natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In this case the volume of acid is reduced by evaporation to approx. 5 ml after the hydrolysis and prior to pH adjustment.
Ebben az esetben a sav térfogatát a hidrolízis után és a pH-beállítás előtt mintegy 5 ml-re való bepárlással csökkentjük.
The evaporation shall be performed under vacuum at 40 o C maximum.
A bepárlást vákuum alatt és maximum 40 oC-on kell végezni.
The sample is ground to pass through a 0,5 mm sieve.
Őröljük meg a mintát annyira, hogy az átjusson egy 0,5 mm-es szemméretű szitán.
Samples high in moisture must be either air-dried at a temperature not exceeding 50 oC or freeze dried prior to grinding.
Őrlés előtt a nagy nedvességtartalmú mintákat vagy légszáraz állapotba kell hozni 50 oC-nál nem magasabb hőmérsékleten, vagy liofilizálni kell azokat.
Samples with a high fat content shall be extracted with light petroleum (3.12) prior to grinding.
A nagy zsírtartalmú mintákat őrlés előtt petroléterrel (3.12.) extrahálni kell.
Determination of free amino acids in feed and premixtures
A szabad aminosavak meghatározása takarmányokban és előkeverékekben
Weigh to the nearest 0,2 mg an appropriate amount (1-5 g) of the prepared sample (5.1), into a conical flask and add 100,0 ml of extraction mixture (3.21).
Az előkészített mintából (5.1.) megfelelő mennyiséget (1–5 g) mérjünk be 0,2 mg pontossággal egy Erlenmeyer-lombikba, és adjunk hozzá 100,0 ml extraháló keveréket (3.21.).
Shake the mixture for 60 min. using a mechanical shaker or a magnetic stirrer (4.8).
Rázassuk a keveréket 60 percig mechanikus rázógép vagy mágneses keverő segítségével (4.8.).
Allow the sediment to settle and pipette 10,0 ml of the supernatant solution into a 100 ml beaker.
Hagyjuk leülepedni az üledéket, és a felülúszó oldatból pipettázzunk 10,0 ml-t egy 100 ml-es főzőpohárba.
Add 5,0 ml of sulfosalicylic acid solution (3.22), with stirring and continue to stir with the aid of magnetic stirrer for 5 min. Filter or centrifuge the supernatant in order to remove any precipitate.
Keverés közben adjunk hozzá 5,0 ml szulfoszalicilsavat (3.22.), és folytassuk a keverést mágneses keverő segítségével 5 percig. A felülúszó folyadékot szűrjük le, vagy centrifugáljuk a csapadék leválasztása céljából.
Place 10,0 ml of the resulting solution into a 100 ml beaker and adjust the pH to 2,20 using sodium hydroxide solution (3.18), transfer to a volumetric flask of appropriate volume using citrate buffer (3.24), and make up to the mark with the buffer solution (3.24).
A kapott oldat 10,0 ml-ét tegyük egy 100 ml-es főzőpohárba, és állítsuk be a pH-t 2,20-ra nátrium-hidroxid-oldattal (3.18.), majd töltsük át egy megfelelő térfogatú mérőlombikba citrát-puffer segítségével (3.24.), és a lombikot töltsük fel jelig a pufferoldattal (3.24.).
If an internal standard is being used add 1,00 ml of internal standard (3.27.3) for each 100 ml final solution and make up to the mark with the buffer solution (3.24).
Ha belső standardot használunk, adjunk 1,00 ml belső standardot (3.27.3.) minden 100 ml végső oldathoz, és a lombikot töltsük fel jelig a pufferoldattal (3.24.).
Proceed to the chromatography step according to paragraph 5.4.
A kromatográfiát az 5.4. bekezdés szerint végezzük.
If the extracts are not being examined the same day, they must be stored below 5 oC.
Ha a kivonatok vizsgálatára nem ugyanazon a napon kerül sor, akkor azokat 5 oC alatt kell tárolni.
