natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Similarly, the required diagnostic confirmation of disease is likely to be balanced against the prevailing situation, the magnitude of the hazard and the degree of risk.
Vaaditussa tautidiagnoosin vahvistamisessa otetaan samaten todennäköisesti huomioon vallitseva tilanne, vaaran suuruus sekä riskin aste.
Veterinary authorities need to make decisions on diagnostic evidence that balance the rapid control and eradication of disease against the potential impact of misdiagnosis.
Eläinlääkintäviranomaisten on tehtävä diagnostisen näytön pohjalta päätökset, joissa otetaan huomioon taudin nopeasta hillitsemisestä ja hävittämisestä saatava hyöty ja toisaalta väärän diagnoosin mahdolliset vaikutukset.
Such judgements have to be made against the background of many factors at the time, but certain situations can be predicted.
Ratkaisuja tehtäessä on otettava samanaikaisesti huomioon monta tekijää, mutta joidenkin tilanteiden voidaan ennustaa syntyvän.
Disease situation
Tautitilanne
Potential problem
Mahdollinen ongelma
Diagnostic criteria
Diagnoosikriteeri
Non specific signs, no official suspicion
Ei spesifisiä oireita, ei virallista epäilyä
Isolated holding
Eristyksissä oleva tila
Carry out rapid detection based on M gene RT-PCR.
Tehdään M-geenin RT-PCR-menetelmään pohjautuva nopea osoitustesti.
Differential diagnosis as required
Erotusdiagnoosi tarvittaessa.
Primary suspected outbreak
Epäilty primääritautipesäke
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation
Toteutetaan taudinmääritystä varten täysi testaus, viruksen eristäminen ja kuvaus.
Holding in densely populated poultry area
Tila korkean siipikarjatiheyden alueella
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation, but concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
Toteutetaan taudinmääritystä varten täysi testaus, viruksen eristäminen ja kuvaus mutta keskitytään nopean osoituksen ja kuvaamisen menetelmiin ja erityisesti niihin, jotka perustuvat RT-PCR-menetelmään ja sekvenssianalyysiin [1].
Second and subsequent suspected outbreaks
Toinen ja myöhempi epäilty tautipesäke
Isolated holdings, epidemiologically linked to primary suspected outbreak
Eristyksissä olevat tilat, joilla on epidemiologinen yhteys epäiltyyn primääritautipesäkkeeseen
Concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
Keskitytään nopean osoituksen ja kuvaamisen menetelmiin ja erityisesti niihin, jotka perustuvat RT-PCR-menetelmään ja sekvenssianalyysiin [1].
Holdings in densely populated poultry area or with many epidemiological links
Tila korkean siipikarjatiheyden alueella tai useita epidemiologisia yhteyksiä
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus [1].
Luotetaan nopean osoituksen menetelmiin, joilla saadaan aikaisimmin näyttöä jonkin lintuinfluenssaviruksen esiintymisestä [1].
Multiple suspected outbreaks or disease spreading rapidly including surveillance
Useita tautipesäke-epäilyjä tai tauti leviää nopeasti, vaikka valvontaa harjoitetaan
Spread will become uncontrollable without rapid intervention
Ilman nopeita toimia leviäminen muodostuu hallitsemattomaksi
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus or rely on clinical signs [1].
Luotetaan nopean osoituksen menetelmiin, joilla saadaan aikaisimmin näyttöä jonkin lintuinfluenssaviruksen esiintymisestä, tai toimitaan kliinisten oireiden perusteella [1].
Diagnosis of infection with AI viruses in pigs and other mammals
Sikojen ja muiden nisäkkäiden lintuinfluenssavirustartuntojen taudinmääritys
AI in pigs
Lintuinfluenssa sioilla
AI viruses readily infect pigs and although replication is in most cases relatively restricted, there is a potential that infected pigs could transmit the disease to poultry and other susceptible animals.
Lintuinfluenssavirukset tarttuvat helposti sikoihin, ja vaikka monistuminen on useimmissa tapauksissa suhteellisen vähäistä, tartunnan saaneet siat saattavat levittää tautia siipikarjaan ja muihin taudille alttiisiin eläimiin.
To date, there is no evidence from the field that infected pigs transmit AI viruses of H5 and H7 subtypes.
Tähän mennessä ei ole saatu kentältä näyttöä siitä, että tartunnan saaneet siat levittäisivät alatyyppejä H5 ja H7 olevia lintuinfluenssaviruksia.
