natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Myriophyllum spicatum — a submersed aquatic dicotyledon — is a species of the water milfoils family.
jos on käytetty ANOVA-analyysiä, havaittavissa olevan vaikutuksen suuruus (esimerkiksi vähiten merkitsevä erotus)
Between June and August, inconspicuous pink-white flowers protrude above the water surface.
mahdollinen kasvun edistyminen käsittelyissä liuoksissa
The plants are rooted in the ground by a system of robust rhizomes and can be found in the entire northern hemisphere in eutrophic, however non-polluted and more calciferous still waters with muddy substrate.
näkyvät merkit fytotoksisuudesta ja testiliuoksia koskevat havainnot
Myriophyllum spicatum prefers fresh water, but is found in brackish water as well.
tulosten pohdinta, mukaan luettuna mahdolliset vaikutukset, joita tästä testimenetelmästä poikkeamisella on ollut testin tuloksiin.
For the sediment-free toxicity test, sterile plants are required.
ASTM Designation E 1913–04, Standard Guide for Conducting Static, Axenic, 14-Day Phytotoxicity Tests in Test Tubes with the Submersed Aquatic Macrophyte, Myriophyllum sibiricum Komarov.
If the testing laboratory does not have regular cultures of Myriophyllum spicatum, sterile plant material may be obtained from another laboratory or (unsterile) plant material might be taken from the field or provided by a commercial supplier; if plants come from the field a taxonomic verification of the species should be envisaged.
Maletzki, D. et al.
If collected from the field or provided by a commercial supplier, plants should be sterilised (1) and maintained in culture in the same medium as used for testing for a minimum of eight weeks prior to use.
, Myriophyllum spicatum als ökotoxikologischer Testorganismus: Methodenentwicklung eines sedimentfreien Testsystems und erste Ergebnisse mit 3,5-Dichlorphenol, Umweltwiss Schadst Forsch, No.
Field sites used for collecting starting cultures have to be free of obvious sources of contamination.
22, s. 702–710.
Great care should be taken to ensure that the correct species is obtained when collecting Myriophyllum spicatum from the field, especially in regions where it can hybridise with other Myriophyllum species.
(2) Tämän liitteen luku C.26: Limaskojen (Lemna-lajien) kasvunestymistesti.
If obtained from another laboratory they should be similarly maintained for a minimum of three weeks.
OECD (2014), ”Myriophyllum spicatum Toxicity Test: Results of an inter-laboratory ring test using a sediment-free test system”, OECD Environment, Health and Safety Publications (EHS), Series Testing and Assessment, No.
The source of plant material and the species used for testing should always be reported.
205, OECD Publishing, Paris.
The quality and uniformity of the plants used for the test will have a significant influence on the outcome of the test and should therefore be selected with care.
(4) OECD (2000), ”Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of Difficult Substances and Mixtures”, OECD Environment, Health and Safety Publications (EHS), Series on Testing and Assessment, No.
Young, rapidly growing plants without visible lesions or discoloration (chlorosis) should be used.
OECD (2000), ”Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of Difficult Substances and Mixtures”, OECD Environment, Health and Safety Publications (EHS), Series on Testing and Assessment, No.
Details about preparation of the test organism are given in Appendix 4.
23, OECD Publishing, Paris.
Cultivation
Christensen, E.R., N. Nyholm (1984), Ecotoxicological Assays with Algae: Weibull Dose-Response Curves, Environmental Science & Technology, Vol.
To reduce the frequency of culture maintenance (e.g. when no Myriophyllum tests are planned for a period), cultures can be held under reduced illumination and temperature (50 μE m–2 s–1, 20 ± 2 °C).
18/9, s. 713–718.
Details of culturing are given in Appendix 3.
Nyholm, N. et al.
At least 14 to 21 days before testing, sufficient test organisms are transferred aseptically into fresh sterile medium and cultured for 14 to 21 days under the conditions of the test as a pre culture.
(1992), Statistical treatment of data from microbial toxicity tests, Environmental Toxicology and Chemistry, Vol.
Details for preparation of a pre-culture are given in Appendix 4.
