natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The apparatus for distillation of water must not contain any part made of copper.
Veden tislauslaite ei saa sisältää kuparista valmistettuja osia.
The following medium is recommended.
Seuraavia liuoksia suositellaan:
Four stock solutions are prepared, according to the following table.
Valmistetaan neljä kantaliuosta jäljempänä olevan taulukon mukaan.
The stock solutions are sterilised by membrane filtration or by autoclaving, and stored in the dark at 4 oC.
Kantaliuokset steriloidaan kalvosuodatus- tai autoklaavikäsittelyllä ja niitä säilytetään pimeässä (4 oC:ssä).
Stock solution No 4 should be sterilised only by membrane filtration.
Kantaliuos numero 4 steriloidaan pelkällä kalvosuodatuskäsittelyllä.
These stock solutions are diluted to achieve the final nutrient concentrations in the test solutions.
Testiliuosten lopullinen ravinnepitoisuus saadaan aikaan laimentamalla kantaliuoksia.
Nutrient
Ravinne
Concentration in the stock solution
Pitoisuus kantaliuoksessa
Final concentration in the test solution
Lopullinen pitoisuus testiliuoksessa
Stock solution 1: macro-nutrients
Kantaliuos 1: makroravinteet
Stock solution 2: Fe-EDTA
Kantaliuos 2: Fe-EDTA
Stock solution 3: trace elements
Kantaliuos 3: hivenaineet
3 × 10-3 mg/l
3 x 10-3 mg/l
1,5 × 10-3 mg/l
1,5 x 10-3 mg/l
7 × 10-3mg/l
7 x 10-3 mg/l
Stock solution 4: NaHCO3
Kantaliuos 4: NaHCO3
The pH of the medium after equilibration with air is approximately 8.
Ilmalla tehtävän tasapainotuksen jälkeen liuoksen pH-arvo on noin 8.
Normal laboratory equipment.
Normaalit laboratorion laitteet.
culturing apparatus: cabinet or chamber in which a temperature in the range 21 oC to 25 oC can be maintained at ± 2 oC, and continuous uniform illumination provided in the spectral range 400 to 700 nm.
Viljelylaite: kaappi tai kammio, jossa lämpötilaväliä 21–25 oC voidaan pitää yllä tarkkuudella ± 2 oC ja jossa on tasainen valaistus spektrialueella 400–700 nm.
If algae in control cultures have achieved the recommended growth rates, it can be assumed that the conditions for growth, including light intensity, have been adequate.
Jos kontrolliviljelmien kasvunopeus on suositusten mukainen, voidaan olettaa, että viljelyolosuhteet, valo-olosuhteet mukaan lukien, ovat olleet sopivat.
It is recommended to use, at the average level of the test solutions, a light intensity in the range 60 to 120 μE.m- 2.s-1 (35 to 70 × 1018 photons.m- 2.s-1) when measured in the range 400 to 700 nm using an appropriate receptor.
Suositeltava valon intensiteetti testiliuoksen keskikorkeudella on 60–120 μE.m-2.s-1 (35–70 x 1018 fotonia/m-2.s-1) mitattuna 400–700 nm:n alueelta sopivalla mittausanturilla.
For light measuring instruments calibrated in lux, an equivalent range of 6000 to 10000 lx is acceptable.
Jos valonmittauslaitteet on kalibroitu lux-yksikköä varten, vastaava alue on 6000–10000 lx.
The light intensity could be obtained using four to seven 30 W fluorescent lamps of the universal white type (colour temperature of approximately 4300 K), at a distance of 0,35 m from the algal culture,
Sopiva valon intensiteetti saadaan esimerkiksi sijoittamalla 4–7 tavallista valkoista 30 W:n loistevalaisinta (värilämpötila noin 4300 K) 0,35 m:n etäisyydelle leväviljelmästä.
Cell density measurements should be made using a direct counting method of living cells, e.g. a microscope with counting chambers.
Solutiheyden mittaukset on tehtävä laskemalla elävät solut suoraan, esimerkiksi laskulaitteella varustetun mikroskoopin avulla.
However, other procedures (photometry, turbidimetry, ...) may be used if sufficiently sensitive and if shown to be sufficiently well correlated with cell density.
