natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The uptake rate constant, the depuration (loss) rate constant (or constants, where more complex models are involved), the bioconcentration factor, and where possible, the confidence limits of each of these parameters are calculated from the model that best describes the measured concentrations of test substance in fish and water.
A felvételi sebességi állandót, a tisztulási (ürülési) sebességi állandót (vagy állandókat, amennyiben összetettebb modellt alkalmaztak), a biokoncentrációs tényezőt, és amennyiben lehetséges, e paraméterek mindegyike esetében a konfidenciahatárokat, a halban és a vízben mért vizsgálatianyag-koncentrációt legjobban leíró modell szerint számítják ki.
The BCF is expressed as a function of the total wet weight of the fish.
A BCF a hal teljes nedves tömegének függvényeként van kifejezve.
However, for special purposes, specified tissues or organs (e.g. muscle, liver), may be used if the fish are sufficiently large or the fish may be divided into edible (fillet) and non-edible (viscera) fractions.
Különleges célokra azonban meghatározott szövetek és szervek (pl. izom, máj) is használhatók, amennyiben a hal elég nagy, illetve ha a hal ehető (filé) és nem ehető (zsiger) részekre osztható.
Since, for many organic substances, there is a clear relationship between the potential for bioconcentration and lipophilicity, there is also a corresponding relationship between the lipid content of the test fish and the observed bioconcentration of such substances.
Mivel számos szerves anyagnál egyértelmű kapcsolat van a biokoncentrációs potenciál és a lipofilitás között, ezért ugyanilyen kapcsolat van a kísérleti hal lipidtartalma és az ilyen anyagok megfigyelt biokoncentrációja között is.
Thus, to reduce this source of variability in test results for those substances with high lipophilicity (i.e. with log Pow > 3), bioconcentration should be expressed in relation to lipid content in addition to whole body weight.
Ezért a nagy lipofilitású (azaz log Pow > 3) anyagokra kapott vizsgálati eredmények változatosságának e forrása csökkentéséhez a biokoncentrációt a teljes testtömegen kívül a lipidtartalom vonatkozásában is ki kell fejezni.
The lipid content should be determined on the same biological material as is used to determine the concentration of the test substance, when feasible.
Amennyiben megvalósítható, a lipidtartalmat ugyanazon a biológiai anyagon kell meghatározni, mint amit a vizsgált anyag koncentrációjának meghatározására használtak.
Before carrying out the test for bioconcentration, the following information for the test substance should be known:
A biokoncentrációs vizsgálat elvégzése előtt a vizsgált anyagról az alábbi adatokra van szükség:
solubility in water
oldhatóság vízben,
octanol-water partition coefficient Pow (denoted also as Kow, determined by an HPLC method in A.8)
oktanol-víz megoszlási együttható Pow (Kow-vel is jelölik, az A.8-ban megadott HPLC módszerrel meghatározva),
hydrolysis
hidrolízis,
phototransformation in water determined under solar or simulated solar irradiation and under the irridiation conditions of the test for bioconcentration (3)
fototranszformáció vízben nap- vagy szimulált napsugárzásnál és a biokoncentrációs vizsgálatnál alkalmazott sugárzási feltételek mellett,
surface tension (i.e. for substances where the log Pow cannot be determined)
felületi feszültség (azaz olyan anyagoknál, ahol Pow-t nem lehet meghatározni),
vapour pressure
gőznyomás,
ready biodegradability (where appropriate)
gyors biológiai lebonthatóság (adott esetben).
Other information required is the toxicity to the fish species to be used in the test, preferably the asymptotic LC50 (i.e. time-independent).
További megkövetelt információ a vizsgálat során használt halfajokra kifejtett toxicitás, lehetőleg az aszimptotikus (azaz az időtől független) LC50.
An appropriate analytical method, of known accuracy, precision and sensitivity, for the quantification of the test substance in the test solutions and in biological material must be available, together with details of sample preparation and storage.
