natgillin/translations-raw huggingface dataset:
This can be given as a dry ground powder or as a suspension in water:
Hrana se može dati kao suhi usitnjeni prah ili kao suspenzija u vodi:
1,0 g of flake food is added to 20 ml of dilution water and blended to give a homogenous mix.
1,0 g pahuljaste hrane doda se u 20 ml vode za razrjeđivanje i izmiješa u homogenu smjesu.
This preparation may be fed at a rate of about 5 ml per vessel per day.
Taj se pripravak može dodavati brzinom od oko 5 ml dnevno po posudi (protresti prije upotrebe).
(shake before use.) Older larvae may receive more.
Starije ličinke mogu dobiti više hrane.
If the culture medium becomes “cloudy”, the feeding should be reduced.
Ako hranjiva podloga za uzgoj kultura postane ‚mutna’, potrebno je smanjiti hranjenje.
Food additions should be carefully monitored.
Dodavanje hrane potrebno je pažljivo nadzirati.
Too little food will cause emigration of the larvae towards the water column, and too much food will cause increased microbial activity and reduced oxygen concentrations.
Premalo hrane dovest će do prebacivanja ličinaka prema vodenom stupcu, a previše hrane dovest će do povećane aktivnosti mikroba i sniženih koncentracija kisika.
Some green algae (e.g. Scenedesmus subspicatus, Chlorella vulgaris) cells may also be added when new culture vessels are set up.
Mogu se dodati i stanice nekih zelenih algi (npr. Scenedesmus subspicatus, Chlorella vulgaris) kada se postavljaju nove posude za uzgoj kultura.
At 20 ± 2 °C adults will begin to emerge from the larval rearing vessels after approximately 13 - 15 days.
Na 20 ± 2 °C ličinke iz posuda za uzgoj ličinaka počinju se preobražavati u odrasle životinje nakon otprilike 13 – 15 dana.
Males are easily distinguished by having plumose antennae and thin body.
Mužjaci se lako razaznaju po svojim dlakavim ticalima i tankom tijelu.
Once adults are present within the breeding cage, all larval rearing vessels should be checked three times weekly for deposition of the gelatinous egg masses.
Kad se u kavezu za uzgoj pojave odrasle životinje, u svim posudama za uzgoj ličinaka triput tjedno potrebno je provjeravati ima li položenih želatinoznih masa jajašaca.
If present, the egg masses should be carefully removed.
Ako ima masa jajašaca, potrebno ih je pažljivo ukloniti.
They should be transferred to a small dish containing a sample of the breeding water.
Potrebno ih je prenijeti u malu posudu u kojoj se nalazi uzorak vode za uzgoj.
Egg masses are used to start a new culture vessel (e.g. 2 - 4 egg masses/vessel) or are used for toxicity tests.
Te se mase jajašaca upotrebljavaju za postavljanje nove posude za uzgoj kulture (npr. od dvoje do četiri mase jajašaca/posudi) ili se upotrebljavaju za ispitivanja toksičnosti.
First instar larvae should hatch after 2 - 3 days.
Valjenje ličinaka u prvom stadiju razvoja trebalo bi se zbiti nakon dva do tri dana.
Using this system a regular supply of adults will be produced with a minimum of management.
Na taj način, uz minimalno upravljanje, stvarat će se redovita zaliha odraslih životinja.
Elendt (1990) has described the “M4” medium.
Elendt (1990.) opisao je medij ‚M4’.
The test solution should not be prepared according to Elendt and Bias (1990) for the concentrations of NaSiO3 · 5H2O, NaNO3, KH2PO4 and K2HPO4 given for the preparation of the stock solutions are not adequate.
Ispitnu otopinu ne bi trebalo pripremati prema Elendtu i Biasu (1990.) jer koncentracije NaSiO3 · 5H2O, NaNO3, KH2PO4 i K2HPO4 navedene za pripremu radnih otopina nisu adekvatne.
Each stock solution (I) is prepared individually and a combined stock solution (II) is prepared from these stock solutions (I) (see Table 1).
Svaka se radna otopina (I) priprema zasebno, a kombinirana radna otopina (II) priprema se iz tih radnih otopina (I) (vidi tablicu 1.).
Fifty ml from the combined stock solution (II) and the amounts of each macro nutrient stock solution which are given in Table 2 are made up to 1 litre of deionised water to prepare the “M7” medium.
