natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Make up to the mark with the mobile phase (3.4) and mix.
Töltsük fel a lombikokat jelig a mozgófázissal (3.4.), és keverjük össze.
Wrap the flasks with aluminium foil.
Tekerjük a lombikokat alumíniumfóliába.
These solutions correspond to 0,5, 1,0, 2,5, 5,0, 7,5 and 10,0 μg of olaquindox per ml respectively.
Ezek az oldatok 0,5, 1,0, 2,5, 5,07,5 és 10,0 μg/ml olaquindox koncentrációnak felelnek meg.
These solutions must be prepared fresh each day.
Ezekből az oldatokból mindennap frisset kell készíteni.
HPLC equipment with variable wavelength ultraviolet detector or diode array detector
HPLC-berendezés, változtatható hullámhosszú ultraibolya-detektorral vagy diódasugaras detektorral.
Liquid chromatographic column, 250 mm × 4 mm, C18, 10 μm packing, or equivalent
Folyadékkromatográfiás oszlop, 250 mm × 4 mm, C18, 10 μm-es töltet vagy ezzel egyenértékű berendezés.
Olaquindox is light sensitive.
Az olaquindox fényérzékeny.
Carry out all procedures under subdued light or use amber glassware.
Valamennyi műveletet tompított fénynél végezzük, vagy barna üvegedényeket használjunk.
A blank feed shall be analysed to check that neither olaquindox nor interfering substances are present.
Vizsgáljunk meg egy takarmányvakmintát annak ellenőrzésére, hogy sem olaquindox, sem pedig interferáló anyagok nincsenek jelen.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of olaquindox, similar to that present in the sample.
Visszanyerési próbát kell végezni a takarmányvakminta analizálásával, amelyet a minta olaquindoxtartalmához közelítő mennyiségű olaquindoxszal dúsítunk.
To fortify at a level of 50 mg/kg, transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.5.1) to a 250 ml conical flask and evaporate the solution to ca. 0,5 ml.
Ahhoz, hogy 50 mg/kg értékre dúsítsuk a takarmányvakmintát, töltsünk 10,0 ml standard törzsoldatot (3.5.1.) egy 250 ml-es Erlenmeyer-lombikba, és pároljuk be az oldatot kb. 0,5 ml-re.
Add 50 g of the blank feed, mix thoroughly and leave for 10 min. mixing again several times before proceeding with the extraction step (5.2).
Adjunk hozzá 50 g takarmányvakmintát, alaposan keverjük össze, és hagyjuk 10 percig állni, majd többször keverjük meg újra, mielőtt folytatjuk a műveletet az extrahálással (5.2.).
For the purpose of this method the blank feed shall be similar in type to that of the sample and olaquindox must not be detected.
Ehhez a módszerhez a takarmányvakminta a mintához hasonló típusú legyen, és benne olaquindox ne legyen kimutatható.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 50 g of the sample.
0,01 g pontossággal mérjünk ki körülbelül 50 g mintát.
Transfer to a 1000 ml conical flask, add 100 ml of methanol (3.1) and place the flask for 5 min. in the ultrasonic bath (4.1).
Töltsük át egy 1000 ml-es Erlenmeyer-lombikba, adjunk hozzá 100 ml metil-alkoholt (3.1.), és tegyük a lombikot 5 percre ultrahangos fürdőbe (4.1.).
Add 410 ml water and leave in the ultrasonic bath for further 15 min. Remove the flask from the ultrasonic bath, shake it for 30 min. on the shaker (4.2) and filter through a folded filter.
Adjunk hozzá 410 ml vizet, és hagyjuk az ultrahangos fürdőben további 15 percre. Vegyük ki a lombikot az ultrahangos fürdőből, rázzuk 30 percig rázógépen (4.2.), és szűrjük át egy redőzött szűrőpapíron.
Transfer 10,0 ml of the filtrate into a 20 ml graduated flask, make up to the mark with water and mix.
A szűrletből töltsünk 10,0 ml-t egy 20 ml-es mérőlombikba, töltsük fel jelig vízzel, és keverjük össze.
An aliquot is filtered through a membrane filter (4.4).
Egy aliquot részt szűrjünk át membránszűrőn (4.4.)
Parameters:
Paraméterek:
Analytical column (4.3.1)
Analitikai oszlop (4.3.1.)
