natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Sediment samples should be taken carefully, causing minimal disturbance of the worms.
Uzorke sedimenta potrebno je uzimati pozorno, uz minimalno ometanje crva.
Remove all worms from the test replicate at the sampling time, e.g. by suspending the sediment with overlying water and spreading the contents of each replicate on a shallow tray and picking the worms using soft steel forceps.
Uklonite sve crve iz ispitnih višestrukih određivanja u vrijeme uzorkovanja, primjerice suspendiranjem sedimenta s vodom iznad sedimenta i rasprostiranjem sadržaja svakog višestrukog određivanja u plitkoj posudi te vađenjem crva hvataljkom od mekog željeza.
Rinse them quickly with water in a shallow glass or steel tray.
Brzo ih isperite vodom u plitkoj staklenoj ili čeličnoj plitici.
Remove the excess water.
Uklonite višak vode.
Transfer the worms carefully to a pre-weighed vessel and weigh them.
Crve pozorno prenesite u prethodno izvaganu posudu i izvažite ih.
Sacrifice the worms by freezing (e.g. ≤ – 18 °C).
Crve usmrtite zamrzavanjem (primjerice ≤ – 18 °C).
The presence and number of cocoons and/or juveniles should be recorded.
Potrebno je zabilježiti prisutnost i broj kokona i/ili mladih.
In general, the worms should be weighed and sacrificed immediately after sampling without a gut purging phase to obtain a conservative BAF which includes contaminated gut content, and to avoid losses of body residues during any gut-purging period in water only (8).
Općenito, crve je potrebno izvagati i usmrtiti odmah nakon uzorkovanja, bez faze pražnjenja crijeva, kako bi se dobio konzervativni BAF koji obuhvaća onečišćeni sadržaj crijeva te kako bi se izbjegli gubici tjelesnih ostataka tijekom razdoblja pražnjenja crijeva samo u vodi (8).
Substances with log Kow above 5 are not expected to be eliminated significantly during any gut-purging period in water only, while substances with log Kow lower than 4 may be lost in notable amounts (47).
Tijekom bilo kojeg razdoblja pražnjenja crijeva samo u vodi ne očekuje se znatna eliminacija tvari čiji je log Kow iznad pet, dok može doći do gubitka znatnih količina tvari čiji je log Kow niži od četiri (47).
During the elimination phase, the worms purge their gut in clean sediment.
Tijekom faze eliminacije crvi prazne crijeva u čistom sedimentu.
This means, measurements immediately before the elimination phase include contaminated gut sediment, while after the initial 4-24 h of the elimination phase, most of the contaminated gut content is assumed to be replaced by clean sediment (11)(47).
To znači da mjerenja odmah nakon faze eliminacije uključuju kontaminirani sediment crijeva, dok se pretpostavlja da se kontaminirani sadržaj crijeva nakon početnih četiri do 24 sata faze eliminacije zamjenjuje čistim sedimentom (11) (47).
The concentration in the worms of this sample may then be considered as the tissue concentration after gut purge.
Koncentracija u crvima u ovom uzorku tada se može smatrati koncentracijom tkiva nakon pražnjenja crijeva.
To account for dilution of the test substance concentration by uncontaminated sediment during the elimination phase, the weight of the gut content may be estimated from worm wet weight/worm ash weight or worm dry weight/worm ash weight ratios.
Kako bi se u obzir uzelo i razrjeđivanje koncentracije ispitivane tvari u nekontaminiranom sedimentu tijekom faze eliminacije, masa sadržaja crijeva može se procijeniti iz omjera mokre mase crva / mase praha crva ili iz suhe mase crva / mase praha crva.
If the purpose of a specific study is to measure the bioavailability and true tissue residues in the test organisms, then at least a sub-sample of treated animals (e.g. from three additional replicate vessels), preferably sampled during steady state, should be weighed, purged in clean water for a period of 6 hours (47), and weighed again before analysis.
