natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Fluorescent bulbs (wide spectrum); 10-20 μE/m2/s, 540-1080 lux, or 50-100 ft-c (ambient laboratory levels); 12-16 hrs photoperiod
Fluorescentne žarulje (širokog spektra); 10 – 20 μE/m2/s, 540 – 1080 lux, ili 50 – 100 ft-c (razine u laboratorijskim uvjetima); fotoperiod 12 – 16 sati
26 ± 1 °C
26 ± 1 °C
Water quality
Kvaliteta vode
O2 ≥ 80 % saturation, hardness: e.g. ~30-300 mg/l CaCO3, NO3-: ≤ 48mg/l, NH4+ and NO2-: < 0,001 mg/l, residual chlorine < 10 μg/l, total organic chlorine < 25 ng/l, pH = 6,5 – 8,5
Zasićenost O2 ≥ 80 %, tvrdoća: npr. ~30 – 300 mg/l CaCO3, NO3–: ≤ 48 mg/l, NH4+ i NO2–: < 0,001 mg/l, rezidualni klor < 10 μg/l, ukupni organski klor < 25 ng/l, pH = 6,5 – 8,5
Further water quality criteria
Dodatni kriteriji za kvalitetu vode
Particulate matter < 20 mg/l, total organic carbon < 2 mg/l, total organophosphorus pesticides < 50 ng/l, total organochlorine pesticides plus polychlorinated biphenyls < 50 ng/l
Čestice < 20 mg/l, ukupni organski ugljik < 2 mg/l, ukupni organofosforni pesticidi < 50 ng/l, ukupni organoklorni pesticidi plus poliklorirani bifenili < 50 ng/l
Tank size for maintenance
Veličina akvarija za držanje
e.g. 180 l, 1 fish/l
Npr. 180 l, 1 riba/l
Permanent (charcoal filtered); other possibilities include combinations with semi-static renewal maintenance or flow-through system with continuous water renewal
Stalno (filtriranje ugljenom); druge mogućnosti uključuju kombinacije s polustatičkim sustavom s obnavljanjem ili protočnim sustavom s neprekidnim obnavljanjem vode
Recommended male to female ratio for breeding
Preporučeni omjer mužjaka i ženki za razmnožavanje
2:1 (or mass spawning)
2: 1 (ili masovno mriješćenje)
Spawning tanks
Akvariji za mriješćenje
e.g. 4 l tanks equipped with steel grid bottom and plant dummy as spawning stimulant; external heating mats, or mass spawning within the maintenance tanks
Npr. akvariji od 4 l s dnom od čelične mreže i umjetnom biljkom kao podražajem za mriješćenje; vanjski grijači, ili masovno mriješćenje u akvarijima za držanje
Egg structure and appearance
Struktura i izgled jajašaca
Stable chorion (i.e. highly transparent, non-sticky, diameter ~ 0,8–1,5 mm)
Stabilan korion (tj. vrlo proziran, neljepljiv, promjera ~ 0,8 – 1,5 mm)
Spawning rate
Stopa mriješćenja
A single mature female spawns at least 50-80 eggs per day.
Jedna zrela ženka mrijesti najmanje 50 – 80 jajašaca dnevno.
Depending on the strain, spawning rates may be considerably higher.
Ovisno o soju, stopa mriješćenja može biti znatno viša.
The fertilisation rate should be ≥ 70 %.
Stopa oplodnje trebala bi biti ≥ 70 %.
For first time spawning fish, fertilisation rates of the eggs may be lower in the first few spawns.
Za ribe koje se prvi put mrijeste stopa oplodnje jajašaca može biti niža u prvih nekoliko mriješćenja.
Static, semi-static renewal, flow-through, 26 ± 1 °C, 24 hrs conditioned test chambers (e.g. 24-well plates 2,5-5 ml per cavity)
Statičko, polustatičko s obnavljanjem, protočno, 26 ± 1 °C, ispitne komore kondicionirane 24 sata (npr. ploče s 24 bunarića po 2,5 – 5 ml)
NORMAL ZEBRAFISH DEVELOPMENT AT 26 °C
NORMALAN RAZVOJ ZEBRICE PRI TEMPERATURI OD 26 °C
Fig. 1: Selected stages of early zebrafish (Danio rerio) development: 0,2 – 1,75 hrs post-fertilisation (from Kimmel et al., 1995 (35)).
