natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In the absence of diaphragm pillars, a specimen of twice the size 2 g (or 4 g in the case of breeding sows and boars) is to be taken from the rib part or the breastbone part of the diaphragm, or from the jaw muscle, tongue or abdominal muscles.
Jos palleapilareita ei ole saatavilla, on otettava kooltaan kaksinkertainen eli 2 g:n (jalostusemakoista ja ‐karjuista 4 g:n) painoinen näyte kyljen tai rintalastan puoleisesta pallean osasta taikka kieli-, purema- tai vatsalihaksista.
For cuts of meat, a sample weighing at least 5 g of striated muscle, containing little fat is to be taken, where possible from close to bones or tendons.
Lihapaloista otetaan vähintään 5 g:n painoinen näyte vähärasvaisesta poikkijuovaisesta lihaksesta mahdollisuuksien mukaan läheltä luita tai jänteitä.
A sample of the same size is to be collected from meat that is not intended to be cooked thoroughly or other types of post-slaughter processing.
Samankokoinen näyte olisi otettava lihasta, jota ei ole tarkoitus kypsentää kauttaaltaan tai käsitellä muulla tavoin teurastuksen jälkeen.
For frozen samples, a sample weighing at least 5 g of striated muscle tissue is to be taken for analysis.
Jos kyse on jäädytetyistä näytteistä, otetaan analyysia varten vähintään 5 g:n painoinen näyte poikkijuovaisesta lihaskudoksesta.
The weight of meat specimens relates to a sample of meat that is free of all fat and fascia.
Tutkittavan näytteen paino on suhteessa otettuun lihanäytteeseen, jossa ei ole rasvaa eikä sidekudosta.
Special attention must be paid when collecting muscle samples from the tongue in order to avoid contamination with the superficial layer of the tongue, which is indigestible and can prevent reading of the sediment.
Erityistä huolellisuutta on noudatettava otettaessa lihasnäytteitä kielestä, jotta kielen pintakerros, jota ei voi digestoida ja joka saattaa estää sakan tulkitsemisen, ei aiheuta kontaminaatiota.
I. Complete pools (100 g of samples at a time)
I Täydet erät (100 g näytettä kerrallaan)
16 ± 0,5 ml of hydrochloric acid is added to a 3 litre beaker containing 2,0 litre of tap water, preheated to 46 to 48 oC; a stirring rod is placed in the beaker, the beaker is placed on the preheated plate and the stirring is started.
Kaadetaan 16 ± 0,5 ml suolahappoa 3 l:n vetoiseen lasimaljaan, jossa on 2,0 l 46–48 oC:n lämpötilaan lämmitettyä vesijohtovettä. Asetetaan sekoitussauva lasimaljaan, asetetaan lasimalja lämmitetylle levylle ja aloitetaan sekoittaminen.
10 ± 0,2 g of pepsin is added.
Lisätään 10 ± 0,2 g pepsiiniä.
100 g of samples collected in accordance with point 2 is chopped in the blender.
Hienonnetaan sekoittimessa 100 g näytteitä, jotka on otettu 2 kohdan mukaisesti.
The chopped meat is transferred to the 3 litre beaker containing the water, pepsin and hydrochloric acid.
Pannaan hienonnettu liha 3 l:n lasimaljaan, joka sisältää vettä, pepsiiniä ja suolahappoa.
The mincing insert of the blender is immersed repeatedly in the digestion fluid in the beaker and the blender bowl is rinsed with a small quantity of digestion fluid to remove any meat still adhering.
Upotetaan sekoittimen teräkappale useita kertoja lasimaljassa olevaan digestionesteeseen ja huuhdellaan sekoittimen kulho pienellä määrällä digestionestettä mahdollisten lihajäämien poistamiseksi.
The beaker is covered with aluminium foil.
Peitetään malja alumiinifoliolla.
