natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Egg structure and appearance
Jos on näyttöä siitä, että testipitoisuus on pysynyt tyydyttävästi ± 20 prosentin rajoissa nimellispitoisuudesta tai mitatusta alkupitoisuudesta koko testin ajan, tulosten analysointi voi perustua nimellispitoisuuksiin tai mitattuihin alkupitoisuuksiin.
Stable chorion (i.e. highly transparent, non-sticky, diameter ~ 0,8–1,5 mm)
Jos pitoisuus poikkeaa enemmän kuin ± 20 prosenttia nimellispitoisuudesta tai mitatusta alkupitoisuudesta, tulosten analysoinnin on perustuttava pitoisuuksien geometriseen keskiarvoon altistuksen aikana tai malleihin, jotka kuvaavat testikemikaalin pitoisuuden vähenemistä (5).
Spawning rate
Joissakin tapauksissa, esimerkiksi silloin, kun alustava testi osoittaa, että testikemikaalilla ei ole myrkkyvaikutuksia pitoisuusarvoon 100 mg/l saakka tai siihen liukoisuusrajaan asti, joka testikemikaalilla on testiviljelyaineessa, tai jos kyseessä on formulaatti, sen dispergoituvuusrajaan asti, voidaan tehdä raja-annostesti, jossa verrataan yhden kontrolliryhmän ja yhden käsitellyn ryhmän vasteita (pitoisuudessa 100 mg/l tai liukoisuusrajaa vastaavassa pitoisuudessa).
A single mature female spawns at least 50-80 eggs per day.
On erittäin suotavaa analysoida altistuspitoisuus raja-annostestin tueksi.
Depending on the strain, spawning rates may be considerably higher.
Kaikki edellä kuvatut testiolosuhteet ja validiteettivaatimukset koskevat myös raja-annostestiä, lukuun ottamatta käsiteltyjen toistojen määrää, joka on kaksinkertaistettava.
The fertilisation rate should be ≥ 70 %.
Kontrolli- ja käsitellyssä ryhmässä tapahtunutta kasvua voidaan analysoida Studentin t-testin kaltaisella tilastotutkimuksella, jossa verrataan keskiarvoja.
For first time spawning fish, fertilisation rates of the eggs may be lower in the first few spawns.
Vastemuuttujat
Static, semi-static renewal, flow-through, 26 ± 1 °C, 24 hrs conditioned test chambers (e.g. 24-well plates 2,5-5 ml per cavity)
Testin tarkoituksena on määrittää testikemikaalin vaikutukset Myriophyllum spicatum -lajin kasvuun.
NORMAL ZEBRAFISH DEVELOPMENT AT 26 °C
Tässä testimenetelmässä kuvataan kahta eri vastemuuttujaa.
Fig.
Keskimääräinen spesifinen kasvunopeus
1: Selected stages of early zebrafish (Danio rerio) development: 0,2 – 1,75 hrs post-fertilisation (from Kimmel et al., 1995 (35)).
Tämä vastemuuttuja lasketaan kontrolleista ja kustakin käsitellystä ryhmästä seuraavien kahden muuttujan avulla: pääverson pituuden logaritmiarvossa tietyn (päivinä ilmaistun) ajan kuluessa tapahtunut muutos ja jonkin toisen mittausmuuttujan (versojen kokonaispituuden, tuorepainon, kuivapainon tai kiehkuroiden määrän) logaritmiarvossa tietyn (päivinä ilmaistun) ajan kuluessa tapahtunut muutos.
The time sequence of normal development may be taken to diagnose both fertilisation and viability of eggs (see paragraph 26: Selection of fertilised eggs).
Huom. Sivuhaarojen kokonaispituutta ja juurien kokonaispituutta koskevien mittausmuuttujien osalta keskimääräisen spesifisen kasvunopeuden laskeminen ei ole mahdollista.
Fig.
Testin alussa koe-eliöllä ei ole sivuhaaroja eikä juuria (esiviljelmän valmistelun vuoksi); koska alkuarvona on nolla, keskimääräisen spesifisen kasvunopeuden laskentaa ei ole määritetty.
2: Selected stages of late zebrafish (Danio rerio) development (de-chorionated embryo to optimise visibility): 22 – 48 hrs after fertilisation (from Kimmel et al., 1995 (35)).
Tuotos
Fig.
