natgillin/translations-raw huggingface dataset:
This order must be followed strictly to avoid decomposition of the pepsin.
A hozzáadási sorrendet szigorúan be kell tartani, hogy elkerülhető legyen a pepszin lebomlása.
The stomacher is then allowed to pound the content of the bag for 25 minutes.
Ezután a Stomacherrel 25 percen át szétzúzzák a zacskó tartalmát.
The plastic bag is removed from the stomacher and the digestion fluid is filtered through the sieve into a 3 litre beaker.
v. A műanyag zacskót kiveszik a Stomacherből, majd az emésztőfolyadékot egy szűrőn keresztül átszűrik egy 3 literes főzőpohárba.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water, which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
A műanyag zacskót körülbelül 100 ml vízzel kimossák, amellyel azután leöblítik a szűrőt, és végül hozzáadják a főzőpohárban lévő szűrlethez.
Up to 15 individual samples can be added to a total pool of 100 samples and examined together with these samples.
Legfeljebb 15 egyedi mintát lehet hozzáadni egy 100 mintából álló egyesített mintához, és együtt vizsgálni ezekkel a mintákkal.
Smaller pools (less than 100 samples)
Kisebb minták (100-nál kevesebb mintából készült gyűjtőminták)
A digestion fluid is prepared by mixing about one and a half litres of water and 25 ml of 17,5 % hydrochloric acid.
Az emésztőfolyadékot kb. másfél liter víz és 25 ml 17,5 %-os sósav összekeverésével készítik.
6 g of pepsin is added and the whole mixed at a temperature of 40 to 41 oC.
Ezután 6 g pepszint kell hozzáadni, majd az egészet 40–41 oC-on elkeverni.
Of the digestion fluid, a volume corresponding to 15 ml per gram of sample is measured (e.g. for 30 samples the volume required is 30 × 15 ml = 450 ml) and transferred to the inner of the two plastic bags, together with the meat samples weighing approximately 1 g (at 25 to 30 oC) taken from each individual sample in accordance with 2.
Az emésztőfolyadékból lemérnek annyiszor 15 ml-t, ahány gramm a minta tömege (pl. 30 mintához szükséges mennyiség 30 × 15 ml, azaz 450 ml), és beleöntik a belső műanyag zacskóba az összes egyedi mintából a 2. pont szerint kinyert körülbelül 1 g-os mintákkal együtt (25–30 oC-on).
Water at a temperature of approximately 41 oC is poured into the outer bag to make up a total volume in the two bags of one and a half litres.
Körülbelül 41 oC-os vizet öntenek a külső zacskóba, olyan mennyiségben, hogy a két zacskóban lévő összes víz együttes térfogata másfél liter legyen.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water (at 25 to 30 oC), which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
A műanyag zacskót körülbelül 100 ml vízzel (25–30 oC-on) kimossák, amellyel azután leöblítik a szűrőt, és végül hozzáadják a főzőpohárban lévő szűrlethez.
Recovery of larvae by sedimentation
A lárvák kinyerése ülepítéssel
Ice (300 to 400 g of ice flakes, scaly ice or crushed ice) is added to the digestion fluid to bring its volume up to about 2 litres.
Jeget (300–400 g-os jégpelyhet, lemezes vagy tört jeget) adnak az emésztőfolyadékhoz, hogy térfogata legfeljebb kb. 2 liter legyen.
The digestion fluid is then stirred until the ice has melted.
Az emésztőfolyadékot azután addig keverik, amíg a jég el nem olvad.
In the case of smaller pools (see II(b)), the amount of ice must be reduced correspondingly.
Kisebb gyűjtőminták esetén (lásd II. pont b. alpontja), a jég mennyiségét arányosan kell csökkenteni.
The chilled digestion fluid is transferred to a 2 litre separation funnel, equipped with a vibrator in an extra clamp.
A lehűtött emésztőfolyadékot beleöntik egy 2 literes választótölcsérbe, amely egy külön rögzítő elemmel felerősített rázókészülékkel van felszerelve.
Sedimentation is allowed to proceed for 30 minutes, during which time the sedimentation funnel is vibrated intermittently, i.e. one minute vibration followed by a one-minute pause.
Ülepítés 30 percig, amíg az ülepítő tölcsér megszakításokkal vibrál, pl. egy egyperces rezgést követően egy percig nem mozog.