11/2, s. 157–167.
Only one nutrient medium is recommended for Myriophyllum spicatum in a sediment-free test system, as described in Appendix 2.
Versteeg (1992), A statistical procedure for modelling continuous toxicity data, Environmental Toxicology and Chemistry, Vol.
A modification of the Andrews' medium is recommended for culturing and testing with Myriophyllum spicatum as described in (1).
11/10, s. 1485–1494.
From five separately prepared nutrient stock solutions with addition of 3 % sucrose the modified Andrews' medium will be arranged.
OECD (2006), ”Current Approaches in the Statistical Analysis of Ecotoxicity Data: A Guidance to Application”, OECD Environment, Health and Safety Publications (EHS), Series on Testing and Assessment, No.
Details about preparation of the medium are given in Appendix 2.
54, OECD Publishing, Paris.
A tenfold concentrated, modified Andrews' medium is needed for obtaining the test solutions (by dilution as appropriate).
, New tables for multiple comparisons with a control, Biometrics, Vol.
The composition of this medium is given in Appendix 2.
20/3, s. 482–491.
Test solutions are usually prepared by dilution of a stock solution.
, A multiple comparisons procedure for comparing several treatments with a control, Journal of the American Statistical Association, Vol.
Stock solutions of the test chemical are normally prepared by dissolving the chemical in demineralised (i.e. distilled or deionised) water.
50/272, s. 1096–1121.
The addition of the nutrients will be achieved by using the tenfold concentrated, modified Andrews' medium.
, New tables for multiple comparisons with a control, Biometrics, Vol.
The stock solutions of the test chemical can be sterilised by autoclave at 121 °C for 20 minutes or by sterile filtration, provided that the sterilisation technique used does not denaturise the test chemical.
20/3, s. 482–491.
Test solutions can also be prepared in sterile demineralised water or medium, under sterile conditions.
, The comparison of several dose levels with a zero dose control, Biometrics, Vol.
The thermo-stability and the adsorption on different surfaces should the taken into account in the selection of the sterilisation procedure of the stock solutions of the test chemical.
28/2, s. 519–531.
Because of that, it is recommended that the stock solutions be prepared under sterile conditions, i.e. using sterile material for dissolving the test chemical under sterile conditions (e.g. flame sterilisation, laminar-flow hoods, etc.) into sterile water.
, A test for differences between treatment means when several dose levels are compared with a zero dose control, Biometrics, Vol.
This technique of preparation of sterile stock solutions is valid for both substances and mixtures.
27/1, s. 103–117.
The highest tested concentration of the test chemical should normally not exceed its water solubility under the test conditions.
, The comparison of several dose levels with a zero dose control, Biometrics, Vol.
For test chemicals of low water solubility it may be necessary to prepare a concentrated stock solution or dispersion of the chemical using an organic solvent or dispersant in order to facilitate the addition of accurate quantities of the test chemical to the test medium and aid in its dispersion and dissolution.
28/2, s. 519–531.
Every effort should be made to avoid the use of such materials.
ECx: Testiviljelyaineeseen liuenneen testikemikaalin pitoisuus, jossa Myriophyllum spicatum -kasvin kasvu vähenee x prosenttia (esimerkiksi 50 prosenttia) määrätyn altistusajan kuluessa (altistusaika on mainittava erikseen, jos se poikkeaa testin kokonaiskestosta tai normaalista kestosta).
There should be no phytotoxicity resulting from the use of auxiliary solvents or dispersants.
Jotta kasvunopeudesta ja tuotoksesta johdetut EC-arvot erottuisivat selvästi toisistaan, edellisestä käytetään symbolia ”ErC” ja jälkimmäisestä symbolia ”EyC”, joiden jälkeen mainitaan mittausmuuttuja, esimerkiksi ErC (pääverson pituus).
For example, commonly used solvents which do not cause phytotoxicity at concentrations up to 100 μl/l, include acetone and dimethylformamide.
