natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Substances that have demonstrated corrosive or severe irritant properties in an in vitro or ex vivo test (7)(8) that has been validated and accepted for the assessment specifically of eye or skin corrosivity/irritation, need not be tested in animals.
Nem kell állatokon kísérletezni olyan anyagokkal, amelyek validált és kimondottan a szem vagy a bőr korróziójának/irritációjának értékelésére elfogadott módszerekkel végzett in vitro vagy ex vivo vizsgálatokban (7)(8) korróziós vagy súlyos irritáló hatást mutattak.
If validated and accepted in vitro/ex vivo tests are not available, one should bypass Steps 5 and 6 and proceed directly to Step 7.
Ha nem állnak rendelkezésre validált és elfogadott in vitro/ ex vivo vizsgálatok, át lehet ugorni az 5. és a 6. lépést és közvetlenül a 7. lépéshez lépni.
Assessment of in vivo dermal irritancy or corrosivity of the substance (Step 7).
Az anyag in vivo bőrirritáló vagy bőrkorróziós hatásának vizsgálata (7. lépés).
approximately 21 hours after removing the patch the challenge area is cleared of hair, approximately three hours later (approximately 30 hours after application of the challenge patch) the skin reactions are observed and recorded according to the grades shown in the Appendix,
a tapasz eltávolítása után hozzávetőleg 21 órával a felületet megtisztítják a szőrzettől,
Generally, at least three test groups and a control group should be used.
Általánosan 3 kezelt csoportot és egy kontrollcsoportot alkalmaznak.
The post-mitochondrial fraction is usually used at concentrations in the range from 1-10 % v/v in the final test medium.
A posztmitokondriális frakciót rendszerint 1–10 térfogatszázalék koncentráció tartományban használják a végtérfogatban.
The condition of a metabolic activation system may depend upon the class of chemical being tested.
Valamely metabolikus aktiváló rendszer állapota függhet a vizsgált kémiai anyag osztályától.
Morita, T., Nagaki, T., Fukuda, I. and Okumura, K., (1992). Clastogenicity of low pH to Various Cultured Mammalian Cells.
Morita, T., Nagaki, T., Fukuda, I. and Okumura, K., (1992), Clastogenicity of low pH to Various Cultured Mammalian Cells, Mutation Res, 268, pp.
Richardson, C., Williams, D.A., Allen, J.A., Amphlett, G., Chanter, D.O. and Phillips, B., (1989) Analysis of Data from In Vitro Cytogenetic Assays. In: Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data.
Richardson, C., Williams, D. A., Allen, J. A., Amphlett, G., Chanter, D. O. and Phillips, B. (1989), Analysis of Data from In vitro Cytogenetic Assays, in: Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data, Kirkland, D. J., (cd) Cambridge University Press, Cambridge, pp.
With the majority of chemical mutagens, induced aberrations are of the chromatid-type, but chromosome-type aberrations also occur.
A mutációit előidéző kémiai anyagok többsége esetében az előidézett rendellenességek kromatid típusúak, de kromoszóma típusú rendellenességek is előfordulnak.
Fielder, R.J., Allen, J.A., Boobis, A.R., Botham, P.A., Doe, J., Esdaile, D.J., Gatehouse, D.G., Hodson-Walker, G., Morton, D.B., Kirkland, D.J. and Richold, M. (1992). Report of British Toxicology Society/UK Environmental Mutagen Society Working Group: Dose setting in In vivo Mutagenicity Assays.
Fielder, R. J., Alleen, J. A., Boobis, A. R., Botham, P. A., Doe, J., Esdaile, D. J., Gatehouse, D. G., Hodson-Walker, G., Morton, D. B., Kirkland, D. J. andRichold, M. (1992), Report of British Toxicology Society/UK, Environmental Mutagen Society Working Group: Dose setting in In vivo Mutagenicity Assays, Mutagenesis, 7. pp.
The Collaborative Study Group for the Micronucleus Test, (1992) Micronucleus Test with Mouse Peripheral Blood Erythrocytes by Acridine Orange Supravital Staining: The Summary Report of the 5th Collaborative Study by CSGMT/JEMMS. MMS.
The Collaborative Study Group for the Micronucleus Test (1992), Micronucleus Test with Mouse Peripheral Blood Erythrocytes by Acridime Orange Supravital Staining: The Summary Report of the 5th Collaborative Study by CSGMT/JEMMS, MMS, Mutation Res., 278. pp.
