natgillin/translations-raw huggingface dataset:
equipment for sealing the plastic bags;
Sekoitetaan digestionestettä, kunnes jää on sulanut.
rennilase, strength 1:150000 Soxhlet units per gram.
Annetaan jäähtyneen nesteen seistä vähintään kolme minuuttia, jotta toukat ehtivät kiertyä.
Collecting of specimens
Asennetaan suodatinpidikkeellä ja suodatinlevyllä varustettu Gelman-suppilo suodatinpumppuun yhdistettyyn erlenmeyerpulloon.
Complete pools (100 samples at a time)
Kaadetaan digestioneste Gelman-suppiloon ja suodatetaan.
See Section A(3)(II)(a).
Digestionesteen valumista suodattimen läpi voidaan suodatuksen lopulla avustaa suodatinpumpun imulla.
Smaller pools (less than 100 samples)
Imu on lopetettava ennen suodattimen kuivumista eli kun suppilossa on jäljellä 2–5 ml nestettä.
Recovery of larvae by filtration
Rennilaasiliuos valmistetaan lisäämällä 2 g rennilaasia 100 ml:aan vesijohtovettä.
In the case of smaller pools, the amount of ice must be reduced correspondingly.
Saumataan muovipussi kahdesti ja pannaan se Stomacher-sekoittimeen sisä- ja ulkopussin väliin.
The digestion fluid is stirred until the ice has melted.
Annetaan sekoittimen käydä kolme minuuttia sekä täyden että vajaan erän ollessa kyseessä.
The chilled digestion fluid is then left for at least three minutes to let the larvae coil.
Kolmen minuutin kuluttua poistetaan muovipussi suodattimineen ja rennilaasiliuoksineen sekoittimesta ja avataan saksilla.
The Gelman funnel, fitted with a filter holder and filter disc, is mounted on an Erlenmeyer flask connected to a filter pump.
Kaadetaan nestesisältö toukkienlaskukammioon tai petrimaljaan.
The digestion fluid is poured into the Gelman funnel and filtered.
Huuhdellaan pussi 5–10 ml:lla vettä ja lisätään huuhde sitten toukkienlaskukammioon trikinoskooppitutkimusta varten tai petrimaljaan stereomikroskooppitutkimusta varten.
Towards the end of filtration, the digestion fluid can be helped to pass through the filter by applying suction with the filter pump.
Näyteliuokset on tutkittava heti niiden valmistuttua.
Suction must cease before the filter becomes dry, i.e. when 2 to 5 ml of fluid is left in the funnel.
Huomautus:
Once all the digestion fluid has been filtered, the filter disc is removed and placed in an 80 ml capacity plastic bag, together with 15 to 20 ml of rennilase solution.
Ainoastaan täysin puhtaita suodatinlevyjä saa käyttää.
The rennilase solution is made by adding 2 g of rennilase to 100 ml of tap water.
Likaisten levyjen ei saa antaa kuivua.
The plastic bag is sealed twice and placed between the inner and outer bags in the Stomacher.
Suodatinlevyt voidaan puhdistaa jättämällä ne rennilaasiliuokseen yön ajaksi.
The Stomacher is allowed to pound for three minutes, e.g. while it is working on a complete or incomplete pool.
Ennen käyttöä ne on huuhdeltava puhtaalla rennilaasiliuoksella sekoittimen avulla.
After three minutes, the plastic bag, complete with filter disc and rennilase solution, is removed from the Stomacher and opened with scissors.
C. Automaattinen digestiomenetelmä enintään 35 g:n painoisia yhdistettyjä näytteitä varten
The liquid contents are poured into a larval counting basin or petri dish.
Trichomatic 35® -sekoitin, jossa on suodatin.
The bag is washed out with 5 to 10 ml of water, which is then added to the larval counting basin for examination by trichinoscope or to the petri dish for examination by stereo-microscope.
Suolahappoliuosta, jonka väkevyys on 8,5 ± 0,5 painoprosenttia.
Digests must be examined as soon as they are ready.
Läpinäkyviä polykarbonaattikalvosuodattimia, joiden läpimitta on 50 mm ja joiden huokosten koko on 14 mikronia.
Note:
Pepsiiniä, jonka vahvuus on 1:10000 NF (US National Formulary) eli 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) eli 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), tai stabiloitua nestemäistä pepsiiniä vähintään 660 Euroopan farmakopean yksikköä/ml.
