natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Key:
Köbrukeste arv ja hindamine
SPECIES
Täiskasvanud tüseda tömpnina köbrukeste olemasolu ja suuruse hindamiseks on määratletud kuus konkreetset piirkonda.
TEST CONDITIONS
Olemasolevate köbrukeste asukoha ja arvu kaardistamiseks on välja töötatud vorm (vt käesoleva liite lõpus).
RECOMMENDED DURATION OF TEST
Registreeritakse iga kala köbrukeste arv ja hinnatakse kvantitatiivselt nende suurust järgmiselt: 0 – puudub, 1– olemas, 2 – suurenenud ja 3 – silmapaistev (joonis 1).
Typical minimum mean total length of control fish at the end of the study (mm) [1]
0 punkti – köbruke puudub.
SURVIVAL OF CONTROLS (minimum)
1 punkt – köbruke on olemas ja sellel on üks kõrgeim tipp, mille kõrgus on ligikaudu võrdne köbrukese raadiusega.
Temperature (°C)
2 punkti – suurenenud köbruke, mille kude meenutab kujult tärni ja millel on tavaliselt lai alus keskelt algavate radiaalsete vagudega.
Salinity (0/00)
Köbrukese tipp on sageli ebakorrapärasem, kuid võib vahel olla veidi ümardunud.
Photoperiod (hrs)
3 punkti – silmapaistev köbruke, tavaliselt üsna suur ja ümmargune, ebaselgema struktuuriga.
Hatching success
Sellised köbrukesed on mõnikord kokku kasvanud ja moodustavad ühtse massi, mis paikneb ühel või mitmel köbrukeste alal (allpool kirjeldatud piirkonnad B, C ja D).
Post-hatch success
Värvus ja muster on sarnased 2 punktile vastava köbrukese omaga, kuid on mõnikord raskesti eristatavad.
Freshwater:
Selle hindamissüsteemi kasutamise korral on normaalsel kontrollrühma isasel, kelle köbrukeste arv on 18–20, köbrukeste punktide üldsumma tavaliselt < 50 (Jensen et al., 2001).
12 - 16 [3]
Tegelik köbrukeste arv võib mõnel kalal olla suurem, kui on vormil asjaomases hindamispiirkonnas lahtreid.
12 - 16 [4]
Selliste köbrukeste kaardistamiseks, mis paiknevad piki suu horisontaaltasapinda vertikaalselt paaris või ühendatuna, võib kummagi köbrukese hinde märkida samasse lahtrisse.
30 days post-hatch
Kaardistamispiirkonnad
22 - 25
Tavaliselt on kontrollrühma isaskaladel neid mitu, kontrollrühma emaskaladel need puuduvad; androgeense kemikaaliga kokku puutunud emaskaladel esinevad need üldjuhul paaris (üks kummagi silma juures) või ka üksikult.
The minimum mean total length is derived from a selection of data available at the current time.
Kontrollrühma emaskaladel need puuduvad; androgeense kemikaaliga kokku puutunud emaskaladel võib neid esineda ja need võivad olla teataval määral arenenud.
After receipt of eggs from a commercial breeder, a short adaptation (e.g. 1-2 h) to test temperature after arrival is necessary.
Vähem arenenud isaskaladel ja androgeense kemikaaliga kokku puutunud emaskaladel on need olemas või suurenenud.
Darkness for larvae until one week after hatching except when they are being inspected, then subdued lighting throughout test (12-16 hour photoperiod) (4).
D – köbrukesed, mis paiknevad paralleelselt piki suujoont.
For any given test conditions, light regime should be constant.
Kontrollrühma isaskaladel hinnatakse need üldjuhul väljaarenenuks.
For any given test this shall be performed to ± 2 0/00.
Kontrollrühma emaskaladel need puuduvad, kuid androgeense kemikaaliga kokku puutunud emaskaladel on need olemas.
