natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For spiked sediment, the concentrations typically measured at the beginning of the exposure in the vessels for both generations (and optionally those of the crystallising dishes) are averaged for each treatment.
Za sediment obrađen spikingom, za svaku grupu izračunava se prosjek koncentracija obično izmjerenih na početku izlaganja u posudama za obje generacije (i fakultativno onih u posudama za kristalizaciju).
To compute a point estimate, i.e. an ECx, the per-vessel and per-breeding cage statistics may be used as true replicates.
Za izračun procijenjene vrijednosti, odnosno ECx, statistički podaci za svaku posudu i za svaki kavez za uzgoj mogu se upotrijebiti kao stvarna ponavljanja.
In calculating a confidence interval for any ECx the variability among vessels should be taken into account, or it should be shown that this variability is so small that it can be ignored.
U izračunu intervala pouzdanosti za bilo koji ECx u obzir je potrebno uzeti varijabilnost među posudama ili je potrebno pokazati da je ta varijabilnost toliko neznatna da se može ignorirati.
When the model is fitted by Least Squares, a transformation should be applied to the per-vessel statistics in order to improve the homogeneity of variance.
Kada se model prilagođava metodi najmanjih kvadrata, na statističke podatke za svaku posudu potrebno je primijeniti transformaciju kako bi se poboljšala homogenost varijance.
However, ECx values should be calculated after the response is transformed back to the original value (31).
Međutim, vrijednosti ECx trebale bi se izračunati tek nakon što se odgovor transformira natrag u izvornu vrijednost (31).
When the statistical analysis aims at determining the NOEC by hypothesis testing, the variability among vessels needs to be taken into account, which is guaranteed by using ANOVA methods (e.g. Williams' and Dunnett's test procedures).
Ako je cilj statističke analize odrediti NOEC testiranjem hipoteze, u obzir je potrebno uzeti varijabilnost među posudama koju jamči upotreba metoda ANOVA-e (npr. postupaka Williamsova i Dunnettova testa).
Williams' test would be appropriate when a monotonic dose-response is expected in theory and Dunnett's test would be appropriate where the monotonicity hypothesis does not hold.
Williamsov test bio bi prikladan ako se u teoriji očekuje odgovor na monotoničnu dozu, a Dunnettov test bio bi prikladan ako se odbaci hipoteza o monotoničnosti.
Alternatively, more robust tests (27) can be appropriate in situations where there are violations of the usual ANOVA assumptions (31).
Kao druga mogućnost, u situacijama kršenja uobičajenih pretpostavki ANOVA-e (31), mogu biti prikladna i robusnija ispitivanja (27).
Emergence ratios are quantal data, and can be analysed by the Cochran-Armitage test applied in a step-down manner where a monotonic dose-response is expected and these data are consistent with this expectation.
Omjeri preobrazbe jesu kvantalni podaci i mogu se analizirati Cochran-Armitageovim testom koji se primjenjuje postupnim snižavanjem kada se očekuje odgovor na monotoničnu dozu i kad se ti podaci slažu s tim očekivanjem.
If not, a Fisher's exact or Mantel-Haentzal test with Bonferroni-Holm adjusted p-values can be used.
Ako to nije slučaj, može se upotrebljavati Fisherov test ili Mantel-Haenszelov test s Bonferroni-Holmovim prilagođenim p-vrijednostima.
If there is evidence of greater variability between replicates within the same concentration than a binomial distribution would indicate (often referenced to as “extra-binomial” variation), then a robust Cochran-Armitage or Fisher exact test such as proposed in (27), should be used.
Ako ima dokaza za još veću varijabilnost između ponavljanja u istoj koncentraciji nego što bi to naznačila binomna distribucija (često zvana i ‚ekstra-binomna’ varijacija), potrebno je primijeniti robusni Cochran-Armitageov ili Fisherov test kakvi su predloženi u (27).
