natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The main factors to be considered for the selection of these sampling points are: previous detection of OsHV-1 μvar in the area, stocking density, water flows, bathymetry and management practices.
A mintavételi pontok kiválasztásánál az alábbi fő szempontokat kell figyelembe venni: Az OsHV-1 μvar korábbi észlelése a területen, vízáramlások, állománysűrűség, batimetria és a terület irányítási gyakorlata.
The sampling provided for in Article 5(2) shall be carried out in the period of the year when prevalence of OsHV-1 μvar in the Member State or compartment is known to be maximal.
Az 5. cikk (2) bekezdése szerinti mintavételt az évnek abban a szakában kell végrehajtani, amikor az ismeretek szerint az OsHV-1 μvar a leginkább elterjedt az adott tagállamban vagy a területi egységen.
When such data is not available, sampling shall be carried out just after the period when the water temperature exceeds 16 °C or at the time of the year when the temperature normally reaches its yearly maximum.
Amennyiben erről nem áll rendelkezésre adat, a mintavételt közvetlenül azután az időszak után kell végrehajtani, amikor a vízhőmérséklet eléri a 16 °C fokot, vagy az év azon szakában, amikor a vízhőmérséklet általában eléri az éves legmagasabb szintet.
The sampling provided for in Article 5(1)(b) shall preferably be carried out in the period of the year described in point c. If samples are collected outside that period of the year, the sampled oysters must be maintained under conditions equivalent to those described in point c for a period suitable for the detection of OsHV-1 μvar, before being tested.
Az 5. cikk (1) bekezdésének b) pontja szerinti mintavételt lehetőleg a c) pontban meghatározott időszakban kell kivitelezni. Amennyiben a mintavételre máskor kerül sor, a mintavétel céljából begyűjtött osztrigákat a c) pontban meghatározottakkal azonos körülmények között kell tartani a vizsgálat előtt az OsHV-1 μvar észleléséhez megfelelően hosszú ideig.
Diagnostic methods of detecting OsHV-1 μvar
Az OsHV-1 μvar észlelésének diagnosztikai módszerei
This procedure explains a standard diagnostic method to be used for OsHV-1 μvar detection and identification by Polymerase Chain Reaction (hereinafter PCR).
A jelen eljárás az OsHV-1 μvar jelenlétének észlelésére és azonosítására használt polimeráz láncreakción (a továbbiakban: PCR) alapuló standard diagnosztikai módszereket magyarázza meg.
It allows distinguishing between OsHV-1 and OsHV-1 μvar.
Az eljárás lehetővé teszi az OsHV-1 és az OsHV-1 μvar közötti különbségtételt.
When appropriate, in order to optimise the reaction conditions and to suit the equipment and conditions in their own laboratory, the laboratories may apply modifications to the methods described in this Annex, provided that an equal sensitivity and specificity can be demonstrated.
Ha a reakció feltételeinek optimalizálása, illetve saját felszerelésük és a feltételek sajátosságai miatt szükséges, a laboratóriumok módosításokat eszközölhetnek a jelen mellékletben leírt módszereken, feltéve, hogy bizonyíthatóan ugyanakkora marad azok érzékenysége és a specificitása.
OsHV-1 μvar is defined in Article 1 of this Regulation.
Az OsHV-1 μvar fogalmát a jelen rendelet 1. cikke határozza meg.
Equipment and environmental conditions
Felszerelés és környezetei feltételek
The diagnostic test used for OsHV-1 μvar detection and identification by PCR requires the equipment and environmental conditions classically used for PCR assays as follows:
Az OsHV-1 μvar észlelésére és azonosítására használt PCR-hez az alábbi, a PCR-vizsgálatokhoz klasszikusan használt felszerelésekre és feltételekre van szükség:
A closed hood equipped with an UV producing system to eliminate potential contaminations when preparing PCR mix.
egy zárt, a PCR-keverék elkészítésekor a potenciális szennyezéseket elpusztító, UV sugárzó rendszerrel felszerelt fülkére,
Two complete sets of pipettes (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl), the first one for DNA extraction, and the second one for PCR mix preparation.
