natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Place the dish with its lid in the vacuum oven (3.3) preheated to 83 °C.
Malja asetetaan kansineen 83 °C:een lämmitettyyn vakuumilämpökaappiin (3.3).
To prevent the oven temperature from falling unduly, introduce the dish as rapidly as possible.
Lämpökaapin lämpötilan tarpeettoman laskun välttämiseksi malja viedään uuniin mahdollisimman nopeasti.
Bring the pressure up to 100 Torr (13,3 kPa) and leave to dry to constant weight (approximately 4 hours) at this pressure in a current of hot dry air.
Paine säädetään 100 torriksi (13,3 kPa) ja annetaan näytteen kuivua (noin neljän tunnin ajan) tässä paineessa kuumassa, kuivassa ilmavirrassa, kunnes massa pysyy vakiona.
Reckon drying time from the moment when the oven returns to 83 °C.
Kuivausaika lasketaan siitä hetkestä, kun lämpökaapin lämpötila on palannut 83 °C:een.
Carefully bring the oven back to atmospheric pressure.
Kuivausajan päätyttyä lämpökaapin paine palautetaan varovasti normaalipaineeseen.
Open the oven, place the lid on the dish immediately, remove the dish from the oven, leave to cool for 30 to 45 minutes in a desiccator (3.4) and weigh to the nearest 1 mg recording the mass to 0,1 mg.
Lämpökaappi avataan, näyteastia suljetaan välittömästi kannella ja otetaan pois lämpökaapista, annetaan jäähtyä 30–45 minuuttia eksikkaattorissa (3.4), punnitaan 1 milligramman tarkkuudella ja kirjataan paino 0,1 mg:n tarkkuudella.
Dry for an additional 30 minutes in the vacuum oven (3.3) at 83 °C and reweigh.
Näytteen annetaan kuivua vielä 30 minuuttia vakuumikuivauskaapissa (3.3) 83 °C:ssa, minkä jälkeen punnitaan uudelleen.
Repeat the heating and weighing procedure until the mass of the dish with its lid decreases by 1 mg or less, or increases between two successive weighings.
Toistetaan lämmitystä ja punnitusta, kunnes astian ja kannen yhteismassa pienenee enintään 1 mg tai kasvaa kahden peräkkäisen punnituksen välillä.
CALCULATION
LASKENTA
% Moisture = (m1 – m2) / (m1 – m0) × 100 %
Kosteusprosentti = (m1 – m2) / (m1 – m0) × 100 %
is the mass of the dish and the lid;
on maljan ja kannen massa;
is the mass of the dish, the lid and the test portion before drying;
on maljan, kannen ja näytteen massa ennen kuivaamista;
is the mass of the dish, the lid and the test portion after drying.
on maljan, kannen ja näytteen massa kuivaamisen jälkeen.
Record the result to the nearest 0,1 g / 100 g.
Tulos kirjataan tarkkuudella 0,1 g / 100 g.
Repeatability limit
Toistettavuusraja
The absolute difference between two independent single test results, obtained using the same method on identical test material in the same laboratory by the same operator using the same equipment within a short interval of time, will in not more than 5 % of the cases be greater that 0,4 g water/ 100 g buttermilk powder.
Kahden yksittäisen testituloksen, jotka sama henkilö on saanut samassa laboratoriossa lyhyen ajan kuluessa samalla menetelmällä ja samalla välineistöllä täysin samanlaiselle testimateriaalille, absoluuttinen ero saa korkeintaan 5 prosentissa tapauksista olla suurempi kuin 0,4 g vettä / 100 g kirnupiimäjauhetta.
Reproducibility limit
Uusittavuusraja
The absolute difference between two independent single test results, obtained using the same method on identical test material in different laboratories by different operators using different equipment will in not more than 5 % of cases be greater than 0,6 g water/100 g acid buttermilk powder.
Kahden yksittäisen testituloksen, jotka eri henkilöt ovat saaneet eri laboratorioissa samalla menetelmällä ja eri välineistöllä täysin samanlaiselle testimateriaalille, absoluuttinen ero saa korkeintaan 5 prosentissa tapauksista olla suurempi kuin 0,6 g vettä / 100 g hapanta kirnupiimäjauhetta.
