natgillin/translations-raw huggingface dataset:
EyCx is dependent on the specific growth rate of the algal species used in each test and on the maximum specific growth rate that can vary between species and even different algal strains.
Az EyCx függ az egyes vizsgálatokban használt algafajok fajlagos szaporodási sebességétől és a legnagyobb fajlagos szaporodási sebességétől, ami a fajok, sőt még különböző algatörzsek között is eltérő lehet.
This response variable should not be used for comparing the sensitivity to toxicants among algal species or even different strains.
Ez a hatásváltozó nem használható az algafajok, de még a különböző törzsek mérgező anyagokkal szembeni érzékenységének összehasonlítására sem.
While the use of average specific growth rate for estimating toxicity is scientifically preferred, toxicity estimates based on yield are also included in this Testing Method so as to satisfy current regulatory requirements in some countries.
Noha tudományos szempontból a toxicitás becsléséhez az átlagos fajlagos szaporodási sebesség használata preferált, e vizsgálati módszer a szaporulaton alapuló toxicitásbecsléseket is tartalmazza, hogy kielégítse a néhány országban érvényben lévő hatósági előírásokat.
Average growth rate
Átlagos szaporodási sebesség
The average specific growth rate for a specific period is calculated as the logarithmic increase in biomass from the equation for each single vessel of controls and treatments:
Az adott időszakra vonatkozó átlagos fajlagos szaporodási sebesség az egyes kontrolltenyészetekre és kezelt tenyészetekre az élőanyag mennyiségének logaritmikus növekedéseként számítható ki a következő egyenletből:
(day–1)
(nap–1)
µ i-j:
μ i–j
is the average specific growth rate from time i to j;
az átlagos fajlagos szaporodási sebesség i-től j időpontig
is the biomass at time i;
az élőanyag mennyisége i időpontban
is the biomass at time j.
az élőanyag mennyisége j időpontban.
For each treatment group and control group, calculate a mean value for growth rate along with variance estimates.
Minden kezelt és kontrollcsoportra ki kell számítani egy átlagot a szaporodási sebességre, valamint meg kell becsülni a szórásnégyzetet.
Calculate average specific growth rate over the entire test duration (normally days 0-3), using the nominally inoculated biomass as the starting value rather than a measured starting value, because in this way greater precision is normally obtained.
Az átlagos fajlagos szaporodási sebességet ki kell számolni a teljes kísérleti időszakra (általában 0–3. nap), kezdeti értékként a névlegesen beoltott élőanyagot, nem pedig a mért kezdeti értéket használva, mert ilyen módon általában nagyobb pontosság érhető el.
If the equipment used for biomass measurement allows sufficiently precise determination of the low inoculum biomass (e.g. flow cytometer) then the measured initial biomass concentration can be used.
Ha az élőanyag mérésére használt mérőeszköz lehetővé teszi az oltó élőanyag kis mennyiségének megfelelően pontos meghatározását (pl. áramlásos citométer), akkor használható a mért kezdeti élőanyag-koncentráció.
Also assess the section-by-section growth rate, calculated as the specific growth rates for each day during the course of the test (days 0-1, 1-2 and 2-3) and examine whether the control growth rate remains constant (See validity criteria, section 1.7).
A szakaszonkénti szaporodási sebességet is meg kell állapítani a vizsgálat minden egyes napjára vonatkozóan (0–1., 1–2. és 2–3. nap), ugyanúgy számítva, mint a fajlagos szaporodási sebességet, és meg kell vizsgálni, hogy a kontrolltenyészet szaporodási sebessége állandó marad-e (lásd érvényességi kritériumok, 1.7. pont).
A significantly lower specific growth rate on day one than the total average specific growth rate may indicate a lag phase.
Az első napon kapott, a teljes átlagos fajlagos szaporodási sebességnél szignifikánsan kisebb fajlagos szaporodási sebesség késési (lag) fázist jelez.
While a lag phase can be minimised and practically eliminated in control cultures by proper propagation of the pre-culture, a lag phase in exposed cultures may indicate recovery after initial toxic stress or reduced exposure due to loss of test substance (including sorption onto the algal biomass) after initial exposure.
