natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Place one edge of the gel carrier plate (sheet side down) on the cover sheet plate and lower it slowly so that a gel film forms between the sheets and spreads out regularly and free of bubbles (Figure 3).
A géltartó lemez egyik szélét arccal lefelé fektessük a fedőlemez mellé, és lassan engedjük rá úgy, hogy a két lemez között egy gélfilm képződjön, amely egyenletesen és buborékmentesen kitölti a helyet (3. ábra).
Carefully lower the gel carrier plate completely using a thin spatula and place three more glass plates on top of it to act as weights.
Egy vékony spatula segítségével gondosan, egészen engedjük le a gélhordozó lemezt, és helyezzünk súlyként még három üveglemezt a tetejére.
After polymerization is complete (about 60 minutes) remove the gel polymerized onto the gel carrier sheet along with the cover sheet by tipping the glass plates.
Miután a polimerizáció befejeződött (mintegy 60 perc elteltével), a polimerizálódott gélt az üveglemezek felfordításával emeljük át a hordozólemezről a fedőlemezre.
Clean the reverse of the carrier sheet carefully to remove gel residues and urea.
A hordozólemez alsó felét gondosan tisztítsuk meg a maradványok és a karbamid eltávolítása érdekében.
Weld the gel sandwich into a film tube and store in a refrigerator (maximum six weeks).
A gélszendvicset hegesszük bele egy filmcsőbe, és tároljuk hűtőszekrényben (legfeljebb hat hétig).
Note: The cover sheet with the spacers can be re-used.
Megjegyzés: A fedőlemez a távtartókkal újra felhasználható.
The polyacrylamide gel can be cut to smaller sizes, recommended when there are few samples or if an automatic electrophoresis device is used (two gels, size 4,5 × 5 cm).
A poliakrilamid gél kisebb darabokra is felvágható, amely akkor ajánlott, ha kevesebb minta áll rendelkezésünkre, vagy egy automatikus elektroforézis készüléket használunk (két gél, 4,5 × 5 cm méretben).
lsoelectric focusing
Izoelektromos fókuszálás
Set the cooling thermostat to 12 °C.
A hűtőtermosztátot állítsuk be 12 °C-ra.
Wipe off the reverse of the gel carrier sheet with kerosene, then drip a few drops of kerosene (4.2) onto the centre of the cooling block.
A géltartó lemez hátulját petróleummal töröljük le, majd cseppentsünk néhány csepp petróleumot (4.2.) a hűtőblokk közepére.
Then roll the gel sandwich, carrier side down, onto it, taking care to avoid bubbles.
Ezután a gélszendvicset terítsük rá hordozó felülettel lefelé, óvatosan ügyelve arra, hogy ne képződjenek levegőbuborékok.
Wipe off any excess kerosene and remove the cover sheet.
Törüljünk le minden felesleges petróleumot, és távolítsuk el a fedőlemezt.
Soak the electrode strips with the electrode solutions (4.3, 4.4), cut to gel length and place in the positions provided (distance of electrodes 9,5 cm).
Az elektródcsíkokat áztassuk bele az elektródos oldatokba (4.3., 4.4.), vágjuk le a gél hosszára, és fektessük le a megadott helyzetbe (az elektródok távolsága 9,5 cm).
Conditions for isoelectric focusing:
Az izoelektromos fókuszálás feltételei:
Gel size 265 × 125 × 0,25 mm
Gélméret 265 × 125 × 0,25 mm
Step
Lépés
(min.)
(perc)
Voltage
Feszültség
Current
Áramerősség
Volt-hours
Volt-óra
Pre-focusing
Előfókuszálás
constant 4
konstans 4
Sample focusing [2]
A minta fókuszálása [2]
Final focusing
Zárófókuszálás
Note: If thickness or width of the gels are changed, the values for current and power have to be suitably adjusted (e.g. double the values for electric current and power if a 265 × 125 × 0,5 mm gel is used).
Megjegyzés: Ha a gél vastagságát vagy szélességét megváltoztatjuk, az áramerősség és a teljesítmény értékeit megfelelő módon kell módosítani (például kettőzzük meg az áramerősség és teljesítmény értékeit, ha 265 × 125 × 0,5 mm-es gélt használunk).
