natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Note 3. Every five samples the reference sample (5) should be injected and used to calculate a new response factor R. (9.1.1).
3. megjegyzés: Minden öt minta után ismét a referenciamintát (5) kell beinjektálni, és segítségével új R-válaszjelet kell meghatározni (9.1.1.).
The results of the chromatographic analysis of the test sample (E) are obtained in the form of a chromatogram in which the CMPA peak is identified by its retention time of about 26 minutes
A vizsgálati minta (E) kromatográfiás elemzésének eredményét egy kromatogram formájában kapjuk meg, ahol a CMPA-csúcsot a körülbelül 26 perces retenciós idő alapján lehet beazonosítani.
The integrator (6.11.6) automatically calculates the peak height H of the CMPA peak.
Az integrátor (6.11.6.) automatikusan kiszámolja a CMPA-csúcs H-csúcsmagasságát.
The baseline location should be checked in every chromatogram.
Az alapvonal helyzetét minden kromatogramon ellenőrizni kell.
The analysis or the integration should be repeated if the baseline was incorrectly located.
Ha az alapvonal illesztése nem volt pontos, az elemzést vagy az integrálást ismételni kell.
Note: If the CMPA peak is sufficiently separated from other peaks valley-to-valley baseline allocation should be used, otherwise use dropping perpendiculars to a common baseline, which should have starting point close to the CMPA peak (thus not at t = 0 min!).
Megjegyzés: ha a CMPA-csúcs kellőképp elkülönül a többi csúcstól, völgytől-völgyig történő alapvonal-hozzárendelést kell alkalmazni, egyéb esetben merőlegeseket kell egy közös alapvonalra állítani, a kiindulási pont legyen közel a CMPA-csúcshoz (azaz nem t = 0 percnél!).
Use for the standard and the samples the same type integration type and check in case of common baseline its consistency for the samples and the standard.
Használjuk ugyanazt az integrálási módszert a standardnál és a mintáknál is, és közös alapvonal esetén ellenőrizzük a konzisztenciáját a minták és a standard esetében is.
It is essential to examine the appearance of each chromatogram prior to quantitative interpretation, in order to detect any abnormalities due either to malfunctioning of the apparatus or the column, or to the origin and nature of the sample analysed.
Lényeges, hogy még a mennyiségi értelmezés előtt valamennyi kromatogram külalakját megvizsgáljuk, hogy felfedezzünk minden olyan rendellenességet, amely vagy a készülék vagy az oszlopok hibás működéséből ered, vagy a vizsgált minta eredetére és jellegére vezethető vissza.
Apply exactly the procedure described from point 8.2 to point 8.4.4 to the standard samples (5.4.1 to 5.4.2).
A standard mintákra (5.4.1. és 5.4.2.) is alkalmazzuk pontosan ugyanazt az eljárást, mint amely a 8.2.–8.4.4. pontig tartó leírásban szerepel.
Use freshly prepared solutions, because CMP degrades in an 8 % trichloroacetic acid environment at room temperature.
Használjunk frissen készített oldatokat, mert a CMP 8 %-os triklór-ecetsavas környezetben, szobahőmérsékleten hamar bomlik.
At 4 °C the solution remains stable for 24 hours.
Az oldat 4 °C-on 24 órán át stabil marad.
In the case of long series of analyses the use of a cooled sample tray in the automatic injector is desirable
Hosszú elemzési sorok esetében ajánlatos az automatikus injektorban hűtött mintatálcát használni.
In this figure the CMPA peak is preceded by two small peaks.
Ezen a görbén a CMPA-csúcsot két kisebb csúcs előzni meg.
It is essential to obtain a similar separation.
Lényeges ugyanilyen elválasztást elérni.
Prior to chromatographic determination of the samples inject 100 μl of the standard sample without rennet whey [0] (5.4.1)
A minták kromatográfiás meghatározása előtt injektáljunk 100 μl oltós savó nélküli standard mintát [0] (5.4.1.).
The chromatogram should not show a peak at the retention time of the CMPA peak.
Ekkor a kromatogramon a CMPA-csúcs retenciós idejénél csúcs ne jelenjen meg.