Míg a késési (lag) fázis az előtenyészet megfelelő adagolásával minimalizálható és gyakorlatilag kiküszöbölhető a kontrolltenyészetekben, addig a vizsgált anyagnak kitett tenyészetekben a késési (lag) fázis a kezdeti toxicitás-stressz utáni helyreállást, vagy pedig a vizsgált anyagnak az expozíció elején történő elveszése (beleértve az élőanyagba történő szorpciót) miatti kisebb gátló hatást jelezhet.
Hence the section-by-section growth rate may be assessed in order to evaluate effects of the test substance occurring during the exposure period.
Ebből következően a szakaszonkénti szaporodási sebesség használható a vizsgált anyagnak a kísérlet során mutatott hatásainak az értékeléséhez.
Substantial differences between the section-by-section growth rate and the average growth rate indicate deviation from constant exponential growth and that close examination of the growth curves is warranted.
Ha a szakaszonkénti növekedési sebesség és az átlagos növekedési sebesség között nagy különbséget tapasztalunk, az azt jelenti, hogy a növekedés mintája erősen eltér az állandó kitevőjű exponenciális növekedéstől és különösen ajánlott a növekedési görbék részletes vizsgálata.
Calculate the percent inhibition of growth rate for each treatment replicate from the equation:
A szaporodási sebesség százalékos gátlása az egyes kezelt párhuzamos tenyészetekre vonatkozóan az alábbi egyenletből számítható ki:
percent inhibition in average specific growth rate;
átlagos szaporodási sebesség százalékos gátlása
mean value for average specific growth rate (µ) in the control group;
átlagos szaporodási sebesség átlaga (μ) a kontrollcsoportban
average specific growth rate for the treatment replicate.
átlagos szaporodási sebesség átlaga a kezelt párhuzamos tenyészetben.
When solvents are used to prepare the test solutions, the solvent controls rather than the controls without solvents should be used in calculation of percent inhibition.
Ha a kísérleti oldatok oldószer felhasználásával készülnek, oldószer nélküli kontrolltenyészetek helyett oldószeres kontrolltenyészeteket kell használni a százalékos gátlás számításakor.
Yield
Kihozatal
The yield is calculated as the biomass at the end of the test minus the starting biomass for each single vessel of controls and treatments.
A szaporulatot az egyes kontrolltenyészetekre és kezelt tenyészetekre úgy kell kiszámítani, hogy a kísérlet végén mért élőanyag-tömegből kivonjuk a kiindulási élőanyag-tömeget.
For each test concentration and control, calculate a mean value for the yield along with variance estimates.
Minden kísérleti koncentrációra és kontrolltenyészetre vonatkozóan ki kell számítani a szaporulatra egy átlagot, valamint meg kell becsülni a szórásnégyzetet.
The percentage inhibition in yield (%Iy) may be calculated for each treatment replicate as follows:
Az egyes kezelt párhuzamos tenyészetekre a szaporulatra vonatkozó százalékos gátlás (% Iy) az alábbiak szerint számítható ki:
%I y:
% I y:
percentage inhibition of yield;
százalékos szaporulatgátlás
mean value for yield in the control group;
a szaporulat átlaga a kontrollcsoportban
value for yield for the treatment replicate.
a szaporulat értéke a kezelt párhuzamos tenyészetekben.
PLOTTING CONCENTRATION RESPONSE CURVE
A KONCENTRÁCIÓ-HATÁS GÖRBE SZERKESZTÉSE
Plot the percentage of inhibition against the logarithm of the test substance concentration and examine the plot closely, disregarding any such data point that was singled out as an outlier in the first phase.
A százalékos szaporodásgátlást ábrázolni kell a vizsgált anyag koncentrációjának (logaritmus) függvényében, és alaposan meg kell vizsgálni a görbét, figyelmen kívül hagyva azokat az adatpontokat, amelyek az első szakaszban érvénytelenként lettek megjelölve.