Mobile Phase (3.4):
Mozgófázis (3.4.):
water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 + 100 (V + V)
víz (3.3.)-metil-alkohol (3.2.) keveréke 900 + 100 (V + V)
20 μl –100 μl
20–50 μl.
Check the stability of the chromatographic system, injecting several times the calibration solution (3.5.3) containing 2,5 μg/ml, until constant peak heights and retention times are achieved.
Ellenőrizzük a kromatográfiás rendszer stabilitását oly módon, hogy 2,5 μg/ml-t tartalmazó kalibrálóoldatot (3.5.3.) fecskendezünk be többször, amíg a csúcsok magassága és a retenciós idők állandóvá nem válnak.
Inject each calibration solution (3.5.3) several times and determine the mean peak heights (areas) for each concentration.
Fecskendezzük be többször egymás után az egyes kalibrálóoldatokat (3.5.3.), és határozzuk meg az egyes koncentrációkhoz tartozó átlagos csúcsmagasságot (területet).
Plot a calibration graph using the mean peak heights (areas) of the calibration solutions as the ordinates and the corresponding concentrations in μg/ml as the abscissae.
Szerkesszünk kalibrációs görbét úgy, hogy a kalibrálóoldatok átlagos csúcsmagasságait (területeit) az ordinátatengelyen, a hozzájuk tartozó, μg/ml-ben kifejezett koncentrációkat pedig az abszcisszán ábrázoljuk.
Inject the sample extract (5.2) several times using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the olaquindox peaks.
Ugyanolyan mennyiségű oldatot használva, mint amennyit a kalibrálóoldatoknál használtunk, fecskendezzük be a mintakivonatokat (5.2.) egymás után többször, és határozzuk meg az olaquindoxcsúcsok átlagos csúcsmagasságát (területét).
From the mean height (area) of the olaquindox peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.3.2).
A mintaoldat olaquindoxcsúcsainak átlagmagasságából (területéből) határozzuk meg a mintaoldat koncentrációját μg/ml-ben, a kalibrációs görbe alapján (5.3.2.).
The olaquindox content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
A minta w olaquindoxtartalmát mg/kg egységben a következő képlet adja meg:
c olaquindox concentration of the sample extract (5.2) in μg/ml
c a mintakivonat (5.2.) olaquinox-koncentrációja μg/ml-ben
m weight of the test portion in g (5.2).
m a vizsgálati adag (5.2.) tömege g-ban.
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract (5.2) and the calibration solution (3.5.3) containing 5,0 μg/ml are compared.
Az analizált anyag azonosítását párhuzamos kromatográfiával vagy diódasoros detektor alkalmazásával lehet megerősíteni, amelyek segítségével a mintakivonat (5.2.) spektruma és az 5,0 μg/ml koncentrációjú kalibrálóoldat (3.5.3.) spektruma összehasonlítható.
A sample extract (5.2) is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.5.3).
A mintakivonatot (5.2.) megfelelő mennyiségű kalibrálóoldattal (3.5.3.) dúsítjuk.
The amount of added olaquindox must be similar to the amount of olaquindox found in the sample extract.
A hozzáadott olaquindox mennyisége közel azonos legyen a mintakivonatban található olaquindox mennyiségével.
Only the height of the olaquindox peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
A hozzáadott mennyiséget és a kivonat hígítását figyelembe véve, csak az olaquindoxcsúcs magassága emelkedhet.
The peak width, at half of its height, must be within ± 10 % of the original width of the olaquindox peak of the unfortified sample extract.
A csúcs szélességének a legnagyobb magasság felénél a dúsítás előtti mintakivonat olaquindoxcsúcsa eredeti szélessége ± 10 %-on belül kell lennie.
Diode array detection
Diódasoros detektálás
Between 220 and 400 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex of the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
220 és 400 nm között a spektrumnak a relatív abszorbancia 10 és 100 %-a közötti tartományba eső részein a mintának és a standardnak a kromatogram csúcsmaximumán rögzített spektruma nem térhet el egymástól.
Between 220 and 400 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
220 és 400 nm között a mintakivonat által kiváltott csúcs felszálló ágának, csúcsmaximumának és leszálló ágának spektrumai nem térhetnek el egymástól, a spektrumnak a relatív abszorbancia 10 és 100 %-a közötti tartományba eső részein.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 15 % relative to the higher result for olaquindox contents between 10 and 200 mg/kg.