Experience gained during the outbreak in the Netherlands in 2003 indicated that H7N7 infected pigs did not show clinical signs that could be attributed to the H7N7-infection.
Alankomaissa vuonna 2003 tapahtuneen taudinpurkauksen aikana saatu kokemus osoittaa, että H7N7-tartunnan saaneilla sioilla ei ollut havaittavissa kliinisiä oireita, jotka olisivat johdettavissa H7N7-tartuntaan.
Moreover, apparently no diseased pigs have been reported to date during the H5N1 outbreak in Asia and elsewhere.
H5N1-viruksen aiheuttaman taudinpurkauksen kuluessa Aasiassa ja muualla ei ilmeisesti ole tähän mennessä raportoitu sairastuneista sioista.
Therefore, clinical signs may not be relied upon to indicate whether pigs are infected although clinical presentation due to infection of pigs with other influenza viruses of avian origin, can occur once a virus has become adapted to the host.
Näin ollen ei voida luottaa siihen, että tartunnan saaneet siat paljastuisivat kliinisten oireiden ansiosta, vaikkakin tautia saattaa esiintyä kliinisesti sikojen saatua tartunnan muusta lintuperäisestä influenssaviruksesta, sitten kun virus on mukautunut isäntäänsä.
The diagnosis of AI virus infections of pigs is essentially similar to diagnosis for avian species, relying on virus isolation, molecular techniques and detection of specific antibodies using haemagglutination inhibition tests.
Sikojen lintuinfluenssavirustartunnan taudinmääritys tapahtuu olennaisilta osin samalla tavalla kuin taudinmääritys lintulajeilla eli siinä eristetään virus, käytetään molekyylirakenteeseen perustuvia menetelmiä ja todetaan spesifiset vasta-aineet hemagglutinaation inhibitiotestien avulla.
There are, however, certain differences and none of the tests are fully validated for the use in pigs to confirm infection with AI viruses.
Tiettyjä eroja kuitenkin on, eikä yhtäkään testeistä ole täysin validoitu käytettäväksi sioilla lintuinfluenssavirusten aiheuttaman tartunnan vahvistamiseksi.
Samples for virus isolation
Näytteet viruksen eristämiseksi
AI virus infections in pigs are usually restricted to the respiratory tract and samples must be respiratory tract tissues and, if appropriate, oropharyngeal or nasal swabs, preferably taken from pigs showing signs of that disease.
Lintuinfluenssatartunta rajoittuu sioilla yleensä hengitysteihin, ja niiltä on otettava näytteet hengitystiekudoksista sekä tarvittaessa pyyhkäisynäytteet henkitorvesta tai kärsästä — ne otetaan mieluiten sioilta, joilla on havaittavissa taudin oireita.
These samples and swabs may be processed for virus isolation or molecular detection of virus, using the same techniques described above for samples from birds.
Näitä näytteitä ja pyyhkäisynäytteitä voidaan käsitellä viruksen eristämiseksi tai viruksen molekyylien toteamiseksi käyttäen samoja menetelmiä kuin edellä kuvattiin linnuista otettujen näytteiden kohdalla.
However, when using PCR techniques, proper controls must be used to ensure that the amplification is not inhibited by substances in the samples from pigs.
Kun käytetään PCR-menetelmiä, on kuitenkin järjestettävä asianmukainen kontrolli sen varmistamiseksi, etteivät sioilta otetuissa näytteissä olevat tekijät estä monistumista.
Inoculation and incubation of eggs
Munien inokulointi ja inkubointi
To isolate mammalian influenza viruses in 9- to 11-day-old embryonated fowls' eggs it is usual practice to inoculate each egg via the allantoic cavity and into the amniotic cavity.
Nisäkkäiden influenssavirusten eristämiseksi 9—11 vuorokauden vanhoissa alkioasteella olevissa kananmunissa käytäntönä on tavallisesti, että jokainen muna inokuloidaan allantoisontelon kautta amniononteloon.
However, when testing pigs in contact with AI viruses, when virus has had little opportunity to adapt, allantoic cavity inoculation is probably sufficient.
Testattaessa lintuinfluenssavirusten kanssa kosketuksissa olleita sikoja, kun viruksella on ollut vähäiset mahdollisuudet mukautua, inokulointi allantoisonteloon todennäköisesti riittää.