Determination of total amino acids
Összes aminosav meghatározása
Oxidation
Oxidáció
Weigh to the nearest 0,2 mg from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1) into:
0,2 mg pontossággal mérjünk ki 0,1–1 g-ot az előkészített mintából (5.1.):
a 100 ml round-bottomed flask (4.1) for open hydrolysis (5.3.2.3) or,
egy 100 ml-es gömblombikba (4.1.) nyitott hidrolízishez (5.3.2.3.), vagy
a 250 ml round-bottomed flask (4.1) if a low sodium concentration is required (5.3.3.1) or,
egy 250 ml-es gömblombikba (4.1.), ha alacsony nátriumkoncentrációra van szükség (5.3.3.1.), vagy
a 100 ml bottle fitted with a screw cap (4.2), for closed hydrolysis (5.3.2.4).
egy csavaros tetejű 100 ml-es palackba (4.2.), (zárt hidrolízishez 5.3.2.4.).
The weighed sample portion must have a nitrogen content of about 10 mg and a moisture content not exceeding 100 mg.
A kimért mintamennyiségnek hozzávetőlegesen 10 mg nitrogéntartalommal és legfeljebb 100 mg nedvességtartalommal kell rendelkeznie.
Place the flask/bottle in an ice-water bath and cool to 0 oC, add 5 ml of oxidation mixture (3.23) and mix using a glass spatula with a bent tip.
Helyezzük a lombikot/palackot jeges vízfürdőbe, és hűtsük le 0 oC-ra, adjunk hozzá 5 ml oxidációs keveréket (3.23.), és keverjük össze egy hajlított végű üvegspatulával.
Seal the flask/bottle containing the spatula with an air-tight film, place the ice-water bath containing the sealed container in a refrigerator at 0 oC and leave for 16 hours.
Zárjuk le légmentesen a spatulát is magában foglaló lombikot/palackot, tegyük a lezárt tartályt tartalmazó jeges vízfürdőt 0 oC-os hűtőszekrénybe, és hagyjuk állni 16 órán keresztül.
After 16 hours remove from the refrigerator and decompose the excess oxidation reagent by the addition of 0,84 g of sodium disulphite (3.4).
16 óra múlva vegyük ki a hűtőszekrényből, és a feleslegben lévő oxidáló reagenst 0,84 g nátrium-diszulfit (3.4.) adagolásával bontsuk le.
Proceed to 5.3.2.1.
Folytassuk a műveletet az 5.3.2.1. pont szerint.
Hydrolysis
Hidrolízis
Hydrolysis of oxidised samples
Az oxidált minták hidrolízise
To the oxidised sample prepared according to 5.3.1 add 25 ml of hydrolysis mixture (3.20) taking care to wash down any sample residue adhering to the sides of the vessel and the spatula.
Az 5.3.1. pont szerint elkészített oxidált mintához adjunk 25 ml hidrolíziskeveréket (3.20.), ügyelve arra, hogy lemossuk az edény falára és a spatulára tapadt mintamaradékot.
Depending on the hydrolysis procedure being used, proceed according to 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Az alkalmazott hidrolízis-eljárástól függően az 5.3.2.3. vagy az 5.2.3.4. pont szerint folytassuk a műveletet.
Hydrolysis of unoxidised samples
A nem oxidált minta hidrolízise
Weigh into either a 100 ml or a 250 ml round-bottom flask (4.1) or a 100 ml bottle fitted with a screw cap (4.2), to the nearest 0,2 mg, from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1).
Mérjünk be egy 100 ml-es vagy egy 250 ml-es gömblombikba (4.1.) vagy egy 100 ml-es csavaros fedelű palackba (4.2.) 0,1–1 g-ot az előkészített mintából (5.1.) 0,2 mg pontossággal.
The weighed sample portion must have a nitrogen content of about 10 mg.