Za pripremu medija ‚M7’ miješa se 50 ml kombinirane radne otopine (II) i količine svake radne otopine makronutrijenata navedene u tablici 2. do ukupno jedne litre deionizirane vode.
A vitamin stock solution is prepared by adding three vitamins to deionised water as indicated in Table 3, and 0,1 ml of the combined vitamin stock solution are added to the final “M7” medium shortly before use.
Vitaminska radna otopina priprema se dodavanjem triju vitamina u deioniziranu vodu, kao što je naznačeno u tablici 3., a 0,1 ml kombinirane vitaminske radne otopine dodaje se konačnom mediju ‚M7’ netom prije upotrebe.
The vitamin stock solution is stored frozen in small aliquots.
Vitaminska radna otopina čuva se zamrznuta u malim alikvotima.
Amount (mg) made up to 1 litre of deionised water
Količina (mg) od koje se umiješa do jedne litre deionizirane vode
To prepare the combined stock solution (II):
Za pripremu kombinirane radne otopine (II):
mix the following amounts (ml) of stock solutions (I) and make up to 1 litre of deionised water
pomiješajte sljedeće količine (ml) radnih otopina (I) u do jedne litre deionizirane vode
MnCl2·4H2O [1]
MnCl2 · 4H2O [1]
SrCl2·6H2O [1]
SrCl2 · 6H2O [1]
MoO4·2H2O [1]
MoO4 · 2H2O [1]
CuCl2·2H2O [1]
CuCl2 · 2H2O [1]
CaCl2·6H2O
CaCl2 · 6H2O
EDTA·2H2O [1] [2]
EDTA · 2H2O [1] [2]
FeSO4·7H2O [1] [2]
FeSO4 · 7H2O [1] [2]
Amount made up to 1 litre of deionised water
Količina od koje se umiješa do jedne litre deionizirane vode
Cyanocobalamin (B12)
Cianokobalamin (B12)
Biotine
Biotin
These substances differ in M4 and M7, as indicated above.
Ove se tvari razlikuju u M4 i M7, kao što je prethodno naznačeno.
Preparation of formulated sediment
Priprema formuliranog sedimenta
SEDIMENT COMPOSITION
SASTAV SEDIMENTA
Sphagnum moss peat, as close to pH 5,5-6,0 as possible, no visible plant remains, finely ground (particle size ≤ 1 mm) and air dried
Sphagnum moss treset, što bliže pH-vrijednosti 5,5 – 6,0, bez vidljivih ostataka biljaka, fino usitnjen (veličina čestica ≤ 1 mm) i sušen na zraku
4 - 5
4 – 5
> 50 % of the particles should be in the range of 50-200 μm
> 50 % čestica trebalo bi biti u rasponu 50 – 200 μm
0,05 - 0,1
0,05 – 0,1
The suspension is conditioned for at least two days with gentle stirring at 20 ± 2 °C, to stabilise pH and establish a stable microbial component. pH is measured again and should be 6,0 ± 0,5.
Suspenzija se priprema najmanje dva dana blagim miješanjem na 20 ± 2 °C, kako bi se stabilizirala pH-vrijednost i uspostavila stabilna mikrobna komponenta. pH-vrijednost ponovno se mjeri i trebala bi iznositi 6,0 ± 0,5.
The pH of the final mixture is measured once again and is adjusted to 6,5 to 7,5 with CaCO3 if necessary.
Još jednom mjeri se pH-vrijednost konačne smjese i podešava na od 6,5 do 7,5 s pomoću CaCO3 ako je potrebno.
Then, before it is used in the chironomid toxicity test, it is recommended that the formulated sediment be conditioned for seven days under the same conditions which prevail in the subsequent test.
Potom se preporučuje da se formulirani sediment, prije upotrebe u ispitivanju toksičnosti trzalaca, priprema sedam dana u istim uvjetima koji prevladavaju i u naknadnom ispitivanju.
The formulated (wet) sediment should not be stored prior to its use in the test.
Formulirani (mokri) sediment ne bi trebalo skladištiti prije upotrebe u ispitivanju.
It should be used immediately after the 7 days conditioning period that ends its preparation.
Njega je potrebno upotrijebiti odmah nakon razdoblja pripremanja od sedam dana koje završava pripremu.
OECD (1984), Earthworm, Acute Toxicity Test, Test Guideline No. 207, Guidelines for the Testing of Chemicals, OECD, Paris.