Tämä vastemuuttuja lasketaan seuraavien kahden muuttujan avulla: pääverson pituuden muutokset ja jonkin toisen mittausmuuttujan – mieluiten versojen kokonaispituuden, tuorepainon, kuivapainon tai kiehkuroiden määrän tai muiden hyödyllisiksi katsottujen muuttujien – muutokset kontrolleissa ja kussakin käsitellyssä ryhmässä testin loppuun saakka.
3: Normal development of zebrafish (Danio rerio) embryos: (1) 0,75 hrs, 2-cell stage; (2) 1 hr, 4-cell stage; (3) 1,2 hrs, 8-cell stage; (4) 1,5 hrs, 16-cell stage; (5) 4,7 hrs, beginning epiboly; (6) 5,3 hrs, approx.
Toksisuuden arviointien on perustuttava pääverson pituuteen ja kolmeen muuhun mittausmuuttujaan (mieluiten versojen kokonaispituus, tuorepaino, kuivapaino tai kiehkuroiden määrä, ks. 37 kohta ja tämän kohdan huomautukset 2, 4 ja 5), koska eräät kemikaalit voivat vaikuttaa enemmän muihin mittausmuuttujiin kuin pääverson pituuteen.
50 % epiboly (from Braunbeck & Lammer 2006 (40)).
Tätä vaikutusta ei havaittaisi laskemalla pelkästään pääverson pituus.
Layout of 24-well plates
Tietyn ajanjakson keskimääräinen spesifinen kasvunopeus lasketaan kasvumuuttujien – pääverson pituuden ja kolmen muun mittausmuuttujan (esimerkiksi versojen kokonaispituuden, tuorepainon, kuivapainon tai kiehkuroiden määrän) – logaritmisena kasvuna soveltamalla seuraavaa kaavaa kaikkiin kontrolliliuosten ja käsiteltyjen liuosten toistoihin:
1-5 five test concentrations/chemical;
keskimääräinen spesifinen kasvunopeus aikavälillä i–j
nC negative control (dilution water);
testi- tai kontrolliryhmän astiasta määritetty mittausmuuttujan arvo hetkellä i
iC internal plate control (dilution water);
testi- tai kontrolliryhmän astiasta määritetty mittausmuuttujan arvo hetkellä j
pC positive control (3,4-DCA 4 mg/l);
t aikaväli i–j
sC solvent control.
Kullekin testiryhmälle ja kontrolliryhmälle lasketaan kasvunopeuden keskiarvo varianssiestimaatteineen.
Scheme of the zebrafish embryo acute toxicity test procedure (from left to right): production of eggs, collection of the eggs, pre-exposure immediately after fertilisation in glass vessels, selection of fertilised eggs with an inverted microscope or binocular and distribution of fertilised eggs into 24-well plates prepared with the respective test concentrations/controls, n = number of eggs required per test concentration/control (here 20), hpf = hours post-fertilisation.
Keskimääräinen spesifinen kasvunopeus on laskettava koko testijaksolta (edellä olevassa kaavassa hetki ”i” tarkoittaa testin alkua ja hetki ”j” testin päättymistä).
Waste
Kullekin testipitoisuudelle ja kontrollille lasketaan keskimääräisen spesifisen kasvunopeuden keskiarvo varianssiestimaatteineen.
24 h pre-conditioning n fertilised eggs per test concentration/ control Selection of fertilised eggs & fertilisation rate determination Glass vessel with respective test concentrations/ controls at volumes to fully cover eggs
Sen lisäksi on määritettävä jaksoittaiset kasvunopeudet, jotta voidaan arvioida testikemikaalin vaikutuksia koko altistusaikana (esimerkiksi analysoimalla logaritmisia kasvukäyriä).
eggs per conc./ control
Kasvunopeuden prosentuaalinen estyminen (Ir) voidaan sen jälkeen laskea kutakin testipitoisuutta varten (käsittelyryhmässä) seuraavan kaavan avulla:
Spawning unit
% Ir keskimääräisen spesifisen kasvunopeuden prosentuaalinen estyminen
ATLAS OF LETHAL ENDPOINTS FOR THE ZEBRAFISH EMBRYO ACUTE TOXICITY TEST
μC μ:n keskiarvo kontrolliryhmässä
The following apical endpoints indicate acute toxicity and, consequently, death of the embryos: coagulation of the embryo, non-detachment of the tail, lack of somite formation and lack of heartbeat.