A mintából bemért adagnak hozzávetőlegesen 10 mg nitrogéntartalommal kell rendelkeznie.
Add carefully 25 ml of hydrolysis mixture (3.20) and mix with the sample.
Óvatosan adjunk hozzá 25 ml hidrolíziskeveréket (3.20.), és keverjük őket össze.
Proceed according to either 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Az 5.3.2.3. vagy az 5.3.2.4. pont szerint folytassuk a műveletet.
Open hydrolysis
Nyitott hidrolízis
Add 3 glass beads to the mixture in the flask (prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2) and boil with continuous bubbling under reflux for 23 hours.
Tegyünk 3 üveggyöngyöt a lombikban lévő keverékbe (ami az 5.3.2.1. vagy az 5.3.2.2. pont szerint készült), és forraljuk folyamatos buborékolás mellett, reflux alatt, 23 órán keresztül.
On completion of hydrolysis, wash the condenser down with 5 ml of citrate buffer (3.24).
Amikor a hidrolízis befejeződött, mossuk ki a hűtőt 5 ml citrát-pufferrel (3.24.).
Disconnect the flask and cool it in an ice bath.
Vegyük le a lombikot, és hűtsük le jeges vízfürdőben.
Proceed according to 5.3.3.
Az 5.3.3. pont szerint folytassuk a műveletet.
Closed Hydrolysis
Zárt hidrolízis
Place the bottle containing the mixture prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2 in an oven (4.3) at 110 oC.
Tegyük az 5.3.2.1. vagy az 5.3.2.2. pont szerint elkészített keveréket tartalmazó palackot egy 110 oC-os kemencébe (4.3.).
During the first hour in order to prevent a build up of pressure (due to the evolution of gaseous substances) and to avoid explosion, place the screw cap over the top of the vessel.
A (gázfejlődésnek tulajdonítható) nyomás kialakulásának megelőzése és a robbanás elkerülése érdekében az első órában helyezzük a csavaros fedelet az edény nyílására. Ne zárjuk le az edényt a fedővel.
Do not close the vessel with the cap.
Egy óra elteltével zárjuk le az edényt a fedővel, és hagyjuk a kemencében (4.3.)
After one hour close the vessel with the cap and leave in the oven (4.3) for 23 hours.
23 órán keresztül.
On completion of hydrolysis, remove the bottle from the oven, carefully open the cap of the bottle and place the bottle in an ice-water bath.
Amikor a hidrolízis befejeződött, vegyük ki az edényt a kemencéből, óvatosan nyissuk fel a palack fedelét, és tegyük a palackot jeges vízfürdőbe.
Leave to cool.
Hagyjuk kihűlni.
Depending on the procedure for pH adjustment (5.3.3), quantitatively transfer the contents of the bottle to a 250 ml beaker or a 250 ml round-bottom flask, using citrate buffer (3.24).
A pH beállításához alkalmazott eljárástól függően (5.3.3.) a palack tartalmát teljes egészében vigyük át egy 250 ml-es főzőpohárba vagy egy 250 ml-es gömblombikba citrát-puffer segítségével (3.24.).
Adjustment of pH
A pH beállítása
Depending on the sodium tolerance of the amino acid analyser (4.9) proceed according to 5.3.3.1 or 5.3.3.2 for the pH adjustment.
Az aminosav-analizátor (4.9.) nátriummal szembeni tűrőképességétől függően az 5.3.3.1. vagy az 5.3.3.2. pont szerint végezzük el a pH beállítását.
For Chromatographic Systems (4.9) requiring a low sodium concentration
Alacsony nátriumkoncentrációt igénylő kromatográfiás rendszerek (4.9.) esetén:
It is advisable to use an internal stock standard solution (3.27.3) when amino acid analysers requiring a low sodium concentration are employed (when the acid volume has to be reduced).
Tanácsos belső standard törzsoldatot (3.27.3.) használni alacsony nátriumkoncentrációt igénylő aminosav-analizátorok alkalmazása esetén (amikor a sav térfogatát csökkenteni kell).
