natgillin/translations-raw huggingface dataset:
AFNOR- Determination of the acute toxicity of a substance to Salmo gairdneri — Static and Flow — Through methods — NFT 90-305 June 1985.
AFNOR — Determination of the acute toxity of a substance to Salmo gairdneri — Static and Flow Through methods — NFT 90-305 June 1985.
ISO 7346/1,/2 and/3 — Water Quality — Determination of the acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish (Brachydanio rerio Hamilton-Buchanan-Teleostei, Cyprinidae).
ISO 7346/1,11 and /3 — Water Quality — Determination of the acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish (Brachydanio rerio Hamilton-Buchanan — Teleostei, Cyprinidae).
Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien fur Probenahme und Normung von Wasseruntersuchungsmethoden -Part II 1974.
Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien für Probenahme und Normung von Wasseruntersuchungsmethoden — Part II 1974.
NEN 6506- Water -Bepaling van de akute toxiciteit met behulp van Poecilia reticulata, 1980.
NEN 6506 — Water — Bepaling van de akute toxiciteit met behulp van Poecilia reticulata, 1980.
Standard methods for the examination of water and wastewater, fourteen edition, APHA-AWWA-WPCF,1975.
Standard methods for the examination of water and wastewater, 14th edition, APHA-AWWA-WPCK, 1975.
Commission of the European Communities, Inter-laboratory test programme concerning the study of the ecotoxicityof a chemical substance with respect to the fish.
Commission of the European Communities, Inter-Laboratory test programme concerning the study of the ecotoxicity of a chemical substance with respect to the fish.
Rudolph, P. und Boje, R. Okotoxikologie, Grundlagen fur die okotoxikologische Bewertung von Umweltchemikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.
Rudolph, P. und Boje, R. Ökotoxikologie, Grundlagen für die Ökotoxikologische Bewertung von Umweltchemikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.
Litchfield, J. T.and Wilcoxon, F., A simplified method for evaluating dose effects experiments, J. Pharm, tExp.
Litchfield, J. T. and Wilcoxon, F., A simplified method for evaluating dose effects experiments, J. Pharm. and Exp.
Therap., 1949, vol. 96,99.
Therap., 1949, vol 96, 99.
Sprague, J.B. Measurement of pollutant toxicity to fish.
Sprague, J. B. Measurement of pollutant toxicity to fish.
Water Res., 1969, vol. 3,793-821.
Water Res., 1969, vol. 3, 793–821.
Water Res. 1970, vol. 4, 3-32.
Water Res., 1970, vol. 4, 3–32.
American Society for Testing and Materials, ASTM STP 634,1977, 65-84.
ASTM STP 634, 1977, 65–84.
Stephan, C.E., Busch, K.A., Smith, R., Burke, J. and Andrews, R.W.
Stephan, C. E., Busch, K. A., Smith, R., Burke, J. and Andrews, R. W.
Reconstituted water
Sekoitevesi
Example of a suitable dilution water
Esimerkki sopivasta laimennusvedestä
All chemicals must be of analytical grade.
Kaikkien kemikaalien on oltava analyyttistä laatua.
The water should be good-quality distilled water, or deionised water with a conductivity of less than 5 μScm-1.
Veden on oltava hyvänlaatuista tislattua tai ionisoimatonta vettä, jonka johtavuus on alle 5 μS/cm-1.
Apparatus for distillation of water must not contain any parts made of copper.
Veden tislauslaite ei saa sisältää kuparista valmistettuja osia.
Stock solutions
Kantaliuokset
Dissolve in, and make up to 1 litre with water.
Liuotetaan veteen ja laimennetaan litran tilavuuteen
Dissolve in, and make up to 1litre with water.
Liuotetaan veteen ja laimennetaan litran tilavuuteen
(sodium hydrogen carbonate):
(natriumvetykarbonaatti):
KCI (potassium chloride):
KO (kaliumkloridi):
Dissolve in, and make up to 11itre with water.
Liuotetaan veteen ja laimennetaan litran tilavuuteen
Reconstituted dilution water
Sekoitettu laimennusvesi
Mix 25 ml of each of the four stock solutions and make up to 1 litre with water.
25 ml kutakin kantaseosta sekoitetaan ja liuos laimennetaan litran tilavuuteen.
