natgillin/translations-raw huggingface dataset:
test conditions: composition of media, CO2 concentration, concentration of test substance, vehicle used, incubation temperature, treatment time, spindle inhibitor used, its concentration and the duration of treatment with it, type of mammalian activation system used, positive and negative controls,
a vizsgálat körülményei: a tápoldatok összetétele, a szén-dioxid-koncentráció, a vizsgált anyag koncentrációja, a felhasznált vivőanyag, az inkubációs hőmérséklet, a kezelés időtartama, a felhasznált orsóképződést gátló vegyület, annak koncentrációja és az azzal történő kezelés időtartama, a felhasznált aktiválórendszer, a pozitív és a negatív kontrollok,
number of cell cultures per experimental point,
a sejtkultúrák száma vizsgálati pontonként,
details of the technique used for slide preparation,
a lemezkészítéshez használt technika részletes leírása,
number of metaphases analysed (data given separately for each culture),
az elemzett metafázisok száma (az adatokat külön kell megadni minden sejtkultúrára),
mean number of SCE per cell and per chromosome (data given separately for each culture),
az SCE átlagos száma sejtenként és kromoszómánként (az adatokat külön kell megadni minden sejtkultúrára),
criteria for scoring SCE,
az SCE-számolás/besorolás kritériumai,
rationale for dose selection,
a dózis kiválasztásának indoka,
dose-response relationship, if applicable,
a dózis-hatás összefüggés, ha van,
PRINCIPLES OF THE TEST METHOD
A VIZSGÁLATI MÓDSZER ELVE
The sex-linked recessive lethal (SLRL) test using Drosophila melanogaster detects the occurrence of mutations, both point mutations and small deletions, in the germ line of the insect.
A nemhez kötött, recesszív letális (SLRL Test = sex-linked recessive lethal test) vizsgálat Drosophila melanogaster használatával mutációk jelenlétét – pont mutációkat vagy kisebb törléseket – mutatja ki a rovar csíravonalában.
This test is a forward mutation assay capable of screening for mutations at about 800 loci on the X-chromosome; this represents about 80 % of all X-chromosal loci.
A vizsgálattal az előrehaladó mutáció követhető, és az X kromoszóma mintegy 800 lokuszán van lehetőség a mutációk szűrésére; ez az X-kromoszóma összes lokuszának mintegy 80 %-át jelenti.
The X-chromosome represents approximately one-fifth of the entire haploid genome.
Az X kromoszóma pedig a teljes haploid genom mintegy egyötödét képviseli.
Mutations in the X-chromosome of Drosophila melanogaster are phenotypically expressed in males carrying the mutant gene.
A Drosophila melanogaster X-kromoszómájának mutációi fenotípusosan a mutáns gént hordozó hímeken jelennek meg.
When the mutation is lethal in the hemizygous condition, its presence is inferred from the absence of one class of male offspring out of the two that are normally produced by a heterozygous female.
Ha valamely mutáció hemizigóta állapotban halálos, annak jelenlétére a heterozigóta nőstények által normál esetben kiköltött két hím osztály egyikének hiánya utal.
The SLRL test takes advantage of these facts by means of specially marked and arranged chromosomes.
Az SLRL-vizsgálattal különleges módon megjelölt és elrendezett kromoszómák segítségével fel lehet ismerni az említett sajátosságokat.
Stocks
Törzsek
Males of a well-defined wild-type stock and females of the Muller-5 stock may be used.
Jól jellemzett, vad típusú törzshöz tartozó hímek és a Muller-5 elnevezésű törzsből származó nőstények használhatók.
Other appropriately marked female stocks with multiple inverted X-chromosomes may also be used.
Más, megfelelően jelölt nőstény törzsek is használhatók, ha van többszörös inverz X-kromoszómájuk.
Test substances should be dissolved in water.
A vizsgált anyagokat vízben oldják.
Substances, which are insoluble in water may be dissolved or suspended in appropriate vehicles (e.g. a mixture of ethanol and Tween-60 or 80), then diluted in water or saline prior to administration.