két teljes pipettakészletre (2 μl; 20 μl; 200 μl és 1000 μl), amelyekből az első a DNS-extrakciójára, a második a PCR-keverék elkészítésére szolgál,
Three different pipettes: one pipette (2 μl) to dispense samples in PCR mix, one pipette (20 μl) for EB sampling and another pipette (20 μl) to load PCR products in agarose gels.
három különböző pipettára: egy pipettára (2 μl) a PCR-keverékben a minták elválasztásához, egy pipettára (20 μl) a EB mintavételhez és egy pipettára (20 μl) a PCR-végtermékek agarózgélekbe vezetéséhez,
Filter pipette tips (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl) for DNA extraction, PCR mix preparation and sample dispensing.
szűrőpipettacsúcsokra (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl) a DNS extrakciójához, a PCR-keverék elkészítéséhez és a minta szétválasztásához,
Pipette tips (20 μl) to collect EB and to load amplification products in agarose gel.
pipettacsúcsokra (20 μl) a EB begyűjtéséhez és az amplifikáció végtermékeinek az agarózgélbe töltéséhez,
A thermal cycler to perform amplifications.
egy PCR-készülékre az amplifikáláshoz,
A horizontal electrophoresis system for PCR products electrophoresis.
horizontális elektroforézis rendszerre a PCR-termékek elektroforéziséhez,
An UV table to observe PCR products after agarose gel electrophoresis.
UV-asztalra a PCR-termékek megfigyeléséhez az agarózgélben történő elektroforézist követően,
A system to acquire pictures of the gels.
a gélekről képeket készítő rendszerre.
The manipulator must wear a lab coat and some gloves during all the different steps described bellow.
A laboránsnak az alább leírt valamennyi lépés során laborköpenyt és valamilyen kesztyűt kell viselnie.
Lab coat and gloves must be changed preferably after each main step: DNA extraction, preparation of PCR mix, sample dispensing, amplification and gel loading.
A köpenyt és a kesztyűket lehetőleg minden fő lépés után cserélni kell, melyek a következőek: DNS-extrakció, a PRC keverék elkészítése, a minta szétválasztása, amplifikáció, gélbe töltés.
It is recommended to perform these different steps in different rooms.
Ajánlott ezeket a lépéseket különböző helyiségekben elvégezni.
More particularly, amplification and gel loading/electrophoresis should take place in a room separate from DNA extraction, PCR mix preparation and DNA dispensing.
Különösképpen fontos az amplifikációt és a gélbe töltést/elektroforézist külön helyiségben végezni, mint a DNS-extrakciót, a PCR-keverék elkészítését és a DNS-szétválasztást.
Live or freshly dead (not decomposed) oysters, which can be previously frozen, are processed for DNA extraction.
A DNS-extrakció céljára élő vagy frissen kimúlt (nem bomló) osztrigákat használunk, amelyeket előzetesen le lehet fagyasztani.
Samples are processed differently according to their size:
A minták méretüktől függően különbözőképpen kerülnek feldolgozásra:
For larvae, pools of 50 mg of the whole animals (including the shell) completed with 200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
lárvák esetében az egész állatokat (héjjal együtt) tartalmazó 50 mg-os készletekhez hozzá kell adni 200 μl desztillált vizet, össze kell törni őket, majd 1000 g-n centrifugálni 1 percig;
For spat smaller than or of 6 mm, pools of 300 mg of the whole animals (including the shell) completed with 1200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
6 mm-es vagy annál kisebb fiatal példányok esetében az egész állatokat (héjjal együtt) tartalmazó 300 mg-os készletekhez hozzá kell adni 1200 μl desztillált vizet, össze kell törni őket, majd 1000 g-n centrifugálni 1 percig;
For spat between 6 and 15 mm in size, all the soft tissues of each animal are crushed individually.
a 6 mm és 15 mm közötti állatok esetében minden példány lágy szöveteit egyedileg kell összetörni;
For animals bigger than 15 mm, pieces of gills and mantle are isolated.
a 15 mm-esnél hosszabb állatok esetében le kell választani a kopoltyúk és a köpeny darabjait.
DNA extraction is performed using the QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) and following the instructions for Tissue Test Protocol.
DNS-extrakció az QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) használatával, a szövetteszt protokoll-előírásai szerint történik.
