natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The sucrose solutions are then provided ad libitum.
Sitä annetaan sitten ad libitum.
For some compounds, at higher concentrations rejection of test dose may result in little or no food being consumed.
Joitakin aineita mehiläiset eivät ehkä syö, kun aineiden pitoisuus on suuri.
After a maximum of 6 h, unconsumed treated diet should be replaced with the sucrose solution alone.
Enintään 6 tunnin kuluttua nauttimatta jäänyt käsitelty ravinto otetaan pois ja korvataan sakkaroosiliuoksella.
The amount of treated diet consumed should be assessed (e.g. measurement of volume/weight of treated diet remaining).
Nautitun käsitellyn ravinnon määrä on arvioitava (esim. mittaamalla jäljelle jääneen ravinnon tilavuus / paino).
The duration of the test is preferably 48 h after the test solution has been replaced with sucrose solution alone.
Testin kestoksi suositellaan 48 tuntia sen jälkeen kun testiliuos on korvattu sakkaroosiliuoksella.
If mortality continues to rise by more than 10 % after the first 24 h, the test duration should be extended to a maximum of 96 h provided that control mortality does not exceed 10 %.
Jos kuolleisuus nousee edelleen yli 10 prosentilla ensimmäisten 24 tunnin jälkeen, koetta on jatkettava enintään 96 tuntiin saakka edellyttäen, ettei kontrollien kuolleisuus ole suurempi kuin 10 %.
Mortality is recorded at 4 h after starting the test and thereafter at 24 h and 48 h (i.e. after giving dose).
Kuolleisuus kirjataan 4 tunnin kuluttua testin alusta ja sen jälkeen 24 tunnin ja 48 tunnin kuluttua (ts. annoksen antamisesta).
If a prolonged observation period is required, further assessments should be made at 24 h intervals, up to a maximum of 96 h, provided that the control mortality does not exceed 10 %.
Jos on tarpeen jatkaa havainnointia, havainnot on tehtävä 24 tunnin välein enintään 96 tuntiin saakka.
The amount of diet consumed per group should be estimated.
Ryhmää kohti kuluneen ravinnon määrä olisi arvioitava.
Comparison of the rates of consumption of treated and untreated diet within the given 6 h can provide information about palatability of the treated diet.
Vertaamalla käsitellyn ja käsittelemättömän ravinnon nauttimisnopeutta 6 tunnin kuluessa voidaan saada käsitys käsitellyn ravinnon maittavuudesta.
All abnormal behavioural effects observed during the testing period should be recorded.
Kaikki epänormaali käyttäytyminen testin aikana on kirjattava.
In some cases (e.g. when a test substance is expected to be of low toxicity) a limit test may be performed, using 100 μg a.s./bee in order to demonstrate that the LD50 is greater than this value.
Joissakin tapauksissa (esim. kun testiaineen myrkyllisyys oletetaan alhaiseksi) voidaan tehdä raja-arvotesti, jolloin käytetään 100 μg tehoainetta mehiläistä kohti sen osoittamiseksi, että LD50 on kyseistä arvoa suurempi.
The same procedure should be used, including three replicate test groups for the test dose, the relevant controls, the assessment of the amount of treated diet consumed, and the use of the toxic standard.
Raja-annostestissä olisi käytettävä samaa menettelyä kuin varsinaisessa testissä, ts. siinä on oltava kolme rinnakkaistestiryhmää annosta kohti, tarvittavat kontrollit, myrkyllinen standardi, ja nautitun käsitellyn ravinnon määrä on arvioitava.
If mortalities occur, a full study should be conducted.
Jos esiintyy kuolleisuutta, on tehtävä täydellinen tutkimus.
If sublethal effects are observed (see Section 1.6.4), these should be recorded.
Jos havaitaan subletaaleja vaikutuksia (ks. kohta 1.6.4), ne on kirjattava.
Data should be summarised in tabular form, showing for each treatment group, as well as control and toxic standard groups, the number of bees used, mortality at each observation time and number of bees with adverse behaviour.
Määritystulokset on esitettävä taulukoituna, ja esityksestä on käytävä ilmi kussakin testiryhmässä sekä kontrolliryhmässä ja myrkyllistä standardia saaneessa ryhmässä käytettyjen mehiläisten lukumäärä, kuolleisuus kunakin havainnointihetkenä ja niiden mehiläisten lukumäärä, joissa havaitaan haittavaikutuksia.
