natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Bioassays must be able to determine TEQ values selectively as the sum of PCDDs, PCDFs and dioxin-like PCBs.
A biológiai tesztekkel szelektíven meg kell tudni határozni a TEQ-értékeket mint a PCDD-k, a PCDF-ek és a dioxinszerű PCB-k összegét.
The determination shall provide a valid and reliable estimate of the true concentration in a sample.
A meghatározásnak érvényes és megbízható becslést kell adnia a minta valódi koncentrációjáról.
High accuracy (accuracy of the measurement: the closeness of agreement between the result of a measurement with the true or assigned value of the measurand) is necessary to avoid the rejection of a sample analysis result on the basis of poor reliability of the estimate of TEQ.
A nagy pontosságra (a mérés pontossága: egy mérés eredménye és a valódi vagy hozzárendelt érték közötti egyezés közelsége) azért van szükség, hogy elkerüljük egy mintaanalízis eredményének elvetését a becsült TEQ-érték gyenge megbízhatósága miatt.
Accuracy is expressed as trueness (difference between the mean value measured for an analyte in a certified material and its certified value, expressed as percentage of this value) and precision (RSDR, relative standard deviation calculated from results generated under reproducibility conditions).
A pontosságot a megbízhatósággal (egy hitelesített anyagban az adott komponensre mért átlagérték és a hitelesített érték közötti különbség, ez utóbbi százalékában kifejezve) és a precizitással (RSDR, a relatív szórás, amit a reprodukálhatósági körülmények között kapott eredményekből kell kiszámítani) fejezzük ki.
Screening methods can comprise bioassays and GC/MS methods; confirmatory methods are high-resolution gas-chromatography/high-resolution mass-spectrometry (HRGC/HRMS) methods.
A szűrővizsgálati módszerek lehetnek biológiai tesztek és GC/MS módszerek; a megerősítő módszerek nagy felbontású gázkromatográfiás/nagy felbontású tömegspektrometriás (HRGC/HRMS) módszerek.
False negative rate
Téves negatív arány
Precision RSDR
Precizitás RSDR
Specific requirements for gc/ms methods to be complied with for screening or confirmatory purposes.
A szűrés és megerősítés céljából alkalmazott GC/MS módszerekre vonatkozó különleges követelmények
Addition of 13C-labelled 2,3,7,8-chlorine substituted internal PCDD/F standards and of 13C-labelled internal dioxin-like PCB standards must be carried out at the very beginning or start of the analytical method, e.g. prior to extraction in order to validate the analytical procedure.
Az elemzési eljárás hitelesítéséhez a 13C-jelölésű 2,3,7,8-klórszubsztituált belső PCDD/F-standardok és a 13C-jelölésű belső dioxinszerű PCB-standardok hozzáadását az elemzési módszer legelején vagy indításakor, pl. az extrahálás előtt kell elvégezni.
At least one congener for each of the tetra to octa-chlorinated homologous groups for PCDD/F and at least one congener for each of the homologous groups for dioxin-like PCBs must be added (alternatively, at least one congener for each mass spectrometric selected ion recording function used for monitoring PCDD/F and dioxin-like PCBs).
A tetraklórozottól az oktaklórozottig terjedő PCDD/F-ek homológ csoportjai mindegyikéből legalább egy rokonvegyületet és a dioxinszerű PCB-k homológ csoportjai mindegyikéből legalább egy rokonvegyületet kell hozzáadni (illetve legalább egy rokonvegyület kerül hozzáadásra minden egyes, a PCDD/F-ek és dioxinszerű PCB-k nyomon követéséhez használt tömegspektrometriás szelektív ionkövetéses üzemmódhoz).
There shall be a clear preference, certainly in case of confirmatory methods, of using all 17 13C-labelled 2,3,7,8-substituted internal PCDD/F standards and all 12 13C-labelled internal dioxin-like PCB standards.
A megerősítő módszerek esetében mindenképpen előnyösebb, ha mind a tizenhét 13C-jelölésű 2,3,7,8-klórszubsztituált belső PCDD/F-standardot és mind a tizenkettő 13C-jelölésű belső dioxinszerű PCB-standardokat alkalmazzuk.
Relative response factors shall also be determined for those congeners for which no 13C-labelled analogue is added by using appropriate calibration solutions.