Slika 1. Odabrane faze ranog razvoja zebrice (Danio rerio): 0,2 – 1,75 sati nakon oplodnje (iz: Kimmel et al. 1995 (35.)).
The time sequence of normal development may be taken to diagnose both fertilisation and viability of eggs (see paragraph 26: Selection of fertilised eggs).
S pomoću vremenskog slijeda normalnog razvoja mogu se dijagnosticirati i oplodnja i iskoristivost jajašaca (vidjeti stavak 26.: Odabir oplođenih jajašaca).
Fig. 2: Selected stages of late zebrafish (Danio rerio) development (de-chorionated embryo to optimise visibility): 22 – 48 hrs after fertilisation (from Kimmel et al., 1995 (35)).
Slika 2. Odabrane faze kasnog razvoja zebrice (Danio rerio) (embrij bez koriona radi bolje vidljivosti): 22 sata – 48 sati nakon oplodnje (iz: Kimmel et al. 1995 (35.)).
Fig. 3: Normal development of zebrafish (Danio rerio) embryos: (1) 0,75 hrs, 2-cell stage; (2) 1 hr, 4-cell stage; (3) 1,2 hrs, 8-cell stage; (4) 1,5 hrs, 16-cell stage; (5) 4,7 hrs, beginning epiboly; (6) 5,3 hrs, approx. 50 % epiboly (from Braunbeck & Lammer 2006 (40)).
Slika 3. Normalan razvoj embrija zebrice (Danio rerio): (1) 0,75 sati, faza s 2 stanice; (2) 1 sat, faza s 4 stanice; (3) 1,2 sata, faza s 8 stanica; (4) 1,5 sati, faza s 16 stanica; (5) 4,7 sati, početak epibolije; (6) 5,3 sata, otprilike 50 % epibolije (iz: Braunbeck & Lammer 2006 (40.)).
Layout of 24-well plates
Nacrt ploča s 24 bunarića
1-5 five test concentrations/chemical;
1 – 5 pet ispitnih koncentracija po kemikaliji;
nC negative control (dilution water);
nC negativna kontrola (voda za razrjeđivanje);
iC internal plate control (dilution water);
iC kontrola unutar ploče (voda za razrjeđivanje);
pC positive control (3,4-DCA 4 mg/l);
pC pozitivna kontrola (3,4-dikloroanilin 4 mg/l);
sC solvent control.
sC kontrola s otapalom
ATLAS OF LETHAL ENDPOINTS FOR THE ZEBRAFISH EMBRYO ACUTE TOXICITY TEST
PRIKAZ SMRTNIH KRAJNJIH TOČAKA ZA ISPITIVANJE AKUTNE TOKSIČNOSTI NA EMBRIJIMA ZEBRICA
The following apical endpoints indicate acute toxicity and, consequently, death of the embryos: coagulation of the embryo, non-detachment of the tail, lack of somite formation and lack of heartbeat.
Sljedeće apikalne krajnje točke znak su akutne toksičnosti te, posljedično, smrti embrija: koagulacija embrija, neodvajanje repa, izostanak formiranja somita i izostanak otkucaja srca.
The following micrographs have been selected to illustrate these endpoints.
Sljedeće mikrofotografije odabrane su za ilustraciju tih krajnjih točaka.
Coagulation of the embryo:
Koagulacija embrija
Under bright field illumination, coagulated zebrafish embryos show a variety of intransparent inclusions.
Pri promatranju uz jako osvjetljenje polja na koaguliranim embrijima zebrica vidljiv je niz neprozirnih nakupina.
Lack of somite formation:
Izostanak formiranja somita
Although retarded in development by approx. 10 hrs, the 24 hrs old zebrafish embryo in (a) shows well-developed somites (→), whereas the embryo in (b) does not show any sign of somite formation (→).
Unatoč kašnjenju u razvoju za otprilike 10 sati, u embrija zebrice starog 24 sata na slici a) vide se dobro razvijeni somiti (→), dok u embrija na slici b) nema nikakvog znaka formiranja somita (→).
Although showing a pronounced yolk sac oedema (*), the 48 hrs old zebrafish embryo in (c) shows distinct formation of somites (→), whereas the 96 hrs old zebrafish embryo depicted in (d) does not show any sign of somite formation (→).