The sum of live midges (males plus females) emerged per vessel, ne, is determined and divided by the number of larvae introduced, na:
Određuje se broj živih mušica (mužjaci i ženke) preobraženih po posudi, ne, koji se onda dijeli brojem uvedenih ličinaka, na:
ER emergence ratio
ER omjer preobrazbe
number of live midges emerged per vessel
broj živih mušica preobraženih po posudi
number of larvae introduced per vessel (normally 20)
broj uvedenih ličinaka po posudi (obično 20)
When ne is larger than na (i.e. when unintentionally more than the foreseen number of larvae where introduced) na should be made equal to ne.
Ako je ne veći od na (odnosno ako se nenamjerno uvede veći broj ličinaka od predviđenog), na potrebno je izjednačiti s ne.
An alternative approach that is most appropriate for large sample sizes, when there is extra binomial variance, is to treat the emergence ratio as a continuous response and use procedures consistent with these ER data.
Najprikladniji alternativni pristup za velike uzorke, kada postoji ekstra-binomna varijanca, jest tretirati omjer preobrazbe kao kontinuirani odgovor te primijeniti postupke u skladu s tim ER podacima.
A large sample size is defined here as the number emerged and the number not emerging both exceeding five, on a per replicate (vessel) basis.
Veliki uzorak ovdje se definira kao broj preobraženih mušica i broj nepreobraženih mušica veći od pet, i to po ponavljanju (posudi).
To apply ANOVA methods, values of ER should first be transformed by the arcsin-sqrt transformation or Tukey-Freeman transformation to obtain an approximate normal distribution and to equalise variances.
Za primjenu metoda ANOVA-e vrijednosti ER-a moraju se prvo transformirati arkus sinus drugi korijen transformacijom ili Tukey-Freemanovom transformacijom kako bi se dobila približna normalna distribucija i ujednačile varijance.
The Cochran-Armitage, Fisher's exact (Bonferroni), or Mantel-Haentzal tests can be applied when using the absolute frequencies.
Kad se upotrebljavaju apsolutne frekvencije, može se primijeniti Cochran-Armitageov, Fisherov (Bonferronijev) ili Mantel-Haenszelov test.
The arcsin-sqrt transformation is applied by taking the inverse sine (sine– 1) of the square root of ER.
Arkus sinus drugi korijen transformacija primjenjuje se tako što se uzme inverzni sinus (sin– 1) drugog korijena ER-a.
For emergence ratios, ECx-values are calculated using regression analysis (e.g. probit, logit or Weibull models (28)).
Za omjere preobrazbe vrijednosti ECx računaju se regresijskom analizom (npr. probit, logit ili Weibullov model (28)).
If regression analysis fails (e.g. when there are less than two partial responses), other non-parametric methods such as moving average or simple interpolation can be used.
Ako regresijska analiza ne uspije (npr. kad imamo manje od dva djelomična odgovora), mogu se upotrebljavati druge neparametrijske metode, kao što je pomični prosjek ili jednostavna interpolacija.
Mean development time represents the mean time span between the introduction of larvae (day 0 of the test) and the emergence of the experimental cohort of midges (for calculation of the true development time, the age of larvae at the time of introduction should be considered).
Srednje vrijeme razvoja predstavlja srednji raspon vremena između uvođenja ličinaka (nulti dan ispitivanja) i njihove preobrazbe u pokusnu skupinu mušica (za izračun stvarnog vremena razvoja potrebno je u obzir uzeti dob ličinaka u vrijeme njihova uvođenja).
The development rate (unit: 1/day) is the reciprocal of the development time and represents that portion of larval development which takes place per day.
Brzina razvoja (jedinica: 1/dan) recipročna je vremenu razvoja i predstavlja dio razvoja ličinaka koji se odvija tijekom jednog dana.
Development rate is preferred for the evaluation of these sediment toxicity studies as its variance is lower, and it is more homogeneous and closer to a normal distribution compared to the development time.
Brzina razvoja preferira se za procjenu ovih studija o toksičnosti sedimenta jer je njezina varijanca niža, a homogenija je i bliža normalnoj raspodjeli u usporedbi s vremenom razvoja.
Hence, more powerful parametric test procedures may be used with development rate unlike development time.
Stoga se mogu upotrebljavati moćni postupci parametrijskih ispitivanja s brzinom razvoja radije nego s vremenom razvoja.
For development rate as a continuous response, ECx-values can be estimated by regression analysis (e.g. (29) (30)).
