natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Yield is value of a measurement variable to express biomass at the end of the exposure period minus the measurement variable at the start of the exposure period.
Prirast je vrijednost mjerne varijable kojom se izražava razlika između biomase na kraju razdoblja izlaganja i mjerne varijable na početku razdoblja izlaganja.
Description of Lemna spp.
Opis Lemna spp.
The aquatic plant commonly referred to as duckweed, Lemna spp., belongs to the family Lemnaceae which has a number of world-wide species in four genera.
Vodena biljka poznata pod nazivom vodena leća, Lemna spp., pripada porodici Lemnaceae, u koju se ubrajaju različite vrste diljem svijeta koje su podijeljene u četiri roda.
Their different appearance and taxonomy have been exhaustively described (1)(2).
Njihov izgled i taksonomija iscrpno su opisani (1) (2).
Lemna gibba and L. minor are species representative of temperate areas and are commonly used for toxicity tests.
Vrste Lemna gibba i L. minor reprezentativne su vrste umjerenih pojasa i vrlo se često upotrebljavaju u toksikološkim ispitivanjima.
Both species have a floating or submerged discoid stem (frond) and a very thin root emanates from the centre of the lower surface of each frond.
Obje vrste imaju plivajuću ili uronjenu diskoidnu stabljiku (list) i vrlo tanak korijen koji izbija iz sredine naličja lista.
Lemna spp. rarely produce flowers and the plants reproduce by vegetatively producing new fronds (3).
Lemna spp. rijetko daju cvjetove, a biljke se vegetativno razmnožavaju stvaranjem novih listova (3).
In comparison with older plants the younger ones tend to be paler, have shorter roots and consist of two to three fronds of different sizes.
Mlađe su biljke uglavnom bljeđe od starijih biljaka, imaju kraće korijenje i sastoje se od dva do tri lista različite veličine.
The small size of Lemna, its simple structure, asexual reproduction and short generation time makes plants of this genus very suitable for laboratory testing (4)(5).
Biljke iz ovog roda vrlo su pogodne za laboratorijsko ispitivanje zahvaljujući maloj veličini, jednostavnoj građi, nespolnom razmnožavanju i kratkom generacijskom vremenu (4) (5).
Because of probable interspecies variation in sensitivity, only comparisons of sensitivity within a species are valid.
Zbog vjerojatnih razlika u osjetljivosti među vrstama, valjane su samo usporedbe osjetljivosti unutar iste vrste.
Examples of Lemna species which have been used for testing:
Primjeri vrsta Lemna upotrijebljenih u ispitivanjima:
Species Reference
referentni popis
Maintenance of stock culture
Održavanje radne kulture
Stock cultures can be maintained under lower temperatures (4-10 °C) for longer times without needing to be re-established.
Radne se kulture na nižoj temperaturi (4 –10 °C) mogu duže vrijeme držati bez presađivanja.
The Lemna growth medium may be the same as that used for testing but other nutrient rich media can be used for stock cultures.
Kao uzgojni medij za radne kulture Lemna može se upotrijebiti medij koji se upotrebljava u ispitivanju, ali moguće je upotrijebiti i druge medije bogate nutrijentima.
Periodically, a number of young, light-green plants are removed to new culture vessels containing fresh medium using an aseptic technique.
Određeni broj mladih svijetlozelenih biljaka povremeno se premješta u nove uzgojne posude sa svježim medijem primjenom aseptičkih postupaka.
Under the cooler conditions suggested here, sub-culturing may be conducted at intervals of up to three months.
U hladnijim uvjetima, kakvi se ovdje preporučuju, presađivanje se može provoditi u razmacima do tri mjeseca.
Chemically clean (acid-washed) and sterile glass culture vessels should be used and aseptic handling techniques employed.
Upotrebljavaju se kemijski čiste (očišćene kiselinom) i sterilne staklene uzgojne posude, a kod rukovanja se primjenjuju aseptički postupci.
In the event of contamination of the stock culture e.g. by algae or funghi, steps are necessary to eliminate the contaminating organisms.
Ako dođe do onečišćenja radne kulture npr. algama ili gljivicama, treba poduzeti potrebne mjere za uklanjanje onečišćujućih organizama.
In the case of algae and most other contaminating organisms, this can be achieved by surface sterilisation.