Example of a voltage programme for an automatic electrophoresis device (2 gels of 5,0 × 4,5 cm), electrodes without strips applied directly to the gel
A következőkben egy automatikus elektroforéziskészülék feszültségprogramja látható (2 db 5,0 × 4,5 cm gél), az elektródokat csíkok nélkül, azonnal a gélre helyezzük fel
Temp.
Hőmérséklet
Sample focusing
A minta fókuszálása
Focusing
Fókuszálás
Place sample applicator in step 2 at 0 Vh.
A mintafelvivőt a 2. lépésben 0 Vh-nál helyezzük el.
Remove sample applicator in step 2 at 30 Vh.
A mintafelvivőt a 2. lépésben 30 Vh-nál távolítsuk el.
Protein staining
Fehérjefestés
Protein fixation
Fehérjefixálás
Remove the electrode strips immediately after turning off the power and put the gel immediately into a staining/destaining dish filled with 200 ml fixative (4.9); leave for 15 minutes, shaking continuously.
Az áram kikapcsolása után azonnal távolítsuk el az elektródcsíkokat, és a gélt rögtön tegyük a 200 ml fixálószerrel (4.9.) töltött festő/festékeltávolító edénybe; folyamatos rázatás mellett hagyjuk benne 15 percig.
Washing and staining the gel plate
A géllemez mosása és festése
Thoroughly drain off the fixative and wash the gel plate twice for 30 seconds each time with 100 ml destaining solution (4.10).
Alaposan öntsük le a fixálószert, és a géllemezt kétszer harminc másodpercig mossuk le alkalmanként 100 ml festékeltávolító szerben (4.10.).
Pour off the destaining solution and fill the dish with 250 ml staining solution (4.11.3); allow to stain for 45 minutes with gentle shaking.
Öntsük le az eltávolító oldatot, és töltsük meg az edényt 250 ml festőoldattal (4.11.3.); 45 percig fessünk, miközben gyengén rázogatjuk az edényt.
Destaining the gel plate
Festék eltávolítása a géllemezről
Pour off the staining solution, wash the gel plate twice using a 100 ml destaining solution (4.10) each time, then shake with 200 ml destaining solution for 15 minutes and repeat the destaining step at least two or three times until the background is clear and uncoloured.
Öntsük le a festőoldatot, kétszer mossuk le alkalmanként 100 ml festékeltávolító szerben (4.10.), majd rázzuk 15 percen át 200 ml festékeltávolító szerben, és ismételjük meg a festékeltávolítást legalább két-három alkalommal egészen addig, amíg a háttér tiszta és színtelen nem lesz.
Then rinse the gel plate with distilled water (2 × 2 minutes) and dry in the air (2 to 3 hours) or with a hairdryer (10 to 15 minutes).
Ezt követően desztillált vízzel öblítsük le a géllemezt (2 × 2 perc), és levegőn (2–3 óra) vagy hajszárítóval (10–15 perc) szárítsuk meg.
Note 1: Carry out fixing, washing, staining and destaining at 20 °C.
1. megjegyzés: A fixálást, mosást, festést és festékeltávolítást 20 °C-on végezzük.
Do not use elevated temperatures.
Ne használjunk magas hőmérsékletet.
Note 2: If more sensitive silver staining (e.g. Silver Staining Kit, Protein, Pharmacia Biotech, Code No 17-1150-01) is preferred, plasmin-treated casein samples have to be diluted to 5 mg/ml.
2. megjegyzés: Ha az érzékenyebb ezüstfestést (például a Pharmacia Biotech ezüstfestő fehérjekészlete, kódszáma 17–1150–01) választjuk, a plazminnal kezelt kazeinmintákat 5 mg/ml-re kell hígítani.
Evaluation is performed by comparing the protein patterns of the unknown sample with reference standards on the same gel.
Az értékelést az ismeretlen minta által adott fehérjemintázatnak a referenciastandardból ugyanazon a gélen kapott mintázattal történő összehasonlítása révén végezhetjük el.
