natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Primers BOSTRE-F (5′- TTACGTCCCTGCCCTTTGTA-3′) and BOSTRE-R (5′- TCGCGGTTGAATTTTATCGT-3′) amplify a 208 bp product.
Početnicama BOSTRE-F (5′- TTACGTCCCTGCCCTTTGTA-3′) i BOSTRE-R (5′- TCGCGGTTGAATTTTATCGT-3′) umnožava se produkt od 208 bp.
PCR mixtures contain SYBR® Green Master Mix (1X), 0,3 μM forward and reverse primers, and 200 ng of extracted DNA.
Mješavine za PCR sadržavaju mješavinu SYBR® Green Master (1X), 0,3 μM prednjih i stražnjih početnica te 200 ng ekstrahirane DNA.
Samples shall be denatured in a Real Time Detection System for 10 minutes at 95 °C before being submitted to 35 cycles (95 °C for 30 seconds, 55 °C for 45 seconds and 72 °C for one minute).
Uzorke se denaturira u sustavu za otkrivanje u stvarnom vremenu 10 minuta na 95 °C prije no što se na njima provede 35 ciklusa (30 sekundi na 95 °C, 45 sekundi na 55 °C i jednu minutu na 72 °C).
Melting temperature curve analysis shall be carried out with temperature increments of 0,5 °C/s starting at 55 °C and ending at 95 °C and recording fluorescence at each change of temperature.
Analiza krivulje temperature taljenja provodi se uvećanjima temperature od 0,5 °C/s, počevši na 55 °C i završavajući na 95 °C te bilježenjem fluorescencije pri svakoj promjeni temperature.
Positive controls shall consist in genomic DNA from a highly infected host or plasmidic DNA including the target region.
Pozitivne se kontrole sastoje od genomskog DNA iz vrlo zaraženog domaćina ili plazmidnog DNA, uključujući ciljano područje.
Negative controls shall consist in genomic DNA from non-infected hosts and PCR reactives without target DNA.
Negativne se kontrole sastoje od genomskog DNA iz nezaraženih domaćina i PCR reaktanata bez ciljanog DNA.
A positive result shall be positive PCR amplification with a unique melting temperature peak (78,25 ± 0,25 °C in the conditions published by Ramilo et al. 2013), with all negative controls being negative and all positive controls being positive.
Rezultat je pozitivan ako dođe do pozitivnog PCR umnažanja s jedinstvenim vrhuncem temperature taljenja (78,25 ± 0,25 °C u uvjetima koje je objavio Ramilo i sur., 2013.), pri čemu su sve negativne kontrole negativne, a sve pozitivne kontrole pozitivne.
A probe that targets the SSU of the rDNA gene complex shall be used although it was shown to cross react with some other members of the family Haplosporidia.
Upotrebljava se sonda usmjerena na SSU genskog kompleksa rDNA iako je poznato da se pokazalo da unakrsno reagira s nekim drugim članovima obitelji Haplosporidia.
Sections of tissue that include gills and digestive gland shall be fixed for a period of at least 24 hours in Davidson's fixative followed by normal processing for paraffin histology.
Dijelovi tkiva u koje su uključene škrge i probavna žlijezda fiksiraju se najmanje 24 sata u Davidsonovu fiksiru nakon čega slijedi uobičajena obrada za parafinsku histologiju.
Sections shall be incubated with 100 μl of hybridisation buffer (4 × SSC [standard saline citrate], 50 % formamide, 1 × Denhardt's solution, 250 μg ml– 1 yeast tRNA, 10 % dextran sulphate) containing 20 ng (2 μl of the PCR reaction prepared as described in point I.3.2 using primers Bo and Boas) of the digoxigenin-labelled probe.
