natgillin/translations-raw huggingface dataset:
This greater within-test variability may have been due to dosing errors, as a small volume (3 to 4 μl) of 1-octanol had to be injected into sealed test bottles.
Suurempi testin sisäinen variaatio saattoi johtua annosteluvirheistä, sillä suljettuihin testipulloihin injektoitiin pieni määrä (3–4 μl) 1-oktanolia.
Higher coefficients of variation would result when lower concentrations of test chemical are used, especially at concentrations lower than 10 mg C/l.
Variaatiokertoimet ovat suuremmat, kun käytetään testikemikaalin pienempiä pitoisuuksia ja varsinkin kun pitoisuus on alle 10 mg C/l.
This could be partially overcome by reducing the concentration of total inorganic carbon (TIC) in the inoculum.
Tämä voidaan estää osittain pienentämällä epäorgaanisen hiilen kokonaismäärää (TIC) inokulaatissa.
In an EU ring-test (24) of five surfactants added at 10 mg C/l, the following results were obtained:
Kun EU:n yhteistutkimuksessa (24) viittä pinta-aktiivista ainetta lisättiin pitoisuudella 10 mg C/l, saatiin seuraavat tulokset.
Mean Percentage biodegradation
Biohajoavuuden keskiarvo
Number of laboratories
Laboratorioiden määrä
Tetrapropylene
Tetraprolyleeni
Benzene sulphonate
Bentseenisulfonaatti
Di-iso-octylsulpho-Succinate
Di-iso-oktyylisulfo-sukkinaatti
(anionic)
(anioninen)
Hexadecyl-trimethyl [7]Ammonium chloride
Heksadekyyli-trimetyyli [7]Ammoniumkloridi
(cationic)
(kationinen)
Iso-Nonylphenol - (ethoxylate)9
Iso-nonyylifenoli-(etoksylaatti)9
(non-ionic)
(ioniton)
Coco-amide-propyl
Kokamidopropyyli
Dimethylhydroxy
Dimetyylihydroksi
Sulphobetaine
Sulfobetaiini
(amphoteric)
(amfoteerinen)
The results show that generally, the variability was higher for the less well-degraded surfactants.
Tulokset osoittavat, että variaatio oli yleensä suurempi, jos pinta-aktiivinen aine oli huonosti hajoava.
Within-test variability was less than 15 % for over 90 % of cases, the highest reaching 30-40 %.
Testin sisäinen variaatio oli alle 15 prosenttia yli 90 prosentissa tapauksista. Suurin variaatio oli 30–40 prosenttia. HUOMAUTUS: Useimmat pinta-aktiiviset aineet eivät ole yksimolekyylisiä lajeja, vaan isomeerien, homologien jne. sekoituksia.
NOTE: Most surfactants are not single molecular species but are mixtures of isomers, homologues, etc. which degrade after different characteristic lag periods and at different kinetic rates resulting in “blurred”, extenuated curves, so that the 60 % pass value may not be reached within “the 10-d window”, even though each individual molecular species would reach > 60 % within 10 days if tested alone.
Ne hajoavat erilaisten latenssiaikojen jälkeen ja erilaisilla kineettisillä nopeuksilla, jolloin käyrät ovat loivia ja epäselviä eikä 60 prosentin kynnysarvoa välttämättä saavuteta 10-päiväisessä jaksossa, vaikka yksin testattuna jokainen yksittäinen molekyylilaji saavuttaisi > 60 prosentin kynnysarvon 10 päivässä.
This may be observed with other complex mixtures as well.
Sama voi ilmetä myös muissa monimutkaisissa seoksissa.
Normal laboratory apparatus and:
Tavallinen laboratoriolaite ja lisäksi:
Glass serum bottles, sealed with butyl rubber stoppers and crimp-on aluminium seals.
lasisia seerumipulloja, suljettu butyylikumitulpalla ja alumiinisulkimilla.
The recommended size is “125 ml” which have a total volume of around 160 ml (in this case the volume of each bottle should be known to be 160 ± 1 ml).
