natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Since the modified Andrews' medium contains sucrose (which stimulates the growth of fungi and bacteria), all material, solutions and culturing be conducted under sterile conditions.
Budući da modificirani Andrewsov medij sadržava saharozu (koja potiče rast gljivica i bakterija), potrebni su sterilni uvjeti za pripremu materijala, držanje otopina i uzgoj kultura.
In addition, all flasks, dishes, bowls etc and other equipment undergo flame treatment at the sterile workbench just prior to use.
Usto, sve tikvice, zdjelice, zdjele i ostala oprema tretiraju se plamenom na sterilnoj radnoj površini neposredno prije upotrebe.
Stock cultures can be maintained under reduced illumination and temperature (50 μE m– 2 s– 1, 20 ± 2 °C) for longer times without needing to be re-established.
Osnovne se kulture mogu držati na slabijoj svjetlosti i nižoj temperaturi (50 μE m– 2 s– 1, 20 ± 2 °C) duže vrijeme bez premještanja.
The Myriophyllum growth medium should be the same as that used for testing but other nutrient rich media can be used for stock cultures.
Uzgojni medij za krocanj trebao bi biti isti kao onaj koji se upotrebljava za ispitivanje, ali i drugi mediji bogati hranjivim tvarima mogu se upotrebljavati za osnovne kulture.
The plant segments are distributed axenically over several 500 ml Erlenmeyer or/and 2000 ml Fernbach flasks, each filled with approximately 450 respectively 1000 ml modified Andrews' medium.
Biljni segmenti raspoređuju se aksenično u nekoliko Erlenmeyerovih tikvica od 500 ml ili/i Fernbachovih tikvica od 2000 ml, od kojih je svaka napunjena s približno 450 odnosno 1000 ml modificiranog Andrewsova medija.
Then, the flasks are axenically cellulose plug stoppered.
Zatim se tikvice zatvaraju aksenično celuloznim čepom.
In addition, thorough flame treatment of equipment at the sterile workbench just prior to use is absolutely necessary.
Osim toga, apsolutno je nužno temeljito tretirati opremu plamenom na sterilnoj radnoj površini neposredno prije upotrebe.
Dependent on number and size, the plants are to be transferred into fresh nutrient solution approximately every three weeks.
Biljke treba prenositi u svježu hranjivu otopinu otprilike svaka tri tjedna, ovisno o njihovu broju i njihovoj veličini.
Apices as well as segments of the stem middle part for this renewed culture can be used.
Za tu obnovljenu kulturu mogu se upotrebljavati i apeksi i segmenti srednjeg dijela stabljike.
Number and size of transferred plants (or segments of plants) are dependent on how many plants are needed.
Broj i veličina biljaka (ili segmenata biljaka) koje se prenose ovise o tome koliko je biljaka potrebno.
For example, you can transfer five shoot segments into one Fernbach flask and three shoot segments into one Erlenmeyer flask, each with a length of 5 cm.
Na primjer, može se prenijeti pet dijelova izdanka u Fernbachovu tikvicu, a tri dijela u Erlenmeyerovu tikvicu; svaki je dio dug 5 cm.
Discard any rooted, flowering, dead or otherwise conspicuous parts.
Odbacuju se svi dijelovi s korijenima ili cvjetovima, mrtvi dijelovi te oni s neobičnim značajkama.
Cutting of plants for the stock and pre culture after 3 weeks of cultivation
Rezanje biljaka za osnovnu kulturu i pretkulturu nakon tri tjedana uzgoja.
pre culture
pretkultura
stock culture
osnovna cultura
Culturing of plants is to be performed in 500 ml Erlenmeyer and 2000 ml Fernbach flasks in a cooling incubator at 20 ± 2 °C with continuously light at approximately 100-150 μE m– 2 s– 1 or 6000-9000 Lux (emitted by chamber illumination with colour temperature “warm white light”).
Kulture biljaka treba uzgajati u Erlenmeyerovim tikvicama od 500 ml i Fernbachovim tikvicama od 2000 ml u inkubatoru s hlađenjem na 20 ± 2 °C sa stalnom svjetlošću od otprilike 100 – 150 μE m– 2 s– 1 ili 6000 – 9000 lux (iz izvora sobne rasvjete boje ‚toplo bijelo svjetlo’).