Similarly, 35 oC is usually recommended for the incubation temperature for isolation of mammalian influenza A viruses, but again for viruses poorly adapted to pigs, 37 oC is not be detrimental to virus isolation.
Inkubaatiolämpötilaksi suositellaan yleensä 35 °C nisäkkäiden influenssa A -virusten eristämiseksi, mutta jälleen jos on kyse huonosti sikoihin sopeutuneista viruksista, 37 °C ei ole vahingollista viruksen eristämisen kannalta.
Test for specific antibodies in HI tests
Spesifisten vasta-aineiden testaus HI-testeissä
Virus isolation or molecular detection are likely to be the most sensitive for determining AI virus infections of pigs.
Viruksen eristäminen tai spesifisten molekyylien osoittaminen ovat todennäköisesti herkimmät menetelmät sikojen lintuinfluenssavirustartunnan toteamiseksi.
However, serological responses in pigs have been detected in the absence of virus isolation or detection.
Sioilla on kuitenkin todettu serologisia vasteita, vaikkei virusta ole pystytty eristämään tai osoittamaan.
HI tests, using pig sera, require some modifications to the test used for avian sera referred to in Chapter VIII.
Kun tehdään HI-testi sikojen seerumista, on VIII luvussa tarkoitettuun lintujen seerumia käyttävään testiin tehtävä joitakin mukautuksia.
Pig sera are notorious for their property of non-specific inhibition in HI tests and therefore each serum sample must be treated with a receptor destroying enzyme (RDE) to prevent this from occurring.
Sian seerumi on tunnettu ei-spesifisestä inhibitiosta HI-testeissä, ja inhibition estämiseksi jokaista seeruminäytettä on käsiteltävä reseptoreja tuhoavalla entsyymillä (RDE).
The following method must be used:
On käytettävä seuraavaa menetelmää:
To 100 μl of pig antiserum add 400 μl RDE (predetermined working dilution) and mix thoroughly.
Lisätään 100 μl:aan sian antiseerumia 400 μl RDE:tä (ennalta määritetty käyttölaimennos) ja sekoitetaan läpikotaisin.
Incubate at 37 oC for one hour.
Inkuboidaan 37 °C:ssa yhden tunnin ajan.
Then incubate for 30 minutes at 56 oC.
Inkuboidaan sitten 30 minuutin ajan 56 °C:ssa.
Cool samples at 4 oC for a minimum of 15 minutes.
Jäähdytetään näytteet 4 °C:ssa vähintään 15 minuutin ajan.
Add 10 μl of 30 % (v/v packed cells) chick red blood cells and mix vigorously.
Lisätään 10 μl 30-prosenttisia (v/v pakattuja soluja) kananpojan punasoluja ja sekoitetaan voimakkaasti.
The treated serum is then used in HI tests as described for avian sera in paragraph [..], the initial dilution is 1:10.
Tällä tavoin käsiteltyä seerumia käytetään sitten HI-testeissä kuten lintujen seerumin osalta kuvataan [..] kohdassa; alkulaimennos on 1:10.
A set of sera of pigs with a known sero-negative status regarding AI must be used to assess the specificity of the HI test for the virus strain to be used (see use of virus strain for serology derived from the outbreak; Chapter VIII).
HI-testien spesifisyyttä kyseiselle viruskannalle on arvioitava käyttäen sikojen seerumeita, joiden tiedetään olevan lintuinfluenssan suhteen seronegatiivisia (ks. tautipesäkkeestä saadun viruskannan käyttö serologiassa; VIII luku).
During the outbreak in the Netherlands in 2003 up to 2,6 % non-specific reactors were detected in the HI test using pig sera that were collected independently of the outbreak
Alankomaissa vuonna 2003 tapahtuneen taudinpurkauksen aikana HI-testissä todettiin jopa 2,6 % ei-spesifisiä reaktiivisia aineita, kun käytettiin sian seerumia, joka oli kerätty taudinpurkauksesta erillään.
Sampling of pigs
Näytteiden ottaminen sioilta
Particularly on farms that keep both pigs and poultry, either mixed or in separate houses, pigs are at risk of becoming infected with AI directly or indirectly via contact with poultry or poultry products.
Erityisesti sekä sikoja että siipikarjaa — joko samoissa tai erillisissä kasvattamoissa — pitävillä tiloilla siat ovat vaarassa saada lintuinfluenssatartunnan suoraan tai välillisesti oltuaan kosketuksissa siipikarjaan tai siipikarjatuotteisiin.
