natgillin/translations-raw huggingface dataset:
However, where appropriate, sampling can be adapted to other identified periods at local level, during which time the presence of other poultry hosts on a holding might pose a greater risk for disease introduction;
Adott esetben azonban a mintavételt helyi szinten olyan egyéb meghatározott időszakokhoz lehet igazítani, amelyek során a gazdaságban az egyéb baromfi-vírusgazdák jelenléte a betegség behurcolásának fokozott veszélyét jelentheti;
in case a significant number of backyard flocks are present, surveillance could be extended to them;
jelentős számú háztáji állomány jelenléte esetén a felügyeletet rájuk is ki lehet terjeszteni;
Member States that must carry out sampling for Newcastle disease to maintain their status as Newcastle disease non-vaccinating countries in accordance with Commission Decision 94/327/EC [2] may utilise these samples from breeding flocks for the surveillance of H5/H7 antibodies.
azok a tagállamok, amelyeknek a Newcastle-betegségre vonatkozóan mintavételt kell végrehajtaniuk abból a célból, hogy a 94/327/EK bizottsági határozatnak [2] megfelelően továbbra is a Newcastle-betegség ellen oltást nem alkalmazó országnak minősüljenek, felhasználhatják ezeket a tenyészállományból származó mintákat a H5/H7 antitestek felügyeletére.
Number of holdings to be sampled of each poultry category (except turkey, duck and goose holdings)
Az egyes baromfi-kategóriákban mintavétel alá eső gazdaságok száma (a pulyka-, kacsa- és libatartó gazdaságok kivételével)
Number of holdings per poultry category per Member State
Gazdaságok száma/baromfi-kategória/tagállam
Number of holdings to be sampled
A mintavétel alá eső gazdaságok száma
Specific requirements for detection of infections with H5/H7 subtypes of avian influenza in ducks, geese and quail
A H5/H7 altípusú madárinfluenza-fertőzések kacsákban, libákban és fürjekben történő kimutatására vonatkozó különleges követelmények
In case commercial flocks are not present, surveillance could be carried out on backyard flocks.
Amennyiben árubaromfi-állományok nincsenek jelen, a felügyeletet el lehet végezni a háztáji állományokon.
Laboratory tests shall be carried out in accordance with the avian influenza diagnostic manual (Commission Decision 2006/437/EC) laying down the procedures for the confirmation and differential diagnosis of avian influenza (including examination of sera from ducks and geese by haemagglutination-inhibition (HI) test).
A laboratóriumi vizsgálatokat a madárinfluenza megállapítására és differenciáldiagnózisára szolgáló eljárásokat megállapító, madárinfluenzára vonatkozó diagnosztikai kézikönyvvel (2006/437/EK határozat) összhangban kell végezni (beleértve a kacsákból és ludakból gyűjtött szérumok vizsgálatát a hemagglutináció-gátlási (HAG) próbával).
However, if laboratory tests not laid down in the avian influenza diagnostic manual nor described in the OIE Terrestrial Manual are envisaged, Member States shall provide the necessary validation data to the CRL, in parallel to submitting their programme to the Commission for approval.
Ha azonban sem a madárinfluenzára vonatkozó diagnosztikai kézikönyvben, sem pedig az OIE Világ Kézikönyvben nem meghatározott laboratóriumi vizsgálatokat irányoznak elő, a tagállamoknak a programjaik Bizottság számára jóváhagyásra való benyújtásával együtt meg kell adniuk a szükséges érvényesítési adatokat a CRL számára.
All positive serological findings shall be confirmed by the National Laboratories for avian influenza by a haemagglutination-inhibition test, using designated strains supplied by the Community Reference Laboratory for Avian Influenza:
A madárinfluenzát vizsgáló nemzeti laboratóriumok egy hemagglutináció-gátlási próbával megerősítik az összes pozitív szerológiai megállapítást, amelyhez a madárinfluenzát vizsgáló közösségi referencialaboratórium által biztosított kijelölt törzseket használják:
initial test using Ostrich/Denmark/72420/96 (H5N2);
első vizsgálat Strucc/Dánia/72420/96 (H5N2) használatával;
test all positives with Duck/Denmark/64650/03 (H5N7) to eliminate N2 cross reactive antibody.
az összes pozitív minta vizsgálata Kacsa/Dánia/64650/03 (H5N7) alkalmazásával az N2 keresztreagáló antitest kizárására.
initial test using Turkey/England/647/77 (H7N7);
első vizsgálat Pulyka/Anglia/647/77 (H7N7) alkalmazásával;
test all positives with African Starling/983/79 (H7N1) to eliminate N7 cross reactive antibody.
az összes pozitív minta vizsgálata Afrikai seregély/983/79 (H7N1) alkalmazásával az N7 keresztreagáló antitest kizárására.
