natgillin/translations-raw huggingface dataset:
There was also a need to develop a suitable test that would allow the routine monitoring of flocks for anti-neuraminidase antibodies.
Szükség volt olyan megfelelő vizsgálat kifejlesztésére is, amely lehetővé teszi az állományban az anti-neuraminidáz ellenanyagok rutinszerű ellenőrzését.
In Italy an ‘ad hoc’ serological test based on an indirect fluorescent antibody assay, using as an antigen N proteins expressed by baculovirus recombinants was developed and used.
Olaszországban kifejlesztettek és használtak egy indirekt fluoreszcens antitest-próbán alapuló „ad hoc” szerológiai vizsgálatot, amelyhez antigénként rekombináns bakulovírusok által exprimált N fehérjéket alkalmaztak.
That may have wider and easier application when an ELISA test is developed.
E vizsgálatok alkalmazása szélesebb körű és könnyebb lehet, amennyiben ELISA-vizsgálatot is végeznek.
The use of vaccines containing only HA, such as recombinant vector vaccines, allows classical AGID tests or ELISA tests based on nucleoprotein, non-structural protein or matrix proteins to be used to detect infection in vaccinated birds.
A kizárólag HA-t tartalmazó vakcinák (mint például a rekombináns vektor vakcinák) alkalmazása lehetővé teszi a hagyományos AGID vagy ELISA vizsgálatot, amely a beoltott madarak fertőzöttségét a nukleoprotein, a nem strukturális fehérjék vagy a mátrix fehérjék alapján állapítja meg.
For inactivated vaccines, a test that detects antibodies to the non-structural virus protein that are only produced during natural infection has been described.
Az inaktivált vakcinák vonatkozásában olyan vizsgálatot fejlesztettek ki, amely kimutatja a nem strukturális vírusfehérjékkel szemben termelődött olyan ellenanyagokat, amelyek kizárólag a természetes fertőzés során keletkeznek.
Such a system is yet to be validated in the field, but has the limitation that natural infection of a flock with any influenza virus, irrespective of subtype results in the production of antibodies directed against the non-structural protein.
Ezt a rendszert a gyakorlatban még validálni kell, de korlátai ott jelentkeznek, hogy egy állománynak bármely influenzavírussal történő természetes fertőzése (függetlenül a vírus altípusától) a nem strukturális fehérjék ellen irányuló ellenanyagok termelését eredményezi.
The development of rapid and sensitive virus-detection methods, especially those that can be automated, such as real time RT-PCR, means that these could be used for simple widespread and regular testing of vaccinated birds for the presence of field virus.
A gyors, érzékeny és különösen az automatizálható víruskimutató módszerek (mint például a valós idejű RT-PCR) kifejlesztése azt jelentené, hogy ezeket a beoltott madarak egyszerű, széles körű és rendszeres vizsgálatára lehetne használni, a vadvírus kimutatása céljából.
Agent detection, however, will be limited to a short window in the acute phase of the infection and cannot be used to conclude that a flock was not exposed to the virus in the past.
Az adott kórokozó kimutatása ugyanakkor egy rövid ablakperiódusra korlátozódik a fertőzés akut szakaszában, és segítségével nem állapítható meg, hogy az állomány ki volt-e téve a vírusnak egy régebbi időpontban.
This approach is most appropriate to the testing of vaccinated birds prior to movement to demonstrate freedom from active infection.
E megközelítés leginkább a beoltott madarak elszállítás előtti vizsgálatára alkalmas, annak megállapítása érdekében, hogy nem aktívan fertőzöttek-e.
The number of samples to be tested by the systems of choice must enable the exclusion of a prevalence of AI virus infection in a flock of more than 15 % with confidence level of 95 %.
A választott rendszerrel vizsgálandó minták számának a madárinfluenzavírus-fertőzés egy állományban történő előfordulásának több, mint 15 %-át kell 95 %-os megbízhatósági szinten kizárnia.
Strategies in the diagnosis of AI
A madárinfluenza diagnosztizálásának stratégiái
As set out in Annex IV to Directive 2005/94/EC, decisions to apply measures in specific areas or contact holdings and the severity of those measures may vary greatly with the magnitude of the risk.