To exclude such infection, oropharyngeal or nasal swabs and blood samples must be collected according to the procedures described in point 8.21 of Chapter IV.
Tällaisen tartunnan sulkemiseksi pois on kerättävä henkitorvesta tai kärsästä otettavat pyyhkäisynäytteet ja verinäytteet IV luvun 8.21 kohdassa kuvattujen menettelyjen mukaisesti.
Samples must be obtained from pigs that show clinical signs of the disease.
Näytteet on otettava sioilta, joilla on havaittavissa taudin kliinisiä oireita.
However, when they do not show any clinical signs, samples may be collected at random over all sections of the house.
Jos sioilla ei kuitenkaan ole havaittavissa mitään kliinisiä oireita, näytteet voidaan kerätä sattumanvaraisesti kasvattamon eri puolilta.
If available in the laboratory, swabs must be tested in rapid molecular tests and/or virus isolation.
Pyyhkäisynäytteille on tehtävä nopeat molekyylitestit ja/tai viruksen eristämistesti, jos tällaiset ovat käytettävissä kyseisessä laboratoriossa.
The RT-PCR must have been appropriately validated and have a sensitivity at least equivalent to virus isolation in eggs for influenza A viruses.
RT-PCR-menetelmä on täytynyt validoida asianmukaisesti, ja sen on oltava vähintään yhtä herkkä kuin testin, jolla influenssa A -virus eristetään munissa.
Two to four weeks after culling of the AI infected poultry, at least 60 blood samples must be collected from pigs in such a way that at least some samples are obtained from groups of pigs that are in direct contact with each other.
Kahdesta neljään viikkoon lintuinfluenssatartunnan saaneen siipikarjan lopettamisen jälkeen sioilta on kerättävä vähintään 60 verinäytettä siten, että ainakin jotkin näytteistä hankitaan sellaisilta sikaryhmiltä, jotka ovat suoraan kosketuksissa toisiinsa.
Samples must be tested in the HI test using virus derived from the poultry outbreak.
Näytteet on testattava HI-testissä käyttäen siipikarjan keskuudessa ilmenneestä tautipesäkkeestä peräisin olevaa virusta.
Samples from both the acute and convalescent phases must be tested in the same test.
Samassa testissä on testattava sekä taudin akuutista että toipumisvaiheesta otettuja näytteitä.
Positive samples can be confirmed using virus neutralisation and/or Western blot analyses.
Positiiviset näytteet voidaan vahvistaa käyttäen virusten neutralisaatiotestiä ja/tai Western blot -menetelmää.
When any of those samples test positive, an epidemiological investigation on all pig farms located within the protection zone must be carried out, irrespective whether they are of mixed type or not.
Jos jokin näytteistä osoittautuu positiiviseksi, kaikilla suojavyöhykkeellä sijaitsevilla sikatiloilla on tehtävä epidemiologinen selvitys riippumatta siitä, ovatko tilat sekatyyppiä vai eivät.
AI viruses in other mammals other than pigs
Lintuinfluenssavirukset muilla nisäkkäillä kuin sioilla
Investigations in other mammals other than pigs which are susceptible to AI including cats must be undertaken.
Tutkimuksia on tehtävä sellaisilla muillakin nisäkkäillä kuin sioilla, jotka ovat lintuinfluenssavirukselle alttiita, esimerkiksi kissoilla.
With specific reference to HPAI H5N1, the following must be carried out for testing cats:
Ottaen erityisesti huomioon HPAI H5N1 -viruksen kissoja testattaessa on toimittava seuraavasti:
Gross pathological lesions, associated with viral replication, concentrate on the lungs and liver, therefore samples for virological investigations must preferably be taken from these organs of dead animals.
Paljain silmin näkyvät patologiset muutokset, jotka liittyvät virusreplikaatioon, keskittyvät keuhkoihin ja maksaan, minkä vuoksi näytteet virologisia tutkimuksia varten on kuolleilta eläimiltä otettava mieluiten juuri näistä elimistä.
In living animals, preferably tracheal/oropharyngeal swabs must be taken for virus detection.
Eläviltä eläimiltä on viruksen toteamista varten otettava mieluiten pyyhkäisynäytteet henkitorvesta/nielusta.
In addition, faecal swabs can be taken separately.
Ulosteesta voidaan lisäksi erikseen ottaa pyyhkäisynäytteet.
