natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The literature may also be consulted for the description and illustration of embryonic stages (2)(5)(10)(11).
Az embrionális fázisok leírását és illusztrációját illetően még a szakirodalom is felhasználható (2) (5) (10) (11).
Hatching and survival
A peték kikelése és túlélése
Observations on hatching and survival should be made at least once daily and numbers recorded.
A kikelés és túlélés folyamatait naponta egyszer meg kell figyelni és a tapasztalt számadatokat fel kell jegyezni.
It may be desirable to make more frequent observations at the beginning of the test (e.g. each 30 minutes during the first three hours), since in some cases, survival times can be more relevant than only the number of deaths (e.g. when there are acute toxic effects).
A vizsgálat elején hasznos lehet az ennél gyakoribb megfigyelések végzése (pl. az első három órában félóránként), mivel egyes esetekben a túlélési idők hossza fontosabb lehet az elhullások számánál (pl. amennyiben akut toxikus hatások figyelhetők meg).
Dead embryos and larvae should be removed as soon as observed since they can decompose rapidly.
Az elpusztult embriókat és lárvákat észlelésükkor azonnal el kell távolítani, mert gyorsan bomlásnak indulnak.
Extreme care should be taken when removing dead individuals not to knock or physically damage adjacent eggs/larvae, these being extremely delicate and sensitive.
Az elhullott egyedek kiemelésekor különös gonddal kell kerülni a szomszédos embriók/lárvák megütését, vagy fizikai megsértését, mivel e szervezetek igen sérülékenyek és érzékenyek.
Criteria for death vary according to life stage:
Az elhullás kritériumai az életciklus szakaszától függően változnak:
for eggs: particularly in the early stages, a marked loss of translucency and change in colouration, caused by coagulation and/or precipitation of protein, leading to a white opaque appearance,
peték: különösen a korai szakaszokban az áttetszőség jelentős csökkenése és színbeli elváltozás, amit a fehérjék koagulációja és/vagy kicsapódása okoz, ami fehér opálos színt eredményez,
for embryos: absence of body movement and/or absence of heart beat and/or opaque discoloration in species whose embryos are normally translucent,
embriók: a testmozgás és/vagy szívverés hiánya, és/vagy opálos elszíneződés olyan fajoknál, amelyek embriói normál körülmények között áttetszők,
for larvae: immobility and/or absence of respiratory movement and/or absence of heart-beat and/or white opaque colouration of central nervous system and/or lack of reaction mechanical stimulus.
lárvák: mozdulatlanság és/vagy légzőmozgások és/vagy a szívverés hiánya, és/vagy a központi idegrendszer opálos elszíneződése és/vagy reakció elmaradása fizikai ingerekre.
Abnormal appearance
Rendellenes küllem
The number of larvae showing abnormality of body form and/or pigmentation, and the stage of yolk-sac absorption, should be recorded at adequate intervals depending on the duration of the test and the nature of the abnormality described.
A vizsgálat időtartamától és a leírt rendellenesség jellegétől függően megfelelő időközönként fel kell jegyezni a rendellenes testformájú és/vagy pigmentációjú lárvák számát, illetve a szikzacskó felszívódásának mértékét.
It should be noted that abnormal embryos and larvae occur naturally and can be of the order of several per cent in the control(s) in some species.
Meg kell jegyezni, hogy rendellenesen fejlődött embriók és lárvák természetes körülmények között is előfordulnak, és egyes fajok esetében a kontrollcsoportban mennyiségük akár néhány százalékot is elérhet.
Abnormal animals should only be removed from the test vessels on death.
A rendellenesen fejlődött állatokat csak elpusztulásukkor kell a kísérleti edényből eltávolítani.
Abnormal behaviour
Rendellenes viselkedés
Abnormalities, e.g. hyperventilation, uncoordinated swimming, and atypical quiescence should be recorded at adequate intervals depending on the duration of the test.
A rendellenes viselkedésmódokat – pl. hiperventilláció, koordinálatlan úszásmód és a fajra nem jellemző nyugalom – a vizsgálat teljes időtartamától függő időközönként fel kell jegyezni.
These effects, although difficult to quantify, can, when observed, aid in the interpretation of mortality data, i.e. provide information on the mode of toxic action of the substance.