FEEDING AND HANDLING GUIDANCE FOR BROOD AND TEST ANIMALS OF RECOMMENDED SPECIES
E – alalõual suu kõrval paiknevad köbrukesed, tavaliselt väikesed ja paarikaupa.
FBS frozen brine shrimps; adults Artemia sp
Kontrollrühma isaskaladel ning kemikaaliga kokku puutunud isaskaladel ja emaskaladel võivad need olla mitmesugused.
BSN brine shrimp nauplii; newly hatched
F – köbrukesed, mis paiknevad piirkonnast E kõhu pool.
BSN48 brine shrimp nauplii; 48 hours old
Tavaliselt väikesed ja paaris.
FOOD [1]
Need on olemas kontrollrühma isaskaladel ja androgeense kemikaaliga kokku puutunud emaskaladel.
POST-HATCH TRANSFER TIME
Köbrukeste hindamise vorm
TIME TO FIRST FEEDING
Numbriline hinnang
Brood fish
Kuupäev
Newly-hatched larvae
1 – olemas
Juveniles
Üldsumma
Type
2 – suurenenud
Frequency
3 – silmapaistev
trout food
liide
None [2]
JAAPANI RIISIKALA TEISESTE SOOTUNNUSTE HINDAMINE ENDOKRIINSE TOIMEGA KEMIKAALIDE TUVASTAMISEKS
trout starter BSN
Allpool on kirjeldatud papillaarjätkete [1] mõõtmist; nimetatud jätked on jaapani riisikala (Oryzias latipes) teisesed sootunnused.
2-4 feeds per day
Pärast maksa väljalõikamist (6. liide) pannakse rümp (pea ülespoole, saba allapoole) koonilisse katseklaasi, mis sisaldab umbes 10 ml neutraalset puhverdatud 10 % formaliinilahust.
14-16 days post-hatch or at swim-up (not essential)
Kui sugunäärmed fikseeritakse muu lahusega kui neutraalne puhverdatud 10 % formaliinilahus, tehakse pärakuuime eesosa ja päraku vahelt žiletiteraga ristilõige läbi rümba; seejuures jälgitakse, et suguava ja sugunäärmed ise ei saaks viga (joonis 3).
19 days post hatch or at swim-up
Kala keha peapoolne osa pannakse sugunäärmete fikseerimiseks fikseerimislahusesse ja sabapoolne osa neutraalsesse puhverdatud 10 % formaliinilahusesse, nagu on kirjeldatud eespool.
BSN48, flake food
Pärast seda, kui pärakuuime on umbes 30 sekundit lahti hoitud, säilitatakse kala keha kuni papillaarjätkete mõõtmiseni neutraalses puhverdatud 10 % formaliinilahuses toatemperatuuril (jätkeid tuleks mõõta pärast vähemalt 24 tunni pikkust fikseerimist).
2-3 times a day
Mõõtmine
2 day post hatch
tüseda tömpnina vere võtmine sabaveenist/-arterist
BSN, flake food
Seejärel lõigatakse väikeste lahkamiskääridega pärakuuim ettevaatlikult ära (parem on lõigata uim ära koos väikese koguse seda toestava koega).
Commercial larvae food, protozoa [3], protein [4]
Seejärel kaetakse pärakuuim katteklaasiga.
BSN48, flake food,
Tuleb olla ettevaatlik, et pintsettidega pärakuuimest kinni võtmisel ei saaks papillaarjätked kriimustada.
BSN once daily; flake food twice daily
Bioloogilise mikroskoobi (tavaline või invertmikroskoop) ja loenduri abil loendatakse papillaarjätketega kiirelülide arv.
2 days post hatch
Papillaarjätketeks loetakse väikest rühma jätkeid kiirelüli tagumisel serval.
flake food
A. Isaskala.
BSN, flake food (or protozoa or rotifers)
B. Emaskala.
BSN48, flake food (or rotifers)
Tokyo, IV, 2: 209–218.
BSN once daily; flake food twice daily or flake food and rotifers once daily
Otsas paiknevad aktinotrihhiumid (Act.).
not applicable
Sci., Univ.