Suositeltu koko on 125 ml, jolloin kokonaistilavuus on noin 160 ml (tässä tapauksessa jokaisen pullon tilavuuden pitää olla tunnetusti 160 ± 1 ml).
A smaller size of vessel may be used when the results fulfil the conditions described in paragraph 66 and 67;
Pienempää astiaa voidaan käyttää, kun tulokset täyttävät kohdissa 66 ja 67 kuvatut ehdot
Carbon analyser or other instrument (e.g. gas chromatograph) for measuring inorganic carbon;
hiilianalysaattori tai muu väline (esim. kaasukromatografi) epäorgaanisen hiilen mittaamista varten
Syringes of high precision for gaseous and liquid samples;
ruiskuja, joiden tarkkuus on suuri, kaasu- ja nestenäytteitä varten
Orbital shaker in a temperature-controlled environment;
orbital-ravistelija ympäristössä, jonka lämpötila on vakioitu
A supply of CO2 free air — this can be prepared by passing air through soda lime granules or by using an 80 % N2/20 % 02 gas mixture (optional) (see paragraph 28);
hiilidioksiditonta ilmaa – tätä voidaan valmistaa kuljettamalla ilmaa sooda-kalkkirakeiden läpi tai käyttämällä kaasuseosta, jossa on 80 prosenttia N2:ta ja 20 prosenttia 02:ta (valinnainen) (katso kohta 28)
Membrane-filtration device of 0,20–0,45 μm porosity (optional);
kalvosuodatin, huokoskoko 0,20–0,45 μm (valinnainen)
Organic carbon analyser (optional).
orgaanisen hiilen analysaattori (valinnainen).
Use analytical grade reagents throughout.
Käytä pelkästään analyysilaatuisia reagensseja.
Distilled or de-ionised water should be used containing ≤ 1 mg/l as total organic carbon.
Tislattu tai deionisoitu vesi, jonka orgaaninen kokonaishiilipitoisuus on ≤ 1 mg/l.
This represents ≤ 5 % of the initial organic carbon content introduced by the recommended dose of the test chemical.
Tämä edustaa alkuperäistä, testikemikaalin suositellun annoksen antamaa ≤ 5 prosentin orgaanista hiilipitoisuutta.
Stock solutions for the mineral salts medium
Mineraalisuolakasvatusalustan kantaliuokset
The stock solutions and the mineral salts medium are similar to those in ISO 14593 (16) and C.4 “ready biodegradability” tests (20).
Kantaliuokset ja mineraalisuolakasvatusalusta vastaavat standardia ISO 14593 (16) ja luvun C.4 biohajoavuuden testejä (20).
The use of a higher concentration of ammonium chloride (2,0 g/l instead of 0,5 g/l) should only be necessary in very exceptional cases, e.g. when the test chemical concentration is > 40 mg C/l.
Suuremman ammoniumkloridipitoisuuden (2,0 g/l eikä 0,5 g/l) käyttö on tarpeen vain poikkeustapauksissa, kuten jos testikemikaalin pitoisuus on > 40 mg C/l.
Stock solutions should be stored under refrigeration and disposed of after six months, or earlier if there is evidence of precipitation or microbial growth.
Kantaliuokset säilytetään jääkaapissa ja hävitetään kuuden kuukauden kuluttua tai aiemmin, jos on merkkejä saostumisesta tai mikrobikasvustosta.
Prepare the following stock solutions:
Valmista seuraavat kantaliuokset:
Potassium dihydrogen phosphate (KH2PO4) 8,50 g
kaliumdivetyfosfaatti (KH2PO4) 8,50 g
Dipotassium hydrogen phosphate (K2HPO4) 21,75 g
dikaliumvetyfosfaatti (K2HPO4) 21,75 g
Disodium hydrogen phosphate dihydrate (Na2HPO4.2H2O) 33,40 g
dinatriumvetyfosfaattidihydraatti (Na2HPO42H2O) 33,40 g
Ammonium chloride (NH4Cl) 0,50 g
ammoniumkloridi (NH4Cl) 0,50 g
Dissolve in water and make up to 1 litre.
