natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Fill the volumetric flask up to the mark with water (HCl concentration about 0,5 mol/litre).
Töltsük fel a mérőlombikot jelig vízzel (a HCl-koncentráció kb. 0,5 mól/liter).
If the residue in the filter appears black (carbon), put it back in the furnace and ash again at 450 to 475 oC.
Ha a szűrőben lévő maradékanyag feketének látszik (szén), tegyük vissza a kemencébe, és hamvasszuk újra 450–475 oC-on.
This ashing, which only requires a few hours (about three to five hours), is complete when the ash appears white or nearly white.
Ez a hamvasztás, amely csak pár órát vesz igénybe (kb. három–öt órát), akkor fejeződik be, amikor a hamu fehérnek vagy majdnem fehérnek tűnik.
Dissolve the residue with about 2 ml of hydrochloric acid (3.1), evaporate to dryness and add 5 ml of 6 mol/litre hydrochloric acid (3.2).
Oldjuk fel a maradékanyagot kb. 2 ml sósavval (3.1.), párologtassuk el belőle a nedvességet és adjunk hozzá 5 ml, 6 mól/liter koncentrációjú sósavat (3.2.).
Heat, filter the solution into the volumetric flask and make up to the mark with water (HCl concentration about 0,5 mol/litre.
Hevítsük, szűrjük az oldatot mérőlombikba, és töltsük fel a mérőlombikot jelig vízzel (a HCl-koncentráció kb. 0,5 mól/liter).
In determining trace elements it is important to be alert to the risks of contamination, particularly by zinc, copper and iron.
A nyomelemek meghatározásakor fontos odafigyelni a – főleg a cink, réz és vas képezte – szennyeződés jelentette kockázatokra.
For this reason, the equipment used in preparing the samples must be free of these metals.
Ezért a minták előkészítésére használt eszközöknek mentesnek kell lennie ezen fémektől.
To reduce the general risk of contamination, work in a dust-free atmosphere with scrupulously clean equipment and carefully washed glassware.
A szennyeződés általános kockázatának csökkentése érdekében dolgozzunk pormentes környezetben, gondosan tisztított eszközökkel és alaposan elmosott üvegedényekkel.
The determination of zinc is particularly sensitive to many types of contamination, e.g. from glassware, reagents, dust, etc.
Különösen a cink meghatározása érzékeny a szennyeződések számos típusára, pl. az üvegkészítményektől, a reagensektől, a portól stb. származókra.
The weight of sample to be ashed is calculated from the approximate trace element content of the feed in relation to the sensitivity of the spectrophotometer used.
Az elhamvasztandó minta tömege a takarmány hozzávetőleges nyomelemtartalma alapján számítható ki, az alkalmazott spektrofotométer érzékenységéhez viszonyítva.
For certain feed low in trace elements it may be necessary to start with a 10 to 20 g sample and make up the final solution to only 100 ml.
Egyes, kevés nyomelemet tartalmazó takarmányok esetén 10–20 g-os mintát kell venni, és a végső oldatot csak 100 ml-re kell feltölteni.
Ashing must be carried out in a closed furnace without injection of air or oxygen.
A hamvasztást zárt kemencében kell elvégezni, levegő vagy oxigén befúvatása nélkül.
The temperature indicated by the pyrometer must not exceed 475 oC.
A pirométer által jelzett hőmérséklet nem lépheti túl a 475 oC-ot.
Spectrophotometric determination
Spektrofotometriás meghatározás
Preparation of calibration solutions
A kalibrálóoldatok elkészítése
For each of the elements to be determined, prepare from the working standard solutions given in points 3.7.1, 3.8.1, 3.9.1 and 3.10.1 a range of calibration solutions, each calibration solution having an HCl concentration of about 0,5 mol/litre (and (in the cases of iron, manganese and zinc) a lanthanum chloride concentration equivalent to 0,1 % La (w/v).