6-7 days post spawn
Tokyo, IV, 2: 209–218.
Cyprinodon varieqatus
Joonis 3.
2-3 feeds per day
Mõnikord harva esineb selliseid jätkeid siiski ka pärakuuime tagumisest otsast lugedes esimesel uimekiirel.
1 day post hatch/swim-up
liide SOOVITATAV PROOVIVÕTMISE KORD VITELLOGENIINI MÄÄRAMISE PUHUL
Food should be given to satiation.
Tuleks olla hoolikas, et hoida ära isas- ja emaskalade vitellogeniiniproovide ristsaastumist.
Surplus food and faeces should be removed, as necessary to avoid accumulation of waste
Meetod 1A:
yolk-sac larvae require no food
Soovi korral võib määrata pärast tsentrifuugimist hematokriti.
filtered from mixed culture
Meetod 1B:
granules from fermentation process.
Meetod 2A:
STATISTICAL GUIDANCE FOR NOEC DETERMINATION
jaapani riisikala maksa väljalõikamine
General
Katses kasutatavad kalad tuleks katsekambrist eemaldada väikese kahvaga.
The replicate tank is the unit of analysis.
Tuleb olla hoolikas, et mitte pillata kalu teise katsekambrisse.
Thus, for continuous measurements, such as size, the replicate mean or median should be calculated and these replicate values are the data for analysis.
Maksa väljalõikamine
The power of the tests used should be demonstrated, preferably based on an adequate historical database for each lab.
Kala viiakse väikese kahvaga transpordimahutist üle tuimastilahusesse.
The size effect that can be detected with 75-80 % power should be provided for each endpoint with the statistical test to be used.
Vesi pühitakse kala pealt filterpaberisse (või paberrätikusse).
The databases available at the time of development of this test method establish the power possible under the recommended statistical procedures.
Järgmised toimingud tehakse stereomikroskoobi all.
An individual lab should demonstrate its ability to meet this power requirement either by conducting its own power analysis or by demonstrating that the Coefficient of Variation (CV) for each response does not exceed the 90th percentile of CVs used in developing the TG.
Kärbitakse maksaga külgnevat rasvkude ja muid kudesid.
Table 1 provides these CVs.
Tuleb olla ettevaatlik, et maks ei saaks kriimustada.
Species
15) Maksa sisaldav mikrokatsuti suletakse korgiga.
Response
Mikrokatsuti paigutatakse jahutavasse (või jääl olevasse) hoidjasse.
Fathead Minnow
Mikropipetiga võetakse 30 μl supernatanti (keskmine kiht) ja viiakse see ühte 0,5 ml mikrokatsutisse.
For almost all statistical tests used to evaluate laboratory toxicology studies, the comparisons of interest are of treatment groups to control.
Tuleb jälgida, et ei võetaks pinnakihist lipiide ega põhjakihist maksakude.
For that reason, it is not appropriate to require a significant ANOVA F-test before using Dunnett's or Williams' test or a significant Kruskal-Wallis test before using the Jonckheere-Terpstra, Mann-Whitney, or Dunn test (Hochberg and Tamhane 1987, Hsu 1996, Dunnett 1955, 1964, Williams 1971, 1972, 1975, 1977, Robertson et al.
Eespool kirjeldatud viisil võetakse veel supernatanti ja viiakse see kahte teise 0,5 ml mikrokatsutisse.
1988, Jonckheere 1954, Dunn 1964).
0,5 ml mikrokatsuti suletakse korgiga ja supernatandi maht märgitakse etiketile.
Dunnett's test has a built-in multiplicity adjustment and its false positive and false negative rates are adversely affected by using the F-test as a gatekeeper.
Seejärel jahutatakse mikrokatsutid jääl olevas katsutihoidjas viivitamata maha.
Similarly, the step-down Williams and Jonckheere-Terpstra tests using a 0,05 significance level at every step preserve an overall 5 % false positive rate and that rate and the power of the tests are adversely affected by using the F- or Kruskal-Wallis test as a gatekeeper.
