natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Additional “analytical” vessels of appropriate dimensions have to be set up, which are treated in the same way (including the presence of test organisms) but not used for biological observations.
Käsittele kaikkia näytteitä testin aikana siten, että kontaminaatio ja häviö ovat mahdollisimman pieniä (niitä voi aiheuttaa esimerkiksi testikemikaalin adsorptoituminen näytteenottovälineisiin).
The vessel dimensions should be selected to provide the sample amounts required by the analytical method.
Testikemikaalin saanto, määritysraja sekä havaitsemisraja sedimentissä ja vedessä kirjataan muistiin ja ilmoitetaan.
Details of sampling are described in paragraph 53.
Testin tärkeimmät pakolliset vastemuuttujat, joita arvioidaan tilastollisesti, ovat biomassa ja matojen kokonaismäärä rinnakkaisnäytettä kohti.
PERFORMANCE OF THE TEST
Lisääntymistä (matojen määrän lisääntyminen) ja kasvua (kuivan biomassan määrän kasvu) voidaan niin haluttaessa myös arvioida.
If no information is available on the toxicity of the test chemical towards Lumbriculus variegatus, it may be useful to conduct a preliminary experiment in order to determine the range of concentrations to be tested in the definitive test, and to optimise the test conditions of the definitive test.
Tässä tapauksessa on tehtävä arvio matojen kuivapainosta altistumisen alussa esimerkiksi mittaamalla synkronoidusta, testiin käytettävästä matoerästä otetun edustavan osanäytteen kuivapaino.
For this purpose a series of widely spaced concentrations of the test chemical are used.
Kuolleisuus ei ole tutkittava ominaisuus tässä testissä, mutta kuolleisuutta olisi kuitenkin arvioitava mahdollisimman tarkasti.
The worms are exposed to each concentration of the test chemical for a period (e.g. 28 d as in the definitive test) which allows estimation of appropriate test concentrations;
Kuolleisuutta arvioitaessa kuolleiksi katsotaan madot, joita ei löydy, jotka eivät reagoi varovaiseen mekaaniseen ärsykkeeseen tai joissa näkyy merkkejä maatumisesta.
no replicates are required.
Kuolleiden matojen määrä on ainakin kirjattava muistiin ja otettava huomioon testituloksia tulkittaessa.
The behaviour of the worms, for example sediment avoidance, which may be caused by the test chemical and/or by the sediment, should be observed and recorded during a preliminary test.
Vaikuttavat pitoisuudet ilmaistaan milligrammoina sedimentin kuivapainokiloa kohti.
Concentrations higher than 1000 mg/kg sediment dry weight should not be tested in the preliminary test.
Jos sedimentissä tai sedimentissä ja yläpuolisessa vedessä altistuksen alussa mitatun testikemikaalin saanto on 80–120 prosenttia nimellispitoisuudesta, vaikuttavat pitoisuudet (ECx-, NOEC- ja LOEC-arvo) voidaan ilmoittaa nimellispitoisuuksien perusteella.
In the definitive test, at least five concentrations should be used and selected e.g. based on the result of the preliminary range-finding test (paragraph 31), and as described in paragraphs 35, 36, 37 and 38.
Jos saanto poikkeaa nimellispitoisuudesta yli ± 20 prosenttia, vaikuttavien pitoisuuksien (ECx-, NOEC- ja LOEC-arvon) on perustuttava altistuksen alussa mitattuihin pitoisuuksiin ottaen samalla huomioon esimerkiksi testikemikaalin massataseen testijärjestelmässä (ks. 30 kohta).
A control (for replication see paragraphs 36, 37 and 38) containing all constituents, except for the test chemical, is run in addition to the test series.
Näissä tapauksissa lisätietoa saadaan analysoimalla kanta- ja/tai applikointiliuoksia, millä voidaan todentaa, että testisedimentit oli valmistettu oikein.
If any solubilising agent is used for application of the test chemical, it should have no significant effect on the test organisms as revealed by an additional solvent-only control.
Tämän testiohjeen 60 kohdasssa kuvattujen parametrien ECx-arvot lasketaan sopivien tilastollisten menetelmien avulla (esimerkiksi tilastollinen koestus, logistinen funktio tai Weibullin funktio, viritetty Spearmanin ja Kärberin menetelmä tai yksinkertainen interpolointi).
