natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Valid Bioassay test results are obtained when plants of the positive control show typical symptoms, the bacteria can be reisolated from these plants and no symptoms are found on the negative controls.
Érvényes biológiai tesztelési vizsgálati eredményeket akkor kapunk, ha a pozitív kontrollnövények jellemző tüneteket mutatnak, a baktériumokat újra lehet izolálni ezekről a növényekről, és a negatív kontrollokon nem találhatók tünetek.
The bioassay test is negative if test plants are not infected by C. m. subsp. sepedonicus, and provided that C. m. subsp. sepedonicus is detected in positive controls.
A biológiai tesztelési vizsgálat negatív, ha a tesztnövények nem fertőzöttek C. m. subsp. sepedonicus-szal, és feltéve, hogy az C. m. subsp. sepedonicus kimutatható a pozitív kontrollokban.
The bioassay test is positive if the test plants are infected by C. m. subsp. sepedonicus.
A biológiai tesztelési vizsgálat pozitív, ha a tesztnövények fertőzöttek C. m. subsp. sepedonicus-szal.
ISOLATION OF C. M. SUBSP.
A C. M. SUBSP.
Diagnosis is only completed if C. m. subsp. sepedonicus is isolated, subsequently identified (see section 9). and confirmed by a pathogenicity test (section 10).
A diagnosztizálás csak akkor fejeződik be, ha a C. m. subsp. sepedonicus izolálásra, majd azonosításra kerül (lásd a 9. szakaszt), amit a patogenitás vizsgálat megerősít (10. szakasz).
Although C. m. subsp. sepedonicus is a fastidious organism, it can be isolated from symptomatic tissue.
Bár a C. m. subsp. sepedonicus válogatós károsító, tüneteket mutató szövetből izolálható.
However, it may be outgrown by rapidly growing saprophytic bacteria and, therefore, isolations directly from the tuber or stem tissue pellet (section 3.1.6 or 3.2.5) is difficult.
Azonban növekedésben lehagyhatják a gyorsan szaporodó szaprofita baktériumok, és ezért izolálása közvetlenül gumó- vagy szárszövet üledékből (3.1.6. vagy 3.2.5. szakasz) nehéz.
With selective medium and appropriate dilution of the resuspended pellet from the heel end cores or stems of potatoes direct isolation of C. m. subsp. sepedonicus may be possible.
Szelektív táptalajon és a köldökrészből vett darabokból vagy a szárdarabokból származó, újraszuszpendált üledék megfelelő hígításával a C. m. subsp. sepedonicus közvetlen izolálása lehetséges lehet.
Isolations shall be made from all symptomatic potato tubers or stem segments and from eggplants were no symptoms are observed but IF/PCR test from the composite sample was positive (see section 7.10).
Az izolálást tüneteket mutató burgonyagumókból vagy szárdarabokból kell elvégezni, valamint tojásgyümölcs-növényekből, ha tünetek nem figyelhetők meg, de az összetett mintán végzett IF-/PCR-vizsgálat pozitív volt (lásd a 7.10. szakaszt).
Maceration of eggplants stems when necessary should be carried out as described in section 3.1.3.
A tojásgyümölcs-növények szárainak macerálását – szükség esetén – a 3.1.3. szakaszban leírtak szerint kell elvégezni.
As positive controls, prepare decimal dilutions from a suspension of 106 cfu per ml of C. m. subsp. sepedonicus (e.g. NCPPB 4053 or PD 406).
Pozitív kontrollként készítsünk tízszeres hígításokat C. m. subsp. sepedonicus 106 cfu/ml-es szuszpenziójából (pl. NCPPB 4053 vagy PD 406).
To avoid any possibility of contamination, prepare positive controls totally separated from samples to be tested.
A fertőzés lehetőségének elkerülése érdekében, a pozitív kontrollokat a vizsgálandó mintáktól teljesen elkülönítve készítsük el.
For each newly prepared batch of a selective medium its suitability for growth of the pathogen should be tested before it is used to test routine samples.
A szelektív táptalaj minden egyes újonnan elkészített tételénél meg kell vizsgálni, hogy az megfelelő-e a kórokozó szaporodása szempontjából, mielőtt a rutin minták vizsgálatánál felhasználásra kerülne.
Selective plating
Szelektív lemeztenyésztés
From a 100 µl aliquot from a resuspended potato pellet sample or eggplant sap make 10-fold dilutions in pellet buffer (Appendix 3).