Za brzinu razvoja kao kontinuirani odgovor mogu se procijeniti vrijednosti ECx regresijskom analizom (npr. (29), (30)).
A NOEC for the mean development rate can be determined via ANOVA methods, e.g. Williams or Dunnett's test.
NOEC za srednju brzinu razvoja može se odrediti metodama ANOVA-e, npr. Williamsovim ili Dunnettovim testom.
Since males emerge earlier than females, i.e. have a higher development rate, it makes sense to calculate the development rate for each gender separately in addition to that for the total midges.
Budući da se mužjaci preobraze ranije nego ženke, odnosno imaju veću brzinu razvoja, logično je izračunati brzinu razvoja za svaki spol zasebno uz izračun brzine razvoja za ukupni broj mušica.
For statistical testing, the number of midges observed on inspection day x are assumed to be emerged at the mean of the time interval between day x and day x – l (l = length of the inspection interval, usually 1 day).
U svrhe statističkog ispitivanja pretpostavlja se da se broj mušica zamijećen na dan pregleda x preobrazio u srednjem vremenskom intervalu između dana x i dana x – l (l = trajanje intervala pregleda, obično jedan dan).
The mean development rate per vessel ( x
Srednja brzina razvoja po posudi ( x
) is calculated according to:
) računa se prema:
total number of midges emerged at the end of experiment (= Σfi)
ukupni broj mušica preobraženih na kraju pokusa (Σfi)
day i
dan i
inspection day (days since introduction of the larvae)
dan pregleda (dana od uvođenja ličinaka)
Sex ratio
Omjer spolova
Sex ratios are quantal data and should therefore be evaluated by means of a Fisher's exact test or other appropriate methods.
Omjeri spolova kvantalni su podaci i stoga ih je potrebno procijeniti Fisherovim testom ili drugim prikladnim metodama.
The natural sex ratio of C. riparius is one, i.e. males and females are equally abundant.
Prirodan omjer spolova vrste C. riparius jest jedan, odnosno jednak je broj mužjaka i ženki.
For both generations the sex ratio data should be treated identically.
Podacima o omjeru spolova potrebno je postupati jednako za obje generacije.
Since the maximum number of midges per vessel (i.e. 20) is too low for a meaningful statistical analysis, the total number of fully emerged and alive midges for each gender is summed over all vessels of one treatment.
Budući da je maksimalni broj mušica po posudi (odnosno 20) premalen za značajnu statističku analizu, ukupan broj živih mušica koje su se u cijelosti preobrazile za svaki spol dobiva se zbrajanjem svih posuda u jednoj grupi.
These untransformed data are tested against the (solvent) control or pooled control data in a 2 × 2 contingency table.
Ti nepretvoreni podaci ispituju se u usporedbi s podacima kontrolne posude s otapalom ili svih kontrolnih posuda u tablici kontingencije 2 × 2.
Reproduction, as fecundity, is calculated as the number of egg ropes per female.
Razmnožavanje, kao potencijalna plodnost, računa se kao broj skupina jajašaca po ženki.
More specific, the total number of egg ropes produced in a breeding cage is divided by the total number of alive and undamaged females added to that cage.
Točnije, ukupan broj skupina jajašaca dobivenih u kavezu za uzgoj dijeli se s ukupnim brojem živih i nepovrijeđenih ženki stavljenih u taj kavez.
A NOEC for fecundity can be determined via ANOVA methods, e.g. Williams or Dunnett's test.
NOEC za potencijalnu plodnost može se odrediti metodama ANOVA-e, npr. Williamsovim ili Dunnettovim testom.
Fertility of the egg ropes is used to quantify the number of fertile egg ropes per female.
Stvarna plodnost skupine jajašaca upotrebljava se za kvantificiranje broja plodnih skupina jajašaca po ženki.
The total number of fertile egg ropes produced in a breeding cage is divided by the total number of alive and undamaged females added to that cage.
Ukupan broj plodnih skupina jajašaca proizvedenih u kavezu za uzgoj dijeli se s ukupnim brojem živih i nepovrijeđenih ženki stavljenih u taj kavez.
