natgillin/translations-raw huggingface dataset:
2 μl of isolated RNA (test samples and positive control), or 2 μl of RNAse-free water in negative reaction controls, is mixed with forward and reverse primers.
2 μl izolirane RNK (ispitni uzorci i pozitivne kontrole) ili 2 μl vode bez RNAse u negativnim kontrolama reakcija miješa se s uzvodnim i nizvodnim početnicama.
This mixture is denatured by heating at 95 °C for 5 minutes, followed by rapid cooling on ice for at least 5 minutes.
Ta se mješavina denaturira zagrijavanjem na 95 °C tijekom 5 minuta nakon čega slijedi brzo hlađenje na ledu tijekom najmanje 5 minuta.
An appropriate volume of real time one-step RT-PCR master mix for the number of samples to be tested is prepared following manufacturer's instructions.
U skladu sa sljedećim uputama proizvođača priprema se odgovarajući volumen glavne mješavine za RT-PCR u jednom koraku u stvarnom vremenu za niz uzoraka koje je potrebno ispitati.
0,1 μl of probe working stock 50 μM is added to each well containing RNA samples (final concentration of the probe will be 0,25 μM in each well containing RNA samples).
0,1μl radne zalihe sonde 50 μM dodaje se u svaku jažicu koja sadržava uzorke RNK (konačna koncentracija sonde bit će 0,25 μM u svakoj jažici koja sadržava uzorke RNK).
13 μl of real time one-step RT-PCR master mix is distributed in each well on the PCR plate containing the denatured primers and RNA.
13 μl glavne mješavine za RT-PCR u jednom koraku u stvarnom vremenu distribuira se u svaku jažicu na PCR plitici koja sadržava denaturirane početnice i RNK.
The plate is placed in a real time thermal cycler programmed for reverse transcription and cDNA amplification/fluorescence detection.
Plitica se stavlja u ciklični termostat u stvarnom vremenu programiran za obrnutu transkripciju i otkrivanje pojačavanja cDNA/fluorescencije.
Amplification conditions consist of a first reverse-transcription step at 48 °C for 25 minutes, followed by 10 minutes at 95 °C (“hot start”) and 40 cycles of 15 seconds at 95 °C, 35 seconds at 55 °C and 30 seconds at 72 °C (or 40 cycles at 97 °C for 2 seconds and 55 °C for 30 seconds if reagents and thermocycler allowing fast reactions are used).
Uvjeti pojačavanja sastoje se od prvog koraka obrnute transkripcije pri 48 °C tijekom 25 minuta, nakon čega slijedi 10 minuta na 95 °C (‘vrući početak’) i 40 ciklusa od 15 sekundi na 95 °C, 35 sekundi na 55 °C i 30 sekundi na 72 °C (ili 40 ciklusa na 97 °C tijekom 2 sekunde i 55 °C tijekom 30 sekundi ako se upotrebljavaju reagensi i ciklični termostat koji dopuštaju brze reakcije).
Fluorescence data are acquired at the end of the 55 °C step.
Podaci o fluorescenciji prikupljaju se krajem koraka na 55 °C.
The assay is considered not valid if atypical amplification curves are obtained, and must be repeated.
Ako se dobiju atipične krivulje pojačanja, smatra se da test nije valjan te ga se mora ponoviti.
Samples are considered positives, if the Ct value (cycle number at which the fluorescence generated within a reaction crosses the fluorescence threshold) is lower than or equal to the defined Ct threshold (35) within 40 PCR cycles (Ct ≤ 35).
Uzorke se smatra pozitivnima ako je Ct vrijednost (broj ciklusa pri kojem fluorescencija generirana reakcijom premašuje prag fluorescencije) niža od definiranog praga Ct-a (35) ili jednaka njemu u 40 ciklusa PCR-a (Ct ≤ 35).
Samples are considered inconclusive, if the Ct value is higher than the defined Ct threshold (35) within 40 PCR cycles (Ct > 35).
Uzorke se smatra dvojbenima ako je Ct vrijednost viša od definiranog praga Ct-a (35) u 40 ciklusa PCR-a (Ct ≥ 35).
Samples are considered negative, if a horizontal amplification curve is obtained which does not cross the threshold line within 40 PCR cycles.
Uzorke se smatra negativnima ako se dobila horizontalna krivulja pojačanja koja ne prelazi prag u 40 ciklusa PCR-a.