Filter discs must never be used when not completely clean.
Anatomiset atulat/pinsetit.
Unclean discs must never be allowed to dry out.
Mikroskoopin objektilaseja, joiden leveys on vähintään 5 cm, tai petrimaljoja, joiden läpimitta on vähintään 6 cm ja joiden pohjiin on merkitty terävällä esineellä 10 × 10 mm:n ruudutus.
Filter discs can be cleaned by leaving them in rennilase solution overnight.
Transmittoidulla valolla varustettu (stereo)mikroskooppi (joka suurentaa 15–60-kertaisesti) tai vaakatasopöydällä varustettu trikinoskooppi.
Before use, they must be washed in fresh rennilase solution using the Stomacher.
Nestemäisen jätteen keräämisastia.
C. Automatic digestion method for pooled samples of up to 35 g
I Digestio
A Trichomatic 35® blender with filtration insert.
Asetetaan suodatin sekoittimeen, liitetään jäteletku paikoilleen ja johdetaan se jäteastiaan.
Hydrochloric acid 8,5 ± 0,5 % weight.
Kun sekoitin käynnistetään, lämpeneminen alkaa.
Transparent polycarbonate membrane filters with a diameter of 50 mm and a pore size of 14 microns.
Ennen käynnistystä reaktiokammion alapuolella sijaitseva pohjaventtiili on avattava ja suljettava.
Pepsin, strength 1:10000 NF (US National Formulary) corresponding to 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), or stabilised liquid pepsin with minimum 660 European Pharmacopoeia units/ml.
Lisätään enintään 35 näytettä, joista kukin painaa noin 1 g (lämpötila 25–30 °C) ja jotka on otettu yksittäisistä näytteistä 2 kohdan mukaisesti.
Tweezers with a flat tip.
Varmistetaan, että suurimmat jännepalat on poistettu, sillä ne saattavat tarttua kalvosuodattimeen.
A number of microscope slides with a side-length of at least 5 cm or a number of petri dishes at least 6 cm in diameter, marked on their undersides into 10 × 10 mm square areas using a pointed instrument.
Kaadetaan sekoittimeen yhdistettyyn nestekammioon vettä (noin 400 ml).
A (stereo-)microscope with transmitted light (magnification 15 to 60 times) or a trichinoscope with a horizontal table.
Kaadetaan noin 30 ml (8,5-prosenttista) suolahappoliuosta pienempään yhdistettyyn nestekammioon.
A bin for collection of waste liquids.
Asetetaan kalvosuodatin karkean suodattimen alle suodatinlaitteeseen.
I. Digestion procedure
Lisätään lopuksi 7 g pepsiiniä tai 21 ml nestemäistä pepsiiniä.
Place the blender with the filtration insert, connect the waste tube and place the tube so it drains into the waste bin.
Suljetaan reaktio- ja nestekammioiden kannet.
When the blender is switched on, heating will start.
Valitaan digestioaika:
Before this is done, the bottom valve located below the reaction chamber must be opened and closed.
lyhyt digestioaika (5 minuuttia) lihasioista saaduille näytteille ja pidennetty digestioaika (8 minuuttia) muille näytteille.
Up to 35 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 °C) taken from each individual sample in accordance with point 2 are then added.
Kun sekoitin käynnistetään, liukeneminen ja digestio alkavat automaattisesti, minkä jälkeen tapahtuu suodatus.
Ensure that larger pieces of tendons are removed as they may clot the membrane filter.
Prosessi kestää 10–13 minuuttia ja päättyy automaattisesti.
Pour water up to the edge of a liquid chamber connected to the blender (approximately 400 ml).
Avataan reaktiokammion kansi, kun kammio on todettu tyhjäksi.
Pour about 30 ml hydrochloric acid (8,5 %) to the edge of the smaller, connected liquid chamber.
Jos kammiossa on vaahtoa tai digestionestejäämiä, toistetaan menettely V kohdan mukaisesti.
Place a membrane filter under the coarse filter in the filter holder in the filter insert.
II Toukkien osoittaminen
Lastly, add 7 g of pepsin or 21 ml liquid pepsin.
Poistetaan suodatinpidike ja siirretään kalvosuodatin objektilasille tai petrimaljaan.
Close the lids of the reaction and liquid chambers.
Tutkitaan kalvosuodatin (stereo)mikroskoopilla tai trikinoskoopilla.
Select the period of digestion.
