natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If there is information (from a range finding experiment) that the test chemical is not cytotoxic up to the limit concentration in the dark experiment (-Irr), but is highly cytotoxic when irradiated (+Irr), the concentration ranges to be selected for the (+Irr) experiment may differ from those selected for the (-Irr) experiment to fulfill the requirement of adequate data quality.
Jos (pitoisuusalueenmäärittelykokeiden perusteella) tiedetään, että testikemikaali ei ole myrkyllinen soluille edes suurimmassa pitoisuudessa pimeäkokeessa (-Irr), mutta on erittäin myrkyllinen soluille säteilytettäessä (+ Irr), voi olla tarpeen valita (+ Irr)-kokeeseen eri pitoisuusalue kuin (- Irr)-kokeeseen, jotta mittaustulosten riittävää laatua koskevat vaatimukset täyttyvät.
Radiation sensitivity of the cells, establishing of historical data:
Solujen säteilyherkkyys ja sen muuttumisen tarkistaminen:
Cells should be checked regularly (about every fifth passage) for sensitivity to the light source by assessing their viability following exposure to increasing doses of irradiation.
Solujen herkkyys valolähteelle pitäisi tarkistaa säännöllisesti (noin joka viidennen siirrostamisen jälkeen) arvioimalla niiden elävyys sen jälkeen, kun niitä on altistettu suuremmille säteilytysannoksille.
Several doses of irradiation, including levels substantially greater than those used for the 3T3 NRU Phototoxicity test should be used in this assessment.
Tässä arvioinnissa pitäisi käyttää useita säteilytysannoksia, myös huomattavasti suurempia kuin 3T3 NRU -valomyrkyllisyystestissä käytetyt.
These doses are easiest quantitated by measurements of UV parts of the light source.
Annokset voidaan kvantifioida helpoimmin mittaamalla valolähteen UV-valon määrä.
Cells are seeded at the density used in the in vitro 3T3 NRU phototoxicity test and irradiated the next day.
Solut inokuloidaan tiheydessä, jota käytetään in vitro 3T3 NRU -valomyrkyllisyystestissä, ja säteilytetään seuraavana päivänä.
Cell viability is then determined one day later using Neutral Red uptake.
Solujen elävyys määritellään yhtä päivää myöhemmin neutraalipunan ottona.
It should be demonstrated that the resulting highest non-cytotoxic dose (e.g. in the validation study: 5 J/cm2 [UVA]) was sufficient to classify the reference chemicals (Table 1) correctly.
On osoitettava, että suurin ei-solumyrkyllinen annos (esim. validointitutkimuksessa 5 J/cm2 [UVA]) oli riittävä vertailukemikaalien luokittelemiseksi (taulukko) oikein.
Radiation sensitivity, check of current test:
Säteilyherkkyys, testin tarkistaminen:
The test meets the quality criteria if the irradiated negative/solvent controls show a viability of more than 80 % when compared with non-irradiated negative/solvent.
Testi täyttää laatuvaatimukset, jos säteilytettyjen negatiivisten kontrollien (liuotinkontrollien) elävyys on yli 80 % verrattuna säteilyttämättömiin negatiivisiin kontrolleihin (liuotinkontrolleihin).
Viability of solvent controls:
Liuotinkontrollien elävyys:
The absolute optical density (OD540 NRU) of the Neutral Red extracted from the solvent controls indicates whether the 1×104 cells seeded per well have grown with a normal doubling time during the two days of the assay.
Liuotinkontrollien neutraalipunauutteesta mitattu absoluuttinen optinen tiheys (OD540 Nru) osoittaa, ovatko kuoppaa kohti inokuloidut 1 × 104 solua lisääntyneet normaalilla nopeudella määritykseen kuuluvien kahden päivän aikana.
A test meets the acceptance criteria if the mean OD540 NRU of the untreated controls is ≥ 0,4 (i.e. approximately 20 times the background solvent absorbance).