Ugyanazon a mintán végzett két párhuzamos meghatározás eredménye közötti különbség 10 és 200 mg/kg közötti olaquindoxtartalom esetén nem haladhatja meg a magasabb eredmény 15 %-át.
An EC collaborative study was arranged in which four piglet feed samples including one blank feed were analysed by up to 13 laboratories.
Közösségi körvizsgálatot szerveztek, amelyben négy malactápmintát, köztük egy vakmintaként használt tápot elemeztek maximum 13 laboratóriumban.
The results are given below:
Az eredményeket az alábbi táblázat tartalmazza:
Nominal content
Névleges tartalom
recovery %
Visszanyerés %
Although the method has not been validated for feeds containing more than 100 mg/kg of olaquindox, it may be possible to obtain satisfactory results by taking a smaller sample weight and/or diluting the extract (5.2) to reach a concentration within the range of the calibration graph (5.3.2).
Bár a módszer nem lett hitelesítve a 100 mg/kg-nál több olaquindoxot tartalmazó takarmányokra, kielégítő eredményeket kaphatunk kisebb súlyú mintákkal és/vagy az extraktum (5.2.) olyan mértékű hígításával, hogy a kalibrációs görbe (5.3.2.) tartományába eső koncentrációt érjen el.
DETERMINATION OF AMPROLIUM
AZ AMPRÓLIUM MEGHATÁROZÁSA
1-[(4-amino-2-propylpyrimidin-5-yl)methyl]-2-methyl-pyridinium chloride hydrochloride
1-[(4-amino-2-propilpirimidin-5-il)metil]-2-metil-piridinium klorid hidroklorid
This method makes it possible to determine the level of amprolium in feed and premixtures.
Ezzel a módszerrel a takarmányokban és előkeverékekben lévő amprólium szintjét lehet meghatározni.
The detection limit is 1 mg/kg, the limit of quantification is 5 mg/kg.
A kimutatási határ 1 mg/kg, a meghatározási határ 5 mg/kg.
The sample is extracted with a methanol-water mixture.
A mintát metil-alkohol és víz keverékével extraháljuk.
After dilution with the mobile phase and membrane filtration the content of amprolium is determined by cation exchange high performance liquid chromatography (HPLC) using a UV detector.
A mozgófázissal történő hígítás és membránszűrés után az ampróliumtartalmat kationcserélő, nagy teljesítményű folyadékkromatográfiával (HPLC), UV-detektor használatával határozzuk meg.
Sodium dihydrogen phosphate solution, c = 0,1 mol/l.
Nátrium-dihidrogén-foszfát oldat, c = 0,1 mól/l
Dissolve 13,80 g of sodium dihydrogen phosphate monohydrate in water (3.3) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.3) and mix.
Oldjunk fel 13,80 g nátrium-dihidrogén-foszfát-monohidrátot vízben (3.3.), egy 1000 ml-es mérőlombikban, töltsük fel vízzel (3.3.) jelig és keverjük össze.
Sodium perchlorate solution, c = 1,6 mol/l.
Nátrium-perklorát oldat, c = 1,6 mól/l
Dissolve 224,74 g of sodium perchlorate monohydrate in water (3.3) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.3) and mix.
Oldjunk fel 224,74 g nátrium-perklorát-monohidrátot vízben (3.3.) egy 1000 ml-es mérőlombikban, töltsük fel vízzel (3.3.) jelig, és keverjük össze.
Mobile phase for HPLC (see observation 9.1).
Mozgófázis a HPLC-hez (lásd az Észrevételek 9.1. pontját).
Mixture of acetonitrile (3.2), sodium dihydrogen phosphate solution (3.4) and sodium perchlorate solution (3.5), 450+450+100 (v+v+v).
Acetonitril (3.2.), nátrium-dihidrogén- foszfát oldat (3.4.) és nátrium-perklorát oldat (3.5.) 450 + 450 + 100 (v + v + v) arányú keveréke.
Prior to use filter through a 0,22 μm membrane filter (4.3) and degas the solution (e.g. in the ultrasonic bath (4.4) for at least 15 minutes).
Használat előtt szűrjük át egy 0,22 μm-es membránszűrőn (4.3.) és gázmentesítsük az oldatot (pl. ultrahangos fürdőben (4.4.) legalább 15 percig).