III Välineistön puhdistus
A short digestion period (5 minutes) must be set for pigs at the normal slaughter age and a longer time (8 minutes) for other samples.
Jos saatu tulos on positiivinen, täytetään kaksi kolmasosaa sekoittimen reaktiokammiosta kiehuvalla vedellä.
When the start button on the blender is turned on, the process of dispensing and digestion starts automatically, followed by filtration.
Kaadetaan tavallista vesijohtovettä yhdistävään astiaan, kunnes alempi sensori peittyy.
After 10 to 13 minutes the process is completed and stops automatically.
Sen jälkeen käynnistetään automaattinen puhdistusohjelma.
Open the lid of the reaction chamber after checking that the chamber is empty.
Puhdistetaan suodatinpidike ja muu välineistö esimerkiksi formaliinilla.
If there is foam or any digestion liquid remaining in the chamber, repeat the procedure in accordance with Section V.
Työpäivän päätteeksi täytetään sekoittimen nestekammio vedellä ja käynnistetään tavallinen ohjelma.
Recovery of larvae
IV Kalvosuodattimien käyttö
Remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish.
Kutakin polykarbonaattikalvosuodatinta saa käyttää enintään viisi kertaa.
Examine the membrane filter using a (stereo-)microscope or a trichinoscope.
Suodatin on käännettävä jokaisen käyttökerran jälkeen.
Cleaning equipment
Lisäksi suodatin on tarkastettava jokaisen käytön jälkeen vaurioiden varalta.
Where the result is positive, fill the blender reaction chamber with boiling water until it is two-thirds full.
Vaurioitunut suodatin on käyttökelvoton.
Ordinary tap water is poured into the connecting liquid chamber until it covers the lower sensor.
V Käytettävä menetelmä, kun digestio on puutteellinen eikä suodatusta voida tehdä
Automatic cleaning then takes place.
Kun sekoitin on käynyt läpi I kohdan mukaisen automaattisen ohjelman, avataan reaktiokammion kansi ja tarkastetaan, onko kammioon jäänyt vaahtoa tai nestejäämiä.
Decontaminate the filter-holder and any other equipment, e.g. using formol.
Jos on, menetellään seuraavasti:
After work is completed for the day, fill the blender liquid chamber with water and put it through a standard cycle.
Suljetaan reaktiokammion alapuolella oleva pohjaventtiili.
Use of membrane filters
Poistetaan suodatinpidike ja siirretään kalvosuodatin objektilasille tai petrimaljaan.
Each polycarbonate membrane filter may be used no more than five times.
Asetetaan uusi kalvosuodatin suodatinpidikkeeseen, joka kiinnitetään paikoilleen.
The filter is to be turned between each use.
Täytetään sekoittimen nestekammio vedellä, kunnes alempi sensori peittyy.
In addition, the filter must be checked after each use for any damage which would make it unsuitable for further use.
Käynnistetään automaattinen puhdistusohjelma.
V. Method to be applied when digestion is incomplete and filtration cannot be carried out
Puhdistusohjelman päätyttyä avataan reaktiokammion kansi ja tarkastetaan, onko kammiossa nestejäämiä.
Once the blender has been put through an automatic cycle in accordance with Section I, open the lid of the reaction chamber and check whether there is foam or any liquid remaining in the chamber.
Jos kammio on tyhjä, irrotetaan suodatinpidike ja siirretään kalvosuodatin pinseteillä objektilasille tai petrimaljaan.
If this is the case, proceed as follows:
Tutkitaan molemmat kalvosuodattimet II kohdan mukaisesti.
close the bottom valve below the reaction chamber;
Ellei suodattimia pystytä tutkimaan, toistetaan koko digestio pidennettynä I kohdan mukaisesti.
remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish;
D. Magneettisekoitinmenetelmä yhdistettyjen näytteiden digestiota varten/suodatineristysmenetelmä ja toukkien osoittaminen lateksi-agglutinaatiotestillä
put a new membrane filter in the filter holder and attach the filter holder;
Tätä menetelmää pidetään vastaavana ainoastaan kotieläimenä pidettävien sikojen lihan testausta varten.
fill the blender liquid chamber with water until the lower sensor is covered;
Teräksinen suodatinlaite 20 μm:n verkkosuodattimia varten ja terässuppilo.
carry out the automatic cleaning cycle;
Tyhjiöpumppu.
after the cleaning cycle has ended, open the lid of the reaction chamber and check whether any liquid remains;
Metalli- tai muoviastioita, joiden vetoisuus on 10–15 l, digestionesteen keräämiseen.
if the chamber is empty, remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish with tweezers;
Kaksisuuntainen kiertosekoittaja.
examine the two membrane filters in accordance with Section II.