In this case add 2,00 ml of the internal stock standard solution (3.27.3) to the hydrolysate before the evaporation.
Ebben az esetben bepárlás előtt adjunk 2,00 ml belső standard törzsoldatot (3.27.3.) a hidrolizátumhoz.
Add 2 drops of 1-octanol (3.15) to the hydrolysate obtained in accordance with paragraph 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Adjunk 2 csepp 1-oktanolt (3.15.) az 5.3.2.3. vagy az 5.2.3.4. pont szerint nyert hidrolizátumhoz.
Using a rotary evaporator (4.7) reduce the volume to 5-10 ml under vacuum at 40 oC.
Rotációs bepárló segítségével (4.7.) csökkentsük a térfogatot 5–10 ml-re vákuum alatt, 40 oC-on.
If the volume is accidentally reduced to less than 5 ml the hydrolysate must be discarded and the analysis recommenced.
Ha a térfogat véletlenül 5 ml alá csökken, akkor a hidrolizátumot ki kell önteni, és az analízist újra kell kezdeni.
Adjust the pH to 2,20 with sodium hydroxide solution (3.18) and proceed to paragraph 5.3.4.
Nátrium-hidroxid-oldattal (3.18.) állítsuk be a pH-t 2,20-re, és az 5.3.4. ponttal folytassuk a műveletet.
For all other Amino Acid Analysers (4.9)
Minden más típusú aminosav-analizátor (4.9.) esetén:
Take the hydrolysates obtained in accordance with 5.3.2.3 or 5.3.2.4 and partly neutralise them by carefully adding with stirring, 17 ml of sodium hydroxide solution (3.17), ensuring that the temperature is kept below 40 oC.
Az 5.3.2.3. vagy az 5.3.2.4. pont szerint kapott hidrolizátumokat részlegesen semlegesítsük úgy, hogy keverés közben óvatosan hozzáadunk 17 ml nátrium-hidroxid-oldatot (3.17.), mialatt a hőmérsékletet 40 oC alatt tartjuk.
Adjust the pH to 2,20 at room temperature using sodium hydroxide solution (3.17) and finally sodium hydroxide solution (3.18).
Szobahőmérsékleten állítsuk be a pH-t 2,20-re a 3.17. pont alatti nátrium-hidroxid-oldattal és végül a 3.18. pont alatti nátrium-hidroxid-oldattal.
Proceed to 5.3.4.
Folytassuk a műveletet az 5.3.4. pont szerint.
Sample solution for chromatography
Mintaoldat a kromatográfiához
Quantitatively transfer the pH adjusted hydrolysate (5.3.3.1 or 5.3.3.2) with citrate buffer (3.24) to a 200 ml graduated flask, and make up to the mark with buffer (3.24).
A beállított pH-jú hidrolizátumot (5.3.3.1. vagy 5.3.3.2.) maradék nélkül, citrát-pufferrel vigyük át egy 200 ml-es mérőlombikba, és töltsük fel jelig a pufferrel (3.24.).
If an internal standard has not already been used, add 2,00 ml of internal standard (3.27.3) and make up to the mark with citrate buffer (3.24).
Ha még nem használtunk belső standardot, adjunk hozzá 2,00 ml belső standardot (3.27.3.), és töltsük fel jelig citrát-pufferrel (3.24.).
Proceed to the chromatography step (5.4).
Folytassuk a műveletet a kromatográfiával (5.4.).
If the sample solutions are not being examined the same day they must be stored below 5 oC.
Ha a mintaoldatok vizsgálatára nem ugyanazon a napon kerül sor, 5 oC alatt kell őket tárolni.
Before chromatography bring the extract (5.2) or hydrolysate (5.3.4) to room temperature.
Kromatográfiás vizsgálat előtt a kivonatot (5.2.) vagy a hidrolizátumot (5.3.4.) állítsuk be szobahőmérsékletre.
