natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Use 10 test plants of a susceptible tomato cultivar (e.g. Moneymaker or cultivar with equivalent susceptibility as determined by the testing laboratory) at the third true leaf stage for each sample.
Használjunk minden mintához 10 tesztnövényt egy fogékony paradicsomfajtából (pl. a »Moneymaker«-ből vagy azzal azonos fogékonyságú, a vizsgálati laboratórium által meghatározott fajtát) három valódi leveles állapotukban.
Symptoms have been show to be less severe and to develop more slowly in eggplant.
A tünetek enyhébbnek mutatkoztak, és lassabban jelentek meg a padlizsánnál.
Where possible, it is therefore recommended to use tomato seedlings.
Ezért – amennyiben lehetséges – használjunk paradicsompalántákat.
Distribute 100 µl of sample extract between the test plants.
Osszunk el 100 µl mintakivonatot a tesztnövények között.
Inoculate the plant stems just above the cotyledons using a syringe fitted with a hypodermic needle (not less than 23G).
Oltsuk be a növények szárát közvetlenül a sziklevelek felett injekciós tűvel ellátott fecskendővel (legalább 23G).
Distribute the sample between the test plants.
Osszuk el a mintát a tesztnövények között.
Holding the plant between two fingers, pipette a drop (approximately 5 - 10 µl) of the suspended pellet on the stem between the cotyledons and the first leaf.
Két ujjunk között tartva a növényt, pipettázzunk egy csepp (mintegy 5–10 µl) szuszpendált pelletet a szárra a sziklevelek és az első levél közé.
Using a sterile scalpel, make a diagonal slit, about 1.0 cm long and approximately 2/3 of the stem thickness deep, starting the cut from the pellet drop.
Steril szikével ejtsünk átlós bemetszést, amely mintegy 1,0 cm hosszú és a mélysége körülbelül a szárvastagság 2/3-a, a vágás a pelletcsepptől induljon.
Inoculate by the same technique, five seedlings with an aqueous suspension of 105 to 106 cells per ml prepared from a 48 hr culture of a virulent biovar 2 strain of R. solanacearum as a positive control and with pellet buffer (Appendix 4) as negative control.
Oltsunk be ugyanezzel a technikával 5 palántát egy virulens, 2. biovariánsba tartozó R. solanacearum törzs 48 órás tenyészetéből készített, 105–106/ml sejtet tartalmazó vizes szuszpenzióval, mint pozitív kontrollal, valamint pellet-pufferrel (4. függelék), mint negatív kontrollal.
Separate positive and negative control plants from the other plants to avoid cross-contamination.
Különítsük el a pozitív és a negatív kontrollnövényeket a többi növénytől a keresztbe fertőződés elkerülése érdekében.
Grow the test plants in quarantine facilities for up to four weeks at 25 to 30 °C and high relative humidity with appropriate watering to prevent waterlogging or wilting through water deficiency.
Neveljük a tesztnövényeket növény-egészségügyi zárlati létesítményekben egészen 4 héten keresztül 25–30 °C-on és magas relatív páratartalom mellett, valamint a megfelelő öntözés biztosításával, hogy megelőzzük a vízzel való átitatódást, vagy a vízhiány okozta hervadást.
To avoid contamination incubate positive control and negative control plants on clearly separated benches in a glasshouse or growth chamber or, in case space is limited, ensure strict separation between treatments.
A fertőzések elkerülése érdekében inkubáljuk a pozitív és a negatív kontrollnövényeket jól elkülönített padokon, üvegházban vagy nevelőkamrában, abban az esetben, ha a tér korlátozott, biztosítani kell a kezelések közötti szigorú elkülönítést.
Observe for symptoms of wilting, epinasty, chlorosis and/or stunting.
Figyeljük meg a hervadás, az epinasztia, a klorózis és/vagy satnyulás tüneteit.
Isolate from infected plants (Section II.3.) and identify purified cultures of presumptive R. solanacearum (Section VI.B.).
Izoláljunk a fertőzött növényekből (II.3. szakasz), és azonosítsuk a vélelmezett R. solanacearum tisztított tenyészeteit (VI.B. szakasz).
If no symptoms are observed after three weeks perform IF/PCR/Isolation on a composite sample of 1 cm stem sections of each test plant taken above the inoculation site.
Ha 3 hét után nem figyelhetők meg tünetek, akkor végezzünk IF/PCR/Izolálási vizsgálatot az egyes tesztnövények szárának a beoltás helye feletti részéről vett 1 cm-es darabokból álló összetett mintán.