Group-specific real-time RT-PCR by Guthrie et al., 2013 [4]
Grupno specifični RT-PCR u stvarnom vremenu, Guthrie et al., 2013. [4]
Real-time RT-PCR using fluorescence resonance energy transfer (FRET) probes to detect nucleic acid of AHSV.
RT-PCR u stvarnom vremenu koji upotrebljava sonde energetskog prijenosa rezonancije fluorescencije (FRET) za otkrivanje nukleinske kiseline VKK-a.
The AHSV RT-PCR assay described was designed using sequences from a wide variety of currently circulating field strains of AHSV (Quan et al., 2010 [5]).
Opisani test RT-PCR VKK-a osmišljen je uz uporabu nizova iz širokog raspona terenskih sojeva VKK-a koji trenutačno kruže (Quan et al., 2010. [5]).
It also incorporates a proprietary synthetic external control assay to verify proper functioning of the assay components.
On uključuje vlasnički sintetički test vanjske kontrole kojim se provjerava ispravno funkcioniranje komponenti testa.
Kits for the one-step real-time PCR are available commercially.
Oprema za PCR u jednom koraku u stvarnom vremenu dostupna je na tržištu.
forward Primer 5′-AGA-GCT-CTT-GTG-CTA-GCA-GCC-T-3′
uzvodna početnica 5′-AGA-GCT-CTT-GTG-CTA-GCA-GCC-T-3′
reverse Primer 5′-GAA-CCG-ACG-CGA-CAC-TAA-TGA-3′
nizvodna početnica 5′-GAA-CCG-ACG-CGA-CAC-TAA-TGA-3′
MGB-TaqMan probe 5′-FAM-TGC-ACG-GTC-ACC-GCT-MGB-3′
sonda MGB-TaqMan 5′-FAM-TGC-ACG-GTC-ACC-GCT-MGB-3′
Primer and probe mix stock solutions are made up in a 25× concentration at 5 μΜ for the forward and reverse primers and 3 μΜ for the probe.
Radne otopine mješavina početnica i sondi napravljene su u koncentraciji 25× pri 5 μΜ za uzvodne i nizvodne početnice i 3 μΜ za sondu.
A test plate layout should be designed and loaded into the real-time PCR machine software.
Raspored ispitne plitice potrebno je osmisliti i učitati u softver stroja za PCR u stvarnom vremenu.
Using the layout as a guide, 5 μl of RNA samples, including test samples and positive and negative controls, are added to appropriate wells of the plate following the layout.
Upotrebljavajući raspored kao vodilju uzorci 5 μl RNK, uključujući ispitne uzorke te pozitivne i negativne kontrole, dodaju se odgovarajućim jažicama plitica u skladu s rasporedom.
The RNA is denatured by heating at 95 °C for 5 minutes, followed by rapid cooling on ice for at least 3 minutes.
RNK je denaturirana zagrijavanjem na 95 °C tijekom 5 minuta nakon čega slijedi brzo hlađenje na ledu tijekom najmanje 3 minute.
An appropriate volume of real-time one-step RT-PCR master mix for the number of samples to be tested is prepared, following the manufacturer's instructions.
U skladu sa sljedećim uputama proizvođača priprema se odgovarajući volumen glavne mješavine za RT-PCR u jednom koraku u stvarnom vremenu za niz uzoraka koje je potrebno ispitati.
1 μl of 25× primer probe mix stock solution (from point 2.2.1 above) is included in the master mix to give a final concentration in each well of 200 nM for each primer and 120 nM of the probe.
1 μl od 25× radne otopine mješavine početnica i sondi (iz prethodne točke 2.2.1.) uključeno je u glavnu mješavinu kako bi se dobila konačna koncentracija u svakoj jažici od 200 nM za svaku početnicu i 120 nM sonde.
20 μl of the master mix is distributed in each well on the PCR plate containing the denatured RNA.
20 μl glavne mješavine distribuira se u svaku jažicu na PCR plitici koja sadržava denaturiranu RNK.
The plate is placed in a real-time thermal cycler programmed for reverse transcription and cDNA amplification/fluorescence detection as suggested by the manufacturers.
Plitica se stavlja u ciklični termostat u stvarnom vremenu programiran za obrnutu transkripciju i otkrivanje pojačavanja cDNA/fluorescencije, kao što su predložili proizvođači.
