natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For the determination of free gossypol in cottonseed, cottonseed meal and cottonseed cake, the test sample shall not exceed 1 g; for compound feed, it may be as much as 5 g. A 10 ml aliquot part of filtrate is suitable in most cases; it shall contain 50 to 100 μg of gossypol.
A gyapotmag, a gyapotmagliszt és a gyapotmagpogácsa szabad gosszipoltartalmának mérésére a vizsgálati minta mennyisége ne haladja meg az 1 g-ot, összetett takarmányok vizsgálata során a minta mennyisége akár 5 g is lehet. A szűrlet 10 ml-nyi aliquot része a legtöbb esetben megfelelő: ez kb. 50–100 μg gosszipolt tartalmaz.
For the determination of total gossypol, the test sample shall be between 0,5 and 5 g, that a 2 ml aliquot part of filtrate will contain 40 to 200 μg of gossypol.
Az összes gosszipoltartalom meghatározásához a vizsgálati minta mennyisége 0,5 és 5 g között legyen, így a szűrlet 2 ml-nyi aliquot része kb. 40–200 μg gosszipolt fog tartalmazni.
The analysis shall be carried out at a room temperature of about 20 oC.
A vizsgálatokat kb. 20 oC-os szobahőmérsékleten kell végezni.
Determination of free gossypol
A szabad gosszipoltartalom meghatározása
Place the test sample in a ground-necked 250 ml flask, the bottom of the flask having been covered with crushed glass.
Tegyük a vizsgálati mintát egy 250 ml-es, csiszolatos lombikba, amelynek az alján üvegzúzalékot helyeztünk el.
Using a pipette, add 50 ml of solvent A (3.2), stopper the flask and mix for one hour in the mixer.
Pipettázzunk 50 ml A. oldószert (3.2.) a lombikba, zárjuk le a lombikot, és keverjük egy órán át a keverőben.
Filter through a dry filter and collect the filtrate in a small ground-necked flask.
Szűrjük át egy száraz szűrőn, és gyűjtsük össze a szűrletet egy kis, csiszolatos lombikban.
During filtration, cover the funnel with a watch glass.
Szűrés közben fedjük be a tölcsért egy óraüveggel.
Pipette identical aliquot parts of filtrate containing 50 to 100 μg of gossypol into each of two 25 ml graduated flasks (A and B).
Pipettázzunk azonos aliquot mennyiségű, 50–100 μg gosszipolt tartalmazó szűrletet két, 25 ml-es mérőlombikba (A. és B. jelű).
If necessary, make up the volume to 10 ml with solvent A (3.2).
Ha szükséges, töltsük fel a mintát 10 ml-re az A. oldószerrel (3.2.).
Then make the contents of flask (A) up to volume with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1).
Ezután töltsük fel térfogatra az A. jelű lombikot propán-2-ol-hexán keverékkel (3.1.).
This solution will be used as a reference solution against which to measure the sample solution.
Ezt az oldatot referenciaoldatként használjuk, amellyel szemben a mintaoldatot mérjük.
Pipette 10 ml of solvent A (3.2) into each of two other 25 ml graduated flasks (C and D).
Pipettázzunk 10–10 ml A. oldószert (3.2.) két másik, 25 ml-es mérőlombikba (C. és D. jelű).
Make the contents of flask (C) up to volume with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1).
Töltsük fel a C. jelű lombik tartalmát térfogatra propán-2-ol-hexán keverékkel (3.1.).
This solution will be used as a reference solution against which to measure the blank test solution.
Ezt az oldatot referenciaoldatként használjuk, mellyel szemben a vakpróbaoldatot mérjük.
Add 2 ml of aniline (3.4) to each of flasks (D) and (B).
Adjunk 2-2 ml anilint (3.4.) a D. és a B. jelű lombikhoz.
Heat for 30 minutes over a boiling water bath to develop the colour.
Hevítsük ezeket 30 percen át forró vízfürdő fölött, hogy tartalmuk elszíneződjön.
Cool to room temperature, make up to volume with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1), homogenise and leave to stand for one hour.
Hűtsük le szobahőmérsékletűre, és töltsük fel tartalmukat térfogatra propán-2-ol-hexán keverékkel (3.1.), homogenizáljuk, majd hagyjuk állni egy órán át.
Determine the optical density of the blank test solution (D) by comparison with the reference solution (C), and the optical density of the sample solution (B) by comparison with the reference solution (A), in the spectrophotometer at 440 nm using 1 cm glass cells.
