natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Boil for three minutes, leave to cool and if necessary add 10 mg of mercuric iodide as a preservative.
Forraljuk három percen keresztül, hagyjuk kihűlni, szükség esetén adjunk hozzá 10 mg higany-jodidot tartósítószerként.
Sulphuric acid 3 mol/litre.
3 mól/liter koncentrációjú kénsav.
Potassium iodide, solution 30 % (w/v).
30 %-os (w/v) kálium-jodid-oldat:
Granulated pumice stone boiled in hydrochloric acid, washed in water and dried.
Sósavban forralt, vízben mosott és szárított, granulált habkő.
3-methylbutan-l-ol.
3-metilbután-1-ol.
Extraction of sample
A minta extrahálása
Weigh 2,5 g of the sample to the nearest mg and place in a 250 ml volumetric flask.
Mérjünk ki mg-os pontossággal 2,5 g-ot a mintából, és helyezzük egy 250 ml-es mérőlombikba.
Add 200 ml of ethanol (3.1) and mix in the tumbler for one hour.
Adjunk hozzá 200 ml etanolt (3.1.), és keverjük a keverőgépen egy órán keresztül.
Add 5 ml of Carrez solution I (3.2) and stir for approximately 30 seconds.
Adjunk hozzá 5 ml Carrez I. oldatot (3.2.), és kevergessük körülbelül 30 másodpercig.
Add 5 ml of Carrez solution II (3.3) and again stir for one minute.
Adjunk hozzá 5 ml Carrez II. oldatot (3.3.), és kevergessük egy percig.
Make up to volume with ethanol (3.1), homogenise and filter.
Töltsük fel térfogatra etanollal (3.1.), homogenizáljuk, és szűrjük.
Remove 200 ml of the filtrate and evaporate to approximately half volume in order to eliminate most of the ethanol.
Vegyünk el 200 ml-t a szűrletből, és az etanol nagy részének eltávolítása céljából pároljuk térfogatának kb. felére.
Transfer the evaporation residue quantitatively to a 200 ml volumetric flask using warm water, cool, bring up to volume with water, homogenise and filter if necessary.
Helyezzük a bepárlás utáni maradékot mennyiségileg egy 200 ml-es mérőlombikba meleg vízzel, hűtsük, töltsük fel térfogatra vízzel, homogenizáljuk, és szükség esetén szűrjük.
This solution will be used to determine the amount of reducing sugars and, after inversion, of total sugars.
Ezen oldatot használjuk a redukálócukor és invertálás utáni összes cukor mennyiségének meghatározására.
Determination of reducing sugars
A redukálócukor meghatározása
Using a pipette, remove not more than 25 ml of the solution containing less than 60 mg of reducing sugars expressed as glucose.
Pipetta segítségével vegyünk fel legfeljebb 25 ml oldatot, amely 60 mg-nál kevesebb, glükózban kifejezett redukálócukrot tartalmaz.
If necessary, make up to 25 ml with distilled water and determine the content of reducing sugars by the Luff-Schoorl method.
Szükség esetén töltsük fel az oldatot desztillált vízzel 25 ml-re, és határozzuk meg redukálócukor-tartalmát a Luff–Schoorl-módszerrel.
The result is expressed as the percentage content of glucose in the sample.
Az eredményt a minta glükóztartalmára vonatkoztatva, százalékosan fejezzük ki.
Determination of total sugars after inversion
Az invertálás utáni összes cukor meghatározása
Using a pipette take 50 ml of the solution and transfer to a 100 ml volumetric flask.
Pipetta segítségével vegyünk fel az oldatból 50 ml-t, és öntsük át egy 100 ml-es mérőlombikba.
Add a few drops of methyl orange solution (3.4) then, carefully and stirring continuously, add hydrochloric acid (3.5) until the liquid turns a definite red.
Adjunk hozzá néhány csepp metilnarancsoldatot (3.4.), majd óvatosan és folyamatos kevergetés közben, adjunk hozzá sósavat (3.5.), amíg a folyadék határozottan vörössé nem válik.
Add 15 ml of hydrochloric acid (3.6), immerse the flask in a fast boiling water bath and keep there for 30 minutes.