The further sample preparation is performed in the following order:
A minta további előkészítése az alábbi sorrendben történik:
Place 100 μl of supernatant for samples referred to in (a) and (b) or 10 to 50 mg of tissues for samples referred to point (c) and (d) in a 1,5 ml microcentrifuge tube and add 180 μl of Buffer ATL.
Helyezzük az a) vagy b) pont szerinti, a víz felszínén maradó mintából 100 μl-t, vagy a c) és d) pont szerinti mintaszövetekből 10–50 mg-ot egy 1,5 ml-es mikrocentrifuga csőbe, és adjunk hozzá 180 μl ATL puffert.
Add 20 μl Proteinase K, mix by vortexing and incubate at 56 °C until the tissue is completely lysed (overnight).
Adjunk hozzá 20 μl K proteinázt, vortexeljük, majd inkubáljuk 56 °C-on, amíg a szövet teljesen feloldódik (egy éjszaka alatt).
Vortex occasionally during incubation to disperse sample.
A minta szétoszlatása érdekében az inkubálás alatt időnként vortexeljük.
Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Röviden centrifugáljuk az 1,5 ml-es mikrocentrifuga csövet annak érdekében, hogy eltávolítsuk a fedőről a cseppeket.
Add 200 μl Buffer AL to the sample, mix by pulse-vortexing for 15 s and incubate at 70 °C for 10 minutes.
Adjunk a mintához 200 μl AL puffert, keverjük össze pulzáló vortexeléssel 15 másodpercig, majd inkubáljuk 70 °C-on 10 percig.
Add 200 μl ethanol (96-100 %) to the sample, and mix by pulse-vortexing for 15 s. Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Adjunk a mintához 200 μl (96–100 %-os) etanolt, majd 15 másodpercig pulzálva vortexeljük. Röviden centrifugáljuk az 1,5 ml-es mikrocentrifuga csövet annak érdekében, hogy eltávolítsuk a fedőről a cseppeket.
Carefully apply the mixture from step 4 to the QIAamp Spin Column (in a 2 ml collection tube) without wetting the rim.
A negyedik lépésben elkészített keveréket óvatosan helyezzük bele a QIAamp Spin Column-ba (a 2 ml-es gyűjtőcsőben) a szegély megnedvesítése nélkül.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the tube containing the filtrate.
Zárjuk le a fedelet, és centrifugáljunk 10000 rpm-en 1 percig. Tegyük a QIAamp Spin Column-ot egy tiszta 2 ml-es gyűjtőcsőbe (a készlet tartalmazza), és tegyük félre a filtrátumot tartalmazó csövet.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW1 without wetting the rim.
Óvatosan nyissuk ki a QIAamp Spin Column-ot, és adjunk hozzá 500 μl AW1 puffert a szegély megnedvesítése nélkül.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Zárjuk le a fedelet, és centrifugáljunk 10000 rpm-en 1 percig. Tegyük a QIAamp Spin Column egy tiszta 2 ml-es gyűjtőcsőbe (a készlet tartalmazza), majd tegyük félre a gyűjtőcsövet a filtrátummal.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW2 without wetting the rim.
Óvatosan nyissuk ki a QIAamp Spin Column-ot, és adjunk hozzá 500 μl AW2 puffert a szegély megnedvesítése nélkül.
Close the cap and centrifuge at full speed (14000 rpm) for 3 min.
Zárjuk le a fedelet, és centrifugáljunk teljes sebességen (14000 rpm) három percig.
(Optional) Place the QIAamp Spin Column in a new 2ml collection tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
(Választás szerint) Helyezzük a QIAamp Spin Column-ot egy új 2 ml-es gyűjtőcsőbe (a készlet nem tartalmazza), és tegyük félre a filtrátumot tartalmazó gyűjtőcsövet.
Centrifuge at full speed (14000 rpm) for 1 min.
Centrifugáljunk teljes sebességen (14000 rpm) egy percig.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 1,5 ml microcentrifuge tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Helyezzük a QIAamp Spin Column-ot egy tiszta 1,5 ml-es mikrocentrifuga csőbe (a készlet nem tartalmazza), és tegyük félre a filtrátumot tartalmazó gyűjtőcsövet.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 100 μl of distilled water.
Óvatosan nyissuk ki a QIAamp Spin Column-ot, és adjunk hozzá 100 μl desztillált vizet.
