natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Aliquots are extracted and filtered through a 0,2 μm pore size, polycarbonate filter and prepared for examination using scanning electron microscope (SEM) techniques.
Näytteestä otetaan osanäytteet, jotka suodatetaan polykarbonaattisuodattimen läpi (huokoskoko 0,2 μm) ja preparoidaan pyyhkäisyelektronimikroskoopilla tehtävää tutkimusta varten.
The fibre diameters are measured at a screen magnification of × 10000 or greater [1] using a line intercept method to give an unbiased estimate of the median diameter.
Kuitujen halkaisijat mitataan vähintään suurennuksella 10000 x [1] käyttäen viivan leikkauspistettä käyttävää menetelmää, jotta keskihalkaisija voidaan estimoida harhattomasti.
Safety/precautions
Turvallisuus ja varotoimet
Personal exposure to airborne fibres should be minimised and a fume cupboard or glove box should be used for handling the dry fibres.
Fyysinen altistus ilmassa leijuville kuiduille on minimoitava ja kuivien kuitujen käsittelyssä on käytettävä veto- tai hansikaskaappia.
Periodic personal exposure monitoring should be carried out to determine the effectiveness of the control methods.
Fyysistä altistusta on seurattava määrävälein, jotta voidaan määrittää turvamenetelmien tehokkuus.
When handling MMMF’s disposable gloves should be worn to reduce skin irritation and to prevent cross-contamination.
Keinotekoisia mieneraalikuituja käsiteltäessä on käytettävä kertakäyttöhansikkaita ihoärsytyksen ehkäisemiseksi ja ristikontaminaation estämiseksi.
Apparatus/equipment
Laitteet
Press and dyes (capable of producing 10 MPa).
Puristin ja puristusmuotit (paine 10 MPa)
0,2 μm pore size polycarbonate capillary pore filters (25 mm diameter).
polykarbonaattisuodattimet, joiden halkaisija on 25 mm ja joissa on kapillaarihuokoset (huokoskoko 0,2 μm)
5 μm pore size cellulose ester membrane filter for use as a backing filter.
selluloosaesterisuodatin (huokoskoko 5 μm) varasuodattimena
Glass filtration apparatus (or disposable filtration systems) to take 25 mm diameter filters (e.g. Millipore glass microanalysis kit, type No XX10 025 00).
lasinen suodatuslaite (tai kertakäyttösuodatinjärjestelmä), joka soveltuu halkaisijaltaan 25 mm:n kokosille suodattimille (esim. Milliporen lasinen mikroanalyysijärjestelmä, tyyppi XX10 025 00)
Freshly distilled water that has been filtered through a 0,2 μm pore size filter to remove micro-organisms.
vastatislattu vesi, joka on suodatettu (huokoskoko 0,2 μm) mikro-organismien poistamiseksi
Sputter coater with a gold or gold/palladium target.
päällystyslaite (kulta tai kulta/palladium)
Scanning electron microscope capable of resolving down to 10 nm and operating at × 10000 magnification.
pyyhkäisyelektronimikroskooppi, jonka erotuskyky 10 nm ja suurennus 10000 x
Miscellaneous: spatulas, type 24 scalpel blade, tweezers, SEM tubes, carbon glue or carbon adhesive tape, silver dag.
spaattelit, skalpelli (tyyppi 24), pinsetit, pyyhkäisyelektronimikroskoopin putket, hiililiima tai -teippi, kolloidinen hopea
Ultrasonic probe or bench top ultrasonic bath.
ultraäänisondi tai ultraäänihaude
Core sampler or cork borer, for taking core samples from MMMF blanket.
kairauslaite tai korkkipora kairausnäytteiden ottamiseksi kuituhuovasta.
Test Procedure
Testimenettely
For blankets and bats a 25 mm core sampler or cork borer is used to take samples of the cross-section.
Kuituhuovasta tai -levystä otetaan näytteet 25 mm:n kairalla tai korkkiporalla.
These should be equally spaced across the width of a small length of the blanket or taken from random areas if long lengths of the blanket are available.
Näytteet pitäisi ottaa tasaisin välimatkoin, jos huopa on lyhyt, tai sattumanvaraisesti valituilta alueilta, jos huopa on pitkä.
The same equipment can be used to extract random samples from loose fibre.
Samoja välineitä voidaan käyttää sattumanvaraisten näytteiden ottamiseksi irrallisesta kuidusta.