Megfelelő kalibrálóoldatok alkalmazásával a relatív válaszfaktorokat azon rokonvegyületekre is meg kell határozni, amelyek 13C-vel jelölt analógját nem adtuk hozzá a vizsgálati anyaghoz.
For feed of plant origin and feed of animal origin containing less than 10 % fat, the addition of the internal standards is mandatory prior to extraction.
A növényi eredetű takarmányok és a 10 %-nál kevesebb zsírt tartalmazó, állati eredetű takarmányok esetében a belső standardokat kötelező az extrahálás előtt hozzáadni.
For feed of animal origin containing more than 10 % fat, the internal standards can be added either before extraction or after fat extraction.
A 10 %-nál magasabb zsírtartalmú, állati eredetű takarmányok esetében a belső standardokat az extrahálás előtt vagy a zsír extrahálása után is hozzáadhatjuk.
An appropriate validation of the extraction efficiency shall be carried out, depending on the stage at which internal standards are introduced and on whether results are reported on a product or fat basis.
Attól függően, hogy a belső standardokat melyik szakaszban adjuk a mintákhoz, valamint hogy az eredményeket termékre vagy zsírra adjuk meg, az extrahálás hatékonyságát megfelelően validálni kell.
Prior to GC/MS analysis, 1 or 2 recovery (surrogate) standard(s) must be added.
A GC/MS elemzés előtt egy vagy két visszanyerési (kísérő) standardot is hozzá kell adni.
For confirmatory methods, the recoveries of the individual internal standards must be in the range of 60 % to 120 %.
A megerősítő módszerek esetében az egyes belső standardok visszanyerésének a 60–120 %-os tartományba kell esnie.
Lower or higher recoveries for individual congeners, in particular for some hepta- and octa- chlorinated dibenzodioxins and dibenzofurans, are acceptable on the condition that their contribution to the TEQ value does not exceed 10 % of the total TEQ value (based on sum of PCDD/F and dioxin-like PCBs).
Egyes rokonvegyületek, különösen egyes 7, illetve 8 klóratomot tartalmazó dibenzo-dioxinok és dibenzo-furánok esetében ennél alacsonyabb vagy magasabb visszanyerés is elfogadható, feltéve, hogy TEQ-értékük részaránya az összes (a PCDD/F-ek és a dioxinszerű PCB-k összegén alapuló) TEQ-értékben legfeljebb 10 %.
For screening methods, the recoveries must be in the range of 30 % to 140 %.
A szűrési módszerek esetében a visszanyerésnek a 30–140 %-os tartományban kell lennie.
Separation of dioxins from interfering chlorinated compounds such as non-dioxin-like PCBs and chlorinated diphenyl ethers shall be carried out by suitable chromatographic techniques (preferably with a florisil, alumina and/or carbon column).
A dioxinokat az interferáló klórozott vegyületektől, így például a nem dioxinszerű PCB-ktől és a klórozott difenil-éterektől megfelelő kromatográfiás eljárással (lehetőleg florisil-, alumínium-oxid- és/vagy szénoszlopon) kell elválasztani.
Gaschromatographic separation of isomers shall be sufficient (< 25 % peak to peak between 1,2,3,4,7,8-HxCDF and 1,2,3,6,7,8-HxCDF).
Az izomerek gázkromatográfiás elválasztása megfelelő legyen (< 25 % a csúcsok közötti eltérés az 1,2,3,4,7,8-HxCDF és az 1,2,3,6,7,8-HxCDF között).
Determination shall be performed according to EPA Method 1613 revision B: Tetra- through octa-chlorinated dioxins and furans by isotope dilution HRGC/HRMS or another with equivalent performance criteria.
A meghatározást az EPA 1613. módszerének B. módosítása szerint kell elvégezni, amely a tetraklórozottól az oktaklórozottig terjedő dioxinok és furánok izotóphígításos HRGC/HRMS-sel vagy más, egyenértékű teljesítménykritériumokkal rendelkező módszerrel történő meghatározására vonatkozik.
The difference between upperbound level and lower bound level must not exceed 20 % for feed with a dioxin contamination in the range or above the maximum level.
A felső és az alsó határérték közötti különbség nem haladhatja meg a 20 %-ot olyan takarmányokban, amelyek dioxinszennyezettsége a maximális tartományban vagy afelett van.
For feed with contamination levels well below the maximum level, the difference may be in the range of 25 %-40 %.
A maximális szintnél jóval alacsonyabb szennyezettségű takarmányok esetében a különbség a 25–40 %-os tartományban mozoghat.