Detection of cows’ milk in cheeses from ewes’ milk, goats’ milk and buffalos’ milk and mixtures of ewes’, goats’ and buffalos’ milk is done via the γ3- and γ2-caseins, whose isoelectric points range between pH 6,5 and pH 7,5 (Figures 4 a, b, Figure 5).
A juh-, kecske- és bivalytejből, illetve juh-, kecske- és bivalytej keverékéből készített sajtokban található tehéntej kimutatása a γ3- és γ2-kazeinek révén történik, amelyek izoelektromos fókuszálási pontjai a 6,5-ös pH és 7,5-ös pH közötti tartományba esnek (4a., 4b. és 5. ábra).
The detection limit is less than 0,5 %.
A kimutatási határ kisebb mint 0,5 %.
Visual estimation
Szemrevételezéssel történő értékelés
For visual evaluation of the amount of bovine milk it is advisable to adjust the concentrations of samples and standards to obtain the same level of intensity of the ovine, caprine and/or buffalo γ2- and γ3-caseins (see ‘γ2 E,G,B’ and ‘γ3 E,G,B’ in Figures 4 a, b and Figure 5).
A szarvasmarha-eredetű tej mennyiségének szemrevételezéssel történő értékeléséhez ajánlatos a minták és a standardok koncentrációit úgy beszabályozni, hogy ugyanolyan intenzitást kapjunk a juh-, kecske- és/vagy bivalyeredetű γ2- és γ3-kazeinekre (lásd a „γ2 E,G,B” és „γ3 E,G,B” csíkokat a 4a., 4b. és 5. ábrán).
After which the amount of bovine milk (less than, equal to or greater than 1 %) in the unknown sample can be judged directly by comparing the intensity of the bovine γ3- and γ2-caseins (see ‘γ3 C’ and ‘γ2 C’ in Figures 4a, b and Figure 5) to those of the 0 % and 1 % reference standards (ewe, goat) or, laboratory interim-standards (buffalo).
Ezt követően az ismeretlen minta szarvasmarha-eredetű tejtartalma (1 %-nál kevesebb, egyenlő vagy több) közvetlenül megítélhető, ha a szarvasmarha-eredetű γ3- és γ2-kazeineket (lásd a „γ3 C” és „γ2 C” csíkot a 4a., 4b. és az 5. ábrán) egybevetjük a 0 % és az 1 %-os referenciastandardokkal (juh és kecske esetében), valamint a laboratórium belső standardjával (bivalynál).
Densitometric estimation
Denzitometriás értékelés
If available, apply densitometry (5.19) for the determination of the peak area ratio of bovine to ovine, caprine and/or buffalo γ2- and γ3-caseins (see Figure 5).
Ha rendelkezésre áll, használjunk denzitométert (5.19.) a szarvasmarha-eredetű és a juh-, kecske-, illetve bivalyeredetű γ3- és γ2-kazeinek adta csúcsok egymáshoz viszonyított arányának mérésére (lásd az 5. ábrát).
Compare this value to γ2- and γ3-casein peak area ratio of the 1 % reference standard (ewe, goat) or laboratory interim-standard (buffalo) analysed on the same gel.
Hasonlítsuk össze ezt az értéket az ugyanezen a gélen elemzett 1 %-os referenciastandard (juh, kecske), illetve a laboratóriumi belső standard (bivaly) γ3- és γ2-kazeincsúcsa által lefedett terület arányával.
Note: The method is operating satisfactorily, if there is a clear positive signal for both bovine γ2- and γ3-caseins in the 1 % reference standard but not in the 0 % reference standard.
Megjegyzés: A módszer akkor működik megfelelően, ha mindkét szarvasmarha-eredetű kazeinre, a γ3- és γ2-kazeinekre egyértelműen pozitív a jelzés az 1 %-os referenciastandardban, de nincs jel a 0 %-os standardban.
If not, optimize the procedure following the details of the method precisely.
Ellenkező esetben, az eljárást optimalizálni kell a módszer részletes leírását követve.
A sample is judged as being positive, if both bovine γ2- and γ3-caseins or the corresponding peak area ratios are equal to or greater than the level of the 1 % reference standard.