If the test is positive perform dilution plating (section 4.1).
Ha a vizsgálat pozitív, végezzünk hígításos lemeztenyésztést (4.1. szakasz).
Identify any purified cultures of presumptive R. solanacearum (Section VI.B.).
Azonosítsuk a vélelmezett R. solanacearum tisztított tenyészeteit (VI.B. szakasz).
Interpretation of the bioassay test results
A biológiai vizsgálat eredményeinek kiértékelése
Valid Bioassay test results are obtained when plants of the positive control show typical symptoms, the bacteria can be reisolated from these plants and no symptoms are found on the negative controls.
Érvényes biológiai vizsgálati eredményeket akkor kapunk, ha a pozitív kontrollnövények jellemző tüneteket mutatnak, a baktériumokat újra lehet izolálni ezekről a növényekről, és a negatív kontrollokon nem találhatók tünetek.
The bioassay test is negative if test plants are not infected by R. solanacearum, and provided that R. solanacearum is detected in positive controls.
A biológiai vizsgálat negatív, ha a tesztnövények nem fertőzöttek R. solanacearum-mal, és feltéve, hogy az R. solanacearum kimutatható a pozitív kontrollokban.
The bioassay test is positive if the test plants are infected by R. solanacearum.
A biológiai vizsgálat pozitív, ha a tesztnövények fertőzöttek R. solanacearum-mal.
IDENTIFICATION TESTS
Azonosítási vizsgálatok
Identify pure cultures of presumptive R. solanacearum isolates using at least two of the following tests based on different biological principles.
Azonosítsuk a vélelmezett R. solanacearum izolátumok tiszta tenyészeteit a következő – eltérő biológiai elveken alapuló – vizsgálatok közül legalább kettő alkalmazásával.
Include known reference strains where appropriate for each test performed (see Appendix 3).
Használjunk ismert referenciatörzseket – amennyiben helyénvaló – mindegyik elvégzett vizsgálatnál (lásd a 3. függeléket).
Determine the following phenotypic properties, which are universally present or absent in R. solanacearum, according to the methods of Lelliott and Stead (1987), Klement et al.
Határozzuk meg a következő fenotípusos jellemzőket – amelyek általánosan megfigyelhetők vagy nem találhatók meg az R. solanacearum-nál – Lelliott és Stead (1987), Klement et al.
Fluorescent pigment production
Fluorescens pigment képződés
Poly-ß-hydroxybutyrate inclusions
Poli-β-hidroxibutirát zárványok
Oxidation/fermentation (O/F) test
Oxidációs/Fermentációs (O/F) vizsgálat
Kovac’s oxidase test
Kovács-féle oxidáz vizsgálat
Reduction of nitrate
Nitrát-redukció
Utilisation of citrate
Citrát-hasznosítás
Growth at 40 °C
Szaporodás 40 °C-on
Growth in 1 % NaCl
Szaporodás 1 %-os NaCl-ben
Growth in 2 % NaCl
Szaporodás 2 %-os NaCl-ben
Arginine dihydrolase activity
Arginin-dihidroláz aktivitás
Gelatine liquefaction
Zselatin elfolyósítása
Levan production
Levan-képződés
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in IF buffer (Appendix 4).
Készítsünk hozzávetőleg 106/ml sejtet IF-pufferben tartalmazó szuszpenziót (4. függelék).
Prepare a twofold dilution series of an appropriate antiserum (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Készítsünk kétszeres hígítási sorozatot egy megfelelő antiszérumból (lásd a honlapot: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Apply the IF procedure (Section VI.A.5.).
Alkalmazzuk az IF-eljárást (VI.A.5. szakasz).
A positive IF test is achieved if the IF titre of the culture is equivalent to that of the positive control.
Az IF-teszt pozitív, ha a tenyészet IF titere megegyezik a pozitív kontrolléval.
Note: If performing only 2 identification tests, do not use another serological test in addition to this method.
Megjegyzés: Ha csak 2 azonosítási vizsgálatot végzünk, ne használjunk egy másik szerológiai vizsgálatot e módszeren felül.
Prepare a suspension of approximately 108 cells per ml in 1X PBS (Appendix 4).
Készítsünk hozzávetőleg 108/ml sejtet 1x PBS-ben tartalmazó szuszpenziót (4. függelék).
Perform an appropriate ELISA procedure with a specific monoclonal antibody to R. solanacearum.