The magnetic stirrer must be adjusted so that it maintains a constant temperature of 44 to 46 oC throughout the operation.
Magneettisekoitin on säädettävä siten, että se ylläpitää tasaisen 44–46 oC:n lämpötilan koko sekoituksen ajan.
During stirring, the digestion fluid must rotate at a sufficiently high speed to create a deep whirl without splashing.
Sekoituksen aikana digestionesteen on pyörittävä sellaisella nopeudella, että seoksen keskelle syntyy syvä pyörre nesteen kuitenkaan roiskumatta.
The digestion fluid is stirred until the meat particles disappear (approximately 30 minutes).
Sekoitetaan digestionestettä niin kauan, että lihahiukkaset häviävät (noin 30 minuuttia).
The stirrer is then switched off and the digestion fluid is poured through the sieve into the sedimentation funnel.
Tämän jälkeen sammutetaan sekoitin ja kaadetaan digestioneste siivilän läpi sakkautussuppiloon.
Longer digestion times may be necessary (not exceeding 60 minutes) in the processing of certain types of meat (tongue, game meat, etc.).
Tiettyjen lihatyyppien (kielen, riistalihan jne.) käsittely saattaa vaatia pitemmän digestioajan (joka ei saa ylittää 60:tä minuuttia).
The digestion process is considered satisfactory if not more than 5 % of the starting sample weight remains on the sieve.
Digestion katsotaan onnistuneen, jos siivilään jää enintään 5 prosenttia näytteen lähtöpainosta.
The digestion fluid is allowed to stand in the funnel for 30 minutes.
Annetaan digestionesteen seistä suppilossa 30 minuuttia.
After 30 minutes, a 40 ml sample of digestion fluid is quickly run off into the measuring cylinder or centrifuge tube.
Kun 30 minuuttia on kulunut, lasketaan nopeasti 40 ml:n digestionestenäyte mittalasiin tai sentrifugiputkeen.
The digestion fluids and other liquid waste are kept in a tray until reading of the results is completed.
Pidetään digestionesteet ja muu nestemäinen jäte tarjottimella, kunnes tulokset on saatu.
The remaining 10 ml sample of sediment is poured into a larval counting basin or petri dish.
Kaadetaan jäljelle jäänyt 10 ml:n sakkanäyte toukkienlaskukammioon tai petrimaljaan.
The cylinder or centrifuge tube is rinsed with not more than 10 ml of tap water, which has to be added to the sample in the larval counting basin or petri dish.
Huuhdellaan mittalasi tai sentrifugiputki enintään 10 ml:lla vesijohtovettä, joka lisätään toukkienlaskukammiossa tai petrimaljassa olevaan näytteeseen.
Subsequently, the sample is examined by trichinoscope or stereo-microscope at a 15 to 20 times magnification.
Tämän jälkeen tutkitaan näyte trikinoskoopilla tai stereomikroskoopilla, joka suurentaa 15–20-kertaisesti.
Visualisation using other techniques is allowed, provided examination of positive control samples has been shown to give an equal or better result than traditional visualisation methods.
Havainnoinnissa voidaan käyttää myös muita tekniikkoja, jos voidaan osoittaa, että niillä saadaan positiivisista kontrollinäytteistä sama tai parempi tulos kuin perinteisillä havainnointimenetelmillä.
In all cases of suspect areas or parasite-like shapes, higher magnifications of 60 to 100 times must be used.
Kaikki epäselvät löydökset tai loismaiset muodot on suurennettava 60–100-kertaisesti.
Digests are to be examined as soon as they are ready.
Näyteliuokset on tutkittava heti niiden valmistuttua.
Under no circumstances should examination be postponed until the following day.
Tutkimusta ei missään tapauksessa saa jättää seuraavaan päivään.
After a further settling period of 10 minutes, 30 ml of the supernatant fluid is withdrawn by suction, leaving a volume of no more than 10 ml for examination in a petri dish or larval counting basin.