Guidelines on the implementation of surveillance programmes for avian influenza in wild birds to be carried out in the Member States
A vadon élő madarak madárinfluenzájára vonatkozó tagállami felügyeleti programok végrehajtásával kapcsolatos iránymutatások
Virological surveillance for avian influenza in wild birds aim to identify the risk of introduction of AI viruses (LPAI and HPAI) to domestic poultry by:
A vadon élő madarak madárinfluenzája virológiai felülvizsgálatának az a célja, hogy meghatározza a madárinfluenza-vírusok (LPAI és HPAI) háziasított baromfiba történő behurcolásának kockázatát a következők által:
ensuring early detection of HPAI H5N1 by investigating increased incidence of morbidity and mortality in wild birds, in particular in selected ‘higher risk’ species.
a HPAI H5N1 korai kimutatásának biztosítása a vadon élő madarak, különösen a kiválasztott „magasabb kockázatot” képviselő fajok megbetegedésének és elhullásának gyakoribb előfordulásainak vizsgálatával,
in the event that HPAI H5N1 is detected in wild birds, then surveillance of live and dead wild birds shall be enhanced to determine whether wild birds of other species can act as asymptomatic carriers or ‘bridge species’ (see Part E of this Annex).
amennyiben vadon élő madarakban HPAI H5N1-et mutatnak ki, ezt követően felülvizsgálatot kell végezni élő és elhullott vadon élő madarakon annak meghatározásához, hogy vadon élő madarak más fajai lehetnek-e tünetmentes hordozók, illetve „hídként szolgáló fajok” (lásd e melléklet E. részét),
continuing a ‘baseline’ surveillance of different species of free living migratory birds as part of continuous monitoring of LPAI viruses.
a vadon élő vonuló madarak különböző fajai „alapfelügyeletének” folytatása, az LPAI vírusok folyamatos ellenőrzésének részeként.
Anseriformes (water fowl) and Charadriiformes (shorebirds and gulls) shall be the main sampling targets to assess if they carry LPAI viruses of H5 and H7 subtypes (which would in any case also detect HPAI H5N1 and other HPAI, if present).
A lúdalakúaknak (víziszárnyasok) és a lilealakúaknak (parti madarak és sirályok) kell az elsődleges mintavételi célpontoknak lenniük annak értékeléséhez, hogy hordoznak-e H5 és H7 altípusú LPAI vírusokat (amely mindenképpen kimutatná a HPAI H5N1 és más HPAI vírusokat is, ha jelen vannak).
‘Higher risk species’ must be targeted in particular.
A „magasabb kockázatot” képviselő fajokra különös figyelmet kell összpontosítani.
All results shall be sent to the Community Reference Laboratory for Avian Influenza (CRL) for collation.
Az összes eredményt egyeztetés céljából meg kell küldeni a madárinfluenzát vizsgáló közösségi referencialaboratóriumnak (CRL).
All avian influenza virus isolates of cases in wild birds shall be submitted to the CRL in accordance with Community legislation, unless a derogation according to paragraph 4 of Chapter V under Differential diagnosis in the avian influenza Diagnostic Manual laid down in Decision 2006/437/EC is granted.
A közösségi jogszabályokkal összhangban a vadon élő madarak esetében az összes madárinfluenzavírus-izolátumot át kell adni a CRL-nek, kivéve, ha a 2006/437/EK határozat tárgyát képező, madárinfluenzára vonatkozó diagnosztikai kézikönyv V. fejezete (Differenciáldiagnózis) 4. bekezdésének megfelelően eltérés engedélyezett.
Viruses of H5/H7 subtype shall be submitted without delay and shall be subjected to the standard characterisation tests (nucleotide sequencing/IVPI) according to the said diagnostic manual.
