natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Concurrent positive controls (see paragraph 50) should induce responses that are compatible with those generated in the laboratory's historical positive control data base and produce a statistically significant increase compared with the concurrent negative control.
Negatiivisten kontrollitietojen on koostuttava mikrotumaisten solujen esiintymistiheydestä yhdessä viljelmässä tai niiden yhteismäärästä rinnakkaisviljelmissä 28 kohdan mukaisesti.
Cell proliferation criteria in the solvent control should be fulfilled (paragraph 25-27).
Samanaikaisten negatiivisten kontrollien olisi mieluiten sijoituttava laboratorion aiempien negatiivisten kontrollien tietokannan 95 prosentin kontrollirajojen sisälle (87) (88).
All experimental conditions were tested unless one resulted in positive results (paragraphs 36-40).
Jos samanaikaisia negatiivisia kontrolleja koskevat tiedot jäävät 95 prosentin kontrollirajojen ulkopuolelle, ne voidaan hyväksyä aiempien kontrollien jakaumaan edellyttäen, että ne eivät ole äärimmäisiä harha-arvoja ja on näyttöä siitä, että testijärjestelmä on ”hallinnassa” (ks. 50 kohta), sekä siitä, että kyse ei ole teknisestä tai inhimillisestä virheestä.
Adequate number of cells and concentrations are analysable (paragraphs 28 and 44-46).
Jos käytetään sytokineesin inhibiittoritekniikkaa, mikrotumien indusoitumisen arvioinnissa käytetään vain sellaisia kaksitumaisia soluja, joissa esiintyy mikrotumia (riippumatta mikrotumien määrästä solua kohti).
The criteria for the selection of top concentration are consistent with those described in paragraphs 24-31.
Yksi, kaksi tai monta mikrotumaa omaavien solujen määrä voidaan ilmoittaa erikseen, ja sen laskemisella voidaan saada hyödyllistä tietoa, mutta se ei ole pakollista.
Providing that all acceptability criteria are fulfilled, a test chemical is considered to be clearly positive if, in any of the experimental conditions examined (see paragraphs 36-39):
Kaikille käsitellyille, negatiivisille ja positiivisille kontrolliviljelmille olisi tehtävä samanaikaisesti sytotoksisuus- ja/tai sytostaasimääritykset (16).
at least one of the test concentrations exhibits a statistically significant increase compared with the concurrent negative control (89)
Sytokineesin eston proliferaatioindeksi tai RI on laskettava kaikille käsitellyille viljelmille ja kontrolliviljelmille määrittämällä solusyklin viivästyminen, kun käytetään sytokineesin estomenetelmää.
the increase is dose-related in at least one experimental condition when evaluated with an appropriate trend test (see paragraph 28)
Jos sytoB:tä ei käytetä, on määritettävä populaation suhteellinen kaksinkertaistuminen tai solumäärän suhteellisen lisääntyminen (ks. lisäys 2).
any of the results are outside the distribution of the historical negative control data (e.g. Poisson-based 95 % control limits; see paragraph 52).
Samanaikainen negatiivinen kontrolli katsotaan hyväksyttäväksi laboratorion aiempien negatiivisten kontrollien tietokantaan 50 kohdan mukaisesti.
When all of these criteria are met, the test chemical is then considered able to induce chromosome breaks and/or gain or loss in this test system.
Samanaikaisten positiivisten kontrollien (ks. 50 kohta) on indusoitava vasteita, jotka ovat yhteensopivia laboratorion aiempien positiivisten kontrollien tietokannan vasteiden kanssa, ja tuotettava tilastollisesti merkittävä lisääntyminen verrattuna samanaikaiseen negatiiviseen kontrolliin.
Recommendations for the most appropriate statistical methods can also be found in the literature (90) (91) (92).
Solujen proliferaatiota koskevien kriteereiden on täytyttävä liuotinkontrollissa (25–27 kohta).
Providing that all acceptability criteria are fulfilled, a test chemical is considered clearly negative if, in all experimental conditions examined (see paragraphs 36-39):
Testi suoritettiin kaikissa testiolosuhteissa, ellei jokin niistä tuottanut positiivisia tuloksia (36–40 kohta).
all results are inside the distribution of the historical negative control data (e.g. Poisson-based 95 % control limits; see paragraph 52).
Riittävä määrä soluja ja pitoisuuksia on analysoitavissa (28 sekä 44–46 kohta).