The test design relates to the selection of the number and spacing of the test concentrations, the number of vessels at each concentration and the number of worms added per vessel.
Ohjeita tilastollisen arvioinnin tekemistä varten on kirjallisuusviitteissä (15) ja (50).
Designs for ECx estimation, for estimation of NOEC, and for conducting a limit test are described in paragraphs 35, 36, 37 and 38.
Jos halutaan laskea EC50 tai jokin muu ECx-arvo, käsittelyä edeltävälle keskiarvolle ( X
The effect concentration (e.g. EC50, EC25, EC10) and the concentration range, over which the effect of the test chemical is of interest, should be bracketed by the concentrations included in the test.
) olisi tehtävä regressioanalyysi.
Extrapolating much below the lowest concentration affecting the test organisms or above the highest tested concentration should be avoided.
Jos tilastollisella analyysilla on tarkoitus määrittää NOEC/LOEC-arvo, astiakohtaiset tilastot (yksittäisiä astioita pidetään rinnakkaisnäytteinä) ovat tarpeen.
If — in exceptional cases — such an extrapolation is done, a full explanation must be given in the report.
Laskennassa käytetään asianmukaisia tilastollisia menetelmiä.
If the ECx is to be estimated, at least five concentrations and a minimum of three replicates for each concentration should be tested;
Yleensä testin kohteen haitallisia vaikutuksia verrattuna kontrolliin tutkitaan käyttämällä yksisuuntaista (pienempää) hypoteesitestausta, jossa p ≤ 0,05.
six replicates are recommended for the control or — if used — the solvent control in order to improve the estimation of control variability.
Esimerkkejä annetaan seuraavissa kappaleissa.
In any case, it is advisable that sufficient test concentrations are used to allow a good model estimation.
Ohjeita sopivan tilastollisen menetelmän valintaa varten on kirjallisuusviitteissä (15) ja (50).
The factor between concentrations should not be greater than two (an exception can be made in cases when the concentration response curve has a shallow slope).
Datan normaalijakaumaa voidaan testata esimerkiksi Kolmogorov-Smirnovin sopivuustestillä, vaihteluvälin ja normaalijakauman suhdetta mittaavalla R/s-testillä tai Shapiro-Wilk-testillä (kaksisuuntainen, p ≤ 0,05).
The number of replicates at each treatment can be reduced if the number of test concentrations with responses in the range of 5 – 95 % are increased.
Cochranin testiä, Levenen testiä tai Bartlettin testiä (kaksisuuntainen, p ≤ 0,05) voidaan käyttää varianssin homogeenisuuden testaamiseen.
Increasing the number of replicates or reducing the size of the test concentration intervals tends to lead to narrower confidence intervals for the test.
Jos parametritestimenetelmien edellytykset (normaalius, varianssin homogeenisuus) täyttyvät, voidaan tehdä yksisuuntainen varianssianalyysi (ANOVA) sekä tämän jälkeen monivertailutestejä.
If the LOEC/NOEC values are to be estimated, at least five test concentrations with at least four replicates (six replicates are recommended for the control or — if used — the solvent control in order to improve the estimation of control variability) should be used, and the factor between concentrations should not be greater than two.
Parivertailuja (esimerkiksi Dunnettin t-testiä) tai alaspäin askeltavia trenditestejä (esimerkiksi Williamsin testiä) voidaan käyttää sen laskemiseen, onko kontrollien ja eri testikohdepitoisuuksien välillä merkitseviä eroja (p ≤ 0,05).
Some information on the statistical power found during hypothesis testing in the ring test of the test method is given in Appendix 6.
Muutoin NOEC- ja LOEC-arvojen määrittämisessä käytetään parametrittomia menetelmiä (esimerkiksi Bonferroni-U-testiä Holmin mukaan tai Jonckheere-Terpstran trenditestiä).
A limit test may be performed (using one test concentration and controls) if no effects are expected up to 1000 mg/kg sediment d.w. (e.g. from a preliminary range-finding test), or if testing at a single concentration will be adequate to confirm a NOEC value of interest.
