natgillin/translations-raw huggingface dataset:
View fish dorsally and anterior forward (head toward viewer).
Plasma kerätään koeputkiin ja varastoidaan – 20 °C:ssä siihen saakka, kunnes siitä analysoidaan vitellogeniini tai muut tarvittavat proteiinit.
Place fish in small Petri dish (e.g., 100 mm in diameter), anterior forward, and ventral down.
Menetelmä 3B:
Focus viewfinder to allow identification of tubercles.
Seeprakala, verinäytteen otto sydänpunktiolla
Gently and slowly roll fish from side to side to identify tubercle areas.
Veren koaguloitumisen ja proteiinin hajoamisen välttämiseksi näytteet otetaan fosfaattipuskuroituun suolaliuokseen, joka sisältää hepariinia (1000 yksikköä/ml) ja proteaasin estäjää, aprotiniinia (2 TIU/ml).
Count and score tubercles.
Hepariini-ammoniumsuola ja kylmäkuivattu aprotiniini ovat puskurin suositeltavia ainesosia.
Repeat the observation on the ventral head surface by placing the fish dorsal anterior forward in the Petri dish.
Näytteenotossa suositellaan käytettäväksi ruiskua (1 ml) ja kiinteää ohutneulaa (esimerkiksi Braun Omnikan-F).
Observations should be completed within 2 min for each fish.
Ruisku on esitäytettävä puskurilla (noin 100 μl), jotta jokaisen kalan pieni verimäärä voidaan eluoida kunnolla.
Tubercle Counting and Rating
Verinäytteet otetaan sydänpunktiolla.
Six specific areas have been identified for assessment of tubercle presence and development in adult fathead minnows.
Ensin kala on nukutettava MS-222:lla (100 mg/l).
A template was developed to map the location and quantity of tubercles present (see end of this Appendix).
Kun anestesian taso on asianmukainen, näytteenottaja voi erottaa seeprakalan sydämensykkeen.
The number of tubercles is recorded and their size can be quantitatively ranked as:
Pidä ruiskun mäntä pienen paineen alaisena, kun punktoit sydäntä.
0- absence, 1-present, 2-enlarged and 3-pronounced for each organism (Fig.
Kerättävän veren määrä on 20–40 mikrolitraa.
1).
Sydänpunktion jälkeen veri-puskuriseos on laitettava koeputkeen.
Rate 0- absence of any tubercle.
Plasma erotellaan verestä sentrifugoimalla (20 minuuttia; 5000 g), ja sitä tulee säilyttää – 80 °C:ssa analysointiin saakka.
Rating 1-present, is identified as any tubercle having a single point whose height is nearly equivalent to its radius (diameter).
Menetelmä 3C:
Rating 2- enlarged, is identified by tissue resembling an asterisk in appearance, usually having a large radial base with grooves or furrows emerging from the centre.
Menettelytapaohje:
Tubercle height is often more jagged but can be somewhat rounded at times.
Seeprakala, pään ja pyrstön homogenisointi
Rating 3- pronounced, is usually quite large and rounded with less definition in structure.
Kalat nukutetaan ja lopetetaan testikuvauksen mukaisesti.
At times these tubercles will run together forming a single mass along an individual or combination of areas (B, C and D, described below).
Kalan pää ja pyrstö leikataan kuvassa 1 näkyvällä tavalla.
Coloration and design are similar to rating 2 but at times are fairly indiscriminate.
Tärkeää:
Using this rating system generally will result in overall tubercle scores of < 50 in a normal control male possessing a tubercle count of 18 to 20 (Jensen et al.
Kaikki dissekointivälineet ja leikkauspöytä on huuhdeltava ja puhdistettava kunnolla (esimerkiksi 96-prosenttisella etanolilla) jokaisen kalan käsittelyn jälkeen, jotta naaraiden tai niiden koiraiden, joille kemikaali on aiheuttanut vaikutuksia, vitellogeniini ei saastuta terveitä koiraita.