Analyse the mortality data by appropriate statistical methods (e.g. probit analysis, moving-average, binomial probability) (3)(4).
Kuolleisuustulokset on analysoitava sopivilla tilastomenetelmillä (esim. probittianalyysi, liukuva keskiarvo, binomiaalinen todennäköisyys) (3) (4).
Plot dose-response curves at each recommended observation time and calculate the slopes of the curves and the median lethal doses (LD50) with 95 % confidence limits.
Annos-vastekuvaajat tehdään kutakin suositeltua havainnointiajankohtaa kohti, ja kuvaajien kulmakertoimet ja puolet tappava annos (LD50) lasketaan 95 prosentin luottamusvälillä.
Corrections for control mortality could be made using Abbott's correction (4)(5).
Kontrollikuolleisuudesta johtuvat korjaukset voitaisiin tehdä Abbottin korjauksella (4) (5).
Where treated diet is not completely consumed, the dose of test substance consumed per group should be determined.
Jos käsiteltyä ravintoa ei ole nautittu kokonaan, olisi määritettävä nautitun testiaineen annos ryhmää kohti.
should be expressed in μg of test substance per bee.
LD5() olisi ilmaistava mikrogrammoina testiainetta mehiläistä kohti.
physical nature and relevant physical-chemical properties (e.g. stability in water, vapour pressure),
fysikaalinen olomuoto ja asian kannalta merkitsevät fysikokemialliset ominaisuudet (esim. stabiilisuus vedessä, höyrynpaine),
chemical identification data, including structural formula, purity (i.e. for pesticides, the identity and concentration of active substance(s)).
kemialliset tunnistetiedot, mukaan lukien rakennekaava ja puhtaus (ts. torjunta-aineille tunnistetiedot ja tehoaine(id)en pitoisuus).
scientific name, race, approximate age (in weeks), collection method, date of collection,
tieteellinen nimi, rotu, ikä suunnilleen (viikkoa), keräysmenetelmä, keräyspäivä,
information on colonies used for collection of test bees including health, any adult disease, any pre-treatment, etc.
testimehiläisten keräykseen käytettyjä pesiä koskevat tiedot, mukaan lukien esim. mehiläisten terveydentila, mahdolliset täysikasvuisten taudit, mahdolliset esikäsittelyt.
temperature and relative humidity of experimental room,
koetilojen lämpötila ja suhteellinen kosteus,
housing conditions including type, size and material of cages,
häkkien tyyppi, koko ja materiaali,
methods of preparation of stock and test solutions (the solvent and its concentration must be given, when used),
varasto- ja testiliuosten valmistusmenetelmät (jos on käytetty liuotinta, sen nimi ja pitoisuus on mainittava),
test design, e.g. number and test concentrations used, number of controls; for each test concentration and control, number of replicate cages and number of bees per cage,
testin suunnittelu, esim. testipitoisuudet ja niiden määrä, kontrollien lukumäärä sekä kutakin testipitoisuutta ja kontrollia kohti rinnakkaisten häkkien määrä ja mehiläisten määrä häkkiä kohti,
date of test.
testin päivämäärä.
results of preliminary range-finding study if performed,
mahdolliset raja-annostutkimuksen tulokset,
raw data: mortality at each dose tested at each observation time,
käsittelemättömät tulokset: kuolleisuus kullakin testipitoisuudella ja kullakin havainnointihetkellä,
graph of the dose-response curves at the end of the test,
annos-vastekuvaajat testin lopussa,
values with 95 % confidence limits, at each of the recommended observation times, for test substance and toxic standard;
testiaineen ja myrkyllisen standardin LD50-arvot 95 prosentin luottamusvälein kullakin suositellulla havainnointihetkellä,
statistical procedures used for determining the LD50,
LD50-arvon määrittämiseen käytetyt tilastomenetelmät,
mortality in controls,
kontrollien kuolleisuus,
other biological effects observed or measured e.g. abnormal behaviour of the bees (including rejection of the test dose), rate of consumption of diet in treated and untreated groups,
muut havaitut tai mitatut biologiset vaikutukset ja mehiläisissä mahdollisesti havaitut epänormaalit vasteet,
any deviation from the test procedures described here and any other relevant information.
mahdolliset poikkeamat tässä kuvatuista testimenettelyistä ja kaikki mahdollisesti tärkeät tiedot.