Határozzuk meg a D. jelű vakpróbaoldat optikai sűrűségét a C. jelű referenciaoldattal összehasonlítva, és a B. jelű mintaoldat optikai sűrűségét az A. jelű referenciaoldattal összehasonlítva egy spektrofotométerrel, 440 nm-nél, 1 cm-es üvegküvettákat használva.
Subtract the optical density of the blank test solution from that of the sample solution (= corrected optical density).
Vonjuk ki a vakpróbaoldat optikai sűrűségét a mintaoldat optikai sűrűségéből (= korrigált optikai sűrűség).
From this value calculate the free gossypol content as indicated in 6.
Ebből az értékből a 6. pontban leírtak szerint számítsuk ki a szabad gosszipoltartalmat.
Determination of total gossypol
Az összes gosszipoltartalom meghatározása
Place a test sample containing 1 to 5 mg of gossypol in a 50 ml graduated flask and add 10 ml of solvent B (3.3).
Tegyünk egy 1–5 mg gosszipolt tartalmazó vizsgálati mintát egy 50 ml-es mérőlombikba, és adjunk hozzá 10 ml B. oldószert (3.3.).
At the same time, prepare a blank test, placing 10 ml of solvent B (3.3) in another 50 ml graduated flask.
Készítsünk ezzel párhuzamosan egy vakpróbaoldatot is úgy, hogy 10 ml B. oldószert (3.3.) teszünk egy másik, 50 ml-es mérőlombikba.
Heat the two flasks for 30 minutes over a boiling water bath.
Hevítsük a két lombikot forró vízfürdő fölött 30 percen át.
Cool to room temperature and make the contents of each flask up to volume with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1).
Hűtsük le a lombikokat szobahőmérsékletűre, és töltsük fel tartalmukat térfogatra propán-2-ol-hexán keverékkel (3.1.).
Homogenise and leave to settle for 10 to 15 minutes, then filter and collect the filtrates in ground-necked flasks.
Homogenizáljuk, és hagyjuk ülepedni 10–15 percig, utána szűrjük át, majd gyűjtsük össze a szűrletet csiszolatos lombikokba.
Pipette 2 ml of the sample filtrate into each of two 25 ml graduated flasks, and 2 ml of the blank test filtrate into each of two other 25 ml flasks.
A mintaszűrletből pipettázzunk 2–2 ml-t két, 25 ml-es mérőlombikba, és a vakpróbaszűrletből is pipettázzunk 2–2 ml-t két másik, 25 ml-es lombikba.
Make the contents of one flask from each series up to 25 ml with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1).
Mindkét sorozatban az egyik lombikot töltsük fel 25 ml-re a propán-2-ol-hexán keverékkel (3.1.).
These solutions will be used as reference solutions.
Ezeket az oldatokat használjuk referenciaoldatként.
Add 2 ml of aniline (3.4) to each of the other two flasks.
A másik két lombik tartalmához adjunk 2–2 ml anilint (3.4.).
Cool to room temperature, make up to 25 ml with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1), homogenise and leave to stand for one hour.
Utána hűtsük le őket szobahőmérsékletűre, töltsük fel tartalmukat propán-2-ol-hexán keverékkel (3.1.) 25 ml-re, homogenizáljuk, és hagyjuk állni egy órán át.
Determine the optical density as indicated in 5.2 for free gossypol.
Határozzuk meg az optikai sűrűséget az 5.2 pontban, a szabad gosszipoltartalomra vonatkozóan ismertetett módon.
From this value calculate the total gossypol content as indicated in 6.
Ebből az értékből számítsuk ki az összes gosszipoltartalmat a 6. pont útmutatása alapján.
Results may be calculated either from the specific optical density (6.1), or by reference to a calibration curve (6.2).
Az eredmény kiszámítható akár a fajlagos optikai sűrűségből (6.1.), akár egy kalibrációs görbe (6.2.) segítségével.
From the specific optical density
A fajlagos optikai sűrűségből
The specific optical densities, under the conditions described, will be the following:
A fajlagos optikai sűrűség a leírt feltételek esetén az alábbiak szerint alakul:
Free gossypol:
Szabad gosszipoltartalom:
Total gossypol:
Összes gosszipoltartalom:
The free or total gossypol content of the sample is calculated by using the following formula:
A minta szabad vagy összes gosszipoltartalmát a következő képlet alapján számítjuk ki:
% gossypol: E × 1 250
gosszipol % E × 1 250
E corrected optical density, determined as indicated in 5.2,
E az 5.2 pont szerint meghatározott korrigált optikai sűrűség,
p test sample in g,
p a vizsgálati minta mennyisége g-ban;
a aliquot part of the filtrate in ml.
a a szűrlet aliquot része ml-ben.