The precision data were determined from an experiment conducted in 1995 involving eight laboratories and 12 samples (6 blind duplicates).
Tarkkuutta koskevat tiedot määritettiin vuonna 1995 suoritetusta koejärjestelystä, johon osallistui kahdeksan laboratoriota ja kaksitoista näytettä (kuusi sokeakokeen kaksoisnäytettä).
REFERENCE METHOD FOR THE DETERMINATION OF MILK FAT PURITY BY GAS CHROMATOGRAPHIC ANALYSIS OF TRIGLYCERDIES — REVISION 2
VERTAILUMENETELMÄ MAITORASVAN PUHTAUDEN MÄÄRITTÄMISEKSI TRIGLYSERIDIEN KAASUKROMATOGRAFISEN MÄÄRITYKSEN AVULLA – VERSIO 2
This standard specifies a reference method for the determination of milk fat purity using gas chromatographic analysis of triglycerides.
Tässä standardissa esitetään vertailumenetelmä maitorasvan puhtauden määrittämiseksi triglyseridien kaasukromatografisen määrityksen avulla.
Both vegetable fats and animal fats such as beef tallow and lard can be detected.
Sillä voidaan havaita sekä kasvirasvat että eläinrasvat, kuten naudantali ja ihra.
Using defined triglyceride equations, the integrity of milk fat is determined.
Maitorasvan puhtaus määritetään tiettyjä triglyseridiyhtälöitä käyttäen.
Basically, the method applies to bulk bovine milk, or products made thereof, irrespective of feeding, breed or lactation conditions.
Menetelmää sovelletaan naudan irtomaitoon tai siitä valmistettuihin tuotteisiin riippumatta naudan rodusta, ruokinnasta tai maidonerityksestä.
Only exceptionally high feeding of pure vegetable oils, such as rapeseed oil, can result in a false positive result.
Vääriä positiivisia tuloksia voidaan saada ainoastaan, jos ruokinnassa käytetään paljon puhtaita kasvirasvoja, kuten rypsiöljyä.
Milk products obtained from individual cows can also cause a false positive result.
Yksittäisistä lehmistä saadut maitotuotteet voivat myös antaa väärän positiivisen tuloksen.
In particular, the method is applicable to fat extracted from milk products purporting to contain pure milk fat with unchanged composition, such as butter, cream, milk, and milk powder.
Menetelmää sovelletaan erityisesti sellaisista maitotuotteista uutettuun rasvaan, joiden väitetään sisältävän puhdasta maitorasvaa muuttumattomassa koostumuksessa, kuten voihin, kermaan, maitoon ja maitojauheeseen.
Technological treatment of milk fat such as removal of cholesterol or fractionation can cause a false positive result.
Maitorasvan tekninen käsittely, kuten kolesterolin poisto, tai fraktioiminen voivat antaa väärän positiivisen tuloksen.
This is also true for milk fat obtained from skim milk or buttermilk.
Tämä pätee myös rasvattomasta maidosta tai kirnupiimästä saatuun maitorasvaan.
The method is not always applicable to fat extracted from cheese, because the ripening process can affect the fat composition so strongly that a false positive result is obtained.
Menetelmää ei voida aina soveltaa juustosta uutettuun rasvaan, koska kypsymisprosessi voi vaikuttaa rasvan koostumukseen niin voimakkaasti, että saadaan väärä positiivinen tulos.
Note 1: Butyric (n-butanoic) acid (C4) occurs exclusively in milk fat and enables quantitative estimations of low to moderate amounts of milk fat in vegetable and animal fats to be made.
Huomautus 1: Koska voihappoa eli n-butaanihappoa (C4) esiintyy yksinomaan maitorasvassa, sen avulla voidaan tehdä kvantitatiivisia arvioita pienistä ja keskisuurista maitorasvapitoisuuksista kasvi- ja eläinrasvoissa.