Amplification conditions consist of, for example, a first reverse-transcription step at 48 °C for 10 minutes, followed by 10 minutes at 95 °C and 40 cycles of 15 seconds at 95 °C and 45 seconds at 60 °C.
Uvjeti pojačavanja sastoje se, primjerice, od prvog koraka obrnute transkripcije pri 48 °C tijekom 10 minuta, nakon čega slijedi 10 minuta na 95 °C i 40 ciklusa od 15 sekundi na 95 °C te 45 sekundi na 60 °C.
Samples are considered positives, if the normalised fluorescence for the AHSV RT-PCR assay exceeds a 0,1 threshold within 36 PCR cycles in all replicates of a sample.
Uzorke se smatra pozitivnima ako normalizirana fluorescencija za test RT-PCR VKK-a premašuje prag od 0,1 u 36 ciklusa PCR-a u svim ponavljanjima uzorka.
Samples are considered inconclusive, if the normalised fluorescence for the AHSV RT-PCR assay exceeds a 0,1 threshold between 36 and 40 PCR cycles in any replicate of a sample.
Uzorke se smatra dvojbenima ako normalizirana fluorescencija za test RT-PCR VKK-a premašuje prag od 0,1 između 36 i 40 ciklusa PCR-a u svim ponavljanjima uzorka.
Samples are considered negative, if the normalised fluorescence for the AHSV RT-PCR assay did not exceed a 0,1 threshold within 40 PCR cycles in all replicates of a sample and if the normalised fluorescence for the proprietary synthetic external control assay exceeded a 0,1 threshold within 33 PCR cycles.’
Uzorke se smatra negativnima ako normalizirana fluorescencija za test RT-PCR VKK-a nije premašila prag od 0,1 u 40 ciklusa PCR-a u svim ponavljanjima uzorka te ako je normalizirana fluorescencija za vlasnički sintetički test vanjske kontrole premašila prag od 0,1 u 33 ciklusa PCR-a.”
CRC Press, Boca Raton, Florida, USA, 646-650.
CRC Press, Boca Raton, Florida, SAD, 646.–650.
Methods, 125 (1), 55-65.
Methods, 125 (1), 55.–65.
Methods 167, 45-52.
Methods 167, 45.–52.
In addition, most of the national reference laboratories of the European Union Member States use real-time RT-PCR methods, including for the diagnosis of African horse sickness, which have proven to be fit for purpose in the annual Proficiency Test exercises performed from 2009 to 2014.
Osim toga, većina nacionalnih referentnih laboratorija država članica Europske unije upotrebljava metode RT-PCR-a u stvarnom vremenu, uključujući za dijagnostiku konjske kuge, za koje se u godišnjim ispitivanjima osposobljenosti provedenima u razdoblju od 2009. do 2014. pokazalo da su primjerene svrsi.
The report also indicates that outside the Union there are a number of OIE reference laboratories and other laboratories with specific African horse sickness expertise that have implemented at least one of the real-time RT-PCR methods for the detection of African horse sickness genome.
U izvješću je isto tako naznačeno da se izvan Unije nalazi niz referentnih laboratorija OIE i drugih laboratorija koji imaju specifična stručna znanja o konjskoj kugi koji za otkrivanje genoma konjske kuge primjenjuju najmanje jednu metodu RT-PCR-a u stvarnom vremenu.
is the most widely used by laboratories. The method described by Guthrie et al.
Metoda koju su opisali Guthrie et al. 2013.
Agüero M., Gomez-Tejedor C., Angeles Cubillo M., Rubio C., Romero E. and Jimenez-Clavero A. (2008).
Agüero M., Gomez-Tejedor C., Angeles Cubillo M., Rubio C., Romero E. i Jimenez-Clavero A. 2008. Real-time fluorogenic reverse transcription polymerase chain reaction assay for detection of African horse sickness virus.
It has been employed with very good results by the participating national reference laboratories of the European Union Member States in the proficiency tests annually organised by the European Union Reference Laboratory for the period 2009-2015.
Nacionalni referentni laboratoriji država članica Europske unije koji sudjeluju u ispitivanjima osposobljenosti što ih je Referentni laboratorij Europske unije godišnje organizirao tijekom razdoblja od 2009. do 2015. upotrebljavali su ga i dobivali vrlo dobre rezultate.