Annetaan seoksen seistä vielä 10 minuuttia, minkä jälkeen poistetaan sakan yläpuolista nestettä 30 ml imemällä, jolloin jäljelle jää 10 ml näytteen tutkimista varten petrimaljassa tai toukkienlaskukammiossa.
The measuring cylinder is washed with no more than 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
Huuhdellaan mittalasi enintään 10 ml:lla vesijohtovettä ja lisätään huuhde petrimaljassa tai laskukammiossa olevaan näytteeseen tutkimusta varten.
If the sediment is found to be unclear on examination, the sample is poured into a measuring cylinder and made up to 40 ml with tap water and then the above procedure is followed.
Jos näyte todetaan tutkimuksen yhteydessä sameaksi, se kaadetaan mittalasiin ja lisätään vesijohtovettä, kunnes tilavuus on 40 ml, minkä jälkeen toistetaan edellä esitetty menettely. Menettely voidaan toistaa 2–4 kertaa, kunnes neste on riittävän kirkasta luotettavan tuloksen saamiseksi.
Positive or doubtful results
VI Positiiviset tai epävarmat tulokset
Where examination of a collective sample produces a positive or uncertain result, a further 20 g sample is taken from each pig in accordance with 2(a).
Jos yhdistetystä näytteestä saatu tulos on positiivinen tai epävarma, jokaisesta siasta on otettava 20 g:n lisänäyte 2 kohdan a alakohdan mukaisesti.
The 20 g samples from five pigs are pooled and examined using the method described above.
Viiden sian 20 g:n näytteet on yhdistettävä ja tutkittava edellä esitetyllä menetelmällä.
In this way samples from 20 groups of five pigs will be examined.
Tällä tavoin tutkitaan 20:n viidestä siasta koostuvan ryhmän näytteet.
When Trichinella is detected in a pooled sample from five pigs, further 20 g samples are collected from the individual pigs in the group and each is examined separately using the method described above.
Jos viiden sian ryhmän yhdistetyssä näytteessä todetaan trikiinejä, jokaisesta kyseisen ryhmän siasta on otettava erillinen 20 g:n näyte, ja jokainen niistä on tutkittava erikseen edellä esitetyllä menetelmällä.
Parasite samples are to be kept in 90 % ethyl alcohol for conservation and identification at species level at the Community or national reference laboratory.
Loisnäytteet on pidettävä 90-prosenttisessa etyylialkoholissa niiden säilyttämiseksi ja loislajin tunnistamiseksi yhteisön tai kansallisessa vertailulaboratoriossa.
After parasite collection, positive fluids (digestive juice, supernatant fluid, washings, etc.) are to be decontaminated by heating to at least 60 oC.
Kun loiset on kerätty, positiivisiksi todetut liuokset (digestioliuos, sakan yläpuolinen neste, huuhde jne.) on tehtävä tartuntavaarattomiksi kuumentamalla ne vähintään 60 oC:een.
EQUIVALENT METHODS
VASTAAVAT MENETELMÄT
Mechanically assisted pooled sample digestion method/sedimentation technique
Mekaanisesti avustettu yhdistetyn näytteen digestiomenetelmä/sakkautusmenetelmä
Knife or scissors for cutting specimens
Veitsi tai sakset näytteiden leikkaamista varten.
Trays marked off with 50 squares, each of which can hold samples of approximately 2 g of meat, or other tools giving equivalent guarantees as regards the traceability of the samples
Tarjottimia, joihin on merkitty 50 ruutua, joihin kuhunkin mahtuu noin 2 g:n lihanäyte, tai muita välineitä, jotka antavat samanlaiset takeet näytteiden jäljitettävyydestä.
Meat mincer or electrical blender
Lihamylly tai sähköinen sekoitin.
A stomacher lab-blender 3500 thermo model
Stomacher 3500 ‐sekoitin, lämpötilaohjattu malli.
