natgillin/translations-raw huggingface dataset:
High water-to-fish ratios are used in order to minimise the reduction in CW caused by the addition of the fish at the start of the test and also to avoid decreases in dissolved oxygen concentration.
A halak méretéhez viszonyítva nagy mennyiségű vizsgálati oldatot kell használni annak érdekében, hogy minimalizálni lehessen a vizsgálat kezdetén a halak hozzáadásával okozott Cw és az oldott oxigén koncentrációjának csökkenését.
It is important that the loading rate is appropriate for the test species used.
Fontos, hogy a feltöltési sebesség a használt kísérleti fajnak megfelelő legyen.
In any case, a loading rate of 0,1-1,0 g of fish (wet weight) per litre of water per day is normally recommended.
Minden esetben 0,1–1,0 g hal (nedves tömeg) per liter víz per nap az ajánlott feltöltési sebesség.
High loading rates can be used if it is shown that the required concentration of test substance can be maintained within ± 20 % limits, and that the concentration of dissolved oxygen does not fall below 60 % saturation.
Akkor használható nagy töltési sebesség, amennyiben igazolt, hogy a vizsgált anyag megkövetelt koncentrációja fenntartható ± 20 %-os határon belül, és hogy az oldott oxigén koncentrációja nem esik 60 %-os telítettség alá.
In choosing appropriate loading regimes, account of the normal habitat of the fish species is taken.
A megfelelő feltöltési rendszerek kiválasztásánál a halfajok természetes életterét kell figyelembe venni.
For example, bottom-living fish may demand a larger bottom area of the aquarium for the same volume of water than pelagic fish species.
A fenéken élő halak például nagyobb alapterületű akváriumot igényelnek, mint a nyíltvízi halfajok.
Feeding
Táplálék
During the acclimation and test periods, fish are fed with an appropriate diet of known lipid and total protein content, in an amount sufficient to keep them in a healthy condition and to maintain body weight.
Az akklimatizációs és kísérleti időszak alatt a halakat megfelelő, ismert lipid- és összfehérjetartalmú táplálékkal kell etetni, az egészségük megőrzéséhez és a testtömegük fenntartásához elegendő mennyiségben.
Fish are fed daily throughout the acclimation and test periods at a level of approximately 1 to 2 % of body weight per day; this keeps the lipid concentration in most species of fish at a relatively constant level during the test.
A halak az akklimatizációs és kísérleti időszakban naponta kapnak enni, testtömegük körülbelül 1–2 %-ának megfelelő mennyiségben; ez a legtöbb halfaj esetén a lipidkoncentrációt viszonylag állandó szinten tartja a vizsgálat alatt.
The amount of feed should be re-calculated, for example, once per week, in order to maintain consistent body weight and lipid content.
A táplálék mennyiségét újra kell számolni, például hetente egyszer, hogy egy állandó szinten legyen tartható a testtömeg és a lipidkoncentráció.
For this calculation, the weight of the fish in each test chamber can be estimated from the weight of the fish sampled most recently in that chamber.
Ennek kiszámításához az egyes tartályokban a halak tömege a tartályból legújabban vett halminta tömegéből becsülhető meg.
Do not weigh the fish remaining in the chamber.
A tartályban maradó halak nem mérhetők le.
Uneaten food and faeces are siphoned daily from the test chambers shortly after feeding (30 minutes to 1 hour).
A kísérleti tartályból a maradék eledelt és az ürüléket az etetést követően (30 perctől 1óráig) naponta szívócsövön keresztül el kell távolítani.
Chambers are kept as clean as possible throughout the test so that the concentration of organic matter is kept as low as possible, since the presence of organic carbon may limit the bioavailability of the test substance (1).
A vizsgálat alatt a tartályokat a lehető legtisztábban kell tartani, hogy a szervesanyag-koncentráció a lehető legkisebb legyen, mivel a szerves szén jelenléte korlátozhatja a vizsgált anyag biológiai elérhetőségét (1).
