natgillin/translations-raw huggingface dataset:
ASK (pass 65 or lower) cells shall be grown in L-15 medium containing 10 % foetal bovine serum, 2 % (vol:vol) 200 mM L-glutamine, and 0,08 % (vol:vol) 50 mM 2-mercaptoethanol in multi-well plates.
Stanice ASK-a (pasaža 65 ili niža) uzgajaju se u mediju L-15 koji sadržava 10 % fetalnoga goveđeg seruma, 2 % (vol:vol) 200 mM L-glutamina i 0,08 % (vol:vol) 50 mM 2-merkaptoetanola u pliticama s više jažica.
Antiserum-treated organ suspension shall be inoculated into young actively growing cell cultures to give a final dilution of tissue material to culture medium of 1:1000.
Suspenzija organa obrađena antiserumom inokulira se u mlade stanične kulture koje aktivno rastu radi konačnog razrjeđenja materijala tkiva u mediju stanične kulture od 1:1000.
For each organ, suspension 40 μl of inoculum shall be added to one well containing 2 ml of culture medium.
Za svaki se organ suspenzija od 40 μl inokuluma dodaje u jednu jažicu koja sadržava 2 ml medija stanične kulture.
To minimise the risk of cross-contamination, separate 12- or 24-well plates shall be used for samples from different fish farm sites.
Kako bi se smanjio rizik unakrsne kontaminacije, odvojene plitice s 12 ili 24 jažice upotrebljavaju se za uzorke iz različitih uzgajališta riba.
One plate shall be left uninoculated to serve as a negative control.
Jedna plitica se ostavlja neinokulirana da bi služila kao negativna kontrola.
A separate plate shall be inoculated with a reference isolate of ISAV as a positive control, as follows.
Odvojena plitica se inokulira referentnim izolatom virusa ISA-a kao pozitivna kontrola na sljedeći način.
One hundred μl of a stock preparation of ISAV (minimum titre 107 Tissue culture infective dose at the 50 % end point (TCID50 ml– 1)) shall be inoculated into the first well and mixed.
Stotinu μl radnog pripravka virusa ISA-e (minimalni titar 107, infektivna doza kulture tkiva od 50 % na završnoj točki (TCID50 ml– 1)) inokulira se u prvu jažicu i promiješa.
A volume of this material shall be transferred from the first well to the second well to make a 1:10 dilution and mixed.
Volumen tog materijala iz prve jažice prenosi se u drugu jažicu da bi se dobila otopina s omjerom 1:10 te se promiješa.
This shall be repeated across the plate to make six 10-fold dilutions.
Taj se postupak ponavlja kroz cijelu pliticu da bi se dobilo šest deseterostrukih razrjeđenja.
Stock ISAV may be stored at – 80 °C for at least 2 years but once thawed must be used within 3 days.
Standardni virus ISA-e može se pohraniti na – 80 °C najmanje dvije godine, ali kada se jednom odmrzne mora se upotrijebiti u roku od tri dana.
Care shall be taken to prevent cross-contamination of test plates with positive control material.
Treba paziti da se spriječi unakrsna kontaminacija testne plitice s materijalom pozitivne kontrole.
To avoid that risk, positive controls shall be set up and handled separately from test plates.
Kako bi se izbjegao taj rizik, pozitivne se kontrole pripremaju i njima se rukuje odvojeno od testne plitice.
A sensitivity test every 6 months of ASK cells towards ISAV isolates may replace the use of including a positive control at each inoculation.
Testom osjetljivosti stanica ASK-a u odnosu na izolate virusa ISA-e koji se provodi jednom u šest mjeseci može se zamijeniti uključivanje pozitivne kontrole pri svakoj inokulaciji.
Samples shall be incubated at 15 ± 2 °C for up to 15 days.
Uzorci se inkubiraju pri 15 ± 2 °C kroz razdoblje do 15 dana.
Using a microscope, cell cultures shall be examined for CPE twice, between 5 to 7 and 12 to 14 days following inoculation.
Stanične se kulture dva puta mikroskopski pregledavaju na pojavu CPU-a između 5. i 7. te između 12. i 14. dana nakon inokulacije.
If any pool shows CPE, virus identification procedures shall be initiated immediately in accordance with point II.2.4.
Ako se pri bilo kojem objedinjavanju pojavi CPU, odmah se započinje s postupcima identifikacije virusa u skladu s točkom II.2.4.
If no CPE is observed by day 14, an Indirect fluorescent antibody test (IFAT), haemadsorption or RT-PCR shall be performed.
