natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Replicated sub-samples of the spiked sediment should be analysed to check the concentrations of the test substance in the sediment, and to determine the degree of homogeneity of test substance distribution.
Testin aloittamisessa tai uusien matojen kasvattamisessa käytetään vain vahingoittumattomia ja selvästi tunnistettuja Tubifex tubifex -yksilöitä (esimerkiksi lähdeviite (64)).
Once the spiked sediment with overlying water has been prepared, it is desirable to allow partitioning of the test substance between the sediment and the aqueous phase.
Sairaat tai vaurioituneet madot sekä munakotelot, joissa kasvaa sienirihmastoja, on hävitettävä.
Appropriate equilibration time is sediment and substance specific, and can be in the order of hours to days and in rare cases up to several weeks (4-5 weeks) (28)(42).
Synkronisoidusta kasvatusjärjestelmästä voidaan saada tietyn ikäisiä matoja sopivin väliajoin tarvittaessa.
Depending on the purpose of the study, e.g., when environmental conditions are to be mimicked, the spiked sediment may be equilibrated or aged for a longer period (11).
Uusia kasvatusastioita perustetaan tietyin väliajoin (esimerkiksi kahden viikon välein), ja niissä käytetään tietyn ikäisiä eläimiä (kuten kotelovaiheessa olevia matoja).
It may be useful to conduct a preliminary experiment in order to optimise the test conditions of the definitive test, e.g. selection of test substance concentration(s) and duration of the uptake and elimination phases.
Edellä kuvatuissa kasvatusolosuhteissa madot ovat täysikasvuisia 8–10 viikon kuluttua.
Duration of the uptake phase
Lumbriculus variegatus (Lumbriculidae, Oligochaeta) elää myös makean veden sedimenteissä kaikkialla maailmassa, ja sitä käytetään laajalti ympäristömyrkyllisyyden testauksessa.
The test organisms are exposed to the test substance during the uptake phase.
Tietoa tämän lajin biologiasta, kasvatusolosuhteista ja herkkyydestä on lähdeviitteissä (1) (6) (9) (36).
The first sample should be taken between 4 and 24 h after start of uptake phase.
Lumbriculus variegatus -matoja voidaan kasvattaa myös T. tubifex -madoille suositellussa keinosedimentissä lähdeviitteen (8) mukaisesti tietyin rajoituksin.
The uptake phase should be run for up to 28 days (1)(6)(11) unless it can be demonstrated that equilibrium has been reached earlier.
Koska L. variegatus suosii luonnossa karkeampia sedimenttejä kuin T. tubifex (59), T. tubifexin kasvattamisessa käytetyt laboratorioviljelmät, joissa on käytetty keinosedimenttiä, voidaan lakkauttaa 4–6 kuukauden kuluttua.
The steady state occurs when:
Käytännön kokemus on osoittanut, että L. variegatusta voidaan pitää hiekkaisella alustalla (esimerkiksi kvartsihiekassa tai hienossa sorassa) läpivirtausjärjestelmässä, jossa käytetään kalanruokaa ravinnonlähteenä, useita vuosia alustaa uudistamatta.
a plot of the bioaccumulation factors at each sampling period against time is parallel to the time axis;
Muihin vedessä eläviin harvasukasmatolajeihin verrattuna L. variegatuksella on se etu, että se lisääntyy nopeasti, jolloin laboratoriossa kasvatettujen populaatioiden biomassa kasvaa nopeasti (1) (6) (9) (10).
three successive analyses of BAF made on samples taken at intervals of at least two days vary no more than ± 20 % of each other;
, ASTM (2000) (1), U.S.
and (iii) there are no significant differences between the three sampling periods (based on statistical comparisons e.g. analysis of variance and regression analysis).
Matoja voidaan kasvattaa suurissa akvaarioissa (57–80 l) 23 °C:ssa.
If the steady state has not been reached by 28 days, the uptake phase may be ended by starting the elimination phase, and the BAFK can be calculated from the uptake and elimination rate constants (see also paragraphs 16 to 18).
Valojakson tulisi olla 16 tuntia valoa ja 8 tuntia pimeää (100–1000 luksia), ja akvaarioissa tulisi käyttää päivittäin vaihtuvaa luonnollista vettä (45–50 l akvaariota kohti).