Screening methods of analysis
Analitikai szűrővizsgálati módszerek
Different analytical approaches can be performed using a screening method: a pure screening approach and a quantitative approach.
A szűrővizsgálati módszerekkel különböző analitikai célok teljesíthetők: a tisztán szűréses és a kvantitatív megközelítés.
Additional reference samples at 0,5x and 2x the level of interest shall be included to demonstrate the proper performance of the test in the range of interest for the control of the level of interest.
A kérdéses szint ellenőrzésére a kérdéses szint felének és kétszeresének megfelelő további referenciamintákat is alkalmazni kell annak igazolására, hogy a teszt a kérdéses tartományban megfelelő teljesítményű.
When testing other matrices, the suitability of the reference sample(s) has to be demonstrated, preferentially by including samples shown by HRGC/HRMS to contain a TEQ level around that of the reference sample or else a blank spiked at this level.
Amikor más mátrixokat tesztelünk, a referenciaminta vagy referenciaminták megfelelőségét is bizonyítani kell, lehetőleg olyan minták felhasználásával, amelyek HRGC/HRMS-sel mért TEQ-értéke hasonló a referenciaminta értékéhez vagy pedig egy vakmintával, amely erre a szintre van beállítva.
Since no internal standards can be used in bioassays, tests on repeatability are very important to obtain information on the standard deviation within one test series.
Mivel a biológiai tesztekben nem használhatók belső standardok, az ismételhetőségre vonatkozó vizsgálatok nagyon fontosak az egy kísérletsorozaton belüli szórás megállapításában.
The coefficient of variation must be below 30 %.
A relatív szórási együtthatónak 30 % alatt kell lennie.
For bioassays, the target compounds, possible interferences, and maximum tolerable blank levels shall be defined.
A biológiai tesztek esetében meg kell határozni a célvegyületeket, az esetleges interferenciákat és az elfogadható vakszintek maximumát.
The quantitative approach requires standard dilution series, duplicate or triplicate clean up and measuring as well as blank and recovery controls.
A kvantitatív megközelítéshez standard hígítási sorok, két vagy három sorozatban párhuzamosan végzett tisztítás és mérés, valamint vak- és visszanyerési próbák szükségesek.
The result may be expressed as TEQ, thereby assuming that the compounds responsible for the signal correspond to the TEQ principle.
Az eredmények kifejezhetők TEQ-ban, feltételezve, hogy a jelért felelős vegyületek megfelelnek a TEQ-alapelvnek.
This is subsequently corrected for the TEQ level calculated for a blank sample (to account for impurities from solvents and chemicals used), and a recovery (calculated from the TEQ level in a quality control sample around the limit of interest).
Ezt azután korrigáljuk a vakmintára számított TEQ-értékkel (hogy figyelembe vegyük az alkalmazott oldószerekből és vegyszerekből származó szennyeződést), valamint egy visszanyerésre számított TEQ-értékkel (amelyet egy, az adott szint körüli értékű minőség-ellenőrző minta TEQ-értékéből számítunk ki).
It is essential to note that part of the apparent recovery loss may be due to matrix effects and/or differences between the TEF values in the bioassays and the official TEF values set by WHO.
Fontos megjegyezni, hogy a nyilvánvaló visszanyerési veszteség egy része mátrixhatásokból és/vagy a biológiai tesztelési eljárások során kapott TEF-értékek és a WHO által rögzített hivatalos TEF-értékek különbségéből eredhet.
For cell based bioassays specific requirements are laid down in point 7.3 and for kit-based bioassays in point 7.4.
A sejtreakción alapuló biológiai tesztelési eljárások vonatkozásában a 7.3. pontban, a vegyszerkészleten alapuló biológiai tesztelési eljárások vonatkozásában a 7.4. pontban megállapított különleges követelményeket kell alkalmazni.
Information on the number of false-positive and false-negative results of a large set of samples below and above the maximum level or action level is necessary, in comparison to the TEQ content as determined by a confirmatory method of analysis.
Egy nagyszámú – a maximális vagy akciós szint alatti vagy feletti mintát tartalmazó – sorozatnál szükség van a téves pozitív és a téves negatív eredmények számával kapcsolatos információkra a megerősítő elemzési módszerrel meghatározott TEQ-tartalommal történő összehasonlításban.
Actual false negative rates must be under 1 %.