2001).
Leikataan viivan takaa
The actual number of tubercles in some fish may be greater than the template boxes (Appendix A) for a particular rating area.
Vitellogeniini-analyysiä varten
If this happens, additional rating numbers may be marked within, to the right or to the left of the box.
Vitellogeniini-analyysiä varten
The template therefore does not need to display symmetry.
Leikataan selkäevän takaa
An additional technique for mapping tubercles which are paired or joined vertically along the horizontal plane of the mouth could be done by double-marking two tubercle rating points in a single box.
Jokaisen kalan pään ja pyrstön yhteispaino punnitaan lähimpään milligrammaan.
Mapping regions:
Punnituksen jälkeen kalan osat laitetaan asianmukaisiin putkiin (esimerkiksi 1,5 ml:n Eppendorf-putkiin) ja jäädytetään – 80 °C:ssa homogenisointiin saakka.
A Tubercles located around eye.
Ne voidaan myös homogenisoida suoraan jään päällä kahdella muovisurvimella.
Mapped dorsal to ventral around anterior rim of eye.
(Myös muita menetelmiä voi käyttää, jos ne tehdään jään päällä ja jos lopputuloksena on homogeeninen massa).
Commonly multiple in mature control males, not present in control females, generally paired (one near each eye) or single in females exposed to androgens.
Putket on numeroitava asianmukaisesti, jotta yhden kalan pää ja pyrstö voidaan yhdistää siihen ruumiinosaan, jota käytetään sukupuolirauhasen histologisessa tutkimuksessa.
B Tubercles located between nares, (sensory canal pores).
Kun homogeeninen massa on valmis, siihen lisätään neljä kertaa kudoksen painon verran jääkylmää homogenisointipuskuria.
Normally in pairs for control males at more elevated levels (2- enlarged or 3- pronounced) of development.
Jatka työskentelyä survimilla, kunnes seos on homogeeninen.
Not present in control females with some occurrence and development in females exposed to androgens.
Tärkeä huomautus:
C Tubercles located immediately anterior to nares, parallel to mouth.
Jokaiselle kalalle käytetään uusia survimia.
Generally enlarged or pronounced in mature control males.
Näytteet laitetaan jäähän siihen saakka, kunnes ne sentrifugoidaan 4 °C:ssa (50000 × g) 30 minuutin ajan.
Present or enlarged in less developed males or androgen-treated females.
Laita pipetillä 20 μl:n supernatanttiannoksia vähintään kahteen putkeen upottamalla pipetin kärki pinnan rasvakerroksen läpi ja vetämällä varovasti supernatanttia pipettiin ilman rasva- tai pellettifraktioita.
D Tubercles located parallel along mouth line.
Putkia säilytetään – 80 °C:ssa niiden käyttöön saakka.
Generally rated developed in control males.
Homogenisointipuskuri:(50 mM Tris-HCl pH 7,4; 1 % proteaasinestäjäsekoitus (Sigma)):
Absent in control females but present in androgen-exposed females.
12 ml Tris-HCl pH 7,4 + 120 μl proteaasinestäjäsekoitus.TRIS:
E Tubercles located on lower jaw, close to mouth, usually small and commonly in pairs.
TRIS-ULTRA PURE (ICN), valmistaja esimerkiksi Bie & Berntsen, Tanska.Proteaasinestäjäsekoitus:
Varying in control or treated males, and treated females.
Sigman (nisäkkäiden kudoksille tarkoitettu) tuote nro P 8340.Huomautus:
F Tubercles located ventral to E. Commonly small and paired.
Homogenisointipuskuri on käytettävä samana päivänä kuin se valmistetaan.
Present in control males and androgen-exposed females.
Pidä puskuri jään päällä käytön aikana.
