natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Sera can be tested at a single dilution of 1 in 5 (spot test method) or may be titrated (serum titration method) to give dilution end-points.
A szérum vizsgálható 1:5 arányú egyszeri hígításban (színreakció-módszer), vagy titrálható (szérumtitrálásos módszer) a hígítási szélsőértékek eléréséhez.
Inhibition values higher than 50 % may be regarded as positive.
Az 50 %-nál nagyobb inhibíciós értékek pozitívnak tekinthetők.
The test protocol described hereinafter is used in the Regional Reference Laboratory for African horse sickness in Pirbright, United Kingdom.
A következőkben ismertetett vizsgálati protokollt az egyesült királyságbeli Pirbrightban található, afrikai lópestissel foglalkozó regionális referencialaboratóriumban alkalmazzák.
Preparation of plates
A lemezek előkészítése
Coat ELISA plates with AHSV antigen extracted from infected cell cultures and diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
Vonjuk be az ELISA-lemezeket a fertőzött sejttenyészetből kivont és 9,6 pH értékű karbonát/bikarbonát pufferoldattal hígított ALPV-antigénnel.
Incubate the ELISA plates overnight at 4 °C.
Inkubáljuk az ELISA-lemezeket egy éjszakán át 4 °C-on.
Wash plates three times by flooding and emptying the wells with phosphate buffered saline (PBS), pH 7, 2 to 7,4 pH, and blot dry on adsorbent paper.
Mossuk ki a lemezeket háromszor úgy, hogy a lyukakat teleöntjük 7,2–7,4 pH-értékű, foszfáttal pufferelt sóoldattal (PBS), majd kiöntjük azt. Ezután itatóspapíron a nedvességet felszívatva megszárítjuk.
Control wells
Kontroll-lyukak
Titrate the positive control sera in a twofold dilution series, from 1 in 5 to 1 in 640, across column 1 in blocking buffer (PBS containing 0,05 % (v/v) Tween-20, 5,0 % (w/v) skimmed-milk powder (Cadbury’s MarvelTM) and 1 % (v/v) adult bovine serum) to give a final volume of 50 μl/well.
A pozitív kontrollszérumot kétszeres hígítási sorban blokkoló pufferoldatban (0,05 % [v/v] Tween-20-at, 5,0 % [w/v] sovány tejport [Cadbury’s MarvelTM] és 1 % [v/v] felnőtt szarvasmarha szérumot tartalmazó PBS) titráljuk, 1:5 aránytól 1:640 arányig végig az első oszlopban úgy, hogy lyukanként 50 μl térfogatot kapjunk.
Add 50 μl of the negative control serum at a dilution of 1 in 5 (10 μl serum + 40 μl blocking buffer) to wells A and B of column 2.
A negatív kontrollszérumból adjunk 50 μl-t 1:5 hígításban (10 μl szérum + 40 μl blokkoló pufferoldat) a második oszlop A és B lyukához.
Add 100 μl/well of blocking buffer to wells C and D of column 2 (blank).
Adjunk lyukanként 100 μl blokkoló pufferoldatot a második oszlop C és D lyukához (vak kontroll).
Add 50 μl of blocking buffer to wells E, F, G and H of column 2 (guinea pig control).
Adjunk 50 μl blokkoló pufferoldatot a második oszlop E, F, G és H lyukához (tengerimalacantiszérum-kontroll).
Spot test method
Színreakció-módszer
Add a 1 in 5 dilution of each test serum in blocking buffer to duplicate wells of columns 3 to 12 (10 μl sera + 40 μl blocking buffer).
Adjuk a blokkoló pufferoldatban 1:5 arányban hígított egyes vizsgálandó szérumokat a 3–12. oszlop két-két lyukához (10 μl szérum + 40 μl blokkoló pufferoldat).
Serum titration method
Szérumtitrálásos módszer
Prepare a twofold dilution series of each test sample (1 in 5 to 1 in 640) in blocking buffer across eight wells of single columns (3 to 12).
Készítsünk mindegyik vizsgálandó mintából kétszeres hígítási sort (1:5-től 1:640-ig) a blokkoló pufferoldatban, egy-egy oszlop nyolc (3–12.) lyukában.
then
ezután
Add 50 μl of guinea pig antisera, pre-diluted in blocking buffer, to all wells except the blank wells of the ELISA plate (all wells now contain a final volume of 100 μl).
