natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For light measuring instruments calibrated in lux, an equivalent range of 6000 to 10000 lx is acceptable.
Lux-ban kalibrált fénymérő műszerek esetében elfogadható egy ezzel egyenértékű, 6000-től 10000 lx-ig terjedő tartomány.
The light intensity could be obtained using four to seven 30 W fluorescent lamps of the universal white type (colour temperature of approximately 4300 K), at a distance of 0,35 m from the algal culture,
A fényerő az algatenyészettől 0,35 méteres távolságban elhelyezett négy–hét, 30 W-os, egyen- és váltakozó áramú, fehér (körülbelül 4300 K színhőmérsékletű) fénycső segítségével érhető el.
Cell density measurements should be made using a direct counting method of living cells, e.g. a microscope with counting chambers.
A sejtsűrűség-méréseket az élő sejtek számára kifejlesztett, közvetlen számolási eljárásokkal, például mikroszkópos számlálókamra, kell végrehajtani.
However, other procedures (photometry, turbidimetry, ...) may be used if sufficiently sensitive and if shown to be sufficiently well correlated with cell density.
Használhatók más eljárások is (fotometria, turbidimetria stb.), ha azok elegendően érzékenyek, és bizonyítottan kielégítően korrelálnak a sejtsűrűséggel.
Test organisms
Vizsgált organizmusok
It is suggested that the species of green algae used be a fast-growing species that is convenient for culturing and testing.
Ajánlatos, hogy a vizsgálathoz használt zöldalgafajták könnyen tenyészthető és vizsgálható, gyorsan szaporodó fajták legyenek.
The following species are preferred:
A következők az előnyben részesített fajták:
Selenastrum capricornutum, e.g. ATCC 22662 or CCAP 278/4,
Selenastrum capricornutum, például ATCC 22662 vagy CCAP 278/4,
Scenedesmus subspicatus, e.g. 86.81 SAG,
Scenedesmus subspicatus, például 86.81 SAG.
SAG Collection of algal culture (Gottingen, F.R.G.)
SAG Collection of algal culture (Göttingen, F.R.G.)
If other species are used, the strain should be reported.
Ha más fajtákat használnak, meg kell adni a törzset.
The concentration range in which effects are likely to occur is determined on the basis of results from range-finding tests.
Az előzetes vizsgálatok eredményei alapján kell meghatározni azt a koncentrációtartományt, amelyben a hatások valószínűleg bekövetkeznek.
The two measures of growth (biomass and growth rate) may result in widely disparate measures of growth inhibition; both should be used in the range finding test to ensure that the geometric progression of concentrations will allow estimation of both the EbC50 and the ErC50.
A két növekedési paraméter (biomassza és növekedési ráta) a növekedésgátlás nagymértékben eltérő értékeit eredményezheti; az előzetes vizsgálatban mindkettőt használni kell annak biztosítására, hogy a koncentrációk mértani sorozata lehetővé tegye mind az EbC50, mind az ErC50 megállapítását.
Initial cell density
Kezdeti sejtsűrűség
It is recommended that the initial cell density in the test cultures be approximately 104 cells/ml for Selenastrum capricornutum and Scenedesmus subspicatus.
Ajánlatos, hogy körülbelül 104 sejt/ml legyen a vizsgált tenyészetekben a kezdeti sejtsűrűség Selenastrum capricornutum és Scenedesmus subspicatus esetében.
When other species are used the biomass should be comparable.
Amikor más fajtákat használnak, a biomasszának hasonlónak kell lennie.
Concentrations of test substance
A vizsgált anyag koncentrációi
For the test, at least five concentrations are made up in a geometric series at a concentration ratio not exceeding 2,2.
A vizsgálathoz legalább 5 koncentrációt kell mértani sorba állítani, 2,2-t nem meghaladó koncentrációarányban.
The lowest concentration tested should have no observed effect on the growth of the algae.
A vizsgált legalacsonyabb koncentrációnak nem szabad megfigyelt hatással lennie az alga növekedésére.
The highest concentration tested should inhibit growth by at least 50 % relative to the control and, preferably, stop growth completely.
