natgillin/translations-raw huggingface dataset:
No additives such as ion pair reagents may be used because they can affect the sorption properties of the stationary phase.
Nem szabad adalékanyagokat (pl. ion-pár reagenseket) használni, mert ezek hatással lehetnek az állófázis szorpciós képességeire.
Such changes of the stationary phase may be irreversible.
Az állófázis ilyen változásai pedig irreverzibilisek lehetnek.
For this reason, it is mandatory that experiments using additives are carried out on separate columns.
Emiatt az adalékanyagok használatával járó kísérleteket kötelezően külön kolonnában kell végrehajtani.
Test and reference substances should be dissolved in the mobile phase.
A vizsgált és referenciaanyagokat a mozgó fázisban kell feloldani.
Test condition
Vizsgálati körülmények
The temperature during the measurements should be recorded.
A mérések során fel kell jegyezni a hőmérsékletet.
The use of a temperature controlled column compartment is highly recommended to guarantee constant conditions during calibration and estimation runs and measurement of the test substance.
Hangsúlyozottan javasolt a szabályozott hőmérsékletű oszlop használata, hogy biztosítható legyen a kísérleti körülmények állandó értéken tartása a kalibrációs és becslési műveletek, valamint a vizsgált anyag mérései során.
Determination of dead time to
A to holtidő meghatározása
For the determination of the dead time to two different methods may be used (see also Section 1.2).
A to holtidő meghatározására két különböző módszer használható (lásd még 1.2. szakasz).
Determination of the dead time to by means of a homologous series
A to holtidő meghatározása egy homológ sor segítségével
This procedure has proven to yield reliable and standardised to values.
Erről az eljárásról bebizonyosodott, hogy megbízható és szabványos to értékeket eredményez.
For details see Testing Method A.8: Partition coefficient (n-octanol/water), HPLC method.
A részleteket lásd az A.8 vizsgálati módszernél: n-oktanol/víz megoszlási koefficiens, HPLC módszer.
Determination of the dead time to by inert substances which are not retained by the column
A to holtidő meghatározása olyan inert anyagok által, amelyeknél a kolonnán való áthaladás során nem lép fel retenció
This technique is based on the injection of solutions of formamide, urea or sodium nitrate.
Ez az eljárás a formamid, urea vagy nátrium-nitrát alapú oldatok befecskendezésén alapul.
Measurements should be performed at least in duplicate.
A méréseket legalább kétszer el kell végezni.
Determination of the retention times tR
A tR retenciós idő meghatározása
Reference substances should be selected as described in Section 1.3.
A referenciaanyagokat az 1.3. szakaszban leírtaknak megfelelően kell kiválasztani.
They may be injected as a mixed standard to determine their retention times, provided it has been confirmed that the retention time of each reference standard is unaffected by the presence of the other reference standards.
Retenciós idejük meghatározása érdekében ezeket keverékstandardként lehet beinjektálni, feltéve, hogy bizonyítható, hogy az egyes referenciaanyagok retenciós idejét nem befolyásolja más referenciaanyagok jelenléte.
The calibration should be performed at regular intervals at least twice daily in order to account for unexpected changes in column performance.
A kalibrálást rendszeres időközönként, naponta legalább kétszer meg kell ismételni, hogy számításba lehessen venni a kolonna teljesítményében esetleg bekövetkező váratlan változásokat.
For best practice the calibration injections should be carried out before and after injections of the test substance to confirm retention times have not drifted.
Az a legjobb gyakorlat, ha a kalibrációs célú injektálásokat a vizsgált anyag beinjektálása előtt és után végzik el, azt megerősítendő, hogy a retenciós időtartamok változatlanok.
The test substances are injected separately in quantities as small as possible (to avoid column overload) and their retention times are determined.
A kolonnák túlterhelésének megelőzése érdekében a vizsgált anyagokat a lehető legkisebb adagokban kell egymástól elkülönítetten beinjektálni, és retenciós idejüket ezután kell meghatározni.
In order to increase the confidence in the measurement, at least duplicate determinations should be made.
