natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For this, plant material must be used instead of fish food, e.g. addition of 0,5 % (dry weight) finely ground leaves of e.g. stinging nettle (Urtica dioica), mulberry (Morus alba), white clover (Trifolium repens), spinach (Spinacia oleracea) or of other plant material (Cerophyl or alpha-cellulose) may be used.
Tässä tapauksessa on käytettävä kalanruoan sijaan kasviainesta, kuten 0,5 prosenttia (kuivapaino) nokkosen (Urtica dioica), valkomulperin (Morus alba), valkoapilan (Trifolium repens), pinaatin (Spinacia oleracea) tai muun kasviaineksen (Cerophyl tai alfaselluloosan) hienoksi jauhettuja lehtiä.
The test is conducted at a constant temperature of 20 °C (± 2 °C).
Testi tehdään vakiolämpötilassa 20 °C (± 2 °C).
For C. tentans and C. yoshimatui recommended temperatures are 23 °C and 25 °C (± 2 °C), respectively.
Suositeltu lämpötila C. tentans -lajille on 23 °C (± 2 °C) ja C. yoshimatui -lajille 25 °C (± 2 °C).
A 16 hours photoperiod is used and the light intensity should be 500 to 1000 lux.
Valoisa aika on 16 tuntia, ja valon voimakkuuden pitää olla 500–1000 luksia.
Exposure duration
Altistuksen kesto
The exposure commences with the addition of larvae to the spiked and control vessels.
Altistus alkaa, kun toukat lisätään astioihin, joissa on testiainetta, ja kontrolliastioihin.
The maximum exposure duration is 28 days for C. riparius and C. yoshimatsui, and 65 days for C. tentans.
Altistuksen enimmäiskesto on 28 vuorokautta lajeille C. riparius ja C. yoshimatsui, ja 65 vuorokautta lajille C. tentans.
If midges emerge earlier, the test can be terminated after a minimum of five days after emergence of the last adult in the control.
Jos sääsket kuoriutuvat aikaisemmin, testi voidaan lopettaa vähintään viisi päivää sen jälkeen, kun viimeinen surviaissääski on kasvanut täysikasvuiseksi kontrollissa.
Emergence
Kuoriutuminen
The development time and the total number of fully emerged male and female midges are determined.
Kehitysaika ja täysin kuoriutuneiden uros- ja naarassääskien yhteismäärä määritetään.
Males are easily identified by their plumose antennae.
Urokset tunnistaa helposti sulkamaisista tuntosarvista.
The test vessels should be observed at least three times per week to make visual assessment of any abnormal behaviour (e.g. leaving sediment, unusual swimming), compared with the control.
Testiastioita on tarkkailtava vähintään kolmesti viikossa ja epänormaalia käyttäytymistä on arvioitava silmämääräisesti (esim. sedimentistä poistuminen, epätavallinen uinti) kontrolliin verrattuna.
During the period of expected emergence a daily count of emerged midges is necessary.
Sääsket on laskettava päivittäin, kun kuoriutuminen on odotettavissa.
The sex and number of fully emerged midges are recorded daily.
Täysikasvuisten sääskien sukupuoli ja lukumäärä kirjataan päivittäin.
After identification the midges are removed from the vessels.
Tunnistuksen jälkeen sääsket poistetaan astioista.
Any egg masses deposited prior to the termination of the test should be recorded and then removed to prevent re-introduction of larvae into the sediment.
Ennen testin loppua mahdollisesti munitut munamassat on kirjattava ylös ja poistettava, jottei sedimenttiin tule lisää toukkia.
The number of visible pupae that have failed to emerge is also recorded.
Myös niiden näkyvissä olevien koteloiden määrä, jotka eivät ole kuoriutuneet, on merkittävä ylös.
Guidance on measurement of emergence is provided in Appendix 5.
Kuoriutumisen mittausohjeet ovat lisäyksessä 5.
Growth and survival
Kasvu ja eloonjäänti
If data on 10-day larval survival and growth are to be provided, additional test vessels should be included at the start, so that they may be used subsequently.
Jos tiedot 10 vuorokauden toukkien eloonjäännistä ja kasvusta tarvitaan, testin alussa on otettava käyttöön ylimääräisiä testiastioita myöhempää käyttöä varten.
