natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The results of the range-finding test are used to choose at least five concentrations in a geometric series just spanning the range 0 to 100 % mortality and differing by a constant factor not exceeding 1,8.
Az előzetes, dózisbehatároló vizsgálat eredményeit arra használják fel, hogy a 0 és 100 % közötti mortalitási tartományban egy legalább öt koncentrációból álló mértani sort jelöljenek ki, amelyben az állandó szorzótényező legfeljebb 1,8.
Tests using these series of concentration should allow the LC50 value and its confidence limits to be estimated as precisely as possible.
Ezen vizsgálati sorral végzett vizsgálatok lehetővé teszik az LC50-érték, illetve a konfidenciaszint lehető legpontosabb meghatározását.
In the definitive test at least four test batches per concentration and four untreated controls, each with 10 worms, are used.
A meghatározó vizsgálat során koncentrációnként legalább négy kísérleti csoportot és négy kezeletlen kontrollt kell használni, amelyek mindegyike 10-10 gilisztát tartalmaz.
The results of these replicate batches are given as a mean and standard deviation.
Ezen ismétlések eredményei adják az átlagértékeket és a normál szórást.
When two consecutive concentrations, at a ratio of 1,8, give only 0 % and 100 % mortality, these two values are sufficient to indicate the range within which the LC50 falls.
Ha két egymást követő és egymástól az 1,8-as faktort meghaladó mértékben nem különböző koncentráció csak 0 %-os és 100 %-os mortalitást ad, ezen értékek már elegendőek annak jelzésére, hogy az LC50 melyik tartományba esik.
Mixture of the basic test substrate and the test substance
Az alapszubsztrátum és a vizsgált talaj keveréke
The test substrate should, whenever possible, be made up without any additional agents other than water.
A vizsgált talajt lehetőleg minden más szer hozzáadása nélkül, csak vízzel kell összeállítani.
Immediately before the start of the test, an emulsion or dispersion of the test substance in deionised water or other solvent is mixed with the basic test substrate, or sprayed evenly over it with a fine chromatographic or similar spray.
Közvetlenül a vizsgálat megkezdése előtt a vizsgált anyag ionmentesített vízben vagy egyéb oldószerben elkészített diszperzióját, illetve emulzióját elkeverik az alapszubsztrátummal, illetve finom kromatográfiás vagy ehhez hasonló szórókészülékkel egyenletesen eloszlatják az alapszubsztrátum felületén.
If insoluble in water, the test substance can be dissolved in as small a volume as possible of suitable organic solvent (e.g. hexane, acetone or chloroform).
Ha a vizsgált anyag nem oldódik vízben, a lehető legkisebb mennyiségű megfelelő szerves oldószerben is feloldható (például hexánban, acetonban vagy kloroformban).
Only agents which volatilise readily may be used to solubilise, disperse or emulsify the test substance.
A vizsgált anyag oldatba vitelére, diszpergálására vagy emulgeálására csak könnyen illó oldószer használható.
The test substrate must be ventilated before use.
A vizsgált talajt a felhasználás előtt át kell szellőztetni.
The amount of water evaporated must be replaced.
Az elpárolgott vízmennyiséget pótolni kell.
The control should contain the same quantity of any additive agent.
A kontrollhoz bármely adalékanyagból azonos mennyiséget kell adni.
If the test substance is not soluble, dispersible or emulsifiable in organic solvents, 10 g of a mixture of fine ground quartz sand and a quantity of test substance necessary to treat 500 g dry weight of artificial soil are mixed with 490 g of dry weight of test substrate.
Ha a vizsgált anyag szerves oldószerekben egyáltalán nem oldódik, nem diszpergálható, és nem emulgeálható, finomra őrölt kvarchomok és a vizsgált anyag 500 g száraz tömegű mesterséges talaj kezelésére elegendő mennyiségének keverékéből 10 g-ot kell elkeverni 490 g száraz tömegű vizsgált talajjal.
For each test batch, an amount of wet test substrate equivalent to 500 g dry weight is placed in each glass container and 10 earthworms, which have been conditioned for 24 hours in a similar wet basic substrate and then washed quickly and surplus water absorbed on filter paper before use, are placed on the test substrate surface.
