natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Potato tubers must be cut transversely close to the heel (stolon end) or longitudinally over the stolon end.
Perunan mukulat leikataan halki maavarren kiinnityskohdan läheltä tai poikkisuuntaan kiinnityskohdan yli.
The early stage of infection is recognised by a glassy yellow to light brown discolouration of the vascular ring from which a pale cream bacterial ooze emerges spontaneously after some minutes.
Tartunnan varhaisvaihe ilmenee lasimaisena, keltaisesta vaaleanruskeaan vaihtelevana värityksenä johtosolukkorenkaassa, josta muutaman minuutin kuluttua pursuaa itsestään vaaleankeltaista bakteerimätää.
Later, the vascular discolouration becomes a more distinct brown and necrosis can extend into the parenchymatous tissue.
Myöhemmin johtojänteiden väritys muuttuu selvemmin ruskeaksi ja nekroosi voi laajeta tylppysolukkoon.
In advanced stages, infection breaks outwards from the heel end and the eyes from which bacterial slime may ooze causing soil particles to adhere.
Myöhemmässä vaiheessa tartunta leviää maavarren kiinnityskohdasta ja mukulan silmistä, ja näistä vuotaa bakteerimätää, johon kiinnittyy maahiukkasia.
Reddish-brown slightly sunken lesions may appear on the skin due to collapse of vascular tissues internally.
Kuoreen voi tulla punaruskeita hieman painuneita vioittumia, kun sisäiset johtosolukot painuvat kasaan.
Secondary development of fungal and bacterial soft rots is common in the advanced stages of the disease.
Taudin myöhemmissä vaiheissa esiintyy yleisesti sekundaarista sieni- ja bakteerimätää.
Symptoms on tomato
Oireet tomaatissa
The tomato plant.
Tomaattikasvi.
The first visible symptom is the flaccid appearance of the youngest leaves.
Ensimmäinen näkyvä oire on nuorimpien lehtien velttous.
Under favourable environmental conditions for the pathogen (soil temperatures of approximately 25 °C; saturated humidity), epinasty and wilting of one side or of the whole plant follows within a few days leading to total plant collapse.
Taudinaiheuttajalle suotuisissa ympäristöolosuhteissa (maaperän lämpötila noin 25 °C, kyllästyskosteus) on seurauksena muutaman päivän kuluessa epinastia ja kasvin yhden puolen tai koko kasvin nuutuminen, mikä johtaa koko kasvin kollapsiin.
Under less favourable conditions (soil temperature below 21 °C), less wilting occurs, but large numbers of adventitious roots may develop on the stem.
Vähemmän suotuisissa olosuhteissa (maaperän lämpötila alle 21 °C) nuutumista esiintyy vähemmän, mutta varteen saattaa kehittyä suuri määrä versojuuria.
It is possible to observe watersoaked streaks from the base of the stem which is evidence of necrosis in the vascular system.
Varressa voidaan havaita varren alaosasta lähteviä vettyneitä juovia, jotka ovat osoitus johtojärjestelmän nekroosista.
When the stem is cut crosswise, discoloured brown vascular tissues exude white or yellowish bacterial ooze.
Jos varsi leikataan poikittaissuunnassa, varren värittyneistä ruskeista johtosolukoista tihkuu valkoista tai kellertävää bakteerimätää.
Symptoms on other hosts
Oireet muissa isäntäkasveissa
Solanum dulcamara and S. nigrum plants.
Solanum dulcamara- ja S. nigrum -kasvit.
Under natural conditions, wilting symptoms are rarely observed in these weed hosts unless soil temperatures exceed 25 °C or inoculum levels are extremely high (e.g. as for S. nigrum growing adjacent to diseased potato or tomato plants).
Luonnonoloissa nuutumista esiintyy äärimmäisen harvoin näissä isäntinä toimivissa rikkakasveissa, ellei maaperän lämpötila ylitä 25 °C tai elleivät inokulaattitasot ole äärimmäisen korkeita (esim. S. nigrum, joka kasvaa saastuneiden peruna- tai tomaattikasvien vierellä).
When wilting does occur, the symptoms are as described for tomato.
Jos nuutumista esiintyy, oireet vastaavat tomaatin yhteydessä kuvattuja oireita.