The sediment from these additional vessels is sieved using a 250 μm sieve to retain the larvae.
Toukat seulotaan ylimääräisten astioiden sedimentistä 250 μm:n seulalla.
Criteria for death are immobility or lack of reaction to a mechanical stimulus.
Kuolleiksi lasketaan toukat, jotka eivät liiku tai reagoi mekaanisiin ärsykkeisiin.
Larvae not recovered should also be counted as dead (larvae which have died at beginning of the test may have been degraded by microbes).
Myös ne toukat, joita ei otettu talteen, lasketaan kuolleiksi (mikrobit ovat saattaneet hajottaa testin alussa kuolleet toukat).
The (ash free) dry weight of the surviving larvae per test vessel is determined and the mean individual dry weight per vessel calculated.
Eloonjääneiden toukkien (tuhkaton) kuivapaino testiastiaa kohden määritetään ja yksilön keskimääräinen kuivapaino astiassa lasketaan.
It is useful to determine which instar the surviving larvae belong to; for that measurement of the width of the head capsule of each individual can be used.
On hyödyllistä määrittää, missä kehitysvaiheessa eloonjääneet toukat ovat. Tähän tarkoitukseen voidaan mitata kunkin toukan pääkapselin leveys.
Concentration of the test substance
Testiaineen pitoisuus
Prior to test commencement (i.e. addition of larvae), samples of bulk sediment are removed from at least one vessel per treatment for the analytical determination of the test substance concentration in the sediment.
Ennen testin aloittamista (eli toukkien lisäämistä) otetaan sedimenttinäytteet (bulk) vähintään yhdestä astiasta käsittelyä kohden, jotta testiaineen pitoisuus sedimentissä voidaan määrittää.
It is recommended that, as a minimum, samples of the overlying water, the pore water and the sediment be analysed at the start (see paragraph 24) and at the end of the test, at the highest concentration and a lower one.
On suositeltavaa, että vähintään yläpuolisen veden, huokosveden ja sedimentin näytteet analysoidaan testin alussa (katso kohta 24) ja lopussa suurimmassa pitoisuudessa ja matalammassa pitoisuudessa.
These determinations of test substance concentration inform about the behaviour/partitioning of the test substance in the water-sediment system.
Testiaineen pitoisuudesta saadaan tietoa testiaineen käyttäytymisestä ja jakautumisesta vesi-sedimenttisysteemissä.
When intermediate measurements are made (e.g. at day 7) and if the analysis needs large samples which cannot be taken from test vessels without influencing the test system, analytical determinations should be performed on samples from additional test vessels treated in the same way (including the presence of test organisms) but not used for biological observations.
Jos välimittauksia tehdään (esim päivänä 7) ja analyysiin tarvitaan suuria näytteitä, joiden ottaminen testiastioista vaikuttaisi testijärjestelmään, analyyttisiin määrityksiin käytetään ylimääräisistä testiastioista otettuja näytteitä. Näitä astioita käsitellään samalla tavoin kuin testiastioita (mukaan lukien testiorganismien lisääminen), mutta niitä ei käytetä biologiseen havainnointiin.
In some cases it might not be possible to analyse concentrations in the pore water as the sample size is too small.
Joskus pitoisuuksien analysointi huokosvedestä ei ole mahdollista, koska näyte on liian pieni.
Physical-chemical parameters
Fysikaalis-kemialliset parametrit
pH and temperature of the test vessels should be measured in an appropriate manner (see paragraph 10).
Testiastioiden pH ja lämpötila on mitattava asiaankuuluvasti (katso kohta 10).
Hardness and ammonia should be measured in the controls and one test vessel at the highest concentration at the start and the end of the test.
Kovuus ja ammoniakki on mitattava kontrolliastioissa ja yhdessä testiastiassa suurimmalla pitoisuudella testin alussa ja lopussa.
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the development rate and the total number of fully emerged male and female midges, or in the case of the 10-day test effects on survival and weight of the larvae.
Tämän testin tarkoituksena on määrittää testiaineen vaikutus uros- ja naarassääskien kehittymisnopeuteen ja täysin kuoriutuneiden sääskien kokonaismäärään. 10 päivän testissä määritetään vaikutukset toukkien eloonjääntiin ja painoon.
If there are no indications of statistically different sensitivities of sexes, male and female results may be pooled for statistical analyses.
