natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If such data are not available, an acute toxicity test under conditions identical with the bioaccumulation test conditions, or toxicity data on other surrogate species data may provide useful information.
yläpuolisen veden lisääminen;
An appropriate analytical method of known accuracy, precision, and sensitivity for the quantification of the substance in the test solutions, in the sediment, and in the biological material must be available, together with details of sample preparation and storage as well as material safety data sheets.
inkubointi testiolosuhteissa (tasapainottumisvaihe)
Analytical detection limits of the test substance in water, sediment, and worm tissue should also be known.
Testiorganismien valitseminen kasvatusalustalta totutteluvaihetta varten
If a radiolabelled test substance is used, the specific radioactivity (i.e. Bq mol– 1), the position of the radiolabelled atom, and the percentage of radioactivity associated with impurities must also be known.
laadun mittaus (ks. 52 kohta);
The specific radioactivity of the test substance should be as high as possible in order to detect test concentrations as low as possible (11).
rinnakkaisnäytteiden ottaminen esille vesi- ja sedimenttinäytteiden ottamista varten testiainepitoisuuden määrittämiseksi;
Information on characteristics of the sediment to be used (e.g. origin of sediment or its constituents, pH and ammonia concentration of the pore water (field sediments), organic carbon content (TOC), particle size distribution (per cent sand, silt, and clay), and per cent dry weight) should be available (6).
jaa madot satunnaistetusti testiastioihin
The test consists of two phases;
riittävien alanäytteiden säilyttäminen madoista analyyttisten tausta-arvojen määrittämistä varten;
the uptake (exposure) phase and the elimination (post-exposure) phase.
tuloilman kontrollointi, jos käytetään suljettua testijärjestelmää
During the uptake phase, worms are exposed to sediment spiked with the test substance, topped with reconstituted water and equilibrated as appropriate (11).
Ota rinnakkaisnäytteet esille näytteenottoa varten;
Groups of control worms are held under identical conditions without the test substance.
kontrolloi tuloilma, matojen käyttäytyminen, veden laatu (ks. 56 kohta);
For the elimination phase the worms are transferred to a sediment-water-system free of test substance.
ota vesi-, sedimentti- ja matonäytteet testiaineen pitoisuuden määrittämiseksi
An elimination phase is necessary to gain information on the rate at which the test substance is excreted by the test organisms (19)(25).
Tuloilman kontrollointi, matojen käyttäytyminen ja lämpötila
An elimination phase is always required unless uptake of the test substance during the exposure phase has been insignificant (e.g. there is no statistical difference between the concentration of the test substance in test and control worms).
Sama kuin päivänä 1;
If a steady state has not been reached during the uptake phase, determination of the kinetics — BAFk, uptake and elimination rate constant(s) — may be done using the results of the elimination phase.
4–6
Change of the concentration of the test substance in/on the worms is monitored throughout both phases of the test.
Sama kuin päivänä 2
During the uptake phase, measurements are made until BAF has reached a plateau or steady state.
kompensoi haihtunut vesi tarvittaessa
By default, the duration of the uptake phase should be 28 days.
8–13
Practical experience has shown that a 12 to 14-day uptake phase is sufficient for several stable, neutral organic substances to reach steady-state (6)(8)(9).
15–20
However, if the steady state is not reached within 28 d, the elimination phase is started by transferring exposed oligochaetes to vessels containing the same medium without the test substance.
22–27
The elimination phase is terminated when either the 10 % level of the concentration measured in the worms on day 28 of the uptake phase is reached, or after a maximum duration of 10 d.
veden laadun mittaus (ks. 52 kohta);
The residue level in the worms at the end of the elimination phase is reported as an additional endpoint, e.g. as Non-eliminated residues (NER).
kertymävaiheen päättäminen;
The bioaccumulation factor (BAFss) is calculated preferably both as the ratio of concentration in worms (Ca) and in the sediment (Cs) at apparent steady state, and as a kinetic bioaccumulation factor, BAFK as the ratio of the rate constant of uptake from sediment (ks) and the elimination rate constant (ke) assuming first-order kinetics.
riittävien alanäytteiden säilyttäminen madoista analyyttisten tausta-arvojen, märkä- ja kuivapainon sekä lipidipitoisuuden määrittämistä varten;
If a steady state is not reached within 28 days, calculate BAFK from the uptake rate and elimination rate constant(s).
matojen siirtäminen lopuista altistetuista rinnakkaisnäyteastioista puhdasta sedimenttiä sisältäviin astioihin eliminaatiovaihetta varten (ei suolen tyhjennystä);
For calculation see Appendix 2.