Non-wilting S. dulcamara plants growing with stems and roots in water may show internal light brown discolouration of vascular tissues on transverse section of the stem base or underwater stem parts.
Nuutumattomissa S. dulcamara -kasveissa, joiden varret ja juuret kasvavat vedessä, voi ilmetä johtosolukon sisäistä vaaleanruskeaa värinmuutosta varren alaosan tai varren vedenalaisen osan poikkileikkauksessa.
Bacteria may ooze from cut vascular tissues or form threads of slime if the cut stem is placed vertically in water, even in the absence of wilting symptoms.
Vaikka nuutumisoireita ei olisikaan, bakteereja voi tihkua johtosolukosta tai ne voivat muodostaa limanauhoja, jos leikattu varsi asetetaan pystysuoraan veteen.
Rapid screening tests may facilitate presumptive diagnosis but are not essential.
Pikaseulontatestit helpottavat alustavaa taudinmääritystä, mutta ne eivät ole välttämättömiä.
Use one or more of the following validated tests:
Käytetään yhtä tai useampaa seuraavista validoiduista testeistä:
(See Section VI.A.1.)
VI jakson A kohdan 1 alakohta)
Detection of poly-ß-hydroxybutyrate (PHB) granules
Poly-β-hydroksibutyraattirakeiden (PHB) toteaminen
Characteristic PHB granules in the cells of R. solanacearum are visualised by staining heat-fixed smears of bacterial ooze from infected tissue on a microscope slide with Nile Blue A or Sudan Black (See Section VI.A.2.).
Tyypilliset PHB-rakeet R. solanacearum -bakteerin soluissa saadaan näkyviin värjäämällä saastuneesta solukosta otetusta bakteerimädästä lämpökäsittelyllä kiinnitetyt preparaatit niilinsinisellä A tai sudaninmustalla (ks. VI jakson A kohdan 2 alakohta).
(See Section VI.A.3.)
VI jakson A kohdan 3 alakohta)
Further appropriate rapid screening tests include the IF test (see Section VI.A.5.), FISH test (see Section VI.A.7.), ELISA tests (see Section VI.A.8.) and PCR tests (see Section VI.A.6).
Muita soveltuvia pikaseulontatestejä ovat IF-testi (ks. VI jakson A kohdan 5 alakohta), FISH-testi (ks. VI jakson A kohdan 7 alakohta), ELISA-testit (ks. VI jakson A kohdan 8 alakohta) ja PCR-testit (ks. VI jakson A kohdan 6 alakohta).
Remove ooze or sections of discoloured tissue from the vascular ring in the potato tuber or from the vascular strands in stems of potato, tomato or other wilting host plants.
Otetaan bakteerilimaa tai värittyneen solukon pala mukulan johtosolukkorenkaasta tai perunan tai tomaatin tai muun nuutuvan isäntäkasvin varren johtojänteistä.
Suspend in a small volume of sterile distilled water or 50mM phosphate buffer (Appendix 4) and leave for 5 to 10 minutes.
Suspendoidaan pieneen määrään steriiliä tislattua vettä tai 50 mM fosfaattipuskuriin (lisäys 4). Jätetään liuos 5–10 minuutiksi.
Prepare a series of decimal dilutions of the suspension.
Valmistetaan suspensiosta kymmenkertaisten laimennosten sarja.
Transfer 50-100 µl of the suspension and dilutions to a general nutrient medium (NA, YPGA or SPA; see Appendix 2) and/or to Kelman’s tetrazolium medium (Appendix 2) and/or a validated selective medium (e.g. SMSA; see Appendix 2).
Siirretään 50–100 µl suspensiota ja laimennoksia tavalliselle ravintoalustalle (NA, YPGA tai SPA; ks. lisäys 2) ja/tai Kelmanin tetratsoliumalustalle (lisäys 2) ja/tai validoidulle selektiiviselle alustalle (esim. SMSA; ks. lisäys 2).
Spread or streak with an appropriate dilution plating technique.
Levitetään tai sivellään maljalle tarkoituksenmukaista laimennussarjatekniikkaa käyttäen.
If useful, prepare separate plates with a diluted cell suspension of R. solanacearum biovar 2 as a positive control.