Incubate 5 minutes at room temperature and centrifuge at 10000 rpm for 1 min.
Inkubáljuk szobahőmérsékleten 5 percig, majd centrifugáljuk 10000 rpm-en egy percig.
Control the quality and efficacy of the extraction (for example by measuring OD (260 nm) under spectrophotometer or after electrophoresis in agarose gel).
Ellenőrizzük a DNS-extrakció minőségét és hatékonyságát (például a OD [260 nm] spektrofotométeres vagy az elektroforézis utáni agarózgélben történő mérésével).
Prepare dilution of your samples in order to have a final DNA concentration of 50-100 ng/μl.
Készítsünk híg oldatot a mintából annak érdekében, hogy a végső DNS-koncentráció 50–100 ng/μl legyen.
DNA solutions are kept at 4 °C until PCR analyses are performed.
A DNS-oldatokat 4 °C-on kell tartani a PCR-elemzés elvégzéséig.
Other commercial kits may be used for the DNA extractions provided they have been demonstrated to give similar results.
Más kereskedelmi forgalomban használható készletek is használhatók a DNS-extrakcióhoz, feltéve, hogy bizonyítottan hasonló eredményekhez vezetnek.
Reactives
Reagensek
10 X Buffer (furnished with the Taq DNA polymerase)
10 X puffer (Taq DNS polimerázzal együtt)
MgCl2 (furnished with the DNA polymerase) (25 mM)
MgCl2 (DNS polimerázzal együtt) (25 mM)
Taq DNA Polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
Taq DNS polimeráz (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20mM) must be diluted 10 fold (at 2 mM) before use
A dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix-et (20 mM) tízszeresen hígítani kell (2 mM-re) használat előtt
d H2O (distilled H2O free of DNA and RNA)
d H2O (DNS- és RNS-mentes desztillált H2O)
Primers
Primerek
The following primers [1] must be used:
A következő primereket [1] kell használni:
PCR mix
PCR-keverék
PCR mix for each tube is:
A PCR-keverék minden csőben:
Volume per tube
Csövenkénti mennyiség
Buffer (10 X)
Puffer (10 X)
49 μl of this PCR mix is dispensed in each PCR tube
A PCR-keverékből adagoljunk 49 μl-t minden PCR-csőbe
1 μl of extracted DNA (50-100 ng/μl) is added to each tube
Adjunk hozzá 1 μl extraktált DNS-t (50–100 ng/μl) minden csőhöz
Controls
Tesztek
Two types of control are used:
Kétfajta tesztet használunk:
Negative controls consist of dH2O (1 μl for 49 μl of PCR mix).
A negatív tesztek dH2O-t tartalmaznak (1 μl 49 μl-nyi PCR-keverék után).
They aim at detecting potential reactive contamination or working environment.
A potenciális reaktív szennyeződés vagy munkakörnyezet észlelésére irányulnak.
One negative control should be included every 10 samples or after each batch of samples.
Minden 10 mintához, vagy minden mintaköteghez egy negatív tesztet kell mellékelni.
Positive controls consist of plasmidic DNA containing the OsHV-1 target genome region CF-CR.
A pozitív tesztek az OsHV-1 CF-CR célgenom részét tartalmazó plazmikus DNS-t tartalmaznak.
They aim at checking the efficacy of the PCR reaction.
A PCR-reakció hatékonyságának ellenőrzésére irányulnak.
One positive control should be included for each PCR analysis.
Minden PCR-elemzéshez egy pozitív tesztet kell mellékelni.
Positive controls are available from the Community Reference Laboratory.
A pozitív tesztek a közösségi referencialaboratóriumból szerezhetők be.
Amplification
Amplifikáció
Amplification cycles are performed in a thermal cycle apparatus.
Az amplifikációs ciklusokat PCR-készülékben végezzük.