Újraszuszpendált burgonyakivonat-minta vagy tojásgyümölcs-növény nedv 100 µl-nyi ennyiségéből készítsünk 10-szeres hígításokat üledékpufferben (3. függelék).
Isolation from undiluted potato pellet usually fails due to the fastidious growth habit of Cms and competition by saprophytes.
A hígítatlan burgonyaüledékből végzett izolálás rendszerint sikertelen a Cms nehezen kielégíthető szaporodási szokásai és a szaprofiták által okozott verseny következtében.
Since the bacterium is usually present in high populations in infected tissues, the saprophytes can usually be diluted out, whilst the pathogen remains.
Mivel a baktérium általában népes populációkban van jelen a fertőzött szövetekben, a szaprofitákat általában ki lehet hígítani, miközben a patogén megmarad.
It is therefore recommended to spread 100 µl from each of the samples, 1/100 up to 1/10000 dilutions onto MTNA medium or NCP-88 medium (Appendix 5) (if using 90 mm diameter petri dishes- adjust volume for alternative dish sizes), using spreaders (hockey sticks) and the spread plate technique.
Ezért ajánlatos 100 µl-t széleszteni mindegyik mintából, 1/100-astól egészen 1/10000-es hígításig MTNA táptalajra vagy NCP-88 táptalajra (5. függelék) (ha 90 mm átmérőjű Petri-csészéket használunk, akkor igazítsuk hozzá a térfogatot az alternatív csészemérethez), szélesztőbot (jéghokibot) és szélesztéses lemeztenyésztési technika felhasználásával.
An alternative strategy is to spread out the initial 100 µl potato pellet aliquot onto a first agar plate with a spreader and then remove the spreader to a second agar plate, streaking out any residue left on the spreader; finally repeat this with a third plate, thus giving a dilution plating effect via the spreader.
Alternatív stratégiát az jelent, ha a burgonyaüledék kezdeti 100 µl aliquot térfogatát szélesztjük az első agarlemezre a szélesztőkengyellel, majd a szélesztőkengyelt továbbvisszük a második agarlemezre, ahol szétkenjük a kengyelen maradt maradékot; végül ugyanezt megismételjük a harmadik lemezzel, így a hígításos lemeztenyésztésnek megfelelő hatást érünk el a szélesztőkengyellel.
Incubate plates in the dark at 21 to 23 °C.
Inkubáljuk a lemezeket sötétben 21–23 °C-on.
Initial examinations of the plates including, by reference to the control plates, counts of any C. m. subsp. sepedonicus like colonies are made after 3 days, with further counts after 5, 7, eventually 10 days.
A lemezek első vizsgálataira, beleértve – a kontroll-lemezekhez való viszonyítással – a C. m. subsp. sepedonicus-szerű telepek megszámolását, 3 nap után kerül sor, amit további számolás követ 5, 7, és végül 10 nap után.
Purification of suspicious colonies
A gyanús telepek tisztítása
Subculturing of C. m. subsp. sepedonicus-like colonies should be carried out onto YGM media for eggplant inoculation and/or subsequent identification; this should be done before the plates become too overgrown i.e. preferably after three to five days.
A C. m. subsp. sepedonicus-szerű telepek szubkultúráit YGM táptalajon kell létrehozni a tojásgyümölcs-növények beoltásához és/vagy a későbbi azonosításhoz; ezt a lemezek túlzott túlszaporodottá válása előtt kell elvégezni, vagyis lehetőleg 3–5 nap után.
Streak C. m. subsp. sepedonicus –like colonies on to one of the following media: (formulae are given in Appendix 5):
Szélesszük kaccsal a C. m. subsp. sepedonicus-szerű telepeket a következő táptalajok egyikére: (összetételüket lásd az 5. függelékben):
nutrient dextrose agar (for use in subculturing only),
dextróz-tápagar (kizárólag a szubkultúránál történő felhasználásra),
yeast peptone glucose agar,
élesztő-pepton-glükóz agar,
yeast extract mineral salts agar.
élesztőkivonat-ásványi só agar.
Incubate at 21 °C to 24 °C for up to 10 days.
Inkubáljuk 21–24 °C-on 10 napig.
subsp. sepedonicus is slow-growing, usually producing pin-point, cream, domed colonies within 10 days.
A C. m. subsp. sepedonicus lassan szaporodik, általában 10 napon belül hozza létre gombostűfejnyi, krémszínű, domború telepeit.