Adjunk 50 μl – előzetesen blokkoló pufferoldatban hígított – tengerimalac-antiszérumot az ELISA-lemez mindegyik lyukához, kivéve a vak kontrollokhoz (ekkor valamennyi lyuk 100 μl végleges térfogatot tartalmaz).
Incubate for 1 hour at 37 °C on an orbital shaker.
Inkubáljuk egy órán át 37 °C-on forgó keverőben.
Wash plates three times and blot dry as before.
Mossuk ki a lemezeket háromszor, és a korábbihoz hasonlóan szárítsuk meg.
Add 50 μl of rabbit anti-guinea-pig horseradish peroxidase (HRP) conjugate pre-diluted in blocking buffer to each well.
Adjunk 50 μl, előzetesen blokkoló pufferoldatban hígított nyúl anti-tengerimalac torma-peroxidáz (HRP) konjugátumot mindegyik lyukhoz.
Chromogen
Kromogén
Prepare the chromogen OPD (OPD = ortho-phenyldiamine) solution according to the manufacturers’ instructions (0,4 mg/ml in sterile distilled water) just before use.
Készítsük el a kromogén-OPD (OPD = orto-fenildiamin) oldatot a gyártó útmutatója szerint (0,4 mg/ml steril desztillált vízben) közvetlenül felhasználás előtt.
Add substrate (hydrogen peroxide = H2O2) to give a final concentration of 0,05 % (v/v) (1 in 2000 of a 30 % solution of H2O2).
Adjuk hozzá a szubsztrátot (hidrogén-peroxid = H2O2), amivel megkapjuk a 0,05 %-os (v/v) végső koncentrációt (30 %-os H2O2-oldat 1:2000 arányban).
Add 50 μl of the OPD solution to each well and leave plates on the bench for 10 minutes at ambient temperature.
Adjunk az OPD-oldatból 50 μl-t mindegyik lyukhoz, és hagyjuk a lemezeket 10 percre szobahőmérsékleten a munkaasztalon.
Stop the reaction by the addition of 50 μl/well of 1M sulphuric acid (H2SO4).
A reakciót lyukanként 50 μl 1M kénsav (H2SO4) hozzáadásával állítsuk le.
Reading
Leolvasás
Read spectrophotometrically at 492 nm.
Olvassuk le spektrofotométerrel 492 nm-en.
Using a software package print out the optical density (OD) values, and the percentage inhibition (PI) for test and control sera based on the mean value recorded in the four guinea pig control wells.
Megfelelő szoftver segítségével nyomtassuk ki az optikai denzitás (OD) értékeit, valamint a százalékos inhibíciót (PI) a vizsgálandó és a kontrollszérumra, a négy tengerimalac-antiszérum kontroll-lyukban mért középérték alapján.
The data expressed as OD and PI values are used to determine whether the test has performed within acceptable limits.
Az OD- és PI-értékben kifejezett adatok alkalmasak annak meghatározására, hogy a vizsgálat eredménye az elfogadható határértékeken belül van-e.
The upper control limits (UCL) and lower control limits (LCL) for the guinea pig control are between OD values 1,4 and 0,4 respectively.
A tengerimalacantiszérum-kontroll esetében az OD értékének felső kontroll-határértéke (upper control limits – UCL) 1,4, az alsó (lower control limits – LCL) pedig 0,4.
The end-point titre for the positive control based on 50 % PI should be 1 in 240 (within a range from 1 in 120 to 1 in 480).
A végpont titernek a pozitív kontrollszérum esetében 50 %-os PI-t alapul véve 1:240-nek kell lennie (1:120–1:480 tartományon belül).
Any plate that fails to conform to the above criteria must be rejected.
A fenti kritériumoknak nem megfelelő lemezek nem értékelhetők ki.
However, if the positive control serum titre is greater than 1 in 480 and the test samples are still negative then the negative test samples can be accepted.
Ha azonban a pozitív kontrollszérum titere nagyobb 1:480-nál, és a vizsgált minták így is negatívak, akkor a negatív vizsgált minták elfogadhatók.
The duplicate negative control serum wells and the duplicate blank wells should record PI values between + 25 % and – 25 %, and between + 95 % and + 105 %, respectively.
