natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If the test chemical is difficult to dissolve in water, procedures described in the OECD Guidance Document No. 23 for handling difficult substances and mixtures should be followed (28).
Valaistus
The use of solvents should be avoided, but may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Loistelamppu (laajakirjoinen); 10–20 μE/m2/s, 540–1080 luksia, tai 50–100 ft-c (laboratorion ympäristötasot); valojakso 12–16 tuntia
Where a solvent is used to assist in stock solution preparation, its final concentration should not exceed 100 μl/l and should be the same in all test vessels.
Veden laatu
When a solvent is used, an additional solvent control is required.
O2 ≥ 80 prosentin kyllästymispitoisuus, kovuus: esim. ~ 30–300 mg/l CaCO3, NO3-: ≤48mg/l, NH4+ ja NO2-: < 0,001 mg/l, jäännöskloori < 10 μg/l, orgaanisen kloorin kokonaismäärä < 25 ng/l, pH = 6,5–8,5
Maintenance of brood fish
Muita veden laatua koskevia kriteereitä
A breeding stock of unexposed, wild-type zebrafish with well-documented fertilisation rate of eggs is used for egg production.
hiukkaset < 20 mg/l, orgaanisen hiilen kokonaismäärä < 2 mg/l, orgaanista fosforia sisältävien torjunta-aineiden kokonaismäärä < 50 ng/l, orgaanista klooria sisältävien torjunta-aineiden ja polykloorattujen bifenyylien kokonaismäärä < 50 ng/l
Fish should be free of macroscopically discernible symptoms of infection and disease and should not have undergone any pharmaceutical (acute or prophylactic) treatment for 2 months before spawning.
Ylläpitotankin koko
Breeding fish are maintained in aquaria with a recommended loading capacity of 1 l water per fish and a fixed 12 - 16 hour photoperiod (29)(30)(31)(32)(33).
esim. 180 l, 1 kala/l
Optimal filtering rates should be adjusted; excess filtering rates causing heavy perturbation of the water should be avoided.
Vedenpuhdistus
For feeding conditions, see Appendix 2.
Jatkuva (hiilisuodatus); muita mahdollisuuksia ovat semistaattisen vedenvaihdon tai jatkuvasti vettä vaihtavan läpivirtausjärjestelmän yhdistelmät.
Surplus feeding should be avoided, and water quality and cleanness of the aquaria should be monitored regularly and be reset to the initial state, if necessary.
Koiraiden ja naaraiden suositeltu suhde kasvatusta varten
Proficiency Testing
2:1 (tai massakutu)
For any laboratory initially establishing this assay, the reference chemical should be used.
Esim. 4 litran kokoiset tankit, joissa on teräsverkkopohja ja keinokasvi kudun stimuloijana; ulkoiset lämpömatot, tai massakutu ylläpitotankeissa
A laboratory can use this chemical to demonstrate their technical competence in performing the assay prior to submitting data for regulatory purposes.
Mätimunien rakenne ja ulkonäkö
Egg production
Vakaa korion (eli hyvin läpinäkyvä, tarttumaton, halkaisija ~ 0,8–1,5 mm)
Zebrafish eggs may be produced via spawning groups (in individual spawning tanks) or via mass spawning (in the maintenance tanks).
Kutumäärä
Since spawning groups of zebrafish may occasionally fail to spawn, the parallel use of at least three spawning tanks is recommended.
Kutumäärät voivat olla kannasta riippuen huomattavasti suurempia.
To avoid genetic bias, eggs are collected from a minimum of three breeding groups, mixed and randomly selected.
Hedelmöitymisasteen on oltava ≥ 70 prosenttia.
2 ± 0,5 mm).
SEEPRAKALAN NORMAALI KEHITYS 26 °C:N LÄMPÖTILASSA
Mating, spawning and fertilisation take place within 30 min after the onset of light and the spawn traps with the collected eggs can be carefully removed.