A 2005/94/EK irányelv IV. mellékletében leírtaknak megfelelően az arra irányuló döntések, hogy különleges területeken vagy kontaktgazdaságokban intézkedések meghozatalára kerüljön sor, illetve ezen intézkedések súlyossága, nagy mértékben függhet a kockázat mértékétől.
Similarly, the required diagnostic confirmation of disease is likely to be balanced against the prevailing situation, the magnitude of the hazard and the degree of risk.
Hasonlóképpen, a betegség diagnózisának kötelező megerősítését is az uralkodó helyzet, a veszély nagysága és a kockázat mértéke befolyásolja.
Veterinary authorities need to make decisions on diagnostic evidence that balance the rapid control and eradication of disease against the potential impact of misdiagnosis.
Az állatorvosi hatóságoknak a diagnosztikai bizonyítékokra támaszkodva olyan döntéseket kell hozniuk, amelyek a rossz diagnózis lehetséges hatásával szemben a betegség gyors megfékezését és felszámolását eredményezik.
Such judgements have to be made against the background of many factors at the time, but certain situations can be predicted.
E döntéseket számos, egy időben jelentkező tényező figyelembevételével kell meghozni, ugyanakkor néhány helyzet előre látható.
Disease situation
Járványügyi helyzet
Potential problem
Lehetséges problémák
Diagnostic criteria
Diagnosztikai kritériumok
Non specific signs, no official suspicion
Nincsenek különleges tünetek, hivatalosan nem merül fel gyanú
Isolated holding
Elszigetelt gazdaság
Carry out rapid detection based on M gene RT-PCR.
Gyors kimutatást kell végezni M génen alapuló RT-PCR vizsgálattal.
Differential diagnosis as required
Adott esetben differenciáldiagnózist kell végezni.
Primary suspected outbreak
Elsődleges járványkitörés gyanúja
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation
Teljes diagnosztikai vizsgálatot, vírusizolálást és -jellemzést kell végezni.
Holding in densely populated poultry area
Nagy baromfisűrűségű területen található gazdaság
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation, but concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
Teljes diagnosztikai vizsgálatot, vírusizolálást és -jellemzést kell végezni; előnyben kell részesíteni a gyors kimutatást, valamint különösen az RT-PCR vizsgálatra és a szekvenciaazonosításra épülő jellemzési módszereket [1].
Second and subsequent suspected outbreaks
Másodlagos és azt követő járványkitörés gyanúja
Isolated holdings, epidemiologically linked to primary suspected outbreak
Járványügyileg elsődleges járványkitörés-gyanús területhez kapcsolódó elszigetelt gazdaság
Concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
Előnyben kell részesíteni a gyors kimutatást, valamint különösen az RT-PCR vizsgálatra és a szekvenciaazonosításra épülő jellemzési módszereket [1].
Holdings in densely populated poultry area or with many epidemiological links
Nagy baromfisűrűségű vagy járványügyileg jelentősen érintett területen található gazdaság
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus [1].
A bármely madárinfluenza-vírus jelenlétét a legkorábban kimutató gyors detektálási módszerekhez kell folyamodni.
Multiple suspected outbreaks or disease spreading rapidly including surveillance
Több járványkitörés gyanúja vagy a betegség gyors terjedése, ideértve a megfigyelést
Spread will become uncontrollable without rapid intervention
Gyors beavatkozás nélkül a terjedés szabályozhatatlanná válik
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus or rely on clinical signs [1].
A bármely madárinfluenza-vírus jelenlétét a legkorábban kimutató gyors módszerekhez vagy a klinikai tünetek értékeléséhez kell folyamodni.
Diagnosis of infection with AI viruses in pigs and other mammals
Madárinfluenza-vírusok okozta fertőzés diagnosztizálása sertésekben és más emlősökben
AI in pigs
Madárinfluenzával fertőzött sertések
AI viruses readily infect pigs and although replication is in most cases relatively restricted, there is a potential that infected pigs could transmit the disease to poultry and other susceptible animals.