Determine the response factors R by injecting the same volume of filtrate (8.5.1) as used for the samples.
Az R-válaszjelet úgy határozzuk meg, hogy a mintáknál használttal azonos mennyiségű szűrletet injektálunk (8.5.1.).
Calculation of the response factor R:
Az R-válaszjel kiszámítása:
CMPA peak: R = W/H
CMPA-csúcs: R = W/H
R the response factor of the CMPA peak
R a CMPA-csúcs válaszjele
H the height of the CMPA peak
H a CMPA-csúcs magassága
W the quantity of whey in the standard sample [5].
W a savó mennyisége a standard mintában [5].
Calculation of the percentage of rennet whey powder in the sample
A mintában található oltós savópor százalékos mennyiségének kiszámítása
W(E) the percentage (m/m) of rennet whey in the sample (E).
W(E) az oltós savó százalékos (m/m) mennyisége a mintában (E)
R the response factor of the CMPA peak (9.1.1)
R a CMPA-csúcs válaszjele (9.1.1.)
H(E) the height of the CMPA peak of the sample (E)
H(E) a CMPA-csúcs magassága a mintában (E)
If W(E) is greater than 1 % and the difference between the retention time and that of the standard sample [5] is smaller than 0,2 minutes then rennet whey solids are present.
Amennyiben W(E) nagyobb mint 1 %, és a retenciós ideje, valamint a standard minta [5] retenciós ideje közötti különbség kisebb mint 0,2 perc, akkor oltóssavó-szárazanyag van jelen.
Not determined.
Nincs meghatározva.
From 0 to 16 % of rennet whey a linear relationship should be obtained with a coefficient of correlation > 0,99.
A 0–16 % oltóssavó-tartalom esetén lineáris összefüggést kell kapni, amelynek korrelációs együtthatója > 0,99.
The 1 % limit is fixed in agreement with the provisions of points 9.2 and 9.4.1 of Annex XIX to Regulation (EEC) No 214/2001, which includes the uncertainty due to reproducibility.
Az 1 %-os határ összhangban van a 214/2001/EK rendelet XIX. mellékletének 9.2. és 9.4.1. pontjában foglalt rendelkezésekkel, és tartalmazza a reprodukálhatóság miatti bizonytalanságot.
Absorbance (220 nm)
Absorbance (220 nm)
Rennet-type whey powder of standard composition and also the adulterated skimmed-milk powder are available from NIZO, Kernhemseweg 2, PO Box 20 — NL-6710 BA Ede.
Szabványos összetételű oltóssavópor és a módosított sovány tejpor is beszerezhető a NIZO-tól, Kernhemseweg 2, PO Box 20, NL-6710 BA Ede.
However, powders giving equivalent results to the NIZO powders may also be used.
Azonban a NIZO-porokkal egyenértékű eredményeket nyújtó porok is felhasználhatók.
(Article 10)
(10. cikk)
SKIMMED-MILK POWDER: QUANTITATIVE DETERMINATION OF PHOSPHATIDYLSERINE AND PHOSPHATIDYLETHANOLAMINE
SOVÁNY TEJPOR: FOSZFATIDILSZERIN ÉS FOSZFATIDIL-ETANOLAMIN MENNYISÉGI MEGHATÁROZÁSA
Method: reversed-phase HPLC
Módszer: fordított fázisú HPLC.
PURPOSE AND FIELD OF APPLICATION
CÉL ÉS ALKALMAZÁSI TERÜLET
The method describes a procedure for the quantitative determination of phosphatidylserine (PS) and phosphatidylethanolamine (PE) in skimmed-milk powder (SMP) and is suitable for detecting buttermilk solids in SMP.
A módszer a foszfatidilszerin (PS) és a foszfatidil-etanolamin (PE) mennyiségi meghatározására szolgál sovány tejporból (SMP), és alkalmas a sovány tejporban található írószárazanyag kimutatására.
PS + PE content: the mass fraction of substance determined using the procedure here specified.
PS + PE tartalom: az itt meghatározott eljárás alapján meghatározott anyag tömegtörtje.
The result is expressed as milligrams of phosphatidylethanolamine dipalmitoyl (PEDP) per 100 g powder.
