natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Application of the test and control substances
Testi- ja kontrolliaineen aplikoiminen
Concurrent positive and negative controls should be used for each study to ensure adequate performance of the experimental model.
Kussakin testissä on tehtävä samaan aikaan positiiviset ja negatiiviset kontrollimääritykset, jotta voidaan varmistaa testimallin riittävä suorituskyky.
Skin discs from a single animal should be used.
Testissä käytetään vain yhdestä eläimestä otettuja ihonäytteitä.
The suggested positive and negative control substances are 10 M hydrochloric acid and distilled water, respectively.
Suositellut kontrolliaineet ovat 10 M suolahappo (positiivinen kontrolli) ja tislattu vesi (negatiivinen kontrolli).
Liquid test substances (150 μL) are applied uniformly to the epidermal surface inside the tube.
Nestemäiset testiaineet (150 μl) aplikoidaan tasaisesti putken sisäpuolella olevalle orvaskesipinnalle.
When testing solid materials, a sufficient amount of the solid is applied evenly to the disc to ensure that the whole surface of the epidermis is covered.
Kun testataan kiinteitä aineita, ainetta on pantava tasaisesti näytepalan päälle riittävä määrä, että se peittää koko orvaskesipinnan.
Deionised water (150 μL) is added on top of the solid and the tube is gently agitated.
Kiinteän aineen päälle lisätään sitten deionisoitua vettä (150 μl) ja putkea ravistellaan varovasti.
In order to achieve maximum contact with the skin, solids may need to be warmed to 30 oC to melt or soften the test substance, or ground to produce a granular material or powder.
Jotta kiinteä testiaine olisi mahdollisimman hyvin kosketuksissa ihon kanssa, ainetta voidaan sulattaa tai pehmentää lämmittämällä se 30 oC:een tai se voidaan jauhaa rakeiseksi tai pulverimaiseksi.
Three skin discs are used for each test and control substance.
Kutakin testi-ja kontrolliainetta varten käytetään kolme ihonäytettä.
Test substances are applied for 24 hours at 20-23 oC.
Testiaineita aplikoidaan 24 tunnin ajaksi lämpötilassa 20–23 oC.
The test substance is removed by washing with a jet of tap water at up to 30 oC until no further material can be removed.
Testiaine poistetaan pesemällä vesihanan alla enintään 30 oC:n lämpötilassa, kunnes ainetta ei enää irtoa.
TER measurements
Ihon sähkövastuksen mittaukset
The skin impedance is measured as TER is measured by using a low-voltage, alternating current Wheatstone databridge (13).
Ihon impedanssi mitataan ihon sähkövastuksena matalajännitevaihtovirtasillalla (Wheatstone-silta) (13).
General specifications of the bridge are 1-3 Volt operating voltage, a sinus or rectangular shaped alternating current of 50 – 1000 Hz, and a measuring range of at least 0,1 – 30 kΩ.
Sillan yleiset eritelmät ovat: käyttöjännite 1–3 volttia, vaihtovirta 50–1000 Hz (sini- tai suorakaideaalto) ja mittausalue vähintään 0,1-30 kΩ.
The databridge used in the validation study measureds inductance, capacitance and resistance up to values of 2000 H, 2000 μF, and 2 MΩ, respectively at frequencies of 100 Hz or 1 kHz, using series or parallel values.
Validointitutkimuksessa käytetty silta mittasi induktanssin aina arvoon 2000 H, kapasitanssin arvoon 2000 μF ja vastuksen arvoon 2 MΩ taajuuksilla 100 Hz tai 1 kHz sarja-arvoina tai rinnakkaisina arvoina.
For the purposes of the TER corrosivity assay measurements are recorded in resistance, at a frequency of 100 Hz and using series values.
Ihon sähkövastusmääritystä varten mittaukset kirjataan vastuksena taajuudella 100 Hz ja sarja-arvoina.
Prior to measuring the electrical resistance, the surface tension of the skin is reduced by adding a sufficient volume of 70 % ethanol to cover the epidermis.
Ennen sähkövastuksen mittausta ihon pintajännitystä pienennetään lisäämällä putkeen 70-prosenttista etanolia riittävästi orvaskeden peittämiseksi.
After a few seconds, the ethanol is removed from the tube and the tissue is then hydrated by the addition of 3 mL MgSO4 solution (154 mM).
Etanoli poistetaan putkesta muutaman sekunnin kuluttua, ja kudos hydratoidaan lisäämällä 3 ml MgSO4-liuosta (154 mM).
The databridge electrodes are placed on either side of the skin disc to measure the resistance in kΩ/skin disc (Figure 1).
Mittaussillan elektrodit asetetaan ihonäytteen molemmille puolille vastuksen mittaamiseksi kilo-ohmeina ihonäytettä kohti (kuva 1).
Electrode dimensions and the length of the electrode exposed below the crocodile clips are shown in Figure 2.
Elektrodien mitat ja hauenleukapidikkeen alapuolella olevan elektrodin pituus esitetään kuvassa 2.
The clip attached to the inner electrode is rested on the top of the PTFE tube during resistance measurement to ensure that a consistent length of electrode is submerged in the MgSO4 solution.
Sisemmän elektrodin pidike pidetään mittauksen aikana PTFE-putken päällä sen varmistamiseksi, että sama pituusmäärä elektrodia on upotettuna MgSO4-liuokseen.
The outer electrode is positioned inside the receptor chamber so that it rests on the bottom of the chamber.
Ulompi elektrodi asetetaan koeastian sisälle siten, että se lepää astian pohjalla.
The distance between the spring clip and the bottom of the PTFE tube is maintained as a constant (Figure 2), because this distance affects the resistance value obtained.
Jousipidikkeen ja PTFE-putken pohjan välinen etäisyys pidetään vakiona (kuva 2), koska tämä etäisyys vaikuttaa mitattavaan vastuksen arvoon.
Consequently, the distance between the inner electrode and the skin disc should be constant and minimal (1-2 mm).
Samoin sisemmän elektrodin ja ihonäytteen välisen etäisyyden on oltava vakio ja mahdollisimman pieni (1–2 mm).
If the measured resistance value is greater than 20 kΩ, this may be due to the remains of the test substance coating the epidermal surface of the skin disc.
Jos mitattu vastuksen arvo on yli 20 kΩ, se voi johtua siitä, että jäljellä oleva testiaine peittää ihonäytteen orvaskesipinnan.
Further removal of this coating can be attempted, for example, by sealing the PTFE tube with a gloved thumb and shaking it for approximately 10 seconds; the MgSO4 solution is discarded and the resistance measurement is repeated with fresh MgSO4.
Tätä kerrosta voidaan yrittää poistaa esim. sulkemalla PTFE-putki peukalolla (hansikas kädessä) ja ravistelemalla putkea noin 10 sekuntia; MgSO4-liuos heitetään pois ja vastusmittaus toistetaan tuoreen MgSO4 -liuoksen kanssa.
The properties and dimensions of the test apparatus and the experimental procedure used may influence the TER values obtained.
Testauslaitteiden ominaisuudet ja mitat sekä koemenetelmä voivat vaikuttaa saatuihin ihon sähkövastusarvoihin.
The 5 kΩ corrosive threshold was developed from data obtained with the specific apparatus and procedure described in this method.
Viiden kΩ:n syövyttävyysraja perustuu tässä ohjeessa selostetuilla erityislaitteilla ja -menetelmällä saatuihin mittaustuloksiin.
Different threshold and control values may apply if the test conditions are altered or a different apparatus is used.
Jos testiolosuhteita muutetaan tai jos käytetään erilaisia laitteita, voi olla tarpeen käyttää eri raja- ja kontrolliarvoja.
Therefore, it is necessary to calibrate the methodology and resistance threshold values by testing a series of reference standards chosen from the chemicals used in the validation study (4)(5), or from similar chemical classes to the chemicals being investigated.
Siksi on tarpeen kalibroida menetelmä ja vastuksen raja-arvot testaamalla vertailukemikaaleja, jotka on valittu validointitutkimuksessa käytettyjen kemikaalien joukosta (4) (5) tai vastaavista kemikaaliluokista kuin testattavat kemikaalit.
A set of suitable reference chemicals is shown in Table 1.
Taulukossa 1 on luettelo sopivista vertailukemikaaleista.
Dye binding methods
Väriaineen sitomista mittaavat menetelmät
Exposure of certain non-corrosive materials can result in a reduction of resistance below the cut-off of 5 kΩ allowing the passage of ions through the stratum corneum, thereby reducing the electrical resistance (5).
Altistus tietyille ei-syövyttäville materiaaleille voi vähentää vastusta alle raja-arvon 5 kΩ ja mahdollistaa ionien pääsyn marraskeden läpi ja sitä kautta vähentää sähkövastusta (5).
For example, neutral organics and chemicals that have surface-active properties (including detergents, emulsifiers and other surfactants) can remove skin lipids making the barrier more permeable to ions.
Esimerkiksi neutraalit orgaaniset aineet ja pinta-aktiiviset kemikaalit (mm. puhdistusaineet, emulgointiaineet ja muut pinta-aktiiviset aineet) voivat poistaa ihon lipidejä ja lisätä ihon läpäisevyyttä ioneille.
Thus, if the TER values of test substances are less than or around 5 kΩ in the absence of visual damage, an assessment of dye penetration should be carried out on the control and treated tissues to determine if the TER values obtained were the result of increased skin permeability, or skin corrosion (3)(5).
Niinpä jos testiaineilla saadut ihon sähkövastusarvot ovat alle tai noin 5 kΩ, mutta näkyvää vauriota ei ole, on määritettävä väriaineen tunkeutuminen kontrollinäytteiden ja käsiteltyjen näytteiden kudokseen sen määrittämiseksi, ovatko ihon sähkövastusarvot tulosta ihon läpäisevyyden kasvusta vai ihon syöpymästä (3) (5).
In case of the latter where the stratum corneum is disrupted, the dye sulforhodamine B, when applied to the skin surface rapidly penetrates and stains the underlying tissue.
Kun on kyse syöpymästä, jossa marraskesi on vaurioitunut, ihon pinnalle aplikoitu sulforodamiini B -väriaine tunkeutuu nopeasti ihoon ja värjää pinnanalaisen kudoksen.
This particular dye is stable to a wide range of chemicals and is not affected by the extraction procedure described below.
Kyseinen väriaine on stabiili useiden eri kemikaalien kanssa, eikä alla kuvattu uuttomenettely vaikuta siihen.
Sulforhodamine B dye application and removal
Sulforodamiini B -väriaineen aplikaatio ja poistaminen
45100; EINECS Number 222-529-8; CAS number 3520-42-1), 150 μL of a 10 % (w/v) dilution in distilled water, is applied to the epidermal surface of each skin disc for two hours.
Jos ilmeisiä vaurioita ei ole, kunkin ihonäytteen orvaskesipinnalle aplikoidaan 2 tunniksi 150 μl 10-prosenttista (paino/tilavuus) sulforodamiini B -liuosta (Acid Red 52; C.I. 45100; EINECS-numero 222-529-8; CAS-numero 3520-42-1) tislatussa vedessä. Ihonäytteitä pestään sen jälkeen vesihanan alla huoneenlämpötilassa noin 10 sekuntia liian tai sitoutumattoman väriaineen poistamiseksi.
These skin discs are then washed with tap water at up to room temperature for approximately 10 seconds to remove any excess/unbound dye.
Ihonäytteet poistetaan varovasti PTFE-putkista ja pannaan pulloon (esim. 20 ml:n lasinen tuikelaskentapullo), jossa on deionisoitua vettä (8 ml). Pulloja ravistellaan varovasti 5 minuuttia mahdollisen jäljellä olevan sitoutumattoman väriaineen poistamiseksi. Huuhtelu toistetaan.
This rinsing procedure is then repeated, after which the skin discs are removed and placed into vials containing 5 ml of 30 % (w/v) sodium dodecyl sulphate (SDS) in distilled water and are incubated overnight at 60 oC.
Jäljellä olevaa liuosta sentrifugoidaan 8 minuuttia 21 oC:ssa (suhteellinen keskipakoisvoima ~175 x g).
After incubation, each skin disc is removed and discarded and the remaining solution is centrifuged for eight minutes at 21 oC (relative centrifugal force ~175 × g). A 1 ml sample of the supernatant is diluted 1 in 5 (v/v) [i.e.
Supernatantista otetaan 1 ml:n näyte, joka laimennetaan 1:5:een (tilavuus/tilavuus) [ts.
1 mL + 4 mL] with 30 % (w/v) SDS in distilled water.
1 ml + 4 ml] 30-prosenttisella (paino/tilavuus) SDS:llä tislatussa vedessä.
The optical density (OD) of the solution is measured at 565 nm.
Liuoksen optinen tiheys (OD) mitataan aallonpituudella 565 nm.
Calculation of dye content
Väriaineen pitoisuuden laskeminen
The sulforhodamine B dye content per disc is calculated from the OD values (5) (sulforhodamine B dye molar extinction coefficient at 565 nm = 8,7 × 104; molecular weight = 580).
Sulforodamiini B -väriaineen pitoisuus ihonäytteessä lasketaan OD-arvoista (5) (sulforodamiini B:n molaarinen ekstinktiokerroin aallonpituudella 565 nm = 8,7 × 104; molekyylipaino = 580).
The dye content is determined for each skin disc by the use of an appropriate calibration curve and a mean dye content is then calculated for the replicates.
Väriaineen pitoisuus ihonäytteessä määritellään käyttämällä sopivaa kalibrointikäyrää, ja väriaineen keskiarvopitoisuus lasketaan sitten rinnakkaisnäytteistä.
Resistance values (kΩ) and mean dye content values (μg/disc), where appropriate, for the test material, as well as for positive and negative controls should be reported in tabular form (individual trial data and means ± S.D.), including data for replicates/repeat experiments, mean and individual values.
Testiaineiden ja positiivisten ja negatiivisten kontrollien vastusarvot (kΩ) ja väriainepitoisuuden keskiarvot (μg/näyte) on esitettävä taulukkomuodossa (yksittäiset koetulokset ja keskiarvot ± keskihajonta). Samoin esitetään rinnakkaiskokeista tai toistetuista kokeista saadut tulokset, keskiarvot ja yksittäiset arvot.
The mean TER results are accepted if the concurrent positive and negative control values fall within the acceptable ranges for the method in the testing laboratory.
Ihon sähkövastusmittausten keskiarvot hyväksytään, jos samaan aikaan mitatut positiivisten ja negatiivisten kontrollinäytteiden määritysten tulokset ovat tälle menetelmälle määritellyissä hyväksyttävissä rajoissa (testilaboratoriossa).
The acceptable resistance ranges for the methodology and apparatus described above are given in the following table:
Hyväksyttävät vastusalueet käytettäessä tätä menetelmää ja näitä laitteita esitetään seuraavassa taulukossa:
Control
Vertailukoe
Resistance range (kΩ)
Vastusalue (kΩ)
Hydrochloric acid
10 M kloorivetyhappo
The mean dye binding results are accepted on condition that concurrent control values fall within the acceptable ranges for the method.
Väriaineen sitoutumiskokeen keskiarvotulokset hyväksytään, jos samaan aikaan tehtyjen kontrolliaineiden määritysten tulokset ovat tälle menetelmälle määritellyissä hyväksyttävissä rajoissa.
Suggested acceptable dye content ranges for the control substances for the methodology and apparatus described above are given below:
Suositellut kontrolliaineiden hyväksyttävät väriainepitoisuusalueet käytettäessä tätä menetelmää ja näitä laitteita ovat:
Dye content range (μg/disc)
Väriaineen pitoisuusalue (μg/näyte)
The test substance is considered to be non-corrosive to skin:
Testiaine ei ole syövyttävä iholle:
if the mean TER value obtained for the test substance is greater than 5 kΩ; or
jos testiaineelle saatu ihon sähkövastusarvo (keskiarvo) on yli 5 kΩ, tai
the mean TER value is less than or equal to 5 kΩ; and
ihon sähkövastusarvo (keskiarvo) on enintään 5 kΩ ja
the skin disc is showing no obvious damage, and
ihonäytteessä ei ole ilmeisiä vaurioita, ja
the mean disc dye content is well below the mean disc dye content of the 10M HCl positive control obtained concurrently.
ihonäytteen sisältämän väriaineen keskipitoisuus on selvästi vähemmän kuin samanaikaisesti määritetyn positiivisen kontrollin (10M HCl) aiheuttama ihonäytteen sisältämän väriaineen keskipitoisuus .
The test substance is considered to be corrosive to skin:
Testiaine on syövyttävä iholle:
if the mean TER value is less than or equal to 5 kΩ and the skin disk is obviously damaged; or
jos ihon sähkövastusarvo (keskiarvo) on enintään 5 kΩ ja ihonäyte on selvästi vaurioitunut tai
the skin disc is showing no obvious damage, but
ihonäytteessä ei ole ilmeisiä vaurioita, mutta
the mean disc dye content is greater than or equal to the mean disc dye content of the 10M HCl positive control obtained concurrently.
ihonäytteen sisältämän väriaineen keskipitoisuus on sama tai suurempi kuin samanaikaisesti määritetyn positiivisen kontrollin (10M HC1) aiheuttama ihonäytteen sisältämän väriaineen keskipitoisuus.
Test and control substances:
Testi- ja kontrolliaineet:
chemical name(s) such as IUPAC or CAS name and CAS number, if known,
kemiallinen nimi, kuten IUPAC- tai CAS-nimi sekä CAS-numero, jos se tiedetään,
purity and composition of the substance or preparation (in percentage(s) by weight) and physical natur,
aineen tai valmisteen puhtaus ja koostumus (painoprosentteina), fysikaaliset tila ja puhtaus,
physico-chemical properties such as physical state, pH, stability, water solubility, relevant to the conduct of the study,
testin suorittamisen kannalta merkitykselliset fysikokemialliset ominaisuudet, kuten fysikaalinen tila, pH, stabiilius ja vesiliukoisuus,
treatment of the test/control substances prior to testing, if applicable (e.g. warming, grinding),
tarvittaessa testi- tai kontrolliaineiden käsittely ennen testiä (esim. lämmittäminen tai jauhaminen),
stability, if known.
stabiilius, jos se tiedetään.
strain and sex used,
käytetty kanta ja sukupuoli,
age of the animals when used as donor animals,
eläinten ikä, kun niitä käytetään luovuttajaeläiminä,
source, housing condition, diet, etc,
toimittaja, häkit, ravinto jne.,
details of the skin preparation.
tiedot ihonäytteestä.
calibration curves for test apparatus,
kalibrointikäyrät testilaitteille,
calibration curves for dye binding test performance,
kalibrointikäyrät väriaineensitomistestille,
details of the test procedure used for TER measurements,
tiedot ihon sähkövastuksen mittauksiin käytetystä testimenettelystä,
details of the test procedure used for the dye binding assessment; if appropriate,
tiedot väriaineensitomistestissä käytetystä testimenettelystä (tarvittaessa),
description of any modification of the test procedures,
kuvaus testimenettelyjen mahdollisista muutoksista,
description of evaluation criteria used.
käytetyt arviointikriteerit.
tabulation of data from the TER and dye binding assay (if appropriate) for individual animals and individual skin samples;
taulukkomuodossa tulokset, jotka on saatu ihon sähkövastuksen ja tarvittaessa värinsitoutumisen määrityksestä yksittäisistä eläimistä ja yksittäisistä ihonäytteistä,
description of any effects observed.
kuvaus mahdollisista havaituista vaikutuksista.
ATLA 23, p. 219-255.
ATLA 23, 219–255.
In Vitro 12, p. 471-482.
Toxic. in Vitro 12, 471–482.
In Vitro 12, p. 483- 524.
Toxic. in Vitro 12, 483–524.
ATLA 23, p. 129-147.
ATLA 23, 129–147.
ATLA 26, 275-280.
ATLA 26, 275–280.
ICCVAM (Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods)., (2002) ICCVAM evaluation of EpiDermTM, EPISKINTM (EPI-200), and the Rat Skin Transcutaneous Electrical Resistance (TER) assay: In Vitro test methods for assessing dermal corrosivity potential of chemicals.
ICCVAM (Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods). (2002). ICCVAM evaluation of EpiDermTM, EPISKINTM (EPI-200), and the Rat Skin Transcutaneous Electrical Resistance (TER) assay: In Vitro test methods for assessing dermal corrosivity potential of chemicals. NIH Publication No.
Oliver, G.J.A., Pemberton, M.A., and Rhodes, C., (1986) An in vitro skin corrosivity test -modificationsand validation.
Oliver, G.J.A., Pemberton, M.A., and Rhodes, C. (1986). An in vitro skin corrosivity test –modifications and validation.
In Vitro 6, p. 191-194.
Toxic. in Vitro 6, 191–194.
ATLA 26, p. 709-720
ATLA 26: 709–720.
Apparatus for the rat skin TER assay
Rotan ihon sähkövastuksen määrityslaite
inner (thick) electrode
sisempi paksu elektrodi
crocodile clip
hauenleuka
outer (thin) electrode
ulompi ohut elektrodi
PTFE tube
PTFE-putki
spring clip
jousipidike
receptor chamber (disposable tube)
koeastia (kertakäyttöputki)
magnesium sulphate (154 mM)
magnesiumsulfaattiliuos (154 mM) Ihonäytteen verinahka
dermis of skin disc
Ihonäytteen orvaskesi
rubber 'O' ring
O-rengas
Dimensions of the polytetrafluoroethylene (PFTE) and receptor tubes and electrodes used
Polytetrafluoroetyleeniputken (PFTE-putken), koeastioiden ja elektrodien mitat
Crocodile clip
hauenleuka
Critical factors of the apparatus shown above:
Yllä kuvattujen laitteiden kriittiset tekijät:
the inner diameter of the PTFE tube,
PTFE-putken sisähalkaisija
the length of the electrodes relative to the PTFE tube and receptor tube, such that the skin disc is not touched by the electrodes and that a standard length of electrode is in contact with the MgSO4 solution,
elektrodien pituus suhteessa PTFE-putkeen ja koeastiaan siten, että ihonäyte ei ole kosketuksissa elektrodeihin ja että vakiomitta elektrodia on kosketuksissa MgSO4-liuoksen kanssa
the amount of MgSO4 solution in the receptor tube should give a depth of liquid, relative to the level in the PFTE tube, as shown in Figure 1,
MgSO4-liuosta on oltava koeastiassa sellainen määrä, että nesteellä on tietty syvyys suhteessa nesteen tasoon PFTE-putkessa (kuvassa 1 esitetyllä tavalla)
the skin disk should be fixed well enough to the PFTE tube, such that the electrical resistance is a true measure of the skin properties.
ihonäyte on kiinnitettävä tarpeeksi hyvin PFTE-putkeen, jotta sähkövastus ilmentäisi ihon ominaisuuksia oikein.
This testing method is equivalent to the OECD TG 431 (2004).
Tämä menetelmä vastaa OECD:n testiohjetta nro TG 431 (2004)
Skin corrosion refers to the production of irreversible tissue damage in the skin following the application of a test material [as defined by the Globally Harmonised System for the Classification and Labelling of Chemical Substances and Mixtures (GHS)] (1).
Ihosyövyttävyydellä tarkoitetaan palautumattoman kudosvaurion ilmenemistä ihossa testiaineen aplikaation jälkeen [määritelmä sisältyy GHS-järjestelmään (Globally Harmonised System for the Classification and Labelling of Chemical Substances and Mixtures)] (1).
This Testing Method does not require the use of live animals or animal tissue for the assessment of skin Corrosivity.
Testimenetelmä ei edellytä elävien eläinten tai eläinkudoksen käyttöä ihosyövyttävyyden määrittämiseksi.
Concern for the pain and suffering involved with this procedure has been addressed in the revision of testing method B.4 that allows for the determination of skin corrosion by using alternative, in vitro, methods, avoiding pain and suffering of animals.
Huoli testissä käytettäville eläimille aiheutuvasta kärsimyksestä on otettu huomioon testimenetelmän B.4 tarkistetussa versiossa, jossa ihosyövyttävyys voidaan määrittää käyttämällä vaihtoehtoisia in vitro -menetelmiä, joissa eläimille ei aiheuteta kipua tai kärsimystä.
Following this, a formal, validation study of in vitro methods for assessing skin corrosion (4)(5) was conducted (6)(7)(8).
Tämän jälkeen tehtiin ihosyövyttävyyden arviointiin käytettävien in vitro -menetelmien (4) (5) virallinen validointitutkimus (6) (7) (8).
The outcome of these studies and other published literature (9) led to the recommendation that the following tests could be used for the assessment of the in vivo skin corrosivity (10)(11)12)(13): the human skin model test (this method) and the transcutaneous electrical resistance test (see testing method B.40).
Näiden tutkimusten tulokset ja muu julkaistu kirjallisuus (9) johtivat siihen suositukseen, että ihosyövyttävyyden arviointiin in vivo voitaisiin käyttää seuraavia testejä (10) (11) (12) (13): ihmisihomallitesti (tässä kuvattu menetelmä) ja sähkövastusmääritystesti (testimenetelmä B.40).
Validation studies have reported that tests employing human skin models (3)(4)(5)(9) are able to reliably discriminate between known skin corrosives and non-corrosives.
Validointitutkimukset ovat osoittaneet, että ihmisihomalleja käyttävillä testeillä (3) (4) (5) (9) voidaan luotettavasti erottaa tunnetut ihoa syövyttävät kemikaalit sellaisista kemikaaleista, jotka eivät syövytä ihoa.
The test protocol may also provide an indication of the distinction between severe and less severe skin corrosives.
Lisäksi on mahdollista, että testillä voidaan erotella erittäin syövyttäviä kemikaaleja vähemmän syövyttävistä.