Ako se do četrnaestog dana ne zapazi CPU, provodi se indirektni test fluorescentnim protutijelima (IFAT), test hemadsorpcije ili RT-PCR.
Subcultivation shall be carried out between days 13 to 15.
Supkultiviranje se izvodi između trinaestog i petnaestog dana.
Culture supernatant shall be added to wells containing fresh actively growing cells in appropriate dilution (1/10) in multi-well plates and incubated at 14 ± 2 °C for up to 18 days.
Supernatant kulture dodaje se u jažice koje sadržavaju svježe stanice u aktivnom rastu u odgovarajućem razrjeđenju (1/10) u pliticama s više jažica i inkubira ga se na temperaturi od 14 ± 2 °C tijekom najviše 18 dana.
Using a microscope, cell cultures shall be examined for CPE twice, between days five to seven and days 14 to 18 following inoculation.
Stanične se kulture dva puta mikroskopski pregledavaju na pojavu CPU-a između petog i sedmog te između četrnaestog i osamnaestog dana nakon inokulacije.
If no CPE is observed by days 14 to 18, a haemadsorption or an RT-PCR test shall be performed.
Ako se do četrnaestog odnosno osamnaestog dana ne zapazi CPU, provodi se test hemadsorpcije ili RT-PCR.
If cytotoxicity occurs within the first 7 days of incubation, subcultivation shall be performed at that stage, and the cells shall be incubated for 14 to 18 days and sub cultivated again with a further period of 14 to 18 days incubation.
Ako se tijekom prvih sedam dana inkubacije pojavi citotoksičnost, u toj fazi provodi se supkultiviranje i stanice se inkubira 14 do 18 dana te ponovno supkultivira s daljnjih 14 do 18 dana inkubacije.
If cytotoxicity occurs after 7 days, subcultivation shall be performed once and the cells shall be incubated to achieve the total period of 28 to 36 days incubation from the primary inoculation.
Ako se citotoksičnost pojavi nakon sedam dana, supkultiviranje se provodi jedanput, a stanice se inkubiraju tako da se postigne ukupno 28 do 36 dana inkubacije od primarne inokulacije.
If bacterial contamination occurs in the primary culture, the test shall be set up again using the tissue homogenate stored at – 80 °C.
Ako se u primarnoj kulturi pojavi bakterijska kontaminacija, test se ponovno priprema upotrebom homogenata pohranjenog na – 80 °C.
Prior to inoculation, the tissue homogenate shall be centrifuged at 4000 × g for 15 to 30 minutes at 0 to 6 °C and the supernatant shall be filtered at 0,22 μm.
Prije inokulacije tkivo homogenata centrifugira se na 4000 × g tijekom 15 do 30 minuta na temperaturi od 0 do 6 °C te se supernatant filtrira kroz 0,22 μm.
If bacterial contamination occurs during the subcultivation step the supernatant shall be filtered at 0,22 μm, inoculated onto fresh cells and incubated for a further 14 to 18 days.
Ako se bakterijska kontaminacija pojavi tijekom faze supkultiviranja, supernatant se filtrira kroz 0,22 μm, inokulira u svježe stanice i inkubira daljnjih 14 do 18 dana.
Virus identification tests
Testovi identifikacije virusa
If evidence of CPE is observed at any stage, or if a haemadsorption test is positive, virus identification shall be carried out.
Ako se u bilo kojoj fazi uoči dokaz CPU-a, ili ako je test hemadsorpcije pozitivan, provodi se identifikacija virusa.
The methods of choice for the identification of ISAV shall be RT-PCR in accordance with point II.1 and Immunofluorescence (IF) in accordance with point II.2.6.
Metode koje se mogu upotrijebiti za identifikaciju virusa ISA-e jesu RT-PCR u skladu s točkom II.1. i imunofluorescencija (IF) u skladu s točkom II.2.6.
If it is considered that other viruses may be present, supplementary virus identification tests shall be carried out.
Ako se sumnja na prisutnost drugih virusa, provode se dodatni testovi za identifikaciju virusa.
If those tests have not resulted in a definitive identification of the virus within 1 week, the supernatant shall be forwarded for immediate identification to:
Ako se tim testovima ne identificira virus sa sigurnošću unutar tjedan dana, supernatant se radi hitne identifikacije prosljeđuje:
the World Organisation for Animal Health (OIE) reference laboratory for ISA, or;
referentnom laboratoriju za ISA-u Svjetske organizacije za zdravlje životinja (OIE) ili
a national reference laboratory or the EU reference laboratory for fish diseases as referred to in Annex VI to Directive 2006/88/EC.
nacionalnom referentnom laboratoriju ili referentnom laboratoriju EU-a za bolesti riba kako je navedeno u Prilogu VI. Direktivi 2006/88/EZ.