Esialtistustoimet (tasapainottumisvaihe) on ajoitettava testiaineen ominaisuuksien mukaan.
If first-order kinetics are not applicable, more complex models should be employed (Appendix 2 and reference (25).
Tarvittaessa valmistetun sedimentin on annettava sopeutua yläpuolisen veden alla 20 ± 2 °C:n lämpötilassa seitsemän päivän ajan;
If a steady state is not achieved within 28 days, the uptake phase may optionally be extended subjecting groups of exposed worms — if available — to further measurements until steady state is reached;
tässä tapauksessa sedimentti on valmistettava aikaisemmin!
in parallel, the elimination phase should nevertheless be started on day 28 of the uptake phase.
Päivänä 2 kuvatut toimet tehdään päivittäin (vähintään kaikkina arkipäivinä).
The uptake rate constant, the elimination rate constant (or constants, where more complex models are involved), the kinetic bioaccumulation factor (BAFK), and where possible, the confidence limits of each of these parameters are calculated from computerised model equations (see Appendix 2 for models).
Eliminaatiovaihe
The goodness of fit of any model can be determined from the correlation coefficient or the coefficient of determination (coefficients close to 1 indicate a good fit).
Kaikkien sedimentin ainesosien sekoittaminen;
To reduce variability in test results for organic substances with high lipophilicity, bioaccumulation factors should be expressed additionally in relation to the lipid content of the test organisms and to the organic carbon content (TOC) in the sediment (biota-sediment accumulation factor or BSAF in kg sediment TOC kg– 1 worm lipid content).
inkubointi testiolosuhteissa
This approach is based on experiences and theoretical correlations for the aquatic compartment, where — for some chemical classes — there is a clear relationship between the potential of a substance to bioaccumulate and its lipophilicity, which has been well established for fish as model organisms (14)(25)(27).
0 (kertymävaiheen päivä 28)
There is also a relationship between the lipid content of the test fish and the observed bioaccumulation of such substances.
Veden laadun mittaus (ks. 52 kohta);
For benthic organisms, similar correlations have been found (15)(16)(17)(18).
siirrä madot lopuista altistetuista rinnakkaisnäytteistä puhdasta sedimenttiä sisältäviin astioihin;
If sufficient worm tissue is available, the lipid content of the test animals may be determined on the same biological material as the one used to determine the concentration of the test substance.
ota rinnakkaisnäytteistä 4–6 tunnin kuluttua vesi-, sedimentti- ja matonäytteet testiaineen pitoisuuden määrittämiseksi;
However, it is practical to use acclimatised control animals at least at start or — preferably — at the end of the uptake phase to measure the lipid content, which can then be used to normalise the BAF values.
kontrolloi tuloilma, matojen käyttäytyminen, veden laatu (ks. 52 kohta);
For a test to be valid the following conditions apply:
8–9
The cumulative mortality of the worms (controls and treatments) until the end of the test should not exceed 20 % of the initial number.
eliminaatiovaiheen päättäminen;
In addition, it should be demonstrated that the worms burrow in the sediment to allow for maximum exposure.
vesi-, sedimentti- ja matonäytteiden ottaminen liuotinkontrolleista;
For details see paragraph 28.
näytteenotto imeytysliuoksista, jos käytössä.
Several species of aquatic oligochaetes can be used for the test.
Sedimentti valmistellaan ennen eliminaatiovaiheen alkamista samoin kuin ennen kertymävaihetta.
Toxicity tests (96 h, in water only) should be conducted at regular intervals (e.g. every month) with a reference toxicant such as potassium chloride (KCl) or copper sulfate (CuSO4) (1) to demonstrate the health conditions of the test animals (1)(6).