Bár e hatásokat nehéz számszerűsíteni, de amennyiben megfigyelhetők, akkor segíthetnek a mortalitási adatok értelmezésében, azaz információkkal szolgálnak az anyag toxikus hatásmechanizmusáról.
At the end of the test, measurement of individual lengths is recommended; standard, fork or total length may be used.
A vizsgálat végén ajánlott az egyedi hosszúságok megmérése: szabványos, villás elágazású vagy teljes hosszúságot lehet mérni.
If however, caudal fin rot or fin erosion occurs, standard lengths should be used.
Amennyiben azonban a farokuszonyon rothadás vagy kimaródás, pusztulás jelei fordulnak elő, akkor a szabványos hosszakat kell használni.
Generally, in a well-run test, the coefficient of variation for length among replicates in the controls should be ≤ 20 %.
Altalánosságban, egy jól végrehajtott vizsgálatban a párhuzamos kontrollok között előforduló hosszúságeltérések együtthatója < 20 % kell hogy legyen.
Weight
A lárvák tömege
These observations will result in some or all of the following data being available for statistical analysis:
E megfigyelések eredménye az alábbi adatok némelyike vagy mindegyike, amelyek a statisztikai elemzések céljára rendelkezésre állnak majd:
cumulative mortality,
kumulált mortalitás,
numbers of healthy larvae at end of test,
az egészséges lárvák száma a vizsgálat végén,
time to start of hatching and end of hatching (i.e. 90 % hatching in each replicate),
a kikelés kezdetéig és végéig eltelt idő (azaz 90 %-os kikelés minden ismétlésben),
numbers of larvae hatching each day,
a napi lárvakikelések száma,
length (and weight) of surviving animals at end of the test,
a vizsgálat végén túlélő állatok hosszúsága (és tömege),
numbers of larvae that are deformed or of abnormal appearance,
a deformált vagy rendellenes küllemű lárvák száma,
numbers of larvae exhibiting abnormal behaviour.
a rendellenes viselkedésmódot mutató lárvák száma.
If LOEC/NOECs are to be estimated, it will be necessary for variations to be analysed within each set of replicates using analysis of variance (ANOVA) or contingency table procedures.
A LOEC és NOEC értékeinek becsléséhez szükséges a párhuzamos eredmények közti eltérések analízise (ANOVA) vagy a kontingenciatáblázatos módszerek alkalmazása.
In order to make a multiple comparison between the results at the individual concentrations and those for the controls, Dunnett's method may be found useful (12)(13).
Az egyedi koncentrációszintek és a kontrollcsoport szintjei esetében kapott eredmények közötti összetett összehasonlítás érdekében hasznosnak bizonyulhat a Dunnett-módszer (12) (13).
Other useful examples are also available (14)(15).
További hasznos példák is rendelkezésre állnak (14) (15).
The size of the effect detectable using ANOVA or other procedures (i.e. the power of the test) should be calculated and reported.
Ki kell számolni és jegyzőkönyvezni kell az ANOVA vagy más eljárások használatával feltárható hatások (azaz a vizsgálat teljesítőképességének) mértékét.
If LC/ECxs are to be estimated, (a) suitable curve(s), such as the logistic curve, should be fitted to the data of interest using a statistical method such as least squares or non-linear least squares.
Amennyiben az LC/ECx értékeket kell megbecsülni, akkor megfelelő – pl. logisztikai – görbé(ke)t kell a vizsgált adatokhoz illeszteni olyan statisztikai módszerek használatával, mint amilyen a legkisebb négyzetek módszere vagy a nem lineáris legkisebb négyzetek módszere.
The curve(s) should be parameterised so that the LC/ECx of interest and its standard error can be estimated directly.
A görbé(ke)t úgy kell paraméterezni, hogy az érdeklődésre számot tartó LC/ECx értéket és annak standard hibáját közvetlenül lehessen megbecsülni.
This will greatly ease the calculation of the confidence limits around the LC/ECx.
Ez nagymértékben megkönnyíti az LC/ECx körüli konfidencia-határértékek kiszámítását.
Unless there are good reasons to prefer different confidence levels, two-sided 95 % confidence should be quoted.
Kivéve, ha nyomós érvek szólnak a különböző konfidenciaszintek alkalmazása mellett, akkor kétoldali 95 %-os konfidenciaszintet célszerű meghatározni.