A mérések megbízhatósága fokozásának érdekében az értékek meghatározását legalább kétszer meg kell ismételni.
The values of log Koc derived from individual measurements should fall within a range of 0,25 log unit.
Az egyedi mérési adatokból származtatott log Koc értékeknek egy 0,25 log egység tartományba kell esniük.
The capacity factors k' are calculated from the dead time to and retention times tR of the selected reference substances according to equation 4 (see Section 1.2).
A k' kapacitási faktorokat a kiválasztott referenciaanyagok to holtidejéből és tR retenciós idejéből, a 4. egyenlet használatával kell kiszámolni (lásd 1.2. szakasz).
The log k' data of the reference substances are then plotted against their log Koc values from batch equilibrium experiments given in Tables 1 and 3 of the Appendix.
A referenciaanyagok log k adatait ekkor a függelék 1. és 3. táblázatában megadott egyensúlyi kísérletekből levezetett log Koc értékekhez viszonyítva kell grafikusan ábrázolni.
Using this plot, the log k' value of a test substance is then used to determine its log Koc value.
A grafikon segítségével ekkor a vizsgált anyag log k' értékét lehet felhasználni a log Koc értékének meghatározásához.
If the actual results show that the log Koc of the test substance is outside the calibration range the test should be repeated using different, more appropriate reference substances.
Ha a ténylegesen kapott eredmények azt mutatják, hogy a vizsgált anyag log Koc értékei kívül esnek a kalibrációs tartományon, akkor a vizsgálatot más, a célnak jobban megfelelő referenciaanyagok használatával meg kell ismételni.
The report must include the following information:
A vizsgálati jelentésben a következő információknak kell szerepelniük:
identity of test and reference substances and their purity, and pKa values if relevant,
a vizsgált anyagok és referenciaanyagok megnevezése, tisztaságuk, valamint – adott esetben – pKa értékeik megjelölése,
description of equipment and operating conditions, e.g. type and dimension of analytical (and guard) column, means of detection, mobile phase (ratio of components and pH), temperature range during measurements,
a műszer leírása és a vizsgálati körülmények, pl. az analitikai (és az előtét-) kolonnák típusa és méretei, az észlelés eszközei, a mozgófázis (a komponensek aránya és pH-érték közötti kapcsolat), a mérések hőmérséklet-tartománya,
dead time and the method used for its determination,
holtidő és a holtidő meghatározására használt módszer,
quantities of test and reference substances introduced in the column,
a kolonnába beadagolt vizsgált anyagok és referenciaanyagok mennyisége,
retention times of reference compounds used for calibration,
a kalibráció céljára felhasznált referenciavegyületek retenciós ideje,
details of fitted regression line (log k' vs log Koc) and a graph of the regression line,
a regresszió egyenes jellemzői (log k' és log Koc között) és a regressziós egyenes grafikonja,
average retention data and estimated d log Koc value for the test compound,
a vizsgált vegyület átlagos retenciós adatai és becsült log Koc értéke,
chromatograms.
kromatogramok.
Chemosphere, 35(1/2), p. 121-128.
Chemosphere, 35(1/2), 121 – 128.
Comparison of Koc values for soils and sewage sludges, and calculated values by the HPLC screening method [1], [2]
A talajokra és szennyvíziszapokra vonatkozó Koc értékek és a HPLC kiválasztási módszerrel számított értékek összehasonlítása [1], [2]
substance
Anyag megnevezése
CAS-No
CAS-szám
log Koc sewage sludges
Log Koc szennyvíziszapoknál
log Koc soils
Log Koc talajoknál
Benzoic acid phenylester
Benzoesavas fenilészter
Benzamide
Benzamid
4-Nitrobenzamide
4-nitrobenzamid
2,5-Dichloroaniline
2,5-Diklóranilin
[OECD 106]
(OECD 106)
[HPLC-method]
(HPLC módszer)
Recommended reference substances for the HPLC screening method based on soil adsorption data.