After 30 minutes, a 60 ml sample of the sediment is quickly run off into a 100 ml measuring cylinder (the funnel is rinsed with detergent solution after use).
Az üledék 60 ml-es mintáját 30 perc eltelte után gyorsan kiöntik egy 100 ml-es mérőhengerbe. (A lombikot használat után mosószeres oldattal kiöblítik.)
The 60 ml sample is allowed to stand for at least 10 minutes, after which time the supernatant is withdrawn by suction to leave a volume of 15 ml, to be examined for presence of larvae.
A 60 ml-es mintát legalább 10 percig hagyják állni, ezután a felül úszót leszívják, visszahagyva egy 15 ml-es mennyiséget a lárvák jelenlétének vizsgálatára.
For suction, a disposable syringe, equipped with a plastic tube, can be used.
A leszíváshoz egy műanyag csővel ellátott eldobható fecskendőt lehet használni.
The length of the tube must be such that 15 ml remains in the measuring cylinder when the flanges of the syringe rest on the cylinder's rim.
A cső olyan hosszú legyen, hogy amikor a fecskendő karimái a henger peremén fekszenek, 15 ml maradjon a mérőhengerben.
The remaining 15 ml is poured into a larval counting basin or two petri dishes and examined using a trichinoscope or stereo-microscope.
A fennmaradó 15 ml-t átöntik a lárvaszámláló medencébe vagy két Petri-csészébe, és megvizsgálják trichinoszkóp vagy sztereomikroszkóp alatt.
The measuring cylinder is washed with 5 to 10 ml of tap water and the washings are added to the sample.
A mérőhengert 5–10 ml csapvízzel kimossák, és a folyadékokat a mintához adják.
Under no circumstances is examination to be postponed until the following day.
Semmilyen körülmények között nem szabad a vizsgálatot másnapra halasztani.
Where the digests are unclear or they are not examined within 30 minutes of their preparation, they must be clarified as follows:
Ha az emésztett anyagok nem eléggé tiszták, vagy az elkészítésüket követő 30 percen belül nem kerül sor a vizsgálatukra, akkor azokat a következőképpen kell megtisztítani:
the final sample of 60 ml is poured into a measuring cylinder and allowed to stand for 10 minutes; 45 ml of supernatant fluid is then removed by suction and the remaining 15 ml is made up to 45 ml with tap water,
az utolsó 60 ml-es mintát beöntik egy mérőhengerbe, és 10 percig hagyják ülepedni; a felül úszó folyadék 45 ml-ét leszívják, és a maradék 15 ml-t csapvízzel kiegészítik 45 ml-re,
after a further settling period of 10 minutes, 30 ml of supernatant fluid is removed by suction and the remaining 15 ml is poured into a petri dish or larval counting basin for examination,
újabb 10 perces ülepítési idő után a felül úszó folyadék 30 ml-ét leszívják, és a maradék 15 ml-t vizsgálat céljából kiöntik egy Petri-csészébe vagy lárvaszámláló medencébe,
the measuring cylinder is washed with 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
a mérőhengert 10 ml csapvízzel ki kell mosni, és az így kapott folyadékot hozzá kell adni a Petri-csészében vagy a lárvaszámláló medencében lévő vizsgálandó mintához.
Where the result is positive or uncertain, the provisions laid down in Chapter I(3)(III) shall apply.
Amennyiben az eredmény pozitív vagy kétes, az I. fejezet 3. bekezdése III. pontjának rendelkezéseit kell alkalmazni.
Mechanically assisted pooled sample digestion method/‘on filter isolation’ technique
A gyűjtőminták mechanikailag támogatott emésztéses módszere/„szűréses izolációs” technika
As stipulated in Chapter II(A)(1).
A II. fejezet A. 1. pontjában leírtak szerint.