Unatoč velikom edemu žumanjčane vrećice (*), u embrija zebrice starog 48 sati na slici c) dobro se vide formirani somiti (→), dok u embrija zebrice starog 96 sati na slici d) nema nikakvog znaka formiranja somita (→).
Note also the spinal curvature (scoliosis) and the pericardial oedema (*) in the embryo shown in (d).
U embrija na slici d) zamjetni su i zakrivljenost kralježnice (skolioza) i perikardijalni edem (*).
Bud in lateral view (a: →; 96 hrs old zebrafish embryo).
(a: →; embrij zebrice star 96 sati).
Note also the lack of the eye bud (*).
Zamjetno je i da nema osnove oka (*).
Lack of heartbeat is, by definition, difficult to illustrate in a micrograph.
Izostanak otkucaja srca po definiciji je teško pokazati na mikrofotografiji.
Lack of heartbeat is indicated by non-convulsion of the heart (double arrow).
Na izostanak otkucaja srca upućuje nekontrahirano srce (dvostruka strelica).
Immobility of blood cells in, e.g. the aorta abdominalis (→ in insert) is not an indicator for lack of heartbeat.
Nepomičnost krvnih stanica u npr. trbušnoj aorti (→ u isječku) nije pokazatelj izostanka otkucaja srca.
Note also the lack of somite formation in this embryo (*, homogenous rather than segmental appearance of muscular tissues).
Zamjetan je i izostanak formiranja somita u ovog embrija (*, homogen umjesto segmentiranog izgleda mišićnog tkiva).
The observation time to record an absence of heartbeat should be at least of one minute with a minimum magnification of 80×.
Da bi se zabilježio izostanak otkucaja srca, embrije je potrebno promatrati najmanje jednu minutu pod povećanjem od najmanje 80 puta.
C.50 Sediment-free Myriophyllum spicatum toxicity test
C.50. Ispitivanje toksičnosti na klasastom krocnju (Myriophyllum spicatum) u sustavu bez sedimenta
This test method is equivalent to OECD test guideline 238 (2014).
Ova ispitna metoda odgovara Smjernici OECD-a za ispitivanje 238 (2014.).
It is designed to assess the toxicity of chemicals to Myriophyllum spicatum, a submersed aquatic dicotyledon, a species of the water milfoils family.
Namijenjena je za procjenu toksičnosti kemikalija za klasasti krocanj (Myriophyllum spicatum), podvodnu vodenu dvosupnicu, vrstu iz porodice krocanja.
It is based on an ASTM existing test method (1) modified as a sediment-free test system (2) to estimate the intrinsic ecotoxicity of test chemicals (independent of the distribution-behaviour of the test chemical between water and sediment).
Temelji se na postojećoj ASTM-ovoj ispitnoj metodi (1.) modificiranoj za ispitni sustav bez sedimenta (2.) radi procjene intrinzične ekotoksičnosti ispitivanih kemikalija (neovisno o raspodjeli ispitivane kemikalije u vodi i sedimentu).
A test system without sediment has a low analytical complexity (only in the water phase) and the results can be analysed in parallel and/or comparison with those obtained in Lemna sp. test (3); in addition, the required sterile conditions allow to keep the effects of microorganisms and algae (chemical uptake/ degradation, etc.) as low as possible.
Ispitni sustav bez sedimenta analitički je manje složen (samo vodena faza) i rezultati se mogu analizirati paralelno i/ili u usporedbi s rezultatima dobivenima ispitivanjem na Lemna sp. (3.); usto, zbog potrebnih sterilnih uvjeta minimalizirani su učinci mikroorganizama i alga (apsorpcija / razgradnja kemikalije itd.).
This test does not replace other aquatic toxicity tests; it should rather complement them so that a more complete aquatic plant hazard and risk assessment is possible.
Ovo ispitivanje ne zamjenjuje druga ispitivanja toksičnosti u vodi, već bi im trebalo biti nadopuna radi cjelovitije procjene opasnosti i rizika za vodene biljke.
The test method has been validated by a ring-test (4).
Ispitna je metoda validirana međulaboratorijskim testom (4.).
Details of testing with renewal (semi-static) and without renewal (static) of the test solution are described.
Opisani su detalji ispitivanja s obnavljanjem (polustatičko) i bez obnavljanja (statičko) ispitne otopine.