Adjunk hozzá 15 ml sósavat (3.6.), merítsük a lombikot gyorsan forró vízfürdőbe, és tartsuk ott harminc percen keresztül.
Cool rapidly to approximately 20 oC and add 15 ml of sodium hydroxide solution (3.7).
Hűtsük le gyorsan kb. 20 oC-ra, és adjunk hozzá 15 ml nátrium-hidroxid-oldatot (3.7.).
Make up to 100 ml with water and homogenise.
Töltsük fel vízzel 100 ml-re, és homogenizáljuk.
Remove not more than 25 ml containing less than 60 mg of reducing sugars expressed as glucose.
Vegyünk el legfeljebb 25 ml oldatot, amely 60 mg-nál kevesebb, glükózban kifejezett redukálócukrot tartalmaz.
The result is expressed as the percentage of glucose or, where appropriate, sucrose, by multiplying by the factor 0,95.
Az eredményt a glükózra vagy, adott esetben, 0,95-os tényezővel szorozva a szacharózra vonatkoztatva, százalékosan fejezzük ki.
Titration by the Luff-Schoorl method
Titrálás a Luff–Schoorl-módszerrel
Using a pipette, take 25 ml of Luff-Schoorl reagent (3.8) and transfer to a 300 ml Erlenmeyer flask; add exactly 25 ml of the clarified sugar solution.
Pipetta segítségével vegyünk fel 25 ml Luff–Schoorl-reagenst (3.8.), és helyezzük át egy 300 ml-es Erlenmeyer-lombikba; adjunk hozzá pontosan 25 ml-t a derített cukoroldatból.
Add 2 granules of pumice stone (3.13), heat, stirring by hand, over a free flame of medium height and bring the liquid to the boil in approximately two minutes.
Adjunk hozzá kétszemcsényi habkövet (3.13.), hevítsük közepes méretű, szabad lángon, közben kézzel kevergessük, és kb. két perc alatt forraljuk fel a folyadékot.
Place the Erlenmeyer immediately on an asbestos-coated wire gauze with a hole approximately 6 cm in diameter under which a flame has been lit.
Az Erlenmeyer-lombikot azonnal helyezzük egy 6 cm átmérőjű lyukkal ellátott azbesztes dróthálóra, amely alatt előzőleg lángot gyújtunk.
The flame shall be regulated in such a way that only the base of the Erlenmeyer is heated.
A lángot úgy kell szabályoznunk, hogy az Erlenmeyer-lombiknak csak az alját melegítse.
Fit a reflux condenser to the Erlenmeyer flask.
Illesszünk egy visszafolyós hűtőt az Erlenmeyer-lombikhoz.
Boil for exactly 10 minutes.
Forraljuk pontosan tíz percig.
Cool immediately in cold water and after approximately five minutes titrate as follows:
Hűtsük le azonnal hideg vízben, és kb. öt perc elteltével a következők szerint titráljuk:
Add 10 ml of potassium iodide solution (3.12) and immediately afterwards (carefully, because of the risk of abundant foaming), add 25 ml of sulphuric acid (3.11).
Adjunk hozzá 10 ml kálium-jodid-oldatot (3.12.), és közvetlenül ezután (a bőséges habképződés veszélye miatt óvatosan) adjunk hozzá 25 ml kénsavat (3.11.).
Titrate with sodium thiosulphate solution (3.9) until a dull yellow colour appears, add the starch indicator (3.10) and complete titration.
Titráljuk nátrium-tioszulfát-oldattal (3.9.), amíg fakósárga színt nem kapunk, adjuk hozzá a keményítő-indikátort (3.10.), és fejezzük be a titrálást.
Carry out the same titration on an accurately measured mixture of 25 ml of Luff-Schoorl reagent (3.8) and 25 ml of water, after adding 10 ml of potassium iodide solution (3.12) and 25 ml of sulphuric acid (3.11) without boiling.
Forralás nélkül, 10 ml kálium-jodid-oldat (3.12.) és 25 ml kénsav (3.11.) hozzáadása után végezzük el ugyanezt a titrálást egy pontosan kimért, 25 ml Luff–Schoorl-reagenst (3.8.) és 25 ml vizet tartalmazó keveréken.
