natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The fish listed above are easy to rear and/or are widely available throughout the year.
A fent felsorolt halakat könnyű tenyészteni és/vagy könnyen beszerezhetők az egész év során.
They are capable of being bred and cultivated either in fish farms or in the laboratory, under disease — and parasite — controlled conditions, so that the test animal will be healthy and of known parentage.
Alkalmasak a tenyésztésre vagy halgazdaságokban, vagy laboratóriumban, betegség- és parazitakontrollált állapotok mellett úgy, hogy a kísérleti állatok egészségesek és ismert származásúak lesznek.
These fish are available in many parts of the world.
Ezek a halak a világ sok részében beszerezhetők.
Example of concentration: percentage mortality
Példa koncentrációra: elpusztulás százalékban
Example of determination of LC50 using log-probit paper
Példa LC50 meghatározására féllogaritmusos papír segítségével
Mortality in % (probit scale)
Elpusztulás százalékban (Probit skála)
Concentrations (log scale)
Koncentrációk (log skála)
This acute immobilisation testing method is equivalent to the OECD TG 202 (2004).
Ez az akut immobilizációs vizsgálati módszer egyenértékű az OECD TG 202 (2004) módszerrel.
This method describes an acute toxicity test to assess effects of chemicals towards daphnids.
Ez a módszer egy akut toxicitási vizsgálatot ír le, amely a vegyi anyagok Daphniákra gyakorolt hatását értékeli.
Existing test methods were used to the extent possible (1)(2)(3).
Amennyire csak lehetett, meglévő vizsgálati módszereket alkalmaztunk (1) (2) (3).
In the context of this method, the following definitions are used:
Ezzel a módszerrel összefüggésben a következő meghatározásokat alkalmazzuk:
is the concentration estimated to immobilise 50 % of the daphnids within a stated exposure period.
EC50: az a becsült koncentráció, amely a Daphniák 50 %-át mozgásképtelenné teszi valamely meghatározott expozíciós időtartamon belül.
If another definition is used, this must be reported, together with its reference.
Amennyiben más meghatározás kerül alkalmazásra, arról be kell számolni, a referenciájával együtt.
Immobilisation: those animals that are not able to swim within 15 seconds, after gentle agitation of the test vessel are considered to be immobilised (even if they can still move their antennae).
Mozgásképtelenség: Azokat az állatokat, amelyek a vizsgálati tartály óvatos megkeverése után 15 másodpercen belül nem képesek úszni, mozgásképtelennek kell tekinteni (még akkor is, ha a csápjaikat még tudják mozgatni).
Young daphnids, aged less than 24 hours at the start of the test, are exposed to the test substance at a range of concentrations for a period of 48 hours.
A fiatal Daphniákat, melyek a vizsgálat kezdetén 24 órásnál fiatalabbak, a vizsgált anyag különböző koncentrációinak teszik ki 48 órás időtartamon át.
Immobilisation is recorded at 24 hours and 48 hours and compared with control values.
Az immobilizálást 24 és 48 óra elteltével rögzítik, és összehasonlítják a kontrollértékekkel.
The results are analysed in order to calculate the EC50 at 48h (see Section 1.2 for definitions).
Az eredményeket elemzik a 48 órás EC50 kiszámítása végett (lásd az 1.2. szakaszt a meghatározásokról).
Determination of the EC50 at 24h is optional.
A 24 órás EC50 meghatározása opcionális.
INFORMATION ON THE TEST SUBSTANCE
A VIZSGÁLT ANYAGRA VONATKOZÓ INFORMÁCIÓK
The water solubility and the vapour pressure of the test substance should be known and a reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency, and limit of determination should be available.
Ismerni kell a vizsgált anyag vízoldékonyságát és gőznyomását, és a vizsgálati oldatokban lévő anyag mennyiségi meghatározásához rendelkezni kell egy olyan megbízható analitikai módszerrel, amelynél ismert a visszanyerési hatékonyság és meghatározás korláta.
Useful information includes the structural formula, purity of the substance, stability in water or light, Pow and results of a test for ready biodegradability (see method C.4).