Depending on the objectives of the test and the regulatory requirements, the use of semi-static method is recommended, e.g. for substances that are rapidly lost from solution as a result of volatilisation, adsorption, photodegradation, hydrolysis, precipitation or biodegradation.
Ovisno o ciljevima ispitivanja i regulatornim zahtjevima, preporučuje se primjena polustatičke metode, npr. za tvari koje se brzo gube iz otopine zbog hlapljenja, adsorpcije, fotorazgradnje, hidrolize, taloženja ili biorazgradnje.
Further guidance is given in (5).
Dodatne smjernice dostupne su u literaturi (5.).
This test method applies to substances, for which the test method has been validated, (see details in the ring-test report (4)) or to formulations, or known mixtures; if a mixture is tested, its constituents should be as far as possible identified and quantified.
Ova ispitna metoda primjenjuje se za tvari za koje je ispitna metoda validirana (vidjeti pojedinosti u izvješću o međulaboratorijskom testu (4.)), formulacije ili poznate smjese; ako se ispituje smjesa, trebalo bi što detaljnije opisati kemijski identitet i količinu njezinih sastojaka.
The sediment-free Myriophyllum spicatum test method complements the water-sediment Myriophyllum spicatum Toxicity Test (6).
Ispitivanjem toksičnosti na klasastom krocnju (Myriophyllum spicatum) u sustavu bez sedimenta nadopunjuje se ispitivanje toksičnosti na klasastom krocnju u sustavu voda-sediment (6.).
Before use of the test method for the testing of a mixture intended for a regulatory purpose, it should be considered whether, and if so why, it may provide adequate results for that purpose.
Prije primjene ove ispitne metode za ispitivanje smjese koje je namijenjeno u regulatornu svrhu trebalo bi razmotriti mogu li se tom metodom osigurati odgovarajući rezultati za tu svrhu, i zašto.
Continuously growing plant cultures of Myriophyllum spicatum (only in modified Andrews' medium, see Appendix 2) are allowed to grow as monocultures in different concentrations of the test chemical over a period of 14 days in a sediment-free test system.
Kulturama klasastog krocnja (Myriophyllum spicatum) koje stalno rastu (samo u modificiranom Andrewsovom mediju, vidjeti Dodatak 2.) omogućuje se da rastu kao monokulture u različitim koncentracijama ispitivane kemikalije u sustavu bez sedimenta 14 dana.
The objective of the test is to quantify chemical-related effects on vegetative growth over this period based on assessments of selected measurement variables.
Cilj je ispitivanja kvantificirati učinke kemikalije na vegetativni rast tijekom tog razdoblja ocjenjivanjem odabranih mjernih varijabli.
Growth of shoot length, of lateral branches and roots as well as development of fresh and dry weight and increase of whorls are the measurement variables.
Mjerne varijable su rast tj. povećanje duljine izdanka, bočnih grana i korijenja, povećanje svježe i suhe mase te povećanje broja pršljena.
In addition, account is taken of distinctive qualitative changes in test organisms, such as disfigurement or chlorosis and necrosis indicated by yellowing or white and brown colouring.
Usto, promatraju se i prepoznatljive kvalitativne promjene ispitnih organizama, kao što su izobličenje, kloroza, koja je prepoznatljiva po žutoj boji, i nekroza, prepoznatljiva po bijeloj ili smeđoj boji.
To quantify chemical-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth is determined and expressed as the ECx; “x” can be any value depending on the regulatory requirements, e.g. EC10, EC20, EC50.
Da bi se kvantificirali učinci kemikalije, rast u ispitnim otopinama uspoređuje se s rastom u kontrolama te se utvrđuje koncentracija koja uzrokuje određeni postotak (x %) inhibicije rasta i izražava se kao ECx; ‚x’ može biti bilo koja vrijednost, ovisno o regulatornim zahtjevima, npr. EC10, EC20, EC50.
It should be noted that estimates of EC10 and EC20 values are only reliable and appropriate in tests where coefficients of variation in control plants fall below the effect level being estimated, i.e. coefficients of variation should be < 20 % for robust estimation of an EC20.
Treba napomenuti da su procjene EC10 i EC20 pouzdane i primjerene samo u ispitivanjima u kojima su koeficijenti varijacije za kontrolne biljke niži od razine učinka koji se procjenjuje, tj. za pouzdanu procjenu EC20 koeficijent varijacije trebao bi biti < 20 %.
