natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If a prolonged observation period is required, further assessments should be made at 24 h intervals, up to a maximum of 96 h, provided that the control mortality does not exceed 10 %.
Ha a meghosszabbított megfigyelési időszakra van szükség, akkor a további értékeléseket 24 órás időközönként kell elvégezni, legfeljebb a 96. óráig, feltéve, hogy a kontrollcsoportban a mortalitás nem haladja meg a 10 %-ot.
The amount of diet consumed per group should be estimated.
Megmérik az egyes csoportok által elfogyasztott táplálék mennyiségét.
Comparison of the rates of consumption of treated and untreated diet within the given 6 h can provide information about palatability of the treated diet.
Az adott 6 óra alatt a kezelt és a kezeletlen táplálékból való fogyasztás mértékének összevetése tájékoztat a kezelt étrend ízletességéről.
All abnormal behavioural effects observed during the testing period should be recorded.
A vizsgálat időszaka alatt feljegyeznek minden, a normálistól eltérő magatartásformát.
In some cases (e.g. when a test substance is expected to be of low toxicity) a limit test may be performed, using 100 μg a.s./bee in order to demonstrate that the LD50 is greater than this value.
Egyes esetekben (pl. amikor a vizsgált anyag várható toxicitása alacsony) tűréstesztet lehet végezni, 100 mg aktív hatóanyag/egyed felhasználásával, annak bemutatására, hogy az LD50 nagyobb ezen értéknél.
The same procedure should be used, including three replicate test groups for the test dose, the relevant controls, the assessment of the amount of treated diet consumed, and the use of the toxic standard.
Ugyanezt az eljárást követik, beleértve a vizsgált dózisra vonatkozó három ún. párhuzamosan kezelt csoportot, a megfelelő kontrollokat, az elfogyasztott kezelt táplálék mennyiségének értékelő felmérését és a toxikus referenciaanyag használatát.
If mortalities occur, a full study should be conducted.
Ha mortalitás tapasztalható, teljes körű vizsgálatot végeznek el.
If sublethal effects are observed (see Section 1.6.4), these should be recorded.
Ha szubletális hatások figyelhetők meg (lásd 1.6.4. szakasz), azokat feljegyezik.
Data should be summarised in tabular form, showing for each treatment group, as well as control and toxic standard groups, the number of bees used, mortality at each observation time and number of bees with adverse behaviour.
Az adatokat táblázat formájában foglalják össze, mindegyik kezelt csoportnál, valamint kontroll- és toxikusreferenciaanyag-csoportnál feltüntetve a kísérlethez felhasznált méhek számát, az egyes megfigyelési időpontokban tapasztalt mortalitást, valamint a rendellenes magatartást mutató méhek számát.
Analyse the mortality data by appropriate statistical methods (e.g. probit analysis, moving-average, binomial probability) (3)(4).
A mortalitási adatokat megfelelő statisztikai módszerekkel elemezik (pl. probitanalízis, mozgóátlag, binomiális valószínűség) (3) (4).
Plot dose-response curves at each recommended observation time and calculate the slopes of the curves and the median lethal doses (LD50) with 95 % confidence limits.
A hatásgörbéket mindegyik ajánlott megfigyelési időpontban grafikonon rögzítik, és a görbék meredekségét és a közepes halálos dózisokat (LD50) a 95 %-os konfidenciahatárhoz kiszámítják.
Corrections for control mortality could be made using Abbott's correction (4)(5).
A kontrollcsoport mortalitásának korrekcióját az Abbott-képlet alkalmazásával lehet elvégezni (4) (5).
Where treated diet is not completely consumed, the dose of test substance consumed per group should be determined.
Ha a méhek nem fogyasztották el a vizsgált anyaggal kezelt táplálék teljes mennyiségét, meghatározzák az egyes csoportok által elfogyasztott vizsgált anyaggal bevitt dózis nagyságát.
should be expressed in μg of test substance per bee.
