natgillin/translations-raw huggingface dataset:
α-cholestanol internal standard solution, 0,2 % solution (m/V) in ethyl acetate (point 4.11).
α-Kolestanoli, sisäisen standardin mukainen liuos, 0,2-prosenttisena (m/v) etyyliasetaattiluoksena (4.11 kohta).
Phenolphthalein solution, 10 g/L in ethanol (point 4.10).
Fenoliftaleiini, 10 g liuotettuna litraan etanolia (4.10 kohta).
Auxiliary gases: hydrogen, helium, nitrogen and air, of gas-chromatographic purity.
Apukaasut: vety, helium, typpi ja ilma, kaasukromatografista laatua.
n-Hexane (point 4.9)/ethyl ether (point 4.10) mixture 65:35 (V/V).
n-Heksaanin (4.9 kohta) ja etyylieetterin (4.10 kohta) seos 65:35 (v/v).
Silylation reagent, consisting of a 9:3:1 (V/V/V) mixture of pyridine/hexamethyl disilazane/trimethylchlorosilane.
Silylointireagenssi, jossa on pyridiiniä, heksametyylidisilatsaania ja trimetyylikloorisilaania tilavuussuhteessa 9:3:1.
Preparation of the unsaponifiable matter.
Saippuoitumattomien aineiden esikäsittely
Using a 500 μl microsyringe (point 3.6) introduce into the 250 ml flask (point 3.1) a volume of the α-cholestanol internal standard solution (point 4.20) containing an amount of cholestanol corresponding to approximately 10 % of the sterol content of the sample.
250 ml:n pulloon (3.1 kohta) lisätään 500 μl:n mikroruiskulla (3.6 kohta) sellainen tilavuusmäärä α-kolestanolin sisäisen standardin mukaista liuosta (4.20 kohta) jonka sisältämä kolestanolin määrä on noin 10 prosenttia sterolin määrästä näytteessä.
For example, for 5 g of olive oil sample add 500 μl of the α-cholestanol solution (point 4.20) and 1500 μl for olive-pomace oil.
Esimerkiksi 5 gramman oliiviöljynäytteeseen lisätään 500 μl α-kolestanoliliuosta (4.20 kohta), ja jos näytteenä on oliivin puristemassaöljyä, lisätään 1500 μl α-kolestanoliliuosta.
Evaporate until dryness with a gentle current of nitrogen in a warm water bath, after cooling the flask, weigh 5 ± 0,01 g of the dry filtered sample into the same flask.
Haihdutetaan kuiviin kevyessä typpivirrassa lämpimässä vesihauteessa ja pullon jäähdyttyä punnitaan 5 ± 0,01 g kuivattua, suodatettua näytettä samaan pulloon.
Animal or vegetable oils and fats containing appreciable quantities of cholesterol may show a peak having a retention time close to cholestanol.
Eläin- ja kasviperäiset rasvat ja öljyt, jotka sisältävät paljon kolesterolia, voivat tuottaa piikin, jonka retentioaika on lähes sama kuin kolestanolin.
If this occurs, the sterol fraction will have to be analysed in duplicate with and without internal standard.
Jos käy näin, sterolifraktio on määritettävä kahdesti niin, että toisella kertaa käytetään sisäistä standardia ja toisella ei.
Add 50 ml of 2 N ethanolic potassium hydroxide solution (point 4.2) and some pumice, fit the reflux condenser and heat to gentle boiling until saponification takes place (the solution becomes clear).
Lisätään 50 ml kaliumhydroksidin 2 N etanoliliuosta (4.2 kohta) ja hohkakiveä, käynnistetään palautusjäähdytin ja kuumennetaan vesihauteessa hiljalleen kiehuvaksi koko ajan voimakkaasti sekoittaen, kunnes saippuoituminen on tapahtunut (liuos kirkastuu).
Continue heating for a further 20 minutes, then add 50 ml of distilled water from the top of the condenser, detach the condenser and cool the flask to approximately 30 °C.