Both average specific growth rate (estimated from assessments of main shoot length and three additional measurement variables) and yield (estimated from the increase in main shoot length and three additional measurement variables) of untreated and treated plants should be determined.
Trebalo bi odrediti prosječnu specifičnu brzinu rasta (na temelju procjena duljine glavnog izdanka i triju drugih mjernih varijabli) i prirast (na temelju povećanja duljine glavnog izdanka i triju drugih mjernih varijabli) netretiranih i tretiranih biljaka.
Specific growth rate (r) and yield (y) are subsequently used to determine the ErCx (e.g. ErC10, ErC20, ErC50) and EyCx (e.g. EyC10, EyC20, EyC50), respectively.
Na temelju specifične brzine rasta (r) i prirasta (y) zatim se određuju ErCx (npr. ErC10, ErC20, ErC50) odnosno EyCx (npr. EyC10, EyC20, EyC50).
In addition, the lowest observed effect concentration (LOEC) and the no observed effect concentration (NOEC) may be statistically determined.
Usto se mogu statistički odrediti i najniža koncentracija s vidljivim učinkom (LOEC) i najviša koncentracija bez vidljivog učinka (NOEC).
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the test chemical in the test medium, should be available.
Mora biti raspoloživa analitička metoda odgovarajuće osjetljivosti za kvantifikaciju ispitivane kemikalije u ispitnom mediju.
Information on the test chemical which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity and impurities, water solubility, stability in water and light, acid dissociation constant (pKa), partition coefficient octanol-water (Kow), vapour pressure and biodegradability.
Za određivanje ispitnih uvjeta korisno je imati podatke o ispitivanoj kemikaliji kao što su strukturna formula, čistoća i nečistoće, topljivost u vodi, stabilnost u vodi i na svjetlosti, konstanta disocijacije kiseline (pKa), koeficijent razdjeljenja oktanol/voda (Kow), tlak pare i biorazgradivost.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry's Law constant, which will indicate if significant losses of the test chemical during the test period are likely.
Topljivost u vodi i tlak pare mogu se upotrijebiti za izračunavanje konstante Henryjeva zakona, iz koje se može zaključiti mogu li se u razdoblju ispitivanja očekivati značajni gubitci ispitivane kemikalije.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
Tako se može zaključiti treba li poduzeti određene mjere za kontrolu tih gubitaka.
Where information on the solubility and stability of the test chemical are uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Ako podaci o topljivosti i stabilnosti ispitivane kemikalije nisu pouzdani, preporučuje se da se topljivost i stabilnost procijene u uvjetima ispitivanja, tj. u uzgojnom mediju te pri temperaturi i osvjetljenju koji će se upotrebljavati tijekom ispitivanja.
The pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or substances which are hydrolytically unstable.
Kontrola pH-vrijednosti ispitnog medija posebno je važna, npr. pri ispitivanju metala ili tvari koje su hidrolitički nestabilne.
Further guidance for testing chemicals with physical-chemical properties that make them difficult to test is provided in a OECD Guidance Document (5).
Dodatne smjernice za ispitivanje kemikalija čija fizikalno-kemijska svojstva otežavaju ispitivanje nalaze se u Smjernicama OECD-a (5.).
For the test to be valid, the doubling time of main shoot length in the control must be less than 14 days.
Da bi ispitivanje bilo valjano, vrijeme udvostručenja duljine glavnog izdanka u kontroli mora biti kraće od 14 dana.
Using the media and test conditions described in this test method, this criterion can be attained using a static or semi-static test regime.
Taj se kriterij može ispuniti primjenom statičkog ili polustatičkog ispitivanja uz medije i ispitne uvjete opisane u ovoj metodi.
The mean coefficient of variation for yield based on measurements of shoot fresh weight (i.e. from test initiation to test termination) and the additional measurement variables (see paragraph 37) in the control cultures do not exceed 35 % between replicates.
Srednji koeficijent varijacije za prirast na temelju mjerenja svježe mase izdanka (od početka do kraja ispitivanja) i dodatnih mjernih varijabli (vidjeti stavak 37.) u kontrolnim kulturama ne prelazi 35 % između ponovljenih uzoraka.