A hasznos információk közé tartozik a szerkezeti képlet, az anyag tisztasága, vízben való stabilitása vagy fénystabilitása, a Pow és a gyors biológiai lebonthatóságra vonatkozó vizsgálat eredményei (lásd C.4. módszer).
Note: guidance for testing substances with physical chemical properties that made them difficult to test is provided in (4).
Megjegyzés: A fizikai, kémiai tulajdonságaik miatt nehezen vizsgálható anyagok vizsgálatának útmutatóját a 4. szakasz tartalmazza.
A reference substance may be tested for EC50 as a means of assuring that the test conditions are reliable.
Az EC50 vizsgálata referenciaanyagra is elvégezhető a vizsgálati körülmények megbízhatóságának biztosítására.
Toxicants used in international ring-tests (1)(5) are recommended for this purpose.
Erre a célra a nemzetközi körvizsgálatokban (1) (5) használt mérgező anyagok javasoltak.
Test(s) with a reference substance should be done preferably every month and at least twice a year.1.6.
A referenciaanyagos vizsgálato(ka)t lehetőleg havonta, és évente legalább kétszer kell elvégezni.1.6.
For a test to be valid, the following performance criteria apply:
A vizsgálat érvényességéhez az alábbi teljesítménykritériumoknak kell teljesülniük:
in the controls, including the control containing the solubilising agent, not more that 10 % of the daphnids should have been immobilised;
A kontrollokban, beleértve az szolubilizálószert tartalmazó kontrollt, a Daphniák immobilizálási aránya nem haladhatja meg a 10 %-ot,
the dissolved oxygen concentration at the end of the test should be ≥ 3 mg/l in control and test vessels.
A vizsgálat végéig az oldott oxigén koncentrációja legyen ≥ 3 mg/l a kontrollban és a vizsgálati tartályokban.
Note: For the first criterion, not more than 10 % of the control daphnids should show immobilisation or other signs of disease or stress, for example, discoloration, unusual behaviour such as trapping at surface of water.
Megjegyzés: Az első kritérium esetében a kontroll-Daphniák legfeljebb 10 %-a lehet mozgásképtelen, illetve mutathatja kór vagy stressz más jeleit, például elszíntelenedést, szokatlan viselkedést, mint például a víz felszínére szorulást.
Test vessels and other apparatus that will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
A vizsgálati tartályoknak és más, a vizsgált oldatokkal érintkezésbe kerülő berendezések teljes mértékben üvegből vagy más, kémiailag inert anyagból kell készülniük.
Test vessels will normally be glass test tubes or beakers; they should be cleaned before each use using standard laboratory procedures.
A vizsgálati tartályok rendszerint üveg kémcsövek vagy főzőpoharak; ezeket minden egyes használatot megelőzően szabványos laboratóriumi eljárással meg kell tisztítani.
Test vessels should be loosely covered to reduce the loss of water due to evaporation and to avoid the entry of dust into the solutions.
A vizsgálati tartályokat lazán le kell fedni, csökkentve a párolgásos vízvesztést, és megakadályozva a por oldatokba való kerülését.
Volatile substances should be tested in completely filled closed vessels, large enough to prevent oxygen becoming limiting or too low (see Section 1.6 and first paragraph of Section 1.8.3).
Az illékony anyagokat olyan, teljesen megtöltött zárt tartályokban kell vizsgálni, amelyek elegendően nagyok az oxigénhiány vagy a túl alacsony oxigénszint megakadályozásához (lásd az 1.6. szakaszt és az 1.8.3. szakasz első bekezdését).
In addition some or all of the following equipment will be used: oxygen-meter (with microelectrode or other suitable equipment for measuring dissolved oxygen in low volumes samples); pH-meter; adequate apparatus for temperature control; equipment for the determination of total organic carbon concentration (TOC); equipment for the determination of chemical oxygen demand (COD); equipment for the determination of hardness, etc.