Duration of the elimination phase
Uusi substraatti kestää säiliössä yleensä noin kaksi kuukautta.
The first sample should be taken between 4 and 24 h after start of elimination phase, since during the initial period, rapid changes in tissue residue may occur.
Jokainen matoviljelmä aloitetaan 500–1000 madolla, ja niitä ruokitaan kolmesti viikossa10 ml:n suspensiolla, joka sisältää 6 g lohien kasvatusravintoa, ajoittaisvaihtoisissa tai läpivirtausolosuhteissa.
It is recommended to terminate the elimination phase either when the concentration of test substance is less than 10 % of steady-state concentration, or after a maximum duration of 10 days.
Staattisissa tai semistaattisissa viljelmissä eläimiä on ruokittava vähemmän bakteeri- ja sienikasvun estämiseksi.
The residue level in the worms at the end of the elimination phase is reported as a secondary endpoint.
Ruoka ja paperisubstraatti on analysoitava biokertyvyystesteissä käytettävien aineiden suhteen.
The period may, however, be governed by the period over which the concentration of the test substance in the worms remains above the analytical detection limit.
Näissä olosuhteissa viljelmässä olevien yksilöiden määrä yleensä kaksinkertaistuu 10–14 päivässä.
Numbers of test worms
Lumbriculus variegatus voidaan ottaa pois viljelmistä esimerkiksi siirtämällä substraatti tiheäsilmäisellä haavilla tai poimimalla yksilöt liekkikiillotetulla leveäsuisella (halkaisija noin 5 mm) lasipipetillä erilliseen laboratoriolasiin.
The number of worms per sample must provide a mass of worm tissue such that the mass of test substance per sample at the beginning of the uptake phase and at the end of the elimination phase, respectively, is significantly higher than the detection limit for the test substance in biological material.
Ne voidaan siirtää sen jälkeen uusiin valmisteltuihin kasvatussäiliöihin tai käsitellä käytettäväksi testissä lähdeviitteissä (1) ja (6) esitetyn mukaisesti.
In the mentioned stages of uptake and elimination phases the concentration in the test animals is usually relatively low (6)(8)(18).
Matojen vaurioituminen tai autotomia on estettävä esimerkiksi käyttämällä niiden käsittelyssä pipettejä, joiden reunat on liekkikiillotettu, tai ruostumattomasta teräksestä valmistettuja puikkoja.
Since the individual weight in many species of aquatic oligochaetes is very low (5-10 mg wet weight per individual for Lumbriculus variegatus and Tubifex tubifex), the worms of a given replicate test chamber may be pooled for weighing and test chemical analysis.
Seikka, johon on syytä suhtautua kriittisesti käytettäessä L. variegatusta sedimentin biokertyvyystesteissä, on sen lisääntymistapa (jakaantuminen, jota seuraa regeneraatio).
For test species with higher individual weight (e.g. Branchiura sowerbyi) replicates containing one individual may be used, but in such cases the number of replicates should be increased to five per sampling point (11).
Tässä suvuttomassa lisääntymistavassa mato jakaantuu kahteen osaan, jotka eivät tarvitse ravintoa, ennen kuin pää- tai häntäosa on regeneroitunut (ks. (36) (37)).
It should however be noted that B. sowerbyi was not included in the ring test (12), and is therefore not recommended as a preferable species in the method.
Näin ollen nielemisen kautta tapahtuvaa sedimentti- ja kontaminanttikertymistä ei tapahdu L. variegatuksella välttämättä jatkuvasti, kuten torvimadoilla, jotka eivät lisäänny jakaantumalla.
Worms of similar size should be used (for L. variegatus see Appendix 6).
Vaihtelua voi nimittäin esiintyä, kun jotkin yksilöt, jotka ovat jakaantuneet eivätkä siksi tarvitse ravintoa tiettynä ajanjaksona, altistuvat testiaineelle vähemmän kuin muut yksilöt, jotka eivät jakaannu testin aikana (ks. (38)).
They should come from the same source, and should be adult or large animals of the same age class (see Appendix 6).
Madot tulisi jakaa keinotekoisesti (synkronisointi) 10–14 päivää ennen altistumisen aloittamista (65).