Myös muita menetelmiä (esimerkiksi fotometriaa tai sameudenmittausta) voidaan käyttää, edellyttäen, että ne ovat tarpeeksi herkkiä ja riittävän hyvin korreloitavissa solutiheyden suhteen.
Test organisms
Koeorganismit
It is suggested that the species of green algae used be a fast-growing species that is convenient for culturing and testing.
Suositeltava eliö on viherlevä, joka on nopeasti kasvava ja soveltuu viljelyyn sekä testaukseen.
The following species are preferred:
Suositukset ovat seuraavat:
Selenastrum capricornutum, e.g. ATCC 22662 or CCAP 278/4,
Selenastrum capricomutum, esimerkiksi ATCC 22662 tai CCAP 278/4,
Scenedesmus subspicatus, e.g. 86.81 SAG,
Scenedesmus subspicatus, esimerkiksi 86.81 SAG.
CCAP Culture Centre of Algae and Protozoa (U.K.)
CCAP Culture Centre of Algae and Protozoa (Englanti)
SAG Collection of algal culture (Gottingen, F.R.G.)
SAG Collection of algal culture (Göttingen, Saksa)
If other species are used, the strain should be reported.
Jos käytetään muita lajeja, kanta on ilmoitettava.
The concentration range in which effects are likely to occur is determined on the basis of results from range-finding tests.
Testiin käytettävä pitoisuusalue määritetään alueenmäärityskokeella.
The two measures of growth (biomass and growth rate) may result in widely disparate measures of growth inhibition; both should be used in the range finding test to ensure that the geometric progression of concentrations will allow estimation of both the EbC50 and the ErC50.
Kun käytetään kasvusuureita biomassa ja kasvunopeus, tulokseksi voidaan saada hyvinkin erilaisia kasvun inhibitioarvoja. Siksi alueenmäärityskokeessa on käytettävä molempia suureita, jotta voitaisiin varmistua siitä, että pitoisuuksien geometrinen porrastus suo mahdollisuuden sekä EbC50- että ErC50-arvon määritykseen.
Initial cell density
Solutiheys kokeen alussa
It is recommended that the initial cell density in the test cultures be approximately 104 cells/ml for Selenastrum capricornutum and Scenedesmus subspicatus.
Suosituksen mukaan viljelmien solutiheyden on oltava kokeen alussa noin 104 solua/ml Selenastrum capricomutum- ja Scenedesmus subspicatus -lajeja käytettäessä.
When other species are used the biomass should be comparable.
Jos käytetään muita lajeja, biomassan on oltava vertailukelpoinen.
Concentrations of test substance
Testattavan aineen pitoisuudet
For the test, at least five concentrations are made up in a geometric series at a concentration ratio not exceeding 2,2.
Koetta varten valmistetaan geometrisenä sarjana vähintään viisi pitoisuutta, joiden poikkeamiskerroin on enintään 2,2.
The lowest concentration tested should have no observed effect on the growth of the algae.
Alin pitoisuus ei saa aiheuttaa havaittavia vaikutuksia levän kasvunopeuteen.
The highest concentration tested should inhibit growth by at least 50 % relative to the control and, preferably, stop growth completely.
Suurimman pitoisuuden on estettävä kasvu vähintään 50-prosenttisesti vertailunäytteeseen verrattuna tai mieluiten estettävä kasvu kokonaan.
Replicates and controls
Toistot ja kontrollit
The test design should include three replicates at each test concentration.
Kokeeseen on kuuluttava kolme toistoa kutakin pitoisuutta kohti.
Three controls without test substance are run and, if relevant, three controls containing the auxiliary substance are also run.
Käytetään kolmea vertailunäytettä ilman testattavaa ainetta ja tarpeen mukaan kolmea vertailunäytettä, jotka sisältävät mahdollista apuainetta.
If justified, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Jos erityiset syyt sitä edellyttävät, pitoisuuksien määrää voidaan suurentaa ja toistojen määrää pitoisuutta kohti pienentää.
Test cultures containing the desired concentrations of test substance and the desired quantity of algal inoculum are prepared by adding aliquots of stock solutions of the test substance to suitable amounts of algal pre-cultures (see Appendix 1).
Valmistetaan testiviljelmät, joissa on testattavaa ainetta haluttuna pitoisuutena ja haluttu määrä siirroslevää lisäämällä testattavan aineen kantaliuoksen alikvootteja sopiviin määriin levän esiviljelmiä (katso liitettä 1).