Kasvu: mittausmuuttujan, kuten pääverson pituuden, sivuhaarojen kokonaispituuden, versojen kokonaispituuden, juurien kokonaispituuden, tuorepainon, kuivapainon tai kiehkuroiden määrän, kasvaminen testijakson aikana.
If a solvent or dispersant is used, its final concentration should be reported and kept to a minimum (≤ 100 μl/l), and all treatments and controls should contain the same concentration of solvent or dispersant.
Kasvunopeus (keskimääräinen spesifinen kasvunopeus): mitattavan muuttujan logaritminen kasvu altistuksen aikana.
Further guidance on the use of dispersants is given in (5).
Huomautus: Kasvunopeuteen liittyvät vastemuuttujat ovat riippumattomia testin kestosta, jos altistamattomien kontrollieliöiden kasvu on eksponentiaalista.
Test and control groups
Kemikaali: aine tai seos.
Prior knowledge of the toxicity of the test chemical to Myriophyllum spicatum from a range-finding test will help in selecting suitable test concentrations.
Kloroosi: koe-eliön, erityisesti kiehkuroiden, värin muutos vihreästä kellertäväksi.
In the definitive toxicity test, there should normally be five (like in the Lemna growth inhibition test, Chapter C.26 of this Annex) to seven test concentrations arranged in a geometric series; they should be chosen in order that the NOEC and EC50 values are bracketed by the concentration range (see below).
Mittausmuuttujat: Kaikentyyppiset muuttujat, jotka mitataan testin päätepisteen ilmaisemiseksi yhden tai useamman erilaisen vastemuuttujan avulla.
Preferably the separation factor between test concentrations should not exceed 3,2; however, a larger value may be used where the concentration-response curve is flat.
Tässä testimenetelmässä mittausmuuttujia ovat pääverson pituus, sivuhaarojen kokonaispituus, versojen kokonaispituus, juurien kokonaispituus, tuorepaino, kuivapaino ja kiehkuroiden määrä.
Justification should be provided when fewer than five concentrations are used.
Monokulttuuri: yhtä kasvilajia sisältävä viljelmä.
At least five replicates should be used at each test concentration.
Nekroosi on testieliön kuollutta (eli valkoista tai tummanruskeaa) kudosta.
In setting the range of test concentrations (for range-finding and/or for the definitive toxicity test), the following should be considered:
Pienin havaittavan vaikutuksen aiheuttava pitoisuus (LOEC): Pienin testattu pitoisuus, jossa kemikaalilla havaitaan olevan tietyn altistusajan kuluessa tilastollisesti merkittävä kasvua vähentävä vaikutus verrattuna kontrolliin (kun p < 0,05).
To determine an ECx, test concentrations should bracket the ECx value to ensure an appropriate level of confidence.
Pitoisuus, joka ei aiheuta havaittavaa vaikutusta (NOEC): lähin LOEC-pitoisuutta pienempi testipitoisuus.
For example, if estimating the EC50, the highest test concentration should be greater than the EC50 value.
Semistaattinen (ajoittaisvaihtoinen) testi: testi, jossa testiliuos vaihdetaan tietyin väliajoin testin aikana.
If the EC50 value lies outside of the range of test concentrations, associated confidence intervals will be large and a proper assessment of the statistical fit of the model may not be possible.
Testikemikaali on tätä testimenetelmää käyttäen testattu aine tai seos.
If the aim is to estimate the LOEC/NOEC, the lowest test concentration should be low enough so that growth is not significantly less than that of the control.
Testin päätepiste kuvaa yleistä tekijää, joka testin tavoitteen mukaisesti muuttuu testikemikaalin vaikutuksesta verrattuna kontrolliin.
In addition, the highest test concentration should be high enough so that growth is significantly lower than that in the control.
Tässä testimenetelmässä testin päätepisteenä on kasvun estyminen, joka voidaan ilmaista erilaisilla vastemuuttujilla, jotka perustuvat yhteen tai useampaan mittausmuuttujaan.
If this is not the case, the test will have to be repeated using a different concentration range (unless the highest concentration is at the limit of solubility or the maximum required limit concentration, e.g. 100 mg/l).