Iga kord enne uue supernatandi võtmist vahetatakse mikropipeti otsik uue vastu.
Mann-Whitney and Dunn's test have to be adjusted for multiplicity and the Bonferroni-Holm adjustment is advised.
Kui otsiku külge kleepub suur kogus lipiide, vahetatakse see kohe uue vastu, et hoida ära maksaekstrakti saastumist rasvaga.
A thorough discussion of most of the recommendations on hypothesis testing and verification of assumptions underlying these tests is given in OECD (2006), which also contains an extensive bibliography.
Kõikide tsentrifuugitud proovide supernatant viiakse eespool kirjeldatud korra kohaselt nelja 0,5 ml mikrokatsutisse.
Treatment of Controls when a Solvent is Used
Pärast supernatandi viimist 0,5 ml mikrokatsutitesse pannakse kõik katsutid identimisetiketiga katsutihoidjasse ja külmutatakse seejärel viivitamata sügavkülmikus.
If a solvent is used, then both a dilution water control and a solvent control should be included.
Kui vitellogeniini kontsentratsiooni mõõdetakse kohe pärast eeltöötlemist, hoitakse ühte 30 μl supernatanti sisaldavat 0,5 ml mikrokatsutit jahutatult katsutihoidjas ja viiakse see töölauale, kus tehakse ELISA.
The two controls should be compared for each response and combined for statistical analysis if no significant difference is found between the controls.
Sellisel juhul pannakse ülejäänud mikrokatsutid katsutihoidjatesse ja külmutatakse need sügavkülmikus.
Otherwise, the solvent control should be used for NOEC determination or ECx estimation and the water control is not used.
Pärast supernatandi kogumist kõrvaldatakse ülejäänud materjal nõuetekohaselt.
See restriction in the validity criteria (Paragraph 7)
Proovide säilitamine Maksahomogenaadi supernatandiga 0,5 ml mikrokatsuteid säilitatakse temperatuuril ≤ – 70 °C kuni ELISA tegemiseni.
For length, weight, proportion of egg hatch or larval mortality or abnormal larvae, and first or last day of hatch or swim-up, a T-test or Mann-Whitney test should be used to compare the dilution water- control and the solvent control at the 0,05 significance level, ignoring all treatment groups.
Meetod 3A:
The results of these tests should be reported.
vöödilise daanio vere võtmine sabaveenist/-arterist
In either case, the replicate mean values tend to be normally distributed by virtue of the Central Limit Theorem and confirmed from data from well over 100 ELS studies of three freshwater species.
Mikrokapillaartorusse lisatakse võrdne kogus aprotiniiniga puhvrit (6 μg/ml fosfaadiga puhverdatud soolalahuses (PBS)) ja plasma eraldatakse verest tsentrifuugimise teel (5 minutit 600 g juures).
Alternatively, where the data or historical databases suggest a log-normal distribution for individual fish size values, the replicate mean logarithm of the individual fish values can be calculated and the data for analysis can then be the anti-logs of these replicate mean logarithms.
Plasma kogutakse katsutitesse ja säilitatakse temperatuuril – 20 °C kuni vitellogeniini või muude huvipakkuvate valkude määramiseni.
Data should be evaluated for consistency with a normal distribution and variance homogeneity.
Meetod 3B:
For this purpose, the residuals from an ANOVA model with concentration as the single explanatory class variable should be used.
vöödilise daanio vere võtmine südamepunktsiooniga
Visual determination from scatterplots and histograms or stem-and-leaf plots can be used.
Vere hüübimise ja valkude lagunemise takistamiseks võetakse proovid PBSi, mis sisaldab hepariini (1000 ühikut/ml) ja proteaasiinhibiitorit aprotiniini (2 trüpsiiniinhibiitori ühikut (TIU) / ml).
Alternatively, a formal test such as the Shapiro-Wilk or Anderson-Darling can be used.