Photos of typical colonies of C. m. subsp. sepedonicus (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
(A C. m. subsp. sepedonicus jellegzetes telepeinek fényképei megtalálhatók a honlapon: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Re-streak to establish purity.
Újraszélesztés kaccsal a tisztaság elérése céljából
Growth rates are improved with subculture.
A szubkultúrával javul a szaporodási ráta.
Typical colonies are creamy-white or ivory, occasionally yellow, rounded, smooth, raised, convex-domed, mucoid-fluidal, with entire edges and usually 1 to 3 mm in diameter.
A jellegzetes telepek krémfehérek vagy elefántcsontszínűek, alkalmanként sárgák, kerekek, simák, kiemelkedők, konvex domborúak, nyálkás-folyósak, ép szélekkel és az átmérőjük rendszerint 1–3 mm.
A simple Gram stain (Appendix 9) may help to select colonies for further testing.
Egy egyszerű Gram-festés (9. függelék) segíthet a telepek kiválasztásában a további vizsgálathoz.
Identify presumptive cultures (see section 9) and perform a pathogenicity test (see section 10).
Azonosítsuk a vélelmezett tenyészeteket (lásd a 9. szakaszt), és végezzük el a patogenitás vizsgálatot (lásd a 10. szakaszt).
IDENTIFICATION
AZONOSÍTÁS
Identify pure cultures of presumptive C. m. subsp. sepedonicus isolates using at least two of the following tests based on different biological principles.
Azonosítsuk a vélelmezett C. m. subsp. sepedonicus izolátumok tiszta tenyészeteit az alábbiak közül legalább két – eltérő biológiai elveken alapuló – vizsgálat felhasználásával.
Include known reference strains where appropriate for each test performed.
Használjunk ismert referencia törzseket – amennyiben helyénvaló – mindegyik elvégzett vizsgálatnál.
Nutritional and enzymatic identification tests
Tápanyaghasznosítási és enzimes azonosítási vizsgálat
Determine the following phenotypic properties which are universally present or absent in C. m. subsp. sepedonicus, according to the methods of Lelliott and Stead (1987), Klement et al.
Határozzuk meg a következő fenotípusos jellemzőket – amelyek általánosan megfigyelhetők vagy nem találhatók meg a C. m. subsp. sepedonicus-nál – Lelliott és Stead (1987), Klement et al.
(1990), Schaad (2001), Anonymous (1987).
(1990), Schaad (2001), Anonymous (1987) módszerei szerint.
All media should be incubated at 21 °C and examined after six days.
Valamennyi táptalajt inkubálni kell 21 °C-on, és meg kell vizsgálni hat nap elteltével.
If no growth has occurred, incubate for up to 20 days.
Ha nincs növekedés, akkor inkubáljuk 20 napon át.
All tests must include a known C. m. subsp.sepedonicus control.
Minden vizsgálatba be kell vonni egy ismert C. m. subsp. sepedonicus kontrollt.
Nutritional and physiological tests must be made using inocula from nutrient agar subcultures.
A tápanyaghasznosítási és az élettani vizsgálatokat a tápagar szubkultúrákból vett inokulumok felhasználásával kell elvégezni.
Morphological comparisons must be made from nutrient dextrose agar cultures.
Morfológiai összehasonlításokat kell végezni a dextróz-tápagar tenyészetekből.
Tests
Vizsgálat
Expected result
Várható eredmény
Oxidation/Fermentation (O/F) test
Oxidációs/Fermentációs (O/F) vizsgálat
Inert or weakly oxidative
Inaktív vagy gyengén oxidatív
Oxidase activity
Oxidáz-aktivitás
Growth at 37 °C
Szaporodás 37 °C-on
Urease activity
Ureáz-aktivitás
Aesculin hydrolysis
Eszkulin-hidrolízis
Starch hydrolysis
Keményítő-hidrolízis
or weak
vagy gyenge
Tolerance of 7 % NaCl
7 %-os NaCl tolerancia
Indole production
Indolképződés
Catalase activity
Kataláz-aktivitás
production
H2S-képződés
Citrate utilization
Citrát-hasznosítás
Gelatin liquefaction
Zselatin elfolyósítása
Acid glycerol
Savképződés glicerinből
Acid from lactose
Savképződés laktózból
Acid from rhamnose
Savképződés ramnózból
Acid from salicin
Savképződés szalicinből
Gram stain (Appendix 9)
Gram-festés (9. függelék)
IF-test
IF-teszt
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in IF buffer (Appendix 3).