U slučaju algi i većine drugih onečišćujućih organizama to se može postići površinskom sterilizacijom. Uzme se uzorak onečišćenog biljnog materijala i odreže se korijenje.
A sample of the contaminated plant material is taken and the roots cut off. The material is then shaken vigorously in clean water, followed by immersion in a 0,5 % (v/v) sodium hypochlorite solution for between 30 seconds and 5 minutes.
Materijal se zatim snažno protrese u čistoj vodi i uroni u 0,5-postotnu (v/v) otopinu natrijeva hipoklorita na između 30 sekundi i pet minuta.
The plant material is then rinsed with sterile water and transferred, as a number of batches, into culture vessels containing fresh growth medium.
Biljni se materijal zatim ispere sterilnom vodom i prenese u više šarži u uzgojne posude koje sadržavaju svježi uzgojni medij.
Many fronds will die as a result of this treatment, especially if longer exposure periods are used, but some of those surviving will usually be free of contamination.
U ovom će postupku mnogi listovi uginuti, posebno kod dužeg vremena izlaganja, ali bi barem neki od preživjelih trebali biti čisti.
These can then be used to re-inoculate new cultures.
Oni se zatim ponovno mogu upotrijebiti za inokuliranje novih kultura.
Media
Mediji
Different growth media are recommended for L. minor and L. gibba.
Za vrste L. minor i L. gibba preporučuju se različiti uzgojni mediji.
For L. minor, a modified Swedish Standard (SIS) medium is recommended whilst for L. gibba, 20X AAP medium is recommended.
Za L. minor preporučuje se prilagođena varijanta medija prema švedskoj normi (SIS), a za L. gibba medij 20X AAP.
Compositions of both media are given below.
Sastav tih dvaju medija naveden je u nastavku.
Swedish Standard (SIS) Lemna growth medium
Uzgojni medij Lemna prema švedskoj normi (SIS)
Stock solutions I - V are sterilised by autoclaving (120 °C, 15 minutes) or by membrane filtration (approximately 0,2 μm pore size).
Radne otopine od I. do V. steriliziraju se obradom u autoklavu (120 °C, 15 minuta) ili membranskom filtracijom (veličina pora oko 0,2 μm).
Stock VI (and optional VII) are sterilised by membrane filtration only;
Otopina VI. (i fakultativno VII.) sterilizira se isključivo membranskom filtracijom;
these should not be autoclaved.
ne smije se obrađivati u autoklavu.
Sterile stock solutions should be stored under cool and dark conditions.
Sterilne radne otopine treba čuvati na hladnom i mračnom mjestu.
Stocks I - V should be discarded after six months whilst stocks VI (and optional VII) have a shelf life of one month.
Radne otopine od I. do V. treba baciti nakon šest mjeseci, dok otopina VI. (i fakultativno VII.) ima rok uporabe jedan mjesec.
Stock solution No.
Radna otopina br.
Concentration in prepared medium
Koncentracija u pripremljenom mediju
Prepared medium
Pripremljeni medij
ZnSO4·7H2O
ZnSO4 · 7H2O
CuSO4·5H2O
CuSO4 · 5H2O
Co(NO3)2·6H2O
Co(NO3)2 · 6H2O
MOPS (buffer)
MOPS (pufer)
To prepare one litre of SIS medium, the following are added to 900 ml of deionised water:
Da bi se dobila jedna litra medija SIS, u 900 ml deionizirane vode dodaje se:
10 ml of stock solution I
10 ml radne otopine I.
5 ml of stock solution II
5 ml radne otopine II.
5 ml of stock solution III
5 ml radne otopine III.
5 ml of stock solution IV
5 ml radne otopine IV.
A further stock solution VII (MOPS buffer) may be needed for certain test chemicals (see paragraph 11).
5 ml radne otopine VI. 1 ml radne otopine VII. (fakultativno). Napomena: Za ispitivanje nekih kemikalija može biti potrebna i radna otopina VII.
However, the historical use of 20X-AAP medium, including the ring test for this guideline, is based upon 300 mg/L.