Kuva 2: Tiettyjä seeprakalan (Danio rerio) kehityksen vaiheita (alkiosta on poistettu korion näkyvyyden parantamiseksi) 22–48 tuntia hedelmöitymisen jälkeen (lähde: Kimmel et al., 1995 (35)).
Rinsing eggs with reconstituted water after collection from spawning traps is recommended.
Kuva 3: Seeprakalan (Danio rerio) alkioiden normaali kehitys: (1) 0,75 tuntia, 2-soluinen alkio; (2) 1 tunti, 4-soluinen alkio; (3) 1,2 tuntia, 8-soluinen alkio; (4) 1,5 tuntia, 16-soluinen alkio; (5) 4,7 tuntia, alkava epibolia; (6) 5,3 tuntia, noin 50-prosenttinen epibolia (lähde: Braunbeck & Lammer 2006 (40)).
Egg differentiation
uoppalevyjen täyttö
At these stages, fertilised eggs can be clearly identified by the development of a blastula.
nC negatiivinen kontrolli (laimennusvesi);
If this is not possible in a static system, a manageable semi-static renewal interval should be applied (e.g. renewal every 24 hrs).
sC liuotinkontrolli
In these cases exposure concentrations need to be verified as a minimum in the highest and lowest test concentrations at the beginning and the end of each exposure interval (see paragraph 36).
KUVASTO SEEPRAKALAN ALKIOILLA TEHTÄVÄN AKUUTIN TOKSISUUSTESTIN LETAALEISTA PÄÄTEPISTEISTÄ
If an exposure concentration of ± 20 % of the nominal concentrations cannot be maintained, all concentrations need to be measured at the beginning and the end of each exposure interval (see paragraph 36).
Seuraavat apikaaliset päätepisteet ovat osoitus akuutista toksisuudesta ja siten alkioiden kuolemasta: alkion koaguloituminen, hännän irtoamattomuus, somiittien muodostumattomuus ja sydämenlyöntien puute.
Upon renewal, care should be taken that embryos remain covered by a small amount of old test solutions to avoid drying.
Seuraavat mikroskooppikuvat on valittu havainnollistamaan näitä päätepisteitä.
The test design can be adapted to meet the testing requirements of specific substances (e.g,. flow-through (24) or passive dosing systems (25) for easily degradable or highly adsorptive substances (29), or others for volatile substances (36)(37)).
Alkion koaguloituminen:
In any case, care should be taken to minimise any stress to the embryos.
Helotaustavalaistuksessa koaguloituneissa seeprakalan alkioissa näkyy erilaisia läpinäkymättömiä osia.
Test chambers should be conditioned at least for 24 hrs with the test solutions prior to test initiation.
Kuva 2
Test conditions are summarised in Appendix 2.
Somiittien muodostumattomuus:
Normally, five concentrations of the test chemical spaced by a constant factor not exceeding 2,2 are required to meet statistical requirements.
Vaikka 24 tuntia vanhan seeprakalan alkion kehitys on myöhässä noin 10 tuntia, siinä näkyy kuvassa (a) hyvin kehittyneitä somiitteja (→), kun taas kuvan (b) alkiossa ei näy mitään merkkejä somiittien muodostumisesta (→).
Justification should be provided, if fewer than five concentrations are used.
Vaikka kuvan (c) 48 tuntia vanha seeprakalan alkiolla on selvä ruskuaispussin ödeema, siinä näkyy selvää somiittien muodostumista (→), kun taas kuvassa (d) 96 tuntia vanhassa seeprakalan alkiossa ei näy mitään merkkejä somiittien muodostumisesta (→).
The highest concentration tested should preferably result in 100 % lethality, and the lowest concentration tested should preferably give no observable effect, as defined in paragraph 28.
Huomaa myös kuvassa (d) olevan alkion selkärangan kieroutuma (skolioosi) sekä perikardiaalinen ödeema (*).
A range-finding test before the definitive test allows selection of the appropriate concentration range.