Készítsünk egy szuszpenziót, amely hozzávetőleg 106/ml sejtet tartalmaz IF-pufferben (3. függelék).
Prepare a 2-fold dilution series of an appropriate antiserum.
Készítsük el a megfelelő antiszérum kétszeres hígítási sorozatát.
Apply the IF procedure (section 4).
Végezzük el az IF eljárást (4. szakasz).
A positive IF test is achieved if the IF titre of the culture is equivalent to that of the positive control.
Az IF-teszt pozitív, ha a tenyészet IF-titere egyenlő a pozitív kontrolléval.
PCR test
PCR-teszt
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in ultra pure water (UPW).
Készítsünk hozzávetőleg 106/ml sejtet ultra tiszta vízben (UPW) tartalmazó szuszpenziót.
Heat 100 µl of the cell suspension in closed tubes in a heating block or boiling waterbath at 100 °C for four minutes.
Hevítsünk 100 µl sejtszuszpenziót lezárt csövekben hevítő blokkban vagy forrásban lévő vízfürdőben 100 °C-on 4 percig.
Apply appropriate PCR procedures to amplify C. m. subsp. sepedonicus specific amplicons (e. g. Pastrik, 2000; see Appendix 4; Li and de Boer, 1995; Mills et al., 1997; Pastrik and Rainey, 1999; Schaad et al., 1999.
Alkalmazzuk a megfelelő PCR-eljárásokat a C. m. subsp. sepedonicus-specifikus fragmentumok felszaporítására (pl. Pastrik, 2000; lásd a 4. függeléket; Li és de Boer, 1995; Mills et al., 1997; Pastrik és Rainey, 1999; Schaad et al., 1999).
A positive identification of C. m. subsp.sepedonicus is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
A C. m. subsp. sepedonicus pozitív azonosítása megvalósul, ha a PCR fragmentumok azonos méretűek, és azonos restrikciós fragmentumhossz polimorfizmusokkal rendelkeznek, mint a pozitív kontrolltörzs esetében képződöttek.
FISH test
FISH-teszt
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in UPW.
Készítsünk egy szuszpenziót, amely hozzávetőleg 106/ml sejtet tartalmaz UPW-ben.
Apply the FISH procedure (section 5).
Végezzük el a FISH-eljárást (5. szakasz).
A positive FISH test is achieved if the same reactions are achieved from the culture and the positive control.
A FISH-teszt pozitív, ha ugyanazokat a reakciókat kapjuk a tenyészetnél és a pozitív kontrollnál.
Fatty acid profiling (FAP)
Zsírsav meghatározás (FAP)
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 72 hours at 21 °C (+/– 1°).
Szaporítsuk a tenyészetet triptikáz-szója agaron (Oxoid) 72 órán át 21 °C-on (+/– 1°).
Apply an appropriate FAP procedure (Janse, 1991; Stead, 1992).
Alkalmazzuk a megfelelő FAP eljárást (Janse, 1991; Stead, 1992).
A positive FAP test is achieved if the profile of the presumptive culture is identical to that of the positive control.
A FAP vizsgálat pozitív, ha a vélelmezett tenyészet profilja megegyezik a pozitív kontrolléval.
The presence of characteristic fatty acids are 15:1 Anteiso A, 15:0 Iso, 15:0 Anteiso, 16:0 Iso, 16:0 and 17:0 Anteiso is highly indicative of C. m. sepedonicus.
A jellegzetes zsírsavak jelenléte, azaz 15:1 Anteiso A, 15:0 Iso, 15:0 Anteiso, 16:0 Iso, 16:0 és 17:0 Anteiso, erőteljesen a C. m. sepedonicus-ra utal.
Other genera such as Curtobacterium, Arthrobacter and Micrococcus also have some of these acids but 15:1 Anteiso A is a rare acid in these bacteria but occurs in all Clavibacter spp. at between 1 to 5 %.
Más nemzetségek, mint például a Curtobacterium, az Arthrobacter és a Micrococcus, szintén rendelkeznek ezen savak némelyikével, de a 15:1 Anteiso A ritka ezekben a baktériumokban, viszont minden Clavibacter fajban megtalálható 1–5 %-ban.
In C. m. sepedonicus the value is usually around 5 %.
A C. m. sepedonicus esetében ez az érték általában 5 % körüli.
Apply the test according the procedure (Smith et al., 2001).
Végezzük el a vizsgálatot az eljárás szerint (Smith et al., 2001).