Uzgojni medij 20X AAP Radne otopine pripremaju se u sterilnoj destiliranoj ili deioniziranoj vodi. Sterilne radne otopine treba čuvati na hladnom i mračnom mjestu. U tim će uvjetima radne otopine imati rok uporabe najmanje šest do osam tjedana. Za medij 20X – AAP priprema se pet radnih otopina s nutrijentima (A1, A2, A3, B i C) uporabom reagencijski čistih kemikalija. Uzgojni medij dobije se tako da se u približno 850 ml deionizirane vode doda po 20 ml svake od radnih otopina s nutrijentima. pH-vrijednost prilagodi se na 7,5 ± 0,1 s pomoću 0,1 ili 1 mol HCl ili NaOH i nadopuni deioniziranom vodom do volumena od jedne litre. Zatim se medij profiltrira u sterilnu posudu kroz membranski filtar 0,2 μm (približno). Uzgojni medij za ispitivanje treba pripremiti jedan do dva dana prije uporabe kako bi se stabilizirala pH-vrijednost. pH-vrijednost uzgojnog medija treba provjeriti prije uporabe i prema potrebi prilagoditi dodavanjem 0,1 ili 1 mol NaOH ili HCl na način opisan ranije u tekstu. Napomena:
Sustance
Tvar
EDTA.2H2O
EDTA · 2H2O
STEINBERG medium (After ISO 20079)
Medij STEINBERG (prema ISO 20079)
Concentrations and stock solutions
Koncentracije i radne otopine
The modified Steinberg medium is used in ISO 20079 for Lemna minor alone (as only Lemna minor is allowed there) but tests showed good results could be reached with Lemna gibba too.
Prilagođeni medij Steinberg u ISO 20079 predviđen je samo za Lemna minor (budući da je ondje jedino i dopuštena Lemna minor), ali ispitivanja su pokazala da se i s vrstom Lemna gibba mogu postići dobri rezultati.
When preparing the medium, reagent- or analytical grade chemicals and deionised water should be used.
Kod pripreme medija treba upotrijebiti reagencijski odnosno analitički čiste kemikalije i deioniziranu vodu.
Prepare the nutrient medium from stock solutions or the 10 fold concentrated medium which allows maximum concentration of the medium without precipitation.
Hranjivi se medij priprema iz radnih otopina ili deseterostruko koncentriranog medija kako bi se dobila najviša koncentracija medija koja se može postići bez taloženja.
pH-stabilised STEINBERG medium (modified acc. to Altenburger)
pH-stabilizirani medij STEINBERG (modificiran prema Altenburgeru)
Nutrient medium
Hranjivi medij
Macroelements
Makroelementi
mol weight
molarna masa
Microelements
Mikroelementi
EDTA Disodium-dihydrate
EDTA dinatrijev dihidrat
Stock solutions (Macroelements)
Radne otopine (makroelementi)
Macroelements (50-fold concentrated)
Makroelementi (pedeseterostruko koncentrirani)
Stock solutions (Microelements)
Radne otopine (mikroelementi)
Microelements (1000-fold concentrated)
Makroelementi (tisućostruko koncentrirani)
Stock solution 5:
Radna otopina 5:
Stock solution 6:
Radna otopina 6:
Stock solution 7:
Radna otopina 7:
Stock solution 8:
Radna otopina 8:
Add 1,0 ml of stock solutions 4, 5, 6, 7 and 8 (see table 3).
Doda se 1,0 ml radnih otopina 4, 5, 6, 7 i 8 (vidjeti tablicu 3.). pH-vrijednost mora biti 5,5 +/– 0,2 (prilagoditi dodavanjem minimalnog volumena otopine NaOH ili HCl).
If sterilisation is done with the final medium stock solution 8 should be added after autoclaving (at 121 °C for 20 min).
Ako se sterilizacija provodi na konačnom mediju, radnu otopinu 8 treba dodati nakon obrade u autoklavu (20 minuta na 121 °C). Priprema deseterostruko koncentriranog (modificiranog) medija STEINBER za međuskladištenje Potrebno je dodati 20 ml radnih otopina 1, 2 i 3 (vidjeti tablicu 2.) u oko 30 ml vode kako bi se izbjeglo taloženje. Doda se 1,0 ml radnih otopina 4, 5, 6, 7 i 8 (vidjeti tablicu 3.). Nadopuni se vodom do 100 ml.