Since many feeds are derived from fishmeal, the feed should be analysed for the test substance.
Miután sok táplálék hallisztből származik, a táplálék vizsgálatianyag-tartalmát is vizsgálni kell.
It is also desirable to analyse the feed for pesticides and heavy metals.
A táplálék peszticid- és nehézfémanalízise is kívánatos.
Light and temperature
Megvilágítás és hőmérséklet
The photoperiod is usually 12 to 16 hours and the temperature (± 2 °C) should be appropriate for the test species (see Appendix 2).
A fényperiódus rendszerint 12–16 órás, és a fajok számára megfelelő hőmérsékletet (± 2 oC) kell biztosítani (lásd 2. függelék).
The type and characteristics of illumination should be known.
A megvilágítás típusának és jellemzőinek ismertnek kell lenni.
Caution should be given to the possible phototransformation of the test substance under the irradiation conditions of the study.
Figyelmet kell fordítani a vizsgálati anyag – a vizsgálat besugárzási körülményei közötti – lehetséges fotoátalakulására.
Appropriate illumination should be used avoiding exposure of the fish to unnatural photoproducts.
Megfelelő megvilágítást kell használni, hogy a fény hatására nem természetes bomlástermékek lehetőleg ne keletkezzenek.
In some cases it may be appropriate to use a filter to screen out UV irradiation below 290 nm.
Néhány esetben megfelelő lehet a 290 nm alatti UV sugárzást kiszűrő ernyő használata.
Fish are exposed under flow-through conditions to at least two concentrations of the test substance in water.
Átfolyási körülmények között legalább két koncentrációt kell készíteni.
Normally, the higher (or highest) concentration of the test substance are selected to be about 1 % of its acute asymptotic LC50, and to be at least ten-fold higher than its detection limit in water by the analytical method used.
Általában a nagyobb (vagy legmagasabb) vizsgáltanyag-koncentráció akut aszimptotikus LC50-értékének körülbelül 1 %-ánál és a használt analitikai módszerre vonatkozó vízben elérhető detektálási határnál legalább tízszer nagyobb legyen.
The highest test concentration can also be determined by dividing the acute 96 h LC50 by an appropriate acute/chronic ratio (appropriate ratios for some chemicals can be about 3 up to 100).
A legnagyobb kísérleti koncentráció az akut (96 órás)/krónikus LC50 aránnyal is megosztható legyen (néhány vegyi anyag esetében a megfelelő arány 3–100 lehet).
If possible, choose the other concentration(s) such that it differs from the one above by a factor of ten.
Amennyiben lehetséges, a többi koncentráció(ka)t úgy kell megválasztani, hogy a fenti értéktől 10-es faktorral különbözzön.
If this is not possible because of the 1 % of LC50 criterion and the analytical limit, a lower factor than ten can be used or the use of 14C labelled test substance should be considered.
Amennyiben ez nem lehetséges az 1 %-os LC50 követelmény és az analitikai határ miatt, 10-nél kisebb faktor is használható, vagy fontolóra kell venni 14C-vel jelzett vizsgált anyag használatát.
No concentration used should be above the solubility of the test substance.
A vizsgált anyag oldhatósága feletti koncentrációt nem szabad használni.
Where a solubilising agent is used its concentration should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Amennyiben szolubilizáló anyagot használnak, annak koncentrációja nem lehet nagyobb 0,1 ml/l-nél, és minden kísérleti tartályban azonosnak kell lennie.
Its contribution, together with the test substance, to the overall content of organic carbon in the test water should be known.
Ismerni kell, hogy mennyivel járul hozzá a kísérleti víz teljes szervesszén-tartalmához.
However, every effort should be made to avoid the use of such materials.
Törekedni kell azonban az ilyen anyagok használatának kerülésére.
