natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The standard sample size is 200 tubers although the procedure can be used with smaller samples if 200 tubers are not available.
Standardi näytekoko on 200 mukulaa. Menetelmä soveltuu käytettäväksi myös alle 200 mukulan näytteille, jos 200:aa mukulaa ei ole käytettävissä.
Pathogen extraction and concentration methods are described in section 3.1.
Taudinaiheuttajan uuttamis- ja konsentrointimenetelmät kuvataan 3.1 jaksossa.
If at least two tests based on different biological principles are positive, isolation and confirmation have to be done.
Jos vähintään kahdesta erilaisiin biologisiin periaatteisiin pohjautuvasta testistä saadaan positiivinen tulos, eristäminen ja varmistaminen on tehtävä.
Perform at least one screening test.
Tehdään vähintään yksi seulontatesti.
When this test is negative the sample is considered to be negative In case this test is positive a second or more screening tests based on different biological principles are required to verify the first positive result.
Jos tästä testistä saadaan negatiivinen tulos, näytettä pidetään negatiivisena. Jos testitulos on positiivinen, on tehtävä toinen tai useampia seulontatestejä eri biologisten periaatteiden pohjalta, jotta ensimmäinen positiivinen tulos voidaan vahvistaa.
If the second or other tests are negative the sample is considered negative.
Jos toisesta testistä tai muista testeistä saadaan negatiivinen tulos, näytettä pidetään negatiivisena.
Further tests are not necessary.
Tällöin ei tarvita lisätestejä.
Immunofluorescence (IF) test.
Immunofluoresenssi (IF) -testi.
Always use a polyclonal antibody for IF screening, additional monoclonal antibodies may provide more specifity (see section 4).
IF-seulonnassa on aina käytettävä polyklonaalisia vasta-aineita; lisäksi käytettävät monoklonaaliset vasta-aineet voivat lisätä spesifisyyttä (ks. 4 jakso).
Use appropriately validated PCR reagents and protocols (see section 6).
Käytettävä asianmukaisesti validoituja PCR-reagensseja ja -testausprotokollia (ks. 6 jakso).
Use validated reagents and protocols (see section 5).
Käytettävä validoituja reagensseja ja testausprotokollia (ks. 5 jakso).
Selective isolation.
Selektiivinen eristäminen.
With the MTNA medium or NCP-88 medium and a 1/100 dilution of the resuspended pellet, this is in many cases a suitable method for direct isolation of C. m. subsp. sepedonicus.
Kun käytetään MTNA-alustaa tai NCP-88-alustaa ja kun uudelleen suspendoitu sakka on laimennettu suhteessa 1:100, tämä menetelmä soveltuu monissa tapauksissa C. m. subsp. sepedonicus -taudinaiheuttajan suoraan eristämiseen.
Typical colonies can be obtained 3 to10 days after planting.
Tyypillisiä pesäkkeitä voidaan saada 3–10 päivää uuden viljelmän aloittamisen jälkeen.
The pathogen then can be purified and identified.
Taudinaiheuttaja voidaan sitten puhdistaa ja tunnistaa.
For full exploitation of its potential, the test requires careful preparation of heel end cores to avoid secondary bacteria associated with the potato tuber which are competitors with C. m. subsp. sepedonicus on the medium and may overgrow the pathogen.
Jotta testistä saataisiin täysi hyöty, testissä käytettävät mukuloiden napapäät on käsiteltävä huolellisesti, jotta voidaan eliminoida toissijaiset bakteerit, jotka ovat alustalla C. m. subsp. sepedonicus -bakteerin kilpailijoita ja voivat estää taudinaiheuttajan kehittymisen.
If the plate test fails isolation must be done from plants used for the bio assay (see section 8).
Jos tämä maljaustesti epäonnistuu, eristäminen on tehtävä biologiseen määritykseen käytettävistä kasveista (ks. 8 jakso).
The bioassay test is used for isolation of C. m. subsp. sepedonicus from potato extract pellets by selective enrichment in eggplants (Solanum melongena).