Emellett a következő berendezések vagy azok mindegyike alkalmazandó: oxigénmérő (mikroelektródával, vagy egyéb olyan berendezéssel, amely alkalmas az oldott oxigén mérésére kis térfogatú mintákban); pH-mérő; megfelelő készülék a hőmérséklet szabályozásához; a teljes szerves szénkoncentráció (TOC) meghatározására szolgáló berendezés; a kémiai oxigénigény (KOI) meghatározására szolgáló berendezés; vízkeménység meghatározására szolgáló berendezés, stb.
Test organism
Vizsgált organizmus
Daphnia magna Straus is the preferred test species although other suitable Daphnia species can be used in this test (e.g. Daphnia pulex).
A vizsgálat során a Daphnia magna Straus kísérleti állatfajt kell előnyben részesíteni, jóllehet más megfelelő Daphnia-fajok is (pl. Daphnia pulex) használhatóak.
At the start of the test, the animals should be less than 24 hours old and to reduce variability, it is strongly recommended they are not first brood progeny.
A vizsgálat kezdetén az állatoknak 24 órásnál fiatalabbnak kell lenniük, és a variációs képesség csökkentése érdekében erősen javasolt, hogy ne az első szaporulatból származzanak.
They should be derived from a healthy stock (i.e. showing no signs of stress such as high mortality, presence of males and ephippia, delay in the production of the first brood, discoloured animals, etc.).
Egészséges törzstenyészetből kell származniuk (azaz nem szabad stressz jeleit mutatniuk, ilyen például magas halálozás, hímek és ephippiumok jelenléte, az első szaporulat késedelme, színtelen állatok, stb.).
All organisms used for a particular test should have originated from cultures established from the same stock of daphnids.
Egy adott vizsgálathoz felhasznált összes szervezet származzon ugyanabból a Daphnia-állományból létrehozott tenyészetből.
The stock animals must be maintained in culture conditions (light, temperature, medium) similar to those to be used in the test.
Az állomány állatait olyan tenyésztési körülmények között kell tartani (fény, hőmérséklet, közeg), mint amelyeket a vizsgálatban használnak.
If the daphnids culture medium to be used in the test is different from that used for routine daphnids culture, it is good practice to include a pre-test acclimation period.
Amennyiben a Daphniák vizsgálatban alkalmazandó tenyésztési közege különbözik a rutin Daphnia-tenyészetben használttól, a helyes gyakorlat az, ha a vizsgálat előtt akklimatizációs időszakot iktatnak be.
For that, brood daphnids should be maintained in dilution water at the test temperature for at least 48 hours prior to the start of the test.
Erre a célra a tenyésztett Daphniákat a vizsgálat kezdetét megelőzően legalább 48 órán keresztül vizsgálati hőmérsékletű hígítóvízben kell tartani.
Natural water (surface or ground water), reconstituted water or dechlorinated tap water are acceptable as holding and dilution water if daphnids will survive in it for the duration of the culturing, acclimation and testing without showing signs of stress.
Tenyésztő- és hígítóvízként természetes víz (felszíni vagy talajvíz), művíz vagy klórtalanított csapvíz fogadható el, amennyiben a Daphniák a tenyésztés, akklimatizálódás és vizsgálat időtartama alatt abban életben maradnak anélkül, hogy stressz jeleit mutatnák.
Any water which conforms to the chemical characteristics of an acceptable dilution water as listed in Appendix 1 is suitable as a test water.
Bármely olyan víz, amely megfelel az elfogadható hígítóvíz 1. függelékben felsorolt kémiai tulajdonságainak, megfelel vizsgálati víznek.
It should be of constant quality during the period of the test.
A víz minőségét a kísérlet során mindvégig azonos szinten kell tartani.
Reconstituted water can be made up by adding specific amounts of reagents of recognised analytical grade to deionised or distilled water.
Művíz készíthető analitikai tisztaságú reagensek meghatározott mennyiségének deionizált vagy desztillált vízhez történő hozzáadásával.
Examples of reconstituted water are given in (1) (6) and in Appendix 2.
Művíz példáit az (1) és (6) pont, illetve a 2. függelék adja meg.
Note that media containing known chelating agents, such as M4 and M7 media in Appendix 2, should be avoided for testing substances containing metals.
