natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Five trials are performed with the test substance and the reference substance(s).
Testattavalla aineella ja vertailuaineella (-aineilla) tehdään viisi koetta.
The time taken for the pressure to rise from 690 kPa to 2070 kPa above atmospheric is noted.
Kirjataan aika, joka kuluu siihen, että paine nousee 690 kPa:sta 2070 kPa:iin ilmanpaineen yläpuolella.
The mean pressure rise time is calculated.
Lasketaan paineennousuun kuluvien aikojen keskiarvo.
In some cases, substances may generate a pressure rise (too high or too low), caused by chemical reactions not characterising the oxidising properties of the substance.
Joissakin tapauksissa aineet saattavat aiheuttaa paineen nousun (liian suuren tai liian pienen), joka aiheutuu sellaisista kemiallisista reaktioista, jotka eivät liity aineen hapettaviin ominaisuuksiin.
In these cases, it may be necessary to repeat the test with an inert substance, e.g. diatomite (kieselguhr), in place of the cellulose in order to clarify the nature of the reaction.
Tällöin voi olla tarpeen toistaa testi inertillä aineella, esim. piimaalla (kieselguhr), selluloosan sijasta reaktion laadun selvittämiseksi.
Pressure rise times for both the test substance and the reference substance(s).
Paineen nousuun kuluneet ajat sekä testiaineelle että vertailuaineelle (-aineille).
Pressure rise times for the tests with an inert substance, if performed.
Paineen nousuun kuluneet ajat mahdollisille inertin aineen kanssa tehdyille testeille.
The mean pressure rise times for both the test substance and the reference substances(s) are calculated.
Lasketaan paineen nousuun kuluneiden aikojen keskiarvot sekä testiaineelle että vertailuaineelle (-aineille).
The mean pressure rise time for the tests with an inert substance (if performed) is calculated.
Lasketaan paineen nousuun kuluneiden aikojen keskiarvot mahdollisille inertin aineen kanssa tehdyille testeille.
Some examples of results are shown in Table 1.
Taulukossa 1 esitetään joitakin esimerkkejä tuloksista.
Examples of results [18]
Esimerkkejä tuloksista [18]
Substance [19]
Aine [19] Keskimääräinen paineen nousuun kulunut aika
Ammonium dichromate, saturated aqueous solution
Ammoniumdikromaatti, kyllästetty vesiliuos
Calcium nitrate, saturated aqueous solution
Kalsiumnitraatti, kyllästetty vesiliuos
Ferric nitrate, saturated aqueous solution
Ferrinitraatti, kyllästetty vesiliuos
Lithium perchlorate, saturated aqueous solution
Litiumperkloraatti, kyllästetty vesiliuos
Magnesium perchlorate, saturated aqueous solution
Magnesiumperkloraatti, kyllästetty vesiliuos
Nickel nitrate, saturated aqueous solution
Nikkelinitraatti, kyllästetty vesiliuos
Nitric acid, 65 %
Typpihappo, 65 %
Perchloric acid, 50 %
Perkloorihappo, 50 %
Perchloric acid, 55 %
Perkloorihappo, 55 %
Potassium nitrate, 30 % aqueous solution
Kaliumnitraatti, 30 % vesiliuos
Silver nitrate, saturated aqueous solution
Hopeanitraatti, kyllästetty vesiliuos
Sodium chlorate, 40 % aqueous solution
Natriumkloraatti, 40 % vesiliuos
Sodium nitrate, 45 % aqueous solution
Natriumnitraatti, 45 % vesiliuos
Inert substance
Inertti aine
Water: cellulose
Vesi: selluloosa
The test report should include the following information:
Testiraportissa on esitettävä seuraavat tiedot:
the identity, composition, purity, etc. of the substance tested,
testattavan aineen tunnistetiedot, koostumus, puhtausaste jne.
the concentration of the test substance,
testiaineen pitoisuus,
the drying procedure of the cellulose used,
selluloosan kuivausmenetelmä,
the water content of the cellulose used,
käytetyn selluloosan vesipitoisuus,
the results of the measurements,
mittaustulokset,
the calculated mean pressure rise times,
paineen nousuun kuluvista ajoista lasketut keskiarvot,
any deviations from this method and the reasons for them,
mahdolliset poikkeamat tästä menetelmästä ja syyt niihin,
all additional information or remarks relevant to the interpretation of the results.
kaikki lisätiedot ja huomautukset, jotka voivat vaikuttaa tulosten tulkintaan.