Standard substance: pure amprolium, 1-[(4-amino-2-propylpyrimidin-5-yl)methyl]-2-methyl-pyridinium chloride hydrochloride, E 750 (see 9.2).
Standard anyag: tiszta amprólium, 1-[(4-amino-2-propilpirimidin-5-il)metil]-2-metil-piridinium klorid hidroklorid, E 750 (lásd a 9.2. pontot).
Amprolium stock standard solution, 500 μg/ml
Amprólium standard törzsoldat, 500 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg, 50 mg of amprolium (3.7) in a 100 ml graduated flask, dissolve in 80 ml methanol (3.1) and place the flask for 10 min. in an ultrasonic bath (4.4).
Mérjünk ki 0,1 mg-os pontossággal 50 mg ampróliumot (3.7.) egy 100 ml-es mérőlombikba, oldjuk fel 80 ml metil-alkoholban (3.1.), és helyezzük a lombikot 10 percre egy ultrahangos fürdőbe (4.4.).
Amprolium intermediate standard solution, 50 μg/ml
Amprólium közbenső standardoldat, 50 μg/ml
Pipette 5,0 ml of the stock standard solution (3.7.1) into a 50 ml graduated flask, make up to the mark with the extraction solvent (3.8) and mix.
Pipettázzunk 5,0 ml standard törzsoldatot (3.7.1.) egy 50 ml-es mérőlombikba, töltsük fel jelig az extraháló oldószerrel (3.8.), és keverjük össze.
Transfer 0,5, 1,0 and 2,0 ml of the intermediate standard solution (3.7.2) into a series of 50 ml graduated flasks.
Adagoljunk 0,5, 1,0 és 2,0 ml közbenső standardoldatot (3.7.2.) 50 ml-es mérőlombikokba.
Make up to the mark with the mobile phase (3.6) and mix.
Töltsük fel a lombikokat jelig a mozgófázissal (3.6.), és keverjük össze.
These solutions correspond to 0,5, 1,0 and 2,0 μg of amprolium per ml respectively.
Ezek az oldatok 0,5, 1,0, illetve 2,0 μg/ml ampróliumnak felelnek meg.
Extraction solvent.
Extraháló oldószer
Methanol (3.1)-water mixture 2+1 (v+v).
Metil-alkohol (3.1.) és víz 2 + 1 (v + v) arányú keveréke.
HPLC equipment with injection system, suitable for injection volumes of 100 μl.
HPLC-berendezés 100 μl mennyiség befecskendezésére alkalmas befecskendező rendszerrel
Liquid chromatographic column 125 mm × 4 mm, cation exchange Nucleosil 10 SA, 5 or 10 μm packing, or equivalent.
125 mm × 4 mm méretű, kationcserélő Nucleosil 10 SA folyadékkromatográfiás oszlop, 5 vagy 10 μm-es töltettel, vagy ezzel egyenértékű berendezés
UV detector with variable wavelength adjustment or diode array detector.
Változtatható hullámhosszon mérő UV-detektor vagy diódasoros detektor
Membrane filter, PTFE material, 0,45 μm.
Membránszűrő, PTFE anyag, 0,45 μm-es
Membrane filter, 0,22 μm.
0,22 μm-es membránszűrő
Ultrasonic bath.
Ultrahangos fürdő
For the performance of the recovery test (5.1.2) a blank feed shall be analysed to check that neither amprolium nor interfering substances are present.
A visszanyerési próba (5.1.2.) előtt vizsgáljunk meg egy takarmányvakmintát annak ellenőrzésére, hogy sem amprólium, sem interferáló anyagok nincsenek jelen.
The blank feed shall be similar in type to that of the sample and amprolium or interfering substances must not be detected.
A takarmányvakminta a mintával azonos fajtájú takarmány legyen, és ampróliumot vagy interferáló anyagokat ne tartalmazzon.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of amprolium, similar to that present in the sample.
A mintában találhatóval közel azonos mennyiségű ampróliummal dúsított takarmányvakminta analízisével végezzünk visszanyerési próbát.
To fortify at a level of 100 mg/kg, transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.7.1) to a 250 ml conical flask and evaporate the solution to approximately 0,5 ml.