Haemadsorption
Hemadsorpcija
As replication of ISAV in cell cultures does not always result in a CPE, every well shall be subject to an RT-PCR test or a haemadsorption test in accordance with this point, or an IF test in accordance with point II.2.6.
Budući da replikacijom virusa ISA-e u staničnim kulturama ne dolazi uvijek do CPU-a, svaku se jažicu podvrgava testu RT-PCR ili testu hemadsorpcije u skladu s ovom točkom, ili testu IP u skladu s točkom II.2.6.
Cell culture medium shall be removed from each well, including those of positive and negative controls, and placed in labelled sterile tubes.
Medij stanične kulture uklanja se iz svake jažice, uključujući one koje se upotrebljavaju za pozitivnu i negativnu kontrolu, te je se stavlja u obilježene sterilne epruvete.
500 μl of a 0,2 % (vol:vol) suspension of washed rabbit or horse red blood cells, or a 0,05 % (vol:vol) suspension of washed rainbow trout or Atlantic salmon red blood cells, shall be added to each well and incubated at room temperature for 45 minutes.
500 μl 0,2 %-tne (vol:vol) suspenzije ispranih crvenih krvnih zrnaca kunića ili konja, ili 0,05 %-tne (vol:vol) suspenzije ispranih crvenih krvnih zrnaca kalifornijske pastrve ili atlantskog lososa dodaje se u svaku jažicu i inkubira 45 minuta na sobnoj temperaturi.
The red blood cells shall be removed and each well shall be washed twice with L-15 medium.
Crvena se krvna zrnca odstranjuju i svaka se jažica dvaput ispire medijem L-15.
Each well shall be examined using a microscope.
Svaka se jažica mikroskopski pregledava.
The presence of clusters of red blood cells attaching to the surface of ASK cells shall be indicative of presumptive infection with an orthomyxovirus.
Postojanje nakupina stanica crvenih krvnih zrnaca pričvršćenih uz površinu stanica ASK-a ukazuje na vjerojatnu zarazu ortomiksovirusom.
If a haemadsorption test is positive, a virus identification test shall be performed immediately in accordance with point II.2.4.
Ako je test hemadsorpcije pozitivan, odmah se provodi test identifikacije virusa u skladu s točkom II.2.4.
Immunofluorescence (IF)
Imunofluorescencija
ASK (pass 65 or lower) shall be grown in a L-15 medium containing 10 % foetal bovine serum, 2 % (vol:vol) 200 mM L-glutamine, and 0,08 % (vol:vol) 50 mM 2-mercaptoethanol in multi-well plates and used at greater than 50 % confluence.
Stanice ASK-a (pasaža 65 ili niža) uzgajaju se u mediju L-15 koji sadržava 10 % fetalnoga goveđeg seruma, 2 % (vol:vol) 200 mM L-glutamina i 0,08 % (vol:vol) 50 mM 2-merkaptoetanola u pliticama s više jažica i upotrebljavaju se pri konfluenciji većoj od 50 %.
Other cell lines or growth medium of proven efficacy may also be used.
Mogu se upotrijebiti i druge stanične linije i hranjive podloge s dokazanom djelotvornošću.
225 μl of putative virus-infected culture supernatant shall be added to each of two wells, mixed and 225 μl transferred to two further wells, namely a 1:5 dilution.
225 μl supernatanta kulture za koju se smatra da je zaražena virusom dodaje se u svaku od dviju jažica, pomiješa se i 225 μl prenosi u dvije sljedeće jažice, pri razrjeđenju od 1:5.
Two additional wells shall be left uninoculated to act as controls.
Dvije dodatne jažice ostavljaju se neinokulirane i služe kao kontrola.
Samples from each fish farm site shall be handled on separate plates, as shall the virus control.
Za uzorke iz različitih ribljih uzgajališta upotrebljavaju se posebne plitice kao i kontrole virusa.
A virus control shall be established using a reference isolate of ISAV.
Kontrola virusa uspostavlja se upotrebom referentnog izolata virusa ISA-e.
Plates shall be incubated at 14 ± 2 °C and examined microscopically for up to 7 days.