Liuota veteen ja täytä 1 litraksi.
The pH of this solution should be 7,4 (± 0,2).
Liuoksen pH-arvon on oltava 7,4 (± 0,2).
If this is not the case, then prepare a new solution.
Jos näin ei ole, valmista uusi liuos.
Calcium chloride dihydrate (CaCl2.2H2O) 36,40 g
kalsiumklorididihydraatti (CaCl2.2H2O) 36,40 g
Magnesium sulphate heptahydrate (MgSO4.7H2O) 22,50 g
magnesiumsulfaattiheptahydraatti (MgSO4.7H2O) 22,50 g
Iron (III) chloride hexahydrate (FeCl3.6H20) 0,25 g
rauta(III)kloridiheksahydraatti (FeCl3.6H20) 0,25 g
Dissolve in water and make up to 1 litre and add one drop of concentrated HCl.
Liuota veteen, täytä 1 litraksi ja lisää yksi tippa väkevöityä HCl-liuosta.
Mix 10 ml of solution (a) with approximately 800 ml water (paragraph 17), then add 1 ml of solutions (b), (c) and (d) and make up to 1 litre with water (paragraph 17).
Sekoita 10 ml liuosta (a) ja noin 800 ml vettä (kohta 17), lisää sitten 1 ml liuoksia (b), (c) ja (d) ja täytä sitten vedellä 1 litraksi (kohta 17).
Other reagents
Muut reagenssit
Concentrated ortho-phosphoric acid (H3PO4) (> 85 % mass per volume).
Väkevöity ortofosforihappo (H3PO4) (massa tilavuutta kohti > 85 %).
Sodium hydroxide solution 7M
Natriumhydroksidiliuos 7M
Dissolve 280 g of sodium hydroxide (NaOH) in 1 litre of water (paragraph 17).
Liuota 280 g natriumhydroksidia (NaOH) 1 litraan vettä (kohta 17).
Determine the concentration of DIC of this solution and consider this value when calculating the test result (see paragraphs 55 and 61), especially in the light of the validity criterion in paragraph 66 (b).
Määritä tämän liuoksen DIC-pitoisuus ja huomioi arvo testitulosta laskettaessa (katso kohdat 55 ja 61), etenkin kohdassa 66 (b) annetun laatuvaatimuksen kannalta.
Prepare a fresh solution if the concentration of DIC is too high.
Valmista uusi liuos, jos DIC-pitoisuus on liian suuri.
Prepare a stock solution of a sufficiently water-soluble test chemical in water (paragraph 17) or in the test medium (paragraph 19) at a concentration preferably 100-fold greater than the final concentration to be used in the test; it may be necessary to adjust the pH of the stock solution.
Valmista kantaliuos riittävän vesiliukoisesta testikemikaalista veteen (kohta 17) tai testiviljelyaineeseen (kohta 19). On suositeltavaa, että pitoisuus on satakertainen verrattuna lopulliseen testissä käytettävään pitoisuuteen. Kantaliuoksen pH-arvon säätäminen voi olla tarpeen.
The stock solution should be added to the mineral medium to give a final organic carbon concentration of between 2 and 40 mg C/l, preferably 20 mg C/l.
Kantaliuos lisätään epäorgaaniseen liuokseen, jotta lopullinen orgaanisen hiilen pitoisuus on 2–40 mg C/l, mieluiten 20 mg C/l.
If concentrations lower than these are used, the precision obtained may be impaired.
Jos käytetty pitoisuus on tätä alempi, tarkkuus saattaa kärsiä.
Soluble and insoluble liquid chemicals may be added to the vessels directly using high precision syringes.
Liukenevat ja liukenemattomat nestemäiset kemikaalit voi lisätä astioihin suoraan ruiskulla, jonka tarkkuus on suuri.
Poorly soluble and insoluble test chemicals may require special treatment (25).