Ako je svrha specifičnog istraživanja izmjeriti bioraspoloživost i ostatke pravog tkiva u ispitnim organizmima, tada je barem poduzorak ispitnih životinja (primjerice iz triju dodatnih posuda za višestruko određivanje) koji je, po mogućnosti, uzorkovan tijekom stabilnog stanja, potrebno izvagati, pročišćivati u čistoj vodi šest sati (47) i ponovno izvagati prije analize.
Data on worm weight and body concentration of this sub-sample can then be compared to values obtained from un-purged worms.
Tada se podaci o masi i tjelesnoj koncentraciji crva ovog poduzorka mogu usporediti s vrijednostima dobivenima od nepročišćenih crva.
The worms designated for measurement of elimination should not be purged before the transfer to clean sediment to minimise additional stress for the animals.
Crve određene za mjerenje eliminacije potrebno je pročistiti prije prijenosa u čisti sediment kako bi se za životinje minimizirao dodatni stres.
Preferably analyse the water, sediment, and worm samples immediately (i.e. within 1-2 d) after removal in order to prevent degradation or other losses and to calculate the approximate uptake and elimination rates as the test proceeds.
Po mogućnosti, uzorke vode, sedimenta i crva analizirajte neposredno nakon njihova vađenja (odnosno u roku od jednog do dva dana) kako bi se spriječila razgradnja ili ostali gubici te kako bi se izračunale približne brzine apsorpcije i eliminacije tijekom nastavka ispitivanja.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
Osim toga, trenutačnom se analizom izbjegava kašnjenje u određivanju platoa.
Failing immediate analysis, the samples should be stored under appropriate conditions.
Ako se analiza ne obavi odmah, uzorke je potrebno uskladištiti pod prikladnim uvjetima.
Obtain information on the stability and proper storage conditions for the particular test substance before beginning the study, (e.g. duration and temperature of storage, extraction procedures, etc.).
Prije početka istraživanja pribavite informacije o stabilnosti i ispravnim uvjetima skladištenja za određenu ispitivanu tvar (primjerice trajanje i temperatura skladištenja, postupci ekstrakcije itd.).
If such information is not available and it is judged to be necessary, spiked control tissues can be run concurrently to determine storage stability.
Ako takve informacije nisu dostupne te ako se procijeni da su nužne, istodobno se mogu analizirati kontrolna tkiva podvrgnuta postupku spikinga kako bi se utvrdila stabilnost skladištenja.
Quality of analytical method
Kakvoća analitičke metode
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as the recovery of the test substance from water, sediment and worm samples are satisfactory for the particular method.
Budući da čitav postupak uglavnom ovisi o točnosti, preciznosti i osjetljivosti analitičke metode koja se primjenjuje u odnosu na ispitivanu tvar, pokusima treba provjeriti jesu li preciznost i obnovljivost kemijske analize te izdvajanje ispitivane tvari iz uzoraka vode, sedimenta i crva zadovoljavajući za metodu u pitanju.
Also, check that the test substance is not detectable in the control chambers in concentrations higher than background.
Provjerite i može li se ispitivana tvar detektirati u kontrolnim posudama u koncentracijama višima od pozadinskih.
If necessary, correct the values of Cw, Cs and Ca for the recoveries and background values of controls.
Ako je to potrebno, ispravite vrijednosti Cw, Cs i Ca za oporavke i pozadinske vrijednosti kontrola.
Handle all samples throughout the test in such a manner so that contamination and loss are minimised (e.g. resulting from adsorption of the test substance on the sampling device).
Tijekom ispitivanja svim uzorcima rukujte na način da minimizirate kontaminaciju i gubitak (primjerice nastali kao rezultat adsorpcije ispitivane tvari na uređaj za uzorkovanje).
The overall recovery and the recovery of test substance in worms, sediment, water, and, if employed, in traps containing absorbents to retain evaporated test substance, should be recorded and reported.
Potrebno je zabilježiti i u izvješće uključiti i ukupni oporavak te oporavak ispitivane tvari u crvima, sedimentu, vodi te, ako se upotrebljavaju, u zamkama koje sadržavaju apsorbente radi zadržavanja isparene ispitivane tvari.