Plitice se inkubiraju na 14 ± 2 °C i mikroskopski pregledavaju tijekom najviše sedam dana.
When early CPE is observed, or if no CPE is observed within 7 days, the next step shall be fixation.
Kada se zapazi rani CPU ili se u roku od sedam dana uopće ne zapazi CPU, sljedeći je korak fiksiranje.
Wells shall be washed with Phosphate buffered saline (PBS) and fixed by incubation with 80 % acetone for 20 minutes at room temperature.
Jažice se ispiru fiziološkom otopinom puferiranom fosfatnim puferom (PBS) i fiksiraju inkubacijom s 80 % acetona 20 minuta na sobnoj temperaturi.
Plates shall be air-dried and stained immediately or stored at 0 to 6 °C for no more than 24 hours prior to staining.
Plitice se suše na zraku i odmah boje ili se pohranjuju na temperaturi od 0 do 6 °C najviše 24 sata prije bojenja.
Replicate wells shall be stained with a mix of monoclonal antibodies (MAb) 3H6F8 and 1OC9F5 against ISAV, or other MAb of proven efficacy and specificity, diluted in PBS and incubated at 37 ± 4 °C for 30 minutes.
Umnožene se jažice boje monoklonskim protutijelima (MAb) 3H6F8 i 1OC9F5 za virus ISA-e ili nekim drugim monoklonskim protutijelom koje ima dokazanu učinkovitost i specifičnost, razrjeđuju u PBS-u i inkubiraju 30 minuta pri temperaturi od 37 ± 4 °C.
MAb shall be removed and plates washed three times with 0,05 % Tween 20 in PBS.
Monoklonsko se protutijelo odstranjuje, a plitice se ispiru tri puta 0,05 %-tnom otopinom Tween 20 u PBS-u.
Anti-mouse IgG Fluorescein isothiocyanate (FITC) conjugate diluted in PBS shall be added to each well and incubated at 37 ± 4 °C for 30 minutes.
Konjugat protumišjeg IgG fluorescein izotiocijanata (FITC) razrijeđen u PBS-u dodaje se u svaku jažicu i inkubira 30 minuta na 37 ± 4 °C.
The dilutions of different batches of MAb and FITC conjugate shall be optimised in each laboratory.
Razrjeđenja različitih serija MAb-a i konjugata FITC-a optimiziraju se u svakom laboratoriju.
Antibody shall be removed and plates shall be washed three times with 0,05 % Tween 20 in PBS.
Protutijelo se odstranjuje a plitice se tri puta ispiru 0,05 %-tnom otopinom Tween 20 u PBS-u.
Wells shall be examined immediately using an inverted microscope set up for fluorescence microscopy with a suitable filter for excitation of FITC.
Jažice se odmah pregledava upotrebom invertiranog mikroskopa podešenog za fluorescentnu mikroskopiju s prikladnim filterom za ekscitaciju FITC-a.
A test shall be considered positive if fluorescent cells are observed.
Test se smatra pozitivnim ako se uoče fluorescentne stanice.
For a test to be valid, the positive controls shall score positive and the negative controls shall score negative.
Da bi test bio valjan, rezultati pozitivne kontrole moraju biti pozitivni, a rezultati negativne kontrole negativni.
Examination of other tissues
Pretraživanje drugih tkiva
The technique referred to in point II.2.6 may be applied to other fish tissues such as liver, spleen and heart providing a reasonable quantity of endothelial cells, leucocytes or lymphocytes can be deposited on the slide.
Tehnika navedena u točki II.2.6. može se primijeniti na druga tkiva ribe, kao što su jetra, slezena i srce, pod uvjetom da se na stakalce može prenijeti dovoljna količina endotelnih stanica, leukocita ili limfocita.
The staining procedure shall remain the same for each tissue, although for some tissues it may be preferable to omit the propidium iodide staining and rely on the phase illumination to identify the cell types present in the imprint.
Postupak bojenja ostaje isti za sva tkiva, iako je kod nekih tkiva bolje izostaviti bojenje propidijevim jodidom i očekivati da će se tipovi stanica prisutni u otisku identificirati faznim osvjetljenjem.
Paraffin-embedded sections shall be cut at 5 μm and stained using haematoxylin and eosin.
Dijelovi preparirani parafinom režu se na veličinu od 5 μm i boje upotrebom hematoksilina i eozina.