The weight and age of an animal may have a significant effect on the BAF-values (e.g. due to different lipid content and/or presence of eggs);
Tässä on käytettävä isoja matoja, joissa mieluiten ei ole merkkejä viimeaikaisesta jakaantumisesta.
these parameters should be recorded accurately.
Kun synkronisoiduissa madoissa esiintyy morfallaksin aiheuttamaa regeneraatiota testin aikana, käytännössä kaikkien eläinten odotetaan altistuvan yhtä paljon sedimentille, johon on lisätty testiainetta.
To measure the mean wet and dry weight a sub-sample of worms should be weighed before starting the test.
Synkronisoitujen matojen ruokkiminen tulee aloittaa heti, kun madot alkavat kaivautua substraattiin tai seitsemän päivän kuluttua leikkauksesta.
With Tubifex tubifex and Lumbriculus variegatus, reproduction is expected during the test period.
Regeneroitumisen jälkeen testissä tulee käyttää vahingoittumattomia kokonaisia matoja, jotka ovat samankokoisia ja jotka uivat tai matelevat aktiivisesti kevyen mekaanisen ärsytyksen seurauksena.
A lack of reproduction in a bioaccumulation test should be recorded, and considered when interpreting the test results.
Kun testissä käytetään Lumbriculus variegatusta, matojen määrän tulisi lisääntyä testissä, jos olosuhteet ovat asianmukaiset, tämän lajin erityisen lisääntymistavan takia (6).
High sediment-to-worm and water-to-worm ratios should be used in order to minimise the reduction of test substance concentration in the sediment during the uptake phase, and to avoid decreases in dissolved oxygen concentration.
Lisääntymisen puuttuminen L. variegatuksella tehtävässä biokertyvyystestissä on kirjattava muistiin ja otettava huomioon testituloksia tulkittaessa.
The chosen loading rate should also correspond to naturally occurring population densities of the chosen species (43).
Branchiura sowerbyi (BEDDARD), Tubificidae, Oligochaeta (ei validoitu rengastestissä)
For example, for Tubifex tubifex, a loading rate of 1-4 mg of worm tissue (wet weight) per gram of wet sediment is recommended (8)(11).
Branchiura sowerbyi elää monenlaisissa patoaltaiden, järvien, lampien ja jokien sedimenttityypeissä, ja se on peräisin trooppisilta alueilta.
References (1) and (6) recommend a loading rate of ≤ 1 g dry weight of worm tissue per 50 g sediment organic carbon for L. variegatus.
Tämän lajin matoja tavataan myös pohjoisen pallonpuoliskon lämpimissä vesistöissä.
The worms to be used in a test are removed from the culture by sieving the culture sediment.
Niitä esiintyy kuitenkin enemmän mutaisissa ja savisissa sedimenteissä, joiden orgaanisen aineksen pitoisuus on suuri.
The animals (adult or large worms without signs of recent fragmentation) are transferred to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water.
Madot elävät myös sedimenttikerroksessa.
If the test conditions differ from the culture conditions, an acclimation phase of 24 h should be sufficient.
Myös matojen takapäät yleensä kaivautuvat sedimenttiin.
Prior to weighing, excess water should be removed from the worms.
Tämä laji on helposti tunnistettavissa niiden takaosassa olevista helttamaisista filamenteista.
This can be done by gently placing the worms on a pre-moistened paper tissue.
Täysikasvuisten matojen pituus saattaa olla 9–11 cm ja märkäpaino 40–50 mg.
It is not recommended to use absorbing paper to dry the worms as this may cause stress or damage to the worms.
Madot lisääntyvät vilkkaasti;
recommend using non-blotted worms of approximately 1,33 times the target biomass.
niiden populaatio kaksinkertaistuu alle kahdessa viikossa, kun olosuhteet ovat jäljempänä kuvatun mukaiset (Aston ym., 1982 (65)).
At the start of the uptake phase (day 0 of the test), the test organisms are removed from the acclimatisation chamber and distributed randomly to vessels (e.g. petri dishes) containing reconstituted water by adding groups of two worms to each vessel, until each vessel contains ten worms.
Yhteenveto Branchiura sowerbyin kasvatusmenetelmistä on esitetty jäljempänä (laatineet Mercedes R. Marchese, INALI, Argentiina, ja Carla J. Roghair, RIVM, Alankomaat).