Legyen ismert pontosságú és érzékenységű analitikai módszer a vizsgált anyag kvantifikálására a vizsgált oldatokban és a biológiai anyagban, a mintakészítés és tárolás részleteivel együtt.
Analytical detection limit of test substance in both water and fish tissues should also be known.
A vizsgált anyag vízben és halszövetekben érvényes analitikai kimutatási határának is ismertnek kell lenni.
When 14C labelled test substance is used, the percentage of radioactivity associated with impurities should be known.
Amennyiben 14C-vel jelzett vizsgált anyagot használnak, ismerni kell a szennyező anyagokhoz tartozó százalékos radioaktivitást.
VALIDITY OF THE TEST
ÉRVÉNYESSÉGI KRITÉRIUMOK
The following conditions should apply for a test to be valid:
Az alábbi feltételeknek kell teljesülniük a vizsgálat érvényességéhez:
the temperature variation is less than ± 2 °C;
a hőmérséklet-ingadozás kisebb ± 2 oC-nál,
the concentration of dissolved oxygen does not fall below 60 % saturation;
az oldott oxigén koncentrációja nem eshet 60 %-os telítettség alá,
the concentration of the test substance in the chambers is maintained within ± 20 % of the mean of the measured values during the uptake phase;
a kamrákban a vizsgált anyag koncentrációját a felvételi fázisban mért értékek átlagának ± 20 %-án belül kell tartani,
the mortality or other adverse effects/disease in both control and treated fish is less than 10 % at the end of the test; where the test is extended over several weeks or months, death or other adverse effects in both sets of fish should be less than 5 % per month and not exceed 30 % in all.
a vizsgálat végén a kontroll és a kezelt halak mortalitásának és egyéb káros hatásoknak/betegségeknek 10 %-nál kisebbnek kell lenni; amennyiben a vizsgálat több hétig vagy hónapig tart, a pusztulásnak, vagy más ártalmas hatásnak a halak mindkét csoportjában kisebbnek kell lenni havi 5 %-nál, és nem haladhatja meg a 30 %-ot összesen.
REFERENCE COMPOUNDS
REFERENCIAVEGYÜLETEK
The use of reference compounds of known bioconcentration potential would be useful in checking the experimental procedure, when required.
Az ismert biokoncentrációs potenciálú referenciavegyületek használata hasznos lehet a kísérleti eljárások ellenőrzése során, amennyiben elvárt.
However, specific substances cannot yet be recommended.
Bár meghatározott anyagok még nem ajánlhatók.
Care should be taken to avoid the use of materials, for all parts of the equipment, that can dissolve, sorb or leach and have an adverse effect on the fish.
A vizsgálat során kerülni kell az olyan anyagok használatát, amelyek oldódhatnak, szorbeálódhatnak vagy kimosódhatnak az eszközökből, és ártalmasak lehetnek a halakra.
Standard rectangular or cylindrical tanks, made of chemically inert material and of a suitable capacity in compliance with loading rate can be used.
Szabványos, kémiailag inert anyagból készült, a töltési sebességnek megfelelő térfogatú négyszögletes vagy hengeres tartályok használhatók.
The use of soft plastic tubing should be minimised.
A puha műanyag csövek használatát minimalizálni kell.
Teflon®, stainless steel and/or glass tubing are preferably used.
Teflon®, rozsdamentes acél és/vagy üvegcsövek használata ajánlott.
Experience has shown that for substances with high adsorption coefficients, such as the synthetic pyrethroids, silanised glass may be required.
A tapasztalatok alapján szükséges lehet a nagy abszorpciós együtthatójú anyagok, mint szintetikus piretroidok esetében, szilanizált üveg használata.
In these situations the equipment will have to be discarded after use.
Ilyen esetekben a felszerelést használat után el kell dobni.
Natural water is generally used in the test and should be obtained from an uncontaminated and uniform quality source.
A kísérletekhez általában természetes vizet kell használni, amely nem szennyezett, és állandó minőségű.