< 2 μg/l
If reference toxicity tests are not conducted at regular intervals, the batch of organisms to be used in a sediment bioaccumulation test should be checked using a reference toxicant.
SUOSITELLUN SYNTEETTISEN VEDEN KOOSTUMUS
Measurement of the lipid content might also provide useful information on the condition of the animals.
Tämän liuoksen kalsium- ja magnesiumionien summa on 2,5 mmol/l.
Culture of the test organisms
Hyväksyttävän laimennusveden pH:n tulisi olla 6–9.
In order to have a sufficient number of worms for conducting bioaccumulation tests the worms may have to be kept in permanent single-species laboratory culture.
Keinosedimentti – valmistus- ja säilytyssuosituksia
Laboratory culture methods for the selected test species are summarised in Appendix 6.
Toisin kuin testimenetelmän C.8 (40) vaatimuksissa, keinosedimentin turvepitoisuudeksi suositellaan 10 prosentin sijasta kahta prosenttia kuivapainosta, jotta se vastaisi luonnollisten sedimenttien orgaanisen aineksen pitoisuutta, joka on pieni tai kohtalainen (58).
For details see references (8)(9)(10)(18)(28)(29)(30)(31)(32).
Keinosedimentin kuivien ainesosien prosenttiosuudet:
Care should be taken to avoid the use of materials for all parts of the equipment that can dissolve, absorb test substances or leach other substances and have an adverse effect on the test animals.
Prosenttia kuivasta sedimentistä
Standard rectangular or cylindrical chambers, made of chemically inert material and of suitable capacity in compliance with the loading rate, i.e. the number of test worms can be used.
Ravinto
The use of soft plastic tubing for administering water or air should be avoided.
Folia urticae, Urtica sp.:n (nokkosen) hienoksi jauhetut lehdet (hiukkaskoko ≤ 0,5 mm) tai seos, joka koostuu Urtica sp.:n jauhetuista lehdistä ja alfaselluloosasta (1: 1);
Polytetrafluoroethylene, stainless steel and/or glass should be used for any equipment having contact with the test media.
lääkestandardien ja elintarvikkeita koskevien vaatimusten mukaisesti;
For substances with high adsorption coefficients, such as synthetic pyrethroids, silanised glass may be required.
kuivan sedimentin lisäksi
In these situations the equipment will have to be discarded after use (5).
Jos ammoniakkipitoisuuden suurentuminen on odotettavissa (esimerkiksi jos testiaineen tiedetään estävän nitrifikaatiota), voi olla hyödyllistä korvata puolet typpipitoisesta nokkosjauheesta selluloosalla (ts. α-selluloosajauhe, hiukkaskoko ≤ 0,5 mm).
For radiolabelled test substances, and for volatile substances, care should be taken to avoid stripping and the escape of stripped test substance.
Turve ilmakuivataan ja jauhetaan hienoksi jauheeksi (raekoko ≤ 0,5 mm, ei näkyviä kasvijäämiä).
Traps (e.g. glass gas washing bottles) containing suitable absorbents to retain any residues evaporating from the test chambers should be employed (11).
Tarvittavasta määrästä turvejauhetta valmistetaan suspensio käyttämällä sitä määrää deionisoitua vettä, joka on lisättävä kuivaan sedimenttiin (on havaittu, että kun veden tilavuus on 11,5 kertaa turpeen kuivapaino, muodostuu sekoitettava turveliete (8)) tehokasta homogenisointilaitetta käyttäen.
The overlying water must be of a quality that will allow the survival of the test species for the duration of the acclimation and test periods without them showing any abnormal appearance or behaviour.
Tämän suspension pH säädetään CaCO3:lla välille 5,5 ± 0,5.
Reconstituted water according to test method C.1 (25) is recommended for use as overlying water in the tests as well as in the laboratory cultures of the worms.
Suspension annetaan vakioitua vähintään kahden päivän ajan sekoittamalla sitä varovasti lämpötilassa 20 ± 2 °C, jotta pH stabiloituu ja saadaan stabiili mikrobikomponentti.
It has been demonstrated that several test species can survive, grow, and reproduce in this water (8), and maximum standardisation of test and culture conditions is provided.