Six samples should be taken when possible, to reflect spatial variations in the bulk material.
Näytteitä on mahdollisuuksien mukaan otettava kuusi siten, että otetaan huomioon bulkkimateriaalin spatiaalinen vaihtelu.
The six core samples should be crushed in a 50 mm diameter dye at 10 MPa.
Kaikki kuusi kairausnäytettä murskataan halkaisijaltaan 50:mm kokoisessa puristusmuotissa paineella 10 Mpa.
Sample Preparation
Näytteiden preparointi
If necessary, organic binder can be removed by placing the fibre inside a furnace at 450 °C for about one hour.
Orgaaninen sideaine voidaan tarvittaessa poistaa panemalla kuitu uuniin (lämpötila 450 °C) noin tunniksi.
Cone and quarter to subdivide the sample (this should be done inside a dust cupboard).
Näytteestä muodostetaan kartio, joka ositetaan neljään osaan (tämä olisi tehtävä vetokaapin sisällä).
Using a spatula, add a small amount (< 0,5 g) of sample to 100 ml of freshly distilled water that has been filtered through a 0,2 μm membrane filter (alternative sources of ultra pure water may be used if they are shown to be satisfactory).
Pieni määrä < 0,5 g) näytettä lisätään spaattelilla 100 ml:aan vastatislattua vettä, joka on suodatettu kalvosuodattimen läpi (huokoskoko 0,2 μm) (myös muulla tavalla valmistettua ultrapuhdasta vettä voidaan käyttää, jos sen voidaan osoittaa olevan tarkoitukseen sopivaa).
Disperse thoroughly by the use of an ultrasonic probe operated at 100 W power and tuned so that cavitation occurs.
Näyte dispergoidaan kokonaan ultraäänisondilla, jota käytetään 100 W:n teholla ja sellaisella säädöllä, että syntyy kavitaatiota.
(If a probe is not available use the following method: repeatedly shake and invert for 30 seconds; ultrasonic in a bench top ultrasonic bath for five minutes; then repeatedly shake and invert for a further 30 seconds.)
(Jos sondia ei ole käytettävissä, käytetään seuraavaa menetelmää: ravistellaan ja käännellään ylösalaisin 30 sekunnin ajan, pannaan viideksi minuutiksi ultraäänihauteeseen ja ravistellaan ja käännellään ylösalaisin uudelleen 30 sekunnin ajan.)
Immediately after dispersion of the fibre, remove a number of aliquots (e.g. three aliquots of 3, 6 and 10 ml) using a wide-mouthed pipette (2-5 ml capacity).
Välittömästi näytteen dispergoinnin jälkeen siitä otetaan osanäytteet (esim. kolme näytettä, 3, 6 ja 10 ml) käyttämällä leveäsuista pipettiä (kapasiteetti 2–5 ml).
Vacuum filter each aliquot through a 0,2 μm polycarbonate filter supported by a 5 µm pore MEC backing filter, using a 25 mm glass filter funnel with a cylindrical reservoir.
Kukin osanäyte suodatetaan polykarbonaattivakuumisuodattimella (huokoskoko 0,2 μm), jonka yhteydessä on MEC-varmistussuodatin (huokoskoko 5 µm), käyttämällä 25 mm:n lasista suodatinsuppiloa, jossa on sylinterimäinen säiliö.
Approximately 5 ml of filtered distilled water should be placed into the funnel and the aliquot slowly pipetted into the water holding the pipette tip below the meniscus.
Suppiloon pannaan noin 5 ml suodatettua tislattua vettä, ja osanäyte pipetoidaan hitaasti veteen pitäen pipetin päätä meniskuksen alla.
The pipette and the reservoir must be flushed thoroughly after pipetting, as thin fibres have a tendency to be located more on the surface.
Pipetti ja säiliö huuhdellaan perusteellisesti pipetoinnin jälkeen, koska ohuet kuidut jäävät usein pintoihin.
Carefully remove the filter and separate it from the backing filter before placing it in a container to dry.
Suodatin poistetaan varovasti ja erotetaan varmistussuodattimesta ennen sen asettamista kuivumaan.
Cut a quarter or half filter section of the filtered deposit with a type 24 scalpel blade using a rocking action.
Suodatinkalvolla olevasta saostumasta leikataan neljäsosa tai puolet skalpellilla (tyyppi 24) käyttämällä edestakaista liikettä.