Each of these groups of worms are then randomly transferred to separate test vessels, e.g. using soft steel forceps.
Testiorganismien kasvattamisessa ei edellytetä mitään tiettyä kasvatustekniikkaa.
The test vessels are subsequently incubated under test conditions.
Ne voidaan kasvattaa käyttämällä kontaminoitumatonta luonnollista sedimenttiä (31).
In order not to underestimate the exposure of the test organisms, e.g. by selectively feeding uncontaminated food, the food necessary for reproduction and growth of the test organisms should be added to the sediment once before or during application of the test substance (see Appendix 5).
Kasvattamiseen voidaan käyttää kolmen litran laboratoriolaseja, jotka sisältävät 1500 ml sedimentti-vesiväliainetta, joka puolestaan koostuu 375 ml:sta luonnollista kontaminoitumatonta sedimenttiä (orgaanisen hiilen kokonaispitoisuus noin 10 prosenttia; noin 17 prosenttia hiukkasista kokoa ≤ 63 μm), 375 ml:sta puhdasta hiekkaa (M32) ja 750 ml:sta synteettistä tai dekloorattua vesijohtovettä (31) (32) (67).
Sediment-water ratio
Myös paperipyyhkeitä voidaan käyttää kasvatuksessa substraattina, mutta silloin populaatio kasvaa vähemmän kuin luonnollisessa sedimentissä.
The recommended sediment-water ratio is 1:4 (45).
Semistaattisissa järjestelmissä laboratoriolasin vesikerrosta ilmastetaan hitaasti, ja yläpuolinen vesi tulee vaihtaa viikoittain.
This ratio is considered suitable to maintain oxygen concentrations at appropriate levels, and to avoid the build-up of ammonia in the overlying water.
Jokainen lasi sisältää aluksi 25 nuorta matoa.
The oxygen content in the overlying water should be maintained at ≥ 40 % saturation.
Kahden kuukauden kuluttua isot madot poimitaan sedimentistä pinseteillä ja laitetaan uuteen lasiin, joka sisältää tuoretta sedimentti-vesiväliainetta.
The overlying water of the test vessels should be gently aerated (e.g. 2 - 4 bubbles per second) via a pasteur pipette positioned approximately 2 cm above the sediment surface so as to minimise perturbation of the sediment.
Vanhassa lasissa on myös munakoteloita ja nuoria matoja.
The photoperiod in the culture and the test is 16 hours (1)(6).
Tällä tavalla on mahdollista kerätä jopa 400 nuorta matoa yhdestä lasista.
Light intensity in the test area should be kept at about 500-1000 lx.
Täysikasvuisia matoja käytetään lisääntymiseen vähintään kerran vuodessa.
The temperature should be 20 ± 2 °C throughout the test.
Viljelmät on pidettävä 21–25 °C:n lämpötilassa, ja lämpötilan vaihtelu saa olla enintään ± 2 °C.
One test concentration (as low as possible) is used for determination of the uptake kinetics, but a second (higher) concentration may be used (e.g. (46)).
Alkion kehittymiseen kuluva aika (munimisesta siihen saakka, kunnes nuori mato kuoriutuu munakotelosta) on noin kolme viikkoa, kun lämpötila on 25 °C.
In that case, samples are taken and analysed at steady state or after 28 d to confirm the BAF measured at the lower concentration (11).
Munien määrä munakotelokohtaisesti vaihtelee välillä 1,8–2,8 (66) (69) tai enintään 8 (68).
The higher concentration should be selected so that adverse effects can be excluded (e.g. by choosing approximately 1 % of the lowest known chronic effect concentration ECx as derived from relevant chronic toxicity studies).
Liuenneen hapen pitoisuus, veden kovuus, lämpötila ja pH on mitattava viikoittain.
The lower test concentration should be significantly higher than the detection limit in sediment and biological samples by the analytical method used.
Kalanruokaa (esimerkiksiTetraMin®-valmistetta) voidaan lisätä suspensiona kaksi tai kolme kertaa viikossa ad libitum.
If the effect concentration of the test substance is close to the analytical detection limit, the use of radiolabelled test substance with high specific radioactivity is recommended.
Lisäksi matoja voidaan ruokkia sulatetulla lehtisalaatilla ad libitum.