The test chemical is then considered unable to induce chromosome breaks and/or gain or loss in this test system.
Suurimman pitoisuuden valintaperusteet vastaavat 24–31 kohdassa esitettyjä kriteerejä.
There is no requirement for verification of a clear positive or negative response.
Edellyttäen, että kaikki hyväksyttävyysperusteet täyttyvät, testikemikaali katsotaan selvästi positiiviseksi, jos jossakin tarkastelluista testiolosuhteista (ks. 36–39 kohta)
In case the response is neither clearly negative nor clearly positive as described above and/or in order to assist in establishing the biological relevance of a result, the data should be evaluated by expert judgement and/or further investigations.
vähintään yksi testipitoisuuksista aiheuttaa tilastollisesti merkittävän lisääntymisen verrattuna samanaikaiseen negatiiviseen kontrolliin (89)
Scoring additional cells (where appropriate) or performing a repeat experiment possibly using modified experimental conditions (e.g. concentration spacing, other metabolic activation conditions [i.e. S9 concentration or S9 origin]) could be useful.
lisääntyminen on annoksesta riippuva ainakin yhdessä testiolosuhteista asianmukaisella trenditestillä arvioituna (ks. 28 kohta)
In rare cases, even after further investigations, the data set will not allow a conclusion of positive or negative, and will therefore be concluded as equivocal.
jokin tuloksista on aiempien negatiivisten kontrollitietojen jakauman ulkopuolella (esimerkiksi Poissonin jakaumaan perustuvat 95 prosentin kontrollirajat; katso 52 kohta).
Test chemicals that induce micronuclei in the MNvit test may do so because they induce chromosome breakage, chromosome loss, or a combination of the two.
Kun kaikki nämä perusteet täyttyvät, testikemikaalin katsotaan voivan indusoida kromosomien katkeamista ja/tai liittymää tai häviämää tässä testijärjestelmässä.
Further analysis using anti-kinetochore antibodies, centromere specific in situ probes, or other methods may be used to determine whether the mechanism of micronucleus induction is due to clastogenic and/or aneugenic activity.
Lähdekirjallisuudessa on myös suosituksia soveltuvimmista tilastollisista menetelmistä (90) (91) (92).
reactivity of the test chemicals with the solvent/vehicle or cell culture media;
Edellyttäen, että kaikki hyväksyttävyysperusteet täyttyvät, testikemikaali katsotaan selvästi negatiiviseksi, jos jossakin tarkastelluista testiolosuhteista (ks. 36–39 kohta):
solubility and stability of the test chemical in solvent, if known;
kaikki tulokset ovat aiempien negatiivisten kontrollitietojen jakauman sisällä (esimerkiksi Poissonin jakaumaan perustuvat 95 prosentin kontrollirajat; katso 52 kohta).
measurement of pH, osmolality, and precipitate in the culture medium to which the test chemical was added, as appropriate.
Tällöin katsotaan, että testikemikaali ei voi indusoida kromosomien katkeamista ja/tai liittymää tai häviämää tässä testijärjestelmässä.
justification for choice of solvent;
Selvästi positiivista tai negatiivista vastetta ei tarvitse vahvistaa.
percentage of solvent in the final culture medium
Jos vaste ei ole selvästi negatiivinen eikä selvästi positiivinen edellä kuvatun mukaisesti ja/tai tuloksen biologisen merkityksellisyyden vahvistaminen kaipaa tukea, tietoja on arvioitava asiantuntija-arvion ja/tai lisätutkimusten avulla.
type and source of cells used;
Lisäsolujen laskeminen (tarvittaessa) tai kokeen toistaminen käyttäen mahdollisesti modifioituja testiolosuhteita (esimerkiksi pitoisuusvälit, muut metaboliset aktivaatiojärjestelmät [kuten S9-jakeen pitoisuus tai alkuperä]) saattaa olla hyödyllistä.
suitability of the cell type used;
Joissakin harvinaisissa tapauksissa saatujen tietojen pohjalta ei lisätutkimusten jälkeenkään voida tehdä varmoja päätelmiä positiivisuudesta tai negatiivisuudesta, ja tulokset jäävät näin ollen epäselviksi.
absence of mycoplasma, in case of cell lines;
MNvit-testissä testikemikaalit voivat aiheuttaa mikrotumien muodostumista indusoimalla kromosomien katkeamista, niiden häviämistä tai molempia.