Erikokoisia pipettejä (1, 10, 25 ml), mikropipettejä lateksi-agglutinaatiotestien valmistajan ohjeiden mukaisesti ja pipetinpidikkeitä.
If the filters cannot be examined, repeat the entire digestion process with a longer digestion time in accordance with Section I.
Nailonisia 20 μm:n verkkosuodattimia, joiden halkaisija sopii suodatinjärjestelmään.
D. Magnetic stirrer method for pooled sample digestion/'on filter isolation' and larva detection by a latex agglutination test
Muoviset tai teräksiset 10–15 cm:n pinsetit/atulat.
This method is only considered equivalent for the testing of meat of domestic swine.
Kartiomaisia 15 ml:n pikkupulloja.
Steel filtration apparatus for 20 μm mesh filters with a steel funnel.
Survin, jossa on kartiomainen teflon- tai teräskärki, joka sopii kartiomaisiin pulloihin.
Vacuum pump.
Koodinumerolla EURLP_D_001/2011 validoidun Trichin-L-antigeenitestin lateksi-agglutinaatiokortit.
Metal or plastic tanks, capacity 10 to 15 litres, to collect the digestive juice.
Koodinumerolla EURLP_D_001/2011 validoidun Trichin-L-antigeenitestin näytteen laimennuspuskuriliuosta.
A 3D gyratory rocker.
Koodinumerolla EURLP_D_001/2011 validoidun Trichin-L-antigeenitestin puskuriliuosta, jota on täydennetty säilytysaineeella (negatiivinen kontrolli).
Pipettes of different sizes (1, 10 and 25 ml), micropipettes according to the latex agglutination manufacturer's instructions and pipette holders.
Koodinumerolla EURLP_D_001/2011 validoidun Trichin-L-antigeenitestin puskuriliuosta, jota on täydennetty Trichinella spiralis -antigeeneillä ja säilytysaineeella (positiivinen kontrolli).
20 microns nylon mesh filters of a diameter that fits with the filtration system.
Koodinumerolla EURLP_D_001/2011 validoidun Trichin-L-antigeenitestin säilytysaineella täydennettyä puskuriliuosta, jossa on vasta-aineilla päällystettyjä polystyreenihiukkasia (lateksihelmet).
Plastic or steel forceps of 10 to 15 cm.
aa) Kertakäyttöpuikkoja.
Conical vials of 15 ml.
I Täydet erät (100 g näytettä kerrallaan)
A pestle with a Teflon or steel conical tip to fit in the conical vials.
Kaadetaan 16 ± 0,5 mL 25-prosenttista suolahappoa (0,2 % lopullinen pitoisuus) 3 l:n vetoiseen lasimaljaan, jossa on 2,0 l ± 200 mL 46–48 °C:n lämpötilaan lämmitettyä vesijohtovettä.
Latex agglutination cards of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Lisätään 10 ± 1 g pepsiiniä jauheena (tai 30 ± 3 ml pepsiiniä nesteenä).
Buffer solution with preservative (sample diluent) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Hienonnetaan sekoittimessa 100–115 g näytteitä, jotka on otettu 2 kohdan mukaisesti, ja 150 ml ± 15 ml esilämmitettyä digestiopuskuria.
Buffer supplemented with preservative (negative control) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Nailoninen 20 μm:n verkkosuodatin asetetaan suodatintelineeseen.
Buffer supplemented with Trichinella spiralis antigens and preservative (positive control) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Kartiomainen teräksinen suodatinsuppilo kiinnitetään telineeseen ja suppiloon sijoitetaan 180 μm:n terässiivilä.
Buffer with polystyrene particles coated with antibodies supplemented with preservative (latex beads) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Tyhjiöpumppu kytketään suodatintelineeseen ja metalli- tai muoviastiaan digestionesteen keräämiseksi.
(aa) Disposable sticks.
Lopetetaan sekoittaminen ja kaadetaan digestioneste suodatinsuppiloon siivilän kautta.
I. For complete pools (100 g of samples at a time)
Huuhdotaan lasimalja noin 250 ml:lla lämmintä vettä.