Using the table establish the amount of glucose in mg which corresponds to the difference between the values of the two titrations, expressed in mg of sodium thiosulphate 0,1 mol/litre.
A táblázat segítségével határozzuk meg a glükóz mennyiségét mg-ban, amely a két titrálás eredménye közti különbségnek felel meg 0,1 mól/liter koncentrációjú nátrium-tioszulfát mg-jában kifejezve.
Special procedures
Különleges vizsgálati módok
In the case of feed which are rich in molasses and other feed which are not particularly homogeneous, weigh out 20 g and place with 500 ml of water in a 1 litre volumetric flask.
A melaszban gazdag, valamint egyéb, kevésbé homogén összetételű takarmányok esetében mérjünk ki 20 g-ot, és helyezzük egy 1 literes mérőlombikba 500 ml vízzel felöntve.
Mix for one hour in the tumbler.
Keverjük forgó dobon egy órán keresztül.
Clarify using Carrez 1 (3.2) and II (3.3) reagents as described under 5.1, this time however using four times the quantities of each reagent.
Az 5.1. pontban leírtak szerint derítsük Carrez I. (3.2.) és Carrez II. (3.3.) reagensek használatával, ebben az esetben azonban négyszeres mennyiséget használjunk az egyes reagensekből.
Bring up to volume with 80 % ethanol (v/v).
Töltsük fel térfogatra 80 %-os (v/v) etanollal.
Homogenise and filter.
Homogenizáljuk és szűrjük.
Eliminate the ethanol as described under 5.1.
Vonjuk ki az etanolt az 5.1. pontban leírtak szerint.
If there is no dextrinised starch, bring up to volume with distilled water.
Ha nincs jelen dextrinált keményítő, töltsük fel térfogatra desztillált vízzel.
In the case of molasses and feed materials which are rich in sugar and almost starch-free (carobs, dried beetroot cossettes etc.), weigh out 5 g, place in a 250 ml volumetric flask, add 200 ml of distilled water and mix in the tumbler for one hour, or more if necessary.
Melaszok, valamint cukorban gazdag és gyakorlatilag keményítőmentes takarmány-alapanyagok (szentjánoskenyér, szárítottcukorrépa-szeletek stb.) esetében mérjünk ki 5 g-ot, és helyezzük egy 250 ml-es mérőlombikba, adjunk hozzá 200 ml desztillált vizet, és keverjük forgó dobon egy órán keresztül vagy szükség esetén tovább.
Clarify using Carrez I (3.2) and II (3.3) reagents as described under 5.1.
Az 5.1. pontban leírtak szerint derítsük Carrez I. (3.2.) és Carrez II. (3.3.) reagensekkel.
Bring up to volume with cold water, homogenise and filter.
Töltsük fel térfogatra hideg vízzel, homogenizáljuk, és szűrjük.
In order to determine the amount of total sugars, continue as described under 5.3.
Az összes cukortartalom meghatározásához az 5.3. pontban leírtak szerint folytassuk a vizsgálatot.
In order to prevent foaming it is advisable to add (irrespective of the volume) approximately 1 ml of 3-methylbutan-l-ol (3.14) before boiling with Luff-Schoorl reagent.
A habképződés elkerülése érdekében a Luff–Schoorl-reagenssel történő forralás előtt tanácsos (a mennyiségtől függetlenül) kb. 1 ml 3-metilbután-1-ol (3.14.) hozzáadása.
The difference between the content of total sugars after inversion, expressed as glucose, and the content of reducing sugars, expressed as glucose, multiplied by 0,95, gives the percentage content of sucrose.
A glükózban kifejezett, invertálás utáni összes cukortartalom és a glükózban kifejezett, redukálócukor-tartalom különbsége 0,95-dal szorozva megadja a szacharóztartalomra vonatkoztatott százalékos arányt.
In order to determine the content of reducing sugars, excluding lactose, two methods may be adopted:
A laktóz nélkül számított redukálócukor-tartalom meghatározására két módszer alkalmazható:
For an approximate calculation, multiply by 0,675 the lactose content established by a different method of analysis and subtract the result obtained from the content of reducing sugars.