Az LD50 értékét az egy méhre jutó vizsgált anyag μg-jában fejezik ki.
physical nature and relevant physical-chemical properties (e.g. stability in water, vapour pressure),
az anyag fizikai természete és főbb fizikai-kémiai tulajdonságai (pl. stabilitása vízben, gőznyomás),
chemical identification data, including structural formula, purity (i.e. for pesticides, the identity and concentration of active substance(s)).
kémiai azonosító adatok, beleértve a szerkezeti képletet és a kémiai tisztaságot (azaz peszticidek esetén a hatóanyag(ok) megnevezését és koncentrációját).
scientific name, race, approximate age (in weeks), collection method, date of collection,
tudományos név, származás, hozzávetőleges életkor (hetekben kifejezve), a befogás módszere és dátuma,
information on colonies used for collection of test bees including health, any adult disease, any pre-treatment, etc.
a kolóniákra vonatkozó információk, ahonnan a begyűjtött állatok származnak, beleértve a méhek egészségi állapotát, bármilyen kifejlett kori betegséget, esetleges előkezeléseket stb.
temperature and relative humidity of experimental room,
a kísérleti helyiség hőmérséklete és relatív páratartalma,
housing conditions including type, size and material of cages,
elhelyezési körülmények, beleértve a dobozok típusát, méretét és anyagát,
methods of preparation of stock and test solutions (the solvent and its concentration must be given, when used),
a törzsoldat és a vizsgált oldatok készítésének módszere (ha oldószert használnak, meg kell adni a nevét és töménységét),
test design, e.g. number and test concentrations used, number of controls; for each test concentration and control, number of replicate cages and number of bees per cage,
a törzsoldat készítésének módja és az újrakezdés gyakorisága (az esetlegesen használt, oldódást segítő szer nevét és koncentrációját meg kell adni), a vizsgálat körülményei, pl. a felhasznált kísérleti koncentrációk száma, a kontrollok száma; minden egyes kísérleti koncentrációra és kontrollra nézve az ún. párhuzamosok és az egy dobozban lévő méhek száma,
date of test.
a vizsgálat időpontja.
results of preliminary range-finding study if performed,
előzetes koncentrációhatárokat felmérő vizsgálat eredményei, ha végeztek ilyet,
raw data: mortality at each dose tested at each observation time,
nyers adatok: mortalitás minden egyes vizsgált dózisra és minden egyes megfigyelési időpontra nézve,
graph of the dose-response curves at the end of the test,
a hatásgöbék grafikonja a vizsgálat végén,
values with 95 % confidence limits, at each of the recommended observation times, for test substance and toxic standard;
értékek 95 % konfidenciahatárhoz, minden egyes javasolt megfigyelési időpontokban, a vizsgált anyagra és a toxikus referenciaanyagra nézve,
statistical procedures used for determining the LD50,
az LD50 meghatározásához használt statisztikai eljárások,
mortality in controls,
mortalitás a kontrollcsoportokban,
other biological effects observed or measured e.g. abnormal behaviour of the bees (including rejection of the test dose), rate of consumption of diet in treated and untreated groups,
más megfigyelt vagy mért biológiai hatások, pl. a méhek abnormális viselkedése (beleértve a vizsgált dózis elutasítását), az elfogyasztott táplálék mértéke kezelt és a kezeletlen csoportoknál,
any deviation from the test procedures described here and any other relevant information.
bármilyen eltérés az itt leírt vizsgálati módszerektől, valamint bármely más releváns információ.
EPPO/Council of Europe (1993) Decision-Making Scheme for the Environmental Risk Assessment of Plant Protection Products — Honeybees.
EPPO/COUNCIL OF Europe (1993). Decision-Making Scheme for the Environmental Risk Assessment of Plant Protection Products – Honeybees.
Gough, H. J., McIndoe, E.C., Lewis, G.B., (1994) The use of dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees (Apis mellifera L.)
Gough, H. J., Mclndoe, E. C, Lewis, G. B. (1994). The use of dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees (Apis mellifera L.)
This acute toxicity test method is a replicate of the OECD TG 214 (1998).
Ezen akutkontakttoxicitás-vizsgálat megfelel az OECD TG 214-nek (1998).
This toxicity test is a laboratory method, designed to assess the acute contact toxicity of plant protection products and other chemicals to adult worker honeybees.