Testi täyttää hyväksymisvaatimukset, jos käsittelemättömien kontrollien keskimääräinen OD540 Nru on ≥ 0,4 (noin 20 kertaa liuottimen tausta-absorbanssi).
Positive control:
Positiivinen kontrolli:
A known phototoxic chemical shall be tested concurrently with each in vitro 3T3 NRU phototoxicity test.
Kussakin in vitro 3T3 NRU -valomyrkyllisyystestissä on testattava samanaikaisesti jokin tunnetusti valomyrkyllinen kemikaali.
Chlorpromazine (CPZ) is recommended.
Käytettäväksi suositellaan klooripromatsiinia (CPZ).
For CPZ tested with the standard protocol in the in vitro 3T3 NRU phototoxicity test, the following test acceptance criteria were defined: CPZ irradiated (+Irr): IC50 = 0,1 to 2,0 μg/ml, CPZ non-irradiated (-Irr): IC50 = 7,0 to 90,0 μg/mL.
CPZ:n testaukselle in vitro 3T3 NRU -valomyrkyllisyyden standardiprotokollassa määriteltiin seuraavat hyväksyntävaatimukset: CPZ, säteilytetty (+ Irr): IC50 = 0,1-2,0 g/ml; CPZ, ei säteilytetty (- Irr): IC50 = 7,0 -90,0 μg/ml.
The Photo Irritation Factor (PIF), should be > 6.
Valoärsyttävyystekijän (PIF) pi täisi olla > 6.
The historical performance of the positive control should be monitored.
Positiivisen kontrollin suorituskykyä olisi seurattava pitkän ajan kuluessa.
Other phototoxic chemicals, suitable for the chemical class or solubility characteristics of the chemical being evaluated, may be used as the concurrent positive controls in place of chlorpromazine.
Klooripromatsiinin sijasta voidaan samanaikaisesti testattavina positiivisina kontrolleina käyttää muita valomyrkyllisiä kemikaaleja, jotka sopivat kyseessä olevalle kemikaaliluokalle tai arvioitavana olevan kemikaalin liukoisuusominaisuuksiin.
Test procedure (6)(7)(8)(16)(17):
Testimenetelmä (6) (7) (8) (16) (17):
day:
päivä:
Dispense 100 μL culture medium into the peripheral wells of a 96-well tissue culture microtiter plate (= blanks).
Pipetoidaan 100 μlviljelynestettä 96-mikrotitterikuoppalevyn laitimmaisiin kuoppiin (= nollakokeet).
In the remaining wells, dispense 100 μL of a cell suspension of 1×105 cells/mL in culture medium (= 1×104 cells/well).
Muihin kuoppiin pipetoidaan 100 μlsolususpensiota, jossa on 1 × 105 solua/ml viljelynesteessä (= 1 × 104 solua/kuoppa).
Two plates should be prepared for each series of individual test substance concentrations, and for the solvent and positive controls.
Kullekin yksittäisen testiaineen pitoisuuksien sarjalle sekä liuotin- ja positiivisille kontrolleille on valmistettava kaksi levyä.
Incubate cells for 24 h (See Section 1.4.1.2) until they form a half confluent monolayer.
Soluja inkuboidaan 24 h (katso kohta 1.4.1.2), kunnes ne muodostavat puoliksi konfluentin yhden solun vahvuisen kerroksen.
This incubation period allows for cell recovery, adherence, and exponential growth.
Tässä ajassa solut toipuvat, tarttuvat levyn pohjaan ja alkavat kasvaa eksponentiaalisesti.
After incubation, decant culture medium from the cells and wash carefully with 150 μL of the buffered solution used for incubation.
Inkubaation jälkeen viljelyneste kaadetaan kuopista pois ja solut pestään huolellisesti 150 μl:lla puskuriliuosta, jota käytettiin inkubaatiossa.
Add 100 μL of the buffer containing the appropriate concentration of test chemical or solvent (solvent control).
Lisätään 100 μL puskuria, jossa on testikemikaalia tai liuotinta (liuotinkontrolli).