Kuumentamista jatketaan vielä 20 minuuttia, sitten lisätään 50 ml tislattua vettä jäähdyttimen yläpäästä, irrotetaan jäähdytin ja jäähdytetään pullo noin 30 °C:n lämpötilaan.
Transfer the contents of the flask quantitatively into a 500 ml separating funnel (point 3.2) using several portions of distilled water (50 ml).
Pullon sisältämä seos siirretään kvantitatiivisesti 500 ml:n erotussuppiloon (3.2 kohta) käyttämällä useita annoksia tislattua vettä (50 ml).
Add approximately 80 ml of ethyl ether (point 4.10), shake vigorously for approximately 60 seconds, periodically releasing the pressure by inverting the separating funnel and opening the stopcock.
Lisätään noin 80 ml etyylieetteriä (4.10 kohta), ravistetaan voimakkaasti noin 60 sekunnin ajan siten, että paine poistetaan ajoittain kääntämällä erotussuppilo ylösalaisin ja avaamalla tulppa.
Allow standing until there is complete separation of the two phases (Note 2).
Annetaan seistä, kunnes kaksi faasia ovat täysin erottuneet (huomautus 2).
Then draw off the soap solution as completely as possible into a second separating funnel.
Sen jälkeen saippualiuos otetaan mahdollisimman tarkoin toiseen erotussuppiloon.
Perform two further extractions on the water-alcohol phase in the same way using 60 to 70 ml of ethyl ether (point 4.10).
Vesi-alkoholifaasi uutetaan vielä kaksi kertaa samalla tavoin käyttämällä 60–70 ml etyylieetteriä (4.10 kohta).
Note 2: Any emulsion can be destroyed by adding small quantities of ethanol (point 4.11).
Huom. 2: Mahdollinen emulsio voidaan hajottaa lisäämällä pieni määrä etanolia (4.11 kohta).
Combine the three ether extracts in one separating funnel containing 50 ml of water.
Yhdistetään kolme eetteriuutetta yhteen erotussuppiloon, joka sisältää 50 ml vettä.
Continue to wash with water (50 ml) until the wash water no longer gives a pink colour on the addition of a drop of phenolphthalein solution (point 4.21).
Pestään vedellä (50 ml kerralla), kunnes pesuvesi ei enää saa vaaleanpunaista väriä, kun siihen lisätään tippa fenoliftaleiiniliuosta (4.21 kohta).
When the wash water has been removed, filter on anhydrous sodium sulphate (point 4.5) into a previously weighed 250 ml flask, washing the funnel and filter with small quantities of ethyl ether (point 4.10).
Kun pesuvesi on poistettu, suodatetaan vedettömän natriumsulfaatin (4.5 kohta) läpi etukäteen punnittuun 250 ml:n pulloon ja pestään suppilo ja suodatin pienillä määrillä etyylieetteriä (4.10 kohta).
Evaporate the solvent by distillation on a rotary evaporator at 30 °C under vacuum.
Liuotin haihdutetaan haihduttimessa 30 °C lämpötilassa tyhjiössä.
Add 5 ml of acetone and remove the volatile solvent completely in a gentle current of air.
Lisätään 5 ml asetonia, ja haihtuva liuotin poistetaan kokonaan kevyessä ilmavirrassa.
Dry the residue in the oven at 103±2 °C for 15 min. Cool in desiccators and weigh to the nearest 0,1 mg.
Jäännöstä kuivatetaan lämpökaapissa 103 ± 2 °C:n lämpötilassa 15 minuutin ajan. Jäähdytetään eksikkaattoreissa ja punnitaan 0,1 mg:n tarkkuudella.
Separation of the sterol and triterpene dialcohols fraction (erythrodiol + uvaol)
Steroli- ja triterpeenidialkoholifraktion (erytrodioli + uvaoli) erottaminen
Remove from the oven and keep in a calcium chloride desiccator (point 3.13) until required for use (plates treated in this way must be used within 15 days).