Heikosti liukenevat ja liukenemattomat testikemikaalit saattavat vaatia erityiskäsittelyä (25).
The choices are:
Vaihtoehdot ovat seuraavat:
direct addition of known weighed amounts;
tunnettujen punnittujen määrien lisääminen suoraan
ultrasonic dispersion before addition;
ultraäänidispersio ennen lisäystä
dispersion with the aid of emulsifying agents to be required to establish whether they have any inhibitory or stimulatory effects on microbial activity before addition;
dispersio käyttämällä tarvittavia emulgointiaineita, jotta voidaan määrittää ennen lisäystä, onko niillä inhiboivia tai stimuloivia vaikutuksia mikrobien toimintaan
adsorption of liquid test chemicals, or a solution in a suitable volatile solvent, on to an inert medium or support (e.g. glass fibre filter), followed by evaporation of the solvent, if used, and direct addition of known amounts;
nestemäisten testikemikaalien adsorptio tai liuotus soveltuvaan haihtuvaan liuottimeen, inerttiin aineeseen tai kantaja-aineeseen (esim. lasikuitusuodattimeen), minkä jälkeen mahdollinen liuotin haihdutetaan ja tunnetut määrät lisätään suoraan
addition of known volume of a solution of the test chemical in an easily volatile solvent to an empty test vessel, followed by evaporation of the solvent.
testikemikaaliliuoksen tunnetun tilavuuden lisääminen helposti haihtuvaan liuottimeen tyhjässä testiastiassa, minkä jälkeen liuotin haihdutetaan.
Agents or solvents used in (c), (d) and (e) have to be tested for any stimulatory or inhibitory effect on microbial activity (see paragraph 42(b).)
Aineiden ja liuottimien, joita käytetään kohdissa (c), (d) ja (e), mahdolliset stimuloivat tai inhiboivat vaikutukset mikrobien toimintaan on testattava (katso kohta 42(b)).
Reference chemical
Vertailukemikaali
Prepare a stock solution of the (soluble) reference chemical in water (paragraph 17) at a concentration preferably 100-fold greater than the final concentration to be used (20 mg C/l) in the test.
Valmista (liukenevan) vertailukemikaalin kantaliuos veteen (kohta 17). On suositeltavaa, että pitoisuus on satakertainen verrattuna lopulliseen testissä käytettävään pitoisuuteen (20 mg C/l).
Inhibition check
Inhibition tarkistus
Test chemicals frequently show no significant degradation under the conditions used in ready biodegradation assessments.
Testikemikaalit eivät usein hajoa merkittävästi biohajoavuuden määrittämiseen käytetyissä olosuhteissa.
One possible cause is that the test chemical is inhibitory to the inoculum at the concentration at which it is applied in the test.
Yksi mahdollinen syy on, että testikemikaali estää inokulaattia pitoisuudella, jossa sitä lisätään testiin.
An inhibition check may be included in the test design to facilitate identification (in retrospect) of inhibition as a possible cause or contributory factor.
Testiin voidaan sisällyttää inhibition tarkistus, mikä helpottaa inhibition tunnistamista (takautuvasti) mahdolliseksi syyksi tai osatekijäksi.
Alternatively, the inhibition check may rule out such interferences and show that zero or slight degradation is attributable solely to non-amenability to microbial attack under the conditions of the test.
Inhibition tarkistuksella voidaan myös sulkea pois tällaiset vaikutukset ja osoittaa, että nollahajoaminen tai heikko hajoaminen liittyy ainoastaan siihen, että testikemikaalit eivät ole alttiita mikrobihyökkäykselle testiolosuhteissa.
In order to obtain information on the toxicity of the test chemical to (aerobic) micro-organisms, prepare a solution in the test medium containing the test chemical and the reference chemical (paragraph 19), each at the same concentrations as added, respectively (see paragraph 22 and 23).
Testikemikaalin toksisuudesta (aerobisille) mikro-organismeille saadaan tietoa valmistamalla testiviljelyaine, joka sisältää testikemikaalia ja vertailukemikaalia (kohta 19), kumpaakin lisättävinä pitoisuuksina (katso kohdat 22 ja 23).