A vizsgált legnagyobb koncentrációnak a kontrollhoz viszonyítva legalább 50 %-kal kell gátolnia, és lehetőleg teljesen meg kell gátolnia a növekedést.
Replicates and controls
Ismétlések és kontrollok
The test design should include three replicates at each test concentration.
A vizsgálat tervének három ismétlést kell tartalmaznia minden egyes vizsgált koncentrációnál.
Three controls without test substance are run and, if relevant, three controls containing the auxiliary substance are also run.
Három kontrollt kell vizsgálni a vizsgált anyag nélkül, és ha van ilyen, három, a segédanyagot tartalmazó kontrollt is kell vizsgálni.
If justified, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Ha indokolt, a vizsgálati terv megváltoztatható a koncentrációk számának növelésével és a koncentrációnkénti ismétlések számának csökkentésével.
Test cultures containing the desired concentrations of test substance and the desired quantity of algal inoculum are prepared by adding aliquots of stock solutions of the test substance to suitable amounts of algal pre-cultures (see Appendix 1).
El kell készíteni a vizsgált anyagot a kívánt koncentrációkban, valamint a kívánt mennyiségű algaoltóanyagot tartalmazó vizsgált tenyészeteket a vizsgált anyag törzsoldatai aliquot részeinek hozzáadásával az alkalmas mennyiségű alga előtenyészetekhez (lásd az 1. függeléket).
The culture flasks are shaken and placed in the culturing apparatus.
Fel kell rázni a lombikokat, és el kell helyezni azokat a tenyésztőkészülékbe.
The algal cells are kept in suspension by shaking, stirring or bubbling with air, in order to improve gas exchange and reduce pH variation in the test solutions.
Az algasejteket szuszpenzióban kell tartani rázassál, keveréssel vagy levegőztetéssel a gázcsere javítására és a pH-változás csökkentésére.
The cultures should be maintained at a temperature in the range of 21 to 25 oC, controlled at ± 2 oC.
A tenyészeteket 21 és 25 oC közötti hőmérséklet-tartományban kell tartani ± 2 oC eltérésen belül szabályozva.
The cell density in each flask is determined at least at 24, 48 and 72 hours after the start of the test.
Minden egyes lombikban, a vizsgálat kezdete után legalább a 24., 48. és 72. órában, meg kell határozni a sejtsűrűséget.
Filtered algal medium containing the appropriate concentration of the test chemical is used to determine the background when using cell density measurements other than direct counting methods.
A vizsgált anyag megfelelő koncentrációját tartalmazó szűrt algatáptalajt kell használni a háttér meghatározására, amikor közvetlen számlálási módszerektől eltérő sejtsűrűségméréseket használnak.
The pH is measured at the beginning of the test and at 72 hours.
A pH-t a vizsgálat kezdetén és a 72. órában kell mérni.
The pH of the controls should not normally deviate by more than 1,5 units during the test.
A kontrollok pH-jának általában nem szabad 1,5 egységnél nagyobb mértékben eltérnie a vizsgálat során.
Testing volatile substances
Illékony anyagok vizsgálata
There is to date no generally accepted way to test volatile substances.
A mai napig nem létezik általánosan elfogadott módszer az illékony anyagok vizsgálatára.
When a substance is known to have a tendency to vaporise, closed test flasks with increased head-space may be used.
Amikor valamilyen anyagról ismert, hogy hajlamos az elpárolgásra, megnövelt felső szabadterű, zárt vizsgálólombikok használhatók.
The possibility of shortage of CO2 should be considered when calculating the head-space of the closed flasks.
A zárt lombikok felső szabad terének kiszámításakor figyelembe kell venni a CO2-hiány kialakulásának lehetőségét.
Variations to this method have been proposed (see reference (4)).
E módszer megváltoztatásához már léteznek javaslatok (lásd a szakirodalom (4) pontját).
Attempts should be made to determine the amount of the substance which remains in solution, and extreme caution is advised when interpreting results of tests with volatile chemicals using closed systems.