Közelítő számításhoz, szorozzuk meg 0,675-tel a laktóztartalmat, amely egy másik elemzési módszerrel került megállapításra, és vonjuk ki a kapott eredményt a redukálócukor-tartalomból.
In both cases the amount of sugar present is determined by the Luff-Schoorl method and calculated in mg of glucose.
A jelen lévő cukormennyiség meghatározása mindkét esetben a Luff–Schoorl-módszerrel történik, és a glükóz mg-ban kerül kiszámításra.
One of the values is subtracted from the other and the difference is expressed as a percentage of the sample.
Az egyik értéket kivonjuk a másikból, és az eredményt a minta százalékában fejezzük ki.
Example:
Példa
The two volumes taken correspond, for each determination, to a sample of 250 mg.
A kiválasztott két mennyiség az egyes meghatározások esetében 250 mg-os mintának felel meg.
In the first case 17 ml of sodium thiosulphate solution 0,1 mol/litre corresponding to 44,2 mg of glucose is consumed; in the second, 11 ml, corresponding to 27,6 mg of glucose.
Az első esetben 44,2 mg glükóznak megfelelő, 17 ml 0,1 mól/liter koncentrációjú nátrium-tioszulfát oldat fogyott; a második esetben 11 ml, amely 27,6 mg glükóznak felel meg.
The difference is 16,6 mg of glucose.
A különbség 16,6 mg glükóz.
The content of reducing sugars (excluding lactose), calculated as glucose, is therefore:
Ezért a glükózra átszámított (laktóz nélküli) redukálócukor-tartalom a következő
Table of values for 25 ml of Luff-Schoorl reagent
25 ml Luff–Schoorl-reagenshez tartozó értékek táblázata
ml of Na2 S2 O30,1 mol/litre, two minutes' heating, 10 minutes' boiling
0,1 mól/liter koncentrációjú Na2S2O3 ml-e, kétpercnyi melegítés, tízpercnyi forralás
0,1 mol/litre
0,1 mól/liter koncentráció
Glucose, fructose invert sugars
Glükóz, fruktóz, invertcukor
difference
különbség
DETERMINATION OF LACTOSE
LAKTÓZ MEGHATÁROZÁSA
This method makes it possible to determine the level of lactose in feed containing more than 0,5 % of lactose.
Ez a módszer lehetővé teszi a 0,5 %-nál magasabb laktóztartalmú takarmányok laktózszintjének meghatározását.
The sugars are dissolved in water.
A cukrokat vízben oldjuk.
The solution is subjected to fermentation by the yeast Saccharomyces cerevisiae which leaves the lactose intact.
Az oldatot Saccharomyces cerevisiae élesztővel erjesztjük, amely a laktózt érintetlenül hagyja.
After clarification and filtration the lactose content of the filtrate is determined by the Luff-Schoorl method.
Derítés és szűrés után a szűrlet laktóztartalmát Luff–Schoorl-módszerrel határozzuk meg.
Suspension of Saccharomyces cerevisiae: suspend 25 g of fresh yeast in 100 ml of water.
Saccharomyces cerevisiae szuszpenzió: oldjunk fel 25 g friss élesztőt 100 ml vízben.
The suspension will keep for a maximum period of one week in a refrigerator.
A szuszpenzió hűtőben legfeljebb egy hétig áll el.
Carrez solution I: dissolve in water 21,9 g of zinc acetate, Zn (CH3 COO)2 2H2O and 3 g of glacial acetic acid.
Carrez I. oldat: vízben oldjunk fel 21,9 g cink-acetátot, Zn(CH3COO)2 2H2O és 3 g jégecetet.
Stirring carefully, pour the citric acid solution (3.4.2) into the sodium carbonate solution (3.4.3).
Óvatosan kevergetve öntsük a citromsavoldatot (3.4.2.) a nátrium-karbonát-oldatba (3.4.3.).
Add the copper sulphate solution (3.4.1) and make up to 1 litre with water.
Adjuk hozzá a réz-szulfát-oldatot (3.4.1.), és töltsük fel egy 1 l-re vízzel.