Ajánlott referenciaanyagok a talaj adszorpciós adatokra alapozott HPLC kiválasztási módszer alkalmazásához
Reference substance
Referenciaanyag megnevezése
log Koc mean values from batch equilibrium
Log Koc átlagértékek az egyensúlyi vizsgálatból
number of Koc data
A Koc ad at ok száma
log S.D.
Log S. D.
source
Forrás
2-Nitrobenzamide
2-nitrobenzamid
N.N-dimethylbenzamide
N, N-dimetilbenzamid
4-Methylbenzamide
4-metilbenzamid
3-Nitrobenzamide
3-nitrobenzamid
3,5-Dinitrobenzamide
3,5-dinitrobenzamid
1,2,3-Trichlorobenzene
1,2,3-triklórbenzol
γ-HCH
g-HCH
Pyrazophos
Pitrazofosz
α-Endosulfan
a-endoszulfán
Basic Blue 41 (mix)
Basic Blue 41 (keverék)
Chemosphere, 35 (1/2), p. 107-119.
Chemosphere, 35 (1/2), 107 – 119.
Chemosphere, 30(7), 1373-1384.
Chemosphere, 30(7), 1373-1384.o.
Bestimmung des Adsorptionskoeffizienten organischer Chemikalien mit der HPLC.
Bestimmung des Adsorptionskoeffízlenten organischer Chemikalien mit der HLPC. UBA R Report No.
Oepen, W.
V. Oepen. W.
Klein., (1991) Chemosphere, 22, p. 285-304.
Klein (1991). Chemosphere. 22. pp. 285-304.
Data provided by industry.
Az iparág által szolgáltatott adatok.
This Reproduction toxicity test method is a replicate of the OECD TG 211 (1998).
E reprodukciós toxicitási vizsgálati módszer megfelel az OECD TG 21 l-nek (1998).
The primary objective of the test is to assess the effect of chemicals on the reproductive output of Daphnia magna.
E vizsgálat elsődleges célja annak felmérése, hogy a vegyi anyagok milyen hatást gyakorolnak a Daphnia magna reprodukciós teljesítményére.
Parent Animals: are those female Daphnia present at the start of the test and of which the reproductive output is the object of the study.
Szülők: a vizsgálat kezdetén jelen lévő nőstény Daphnia-egyedek, amelyek szaporodási teljesítménye e vizsgálat tárgyát képezi.
Offspring: are the young Daphnia produced by the parent animals in the course of the test.
Szaporulat: azon fiatal Daphnia-egyedek, amelyek a vizsgálat során születnek a szülőktől.
Lowest Observed Effect Concentration (LOEC): is the lowest tested concentration at which the substance is observed to have a statistically significant effect on reproduction and parent mortality (at p < 0,05) when compared with the control, within a stated exposure period.
Legalacsonyabb megfigyelhető hatást okozó koncentráció (LOEC): azon legalacsonyabb vizsgálati koncentráció, amelynél a kontrollcsoporttal összevetve megfigyelhető a vizsgált anyag statisztikailag jelentős hatása a reprodukcióra és a szülők mortalitására (p < 0,05) a megfigyelt behatási periódusban.
When these two conditions cannot be satisfied, a full explanation must be given for how the LOEC (and hence the NOEC) has been selected.
Amennyiben e két feltétel nem teljesíthető, akkor kimerítő magyarázatot kell adni arra, hogy hogyan történt a LOEC (és ennélfogva a NOEC) kiválasztása.
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC, which when compared with the control, has no statistically significant effect (p < 0,05), within a stated exposure period.
Hatástalan koncentráció: a közvetlenül a LOEC alatti vizsgálati koncentráció, amely – a kontrollcsoporttal való összevetésben – nem fejt ki statisztikailag jelentős hatást (p < 0,05), a meghatározott expozíciós időszak alatt.
ECx: is the concentration of the test substance dissolved in water that results in a x % reduction in reproduction of Daphnia magna within a stated exposure period.
ECx: ez a vízben oldott vizsgált anyag azon koncentrációja, amely a Daphnia magna reprodukciójában x % csökkenést okoz meghatározott expozíciós időszak alatt.