Culturing of plants in a cooling incubator with chamber illumination
Uzgoj biljaka u inkubatoru s hlađenjem sa sobnom rasvjetom.
Chemically clean (acid-washed) and sterile glass culture vessels should be used and aseptic handling techniques employed.
Upotrebljavaju se kemijski čiste (kiselinom očišćene) i sterilne staklene uzgojne posude, a pri rukovanju se primjenjuju aseptički postupci.
In the event of contamination of the stock culture e.g. by algae, fungi and/or bacteria a new culture should be prepared or a stock culture from another laboratory should be used to renewal of the one culture.
U slučaju onečišćenja osnovne kulture npr. algama, gljivicama i/ili bakterijama, treba pripremiti novu kulturu ili upotrijebiti osnovnu kulturu iz drugog laboratorija za obnovu kulture.
MAINTENANCE OF PRE-CULTURE AND PREPARATION OF TEST ORGANISM FOR TESTING
DRŽANJE PRETKULTURE I PRIPREMA ORGANIZAMA ZA ISPITIVANJE
To obtain pre-culture, cut shoots of stock culture into segments with two whorls each; put segments into Fernbach flasks filled with modified Andrews' medium (with 3 % sucrose).
Za dobivanje pretkultura treba izrezati izdanke osnovne kulture u segmente od kojih svaki ima dva pršljena; segmenti se stavljaju u Fernbachove tikvice napunjene modificiranim Andrewsovim medijem (s 3 % saharoze).
Each flask can contain up to 50 shoot segments.
Svaka tikvica može sadržavati do 50 segmenata izdanka.
However, care is to be taken that the segments are vital and do not have any roots and lateral branches or their buds (see figure 1 in Appendix 3).
Ipak, treba paziti da su segmenti vitalni i da nemaju korijenje ni bočne grane ili njihove pupoljke (vidjeti sliku 1. u Dodatku 3.).
The pre-culture organisms are cultured for 14 to 21 days under sterile conditions in an environmental chamber with alternating 16/8 hour light/dark phases.
Organizmi pretkulture uzgajaju se 14 dana – 21 dan u sterilnim uvjetima u komori s izmjeničnim fazama svjetlost/tama od 16/8 sati.
Light intensity selected from the range of 100-150 μE m– 2 s– 1.
Intenzitet svjetlosti odabire se u rasponu 100 – 150 μE m– 2 s– 1.
Since the modified Andrews' medium contains sucrose (which stimulates the growth of algae, fungi and bacteria), test chemical solutions should be prepared and culturing be conducted under sterile conditions.
Budući da modificirani Andrewsov medij sadržava saharozu (koja potiče rast alga, gljivica i bakterija), potrebni su sterilni uvjeti za pripremu otopina ispitivane kemikalije i uzgoj kultura.
In addition, all flasks, dishes, bowls etc. and other equipment undergo flame treatment at the sterile workbench just prior to use.
Usto, sve tikvice, zdjelice, zdjele i ostala oprema tretiraju se plamenom na sterilnoj radnoj površini neposredno prije upotrebe.
Shoots are axenically removed from the pre-culture flasks, choosing material that is as homogeneous as possible.
Izdanci se aksenično uklanjaju iz tikvica s pretkulturama, pri čemu se bira što homogeniji materijal.
Each testing requires at least 60 test organisms (testing with eight test chemical concentrations).
Za svako ispitivanje potrebno je najmanje 60 ispitnih organizama (ispitivanje s osam koncentracija ispitivane kemikalije).
For testing, take fresh lateral branches from pre-cultures, shorten them to 2,5 cm from base (measured with ruler) and transfer them into a beaker containing sterile modified Andrews' medium.
Za ispitivanje se uzimaju svježe bočne grane iz pretkultura, skraćuju se na 2,5 cm od baze (mjerenje pomičnim mjerilom) i prenose u čašu sa sterilnim modificiranim Andrewsovim medijem.
These fresh lateral branches can be used for the sediment-free Myriophyllum spicatum toxicity test.