INTERPRETATION OF THE RESULTS
TULOSTEN TULKINTA
The test results are assessed on the basis of:
Testitulosten arvioinnissa
whether the mixture of test substance and cellulose spontaneously ignites; and
todetaan, syttyykö testiaineen ja selluloosan seos itsestään ja
the comparison of the mean time taken for the pressure to rise from 690 kPa to 2070 kPa with that of the reference substance(s).
verrataan paineen nousuun (690 kPa – 2070 kPa) kuluneiden aikojen keskiarvoja vertailuaine(id)en vastaaviin arvioihin.
A liquid substance is to be considered as an oxidiser when:
Nestemäisen aineen katsotaan olevan hapettava, kun
a 1:1 mixture, by mass, of the substance and cellulose spontaneously ignites; or
testattavan aineen ja selluloosan 1:1-seos (massana) syttyy itsestään tai
a 1:1 mixture, by mass, of the substance and cellulose exhibits a mean pressure rise time less than or equal to the mean pressure rise time of a 1:1 mixture, by mass, of 65 % (w/w) aqueous nitric acid and cellulose.
testattavan aineen ja selluloosan 1:1-seoksella (massana) on pienempi tai yhtä suuri keskimääräinen paineen nousuun kuuluva aika kuin 65-painoprosenttisen typpihapon ja selluloosan 1:1-seoksella (massana).
In order to avoid a false positive result, if necessary, the results obtained when testing the substance with an inert material should also be considered when interpreting the results.
Väärien positiivisten tulosten välttämiseksi on tuloksia tulkittaessa tarkasteltava tarvittaessa myös tuloksia, jotka on saatu testattaessa ainetta inertin materiaalin kanssa.
revised edition.
tarkistettu painos.
UN Publication No: ST/SG/AC.10/11/Rev.
YK:n julkaisu nro ST/SG/AC.10/11/Rev.
Support stand
Tukiteline
Ignition coil
Sytytyskela
Insulation
Eristys
Firing plug
Sytytystulppa
Note: either of these configurations may be used.
Huom: kokoonpanosta voidaan käyttää kumpaa hyvänsä.
Dependent on type of instrument and on degree of purity of the substance.
Vaihtelee laitteen tyypin ja aineen puhtausasteen mukaan.
Dependent on type of instrument and on degree of purity of the substance
Vaihtelee laitteen tyypin ja aineen puhtausasteen mukaan.
This accuracy is only valid for the simple device as for example described in ASTM D 1120-72; it can be improved with more sophisticated ebulliometer devices.
Koskee vain esimerkiksi ASTM D 1120-72:ssa kuvattujen yksinkertaisten laitteiden avulla tehtäviä määrityksiä. Tarkkuutta voidaan parantaa käyttämällä kehittyneempiä laitteita.
Only valid for pure substances.
Koskee vain puhtaita aineita.
The use in other circumstances should be justified.
Menetelmän käyttö muissa olosuhteissa on perusteltava.
Dependent of the degree of purity.
Vaihtelee puhtausasteen mukaan.
These methods can also be used in the range 1 to 10 Pa providing care is taken.
Menetelmiä voidaan huolellisuutta noudattaen käyttää myös alueella 1–10 Pa.
As, for example, in the framework of UN transport regulations.
Esimerkiksi YK:n kuljetussäännösten yhteydessä.
The acid should be titrated before testing to confirm its concentration.
Happo on titrattava ennen testausta sen konsentraation varmistamiseksi.
E.g.: 50 % (w/w) perchloric acid and 40 % (w/w) sodium chlorate are used in reference 1.
Esimerkiksi 50-painoprosenttista perkloorihappoa ja 40-painoprosenttista natriumkloraattia on käytetty viitteessä 1.
E.g. Whatman Column Chromatographic Cellulose Powder CF 11, catalogue No 4021 050.
Esimerkiksi Whatman Column Chromatographic Cellulose Powder CF 11, luettelon nro 4021 050.
Confirmed by, e.g. Karl-Fisher titration.
Varmistetaan (esim.) Karl-Fisherin titrauksella.
Alternatively, this water content can also be achieved by, e.g. heating at 105 oC under vacuum for 24 h.
Vesipitoisuus voidaan määrittää myös (esim.) kuumentamalla 105 oC:ssa tyhjiössä 24 h.