Lovell, D.P., Anderson, D., Albanese, R., Amphlett, G.E., Clare, G., Ferguson, R., Richold, M., Papworth, D.G. and Savage, J.R.K., (1989) Statistical Analysis of In Vivo Cytogenetic Assays. In: D.J.
Lovell, D. P., Anderson, D., Albanese, R., Amphlett, G. E., Clare, G., Ferguson, R., Richold, M., Papworth, D. G. and Savage J. R. K. (1989), Statistical Analysis of In vivo Cytogenetic Assays, in: UKEMS Subcommittee on Guidelines for Mutagenicity Testing, Report Part III.
Kirkland (Ed.) Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data.
Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data, D. J. Kirkland (ed.)
benzo[a]pyrene
Benzo[a]pirén
cyclophosphamide monohydrate
Ciklofoszfamid monohidrát
Congo Red
Kongó vörös
2-nitrofluorene
2-Nitro-fluorén
Cumene hydroperoxide
Kumén-hidroperoxid
Furylfuramide (AF2)
Furil-furamid (AF2)
In: Short-term Test Systems for Detecting Carcinogens. Ed.
Norpoth K. H. and Garner, R. C, Springer, Berlin-Heidelberg-New-York, pp.
In: Handbook of Mutagenicity Test Procedures. 2nd Edition. Ed.
Kilbey, B. J., Legator, M., Nichols, W. and Ramel, C, Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, pp.
For toxic substances, the highest concentration tested should not reduce survival below 5 to 10 %.
Mérgező anyagoknál a legnagyobb vizsgált koncentráció a túlélési arányt nem csökkentheti 5–10 %-ot meghaladó mértékben.
Relatively water-insoluble substances should be tested up to their limit of solubility, using appropriate procedures.
Vízben viszonylag rosszul oldódó anyagokat a megfelelő eljárások alkalmazásával oldhatóságuk határáig kell vizsgálni.
For freely water-soluble non-toxic substances, the upper concentration should be determined on a case by case basis.
A vízben jól oldódó és nem mérgező anyagok felső koncentrációját esetenként kell meghatározni.
The plates are incubated four to seven days at 28 to 30 oC in the dark.
A lemezeket négy-hét napig 28–30 oC hőmérsékleten, sötétben kell inkubálni.
Spontaneous mutation frequencies
Spontán mutációs gyakoriság
At least three replicate plates should be used per concentration for the assay of prototrophs produced by gene mutation and for cell viability.
A génmutációval előállított prototrófok, illetve a sejtéletképesség vizsgálatára valamennyi koncentráció esetében legkevesebb három lemezt kell alkalmazni.
Basic Mutagenicity Tests, UKEMS Recommended Procedures.
UKEMS Sub-Committee on Guidelines for Mutagenicity Testing, Report, Part I revised.
UKEMS Sub-Committee on Guidelines for Mutagenicity Testing, report, Part III.
UKEMS Subcommittee on Guidelines for Mutagenicity Testing, report Part III, Cambridge University Press, Cambridge, New York, Port Chester, Melbourne, Sydney, pp.
A minimum of 25 diakinesis-metaphase I cells per male must be scored microscopically.
Hímenként legkevesebb 25 I. típusú diakinézis-metafázisban levő sejtet kell mikroszkóposan megvizsgálni.
Examination of mitotic metaphases, in spermatogonia or bone-marrow, is required in F1 males with small testes and meiotic breakdown before diakinesis or from F1 female XO suspects.
A kis herékkel, illetve a diakinézis előtti meiotikus károsodással rendelkező F1 hímeknél, valamint azon F1 nőstényeknél, amelyeknél felmerül az XO-károsodás gyanúja, el kell végezni a spermatogoniumsejtek vagy a csontvelői sejtek mitotikus metafázisainak vizsgálatát is. Egy szokatlanul hosszú és/vagy rövid kromoszóma jelenléte mind a tíz sejtben egy bizonyos, hímsterilitást okozó transzlokációra utal (c-t típus).
Signs of toxicity should be carefully recorded, including time of onset, degree and duration. Observations should include, but not be limited to, changes in skin, fur, eyes, mucous membranes, occurrence of secretions and excretions and autonomic activity (e.g. lacrimation, pilo-erection, pupil size, unusual respiratory pattern).
A feljegyzett észleléseknek ki kell terjedniük, de nem korlátozandók a következőkre: a bőr, a bunda, a szemek és a nyálkahártyák állapotának, a vizelet- és ürülékkiválasztás és az autonóm mozgások (pl. könnyezés, szőrzet felborzolódása, pupilla mérete, szokatlan légzési ritmusok) változásaira.
