natgillin/translations-raw huggingface dataset:
24 eggs in dilution water as negative control on one plate.
24 jajašca u jednu pločicu u vodu za razrjeđivanje kao negativna kontrola.
Apical observations performed on each tested embryo include: coagulation of embryos, lack of somite formation, non-detachment of the tail, and lack of heartbeat (Table 1).
Apikalna zapažanja koja se provode za svaki ispitni embrij jesu sljedeća: koagulacija embrija, izostanak formiranja somita, neodvajanje repa i izostanak otkucaja srca (tablica 1.).
These observations are used for the determination of lethality: Any positive outcome in one of these observations means that the zebrafish embryo is dead.
Na temelju tih zapažanja utvrđuje se smrtnost: svaki pozitivan ishod u jednome od tih zapažanja znači da je embrij zebrice mrtav.
Additionally, hatching is recorded in treatment and control groups on a daily basis starting from 48 hrs.
Usto, svakodnevno se bilježi valjenje u tretiranim i kontrolnim skupinama, s početkom nakon 48 sati.
Observations are recorded every 24 hrs, until the end of the test.
Zapažanja se bilježe svaka 24 sata do kraja ispitivanja.
Apical observations of acute toxicity in zebrafish embryos 24-96 hrs post fertilisation
Apikalna zapažanja akutne toksičnosti u embrija zebrica 24 sata – 96 sati nakon oplodnje.
Exposure times
Vrijeme izlaganja
24 hrs
24 sata
48 hrs
48 sati
72 hrs
72 sata
96 hrs
96 sati
Coagulated embryos
Koagulacija embrija
Lack of somite formation
Izostanak formiranja somita
Non-detachment of the tail
Neodvajanje korijena repa u bočnom prikazu
Lack of heartbeat
Izostanak otkucaja srca
Coagulation of the embryo: Coagulated embryos are milky white and appear dark under the microscope (see Appendix 5, Fig. 1).
Koagulacija embrija: Koagulirani su embriji mliječno bijele boje, a pod mikroskopom izgledaju tamni (vidjeti Dodatak 5. sliku 1.).
The number of coagulated embryos is determined after 24, 48, 72 and 96 hrs.
Broj koaguliranih embrija određuje se nakon 24, 48, 72 i 96 sati.
Lack of somite formation: At 26 ± 1 °C, about 20 somites have formed after 24 hrs (see Appendix 5, Figure 2) in a normally developing zebrafish embryo.
Izostanak formiranja somita: Pri temperaturi od 26 ± 1 °C nakon 24 sata u embrija zebrice koji se normalno razvija formirano je 20-ak somita (vidjeti Dodatak 5. sliku 2.).
A normally developed embryo shows spontaneous movements (side-to-side contractions).
U embrija koji se normalno razvija uočljivi su spontani pokreti (s jedne na drugu stranu).
Spontaneous movements indicate the formation of somites.
Spontani pokreti upućuju na formiranje somita.
The absence of somites is recorded after 24, 48, 72 and 96 hrs.
Nepostojanje somita bilježi se nakon 24, 48, 72 i 96 sati.
Non-formation of somites after 24 hrs might be due to a general retardation of development.
Ako se somiti ne formiraju nakon 24 sata, to može biti znak općeg zastoja u razvoju.
At latest after 48 hrs, the formation of somites should be developed.
Najkasnije nakon 48 sati somiti bi trebali biti razvijeni.
If not, the embryos are considered dead.
U protivnom se zameci smatraju mrtvima.
Non-detachment of the tail: In a normally developing zebrafish embryo, detachment of the tail (seeAppendix 5, Figure 3) from the yolk is observed following posterior elongation of the embryonic body.
Neodvajanje repa: U embrija zebrice koji se normalno razvija odvajanje repa (vidjeti Dodatak 5. sliku 3.) od žumanjčane vrećice zamjećuje se nakon produljenja stražnjeg dijela embrionalnog tijela.
Absence of tail detachment is recorded after 24, 48, 72 and 96 hrs.
Neodvajanje repa bilježi se nakon 24, 48, 72 i 96 sati.
Lack of heartbeat: In a normally developing zebrafish embryo at 26 ± 1 °C, the heartbeat is visible after 48 hrs (see Appendix 5, Figure 4).