Mixtures of oxidisers with cellulose must be treated as potentially explosive and handled with due care.
Hapettimien ja selluloosan seoksia on pidettävä mahdollisesti räjähtävinä ja käsiteltävä asianmukaisella huolella.
In practice this can be achieved by preparing a 1:1 mixture of the liquid to be tested and cellulose in a greater amount than needed for the trial and transferring 5 ±0,1 g to the pressure vessel.
Käytännössä tämä voidaan tehdä valmistamalla testattavasta nesteestä ja selluloosasta 1:1-seosta suurempi määrä kuin kokeeseen tarvitaan ja siirtämällä 5 ±0,1 g seosta paineastiaan.
The mixture is to be freshly prepared for each trial.
Seos on valmistettava tuoreeltaan joka koetta varten.
In particular, contact between the adjacent turns of the coil must be avoided.
Erityisesti on estettävä kelan vierekkäisten kierteiden välinen kosketus.
See reference (1) for classification under the UN transport scheme.
Ks. viite (1), YK:n kuljetusjärjestelmän mukainen luokitus.
Saturated solutions should be prepared at 20 oC.
Kyllästetyt liuokset on valmistettava 20 oC:ssa.
Mean value from interlaboratory comparative trials.
Laboratorioidenvälisten vertailevien tutkimusten keskiarvo.
Maximum pressure of 2070 kPa not reached.
Maksimipainetta 2070 kPa ei saavutettu.
See reference 1 for interpretation of the results under the UN transport regulations using several reference substances.
Ks. viite 1, tulosten tulkinta YK:n kuljetusmäärysten mukaan käytettäessä useita vertailuaineita.
PART B: METHODS FOR THE DETERMINATION OF TOXICITY AND OTHER HEALTH EFFECTS
OSA B: TOKSISUUDEN JA MUIDEN TERVEYSVAIKUTUSTENMÄÄRITYS
GENERAL INTRODUCTION
YLEISJOHDANTO
bis. ACUTE ORAL TOXICITY — FIXED DOSE PROCEDURE
AKUUTTI ORAALINEN TOKSISUUS — VAKIOANNOSMENETELMÄ
tris. ACUTE ORAL TOXICITY — ACUTE TOXIC CLASS METHOD
AKUUTTI ORAALINEN TOKSISUUS — AKUUTIN TOKSISUUSLUOKAN MENETELMÄ
ACUTE TOXICITY (INHALATION)
AKUUTTI MYRKYLLISYYS (HENGITETTYNÄ)
ACUTE TOXICITY (DERMAL)
AKUUTTI MYRKYLLISYYS (IHON KAUTTA)
ACUTE TOXICITY: DERMAL IRRITATION/CORROSION
AKUUTTI TOKSISUUS: IHOÄRSYTTÄVYYS/-SYÖVYTTÄVYYS
ACUTE TOXICITY: EYE IRRITATION/CORROSION
AKUUTTI TOKSISUUS: SILMÄN ÄRSYTTÄVYYS/SYÖVYTTÄVYYS
SKIN SENSITISATION
IHON HERKISTYMINEN
REPEATED DOSE (28 DAYS) TOXICITY (ORAL)
ORAALINEN TOISTUVAN ANNOSTELUN TOKSISUUSTUTKIMUS (28 VRK)
REPEATED DOSE (28 DAYS) TOXICITY (INHALATION)
TOISTETUN ANNOKSEN (28 PÄIVÄÄ) MYRKYLLISYYS (HENGITETTYNÄ)
REPEATED DOSE (28 DAYS) TOXICITY (DERMAL)
TOISTETUN ANNOKSEN (28 PÄIVÄÄ) MYRKYLLISYYS (IHON KAUTTA NAUTITTAVAT AINEET)
MUTAGENICITY — IN VITRO MAMMALIAN CHROMOSOME ABERRATION TEST
MUTAGEENISUUS — KROMOSOMIPOIKKEAVUUSTESTI NISÄKÄSSOLUILLA IN VITRO
MUTAGENICITY — IN VIVO MAMMALIAN BONE MARROW CHROMOSOME ABERRATION TEST