Minden kísérleti csoportban 500 g száraz tömegnek megfelelő mennyiségű nedves vizsgált talajt helyeznek el, üvegedényenként 10 db gilisztával, amelyeket előzőleg hasonló nedves környezetben szoktattak 24 órán keresztül, majd gyorsan megmosták azokat, a felesleges vizet szűrőpapírral felszívatták, és a gilisztákat a szubsztrátum felületére helyezték.
The containers are covered with perforated plastic lids, dishes or film to prevent the substrate drying and they are kept under the test conditions for 14 days.
A tárolóedényeket perforált műanyag fedővel, kupakkal vagy fóliával zárják le, hogy a talajt megóvják a kiszáradástól, majd 14 napon keresztül tartják a vizsgálati körülmények között.
The assessments should be made 14 days (and optionally seven days) after setting up the test.
Az értékelést a vizsgálat megkezdését követő 14. napon (és esetleg a 7. napon) lehet elvégezni.
The substrate is spread on a plate made of glass or stainless steel.
A talajt üveg- vagy rozsdamentes acéllemezen terítik szét.
The earthworms are examined and the numbers of surviving earthworms determined.
A gilisztákat megvizsgálják, és megállapítják a vizsgálatot túlélők számát.
Earthworms are considered dead if they do not respond to a gentle mechanical stimulus to the front end.
Az a giliszta tekinthető élettelennek, amely az elülső végét érő enyhe mechanikai ingerre nem reagál.
When the examination is made at seven days, the container is refilled with the substrate and the surviving earthworms are replaced on the same test substrate surface.
Ha a hetedik napon végeznek vizsgálatot, a tartályba visszatöltik a talajt, és a túlélő gilisztákat ugyanarra a vizsgálati talaj felületre helyezik vissza.
Test organisms should be adult Eisenia foetida (see note in Appendix) (at least two months old with clitellum) wet weight 300 to 600 mg.
Vizsgált organizmusok: felnőtt Eisenia foetida példányok (lásd a függelék megjegyzését) (legalább két hónaposak, amelyeknél a clitellum [nyereg] már kialakult), 300 és 600 mg közötti nedves súllyal.
(For breeding method see Appendix.)
(A tenyésztési módszereket lásd a függelékben.)
When the data are adequate the LC50 value and the confidence limits (p = 0,05) should be determined using standard methods (Litchfield and Wilcoxon, 1949, for equivalent method).
Ha elegendő adat áll rendelkezésre, a szabványmódszerrel meg kell határozni az LC50-értéket és a konfidencia-határértékeket (p = 0,05) (ezzel egyenértékű módszer Litchfield és Wilcox on, 1949).
The LC50 should be given as mg of test substance per kilogram of the test substrate (dry weight).
A vizsgált anyag LC50-értékét milligrammban kell megadni a vizsgált talaj kilogrammjára (száraz tömeg) vonatkoztatva.
In those cases where the slope of the concentration curve is too steep to permit calculation of the LC50, a graphical estimate of this value is sufficient.
Azon esetekben, amikor a koncentrációs görbe túlságosan meredek az LC50 kiszámításához, ezen érték grafikus becslése is elegendő.
When two consecutive concentrations at a ratio of 1,8 give only 0 % and 100 % mortality, the two values are sufficient to indicate the range within which the LC50 falls.
Ha két egymást követő és egymástól az 1,8-as szorzótényezőnél nagyobb mértékben nem különböző koncentráció csak 0 %-os és 100 %-os elhullást ad, ezen értékek már elegendőek annak jelzésére, hogy az LC50 melyik tartományba esik.