Treated and Control Replicates
Suurin etu tämän lajin käyttämisestä on suuri yksilöllinen biomassa (yksilön märkäpaino jopa 40–50 mg).
The minimum number of treated replicates for kinetic measurements should be three per sampling point (11) throughout uptake and elimination phase.
Sen vuoksi tätä lajia voi käyttää radioleimaamattomien testiaineiden biokertyvyystesteissä.
Additional replicates should be employed e.g. for optional additional sampling dates.
Se voidaan altistaa T. tubifexille tai L. variegatukselle käytetyissä järjestelmissä siten, että yhdessä näytteessä on yksi yksilö (11).
For the elimination phase, a matching number of replicates is prepared with non-spiked sediment and overlying water, so that the treated worms can be transferred from designated treated vessels to non-treated vessels at the end of the uptake phase.
Rinnakkaisnäytteiden määrää on kuitenkin lisättävä, ellei käytetä isompia testiastioita (11).
The total number of treated replicates should be sufficient for both uptake and elimination phase.
Myös kaivautumiskäyttäytymiseen liittyvää validiteettikriteeriä on mukautettava tätä lajia varten.
Alternatively, the worms designated for sampling during the elimination phase may be exposed in one large container containing spiked sediment of the same batch as used for uptake kinetics.
Tämän liitteen luku C.13.
It should be demonstrated that the test conditions (e.g. sediment depth, sediment water ratio, loading, temperature, water quality) are comparable to the replicates designated for the uptake phase.
Biokertyvyys: testi kaloilla läpivirtausolosuhteissa.
At the end of the uptake phase, water, sediment and worm samples should be taken from this container for analysis, and a sufficient number of large worms that show no sign of recent fragmentation, should be removed carefully and transferred to the replicates prepared for the elimination phase (e.g. ten organisms per replicate vessel).
Tämän liitteen luku C.27 – Surviaissääskillä tehtävä myrkyllisyystesti, käyttäen vettä tai sedimenttiä, joihin on lisätty tutkittavaa ainetta.
If no solvent other than water is used, at least 9 replicates of a negative control (at least 3 sampled at start, 3 at end of uptake and 3 at end of elimination) should be provided for biological and background analysis.
Workshop on ’Bioaccumulation: Sediment test using benthic oligochaetes’, 26.-27.04.1999, Hochheim/Main, Germany.
If any solubilising agent is used for application of the test substance, a solvent control should be run (at least 3 replicates should be sampled at start, 3 at the end of the uptake phase, and 3 at the end of the elimination phase).
Report on the R+D-project No.
In this case, at least 4 replicates of a negative control (no solvent) should be provided for sampling at the end of the uptake phase.
R. Nagel and R. Loskill (eds.):
These replicates can be compared biologically with the solvent control in order to gain information on possible influence of the solvent on the test organisms.
Bioaccumulation of lipophilic compounds from sediments by oligochaetes.
Details are given in Appendix 3.
Wat.
Frequency of water quality measurements
Res.
As a minimum, the following water quality parameters should be measured in the overlying water during uptake and elimination phase:
23, 1443–1450.
temperature in the surrounding medium (ambient air or water bath) or in one representative test vessel may also be recorded e.g. in continuous or hourly intervals;
Wat.
Dissolved oxygen content
24, 1225–1231.
in one vessel of each treatment level, and in one control vessel per sampling date;
Luku A.5 Pintajännitys
expressed as mg/L and % ASV (air saturation value);
Luku C.4 A–F Biohajoavuuden määritys
Air supply
Luku C.19 Maa-aineksiin ja viemärilietteeseen sovellettavan adsorptiokertoimen (KOC) määritys korkean suorituskyvyn nestekromatografialla
controlled at least once per day (workdays) and adjusted if needed;
Luku C.29 Biohajoavuus – CO2 suljetuissa astioissa.
in one treated vessel of each treatment level per sampling date, and in one control vessel once per week and at the start and the end of the uptake and elimination period;
In Hutzinger, O. (editor), The Handbook of Environmental Chemistry, Vol.
Total water hardness
2 Part J (Vol. editor: B. Beek):
at least in one treated vessel and one control test vessel at the start and the end of the uptake and elimination period, expressed as mg/l CaCO3;
Influence of partition coefficient of lipophilic compounds on bioconcentration kinetics with fish.