Dijelove se inkubira sa 100 μl pufera za hibridizaciju (4 × SSC [citrat standardne fiziološke otopine], 50 % formamida, 1 × Denhardtove otopine, 250 μg ml– 1 tRNA kvasca, 10 % dekstran sulfata) koji sadržava 20 ng (2 μl PCR reakcije pripremljene kako je opisano u točki I.3.2. upotrebom početnica Bo i Boas) sonde označene dioksigeninom.
A positive result shall correspond to labelled parasites inside the haemocytes, with all negative controls negative and all positive controls positive.
Pozitivan rezultat odgovara označenim parazitima unutar hemocita, pri čemu su negativne kontrole negativne, a pozitivne kontrole pozitivne.
Targeted regions shall be the SSU rDNA and ITS1.
Ciljana su područja SSU rDNA i ITS1.
Procedures for surveillance and confirmation of infection with Bonamia ostreae
Postupci za nadziranje i potvrđivanje zaraze Bonamijom ostreaeom
For the purpose of surveillance and confirmation of the presence of or to rule out a suspicion of infection with Bonamia ostreae in accordance with the requirements laid down in Section II of Part 5 to Annex I, the diagnostic methods and corresponding procedures to be used shall be in accordance with the guidelines laid down in the following Table 5.1.
Za potrebe nadziranja i potvrđivanja prisutnosti zaraze Bonamijom ostreaeom ili radi otklanjanja sumnje na tu zarazu, u skladu sa zahtjevima utvrđenima u odjeljku II. dijela 5. Priloga I., dijagnostičke metode i odgovarajući postupci koji se upotrebljavaju u skladu su sa smjernicama utvrđenima u tablici 5.1. u nastavku.
Table 5.1
Tablica 5.1.
Guidelines for the use of diagnostic methods for the surveillance programmes and to rule out or confirm infection with Bonamia ostreae
Smjernice za upotrebu dijagnostičkih metoda za programe nadziranja i za otklanjanje sumnje na zarazu Bonamijom ostreaeom ili potvrđivanje te zaraze
Heart or gill imprints
Otisci srca ili škrgi
DETAILED DIAGNOSTIC METHODS AND PROCEDURES FOR SURVEILLANCE AND CONFIRMATION OF WHITE SPOT DISEASE (WSD)
DETALJNE DIJAGNOSTIČKE METODE I POSTUPCI ZA NADZIRANJE I POTVRĐIVANJE BOLESTI BIJELIH PJEGA RAKOVA (WSD)
Diagnostic procedures for detection of WSSV
Dijagnostički postupci za otkrivanje WSSV-a
When sampling and laboratory examination for the purpose of the surveillance and eradication programmes set out in Section I of Part 6 of Annex I and for the confirmation of the presence of or to rule out a suspicion of infection with WSSV are carried out in accordance with Article 57(b) of Directive 2006/88/EC, using the diagnostic methods set out in Section II of Part 6 of Annex I, the detailed diagnostic methods and procedures set out in points 2 to 7 of this Part shall apply.
Pri uzorkovanju i laboratorijskom pretraživanju u svrhu programa nadziranja i iskorjenjivanja kako su utvrđeni u odjeljku I. dijela 6. Priloga I. i u svrhu potvrđivanja prisutnosti zaraze WSSV-om ili otklanjanja sumnje na njezinu prisutnost u skladu s člankom 57. točkom (b) Direktive 2006/88/EZ upotrebom dijagnostičkih metoda utvrđenih u odjeljku II. dijela 6. Priloga I. primjenjuju se detaljne dijagnostičke metode i postupci utvrđeni u točkama od 2. do 7. ovog dijela.
The methods and procedures described in this Part of Annex II are adapted from the ISO 17025 accredited test applied at the European Union Reference Laboratory for Crustacean Diseases.
Metode i postupci opisani u ovom dijelu Priloga II. preuzeti su iz ispitivanja odobrenog u skladu s normom ISO 17025 koje se primjenjuje u Referentnom laboratoriju Europske unije za bolesti rakova.