A H5/H7 altípushoz tartozó vírusokat késedelem nélkül át kell adni, és az említett diagnosztikai kézikönyvnek megfelelően standard jellemzési vizsgálatoknak kell alávetni (nukleotidszekvenciálás/IVPI).
Surveillance for avian influenza in wild birds
A madárinfluenza felügyelete a vadon élő madarakban
Design and implementation
Tervezés és végrehajtás
Close cooperation with epidemiologists and ornithologists and the competent authority for nature conservation shall be ensured for designing the surveillance, assisting in species identification and optimising sampling.
A felügyelet tervezése, a fajmeghatározásban való segítségnyújtás és a mintavétel optimalizálása érdekében biztosítani kell a szoros együttműködést az epidemiológusokkal, az ornitológusokkal és a természetvédelemért felelős illetékes hatósággal.
The design of the surveillance shall be adapted to the national situation as regards selection of species to be sampled according to species predominance and bird population sizes.
A felügyelet tervezését a nemzeti körülményekhez kell igazítani a mintavételre szánt fajoknak a predomináns fajok és a madárállomány méretei szerinti kiválasztása tekintetében.
Sampling must consider the seasonality of migration patterns, which may vary in different Member States.
A mintavételnek tekintetbe kell vennie a vonulási minták évszakhoz kötődő jellegzetességeit, amelyek eltérhetnek a különböző tagállamokban.
It shall take into account the behaviour of bird species as regards migratory flyways, main habitats, gregariousness and degree of mixing during migration and the results obtained from previous surveillance during 2003-2006.
Figyelembe kell vennie a madárfajoknak a vonulási útvonalak, a fő élőhelyek, a csoportos közlekedés és a vándorlás során való keveredés mértéke tekintetében való viselkedését, valamint a 2003–2006 közötti előző felügyeletből nyert eredményeket.
In addition, continuous review and feedback will be provided through the AI wild bird surveillance working group who are analysing new data as they become available.
Továbbá folyamatos felülvizsgálatot és visszajelzést fog biztosítani a madárinfluenza vadon élő madarakban való előfordulása felügyeletéért felelős munkacsoport, amely elemzi az új adatokat, amint azok elérhetőek lesznek.
For H5N1 HPAI, all those factors shall be considered in relation to the probability of wild bird exposure to infected poultry and wild birds in outbreak areas and the probability of contact of wild birds with domestic poultry in the poultry husbandry systems in the different Member States.
A H5N1 HPAI vonatkozásában mindezeket a tényezőket tekintetbe kell venni a vadon élő madarak fertőzött baromfira és vadon élő madarakra való expozíciójának valószínűségével kapcsolatosan a kitörési területeken és a vadon élő madarak háziasított baromfival való érintkezésének valószínűségével kapcsolatosan a baromfi-tenyésztési rendszerekben a különböző tagállamokban.
To assess those probabilities, the decision trees and tables in the opinion of EFSA [1], which were drawn up in collaboration with the European Commission's Environment Directorate-General can provide an effective tool for Member States’ local risk assessments to adapt to an evolving situation based on a close collaboration and exchange of views between Member States.Liaisons with bird conservation/watching institutions and ringing stations shall be encouraged.
E valószínűségek értékeléséhez az EFSA véleményében [1] foglalt döntéshozatali ábrák és táblázatok – amelyeket az Európai Bizottság Környezetvédelmi Főigazgatóságával együttműködve dolgoztak ki – hatékony eszközt biztosíthatnak ahhoz, hogy a tagállamok helyi kockázatértékelése a tagállamok közötti szoros együttműködés és véleménycsere révén igazodjon egy kialakuló helyzethez.Ösztönözni kell a madármegőrző/megfigyelő intézményekkel és madárgyűrűző állomásokkal való kapcsolatokat.
Sampling, where appropriate, shall be carried out under the supervision of staff from these groups/stations, by hunters and other ornithologically skilled persons.
A mintavételt adott esetben e csoportok/állomások személyzetének felügyelete alatt, vadászoknak és más, ornitológiai szakismerettel rendelkező személyeknek kell végrehajtani.