A madárinfluenza-vírusok könnyen képesek megfertőzni a sertéseket és bár a vírus replikációja a legtöbb esetben viszonylag korlátozott, a fertőzött sertések átadhatják a betegséget a baromfinak és más, érzékeny állatoknak.
To date, there is no evidence from the field that infected pigs transmit AI viruses of H5 and H7 subtypes.
Jelenlegi ismereteink szerint nincs konkrét bizonyíték arra nézve, hogy a fertőzött sertések átadják a H5 vagy H7 altípusú madárinfluenza-vírust.
Experience gained during the outbreak in the Netherlands in 2003 indicated that H7N7 infected pigs did not show clinical signs that could be attributed to the H7N7-infection.
A 2003-as hollandiai járvány során kiderült, hogy a H7N7 altípusú vírussal fertőzött sertések nem mutatnak a H7N7-fertőzésnek tulajdonítható klinikai tüneteket.
Moreover, apparently no diseased pigs have been reported to date during the H5N1 outbreak in Asia and elsewhere.
Úgy tűnik továbbá, hogy az Ázsiában és máshol jelentkező H5N1-járvány során nem jelentettek be fertőzött sertést.
Therefore, clinical signs may not be relied upon to indicate whether pigs are infected although clinical presentation due to infection of pigs with other influenza viruses of avian origin, can occur once a virus has become adapted to the host.
Ezért nem szabad a klinikai tünetekre hagyatkozni annak megállapításakor, hogy a sertések fertőzöttek-e, noha a sertésekben más madár-influenzavírusok okozta fertőzéskor – a vírusnak a gazdához való adaptációja után – klinikai jelek alakulhatnak ki.
The diagnosis of AI virus infections of pigs is essentially similar to diagnosis for avian species, relying on virus isolation, molecular techniques and detection of specific antibodies using haemagglutination inhibition tests.
A sertések madárinfluenza-vírussal történő fertőzésének diagnózisa lényegében hasonló a madárfajok diagnózisához: a vírusizolálást, a molekuláris vizsgálatokat és a hemagglutináció-gátlási próbával történő specifikus ellenanyagok kimutatását foglalja magában.
There are, however, certain differences and none of the tests are fully validated for the use in pigs to confirm infection with AI viruses.
Léteznek azonban bizonyos különbségek és a sertéseknek a madárinfluenza-vírus okozta fertőzésének bizonyítására egyik vizsgálat sem teljes mértékben jóváhagyott.
Samples for virus isolation
Minták a vírusizoláláshoz
AI virus infections in pigs are usually restricted to the respiratory tract and samples must be respiratory tract tissues and, if appropriate, oropharyngeal or nasal swabs, preferably taken from pigs showing signs of that disease.
A sertések madárinfluenza-vírus okozta fertőzései rendszerint a légzőtraktusra korlátozódnak, így a mintákat a légzőtraktus szöveteiből kell venni. Adott esetben garat- vagy orr-tamponmintát kell venni, lehetőség szerint a betegség tüneteit mutató sertésekből.
These samples and swabs may be processed for virus isolation or molecular detection of virus, using the same techniques described above for samples from birds.
E minták és tamponok a fentebb már ismertetett, madarakból történő mintavételre vonatkozó technikákkal dolgozhatók fel, vírusizolálás és a vírus molekuláris vizsgálattal történő kimutatása céljából.
However, when using PCR techniques, proper controls must be used to ensure that the amplification is not inhibited by substances in the samples from pigs.
A PCR-technikák alkalmazása során azonban megfelelő módon ellenőrizni kell, hogy az amplifikációt ne gátolják a sertésből vett mintákban található anyagok.
Inoculation and incubation of eggs
Tojások beoltása és inkubálása
To isolate mammalian influenza viruses in 9- to 11-day-old embryonated fowls' eggs it is usual practice to inoculate each egg via the allantoic cavity and into the amniotic cavity.
Az emlősök influenzavírusainak izolálása 9–11 napos embrionált tyúktojásban rendszerint úgy történik, hogy valamennyi tojás esetében az allantoisüregen keresztül az amnionüregbe fecskendezünk.