Due to the large variation in C4 in the approximate percentage mass fraction range 3,1 % and 3,8 %, however, it is difficult to provide qualitative and quantitative information for foreign fat to pure milk fat mass fractions of up to 20 % [1].
Vieraista rasvoista on kuitenkin vaikea saada kvalitatiivista ja kvantitatiivista tietoa silloin kun puhtaaseen maitorasvaan on lisätty enintään 20 % vierasta rasvaa; tämä johtuu siitä, että maitorasvan C4-pitoisuus likimääräisessä prosentuaalisessa massafraktiossa vaihtelee suuresti, kun rasvaa on 3,1–3,8 % [1].
Note 2: Practically, quantitative results cannot be derived from the sterol content of vegetable fats, because they depend on the production and processing conditions.
Huomautus 2: Kvantitatiivisia tuloksia ei voida käytännössä johtaa kasvirasvojen sterolipitoisuudesta, koska ne vaihtelevat tuotanto- ja käsittelyolosuhteiden mukaan.
Even more, the qualitative determination of foreign fat using sterols is ambiguous.
Vieraan rasvan kvalitatiivinen määritys steroleja käyttäen on vielä tulkinnanvaraisempaa.
Milk fat purity: absence of vegetable and animal fats determined by the procedure specified in this standard.
Maitorasvan puhtaus: maitorasvassa ei ole kasvi- ja eläinrasvoja tässä standardissa esitetyllä menetelmällä määritettynä.
Note: The purity is determined using S-values, which are calculated from the triglyceride composition.
Huomautus: Puhtaus määritellään käyttäen S-arvoja, jotka lasketaan triglyseridikoostumuksesta.
The triglyceride mass fractions are expressed as a percentage.
Triglyseridimassafraktiot ilmaistaan prosenttiosuuksina.
The fat extracted from milk or milk products is analysed by gas chromatography using a packed or a short capillary column to determine the triglycerides (TGs), separated by total carbon numbers.
Maidosta tai maitotuotteista uutettu rasva analysoidaan kaasukromatografisesti käyttämällä pakattua tai lyhyttä kapillaarikolonnia hiiliatomien kokonaismäärän perusteella erottuvien triglyseridien määrittämiseksi.
Note 1: The suitability and equivalence of both packed and capillary columns have been demonstrated previously [2-4].
Huomautus 1: Sekä pakattujen että kapillaarikolonnien soveltuvuus ja vastaavuus on osoitettu aiemmin [2–4].
Note 2: The S-value is a sum of TG mass fractions being multiplied by defined factors respectively.
Huomautus 2: S-arvo on triglyseridien massafraktioiden summa kerrottuna tietyillä kertoimilla.
All reagents shall be of recognized analytical grade.
Kaikkien reagenssien on oltava tunnustettua analyysilaatua.
Carrier gas: nitrogen or, alternatively, helium or hydrogen, all with a purity of at least 99,995 %.
kantajakaasu: typpeä tai vaihtoehtoisesti heliumia tai vetyä, puhtausaste vähintään 99,995 %
Fat standards, for standardizing a milk fat standard according to Clause 7.3.3.
rasvastandardeja maitorasvastandardin vakiointiin 7.3.3 kohdan mukaisesti
Triglyceride standards, saturated, suited products are available commercially.
triglyseridistandardeja, tyydyttyneitä; sopivia tuotteita on saatavilla kaupallisesti.
Cholesterol standard.
kolesterolistandardi
Methanol (CH3OH), free of water.
metanoli (CH3OH), vedetön
n-Hexane (CH3(CH2)4CH3).
n-heksaani (CH3(CH2)4CH3)
n-Heptane (CH3(CH2)5CH3).
n-heptaani (CH3(CH2)5CH3)
Other gases: hydrogen, purity at least 99,995 %, free from organic impurities (CnHm < 1 µl/l); synthetic air, free from organic impurities (CnHm < 1 µl/l).
muita kaasuja, vetyä, puhtausaste vähintään 99,995 %, vailla orgaanisia epäpuhtauksia (CnHm < 1 µl/l); synteettistä ilmaa, vailla orgaanisia epäpuhtauksia (CnHm < 1 µl/l).