OECD (1984.), Earthworm, Acute Toxicity Test, Test Guideline No. 207, Guidelines for the Testing of Chemicals, OECD, Pariz.
Safety, 39:
Safety, 39: 10.
Chemical Characteristics of an Acceptable Dilution water
Kemijska svojstva prihvatljive vode za razrjeđivanje
CONSTITUENT
SASTOJAK
CONCENTRATIONS
KONCENTRACIJE
However, it should be noted that if there is an interaction suspected between hardness ions and the test chemical, lower hardness water should be used (and thus, Elendt Medium M4 should not be used in this situation).
Međutim, potrebno je imati na umu da, ako se sumnja u postojanje interakcije između iona tvrdoće i ispitivane kemikalije, potrebno je upotrebljavati vodu manje tvrdoće (u toj se situaciji stoga ne smije upotrebljavati medij Elendt M4).
Guidance for test performance
Smjernice za provođenje ispitivanja
Example of a breeding cage:
Primjer kaveza za uzgoj:
A gauze on the top and at least one side of the cage (mesh size ca. 1 mm)
A mreža na gornjoj strani i najmanje s jedne strane kaveza (veličina otvora gaze otprilike 1 mm)
B aperture for placing the emerged adults inside the breeding cage and to remove the laid egg ropes from the crystallisation dishes (not shown in this graphic)
B otvor za stavljanje preobraženih odraslih životinja u kavez za uzgoj i uklanjanje položenih skupina jajašaca iz posuda za kristalizaciju (nije ovdje prikazano)
C breeding cage size minimum 30 cm length, 30 cm height and 30 cm width
C veličina kaveza za uzgoj najmanje duljine 30 cm, visine 30 cm i širine 30 cm
Example of a test vessel:
Primjer ispitne posude:
A pasteur pipette for air supply of the overlying water
A Pasteurova pipeta za dovod zraka u vodu iznad sedimenta
B glass lid to prevent emerged midges from escaping
B stakleni poklopac za sprečavanje bijega preobraženih mušica
C water surface layer
C površinski sloj vode
D test vessel (glass beaker minimum 600 ml)
D ispitna posuda (staklena laboratorijska čaša od 600 ml)
E sediment layer
E sloj sedimenta
Example of an exhauster for capturing adult midges (arrows indicate air flow direction):
Primjer sisaljke za hvatanje odraslih mušica (strelice ukazuju na smjer protoka zraka):
On the inside, the opening of glass tube (A) is covered with some cotton and a gauze (mesh size ca. 1 mm) to prevent damaging the midges when they are sucked into the exhauster
S unutarnje strane otvor staklene cjevčice (A) prekriven je pamukom i gazom (veličina otvora mrežice otprilike 1 mm) kako bi se spriječila povreda mušica pri njihovu uvlačenju u sisaljku
C transparent container (plastic or glass, length ca. 15 cm) for captured midges
C proziran spremnik (plastičan ili staklen, duljine otprilike 15 cm) za ulovljene mušice
D cork of vulcanised rubber, perforated with tube (E).
D čep od vulkanizirane gume, probušen cjevčicom (E).
To release midges into the breeding cage, cork D is released from container C
Za puštanje mušica u kavez za uzgoj, čep D se miče iz spremnika C
F 2nd generation — test vessels containing a sediment-water system, eight replicates, 20 first instar larvae per vessel
A prva generacija – ispitne posude koje sadržavaju sustav voda/sediment, osam ponavljanja, 20 ličinaka iz prvog stadija razvoja po posudi B četiri ispitne posude za svaki kavez za uzgoj, A i B C kavezi za uzgoj (A i B) za rojenje, parenje i polaganje jajašaca D posude za kristalizaciju za polaganje jajašaca E mikrotitracijske pločice, jedna jažica za svaku skupinu jajašaca F druga generacija – ispitne posude koje sadržavaju sustav voda/sediment, osam ponavljanja, 20 ličinaka iz prvog stadija razvoja po posudi
FISH SEXUAL DEVELOPMENT TEST
ISPITIVANJE SPOLNOG RAZVOJA RIBA
This test method is equivalent to OECD test guideline (TG) 234 (2011).
Ova ispitna metoda odgovara Smjernici za ispitivanje OECD-a (TG) 234 (2011.).