Kun levyt on otettu lämpökaapista, niitä säilytetään kalsiumkloridia sisältävässä eksikkaattorissa (3.13 kohta) käyttöhetkeen saakka (näin käsitellyt levyt on käytettävä 15 päivän kuluessa).
When basic silica gel plates are used to separate the sterol fraction there is no need to treat the unsaponifiable fraction with alumina.
Kun sterolifraktion erottamiseen käytetään emäksisiä silikageelilevyjä, ei ole tarpeen käsitellä saippuoitumattomia aineita alumiinioksidilla.
In this way all compounds of an acid nature (fatty acids and others) are retained on the spotting line and the sterols band is clearly separated from the aliphatic and triterpene alcohols band.
Näin kaikki happamat aineet (rasvahapot ja muut hapot) jäävät lähtöviivalle. Sterolivyöhyke erottuu selvästi alifaattisten ja triterpeenisten alkoholien vyöhykkeestä.
Place hexane/ethyl ether mixture (point 4.24) (Note 4) into the development chamber, to a depth of approximately 1 cm.
Heksaani-etyylieetteriseosta (4.24 kohta) (huomautus 4) kaadetaan kehitysastiaan niin, että sitä on noin 1 cm.
Close the chamber with the appropriate cover and leave thus for at least half an hour, in a cool place, so that liquid-vapour equilibrium is established strips of filter paper dipping into the eluent may be placed on the internal surfaces of the chamber.
Kehitysastia suljetaan sopivalla kannella ja annetaan seistä avaamatta vähintään puoli tuntia, jotta syntyy neste-höyrytasapaino. Astian sisäseinille voidaan kiinnittää suodatinpaperisuikaleita, jotka ulottuvat eluointiaineeseen.
This reduces developing time by approximately one-third and brings about more uniform and regular elution of the components.
Tämä lyhentää kehitysaikaa lähes kolmanneksella ja aineosat eluoituvat tasaisemmin.
Note 4:
Huom. 4: Kehitysliuos on vaihdettava uuteen ennen jokaista koetta, jotta eluointiolosuhteet olisivat täysin toistettavissa.
The developing mixture needs to be replaced for every test, in order to achieve perfectly reproducible elution conditions, alternative solvent 50:50 (V/V) n-hexane/ethyl ether may be used.
Vaihtoehtoisena liuottimena voidaan käyttää n-heksaani-etyylieetteriseosta (50:50, v/v).
Prepare an approximately 5 % solution of the unsaponifiable (point 5.1.5) in ethyl acetate (point 4.12) and, using the 100 μl microsyringe, depose 0,3 ml of the solution on a narrow and uniform streak on the lower end (2 cm) of the chromatographic plate (point 5.2.1).
Saippuoitumattomista aineista (5.1.5 alakohta) valmistetaan noin 5-prosenttinen etyyliasetaattiliuos (4.12 kohta), jota levitetään 0,3 ml ohuena ja tasaisena nauhana 100 μl:n mikroruiskulla kromatografialevyn (5.2.1 alakohta) alareunaan (2 cm).
In line with the streak, place 2 to 3 μl of the material reference solution (point 4.13), so that the sterol and triterpene dialcohols band can be identified after developing.
Asetetaan 2–3 μl aineiden vertailuliuosta (4.13 kohta) lähtöviivan tasalle niin, että steroli ja triterpeenidialkoholit voidaan tunnistaa kehityksen jälkeen.
Place the plate in the developing chamber prepared as specified in point 5.2.2.
Levy asetetaan kehitysastiaan, joka on valmisteltu 5.2.2 alakohdan ohjeiden mukaan.
The ambient temperature should be maintained between 15 and 20 °C (Note 5).
Ympäristön lämpötilan on oltava 15–20 °C (huomautus 5).
Immediately close the chamber with the cover and allow eluting until the solvent front reaches approximately 1 cm from the upper edge of the plate.
Astian kansi suljetaan heti ja annetaan levyn eluoitua, kunnes liuotinrintama on siirtynyt noin 1 cm:n päähän levyn yläreunasta.