Plastic bags suitable for the stomacher lab-blender
Stomacher-sekoittimeen sopivia muovipusseja.
Conical separation funnels, capacity 2 litres, preferably fitted with teflon safety plugs
Kartiomaisia erotussuppiloita, joiden tilavuus on 2 l ja joissa on mieluiten teflontulpat.
Sieves, mesh size 180 microns, external diameter 11 cm, with stainless steel or brash mesh
Siivilöitä, joiden silmäkoko on 180 μm, ulkohalkaisija 11 cm ja verkko ruostumatonta terästä tai messinkiä.
100 ml glass measuring cylinders
Mittalaseja, joiden tilavuus on 100 ml.
A vibrator, e.g. an electric shaver with the head removed
Täristin, esim. sähköparranajokone, jonka pää on irrotettu.
A relay which will switch on and off at one-minute intervals
Rele, joka avautuu ja sulkeutuu yhden minuutin välein.
A trichinoscope with a horizontal table or a stereo-microscope, with a sub-stage transmitted light source of adjustable intensity
Trikinoskooppi, joka on varustettu vaakatasopöydällä, tai stereomikroskooppi, jonka näytetason alapuolella on säädettävätehoinen transmittoidun valon lähde.
A larval counting basin and a number of 9 cm diameter petri dishes as in Chapter I(1)(l) and (m)
Kammio toukkien laskemista varten ja petrimaljoja, joiden halkaisija on 9 cm, kuten edellä olevan I luvun 1 kohdan l ja m alakohdassa.
17,5 % hydrochloric acid
17,5-prosenttista suolahappoa.
Pepsin, strength 1: 10000 NF (US national formulary) corresponding to 1: 12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie),
Pepsiiniä, jonka vahvuus on 1:10000 NF (US National Formulary) eli 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) eli 2000 FIP (Fédération Internationale de Pharmacie).
A number of 10 litre bins to be used for decontamination of apparatus, e.g. with formol, and for digestive juice remaining where specimens test positive
Useita 10 litran jäteastioita, joita käytetään välineistön puhdistamiseen esimerkiksi formaliinilla ja jäljelle jääneen digestionesteen keräämiseen, jos näytteet ovat antaneet positiivisen tuloksen.
A balance accurate to 0,1 g.
Vaaka, jonka tarkkuus on 0,1 g.
As stipulated in Chapter I(2).
Noudatetaan I luvun 2 kohtaa.
I. Grinding
I Jauhaminen
Grinding the meat samples in a meat mincer beforehand will improve the digestion quality.
Lihanäytteiden jauhaminen etukäteen lihamyllyssä parantaa digestion laatua.
If an electrical blender is used, the blender must be operated three to four times for approximately one second each time.
Jos jauhamiseen käytetään sähköistä sekoitinta, se on käynnistettävä 3–4 kertaa noin sekunniksi.
Digestion procedure
II Digestio
This procedure may involve complete pools (100 g of samples at a time) or pools of less than 100 g.
Digestiossa voi olla mukana täysiä eriä (100 g näytettä kerrallaan) tai alle 100 g:n eriä.
Complete pools (100 samples at a time)
Täydet erät (100 näytettä kerrallaan).
The stomacher lab-blender 3500 is fitted with a double plastic bag and the temperature control set at 40 to 41 oC.
Asennetaan Stomacher 3500 ‐sekoittimeen sisäkkäin kaksi muovipussia ja asetetaan lämpötilavalitsin 40–41 oC:een.
One and a half litres of water preheated to 40 to 41 oC is poured into the inner plastic bag.
Kaadetaan sisempään muovipussiin 1,5 l vettä, joka on lämmitetty 40–41 oC:n lämpötilaan.
25 ml of 17,5 % hydrochloric acid is added to the water in the stomacher.
Lisätään 25 ml 17,5-prosenttista suolahappoa sekoittimessa olevaan veteen.