Carefully attach the cut section to a SEM stub using a sticky carbon tab or carbon glue.
Leike kiinnitetään varovasti pyyhkäisyelektronimikroskoopin näytealustalle hiiliteipillä tai -liimalla.
Silver dag should be applied in at least three positions to improve the electrical contact at the edges of the filter and the stub.
Kolloidihopeaa aplikoidaan vähintään kolmeen paikkaan, jotta sähkökontakti olisi parempi suodattimen ja näytealustan reunoilla.
When the glue/silver dag is dry, sputter coat approximately 50 nm of gold or gold/palladium onto the surface of the deposit.
Kun liima tai kolloidinen hopea on kuivunut, kerroksen pinta päällystetään kullalla tai kulta-palladiumseoksella (paksuus noin 50 nm).
SEM calibration and operation
Pyyhkäisyelektronimikroskoopin kalibrointi ja käyttö
The SEM calibration should be checked at least once a week (ideally once a day) using a certified calibration grid.
Pyyhkäisyelektronimikroskoopin kalibrointi on tarkistettava vähintään kerran viikossa (mieluiten kerran päivässä) käyttämällä sertifioitua kalibraattoria.
The calibration should be checked against a certified standard and if the measured value (SEM) is not within ±2 % of the certified value, then the SEM calibration must be adjusted and re-checked.
Kalibrointi on tarkistettava sertifioituihin standardiarvoihin nähden, ja jos mitattu arvo ei ole ±2 % sertifioidusta arvosta, kalibrointia on säädettävä ja se on tarkistettava uudelleen.
The SEM should be capable of resolving at least a minimum visible diameter of 0,2 µm, using a real sample matrix, at a magnification of × 2000.
Pyyhkäisyelekronimikroskoopin erotuskyvyn on oltava vähintään sellainen, että sillä pystytään erottamaan 0,2 µm:n halkaisija (aito näytematriisi), kun suurennus on 2000 x.
The SEM should be operated at 10000 magnification [2] using conditions that give good resolution with an acceptable image at slow scan rates of, for example, 5 seconds per frame.
Pyyhkäisyelektronimikroskooppia pitäisi käyttää suurennuksella 10000 x olosuhteissa [2], jotka mahdollistavat hyvän erotuskyvyn hitailla pyyhkäisynopeuksilla (esim. 5 sekuntia/pyyhkäisy).
Although the operational requirements of different SEMs may vary, generally to obtain the best visibility and resolution, with relatively low atomic weight materials, accelerating voltages of 5-10 keV should be used with a small spot size setting and short working distance.
Vaikka eri pyyhkäiselektronimikroskooppien käyttövaatimukset voivat vaihdella, parhaan näkyvyyden ja erotuskyvyn aikaansaamiseksi atomipainoltaan suhteellisen kevyillä materiaaleilla olisi käytettävä kiihdytysjännitettä 5–10 keV sekä pientä pyyhkäisypisteen kokoa ja lyhyttä työskentelyetäisyyttä.
As a linear traverse is being conducted, then a 0° tilt should be used to minimise re-focussing or, if the SEM has a eucentric stage, the eucentric working distance should be used.
Suoritettaessa lineaarista pyyhkäisyä pitäisi käyttää 0o:n kallistuskulmaa uudelleenfokusoinnin minimoimiseksi, tai jos pyyhkäisyelektronimikroskoopissa on eusentrinen objektipöytä, tulisi käyttää eusentristä työskentelyetäisyyttä.
Lower magnification may be used if the material does not contain small (diameter) fibres and the fibre diameters are large (> 5 μm).
Pienempää suurennusta voidaan käyttää, jos materiaali sisältää ainostaan suuria kuituja (halkaisija > 5 μm).
Sizing
Koon määritys
Low magnification examination to assess the sample
Tutkimus pienillä suurennuksilla näytteen arvioimiseksi
Initially the sample should be examined at low magnification to look for evidence of clumping of large fibres and to assess the fibre density.
Näyte arvioidaan aluksi pienillä suurennuksilla. Tällöin tarkistetaan, onko näytteessä suurien kuitujen rykelmiä, ja arvioidaan kuitujen tiheys.
In the event of excessive clumping it is recommended that a new sample is prepared.
Jos kuidut esiintyvät paljon rykelminä, suositellaan uuden näytteen ottamista.
For statistical accuracy it is necessary to measure a minimum number of fibres and high fibre density may seem desirable as examining empty fields is time consuming and does not contribute to the analysis.