(a: →; 96 tuntia vanha seeprakalan alkio).
The range-finding is typically performed using ten embryos per concentration.
Huomaa myös näkörakkulan puuttuminen (*).
The following instructions refer to performing the test in 24-well plates.
Kuva 4
Details and visual instructions for allocation of concentrations across 24-well plates are available in paragraph 27 and Appendix 4, Figure 1.
Sydämenlyöntien puutetta osoittaa se, että sydän ei supistu (kaksoisnuoli).
Dilution water controls are required both as negative control and as internal plate controls.
Verisolujen liikkumattomuus esimerkiksi vatsa-aortassa (→ pienemmässä kuvassa) ei ole osoitus sydämenlyöntien puutteesta.
If more than 1 dead embryo is observed in the internal plate control, the plate is rejected, thus reducing the number of concentrations used to derive the LC50.
Huomaa myös somiittien muodostumattomuus tässä alkiossa (*, lihaskudosten homogeeninen eikä segmentaalinen ulkonäkö).
If an entire plate is rejected the ability to evaluate and discern observed effects may become more difficult, especially if the rejected plate is the solvent control plate or a plate in which treated embryos are also affected.
Sydämenlyöntien puutteen kirjaamiseksi vaadittava havainnointiaika on vähintään yksi minuutti vähintään 80-kertaisella suurennuksella.
In the first case the test must be repeated.
C.50 Sedimentitön Myriophyllum spicatum -lajilla tehtävä toksisuustesti
In the second one the loss of an entire treatment group(s) due to internal control mortality may limit the ability to evaluate effects and determine LC50 values.
Tämä testimenetelmä vastaa OECD:n testiohjetta nro 238 (2014).
A positive control at a fixed concentration of 4 mg/l 3,4-dichloroaniline is performed with each egg batch used for testing.
Sillä arvioidaan kemikaalien toksisuutta Myriophyllum spicatum -lajille (tähkä-ärviä), joka on ärviöihin kuuluva kaksisirkkainen uposvesikasvi.
In case a solvent is used, an additional group of 20 embryos is exposed to the solvent on a separate 24-well plate, thus serving as a solvent control.
Menetelmä perustuu olemassa olevaan ASTM-testimenetelmään (1), joka on muutettu sedimentittömäksi testijärjestelmäksi (2) testikemikaalien todellisen ekotoksisuuden (joka ei riipu testikemikaalin jakautumisesta veden ja sedimentin välillä) arvioimiseksi.
To consider the test acceptable, the solvent should be demonstrated to have no significant effects on time to hatch, survival, nor produce any other adverse effects on the embryos (cf. paragraph 8c).
Sedimentittömässä testijärjestelmässä analysointi on yksinkertaista (vain vesifaasissa), ja tuloksia voidaan analysoida rinnakkain ja/tai vertaillen limaskoilla (Lemna sp.) tehdystä testistä (3) saatujen tulosten kanssa; lisäksi vaadittavien steriilien olosuhteiden avulla mikro-organismien ja levien vaikutukset (muun muassa kemikaalin kulutus/hajoaminen) voidaan pitää mahdollisimman vähäisinä.
Start of exposure and duration of test
Tämä testi ei korvaa muita vesieliötoksisuutta koskevia testejä; sen tarkoituksena on pikemminkin täydentää niitä ja mahdollistaa kattavampi vesikasveille aiheutuvan vaaran ja riskin arviointi.
The test is initiated as soon as possible after fertilisation of the eggs and terminated after 96 hrs of exposure.
Tämä testimenetelmä on validoitu kansainvälisellä yhteistutkimuksella (ring test) (4).
The embryos should be immersed in the test solutions before cleavage of the blastodisc commences, or, at latest, by the 16 cell-stage.
Testimenetelmässä kuvataan yksityiskohtaisesti testausta, jossa testiliuos vaihtuu (semistaattinen) tai ei vaihdu (staattinen menetelmä).