Biologista määritysmenetelmää käytetään C. m. subsp. sepedonicus -bakteerin eristämiseen perunan sakkauutteesta käyttäen valikoivaa rikastusta munakoisoissa (Solanum melongena).
The test requires optimal incubation conditions as specified in this method.
Testi edellyttää optimaalisia menetelmässä tarkennettuja inkubointiolosuhteita.
Bacteria inhibitory to C. m. subsp. sepedonicus on the MTNA or NCP-88 medium will most likely not interfere in this test (see section 7).
Bakteerit, jotka inhiboivat C. m. subsp. sepedonicus -bakteeria MTNA- tai NCP-88-alustalla, eivät todennäköisesti häiritse tätä testiä (ks. 7 jakso).
Typical colony morphology is described in section 8.
Tyypillinen pesäkemorfologia on kuvattu 8 jaksossa.
Culturing or bioassays can fail due to competition or inhibition by saprophytic bacteria.
Viljelytestit tai biologiset määritykset saattavat epäonnistua, jos saprofyyttiset bakteerit kilpailevat taudinaiheuttajan kanssa tai estävät sen kasvun.
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests from the same pellet or by taking additional vascular tissue near the heel end from cut tubers of the same sample and, if necessary, test additional samples.
Jos seulontatesteistä saadaan positiiviset mutta eristystesteistä negatiiviset tulokset, toistetaan eristystestit samasta sakasta tai otetaan lisää johtosolukkoa samaan näytteeseen kuuluvien halkaistujen mukuloiden napapään läheltä ja testataan tarvittaessa lisänäytteitä.
Reliable identification of pure presumptive C. m. subsp. sepedonicus cultures is achieved using the tests described in section 9.
Oletetun C. m. subsp. sepedonicus -kasvintuhoojan puhtaan viljelmän tunnistaminen luotettavasti onnistuu käyttämällä 9 jaksossa kuvattuja testejä.
Scheme for detection and identification of Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus in samples of asymptomatic potato plants
Menetelmä Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus -kasvintuhoojan toteamiseksi ja tunnistamiseksi oireettomista kasvinäytteistä
sample of stem segments (1)
Näyte-erä perunan varren palasia (1)
selective isolation (4)/IF test (5)/PCR test (6)/FISH test (7)
Selektiivinen eristäminen (4)/ IF-testi (5)/ PCR-testi (6)/ FISH-testi (7)
optional auxiliary test: bioassay (8)
valinnainen lisätesti: biologinen määritys (8)
colonies with typical morphology (4) after isolation
Pesäkkeet, joiden morfologia on tyypillinen (4) eristämisen jälkeen
all tests done negative
Kaikki testitulokset negatiivisia
IDENTIFICATION TESTS (10)
TUNNISTAMISTESTIT (10)
PATHOGENICITY TEST (11)
PATOGEENISYYSTESTI (11) Molemmat testit varmistavat
See section 3.2 for recommended sample sizes.
Ks. jaksosta 3.2 suositellut näytekoot.
Pathogen extraction and concentration methods are described in section 3.2.
Taudinaiheuttajan uuttamis- ja konsentrointimenetelmät kuvataan 3.2 jaksossa.
When this test is negative the sample is considered to be negative.
Jos tästä testistä saadaan negatiivinen tulos, näytettä pidetään negatiivisena.
In case this test is positive a second or more screening tests based on different biological principles are required to verify the first positive result.
Jos testitulos on positiivinen, on tehtävä toinen tai useampia seulontatestejä eri biologisten periaatteiden pohjalta, jotta ensimmäinen positiivinen tulos voidaan vahvistaa.
The selective isolation test and typical colony morphology are described in section 8.
Selektiivinen eristäminen ja tyypillinen pesäkemorfologia kuvataan 8 jaksossa.
The IF test is described in section 4.
IF-testi kuvataan 4 jaksossa.
PCR tests are described in section 6.
PCR-testit kuvataan 6 jaksossa.
The FISH test is described in section 5.
FISH-testi kuvataan 5 jaksossa.
The bioassay is described in section 7.
Biologinen määritys kuvataan 7 jaksossa.
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests and, if necessary, test additional samples.