Meg kell jegyezni, hogy fémtartalmú vizsgált anyag esetében kerülendőek az ismert kelátképző anyagok, mint a 2. függelékben említett M4 és M7 közegek.
The pH should be in the range of 6 to 9.
A pH-érték legyen 6–9 közötti tartományban.
Hardness between 140 and 250 mg/l (as CaCO3) is recommended for Daphnia magna, while lower hardness may be also appropriate for other Daphnia species.
A Daphnia Magna esetében 140 és 250 mg/l (CaCO3-ban) közti keménység ajánlott, míg más Daphnia-fajok esetében alacsonyabb keménység is megfelelő lehet.
The dilution water may be aerated prior to use for the test so that the dissolved oxygen concentration has reached saturation.
A hígítóvizet a vizsgálatra történő felhasználás előtt levegőztetni lehet, hogy az oxigénkoncentráció elérje a telítettséget.
If natural water is used, the quality parameters should be measured at least twice a year or whenever it is suspected that these characteristics may have changed significantly (see previous paragraph and Appendix 1).
Természetes víz használatakor a minőségi paramétereket évente legalább kétszer mérni kell, illetve bármikor, ha felmerül annak a gyanúja, hogy ezek a tulajdonságok jelentős mértékben megváltozhattak (lásd az előző bekezdést és az 1. függeléket).
Measurements of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni) should also be made.
Nehézfém-méréseket (pl. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni) is végezni kell.
If dechlorinated tap water is used, daily chlorine analysis is desirable.
Klórmentesített csapvíz használata esetén kívánatos a napi klórelemzés.
If the dilution water is from a surface or ground water source, conductivity and total organic carbon (TOC) or chemical oxygen demand (COD) should be measured.
Amennyiben a hígítóvíz felszíni vagy talajvízforrásból származik, mérni kell a vezetőképességet, az összes szerves széntartalmat (TOC) vagy a kémiai oxigénigényt (KOI).
Test solutions
Vizsgálati oldatok
Test solutions of the chosen concentrations are usually prepared by dilution of a stock solution.
A kiválasztott koncentrációnak megfelelő vizsgálati oldatokat rendszerint a törzsoldat hígításával készítik el.
Stock solutions should preferably be prepared by dissolving the test substance in the dilution water.
A törzsoldatokat lehetőleg a vizsgálati anyagnak a hígítóvízben történő feloldásával kell elkészíteni.
As far as possible, the use of solvents, emulsifiers or dispersants should be avoided.
Az oldószerek, emulgeálószerek vagy diszpergálószerek használatát lehetőleg kerülni kell.
However, such compounds may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Ugyanakkor bizonyos esetekben szükség lehet ezekre a szerekre a megfelelő koncentrációjú törzsoldat készítéséhez.
Guidance for suitable solvents, emulsifiers and dispersants is given in (4).
A megfelelő oldószerek, emulgeálószerek és diszpergálószerek példáit a (4) pont sorolja fel.
In any case, the test substance in the test solutions should not exceed the limit of solubility in the dilution water.
A vizsgálati oldatban lévő vizsgálati anyag mindenestre nem haladhatja meg a hígítóvízben való oldhatóság határértékét.
The test should be carried out without the adjustment of pH.
A vizsgálatot a pH-érték beállítása nélkül kell végezni.
If the pH does not remain in the range 6-9, then a second test could be carried out, adjusting the pH of the stock solution to that of the diluition water before addition of the test substance.
Ha a pH-érték nem marad a 6–9 értékek tartományában, újabb vizsgálat végezhető, amelynél a törzsoldat pH-értékét a hígítóvíz pH-értékére kell beállítani a vizsgálati anyag hozzáadása előtt.
The pH adjustment should be made in such a way that the stock solution concentration is not changed to any significant extent and that no chemical reaction or precipitation of the test substance is caused.
A pH-beállítást úgy kell elvégezni, hogy a törzsoldat-koncentrációja ne változzon jelentős mértékben, és a vizsgálati anyag ne lépjen kémiai reakcióba más anyaggal, vagy ne csapódjon ki.
