natgillin/translations-raw huggingface dataset:
When secondary sewage effluent is to be used add up to 100 ml effluent (paragraph 33) to 900 ml mineral salts medium (paragraph 19) and dilute to 1 litre with medium.
Jos käytetään sekundaarista jätevettä, lisää enintään 100 ml jätevettä (kohta 33) 900 ml:aan mineraalisuolakasvatusalustaa (kohta 19) ja laimenna siirrosaineella 1 litraksi.
Preparation of bottles
Pullojen valmistelu
Aliquots of inoculated medium are dispensed into replicate bottles to give a headspace to liquid ratio of 1:2 (e.g. add 107 ml to 160 ml-capacity bottles).
Siirrostetun liuoksen alikvootteja annostellaan rinnakkaispulloihin siten, että kaasutilan (headspace) ja nesteen suhde on 1:2 (jos pullon tilavuus on esim. 160 ml, lisää 107 ml).
Other ratios may be used, but see the warning given in paragraph 11.
Muitakin suhteita voi käyttää, mutta katso kohdassa 11 annettu varoitus.
When using either type of inoculum, care must be taken to ensure that the inoculated medium is adequately mixed to ensure that it is uniformly distributed to the test bottles.
Kun käytetään muuntyyppistä siirrosainetta, on varmistettava huolellisesti, että siirrostettu liuos on sekoitettu hyvin, jotta se jakautuu tasaisesti testipulloihin.
Sets of bottles (paragraph 15a) are prepared to contain the following:
Pullosarjoihin (kohta 15 a) kuuluvat seuraavat osat:
Test vessels (denoted FT) containing the test chemical;
testiastiat (FT), jotka sisältävät testikemikaalia
Blank controls (denoted FB) containing only the test medium plus inoculum; any chemicals, solvents, agents or glass fibre filters used to introduce the test chemical into the test vessels must also be added;
kontrollipullot (FB), jotka sisältävät vain testiviljelyainetta ja siirrosainetta. Lisäksi testikemikaalin siirtämiseen testiastioihin voidaan tarvita kemikaaleja, liuottimia, aineita ja lasikuitusuodattimia
Vessels (denoted FC) for checking the procedure containing the reference chemical;
astiat (FC), jotka sisältävät vertailukemikaalia testimenettelyn tarkistamista varten
If needed, vessels (denoted FI) for checking a possible inhibitory effect of the test chemical containing both the test chemical and reference chemical at the same concentrations (paragraph 24) as in bottles FT and FC, respectively;
tarvittaessa astiat (FI), joilla tarkistetaan testikemikaalin inhibitiovaikutus ja joissa on sekä testikemikaalia että vertailukemikaalia samoissa pitoisuuksissa (kohta 24) kuin pulloissa FT ja FC
Vessels (denoted FS) for checking a possible abiotic degradation as (a) plus 50 mg/l HgCl2 or sterilised by some other means (e.g. by autoclaving).
astiat (FS), joilla tarkistetaan mahdollinen abioottinen hajoaminen (a) plus 50 mg/l HgCl2:ta tai muulla tavoin steriloituna (esim. autoklaavissa).
Water-soluble test chemicals and reference chemicals are added as aqueous stock solutions (paragraphs 22, 23 and 24) to give a concentration of 10 to 20 mg C/l.
Vesiliukoiset testikemikaalit ja vertailukemikaalit lisätään vesipitoisina kantaliuoksina (kohdat 22, 23 ja 24), kunnes pitoisuus on 10–20 mg C/l.
Insoluble test chemicals and insoluble reference chemicals are added to bottles in a variety of ways (see paragraph 22a-e) according to the nature of the test chemical, either before or after addition of the inoculated medium, depending on the method of treatment of the test chemical.
Liukenemattomat testikemikaalit ja liukenemattomat vertailukemikaalit lisätään pulloihin eri tavoin (katso kohdat 22 a–e) testikemikaalin luonteen mukaan. Ne lisätään joko ennen siirrostettua liuosta tai sen jälkeen testikemikaalin käsittelyn mukaan.
If one of the procedures given in paragraph 22a-e is used, then the blank bottles FB (paragraph 42b) should be treated in a similar fashion but excluding the test chemical or reference chemical.
Jos käytössä on jokin kohdissa 22 a–e annetuista menetelmistä, kontrollipulloja FB (kohta 42 b) käsitellään muuten samoin, mutta ilman testikemikaalia tai vertailukemikaalia.