A mintát akkor fogjuk pozitívnak tekinteni, ha benne a szarvasmarha-eredetű γ3- és γ2-kazein, illetve az ezeknek megfelelő csúcsok alatti terület nagysága nagyobb vagy egyenlő az 1 %-os referenciastandardnál kapott szintnél.
Schematic drawing of the covering sheet
A fedőlemez sematikus rajza
Casein layer floating between aqueous and organic phases after centrifugation
A vizes és a szerves fázis között a centrifugálást követően kialakuló kazeinréteg
Flapping technique for casting of ultrathin polyacrylamide gels
Ultravékony poliakrilamid gél öntésére alkalmas terítéses eljárás
a = spacer tape (0,25 mm); b = covering sheet (5.3); c, e = glass plates (5.1); d = gel solution (4.1.2); f = gel carrier sheet (5.2)
a = távtartószalag (0,25 mm); b = fedőlemez (5.3.); c, e = üveglapok (5.1.); d = géloldat (4.1.2.); f = géltartó lemez (5.2.).
Figure 4a
ábra
Isoelectric focusing of plasmin-treated caseins from ewes’ and goats’ milk cheese containing different amounts of cows’ milk.
A juhsajtból és a kecskesajtból származó és különböző mennyiségű tehéntejet tartalmazó, plazminnal kezelt kazeinek izoelektromos fókuszálása
% CM = percentage of cows’ milk, C = cow, E = ewe, G = goat
% CM = tehéntej százalékos aránya, C = tehén, E = juh, G = kecske
Upper half of the IEF gel is shown.
Az IEF-gél felső fele látható.
Figure 4b
ábra
Isoelectric focusing of plasmin treated caseins from cheese made from mixtures of ewes’, goats’ and buffalos’ milk containing different amounts of cows’ milk.
A juhtej, kecsketej és bivalytej keverékéből készült sajtokból származó és különböző mennyiségű tehéntejet tartalmazó, plazminnal kezelt kazeinek izoelektromos fókuszálása
Total separation distance of the IEF gel is shown.
Az IEF-gél teljes elválasztási távolsága látható.
Superposition of densitograms of standards (STD) and cheese samples made from a mixture of ewes’ and goats’ milk after isoelectric focusing
A standardok (STD) és a juh-, illetve kecsketej keverékéből készült sajtokból származó minták denzitogrammjai izoelektromos fókuszálást követően
Upper half of the IEF gel was scanned at λ = 634 nm.
Az IEF-gél felső felét a λ = 634 nm hullámhosszon mértük le.
The produce Ampholine® pH 3,5-9,5 (Pharmacia) and Resolyte® pH 5-7 and pH 6-8 (BDH, Merck) have proved particularly suitable for obtaining the required separation of γ-caseins.
Az Ampholine® pH 3,5–9,5-es (Pharmacia) és a Resolyte® pH 5–7, valamint pH 6–8-as (BDH, Merck) termékek különösen alkalmasnak bizonyultak a γ -kazeinek kívánt szeparációjának elérésére.
Sample application: After pre-focusing (step 1), pipette 18 μl of the sample and standard solutions onto the sample applicators (10 × 5 mm), place them on the gel at 1 mm intervals from each other and 5 mm longitudinally from the anode and press lightly.
Mintaalkalmazás: Az előfókuszálást követően (1. lépés) pipettázzunk 18 μl mintát és standard oldatokat a mintafelvivőre (10 × 5 mm), azokat egymástól legalább 1 mm-es távolságra, az anódtól pedig hosszirányban legalább 5 mm-re helyezzük rá a gélre, és enyhén nyomjuk meg.
Carry out focusing using the above conditions, carefully removing the sample applicators after the 60 minutes of sample focusing.
A fenti körülmények mellett végezzük el a fókuszálást, és óvatosan távolítsuk el a mintafelvivő eszközt a minta 60 perces futtatását követően.