A vízben nem oldódó anyagokat a megfelelő vivőanyagban is lehet oldani vagy szuszpendálni (pl. etanol és Tween-60, illetve Tween-80 keverékében), majd vízzel, illetve sóoldattal hígítani a beadás előtt.
Dimethylsulphoxide (Dmso) should be avoided as a vehicle.
A dimetil-szulfoxidot (DMSO) lehetőleg ne használják vivőanyagként.
Number of animals
Az állatok száma
The test should be designed with a predetermined sensitivity and power.
A vizsgálatot előre meghatározott érzékenységgel és felbontóképességgel kell megtervezni.
The spontaneous mutant frequency observed in the appropriate control will influence strongly the number of treated chromosomes that must be analysed.
A megfelelő kontroliban megfigyelt spontán mutációs gyakoriság jelentősen befolyásolja az elemzésre szánt kezelt kromoszómák számát.
Exposure may be oral, by injection or by exposure to gases or vapours.
Az anyagot szájon át, injekcióval, illetve gázzal vagy párával való expozíció útján adagolhatjuk.
Feeding of the test substance may be done in sugar solution.
A vizsgált anyagot táplálékként cukoroldatban adhatók be.
When necessary, substances may be dissolved in a 0,7 % NaCl solution and injected into the thorax or abdomen.
Szükség esetén az anyagokat 0,7 %-os NaCl-oldatban is feloldhatjuk, és azt a mellkasba vagy a hasüregbe fecskendezhetjük.
Negative (vehicle) and positive controls should be included.
Negatív (vivőanyag-) és pozitív kontrollokat is alkalmazni kell.
However, if appropriate laboratory historical control data are available, no concurrent controls are needed.
Ha azonban megfelelő történeti laboratóriumi adatok állnak rendelkezésre, kontrollokra nincs szükség.
Exposure levels
Expozíciós szintek
Three exposure levels should be used.
Három expozíciós szintet kell alkalmazni.
For a preliminary assessment one exposure level of the test substance may be used, that exposure level being either the maximum tolerated concentration or that producing some indication of toxicity.
Előzetes felmérésre a vizsgált anyag egyetlen koncentrációját használják, ez lehet a legnagyobb elviselhető koncentráció, vagy pedig az, amely a toxicitás bizonyos jeleit kiváltja.
For non-toxic substances exposure to the maximum practicable concentration should be used.
A nem mérgező anyagoknál a legnagyobb, gyakorlatilag még megvalósítható koncentrációt használják.
Wild-type males (three to five days old) are treated with the test substance and mated individually to an excess of virgin females from the Muller-5 stock or from another appropriately marked (with multiple inverted X-chromosomes) stock.
A vizsgált anyaggal vad típusú (három-öt napos) hímeket kezelnek, majd egyenként pároztatják a Muller-5 törzsből vagy más, megfelelően jelölt törzsből származó szűz nőstényekkel (a törzsekben többszörös inverz X-kromoszómának kell lennie).
The females are replaced with fresh virgins every two to three days to cover the entire germ cell cycle.
A nőstényeket két-háromnaponta friss szűz állatokra cserélik le, hogy a teljes csírasejtciklust le tudják fedni.
The offspring of these females are scored for lethal effects corresponding to the effects on mature sperm, mid or late-stage spermatids, early spermatids, spermatocytes and spermatogonia at the time of treatment.
E nőstények utódait megvizsgálják a halálos hatások szempontjából, amelyek megnyilvánulhatnak a kezelés alatt az érett spermára, a középső szakaszban és a kései stádiumban lévő spermatidákra, a korai spermatidákra, illetve az elősejtekre és az ős-ondósejtekre gyakorolt hatásban.
Heterozygous F1 females from the above crosses are allowed to mate individually (i.e. one female per vial) with their brothers.
A fenti keresztezésekből származó heterozigóta F1 nőstényeket engedik egyedenként párzani (vagyis csoportonként egy nőstényt) a testvéreikkel.
In the F2 generation, each culture is scored for the absence of wild-type males.
Az F2 nemzedékben minden tenyészetben meghatározzák a vad típusú hímek hiányát.