Additional equipment:
Kiegészítő felszerelés:
1 litre Gelman funnel, complete with filter holder (diameter 45 mm);
1 literes Gelman-tölcsér, szűrőfeltéttel kiegészítve (az átmérő 45 mm);
filter discs, consisting of a circular stainless steel mesh with an aperture of 35 microns (disc diameter: 45 mm), two rubber rings 1 mm thick (external diameter: 45 mm; internal diameter: 38 mm), the circular mesh being placed between the two rubber rings and bonded to them using a two-component glue suitable for the two materials;
szűrőkorongok; egy kör alakú rozsdamentes acélháló 35 mikronos lyukbőséggel (a korong átmérője 45 mm), két, 1 mm vastag gumiból készült gumigyűrű (a külső átmérő 45 mm, a belső átmérő 38 mm), a kör alakú acélháló a két gumigyűrű közé van elhelyezve és a kétféle anyag kötésére alkalmas kétkomponensű ragasztóval rögzítve;
an Erlenmeyer flask, capacity 3 litres, fitted with a side tube for suction;
egy 3 literes űrtartalmú Erlenmeyer szívópalack;
a filter pump;
egy vízlégszivattyú szivattyú;
plastic bags, capacity at least 80 ml;
legalább 80 ml űrtartalmú műanyag zacskók;
equipment for sealing the plastic bags;
a műanyag zacskók hegesztésére alkalmas berendezés;
rennilase, strength 1: 150000 soxhlet units per gram.
renniláz, amelynek koncentrációja grammonként 1: 150000 soxhlet egység.
Collecting of specimens
Mintavétel
See Chapter II(A)(3)(II)(a).
Lásd a II. fejezet A. 3. II. a) pontját.
See Chapter II(A)(3)(II)(b).
Lásd a II. fejezet A. 3. II. b) pontját.
Recovery of larvae by filtration
A lárvák kinyerése szűréssel
In the case of smaller pools, the amount of ice must be reduced correspondingly.
Kisebb egyesített minták esetén a jég mennyiségét arányosan kell csökkenteni.
The digestion fluid is stirred until the ice has melted.
Az emésztőfolyadékot azután addig keverik, amíg a jég el nem olvad.
The chilled digestion fluid is then left for at least three minutes to let the larvae coil.
A lehűtött emésztőfolyadékot ezután legalább három percig hagyják állni, hogy a lárvák kitekeredhessenek.
The Gelman funnel, fitted with a filter holder and filter disc, is mounted on an Erlenmeyer flask connected to a filter pump.
A szűrőtartóval és szűrőkoronggal ellátott Gelman-tölcsért az Erlenmeyer-lombikra helyezik, amely egy vízlégszivattyúhoz van kötve.
The digestion fluid is poured into the Gelman funnel and filtered.
Az emésztőfolyadékot átöntik a Gelman-lombikba, és leszűrik.
Towards the end of filtration, the digestion fluid can be helped to pass through the filter by applying suction with the filter pump.
A szűrés vége felé az emésztőfolyadék szűrőn keresztüli átáramlása vízlégszivattyúval végzett szívással meggyorsítható.
Suction must cease before the filter becomes dry, i.e. when 2 to 5 ml of fluid is left in the funnel.
Mielőtt a szűrő kiszárad – azaz amikor 2–5 ml folyadék marad a tölcsérben –, a szívást abba kell hagyni.
Once all the digestion fluid has been filtered, the filter disc is removed and placed in an 80 ml capacity plastic bag, together with 15 to 20 ml of rennilase solution.
Amikor az összes emésztőfolyadékot leszűrték, a szűrőkorongot eltávolítják, és 15–20 ml renniláz oldattal együtt behelyezik egy 80 ml űrtartalmú műanyag zacskóba.
The rennilase solution is made by adding 2 g of rennilase to 100 ml of tap water.
A rennilázoldatot úgy készítik, hogy 2 g rennilázt adnak 100 ml csapvízhez.
The plastic bag is sealed twice and placed between the inner and outer bags in the stomacher.
A műanyag zacskót két rétegben lehegesztik, és a belső és a külső zacskó közé helyezik a Stomacherbe.
The stomacher is allowed to pound for three minutes, e.g. while it is working on a complete or incomplete pool.
A Stomachert azután hagyják, hogy három percig zúzza a tartalmát, pl. amikor teljes vagy nem teljes egyesített mintát dolgoz fel.
After three minutes, the plastic bag, complete with filter disc and rennilase solution, is removed from the stomacher and opened with scissors.
A szűrőkorongot és a rennilázoldatot tartalmazó műanyag zacskót három perc elteltével kiveszik a Stomacherből, és felnyitják ollóval.
The liquid contents are poured into a larval counting basin or petri dish.
A folyékony tartalmat átöntik egy lárvaszámláló medencébe vagy egy Petri-csészébe.
The bag is washed out with 5 to 10 ml of water, which is then added to the larval counting basin for examination by trichinoscope or to the petri dish for examination by stereo-microscope.