Shake the mixture and filter a suitable amount through a 0,22 μm membrane filter (4.5).
Rázzuk fel a keveréket, és szűrjünk át megfelelő mennyiséget egy 0,2 μm-es membránszűrőn (4.5.).
The resulting clear solution is subjected to ion exchange chromatography, using an amino acid analyser (4.9).
A kapott tiszta oldatot vessük alá ioncserés kromatográfiának aminosav-analizátor segítségével (4.9.).
The injection may be performed manually or automatically.
Az injektálást lehet kézzel vagy automatikusan végezni.
It is important that the same quantity of solution ±0,5 % is added to the column for the analysis of standards and samples except when an internal standard is used, and that the sodium:amino acid ratios in the standard and sample solutions are as similar as is practicable.
Ügyeljünk arra, hogy – ±0,5 %-os eltéréssel – azonos mennyiségű oldatot tegyünk az oszlopra a standardok és minták analíziséhez, kivéve, amikor belső standardot használunk, valamint, hogy a nátrium-aminosav arányok, amennyire csak lehet, megegyezzenek a standardban és a mintában.
In general the frequency of calibration runs depends on the stability of the ninhydrin reagent and the analytical system.
A kalibrálás gyakorisága általában a ninhidrin reagens és az analitikai rendszer stabilitásától függ.
The standard or sample is diluted with citrate buffer (3.24) to give a peak area of the standard of 30 %-200 % of the sample amino acid peak area.
A standardot vagy a mintát citrát-pufferrel (3.24.) hígítjuk annak érdekében, hogy a standard csúcsterülete a minta aminosav csúcsterületének 30–200 %-a legyen.
The chromatography of amino acids will vary slightly according to the type of analyser employed and resin used.
Az aminosavak kromatográfiás vizsgálata az alkalmazott analizátor és a használt gyanta típusától függően némiképp eltérhet.
The chosen system must be capable of separating the amino acids from each other and from the ninhydrin-positive materials.
A választott rendszernek képesnek kell lennie arra, hogy az aminosavakat elválassza egymástól és a ninhidrin-pozitív anyagoktól.
In the range of operation the chromatographic system must give a linear response to changes in the amounts of amino acids added to the column.
A működési tartományban a kromatográfiás rendszer reakciójának egyenesen arányosnak kell lennie a kolonnára felvitt aminosavak mennyiségével.
During the chromatography step the valley:peak height ratios mentioned below apply, when an equimolar solution (of the amino acids being determined) is analysed.
A kromatográfiás lépésnél az alábbiakban említett csúcs-mélyponti arányt alkalmazzuk, amikor (a meghatározandó aminosavak vonatkozásában) ekvimoláris oldatot analizálunk.
This equimolar solution must contain at least 30 % of the maximum load of each amino acid which can be accurately measured with the amino acid analyser system (4.9).
Az ekvimoláris oldatnak az aminosav-analizátor rendszerrel (4.9.). pontosan mérhető aminosavak maximális mennyiségének legalább 30 %-át tartalmaznia kell.
For all other amino acids the separation must be better than 1:10.
Minden más aminosav esetében a szétválasztásnak jobbnak kell lennie, mint 1:10.
The system must ensure that lysine is separated from ‘lysine artifacts’ and ornithine.
A rendszernek el kell tudnia választani a lizint a „mesterséges lizin képződményektől” és az ornitintől.
The area of the sample and standard peaks is measured for each individual amino acid and the amount (X), in g amino acid per kg sample, is calculated as follows:
Minden aminosavra megmérjük a minta és a standard csúcsterületét, és kiszámítjuk a minta egy kg-jában lévő aminosav g-ban kifejezett mennyiségét (X).