High-temperature gas chromatograph
Korkean lämpötilan kaasukromatografi
The high-temperature gas chromatograph shall be suited for temperatures of at least 400 °C and be equipped with a flame ionization detector (FID).
Korkean lämpötilan kaasukromatografin on oltava sellainen, että se soveltuu vähintään 400 °C:n lämpötiloihin ja on varustettu liekki-ionisaatiodetektorilla (FID).
Septa used in the injector shall withstand high temperatures and exhibit a very low degree of ‘bleeding’.
Injektorissa käytettävien tiivisteiden on oltava sellaisia, että ne kestävät korkeita lämpötiloja ja vuotavat erittäin vähän.
For capillary GC, use an on-column injector.
Kapillaarikaasukromatografissa käytetään kolonniin liitettyä injektoria.
Always use graphite seals to connect the column as well as injector and/or detector inserts (where applicable).
Kolonnin sekä injektorin ja/tai detektorin (tapauksen mukaan) liittämiseksi on aina käytettävä grafiittitiivisteitä.
Chromatography column
Kromatografiakolonni
Packed column
Pakattu kolonni
Use a glass column of internal diameter 2 mm and length 500 mm, packed with a stationary phase of 3 % OV-1 on 125 µm to 150 µm (100 to 120 mesh) Gas ChromQ [1].
Käytetään lasikolonnia, jonka sisähalkaisija on 2 mm ja pituus 500 mm ja joka on pakattu stationaarifaasilla 3 % OV-1, 125–150 µm (100–120 mesh) Gas ChromQ:ssa [1].
The preparation, silanization, packing and conditioning of the packed column is described in Annex A.
Pakatun kolonnin valmistelu, silylointi, pakkaaminen ja esikäsittely kuvataan liitteessä A.
Alternatively a capillary column may be used (5.2.2).
Vaihtoehtoisesti voidaan käyttää kapillaarikolonnia (5.2.2).
Capillary column
Kapillaarikolonni
Use a short capillary column, e.g. of length 5 m with a non-polar stationary phase that can withstand temperatures up to 400 °C or more [2]).
Käytetään lyhyttä (esim. 5 m) kapillaarikolonnia, jossa on pooliton stationaarifaasi, joka kestää vähintään 400 °C:n lämpötilaa [2].
Condition the column by performing 20 analyses of a milk fat solution (7.2) within 2 to 3 days by using the settings given in 7.3.4.2.
Kolonni vakioidaan tekemällä maitorasvaliuokselle (7.2) 20 määritystä 2–3 päivän aikana kohdassa 7.3.4.2 esitetyin säädöin.
After that the response factors (7.3.3) shall be close to 1 and less than 1,20.
Sen jälkeen vastekerrointen (7.3.3) tulee olla lähes 1 ja alle 1,20.
Note: Columns with different dimensions and a different non-polar, highly temperature-resistant phase can be used, as long as their performance is consistent with this standard.
Huomautus: Voidaan käyttää muunkokoisia kolonneja, joissa on erilainen pooliton, korkeita lämpötiloja kestävä faasi, kunhan niiden suoritus on tämän standardin mukainen.
See also 7.3.4.2.
Ks. myös kohta 7.3.4.2.
Extrelut column, of capacity 1 ml to 3 ml, filled with silica gel, needed for the extraction of milk fat according to 7.1.3 only.
extrelut-kolonni, 1–3 ml, jossa on silikageeliä, maitorasvan uuttamiseksi ainoastaan kohdan 7.1.3 mukaisesti
Graphite seals, capable of withstanding temperatures of at least 400 °C; to be used for the connection of the GC column as well as for the injector and/or detector inserts.
grafiittitiivisteitä, jotka kestävät vähintään 400 °C:n lämpötilaa; käytetään kaasukromatografikolonnin liittämiseksi sekä injektorin ja/tai detektorin insertteihin
Water bath, capable of maintaining a temperature of 50 °C ± 2 °C.
vesihaude, joka voidaan pitää lämpötilassa 50 °C ± 2 °C.