Te svježe bočne grane mogu se upotrijebiti za ispitivanje toksičnosti klasastog krocnja u sustavu bez sedimenta.
Cutting of plants from the pre culture for the sediment-free Myriophyllum spicatum toxicity test
Rezanje biljaka iz pretkulture za ispitivanje toksičnosti na Myriophyllum spicatum u sustavu bez sedimenta.
waste or further cultivation
svježe bočne grane za ispitivanje
fresh lateral branches for the test
otpad ili daljnji uzgoj kulture
C.51 water-sediment Myriophyllum spicatum toxicity test
C.51. Ispitivanje toksičnosti na klasastom krocnju (Myriophyllum spicatum) u sustavu voda-sediment
This test method is equivalent to the OECD test guideline 239 (2014).
Ova ispitna metoda odgovara Smjernici OECD-a za ispitivanje 239 (2014.).
Test methods are available for the floating, monocotyledonous aquatic plant, Lemna species (1) and for algal species (2).
Dostupne su ispitne metode za plutajuće vodene jednosupnice iz roda Lemna (1.) i za alge (2.).
These methods are routinely used to generate data to address the risk of test chemicals, in particular chemicals with herbicidal activity, to non-target aquatic plant species.
Te se metode često primjenjuju za prikupljanje podataka o rizicima povezanima s ispitivanim kemikalijama, posebice kemikalijama herbicidnog djelovanja, na neciljane vrste vodenog bilja.
However, in some cases, data for additional macrophyte species may be required.
Međutim, u nekim slučajevima mogu biti potrebni podatci za dodatne vrste makrofita.
Recent guidance published from the Society of Environmental Toxicology and Chemistry (SETAC) workshop on Aquatic Macrophyte Risk Assessment for Pesticides (AMRAP) proposed that data for a rooted macrophyte species may be required for test chemicals where Lemna and algae are known not to be sensitive to the mode of action or if partitioning to sediment is a concern, leading to exposure via root uptake (3).
U smjernicama koje su nedavno objavljene kao rezultat radionice Društva za toksikologiju i kemiju okoliša (SETAC) o procjeni rizika od pesticida za vodene makrofite (AMRAP) navedeno je da za ispitivane kemikalije mogu biti potrebni podaci za ukorijenjenu makrofitnu vrstu ako je poznato da alge i vrste iz roda Lemna nisu osjetljive na način djelovanja predmetne kemikalije ili ako postoji mogućnost razdiobe u sedimentu koja bi dovela do izloženosti apsorpcijom kroz korijen (3.).
Based on current understanding and experience, Myriophyllum spp were selected as the preferred species in cases where data are required for a submerged, rooted dicotyledonous species (4) (5) (6).
Na temelju postojećeg znanja i iskustva Myriophyllum spp. odabrane su kao preferirana vrsta u slučajevima kada su potrebni podaci za podvodne ukorijenjene dvosupnice (4., 5., 6.).
The water-sediment Myriophyllum spicatum test method complements the sediment-free Myriophyllum spicatum Toxicity Test (7).
Ispitivanjem toksičnosti na klasastom krocnju (Myriophyllum spicatum) u sustavu voda-sediment nadopunjuje se ispitivanje toksičnosti na klasastom krocnju u sustavu bez sedimenta (7.).
This document describes a test method, which allows assessment of the effects of a test chemical on the rooted, aquatic plant species Myriophyllum spicatum, growing in a water-sediment system.
U ovom dokumentu opisuje se ispitna metoda kojom se mogu procijeniti učinci ispitivane kemikalije na ukorijenjenu vodenu biljnu vrstu klasasti krocanj (Myriophyllum spicatum) u sustavu voda-sediment.
The test method is based partly on existing methods (1) (2) (8) and takes account of recent research related to the risk assessment of aquatic plants (3).
Ispitna metoda djelomično se temelji na postojećim metodama (1., 2., 8.) i u njoj se uzimaju u obzir novija istraživanja povezana s procjenom rizika za vodene biljke (3.).
The water-sediment method has been validated by an international ring-test conducted with Myriophyllum species grown under static conditions, which were exposed to the test chemical through applications made via the water column (9).