Intrinsic rate of increase: is a measure of population growth which integrates reproductive output and age-specific mortality (20) (21) (22).
Belső növekedési ráta: a populáció növekedésének mértéke, amely a reprodukciós teljesítményből és a korspecifikus pusztulásból tevődik össze (20) (21) (22).
In steady state populations it will be zero.
Az egyensúlyi populációk esetében ez pontosan nulla.
For growing populations it will be positive and for shrinking populations it will be negative.
A növekedő populációknál pozitív, a csökkenő populációknál negatív.
Clearly, the latter is not sustainable and ultimately will lead to extinction.
Ez utóbbi nyilvánvalóan nem fenntartható, és végül kihaláshoz vezet.
Limit of Detection: is the lowest concentration that can be detected but not quantified.
Érzékelési határ a legalacsonyabb koncentráció, amelyet érzékelni lehet, de számszerűsíteni már nem.
Limit of Determination: is the lowest concentration that can be measured quantitatively.
Meghatározási határ: a számszerűsíthetően mérhető legalacsonyabb koncentráció.
Mortality: an animal is recorded as dead when it is immobile, i.e. when it is not able to swim, or if there is no observed movement of appendages or postabdomen, within 15 seconds after gentle agitation of the test container.
Mortalitás: egy állat akkor tekinthető kimúltnak, ha mozdulatlan, azaz ha nem képes úszni, vagy ha a tesztedény enyhe rázogatása után 15 másodpercen belül nem figyelhető meg mozgás a függelékben vagy az utóbélben.
(If another definition is used, this must be reported together with its reference).
(Más meghatározás használata esetén ezt a hozzá tartozó irodalmi hivatkozással együtt kell megadni.)
Young female Daphnia (the parent animals), aged less than 24 hours at the start of the test, are exposed to the test substance added to water at a range of concentrations.
Fiatal, a vizsgálat kezdetekor 24 órásnál nem idősebb nőstény Daphniákat (a szülőket) a vízhez különféle koncentrációszintekben adagolt vizsgálati anyag hatásának kell kitenni.
The test duration is 21 days.
A vizsgálat időtartama 21 nap.
At the end of the test, the total number of living offspring produced per parent animal alive at the end of the test is assessed.
A vizsgálati időszak végén fel kell mérni a vizsgálat végén még életben lévő szülők élő szaporulatának teljes számát.
This means that juveniles produced by adults that die during the test are excluded from the calculations.
Ez azt jelenti, hogy a vizsgálat során kimúlt szülő állatok szaporulatát ki kell zárni a számításból.
Reproductive output of parent animals can be expressed in other ways (e.g. number of living offspring produced per animal per day from the first day offspring were observed) but these should be reported in addition to the total number of juveniles produced per parent alive at the end of the test.
A szülők reprodukciós teljesítményét más módokon is ki lehet fejezni (pl. az első utód megjelenésének napjától számítva a naponta egy állatra jutó élő utódok száma), ezt azonban a vizsgálati időszak végén még élő szülőkre jutó élő utódok teljes száma mellett, kiegészítésként lehet jelenteni.
The reproductive output of the animals exposed to the test substance is compared to that of the control(s) in order to determine the lowest observed effect concentration (LOEC) and hence the no observed effect concentration (NOEC).
A vizsgált anyag hatásának kitett állatok szaporulatát össze kell hasonlítani a kontrollcsoport szaporulatával, a legalacsonyabb megfigyelhető hatást okozó koncentráció (LOEC), s ezzel összefüggésben a hatástalan legmagasabb koncentráció (NOEC) szintjének meghatározása érdekében.
In addition, and as far as possible, the data are analysed using a regression model in order to estimate the concentration that would cause a x % reduction in reproductive output (i.e. the EC50, EC20, or EC10).
Ezen túlmenően lehetőség szerint egy regressziós modell segítségével kell az adatokat elemezni azon koncentrációszint becslése érdekében, amely egy x százaléknyi csökkenést okoz a szaporulatban (például EC50, EC20, illetve az EC10).
The survival of the parent animals and time to production of first brood must also be reported.