Meg kell kísérelni az oldatban maradó anyagmennyiség meghatározását; rendkívüli óvatosság ajánlatos a zárt rendszerek segítségével illékony kémiai anyagokkal végrehajtott vizsgálatok eredményeinek értelmezésekor.
Using the procedures described in this method, a limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Az e módszerben leírt eljárások segítségével végrehajtható a határérték-vizsgálat 100 mg/l koncentrációval annak bemutatására, hogy az EC50 nagyobb, mint e koncentráció.
The limit test should be performed at least in triplicate, with the same number of controls.
A határérték-vizsgálatot legalább háromszor kell végrehajtani, azonos számú kontrollokkal.
The two measures of growth (biomass and growth rate) should be used for the limit test.
A két növekedési paramétert (biomassza és növekedési ráta) kell felhasználni a határértékvizsgálathoz.
If, in a limit test, a mean decrease of 25 % or more is found in either biomass or growth rate between the limit test and the control, a full test should be carried out.
Ha valamely határérték-vizsgálatban 25 %-os vagy ennél nagyobb közepes csökkenést állapítanak meg a biomasszában vagy a növekedési rátában a határérték-vizsgálat és a kontroll között, a teljes vizsgálatot végre kell hajtani.
The measured cell density in the test cultures and controls are tabulated together with the concentrations of the test substance and the times of measurements.
Táblázatban kell összefoglalni a vizsgált tenyészetekben és kontrollokban mért sejtsűrűséget a vizsgált anyag koncentrációival és a mérések időpontjaival együtt.
The mean value of the cell density for each test substance concentration and for the controls is plotted against time (0-72 h) to produce growth curves.
A növekedési görbék létrehozásához fel kell vinni az idő (0–72 h) függvényében az egyes vizsgálatianyagkoncentrációkhoz és a kontrollokhoz megállapított sejtsűrűség átlagértékét.
To determine the concentration/effect relationship, the two following approaches should be used.
A koncentráció/hatás összefüggés meghatározására a következő két megközelítést kell használni.
Some substances can stimulate the growth at low concentrations.
Néhány anyag alacsony koncentrációkban stimulálhatja a növekedést.
Only data points indicating inhibition between 0 and 100 % should be considered.
Csak a 0 és 100 % közötti növekedésgátlást jelző adatokat kell figyelembe venni.
COMPARISON OF AREAS UNDER THE GROWTH CURVES
A NÖVEKEDÉSI GÖRBÉK ALATTI TERÜLETEK ÖSSZEHASONLÍTÁSA
The area between the growth curves and the horizontal line N = N0 may be calculated according to the formula:
A növekedési görbék és az N = N0 vízszintes vonal közötti terület a következő képletnek megfelelően számítható ki:
A area
A terület,
number of cells/ml at time t0 (beginning of the test),o,
sejtek száma/ml a t0 időpontban (a vizsgálat kezdetén),
measured number of cells/ml at t1
mért sejtszám/ml a t1 időpontban,
measured number of cells/ml at time
mért sejtszám/ml a tn időpontban,
time of first measurement after beginning of test
az első mérés ideje a vizsgálat kezdete után,
time of nth measurement after beginning of test.
az n-edik mérés ideje a vizsgálat kezdete után,
n number of measurements taken after the beginning of the test.
n a vizsgálat kezdete után végrehajtott mérések száma.
The percentage inhibition of the cell growth at each test substance concentration (IA) is calculated according to the formula:
Az egyes vizsgálatianyag-koncentrációk mellett a növekedésgátlás százalékos arányát (IA) a következő képletnek megfelelően lehet kiszámítani:
area between the control growth curve and the horizontal line N = No.
a kontroll növekedési görbe és az N=N0 vízszintes vonal közötti terület,
area between the growth curve at the concentration t and the horizontal line N = No.
a t koncentráció melletti növekedési görbe és az N=N0 vízszintes vonal közötti terület.
values are plotted on semilogarithmic paper or on semilogarithmic probit paper against the corresponding concentrations. If plotted on probit paper, the points are fitted by a straight line, either by eye or by a computed regression.