Fit a smooth line through the data points by eye or by computerised interpolation to get a first impression of the concentration response relationship, then proceed with a more detailed method, preferably a computerised statistical method.
Egy egyenest kell illeszteni az adatpontokra kézzel vagy számítógépes interpolációval, ami egy első benyomást ad a koncentráció-hatás összefüggésről, majd ezután kifinomultabb módszert, lehetőleg számítógépes statisztikai módszert kell használni.
Depending on the intended usage of the data, the quality (precision) and amount of data, as well as the availability of data analysis tools, it may be decided (and sometimes well justified) to stop the data analysis at this stage and simply read the key figures EC50 and EC10 (and/or EC20) from the eye fitted curve (also see section below on stimulatory effects).
Az adatok tervezett felhasználásának, minőségének (pontosságának) és mennyiségének, valamint a rendelkezésre álló adatelemző eszközök függvényében lehet úgy dönteni (és néha jól meg lehet indokolni), hogy ezen a szinten befejeződik az adatelemzés és a meghatározó értékek, azaz az EC50 és az EC10 (és/vagy EC20) egyszerűen leolvashatók a kézzel illesztett görbéről (lásd még alább a stimulációs hatásokról szóló pontot).
Valid reasons for not using a statistical method may include:
A következők indokolhatják a statisztikai módszer mellőzését:
data are not appropriate for computerised methods to produce any more reliable results than can be obtained by expert judgement — in such situations some computer programs may even fail to produce a reliable solution (iterations may not converge etc.),
Az adatok nem megfelelőek ahhoz, hogy számítógépes módszerrel további, még megbízhatóbb eredmény szülessen, mint a szakértői megítéléssel – ilyen esetekben néhány számítógépes program nem is képes megbízható megoldást adni (az iteráció nem konvergál stb.).
stimulatory growth responses cannot be handled adequately using available computer programs (see below).
Stimulációs szaporodási viselkedés nem kezelhető pontosan a rendelkezésre álló számítógépes programokkal (lásd alább).
STATISTICAL PROCEDURES
STATISZTIKAI SZÁMÍTÁSOK
The aim is to obtain a quantitative concentration-response relationship by regression analysis.
A statisztikai számítások célja, hogy regressziószámítással kvantitatív koncentráció–hatás összefüggést állítsunk elő.
It is possible to use a weighted linear regression after having performed a linearising transformation of the response data — for instance into probit or logit or Weibull units (9), but non-linear regression procedures are preferred techniques that better handle unavoidable data irregularities and deviations from smooth distributions.
Használható súlyozott lineáris regresszió, a hatásadatok például probit, logit vagy Weibull egységekbe történő lineáris transzformációja után (9), de célszerű előnyben részesíteni a nem lineáris regressziós technikákat, amelyek jobban kezelik az elkerülhetetlen adatszabálytalanságokat és az egyenletes eloszlástól való eltéréseket.
Approaching either zero or total inhibition, such irregularities may be magnified by the transformation, interfering with the analysis (9).
Akár a nulla gátlás, akár a teljes gátlás közelében a transzformáció megsokszorozhat bizonyos szabálytalanságokat, ami hibás elemzést eredményezhet (9).
It should be noted that standard methods of analysis using probit, logit, or Weibull transforms are intended for use on quantal (e.g. mortality or survival) data, and must be modified to accommodate growth or biomass data.
Meg kell jegyezni, hogy a transzformációval kapott probit, logit vagy Weibull egységeket használó szabványos elemzési módszerek kvantált adatok (pl. halálozás vagy túlélés) használatára vannak tervezve, és a szaporodási adatokkal vagy az élőanyagra vonatkozó adatokkal való alkalmazásukhoz módosítani kell őket.
Specific procedures for determination of ECx values from continuous data can be found in (10)(11) and (12).
Az ECx értékek folytonos adatokból történő meghatározására szolgáló speciális eljárásokat lásd az irodalomban, (10), (11) és (12).
The use of non-linear regression analysis is further detailed in Appendix 4.
A nem lineáris regresszió használatáról a 4. függelékben található részletesebb információ.