If an internal standard is used multiply by: D
Ha belső standardot használunk, szorozzuk meg D C
A peak area, hydrolysate or extract
A a hidrolizátum vagy a kivonat csúcsterülete
B peak area, calibration standard solution
B a kalibráló standardoldat csúcsterülete
C peak area, internal standard in hydrolysate or extract
C a hidrolizátumban vagy a kivonatban lévő belső standard csúcsterülete
D peak area, internal standard, calibration standard solution
D a belső standard, kalibráló standardoldat csúcsterülete
M molar weight of the amino acid being determined
M a meghatározandó aminosav móltömege
c concentration of standard in μmol/ml
c a standard koncentrációja μmól/l-ben
m sample weight (g) (corrected to original weight if dried or defatted)
m a minta tömege (g) (ha szárított vagy zsírtalanított, akkor az eredeti tömegre korrigálva)
V ml total hydrolysate (5.3.4) or ml calculated total dilution volume of extract (6.1)
V ml összes hidrolizátum (5.3.4.) vagy ml kivonat (6.1.) számított teljes hígítási térfogata
Cystine and cysteine are both determined as cysteic acid in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as cystine (C6H12N2O4S2, M 240,30 g/mol) by using M 120,15 g/mol (= 0,5 x 240,30 g/mol).
Mind a cisztin, mind a cisztein mint cisztein-sav kerül meghatározásra az oxidált minta hidrolizátumaiban, de cisztinként kerül kiszámításra (C6H12N2O4S2, MW 240,30 g/mól), ha MW 120,15 g/mólt (= 0,5 × 240,30 g/mól) használunk.
Methionine is determined as methionine sulphone in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as methionine by using M of methionine: 149,21 g/mol.
A metionin metionin-szulfonként kerül meghatározásra az oxidált minta hidrolizátumaiban, de metioninként kerül kiszámításra a metionin molekulatömegének (MW = 149,21 g/mol) használatával.
Added free methionine is determined after extraction as methionine, for the calculation the same M is used.
A hozzáadott szabad metionin extrahálás után metioninként kerül meghatározásra, és a számításhoz ugyanezt a molekulatömeget (M) használjuk.
The total dilution volume of extracts (F) for determination of free amino acids (5.2) is calculated as follows:
A szabad aminosavak (5.2.) meghatározása esetén a kivonatok teljes hígítási térfogatát (F) a következőképpen számítjuk ki:
V Volume of final extract
V a végső kivonat térfogata
Evaluation of the method
A módszer értékelése
The method has been tested in an intercomparison made at international level in 1990 using four different feed (mixed pig feed, broiler compound, protein concentrate, premixture).
A módszert nemzetközi összehasonlító vizsgálat során ellenőrizték, amelyet 1990-ben végeztek négy különböző takarmány (kevert sertéstáp, brojlertápkeverék, fehérjekoncentrátum, előkeverék) felhasználásával.
The results, after elimination of outliers, of mean and standard deviation are given in the tables in this point:
A szélsőértékek kizárásával kapott átlagértékeket és standard szórásokat az ebben a pontban található táblázatok mutatják be:
Means in g/kg
Átlagértékek g/kg-ban
n Number of participating laboratories.
n a részt vevő laboratóriumok száma
Reference material
Referenciaanyag
Amino Acid
Aminosav
Cyst(e)ine
Ciszt(e)in
Mixed Pig Feed
Kevert sertéstáp
Broiler Compound
Brojlertápkeverék
Protein Concentrate
Fehérjekoncentrátum
Premixture
Előkeverék
The repeatability expressed as ‘within laboratory standard deviation’ of the abovementioned intercomparison is given in the tables below:
A fent említett összehasonlító vizsgálat ismételhetőségét „laboratóriumon belüli szórásként” kifejezve az alábbi táblázatok mutatják:
Within Laboratory Standard Deviation (Sr) in g/kg
Laboratóriumon belüli szórás (Sr) g/kg
Coefficient of Variation (%) for Within Laboratory Standard Deviation (Sr)
A laboratóriumon belüli szórás (Sr) relatív szórása ( %)
The results for between laboratory standard deviation by the abovementioned intercomparison are given in the table below:
A fent említett összehasonlító vizsgálatra vonatkozóan, a különböző laboratóriumok közötti szórásértékeket az alábbi táblázat adja meg:
Between Laboratory Standard Deviation (SR) in g/kg
Laboratóriumon belüli szórás (SR) g/kg
Coefficient of Variation (%) for Between Laboratory Standard Deviation (SR)
A laboratóriumon belüli szórás (SR) relatív szórása ( %)
Use of reference materials
Referenciaanyagok használata
The correct application of the method shall be verified by making replicate measurements of certified reference materials when available.
