natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Clean surface, well or reconstituted water or dechlorinated tap water
Venitage kõhuõõne seinad laiali täppistööks ette nähtud pintsettidega ja võtke siseelundid välja.
Pre-exposure period
Vajaduse korral võib siseelundid välja võtta ka kõhuõõne ühe seina kõrvaldamisega.
7 days recommended
Teise paari täppispintsettide abil tooge esile maksa ja sapipõie ühenduskoht.
Chemical exposure duration
Haarake kinni sapijuhast ja lõigake sapipõis ära.
Biological endpoints
Olge ettevaatlik, et sapipõis ei läheks katki.
survival
Haarake kinni söögitorust ja lõigake seedekulgla maksast samal viisil lahti.
behaviour
Olge ettevaatlik, et seedekulgla sisu ei voolaks välja.
sex characteristics
Lõigake sabapoolne seedekulgla osa pärakust lahti ja eemaldage seedekulgla kõhuõõnest.
VTG
Kärpige maksa kõrval olevat rasva ja muid kudesid.
Test acceptability
Olge ettevaatlik, et maks ei saaks kriimustada.
Dissolved oxygen > 60 % of saturation;
Haarake täppispintsettidega maksa väratipiirkonnast ja tõstke maks kõhuõõnest välja.
mean temperature of 25 ± 2 °C;
Pange maks objektiklaasile.
90 % survival of fish in the controls;
Eemaldage vajaduse korral täppispintsettidega maksa pinnalt kogu rasv ja muu kude (nt kõhukelme).
measured test concentrations within 20 % of mean measured values per treatment level.
Mõõtke maksa mass elektroonilise analüütilise kaaluga, kasutades taarana 1,5 ml mikrokatsutit.
mean temperature of 24 ± 2 °C;
Märkige maksa mass töölehele (täpsusega 0,1 mg).
mean temperature of 26 ± 2 °C;
Kontrollige mikrokatsuti etiketil oleva identifitseerimisteabe õigsust.
Some chemical characteristics of acceptable dilution water
Sulgege maksa sisaldava mikrokatsuti kork.
< 20 mg/l
Pange mikrokatsuti jahutusega (või jääl olevasse) hoidjasse.
< 2 mg/l
Pärast ühe maksa väljalõikamist puhastage lahkamisriistad või asendage need puhastega.
Total organophosphorus pesticides
Eemaldage eespool kirjeldatud viisil maks kõikidelt transpordimahutis olevatelt kaladelt.
Appendix 4A
Pärast seda, kui maks on eemaldatud kõikidelt transpordimahutis olnud kaladelt (st kõigilt katsekambris olnud isas- ja emaskaladelt), pange kõik maksaproovid katsutihoidjasse, millel on identifitseerimisandmetega etikett, ja hoidke seda sügavkülmikus.
Spawning substrate for zebrafish
Kui maksale hakatakse eeltöötlust tegema varsti pärast väljalõikamist, viiakse proovid järgmisele töölauale jahutusega katsutihoidjas (või jääl olevas hoidjas).
Spawning tray
Pärast kaladelt maksa väljalõikamist on rümp valmis teiseste sootunnuste mõõtmiseks.
all glass instrument dish, for example 22 × 15 × 5,5 cm (l × w × d), covered with a removable stainless steel wire lattice (mesh width 2 mm).
Proov
The lattice should cover the opening of the instrument dish at a level below the brim.
Säilitage maksaproove temperatuuril ≤ – 70 °C, kui neile ei hakata eeltöötlust tegema vahetult pärast väljalõikamist.
On the lattice, spawning substrate should be fixed.
Lõige kääridega tehakse vahetult rinnauimedest eespool.
It should provide structure for the fish to move into.
Joonis 2.
For example, artificial aquaria plants made of green plastic material are suitable (NB: possible adsorption of the test chemical to the plastic material should be considered).
Osadeks lahtivõetava metallkolonni näidis;
The plastic material should be leached out in sufficient volume of warm water for sufficient time to ensure that no chemicals may be disposed to the test water.
Kõhu keskjoont mööda lõigatakse kõht lahti punktini, mis asub umbes 2 mm pärakust pea pool.
When using glass materials it should be ensured that the fish are neither injured nor cramped during their vigorous actions.
Joonis 3.
The distance between the tray and the glass panes should be at least 3 cm to ensure that the spawning is not performed outside the tray.
Kõhuseinad lükatakse pintsettidega laiali, et paljastada maks ja muud siseelundid.
The eggs spawned onto the tray fall through the lattice and can be sampled 45-60 min after the start of illumination.