The dilution water must be of a quality that will allow the survival of the chosen fish species for the duration of the acclimation and test periods without them showing any abnormal appearance or behaviour.
A hígításra használt víz minőségének lehetővé kell tennie a választott halfajok túlélését az akklimatizációs és a kísérleti időszakok alatt anélkül, hogy bármilyen rendellenes külső megjelenés vagy viselkedés jelentkezne.
Ideally, it should be demonstrated that the test species can survive, grow and reproduce in the dilution water (e.g. in laboratory culture or a life-cycle toxicity test).
Ideális esetben a vizsgált fajok bizonyítottan képesek túlélni, fejlődni és szaporodni a hígítóvízben (pl. laboratóriumi tenyészetben, vagy életciklusra vonatkozó toxicitásvizsgálatnál).
The water should be characterised at least by pH, hardness, total solids, total organic carbon and, preferably also ammonium, nitrite and alkalinity and, for marine species, salinity.
A vizet legalább a pH-val, keménységgel, valamennyi szilárd anyaggal, összes szerves szénnel, és lehetőleg ammónium-, nitrittartalommal és alkalitással, és tengeri fajoknál sótartalommal is jellemezni kell.
The parameters which are important for optimal fish well-being are fully known, but Appendix 1 gives recommended maximum concentrations of a number of parameters for fresh and marine test waters.
A halak optimális jólétéhez fontos paraméterek teljesen ismertek, de az 1. függelék megadja számos paraméter esetében az ajánlott maximális koncentrációt a vizsgált édes- és tengervízre.
The water should be of constant quality during the period of a test.
A kísérleti időszak alatt a víznek állandó minőségűnek kell lenni.
The pH value should be within the range 6,0 to 8,5, but during a given test it should be within a range of ±0,5 pH units.
A pH-értékének 6,0 és 8,5 között kell lenni, de egy adott vizsgálat során ±0,5 pH egységnyi tartományon belül kell maradnia.
In order to ensure that the dilution water will not unduly influence the test result (for example, by complexation of the test substance) or adversely affect the performance of the stock of fish, samples should be taken at intervals for analysis.
Analízis céljából időközönként mintákat kell venni, annak érdekében, hogy a hígítóvíz ne befolyásolhassa hátrányosan a vizsgálati eredményeket (például a vizsgált anyag komplexálásával), vagy ne legyen káros hatással a halállomány állapotára.
Determination of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni), major anions and cations (e.g. Ca, Mg, Na, K, Cl, SO4), pesticides (e.g. total organophosphorous and total organochlorine pesticides), total organic carbon and suspended solids should be made, for example, every three months where a dilution water is known to be relatively constant in quality.
Nehézfémek (pl. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni), főbb anionok és kationok (pl. Ca, Mg, Na, K, Cl, SO4), peszticidek (pl. összes szerves foszforvegyület és összes szerves klórpeszticidek), összes szerves szén és szuszpendált szilárd anyag meghatározását el kell végezni, például háromhavonta, amennyiben a hígítóvíz ismerten viszonylag állandó minőségű.
If water quality has been demonstrated to be constant over at least one year, determinations can be less frequent and intervals extended (e.g. every six months).
Amennyiben a víz minősége bizonyítottan konstans legalább egy éven keresztül, akkor ritkábban, nagyobb időközökkel is lehet ellenőrző méréseket végezni (pl. csak hathavonta egyszer).
The natural particle content as well as the total organic carbon (TOC) of the dilution water should be as low as possible to avoid adsorption of the test substance to organic matter which may reduce its bioavailability (4).
A hígítóvíz természetes részecske- és a teljes szervesszén-tartalmának (TOC) is a lehető legalacsonyabbnak kell lenni, hogy a vizsgált anyag ne abszorbeálódjon szerves anyagon, ami csökkenthetné a biológia elérhetőségét (4).
The maximum acceptable value is 5 mg/l for particulate matter (dry matter, not passing a 0,45 μm filter) and 2 mg/l for total organic carbon (see Appendix 1).