Oven, capable of operating at 50 °C ± 2 °C and 100 °C ± 2 °C.
uuni, joka toimii lämpötilassa 50 °C ± 2 °C ja 100 °C ± 2 °C
Microlitre pipette.
mikrolitrapipetti
Graduated pipette, of capacity 5 ml.
mittapipetti, 5 ml
Round-bottomed flask, of capacity 50 ml.
kolvi, 50 ml
Erlenmeyer flask, of nominal capacity 250 ml.
erlenmeyerpullo, nimellistilavuus 250 ml
Funnel.
suppilo
Fine-pored filter paper.
suodatinpaperi, jossa on pieni huokoskoko
Rotary evaporator.
pyöröhaihduttaja
Ampoules, of nominal capacity 1 ml, fitted with a polytetrafluoroethylene-lined aluminium crimp cap or screw cap.
ampulleja, 1 ml, joissa on polytetrafluorieteeni-tiivisteellä varustettu alumiininen puristettu tai kierretulppa
Injection syringe, with syringe plunger not reaching into the tip of the needle (packed column GC).
injektioruiskuja, joiden mäntä ei ulotu neulan kärkeen (kaasukromatografia pakattua kolonnia käyttäen)
Note: With these syringes better repeatability of the results is obtained.
Huomautus: Näillä ruiskuilla saadaan parempi toistettavuustulos.
A representative sample should have been sent to the laboratory. It should not have been damaged or changed during transport or storage.
Laboratorion on saatava edustava näyte, joka ei ole vahingoittunut eikä muuttunut kuljetuksen tai varastoinnin aikana.
IDF 50 [5].
Suositellaan käytettäväksi standardissa ISO 707IDF 50 [5] esitettyä näytteenottomenetelmää.
Preparation of test samples
Laboratorionäytteen esikäsittely
Use for test sample preparation one of the three following methods of milk fat extraction.
Laboratorionäytteen esikäsittelyä varten käytetään jotakin seuraavista kolmesta maitorasvan uuttamismenetelmästä.
Isolation from butter or butteroil
Voin tai voiöljyn eristäminen
Melt 50 g to 100 g of test sample at 50 °C using a water bath (5.5) or an oven (5.6).
Sulatetaan 50–100 g näytettä 50 °C:ssa käyttäen vesihaudetta (5.5) tai uunia (5.6).
Place 0,5 to 1,0 g of sodium sulfate (4.7) in a folded filter paper (5.12).
Pannaan 0,5–1,0 g natriumsulfaattia (4.7) taitettuun suodatinpaperiin (5.12).
Preheat a 250 ml Erlenmeyer flask (5.10) and a funnel (5.11) with inserted filter paper in the oven (5.6) set at 50 °C.
Esikuumennetaan 250 ml:n erlenmeyerpullo (5.10) ja suodatinpaperilla varustettu suppilo (5.11) uunissa (5.6), jonka lämpötilaksi on säädetty 50 °C.
Filter, while maintaining the preheated flask, funnel and inserted filter device in the oven, the fat layer of the molten sample.
Suodatetaan sulaneen näytteen rasvakerros siten, että esikuumennettu pullo ja suodatinpaperilla varustettu suppilo ovat uunissa.
Take care that no serum is transferred.
Varotaan, ettei heraa siirry.
Only in cases where a limited amount of test sample is available, a smaller test sample may be used and the procedure should be adapted accordingly.
Vain silloin kun näytettä on saatavilla rajattu määrä, voidaan käyttää pienempää näytettä, ja menetelmää on mukautettava vastaavasti.
However, the handling of a smaller test portion involves a higher risk of obtaining a non-representative sample.
Pienempää näytettä käsiteltäessä on kuitenkin suurempi vaara saada ei-edustava näyte.
Note 1: Butter can be obtained from cream by churning and thorough washing of the resulting butter grain.