From a calibration curve
Kalibrációs görbéből
Free gossypol
Szabad gosszipoltartalom
Prepare 2 series of five 25 ml graduated flasks.
Készítsünk elő két, egyenként 5 db 25 ml-es mérőlombikból álló sorozatot.
Pipette aliquots of 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 and 10,0 ml of standard gossypol solution A (3.5) into each series of flasks.
Pipettázzunk mindkét sorozat lombikjaiba 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 és 10,0 ml gosszipol-A standardoldatot (3.5.).
Make up the volumes to 10 ml with solvent A (3.2).
Töltsük fel valamennyi lombikot 10 ml-re az A oldószerrel (3.2.).
Complete each series with a 25 ml graduated flask containing only 10 ml of solvent A (3.2) (blank test).
Egészítsük ki mindkét sorozatot egy-egy, 25 ml-es, de csak 10 ml A. oldószert (3.2.) tartalmazó lombikkal (vakpróba).
Make the volume of the flasks in the first series (including the flask for the blank test) up to 25 ml with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1) (reference series).
Töltsük fel 25 ml-re az egyik sorozat lombikjait (beleértve a vakpróba lombikját is) propán-2-ol–hexán keverékkel (3.1.) (referenciasorozat).
Add 2 ml of aniline (3.4) to each flask in the second series (including the flask for the blank test).
Adjunk a másik sorozat minden lombikjának tartalmához 2 ml anilint (3.4.), beleértve a másik vakpróba lombikját is.
Cool to room temperature, make up to volume with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1), homogenise and leave to stand for one hour (standard series).
Ezután hűtsük le őket szobahőmérsékletűre, töltsük fel térfogatra propán-2-ol–hexán keverékkel (3.1.), homogenizáljuk, és hagyjuk állni egy órán át (standard sorozat).
Determine as indicated in 5.2 the optical density of the solutions in the standard series by comparison with the corresponding solutions in the reference series.
Határozzuk meg a standardoldatok optikai sűrűségét az 5.2. pont szerint, a referenciasorozat oldataival összehasonlítva.
Trace the calibration curve by plotting the optical densities against the quantities of gossypol (in μg).
Szerkesszük meg a kalibrációs görbét úgy, hogy az optikai sűrűséget a gosszipol μg-ban kifejezett mennyiségének függvényében ábrázoljuk.
Total gossypol
Összes gosszipoltartalom
Prepare six 50 ml graduated flasks.
Készítsünk elő 6 db 50 ml-es mérőlombikot.
Heat for 30 minutes over a boiling water bath.
Hevítsük a lombikokat forró vízfürdő fölött 30 percen át.
Cool to room temperature, make up to volume with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1) and homogenise.
Hűtsük le őket szobahőmérsékletűre, töltsük fel térfogatra a propán-2-ol–hexán keverékkel (3.1.), és homogenizáljuk a tartalmukat.
Place 2,0 ml of these solutions in each of two series of six 25 ml graduated flasks.
Az elkészített oldatokból tegyünk 2-2 ml-t a két sorozatban előkészített, 6-6 db 25 ml-es mérőlombikba.
Make the contents of the flasks in the first series up to 25 ml with the propan-2-ol-hexane mixture (3.1) (reference series).
Töltsük fel az első sorozat lombikjainak tartalmát 25 ml-re propán-2-ol–hexán keverékkel (3.1.) (referenciasorozat).
Add 2 ml of aniline (3.4) to each flask in the second series.
A másik sorozat minden egyes lombikjába tegyünk 2 ml anilint (3.4.).
15 %, in relative value to the higher level, for gossypol contents of less than 500 ppm,
az 500 ppm-nél kevesebb gosszipolt tartalmazó minták esetében a magasabb érték 15 %-át,
75 ppm, in absolute value, for contents of not less than 500 ppm and not more than 750 ppm,
az 500 ppm-nél nem kevesebb és 750 ppm-nél nem több gosszipolt tartalmazó minták esetében a 75 ppm-et, abszolút értékben,
10 %, in relative value to the higher value, for contents of more than 750 ppm.
a 750 ppm-nél több gosszipolt tartalmazó minták esetében a magasabb érték 10 %-át.