If a culture appears to have arisen from an F1 female carrying a lethal in the parental X-chromosome (i.e. no males with the treated chromosome are observed) daughters of that female with the same genotype should be tested to ascertain whether the lethality is repeated in the next generation.
Ha egy tenyészet minden jel szerint a szülői X-kromoszómában a halálos gént hordozó F1 nősténytől származik (vagyis egyetlen hímet sem találtak a kezelt kromoszómával), annak a nősténynek az azonos genotípusú leányait is vizsgálni kell annak bizonyítására, hogy a letalitás megismétlődik-e a következő generációban.
Data should be tabulated to show the number of X-chromosomes tested, the number of non-fertile males and the number of lethal chromosomes at each exposure concentration and for each mating period for each male treated.
Az adatokat táblázatos formában kell összefoglalni a vizsgált X-kromoszómák, a terméketlen hímek, valamint a halálos kromoszómák számának az egyes adagolási koncentrációknál, illetve párosítási időszakoknál az egyes kezelt hímekre történő bemutatásához.
Numbers of clusters of different sizes per male should be reported.
A hímenként észlelhető eltérő nagyságú csoportok (klaszterek) számát rögzíteni kell.
These results should be confirmed in a separate experiment.
Ezen eredményeket külön vizsgálattal is meg kell erősíteni.
Appropriate statistical methods should be used in evaluation sex-linked recessive lethal tests.
Megfelelő statisztikai módszerek alkalmazásával kell értékelni a nemhez kötött, recesszív halálos mutációs vizsgálatokat.
Clustering of recessive lethals originating from one male should be considered and evaluated in an appropriate statistical manner.
Az egy hímtől eredő recesszív letális mutációk csoportjait a megfelelő statisztikai módszerekkel kell vizsgálni és értékelni.
stock: Drosophila stocks or strains used, age of insects, number of males treated, number of sterile males, number of F2 cultures established, number of F2 cultures without progeny, number of chromosomes carrying a lethal detected at each germ cell stage,
törzs: a használt Drosophila törzsek és fajták, a rovarok kora, a kezelt hímek száma, a steril hímek száma, a létrejött F2 tenyészetek száma, a leszármazottak nélküli F2 tenyészetek száma, az egyes csírasejtstádiumokban észlelt, halálos génmutációt hordozó kromoszómák száma,
criteria for establishing the size of treated groups,
a kezelt csoportok méretének meghatározásához használt kritériumok,
test conditions. detailed description of treatment and sampling schedule, exposure levels, toxicity data, negative (solvent) and positive controls, if appropriate,
a vizsgálati feltételek: a kezelési és a mintavételi ütemterv részletes ismertetése, az expozíciós szintek, a toxicitási adatok, a negatív (oldószeres) és a pozitív kontrollok, ha szükséges,
criteria for scoring lethal mutations,
a letális mutációk számlálásának kritériumai,
exposure/effect relationship where possible,
dózis-hatás összefüggés, ha van,
evaluation of data,
az eredmények statisztikai feldolgozása,
Mammalian cell culture systems may be used to detect phenotypic changes in vitro induced by chemical substances associated with malignant transformation in vivo.
Az emlőssejtkultúra-rendszerek felhasználhatók a rosszindulatú in vivo átalakulással összefüggésbe hozott kémiai vegyületek által kiváltott in vitro fenotípusos változások kimutatására.
Widely used cells include C3H10T1/2, 3T3, SHE, Fischer rat and the tests rely on changes in cell morphology, focus formation or changes in anchorage dependence in semi-solid agar.
A széles körben alkalmazott sejtvonalak közé tartozik a C3H10T1/2, a 3T3, az SHE, a Fischer jelzésű patkánysejtvonal; a vizsgálatok a sejtek morfológiai változásain, fókuszképződésén vagy félszilárd agaron való megtelepedésiképesség-változásain alapulnak.
Less widely used systems exist which detect other physiological or morphological changes in cells following exposure to carcinogenic chemicals.