One dilution water control or if relevant, one control containing the solubilising agent should be run in addition to the test series, provided that it has been established that the agent has no effects on the fish.
A vizsgált sorozat mellett a hígítóvíz-kontrollt, és adott esetben, egy szolubilizálószert tartalmazó kontrollt is be kell állítani, feltéve hogy biztosított, hogy a szernek nincs hatása a halakra.
If not, both controls should be set up.
Amennyiben ez nem áll fenn, mindkét kontrollt el kell végezni.
Frequency of water quality measurements
A vízminőség mérésének gyakorisága
During the test, dissolved oxygen, TOC, pH and temperature should be measured in all vessels.
A vizsgálat során minden edényben mérni kell az oldott oxigént, TOC-t, pH-t és hőmérsékletet.
Total hardness and salinity, if relevant, should be measured in the controls and one vessel at the higher (or highest) concentration.
A kontrollokban és a nagyobb (vagy legnagyobb) koncentrációjú edényben mérni kell a teljes keménységet és (adott esetben) a sótartalmat.
As a minimum, dissolved oxygen and salinity, if relevant, should be measured three times — at the beginning, around the middle and end of the uptake period — and once a week in the depuration period.
Az oldott oxigént és (adott esetben) a sótartalmat legalább háromszor kell mérni a felvételi periódusban – annak elején, közepén és a végén – és egyszer egy héten a tisztulási periódusban.
TOC should be measured at the beginning of the test (24 h and 48 h prior to test initiation of uptake phase) before addition of the fish and at least once a week, during both uptake and depuration phases.
TOC-t a vizsgálat kezdetén (a felvételi fázis előtt 24 és 48 órával) a halak bevitele előtt, és a felvételi és tisztulási fázis alatt pedig legalább hetente egyszer kell mérni.
Temperature should be measured daily, pH at the beginning and end of each period and hardness once each test.
A hőmérsékletet naponta, pH-t a periódusok kezdetén és végén, keménységet vizsgálatonként egyszer kell mérni.
Temperature should preferably be monitored continuously in at least one vessel.
A hőmérsékletet ajánlott folyamatosan mérni, legalább egy edényben.
Sampling and analysis of fish and water
Hal- és vízmintavételezés és -analízis
Fish and water sampling schedule
Mintavételezési ütemterv
Water from the test chambers for the determination of test substance concentration is sampled before addition of the fish and during both uptake and depuration phases.
A kísérleti tartályokból a vizsgált anyag koncentrációjának meghatározásához a halak bevitele előtt, valamint a felvételi és a tisztulási fázis alatt kell mintát venni.
As a minimum, the water is sampled at the same time as the fish and before feeding.
Vízmintát legalább a halmintával egy időben és etetés előtt kell venni.
During the uptake phase, the concentrations of test substance are determined in order to check compliance with the validity criteria.
A felvételi fázis alatt meg kell határozni a vizsgált anyag koncentrációját az érvényességi követelmények teljesülésének ellenőrzése céljából.
Fish is sampled on at least five occasions during the uptake phase and at least on four occasions during the depuration phase.
A felvételi fázis alatt legalább ötször, a tisztulási fázis alatt legalább négyszer kell halmintát venni.
Since on some occasions it will be difficult to calculate a reasonably precise estimate of the BCF value based on this number of samples, especially when other than simple first-order depuration kinetics are indicated, it may be advisable to take samples at a higher frequency in both periods (see Appendix 4).
Mivel egyes esetekben e mintaszámok alapján nehéz pontosan megbecsülni a BCF értékét, különösen, ha egyszerű elsőrendűtől eltérő tisztulási kinetika mutatkozik, tanácsos mindkét periódusban gyakrabban mintát venni (lásd 4. függelék).
The extra samples are stored and analysed only if the results of the first round of analyses prove inadequate for the calculation of the BCF with the desired precision.