for cell lines, information on cell cycle length or proliferation index;
Antikinetokorivasta-aineilla, sentromeerispesifisillä in situ -koettimilla tai muilla menetelmillä voidaan yrittää määrittää, johtuuko mikrotumien indusoitumismekanismi klastogeenisesta ja/tai aneugeenisesta vaikutuksesta.
where lymphocytes are used, sex of blood donors, age and any relevant information on the donor, whole blood or separated lymphocytes, mitogen used;
testikemikaalien reagointi liuottimen/kantaja-aineen tai solujen kasvatusväliaineen kanssa
normal (negative control) cell cycle time;
tutkittavan kemikaalin liukoisuus ja stabiliteetti liuottimessa, jos tiedossa
methods for the maintenance of cell cultures, for cell lines;
tarvittaessa pH-arvon, osmolaliteetin ja saostumisen mittaus soluviljelmän elatusaineessa, johon testikemikaalia lisättiin.
modal number of chromosomes, for cell lines;
liuottimen valintaperusteet
Test Conditions:
liuottimen pitoisuus lopullisessa kasvatusväliaineessa
identity of the cytokinesis blocking substance (e.g. cytoB), if used, and its concentration and duration of cell exposure;
käytettyjen solujen tyyppi ja alkuperä
concentration of the test chemical expressed as a final concentration in the culture medium (e.g. μg or mg/mL, or mM of culture medium);
käytetyn solutyypin soveltuvuus
rationale for the selection of concentrations and the number of cultures, including cytotoxicity data and solubility limitations;
solulinjojen osalta mykoplasman puuttuminen
composition of media, CO2 concentration, if applicable, humidity level;
solulinjojen osalta tiedot solusyklin kestosta tai proliferaatioindeksi
concentration (and/or volume) of the solvent and test chemical added in the culture medium;
lymfosyyttien osalta verenluovuttajien sukupuoli, ikä ja muut merkitykselliset tiedot luovuttajista, tieto siitä, onko testissä altistettu kokoverta vai eristettyjä lymfosyyttejä, käytetty mitogeeni
incubation temperature and time;
tavallinen (negatiivisen kontrollin) solusyklin kesto
cell density at seeding, if applicable;
solulinjojen osalta soluviljelymenetelmät
positive and negative control chemicals, final concentrations, conditions and durations of treatment and recovery periods;
Testiolosuhteet:
methods of slide preparation and the staining technique used;
mahdollinen sytokineesin inhibiittori (esimerkiksi sytoB), sen pitoisuus ja solujen altistuksen kesto
criteria for considering studies as positive, negative, or equivocal;
väliaineen koostumus ja tarvittaessa CO2-pitoisuus, kosteuspitoisuus
method(s) of statistical analysis used;
kasvatusväliaineeseen lisätyn liuottimen ja testikemikaalin pitoisuus (ja/tai tilavuus)
methods, such as use of anti-kinetochore antibody or pan-centromeric specific probes, to characterise whether micronuclei contain whole or fragmented chromosomes, if applicable;
inkubaatiolämpötila ja -aika
definition of acceptable cells for analysis;
tarvittaessa solutiheys inokuloitaessa
in the absence of cyto B, the number of cells treated and the number of cells harvested for each culture in case of cell lines;
metabolisen aktivaatiojärjestelmän tyyppi ja koostumus (S9-jakeen alkuperä, S9-seoksen valmistusmenetelmä, S9-seoksen ja S9-jakeen pitoisuus tai tilavuus lopullisessa kasvatusväliaineessa, S9-jakeen laadunvalvonta [esimerkiksi entsymaattinen aktiivisuus, steriiliys, metabolointikyky])
measurement of cytotoxicity used, e.g. CBPI or RI in the case of cytokinesis-block method; RICC or RPD when cytokinesis-block methods are not used; other observations if any (e.g. cell confluency, apoptosis, necrosis, metaphase counting, frequency of binucleated cells);
positiiviset ja negatiiviset kontrollikemikaalit, lopulliset pitoisuudet, käsittelyolosuhteet ja käsittelyjen kestot sekä palautumisajat
data on pH and osmolality of the treatment medium, if determined;
objektilasien preparointimenetelmät ja käytetyt värjäystekniikat
distribution of mono-, bi-, and multi-nucleate cells if a cytokinesis block method is used;
mikrotumaisten solujen laskentaperusteet (analysoitavissa olevien solujen valinta ja mikrotumien tunnistus)
number of cells with micronuclei given separately for each treated and control culture, and defining whether from binucleate or mononucleate cells, where appropriate;
analysoitujen solujen määrät
historical negative (solvent) and positive control data, with ranges, means and standard deviation and 95 % control limits for the distribution, as well as the number of data;
tutkimusten positiivisuuden, negatiivisuuden tai epäselvyyden arviointiperusteet
statistical analysis; p-values if any.