EPPO/Council of Europe (1993) Decision-Making Scheme for the Environmental Risk Assessment of Plant Protection Products — Honeybees.
EPPO/Council of Europe (1993). Decision-Making Scheme for the Environmental Risk Assessment of Plant Protection Products — Honeybees.
EPPO bulletin, vol. 23, N.1, 151-165.
EPPO Bulletin, Vol. 23, N.1, pp. 151-165.
Gough, H. J., McIndoe, E.C., Lewis, G.B., (1994) The use of dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees (Apis mellifera L.)
Gough, H. J., McIndoe, E.C., Lewis, G.B. (1994). The use of dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees (Apis mellifera L.)
Journal of Apicultural Research, 22, p. 119-125.
Journal of Apicultural Research, 22, pp. 119-125.
Ther., 96, p. 99-113.
Ther., 96, pp. 99-113.
Entomol., 18, p. 265-267.
Entomol., 18, pp. 265-267.
This acute toxicity test method is a replicate of the OECD TG 214 (1998).
Tämä välittömän myrkyllisyyden testimenetelmä on toisinto OECD:n testausohjeesta N:o 214 (1998).
This toxicity test is a laboratory method, designed to assess the acute contact toxicity of plant protection products and other chemicals to adult worker honeybees.
Tämä myrkyllisyystesti on laboratoriomenetelmä, jonka tarkoituksena on arvioida kasvinsuojeluaineiden ja muiden kemikaalien välitöntä myrkyllisyyttä täysikasvuisille työmehiläisille kosketusaltistuksen jälkeen.
In the assessment and evaluation of toxic characteristics of substances, determination of acute contact toxicity in honeybees may be required, e.g. when exposure of bees to a given chemical is likely.
Arvioitaessa kemikaalien myrkyllisiä ominaisuuksia voidaan vaatia välittömän myrkyllisyyden määrittämistä mehiläisillä kosketusaltistuksen jälkeen esimerkiksi silloin, kun mehiläisten altistuminen tietylle kemikaalille on todennäköistä.
The acute contact toxicity test is carried out to determine the inherent toxicity of pesticides and other chemicals to bees.
Kosketusaltistuksen jälkeen ilmenevän välittömän myrkyllisyyden testin tarkoituksena on määrittää mehiläisille myrkyllisten torjunta-aineiden ja muiden kemikaalien aineelle ominainen myrkyllisyys.
The results of this test should be used to define the need for further evaluation.
Testituloksien avulla määritellään lisäarvioinnin tarve.
Acute contact toxicity: is the adverse effects occurring within a maximum period of 96 h of a topical application of a single dose of a substance.
Kosketusaltistuksen jälkeen ilmenevä välitön myrkyllisyys: Haittavaikutukset, jotka ilmenevät enintään 96 tunnin kuluttua siitä, kun testiainetta on aplikoitu paikallisesti yksi annos.
Dose: is the amount of test substance applied.
Annos: Aplikoidun testiaineen määrä.
LD50(Median Lethal Dose) contact: is a statistically derived single dose of a substance that can cause death in 50 % of animals when administered by the contact.
LD50(puolet tappava annos) ihon kautta annosteltuna: Tilastollisesti laskettu yksittäinen annos, joka aiheuttaa kuoleman 50 %:ssa eläimistä ihon kautta annosteltuna.
The LD50 value is given in μg of test substance per bee.
ilmaistaan mikrogrammana testiainetta mehiläistä kohti.
Adult worker honeybees (Apis mellifera) are exposed to a range of doses of the test substance dissolved in appropriate carrier, by direct application to the thorax (droplets).
Täysikasvuisia työmehiläisiä (Apis mellifera) altistetaan sopivaan kantaja-aineeseen liuotetun testiaineen annoksille siten, että ainetta aplikoidaan suoraan rintakehälle (tippoina).
The test duration is 48 h. If the mortality rate is increasing between 24 h and 48 h whilst control mortality remains at an accepted level, i.e. < 10 %, it is appropriate to extend the duration of the test to a maximum of 96 h. Mortality is recorded daily and compared with control values.
Testin kesto on 48 h. Jos kuolleisuus kasvaa 24 tunnin ja 48 tunnin välillä kontrollien kuolleisuuden pysyessä hyväksyttävällä tasolla, ts. < 10 %, testiä pitäisi jatkaa enintään 96 tuntiin saakka. Kuolleisuus kirjataan päivittäin, ja sitä verrataan kontrolliarvoihin.