Aerate until the dissolved oxygen concentration equals the air-saturation value.
Liuosta ilmastetaan, kunnes liuenneen hapen pitoisuus saavuttaa ilmakyllästymisarvon.
The pH should be 7,8 ± 0,2.
pH-arvon on oltava 7,8±0,2.
If necessary adjust the pH with NaOH (sodium hydroxide) or HCI (hydrochloric acid).
pH:ta säädetään tarvittaessa NaOH:lla (natriumhydroksidilla) tai HCl:llä (suolahapolla).
The dilution water so prepared is set aside for about 12 hours and must not be further aerated.
Näin valmistettu sekoitevesi pannaan syrjään noin 12 tunniksi, eikä sitä tarvitse enää ilmastaa.
The sum of the Ca and Mg ions in this solution is 2,5 mmol per litre.
Liuoksen Ca- ja Mg-ionien yhteenlaskettu pitoisuus on 2,5 millimoolia/1.
The ratio of Ca:Mg ions is 4:1 and of Na:K ions is 10:1.
Ca- ja Mg-ionien suhde on 4:1 ja Na- ja K-ionien suhde 10:1.
The total alkalinity of this solution is 0,8 mmol per litre.
Liuoksen kokonaisalkalisuus on 0,8 millimoolia/1.
Any deviation in the preparation of the dilution water must not change the composition or properties of the water.
Mahdolliset poikkeavuudet laimennusveden valmistuksessa eivät saa vaikuttaa veden koostumukseen tai sen ominaisuuksiin.
Fish species recommended for testing
Kalalajit, joita suositellaan käytettäväksi testissä
Recommended species
Suositeltu laji
Recommended range of test temperature (oC)
Suositeltu lämpötilaväli ( oC)
Recommended total length of test animal (cm)
Suositeltu koe-eläimen kokonaispituus (cm)
Brachydanio rerio (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan) Zebrab-fish
3,0 ± 0,5 Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque) Fathead minnow
Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque) Fathead minnow
Pimepbales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque) paksupäämutu
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Common carp
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linnaeus 1758) karppi
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) Cyprinodontidae (Tomminck and Schlege 1850) Red killifish
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) Cyprinodontidae (Tomminck et Schlegel 1850) Red killifish
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters 1859) Guppy
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters 1859) miljoonakala
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque Linneaus 1758) Bluegill
Lepomis macrochirus(Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque Linnaeus 1758) Bluegill
Onchorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum 1988) Rainbow trout
Onchorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum 1988) kirjolohi
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Golden Orfe
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae) (Linnaeus 1758) säyne
The fish listed above are easy to rear and/or are widely available throughout the year.
Edellä luetellut kalalajit ovat helposti viljeltävissä tai yleisesti saatavissa läpi koko vuoden.
They are capable of being bred and cultivated either in fish farms or in the laboratory, under disease — and parasite — controlled conditions, so that the test animal will be healthy and of known parentage.
Niitä voidaan viljellä kalanviljelylaitoksissa tai laboratorioissa, edellyttäen, että sairauden ja loisten esiintymistä valvotaan. Näin saadaan terveitä koe-eläimiä, joiden tausta on tiedossa.
These fish are available in many parts of the world.
Näitä kaloja on saatavissa monissa osissa maailmaa.
Example of concentration: percentage mortality
Pitoisuusesimerkki: prosentuaalinen kuolleisuus
Example of determination of LC50 using log-probit paper
Esimerkki LC50-määrityksestä logaritmitodennäköisyyspaperin avulla
Mortality in % (probit scale)
Kuolleisuus prosentteina (todennäköisyysasteikko) LC50
Concentrations (log scale)
Pitoisuudet (logaritminen asteikko)
This acute immobilisation testing method is equivalent to the OECD TG 202 (2004).
Tämä testimenetelmä vastaa OECD:n testiohjetta TG 2002 (2004).
This method describes an acute toxicity test to assess effects of chemicals towards daphnids.
Tällä menetelmällä testataan akuuttia myrkyllisyyttä arvioimalla kemikaalien vaikutuksia vesikirppuihin (Daphnia).
Existing test methods were used to the extent possible (1)(2)(3).