Jos eri sukupuolten herkkyydessä ei ilmene tilastollisesti merkitsevää eroa, urosten ja naaraiden tulokset voidaan yhdistää tilastollisia analyysejä varten.
The sensitivity differences between sexes can be statistically judged by e.g. a χ2-r × 2 table test.
Sukupuolten väliset herkkyyserot voidaan määrittää tilastotieteellisesti esimerkiksi χ2-r × 2 -taulukkotestillä.
Larval survival and mean individual dry weight per vessel must be determined after 10 days where required.
Toukkien eloonjäänti ja yksilön keskimääräinen kuivapaino astiaa kohden määritetään 10 päivän kuluttua, jos tarpeen.
Effect concentrations expressed and based on dry weight, are calculated preferably based on measured sediment concentrations at the beginning of the test (see paragraph 38).
Kuivapainoon perustuvat vaikutuspitoisuudet lasketaan mieluiten testin alussa mitattujen sedimenttipitoisuuksien perusteella (katso kohta 38).
To compute a point estimate for the EC50 or any other ECx, the per-vessel statistics may be used as true replicates.
:n tai minkä tahansa muun ECx:n piste-estimaattia laskettaessa astiakohtaisia tilastotietoja voidaan käyttää aitoina toistoina.
In calculating a confidence interval for any ECx the variability among vessels should be taken into account, or it should be shown that this variability is so small that it can be ignored.
Laskettaessa minkä tahansa ECx-arvon luottamusväliä astioiden välinen vaihtelu on otettava huomioon tai vaihtoehtoisesti osoitettava vaihtelu niin pieneksi, että se voidaan jättää huomiotta.
When the model is fitted by Least Squares, a transformation should be applied to the per-vessel statistics in order to improve the homogeneity of variance.
Jos malliin sovelletaan pienimmän neliösumman menetelmää, astiakohtaisiin tilastotietoihin on sovellettava muunnosta, jotta varianssin homogeenisuus paranee.
However, ECx values should be calculated after the response is transformed back to the original value.
ECx-arvot on kuitenkin laskettava sen jälkeen, kun vaste on muunnettu takaisin alkuperäisarvoon.
When the statistical analysis aims at determining the NOEC/LOEC by hypothesis testing, the variability among vessels needs to be taken into account, e.g. by a nested ANOVA.
Kun NOEC/LOEC on tarkoitus määrittää tilastollisen hypoteesin testillä, astioiden välinen vaihtelu on huomioitava esimerkiksi hierarkkisella ANOVAlla.
Alternatively, more robust tests (21) can be appropriate in situations where there are violations of the usual ANOVA assumptions.
Robustimpia testejä (21) voidaan käyttää soveltuvissa tilanteissa, kun tavalliset ANOVAn oletukset eivät täyty.
Emergence ratio
Kuoriutumisaste
Emergence ratios are quantal data, and can be analyzed by the Cochran-Armitage test applied in step-down manner where a monotonic dose-response is expected and these data are consistent with this expectation.
Kuoriutumisasteet ovat dikotomisia tietoja, ja ne voidaan analysoida Cochran-Armitagen testillä, jota sovelletaan alaspäin askeltavasti, kun monotoninen annosvaste on odotettavissa, ja näitä tietoja pidetään tämän odotuksen mukaisina.
If not, a Fisher’s exact or Mantel-Haenszel test with Bonferroni-Holm adjusted p-values can be used.
Jos näin ei ole, voidaan käyttää Fisherin tarkkaa testiä tai Mantel-Haenszelin testiä, jossa p-arvot on korjattu Bonferroni-Holmin menetelmällä.
If there is evidence of greater variability between replicates within the same concentration than a binomial distribution would indicate (often referenced as “extra-binomial” variation), then a robust Cochran-Armitage or Fisher exact test such as proposed in (21), should be used.
Jos on näyttöä siitä, että saman pitoisuuden toistojen välinen varianssi on suurempi kuin binomijakauma antaa edellyttää (ylihajonta), voidaan käyttää Cochran-Armitagen testiä tai Fisherin tarkkaa testiä (21).