Jos raja-annostesti (kontrollin ja vain yhden käsittelyn vertailu) on tehty ja jos parametristen testimenetelmien vaatimukset (normaalius, homogeenisuus) täyttyvät, metrisiä vasteita (matojen kokonaismäärä sekä biomassa matojen kuivapainona) voidaan arvioida Studentin testillä (t-testillä).
In the latter case, a detailed rationale for selection of limit concentration should be included in the test report.
Jos vaatimukset eivät täyty, voidaan käyttää t-testiä, jossa varianssit ovat heterogeenisia (Welchin t-testi) tai parametritonta testiä, kuten Mann-Whitneyn U-testiä.
The purpose of the limit test is to perform a test at a concentration sufficiently high to enable decision makers to exclude possible toxic effects of the chemical, and the limit is set at a concentration which is not expected to appear in any situation.
Menetelmälle tehdyn yhteistutkimuksen hypoteesitestauksen yhteydessä havaitusta tilastollisesta voimasta on tietoa lisäyksessä 6.
1000 mg/kg (dry weight) is recommended.
Kontrollien välisten (kontrolli ja liuotinkontrolli) merkitsevien erojen määrittämiseksi jokaisen kontrollin rinnakkaisnäytteet voidaan testata raja-annostestin yhteydessä kuvatulla tavalla.
Usually, at least six replicates for both the treatment and controls are necessary.
Jos näissä testeissä ei havaita merkitseviä eroja, kaikki kontrolli- ja liuotinkontrollirinnakkaisnäytteet voidaan yhdistää.
Exposure conditions
Muussa tapauksessa kaikkia käsittelyjä tulee vertailla liuotinkontrolliin.
The test is conducted with at least 10 worms for each replicate used for determination of biological parameters.
Tulosten tulkinnassa on oltava varovainen, jos kuvatusta testimenetelmästä on poikettu ja jos testipitoisuuksista mitatut pitoisuudet ovat lähellä käytetyn analyysimenetelmän havaitsemisrajaa.
This number of worms corresponds to approximately 50 - 100 mg of wet biomass.
Kaikki poikkeamat testimenetelmästä on kirjattava muistiin.
Assuming a dry content of 17,1 % (48), this results in approximately 9 - 17 mg of dry biomass per vessel.
Testiraportissa on annettava ainakin seuraavat tiedot:
U.S.
kaikki ennen testin alkua hankitut tiedot fysikaalisesta olomuodosta ja fysikaalis-kemiallisista ominaisuuksista (esimerkiksi vesiliukoisuus, höyrynpaine, jakaantumiskerroin maa-aineksessa (tai sedimentissä, jos saatavissa), log Kow ja stabiilisuus vedessä)
EPA (2000 (7)) recommends to use a loading rate not exceeding 1:
tieteellinen nimi, lähde, mahdollinen esikäsittely, totuttamistiedot, viljelyolosuhteet jne.
50 (dry biomass: TOC).
testauksessa käytetty menetelmä (staattinen, semistaattinen tai läpivirtausmenetelmä)
For the formulated sediment described in paragraph 22, this corresponds to approximately 43 g sediment (dry weight) per 10 worms at a TOC content of 2,0 % of dry sediment.
testijärjestely (testiastioiden lukumäärä, materiaali ja koko, veden tilavuus astiaa kohti, sedimentin massa ja tilavuus astiaa kohti, (läpivirtaus- tai semistaattisissa menetelmissä veden vaihtumisnopeus,) ennen testiä ja sen aikana käytetty ilmastus, rinnakkaisnäytteiden määrä, matojen lukumäärä rinnakkaisnäytettä kohti altistuksen alussa, testipitoisuuksien lukumäärä, vakioimis-, tasaantumis- ja altistusvaiheiden pituus, näytteenottotiheys)
Worms of similar size should be selected (see paragraph 39).
nimelliset testipitoisuudet, tiedot kemiallista analyysia varten otetuista näytteistä sekä analyysimenetelmät, joilla testikemikaalin pitoisuudet saatiin;
It is recommended that a sub-sample of the batch or stock of worms is weighed before the test in order to estimate the mean weight.
testimenetelmän 24–25 kohdassa kuvatut sedimentin ominaisuudet ja kaikki muut tehdyt mittaukset;
The worms to be used in a test are removed from the culture (see Appendix 5 for details).