μT μ:n keskiarvo käsittelyryhmässä.
The following micrographs have been selected to illustrate these endpoints.
Tuotokseen kohdistuvat vaikutukset määritetään seuraavien mittausmuuttujien avulla: pääverson pituus ja kolme muuta mittausmuuttujaa (mieluiten versojen kokonaispituus, tuorepaino, kuivapaino tai kiehkuroiden määrä), jotka mitataan jokaisesta koeastiasta testin alussa ja lopussa.
Coagulation of the embryo:
Jos toisena mittausmuuttujana käytetään tuorepainoa tai kuivapainoa, testin alussa oleva biomassa määritetään samasta erästä otetun koe-eliönäytteen avulla, jota on käytetty koeastioiden siirrostamiseen.
Under bright field illumination, coagulated zebrafish embryos show a variety of intransparent inclusions.
Kullekin testipitoisuudelle ja kontrollille lasketaan tuotoksen keskiarvo varianssiestimaatteineen.
Figure 2
Tuotoksen prosentuaalinen estyminen ( % Iy) voidaan laskea kutakin käsittelyryhmää varten seuraavasti:
Lack of somite formation:
% Iy tuotoksen prosentuaalinen estyminen
Although retarded in development by approx.
bC kontrolliryhmän lopullinen biomassa, josta on vähennetty sen biomassa testin alussa
10 hrs, the 24 hrs old zebrafish embryo in (a) shows well-developed somites (→), whereas the embryo in (b) does not show any sign of somite formation (→).
bT käsittelyryhmän lopullinen biomassa, josta on vähennetty sen biomassa testin alussa.
Although showing a pronounced yolk sac oedema (*), the 48 hrs old zebrafish embryo in (c) shows distinct formation of somites (→), whereas the 96 hrs old zebrafish embryo depicted in (d) does not show any sign of somite formation (→).
Kaksinkertaistumisaika
Note also the spinal curvature (scoliosis) and the pericardial oedema (*) in the embryo shown in (d).
Seuraavan kaavan avulla, jota sovelletaan kontrolliastioita koskeviin tietoihin, voidaan määrittää pääverson pituuden kaksinkertaistumisaika (Td) ja varmistaa samalla, että testi täyttää tämän validiteettivaatimuksen (ks. 8 kohta):
Bud in lateral view (a: →; 96 hrs old zebrafish embryo).
Td = ln 2 /μ
Note also the lack of the eye bud (*).
Kaavassa μ on keskimääräinen spesifinen kasvunopeus, joka lasketaan 50–52 kohdassa kuvatulla tavalla.
Figure 4
Pitoisuus-vastekäyrien piirtäminen
Lack of heartbeat is, by definition, difficult to illustrate in a micrograph.
Pitoisuus-vastekäyrät piirretään merkitsemällä y-akselille vastemuuttujan keskimääräinen prosentuaalinen estyminen (vastemuuttujana on Ir tai Iy, joka lasketaan 53 kohdan mukaan) ja x-akselille testiaineen pitoisuuden logaritmi.
Lack of heartbeat is indicated by non-convulsion of the heart (double arrow).
ECx-pitoisuuden arviointi
Immobility of blood cells in, e.g. the aorta abdominalis (→ in insert) is not an indicator for lack of heartbeat.
ECx-pitoisuuden estimaattien on perustuttava sekä keskimääräiseen spesifiseen kasvunopeuteen (ErCx) että tuotokseen (EyCx).
Note also the lack of somite formation in this embryo (*, homogenous rather than segmental appearance of muscular tissues).
Näistä kummankin on puolestaan perustuttava pääverson pituuteen ja mahdollisesti johonkin toiseen mittausmuuttujaan (mieluiten versojen kokonaispituuteen, tuorepainoon, kuivapainoon tai kiehkuroiden määrään), koska eräät kemikaalit vaikuttavat eri tavalla pääverson pituuteen kuin muihin mittausmuuttujiin.
The observation time to record an absence of heartbeat should be at least of one minute with a minimum magnification of 80×.
Tavoitteena on siis saada toksisuusparametreiksi seuraavat neljä ECx-arvoa kutakin laskettua kasvunestymistasoa x kohden: ErCx (pääverson pituus); ErCx (mieluiten versojen kokonaispituus, tuorepaino, kuivapaino tai kiehkuroiden määrä); EyCx (pääverson pituus); ja EyCx (mieluiten versojen kokonaispituus, tuorepaino, kuivapaino tai kiehkuroiden määrä).