Viable fertilised eggs should be separated from unfertilised eggs and be transferred to 24-well plates pre-conditioned for 24 hrs and refilled with 2 ml/well freshly prepared test solutions within 180 minutes post fertilisation.
Tästä annetaan tarkempia ohjeita kirjallisuusviitteessä (5).
By means of stereomicroscopy (preferably ≥30-fold magnification), fertilised eggs undergoing cleavage and showing no obvious irregularities during cleavage (e.g. asymmetry, vesicle formation) or injuries of the chorion are selected.
Tätä testimenetelmää sovelletaan aineisiin, joita varten testimenetelmä on validoitu (ks. lähemmin kansainvälisen yhteistutkimuksen raportti (4)) tai valmisteisiin tai tunnettuihin seoksiin; seosta testattaessa sen ainesosat on mahdollisimman pitkälti tunnistettava ja määritettävä kvantitatiivisesti.
For egg collection and separation, see Appendix 3, Fig. 1 and 3 and Appendix 4, Fig.
Sedimentitön Myriophyllum spicatum -testimenetelmä täydentää vesisedimenttijärjestelmässä tehtävää Myriophyllum spicatum -toksisuustestiä (6).
2.
Ennen kuin testimenetelmää käytetään seoksen testaamiseen sääntelytarkoituksiin, on harkittava, antaako se asianmukaiset tulokset tämän tavoitteen kannalta, ja jos antaa, miksi.
Distribution of eggs over the 24-well plates
Jatkuvasti kasvavien Myriophyllum spicatum -lajin kasviviljelmien (vain Andrewsin elatusaineen muunnoksessa, ks. lisäys 2) 14 päivän ajan monokulttuureina testiaineen eri pitoisuuksissa sedimentittömässä testijärjestelmässä.
Eggs are distributed to well plates in the following numbers (see also Appendix 4, Fig.
Testin tavoitteena on kvantifioida testikemikaaliin liittyvät vaikutukset kasvien kasvuun tämän ajan kuluessa tiettyjen mittausmuuttujien arvioinnin perusteella.
1)
Versojen, sivuhaarojen ja juurien pituuden kasvu sekä tuore- ja kuivapainon kehitys ja kiehkuroiden lisääntyminen ovat mittausmuuttujia.
20 eggs on one plate for each test concentration;
Lisäksi huomioon otetaan koe-eliöiden selvästi erottuvat kvalitatiiviset muutokset, kuten epämuotoisuus tai kloroosi ja nekroosi, joka ilmenee kellastumisena tai valkoisena ja ruskeana värinä.
20 eggs as solvent control on one plate (if necessary);
Testikemikaaliin liittyvien vaikutusten kvantifioimiseksi testiliuoksissa tapahtunutta kasvua verrataan kontrolleissa tapahtuneeseen kasvuun, minkä jälkeen määritetään pitoisuus, jossa kasvu estyy ennalta määrätyn prosenttimäärän x verran.
20 eggs as positive control on one plate;
Kyseinen pitoisuus ilmoitetaan ECx-arvona, esimerkiksi EC10, EC20 tai EC50.
4 eggs in dilution water as internal plate control on each of the above plates;
On syytä huomata, että EC10- ja EC20-arvojen arviot ovat luotettavia ja asianmukaisia vain testeissä, joissa kontrollikasvien variaatiokertoimet ovat pienemmät kuin arvioitava vaikutustaso.
24 eggs in dilution water as negative control on one plate.
Toisin sanoen vaikutuskertoimien on oltava < 20 prosenttia, jotta EC20-arvo voidaan arvioida luotettavasti.
Apical observations performed on each tested embryo include: coagulation of embryos, lack of somite formation, non-detachment of the tail, and lack of heartbeat (Table 1).