Puhvri koostisainetena soovitatakse kasutada hepariini ammooniumisoola ja lüofiliseeritud aprotiniini.
Consistency with variance homogeneity can be assessed from a visual examination of the same scatter plot or formally from Levene's test.
Vereproovi võtmiseks soovitatakse kasutada fikseeritud peene nõelaga 1 ml süstalt (nt Braun Omnikan-F).
Only parametric tests (e.g. Williams, Dunnett) need be evaluated for normality or variance homogeneity.
Süstlasse tuleks eelnevalt võtta puhverlahust (ligikaudu 100 μl), et iga kala väike verekogus süstlast täielikult kätte saada.
Attention should be paid to possible outliers and their effect on analysis.
Vereproovid võetakse südamepunktsiooniga.
Tukey's outlier test and visual inspection of the same plots of residuals described above can be used.
Kõigepealt tuleks kala tuimastada MS-222-ga (100 mg/l).
It should be recalled that observations are entire replicates, so omitting an outlier from analysis should be done only after careful consideration.
Nõuetekohane tuimastus võimaldab proovivõtjal eristada vöödilise daanio südamelööke.
The statistical tests that make use of the characteristics of the experimental design and biological expectation are step-down trend tests, such as Williams and Jonckheere-Terpstra.
Südame punkteerimisel hoitakse süstla kolbi nõrga tõmbe all.
These tests assume a monotone concentration-response and the data should be assessed for consistency with that assumption.
Kogutava vere maht on vahemikus 20–40 mikroliitrit.
This can be done visually from a scatter plot of the replicate means against test concentration.
Pärast südamepunktsiooni tuleks vere ja puhvri segu viia katsutisse.
It will be helpful to overlay that scatter plot with a piecewise linear plot connecting the concentration means weighted by replicate sample size.
Plasma eraldatakse verest tsentrifuugimise teel (20 minutit 5000 g juures) ja seda tuleks säilitada –80 °C juures kuni analüüsi tegemiseni.
Great deviation of this piecewise linear plot from monotonicity would indicate a possible need to use non-trend tests.
Meetod 3C:
Alternatively, formal tests can be used.
standardne töökord vöödilise daanio pea ja saba homogeniseerimiseks
A simple formal test is to compute linear and quadratic contrasts of the concentration means.
Kalad tuimastatakse ja surmatakse humaansel viisil vastavalt katsemeetodi kirjeldusele.
If the quadratic contrast is significant and the linear contrast is not significant that is an indication of a possible problem with monotonicity which should be further evaluated from plots.
Kala pea ja saba lõigatakse ära nii, nagu on näidatud joonisel 1.
Where normality or variance homogeneity may be an issue, these contrasts can be constructed from rank-order transformed data.
Oluline märkus: kõik lõikeriistad ja lõikelaud tuleks enne iga kala lõikamist loputada ja korralikult puhastada (näiteks 96 % etanooliga), et hoida ära kemikaaliga mitte kokku puutunud isaskalade saastumist emaskalade ja kemikaaliga kokku puutunud isaskalade vitellogeniiniga.
Alternative procedures, such as Bartholomew's test for monotonicity can be used, but add complexity.
Lõige rinnauime tagant
Figure 2
Vitellogeniini analüüsi jaoks
NOEC Flow-Chart Size Measurements (length and weight)
Sugunäärmete histoloogia jaoks
Variances stabilising transform?
Lõige seljauime tagant
Normalising transform?
Iga kala pea ja saba kaalutakse koos ja nende summaarne mass määratakse milligrammi täpsusega.
Tamhane-Dunnett test
Pärast kaalumist pannakse need kehaosad sobivasse katsutisse (nt 1,5 ml Eppendorfi katsuti) ja säilitatakse külmutatult – 80 °C juures kuni homogeniseerimiseni või homogeniseeritakse kohe jää peal kahe plastvarda abil.
Dunnett test
Pärast ühtlase massi saavutamist lisatakse koe massi neljakordselt ületav kogus jääkülma homogeniseerimispuhvrit [1].