Apply eight different concentrations of the test chemical.
Kuoppiin lisätään kahdeksaa eri pitoisuutta testikemikaalia.
Incubate cells with the test substance in the dark for 60 minutes (See Section 1.4.1.2 and 1.4.1.4 second paragraph).
Soluja inkuboidaan testikemikaalin kanssa pimeässä 60 minuuttia (katso kohta 1.4.1.2 ja kohta 1.4.1.4, toinen alakohta).
From the two plates prepared for each series of test substance concentrations and the controls, one is selected, generally at random, for the determination of cytotoxicity (-Irr) (i.e., the control plate), and one (the treatment plate) for the determination of photocytotoxicity (+Irr).
Kullekin yksittäisen testiaineen pitoisuuksien sarjalle sekä kontrolleille valmistetuista kahdesta levystä valitaan yksi (yleensä sattumanvaraisesti) sytotoksisuuden määritystä varten (- Irr) (kontrollilevy) ja toinen (testilevy) fotosytotoksisuuden määritystä varten (+ Irr).
To perform the +Irr exposure, irradiate the cells at room temperature for 50 minutes through the lid of the 96-well plate with the highest dose of radiation that is non-cytotoxic (see also Appendix 2).
Testin (+ Irr)-osaa varten soluja säteilytetään huoneenlämpötilassa 50 minuuttia 96-kuoppalevyn kannen läpi suurimmalla ei-solumyrkyllisellä säteilyannoksella (katso myös liite 2).
Keep non-irradiated plates (-Irr) at room temperature in a dark box for 50 min (= light exposure time).
Säteilyttämättömät levyt (- Irr) pidetään huoneenlämpötilassa pimeässä laatikossa 50 min (= valoaltistusaika).
Decant test solution and carefully wash twice with 150 μL of the buffered solution used for incubation, but not containing the test material.
Testiliuos kaadetaan pois ja solut pestään huolellisesti kahdesti 150 μl:lla puskuriliuosta, jota käytettiin inkubaatiossa, mutta jossa ei ole testiainetta.
Replace the buffer with culture medium and incubate (See Section 1.4.1.2.) overnight (18-22 h).
Puskuri korvataan viljelynesteellä, ja soluja inkuboidaan (katso kohta 1.4.1.2) yli yön (18–22 h).
Microscopic evaluation
Mikroskooppitutkimus
Cells should be examined for growth, morphology, and integrity of the monolayer using a phase contrast microscope.
Solujen lisääntyminen, morfologia ja yhden solun vahvuisen kerroksen eheys on tutkittava käyttäen faasikontrastimikroskooppia.
Changes in cell morphology and effects on cell growth should be recorded.
Solujen muodonmuutokset ja vaikutukset solujen lisääntymiseen on kirjattava.
Neutral Red uptake test
Neutraalipunatesti
Wash the cells with 150 μL of the pre-warmed buffer.
Solut pestään 150 μl:lla esilämmitettyä puskuriliuosta.
Remove the washing solution by gentle tapping.
Pesuliuos kaadetaan pois ravistamalla levyä varovasti.
Add 100 μL of a 50 μg/mL Neutral Red (NR) (3-amino-7-dimethylamino-2-methylphenazine hydrochloride, EINECS number 209-035-8; CAS number 553-24-2; C.I.
Kuoppiin lisätään 100 € neutra alipunaa (NR) (3-amino-7-dimetyyliamino-2-metyylifenatsiinihydrokloridi, EINECS-numero 209-035-8; CAS-numero 553-24-2; C.I.
in medium without serum (16) and incubate as described in paragraph 1.4.1.2., for 3 h. After incubation, remove the NR medium, and wash cells with 150 μL of the buffer.
viljelynesteessä ilman seerumia (16) ja soluja inkuboidaan 3 tunnin ajan kohdassa 1.4.1.2 kuvatulla tavalla. Inkubaation jälkeen NR-viljelyneste poistetaan ja solut pestään 150 μl:lla puskuriliuosta.