Passive surveillance of sick and dead wild birds shall be targeted on:
A beteg és elhullott vadon élő madarak passzív felügyeletének a következőkre kell összpontosulnia:
areas where increased incidence of morbidity and mortality in wild birds occurs;
azokra a területekre, ahol a vadon élő madarak megbetegedése és elhullása gyakrabban fordul elő;
areas close to the sea, lakes and waterways where birds were found dead; and in particular when these areas are in proximity to domestic poultry farms;
a tengerhez, tavakhoz és vízi utakhoz közeli területekre, ahol elhullott madarakat találtak, különösen, ha ezek a területek háziasított baromfigazdaságok közelében vannak;
birds belonging to identified ‘higher risk’ species listed in part D and other wild birds living in close proximity with them.
a D. részben felsorolt, „magasabb kockázatot” jelentőként azonosított fajokhoz tartozó madarak és egyéb vadon élő madarak, amelyek az ő szoros közelségükben élnek.
In addition, investigations of living and dead wild birds in areas where H5N1 cases have been detected shall ideally be targeted on birds:
Továbbá azokon a területeken, ahol H5N1-eseteket mutattak ki, az élő vagy elhullott vadon élő madarak vizsgálata ideális esetben a következő madarakra összpontosul:
wild birds or poultry to possibly identify asymptomatic carriers;
vadon élő madarak vagy baromfi a tünetmentes hordozók lehetséges azonosításához;
in areas epidemiologically linked to these cases;
az ezen esetekhez járványtanilag kapcsolódó területeken élők;
coming possibly in close contact to domestic poultry holdings (Protection zone, surveillance zone and area B), which might function as ‘bridge species’, in particular those that are listed in part E.
a háziasított baromfigazdaságokkal esetlegesen szoros érintkezésbe lépő madarak (védőkörzet, megfigyelési körzet és B. terület), amelyek „hídként szolgáló fajokként” működhetnek, különösen az E. részben felsoroltak.
Active surveillance on living and clinically healthy and/or clinically diseased, injured or hunted [2] birds shall be targeted on:
Élő és klinikailag egészséges és/vagy klinikailag beteg, sérült vagy levadászott [2] madarak aktív felügyeletének a következőkre kell összpontosulnia:
migratory birds belonging to the orders of Anseriformes (water fowl) and Charadriiformes (shorebirds and gulls);
a lúdalakúak (víziszárnyasok) és a lilealakúak (parti madarak és sirályok) rendjébe tartozó vonuló madarak;
at identified areas for concentration and mixing of high number of migratory birds involving different species and in particular when these areas are in proximity to domestic poultry farms;
nagyszámú, különböző fajokat felölelő vonuló madarat összpontosító és összekeverő azonosított területek és különösen, ha ezek a területek háziasított baromfigazdaságok közelében vannak;
a selection of higher risk species [3].
a magasabb fertőzési kockázatot képviselő fajok kiválasztása [3].
Oropharyngeal and cloacal swabs for virological examination shall be taken from apparently healthy free living birds.
Virológiai vizsgálat céljára garat- és kloákakeneteket látszólag egészséges, vadon élő madaraktól kell venni.
If for any reason it is impractical to take cloacal swabs from live birds carefully collected fresh faeces samples may serve as an alternative.
Ha bármilyen oknál fogva nem végrehajtható a vadon élő madarak kloákájából való kenetvétel, alternatív megoldásként gondosan összegyűjtött friss bélsárminta szolgálhat.
However, traceability in case of mixed sites frequented by different bird species must be ensured.
Ugyanakkor a különböző madárfajok által látogatott vegyes telepek esetén biztosítani kell a nyomon követhetőséget.
Cloacal and tracheal/oropharyngeal swabs and/or tissues (namely the brain, heart, lung, trachea, kidney and intestines) from wild birds found dead or shot shall be sampled for virus isolation and molecular detection (PCR).
Elhullott vagy lelőtt vadon élő madarakból kloáka- és légcső-/garatkeneteket és/vagy szöveteket (mégpedig agy-, szív-, tüdő-, légcső-, vese- és bélmintákat) kell gyűjteni vírusizoláció és molekuláris szintű kimutatás (PCR) céljából.
Swabs must be chilled immediately on ice or with frozen gel packs and submitted to the laboratory as quickly as possible.