A zacskót kimossák 5–10 ml vízzel, amelyet azután trichinoszkópos vizsgálatra át kell önteni a lárvaszámláló kamrába, vagy sztereomikroszkópos vizsgálatra egy Petri-csészébe.
Digests must be examined as soon as they are ready.
Az emésztett anyagokat elkészültük után azonnal meg kell vizsgálni.
Filter discs must never be used when not completely clean.
A szűrőkorongokat csak akkor lehet felhasználni, ha teljesen tiszták.
Unclean discs must never be allowed to dry out.
A nem tiszta korongokat soha nem szabad hagyni kiszáradni.
Filter discs can be cleaned by leaving them in rennilase solution overnight.
A szűrőkorongokat úgy lehet megtisztítani, hogy egy éjszakára rennilázoldatban hagyják ázni.
Before use, they must be washed in fresh rennilase solution using the stomacher.
Használat előtt a Stomacherben át kell azokat mosni friss rennilázoldattal.
Automatic digestion method for pooled samples of up to 35 g
Az automata emésztéses módszer maximum 35 g tömegű gyűjtőmintákhoz
A Trichomatic 35® blender with filtration insert
egy Trichomatic 35® keverőgép beépített szűrővel;
Hydrochloric acid 8,5 ± 0,5 % weight
8,5 % ± 0,5 tömegszázalékos sósavoldat;
Transparent polycarbonate membrane filters with a diameter of 50 mm and a pore size of 14 microns
átlátszó polikarbonát membránszűrők, amelyek átmérője 50 mm, pórusnagysága 14 mikron;
Pepsin, strength 1: 10000 NF (US National Formulary) corresponding to 1: 12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie)
pepszin koncentrációja 1: 10000 NF (US National Formulary), amely megfelel 1: 12500 BP-nek (British Pharmacopoea) és 2000 FIP-nek (Fédération Internationale de Pharmacie);
A balance accurate to 0,1 g
egy 0,1 g pontosságú mérleg;
Tweezers with a flat tip
tompa hegyű csipesz;
A number of microscope slides with a side-length of at least 5 cm or a number of petri dishes at least 6 cm in diameter, marked on their undersides into 10 × 10 mm square areas using a pointed instrument
legalább 5 cm oldalhosszú mikroszkóp-tárgylemezek, vagy néhány, legalább 6 cm átmérőjű Petri-csésze, amelyeket az aljukon egy hegyes eszközzel 10 × 10 mm-es négyzetekből álló vizsgálati területekre osztottak;
A (stereo-)microscope with transmitted light (magnification 15 to 60 times) or a trichinoscope with a horizontal table
egy áteső fényű (15–60-szoros nagyítású) (sztereo-)mikroszkóp vagy egy trichinoszkóp vízszintes asztallappal;
A bin for collection of waste liquids
egy tartály az elhasznált folyadékok tárolására;
a thermometer accurate to 0,5 oC within the range 1 to 100 oC.
az 1–100 oC hőmérséklettartományban ± 0,5 oC-os pontossággal működő hőmérő.
I. Digestion procedure
I. Emésztési eljárás
Place the blender with the filtration insert, connect the waste tube and place the tube so it drains into the waste bin.
Vegye elő a beépített szűrővel ellátott keverőgépet, kösse rá a szennyvízcsövet, és azt vezesse bele a szennyvíztartályba.
When the blender is switched on, heating will start.
A készülék bekapcsolása után a felfűtés elindul.
Before this is done, the bottom valve located below the reaction chamber must be opened and closed.
A beindítás előtt a reakciókamra alatt elhelyezett alsó szelepet ki kell nyitni és be kell zárni.
Up to 35 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 oC) taken from each individual sample in accordance with point 2 are then added.
Legfeljebb 35 darab, a 2. pontnak megfelelően az egyedi mintákból vett, egyenként körülbelül 1 g tömegű mintát (25–30 oC-on) kell a gépbe helyezni.
Ensure that larger pieces of tendons are removed as they may clot the membrane filter.
Ellenőrizze, hogy nagyobb índarabok nincsenek-e bennük, mivel ezek eltömíthetik a membránszűrőt.
Pour water up to the edge of a liquid chamber connected to the blender (approximately 400 ml).
Öntsön (körülbelül 400 ml) vizet a keverőgéppel összekötött egyik folyadékkamra szájához.
Pour about 30 ml hydrochloric acid ((8,5 %) to the edge of the smaller, connected liquid chamber.