Decant and remove excess buffer by blotting or centrifugation.
Puskuriliuos kaadetaan pois ja kuopat kuivataan täysin imeyttäen neste paperiin tai sentrifugoimalla.
Add exactly 150 μL NR desorb solution (freshly prepared 49 parts water + 50 parts ethanol + 1 part acetic acid).
Lisätään tarkasti 150 μl NR-desorbointiliuosta (juuri valmistettu, 49 osaa vettä + 50 osaa etanolia + 1 osa etikkahappoa).
Shake the microtiter plate gently on a microtiter plate shaker for 10 min until NR has been extracted from the cells and has formed a homogeneous solution.
Mikrotitterilevyä heilutetaan varovasti ravistajassa 10 minuutin ajan, kunnes NR on uuttunut soluista ja muodostanut tasaisen liuoksen.
Measure the optical density of the NR extract at 540 nm in a spectrophotometer, using blanks as a reference.
NR-uutteen optinen tiheys luetaan aallonpituudella 540 nm spektrofotometrissä käyttäen vertailuliuoksena nollanäytteitä.
Save data in an appropriate electronic file format for subsequent analysis.
Mittaustulokset tallennetaan sopivassa sähköisessä muodossa myöhempää analysointia varten.
QUALITY AND QUANTITY OF DATA
MITTAUSTULOSTEN LAATU JA MÄÄRÄ
The test data should allow a meaningful analysis of the concentration-response obtained in the presence and in the absence of irradiation, and if possible the concentration of test chemical by which cell viability is reduced to 50 % (IC50).
Mittaustulosten avulla pitäisi voida analysoida järkevästi säteilytyksellä ja ilman sitä saadut pitoisuusvasteet sekä mahdollisuuksien mukaan se testikemikaalin pitoisuus, jossa solujen elävyys on vähentynyt 50 prosenttiin (IC50).
If cytotoxicity is found, both the concentration range and the intercept of individual concentrations shall be set in a way to allow the fit of a curve to the experimental data.
Jos havaitaan sytotoksisuutta, sekä pitoisuusalue että yksittäiset pitoisuudet on valittava siten, että koetuloksiin voidaan sovittaa kuvaaja.
For both clearly positive and clearly negative results (See Section 2.3, first paragraph), the primary experiment, supported by one or more preliminary dose range-finding experiment(s), may be sufficient.
Selvästi positiivisia tai selvästi negatiivisia tuloksia ei tarvitse tarkistaa toistamalla koetta (katso kohta 2.3, ensimmäinen alakohta). Tällaisissa tapauksissa riittää yksi koe, jota tukee yksi tai useampia annoksen pitoisuusaluetta määrittäviä alustavia kokeita.
Equivocal, borderline, or unclear results should be clarified by further testing (see also section 2.4, second paragraph).
Moniselitteiset tai epäselvät tulokset tai rajatapaukset olisi selvennettävä uudella testillä (katso kohdan 2.4 toinen alakohta).
In such cases, modification of experimental conditions should be considered.
Tällaisissa tapauksissa olisi harkittava koeolosuhteiden muuttamista.
Experimental conditions that might be modified include the concentration range or spacing, the pre-incubation time, and the irradiation-exposure time.
Voidaan muuttaa pitoisuusalue tai pitoisuuksien välit, esi-inkubaatioaika ja altistusaika säteilytykselle.
A shorter exposure time may be appropriate for water-unstable chemicals.
Vedessä hajoaville kemikaaleille voi lyhyt altistusaika olla tarkoituksenmukainen.
To enable evaluation of the data, a Photo-Irritation-Factor (PIF) or Mean Photo Effect (MPE) may be calculated.
Tulosten arvioimiseksi voidaan laskea valoärsyttävyystekijä (PIF) tai keskimääräinen valovaikutus (MPE).
For the calculation of the measures of photocytotoxicity (see below) the set of discrete concentration-response values has to be approximated by an appropriate continuous concentration-response curve (model).