Jos seulontatesteistä saadaan positiiviset mutta eristystesteistä negatiiviset tulokset, eristystestit toistetaan ja tarvittaessa testataan lisänäytteitä.
VISUAL EXAMINATION FOR RING ROT SYMPTOMS
SILMÄMÄÄRÄINEN PERUNAN VAALEAN RENGASMÄDÄN OIREIDEN TARKASTELU
Potato plants
Perunakasvit
Under European climatic conditions symptoms are rarely found in the field and often only at the end of the season.
Euroopan ilmasto-oloissa oireet eivät yleensä näy pellossa ja, jos niitä näkyy, tämä tapahtuu usein vasta kasvukauden lopulla.
Moreover the symptoms are frequently masked or confused by/with other diseases, senescence or mechanical damages.
Lisäksi toiset taudit, vanheneminen tai mekaaniset vauriot peittävät usein oireet tai oireet voidaan sekoittaa niihin.
Therefore it may be easy to miss symptoms in field inspections.
Oireet saattavat siten helposti jäädä huomaamatta pellolla tehtävissä tarkastuksissa.
Wilting symptoms are very different from those of brown rot; wilting is usually slow and initially limited to the leaf margins.
Lakastumisoireet poikkeavat suuresti tumman rengasmädän aiheuttamista oireista; lakastuminen on yleensä hidasta ja rajoittuu aluksi lehtien reunoihin.
Young infected leaves often continue to expand although, less so in the infected zones.
Tartunnan saaneet nuoret lehdet jatkavat usein kasvuaan, vaikkakin kasvu on hitaampaa tartunnan saaneilla alueilla.
This creates odd shaped leaves.
Seurauksena on oudonmuotoisia lehtiä.
Leaves affected by blocking of the vascular tissues further down the stem often develop chlorotic, yellow to orange, intercostal areas.
Jos varren johtosolukko tukkeutuu, lehtisuonten välinen alue lehdessä muuttuu usein kellertäväksi tai oranssiksi.
Infected leaflets, leaves and even stems may eventually die.
Tartunnan saaneet lehdykät, lehdet ja jopa varret saattavat kuolla.
Often leaves and tubers are simply reduced in size.
Usein seurauksena on vain lehtien ja mukuloiden koon pienentyminen.
Occasionally plants are stunted.
Toisinaan kasvista tulee kitukasvuinen.
Coloured pictures of a range of symptoms can be found on the web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
Värikuvia erilaisista oireista löytyy seuraavilta www-sivuilta: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
Potato tubers
Perunan mukulat
The earliest symptoms are a slight glassiness or translucence of the tissue without softening around the vascular system, particularly near the heel end.
Ensimmäiset oireet ovat erityisesti napapään lähellä olevan solukon lievä lasimaisuus tai läpikuultavuus ilman että suoniston ympärys olisi pehmennyt.
The vascular ring at the heel end may be slightly darker in colour than normal.
Napapäässä oleva johtosolukkorengas voi olla väriltään hieman tavanomaista tummempi.
The first readily identifiable symptom is one whereby the vascular ring has a yellowish coloration and when the tuber is gently squeezed, pillars of cheese-like material emerge from the vessels.
Ensimmäiset oireet, jotka voidaan selvästi tunnistaa, ovat johtosolukkorenkaan kellertävä väri ja se, että mukulaa kevyesti painettaessa suonista tulee ulos juustomaista ainetta.
This exudation contains millions of bacteria.
Tämä tihkuva erite sisältää miljoonia bakteereita.
Browning of the vascular tissue may develop and tuber symptoms at this stage are similar to those of brown rot caused by Ralstonia solanacearum.
Johtosolukko voi tummua, ja mukuloiden oireet ovat tässä vaiheessa samanlaiset kuin tummaa rengasmätää aiheuttavan Ralstonia solanacearum -bakteerin aiheuttamat oireet.
At first, these symptoms may be restricted to one part of the ring, not necessarily close to the heel end and may gradually extend to the whole ring.
Ensi vaiheessa näiden oireiden esiintyminen voi rajoittua ainoastaan osaan rengasta, eikä välttämättä lähimpänä napapäätä olevaan osaan, ennen kuin ne leviävät asteittain koko renkaaseen.