Blood samples to be examined in HI assays require heat treatment for 56 oC for 30 minutes and RDE treatment can be omitted.
HI-määrityksissä tutkittaville verinäytteille on tehtävä lämpökäsittely 56 °C:ssa 30 minuutin ajan mutta RDE-käsittely voidaan jättää tekemättä.
Minimum safety requirements for the transport of samples
Vähimmäisturvallisuusvaatimukset näytteiden kuljettamiseksi
The transport of samples in which pathogens are known to be present or suspected of being present are the subject of strict national and international regulations that must be adhered to at all times.
Sellaisten näytteiden kuljettamisessa, joissa tiedetään tai epäillään esiintyvän patogeenejä, on aina noudatettava tiukkoja kansallisia ja kansainvälisiä säännöksiä.
Virus isolates are not classified as diagnostic samples but must be packaged in accordance with international standards.
Eristettyjä viruskantoja ei luokitella diagnostisiksi näytteiksi, vaan ne on pakattava kansainvälisten standardien mukaisesti.
The instructions set out in this chapter are for air transport, but similar packaging must be used for land or sea transport of samples.
Tässä luvussa esitetyt ohjeet koskevat ilmakuljetuksia, mutta samanlaisia pakkauksia on käytettävä myös kuljetettaessa näytteet maitse tai meritse.
Packing diagnostic specimens for transport
Diagnostisten näytteiden pakkaaminen kuljetusta varten
Diagnostic specimens transported under the IATA Regulations are assigned to UN identification number 2814, 2900, or 3373, as relevant.
IATA:n sääntöjen mukaan kuljetettaville diagnostisille näytteille annetaan UN-numero 2814, 2900 tai 3373.
The shipper and not the transport company is responsible for the shipment until the package reaches the consignee.
Lähettäjä — ei kuljetusyhtiö — on vastuussa lähetyksestä, kunnes paketti saapuu vastaanottajalle.
Primary packaging
Primaaripakkaus
Primary receptacle(s) must be water tight, for example, screw caps must be sealed with parafilm or adhesive tape or similar protections taken.
Primaariastian(astioiden) on oltava vedenpitävä, esim. kierrekorkit on suljettava parafilmillä tai teipillä tai on ryhdyttävä vastaaviin varotoimiin.
Multiple primary receptacles must be wrapped individually to prevent breakage.
Jos primaariastioita on useita, ne on käärittävä yksitellen rikkoontumisen estämiseksi.
When determining the volume of diagnostic specimens being shipped, the viral transport media must be taken into account.
Määritettäessä lähetettävien diagnostisten näytteiden tilavuutta on otettava huomioon viruksen kuljetuselatusaine.
Primary receptacle(s) must not contain more than 500 ml or 500 g.
Primaariastioiden enimmäissisältö saa olla 500 ml tai 500 g.
The entire contents of the primary receptacle is the diagnostic specimen.
Primaariastian koko sisältö muodostaa diagnostisen näytteen.
Secondary packaging
Sekundaaripakkaus
Enough absorbent material in the secondary container to absorb the entire contents of all primary receptacles in case of leakage or damage must be used.
Sekundaaripakkaukseen on laitettava riittävästi imukykyistä materiaalia imemään kaikkien primaariastioiden koko sisältö, jos primaariastiat vuotavat tai vahingoittuvat.
Secondary packaging must meet the IATA packaging requirements for diagnostic specimens including 1,2 metres (3,9 feet) drop test procedure.
Sekundaaripakkauksen on täytettävä diagnostisia näytteitä koskevat IATA:n pakkausvaatimukset, mukaan lukien 1,2 metrin (3,9 jalan) pudotustestimenettely.
Since infectious substance packaging surpasses the requirements for diagnostic specimen packaging, in the IATA Packing Instruction 602, it may be used.
Tartuntavaarallisen aineen pakkausta (IATA:n pakkausohje 602) saa käyttää, koska tällainen pakkaus ylittää diagnostisen näytteen pakkausta koskevat vaatimukset.
Infectious substance packaging must have the required specification markings on packaging (UN will be in a circle), for example:
Tartuntavaarallisen aineen pakkauksessa on oltava vaaditut merkinnät (lyhenne ”UN” on ympyröity): Esimerkki:
‘UN 4G/CLASS 6.2/99/GB/2450’
”UN 4G/CLASS 6.2/99/GB/2450”
Secondary packaging must be watertight.