Az eredményt 100 g porra megadott foszfatidil-etanolamin-dipalmitoil (PEDP) milligrammjában fejezzük ki.
Extraction of aminophospholipids by methanol from reconstituted milk powder.
Aminofoszfolipidek kivonása tejporból készült tejből metil-alkohollal.
Determination of PS and PE as o-phthaldialdehyde (OPA) derivatives by reversed-phase (RP) HPLC and fluorescence detection.
A PS és a PE meghatározása fordított fázisú (RP) HPLC-vel és fluoreszcenciaészleléssel o-ftáldialdehid-(OPA-) származék formájában történik.
Quantification of PS and PE content in the test sample by reference to a standard sample containing a known amount of PEDP.
A vizsgálati minta PS- és PE-tartalmát egy ismert mennyiségű PEDP-t tartalmazó standarddal való összehasonlítás alapján kapjuk meg.
Water must be distilled or water or water of at least equivalent purity, unless otherwise specified.
A felhasznált víznek egyéb előírás hiányában desztillált víznek, vagy azzal egyenértékű tisztaságú víznek kell lennie.
Standard material: PEDP, at least 99 % pure
Standardanyag: legalább 99 %-os tisztaságú PEDP
Note: Standard material must be stored at –18 °C.
Megjegyzés: A standardanyagot – 18 °C-on kell tárolni.
Reagents for standard sample and test sample preparation
A standard mintához és a vizsgálati minta előkészítéséhez használt vegyszerek
HPLC-grade methanol
HPLC-minőségű metil-alkohol
HPLC-grade chloroform
HPLC-minőségű kloroform
Reagents for o-phthaldialdehyde derivatisation
Az o-ftáldialdehid-derivátum készítéséhez használt vegyszerek
Sodium hydroxide, 12 M water solution
NaOH, 12 M vizes oldat
Boric acid, 0,4 M water solution adjusted to pH 10,0 with sodium hydroxide (4.3.1)
Bórsav, 0,4 M vizes oldat NaOH-val 10,0 pH-ra állítva (4.3.1.)
2-mercaptoethanol
2-merkapto-etanol
o-phthaldialdehyde (OPA)
o-ftáldialdehid (OPA)
HPLC elution solvents
HPLC-eluensek
Elution solvents must be prepared using HPLC-grade reagents.
Az eluenseket HPLC-minőségű vegyszerek felhasználásával kell készíteni
HPLC-grade water
HPLC-minőségű víz
Methanol of fluorimetric tested purity
Fluorimetrikus tisztaságú metil-alkohol
Sodium dihydrogen phosphate
Nátrium-dihidrogén-foszfát
Acetic acid.
Ecetsav
Analytical balance, capable of weighing to the nearest 1 mg, with a readability of 0,1 mg
Analitikai mérleg, 1 mg-os pontosságú mérésre képes, 0,1 mg-os leolvashatósággal
Beakers, 25 and 100 ml capacity
Főzőpoharak, 25 és 100 ml űrtartalommal
Pipettes, capable of delivering 1 and 10 ml
1 és 10 ml adagolására alkalmas pipetták
Graduated pipettes, capable of delivering 0,2, 0,5 and 5 ml
0,2, 0,5 és 5 ml-es adagolásra képes beosztásos pipetták
Volumetric flasks, 10, 50 and 100 ml capacity
10, 50 és 100 ml űrtartalmú mérőlombikok
Syringes, 20 and 100 μl capacity
20 és 100 µl-es fecskendők
Centrifuge, capable of operating at 27000 × g
27000 × g-vel működő centrifuga
Glass vials, about 5 ml capacity
Mintegy 5 ml űrtartalmú üvegfiolák
Graduated cylinder, 25 ml capacity
25 ml űrtartalmú beosztásos mérőhenger
pH-meter, accurate to 0,1 pH units
pH-mérő, 0,1 pH egységig pontos
HPLC equipment
HPLC-berendezés
Gradient pumping system, capable of operating at 1,0 ml/min at 200 bar
Gradiens szivattyúrendszer, amely 200 baron 1,0 ml/min sebességgel tud működni
Autosampler with derivatisation capability
Automata mintavevő derivátumképző lehetőséggel
Column heater, capable of maintaining the column at 30 °C ± 1 °C
Oszlopfűtő egység, képes az oszlopot 30 °C ± 1 °C-on tartani
Fluorescence detector, capable of operating at 330 nm excitation wavelength and 440 nm emission wavelength
Fluoreszcencia-detektor, képes 330 nm gerjesztési hullámhosszal és 440 nm kibocsátási hullámhosszal működni
Integrator or data processing software capable of peak area measurement
A görbe csúcsai alatti terület mérésére alkalmas integrátor vagy adatfeldolgozó szoftver
A Lichrosphere — 100 column (250 × 4,6 mm) or an equivalent column packed with octadecylsilane (C 18), 5 μm particle size.