A negatív kontrollszérumot tartalmazó kettős lyukaknak + 25 % és – 25 % közötti PI-értékeket kell mutatniuk, a vak kontrollt tartalmazó kettős lyukaknak pedig + 95 % és + 105 % közöttit.
Failure to be within these limits does not invalidate the plate but does suggest that background colour is developing.
Ha ezeken a határokon kívül eső értéket kapunk, a lemez még felhasználható, de ez annak a jele, hogy háttérszíneződés történik.
The diagnostic threshold (cut-off value) for test sera is 50 % (PI 50 %).
A diagnosztikai küszöbérték („cut-off” érték) a vizsgált szérum esetében 50 % (PI 50 %).
Samples that record PI values above and below the threshold for the duplicate wells are considered doubtful.
Azok a minták, amelyek a kettős lyukak küszöbértékénél magasabb vagy alacsonyabb értéket mutatnak, kétesnek tekintendők.
Such samples may be re-tested in the spot test and by titration.
Ezeket újra vizsgálhatjuk színreakcióval és titrálással.
Positive samples may also be titrated to provide an indication of the degree of positivity.
A pozitív mintákat is titrálhatjuk a pozitivitás mértékének megállapításához.
Spot test layout
Színreakció elrendezése
–ve cont negative control.
kont. negatív kontrollszérum
+ ve cont positive control.
+ kont. pozitív kontrollszérum
GP cont guinea pig control.
TM kont. tengerimalacantiszérum-kontroll
Test sera
Vizsgált szérumok
–ve cont.
kont.
INDIRECT ELISA FOR THE DETECTION OF ANTIBODIES TO AFRICAN HORSE SICKNESS VIRUS (AHSV) (PRESCRIBED TEST)
AZ AFRIKAI LÓPESTIS VÍRUSÁVAL (ALPV) SZEMBEN TERMELT ELLENANYAGOK KIMUTATÁSÁRA SZOLGÁLÓ INDIREKT ELISA-PRÓBA (ELŐÍRT VIZSGÁLAT)
The test described hereinafter is in accordance with the test description in Chapter 2.1.11 of the OIE Manual of Standards for Diagnostic Tests and Vaccines, fourth edition, 2000.
Az alábbiakban ismertetett vizsgálat összhangban áll az OIE A diagnosztikai vizsgálatok és a vakcinák szabványainak kézikönyve 2000. évi negyedik kiadásának 2.1.11. fejezetében ismertetett vizsgálattal.
The recombinant VP7 protein has been used as antigen for AHS virus antibody determination with a high index of sensitivity and specificity.
A rekombináns VP7-fehérjét az ALP-vírus elleni ellenanyagok kimutatásánál nagy érzékenységű és specificitású antigénként használják.
Other advantages are that it is stable and not infective.
További előnye, hogy stabil és nem fertőző.
Solid phase
Szilárd fázis
ELISA plates are coated with recombinant AHSV-4 VP7 diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
Az ELISA-lemezeket 9,6 pH-értékű karbonát/bikarbonát pufferoldatban hígított rekombináns ALPV-4 VP7-tel vonjuk be.
Incubate plates overnight at 4 °C.
A lemezeket egy éjszakán át inkubáljuk 4 °C-on.
Wash the plates five times with distilled water containing 0,01 % (v/v) Tween 20 (washing solution).
A lemezeket ötször kimossuk 0,01 % (v/v) Tween-20-at tartalmazó desztillált vízzel (mosóoldat).
Gently tap the plates onto absorbent material to remove any residual wash.
Finoman ütögessük a lemezeket nedvszívó anyaghoz, hogy a rajtamaradt oldatot eltávolítsuk.
Block the plates with phosphate buffered saline (PBS) + 5 % (w/v) skimmed milk (Nestlé Dry Skim MilkTM), 200 μl/well, for 1 hour at 37 °C.
Blokkoljuk a lemezeket foszfáttal pufferelt sóoldat (PBS) és 5 % (w/v) sovány tej (Nestlé Dry Skim MilkTM) lyukanként 200 μl-nyi keverékével egy órán át 37 °C-on.
Remove the blocking solution and gently tap the plates onto absorbent material.
Távolítsuk el a blokkoló oldatot, és finoman ütögessük a lemezeket nedvszívó anyaghoz.