Tubercle Template
Vitellogeniinin rikastusnäytteet ja määritysten välinen vertailuaine
Numerical Rating
Niinä päivinä, kun tehdään vitellogeniinimäärityksiä, analysoidaan myös rikastusnäyte käyttämällä määritysten välistä vertailuainetta.
resent
Määritysten välisen vertailuaineen valmistamisessa käytettävä vitellogeniini on peräisin eri erästä kuin se, jota käytettiin tehtävän määrityksen kalibrointistandardien tekemiseen.
Date
Rikastusnäyte tehdään lisäämällä tunnettu määrä määritysten välistä vertailuainetta kontrolliryhmän koiraan plasmanäytteeseen.
nlarged
Näytettä rikastetaan, jotta saadaan sellainen vitellogeniinipitoisuus, joka on 10–100 kertaa suurempi kuin kontrolliryhmän koiraan odotuksenmukainen vitellogeniinipitoisuus.
Total Score
Rikastettava kontrolliryhmän plasmanäyte voi olla peräisin yksittäiseltä kalalta, tai se voidaan yhdistää useilta kaloilta.
ronounced
Osanäyte rikastamattomasta kontrolliryhmän koiraan plasmasta analysoidaan vähintään kahdessa rinnakkaisessa kuopassa.
Appendix 5B
Myös rikastettu näyte analysoidaan vähintään kahdessa rinnakkaisessa kuopassa.
Assessment of secondary sex characteristics in medaka for the detection of certain endocrine active chemicals
Vitellogeniinin keskimääräinen määrä kahdessa rikastamattomassa kontrolliryhmän koiraan plasmanäytteessä lisätään siihen vitellogeniinin laskettuun määrään, joka on lisätty näytteiden rikastamiseen, odotuksenmukaisen pitoisuuden määrittämiseksi.
Below is a description of the measurement of papillary processes, which are the secondary sex characteristics in medaka (Oryzias latipes).
Tämän odotuksenmukaisen pitoisuuden ja mitatun pitoisuuden välinen suhde ilmoitetaan kyseisenä päivänä tehtyjen määritysten tulosten mukana.
After the excision of the liver (Appendix 6), the carcass is placed into a conical tube containing about 10 ml of 10 % neutral buffered formalin (upside: head, downside: tail).
Päätöksentekoa tukeva vuokaavio tilastollista analyysia varten
If the gonad is fixed in a solution other than 10 % neutral buffered formalin, make a transverse cut across the carcass between anterior region of anal fin and anus using razor, taking care not to harm the gonopore and gonad itself (Fig.
Dunnett- testi Varianssia vakauttava muutos?
3).
Dunn- tai Mann-Whitney-testi
Place the cranial side of the fish body into the fixative solution to preserve the gonad, and the tail side of the fish body into the 10 % neutral buffered formalin as described above.
Rinnakkaiskokeiden keskiarvojen vertailutesti (step-down trendtest)
After placing the fish body into 10 % neutral buffered formalin, grasp the anterior region of the anal fin with tweezers and fold it for about 30 seconds to keep the anal fin open.
Dunn-tai Mann-Whitney-testi rinnakkaisnäytteiden keskiarvoilla
When grasping the anal fin with tweezers, grasp a few fin rays in the anterior region with care not to scratch the papillary processes.
Dunn-testi Kyllä Ei
After keeping the anal fin open for about 30 seconds, store the fish body in 10 % neutral buffered formalin at room temperature until the measurement of the papillary processes (measurement should be conducted after fixing for at least 24 hours).
Ei-monotoninen
Measurement
Tamhane-Dunnett-testi >= 4 rinnak. per pit.
After fixing the fish body in the 10 % neutral buffered formalin for at least 24 hours, pick up the fish carcass from the conical tube and wipe the formalin on the filter paper (or paper towel).
<= 3 rinnak. per pit. Sisäkk.
Place the fish abdomen side up.
Sisäkk.
Then cut the anal fin using small dissection scissors carefully (it is preferable to cut the anal fin with small amount of pterygiophore).