MUTAGEENISUUS — KROMOSOMIPOIKKEAVUUSTESTI NISÄKKÄIDEN LUUYTIMESSÄ IN VIVO
MUTAGENICITY — IN VIVO MAMMALIAN ERYTHROCYTE MICRONUCLEUS TEST
MUTAGEENISUUS — MIKROTUMATESTI NISÄKKÄÄN PUNASOLUISSA IN VIVO
MUTAGENICITY TESTING AND SCREENING FOR CARCINOGENICITY GENE MUTATION — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MUTAGEENISUUSTESTAUS JA KARSINOGEENISTEN AINEIDEN SEULONTA GEENIMUTAATIOT — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MITOTIC RECOMBINATION — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MITOOTTINEN REKOMBINAATIO — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MUTAGENICITY — IN VITRO MAMMALIAN CELL GENE MUTATION TEST
MUTAGEENISUUS — GEENIMUTAATIOTESTI NISÄKÄSSOLUILLA IN VITRO
DNA DAMAGE AND REPAIR — UNSCHEDULED DNA SYNTHESIS — MAMMALIAN CELLS IN VITRO
DNA-VAURIO JA SEN KORJAANTUMINEN — UDS-TESTI NISÄKÄSSOLUVILJELMÄLLÄ
SISTER CHROMATID EXCHANGE ASSAY IN VITRO
SISARKROMATIDIVAIHDOSTESTI
SEX-LINKED RECESSIVE LETHAL TEST IN DROSOPHILA MELANOGASTER
RESESSIIVI LETAALI -TESTI BANAANIKARPÄSELLÄ (DROSOPHILA MELANOGASTER)
IN VITRO MAMMALIAN CELL TRANSFORMATION TESTS
SOLUTRANSFORMAATIOTESTIT NISÄKÄSSOLUVILJELMILLÄ
RODENT DOMINANT LETHAL TEST
DOMINOIVA LETAALITESTI JYRSIJÖILLÄ
MAMMALIAN SPERMATOGONIAL CHROMOSOME ABERRATION TEST
NISÄKKÄIDEN SPERMATOGONIOIDEN KROMOSOMIPOIKKEAVUUSTESTI
MOUSE SPOT TEST
HIIREN SPOT-TESTI
MOUSE HERITABLE TRANSLOCATION
HIIREN PERIYTYVÄ TRANSLOKAATIO
SUB-CHRONIC ORAL TOXICITY TEST REPEATED DOSE 90 — DAY ORAL TOXICITY STUDY IN RODENTS
SUBKROONINEN ORAALINEN MYRKYLLISYYSTESTI TOISTETUILLA ANNOKSILLA TEHTÄVÄ 90 VUOROKAUDEN ORAALINEN MYRKYLLISYYSTUTKIMUS JYRSIJÖILLÄ
SUB-CHRONIC ORAL TOXICITY TEST REPEATED DOSE 90 — DAY ORAL TOXICITY STUDY IN NON-RODENTS
SUBKROONINEN ORAALINEN MYRKYLLISYYSTESTI TOISTETUILLA ANNOKSILLA TEHTÄVÄ 90 VUOROKAUDEN ORAALINEN MYRKYLLISYYSTUTKIMUS MUILLA KUIN JYRSIJÖILLÄ
SUB-CHRONIC DERMAL TOXICITY STUDY 90-DAY REPEATED DERMAL DOSE STUDY USING RODENT SPECIES
SUBKROONINEN MYRKYLLISYYSTESTI (IHON KAUTTA) TOISTUVA ANNOSTELU IHON KAUTTA, 90 VUOROKAUTTA, JYRSIJÄT
SUB-CHRONIC INHALATION TOXICITY STUDY 90-DAY REPEATED INHALATION DOSE STUDY USING RODENT SPECIES
SUBKROONINEN MYRKYLLISYYSTUTKIMUS (HENGITYSTEIDEN KAUTTA) TOISTUVA ANNOSTELU HENGITYSTEIDEN KAUTTA, 90 VUOROKAUTTA, JYRSIJÄT
CHRONIC TOXICITY TEST
KROONINEN MYRKYLLISYYSTESTI
PRENATAL DEVELOPMENTAL TOXICITY STUDY
PRENATAALISEN KEHITYKSEN AIKAISTEN MYRKYLLISYYSVAIKUTUSTEN TUTKIMUS
CARCINOGENICITY TEST
KARSINOGEENISUUSTESTL
COMBINED CHRONIC TOXICITY/CARCINOGENICITY TEST
YHDISTETTY KROONINEN MYRKYLLISYYS/KARSINOGEENISUUSTESTI
ONE-GENERATION REPRODUCTION TOXICITY TEST
MYRKKYJEN VAIKUTUS LISÄÄNTYMISKYKYYN (YHDEN SUKUPOLVEN TESTI)
TWO-GENERATION REPRODUCTION TOXICITY STUDY