Preparation of 10-fold-concentrated STEINBERG medium (modified) for intermediate storage
Za radnu otopinu 8 u svakom se slučaju preporučuje sterilna filtracija (0,2 μm). Priprema konačne koncentracije (modificiranog) medija STEINBERG
Add to 20 ml of stock solutions 1, 2 and 3 (see table 2) to about 30 ml water to avoid precipitation.
Potrebno je dodati 20 ml radnih otopina 1, 2 i 3 (vidjeti tablicu 2.) u oko 900 ml deionizirane vode kako bi se izbjeglo taloženje.
Adjust with water to 100 ml.
Nadopuni se vodom do 1000 ml.
If stock solutions are sterilised and appropriate water is used no further sterilisation is necessary.
Ako su radne otopine sterilizirane i upotrebljava se prikladna voda, nije potrebna dodatna sterilizacija.
The pH of the medium (final concentration) should be 5,5 ± 0,2.
Ako su radne otopine sterilizirane i upotrebljava se prikladna voda, nije potrebna dodatna sterilizacija. Ako se sterilizacija provodi na konačnom mediju, radnu otopinu 8 treba dodati nakon obrade u autoklavu (20 minuta na 121 °C). pH-vrijednost medija (konačna koncentracija) mora biti 5,5 ± 0,2.
Unless noted
Ako nije navedeno drukčije.
the following Chapters C.31 to C.46 are added:
Dodaju se sljedeća poglavlja od C.31. do C.46.:
TERRESTRIAL PLANT TEST:
TEST NA KOPNENOM BILJU:
SEEDLING EMERGENCE AND SEEDLING GROWTH TEST
ISPITIVANJE NICANJA I RASTA KLIJANACA
This test method is equivalent to OECD Test Guideline (TG) 208 (2006).
Ova ispitna metoda odgovara Smjernici za ispitivanje OECD-a (TG) 208 (2006.).
Test methods are periodically reviewed in the light of scientific progress and applicability to regulatory use.
Ispitne se metode periodički preispituju u svjetlu znanstvenoga napretka i primjenjivosti za regulatorne svrhe.
This updated test method is designed to assess potential effects of chemicals on seedling emergence and growth.
Ova ažurirana ispitna metoda namijenjena je ocjenjivanju mogućih učinaka kemikalija na nicanje i rast klijanaca.
As such it does not cover chronic effects or effects on reproduction (i.e. seed set, flower formation, fruit maturation).
Kao takva ne obuhvaća kronične učinke ili učinke na razmnožavanje (tj. zametanje sjemena, formiranje cvjetova i sazrijevanje plodova).
Conditions of exposure and properties of the chemical to be tested must be considered to ensure that appropriate test methods are used (e.g. when testing metals/metal compounds the effects of pH and associated counter ions should be considered) (1).
Kako bi se osigurao odabir primjerenih ispitnih metoda, mora se voditi računa o uvjetima izloženosti i svojstvima kemikalije koja će se ispitivati (npr. kada se ispituju metali/spojevi metala, treba voditi računa o učincima pH-vrijednosti i pripadajućim protuionima) (1).
This test method does not address plants exposed to vapours of chemicals.
Ovom se ispitnom metodom ne ispituje bilje izloženo parama kemikalija.
The test method is applicable to the testing of general chemicals, biocides and crop protection products (also known as plant protection products or pesticides).
Ispitna se metoda može primijeniti za ispitivanje kemikalija u općoj uporabi, biocida i proizvoda za zaštitu usjeva (poznatih i kao sredstva za zaštitu bilja ili pesticidi).
It has been developed on the basis of existing methods (2) (3) (4) (5) (6) (7).
Razvijena je na temelju postojećih metoda (2) (3) (4) (5) (6) (7).
Other references pertinent to plant testing were also considered (8) (9) (10).
Razmotrena je i ostala literatura koja se odnosi na ispitivanje bilja (8) (9) (10).
The test assesses effects on seedling emergence and early growth of higher plants following exposure to the test chemical in the soil (or other suitable soil matrix).
Ispitivanjem se ocjenjuju učinci na nicanje klijanaca i rani rast viših biljaka nakon izloženosti ispitivanoj kemikaliji u tlu (ili drugoj prikladnoj matrici tla).
Seeds are placed in contact with soil treated with the test chemical and evaluated for effects following usually 14 to 21 days after 50 % emergence of the seedlings in the control group.