Huomautus 1: Voi voidaan valmistaa kermasta kirnuamalla ja pesemällä voirakeet.
Note 2: The milk fat obtained using the procedure in 7.1.1 will be almost free of phospholipids.
Huomautus 2: Menetelmällä 7.1.1 saatu maitorasva ei sisällä juuri lainkaan fosfolipidejä.
Extraction according to the Röse–Gottlieb gravimetric method
Uuttaminen Röse–Gottliebin gravimetrisellä menetelmällä
Note: If phospholipids are present in the milk fat obtained, a cholesterol peak will be obtained which is increased by approximately 0,1 %.
Huomautus: Jos saadussa maitorasvassa on fosfolipidejä, saadaan noin 0,1 % suurempi kolesterolipiikki.
The TG composition standardized to 100 % including cholesterol is thereby influenced only to a negligible extent.
Ne eivät siten vaikuta mainittavasti triglyseridien koostumukseen, joka vakioidaan 100 %:iin kolesteroli mukaan luettuna.
Extraction from milk using silica gel columns
Uuttaminen maidosta silikageelikolonnin avulla
Add, using a microlitre pipette (5.7), 0,7 ml of test sample tempered to 20 °C to a 1 ml to 3 ml Extrelut column (5.3).
Mikrolitrapipetillä (5.7) annostellaan 0,7 ml 20 °C:n lämpötilaan lämmitettyä näytettä 1–3 ml:n Extrelut-kolonniin (5.2).
Allow to distribute uniformly on the silica gel for approximately 5 min.
Maidon annetaan levitä tasaisesti silikageelin päälle noin 5 minuutin ajan.
To denature the protein–lipid complexes, add, using the graduated pipette (5.8), 1,5 ml of methanol (4.3) to the Extrelut column.
Valkuais-lipidikompleksit denaturoidaan lisäämällä mittapipetillä (5.8) Extrelut-kolonniin 1,5 ml metanolia (4.3).
Collect the solvent draining off in a 50 ml round-bottomed flask (5.9) previously dried to a constant, known mass weighed to the nearest 1 mg, recording the mass to 0,1 mg.
Eluaatti kerätään 50 ml:n kolviin (5.9), joka on etukäteen kuivattu tunnettuun vakiomassaan, joka punnitaan 1 mg:n tarkkuudella ja kirjataan 0,1 mg:n tarkkuudella.
Allow the column to drain until empty after the extraction.
Uuttamisen jälkeen kolonnin annetaan valua tyhjäksi.
Distil off the solvents from the eluate on a rotary evaporator (5.13) with its water bath set at between 40 °C and 50 °C.
Liuottimet tislataan eluaatista pyöröhaihduttimen (5.13) avulla vesihauteessa 40–50 °C:n lämpötilassa.
After the solvents have been distilled off, dry and subsequently weigh the round-bottomed flask and its contents to the nearest 1 mg, recording the mass to 0,1 mg.
Kun liuottimet on tislattu, kolvi kuivataan ja punnitaan sisältöineen 1 mg:n tarkkuudella ja massa kirjataan 0,1 mg:n tarkkuudella.
Determine the fat mass yield by subtracting the mass of the dried empty round-bottomed flask from the mass obtained.
Rasvamassamäärä määritetään vähentämällä saadusta massasta kuivatun tyhjän kolvin massa.
Note: Fat extractions by the Gerber, Weibull–Berntrop or Schmid–Bondzynski–Ratzlaff methods or isolation of milk fat using detergents (BDI method) are not suitable for TG analysis, because substantial quantities of partial glycerides or phosholipids can pass into the fat phase.
Huomautus: Rasvan uuttaminen Gerber-, Weibull–Berntrop- tai Schmid–Bondzynski–Ratzlaff-menetelmällä taikka maitorasvan eristäminen detergenteillä (BDI-menetelmä) ei sovellu triglyseridimääritykseen, koska näissä menetelmissä rasvafaasiin voi joutua suurehkoja määriä osittaisia glyseridejä tai fosfolipidejä.
Consequently, the application of this International Standard is limited regarding certain products, particularly cheese.