Izostanak otkucaja srca: U embrija zebrice koji se normalno razvija pri temperaturi od 26 ± 1 °C otkucaji srca zamjećuju se nakon 48 sati (vidjeti Dodatak 5. sliku 4.).
Particular care should be taken when recording this endpoint, since irregular (erratic) heartbeat should not be recorded as lethal.
Bilježenje ove krajnje točke trebalo bi provoditi posebno pažljivo jer nepravilne otkucaje srca ne bi trebalo bilježiti kao smrtonosne.
Moreover, visible heartbeat without circulation in aorta abdominalis is considered non-lethal.
Nadalje, vidljivi otkucaji srca bez cirkulacije u trbušnoj aorti (aorta abdominalis) ne smatraju se smrtonosnima.
To record this endpoint, embryos showing no heartbeat should be observed under a minimum magnification of 80x for at least one minute.
Pri bilježenju ove krajnje točke embrije u kojih nisu vidljivi otkucaji srca trebalo bi promatrati pod povećanjem od najmanje 80 puta najmanje jednu minutu.
Absence of heartbeat is recorded after 48, 72 and 96 hrs.
Izostanak otkucaja srca bilježi se nakon 48, 72 i 96 sati.
Hatching rates of all treatment and control groups should be recorded from 48 hrs onwards and reported.
Stope valjenja svih tretiranih i kontrolnih skupina trebalo bi bilježiti od 48 sati nadalje i uvrstiti u izvješća.
Although hatching is not an endpoint used for the calculation of the LC50, hatching ensures exposure of the embryo without a potential barrier function of the chorion, and as such may help data interpretation.
Iako se valjenje ne primjenjuje kao krajnja točka za izračun LC50, njime se osigurava izloženost embrija bez potencijalne zaštitne funkcije koriona, što može pomoći u tumačenju podataka.
Detailed descriptions of the normal (35) and examples of abnormal development of zebrafish embryos are illustrated in Appendixes 3 and 5.
Dodaci 3. i 5. sadržavaju detaljan opis normalnog (35.) i primjere abnormalnog razvoja embrija zebrica.
At the beginning and at the end of the test, pH, total hardness and conductivity in the control(s) and in the highest test chemical concentration are measured.
Na početku i na kraju ispitivanja mjere se pH, ukupna tvrdoća i vodljivost u kontroli/kontrolama i u najvišoj koncentraciji ispitivane kemikalije.
In semi-static renewal systems the pH should be measured prior to and after water renewal.
U polustatičkim sustavima s obnavljanjem trebalo bi izmjeriti pH prije i nakon obnavljanja vode.
The dissolved oxygen concentration is measured at the end of the test in the negative controls and highest test concentration with viable embryos, where it should be in compliance with the test validity criteria (see paragraph 8f).
Koncentracija otopljenog kisika mjeri se na kraju ispitivanja u negativnim kontrolama i u najvišoj ispitnoj koncentraciji s iskoristivim embrijima, gdje bi trebala biti u skladu s kriterijima valjanosti ispitivanja (vidjeti stavak 8. točku (f)).
If there is concern that the temperature varies across the 24-well plates, temperature is measured in three randomly selected vessels.
Ako postoji mogućnost da temperatura nije jednaka u svim pločama s 24 bunarića, ona se mjeri u tri nasumično odabrane posude.
Temperature should be recorded preferably continuously during the test or, as a minimum, daily.
Temperaturu bi trebalo bilježiti po mogućnosti stalno za vrijeme ispitivanja, a barem jednom dnevno.
In a static system, the concentration of the test chemical should be measured, as a minimum, in the highest and lowest test concentrations, but preferably in all treatments, at the beginning and end of the test.
U statičkom sustavu koncentraciju ispitivane kemikalije trebalo bi mjeriti barem u najvišoj i najnižoj ispitnoj koncentraciji, a po mogućnosti u svim tretiranim skupinama, na početku i na kraju ispitivanja.
In semi-static (renewal) tests where the concentration of the test chemical is expected to remain within ± 20 % of the nominal values, it is recommended that, as a minimum, the highest and lowest test concentrations be analysed when freshly prepared and immediately prior to renewal.
U polustatičkom ispitivanju (s obnavljanjem), ako se očekuje da će koncentracija ispitivane kemikalije ostati u granicama od ± 20 % nazivnih vrijednosti, preporučuje se da se barem najviša i najniža ispitna koncentracija analiziraju odmah nakon pripreme te neposredno prije obnavljanja.