Alternative approaches, using equivalent conditions or kits produced by different manufacturers, but which offer equivalent sensitivity and specificity to those described in this Part may be applied.
Mogu se primjenjivati alternativni pristupi, upotrebom istovrijednih uvjeta ili kompleta koje proizvode drugi proizvođači, ali koji imaju jednaku osjetljivost i specifičnost poput onih opisanih u ovom dijelu.
In all instances, PCR amplified product shall be sequenced to confirm identity as White spot syndrome virus (WSSV).
U svakom se slučaju umnoženi produkt PCR-a sekvencira radi potvrde identiteta virusa sindroma bijelih pjega rakova (WSSV).
Tissue (pleopods and gills) containing WSSV from crustaceans may be stored in ethanol, RNAlater or snap frozen at – 80 °C.
Tkiva (pleopodi i škrge) koja sadržavaju WSSV iz rakova mogu se pohraniti u etanolu, otopini RNAlater ili naglo zamrznuti na – 80 °C.
The stages required for the identification of WSSV from tissue samples shall be as follows: Homogenisation of the tissue, extraction of the DNA, specific amplification of WSSV DNA using PCR, visualisation of the amplified product on a gel, purification of the DNA and sequencing to confirm the identity of the pathogen.
Faze potrebne za identifikaciju WSSV-a iz uzoraka tkiva sljedeće su: homogenizacija tkiva, ekstrakcija DNA, specifično umnažanje DNA WSSV-a upotrebom PCR-a, vizualizacija umnoženog produkta na gelu, pročišćavanje DNA i sekvenciranje radi potvrđivanja identiteta patogena.
Tissue homogenisation
Homogenizacija tkiva
The disruption of the tissues and the preparation of a homogenate in an appropriate buffer shall be carried out using the Fast Prep tissue disruptor and Lysing matrix A tubes (MP Biomedicals).
Kidanje tkiva i priprema homogenata u odgovarajućem puferu provodi se upotrebom uređaja za kidanje tikva Fast Prep i epruveta Lysing matrix A (MP Biomedicals).
The tissue shall be weighed, placed in Lysing Matrix A tubes, diluted 1 in 10 w/v or according to manufacturer's instructions, in an appropriate buffer (G2 and 10 μl Proteinase K for use with DNA Tissue kit (Qiagen)) and homogenised using the Fast Prep 24 homogeniser for two minutes.
Tkivo se važe, stavlja u epruvete Lysing Matrix A, razrjeđuje u omjeru 1:10 w/v ili u skladu s uputama proizvođača u odgovarajućem puferu (G2 i 10 μl proteinaze K za upotrebu s kompletom DNA Tissue (Qiagen)) i homogenizira dvije minute upotrebom homogenizatora Fast Prep 24.
Homogenised samples shall be incubated at 56 °C for a minimum period of four hours or overnight.
Homogenizirane uzorke inkubira se najmanje četiri sata ili preko noći na 56 °C.
Samples shall be vortexed, centrifuged at 9000 rpm for two minutes and 50 μl of supernatant or a volume equivalent to 5 mg of tissue (weight of tissue optimal for extraction kit) shall be added to a sample tube for DNA extraction and volume made up to 200 μl using G2 buffer.
Uzorke se vrtložno protresa, centrifugira na 9000 rpm dvije minute te se 50 μl supernatanta ili volumena koji odgovara 5 mg tkiva (masa tkiva optimalna za upotrebu kompleta za ekstrakciju) dodaje u epruvetu s uzorkom radi ekstrakcije i volumena DNA do 200 μl upotrebom pufera G2.
Total DNA shall be extracted using a DNA tissue extraction kit and the EZ1 Advanced XL Biorobot (Qiagen) following the manufacturers' instructions.
Ukupan DNA ekstrahira se upotrebom kompleta za ekstrakciju DNA tkiva te s pomoću uređaja EZ1 Advanced XL Biorobot (Qiagen) u skladu s uputama proizvođača.