Since the use of radiolabelled substances is recommended, it is possible to analyse for total radioactivity (i.e. parent and degradation products).
Budući da se preporučuje upotreba radioaktivno obilježenih tvari, moguće je analizirati cjelokupnu radioaktivnost (odnosno polazni i produkti razgradnje).
However, if analytically feasible, quantification of parent substance and degradation products at steady state or at the end of the uptake phase can provide important information.
Međutim, ako je to analitički izvedivo, korisne informacije može pružiti kvantifikacija polazne tvari i produkata razgradnje u stabilnom stanju ili na kraju faze apsorpcije.
If it is intended to perform such measurements, the samples should then be subjected to appropriate extraction procedures so that the parent substance can be quantified separately.
Ako je predviđeno provođenje takvih mjera, tada je uzorke potrebno podvrgnuti odgovarajućim postupcima ekstrakcije kako bi se polazna tvar mogla zasebno kvantitativno odrediti.
Where a detected degradation product represents a significant percentage (e.g. > 10 %) of the radioactivity measured in the test organisms at steady state or at the end of the uptake phase, it is recommended to identify such degradation products (5).
Kada uočeni produkt razgradnje predstavlja znatan postotak (primjerice > 10 %) radioaktivnosti izmjerene u ispitnim organizmima u stabilnom stanju ili na kraju faze apsorpcije, preporučuje se identificirati takve produkte razgradnje (5).
Due to low individual biomass, it is often not possible to determine the concentration of test substance in each individual worm, unless Branchiura sowerbyi (40-50 mg wet weight per worm) is used as test species (11).
Zbog niske pojedinačne biomase često nije moguće utvrditi koncentraciju ispitivane tvari u svakom pojedinom crvu, osim ako se kao ispitivana vrsta ne upotrebljava Branchiura sowerbyi (40 – 50 mg mokre mase po crvu) (11).
Therefore, pooling of the individuals sampled from a given test vessel is acceptable, but it does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Stoga je udruživanje jedinki uzorkovanih iz dane ispitne posude prihvatljivo, ali ograničava statističke postupke koji se mogu primijeniti na podatke.
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of test animals and/or replicate test chambers to accommodate the desired pooling, procedure and power, should be included in the test.
Ako su određeni statistički postupak i snaga bitni, u ispitivanje je potrebno uključiti dovoljan broj pokusnih životinja i/ili broj posuda za višekratno određivanje kako bi se omogućilo željeno spajanje, postupak i snaga.
It is recommended that the BAF is expressed both as a function of total wet weight, total dry weight, and, when required (e.g. for highly lipophilic substances) as a function of the lipid content and the TOC of the sediment.
Preporučuje se BAF izražavati i kao funkciju ukupne mokre mase i, kad je to potrebno (primjerice za jako lipofilne tvari), kao funkciju sadržaja lipida i TOC-a sedimenta.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (48)(49).
Za određivanje sadržaja lipida potrebno je upotrebljavati prikladne metode (48)(49).
The chloroform/methanol extraction technique (50) may be recommended as standard method (48).
Ekstrakcijski postupak kloroform-metanol (50) može se preporučiti kao standardna metoda (48).
However, to avoid the use of chlorinated solvents, a ring-tested modification of the Bligh & Dyer method (50) as described in (51) might be used.
Međutim, radi izbjegavanja upotrebe kloriranih otapala može se upotrebljavati metoda Bligha i Dyera izmijenjena u prstenastom testu (50) kako je opisano u (51).
Since the various methods do not give identical values (48), it is important to detail the method used.
Budući da razne metode ne daju identične vrijednosti (48), vrlo je važno navesti pojedinosti primijenjene metode.
When possible, i.e. if sufficient worm tissue is available, the lipid content is measured in the same sample or extract as that produced for analysis for the test substance, since the lipids often have to be removed from the extract before it is analysed by chromatography (5).