Sen jälkeen pH mitataan uudelleen ja säädetään tarvittaessa CaCO3:lla välille 6,0 ± 0,5.
The water should be characterised at least by pH, conductivity and hardness.
Sen jälkeen suspensioon sekoitetaan kaikki muut kuivat ainesosat; tässä on otettava huomioon testiaineen lisäämiseen käytetty osuus.
Analysis of the water for micro-pollutants prior to use might provide useful information (Appendix 4).
Seokseen lisätään loput deionisoidusta vedestä, jotta saadaan aikaan homogeeninen sedimentti.
The water should be of constant quality during the period of a test.
Sen jälkeen pH mitataan uudelleen ja säädetään tarvittaessa CaCO3:lla välille 6,5 ± 7,5.
The pH of the overlying water should be between 6 and 9.
Jos ammoniakin muodostuminen on odotettavissa, keinosedimenttiä voidaan sopeuttaa seitsemän päivän ajan samoissa olosuhteissa, jotka vallitsevat varsinaisessa testissä (ts. sedimentin ja veden suhde 1:4, sedimenttikerroksen korkeus sama kuin testiastioissa), ennen kuin siihen lisätään testiainetta.
The total hardness should be between 90 and 400 mg CaCO3 per litre at the start of the test (7).
Siihen on siis lisättävä ilmastettua vettä.
Ranges for pH and hardness in the mentioned reconstituted water are given in test method C.1 (25).
Sen jälkeen sedimenttiin sekoitetaan kvartsihiekkaa, johon on lisätty testiainetta jokaisen käsittelytason mukaisesti.
If there is an interaction suspected between hardness ions and the test substance, lower hardness water should be used.
Sedimentti jaetaan rinnakkaisnäytetestiastioihin, joihin lisätään testivesi (ts. sedimentin ja veden suhde 1:4, sedimenttikerroksen korkeus sama kuin testiastioissa).
Appendix 4 summarises additional criteria of an acceptable dilution water according to OECD TG 210 (34).
Valittu ravinnonlähde on lisättävä astioihin ennen kuin sedimenttiin lisätään testiaine tai sen aikana.
The sediment must be of a quality that will allow the survival and preferably the reproduction of the test organisms for the duration of the acclimation and test periods without them showing any abnormal appearance or behaviour.
Sen varmistamiseksi, että ravinto on riittävästi kosketuksissa testiaineeseen, ravinto tulisi sekoittaa sedimenttiin viimeistään sinä päivänä, kun testiaine lisätään sedimenttiin.
The worms should burrow into the sediment.
Poikkeuksia voidaan tehdä, jos tasapainottumisajan pituus johtaa ravinnon liialliseen mikrobiaaliseen hajoamiseen ennen testiorganismien lisäämistä.
Burrowing behaviour can have an influence on the exposure, and consequently on the BAF.
Sedimentistä otetaan näytteitä, joista määritetään kuivapaino ja orgaanisen hiilen kokonaispitoisuus (ts. kolme näytettä testiainetta sisältävästä sedimentistä tai kontrollisedimentistä).
Therefore, sediment avoidance or burrowing behaviour of the test organisms should be recorded, where turbidity of the overlying water allows such observations.
Ainesosien (turve, hiekka, kaoliini) kuivapaino on ilmoitettava grammoina ja prosentteina kokonaiskuivapainosta.
The worms (control and treatments) should burrow in the sediment within a period of 24 h after addition to the test vessels.
Sedimentin valmistamisen aikana kuiviin ainesosiin lisättävän veden tilavuus on myös ilmoitettava prosentteina kokonaiskuivapainosta (esimerkiksi kun kuivapaino on 100 prosenttia ja veden tilavuus 46 prosenttia, 1000 gramman kuivapainosta yhteensä 460 ml vettä, mistä tulokseksi saadaan 1460 grammaa märkää sedimenttiä).
If permanent burrowing failure or sediment avoidance are observed (e.g. more than 20 % over more than half of the uptake phase), this indicates that either the test conditions are not appropriate, or the test organisms are not healthy, or that the concentration of the test substance elicits this behaviour.