Inoculum
Siirrosaine
The inoculum may be derived from a variety of sources: activated sludge; sewage effluent (non-chlorinated); surface waters and soils; or from a mixture of these (20).
Siirrosaine voi olla peräisin monesta eri lähteestä: aktiivilietteestä, jätevedestä (ilman kloorikäsittelyä), pintavedestä, maa-aineksesta tai näiden seoksesta (20).
The biodegradative activity of the source should be checked by using a reference chemical.
Lähteen biohajoamistoiminta on tarkistettava vertailukemikaalin avulla.
Whatever the source, micro-organisms previously exposed to the test chemical should not be used if the procedure is to be used as a test for ready biodegradability.
Oli lähde mikä tahansa, aiemmin testikemikaalille altistuneita mikro-organismeja ei saa käyttää, jos menetelmää käytetään nopean biohajoavuuden testaamiseen.
Activated sludge, sewage and sewage effluent contain pathogenic organisms and must be handled with caution.
aktiiviliete, jätevesi ja poistovesi sisältävät patogeenisiä organismeja, ja niitä on käsiteltävä varoen.
Based on experience, the optimal volume for the inoculum is that which:
Kokemuksen perusteella siirrosaineen optimaalinen tilavuus täyttää seuraavat ehdot:
is sufficient to give adequate biodegradative activity;
mahdollistaa riittävän biohajoamistoiminnan
degrades the reference chemical by the stipulated percentage (see paragraph 66);
hajottaa vertailukemikaalia määrätyssä määrin (katso kohta 66)
gives 102 to 105 colony-forming units per millilitre in the final mixture;
antaa 102–105 pesäkkeitä muodostavaa yksikköä millilitraa kohden lopullisessa seoksessa
normally gives a concentration of 4 mg/l suspended solids in the final mixture when activated sludge is used, concentrations up to 30 mg/l may be used but may significantly increase CO2 production of the blanks (26);
antaa normaalisti suspendoituneen kiintoaineen pitoisuudeksi 4 mg/l lopullisessa seoksessa, kun käytetään aktiivilietettä. Pitoisuus voi olla enintään 30 mg/l, mutta se voi nostaa CO2-tuotantoa merkittävästi nollakokeissa (26)
contributes less than 10 % of the initial concentration of organic carbon introduced by the test chemical;
antaa alle 10 prosenttia testikemikaalin antamasta alkuperäisestä orgaanisen hiilen pitoisuudesta
is generally 1-10 ml of inoculum for 1 litre of test solution.
1–10 ml siirrosainetta 1 testiliuoslitraa kohden.
Activated sludge is freshly collected from the aeration tank of a sewage treatment plant or laboratory-scale unit treating predominantly domestic sewage.
Aktiiviliete kerätään tuoreena pääosin kotitalouksien jätevettä käsittelevän vedenpuhdistamon tai laboratoriolaitoksen ilmastussäiliöstä.
If necessary, coarse particles should be removed by sieving (e.g. using a 1 mm2 mesh sieve) and the sludge should be kept aerobic until used.
Tarvittaessa karkeat hiukkaset poistetaan suodattamalla (esim. 1 mm2:n verkkoseulalla), minkä jälkeen liete pidetään aerobisena.
Alternatively, after removal of any coarse particles, settle or centrifuge (e.g. 1100 × g for 10 minutes).
Lietteen annetaan asettua tai se sentrifugoidaan (esimerkiksi 1100 × g 10 minuutin ajan) karkeiden hiukkasten poiston jälkeen.
Discard the supernatant liquid.
Pintaliete hylätään.
The sludge may be washed in the mineral solution.
Lietettä voidaan pestä epäorgaanisessa liuoksessa.
Suspend the concentrated sludge in mineral medium to yield a concentration of 3-5 g suspended solids/l. Thereafter aerate until required.
Väkevöity liete suspendoidaan epäorgaaniseen liuokseen (lopullinen pitoisuus 3–5 g kuiva-ainetta/1) ja säilötään ilmastettuna.