Sekundaaripakkauksen on oltava vedenpitävä.
The packaging manufacturer or other authorised party's packing instructions, included with the secondary packaging, must be followed.
On noudatettava pakkauksen valmistajan tai muun valtuutetun osapuolen pakkausohjeita, jotka toimitetaan sekundaaripakkauksen mukana.
Secondary packaging must be at least 100 mm (four inches) in the smallest overall external dimension.
Sekundaaripakkauksen ulkoisten mittojen on pienimmillään oltava vähintään 100 mm (neljä tuumaa).
Secondary packaging must be large enough for shipping documents, such as an air waybill.
Sekundaaripakkauksen on oltava riittävän suuri lastausasiakirjoja, kuten lentorahtikirjaa, varten.
Outer packaging
Ulkopakkaus
The outer packaging must not contain more than 4 l or 4 kg.
Ulkopakkauksen sisältö saa olla enintään 4 l tai 4 kg.
If required, either dry ice or wet ice must be placed outside the secondary packaging.
Tarvittaessa sekundaaripakkauksen ulkopuolelle on asetettava joko kuivajäätä tai märkää jäätä.
If using dry ice the packaging must permit the release of carbon dioxide gas and not allow a build-up of pressure that could rupture the packaging.
Jos käytetään kuivajäätä, pakkauksesta on voitava vapautua hiilidioksidikaasua, eikä siinä saa syntyä sellaista painetta, että pakkaus voisi revetä.
If using wet ice, the packaging must be leak-proof.
Jos käytetään märkää jäätä, pakkauksen on oltava tiivis.
Each package and the air waybill must be marked with the following exact wording:
Jokaisessa pakkauksessa ja lentorahtikirjassa on oltava seuraava merkintä täsmälleen tässä sanamuodossa:
‘UN 3373 DIAGNOSTIC SPECIMEN
”UN 3373 DIAGNOSTIC SPECIMEN
An itemised list of contents must be enclosed between the secondary packaging and the outer packaging.
Sekundaaripakkauksen ja ulkopakkauksen välissä on oltava yksilöity luettelo sisällöstä.
The outer packaging must be placed in a sealed plastic bag to protect from moisture.
Ulkopakkaus on asetettava suljettuun muovipussiin sen suojaamiseksi kosteudelta.
A Shipper's Declaration for Dangerous Goods is not required.
Vaarallisia aineita koskevaa lähettäjän ilmoitusta ei vaadita.
Dispatch of viruses and samples to the Community reference laboratory
Virusten ja näytteiden lähettäminen yhteisön vertailulaboratorioon
The samples to be sent to the Community reference laboratory need to comply with the recommendations for the transport of dangerous pathogens within the Community and also regulations and legislation in force in the United Kingdom.
Yhteisön vertailulaboratorioon lähetettävien näytteiden on oltava vaarallisten patogeenien kuljettamista yhteisössä koskevien suositusten samoin kuin Yhdistyneessä kuningaskunnassa voimassa olevien sääntöjen ja lainsäädännön mukaisia.
The instructions set out in this chapter must be followed.
Tässä luvussa esitettyjä ohjeita on noudatettava.
Dispatch of viruses or other materials to the Community reference laboratory
Virusten tai muun materiaalin lähettäminen yhteisön vertailulaboratorioon
All materials must be packed in accordance with the instructions set out in this Chapter.
Kaikki materiaalit on pakattava tässä luvussa esitettyjen ohjeiden mukaisesti.
The outer packaging must be marked as follows:
Ulkopakkaukseen on laitettava seuraava merkintä:
‘ANIMAL PATHOGEN — PACKAGE ONLY TO BE OPENED AT THE AVIAN VIROLOGY SECTION, VLA, WEYBRIDGE.
”ANIMAL PATHOGEN — PACKAGE ONLY TO BE OPENED AT THE AVIAN VIROLOGY SECTION, VLA, WEYBRIDGE.
IMPORTATION AUTHORISED BY LICENCE NUMBER …*… ISSUED UNDER THE IMPORTATION OF ANIMAL PATHOGENS ORDER.’
IMPORTATION AUTHORISED BY LICENCE NUMBER …*…ISSUED UNDER THE IMPORTATION OF ANIMAL PATHOGENS ORDER.”
One of the following licence numbers must be inserted:
Mukaan on liitettävä yksi seuraavista lisenssinumeroista:
for AI viruses:
lintuinfluenssavirusten osalta: