natgillin/translations-raw huggingface dataset:
This method makes it possible to determine the content of volatile nitrogenous bases, expressed as ammonia, in fish-meal containing practically no urea.
Menetelmällä voidaan määrittää haihtuvien typpipitoisten emästen pitoisuus ammoniakkina ilmoitettuna kalajauhosta, joka ei käytännöllisesti katsoen sisällä ureaa.
It is applicable only to ammonia contents of less than 0,25 %.
Menetelmä soveltuu ainoastaan näytteisiin, joiden ammoniakkipitoisuus on alle 0,25 %.
The volatile nitrogenous bases are displaced at boiling point by adding magnesium oxide and collected in a specific quantity of sulphuric acid, the excess of which is back-titrated with a solution of sodium hydroxide.
Haihtuvat typpipitoiset emäkset vapautuvat keitettäessä näyteliuosta magnesiumoksidin kanssa ja ne sidotaan tunnettuun määrään rikkihappoa, jonka ylimäärä titrataan takaisin natriumhydroksidiliuoksella.
Magnesium oxide.
Magnesiumoksidi.
Anti-foaming emulsion (e.g. silicone).
Kuohunestoaine (esim. silikoni).
Sulphuric acid 0,05 mol/litre.
Rikkihappo, 0,05 mol/l.
Sodium hydroxide solution 0,1 mol/litre.
Natriumhydroksidiliuos 0,1 mol/l.
Methyl red solution 0,3 % in 95 %-96 % (v/v) ethanol.
Metyylipunaliuos, 0,3 % (w/v), joka on valmistettu 95–96-prosenttiseen (v/v) etanoliin.
Distilling apparatus of the Kjeldahl type.
Kjeldahl-tyyppinen tislauslaitteisto.
Weigh 10 g of the sample to the nearest 1 mg and place with 100 ml of water in a 200 ml graduated flask.
Punnitaan 10 g näytettä 1 mg:n tarkkuudella 200 ml:n mittapulloon, johon lisätään 100 ml vettä.
Take a quantity of clear filtrate appropriate for the presumed content of volatile nitrogenous bases (100 ml is usually suitable).
Otetaan kirkasta liuosta sopiva määrä haihtuvien typpipitoisten emästen oletetun pitoisuuden kannalta (100 ml on yleensä sopiva määrä).
Dilute to 200 ml and add 2 g of magnesium oxide (3.2) and a few drops of anti-foaming emulsion (3.3).
Laimennetaan 200 ml:ksi ja lisätään 2 g magnesiumoksidia (3.2) ja muutama pisara kuohunestoainetta (3.3).
The solution must be alkaline to litmus paper; otherwise add some magnesium oxide (3.2).
Liuoksen on oltava lakmuspaperilla määritettynä emäksinen; muussa tapauksessa siihen lisätään hieman magnesiumoksidia (3.2).
Proceed according to 5.2 and 5.3 of the method of analysis for the determination of the crude protein content (Part C of this Annex).
Jatketaan raakavalkuaispitoisuuden määrityksessä käytettävän menetelmän 5.2 ja 5.3 kohdan mukaisesti (tämän liitteen C osa).
1 ml of H2SO40,05 mol/litre corresponds to 1,7 mg of ammonia.
1 ml H2SO4:ää, 0,05 mol/l, vastaa 1,7 mg:aa ammoniakkia.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample shall not exceed, in relative value, 10 % of ammonia.
Kahden samasta näytteestä suoritetun rinnakkaismäärityksen tulosten välinen ero ei saa olla suhteellisena arvona ilmoitettuna suurempi kuin 10 % ammoniakkimäärästä.
DETERMINATION OF AMINO ACIDS (EXCEPT TRYPTOPHANE)
AMINOHAPPOJEN MÄÄRITYS (TRYPTOFAANIA LUKUUN OTTAMATTA)
This method makes the determination possible of free (synthetic and natural) and total (peptide bound and free) amino acids in feed, using an amino acid analyser.
Menetelmällä voidaan määrittää rehujen vapaat aminohapot (synteettiset ja luonnon aminohapot) ja kokonaisaminohapot (peptideihin kiinnittyneet ja vapaat) aminohappoanalysaattorilla.
It is applicable to the following amino acids: cyst(e)ine, methionine, lysine, threonine, alanine, arginine, aspartic acid, glutamic acid, glycine, histidine, isoleucine, leucine, phenylalanine, proline, serine, tyrosine and valine.
Se sopii seuraaviin aminohappoihin: kyst(e)iini, metioniini, lysiini, treoniini, alaniini, arginiini, asparagiinihappo, glutamiinihappo, glysiini, histidiini, isoleusiini, leusiini, fenyylialaniini, proliini, seriini, tyrosiini ja valiini.
The method does not distinguish between the salts of amino acids and it cannot differentiate between D and L forms of amino acids.
Menetelmällä ei eroteta toisistaan aminohappojen suoloja eikä aminohappojen D- ja L-muotoja.
It is not valid for the determination of tryptophan or hydroxy analogues of amino acids.
Se ei sovellu tryptofaanin eikä aminohappojen hydroksianalogien määritykseen.
Free amino acids
Vapaat aminohapot
The free amino acids are extracted with diluted hydrochloric acid.
Vapaat aminohapot uutetaan laimealla kloorivetyhapolla.
Co-extracted nitrogenous macromolecules are precipitated with sulfosalicylic acid and removed by filtration.
Mukana uuttuneet typpipitoiset makromolekyylit saostetaan sulfosalisyylihapolla ja poistetaan suodattamalla.
The filtered solution is adjusted to pH 2,20.
Suodatetun liuoksen pH säädetään arvoon 2,20.
The amino acids are separated by ion exchange chromatography and determined by reaction with ninhydrin with photometric detection at 570 nm.
Aminohapot erotetaan ioninvaihtokromatografialla ja määritetään fotometrillä ninhydriinijohdoksina aallonpituudella 570 nm.
Total amino acids
Kokonaisaminohapot
The procedure chosen depends on the amino acids under investigation.
Menetelmä valitaan tutkittavien aminohappojen mukaan.
Cyst(e)ine and methionine must be oxidised to cysteic acid and methionine sulphone respectively prior to hydrolysis.
Kyst(e)iini ja metioniini on hapetettava kysteiinihapoksi ja metioniinisulfoniksi ennen hydrolyysiä.
Tyrosine must be determined in hydrolysates of unoxidised samples.
Tyrosiini on määritettävä näytteistä, joita ei hapeteta ennen hydrolyysiä.
All the other amino acids listed in paragraph 1 can be determined in either the oxidised or unoxidised sample.
Kaikki muut 1 kohdassa mainitut aminohapot voidaan määrittää joko hapetetusta tai hapettamattomasta näytteestä.
Oxidation is performed at 0 oC with a performic acid/phenol mixture.
Hapettaminen tapahtuu 0 oC:ssa permuurahaishapon ja fenolin seoksella.
Excess oxidation reagent is decomposed with sodium disulphite.
Hapetusreagenssin ylimäärä hajotetaan natriumdisulfiitin avulla.
The oxidised or unoxidised sample is hydrolysed with hydrochloric acid (3.20) for 23 hours.
Hapetettu tai hapettamaton näyte hydrolysoidaan kloorivetyhapolla (3.20) avulla 23 tunnin ajan.
The hydrolysate is adjusted to pH 2,20.
Hydrolyysituotteen pH säädetään arvoon 2,20.
The amino acids are separated by ion exchange chromatography and determined by reaction with ninhydrin using photometric detection at 570 nm (440 nm for proline).
Aminohapot erotetaan ioninvaihtokromatografialla ja määritetään fotometrillä ninhydriinijohdoksina aallonpituudella 570 nm (proliini 440 nm).
Double distilled water or water of equivalent quality must be used (conductivity < 10 μS).
Veden on oltava kaksoistislattua tai vastaavan laatuista (johtokyky < 10 μS).
Hydrogen peroxide, w (w/w) = 30 %.
Vetyperoksidi, w (w/w) = 30 %.
Formic acid, w (w/w) = 98 %-100 %.
Muurahaishappo, w (w/w) = 98–100 %.
Phenol.
Fenoli.
Sodium disulphite.
Natriumdisulfiitti.
Sodium hydroxide.
Natriumhydroksidi.
5-Sulfosalicylic acid dihydrate.
5-Sulfosalisyylihappo-dihydraatti.
Hydrochloric acid, density approximately 1,18 g/ml.
Kloorivetyhappo, tiheys noin 1,18 g/ml.
tri-Sodium citrate dihydrate.
Trinatriumsitraatti-dihydraatti.
2,2'-Thiodiethanol (thiodiglycol).
2,2'-Tiodietanoli (tiodiglykoli).
Sodium chloride.
Natriumkloridi.
Ninhydrin.
Ninhydriini.
Light petroleum, boiling range 40-60 oC.
Petrolieetteri, kiehumislämpötila 40–60 oC.
Norleucine, or other compound suitable for use as internal standard.
Norleusiini tai muu yhdiste, jota voidaan käyttää sisäisenä standardina.
Nitrogen gas (< 10 ppm oxygen).
Typpikaasu (<10 ppm happea).
1-Octanol.
1-Oktanoli.
Amino acids.
Aminohapot.
Standard substances listed under paragraph 1.
Edellä 1 kohdassa luetellut standardina käytettävät yhdisteet.
Pure compounds containing no water of crystallisation.
Puhtaat yhdisteet, jotka eivät sisällä kidevettä.
Dry under vacuum over P2O5 or H2SO4 for 1 week prior to use.
Kuivataan tyhjiössä P2O5:n tai H2SO4:n päällä viikon ajan ennen käyttöä.
Cysteic acid.
Kysteiinihappo.
Methionine sulphone.
Metioniinisulfoni.
Sodium hydroxide solution, c = 7,5 mol/l:
Natriumhydroksidiliuos, c = 7,5 mol/l:
Dissolve 300 g NaOH (3.5) in water and make up to 1 litre.
liuotetaan 300 g NaOH:ta (3.5) veteen ja laimennetaan 1 litraksi.
Sodium hydroxide solution, c = 1 mol/l:
Natriumhydroksidiliuos, c = 1 mol/l:
Dissolve 40 g NaOH (3.5) in water and make up to 1 litre.
liuotetaan 40 g NaOH:ta (3.5) veteen ja laimennetaan 1 litraksi.
Formic acid — phenol solution:
Muurahaishappo-fenoliliuos:
Mix 889 g formic acid (3.2) with 111 g water and add 4,73 g phenol (3.3).
sekoitetaan 889 g muurahaishappoa (3.2) ja 111 g vettä ja lisätään 4,73 g fenolia (3.3).
Hydrolysis mixture, c = 6 mol HCl/l containing 1 g phenol/l:
Hydrolyysiseos, c = 6 mol HCl/l ja 1 g fenolia litrassa:
Add 1 g phenol (3.3) to 492 ml HCl (3.7) and make up to 1 litre with water.
lisätään 1 g fenolia (3.3) 492 ml:aan HCl (3.7) ja laimennetaan vedellä 1 litraksi.
Extraction mixture, c = 0,1 mol HCl/l containing 2 % thiodiglycol: Take 8,2 ml HCl (3.7), dilute with approximately 900 ml water, add 20 ml thiodiglycol (3.9) and make up to 1 litre with water, (do not mix 3.7 and 3.9 directly).
Uuttoseos, c = 0,1 mol HCl /l ja 2 % tiodiglykolia litrassa: laimennetaan 8,2 ml HCl (3.7) noin 900 ml:aan vettä, lisätään 20 ml tiodiglykolia (3.9) ja täytetään vedellä yhdeksi litraksi (ei sekoiteta suoraan aineita 3.7 ja 3.9).
5-Sulfosalicylic acid, ß = 6 %:
5-Sulfosalisyylihappo, ß = 6 %:
Dissolve 60 g 5-sulfosalicylic acid (3.6) in water and make up to 1 l with water.
Liuotetaan 60 g 5-sulfosalisyylihappoa (3.6) veteen ja laimennetaan vedellä litraksi.
Oxidation mixture (Performic acid — phenol):
Hapetusseos (permuurahaishappo-fenoli):
Mix 0,5 ml hydrogen peroxide (3.1) with 4,5 ml formic acid-phenol solution (3.19) in a small beaker.
sekoitetaan 0,5 ml vetyperoksidia (3.1) 4,5 ml:aan muurahaishappo-fenoliliuosta (3.19) pienessä dekantterilasissa.
Incubate at 20-30 oC for 1 hour in order to form performic acid, then cool on an ice-water bath (15 min.) before adding to the sample.
Inkuboidaan 20–30 oC:ssa tunnin ajan, jotta saadaan permuurahaishappoa, annetaan sitten jäähtyä jäävesihauteessa (15 min) ennen näytteeseen lisäämistä.
Caution: Avoid contact with skin and wear protective clothing.
Varoitus: vältettävä ihokosketusta ja käytettävä suojavaatteita.
Citrate buffer, c = 0,2 mol Na+/l, pH 2,20:
Sitraattipuskuriliuos, c = 0,2 mol Na+/l, pH 2,20:
Dissolve 19,61 g sodium citrate (3.8), 5 ml thiodiglycol (3.9), 1 g phenol (3.3) and 16,50 ml HCl (3.7) in approximately 800 ml water.
liuotetaan 19,61 g natriumsitraattia (3.8), 5 ml tiodiglykolia (3.9), 1 g fenolia (3.3) ja 16,50 ml HCl (3.7) noin 800 ml:aan vettä.
Adjust pH to 2,20.
Säädetään pH arvoon 2,20.
Make up to 1 litre with water.
Täytetään 1 litraksi vedellä.
Elution buffers, prepared according to conditions for the analyser used (4.9).
Eluointipuskurit, valmistetaan analysaattorin vaatimusten mukaisesti (4.9).
Ninhydrin reagent, prepared according to conditions for the analyser used (4.9).
Ninhydriinireagenssi, valmistetaan analysaattorin vaatimusten mukaisesti (4.9).
Standard solutions of amino acids.
Aminohappojen standardiliuokset.
These solutions shall be stored below 5 oC.
Nämä liuokset säilytetään alle 5 oC:n lämpötilassa.
Stock standard solution of amino acids (3.16.1).
Aminohappojen standardin kantaliuos (3.16.1).
c = 2,5 μmol/ml of each in hydrochloric acid.
c = 2,5 μmol/ml kutakin aminohappoa kloorivetyhapossa.
May be obtained commercially.
Saatavana kaupallisesti.
Stock standard solution of cysteic acid and methionine sulphone, c = 1,25 μmol/ml.
Kysteiinihapon ja metioniinisulfonin standardin kantaliuos, c = 1,25 μmol/ml.
Dissolve 0,2115 g cysteic acid (3.16.2) and 0,2265 g methionine sulphone (3.16.3) in citrate buffer (3.24) in a 1 litre graduated flask and make up to mark with citrate buffer.
Liuotetaan 0,2115 g kysteiinihappoa (3.16.2) ja 0,2265 g metioniinisulfonia (3.16.3) sitraattipuskuriin (3.24) litran mittapullossa ja täytetään merkkiin asti sitraattipuskurilla.
Store below 5 oC for not more than 12 months.
Säilytetään alle 5 oC:n lämpötilassa enintään 12 kuukautta.
This solution is not used if the stock standard solution (3.27.1) contains cysteic acid and methionine sulphone.
Tätä liuosta ei tarvita, jos standardin kantaliuos (3.27.1) sisältää kysteiinihappoa ja metioniinisulfonia.
Stock standard solution of the internal standard e.g. norleucine, c = 20 μmol/ml.
Sisäisen standardin kantaliuos, esimerkiksi norleusiini, c = 20 μmol/ml.
Dissolve 0,6560 g norleucine (3.13) in citrate buffer (3.24) in a graduated flask and make up to 250 ml with citrate buffer.
Liuotetaan 0,6560 g norleusiinia (3.13) sitraattipuskuriin (3.24) mittapullossa ja täytetään 250,0 ml:ksi sitraattipuskurilla (3.24).
Store below 5 oC for no more than 6 months.
Säilytetään alle 5 oC:n lämpötilassa enintään 6 kuukautta.
Calibration solution of standard amino acids for use with hydrolysates, c = 5 nmol/50 μl of cysteic acid and methionine sulphone and c = 10 nmol/50 μl of the other amino acids.
Aminohappojen kalibrointiliuos hydrolysaateille: kysteiinihappo ja metioniinisulfoni, c = 5 nmol/50 μl, muut aminohapot c = 10 nmol/50 μl.
Adjust pH to 2,20 with sodium hydroxide (3.18).
Säädetään pH arvoon 2,20 natriumhydroksidilla (3.18).
Transfer quantitatively to a 50 ml graduated flask and make up to the mark with citrate buffer (3.24) and mix.
Siirretään kvantitatiivisesti 50 ml:n mittapulloon, täytetään merkkiin asti sitraattipuskurilla (3.24) ja sekoitetaan.
Store below 5 oC for not more than 3 months.
Säilytetään alle 5 oC:n lämpötilassa enintään 3 kuukautta.
See also observation 9.1.
Katso myös huomautukset 9.1 kohdassa.
Calibration solution of standard amino acids for use with hydrolysates prepared according to paragraph 5.3.3.1 and for use with extracts (5.2).
Aminohappojen kalibrointiliuos 5.3.3.1 kohdan mukaisesti valmistetuille hydrolysaateille ja uutteille (5.2).
The calibration solution is prepared according to 3.27.4 but omitting sodium chloride.
Kalibrointiliuos valmistetaan 3.27.4 kohdan mukaisesti kuitenkin jättäen natriumkloridi pois.
100 or 250 ml round bottomed flask fitted with a reflux condenser.
100 ml:n tai 250 ml:n pyörökolvi, joka on varustettu palautusjäähdyttimellä.
100 ml borosilicate glass bottle with screw cap with rubber/teflon liner (e.g. Duran, Schott) for use in the oven.
Borosilikaattilasinen 100 ml:n pullo, jossa on kumi/teflontiivisteinen kierrettävä uuninkestävä korkki (esimerkiksi Duran, Schott).
Oven with forced ventilation and a temperature regulator with an accuracy better than ± 2 oC.
Koneellisella ilmanvaihdolla varustettu ja lämpötilaltaan säädettävä kuivausuuni, jonka tarkkuus on parempi kuin ± 2 oC.
pH-meter (three decimal places).
pH-mittari (lukemat kolmen desimaalin tarkkuudella).
Membrane filter (0,22 μm).
Kalvosuodatin (0,2 μm).
Centrifuge.
Sentrifugi.
Rotary vacuum evaporator.
Vakuumipyöröhaihdutin.
Mechanical shaker or magnetic stirrer.
Mekaaninen ravistelija tai magneettisekoitin.
Amino acid analyser or HPLC equipment with ion exchange column, device for ninhydrin, post column derivatisation and photometric detector.
Aminohappoanalysaattori tai HPLC-laitteisto, joissa on ioninvaihtokolonni, välineistö kolonnin jälkeistä ninhydriiniderivointia varten ja fotometri.
The column is filled with sulfonated polystyrene resins capable of separating the amino acids from each other and from other ninhydrin-positive materials.
Kolonni täytetään sellaisella sulfonoidulla polystyreenihartsilla, jolla voidaan erottaa eri aminohapot toisistaan ja muista ninhydriinin kanssa reagoivista yhdisteistä.
The flow in the buffer and ninhydrin lines is provided by pumps having a flow stability of ±0,5 % in the period covering both the standard calibration run and the analysis of the sample.
Puskuri- ja ninhydriinipumpun virtausnopeuden stabiilisuuden tulee olla ±0,5 % ajanjaksona, jona analysoidaan sekä standardiliuos että näyte.
With some amino acid analysers hydrolysis procedures can be used in which the hydrolysate has a sodium concentration of c = 0,8 mol/l and contains all the residual formic acid from the oxidation step.
Tietyissä aminohappoanalysaattoreissa voidaan käyttää hydrolyysimenetelmää, jossa hydrolysaatin natriumpitoisuus on c = 0,8 mol/l ja se sisältää näin kaiken hapetuksessa jäljelle jääneen muurahaishapon.
Others do not give a satisfactory separation of certain amino acids if the hydrolysate contains excess formic acid and/or high sodium ion concentrations.
Muut laitteet eivät erota tyydyttävästi tiettyjä aminohappoja, jos hydrolysaatti sisältää liikaa muurahaishappoa ja/tai natriumionipitoisuus on suuri.
In this case the volume of acid is reduced by evaporation to approx. 5 ml after the hydrolysis and prior to pH adjustment.
Tässä tapauksessa hapon määrää vähennetään haihduttamalla hydrolysaatti noin 5 ml:aan ennen pH:n säätämistä.
The evaporation shall be performed under vacuum at 40 o C maximum.
Haihduttamisen on tapahduttava tyhjiössä enintään 40 oC:ssa.
Preparation of the sample
Näytteen valmistaminen
The sample is ground to pass through a 0,5 mm sieve.
Näyte jauhetaan siten, että se läpäisee 0,5 mm:n seulan.
Samples high in moisture must be either air-dried at a temperature not exceeding 50 oC or freeze dried prior to grinding.
Näytteet, joilla on suuri kosteuspitoisuus, on ilmakuivattava korkeintaan 50 oC:n lämpötilassa tai kylmäkuivattava ennen jauhamista.
Samples with a high fat content shall be extracted with light petroleum (3.12) prior to grinding.
Näytteet, joiden rasvapitoisuus on suuri, on uutettava petrolieetterillä (3.12) ennen jauhamista.
Determination of free amino acids in feed and premixtures
Vapaiden aminohappojen määrittäminen rehuista ja esiseoksista
Weigh to the nearest 0,2 mg an appropriate amount (1-5 g) of the prepared sample (5.1), into a conical flask and add 100,0 ml of extraction mixture (3.21).
Punnitaan 0,2 mg:n tarkkuudella sopiva määrä (1–5 g) valmistettua näytettä (5.1) erlenmeyerkolviin ja lisätään 100,0 ml uuttoseosta (3.21).
Shake the mixture for 60 min. using a mechanical shaker or a magnetic stirrer (4.8).
Ravistellaan seosta 60 minuuttia mekaanisella ravistelijalla tai magneettisekoittimella (4.8).
Allow the sediment to settle and pipette 10,0 ml of the supernatant solution into a 100 ml beaker.
Annetaan sakan laskeutua ja pipetoidaan 10,0 ml supernatanttiliuosta dekantterilasiin.
Add 5,0 ml of sulfosalicylic acid solution (3.22), with stirring and continue to stir with the aid of magnetic stirrer for 5 min. Filter or centrifuge the supernatant in order to remove any precipitate.
Lisätään koko ajan sekoittaen 5,0 ml sulfosalisyylihappoliuosta (3.22) ja jatketaan sekoittamista 5 minuutin ajan magneettisekoittimella. Suodatetaan tai sentrifugoidaan liuos mahdollisen sakan erottamiseksi.
Place 10,0 ml of the resulting solution into a 100 ml beaker and adjust the pH to 2,20 using sodium hydroxide solution (3.18), transfer to a volumetric flask of appropriate volume using citrate buffer (3.24), and make up to the mark with the buffer solution (3.24).
Pipetoidaan 10,0 ml saatua liuosta 100 ml:n dekantterilasiin, säädetään pH arvoon 2,20 natriumhydroksidiliuoksella (3.18), huuhdotaan sopivan kokoiseen mittapulloon sitraattipuskurilla (3.24) ja täytetään merkkiin asti puskuriliuoksella (3.24).
If an internal standard is being used add 1,00 ml of internal standard (3.27.3) for each 100 ml final solution and make up to the mark with the buffer solution (3.24).
Jos käytetään sisäistä standardia (3.27.3), sitä lisätään 1,00 ml lopullisen liuoksen kutakin 100 ml:aa kohden ja täytetään merkkiin asti purskuriliuoksella (3.24).
Proceed to the chromatography step according to paragraph 5.4.
Siirrytään kromatografiavaiheeseen 5.4 kohdan mukaisesti.
If the extracts are not being examined the same day, they must be stored below 5 oC.
Jos kromatografiaa ei tehdä samana päivänä, uutteet säilytetään alle 5 oC:n lämpötilassa.
Determination of total amino acids
Kokonaisaminohappojen määrittäminen
Oxidation
Hapettaminen
Weigh to the nearest 0,2 mg from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1) into:
Punnitaan 0,2 mg:n tarkkuudella 0,1–1 g valmistettua näytettä (5.1):
a 100 ml round-bottomed flask (4.1) for open hydrolysis (5.3.2.3) or,
100 ml:n pyörökolviin (4.1) avointa hydrolyysiä varten (5.3.2.3), tai
a 250 ml round-bottomed flask (4.1) if a low sodium concentration is required (5.3.3.1) or,
250 ml:n pyörökolviin (4.1), jos tarvitaan alhaista natriumpitoisuutta (5.3.3.1), tai
a 100 ml bottle fitted with a screw cap (4.2), for closed hydrolysis (5.3.2.4).
100 ml:n kierrekorkilliseen pulloon (4.2) suljettua hydrolyysiä varten (5.3.2.4).
The weighed sample portion must have a nitrogen content of about 10 mg and a moisture content not exceeding 100 mg.
Punnitun näytemäärän typpipitoisuuden on oltava noin 10 mg ja kosteuspitoisuuden enintään 100 mg.
Place the flask/bottle in an ice-water bath and cool to 0 oC, add 5 ml of oxidation mixture (3.23) and mix using a glass spatula with a bent tip.
Asetetaan pyörökolvi tai pullo jää-vesihauteeseen ja jäähdytetään 0 oC:seen, lisätään 5 ml hapetusseosta (3.23) ja sekoitetaan kaarevakärkisellä lasilastalla.
Seal the flask/bottle containing the spatula with an air-tight film, place the ice-water bath containing the sealed container in a refrigerator at 0 oC and leave for 16 hours.
Suljetaan kolvi/pullo lastoineen ilmatiiviin kalvon avulla, asetetaan jää-vesihaude näin suljettuine astioineen jääkaappiin, jonka lämpötila on 0 oC, ja jätetään sinne 16 tunniksi.
After 16 hours remove from the refrigerator and decompose the excess oxidation reagent by the addition of 0,84 g of sodium disulphite (3.4).
Tämän jälkeen se otetaan jääkaapista ja hajotetaan hapetusreagenssin ylimäärä lisäämällä 0,84 g natriumdisulfiittia (3.4).
Proceed to 5.3.2.1.
Siirrytään 5.3.2.1 kohtaan.
Hydrolysis
Hydrolyysi
Hydrolysis of oxidised samples
Hapetettujen näytteiden hydrolyysi
To the oxidised sample prepared according to 5.3.1 add 25 ml of hydrolysis mixture (3.20) taking care to wash down any sample residue adhering to the sides of the vessel and the spatula.
Edellä 5.3.1. kohdan mukaisesti valmistettuun hapetettuun näytteeseen lisätään 25 ml hydrolyysiseosta (3.20) huolehtien siitä, että astian seinämiin ja lastaan jäänyt näyte huuhdellaan pois.
Depending on the hydrolysis procedure being used, proceed according to 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Jatketaan valitun hydrolyysimenetelmän mukaan 5.3.2.3 tai 5.3.2.4 kohdasta.
Hydrolysis of unoxidised samples
Hapettamattomien näytteiden hydrolyysi
Weigh into either a 100 ml or a 250 ml round-bottom flask (4.1) or a 100 ml bottle fitted with a screw cap (4.2), to the nearest 0,2 mg, from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1).
Punnitaan 100 ml:n tai 200 ml:n pyörökolviin (4.1) tai 100 ml:n kierrekorkilliseen pulloon (4.2) 0,1–1,0 g valmistettua näytettä (5.1) 0,2 mg:n tarkkuudella.
The weighed sample portion must have a nitrogen content of about 10 mg.
Punnitun näytemäärän typpipitoisuuden on oltava noin 10 mg.
Add carefully 25 ml of hydrolysis mixture (3.20) and mix with the sample.
Lisätään varovasti 25 ml hydrolyysiseosta (3.20) ja sekoitetaan näytteeseen.
Proceed according to either 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Jatketaan joko 5.3.2.3 tai 5.3.2.4 kohdasta.
Open hydrolysis
Avoin hydrolyysi
Add 3 glass beads to the mixture in the flask (prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2) and boil with continuous bubbling under reflux for 23 hours.
Lisätään kolme lasihelmeä kolvissa olevaan seokseen (valmistettu 5.3.2.1 tai 5.3.2.2 kohdan mukaisesti) ja keitetään tasaisesti kuplittaen palautusjäähdyttimen alla 23 tuntia.
On completion of hydrolysis, wash the condenser down with 5 ml of citrate buffer (3.24).
Hydrolyysin jälkeen huuhdellaan jäähdytin 5 ml:lla sitraattipuskuria (3.24).
Disconnect the flask and cool it in an ice bath.
Kolvi irrotetaan ja jäähdytetään jäähauteessa.
Proceed according to 5.3.3.
Jatketaan 5.3.3 kohdan mukaisesti.
Closed Hydrolysis
Suljettu hydrolyysi
Place the bottle containing the mixture prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2 in an oven (4.3) at 110 oC.
Asetetaan 5.3.2.1 tai 5.3.2.2 kohdan mukaisesti valmistettua näyteseosta sisältävä pullo uuniin (4.3) 110 oC:seen.