sósavval extraháljuk.
Co-extracted nitrogenous macromolecules are precipitated with sulfosalicylic acid and removed by filtration.
Az együtt extrahált nitrogéntartalmú makromolekulákat szulfoszalicilsavval csapatjuk ki, és szűréssel távolítjuk el.
The filtered solution is adjusted to pH 2,20.
A szűrt oldat kémhatását pH = 2,20 értékre állítjuk be.
The amino acids are separated by ion exchange chromatography and determined by reaction with ninhydrin with photometric detection at 570 nm.
Az aminosavakat ioncserés kromatográfiával választjuk szét, és ninhidrines reakcióval, 570 nm-en végzett fotometriás detektálással határozzuk meg.
Total amino acids
Összes aminosav
The procedure chosen depends on the amino acids under investigation.
A választott eljárás függ a vizsgált aminosavaktól.
Cyst(e)ine and methionine must be oxidised to cysteic acid and methionine sulphone respectively prior to hydrolysis.
A ciszteint és a metionint a hidrolízis előtt ciszteinsavvá, illetve metionin-szulfonná kell oxidálni.
Tyrosine must be determined in hydrolysates of unoxidised samples.
A tirozint az oxidálatlan minták hidrolizátumaiból kell meghatározni.
All the other amino acids listed in paragraph 1 can be determined in either the oxidised or unoxidised sample.
Az (1) bekezdésben felsorolt összes többi aminosav akár oxidált, akár oxidálatlan mintából meghatározható.
Oxidation is performed at 0 oC with a performic acid/phenol mixture.
Az oxidálást 0 oC-on végezzük perhangyasav/fenol keverékével.
Excess oxidation reagent is decomposed with sodium disulphite.
A oxidálószer-felesleget nátrium-diszulfittal bontjuk le.
The oxidised or unoxidised sample is hydrolysed with hydrochloric acid (3.20) for 23 hours.
Az oxidált vagy oxidálatlan mintát sósavval (3.20.) hidrolizáljuk 23 órán keresztül.
The hydrolysate is adjusted to pH 2,20.
A hidrolizátum kémhatását pH = 2,20 értékre állítjuk be.
The amino acids are separated by ion exchange chromatography and determined by reaction with ninhydrin using photometric detection at 570 nm (440 nm for proline).
Az aminosavakat ioncserés kromatográfiával választjuk szét, és ninhidrines reakcióval, 570 nm-en (prolin esetében 440 nm-en) végzett fotometriás detektálással határozzuk meg.
Double distilled water or water of equivalent quality must be used (conductivity < 10 μS).
Kétszer desztillált vizet vagy ezzel egyenértékű minőségű vizet kell használni (vezetőképessége < 10 μS).
Hydrogen peroxide, w (w/w) = 30 %.
Hidrogén-peroxid, w (w/w) = 30 %.
Formic acid, w (w/w) = 98 %-100 %.
Hangyasav, w (w/w) = 98–100 %.
Phenol.
Fenol.
Sodium disulphite.
Nátrium-diszulfit.
Sodium hydroxide.
Nátrium-hidroxid.
5-Sulfosalicylic acid dihydrate.
5-szulfo-szalicilsav-dihidrát.
Hydrochloric acid, density approximately 1,18 g/ml.
Sósav, sűrűsége megközelítőleg 1,18 g/ml.
tri-Sodium citrate dihydrate.
tri-nátrium-citrát-dihidrát.
2,2'-Thiodiethanol (thiodiglycol).
2,2'-Tiodietanol (tiodiglikol).
Sodium chloride.
Nátrium-klorid
Ninhydrin.
Ninhidrin.
Light petroleum, boiling range 40-60 oC.
Petroléter, forráspont-tartomány: 40–60 oC.
Norleucine, or other compound suitable for use as internal standard.
Norleucin vagy más, belső standardként történő használatra alkalmas vegyület.
Nitrogen gas (< 10 ppm oxygen).
Nitrogéngáz (10 ppm-nél kevesebb oxigénnel).
1-Octanol.
1-oktanol.
Amino acids.
Aminosavak.
Standard substances listed under paragraph 1.
Az 1. pontban felsorolt standard anyagok.
Pure compounds containing no water of crystallisation.
Tiszta vegyületek kristályvíztartalom nélkül.
Dry under vacuum over P2O5 or H2SO4 for 1 week prior to use.
Használat előtt egy hétig szárítsuk vákuumban P2O5 vagy H2SO4 felett.
Cysteic acid.
Ciszteinsav.
Methionine sulphone.
Metionin-szulfon.
Sodium hydroxide solution, c = 7,5 mol/l:
Nátrium-hidroxid-oldat, c = 7,5 mól/l:
Dissolve 300 g NaOH (3.5) in water and make up to 1 litre.
Oldjunk fel 300 g NaOH-t (3.5.) vízben, és vízzel töltsük fel 1 l-re.
Sodium hydroxide solution, c = 1 mol/l:
Nátrium-hidroxid-oldat, c = 1 mól/l:
Dissolve 40 g NaOH (3.5) in water and make up to 1 litre.