statement that the test has been carried out in accordance with the abovementioned quality criteria,
nyilatkozat arról, hogy a vizsgálatot a fent említett minőségi követelményeknek megfelelően végezték,
test carried out (range finding test and/or definitive test),
az elvégzett vizsgálatok (előzetes, dózisbehatároló vizsgálat és/vagy meghatározó vizsgálat),
exact description of the test conditions or statement that the test has been carried out in accordance with the method; any deviations have to be reported,
a vizsgálati körülmények pontos leírása, illetve nyilatkozat arról, hogy a vizsgálatot a módszernek megfelelően végezték-e el; minden eltérést jelezni kell,
exact description of how the test substance has been mixed into the basic test substrate,
annak pontos leírása, hogy a vizsgált anyagot hogyan keverték bele a vizsgált talajba,
information about test organisms (species, age, mean and range in weight, keeping and breeding conditions, supplier),
a felhasznált vizsgált organizmusokkal kapcsolatos információk (faj, kor, súlyszélsőértékek és -átlag, tartási és tenyésztési körülmények, származás),
method used for determination of LC50,
az LC50 meghatározásához használt módszer,
test results including all data used,
az összes felhasznált adatot tartalmazó vizsgálati eredmények,
description of observed symptoms or changes in behaviour of test organisms,
a vizsgált organizmusok viselkedésében megfigyelt tünetek vagy változások leírása,
mortality in the controls,
a kontrollok mortalitása,
or highest tested concentration without mortality and lowest tested concentration with a mortality of 100 %, 14 days (and optionally seven days) after setting up the test,
az LC50, illetve a legmagasabb vizsgált koncentráció, amely a vizsgálat beindítását követő 14 nappal (és esetleg hét nappal) már elhullást nem eredményezett, és a legkisebb vizsgált koncentráció, amely ugyanezen időpontban már 100 %-os elhullást eredményezett,
plotting of the concentration/response curve,
a koncentráció-hatás görbe felvétele,
results obtained with the reference substance, whether in association with the present test or from previous quality control exercises.
a referenciaanyaggal kapott eredmények, akár a mostani vizsgálatokkal kapcsolatosan, akár korábbi minőség-ellenőrzési próbán nyerték azokat.
OECD, Paris, 1981, Test Guideline 207, Decision of the Council C(81)30 final.
OECD, Párizs, 1981, 207. vizsgálati irányelv, a Tanács határozata, C(81) 30 végleges
Edwards, C. A. and Lofty, J. R., 1977, Biology of Earthworms, Chapman and Hall, London, p. 331.
Edwards, C. A. and Lofty, J. R., 1977, Biology of Earthsworms, Chapman and Hall, London, p. 331.
Litchfield, J. T. andWilcoxon, F., A simplified method of evaluation dose effect experiments.
Litchfield, J. T. and Wilcoxon, F., A simplified method of evaluation dose effect experiments.
I. Pharm.
J.Pharm.
Therap., vol. 96, 1949, p. 99.
Therap., vol. 96, 1949, p. 99.
Umweltbundesamt/Biologische Bundesanstalt für land- und Forstwirtschaft, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Toxizitätstest am Regenwurm Eisenia foetida in künstlichem Boden’, in: Rudolph/Boje, Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltbundesamt/Biologische Bundesanstalt für Land- and Forstwirtschaft, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag „Toxisitätstest am Regenwurm Eisenia foetida in künstlichem Boden”, in: Rudolph/Boje, Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Breeding and keeping of the worms before testing
A giliszták tenyésztése és tartása a vizsgálat előtt
For breeding the animals, 30 to 50 adult worms, are put in a breeding box with fresh substrate and removed after 14 days.
Az állatok tenyésztéséhez 30–50 darab felnőtt gilisztára van szükség, amelyeket friss szubsztrátummal ellátott tenyésztőládába helyeznek, majd 14 nap múlva eltávolítják azokat.
These animals maybe used for further breeding batches.
Ezen állatokat használhatják fel a további tenyészetekhez.
The earthworms hatched from the cocoons are used for testing when mature (under the prescribed conditions after two to three months).
A gubóból kikelt giliszta felnőtt (ivarérett) korában használható fel a vizsgálatokhoz (a leírt feltételek mellett ez két-három hónap után következik be).
Keeping and breeding conditions
Tenyésztési és tartási körülmények
Climatic chamber temperature 20 ± 2 oC preferably with continuous light (intensity 400 to 800 lux).
Klímakamra 20 ± 2 oC hőmérséklet, lehetőleg folyamatos megvilágítással (400 és 800 lux közötti fényintenzitással).
Breeding boxes suitable shaI1ow containers of 10 to 20 l volume.
Tenyésztő ládák 10–20 liter űrtartalmú, megfelelően lapos edények.
Substrate Eisenia foetida may be bred in various animal excrements.
Szubsztrátum Az Eisenia foetida többféle állati ürüléken is tenyészthető.