Remove the plate from the developing chamber and evaporate the solvent in a flow of hot air or by leaving the plate for a short while, under a hood.
Levy otetaan kehitysastiasta ja liuotin haihdutetaan kuumassa ilmavirrassa tai panemalla levy joksikin aikaa vetokaappiin.
Note 5: Higher temperature could worsen the separation.
Huom. 5: Korkeampi lämpötila voi haitata erottelua.
Spray the plate lightly and uniformly with the 2,7-dichlorofluorescein solution (point 4.14) and then leave to dry.
Levylle suihkutetaan ohuelti ja tasaisesti 2,7-dikloorifluoreseiiniliuosta (4.14 kohta), ja se jätetään kuivumaan.
When the plate is observed under ultraviolet light, the sterols and triterpene dialcohols bands can be identified through being aligned with the spots obtained from the reference solution (point 4.13).
Sterolin ja triterpeenidialkoholien vyöhykkeet voidaan tunnistaa ultraviolettivalossa kohdistamalla ne vertailuliuoksesta (4.13 kohta) syntyneisiin pisteisiin.
Mark the limits of the bands along the edges of the fluorescence with a black pencil (see TLC plate figure 3).
Vyöhykkeiden ääriviivat merkitään mustalla kynällä fluoresenssin rajoja seuraten (ks. kuva 3, TLC-levy).
By using a metal spatula, scrape off the silica gel of the marked area.
Silikageelikerros raaputetaan merkityltä alueelta metallilastalla.
Place the finely comminuted material removed into the filter funnel (point 3.7).
Saatu aines hienonnetaan, siirretään suodatinsuppiloon (3.7 kohta), lisätään 10 ml kuumaa etyyliasetaattia (4.12 kohta), sekoitetaan huolellisesti metallilastalla ja suodatetaan tyhjiössä. Suodos kerätään suodatinsuppiloon liitettyyn erlenmeyerpulloon (3.8 kohta).
Add 10 ml of hot ethyl acetate (point 4.12), mix carefully with the metal spatula and filter under vacuum, collecting the filtrate in the conical flask (point 3.8.) attached to the filter funnel.
Pulloon jäänyt aines pestään kolme kertaa noin 10 ml:lla etyylieetteriä (4.3 kohta), ja suodos kerätään samaan, suodatinsuppiloon liitettyyn pulloon.
Wash the residue in the flask three times with ethyl ether (point 4.3) (approximately 10 ml each time), collecting the filtrate in the same flask attached to the funnel, evaporate the filtrate to a volume of 4 to 5 ml, transfer the residual solution to the previously weighed 10 ml test tube (point 3.9), evaporate to dryness by mild heating, in a gentle flow of nitrogen, make up again using a few drops of acetone (point 4.8), evaporate again to dryness,
Suodosta haihdutetaan, kunnes sen tilavuus on noin 4–5 ml, ja jäännösliuos kaadetaan etukäteen punnittuun 10 ml:n koeputkeen (3.9 kohta). Liuosta kuivataan alhaisella lämmöllä kevyessä typpivirrassa; jäännös liuotetaan muutamaan tippaan asetonia (4.8 kohta) ja kuivataan jälleen.
The residue contained in the test tube must consist of the sterol and triterpene dialchols fractions.
Koeputkessa olevan jäännöksen on sisällettävä steroli- ja triterpeenidialkoholifraktio.
Preparation of the trimethylsilyl ethers.
Trimetyylisilyylieettereiden valmistus
Add the silylation reagent (point 4.25) (Note 6), in the ratio of 50 μl for every milligram of sterols and triterpene dialcohols, in the test tube containing the sterol and triterpene fraction, avoiding any uptake of moisture (Note 7).
Koeputkessa olevaan steroli- ja triterpeenifraktioon lisätään 50 μl silylointireagenssia (4.25 kohta) (huomautus 6) jokaista koeputkessa olevaa sterolien ja triterpeenidialkoholien milligrammaa kohti niin, että kosteutta ei pääse mukaan (huomautus 7).