Az IA értékeket a megfelelő koncentrációk függvényében fel kell vinni egy féllogaritmusos vagy féllogaritmusos probit papírra.
The EC50 is estimated from the regression line by reading off the concentration that is equivalent to a 50 % inhibition (IA = 50 %). To denote this value unambiguously in relation to this method of calculation, it is proposed to use the symbol EbC50.
Ha probit papírra vittük fel a pontokat, azokra egyenes vonalat kell illeszteni szemmel vagy számított regresszió alapján.
It is essential that the EbC50 is quoted with the appropriate exposure period, e.g. EbC50 (0-72h).
A regressziós egyenesből kell megbecsülni az EC50-et egy, az 50 %-os gátlással (IA = 50 %) egyenértékű koncentráció leolvasásával. Ahhoz, hogy ezen érték egyértelműen legyen jelezve ezen számítási módszerrel összefüggésben, ajánlatos az EbC50 szimbólum használata. Lényeges, hogy az EbC50-et a megfelelő expozíciós időtartammal együtt adják meg, például EbC50 (0–72 h).
COMPARISON OF GROWTH RATES
NÖVEKEDÉSI RÁTÁK ÖSSZEHASONLÍTÁSA
The average specific growth rate (μ) for exponentially growing cultures can be calculated as
Az exponenciálisan növekedő tenyészetek átlagos, specifikus növekedési rátája (μ) a következőképpen számítható ki:
where to is the time at the beginning of the test.
ahol t0 a vizsgálat kezdete.
Alternatively, the average specific growth rate may be derived from the slope of the regression line in a plot of ln N versus time.
Az átlagos specifikus növekedési ráta az idő függvényében felvitt ln N görbén a regressziós egyenes meredekségéből határozható meg.
The percentage inhibition of specific growth rate at each test substance concentration (Iμt) is calculated according to the formula:
A specifikus növekedési ráta egyes vizsgálatianyag-koncentrációk melletti százalékos gátlását (Iμt) a következő képlet segítségével kell kiszámítani:
mean control specific growth rate
a kontroll átlagos specifikus növekedési rátája,
mean specific growth rate for the test concentration t
a t vizsgált koncentrációhoz tartozó átlagos specifikus növekedési ráta.
The percentage reduction in average specific growth rate at each test substance concentration compared to the control value is plotted against the logarithm of the concentration.
Fel kell vinni az átlagos specifikus növekedési ráta minden egyes vizsgált anyagkoncentráció melletti százalékos csökkenését a kontrollértékkel összehasonlítva a koncentráció logaritmusának függvényében.
The EC5o may be read from the resulting graph.
Az így kapott görbéből leolvasható az EC50.
To denote unambiguously the EC50 derived by this method it is proposed to use the symbol ErC50.
Az e módszerrel megállapított EC50 félreérthetetlen jelölésére ajánlatos az ErC50 szimbólum használata.
The times of measurement must be indicated, e.g. if the value relates to times 0 and 72 hours, the symbol becomes ErC50 (0-72h).
A mérési időket jelezni kell, például, ha az érték 0 és 72 órás időkre vonatkozik, a szimbólum a következő: ErC50 (0–72 h).
Note: specific growth rate is a logarithmic term, and small changes in growth rate may lead to great changes in biomass.
Megjegyzés: A specifikus növekedési ráta logaritmikus mennyiség, és a növekedési ráta kismértékű változásai nagy változásokhoz vezethetnek a biomasszában.
EbC and ErC values are therefore not numerically comparable.
Ebből következően az EbC- és ErC-értékek számszerűen nem hasonlíthatók össze.
CALCULATION OF THE NOEC
A NOEC KISZÁMÍTÁSA
The No Observed Effect Concentration is determined by a suitable statistical procedure for multisample comparison (e.g. analysis of variance and Dunnett's test), using the individual replicates values of the areas under the growth curves A (see point 2.1) or the specific growth rates μ (see point 2.2).