It is recommended to use as breeding medium a mixture of 50 % by volume peat and 50 % cow or horse dung.
Tenyésztőközegként 50 térfogat-százalékos tőzeg és 50 térfogat-százalékos tehén vagy lótrágya keveréke ajánlott.
The medium should have a pH value of about 6 to 7 (regulated with calcium carbonate) and a low ionic conductivity (less than 6 mmhos or 0,5 % salt concentration).
A közeg pH-értéke körülbelül 6 és 7 között legyen (ezt kalcium-karbonáttal lehet szabályozni), és alacsony ionos vezetőképességgel kell rendelkeznie (6 mmhos-nál vagy 0,5 % sókoncentrációnál kevesebb).
The substrate should be moist but not too wet.
A szubsztrátum legyen nedves, de ne legyen túl vizes.
Other successful procedures may be used besides the method given above.
A fent említett módszeren kívül még más sikeres módszer is alkalmazható.
Note: Eisenia foetida exists in two races which some taxonomists have separated into species (Bouche, 1972).
Megjegyzés: Az Eisenia foetida két fajban létezik, amelyeket egyes taxonómusok külön alfajként írtak le (Bouche, 1972).
These are morphologically similar but one, Eisenia foetida foetida, has typically transverse striping or banding on the segments and the other, Eisenia foetida andrei, lacks this and has a variegated reddish colour.
Ezek morfológiailag nem különböznek, de egyikük, az Eisenia foetida foetida gyűrűin jellegzetes keresztirányú csíkozást vagy szalagokat találhatunk, amelyek a másikon, az Eisenia foetida andrei fajon nem jelennek meg, ellenben ennek vörösesebb színe van.
Where possible Eisenia foetida andrei should be used.
Ha lehet, az Eisenia foetida andrei használatát javasoljuk.
Other species may be used if the necessary methodology is available.
Más faj is használható, ha a hozzá szükséges módszertan rendelkezésre áll.
BIODEGRADATION
BIOLÓGIAI LEBOMLÁS
ZAHN-WELLENS TEST
ZAHN–WELLENS VIZSGÁLAT
The purpose of the method is the evaluation of the potential ultimate biodegradability of water-soluble, non-volatile organic substances when exposed to relatively high concentrations of micro-organisms in a static test.
E módszernek az a célja, hogy felmérje a vízoldékony, nem illékony szerves anyagok végső biológiai lebontásának lehetőségeit akkor, ha statikus vizsgálati körülmények között viszonylag nagy töménységű mikroorganizmusnak vannak kitéve.
Physico-chemical adsorption on the suspended solids may take place and this must be taken into account when interpreting results (see 3.2).
A szuszpendált szilárd részecskéken fizikokémiai adszorpció is létrejöhet, amit az eredmények értékelésekor figyelembe kell venni (lásd a 3.2. pontot).
The substances to be studied are used in concentrations corresponding to DOC-values in the range of 50 to 400 mg/litre or COD-values in the range of 100 to 1000 mg/litre (DOC = dissolved organic carbon; COD = chemical oxygen demand).
A használni kívánt anyagokat 50 és 400 mg/liter közötti DOC-értékeknek, valamint 100 és 1000 mg/liter közötti COD-értékeknek megfelelő koncentrációban vizsgáljuk (DOC = oldott szerves szén; COD = kémiai oxigénigény).
These relatively high concentrations have the advantage of analytical reliability.
E viszonylag magas koncentrációknak az az előnye, hogy analitikailag megbízhatóak.
Compounds with toxic properties may delay or inhibit the degradation process.
Mérgező tulajdonságú vegyületek késleltethetik vagy gátolhatják a lebomlás folyamatát.
In this method, the measure of the concentration of dissolved organic carbon or the chemical oxygen demand is used to assess the ultimate biodegradability of the test substance.
E módszerben az oldott szerves szén vagy a kémiai oxigénigény mérését a vizsgált anyag végső biológiai lebonthatóságának felmérésére használjuk.
A simultaneous use of a specific analytical method may allow the assessment of the primary biodegradation of the substance (disappearance of the parent chemical structure).
Az ezzel párhuzamosan alkalmazott analitikai módszer segíthet az anyag primer lebomlásának meghatározásában (a kiindulási molekulaszerkezet eltűnése).