Egy Lichrosphere – 100 oszlop (250 × 4,6 mm) vagy azzal egyenértékű oszlop, 5 µm-os részecskenagyságú oktadecilszilánnal (C18) töltve
Sampling must be carried out in accordance with ISO Standard 707.
A mintavételt a 707 ISO-szabvány szerint kell elvégezni.
Preparation of the internal standard solution
Belső standard oldat készítése
Weigh 30,0 ± 0,1 mg of tryptamine-monohydrochloride (4.2.3) into a 100 ml volumetric flask (5.6) and make up to the mark with methanol (4.2.1)
Mérjünk ki egy 100 ml-es mérőlombikba (5.6.) 30,0 ±0,1 mg triptamin-monokloridot (4.2.3.), és töltsük fel jelig metil-alkohollal (4.2.1.)
Pipette 1 ml (5.3) of this solution into a 10 ml volumetric flask (5.6) and make up to the mark with methanol (4.2.1) in order to obtain a 0,15 mM tryptamine concentration
Pipettázzunk 1 ml-t (5.3.) ebből az oldatból egy 10 ml-es mérőlombikba (5.6.), és töltsük fel jelig metil-alkohollal (4.2.1.), hogy elérjük a 0,15 mM-triptaminkoncentrációt
Preparation of the test sample solution
A vizsgálati minta oldatának elkészítése
Weigh 1,000 ± 0,001 g of the SMP sample into a 25 ml beaker (5.2).
Mérjünk ki egy 25 ml-es főzőpohárba (5.2.) 1,000 ± 0,001 g soványtejpor-mintát.
Add 10 ml of distilled water at 40 °C ± 1 °C by a pipette (5.3) and stir with a magnetic stirrer (5.4) for 30 minutes in order to dissolve any lumps
Adjunk hozzá pipettával (5.3.) 10 ml 40 °C ± 1 °C-os desztillált vizet, és a mágneses keverőn (5.4.) keverjük 30 percig, hogy minden csomó feloldódjon
Pipette 0,2 ml (5.5) of the reconstituted milk into a 10 ml volumetric flask (5.6), add 100 μl of the 0,15 mM tryptamine solution (7.1) using a syringe (5.7) and make up to the volume with methanol (4.2.1).
Pipettázzunk 0,2 ml (5.5.) tejporból készült tejet egy 10 ml-es mérőlombikba (5.6.), majd a fecskendő használatával (5.7.) adjunk hozzá 100 μl 0,15 mM-os triptaminoldatot (7.1.), és töltsük fel metil-alkohollal a jelig (4.2.1.).
Mix carefully by inversion and sonicate (5.8) for 15 min
Gondosan keverjük el felfordítással, és 15 percen át kezeljük ultrahanggal (5.8.)
Centrifuge (5.9) at 27000 g × g for 10 minutes and collect the supernatant in a glass vial (5.10)
Centrifugáljuk (5.9.) 27000 × g erővel 10 percig, és a felülúszót egy üvegfiolába gyűjtsük össze (5.10.).
Note: Test sample solution should be stored at 4 °C until the HPLC analysis is performed.
Megjegyzés: A vizsgálati mintából készült oldatot a HPLC-vizsgálat elvégzéséig 4 °C-os hőmérsékleten kell tárolni.