Oro-nasal, head only, or whole body individual chamber exposure may be used; the first two will minimise uptake by other routes.
Végezhetők csak az orron és szájon át vagy csak a fejen át, illetve az egész testen keresztül megvalósuló egyedi expozíciós kamrai vizsgálatok; az első két módszer előnye, hogy minimalizálja a vizsgált anyag egyéb úton történő felvételének lehetőségét.
The findings of the Prenatal Developmental Toxicity Study should be evaluated in terms of the observed effects.
A prenatális fejlődési toxicitási vizsgálat eredményeit a megfigyelt hatások szempontjából kell értékelni.
The evaluation will include the following information:
Az értékelés az alábbi információkat foglalja magában:
Dissection Procedures for Rat Foetuses Permitting Alizarin Red Staining of Skeleton and Histological Study of Viscera.
Dissection Procedures for Rat Foetuses Permitting Alizarin Red Staining of Skeleton and Histological Study of Viscera.
In inhalation studies, the entire respiratory tract should be preserved, including nasal cavity, pharynx and larynx.
Inhalációs vizsgálatoknál a teljes légzőrendszert vizsgálni kell, az orral, a garattal és a gégefővel együtt.
The epididymis should be evaluated for leukocyte infiltration, change in prevalence of cell types, aberrant cell types, and phagocytosis of sperm.
A mellékherében meg kell vizsgálni a leukocita infiltrációt, a sejttípusok gyakoriságában bekövetkező változásokat, az abnormális sejttípusokat, valamint az ondósejek fagocitózisát.
PAS and haematoxylin staining may be used for examination of the male reproductive organs.
A hím szaporítószervek vizsgálatára PAS- és hematoxilin-festés alkalmazható.
Concurrent positive and negative controls (solvent/vehicle) should be included in each independently performed part of the experiment.
Minden kísérlethez egyidejűleg pozitív és negatív (oldószer/vivőanyag) kontrollokat alkalmazunk.
Except for treatment with the test substance, animals in the control group should be handled in an identical manner to the animals in the treated groups.
A vizsgált anyaggal való kezelés kivételével a kontrollcsoportokba beosztott állatokat azonos bánásmódban kell részesíteni a kezelt csoportokban lévő állatokkal.
Kennelly, J.C., Waters, R., Ashby, J., Lefevre, P.A., Burlinson, B., Benford, D.J., Dean, S.W. and Mitchell, I. de G., (1993) In Vivo Rat Liver UDS Assay. In: Kirkland D.J. and Fox M., (Eds) Supplementary Mutagenicity Tests: UKEM Recommended Procedures.
Kennelly, J. C, Waters, R., Ashby, J., Lefevre, P. A., Burlinson, B., Benford, D. J., Dean, S. W. and Mitchell, I. de G. (1993), In vivo Rat Liver UDS Assay, in: Kirkland D. J. and Fox M., (eds), Supplementary Mutagenicity Tests: UKEM Recommended Procedures.
Part II revised.
Part II. revised.
Mirsalis, J.C., Tyson, C.K. and Butterworth, B.E., (1982) Detection of Genotoxic Carcinogens in the In Vivo/In Vitro Hepatocyte DNA Repair Assay. Environ.
Mirsalis, J. C, Tyson, C. K. and Butterworth, B. E. (1982), Detection of Genotoxic Carcinogens in the In Vivo/In vitro Hepalocyte DNA Repair Assay, Environ.
Following TER assessment, the magnesium sulfate is discarded from the tube and the skin is carefully examined for obvious damage.
A TER-vizsgálatot követően a magnézium-szulfátot eltávolítják a csőből, és gondosan megvizsgálják, hogy a bőrön látható-e károsodás.
If there is no obvious major damage, Sulforhodamine B dye (Acid Red 52; C.I.
Ha nincs nagyobb látható károsodás, akkor szulforhodamin B festékanyag (Acid Red 52; C.I.
Each skin disc is carefully removed from the PTFE tube and placed in a vial (e.g. a 20 mL glass scintillation vial) containing deionised water (8 mL).
Minden bőrkorongot óvatosan eltávolítanak a PTFE csőről, és egy deionizált vizet tartalmazó (8 ml) ampullába helyezik (pl. egy 20 ml üveg szcintillációs ampulla).
The vials are agitated gently for five minutes to remove any additional unbound dye.
Az ampullákat óvatosan 5 percen át rázogatják minden felesleges/meg nem tapadt festékanyag eltávolítása érdekében.