Tarvittaessa valmistetaan erillisiä maljoja, joissa on laimennettua R. solanacearum biovaria 2 -solususpensioviljelmää positiivisena kontrollina.
Incubate the plates for two to six days at 28 °C.
Inkuboidaan maljoja 2–6 päivän ajan 28 °C:ssa.
On the general nutrient media, virulent isolates of R. solanacearum develop pearly cream-white, flat, irregular and fluidal colonies often with characteristic whorls in the centre.
Tavallisella ravintoalustalla elinvoimaiset R. solanacearum -bakteerin isolaatit kehittyvät kermanvalkoisiksi, litteiksi, epäsäännöllisen muotoisiksi ja juokseviksi pesäkkeiksi, jotka ovat usein keskeltä tyypillisesti kierteisiä.
Avirulent forms of R. solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely cream-white.
Tautia aiheuttamattomat R. solanacearum -bakteerin muodot kehittävät pieniä, pyöreitä, voimaisia ja kokonaisuudessaan kermanvalkoisia pesäkkeitä, jotka eivät ole juoksevia.
On Kelman’s tetrazolium and SMSA media, the whorls are blood red in colour.
Kelmanin tetratsolium- ja SMSA-alustalla kierteet ovat väriltään verenpunaisia.
Avirulent forms of Ralstonia solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely deep red.
Tautia aiheuttamattomat Ralstonia solanacearum -bakteerin muodot kehittävät pieniä, pyöreitä, voimaisia ja kokonaisuudessaan syvänpunaisia pesäkkeitä, jotka eivät juoksevia.
Tests to confirm identity of presumptive isolates of R. solanacearum are shown in Section VI.B.
Testit, joilla vahvistetaan oletettujen R. solanacearum -isolaattien tunnistus, esitetään VI jakson B kohdassa.
Detailed methods for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato tubers
Yksityiskohtaiset menetelmät Ralstonia solanacearum -kasvintuhoojan toteamiseksi ja tunnistamiseksi oireettomista mukulanäytteistä
Note:
HUOMAUTUS:
The potato extract described below can also be used for detection of the potato ring rot bacterium, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Jäljempänä kuvattua perunauutetta voidaan käyttää myös perunan vaaleaa rengasmätää aiheuttavan Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus -bakteerin toteamiseen.
Optional pre-treatment in advance to sample preparation:
Näytteiden valmistamista edeltävät vapaavalintaiset esikäsittelyt:
Incubation of samples at 25 to 30 °C, for up to two weeks before testing, to encourage multiplication of any R. solanacearum populations.
Inkuboidaan näytteitä 25–30 °C:ssa enintään 2 viikon ajan ennen testausta mahdollisten R. solanacearum -populaatioiden lisääntymisen helpottamiseksi.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove pathogen DNA) and detergents between each sample.
Kunkin näytteen jälkeen käytetään tarkoituksenmukaisia desinfiointiaineita (tehtäessä PCR-testi on käytettävä klooriyhdisteitä patogeenisen DNA:n poistamiseksi) ja puhdistusaineita.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel (stolon) end of each tuber so that the vascular tissues become visible.
Poistetaan puhtaalla ja desinfioidulla leikkausveitsellä tai vihannesveitsellä kuori mukulan napapäästä siten, että johtosolukot tulevat näkyviin.
Carefully cut out a small core of vascular tissue at the heel end and keep the amount of non-vascular tissue to a minimum. (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Leikataan varovasti pieni kartionmuotoinen kappale johtosolukosta kunkin mukulan napapäästä ja yritetään pitää muun solukon kuin johtosolukon osuus mahdollisimman pienenä (ks. www-sivusto osoitteessa http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Note: Set aside any (rotting) tubers with suspected brown rot symptoms and test separately.
Huomautus: Laitetaan sivuun jokainen (pilaantunut) mukula, jossa on tummaksi rengasmädäksi epäiltyjä oireita, ja testataan yksittäin.
All tubers including those with suspicioussymptoms should be kept according to Annex III.
Kaikki mukulat (myös ne, joissa on epäilyttäviä oireita) olisi säilytettävä liitteen III mukaisesti.