DETERMINATION OF THE LEVELS OF DIOXINS (PCDD/PCDF) AND DIOXIN-LIKE PCBs
A DIOXIN- (PCDD/PCDF) ÉS DIOXINSZERŰ PCB-TARTALOM MEGHATÁROZÁSA
I. METHODS OF SAMPLING AND INTERPRETATION OF ANALYTICAL RESULTS
I. MINTAVÉTELI MÓDSZEREK ÉS AZ ANALITIKAI EREDMÉNYEK ÉRTELMEZÉSE
The lot is non-compliant with the maximum level as laid down in Directive 2002/32/EC, if the upperbound analytical result, confirmed by duplicate analysis , exceeds the maximum level beyond reasonable doubt taking into account the measurement uncertainty.
A vizsgált tétel nem felel meg a 2002/32/EK irányelvben megállapított maximális határértéknek, ha a párhuzamos vizsgálattal megerősített felső határ – a mérési bizonytalanságra is figyelemmel – az ésszerűség határain belül kétséget kizáróan meghaladja a maximális határértéket.
by calculating the expanded uncertainty, using a coverage factor of 2 which gives a level of confidence of approximately 95 %.
kiterjesztett bizonytalanság számítása 2-es kiterjesztési tényező alkalmazásával, amely megközelítőleg 95 %-os konfidenciaszintet eredményez.
A lot is non-compliant if the measured value minus U is above the maximum level.
A tétel nem megfelelő, ha az U-val csökkentett mért érték meghaladja a meghatározott engedélyezett határértéket.
In case of a separate determination of dioxins and dioxin-like-PCBs the sum of the estimated expanded uncertainty of the separate analytical results of dioxins and dioxin-like PCBs has to be used for the sum of dioxins and dioxin-like PCBs,
A dioxinok és dioxinszerű PCB-k külön történő meghatározása esetén a dioxinok és a dioxinszerű PCB-k külön vizsgálati eredményei becsült kiterjesztett bizonytalanságának összegét kell felhasználni a dioxinok és a dioxinszerű PCB-k összegének megállapításához.
by establishing the decision limit (CCα) in accordance with Commission Decision 2002/657/EC (point 3.1.2.5 of the Annex — the case of substances with established permitted level).
a 2002/657/EK bizottsági határozat szerinti döntési határérték (CCα) meghatározása (a melléklet 3.1.2.5. pontja – megállapított engedélyezett határértékkel rendelkező anyagok).
A lot is non-compliant if the measured value is equal to or above the CCα.The present interpretation rules apply for the analytical result obtained on the sample for official control.
A tétel nem megfelelő, ha a mért érték egyenlő a CCα-val, vagy meghaladja azt.A jelenlegi értelmezési szabályok a hatósági ellenőrzéshez vett mintából nyert vizsgálati eredményre alkalmazandók.
It does not affect the right of Member States to apply national rules to analyses for defence or referee purposes.
Ez nem befolyásolja a tagállamok azon jogát, hogy védelmi vagy döntőbírói eljárás céljából végzett vizsgálatok esetében a nemzeti szabályokat alkalmazzák.
SAMPLE PREPARATION AND REQUIREMENTS FOR METHODS OF ANALYSIS USED IN OFFICAL CONTROL OF THE LEVELS OF DIOXINS (PCDD/PCDF) AND DIOXIN-LIKE PCBs
MINTA-ELŐKÉSZÍTÉS ÉS A DIOXIN- (PCDD/PCDF) ÉS DIOXINSZERŰ PCB-TARTALOM HATÓSÁGI ELLENŐRZÉSEKOR ALKALMAZOTT ANALITIKAI MÓDSZEREKRE VONATKOZÓ KÖVETELMÉNYEK
Objective and field of application
Cél és alkalmazási terület
These requirements shall be applied where feed materials and feed are analysed for the determination of the dioxins (polychlorinated dibenzo-p-dioxins (PCDD) and polychlorinated dibenzofurans (PCDF)) and dioxin-like polychlorinated biphenyls (PCBs).
Ezeket a követelményeket a takarmány-alapanyagokban és a takarmányokban lévő dioxinok (poliklórozott dibenzo-p-dioxinok (PCDD) és poliklórozott dibenzofuránok (PCDF)) és a dioxinjellegű poliklórozott bifenilek (PCB-k) meghatározását célzó analitikai vizsgálatok esetén kell alkalmazni.
Monitoring for the presence of dioxins in feed can be performed by a strategy involving a screening method in order to select those samples with levels of dioxins and dioxin-like PCBs that are less than 25 % below or exceed the level of interest.