The results are analysed in order to calculate the LD50 at 24 h and 48 h, and in case the study is prolonged at 72 h and 96 h.
Tuloksista lasketaan LD50 24 tunnin ja 48 tunnin kuluttua sekä 72 tunnin ja 96 tunnin kuluttua, jos testiä on jatkettu.
the average mortality for the total numbers of controls must not exceed 10 % at the end of the test,
keskimääräinen kuolleisuus kaikilla kontrolleilla ci ole suurempi kuin 10 % testin lopussa, ja
Young adult worker bees should be used, i.e. bees of the same age, feeding status, race etc. Bees should be obtained from adequately fed, healthy, as far as possible disease-free and queen-right colonies with known history and physiological status.
Testiin pitäisi käyttää nuoria täysikasvuisia työmehiläisiä, ts. sellaisia, jotka ovat saman ikäisiä, samalla tavoin ruokittuja, saman rotuisia jne. Testimehiläisten olisi oltava asianmukaisesti ruokittuja ja hyväkuntoisia, niissä ei saisi olla tauteja ja ne olisi kerättävä emollisista pesistä, joiden fysiologinen tila ja aiempi historia tunnetaan.
Collection in early spring or late autumn should be avoided, as the bees have a changed physiology during the time.
Keräämistä aikaisin keväällä tai myöhään syksyllä olisi vältettävä, koska mehiläisten fysiologia on erilainen näinä aikoina.
If tests have to be conduced in early spring or late autumn, bees can be emerged in an incubator and reared for one week with ‘bee bread’ (pollen collected from the comb) and sucrose solution.
Jos testit on tehtävä aikaisin keväällä tai myöhään syksyllä, mehiläisten voi antaa kuoriutua lämpökaapissa ja niitä voi kasvattaa viikon verran ”mesileivällä” (kakusta kerätyllä siitepölyllä) ja sakkaroosiliuoksella.
Any appropriate material can be used, e.g. stainless steel, wire mesh, plastic, disposable wooden cages, etc. The size of test cages should be appropriate to the number of bees, i.e. providing adequate space.
Kaikkia sopivia materiaaleja voi käyttää, kuten ruostumatonta terästä, metalliverkkoa tai muovia, tai häkit voivat olla kertakäyttöisiä puuhäkkejä. Testihäkkien on oltava kooltaan riittävän tilavia mehiläismäärälle.
Groups of 10 bees per cage are preferred.
Kymmenen mehiläistä häkkiä kohti on sopivin määrä
The bees should be held in the dark in an experimental room at a temperature of 25 ± 2 οC.
Mehiläisiä olisi pidettävä pimeässä koehuoneessa lämpötilassa 25 ± 2 oC.
The collected bees may be anaesthetised with carbon dioxide or nitrogen for application of the test substance.
Mehiläiset voidaan keräyksen jälkeen anestesoida hiilidioksidilla tai typpikaasulla, jotta testiaine voidaan aplikoida.
The amount of anaesthetic used and time of exposure should be minimised.
Anestesia-ainetta on käytettävä mahdollisimman pieni määrä ja mahdollisimman lyhyen aikaa.
The test substance is to be applied as solution in a carrier, i.e. an organic solvent or a water solution with a wetting agent.
Testiaine aplikoidaan kantaja-aineeseen, ts. orgaaniseen liuottimeen tai veteen tehtynä liuoksena, jossa on vettymistä edistävää ainetta.
As organic solvent, acetone is preferred but other organic solvents of low toxicity to bees may be used (e.g. dimethylformamide, dimethylsulfoxide).
Orgaanisista liuottimista suositeltavin on asetoni, mutta muitakin orgaanisia liuottimia, joiden myrkyllisyys mehiläisille on vähäinen, voidaan käyttää (esim. dimetyyliformamidia tai dimetyylisulfoksidia).
For water dispersed formulated products and highly polar organic substances not soluble in organic carrier solvents, solutions may be easier to apply if prepared in a weak solution of a commercial wetting agent (e.g. Agral, Cittowett, Lubrol, Triton, Tween).