Ready for use solutions are available commercially.
Käyttövalmiita liuoksia on kaupan.
Other silylation reagents, such as, for example, bistrimethylsilyl trifluor acetamide + 1 % trimethylchlorosilane, which has to be diluted with an equal volume of anhydrous pyridine, are also available.
Saatavana on myös muita silylointireagensseja, kuten esim. bistrimetyylisilyylitrifluoriasetamidi + 1 % trimetyylikloorisilaania; reagenssi laimennetaan samalla määrällä vedetöntä pyridiiniä.
Pyridine can be replaced by the same amount of acetonitrile.
Pyridiini voidaan korvata samalla määrällä asetonitriiliä.
Stopper the test tube, shake carefully (without overturning) until the compounds are completely dissolved.
Koeputki suljetaan tulpalla, ravistetaan varovasti (ei ylösalaisin), kunnes yhdisteet ovat täysin liuenneet.
The slight opalescence, which may form, is normal and does not cause any anomaly.
Lievä sameus on tavallista eikä ole haitaksi.
The formation of a white flock or the appearance of a pink colour is indicative of the presence of moisture or deterioration of the reagent.
Valkoiset hiutaleet tai vaaleanpunaiseksi värjäytyminen ovat merkkejä kosteudesta tai reagenssien muuttumisesta.
If this occurs, the test must be repeated (only if hexamethyldisilazane/trimethylchlorosilane is used).
Jos näitä ilmenee, koe on uusittava (ainoastaan käytettäessä heksametyylidisilatsaania tai trimetyylikloorisilaania).
Gas chromatographic analysis.
Kaasukromatografinen määritys
Preliminary operations, capillary column conditioning.
Esivalmistelut ja kapillaarikolonnin valmistelu
Fit the column (point 3.11) in the gas chromatograph, by attaching the inlet end to the split injector and the outlet end to the detector.
Kolonni (3.11 kohta) asennetaan kaasukromatografialaitteistoon kiinnittämällä kolonnin alkupää jakoinjektoriin ja kolonnin loppupää detektoriin.
Carry out general checks on the gas chromatograph unit (leaks from the gas circuits, detector efficiency, efficiency of the splitting system and recording system, etc.).
Tarkistetaan kaasukromatografisten laitteiden toiminta (kaasuliitännän tiiviys, detektorin, virtauksenjakojärjestelmän ja piirturin toimivuus, jne.)
If the column is being used for the first time, it is recommended that it be subjected to conditioning: passing a gentle flow of gas through the column itself, then switch on the gas chromatography unit and begin a gradual heating, up to a temperature of at least 20 °C above the operating temperature (Note 8).
Jos kapillaarikolonnia ei ole aikaisemmin käytetty, se on ensin valmisteltava käyttöön. Pieni määrä kaasua johdetaan kolonnin läpi, käynnistetään kaasukromatografi ja aloitetaan asteittainen lämmittäminen, jota jatketaan, kunnes lämpötila on kohonnut vähintään 20 °C korkeammaksi kuin käyttölämpötila (huomautus 8).
Hold this temperature for at least two hours, then place the entire unit in operating mode (adjustment of gas flows and splitting, ignition of the flame, connection with the computing system, adjustment of the column, detector and injector temperature, etc.) and then record the signal with a sensitivity at least two times greater than that one intended for the analysis.
Korkeaa lämpötilaa pidetään yllä vähintään kaksi tuntia, minkä jälkeen kromatografialaitteisto saatetaan käyttövalmiiksi (kaasuvirran ja erotuksen säätö, liekinsytytys, tietojärjestelmän kytkeminen, kolonnin, detektorin ja injektorin säätö jne.) ja signaalia rekisteröidään herkkyydellä, joka on vähintään kaksi kertaa niin suuri kuin määrityksessä käytettävä.
The course of the base line must be linear, without peaks of any kind, and must not show drift.
Saadun perusviivan on oltava suora, eikä siinä saa olla minkäänlaisia piikkejä eikä siirtymää mihinkään suuntaan.