A dioxinok takarmányokban történő előfordulását egy olyan szűrési módszert magában foglaló stratégiával vizsgálhatjuk, amely segítségével kiválaszthatjuk azokat a mintákat, amelyekben a dioxinok és a dioxinszerű PCB-k mennyisége kevesebb, mint 25 %-kal van a kérdéses szint alatt, vagy meghaladja azt.
The concentration of dioxins in those samples with significant levels needs to be determined/confirmed by a confirmatory method.
E jelentős dioxintartalmú mintákban a dioxinok koncentrációját megerősítő módszerrel kell meghatározni/megerősíteni.
These methods have a capacity for a high sample throughput and are used to sift large numbers of samples for potential positives.
E módszerek nagy teljesítményűek, és arra alkalmazzák őket, hogy nagyszámú minta közül kiszűrjék a potenciálisan pozitív mintákat.
They are specifically designed to avoid false negatives.
Kialakításuk kimondottan azt a célt szolgálja, hogy segítségükkel elkerülhetőek legyenek a téves negatív eredmények.
Because environmental and biological samples (including samples of feed materials/feed) in general contain complex mixtures of different dioxin congeners, the concept of Toxic Equivalency Factors (TEFs) has been developed to facilitate risk assessment.
Mivel a környezeti és a biológiai minták (ezen belül a takarmányalapanyag- és a takarmányminták is) általában különböző rokon dioxinvegyületek komplex keverékeit tartalmazzák, a kockázatfelmérés megkönnyítése érdekében kidolgozták a toxicitásiegyenérték-tényezők (TEF-ek) koncepcióját.
These TEFs have been established to express concentrations of mixtures of 2,3,7,8-substituted PCDDs and PCDFs and some non-ortho and mono-ortho chlorine substituted PCBs which possess dioxin-like activity in toxic equivalents (TEQs) of 2,3,7,8-TCDD.
A TEF-ek a 2,3,7,8-helyen szubsztituált PCDD-ket és PCDF-eket tartalmazó keverékek koncentrációjának, valamint egyes, dioxinjellegű aktivitással rendelkező, nem orto- és mono-orto-klórral szubsztituált PCB-knek a 2,3,7,8-TCDD toxikus egyenértékében (TEQ) való kifejezésére szolgálnak.
The concentrations of the individual substances in a given sample are multiplied by their respective TEF and subsequently summed to give the total concentration of dioxin-like compounds expressed in TEQs.
Az egyes anyagok adott mintában mért koncentrációit megszorozzuk a hozzájuk tartozó TEF-értékkel, majd összeadjuk őket, és így megkapjuk a dioxinjellegű vegyületek TEQ-ben kifejezett összes koncentrációját.
For the purposes of this Regulation only, the accepted specific limit of quantification of an individual congener is the concentration of an analyte in the extract of a sample which produces an instrumental response at two different ions to be monitored with an S/N (signal/noise) ratio of 3:1 for the less sensitive signal and fulfilment of the basic requirements such as e.g. retention time and isotope ratio according to the determination procedure as described in EPA method 1613 revision B.
Kizárólag e rendelet alkalmazásában az egyes rokonvegyületek (kongénerek) elfogadott meghatározási határa a vizsgált vegyület mintakivonatban mért azon koncentrációja, amelynél két különböző vizsgált ion S/N (jel/zaj) aránya a legkevésbé érzékeny ionra vonatkozóan 3:1, és amely megfelel az EPA 1613 módszer B. felülvizsgálata szerinti meghatározási módszerben megadott alapkövetelményeknek, mint amilyen például a retenciós idő, illetve az izotóparány.
Quality assurance requirements to be complied with for sample preparation
A minta előkészítésére vonatkozó minőségbiztosítási követelmények
The general provisions on the preparation of samples for analysis as laid down in the Annex II are applicable.
Az analitikai vizsgálat céljára szolgáló minták előkészítését illetően a II. mellékletben megállapított általános rendelkezéseket kell alkalmazni.
In addition following requirements have to be complied with:
Ezeken túlmenően az alábbi követelményeknek kell megfelelni:
Glassware shall be rinsed with solvents previously controlled for the presence of dioxins.
Az üvegeszközöket dioxinszennyezettség szempontjából előzetesen ellenőrzött oldószerekkel kell kiöblíteni.
Perform a blank analysis by carrying out the entire analytical procedure omitting only the sample.
Végezzünk vakpróbát úgy, hogy elvégezzük az egész analitikai eljárást, és csak a mintát hagyjuk ki belőle.