A 100 mg/kg szintre való dúsításhoz öntsünk át a standard törzsoldatból (3.7.1.) 10,0 ml-t egy 250 ml-es Erlenmeyer-lombikba, és párologtassuk az oldatot körülbelül 0,5 ml-ig.
In this case, the sample to be analysed is fortified with a quantity of amprolium similar to that already present in the sample.
Ebben az esetben a vizsgált mintát az abban már jelen lévővel közel azonos mennyiségű ampróliummal dúsítjuk.
This sample is analysed together with the unfortified sample and the recovery can be calculated by subtraction.
Ezt a mintát a nem dúsított mintával együtt elemezzük, és a visszanyerést kivonással számítjuk ki.
Premixtures (content < 1 % amprolium) and feed
Előkeverékek (ampróliumtartalom < 1 %) és takarmányok
Weigh to the nearest 0,01 g, 5-40 g of the sample depending on the amprolium content into a 500 ml conical flask and add 200 ml extraction solvent (3.8).
Mérjünk ki 0,01 g pontossággal, az ampróliumtartalomtól függően, 5–40 g mintát egy 500 ml-es Erlenmeyer-lombikba, és adjunk hozzá 200 ml extraháló oldószert (3.8.).
Dilute an aliquot of the extract with the mobile phase (3.6) to an amprolium content of 0,5-2 μg/ml and mix (see observation 9.3).
Oldjuk a kivonat egy aliquot részét a mozgófázissal (3.6.) 0,5–2 μg/ml ampróliumtartalomig és keverjük össze (lásd az Észrevételek 9.3. pontját).
Filter 5-10 ml of this diluted solution on a membrane filter (4.2).
Szűrjük át ezen hígított oldatnak 5–10 ml-ét egy membránszűrőn (4.2.).
Premixtures (content ≥ 1 % amprolium)
Előkeverékek (amprómiumtartalom ≥ 1 %).
Weigh to the nearest 0,001 g, 1-4 g of the premixture depending on the amprolium content into a 500 ml conical flask and add 200 ml extraction solvent (3.8).
Mérjünk ki 0,001 g pontossággal, az ampróliumtartalomtól függően, 1–4 g előkeveréket egy 500 ml-es Erlenmeyer-lombikba, és adjunk hozzá 200 ml extraháló oldószert (3.8.).
Dilute an aliquot of the extract with the mobile phase (3.6) to an amprolium content of 0,5-2 μg/ml and mix.
Oldjuk a kivonat egy aliquot részét a mozgófázissal (3.6.) 0,5–2 μg/ml ampróliumtartalomig, és keverjük össze.
Liquid chromatographic
Folyadékkromatográfiás
column (4.1.1):
oszlop (4.1.1):
125 mm × 4 mm, cation exchange Nucleosil 10 SA, 5 or 10 μm packing, or equivalent
125 mm × 4 mm méretű, kationcserélő Nucleosil 10 SA, 5 vagy 10 μm-es töltettel, vagy ezzel egyenértékű berendezés.
Mobile phase (3.6):
Mozgófázis (3.6.):
0,7-1 ml/min
0,7–1 ml/perc
Check the stability of the chromatographic system, injecting several times the calibration solution (3.7.3) containing 1,0 μg/ml, until constant peak heights and retention times are achieved.
Ellenőrizzük a kromatográfiás rendszer stabilitását oly módon, hogy 1,0 μg/ml-es kalibrálóoldatot (3.7.3.) fecskendezünk be többször, amíg a csúcsok magassága és a retenciós idők állandóvá nem válnak.
Inject each calibration solution (3.7.3) several times and determine the mean peak heights (areas) for each concentration.
Fecskendezzünk be minden kalibrálóoldatot (3.7.3.) többször egymás után, és határozzuk meg az egyes koncentrációkhoz tartozó csúcsmagasságok (területének) átlagát.
Inject the sample extract (5.2) several times using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the amprolium peaks.
Ugyanolyan mennyiségú oldatot használva, mint amennyit a kalibrálóoldatoknál használtunk, fecskendezzük be a mintakivonatot (5.2.) egymás után többször, és határozzuk meg az ampróliumcsúcsok átlagos csúcsmagasságát (területét).
From the mean height (area) of the amprolium peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.3.2).
A mintaoldat ampróliumcsúcsainak átlagmagasságából (területéből) határozzuk meg a mintaoldat μg/ml-ben kifejezett koncentrációját a kalibrációs görbe (5.3.2.) alapján.