An extraction control (Calf Thymus DNA) and a negative control (G2 buffer) shall run with each batch of samples.
Kontrola za ekstrakciju (DNA iz telećeg timusa) i negativna kontrola (pufer G2) upotrebljavaju se u svakoj seriji uzoraka.
DNA shall be eluted into 50 μl volume.
DNA se eluira u volumen od 50 μl.
To ensure that the extraction has completed successfully, the DNA concentration for all samples and controls shall be determined using a Nano Drop machine.
Kako bi se osigurala uspješna ekstrakcija, koncentracija DNA za sve uzorke i kontrole utvrđuje se upotrebom uređaja Nano Drop.
Extracted DNA shall be frozen at – 20 °C if not required immediately.
Ekstrahirani DNA zamrzava se na – 20 °C ako nije namijenjen neposrednoj upotrebi.
WSSV Polymerase Chain Reaction (PCR)
Lančana reakcija polimerazom (PCR) za WSSV
The method to be used for the detection of WSSV shall be the protocol for the detection of WSSV by nested PCR set out in the following paragraphs which amplifies a 1447 bp and an 848 bp amplicon of the 18s rRNA gene in the first and second round PCRs respectively.
Metoda koja se upotrebljava za otkrivanje WSSV-a jest protokol za otkrivanje WSSV-a ugniježđenim PCR-om opisanim u stavcima u nastavku kojim se umnožava produkt umnažanja od 1447 bp i 848 bp gena 18s rRna u prvom odnosno drugom krugu PCR-a.
The 1st round PCR reaction shall be set up in a 50 μl volume which contains final concentrations of 1 × GoTaq Buffer (Promega), 5 mM MgCl2, 1 pmol/μl WSSV 146 F1 primer, 1 pmol/μl WSSV 146 R1 primer (Table 1), 0,25 mM dNTPs, 1,25U Taq polymerase and 2,5 μl of DNA.
Reakcija prvog kruga PCR-a postavlja se u volumenu od 50 μl koji sadržava konačne koncentracije od 1 × GoTaq pufera (Promega), 5 mM MgCl2, 1 pmol/μl početnice 146 F1 WSSV-a, 1 pmol/μl početnice 146 R1 WSSV-a (tablica 1), 0,25 mM dNTP, 1,25 jedinice Taq polimeraze i 2,5 μl DNA.
Each sample shall be run in duplicate alongside a negative extraction control, a negative PCR control, (2,5 μl H2O added instead of DNA) and a positive control.
Svaki se uzorak obrađuje dvostruko uz negativnu kontrolu ekstrakcije, negativnu PCR kontrolu (2,5 μl H2O dodane umjesto DNA) i pozitivnu kontrolu.
The positive control shall be diluted WSSV plasmid made and validated for use in-house (available from the EURL).
Pozitivnu kontrolu čini razrijeđeni plazmid WSSV-a izrađen i validiran za internu upotrebu (dostupan u referentnom laboratoriju EU-a).
The 2nd round WSSV PCR reaction shall be set up in the same way as the first round but using the WSSV 146 F2/R2 primer set and using a second positive control to check that this stage of the PCR has worked.
Drugi krug reakcije PCR-a za WSSV postavlja se na isti način kao i prvi krug, ali upotrebom niza početnica 146 F2/R2 WSSV-a te upotrebom druge pozitivne kontrole radi provjere uspješnosti ove faze PCR-a.
Primer
Početnica
Both 1st and 2nd round PCRs shall be run using the following cycling conditions on a DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cycler (or equivalent).
I prvi i drugi krug PCR-a provodi se upotrebom uvjeta ciklusa navedenih u nastavku u uređaju za PCR DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cyler (ili jednakovrijednom uređaju).
An initial denaturation step of 94 °C for two minutes followed by 94 °C for 30 seconds, 62 °C for 30 seconds, 72 °C for 30 seconds repeated for 30 cycles, a 72 °C extension step for two minutes and held at 4 °C.