Valomyrkyllisyyden arvojen laskemiseksi (ks. jäljempänä) on yksittäisiä konsentraatio-vastearvoja aproksimoitava jatkuvalla konsentraatio-vastekuvaajalla (malli).
Fitting of the curve to the data is commonly performed by a non-linear regression method (18).
Kuvaaja sovitetaan tuloksiin tavallisesti soveltamalla ei-lineaarista regressiomenetelmää (18).
To assess the influence of data variability on the fitted curve a bootstrap procedure is recommended.
Jotta voidaan arvioida tietojen vaihtelevuuden vaikutus kuvaajaan, suositellaan bootstrap-menetelmää.
A Photo-Irritation-Factor (PIF) is calculated using the following formula:
Valoärsyttävyystekijä (PIF) lasketaan seuraavasta kaavasta:
If an IC50 in the presence or absence of light cannot be calculated, a PIF cannot be determined for the test material.
Jos IC50:tä (joko valon kanssa tai ilman valoa) ei voida laskea, PIF:iä ei voida määrittää testiaineelle.
The mean photo effect (MPE) is based on comparison of the complete concentration-response curves (19).
Keskimääräinen valovaikutus (MPE) perustuu täydellisten pitoisuus-vastekuvaajien vertailuun (19).
The photo effect PEc at any concentration C is defined as the product of the response effect REc and the dose effect DEc i.e. PEc = REc × DEc. The response effect REc is the difference between the responses observed in the absence and presence of light, i.e. REc = Rc (-Irr) - Rc (+Irr).
Valovaikutus PEc missä tahansa pitoisuudessa C määritellään vastevaikutuksen REc ja annosvaikutuksen DEc tulona PEc = REc x DEc. Vastevaikutus REc on ilman valoa ja valon kanssa havaittujen vasteiden erotus REc = Rc (- Irr) - Rc (+ Irr).
The dose-effect is given by
Annosvaikutus lasketaan kaavasta
where C* represents the equivalence concentration, i.e. the concentration at which the +Irr response equals the –Irr response at concentration C. If C* cannot be determined because the response values of the +Irr curve are systematically higher or lower than RC(-Irr) the dose effect is set to 1.
jossa C* on ekvivalenssipitoisuus eli pitoisuus, jossa + Irr-vaste vastaa - Irr-vastetta pitoisuudessa C. Jos C*:tä ei voida määrittää, koska + Irr-kuvaajan vastearvot ovat järjestelmällisesti suurempia tai pienempiä kuin RC (- Irr), annosvaikutuksen arvo on 1.
The weighting factors wi are given by the highest response value, i.e. wi = MAX Ri (+Irr), Ri (-Irr) .
Painotuskertoimet (wi) saadaan suurimmasta vastearvosta: wi = MAX Ri (+ Irr), Ri (- Irr).
The concentration grid Ci is chosen such that the same number of points falls into each of the concentration intervals defined by the concentration values used in the experiment.
Pitoisuusvälit Ci valitaan siten, että kuhunkin pitoisuusväliin kuuluu sama määrä pisteitä.
Depending on whether the MPE value is larger than a properly chosen cut-off value (MPEc = 0,15) or not, the chemical is classified as phototoxic.
Jos tämä suurin pitoisuus on suurempi kuin + Irr-kokeessa käytetty suurin pitoisuus, + Irr-kuvaajan jäljelle jäävässä osassa vastearvo on 0. Riippuen siitä, onko MPE:n arvo suurempi kuin asianmukaisesti valittu erotteleva raja-arvo (MPEc=0,15) vai ei, kemikaali luokitellaan valomyrkylliseksi.
A software package for the calculation of the PIF and MPE is available from (20).
PIF:n ja MPE:n laskemista varten on saatavissa ohjelmistopaketti (20).
Based on the validation study (8), a test substance with a PIF < 2 or an MPE < 0,1 predicts: ‘no phototoxicity’.
