natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Nomographs should be checked at least annually and more frequently if algal culture conditions have changed.
Nomogrammit olisi tarkistettava vähintään kerran vuodessa ja useamminkin, jos levien viljelyolosuhteet muuttuvat.
Light absorbance has been found to be a better surrogate for carbon content than cell number (13).
On havaittu että valon absorptio on parempi menetelmä hiilipitoisuuden määrittämiseksi kuin solumäärä (1 3).
A concentrated algal suspension should be fed to the Daphnia to minimise the volume of algal culture medium transferred to the test vessels.
Vesikirpulle olisi annettava ravinnoksi konsentroitua leväsuspensiota, jotta testiastioihin lisätyn levänviljelynesteen tilavuus olisi mahdollisimman pieni.
Concentration of the algae can be achieved by centrifugation followed by resuspension in distilled water, deionised water or Daphnia culture medium.
Leviä voidaan konsentroida sentrifugoimalla, jonka jälkeen ne suspendoidaan uudelleen veteen, deionisoituun veteen tai vesikirpun viljelynesteeseen.
Light
Valo
16 hours light at an intensity not exceeding 15-20 μE· m-2·s-1.
16 tuntia valoa, jonka intensiteetti on enintään 15-20 μE · m-2 · s-1.
The temperature of the test media should be within the range 18-22 oC.
Testissä käytettävän viljelynesteen lämpötilan on oltava 18-22 oC.
However, for any one test, the temperature should not, if possible, vary by more than 2 oC within these limits (e.g. 18-20, 19-21 or 20-22 oC).
Lämpötila ei saisi kuitenkaan, jos mahdollista, vaihdella missään testissä enempää kuin 2 oC kyseisissä rajoissa (esim. 18-20, 19-21 tai 20-22 oC).
It may be appropriate to use an additional test vessel for the purposes of temperature monitoring.
Lämpötilan seuraamista varten voi olla tarpeen lisätä yksi testiastia.
Aeration
Ilmastus
Test concentration
Testipitoisuudet
Normally, there should be at least five test concentrations arranged in a geometric series with a separation factor preferably not exceeding 3.2, and the appropriate number of replicates for each test concentration should be used (see Section 1.8.1.3).
Kokeessa pitäisi olla yleensä vähintään viisi testipitoisuutta geometrisessa sarjassa, eikä kerroin saisi olla suurempi kuin 3,2. Kutakin pitoisuutta kohti olisi käytettävä asianmukaista rinnakkaisnäytteiden määrää, (ks. kohta 1.8.1.3).
Substances should not be tested above their solubility limit in the test medium.
Aineita ei saisi testata niiden liukoisuusrajaa suuremmassa pitoisuudessa.
In setting the range of concentrations, the following should be borne in mind:
Pitoisuusalueen valinnassa on otettava huomioon seuraavat seikat:
If the aim is to obtain the LOEC/NOEC, the lowest test concentration must be low enough so that the fecundity at that concentration is not significantly lower than that in the control.
Jos tarkoitus on määrittää LOEC/NOEC, pienimmän testipitoisuuden on oltava niin pieni, ettei hedelmällisyys tällä pitoisuudella ole merkitsevästi pienempi kuin kontrollilla.
If this is not the case, the test will have to be repeated with a reduced lowest concentration.
Mikäli näin ei ole, testi on toistettava vielä pienemmällä pitoisuudella.
If the aim is to obtain the LOEC/NOEC, the highest test concentration must be high enough so that the fecundity at that concentration is significantly lower than that in the control.
Jos tarkoitus on määrittää LOEC/NOEC, suurimman testipitoisuuden on oltava niin suuri, että hedelmällisyys tällä pitoisuudella on merkitsevästi pienempi kuin kontrolleilla.
If this is not the case, the test will have to be repeated with an increased highest concentration.
Mikäli näin ei ole, testi on toistettava suuremmalla pitoisuudella.
If the ECX for effects on reproduction is estimated, it is advisable that sufficient concentrations are used to define the ECX with an appropriate level of confidence.
Jos arvioidaan ECX lisääntymisvaikutuksille, suositellaan, että käytetään niin suurta määrää pitoisuuksia, että ECX voidaan määrittää asianmukaisella luotettavuustasolla.
If the EC50 for effects on reproduction is estimated, it is advisable that the highest test concentration is greater than this EC50.
Jos arvioidaan EC50 lisääntymisvaikutuksille, suositellaan, että suurin testipitoisuus on suurempi kuin kyseinen Ec50.
Otherwise, although it will still be possible to estimate the EC50, the confidence interval for the EC50 will be very wide and it may not be possible to satisfactorily assess the adequacy of the fitted model.
Muuten EC50:n luottamusväli on kovin suuri ja voi olla mahdotonta arvioida tyydyttävästi sovitetun mallin asianmukaisuutta, vaikka onkin mahdollista arvioida EC50.
The range of test concentration should preferably not include any concentrations that have a statistically significant effect on adult survival since this would change the nature of the test from simply a reproduction test to a combined reproduction and mortality test requiring much more complex statistical analysis.
Testipitoisuuden joukossa ei saisi olla sellaista pitoisuutta, jolla olisi tilastollisesti merkitsevä vaikutus täysikasvuisten eläinten eloonjäämiseen, koska testi ei silloin olisi enää pelkästään lisääntymistesti, vaan yhdistetty lisääntymis- ja kuolleisuustesti, joka vaatisi paljon monimutkaisempaa tilastollista analyysiä.
Where a solvent or dispersant is used to aid preparation of test solutions (see Section 1.6.4), its final concentration in the test vessels should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Jos testiliuosten valmistuksessa käytetään liuottimia tai dispergointiaineita (ks. kohta 1.6.4), niiden lopullinen pitoisuus testiastioissa saisi olla enintään 0,1 ml/l, ja sen olisi oltava sama kaikissa testiastioissa.
One test-medium control series and also, if relevant, one control series containing the solvent or dispersant should be run in addition to the test series.
Testisarjan lisäksi on määritettävä yksi viljelynestettä sisältävä kontrollisarja ja tapauksen mukaan yksi kontrollisarja. joka sisältää liuotinta tai dispergointiainetta.
When used, the solvent or dispersant concentration should be the same as that used in the vessels containing the test substance.
Mahdollisen liuottimen tai dispergointiaineen pitoisuuden olisi oltava sama kuin testiainetta sisältävissä testiastioissa.
The appropriate number of replicates should be used (see Section 1.8.1.3).
Riittävä määrä rinnakkaisnäytteitä olisi määritettävä (ks. kohta 1.8.1.3).
Generally, in a well-run test, the coefficient of variation around the mean number of living offspring produced per parent animal in the control(s) should be ≤ 25 %, and this should be reported for test designs using individually held animals.
Yleensä hyvin suoritetussa testissä kontrollinäytteiden emojen tuottamien elävien jälkeläisten määrän keskiarvon vaihtelukerroin saisi olla enintään 25 %, ja tämä olisi ilmoitettava testeille, joissa käytetään yksittäin kasvatettuja eläimiä.
Test medium renewal
Testissä käytettävän viljelynesteen vaihto
The frequency of medium renewal will depend on the stability of the test substance, but should be at least three times per week.
Viljelynesteen vaihtoväli riippuu testiaineen stabiilisuudesta. mutta viljelyneste pitäisi vaihtaa vähintään kolme kertaa viikossa.
If, from preliminary stability tests (see Section 1.4) the test substance concentration is not stable (i.e. outside the range 80-120 % of nominal or falling below 80 % of the measured initial concentration) over the maximum renewal period (i.e. 3 days), consideration should be given to more frequent medium renewal, or to the use of a flow-through test.
Jos testiainepitoisuus alustavien testien perusteella (ks. kohta 1.4) ei ole stabiili (ts. ei ole välillä 80-120 % nimellispitoisuudesta tai laskee alle 80 prosentin mitatusta alkupitoisuudesta) pisimmän hyväksytyn vaihtovälin aikana (ts. 3 vrk), olisi harkittava viljelynesteen vaihtamista useammin tai siirtymistä läpivirtaustestiin.
When the medium is renewed in semi-static tests, a second series of test vessels are prepared and the parent animals transferred to them by, for example, a glass pipette of suitable diameter.
Kun viljelyneste vaihdetaan puolistaattisessa testissä, valmistetaan toinen sarja testiastioita ja emovesikirput siirretään niihin esim. sopivan kokoisella lasipipetillä.
The volume of medium transferred with the Daphnia should be minimised.
Vesikirpun kanssa siirrettävän viljelynesteen tilavuuden pitäisi olla mahdollisimman pieni.
The results of the observations made during the test should be recorded on data sheets (see examples in Appendices 3 and 4).
Testin aikana tehtyjen havaintojen tulokset olisi kirjattava testilomakkeille (ks. lisäys 3 ja 4).
If other measurements are required (see 1.3 and 1.8.8) additional observations may be required.
Jos on tehtävä muita mittauksia (ks. 1.3 ja 1.8.8), on ehkä tehtävä lisähavaintoja.
The offspring produced by each parent animal should preferably be removed and counted daily from the appearance of the first brood, to prevent them consuming food intended for the adult.
Kunkin emon tuottamat jälkeläiset olisi mieluiten otettava astiasta ja laskettava päivittäin ensimmäisistä jälkeläisistä lähtien, jotta ne eivät söisi aikuisille tarkoitettua ravintoa.
For the purpose of this method it is only the number of living offspring that needs to be counted, but the presence of aborted eggs or dead offspring should be recorded.
Tässä testissä tarvitsee laskea vain elävät jälkeläiset, mutta kuolleiden munien tai poikasten esiintyminen olisi kirjattava.
Mortality among the parent animals should be recorded preferably daily, at least at the same times as offspring are counted.
Emojen kuolleisuus olisi kirjattava mieluiten päivittäin tai ainakin silloin, kun poikaset lasketaan.
Although this method is designed principally to assess effects on reproduction, it is possible that other effects may also be sufficiently quantified to allow statistical analysis.
Vaikka tämän menetelmän pääasiallisena tarkoituksena on lisääntymisvaikutusten arviointi, on mahdollista, että muitakin vaikutuksia esiintyy siinä määrin, että ne voidaan analysoida tilastollisesti.
Growth measurements are highly desirable since they provide information on possible sublethal effects, which may be more useful than reproduction measurement alone; the measurement of the length of the parent animals (i.e. body length excluding the anal spine) at the end of the test is recommended.
Kasvumittaukset ovat hyvin toivottavia, koska niistä saa mahdollisia subletaaleja vaikutuksia koskevia tietoja, jotka voivat olla hyödyllisempiä kuin pelkästään lisääntymisen määrittäminen. Emojen pituuden (ts. pituus ilman pyrstörankaa) mittausta testin lopussa suositellaan.
Other parameters that can be measured or calculated include time to production of first brood (and subsequent broods), number and size of broods per animal, number of aborted broods, presence of males or ephippia and the intrinsic rate of population increase.
Muita muuttujia, jotka voidaan mitata tai laskea, ovat esim. emon ikä ensimmäisten (ja myöhempien) jälkeläisten syntyessä, jälkeläisten lukumäärä ja koko, ennenaikaisesti syntyneiden jälkeläisten määrä, koiraiden tai lepomunien esiintyminen sekä populaation ominaiskasvunopeus.
Oxygen concentration, temperature, hardness and pH values should be measured at least once a week, in fresh and old media, in the control(s) and in the highest test substance concentration.
Happipitoisuus, lämpötila, veden kovuus ja pH olisi mitattava vähintään kerran viikossa sekä tuoreesta että vanhasta viljelynesteestä, kontroll(e)ista ja testistä, jossa on suurin testiaineen pitoisuus.
During the test, the concentrations of test substance are determined at regular intervals.
Testin aikana testiaineen pitoisuus määritetään säännöllisin väliajoin.
In semi-static tests where the concentration of the test substance is expected to remain within ± 20 % of the nominal (i.e. within the range 80-120 % — see 1.4 and 1.8.4), it is recommended that, as a minimum, the highest and lowest test concentrations be analysed when freshly prepared and at the time of renewal on one occasion during the first week of the test (i.e. analyses should be made on a sample from the same solution — when freshly prepared and at renewal).
Suositellaan, että puolistaattisissa testeissä, joissa testiaineen pitoisuuden odotetaan pysyvän ± 20 prosentissa (ts. välillä 80-120 %) nimellispitoisuudesta (ks. kohta 1.4 ja 1.8.4), suurimmat ja pienimmät testissä käytetyt pitoisuudet määritetään tuoreista testiliuoksista ja viljelynestettä vaihdettaessa kerran ensimmäisen testiviikon aikana (ts. määritys olisi tehtävä samasta liuoksesta, kun se on tuore ja kun se vaihdetaan).
These determinations should be repeated at least at weekly intervals thereafter.
Nämä määritykset olisi tehtävä tämän jälkeen uudelleen vähintään viikon välein.
For tests where the concentration of the test substance is not expected to remain within ± 20 % of the nominal, it is necessary to analyse all test concentrations, when freshly prepared and at renewal.
Testeissä, joissa testiaineen pitoisuuden ei odoteta pysyvän ± 20 prosentissa nimellisarvosta, on välttämätöntä määrittää testipitoisuudet sekä tuoreesta liuoksesta että liuosta vaihdettaessa.
However, for those tests where the measured initial concentration of the test substance is not within ± 20 % of nominal but where sufficient evidence can be provided to show that the initial concentrations are repeatable and stable (i.e. within the range 80-120 % of initial concentrations), chemical determinations could be reduced in weeks 2 and 3 of the test to the highest and lowest test concentrations.
Kuitenkin jos mitattu testiaineen alkupitoisuus ei ole ± 20 prosentissa nimellisarvosta, mutta jos on riittävästi näyttöä siitä, että alkupitoisuudet ovat toistettavia ja stabiileja (ts. välillä 80-120 % alkupitoisuudesta), viikolla 2 ja 3 voitaisiin määrittää vain suurin ja pienin testipitoisuus.
In all cases, determination of test substance concentrations prior to renewal need only be performed on one replicate vessel at each test concentration.
Joka tapauksessa testiaineen pitoisuus tarvitsee määrittää liuosta vaihdettaessa vain yhdestä rinnakkaisnäytteestä kullekin pitoisuudelle.
If a flow-through test is used, a similar sampling regime to that described for semi-static tests is appropriate (but measurement of ‘old’ solutions is not applicable in this case).
Jos kyseessä on läpivirtaustesti, samanlainen näytteenotto-ohjelma on sopiva kuin puolistaattisissa testeissä (vaikka ”vanhasta” liuoksesta ei tehdä määritystä).
If there is evidence that the concentration of the substance being tested has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, then results can be based on nominal or measured initial values.
Jos on näyttöä siitä, että testattavan aineen pitoisuus on pysynyt tyydyttävällä tavalla ± 20 prosentissa nimellispitoisuudesta tai alkupitoisuudesta koko testin ajan, tulokset voivat perustua nimellispitoisuuksiin tai alkupitoisuuksiin.
If the deviation from the nominal or measured initial concentration is greater than ± 20 %, results should be expressed in terms of the time-weighed mean (see Appendix 5).
Jos poikkeama nimellispitoisuudesta tai alkupitoisuudesta on suurempi kuin ± 20 %, tulokset olisi ilmaistava aikapainotettuina keskiarvoina (ks. lisäys 5).
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the total number of living offspring produced per parent animal alive at the end of the test.
Tämän testin tarkoituksena on määrittää testiaineen vaikutus elävien jälkeläisten kokonaismäärään testin lopussa elossa olevien emojen määrää kohti.
The total number of offspring per parent animal should be calculated for each test vessel (i.e. replicate).
Elävien jälkeläisten kokonaismäärä emojen määrää kohti olisi laskettava jokaiselle testiastialle (ts. rinnakkaisnäytteille).
If, in any replicate the parent animal dies during the test or turns out to be male, then the replicate is excluded from the analysis.
Jos jossakin rinnakkaisnäytteessä emo kuolee testin aikana tai osoittautuu koiraaksi, kyseinen rinnakkaisnäyte jätetään testin ulkopuolelle.
The analysis will then be based on a reduced number of replicates.
Analyysi perustuu silloin pienempään määrään rinnakkaisnäytteitä.
For the estimation of the LOEC, and hence the NOEC, for effects of the chemical on reproductive output, it is necessary to calculate the mean reproductive output across replicates for each concentration and the pooled residual standard deviation, and this can be done using analysis of variance (ANOVA).
Kun selvitettäessä kemikaalin vaikutuksia lisääntymistuotokseen määritetään LOEC ja siitä NOEC, on laskettava kaikkien rinnakkaisnäytteiden keskimääräinen lisääntymistuotos kullekin pitoisuudelle ja painotettu jäännösvakiopoikkeama. Tämä voidaan tehdä varianssianalyysillä (ANOVA).
The mean for each concentration must then be compared with the control mean using an appropriate multiple comparison method.
Kunkin pitoisuuden keskiarvoa on tämän jälkeen verrattava kontrollien keskiarvoon käyttämällä sopivaa vertailumenetelmää.
Dunnett's or Williams' tests may be useful (14)(15)(16)(17).
Dunnettin tai Williamsin testit voivat olla hyödyllisiä (14) (15) (16) (17).
It is necessary to check whether the ANOVA assumption of homogeneity of variance holds.
On myös tarkistettava, pitääkö ANOVAn olettamus varianssin homogeenisuudesta paikkansa.
It is recommended that this be done graphically rather than via a formal significance test (18); a suitable alternative is to run a Bartlett's test.
Suositellaan, että tämä tehdään graafisesti mieluummin kuin formaalilla merkitsevyystestillä (18); sopiva vaihtoehto on Bartlettin testi.
If this assumption does not hold, then consideration should be given to transforming the data to homogenise variances prior to performing the ANOVA, or to carrying out a weighted ANOVA.
Jos oletus ei pidä paikkaansa, on harkittava tulostietojen muuntamista varianssien tasoittamiseksi ennen ANOVAa tai painotetun ANOVAn tekemistä.
The size of the effect detectable using ANOVA (i.e. the least significant difference) should be calculated and reported.
ANOVAlla määritetty havaittavan vaikutuksen suuruus (ts. pienin merkitsevä ero) olisi laskettava ja ilmoitettava.
For the estimation of the concentration which would cause a 50 % reduction in reproductive output (i.e. the EC50), a suitable curve, such as the logistic curve, should be fitted to the data using a statistical method such as least squares.
Sellaisen pitoisuuden arvioimiseksi, joka aiheuttaisi 50 prosentin pienenemisen lisääntymistuotoksessa (ts. EC50), tulostietoihin olisi sovitettava jokin sopiva käyrä, kuten logistinen käyrä, käyttämällä jotakin tilastomenetelmää, kuten pienimmän neliösumman menetelmää.
The curve could be parameterised so that the EC50 and its standard error can be estimated directly.
Käyrään voitaisiin valita sellaiset muuttujat, että EC50 ja sen keskivirhe voidaan määrittää käyrästä suoraan.
This would greatly ease the calculation of the confidence limits about the EC50.
Tämä helpottaisi suuresti EC50:n luottamusrajojen laskemista.
Unless there are good reasons to prefer different confidence levels, two-sided 95 % confidence limits should be quoted.
Ellei ole erityisiä syitä käyttää erilaisia luottamusrajoja, kaksipuolinen 95 prosentin raja olisi ilmoitettava.
This can be done graphically or by dividing the residual sum of squares into ‘lack of fit’ and ‘pure error components’ and performing a significance test for lack of fit.
Tämä voidaan tehdä graafisesti tai jakamalla jäännösneliösumma sovituksen onnistumista ja puhdasta virhettä koskeviin komponentteihin ja tekemällä merkitsevyystesti sovituksen onnistumiselle.
Since treatments giving high fecundity are likely to have greater variance in the number of juveniles produced than treatments giving low fecundity, consideration to weighting the observed values to reflect the different variances in the different treatment groups should be given (see for background information ref. 18).
Koska korkeaan hedelmällisyyteen johtavilla käsittelyillä on todennäköisesti suurempi tuotettujen nuorten yksilöiden määrän varianssi kuin alhaiseen hedelmällisyyteen johtavilla käsittelyillä, olisi harkittava havaittujen arvojen painottamista siten, että ne heijastaisivat eri käsittelyryhmien erilaisia variansseja (ks. taustatietoa viitteessä 18).
In the analysis of the data from the final ring test (2), a logistic curve was fitted using the following model, although other suitable models can be used:
Lopullisen rengastestin (2) tulostietoja analysoitaessa niihin sovitettiin logistinen käyrä käyttämällä seuraavaa mallia, vaikka muitakin sopivia malleja voi käyttää:
Low melting
Alhainen sulamispiste
Up to 25 %
enintään 25 %
Up to 50 %
enintään 50 %
The sample chamber (figure 2a) is bounded on one side by a suitable high-vacuum valve. A U-tube containing a suitable manometer fluid is attached to the other side.
Näytekammion (kuva 2a) toiselle puolelle on liitetty tyhjöventtiili ja toiselle puolelle on liitetty painemittarinestettä sisältävä U-putki.
When the sample is heated the vapour pressure increases. This alters the equilibrium of the fluid in the U-tube.
Kun näytettä kuumennetaan, höyrynpaine suurenee, mikä vaikuttaa U-putken nestepatsaan tasapainoon.
This arrangement has the advantage of allowing the introduction of a copper bar. This allows cooling from the outside using a cooling bath,
Tällaisen järjestelyn etuna on mahdollisuus panna uuniin kuparitanko, jolla voidaan hoitaa jäähdytys ulkopuolelta jäähdytyshauteiden avulla.
where: E = 1
jossa E = 1
The average speed of the gas molecule c—
Kaasumolekyylin keskinopeus c saadaan seuraavan c—
is given by:
suureyhtälön mukaan:
Calculated values of the vapour pressure can be used:
Höyrynpaineen laskettuja arvoja voidaan käyttää, kun halutaan
for deciding which of the experimental methods is appropriate,
päättää, mikä kokeellisista menetelmistä on sopiva,
The syringe should initially be partially filled with air. Air should be gently expelled while inserting the needle through the n-octanol layer.
Näytteenottoa varten ruisku täytetään osittain ilmalla, joka työnnetään varovasti ulos vietäessä ruisku n-oktanolikerroksen läpi.
All calculation methods are based on the formal fragmentation of the molecule into suitable substructures for which reliable log Pow-increments are known.
Kaikki laskentamenetelmät perustuvat molekyylin muodolliseen fragmentointiin sopiviin alarakenteisiin, joille on tiedossa luotettavat log Pow -differentiaalit.
The log Pow of the whole molecule is then calculated as the sum of its corresponding fragment values plus the sum of correction terms for intramolecular interactions.
Koko molekyylin log Pow -arvo voidaan tämän jälkeen laskea fragmenttiarvojensa summana lisättynä korjaustermeillä, jotka perustuvat molekyylin sisäisiin vuorovaikutuksiin.
Length of the mould: 250 mm
Muotin pituus: 250 mm
Material: aluminium
Aine: alumiini
Berthold, D. Conrad, T. Grewer, H. Grosse-Wortmann ‘Entwicklung einer Standard-Apparatur zur Messung von Explosionsgrenzen’.
Berthold, D. Conrad, T, Grewer, H. Grosse-Wortmann, T. Redeker und H. Schacke.
Chem.-Ing.- Tech.
”Entwicklung einer Standard-Apparatur zur Messung von Explosionsgrenzen”.
The auto-flammability of liquids may also need to be tested using method A.15. Auto-ignition temperature (liquids and gases).
Nesteiden itsesyttyvyyden testauksessa voidaan myös tarvita menetelmää A.15 Itsesyttymislämpötila (nesteet ja kaasut).
A tared tube is filled with 9 cm3 of substance and the substance tamped with 80 N force applied to the total cross-section of the tube.
Taarattuun putkeen pannaan 9 cm3 ainetta, joka sullotaan putkeen tämän koko poikkileikkauspinta-alaan kohdistuvalla 80 N:n voimalla.
For reasons of safety or in cases where the physical form of the sample can be changed by compression other filling procedures may be used; e.g. if the substance is very friction sensitive then tamping is not appropriate.
Turvallisuussyistä ja tapauksissa, joissa näytteen fyysinen muoto voi muuttua puristuksen vaikutuksesta, voidaan käyttää muuntyyppistä täyttömenetelmää (sullomista ei voi käyttää esimerkiksi hyvin kitkaherkkien aineiden kohdalla).