A maximális elfogadható érték 5 mg/l szemcsés anyagok esetében (szárazanyag 0,45 μm-es szűrőn nem jut át) és 2 mg/l az összes szerves szén esetében (lásd 1. függelék).
If necessary, the water should be filtered before use.
A vizet szűrni kell felhasználás előtt, amennyiben szükséges.
The contribution to the organic carbon content in water from the test fish (excreta) and from the food residues should be as low as possible.
A kísérleti halaktól (ürülék) és a táplálékmaradékból származó szerves széntartalom járulékának a lehető legkisebbnek kell lenni a vízben.
Throughout the test, the concentration of organic carbon in the test vessel should not exceed the concentration of organic carbon originating from the test substance and, if used, the solubilising agent by more than 10 mg/l (± 20 %).
A vizsgálat során a kísérleti edényben a szerves szén koncentrációja nem haladhatja meg a vizsgált anyagból származó szerves szén koncentrációját, és, amennyiben alkalmazták, az oldószer koncentrációját 10 mg/l-nél nagyobb mértékben (± 20 %).
Test Solutions
Vizsgált oldat
A stock solution of the test substance is prepared at a suitable concentration.
A vizsgált anyagból megfelelő koncentrációjú törzsoldat készül.
The stock solution should preferably be prepared by simply mixing or agitating the test substance in the dilution water.
A törzsoldatot célszerű a vizsgált anyagnak egyszerűen a hígítóvízbe keverésével vagy összerázással elkészíteni.
The use of solvents or dispersants (solubilising agents) is not recommended; however this may occur in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Az oldószerek vagy diszpergálószerek (oldódást segítő szerek) használata nem ajánlott; néhány esetben azonban alkalmazhatók megfelelő töménységű törzsoldat készítése érdekében.
Solvents which may be used are ethanol, methanol, ethylene glycol monomethyl ether, ethylene glycol dimethyl ether, dimethylformamide and triethylene glycol.
A felhasználható oldószerek: etanol, metanol, etilén-glikol-metil-éter, etilénglikol-dimetil-éter, dimetil-formamid és trietilén-glikol.
Dispersants which may be used are Cremophor RH40, Tween 80, methylcellulose 0,01 % and HCO-40.
A felhasználható diszpergálószerek: Cremophor RH40, Tween 80, metilcellulóz 0,01 % és HCO-40.
Care should be taken when using readily biodegradable agents as these can cause problems with bacterial growth in flow-through tests.
Gondosan kell eljárni a biológiailag könnyen lebontható szerek használata esetén, mivel átfolyásos vizsgálatokban baktériumnövekedés révén problémát okozhatnak.
The test substance may be radio-labelled and should be of the highest purity (e.g. preferably > 98 %).
A vizsgált anyag radioaktívan is jelölhető, és a legnagyobb tisztaságúnak kell lenni (pl. lehetőleg > 98 %).
For flow-through tests, a system which continuously dispenses and dilutes a stock solution of the test substance (e.g. metering pump, proportional diluter, saturator system) is required to deliver the test concentrations to the test chambers.
Átfolyásos vizsgálatokban a vizsgált anyag törzsoldatát folyamatosan adagoló és hígító rendszerre (pl. állandó áramlási sebességet biztosító pumpa, szabályozható hígító rendszer, telítőrendszer) van szükség a kísérleti koncentrációk kísérleti kamrákba juttatásához.
At least five volume replacements through each test chamber per day are preferably allowed.
Az egyes tartályok esetében a napi öt térfogatcsere a megengedhető.
The flow-through mode is to be preferred, but where this is not possible (e.g. when the test organisms are adversely affected) a semi-static technique may be used provided that the validity criteria are satisfied.
Az átfolyásos mód részesül előnyben, amennyiben nem alkalmazható (pl. ha a vizsgált szervezetekre károsan hat), félstatikus módszer használható, feltéve hogy az érvényességi követelmények teljesülnek.
The flow rates of stock solutions and dilution water should be checked both 48 h before and then at least daily during the test.