Minden egyes meghatározandó elemhez készítsünk a 3.7.1., 3.8.1., 3.9.1. és 3.10.1. pontban megadott standard munkaoldatokból egy kalibrálóoldat-sorozatot, úgy, hogy minden egyes kalibrálóoldatnak a HCl-koncentrációja kb. 0,5 mól/liter és (vas, mangán és cink esetében) a lantán-klorid koncentrációja 0,1 %-os (w/v) lantánnal egyenértékű legyen.
The trace element concentrations selected must lie within the range of sensitivity of the spectrophotometer used.
A kiválasztott nyomelem-koncentrációknak az alkalmazott spektrofotométer érzékenységi tartományán belül kell lenniük.
The tables below show, by way of example, the compositions of typical ranges of calibration solutions; depending, however, on the type and sensitivity of spectrophotometer used it may be necessary to select other concentrations.
Az alábbi táblázatok példákon keresztül mutatják a kalibrálóoldat-sorozatok egy mintasorozatát; az alkalmazott spektrofotométer típusától és érzékenységi tartományától függően, adott esetben más koncentrációkat kell kiválasztani.
ml working standard solution (3.7.1) (1 ml = 100 μg Fe)
standard munkaoldat, ml-ben (3.7.1) (1 ml = 100 μg Fe)
ml HCl (3.2)
ml HCl (3.2.)
+ 10 ml of lanthanum chloride solution (3.11) and make up to 100 ml with water
+ 10 ml lantán-klorid oldat (3.11.), töltsük fel vízzel 100 ml-re.
ml working standard solution (3.8.1) (1 ml = 10 μg Cu)
standard munkaoldat, ml-ben (3.8.1) (1 ml = 10 μg Cu)
ml working standard solution (3.9.1) (1 ml = 10 μg Mn)
standard munkaoldat, ml-ben (3.9.1) (1 ml = 10 μg Mn)
ml working standard solution (3.10.1) (1 ml = 10 μg Zn)
standard munkaoldat, ml-ben (3.10.1.) (1 ml = 10 μg Zn)
Preparation of solution for analysis
Az oldat előkészítése az analízisre
For the determination of copper, the solution prepared from point 5.1.1 can normally be used directly.
A réz meghatározásához az 5.1.1. pont szerint elkészített oldatot általában közvetlenül fel lehet használni.
If necessary to bring its concentration within the range of the calibration solutions, an aliquot portion may be pipetted into a 100 ml volumetric flask and made up to the mark with 0,5 mol/litre hydrochloric acid (3.3).
Ha mégis korrigálni kell koncentrációját a kalibrálóoldat-sorozaton belül, egy aliquot részt pipettázzunk egy 100 ml-es mérőlombikba, és töltsük fel jelig 0,5 mól/liter koncentrációjú sósavval (3.3.).
For the determination of iron, manganese and zinc, pipette an aliquot portion of the solution prepared from point 5.1.1 into a 100 ml volumetric flask, add 10 ml of lanthanum chloride solution (3.11) and make up to the mark with 0,5 mol/litre hydrochloric acid (3.3) (see also point 8 ‘Observation’).
A vas, mangán és cink meghatározásához pipettázzunk egy aliquot részt az 5.1.1. pont szerint elkészített oldatból egy 100 ml-es mérőlombikba, adjunk hozzá 10 ml lantán-klorid oldatot (3.11.), és töltsük fel jelig 0,5 mól/liter koncentrációjú sósavval (3.3.) (lásd még az Észrevételek 8. pontját).
Blank experiment
Vakpróba
The blank experiment must include all the prescribed steps of the procedure except that the sample material is omitted.
A vakpróba során a módszer összes meghatározott lépését el kell végezni, azzal a különbséggel, hogy a mintaanyagot elhagyjuk.
The calibration solution ‘0’ must not be used as the blank.
A „0” kalibrálóoldatot nem szabad vakoldatként használni.
Measurement of the atomic absorption
Az atomabszorpció mérése
Measure the atomic absorption of the calibration solutions and of the solution to be analysed using an oxidising air-acetylene flame at the following wavelengths:
Mérjük meg a kalibrálóoldatok és az analizálandó oldat atomabszorpcióját oxidáló, levegő-acetilén láng alkalmazásával, a következő hullámhosszokon:
Carry out each measurement four times.
Minden mérést négyszer végezzünk el.
Mineral feed
Ásványi takarmányok
If the sample contains no organic matter, prior ashing is unnecessary.
Ha a minta nem tartalmaz szerves anyagot, az előzetes hamvasztás szükségtelen.
Proceed as described in point 5.1.1.1 starting from the second paragraph.
Folytassuk a műveletet az 5.1.1.1. pont második bekezdésétől.
Evaporation with hydrofluoric acid may be omitted.
A fluorsavval végzett bepárlás elhagyható.
Using a calibration curve, calculate the trace element concentration in the solution to be analysed and express the result in milligrams of trace element per kilogram of sample (ppm).
Egy kalibrációs görbe segítségével számoljuk ki az analizálandó oldat nyomelem-koncentrációját, az eredményt a minta kilogrammonkénti nyomelemtartalmára vonatkoztatva, milligrammban adjuk meg (ppm).
5 mg/kg, in absolute value, for contents of the trace element concerned up to 50 mg/kg,
a vizsgált nyomelemtartalom legfeljebb 50 mg/kg értéke esetén abszolút értékben az 5 mg/kg-ot,
10 % of the higher result for contents of the trace element concerned from 50 and up to 100 mg/kg,
a vizsgált nyomelemtartalom 50 és 100 mg/kg koncentráció közötti értéke esetén a magasabb érték 10 %-át,
10 mg/kg, in absolute value, for contents of the trace element concerned from 100 and up to 200 mg/kg,
a vizsgált nyomelemtartalom 100 és 200 mg/kg közötti értéke esetén abszolút értékben a 10 mg/kg-ot,
5 % of the higher result for contents of the trace element concerned above 200 mg/kg.
a vizsgált nyomelemtartalom 200 mg/kg feletti értéke esetén a magasabb érték 5 %-át.
The presence of large quantities of phosphates may interfere with the determination of iron, manganese and zinc.
Nagy mennyiségű foszfát jelenléte interferenciát okozhat a vassal, mangánnal és cinkkel.
Such interference must be corrected by addition of lanthanum chloride solution (3.11).
Az intereferenciát lantán-klorid oldat (3.11.) hozzáadásával kell korrigálni.
If, however, in the sample the weight ratio Ca + Mg/P is > 2, addition of lanthanum chloride solution (3.11) to the solution for analysis and to the calibration solutions may be omitted.
Ha azonban a mintában a Ca + Mg / P súlyaránya > 2, elhagyható a lantán-klorid oldatnak a vizsgálandó oldathoz és a kalibrálóoldatokhoz való hozzáadása.
DETERMINATION OF HALOFUGINONE
A HALOFUGINON MEGHATÁROZÁSA
DL-trans-7-bromo-6-chloro-3- [3-(3-hydroxy-2-piperidyl)acetonyl]-quinazolin-4-(3H)-one hydrobromide
DL-transz-7-bromo-6-kloro-3-[3-(3-hidroxi-2-piperidil)acetonil]-quinazolin-4-(3H)-egy hidrobromid
The method makes it possible to determine the level of halofuginone in feed.
A módszer a halofuginon takarmányokban történő meghatározására szolgál.
The limit of quantification is 1 mg/kg.
A meghatározási határ 1 mg/kg.
After treatment with hot water, halofuginone is extracted as the free base into ethyl acetate and subsequently partitioned as the hydrochloride into an aqueous acid solution.
Forró vízzel történt kezelés után a halofuginont szabad bázis formában etilén-acetátba extraháljuk, ezt követően pedig hidroklorid formában vizes savoldatba partícionáljuk.
The extract is purified by ion-exchange chromatography.
A kivonatot ioncserélő kromatográfiával tisztítjuk.
The content of halofuginone is determined by reversed-phase high performance liquid chromatography (HPLC) using an UV detector.
A halofuginontartalom meghatározását fordított fázisú, nagy teljesítményű folyadékkromatográfiás (HPLC) módszerrel és UV-detektor alkalmazásával végezzük.
Acetonitrile, equivalent to HPLC grade.
Acetonitril, HPLC minőségű.
Amberlite XAD-2 resin.
Amberlite XAD-2 műgyanta
Ammonium acetate.
Ammónium-acetát
Ethyl acetate.
Etil-acetát
Acetic acid, glacial.
Jégecet
Halofuginone standard substance (DL-trans-7-brome-6-chloro-3-[3-hydroxy-2-piperidyl)acetonyl] quinazoline-4-(3H)-one hydrobromide, E 764).
Halofuginon standard anyag (DL-transz-7-bromo-6-kloro-3-[3-hidroxi-2-piperidil)acetonil] quinazolin-4-(3H)-egy hidrobromid, E 764)
Halofuginone stock standard solution, 100 μg/ml
Halofuginon standard törzsoldat, 100 μg/ml
Weight to the nearest 0,1 mg, 50 mg of halofuginone (3.6) in a 500 ml graduated flask, dissolve in ammonium acetate buffer solution (3.18), make up to the mark with the buffer solution and mix.
Mérjünk be egy 500 ml-es mérőlombikba 0,1 mg pontossággal 50 mg halofuginont (3.6.), oldjuk fel ammónium-acetát pufferoldatban (3.18.), töltsük fel a lombikot jelig a pufferoldattal, majd keverjük el.
This solution is stable for three weeks at 5 oC if stored in the dark.
Ezen oldat 5 oC hőmérsékleten és sötétben tárolva három héten át stabil marad.
Calibration solutions
Kalibrálóoldatok
Into a series of 100 ml graduated flasks transfer 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 and 6,0 ml of the stock standard solution (3.6.1).
100 ml-es mérőlombikokba adagoljunk 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 és 6,0 ml standard törzsoldatot (3.6.1.).
Make up to the mark with mobile phase (3.21) and mix.
A mozgófázissal (3.21.) töltsük fel jelig, és keverjük el.
These solutions have concentrations of 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 and 6,0 μg/ml of halofuginone respectively.
Ezen oldatok halofuginon-koncentrációja 1,0, 2,0, 3,0, 4,0, illetve 6,0 μg/ml lesz.
These solutions must be freshly prepared before use.
Az oldatokat használat előtt frissen kell elkészíteni.
Hydrochloric acid (ρ20 approximately 1,16 g/ml).
Sósav (ρ20 megközelítőleg 1,16 g/ml)
Silver nitrate.
Ezüst-nitrát
Sodium ascorbate.
Nátrium-aszkorbát
Sodium carbonate.
Nátrium-karbonát
EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid, disodium salt).
EDTA (etilén-diamin-tetraecetsav, dinátrium só)
Water, equivalent to HPLC grade.
Víz, HPLC minőségű
Sodium carbonate solution, c = 10 g/100 ml.
Nátrium-karbonát-oldat, c = 10 g/100 ml
Sodium chloride-saturated sodium carbonate solution, c = 5 g/100 ml.
Nátrium-kloriddal telített nátrium-karbonát-oldat, c = 5 g/100 ml
Dissolve 50 g of sodium carbonate (3.11) in water, dilute to 1 litre and add sodium chloride (3.12) until the solution is saturated.
Oldjunk fel 50 g nátrium-karbonátot (3.11.) vízben, hígítsuk fel 1 literre, és adjunk hozzá nátrium-kloridot (3.12.), amíg az oldat telített nem lesz.
Hydrochloric acid, approximately 0,1 mol/l.
Sósav, megközelítőleg 0,1 mól/l
Dilute 10 ml of HCI (3.7) with water to 1 litre.
10 ml HCl-t (3.7.) hígítsunk vízzel egy literre.
Ammonium acetate buffer solution, approximately 0,25 mol/l.
Ammónium-acetát pufferoldat, megközelítőleg 0,25 mól/l koncentrációjú
Dissolve 19,3 g of ammonium acetate (3.3) and 30 ml of acetic acid (3.5) in water (3.14) and dilute to 1 1itre.
Oldjunk fel 19,3 g ammónium-acetátot (3.3.) és 30 ml ecetsavat (3.5.) vízben (3.14.), és hígítsuk 1 literre.
Amberlite XAD-2 resin preparation.
Amberlite XAD-2 műgyanta előkészítése
Wash an appropriate quantity of Amberlite (3.2) with water until all chloride ions have been removed, as indicated by a silver nitrate (3.20) test performed on the discarded aqueous phase.
Megfelelő mennyiségű Amberlite-et (3.2.) mossunk addig vízzel, amíg az összes kloridiont el nem távolítottuk, mindezt ezüst-nitrátnak (3.20.) az elöntött vizes fázishoz való hozzáadásával ellenőrizhetjük.
Then wash the resin with 50 ml of methanol (3.8), discard the methanol and store the resin under fresh methanol.
Ezután mossuk ki a gyantát 50 ml metil-alkoholban (3.8.), öntsük le a metil-alkoholt, és a gyantát friss metil-alkohol alatt tároljuk.
Silver nitrate solution, approximately 0,1 mol/l.
Ezüst-nitrát oldat, megközelítőleg 0,1 mól/l
Dissolve 0,17 g of silver nitrate (3.9) in 10 ml of water.
Oldjunk fel 0,17 g ezüst-nitrátot (3.9.) 10 ml vízben.
HPLC Mobile phase.
HPLC mozgófázis
Mix 500 ml of acetonitrile (3.1) with 300 ml of ammonium acetate buffer solution (3.18) and 1200 ml of water (3.14).
Keverjünk el 500 ml acetonitrilt (3.1.) 300 ml ammónium-acetát pufferoldattal (3.18.) és 1200 ml vízzel (3.14.).
Adjust the pH to 4,3 using acetic acid (3.5).
Az oldat pH-ját ecetsavval (3.5.) állítsuk be 4,3-ra.
Filter through a 0,22 μm filter (4.8) and degas the solution (e.g. by ultrasonification for 10 minutes).
Szűrjük át egy 0,22 μm-es szűrőn (4.8.) és gázmentesítsük az oldatot (pl. 10 percig tartó ultrahangos kezeléssel).
This solution is stable for one month, if stored in the dark in a closed container.
Az oldat egy hónapon át stabil marad, ha zárt edényben, sötétben tároljuk.
Rotary film evaporator
Rotációs, vékonyfilmes bepárló
HPLC equipment with variable wavelength ultraviolet detector or diode-array detector
HPLC-készülék, változtatható hullámhosszú UV-detektorral vagy diódasoros detektorral
Liquid chromatographic column, 300 mm x 4 mm, C18, 10 μm packaging, or an equivalent column
Folyadékkromatográfiás oszlop, 300 mm × 4 mm, C18, 10 μm-es töltet, vagy egy ezzel egyenértékű oszlop
Glass column (300 mm x 10 mm) fitted with a sintered-glass filter and a stopcock
Zsugorított üvegszűrővel és elzárócsappal ellátott üvegoszlop (300 mm × 10 mm)
Glass-fibre filters, diameter 150 mm
Üvegszálas szűrők, 150 mm-es átmérővel
Membrane filters, 0,45 μm
Membránszűrők, 0,45 μm-es.
Membrane filters, 0,22 μm
Membránszűrők, 0,22 μm-es.
Halofuginone as the free base is unstable in alkaline and ethyl acetate solutions.
A halofuginon szabad bázis formájában nem stabil a lúgos és etil-acetát oldatokban.
It shall not remain in ethyl acetate for more than 30 minutes.
Harminc percnél tovább nem maradhat etil-acetátban.
A blank feed shall be analysed to check that neither halofuginone nor interfering substances are present.
Vizsgáljunk meg egy takarmányvakmintát annak ellenőrzésére, hogy sem halofuginon, sem interferáló anyagok nincsenek jelen.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of halofuginone, similar to that present in the sample.
A mintában találhatóval közel azonos mennyiségű halofuginonnal dúsított takarmányvakminta analízisével végezzünk visszanyerési próbát.
To fortify at a level of 3 mg/kg, add 300 μl of the stock standard solution (3.6.1) to 10 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2).
A 3 mg/kg-os szintre történő dúsításhoz adjunk 300 μl standard törzsoldatot (3.6.1.) 10 g takarmányvakmintához, keverjük össze, majd várjunk 10 percet, mielőtt folytatnánk a műveletet az extrahálással (5.2.).
for the purpose of this method, the blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis halofuginone shall not be detected.
Ennél a módszernél a takarmányvakminta a mintával azonos fajtájú takarmány legyen, amelyben az analízis során halofuginon nem mutatható ki.
Weigh to the nearest 0,1 g, 10 g of the prepared sample, into a 200 ml centrifuge tube, add 0,5 g of sodium ascorbate (3.10), 0,5 g of EDTA (3.13) and 20 ml of water and mix.
Egy 200 ml-es centrifugacsőbe 0,1 g-os pontossággal mérjünk ki 10 g-ot az előkészített mintából, adjunk hozzá 0,5 g nátrium-aszkorbátot (3.10.), 0,5 g EDTA-oldatot (3.13.) és 20 ml vizet, majd keverjük össze.
Place the tube for 5 minutes in a water bath (80 oC).
A csövet helyezzük öt percre 80 oC-os vízfürdőbe.
After cooling down to room temperature, add 20 ml of sodium carbonate solution (3.15) and mix.
Miután visszahűlt szobahőmérsékletre, adjunk hozzá 20 ml nátrium-karbonát oldatot (3.15.), és keverjük össze.
Add immediately 100 ml of ethyl acetate (3.4) and shake vigorously by hand for 15 seconds.
Közvetlenül ezután adjunk hozzá 100 ml etil-acetátot (3.4.), és kézzel erősen rázzuk 15 másodpercen keresztül.
Then place the tube for three minutes in the ultrasonic bath (4.1) and loosen the stopper.
Ezután tegyük a csövet három percig az ultrahangos fürdőbe (4.1.), és lazítsuk meg a dugóját.
Centrifuge for two minutes and decant the ethyl acetate phase through a glass fibre filter (4.6), into a 500 ml separating funnel.
Centrifugáljuk két percen át, majd dekantáljuk az etil-acetát fázist egy üvegszálas szűrőn (4.6.) keresztül egy 500 ml-es választótölcsérbe.
Repeat the extraction of the sample with a second portion of 100 ml of ethyl acetate.
Ismételjük meg az extrahálást a mintán egy második 100 ml-es etil-acetát adaggal.
Wash the combined extracts for one minute with 50 ml of sodium chloride saturated sodium carbonate solution (3.16) and discard the aqueous layer.
Mossuk az elegyített kivonatot 50 ml nátrium-kloriddal telített nátrium-karbonát oldattal (3.16.) egy percen keresztül, és a vizes fázist öntsük el.
Extract the organic layer for 1 min. with 50 ml of hydrochloric acid (3.17).
A szerves réteget 1 percen keresztül 50 ml sósavval (3.17.) extraháljuk.
Run the lower acid layer into a 250 ml separating funnel.
Az alsó savas réteget eresszük le egy 250 ml-es választótölcsérbe.
Re-extract the organic layer for 1,5 minutes with a further 50 ml of hydrochlorid acid and combine with the first extract.
A szerves réteget ismételten extraháljuk másfél percen keresztül további 50 ml sósavval, és elegyítsük az első kivonattal.
Wash the combined acid extracts by swirling for approximately 10 seconds with 10 ml of ethyl acetate (3.4).
Mossuk az elegyített savas kivonatokat úgy, hogy megközelítőleg tíz másodpercig locsoljuk 10 ml etil-acetáttal (3.4.).
Quantitatively transfer the aqueous layer into a 250 ml round-bottomed flask and discard the organic phase.
A vizes réteget teljes mennyiségben vigyük át egy 250 ml-es gömblombikba, és öntsük el a szerves fázist.
Evaporate all the remaining ethyl acetate from the acid solution using a rotary film evaporator (4.2).
A rotációs, vékonyfilmes bepárlókészülékkel (4.2.) párologtassuk el az összes visszamaradó etil-acetátot a savas oldatból.
The temperature of the water bath must not exceed 40 oC.
A vízfürdő hőmérséklete nem haladhatja meg a 40 oC-ot.
Under a vacuum of approximately 25 mbar all of the residual ethyl acetate will be removed within 5 minutes at 38 oC.
Körülbelül 25 mbar vákuumban 38 oC-on az összes visszamaradt etil-acetát öt perc alatt elpárolog.
Clean up
Tisztítás
Preparation of the Amberlite column
Az Amberlite-oszlop előkészítése
An XAD-2 column is prepared for each sample extract.
Minden mintakivonat számára külön XAD-2 oszlopot készítünk. Vigyünk át metil-alkohollal (3.8.)
Transfer 10 g of prepared Amberlite (3.19) into a glass column (4.5) with methanol (3.8).
10 g előkészített Amberlite-et (3.19.) egy üvegoszlopba (4.5.).
Add a small plug of glass-wool to the top of the resin bed.
A gyantaágy tetejére tegyünk egy kis üvegvatta dugót.
Drain the methanol from the column and wash the resin with 100 ml of water, stopping the flow as the liquid reaches the top of the resin bed.
Eresszük le az oszlopról a metil-alkoholt, és 100 ml vízzel mossuk el a gyantát, de állítsuk meg az átfolyást, amikor a folyadék elérte a gyantaágy tetejét.
Allow the column to equilibrate for 10 minutes before use.
Használat előtt, 10 percig engedjük, hogy az oszlop egyensúlyba kerüljön.
Never allow the column to run dry.
Soha ne hagyjuk az oszlopot kiszáradni.
Sample clean up
A minta tisztítása
Transfer the extract (5.2) quantitatively to the top of the prepared Amberlite column (5.3.1) and elute, discarding the eluate.
A kivonatot (5.2.) teljes mennyiségben vigyük át az előkészített Amberlite-oszlop (5.3.1.) tetejére, eluáljuk, majd az eluátumot öntsük el.
The rate of elution must not exceed 20 ml/min.
Az eluálás sebessége nem lehet több, mint 20 ml/perc.
Rinse the round-bottomed flask with 20 ml of hydrochlorid acid (3.17) and use this to wash the resin column.
Öblítsük el a gömblombikot 20 ml sósavval (3.17.), és ezt használjuk a gyantaoszlop elmosásához is.
Blow through any remaining acid solution with a stream of air.
Légbefúvással távolítsunk el minden savoldat-maradékot.
Discard the washings.
A mosóoldatot öntsük el.
Add 100 ml of methanol (3.8) to the column and allow 5 to 10 ml to elute, collecting the eluate in a 250 ml round-bottomed flask.
Adjunk 100 ml metil-alkoholt (3.8.) az oszlopra, és engedjünk 5–10 ml-t eluálódni, miközben az eluátumot egy 250 ml-es gömblombikban fogjuk fel.
Leave the remaining methanol for 10 minutes to equilibrate with the resin and continue the elution at a rate not exceeding 20 ml/min. collecting the eluate in the same round-bottomed flask.
Tíz percig hagyjuk, hogy a maradék metil-alkohol egyensúlyba kerüljön a műgyantával, majd folytassuk az eluálást maximum 20 ml/perc sebességen, miközben az eluátumot ugyanabban a gömblombikban fogjuk fel.
Evaporate the methanol on the rotary film evaporator (4.2), the temperature of the water bath must not exceed 40 oC.
A metil-alkoholt a rotációs, vékonyfilmes bepárlókészüléken párologtassuk el (4.2.), a vízfürdő hőmérséklete nem haladhatja meg a 40 oC-ot.
Transfer the residue quantitatively into a 10 ml calibrated flask using the mobile phase (3.21).
A maradékot a mozgófázis (3.21.) segítségével teljes mennyiségben vigyük át egy 10 ml-es mérőlombikba.
Make up to the mark with mobile phase and mix.
Mozgófázissal töltsük fel jelig, és keverjük el.
An aliquot is filtered through a membrane filter (4.7).
Egy aliquot részt szűrjünk át membránszűrőn (4.7.)