Oldjunk fel 40 g NaOH-t (3.5.) vízben, és vízzel töltsük fel 1 l-re.
Formic acid — phenol solution:
Hangyasav-fenol oldat:
Mix 889 g formic acid (3.2) with 111 g water and add 4,73 g phenol (3.3).
Elegyítsünk 889 g hangyasavat (3.2.) 111 g vízzel és adjunk hozzá 4,73 g fenolt (3.3.).
Hydrolysis mixture, c = 6 mol HCl/l containing 1 g phenol/l:
Hidrolízis keverék c = 6 mól HCl /l 1 g fenol/l tartalommal:
Add 1 g phenol (3.3) to 492 ml HCl (3.7) and make up to 1 litre with water.
Adjunk egy g fenolt (3.3.) 492 ml HCl-hez (3.7.), és vízzel töltsük fel 1 l-re.
Extraction mixture, c = 0,1 mol HCl/l containing 2 % thiodiglycol: Take 8,2 ml HCl (3.7), dilute with approximately 900 ml water, add 20 ml thiodiglycol (3.9) and make up to 1 litre with water, (do not mix 3.7 and 3.9 directly).
Extraháló keverék, c = 0,1 mól HCl/l 2 %-os tiodiglikol tartalommal: Vegyünk 8,2 ml HCl-t (3.7.), hígítsuk megközelítőleg 900 ml vízzel, adjunk hozzá 20 ml tiodiglikolt (3.9.), és vízzel töltsük fel 1 l-re (ne keverjük össze közvetlenül a 3.7.-et és 3.9.-et).
5-Sulfosalicylic acid, ß = 6 %:
5-szulfo-szalicilsav ß = 6 %:
Dissolve 60 g 5-sulfosalicylic acid (3.6) in water and make up to 1 l with water.
Oldjunk fel 60 g 5-szulfo-szalicilsavat (3.6.) vízben, és vízzel töltsük fel 1 l-re.
Oxidation mixture (Performic acid — phenol):
Oxidáló keverék (perhangyasav-fenol):
Mix 0,5 ml hydrogen peroxide (3.1) with 4,5 ml formic acid-phenol solution (3.19) in a small beaker.
Elegyítsünk 0,5 ml hidrogén peroxidot (3.1.) 4,5 ml hangyasav-fenol oldattal (3.19.) egy kis főzőpohárban.
Incubate at 20-30 oC for 1 hour in order to form performic acid, then cool on an ice-water bath (15 min.) before adding to the sample.
Inkubáljuk 20–30 oC-on egy órán át a perhangyasav keletkezéséhez, majd hűtsük le jeges vízfürdőben (15 percig), mielőtt a mintához adnánk.
Caution: Avoid contact with skin and wear protective clothing.
Figyelem: Kerüljük a bőrrel való érintkezést, és viseljünk védőruházatot.
Citrate buffer, c = 0,2 mol Na+/l, pH 2,20:
Citrátpuffer, c = 0,2 mól Na+/l, pH 2,20:
Dissolve 19,61 g sodium citrate (3.8), 5 ml thiodiglycol (3.9), 1 g phenol (3.3) and 16,50 ml HCl (3.7) in approximately 800 ml water.
Oldjunk fel 19,61 g nátrium-citrátot (3.8.), 5 ml tiodiglikolt (3.9.), 1 g fenolt (3.3.) és 16,50 ml HCl-t (3.7.) megközelítőleg 800 ml vízben.
Adjust pH to 2,20.
Állítsuk be a pH-t 2,20-re.
Make up to 1 litre with water.
Töltsük fel vízzel 1 literre.
Elution buffers, prepared according to conditions for the analyser used (4.9).
Eluáló pufferek, a használt analizátor feltételei szerint készítve (4.9.).
Ninhydrin reagent, prepared according to conditions for the analyser used (4.9).
Ninhidrin reagens, a használt analizátor feltételei szerint készítve (4.9.).
Standard solutions of amino acids.
Aminosavak standardoldata.
These solutions shall be stored below 5 oC.
Ezeket az oldatokat 5 oC alatt kell tárolni.
Stock standard solution of amino acids (3.16.1).
Aminosavak standard törzsoldata (3.16.1.).
c = 2,5 μmol/ml of each in hydrochloric acid.
c = 2,5 μmól/l, mindegyik sósavban.
May be obtained commercially.
Kereskedelmi forgalomban kapható.
Stock standard solution of cysteic acid and methionine sulphone, c = 1,25 μmol/ml.
Ciszteinsav és metionin-szulfon standard törzsoldata, c = 1,25 μmól/ml.
Dissolve 0,2115 g cysteic acid (3.16.2) and 0,2265 g methionine sulphone (3.16.3) in citrate buffer (3.24) in a 1 litre graduated flask and make up to mark with citrate buffer.
1 literes mérőlombikban citrátpufferban (3.24.) oldjunk fel 0,2115 g ciszteinsavat (3.16.2.) és 0,2265 g metionin szulfont (3.13.), majd az oldatot töltsük fel jelig citrátpufferrel.
Store below 5 oC for not more than 12 months.
Legfeljebb 12 hónapig tároljuk 5 oC alatt.