C.50 Sediment-free Myriophyllum spicatum toxicity test
On syytä huomata, että näiden kahden vastemuuttujan avulla lasketut ECx-arvot eivät ole vertailukelpoisia, mikä on otettava huomioon käytettäessä testin tuloksia.
This test method is equivalent to OECD test guideline 238 (2014).
Jos testiolosuhteet ovat tämän testimenetelmän mukaiset, keskimääräiseen spesifiseen kasvunopeuteen perustuvat ECx-arvot (ErCx) ovat useimmiten suurempia kuin tuotokseen perustuvat arvot (EyCx), mikä johtuu niiden matemaattisista perusteista.
It is designed to assess the toxicity of chemicals to Myriophyllum spicatum, a submersed aquatic dicotyledon, a species of the water milfoils family.
Tätä ei pidä tulkita siten, että näiden kahden vastemuuttujan herkkyydet olisivat erilaiset, vaan arvojen välinen ero on puhtaasti matemaattinen.
It is based on an ASTM existing test method (1) modified as a sediment-free test system (2) to estimate the intrinsic ecotoxicity of test chemicals (independent of the distribution-behaviour of the test chemical between water and sediment).
Tilastomenetelmät
A test system without sediment has a low analytical complexity (only in the water phase) and the results can be analysed in parallel and/or comparison with those obtained in Lemna sp. test (3); in addition, the required sterile conditions allow to keep the effects of microorganisms and algae (chemical uptake/ degradation, etc.) as low as possible.
Tavoitteena on saada kvantitatiivinen pitoisuus-vastesuhde regressioanalyysin avulla.
This test does not replace other aquatic toxicity tests; it should rather complement them so that a more complete aquatic plant hazard and risk assessment is possible.
Painotettua lineaarista regressiota voidaan käyttää sen jälkeen, kun vastetiedoille on tehty linearisoiva muunnos – esimerkiksi probitti-, logitti- tai Weibull-malleilla (7) – mutta suositeltavampaa on käyttää epälineaarisia regressiomenetelmiä, joilla voidaan paremmin käsitellä tiedoissa väistämättä esiintyviä epäsäännöllisyyksiä sekä poikkeamia tasaisista jakaumista.
The test method has been validated by a ring-test (4).
Lähestyttäessä tilaa, jossa kasvu ei esty ollenkaan tai estyminen on täydellistä, linearisoiva muunnos voi suurentaa epäsäännöllisyyksiä ja haitata siten analyysiä (7).
Details of testing with renewal (semi-static) and without renewal (static) of the test solution are described.
On syytä huomata, että standardianalyysimenetelmät, joissa käytetään probitti-, logitti- tai Weibull-muunnoksia, on tarkoitettu dikotomisia tietoja varten (kun vasteita on kaksi, esimerkiksi kuolleisuus tai eloonjääminen), minkä vuoksi niitä on mukautettava, jos niitä aiotaan käyttää kasvu- tai tuotostietojen analysointiin.
Depending on the objectives of the test and the regulatory requirements, the use of semi-static method is recommended, e.g. for substances that are rapidly lost from solution as a result of volatilisation, adsorption, photodegradation, hydrolysis, precipitation or biodegradation.
Kirjallisuusviitteissä (8), (9) ja (10) kuvataan erityismenetelmiä, joilla ECx-arvot voidaan määrittää jatkuvista tiedoista.
Further guidance is given in (5).
Kunkin vastemuuttujan analysoimiseksi käytetään pitoisuus-vastesuhdetta, jonka avulla lasketaan ECx-arvojen piste-estimaatit.
This test method applies to substances, for which the test method has been validated, (see details in the ring-test report (4)) or to formulations, or known mixtures; if a mixture is tested, its constituents should be as far as possible identified and quantified.
Jokaiselle estimaatille on määritettävä 95 prosentin luottamusväli, jos se on mahdollista.
The sediment-free Myriophyllum spicatum test method complements the water-sediment Myriophyllum spicatum Toxicity Test (6).
Vastetietojen ja regressiomallin välinen yhteensopivuuden aste on arvioitava joko graafisesti tai tilastollisesti.