Cover the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4) and agitate on a rotary shaker (50-100 rpm) for 4 hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
peitetään kappaleet riittävällä määrällä (noin 40 ml) uuttopuskuria (lisäys 4) ja sekoitetaan tasoravistimella (50–100 rpm:n kierrosnopeudella) neljän tunnin ajan alle 24 °C:ssa tai 16–24 tunnin ajan jäähdytettyinä;
Homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
homogenoidaan kappaleet riittävällä määrällä (noin 40 ml) uuttopuskuria (lisäys 4) joko sekoittimella (esim. Waring tai Ultra Turrax) tai murskaamalla suljetussa kertakäyttöisessä liotepussissa (esim. luja Stomacher- tai Bioreba-polyeteenipussi, jonka mitat ovat 150 mm × 250 mm, säteilysteriili) käyttäen kumivasaraa tai sopivaa jauhamisvälinettä (esim. Homex).
Note: The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Huomautus: Näytteiden ristikontaminaation riski on suuri silloin, kun näytteet homogenoidaan sekoittimella.
Ensure that freshly sterilised blender blades and vessels are used for each sample.
On varmistettava, että jokaista näytettä varten käytetään vasta steriloituja sekoittimen lapoja ja astioita.
If the PCR test is to be used, avoid carry-over of DNA on containers or grinding apparatus.
Jos aiotaan tehdä PCR-testi, on vältettävä DNA:n siirtyminen astioihin tai jauhamislaitteisiin.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Tehtäessä PCR-testi on suositeltavaa suorittaa murskaaminen kertakäyttöisissä pusseissa ja käyttää kertakäyttöisiä putkia.
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (approximately 10 ml) extraction buffer.
Jos liuos on liian sameaa, sitä kirkastetaan joko hitaasti sentrifugoiden (enintään 180 g kymmenen minuutin ajan 4–10 °C:n lämpötilassa) tai suodatetaan liuos (40–100 µm:n huokoskoon vakuumisuodatusjärjestelmällä) ja pestään suodatin vielä uuttopuskurilla (10 ml).
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Konsentroidaan bakteerifraktio sentrifugoimalla 7000 g 15 minuutin ajan (tai 10000 g 10 minuutin ajan) 4–10 °C:n lämpötilassa ja poistetaan supernatantti sakkaa sekoittamatta.
Resuspend the pellet in 1.5 ml pellet buffer (Appendix 4).
Suspendoidaan sakka uudelleen 1,5 ml:aan sakkapuskuria (lisäys 4).
Use 500 µl to test for R. solanacearum, 500 µl for Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus and 500 µl for reference purposes.
Käytetään 500 µl:aa R. solanacearum -bakteerin testaamiseksi, 500 µl:aa Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus -bakteerin testaamiseksi ja 500 µl:aa vertailutarkoituksiin.
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (months).
Lisätään 10–25 % (v/v) steriiliä glyserolia 500 µl:aan vertailuarvona olevaan määräosaan ja jäljellä olevaan testimääräosaan, sekoitetaan ja varastoidaan –16––24 °C:n lämpötilaan (viikoiksi) tai –68––86 °C:n lämpötilaan (kuukausiksi).
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Säilytetään testimääräosat 4–10 °C:ssa testauksen ajan.
It is imperative that all R. solanacearum positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
Saastunnan välttämiseksi on ehdottoman tärkeää käsitellä näytteet ja R. solanacearum -positiiviset vertailu-, kontrolli- ja valvontanäytteet toisistaan erillään.
See Flow chart and description of the tests and optimised protocols in the relevant appendices:
Ks. vuokaavio ja testien kuvaus sekä optimoidut protokollat niitä käsittelevissä lisäyksissä:
Selective isolation (see Section VI.A.4.)
Eristäminen selektiivisellä alustalla (ks. VI jakson A kohdan 4 alakohta)
IF test (see Section VI.A.5.)
IF-testi (VI jakson A kohdan 5 alakohta)
PCR tests (see Section VI.A.6.)
PCR-testi (VI jakson A kohdan 6 alakohta)
FISH test (see Section VI.A.7.)
FISH-testi (VI jakson A kohdan 7 alakohta)
ELISA tests (see Section VI.A.8.)
ELISA-testi (VI jakson A kohdan 8 alakohta)
Bioassay (see Section VI.A.9.)
Biologinen määritys (VI jakson A kohdan 9 alakohta).