A NOEC for fertility can be determined via ANOVA methods, e.g. Williams or Dunnett's test.
NOEC za stvarnu plodnost može se odrediti metodama ANOVA-e, npr. Williamsovim ili Dunnettovim testom.
The test report should provide the following information:
Izvješće o ispitivanju trebalo bi obuhvaćati sljedeće informacije:
physical nature and physical-chemical properties (water solubility, vapour pressure, log Kow, partition coefficient in soil (or in sediment if available), stability in water and sediment etc.);
fizikalna priroda i fizikalno-kemijska svojstva (topljivost u vodi, tlak pare, log Kow,podjelni koeficijent u tlu (ili u sedimentu ako postoji), stabilnost u vodi i sedimentu itd.);
chemical identification data (common name, chemical name, structural formula, CAS number, etc.) including purity and analytical method for the quantification of the test chemical.
podaci za identifikaciju kemikalije (opći naziv, kemijski naziv, strukturna formula, CAS broj itd.), uključujući čistoću i analitičku metodu kvantifikacije ispitivane kemikalije.
test organisms used:
upotrijebljeni ispitni organizmi:
information on how the egg masses and larvae were handled;
informacije o postupanju s masama jajašaca i ličinkama;
information on handling of the emerged adults of the 1st generation with the help of an exhauster etc (see Appendix 5)
informacije o postupanju s preobraženim odraslim životinjama prve generacije s pomoću sisaljke itd. (vidi Dodatak 5.)
age of the test organisms at the time of insertion into the test vessels of the 1st and 2nd generation.
dob ispitnih organizama u vrijeme stavljanja u ispitne posude prve i druge generacije.
sediment used, i.e. natural or formulated (artificial) sediment;
upotrijebljeni sediment, odnosno prirodni ili formulirani (umjetni) sediment;
natural sediment:
prirodni sediment:
pH, organic carbon content, C/N ratio and granulometry (if appropriate).
pH-vrijednost, sadržaj organskog ugljika, omjer C/N i granulometriju (ako je prikladno).
formulated sediment:
formulirani sediment:
preparation, ingredients and characteristics (organic carbon content, pH, moisture, etc. measured at the start of the test);
priprema, sastojci i svojstva (sadržaj organskog ugljika, pH-vrijednost, vlaga itd. izmjereni na početku ispitivanja);
preparation of the test water (if reconstituted water is used) and characteristics (oxygen concentration, pH, hardness, etc. measured at the start of the test);
priprema ispitne vode (ako se upotrebljava obrađena voda) i svojstva (koncentracija kisika, pH-vrijednost, tvrdoća itd. izmjereni na početku ispitivanja);
depth of sediment and overlaying water for the test vessels and crystallising dishes;
dubina sedimenta i vode iznad sedimenta za ispitne posude i posude za kristalizaciju;
crystallising dishes (material and size);
posude za kristalizaciju (materijal i veličina);
breeding cages (material and size)
kavezi za uzgoj (materijal i veličina)
method of preparation of stock solutions and test concentrations for the test vessels and crystallising dishes;
metoda pripreme radnih otopina i ispitnih koncentracija za ispitne posude i posude za kristalizaciju;
application of the test chemical into the test vessels and crystallising dishes:
dodavanje ispitivane kemikalije u ispitne posude i posude za kristalizaciju:
test concentrations, number of replicates and solvents if needed;
ispitne koncentracije, broj ponavljanja i otapala ako je potrebno;
incubation conditions for the test vessels:
uvjeti za inkubaciju za ispitne posude:
temperature, light cycle and intensity, aeration (bubbles per second);
temperatura, ciklus i jačina svjetlosti, dozračivanje (mjehurića po sekundi);
incubation conditions for the breeding cages and the crystallising dishes:
uvjeti za inkubaciju za kaveze za uzgoj i posude za kristalizaciju:
temperature, light cycle and intensity;
temperatura, ciklus i jačina svjetlosti;
incubation conditions for the egg ropes in the micro plates (or other vessels):
uvjeti za inkubaciju za skupine jajašaca na mikrotitracijskim pločicama (ili u drugim posudama):
temperature, light cycle and intensity:
temperatura, ciklus i jačina svjetlosti:
detailed information on feeding including type of food, preparation, amount and feeding regime.