The culture flasks are shaken and placed in the culturing apparatus.
Viljelypulloja ravistetaan ja ne asetetaan viljelylaitteeseen.
The algal cells are kept in suspension by shaking, stirring or bubbling with air, in order to improve gas exchange and reduce pH variation in the test solutions.
Leväsolut pidetään suspendoituneina ravistamalla, hämmentämällä tai ilmakuplien avulla. Näin parannetaan kaasunvaihto ja pienennetään testiliuoksen pH-arvon vaihteluita.
The cultures should be maintained at a temperature in the range of 21 to 25 oC, controlled at ± 2 oC.
Viljelmien lämpötila pidetään alueella 21–25 oC ± 2 oC.
The cell density in each flask is determined at least at 24, 48 and 72 hours after the start of the test.
Kunkin pullon solutiheys määritetään vähintään 24, 48 ja 72 tunnin kuluttua kokeen alusta lukien.
Filtered algal medium containing the appropriate concentration of the test chemical is used to determine the background when using cell density measurements other than direct counting methods.
Jos käytetään muita tiheyden määrittämismenetelmiä kuin suoraa laskentaa, tausta määritetään sopivan pitoisuuden testattavaa kemikaalia sisältävän suodatetun levän avulla.
The pH is measured at the beginning of the test and at 72 hours.
pH-arvo määritetään kokeen alussa ja 72 tunnin kuluttua.
The pH of the controls should not normally deviate by more than 1,5 units during the test.
Yleensä vertailunäytteen pH-arvo saa kokeen aikana vaihdella enintään 1,5 yksikön verran.
Testing volatile substances
Haihtuvien aineiden testaus
There is to date no generally accepted way to test volatile substances.
Haihtuvien aineiden testaamiseen ei ole yleisesti hyväksyttyä menetelmää.
When a substance is known to have a tendency to vaporise, closed test flasks with increased head-space may be used.
Jos aineen tiedetään olevan haihtuvaa, voidaan käyttää suljettuja pulloja, joissa on tavallista suurempi ylätila.
The possibility of shortage of CO2 should be considered when calculating the head-space of the closed flasks.
Suljettujen pullojen ylätilan laskemisessa on otettava huomioon mahdollinen hiilidioksidin puute.
Variations to this method have been proposed (see reference (4)).
Viitteessä 4 on maininta vaihtoehtoisista menetelmistä.
Attempts should be made to determine the amount of the substance which remains in solution, and extreme caution is advised when interpreting results of tests with volatile chemicals using closed systems.
Liuokseen jäävän aineen määrä on yritettävä määrittää. On noudatettava äärimmäistä varovaisuutta tulkittaessa tuloksia kokeista, joissa on testattu haihtuvia kemikaaleja suljetuissa järjestelmissä.
Using the procedures described in this method, a limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Rajatestin (100 mg/l) avulla voidaan, osoittaa että EC50-arvo on suurempi kuin rajatestipitoisuus.
The limit test should be performed at least in triplicate, with the same number of controls.
Rajatesti on suoritettava vähintään kolmena toistona samaa vertailunäytteiden määrää käyttäen.
The two measures of growth (biomass and growth rate) should be used for the limit test.
Rajatestissä on käytettävä kahta kasvun suuretta (biomassaa ja kasvunopeutta).
If, in a limit test, a mean decrease of 25 % or more is found in either biomass or growth rate between the limit test and the control, a full test should be carried out.
Jos rajatestin tuloksena on biomassan tai kasvunopeuden pieneneminen keskimäärin vähintään 25 %, on suoritettava kattava testi.
The measured cell density in the test cultures and controls are tabulated together with the concentrations of the test substance and the times of measurements.
Testi- ja kontrolliviljelmien mitattu solutiheys esitetään taulukkona, josta ilmenevät testattavan aineen pitoisuudet ja mittausajankohdat.
The mean value of the cell density for each test substance concentration and for the controls is plotted against time (0-72 h) to produce growth curves.
Kasvukäyrät saadaan piirtämällä solutiheyden muuttuminen ajan funktiona (0–72 tuntia) käsiteltyjen näytteiden ja kontrolliviljelmien osalta kutakin testattavaa ainepitoisuutta kohti.