Before use of the test method for the testing of a mixture intended for a regulatory purpose, it should be considered whether, and if so why, it may provide adequate results for that purpose.
Regressionanalyysi on tehtävä käyttämällä yksittäisiä toistojen vasteita eikä käsittelyryhmien keskiarvoja.
Continuously growing plant cultures of Myriophyllum spicatum (only in modified Andrews' medium, see Appendix 2) are allowed to grow as monocultures in different concentrations of the test chemical over a period of 14 days in a sediment-free test system.
estimaatit ja luottamusvälit saadaan myös käyttämällä lineaarista interpolointia bootstrap-menetelmän kanssa (10), jos käytettävissä olevat regressiomallit tai -menetelmät eivät sovellu kyseisten tietojen käsittelyyn.
The objective of the test is to quantify chemical-related effects on vegetative growth over this period based on assessments of selected measurement variables.
LOEC-pitoisuuden ja siten myös NOEC-pitoisuuden arvioimiseksi on verrattava käsiteltyjen liuosten keskiarvoja käyttämällä varianssianalyysitekniikoita (ANOVA).
Growth of shoot length, of lateral branches and roots as well as development of fresh and dry weight and increase of whorls are the measurement variables.
Sen jälkeen kunkin pitoisuuden keskiarvoa verrataan kontrolliryhmän keskiarvoon käyttämällä sopivaa moniulotteista vertailumenetelmää tai trenditestimenetelmää.
In addition, account is taken of distinctive qualitative changes in test organisms, such as disfigurement or chlorosis and necrosis indicated by yellowing or white and brown colouring.
Dunnettin tai Williamsin testi voi olla käyttökelpoinen (12) (13) (14) (15) (16).
To quantify chemical-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth is determined and expressed as the ECx; “x” can be any value depending on the regulatory requirements, e.g. EC10, EC20, EC50.
Lisäksi on arvioitava, pitääkö ANOVA-oletus varianssin homogeenisuudesta paikkansa.
It should be noted that estimates of EC10 and EC20 values are only reliable and appropriate in tests where coefficients of variation in control plants fall below the effect level being estimated, i.e. coefficients of variation should be < 20 % for robust estimation of an EC20.
Arviointi voidaan tehdä graafisesti tai virallisen testin avulla (15).
Both average specific growth rate (estimated from assessments of main shoot length and three additional measurement variables) and yield (estimated from the increase in main shoot length and three additional measurement variables) of untreated and treated plants should be determined.
Sopivia testejä ovat Levenen ja Bartlettin testit.
Specific growth rate (r) and yield (y) are subsequently used to determine the ErCx (e.g. ErC10, ErC20, ErC50) and EyCx (e.g. EyC10, EyC20, EyC50), respectively.
Jos oletus varianssin homogeenisuudesta ei pidä paikkaansa, tilanne on joskus korjattavissa tietojen logaritmimuunnoksella.
In addition, the lowest observed effect concentration (LOEC) and the no observed effect concentration (NOEC) may be statistically determined.
Jos varianssin heterogeenisuus on erittäin suuri eikä se ole korjattavissa muunnoksella, on harkittava analysointia sellaisilla menetelmillä kuin Jonckheeren alaspäin askeltava trenditesti.
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the test chemical in the test medium, should be available.
Kirjallisuusviitteessä (10) annetaan lisäohjeita NOEC-arvon määrittämisestä.
Information on the test chemical which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity and impurities, water solubility, stability in water and light, acid dissociation constant (pKa), partition coefficient octanol-water (Kow), vapour pressure and biodegradability.
Tieteen viimeaikaisen kehityksen perusteella on suositeltu, että NOEC-käsitteestä luovuttaisiin ja se korvattaisiin regressioanalyysiin perustuvilla ECx:n piste-estimaateilla.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry's Law constant, which will indicate if significant losses of the test chemical during the test period are likely.
Sopivaa x:n arvoa ei ole vielä vahvistettu tätä Myriophyllum-testiä varten.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
Sopivalta kuitenkin vaikuttaisi väli 10–20 prosenttia (valitun vastemuuttujan mukaan), ja suositeltavaa on ilmoittaa sekä EC10- että EC20-arvo.
Where information on the solubility and stability of the test chemical are uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Raportointi
The pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or substances which are hydrolytically unstable.