Tilastotulosten luotettavuuden takaamiseksi on mitattava riittävästi kuituja. Suuri kuitujen tiheys voi näyttää tämän vuoksi tarpeelliselta, koska tyhjien kenttien tutkimimen on aikaavievää eikä tue analyysiä.
However, if the filter is overloaded, it becomes difficult to measure all the measurable fibres and, because small fibres may be obscured by larger ones, they may be missed.
Jos suodatin on kuitenkin ylikuormattu, on vaikea mitata kaikkia mitattavissa olevia kuituja, ja koska suuret kuidut voivat peittää näkyvistä pienemmät kuidut, pienemmät kuidut voivat jäädä mittaamatta.
Bias towards over estimating the LWGMD may result from fibre densities in excess of 150 fibres per millimetre of linear traverse.
LWGMD-arvon yliarvioiminen voi johtua kuitujen tiheyksistä, jotka ovat yli 150 kuitua yhtä lineaarisen pyyhkäisyn millimetriä kohti.
On the other hand, low fibre concentrations will increase the time of analysis and it is often cost effective to prepare a sample with a fibre density closer to the optimum than to persist with counts on low concentration filters.
Toisaalta pienet tiheydet pidentävät analyysiin tarvittavaa aikaa. Siksi on usein kustannustehokkaampaa preparoida näyte, jossa kuitujen tiheys on lähempänä optimia, kuin jatkaa mittauksia tiheyden ollessa pieni.
The optimum fibre density should give an average of about one or two countable fibre per fields of view at 5000 magnification.
Optimitiheys on sellainen, että yhtä näkökenttää kohti on keskimäärin yksi tai kaksi mitattavissa olevaa kuitua suurennuksella 5000 x.
Nevertheless the optimum density will depend on the size (diameter) of the fibres, so it is necessary that the operator uses some expert judgement in order to decide whether the fibre density is close to optimal or not.
Optimitiheys riippuu kuitenkin kuitujen koosta (halkaisijasta), joten tutkijan on harkittava, onko kuitujen tiheys optimaalinen vai ei.
Length weighting of the fibre diameters
Kuitujen halkaisijan pituuspainotus
Only those fibres that touch (or cross) an (infinitely) thin line drawn on the screen of the SEM are counted.
Vain ne kuidut lasketaan, jotka koskettavat (äärettömän) ohutta viivaa (tai leikkaavat sen) pyyhkäisyelektronimikroskoopin näkökentässä.
For this reason a horizontal (or vertical) line is drawn across the centre of the screen.
Tätä varten näkökentän keskustan yli vedetään vaakasuora (tai pystysuora) viiva.
Alternatively a single point is placed at the centre of the screen and a continuous scan in one direction across the filter is initiated.
Vaihtoehtoisesti näkökentän keskelle asetetaan yksi piste ja käynnistetään jatkuva pyyhkäisy yhteen suuntaan suodattimen yli.
Each fibre of aspect ratio grater than 3:1 touching or crossing this point has its diameter measured and recorded.
Jokainen kuitu, jonka muotosuhde on yli 3:1 ja joka koskettaa tätä pistettä tai leikkaa sen, mitataan ja kirjataan.
Fibre sizing
Kuitujen koon määritys
It is recommended that a minimum of 300 fibres are measured.
Suositellaan, että vähintään 300 kuitua mitataan.
Each fibre is measured only once at the point of intersection with the line or point drawn on the image (or close to the point of intersection if the fibre edges are obscured).
Kukin kuitu mitataan vain kerran kohdassa, jossa se leikkaa kentässä olevan viivan tai pisteen (tai leikkauskohtaa lähellä olevassa kohdassa, jos kuidun reunat peittyvät näkyvistä).
If fibres with non-uniform cross sections are encountered, a measurement representing the average diameter of the fibre should be used.
Jos kuidun poikkileikkaukset eivät ole kauttaaltaan samat, on käytettävä mittausta, joka edustaa kuidun keskiarvoa.
Care should be taken in defining the edge and measuring the shortest distance between the fibre edges.
Reuna on määriteltävä huolellisesti ja mitattava lyhyin välimatka kuidun reunojen välillä.
Sizing may be done on line, or off-line on stored images or photographs.
Mittaukset voidaan tehdä suoraan tai (valo)kuvista.