Orgaanisiin kantaja-aineisiin liukenemattomien veteen dispergoitujen valmisteiden ja erittäin polaaristen orgaanisten kemikaalien aplikointi voi olla helpompaa, jos niiden liuokset tehdään laimeaan kaupalliseen vettymistä edistävään aineeseen (esim. Agral, Cittowett, Lubrol, Triton, Tween).
Appropriate control solutions should be prepared, i.e. where a solvent or a dispersant is used to solubilise the test substance, two separate control groups should be used, one treated with water, and one treated with the solvent/dispersant.
Testissä olisi käytettävä asianmukaisia kontrolliliuoksia, ts. jos testiaineen liuottamiseen on käytetty liuotinta tai dispergointiainetta, pitäisi käyttää kahta erillistä kontrolliryhmää: sellaista, joka on käsitelty vedellä ja sellaista, joka on käsitelty liuottimella tai dispergointiaineella.
The number of doses and replicates tested should meet the statistical requirements for determination LD50 with 95 % confidence limits.
Testiannosten ja rinnakkaismääritysten määrän on täytettävä tilastolliset vaatimukset LD50:n määrittämiseksi 9 5 %:n luottamusvälein.
Normally five doses in a geometric series, with a factor not exceeding 2,2, and covering the range for LD50, are required for the test.
Tavallisesti vaaditaan viisi annosta, joiden pitoisuudet ovat geometrisessa sarjassa, jonka kerroin on enintään 2,2, ja jotka kattavat LD50:n määrittämiseksi tarvittavan pitoisuusalueen.
However, the number of doses has to be determined in relation to the slope of the toxicity curve (dose versus mortality) and with consideration taken to the statistical method which is chosen for analysis of the results.
Annosteltavien pitoisuuksien lukumäärä on kuitenkin määriteltävä myrkyllisyyskäyrän (kuolleisuus annoksen funktiona) kulmakertoimen mukaan, ja tulosten analysointiin valittu tilastollinen menetelmä on myös otettava huomioon.
A range-finding test enables the choice of the appropriate doses.
Alustavilla testeillä on määriteltävä sopivat annostelupitoisuudet.
If an organic solvent or a wetting agent is used three additional control batches of each 10 bees for the solvent or the wetting agent have to be included.
Jos käytetään orgaanista liuotinta tai vettymistä edistävää ainetta, on testissä oltava myös orgaanista liuotinta tai vettymistä edistävää ainetta varten kolme kontrollierää, joista kussakin on kymmenen mehiläistä.
A toxic standard must be included in the test series.
Testisarjassa on oltava myös myrkyllinen standardi.
The preferred toxic standard is dimethoate, for which the reported contact LD50-24 h is in the range 0,10-0,30 μg a.s./bee (2).
Suositeltava myrkyllinen standardi on dimetoaatti, jonka 24 tunnin LD50-arvo on alueella 0,10-0,30 μg tehoainetta / mehiläinen (2).
Anaesthetised bees are individually treated by topical application.
Anestesoidut mehiläiset käsitellään yksitellen.
The bees are randomly assigned to the different test doses and controls.
Mehiläiset jaetaan satunnaistetusti eri testiannos- ja kontrolliryhmiin.
A volume of 1 μl of solution containing the test substance at the suitable concentration should be applied with a microapplicator to the dorsal side of the thorax of each bee.
Liuosta, joka sisältää 1 mikrolitran testiainetta sopivassa pitoisuudessa, aplikoidaan mikroaplikaattorilla kunkin mehiläisen rintakehän selkäpuolelle.
Other volumes may be used, if justified.
Muita tilavuuksia voi käyttää, jos se on perusteltua.
After application, the bees are allocated to test cages and supplied with sucrose solutions.
Mehiläiset jaetaan aplikaation jälkeen testihäkkeihin ja niille annetaan sakkaroosiliuosta.
The duration of the test is preferably 48 hours.
Testin keston olisi oltava mieluiten 48 tuntia.
If mortality increases by more than 10 % between 24 h and 48 h, the test duration should be extended up to a maximum of 96 h provided that control mortality does not exceed 10 %.
Jos kuolleisuus nousee edelleen yli 10 prosentilla 24 tunnin ja 48 tunnin välillä, testiä on jatkettava, kuitenkin enintään 96 tuntiin saakka, edellyttäen, ettei kontrollien kuolleisuus ole suurempi kuin 10 %.