The method is applicable only to those organic test substances which, at the concentration used in the test:
A módszer csak olyan szerves vizsgált anyagokra megfelelő, amelyek(nek) a kísérletben használt koncentrációban:
are soluble in water under the test conditions,
a vizsgálati körülmények között vízben oldódik,
have negligible vapour pressure under the test conditions,
páranyomása a vizsgálati körülmények között elhanyagolható,
are not inhibitory to bacteria,
a baktériumokat nem gátolják,
are adsorbed within the test system only to a limited extent,
a vizsgálati rendszerben csak korlátozott mértékben szívódik fel,
are not lost by foaming from the test solution.
habképződés útján nem tűnnek el a vizsgált oldatból.
Information on the relative proportions of the major components of the test material will be useful in interpreting the results obtained, particularly in those cases where the results are low or marginal.
A vizsgált anyag főbb összetevői egymáshoz viszonyított részarányának ismerete hasznos lehet a kapott eredmények értékelése során, különösen azon esetekben, amikor az eredmények alacsony számértékűek vagy marginálisak.
Information on the toxicity of the substance to micro-organisms is desirable for the interpretation of low results and in the selection of appropriate test concentrations.
Az anyag mikroorganizmusokra gyakorolt mérgező hatásának ismerete kívánatos az alacsony lebomlási értékek értékelésénél és a megfelelő vizsgált koncentrációk kiválasztásánál.
The amount of degradation attained at the end of the test is reported as the ‘Biodegradability in the Zahn-Wellens test’:
A vizsgálat végén nyert lebomlási mértéket, mint a „Zahn–Wellens vizsgálatban kapott biológiai lebonthatóságot” kell értékelni,
DT biodegradation (%) at time T,
biológiai lebomlás ( %) T idő alatt,
CA DOC (or COD) values in the test mixture measured three hours after the beginning of the test (mg/l) (DOC = dissolved organic carbon, COD = chemical oxygen demand),
C A DOC- (vagy COD-) értékek a vizsgált keverékben a vizsgálat megkezdését követő három óra múlva (mg/l) (DOC = oldott szerves szén, COD = kémiai oxigénigény) C T
CT DOC or COD values in the test mixture at time of sampling (mg/l),
DOC- (vagy COD-) értékek a vizsgált keverékben mintavételkor (mg/l), C B
CB DOC or COD value of the blank at time of sampling (mg/l),
DOC- (vagy COD-) értékek a vakpróbában mintavételkor (mg/l),
CBA DOC or COD value of the blank, measured three hours after the beginning of the test (mg/l).
C BA DOC- (vagy COD-) értékek a vakpróbában a vizsgálat megkezdését követő három óra múlva (mg/l)
The extent of degradation is rounded to the nearest full percent.
A bomlás mértékét a legközelebbi egész százalékra kerekítik.
Percentage degradation is stated as the percentage DOC (or COD) removal of the tested substance.
A százalékos lebomlást a vizsgált anyag DOC- (vagy COD-) százalékának csökkenésével kell megadni.
The difference between the measured value after three hours and the calculated or preferably measured initial value may provide useful information on the elimination of the substance (see 3.2, Interpretation of results).
A mért vagy számított kiindulási érték és a három óra elteltével mért érték közötti különbség hasznos információkkal szolgálhat az anyag megsemmisítésével kapcsolatban (lásd a 3.2. pontot, Az eredmények értelmezése).
In some cases when investigating new substances reference substances may be useful; however, specific reference substances cannot yet be recommended.
Egyes esetekben, ha új anyagokat vizsgálunk, hasznos lehet a referenciaanyagok alkalmazása; konkrét referenciaanyagok ajánlása azonban egyelőre nem lehetséges.
Activated sludge, mineral nutrients and the test material as the sole carbon source in an aqueous solution are placed together in a one to four litre glass vessel equipped with an agitator and an aerator.
Keverőszerkezettel és levegőztetőberendezéssel ellátott, négyliteres üvegedénybe élesztett iszapot, ásványi tápanyagokat és egyedüli szénforrásként a vizsgált anyagot helyeznek el a vizes oldatban.
The mixture is agitated and aerated at 20 to 25 oC under diffuse illumination or in a dark room for up to 28 days.