REFERENCE METHOD FOR DETECTING COLIFORMS IN BUTTER, SKIMMED-MILK POWDER, CASEIN AND CASEINATES
REFERENCIA-MÓDSZER KÓLIBAKTÉRIUMOK KIMUTATÁSÁRA VAJBAN, SOVÁNY TEJPORBAN, KAZEINBEN ÉS KAZEINÁTOKBAN
PREPARATION OF SAMPLES
A MINTÁK ELŐKÉSZÍTÉSE
ISO standard 8261
8261 ISO-szabvány.
ISO standard 4831
4831 ISO-szabvány.
Samples corresponding to 1 g of butter or 0,1 g of skimmed-milk powder or casein/caseinates are inoculated in the culture medium.
A táptalajt 1 g vajnak megfelelő vagy 0,1 g sovány tejpornak vagy kazeinnek/kazeinátoknak megfelelő mintákkal oltjuk be.
Three tubes are inoculated per sample.
Mintánként három kémcsövet oltunk be.
RESULTS
EREDMÉNYEK
If the 3 tubes produce 3 negative results, the result is ‘compliant’
Ha a 3 kémcső három negatív eredményt hoz, az eredmény „megfelelő”
If the 3 tubes produce 2 or 3 positive results, the result is ‘non-compliant’
Ha a 3 kémcső kettő vagy három pozitív eredményt hoz, az eredmény „nem megfelelő”
If the 3 tubes produce 2 negative results, the analysis is redone twice (with two tubes)
Ha a 3 kémcső kettő negatív eredményt hoz, az analízist kétszer meg kell ismételni (két kémcsővel)
If the 2 results are negative, the result is ‘compliant’
Ha a 2 eredmény negatív, az eredmény „megfelelő”
If at least 1 result is positive, the result is ‘non-compliant’.
Ha legalább 1 eremény pozitív, az eredmény „nem megfelelő”.
(Article 8)
(8. cikk)
DETERMINATION OF LACTOSE IN COMPOUND FEEDINGSTUFFS
LAKTÓZ MEGHATÁROZÁSA ÖSSZETETT TAKARMÁNYOKBAN
Determination of lactose in compound feedingstuffs.
Laktóz meghatározása összetett takarmányokban.
The content of lactose is defined as the percentage by mass as determined by the procedure described.
A laktóztartalom a megadott eljárás alapján meghatározott, tömegszázalékban kifejezett mennyiség.
The anhydrous lactose content is expressed as g per 100 g.
A vízmentes laktóztartalmat g/100g-ban fejezzük ki.
The compound feedingstuff is reconstituted with water.
Az összetett takarmányt vízzel felöntjük.
A ‘Biggs’ solution is added to a dilute weighed aliquot to precipitate out the fat and the protein component fractions of the compound feedingstuff.
Adjunk „Biggs”-oldatot egy hígított lemért aliquot-hoz, hogy kicsapódjon az összetett takarmányból a zsír és a fehérjekomponens-frakció.
The sample is filtered (or centrifuged) and the filtrate (or supernatant) is injected on a cation exchange HPLC column in the lead form using HPLC grade water as the mobile phase.
A mintát leszűrjük (vagy centrifugáljuk), és a szűrletet (vagy felülúszót) injektáljuk egy ólomionos kationcserélő HPLC-oszlopra mozgófázisként HPLC-minőségű víz használatával.
The eluted lactose is detected by a differential refractometer.
Az eluált laktózt differenciál refraktométerrel mutatjuk ki.
Use only reagents of recognized analytical grade, unless otherwise specified, and degassed HPLC grade water.
Ellenkező rendelkezés hiányában csak elismert analitikai tisztaságú vegyszert és gázmentes HPLC-minőségű vizet használjunk.
D-Lactose monohydrate ((C12H22)O11H2O) can take up additional moisture.
A d-laktóz monohidrát ((C12H22)O11H2O) többletnedvességet tud felvenni.
Before use measure the real amount of water by Karl-Fisher or remove the additional moisture by placing lactose in an oven at 105 °C for 8 hours (the lactose does not lose its crystal water by this treatment).
Használat előtt mérjük meg a tényleges vízmennyiséget a Karl-Fisher-módszerrel vagy távolítsuk el a többletnedvességet úgy, hogy 8 órára 105 °C-os kemencébe helyezzük a laktózt (a laktóz ennél a kezelésnél nem veszíti el kristályvíz-tartalmát).