A külön minták tárolására és elemzésére csak akkor kerül sor, ha az elemzés első sorozata alkalmatlannak bizonyul a BCF kívánt pontosságú kiszámítására.
An example of an acceptable sampling schedule is given in Appendix 4.
Az elfogadható mintavételi ütemterv egy példája a 4. függelékben található.
Other schedules can readily be calculated using other assumed values of Pow to calculate the exposure time for 95 % uptake.
Más feltételezett Pow-értékkel más ütemtervet is gyorsan ki lehet dolgozni a 95 %-os felvétel expozíciós idejének kiszámolásával.
Sampling is continued during the uptake phase until a steady-state has been established or for 28 days, whichever is the shorter.
A mintavételezést a felvételi fázisban addig kell folytatni, amíg az állandósult állapot beáll, vagy legfeljebb 28 napig.
If the steady-state has not been reached within 28 days sampling continues until a steady-state has been attained or for 60 days, whichever is shorter.
Amennyiben az állandósult állapot nem áll be 28 nap alatt, a mintavételezést addig kell folytatni, amíg beáll az állandósult állapot, de legfeljebb 60 napig.
Before beginning the depuration phase the fish are transfered to clean tanks.
A tisztulási fázis megkezdése előtt a halak átkerülnek a tiszta tartályokba.
Sampling and Sample Preparation
Mintavételezés és mintakészítés
Water samples for analysis are obtained e.g. by siphoning through inert tubing from a central point in the test chamber.
Az analízishez a vízmintákat, például inert csövön keresztül, a kísérleti tartály középső pontjából veszik.
Since neither filtration nor centrifuging appear always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable (especially for super-lipophilic chemicals i.e. those chemicals with a log Pow > 5) (1) (5), samples may not be subjected to those treatments.
Mivel a vizsgált anyag biológiailag nem elérhető részét a biológiailag elérhetőtől nem mindig lehet centrifugálással vagy szűréssel elválasztani, (főleg erősen lipofil vegyszerek esetén, azaz log Pow > 5 vegyszereknél) (1) (5), a mintákon nem lehet ezen eljárásokat alkalmazni.
Instead, measures should be taken to keep the tanks as clean as possible and the content of total organic carbon should be monitored during both the uptake and depuration phases.
Ehelyett a tartályokat minél tisztábban kell tartani, és a teljes szervesszén-tartalmat a felvételi és tisztulási fázis alatt is figyelemmel kell kísérni.
An appropriate number of fish (normally a minimum of four) is removed from the test chambers at each sampling time.
Minden mintavételezéskor megfelelő számú halat (általában legalább négyet) kell kivenni a kísérleti kamrákból.
The sampled fish are rinsed quickly with water, blot ‘dry’, killed instantly using the most appropriate and humane method, and then weighed.
A mintahalakat gyorsan le kell öblíteni vízzel, „szárazra” törölni, azonnal megölni a legmegfelelőbb és humánus módszerrel, ezt követően lemérni.
It is preferable to analyse fish and water immediately after sampling in order to prevent degradation or other losses and to calculate approximate uptake and depuration rates as the test proceeds.
A lebomlás vagy egyéb veszteségek elkerülése érdekében a halakat és a vizet lehetőleg rögtön mintavételezés után kell analizálni, és a vizsgálat előrehaladtával megközelítőleg ki kell számolni a felvételi és a tisztulási sebességet.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
Az azonnali analízis lehetővé teszi annak kiküszöbölését is, hogy egy platót késve ismerjenek fel.
Failing immediate analysis, samples are stored by an appropriate method.
Az azonnali analízis meghiúsulása esetén a mintákat megfelelő módszerrel tárolják.
Before the beginning of the study, information on the proper method of storage for the particular test substance — for example, deep-freezing, holding at 4 0C, duration of storage, extraction, etc. are obtained.
A vizsgálat kezdete előtt a különböző vizsgált anyagok tárolásának megfelelő módszeréről információkat kell szerezni – például mélyhűtés, 4 oC-on tartás, tárolás időhossza, extrakció stb.