Végezzük el a megfelelő ELISA-eljárást R. solanacearum-specifikus monoklonális ellenanyaggal.
A positive ELISA test is achieved if the ELISA reading obtained from the culture is at least half that obtained for the positive control.
Az ELISA-teszt pozitív, ha a tenyészet leolvasásából származó ELISA-eredmény legalább a fele a pozitív kontrollnál kapotténak.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in molecular grade sterile water.
Készítsünk hozzávetőleg 106/ml sejtet molekuláris fokozatú steril vízben tartalmazó szuszpenziót.
Apply appropriate PCR procedures to amplify R. solanacearum-specific amplicons (e.g. Seal et al.
Alkalmazzuk a megfelelő PCR-eljárásokat az R. solanacearum-specifikus fragmentumok felerősítésre (pl. Seal et al.
(1993); Pastrik and Maiss (2000); Pastrik et al.
(1993); Pastrik és Maiss (2000); Pastrik et al.
A positive identification of R. solanacearum is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
Az R. solanacearum pozitív azonosítása megvalósul, ha a PCR-fragmentumok azonos méretűek, és azonos restrikciós fragmentumhossz polimorfizmusokkal rendelkeznek, mint a pozitív kontrolltörzs esetében képződöttek.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in UPW.
Készítsünk hozzávetőleg 106/ml sejtet UPW-ben tartalmazó szuszpenziót.
Apply the FISH procedure (Section VI.A.7.) with at least 2 R. solanacearum-specific oligo-probes (Appendix 7).
Alkalmazzuk a FISH-eljárást (VI.A.7. szakasz) legalább két R. solanacearum-specifikus oligoszondával (7. függelék).
A positive FISH test is achieved if the same reactions are achieved from the culture and the positive control.
A FISH-teszt pozitív, ha ugyanazok a reakciók játszódnak le a tenyészet és a pozitív kontroll esetében.
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 48 hours at 28 °C.
Szaporítsuk a tenyészetet triptikáz szója agaron (Oxoid) 48 órán át 28 °C-on.
Apply an appropriate FAP procedure (Janse, 1991; Stead, 1992).
Alkalmazzuk a megfelelő FAP-eljárást (Janse, 1991; Stead, 1992).
A positive FAP test is achieved if the profile of the presumptive culture is identical to that of the positive control.
A FAP-vizsgálat pozitív, ha a vélelmezett tenyészet profilja megegyezik a pozitív kontrolléval.
The presence of characteristic fatty acids are 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH and 18:1 2OH and absence of 16:0 3OH is highly indicative of a Ralstonia sp.
A jellegzetes 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH és 18:1 2OH zsírsavak jelenléte, valamint a 16:0 3OH zsírsav hiánya erőteljesen Ralstonia sp. fajra utal.
Strain characterisation using one of the following methods is recommended for each new case of isolation of R. solanacearum.
A törzsnek a következő módszerek egyikével elvégzett jellemzése ajánlott az R. solanacearum izolálásának minden új eseténél.
Include known reference strains where appropriate for each test performed (see Appendix 3).
Használjunk ismert referenciatörzseket – amennyiben helyénvaló – minden elvégzett vizsgálatnál (lásd a 3. függeléket).
solanacearum is separated into biovars on the basis of the ability to utilise and/or oxidise three disaccharides and three hexose alcohols (Hayward, 1964 and Hayward et al., 1990).
Az R. solanacearum-ot több biovariánsra osztjuk három diszacharid és három hexóz alkohol hasznosításának és/vagy oxidálásának képessége alapján (Hayward, 1964 és Hayward et al., 1990).
Growth media for the biovar test is described in Appendix 2.
A biovariáns-vizsgálatnál használt növekedési táptalajok leírása a 2. függelékben található.
The test can be successfully performed by stab inoculating the media with pure cultures of R. solanacearum isolates and incubating at 28 °C.
A vizsgálat sikeresen elvégezhető a táptalajnak az R. solanacearum izolátumok tiszta tenyészeteivel történő szúrásos beoltásával, és 28 °C-on történő inkubálásával.
If the media are dispensed into sterile 96 well cell culture plates (200 µl per well) colour change from olive green to yellow can be observed within 72 hours, indicating a positive test result.
Ha a táptalajt szétosztjuk steril, 96 mintahelyes sejttenyészet-lemezekre (200 µl/vájulat), megfigyelhető, hogy a színe olajzöldről sárgára változik 72 órán belül, ami a vizsgálat pozitív eredményét jelzi.