Test samples
Vizsgálandó minták
Serum samples to be tested, and positive and negative control sera, are diluted 1 in 25 in PBS + 5 % (w/v) skimmed milk + 0,05 % (v/v) Tween 20, 100 μl per well.
A vizsgálandó szérummintákat, valamint a pozitív és negatív kontrollszérumokat 1:25 arányban PBS, 5 % (w/v) sovány tej és 0,05 % (v/v) Tween-20 lyukanként 100 μl-nyi keverékében hígítjuk.
Incubate for 1 hour at 37 °C.
Egy órán át 37 °C-on inkubáljuk.
For titration, make a twofold dilution series from 1 in 25 (100 μl/well), one serum per plate column, and do the same with positive and negative controls.
Titráláshoz készítsünk kétszeres hígítási sort 1:25 aránytól kezdve (lyukanként 100 μl), a lemez minden oszlopában egy szérumból, majd ugyanezt a pozitív és negatív kontrollszérumból is.
Wash the plates as described in step 2.1.1.2.
Mossuk ki a lemezeket a 2.1.1.2. lépésben ismertetett módszerrel.
Conjugate
Konjugátum
Dispense 100 μl/well of horseradish-peroxidase (HRP) -conjugated anti-horse gamma-globulin diluted in PBS + 5 % milk + 0,05 % Tween 20, pH 7,2.
Adagoljunk lyukanként 100 μl-nyi, PBS, 5 % tej és 0,05 % Tween-20 7,2 pH értékű keverékében hígított torma-peroxidázzal (HRP) konjugált anti-ló gamma-globulint.
Cromogen/Substrate
Kromogén/szubsztrát
Add 200 μl/well of chromogen/substrate solution (10 ml of 80,6 mM DMAB (dimethyl aminobenzaldehyde) + 10 ml of 1,56 mM MBTH (3-methyl-2-benzo-thiazoline hydrazone hydrochlorid) + 5 μl H2O2)
Adjunk mindegyik lyukhoz 200 μl kromogén-/szubsztrátoldatot (10 ml 80,6 mM DMAB (dimetil-aminobenzaldehid) + 10 ml 1,56 mM MBTH (3-metil-2-benzo-tiazolin hidrazon hidroklorid) + 5 μl H2O2).
Colour development is stopped by adding 50 μl of 3N H2SO4 after approximately 5 to 10 minutes (before the negative control begins to be coloured).
A színképződést kb. 5–10 perccel később 50 μl 3N H2SO4 hozzáadásával állítjuk le (mielőtt a negatív kontrollszérum elszíneződne).
Other chromogens such as ABTS (2,2'-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]), TMB (tetramethyl benzidine), or OPD (ortho-phenyldiamine) can also be used.
Más kromogének is alkalmazhatók, mint pl. az ABTS (2,2’-azino-bisz-[3-etilbenzotiazolin-6-szulfonsav]), TMB (tetra-metil benzidin) vagy az OPD (orto-fenildiamin).
Read the plates at 600 nm (or 620 nm).
Olvassuk le a lemezeket 600 (vagy 620) nm-en.
Interpretation of the results
Az eredmények értékelése
Calculate the cut-off value by adding 0,6 to the value of the negative control (0,6 is the standard deviation derived with a group of 30 negative sera).
A küszöbértéket úgy számítjuk ki, hogy 0,6-ot hozzáadunk a negatív kontroll értékéhez (0,6 a standard szórás 30 negatív szérumból származtatva).
Test samples giving absorbance values lower than the cut-off are regarded as negative.
A küszöbértéknél alacsonyabb abszorpciós értéket mutató vizsgált mintákat negatívnak tekintjük.
Test samples giving absorbance values greater than the cut-off + 0,15 are regarded as positive.
A küszöbérték + 0,15-nél nagyobb abszorpciós értéket mutató vizsgált mintákat pozitívnak tekintjük.
Test samples giving intermediate absorbance values are doubtful and a second technique must be employed to confirm the result.
A köztes abszorpciós értéket mutató vizsgált minták kétesnek tekintendők, ezért egy második technikát kell alkalmazni az eredmények megerősítéshez.