For each response variable to be analysed, use the concentration-response relationship to calculate point estimates of ECx values.
Az egyes hatásváltozók elemzéséhez a koncentráció–válasz összefüggésből állítsuk elő az ECx egyes pontokban becsült értékét.
When possible, the 95 % confidence limits for each estimate should be determined.
Ha lehetséges, meg kell határozni az egyes becslések 95 %-os konfidenciahatárát.
Goodness of fit of the response data to the regression model should be assessed either graphically or statistically.
A hatásadatok regressziós modellhez illeszkedésének jóságát grafikus vagy statisztikai módszerrel kell megállapítani.
Regression analysis should be performed using individual replicate responses, not treatment group means.
A regressziószámítást az egyes vizsgálati edényeken nyert értékekkel, nem pedig a vizsgálati csoportok középértékével kell elvégezni.
If, however, nonlinear curve fitting is difficult or fails because of too great a scatter in the data, the problem may be circumvented by performing the regression on group means as a practical way of reducing the influence of suspected outliers.
Ha azonban a nem lineáris görbeillesztés bonyolult vagy nem sikerül az adatok túl nagy szórása miatt, a problémát meg lehet kerülni a csoportátlagok regresszióanalízésével, ami egy gyakorlati mód a feltehető érvénytelen adatpontok hatásának csökkentésére.
Use of this option should be identified in the test report as a deviation from normal procedure because curve fits with individual replicates did not produce a good result.
Ennek a lehetőségnek a használatát a szokásos eljárástól való eltérésként fel kell tüntetni a mérési jegyzőkönyvben, hivatkozva arra, hogy a görbeillesztések az egyedi párhuzamos tenyészeteknél kapott adatokkal nem adtak jó eredményt.
estimates and confidence limits may also be obtained using linear interpolation with bootstrapping (13), if available regression models/methods are unsuitable for the data.
Az EC50 becsült értékeit és a megbízhatósági határokat visszatevéses mintavétellel („bootstrap” módszer) együtt alkalmazott lineáris interpolációval (13) is megkaphatjuk, ha a rendelkezésre álló regressziós modellek/módszerek nem használhatók a kapott adatokkal.
For estimation of the LOEC and hence the NOEC, and for effects of the test substance on growth rate, it is necessary to compare treatment means using analysis of variance (ANOVA) techniques.
Az LOEC és ennélfogva az NOEC becsléséhez is, illetve a vizsgált anyag által a szaporodási sebességre gyakorolt hatásnak a becsléséhez szórásnégyzet-elemzési (ANOVA) eljárások segítségével össze kell hasonlítani a kezelt csoport átlagait.
The mean for each concentration must then be compared with the control mean using an appropriate multiple comparison or trend test method.
Az egyes koncentrációkhoz tartozó középértékeket ezután alkalmasan megválasztott többszörös összehasonlító módszerrel vagy trendpróbával a kontrollcsoporton nyert középértékhez hasonlítjuk.
Dunnett’s or Williams’ test may be useful (14)(15)(16)(17)(18).
A Dunnett- vagy a Williams-féle módszer használható lehet erre a célra (14)(15)(16)(17)(18).
It is necessary to assess whether the ANOVA assumption of homogeneity of variance holds.
Lényeges ellenőrizni, hogy fennáll-e az ANOVA-nak a szórásnégyzetek homogenitására vonatkozó feltevése.
This assessment may be performed graphically or by a formal test (18).
Ez történhet grafikusan vagy formális próbával (18).
Suitable tests are Levene’s or Bartlett’s.
Erre a célra a Levene- és a Bartlett-próba alkalmas.
Failure to meet the assumption of homogeneity of variances can sometimes be corrected by logarithmic transformation of the data.
A szórásnégyzetek homogenitására vonatkozó feltevés nem teljesülése gyakran kiküszöbölhető az adatok logaritmikus transzformálásával.
If heterogeneity of variance is extreme and cannot be corrected by transformation, analysis by methods such as step-down Jonkheere trend tests should be considered.