Rinnakkaistestien keskiarvojen jakauma normaali
Grasp the anterior region of the severed anal fin with tweezers and put it on a glass slide with a several drops of water.
Varianssit eivät ole yhtäsuuret
Then cover the anal fin with a cover glass.
Variantit yhtäsuuret
Be careful not to scratch the papillary processes when grasping the anal fin with tweezers.
Ei monotoninen
Count the number of the joint plate with papillary processes using the counter under a biological microscope (upright microscope or inverted microscope).
>=4 vertailutestiä pitoisuutta kohden
The papillary processes are recognized when a small formation of processes is visible on the posterior margin of joint plate.
Normalisoiva muunnos?
Write the number of joint plate with papillary processes in each fin ray to the worksheet (e.g. first fin ray: 0, second fin ray: 10, third fin ray: 12, etc.) and enter the sum of this number on the Excel spreadsheet by individual fish.
Sisäkk.
If necessary, take a photograph of the anal fin and count the number of joint plate with papillary processes on the photograph.
Sisäkk.
After the measurement, put the anal fin into the conical tube described in (1) and store it.
ANOVA normaali
Fig.1.
Määritä, onko annos-vastesuhde monotoninen.
Diagram showing sexual difference in shape and size of the anal fin.
ANOVAn Tamhane-Dunnett-testi Sisäkk.
A, male;
SAMMAKKOELÄINTEN MUODONVAIHDOSTUTKIMUS (AMA-TUTKIMUS)
B, female.
Tämä testimenetelmä vastaa OECD:n testiohjetta (TG) nro 231 (2009).
Fig.2.A.
Tarve kehittää ja validoida tutkimus, jolla pystytään havaitsemaan selkärankaisten lajien kilpirauhasjärjestelmään vaikuttavia kemikaaleja, perustuu huolenaiheisiin, joiden mukaan kemikaalien ympäristöpitoisuuksista saattaa aiheutua haittavaikutuksia sekä ihmisille että eläimille.
Processes on joint plates of anal fin-ray.
Vuonna 1998 OECD aloitti tärkeän toimenpiteen, nimittäin olemassa olevien ohjeiden uudistuksen ja uusien ohjeiden laatimisen mahdollisten hormonitoimintaa häiritsevien aineiden seulontaa ja testausta varten.
J.P., joint plate;
Yksi toimenpiteen osa oli laatia testiohjeet selkärankaisten lajien kilpirauhasjärjestelmään vaikuttavien kemikaalien seulontaan.
A.S., axial space;
Sekä jyrsijöillä tehtävän toistetun annoksen 28 päivän myrkyllisyystutkimusta (tämän liitteen luku B.7) että sammakkoeläinten muodonvaihdostutkimusta (Amphibian Metamorphosis Assay, AMA-tutkimus) ehdotettiin parannettavaksi.
P., process.
Parannettu testimenetelmä B.7 validoitiin, ja tarkistettu testimenetelmä on sittemmin julkaistu.
B, Distal extremity of fin-ray.
AMA-tutkimus validoitiin kattavasti.
Actinotrichia (Act.) are on the tip.
Siihen sisältyi laboratorioiden sisäisiä ja välisiä tutkimuksia, joilla osoitettiin tutkimuksen merkityksellisyys ja luotettavuus (1, 2).
Fig.3.
Lopuksi riippumattomista asiantuntijoista koostuva ryhmä vertaisarvioi tutkimuksen validoinnin (3).
Photograph of fish body showing the cut site when the gonad is fixed in the fixing solution other than 10 % neutral buffered formalin.
Tämä testimenetelmä perustuu kilpirauhasjärjestelmään vaikuttavien kemikaalien havaitsemista koskevien validointitutkimusten aikana karttuneeseen kokemukseen sekä muualla OECD:n jäsenvaltioissa tehtyyn tutkimukseen.