synteettisen sedimentin valmistus
Large (adult) animals that do not show signs of recent fragmentation are transferred to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water.
testiveden valmistus (jos käytetään synteettistä vettä) ja ominaisuudet (happipitoisuus, pH, johtavuus, kovuus ja kaikki muut tehdyt mittaukset) ennen testin alkua
They are subsequently synchronised as described in Appendix 5.
yksityiskohtaiset tiedot ruokinnasta, kuten ravinnon tyyppi, valmistus, määrä ja ruokinta-aikataulu
After regenerating for a period of 10 to 14 d, intact complete worms of similar size, which are actively swimming or crawling after a gentle mechanical stimulus, should be used for the test.
valon voimakkuus ja valoisan ajan määrä
If the test conditions differ from the culture conditions (e.g. in temperature, light regime, and overlying water), an acclimation phase of e.g. 24 h at temperature, light regime, and using the same overlying water as in the test should be sufficient to adapt the worms to the test conditions.
kaikkien biologisten parametrien määrityksessä käytetyt menetelmät (esimerkiksi näytteenotto ja testiorganismien tutkiminen ja punnitseminen) sekä abioottisten parametrien määrityksessä käytetyt menetelmät (esimerkiksi veden ja sedimentin laatua kuvaavat parametrit)
The adapted oligochaetes should be allocated randomly to the test vessels.
kaikkien kemiallista analyysia varten otettujen näytteiden tilavuudet ja/tai painot
Since food is added to the sediment prior to (or during) application of the test chemical, the worms are not fed additionally during the test.
tarkat tiedot kaikkien kemiallisesti analysoitavien näytteiden käsittelystä, mukaan luettuina tiedot testikemikaalin valmistuksesta, säilytyksestä, lisäämistavasta, talteenotosta ja analyysimenetelmistä (ja tarkkuudesta) sekä testikemikaalin saannista.
Light and temperature
veden laatu testiastioissa (pH-arvo, lämpötila, liuenneen hapen pitoisuus, kovuus, ammoniakkipitoisuudet ja kaikki muut tehdyt mittaukset)
The photoperiod in the culture and the test is usually 16 hours (3), (7).
orgaanisen hiilen kokonaispitoisuus (TOC), kuivapainon ja märkäpainon suhde, sedimentin pH-arvo ja kaikki muut tehdyt mittaukset
Light intensity should be kept low (e.g. 100-500 lx) to imitate natural conditions at the sediment surface, and measured at least once during the exposure period.
matojen kokonaismäärä sekä täydellisten ja epätäydellisten matojen määrä jokaisessa testikammiossa testin lopussa, jos tämä on määritetty
The temperature should be 20 °C ± 2 °C throughout the test.
jokaisessa testikammiossa testin lopussa olleiden matojen kuivapaino sekä madoista otetun osanäytteen kuivapaino testin alussa, jos tämä on mitattu
On one given measuring date the difference of temperature between test vessels should not be higher than ± 1 °C.
havaittu epätavallinen käyttäytyminen kontrolleihin verrattuna (esimerkiksi sedimentin välttäminen, ulostepellettien mahdollinen esiintyminen)
The test vessels should be placed in the test incubator or the test area in a randomised way, e.g. in order to minimise bias of reproduction due to vessel location.
todettu kuolleisuus
Aeration
myrkyllisten tutkittavien ominaisuuksien estimaatit (kuten ECx-, NOEC- ja/tai LOEC-arvo) ja niiden määrittämiseen käytetyt tilastolliset menetelmät
The overlying water of the test vessels should be gently aerated (e.g. 2 - 4 bubbles per second) via a pasteur pipette positioned approx.
kaikki nimelliset testipitoisuudet, mitatut testipitoisuudet ja tulokset kaikista analyyseistä, joilla määritettiin testikemikaalin pitoisuus testiastiassa
2 cm above the sediment surface so as to minimise perturbation of the sediment.
poikkeamat hyväksyttävyyskriteereistä.
Care should be taken that the dissolved oxygen concentration does not fall below 30 % of air saturation value (ASV).
Tulosten arviointi
Air supply should be controlled and — if necessary — adjusted at least once daily on workdays.
kohdassa 13 annettujen hyväksyttävyyskriteerien täyttyminen
Water quality measurements
Tämän liitteen luku C.27.