Početni korak denaturacije na 94 °C tijekom dvije minute nakon kojeg slijedi 30 sekundi na 94 °C, 30 sekundi na 62 °C, 30 sekundi na 72 °C, što se ponavlja u 30 ciklusa, produljenje tijekom dvije minute na 72 °C i održavanje na 4 °C.
Gel electrophoresis
Gel elektroforeza
Amplified PCR products from both the 1st and 2nd round PCRs shall be visualised on 2 % agarose gels made using TAE buffer.
Umnoženi produkti PCR-a iz prvog i drugog kruga PCR-a vizualiziraju se u 2 %-tnim agar gelovima napravljenima upotrebom TAE pufera.
15 μl of each sample shall be run at 120 Volts for approximately 20 minutes and viewed under UV light.
15 μl svakog uzorka podvrgava se naponu od 120 volti približno 20 minuta i promatra pod UV svjetlom.
Positive samples will produce a band of 1447 bp in the 1st round PCR and 848bp in the second round PCR.
Pozitivni uzorci proizvest će vrpcu od 1447 bp u prvom krugu PCR-a i od 848 bp u drugom krugu PCR-a.
Samples of that size shall be cut out and placed into a 1,5 ml microfuge tube.
Uzorci te veličine izrezuju se i stavljaju u epruvetu za mikrocentrifugu od 1,5 ml.
The DNA contained within the gel slices shall be purified using Promega Wizard® SV Gel and PCR clean-Up System according to manufacturers' instructions.
DNA sadržan u dijelovima gela pročišćava se upotrebom sustava Promega Wizard® SV Gel and PCR Clean-Up u skladu s uputama proizvođača.
The concentration of the DNA shall be estimated using a Nano Drop machine.
Koncentracija DNA procjenjuje se upotrebom uređaja Nano Drop.
The purified DNA shall be frozen at – 20 °C if not being used immediately.
Pročišćeni DNA zamrzava se na – 20 °C ako nije namijenjen neposrednoj upotrebi.
Sequencing of PCR products
Sekvenciranje produkata PCR-a
DNA shall be sequenced using the Big Dye Terminator Kit v3,1 (Applied Biosystems).
DNA se sekvencira upotrebom kompleta Big Dye Terminator Kit v3,1 (Applied Biosystems).
The total volume in each reaction is 20 μl, the final concentrations being 1 × Big Dye terminator, 1 × sequencing buffer, 10 pmol/μl forward or reverse primer and 10 μl of purified DNA (diluted to approximately 10 ng/μl) run using the following cycling conditions on a DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cycler (or equivalent): 94 °C for 30 seconds followed by 96 °C for 10 seconds, 50 °C for 10 seconds and 60 °C for four minutes, cycling the last three steps 30 times.
Ukupni volumen u svakoj reakciji iznosi 20 μl, pri čemu su konačne koncentracije 1 × Big Dye Terminator, 1 × pufer za sekvenciranje, 10 pmol/μl prednje ili stražnje početnice i 10 μl pročišćene DNA (razrijeđene na oko 10 ng/μl), obrađen upotrebom sljedećih uvjeta za cikluse u uređaju DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cycler (ili jednakovrijednom uređaju): 30 sekundi na 94 °C, nakon čega slijedi 10 sekundi na 96 °C, 10 sekundi na 50 °C i četiri minute na 60 °C, pri čemu se posljednja tri koraka cikliraju 30 puta.
The PCR products shall be precipitated using a sodium acetate method where 20 μl DNA is added to 10 μl NaAc, 70 μl H2O and 250 μl ethanol, vortexed and centrifuged at 13000 rpm for 20 minutes, the supernatant shall be removed and the pellet shall be washed with 200 μl absolute ethanol, centrifuging at 13000 rpm for five minutes.