In that case, the remaining body will be cut off between anterior region of anal fin and anal using razor (red bar), and the head side of fish body will be put into the fixing solution for gonad and the tail side of the fish body will be put into the 10 % neutral buffered formalin.
AMA-tutkimus on seulontatutkimus, jonka tavoitteena on tunnistaa empiirisesti sellaiset kemikaalit, jotka voivat häiritä hypotalamus-aivolisäke-kilpirauhasakselin (HPT-akselin) toimintaa.
Papillary processes normally appear only in adult males and are found on fin rays from the second to the seventh or eighth counting from the posterior end of the anal fin (Fig.1 and 2).
AMA on siinä mielessä yleispätevä selkärankaismalli, että se perustuu HPT-akselin säilöttyihin rakenteisiin ja toimintoihin.
However, processes rarely appear on the first fin ray from the posterior end of the anal fin.
Se on tärkeä tutkimus, koska sammakon muodonvaihdos on hyvin tutkittu kilpirauhasesta riippuva prosessi, joka reagoi HPT-akseliin vaikuttaviin kemikaaleihin, ja se on ainoa olemassa oleva tutkimus, jolla voidaan havaita kilpirauhaseen kohdistuvia vaikutuksia morfologisessa kehitysvaiheessa olevalla eläimellä.
This SOP covers the measurement of processes on the first fin ray (the fin ray number refers to the order from the posterior end of the anal fin in this SOP).
Testissä vaiheessa 51 olevia Xenopus laevis -sammakonpoikasia altistetaan kolmelle eri pitoisuudelle testikemikaalia ja laimennusvesikontrollille 21 päivän ajan.
Recommended procedures for sample collection for vitellogenin analysis
Jokaisesta käsittelystä tehdään neljä rinnakkaistestiä.
Care should be taken to avoid cross-contamination between VTG samples of males and females.
Testin alussa toukkien tiheys on 20 sammakonpoikasta testiastiaa kohti kaikissa käsittelyryhmissä.
Procedure 1A:
Tutkittavat ominaisuudet ovat takajalan pituus, kuonon ja peräaukon välinen pituus, kehitysvaihe, märkäpaino, kilpirauhasen histologia sekä päivittäiset havainnot kuolleisuudesta.
Fathead Minnow, Blood Collection from the Caudal Vein/Artery
Testilajit
After anaesthetisation, the caudal peduncle is partially severed with a scalpel blade and blood is collected from the caudal vein/artery with a heparinised microhematocrit capillary tube.
Xenopus laevis -lajia kasvatetaan yleisesti laboratorioissa kaikkialla maailmassa, ja sitä saa helposti kaupallisilta toimittajilta.
After the blood has been collected, the plasma is quickly isolated by centrifugation for 3 min at 15000 g (or alternatively for 10 min. at 15000 g at 4 °C).
Tässä lajissa lisääntyminen saadaan helposti aikaan kaikkina vuodenaikoina käyttämällä ihmisen koriongonadotropiini- eli hCG-injektioita, ja näin syntyvistä toukista voidaan kasvattaa suuri määrä tiettyihin kehitysvaiheisiin, jolloin voidaan käyttää kehitysvaihekohtaisia testisuunnitelmia.
If desired, percent hematocrit can be determined following centrifugation.
Tutkimuksessa on ensisijaisesti käytettävä laboratorion aikuisista sammakoista peräisin olevia toukkia.
The plasma portion is then removed from the microhematocrit tube and stored in a centrifuge tube with 0,13 units of aprotinin (a protease inhibitor) at – 80 °C until determination of vitellogenin can be made.
Vaihtoehtoisesti – joskaan tämä ei ole suositeltavaa – munat tai alkiot voidaan lähettää laboratorioon, jossa testi tehdään, jolloin on huolehdittava totutteluvaiheesta.