Moreover, in an international ring trial organised in 2015 in the framework of the OIE reference laboratories network this protocol was ranked very high amongst others.
Osim toga, taj je protokol vrlo visoko rangiran među drugima tijekom međunarodnog interlaboratorijskog istraživanja organiziranog 2015. u okviru mreže referentnih laboratorija OIE-a.
Maree S. and Paweska J.T.
Maree S. i Paweska J.T. 2005.
Preparation of recombinant African horse sickness virus VP7 antigen via a simple method and validation of a VP7-based indirect ELISA for the detection of group-specific IgG antibodies in horse sera.
Preparation of recombinant African horse sickness virus VP7 antigen via a simple method and validation of a VP7-based indirect ELISA for the detection of group-specific IgG antibodies in horse sera.
Development and optimisation of a duplex real-time reverse transcription quantitative PCR assay targeting the VP7 and NS2 genes of African horse sickness virus.
Development and optimisation of a duplex real-time reverse transcription quantitative PCR assay targeting the VP7 and NS2 genes of African horse sickness virus. (Razvoj i optimizacija dvostrukog testa obrnute transkripcije kvantitativnog PCR-a u stvarnom vremenu usredotočenog na gene VP7 i NS2 virusa konjske kuge.
Guthrie AJ, MacLachlan NJ, Joone C, Lourens CW, Weyer CT, Quan M, Monyai MS, Gardner IA.
Guthrie AJ, MacLachlan NJ, Joone C, Lourens CW, Weyer CT, Quan M, Monyai MS, Gardner IA. Diagnostic accuracy of a duplex real-time reverse transcription quantitative PCR assay for detection of African horse sickness virus.
Laviada M.D., Roy P. and Sanchez-Vizcaino J.M (1992b).
Laviada M.D., Roy P. i Sanchez-Vizcaino J.M (1992b). Adaptation and evaluation of an indirect ELISA and inmunoblotting test for African horse sickness antibody detection.
Adaptation and evaluation of an indirect ELISA and immunoblotting test for African horse sickness antibody detection.
(Prilagodba i evaluacija indirektnog testa ELISA i testa imunobloting za otkrivanje protutijela na konjsku kugu.) U: Bluetongue, African Horse Sickness and Related Orbiviruses: Proceedings of the Second International Symposium.
J. Virol.
(Priprema antigena rekombinantnog virusa konjske kuge VP7 jednostavnom metodom i validacija indirektnog testa ELISA utemeljenog na VP7 za otkrivanje grupno specifičnih protutijela IgG u konjskim serumima.) J. Virol.
as well as by Guthrie et al. (2013) should be included in that Annex to make those agent identification tests available for the purpose of pre-movement testing.
Istodobno, postupke RT-PCR-a u stvarnom vremenu kako su ih opisali Agüero et al. 2008. i Guthrie et al. 2013. trebalo bi dodati u taj Prilog kako bi ti testovi za identifikaciju uzročnika bolesti postali dostupni za potrebe testiranja prije premještanja.
Below are some basic steps as described by Guthrie et al. (2013), which can be modified depending upon local/case-specific requirements, kits used and equipment available.
U nastavku su neki osnovni koraci kako su ih opisali Guthrie et al. 2013. koji se mogu izmijeniti ovisno o lokalnim zahtjevima/zahtjevima specifičnima za predmet, upotrijebljena oprema i dostupna oprema.
Real-time fluorogenic reverse transcription polymerase chain reaction assay for detection of African horse sickness virus. J. Vet.
(Test fluorogenske obrnute transkripcije lančane reakcije polimerazom u stvarnom vremenu za otkrivanje virusa konjske kuge.) J. Vet.
Diagnostic accuracy of a duplex real-time reverse transcription quantitative PCR assay for detection of African horse sickness virus. Journal of Virological Methods.
(Dijagnostička točnost dvostrukog testa obrnute transkripcije kvantitativnog PCR-a u stvarnom vremenu za otkrivanje virusa konjske kuge.) Journal of Virological Methods.
See footnote 2. -------------------------------------------------- ANNEX
Vidjeti bilješku 2.
In: Bluetongue, African Horse Sickness and Related Orbiviruses: Proceedings of the Second International Symposium. Walton T.E.
(Bolest plavog jezika, konjska kuga i s njima povezani orbivirusi: rezultati drugog međunarodnog simpozija.) Walton T.E.