Käsittelemättömistä ja käsitellyistä kasveista on määritettävä sekä keskimääräinen spesifinen kasvunopeus (joka arvioidaan pääverson pituuden ja kolmen muun mittausmuuttujan määrittämisen perusteella) että tuotos (joka arvioidaan pääverson pituuden sekä kolmen muun mittausmuuttujan lisääntymisen perusteella).
These observations are used for the determination of lethality: Any positive outcome in one of these observations means that the zebrafish embryo is dead.
Spesifistä kasvunopeutta (r) ja tuotosta (y) käytetään tämän jälkeen ErCx-arvon (esimerkiksi ErC10, ErC20, ErC50) ja EyCx-arvon (esimerkiksi EyC10, EyC20, EyC50) määrittämiseen.
Additionally, hatching is recorded in treatment and control groups on a daily basis starting from 48 hrs.
Tilastollisesti voidaan määrittää myös pienin havaittavan vaikutuksen aiheuttava pitoisuus (LOEC) sekä pitoisuus, joka ei aiheuta havaittavaa vaikutusta (NOEC).
Observations are recorded every 24 hrs, until the end of the test.
Käytettävissä on oltava analyysimenetelmä, jolla testiviljelyaineessa oleva testikemikaali voidaan kvantifioida riittävän herkästi.
Apical observations of acute toxicity in zebrafish embryos 24-96 hrs post fertilisation
Testikemikaalia koskevia tietoja, joista voi olla hyötyä päätettäessä testiolosuhteista, ovat rakennekaava, puhtaus ja epäpuhtaudet, vesiliukoisuus, stabiilius vedessä ja valossa, hapon dissosiaatiovakio (pKa), jakaantumiskerroin oktanoli/vesi (Kow), höyrynpaine ja biohajoavuus.
Exposure times
Vesiliukoisuutta ja höyrynpainetta voidaan käyttää laskettaessa Henryn vakiota, josta voidaan päätellä, onko todennäköistä, että testikemikaalia häviää merkittävästi testin aikana.
24 hrs
Tämän perusteella voidaan päättää, vaativatko tällaiset häviöt erityistoimia.
48 hrs
Jos testikemikaalin liukoisuutta ja stabiiliutta koskevat tiedot ovat epäluotettavia, nämä ominaisuudet olisi arvioitava testiolosuhteissa, toisin sanoen siinä viljelyaineessa, lämpötilassa ja valaistuksessa, joita testissä käytetään.
72 hrs
Testiviljelyaineen pH:n tarkistaminen on erityisen tärkeää esimerkiksi testattaessa metalleja tai hydrolyyttisesti epästabiileja aineita.
96 hrs
OECD:n ohjeasiakirjassa (5) annetaan lisäohjeita sellaisten kemikaalien testauksesta, joiden fysikaalis-kemialliset ominaisuudet vaikeuttavat niiden testaamista.
Coagulated embryos
Jotta testi olisi validi, pääverson pituuden on kaksinkertaistuttava kontrolliviljelmässä alle 14 päivässä.
Lack of somite formation
Käytettäessä tässä testimenetelmässä kuvattuja testiliuoksia ja -olosuhteita tämä vaatimus voidaan täyttää käyttämällä staattista tai semistaattista testausta.
Non-detachment of the tail
Versojen tuorepainon määrityksiin perustuvan tuoton (testin aloittamisesta testi päättämiseen) sekä muiden mittausmuuttujien (ks. 37 kohta) keskimääräinen variaatiokerroin kontrolliviljelmien välillä ei saa olla yli 35 prosenttia rinnakkaisnäytteiden välillä.
Lack of heartbeat
Yli 50 prosenttia kontrolliryhmän rinnakkaisnäytteistä pidetään steriileinä koko 14 päivää kestävän altistusajan.
Coagulation of the embryo: Coagulated embryos are milky white and appear dark under the microscope (see Appendix 5, Fig.
Tämä tarkoittaa, että niissä ei ole muita organismeja, kuten leviä, sieniä ja bakteereita, näkyvinä epäpuhtauksina (kirkas liuos).
