natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Samples may need to be filtered (e.g. using a 0,45 μm pore size) or centrifuged.
Näytteet voivat edellyttää sentrifugointia tai suodatusta (esim. 0,45 um:n huokoskoon suotimella).
Centrifugation is the recommended procedure.
Sentrifugointia suositellaan.
However, if the test material does not adsorb to filters, filtration may also be acceptable.
Jos testiaine ei adsorboidu suotimiin, voi myös suodatus olla hyväksyttävää.
During the test, dissolved oxygen, pH and temperature should be measured in all test vessels.
Liuennut happi, pH ja lämpötila on mitattava testin aikana kaikista testiastioista.
Total hardness, alkalinity and salinity (if relevant) should be measured in the controls and one vessel at the highest concentration.
Veden kokonaiskovuus, emäksisyys ja suolapitoisuus (jos sillä on merkitystä) mitataan kontrolleista ja yhdestä astiasta, jossa on suurin pitoisuus.
As a minimum, dissolved oxygen and salinity (if relevant) should be measured three times (at the beginning, middle and end of the test).
Liuennut happi ja suolapitoisuus, jos se on merkityksellinen, olisi mitattava kolmesti (testin alussa, keskivaiheilla ja lopussa).
In semi-static tests, it is recommended that dissolved oxygen be measured more frequently, preferably before and after each water renewal or at least once a week. pH should be measured at the beginning and end of each water renewal in static renewal test and at least weekly in flow-through tests.
Suositellaan, että puolistaattisissa testeissä liuennut happi mitataan useammin, mieluiten ennen kutakin veden vaihtoa ja sen jälkeen tai vähintään kerran viikossa. pH olisi mitattava kunkin vedenvaihdon alussa ja lopussa puolistaattisissa testeissä ja vähintään viikoittain läpivirtaustesteissä.
Hardness and alkalinity should be measured once each test.
Kovuus ja emäksisyys olisi mitattava kerran testin aikana.
Temperature should preferably be monitored continuously in at least one test vessel.
Lämpötilaa olisi mielellään seurattava jatkuvasti vähintään yhdessä testiastiassa.
Weight: at the end of the test all surviving fish must be weighed as wet weights (blotted dry) either in groups by test vessel or individually.
Paino: Testin lopussa on määritettävä kaikkien elossa olevien kalojen märkäpaino (pyyhekuivattuna) joko ryhmittäin testiastiaa kohti tai yksittäin.
Weighing of animals by test vessel is preferred to individual weights which require that fish be individually marked.
Punnitseminen testiastiaa kohti on parempi kuin yksittäisten kalojen punnitseminen, jolloin kalat olisi merkittävä yksilöllisesti.
In the case of the measurement of individual weights for determination of individual fish specific growth rate, the marking technique selected should avoid stressing the animals (alternatives to freeze marking may be appropriate, e.g. the use of coloured fine fishing line).
Jos mitataan kunkin kalan paino yksilöspesifisen kasvunopeuden määrittämiseksi, olisi valittava sellainen merkintätapa, joka ei stressaisi eläimiä (kylmämerkinnän vaihtoehdot, esim. hienon värillisen siiman käyttö, voivat olla sopivia).
The fish should be examined daily during the test period and any external abnormalities (such as hemorrhage, discoloration) and abnormal behaviour noted.
Kaloja on havainnoitava päivittäin testin aikana, ja kaikki ulkoiset poikkeavuudet (kuten verenvuoto, värin muutokset) olisi pantava merkille.
Any mortalities should be recorded and the dead fish removed as soon as possible.
Mahdolliset kuolemantapaukset on kirjattava ja kuolleet kalat poistettava mahdollisimman nopeasti tankista.
Dead fish are not replaced, the loading rate and stocking density being sufficient to avoid effects on growth through changes in number of fish per tank.
Kuolleiden kalojen tilalle ei panna uusia, sillä lastaus- ja varastotiheys ovat niin suuret, että kunkin tankin kalojen määrän muutokset eivät vaikuta kasvuun.
However, the feeding rate will need to be adjusted.
Ruokkimistaajuutta on kuitenkin mukautettava.
It is recommended that a statistician be involved in both the design and analysis of the test since this test method allows for considerable variation in experimental design as for example, in the number of test chambers, number of test concentrations, number of fish, etc. In view of the options available in test design, specific guidance on statistical procedure is not given here.