The following water quality parameters should be measured in the overlying water:
Surviaissääskillä tehtävä myrkyllisyystesti, käyttäen vettä tai sedimenttiä, joihin on lisätty tutkittavaa ainetta.
at least in one test vessel of each concentration level and one test vessel of the controls once per week and at the start and the end of the exposure period;
202 67 429.
if possible, temperature in the surrounding medium (ambient air or water bath) may be recorded additionally e.g. at hourly intervals;
Lumbriculus variegatus, a Benthic Oligochaete, as a Bioassay Organism. s. 205–215.
Dissolved oxygen content:
Tämän liitteen luku C.1 Akuutti myrkyllisyys kalalle.
expressed as mg/l and % ASV (air saturation value);
298 67 419, Umweltbundesamt, Berlin.
Air supply:
OECD Series on Testing and Assessment No.
should be controlled at least once daily on workdays and — if necessary — adjusted;
54, OECD, Paris, France.
Total water hardness:
BfG (Bundesanstalt für Gewässerkunde), Koblenz, Germany. s. 107–119.
at least in one replicate of the controls and one test vessel at the highest concentration at the start and the end of the exposure period;
Muuta kirjallisuutta tilastollisista menetelmistä:
expressed as mg/l CaCO3;
aine tai seos.
Total ammonia content:
Vakioimisvaihe
at least in one replicate of the controls and in one test vessel of each concentration level at the start of the exposure period, and subsequently 3 × per week;
Sopeuttamisvaihetta käytetään sedimentin mikrobien vakauttamiseen ja esimerkiksi sedimentin ainesosissa olevan ammoniakin poistamiseen;
expressed as mg/l NH4+ or NH3 or total ammonia-N.
sopeuttaminen tehdään ennen testikemikaalin lisäämistä sedimenttiin.
If measurement of water quality parameters requires removal of significant water samples from the vessels, it may be advisable to set up separate vessels for water quality measurements so as not to alter the water-to-sediment volume ratio.
Tavallisesti yläpuolinen vesi hävitetään sopeuttamisen jälkeen.
Biological observations
testikemikaalin pitoisuus sedimentissä, jonka seurauksena johonkin biologiseen parametriin kohdistuu x prosentin (esimerkiksi 50 prosentin) suuruinen vaikutus mainitun altistusajan kuluessa.
During the exposure, the test vessels should be observed in order to assess visually any behavioural differences in the worms (e.g. sediment avoidance, fecal pellets visible on the sediment surface) compared with the controls.
Tasapainottumisaika käytetään testikemikaalin jakaantumiseen kiinteään faasiin, huokosveteen ja yläpuoliseen veteen.
Observations should be recorded.
Sitä sovelletaan ennen testikemikaalin lisäämistä sedimenttiin ja ennen testiorganismien lisäämistä.
At the end of the test, each replicate is examined (additional vessels designated for chemical analyses may be excluded from examination).
Altistumisvaihe
An appropriate method should be used to recover all worms from the test vessel.
aika, jona testiorganismit altistetaan testattavalle kemikaalille.
Care should be taken that all worms are recovered uninjured.
Synteettinen sedimentti
One possible method is sieving the worms from the sediment.
luonnollisen sedimentin fyysisiä ainesosia jäljittelevistä materiaaleista valmistettu seos.
A stainless steel mesh of appropriate mesh size can be used.
LOEC (Lowest Observed Effect Concentration)
Most of the overlying water is carefully decanted, and the remaining sediment and water is agitated to result in a slurry, which can be passed through the sieve.
Pienin testikemikaalin testattu pitoisuus, jolla kemikaalin havaitaan aiheuttavan merkitsevän vaikutuksen (p < 0,05) verrattuna kontrolliin.
Using a 500 μm mesh, most of the sediment particles will pass the sieve very quickly;
Ehtona on myös, että kaikilla LOEC-pitoisuutta suuremmilla testipitoisuuksilla on oltava vähintään yhtä suuri vaikutus kuin LOEC-pitoisuudella.
however, sieving should be done quickly, in order to prevent the worms from crawling into or through the mesh.
Jos nämä kaksi ehtoa eivät täyty, on annettava tyhjentävä selitys siitä, miten LOEC-pitoisuus (ja myös NOEC-pitoisuus) on valittu.