The blood is transferred into Eppendorf tubes (held on ice) and then centrifuged (5 min, 7000 g, room temperature).
lisääntymissäiliöitä
The sex of each test fish is identified on the basis of external secondary sex characteristics (e.g. the shape of the anal fin).
valotehon mittari, jossa mittayksikkönä luksi
Place the test fish in a container for transport and carry it to the workstation for excision of the liver.
erilaisia laboratoriolaseja ja -instrumentteja
Check the labels of the test chamber and the transport container for accuracy and to confirm that the number of fish that have been removed from the test chamber and that the number of fish remaining in the test chamber are consistent with expectation.
säädettäviä pipettejä (10–5000 μl) tai valikoima vastaavankokoisia pipettejä
If the sex cannot be identified by the fish's external appearance, remove all fish from the test chamber.
tutkimuksen tekemiseen riittävä määrä testikemikaalia mieluiten yhdestä erästä
In this case, the sex should be identified by observing the gonad or secondary sex characteristics under a stereoscopic microscope.
testattavalle kemikaalille sopivat analyysilaitteet tai sopimusperusteiset analyysipalvelut.
Excision of the liver
Kemikaalin testattavuus
Transfer the test fish from the container for transport to the anaesthetic solution using the small spoon-net.
AMA perustuu vesialtistukseen, jossa testikemikaalia johdetaan testiastioihin läpivirtausjärjestelmän kautta.
Insert the dissection scissors into the small incision, and incise the abdomen from a point caudal to the branchial mantle to the cranial side of the anus along the midline of the abdomen.
Järjestelmän veden kanssa kosketuksiin joutuvien osien tulee olla lasia, ruostumatonta terästä ja/tai polytetrafluoroetyleeniä.
Be careful not to insert the dissection scissors too deeply so as to avoid damaging the liver and gonad.
Muitakin sopivia muoveja voi käyttää, jos ne eivät vaaranna tutkimusta.
Conduct the following operations under the stereoscopic microscope.
Altistussäiliöinä tulee käyttää lasisia tai ruostumattomasta teräksestä valmistettuja akvaarioita.
Place the test fish abdomen side up on the paper towel (glass Petri dish or slide glass are also available).
Niissä on oltava nousuputket, joilla säiliön vesimääräksi saadaan noin 4,0–10,0 litraa, ja veden vähimmäissyvyyden tulee olla 10–15 cm.
Extend the walls of the abdominal cavity with precision tweezers and exteriorise the internal organs.
Järjestelmässä on voitava käyttää kaikkia altistuspitoisuuksia ja kontrollia sekä neljää rinnakkaisnäytettä käsittelyä kohti.
It is also acceptable to exteriorise the internal organs by removing one side of the wall of the abdominal cavity if necessary.
Jokaisen säiliön virtausnopeuden on oltava tasainen, kun otetaan huomioon sekä biologisten olosuhteiden ylläpitäminen että kemikaalialtistus (esimerkiksi 25 ml/min).
Expose the connected portion of the liver and gallbladder using another pair of precision tweezers.
Käsittelysäiliöt on laitettava altistusjärjestelmään sattumanvaraisiin paikkoihin, jotta mahdolliset sijainnista johtuvat vaikutukset voidaan minimoida.
Then grasp the bile duct and cut off the gallbladder.
Tämä koskee myös lämpötilan, valotehon jne. vaihteluita.
Be careful not to break the gallbladder.
Tilassa on käytettävä loisteputkivalaistusta.
Grasp the oesophagus and excise the gastrointestinal tract from the liver in the same way.
Veden lämpötila on pidettävä arvossa 22 ± 1 °C; pH-arvo saa olla 6,5–8,5, ja liuenneen hapen (DO) pitoisuus saa olla > 3,5 mg/l (> 40 prosenttia ilman kyllästysarvosta) jokaisessa testisäiliössä.
Be careful not to leak the contents of the gastrointestinal tract.
Viikoittain tulee mitata vähintään veden lämpötila, pH ja liuennut happi.