Quality of Analytical method
Az analitikai módszer minősége
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as recovery of the test substance from both water and fish are satisfactory for the particular method.
Mivel az egész eljárást alapvetően a vizsgált anyaghoz használt analitikai módszer pontossága és érzékenysége határozza meg, kísérlettel ellenőrizni kell a kémiai analízis pontosságát és reprodukálhatóságát, és a vizsgált anyag vízből és halakból való visszanyerését.
Also, check that the test substance is not detectable in the dilution water used.
Azt is ellenőrizni kell, hogy a vizsgált anyag ne legyen észlelhető a használt hígítóvízben.
If necessary, the values of Cw and Cf obtained from the test are corrected for the recoveries and background values of controls.
A Cw és Cf vizsgálatból kapott értékét korrigálni kell – szükség szerint – visszanyeréssel és a kontrollok háttérértékével.
Fish and water samples are handled throughout in such a manner as to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption by the sampling device).
A hal- és vízmintákkal végig úgy kell bánni, hogy minimális legyen a szennyezés és a (pl. a mintavevő eszköz adszorpciójából eredő) veszteség.
Analysis of Fish Sample
Halminta analízise
If radiolabelled materials are used in the test, it is possible to analyse for total radio label (i.e. parent and metabolites) or, the samples may be cleaned up so that parent compound can be analysed separately.
Amennyiben a vizsgálat során radioaktívan jelzett anyagokat használtak, mérhető az össz-radioaktivitás (a kiindulási vegyületét és metabolitokét együttesen), vagy a minták megtisztíthatók úgy, hogy a kiindulási vegyület külön analizálható legyen.
Also, the major metabolites may be characterised at steady-state or at the end of the uptake phase, whichever is the sooner.
A fő metabolitokat állandósult állapotban vagy a felvételi fázis végén (amelyik előbb bekövetkezik) szintén lehet jellemezni.
If the BCF in terms of total radiolebelled residues is ≥ 1000 %, it may be advisable, and for certain categories of chemicals such as pesticides strongly recommended, to identify and quantify degradates representing ≥ 10 % of total residues in fish tissues at steady state.
Amennyiben az összes mért radioaktivitás százalékában kifejezett BCF > 1000 %, tanácsos lehet, sőt bizonyos vegyszer-kategóriáknál, pl. peszticideknél erősen ajánlott, az állandósult állapotban a halszövetekben a teljes maradék 10 %-át meghaladó mennyiségű bomlástermékek azonosítása és kvantifikálása.
If degradates representing ≥ 10 % of total radiolabelled residues in the fish tissue are identified and quantified, then it is also recommended to identify and quantify degradates in the test water.
Amennyiben a meghatározást elvégezték a halszövetben, el kell végezni a vízben is.
The concentration of the test substance should usually be determined for each weighed individual fish.
A vizsgált anyag koncentrációját rendszerint meg kell határozni minden lemért halban.
If this is not possible, pooling of the samples on each sampling occasion may be done but pooling does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Amennyiben ez nem lehetséges, az egyes mintavételi alkalmakkor egyesíthetők a minták, de az összesítés korlátozza az adatokra alkalmazható statisztikai eljárások számát.
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of fish to accommodate the desired pooling procedure and power should be included in the test (6) (7).
Amennyiben a statisztikai eljárás megkívánja, akkor a kívánt egyesítési eljárást és az ehhez szükséges halak számát a vizsgálati módszerben rögzíteni kell (6) (7).
BCF should be expressed both as a function of total wet weight and, for high lipophilic substances, as a function of the lipid content.
BCF-et a teljes nedves tömeg függvényeként, és az erősen lipofil anyagok esetében a lipidtartalom függvényeként is ki kell fejteni.
Lipid content of the fish is determined on each sampling occasion if possible.