A negative straight-line drift indicates leakage from the column connections; a positive drift indicates inadequate conditioning of the column.
Jos ilmenee negatiivista suoraviivaista siirtymää, se on merkki kolonnin liitäntöjen vuodosta, ja jos ilmenee positiivista siirtymää, se johtuu kolonnin riittämättömästä valmistelusta.
Note 8:
Huom. 8:
The conditioning temperature must always be at least 20 °C less than the maximum temperature specified for the stationary phase used.
Esivalmistelulämpötilan on aina oltava vähintään 20 °C alempi kuin käytetyn stationäärifaasin korkein lämpötila.
Choice of operating conditions.
Toimintaolosuhteiden valinta
The operating conditions are as follows:
Käyttöolosuhteiden ohjearvot ovat seuraavat:
Column temperature: 260 ± 5 °C;
kolonnin lämpötila: 260 ± 5 °C,
Injector temperature: 280-300 °C;
injektorin lämpötila: 280–300 °C,
Detector temperature: 280-300 °C;
detektorin lämpötila: 280–300 °C,
Linear velocity of the carrier gas: helium 20 to 35 cm/s; hydrogen 30 to 50 cm/s;
kantajakaasun lineaarinopeus: heliumille 20–35 cm/s ja vedylle 30–50 cm/s,
Splitting ratio: from 1:50 to 1:100;
jakosuhde: 1:50–1:100,
Instrument sensitivity: from 4 to 16 times the minimum attenuation;
laitteiston herkkyys: 4–16 kertaa vähimmäisvaimennus,
Recording sensitivity: 1 to 2 mV full scale;
rekisteröintiherkkyys: 1–2 mV täydestä asteikosta,
Amount of substance injected: 0,5 to 1 μl of TMSE solution.
injektoidun aineen määrä: 0,5–1 μl TMSE-liuosta.
These conditions may be changed according to the characteristics of the column and gas chromatograph, so as to obtain chromatograms, which meet the following requirements:
Näitä olosuhteita voidaan muuttaa kolonnin ja kaasukromatografin ominaisuuksien mukaan niin, että saadaan seuraavat vaatimukset täyttävä kromatogrammi:
The retention time for the ß-sitosterol peak should be at 20 ± 5 min;
β-sitosterolipiikin retentioaika on 20 ± 5 minuuttia,
In addition to being separated the peaks, they must also be completely resolved, i.e. the peak trace should return to the base line before leaving for the next peak.
kaikki mukana olevat sterolit on voitava erottaa toisistaan. Lisäksi kunkin piikin jälkeen piirturin tulee palata perusviivalle ennen uuden piikin alkua.
Incomplete resolution is, however, tolerated, provided that the peak at RRT 1,02 (Sitostanol) can be quantified using the perpendicular.
Tämä ei ole kuitenkaan tarpeen, jos suhteellisen retentioajan (RRT) 1,02 piikki (sitostanoli) pystytään mittaamaan kohtisuoraan.
Analytical procedure
Määritys
Push the needle through the membrane of the injector and after one to two seconds, inject rapidly, and then slowly remove the needle after around five seconds.
Neula työnnetään septumin läpi injektoriin ja 1–2 sekunnin kuluttua seos injektoidaan nopeasti, odotetaan noin viisi sekuntia, jonka jälkeen neula vedetään pois hitaasti.
An automatic injector can be used as well.
Myös automaattista injektoria voidaan käyttää.
Carry out the recording until the TMSE of the present triterpene dialcohols are completely eluted.
Rekisteröintiä jatketaan, kunnes näytteessä olevien triterpeenidialkoholien TMSE on kokonaan eluoitunut.
The base line must continue to meet the requirements (point 5.4.1.2).
Perusviivan on koko ajan oltava 5.4.1.2 alakohdan vaatimusten mukainen.
Peak identification
Piikkien tunnistaminen
Identify individual peaks on the basis of retention times and by comparison with the mixture of sterol and triterpene dialcohols TMSE, analysed under the same conditions (see Appendix).