Check the concentration of the reagent thus obtained (Cu 0,05 mol/litre; Na2 CO3 1 mol/litre).
Ellenőrizzük az így kapott reagens koncentrációját (0,05 mól/liter Cu; 1 mól/liter Na2CO3).
Copper sulphate solution: dissolve 25 g of copper sulphate Cu SO4 5H2O, free from iron, in 100 ml of water.
Réz-szulfát-oldat. 100 ml vízben oldjunk fel 25 g vasmentes rézszulfátot CuSO45H2O.
Citric acid solution: dissolve 50 g of citric acid C6H8O7·H2O in 50 ml of water.
Citromsavoldat: 50 ml vízben oldjunk fel 50 g citromsavat, C6H8O7 . H2O.
Solution of sodium thiosulphate 0,1 mol/litre.
0,1 mól/liter koncentrációjú nátrium-tioszulfát oldat.
Boil for three minutes, leave to cool, and if necessary add 10 mg of mercuric iodide as a preservative.
Forraljuk 3 percig, hagyjuk hűlni, és amennyiben szükséges, adjunk hozzá 10 mg higany-jodidot tartósítószerként.
Water bath with thermostat set at 38-40 oC.
38–40 oC-ra beállított, hőfokszabályzóval ellátott vízfürdő.
Weigh 1 g of the sample to the nearest mg and place this portion of the sample in a 100 ml volumetric flask.
Mérjünk ki a mintából 1 g-ot mg-os pontossággal, és ezt a részmintát helyezzük egy 100 ml-es mérőlombikba.
Add 25 to 30 ml of water.
Adjunk hozzá 25–30 ml vizet.
Place the flask in a boiling water bath for 30 minutes and then cool to approximately 35 oC.
Helyezzük a lombikot harminc percre forrásban lévő vízfürdőbe, majd hűtsük le kb. 35 oC-ra.
Add 5 ml of yeast suspension (3.1) and homogenise.
Adjunk hozzá 5 ml élesztő-szuszpenziót (3.1.), és homogenizáljuk. Hagyjuk a lombikot két órán keresztül, 38–40 oC-on állni a vízfürdőben.
Leave the flask to stand for two hours in a water bath, at a temperature of 38-40o C. Cool to approximately 20 oC.
Hűtsük le kb. 20 oC-ra.
Add 2,5 ml of Carrez solution I (3.2) and stir for 30 seconds, then add 2,5 ml of Carrez solution II (3.3) and again stir for 30 seconds.
Adjunk hozzá 2,5 ml Carrez I. oldatot (3.2.), és kevergessük harminc másodpercig, majd adjunk hozzá 2,5 ml Carrez II. oldatot (3.3.), és újra kevergessük harminc másodpercig.
Make up to 100 ml with water, mix and filter.
Töltsük fel vízzel 100 ml-re, keverjük össze, és szűrjük.
Using a pipette, remove an amount of filtrate which does not exceed 25 ml and which preferably contains from 40 to 80 mg of lactose and transfer it to a 300 ml Erlenmeyer flask.
Pipetta segítségével vegyünk fel a szűrletből egy részt, amely nem haladja meg a 25 ml-t, és amely lehetőleg 40–80 mg laktózt tartalmaz, és helyezzük át egy 300 ml-es Erlenmeyer-lombikba.
If necessary, make up to 25 ml with water.
Amennyiben szükséges, töltsük fel 25 ml-re vízzel.
Carry out a blank test in the same way with 5 ml of yeast suspension (3.1).
Végezzünk vakpróbát ugyanilyen módon 5 ml élesztő oldattal (3.1.).
Determine the lactose content according to Luff-Schoorl, as follows: add exactly 25 ml of Luff-Schoorl reagent (3.4) and two granules of pumice stone (3.5).
A laktóztartalmat a Luff–Schoorl-módszer szerint, a következőképpen határozzuk meg: adjunk az oldathoz pontosan 25 ml Luff–Schoorl-reagenst (3.4.) és kétszemcsényi habkövet (3.5.).
Stir by hand-while heating over a free flame of medium height and bring the liquid to the boil in approximately two minutes.