A téves negatív minták tényleges arányának 1 % alatt kell lennie.
The rate of false positive samples shall be low enough to make the use of a screening tool advantageous.
A téves pozitív minták arányának elég alacsonynak kell lenni ahhoz, hogy előnyös legyen a szűrővizsgálati módszer alkalmazása.
In addition, samples from a wide TEQ-range shall be confirmed by HRGC/HRMS (approximately 2 %-10 % of the negative samples).
Továbbá HRGC/HRMS-sel meg kell erősíteni a széles TEQ-tartományból származó mintákat (a negatív minták körülbelül 2–10 %-a).
Information on correspondence between bioassay and HRGC/HRMS results shall be made available.
A biológiai tesztek és a HRGC/HRMS eredményeinek összefüggésével kapcsolatos információkat is meg kell adni.
When performing a bioassay, every test run requires a series of reference concentration of TCDD or a dioxin/furan mixture (full dose-response curve with a R2 > 0,95).
A biológiai tesztek során minden teszt lefuttatásához szükség van egy TCDD vagy dioxin/furán-elegy referenciakoncentráció-sorozatra (teljes dózisválasz görbe, ahol R2 > 0,95).
However, for screening purposes, an expanded low level curve for analysing low-level samples could be used.
Szűrési célokra azonban egy kibővített, alacsony szintű minták mérésére alkalmas alacsonyszint görbét lehet alkalmazni.
It shall be ensured that the kit-based bioassays have sufficient sensitivity and reliability to be applied for feed.
Gondoskodni kell arról, hogy a reagenskészlet-alapú biológiai tesztek kellően érzékenyek és megbízhatóak legyenek a takarmányokhoz való alkalmazáshoz.
Manufacturer's instructions for sample preparation and analyses have to be followed.
Követni kell a gyártó minta-előkészítésre és mintaelemzésre vonatkozó utasításait.
Materials or components designed for use with other kits shall not be used.
Nem alkalmazhatók más reagenskészletekben történő felhasználásra szánt anyagok vagy komponensek.
The limit of detection for immunoassays is determined as the sum of the mean and 3x the standard deviation, based on 10 replicate analysis of the blank, to be divided by the slope value of the linear regression equation.
Az immunvizsgálatok kimutatási határát úgy kell meghatározni, hogy a vakminta 10 párhuzamos vizsgálatából kapott átlag és a szórás háromszorosának összegét elosztjuk a lineáris regressziós egyenes meredekségével.
Reference standards shall be used for tests at the laboratory to make sure that the responsiveness to the standard is within an acceptable range.
A laboratóriumban végzett tesztekhez referenciastandardokat kell használni annak biztosítása érdekében, hogy a standardra adott válasz az elfogadható tartományba essen.
Reporting of results
Az eredményekről készült jelentés
In so far as the used analytical procedure makes it possible, the analytical results shall contain the levels of the individual PCDD/F and PCB congeners and the analytical results have to be reported as lowerbound, upperbound and medium-bound in order to include a maximum of information in the reporting of the results and thereby enabling the interpretation of the results according to specific requirements.
Amennyiben az alkalmazott analitikai eljárás lehetővé teszi, az analitikai eredmények között fel kell tüntetni az egyes PCDD/F- és PCB-rokonvegyületek szintjeit is, és az analitikai eredményeket alsó határral, felső határral és középső értékekkel is ki kell fejezni, hogy a jelentés az eredmények tekintetében maximális mennyiségű információt tartalmazzon, és így lehetővé tegye az eredmények különleges követelmények szerinti értelmezését.
The report shall also include the lipid content of the sample as well the method used for lipid extraction.
A jelentésben meg kell adni a minta lipidtartalmát, és a lipidek extrahálásához alkalmazott módszert is.
The recoveries of the individual internal standards must be made available in case the recoveries are outside the range mentioned in point 6, in case the maximum level is exceeded and in the other cases upon request.
Az egyes belső standardok visszanyerését meg kell adni abban az esetben, ha a visszanyerések kívül esnek a 6. pontban említett tartományon, vagy ha az eredmények meghaladják a maximális szintet, vagy arra kérés érkezik.
As the uncertainty of the measurement is to be taken into account when deciding about the compliance of a sample, this parameter shall also be made available.
Mivel a minta megfelelőségéről való döntésnél figyelembe kell venni a mérési bizonytalanságot, ezt a paramétert is meg kell adni.