Jo olemassa olevia testimenetelmiä käytetään hyväksi mahdollisuuksien mukaan (1) (2) (3).
In the context of this method, the following definitions are used:
Tässä testimenetelmässä käytetään seuraavia määritelmiä:
is the concentration estimated to immobilise 50 % of the daphnids within a stated exposure period.
EC50: pitoisuus, jossa 50 % vesikirpuista arvioidaan immobilisoituvan määrätyn altistusajan kuluessa.
If another definition is used, this must be reported, together with its reference.
Jos käytetään muuta määritelmää, se on ilmoitettava viittauksineen.
Immobilisation: those animals that are not able to swim within 15 seconds, after gentle agitation of the test vessel are considered to be immobilised (even if they can still move their antennae).
Immobilisaatio: Eläimet, jotka eivät kykene uimaan 15 sekunnin kuluessa sen jälkeen, kun testiastiaa on heilutettu varovasti, katsotaan immobilisoituneiksi (vaikka ne voisivat edelleen liikuttaa tuntosarviaan).
Young daphnids, aged less than 24 hours at the start of the test, are exposed to the test substance at a range of concentrations for a period of 48 hours.
Nuoria vesikirppuja (testin alussa alle 24 tunnin ikäisiä) altistetaan testiaineelle sopivaksi arvioidulla pitoisuusalueella 48 tunnin ajan.
Immobilisation is recorded at 24 hours and 48 hours and compared with control values.
Immobilisaatio kirjataan 24 ja 48 tunnin kuluttua ja sitä verrataan kontrolliarvoihin.
The results are analysed in order to calculate the EC50 at 48h (see Section 1.2 for definitions).
Tulokset analysoidaan EC50:n laskemiseksi 48 tunnin kohdalla (katso määritelmät kohdassa 1.2).
Determination of the EC50 at 24h is optional.
EC50:n määrittely 24 tunnin kohdalla on vapaaehtoista.
INFORMATION ON THE TEST SUBSTANCE
TESTIAINETTA KOSKEVAT TIEDOT
The water solubility and the vapour pressure of the test substance should be known and a reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency, and limit of determination should be available.
Testiaineen vesiliukoisuus ja höyrynpaine on oltava tiedossa, ja aineen kvantifioimiseksi testiliuoksissa on oltava käytettävissä luotettava analyysimenetelmä, jonka saantoteho on raportoitu, ja määritysraja pitäisi olla saatavissa.
Useful information includes the structural formula, purity of the substance, stability in water or light, Pow and results of a test for ready biodegradability (see method C.4).
Tarpeellisia tietoja ovat mm. rakennekaava, aineen puhtaus, stabiilisuus vedessä tai valossa, Pow ja helpon biohajoavuuden testin (ks. testimenetelmä C.4) tulokset.
Note: guidance for testing substances with physical chemical properties that made them difficult to test is provided in (4).
Huom.: Ohjeita sellaista tapausta varten, kun fysikokemialliset ominaisuudet tekevät testiaineista vaikeasti testattavia: kirjallisuusviite (4).
A reference substance may be tested for EC50 as a means of assuring that the test conditions are reliable.
Testiolosuhteiden luotettavuuden varmistamiseksi EC50 voidaan testata vertailuaineella.
Toxicants used in international ring-tests (1)(5) are recommended for this purpose.
Tätä tarkoitusta varten suositellaan kansainvälisissä yhteistutkimuksissa (ring test) käytettyjä myrkyllisiä kemikaaleja (1) (5).
For a test to be valid, the following performance criteria apply:
Jotta testi olisi validi, seuraavien vaatimusten on täytyttävä:
in the controls, including the control containing the solubilising agent, not more that 10 % of the daphnids should have been immobilised;
Kontrolleissa (mukaan lukien liuotusapuaineen sisältävä kontrolli) enintään 10 % vesikirpuista saa immobilisoitua.
the dissolved oxygen concentration at the end of the test should be ≥ 3 mg/l in control and test vessels.
Liuenneen hapen pitoisuuden testin lopussa on oltava ≥ 3 mg/l kontrolli- ja koeastioissa.
Note: For the first criterion, not more than 10 % of the control daphnids should show immobilisation or other signs of disease or stress, for example, discoloration, unusual behaviour such as trapping at surface of water.