As the infection progresses, destruction of the vascular tissue occurs; the outer cortex may become separated from the inner cortex.
Saastunnan leviämisen myötä suonisolukot tuhoutuvat. Ulkokuori voi erottua sisäkuoresta.
In advanced stages of infection, cracks appear on the surface of the tuber, which are often reddish-brown at their margins.
Saastunnan myöhemmissä vaiheissa mukulan pintaan ilmestyy reunoiltaan usein punaisenruskeita halkeamia.
Recently in Europe several cases have occurred where the central cortex rots at the same time as the vascular ring resulting in secondary invasion with internal hollowing and necrosis.
Euroopassa on vastikään esiintynyt useita tapauksia, joissa kuoren keskiosa mätänee samaan aikaan kuin johtosolukkorengas, mistä aiheutuu sekundäärinen invaasio, joka johtaa sisuksen muuttumiseen ontoksi ja nekroosiin.
Secondary fungal or bacterial invasion may mask the symptoms and it may be difficult, if not impossible, to distinguish advanced ring rot symptoms from other tuber rots.
Jonkin toisen taudinaiheuttajan, sienen tai bakteerin, aiheuttama samanaikainen saastunta voi peittää oireet, jolloin voi olla vaikeaa, jollei mahdotonta, erottaa perunan vaalean rengasmädän myöhempiä oireita muista perunan pilaajista.
Atypical symptoms may be possible.
Epätyypilliset oireet ovat mahdollisia.
SAMPLE PREPARATION
NÄYTTEIDEN VALMISTAMINEN
The standard sample size is 200 tubers per test.
Standardinäytekoko on 200 mukulaa testiä kohden.
More intensive sampling requires more tests on samples of this size.
Laajempi näytteenotto edellyttää useampia testejä tämänkokoisille näytteille.
Larger numbers of tubers in the sample will lead to inhibition or difficult interpretation of the results.
Jos näytteessä on enemmän kuin 200 mukulaa, tulokset saattavat jäädä saamatta tai niitä on vaikea tulkita.
However, the procedure can be conveniently applied for samples with less than 200 tubers where fewer tubers are available.
Menettelyä voidaan kuitenkin hyvin käyttää alle 200 mukulan näytteisiin, jos 200:aa mukulaa ei ole käytettävissä.
Validation of all detection methods described below is based on testing of samples of 200 tubers.
Kaikkien jäljempänä kuvattujen toteamismenetelmien validointi perustuu 200 mukulan suuruisen näytteen testaamiseen.
The potato extract described below can also be used for detection of the potato brown rot bacterium, Ralstonia solanacearum.
Jäljempänä kuvattua perunauutetta voidaan käyttää myös perunan tummaa rengasmätää aiheuttavan Ralstonia solanacearum -bakteerin toteamiseen.
Optional pre-treatment in advance to sample preparation:
Näytteiden valmistamista edeltävä vapaavalintainen esikäsittely:
Wash the tubers.
Pestään mukulat.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove eventual pathogen DNA) and detergents between each sample.
Kunkin näytteen jälkeen käytetään tarkoituksenmukaisia desinfiointiaineita (tehtäessä PCR-testi on käytettävä klooriyhdisteitä mahdollisen patogeenisen DNA:n poistamiseksi) ja puhdistusaineita.
Air dry the tubers.
Ilmakuivataan mukulat.
This washing procedure is particularly useful (but not required) for samples with excess soil and if a PCR-test or direct isolation procedure is to be performed.
Pesumenettelystä on erityistä hyötyä (vaikkakaan sitä ei vaadita), jos näytteissä on paljon ylimääräistä multaa ja jos PCR-testi tai suora eristysmenettely toteutetaan.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel end of each tuber so that the vascular tissue becomes visible.
Poistetaan puhtaalla ja desinfioidulla leikkausveitsellä tai vihannesveitsellä kuori mukulan napapäästä siten, että johtosolukko tulee näkyviin.