Kad je to moguće, odnosno ako postoji dovoljno tkiva crva, sadržaj lipida mjeri se na istom uzorku ili ekstraktu kao i onaj proizveden za analizu ispitivane tvari jer se lipidi često moraju ukloniti iz ekstrakta prije nego što se on kromatografski analizira (5).
However, it is practical to use acclimatised control animals at least at start or — preferably — at the end of the uptake phase to measure the lipid content, e.g. in three samples.
Međutim, praktično je upotrebljavati aklimatizirane kontrolne životinje barem na početku ili po mogućnosti na kraju faze apsorpcije za mjerenje sadržaja lipida, odnosno u trima uzorcima.
The uptake curve of the test substance is obtained by plotting in arithmetic scale the concentration of test substance in/on the worms during the uptake phase against time.
Krivulja apsorpcije ispitivane tvari dobiva se grafičkim prikazom koncentracije u/na crvima tijekom faze apsorpcije u ovisnosti o vremenu na aritmetičkoj ljestvici.
If the curve has reached a plateau, calculate the steady state BAFss:
Ako je krivulja dosegnula plato, izračunajte BAFss u stabilnom stanju:
at steady state or at day 28mean
pri stabilnom stanju ili 28. danasrednja vrijednost
Determine the kinetic bioaccumulation factor (BAFK) as the ratio ks/ke.
Odredite faktor kinetičke bioakumulacije (BAFK) kao omjer ks/ke.
The elimination constant (ke) is usually determined from the elimination curve (i.e. a plot of the concentration of the test substance in the worms during the elimination phase).
Konstanta eliminacije (ke) obično se određuje iz krivulje eliminacije (odnosno grafičkog prikaza koncentracije ispitivane tvari u crvima tijekom faze eliminacije).
The uptake rate constant ks is then calculated from the uptake curve kinetics.
Potom se izračunava konstanta brzine apsorpcije ks iz krivulje kinetike apsorpcije.
The preferred method for obtaining BAFK and the rate constants, ks, and ke, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer (see Appendix 2).
Za dobivanje BAFK i konstanti brzine, ks, i ke prednost se daje metodama upotrebe procjene nelinearnih parametara na računalu (vidi Dodatak 2.).
If the elimination is obviously not first-order, then more complex models should be employed (25)(27)(52).
Ako eliminacija očito nije prvog reda, potrebno je primijeniti kompleksnije modele (25)(27)(52).
The biota-sediment accumulation factor (BSAF) is determined by normalising the BAFK for the worm lipid content and the sediment total organic carbon content.
Faktor akumulacije biota-sedimenta (BSAF) određuje se normaliziranjem BAFK-a za sadržaj lipida u crvima i za ukupni sadržaj organskog kisika u sedimentu.
The results should be interpreted with caution where measured concentrations of test concentrations occur at levels close to the detection limit of the analytical method used.
Rezultate je potrebno tumačiti s oprezom ako se izmjerene koncentracije ispitnih koncentracija kreću u blizini granice detekcije upotrijebljene analitičke metode.
Clearly defined uptake and elimination curves are an indication of good quality bioaccumulation data.
Jasno definirane krivulje apsorpcije i eliminacije znak su dobre kakvoće podataka o bioakumulaciji.
Generally the confidence limits for the BAF values from well-designed studies should not exceed 25 % (5).
Granice pouzdanosti za vrijednosti BAF iz dobro osmišljenih studija općenito ne bi trebale premašivati 25 % (5).
The test report must include the following information.