After incubation, each skin disc is removed and discarded and the remaining solution is centrifuged for eight minutes at 21 oC (relative centrifugal force ~175 × g).
Az inkubálást követően minden bőrkorongot eltávolítanak és kidobnak, és a fennmaradó oldatot 8 percen át 21 oC -on centrifugálják (relatív centrifugális erő ~175 × g).
A 1 ml sample of the supernatant is diluted 1 in 5 (v/v) [i.e. 1 mL + 4 mL] with 30 % (w/v) SDS in distilled water.
1 ml felszínen úszó mintát felhígítanak 1:5 (v/v) [azaz 1 ml + 4 ml] arányban 30 tömegszázalékos SDS-szel desztillált vízben.
For solid materials, sufficient test substance must be applied evenly to cover the skin, and it should be moistened with deionised or distilled water to ensure good contact with the skin.
Szilárd anyagok esetén a bőrön egyenletesen elosztva elegendő vizsgált anyagot használjunk, és deionizált vagy desztillált vízzel nedvesítsük be a bőrrel való jó érintkezés biztosítására.
Where appropriate, solids should be ground to a powder before application.
Ahol szükséges, a szilárd anyagok alá a felvitel előtt púdert kell tenni.
Cells should be checked regularly for the absence of mycoplasma contamination and only used if none is found (11).
A sejteket rendszeresen ellenőrizni kell, hogy nem történt-e mikoplazma-fertőzés, és csak azok a sejtek használhatók fel, amelyekben ilyet nem találtak (11).
It is important that UV sensitivity of the cells is checked regularly according to the quality control procedure described in this method.
Fontos, hogy az ebben a módszerben leírt minőség-ellenőrzési eljárásnak megfelelően rendszeresen ellenőrizzék a sejtek UV-érzékenységét.
Because the UVA sensitivity of cells may increase with the number of passages, Balb/c 3T3 cells of the lowest obtainable passage number, preferably less than 100, should be used. (See Section 1.4.2.2.2 and Appendix 2).
Mivel a sejtek UVA-érzékenysége a passzázsok számával nőhet, a lehető legkisebb, lehetőleg 100-nál kisebb passzázsszámú Balb/c 3T3 sejteket kell használni (lásd az 1.4.2.2.2. szakaszt és a 2. függeléket).
It may be useful to assess solubility initially and at 60 min (or whatever treatment time is to be used), as solubility can change during time or during the course of exposure.
Az oldhatóságot érdemes lehet kétszer: az első alkalom után 60 perc (vagy bármilyen más kezelési idő) elteltével másodszor is megállapítani, mivel az oldhatóság időben, illetve az expozíció során megváltozhat.
To avoid toxicity induced by improper culture conditions or by highly acidic or alkaline chemicals, the pH of the cell cultures with added test chemical should be in the range 6,5 - 7,8.
A nem megfelelő tenyésztési feltételek, illetve az erősen savas vagy lúgos vegyi anyagok által kiváltott toxicitás elkerülése érdekében a vizsgált vegyi anyaggal kezelt sejtkultúrák pH-jának a 6,5–7,8 tartományban kell lennie.
It is defined as the weighted average across a representative set of photo effect values
Ez a mennyiség definíció szerint a fényhatásértékek reprezentatív csoportján vett súlyozott átlagot jelenti:
Irradiance [mW/cm2]
Irradiancia [mW/cm2]
The temperature of the experimental animals room should be 22 oC (±3 oC).
A kísérleti helyiség hőmérsékletének 22 oC (± 3 oC)-nak kell lennie.
Inject 250μl of phosphate-buffered saline (PBS) containing 20 μCi (7,4e + 8 Bq) of 3H-methyl thymidine into all test and control mice via the tail vein.
Használhatunk ehelyett 250 μl, 2 μCi (7,4 e + 7 Bq) 125I-jóddezoxiuridint és 10–5 M fluordezoxiuridint tartalmazó PBS-t is, szintén az egerek farokvénájába injektálva. Öt órával később extermináljuk az állatokat. Mindegyik kísérleti csoportban az állatok füléből vágjuk ki a kezelt terület nyirokelvezetéséről gondoskodó füli nyirokcsomókat, és tegyük be azokat kísérleti csoportonként egy PBS-t tartalmazó edénybe (összevont kezelési csoporton alapuló megközelítés). Más esetben úgy is eljárhatunk, hogy csak az egyes állatokból kivágott nyirokcsomópárokat tesszük egy-egy PBS-t tartalmazó edénybe (egyedi megközelítés).