KAKSI SUKUPOLVEA KÄSITTÄVÄ LISÄÄNTYMISKYKYYN KOHDISTUVIEN MYRKYLLISYYSVAIKUTUSTEN TUTKIMUS
TOXICOKINETICS
MYRKKYKINETIIKKA
DELAYED NEUROTOXICITY OF ORGANOPHOSPHORUS SUBSTANCES FOLLOWING ACUTE EXPOSURE
ORGANOFOSFAATTIEN AIHEUTTAMA VIIVÄSTYNYT NEUROTOKSISUUS AKUUTIN ALTISTUKSEN JÄLKEEN
DELAYED NEUROTOXICITY OF ORGANOPHOSPHORUS SUBSTANCES 28 DAY REPEATED DOSE STUDY
ORGANOFOSFAATTIEN AIHEUTTAMA VIIVÄSTYNYT NEUROTOKSISUUS 28 PÄIVÄN TOISTUVAN ANNOSTELUN TUTKIMUKSESSA
UNSCHEDULED DNA SYNTHESIS (UDS) TEST WITH MAMMALIAN LIVER CELLS IN VIVO
UDS-TESTI NISÄKKÄIDEN MAKSASOLUILLA IN VIVO
IN VITRO SKIN CORROSION: TRANSCUTANEOUS ELECTRICAL RESISTANCE TEST (TER)
IN VITRO IHOSYÖVYTTÄVYYS: IHON SÄHKÖVASTUSMÄÄRITYSTESTI (TER)
BIS. IN VITRO SKIN CORROSION: HUMAN SKIN MODEL TEST
IN VITRO IHOSYÖVYTTÄVYYS: IHMISIHOMALLITESTI
IN VITRO 3T3 NRU PHOTOTOXICITY TEST
IN VITRO 3T3 NRU -VALOMYRKYLLISYYSTESTI
SKIN SENSITISATION: LOCAL LYMPH NODE ASSAY
IHOHERKISTYS: PAIKALLINEN IMUSOLMUKEMÄÄRITYSMENETELMÄ
NEUROTOXICITY STUDY IN RODENTS
NEUROTOKSISUUSTUTKIMUS JYRSIJÖILLÄ
SKIN ABSORPTION: IN VIVO METHOD
IHON KAUTTA IMEYTYMINEN: IN VIVO -MENETELMÄ
SKIN ABSORPTION: IN VITRO METHOD
IHON KAUTTA IMEYTYMINEN: IN VITRO -MENETELMÄ
CHARACTERISATION OF THE TEST SUBSTANCE
TESTIAINEEN KARAKTERISAATIO
The composition of the test substance, including major impurities, and its relevant physico-chemical properties including stability, should be known prior to the initiation of any toxicity study.
Testiaineen koostumus, mukaan lukien tärkeimmät epäpuhtaudet, ja sen olennaiset fysikaalis-kemialliset ominaisuudet, mukaan lukien stabiliteetti, on oltava tiedossa ennen toksisuustutkimusten aloittamista.
The physico-chemical properties of the test substance provide important information for the selection of the route of administration, the design of each particular study and the handling and storage of the test substance.
Testiaineen fysikaalis-kemialliset ominaisuudet antavat tärkeää tietoa antotavan, tutkimusasetelman ja testiaineen käsittely- ja säilyttämistavan valintaa varten.
The development of an analytical method for qualitative and quantitative determination of the test substance (including major impurities when possible) in the dosing medium and the biological material should precede the initiation of the study.
Annosteluaineessa ja biologisessa materiaalissa olevan testiaineen (ja mahdollisuuksien mukaan myös tärkeimpien epäpuhtauksien) määrittämiseen käytettävä määrällinen ja laadullinen analyysimenetelmä tulee kehittää ennen tutkimuksen aloittamista.
All information relating to the identification, the physico-chemical properties, the purity, and behaviour of the test substance should be included in the test report.