E toxicitásvizsgálat olyan laboratóriumi módszer, amelyet annak felmérésére dolgoztak ki, hogy a növényvédő szerek és más vegyi anyagok milyen mértékű akut kontakt toxicitást gyakorolnak a felnőtt dolgozó háziméhekre.
In the assessment and evaluation of toxic characteristics of substances, determination of acute contact toxicity in honeybees may be required, e.g. when exposure of bees to a given chemical is likely.
Az anyagok toxikus jellemzőinek a felmérése és értékelése a háziméhekre gyakorolt akut kontakt toxicitás mértékének a meghatározását igényelheti, pl. olyan körülmények között, amikor valószínű, hogy a méhek ki lesznek téve egy adott vegyi anyag hatásának.
The acute contact toxicity test is carried out to determine the inherent toxicity of pesticides and other chemicals to bees.
Az akutkontakttoxicitás-vizsgálatot a peszticideknek és más vegyi anyagoknak a méhekre gyakorolt inherens toxicitásának meghatározására végzik.
The results of this test should be used to define the need for further evaluation.
A vizsgálat eredményeit felhasználják annak meghatározására, hogy szükség van-e további minősítésre.
Acute contact toxicity: is the adverse effects occurring within a maximum period of 96 h of a topical application of a single dose of a substance.
Akut kontakt toxicitás: egyszeri, helyileg alkalmazott tesztanyagdózis, maximum 96 órán belül jelentkező károsító hatása.
Dose: is the amount of test substance applied.
Dózis: a vizsgált anyag elfogyasztott mennyisége.
LD50(Median Lethal Dose) contact: is a statistically derived single dose of a substance that can cause death in 50 % of animals when administered by the contact.
Kontakt LD50 (közepes halálos dózis): valamely anyag statisztikailag megállapított egyszeri olyan dózisa, amely érintkezés útján az állatok 50 %-ának elhullását okozza.
The LD50 value is given in μg of test substance per bee.
Az LD50 értéket a vizsgált anyag egy méhre jutó mennyiségével (μg/méh) fejezzük ki.
Adult worker honeybees (Apis mellifera) are exposed to a range of doses of the test substance dissolved in appropriate carrier, by direct application to the thorax (droplets).
A vizsgálat során a kifejlett dolgozó háziméheket (Apis mellifera) a vizsgált anyag megfelelő hordozóanyagban, különböző töménységben oldott dózisaival kezelik úgy, hogy azt közvetlenül a torra cseppentik.
The test duration is 48 h. If the mortality rate is increasing between 24 h and 48 h whilst control mortality remains at an accepted level, i.e. < 10 %, it is appropriate to extend the duration of the test to a maximum of 96 h. Mortality is recorded daily and compared with control values.
A vizsgálat időtartama 48 óra. Ha az elhullási arány a 24. és 48. óra között is növekszik, míg a kontrollcsoportban egy elfogadható szinten, azaz £ 10 %-on marad, helyénvaló a vizsgálat időtartamát legfeljebb 96 órára meghosszabbítani. A elhullást naponta rögzítik és összehasonlítják a kontrollértékekkel.
The results are analysed in order to calculate the LD50 at 24 h and 48 h, and in case the study is prolonged at 72 h and 96 h.
Az eredményeket elemzik a 24. és a 48. órai LD50 érték, illetve ha a vizsgálatot meghosszabbítják, akkor a 72. és 96. órai LD50 érték meghatározásához.
the average mortality for the total numbers of controls must not exceed 10 % at the end of the test,
a vizsgálat végére a teljes kontrollcsoport létszámához viszonyított átlagos mortalitás nem haladhatja meg a 10 %-ot,
Young adult worker bees should be used, i.e. bees of the same age, feeding status, race etc. Bees should be obtained from adequately fed, healthy, as far as possible disease-free and queen-right colonies with known history and physiological status.
A vizsgálatokhoz fiatal, kifejlett dolgozó háziméheket használnak, azaz azonos életkorú, tápláltsági fokú, fajú stb. méheket. A méheket megfelelően táplált, és – amennyire csak lehetséges – betegségektől mentes és királynővel rendelkező, ismert előéletű és fiziológiai állapotú kolóniákból fogják be.