Testiviljelyaine: Täydellinen synteettinen ravinneliuos, jossa testikasvit kasvavat, kun ne altistetaan testikemikaalille.
Every test should include controls consisting of the same nutrient medium, test organism (choosing plant material as homogeneous as possible, fresh lateral branches from pre-cultures, shortened to 2,5 cm from base), environmental conditions and procedures as the test vessels but without the test chemical.
Yleensä testikemikaali liuotetaan testiviljelyaineeseen.
If an auxiliary solvent or dispersant is used, an additional control treatment with the solvent/dispersant present at the same concentration as that in the vessels with the test chemical should be included.
Huom. Kun altistamattomien eliöiden kasvu on eksponentiaalista, tuotokseen perustuvat vastemuuttujat vähenevät testin keston pidentyessä.
The number of replicate control vessels (and solvent vessels, if applicable) should be at least ten.
UVCB-aine: koostumukseltaan tuntematon tai vaihteleva aine, kompleksi reaktiotuote tai biologinen materiaali.
If determination of NOEC is not required, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Vastemuuttuja: Muuttuja, jonka avulla arvioidaan toksisuutta.
However, in any case the number of control replicates should be at least ten.
Vastemuuttuja johdetaan erilaisia laskentamenetelmiä käyttämällä mistä tahansa mitatusta muuttujasta, joka kuvaa biomassaa.
Exposure
MUUTETTU ANDREWSIN KASVUALUSTA KANTAVILJELMÄÄ JA ESIVILJELMÄÄ VARTEN
Fresh lateral branches from pre-culture shortened to 2,5 cm from base are assigned randomly to the test vessels under aseptic conditions; each test vessel should contain one 2,5 cm lateral branch that should have an apical meristem on one end.
Kantaviljelmää ja esiviljelmää varten tarvittava muutettu Andrewsin kasvualusta valmistetaan viidestä erikseen valmistetusta kantaliuoksesta ja siihen lisätään 3 prosenttia sakkaroosia.
The chosen plant material should be the same quality in each test vessel.
Taulukko 1
A randomised design for location of the test vessels in the incubator is required to minimise the influence of spatial differences in light intensity or temperature.
Andrewsin ravinneliuoksen koostumus: (ASTM Designation E 1913-04)
A blocked design or random repositioning of the vessels (or repositioning more frequently) when observations are made is also required.
Kantaravinneliuoksen valmistus
If a preliminary stability test shows that the test chemical concentration cannot be maintained (i.e. the measured concentration falls below 80 % of the measured initial concentration) over the test duration (14 days), a semi-static test regime is recommended.
Ravinneliuoksen valmistus
In this case, the plants should be exposed to freshly prepared test and control solutions on at least one occasion during the test (e.g. day 7).
Kantaliuos
The frequency of exposure to fresh medium will depend on the stability of the test chemical; a higher frequency may be needed to maintain near-constant concentrations of highly unstable or volatile chemicals.
Alkupaino / 1000 ml
The exposure scenario through a foliar application (spray) is not covered in this test method.
ml / 5 l ravinneliuosta
Warm and/or cool white fluorescent lighting should be used to provide light irradiance in the range of about of 100-150 μE m–2 s–1 when measured as a photosynthetically active radiation (400-700 nm) at points the same distance from the light source as the bottom of the test vessels (equivalent ca. 6000 to 9000 lux) and using a light-dark cycle of 16:8 h.
Ks. jäljempänä kantaliuos nro 3.1
Spherical sensors (which respond to light from all angles above and below the plane of measurement) and “cosine” sensors (which respond to light from all angles above the plane of measurement) are preferred to unidirectional sensors, and will give higher readings for a multi-point light source of the type described here.
0 372 g
The temperature in the test vessels should be 23 ± 2 °C.
Kantaliuoksen nro 3.1 valmistus kantaliuoksen nro 3 valmistusta varten
See (5) for further guidance.
Kantaliuoksen nro 3.1 valmistamisen jälkeen (taulukko 2) tämä liuos pakastetaan noin 11 ml:n määräosissa (vähintään – 18 °C:n lämpötilassa).