Dose is expressed as weight (g, mg) or as weight of test substance per unit weight of the test animal (e.g. mg/Kg), or as constant dietary concentrations (ppm).
A dózist tömegegységben (g, mg), vagy a vizsgálandó anyag tömegének és a vizsgált állat tömegegységének hányadosában (pl. mg/kg), vagy a táplálékban lévő állandó koncentrációban (ppm) fejezik ki.
The temperature in the experimental animal room should be 22 °C (± 3 °C).
A kísérleti helyiség hőmérsékletének 22 oC (± 3 oC)-nak kell lennie.
Loud intermittent noise should be kept to a minimum.
Minimálisra kell csökkenteni az időszakosan jelentkező erős zajokat.
At least five males and five females, selected from these 10 males and 10 females, should be perfused in situ and used for detailed neurohistopathology at the end of the study.
A 10 hím és 10 nőstény közül a vizsgálat végén legalább öt hímet és öt nőstényt kell kiválasztani az in situ perfúzióhoz és a részletes ideg-kórszövettani vizsgálatokhoz.
In cases where only a limited number of animals in a given dose group are observed for signs of neurotoxic effects, consideration should be given to the inclusion of these animals in those selected for perfusion.
Ha az adott dóziscsoportban csak korlátozott számú állatnál lehet megfigyelni neurotoxikus hatásokat, fontolóra kell venni ezeknek az állatoknak is a perfúzióra kijelöltek közé való felvételét.
The highest dose level should be chosen with the aim of inducing neurotoxic effects or clear systemic toxic effects.
A legnagyobb dózist azt a célt szem előtt tartva kell megválasztani, hogy a neurotoxikus hatásokat vagy egyértelmű szisztémás toxikus hatásokat váltson ki.
Thereafter, a descending sequence of dose levels should be selected with a view to demonstrating any dose-related response and no-observed-adverse effect (NOAEL) at the lowest dose level.
Ezt követően úgy kell csökkenő sorrendben kiválasztani a kisebb dózisokat, hogy meg lehessen határozni a dózissal összefüggő válaszokat, illetve a legkisebb dózisnál a nem észlelhető káros hatás szintjét (NOAEL).
Additionally, all data should be summarised in tabular form showing for each test or control group the number of animals at the start of the test, the number of animals found dead during the test or killed for humane reasons and the time of any death or humane kill, the number showing signs of toxicity, a description of the signs of toxicity observed, including time of onset, duration, type and severity of any toxic effects, the number of animals showing lesions, including the type and severity of the lesion(s).
Emellett az összes adatot táblázatos formában is össze kell foglalni úgy, hogy minden kezelt és kontrollcsoport esetében mutassa az állatok számát a vizsgálat kezdetén, valamint azoknak a számát, amelyek a vizsgálat során elhullottak vagy humánus módon exterminálásra kerültek, illetve az elhullások és humánus okokból végzett exterminálás időpontját, a toxicitásra utaló tüneteket mutató állatok számát, a megfigyelt toxikus hatások leírását, ezen belül megjelenésük időpontját, valamint ezek időbeli lefolyását, típusát és súlyosságát, és végül a léziókat mutató állatok számát és ezen belül a lézió(k) típusát és súlyosságát.
Environmental Protection Agency, Methods for the acute toxicity tests with fish, macroinvertebrates and amphibians.
Environmental Protection Agency, Methods for the acute toxicity tests with fish, macroinvertabrates and amphibians.
20000-fold
20000-szeres
2000-fold
2000-szeres
1000-fold
1000-szeres
20-fold
20-szoros
10000-fold
10000-szeres
5000-fold
5000-szeres
NH4Cl
NH4C1
OECD, Paris, 1981, Test Guideline 201, Decision of the Council C(81) 30 Final.
OECD, Párizs, 1981, 201. vizsgálati irányelv, a Tanács határozata, C(81) 30 végleges.
preferably 7,0
Lehetőleg 7,0
DOC Dissolved organic Carbon
DOC Dissolved organic Carbon (oldott szerves szén)
ThoD Theoretical Oxygen Demand
ThoD Theoretical Oxygen Demand (elméleti oxigénigény)
SS Suspended Solids
SS Suspended Solids (Szuszpendált szilárd anyagok)
Contamination may result from inherent impurities and also from the ion-exchange resins and lysed material from bacterial and algae.
A szennyeződés származhat a saját szennyeződésekből, valamint az ioncserélő műgyantákból és a baktériumból vagy algából származó roncsolt anyagból is.