Volatile test chemicals should be injected into sealed bottles (paragraph 47) using a micro syringe.
Haihtuvat testikemikaalit injektoidaan suljettuihin pulloihin (kohta 47) mikroruiskulla.
The dose is calculated from the volume injected and the density of the test chemical.
Annos lasketaan injektoidun tilavuuden ja testikemikaalin tiheyden mukaan.
Water should be added to vessels, where necessary, to give the same liquid volume in each vessel.
Astioihin lisätään tarvittaessa vettä, jotta nestetilavuus on sama jokaisessa astiassa.
It must be ensured that the headspace to liquid ratio (usually 1:2) and concentration of the test chemical are such that sufficient oxygen is available in the headspace to allow for complete biodegradation.
On varmistettava, että kaasutilan ja nesteen suhde (yleensä 1:2) ja testikemikaalin pitoisuus ovat sellaisia, että kaasutilassa on riittävästi happea täydellistä biohajoamista varten.
All bottles are then sealed for example, with butyl rubber septa and aluminium caps.
Sen jälkeen kaikki pullot suljetaan esimerkiksi butyylikumikalvolla tai alumiinikorkilla.
Volatile tests chemicals should be added at this stage (paragraph 45).
Haihtuvat testikemikaalit lisätään tässä vaiheessa (kohta 45).
If the decrease in DOC concentration of the test solution is to be monitored and for time zero analyses to be performed for initial IC concentration (sterile controls, paragraph 42e) or other determinands, remove an appropriate sample from the test vessel.
Jos testiliuoksen DOC-pitoisuuden laskua halutaan seurata ja alkuperäisen IC-pitoisuuden nollahetken analyysejä (steriilit kontrollit, kohta 42 e) tai muita analyysejä halutaan tehdä, ota sopivan kokoinen näyte testiastiasta.
The test vessel and its contents are then discarded.
Hävitä testiastia ja sen sisältö tämän jälkeen.
The sealed bottles are placed on a rotary shaker (paragraph 15d), with a shaking rate sufficient to keep the bottle contents well mixed and in suspension (e.g. 150 to 200 rpm), and incubated in the dark at 20 °C, to be kept within ± 1 °C.
Suljetut pullot asetetaan pyörivään ravistimeen (kohta 15 d), jonka ravistusnopeus riittää pitämään pullojen sisällön hyvin sekoitettuna ja suspendoituneena (esim. 150–200 rpm), ja niitä inkuboidaan pimeässä lämpötilassa 20 °C ± 1 °C.
The pattern of sampling will depend on the lag period and kinetic rate of biodegradation of the test chemical.
Näytteenottotapa määräytyy lag-vaiheen ja testikemikaalin biohajoamisen kineettisen nopeuden mukaan.
Bottles are sacrificed for analysis on the day of sampling, which should be at least weekly or more frequently (e.g. twice per week) if a complete degradation curve is required.
Pullot analysoidaan näytteenottopäivänä, joita pidetään vähintään kerran viikossa tai useammin (esim. kahdesti viikossa), jos täydellinen hajoamiskäyrä on tarpeen.
The requisite number of replicate bottles is taken from the shaker, representing FT, FB and FC and, if used FI and FS (see paragraph 42).
Tarvittava määrä rinnakkaispulloja (FT, FB ja FC sekä FI ja FS, jos käytössä) otetaan ravistajasta (ks. kohta 42).
The test normally runs for 28d.
Testin normaali kesto on 28 päivää.
If the biodegradation curve indicates that a plateau has been attained before 28d, the test may be concluded earlier than 28d.
Jos biohajoamiskäyrä osoittaa, että tasannevaihe on saavutettu ennen päivää 28, testi voidaan lopettaa jo aikaisemmin.
Take samples from the five bottles reserved for the 28th day of the test for analysis and use the results to calculate the confidence limits or coefficient of variation of percentage biodegradation.
Ota näytteet viidestä pullosta, jotka on varattu testipäivän 28 analysointia varten, ja laske tulosten perusteella luottamusvälit tai biohajoamisprosentin variaatiokerroin. Inhibition ja abioottisen hajoamisen tarkistusta varten varatuista pulloista ei tarvitse ottaa näytteitä yhtä usein kuin muista pulloista.
Bottles representing the checks for inhibition and for abiotic degradation need not be sampled as frequently as the other bottles; day 1 and day 28 would be sufficient.
Riittää, kun näyte otetaan päivänä 1 ja 28.