Excise the caudal gastrointestinal tract from the anus and remove the tract from the abdominal cavity.
Lämpötilaa on mitattava mieluiten jatkuvasti ainakin yhdestä testiastiasta.
Trim the mass of fat and other tissues from the periphery of the liver.
Lisäyksessä 1 on esitetty koeolosuhteet, joissa testi on toteutettava.
Be careful not to scratch the liver.
Lisätietoja läpivirtausaltistusjärjestelmien ja/tai staattisten järjestelmien rakentamisesta on ASTM:n oppaassa ’Standard Guide for Conducting Acute Toxicity Tests on Test Materials with Fishes, Macroinvertebrates, and Amphibians’ (5) ja yleisissä myrkyllisyyttä vesieliöille koskevissa testeissä.
Grasp the hepatic portal area using the precision tweezers and remove the liver from the abdominal cavity.
Veden laatu
Place the liver on the slide glass.
Tutkimuksessa voi käyttää mitä tahansa paikallisesti saatavaa vettä (esimerkiksi lähdevettä tai hiilisuodatettua vesijohtovettä), jossa X. laevis -sammakonpoikaset voivat kasvaa ja kehittyä normaalisti.
Using the precision tweezers, remove any additional fat and extraneous tissue (e.g., abdominal lining), if needed, from the surface of the liver.
Koska paikallisen veden laatu voi vaihdella huomattavasti alueelta toiselle, veden laatu on analysoitava etenkin silloin, jos saatavilla ei ole aiempia tietoja veden käyttökelpoisuudesta Xenopus-lajin kasvattamisessa.
Measure the liver weight with 1.5 ml microtube as a tare using an electronic analytical balance.
Erityisesti on varmistettava, ettei vedessä ole kuparia, klooria eikä kloramiineja, koska ne kaikki ovat myrkyllisiä sammakoille ja sammakonpoikasille.
Record the value on the worksheet (read: 0,1 mg).
Lisäksi vedestä on suositeltavaa analysoida fluoridin, perkloraatin ja kloraatin (juomaveden desinfioinnista syntyvät sivutuotteet) taustapitoisuudet, koska kaikki nämä anionit ovat kilpirauhasen jodin kuljetusproteiinin substraatteja, ja kaikkien niiden kohonneet pitoisuudet voivat vaikuttaa tutkimustuloksiin.
Confirm the identification information on the microtube label.
Analyysi on tehtävä ennen testauksen aloittamista.
Close the cap of the microtube containing the liver.
Yleensä testivedessä ei ole näitä anioneja.
Store it in a cooling rack (or ice rack).
Testiveden jodipitoisuus
Following the excision of one liver, clean the dissection instruments or replace them with clean ones.
Jotta kilpirauhanen voi syntetisoida tyroksiinihormonia, toukkien on saatava vedestä ja ravinnosta riittävästi jodia.
Remove livers from all of the fish in the transport container as described above.
Tällä hetkellä empiirisesti johdettuja ohjeita vähimmäisjodipitoisuuksista ei ole.
After the livers have been excised from all of the fish in the transport container (i.e., all males or females in a test chamber), place all liver specimens in a tube rack with a label for identification and store it in a freezer.
Jodin saatavuus voi kuitenkin vaikuttaa siihen, miten kilpirauhasjärjestelmä reagoi kilpirauhaseen vaikuttaviin aineisiin, ja sen tiedetään muokkaavan kilpirauhasen perustoimintaa.
When the livers are donated for pre-treatment shortly after the excision, the specimens are carried to the next workstation in a cooling rack (or ice rack).
Tämä seikka on syytä ottaa huomioon kilpirauhasen histopatologisia tuloksia tulkittaessa.
Following liver excision, the fish carcass is available for measurement of secondary sex characteristics.
Tämän vuoksi testivedestä mitatut jodipitoisuudet on ilmoitettava.