Sjeme se stavi u dodir sa zemljom koja je tretirana ispitivanom kemikalijom čiji se učinci ocjenjuju obično nakon 14 do 21 dana nakon što nikne 50 % klijanaca u kontrolnoj skupini.
Endpoints measured are visual assessment of seedling emergence, dry shoot weight (alternatively fresh shoot weight) and in certain cases shoot height, as well as an assessment of visible detrimental effects on different parts of the plant.
Krajnje točke koje se mjere jesu vizualna procjena nicanja klijanaca, masa suhe tvari izdanka (alternativno masa svježe tvari izdanka) i u određenim slučajevima visina izdanka, kao i procjena vidljivih štetnih učinaka na različite dijelove biljke.
These measurements and observations are compared to those of untreated control plants.
Ta se mjerenja i zapažanja uspoređuju s onima kod netretiranih kontrolnih biljaka.
Depending on the expected route of exposure, the test chemical is either incorporated into the soil (or possibly into artificial soil matrix) or applied to the soil surface, which properly represents the potential route of exposure to the chemical.
Ovisno o očekivanom putu izlaganja, ispitivana se kemikalija unosi u zemlju (ili eventualno u matricu umjetne zemlje) ili se primjenjuje na površinu zemlje, što pravilno predstavlja mogući put izlaganja kemikaliji.
Soil incorporation is done by treating bulk soil.
Kemikalija se unosi u zemlju tretiranjem zemlje u rasulu.
After the application the soil is transferred into pots, and then seeds of the given plant species are planted in the soil.
Nakon primjene kemikalije zemlja se premješta u uzgojne posude, u koje se potom sije sjeme određene biljne vrste.
Surface applications are made to potted soil in which the seeds have already been planted.
Kod površinske primjene kemikalija se primjenjuje na zemlju u posudama u koju je već posijano sjeme.
The test units (controls and treated soils plus seeds) are then placed under appropriate conditions to support germination/growth of plants.
Ispitne jedinice (kontrole i tretirana zemlja plus sjeme) potom se stavljaju u odgovarajuće uvjete kako bi se potaknulo klijanje/rast biljaka.
The test can be conducted in order to determine the dose-response curve, or at a single concentration/rate as a limit test according to the aim of the study.
Ispitivanje se može provesti kako bi se odredila krivulja doza-odgovor ili kao granični test sa samo jednom koncentracijom / dozom primjene u skladu s ciljem studije.
If results from the single concentration/rate test exceed a certain toxicity level (e.g. whether effects greater than x % are observed), a range-finding test is carried out to determine upper and lower limits for toxicity followed by a multiple concentration/rate test to generate a dose-response curve.
Ako rezultati dobiveni ispitivanjem sa samo jednom koncentracijom / dozom primjene premašuju određenu razinu toksičnosti (npr. uoče li se učinci veći od x %), provodi se ispitivanje za određivanje raspona kako bi se odredile gornja i donja granica toksičnosti, nakon čega se provodi ispitivanje s više koncentracija / doza primjene kako bi se dobila krivulja doza-odgovor.
An appropriate statistical analysis is used to obtain effective concentration ECx or effective application rate ERx (e.g. EC25, ER25, EC50, ER50) for the most sensitive parameter(s) of interest.
Odgovarajućom statističkom analizom izračunava se učinkovita koncentracija ECx ili učinkovita doza primjene ERx (npr. EC25, ER25, EC50, ER50) za najosjetljiviji parametar ili najosjetljivije parametre koji se ispituju.
Also, the no observed effect concentration (NOEC) and lowest observed effect concentration (LOEC) can be calculated in this test.
Osim toga, ovim se ispitivanjem može izračunati najviša koncentracija bez vidljivog učinka (NOEC) i najniža koncentracija s vidljivim učinkom (LOEC).
The following information is useful for the identification of the expected route of exposure to the chemical and in designing the test:
Sljedeće su informacije korisne za utvrđivanje očekivanog puta izloženosti kemikaliji i za planiranje ispitivanja:
structural formula, purity, water solubility, solubility in organic solvents, 1-octanol/water partition coefficient, soil sorption behaviour, vapour pressure, chemical stability in water and light, and biodegradability.
strukturna formula, čistoća, topljivost u vodi, topljivost u organskim otapalima, koeficijent razdjeljenja 1-oktanol/voda, sorpcijsko ponašanje u tlu, tlak para, kemijska stabilnost u vodi i na svjetlosti te biorazgradivost.
