natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Preparation of formulated sediment
Mittaustekniikka, joka on sekä varsin herkkä että spesifi on proteiinipitoisuuksien määrittäminen entsyymivälitteisellä immunosorbenttimääritysmenetelmällä (ELISA-menetelmällä).
SEDIMENT COMPOSITION
Tällöin on käytettävä homologisia vasta-aineita (joita on muodostunut saman lajin vitellogeniinia vastaan) ja tärkeimpiä homologisia standardeja.
The composition of the formulated sediment should be as follows:
Sukupuolen määrittäminen
Sphagnum moss peat, as close to pH 5,5-6,0 as possible, no visible plant remains, finely ground (particle size ≤ 1 mm) and air dried
Sen mukaan, mitä vitellogeniinin näytteenottomenetelmää käytetään, koko kala tai jokaisesta kalasta jäljelle jäävä keskiruumis asetetaan kudoskasettiin (johon on laitettu tarvittavat merkinnät etukäteen) ja kiinnitetään asianmukaisella kiinnitysaineella sukupuolen histologista määritystä varten (valinnaisesti myös sukupuolirauhasten kehitysvaiheen arviointia varten).
4 - 5
Ohjeita kiinnittämistavoista on lisäyksessä 7 sekä OECD:n ohjeasiakirjassa, joka koskee hormonitoimintaan liittyvän histopatologian diagnosointia kalojen sukupuolirauhasissa (Guidance Document on the Diagnosis of Endocrine-Related Histopathology of Fish Gonads) (22).
> 50 % of the particles should be in the range of 50-200 μm
Käsittelyn jälkeen kalat valetaan parafiiniblokiksi.
CaCO3, pulverised, chemically pure
Kalat on asetettava parafiiniblokkiin pitkittäin.
0,05 - 0,1
Jokaiselta yksilöltä otetaan vähintään kuusi pitkittäisleikettä (paksuus 3–5 μm) frontaalitasossa, mukaan luettuina sukupuolirauhaskudosta molemmista rauhasista.
Conductivity ≤ 10 μS/cm
Näiden leikkeiden välinen etäisyys tulisi olla koirailla noin 50 μm ja naarailla 250.
PREPARATION
Koska jokaisessa blokissa on kuitenkin usein sekä koiraita että naaraita (jos yhteen blokkiin on valettu useampi kuin yksi yksilö), näistä blokeista otettujen leikkeiden väli tulisi olla noin 50 μm siihen saakka, kunnes jokaisen koiraan sukupuolirauhasista on saatu vähintään kuusi leikettä.
The suspension is conditioned for at least two days with gentle stirring at 20 ± 2 °C, to stabilise pH and establish a stable microbial component. pH is measured again and should be 6,0 ± 0,5.
Sen jälkeen leikkeiden välistä etäisyyttä voidaan suurentaa naarailla noin 250 μm:iin.
STORAGE
Munasarjojen ja kivesten histopatologia ja kehitysvaiheen määritys ei ole pakollista, mutta jos ne tutkitaan, tulokset on analysoitava tilastollisesti ja raportoitava.
The dry constituents for preparation of the artificial sediment may be stored in a dry and cool place at room temperature.
On muistettava, että joillakin kalalajeilla täysin kehittyneiden sukupuolirauhasten puuttuminen on luonnollista, ja niillä voi olla vain yksi sukupuolirauhanen (esimerkiksi medaka ja toisinaan myös seeprakala).
The formulated (wet) sediment should not be stored prior to its use in the test.
Kaikki tällaiset havainnot on kirjattava muistiin.
It should be used immediately after the 7 days conditioning period that ends its preparation.
Medaka-yksilön geneettisen sukupuolen määritys perustuu siihen, onko niillä medakan koirassukupuolen määrittävä geeni DMY vai ei.
OECD (1984), Earthworm, Acute Toxicity Test, Test Guideline No. 207, Guidelines for the Testing of Chemicals, OECD, Paris.
Tämä geeni sijaitsee Y-kromosomissa.
Meller, M., Egeler, P., Roembke, J., Schallnass, H., Nagel, R. and B. Streit (1998), Short-term toxicity of lindane, hexachlorobenzene and copper sulfate on tubificid sludgeworms (Oligochaeta) in artificial media, Ecotox.
Medakan genotyyppinen sukupuoli voidaan tunnistaa sekvensoimalla DMY-geeni DNA:sta, joka on otettu esimerkiksi peräevän tai selkäevän palasesta.
Environ.
Jos kalalla on DMY-geeni, kyseessä on XY-yksilö (koiras) fenotyypistä riippumatta, ja jos DMY-geeniä ei ole, kyseessä on XX-yksilö (naaras) fenotyypistä riippumatta (23).
Safety, 39:
Kudosten valmistelua ja PCR-menetelmää koskevia ohjeita on lisäyksessä 9.
10-20.
Kolmipiikkiyksilön geneettinen sukupuoli määritetään myös PCR-menetelmällä, jota kuvataan lisäyksessä 10.
Chemical Characteristics of an Acceptable Dilution water
Sekasukupuolisuuden esiintyminen (katso määritelmä lisäyksestä 1) on raportoitava.
CONSTITUENT
Sekundaariset sukupuoliominaisuudet
CONCENTRATIONS
Medakalla naaraiden peräevän takaosassa oleva papillimuodostelma on androgeenille herkkä.
Hardness as CaCO3
Tämän liitteen (38) luvussa C.37 on asiaankuuluvia valokuvia koiraan ja koiraaksi muuttuneen naaraan sekundaarisista sukupuoliominaisuuksista.
However, it should be noted that if there is an interaction suspected between hardness ions and the test chemical, lower hardness water should be used (and thus, Elendt Medium M4 should not be used in this situation).
On tärkeää, että ominaisuus määritetään vahvimmalla validilla tilastollisella testillä.
Guidance for test performance
Kokeellinen yksikkö on rinnakkaisnäyte, mutta rinnakkaisnäytteiden sisäinen vaihtelu on sisällytettävä tilastolliseen testaukseen.
1 mm)
Sukupuolten ja geneettisten sukupuolten jakaumat
B aperture for placing the emerged adults inside the breeding cage and to remove the laid egg ropes from the crystallisation dishes (not shown in this graphic)
Sukupuolijakaumista on analysoitava altistuksen merkitsevä vaikutus (NOEC/LOEC-lähestymistapa) Jonckheere-Terpstran testillä (trenditestillä), jos monotoninen annos-vastesuhde on todettu.
C breeding cage size minimum 30 cm length, 30 cm height and 30 cm width
Jos annos-vastesuhde on ei-monotoninen, on sovellettava kahta testiä:
Example of a test vessel:
Dunnettin testiä käytetään, jos normaalisuus ja homogeeninen varianssi on havaittu.
A pasteur pipette for air supply of the overlying water
Sen sijaan jos on havaittu heterogeeninen varianssi, käytetään Tamhane-Dunnettin testiä.
B glass lid to prevent emerged midges from escaping
Muussa tapauksessa käytetään Mann-Whitneyn tarkkaa testiä ja Bonferroni-Holm-korjausta.
C water surface layer
Vuokaavio, jossa kuvataan sukupuolijakaumaan liittyviä tilastoja, on lisäyksessä 8.
D test vessel (glass beaker minimum 600 ml)
Sukupuolijakaumat on esitettävä taulukoissa pitoisuuden mukaisina jakaumina ± keskihajonta koiraiden, naaraiden, sekasukupuolisuuden ja eriytymättömyyden osalta.
E sediment layer
Tilastollinen merkitsevyys tulisi korostaa.
Example of an exhauster for capturing adult midges (arrows indicate air flow direction):
Esimerkkejä on FSDT-testin vaiheen 2 validointiraportissa (42).
A glass tube (inner diameter ca.
Geneettinen sukupuoli on ilmoitettava prosenttiosuutena koiraiden ja naaraiden fenotyyppisen sukupuolen vaihtumisesta, sekasukupuolisuudesta ja eriytymättömyydestä.
5 mm) connected to a self-priming pump B cork of vulcanised rubber, perforated with glass tube (A).
Vitellogeniinipitoisuudet
On the inside, the opening of glass tube (A) is covered with some cotton and a gauze (mesh size ca.
Vitellogeniinipitoisuuksista on analysoitava altistumisen merkitsevä vaikutus (NOEC/LOEC-lähestymistapa).
1 mm) to prevent damaging the midges when they are sucked into the exhauster
Dunnettin testiä tulisi käyttää mieluummin kuin t-testiä ja Bonferronin korjausta.
C transparent container (plastic or glass, length ca.
Jos käytetään Bonferronin korjausta, Bonferroni-Holmin korjaus on suositeltavampi.
15 cm) for captured midges
Vitellogeniinin log-muunnokset on otettava huomioon normaalisuuden ja varianssin homogeenisuuden saavuttamiseksi.
D cork of vulcanised rubber, perforated with tube (E).
Jos pitoisuus-vaste on yhdenmukainen monotonisuuden kanssa, Jonckheere-Terpstran testi on kaikkiin edellä mainittuihin testeihin nähden ensisijainen.
To release midges into the breeding cage, cork D is released from container C
Jos käytetään t-testejä tai Dunnettin testiä, merkitsevä ANOVA F -testi ei ole etenemisen kannalta tarpeen.
E tube (plastic or glass, inner diameter ca.
Katso tarkempia tietoja lisäyksessä 8 olevasta vuokaaviosta.
8 mm) to collect adult midges from vessel
Tulokset on ilmoitettava taulukoissa pitoisuuksien keskiarvona ± keskihajonta koiraiden, naaraiden, sekasukupuolisuuden ja eriytymättömyyden osalta erikseen.
Schematic presentation of a life-cycle test:
Fenotyyppisten naaraiden ja fenotyyppisten koiraiden tilastollinen merkitsevyys on korostettava.
A 1st generation — test vessels containing a sediment-water system, eight replicates, 20 first instar larvae per vessel
Testikemikaalin varsinaiset pitoisuudet
B four test vessels for each breeding cage, A and B
Testikemikaalin todelliset pitoisuudet testiastioissa on analysoitava 34 kohdassa kuvattujen taajuuksien mukaisesti.
C breeding cages (A and B) for swarming, mating and oviposition
Tulokset on ilmoitettava taulukoissa keskimääräisenä pitoisuutena ± keskihajontana rinnakkaisnäytekohtaisesti ja myös pitoisuuskohtaisesti.
D crystallising dishes for deposition of egg ropes
Tällöin on annettava tiedot näytteiden lukumäärästä ja korostettava niitä vieraita havaintoja, jotka olivat ± 20 prosentin sisällä keskimääräisestä käsittelypitoisuudesta.
E micro plates, one well for each egg rope
Esimerkkejä on FSDT-testin vaiheen 2 validointiraportissa (42).
F 2nd generation — test vessels containing a sediment-water system, eight replicates, 20 first instar larvae per vessel
Tulosten tulkinnassa on oltava varovainen, jos testiliuoksista mitatut testikemikaalipitoisuudet ovat lähellä analyysimenetelmän havaitsemisrajaa.
C.41.
Olennaiset fysikaalis-kemialliset ominaisuudet;
FISH SEXUAL DEVELOPMENT TEST
kemialliset tunnistetiedot; tiedot esimerkiksi puhtaudesta ja testikemikaalin kvantifioinnin analyysimenetelmä.
This test method is equivalent to OECD test guideline (TG) 234 (2011).
Käytetty testimenettely (esimerkiksi läpivirtaus, puolistaattinen/ajoittaisvaihtoinen);
It is based on a decision from 1998 to develop new or update existing test methods for the screening and testing of potential endocrine disrupters.
testisuunnitelma ja testipitoisuudet, varastoliuosten valmistusmenetelmä (liitteessä), liuoksen vaihtotiheys (liuotusapuaine ja sen pitoisuus tulee ilmoittaa, jos sitä on käytetty).
The Fish Sexual Development Test (FSDT) was identified as a promising test method covering a sensitive fish life stage responsive to both oestrogen and androgen-like chemicals.
Testikemikaalin nimellispitoisuudet, mitattujen arvojen keskiarvot ja niiden keskihajonnat testiastioissa sekä menetelmä, jolla arvot laskettiin (käytetty analyysimenetelmä tulee esittää liitteessä); todisteet siitä, että mittaukset koskevat testikemikaalin pitoisuuksia todellisessa liuoksessa.
The test method went through an inter-laboratory validation exercise from 2006 to 2010, where Japanese medaka (Oryzias latipes), zebrafish (Danio rerio) and three spined stickleback (Gasterosteus aculeatus) were validated and fathead minnow (Pimephales promelas) was partially validated (41) (42) (43).
Veden laatu testiastioissa:
This protocol includes Japanese medaka, the three-spined stickleback and zebrafish.
Tarkat tiedot ruokinnasta (esimerkiksi ruoan (ruokien) tyyppi, lähde, annettu määrä ja antotiheys sekä analyysit merkittävistä kontaminanteista (esimerkiksi PCB-yhdisteet, PAH-yhdisteet ja orgaanista klooria sisältävät torjunta-aineet), mikäli tarpeen.
The protocol is in principle an enhancement of OECD TG 210 Fish, Early Life Stage Toxicity Test (1), where the exposure is continued until the fish are sexually differentiated, i.e. about 60 days post-hatch (dph) for Japanese medaka, the three-spined stickleback and zebrafish (the exposure period can be shorter or longer for other species that are validated in the future), and endocrine-sensitive endpoints are added.
Todisteet siitä, että kontrollit täyttävät validiteettikriteerit:
The combination of the two core endocrine endpoints, vitellogenin (VTG) concentration and phenotypic sex ratio enable the test to indicate the mode of action of the test chemical.
Hyväksymiskriteereitä (kontrollit) koskevat vieraat havainnot tulee korostaa.
Due to the population-relevant change in phenotypic sex ratio, the FSDT can be used for hazard and risk assessment.
Eloonjääminen on esitettävä rinnakkaisnäyte- ja pitoisuuskohtaisena prosenttiosuutena.
However, if the test is used for hazard or risk assessment, the stickleback should not be used because the validation data available so far showed that in this species the alterations of phenotypic sex ratio by the test chemicals were uncommon.
Validiteettikriteereitä koskevat vieraat havainnot tulee korostaa.
The protocol is based on fish exposed via water to chemicals during the sex labile period in which the fish is expected to be most sensitive to the effects of endocrine disrupting chemicals that interfere with sexual development.
Havainnoituja eri ominaisuuksia koskevat tulokset on esitettävä selvästi:
Two core endpoints are measured as indicators of endocrine-associated developmental aberrations, the VTG concentrations and sex ratios (proportions of sex) determined via gonad histology.
alkion eloonjääminen ja kuoriutumisen onnistuminen;
Gonadal histopathology (evaluation and staging of oocytes and spermatogenetic cells) is optional.
ulkoiset poikkeamat;
Additionally, the genetic sex is determined whenever possible (e.g. in Japanese medaka and the three spined stickleback).
pituus ja paino;
The presence of a genetic sex marker is a considerable advantage as it increases the power of the sex ratio statistics and enables the detection of individual phenotypic sex reversal.
vitellogeniinimittaukset (ng/g homogenaatissa, ng/ml plasmassa tai ng/mg maksassa);
Other apical endpoints that should be measured include hatching rate, survival, length and body weight.
sukupuolirauhasten histologia, sukupuolijakauma, tiedot geneettisestä sukupuolesta;
The test method might be adaptable to other species than those mentioned above provided that the other species undergo a validation equal to the one accomplished for Japanese medaka, the three-spined stickleback and zebrafish, that the control fish are sexually differentiated at the end of the test, that VTG levels are sufficiently high to detect significant chemical-related variations, and that sensitivity of the test system is established using endocrine active reference chemicals ((anti)-oestrogens, (anti)-androgens, aromatase inhibitors etc).
kaloilla ilmenneet epätavalliset reaktiot ja kaikki testikemikaalin aiheuttamat näkyvät vaikutukset.
In addition, any validation report(s) referring to FSDT data using other species should be reviewed by the OECD, and the validation outcome should be considered as satisfactory.
Tulokset on esitettävä keskiarvoina ± keskihajonta (SD) tai keskivirhe (SE).
Initial considerations and limitations
Tilastoista on ilmoitettava vähintään NOEC- ja LOEC-arvot ja luottamusvälit.
VTG is normally produced by the liver of female oviparous vertebrates in response to circulating endogenous oestrogen (2).
Tilastollista vuokaaviota (lisäys 8) on noudatettava.
The VTG synthesis is very limited, though detectable, in immature fish and adult male fish because they lack sufficient circulating oestrogen.
Sumpter, 1996, ’Inhibition of testicular growth in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) exposed to estrogenic alkylphenolic chemicals’, Environmental Toxicology and Chemistry 15, pp.
However, the liver is capable of synthesising and secreting VTG in response to exogenous oestrogen stimulation (3) (4) (5).
194–202.
The measurement of VTG serves for the detection of chemicals with oestrogenic, anti-oestrogenic, androgenic modes of action and chemicals that interfere with steroidogenesis as for example aromatase inhibitors.
Sumpter, J.P. and S. Jobling, 1995, ’Vitellogenesis As A Biomarker for Estrogenic Contamination of the Aquatic Environment’, Environmental Health Perspectives 103, pp.
The detection of oestrogenic chemicals is possible via the measurement of VTG induction in male fish, and it has been abundantly documented in the scientific peer-reviewed literature.
173–178.
VTG induction has also been demonstrated following exposure to aromatisable androgens (6) (7).
Hutchinson, S. Maddix, and H. Trip (1999), ’An in vivo testing system for endocrine disruptors in fish early life stages using induction of vitellogenin’, Environmental Toxicology and Chemistry 18, pp.
A reduction in the circulating level of oestrogen in females, for instance through the inhibition of the aromatase converting the endogenous androgen to the natural oestrogen 17β-oestradiol, causes a decrease in the VTG concentration, which is used to detect chemicals having aromatase inhibiting properties or steroidogenesis inhibitors more broadly (33).
337–347.
The biological relevance of the VTG response following oestrogenic/aromatase inhibition is established and has been broadly documented (8) (9).
Pedersen, and P. Bjerregaard (2001a), ’Development of an ELISA for vitellogenin in whole body homogenate of zebrafish (Danio rerio)’, Comparative Biochemistry and Physiology C-Toxicology & Pharmacology 130, pp.
However, it is possible that production of VTG in females can also be affected by general toxicity and non-endocrine toxic modes of action.
119–131.
Several measurement methods have been successfully developed and standardised for routine use to quantify VTG in blood, liver, whole body or head/tail homogenate samples collected from individual fish.
Andersen, L., P. Bjerregaard, and B. Korsgaard ( 2003), ’Vitellogenin induction and brain aromatase activity in adult male and female zebrafish exposed to endocrine disrupters’, Fish Physiology and Biochemistry 28, pp.
This is the case for zebrafish, three-spined stickleback and Japanese medaka and also the partially validated species fathead minnow;
319–321.
species-specific Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) methods using immunochemistry for the quantification of VTG are available (5) (10) (11) (12) (13) (14) (15) (16).
Petersen (2003), ’Gonad development and vitellogenin production in zebrafish (Danio rerio) exposed to ethinylestradiol and methyltestosterone’, Aquatic Toxicology 65, pp.
In Japanese medaka and zebrafish, there is a good correlation between VTG measured from blood plasma, liver and homogenate samples although homogenates tend to show slightly lower values than plasma (17) (18) (19).
397–411.
Appendix 5 provides the recommended procedures for sample collection for VTG analysis.
Tyler (2002), ’Utility of a juvenile fathead minnow screening assay for detecting (anti-)estrogenic substances’, Environmental Toxicology and Chemistry 21, pp.
Change in the phenotypic sex ratio (proportions of sex) is an endpoint reflecting sex reversal.
319–326.
In principle, oestrogens, anti-oestrogens, androgens, anti-androgens and steroidogenesis inhibiting chemicals can affect the sex ratio of developing fish (20).
Wang (2007), ’Toxicity of the aromatase inhibitor letrozole to Japanese medaka (Oryzias latipes) eggs, larvae and breeding adults’, Comparative Biochemistry and Physiology C-Toxicology & Pharmacology 145, pp.
It has been shown that this sex reversal is partly reversible in zebrafish (21) following oestrogen-like chemical exposure, whereas sex reversal following androgen-like chemical exposure is permanent (30).
533–541.
The sex is defined as female, male, intersex (both oocytes and spermatogenetic cells in one gonad) or undifferentiated, determined in individual fish via histological examination of the gonads.
LeBlanc, and C.V.Sullivan (1999), ’Fathead minnow (Pimephales promelas) vitellogenin: purification, characterization and quantitative immunoassay for the detection of estrogenic compounds’, Comparative Biochemistry and Physiology C-Toxicology & Pharmacology 123, pp.
Guidance is given in Appendix 7 and in the OECD Guidance Document on the Diagnosis of Endocrine-Related Histopathology of Fish Gonads (22).
113–125.
Genetic sex is examined via genetic markers when they exist in a given fish species.
Porcher (2002), ’Development and validation of an enzyme-linked immunosorbent assay to measure vitellogenin in the zebrafish (Danio rerio)’, Environmental Toxicology and Chemistry 21, pp.
In Japanese medaka the female XX or male XY genes can be detected by Polymerase Chain-Reaction (PCR), or the Y-linked DM domain gene (DMY) can be analysed (DMY negative or positive) as described in (23) (24).
1699–1708.
In three-spined stickleback, there is an equivalent PCR method for genetic sex determination described in Appendix 10.
Hatano, H. Mizukami, M. Yamashita, R. Sakakibara, and E. Tamiya (2002), ’Development and application of a monoclonal antibody-based sandwich ELISA for quantification of Japanese medaka (Oryzias latipes) vitellogenin’, Comparative Biochemistry and Physiology C-Toxicology & Pharmacology 132, pp.
Where the genetic sex can be individually linked to the phenotypic sex, the power of the test is improved and therefore genetic sex should be determined in species with documented genetic sex markers.
161–169.
The two core endocrine endpoints, VTG and sex ratio, can in combination demonstrate the endocrine mode of action (MOA) of the chemical (Table 1).
Bengtsson (2004), ’The juvenile three-spined stickleback (Gasterosteus aculeatus L.) as a model organism for endocrine disruption – II – kidney hypertrophy, vitellogenin and spiggin induction’, Aquatic Toxicology 70, pp.
The sex ratio is a population relevant biomarker (25) (26) and for some well defined modes of action, the FSDT results may be used for hazard and risk assessment purposes when deemed appropriate by the regulatory agency.
311–326.
These modes of action are at present oestrogens, androgens and steroidogenesis inhibitors.
Tatarazako, N., M. Koshio, H. Hori, M. Morita, and T. Iguchi (2004), ’Validation of an enzyme-linked immunosorbent assay method for vitellogenin in the medaka’, Journal of Health Science 50, pp.
Reaction of the endocrine endpoints to different modes of action of chemicals
301–308.
↑ = increasing, ↓ = decreasing, — = not investigated
Eidem, J.K., H. Kleivdal, K. Kroll, N. Denslow, R. van Aerle, C. Tyler, G. Panter, T. Hutchinson, and A. Goksoyr (2006), Development and validation of a direct homologous quantitative sandwich ELISA for fathead minnow (Pimephales promelas) vitellogenin.
References
Aquatic Toxicology, 78, pp.
Weak oestrogen agonist
202–206.
↑♀ or ↑Undiff
Ankley (2006), ’Evaluation of a commercial kit for measuring vitellogenin in the fathead minnow (Pimephales promelas)’, Ecotoxicology and Environmental Safety 64, pp.
Strong oestrogen agonist
101–105.
↑♀ or ↑Undiff, No ♂
Holbech, H., Petersen, G. I., Norman, A., Örn, S, Norrgren, L., and Bjerregaard, P (2001b), ’Suitability of zebrafish as test organism for detection of endocrine disrupting chemicals.
Oestrogen antagonist
Comparison of vitellogenin in plasma and whole body homogenate from zebrafish (Danio rerio) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)’, Nordic Council of Ministers, TemaNord 2001:597, pp.
↓♀, ↑Undiff.
48–51.
Androgen agonist
Porcher, and A. Goksoyr (2004), ’Development of quantitative vitellogenin-ELISAs for fish test species used in endocrine disruptor screening’, Analytical and Bioanalytical Chemistry 378, pp.
↑♂, No ♀
621–633.
Androgen antagonist
Orn, S., S. Yamani, and L. Norrgren (2006), ’Comparison of vitellogenin induction, sex ratio, and gonad morphology between zebrafish and Japanese medaka after exposure to 17 alpha-ethinylestradiol and 17 beta-trenbolone’, Archives of Environmental Contamination and Toxicology 51, pp.
↑Intersex
237–243.
Aromatase inhibitor
Scholz, S. and N. Kluver (2009), Effects of Endocrine Disrupters on Sexual, Gonadal Development in Fish, Sexual Development 3, pp.
The FSDT does not cover the reproductive life stage of the fish and therefore chemicals that are suspected to affect reproduction at lower concentrations than sexual development should be examined in a test that covers reproduction.
136–151.
Definitions for the purpose of this Test Method are given in Appendix 1.
Fenske, M., G. Maack, C. Schafers, and H. Segner (2005), ’An environmentally relevant concentration of estrogen induces arrest of male gonad development in zebrafish, Danio rerio’, Environmental Toxicology and Chemistry 24, pp.
The in vivo FSDT is intended to detect chemicals with androgenic and oestrogenic properties as well as anti-androgenic, anti-oestrogenic and steroidogenesis inhibiting properties.
1088–1098.