detaljne informacije o hranjenju, uključujući vrstu hrane, pripremu, količinu i režim hranjenja.
nominal test concentrations, measured test concentrations and the results of all analyses to determine the concentration of the test chemical in the test vessels and crystallising dishes;
nominalne ispitne koncentracije, izmjerene ispitne koncentracije i rezultati svih analiza za određivanje koncentracije ispitivane kemikalije u ispitnim posudama i posudama za kristalizaciju;
water quality within the test vessels and crystallising dishes, i.e. pH, temperature, dissolved oxygen, hardness and ammonia;
kakvoća vode u ispitnim posudama i posudama za kristalizaciju, odnosno pH-vrijednost, temperatura, otopljeni kisik, tvrdoća i amonijak;
replacement of evaporated test water for the test vessels, if any;
zamjena isparene ispitne vode za ispitne posude, ako je bilo;
number of emerged male and female midges per vessel and per day for the 1st and 2nd generation;
broj preobraženih mužjaka i ženki mušica po posudi i po danu za prvu i drugu generaciju;
sex ratio of fully emerged and alive midges per treatment for the 1st and 2nd generation
omjer spolova živih mušica koje su se u cijelosti preobrazile po grupi za prvu i drugu generaciju
number of larvae which failed to emerge as midges per vessel for the 1st and 2nd generation;
broj ličinaka koje se nisu preobrazile kao mušice po posudi za prvu i drugu generaciju;
percentage/fraction of emergence per replicate and test concentration (male and female midges pooled) for the 1st and 2nd generation;
postotak/udio preobrazbe po ponavljanju i ispitnoj koncentraciji (mužjaci i ženke mušica zajedno) za prvu i drugu generaciju;
mean development rate of fully emerged and alive midges per replicate and treatment rate (male and female midges separate and also pooled) for the 1st and 2nd generation;
srednja brzina razvoja živih mušica koje su se u cijelosti preobrazile po ponavljanju i brzini tretmana (mužjaci i ženke mušica odvojeno i zajedno) za prvu i drugu generaciju;
number of egg ropes deposited in the crystallising dishes per breeding cage and day;
broj skupina jajašaca položenih u posude za kristalizaciju po kavezu za uzgoj i danu;
characteristics of each egg rope (size, shape and fertility);
svojstva svake skupine jajašaca (veličina, oblik i stvarna plodnost);
fecundity — total number of egg ropes per total number of females added to the breeding cage;
potencijalna plodnost – ukupan broj skupina jajašaca po ukupnom broju ženki stavljenih u kavez za uzgoj;
fertility — total number of fertile egg ropes per total number of females added to the breeding cage;
stvarna plodnost – ukupan broj plodnih skupina jajašaca po ukupnom broju ženki stavljenih u kavez za uzgoj;
estimates of toxic endpoints e.g. ECx (and associated confidence intervals), NOEC and the statistical methods used for its determination;
procjene toksičnih krajnjih učinaka, npr. ECx (i s time povezani intervali pouzdanosti), NOEC i statističke metode upotrijebljene za njihovo određivanje;
Chapter C.28 of this Annex, Sediment-water chironomid toxicity test using spiked water.
Poglavlje C.27. ovog Priloga, Ispitivanje toksičnosti trzalaca (chironomidae) u vodi iz sedimenta sa sedimentom obrađenim spikingom.
Chapter C.27 of this Annex, Sediment-water chironomid toxicity test using spiked sediment.
Poglavlje C.27. ovog Priloga, Ispitivanje toksičnosti trzalaca (chironomidae) u vodi iz sedimenta sa sedimentom obrađenim spikingom.
J. Amer.
J. Amer.
OECD (2006), Current Approaches in the Statistical Analysis of Ecotoxicity Data:
OECD (2006.), Current Approaches in the Statistical Analysis of Ecotoxicity Data: a Guidance to Application, OECD Series on Testing and Assessment No.
a Guidance to Application, OECD Series on Testing and Assessment No. 54, 146 pp., ENV/JM/MONO(2006)18, OECD, Paris.
54, 146 pp., ENV/JM/MONO(2006)18, OECD, Paris.