It is based on a decision from 1998 to develop new or update existing test methods for the screening and testing of potential endocrine disrupters.
Temelji se na odluci iz 1998. o razvoju novih ili ažuriranju postojećih ispitnih metoda za preventivno ispitivanje i ispitivanje potencijalnih endokrinih ometača.
The Fish Sexual Development Test (FSDT) was identified as a promising test method covering a sensitive fish life stage responsive to both oestrogen and androgen-like chemicals.
Ispitivanje spolnog razvoja riba (FSDT) bilo je utvrđeno kao obećavajuća ispitna metoda kojom je bio obuhvaćen osjetljivi životni stadij riba u kojem dolazi do reakcije na kemikalije slične estrogenu i androgenu.
The test method went through an inter-laboratory validation exercise from 2006 to 2010, where Japanese medaka (Oryzias latipes), zebrafish (Danio rerio) and three spined stickleback (Gasterosteus aculeatus) were validated and fathead minnow (Pimephales promelas) was partially validated (41) (42) (43).
Od 2006. do 2010. provedena je međulaboratorijska validacija ispitne metode u okviru koje su validirani medaka (Oryzias latipes), zebrica (Danio rerio) i koljuška (Gasterosteus aculeatus) i djelomično debeloglava gavčica (Pimephales promelas) (41) (42) (43).
This protocol includes Japanese medaka, the three-spined stickleback and zebrafish.
Ovaj protokol uključuje medaku, koljušku i zebricu.
The protocol is in principle an enhancement of OECD TG 210 Fish, Early Life Stage Toxicity Test (1), where the exposure is continued until the fish are sexually differentiated, i.e. about 60 days post-hatch (dph) for Japanese medaka, the three-spined stickleback and zebrafish (the exposure period can be shorter or longer for other species that are validated in the future), and endocrine-sensitive endpoints are added.
Protokol je u načelu unapređenje Smjernice za ispitivanje OECD-a 210 Ispitivanje toksičnosti na ribama u ranim životnim stadijima (1), u kojem se izlaganje nastavlja sve do diferencijacije riba po spolu, odnosno približno 60 dana poslije valjenja (dph) za medaku, koljušku i zebricu (vrijeme izlaganja može biti kraće ili dulje za druge vrste koje će biti validirane u budućnosti), i dodavanja endokrinih konačnih učinaka.
The FSDT assesses early life-stage effects and potential adverse consequences of putative endocrine disrupting chemicals (e.g. oestrogens, androgens and steroidogenesis inhibitors) on sexual development.
Ispitivanjem spolnog razvoja riba procjenjuju se učinci u ranim životnim stadijima i potencijalno štetne posljedice navodno endokrino disruptivnih kemikalija (npr. estrogena, androgena i inhibitora steroidogeneze) na spolni razvoj.
The combination of the two core endocrine endpoints, vitellogenin (VTG) concentration and phenotypic sex ratio enable the test to indicate the mode of action of the test chemical.
Kombinacijom dvaju osnovnih endokrinih krajnjih učinaka, koncentracijom vitelogenina (VTG) i omjerom fenotipskih spolova omogućuje se da se u ispitivanju naznači način djelovanja ispitivane kemikalije.
Due to the population-relevant change in phenotypic sex ratio, the FSDT can be used for hazard and risk assessment.
Zbog promjene omjera fenotipskih spolova koja je relevantna za populaciju, ispitivanje spolnog razvoja riba može se upotrebljavati za procjenu opasnosti i rizika.
However, if the test is used for hazard or risk assessment, the stickleback should not be used because the validation data available so far showed that in this species the alterations of phenotypic sex ratio by the test chemicals were uncommon.
Međutim, ako se ispitivanje upotrebljava za procjenu opasnosti ili rizika, ne bi trebalo upotrebljavati koljušku jer raspoloživi podaci o validaciji do sada upućuju na to da za tu vrstu nisu uobičajene promjene omjera fenotipskih spolova pod djelovanjem ispitivanih kemikalija.
The protocol is based on fish exposed via water to chemicals during the sex labile period in which the fish is expected to be most sensitive to the effects of endocrine disrupting chemicals that interfere with sexual development.
2. Protokol se temelji na ribama koje su putem vode izložene kemikalijama tijekom razdoblja u kojem je spol nestabilan i u kojem se očekuje da su ribe najosjetljivije na učinke endokrino disruptivnih kemikalija koje utječu na spolni razvoj.