1).
Huom. Ohjeita steriiliyden arvioinnista annetaan kansainvälisen yhteistutkimuksen raportissa (4).
The number of coagulated embryos is determined after 24, 48, 72 and 96 hrs.
VERTAILUKEMIKAALI
Lack of somite formation: At 26 ± 1 °C, about 20 somites have formed after 24 hrs (see Appendix 5, Figure 2) in a normally developing zebrafish embryo.
Vertailukemikaali(t), kuten kansainvälisessä yhteistutkimuksessa (4) käytetty 3,5-dikloorifenoli, voidaan testata testimenettelyn tarkistamiseksi; kansainvälisen yhteistutkimuksen tietojen mukaan 3,5-dikloorifenolin keskimääräiset EC50-arvot eri vastemuuttujille (ks. tämän testimenetelmän 37–41 kohta) ovat 3,2–6,9 mg/l (tarkempia tietoja näiden arvojen luottamusvälistä on kansainvälisen yhteistutkimuksen raportissa).
A normally developed embryo shows spontaneous movements (side-to-side contractions).
Vertailukemikaali on suotavaa testata vähintään kahdesti vuodessa tai, jos testausta tehdään harvemmin, rinnakkain määritettäessä testikemikaalin toksisuutta.
If not, the embryos are considered dead.
Koska muunnettu Andrewsin kasvualusta sisältää sakkaroosia (joka stimuloi sienten ja bakteerien kasvua), testiliuokset on valmistettava steriileissä olosuhteissa.
Non-detachment of the tail: In a normally developing zebrafish embryo, detachment of the tail (seeAppendix 5, Figure 3) from the yolk is observed following posterior elongation of the embryonic body.
Kaikki nesteet sekä laitteet on steriloitava ennen käyttöä.
Absence of tail detachment is recorded after 24, 48, 72 and 96 hrs.
Sterilointi tehdään 4 tuntia kestävällä kuumailmakäsittelyllä (210 °C) tai autoklavoimalla 20 minuutin ajan lämpötilassa 121 °C.
Lack of heartbeat: In a normally developing zebrafish embryo at 26 ± 1 °C, the heartbeat is visible after 48 hrs (see Appendix 5, Figure 4).
Lisäksi kaikki pullot, maljat, kulhot ja muut tarvikkeet liekitetään steriilillä työpöydällä välittömästi ennen käyttöä.
Particular care should be taken when recording this endpoint, since irregular (erratic) heartbeat should not be recorded as lethal.
Viljelmiä ja koeastioita ei saa säilyttää toistensa kanssa.
Moreover, visible heartbeat without circulation in aorta abdominalis is considered non-lethal.
Sen vuoksi on paras käyttää erillisiä ilmastoituja kasvatuskaappeja, inkubaattoreita tai huoneita.
To record this endpoint, embryos showing no heartbeat should be observed under a minimum magnification of 80x for at least one minute.
Valaistuksen ja lämpötilan on oltava säädettävissä, ja ne on pidettävä tasaisina.
Absence of heartbeat is recorded after 48, 72 and 96 hrs.
Koe-eliö
Hatching rates of all treatment and control groups should be recorded from 48 hrs onwards and reported.
Myriophyllum spicatum on ärviöiden sukuun kuuluva kaksisirkkainen uposkasvilaji.
Although hatching is not an endpoint used for the calculation of the LC50, hatching ensures exposure of the embryo without a potential barrier function of the chorion, and as such may help data interpretation.
Kasvin vaaleanpunertavat huomaamattomat kukat työntyvät kesäkuusta elokuuhun vedenpinnan yläpuolelle.
Detailed descriptions of the normal (35) and examples of abnormal development of zebrafish embryos are illustrated in Appendixes 3 and 5.
Kasvit juurtuvat pohjaan lujilla juurakoilla, ja niitä tavataan koko pohjoisella pallonpuoliskolla rehevöityneissä, mutta pilaantumattomissa ja kalkkipitoisissa rauhallisissa mutapohjaisissa vesissä.