Metoda voda-sediment validirana je međunarodnim međulaboratorijskim testom s vrstama krocnja koje su uzgojene u statičkim uvjetima te izložene ispitivanoj kemikaliji u vodenom stupcu (9.).
However, the test system is readily adapted to allow for exposure via spiked sediment or exposure via the water phase in semi-static or pulsed-dose scenarios, although these scenarios have not been formally ring tested.
Međutim, ispitni sustav lako se prilagođava za izlaganje u sedimentu s dodatkom ili izlaganje u vodenoj fazi u polustatičkom sustavu ili sustavu s pulsnim doziranjem, iako te metode nisu formalno ispitane međulaboratorijskim testom.
Furthermore, the general method can be used for other rooted, submerged and emergent species including other Myriophyllum species (e.g. Myriophyllum aquaticum) and Glyceria maxima (10).
Nadalje, opća metoda može se primjenjivati i na druge ukorijenjene podvodne i nadvodne vrste, uključujući druge vrste krocnja (npr. Myriophyllum aquaticum) i veliku pirevinu (Glyceria maxima) (10.).
Modifications of test conditions, design and duration may be required for alternative species.
Za druge vrste može biti potrebno izmijeniti ispitne uvjete, plan i trajanje ispitivanja.
In particular, more work is needed to define appropriate procedures for Myriophyllum aquaticum.
Posebno je potrebno dodatno utvrditi odgovarajuće postupke za Myriophyllum aquaticum.
These options are not presented in detail in this test method, which describes the standard approach for exposure of Myriophyllum spicatum in a static system via the water phase.
U ovoj ispitnoj metodi nisu navedene pojedinosti o tim drugim mogućnostima, nego se opisuje standardni pristup za izlaganje Myriophyllum spicatum u statičkom sustavu u vodenoj fazi.
This test method applies to substances, for which the test method has been validated, (see details in the ring test report (9)) or to formulations or known mixtures.
Ova ispitna metoda primjenjuje se na tvari za koje je ispitna metoda validirana (vidjeti pojedinosti u izvješću o međulaboratorijskom testu (9.)), formulacije ili poznate smjese.
A Myriophyllum test may be conducted to fulfil a Tier 1 data requirement triggered by potential test chemical partitioning to sediment or mode of action/selectivity issues.
Ispitivanje na krocnju može se provesti kako bi se ispunio zahtjev za podatke osnovnog stupnja zbog potencijalne razdiobe u sedimentu ili problema povezanih s načinom djelovanja / selektivnošću ispitivane kemikalije.
Equally, a laboratory-based Myriophyllum test may be required as part of a higher-tier strategy to address concerns over the risk to aquatic plants.
Laboratorijsko ispitivanje na krocnju može biti potrebno i kao dio višestupanjske strategije za preispitivanje mogućih rizika za vodene biljke.
The specific reason for conducting a test will determine the route of exposure (i.e. via water or sediment).
U skladu s konkretnim razlogom za provođenje ispitivanja odredit će se način izlaganja (u vodi ili sedimentu).
Before use of this test method for the testing of a mixture intended for a regulatory purpose, it should be considered whether, and if so why, it may provide adequate results for that purpose.
Prije primjene ove ispitne metode za ispitivanje smjese namijenjeno u regulatornu svrhu trebalo bi razmotriti mogu li se tom metodom osigurati odgovarajući rezultati za tu svrhu, i zašto.
The test is designed to assess chemical-related effects on the vegetative growth of Myriophyllum plants growing in standardised media (water, sediment and nutrients).
Ispitivanje je namijenjeno ocjenjivanju učinaka kemikalija na vegetativni rast krocnja (Myriophyllum) u standardiziranim medijima (voda, sediment i hranjive tvari).
For this purpose, shoot apices of healthy, non-flowering plants are potted in standardised, artificial sediment, which is supplemented with additional nutrients to ensure adequate plant growth, and then maintained in Smart and Barko medium (Appendix 1).
U tu se svrhu vrhovi izdanaka zdravih biljaka bez cvjetova stavljaju u lonce za biljke sa standardiziranim umjetnim sedimentom kojemu se dodaju hranjive tvari kako bi se osigurao prikladan rast biljaka te se potom biljke drže u Smartovu i Barkovu mediju (Dodatak 1.).