Transform to normal, homogenous?
Jätkatakse varrastega töötlemist, kuni segu on homogeenne.
Step-down Williams or Jonckherre
Oluline märkus: iga kala puhul kasutatakse uusi vardaid.
Rep means normal, homogenous?
Proovid pannakse jääle kuni tsentrifuugimiseni (30 minutit 4 °C ja 50000 g juures).
Yes
Pipetiga pannakse vähemalt kahte katsutisse 20 μl supernatanti; pipeti ots viiakse allapoole pindmist rasvakihti ja supernatant eemaldatakse nii, et rasva- ja sademefraktsioon kaasa ei tuleks.
Are data consistent with monotone concentration-response?
Katsuteid säilitatakse temperatuuril – 80 °C kuni proovide kasutamiseni.
Rep means normal?
VITELLOGENIINIGA RIKASTATUD PROOVID JA ERI KATSETES KASUTATAV VÕRDLUSSTANDARD
Variances equal?
Igal vitellogeniinianalüüsi tegemise päeval mõõdetakse ka rikastatud proovi, mis on valmistatud eri katsetes kasutatava võrdlusstandardiga.
If % effect at NOEC is large of % effect at LOEC is small, then try ECx
Vitellogeniin, millest valmistatakse eri katsetes kasutatav võrdlusstandard, peab olema muust partiist kui see, mida kasutatakse asjaomase katse kaliibrimisstandardite tegemiseks.
Step-down Jonckherre
Rikastud proovi valmistamiseks lisatakse teadaolev kogus võrdlusstandardit kontrollrühma isaskalade plasmaproovile.
Dunn or Mann-Whitney test
Proovi rikastatakse nii, et saavutatav vitellogeniini kontsentratsioon on 10–100 korda suurem kui kontrollrühma isaskalade plasma eeldatav vitellogeniinisisaldus.
Dashed figures are paths for 1st and last day of hatch or swimup (*) or abnormal larvae
Rikastatav kontrollrühma isaskalade plasma võib pärineda kas ühelt või mitmelt kalalt.
These responses never satisfy assumptions for parametric analysis or models.
Kontrollrühma isaskalade rikastamata plasma osaproovi analüüsitakse vähemalt kahes paralleelkannus.
Unless the data are not consistent with the requirements for these tests, the NOEC is determined by a step-down application of Williams' or the Jonckheere-Terpstra test.
Rikastatud plasmat analüüsitakse samuti vähemalt kahes paralleelkannus.
OECD (2006) provides details on these procedures.
Eeldatava kontsentratsiooni arvutamiseks liidetakse plasma rikastamiseks lisatud arvutuslikule vitellogeniinikogusele kontrollrühma isaskalade kahes rikastamata proovis mõõdetud vitellogeniinikoguste keskväärtus.
For data not consistent with the requirements for a step-down trend test, Dunnett's test or the Tamhane-Dunnett (T3) test can be used, both of which have built-in adjustments for multiplicity.
Saadud eeldatava kontsentratsiooni ja mõõdetud kontsentratsiooni suhtarv esitatakse koos iga samal päeval tehtud katse tulemustega.
These tests assume normality and, in the case of Dunnett, variance homogeneity.
STATISTILISE ANALÜÜSI VALIMISE VOOSKEEM
Where those conditions are not satisfied, Dunn's non-parametric test can be used.
Paralleelide keskväärtused on normaaljaotusega
OECD (2006) contains details for all of these tests.
Normaliseeriv teisendus?
Figure 2 is giving an overview, how to find the test of choice.
Dunnetti test
Egg Hatch and Larval Survival
Hajuvused ei ole võrdsed
The data are proportions of eggs that hatch or larvae that survive in individual replicates.
Astmeliselt rakendatav Jonckheere'i või Williamsi test
These proportions should be assessed for extra-binomial variance, which is common but not universal for such measurements.