Histological changes in clinically diseased Atlantic salmon are variable, but may include the following:
Histološke promjene kod klinički bolesnog atlantskog lososa različite su, ali mogu uključivati sljedeće:
numerous erythrocytes in the central venous sinus and lamellar capillaries of the gills, where erythrocyte thrombi also may be formed;
mnogobrojne eritrocite u središnjem venoznom sinusu i lamelarnim kapilarama škrga, gdje mogu nastati i trombovi eritrocita;
multifocal to confluent petechiae or hepatocyte necrosis or both at some distance from larger vessels in the liver; multifocal accumulation of erythrocytes in dilated hepatic sinusoids;
multifokalne i konfluentne petehije ili nekroza hepatocita ili oboje na određenoj udaljenosti od većih žila u jetri; multifokalna akumulacija eritrocita u proširenim hepatičnim sinusoidima;
accumulation of erythrocytes in blood vessels of the intestinal lamina propria and eventually haemorrhage into the lamina propria;
nakupljanje eritrocita u krvnim žilama lamine proprije crijeva i moguće krvarenje u laminu propriju;
spleen stroma distended by erythrocyte accumulation;
stroma slezene raširena zbog nakupljanja eritrocita;
slight multifocal to extensive diffuse interstitial haemorrhage with tubular necrosis in the haemorrhagic areas, erythrocyte accumulation in the glomeruli in the kidney;
slabo multifokalno do obilno rašireno intersticijsko krvarenje s tubularnom nekrozom u područjima krvarenja, nakupljanje eritrocita u glomerulima u bubregu;
erythrophagocytosis in the spleen and secondary haemorrhages in liver and kidney.
eritrofagocitoza u slezeni i sekundarna krvarenja u jetri i bubregu.
Immunohistochemistry (IHC)
Imunohistokemija (IHC)
Polyclonal antibody against ISAV nucleoprotein shall be used on paraffin sections from formalin-fixed tissue.
Poliklonalno protutijelo protiv nukleoproteina virusa ISA-e upotrebljava se na parafinskim dijelovima tkiva fiksiranog formalinom.
The organs to be examined shall be mid-kidney and heart (transitional area including all three chambers and valves).
Organi koje se pretražuje jesu srednji bubreg i srce (prijelazno područje, uključujući sve tri komore i zaliske).
Suspected cases due to pathological signs shall be verified with a positive IHC.
Slučajeve koji su sumnjivi zbog patoloških znakova provjerava se pozitivnim IHC-om.
Histological sections shall be prepared in accordance with standard methods.
Histološke se dijelove priprema u skladu s uobičajenim postupcima.
Preparation of tissue sections
Priprema dijelova tkiva
The tissues shall be fixed in neutral phosphate-buffered 10 % formalin for at least 1 day, dehydrated in a graded ethanol series, cleared in xylene and embedded in paraffin, according to standard protocols.
Tkiva se fiksira u neutralnom 10 %-tnom formalinu puferiranom fosfatnim puferom najmanje jedan dan, dehidrira uzastopnim uranjanjem u etanol rastuće koncentracije, pročisti u ksilenu i utisne u parafin, u skladu s uobičajenim protokolima.
Approximately 5 μm thick sections (for IHC placed on poly-L-lysine-coated slides) shall be heated at 56 °C to 58 °C (maximum 60 °C) for 20 minutes, dewaxed in xylene, rehydrated through a graded ethanol series, and stained with haematoxylin and eosin for pathomorphology and IHC in accordance with point (2).
Dijelovi debljine oko 5 μm (za IHC stavljeni na stakalce premazano poli-L-lizinom) zagrijavaju se 20 minuta na temperaturi od 56 °C do 58 °C (najviše 60 °C), deparafiniraju u ksilenu, rehidriraju uzastopnim uranjanjem u etanol rastuće koncentracije i boje hematoksilinom i eozinom radi patomorfologije i IHC-a u skladu s točkom 2.