Kevésbé széles körben használt rendszerek is léteznek, amelyek más fiziológiai vagy morfológiai változásokat mutatnak ki a sejtekben, a rákkeltő anyagokkal történő kezelést követően.
None of the in vitro test endpoints has an established mechanistic link with cancer.
Az in vitro vizsgálatok egyetlen végpontja esetében sem bizonyított az a mechanizmus, amely a hatás és a karcinogén folyamat összefüggését magyarázza.
Some of the test systems are capable of detecting tumour promotors.
Egyes vizsgálati rendszerek alkalmasak tumorpromoterek kimutatására.
Cytotoxicity may be determined by measuring the effect of the test material on colony-forming abilities (cloning efficiency) or growth rates of the cultures.
A citotoxicitást a vizsgált anyagnak a kolóniaképző képességre (klónozási hatékonyság) vagy a kultúrák növekedési sebességére gyakorolt hatásával határozhatják meg.
The measurement of cytotoxicity is to establish that exposure to the test chemical has been toxicologically relevant but cannot be used to calculate transformation: frequency in all assays since some may involve prolonged incubation and/or replating.
A citotoxicitás mérése azt a célt szolgálja, hogy megállapítsák, a vizsgált anyag adagja toxikológiailag releváns volt-e, de nem használható minden mérésnél a transzformációs gyakoriság kiszámítására, hiszen egyes vizsgálatok esetében hosszabb inkubációra és/vagy ismételt szélesztésre van szükség.
A variety of cell lines or primary cells are available depending on the transformation test being used.
Az alkalmazott transzformációs vizsgálattól függően számos sejtvonal vagy primer sejttenyészet jöhet szóba.
The investigator must ensure that the cells in the test being performed exhibit the appropriate phenotypic change after exposure to known carcinogens and that the test, in the investigator's laboratory, is of proven and documented validity and reliability.
A vizsgálatot végző személynek biztosítania kell, hogy az elvégzendő vizsgálat során a megfelelő fenotípusos változás következik be az ismert rákkeltő hatású anyaggal való expozíciót követően, és hogy a vizsgálatot végző személy által vezetett kutatólaboratóriumban végzett vizsgálat megbízhatósága és érvényessége bizonyított és dokumentálható.
Media and experimental conditions should be used that are appropriate to the transformation assay in use.
Olyan tápfolyadékot és vizsgálati körülményeket kell alkalmazni, amelyek a legjobban illenek a használt transzformációs vizsgálathoz.
Test substances may be prepared in culture media or dissolved or suspended in appropriate vehicles prior to treatment of the cells.
A vizsgált anyagokat a sejtek kezelését megelőzően tápfolyadékban vagy megfelelő vivőanyagban kell előkészíteni vagy feloldani, illetve szuszpendálni.
The final concentration of the vehicle in the culture system should not affect cell viability, growth rate or transformation incidence.
A vivőanyag végső koncentrációja a kultúrában nem befolyásolhatja a sejtek életképességét, növekedési sebességét vagy a transzformáció előfordulási gyakoriságát.
Alternatively, when cell types are used that possess intrinsic metabolic activity, the nature of the activity should be known to be appropriate to the chemical class being tested.
A másik lehetőség, hogy belső metabolikus aktivitással rendelkező sejttípusokat használunk, ám ilyenkor az aktivitás jellegét és mértékét ismerni kell, hogy az megfeleljen a vizsgált kémiai osztálynak.
Positive controls, using both a direct-acting compound and a compound requiring metabolic activation should be included in each experiment; a negative (vehicle) control should also be used.
Minden vizsgálatnak pozitív kontrollként tartalmaznia kell egy közvetlenül ható vegyületet és egy metabolikus aktiválást igénylő vegyületet is; ezenkívül negatív (vivőanyag-) kontrollt is kell használni.
The following are examples of substances, which might be used as positive controls:
Néhány példa a pozitív kontrollként felhasználható anyagokra:
Direct-acting chemicals:
közvetlenül ható vegyületek:
Ethylmethanesulphonate,
etil-metán-szulfonát,
β-propiolactone,
béta-propiol akton,
Compounds requiring metabolic activation:
közvetve ható vegyületek:
2-acetylaminofluorene,
2-acetoamin-fluorén,
4-dimethylaminoazobenzene,
4-dimetil-amino-azo-benzén,
7,12-dimethylbenzanthracene.