Paralleelide keskväärtused ei ole normaaljaotusega või homogeense hajuvusega
The flowchart in figure 3 is guidance for the test of choice; see text for detailed descriptions.
Paralleelide keskväärtused on normaaljaotusega ja homogeense hajuvusega
Two tests are commonly used.
Paralleelide keskväärtused ei ole normaaljaotusega
These are Tarone's C(α) test (Tarone, 1979) and chi-squared tests, each applied separately to every test concentration.
Hajuvust tasakaalustav teisendus?
If extra-binomial variance is found in even one test concentration, then methods that accommodate that should be used.
Tamhane'i-Dunnetti test hierarhilise ANOVA suhtes
Formula 1
Dunni või Manni-Whitney test ≤ 3 paralleeli konts. kohta
Tarone's C (α) test (Tarone 1979)
Normaliseeriv teisendus?
Where ̂ is the mean proportion for a given concentration, m is the number of replicate tanks, nj is the number of subjects in replicate j, and xj is the number of subjects in that replicate responding, e.g. not hatched or dead.
Ei Jah Jah Ei
This test is applied to each concentration separately.
Hajuvust tasakaalustav teisendus?
This test can be seen as an adjusted chi-squared test, but limited power simulations done by Tarone have shown it to be more powerful than a chi-squared test.
Dunnetti test Hajuvused on võrdsed
Figure 3
Astmeliselt rakendatav Jonckheere'i test
NOEC Flow Chart for Egg Hatch and Larval Mortality Yes Yes Yes No
Astmeliselt rakendatav trenditest paralleelide keskväärtuste suhtes
Are data (*) consistent with a monotone concentration-response?
Ei ole monotoonne
Step-down Rao-Scott Cochran-Armitage or Jonckheere test or, after arc-sin square-root transform, Williams test
On monotoonne
Step-down Cochran-Armitage or Jonckheere test or, after arc-sin square-root transform, Williams test
Kas kontsentratsioonist sõltuvus on monotoonnne?
Dunnett test Dunn test or Mann-Whitney No
C.49.
Data normally distributed, homogenous after arc-sin square-root transform?
Ägeda mürgisuse katse kalaembrüotega
C(α) or chi-squared Test for extra-binominal Variance significant?
Käesolev katsemeetod on samaväärne OECD katsejuhendiga nr 236 (2013).
Data are replicate proportion.
Selles kirjeldatakse vöödilise daanio (Danio rerio) embrüotele avalduva ägeda mürgisuse katset.
Where there is no significant evidence of extra-binomial variance, the step-down Cochran-Armitage test can be used.
Käesolev meetod on ette nähtud kemikaalide ägeda mürgisuse määramiseks embrüonaalses arengujärgus kaladel.
This test ignores replicates, so where there is such evidence, the Rao-Scott adjustment to the Cochran-Armitage test (RSCA) takes replicates, replicate sizes, and extra-binomial variance into account and is recommended.
See põhineb vöödilise daanioga tehtud uuringutel ja valideerimistel (1–14).
Alternative tests include the step-down Williams and Jonckheere-Terpstra tests and Dunnett's test as described for size measurements.
Käesolevat katsemeetodit on edukalt kasutatud paljude eri kemikaalide puhul, millel on erinev toimemehhanism, lahustuvus, lenduvus ja hüdrofoobsus (vastav ülevaade on esitatud viidetes 15 ja 16).
These tests apply whether or not there is extra-binomial variance, but have somewhat lower power (Agresti 2002, Morgan 1992, Rao and Scott 1992, 1999, Fung et al.
Vöödilise daanio äsja viljastatud marjaterad viiakse 96 tunniks kokkupuutesse uuritava kemikaaliga.
1994, 1996).
Iga 24 tunni järel registreeritakse letaalsuse näitajatena kuni nelja järgmise lõppnäitaja vaatluse tulemused (6): i) viljastatud marjaterade koaguleerumine, ii) somiitide moodustumata jäämine, iii) sabaalgme rebukotist eraldumata jäämine ja iv) südamelöökide puudumine.