natgillin/translations-raw huggingface dataset:
As embedding agent for microscopy paraffin oil or glycerol is recommended.
Beágyazó anyagként mikroszkópos vizsgálathoz paraffinolaj vagy glicerol ajánlatos.
The remaining impurities are used for sedimentation as described in point 6.2.
A fennmaradó szennyeződéseket a 6.2. pontnak megfelelően ülepítésre alkalmazzuk.
OJ L 165, 30.4.2004 p. 1; corrected by OJ L 191, 28.5.2004, p. 1.
HL L 165., 2004.4.30., 1. o.
METHOD OF CALCULATING THE ENERGY VALUE OF POULTRYFEED
A BAROMFITAKARMÁNY-KEVERÉKEK ENERGIAÉRTÉKÉNEK SZÁMÍTÁSI MÓDSZERE
Method of calculation and expression of energy value
Az energiaérték számításának és kifejezésének módszere
The energy value of compound poultry feed must be calculated in accordance with the formula set out below on the basis of the percentages of certain analytical components of the feed.
A baromfitakarmány-keverékek energiaértékét az alábbi képletnek megfelelően kell kiszámítani a takarmány bizonyos analitikai alkotóelemeinek százalékos aránya alapján.
This value is to be expressed in megajoules (MJ) of metabolisable energy (ME), corrected for nitrogen, per kilogram of compound feed:
Ezt az értéket az összetett takarmány kilogrammonkénti, nitrogénnel korrigált, metabolizálható energiájával (ME) kell kifejezni, megajoule (MJ) mértékegységben:
MJ/kg of ME = 0,1551 × % crude protein +0,3431 × % crude fat +0,1669 × % starch +0,1301 × % total sugar (expressed as sucrose).
ME (MJ/kg) = 0,1551 × nyersfehérje % +0,3431 × nyers zsír % +0,1669 × keményítő % +0,1301 × összes cukor % (szacharózban kifejezve)
Tolerances applicable to declared values
A feltüntetett értékekre alkalmazandó tűréshatárok
If the official inspection reveals a discrepancy (increased or reduced energy value of the feed) between the result of the inspection and the declared energy value, a minimum tolerance of 0,4 MJ/kg of ME shall be permitted.
Amennyiben a hatósági ellenőrzés eltérést (a takarmány megemelkedett vagy lecsökkent energiaértéke) mutat ki az ellenőrzés eredménye és a feltüntetett energiaérték között, az ME 0,4 MJ/kg-os tűréshatárát engedélyezik.
After application of the above formula, the result obtained must be given to one decimal place.
A fenti képlet alkalmazásával kapott eredményt egy tizedesjegyre kerekítve kell megadni.
Sampling and analysis methods
A mintavétel és analitikai módszerek
Sampling of the compound feed and determination of the content of analytical components indicated in the method of calculation must be performed in accordance with the Community sampling methods and analysis methods for the official control of feed respectively.
Az összetett takarmány mintavételét és a számítási módszerben jelzett analitikai alkotóelemek tartalmának meghatározását a takarmányok hatósági ellenőrzésére szolgáló közösségi mintavételi és analitikai módszerekkel összhangban kell elvégezni.
The following are to be applied:
A következőket kell alkalmazni:
for determining the crude fat content: procedure B of the method for the determination of crude oils and fats, laid down in Part H of Annex III.
a nyerszsírtartalom meghatározására: a III. melléklet H. részében a nyersolajok és zsírok meghatározására szolgáló B. módszer,
for determining the starch content: the polarimetric method, laid down in Part L of Annex III.
a keményítőtartalom meghatározására: a III. melléklet L. részében megállapított polarimetriás módszer.
METHODS OF ANALYSIS TO CONTROL ILLEGAL PRESENCE OF NO LONGER AUTHORISED ADDITIVES IN FEED
ANALITIKAI MÓDSZEREK A MÁR NEM ENGEDÉLYEZETT ADALÉKANYAGOK TAKARMÁNYOKBAN VALÓ ILLEGÁLIS JELENLÉTÉNEK ELLENŐRZÉSÉRE
Important notes:
Fontos megjegyzések:
More sensitive methods of analysis than the methods of analysis mentioned in this Annex can be used to detect the illegal presence of no longer authorised additives in feed.
Az e mellékletben említett módszereknél érzékenyebb analitikai módszerek használhatók a már nem engedélyezett adalékanyagok takarmányokban való illegális jelenlétének ellenőrzésére.
The methods of analysis mentioned in this Annex shall be used for confirmatory purposes.