käytetyt tilastoanalyysimenetelmät
Chapter B.10 of this Annex: In Vitro Mammalian Chromosome Aberration Test,.
tarvittaessa menetelmät sen määrittämiseksi, sisältävätkö mikrotumat kokonaisia kromosomeja vai kromosomifragmentteja, esimerkiksi kinetokorivasta-aineen tai pansentromeerispesifisten koettimien käyttö
In vitro micronucleus assay with Chinese hamster V79 cells — results of a collaborative study with in situ exposure to 26 chemical substances.
analysoitavaksi hyväksyttävien solujen määritelmä
A protocol for the in vitro micronucleus test, I. Contributions to the development of a protocol suitable for regulatory submissions from an examination of 16 chemicals with different mechanisms of action and different levels of activity.
jos sytoB:tä ei käytetä, käsiteltyjen solujen lukumäärä ja solulinjojen osalta kustakin viljelmästä kerättyjen solujen lukumäärä
Evaluation of different cytotoxic and cytostatic measures for the in vitro micronucleus test (MNVit): Introduction to the collaborative trial.
käytetyt sytotoksisuuden määritysmenetelmät, esimerkiksi sytokineesin eston proliferaatioindeksi tai RI (sytokineesin estoon perustuva menetelmä); solumäärän suhteellinen lisääntyminen tai populaation suhteellinen kaksinkertaistuminen (muu kuin sytokineesin estoon perustuva menetelmä); tarvittaessa muut havainnot (esimerkiksi solujen konfluenssi, apoptoosi, nekroosi, metafaasien määrä ja kaksitumaisten solujen määrä)
Available at: http://ecvam.jrc.it/index.htm.
aiemmat tiedot negatiivisista (liuotin) ja positiivisista kontrolleista, myös vaihteluvälit, keskiarvot ja keskihajonnat sekä jakauman 95 prosentin kontrollirajat sekä tietojen lukumäärä
“In vitro micronucleus test”, in Encyclopedia of Biopharmaceutical Statistics, 2nd ed.
ESAC:in 25. kokous, 16.–17. marraskuuta 2006.
Chow, S. (ed.), Marcel Dekker, Inc.
Saatavilla osoitteessa http://ecvam.jrc.it/index.htm
any chemical or process that, by interacting with the components of the mitotic and meiotic cell division cycle apparatus, leads to aneuploidy in cells or organisms.
”CHO/HGPRT Mutation Assay: Evaluation of Gases and Volatile Liquids”, teoksessa Genotoxic Effects of Airborne Agents.
programmed cell death characterised by a series of steps leading to the disintegration of cells into membrane-bound particles that are then eliminated by phagocytosis or by shedding.
Corrigendum to ”Report from the in vitro micronucleus assay working group”.
the increase in cell number as a result of mitotic cell division.
OECD Environment, Health and Safety Publications (EHS), Series on testing and assessment, No.198, OECD Publishing, Paris.
the DNA region of a chromosome where both chromatids are held together and on which both kinetochores are attached side-to-side.
Analysis of Data from in vitro Cytogenetic Assays, teoksessa Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data, Kirkland, D.J.
refers to final concentrations of the test chemical in the culture medium.
(toim.), Cambridge University Press, Cambridge, s. 141–154.
any chemical or event which causes structural chromosomal aberrations in populations of cells or eukaryotic organisms.
yksittäisen tai useamman kuin yhden kromosomin mutta ei kuitenkaan koko kromosomiston (polyploidia) poikkeaminen kromosomien tavallisesta diploidisesta (tai haploidisesta) määrästä.
Cytokinesis
Apoptoosi
the process of cell division immediately following mitosis to form two daughter cells, each containing a single nucleus.
aine tai prosessi, joka aiheuttaa rakenteellisia kromosomipoikkeavuuksia solu- tai organismipopulaatioissa.
Cytokinesis-Block Proliferation index (CBPI)
yleinen nimitys kontrolliviljelmille, joihin lisätään vain testikemikaalin liuottamiseen käytettyä liuotinta.
the proportion of second-division cells in the treated population relative to the untreated control (see Appendix 2 for formula).