Staining procedure for IHC
Postupak bojenja za IHC
All incubations shall be carried out at room temperature on a rocking platform, unless otherwise provided for in this decision:
Sve se inkubacije provode na sobnoj temperaturi na pomičnoj mjernoj ploči, osim ako nije drukčije predviđeno u ovoj odluci:
antigen retrieval shall be done by boiling sections in 0,1 M citrate buffer pH 6,0 for 2 × 6 minutes followed by blocking with 5 % non-fat dry milk and 2 % goat serum in 50 mM TBS (TBS; Tris/HCl 50 mM, NaCl 150 mM, pH 7,6) for 20 minutes;
antigeni se uzimaju vrenjem dijelova u 0,1 M citratnog pufera pH 6,0 tijekom 2 × 6 minuta nakon čega slijedi blokiranje 5 %-tnim bezmasnim mlijekom u prahu i 2 %-tnim kozjim serumom u 50 mM TBS-a (TBS; Tris/HCl 50 mM, NaCl 150 mM, pH 7,6) tijekom 20 minuta;
sections shall then be incubated overnight with primary antibody (monospecific rabbit antibody against ISAV nucleoprotein) diluted in TBS with 1 % non-fat dry milk, followed by three washes in TBS with 0,1 % Tween 20;
dijelove se zatim inkubira preko noći s primarnim protutijelom (monospecifično kunićje protutijelo protiv nukleoproteina virusa ISA-e) razrijeđenim u TBS-u s 1 %-tnim bezmasnim mlijekom u prahu, nakon čega slijede tri ispiranja u TBS-u s 0,1 %-tnim Tween 20;
for detection of bound antibodies, sections shall be incubated with Alkaline phosphatase-conjugated antibodies to rabbit IgG for 60 minutes.
za otkrivanje vezanih protutijela dijelove se 60 minuta inkubira protutijelima konjugiranima alkalnom fosfatazom za kunićji IgG.
Following a final wash, Fast Red (1 mg ml– 1) and Naphthol AS-MX phosphate (0,2 mg ml– 1) with 1 mM Levamisole in 0,1 M TBS (pH 8,2) shall be added to develop for 20 minutes.
Nakon konačnog se ispiranja dodaju Fast Red (1 mg ml– 1) i Naphthol AS-MX fosfat (0,2 mg ml– 1) s 1 mM levamizola u 0,1 M TBS-a (pH 8,2) i razvija se 20 minuta.
Sections shall then be washed in tap water before counterstaining with Harris haematoxylin and mounted in aqueous mounting medium.
Dijelove se zatim ispire vodom iz slavine prije protubojenja hematoksilinom Harris i stavlja u vodeni medij za uklapanje uzoraka.
ISAV positive and ISAV negative tissue sections shall be included as controls in every setup.
Dijelovi tkiva pozitivni na virus ISA-e i dijelovi tkiva negativni na virus ISA-e uključuju se kao kontrole u svakom slučaju.
Interpretation of the result of IHC
Tumačenje rezultata IHC-a
The interpretation of the result of the IHC test shall be as set out in points (a) and (b):
Tumačenje rezultata ispitivanja IHC-om provodi se kako je utvrđeno u točkama (a) i (b):
control sections shall be considered as positive, when it is observed that the control sections have clearly visible red-coloured (reddish) cytoplasmic and intranuclear staining of endothelia cells in blood vessels of endocardium.
kontrolne dijelove smatra se pozitivnima kad se zapazi da kontrolni dijelovi imaju jasno vidljiva crvena (crvenkasta) citoplazmatska i intranuklearna obojenja endotelnih stanica u krvnim žilama endokarda.
A test sample section shall only be regarded as positive if such clear, intranuclear red staining of endothelial cells is found;
Dio testnog uzorka smatra se pozitivnim samo ako se otkrije takvo jasno, intranuklearno crveno obojenje endotelnih stanica;
control sections shall be considered as negative if they don't have any significant colour reaction.
kontrolne dijelove smatra se negativnima ako nemaju nikakve znatne reakcije u pogledu obojenja.
Since the intranuclear localisation is particular to the orthomyxovirus nucleoprotein during a stage of virus replication but concurrent cytoplasmic staining is often dominant, cytoplasmic and other staining patterns without intranuclear localisation shall be considered as nonspecific or inconclusive.
Budući da je intranuklearna lokalizacija specifična za nukleoprotein ortomiksovirusa u fazi replikacije virusa, ali često je dominantno popratno citoplazmatsko obojenje, citoplazmatski i drugi uzorci obojenja bez intranuklearne lokalizacije smatraju se neodređenima ili nepotpunima.
The strongest positive staining reactions are usually obtained in endothelial cells of heart and kidney.
Najjače pozitivne reakcije obojenja uobičajeno nastaju u endotelnim stanicama srca i bubrega.
Endothelial staining reactions within very extensive haemorrhagic lesions may be slight or absent, possibly because of lysis of infected endothelial cells.
Reakcije endotelnog obojenja unutar vrlo velikih hemoragijskih lezija mogu biti male ili nepostojeće, a to je moguće zbog lize zaraženih endotelnih stanica.