Megerősítés céljára az e mellékletben említett analitikai módszerek kell használni.
DETERMINATION OF METHYL BENZOQUATE
A METIL-BENZOKVÁT MEGHATÁROZÁSA
7-benzyloxy-6-butyl-3-methoxycarbonyl-4-quinolone
7-benziloxi-6-butil-3-metoxikarbonil-4-kvinolon
This method makes it possible to determine the level of methyl benzoquate in feed.
Ezzel a módszerrel a takarmányokban lévő metil-benzokvát szintjét lehet meghatározni.
Methyl benzoquate is extracted from the sample with methanolic methanesulfonic acid solution.
A metil-benzokvátot a mintából metil-alkoholos metánszulfonsav-oldattal extraháljuk.
The extract is purified with dichloromethane, by ion-exchange chromatography and then again with dichloromethane.
A kivonatot diklórmetánnal, ioncserélő kromatográfiás módszerrel derítjük, majd ismét diklórmetánnal kezeljük.
The methyl benzoquate content is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) with an UV detector.
A metil-benzokvát-tartalom meghatározását fordított fázisú, nagy teljesítményű folyadékkromatográfiás eljárással (HPLC) és UV-detektor alkalmazásával végezzük.
HPLC mobile phase
HPLC mozgófázis
Mixture of methanol (3.2) and water (equivalent to HPLC grade) 75 + 25 (v + v).
metil-alkohol (3.2.) és víz (HPLC minőségű) 75 + 25 (v + v) térfogatarányú keveréke.
Filter through a 0,22 μm filter (4.5) and degas the solution (e.g. by ultrasonification for 10 minutes).
Szűrjük át egy 0,22 μm-es szűrőn (4.5.), és gázmentesítsük az oldatot (pl. 10 percig tartó ultrahangos kezeléssel).
Methanesulfonic acid solution, c = 2 %
Metánszulfonsav-oldat, c = 2 %
Dilute 20,0 ml methanesulfonic acid to 1000 ml with methanol (3.2).
Hígítsunk 20,0 ml metánszulfonsav-oldatot metil-alkohollal (3.2.) 1000 ml-re.
Hydrochloric acid solution, c = 10 %
Sósavoldat, c = 10 %
Dilute 100 ml hydrochloric acid (ρ201,18 g/ml) to 1000 ml with water.
Hígítsunk 100 ml sósavat (ρ201,18 g/ml) vízzel 1000 ml-re.
Slurry 100 g resin with 500 ml hydrochloric acid solution (3.5) and heat on a hot plate to boiling, stirring continuously.
100 g gyantát mossunk át 500 ml sósavoldattal (3.5.), és állandó keverés mellett hevítsük forrásig forró főzőlapon.
Allow to cool and decant off the acid.
Hagyjuk kihűlni, és öntsük le róla a savat.
Filter through a filter paper under vacuum.
Vákuum alatt szűrjük át egy szűrőpapíron.
Wash the resin twice with 500 ml portions of water and then with 250 ml of methanol (3.2).
Mossuk át kétszer a gyantát 500 ml vízzel, majd 250 ml metil-alkohollal (3.2.).
Rinse the resin with a further 250 ml portion of methanol and dry by passing air through the filter cake.
További 250 ml metil-alkohollal öblítsük a gyantát, és a szűrőpogácsán keresztül engedett levegővel szárítsuk.
Store the dried resin in a stoppered bottle.
A száraz gyantát lezárt üvegben tároljuk.
Standard substance: pure methyl benzoquate (7-benzyloxy-6-butyl-3-methoxycarbonyl-4-quinolone)
Standard anyag: tiszta metil-benzokvát (7-benziloxi-6-butil-3-metoxicarbonil-4-kvinolon)
Methyl benzoquate stock standard solution, 500 μg/ml
Metil-benzokvát standard törzsoldat, 500 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg, 50 mg of standard substance (3.7), dissolve in methanesulfonic acid solution (3.4) in a 100 ml graduated flask, make up to the mark and mix.
Mérjünk ki 0,1 mg-os pontossággal 50 mg standard anyagot (3.7.), oldjuk fel metánszulfonsav-oldattal (3.4.) egy 100 ml-es mérőlombikban, töltsük fel jelig, és keverjük el.
Methyl benzoquate intermediate standard solution, 50 μg/ml
Metil-benzokvát közbenső standardoldat, 50 μg/ml
Transfer 5,0 ml of methyl benzoquate stock standard solution (3.7.1) into a 50 ml graduated flask, make up to the mark with methanol (3.2) and mix.