For tests where the concentration of the test chemical is not expected to remain within ± 20 % of nominal, all test concentrations must be analysed when freshly prepared and immediately prior to renewal.
U ispitivanju u kojem se predviđa da koncentracija ispitivane kemikalije neće ostati u granicama od ± 20 % nazivne vrijednosti moraju se analizirati sve ispitne koncentracije odmah nakon pripreme te neposredno prije obnavljanja.
In case of insufficient volume for analysis, merging of test solutions, or use of surrogate chambers being of the same material and having the same volume to surface area ratios as 24-well plates, may be useful.
U slučaju nedostatne količine za analizu može biti korisno spojiti ispitne otopine ili upotrijebiti zamjenske komore koje su izrađene od istog materijala te imaju isti omjer volumena i površine kao ploče s 24 bunarića.
It is strongly recommended that results be based on measured concentrations.
Preporučuje se da se rezultati svakako temelje na izmjerenim koncentracijama.
When the concentrations do not remain within 80-120 % of the nominal concentration, the effect concentrations should be expressed relative to the geometric mean of the measured concentrations; see Chapter 5 in the OECD Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of Difficult Substances and Mixtures for more details (28).
Ako koncentracije ne ostanu unutar 80 – 120 % nazivne koncentracije, koncentracije koje imaju određeni učinak trebalo bi izraziti u odnosu na geometrijsku sredinu izmjerenih koncentracija; za više pojedinosti vidjeti 5. poglavlje Smjernica OECD-a za ispitivanje toksičnosti analitički zahtjevnih tvari i smjesa za vodene organizme (28.).
LIMIT TEST
ISPITIVANJE GRANIČNE KONCENTRACIJE
Using the procedures described in this test method, a limit test may be performed at 100 mg/l of test chemical or at its limit of solubility in the test medium (whichever is the lower) in order to demonstrate that the LC50 is greater than this concentration.
Uz primjenu postupaka opisanih u ovoj ispitnoj metodi može se provesti ispitivanje granične koncentracije pri koncentraciji od 100 mg/l ispitivane kemikalije ili pri granici topljivosti te kemikalije u ispitnom mediju (tj. pri nižoj od te dvije koncentracije) kako bi se dokazalo da je srednja smrtonosna koncentracija (LC50) viša od te koncentracije.
The limit test should be performed using 20 embryos in the treatment, the positive control and –if necessary- in the solvent control and 24 embryos in the negative control.
Ispitivanje granične koncentracije trebalo bi provesti s po 20 embrija u tretiranoj skupini, pozitivnoj kontroli i, prema potrebi, kontroli s otapalom, te 24 embrija u negativnoj kontroli.
If the percentage of lethality at the concentration tested exceeds the mortality in the negative control (or solvent control) by 10 %, a full study should be conducted.
Ako je smrtnost pri ispitivanoj koncentraciji za 10 % veća od smrtnosti u negativnoj kontroli (ili kontroli s otapalom), trebalo bi provesti cjelovitu studiju.
Any observed effects should be recorded.
Treba zabilježiti sve zamijećene učinke.
If mortality exceeds 10 % in the negative control (or solvent control), the test becomes invalid and should be repeated.
Ako je smrtnost u negativnoj kontroli (ili kontroli s otapalom) veća od 10 %, ispitivanje nije valjano i treba ga ponoviti.
In this test, the individual wells are considered independent replicates for statistical analysis.
U ovom ispitivanju pojedinačni bunarići smatraju se neovisnim ponovljenim uzorcima za statističku analizu.
The percentages of embryos for which at least one of the apical observations is positive at 48 and/or 96 hrs are plotted against test concentrations.
Izrađuje se grafički prikaz postotka embrija za koje je nakon 48 i/ili 96 sati utvrđen pozitivan ishod najmanje jednog apikalnog zapažanja u odnosu na ispitne koncentracije.
For calculation of the slopes of the curve, LC50 values and the confidence limits (95 %), appropriate statistical methods should be applied (38) and the OECD Guidance Document on Current Approaches in the Statistical Analysis of Ecotoxicity Data should be consulted (39).