Suositellaan, että sekä testin suunnittelussa että analysoinnissa on mukana tilastotieteilijä, koska menetelmä mahdollistaa huomattavaa joustoa kokeen suunnittelussa. Esim. testiastioiden lukumäärä, testipitoisuuksien lukumäärä ja kalojen lukumäärä voivat olla erilaiset.
Growth rates should not be calculated for test vessels where the mortality exceeds 10 %.
Kasvunopeuksia ei lasketa sellaisille testiastioille, joissa kuolleisuus on yli 10 %.
However, mortality rate should be indicated for all test concentrations.
Kuolleisuus olisi kuitenkin ilmoitettava kaikille testipitoisuuksille.
Whichever method is used to analyse the data, the central concept is the specific growth rate r between time t1 and time t2.
Riippumatta tulosten analysointiin käytettävästä menetelmästä keskeinen käsite on spesifinen kasvunopeus r ajankohtien t1, ja t2 välillä.
This can be defined in several ways depending on whether fish are individually marked or not or whether a tank average is required.
Se voidaan määritellä useilla tavoilla riippuen siitä, onko kalat merkitty yksilöllisesti vai ei ja siitä, tarvitaanko tankin keskiarvoa.
individual fish specific growth rate
yksittäisen kalan spesifinen kasvunopeus
tank-average specific growth rate
tankkikohtainen keskimääräinen kasvunopeus
‘pseudo’ specific growth rate
spesifinen pseudokasvunopeus
weights of a particular fish at times t1 and t2, respectively
tietyn kalan paino ajankohdalla t1, ja t2
logarithm of the weight of an individual fish at the start of the study period
yksittäisen kalan painon logaritmi testin alussa
logarithm of the weight of an individual fish at the end of the study period
yksittäisen kalan painon logaritmi testin lopussa
average of the logarithms of the values w1 for the fish in the tank at the start of the study period
w1-arvojen logaritmien keskiarvo tankin kaloille testin alussa
average of the logarithms of the values w2 for the fish in the tank at the end of the study period
w2-arvojen logaritmien keskiarvo tankin kaloille testin alussa
time (days) at start and end of study period
aika (päiviä) testin alussa ja lopussa
r1, r2, r3 can be calculated for the 0-28 days period and, where appropriate (i.e. when measurement at day 14 has been done) for the 0-14 and 14-28 days periods.
r1, r2, r3 voidaan laskea ajalle 0–28 vuorokautta ja tarvittaessa (ts. kun päivänä 14 on tehty mittaus) ajalle 0–14 vuorokautta ja 14–28 vuorokautta.
Analysis of results by regression (concentration-response modelling)
Tulosten regressioanalyysi (pitoisuus-vastemallitus)
This method of analysis fits a suitable mathematical relationship between the specific growth rate and concentration, and hence enables the estimation of the ‘ECx’ i.e. any required EC value.
Tässä analyysimenetelmässä sovitetaan sopiva matemaattinen vastaavuussuhde spesifisen kasvunopeuden ja pitoisuuden välille, ja sen avulla voidaan estimoida ECx ts. mikä tahansa LC-arvo.
Using this method the calculation of r for individual fish (r1) is not necessary and instead, the analysis can be based on the tank-average value of r (r2).
Tämä menetelmä ei edellytä r-arvon laskemista yksittäisille kaloille (r1); sen sijaan analyysi perustuu tankkia kohti määritettyyn keskiarvoon (r2).
This last method is preferred.
Jälkimmäinen menetelmä on suositeltava.
It is also more appropriate in case of the use of smallest species.
Se on parempi myös pienikokoisille kalalajeille.
The tank-average specific growth rates (r2) should be plotted graphically against concentration, in order to inspect the concentration response relationship.
Tankkikohtainen keskimääräinen spesifinen kasvunopeus (r2) esitetään kuvaajassa pitoisuuden funktiona, jotta voidaan tarkastella pitoisuus-vastesuhdetta.
For expressing the relationship between r2 and concentration, an appropriate model should be chosen and its choice must be supported by appropriate reasoning.
Jotta r2-arvon ja pitoisuuden välinen suhde voidaan ilmaista, on valittava sopiva malli, ja valinnan tueksi on esitettävä asianmukaiset perustelut.
If the numbers of fish surviving in each tank are unequal, then the process of model fitting, whether simple or non-linear, should be weighted to allow for unequal sizes of groups.
Jos elossa olevien kalojen määrä tankeissa on erilainen, on mallin sovitus — olipa se yksinkertainen tai epälineaarinen — painotettava siten, että siinä otetaan huomioon ryhmien epätasainen koko.
The method of fitting the model must enable an estimate of, for example, the EC20 and of its dispersion (either standard error or confidence interval) to be derived.
Mallin sovitusmenetelmän on oltava sellainen, että voidaan estimoida esim. EC20 ja laskea sen hajonta (joko keskivirhe tai luottamusväli).
The graph of the fitted model should be shown in relation to the data so that the adequacy of the fit of the model can be seen (8)(18)(19)(20).
Sovitetun mallin kuvaaja on esitettävä mittaustulosten kanssa, jotta mallin sopivuus voidaan nähdä (8) (18) (19) (20).
Analysis of results for the estimation of the LOEC
Tulosten analysointi LOEC-arvon estimoimiseksi
If the test has included replication of tanks at all concentration levels, the estimation of the LOEC could be based on an analysis of variance (ANOVA) of the tank-average specific growth rate (see Section 2.1), followed by a suitable method (e.g. Dunnett's or Williams' test (12)(13)(14)(21)) of comparing the average r for each concentration with the average r for the controls to identify the lowest concentration for which this difference is significant at a 0,05 probability level.
Jos testissä on rinnakkaiset tankit kaikilla pitoisuuksilla, LOEC-arvon estimointi voi perustua tankkikohtaisen keskimääräisen spesifisen kasvunopeuden varianssianalyysiin (ANOVA) (ks. kohta 2.1), jonka jälkeen sopivalla menetelmällä (esim. Dunnettin tai Williamsin testillä (12) (13) (14) (21) verrataan kullakin pitoisuudella saatua r-arvoa kontrollien keskimääräiseen r-arvoon, jotta voidaan tunnistaa pienin pitoisuus, jolla kyseinen ero on merkitsevä todennäköisyystasolla 0,05.
If the required assumptions for parametric methods are not met — non-normal distribution (e.g. Shapiro-Wilk's test) or heterogeneous variance (Bartlett's test), consideration should be given to transforming the data to homogenise variances prior to performing the ANOVA, or to carrying out a weighted ANOVA.
Jos parametristen menetelmien edellyttämät vaatimukset eivät täyty –epänormaali jakauma (esim. Shapiro-Wilkin testi) tai heterogeeninen varianssi (Bartlettin testi) — olisi harkittava mittaustulosten muuntamista varianssien homogenisoimiseksi ennen ANOVA-analyysiä tai painotetun ANOVAn tekemistä.
The average r3 for each test concentration may then be compared with the average r3 for the controls.
Kunkin testipitoisuuden keskimääräistä r3-arvoa voidaan sitten verrata kontrollien keskimääräiseen r3-arvoon.
The LOEC can then be identified as before.
LOEC-arvo voidaan sitten määrittää kuten edellä.
It must be recognised that this method provides no allowance for, nor protection against, variability between tanks, beyond that which is accounted for by the variability between individual fish.
On todettava, että tässä menetelmässä ei voida ottaa lainkaan huomioon suurempaa tankkien välistä vaihtelua kuin minkä yksittäisten kalojen välinen vaihtelu selittää.
However, experience has shown (8) that between-tank variability was very small compared with within-tank (i.e. between fish) variability.
Kokemus on kuitenkin osoittanut (9), että tankkien välinen vaihtelu on erittäin pieni verrattuna tankinsisäiseen (ts. kalojen väliseen) vaihteluun.
If individual fish are not included in the analysis, the method of outlier identification and justification for its use must be provided.
Jos analyysi ei ota huomioon yksittäisiä kaloja, on selostettava suuresti poikkeavien näytteiden tunnistamiseen käytetty menetelmä ja perusteltava se.
The results should be interpreted with caution where measured toxicant concentrations in test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method or, in semi static tests, when the concentration of the test substance decreases between freshly prepared solution and before renewal.
Tulosten tulkinnassa on oltava varovainen, jos testiliuosten myrkyllisen aineen pitoisuudet ovat lähellä määritysmenetelmän havaitsemisrajaa tai jos puolistaattisessa testissä testiaineen pitoisuus ennen liuoksen vaihtoa on pienempi kuin juuri valmistetussa liuoksessa.
physical nature and relevant physical-chemical properties;
fysikaalinen olomuoto ja fysikokemialliset ominaisuudet, jos niillä on merkitystä,
chemical identification data including purity and analytical method for quantification of the test substance where appropriate.
kemialliset tunnistetiedot, mukaan luettuna puhtausaste, ja testiaineen kvantifiointiin käytettävä analyyttinen menetelmä (tarvittaessa).
scientific name, possibly
mahdollisesti tieteellinen nimi,
strain, size, supplier, any pre-treatment, etc.
kanta, koko, toimittaja, mahdolliset esikäsittelyt jne.
test procedure used (e.g. semi-static/renewal, flow-through, loading, stocking density, etc.),
käytetty testimenetelmätyyppi (esim. puolistaattinen tai läpivirtausmenetelmä, lastaustiheys, varastotiheys),
test design (e.g. number of test vessels, test concentrations and replicates, number of fish per vessel),
testin suunnittelu (esim. testiastioiden, testipitoisuuksien ja rinnakkaisten näytteiden lukumäärä, kalojen lukumäärä astiaa kohti),
method of preparation of stock solutions and frequency of renewal (the solubilising agent and its concentration must be given, when used),
varastoliuosten valmistusmenetelmä ja nesteen vaihtojen väli (liuotusapuaine ja sen pitoisuus on ilmoitettava, jos sellaista käytetään),
the nominal test concentrations, the means of the measured values and their standard deviations in the test vessels and the method by which these were attained and evidence that the measurements refer to the concentrations of the test substance in true solution,
nimelliset testipitoisuudet, mitattujen arvojen keskiarvot ja niiden keskihajonnat testiastioissa, niiden laske miseen käytetty menetelmä sekä näyttö siitä, että mittaukset on tehty todella liuoksessa olevasta testi aineesta,
dilution water characteristics: pH, hardness, alkalinity, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), total organic carbon, suspended solids, salinity of the test medium (if measured) and any other measurements made,
laimennukseen käytetyn veden ominaisuudet: pH, kovuus, lämpötila, liuenneen hapen pitoisuus, jäännösklooripitoisuus (jos se on mitattu), orgaanisiin yhdisteisiin sitoutuneen hiilen kokonaismäärä, suspensiossa olevat kiinteät aineet, testiväliaineen suolapitoisuus (jos se on mitattu) ja muut mahdolliset mittaukset,
water quality within test vessels: pH, hardness, temperature and dissolved oxygen concentration,
testiastioissa olevan veden laatu: pH, kovuus, lämpötila ja liuenneen hapen pitoisuus,
detailed information on feeding, (e.g. type of food(s), source, amount given and frequency).
yksityiskohtaiset tiedot ruokinnasta (esim. rehu(je)n tyyppi, alkuperä, annettu määrä ja antotaajuus).
evidence that controls met the validity criterion for survival, and data on mortalities occurring in any of the test concentrations,
näyttö siitä, että kontrollit täyttivät eloonjäämistä koskevan validiteettivaatimuksen, ja missä tahansa pitoi suudessa esiintynyttä kuolleisuutta koskevat tarkat tiedot,
statistical analytical techniques used, statistics based on replicates or fish, treatment of data and justification of techniques used,
käytetyt analyyttiset tilastomenetelmät, rinnakkaisnäyte- tai kalaperusteiset tilastot, mittaustulosten käsittely ja käytettyjen tekniikoiden perustelut,
tabulated data on individual and mean fish weights on days 0, 14 (if measured) and 28 values of tank-average or pseudo specific growth rates (as appropriate) for the periods 0-28 days or possibly 0-14 and 14-28,
taulukoidut mittaustulokset yksittäisten kalojen painoista ja keskimääräisistä painoista päivinä 0, 14 jos on mitattu) ja 28, tankkikohtaiset keskimääräiset kasvunopeudet tai spesifiset pseudokasvunopeudet ajan jaksoille 0–28 vuorokautta tai mahdollisesti ajanjaksoille 0–14 ja 14–28 vuorokautta,
results of the statistical analysis (i.e. regression analysis or ANOVA) preferably in tabular and graphical form and the LOEC (p = 0,05) and the NOEC or ECx with, when possible, standard errors, as appropriate,
tilastollisen analyysin (ts. regressioanalyysin tai ANOVAn) tulokset mieluiten taulukko- ja kuvaajamuodossa sekä LOEC-arvo (p = 0,05) ja NOEC-arvo tai ECx-arvo sekä keskivirheet, jos mahdollista,
incidence of any unusual reactions by the fish and any visible effects produced by the test substance.
kalojen mahdolliset epätavalliset reaktiot ja testiaineen aiheuttamat mahdolliset näkyvät vaikutukset.
Nagel R., Bresh H., Caspers N., Hansen P.D., Market M., Munk R., Scholz N. and Höfte B.B., (1991) Effect of 3,4-dichloroaniline on the early life stages of the Zebrafish (Brachydanio rerio): results of a comparative laboratory study.
Nagel R., Bresh H., Caspers N., Hansen P. D., Market M., Munk R., Scholz N. and Höfte B. B. (1991). Effect of 3,4-dichloroaniline on the early life stages of the Zebrafish (Brachydanio rerio): rcsults of a comparative laboratory study.
Holcombe, G.W., Benoit D.A., Hammermeister, D.E., Leonard, E.N. and Johnson, R.D., (1995) Acute and long-term effects of nine chemicals on the Japanese medaka (Oryzias latipes).Arch.
Holcombe, G. VV., Benoit D. A., Hammermeister, D. E., Leonard, E. N. and Johnson, R. D. (199 5). Acute and long-term effects of nine chemicals on the Japanese medaka (Oryzias latipes).
Benoit, D.A., Holcombe, G.W. and Spehar, R.L., (1991) Guidelines for conducting early life toxicity tests with Japanese medaka (Oryzias latipes).
Benoit, D. A., Holcombe, G. VV. and Spehar, R. L. (1991). Guidelines for conducting early life toxicity tests with Japanese medaka (Oryzias latipes).
Environmental Protection Agency, Duluth, Minesota.
US Environmental Protection Agency, Duluth. Minnesota.
Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Eighth Symposium, ASTM STP 891, R C Bahner and D J Hansen, Eds., American Society for Testing and Materials, Philadelphia, p. 328-338.
Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Eighth Symposium, ASTM STP 891, R. C. Bahner and D. J. Hansen, eds., American Society for Testing and Materials, Philadelphia, pp. 328-338.
Conservation and Protection, Ontario, Report EPS 1/RM/28, p. 81.
Conservation and Protection, Ontario, Report EPS l/RM/28, 81 pp.
Cox D.R., (1958) Planning of experiments.
Cox D. R. (1958).
Assoc., 50, p. 1096-1121.
Assoc., 50, pp. 1096–1121.
Journal of Fish Biology, 37, p. 33-41.
Journal of Fish Biology, 37, pp. 33-41.
Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center.
Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center. Sept.
Biometrics 28, p. 510-531.
Biometrics 28, pp. 510-531.
FISH SPECIES RECOMMENDED FOR TESTING AND SUITABLE TEST CONDITIONS
TESTIIN SUOSITELLUT KALALAJIT JA SOPIVAT TESTIOLOSUHTEET
Recommended test temperature range
Suositeltu lämpötila-alue
Photoperiod
Valojaksot
Recommended range for initial fish weight
Suositellut kalojen painorajat testin alussa
Dry propietary salmonid fry food
Kaupallinen lohikalojen poikasten kuivarehu
Other well documented species:
Muita hyvin dokumentoituja lajeja:
zebrafish
Seeprakala
Live food (Brachionus Artemia)
Elävää ravintoa (Brachionus Artemia)
ricefish (Medaka)
Medaka
Concentrations
Pitoisuus
Logarithmic series of concentrations suitable for toxicity test (9)
Myrkyllisyystestiin soveltuvien pitoisuuksien logaritmiset sarjat (9)
Column (Number of concentrations between 100 and 10, or between 10 and 1) [1]
Sarake välillä 100-10 tai välillä 10-1 olevien pitoisuuksien lukumäärä) [1]
A series of five (or more) successive concentrations may be chosen from a column.
Sarakkeesta voi valita viiden (tai useamman) peräkkäisen pitoisuuden sarjan.
Mid-points between concentrations in column (x) are found in column (2x + 1).
Sarakkeessa (x) olevien pitoisuuksien keskivälillä olevia arvoja on sarakkeessa (2x + 1).
The values listed can represent concentrations expressed as percentage per volume or weight (mg/l or μg/l).
Luetellut arvot voivat olla prosenttiosuuksina tilavuusyksikköä tai painoyksikköä kohti ilmaistuja pitoisuuksia (mg/l tai μg/l).
Values can be multiplied or divided by any power of 10 as appropriate.
Arvot voidaan tarvittaessa jakaa tai kertoa kymmenen potensseilla.
Column 1 might be used if there was considerable uncertainty on the toxicity level.
Saraketta 1 voidaan käyttää, jos myrkyllisyystaso on hyvin epävarma
This short-term toxicity test method is a replicate of the OECD TG 212 (1998).
Tämä lyhytaikainen myrkyllisyystesti on toisinto OECD:n testiohjeesta nro 212 (1998).
This short-term toxicity test on Fish Embryo and Sac-Fry stages is a short-term test in which the life stages from the newly fertilised egg to the end of the sac-fry stage are exposed.
Tämä lyhytaikainen kalan alkio- ja ruskuaispussivaiheen poikasilla tehtävä myrkyllisyystesti on lyhytaikainen testi, jossa altistetaan testiaineelle varhaisessa kehitysvaiheessa olevia kalan alkioita juuri hedelmöityneistä munista ruskuaispussivaiheen loppuun asti.
No feeding is provided in the embryo and sac-fry test, and the test should thus be terminated while the sac-fry are still nourished from the yolk-sac.
Alkio- ja ruskuaispussivaihetestissä ci anneta ravintoa, joten testi pitäisi lopettaa vaiheessa, jossa ruskuaispussivaihealkio saa vielä ravintonsa ruskuaispussista.
The test is intended to define lethal, and to a limited extent, sub-lethal effects of chemicals on the specific stages and species tested.
Testissä on tarkoitus määrittää kemikaalien letaalit ja rajoitetussa määrin subletaalit vaikutukset tietyn lajin tietyissä kehitysvaiheissa oleviin poikasiin.
This test would provide useful information in that is could (a) form a bridge between lethal and sub-lethal tests, (b) be used as a screening test for either a Full Early Life Stage test or for chronic toxicity tests and (c) be used for testing species where husbandry techniques are not sufficiently advanced to cover the period of change from endogenous to exogenous feeding.
Tästä testistä saatavat tiedot olisivat hyödyllisiä, koska a) testin avulla voitaisiin muodostaa yhteys letaalien ja subletaalien vaikutusten välille, b) sitä voitaisiin käyttää joko täydellisen varhaiskehitysvaiheiden testin tai pitkäaikaisten myrkyllisyystestien seulontatestinä ja c) sillä voitaisiin testata lajeja, joiden kasvatusmenetelmät eivät ole vielä niin kehittyneet, että hallittaisiin vaihe, jolloin eläin siirtyy endogeenisestä ravinnonotosta eksogeeniseen ravinnonottoon.
It should be borne in mind that only tests incorporating all stages of the life-cycle of fish are generally liable to give an accurate estimate of the chronic toxicity of chemicals to fish, and that any reduced exposure with respect to life stages may reduce the sensitivity and thus underestimate the chronic toxicity.
Olisi muistettava, että kemikaalien pitkäaikainen myrkyllisyys kaloille voidaan yleensä arvioida tarkasti vain testeillä, jotka kattavat kaikki kalan elinkierron vaiheet. Jos altistetaan vain tietyissä kehitysvaiheissa olevia kaloja, testin herkkyys kärsii, ja pitkäaikainen myrkyllisyys voidaan aliarvioida.
Prior to the publication of this test, most experience with this embryo and sac-fry test has been with the freshwater fish Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae — common name zebrafish).
Ennen tämän testin julkaisemista useimmat tiedot alkio- ja ruskuaispussivaiheen kaloilla on saatu makeassa vedessä elävällä Danio rerio Hamilton-Buchanan -kalalla (Teleostei, Cyprinidae; yleinen nimi seeprakala).
More detailed guidance on test performance for this species is therefore given in Appendix 1.
Tällä kalalla suoritettavasta testistä annetaan siksi yksityiskohtaisemmat ohjeet lisäyksessä 1.