BLOCKING ELISA FOR THE DETECTION OF ANTIBODIES TO AFRICAN HORSE SICKNESS VIRUS (AHSV) (PRESCRIBED TEST)
AZ AFRIKAI LÓPESTIS VÍRUSÁVAL (ALPV) SZEMBEN TERMELT ELLENANYAGOK KIMUTATÁSÁRA SZOLGÁLÓ BLOKKOLÓ ELISA-PRÓBA (ELŐÍRT VIZSGÁLAT)
The blocking ELISA is designed to detect specific AHSV antibodies in sera from any susceptible species.
A blokkoló ELISA-próba specifikus ALPV-ellenanyagok bármely fogékony faj szérumából történő kimutatására szolgál.
is the major, antigenic, viral protein of AHSV, and is conserved within the nine serotypes.
A VP7 az ALPV legfontosabb antigén vírusfehérjéje, amely a kilenc szerotípuson belül megmarad.
Because the monoclonal antibody (Mab) is also directed against the VP7, the assay will give a high level of sensitivity and specificity.
Mivel a monoklonális ellenanyag (mea) a VP7 ellen is irányul, a próba érzékenysége és specificitása magas fokú.
Further, the recombinant VP7 antigen is completely innocuous and therefore guarantees a high degree of safety.
Ezenkívül a rekombináns VP7-antigén teljesen ártalmatlan, ezért nagy biztonsággal használható.
The principal of the test is the interruption of the reaction between the recombinant VP7, as the antigen bound to the ELISA plate and the conjugated Mab specific for the VP7.
A vizsgálat elve a rekombináns VP7 – mint az ELISA-lemezhez kötött antigén – és a konjugált, VP7-specifikus mea közötti reakció megszakításán alapul.
Antibody in the test sera will block the reaction between the antigen and the Mab resulting in a reduction in colour.
A vizsgálandó szérumban lévő ellenanyagok gátolják az antigén és a mea közötti reakciót, ami a színintenzitás csökkenését fogja eredményezni.
The test described hereinafter is carried out in the European Community Reference Laboratory for African horse sickness in Algete, Spain.
Az alábbiakban ismertetett vizsgálatot az Európai Közösségnek a spanyolországi Algetében található, afrikai lópestissel foglalkozó referencialaboratóriumában végzik.
ELISA plates
ELISA-lemezek
Wash the plates five times with phosphate buffered saline (PBS) containing 0,05 % (v/v) Tween 20 (PBST).
A lemezeket ötször kimossuk 0,05 % (v/v) Tween-20-at tartalmazó, foszfáttal pufferelt sóoldattal (PBST).
Stabilise the plate by treatment with a stabilising solution (in order to allow long term storage at 4 °C without loss of activity) and blot dry onto absorbent material.
A lemezeket stabilizálóoldattal kezelve stabilizáljuk (a 4 °C-on történő hosszú távú, aktivitáscsökkenés nélküli tárolás érdekében), és nedvszívó anyagon kiszárítjuk.
Test samples and controls
Vizsgálandó minták és kontrollok
For screening dilute test sera and controls 1 in 10 directly on the plate in PBST to give a final volume 100 μl/well.
Szűréshez a vizsgálandó szérumokat és a kontrollokat közvetlenül a lemezen 1:10 arányban hígítjuk PBST-ben lyukanként 100 μl végső térfogatra.
For titration prepare a twofold dilution series of test sera and positive controls (100 μl/well) from 1 in 10 to 1 in 1280 across eight wells.
Titráláshoz kétszeres hígítási sort készítünk a vizsgálandó szérumokból és a pozitív kontrollokból (lyukanként 100 μl-t) 1:10 aránytól 1:1280 arányig nyolc lyukban.
Negative control is tested at 1 in 10 dilution.
A negatív kontrollt 1:10 hígításban vizsgáljuk.
Add 50 μl/well of pre-diluted horseradish-peroxidase (HRP) -conjugated Mab (monoclonal antibodies specific for VP7) to each well and mix gently to ensure homogeneity.
Mindegyik lyukhoz 50 μl előzetesen hígított torma-peroxidázzal (HRP) konjugált mea-t (VP7-specifikus monoklonális ellenanyagot) adunk és finoman homogénre keverjük.
Incubate for 30 minutes at 37 °C.
30 percig 37 °C-on inkubáljuk.
Wash the plates five times with PBST and blot dry as above.
A lemezeket ötször kimossuk PBST-vel és a fentihez hasonlóan kiszárítjuk.