To determine the concentration/effect relationship, the two following approaches should be used.
Pitoisuuden ja vaikutuksen suhde määritetään kahden jäljempänä kuvatun menetelmän mukaan.
Some substances can stimulate the growth at low concentrations.
Eräiden aineiden kohdalla kasvua voidaan simuloida matalien pitoisuuksien osalta.
Only data points indicating inhibition between 0 and 100 % should be considered.
Kelpuutetaan vain pisteet, jotka osoittavat 0–100 prosentin inhibitiota.
COMPARISON OF AREAS UNDER THE GROWTH CURVES
KASVUKÄYRIEN ALAISTEN PINTA-ALOJEN VERTAILU
The area between the growth curves and the horizontal line N = N0 may be calculated according to the formula:
Kasvukäyrän ja vaakasuoran N = No välinen pinta-ala voidaan laskea seuraavan suureyhtälön avulla;
A area
A pinta-ala
number of cells/ml at time t0 (beginning of the test),o,
solujen määrä millilitrassa hetkellä t0 (kokeen alussa),
measured number of cells/ml at t1
mitattu solujen määrä millilitrassa hetkellä t,
measured number of cells/ml at time
mitattu solujen määrä millilitrassa hetkellä tn,
time of first measurement after beginning of test
kokeen alusta mittaushetkeen 1 kulunut aika,
time of nth measurement after beginning of test.
kokeen alusta mittaushetkeen n kulunut aika,
n number of measurements taken after the beginning of the test.
n mittausten määrä kokeen alkamisen jälkeen.
The percentage inhibition of the cell growth at each test substance concentration (IA) is calculated according to the formula:
Solukasvun suhteellinen estyminen ( %) kutakin testattavan aineen pitoisuutta kohti (IA) lasketaan seuraavan suureyhtälön avulla:
area between the control growth curve and the horizontal line N = No.
vertailunäytteen kasvukäyrän ja vaakasuoran N = No välinen pinta ala
area between the growth curve at the concentration t and the horizontal line N = No.
pitoisuuden t kasvukäyrän ja vaakasuoran N = No välinen pinta ala
It is essential that the EbC50 is quoted with the appropriate exposure period, e.g. EbC50 (0-72h).
On tärkeää, että EbC50-arvon yhteydessä viitataan myös altistusjaksoon, esimerkiksi EbC50 (0–72 h).
COMPARISON OF GROWTH RATES
KASVUNOPEUKSIEN VERTAILU
The average specific growth rate (μ) for exponentially growing cultures can be calculated as
Eksponentiaalisesti kasvavien viljelmien keskimääräinen spesifinen kasvunopeus (μ) voidaan ilmaista seuraavasti:
where to is the time at the beginning of the test.
jossa t0 on kokeen alkuaika.
Alternatively, the average specific growth rate may be derived from the slope of the regression line in a plot of ln N versus time.
Vaihtoehtoisesti voidaan johtaa keskimääräinen spesifinen kasvunopeus regressiosuoran kaltevuudesta piirtämällä In N ajan funktiona.
The percentage inhibition of specific growth rate at each test substance concentration (Iμt) is calculated according to the formula:
Spesifisen kasvunopeuden prosentuaalinen estyminen kutakin testattavan aineen pitoisuutta kohti (Iμt) voidaan laskea seuraavan suureyhtälön avulla:
mean control specific growth rate
vertailunäytteen keskimääräinen spesifinen kasvunopeus
mean specific growth rate for the test concentration t
testattavan aineen pitoisuuden t keskimääräinen spesifinen kasvunopeus
The percentage reduction in average specific growth rate at each test substance concentration compared to the control value is plotted against the logarithm of the concentration.
Piirretään kutakin testattavan aineen pitoisuutta kohti keskimääräisen spesifisen kasvunopeuden pieneneminen vertailuarvoon verrattuna, pitoisuuden logaritmin funktiona.
The EC5o may be read from the resulting graph.
EC50-arvo voidaan lukea tuloksena saatavasta käyrästä.
To denote unambiguously the EC50 derived by this method it is proposed to use the symbol ErC50.
Jotta luettu EC50-arvo voitaisiin tunnistaa tähän menetelmään liittyväksi, ehdotetaan symbolin ErC50 käyttöä. Myös mittausajat on ilmoitettava.