7,12-dimetil-benzantracén.
When appropriate, an additional positive control of the same chemical class as the compound under test should be included.
Ahol szükséges, alkalmazni lehet még egy pozitív kontrollt is, amely a vizsgált anyaggal egyező vegyületosztályba tartozik.
Several concentrations of the test substance should be used.
A vizsgált anyag több koncentrációját kell alkalmazni.
These concentrations should yield a concentration-related toxic effect, the highest concentration producing a low level of survival and the survival in the lowest concentration being approximately the same as that in the negative control.
E mennyiségeknek koncentrációfüggő mérgező hatást kell eredményezniük, amelyek jellemzője, hogy a legnagyobb vizsgált koncentrációval alacsony túlélési arány jár, míg a legalacsonyabb koncentrációval kezelt csoportban a túlélés megközelítőleg megegyezik a negatív kontrollcsoportéval.
Cells without sufficient intrinsic metabolic activity should be exposed to the test substance in the presence and absence of an appropriate metabolic activation system.
A szükséges belső metabolikus aktivitással nem rendelkező sejteket a megfelelő metabolikus akti válórendszer jelenlétében, illetve hiányában is kezelni kell a vizsgált anyaggal.
At the end of the exposure period, cells are washed free of test substance and cultured under conditions appropriate for the appearance of the transformed phenotype being monitored and the incidence of transformation determined.
A kezelés végén a sejtek környezetéből kimossák az anyagot, és olyan, megfelelő körülmények között tenyésztik, amelyek mellett a vizsgált, transzformált fenotípus megjelenhet, és a transzformáció előfordulási gyakorisága meghatározható.
All results are confirmed in an independent experiment.
Valamennyi eredményt független vizsgálattal kell megerősíteni.
Data should be presented in tabular form and may take a variety of forms according to the assay being used e.g. plate counts, positive plates or numbers of transformed cells.
Az adatokat táblázatos formában kell összefoglalni, amely számos fajtát jelenthet attól függően, hogy milyen meghatározást végzünk, pl. telepszám, pozitív telepek, illetve a transzformált sejtek száma.
Where appropriate, survival should be expressed as a percentage of control levels and transformation frequency expressed as the number of transformants per number of survivors.
Ahol szükséges, a túlélési arányt a kontrollértékek százalékában, a transzformációs gyakoriságot pedig a túlélő sejtekre eső transzformált sejtek számának arányában kell megadni.
cell type used, number of cell cultures, methods for maintenance of cell cultures,
a felhasznált sejttípus, a sejtkultúrák száma, a sejtkultúrák fenntartásának módszere,
test conditions: concentration of test substance, vehicle used, incubation time, duration and frequency of treatment, cell density during treatment, type of exogenous metabolic activation system used, positive and negative controls, specification of phenotype being monitored, selective system used (if appropriate), rational for dose selection,
a vizsgálat körülményei: a vizsgált anyag koncentrációja, a felhasznált vivőanyag, az inkubációs idő, a kezelés gyakorisága és időtartama, a sejtsűrűség a kezelés alatt, a felhasznált külső anyagcsere-aktiváló rendszer, a pozitív és negatív kontrollok, a megfigyelt fenotípus leírása, a használt szelektív rendszer (ha alkalmazható), a dózisok megválasztásának indokolása,
method used to enumerate viable and transformed cells,
az életképes és transzformált sejtek megszámlálásához használt módszer,
Dominant lethal effects cause embryonic or foetal death.
A domináns letális (halálos) hatások embrionális, illetve magzati elhalást okoznak.
Induction of dominant lethals by exposure to a chemical substance indicates that the substance has affected germinal tissue of the test species.
A domináns letális hatások indukálása azt jelzi, hogy az illető vizsgált anyag a vizsgált állatfaj esetében hatást gyakorolt a csíraszövetekre.