Sludge should be taken from a properly working conventional treatment plant.
Lietteen on tultava tehokkaasti toimivasta, perinteisen tekniikan mukaisesta laitoksesta.
Settle or centrifuge the re-suspended sludge after thorough mixing, discard the supernatant liquid and again suspend the washed sludge in a further volume of mineral medium.
Liete sekoitetaan hyvin, minkä jälkeen uudelleen suspendoitunut liete saa asettua tai se sentrifugoidaan. Pintaliete hylätään ja pesty liete suspendoidaan uudelleen uuteen epäorgaaniseen liuokseen.
Treat the sludge in a Waring blender for 2 minutes at medium speed.
Lietettä käsitellään Waring-sekoittimessa keskinopeudella 2 minuutin ajan.
Settle the blended sludge for 30 minutes or longer if required and decant liquid for use as inoculum at the rate of about 10 mg/l of mineral medium.
Sekoitetun lietteen annetaan asettua 30 minuutin ajan (tai tarvittaessa kauemmin), ja neste dekantoidaan. Näin saatua nestettä käytetään siirrosaineena (pitoisuus: 10 ml/l epäorgaanista liuosta).
Still further reduction of the blank CO2 evolution can be achieved by aerating the sludge overnight with CO2-free air.
:n muodostumista nollakokeessa voidaan vähentää vielä lisää ilmastamalla lietettä yön yli ilmalla, joka ei sisällä hiilidioksidia.
Use 4 mg/l activated sludge solids as the concentration of the inoculum in this test (13).
Käytä 4 mg/l aktiivilietteen kiintoainesta siirrosaineen pitoisuutena tässä testissä (13).
Secondary sewage effluent
Sekundaarinen jätevesi
Alternatively, the inoculum can be derived from the secondary effluent of a treatment plant or laboratory-scale unit receiving predominantly domestic sewage.
Siirrosaineen lähteenä voidaan käyttää myös pääosin kotitalousjätevesiä puhdistavasta käsittelylaitoksesta tai laboratoriolaitoksesta saatavaa sekundaarista jätevettä.
Maintain the sample under aerobic conditions and use on the day of collection, or pre-condition if necessary.
Säilytä näyte aerobisissa olosuhteissa ja käytä se näytteenottopäivänä tai esikäsittele tarvittaessa.
The effluent should be filtered through a coarse filter to remove gross particulate matter and the pH value is measured.
Karkeat hiukkaset poistetaan suodattamalla jätevesi karkealla suodattimella ja pH-arvo mitataan.
This sparging procedure reduces the IC content of the inoculum.
Hiilidioksidittoman ilman käyttö laskee siirrosaineen IC-pitoisuutta.
For example, when the maximum recommended volume of filtered sparged effluent (100 ml) per litre was used as inoculum, the amount of IC present in blank control vessels was in the range 0,4 to 1,3 mg/l (14), representing 2-6,5 % of test chemical C at 20 mg C/l and 4-13 % at 10 mg C/l.
Kun suodatetun, ilmakäsitellyn jäteveden suositeltua enimmäistilavuutta (100 ml) litraa kohden käytettiin siirrosaineena, kontrolliastioiden IC-pitoisuus oli 0,4–1,3 mg/l (14), mikä vastaa 2–6,5 prosenttia, kun hiilen pitoisuus testikemikaalissa on 20 mg C/l, ja 4–13 prosenttia, kun hiilen pitoisuus on 10 mg C/l.
Surface waters
Pintavedet
A sample is taken of an appropriate surface water.
Soveltuvasta pintavedestä otetaan näyte.
It should be kept under aerobic conditions and used on the day of collection.
Näytettä säilytetään aerobisissa olosuhteissa, ja se on käytettävä näytteenottopäivänä.
The sample should be concentrated, if necessary, by filtration or centrifugation.
Näyte väkevöidään tarvittaessa suodattamalla tai sentrifugoimalla.