HCl and NaOH are preferred.
Erre a célra a HCl vagy az NaOH javasolt.
Conditions of exposure
A vizsgálat körülményei
Test groups and controls
Vizsgálati csoportok és kontrollok
Test vessels are filled with appropriate volumes of dilution water and solutions of test substance.
A vizsgálati tartályokat megfelelő mennyiségű hígítóvízzel és a vizsgálati anyag oldataival kell feltölteni.
Ratio of air/water volume in the vessel should be identical for test and control group.
A tartályokban a levegő/víz aránya legyen azonos a vizsgálati és a kontrollcsoport esetében.
Daphnids are then placed into test vessels.
Ezután a Daphniákat bele kell helyezni a vizsgálati tartályokba.
At least 20 animals, preferably divided into four groups of five animals each, should be used at each test concentration and for the controls.
Minden egyes vizsgálati koncentrációban és a kontrollokban legalább 20 állatot kell használni – lehetőleg négy, egyenként öt állatot tartalmazó csoportra osztva.
At least 2 ml of test solution should be provided for each animal (i.e. a volume of 10 ml for five daphnids per test vessel).
Állatonként legalább 2 ml vizsgálati oldatot kell biztosítani (azaz vizsgálati tartályonként 10 ml mennyiséget öt Daphniára).
The test may be carried out using semi-static renewal or flow-through system when the concentration of the test substance is not stable.
A vizsgálat elvégezhető félstatikus vagy átfolyásos rendszerben is, ahol a vizsgált anyag koncentrációja nem állandó.
One dilution-water control series and also, if relevant, one control series containing the solubilising agent must be run in addition to the treatment series.
A kezelt sorozatok mellett egy hígítóvizes kontrollcsoport-sorozatot és – adott esetben – egy, az oldószert tartalmazó kontrollcsoport-sorozatot kell beállítani.
Test concentrations
Vizsgálati koncentrációk
A range-finding test may be conducted to determine the range of concentrations for the definitive test unless information on toxicity of the test substance is available.
A végleges vizsgálat koncentrációtartományának meghatározására behatároló vizsgálat végezhető, hacsak rendelkezésre nem állnak a vizsgálati anyag toxicitásra vonatkozó információk.
For this purpose, the daphnids are exposed to a series of widely spaced concentrations of the test substance.
E célból a Daphniákat a vizsgálati anyag szélesen változó koncentrációinak teszik ki.
Five daphnids should be exposed to each test concentration for 48 hours or less, and no replicates are necessary.
Minden egyes vizsgálati koncentrációnak öt Daphniát kell kitenni, 48 óráig vagy rövidebb ideig, és párhuzamosokra nincs szükség.
The exposure period may be shortened (e.g. 24 hours or less) if data suitable for the purpose of the range-finding test can be obtained in less time.
Az expozíciós idő csökkenthető (pl. 24 óra vagy kevesebb), ha a behatároló vizsgálat céljainak megfelelő adatok rövidebb idő alatt megszerezhetők.
At least five test concentrations should be used.
Legalább öt vizsgálati koncentrációt használjunk.
They should be arranged in a geometric series with a separation factor preferably not exceeding 2,2.
Ezeket szétválasztási tényezővel mértani sorba kell beállítani, lehetőség szerint nem meghaladva a 2,2 értéket.
Justification should be provided if fewer than five concentrations are used.
Ötnél kevesebb vizsgálati koncentráció használatát indokolni kell.
The highest concentration tested should preferably result in 100 % immobilisation, and the lowest concentration tested should preferably give no observable effect.
A legmagasabb vizsgált koncentráció eredményezzen lehetőleg 100 százalékos immobilizációt, a legalacsonyabb vizsgált koncentráció pedig lehetőleg ne okozzon megfigyelhető hatást.
The temperature should be within the range of 18 oC and 22 oC, and for each single test it should be constant within ± 1 oC.
A hőmérséklet legyen 18 oC és 22 oC közötti tartományban, és minden egyes vizsgálatnál ± 1 oC eltéréssel legyen állandó.
A 16-hour light and eight-hour dark cycle is recommended.