Inorganic carbon (IC) analysis
Epäorgaanisen hiilen (IC) analyysi
production in the bottles is determined by measuring the increase in the concentration of inorganic carbon (IC) during incubation.
Pullojen CO2-tuotanto määritetään mittaamalla epäorgaanisen hiilen (IC) pitoisuuden nousu inkubaation aikana.
There are two recommended methods available for measuring the amount of IC produced in the test, and these are described immediately below.
Testin aikana tuotetun IC:n mittaamiseen on kaksi suositeltavaa menetelmää, jotka on kuvattu alla.
Since the methods can give slightly different results only one should be used in a test run.
Koska näiden menetelmien tulokset voivat poiketa hieman toisistaan, käytä vain yhtä menetelmää yhdessä testiajossa.
Method (a) is recommended if the medium is likely to contain remnants of, for example, a glass-filter paper and/or insoluble test chemical.
Menetelmä (a) on suositeltava, jos siirrosaineessa on todennäköisesti jäänteitä lasisuodatinpaperista ja/tai liukenemattomasta testikemikaalista.
This analysis can be performed using a gas chromatograph if a carbon analyser is not available.
Analyysi voidaan tehdä kaasukromatografilla, jos hiilianalysaattoria ei ole käytettävissä.
It is important that the bottles should be at or close to the test temperature when the headspace gas is analysed.
On tärkeää, että pullot ovat testilämpötilassa tai sitä lähellä, kun kaasutilan kaasua analysoidaan.
Method (b) can be easier for laboratories using carbon analysers to measure IC.
Menetelmä (b) voi olla helpompi, jos laboratoriossa käytetään hiilianalysaattoreita IC:n mittaamiseen.
It is important that the sodium hydroxide solution (paragraph 21) used to convert CO2 to carbonate is either freshly prepared or its IC content is known, so that this can be taken into account when calculating the test results (see paragraph 66-b.)
On tärkeää, että natriumhydroksidiliuos (kohta 21), jolla CO2 muunnetaan karbonaatiksi, on vasta valmistettu tai sen IC-pitoisuus on tunnettu, jotta se voidaan huomioida testituloksia laskettaessa (ks. kohta 66 b.)
Method (a):
Menetelmä (a):
acidification to pH < 3
happamoittaminen pH-arvoon < 3
Before each batch of analyses, the IC analyser is calibrated using an appropriate IC standard (e.g. 1 % w/w CO2 in N2).
Ennen jokaista analyysierää IC-analysaattori kalibroidaan käyttämällä soveltuvaa IC-standardia (esim. 1 % w/w CO2:ta N2:ssa).
Concentrated orthophosphoric acid (paragraph 20) is injected through the septum of each bottle sampled to lower the pH of the medium to < 3 (e.g. add 1 ml to 107 ml test medium).
Väkevöity ortofosforihappo (kohta 20) injektoidaan jokaisen pullon kalvon läpi, jotta siirrosaineen pH-arvoksi tulee < 3 (esim. 1 ml, kun testiviljelyaineen tilavuus on 107 ml).
The bottles are placed back on the shaker.
Pullot asetetaan takaisin ravistajaan.
After shaking for one hour at the test temperature the bottles are removed from the shaker, aliquots (e.g. 1 ml) of gas are withdrawn from the headspace of each bottle and injected into the IC analyser.
Kun pulloja on ravistettu yksi tunti testilämpötilassa, ne otetaan pois ravistajasta, kaasualikvootit (esim. 1 ml) otetaan jokaisen pullon kaasutilasta ja injektoidaan IC-analysaattoriin.
The measured IC concentrations are recorded as mg C/l.
Mitatut IC-pitoisuudet rekisteröidään (mg C/l).
The principle of this method is that after acidification to pH < 3 and equilibration at 20 °C, the equilibrium constant for the distribution of CO2 between the liquid and gaseous phases in the test bottles is 1,0 when measured as a concentration (13).
Tämä menetelmä perustuu siihen, että kun pH-arvo on happamoitettu alle kolmeen ja tasapainotus tehty lämpötilassa 20 °C, CO2:n jakautumisen testipullojen neste- ja kaasufaasin välillä tasapainovakio on 1,0 pitoisuutena mitattuna (13).
This should be demonstrated for the test system at least once as follows:
Tämä on osoitettava vähintään kerran seuraavalla tavalla:
Set up bottles containing 5 and 10 mg/l as IC using a solution of anhydrous sodium carbonate (Na2 CO3) in CO2-free water prepared by acidifying water to pH 6,5 with concentrated ortho-phosphoric acid (paragraph 20), sparging overnight with CO2-free air and raising the pH to neutrality with alkali.