CONFIRMATION TEST
MEGERőSÍTő VIZSGÁLAT
The pathogenicity test must be performed as final confirmation of a diagnosis of C. m. subsp. sepedonicus and for assessment of virulence of cultures identified as C. m. subsp. sepedonicus:
A patogenitás vizsgálatot el kell végezni a C. m. subsp. sepedonicus diagnosztizálásának végső megerősítésére, és a C. m. subsp. Sepedonicus-ként azonosított tenyészetek virulenciájának felmérésére.
Prepare an inoculum of approximately 106 cells per ml from three day cultures of the isolate to be tested and an appropriate positive control strain of C. m. subsp. sepedonicus.
Készítsünk a vizsgálandó izolátum 3 napos tenyészetéből hozzávetőleg 106/ml sejtet tartalmazó oltóanyagot, és egy C. m. subsp. sepedonicus törzsből megfelelő pozitív kontrollt.
Inoculate 5 to 10 eggplant stems of young seedlings at leaf stage 3 (section 7.3 or 7.4).
Oltsuk be 5–10 fiatal, 3 leveles korban lévő tojásgyümölcs-palánta szárát (7.3. vagy 7.4. szakasz).
Incubate at 18 to 24 °C with sufficient light and high relative humidity with appropriate watering to avoid waterlogging or drought stress (section 7.7).
Inkubáljuk 18–24 °C-on elegendő fény és magas relatív páratartalom mellett, valamint a megfelelő öntözés biztosításával, hogy megelőzzük a vízzel való átitatódást, vagy a szárazság okozta stresszt (7.7. szakasz).
With pure cultures, typical wilting should be obtained within two weeks but plants not showing symptoms (see section 7.8) after this time should be incubated up to three weeks at temperatures conducive to eggplant growth but not exceeding 25 °C (Appendix 8).
A tiszta tenyészeteknél a tipikus hervadásnak 2 héten belül be kell következnie, de azokat a növényeket, amelyeken nem mutatkoznak tünetek (lásd a 7.8. szakaszt) ezen időszak letelte után, inkubálni kell 3 héten át a tojásgyümölcs növekedését elősegítő hőmérsékleten, amely nem haladhatja meg a 25 °C-ot (8. függelék).
If after three weeks symptoms are not present, the culture cannot be confirmed as being a pathogenic form of C. m. subsp. sepedonicus.
Ha 3 hét után nem mutatkoznak tünetek, akkor nem lehet megerősíteni, hogy a tenyészet a C. m. subsp. sepedonicus patogén formája.
Isolate from symptomatic plants by removing a section of stem 2 cm above the inoculation point.
Izoláljunk a tüneteket mutató növényekből a szár egy darabjának a beoltási pont felett mintegy 2 cm-rel történő eltávolításával.
Comminute and suspend in a small volume of sterile distilled water or 50 mM phosphate buffer (Appendix 3).
Zúzzuk össze és szuszpendáljuk kis mennyiségű steril desztillált vízben vagy 50 mM foszfát-pufferben (3. függelék).
Isolate from the suspension by dilution spreading or streaking onto MTNA and YPGA (Appendix 5), incubate for three to five days at 21 to 23 °C and observe the formation of colonies typical of C. m. subsp. sepedonicus.
Izoláljuk a szuszpenzióból kengyellel vagy kaccsal végzett hígításos szélesztéssel MTNA vagy YPGA táptalajra (5. függelék), inkubáljuk 3–5 napon át 21–23 °C-on, és figyeljük meg a C. m. subsp. sepedonicus-ra jellemző telepek kialakulását.
For each suspected occurrence for which a positive result in the screening test (s) has been identified according to the methods set out in Annex I, and confirmation or refutation by completion of the said methods is awaited, there should be the retention and appropriate conservation of:
A károsító minden olyan gyanított előfordulása esetén, amikor a szűrővizsgálat(ok) során pozitív eredmény került megállapításra az I. mellékletben meghatározott módszereknek megfelelően, és a gyanú az említett módszerek befejezése révén megerősítésre vagy eloszlatásra vár, meg kell őrizni és megfelelően fent kell tartani:
all tubers sampled and, wherever possible, all plants sampled,
az összes gumót és – amennyiben lehetséges – az összes növényt, amelyekből mintát vettünk,
any remaining extract and additional prepared material for the screening test(s), e.g. immunofluorescence slides,
a kivonatok maradékait és a szűrővizsgálat(ok)hoz készített további anyagokat, pl. immunfluoreszcenciás lemezeket,
all relevant documentation,
a teljes vonatkozó dokumentációt,
until the completion of the said methods.
az említett módszerek befejezéséig.