Ha a szórásnégyzetek heterogenitása túlságosan szélsőségesnek bizonyul, és transzformációval nem javítható, akkor célszerű megfontolni például a lépésenkénti Jonkheere-trendpróba alkalmazását.
Additional guidance on determining the NOEC can be found in (12).
Az NOEC meghatározásához további útmutatás is található az irodalomban (12).
Recent scientific developments have led to a recommendation of abandoning the concept of NOEC and replacing it with regression based point estimates ECx.
A legújabb kutatási eredmények alapján az az ajánlás fogalmazható meg, hogy az NOEC kiszámítása helyett célszerűbb az ECx értékét becsülni pontonkénti regresszióval.
An appropriate value for x has not been established for this algal test.
Ehhez az algavizsgálathoz még nem állapítottak meg megfelelő x értéket.
A range of 10 to 20 % appears to be appropriate (depending on the response variable chosen), and preferably both the EC10 and EC20 should be reported.
A 10–20 %-os tartomány azonban megfelelőnek tűnik (a választott hatásváltozótól függően), és célszerű mind az EC10-et, mind az EC20-at megadni a mérési jegyzőkönyvben.
GROWTH STIMULATION
SZAPORODÁSSTIMULÁCIÓ
Growth stimulation (negative inhibition) at low concentrations is sometimes observed.
Kis koncentrációk mellett néha szaporodásstimuláció (negatív gátlás) figyelhető meg.
This can result from either hormesis (toxic stimulation) or from addition of stimulating growth factors with the test material to the minimal medium used.
Ezt vagy a hormesis (kétfázisú reagálás) jelensége („toxikus anyag által kiváltott stimuláció”), vagy a vizsgált anyaggal együtt az alkalmazott ásványi sókat tartalmazó tápoldatba került szaporodásserkentő tényezők okozhatják.
Note that the addition of inorganic nutrients should not have any direct effect because the test medium should maintain a surplus of nutrients throughout the test.
Megjegyzendő, hogy a szervetlen tápanyagok hozzáadásának nem lehet semmilyen közvetlen hatása, mert a kísérleti oldatnak a kísérlet folyamán végig feleslegben kell tartalmaznia a tápanyagot.
Low dose stimulation can usually be ignored in EC50 calculations unless it is extreme.
Kis dózisú stimuláció gyakran figyelmen kívül hagyható az EC50 kiszámítása során, hacsak mértéke nem rendkívül nagy.
However, if it is extreme, or an ECx value for low x is to be calculated, special procedures may be needed.
Ha azonban rendkívül nagy mértékű, vagy pedig kis x értékre kell ECx-et számítani, akkor speciális eljárásokra lehet szükség.
Deletion of stimulatory responses from the data analysis should be avoided if possible, and if available curve fitting software cannot accept minor stimulation, linear interpolation with bootstrapping can be used.
Lehetőség szerint kerülni kell a stimulációs hatások törlését az adatelemzésből, és ha a rendelkezésre álló görbeillesztő szoftver nem képes kezelni a kisebb mértékű stimulációkat, akkor visszatevéses mintavétellel („bootstrap” módszer) együtt alkalmazott lineáris interpoláció használható.
If stimulation is extreme, use of a hormesis model may be considered (19).
Ha a stimuláció rendkívül nagy, akkor mérlegelni lehet hormesismodell alkalmazását (19).
NON-TOXIC GROWTH INHIBITION
NEM A TOXIKUS ANYAG ÁLTAL KIVÁLTOTT SZAPORODÁSGÁTLÁS
Light absorbing test materials may give rise to a growth rate reduction because shading reduces the amount of available light.
A fényt abszorbeáló anyagok a szaporodási sebesség csökkenését okozhatják, hiszen az árnyékolás csökkenti a kapott fény mennyiségét.
Such physical types of effects should be separated from toxic effects by modifying the test conditions and the former should be reported separately.
Az ilyen jellegű fizikai hatásokat a kísérleti körülmények módosításával el kell választani a toxikus hatásoktól, és az előbbit külön kell dokumentálni.
Guidance may be found in (2) and (3).
Útmutatás az irodalomban található, (2) és (3).