Izvješće o ispitivanju mora obuhvaćati sljedeće informacije:
physical nature and, physicochemical properties e.g. log Kow, water solubility;
fizikalna narav i fizikalno-kemijska svojstva, primjerice log Kow, topljivost u vodi;
if radiolabelled, the precise position of the labelled atoms, the specific radioactivity, and the percentage of radioactivity associated with impurities.
kod radioaktivno obilježenih tvari: točan položaj obilježenih atoma, specifična radioaktivnost i postotak radioaktivnosti povezan s nečistoćama.
test design (e.g. number, material and size of test chambers, water volume, sediment mass and volume, water volume replacement rate (for flow-through or semi-static procedures), any aeration used before and during the test, number of replicates, number of worms per replicate, number of test concentrations, length of uptake and elimination phases, sampling frequency);
plan ispitivanja (primjerice broj, materijal i veličina ispitnih posuda, volumen vode, masa i volumen sedimenta, brzina izmjene volumena vode (za protočne ili polustatičke postupke), bilo kakvo dozračivanje upotrijebljeno prije ili tijekom ispitivanja, broj višestrukih određivanja, broj crva po višestrukom određivanju, broj ispitnih koncentracija, dužina faza apsorpcije i eliminacije, učestalost uzorkovanja);
method of test substance preparation and application as well as reasons for choosing a specific method;
metoda pripreme i primjene ispitivane tvari kao i obrazloženje odabira specifične metode;
the nominal test concentrations;
nazivne ispitne koncentracije;
source of the constituents of the artificial water and sediment or — if natural media are used — origin of the water and the sediment, description of any pre-treatment, results of any demonstration of the ability of the test animals to live and/or reproduce in the media used, sediment characteristics (pH and ammonia of the pore water (natural sediments), organic carbon content (TOC), particle size distribution (percent sand, silt, and clay), percent water content, and any other measurements made) and water characteristics (pH, hardness, conductivity, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), and any other measurements made);
izvor sastojaka umjetne vode i sedimenta ili, ako se upotrebljavaju prirodni mediji, podrijetlo tla, opis svake prethodne obrade, rezultati svake demonstracije sposobnosti pokusnih životinja da žive i/ili se reproduciraju u upotrijebljenom mediju, značajke sedimenta (pH-vrijednost i amonijak porne vode (prirodni sedimenti), sadržaj organskog ugljika (OC), distribucija veličine čestica (postotak pijeska, praha i gline), postotak sadržaja vode i sva ostala mjerenja) te značajke vode (pH-vrijednost, tvrdoća, provodljivost, temperatura, koncentracija otopljenog kisika, rezidualni klor (ako se mjeri) i sva ostala mjerenja);
the nominal and measured dry weight in % of wet weight (or dry weight-to-wet weight ratio) of the artificial sediment;
nominalna i izmjerena suha masa u % mokre mase (ili omjer suhe i mokre mase) umjetnog sedimenta;
the measured dry weight in % of wet weight (or dry weight-to-wet weight ratio) for field sediments;
izmjerena suha masa u % mokre mase (ili omjer suhe i mokre mase) za terenske sedimente;
water quality within the test chambers as characterised by temperature, pH, ammonium, total hardness, and dissolved oxygen concentration;
kakvoća vode unutar ispitnih posuda karakterizirana temperaturom, pH-vrijednošću, amonijakom, ukupnom tvrdoćom i koncentracijom otopljenog kisika;
detailed information on the treatment of water, sediment, and worm samples, including details of preparation, storage, spiking procedures, extraction, and analytical procedures (and precision) for the test substance and lipid content, and recoveries of the test substance.
detaljni podaci o tretiranju uzoraka vode, sedimenta i crva, uključujući i pojedinosti o pripremi, skladištenju, postupcima spikinga, ekstrakcijskim i analitičkim postupcima (i preciznosti) za ispitivanu tvar i sadržaj lipida te oporavak ispitivane tvari.