After an establishment period to allow for root formation, plants are exposed to a series of test concentrations added to the water column.
Nakon razdoblja potrebnog za formiranje korijena biljke se izlažu nizu ispitnih koncentracija u vodenom stupcu.
Alternatively, exposure via the sediment may be simulated by spiking the artificial sediment with the test chemical and transplanting plants into this spiked sediment.
Alternativno, može se simulirati izlaganje u sedimentu dodatkom ispitivane kemikalije umjetnom sedimentu i presađivanjem biljaka u taj sediment s dodatkom.
In both cases, plants are subsequently maintained under controlled environmental conditions for 14 days.
U oba slučaja biljke se potom drže u kontroliranim okolnim uvjetima 14 dana.
Effects on growth are determined from quantitative assessments of shoot length, fresh weight and dry weight, as well as qualitative observations of symptoms such as chlorosis, necrosis or growth deformities.
Učinci na rast određuju se na temelju kvantitativnih procjena duljine izdanka, svježe mase i suhe mase, kao i kvalitativnih zapažanja simptoma kao što su kloroza, nekroza ili deformacije pri rastu.
To quantify chemical-related effects, growth in the test solutions is compared with the growth of the control plants, and the concentration causing a specified x % inhibition of growth is determined and expressed as the ECx; “x” can be any value depending on the regulatory requirements, e.g. EC10 EC20 and EC50.
Da bi se kvantificirali učinci kemikalije, rast u ispitnim otopinama uspoređuje se s rastom kontrolnih biljaka te se određuje koncentracija koja uzrokuje određeni postotak (x %) inhibicije rasta i izražava se kao ECx; ‚x’ može biti bilo koja vrijednost, ovisno o regulatornim zahtjevima, npr. EC10, EC20, EC50.
Both average specific growth rate (estimated from assessments of shoot length, shoot fresh weight and shoot dry weight) and yield (estimated from the increase in shoot length, shoot fresh weight and shoot dry weight) of untreated and treated plants should be determined.
Trebalo bi odrediti prosječnu specifičnu brzinu rasta (na temelju procjena duljine izdanka, svježe mase izdanka i suhe mase izdanka) i prirast (na temelju povećanja duljine izdanka, svježe mase izdanka i suhe mase izdanka) netretiranih i tretiranih biljaka.
If required, the lowest observed effect concentration (LOEC) and the no observed effect concentration (NOEC) may be statistically determined from estimates of average specific growth rates and yield.
Ako je potrebno, mogu se statistički odrediti i najniža koncentracija s vidljivim učinkom (LOEC) i najviša koncentracija bez vidljivog učinka (NOEC) na temelju procjena prosječnih specifičnih brzina rasta i prirasta.
An analytical method with adequate sensitivity for quantification of the chemicals in the test medium should be available.
Mora biti raspoloživa analitička metoda odgovarajuće osjetljivosti za kvantifikaciju kemikalija u ispitnom mediju.
Information on the test chemical which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, composition in the case of multi-constituent substances, UVCBs, mixtures or formulations, purity, water solubility, stability in water and light, acid dissociation constant (pKa), partition coefficient octanol-water (Kow), if available Kd to sediments, vapour pressure and biodegradability.
Za određivanje ispitnih uvjeta korisno je imati podatke o ispitivanoj kemikaliji kao što su strukturna formula, sastav ako je riječ o tvari s više sastojaka, UVCB tvari, smjesi ili formulaciji, čistoća, topljivost u vodi, stabilnost u vodi i na svjetlosti, konstanta disocijacije kiseline (pKa), koeficijent razdjeljenja oktanol/voda (Kow), ako je dostupan Kd u sedimente, tlak pare i biorazgradivost.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry's Law constant, which will indicate whether significant losses of the test chemical during the test period are likely.
Topljivost u vodi i tlak pare mogu se upotrijebiti za izračunavanje konstante Henryjeva zakona, iz koje se može zaključiti mogu li se u razdoblju ispitivanja očekivati značajni gubitci ispitivane kemikalije.