Utilisation of:
Hasznosítás:
D (+) Cellobiose
D (+) Cellobióz
Additional tests differentiate biovar 2 sub-phenotypes
További vizsgálatok a 2. biovariáns alfenotípusainak meghatározására
(Worldwide distribution)
(Világszerte elterjedt)
(Found in Chile and Colombia)
(Chilében és Kolumbiában fordul elő)
(Found in tropical areas)
(A trópusi területeken fordul elő)
Utilisation of trehalose
Trehalóz-hasznosítás
Utilisation of meso-inositol
Mezo-inozitol-hasznosítás
Utilisation of D ribose
D-ribóz-hasznosítás
Pectolytic activity [101]
Pektolitikus aktivitás [101]
low
Alacsony
high
magas
Molecular differentiation of strains in the R. solanacearum complex can be achieved using several techniques, including:
Az R. solanacearum komplexumba tartozó törzsek molekuláris differenciálására több technika áll rendelkezésre, beleértve az alábbiakat:
Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis (Cook et al., 1989).
Restrikciós fragmentumhossz polimorfizmus (RFLP) elemzés (Cook et al., 1989).
Repetitive sequence PCR using REP, BOX and ERIC primers (Louws et al., 1995; Smith et al., 1995).
Repetitív szekvencia PCR-, REP-, boksz- és ERIC-primerek felhasználásával (Louws et al., 1995; Smith et al., 1995).
Amplified fragment length polymorphism (AFLP) analysis (Van der Wolf et al., 1998).
Felerősített fragmentumhossz polimorfizmus (AFLP) elemzés (Van der Wolf et al., 1998).
Specific PCR primers (Pastrik et al, 2002; see Appendix 6) can be used to differentiate strains belonging to division 1 (biovars 3, 4 and 5) and division 2 (biovars 1, 2A and 2T) of R. solanacearum, as originally defined by RFLP analysis (Cook et al., 1989) and 16S rDNA sequencing (Taghavi et al., 1996).
Specifikus PCR-primereket (Pastrik et al, 2002; lásd a 6. függeléket) használhatunk az R. solanacearum 1. csoportjába (3., 4. és 5. biovariáns) és 2. csoportjába (1., 2A és 2T biovariáns) tartozó törzsek differenciálására, amit eredetileg RFLP elemzéssel (Cook et al., 1989) és 16S rDNS szekvenálással (Taghavi et al., 1996) határoztak meg.
CONFIRMATION TEST
MEGERŐSÍTŐ VIZSGÁLAT
The pathogenicity test must be performed as final confirmation of a diagnosis of R. solanacearum and for assessment of virulence of cultures identified as R. solanacearum.
A patogenitás vizsgálatot el kell végezni az R. solanacearum diagnosztizálásának végső megerősítésére, és az R. solanacearum-ként azonosított tenyészetek virulenciájának felmérésére.
Prepare an inoculum of approximately 106 cells per ml from a 24 to 48 hour culture of the isolate to be tested and an appropriate positive control strain of R. solanacearum (e.g. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; see Appendix 3).
Készítsünk a vizsgálandó izolátum 24–48 órás tenyészetéből hozzávetőleg 106/ml sejtet tartalmazó oltóanyagot, és egy R. solanacearum törzsből megfelelő pozitív kontrollt (pl. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; lásd a 3. függeléket).
Inoculate 5 to 10 susceptible tomato or eggplant seedlings at the third true leaf stage (see Section VI.A.9).
Oltsunk be 5–10 fogékony paradicsom- vagy padlizsánpalántát a harmadik valódi leveles állapotukban (lásd a VI.A.9. szakaszt).
Incubate for up to two weeks at 25 to 28 °C and high relative humidity with appropriate watering to avoid waterlogging or drought stress.
Inkubáljuk egészen 2 héten át 25–28 °C-on és magas relatív páratartalom mellett, valamint a megfelelő öntözés biztosításával, hogy megelőzzük a vízzel való átitatódást, vagy a vízhiány okozta stresszt.
With pure cultures typical wilting should be obtained within 14 days.
A tiszta tenyészeteknél a tipikus hervadásnak 14 napon belül be kell következnie.
If after this period symptoms are not present, the culture cannot be confirmed as being a pathogenic form of R. solanacearum.
Ha ezen időszak után a tünetek nincsenek jelen, akkor nem lehet megerősíteni, hogy a tenyészet az R. solanacearum patogén formája.