Retention of the tubers will enable variety testing to be undertaken where appropriate.
A gumók megőrzése lehetőséget fog biztosítani a fajtavizsgálat elvégzésére, amennyiben helyénvaló.
In the case of positive confirmation of the organism, there should be retention and appropriate conservation of:
A károsító előfordulásának pozitív megerősítése esetén, meg kell őrizni és megfelelően fent kell tartani:
the material specified in paragraph 1,
az 1. bekezdésben meghatározott anyagokat,
a sample of the infected eggplant material inoculated with the tuber or plant extract,
a gumó- vagy növénykivonattal beoltott, fertőzött tojásgyümölcsből vett mintát,
the isolated culture of the organism,
a károsító izolált tenyészetét,
until at least one month after the notification procedure under Article 5(2).
legalább egy hónapig az 5. cikk (2) bekezdése szerinti bejelentési eljárást követően.
The elements to be considered in the determination of the extent of probable contamination under Article 5(1)(b) shall include:
A feltételezett fertőzés mértékének az 5. cikk (1) bekezdése b) pontja szerinti meghatározásánál a következőket kell figyelembe venni:
tubers or plants grown at a place of production designated as contaminated under Article 5(1)(a),
az 5. cikk (1) bekezdése a) pontja szerint fertőzöttnek minősülő termőhelyen termesztett gumókat vagy növényeket,
place(s) of production with some production link to the tubers or plants, designated as contaminated under Article 5(1)(a), including those sharing production equipment and facilities directly or through a common contractor,
az 5. cikk (1) bekezdése a) pontja szerint fertőzöttnek minősülő gumókkal vagy növényekkel termelési kapcsolatban álló termőhely(ek)et, beleértve azokat, ahol – közvetlenül, vagy közös szolgáltatón keresztül – közösen használnak termelési eszközöket és létesítményeket,
tubers or plants produced in the place(s) of production referred to in the previous indent, or present in such place(s) of production during the period when the tubers or plants designated as contaminated under Article 5(1)(a) were present on the place of production referred to in the first indent,
a gumókat vagy növényeket, amelyeket az előző francia bekezdésben említett termőhelye(ke)n termesztettek, vagy amelyek jelen voltak ilyen termőhelye(ke)n abban az időszakban, amikor az 5. cikk (1) bekezdése a) pontja szerint fertőzöttnek minősülő gumók vagy növények jelen voltak az első francia bekezdésben említett telephelyeken vagy termőhelyen,
premises handling potatoes from the places of production referred to in the above indents,
telephelyeket, ahol a fenti francia bekezdésekben említett termőhelyekről származó burgonyát kezelik,
any machinery, vehicle, vessel, store, or units thereof, and any other objects including packaging material, that may have come into contact with the tubers or plants designated as contaminated under Article 5(1)(a),
mindazokat a gépeket, járműveket, hajókat, raktárakat, vagy azok részeit, valamint minden egyéb tárgyat, beleértve a csomagolóanyagokat is, amelyek érintkezésbe kerülhettek az 5. cikk (1) bekezdése a) pontja szerint fertőzöttnek minősülő gumókkal vagy növényekkel,
any tubers or plants stored in, or in contact with, any of the structures or objects listed in the previous indent, prior to the cleansing and disinfection of such structures and objects,
mindazokat a gumókat vagy növényeket, amelyek az előző francia bekezdésben felsorolt építmények vagy tárgyak bármelyikében tárolásra kerültek, vagy azok bármelyikével érintkezésbe kerültek, ezen építmények és tárgyak tisztítását és fertőtlenítését megelőzően,
as a result of the testing under Article 6, those tubers or plants with a sister or parental clonal relationship to the tubers or plants designated to be contaminated under Article 5(1)(a) and for which, although they may have tested negative for the organism, it appears that contamination is probable through a clonal link.
a 6. cikk szerint elvégzett vizsgálat eredményeként, azokat a gumókat vagy növényeket, amelyek egyenes- vagy oldalági klonális kapcsolatban állnak az 5. cikk (1) bekezdése a) pontja szerint fertőzöttnek minősülő gumókkal vagy növényekkel, és amelyeknél úgy tűnik, hogy – bár a károsító kimutatására irányuló vizsgálat hozhatott negatív eredményt – a fertőzés valószínűsíthető a klonális kapcsolat útján.