Preparation of the external standard solution
Külső standard oldat készítése
Weigh 55,4 mg PEDP (4.1) into a 50 ml volumetric flask (5.6) and add about 25 ml of chloroform (4.2.2) using a graduated cylinder (5.11).
Mérjünk ki 55,4 mg PEDP-t (4.1.) egy 50 ml-es mérőlombikba (5.6.), és adjunk hozzá a beosztásos mérőhenger (5.11.) használatával 25 ml kloroformot (4.2.2.).
Heat the stoppered flask to 50 °C ± 1 °C and mix carefully till the PEDP dissolves.
Melegítsük a ledugaszolt lombikot 50 °C± 1 °C-ra, és gondosan addig keverjük, míg a PEDP fel nem oldódik.
Cool the flask to 20 °C, make up to the volume with methanol (4.2.1) and mix by inversion
Hűtsük vissza a lombikot 20 °C-ra, metil-alkohollal (4.2.1.) töltsük fel jelig, és felfordítással keverjük el
Pipette 1 ml (5.3) of this solution into a 100 ml volumetric flask (5.6) and make up to the volume with methanol (4.2.1).
Pipettázzunk (5.3.) ebből az oldatból 1 ml-t egy 100 ml-es mérőlombikba (5.6.), majd jelig töltsük fel metil-alkohollal (4.2.1.).
Pipette 1 ml (5.3) of this solution into a 10 ml volumetric flask (5.6), add 100 μl (5.7) of 0,15 mM tryptamine solution (7.1) and make up to the volume with methanol (4.2.1).
Pipettázzunk (5.3.) ebből az oldatból 1 ml-t egy 10 ml-es mérőlombikba (5.6.), adjunk hozzá 100 μl (5.7.) 0,15 mM-os triptaminoldatot (7.1.), majd jelig töltsük fel metil-alkohollal (4.2.1.).
Mix by inversion
Keverjük el felfordítással
Note: Reference sample solution should be stored at 4 °C until the HPLC analysis is performed.
Megjegyzés: A referenciaoldatot a HPLC-elemzés elvégzéséig 4 °C-os hőmérsékleten kell tárolni.
Preparation of the derivatising reagent
A deriváló vegyszer elkészítése
Weigh 25,0 ± 0,1 mg of OPA (4.3.4) into a 10 ml volumetric flask (5.6), add 0,5 ml (5.5) of methanol (4.2.1) and mix carefully to dissolve the OPA.
Mérjünk ki 25,0 ±0,1 mg OPA-t (4.3.4.) egy 10 ml-es mérőlombikba (5.6.), adjunk hozzá 0,5 ml (5.5.) metil-alkoholt (4.2.1.), és gondosan keverjük el, hogy az OPA feloldódjon.
Make up to the mark with boric acid solution (4.3.2) and add 20 μl of 2-mercaptoethanol (4.3.3) by syringe (5.7).
Jelig töltsük fel bórsavoldattal (4.3.2.), és fecskendővel (5.7.) adjunk hozzá 20 μl 2-merkaptoetanolt (4.3.3.).
Note: The derivatising reagent should be stored at 4 °C in a brown glass vial and is stable for one week.
Megjegyzés: A deriváló reagenst barna üvegfiolában 4 °C-on kell tárolni, körülbelül egy hétig stabil.
Elution solvents (4.4)
Eluáló-oldószerek (4.4.)
Solvent A: Solution of 0,3 mM sodium dihydrogen phosphate and 3 mM sodium acetate solution (adjusted to pH 6,5 ± 0,1 with acetic acid): methanol: tetrahydrofuran = 558:440:2 (v/v/v)
oldószer: 0,3 mM nátrium-dihidrogén-foszfát és 3 mM nátrium-acetát-oldat (6,5 ± 0,1-es pH-ra ecetsavval beállítva):metil-alkohol:tetrahidrofurán = 558:440:2 (v/v/v) arányban
Solvent B: methanol
oldószer: metil-alkohol.
Suggested eluting gradient:
Javasolt eluáló gradiens:
Solvent A
oldószer
Solvent B
oldószer
Flow rate
Áramlási sebesség
0Note: The eluting gradient may require slight modification in order to achieve the resolution shown in figure 1.