Za izračun nagiba krivulje, vrijednosti srednje smrtonosne koncentracije (LC50) i granica pouzdanosti (95 %) trebalo bi primijeniti odgovarajuće statističke metode (38.) te proučiti Smjernice OECD-a o aktualnim pristupima u statističkoj analizi podataka o ekotoksičnosti (39.).
chemical identification, such as IUPAC or CAS name, CAS number, SMILES or InChI code, structural formula, purity, chemical identity of impurities as appropriate and practically feasible, etc. (including the organic carbon content, if appropriate).
podaci za kemijsku identifikaciju tvari, kao što su IUPAC ili CAS naziv, CAS broj, oznaka SMILES ili InChI, strukturna formula, čistoća, kemijski identitet nečistoća prema potrebi i ako je praktički izvedivo itd. (uključujući udio organskog ugljika, prema potrebi),
test procedure used (e.g., semi-static renewal);
ispitni postupak (npr. polustatičko ispitivanje s obnavljanjem),
photoperiod;
fotoperiod,
test design (e.g., number of test chambers, types of controls);
plan ispitivanja (npr. broj ispitnih komora, vrste kontrole),
water quality characteristics in fish maintenance (e.g. pH, hardness, temperature, conductivity, dissolved oxygen);
obilježja kvalitete vode za držanje riba (npr. pH, tvrdoća, temperatura, vodljivost, otopljeni kisik),
dissolved oxygen concentration, pH, total hardness, temperature and conductivity of the test solutions at the start and after 96 hrs;
koncentracija otopljenog kisika, pH, ukupna tvrdoća, temperatura i vodljivost ispitnih otopina na početku i nakon 96 sati,
method of preparation of stock solutions and test solutions as well as frequency of renewal;
način pripreme matičnih otopina i ispitnih otopina te učestalost obnavljanja,
justification for use of solvent and justification for choice of solvent, if other than water;
obrazloženje za upotrebu otapala i obrazloženje za odabir otapala (ako nije voda),
the nominal test concentrations and the result of all analyses to determine the concentration of the test chemical in the test vessels; the recovery efficiency of the method and the limit of quantification (LoQ) should also be reported;
nazivne ispitne koncentracije i rezultati svih analiza za određivanje koncentracije ispitivane kemikalije u ispitnim posudama; trebalo bi navesti i učinkovitost izdvajanja ispitivane tvari pri primjeni metode te granicu kvantifikacije (LoQ),
evidence that controls met the overall survival validity criteria;
dokaz da kontrole ispunjavaju opće kriterije valjanosti za preživljavanje,
fertilisation rate of the eggs;
stopa oplodnje jajašaca,
hatching rate in treatment and control groups.
stopa valjenja u tretiranim i kontrolnim skupinama.
maximum concentration causing no mortality within the duration of the test;
najviša koncentracija koja ne izaziva smrtnost u razdoblju ispitivanja,
minimum concentration causing 100 % mortality within the duration of the test;
najniža koncentracija koja izaziva 100 %-tnu smrtnost u razdoblju ispitivanja,
cumulative mortality for each concentration at the recommended observation times;
ukupna smrtnost u svakoj koncentraciji u svakom preporučenom vremenu promatranja,
the LC50 values at 96 hrs (and optionally at 48 hrs) for mortality with 95 % confidence limits, if possible;
vrijednosti LC50 nakon 96 sati (i eventualno nakon 48 sati) za smrtnost s granicama pouzdanosti od 95 %, ako je to moguće,
graph of the concentration-mortality curve at the end of the test;
graf krivulje za odnos koncentracija i smrtnosti na kraju ispitivanja,
mortality in the controls (negative controls, internal plate controls, as well as positive control and any solvent control used);
smrtnost u kontrolama (negativne kontrole, kontrole unutar ploče, pozitivne kontrole i sve upotrijebljene kontrole s otapalom),
data on the outcome of each of the four apical observations;
podaci o ishodima svakog od četiri apikalna zapažanja,
incidence and description of morphological and physiological abnormalities, if any (see examples provided in Appendix 5, Figure 2);
pojava i opis morfoloških i fizioloških anomalija, ako ih ima (vidjeti primjere navedene u Dodatku 5. slici 2.),
incidents in the course of the test which might have influenced the results;
svi događaji tijekom ispitivanja koji su možda utjecali na rezultate,
statistical analysis and treatment of data (probit analysis, logistic regression model and geometric mean for LC50);
statistička analiza i obrada podataka (probit analiza, logistički regresijski model i geometrijska sredina za LC50),
slope and confidence limits of the regression of the (transformed) concentration-response curve.
nagib i granice pouzdanosti regresije (transformirane) krivulje koncentracija-odgovor.