The times of measurement must be indicated, e.g. if the value relates to times 0 and 72 hours, the symbol becomes ErC50 (0-72h).
Jos esimerkiksi arvo viittaa 0 ja 72 tunnin jälkeen tehtyihin mittauksiin, käytetään symbolia ErC50 (0–72 h).
Note: specific growth rate is a logarithmic term, and small changes in growth rate may lead to great changes in biomass.
Huomautus: Spesifinen kasvunopeus on logaritminen suure, joten pienet kasvunopeuden muutokset voivat aiheuttaa suuria biomassan muutoksia.
EbC and ErC values are therefore not numerically comparable.
Siksi EbC- ja ErC-arvoja ei voi verrata numeerisesti.
CALCULATION OF THE NOEC
NOEC-ARVON LASKENTA
The No Observed Effect Concentration is determined by a suitable statistical procedure for multisample comparison (e.g. analysis of variance and Dunnett's test), using the individual replicates values of the areas under the growth curves A (see point 2.1) or the specific growth rates μ (see point 2.2).
NOEC-arvo (No Observed Effect Concentration — pitoisuus, joka ei aiheuta havaittavaa vaikutusta) määritetään soveltuvan tilastollisen, useiden näytteiden vertailumenetelmän mukaan (tehdään esimerkiksi varianssianalyysi ja Dunnetin testi) käyttäen yksittäisiä toistoarvoja kasvukäyrien A alaisesta pinta-alasta (katso kohtaa 2.1) tai spesifisiä kasvunopeuksia μ (katso kohtaa 2.2).
test substance: chemical identification data,
testattava aine: kemiallinen rakenne,
test organisms: origin, laboratory culture, strain number, method of cultivation,
testattavat eliöt: lähde, laboratorioviljelmä, kannan numero, viljelymenetelmä,
date of the start and the end of the test and its duration,
alku- ja loppupäivä sekä kokeen kesto,
temperature,
lämpötila,
composition of medium,
liuoksen koostumus,
culturing apparatus,
viljelylaite,
pH of solutions at the start and end of the test (an explanation should be provided if pH deviations of more than 1,5 unit are observed),
liuosten pH-arvo kokeen alussa ja lopussa (mukaan on liitettävä selvitys, jos pH-arvo vaihtelee yli 1,5 yksikön verran),
vehicle and method used for solubilising the test substance and concentration of the vehicle in the test solutions,
liuotin ja menetelmä, jota on käytetty testattavan aineen liuottamiseen, sekä liuottimen pitoisuus testiliuoksessa,
light intensity and quality,
valon intensiteetti ja laatu,
concentrations tested (measured or nominal).
testatut pitoisuudet (mitatut tai nimelliset),
results:
tulokset:
cell density for each flask at each measuring point and method for measuring cell density,
kunkin pullon solutiheys kullakin mittaushetkellä ja solutiheyden mittausmenetelmä,
mean values of cell density,
solutiheyden keskiarvot,
growth curves,
kasvukäyrät,
graphical presentation of the concentration effect relationship,
pitoisuuden ja vaikutusten suhteen graafinen esitys,
EC values and method of calculation,
EC-arvot ja laskentamenetelmät,
other observed effects.
muut havaitut vaikutukset.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus’, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ”Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus” in: Rudolph/Boje: Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum.
ISO 8692 Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum.
and M.Vighi — Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Galassi and M. Vighi — Chemosphere, 1981, vol. 10, 1123–1126.
Example of a procedure for the culturing of algae
Esimerkki levänviljelymenetelmästä
The purpose of culturing on the basis of the following procedure is to obtain algal cultures for toxicity tests.
Tässä kuvattavan menetelmän avulla voidaan viljellä leviä myrkyllisyyskokeita varten.
Suitable methods should be used to ensure that the algal cultures are not infected with bacteria (ISO 4833).
Soveltuvien menetelmien avulla on varmistettava, että leväviljelmissä ei ole bakteeritartuntaa (ISO 4833).
Axenic cultures may be desirable but unialgal cultures are essential.
On aina varmistettava, että viljelmissä esiintyy vain yhtä levälajia.
All operations should be carried out under sterile conditions in order to avoid contamination with bacteria and, other algae.