Huom.: Ensimmäinen vaatimus merkitsee, että enintään 10 prosenttia kontrollivesikirpuista saa immobilisoitua tai osoittaa muita sairauden tai stressin merkkejä, esimerkiksi värimuutoksia tai epätavallista käyttäytymistä (esim. jääminen pysyvästi vedenpinnalle).
Test vessels and other apparatus that will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
Astioiden ja muiden laitteiden, jotka joutuvat kosketuksiin testiliuosten kanssa, on oltava kokonaan lasia tai muuta kemiallisesti inerttiä materiaalia.
Test vessels will normally be glass test tubes or beakers; they should be cleaned before each use using standard laboratory procedures.
Testiastiat ovat tavallisesti lasisia koeputkia tai dekanterilaseja. Ne on puhdistettava ennen jokaista käyttöä laboratorion normaaleilla menettelyillä.
Test vessels should be loosely covered to reduce the loss of water due to evaporation and to avoid the entry of dust into the solutions.
Koeastiat on peitettävä väljästi, jotta vältettäisiin veden menetys haihtumisen kautta ja pölyn pääsy liuoksiin.
Volatile substances should be tested in completely filled closed vessels, large enough to prevent oxygen becoming limiting or too low (see Section 1.6 and first paragraph of Section 1.8.3).
Haihtuvat aineet pitäisi testata täysin suljetuissa astioissa, jotka ovat tarpeeksi suuria, ettei happipitoisuus muodostu rajoittavaksi tekijäksi tai alene liiaksi (ks. kohta 1.6 ja kohdan 1.8.3 ensimmäinen alakohta).
In addition some or all of the following equipment will be used: oxygen-meter (with microelectrode or other suitable equipment for measuring dissolved oxygen in low volumes samples); pH-meter; adequate apparatus for temperature control; equipment for the determination of total organic carbon concentration (TOC); equipment for the determination of chemical oxygen demand (COD); equipment for the determination of hardness, etc.
Lisäksi tarvitaan joitakin tai kaikkia seuraavista laitteista: happimittari (joka on varustettu mikroelektrodilla tai muulla sopivalla laitteella, jolla voidaan mitata liuennut happi pienitilavuuksisissa näytteissä); pH-mittari; asianmukaiset laitteet lämpötilan säätöön; laitteet orgaanisiin yhdisteisiin sitoutuneen hiilen kokonaispitoisuuden (TOC) mittaamiseen; laitteet kemiallisen hapenkulutuksen (COD) mittaamiseen; laitteet veden kovuuden mittaamiseen jne.
Test organism
Testiorganismi
Daphnia magna Straus is the preferred test species although other suitable Daphnia species can be used in this test (e.g. Daphnia pulex).
Testissä suositellaan käytettäväksi Daphnia magna Straus -organismia. Muita sopivia vesikirppulajeja (e.g. Daphnia pulex) saa myös käyttää.
At the start of the test, the animals should be less than 24 hours old and to reduce variability, it is strongly recommended they are not first brood progeny.
Testin alussa eläinten on oltava alle 24 tunnin ikäisiä, ja ominaisuuksien vaihtelun vähentämiseksi suositellaan painokkaasti, että ne eivät ole ensimmäistä sikiösarjaa.
They should be derived from a healthy stock (i.e. showing no signs of stress such as high mortality, presence of males and ephippia, delay in the production of the first brood, discoloured animals, etc.).
Niiden olisi oltava peräisin terveestä varastokannasta (ts. niissä ei saa näkyä merkkejä stressistä, kuten korkeaa kuolleisuutta, koiraita ja lepomunia, viivästymistä ensimmäisten sikiöiden tuottamisessa, värihäiriöisiä eläimiä jne.).
All organisms used for a particular test should have originated from cultures established from the same stock of daphnids.
Kaikkien tietyssä testissä käytettävien organismien on oltava peräisin saman vesikirppukannan viljelystä.
The stock animals must be maintained in culture conditions (light, temperature, medium) similar to those to be used in the test.
Varastokannan eläimiä on pidettävä samanlaisissa viljelyoloissa (valo, lämpötila, viljelyneste) kuin testissä käytettäviä.