Commission Decision (EU) 2016/1846
Odluka Komisije (EU) 2016/1846
on the measure SA.41187 (2015/C) (ex 2015/NN) implemented by Hungary on the health contribution of tobacco industry businesses
o mjeri SA.41187 (2015/C) (ex 2015/NN) koju je provela Mađarska u pogledu zdravstvenog doprinosa poduzeća u sektoru duhanske industrije
(notified under document C(2016) 4049)
(priopćeno pod brojem dokumenta C(2016) 4049)
In March 2015, the Commission became aware of a new health contribution imposed by Hungary on tobacco industry businesses.
U ožujku 2015. Komisija je saznala za novi zdravstveni doprinos koji je Mađarska odredila poduzećima u sektoru duhanske industrije.
By letter of 13 April 2015, the Commission sent an information request to Hungary on that measure, by which it also informed the Hungarian authorities that it would consider issuing a suspension injunction decision in accordance with Article 11(1) of Council Regulation (EC) No 659/1999 [2].
Dopisom od 13. travnja 2015. Komisija je Mađarskoj poslala zahtjev za informacije o toj mjeri kojim je također obavijestila mađarska nadležna tijela da će razmotriti izdavanje naloga za obustavu u skladu s člankom 11. stavkom 1. Uredbe Vijeća (EZ) br. 659/1999 [2].
By letter of 12 May 2015, Hungary responded to that information request.
Dopisom od 12. svibnja 2015. Mađarska je odgovorila na taj zahtjev za informacije.
Hungary did not, however, provide any comments on the possibility of the Commission issuing a suspension injunction.
Međutim Mađarska nije iznijela primjedbe na mogućnost da će Komisija izdati nalog o obustavi.
On 15 July 2015, the Commission informed Hungary that it had decided to initiate the procedure laid down in Article 108(2) of the Treaty on the Functioning of the European Union (hereinafter: ‘the Treaty’) in respect of the health contribution imposed on tobacco industry businesses (the ‘Opening Decision’).
Komisija je 15. srpnja 2015. obavijestila Mađarsku da je odlučila pokrenuti postupak iz članka 108. stavka 2. Ugovora o funkcioniranju Europske unije (dalje u tekstu: „Ugovor”) u pogledu zdravstvenog doprinosa određenog poduzećima u sektoru duhanske industrije („odluka o pokretanju postupka”).
The Commission also ordered the immediate suspension of the measure in the Opening Decision.
Komisija je u odluci o pokretanju postupka naložila i neposrednu obustavu mjere.
By that decision, the Commission invited interested parties to submit their comments on the measure.
Komisija je u toj odluci pozvala zainteresirane strane da dostave svoje primjedbe na mjeru.
The Commission received comments from two interested parties.
Komisija je zaprimila primjedbe od dviju zainteresiranih strana.
On 20 October 2015, the Commission forwarded those comments to Hungary, which was given the opportunity to react.
Komisija je 20. listopada 2015. proslijedila te primjedbe Mađarskoj koja je dobila priliku na njih odgovoriti.
Hungary did not react to those comments.
Mađarska nije odgovorila na te primjedbe.
On 16 December 2014, the Hungarian Parliament adopted Act XCIV of 2014 on the health contribution for the year 2015 of tobacco industry businesses (‘the Act’).
Mađarski parlament donio je 16. prosinca 2014. Zakon br. XCIV iz 2014. o zdravstvenom doprinosu poduzeća u sektoru duhanske industrije za 2015. godinu („Zakon”).
The Act imposes a tax, referred to as a ‘health contribution’, which is levied on the annual turnover derived from the production and trade of tobacco products in Hungary and applies in addition to existing business taxes in Hungary, in particular, corporate income tax.
Zakonom se određuje porez, pod nazivom „zdravstveni doprinos”, koji se naplaćuje na godišnji promet od proizvodnje i trgovine duhanskim proizvodima u Mađarskoj i primjenjuje se uz postojeće poreze koje plaćaju poduzeća u Mađarskoj, posebno porez na dobit.
The tax is levied on authorised warehouse keepers, importers, and registered traders of tobacco products.
Porez se naplaćuje ovlaštenim voditeljima skladišta, uvoznicima i registriranim trgovcima duhanskim proizvodima.
The stated purpose of the Act is to collect funds for the financing of the health system to increase the quality of health services.