Keinosedimentin kuivia ainesosia voi säilyttää kuivassa ja viileässä paikassa huoneenlämmössä.
In such a case the test should be stopped and repeated at improved conditions.
Valmistettu märkä sedimentti voidaan säilyttää (käytettäväksi myöhemmin vain laboratorioviljelyssä) 4 ± 2 °C:n lämpötilassa pimeässä 2–4 viikon ajan valmistuspäivästä alkaen (8).
Additional information on sediment ingestion can be obtained by using methods described in (35)(36), which specify sediment ingestion or particle selection in the test organisms.
Sedimentti, johon on lisätty testiaine, on käytettävä heti, ellei ole tiedossa, että tiettyä sedimenttiä voidaan säilyttää ilman, että se vaikuttaa testiaineen myrkyllisyyteen ja biologiseen saatavuuteen.
If observable, at least the presence or absence of fecal pellets on the sediment surface, which indicate sediment ingestion by the worms, should be recorded and considered for the interpretation of the test results with respect to exposure pathways.
Näytteitä sedimentistä, johon testiainetta on lisätty, voidaan säilyttää kyseisen testiaineen suositelluissa säilytysolosuhteissa analyysiin saakka.
An artificial sediment based on the artificial soil described in test method C.8 (40) is recommended for use in both the tests and the laboratory cultures of the worms (Appendix 5), since natural sediments of appropriate quality may not be available throughout the year.
Biokertyvyystestaukseen suositeltavat harvasukasmatolajit
In addition, indigenous organisms as well as the possible presence of micropollutants in natural sediments might influence the test.
Tubifex tubifex (MÜLLER), Tubificidae, Oligochaeta
Several test species can survive, grow, and reproduce in the artificial sediment (8).
Harvasukasmatoihin kuuluva torvimato (Tubificidae, Oligochaeta) Tubifex tubifex (Müller) elää makean veden sedimenteissä rakentamissaan putkissa, jotka on pinnoitettu limalla.
The artificial sediment should be characterised at least by origin of the constituents, grain size distribution (percent sand, silt, and clay), organic carbon content (TOC), water content, and pH.
Madot elävät näissä putkissa pää alaspäin ja nielevät sedimenttihiukkasia hyödyntäen niissä olevia mikro-organismeja ja orgaanista jätettä.
Measurement of redox potential is optional.
Madon takapää heilahtelee yleensä yläpuolisessa vedessä hengittämistä varten.
However, natural sediments from unpolluted sites may serve as test and/or culture sediment (1).
Vaikka tämä laji elää monenlaisissa sedimenttityypeissä kaikkialla pohjoisella pallonpuoliskolla, Tubifex tubifex suosii melko hienojakoista ravintoa (59).
Natural sediments should be characterised at least by origin (collection site), pH and ammonia of the pore water, organic carbon content (TOC), particle size distribution (percent sand, silt, and clay), and percent water content (6).
Tämän lajin soveltuvuutta ympäristömyrkyllisyyden testaukseen kuvataan esimerkiksi lähdeviitteissä (8) (29) (31) (39) (60) (62) (63).
It is recommended that, before it is spiked with the test substance, the natural sediment be conditioned for seven days under the same conditions which prevail in the subsequent test, if ammonia development is expected.
Jotta Tubifex tubifex -yksilöitä olisi riittävästi biokertyvyystestien tekemistä varten, matoja on kasvatettava laboratoriossa jatkuvasti.
Analysis of the sediment or its constituents for micro-pollutants prior to use might provide useful information.
Testimenetelmässä C.1 T. tubifexin kasvattamiseen suositellaan järjestelmää, joka koostuu keinomaahan perustuvasta keinosedimentistä ja synteettisestä vedestä (8).
Handling of natural sediments prior to their use in the laboratory is described in (1)(6)(44).
Jokaiseen kasvatussäiliöön laitetaan kerros lisäyksessä 5 kuvatun mukaisesti valmistettua märkää keinosedimenttiä.
The preparation of the artificial sediment is described in Appendix 5.
Sedimenttikerroksen pitäisi olla niin syvä, että matojen luonnollinen kaivautumiskäyttäytyminen on mahdollista (vähimmäissyvyys T. tubifexille 2 cm).