Tämä pätee myös akseenisia viljelmiä käytettäessä. Bakteerien tai muiden levien pääsy viljelmään on estettävä tekemällä kaikki toimet steriileissä olosuhteissa.
Contaminated cultures should be rejected.
Kontaminoituneet viljelmät on hylättävä.
Procedures for obtaining algal cultures
Leväviljelmien tuottaminen
Preparation of nutrient solutions (media):
Elatusaineen valmistelu:
the medium can be prepared by diluting concentrated stock solutions of nutrients.
Elatusaineet voidaan valmistaa laimentamalla väkevää kantaliuosta.
For solid medium, 0,8 % of agar is added.
Jos elatusaine on kiinteä, lisätään 0,8 % agaria.
The medium used should be sterile.
Elatusaineen on oltava steriili.
Sterilisation by autoclaving may lead to a loss of NH3.
Sterilointi autoklaavikäsittelyllä voi aiheuttaa ammoniakkihäviöitä.
Stock culture:
Kantaviljelmä:
the stock cultures are small algal cultures that are regularly transferred to fresh medium to act as initial test material.
Kantaviljelmät ovat pieniä leväviljelmiä, jotka siirretään säännöllisesti tuoreeseen elatusaineeseen, jossa ne toimivat testin alkumateriaalina.
If the cultures are not used regularly they are streaked out on sloped agar tubes.
Jos viljelmiä ei käytetä säännöllisesti, ne valutetaan kallistettuihin agarputkiin.
These are transferred to fresh medium at least once every two months.
Putket siirretään tuoreeseen elatusaineeseen vähintään kahden kuukauden väliajoin.
the stock cultures are grown in conical flasks containing the appropriate medium (volume about 100 ml).
Kantaviljelmiä viljellään sopivaa elatusainetta sisältävissä erlenmeyerpulloissa (tilavuus noin 100 ml).
When the algae are incubated at 20 oC with continuous illumination, a weekly transfer is required.
Kun leviä inkuboidaan 20 oC:ssa jatkuvassa valaistuksessa, siirrot on tehtävä viikoittain.
During transfer an amount of ‘old’ culture is transferred with sterile pipettes into a flask of fresh medium, so that with the fast-growing species the initial concentration is about 100 times smaller than in the old culture.
Siirrossa ”vanhan” viljelmän osa siirretään steriilin pipetin avulla tuoretta elatusainetta sisältävään pulloon. Jos laji on nopeasti kasvava, alkupitoisuuden on oltava noin sadasosa vanhan viljelmän pitoisuudesta.
the growth rate of a species can be determined from the growth curve.
Lajin kasvunopeus voidaan määrittää kasvukäyrän avulla.
If this is known, it is possible to estimate the density at which the culture should be transferred to new medium.
Näin on mahdollista arvioida, kuinka usein viljelmä on siirrettävä uuteen elatusaineeseen.
This must be done before the culture reaches the death phase.
Siirto on tehtävä, ennen kuin viljelmä kuolee.
Pre-culture:
Esiviljely
the pre-culture is intended to give an amount of algae suitable for the inoculation of test cultures.
Esiviljelyn avulla saadaan levämäärä, joka on sopiva testiviljelmien siirrostukseen.
The pre-culture is incubated under the conditions of the test and used when still exponentially growing, normally after an incubation period of about three days.
Esiviljelmää inkuboidaan testiolosuhteissa, ja viljelmä käytetään sen ollessa vielä eksponentiaalisessa kasvuvaiheessa, yleensä noin kolmen päivän pituisen inkubaation jälkeen.
When the algal cultures contain deformed or abnormal cells, they must be discarded.
Leväviljelmät, jotka sisältävät epämuodostuneita tai poikkeavia soluja, on hylättävä.
The ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum reports the following results for an inter-laboratory test among 16 laboratories, testing potassium dichromate:
Taulukossa on tulokset vedenlaatustandardin ISO 8692 mukaisesta makeavesilevien kasvunestotestistä, jossa on käytetty lajeja Scenedesmus subspicatus ja Selenastrum caprtcomutum (16 laboratoriota käsittävä laboratorioiden välinen kaliumdikromaatin testaus).
Means (mg/l)
Keskiarvo (mg/l)
Range (mg/l)
Alue (mg/l)