However, when testing pigs in contact with AI viruses, when virus has had little opportunity to adapt, allantoic cavity inoculation is probably sufficient.
A madárinfluenza-vírusokkal érintkezett sertések vizsgálatakor azonban – amennyiben a vírusnak kevés lehetősége volt adaptálódni – valószínűleg az allantoisüreg befecskendezése elégséges lehet.
Similarly, 35 oC is usually recommended for the incubation temperature for isolation of mammalian influenza A viruses, but again for viruses poorly adapted to pigs, 37 oC is not be detrimental to virus isolation.
Hasonlóképpen, az A típusú emlős-influenzavírusok izolálásának javasolt inkubációs hőmérséklete rendszerint 35 °C, de a sertésekhez rosszul adaptálódott vírusok izolálásának a 37 °C-os hőmérséklet sem ártalmas.
Test for specific antibodies in HI tests
Különleges ellenanyagok kimutatása a hemagglutinációs-gátlási próbákban
Virus isolation or molecular detection are likely to be the most sensitive for determining AI virus infections of pigs.
A sertések madárinfluenza-vírusos fertőzése kimutatásának legérzékenyebb módja a vírusizolálás vagy a molekuláris vizsgálattal történő kimutatás.
However, serological responses in pigs have been detected in the absence of virus isolation or detection.
Szerológiai válaszokat is kimutattak azonban a sertésekben anélkül, hogy vírust izoláltak vagy kimutattak volna.
HI tests, using pig sera, require some modifications to the test used for avian sera referred to in Chapter VIII.
A sertésből származó szérumokat használó hemagglutinációs-gátlási próbákat a VIII. fejezetben meghatározott, madárból származó szérumokat felhasználó vizsgálathoz képest néhány módosítással kell elvégezni.
Pig sera are notorious for their property of non-specific inhibition in HI tests and therefore each serum sample must be treated with a receptor destroying enzyme (RDE) to prevent this from occurring.
A sertésekből származó szérum a hemagglutinációs-gátlási próbákban mutatott nem specifikus gátlásáról ismert és ezért ezt megelőzendő, valamennyi szérummintát a receptormegsemmisítő enzimmel (RDE) kell kezelni.
The following method must be used:
A következő módszert kell használni:
To 100 μl of pig antiserum add 400 μl RDE (predetermined working dilution) and mix thoroughly.
100 μl sertésantiszérumhoz 400 μl receptormegsemmisítő enzimet (előzetes hígítás) kell adni és alaposan össze kell őket keverni.
Incubate at 37 oC for one hour.
Egy órán keresztül 37 °C-on kell inkubálni.
Then incubate for 30 minutes at 56 oC.
Ezután 30 perc 56 °C-on történő inkubáció következik.
Cool samples at 4 oC for a minimum of 15 minutes.
A mintákat 4 °C-on 15 percig hűteni kell.
Add 10 μl of 30 % (v/v packed cells) chick red blood cells and mix vigorously.
10 μl 30 %-os csirkevörösvérsejtet (térfogat/térfogat koaguláló sejtek, v/v packed cells) kell hozzáadni és erőteljesen elkeverni.
The treated serum is then used in HI tests as described for avian sera in paragraph [..], the initial dilution is 1:10.
A kezelt szérumot ezután a […] bekezdésben meghatározott, a madárszérumokkal megegyező módszerrel használjuk a hemagglutinációs-gátlási próbához.
A set of sera of pigs with a known sero-negative status regarding AI must be used to assess the specificity of the HI test for the virus strain to be used (see use of virus strain for serology derived from the outbreak; Chapter VIII).
Madárinfluenzával szemben elismerten szeronegatív státuszú sertésszérum-együttessel meg kell állapítani a felhasználandó vírustörzsre vonatkozó hemagglutinációs-gátlási próba specifikusságát (lásd a szerológiai vizsgálatra használt, járványból eredő vírustörzsek felhasználását; VIII. fejezet).