The storage of natural sediments in the laboratory should be as short as possible.
Vesikerrosta ilmastetaan kevyesti (noin kaksi kuplaa sekunnissa 0,45 μm:n suodattimella suodatetulla ilmalla) Pasteur-pipetillä, joka sijaitsee noin kahden senttimetrin päässä sedimentin pinnasta.
U.S.
Suositeltu kasvatuslämpötila on 20 ± 2 °C.
EPA (6) recommends a maximum storage period of 8 weeks at 4 ± 2 °C in the dark.
Kasvatusjärjestelmään lisätään matoja siten, että enimmäistäyttöaste on 20000 yksilöä neliömetrillä sedimentin pintaa.
There should be no headspace above the sediment in the storage containers.
Suurempi täyttöaste saattaa hidastaa kasvua ja lisääntymistä (43).
Recommendations for the storage of artificial sediment are given in Appendix 5.
Keinosedimenttiin perustuvissa kasvatusjärjestelmissä matoja on ruokittava.
Application of the test substance
Ravintona voidaan käyttää hienojakoista kalanruokaa, esimerkiksi TetraMin®-valmistetta voidaan käyttää lisäravinteena (8);
The sediment is spiked with the test substance.
Klerks 1994, henkilökohtainen tiedonanto.
The spiking procedure involves coating of one or more of the sediment constituents with the test substance.
Ruokintatiheyden tulee olla sellainen, että madot kasvavat ja lisääntyvät riittävästi ja että ammoniakin muodostuminen ja sienten kasvaminen kasvatusjärjestelmässä pysyy mahdollisimman pienenä.
For example, the quartz sand, or a portion thereof (e.g. 10 g of quartz sand per test vessel), can be soaked with a solution of the test substance in a suitable solvent, which is then slowly evaporated to dryness.
Ruokaa voidaan annostella kahdesti viikossa (esimerkiksi 0,6–0,8 mg sedimentin pinnan neliösenttimetriä kohti).
The coated fraction can then be mixed into the wet sediment.
Käytännön kokemus on osoittanut, että deionisoituun veteen suspendoidun ja homogenisoidun ruoan antaminen saattaa edistää ruoan jakautumista tasaisesti sedimentin pinnalle kasvatussäiliöissä.
The amount of sand provided by the test-substance-and-sand mixture has to be taken into account when preparing the sediment, i.e. the sediment should thus be prepared with less sand (6).
Ammoniakin kertymisen välttämiseksi yläpuolinen vesi on vaihdettava läpivirtausjärjestelmää käyttäen tai manuaalisesti vähintään kerran viikossa.
With a natural sediment, the test substance may be added by spiking a dried portion of the sediment as described above for the artificial sediment, or by stirring the test substance into the wet sediment, with subsequent evaporating of any solubilising agent used.
Varastokasvatusjärjestelmissä sedimentti on vaihdettava kolmen kuukauden välein.
Suitable solvents for spiking wet sediment are ethanol, methanol, ethylene glycol monomethyl ether, ethylene glycol dimethyl ether, dimethylformamide and triethylene glycol (5)(34).
Kasvatusjärjestelmästä voidaan ottaa näytteitä madoista siivilöimällä kasvatussedimentti 1 mm:n siivilällä, jos vain täysikasvuisia matoja tarvitaan.
Toxicity and volatility of the solvent and the solubility of the test substance in the chosen solvent should be the main criteria for the selection of a suitable solubilising agent.
Munakoteloiden säilyttämiseksi 0,5 mm:n siivilä on sopiva ja nuorten matojen säilyttämiseksi 0,25 mm:n siivilä.
Additional guidance on spiking procedures is given in Environment Canada (1995)(41).
Siivilät voidaan laittaa synteettiseen veteen, kun sedimentti on valunut siivilän läpi.
Care should be taken to ensure that the test substance added to sediment is thoroughly and evenly distributed within the sediment.
Madot lähtevät siivilästä, ja ne voidaan poimia vedestä käyttämällä pehmeäkärkisiä pinsettejä tai pipettiä, jonka reunat on liekkikiillotettu.