Valmistele pullot, joissa IC:tä on 5 ja 10 mg/l, käyttämällä vedetöntä natriumkarbonaattia (Na2CO3) ja vettä, joka ei sisällä CO2:ta ja joka valmistetaan happamoittamalla veden pH-arvoksi 6,5 ortofosrofihapolla (kohta 20). Kuplita yön yli ilmalla, joka ei sisällä CO2:ta, ja nosta pH neutraaliksi emäksellä.
Ensure that the ratio of the headspace volume to the liquid volume is the same as in the tests (e.g. 1:2).
Varmista, että kaasutilan ja nesteen tilavuuksien suhde on sama kuin testeissä (esim. 1:2).
Acidify and equilibrate as described in paragraph 52, and measure the IC concentrations of both the headspace and liquid phases.
Happamoita ja tasapainota kohdan 52 ohjeiden mukaisesti ja mittaa IC-pitoisuudet sekä kaasutilasta että nestefaasista.
Check that the two concentrations are the same within experimental error.
Tarkista, että nämä kaksi pitoisuutta ovat samat koevirheen sisällä.
If they are not, the operator should review the procedures.
Jos näin ei ole, työvaiheet on käytävä läpi.
This check on the distribution of IC between liquid and gaseous phases need not be made every time the test is performed; it could presumably be made while performing the calibration.
IC:n jakautumista neste- ja kaasufaasin välille ei tarvitse tarkistaa aina, kun testi tehdään. Se voidaan tehdä kalibroinnin yhteydessä.
Method (b):
Menetelmä (b):
conversion of CO2 to carbonate
:n muuntaminen karbonaatiksi
Before each batch of analyses, the IC analyser is calibrated using an appropriate standard — for example, a solution of sodium bicarbonate (NaHCO3) in CO2 free water (see paragraph 53) in the range 0 to 20 mg/l as IC.
IC-analysaattori kalibroidaan ennen jokaista analyysierää soveltuvalla standardilla, kuten natriumbikarbonaattiluoksella (NaHCO3) vedessä, joka ei sisällä CO2:ta (ks. kohta 53), IC-pitoisuus 0–20 mg/l.
Sodium hydroxide solution (7M, paragraph 21) (e.g. 1 ml to 107 ml medium) is injected through the septum of each bottle sampled and the bottles are shaken for 1 h at the test temperature.
Natriumhydroksidiliuos (7M, kohta 21) (esim. 1 ml, kun testiviljelyaineen tilavuus on 107 ml) injektoidaan kalvon läpi jokaiseen pulloon, josta näyte otetaan, ja pulloja ravistetaan 1 tunti testilämpötilassa.
Use the same NaOH solution on all bottles sacrificed on a particular day, but not necessarily on all sampling occasions throughout a test.
Käytä samaa NaOH-liuosta kaikissa tiettynä päivänä analysoitavissa pulloissa. Samaa liuosta ei kuitenkaan tarvitse käyttää testin kaikilla näytteenottokerroilla.
If absolute blank IC values are required at all sampling occasions, IC determinations of the NaOH solution will be required each time it is used.
Jos IC:n absoluuttiset nolla-arvot tarvitaan kaikilla näytteenottokerroilla, NaOH-liuoksen IC on määritettävä aina ennen käyttöä.
The bottles are removed from the shaker and allowed to settle.
Pullot otetaan pois ravistajasta, ja niiden annetaan tasaantua.
Suitable volumes (e.g. 50 to 1000 μl) of the liquid phase in each vessel are withdrawn by syringe.
Jokaisen pullon nestefaasista otetaan sopiva tilavuus (esim. 50–1000 μl) ruiskulla.
The samples are injected into the IC analyser and the concentrations of IC are recorded.
Nämä näytteet injektoidaan IC-analysaattoriin, ja IC-pitoisuudet merkitään ylös.
It should be ensured that the analyser used is equipped properly to deal with the alkaline samples produced in this method.
On varmistettava, että käytettävä analysaattori soveltuu tällä menetelmällä tuotettujen emäksisten näytteiden käsittelyyn.
The principle of this method is that after the addition of alkali and shaking, the concentration of IC in the headspace is negligible.
Tämä menetelmä perustuu siihen, että kun emästä on lisätty ja pulloja ravistettu, IC-pitoisuus kaasutilassa on hyvin pieni.