Formulated sediment or reconstituted, artificial or synthetic sediment is a mixture of materials used to mimic the physical components of natural sediment.
Formulirani sediment ili obrađeni, umjetni ili sintetički sediment jest smjesa materijala koja se upotrebljava za oponašanje fizikalnih svojstava prirodnog sedimenta.
Overlying water is the water placed over sediment in the test vessel.
Voda iznad sedimenta jest voda koja se u ispitnoj posudi nalazi iznad sedimenta.
Interstitial water or pore water is the water occupying space between sediment and soil particles.
Međuprostorna voda ili porna voda jest voda u prostoru između sedimenta i čestica tla.
Spiked water is the test water to which test chemical has been added.
Voda obrađena spikingom jest ispitna voda u koju je dodana ispitivana kemikalija.
Kieselgur (e.g. Merck, Art 8117) has also been shown to be a suitable substrate (a thinner layer of up to a very few mm is sufficient).
Pokazalo se i da je dijatomejska zemlja (npr. Merck, Art 8117) prikladan supstrat (dostatan je tanji sloj od svega nekoliko mm).
Suitable water is then added to a depth of several cm.
Potom se dodaje prikladna voda u dubini od nekoliko centimetara.
Water levels should be topped up as necessary to replace evaporative loss, and prevent desiccation.
Vodu je potrebno nadolijevati po potrebi kako bi se zamijenila voda izgubljena isparavanjem i spriječilo isušivanje.
Water can be replaced if necessary.
Voda se po potrebi može zamijeniti.
Gentle aeration should be provided.
Potrebno je osigurati blago dozračivanje.
The larval rearing vessels should be held in a suitable cage which will prevent escape of the emerging adults.
Posude za uzgoj ličinaka potrebno je držati u prikladnom kavezu koji će spriječiti bijeg preobraženih odraslih životinja. Kavez bi trebao biti dovoljno velik da se preobražene odrasle životinje mogu rojiti;
The cage should be sufficiently large to allow swarming of emerged adults, otherwise copulation may not occur (minimum is ca. 30 × 30 × 30 cm).
u suprotnome možda neće doći do kopulacije (minimalno oko 30 x 30 x 30 cm).
Cages should be held at room temperature or in a constant environment room at 20 ± 2 °C with a photo period of 16 hour light (intensity ca. 1000 lux), 8 hours dark.
Kaveze je potrebno držati na sobnoj temperaturi ili u prostoriji s konstantnim okolišem na 20 ± 2 °C s fotoperiodom od 16 sati svjetlosti (jačine oko 1000 luksa), osam sati mraka.
It has been reported that air humidity of less than 60 % RH can impede reproduction.
Izvješća ukazuju na to da vlažnost zraka ispod 60 % RV može spriječiti razmnožavanje.
Any suitable natural or synthetic water may be used.
Može se upotrebljavati bilo koja prikladna prirodna ili sintetička voda.
Well water, dechlorinated tap water and artificial media (e.g. Elendt “M4” or “M7” medium, see below) are commonly used.
Obično se upotrebljavaju izvorska voda, voda iz slavine iz koje je uklonjen klor i umjetni mediji (npr. mediji Elendt ‚M4’ ili ‚M7’; vidi u nastavku).
The water should be aerated before use.
Vodu je prije upotrebe potrebno dozračiti.
If necessary, the culture water may be renewed by pouring or siphoning the used water from culture vessels carefully without destroying the tubes of larvae.
Ako je to potrebno, voda za uzgoj kulture može se obnoviti pažljivim izlijevanjem upotrijebljene vode iz posuda za uzgoj kulture, izravno ili putem sifona, da se pritom ne unište cjevčice s ličinkama.
Feeding larvae
Hranjenje ličinaka
Chironomus larvae should be fed with a fish flake food (Tetra Min®, Tetra Phyll® or other similar brand of proprietary fish food), at approximately 250 mg per vessel per day.
Ličinke vrste Chironomus treba hraniti pahuljicama riblje hrane (Tetra Min®, Tetra Phyll® ili neka druga slična robna marka riblje hrane), i to otprilike 250 mg dnevno po posudi.