The test is terminated 14 days after the plants are transferred into the test vessels.
Pakastettujen annosten säilyvyysaika on viisi vuotta.
Measurements and analytical determinations
Kantaliuoksen nro 3 valmistamiseksi sulatetaan kantaliuos nro 3.1, kaadetaan 10 ml sitä 1 litran vetoiseen mittapulloon ja lisätään ultrapuhdasta vettä pullon mittamerkkiin asti.
At the start of the test, the main shoot length of test organism is 2,5 cm (see paragraph 29); it is measured with a ruler (see Appendix 4) or by photography and image analysis.
Tämän jälkeen lisätään 150 g liuotettua sakkaroosia (3 prosenttia 5 litraa kohti) ja täytetään mittapullo ultrapuhtaalla vedellä mittamerkkiin asti.
The main shoot length of test organism appearing normal or abnormal needs to be determined at the beginning of the test, at least once during the 14-day exposure period and at test termination.
Lopuksi ravinneliuos kaadetaan 1 litran Schott-pulloihin ja autoklavoidaan 121 °C:n lämpötilassa 20 minuutin ajan.
Note: As an alternative for those who do not have image analysis, if the workbench is sterilised prior to addition of plants to test vessels, a sterile ruler can also be used to measure the length of the main shoot at test initiation and during the test.
Näin saatu ravinneliuos voidaan säilyttää steriilinä jääkaapissa (5–10 °C:n lämpötilassa) kolme kuukautta.
Total shoot length
Näin saatu kymmenkertaisesti tiivistetty muutettu ravinneliuos voidaan säilyttää steriilinä jääkaapissa (5–10 °C:n lämpötilassa) kolme kuukautta.
Total root length
KANTAVILJELMÄN YLLÄPITO
Fresh weight
Tässä lisäyksessä kuvaillaan ärviöiden sukuun kuuluvan kaksisirkkaisen Myriophyllum spicatum L -uposkasvilajin [1] kantaviljelmää.
Dry weight
Laboratorio-olosuhteissa viljeltävää sedimentitöntä kantaviljelmää varten tarvitaan steriilejä kasveja.
Number of whorls
Steriilejä kasveja on saatavissa Saksan liittovaltion ympäristöviraston (Umweltbundesamt) ekotoksikologian laboratoriosta.
Note 1:
Vaihtoehtoisesti koe-eliöt voidaan valmistaa epästeriileistä kasveista standardin ASTM E 1913-04 mukaisesti.
The observations made during the range-finding test could help in selecting relevant additional measurements among the six variables listed above.
Seuraavassa esitetään – ASTM-standardioppaasta lainattu – menettely luonnosta kerättyjen Myriophyllum sibiricum -kasvien viljelemiseksi:
Note 2:
Koska muunnettu Andrewsin kasvualusta sisältää sakkaroosia (joka stimuloi sienten ja bakteerien kasvua), kaikkia materiaaleja, liuoksia ja viljelmiä on käsiteltävä steriileissä olosuhteissa.
Due to the fact that sucrose and light (exposure of roots to light during the test) may have an influence on auxin (plant growth hormone) transport carriers, and that some chemicals may have an auxin-type mode of action, the inclusion of root endpoints (parameter iii) is questionable.
Myriophyllum-kasvien viljelyaine voi olla sama kuin testauksessa käytetty viljelyaine, mutta kantaviljelmissä voidaan käyttää myös muita ravinteikkaita viljelyaineita.
Note 4:
Kasvisegmentit jaetaan akseenisesti useisiin 500 ml:n Erlenmeyer-pulloihin tai/ja 2000 ml:n Fernbach-pulloihin, joista kuhunkin kaadetaan 450 ml (Erlenmeyer-pullot) tai 1000 ml (Fernbach-pullot) muutettua Andrewsin kasvualustaa.
The ring test results show high coefficients of variation (> 60 %) for the total lateral branch length (parameter i).
Tämän jälkeen pullot suljetaan akseenisesti selluloosatulpilla.
Total lateral branch length is in any case encompassed within the total shoot length measurement (parameter ii) which shows more acceptable coefficients of variation of < 30 %.