This solution is not used if the stock standard solution (3.27.1) contains cysteic acid and methionine sulphone.
Nem használjuk ezt az oldatot, ha a standard törzsoldat (3.27.1.) tartalmaz ciszteinsavat és metionin szulfont.
Stock standard solution of the internal standard e.g. norleucine, c = 20 μmol/ml.
Belső standard pl. norleucin standard törzsoldata, c = 20 μmól/ml.
Dissolve 0,6560 g norleucine (3.13) in citrate buffer (3.24) in a graduated flask and make up to 250 ml with citrate buffer.
Mérőlombikban oldjunk fel 0,6560 g norleucint (3.13.) citrátpufferben (3.24.), majd az oldatot töltsük fel 250 ml-re citrátpufferrel.
Store below 5 oC for no more than 6 months.
Legfeljebb 6 hónapig tároljuk 5 oC alatt.
Calibration solution of standard amino acids for use with hydrolysates, c = 5 nmol/50 μl of cysteic acid and methionine sulphone and c = 10 nmol/50 μl of the other amino acids.
Standard aminosavak kalibrálóoldata hidrolizátumokkal való használatra, c = 5 nmól/50 μl ciszteinsav és metionin szulfon és c = 10 nmól/50 μl más aminosav.
Adjust pH to 2,20 with sodium hydroxide (3.18).
A pH-t állítsuk 2,20-re nátrium-hidroxiddal (3.18.).
Transfer quantitatively to a 50 ml graduated flask and make up to the mark with citrate buffer (3.24) and mix.
Öntsük át a teljes mennyiséget egy 50 ml-es mérőlombikba, töltsük fel jelig citrátpufferrel (3.24.), és keverjük össze.
Store below 5 oC for not more than 3 months.
Legfeljebb 3 hónapig tároljuk 5 oC alatt.
See also observation 9.1.
Lásd még az Észrevételek 9.1. pontját.
Calibration solution of standard amino acids for use with hydrolysates prepared according to paragraph 5.3.3.1 and for use with extracts (5.2).
Standard aminosavak kalibrálóoldata hidrolizátumokkal való használatra, az 5.3.3.1. pont szerint készítve és a kivonatokkal való használatra (5.2.).
The calibration solution is prepared according to 3.27.4 but omitting sodium chloride.
A kalibrálóoldat a 3.27.4. pont szerint készül, de elhagyjuk a nátrium-kloridot.
100 or 250 ml round bottomed flask fitted with a reflux condenser.
100 vagy 250 ml-es visszafolyós hűtővel ellátott gömblombik.
100 ml borosilicate glass bottle with screw cap with rubber/teflon liner (e.g. Duran, Schott) for use in the oven.
100 ml-es, csavaros tetejű, gumi/teflon béléses bórszilikát üveglombik (pl. Duran, Schott) kemencében történő használatra.
Oven with forced ventilation and a temperature regulator with an accuracy better than ± 2 oC.
Intenzív szellőztetésű és + 2 oC-nál nagyobb pontosságú hőmérséklet-szabályozóval ellátott kemence.
pH-meter (three decimal places).
pH-mérő (három tizedesjegyig)
Membrane filter (0,22 μm).
0,22 μm-es membránszűrő.
Centrifuge.
Centrifuga.
Rotary vacuum evaporator.
Rotációs vákuumbepárló.
Mechanical shaker or magnetic stirrer.
Mechanikus rázógép vagy mágneses keverő
Amino acid analyser or HPLC equipment with ion exchange column, device for ninhydrin, post column derivatisation and photometric detector.
Aminosav-analizátor vagy HPLC-berendezés ioncserélő oszloppal, készülék ninhidrinhez, utókolonnás derivatizáláshoz és fotometriás detektor.
The column is filled with sulfonated polystyrene resins capable of separating the amino acids from each other and from other ninhydrin-positive materials.
A kolonna szulfonált polisztirol gyantával van töltve, amely képes az aminosavak egymástól és más ninhidrin-pozitív anyagoktól való elválasztására.
The flow in the buffer and ninhydrin lines is provided by pumps having a flow stability of ±0,5 % in the period covering both the standard calibration run and the analysis of the sample.
A puffer és ninhidrin vonal áramlását ±0,5 %-os áramlási stabilitású szivattyúk biztosítják a standard kalibrálás és a minta analízisének időszakában.
With some amino acid analysers hydrolysis procedures can be used in which the hydrolysate has a sodium concentration of c = 0,8 mol/l and contains all the residual formic acid from the oxidation step.
Néhány aminosav-analizátornál olyan hidrolízises eljárások is alkalmazhatók, amelyekben a hidrolizátum nátriumkoncentrációja k = 0,8 mól/l, és amelyek tartalmazzák az oxidációs lépésből származó valamennyi hangyasavmaradékot.
Others do not give a satisfactory separation of certain amino acids if the hydrolysate contains excess formic acid and/or high sodium ion concentrations.
Más analizátorok nem biztosítanak megfelelő elválasztást bizonyos aminosavak esetében, ha a hidrolizátum feleslegben tartalmaz hangyasavat, és/vagy magas benne a nátrium-ion koncentráció.