The fitting procedure should preferably provide a means for assessing the significance of the lack of fit.
Az illeszkedési eljárásnak lehetőleg olyannak kell lennie, hogy egyben biztosítsa az illeszkedés hiánya szignifikáns becslésének eszközét.
Graphical methods for fitting curves can be used.
A görbék illesztésére grafikus módszerek is felhasználhatók.
Regression analysis is suitable for all observations listed in Section 1.7.5.6.
A regressziós elemzés az 1.7.5.6. szakaszban felsorolt összes megfigyelés elemzésére megfelelő.
The results should be interpreted with caution where measured toxicant concentrations in test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method.
Az eredményeket kellő óvatossággal kell értelmezni, amennyiben a kísérleti oldatokban mért mérgezőanyag-koncentrációk az analitikai módszer észlelési határához közel lévő szinteket érnek el.
The interpretation of results for concentrations above the water solubility of the substance should also be made with care.
A vizsgált anyag vízoldhatóságát meghaladó koncentrációértékekre vonatkozó eredmények értelmezésekor kellő óvatossággal kell eljárni.
THE TEST REPORT
VIZSGÁLATI JELENTÉS
chemical identification data, including purity and analytical method for quantification of the tests substance where appropriate.
a kémiai azonosítási adatok, beleértve a kémiai tisztaságot és – adott esetben – a vizsgált anyag mennyiségének számszerűsítésére szolgáló analitikai módszer.
scientific name, strain, numbers of parental fish (i.e. how many females were used for providing the required numbers of eggs in the test), source and method of collection of the fertilised eggs and subsequent handling.
tudományos név, törzs, az ikrás nőstények száma (azaz hány nőstényt használtak a kísérlethez szükséges peteszám előállításához), szállító, valamint a megtermékenyített peték begyűjtésének módszere és az ezt követő kezelése.
test procedure used (e.g. semi-static or flow-through, time period from fertilisation to start the test, loading, etc),
az alkalmazott vizsgálati eljárás/módszer (pl. félstatikus vagy átfolyási, a megtermékenyítéstől a vizsgálat elkezdéséig eltelt idő, betelepítés stb.),
photoperiod(s),
megvilágítási periódus(ok),
test design (e.g. number of test chambers and replicates, number of embryos per replicate),
a vizsgálat kialakítása (pl. a tesztedények és párhuzamosok száma, az embriók létszáma a párhuzamos edényekben),
the nominal test concentrations, the measured values, their means and their standard deviations in the test vessels and the method by which these were attained and, if the test substance is soluble in water at concentrations below those tested, evidence should be provided that the measurements refer to the concentrations of the test substance in solution,
a névleges kísérleti koncentrációk, a mért értékek és azok átlaga és szórása a tesztedényekben, az ilyen adatok megszerzésének módszerei és – amennyiben a vizsgált anyag vízben oldható a vizsgált koncentrációértékek szintje alatt is – bizonyítékok annak alátámasztására, hogy a mérések valóban az oldatban lévő vizsgált anyag koncentrációszintjeire vonatkoznak,
dilution water characteristics: pH, hardness, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), total organic carbon, suspended solids, salinity of the test medium (if measured) and any other measurements made,
a hígítóvíz jellemzői: pH-érték, keménység, hőmérséklet, oldottoxigén-koncentráció, maradványklórszintek (amennyiben mérik), összes szervesszén-tartalom, szuszpendált szilárd anyagok, a vizsgált közeg sótartalma (amennyiben mérik) és bármely más mérési adat,
water quality within test vessels: pH, hardness, temperature and dissolved oxygen concentration.
vízminőség a tesztedényekben: pH-érték, keménység, hőmérséklet és az oldottoxigén-koncentráció.