Öntsünk át 5,0 ml metil-benzokvát standard törzsoldatot (3.7.1.) egy 50 ml-es mérőlombikba, töltsük fel metil-alkohollal (3.2.) jelig, és keverjük el.
Transfer 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 and 5,0 ml of methyl benzoquate intermediate standard solution (3.7.2) into a series of 25 ml graduated flasks.
25 ml-es mérőlombikokba adagoljunk 1,0, 2,0, 3,0, 4,0, illetve 5,0 ml metil-benzokvát közbenső standardoldatot (3.7.2.).
Make up to the mark with the mobile phase (3.3) and mix.
Töltsük fel a lombikokat jelig a mozgófázissal (3.3.), és keverjük össze.
These solutions have concentrations of 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 and 10,0 μg/ml methyl benzoquate respectively.
Ezen oldatok 2,0, 4,0, 6,0, 8,0, illetve 10,0 μg/ml metil-benzokvát koncentrációnak felelnek meg.
Laboratory shaker
Laboratóriumi rázógép
Glass column (250 mm × 15 mm) fitted with a stopcock and reservoir of approximately 200 ml capacity
Elzárócsappal és egy megközelítőleg 200 ml-es tartállyal ellátott, 15 mm belső átmérőjű és 250 mm magas üvegoszlop
Liquid chromatographic column: 300 mm × 4 mm, C18, 10 μm packing or equivalent
Folyadékkromatográfiás oszlop: 300 mm × 4 mm, C18, 10 μm-es töltet, vagy egy ezzel egyenértékű berendezés
A blank feed shall be analysed to check that neither methyl benzoquate nor interfering substances are present.
Vizsgáljunk meg egy takarmányvakmintát annak ellenőrzésére, hogy sem metil-benzokvát, sem interferáló anyagok nincsenek jelen.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of methyl benzoquate, similar to that present in the sample.
A mintában találhatóval közel azonos mennyiségű metil-benzokváttal dúsított takarmányvakminta analízisével végezzünk visszanyerési próbát.
To fortify at a level of 15 mg/kg, add 600 μl of the stock standard solution (3.7.1) to 20 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2).
15 mg/kg-os szintre történő dúsításhoz adjunk 600 ml standard törzsoldatot (3.7.1.) 20 g takarmányvakmintához, mindezt keverjük el, majd 10 percet várjunk, mielőtt folytatnánk a műveletet az extrahálással (5.2.).
Note for the purpose of this method, the blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis methyl benzoquate must not be detected.
Megjegyzés: Ehhez a módszerhez a takarmányvakminta a mintával azonos fajtájú takarmány legyen, és abban az analízis során metil-benzokvát ne legyen kimutatható.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 20 g of the prepared sample and transfer to a 250 ml conical flask.
Mérjünk ki az előkészített mintából 0,01 g pontossággal 20 g-ot, és öntsük át egy 250 ml-es Erlenmeyer-lombikba.
Liquid-liquid partition
Folyadék-folyadék elválasztás
Transfer into a 500 ml separating funnel containing 100 ml of hydrochloric acid solution (3.5), 25,0 ml of the filtrate obtained in (5.2).
Egy 100 ml sósavoldatot (3.5.) tartalmazó 500 ml-es elválasztótölcsérbe öntsünk át 25,0 ml-t az (5.2.) lépésben nyert szűrletből.
Add 100 ml dichloromethane (3.1) to the funnel and shake for one minute.
Adjunk hozzá 100 ml diklórmetánt (3.1.) a tölcsérhez, és rázzuk egy percen keresztül.
Allow the layers to separate and run off the lower (dichloromethane) layer into a 500 ml round-bottomed flask.
Hagyjuk a rétegeket elválni egymástól, és az alsó réteget (a diklórmetánt) eresszük bele egy 500 ml-es gömblombikba.
Repeat the extraction of the aqueous phase with two further 40-ml portions of dichloromethane and combine these with the first extract in the round-bottomed flask.
Ismételjük meg a vizes fázis extrakcióját még kétszer, további 40–40 ml diklórmetánnal, majd vegyítsük az első kivonattal a gömblombikban.
Evaporate the dichloromethane extract down to dryness on the rotary evaporator (4.2) operating under reduced pressure at 40 oC.
A rotációs, vékonyfilmes bepárlókészüléken (4.2.), csökkentett nyomáson, 40 oC hőmérsékleten teljes száradásig pároljuk be a diklórmetán-kivonatot.