Initial denaturation: 2 min at 94 °C
Kezdeti denaturáció: 2 perc 94 °C-on
Amplification: 35 cycles (1 min at 94 °C, 1 min at 50 °C and 1 min at 72 °C)
Amplifikáció: 35 ciklus (1 perc 94 °C-on, 1 perc 50 °C-on és 1 perc 72 °C-on)
Final elongation: 5 min at 72 °C
Végső elongáció: 2 perc 72 °C-on
Electrophoresis
Elektroforézis
50 X TAE (can be bought directly ready for use):
50 X TAE (megvásárolható közvetlenül felhasználásra készen):
Tris base (40 mM) 242 g
Trisz bázis (40 mM) 242 g
Acetic glacial acid (40 mM) 57,1 ml
Jégecet (40 mM) 57,1 ml
dH2O for 1 liter
dH2O 1 literhez
Ajust at pH 8
Állítsuk be az oldat pH-ját 8-asra
Agarose gel 2,5 % in 1 X TAE
2,5 % agarózgél a 1 X TAE-ban
Ethidium bromide (0,5 μg/ml) added after cooling the gel.
Adjunk hozzá etídium-bromidot (0,5 μg/ml) a gél lehűtése után.
Loading blue dye:
Kék töltőfesték:
Bromophenol blue 0,25 %
0,25 % kék bromofenol
Sucrose 40 %
40 % szacharóz
Keep at 4 °C.
Tartsuk 4 °C-on.
Use diluted 6 times (2 μl of loading blue buffer for 10μl of PCR products).
Használjunk hatszoros hígítást (2 μl kék töltőpuffer 10 μl PCR-termékhez).
Molecular weight marker:
Molekulasúly-indikátor:
SmartLadder SF (Eurogentec): a ready-to-use molecular weight marker including 9 regularly spaced bands from 100 to 1000 bp.
SmartLadder SF (Eurogentec): közvetlenül felhasználható molekulasúly-indikátor, amely 9 szabályosan elhelyezkedő sávot tartalmaz 100 és 1000 bp között.
Agarose gel preparation
Az agarózgél elkészítése
Weight 2,5 g of agarose, add 100 ml of 1 X TAE and heat until the mix is melted.
Mérjünk ki 2,5 g agarózt, adjunk hozzá 100 ml 1 X TAE-t, és melegítsük a keveréket addig, amíg megolvad.
After cooling the solution, ethidium bromide is added (5 μl for 100 ml of agarose gel) and the solution is disposed in a specific mould equipped with combs (to form slots).
Az oldat kihűtése után adjunk hozzá etídium-bromidot (5 μl-t 100 ml agarózgélhez), töltsük az oldatot az öntőformába, és helyezzük bele a fésűt a zsebek előállításához.
When gel is polymerised, combs are removed and gel is placed in a horizontal electrophoresis system containing enough 1 X TAE to the cover agarose gel.
Miután a gél polimerizálódik, távolítsuk el a fésűket, és helyezzük a gélt olyan vízszintes elektroforézis rendszerbe, amely elegendő 1X TAE-t tartalmaz ahhoz, hogy lefedje az agarózgélt.
10 μl of PCR products are mixed with 2 μl of blue dye (6 X) and disposed in the slots.
10 μl PCR-terméket vegyítsünk el 2 μl kék festékkel (6X), majd helyezzük be a zsebekbe.
One whole is dedicated to the molecular weight marker (5 μl).
Az egyik zsebbe a molekulasúly-indikátort (5 μl) helyezzük.
A voltage of 50 to 150 volts is applied during 30 min to 1 hour depending on the gel size and thickness.
A gél méretétől és vastagságától függően 50–150 volt feszültséget vezetünk bele 30 perc és 1 óra közötti időtartamra.
Gel is observed under UV.
Vizsgáljuk meg a gélt UV fényben.
The presence of OsHV-1 μvar in a sample is indicated by the presence of a band of the appropriate size (157 bp instead of 173 bp for OsHV-1) on a 2,5 % agarose gel with all negative controls negative and all positive controls positive.
Az OsHV-1 μvar jelenlétét a mintában egy megfelelő méretű (OsHV-1 esetében a szokásos 173 bp helyett 157 bp) sáv mutatja a 2,5 %-os agarózgélen. Minden negatív tesztnek negatívnak, és minden pozitív tesztnek pozitívnak kell bizonyulnia.