Concentrated Biggs/Szijarto solution
Koncentrált Biggs/Szijarto-oldat
Dissolve 9,10 g zinc acetate ehydrate (Zn(CH3COO)2.2H2O) and 5,46 g phosphotungstic acid monohydrate (H3[P(W3O10)4.xH2O]) in about 70 ml with HPLC grade water (6.8) in a 100 ml volumetric flask.
Oldjunk fel 9,10 g cink-acetát-dihidrátot (Zn(CH3COO)2.2H2O) és 5,46 g foszfor-wolframsav-monohidrátot (H3[P(W3O10)4.xH2O]) körülbelül 70 ml HPLC-minőségű vízben egy 100 ml-es mérőlombikban.
Add 5,81 ml glacial acetic acid (CH3COOH).
Adjunk hozzá 5,81 ml jégecetet (CH3COOH).
Dilute to the 100 ml mark with HPLC grade water (6.8) water and mix.
Hígítsuk fel a 100 ml jelig HPLC-minőségű vízzel (6.8.), és keverjük össze.
The solution can be stored at room temperature for 1 year.
Ez az oldat szobahőmérsékleten egy évig tárolható.
Diluted Biggs/Szijarto solution
Hígított Biggs/Szijarto-oldat
Dilute 25 ml concentrated Biggs/Szijarto solution (5.3) with water to 500 ml using a volumetric flask.
Hígítsunk fel 25 ml koncentrált Biggs/Szijarto-oldatot (5.3.) vízzel 500 ml-re mérőlombik használatával.
The solution can be stored at room temperature for 1 month.
Ez az oldat szobahőmérsékleten egy hónapig tárolható.
Preparation of HPLC grade water
HPLC-minőségű víz előkészítése
Filter the ultra pure water (6.8) by using the vacuum system filtration (6.9).
Szűrjük le az ultratiszta vizet (6.8.) vákuumos szűrőrendszer használatával (6.9.).
To improve the pump performance and to obtain a stable baseline, degas the mobile phase daily by selecting one of the available techniques such as sparging by helium, sonication, vacuum or in-line degassing system.
A pumpa teljesítményének javításához és stabil alapvonal eléréséhez a mozgófázist naponta gázmentesítsük valamilyen rendelkezésre álló technikával, mint pl. hélium bevezetése, ultrahangos kezelés, vákuumos vagy in-line gázmentesítés.
Note: In order to prolong column life it is essential that the carbon dioxide content of the eluent is as low as possible and that re-uptake is prevented.
Megjegyzés: Az oszlop élettartamának meghosszabítása érdekében fontos, hogy az eluens szén-dioxid-tartalma a lehető legalacsonyabb legyen és hogy az újrafelvétel ne legyen lehetséges.
Usual laboratory equipment and, in particular, the following:
A szokásos laboratóriumi berendezés, valamint különösen a következők:
HPLC ion exchange resin column
Ioncserélő gyantát tartalmazó HPLC-oszlop
Column packing: 8 % cross-linked polystyrene-divinylbenzene copolymer functionalised with cation-exchange groups in the lead form.
Oszloptöltet: ólomionos kationcserélő csoportokkal aktivált 8 % keresztkötésű polisztirol-divinil-benzol kopolimer.
Column dimensions: Length 300 mm, internal diameter ca. 8 mm.
Oszlop méretei: 300 mm hosszú, belső átmérő kb. 8mm.
Use of other diameters is possible provided that the flow-rate is adjusted accordingly.
Más átmérőt is lehet használni, ha az áramlási sebességet megfelelően beállítjuk.
Guard column
Előtétoszlop
The guard column is a combination of a separate cation exchanger (H+) and an anion exchanger (CO3-), each packed in columns of ca. 30 mm × 4,6 mm (L × ID) (e.g. micro-guard columns in a micro-guard holder) and connected in series or in the form of a mixed bed consisting of AG 50W-X4, -400 mesh (H+) and AG3-X4A, 200–400 mesh (OH-) in the ratio of 35:65 (m/m) manually packed in a column of ca. 20 × 9 mm (L × ID).