0Megjegyzés: Annak érdekében, hogy az 1. ábrán bemutatott elválasztási képességet elérjük, az eluáló gradiens kismértékű megváltoztatására lehet szükség.
Column temperature: 30 °C.
Oszlophőmérséklet: 30 °C.
Injection volume: 50 μl derivatising reagent and 50 μl sample solution
Befecskendezett mennyiség: 50 μl deriválószer és 50 μl mintaoldat
Column equilibration
Oszlop kalibrálása
Starting up the system on a daily basis, flush the column with 100 % solvent B for 15 minutes, then set at A:B = 40:60 and equilibrate at 1 ml/min for 15 minutes.
A rendszer napi indításakor az oszlopot 100 %-os B.oldószerrel mossuk át egy negyed órán át, majd váltsunk át A:B = 40:60 arányú keverékre, és 1 ml/min áramlási sebességgel további negyed órán keresztül kalibráljuk.
Perform a blank run by injecting methanol (4.2.1).
Végezzünk vak tesztet metil-alkohol injektálásával (4.2.1.).
Note: Before long-term storage flush the column with methanol: chloroform = 80:20 (v/v) for 30 minutes.
Megjegyzés: Hosszabb idejű tárolás előtt az oszlopot metil-alkohol:kloroform = 80:20 (v/v) arányú keverékével mossuk 30 percen át.
Determine the PS + PE content in the test sample
Határozzuk meg a PS + PE tartalmat a vizsgálati mintában
Perform the sequence of the chromatographic analyses keeping constant the run-to-run time in order to obtain constant retention times.
Végezzük el a kromatográfiás elemzés lépéseit a futtatástól-futtatásig terjedő időt állandó értéken tartva, hogy konstans retenciós időket kapjunk.
Inject the external standard solution (7.3) every 5-10 test sample solutions in order to calculate the response factor 0
A válaszjel számításához a külső standard oldatot (7.3.) minden 5–10 vizsgálati minta után fecskendezzük be.
Note: The column must be cleaned by flushing with 100 % solvent B (7.5.1) for at least 30 minutes every 20-25 runs.
Megjegyzés: Az oszlopot a 100 %-os B.oldószerrel (7.5.1.) minden 20–25 futtatás után legalább harminc percen át kell mosnunk.
Integration mode
Integrálás módja
PEDP peak
PEDP-csúcs
PEDP is eluted as a single peak.
A PEDP egyetlen csúcsban eluálódik.
Determine the peak area by valley-to-valley integration.
A csúcs alatti területet völgytől-völgyig integrálással határozzuk meg.
Tryptamine peak
Triptamincsúcs
Tryptamine is eluted as a single peak (Figure 1).
A triptamin egyetlen csúcsban eluálódik (1. ábra).
PS and PE peaks groups
PS- és PE-csúcscsoportok
Under the described conditions (Figure 1), PS elutes as two main partially unresolved peaks preceded by a minor peak.
A leírt feltételek mellett (1. ábra), a PS két fő, részben egymástól el nem váló csúcsban eluálódik ki, amelyet egy kisebb csúcs előz meg.
PE elutes as three main partially unresolved peaks.
A PE három fő, részben egymástól el nem váló csúcsban eluálódik ki.
Determine the whole area of each peak cluster setting the baseline as reported in Figure 1.
Határozzuk meg minden csúcscsoport egész területét az alapvonalnak az 1. ábrán bemutatott illesztésével.
CALCULATION AND EXPRESSION OF RESULTS
SZÁMÍTÁS ÉS AZ EREDMÉNYEK KIFEJEZÉSE
PS and PE content in the test sample shall be calculated as follows: C = 55,36 × ((A2)/(A1)) × ((T1)/(T2))
A vizsgálati minta PS- és PE-tartalmát a következők szerint lehet kiszámítani: C = 55,36 × ((A2)/(A1)) × ((T1)/(T2))
C PS or PE content (mg/100 g powder) in the test sample
C a PS- vagy PE-tartalom a vizsgálati mintában (mg/100 g por)
PEDP peak area of the standard sample solution (7.3)
a standardminta-oldat PEDP-csúcsa alatti terület (7.3.)