A kenetmintákat jégen vagy fagyasztott gélcsomagok segítségével azonnal le kell hűteni és a lehető leghamarabb el kell őket juttatni a laboratóriumba.
Samples must not be frozen unless absolutely necessary.
A mintákat csupán végszükséglet esetén szabad mélyhűteni.
If available, swabs must be placed in antibiotic or specific virus transport medium so that they are fully immersed.
Amennyiben rendelkezésre áll, a kenetmintákat antibiotikus vagy különleges vírusszállító eszközbe kell helyezni oly módon, hogy teljesen elmerüljenek.
Placing samples in medium for transportation must be done in addition to chilling and not as an alternative to chilling.
A kenetminták szállítási eszközbe helyezésének a hűtést kiegészítve kell történnie, nem pedig a hűtés alternatívájaként.
In the absence of such medium, swabs must be returned to their casing and submitted dry.
Ilyen eszköz hiányában a kenetmintákat vissza kell helyezni foglalatukba és száraz állapotban kell őket eljuttatni.
If rapid transport within 48 hours to the laboratory (in transport medium at 4° Celsius) is not guaranteed, samples shall be immediately frozen, stored and then transported on dry ice.
Ha nem garantált a laboratóriumba történő 48 órán belüli gyors szállítás (4 °C hőmérsékletű szállítóközegben), a mintákat késedelem nélkül szárazjégben kell lefagyasztani, tárolni, majd szállítani.
Storage and transport of samples may be affected by a variety of factors so the method selected must be fit for purpose.
A minták tárolását és szállítását több tényező is befolyásolhatja, ezért a kiválasztott módszernek a célnak megfelelőnek kell lennie.
Sampling procedures shall be carried out in accordance with the avian influenza diagnostic manual (Commission Decision 2006/437/EC) laying down the procedures for the confirmation and differential diagnostic of avian influenza.
A mintavételi eljárásokat a madárinfluenzára vonatkozó diagnosztikai kézikönyvvel (2006/437/EK határozat) összhangban kell elvégezni, amely meghatározza a madárinfluenza megállapítására és differenciáldiagnózisára vonatkozó eljárásokat.
Laboratory tests shall be carried out in accordance with the avian influenza diagnostic manual (Commission Decision 2006/437/EC) laying down the procedures for the confirmation and differential diagnostic of avian influenza.
A laboratóriumi vizsgálatokat a madárinfluenzára vonatkozó diagnosztikai kézikönyvvel (2006/437/EK határozat) összhangban kell elvégezni, amely meghatározza a madárinfluenza megállapítására és differenciáldiagnózisára alkalmas eljárásokat.
All samples collected in the surveillance for avian influenza in wild birds shall be tested as soon as possible by molecular techniques if available and according to the diagnostic manual (Commission Decision 2006/437/EC).
A vadon élő madarak madárinfluenzájának felügyelete során gyűjtött összes mintát a lehető leghamarabb meg kell vizsgálni molekulatechnikákkal, amennyiben rendelkezésre állnak, és a diagnosztikai kézikönyvvel (2006/437/EK határozat) összhangban.
These tests shall only be carried out in laboratories able to guarantee quality assurance and using methods recognised by the CRL for avian influenza.
Ezeket a vizsgálatokat csak olyan laboratóriumokban lehet elvégezni, amelyek garantálni tudják a minőségbiztosítást, és amelyek a CRL által a madárinfluenza vizsgálatára elismert módszereket alkalmaznak.
In addition, methods used must have produced acceptable results in the most recent comparative ring test of national laboratories.
Továbbá az alkalmazott módszereknek elfogadható eredményeket kell adniuk a nemzeti laboratóriumok legújabb összehasonlító gyűrűpróbáján.
Initial screening using M gene PCR is recommended, with rapid testing of positives for H5 (but within two weeks) and in case of a positive finding analysis of the cleavage site must be undertaken as soon as possible to determine whether or not it has a highly pathogenic avian influenza (HPAI) or a low pathogenic avian influenza (LPAI) motif.