Navedena svrha zakona jest prikupiti sredstva za financiranje zdravstvenog sustava u cilju poboljšanja kvalitete zdravstvenih usluga.
The health contribution tax is due on the annual turnover generated in the year previous to the tax year derived from the production and trade of tobacco products in Hungary, on the condition that the turnover from these activities accounts for at least 50 % of the total annual turnover generated by the undertaking.
Porez za zdravstveni doprinos plaća se na temelju godišnjeg prometa ostvarenog u Mađarskoj od proizvodnje duhanskih proizvoda i njihove prodaje u godini koja prethodi poreznoj godini pod uvjetom da promet od tih djelatnosti čini najmanje 50 % ukupnog godišnjeg prometa tog poduzetnika.
No deduction of costs is provided, apart from the cost of certain investments in the tax year.
Nije predviđeno odbijanje troškova, osim troškova određenih ulaganja u poreznoj godini.
The health contribution tax is progressive in nature.
Porez za zdravstveni doprinos progresivne je prirode.
The applicable contribution depends on the annual turnover of the taxpayer as follows:
Primjenjivi doprinos ovisi o godišnjem prometu poreznog obveznika kako slijedi:
for the part of the turnover below HUF 30 billion: 0,2 % with a minimum of HUF 30 million,
Za dio prometa niži od 30 milijardi HUF: 0,2 % uz minimum od 30 milijuna HUF
for the part of the turnover between HUF 30 billion and 60 billion: 2,5 %,
Za dio prometa između 30 milijardi HUF i 60 milijardi HUF: 2,5 %
for the part of the turnover exceeding HUF 60 billion: 4,5 %.
Za dio prometa koji premašuje 60 milijardi HUF: 4,5 %
Pursuant to Section 6(6) of the Act, the tax liability resulting from the health contribution tax can be reduced by up to 80 % of the payable contribution if the company makes investments that comply with the definition set out in point 7 of Article 3(4) of Act C of 2000 on Accounting [4].
U skladu s člankom 6. stavkom 6. Zakona, porezna obveza koja proizlazi iz poreza za zdravstveni doprinos može se smanjiti za do 80 % plativog doprinosa ako trgovačko društvo izvrši ulaganja koja su u skladu s definicijom iz članka 3. stavka 4. točke 7. Zakona C o računovodstvu iz 2000.
The reduction is equal to the positive difference between 30 % of the amount accounted for as an investment in the tax year and the amount of State or EU subsidy used for the implementation of the investment project.
Smanjenje je jednako pozitivnoj razlici između 30 % iznosa obračunanog kao ulaganje u poreznoj godini i iznosa državne subvencije ili subvencije EU-a koja se upotrebljava za provedbu investicijskog projekta.
The Act provides that a tax declaration has to be submitted by 30 June 2015 and that the health contribution tax has to be paid in 30 days following this deadline.
Zakonom je predviđeno da se porezna prijava mora podnijeti do 30. lipnja 2015. te da se porez za zdravstveni doprinos mora platiti u roku od 30 dana nakon tog roka.
THE FORMAL INVESTIGATION PROCEDURE
FORMALNI ISTRAŽNI POSTUPAK
Grounds for initiating the formal investigation procedure
Osnove za pokretanje formalnog istražnog postupka
The Commission opened the formal investigation procedure because it reached the preliminary conclusion that the progressive structure of the health contribution (rates and turnover brackets) and the provisions on the reduction of the tax liability on the condition of making certain investments (hereafter collectively referred to as: ‘the contested measures’) constituted unlawful and incompatible State aid.
Komisija je pokrenula formalni istražni postupak jer je donijela preliminarni zaključak da progresivna struktura zdravstvenog doprinosa (stope i skupine po iznosu prometa) i odredbe kojima se porezne obveze smanjuju pod uvjetom provođenja određenih ulaganja (dalje u tekstu zajedno: „sporne mjere”) čine nezakonitu i nespojivu državnu potporu.
The Commission was of the opinion that the progressive tax rates laid down by the Act differentiate between undertakings based on their turnover and grant a selective advantage to undertakings with low turnover and thus smaller undertakings.
Komisija je smatrala da se progresivnim poreznim stopama propisanima Zakonom stvara razlika među poduzetnicima na temelju njihova prometa i da se osigurava selektivna prednost poduzetnicima s malim obujmom prometa, odnosno manjim poduzetnicima.