Chromogen/Substrate
Kromogén/szubsztrát
Add 100 μl/well of chromogen/substrate solution (1 ml of ABTS (2,2′-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]) 5 mg/ml + 9 ml of substrate buffer (0,1 M Phosphate-Citrate buffer of pH 4 containing 0,03 % H2O2] and incubate for 10 minutes at room temperature.
Mindegyik lyukhoz hozzáadunk 100 μl kromogén-/szubsztrátoldatot (1 ml ABTS (2,2’-azino-bisz-[3-etilbenzotiazolin-6-szulfonsav]), 5 mg/ml, + 9 ml szubsztrát puffer (0,1 M 4 pH-értékű, 0,03 % H2O2-t tartalmazó foszfát-citrát puffer), és 10 percig szobahőmérsékleten inkubáljuk.
Colour development is stopped by adding 100 μl/well of 2 % (w/v) SDS (sodium dodecyl sulphate).
A színképződést lyukanként 100 μl 2 % (w/v) SDS (nátrium-dodecil-szulfát) hozzáadásával állítjuk le.
Read at 405 nm in an ELISA reader.
Olvassuk le ELISA-leolvasóban 405 nm-en.
Assay validation
A próba validációja
The test is valid when the optical density (OD) of negative control (NC) is higher than 1,0 and the OD of positive control (PC) is lower than 0,2.
A vizsgálat érvényes, ha a negatív kontroll (NK) optikai denzitása (OD) 1,0-nál nagyobb, a pozitív kontroll (PK) OD-a pedig 0,2-nél kisebb.
Cut-off calculation
Küszöbérték-számítás
Positive cut off NC – ((NC – PC) × 0,3)
Pozitív küszöbérték NK - [(NK – PK) × 0,3]
Negative cut off NC – ((NC – PC) × 0,2)
Negatív küszöbérték NK - [(NK – PK) × 0,2]
Where, NC is the OD of the negative control and PC the OD of positive control.
ahol NK a negatív kontroll OD-a, PK pedig a pozitív kontroll OD-a.
Samples with OD lower than positive cut-off should be considered as positives to AHSV antibodies.
A pozitív küszöbértéknél kisebb OD-t mutató minták ALPV-ellenanyagokra pozitívnak tekintendőek.
Samples with OD higher than negative cut-off should be considered negatives for AHSV antibodies.
A negatív küszöbértéknél nagyobb OD-t mutató minták ALPV-ellenanyagokra negatívnak tekintendőek.
Samples with OD between these two values should be considered doubtful and the animals re-sampled after two to three weeks.
Az e két érték közötti OD-t mutató minták kétesnek tekintendők, ezért az állatoktól két-három héttel később új mintát kell venni.
(referred to in Article 22)
(lásd a 22. cikket)
Council Directive 90/426/EEC
A Tanács 90/426/EGK irányelve
(OJ L 224, 18.8.1990, p. 42).
(HL L 224., 1990.8.18., 42. o.)
Council Directive 90/425/EEC
A Tanács 90/425/EGK irányelve
(OJ L 224, 18.8.1990, p. 29).
(HL L 224., 1990.8.18., 29. o.)
only Article 15(3)
Kizárólag a 15. cikk (3) bekezdése
Council Directive 91/496/EEC
A Tanács 91/496/EGK irányelve
(OJ L 268, 24.9.1991, p. 56).
(HL L 268., 1991.9.24., 56. o.)
only as regards the reference to Directive 90/426/EEC in Article 26(2)
Kizárólag a 26. cikk (2) bekezdésében a 90/426/EGK irányelvre való hivatkozás tekintetében
Commission Decision 92/130/EEC
A Bizottság 92/130/EGK határozata
(OJ L 47, 22.2.1992, p. 26).
(HL L 47., 1992.2.22., 26. o.)
Council Directive 92/36/EEC
A Tanács 92/36/EGK irányelve
(OJ L 157, 10.6.1992, p. 28).
(HL L 157., 1992.6.10., 28. o.)
1994 Act of Accession, Annex I, Point V.E.I.A.3
Az 1994. évi csatlakozási okmány I. mellékletének V.E.I.A.3 pontja
(OJ C 241, 29.8.1994, p. 132).
(HL C 241., 1994.8.29., 132. o.)
Commission Decision 2001/298/EC
A Bizottság 2001/298/EK határozata
(OJ L 102, 12.4.2001, p. 63).