100 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 oC) taken from each individual sample in accordance with 2 are added.
Lisätään 100 näytettä, joista kukin painaa noin 1 g (lämpötila 25–30 oC) ja jotka on otettu yksittäisistä näytteistä 2 kohdan mukaisesti.
Lastly, 6 g pepsin is added.
Lisätään lopuksi 6 g pepsiiniä.
This order must be followed strictly to avoid decomposition of the pepsin.
Tätä lisäämisjärjestystä on noudatettava tarkasti, jotta pepsiini ei hajoa.
The stomacher is then allowed to pound the content of the bag for 25 minutes.
Tämän jälkeen annetaan sekoittimen hienontaa pussin sisältöä 25 minuuttia.
The plastic bag is removed from the stomacher and the digestion fluid is filtered through the sieve into a 3 litre beaker.
Poistetaan muovipussi sekoittimesta ja suodatetaan digestioneste siivilän läpi 3 l:n lasimaljaan.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water, which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
Huuhdellaan muovipussi noin 100 ml:lla vettä, joka käytetään sitten siivilän huuhteluun ja lisätään lasimaljassa olevaan suodatettuun nesteeseen.
Up to 15 individual samples can be added to a total pool of 100 samples and examined together with these samples.
Täyteen 100 näytteen erään voidaan lisätä enintään 15 yksittäistä näytettä ja tutkia ne yhdessä täyden erän kanssa.
Smaller pools (less than 100 samples)
Pienemmät erät (alle 100 näytettä).
A digestion fluid is prepared by mixing about one and a half litres of water and 25 ml of 17,5 % hydrochloric acid.
Valmistetaan digestioneste sekoittamalla noin 1,5 l vettä ja 25 ml 17,5-prosenttista suolahappoa.
6 g of pepsin is added and the whole mixed at a temperature of 40 to 41 oC.
Lisätään 6 g pepsiiniä ja lämmitetään neste 40–41 oC:een.
Of the digestion fluid, a volume corresponding to 15 ml per gram of sample is measured (e.g. for 30 samples the volume required is 30 × 15 ml = 450 ml) and transferred to the inner of the two plastic bags, together with the meat samples weighing approximately 1 g (at 25 to 30 oC) taken from each individual sample in accordance with 2.
Mitataan digestionestettä 15 ml/näytegramma (esim. 30:tä näytettä varten vaadittava määrä on 30 × 15 ml eli 450 ml) ja lisätään neste sisempään muovipussiin yhdessä jokaisesta yksittäisestä näytteestä 2 kohdan mukaisesti otetun noin 1 g:n painoisen lihanäytteen (lämpötila 25–30 oC) kanssa.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water (at 25 to 30 oC), which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
Huuhdellaan muovipussi noin 100 ml:lla vettä (lämpötila 25–30 oC), joka käytetään sitten siivilän huuhteluun ja lisätään lasimaljassa olevaan suodatettuun nesteeseen.
Recovery of larvae by sedimentation
III Toukkien osoittaminen sakkauttamalla
In the case of smaller pools (see II(b)), the amount of ice must be reduced correspondingly.
Kun on kyse pienemmistä eristä (ks. II kohdan b alakohta), jään määrää on vähennettävä vastaavasti.
The chilled digestion fluid is transferred to a 2 litre separation funnel, equipped with a vibrator in an extra clamp.
Kaadetaan jäähtynyt digestioneste 2 l:n erotussuppiloon, joka on varustettu ylimääräisessä kiinnittimessä olevalla täristimellä.
Sedimentation is allowed to proceed for 30 minutes, during which time the sedimentation funnel is vibrated intermittently, i.e. one minute vibration followed by a one-minute pause.
Sakkauttamista varten täristetään erotussuppiloa jaksoittain 30 minuutin ajan siten, että yhden minuutin täristystä seuraa yhden minuutin tauko.
