natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Adequate solubility of the test chemical in the receptor fluid should be demonstrated so that it does not act as a barrier to absorption.
On osoitettava, että testikemikaalilla on riittävä liukenevuus vastaanottonesteessä, jotta tämä ei toimi esteenä imeytymiselle.
In addition, the receptor fluid should not affect skin preparation integrity.
Lisäksi vastaanottoneste ei saa vaikuttaa ihonäytteen funktionaaliseen eheyteen.
In a flow-through system, the rate of flow must not hinder diffusion of a test substance into the receptor fluid.
Läpivirtausjärjestelmässä virtausnopeus ei saa haitata testiaineen diffundoitumista vastaanottonesteeseen.
In a static cell system, the fluid should be continuously stirred and sampled regularly.
Staattisessa kammiojärjestelmässä nestettä on jatkuvasti sekoitettava ja siitä on otettava näytteitä säännöllisesti.
If metabolism is being studied, the receptor fluid must support skin viability throughout the experiment.
Jos tutkitaan metaboliaa, ihonäytteen on pysyttävä elävänä koko testin ajan.
Skin preparations
Ihonäytteet
Skin from human or animal sources can be used.
Testissä käytetään ihmisestä tai eläimestä otettua ihoa.
Although viable skin is preferred, non-viable skin can also be used provided that the integrity of the skin can be demonstrated.
On suositeltavaa käyttää elävää ihoa, mutta myös kuollutta ihoa voidaan käyttää, kunhan osoitetaan ihon funktionaalinen eheys.
Either epidermal membranes (enzymically, heat or chemically separated) or split thickness skin (typically 200-400 μm thick) prepared with a dermatome, are acceptable.
Hyväksyttäviä ovat joko (entsyymi, lämpö- tai kemiallisilla menetelmillä erotetut) orvaskesikalvot tai ihohöylällä (dermatomilla) irrotetut ohennetut ihonäytteet (split thickness skin) (paksuus tyypillisesti 200–400 μm).
Full thickness skin may be used but excessive thickness (approximately > 1 mm) should be avoided unless specifically required for determination of the test chemical in layers of the skin.
Myös kokoihonäytteitä (full thickness skin) voidaan käyttää, mutta liiallista ihonäytteen paksuutta (n. > 1 mm) pitäisi välttää, ellei sitä erityisesti edellytetä testikemikaalin määrittämiseksi ihokerroksissa.
The selection of species, anatomical site and preparative technique must be justified.
Laji, anatominen näytteenottopaikka ja käytetty menetelmä on perusteltava.
Acceptable data from a minimum of four replicates per test preparation are required.
Hyväksyttävät testitulokset tarvitaan vähintään neljästä rinnakkaisesta näytteestä testiä kohti.
Skin preparation integrity
Ihonäytteen eheys
It is essential that the skin is properly prepared.
On tärkeää, että ihonäyte valmistetaan oikein.
Inappropriate handling may result in damage to the stratum corneum, hence the integrity of the prepared skin must be checked.
Epäasianmukainen käsittely voi vahingoittaa marraskettä, minkä vuoksi ihonäytteen eheys on varmistettava.
When skin metabolism is being investigated, freshly excised skin should be used as soon as possible, and under conditions known to support metabolic activity.
Jos tutkimuskohteena on ihon metabolia, vastaleikattu ihonäyte pitäisi käyttää testissä mahdollisimman pian ja olosuhteissa, joiden tiedetään tukevan metabolista toimintaa.
As a general guidance, freshly excised skin should be used within 24 hours, but the acceptable storage period may vary depending on the enzyme system involved in metabolisation and storage temperatures (13).
Yleissääntönä on, että vastaleikattu iho käytetään 24 tunnin kuluessa, mutta hyväksyttävä varastointiaika voi vaihdella riippuen aineenvaihduntaan osallistuvasta entsyymijärjestelmästä ja varastointilämpötilasta (13).
When skin preparations have been stored prior to use, evidence should be presented to show that barrier function is maintained.
Jos ihonäytteet on varastoitu ennen käyttöä, on osoitettava, että ihon läpäisyä estävät ominaisuudet ovat testiajankohtana ennallaan.
The test substance preparation (e.g. neat, diluted or formulated material containing the test substance which is applied to the skin) should be the same (or a realistic surrogate) as that to which humans or other potential target species may be exposed.
Testiainevalmisteen (esim. testiaineen sisältävä laimentamaton tai laimennettu materiaali tai formulaatio, joka aplikoidaan iholle) olisi mielellään oltava sama kuin valmiste, jolle ihmiset tai muut kohdelajit voivat altistua, tai kyseisen valmisteen realistinen korvike.
Any variation from the ‘in-use’ preparation must be justified.
Käytössä olevasta valmisteesta poikkeaminen on perusteltava.
Test substances concentrations and formulations
Testiaineen pitoisuudet ja formulaatiot
Normally more than one concentration of the test substance is used spanning the upper of potential human exposures.
Normaalisti käytetään useampaa kuin yhtä testiaineen pitoisuutta siten, että pitoisuudet kattavat potentiaalisen altistuksen yläpään arvot (ihmisissä).
Likewise, testing a range of typical formulations should be considered.
Samoin on harkittava useiden tyypillisten formulaatioiden testaamista.
Under normal conditions of human exposure to chemicals, finite doses are usually encountered.
Ihmisen altistuessa kemikaaleille annokset ovat normaalioloissa rajallisia.
Therefore, an application that mimics human exposure, normally 1-5 mg/cm2 of skin for a solid and up to10 μl/cm2 for liquids, should be used.
Siksi altistumista jäljittelevässä annostelussa testiainetta aplikoidaan iholle tavallisesti 1-5 mg/cm2, kun testiaine on kiinteä, ja enintään 10 μl/cm2, kun testiaine on nestemäinen.
The quantity should be justified by the expected use conditions, the study objectives or physical characteristics of the test preparation.
Aplikoitavan määrän perusteluina ovat ennakoidut käyttöolosuhteet, tutkimuksen tavoitteet ja testivalmisteen fysikaaliset ominaisuudet.
For example, applications to the skin surface may be infinite, where large volumes per unit area are applied.
Esimerkiksi testiaineen aplikointi voi olla rajoittamatonta tapauksissa, joissa valmistetta aplikoidaan suuria määriä pinta-alayksikköä kohti.
The passive diffusion of chemicals (and therefore their skin absorption) is affected by temperature.
Lämpötila vaikuttaa kemikaalien passiiviseen diffuusioon (ja näin ollen niiden imeytymiseen ihon läpi).
The diffusion chamber and skin should be maintained at a constant temperature close to normal skin temperature of 32 ± 1 oC.
Diffuusiokammion ja ihonäytteen lämpötila on pidettävä vakiona lähellä ihon normaalilämpötilaa 32 ± 1 oC.
Different cell designs will require different water bath or heated block temperatures to ensure that the receptor/skin is at its physiological norm.
Erilaiset diffuusiokammiot edellyttävät erilaisia vesihauteen ja blokkikuumentimen lämpötiloja, jotta varmistetaan, että vastaanottofaasi tai ihonäyte on fysiologisessa vakiotilassaan.
Humidity should preferably be between 30 and 70 %.
Suhteellisen kosteuden arvoksi suositellaan 30–70 %.
Skin exposure to the test preparation may be for the entire duration of the experiment or for shorter times (i.e., to mimic a specific type of human exposure).
Ihoa voidaan altistaa testiaineelle koko testin ajan tai lyhyempiä aikoja (esim. jonkin tietyntyyppisen altistuksen jäljittelemiseksi).
The skin should be washed of excess test preparation with a relevant cleansing agent, and the rinses collected for analysis.
Iholta pestään ylimääräinen testiaine sopivalla puhdistusaineella, ja huuhteluvesi kerätään talteen analyysiä varten.
The removal procedure of the test preparation will depend on the expected use condition, and should be justified.
Menetelmä, jolla testiaine poistetaan, riippuu ennakoiduista käyttöolosuhteista, ja se on perusteltava.
A period of sampling of 24 hours is normally required to allow for adequate characterisation of the absorption profile.
Näytteenottoaika on tavallisesti 24 tuntia, jotta absorptioprofiili voitaisiin karakterisoida riittävästi.
Since skin integrity may start to deteriorate beyond 24 hours, sampling times should not normally exceed 24 hours.
Koska ihon eheys voi alkaa heikentyä 24 tunnin kuluttua, näytteenottoaika ei tavallisesti saisi ylittää 24 tuntia.
For test substances that penetrate the skin rapidly this may not be necessary but, for test substances that penetrate slowly, longer times may be required.
Jotkin aineet edellyttävät pitempää näytteenottoaikaa (24 tuntia), mutta nopeasti imeytyville se ei ehkä ole tarpeen.
Sampling frequency of the receptor fluid should allow the absorption profile of the test substance to be presented graphically.
Vastaanottonesteestä on otettava näytteitä tarpeeksi tiheästi, jotta testiaineen absorptioprofiili voidaan esittää graafisesti.
All components of the test system should be analysed and recovery is to be determined.
Kaikki testijärjestelmän komponentit on analysoitava ja saanto määritettävä.
This includes the donor chamber, the skin surface rinsing, the skin preparation and the receptor fluid/chamber.
Komponetteihin kuuluvat lähettäjäosasto, ihonäytteen pinnan huuhteluvesi, ihonäyte ja vastaanottoneste/osasto.
In some cases, the skin may be fractionated into the exposed area of skin and area of skin under the cell flange, and into stratum corneum, epidermis and dermis fractions, for separate analysis.
Joissain tapauksissa iho voidaan erillistä analyysiä varten jaottaa ihon altistuneeseen osaan, kammion reunan alla olevaan osaan, marrasketeen, orvasketeen ja verinahkaan.
In all studies adequate recovery should be achieved (the aim should be a mean of 100±10 % of the radioactivity and any deviation should be justified).
Kaikissa kokeissa on saavutettava riittävä saanto (keskiarvon on oltava 100 ± 10 % radioaktiivisuudesta; poikkeaminen tästä on perusteltava).
The amount of test substance in the receptor fluid, skin preparation, skin surface washings and apparatus rinse should be analysed, using a suitable t echnique.
Vastaanottonesteessä, ihonäytteessä sekä ihon pinnan ja laitteiden huuhteluvedessä oleva testiaine on analysoita sopivalla menetelmällä.
The analysis of receptor fluid, the distribution of the test substance chemical in the test system and the absorption profile with time, should be presented.
Tuloksina esitetään vastaanottonesteen analyysi, testiaineen jakauma testijärjestelmässä ja absorptioprofiili ajan funktiona.
When finite dose conditions of exposure are used, the quantity washed from the skin, the quantity associated with the skin (and in the different skin layers if analysed) and the amount present in the receptor fluid (rate, and amount or percentage of applied dose) should be calculated.
Kun aplikoitu annos on rajallinen, iholta pesty määrä, ihossa (ihon eri kerroksissa, jos analysoitu erikseen) ja vastaanottonesteessä oleva määrä (imeytymisnopeus sekä määrä tai prosenttiosuus aplikoidusta annoksesta) on määritettävä.
Skin absorption may sometimes be expressed using receptor fluid data alone.
Ihon läpi imeytyminen voidaan joskus ilmaista käyttämällä pelkästään vastaanottonesteen analyysistä saatuja tuloksia.
However, when the test substance remains in the skin at the end of the study, it may need to be included in the total amount absorbed (see paragraph 66 in reference (3)).
Jos testiainetta on kuitenkin edelleen ihossa testin lopussa, se saattaa olla tarpeen sisällyttää imeytyneeseen kokonaismäärään (ks. kirjallisuusviite [3], kohta 66).
When infinite dose conditions of exposure are used the data may permit the calculation of a permeability constant (Kp).
Jos on käytetty rajoittamatonta annosta, testitulosten perusteella voi olla mahdollista määrittää läpäisyvakio (Kp).
Under the latter conditions, the percentage absorbed is not relevant.
Viimeksi mainitussa tapauksessa imeytymisprosentti ei ole merkityksellinen.
The test report must include the requirements stipulated in the protocol, including a justification for the test system used and should, comprise the following:
Testiselosteessa on esitettävä, miten testiohjeessa asetetut vaatimukset on täytetty (mm. käytetyn testijärjestelmän perustelut). Siinä on oltava seuraavat tiedot:
physical nature, physicochemical properties (at least molecular weight and log Pow), purity (radiochemical purity),
fysikaalinen olomuoto ja fysikokemialliset ominaisuudet (ainakin molekyylipaino ja log Pow), puhtaus (radiokemiallinen puhtaus)
identification information (e.g. batch number),
tunnistetiedot (esim. erän numero)
solubility in receptor fluid.
liukoisuus vastaanottonesteeseen.
homogeneity.
homogeenisyys.
sources and site of skin, method of preparation, storage conditions prior to use, any pre-treatment (cleaning, antibiotic treatments, etc.), skin integrity measurements, metabolic stat us, justification of use,
ihonäytteen lähde ja anatominen näytteenottopaikka, käytetty valmistusmenetelmä, varastointiolosuhteet ennen käyttöä, mahdollinen esikäsittely (puhdistus, antibioottikäsittely jne.), ihon funktionaalisen eheyden määritys, metabolinen tila, käytön perustelut
cell design, receptor fluid composition, receptor fluid flow rate or sampling times and procedures,
diffuusiokammion tyyppi, vastaanottonesteen koostumus, vastaanottonesteen virtausnopeus tai näytteenottoajat ja -menettelyt
details of application of test preparation and quantification of dose applied,
testiaineen aplikointimenetelmä ja aplikoidun annoksen määrän määrittäminen
duration of exposure,
altistusaika
details of removal of test preparation from the skin, e.g. skin rinsing,
miten testiaine poistetaan iholta (esim. ihon huuhtelu)
details of analysis of skin and any fractionation techniques employed to demonstrate skin distribution,
ihonäytteen analyysimenetelmä ja mahdolliset jaotustekniikat, joita käytettiin jakautumisen määrittämiseksi ihossa
cell and equipment washing procedures,
diffuusiokammion ja muiden laitteiden pesumenetelmät
assay methods, extraction techniques, limits of detection and analytical method validation.
määritysmenetelmät, uuttomenetelmät, detektiorajat ja analyysimenetelmän validointi.
overall recoveries of the experiment (Applied dose ≡ Skin washings + Skin + Receptor fluid + Cell washings),
kokonaissaanto (aplikoitu annos = ihon huuhteluvesi + ihonäyte + vastaanottoneste + diffuusiokammion huuhteluvesi)
tabulation of individual cell recoveries in each compartment,
yksittäisten diffuusiokammioiden saannot kunkin osaston osalta (taulukkomuodossa)
absorption profile,
absorptioprofiili
tabulated absorption data (expressed as rate, amount or percentage).
absorptiotiedot taulukkomuodossa (imeytymisnopeutena sekä määränä tai prosenttiosuutena).
CRC Press, Boca Raton.
In vitro Percutaneous Absorption: Principles, Fundamentals andApplications. CRC Press, Boca Raton.
Bronaugh R.L. and Collier, S.W., (1991) Protocol for In vitro Percutaneous Absorption Studies, in In vitro Percutaneous Absorption: Principles, Fundamentals and Applications, RL Bronaugh and HI Maibach, Eds., CRC Press, Boca Raton, p. 237-241.
Bronaugh RL and Collier, SW. (1991). Protocol for In vitro Percutaneous Absorption Studies, in In vitroPercutaneous Absorption: Principles, Fundamentals and Applications, RL Bronaugh and HI Maibach, Eds., CRC Press, Boca Raton, pp. 237–241.
Howes, D., Guy, R., Hadgraft, J., Heylings, J.R. et al.
Howes D, Guy R, Hadgraft J, Heylings JR et al.
An example of a typical design of a static diffusion cell for in vitro percutaneous absorption studies
Esimerkki tyypillisestä in vitro -ihoabsorptiotestissä käytettävästä staattisesta diffuusiokammiosta
Activated charcoal filter (for volatile test substances)
Aktiivihiilisuodatin (haihtuvia testiaineita varten)
Cell donor chamber
Lähettäjäosasto
Skin membrane (2.54 cm2)
Ihokalvo (2,54 cm2)
Support grid
Tukilevy
Glass diffusion cell
Lasinen diffuusiokammio
Magnetic stirrer bar
Magneettisekoitin
Receptor chamber/ fluid maintained at 32°C ± 1°C in a temperature-controlled water bath
Vastaanotto-osasto/neste lämpötilakontrolloidussa vesihauteessa (vakiolämpötila 32°C ± 1°C)
(AUTO) SAMPLER
(AUTOMAATTINEN) NÄYTTEENOTIN
Programmed to sample specific time-course
Ohjelmoitu ottamaan näytteitä määräajankohdin
(Auto) pipette/syringe sampling into scintillation or HPLC vials
(Automaattinen) näytteenotto pipetillä tai ruiskulla tuikelaskenta- tai HPLC-pulloihin
Volume maintained by replacement of fresh receptor fluid
Tilavuutta ylläpidetään lisäämällä uutta vastaanottonestettä
The area of corneal opacity should be noted
Sarveiskalvosamentuman alue on mainittava.
For a number of measurements in serum and plasma, most notably for glucose, overnight fasting would be preferable.
Monia seerumista ja plasmasta tehtäviä määrityksiä, esimerkiksi glukoosia varten olisi paasto yön yli suositeltava.
The major reason for this preference is that the increased variability which would inevitably result from non-fasting, would tend to mask more subtle effects and make interpretation difficult.
Tärkeimmät syyt tähän ovat se, että ilman paastoa näytteissä olisi luonnollisesti paljon enemmän vaihtelua, mikä saattaisi peittää vähäisempiä vaikutuksia ja vaikeuttaa tulkintaa.
On the other hand, however, overnight fasting may interfere with the general metabolism of the animals and, particularly in feeding studies, may disturb the daily exposure to the test substance.
Toisaalta paastoaminen yli yön saattaa häiritä eläinten yleistä aineenvaihduntaa ja myös päivittäistä altistamista testiaineelle erityisesti ruokintatutkimuksissa.
If overnight fasting is adopted, clinical biochemical determinations should be performed after the conduct of functional observations in week 4 of the study.
Jos eläimen ruokinta siirretään yli yön, kliiniset biokemialliset määritykset tulee tehdä neljännellä tutkimusviikolla suoritettavien toiminnallisten havaintojen jälkeen.
If overnight fasting is adopted, clinical biochemical determinations should be performed after the conduct of functional observations of the study.
Jos eläimet paastoavat yli yön, kliinisen biokemian määritykset olisi tehtävä sen jälkeen, kun on tehty toiminnalliset havainnot.
Now known as serum alanine aminotransferase.
Nykyisin seerumin alaniiniaminotransferaasi.
Now known as serum aspartate aminotransferase.
Nykyisin seerumin aspartaattiaminotransferaasi.
These organs, from 10 animals per sex per group for rodents and all non-rodents, plus thyroid (with parathyroids) for all non-rodents, should be weighed.
Nämä elimet, 10 jyrsijästä ryhmää ja sukupuolta kohden ja kaikista muista eläimistä, sekä muiden eläinten kilpirauhanen (ja lisäkilpirauhanen), on punnittava.
These organs, from 10 animals per sex per groups for rodents, should be weighed.
Nämä kunkin ryhmän 10 naaras- ja 10 urospuolisen jyrsijän elimet tulee punnita.
In this method a reference group is one in which the test substance is administered by another route that ensures complete bioavailability of the dose.
Tässä tarkoitettu vertailuryhmä saa testattavaa ainetta jotakin muuta tietä, joka takaa annoksen täydellisen käyttökelpoisuuden.
Solvent used for measuring absorption.
Absorption määritykseen käytetty liuotin.
† Includes five animals selected for functional testing and detailed clinical observations as part of the neurotoxicity study.
† Tähän ryhmään kuuluu viisi eläintä, jotka on valittu toiminnallisiin kokeisiin ja yksityiskohtaiseen kliiniseen havainnointiin osana neurotoksisuustutkimusta
PART C: METHODS FOR THE DETERMINATION OF ECOTOXICITY
OSA C: EKOMYRKYLLISYYDEN MÄÄRITTÄMISMENETELMÄT
ACUTE TOXICITY FOR FISH
AKUUTTI MYRKYLLISYYS KALALLE
DAPHNIA SP. ACUTE IMMOBILISATION TEST
DAPHNIA SP. AKUUTIN IMMOBILISAATION TESTI
ALGAL INHIBITION TEST
LEVÄN INHIBITIOKOE
DETERMINATION OF ‘READY’ BIODEGRADABILITY
BIOHAJOAVUUDEN MÄÄRITYS
PART I. GENERAL CONSIDERATIONS
OSA I YLEISTÄ
PART II.
DOC DIE-AWAY-KOE (menetelmä C.4-A)
DOC DIE-AWAY TEST (Method C.4-A)
DOC DIE-AWAY-KOE (Menetelmä C.4-A)
PART III.
OSA III.
MODIFIED OECD SCREENING TEST (Method C.4-B)
MUUNNELTU OECD-SEULONTAKOE (Menetelmä C.4-B)
PART IV.
OSA IV.
EVOLUTION TEST (Method C.4-C)
HIILIDIOKSIDIN MUODOSTUMISKOE (menetelmä C.4-C)
PART V. MANOMETRIC RESPIROMETRY TEST (Method C.4-D)
OSA V MANOMETRINEN RESPIROMETRIAKOE (menetelmä C.4-D)
PART VI.
OSA VI.
CLOSED BOTTLE TEST (Method C.4-E)
SULJETUN PULLON MENETELMÄ (Menetelmä C.4-E)
PART VII. M.I.T.I.
OSA VII MITI-KOE (menetelmä C.4-F)
TEST (Method C.4-F)
1 MENETELMÄN PERIAATE
DEGRADATION — BIOCHEMICAL OXYGEN DEMAND
HAJOAMINEN — BIOKEMIALLINEN HAPENKULUTUS
DEGRADATION — CHEMICAL OXYGEN DEMAND
HAJOAMINEN — KEMIALLINEN HAPENKULUTUS
DEGRADATION — ABIOTIC DEGRADATION: HYDROLYSIS AS A FUNCTION OF PH
HAJOAMINEN — ABIOOTTINEN HAJOAMINEN: HYDROLYYSI PH:N FUNKTIONA
TOXICITY FOR EARTHWORMS
MYRKYLLISYYSTUTKIMUS MADOILLA
BIODEGRADATION — ZAHN-WELLENS TEST
BIOLOGINEN HAJOAMINEN — ZAHN-WELLENS-TESTI
BIODEGRADATION — ACTIVATED SLUDGE SIMULATION TESTS
BIOLOGINEN HAJOAMINEN — AKTIIVILIETTEEN SIMULOINTITESTIT
BIODEGRADATION — ACTIVATED SLUDGE RESPIRATION INHIBITION
BIOLOGINEN HAJOAMINEN — AKTIIVILIETTEEN SOLUHENGITYKSEN INHIBITIOTESTI
BIODEGRADATION — MODIFIED SCAS TEST
BIOLOGINEN HAJOAMINEN — MODIFIOITU SCAS-TESTI
BIOCONCENTRATION: FLOW-THROUGH FISH TEST
BIOKERTYVYYS: TESTI KALOILLA LÄPIVIRTAUSOLOSUHTEISSA
FISH JUVENILE GROWTH TEST
KALANPOIKASILLA TEHTÄVÄ KASVUTESTI
FISH, SHORT-TERM TOXICITY TEST ON EMBRYO AND SAC-FRY STAGES
KALAN ALKIO- JA RUSKUAISPUSSIVAIHEEN POIKASILLA TEHTÄVÄ LYHYTAIKAINEN MYRKYLLISYYSTESTI
HONEYBEES — ACUTE ORAL TOXICITY TEST
MEHILÄISET — SUUN KAUTTA TAPAHTUNEEN ALTISTUKSEN JÄLKEEN ILMENEVÄN VÄLITTÖMÄN MYRKYLLISYYDEN TESTI
HONEYBEES — ACUTE CONTACT TOXICITY TEST
MEHILÄISET — KOSKETUSALTISTUKSEN JÄLKEEN ILMENEVÄN VÄLITTÖMÄN MYRKYLLISYYDEN TESTI
ADSORPTION/DESORPTION USING A BATCH EQUILIBRIUM METHOD
ADSORPTIO/DESORPTIO ERÄTASAPAINOMENETELMÄÄ KÄYTTÄEN
ESTIMATION OF THE ADSORPTION COEFFICIENT (KOC) ON SOIL AND ON SEWAGE SLUDGE USING HIGH PERFORMANCE LIQUID CHROMATOGRAPHY (HPLC)
MAA-AINEKSIIN JA VIEMÄRILIETTEESEEN SOVELLETTAVAN ADSORPTIOKERTOIMEN (Koc) MÄÄRITYS KORKEAN SUORITUSKYVYN NESTEKROMATOGRAFIALLA (HPLC)
DAPHNIA MAGNA REPRODUCTION TEST
LISÄÄNTYMISTESTI VESIKIRPULLA (DAPHNIA MAGNA)
SOIL MICROORGANISMS: NITROGEN TRANSFORMATION TEST
MAAPERÄN MIKROBIT: TYPEN MUUNTUMISTESTI
SOIL MICROORGANISMS: CARBON TRANSFORMATION TEST
MAAPERÄN MIKROBIT: HIILEN MUUNTUMISTESTI
AEROBIC AND ANAEROBIC TRANSFORMATION IN SOIL
KEMIKAALIEN AEROBINEN JA ANAEROBINEN HAJOAMINEN MAAPERÄSSÄ
AEROBIC AND ANAEROBIC TRANSFORMATION IN AQUATIC SEDIMENT SYSTEMS
AEROBINEN JA ANAEROBINEN HAJOAMINEN VESIYMPÄRISTÖN SEDIMENTTIJÄRJESTELMISSÄ
The purpose of this test is to determine the acute lethal toxicity of a substance to fish in fresh water.
Tällä menetelmällä voidaan määrittää aineen akuutti tappava myrkyllisyys kalalle makeassa vedessä.
It is desirable to have, as far as possible, information on the water solubility, vapour pressure, chemical stability, dissociation constants and biodegradability of the substance to help in the selection of the most appropriate test method (static, semi-static or flow-through) for ensuring satisfactorily constant concentrations of the test substance over the period of the test.
Sopivimman testimenetelmän (staattinen, puolistaattinen tai läpivirtaus) löytämiseksi on suositeltavaa hankkia mahdollisuuksien mukaan tietoa aineen vesiliukoisuudesta, höyrynpaineesta, kemiallisesta stabiiliudesta, dissosiaatiovakiosta ja biohajoavuudesta. Näin voidaan varmistaa, että aineen pitoisuus pysyy lähes vakiona koejakson aikana.
Additional information (for instance structural formula, degree of purity, nature and percentage of significant impurities, presence and amounts of additives, and n-octanol/water partition coefficient) should be taken into consideration in both the planning of the test and interpretation of the results.
Kokeen suunnittelussa ja tulosten tulkinnassa on otettava huomioon mahdolliset lisätiedot (esimerkiksi aineen rakennekaava, puhtausaste, merkittävien epäpuhtauksien laatu ja pitoisuus, lisäaineiden läsnäolo ja määrä sekä n-oktanoli/vesi-jakautumiskerroin).
Acute toxicity is the discernible adverse effect induced in an organism within a short time (days) of exposure to a substance.
Akuutti myrkyllisyys on selvästi havaittava haitta, joka aiheutuu eliölle lyhyen ajan kuluessa aineelle altistumisen jälkeen. Kuvattavassa kokeessa akuutti myrkyllisyys ilmaistaan tappavan pitoisuuden mediaanina (LC50).