Öntsön kb. 30 ml (8,5 %-os) sósavat a kisebb, bekötött folyadékkamra szájához.
Place a membrane filter under the coarse filter in the filter holder in the filter insert.
Helyezzen egy membránszűrőt a durva szűrő alá a szűrőtartóban lévő beépített szűrőben.
Lastly, add 7 g of pepsin.
Végül 7 g pepszint kell ezekhez hozzáadni.
Close the lids of the reaction and liquid chambers.
Zárja le a reakció- és a folyadékkamra fedelét.
Select the period of digestion.
Válassza ki az emésztési idő hosszát.
A short digestion period (5 minutes) must be set for pigs at the normal slaughter age and a longer time (8 minutes) for other samples.
Rövid emésztési időt (5 perc) kell alkalmazni normál vágásérett sertések esetében, és hosszabb időt (8 perc) más minták emésztése során.
When the start button on the blender is turned on, the process of dispensing and digestion starts automatically, followed by filtration After 10 to 13 minutes the process is completed and stops automatically.
Az automatikus adagolás akkor indul be, amikor a keverőgép indítógombját benyomjuk, és az emésztés az azt követő szűréssel együtt automatikusan végbemegy. 10–13 perc után a művelet befejeződik, és automatikusan leáll.
Open the lid of the reaction chamber after checking that the chamber is empty.
A reakciókamra fedelének nyitása előtt ellenőrizni kell, hogy a kamra kiürült-e.
If there is foam or any digestion liquid remaining in the chamber, repeat the procedure in accordance with V.
Ha hab vagy visszamaradt emésztőfolyadék van a kamrában, a V. pont szerint ismételje meg a műveletet.
Recovery of larvae
A lárvák kinyerése
Remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or Petri dish.
Szerelje le a szűrőtartót, és egy tárgylemezre vagy egy Petri-csészébe rakja ki belőle a membránszűrőt.
Examine the membrane filter using a (stereo-) microscope or a trichinoscope.
A membránszűrőt mikroszkóp vagy trichinoszkóp alatt kell megvizsgálni.
Cleaning equipment
A berendezés tisztítása
Where the result is positive, fill the blender reaction chamber with boiling water until it is two-thirds full.
Pozitív eredmény esetén 2/3-áig töltse fel a keverőgép reakciókamráját forró vízzel.
Ordinary tap water is poured into the connecting liquid chamber until it covers the lower sensor.
Közönséges csapvizet kell az összekötő folyadékkamrába önteni, amíg a víz el nem lepi az alsó szintérzékelőt.
Automatic cleaning then takes place.
Ezután be kell indítani az automata tisztítóprogramot.
Decontaminate the filter-holder and any other equipment, e.g. using formol.
A többi eszközzel együtt fertőtlenítse a szűrőtartót, például formalinos kezeléssel.
After work is completed for the day, fill the blender liquid chamber with water and put it through a standard cycle.
A napi munka befejeztével töltse fel vízzel a keverő folyadékkamráját, majd indítson be egy szabványos programot.
Use of membrane filters
A membránszűrők használata
Each polycarbonate membrane filter may be used no more than five times.
Az egyes polikarbonát membránszűrők ötnél több alkalommal nem használhatók.
The filter is to be turned between each use.
A szűrőt az egyes használatok között meg kell fordítani.
In addition, the filter must be checked after each use for any damage which would make it unsuitable for further use.
Ezen túlmenően a szűrőt minden használat után meg kell vizsgálni arra vonatkozóan, hogy nem érte-e olyan kár, amely azt a további használatra alkalmatlanná tenné.
V. Method to be applied when digestion is incomplete and filtration cannot be carried out
V. Módszer arra az esetre, ha az emésztés nem teljes mértékű, a szűrést ezért nem lehet elvégezni
Once the blender has been put through an automatic cycle in accordance with C(3)(I), open the lid of the reaction chamber and check whether there is foam or any liquid remaining in the chamber.
Ha a C. szakasz 3. bekezdése I. pontja szerint a keverőben végbement az automatikus művelet, nyissa fel a reakciókamra fedelét, és ellenőrizze, hogy a kamrában maradt-e vissza hab vagy emésztőfolyadék.