Total ammonia content
Wat.
at least in one treated vessel and one control test vessel at the start and the end of the uptake and elimination period;
Wat.
Sampling and analysis of worms, sediment, and water
22, 701–707.
Sampling Schedule
Development of ecotoxicological test systems to assess contaminated sediments.
Examples of sampling schedules for a 28-day uptake phase and a 10-day elimination phase are given in Appendix 3.
Joint report no.
Sample the water and sediment from the test chambers for determination of test substance concentration before adding the worms, and during both uptake and elimination phases.
A. Mudroch, J.M.
During the test the concentrations of test substance are determined in the worms, sediment, and water in order to monitor the distribution of the test substance in the compartments of the test system.
Ylärajan määrittää vaatimus, jonka mukaan jakaantumistasapainossa tehtyjen säätötoimenpiteiden jälkeen erotusfaasin on oltava täydellinen, ennen kuin näytteitä otetaan analyyttisiä määrityksiä varten.
Sample the worms, sediment, and water on at least six occasions during the uptake as well as the elimination phase.
Asianmukaista huolellisuutta noudatettaessa ylärajaa voidaan nostaa Pow-arvon ylempiin arvoihin saakka.
Continue sampling until a plateau (steady state) has been established (see Appendix 1) or for 28 days.
Neuvoston direktiivi 91/271/ETY, annettu 21 päivänä toukokuuta 1991, yhdyskuntajätevesien käsittelystä, EYVL L 135, 30.5.1991, s. 40.
If the plateau has not been reached within 28 days, begin the elimination phase.
Samaa menettelyä käytetään myös vertailukemikaalille pulloissa FR1–3
When beginning the elimination phase, transfer the designated worms to replicate chambers containing untreated sediment and water (see also paragraphs 17 and 18).
Suositeltu koko on 0,1–1 litraa.
Sampling and sample preparation
Kaasutiiviiden silikonitulppien käyttö on suositeltavaa.
Obtain water samples by decanting, siphoning or pipetting a volume sufficient for measuring the quantity of the test substance in the sample.
Lisäksi suositellaan, että tulppien, etenkin butyylikumitulppien, kaasutiiviys testataan, koska monet kaupallisesti saatavilla olevat tulpat eivät ole riittävän tiiviitä metaanin suhteen, ja jotkin tulpat eivät pysy tiiviinä, kun ne puhkaistaan neulalla testiolosuhteissa.Suositeltavia ovat kaasutiiviit, pinnoitetut tulpat, joiden käyttö on pakollista haihtuville kemikaaleille (osa kaupallisesti saatavista tulpista on verrattain ohuita, alle 0,5 cm, ja niiden kaasutiiviys menetetään, kun ne puhkaistaan ruiskuneulalla);Jos testikemikaalit eivät ole haihtuvia, suositeltavia ovat noin 1 cm:n butyylikumitulpat, jotka pysyvät yleensä kaasutiiviinä myös neulalla puhkaisun jälkeen.Ennen testin aloittamista on suositeltavaa tutkia tarkasti, pysyvätkö tulpat kaasutiiviinä neulalla puhkaisun jälkeen.
The remaining overlying water is carefully decanted or siphoned from the test chamber(s).
Mittarin käytössä ja sen säännöllisin väliajoin tehtävässä kalibroinnissa noudatetaan valmistajan ohjeita.
Sediment samples should be taken carefully, causing minimal disturbance of the worms.
Jos testissä käytetään kuvatun mukaista painemittaria (esimerkiksi sellaista, jossa on teräskalvo), sitä ei tarvitse kalibroida laboratoriossa.
Remove all worms from the test replicate at the sampling time, e.g. by suspending the sediment with overlying water and spreading the contents of each replicate on a shallow tray and picking the worms using soft steel forceps.
Mittarin kalibrointi tehdään suositusten mukaisin väliajoin lisensoidun kalibrointilaitoksen toimesta.
Rinse them quickly with water in a shallow glass or steel tray.
Kalibroinnin tarkkuus voidaan tarkistaa laboratoriossa yksipistemittauksella 1 × 105 Pa:n paineella sellaisella painemittarilla, jossa on mekaaninen näyttö.
Remove the excess water.
Kun tämä piste mitataan oikein, myös lineaarisuus pysyy muuttumattomana.