Produkti sekvenciranja PCR-a talože se metodom upotrebe natrijeva acetata pri kojoj se 20 μl DNA dodaje u 10 μl NaAc, 70 μl H2O i 250 μl etanola, vrtložno protrese i centrifugira 20 minuta na 13000 rpm, supernatant se uklanja, a talog ispire u 200 μl čistog etanola, centrifugiranjem na 13000 rpm pet minuta.
The pellet shall be dried for five minutes at 37 °C.
Talog se suši pet minuta na 37 °C.
25 μl of Hi-Di formamide shall be added to the pellets, heated to 95 °C for two minutes and vortexed thoroughly.
25 μl jako deioniziranog (Hi-Di) formamida dodaje se talozima, zagrijava na 95 °C dvije minute i temeljito vrtložno protresa.
Samples shall be sequenced using the ABI3130xl Avant Genetic analyser according to manufacturers' instructions.
Uzorke se sekvencira upotrebom analizatora ABI3130xl Avant Genetic u skladu s uputama proizvođača.
Sequencing results shall be analysed using Sequencher software and sequences matched to sequences on the NCBI database using the BLAST function.
Rezultati sekvenciranja analiziraju se programom Sequencher te se nizovi povezuju s nizovima u bazi podataka NCBI-ja upotrebom funkcije BLAST.
SURVEILLANCE AND CONTROL METHODS FOR VIRAL HAEMORRHAGIC SEPTICAEMIA (VHS) AND INFECTIOUS HEMATOPOIETIC NECROSIS (IHN)
METODE NADZIRANJA I KONTROLE ZA VIRUSNU HEMORAGIJSKU SEPTIKEMIJU (VHS) I ZARAZNU HEMATOPOETSKU NEKROZU (IHN)
I. Requirements for surveillance and eradication programmes to obtain and maintain disease free-health statuses with regard to VHS and IHN and containment measures for those listed diseases
I. Zahtjevi za programe nadziranja i iskorjenjivanja radi postizanja i održavanja statusâ područja slobodnih od bolesti u odnosu na VHS i IHN te mjere za suzbijanje tih bolesti s popisa
the farm under suspicion shall be subject to at least one health inspection and one sampling of 10 fish, when clinical signs or post-mortem signs consistent with infection with either VHS or IHN or both are observed or minimum 30 fish, when clinical or post-mortem signs are not observed.
uzgajalište u kojem se sumnja na prisutnost tih bolesti podvrgava se najmanje jednom zdravstvenom pregledu i jednom uzorkovanju 10 riba kada su prisutni klinički znakovi ili post-mortem znakovi zaraze VHS-om ili IHN-om ili objema tim bolestima, ili od najmanje 30 riba ako nisu prisutni klinički ili post-mortem znakovi.
Samples shall be tested using one or more of the diagnostic methods set out in points (i) and (ii) in accordance with the detailed diagnostic methods and procedures as set out in Section II of Part 1 of Annex II:
Uzorke se ispituje upotrebom jedne dijagnostičke metode utvrđene u točkama i. i ii., ili više njih, u skladu s detaljnim dijagnostičkim metodama i postupcima kako su utvrđeni u odjeljku II. dijela 1. Priloga II.:
if Ostrea spp. and Mytilus spp. are present in the production units or production area, both genera shall be sampled equally in sample size.
ako su u proizvodnim jedinicama ili proizvodnom području prisutni Ostrea spp. i Mytilus spp., oba se roda uzorkuje u jednakoj količini uzorka.
If only one of those genera is present, that genus shall be sampled.
Ako je prisutan samo jedan od tih rodova, uzorkuje se taj rod.
If neither Ostrea nor Mytilus genera are present, the sample must be representative of all other susceptible species present;
Ako nisu prisutni ni rod Ostrea ni rod Mytilus, uzorak mora biti reprezentativan za sve druge prisutne prijemljve vrste;
if weak, gaping or freshly dead but not decomposed molluscs are present in the production units, such molluscs shall primarily be selected.
ako su u proizvodnim jedinicama prisutni oslabljeni, otvoreni ili svježe uginuli mekušci koji nisu u stanju raspadanja, primarno se sakuplja te mekušce.