In order for the test to be considered valid, the following performance criteria must be met in the controls:
Da bi ispitivanje bilo valjano, kontrole moraju zadovoljavati sljedeće kriterije uspješnosti:
the seedling emergence is at least 70 %;
nicanje klijanaca iznosi najmanje 70 %,
the seedlings do not exhibit visible phytotoxic effects (e.g. chlorosis, necrosis, wilting, leaf and stem deformations) and the plants exhibit only normal variation in growth and morphology for that particular species;
klijanci ne pokazuju vidljive fitotoksične učinke (npr. klorozu, nekrozu, uvenuće, deformacije lista i stabljike) i biljke pokazuju uobičajene varijacije u rastu i morfologiji za predmetnu vrstu,
the mean survival of emerged control seedlings is at least 90 % for the duration of the study;
srednja stopa preživljavanja izniklih kontrolnih klijanaca iznosi najmanje 90 % tijekom trajanja istraživanja,
environmental conditions for a particular species are identical and growing media contain the same amount of soil matrix, support media, or substrate from the same source.
okolišni su uvjeti za određenu vrstu identični, a uzgojni mediji sadržavaju istu količinu matrice tla, pomoćnih medija ili supstrata iz istog izvora.
A reference chemical may be tested at regular intervals, to verify that performance of the test and the response of the particular test plants and the test conditions have not changed significantly over time.
Ispitivanjem referentne kemikalije u redovitim vremenskim razmacima može se provjeriti jesu li se provođenje ispitivanja i odgovor određenih ispitnih biljaka te uvjeti ispitivanja značajno promijenili tijekom vremena.
Alternatively, historical biomass or growth measurement of controls could be used to evaluate the performance of the test system in particular laboratories, and can serve as an intra-laboratory quality control measure.
Alternativno se mogu upotrijebiti prijašnja mjerenja biomase ili rasta kontrola kako bi se ocijenila uspješnost ispitnih sustava u pojedinim laboratorijima, a mogu poslužiti i za kontrolu kvalitete unutar laboratorija.
Natural soil — Artificial substrate
Prirodno tlo – umjetni supstrat
Plants may be grown in pots using a sandy loam, loamy sand, or sandy clay loam that contains up to 1,5 percent organic carbon (approx. 3 percent organic matter).
Biljke se mogu uzgajati u posudama s pjeskovitom ilovačom, ilovastim pijeskom ili pjeskovito glinastom ilovačom koja sadržava do 1,5 % organskog ugljika (oko 3 % organske tvari).
Commercial potting soil or synthetic soil mix that contains up to 1,5 percent organic carbon may also be used.
Može se upotrijebiti i komercijalna zemlja za lončanice ili sintetička mješavina zemlje koja sadržava do 1,5 % organskog ugljika.
Clay soils should not be used if the test chemical is known to have a high affinity for clays.
Ne smije se upotrijebiti glinovita zemlja ako je poznato da ispitivana kemikalija ima visoki afinitet za gline.
Field soil should be sieved to 2 mm particle size in order to homogenise it and remove coarse particles.
Zemlju s polja treba prosijati na veličinu čestica 2 mm kako bi se homogenizirala i kako bi se uklonile grube čestice.
The type and texture, % organic carbon, pH and salt content as electronic conductivity of the final prepared soil should be reported.
Treba dokumentirati vrstu i teksturu, postotak organskog ugljika, pH te udio soli koji se mjeri kao električna vodljivost konačne pripremljene zemlje.
The soil should be classified according to a standard classification scheme (11).
Zemlju treba klasificirati prema standardnoj klasifikacijskoj shemi (11).
The soil could be pasteurised or heat treated in order to reduce the effect of soil pathogens.
Zemlja se može pasterizirati ili toplinski obraditi kako bi se smanjio učinak patogena iz tla.
Natural soil may complicate interpretation of results and increase variability due to varying physical/chemical properties and microbial populations.
Uporaba prirodne zemlje može otežati tumačenje rezultata i povećati varijabilnost zbog varirajućih fizikalno-kemijskih svojstava i mikrobnih populacija.