Two core endpoints are measured as indicators of endocrine-associated developmental aberrations, the VTG concentrations and sex ratios (proportions of sex) determined via gonad histology.
Dva osnovna krajnja učinka mjere se kao pokazatelji razvojnih aberacija povezanih s endokrinim sustavom, koncentracije VTG-a i omjeri spolova (udjeli spolova) utvrđeni histološkom analizom spolnih žlijezda.
Gonadal histopathology (evaluation and staging of oocytes and spermatogenetic cells) is optional.
Histopatološka analiza spolnih žlijezda (ocjenjivanje i određivanje stadija jajnih stanica i spermatogenih stanica) nije obvezna.
Additionally, the genetic sex is determined whenever possible (e.g. in Japanese medaka and the three spined stickleback).
Pored toga, genetski spol određuje se kada god je to moguće (npr. u medake i koljuške).
The presence of a genetic sex marker is a considerable advantage as it increases the power of the sex ratio statistics and enables the detection of individual phenotypic sex reversal.
Prisutnost markera genetskog spola predstavlja znatnu prednost jer se njime povećava snaga statističkih podataka o omjeru spolova i omogućuje utvrđivanje pojedinačne promjene fenotipskog spola.
Other apical endpoints that should be measured include hatching rate, survival, length and body weight.
Ostali apikalni krajnji učinci koje je potrebno mjeriti uključuju stopu valjenja, preživljavanje, dužinu i tjelesnu masu.
The test method might be adaptable to other species than those mentioned above provided that the other species undergo a validation equal to the one accomplished for Japanese medaka, the three-spined stickleback and zebrafish, that the control fish are sexually differentiated at the end of the test, that VTG levels are sufficiently high to detect significant chemical-related variations, and that sensitivity of the test system is established using endocrine active reference chemicals ((anti)-oestrogens, (anti)-androgens, aromatase inhibitors etc).
Ispitna metoda mogla bi se prilagoditi za druge vrste koje nisu prethodno navedene pod uvjetom da druge vrste budu podvrgnute validaciji koja je jednaka onoj provedenoj za medaku, koljušku i zebricu, da se kontrolne ribe razlikuju po spolu na kraju ispitivanja, da su razine VTG-a dovoljno visoke za utvrđivanje znatnih varijacija povezanih s kemikalijama i da je utvrđena osjetljivost sustava ispitivanja primjenom endokrino aktivnih referentnih kemikalija ((anti)estrogena, (anti)androgena, inhibitora aromataze itd.).
In addition, any validation report(s) referring to FSDT data using other species should be reviewed by the OECD, and the validation outcome should be considered as satisfactory.
Pored toga, OECD bi trebao pregledati svako izvješće / sva izvješća o validaciji u kojem se upućuje na podatke o ispitivanju spolnog razvoja riba u kojem su upotrijebljene druge vrste, a ishod validacije trebao bi se smatrati zadovoljavajućim.
Initial considerations and limitations
Početna razmatranja i ograničenja
VTG is normally produced by the liver of female oviparous vertebrates in response to circulating endogenous oestrogen (2).
VTG se uobičajeno proizvodi u jetri ženki oviparnih kralježnjaka kao reakcija na cirkulirajući endogeni estrogen (2).
The VTG synthesis is very limited, though detectable, in immature fish and adult male fish because they lack sufficient circulating oestrogen.
Sinteza VTG-a vrlo je ograničena, iako ju je moguće utvrditi u nezrelih riba i odraslih mužjaka riba jer nemaju dovoljno cirkulirajućeg estrogena.
However, the liver is capable of synthesising and secreting VTG in response to exogenous oestrogen stimulation (3) (4) (5).
Međutim, jetra može sintetizirati i izlučivati VTG kao reakciju na stimulaciju egzogenim estrogenom (3) (4) (5).
The measurement of VTG serves for the detection of chemicals with oestrogenic, anti-oestrogenic, androgenic modes of action and chemicals that interfere with steroidogenesis as for example aromatase inhibitors.
Mjerenjem VTG-a utvrđuju se kemikalije s estrogenim, antiestrogenim i androgenim načinima djelovanja i kemikalije koje utječu na steroidogenezu kao što su na primjer inhibitori aromataze.