For each series of tests use only one batch of water, checked beforehand by DOC analysis.
Minden egyes vizsgálatsorozathoz csak egyetlen adag vizet kell használni, amelyet előzőleg DOC-elemzéssel kell ellenőrizni.
Such a check is not necessary for the closed bottle test, but the oxygen consumption of the water must be low.
Ilyen ellenőrzésre nincs szükség a zárt palack vizsgálathoz, de a víz oxigénfogyasztásának alacsonynak kell lennie.
Stock solutions of mineral components
Az ásványianyag-tápoldat törzsoldatai
To make up the test solutions, stock solutions of appropriate concentrations of mineral components are made up.
A vizsgált oldatok elkészítéséhez megfelelő koncentrációjú ásványianyag-tápoldatokat tartalmazó törzsoldatokat kell készíteni.
The following stock solutions may be used (with different dilution factors) for the methods DOC Die-Away, Modified OECD Screening, CO2 Evolution, Manometric Respirometry, Closed Bottle test.
A következő törzsoldatok használhatók (különböző hígítási arányokkal) a DOC-csökkenés, a módosított OECD, a CO2-fejlődési, a manometrikus respirometriás és a zártpalackos vizsgálati módszerekhez.
The dilution factors and, for the MITI test, the specific preparation of the mineral medium are given under the headings of the specific tests.
A hígítási arányok és a MITI-vizsgálat során alkalmazandó ásványianyag-tápoldat elkészítése az adott vizsgálatok leírásában olvasható.
Stock solutions:
Törzsoldatok:
Prepare the following stock solutions, using analytical grade reagents.
A következő törzsoldatokat kell elkészíteni analitikai tisztaságú reagensek segítségével.
Monopotassium dihydrogen orthophosphate, KH2PO4
Kálium-dihidrogén-foszfát, KH2PO4
Dipotassium monohydrogen orthophosphate, K2HPO4
Dikálium-hidrogén-foszfát, K2HPO4
Dissolve in water and make up to 1 litre The pH of the solution should be 7,4.
Ezen anyagokat fel kell oldani vízben, és kiegészíteni 1 literre. Az oldat pH-jának 7,4-nek kell lennie.
Calcium chloride, anhydrous, CaCl2
Kalcium-klorid, vízmentes, CaCl2
or Calcium chloride dihydrate, CaCl2, 2 H2O
or vagy kalcium-klorid-dihidrát, CaCl2 ·2 H2O
Dissolve in water and make up to 1 litre
Vízben kell feloldani, és 1 literre kiegészíteni.
In the calculation of Dt, percentage degradation, the mean values of the duplicate measurement of the parameter in both test vessels and inoculum blank are used.
A Dt (százalékos lebomlás) számításához mind a vizsgálati tartályokban, mind az inokulum-vakpróbában a paraméter kétszeri mérésének átlagát kell használni.
The formulas are set out in the sections below on specific tests.
A képleteket a későbbiekben ismertetett, az egyes vizsgálatokkal foglalkozó szakaszok tartalmazzák.
Degradation is followed by DOC analysis at frequent intervals over a 28-day period.
A lebomlást egy 28 napos időtartam során gyakori időközönként végrehajtott DOC-elemzés követi.
preferably and when necessary:
Ajánlott és amikor szükséges:
Flask 7: Adsorption control
lombik: adszorpciós kontroll
Flask 8: Toxicity control
lombik: toxicitáskontroll
formed
A vakpróbában képződött CO2
formed cumulative (mg)
Képződött CO2 összesen (mg),
(test minus blank mean)
a vizsgált anyag és a vakpróba különbségeinek átlaga
formation in sterile in flask after 28 day (mg)
-fejlődés steril kontrollban 28 nap után [mg]
However, for poorly degradable compounds and those with a low ThOD, 5-10 mg/litre can be used.
Azonban a nehezen lebomló vegyületekhez és az alacsony ThOD-értékű vegyületekhez 5–10 mg/liter használható.
In some cases, it would be advisable to run parallel series of test chemical at two different concentrations, for example, 2 and 5 mg/litre.
Néhány esetben ajánlatos lehet a vizsgált anyagot egyidejűleg vizsgálni két különböző, például 2 és 5 mg/literes koncentráció mellett.
The pH value of the solution should be 7,2
Az oldat pH-értékének 7,2-nek kell lennie.
Calcium chloride anhydrous, CaCl2
Kalcium-klorid, vízmentes, CaCl2