Definition of the containment area
Az elszigetelési terület meghatározása
The following factors influencing the risks for the spread of the disease shall be taken into account when defining the containment area in accordance with Article 2(2):
Az elszigetelési terület 2. cikk (2) bekezdése szerinti meghatározásánál a betegség terjedésének kockázatát befolyásoló alábbi tényezőket kell figyelembe venni:
the number, rate and distribution of molluscs on the farm or mollusc farming area infected;
a fertőzött puhatestű-tenyésztési területen vagy gazdaságban a puhatestűek száma, aránya és eloszlása;
distance and density of neighbouring farms or mollusc farming areas;
a szomszédos puhatestű-tenyésztési területek vagy gazdaságok távolsága és sűrűsége;
proximity to processing establishments, contact farms or contact mollusc farming areas;
a feldolgozólétesítményektől való távolság, a kapcsolatban lévő gazdaságok vagy puhatestű-tenyésztési területek;
species present at the farms or mollusc farming areas;
a gazdaságokban vagy puhatestű-tenyésztési területeken fellelhető fajok;
farming practices applied in the affected and the neighbouring farms or mollusc farming areas; and
az érintett és a szomszédos gazdaságokban és puhatestű-tenyésztési területeken alkalmazott gazdálkodási módszerek; valamint
hydrodynamic conditions and other factors of epizootiological significance identified.
hidrodinamikai feltételek és más azonosított, járványügyi jelentőségű tényezők.
These primers or descriptions thereof may be obtained from the Community Reference Laboratory for Mollusc Diseases (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, France).
Az említett primerek, illetve azok leírásai beszerezhetőek a puhatestűek betegségeivel foglalkozó közösségi referencialaboratóriumtól (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, Franciaország).
Model animal health certificate for the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Állat-egészségügyi bizonyítványminta a gazdaságokba vagy átmosási övezetekbe szánt Crassostrea gigas osztrigák forgalomba hozatalához
Approved aquaculture holding
Engedélyezett akvakultúra-gazdaság
For the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
A gazdaságokba vagy átmosási övezetekbe szánt Crassostrea gigas osztrigák forgalomba hozatalához
(1)(2)[II.1 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2 of Regulation (EU) No 175/2010
A 175/2010/EU rendelet 2. cikke alapján létrehozott elszigetelési területről származó Crassostrea gigas osztrigákkal kapcsolatos követelmények
I, the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate:
Alulírott hatósági ellenőr igazolom, hogy a bizonyítvány I. részében említett Crassostrea gigas osztrigák:
originate from an area subject to disease control measures regarding increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar;.
olyan területről származnak, ahol a Crassostrea gigas osztrigáknak az OsHV-1 μvarral összefüggésben megnövekedett elhullására tekintettel járványvédelmi intézkedéseket vezettek be;
(1)[II.1.2 are allowed to be placed on the market according to Article 3(2)(a) of Regulation (EU) No 175/2010;]
(1)[II.1.2. forgalomba helyezése engedélyezett a 175/2010/EU rendelet 3. cikkének (2) bekezdése alapján;]
(1)[II.1.2 are originating from a part of the containment area not affected by the increased mortalities and the consignment has been subject to sampling and testing in accordance with Annex I to Regulation (EU) No 175/2010 in Crassostrea gigas oysters with negative result;]]
(1)[II.1.2. az elszigetelési területnek a megnövekedett arányú elhullással nem érintett részéről származnak, és a szállítmánynak a 175/2010/EU rendelet I. melléklete szerinti mintavételezése és vizsgálata negatív eredménnyel zárult;]]
(1)(3)[II.2 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a Member State or compartment previously subjected to containment measures as regards increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar and intended for Member States or compartments subject to a programme for the early detection of OsHV-1 μvar
Korábban a Crassostrea gigas osztrigáknak az OsHV-1 μvarral összefüggésben megnövekedett elhullására tekintettel járványvédelmi intézkedések által érintett tagállamból vagy területi egységről származó, az OsHV-1 μvar korai felderítésére irányuló programban részt vevő tagállamba vagy területi egységbe szánt Crassostrea gigas osztrigákkal kapcsolatos követelmények
come from a farm or mollusc farming area where, according to the records of the farm or mollusc farming area, there is no indication of increased mortalities;
olyan gazdaságból vagy puhatestű-tenyésztési területről származnak, ahol a gazdaság, illetve a puhatestű-tenyésztési terület nyilvántartásában nem szerepelnek a megnövekedett arányú elhullásra utaló jelek;