Observe for symptoms of wilting and/or epinasty, chlorosis and stunting.
Figyeljük meg a hervadás és/vagy az epinasztia, a klorózis és a satnyulás tüneteit.
Isolate from symptomatic plants by removing a section of stem about 2 cm above the inoculation point.
Izoláljunk a tüneteket mutató növényekből a szár egy darabjának a beoltási pont felett mintegy 2 cm-rel történő eltávolításával.
Comminute and suspend in a small volume of sterile distilled water or 50 mM phosphate buffer (Appendix 4).
Zúzzuk össze és szuszpendáljuk kis mennyiségű steril desztillált vízben vagy 50 mM foszfátpufferben (4. függelék).
Isolate from the suspension by dilution spreading or streaking on a suitable medium, preferably onto a selective medium (Appendix 2), incubate for 48 to 72 hours at 28 °C and observe the formation of colonies typical of R. solanacearum.
Izoláljuk a szuszpenzióból bottal vagy kaccsal végzett hígításos szélesztéssel megfelelő táptalajra, lehetőleg szelektív táptalajra (2. függelék), inkubáljuk 48–72 órán át 28 °C-on, és figyeljük meg az R. solanacearum-ra jellemző telepek kialakulását.
See Lelliott and Stead (1987)
Lásd: Lelliott és Stead (1987)
Laboratory [201]
Laboratórium [201]
Location
Település
Vienna and Linz
Bécs és Linz
Contact scientists: see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main.
Kapcsolattartó kutatók: lásd a honlapot: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
General growth media
Általános táptalajok
Nutrient Agar (NA)
Tápagar (NA)
Nutrient Agar (Difco)
Tápagar (Difco)
Distilled water
Desztillált víz
Dissolve ingredients and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 min.
Oldjuk fel az összetevőket, és sterilizáljuk autoklávban 121 °C-on 15 percig.
Yeast Peptone Glucose Agar (YPGA)
Élesztő-pepton-glükóz agar (YPGA)
Yeast extract (Difco)
Élesztőkivonat (Difco)
Bacto-Peptone (Difco)
Bacto-pepton (Difco)
D(+) Glucose (monohydrate)
D(+)-glükóz (monohidrát)
Dissolve ingredients and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes.
Oldjuk fel az összetevőket, és sterilizáljuk autoklávban 121 °C-on 15 percig.
Kelman’s Tetrazolium Medium
Kelman-féle tetrazóliumos táptalaj
Casamino acids (Difco)
Kazaminosavak (Difco)
Cool to 50 °C and add a filter-sterilised solution of 2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride (Sigma) to obtain a final concentration of 50 mg per l.
Hűtsük le 50 °C-ra, és adjunk hozzá 2,3,5-trifenil-tetrazólium-klorid (Sigma) szűréssel sterilizált oldatát, hogy a végkoncentráció 50 mg/l legyen.
Validated selective growth media
Validált szelektív táptalajok
SMSA medium (Englebrecht, 1994 as modified by Elphinstone et al., 1996)
SMSA táptalaj (Englebrecht, 1994; módosítva Elphinstone et al., 1996)
Basal medium
Alap táptalaj
Bacto-Agar (Difco); see Note 2.
Bacto-agar (Difco) (lásd a 2. megjegyzést)
Cool to 50 °C and add filter-sterilised aqueous stock solutions of the following ingredients to obtain the specified final concentrations:
Hűtsük le 50 °C-ra, és adjunk hozzá szűréssel sterilizált vizes törzsoldatokat, melyek az alábbi összetevőkből állnak, hogy megkapjuk a meghatározott végkoncentrációkat:
Crystal Violet (Sigma)
Kristályibolya (Sigma)
1250 U (approximately 25 mg) per l
1250 U (hozzávetőleg 25 mg) literenként
Chloramphenicol (Sigma C-3175)
Klóramfenikol (Sigma C-3175)
825 U (approximately 0,5 mg) per l
825 U (hozzávetőleg 0,5 mg) literenként
2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride (Sigma)
2,3,5-trifenil-tetrazólium-klorid (Sigma)
Use of reagents other than those specified above may affect growth of R. solanacearum.
A fentiekben megadottaktól eltérő reagensek használata befolyásolhatja az R. solanacearum szaporodását.
Oxoid Agar #1 can be used in place of Bacto-Agar (Difco).
Oxoid agar #1 használható Bacto-agar (Difco) helyett.