Kaikki testiaineen tunnistamiseen, fysikaalis-kemiallisiin ominaisuuksiin, puhtauteen ja käyttäytymiseen liittyvät tiedot tulee sisällyttää tutkimusraporttiin.
ANIMAL CARE
ELÄINTEN HOITO
Stringent control of environmental conditions and proper animal care techniques are essential in toxicity testing.
Ympäristöolosuhteiden ja eläinten oikeiden hoitomenetelmien tiukka seuranta on oleellista toksisuustutkimuksissa.
Housing conditions
Elinolosuhteet
The environmental conditions in the experimental animal rooms or enclosures should be appropriate to the test species.
Koe-eläintilojen ja häkkien ympäristöolosuhteiden on oltava testattavalle lajille tarkoituksenmukaiset.
For rats, mice and guinea pigs, suitable conditions are a room temperature of 22 oC ± 3 oC with a relative humidity of 30 to 70 %; for rabbits the temperature should be 20 ± 3 oC with a relative humidity of 30 to 70 %.
Rotalle, hiirelle ja marsulle sopiva huoneenlämpötila on 22 ± 3 oC ja suhteellinen ilmankosteus 30-70 %. Kaniineille sopiva huoneenlämpötila on 20 ± 3 oC ja suhteellinen ilmankosteus 30–70 %.
Some experimental techniques are particularly sensitive to temperature effects and, in these cases, details of appropriate conditions are included in the description of the test method.
Jotkut tutkimusmenetelmät ovat erityisen herkkiä lämpötilavaikutuksille. Näissä tapauksissa asianmukaiset olosuhteet on selostettu yksityiskohtaisesti tutkimusmenetelmän kuvauksen yhteydessä.
In all investigations of toxic effects, the temperature and humidity should be monitored, recorded, and included in the final report of the study.
Kaikissa toksisuustutkimuksissa on valvottava huoneenlämpötilaa ja ilmankosteutta, rekisteröitävä tiedot ja kirjattava ne tutkimuksen loppuraporttiin. Valaistuksen tulee olla keinovaloa.
Lighting should be artificial, the sequence being 12 hours light, 12 hours dark.
Valolähteenä on keinovalo, jaksoittaisuus 12 tuntia valoa, 12 tuntia pimeyttä.
Details of the lighting pattern should be recorded and included in the final report of the study.
Valaistusmallin yksityiskohdat on rekisteröitävä ja kirjattava tutkimuksen loppuraporttiin.
Unless otherwise specified in the method, animals may be housed individually, or be caged in small groups of the same sex; for group caging, no more than five animals should be housed per cage.
Jollei menetelmässä erikseen muuta mainita, eläimiä voidaan säilyttää yksin tai pienryhmänä häkeissä, joissa on samaa sukupuolta. Yhdessä ryhmähäkissä saa olla enintään viisi eläintä.
In reports of animal experiments, it is important to indicate the type of caging used and the number of animals housed in each cage both during exposure to the chemical and any subsequent observation period.
Koe-eläintutkimusraporteissa on tärkeää ilmoittaa käytetty häkkityyppi ja eläinten määrä häkkiä kohti sekä kemiallisen altistuksen että sitä seuranneiden havainnointijaksojen aikana.
Feeding conditions
Ruokintaolosuhteet
Diets should meet all the nutritional requirements of the species under test.
Ravinnon tulee tyydyttää testattavan eläinlajin kaikki ravitsemukselliset tarpeet.
Where test substances are administered to animals in their diet the nutritional value may be reduced by interaction between the substance and a dietary constituent.
Jos testiainetta annetaan eläimille ravinnossa, ravinnon ravintoarvo voi heiketä testiaineen ja ruoka-aineen interaktion vuoksi.
The possibility of such a reaction should be considered when interpreting the results of tests.
Tällaisen reaktion mahdollisuus on otettava huomioon tutkimustuloksia tulkittaessa.
Conventional laboratory diets may be used with an unlimited supply of drinking water.
Eläimille voidaan antaa tavanomaista koe-eläinravintoa ja juomavettä on oltava kaiken aikaa tarjolla.
The choice of the diet may be influenced by the need to ensure a suitable admixture of a test substance when administered by this method.
Ravinnon valintaan voi vaikuttaa tarve varmistaa testiaineelle sopiva sekoitus, kun se annostellaan ravinnon mukana.
Dietary contaminants which are known to influence the toxicity should not be present in interfering concentrations.