Useista ainesosista koostuvat aineet, koostumukseltaan tuntemattomat tai vaihtelevat aineet ja seokset:
Further guidance for testing chemicals with physical-chemical properties that make them difficult to test is provided in a OECD Guidance Document (5).
Testilajit
For the test to be valid, the doubling time of main shoot length in the control must be less than 14 days.
tieteellinen nimi ja alkuperä.
Using the media and test conditions described in this test method, this criterion can be attained using a static or semi-static test regime.
käytetty testimenettely (staattinen tai puolistaattinen)
The mean coefficient of variation for yield based on measurements of shoot fresh weight (i.e. from test initiation to test termination) and the additional measurement variables (see paragraph 37) in the control cultures do not exceed 35 % between replicates.
testin alkamispäivä ja kesto
More than 50 % of the replicates of the control group are kept sterile over the exposure period of 14 days, which means visibly free of contamination by other organisms such as algae, fungi and bacteria (clear solution).
testiviljelyaine
Note: Guidance on how to assess sterility is provided in the ring-test report (4).
koejärjestely: koeastiat ja niiden sulkimet, liuostilavuudet, pääverson pituus koeastiaa kohden testin alussa
REFERENCE CHEMICAL
testipitoisuudet (nimellis- ja mitatut pitoisuudet tapauksen mukaan) sekä toistojen määrä pitoisuutta kohden
Reference chemical(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the ring test (4), may be tested as a mean of checking the test procedure; from the ring test data, the mean EC50-values of 3,5-DCP for the different response variables (see paragraphs 37-41 of this test method) are between 3,2 mg/l and 6,9 mg/l (see ring test report for details about confidence interval for these values).
kanta- ja testiliuosten valmistusmenetelmät, mukaan luettuina tiedot mahdollisesta liuottimen tai dispergointiaineen käytöstä
It is advisable to test a reference chemical at least twice a year or, where testing is carried out at a lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test chemical.
lämpötila testin aikana
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
valolähde, valon voimakkuus ja homogeenisuus
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
testi- ja kontrolliviljelyaineen pH-arvot
The test vessels should be long enough for the shoot in the control vessels to grow in the water phase without reaching the surface of the test medium at the end of the test.
testikemikaalin analyysimenetelmä sekä laadunarviointiin tarvittavat tiedot (validointitutkimukset, analyysien keskihajonnat ja luottamusvälit)
Thick-walled borosilicate glass test tubes without lip, inner diameter approximately 20 mm, length approximately 250 mm, with aluminium caps are recommended.
pääverson pituuden ja muiden mittausmuuttujien, esimerkiksi sivuhaarojen kokonaispituuden, versojen kokonaispituuden, juurien kokonaispituuden, tuorepainon, kuivapainon tai kiehkuroiden määrän määrittämismenetelmät
Since the modified Andrews' medium contains sucrose (which stimulates the growth of fungi and bacteria), the test solutions have to be prepared under sterile conditions.
kunkin testi- ja kontrolliastian viljelmän tila (steriili vai epästeriili) kullakin havainnointikerralla
All liquids as well as equipment are sterilised before use.
kaikki poikkeamat tästä testimenetelmästä,
Sterilisation is carried out via heated air treatment (210 °C) for 4 hours or autoclaving for 20 minutes at 121 °C.
käsittelemättömät tiedot: pääverson pituus ja muut mittausmuuttujat jokaisessa testaukseen ja toistoihin käytetyssä koeastiassa kullakin havainnointi- ja analysointikerralla
In addition, all flasks, dishes, bowls etc. and other equipment undergo flame treatment at a sterile workbench just prior to use.
kunkin mittausmuuttujan keskiarvot ja keskihajonnat
The cultures and test vessels should not be kept together.
kunkin mittausmuuttujan kasvukäyrät
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
kunkin käsitellyn toiston lasketut vastemuuttujat sekä toistojen keskiarvot ja variaatiokerroin
Illumination and temperature should be controllable and maintained at a constant level.
pitoisuuden ja vaikutuksen välisen suhteen graafinen esitys
Test organism
toksisuusarvioinnin päätepisteiden estimaatit vastemuuttujien osalta, esimerkiksi EC50, EC10 ja EC20, ja vastaavat luottamusvälit; LOEC- ja/tai NOEC-pitoisuus, jos ne on laskettu, ja niiden määrityksessä käytetyt tilastomenetelmät