Sample weight used for the extraction must be sufficient to fulfil the requirements with respect to sensitivity.
Az extraháláshoz használt minta súlyának meg kell felelnie az érzékenységre vonatkozó követelményeknek.
Requirements for laboratories
A laboratóriumokra vonatkozó követelmények
For details of acceptance criteria, see point 5.
Az elfogadási kritériumokat részletesen lásd az 5. pontban.
Limit of quantification for a confirmatory method shall be in the range of about one fifth of the level of interest, to make sure that acceptable coefficients of variations are met in the range of the level of interest.
Megerősítő módszer esetében a meghatározási határ az adott szint körülbelül egyötödénél legyen annak érdekében, hogy az adott szinttartományban elfogadható relatív szórási együtthatókat kapjunk.
Regular blank controls and spiking experiments or analysis of control samples (preferably, if available, certified reference material) shall be performed as internal quality control measures.
Belső minőség-ellenőrzési intézkedésként rendszeres vakpróbát, ráméréses kísérleteket vagy ellenőrző minták (lehetőleg tanúsított anyagminták) vizsgálatát kell végezni.
Successful participation in interlaboratory studies that assess laboratory proficiency is the best way to prove the competence in specific analyses.
Meghatározott vizsgálatra való alkalmasság bizonyításának legjobb módja a laboratóriumi jártasság becslésére szervezett körvizsgálatokban való sikeres részvétel.
However successful participation in interlaboratory studies for e.g. soil or sewage samples does not necessarily prove the competence also in the field of food or feed samples, which present lower contamination levels.
A talaj- vagy szennyvízminták vizsgálatára szervezett körvizsgálatokban való sikeres részvétel azonban nem bizonyítja szükségszerűen az élelmiszer- és a takarmányminták vizsgálatára való alkalmasságot, mivel ez utóbbiakban a szennyezettségi szint kisebb.
Therefore, the continuous participation in interlaboratory studies for the determination of dioxins and dioxin-like PCBs in the relevant feed/food matrices is mandatory.
Ezért a megfelelő takarmány/élelmiszer-mátrixokban lévő dioxinok és dioxinszerű PCB-k meghatározására szervezett körvizsgálatokban való folyamatos részvétel kötelező.
Laboratories shall be accredited by a recognised body operating in accordance with ISO Guide 58 to ensure that they are applying analytical quality assurance.
A laboratóriumokat egy elismert és az ISO 58. iránymutatással összhangban működő testület akkreditálja annak érdekében, hogy analitikai minőségbiztosítást alkalmazzanak.
Laboratories shall be accredited following the ISO/IEC/17025 standard.
A laboratóriumokat az ISO/IEC/17025 szabvány szerint kell akkreditálni.
Requirements for the analytical procedures for dioxins and dioxin-like PCBS
A dioxinok és a dioxinjellegű PCB-k esetében használt analitikai eljárásokra vonatkozó követelmények
For PCDDs and PCDFs, detectable quantities have to be in the picogram TEQ (10-12 g) range because of extreme toxicity of some of these compounds.
A PCDD-k és PCDF-ek vonatkozásában a kimutatási határnak a pikogramm (10–12 g) TEQ tartományban kell lennie, mivel ezen vegyületek némelyike nagyon mérgező.
For most PCB congeners sensitivity in nanogram (10-9 g) range is already sufficient.
A legtöbb PCB-rokonvegyület esetében már elegendő a nanogrammos (10–9 g) érzékenység is.
However, for the measurement of the more toxic dioxin-like PCB congeners (in particular non-ortho substituted congeners), the same sensitivity must be reached as for the PCDDs and PCDFs.
A mérgezőbb dioxinszerű PCB-rokonvegyületek (és különösen a nem-orto szubsztituált rokonvegyületek) méréséhez azonban ugyanolyan érzékenységre van szükség, mint a PCDD-k és PCDF-ek esetében.
For gas chromatography/mass spectrometry (GC/MS) methods, a differentiation among various congeners is necessary, such as between toxic (e.g. the 17 2,3,7,8-substituted PCDDs and PCDFs and dioxin-like PCBs) and other congeners.
A gázkromatográfiás/tömegspektrometriás (GC/MS) módszereknél meg kell tudni különböztetni egymástól a különböző rokonvegyületeket, így például a mérgező (pl. a tizenhét 2,3,7,8-as helyzetben szubsztituált PCDD és PCDF és a dioxinjellegű PCB-k) és a többi rokonvegyületeket.