The detection of oestrogenic chemicals is possible via the measurement of VTG induction in male fish, and it has been abundantly documented in the scientific peer-reviewed literature.
Postojanje estrogenih kemikalija može se utvrditi mjerenjem indukcije VTG-a u mužjacima riba, pri čemu je to utvrđivanje uvelike dokumentirano u znanstvenoj, stručno pregledanoj literaturi.
VTG induction has also been demonstrated following exposure to aromatisable androgens (6) (7).
Dokazana je i indukcija VTG-a nakon izlaganja androgenima koji mogu aromatizirati (6) (7).
A reduction in the circulating level of oestrogen in females, for instance through the inhibition of the aromatase converting the endogenous androgen to the natural oestrogen 17β-oestradiol, causes a decrease in the VTG concentration, which is used to detect chemicals having aromatase inhibiting properties or steroidogenesis inhibitors more broadly (33).
Smanjenjem razine cirkulirajućeg estrogena u ženkama, na primjer inhibicijom aromataze kojom se endogeni androgen pretvara u prirodni estrogen estradiol 17β, dolazi do smanjenja koncentracije VTG-a, koje služi za utvrđivanje kemikalija sa svojstvima inhibitora aromataze ili općenito inhibitora steroidogeneze (33).
The biological relevance of the VTG response following oestrogenic/aromatase inhibition is established and has been broadly documented (8) (9).
Biološka relevantnost reakcije VTG-a nakon estrogene inhibicije / inhibicije aromataze utvrđena je i uvelike dokumentirana (8) (9).
However, it is possible that production of VTG in females can also be affected by general toxicity and non-endocrine toxic modes of action.
Međutim, moguće je da na proizvodnju VTG-a u ženki utječu i opća toksičnost te neendokrini toksični načini djelovanja.
Several measurement methods have been successfully developed and standardised for routine use to quantify VTG in blood, liver, whole body or head/tail homogenate samples collected from individual fish.
Uspješno je razvijeno i standardizirano nekoliko metoda mjerenja za rutinsku primjenu pri određivanju količine VTG-a u uzorcima krvi, jetre, cijelog tijela ili homogenata glave/repa prikupljenih od pojedinačnih riba.
This is the case for zebrafish, three-spined stickleback and Japanese medaka and also the partially validated species fathead minnow;
Navedeno vrijedi za zebricu, koljušku i medaku te za djelomično validiranu vrstu debeloglava gavčica;
species-specific Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) methods using immunochemistry for the quantification of VTG are available (5) (10) (11) (12) (13) (14) (15) (16).
dostupne su metode enzimskog imunosorbentnog testa (ELISA) specifičnoga za vrstu u okviru kojih se primjenjuje imunokemija za kvantifikaciju VTG-a (5) (10) (11) (12) (13) (14) (15) (16).
In Japanese medaka and zebrafish, there is a good correlation between VTG measured from blood plasma, liver and homogenate samples although homogenates tend to show slightly lower values than plasma (17) (18) (19).
U medake i zebrice postoji dobra korelacija između VTG-a izmjerenog iz uzoraka krvne plazme, jetre i homogenata, iako postoji tendencija da su vrijednosti dobivene iz homogenata nešto niže od onih dobivenih iz plazme (17) (18) (19).
Appendix 5 provides the recommended procedures for sample collection for VTG analysis.
U Dodatku 5. predviđeni su preporučeni postupci za uzimanje uzoraka za analizu VTG-a.
Change in the phenotypic sex ratio (proportions of sex) is an endpoint reflecting sex reversal.
Promjena omjera fenotipskih spolova (udjela spolova) krajnji je učinak kojim se odražava promjena spola.
In principle, oestrogens, anti-oestrogens, androgens, anti-androgens and steroidogenesis inhibiting chemicals can affect the sex ratio of developing fish (20).
U načelu, estrogeni, antiestrogeni, androgeni, antiandrogeni i kemikalije kojima se inhibira steroidogeneza mogu utjecati na omjer spolova riba u razvoju (20).
It has been shown that this sex reversal is partly reversible in zebrafish (21) following oestrogen-like chemical exposure, whereas sex reversal following androgen-like chemical exposure is permanent (30).
Pokazalo se da je navedena promjena spola djelomično reverzibilna u zebrica (21) nakon izlaganja kemikalijama sličnima estrogenu, dok je promjena spola nakon izlaganja kemikalijama sličnima androgenu trajna (30).