results from any preliminary studies on the stability of the test substance,
a vizsgált anyag stabilitására vonatkozó előzetes vizsgálatok eredményei,
evidence that controls met the overall survival acceptability standard of the test species (Appendices 2 and 3),
annak bizonyítása, hogy a kontrollok megfelelnek a vizsgált fajok teljes túlélési elfogadhatósági normáinak (lásd 2. és 3. függelék),
data on mortality/survival at embryo and larval stages and overall mortality/survival,
adatok az embrió és lárva fejlődési fázisok mortalitási/túlélési arányairól és az összesített mortalitási/túlélési arányokról,
days to hatch and numbers hatched,
a kikelésig eltelt napok és a kikelt példányok száma,
data for length (and weight),
hossz-(és tömeg-) adatok,
incidence and description of morphological abnormalities, if any,
az esetleges morfológiai rendellességek előfordulása és jellemzése,
incidence and description of behavioural effects, if any,
az esetleges viselkedésbeli eltérések előfordulása és leírása,
statistical analysis and treatment of data,
az adatok statisztikai elemzése és kezelése,
for tests analysed using ANOVA, the lowest observed effect concentration (LOEC) at p=0,05 and the no observed effect concentration (NOEC) for each response assessed, including a description of the statistical procedures used and an indication of what size of effect could be detected,
az ANOVA segítségével elemzett vizsgálatokra nézve a legalacsonyabb megfigyelhető hatást okozó koncentráció (LOEC) értéke p = 0,05-nél és megfigyelhető hatást nem okozó koncentráció (NOEC) értéke minden egyes kiértékelt reakcióra nézve, beleértve a felhasznált statisztikai módszer leírását és annak jelzését, hogy milyen mértékű hatást sikerült feltárni,
for tests analysed using regression techniques, the LC/ECx and confidence intervals and a graph of the fitted model used for its calculation,
a regressziós analízissel elemzett vizsgálatok esetében az LC/ECx értéke, a konfidencia-intervallumok és a számításhoz felhasznált illesztettmodell grafikonja,
explanation for any deviation from this testing method.
a leírt vizsgálati módszertől tett esetleges eltérések magyarázata.
Kristensen P., (1990) Evaluation of the Sensitivity of Short Term Fish Early Life Stage Tests in Relation to other FELS Test Methods.
KRISTENSEN P. (1990). Evaluation of the Sensitivity of Short Term Fish Early Life Stage Tests in Relation to other FELS Test Methods.
Laale H.W., (1977) The Biology and Use of the Zebrafish (Brachydanio rerio) in Fisheries Research.
LAALE H. W. (1977).
Mc Clave J.T., Sullivan J.H. and Pearson J.G., (1980) Statistical Analysis of Fish Chronic Toxicity Test Data.
Mc Clave J. T., Sullivan J. H. and Pearson J. G. (1980). Statistical Analysis of Fish Chronic Toxicity Test Data.
Report EPS 1/RM/28, December 1992, p. 81.
Report EPS l/RM/28, December 1992, 81 pp.
Dave G. and Xiu R., (1991) Toxicity of Mercury, Nickel, Lead and Cobalt to Embryos and Larvae of Zebrafish, Brachydanio rerio.
Dave G. and Xiu R. (1991).
Arch. of Environmental Contamination and Toxicology, 21, p. 126-134.
Toxicity of Mercury, Nickel, Lead and Cobalt to Embryos and Larvae of Zebrafish, Brachydanio reri o. Arch. of Environmental Contamination and Toxicology, 21, pp. 126-134.
FRESHWATER
ÉDESVÍZI FAJOK
Rainbow trout (9)(16)
Szivárványos pisztráng (9) (16)
Zebrafish (7)(17)(18)
Zebrahal (7) (17) (18)
Common carp (8)(19)
Közönséges ponty (8) (19)
Japanese ricefish/Medaka (20)(21)
Japán rizshal/Medaka (20) (21)
Fathead minnow (8)(22)
Nagyfejű cselle (8) (22)
Examples of other well-documented species which have also been used
Példák más, jól dokumentált és tesztelésre használható halfajokra
SALTWATER
TENGERI
Tidewater silverside (23)(24)(25)
Tidewater silverside (nincs magyar neve) (23) (24) (25)
Sheepshead minnow (23)(24)(25)
Tarka fogasponty (23) (24) (25)
GUIDANCE ON PERFORMANCE OF A TOXICITY TEST ON EMBRYOS AND SAC-FRY OF ZEBRAFISH (BRACHYDANIO RERIO)
ÚTMUTATÓ ZEBRAHAL- (BRACHYDANIO RERIO) EMBRIÓK ÉS SZIKZACSKÓS LÁRVÁK TOXICITÁSI VIZSGÁLATÁNAK VÉGREHAJTÁSÁHOZ
The zebrafish originates from the Coromandel coast of India where it inhabits fast-flowing streams.