A hal lipidtartalmát amennyiben lehetséges, minden mintavételi alkalommal meg kell határozni.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (ref. 8 and 2 of Appendix 3).
A lipidtartalom meghatározására megfelelő módszereket kell alkalmazni (3. függelék, 8. és 2. hivatkozás).
Chloroform/methanol extraction technique may be recommended as standard method (9).
Szabványmódszerként a kloroform/metanol extrakciós technika ajánlott (9).
The various methods do not give identical values (10), so it is important to give details of the method used.
A különböző módszerek nem adnak azonos értékeket (10), ezért fontos megadni a használt módszer részleteit.
When possible, the analysis for lipid should be made on the same extract as that produced for analysis for the test substance, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically.
Amennyiben lehetséges, a lipid analízisét a vizsgált anyag analíziséhez készítettel azonos extraktumon kell elvégezni, mert a lipideket gyakran el kell távolítani az extraktumból, mielőtt kromatográfiásan elemezhetők lennének.
The lipid content of the fish (as mg/kg wet weight) at the end of the experiment should not differ from that at the start by more ± 25 %.
A hal lipidtartalma (mg/kg nedves tömeg) a kísérlet végén nem térhet el a kezdeti értéktől ± 25 %-nál jobban.
The tissue percent solids should also be reported to allow conversion of lipid concentration from a wet to a dry basis.
A szövet szárazanyag-tartalmát szintén rögzíteni kell, hogy a lipidkoncentráció átváltható legyen nedves állapotban mértről száraz állapotban mértre.
The uptake curve of the test substance is obtained by plotting its concentration in/on fish (or specified tissues) in the uptake phase against time on arithmetic scales.
A vizsgált anyag felvételi görbéje a felvételi fázisban a halban/on (vagy meghatározott szövetben/en) mért koncentrációt az idő függvényében, aritmetikus skálán ábrázolják.
If the curve has reached a plateau, that is, become approximately asymptotic to the time axis, the steady-state BCFss is calculated from:
Amennyiben a görbe platót ér el, vagyis megközelítőleg párhuzamos az időtengellyel, az állandósult BCFss a következő képlet alapján számolható:
as steady-state (mean)
állandósult állapotban (átlag)
When no steady-state is reached, it may be possible to calculate a BCFss of sufficient precision for hazard assessment from a ‘steady-state’ at 80 % (1,6/k2) or 95 % (3,0/k2) of equilibrium.
Amennyiben nem következett be az állandósult állapot, a BCFss kielégítő pontossággal kiszámolható az „állandósult állapot”-ból, az egyensúly 80 %-ánál (1,6/k2) vagy 95 %-ánál (3,0/k2).
Also the concentration factor (BCFK) is determined, as the ratio k1/k2, the two first-order kinetic constants.
A koncentrációs faktort (BCFK) is meghatározzák a két elsőrendű kinetikai állandó k1/k2 arányaként.
The depuration rate constant (k2) is usually determined from the depuration curve (i.e. a plot of the decrease in test substance concentration in the fish with time).
A tisztulási sebességi állandó (k2) rendszerint a tisztulási görbéből határozható meg (azaz a halban a vizsgált anyag koncentrációjának csökkenése az idő függvényében).
The uptake rate constant (k1) is then calculated given k2 and a value of Cf which is derived from the uptake curve (see also Appendix 5).
A felvételi sebességi állandó (k1) ezután kiszámolható az adott k2 és a Cf egy, a felvételi görbéből levezetett értékéből (lásd 5. függeléket is).
The preferred method for obtaining BCFK and the rate constants, k1 and k2, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer (11).
A BCFK és a k1, k2 sebességi állandók kiszámításának megfelelő módszere a számítógéppel végzett nem lineáris paraméterbecslő módszer használata (11).
Otherwise, graphical methods may be used to calculate k1 and k2.
Grafikus módszerek is használhatók a k1 és k2 kiszámítására.