It is generally accepted that dominant lethals are due to chromosomal damage (structural and numerical anomalies).
Az általánosan elfogadott nézet szerint a domináns letális hatások kromoszómakárosodásra vezethetők vissza (szerkezeti és számbeli rendellenességek).
Embryonic death if females are treated may also be the result of toxic effects.
Nőstény állatok kezelése esetén az embrió elpusztulása az anyag toxikus hatása miatt is bekövetkezhet.
Generally, male animals are exposed to the test compound and mated to untreated virgin females.
Általában hím állatokat kezelnek a vizsgált anyaggal, és a kezelt állatokat kezeletlen szűz nőstényekkel pároztatják.
The various germ cell stages can be tested separately by the use of sequential mating intervals.
A különféle csírasejtstádiumok külön vizsgálhatók, ha egymás után következő pároztatási időközöket alkalmazunk.
The increase of dead implants per female in the treated group over the dead implants per female in the control group reflects the post-implantational loss.
Az egy nőstényre jutó élettelen, beágyazódott embriók számának növekedése a kezelt csoportban a kontrollcsoportban tapasztalható hasonló adathoz képest a beágyazódás utáni veszteséget tükrözi.
Pre-implantational loss can be estimated based on corpora lutea counts or by comparing the total implants per female in treated and control groups.
A beágyazódás előtti veszteségeket a sárgatestek száma alapján vagy a kezelt és kontrollcsoportokban az összes beágyazódott embriók számának összehasonlításából lehet kiszámítani.
The total dominant lethal effect is the sum of pre- and post-implantational loss.
Az összes domináns letális hatás a beágyazódás előtti és utáni elhalás összegéből adódik.
The calculation of the total dominant lethal effect is based on comparison of the live implants per female in the test group to the live implants per female in the control group.
A teljes domináns letális hatás kiszámítása a kezelt csoportban egy nőstényre jutó élő, beágyazódott embriók számának a kontrollcsoportban egy nőstényre jutó élő, beágyazódott embriók számával történő egybevetésén alapul.
A reduction in the number of implants at certain intervals may be the result of cell killing (i.e. of spermatocytes and/or spermatogonia).
A beágyazódott embriók számának csökkenése bizonyos időközönként sejtpusztulás eredménye is lehet (azaz spermatociták és/vagy ondósejt-előalakok pusztulásáé).
When possible, test substances should be dissolved or suspended in isotonic saline.
Ahol lehet, a vizsgált anyagokat izotóniás sóoldatban kell feloldani vagy szuszpendálni.
Chemicals insoluble in water may be dissolved or suspended in appropriate vehicles.
A vízben oldhatatlan vegyi anyagokat a megfelelő vivőanyagban lehet feloldani vagy szuszpendálni.
The vehicle used should neither interfere with the test chemical nor produce toxic effects.
Az alkalmazott vivőanyag nem lehet hatással a vizsgált anyagra, és nem okozhat toxikus hatást.
Fresh preparations of the test chemical should be employed.
A vizsgált vegyi anyag friss készítményeit kell használni.
The test compound should generally be administered only once.
A vizsgált vegyületet rendszerint csak egyszer kell beadni.
Based on toxicological information a repeated treatment schedule can be employed.
Toxikológiai információk alapján ismételt kezelés is lehetséges.
The usual routes of administration are oral intubation or intraperitoneal injection.
Az általánosan alkalmazott adagolási módok a szájon át történő intubálás és az intraperitoneális injekció.
Other routes of administration may be appropriate.
Más alkalmazási módok is megfelelőek lehetnek.
Rats or mice are recommended as the test species.
A javasolt kísérleti állat a patkány vagy az egér.
Healthy fully sexually mature animals are randomised and assigned to treatment and control groups.
Az egészséges, ivarérett állatokat véletlenszerű kiválasztással kezelt és kontrollcsoportokba kell beosztani.
An adequate number of treated males should be used, taking into account the spontaneous variation of the biological character being evaluated.
Megfelelő létszámban kell kezelt hímeket felhasználni, figyelembe véve az értékelni kívánt biológiai jellemző spontán variációit.