Mortality is recorded at 4 h after dosing and thereafter at 24 h and 48 h. If a prolonged observation period is required, further assessments should be made, at 24 h intervals, to a maximum of 96 h, provided that the control mortality does not exceeding 10 %.
Kuolleisuus kirjataan 4 tunnin kuluttua annostelusta ja 24 tunnin sekä 48 tunnin kuluttua. Jos on tarpeen jatkaa havainnointia, havaintoja on tehtävä 24 tunnin väliajoin enintään 96 tuntiin saakka, mikäli kontrollikuolleisuus ei ylitä 10:tä prosenttia.
In some cases (e.g. when a test substance is expected to be of low toxicity) limit test may be performed, using 100 μg a.s./bee in order to demonstrate that the LD50 is greater than this value.
Joissakin tapauksissa (esim. kun testiaineen myrkyllisyys oletetaan alhaiseksi) voidaan tehdä raja-arvotesti, jolloin käytetään 100 μg tehoainetta mehiläistä kohti sen osoittamiseksi, että LD50 on kyseistä arvoa suurempi.
The same procedure should be used, including three replicate test groups for the test dose, the relevant controls, and the use of the toxic standard.
Raja-annostestissä olisi käytettävä samaa menettelyä kuin varsinaisessa testissä, ts. siinä on oltava kolme rinnakkaistestiryhmää annosta kohti, tarvittavat kontrollit ja myrkyllinen standardi.
If sublethal effects are observed (see Section 1.6.4) these should be recorded.
Jos havaitaan subletaaleja vaikutuksia (ks. kohta 1.6.4), ne on kirjattava.
Data should be summarised in tabular form, showing for each treatment group, as well as, control and toxic standard groups, the number of bees used, mortality at each observation time and number of bees with adverse behaviour.
Määritystulokset on esitettävä taulukoituna, ja esityksestä on käytävä ilmi kussakin testiryhmässä sekä kontrolliryhmässä ja myrkyllistä standardia saaneessa ryhmässä käytettyjen mehiläisten lukumäärä, kuolleisuus kunakin havainnointihetkenä ja niiden mehiläisten lukumäärä, joissa havaitaan haittavaikutuksia.
Plot dose-response curves at each recommended observation time (i.e. 24 h, 48 h and, if relevant, 72 h, 96 h) and calculate the slopes of the curves and the median lethal doses (LD50) with 95 % confidence limits.
Annos-vastekuvaajat tehdään kutakin suositeltua havainnointiajankohtaa (ts. 24, 48 ja tarvittaessa 72 ja 96 tuntia) kohti, ja kuvaajien kulmakertoimet ja puolet tappava annos (LD50) lasketaan 95 prosentin luottamusvälillä.
physical nature and physical-chemical properties (e.g. stability in water, vapour pressure),
fysikaalinen olomuoto ja fysikokemialliset ominaisuudet (esim. stabiilisuus vedessä, höyrynpaine),
methods of administration of test substance, e.g. carrier solvent used, volume of test solution applied anaesthetics used,
testiaineen antotapa, esim. käytetty kantaja-aine, aplikoidun testiliuoksen tilavuus, käytetty anestesia-aine,
test design, e.g. number and test doses used, number of controls; for each test dose and control, number of replicate cages and number of bees per cage,
testin suunnittelu, esim. testiannokset ja niiden lukumäärä, kontrollien lukumäärä sekä kutakin testiannosta ja kontrollia kohti rinnakkaisten häkkien määrä ja mehiläisten määrä häkkiä kohti,
raw data: mortality at each concentration tested at each observation time,
käsittelemättömät tulokset: kuolleisuus kullakin testipitoisuudella ja kullakin havainnointihetkellä,
values, with 95 % confidence limits, at each of the recommended observation times, for test substance and toxic standard,
testiaineen ja kontrollin LD50-arvot 95 % prosentin luottamusvälein kullakin havainnointihetkellä,
other biological effects observed or measured and any abnormal responses of the bees,
muut havaitut tai mitatut biologiset vaikutukset ja mehiläisten mahdolliset epänormaalit vasteet,
any deviation from the test method procedures described here and any other relevant information.
mahdolliset poikkeamat tässä kuvatuista testimenettelyistä ja kaikki mahdollisesti tärkeät tiedot.
EPPO bulletin, vol. 23, N.1, p. 151-165.
EPPO bulletin, Vol. 23, N.1, pp. 151-165.