Collection in early spring or late autumn should be avoided, as the bees have a changed physiology during the time.
Kerülni kell a kora tavasszal vagy késő ősszel történő befogást, mivel a méhek fiziológiája ezen időszakban megváltozik.
If tests have to be conduced in early spring or late autumn, bees can be emerged in an incubator and reared for one week with ‘bee bread’ (pollen collected from the comb) and sucrose solution.
Ha a vizsgálatokat mégis kora tavasszal vagy késő ősszel végzik, a méheket inkubátorba téve elő lehet csalogatni és egy hétig „méhkenyérrel” (a lépről gyűjtött pollennel) és cukros vízzel lehet táplálni.
Any appropriate material can be used, e.g. stainless steel, wire mesh, plastic, disposable wooden cages, etc. The size of test cages should be appropriate to the number of bees, i.e. providing adequate space.
E célra bármilyen alkalmas anyag felhasználható, pl. rozsdamentes acél, drótháló, műanyag vagy eldobható, fából készült stb. dobozok. A vizsgálati dobozok méreteit a méhek létszámához igazítják, hogy elegendő helyük legyen.
Groups of 10 bees per cage are preferred.
Dobozonként tíz méhből álló csoportok használata javasolt.
The bees should be held in the dark in an experimental room at a temperature of 25 ± 2 οC.
A méheket 25 ± 2 oC hőmérsékletű sötét teszthelyiségben tartják.
Sucrose solution in water with a final concentration of 500 g/l (50 % w/v) should be used as food and provided ad libitum during the test time, using a bee feeder.
Táplálékként 500 g/liter (azaz 50 tömegszázalékos) végkoncentrációjú vizes cukoroldatot alkalmaznak, és a vizsgálat ideje alatt korlátozás nélkül adagolják méhetető berendezés felhasználásával.
This can be a glass tube (approximately 50 mm long and 10 mm wide with the open end narrowed to about 2 mm diameter).
Ez lehet egy üvegcső (körülbelül 50 mm hosszú és 10 mm széles, amelynek nyitott végén körülbelül 2 mm átmérőre leszűkített).
The collected bees may be anaesthetised with carbon dioxide or nitrogen for application of the test substance.
A befogott méheket a vizsgált anyag elhelyezése érdekében szén-dioxiddal vagy nitrogénnel lehet elkábítani.
The amount of anaesthetic used and time of exposure should be minimised.
Minimalizálni kell az alkalmazott narkotikum mennyiségét és az expozíció időtartamát.
The test substance is to be applied as solution in a carrier, i.e. an organic solvent or a water solution with a wetting agent.
A vizsgált anyagot valamilyen hordozóanyagban, azaz szerves oldószerben oldva vagy detergenst tartalmazó vizes oldatban alkalmazzák.
As organic solvent, acetone is preferred but other organic solvents of low toxicity to bees may be used (e.g. dimethylformamide, dimethylsulfoxide).
Szerves oldószerként előnyben részesül az aceton, de a méhekre kis mértékben mérgező egyéb szerves oldószereket is lehet használni (pl. dimetil-formamid, dimetil-szulfoxid).
For water dispersed formulated products and highly polar organic substances not soluble in organic carrier solvents, solutions may be easier to apply if prepared in a weak solution of a commercial wetting agent (e.g. Agral, Cittowett, Lubrol, Triton, Tween).
A vízben diszpergált formulázott termékek és az erősen poláros szerves anyagok esetében, amelyek szerves oldószerekben nem oldódnak, a kísérlethez használt oldatokat könnyebb felvinni, ha azt a kereskedelemben szokásos detergens (pl. Agral, Cittowett, Lubrol, Triton, Tween) híg oldatában készítik elő.
Appropriate control solutions should be prepared, i.e. where a solvent or a dispersant is used to solubilise the test substance, two separate control groups should be used, one treated with water, and one treated with the solvent/dispersant.
A megfelelő kontrolloldatokat előkészítik, azaz ha oldószert vagy diszpergálószert használnak a vizsgált anyag feloldásához, akkor két különálló kontrollcsoportot alkalmaznak, egyet vízzel, egyet pedig az oldószerrel/diszpergálószerrel kezelve.
The number of doses and replicates tested should meet the statistical requirements for determination LD50 with 95 % confidence limits.
A vizsgált dózisok és a párhuzamos vizsgálatok száma meg kell, hogy feleljen az LD50 95 %-os konfidenciahatár mellett történő meghatározására vonatkozó statisztikai követelményeknek.
Normally five doses in a geometric series, with a factor not exceeding 2,2, and covering the range for LD50, are required for the test.
A vizsgálathoz szokványos esetben öt, olyan mértani sort képező dózisra van szükség, amelyek 2.2 értéket meg nem haladó szorzótényezővel különböznek egymástól, és az LD50 tartományát fedik le.
However, the number of doses has to be determined in relation to the slope of the toxicity curve (dose versus mortality) and with consideration taken to the statistical method which is chosen for analysis of the results.
A dózisok számát azonban a hatásgörbe (pusztulás a dózis függvényében) meredekségének függvényében és az eredmények elemzéséhez kiválasztott statisztikai módszer figyelembevételével határozzák meg.
A range-finding test enables the choice of the appropriate doses.
A vizsgálat előtt elvégzett, dózisbehatároló vizsgálat lehetővé teszi a megfelelő dózisok kiválasztását.
If an organic solvent or a wetting agent is used three additional control batches of each 10 bees for the solvent or the wetting agent have to be included.
Ha szerves oldószert vagy detergenst használnak, az oldószerre vagy a detergensre nézve három további, egyenként tíz méhből álló kontrollcsoportot vizsgálnak.
A toxic standard must be included in the test series.
A tesztsorozattal párhuzamosan egy, a toxikus referenciaanyagot tartalmazó sorozatot is be kell állítani.
The preferred toxic standard is dimethoate, for which the reported contact LD50-24 h is in the range 0,10-0,30 μg a.s./bee (2).
A javasolt referenciaanyag a dimetoát, amelynek 24 órás kontakt LD50 értéke a 0,10–0,30 μg hatóanyag/egyed (2) tartományba esik.
Anaesthetised bees are individually treated by topical application.
Az elkábított méheket egyenként kezelik külsőleg a vizsgált anyaggal.
The bees are randomly assigned to the different test doses and controls.
A méheket véletlenszerűen rendelik a különböző vizsgált dózisokhoz és kontrollokhoz.
A volume of 1 μl of solution containing the test substance at the suitable concentration should be applied with a microapplicator to the dorsal side of the thorax of each bee.
Mindegyik méh torának háti részére viszik fel mikroapplikátorral a vizsgált anyagot a megfelelő koncentrációban tartalmazó oldat egy μl mennyiségét.
Other volumes may be used, if justified.
Indokolt esetben más mennyiségeket lehet alkalmazni.
After application, the bees are allocated to test cages and supplied with sucrose solutions.
A felvitelt követően a méheket elosztják a kísérleti dobozok között, és ellátják cukoroldattal.
The duration of the test is preferably 48 hours.
A vizsgálat időtartama lehetőség szerint 48 óra.
If mortality increases by more than 10 % between 24 h and 48 h, the test duration should be extended up to a maximum of 96 h provided that control mortality does not exceed 10 %.
Ha a mortalitás a 24. és a 48. óra között 10 %-nál nagyobb mértékben növekszik, a vizsgálat időtartamát maximum 96 órára meghosszabbítják, feltéve, hogy a kontrollcsoportban a mortalitás nem haladja meg a 10 %-ot.
Mortality is recorded at 4 h after dosing and thereafter at 24 h and 48 h. If a prolonged observation period is required, further assessments should be made, at 24 h intervals, to a maximum of 96 h, provided that the control mortality does not exceeding 10 %.
Feljegyzik a mortalitás alakulását a dózis bevitelét követő negyedik órában, ezt követően a 24. és a 48. órában. Ha a meghosszabbított megfigyelési időszakra van szükség, akkor a további értékeléseket 24 órás időközönként végezik el, legfeljebb a 96. óráig, feltéve, hogy a kontrollcsoportban a mortalitás nem haladja meg a 10 %-ot.
In some cases (e.g. when a test substance is expected to be of low toxicity) limit test may be performed, using 100 μg a.s./bee in order to demonstrate that the LD50 is greater than this value.
Egyes esetekben (pl. amikor valamely vizsgált anyag várható toxicitása alacsony) tűréstesztet lehet végezni, 100 μg hatóanyag/egyed dózis felhasználásával annak bemutatására, hogy az LD50 nagyobb ezen értéknél.
The same procedure should be used, including three replicate test groups for the test dose, the relevant controls, and the use of the toxic standard.
Ugyanezt az eljárást követik, beleértve a vizsgált dózisra vonatkozó három ún. párhuzamos kezelt csoportot, a megfelelő kontrollokat, valamint a toxikus referenciaanyag használatát.
If sublethal effects are observed (see Section 1.6.4) these should be recorded.
Ha szubletális hatások figyelhetők meg (lásd 1.6.4. szakasz), azokat feljegyzik.
Data should be summarised in tabular form, showing for each treatment group, as well as, control and toxic standard groups, the number of bees used, mortality at each observation time and number of bees with adverse behaviour.
Az adatokat táblázat formájában foglalják össze, mindegyik kezelt csoportnál, valamint kontroll- és toxikus referenciaanyaggal kezelt csoportnál feltüntetve a kísérlethez felhasznált méhek számát, az egyes megfigyelési időpontokban tapasztalt mortalitást, valamint a rendellenes magatartást tanúsító méhek számát.
Plot dose-response curves at each recommended observation time (i.e. 24 h, 48 h and, if relevant, 72 h, 96 h) and calculate the slopes of the curves and the median lethal doses (LD50) with 95 % confidence limits.
A hatásgörbéket mindegyik ajánlott megfigyelési időpontban (azaz a 24., 48. és adott esetben a 72. és 96. órában) grafikonon rögzítik, és a görbék meredekségét és a közepes halálos dózisokat (LD50) a 95 %-os konfidenciahatárhoz kiszámítják.
physical nature and physical-chemical properties (e.g. stability in water, vapour pressure),
az anyag fizikai természete és főbb fizikai-kémiai tulajdonságai (pl. stabilitása vízben, gőznyomás),
methods of administration of test substance, e.g. carrier solvent used, volume of test solution applied anaesthetics used,
a vizsgált anyag beadásának módszerei, pl. a hordozó oldószer, alkalmazott vizsgált oldat mennyisége, felhasznált narkotikum,
test design, e.g. number and test doses used, number of controls; for each test dose and control, number of replicate cages and number of bees per cage,
a vizsgálat körülményei, pl. felhasznált vizsgált dózisok száma, a kontrollok száma; minden egyes vizsgált dózisra és kontrollra nézve az ún. párhuzamosok és az egy dobozban lévő méhek száma,
raw data: mortality at each concentration tested at each observation time,
nyers adatok: mortalitás minden egyes vizsgált dózisra és minden egyes megfigyelési időpontra nézve,
values, with 95 % confidence limits, at each of the recommended observation times, for test substance and toxic standard,
értékek, 95 %-os konfidenciahatárhoz, az egyes javasolt megfigyelési időpontokban, a vizsgált anyagra és a toxikus referenciaanyagra nézve,
other biological effects observed or measured and any abnormal responses of the bees,
más megfigyelt vagy mért biológiai hatások és a méhek bármilyen abnormális reakciója,
any deviation from the test method procedures described here and any other relevant information.
bármilyen eltérés az itt leírt vizsgálati módszerektől, valamint bármely más releváns információ.
EPPO bulletin, vol. 23, N.1, p. 151-165.
EPPO bulletin, Vol. 23, N. 1, pp. 151-165.
Gough, H. J., McIndoe, E.C., Lewis, G.B., (1994) The use of dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees (Apis mellifera L.), 1981-1992.
Gough, H. J., McIndoe, E. C, Lewis, G. B. (1994). The use of dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees (Apis mellifera L.), 1981-1992.
This method is a replicate of the OECD TG 106, for the Determination of Soil Adsorption/Desorption, using a Batch Equilibrium Method (2000).
E módszer megfelel az OECD TG 106-nak: a talajon történő adszorpció/deszorpció meghatározása egyensúlyi rendszerben (2000).