If the daphnids culture medium to be used in the test is different from that used for routine daphnids culture, it is good practice to include a pre-test acclimation period.
Jos testissä käytettävä viljelyneste eroaa vesikirpun viljelyssä normaalisti käytetystä viljelynesteestä, on hyvä noudattaa käytäntöä, että eläimet totutetaan viljelyoloihin ennen testiä.
For that, brood daphnids should be maintained in dilution water at the test temperature for at least 48 hours prior to the start of the test.
Viljelystä saatuja vesikirppuja on tätä varten pidettävä laimennusvedessä testilämpötilassa vähintään 48 tunnin ajan ennen testin alkua.
Natural water (surface or ground water), reconstituted water or dechlorinated tap water are acceptable as holding and dilution water if daphnids will survive in it for the duration of the culturing, acclimation and testing without showing signs of stress.
Luonnonvesi (pinta- tai pohjavesi), synteettinen vesi tai talousvesi, josta on poistettu kloori, ovat hyväksyttäviä viljely- ja laimennusvesiä, jos vesikirput voivat elää siinä viljelyn, totuttamisen ja testauksen ajan osoittamatta stressaantumisen merkkejä.
Any water which conforms to the chemical characteristics of an acceptable dilution water as listed in Appendix 1 is suitable as a test water.
Mikä tahansa vesi, joka täyttää liitteessä 1 mainitut hyväksyttävän liuoksen kemialliset ominaisuudet, soveltuu käytettäväksi testissä.
It should be of constant quality during the period of the test.
Veden laadun pitäisi pysyä vakiona testin ajan.
Reconstituted water can be made up by adding specific amounts of reagents of recognised analytical grade to deionised or distilled water.
Synteettinen vesi voidaan valmistaa lisäämällä tietyt määrät reagensseja (tunnustettu analyyttinen laatu) deionisoituun tai tislattuun veteen.
Examples of reconstituted water are given in (1) (6) and in Appendix 2.
Kirjallisuusviitteissä (1) ja (6) ja liitteessä 2 annetaan esimerkkejä synteettisestä vedestä.
Hardness between 140 and 250 mg/l (as CaCO3) is recommended for Daphnia magna, while lower hardness may be also appropriate for other Daphnia species.
Daphnia Magna -organismia varten suositellaan kovuutta 140–250 mg/l (CaCO3), mutta muita Daphnia-organismeja varten käy myös vähäisempi kovuus.
The dilution water may be aerated prior to use for the test so that the dissolved oxygen concentration has reached saturation.
Laimennusvettä voidaan ilmastaa ennen testin alkua, jotta liuenneen hapen pitoisuus saavuttaa kyllästymispisteen.
If natural water is used, the quality parameters should be measured at least twice a year or whenever it is suspected that these characteristics may have changed significantly (see previous paragraph and Appendix 1).
Jos käytetään luonnonvettä, laatuparametrit on tarkistettava vähintään kahdesti vuodessa tai aina kun on epäilystä siitä, että nämä ominaisuudet ovat voineet muuttua merkittävästi (ks. edellinen kohta ja liite 1).
Measurements of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni) should also be made.
Lisäksi on määritettävä raskasmetallit (esim. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd ja Ni).
If dechlorinated tap water is used, daily chlorine analysis is desirable.
Käytettäessä vettä, josta on poistettu kloori, suositellaan päivittäistä kloorianalyysiä.
If the dilution water is from a surface or ground water source, conductivity and total organic carbon (TOC) or chemical oxygen demand (COD) should be measured.
Jos laimennusvesi on pinta- tai pohjavesilähteestä, johtokyky, orgaanisiin yhdisteisiin sitoutuneen hiilen kokonaispitoisuus (TOC) tai kemiallinen hapenkulutus (COD) on mitattava.
Test solutions
Testiliuokset
Test solutions of the chosen concentrations are usually prepared by dilution of a stock solution.
Halutun pitoiset testiliuokset valmistetaan yleensä laimentamalla varastoliuosta.
Stock solutions should preferably be prepared by dissolving the test substance in the dilution water.
Varastoliuokset olisi mieluiten tehtävä liuottamalla testiaine laimennusveteen.
As far as possible, the use of solvents, emulsifiers or dispersants should be avoided.