16 ± 0,5 ml of 25 % hydrochloric acid (0,2 % final) is added to a 3 litre beaker containing 2,0 litres ± 200 ml of tap water, preheated to 46 to 48 °C;
Kaadetaan huuhteluneste suodatinliuskalle sen jälkeen, kun digestioneste on onnistuneesti suodatettu.
10 ± 1 g of powder pepsin (or 30 ± 3 ml of liquid pepsin) is added.
Otetaan pinseteillä/atuloilla kiinni suodatinkalvon reunasta.
100-115 g of samples collected in accordance with point 2 are chopped in the blender, with 150 ± 15 ml of preheated digestion buffer.
Taitetaan suodatinkalvo vähintään neljä kertaa ja asetetaan se 15 ml:n kartiomaiseen putkeen.
The 20 microns nylon mesh filter is placed on the filtration support.
Kartiomainen putki on valittava niin, että sopii survimeen.
The conical filtration steel funnel is fixed to the support with the block system and the steel sieve of 180 microns mesh size is placed on the funnel.
Suodatinkalvo työnnetään survimen avulla 15 ml:n kartiomaisen putken pohjalle ja sitä painetaan voimakkaasti liikuttamalla survinta edestakaisin noin 20 kertaa; survin olisi asetettava suodatinkalvotaitoksen sisälle valmistajan ohjeiden mukaisesti.
The vacuum pump is connected with the filtration support and with the metal or plastic tank, to collect the digestive fluid.
Lisätään pipetillä 0,5 ml ± 0,01 ml näytelaimennetta 15 ml:n kartiomaiseen putkeen ja homogenoidaan suodatinkalvo survimella pienin edestakaisin liikkein noin 30 sekunnin ajan välttäen äkkinäisiä liikkeitä nesteen roiskumisen ehkäisemiseksi valmistajan ohjeiden mukaisesti.
Stirring is stopped and the digestion fluid is poured into the filtration funnel through the sieve.
Kukin näyte, negatiivinen kontrolli ja positiivinen kontrolli annostellaan pipeteillä agglutinaatiokortin eri kenttiin valmistajan ohjeiden mukaisesti.
The beaker is rinsed with approximately 250 ml of warm water.
Lateksihelmet lisätään kuhunkin agglutinaatiokortin kenttään pipetillä valmistajan ohjeiden mukaisesti siten, etteivät ne joudu kosketuksiin näytteen (näytteiden) ja kontrollien kanssa.
The rinsing liquid is poured into the filtration ramp after the digested fluid has been successfully filtrated.
Lateksihelmet sekoitetaan sitten kussakin kentässä varovaisesti kertakäyttöpuikolla, kunnes homogeeninen neste täyttää koko kentän.
The filtration membrane is taken with the forceps, holding it by an edge.
Agglutinaatiokortti asetetaan kaksisuuntaiseen sekoittajaan, ja sitä sekoitetaan 10 ± 1 minuutin ajan valmistajan ohjeiden mukaisesti.
The filtration membrane is folded (minimal) in four and put in the 15 ml conical tube.
Valmistajan ohjeissa mainitun ajan kuluttua sekoittaminen lopetetaan, agglutinaatiokortti asetetaan tasaiselle pinnalle ja reaktiotulokset luetaan välittömästi valmistajan ohjeiden mukaisesti.
The choice of conical tube must be adapted to the pestle.
Jos näyte on positiivinen, ilmestyy helmikeräymiä.
The filtration membrane is pushed at the bottom of the 15 ml conical tube with the help of the pestle and strongly pressed by doing approximately 20 successive back and forth movements with the pestle which should be positioned inside the filtration membrane folding according to the manufacturer's instructions.
Jos näyte on negatiivinen, suspensio säilyy homogeenisenä ilman helmikeräymiä.
0,5 ± 0,01 ml of sample diluents is added into the 15 ml conical tube by pipette and the filtration membrane is homogenised with the pestle by doing successive low amplitude back and forth movements for approximately 30 seconds, avoiding abrupt movements to limit liquid splashes according to the manufacturer's instructions.
II Alle 100 g:n erät I luvun 3 kohdan II alakohdan mukaisesti
Each sample, the negative control, and the positive control, are dispensed into different fields of the agglutination card by pipettes, according to the manufacturer's instructions.
Alle 100 g:n erien osalta on seurattava I luvun 3 kohdan II alakohdassa esitettyä menettelyä.