Analytical measurements
Myriophyllum spicatum viihtyy parhaiten makeassa vedessä, mutta sitä tavataan myös murtovesissä.
At the beginning and at the end of the test, pH, total hardness and conductivity in the control(s) and in the highest test chemical concentration are measured.
Sedimentitöntä toksisuustestiä varten tarvitaan steriilejä kasveja.
In semi-static renewal systems the pH should be measured prior to and after water renewal.
Jos testilaboratoriolla ei ole Myriophyllum spicatum -lajin kantaviljelmiä, steriili kasvimateriaali voidaan hankkia toisesta laboratoriosta tai (epästeriili) kasvimateriaali voidaan kerätä luonnosta tai hankkia kaupalliselta toimittajalta; jos kasvit kerätään luonnosta, lajimääritys on todennettava taksonomisesti.
The dissolved oxygen concentration is measured at the end of the test in the negative controls and highest test concentration with viable embryos, where it should be in compliance with the test validity criteria (see paragraph 8f).
Jos kasvit kerätään luonnosta tai hankitaan kaupalliselta toimittajalta, ne on steriloitava (1) ja niitä on viljeltävä testissä käytettävässä viljelyaineessa vähintään kahdeksan viikkoa ennen käyttöä.
If there is concern that the temperature varies across the 24-well plates, temperature is measured in three randomly selected vessels.
Paikoissa, joista alkuviljelmien kasvit kerätään, ei saa olla ilmeisiä kontaminaatiolähteitä.
Temperature should be recorded preferably continuously during the test or, as a minimum, daily.
Kerättäessä Myriophyllum spicatum -kasveja luonnosta on varmistettava huolellisesti, että kerätään oikeaa lajia, erityisesti alueilla, jossa se voi risteytyä muiden Myriophyllum-lajien kanssa.
In a static system, the concentration of the test chemical should be measured, as a minimum, in the highest and lowest test concentrations, but preferably in all treatments, at the beginning and end of the test.
Jos kasvit hankitaan toisesta laboratoriosta, niitä on viljeltävä vastaavalla tavalla kolmen viikon ajan.
In semi-static (renewal) tests where the concentration of the test chemical is expected to remain within ± 20 % of the nominal values, it is recommended that, as a minimum, the highest and lowest test concentrations be analysed when freshly prepared and immediately prior to renewal.
Kasvimateriaalin lähde sekä testauksessa käytettävät lajit on aina ilmoitettava.
For tests where the concentration of the test chemical is not expected to remain within ± 20 % of nominal, all test concentrations must be analysed when freshly prepared and immediately prior to renewal.
Testissä käytettävät kasvit on valittava huolellisesti, koska niiden laatu ja yhtenäisyys vaikuttavat merkittävästi testin tulokseen.
In case of insufficient volume for analysis, merging of test solutions, or use of surrogate chambers being of the same material and having the same volume to surface area ratios as 24-well plates, may be useful.
Testissä on käytettävä nuoria, nopeasti kasvavia kasveja, joissa ei ole näkyviä vaurioita tai värimuutoksia (kloroosia).
It is strongly recommended that results be based on measured concentrations.
Koe-eliön valmistelu on kuvattu yksityiskohtaisesti lisäyksessä 4.
When the concentrations do not remain within 80-120 % of the nominal concentration, the effect concentrations should be expressed relative to the geometric mean of the measured concentrations; see Chapter 5 in the OECD Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of Difficult Substances and Mixtures for more details (28).
Viljely
LIMIT TEST
Viljelmien ylläpidon helpottamiseksi (esimerkiksi silloin, kun Myriophyllum-testejä ei aiota tehdä tiettynä aikana) niitä voidaan säilyttää normaalia heikommassa valaistuksessa ja alhaisemmassa lämpötilassa (50 μE m– 2 s– 1, 20 ± 2 °C).