A keveréket kevertetik, levegőztetik, és 20 és 25 oC hőmérséklet között, diffúz megvilágításban vagy sötétkamrában tartják 28 napon keresztül.
The degradation process is monitored by determination of the DOC (or COD) values in the filtered solution at daily or other appropriate regular time intervals.
A lebomlási folyamatot a szűrt oldat DOC-, illetve COD-értékeinek naponkénti vagy egyéb megfelelő időközönként végzett meghatározása útján követik nyomon.
The ratio of eliminated DOC (or COD) after each interval to the value three hours after the start is expressed as percentage biodegradation and serves as the measure of the extent of degradation at this time.
Az indulást követő három óra elteltével mért érték és az egyes időközökben eltűnt DOC (vagy COD) mért értékeinek egymáshoz viszonyított arányát százalékos biológiai bomlás formájában fejezik ki, és ez szolgál a lebomlás adott időre számított mértékéül.
The result is plotted versus time to give the biodegradation curve.
Az eredményt az idő függvényében ábrázolva kapják meg a biológiai bomlás görbéjét.
When a specific analytical method is used, changes in the concentration of the parent molecule due to biodegradation can be measured (primary biodegradability).
Ha specifikus analitikai módszert használunk, mérhető a kiindulási molekula koncentrációjának a biológiai bomlás következtében előállott változása is (elsődleges biológiai bomlás).
The reproducibility of this test has been proven to be satisfactory in a ring test.
A vizsgálat kielégítő mértékű ismételhetőségét körvizsgálat bizonyította.
The sensitivity of the method is largely determined by the variability of the blank and, to a lesser extent, by the precision of the determination of dissolved organic carbon and the level of test compound in the liquor.
A módszer érzékenységét nagymértékben a vakpróba változékonysága és kisebb mértékben az oldott szerves szén, illetve a vizsgált vegyület folyadékkoncentrációjának kimutatási pontossága határozza meg.
Test water: drinking water with an organic carbon content < 5 mg/litre.
A vizsgálathoz használt víz: kevesebb mint 5 mg/liter szerves szenet tartalmazó ivóvíz.
The concentration of calcium and magnesium ions together must not exceed 2,7 mmole/litre; otherwise adequate dilution with deionised or distilled water is required.
A kalcium- és magnéziumionok együttes koncentrációja nem haladhatja meg a 2,7 mmol/litert; ellenkező esetben ionmentesített vagy desztillált vízzel való hígításra van szükség.
Sulphuric acid, analytical reagent (A.R.):
Kénsav, analitikai reagens (A.R.):
Sodium hydroxide solution A.R.:
Nátrium-hidroxid-oldat A.R.:
Mineral nutrient solution: dissolve in one litre deionised water:
Ásványitápanyag-oldat: oldjunk fel egy liter ionmentesített vízben:
ammonium chloride, NH4Cl, A.R.:
ammónium-kloridot, NH4Cl, A.R.:
sodium dihydrogenphosphate, NaH2PO4.2H2O, A.R.:
nátrium-dihidrogen-foszfátot, NaH2PO4.2H2O, A.R.:
potassium dihydrogenphosphate, KH2PO4, A.R.:
kálium-dihidrogén-foszfátot, KH2PO4, A.R.:
di-potassium mono-hydrogenphosphate, K2HPO4, A.R.:
dikálium-monohidrogén-foszfátot, KH2PO4, A.R.:
The mixture serves both as a nutrient and as buffering system.
A keverék tápoldatként és pufferként egyaránt szolgál.
Glass vessels with a volume of one to four litres (e.g. cylindrical vessels).
Egy és négy liter közötti űrtartalmú üvegedények (pl. üveghengerek).
Agitator with a glass or metal stirrer on a suitable shaft (the stirrer should rotate about 5 to 10 cm above the bottom of the vessel).
Üveg- vagy fémlapáttal ellátott és megfelelő tengelyre szerelt keverőkészülék (a lapátnak az edény fenekétől 5–10 cm távolságra kell forognia).
A magnetic stirrer with a 7 to 10 cm long rod can be used instead.
Helyette 7 és 10 cm közötti hosszúságú, rúddal felszerelt mágneses keverő is használható.