After 30 minutes, a 60 ml sample of the sediment is quickly run off into a 100 ml measuring cylinder (the funnel is rinsed with detergent solution after use).
Kun 30 minuuttia on kulunut, lasketaan nopeasti 60 ml:a liuosta 100 ml:n mittalasiin. (Huuhdellaan suppilo pesuliuoksella käytön jälkeen.)
The 60 ml sample is allowed to stand for at least 10 minutes, after which time the supernatant is withdrawn by suction to leave a volume of 15 ml, to be examined for presence of larvae.
Annetaan 60 ml:n näytteen seistä vähintään 10 minuuttia, minkä jälkeen sakan yläpuolista nestettä poistetaan imemällä siten, että mittalasiin jää jäljelle 15 ml:n näyte, joka tutkitaan toukkien varalta.
For suction, a disposable syringe, equipped with a plastic tube, can be used.
Imemiseen voidaan käyttää muoviletkulla varustettua kertakäyttöruiskua.
The length of the tube must be such that 15 ml remains in the measuring cylinder when the flanges of the syringe rest on the cylinder's rim.
Letkun pituuden olisi oltava sellainen, että mittalasiin jää 15 ml, kun ruiskun pää lepää mittalasin reunalla.
The remaining 15 ml is poured into a larval counting basin or two petri dishes and examined using a trichinoscope or stereo-microscope.
Kaadetaan loput 15 ml toukkienlaskukammioon trikinoskooppitutkimusta varten tai kahteen petrimaljaan stereomikroskooppitutkimusta varten.
The measuring cylinder is washed with 5 to 10 ml of tap water and the washings are added to the sample.
Pestään mittalasi 5–10 ml:lla vesijohtovettä ja lisätään huuhde näytteeseen.
Under no circumstances is examination to be postponed until the following day.
Tutkimusta ei missään tapauksessa saa jättää seuraavaan päivään.
Where the digests are unclear or they are not examined within 30 minutes of their preparation, they must be clarified as follows:
Jos näyteliuokset ovat sameita tai niitä ei tutkita 30 minuutin kuluessa niiden valmistumisesta, ne on laimennettava seuraavasti:
the final sample of 60 ml is poured into a measuring cylinder and allowed to stand for 10 minutes; 45 ml of supernatant fluid is then removed by suction and the remaining 15 ml is made up to 45 ml with tap water,
Kaadetaan lopullinen 60 ml:n näyte mittalasiin ja annetaan sen seistä 10 minuuttia. Tämän jälkeen poistetaan sakan yläpuolista nestettä 45 ml imemällä ja lisätään 15 ml:n jäännökseen vesijohtovettä, kunnes tilavuus on 45 ml.
after a further settling period of 10 minutes, 30 ml of supernatant fluid is removed by suction and the remaining 15 ml is poured into a petri dish or larval counting basin for examination,
Annetaan seoksen seistä vielä 10 minuuttia, minkä jälkeen poistetaan sakan yläpuolista nestettä 30 ml imemällä ja kaadetaan loput 15 ml petrimaljaan tai toukkienlaskukammioon tutkimusta varten.
the measuring cylinder is washed with 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
Huuhdellaan mittalasi 10 ml:lla vesijohtovettä ja lisätään huuhde petrimaljassa tai laskukammiossa olevaan näytteeseen tutkimusta varten.
Where the result is positive or uncertain, the provisions laid down in Chapter I(3)(III) shall apply.
Jos tulos on positiivinen tai epävarma, noudatetaan I luvun 3 kohdan III alakohdan säännöksiä.
Mechanically assisted pooled sample digestion method/‘on filter isolation’ technique
Mekaanisesti avustettu yhdistetyn näytteen digestiomenetelmä/suodatineristysmenetelmä
As stipulated in Chapter II(A)(1).
Noudatetaan edellä olevan II luvun A kohdan 1 alakohtaa.