The sum of midges emerged per vessel, ne, is determined and divided by the number of larvae introduced, na:
Kuoriutuneiden sääskien määrä astiassa (ne) määritetään, ja summa jaetaan lisättyjen sääskien määrällä (na):
emergence ratio
ER kuoriutumisaste
number of midges emerged per vessel
kuoriutuneiden sääskien määrä astiassa
number of larvae introduced per vessel
astiaan lisättyjen toukkien määrä
An alternative that is most appropriate for large sample sizes, when there is extra binomial variance, is to treat the emergence ratio as a continuous response and use procedures such as William’s test when a monotonic dose-response is expected and is consistent with these ER data.
Kun näytekoko on suuri ja ylihajontaa esiintyy, paras vaihtoehto on pitää kuoriutumisastetta jatkuvana vasteena ja käyttää esimerkiksi Williamsin testiä, kun monotoninen annosvaste on odotettavissa ja yhdenmukainen kuoriutumisastetietojen kanssa.
Dunnett’s test would be appropriate where monotonicity does not hold.
Dunnettin testi soveltuu, kun monotonisuutta ei esiinny.
A large sample size is defined here as the number emerged and the number not emerging both exceeding five, on a per replicate (vessel) basis.
Näytekoko määritetään tässä suureksi, jos sekä kuoriutuneiden että kuoriutumattomien toukkien määrä on toistossa (astiassa) yli viisi.
To apply ANOVA methods values of ER should first be transformed by the arcsin-sqrt-transformation or Freeman-Tukey transformation to obtain an approximate normal distribution and to equalise variances.
Jos halutaan soveltaa ANOVA-menetelmiä, ER-arvot on ensin muunnettava arcsin-neliöjuuri-muunnoksella tai Tukey-Freemanin muunnoksella, jotta saadaan likimääräinen normaalijakauma ja varianssi tasoittuu.
The Cochran-Armitage, Fisher’s exact (Bonferroni), or Mantel-Haenszel tests can be applied when using the absolute frequencies.
Cochran-Armitagen testiä, Fisherin tarkkaa testiä (Bonferroni) tai Mantel-Haenszelin testiä voidaan soveltaa, kun käytetään absoluuttisia frekvenssejä.
The arcsin-sqrt transformation is applied by taking the inverse sine (sin-1) of the square root of ER.
Arcsin-neliöjuuri-muunnosta sovelletaan ottamalla kuoriutumisasteen neliöjuuren käänteinen sini (sin–1).
For emergence ratios, ECx-values are calculated using regression analysis (or e.g. probit (22), logit, Weibull, appropriate commercial software etc.).
Kuoriutumisasteissa ECx-arvot lasketaan käyttämällä regressioanalyysiä (tai esim. probit- (22), logit- tai Weibull-mallia tai soveltuvaa kaupallista ohjelmistoa).
If regression analysis fails (e.g. when there are less than two partial responses), other non-parametric methods such as moving average or simple interpolation are used.
Jos regressioanalyysi epäonnistuu (esim. osittaisia vasteita on alle kaksi), käytetään muita parametrittomia menetelmiä, kuten liukuvaa keskiarvoa tai yksinkertaista interpolaatiota.
Development rate
Kehittymisnopeus
The development rate is the reciprocal of the development time (unit: 1/day) and represents that portion of larval development which takes place per day.
(Aidon kehittymisajan laskennassa on huomioitava toukkien ikä lisäyshetkellä.) Kehittymisnopeus on kehittymisajan käänteisluku (yksikkö: 1/vrk) ja edustaa päivässä tapahtuvaa toukkien kehittymistä.
The development rate is preferred for the evaluation of these sediment toxicity studies as its variance is lower, and it is more homogeneous and closer to normal distribution as compared to development time.
Kehittymisnopeuden käyttö on suositeltavaa näiden sedimentin toksisuuskokeiden arvioinnissa, sillä sen varianssi on pienempi ja se on homogeenisempi ja lähempänä normaalijakaumaa kuin kehittymisaika.
Hence, powerful parametric test procedures may be used with development rate rather than with development time.
Siksi tehokkaita parametritestimenetelmiä käytetään mieluummin kehittymisnopeuden kuin kehittymisajan kanssa.
For development rate as a continuous response, ECx-values can be estimated by using regression analysis (e.g. (23), (24)).
Kun kehittymisnopeus on jatkuva vaste, ECx-arvot voidaan estimoida regressioanalyysillä (esim. (23), (24)).