If such molluscs are not present, the molluscs selected shall include the oldest healthy molluscs;
Ako nisu prisutni takvi mekušci, odabiru se najstariji zdravi mekušci;
when sampling in mollusc farms which utilise more than one water source for mollusc production, mollusc representing all water sources shall be included for sampling in such a way that all parts of the farm are proportionally represented in the sample;
pri uzorkovanju u uzgajalištima mekušaca u kojima se za proizvodnju mekušaca upotrebljava više od jednog izvora vode, u uzorkovanje se uključuju mekušci iz svih izvora vode tako da su svi dijelovi uzgajališta razmjerno predstavljeni u uzorku;
when sampling in mollusc farming areas, mollusc from a sufficient number of sampling points, shall be included in the sample in such a way that all parts of the mollusc farming area are proportionally represented in the sample.
pri uzorkovanju u područjima uzgoja mekušaca u uzorak se uključuju mekušci iz dostatnog broja točki uzorkovanja tako da su svi dijelovi područja uzgoja mekušaca razmjerno predstavljeni u uzorku.
The main factors to be considered for the selection of these sampling points are previous sampling points where Marteilia refringens was detected, stocking density, water flows, presence of susceptible species, presence of vector species, bathymetry and management practices.
Glavni su čimbenici koje je potrebno uzeti u obzir pri odabiru tih točki uzorkovanja prethodne točke uzorkovanja na kojima je otkrivena Marteilia refringens, gustoća držanja, protok vode, prisutnost prijemljivih vrsta, prisutnost vektorskih vrsta, batimetrija i načini gospodarenja.
Natural beds shall be included in the sampling.
U uzorkovanje se uključuju prirodna staništa.
if Ostrea edulis are present, only oysters of that species shall be selected for sampling.
ako je prisutna Ostrea edulis, samo kamenice te vrste biraju se za uzorkovanje.
If Ostrea edulis are not present, the sample shall be representative of all other susceptible species present;
Ako Ostrea edulis nije prisutna, uzorak je reprezentativan za sve druge prisutne prijemljve vrste;
if weak, gaping or freshly dead but not decomposed molluscs are present, such molluscs shall primarily be selected.
ako su prisutni oslabljeni, otvoreni ili svježe uginuli mekušci koji nisu u stanju raspadanja, primarno se sakuplja te mekušce.
when sampling in farms which utilise more than one water source for mollusc production, mollusc representing all water sources shall be included for sampling in such a way that all parts of the farm are proportionally represented in the sample;
pri uzorkovanju u uzgajalištima u kojima se za proizvodnju mekušaca upotrebljava više od jednog izvora vode, u uzorkovanje se uključuju mekušci iz svih izvora vode tako da su svi dijelovi uzgajališta razmjerno predstavljeni u uzorku;
when sampling in mollusc farming areas, molluscs from a sufficient number of sampling points shall be included in the sample.
pri uzorkovanju u područjima uzgoja mekušaca, u uzorak se uključuju mekušci iz dostatnog broja točki uzorkovanja.
The main factors to be considered for the selection of those sampling points are previous points where Bonamia ostreae was detected, stocking density, water flows, the presence of susceptible species, the presence of vector species, bathymetry and management practices.
Glavni su čimbenici koje je potrebno uzeti u obzir pri odabiru tih točki uzorkovanja prethodne točke na kojima je otkrivena Bonamia ostrae, gustoća držanja, protok vode, prisutnost prijemljivih vrsta, prisutnost vektorskih vrsta, batimetrija i načini gospodarenja.
Natural beds within or adjacent to the farming areas shall be included in the sampling.
Prirodna staništa u područjima uzgoja ili blizu tih područja uključena su u uzorkovanje.