PS or PE peak area of the test sample solution (7.2)
a PS- vagy PE-csúcs alatti terület a vizsgálati mintából készült oldatban (7.2.)
Tryptamine peak area of the standard sample solution (7.3)
a standardminta-oldat triptamincsúcsa alatti terület (7.3.)
Tryptamine peak area of the test sample solution (7.2).
a triptamincsúcs alatti terület a vizsgálati mintából készült oldatban (7.2.).
Note: The values for repeatability were calculated according to the IDF International Standard [1].
Megjegyzés: Az ismételhetőségre vonatkozó értékek kiszámítása az IDF nemzetközi szabványnak [1] megfelelően történt.
The provisional reproducibility limit was calculated according to the procedure defined in Annex III(b) hereto.
Az ideiglenes reprodukálhatósági határérték kiszámítása az e rendelet III. mellékletének b) pontja szerint történt.
The relative standard derivation of the repeatability, which expresses the variability of independent analytical results obtained by the same operator using the same apparatus under the same conditions on the same test sample and in a short interval of time, should not exceed 2 % relative.
Az ismételhetőség relatív szórása, amely az ugyanazon személy által, ugyanannak a készüléknek a használatával, ugyanolyan körülmények között, ugyanazon vizsgálati mintából, rövid időeltéréssel kapott független elemzési eredmények variabilitását fejezi ki, nem haladhatja meg a 2 %-os relatív értéket.
If two determinations are obtained under these conditions, the relative difference between the two results should not be greater than 6 % of the arithmetic mean of the results.
Ha ilyen körülmények között két meghatározást végeznek el, akkor a két eredmény viszonylagos eltérése nem lehet nagyobb, mint az eredmények számtani középértékének 6 %-a.
If two determinations are obtained by operators in different laboratories using different apparatus under different conditions for the analysis on the same test sample, the relative difference between the two results should not be greater than 11 % of the arithmetic mean of the results.
Ha két laboratóriumban más készülékeken, más személyek, más feltételek mellett végeznek el két meghatározást ugyanannak a vizsgálati mintának az elemzése céljából, akkor a két eredmény viszonylagos eltérése nem lehet nagyobb, mint az eredmények számtani középértékének 11 %-a.
HPLC pattern of OPA-derivatives of phosphatidylserine (PS) and phosphatidylethanolamine (PE) in methanol extract of reconstituted skim-milk powder.
A foszfatidilszeril (PS) és foszfatidil-etanolamin (PE) OPA-származékainak HPLC-mintája tejporból készült tej metil-alkoholos kivonatában.
International IDF Standard 135B/1991.
IDF 135B/1991 nemzetközi szabvány.
Milk and milk products.
Tej és tejtermékek.
Precision characteristics of analytical methods.
Analitikai módszerek pontossági jellemzői.
Outline of collaborative study procedure.
Vázlat a kollaboratív vizsgálati eljáráshoz.
(Article 11)
(11. cikk)
DETECTION OF ANTIMICROBIAL RESIDUES IN SKIMMED MILK POWDER
A SOVÁNY TEJPORBAN TALÁLHATÓ ANTIMIKROBIÁLIS MARADVÁNYANYAGOK KIMUTATÁSA
A microbial inhibitor screening test using Geobacillus stearothermophilus var. calidolactis ATCC 10149 (identical to strain C953) as test micro-organism and being sufficiently sensitive to detect 4 μg benzylpenicillin per kg milk and 100 μg sulfadimidine per kg milk shall be used.
A baktérium gátlási szűrővizsgálat céljára a Geobacillus stearothermophilus var. calidolactis ATCC 10149 törzsét (azonos a C953 törzzsel) használjuk teszt-mikroorganizmusnak, amely eléggé érzékeny ahhoz, hogy kimutasson tejkilogrammonként 4 μg benzilpenicillint és 100 μg szulfadimidint.
Commercial tests kits are available and can be used if they have the required sensitivity for benzylpencillin and sulfadimidine.
A kereskedelemben kapható vizsgálati készletek is használhatók, ha rendelkeznek a kívánt benzilpencillin- és szulfadimidin-érzékenységgel.