Lisäksi tarvikkeet on ehdottomasti liekitettävä steriilillä työpöydällä välittömästi ennen käyttöä.
Note 5:
Määrästä ja koosta riippuen kasvit on siirrettävä tuoreeseen ravinneliuokseen noin kolmen viikon välein.
Main shoot length and number of whorls have an advantage, in that they can be determined for each test and control vessel at the start, during, and at the end of the test by photography and image analysis, although a (sterile) ruler can also be used.
Siirrettävien kasvien (tai kasvisegmenttien) määrä ja koko riippuvat tarvittavien kasvien määrästä.
Total lateral branches length, total root length (as a sum of all lateral branches or roots) and total shoot length (as a sum of main shoot length and total lateral branches length) can be measured with a ruler at the end of exposure.
Esimerkiksi voidaan siirtää viisi versosegmenttiä yhteen Fernbach-puolloon ja kolme versosegmenttiä yhten Erlenmeyer-pulloon.
The fresh and/or dry weight should be determined at the start of the test from a sample of the pre-culture representative of what is used to begin the test, and at the end of the test with the plant material from each test and control vessel.
Kaikkien segmenttien pituus on 5 cm.
Total lateral branches length, total shoot length, total root length, fresh weight, dry weight and number of whorls may be determined as follows:
Kaikki juuria kasvattaneet, kukkivat, kuolleet tai muutoin silmiinpistävät osat heitetään pois.
The main shoot length may be determined by image analysis or using a ruler.
esiviljelmä
The total shoot length is the sum of the total lateral branches length and the main shoot length of each test and control vessel at the end of exposure.
kantaviljelmä
The root length may be determined by measuring all roots with a ruler at the end of exposure.
Kasvit viljellään 500 ml:n Erlenmeyer-pulloissa ja 2000 ml:n Fernbach-pulloissa jäähdyttävässä inkubaattorissa 20 ± 2 °C:n lämpötilassa jatkuvassa valaistuksessa, jonka voimakkuus on noin 100–150 μE m– 2 s– 1 tai 6000–9000 luksia (viljelykaapin sisäinen valaistus, värilämpötila ”lämpimänvalkoinen”.
The total root length is the sum of all roots of each test and control vessel.
Kasvien viljely jäähdyttävässä inkubaattorissa, jossa on sisäinen valaistus.
The fresh weight may be determined by weighing the test organisms at the end of exposure.
Kasveja viljeltäessä on käytettävä kemiallisesti puhtaita (happopestyjä) ja steriilejä lasisia kasvatusastioita sekä aseptisia käsittelytekniikoita.
All plant material of each test and control vessel will be rinsed with distilled water, dabbed dry with cellulose paper.
Jos esimerkiksi levät, sienet ja/tai bakteerit kontaminoivat kantaviljelmän, on valmistettava uusi viljelmä tai käytettävä toisesta laboratoriosta saatavaa kantaviljelmää kyseisen viljelmän uudistamiseen.
After this preparation the fresh weight will be determined by weighing.
Carl von Linné (* 23. toukokuuta 1707, Råshult /Älmhult; † 10. tammikuuta 1778, Uppsala).
The starting biomass (fresh weight) is determined on the basis of a sample of test organisms taken from the same batch used to inoculate the test vessels.
Esiviljelmän valmistamiseksi kantaviljelmästä peräisin olevat versot leikataan segmenteiksi, joissa on kaksi kiehkuraa kussakin.
After the preparations for the determination of the fresh weight the test organisms will be dried at 60 °C to a constant weight.
Segmentit laitetaan muutetulla Andrewsin kasvualustalla(jossa on 3 prosenttia sakkaroosia) täytettyihin Fernbach-pulloihin.
If a static test design is used, the pH of each treatment should be measured at the beginning and at the end of the test.
Koska muunnettu Andrewsin elatusaine sisältää sakkaroosia (joka stimuloi sienten ja bakteerien kasvua), testikemikaalin liuokset on valmistettava ja viljely suoritettava steriileissä olosuhteissa.