Az M gén PCR-ral való kezdeti vizsgálata ajánlott, H5 pozitívok gyors (de két héten belüli), vizsgálatával, és pozitív eredmény esetén, el kell végezni a hasadási hely leghamarabbi vizsgálatát annak meghatározása céljából, hogy magas patogenitású (HPAI) vagy alacsony patogenitású (LPAI) madárinfluenzát tartalmaz-e.
If H5 HPAI is confirmed further analysis to determine the N type must be done rapidly (even this can only provide evidence eliminating N1).
Amennyiben a H5 HPAI megléte megerősítést nyer, további gyors vizsgálatokat kell végezni az N-típus meghatározása céljából (ez is csak azt képes bebizonyítani, hogy ki lehet zárni az N1-altípus jelenlétét).
At the laboratory, pooling of up to five samples taken from the same species collected at the same site and same time may be permitted when it can be ensured that, in case of a positive finding, the individual samples can be identified and retested.
A laboratóriumban legfeljebb öt, azonos fajból, azonos helyen és időben gyűjtött minta egyesítése engedélyezhető, amennyiben biztosítható, hogy pozitív eredmény esetén az egyes minták azonosíthatók és újra vizsgálhatók.
Serological surveillance shall not be applied for avian influenza investigations in wild birds because serological methods cannot distinguish between HP and LP strains and antibody findings do not allow inference in relation to the likely location where wild birds might have become infected.
Szerológiai felügyeletet nem kell alkalmazni a vadon élő madarak madárinfluenzájának vizsgálataihoz, mert a szerológiai módszerek nem tudnak különbséget tenni a HP és LP törzsek között, és az antitest-eredmények alapján nem lehet következtetni a vadon élő madarak megfertőződésének valószínűsíthető helyére.
However, serological surveillance might be important to study in which resident or migrating bird species H5/H7 viruses are/were prevalent (or endemic).
A szerológiai felügyelet ugyanakkor fontos lehet annak tanulmányozásához, hogy mely fészekülő vagy vonuló madárfajokban vannak/voltak elterjedve H5/H7 vírusok (vagy endémiások).
Such analysis shall only be performed by specialised laboratories using a carefully selected panel of antigens to ensure the detection of haemagglutinin specific antibodies (i.e. to eliminate the possibility of interference from N specific antibodies).
Ilyen vizsgálat csak szakosodott laboratóriumok által végezhető, amelyek gondosan kiválasztott antigéntáblát használnak annak biztosítására, hogy a haemagglutinin-specifikus antitestek kimutatását biztosítsák (pl. az N-specifikus antitestekből való interferencia lehetőségének megszüntetésére).
List of wild bird species presenting a higher risk in relation to avian influenza [4]Common name
A madárinfluenza szempontjából nagyobb kockázatot jelentő vadon élő madárfajok jegyzéke [4]Köznapi Elnevezés
Bewick's Swan
Kis hattyú
Whooper Swan
Énekes hattyú
Mute Swan
Bütykös hattyú
Pink-footed Goose
Rövidcsőrű lúd
Bean Goose
Vetési lúd
Greater White-fronted Goose (European race)
Nagy lilik (Európai faj)
Lesser White-fronted Goose
Kis lilik
Greylag Goose
Nyári lúd
Barnacle Goose
Apácalúd
Brent Goose
Örvös lúd
Red-breasted Goose
Vörösnyakú lúd
Canada Goose
Kanadai lúd
Eurasian Wigeon
Fütyülő réce
Common Teal
Csörgő réce
Northern Pintail
Nyílfarkú réce
Northern Shoveler
Kanalas réce
Marbled Teal
Márványos réce
Red-crested Pochard
Üstökös réce
Common Pochard
Barátréce
Tufted Duck
Kontyos réce
Waders
Gázlómadarak
Northern Lapwing
Bíbic
Eurasian Golden Plover
Aranylile
Black-tailed Godwit
Goda Limosa limosa
Gulls
Sirályok
Black-headed Gull
Dankasirály
Common Gull
Viharsirály
List of birds living in proximity to domestic poultry [5]
Házi baromfi közelében élő madarak jegyzéke [5]
Common name
Köznapi elnevezés
Probability of contact with poultry
Baromfival való érintkezés valószínűsége
Group 1.
csoport.
Species intimately associated with poultry production in Europe
Az európai baromfitenyésztéshez közvetlenül kapcsolódó fajok