This should be checked for the test system at least once by using IC standards, adding alkali and equilibrating, and measuring the concentration of IC in both the headspace and liquid phases (see paragraph 53).
Tämä on tarkistettava vähintään kerran käyttämällä IC-standardeja, lisäämällä emästä, tasapainottamalla ja mittaamalla IC-pitoisuus sekä kaasutilassa että nestefaasissa (ks. kohta 53).
The concentration in the headspace should approach zero.
Pitoisuuden pitäisi olla lähes nolla kaasutilassa.
This check on the virtually complete absorption of CO2 need not be made every time the test is performed.
Tätä virtuaalisesti täydellisen CO2-absorption tarkistusta ei tarvitse tehdä aina, kun testi tehdään.
Calculating of results
Tulosten laskeminen
Assuming 100 % mineralisation of the test chemical to CO2, the ThIC in excess of that produced in the blank controls equals the TOC added to each test bottle at the start of the test, that is:
Jos oletetaan, että testikemikaali on mineralisoitunut sataprosenttisesti CO2:ksi, kontrollien tuotannon ylittävä ThIC on yhtä kuin jokaiseen testipulloon testin alussa lisätty TOC, eli:
TOC
TOC.
The total mass (mg) of inorganic carbon (TIC) in each bottle is:
Yhdessä pullossa olevan epäorgaanisen hiilen kokonaismassa (TIC) (mg) on:
mg C in the liquid
mg C nesteessä
mg C in the headspace
mg C kaasutilassa
Equation [1]
Yhtälö [1]
volume of liquid in the bottle (litre);
nesteen tilavuus pullossa (litraa)
CL concentration of IC in the liquid (mg/l as carbon);
CL IC-pitoisuus nesteessä (mg/l hiilenä)
VH volume of the headspace (litre);
VH kaasutilan tilavuus (litraa)
CH concentration of IC in the headspace (mg/l as carbon).
CH IC-pitoisuus kaasutilassa (mg/l hiilenä).
The calculations of TIC for the two analytical methods used for measuring IC in this test are described below in paragraphs 60 and 61.
TIC-laskelmat tässä testissä IC:n mittaamiseen käytettyä kahta analyysimenetelmää varten on kuvattu kohdissa 60 ja 61.
Percentage biodegradation (% D) in each case is given by:
Biohajoamisprosentti (% D) saadaan seuraavasti:
Equation [2]
Yhtälö [2]
TOC mg TOC added initially to the test vessel.
TOC alun perin testiastiaan lisätty mg TOC.
The percentage biodegradation % D is calculated for the test (FT), reference (FC) and, if included inhibition monitoring control (FI) bottles from the respective amounts of TIC produced up to each sampling time.
Biohajoamisprosentti % D lasketaan testipulloille (FT), vertailupulloille (FC) ja mahdollisille inhibition seurantaan tarkoitetuille pulloille (FI) kuhunkin näytteenottoaikaan mennessä tuotetun TIC:n määrästä.
If there has been a significant increase in the TIC content of the sterile controls (FS) over the test period, then it may be concluded that abiotic degradation of the test chemical has occurred and this must be taken into account in the calculation of D in Equation [2].
Jos TIC-pitoisuus on noussut merkittävästi steriileissä kontrolleissa (FS) testijakson aikana, voidaan päätellä, että testikemikaali on hajonnut abioottisesti. Tämä on huomioitava laskettaessa D:tä kaavalla [2].
Acidification to pH < 3
Happamoittaminen pH-arvoon < 3
Since acidification to pH < 3 and equilibration results in the equalisation of the concentration of TIC in the liquid and gaseous phases, only the concentration of IC in the gas phase needs to be measured.
Koska happamoittaminen pH-arvoon < 3 ja tasapainottaminen tasapainottaa TIC-pitoisuuden neste- ja kaasufaasissa, ainoastaan kaasufaasin IC-pitoisuus mitataan.
Thus, from Equation [1] TIC
Kaava [1] TIC
, where VB = volume of the serum bottle.
, jossa VB = seerumipullon tilavuus.
Conversion of CO2 to carbonate
:n muuntaminen karbonaatiksi
In this method calculations are performed as in Equation [1], but the negligible amount of IC in the gaseous phase is ignored, that is VH
Tässä menetelmässä laskelmat tehdään kuten kaavassa [1], mutta kaasufaasin hyvin pieni IC-määrä jätetään huomioimatta, eli VH
Expression of Results
Tulosten ilmaiseminen
A biodegradation curve is obtained by plotting percentage biodegradation, D, against time of incubation and if possible, the lag phase, biodegradation phase, 10-d window and plateau phase, that is the phase in which the maximal degradation has been reached and the biodegradation curve has levelled out, are indicated.