A törzsoldatok és a hígítóvíz áramlási sebességét legalább naponta a vizsgálat előtt és után 48 órával ellenőrizni kell.
In this check the determination of the flow-rate through each test chamber is included and ensured that it does not vary by more than 20 % either within or between chambers.
Az ellenőrzés magában foglalja az áramlási sebesség meghatározását az egyes kísérleti tartályokban, és biztosítja, hogy ne változzon 20 %-nál nagyobb mértékben sem az egyes kamrákban, sem azok között.
Important criteria in the selection of species are that they are readily available, can be obtained in convenient sizes and can be satisfactorily maintained in the laboratory.
A fajok megválasztásánál fontos követelmény, hogy könnyen és megfelelő méretben elérhetők, és a laboratóriumban kielégítő körülmények között tarthatók legyenek.
Other criteria for selecting fish species include recreational, commercial, ecological importance as well as comparable sensitivity, past successful use etc.
A halfajok megválasztásának egyéb követelményei közé tartozik a fontosság rekreációs, kereskedelmi, ökológiai szempontból éppúgy, mint az összehasonlítható érzékenység, múltbeli sikeres használat stb.
Recommended test species are given in Appendix 2.
Az ajánlott fajok a 2. függelékben találhatók.
Other species may be used but the test procedure may have to be adapted to provide suitable test conditions.
Más fajok is használhatók, de a kísérleti eljárást esetleg át kell dolgozni a megfelelő vizsgálati körülmények biztosításához.
The rationale for the selection of the species and the experimental method should be reported in this case.
Ebben az esetben a jelentésnek tartalmaznia kell a fajok és a kísérleti módszer kiválasztásának indoklását.
Holding of fish
A halak tartása
Acclimate the stock population of fish for at least two weeks in water at the test temperature and feed throughout on a sufficient diet and of the same type to be used during the test.
Legalább két hétig a vizsgálat során alkalmazott hőmérsékletű vízben akklimatizálják a törzspopulációt, és kielégítő, a vizsgálat alatt használttal megegyező típusú étrenden tartják őket.
mortalities of greater than 10 % of population in seven days: reject the entire batch;
amennyiben hét nap alatt a populáció mortalitása 10 %-nál magasabb, az egész állományt ki kell cserélni,
mortalities of between 5 and 10 % of population in seven days: acclimate for seven additional days;
mortalitás a populáció 5–10 %-a hét nap alatt: további hét napig kell akklimatizálni,
mortalities of less than 5 % of population in seven days: accept the batch — if more than 5 % mortality during second seven days reject the entire batch.
mortalitás a populáció 5 %-ánál kisebb hét nap alatt: a tételt kell elfogadni – ha a második hét nap alatt a mortalitás 5 %-nál több, az egész tételt ki kell selejtezni.
Ensure that fish used in tests are free from observable diseases and abnormalities.
Beteg és rendellenesen fejlődött halak nem használhatók a vizsgálathoz.
Discard any diseased fish.
Minden beteg haltól meg kell szabadulni.
Fish should not receive treatment for disease in the two weeks preceding the test, or during the test.
A halak a vizsgálat előtti két hétben és a vizsgálat során nem kaphatnak betegség miatti kezelést.
PERFORMANCE OF THE TEST
A VIZSGÁLAT VÉGREHAJTÁSA
It may be useful to conduct a preliminary experiment in order to optimise the test conditions of the definitive test, e.g. selection of test substance concentration(s), duration of the uptake and depuration phases.
Hasznos lehet elővizsgálatokat végezni a vizsgálati körülmények optimalizására a döntő vizsgálathoz, pl. a vizsgált anyag koncentrációjának, a felvételi és tisztulási fázisok megválasztására.
Duration of uptake phase
A felvételi fázis időtartama
A prediction of the duration of the uptake phase can be obtained from practical experience (e.g. from a previous study or an accumulation related chemical) or from certain empirical relationships utilising knowledge of either the aqueous solubility or the octanol/water partition coefficient of the test substance (see Appendix 3).