A megfigyelhető hatást nem okozó koncentrációt („no observed effect concentration” = NOEC) több minta összehasonlítására szolgáló alkalmas statisztikai eljárással (például varianciaanalízis és Dunnett-próba) kell meghatározni az A. növekedési görbék melletti területek egyes ismétlődő értékeinek (lásd a 2.1. pontot) vagy a μ specifikus növekedési ráták (lásd a 2.2. pontot) segítségével.
test substance: chemical identification data,
vizsgált anyag: kémiai azonosítási adatok,
test organisms: origin, laboratory culture, strain number, method of cultivation,
vizsgált organizmusok: eredet, laboratóriumi tenyészet, törzsszám, tenyésztés módszere,
date of the start and the end of the test and its duration,
vizsgálat kezdetének és befejezésének időpontja és időtartama,
temperature,
hőmérséklet,
composition of medium,
tápoldat összetétele,
culturing apparatus,
a tenyésztéshez használt készülékek,
pH of solutions at the start and end of the test (an explanation should be provided if pH deviations of more than 1,5 unit are observed),
az oldatok pH-ja a vizsgálat kezdetén és végén (magyarázatot kell adni, ha 1,5 egységnél nagyobb pH-eltérés figyelhető meg),
vehicle and method used for solubilising the test substance and concentration of the vehicle in the test solutions,
a vizsgált anyag oldhatóvá tételére használt segédanyag és módszer, valamint a segédanyag koncentrációja a vizsgált oldatokban,
light intensity and quality,
a fény intenzitása és minősége,
concentrations tested (measured or nominal).
vizsgált koncentrációk (mért és névleges),
results:
eredmények:
cell density for each flask at each measuring point and method for measuring cell density,
sejtsűrűség minden lombik esetében, minden egyes mérési pontban és a sejtsűrűség mérési módszere,
mean values of cell density,
átlagos sejtsűrűség,
growth curves,
növekedési görbék,
graphical presentation of the concentration effect relationship,
koncentráció-hatás összefüggés grafikus ábrázolása,
EC values and method of calculation,
EC-értékek és a számítás módszere,
other observed effects.
egyéb megfigyelt hatások.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus’, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag „Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus”, in: Rufolf/Boje: Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
and M.Vighi — Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Galassi and M. Vighi – Chemosphere, 1981, vol.10, 1123–1126.
Example of a procedure for the culturing of algae
Példa algatenyésztési eljárásra
The purpose of culturing on the basis of the following procedure is to obtain algal cultures for toxicity tests.
Az alábbiakban ismertetett eljárások alapján végzett tenyésztés célja a toxicitásvizsgálatokhoz használható algatenyészetek létrehozása.
Suitable methods should be used to ensure that the algal cultures are not infected with bacteria (ISO 4833).
Olyan alkalmas módszereket kell használni, amelyekkel megelőzhető az algatenyészet baktériumos fertőződése (ISO 4833).
Axenic cultures may be desirable but unialgal cultures are essential.
Axenikus kultúrák kívánatosak lehetnek, az azonban mindenképpen létfontosságú, hogy csak egyféle algasejt legyen jelen.
All operations should be carried out under sterile conditions in order to avoid contamination with bacteria and, other algae.
Minden műveletet steril körülmények között kell végezni az egyéb algasejtekkel vagy baktériumokkal való szennyeződés elkerülése érdekében.
Contaminated cultures should be rejected.
Szennyezett tenyészeteket nem szabad alkalmazni.
Procedures for obtaining algal cultures
Az algakultúrák kialakításának eljárásai
Preparation of nutrient solutions (media):
Tápoldat elkészítésének módja:
the medium can be prepared by diluting concentrated stock solutions of nutrients.
A tápoldat koncentrált törzsoldatok hígításával készíthető el.
For solid medium, 0,8 % of agar is added.
A szilárd táptalajhoz hozzá kell adni az agar 0,8 %-át.
The medium used should be sterile.
A használt tápoldatnak sterilnek kell lennie.
Sterilisation by autoclaving may lead to a loss of NH3.
Az autoklávban történő sterilizálás NH3 veszteséghez vezethet.
Stock culture:
Törzstenyészet:
the stock cultures are small algal cultures that are regularly transferred to fresh medium to act as initial test material.