Dissolve the residue in 20 to 25 ml methanol (3.2), stopper the flask and retain the whole of the extract for ion-exchange chromatography (5.4).
Oldjuk fel a maradékot 20–25 ml metil-alkoholban (3.2.), zárjuk le az üveget, és tartsuk meg az egész kivonatot az ioncserélő kromatográfiához (5.4.).
Ion-exchange chromatography
Ioncserélő kromatográfia
Preparation of the cation-exchange column
A kationcserélő oszlop előkészítése
Insert a plug of glass wool into the lower end of a glass column (4.3).
Az üvegoszlop (4.3.) alsó végébe illesszünk egy kis üvegvatta dugót.
Prepare a slurry of 5,0 g of the treated cation-exchange resin (3.6) with 50 ml of hydrochloric acid (3.5), pour into the glass column and allow to settle.
Készítsünk a kezelt kationcserélő műgyanta (3.6.) 5,0 grammjából és 50 ml sósavból (3.5.) egy elegyet, öntsük bele az üvegoszlopba, majd hagyjuk, hogy leülepedjen.
Run out the excess acid to just above the resin surface and wash the column with water until the effluent is neutral to litmus.
Engedjük ki a felesleges savat, hogy még éppen ellepje a gyanta felszínét, és addig mossuk az oszlopot vízzel, amíg a szüredéken végzett lakmuszteszt semleges nem lesz.
Transfer 50 ml methanol (3.2) onto the column and allow to drain down to the resin surface.
Öntsünk át 50 ml metil-alkoholt (3.2.) az oszlopra, és hagyjuk, hogy leszivárogjon a gyanta felszínén.
By means of a pipette, carefully transfer the extract obtained in (5.3) onto the column.
Az (5.3.) pontban készített mintakivonatot pipettázzuk óvatosan az oszlop tetejére.
Rinse the round-bottomed flask with two portions of 5 to 10 ml methanol (3.2) and transfer these washings to the column.
A gömblombikot két adag, 5–10 ml mennyiségű metil-alkohollal (3.2.) öblítsük, és öntsük ezt a mosófolyadékot is az oszlopra.
Run the extract down to the resin surface and wash the column with 50 ml methanol, ensuring that the flow rate does not exceed 5 ml per minute.
Futtassuk le a kivonatot a gyanta felszínén, és mossuk az oszlopot 50 ml metil-alkohollal, ügyelve arra, hogy az átfolyási sebesség ne haladja meg az 5 ml/percet.
Discard the effluent.
Öntsük el a szüredéket.
Elute the methyl benzoquate from the column using 150 ml of methanesulfonic acid solution (3.4) and collect the column eluate in a 250 ml conical flask.
Eluáljuk az oszlopról a metil-benzokvátot 150 ml metánszulfonsav-oldattal (3.4.), majd vegyük fel az eluátumot egy 250 ml-es gömblombikban.
Add 300 ml of hydrochloric acid solution (3.5) and 130 ml of dichloromethane (3.1).
Adjunk hozzá 300 ml sósavoldatot (3.5.) és 130 ml diklórmetánt (3.1.).
Shake for 1 minute and allow the phases to separate.
Rázzuk egy percen keresztül, és engedjük, hogy a fázisok elváljanak egymástól.
Run off the lower (dichloromethane) layer into a 500 ml round bottomed flask.
Az alsó réteget (a diklórmetánt) eresszük bele egy 500 ml-es gömblombikba.
Repeat the extraction of the aqueous phase with two further 70 ml portions of dichloromethane and combine these extracts with the first in the round-bottomed flask.
Ismételjük meg a vizes fázis extrakcióját még kétszer, további 70–70 ml diklórmetánnal, és ezen kivonatokat öntsük össze a gömblombikban lévő első kivonattal.
Dissolve the residue in the flask with approximately 5 ml of methanol (3.2) and transfer this solution quantitatively to a 10 ml graduated flask.
Oldjuk fel a maradékot megközelítőleg 5 ml metil-alkoholban (3.2.), és öntsük az oldatot teljes mennyiségben egy 10 ml-es mérőlombikba.
Rinse the round-bottomed flask with a further two portions of 1 to 2 ml of methanol and transfer these to the graduated flask.
Öblítsük el még kétszer a lombikot 1–2 ml metil-alkohollal, majd öntsük a mérőlombikba.
Make up to the mark with methanol and mix.
Töltsük fel jelig metil-alkohollal, és keverjük el.
An aliquot portion is filtered through a membrane filter (4.6).