A módszer helyes alkalmazását lehetőség szerint hitelesített referenciaanyagokon végzett ismételt mérésekkel kell ellenőrizni.
Calibration with certified amino acid calibration solution is recommended.
Hitelesített aminosav-kalibrálóoldattal végzett kalibrálás javasolt.
Because of differences between amino acid analysers the final concentrations of the calibration solutions of standard amino acids (see 3.27.4 and 3.27.5) and of the hydrolysate (see 5.3.4) shall be taken as a guideline.
Az aminosav-analizátorok közötti különbségek miatt a standard aminosavak (lásd 3.27.4. és 3.27.5.) és a hidrolizátumok (lásd 5.3.4.) kalibrálóoldatainak végső koncentrációit irányadónak kell tekinteni.
The range of linear response of the apparatus has to be checked for all amino acids.
A berendezés lineáris reakciójának tartományát valamennyi aminosavra ellenőrizni kell.
The standard solution is diluted with citrate buffer to give peak areas in the middle of the range.
A standardoldatot citrát-pufferrel hígítjuk, hogy a csúcsterületek a tartomány közepére essenek.
Where high performance liquid chromatographic equipment is used to analyse the hydrolysates, the experimental conditions must be optimised in accordance with the manufacturer's recommendations.
Amennyiben nagy teljesítményű folyadékkromatográfiás berendezést használunk a hidrolizátumok elemzéséhez, a gyártó ajánlásainak megfelelően kell a kísérleti körülményeket optimalizálni.
By applying the method to feed containing more than 1 % chloride (concentrate, mineral feeds, supplementary feeds) underestimation of methionine could occur and special treatment has to be done.
Ha 1 %-nál több kloridot tartalmazó takarmányokra (koncentrátum, ásványi takarmányok, kiegészítő takarmányok) alkalmazzuk a módszert, előfordulhat a metionin alulértékelése, és ezért speciális kezelést kell végezni.
DETERMINATION OF TRYPTOPHAN
A TRIPTOFÁN MEGHATÁROZÁSA
The method makes the determination possible of the total and free tryptophan in feed.
A módszer a takarmányokban található összes és a szabad triptofán meghatározására szolgál.
It does not distinguish between D- and L- forms.
Nem különbözteti meg a D- és az L-formákat.
For the determination of the total tryptophan, the sample is hydrolysed under alkaline conditions with saturated barium hydroxide solution and heated to 110 oC for 20 hours.
Az összes triptofán meghatározásához a mintát alkalikus körülmények között, telített bárium-hidroxid-oldattal hidrolizáljuk, majd 110 oC-ra hevítjük, és ezen a hőmérsékleten tartjuk 20 órán át.
After hydrolysis internal standard is added.
Hidrolízis után belső standardot adunk hozzá.
For the determination of free tryptophan, the sample is extracted under mild acidic conditions in the presence of internal standard.
A szabad triptofán meghatározásához a mintát enyhén savas körülmények között extraháljuk belső standard jelenlétében.
The tryptophan and the internal standard in the hydrolysate or in the extract are determined by HPLC with fluorescence detection.
A hidrolizátumban vagy a kivonatban található triptofánt és a belső standardot HPLC-módszerrel, fluoreszcens detektálással határozzuk meg.