Carefully cut out a small core of vascular tissue at the heel end and keep the amount of non-vascular tissue to a minimum (see web site: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Leikataan varovasti pieni kartionmuotoinen kappale johtosolukosta kunkin mukulan napapäästä ja yritetään pitää muun solukon kuin johtosolukon osuus mahdollisimman pienenä (ks. www-sivusto osoitteessa http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Set aside any tubers with suspected ring rot symptoms and test separately.
Laitetaan sivuun jokainen mukula, jossa epäillään olevan rengasmätää, ja testataan yksittäin.
All tubers in the sample (including those with suspicious symptoms) should be kept according to Annex II.
Lohkaistuja mukuloita, joissa on epäilyttäviä oireita, olisi korkkiutettava huoneenlämmössä 2 vuorokautta ja säilytettävä karanteenissa (4–10 °C:ssa), kunnes kaikki testit on saatu tehtyä. Kaikki mukulanäytteet (myös ne, joissa on epäilyttäviä oireita) olisi säilytettävä liitteen II mukaisesti.
If this is not possible, store them in the container, without addition of buffer, refrigerated for not longer than 72 hours or for not longer than 24 hours at room temperature.
Jos tämä ei ole mahdollista, niitä voidaan säilyttää astiassa – lisäämättä puskuriliuosta – jäähdytettyinä enintään 72 tunnin ajan tai huoneenlämmössä enintään 24 tunnin ajan.
Drying and suberisation of cores, and growth of saprophytes during storage may hinder detection of the ring rot bacterium.
Rengasmätäbakteerin toteamista saattavat haitata kappaleiden kuivuminen ja korkkiutuminen sekä saprofyyttien kasvu varastoinnin aikana.
Process the heel end cores by one of the following procedures: either,
Käsitellään napapääkappaleet yhtä seuraavista menettelyistä noudattaen: joko
cover the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 3) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
peitetään kappaleet riittävällä määrällä (noin 40 ml) uuttopuskuria (lisäys 3) ja sekoitetaan tasoravistimella (50–100 rpm:n kierrosnopeudella) neljän tunnin ajan alle 24 °C:ssa tai 16–24 tunnin ajan jäähdytettyinä;
homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 3), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
homogenoidaan kappaleet riittävällä määrällä (noin 40 ml) uuttopuskuria (lisäys 3) joko sekoittimella (esim. Waring tai Ultra Turrax) tai murskaamalla suljetussa kertakäyttöisessä pussissa (esim. luja Stomacher- tai Bioreba-polyeteenipussi, jonka mitat ovat 150 mm x 250 mm, säteilysteriili) käyttäen kumivasaraa tai sopivaa murskaamisvälinettä (esim. Homex).
The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Näytteiden ristikontaminaation riski on suuri silloin, kun näytteet homogenoidaan sekoittimella.
Take precautions to avoid aerosol generation or spillage during the extraction process.
On ryhdyttävä varotoimiin roiskumisen tai läikkymisen välttämiseksi uuttamisprosessin aikana.
Ensure that freshly sterilised blender blades and vessels are used for each sample.
On varmistettava, että jokaista näytettä varten käytetään vasta steriloituja sekoittimen teriä ja astioita.
If the PCR test is to be used, avoid carry-over of DNA on containers or grinding apparatus.
Jos aiotaan tehdä PCR-testi, on vältettävä DNA:n siirtyminen astioihin tai murskaamislaitteisiin.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Tehtäessä PCR-testi on suositeltavaa murskata kappaleet kertakäyttöisissä pusseissa ja käyttää kertakäyttöisiä putkia.
Decant the supernatant.
Dekantoidaan supernatantti.
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (10 ml) extraction buffer (Appendix 3).
Jos liuos on liian sameaa, sitä kirkastetaan joko hitaasti sentrifugoiden (enintään 180 x g kymmenen minuutin ajan 4–10 °C:n lämpötilassa) tai suodatetaan liuos (40–100 µm:n huokoskoon vakuumisuodatusjärjestelmällä) ja pestään suodatin vielä uuttopuskurilla (10 ml) (lisäys 3).
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Konsentroidaan bakteerifraktio sentrifugoimalla 7000 x g 15 minuutin ajan (tai 10000 x g 10 minuutin ajan) 4–10 °C:n lämpötilassa ja poistetaan supernatantti sakkaa sekoittamatta.