Mikrotumat
Cytostasis
Mitoosi-indeksi
inhibition of cell growth (see Appendix 2 for formula).
aiheuttaa periytyvän muutoksen geenien DNA:n emäsparirakenteessa tai kromosomirakenteessa (kromosomipoikkeavuudet).
For the assays covered in this test method performed in the presence of cytochalasin B, cytotoxicity is identified as a reduction in cytokinesis-block proliferation index (CBPI) or Replication Index (RI) of the treated cells as compared to the negative control (see paragraph 26 and Appendix 2)
Nondisjunktio häiriö, jossa kromatidiparit eivät erkaannu toisistaan ja jakaudu oikein kehittyviin tytärsoluihin, minkä takia tytärsolujen kromosomimäärä poikkeaa tavallisesta. p53-status
For the assays covered in this test method performed in the absence of cytochalasin B, cytotoxicity is identified as a reduction in relative population doubling (RPD) or relative increase in cell count (RICC) of the treated cells as compared to the negative control (see paragraph 27 and Appendix 2).
p53-proteiini osallistuu solusyklin säätelyyn, apoptoosiin ja DNA:n korjautumiseen.
Interphase cells
Solut, joista puuttuu toimiva p53-proteiini tai jotka eivät pysty pysäyttämään solusykliä tai hävittämään vahingoittuneita soluja apoptoosilla tai muilla p53-proteiinin toimintoihin liittyvillä mekanismeilla (esimerkiksi indusoimalla DNA:n korjautumisen, ovat teoriassa alttiimpia geenimutaatioille tai kromosomipoikkeavuuksille.
cells not in the mitotic stage.
Pitoisuudet testikemikaalin lopulliset pitoisuudet kasvatusväliaineessa.
a protein-containing structure that assembles at the centromere of a chromosome to which spindle fibres associate during cell division, allowing orderly movement of daughter chromosomes to the poles of the daughter cells.
Polyploidia solujen tai organismien kromosomien lukumäärää koskeva poikkeavuus, joka koskee yksittäisen kromosomin tai kromosomien (aneuploidia) sijaan koko kromosomistoa.
small nuclei, separate from and additional to the main nuclei of cells, produced during telophase of mitosis or meiosis by lagging chromosome fragments or whole chromosomes.
Populaation suhteellinen kaksinkertaistuminen (PSK)
the ratio of cells in metaphase divided by the total number of cells observed in a population of cells; an indication of the degree of cell proliferation of that population.
sytotoksisuuden mittausmenetelmä, kun sytoB:tä ei käytetä (ks. kaava lisäyksessä 2).
Non-disjunctio
Proliferaatioindeksi (PI)
failure of paired chromatids to disjoin and properly segregate to the developing daughter cells, resulting in daughter cells with abnormal numbers of chromosomes.
sytotoksisuuden mittausmenetelmä, kun sytoB:tä ei käytetä (ks. kaava lisäyksessä 2).
numerical chromosome aberrations in cells or organisms involving entire set(s) of chromosomes, as opposed to an individual chromosome or chromosomes (aneuploidy).
S9-jakeen ja metabolisen entsyymitoiminnan kannalta välttämättömien kofaktorien seos.
Proliferation Index (PI)
solujen kasvun estäminen (ks. kaava lisäyksessä 2).
method for cytotoxicity measurement when cytoB is not used (see Appendix 2 for formula).
Sytostaasi
Relative Increase in Cell Count (RICC)
Kun sytoB:tä käytetään, sytotoksisuuden arvioinnin on perustuttava sytokineesin eston proliferaatioindeksiin (SEPI) tai replikaatioindeksiin (RI) (17) (69).
Replication Index (RI)
Sytokineesin eston proliferaatioindeksi ilmaisee tumien keskimääräistä määrää solua kohti, ja sitä voidaan käyttää solujen proliferaation laskemiseen.
the proportion of cell division cycles completed in a treated culture, relative to the untreated control, during the exposure period and recovery (see Appendix 2 for formula).