The volume of inoculum to be used in each test vessel should meet the criteria given in paragraph 26.
Jokaisessa testiastiassa käytettävän siirrosaineen tilavuuden on täytettävä kohdassa 26 annetut ehdot.
A sample is taken of an appropriate soil, collected to a depth of up to 20 cm below the soil surface.
Soveltuvasta maa-aineksesta otetaan näyte enintään 20 cm maan pinnan alta.
Stones, plant remains and invertebrates should be removed from the sample of soil before it is sieved through a 2 mm mesh (if the sample is too wet to sieve immediately, then partially air dry to facilitate sieving).
Kivet, kasvien jäännökset ja selkärangattomat poistetaan maanäytteestä, minkä jälkeen se seulotaan 2 mm:n verkkosiivilällä (jos näyte on niin märkä, ettei sitä voi seuloa heti, anna sen kuivua osittain). Näytettä säilytetään aerobisissa olosuhteissa, ja se on käytettävä näytteenottopäivänä.
It should be kept under aerobic conditions and used on the day of collection (If the sample is transported in a loosely-tied black polythene bag, it can be stored at 2 to 4 °C in the bag for up to one month).
(Jos näytettä kuljetetaan löysästi suljetussa mustassa polyeteenikassissa, sitä voidaan säilyttää kassissa kuukauden 2–4 °C:n lämpötilassa).
Preconditioning of inoculum
Siirrosaineen esikäsittely
Inoculum may be pre-conditioned to the experimental conditions, but not pre-adapted to the test chemical.
Esikäsittelyn avulla siirrosaine voidaan sopeuttaa testiolosuhteisiin, mutta ei testattavaan kemikaaliin.
Pre-conditioning can reduce the blank CO2 evolution.
Esikäsittely voi vähentää CO2:n muodostumista nollakokeessa.
Pre-conditioning consists of aerating activated sludge after diluting in test medium to 30 mg/l with moist CO2-free air for up to 5-7 days at the test temperature.
Esikäsittelyssä testiaineen pitoisuudeksi laimennetaan 30 mg/l, ja sen jälkeen aktiivilietettä ilmastetaan kostella ilmalla, joka ei sisällä hiilidioksidia, 5–7 päivän ajan testilämpötilassa.
Number of bottles
Pullojen määrä
The number of bottles (paragraph 15-a) needed for a test will depend on the frequency of analysis and the test duration.
Testiin tarvittava pullojen määrä (kohta 15 a) määräytyy analyysitiheyden ja testin keston mukaan.
It is recommended that triplicate bottles be analysed after a sufficient number of time intervals such that the 10-d window may be identified.
On suositeltavaa, että kolme pulloa analysoidaan rinnakkain riittävien aikavälien jälkeen, jotta 10-päiväinen jakso voidaan tunnistaa.
Also at least five test bottles (paragraph 15-a) from sets (a), (b) and (c) (see paragraph 42) are analysed at the end of the test, to enable 95 % confidence intervals to be calculated for the mean percentage biodegradation value.
Vähintään viisi testipulloa (kohta 15 a) sarjoista (a), (b) ja (c) (ks. kohta 42) analysoidaan testin lopussa, jotta biohajoavuuden keskiarvolle voidaan laskea 95 prosentin luottamusvälit.
Inoculated medium
Siirrostettu liuos
The inoculum is used at a concentration of 4 mg/l activated sludge dry solids.
Siirrosainetta käytetään pitoisuudella 4 mg litrassa aktiivilietteen kiintoainetta.
Prepare immediately before use sufficient inoculated medium by adding, for example, 2 ml suitably treated activated sludge (paragraphs 27 to 32) at 2000 mg/l to 1 litre of mineral salts medium (paragraph 19).
Valmista riittävä määrä siirrostettua liuosta juuri ennen käyttöä lisäämällä esimerkiksi 2 ml sopivasti käsiteltyä aktiivilietettä (kohdat 27–32) pitoisuudella 2000 mg/l yhteen litraan mineraalisuolakasvatusalustaa (kohta 19).