mortality of the control worms and the worms in each test chamber and any observed sublethal effects including abnormal behaviour (e.g., sediment avoidance, presence or absence of fecal pellets, lack of reproduction);
smrtnost kontrolnih crva i crva u svakoj ispitnoj posudi te svi opaženi subletalni učinci, uključujući neuobičajeno ponašanje (primjerice izbjegavanje sedimenta, prisutnost ili odsutnost fekalnih peleta, nedostatak razmnožavanja);
the measured dry weight in % of wet weight (or dry weight-to-wet weight ratio) of the sediment and the test organisms (useful for normalisation);
izmjerena suha masa u % mokre mase tla (ili omjer suhe i mokre mase) sedimenta i ispitivanih organizama (korisno za normalizaciju);
the lipid content of the worms;
sadržaj lipida crvi;
curves showing the uptake and elimination kinetics of the test substance in the worms, and the time to steady state;
krivulje koje pokazuju kinetiku apsorpcije i eliminacije ispitivane tvari u crvima i vrijeme do stabilnog stanja;
Ca, Cs and Cw (with standard deviation and range, if appropriate) for all sampling times (Ca expressed in g kg– 1 wet and dry weight of whole body, Cs expressed in g kg– 1 wet and dry weight of sediment, and Cw in mg l– 1).
Ca, Cs i Cw (sa standardnim odstupanjem i rasponom, prema potrebi) za sva vremena uzorkovanja (Ca izražen u g kg– 1 mokre i suhe mase čitavog tijela, Cs izražen u g kg– 1 mokre i suhe mase sedimenta te Cw u mg l– 1).
If a biota-sediment accumulation factor (BSAF; see Appendix 1 for definition) is required (e.g. for comparison of results from two or more tests performed with animals of differing lipid content), Ca should additionally be expressed as g kg– 1 lipid content of the organism, and Cs should be expressed as g kg– 1 organic carbon (OC) of the sediment;
Ako se traži i faktor akumulacije biota-sedimenta (BSAF; za definicije vidi Dodatak 1.) (primjerice radi usporedbe rezultata dvaju ili većeg broja ispitivanja provedenih sa životinjama različitog sadržaja lipida), Ca trebao bi se dodatno izraziti kao g kg– 1 sadržaja lipida u organizmu, a Cs trebao bi se izraziti kao g kg– 1 organskog ugljika (OC) u sedimentu;
BAF (expressed in kg wet sediment kg– 1 wet worm), sediment uptake rate constant ks (expressed in g wet sediment kg– 1 of wet worm d– 1), and elimination rate constant ke (expressed in d– 1);
BAF (izražen u kg mokrog sedimenta kg– 1 mokrog crva), konstanta brzine apsorpcije sedimenta ks (izražena u g mokrog sedimenta kg– 1 mokrog crva d– 1) i konstanta brzine eliminacije ke (izražena u d– 1);
BSAF (expressed in kg sediment OC kg– 1 worm lipid content) may be reported additionally;
naknadno se može izvijestiti o BSAF-u (izražen u kg OC-a u sedimentu kg– 1 sadržaja lipida u crvu);
Non-eliminated residues (NER) at end of elimination phase;
Neeliminirani ostaci (NER) na kraju faze eliminacije;
if measured:
ako su mjereni:
percentages of parent substance, degradation products, and bound residues (i.e. the percentage of test substance that cannot be extracted with common extraction methods) detected in the test animals;
postoci polazne tvari, produkata razgradnje i vezanih ostataka (odnosno postotak ispitivane tvari koja se ne može ekstrahirati uobičajenim metodama ekstrakcije) detektirani u pokusnim životinjama;
methods used for statistical analyses of the data.
metode upotrijebljene za statističke analize podataka.
compliance of the results with the validity criteria as listed in paragraph 21;
sukladnost rezultata s validacijskim kriterijima navedenima u stavku 21.;
unexpected or unusual results, e.g. incomplete elimination of the test substance from the test animals;
neočekivani ili neobični rezultati, primjerice nepotpuna eliminacija ispitivane tvari iz pokusnih životinja;
in such cases results from any preliminary study may provide useful information.
u takvim slučajevima rezultati iz bilo kojeg preliminarnog istraživanja mogu pružiti korisne informacije.
Artificial sediment, or formulated, reconstituted or synthetic sediment, is a mixture of materials used to mimic the physical components of a natural sediment.
Umjetni sediment ili formulirani, obrađeni ili sintetički sediment jest smjesa tvari koja se upotrebljava za oponašanje fizikalnih sastojaka prirodnog sedimenta.