Using a 250 μm mesh will prevent the worms from crawling into or through the mesh;
NOEC (No Observed Effect Concentration)
however, care should be taken that as little as possible of the sediment particles is retained on the mesh.
LOEC:tä pienempi testipitoisuus, jolla ei ole kontrolliin verrattuna tietyllä altistusajanjaksolla tilastollisesti merkittävää vaikutusta (todennäköisyystasolla p < 0,05).
The sieved slurry of each replicate vessel may be passed through the sieve a second time in order to ensure that all worms are recovered.
Oktanoli-vesi-jakaantumiskerroin (Kow, joskus myös Pow) Kemikaalin prosentuaalinen liukoisuus n-oktanoliin ja veteen tasapainotilassa.
An alternative method could be warming of the sediment by placing the test vessels in a water bath at 50 – 60 °C;
Edustaa kemikaalin lipofiilisyyttä (tämän liitteen A.24 luku).
the worms will leave the sediment and can be collected from the sediment surface by use of a fire-polished wide-mouth pipette.
Kow-arvoa tai sen logaritmia (log Kow) käytetään ilmaisemaan kemikaalin biokertyvyyspotentiaalia vesieliöissä.
Another alternative method could be to produce a sediment slurry and pour this slurry onto a shallow pan of suitable size.
Orgaaninen hiili-vesi-jakaantumiskerroin (Koc)
From the shallow layer of slurry the worms can be picked up by a steel needle or watchmakers' tweezers (to be used rather like a fork than forceps to avoid injuring the worms) and transferred to clean water.
sedimentin orgaanisen hiilen fraktiossa tai sen pinnalla olevan kemikaalin pitoisuuden ja vedessä tasapainotilassa olevan pitoisuuden välinen suhde.
After separating the worms from the sediment slurry, these are rinsed in test medium and counted.
Yläpuolinen vesi testiastiassa sedimentin peittävä vesi.
Independently of the method used, laboratories should demonstrate that their personnel are able to recover an average of at least 90 % of the organisms from whole sediment.
Huokosvesi on sedimentin tai maa-aineksen hiukkasten välissä olevaa vettä.
For example, a certain number of test organisms could be added to control sediment or test sediments, and recovery could be determined after 1 h (7).
Käsitelty sedimentti sedimenttiä, johon on lisätty testiaine.
The total number of living and dead individuals per replicate should be recorded and assessed.
Suositellun synteettisen veden koostumus
The following groups of worms are considered to be dead:
(muokattu tämän liitteen C.1 luvusta (1))
there is no reaction after a gentle mechanical stimulus
Kalsiumkloridiliuos
there are signs of decomposition (in combination with “a”)
Magnesiumsulfaattiliuos
number of missing worms
Natriumbikarbonaattiliuos
Additionally, the living worms can be assigned to one of three groups:
Kaliumkloridiliuos
large complete worms (adults) without regenerated body regions
Kaikkien kemikaalien on oltava analyyttistä laatua.
complete worms with regenerated, lighter-coloured body regions (i.e., with new posterior part, with new anterior part, or with both new posterior and anterior parts)
Tislatun tai deionisoidun veden johtavuus saa olla enintään 10 μScm– 1.
incomplete worms (i.e., recently fragmented worms with non-regenerated body regions)
25 ml jokaisesta liuoksesta (a–d) sekoitetaan ja kokonaistilavuudeksi valmistetaan yksi litra deionisoidulla vedellä.
These additional observations are not mandatory, but can be used for additional interpretation of the biological results (for example, a high number of worms assigned to group c may indicate a delay of reproduction or regeneration in a given treatment).
Näiden liuosten kalsium- ja magnesiumionien summa on 2,5 mmol/l.
Additionally, if any differences in appearance (e.g. lesions of the integument, oedematous body sections) are observed between treated and control worms, these should be recorded.
Ca:Mg-ionien suhde on 4:1 ja Na:K-ionien suhde on 10:1.
Immediately after counting/assessment, the living worms found in each replicate are transferred to dried, pre-weighed and labelled weigh pans (one per replicate), and killed using a drop of ethanol per weigh pan.
Tämän liuoksen happokapasiteetti KS4.3 on 0,8 mmol/l.