A felvételi fázis időtartamának előrejelzése előzetes tapasztalatból (pl. előző vizsgálatból vagy akkumulációhoz kapcsolódó vegyi anyagból), vagy bizonyos, a vizsgált anyag vízben való oldhatósága, vagy oktanol/víz megoszlási együtthatója ismeretét felhasználó tapasztalati kapcsolatokból nyerhető (lásd 3. függelék).
The uptake phase should be run for 28 days unless it can be demonstrated that equilibrium has been reached earlier.
A felvételi fázis 28 napig tart, kivéve ha igazolható, hogy az egyensúly korábban beállt.
If the steady-state has not been reached by 28 days, the uptake phase should be extended, taking further measurements, until steady-state is reached or 60 days, whichever is shorter.
Amennyiben az állandósult állapot nem áll be 28 nap alatt, a felvételi fázist ki kell terjeszteni további méréseket végezve, amíg az állandósult állapot beáll, vagy legfeljebb 60 napig.
Duration of the depuration phase
A tisztulási fázis időtartama A felvételi fázis időtartamának a fele rendszerint elég az anyag megfelelő (pl. 95 %-os) csökkenéséhez (lásd 3. függeléket a becslés magyarázatához).
However, for substances having more complex patterns of uptake and depuration than are represented by a one-compartment fish model, yielding first order kinetics, allow longer depuration phases for determination of loss rate constants.
Az elsőrendű kinetikát eredményező egyrekeszeshal-modellnél összetettebb felvételi és tisztulási fázissal rendelkező anyagoknál azonban az ürülési sebességi állandó meghatározására azonban hosszabb tisztulási fázis is megengedett.
The period may, however, be governed by the period over which the concentration of test substance in the fish remains above the analytical detection limit.
Az időtartamot azonban az a periódus szabhatja meg, ami után a halban a vizsgált anyag koncentrációja az analitikai detektálási határ fölött marad.
Numbers of test fish
A kísérleti halak száma
Select the numbers of fish per test concentration such that minimum of four fish per sample are available at each sampling.
A halak számát koncentrációnként úgy választják ki, hogy mintánként legalább négy hal álljon rendelkezésre minden mintavételnél.
If greater statistical power is required, more fish per sample will be necessary.
Amennyiben komolyabb statisztikai számításokat akarunk végezni, mintánként több hal szükséges.
If adult fish are used, report whether male or female, or both are used in the experiment.
Amennyiben kifejlett halakat használnak, rögzíteni kell, hogy hímeket és nőstényeket milyen arányban használnak a kísérletben.
If both sexes are used, differences in lipid content between sexes should be documented to be non-significant before the start of the exposure; pooling all male and all female fish may be necessary.
Amennyiben mindkét nemet használják, dokumentálni kell, hogy az expozíció kezdete előtt a két nem között a lipidtartalom különbsége jelentéktelen; szükséges lehet az összes hím és az összes nőstény hal egybegyűjtése.
In any one test, fish of similar weight are selected, such that the smallest are no smaller than two-thirds of the weight of the largest.
Mindegyik vizsgálatban hasonló tömegű halakat kell kiválasztani, a legkisebbek ne legyenek kisebbek a legnagyobb hal tömegének kétharmadánál.
All should be of the same year-class and come from the same source.
Ugyanabba a korcsoportba tartozzanak, és a származásuk is azonos legyen.
Since weight and age of a fish appear sometimes to have a significant effect on BCF values (1) these details are recorded accurately.
Mivel a halak tömege és kora időnként jelentős hatással lehet a BCF értékekre (1), ezeket a részleteket pontosan rögzíteni kell.
It is recommended that a sub-sample of the stock of fish is weighed before the test in order to estimate the mean weight.
Ajánlott az átlagtömeg becslése érdekében a vizsgálat előtt a halpopuláció egy mintacsoportját lemérni.
Loading
Tesztállatok elrendezése