The amprolium content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
A minta mg/kg-ban kifejezett w ampróliumtartalmát a következő képlettel kapjuk meg:
V volume of the extraction solvent (3.8) in ml according to 5.2 (i.e. 200 ml)
V az extraháló oldószer (3.8.) ml-ben kifejezett térfogata, az 5.2. pont szerint (azaz 200 ml)
c amprolium concentration of the sample extract (5.2) in μg/ml
c a mintakivonat (5.2.) μg/ml-ben kifejezett ampróliumkoncentrációja
f dilution factor according to 5.2
f hígítási faktor, az 5.2. pont szerint
m weight of the test portion in g.
m a mintadarab tömege grammban.
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract (5.2) and the calibration solution (3.7.3) containing 2,0 μg/ml are compared.
Az analizált anyag azonosítása párhuzamos kromatográfiával vagy diódasoros detektor segítségével erősíthető meg, amely során a mintakivonat (5.2.) és a 2,0 μg/ml-es kalibrálóoldat (3.7.3.) spektrumát hasonlítjuk össze.
A sample extract (5.2) is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.7.3).
A mintakivonatot (5.2.) megfelelő mennyiségű kalibrálóoldattal (3.7.3.) dúsítjuk.
The amount of added amprolium must be similar to the amount of amprolium found in the sample extract.
A hozzáadott amprólium mennyisége közel azonos legyen a mintakivonatban található amprólium mennyiségével.
Only the height of the amprolium peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
A hozzáadott mennyiséget és a kivonat hígítását figyelembe véve, csak az ampróliumcsúcs magassága emelkedhet.
The peak width, at half of its height, must be within ± 10 % of the original width of the amprolium peak of the unfortified sample extract.
A csúcs szélességének a legnagyobb magasság felénél a dúsítás előtti mintakivonat ampróliumcsúcsa eredeti szélessége ± 10 %-on belül kell lennie.
Between 210 and 320 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex of the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
210 és 320 nm között a spektrumnak a relatív abszorbancia 10 és 100 %-a közötti tartományba eső részein a mintának és a standardnak a kromatogram csúcsmaximumán rögzített spektruma nem térhet el egymástól.
Between 210 and 320 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
210 és 320 nm között, a mintakivonat által kiváltott csúcs felszálló ágának, csúcsmaximumának és leszálló ágának spektrumai nem térhetnek el egymástól a spektrumnak a relatív abszorbancia 10 és 100 %-a közötti tartományba eső részein.
If one of these criteria is not met, the presence of the analyte has not been confirmed.
Amennyiben ezen kritériumok valamelyike nem teljesül, az analizált anyag jelenléte nem bizonyított.
15 % relative to the higher value for amprolium contents from 25 mg/kg to 500 mg/kg,
25 mg/kg és 500 mg/kg közötti ampróliumtartalom esetén a magasabb érték 15 %-át,
75 mg/kg for amprolium contents between 500 mg/kg and 1000 mg/kg,
500 mg/kg és 1000 mg/kg közötti ampróliumtartalom esetén a 75 mg/kg értéket,
7,5 % relative to the higher value for amprolium contents of more than 1000 mg/kg.
1000 mg/kg feletti ampróliumtartalom esetén a magasabb érték 7,5 %-át.
For a fortified (blank) sample the recovery shall be at least 90 %.
Dúsított (vak)minta esetében a visszanyerésnek legalább 90 %-osnak kell lennie.
A collaborative study was arranged in which three poultry feeds (sample 1-3), one mineral feed (sample 4) and one premix (sample 5) were analysed.
Körvizsgálatot szerveztek, amely során három baromfitakarmányt (1–3. minta) egy ásványi takarmányt (4. minta) és egy előkeveréket (5. minta) analizáltak.
Sample 1 (blank feed)
minta (takarmányvakminta)
nominal content [mg/kg]
Névleges tartalom [mg/kg]
If the sample contains thiamine, the thiamine peak in the chromatogram appears shortly before the amprolium peak.
Amennyiben a minta tiamint tartalmaz, a tiamincsúcs valamivel az ampróliumcsúcs előtt jelenik meg a kromatogramon.
Following this method amprolium and thiamine must be separated.
Ezt a módszert követve az ampróliumot és a tiamint el kell választani.