Közepes méretű, szabad lángon történő melegítés közben kézzel kevergessük, és kb. két perc alatt forraljuk fel a folyadékot.
Add 10 ml of potassium iodide solution (3.6) and immediately afterwards (carefully, because of the risk of abundant foaming) add 25 ml of sulphuric acid (3.7).
Adjunk hozzá 10 ml kálium-jodid-oldatot (3.6.), és rögtön utána (a bőséges habképződés veszélye miatt óvatosan) adjunk hozzá 25 ml kénsavat (3.7.).
Titrate with sodium thiosulphate solution (3.8) until a dull yellow colour appears, add the starch indicator (3.9) and complete titration.
Titráljuk nátrium-tioszulfát-oldattal (3.8.) amíg fakósárga színt nem kapunk, adjuk hozzá a keményítő-indikátort (3.9.), és fejezzük be a titrálást.
Carry out the same titration on an accurately measured mixture of 25 ml of Luff-Schoorl reagent (3.4) and 25 ml of water, after adding 10 ml of potassium iodide solution (3.6) and 25 ml of sulphuric acid (3.7) without boiling.
Forralás nélkül, 10 ml kálium-jodid-oldat (3.6.) és 25 ml kénsav (3.7.) hozzáadása után végezzük el ugyanezt a titrálást egy pontosan kimért, 25 ml Luff–Schoorl-reagenst (3.4.) és 25 ml vizet tartalmazó keveréken.
Using the attached table, establish the amount of lactose in mg which corresponds to the difference between the results of the two titrations, expressed in ml of sodium thiosulphate 0,1 mol/litre.
A csatolt táblázat segítségével határozzuk meg a laktóz mennyiségét mg-ban, amely a két titrálás eredménye közti különbségnek felel meg, 0,1 mól/liter koncentrációjú nátrium-tioszulfát ml-ében kifejezve.
Express the result of anhydrous lactose as a percentage of the sample.
A dehidratált laktózra vonatkozó eredményt a minta százalékában fejezzük ki.
For products containing more than 40 % of fermentable sugar, use more than 5 ml of yeast suspension (3.1).
A 40 %-nál több erjeszthető cukrot tartalmazó termékek esetében 5 ml-nél nagyobb mennyiségű élesztő-szuszpenziót (3.1.) használjunk.
DETERMINATION OF STARCH
A KEMÉNYÍTŐ MEGHATÁROZÁSA
POLARIMETRIC METHOD
POLARIMETRIÁS MÓDSZER
This method makes it possible to determine the levels of starch and of high molecular weight starch degradation products in feed for the purpose of checking compliance with the declared energy value (provisions in Annex VII) and Council Directive 96/25/EC.2.
E módszer lehetővé teszi a keményítő és a nagy molekulasúlyú keményítő-bomlástermékek takarmányokban jelen lévő szintjének meghatározását a feltüntetett energiaérték (a VII. melléklet rendelkezései) és a 96/25/EK tanácsi irányelv betartásának ellenőrzése céljából.2.
After clarification and filtration the optical rotation of the solution is measured by polarimetry.
Tisztítás és szűrés után az oldat optikai forgatóképességét polarimetriával mérjük.
In the second, the sample is extracted with 40 % ethanol.
A második meghatározás során a mintát 40 %-os etanollal extraháljuk.
After acidifying the filtrate with hydrochloric acid, clarifying and filtering, the optical rotation is measured as in the first determination.
A szűrlet sósavval való savanyítása, tisztítása és szűrése után az optikai forgatóképességet ugyanúgy mérjük, mint az első meghatározás esetében.
The difference between the two measurements, multiplied by a known factor, gives the starch content of the sample.
A minta keményítőtartalmát úgy kapjuk meg, hogy a két mért érték különbségét megszorozzuk egy ismert együtthatóval.
Hydrochloric acid, solution 25 % (w/w) density: 1,126 g/ml.
25 %-os (w/w) sósav-oldat, d: 1,126 g/ml.
Hydrochloric acid. solution 1,13 % (w/v)
1,13 %-os (w/v) sósav-oldat
The concentration must be checked by titration using a sodium hydroxide solution 0,1 mol/litre in the presence of 0,1 % (w/v) methyl red in 94 % (v/v) ethanol.