The latex beads are added into each field of the agglutination card by a pipette, according to the manufacturer's instructions, without making them come into contact with the sample/s and controls.
Jos yhdistetystä näytteestä saatu lateksi-agglutinaatiotestin tulos on positiivinen tai epävarma, jokaisesta siasta on otettava 20 g:n lisänäyte I luvun 2 kohdan a alakohdan mukaisesti.
In each field, the latex beads are then gently mixed with a disposable stick until the homogeneous liquid covers the entire field.
Viiden sian 20 g:n näytteet on yhdistettävä ja tutkittava I jaksossa esitetyllä menetelmällä.
The agglutination card is put on the 3D rocker and is rocked for 10 ± 1 minutes according to the manufacturer's instructions.
Tällä tavoin tutkitaan 20:n viidestä siasta koostuvan ryhmän näytteet.
After the time established by the manufacturer's instructions, the rocking is stopped and the agglutination card is put on a plane surface and the reaction results are read immediately, according to the manufacturer's instructions.
Jos viiden sian ryhmästä saadaan positiivinen lateksi-agglutinaatio, jokaisesta kyseisen ryhmän siasta on otettava erillinen 20 g:n näyte, ja jokainen niistä on tutkittava erikseen I jaksossa esitetyllä menetelmällä.
In the case of a positive sample, the beads aggregates must appear.
Jos lateksi-agglutinaatiotestin tulos on positiivinen tai epävarma, on lähetettävä vähintään 20 g sian lihasta kansalliseen vertailulaboratorioon vahvistusta varten käyttäen yhtä I luvussa esitetyistä menetelmistä.
In the case of a negative sample, the suspension remains homogeneous without beads aggregates.
Loisnäytteet on pidettävä 90-prosenttisessa etyylialkoholissa niiden säilyttämiseksi ja loislajin tunnistamiseksi Euroopan unionin tai kansallisessa vertailulaboratoriossa.
Pools of less than 100 g as set out in Chapter I(3)(II)
Kun loiset on kerätty, positiivisiksi todetut liuokset on tehtävä tartuntavaarattomiksi kuumentamalla ne vähintään 60 °C:een.
For pools of less than 100 g, the procedure set out in Chapter I(3)(II) must be followed.
Jos yhdistetystä tai yksittäisestä näytteestä saatu lateksi-agglutinaatiotestin tulos on positiivinen tai epävarma, kaikki lihan kanssa kosketuksissa olevat materiaalit (sekoittimen kulho ja terä, survin, lasimalja, sekoitussauva, lämpötila-anturi, kartiomainen suodatinsuppilo, siivilä ja pinsetit/atulat) on puhdistettava huolellisesti kastamalla ne muutamaksi sekunniksi lämpimään veteen (65–90 °C).
Where examination of a collective sample produces a positive or uncertain latex agglutination result, a further 20 g sample is taken from each swine in accordance with Chapter I(2)(a).
Lihajäämät tai inaktivoidut toukat, joita saattaa edelleen olla materiaalien pinnalla, voidaan poistaa puhtaalla sienellä ja vesijohtovedellä.
The 20 g samples from five swine are pooled and examined using the method described in Section I. In this way samples from 20 groups of five swine must be examined.
Tarpeen mukaan voidaan lisätä muutama tippa pesuainetta rasvan poistamiseksi laitteista.
When a positive latex agglutination is obtained from a group of five swine, further 20 g samples are collected from the individuals in the group and each is examined separately using the method described in Section I.
Tämän jälkeen on suositeltavaa huuhdella kaikki osat huolellisesti pesuainejäämien poistamiseksi kokonaan.
When a positive or uncertain latex agglutination result is obtained, at least 20 g of swine muscle must be sent to the national reference laboratory for confirmation using one of the methods described in Chapter I.
E. Keinotekoinen digestiokoe trikiinin toukkien osoittamiseksi in vitro lihanäytteissä, PrioCHECK® Trichinella AAD Kit
Parasite samples must be kept in 90 % ethyl alcohol for conservation and identification at species level at the EU or national reference laboratory.
PrioCHECK® Trichinella AAD Kit -pakkausta käytetään pakkauksen käyttöohjeiden mukaisesti käyttäen erotussuppiloita (Lenz NS 29/32) ja lasista 80 ml:n koeputkea.
After parasite collection, positive fluids must be decontaminated by heating to at least 60 °C.
LIITE II