Validointitutkimuksen perusteella (8) testiaineen, jonka PIF < 2 tai MPE < 0,1 ennuste on: ”ei valomyrkyllinen”.
A PIF > 2 and < 5 or an MPE > 0,1 and < 0,15 predicts: ‘probable phototoxicity’; and a PIF > 5 or an MPE > 0,15 predicts: ‘phototoxicity’.
Kun PIF > 2 ja < 5, tai kun MPE > 0,1 ja < 0,15, ennuste on: ”todennäköisesti valomyrkyllinen”; kun PIF > 5, tai kun MPE > 0,15, ennuste on: ”valomyrkyllinen”.
For any laboratory initially establishing this assay, the reference materials listed in Table 1 should be tested prior to the testing of test substances for phototoxic assessment.
Laboratorion, joka ottaa käyttöön tämän määrityksen, olisi testattava ensin taulukossa 1 mainitut vertailumateriaalit ennen kuin aloitetaan testinaineiden testaaminen valomyrkyllisyyden arvioimiseksi.
PIF or MPE values should be close to the values mentioned in Table 1.
PIF- ja MPE-arvojen tulisi olla lähellä taulukossa 1 mainittuja arvoja.
Absorption peak
Absorptio-huippu
Solvent [9]
Liuotin [9]
Amiodarone HCL
Amiodaroni-HCL
(shoulder)
(olkapää)
Choloropromazine HCL
Klooripromatsiini-HCL
acetonitrile
asetonitriili
Protoporphyrin IX, Disodium
Protoporfyriini IX, dinatrium
L-Histidine
L-histidiini
no PIF
ei PIF-arvoa
Hexacholorophene
Heksaklorofeeni
Sodium lauryl sulphate
Natriumlauryylisulfaatti
no absorption
Ei absorptiota
INTERPRETATION OF DATA
TULOSTEN TULKINTA
If phototoxic effects are observed only at the highest test concentration, (especially for water soluble test chemicals) additional considerations may be necessary for assessment of hazard.
Jos valomyrkyllisyysvaikutuksia havaitaan vain suurimmilla testipitoisuuksilla (erityisesti vesiliukoisilla testikemikaaleilla), vaaran arvioimiseksi voidaan tarvita lisätestaamista muilla pitoisuuksilla.
These may include data on skin absorption, and accumulation of the chemical in the skin and/or data from other tests, e.g. testing of the chemical in in vitro animal or human skin, or skin models.
Lisätietoja voidaan tarvita esimerkiksi kemikaalin imeytymisestä ja kertymisestä ihoon, ja/tai kemikaali on testattava muulla testillä, esimerkiksi ihmisen tai eläimen ihoa käyttävällä in vitro -testillä tai ihomallien avulla.
If no toxicity is demonstrated (+Irr and -Irr), and if poor solubility limited the concentrations that could be tested, then the compatibility of the test substance with the assay may be questioned and confirmatory testing should be considered using, e.g. another model.
Jos myrkyllisyyttä ei voida osoittaa (+ Irr ja - Irr) ja jos aineen huonoliukoisuus rajoittaa testattavia pitoisuuksia, voidaan asettaa kyseenalaiseksi, sopiiko testiaine kyseiseen määritykseen, ja on harkittava vahvistavaa määritystä (esim. käyttämällä muuta mallia).
The test report must include at least the following information:
Testiselosteessa on annettava seuraavat tiedot:
identification data, common generic names and IUPAC and CAS number, if known,
tunnistetiedot, yleisnimet ja IUPAC- ja CAS-numero, jos se tiedetään,
physical nature and purity,
fysikaalinen olomuoto ja puhtaus,
physicochemical properties relevant to conduct of the study,
fysikokemialliset ominaisuudet, jotka vaikuttavat tutkimuksen tekemiseen,
UV/vis absorption spectrum,
UV-valon ja näkyvän valon absorptiospektri,
stability and photostability, if known.
stabiilius ja valostabiilius, jos tunnetaan.