Detailed methods for detection and identification of R. solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Yksityiskohtaiset menetelmät R. solanacearum -kasvintuhoojan toteamiseksi ja tunnistamiseksi oireettomista perunoista, tomaateista tai muista isäntäkasveista
Note: For detection of latent R. solanacearum populations it is advised to test composite samples.
Huomautus: Piilevien R. solanacearum -kantojen toteamiseksi on suositeltavaa käyttää kokoomanäytteitä.
Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.
Jos tehdään tutkimuksia, niiden olisi perustuttava tilastollisesti edustavaan otokseen tutkittavana olevasta kasvipopulaatiosta.
Collect 1 to 2 cm stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Kerätään 1–2 cm:n kokoiset varren palaset suljettavaan steriiliin astiaan seuraavien näytteenottomenetelmien mukaisesti:
Other hosts: With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Muut isäntäkasvit: Poistetaan desinfioiduilla leikkausveitsellä tai oksasaksilla 1 cm:n palanen kunkin varren alaosasta juuri maanpinnan yläpuolelta.
Pathogen detection will be most reliable during late spring, summer and autumn seasons, although natural infections can be detected all year round in the perennial Solanum dulcamara growing in watercourses.
Taudinaiheuttaja voidaan luotettavimmin havaita loppukeväästä, kesällä ja syksyllä, vaikka luonnossa voidaankin havaita tartuntoja läpi vuoden vesistöissä kasvavissa monivuotisissa Solanum dulcamara -kasveissa.
Known hosts include volunteer potato plants (groundkeepers), Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium and other members of the family Solanaceae.
Tunnettuja isäntäkasveja ovat ylivuotiset perunakasvit, Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium ja muut Solanaceae-heimon jäsenet.
Further hosts are Pelargonium spp. and Portulaca oleracea.
Muita isäntäkasveja ovat Pelargonium spp. ja Portulaca oleracea.
Some European weed spp. which may potentially harbour R. solanacearum biovar 2/Race 3 populations in roots and/or rhizospheres under specific environmental conditions include Atriplex hastata, Bidens pilosa, Cerastium glomeratum, Chenopodium album, Eupatorium cannabinum, Galinsoga parviflora, Ranunculus scleratus, Rorippa spp, Rumex spp., Silene alba, S. nutans., Tussilago farfarra and Urtica dioica.
Muita eurooppalaisia rikkakasvilajikkeita, joiden juurissa ja/tai ritsosfäärissä (juurten ympäristössä) voidaan tietyissä ympäristöoloissa tavata R. solanacearum biovarin 2 rodun 3 populaatioita, ovat Atriplex hastata, Bidens pilosa, Cerastium glomeratum, Chenopodium album, Eupatorium cannabinum, Galinsoga parviflora, Ranunculus scleratus, Rorippa spp., Rumex spp., Silene alba, S. nutans., Tussilago farfarra ja Urtica dioica.
Note: Visual examination for internal symptoms (vascular staining or bacterial ooze) can be done at this stage.
Huomautus: Kasveja voidaan tässä vaiheessa tarkastella silmämääräisesti sisäisten oireiden varalta (johtosolukon värjäytyminen tai bakteerimätä.
Set aside any stem segments with symptoms and test separately (See Section II).
Laitetaan sivuun kaikki varren osat, joissa on oireita, ja testataan erikseen (ks. II jakso).
Disinfect stem segments briefly with ethanol 70 % and immediately blot dry on tissue paper.
Desinfioidaan varren osat pikaisesti 70-prosenttisella etanolilla ja kuivataan välittömästi paperipyyhkeeseen taputtamalla.
Then process the stem segments by one of the following procedures: either,
Käsitellään tämän jälkeen varren palaset yhtä seuraavista menettelyistä noudattaen: joko
Cover the segments with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated, or
peitetään kappaleet riittävällä määrällä (noin 40 ml) uuttopuskuria (lisäys 4) ja sekoitetaan tasoravistimella (50–100 rpm:n kierrosnopeudella) neljän tunnin ajan alle 24 °C:ssa tai 16–24 tunnin ajan jäähdytettyinä; tai
Process immediately by crushing the segments in a strong maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba) with an appropriate volume of extraction buffer (Appendix 4) using a rubber mallet or appropriate grinding apparatus (e.g. Homex).
käsitellään välittömästi jauhamalla palaset lujassa pussissa (esim. Stomacher tai Bioreba) siten, että siinä on sopiva määrä uuttopuskuria (lisäys 4), käyttäen kumivasaraa tai sopivaa jauhamisvälinettä (esim. Homex).