A zebrahalak India keleti, koromandel partján, gyorsfolyású patakokban élnek.
It is a common aquarium fish of the carp family, and information about procedures for its care and culture can be found in standard reference books on tropical fish.
A pontyfélék családjához tartozó közönséges akváriumi halak, amelyek tartásával és életkörülményeivel kapcsolatos információk bármelyik, a trópusi halakkal foglalkozó szakkönyvben megtalálhatók.
Its biology and use in fishery research have been reviewed by Laale (1).
Biológiájukat és alkalmazásukat a halászati kutatásban Laale ismertette.
The fish rarely exceeds 45 mm in length.
A zebrahal csak ritkán hosszabb 45 mm-nél.
The body is cylindrical with 7-9 dark-blue horizontal silvery stripes.
Hengeres testét 7–9 fémes-sötétkék vízszintes, ezüstösen csillogó csík díszíti.
These stripes run into the caudal and anal fins.
E mintázat a farokúszón és a farok alatti úszón folytatódik.
The back is olive-green.
A hal háta sárgászöld színű.
Males are slimmer than females.
A hímek karcsúbbak a nőstényeknél.
Females are more silvery and the abdomen is distended, particularly prior to spawning.
A nőstények ezüstösebbek és hasuknál duzzadtabbak, különösen ívás előtt.
Adult fishes are able to tolerate large fluctuations in temperature, pH and hardness.
A felnőtt halak a víz hőmérséklete, pH-értéke és keménységi foka tekintetében jelentős ingadozásokat képesek elviselni.
However, in order to get healthy fish which produce eggs of good quality, optimal conditions should be provided.
Az egészséges, jó minőségű ikrákat rakó halak tartásához azonban optimális körülményeket kell biztosítani.
During spawning the male pursues and butts the female, and as the eggs are expelled they are fertilised.
A szaporodási időszakban a hím üldözi és fejével bökdösi a nőstényt, és a kipréselődött ikrákat azonnal meg is termékenyíti.
The eggs, which are transparent and non-adhesive, fall to the bottom where they may be eaten by the parents.
Az átlátszó és nem tapadós ikrák a vízfenékre hullanak alá, ahol szüleik olykor meg is eszik őket.
Spawning is influenced by light.
A fény befolyásolja a halak ívását.
If the morning light is adequate, the fish usually spawns in the early hours following daybreak.
Amennyiben a reggeli fény megfelelő, a halak rendszerint a hajnalt követő korai órákban rakják le ikráikat.
A female can produce batches of several hundreds of eggs at weekly intervals.
A nőstény heti rendszerességgel alkalmanként több száz ikra lerakására képes.
CONDITIONS OF PARENTAL FISH, REPRODUCTION AND EARLY-LIFE STAGES
A TENYÉSZHALAK TARTÁSÁNAK, SZAPORÍTÁSÁNAK ÉS A KORAI FEJLŐDÉSI STÁDIUMOKBAN LEVŐ EGYEDEK TARTÁSÁNAK FELTÉTELEI
Select a suitable number of healthy fish and keep these in suitable water (e.g. Annex 4) for at least two weeks prior to the intended spawning.
Megfelelő számú egészséges halat kell kiválasztani, és megfelelő minőségű vízben kell tartani (lásd 4. függelék) a tervezett ikráztatás előtt legalább két hétig.
The group of fish should be allowed to breed at least once before producing the batch of eggs used in the test.
Hagyni kell, hogy a halak csoportjának tagjai a vizsgálat során használandó ikrák lerakása előtt legalább egyszer párosodjanak.
The density of fish during this period should not exceed 1 gram of fish per litre.
A halpopuláció sűrűsége ezen időszakban nem haladhatja meg az 1 gramm hal/liter fajlagos értéket.
Regular changes of water or the use of purification systems will enable the density to be higher.
Rendszeres vízcsere vagy víztisztító rendszer használata esetén ennél magasabb egyedsűrűség is lehetséges.
The temperature in the holding tanks should be maintained at 25 ± 2 oC.