More than 50 % of the replicates of the control group are kept sterile over the exposure period of 14 days, which means visibly free of contamination by other organisms such as algae, fungi and bacteria (clear solution).
Više od 50 % ponovljenih uzoraka kontrolne skupine održavaju se sterilnima, tj. bez vidljivih onečišćenja drugim organizmima kao što su alge, gljivice i bakterije (bistra otopina), tijekom razdoblja izlaganja od 14 dana.
Note: Guidance on how to assess sterility is provided in the ring-test report (4).
Napomena: smjernice o tome kako procijeniti sterilnost dostupne su u izvješću o međulaboratorijskom testu (4.).
Reference chemical(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the ring test (4), may be tested as a mean of checking the test procedure; from the ring test data, the mean EC50-values of 3,5-DCP for the different response variables (see paragraphs 37-41 of this test method) are between 3,2 mg/l and 6,9 mg/l (see ring test report for details about confidence interval for these values).
Referentna kemikalija (ili više njih), kao što je 3,5-diklorofenol, koji je upotrijebljen u međulaboratorijskom testu (4.), može se ispitati radi provjere ispitnog postupka; prema podacima iz međulaboratorijskog testa srednje su vrijednosti EC50 3,5-diklorofenola za različite varijable odgovora (vidjeti stavke 37. – 41. ove ispitne metode) između 3,2 mg/l i 6,9 mg/l (za pojedinosti o intervalu pouzdanosti za te vrijednosti vidjeti izvješće o međulaboratorijskom testu).
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
Sva oprema koja dolazi u dodir s ispitnim medijima trebala bi biti izrađena od stakla ili drugog kemijski inertnog materijala.
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
Staklenu opremu koja se upotrebljava za uzgoj i ispitivanje trebalo bi očistiti od kemijskih onečišćivača koji bi mogli dospjeti u ispitni medij i trebala bi biti sterilna.
The test vessels should be long enough for the shoot in the control vessels to grow in the water phase without reaching the surface of the test medium at the end of the test.
Ispitne posude trebale bi biti dovoljno duge da izdanci u kontrolnim posudama mogu rasti u vodenoj fazi, a da ne dosegnu površinu ispitnog medija na kraju ispitivanja.
Thick-walled borosilicate glass test tubes without lip, inner diameter approximately 20 mm, length approximately 250 mm, with aluminium caps are recommended.
Preporučuju se staklene epruvete s debelim stijenkama od borosilikatnog stakla, bez izljeva na vrhu, unutarnjeg promjera približno 20 mm, duljine približno 250 mm, s aluminijskim čepovima.
Since the modified Andrews' medium contains sucrose (which stimulates the growth of fungi and bacteria), the test solutions have to be prepared under sterile conditions.
Budući da modificirani Andrewsov medij sadržava saharozu (koja potiče rast gljivica i bakterija), ispitne otopine moraju se pripremati u sterilnim uvjetima.
All liquids as well as equipment are sterilised before use.
Sve tekućine i oprema steriliziraju se prije upotrebe.
Sterilisation is carried out via heated air treatment (210 °C) for 4 hours or autoclaving for 20 minutes at 121 °C.
Sterilizacija se provodi tretiranjem zagrijanim zrakom (210 °C) 4 sata ili tretiranjem u autoklavu 20 minuta na 121 °C.
In addition, all flasks, dishes, bowls etc. and other equipment undergo flame treatment at a sterile workbench just prior to use.
Usto, sve tikvice, zdjelice, zdjele i ostala oprema tretiraju se plamenom na sterilnoj radnoj površini neposredno prije upotrebe.
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
To je najlakše postići ako se upotrebljavaju odvojene uzgojne komore, inkubatori ili prostorije.
Illumination and temperature should be controllable and maintained at a constant level.
Trebalo bi se moći kontrolirati osvjetljenje i temperaturu te ih održavati na stalnoj razini.
Myriophyllum spicatum — a submersed aquatic dicotyledon — is a species of the water milfoils family.
Klasasti krocanj (Myriophyllum spicatum), podvodna vodena dvosupnica, vrsta je iz porodice krocanja.
Between June and August, inconspicuous pink-white flowers protrude above the water surface.
Između lipnja i kolovoza njezini sitni ružičasto-bijeli cvjetići izlaze iznad površine vode.