The test report must include the following:
A vizsgálati jegyzőkönyv tartalmazza a következő információkat:
Test substance:
Vizsgált anyag:
physical nature and relevant physiochemical properties, including water solubility limit,
fizikai jelleg és a vonatkozó fizikai és kémiai tulajdonságok, beleértve a vízoldhatósági határértéket is,
chemical identification data, including purity.
kémiai azonosítás, beleértve a tisztaságot is.
Test species:
Vizsgált faj:
the strain, supplier or source and the culture conditions used.
a törzs, a szállító vagy az eredet, és az alkalmazott tenyésztési körülmények.
date of start of the test and its duration,
a vizsgálat megkezdésének időpontja és időtartama,
description of test design: test vessels, culture volumes, biomass density at the beginning of the test,
a kísérlet kivitelezésének leírása: kísérleti eszközök, a tenyészetek mennyisége, az élőanyag sűrűsége a vizsgálat kezdetén,
composition of the medium,
a tápoldat összetétele,
test concentrations and replicates (e.g. number of replicates, number of test concentrations and geometric progression used),
kísérleti koncentrációk és párhuzamos tenyészetek (pl. párhuzamos tenyészetek száma, kísérleti koncentrációk száma és az alkalmazott mértani sor),
description of the preparation of test solutions, including use of solvents etc.,
a kísérleti oldatok készítésének leírása, beleértve az oldószerek használatát stb.,
culturing apparatus,
tenyésztőkészülék,
light intensity and quality (source, homogeneity),
fényerő és -minőség (fényforrás, homogenitás),
concentrations tested: the nominal test concentrations and any results of analyses to determine the concentration of the test substance in the test vessels.
kísérleti koncentrációk: a névleges kísérleti koncentrációk és a lombikokban lévő vizsgált anyag koncentrációjának meghatározására szolgáló analízisek eredménye.
The recovery efficiency of the method and the limit of quantification in the test matrix should be reported,
A vizsgálati mátrixra vonatkozóan a mérési jegyzőkönyvben fel kell tüntetni a módszer visszanyerési hatékonyságát és a mennyiségi meghatározás határértékét,
all deviations from this Testing Method,
minden eltérés ettől a vizsgálati módszertől,
method for determination of biomass and evidence of correlation between the measured parameter and dry weight.
az élőanyag tömegének meghatározási módszere, valamint a mért paraméter és a száraz tömeg közötti korreláció bizonyítéka.
pH values at the start and end of the test at all treatments,
pH-értékek minden kezelés kezdetén és végén,
biomass for each flask at each measuring point and method for measuring biomass,
az élőanyag tömege minden lombikban és minden mérési pontban, valamint az élőanyag mérésének módszere,
growth curves (plot of biomass versus time),
szaporodási görbék (az élőanyag mennyiségének ábrázolása az idő függvényében),
calculated response variables for each treatment replicate, with mean values and coefficient of variation for replicates,
hatásváltozók számított értéke minden párhuzamos tenyészetre, továbbá vizsgálati csoportonként a középérték és a szórásnégyzet,
graphical presentation of the concentration/effect relationship,
a koncentráció-hatás összefüggés grafikus ábrázolása,
estimates of toxicity for response variables e.g. EC50, EC10, EC20 and associated confidence intervals.
toxicitásbecslés a hatásváltozókra, pl. EC50, EC10, EC20 és a kapcsolódó megbízhatósági intervallumok.
If calculated, LOEC and NOEC and the statistical methods used for their determination,
Az LOEC és az NOEC, ha ezek kiszámítása megtörtént, és a meghatározásukhoz használt statisztikai módszer,
if ANOVA has been used, the size of the effect which can be detected (e.g. the least significant difference),
ANOVA alkalmazása esetén a hatás kimutatásának mérethatára (például a legkisebb szignifikáns különbség),
any stimulation of growth found in any treatment,
a vizsgálatok során észlelt esetleges növekedésserkentés,
any other observed effects, e.g. morphological changes of the algae,
bármilyen más észlelt hatás, például az algák morfológiai változása,