natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Inject the sample extract (5.5) several times, using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the methyl benzoquate peaks.
Injektoidaan useita kertoja näyteuutetta (5.5) käyttäen samaa tilavuutta kuin kalibrointiliuoksille, ja määritetään metyylibentsokvaattipiikkien korkeuden (pinta-alan) keskiarvo.
Determine the concentration of the sample solution in μg/ml from the mean height (area) of the methyl benzoquate peaks of the sample solution by reference to the calibration graph (5.6.2).
Näyteliuoksen metyylibentsokvaattipiikkien korkeuden (pinta-alan) keskiarvosta määritetään näyteliuoksen pitoisuus μg/ml:na käyttäen kalibrointikäyrää (5.6.2).
The content of methyl benzoquate w (mg/kg) of the sample is given by the following formula:
Näytteessä olevan metyylibentsokvaatin määrä w (mg/kg) lasketaan seuraavalla kaavalla:
c methyl benzoquate concentration of the sample solution in μg/ml,
c näyteliuoksen metyylibentsokvaattipitoisuus μg/ml:na,
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract and the calibration solution (3.7.3) containing 10 μg/ml are compared.
Tutkittavan aineen tunnistaminen voidaan varmentaa yhteiskromatografialla tai diodirividetektorilla, joilla näyteuutteen ja 10 μg/ml metyylibentsokvaattia sisältävän kalibrointiliuoksen (3.7.3) spektrejä voidaan verrata.
A sample extract is fortified by addition of an appropriate amount of the intermediate standard solution (3.7.2).
Näyteuutteeseen lisätään sopiva määrä standardin välimuotoliuosta (3.7.2).
The amount of added methyl benzoquate must be similar to the estimated amount of methyl benzoquate in the sample extract.
Lisätyn metyylibentsokvaatin määrän on vastattava näyteuutteessa olevan metyylibentsokvaatin arvioitua määrää.
Only the height of the methyl-benzoquate peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Ainoastaan metyylibentsokvaatin piikin korkeus saa kasvaa, kun otetaan huomioon sekä lisätty määrä että uutteen laimeneminen.
the wavelength of maximum absorption of the sample and of the standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram must be the same within a margin determined by the resolving power of the detection system.
kromatogrammin piikin huipun kohdalla näytteen ja standardin spektrien maksimiabsorptioaallonpituuksien on oltava samat ilmaisinjärjestelmän erotuskyvyn mukaan määräytyvissä rajoissa.
between 220 and 350 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
välillä 220–350 nm kromatogrammin piikin huipun kohdalla ajetut näyte- ja standardispektrit eivät saa erota niiltä spektrin osilta, joiden suhteellinen absorbanssi on 10–100 %.
between 220 and 350 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
välillä 220–350 nm näyteliuoksesta ajetut spektrit piikin nousun, huipun ja laskun kohdalla eivät saa erota toisistaan niiltä spektrin osilta, joiden suhteellinen absorbanssi on 10–100 %.
This criterion is met when the same maxima are present and when at no observed points the deviation between the spectra does not exceed 15 % of the absorbance of the spectrum of the apex.
Tämä edellytys täyttyy, kun samat maksimit esiintyvät ja kun kaikissa havaittavissa kohdissa spektrien välinen poikkeama ei ole suurempi kuin 15 % huipun spektrin absorbanssista.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed: 10 % relative to the higher result for methyl benzoquate contents between 4 and 20 mg/kg.
Kahden rinnakkaismäärityksen välinen ero samasta näytteestä ero ei saa olla suurempi kuin 10 % suuremmasta tuloksesta, kun metyylibentsokvaattipitoisuudet ovat välillä 4–20 mg/kg.
For a fortified blank sample the recovery shall be at least 90 %.
Sellaisen nollanäytteen saannon, johon on lisätty määritettävää ainetta, on oltava vähintään 90 %.
Five samples were analysed by 10 laboratories.
Laboratorioiden välisessä tutkimuksessa analysoitiin viisi näytettä 10 laboratoriossa.
Blank
Nollanäyte
Meal 1
Jauho 1
Pellet 1
Rae 1
Meal 2
Jauho 2
Pellet2
Rae 2
ND Not detected
Ei hav. Ei havaittu
DETERMINATION OF OLAQUINDOX
OLAKVINDOKSIN MÄÄRITYS
2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxaline-N1,N4-dioxide
(2-[N-2′-(hydroksietyyli)karbamoyyli]-3-metyylikinoksaliini-N1,N4-dioksidi
This method makes it possible to determine the level olaquindox in feed.
Menetelmällä voidaan määrittää rehujen olakvindoksipitoisuus.
The sample is extracted by a water-methanol mixture.
Näyte uutetaan vesi-metanoliseoksella.
The content of olaquindox is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) using an UV detector.
Olakvindoksipitoisuus määritetään korkean erotuskyvyn käänteisfaasinestekromatografialla (HPLC) UV-detektoria käyttäen.
Mobile phase for HPLC.
HPLC:ssä käytettävä liikkuva faasi.
Water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 +100 (V + V).
Vesi (3.3)-metanoli (3.2)-seos, 900 + 100 (V + V).
Standard substance: pure olaquindox 2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxaline-N1,N4-dioxide, E 851.
Standardiyhdiste: puhdas olakvindoksi, 2-[N-2′-(hydroksietyyli)karbamoyyli]-3-metyylikinoksaliini-N1,N4-dioksidi, E 851.
Olaquindox stock standard solution, 250 μg/ml
Olakvindoksistandardin kantaliuos, 250 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg 50 mg of olaquindox (3.5) in a 200 ml graduated flask and add ca. 190 ml water.
Punnitaan 50 mg olakvindoksia (3.5) 0,1 mg:n tarkkuudella 200 ml:n mittapulloon ja lisätään noin 190 ml vettä.
Then place the flask for 20 min. into an ultrasonic bath (4.1).
Asetetaan pullo 20 minuutiksi ultraäänihauteeseen (4.1).
After ultrasonic treatment bring the solution to room temperature, make up to the mark with water and mix.
Ultraäänikäsittelyn jälkeen liuoksen annetaan jäähtyä huoneenlämpötilaan, täytetään merkkiin asti vedellä ja sekoitetaan.
Wrap the flask with aluminium foil and store in a refrigerator.
Kääritään pullo alumiinifolioon ja säilytetään jääkaapissa.
This solution must be prepared fresh each month.
Liuos on valmistettava kuukausittain.
Olaquindox intermediate standard solution, 25 μg/ml
Olakvindoksistandardin välimuotoliuos, 25 μg/ml
Transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.5.1) into a 100 ml graduated flask, make up to the mark with the mobile phase (3.4) and mix.
Pipetoidaan 10,0 ml kantaliuosta (3.5.1) 100 ml:n mittapulloon, täytetään merkkiin asti liikkuvalla faasilla (3.4) ja sekoitetaan.
This solution must be prepared fresh each day.
Liuos on valmistettava päivittäin.
Into a series of 50 ml graduated flasks transfer 1,0, 2,0, 5,0, 10,0, 15,0 and 20,0 ml of the intermediate standard solution (3.5.2).
Pipetoidaan 50 ml:n mittapulloihin 1,0, 2,0, 5,0, 10,0, 15,0 ja 20,0 ml standardin välimuotoliuosta (3.5.2).
Make up to the mark with the mobile phase (3.4) and mix.
Täytetään merkkiin asti liikkuvalla faasilla (3.4) ja sekoitetaan.
Wrap the flasks with aluminium foil.
Kääritään pullot alumiinifolioon.
These solutions correspond to 0,5, 1,0, 2,5, 5,0, 7,5 and 10,0 μg of olaquindox per ml respectively.
Nämä liuokset sisältävät vastaavasti 0,5, 1,0, 2,5, 5,0, 7,5 ja 10,0 μg/ml olakvindoksia.
These solutions must be prepared fresh each day.
Liuokset on valmistettava päivittäin.
HPLC equipment with variable wavelength ultraviolet detector or diode array detector
HPLC-laitteisto, jossa on vaihtuva-aallonpituuksinen UV-detektori tai diodirividetektori.
Liquid chromatographic column, 250 mm × 4 mm, C18, 10 μm packing, or equivalent
Nestekromatografiakolonni, 250 mm x 4 mm, C18, hiukkaskoko 10 μm, tai vastaava.
Olaquindox is light sensitive.
Olakvindoksi on valoherkkää.
Carry out all procedures under subdued light or use amber glassware.
Kaikki toimenpiteet on tehtävä himmennetyssä valaistuksessa tai ruskeita lasiastioita käyttäen.
A blank feed shall be analysed to check that neither olaquindox nor interfering substances are present.
Nollanäyte on analysoitava, jotta varmistetaan, ettei se sisällä olakvindoksia tai mittausta häiritseviä aineita.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of olaquindox, similar to that present in the sample.
Saantokoe suoritetaan analysoimalla nollanäyte, johon on lisätty näytteessä esiintyvää määrää vastaava määrä olakvindoksia.
To fortify at a level of 50 mg/kg, transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.5.1) to a 250 ml conical flask and evaporate the solution to ca. 0,5 ml.
Lisäyksen saamiseksi tasolle 50 mg/kg pipetoidaan 10,0 ml standardin kantaliuosta (3.5.1) 250 ml:n erlenmeyerkolviin ja haihdutetaan liuos noin 0,5 ml:ksi.
Add 50 g of the blank feed, mix thoroughly and leave for 10 min. mixing again several times before proceeding with the extraction step (5.2).
Lisätään 50 g nollanäytettä, sekoitetaan huolellisesti ja annetaan tasoittua 10 min sekoittaen useita kertoja ennen uuttovaiheeseen siirtymistä (5.2).
For the purpose of this method the blank feed shall be similar in type to that of the sample and olaquindox must not be detected.
Tätä menetelmää käytettäessä nollanäytteen on oltava tyypiltään samanlaista kuin näyte, eikä siinä saa esiintyä havaittavaa määrää olakvindoksia.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 50 g of the sample.
Punnitaan noin 50 g näytettä 0,01 g:n tarkkuudella.
Transfer to a 1000 ml conical flask, add 100 ml of methanol (3.1) and place the flask for 5 min. in the ultrasonic bath (4.1).
Siirretään 1000 ml:n erlenmeyerkolviin, lisätään 100 ml metanolia (3.1) ja asetetaan kolvi 5 minuutiksi ultraäänihauteeseen (4.1).
Add 410 ml water and leave in the ultrasonic bath for further 15 min. Remove the flask from the ultrasonic bath, shake it for 30 min. on the shaker (4.2) and filter through a folded filter.
Lisätään 410 ml vettä ja annetaan olla ultraäänihauteessa vielä 15 minuuttia. Otetaan kolvi ultraäänihauteesta, ravistellaan 30 minuutin ajan ravistelijassa (4.2) ja suodatetaan taitellun suodatinpaperin läpi.
Transfer 10,0 ml of the filtrate into a 20 ml graduated flask, make up to the mark with water and mix.
Pipetoidaan 10,0 ml suodosta 20 ml:n mittapulloon, täytetään merkkiin asti vedellä ja sekoitetaan.
Parameters:
Muuttujat:
Analytical column (4.3.1)
Analyysikolonni (4.3.1)
Mobile Phase (3.4):
Liikkuva faasi (3.4):
water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 + 100 (V + V)
vesi (3.3) — metanoli (3.2.) seos, 900 + 100 (V + V)
20 μl –100 μl
20–100 μl.
Check the stability of the chromatographic system, injecting several times the calibration solution (3.5.3) containing 2,5 μg/ml, until constant peak heights and retention times are achieved.
Kromatografiajärjestelmän stabiilisuus tarkistetaan injektoimalla useita kertoja 2,5 μg/ml olakvindoksia sisältävää kalibrointiliuosta (3.5.3), kunnes piikkien korkeudet ja retentioajat pysyvät vakioina.
Inject each calibration solution (3.5.3) several times and determine the mean peak heights (areas) for each concentration.
Injektoidaan kutakin kalibrointiliuosta (3.5.3) useita kertoja ja lasketaan kutakin konsentraatiota vastaavat piikkien korkeuksien (pinta-alojen) keskiarvot.
Plot a calibration graph using the mean peak heights (areas) of the calibration solutions as the ordinates and the corresponding concentrations in μg/ml as the abscissae.
Piirretään kalibrointikäyrä siten, että y-akselilla ovat kalibrointiliuosten piikkien korkeuksien (pinta alojen) keskiarvot ja x-akselilla vastaavat konsentraatiot (μg/ml).
Inject the sample extract (5.2) several times using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the olaquindox peaks.
Injektoidaan useita kertoja näyteliuosta (5.2) sama määrä kuin kalibrointiliuoksia ja lasketaan olakvindoksipiikkien korkeuden (pinta-alan) keskiarvo.
From the mean height (area) of the olaquindox peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.3.2).
Näyteliuoksen olakvindoksipitoisuus (μg/ml) lasketaan olakvindoksin piikkien korkeuden (pinta-alan) keskiarvosta kalibrointikäyrän (5.3.2) avulla.
The olaquindox content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
Näytteen olakvindoksipitoisuus w (mg/kg) saadaan seuraavasta kaavasta:
c olaquindox concentration of the sample extract (5.2) in μg/ml
c näyteliuoksen (5.2) olakvindoksipitoisuus (μg/ml),
m weight of the test portion in g (5.2).
m näyte-erän paino grammoina (5.2).
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract (5.2) and the calibration solution (3.5.3) containing 5,0 μg/ml are compared.
Tutkittavan aineen tunnistaminen voidaan varmentaa yhteiskromatografialla tai diodirividetektorilla vertaamalla näyteliuoksen (5.2) ja 5,0 μg/ml olakvindoksia sisältävän kalibrointiliuoksen (3.5.3) spektrejä.
A sample extract (5.2) is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.5.3).
Näyteliuokseen (5.2) lisätään sopiva määrä kalibrointiliuosta (3.5.3).
The amount of added olaquindox must be similar to the amount of olaquindox found in the sample extract.
Lisätyn olakvindoksimäärän on oltava samaa luokkaa kuin näyteliuoksesta analysoitu olakvindoksin määrä.
Only the height of the olaquindox peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Vain olakvindoksipiikin korkeus saa kasvaa, kun otetaan huomioon sekä lisätty määrä että olakvindoksin näyteliuoksen laimeneminen.
The peak width, at half of its height, must be within ± 10 % of the original width of the olaquindox peak of the unfortified sample extract.
Piikin leveyden puolivälissä sen korkeutta on oltava ± 10 prosenttia alkuperäisen näyteliuoksen olakvindoksipiikin leveydestä.
Diode array detection
Diodirividetektorimääritys
Between 220 and 400 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex of the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
Välillä 220–400 nm näytteen ja standardin spektrit, kromatogrammin piikin kärjestä mitattuna, eivät saa erota niiltä spektrin osilta, joiden suhteellinen absorbanssi on 10–100 %.
Between 220 and 400 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
Välillä 220–400 nm näyteuutteesta ajetut spektrit piikin nousun, huipun ja laskun kohdalla eivät saa erota toisistaan niiltä spektrin osilta, joiden suhteellinen absorbanssi on 10–100 %.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 15 % relative to the higher result for olaquindox contents between 10 and 200 mg/kg.
Kun olakvindoksipitoisuus on 10–200 mg/kg, näytteen kahden rinnakkaisen määrityksen välinen ero ei saa olla suurempi kuin 15 % suuremmasta rinnakkaistuloksesta.
An EC collaborative study was arranged in which four piglet feed samples including one blank feed were analysed by up to 13 laboratories.
EY:n laboratorioiden välisessä menetelmävertailussa 13 laboratoriossa analysoitiin neljä porsaanrehunäytettä, joista yksi oli nollanäyte.
The results are given below:
Tulokset olivat seuraavat:
Nominal content
nimellispitoisuus
recovery %
saanto %
Although the method has not been validated for feeds containing more than 100 mg/kg of olaquindox, it may be possible to obtain satisfactory results by taking a smaller sample weight and/or diluting the extract (5.2) to reach a concentration within the range of the calibration graph (5.3.2).
Vaikka menetelmää ei ole validoitu rehuille, joissa on yli 100 mg/kg olakvindoksia, sillä on mahdollista saada tyydyttäviä tuloksia käyttämällä pienempää näytemäärää ja/tai laimentamalla näyteliuosta (5.2), jotta päästäisiin kalibrointikäyrän pitoisuusalueelle (5.3.2).
DETERMINATION OF AMPROLIUM
AMPROLIUMIN MÄÄRITYS
1-[(4-amino-2-propylpyrimidin-5-yl)methyl]-2-methyl-pyridinium chloride hydrochloride
1 [(4-amino-2-propyylipyrimidin-5-yyli)metyyli]-2-metyylipyridiniumkloridihydrokloridi
This method makes it possible to determine the level of amprolium in feed and premixtures.
Menetelmällä voidaan määrittää amproliumin pitoisuus rehuissa ja esiseoksissa.
The detection limit is 1 mg/kg, the limit of quantification is 5 mg/kg.
Toteamisraja on 1 mg/kg ja määritysraja 5 mg/kg.
The sample is extracted with a methanol-water mixture.
Näyte uutetaan metanoli-vesiseoksella.
After dilution with the mobile phase and membrane filtration the content of amprolium is determined by cation exchange high performance liquid chromatography (HPLC) using a UV detector.
Uute laimennetaan liikkuvalla faasilla, suodatetaan kalvosuodattimella, ja amprolium määritetään korkean erotuskyvyn kationinvaihtonestekromatografialla (HPLC) ja UV-detektorilla.
Sodium dihydrogen phosphate solution, c = 0,1 mol/l.
Natriumdivetyfosfaattiliuos, c = 0,1 mol/l.
Dissolve 13,80 g of sodium dihydrogen phosphate monohydrate in water (3.3) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.3) and mix.
Liuotetaan 13,80 g natriumdivetyfosfaattimonohydraattia veteen (3.3) 1000 ml:n mittapullossa, täytetään merkkiin asti vedellä (3.3) ja sekoitetaan.
Sodium perchlorate solution, c = 1,6 mol/l.
Natriumperkloraattiliuos, c = 1,6 mol/l.
Dissolve 224,74 g of sodium perchlorate monohydrate in water (3.3) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.3) and mix.
Liuotetaan 224,74 g natriumperkloraattimonohydraattia veteen (3.3) 1000 ml:n mittapullossa, täytetään merkkiin asti vedellä (3.3) ja sekoitetaan.
Mobile phase for HPLC (see observation 9.1).
HPLC:ssä käytettävä liikkuva faasi (katso huomautus 9.1).
Mixture of acetonitrile (3.2), sodium dihydrogen phosphate solution (3.4) and sodium perchlorate solution (3.5), 450+450+100 (v+v+v).
Asetonitriilin (3.2), natriumdivetyfosfaattiliuoksen (3.4) ja natriumperkloraattiliuoksen (3.5) seos, 450 + 450 + 100 (v + v + v).
Prior to use filter through a 0,22 μm membrane filter (4.3) and degas the solution (e.g. in the ultrasonic bath (4.4) for at least 15 minutes).
Suodatetaan ennen käyttöä 0,22 μm:n kalvosuodattimella (4.3) ja poistetaan kaasut (esim. ultraäänihauteessa (4.4) vähintään 15 min).
Standard substance: pure amprolium, 1-[(4-amino-2-propylpyrimidin-5-yl)methyl]-2-methyl-pyridinium chloride hydrochloride, E 750 (see 9.2).
Standardiyhdiste: puhdas amproliumi, 1-[(4-amino-2-propyylipyrimidin-5-yyli)-metyyli]-2-metyylipyridi-niumkloridihydrokloridi, E 750 (katso kohta 9.2).
Amprolium stock standard solution, 500 μg/ml
Amproliumstandardin kantaliuos, 500 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg, 50 mg of amprolium (3.7) in a 100 ml graduated flask, dissolve in 80 ml methanol (3.1) and place the flask for 10 min. in an ultrasonic bath (4.4).
Punnitaan 0,1 mg:n tarkkuudella 50 mg amproliumia (3.7) 100 ml:n mittapulloon, liuotetaan 80 ml:aan metanolia (3.1), ja pullo pannaan 10 minuutiksi ultraäänihauteeseen (4.4).
Amprolium intermediate standard solution, 50 μg/ml
Amproliumstandardin välimuotoliuos, 50 μg/ml
Pipette 5,0 ml of the stock standard solution (3.7.1) into a 50 ml graduated flask, make up to the mark with the extraction solvent (3.8) and mix.
Pipetoidaan 5,0 ml standardin kantaliuosta (3.7.1) 50 ml:n mittapulloon, täytetään merkkiin asti uuttoliuoksella (3.8) ja sekoitetaan.
Transfer 0,5, 1,0 and 2,0 ml of the intermediate standard solution (3.7.2) into a series of 50 ml graduated flasks.
Siirretään 0,5, 1,0 ja 2,0 ml standardin välimuotoliuosta (3.7.2) 50 ml:n mittapulloihin.
Make up to the mark with the mobile phase (3.6) and mix.
Täytetään merkkiin asti liikkuvalla faasilla (3.6) ja sekoitetaan.
These solutions correspond to 0,5, 1,0 and 2,0 μg of amprolium per ml respectively.
Nämä liuokset vastaavat 0,5, 1,0 ja 2,0 μg/ml amproliumia.
Extraction solvent.
Uuttoliuos.
Methanol (3.1)-water mixture 2+1 (v+v).
Metanoli (3.1) -vesiseos 2 + 1 (v + v).
HPLC equipment with injection system, suitable for injection volumes of 100 μl.
HPLC-laitteisto, jossa voidaan injektoida 100 μl:n näytteitä.
Liquid chromatographic column 125 mm × 4 mm, cation exchange Nucleosil 10 SA, 5 or 10 μm packing, or equivalent.
Nestekromatografiakolonni, 125 mm × 4 mm, kationinvaihto Nucleosil 10 SA, hiukkaskoko 5 μm tai 10 μm, tai vastaava.
UV detector with variable wavelength adjustment or diode array detector.
Vaihtuva-aallonpituuksinen UV-detektori tai diodirividetektori.
Membrane filter, PTFE material, 0,45 μm.
Kalvosuodatin, PTFE:tä, 0,45 μm.
Membrane filter, 0,22 μm.
Kalvosuodatin, 0,22 μm.
Ultrasonic bath.
Ultraäänihaude.
For the performance of the recovery test (5.1.2) a blank feed shall be analysed to check that neither amprolium nor interfering substances are present.
Saantokokeen (5.1.2) toimivuuden määrittämiseksi on analysoitava nollarehu (nollanäyte), jotta varmistetaan, ettei se sisällä amproliumia tai mittausta häiritseviä aineita.
The blank feed shall be similar in type to that of the sample and amprolium or interfering substances must not be detected.
Nollanäytteen on oltava näytteen kaltainen, eikä siinä saa olla havaittavia määriä amproliumia tai häiritseviä aineita.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of amprolium, similar to that present in the sample.
Saanto on määritettävä analysoimalla nollanäyte, johon on lisätty näytteen amproliumia näytteen amproliumpitoisuutta vastaava määrä.
To fortify at a level of 100 mg/kg, transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.7.1) to a 250 ml conical flask and evaporate the solution to approximately 0,5 ml.
Jotta saadaan 100 mg/kg amproliumia vastaava näyteliuos, siirretään 10,0 ml standardin kantaliuosta (3.7.1) 250 ml:n erlenmeyerkolviin, ja liuos haihdutetaan noin 0,5 ml:ksi.
In this case, the sample to be analysed is fortified with a quantity of amprolium similar to that already present in the sample.
Tällöin analysoitavaan näytteeseen lisätään suunnilleen näytteiden jo sisältämä määrä amproliumia.
This sample is analysed together with the unfortified sample and the recovery can be calculated by subtraction.
Tämä näyte analysoidaan yhdessä varsinaisen näytteen kanssa, ja saanto voidaan laskea vähennyslaskulla.
Premixtures (content < 1 % amprolium) and feed
Esiseokset (amproliumpitoisuus < 1 %) ja rehut
Weigh to the nearest 0,01 g, 5-40 g of the sample depending on the amprolium content into a 500 ml conical flask and add 200 ml extraction solvent (3.8).
Punnitaan 0,01 gramman tarkkuudella 5–40 g näytettä, riippuen sen amproliumpitoisuudesta, 500 ml:n erlenmeyerkolviin ja lisätään 200 ml uuttoliuosta (3.8).
Dilute an aliquot of the extract with the mobile phase (3.6) to an amprolium content of 0,5-2 μg/ml and mix (see observation 9.3).
Uutteesta otettu erä laimennetaan liikkuvalla faasilla (3.6) siten, että sen amproliumpitoisuus on 0,5–2 μg/ml, ja sekoitetaan (katso 9.3).
Filter 5-10 ml of this diluted solution on a membrane filter (4.2).
Suodatetaan 5–10 ml tätä laimennettua liuosta kalvosuodattimella (4.2).
Premixtures (content ≥ 1 % amprolium)
Esiseokset (amproliumpitoisuus ≥ 1 %)
Weigh to the nearest 0,001 g, 1-4 g of the premixture depending on the amprolium content into a 500 ml conical flask and add 200 ml extraction solvent (3.8).
Punnitaan 0,01 gramman tarkkuudella 1–4 g esiseosta, riippuen sen amproliumpitoisuudesta, 500 ml:n erlenmeyerkolviin ja lisätään 200 ml uuttoliuosta (3.8).
Dilute an aliquot of the extract with the mobile phase (3.6) to an amprolium content of 0,5-2 μg/ml and mix.
Uutteesta otettu erä laimennetaan liikkuvalla faasilla (3.6) siten, että sen amproliumpitoisuus on 0,5–2 μg/ml, ja sekoitetaan.
column (4.1.1):
Nestekromatografiakolonni (4.1.1):
125 mm × 4 mm, cation exchange Nucleosil 10 SA, 5 or 10 μm packing, or equivalent
125 mm × 4 mm, kationinvaihtaja Nucleosil 10 SA, hiukkaskoko 5 tai 10 μm, tai vastaava
Mobile phase (3.6):
Liikkuva faasi (3.6):