Thus, analytical results shall be reported as x +/- U whereby x is the analytical result and U is the expanded measurement uncertainty using a coverage factor of 2 which gives a level of confidence of approximately 95 %.
Tehát az analitikai eredményeket x +/– U formában kell jelenteni, ahol x a vizsgálati eredmény, U a kiterjesztett mérési bizonytalanság, a kiterjesztési tényező 2, amely körülbelül 95 %-os konfidenciaszintet eredményez.
In case of a separate determination of dioxins and dioxin-like-PCBs the sum of the estimated expanded uncertainty of the separate analytical results of dioxins and dioxin-like PCBs has to be used for the sum of dioxins and dioxin-like PCBs.
A dioxinok és dioxinszerű PCB-k külön történő meghatározása esetén, a dioxinok és dioxinszerű PCB-k külön vizsgálati eredményei becsült kiterjesztett bizonytalanságának összegét kell felhasználni a dioxinok és a dioxinszerű PCB-k összegének megállapításához.
If the uncertainty of measurement would be taken into account by applying a CCα (as described in I.2 of this Part B) this parameter shall be reported.
Ha a CCα alkalmazásával vesszük figyelembe a mérési bizonytalanságot (ezen B. rész I. 2. pontjában leírt módon), ezt a paramétert is jelenteni kell.
Table of TEF (= toxic equivalency factors) for dioxins, furans and dioxin-like PCBs:Abbreviations used: «T» = tetra; «Pe» = penta; «Hx» = hexa; «Hp» = hepta; «O» = octa; «CDD» = chlorodibenzo-p-dioxin; «CDF» = chlorodibenzofuran; «CB» = chlorobiphenyl.
TEF (= toxicitási egyenérték-tényező) táblázat dioxinokra, furánokra és dioxinszerű PCB-kreAlkalmazott rövidítések: „T” = tetra; „Pe” = penta; „Hx” = hexa; „Hp” = hepta; „O” = okta; „CDD” = klór-dibenzo-p-dioxin; „CDF” = klór-dibenzo-furán; „CB” = klór-bifenil.
CongenerTEF valueCongenerTEF valueDibenzo-p-dioxins (‘PCDDs’) ‘Dioxin-like’ PCBs: 2,3,7,8-TCDD11,2,3,7,8-PeCDD1Non-ortho PCBs1,2,3,4,7,8-HxCDD0,1PCB 770,00011,2,3,6,7,8-HxCDD0,1PCB 810,00011,2,3,7,8,9-HxCDD0,1PCB 1260,11,2,3,4,6,7,8-HpCDD0,01PCB 1690,01OCDD0,0001Mono-ortho PCBsPCB 1050,0001Dibenzofurans (‘PCDFs’) PCB 1140,00052,3,7,8-TCDF0,1PCB 1180,00011,2,3,7,8-PeCDF0,05PCB 1230,00012,3,4,7,8-PeCDF0,5PCB 1560,00051,2,3,4,7,8-HxCDF0,1PCB 1570,00051,2,3,6,7,8-HxCDF0,1PCB 1670,000011,2,3,7,8,9-HxCDF0,1PCB 1890,00012,3,4,6,7,8-HxCDF0,11,2,3,4,6,7,8-HpCDF0,011,2,3,4,7,8,9-HpCDF0,01OCDF0,0001
RokonvegyületTEF-értékRokonvegyületTEF-értékDibenzo-p-dioxinok (PCDD-k)Dioxinszerű PCB-k:2,3,7,8-TCDD11,2,3,7,8-PeCDD1Nem-orto PCB-k1,2,3,4,7,8-HxCDD0,1PCB 770,00011,2,3,6,7,8-HxCDD0,1PCB 810,00011,2,3,7,8,9-HxCDD0,1PCB 1260,11,2,3,4,6,7,8-HpCDD0,01PCB 1690,01OCDD0,0001Mono-orto PCB-kPCB 1050,0001Dibenzofuránok (PCDF-ek)PCB 1140,00052,3,7,8-TCDF0,1PCB 1180,00011,2,3,7,8-PeCDF0,05PCB 1230,00012,3,4,7,8-PeCDF0,5PCB 1560,00051,2,3,4,7,8-HxCDF0,1PCB 1570,00051,2,3,6,7,8-HxCDF0,1PCB 1670,000011,2,3,7,8,9-HxCDF0,1PCB 1890,00012,3,4,6,7,8-HxCDF0,11,2,3,4,6,7,8-HpCDF0,011,2,3,4,7,8,9-HpCDF0,01OCDF0,0001
The duplicate analysis is necessary to exclude the possibility of internal cross-contamination or an accidental mix-up of samples.