Sen vuoksi tätä kansainvälistä standardia voidaan soveltaa tiettyihin tuotteisiin, erityisesti juustoihin, vain rajallisesti.
Preparation of sample solution
Näyteliuoksen valmistaminen
For gas chromatography with a packed column, prepare a 5 % (volume fraction) solution of the fat (obtained according to 7.1) in n-hexane (4.4) or n-heptane (4.5).
Kaasukromatografiaa varten valmistetaan 5 %:n (tilavuusosuus) liuos kohdan 7.1 mukaisesti saadusta rasvasta n-heksaaniin (4.4) tai n-heptaaniin (4.5).
Depending on the column dimensions, use a concentration of 1 % (0,53 mm, ID wide-bore) or lower for on-column injection with a capillary column.
Kolonnin koon mukaan käytetään 1 %:n pitoisuutta (leveä halkaisija, 0,53 mm ID) tai alhaisempaa, jos kyseessä on suora injektio kapillaarikolonniin.
Based on the column used and the mass of fat obtained in 7.1.3, determine the amount of solvent (4.4 or 4.5) to be added to the test sample material in the flask on the basis of weighing to the nearest 1 mg, and recording the mass to 0,1 mg.
Määritetään näyteainekseen lisättävän liuottimen (4.4 tai 4.5) määrä käytetyn kolonnin ja kohdan 7.1.3 mukaisesti saadun rasvamassan perusteella, joka punnitaan 1 mg:n tarkkuudella ja kirjataan 0,1 mg:n tarkkuudella.
Completely dissolve the remainder.
Liuotetaan jäljelle jäävä aines täydellisesti.
Transfer approximately 1 ml of the sample solution into an ampoule (5.14).
Siirretään noin 1 ml näyteliuosta ampulliin (5.14).
Chromatographic triglyceride determination
Triglyseridien kromatografinen määritys
Baseline drift
Perusviivan ryömintä
To minimize baseline rising, the column shall be conditioned as specified in 5.2.2 (capillary column) or in Annex A.4 (packed column).
Perusviivan nousun minimoimiseksi kolonni on vakioitava kohdassa 5.2.2 (kapillaarikolonni) tai liitteessä A.4 (pakattu kolonni) esitetyllä tavalla.
Note: Because of the high column temperature, the analysis of TGs is particularly susceptible to a rise of the baseline in the high carbon-number range.
Huomautus: Kolonnin korkean lämpötilan vuoksi perusviivan nousu voi häiritä erityisesti niiden triglyseridien määrityksessä, joissa on pitkät hiiliketjut.
Injection technique
Injektiotekniikka
To avoid discrimination effects, apply the hot-needle technique for improving the quantification of the high-boiling TG components.
Jotta triglyseridit eivät erottuisi eri tavalla, sovelletaan kuumainjektiomenettelyä, jolla myös saadaan parempia kvantitatiivisia tuloksia, kun on kyse korkeassa lämpötilassa kiehuvista triglyseridikomponenteista.
Heat the needle up prior to injection for about 3 s. Then, rapidly inject the syringe content.
Lämmitetään neulaa ennen injektiota noin 3 sekunnin ajan. Tämän jälkeen ruiskun sisältö injektoidaan nopeasti.
When using cold on-column injection (7.3.4.2), insert the needle of the syringe and inject immediately.
Kun käytetään kylmää on-column-injektiota (7.3.4.2), ruiskun neula työnnetään injektioporttiin ja injektoidaan välittömästi.
The dwell time of the needle in the injection port should be such that broad tailing of the solvent peak is avoided.
Neula ei saa viipyä injektioportissa niin kauan, että liuotinpiikkiin jää häntä.
Note: The optimum dwell time typically is about 3 s.
Huomautus: Optimaalinen viipymisaika on noin 3 sekuntia.
For the calibration of test samples, perform two to three analyses of standardized milk fat at the beginning of every day.
Näytteiden kalibroimiseksi tehdään joka päivän aluksi 2–3 vakioidun maitorasvan määritystä.