Ravintoa saastuttavia aineita, joiden tiedetään vaikuttavan toksisuuteen, ei saa olla läsnä häiritsevinä pitoisuuksina.
ALTERNATIVE TESTING
VAIHTOEHTOISET TUTKIMUKSET
The European Union is committed to promoting the development and validation of alternative techniques which can provide the same level of information as current animal tests, but which use fewer animals, cause less suffering or avoid the use of animals completely.
Euroopan unioni on sitoutunut edistämään sellaisten vaihtoehtomenetelmien kehittämistä ja validointia, joista saadaan samantasoista tietoa kuin nykyisistä eläinkokeista, mutta joihin tarvitaan vähemmän eläimiä ja jotka aiheuttavat vähemmän kärsimystä tai joissa eläimiä ei tarvita lainkaan.
Such methods, as they become available, must be considered wherever possible for hazard characterisation and consequent classification and labelling for intrinsic hazards and chemical safety assessment.
Sitä mukaa kuin tällaisia menetelmiä tulee saataville, on niitä mahdollisuuksien mukaan käytettävä vaaran luonnehdinnassa ja siihen perustuvassa ominaisvaarojen luokittelussa ja merkitsemisessä.
EVALUATION AND INTERPRETATION
ARVIOINTI JA TULKINTA
When tests are evaluated and interpreted, limitations in the extent to which the results of animal and in vitro studies can be extrapolated directly to man must be considered and therefore, evidence of adverse effects in humans, where available, may be used for confirmation of testing results.
Testien arvioinnissa ja tulkinnassa on otettava huomioon ekstrapolaatiorajoitukset eläinkokeiden ja in vitro -tutkimusten tulosten soveltamisessa suoraan ihmiseen, ja siksi mahdollisesti saatavia todisteita haittavaikutuksista ihmisellä voidaan käyttää tutkimustulosten vahvistamiseen.
LITERATURE REFERENCES
LÄHDELUETTELO
Most of these methods are developed within the framework of the OECD programme for Testing Guidelines, and should be performed in conformity with the principles of Good Laboratory Practice, in order to ensure as wide as possible ‘mutual acceptance of data’.
Useimmat näistä menetelmistä on kehitetty OECD:n ”Testing Guidelines” -ohjelman puitteissa ja niitä tulisi käyttää yhtenevästi GLP (Good Laboratory Practice) -periaatteiden kanssa mahdollisimman laajan ”keskinäisen tietojen hyväksymisen” varmistamiseksi.
Additional information may be found in the references listed in the OECD guidelines and the relevant literature published elsewhere.
Lisätietoa löytyy OECD-ohjeiston kirjallisuusluettelossa mainituista lähteistä ja muusta asiaankuuluvasta kirjallisuudesta.
This test method is equivalent to OECD TG 420 (2001)
Tämä menetelmä vastaa OECD:n testiohjetta nro TG 420 (2001)
Traditional methods for assessing acute toxicity use death of animals as an endpoint.
Perinteisissä menetelmissä akuutin toksisuuden arvioimiseksi käytetään päätepisteenä eläinten kuolemaa.
In 1984, a new approach to acute toxicity testing was suggested by the British Toxicology Society based on the administration at a series of fixed dose levels (1).
Vuonna 1984 British Toxicology Society ehdotti akuutin toksisuuden testaamiseksi uutta käytäntöä, joka perustuu aineen annosteluun vakioannostasojen sarjana (1).
The approach avoided using death of animals as an endpoint, and relied instead on the observation of clear signs of toxicity at one of a series of fixed dose levels.
Menetelmässä vältettiin käyttämästä eläinten kuolemaa päätepisteenä ja tarkkailtiin sen sijaan selviä toksisuusoireita yhdellä annossarjasta valitulla vakioannostasolla.
Following UK (2) and international (3) in vivo validation studies the procedure was adopted as a testing method in 1992.
Menetelmä on hyväksytty tutkimusmenetelmäksi vuonna 1992 Yhdistyneen kuningaskunnan (2) ja kansainvälisten (3) in vivo -validointitutkimusten perusteella.
Subsequently, the statistical properties of the Fixed Dose Procedure have been evaluated using mathematical models in a series of studies (4)(5)(6).
Tämän jälkeen vakioannosmenetelmän tilastollisia ominaisuuksia on arvioitu matemaattisten mallien avulla useissa tutkimuksissa (4) (5) (6).