For the following statistical tests, the number of midges observed on inspection day × are assumed to be emerged at the mean of the time interval between day x and day x – l (l = length of the inspection interval, usually 1 day).
Seuraavissa tilastollisissa testeissä oletetaan, että tarkastuspäivänä × havaittu sääskimäärä kuoriutuu päivän x ja päivän x-l välissä (l = tarkastusvälin pituus, yleensä 1 päivä).
The mean development rate per vessel (x) is calculated according to:
Keskimääräinen kehittymisnopeus astiassa (x) lasketaan seuraavasti:
mean development rate per vessel
keskimääräinen kehittymisnopeus astiassa
i index of inspection interval
i tarkastusvälin indeksi
maximum number of inspection intervals
m tarkastusvälien enimmäismäärä
number of midges emerged in the inspection interval i
tarkastusvälissä i kuoriutuneiden sääskien määrä
total number of midges emerged at the end of experiment (=
testin lopussa kuoriutuneiden sääskien kokonaismäärä (=
development rate of the midges emerged in interval i
tarkastusvälissä i kuoriutuneiden sääskien kehittymisnopeus
inspection day (days since application)
tarkastuspäivä (päivää lisäyksen jälkeen)
length of inspection interval i (days, usually 1 day)
tarkastusvälin i pituus (päivissä, yleensä 1 päivä)
The test report must at least provide the following information:
Testiraportin on sisällettävä vähintään seuraavat tiedot:
physical nature and, where relevant, physical-chemical properties (water solubility, vapour pressure, partition coefficient in soil (or in sediment if available), stability in water, etc.);
fysikaalinen olomuoto ja tarvittaessa fysikaalis-kemialliset ominaisuudet (vesiliukoisuus, höyrynpaine, jakaantumiskerroin maa-aineksessa (tai sedimentissä, jos saatavissa), stabiilisuus vedessä jne.)
chemical identification data (common name, chemical name, structural formula, CAS number, etc.) including purity and analytical method for quantification of test substance.
kemialliset tunnistetiedot (yleisnimi, kemiallinen nimi, rakennekaava, CAS-numero jne.) sekä puhtaus ja testiaineen kvantifioinnissa käytetty analyysimenetelmä.
test animals used: species, scientific name, source of organisms and breeding conditions;
käytetyt koe-eläimet: lajit, tieteellinen nimi, eliöiden lähde ja kasvatusolosuhteet
information on handling of egg masses and larvae;
tiedot munamassojen ja toukkien käsittelystä
age of test animals when inserted into test vessels.
koe-eläinten ikä testiastioihin lisättäessä.
sediment used, i.e. natural or formulated sediment;
käytetty sedimentti, eli luonnollinen vai synteettinen sedimentti
for natural sediment, location and description of sediment sampling site, including, if possible, contamination history; characteristics: pH, organic carbon content, C/N ratio and granulometry (if appropriate).
luonnollisen sedimentin osalta sedimentin näytteenottopaikan sijainti ja kuvaus, mukaan lukien, jos mahdollista, kontaminaatiohistoria, ominaisuudet: pH, orgaanisen hiilen pitoisuus, C/N-suhde ja rakeisuus (tarvittaessa)
preparation of the formulated sediment: ingredients and characteristics (organic carbon content, pH, moisture, etc. at the start of the test);
synteettisen sedimentin valmistus: ainesosat ja niiden ominaisuudet (orgaanisen hiilen pitoisuus, pH, kosteus jne. testin alussa)
preparation of the test water (if reconstituted water is used) and characteristics (oxygen concentration, pH, conductivity, hardness, etc. at the start of the test);
testiveden valmistus (jos käytetään synteettistä vettä) ja ominaisuudet (happipitoisuus, pH, johtavuus, kovuus jne. testin alussa)
depth of sediment and overlying water;
sedimentin ja sen päällä olevan veden syvyys
volume of overlying and pore water; weight of wet sediment with and without pore water;
sedimentin päällä olevan veden ja huokosveden tilavuus, märän sedimentin paino huokosveden kanssa ja ilman huokosvettä
test vessels (material and size);
testiastiat (materiaali ja koko)
method of spiking sediment: test concentrations used, number of replicates and use of solvent if any;
tapa, jolla testiaine lisättiin sedimenttiin: käytetyt pitoisuudet, toistojen määrä ja mahdollisen liuottimen käyttö
stabilisation equilibrium phase of the spiked sediment-water system: duration and conditions;
vesi-sedimenttisysteemin stabilointivaihe: kesto ja olosuhteet
incubation conditions: temperature, light cycle and intensity, aeration (frequency and intensity);
inkubaatio-olosuhteet: lämpötila, valojakso ja valon voimakkuus, ilmastus (taajuus ja voimakkuus)
detailed information on feeding including type of food, preparation, amount and feeding regime.