A koncentrációt 0,1 mól/liter koncentrációjú nátrium-hidroxid-oldattal végzett titrálással kell ellenőrizni, 94 %-os (v/v) etanolban oldott 0,1 % (w/v) metilvörös jelenlétében.
For the neutralisation of 10 ml, 30,94 ml of NaOH 0,1 mol/litre is needed.
10 ml semlegesítéséhez 30,94 ml 0,1 mól/liter koncentrációjú NaOH szükséges.
Carrez solution I: dissolve 21,9 g of zinc acetate Zn(CH3COO)2 2H2O and 3 g of glacial acetic acid in water.
Carrez I. oldat: vízben oldjunk fel 21,9 g cink-acetátot, Zn(CH3COO)2·2H2O és 3 g jégecetet.
Carrez solution II: dissolve 10,6 g of potassium ferrocyanide K4 Fe(CN)6 3H2O in water.
Carrez II. oldat: vízben oldjunk fel 10,6 g kálium-[hexaciano-ferrát(II)]-ot K4Fe(CN)6·3H2O.
Ethanol, solution 40 % (v/v), density: 0,948 g/ml at 20 oC.
40 %-os (v/v) etanol, d: 0,948 g/ml 20 oC-on.
250 ml Erlenmeyer flask with standard ground-glass joint and with reflux condenser.
250 ml-es Erlenmeyer-lombik szabványos üvegcsiszolattal és visszafolyós hűtővel.
Polarimeter or saccharimeter.
Polariméter vagy szachariméter.
Crush the sample until it is fine enough for all of it to pass through a 0,5 mm round-meshed sieve.
Őröljük a mintát olyan finomságúra, hogy az teljes egészében átjusson egy 0,5 mm szemméretű, kerek szemű szitán.
Determination of the total optical rotation (P or S) (see observation 7.1)
A teljes optikai forgatóképesség (P vagy S) meghatározása (lásd az Észrevételek 7.1. pontját)
Weigh 2,5 g of the crushed sample to the nearest mg and place in a 100 ml graduated flask.
Mérjünk ki a megőrölt mintából mg pontossággal 2,5 g-ot, és helyezzük azt egy 100 ml-es mérőlombikba.
Add 25 ml of hydrochloric acid (3.2), shake to obtain even distribution of the test sample and add a further 25 ml of hydrochloric acid (3.2).
Adjunk hozzá 25 ml sósavat (3.2.), rázzuk össze a vizsgálati minta egyenletes eloszlásának biztosítása céljából, és adjunk hozzá további 25 ml sósavat (3.2.).
Immerse the flask in a boiling water bath shaking vigorously and steadily for the first three minutes to prevent the formation of agglomerates.
Merítsük a lombikot forrásban levő vízfürdőbe, az első három percben erőteljesen és folyamatosan rázogassuk a csomóképződés megakadályozása céljából.
The quantity of water in the water bath must be sufficient for the bath to remain at boiling point when the flask is introduced into it.
A vízfürdőben elegendő víznek kell lennie ahhoz, hogy a fürdő a lombik behelyezésekor forrásponton maradjon.
The flask must not be taken out of the bath whilst being shaken.
A lombikot rázogatás közben nem szabad kivenni a vízfürdőből.
After exactly 15 minutes, remove from the bath, add 30 ml of cold water and cool immediately to 20 oC.
Pontosan 15 perc elteltével vegyük ki a lombikot a vízfürdőből, adjunk hozzá 30 ml hideg vizet, és azonnal hűtsük le 20o-ra.
Add 5 ml of Carrez solution I (3.3) and shake for approximately 30 seconds.
Adjunk hozzá 5 ml-t a Carrez I. oldatból (3.3.), és rázogassuk kb. harminc másodpercen át.
Then add 5 ml of Carrez solution II (3.4) and shake again for approximately 30 seconds.
Ezt követően adjunk hozzá 5 ml-t a Carrez II. oldatból (3.4.), és ismét rázzuk kb. harminc másodpercen át.
Make up to volume with water, mix and filter.
Töltsük fel vízzel térfogatra, keverjük össze és szűrjük meg.