If this is the case, proceed as follows:
Ha igen, végezze el a következő műveletet:
close the bottom valve below the reaction chamber;
A reakciókamra alatt csukja be az alsó szelepet.
remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or Petri dish;
Szerelje le a szűrőtartót, és egy tárgylemezre vagy egy Petri-csészébe rakja ki belőle a membránszűrőt.
put a new membrane filter in the filter holder and attach the filter holder;
Tegyen új membránszűrőt a szűrőtartóba, majd helyezze vissza a szűrőtartót.
fill the blender liquid chamber with water until the lower sensor is covered;
Töltse fel vízzel a folyadékkamrát, amíg a víz el nem lepi az alsó szintérzékelőt.
carry out the automatic cleaning cycle;
Végezze el az automatikus tisztítási programot.
after the cleaning cycle has ended, open the lid of the reaction chamber and check whether any liquid remains;
Miután a tisztítási program befejeződött, nyissa ki a reakciókamra fedelét, és ellenőrizze, maradt-e benne folyadék.
if the chamber is empty, remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or Petri dish with tweezers;
Ha a kamra kiürült, szerelje le a szűrőtartót, és csipesszel rakja ki belőle a membránszűrőt egy tárgylemezre vagy egy Petri-csészébe.
examine the two membrane filters in accordance with C(3)(II).
A két membránszűrőt a C. szakasz 3. bekezdése II. pontjának megfelelően meg kell vizsgálni.
If the filters cannot be examined, repeat the entire digestion process with a longer digestion time in accordance with C(3)(I).
Ha a szűrőket nem lehet megvizsgálni, a teljes emésztési folyamatot meghosszabbított emésztési idővel meg kell ismételni a C. szakasz 3. bekezdése I. pontjának megfelelően.
TRICHINOSCOPIC EXAMINATION
III. FEJEZET TRICHINOSZKÓPOS VIZSGÁLAT
Apparatus
Eszközök
An incandescent-lamp trichinoscope with 30 to 40 times and 80 to 100 times magnification or a stereomicroscope with a substage transmitted light source of adjustable intensity
Egy 30–40-szeres és 80–100-szoros nagyítású izzólámpás trichinoszkóp, vagy egy sztereomikroszkóp állítható erősségű, alsó fényforrással;
A compressorium being a pressure glass consisting of two glass plates (one of which is divided into equal fields)
Egy kompresszórium, amely két egymással szemben összenyomható üveglapból áll (amelyek közül az egyik azonos nagyságú mezőkre van felosztva);
Small curved scissors
kis hajlított ollók;
Small forceps
kis csipeszek;
A knife for cutting specimens
a minták feldarabolására szolgáló kés;
Small numbered containers for storing the specimens separately
kis számozott tartályok a minták elkülönített tárolására;
A dropping pipette
csepegtetőpipetta;
A glass of acetic acid and a glass of potassium hydroxide solution for brightening any calcifications and softening dried meat.
egy üveg ecetsav és egy üveg kálium-hidroxid oldat a mészsók kioldására vagy a szárított hús puhítására.
In the case of whole carcases, several hazelnut-size samples are taken from each animal:
Egész testek esetén több, egy mogyorónyi nagyságú mintát kell venni minden állatból:
in domestic swine, such samples are taken from both diaphragm pillars at the transition of the sinewy part;
Házisertés esetén mindkét rekeszoszlopból az inas részbe való átmenet közeléből vesznek mintákat.
in wild boar samples are taken from both diaphragm pillars at the transition of the sinewy part and in addition from the jaw, the muscles of the lower leg, the intercostal muscles and the tongue muscles, giving a total of six samples from each individual animal;
Ha vaddisznóból vesznek mintát, ezt mindkét rekeszoszlopból az inas részbe való átmenet közeléből és ezen túlmenően a rágóizomból, az elülső lábszár izmaiból, a bordaközi izmokból és a nyelvizmokból teszik, így összesen hat mintát kapnak minden egyes állatból.
if certain muscles are not available for sampling, a total of four samples are taken from the muscles that are available;
Ha egyes izmokból nem lehet mintát venni, összesen négy mintát vesznek azokból az izmokból, amelyekből lehet.
in pieces of meat, four hazelnut-size samples of striated muscle tissue containing if possible no fat, taken from different points, are taken from each piece, where possible close to bones or tendons.
Húsrészek esetén minden részből venni kell négy darab, lehetőség szerint zsírt nem tartalmazó, mogyorónyi nagyságú vázizom-mintát, különböző pontokról, és ahol lehetséges, csontok vagy inak mellől.