(HL L 102., 2001.4.12., 63. o.)
only as regards the reference to Directive 90/426/EEC in Article 1(1), and Annex I, pt. 2
Kizárólag az 1. cikk (1) bekezdésében a 90/426/EGK irányelvre való hivatkozás tekintetében, valamint az I. melléklet 2. pontja
Commission Decision 2002/160/EC
A Bizottság 2002/160/EK határozata
(OJ L 53, 23.2.2002, p. 37).
(HL L 53., 2002.2.23., 37. o.)
only Annex III, point 10
Kizárólag a III. melléklet 10. pontja
2003 Act of Accession, Annex II, Point 6.B.I.16
A 2003. évi csatlakozási okmány II. mellékletének 6.B.I.16 pontja
(OJ L 236, 23.9.2003, p. 381).
(HL L 236., 2003.9.23., 381. o.)
Council Directive 2004/68/EC
A Tanács 2004/68/EK irányelve
(OJ L 139, 30.4.2004, p. 321).
(HL L 139., 2004.4.30., 321. o.)
only Article 15
Kizárólag a 15. cikk
(OJ L 363, 20.12.2006, p. 352).
(HL L 363., 2006.12.20., 352. o.)
only Annex, point I.2.
Kizárólag a melléklet I.2. pontja
(OJ L 219, 14.8.2008, p. 40).
(HL L 219., 2008.8.14., 40. o.)
only Article 7
Kizárólag a 7. cikk
90/426/EEC
90/426/EGK
90/425/EEC
90/425/EGK
1 July 1992
1992. július 1.
91/496/EEC
91/496/EGK
92/36/EEC
92/36/EGK
19 November 2005
2005. november 19.
Directive 90/426/EEC
A 90/426/EGK irányelv
Article 2(c)(i) and (ii)
2. cikk c) pont i. és ii. alpont
Article 2(d) to (i)
2. cikk d) –i) pont
Article 4(1), (2) and (3)
4. cikk (1), (2) és (3) bekezdések
Article 4(4)(i) and (ii)
4. cikk (4) bekezdés i. és ii. alpont
Article 4(4)(a) and (b)
4. cikk (4) bekezdés a) és b) pont
Article 4(5)(a), first to sixth indents
4. cikk (5) bekezdés a) pont, elsőtől a hatodik francia bekezdésig
Article 4(5)(a)(i) to (vi)
4. cikk (5) bekezdés a) pont i–vi. alpont
Article 4(5)(b)
4. cikk (5) bekezdés b) pont
Article 4(6), first subparagraph, first to eighth indents
4. cikk (6) bekezdés, első albekezdés, elsőtől a nyolcadik francia bekezdésig
Article 4(6), first subparagraph, (a) to (h)
4. cikk (6) bekezdés, első albekezdés, a)–h) pont
Article 4(6), second and third subparagraphs
4. cikk (6) bekezdés, második és harmadik albekezdés
Article 5(2), first subparagraph, (a) and (b)
5. cikk (2) bekezdés, első albekezdés a) és b) pont
Article 5(2), second subparagraph, (a) and (b)
5. cikk (2) bekezdés, második albekezdés a) és b) pont
Article 5(3)(a) and (b)
5. cikk (3) bekezdés a) és b) pont
Article 5(5)(a) and (b)
5. cikk (5) bekezdés a) és b) pont
Article 5(3)(c), first and second indents
5. cikk (3) bekezdés c) pont, első és második francia bekezdés
Article 5(5)(c), first subparagraph, (i) and (ii)
5. cikk (5) bekezdés c) pont, első albekezdés i. és ii. alpont
Article 5(3)(c), second indent, last sentence
5. cikk (3) bekezdés c) pont, második francia bekezdés, utolsó mondat
Article 5(5)(c), second subparagraph
5. cikk (5) bekezdés c) pont, második albekezdés
Article 5(3)(d) and (e)
5. cikk (3) bekezdés d) és e) pont
Article 5(5)(d) and (e)
5. cikk (5) bekezdés d) és e) pont
Article 8(1), first subparagraph, first and second indents
8. cikk (1) bekezdés, első albekezdés, első és második francia bekezdés
Article 8(1)(a) and (b)
8. cikk (1) bekezdés a) és b) pont
Article 16(1)(a) to (f)
16. cikk (1) bekezdés a)–f) pont