Yksittäiset piikit tunnistetaan niiden retentioajan perusteella sekä vertaamalla sterolien ja triterpeenidialkoholien TMSE-seokseen, joka on määritetty samoissa olosuhteissa (ks. lisäys).
The sterols and triterpene dialcohols are eluted in the following order: cholesterol, brassicasterol, ergosterol, 24-methylen-cholesterol, campesterol, campestanol, stigmasterol, Δ7-campesterol, Δ5,23-stigmastadienol, clerosterol, ß-sistosterol, sitostanol, Δ5-avenasterol, Δ5,24-stigmastadienol, Δ7-stigmastenol, Δ7-avenasterol, erythrodiol and uvaol.
Sterolit ja triterpeenidialkoholit eluoituvat seuraavassa järjestyksessä: kolesteroli, brassikasteroli, ergosteroli, 24-metyleenikolesteroli, kampesteroli, kampestanoli, stigmasteroli, δ-7-kampesteroli, δ-5,23-stigmastadienoli, klerosteroli, β-sitosteroli, sitostanoli, δ-5-avenasteroli, δ-5,24-stigmastadienoli, δ-7-sigmastenoli, δ-7-avenasteroli, erytrodioli ja uvaoli.
The retention times for ß-sitosterol, for SE-52 and SE-54 columns, are shown in Table 1.
ß-Sitosterolin retentioajat SE-52- ja SE-54-kolonneille on esitetty taulukossa 1.
Figures 1 and 2 show typical chromatograms for some oils.
Kuvat 1 ja 2 esittävät eräiden öljyjen tyypillisiä kromatogrammeja.
Quantitative evaluation.
Kvantitatiivinen arviointi
Calculate the areas of the α-cholestanol and the sterol and triterpene dialcohols peaks by using the computing system.
Lasketaan α-kolestanolin sekä sterolien ja triterpeenidialkoholien piikkien pinta-alat tietojärjestelmän avulla.
Calculate the concentration of each individual sterol, in mg/kg of fatty material, as follows:
Lasketaan yksittäisten sterolien pitoisuus mg/kg:ssa rasvaa tai öljyä seuraavasta kaavasta:
sterol x
steroli x
where:
jossa: A x
EXPRESSION OF THE RESULTS
Ilmoitetaan yksittäisten sterolien pitoisuus mg/kg:ssa rasvaa tai öljyä ja niiden pitoisuuksien yhteismäärä, ”kokonaissterolimäärä”. Yksittäisten sterolien sekä erytrodiolin ja uvaolin pitoisuudet ilmaistaan yhden desimaalin tarkkuudella. Kokonaisterolimäärä on ilmaistava kokonaislukuna.
Calculate the percentage of each individual sterol from the ratio of the relevant peak area to the total peak area for sterols and erythrodiol and uvaol:
steroli x Ax ΣA 100 jossa:
Apparent β-sitosterol: Δ5-23-stigmastadienol + clerosterol + β-sitosterol + sitostanol + Δ5-avenasterol + Δ5-24-stigmastadienol.
Näennäinen β-sitosterolipitoisuus: δ-5-23-stigmastadienoli + klerosteroli + β-sitosteroli + sitostanoli + δ-5-avenasteroli + δ-5-24-stigmastadienoli.
Calculate the percentage of erythrodiol and uvaol:
Lasketaan erytrodiolin ja uvaolin prosentuaalinen osuus:
Erythrodiol
erytrodioli
Uvaol
uvaoli
ΣA sum area for sterol in computing system counts;
ΣA sterolin kokonaispinta-ala, tietojärjestelmällä laskettuna;
Er area of Erythrodiol in computing system counts;
Er erytrodiolin pinta-ala tietojärjestelmällä laskettuna;
Uv area of Uvaol in computing system counts;
Uv uvaolin pinta-ala tietojärjestelmällä laskettuna.
Determination of the linear speed of the gas
Kaasun lineaarinopeuden määrittäminen