Liuottimien, emulgointiaineiden tai dispergointiaineiden käyttöä olisi mahdollisuuksien mukaan vältettävä.
However, such compounds may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Niitä voidaan kuitenkin tarvita joissakin tapauksissa sopivan väkevyisen varastoliuoksen valmistamiseksi.
Guidance for suitable solvents, emulsifiers and dispersants is given in (4).
Kirjallisuusviitteessä (4) on tietoa sopivien liuottimien, emulgointiaineiden tai dispergointiaineiden käytöstä.
In any case, the test substance in the test solutions should not exceed the limit of solubility in the dilution water.
Testiaineen pitoisuus testiliuoksissa ei saa missään tapauksessa ylittää aineen liukoisuusrajaa laimennusvedessä.
The test should be carried out without the adjustment of pH.
Testi on suoritettava säätämättä pH:ta.
HCl and NaOH are preferred.
Suositeltavia aineita ovat HCl ja NaOH.
Conditions of exposure
Altistumisolosuhteet
Test groups and controls
Testi- ja kontrolliryhmät
Test vessels are filled with appropriate volumes of dilution water and solutions of test substance.
Koeastiat täytetään sopivaan tilavuuteen laimennusvedellä ja testiaineen sisältävillä liuoksilla.
Ratio of air/water volume in the vessel should be identical for test and control group.
Ilman ja veden tilavuuden keskinäisen suhteen astiassa pitäisi olla sama sekä testi- että kontrolliryhmässä.
Daphnids are then placed into test vessels.
Vesikirput pannaan astioihin.
At least 20 animals, preferably divided into four groups of five animals each, should be used at each test concentration and for the controls.
Kutakin testipitoisuutta ja kontrolliryhmää varten olisi käytettävä vähintään 20 eläintä, mielellään jaettuina neljään viiden eläimen ryhmään.
At least 2 ml of test solution should be provided for each animal (i.e. a volume of 10 ml for five daphnids per test vessel).
Kutakin eläintä varten olisi varattava vähintään 2 ml testiliuosta (ts. 10 ml testiliuosta viittä vesikirppua ja yhtä koeastiaa kohti).
The test may be carried out using semi-static renewal or flow-through system when the concentration of the test substance is not stable.
Testi suoritetaan siten, että liuos vaihtuu semistaattisissa oloissa tai läpivirtausolosuhteissa, jos testiaineen pitoisuus ei ole stabiili.
One dilution-water control series and also, if relevant, one control series containing the solubilising agent must be run in addition to the treatment series.
Testisarjan lisäksi on suoritettava yksi laimennusvesikontrollisarja ja tarvittaessa myös yksi liuotusapuaineen sisältävä kontrollisarja.
Test concentrations
Testipitoisuudet
A range-finding test may be conducted to determine the range of concentrations for the definitive test unless information on toxicity of the test substance is available.
Varsinaisen testin pitoisuusalueiden määrittämiseksi voidaan tehdä pitoisuusalueen määrittelykoe, jollei testiaineen myrkyllisyydestä ole saatavilla tietoa.
For this purpose, the daphnids are exposed to a series of widely spaced concentrations of the test substance.
Tätä varten vesikirput altistetaan useille testiaineen pitoisuuksille laajoin pitoisuusvälein.
Five daphnids should be exposed to each test concentration for 48 hours or less, and no replicates are necessary.
Viisi vesikirppua on altistettava kullekin pitoisuudella enintään 48 tunnin ajaksi. Rinnakkaiskokeita ei tarvita.
They should be arranged in a geometric series with a separation factor preferably not exceeding 2,2.
Kokeessa pitäisi olla vähintään viisi testipitoisuutta geometrisessa sarjassa, eikä kerroin saisi olla suurempi kuin 2,2.
Justification should be provided if fewer than five concentrations are used.
Jos pitoisuuksien määrä on vähemmän kuin viisi, se on perusteltava.
The highest concentration tested should preferably result in 100 % immobilisation, and the lowest concentration tested should preferably give no observable effect.
Suosituksena on, että suurin testattava pitoisuus johtaa 100 prosentin immobilisaatioon ja että pienin testattava pitoisuus ei aiheuta havaittavaa vaikutusta.