Semi-automated image measurement systems that download data directly into a spreadsheet are recommended, as they save time, eliminate transcription errors and calculations can be automated.
Käytettäväksi suositellaan puoliautomaattisia mittausjärjestelmiä, jotka lataavat tiedot suoraan laskentataulukkoon, koska ne säästävät aikaa, eliminoivat kopiointivirheiden mahdollisuuden, ja laskenta voidaan automatisoida.
The ends of long fibres should be checked at low magnification to ensure that they do not curl back into the measurement field of view and are only measured once.
On tarkistettava pienellä suurennuksella, että pitkien kuitujen päät eivät kierry takaisin mittauskenttään ja että ne mitataan vain kerran.
Fibre diameters do not usually have a normal distribution.
Kuitujen halkaisijat eivät tavallisesti edusta normaalijakaumaa.
However, by performing a log transformation it is possible to obtain a distribution that approximates to normal.
Logaritmimuunnoksen avulla on kuitenkin mahdollista saada jakauma, joka on lähellä normaalijakaumaa.
Calculate the arithmetic mean (mean lnD) and the standard deviation (SDlnD) of the log to base e values (lnD) of the n fibre diameters (D).
Lasketaan n kuitujen halkaisijan (D) luonnollisten logaritmien (lnD) aritmeettinen keskiarvo (keskiarvo lnD) ja keskihajonta (SDlnD).
The standard deviation is divided by the square root of the number of measurements (n) to obtain the standard error (SElnD).
Keskihajonta jaetaan mittausten lukumäärän (n) neliöjuurella keskivirheen (SElnD) määrittämiseksi.
Subtract two times the standard error from the mean and calculate the exponential of this value (mean minus two standard errors) to give the geometric mean minus two geometric standard errors.
Vähennetään keskiarvosta 2 x keskivirhe ja määritetään tämän arvon (keskiarvo miinus 2 x keskivirhe) eksponenttiarvo, mikä antaa geometrisen keskiarvon miinus 2 x geometrinen keskivirhe.
The test report should include at least the following information:
Testiselosteessa on annettava ainakin seuraavat tiedot:
The value of LWGMD-2SE.
arvo LWGMD miinus 2 x keskivirhe
Any deviations and particularly those which may have an effect on the precision or accuracy of the results with appropriate justifications.
mahdolliset poikkeamiset testimenettelystä (erityisesti ne, joilla voi olla vaikutusta tulosten tarkkuuteen tai luotettavuuteen) perusteluineen.
Health and Safety Executive, February 1999.
February 1999.
This magnification value is indicated for 3 µm fibres, for 6 µm fibres a magnification of × 5000 may be more suitable.
Suurennus on tarkoitettu 3 µm:n kuiduille; 6 µm:n kuiduille voi soveltua paremmin suurennus 5000 ×.
For 3 μm fibres, see previous note.
3 μm:n kuitujen osalta ks. edellinen alaviite.
IN VITRO SKIN IRRITATION: RECONSTRUCTED HUMAN EPIDERMIS MODEL TEST
REKONSTRUOITUA IHMISORVASKESIMALLIA KÄYTTÄVÄ IN VITRO -IHOÄRSYTTÄVYYSTESTI
Skin irritation refers to the production of reversible damage to the skin following the application of a test substance for up to 4 hours [as defined by the United Nations (UN) Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS)](1).
Ihoärsytyksellä tarkoitetaan korjautuvan ihovaurion syntymistä enintään neljä tuntia kestäneen testiaineen annostelun jälkeen [kuten on määritelty Yhdistyneiden Kansakuntien (YK) GHS-järjestelmässä (Globally Harmonised System for the Classification and Labelling of Chemical Substances and Mixtures)] (1).
This Test Method provides an in vitro procedure that, depending on information requirements, may allow determining the skin irritancy of substances as a stand-alone replacement test within a testing strategy, in a weight of evidence approach (2).
Tässä testimenetelmässä vahvistetaan in vitro -menettely, jota tietovaatimuksista riippuen voidaan käyttää luotettavasti yksittäisenä korvaavana testinä aikaisempaan näyttöön perustuvassa testausstrategiassa aineiden aiheuttaman ihoärsytyksen määrittämiseen (2).
The assessment of skin irritation has typically involved the use of laboratory animals (See Method B.4)(3).
Ihoärsyttävyyden arviointi on tyypillisesti edellyttänyt koe-eläinten käyttöä (ks. menetelmä B.4) (3).