If losses of the test chemicals are likely, the losses should be quantified and the subsequent steps to control such losses should be documented.
Ako se mogu očekivati gubitci ispitivane kemikalije, treba ih kvantificirati i naznačiti daljnje mjere za kontrolu takvih gubitaka.
Where information on the solubility and stability of the test chemical(s) is uncertain, it is recommended that these properties are assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Ako podaci o topljivosti i stabilnosti ispitivane kemikalije / ispitivanih kemikalija nisu pouzdani, preporučuje se da se one procijene u uvjetima ispitivanja, tj. u uzgojnom mediju te pri temperaturi i osvjetljenju koji će se upotrebljavati tijekom ispitivanja.
Note: when light dependent peroxidising herbicides are tested, the laboratory lighting used should contain the equivalent presence of solar ultraviolet light found in natural sunlight.
Napomena: kada se ispituju herbicidi koji izazivaju peroksidaciju ovisnu o svjetlosti, trebalo bi upotrebljavati laboratorijsku rasvjetu s jednakom količinom solarnog ultraljubičastog svjetla kao u prirodnoj sunčevoj svjetlosti.
The pH should be measured and adjusted in the test medium as appropriate.
pH-vrijednost treba mjeriti i prema potrebi prilagođavati u ispitnom mediju.
The pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or chemicals which are hydrolytically unstable.
Kontrola pH-vrijednosti ispitnog medija posebno je važna, npr. pri ispitivanju metala ili kemikalija koje su hidrolitički nestabilne.
Further guidance for testing chemicals with physical-chemical properties that make them difficult to test is provided in a OECD Guidance Document (11).
Dodatne smjernice za ispitivanje kemikalija čija fizikalno-kemijska svojstva otežavaju ispitivanje nalaze se u Smjernicama OECD-a (11.).
For the test results to be valid, the mean total shoot length and mean total shoot fresh weight in control plants at least double during the exposure phase of the test.
Da bi rezultati ispitivanja bili valjani, srednja ukupna duljina izdanaka i srednja ukupna svježa masa izdanaka kontrolnih biljaka trebaju se najmanje udvostručiti u fazi izlaganja.
In addition, control plants must not show any visual symptoms of chlorosis and should be visibly free from contamination by other organisms such as algae and/or bacterial films on the plants, at the surface of the sediment and in the test medium.
Osim toga, na samim kontrolnim biljkama, na površini sedimenta i u ispitnom mediju ne smije biti vidljivih znakova kloroze ni onečišćenja drugim organizmima kao što su alge i/ili bakterijski filmovi.
The mean coefficient of variation for yield based on measurements of shoot fresh weight (i.e. from test initiation to test termination) in the control cultures does not exceed 35 % between replicates.
Srednji koeficijent varijacije za prirast na temelju mjerenja svježe mase izdanka (od početka do kraja ispitivanja) u kontrolnim kulturama ne bi trebao prelaziti 35 % među ponovljenim uzorcima.
A reference chemical(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the ring test (9), should be periodically tested in order to check the performance of the test procedure over time.
Referentnu kemikaliju (ili više njih), kao što je 3,5-diklorofenol, koji je upotrijebljen u međulaboratorijskom testu (9.), trebalo bi povremeno ispitati radi provjere uspješnosti ispitnog postupka.
The ring test data indicate that the mean EC50 values of 3,5-DCP for the different response variables were between 4,7 and 6,1 mg/l (see the ring-test report for details of anticipated confidence interval around these values).
Prema podacima iz međulaboratorijskog testa srednje su vrijednosti EC50 3,5-diklorofenola za različite varijable odgovora između 4,7 i 6,1 mg/l (za pojedinosti o očekivanom intervalu pouzdanosti za te vrijednosti vidjeti izvješće o međulaboratorijskom testu).
It is advisable to test a reference chemical at least twice a year or, where testing is carried out infrequently, in parallel with the definitive toxicity tests.
Preporučljivo je da se referentna kemikalija ispita barem dvaput godišnje ili, ako se ispitivanje provodi rjeđe, istovremeno s glavnim ispitivanjem toksičnosti.