A törzstenyészetek kis algatenyészetek, amelyeket rendszeresen friss táptalajba kell oltani azért, hogy kezdeti vizsgált anyagként szolgáljanak.
If the cultures are not used regularly they are streaked out on sloped agar tubes.
Ha nem használnak rendszeresen tenyészeteket, akkor azokat ferde agarra kell széleszteni.
These are transferred to fresh medium at least once every two months.
E tenyészeteket minden két hónapban legalább egyszer friss médiumba kell oltani.
the stock cultures are grown in conical flasks containing the appropriate medium (volume about 100 ml).
A törzstenyészeteket a megfelelő tápoldatot tartalmazó kúpos lombikokban (körülbelül 100 ml-es űrtartalmú) kell szaporítani.
When the algae are incubated at 20 oC with continuous illumination, a weekly transfer is required.
Amikor az algákat 20 oC hőmérsékleten inkubálják folyamatos megvilágítás mellett, hetenkénti átoltás szükséges.
During transfer an amount of ‘old’ culture is transferred with sterile pipettes into a flask of fresh medium, so that with the fast-growing species the initial concentration is about 100 times smaller than in the old culture.
Az átoltás során bizonyos mennyiségű „régi” tenyészetet kell átvinni steril pipettákkal egy friss tápfolyadékot tartalmazó lombikba úgy, hogy a gyorsan növekvő fajták esetében a kezdeti koncentráció körülbelül a régi tenyészetnek a századrésze legyen.
the growth rate of a species can be determined from the growth curve.
Valamely fajta növekedési rátája a növekedési görbe segítségével határozható meg.
If this is known, it is possible to estimate the density at which the culture should be transferred to new medium.
Ha ez ismert, meghatározható az a sűrűség, amelynek elérésekor a tenyészetet át kell oltani.
This must be done before the culture reaches the death phase.
Ezt azelőtt kell végrehajtani, mielőtt a tenyészet eléri az elpusztulási fázist.
Pre-culture:
Előtenyészet:
the pre-culture is intended to give an amount of algae suitable for the inoculation of test cultures.
Az előtenyészetnek megfelelő mennyiségű algát kell termelnie, amiket a vizsgált kultúráknál inokulumként lehet alkalmazni.
The pre-culture is incubated under the conditions of the test and used when still exponentially growing, normally after an incubation period of about three days.
Az előtenyészetet a vizsgálati körülmények között inkubálni kell, és általában akkor kell használni azokat, amikor még exponenciálisan növekednek, tehát körülbelül háromnapos inkubálási időtartam után.
When the algal cultures contain deformed or abnormal cells, they must be discarded.
Azon algatenyészeteket, amelyek deformálódott vagy abnormális sejteket tartalmaznak, ki kell dobni.
The ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum reports the following results for an inter-laboratory test among 16 laboratories, testing potassium dichromate:
Az ISO 8692 – Water quality – Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum a káliumdikromátot vizsgáló, 16 laboratóriumközi vizsgálat következő eredményeiről számol be:
Means (mg/l)
Átlagértékek (mg/l)
Range (mg/l)
Tartomány (mg/l)
Six test methods are described that permit the screening of chemicals for ready biodegradability in an aerobic aqueous medium:
Ez a leírás hat vizsgálati módszert ismertet, amelyek lehetővé teszik a kémiai anyagok szűrését a biológiailag könnyen végbemenő lebonthatóság szempontjából, valamely aerob vizes közegben.
Dissolved Organic Carbon (DOC) Die-Away (Method C.4-A)
Oldottszervesszén- („Dissolved Organic Carbon” = DOC) csökkenés (C.4-A. módszer);
Modified OECD Screening — DOC Die-Away (Method C.4-B)
Módosított OECD vizsgálat – DOC-csökkenés (C.4-B. módszer);
Carbon dioxide (CO2) Evolution (Modified Sturm Test) (Method C.4-C)
Szén-dioxid-fejlődés-vizsgálat (CO2) (módosított Sturm-féle vizsgálat) (C.4.-C. módszer);
Manometric Respirometry (Method C.4-D)
Manometrikus respirometria (C.4-D. módszer);