RI ilmaisee solusyklien suhteellista määrää solua kohti käsitellyissä viljelmissä sytoB:lle altistamisen aikana verrattuna kontrolliviljelmiin, ja sitä voidaan käyttää sytostaasiasteen (sytostaasi- %) laskemiseen seuraavasti:
mix of the S9 liver fraction and cofactors necessary for metabolic enzyme activity.
sytostaasi- % = 100 – 100(SEPIT – 1) ÷ (SEPIC – 1)
Untreated control
T testikemikaalilla käsitelty viljelmä
When cytoB is used, evaluation of cytotoxicity should be based on the Cytokinesis-Block Proliferation Index (CBPI) or Replication Index (RI) (17) (69).
C kontrolliviljelmä
The CBPI indicates the average number of nuclei per cell, and may be used to calculate cell proliferation.
yksitumaisten solujen määrä
The RI indicates the relative number of cell cycles per cell during the period of exposure to cytoB in treated cultures compared to control cultures and can be used to calculate the % cytostasis:
yksitumaisten solujen määrä
% Cytostasis = 100 – 100(CBPIT – 1) ÷ (CBPIC – 1)
monitumaisten solujen määrä
T test chemical treatment culture
solujen kokonaismäärä
C control culture
Näin ollen, jos SEPI = 1 (kaikki solut ovat yksitumaisia), sytostaasi on 100 %.
No. mononucleate cells
Sytostaasi = 100 – RI
No. binucleate cells
T käsitellyt viljelmät
No. multinucleate cells
C kontrolliviljelmät
Total number of cells
Näin ollen, jos RI = 53 %, kontrolliviljelmässä kaksitumaisiksi ja monitumaisiksi soluiksi jakaantuneiden solujen määrään verrattuna vain 53 % soluista jakaantui käsitellyssä viljelmässä, eli sytostaasi on 47 %.
Thus, a CBPI of 1 (all cells are mononucleate) is equivalent to 100 % cytostasis.
Kun sytoB:tä ei käytetä, sytotoksisuus on arvioitava solumäärän suhteellisen lisääntymisen (SMSL) tai populaation suhteellisen kaksinkertaistumisen (PSK) perusteella (69), koska molemmissa otetaan huomioon jakaantuneen solupopulaation osuus.
Cytostasis = 100-RI
Näin ollen, jos SMSL tai PSK = 53 %, sytotoksisuus/sytostaasi = 47 %.
T treated cultures
Sytotoksisuutta voidaan arvioida proliferaatioindeksin (PI) avulla laskemalla 1 solusta (kl1), 2 solusta (kl2), 3 tai 4 solusta (kl4) ja 5–8 solusta (kl8) muodostuneiden kloonien määrä seuraavasti
C control cultures
Proliferaatioindeksiä on käytetty sytotoksisuuden tärkeänä ja luotettavana parametrina myös ilman sytoB:tä in vitro viljellyille solulinjoille (35) (36) (37) (38), ja sitä voidaan pitää hyödyllisenä lisäparametrina.
Thus, an RI of 53 % means that, compared to the numbers of cells that have divided to form binucleate and multinucleate cells in the control culture, only 53 % of this number divided in the treated culture, i.e. 47 % cytostasis.
Joka tapauksessa solujen määrän ennen käsittelyä olisi oltava sama käsitellyissä ja negatiivisissa kontrolliviljelmissä.
When cytoB is not used, evaluation of cytotoxicity based on Relative Increase in Cell Counts (RICC) or on Relative Population Doubling (RPD) is recommended (69), as both take into account the proportion of the cell population which has divided.
Vaikka solumäärän suhteellista lisääntymistä (solujen lukumäärä käsitellyissä viljelmissä / solujen lukumäärä kontrolliviljelmissä) on aiemmin käytetty sytotoksisuuden parametrina, sitä ei enää suositella, koska se voi johtaa sytotoksisuuden aliarviointiin.
Thus, a RICC, or a RPD of 53 % indicates 47 % cytotoxicity/cytostasis.
Käytettäessä automaattisia laskentajärjestelmiä, kuten virtaussytometriaa, laserpyyhkäisysytometriaa tai kuva-analyysia, kaavassa käytetty solumäärä voidaan korvata tumien määrällä.
By using a Proliferation Index (PI), cytotoxicity may be assessed via counting the number of clones consisting of 1 cell (cl1), 2 cells (cl2), 3 to 4 cells (cl4) and 5 to 8 cells (cl8).
Negatiivisissa kontrolliviljelmissä populaation kaksinkertaistumisen tai replikaatioindeksin määrittämisessä on noudatettava vaatimusta ottaa soluista näyte noin 1,5–2,0 normaalia solusykliä vastaavan ajan kuluttua käsittelyn jälkeen.