In this case growth of R. solanacearum will be slower, although growth of competing saprophytes may also be reduced.
Ebben az esetben az R. solanacearum szaporodása lelassul, bár a kompetitív szaprofiták szaporodása ugyancsak lelassulhat.
Typical colonies of R. solanacearum may take 1 to 2 days longer to form and the red colouration may be lighter and more diffuse than on Bacto-Agar.
Az R. solanacearum jellemző telepeinek kialakulása 1–2 nappal tovább tarthat, és a vörös színeződés halványabb és szétterjedtebb lehet, mint a Bacto-agaron.
Increasing bacitracin concentration to 2500 U per l may reduce populations of competing bacteria without affecting growth of Ralstonia solanacearum.
A bacitracin koncentráció 2500 U/l-re növelésével csökkenthetjük a kompetitív baktérium populációkat, a R. solanacearum szaporodásának befolyásolása nélkül.
Store media and stock solutions of antibiotics at 4 °C in the dark and use within one month.
Tároljuk a táptalajokat és az antibiotikumok törzsoldatait 4 °C-on sötétben, és egy hónapon belül használjuk fel azokat.
Plates should be free from surface condensation before use.
A lemezeket meg kell szabadítani a felületi kondenzációtól használat előtt.
Avoid excess drying of plates.
Kerüljük el a lemezek túlzott szárítását.
Quality control should be performed after preparation of each new batch of medium by plating a suspension of a reference culture of R. solanacearum (see Appendix 3) and observing formation of typical colonies after incubation at 28 °C for two to five days.
Minőségellenőrzést kell végezni a táptalajok minden egyes új tételének elkészítése után az R. solanacearum egy referencia tenyészetének (lásd a 3. függeléket) lemeztenyésztése és a jellemző telepek kialakulásának 28 °C-on 2–5 napig végzett inkubálás utáni megfigyelése révén.
Validated enrichment media
Validált dúsítási táptalajok
SMSA Broth (Elphinstone et al., 1996)
SMSA-tápleves(Elphinstone et al., 1996)
Prepare as for SMSA selective agar medium but omit Bacto-Agar and 2,3,5-tetrazolium chloride.
Úgy készítsük, mint az SMSA szelektív agar táptalajt, de hagyjuk ki a Bacto-agart és a 2,3,5-tetrazólium-kloridot.
Modified Wilbrink broth (Caruso et al., 2002)
Módosított Wilbrink-tápleves (Caruso et al., 2002)
Proteose peptone
Proteóz pepton
Sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes and cool to 50 °C
Sterilizáljuk autoklávban 121 °C-on 15 percig, és hűtsük le 50 °C-ra.
Add antibiotic stock solutions as for SMSA broth.
Adjunk hozzá antibiotikum törzsoldatokat, mint az SMSA-táplevesnél.
Bacterial isolates
Baktérium izolátumok
The following bacterial isolates are recommended for use as standard reference material either as positive controls (Table 1) or during optimisation of tests to avoid cross-reactions (Table 2).
A következő baktérium izolátumok, mint standard referenciaanyagok használata ajánlott, akár pozitív kontrollként (1. táblázat), akár a vizsgálatok optimalizálása során a keresztreakciók elkerülése érdekében (2. táblázat).
All strains are commercially available from:
Valamennyi törzs beszerezhető kereskedelmi úton az alábbi forrásokból:
Culture Collection of the Plant Protection Service (PD), Wageningen, the Netherlands.
Culture Collection of the Plant Protection Service (PD), Wageningen, The Netherlands.
Table 1 SMT reference panel of isolates of R. solanacearum
táblázat Az R. solanacearum izolátumainak SMT referencia táblázata
NCPPB code
NCPPB kód
Other codes
Egyéb kódok
Country of origin
Származá-si ország
Note: Authenticity of the above strains can be guaranteed only if obtained from an authentic culture collection.
Megjegyzés: A fenti törzsek hitelessége csak akkor garantálható, ha hiteles baktériumtenyészet-gyűjteményből származnak.
Table 2: SMT reference panel of serologically- or genetically-related bacteria for use in optimisation of detection tests
táblázat: A kimutatási vizsgálatok optimalizálásánál használt, szerológiailag vagy genetikailag rokon baktériumok SMT referencia táblázata
Other code
Egyéb kód
The following standard control material is available from the NCPPB culture collection.
Fagyasszunk le 200 egészséges burgonyagumóból nyert burgonyakivonat-pelletet a vizsgálatokhoz negatív kontroll céljára.