Additional equipment:
Lisälaitteet:
1 litre Gelman funnel, complete with filter holder (diameter 45 mm);
Gelman-suppilo, jonka vetoisuus on 1 l, suodatinpidikkeineen (pidikkeen halkaisija 45 mm).
filter discs, consisting of a circular stainless steel mesh with an aperture of 35 microns (disc diameter: 45 mm), two rubber rings 1 mm thick (external diameter: 45 mm; internal diameter: 38 mm), the circular mesh being placed between the two rubber rings and bonded to them using a two-component glue suitable for the two materials;
Suodatinlevyjä, joissa on pyöreä ruostumattomasta teräksestä valmistettu verkko, jonka silmäkoko on 35 μm (levyn halkaisija 45 mm) ja kaksi 1 mm:n paksuisesta kumista valmistettua rengasta (ulkohalkaisija 45 mm, sisähalkaisija 38 mm). Pyöreä verkko pannaan kahden kumirenkaan väliin ja kiinnitetään niihin näille kahdelle materiaalille sopivalla kaksikomponenttiliimalla.
an Erlenmeyer flask, capacity 3 litres, fitted with a side tube for suction;
Erlenmeyerpullo, jonka vetoisuus on 3 l ja jossa on sivuputki imemistä varten.
a filter pump;
Suodatinpumppu.
plastic bags, capacity at least 80 ml;
Muovipusseja, joiden tilavuus on vähintään 80 ml.
equipment for sealing the plastic bags;
Muovipussien saumausvälineet.
rennilase, strength 1: 150000 soxhlet units per gram.
Rennilaasia, jonka vahvuus on 1:150000 Soxhlet-yksikköä/g.
Collecting of specimens
Näytteenotto
See Chapter II(A)(3)(II)(a).
Ks. II luvun A kohdan 3 alakohdan II alakohdan a alakohta.
See Chapter II(A)(3)(II)(b).
Ks. II luvun A kohdan 3 alakohdan II alakohdan b alakohta.
Recovery of larvae by filtration
III Toukkien osoittaminen suodattamalla
The digestion fluid is stirred until the ice has melted.
Sekoitetaan digestionestettä, kunnes jää on sulanut.
The chilled digestion fluid is then left for at least three minutes to let the larvae coil.
Annetaan jäähtyneen nesteen seistä vähintään kolme minuuttia, jotta toukat ehtivät kiertyä.
The Gelman funnel, fitted with a filter holder and filter disc, is mounted on an Erlenmeyer flask connected to a filter pump.
Asennetaan suodatinpidikkeellä ja suodatinlevyllä varustettu Gelman-suppilo suodatinpumppuun yhdistettyyn erlenmeyerpulloon.
The digestion fluid is poured into the Gelman funnel and filtered.
Kaadetaan digestioneste Gelman-suppiloon ja suodatetaan.
Towards the end of filtration, the digestion fluid can be helped to pass through the filter by applying suction with the filter pump.
Digestionesteen valumista suodattimen läpi voidaan suodatuksen lopulla avustaa suodatinpumpun imulla.
Suction must cease before the filter becomes dry, i.e. when 2 to 5 ml of fluid is left in the funnel.
Imu on lopetettava ennen suodattimen kuivumista eli kun suppilossa on jäljellä 2–5 ml nestettä.
Once all the digestion fluid has been filtered, the filter disc is removed and placed in an 80 ml capacity plastic bag, together with 15 to 20 ml of rennilase solution.
Kun koko digestioneste on suodatettu, irrotetaan suodatinlevy ja pannaan se 80 ml:n muovipussiin, johon lisätään 15–20 ml rennilaasiliuosta.
The rennilase solution is made by adding 2 g of rennilase to 100 ml of tap water.
Rennilaasiliuos valmistetaan lisäämällä 2 g rennilaasia 100 ml:aan vesijohtovettä.