Biohajoamiskäyrä saadaan esittämällä biohajoamisprosentti D suhteessa inkubaatioaikaan ja lag-vaihe, biohajoamisvaihe, 10-päiväinen jakso ja tasannevaihe eli vaihe, jolloin maksimaalinen hajoaminen on saavutettu ja biohajoamiskäyrä on loiventunut, ilmaistaan, jos mahdollista.
If comparable results are obtained for parallel test vessels FT (< 20 % difference), a mean curve is plotted (see Appendix 2, Fig.1); if not, curves are plotted for each vessel.
Jos rinnakkaistestipulloista FT saadaan verrattavissa olevat tulokset (ero < 20 %), piirretään keskiarvokäyrä (ks. lisäys 2, kuva 1). Jos näin ei ole, jokaista astiaa varten piirretään oma käyrä.
The mean value of the percentage biodegradation in the plateau phase is determined or the highest value is assessed (e.g. when the curve decreases in the plateau phase), but it is important to assess that in the latter case the value is not an outlier.
Tasannevaiheen biohajoamisprosentin keskiarvo määritetään tai korkein arvo arvioidaan (esim. kun käyrä laskee tasannevaiheessa), mutta jälkimmäisessä tapauksessa on tärkeää varmistaa, että arvo ei ole poikkeava havainto.
Indicate this maximum level of biodegradation as “degree of biodegradation of the test chemical” in the test report.
Kirjaa tämä biohajoamisen enimmäistaso testiraporttiin testikemikaalin biohajoamisasteena.
If the number of test vessels was insufficient to indicate a plateau phase, the measured data of the last day of the test are used to calculate a mean value.
Jos testiastioiden määrä ei riittänyt tasannevaiheen osoittamiseen, keskiarvo lasketaan testin viimeisenä päivänä mitatuista tiedoista.
This last value, the mean of five replicates, serves to indicate the precision with which the percentage biodegradation was determined.
Tämä viimeinen arvo, viiden rinnakkaisnäytteen keskiarvo, osoittaa biohajoamisprosentin määritystarkkuuden.
Also report the value obtained at the end of the 10-d window.
Kirjaa ylös myös 10-päiväisen jakson lopussa saatu arvo.
In the same way, a curve for the reference chemical, FC, is plotted and, if included, for the abiotic elimination check, FS and the inhibition control, FI.
Vertailukemikaalin FC käyrä laaditaan samalla tavalla, ja samoin abioottisen eliminaation tarkistuksen FS ja inhibition tarkistuksen FI, jos ne olivat käytössä.
The amounts of TIC present in the blank controls (FB) are recorded as are those in flasks FS (abiotic check), if these vessels were included in the test.
TIC:n määrät kontrollipulloissa (FB) kirjataan samoin kuin pulloissa FS (abioottinen tarkistus), jos sellaiset olivat käytössä.
Calculate D for the FI vessels, based on the theoretical IC yield anticipated from only the reference component of the mixture.
Laske FI-astioiden D ainoastaan seoksen vertailukomponentin odotetun teoreettisen IC-saannin perusteella.
If, at day 28, [(DFC [8] – DFI [9]/DFC] × 100 > 25 %, it may be assumed that the test chemical inhibited the activity of the inoculum, and this may account for low values of DFT obtained under the conditions of the test.
Jos päivänä 28 [(DFC [8] – DFI [9])/DFC] × 100 > 25 %, voidaan olettaa, että testikemikaali esti siirrosaineen toimintaa, mikä voi selittää testiolosuhteissa saadut matalat DFT-arvot.
In this case the test could be repeated using a lower test concentration and preferably reducing the DIC in the inoculum and TIC formed in the blank controls, since the lower concentration will otherwise reduce the precision of the method.
Tässä tapauksessa testi voidaan toistaa käyttämällä alempaa testipitoisuutta ja mielellään vähentämällä DIC:n määrää siirrosaineessa ja kontrollipulloissa muodostuvaa TIC:tä, sillä muutoin alempi pitoisuus heikentää menetelmän tarkkuutta.
Alternatively, another inoculum may be used.
Vaihtoehtoisesti voidaan käyttää toista siirrosainetta.