In relation to animal welfare concerns, method B.4 allows for the determination of skin corrosion/irritation by applying a sequential testing strategy, using validated in vitro and ex vivo methods, thus avoiding pain and suffering of animals.
Eläinten hyvinvointiin liittyvien näkökohtien osalta voidaan todeta, että menetelmällä B.4 ihosyövyttävyys ja ihoärsyttävyys voidaan määritellä soveltamalla vaiheittaista testausstrategiaa käyttäen in vitro ja ex vivo -menetelmiä, joita käyttämällä vältetään eläimille aiheutuva kipu ja kärsimys.
Three validated in vitro Test Methods or Test Guidelines, B.40, B.40bis and TG 435 (4, 5, 6), are useful for the corrosivity part of the sequential testing strategy of B.4.
Kolme validoitua in vitro -testimenetelmää tai -testausohjetta, eli B.40, B.40bis ja TG 435 (4, 5, 6) ovat hyödyllisiä B.4:n vaiheittaisen testausstrategia syövyttävyysosiossa.
This Test Method is based on reconstructed human epidermis models, which in their overall design (the use of human derived epidermis keratinocytes as cell source, representative tissue and cytoarchitecture) closely mimic the biochemical and physiological properties of the upper parts of the human skin, i.e. the epidermis.
Tämä testimenetelmä perustuu rekonstruoituun ihmisorvaskesimalliin, jonka kokonaissuunnittelu (ihmisestä peräisin olevan orvaskeden keratinosyyttien käyttäminen solujen lähteenä ja edustava kudos- ja soluarkkitehtuuri) jäljittelee läheisesti ihmisihon ylemmän kerroksen eli epidermiksen biokemiallisia ja fysiologisia ominaisuuksia.
The procedure described under this Test Method allows the hazard identification of irritant substances in accordance with UN GHS category 2.
Tässä testimenetelmässä esiteltävällä menettelyllä ärsyttävien aineiden aiheuttamat vaarat voidaan tunnistaa YK:n GHS-luokan 2 mukaisesti.
This Test Method also includes a set of performance standards for the assessment of similar and modified reconstructed human epidermis based test methods (7).
Tähän testimenetelmään sisältyy myös sarja suoritusvaatimuksia, joilla voidaan arvioida samanlaisia ja muunnettuja rekonstruoituun ihmisorvasketeen perustuvia testimenetelmiä (7).
Prevalidation, optimisation and validation studies have been completed for two in vitro test methods (8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17), commercially available as EpiSkin™ and EpiDerm™, using reconstructed human epidermis models.
Kahden in vitro -testimenetelmän (8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17), joissa käytetään rekonstruoitua ihmisorvaskesimallia ja jotka ovat kaupallisesti saatavilla nimillä EpiSkin™ ja EpiDerm™, osalta on saatu päätökseen validointia edeltävää vaihetta, optimointia ja validointia koskevat tutkimukset.
These references were based on R 38.
Nämä perustuvat riskilausekkeeseen R.38.
Certain aspects of recalculation for the purposes of GHS are addressed in reference 25.
Tiettyjä GHS-järjestelmän tarkoituksiin tehtävien laskelmien on käsitelty kirjallisuuslähteessä 25.
Methods with a performance equivalent to EpiSkin™ (validated reference method 1) are recommended as a stand alone replacement test method for the rabbit in vivo test for classifying GHS category 2 irritant substances.
Menetelmiä, joiden suorituskyky on vastaava kuin EpiSkin™-menetelmän (validoitu vertailumenetelmä 1), suositellaan käytettäväksi erillisenä kanin in vivo -testin korvaavana testimenetelmänä luokiteltaessa GHS-luokkaan 2 kuuluvia ärsytystä aiheuttavia kemikaaleja.
Methods with a performance equivalent to EpiDerm™ (validated reference method 2) are only recommended as a screen test method, or as part of a sequential testing strategy in a weight of evidence approach, for classifying GHS category 2 irritant substances.
Menetelmiä, joiden suorituskyky on vastaava kuin EpiDerm™-menetelmän (validoitu vertailumenetelmä 2), suositellaan käytettäväksi ainoastaan seulontatestimenetelmänä tai osana vaiheittaista aikaisempaan näyttöön perustuvaa testausstrategiaa luokiteltaessa GHS-luokkaan 2 kuuluvia ärsytystä aiheuttavia aineita.