Az előtétoszlop egy külön kationcserélő (H+) és egy anioncserélő (CO3–) kombinációja, mindegyik kb. 30 mm × 4,6 mm-es (hossz × belső átmérő) oszlopokba töltve (pl. mikro-előtétoszlopok mikroelőtétoszlop-tartóban)és sorba kötve vagy „mixed-bed” formában, amelyet egy AG 50W–X4, – 400 mesh (H+) és egy AG3-X4A, 200–400 mesh (OH–) alkot 35:65 (m/m) arányban, manuálisan egy kb. 20 × 9 mm-es (hossz × belső átmérő) oszlopba töltve.
Column oven
Termosztatikus oszlopkamra
Oven capable of maintaining a constant temperature of 85 °C ± 1 °C.
85 °C ± 1 °C állandó hőmérséklet fenntartására alkalmas kamra.
HPLC pump
HPLC-pumpa
Pump capable of generating a constant flow-rate (< 0,5 % fluctuations) at 0,2-1,0 m/min.
0,2–1,0 m/min állandó áramlási sebesség (< 0,5 % ingadozás) előállítására képes pumpa.
HPLC injection device
HPLC-injektáló eszköz
Auto sampler capable of injecting 25 µL and having a repeatability < 0,5 %.
25 µl injektálására képes automata mintaadagoló < 0,5 % ismételhetőséggel.
Alternatively a manual device may be used (same requirements as the auto sampler).
Kézi eszköz is használható (ugyanazokkal a követelményekkel, mint az automata adagoló).
Highly sensitive refractive index detector having a noise < 5,10-9 RI units.
Magas érzékenységű refraktív index detektor, melynek zajszintje < 5,10–9 RI egység.
Integrator
Integrátor
Software or a dedicated integrator to perform data acquisition, processing and generating peak areas and peak heights, which can be converted to lactose concentrations.
Szoftver vagy az arra fenntartott integrátor az adatgyűjtéshez és feldolgozáshoz és olyan csúcsterületek és csúcsmagasságok előállításához, amelyet át lehet számítani laktózkoncentrációra.
Water purification unit
Víztisztító egység
System capable to provide ultra pure water (type 1) having a resistivity >14 MΩ.cm.
> 14 MΩ.cm ellenállású ultratiszta víz (1. típus) előállítására képes rendszer.
Solvent filtration unit
Oldószerszűrő egység
System that enables filtration of the water using 0,45 µm pore size membrane filter.
0,45 µm pórusméretű membránszűrő használatával való vízszűrést lehetővé tévő rendszer.
Note: Many water purification units (6.8) have a built in 0,45 or 0,2 µm filtration.
Megjegyzés: Sok víztisztító egység (6.8.) rendelkezik beépített 0,45 vagy 0,2 µm-es szűrővel.
Additional filtration can be omitted if this water is directly used.
A további szűrés elhagyható, ha ezt a vizet közvetlenül felhasználjuk.
Balance having a read-out of 0,1 mg.
0,1 mg leolvashatóságú mérleg.
Water bath
Vízfürdő
Water bath capable of maintaining a temperature at 40 °C (±0,5).
40 °C (±0,5) hőmérséklet tartására képes vízfürdő.
Centrifuge
Centrifuga
Having a capacity of generating at least 3000 g for Eppendorf vials or equivalent or larger type of vials.
Eppendorf-csövek vagy azzal egyenértékű, vagy nagyobb típusú csövek esetén legalább 3000 g előállítására képes centrifuga.
Volumetric flask 50 mL
50 ml-es mérőlombik
Capacity of 50 mL, class A.
50 ml űrtartalom, A osztály
Note: Flasks of other capacity can be used by taking into account the volume factor.
Megjegyzés: Más űrtartalmú lombik is használható a térfogattényező figyelembevételével.
Volumetric flask 100 mL
100 ml-es mérőlombik
Capacity of 100 mL, class A.
100 ml űrtartalom, A osztály
Graduated pipette
Osztott pipetta
Graduated pipette of 10 mL
10 ml-es osztott pipetta.