A „felső határérték” kiszámításánál a mennyiségi meghatározás határértéke tekintendő az egyes, mennyiségileg nem meghatározható rokonvegyületek TEQ-hez való hozzájárulása értékének.
The first analysis, taking into account the measurement uncertainty is used for verification of compliance.In case the analysis is performed in the frame of a dioxin contamination incident, confirmation by duplicate analysis might be omitted in the case the samples selected for analysis are through traceability linked to the dioxin contamination incident.
Az „alsó határ” fogalma szerint minden egyes, mennyiségileg nem meghatározható rokonvegyület TEQ-hez való hozzájárulása nullának tekintendő. A „középső érték” kiszámításánál a mennyiségi meghatározás határértékének fele tekintendő az egyes, mennyiségileg nem meghatározható rokonvegyületek TEQ-hez való hozzájárulásának.
METHODS OF ANALYSIS FOR THE DETERMINATION OF CONSTITUENTS OF ANIMAL ORIGIN FOR THE OFFICIAL CONTROL OF FEED
A TAKARMÁNYOK HATÓSÁGI ELLENŐRZÉSE SORÁN AZ ÁLLATI EREDETŰ ALKOTÓELEMEK MEGHATÁROZÁSÁRA SZOLGÁLÓ ANALITIKAI MÓDSZEREK
Conditions for the microscopic detection, identification or estimation of constituents of animal origin in feed
A takarmányokban található állati eredetű összetevők mikroszkópos kimutatására, azonosítására és becslésére vonatkozó feltételek
These conditions shall be used when detection of constituents of animal origin (defined as products from processing bodies and body-parts of mammals, poultry and fish) in feed is carried out by means of microscopic examination in the framework of the coordinated inspection programme in the field of animal nutrition in accordance with Regulation (EC) 882/2004 of the European Parliament and of the Council.
E feltételeket akkor kell alkalmazni, ha a takarmányokban található állati eredetű összetevők (emlősök, baromfi és halak testének, illetve testrészeinek feldolgozásából származó termékek) kimutatása a 882/2004/EK európai parlamenti és tanácsi rendeletnek megfelelően a takarmányozás terén koordinált ellenőrzési program keretében, mikroszkópos vizsgálatok útján történik.
Provided that the methods in this Annex are used in all official tests, a second test may also be carried out using variant or alternative methods, in order to improve the detection of certain types of animal constituents or to further specify the origin of the animal constituents.
Ha az e mellékletben ismertetett módszert alkalmazzák minden hatósági vizsgálatban, el kell végezni egy második vizsgálatot is egy alternatív módszerrel, az állati eredetű összetevők egyes típusai kimutatásának javítása vagy az állati összetevők eredetének további meghatározása érdekében.
Furthermore, a variant protocol may be used when examining certain specific animal constituents such as plasma or bones in tallow (see also point 9), provided that these analyses are made in addition to the analyses foreseen in the coordinated inspection programme.2.
Továbbá egyes különös állati összetevők, pl. a faggyúban lévő plazma vagy csontok esetén (lásd a 9. pontot is) egy másik módszert is alkalmazni kell, ha ezeket a vizsgálatokat a koordinált ellenőrzési program keretében előírt vizsgálatok kiegészítéseként végzik.2.
Dependent on the nature of the constituents of animal origin, very small amounts (< 0,1 %) in feed can be detected.
Az állati eredetű alkotóelem jellegétől függően a takarmányban már igen kis mennyiségben is (< 0,1 %) kimutatható.
A representative sample, taken in accordance with the provisions laid down in Annex I which has undergone suitable preparation is used for the identification.
Az azonosításra az I. mellékletben megállapított rendelkezések szerint vett és megfelelően előkészített reprezentatív mintát kell használni.
The following protocol is fit for handling feed with low moisture content.
A következő módszer megfelelő a csökkentett nedvességtartalmú takarmányok kezeléséhez.
Feed with an amount of moisture higher than 14 % shall be dried (condensed) prior to handling.
A 14 %-nál magasabb nedvességtartalmú takarmányokat kezelés előtt szárítani (kondenzálni) kell.