A jelentésbe bele kell foglalni a szülők túlélési arányát és az első ivadékok megjelenésének idejét is.
Other substance-related effects on parameters such as growth (e.g. length) and possibly intrinsic rate of increase, may also be examined.
Vizsgálni lehet továbbá a vizsgált anyag más paraméterekre gyakorolt hatásait is, mint pl. a növekedés (pl. testhossz) és a valószínű belső növekedési ráta.
Results of an acute toxicity test (see Method C.2, Part I) performed with Daphnia magna should be available.
Rendelkezésre kell hogy álljanak a Daphnia magna fajjal végzett akut toxicitási vizsgálatok eredményei (lásd a C.2. módszer 1. része).
The result may be useful in selecting an appropriate range of test concentrations in the reproduction tests.
Az eredmények a reprodukciós vizsgálatok során hasznosak lehetnek a vizsgálati koncentrációk megfelelő tartományának megállapításában.
The water solubility and the vapour pressure of the test substance should be known and a reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency and limit of determination should be available.
Ismerni kell a vizsgált anyag vízoldékonyságát és gőznyomását, és egy olyan megbízható analitikai módszerrel kell rendelkezni a vizsgálati oldatokban lévő anyag számszerű meghatározásához, amelynek visszanyerési hatékonysága és mérési határa ismert.
Information on the test substance which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity of the substance, stability in light, stability under the conditions of the test, pKa, Pow and results of the test for ready biodegradability (see Method C.4).
A vizsgált anyagra vonatkozó azon információkhoz, amelyek hasznosak lehetnek a vizsgálati körülmények megállapításához, tartozik még a szerkezeti képlet, az anyag tisztasága, fénystabilitása, stabilitása vizsgálati körülmények között, pKa és megoszlási koefficiens (n-oktanol/víz) értékek, valamint a biológiai lebonthatóságra vonatkozó vizsgálat eredményei is (lásd a C.4. módszert).
For a test to be valid, the following performance criteria should be met in the control(s):
A vizsgálat érvényesságéhez az alábbi teljesítménykritériumoknak kell teljesülniük a kontrollcsoport(ok)ban:
the mortality of the parent animals (female Daphnia) does not exceed 20 % at the end of the test,
a vizsgálat végén a szülők (nőstény Daphnia) mortalitási aránya nem haladja meg a 20 %-ot,
the mean number of live offspring produced per parent animal surviving at the end of the test is ≥ 60.
a vizsgálat végén még élő szülők élő szaporulatának átlagos száma >= 60.
Test vessels and other apparatus which will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
A vizsgálati edények és minden más, a vizsgálati oldatokkal közvetlenül érintkező más felszerelések üvegből vagy más, kémiailag közömbös anyagból készülnek.
The test vessels will normally be glass beakers.
A vizsgálati edények általában üveglombikok.
In addition, some or all of the following equipment will be required:
Ezenfelül szükség lehet az alábbi berendezések némelyikére vagy mindegyikére:
oxygen meter (with microelectrode or other suitable equipment for measuring dissolved oxygen in low volume samples),
oxigénmérő (mikroelektróddal vagy más olyan berendezés segítségével, amelynek a rendeltetése csekély mennyiségű mintában az oldott oxigén mérése),
equipment for the determination of the hardness of water,
a vízkeménységet meghatározó készülékek,
equipment for the determination of the total organic carbon concentration (TOC) of water or equipment for the determination of the chemical oxygen demand (COD),
a víz összes szervesszén-koncentrációjának (TOC) vagy a kémiai oxigénigény (COI) meghatározására alkalmas készülék,
adequate apparatus for the control of the lighting regime and the measurement of light intensity.
megfelelő berendezés a fény szabályozására és intenzitásának mérésére.
The species to be used in the test is Daphnia magna Straus.
A vizsgálat során használt állatfaj a Daphnia magna Straus.
Other Daphnia species may be used providing they meet the validity criteria as appropriate (the validity criterion relating to the reproductive output in the controls should be relevant for the Daphnia species).