yksityiskohtaiset tiedot syöttämisestä, kuten ravinnon tyyppi, valmistus, määrä ja syöttöaikataulu.
the nominal test concentrations, the measured test concentrations and the results of all analyses to determine the concentration of the test substance in the test vessel;
kaikki nimelliset testipitoisuudet, mitatut testipitoisuudet ja tulokset kaikista analyyseistä, joilla määritettiin testiaineen pitoisuus testiastiassa
water quality within the test vessels, i.e. pH, temperature, dissolved oxygen, hardness and ammonia;
testiastioissa olevan veden laatu, eli pH, lämpötila, liuennut happi, kovuus ja ammoniakki
replacement of evaporated test water, if any;
mahdollinen haihtuneen testiveden korvaus
number of emerged male and female midges per vessel and per day;
kuoriutuneiden uros- ja naarassääskien määrä astiassa päivää kohden
number of larvae which failed to emerge as midges per vessel;
kuoriutumattomien toukkien määrä astiassa
mean individual dry weight of larvae per vessel, and per instar, if appropriate;
toukkien keskimääräinen kuivapaino astiaa kohden, kehitysasteittain jos tarpeen
percent emergence per replicate and test concentration (male and female midges pooled);
kuoriutumisprosentti rinnakkaisnäytteessä ja testipitoisuudessa (uros- ja naarassääsket yhteensä)
mean development rate of fully emerged midges per replicate and treatment rate (male and female midges pooled);
täysin kuoriutuneiden sääskien keskimääräinen kehittymisnopeus rinnakkaisnäytteessä ja testissä (uros- ja naarassääsket yhteensä)
estimates of toxic endpoints e.g. ECx (and associated confidence intervals), NOEC and/or LOEC,, and the statistical methods used for their determination;
toksisten tutkittavien ominaisuuksien estimaatit, kuten ECx (ja siihen liittyvät luottamusvälit), NOEC ja/tai LOEC, ja niiden määrittämiseen käytetyt tilastolliset menetelmät
discussion of the results, including any influence on the outcome of the test resulting from deviations from this Test Method.
tulosten pohdinta, mukaan luettuna mahdolliset vaikutukset, joita tästä testimenetelmästä poikkeamisella on ollut testin tuloksiin.
Test Method C.8 of this Annex, Toxicity for Earthworms.
Tämän liitteen testimenetelmä C.8: Myrkyllisyystutkimus madoilla.
For the purpose of this Test Method the following definitions are used:
Tässä testimenetelmässä käytetään seuraavia määritelmiä:
Formulated sediment or reconstituted, artificial or synthetic sediment, is a mixture of materials used to mimic the physical components of a natural sediment.
Synteettinen sedimentti on luonnollisen sedimentin fyysisiä ainesosia jäljittelevistä materiaaleista valmistettu seos.
Overlying water is the water placed over sediment in the test vessel.
Yläpuolinen vesi on testiastiassa sedimentin päällä oleva vesi.
Interstitial water or pore water is the water occupying space between sediment and soil particles.
Huokosvesi on sedimenttirakeiden välissä olevaa vettä.
Spiked sediment is sediment to which test substance has been added.
Sedimentti, johon on lisätty testiaine.
Recommendations for culture of Chironomus riparius
Chironomus riparius -lajin kasvatussuosituksia
Chironomus larvae may be reared in crystallising dishes or larger containers.
Chironomus-toukkia voi kasvattaa kiteytysmaljoissa tai suurissa astioissa.
Fine quartz sand is spread in a thin layer of about 5 to 10 mm deep over the bottom of the container.
Astian pohjalle levitetään noin 5–10 mm:n paksuinen kerros hienoa kvartsihiekkaa.