Resuspend the pellet in 1,5 ml pellet buffer (Appendix 3).
Suspendoidaan sakka uudelleen 1,5 ml:aan sakkapuskuria (lisäys 3).
Use 500 µl to test for C. m. subsp. sepedonicus, 500 µl for Ralstonia solanacearum and 500 µl for reference purposes.
Käytetään 500 µl C. m. subsp. sepedonicus -bakteerin testaamiseksi, 500 µl Ralstonia solanacearum -bakteerin testaamiseksi ja 500 µl vertailutarkoituksiin.
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at 68 to –86 °C (months).
Lisätään steriiliä glyserolia vertailuaineena käytettävään näytteeseen (500 µl) ja jäljellä olevaan testinäytteeseen 10–25 % (v/v) loppupitoisuuden saavuttamiseksi, sekoitetaan vorteksilla ja varastoidaan –16 ja –24 °C:n väliseen lämpötilaan (viikoiksi) tai –68 ja –86 °C:n väliseen lämpötilaan (kuukausiksi).
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Säilytetään testinäytteet 4–10 °C:ssa testauksen ajan.
Repeated freezing and thawing is not advisable.
Toistuva jäädytys ja sulatus ei ole suositeltavaa.
If transport of the extract is required, ensure delivery in a cool box within 24 to 48 hours.
Jos uutetta joudutaan kuljettamaan, toimitus on tehtävä kylmälaukussa 24–48 tunnin kuluessa.
It is imperative that all C. m. subsp. sepedonicus positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
Kontaminaation välttämiseksi on ehdottoman tärkeää käsitellä kaikki C. m. subsp. sepedonicus -bakteerin positiiviset kontrollit ja näytteet toisistaan erillään.
This applies to IF slides and to all tests.
Tämä koskee sekä immunofluoresenssitestiä että kaikkia muitakin testejä.
For detection of latent C. m. subsp. sepedonicus populations it is advised to test composite samples.
Piilevien C. m. subsp. sepedonicus -kantojen toteamiseksi on suositeltavaa käyttää kokoomanäytteitä.
The procedure can be conveniently applied for composite samples of up to 200 stem parts.
Menettelyä voidaan vaivatta käyttää jopa 200:n varresta otetun osan muodostamiin kokoomanäytteisiin.
(Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.)
(Jos tehdään tutkimuksia, niiden olisi perustuttava tilastollisesti edustavaan otokseen tutkittavana olevasta kasvipopulaatiosta.)
With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 to 2 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Poistetaan desinfioidulla leikkausveitsellä tai desinfioiduilla oksasaksilla 1–2 cm:n palanen kunkin varren alaosasta juuri maanpinnan yläpuolelta.
Disinfect stem segments briefly with ethanol 70 % and immediately blot dry on tissue paper.
Desinfioidaan varren osat pikaisesti 70 % etanolilla ja kuivataan välittömästi kasvopaperiin taputtamalla.
Collect stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Kerätään varren palaset suljettavaan steriiliin astiaan seuraavien näytteenottomenetelmien mukaisesti:
Process the stem segments by one of the following procedures: either,
Käsitellään varren palaset yhtä seuraavista menettelyistä noudattaen: joko
cover the segments with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 3) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
peitetään palaset riittävällä määrällä (noin 40 ml) uuttopuskuria (lisäys 3) ja sekoitetaan tasoravistimella (50–100 rpm:n kierrosnopeudella) neljän tunnin ajan alle 24 °C:ssa tai 16–24 tunnin ajan jäähdytettyinä;
process immediately. By crushing the segments in a strong maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba) with an appropriate volume of extraction buffer (Appendix 3) using a rubber mallet or appropriate grinding apparatus (e.g. Homex).
käsitellään välittömästi murskaamalla palaset lujassa pussissa (esim. Stomacher tai Bioreba) siten, että siinä on sopiva määrä uuttopuskuria (lisäys 3), käyttäen kumivasaraa tai sopivaa murskaamisvälinettä (esim. Homex).