A tárolótartályokban a hőmérsékletet 25 ± 2 oC-on kell tartani.
Eight females and 16 males are placed in a tank containing 50 litres of dilution water, shielded from direct light and left as undisturbed as possible for at least 48 hours.
Nyolc nőstényt és 16 hímet 50 liter hígítóvizet tartalmazó, a közvetlen fénysugárzástól védett és legalább 48 óráig zavartalanul hagyott tartályban kell tartani.
The spawning tray will prevent the fish from eating the eggs and at the same time permit an easy collection of the eggs.
Az ívatótálca használatával megakadályozható, hogy a halak felfalják az ikrákat, ugyanakkor az ikrák összegyűjtése is egyszerűbb.
The group of fish should have spawned at least once before the spawning from which eggs are used for testing.
A vizsgálati célra szánt ikrák lerakása előtt a halakat legalább egyszer ívatni kell.
Five to 10 male and female fish are housed individually at least two weeks prior to the intended spawning.
A tervezett ívatás előtt legalább két hétig kell 5–10 nőstényt, illetve hímet egyedenként elkülönítve tartani.
After 5-10 days, the abdomens of the females will be distended and their genital papillae visible.
5–10 nap elteltével a nőstények hasa kezd megduzzadni, és az ivarnyílás környéke kidudorodik.
The water temperature is gradually increased one degree higher than the acclimatisation temperature.
A víz hőmérsékletét fokozatosan egy fokkal az akklimatizációs hőmérséklet fölé kell emelni.
The light is turned off and the tank is left as undisturbed as possible.
A fény kikapcsolása után a lehető legnagyobb nyugalmat kell biztosítani a tartály környékén.
If larger batches of eggs are needed than can be obtained from one female, a sufficient number of spawning tanks may be set-up in parallel.
Amennyiben az egy nősténytől begyűjthetőnél több ikrára van szükség, akkor párhuzamosan több ikráztatótartályt lehet működtetni.
By recording the reproduction success of the individual females prior to the test (size of batch and quality), those females with highest reproduction success may be selected for breeding.
Az egyes nőstényeknek a vizsgálat megkezdése előtti, korábbi szaporodási sikerét (az ikrák száma és minősége alapján) feljegyezve ki lehet választani a tenyésztési szempontból a legsikeresebbnek ígérkező példányokat.
The eggs should be transferred to the test vessels by means of glass tubes (inner diameter not less than 4 mm) provided with a flexible suction bulb.
Az ikrákat gumiballonnal felszerelt (legalább 4 mm belső átmérőjű) üvegcsövekben kell a tesztedényekbe áthelyezni.
The amount of water accompanying the eggs on their transfer should be as small as possible.
Az ikrákkal együtt áthelyezett víz mennyiségének a szállításkor a lehető legkisebb kell lennie.
The eggs are heavier than water and sink out of the tube.
Az ikrák sűrűsége nagyobb, mint a vízé, tehát az ikrák lesüllyednek, és így kikerülnek a csőből.
Care should be taken to prevent eggs (and larvae) coming into contact with the air.
Ügyelni kell arra, hogy az ikrákat (és lárvákat) ne érje levegő.
Also the development rate and the rate of hatching vary from one batch to another.
A fejlődés üteme és az ikrák kikelési aránya is adagonként változó.
The successfully fertilised eggs and the yolk sac larvae survive well, normally above 90 %.
A sikeresen megtermékenyített ikrák és a szikzacskós lárvák túlélési aránya jó, általában meghaladja a 90 %-ot.
At 25 oC the eggs will hatch three-five days after fertilisation and the yolk sac will be absorbed approximately 13 days after fertilization.
25 oC-on az ikrák a megtermékenyítést követő 3–5 napon belül kikelnek, a szikzacskó pedig az ivadékok a megtermékenyítést követő mintegy 13 napon belül felszívódik.
The embryonic development has been well defined by Hisaoka and Battle (2).
Az embrionális fejlődés folyamatát Hisaoka és Battle írta le részletesen (2).
Due to the transparency of the eggs and post-hatch larvae, the development of the fish may be followed and the presence of malformations may be observed.
Az ikrák és az éppen kikelt lárvák átlátszósága miatt a halak fejlődése jól nyomon követhető és a deformált változatok jelenléte megfigyelhető.