Any deviation from the test method and relevant explanations.
Sva odstupanja od ispitne metode i odgovarajuća objašnjenja.
Discussion and interpretation of results.
Diskusija i tumačenje rezultata.
OECD (2011) Validation Report (Phase 1) for the Zebrafish Embryo Toxicity Test: Part I and Part II.
OECD (2011) Validation Report (Phase 1) for the Zebrafish Embryo Toxicity Test: Part I and Part II. Series on Testing and Assessment No.
Series on Testing and Assessment No. 157, OECD, Paris.
157, OECD, Paris.
OECD (2012) Validation Report (Phase 2) for the Zebrafish Embryo Toxicity Test: Part I and Part II (Annexes).
OECD (2012) Validation Report (Phase 2) for the Zebrafish Embryo Toxicity Test: Part I and Part II (Annexes). Series on Testing and Assessment No.
Series on Testing and Assessment No. 179, OECD, Paris.
179, OECD, Paris.
Environmental Toxicology and Chemistry 32: 1768-1783. .
Environmental Toxicology and Chemistry 32: 1768-1783.
Pharmacol.: 149 (2), 196-209
Pharmacol.: 149 (2), 196-209.
Chapter C.4 of this Annex: Ready Biodegradability.
Poglavlje C.4. ovog Priloga: Laka biorazgradivost.
Chapter C.29 of this Annex: Ready Biodegradability, CO2 in sealed vessels.
Poglavlje C.29. ovog Priloga: Laka biorazgradivost – CO2 u začepljenim posudama.
Chapter C.48 of this Annex: Fish Short Term Reproduction Assay.. See Appendix 4a.
Poglavlje C.48. ovog Priloga: Kratkoročni reprodukcijski test na ribama. Vidjeti Dodatak 4.a.
35, 4097–4102.
35, 4097-4102.
Available: [http://www.iso.org].
Dostupno na: [http://www.iso.org].
Series on Testing and Assessment No. 23, OECD, Paris.
23, OECD, Paris.
European Union (2010) Directive 2010/63/EU of the European Parliament and Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes (OJ L 276, 20.10.2010, p. 33).
Europska unija (2010.): Direktiva 2010/63/EU Europskog parlamenta i Vijeća od 22. rujna 2010. o zaštiti životinja koje se koriste u znanstvene svrhe. Službeni list Europske unije, L 276: 33. – 79.; 20.10.2010.
Chapter C.2 of this Annex: Daphnia sp., Acute Immobilistaion Test.
Poglavlje C.2. ovog Priloga: Test akutne imobilizacije Daphnia sp.
Series on Testing and Assessment No. 54.
Series on Testing and Assessment No.
Detailed review paper “Fish embryo toxicity assays”.
Detaljni pregled ‚Fish embryo toxicity assays’.
Apical endpoint
Apikalna krajnja točka
Causing effect at population level.
uzrokuje učinke na razini populacije.
A cellular formation around the animal pole that covers a certain part of the yolk.
stanična formacija oko animalnog pola koja obuhvaća određeni dio žumanjka.
A substance or a mixture
tvar ili smjesa.
Epiboly
Epibolija
is a massive proliferation of predominantly epidermal cells in the gastrulation phase of the embryo and their movement from the dorsal to the ventral side, by which entodermal cell layers are internalised in an invagination-like process and the yolk is incorporated into the embryo.
veliko umnožavanje pretežno epidermalnih stanica u fazi gastrulacije embrija i njihovo premještanje s dorzalne na ventralnu stranu, čime se entodermalni slojevi stanica uvlače u procesu sličnom invaginaciji i žumanjak se ugrađuje u embrij.
Flow-through test
Protočno ispitivanje
A test with continued flow of test solutions through the test system during the duration of exposure.
test sa stalnim protokom ispitne otopine kroz ispitni sustav za vrijeme izlaganja.