During the outbreak in the Netherlands in 2003 up to 2,6 % non-specific reactors were detected in the HI test using pig sera that were collected independently of the outbreak
A 2003-as hollandiai járvány során a járványtól függetlenül gyűjtött sertésszérumokat alkalmazó hemagglutinációs-gátlási próbában kimutatott nem specifikus reakciók aránya 2,6 %-ig terjedt.
Sampling of pigs
Mintavétel sertésekből
Particularly on farms that keep both pigs and poultry, either mixed or in separate houses, pigs are at risk of becoming infected with AI directly or indirectly via contact with poultry or poultry products.
A sertéseknél fennáll az a veszély, hogy a baromfival vagy baromfitermékekkel történő érintkezés útján közvetlenül vagy közvetetten madárinfluenza-vírussal fertőződnek meg, különösen az olyan gazdaságokban, amelyek sertést és baromfit egyaránt tartanak (azonos vagy különböző ólakban).
To exclude such infection, oropharyngeal or nasal swabs and blood samples must be collected according to the procedures described in point 8.21 of Chapter IV.
E fertőzés kizárása érdekében garat- vagy orr-tamponmintát és vérmintát kell venni, a IV. fejezet 8.21. pontjában ismertetett eljárásokkal összhangban.
Samples must be obtained from pigs that show clinical signs of the disease.
Mintákat a betegség klinikai tüneteit mutató sertésekből kell venni.
However, when they do not show any clinical signs, samples may be collected at random over all sections of the house.
Klinikai tünetek hiányában azonban a minták a gazdaság bármely részén véletlenszerűen kiválasztott sertésekből vehetők.
If available in the laboratory, swabs must be tested in rapid molecular tests and/or virus isolation.
A tamponmintákat gyors molekuláris vizsgálat vagy vírusizolálás alá kell vetni, amennyiben erre lehetőség van a laboratóriumban.
The RT-PCR must have been appropriately validated and have a sensitivity at least equivalent to virus isolation in eggs for influenza A viruses.
Az RT-PCR-t megfelelő módon validálni kell és érzékenységének legalább az A-típusú influenzavírusoknak tojásokban történő vírusizolálálásával megfelelőnek kell lennie.
Two to four weeks after culling of the AI infected poultry, at least 60 blood samples must be collected from pigs in such a way that at least some samples are obtained from groups of pigs that are in direct contact with each other.
2–4 nappal a madárinfluenzával fertőzött baromfi leölése után legalább 60 vérmintát kell a sertésekből venni olyan módon, hogy legalább néhány minta az egymással közvetlen érintkezésben lévő sertések csoportjából származzon.
Samples must be tested in the HI test using virus derived from the poultry outbreak.
A mintákat a baromfijárványból származó vírust felhasználó hemagglutinációs-gátlási próbának kell alávetni.
Samples from both the acute and convalescent phases must be tested in the same test.
Az akut és a konvaleszcens fázisból vett mintákat egyaránt ugyanabban a próbában kell vizsgálni.
Positive samples can be confirmed using virus neutralisation and/or Western blot analyses.
A pozitív mintákat vítusneutralizációval és/vagy Western-Blot analízissel lehet megerősíteni.
When any of those samples test positive, an epidemiological investigation on all pig farms located within the protection zone must be carried out, irrespective whether they are of mixed type or not.
Amennyiben a minták valamelyike pozitív, járványügyi vizsgálatot kell folytatni a védőkörzetben található valamennyi sertéstartó gazdaságban, függetlenül attól, hogy vegyes gazdaságokról van-e szó.
AI viruses in other mammals other than pigs
Madárinfluenza-vírusok a sertésektől eltérő emlősökben
Investigations in other mammals other than pigs which are susceptible to AI including cats must be undertaken.
Meg kell vizsgálni a sertésektől eltérő, a madárinfluenzára hajlamos emlősöket, ideértve a macskát.
With specific reference to HPAI H5N1, the following must be carried out for testing cats:
Különös tekintettel a H5N1 altípusú magas patogenitású madárinfluenza kimutatására, a macskák vizsgálatára a következők vonatkoznak:
Gross pathological lesions, associated with viral replication, concentrate on the lungs and liver, therefore samples for virological investigations must preferably be taken from these organs of dead animals.