Solvent:
Liuotin:
justification for choice of solvent,
perustelut liuottimen valinnalle,
solubility of the test chemical in solvent,
testikemikaalin liukoisuus liuottimeen,
percentage of solvent present in treatment medium.
liuottimen pitoisuus prosentteina käsittelynesteessä.
absence of mycoplasma,
onko soluissa mykoplasmaa,
cell passage number, if known,
solujen siirrostusjärjestysluku, jos se tiedetään,
Radiation sensitivity of cells, determined with the irradiation equipment used in the in vitro 3T3 NRU phototoxicity test.
solujen säteilyherkkyys määritettynä sillä säteilytyslaitteella, jota käytetään in vitro 3T3 NRU -valomyrkyllisyystestissä.
Test conditions (1); incubation before and after treatment:
Testiolosuhteet (1) — inkubointi ennen käsittelyä ja sen jälkeen:
type and composition of culture medium,
viljelynesteen tyyppi ja koostumus,
incubation conditions (CO2 concentration; temperature; humidity),
inkubaatio-olosuhteet (CO2-pitoisuus, lämpötila, kosteus),
duration of incubation (pre-treatment; post-treatment).
inkubaatioaika (esikäsittely, jälkikäsittely).
Test conditions (2); treatment with the chemical:
Testiolosuhteet (2) — käsittely kemikaalilla:
rationale for selection of concentrations of the test chemical used in the presence and in the absence of irradiation,
perustelut testikemikaalin pitoisuuksien valintaan (sekä säteilytyksen kanssa että ilman sitä),
in case of limited solubility of the test chemical and absence of cytotoxicity: rationale for the highest concentration tested,
jos testikemikaali on huonoliukoinen eikä osoita solumyrkyllisyyttä, perustelut suurimmalle testatulle pitoisuudelle,
type and composition of treatment medium (buffered salt solution),
käsittelynesteen tyyppi ja koostumus (puskuroitu suolaliuos),
duration of the chemical treatment.
kemikaalikäsittelyn kesto.
Test conditions (3); irradiation:
Testiolosuhteet (3) — säteilytys:
rationale for selection of the light source used,
perustelut käytetyn valolähteen valinnalle,
manufacturer and type of light source and radiometer,
valolähteen ja säteilymittarin valmistaja ja tyyppi,
spectral irradiance characteristics of the light source,
valolähteen spektrin säteilyominaisuudet,
transmission and absorption characteristics of the filter(s) used,
käytetyn suodattimen (käytettyjen suodattimien) transmissio- ja absorptio-ominaisuudet,
characteristics of the radiometer and details on its calibration,
säteilymittarin ominaisuudet ja sen kalibrointi yksityiskohtaisesti,
distance of the light source from the test system,
valolähteen etäisyys testijärjestelmästä,
UVA irradiance at this distance, expressed in mW/cm2,
UVA-säteilyn voimakkuus kyseisellä etäisyydellä, mW/cm2,
duration of the UV/vis light exposure,
UV-altistuksen tai näkyvälle valolle altistuksen kesto,
UVA dose (irradiance × time), expressed in J/cm2,
UVA-annos (säteilyvoimakkuus × aika), ilmaistuna laatuna J/cm2,
temperature of cell cultures during irradiation and cell cultures concurrently kept in the dark.
soluviljelmien lämpötila säteilytyksen aikana ja samanaikaisesti pimeässä pidettyjen soluviljelmien lämpötila.
Test conditions (4); Neutral Red viability test:
Testiolosuhteet (4) — neutraalipunatesti:
composition of Neutral Red treatment medium,
neutraalipunaliuoksen koostumus,
duration of Neutral Red incubation,
neutraalipunainkubaation kesto,
Neutral Red extraction conditions (extractant; duration),
neutraalipunan uutto-olosuhteet (uuttoaine, kesto),
wavelength used for spectrophotometric reading of Neutral Red optical density,
aallonpituus, jolla neutraalipunan optinen tiheys luettiin spektrofotometrillä,