Internal Plate Control
Kontrola unutar ploče
Internal control consisting of 4 wells filled with dilution water per 24-well plate to identify potential contamination of the plates by the manufacturer or by the researcher during the procedure, and any plate effect possibly influencing the outcome of the test (e.g. temperature gradient).
unutarnja kontrola koja se sastoji od 4 bunarića napunjena vodom za razrjeđivanje po ploči s 24 bunarića radi utvrđivanja moguće kontaminacije ploča koju prouzroči proizvođač ili istraživač tijekom postupka i svih učinaka na ploču koji mogu utjecati na rezultat ispitivanja (npr. promjena temperature).
International Union of Pure and Applied Chemistry
Međunarodna unija za čistu i primijenjenu kemiju
Maintenance water
Voda za držanje
Water in which the husbandry of the adult fish is performed.
voda u kojoj se drže odrasle ribe.
Median Lethal Concentration (LC50)
Medijan smrtonosne koncentracije (LC50)
The concentration of a test chemical that is estimated to be lethal to 50 % of the test organisms within the test duration.
koncentracija ispitivane kemikalije koja je procijenjena kao smrtonosna za 50 % ispitnih organizama za vrijeme ispitivanja.
Semi-static renewal test
Polustatičko ispitivanje s obnavljanjem
A test with regular renewal of the test solutions after defined periods (e.g., every 24 hrs).
ispitivanje s redovitim obnavljanjem ispitne otopine nakon određenih razdoblja (npr. svaka 24 sata).
Somite
Somit
In the developing vertebrate embryo, somites are masses of mesoderm distributed laterally to the neural tube, which will eventually develop dermis (dermatome), skeletal muscle (myotome), and vertebrae (sclerotome).
u embriju kralježnjaka koji se razvija somiti su nakupine mezoderma raspoređene na lateralnom dijelu neuralne cijevi iz kojih se s vremenom razvijaju dermis (dermatom), skeletni mišići (miotom) i kralješci (sklerotom).
Static test
Statičko ispitivanje
A test in which test solutions remain unchanged throughout the duration of the test.
ispitivanje u kojem ispitne otopine ostaju nepromijenjene tijekom cijelog ispitivanja.
Any substance or mixture tested using this test method
bilo koja tvar ili smjesa koja se ispituje ovom ispitnom metodom.
Substances of unknown or variable composition, complex reaction products or biological materials
tvari nepoznatog ili promjenjivog sastava, složeni reakcijski proizvodi i biološki materijali.
MAINTENANCE, BREEDING AND TYPICAL CONDITIONS FOR ZEBRAFISH EMBRYO ACUTE TOXICITY TESTS
DRŽANJE, UZGOJ I TIPIČNI UVJETI ZA ISPITIVANJA AKUTNE TOKSIČNOSTI NA EMBRIJIMA ZEBRICA
Zebrafish (Danio rerio)
Zebrica (Danio rerio)
Origin of species
Podrijetlo vrste
India, Burma, Malakka, Sumatra
Indija, Burma, Melaka, Sumatra
Sexual dimorphism
Spolni dimorfizam
Females: protruding belly, when carrying eggs
Ženke: izbočen trbuh kada nose jajašca
Males: more slender, orange tint between blue longitudinal stripes (particularly evident at the anal fin)
Mužjaci: tanji, narančasta nijansa između plavih vodoravnih pruga (posebno očita na analnoj peraji)
Dry flake food (max. 3 % fish weight per day) 3 - 5 times daily; additionally brine shrimp (Artemia spec.) nauplii and/or small daphnids of appropriate size obtained from an uncontaminated source.
Suha hrana u listićima (najviše 3 % težine ribe po danu) 3 – 5 puta dnevno; usto ličinke (nauplii) račića Artemia i/ili male vodenbuhe odgovarajuće veličine dobivene iz nekontaminiranih izvora.
Feeding live food provides a source of environmental enrichment and therefore live food should be given wherever possible.
Živom se hranom bogati okoliš i stoga bi kad god je to moguće trebalo davati živu hranu.
To guarantee for optimal water quality, excess food and faeces should be removed approx. one hour after feeding.
Kako bi se osigurala optimalna kvaliteta vode, trebalo bi ukloniti višak hrane i izmet otprilike jedan sat nakon hranjenja.
Approximate weight of adult fish
Približna težina odraslih riba
Females: 0,65 ± 0,13 g
Ženke: 0,65 ± 0,13 g
Males: 0,5 ± 0,1 g
Mužjaci: 0,5 ± 0,1 g
Maintenance of parental fish
Držanje uzgojnih riba