Más Daphnia-fajokat is fel lehet használni, feltéve, hogy azok kielégítik a megfelelő érvényességi kritériumokat (az egyes Daphnia-fajokra jellemző szaporodási kritériumok a kontrollban teljesülnek).
If other species of Daphnia are used they must be clearly identified and their use justified.
Más Daphnia-fajok használata esetén ezeket egyértelműen azonosítani kell és alkalmazásukat meg kell indokolni.
Preferably, the clone should have been identified by genotyping.
A klónt lehetőleg genotípusos meghatározással kell beazonosítani.
Research (1) has shown that the reproductive performance of Clone A (which originated from IRCHA in France) (3) consistently meets the validity criterion of a mean of ≥ 60 offspring per parent animal surviving when cultured under the conditions described in this method.
Kutatások (1) kimutatták, hogy az „A” Klón (amely a franciaországi IRCHA-ból származik) (3) reprodukciós teljesítménye következetesen kielégíti az e módszerben leírt feltételek mellett tenyésztett, a vizsgálatot túlélő egyes szülőkre átlagosan jutó >= 60 utód érvényességi kritériumot.
However, other clones are acceptable provided that the Daphnia culture is shown to meet the validity criteria for a test.
Emellett azonban más klónok is elfogadhatók, feltéve, hogy a Daphnia tenyészetről kimutatható, hogy kielégíti a vizsgálat érvényességi kritériumait.
At the start of the test, the animals should be less than 24 hours old and must not be first brood progeny.
A vizsgálat kezdetekor az állatok nem lehetnek idősebbek 24 óránál, és nem származhatnak az első szaporulatból.
They should be derived from a healthy stock (i.e. showing no signs of stress such as high mortality, presence of males and ephippia, delay in the production of the first brood, discoloured animals etc.).
Az állatoknak egészséges törzstenyészetből kell származniuk (azaz nem mutathatják a stressz jeleit, mint pl. magas mortalitás, hímek vagy ephippia jelenléte, késedelem az első szaporulat létrehozásában, színtelen állatok stb.).
The stock animals must be maintained in culture conditions (light, temperature, medium, feeding and animals per unit volume) similar to those to be used in the test.
A törzstenyészet állatait hasonló tenyésztési körülmények között kell tartani (megvilágítás, hőmérséklet, közeg, táplálék és állatok mennyisége térfogategységre számolva), mint a vizsgálat céljaira alkalmazandókat.
If the Daphnia culture medium to be used in the test is different from that used for routine Daphnia culture, it is good practice to include a pre-test acclimation period of normally about 3 weeks (i.e. one generation) to avoid stressing the parent animals.
Ha a vizsgálat során használandó tenyészfolyadék jellemzői eltérnek azon közeg jellemzőitől, amelyben a Daphniákat szokásos módon tenyésztik, akkor megfelelő egy szokásosan mintegy háromhetes akklimatizációs időszak biztosítása a vizsgálat előtt (azaz egy generációnyi idő), a szülők stresszmentesítése érdekében.
It is recommended that a fully defined medium be used in this test.
Javasolt egy teljeskörűen meghatározott tenyészfolyadék használata a vizsgálat során.
This can avoid the use of additives (e.g. seaweed, soil extract etc.), which are difficult to characterise, and therefore improves the opportunities for standardisation between laboratories.
Így elkerülhető az adalékanyagok (pl. alga, talajkivonatok stb.) használata, amelyeket nehéz jellemezni, és mindez elősegíti a laboratóriumok közötti szabványosítás lehetőségét.
Elendt M4 (4) and M7 media (see Appendix 1) have been found to be suitable for this purpose.
E célra az Elendt M4 (4) és M7 tenyészfolyadék (lásd az 1. függeléket) bizonyult alkalmasnak.
However, other media (e.g. (5) (6)) are acceptable providing the performance of the Daphnia culture is shown to meet the validity criteria for the test.
Azonban másfajta tenyészfolyadékok (pl. (5) és (6)) is elfogadhatók, feltéve, hogy a Daphnia tenyészet teljesítménye bizonyíthatóan kielégíti a vizsgálat validitási kritériumait.