16 órás világos, és 8 órás sötét ciklus javasolt.
Complete darkness is also acceptable, especially for the test substances unstable in light.
A teljes sötétség is elfogadható, főleg fényben instabil vizsgálati anyagok esetében.
The test vessels must not be aerated during the test.
A vizsgálati edényeket tilos a vizsgálat során levegőztetni.
The test is carried out without adjustment of pH.
A vizsgálatot a pH-érték módosítása nélkül kell végezni.
The daphnids should not be fed during the test.
A Daphniákat a vizsgálat alatt nem szabad etetni.
The test duration is 48 hours.
A vizsgálat időtartama 48 óra.
Each test vessel should be checked for immobilised daphnids at 24 and 48 hours after the beginning of the test (see Section 1.2 for definitions).
24 és 48 órával a vizsgálat megkezdését követően minden vizsgálati tartályban ellenőrizni kell a mozgásképtelen Daphniákat (lásd az 1.2. szakaszt a meghatározásokról).
In addition to immobility, any abnormal behaviour or appearance should be reported.
A mozgásképtelenség mellett minden rendellenes viselkedésről vagy jelenségről be kell számolni.
Analytical measurements
Analitikai mérések
The dissolved oxygen and pH are measured at the beginning and end of the test in the control(s) and in the highest test substance concentration.
A vizsgálat kezdetekor és a végén a kontroll(ok)ban és a vizsgálati anyag legnagyobb koncentrációjában mérni kell az oldott oxigén koncentrációját és a pH-értéket.
The dissolved oxygen concentration in controls should be in compliance with the validity criterion (see Section 1.6).
A kontrollokban az oldott oxigén koncentrációja feleljen meg az érvényességi kritériumnak (lásd az 1.6. szakaszt).
The pH should normally not vary by more than 1,5 units in any one test.
A pH-értéknek rendes körülmények között egyik vizsgálatban sem szabad 1,5 egységet meghaladó mértékben változnia.
The temperature is usually measured in control vessels or in ambient air and it should be recorded preferably continuously during the test or, as a minimum, at the beginning and end of the test.
A hőmérsékletet rendszerint kontrolltartályokban vagy környezeti levegőben mérik, és a vizsgálat során lehetőleg folyamatosan rögzíteni kell, de legalább a vizsgálat kezdetekor és végén.
The concentration of the test substance should be measured, as a minimum, at the highest and lowest test concentration, at the beginning and end of the test (4).
A vizsgálati anyag koncentrációját legalább a legnagyobb és legkisebb vizsgálati koncentrációnál kell mérni a vizsgálat kezdetekor és végén (4).
It is recommended that results be based on measured concentrations.
Az eredményeket célszerű a ténylegesen mért koncentrációértékekre alapozni.
However, if evidence is available to demonstrate that the concentration of the test substance has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, then the results can be based on nominal or measured initial values.
Ugyanakkor, ha megfelelő bizonyíték áll rendelkezésre arra vonatkozóan, hogy a vizsgált anyag koncentrációját a vizsgálat során sikerült mindvégig a névleges vagy kiindulási koncentráció ± 20 %-os sávján belül tartani, akkor az eredményeket a névleges vagy a mért kiindulási értékekre is lehet alapozni.
LIMIT TEST
HATÁRÉRTÉK-VIZSGÁLAT
Using the procedures described in this Method, a limit test may be performed at 100 mg/l of test substance or up to its limit of solubility in the test medium (whichever is the lower) in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Az e módszerben leírt eljárások segítségével 100 mg/l vizsgálati anyaggal vagy a vizsgálati közegben való oldhatósági határig (amelyik alacsonyabb) határérték-vizsgálat hajtható végre annak bizonyítására, hogy az EC50 nagyobb, mint e koncentráció.
The limit test should be performed using 20 daphnids (preferably divided into four groups of five), with the same number in the control(s).
A határérték-vizsgálatot 20 Daphnia használatával (lehetőleg négy darab ötös csoportra osztva) kell végrehajtani úgy, hogy a kontrollcsoportban lévő állatok száma ezzel azonos legyen.