Mivel nagy mértékű, vírusreplikációval kísért patológiai elváltozások figyelhetők meg a tüdőn és a májon, a virológiai vizsgálathoz szükséges mintákat lehetőleg az elpusztult állat ezen szerveiből kell venni.
In living animals, preferably tracheal/oropharyngeal swabs must be taken for virus detection.
A vírus kimutatásához az élő állatból lehetőleg légcső-/garat- tamponmintát kell venni.
In addition, faecal swabs can be taken separately.
Ezenkívül bélsárminta is vehető, amelyet elkülönítve kell kezelni.
Blood samples to be examined in HI assays require heat treatment for 56 oC for 30 minutes and RDE treatment can be omitted.
A hemagglutinációs-próbákkal vizsgálandó vérmintákat 30 percig 56 °C-ra fel kell melegíteni; a receptormegsemmisítő enzimes kezelés elhagyható.
Minimum safety requirements for the transport of samples
A minták szállítása során alkalmazandó biztonsági minimumkövetelmények
The transport of samples in which pathogens are known to be present or suspected of being present are the subject of strict national and international regulations that must be adhered to at all times.
A patogén kórokozókat bizonyítottan vagy valószínűsíthetően tartalmazó minták szállítására szigorú nemzeti és nemzetközi szabályok vonatkoznak, amelyeket mindig be kell tartani.
Virus isolates are not classified as diagnostic samples but must be packaged in accordance with international standards.
A vírusizolátumokat nem diagnosztikai mintákként sorolják be, azonban a nemzetközi szabványoknak megfelelően kell őket csomagolni.
The instructions set out in this chapter are for air transport, but similar packaging must be used for land or sea transport of samples.
Az e fejezetben meghatározott előírások a légi szállításra vonatkoznak, de hasonló csomagolási szabályok érvényesek a minták szárazföldi vagy tengeri szállítására.
Packing diagnostic specimens for transport
Diagnosztikai minták szállítási célú csomagolása
Diagnostic specimens transported under the IATA Regulations are assigned to UN identification number 2814, 2900, or 3373, as relevant.
Az IATA-rendeletekkel összhangban szállított diagnosztikai minták az esetnek megfelelően az UN 2814, 2900 vagy 3373 jelzés valamelyikét kapják.
The shipper and not the transport company is responsible for the shipment until the package reaches the consignee.
A szállításért a feladó, nem pedig a szállítást végző vállalat felelős, amíg a csomag a címzetthez nem ér.
Primary packaging
Elsődleges csomagolás
Primary receptacle(s) must be water tight, for example, screw caps must be sealed with parafilm or adhesive tape or similar protections taken.
Az elsődleges edénynek/edényeknek vízállónak kell lennie/lenniük, a csavaros kupakot például szigetelőszalaggal vagy celluxszal le kell ragasztani, vagy hasonló védekező intézkedéseket kell tenni.
Multiple primary receptacles must be wrapped individually to prevent breakage.
Az egyes elsődleges edényeket egyenként be kell csomagolni, hogy el ne törjenek.
When determining the volume of diagnostic specimens being shipped, the viral transport media must be taken into account.
A szállítandó diagnosztikai minták mennyiségének meghatározásakor figyelembe kell venni a vírusszállító közeget.
Primary receptacle(s) must not contain more than 500 ml or 500 g.
Az elsődleges edénynek/edényeknek legfeljebb 500 ml vagy 500 g anyagot szabad tartalmaznia/tartalmazniuk.
The entire contents of the primary receptacle is the diagnostic specimen.
Az elsődleges edény teljes tartalma a diagnosztikai minta.
Secondary packaging
Másodlagos csomagolás
Enough absorbent material in the secondary container to absorb the entire contents of all primary receptacles in case of leakage or damage must be used.
A másodlagos tartályba elegendő abszorbens anyagot kell tenni, hogy szivárgás vagy sérülés esetén fel tudja szívni az elsődleges edények teljes tartalmát.