Further clarification of the extract or concentration of the bacterial fraction are not usually required but may be achieved by filtration and/or centrifugation as described in Section III.1.1.3 – 1.1.5.
Uutteen kirkastaminen lisää tai bakteerifraktion konsentrointi ei yleensä ole tarpeen mutta voidaan tehdä suodattamalla ja/tai sentrifugoimalla, kuten III jakson 1.1.3–1.1.5 kohdassa kuvataan.
Divide the neat or concentrated sample extract into two equal parts.
Jaetaan laimentamaton tai konsentroitu näyteuute kahteen yhtä suureen osaan.
Maintain one half at 4 to 10 °C during testing and store the other half with 10 to 25 % (v/v) sterile glycerol at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (month) in case further testing is required.
Pidetään toista osaa 4–10 °C:n lämpötilassa testauksen ajan ja varastoidaan toinen puolisko 10–25 %:ssa (v/v) steriilissä glyserolissa –16––24 °C:n lämpötilaan (viikoiksi) tai –68––86 °C:n lämpötilaan (kuukaudeksi), mikäli lisätestaus on tarpeen.
Sample of water (1)
vesinäyte (1)
Concentration of the pathogen (2)
patogeenin konsentrointi (2)
CORE SCREENING TEST
SEULONTATESTI
Selective isolation (3)
selektiivinen eristäminen (3)
optional auxiliary tests: bioassay (4) / enrichment PCR (5) / enrichment ELISA (6)
valinnaiset lisätestit: biologinen määritys (4) / rikastus-PCR (5) / rikastus-ELISA (6)
Colonies with typical morphology (7) after isolation
morfologialtaan tyypillisiä pesäkkeitä (7) eristämisen jälkeen
sample not contaminated by
näyte ei ole
IDENTIFICATION TESTS (9)
TUNNISTUSTESTIT (9)
PATHOGENICITY TEST (10)
PATOGEENISYYSTESTI (10)
Sample not contaminated by
näyte ei ole
Sample contaminated by
näyte on
See Section IV.2.1. for recommended sampling procedures.
Ks. suositellut näytekoot IV jakson 2.1 kohta.
Pathogen concentration methods are described in Section IV.2.1.
Taudinaiheuttajan konsentrointimenetelmät kuvataan IV jakson 2.1 kohdassa.
Concentration increases populations of both pathogen and competing saprophytic bacteria and is recommended only if it does not result in inhibition of the isolation test.
Konsentroinnissa sekä taudinaiheuttajan että sen kanssa kilpailevien saprofyyttisten bakteerien populaatiot kasvavat, ja sitä suositellaankin ainoastaan, jos sen seurauksena eristystesti ei tule mahdottomaksi.
The bioassay test is described in Section VI.A.9.
Biologinen määritys kuvataan VI jakson A kohdan 9 alakohdassa.
Enrichment PCR methods are described in Section VI.A.4.2 and Section VI.A.6.
Rikastuksen PCR-menetelmät kuvataan VI jakson A kohdan 4.2 alakohdassa sekä VI jakson A kohdan 6 alakohdassa.
Enrichment ELISA methods are described in Section VI.A.4.2 and Section VI.A.8.
Rikastuksen ELISA-menetelmät kuvataan VI jakson A kohdan 4.2 alakohdassa sekä VI jakson A kohdan 8 alakohdassa.
Culturing can fail due to competition or inhibition by saprophytic bacteria.
Viljelytestit saattavat epäonnistua, jos saprofyyttiset bakteerit kilpailevat taudinaiheuttajan kanssa tai estävät sen kasvun.
If high saprophyte populations are suspected to affect the reliability of the isolation, then repeat the isolation tests after dilution of the sample in sterile water.
Jos epäillään, että saprofyyttiset populaatiot vaikuttavat erityksen luotettavuuteen, eristystestit toistetaan sen jälkeen, kun näyte on laimennettu steriilillä vedellä.