Egy aliquot részt szűrjünk át membránszűrőn (4.6.).
Reserve this solution for HPLC-determination (5.6).
Ezt az oldatot tegyük el a HPLC-meghatározáshoz (5.6.).
The following conditions are offered for guidance, other conditions may be used provided that they give equivalent results:
Az alábbi vizsgálati feltételek csak útmutatásként szolgálnak, ettől eltérő feltételeket is lehet használni, feltéve, hogy ezzel egyenértékű eredményt adnak:
liquid chromatographic column (4.4.1),
folyadékkromatográfiás oszlop (4.4.1.),
HPLC mobile phase: methanol-water mixture (3.3),
HPLC mozgófázis: metil-alkohol és víz keveréke (3.3.),
flow rate: 1 to 1,5 ml/minute,
átáramlási sebesség: 1–1,5 ml/perc,
detection wavelength: 265 nm,
kimutatási hullámhossz: 265 nm,
Check the stability of the chromatographic system, injecting the calibration solution (3.7.3) containing 4 μg/ml several times, until constant peak heights or areas and retention times are achieved.
Ellenőrizzük a kromatográfiás rendszer stabilitását oly módon, hogy 4,0 μg/ml anyagot tartalmazó kalibrálóoldatot (3.7.3.) fecskendezünk be többször, amíg a csúcsmagasságok vagy területek, illetve a retenciós idők állandóvá nem válnak.
Inject each calibration solution (3.7.3) several times and measure the peak heights (areas) for each concentration.
Fecskendezzük be többször egymás után az egyes kalibrálóoldatokat (3.7.3.), és mérjük meg az egyes koncentrációkhoz tartozó csúcsok magasságát (területét).
Inject the sample extract (5.5) several times, using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the methyl benzoquate peaks.
Ugyanolyan mennyiségű oldatot használva, mint amennyit a kalibrálóoldatoknál használtunk, fecskendezzük be a mintakivonatot (5.5.) egymás után többször, és határozzuk meg a metil-benzokvát-csúcsok átlagos magasságát (területét).
Determine the concentration of the sample solution in μg/ml from the mean height (area) of the methyl benzoquate peaks of the sample solution by reference to the calibration graph (5.6.2).
A mintaoldat által kiváltott metil-benzokvát-csúcsok átlagos magasságát (területét) a kalibrációs görbével egybevetve (5.6.2.), határozzuk meg a mintaoldat koncentrációját μg/ml-ben.
The content of methyl benzoquate w (mg/kg) of the sample is given by the following formula:
A minta mg/kg-ben kifejezett w metilbenzokvát-tartalma a következő képlet alapján számítható ki:
c methyl benzoquate concentration of the sample solution in μg/ml,
c a mintaoldat metil-benzokvát-koncentrációja g/ml-ben,
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract and the calibration solution (3.7.3) containing 10 μg/ml are compared.
Az analizált anyag azonosítását párhuzamos kromatográfiával vagy diódasoros detektorral lehet megerősíteni, amely során a mintakivonat és a 10,0 μg/ml metil-benzokvátot tartalmazó kalibrálóoldat (3.7.3.) spektrumát hasonlítjuk össze.
A sample extract is fortified by addition of an appropriate amount of the intermediate standard solution (3.7.2).
A mintakivonatot megfelelő mennyiségű közbenső standardoldattal (3.7.2.) dúsítjuk.
The amount of added methyl benzoquate must be similar to the estimated amount of methyl benzoquate in the sample extract.
A hozzáadott metil-benzokvát mennyiségének a mintakivonatban található metil-benzokvát becsült mennyiségével közel azonosnak kell lennie.
Only the height of the methyl-benzoquate peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
A hozzáadott mennyiséget és a kivonat hígítását figyelembe véve, csak a metil-benzokvát-csúcs magassága emelkedhet.
the wavelength of maximum absorption of the sample and of the standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram must be the same within a margin determined by the resolving power of the detection system.
a minta és a standard spektrumában a kromatogram csúcsmaximumán rögzített legnagyobb elnyeléshez tartozó hullámhossznak a detektor felbontóképessége által meghatározott tűréshatáron belül azonosnak kell lennie.
between 220 and 350 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
220 és 350 nm között a spektrumnak a relatív abszorbancia 10 és 100 %-a közötti tartományba eső részein a mintának és a standardnak a kromatogram csúcsmaximumán rögzített spektruma nem térhet el egymástól.
between 220 and 350 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
220 és 350 nm között a mintakivonat által kiváltott csúcs felszálló ágának, csúcsmaximumának és leszálló ágának spektrumai nem térhetnek el egymástól a spektrumnak a relatív abszorbancia 10 és 100 %-a közötti tartományba eső részein.
This criterion is met when the same maxima are present and when at no observed points the deviation between the spectra does not exceed 15 % of the absorbance of the spectrum of the apex.
Ez a kritérium akkor teljesül, ha ugyanazok a maximális értékek vannak jelen, és a spektrumok egyetlen vizsgált ponton sem térnek el a csúcsmaximum spektruma abszorbanciájának 15 %-ánál nagyobb mértékben.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed: 10 % relative to the higher result for methyl benzoquate contents between 4 and 20 mg/kg.
Ugyanazon a mintán végzett két párhuzamos meghatározás eredménye közötti különbség 4–20 mg/kg metil-benzokvát-tartalom esetén nem haladhatja meg a magasabb érték 10 %-át.
For a fortified blank sample the recovery shall be at least 90 %.
A dúsított vakminta esetében a visszanyerésnek legalább 90 %-osnak kell lennie.
Five samples were analysed by 10 laboratories.
Tíz laboratóriumban öt minta elemzésére került sor.
Blank
Vak
Meal 1
liszt
Pellet 1
pellet
Meal 2
liszt
Pellet2
pellet
ND Not detected
ND nem kimutatható
DETERMINATION OF OLAQUINDOX
AZ OLAQUINDOX MEGHATÁROZÁSA
2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxaline-N1,N4-dioxide
(2-[N-2’-(hidroxietil)karbamoil]-3-metilkinoxalin-N1,N4-dioxid)
This method makes it possible to determine the level olaquindox in feed.
Ez a módszer a takarmányokban lévő olaquindoxszint meghatározására szolgál.
The sample is extracted by a water-methanol mixture.
A mintát víz-metil-alkohol keverékével extraháljuk.
The content of olaquindox is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) using an UV detector.
Az olaquindoxtartalmat fordított fázisú nagy teljesítményű folyadékkromatográfiával (HPLC) határozzuk meg, UV-detektor segítségével.
Mobile phase for HPLC.
Mozgófázis a HPLC-hez:
Water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 +100 (V + V).
Víz (3.3.)-metil-alkohol (3.2.) keveréke, 900 + + 100 (V + V).
Standard substance: pure olaquindox 2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxaline-N1,N4-dioxide, E 851.
Standard anyag: tiszta olaquindox 2-[N-2’-(hidroxietil)karbamoil]-3-metilkinoxalin-N1,N4-dioxid, E 851.
Olaquindox stock standard solution, 250 μg/ml
Olaquindox standard törzsoldat, 250 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg 50 mg of olaquindox (3.5) in a 200 ml graduated flask and add ca. 190 ml water.
0,1 mg pontossággal mérjünk be 50 mg olaquindoxot (3.5.) egy 200 ml-es mérőlombikba, és adjunk hozzá kb. 190 ml vizet.
Then place the flask for 20 min. into an ultrasonic bath (4.1).
Ezután tegyük a lombikot 20 percre ultrahangos fürdőbe (4.1.).
After ultrasonic treatment bring the solution to room temperature, make up to the mark with water and mix.
Az ultrahangos kezelés után állítsuk be az oldatot szobahőmérsékletűre, töltsük fel jelig vízzel, és keverjük össze.
Wrap the flask with aluminium foil and store in a refrigerator.
Tekerjük a lombikot alumíniumfóliába, és tároljuk hűtőszekrényben.
This solution must be prepared fresh each month.
Ebből az oldatból minden hónapban frisset kell készíteni.
Olaquindox intermediate standard solution, 25 μg/ml
Olaquindox közbenső standardoldat, 25 μg/ml
Transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.5.1) into a 100 ml graduated flask, make up to the mark with the mobile phase (3.4) and mix.
Töltsünk 10,0 ml standard törzsoldatot (3.5.1.) egy 100 ml-es mérőlombikba, töltsük fel jelig a mozgófázissal (3.4.), és keverjük össze.
This solution must be prepared fresh each day.
Ebből az oldatból mindennap frisset kell készíteni.
Into a series of 50 ml graduated flasks transfer 1,0, 2,0, 5,0, 10,0, 15,0 and 20,0 ml of the intermediate standard solution (3.5.2).
Töltsünk 50 ml-es mérőlombikokba 1,0, 2,0, 5,0, 10,0 és 20,0 ml közbenső standardoldatot (3.5.2.).