(Teise võimalusena võib kõhuseinad küljele lahti tõmmatult kinnitada nõeltega.)
The transparent eggs are non-adhesive and can easily be counted by using transversal light.
Joonis 4.
When using five females per vessel, egg numbers up to 20 at a day can be regarded as low, up to 100 as medium and more than 100 as high numbers.
Maks eraldatakse pintsettide abil ümbritsevatest kudedest.
The spawning tray should be removed, the eggs collected and the spawning tray re-introduced in the test vessel, either as late as possible in the evening or very early in the morning.
Joonis 5.
The time until re-introduction should not exceed one hour since otherwise the cue of the spawning substrate may induce individual mating and spawning at an unusual time.
Sooled tõmmatakse ettevaatlikult pintsettidega eemale.
If a situation needs a later introduction of the spawning tray, this should be done at least 9 hours after start of the illumination.
Joonis 6.
At this late time of the day, spawning is not induced any longer.
Soolestiku mõlemad otsad ja mesenteeriumimanused lõigatakse kääride abil lahti.
Appendix 4B
Joonis 7 (emaskala).
Spawning substrate for fathead minnow
Emaskala puhul toimitakse samal viisil.
Two or three combined plastic/ceramic/glass or stainless steel spawning tiles and trays are placed in each of the test chamber (e.g., 80 mm length of grey semi-circular guttering sitting on a lipped tray of 130mm length) (see picture).
Joonis 8.
Properly seasoned PVC or ceramic tiles have demonstrated to be appropriate for a spawning substrate (Thorpe et al, 2007).
Lõpule viidud lahkamine.
It is recommended that the tiles are abraded to improve adhesion.
Meetod 2B.
The tray should also be screened to prevent fish from access to the fallen eggs unless the egg adhesion efficiency has been demonstrated for the spawning substrate used.
Jaapani riisikala (Oryzias latipes) maksa eeltöötlemine vitellogeniini määramiseks
The base is designed to contain any eggs that do not adhere to the tile surface and would therefore fall to the bottom of the tank (or those eggs laid directly onto the flat plastic base).
Võtke ELISA komplektist homogeniseerimispuhver ja jahutage see purustatud jää abil maha (lahuse temperatuurini ≤ 4 °C).
All spawning substrates should be leached for a minimum of 12 hours, in dilution water, before use.
Kui kasutatakse EnBio ELISA süsteemi homogeniseerimispuhvrit, sulatage lahus toatemperatuuril ja siis jahutage pudelit purustatud jääs.
Appendix 5A
Arvutage maksa jaoks vajalik homogeniseerimispuhvri maht, lähtudes maksa massist (lisage 50 μl homogeniseerimispuhvrit homogeniseeritava maksa mg kohta).
Assessment of secondary sex characteristics in fathead minnow for the detection of certain endocrine active chemicals
Kui maksa mass on näiteks 4,5 mg, on vajalik homogeniseerimispuhvri kogus 225 μl.
Overview
Koostage homogeniseerimispuhvri mahtude loetelu kõikide maksade jaoks.
Potentially important characteristics of physical appearance in adult fathead minnows in endocrine disrupter testing include body colour (i.e. light/dark), coloration patterns (i.e. presence or absence of vertical bands), body shape (i.e. shape of head and pectoral region, distension of abdomen), and specialized secondary sex characteristics (i.e. number and size of nuptial tubercles, size of dorsal pad and ovipositor).
Maksa ettevalmistamine eeltöötlemiseks
Nuptial tubercles are located on the head (dorsal pad) of reproductively-active male fathead minnows, and are usually arranged in a bilaterally-symmetric pattern (Jensen et al.
Võtke 1,5 ml mikrokatsuti maksaga sügavkülmikust välja vahetult enne eeltöötlemist.
2001).
Isaskalade maksa eeltöötlus peaks toimuma enne emaskalade maksa eeltöötlust, et hoida ära vitellogeniiniga saastumist.
Control females and juvenile males and females exhibit no tubercle development (Jensen et al.
Peale selle peaks katserühmade kalade maksade eeltöötlemine toimuma järgmises järjekorras:
2001).
Sügavkülmikust teataval ajahetkel võetavate maksaproove sisaldavate 1,5 ml mikrokatsutite arv ei tohiks ületada proovide arvu, mida saab samaaegselt tsentrifuugida.
There can be up to eight individual tubercles around the eyes and between the nares of the males.
Paigutage maksa sisaldavad 1,5 ml mikrokatsutid proovi numbri järgi jääga hoidjasse (maksa üles sulatada ei ole vaja).
The greatest numbers and largest tubercles are located in two parallel lines immediately below the nares and above the mouth.
Eeltöötluse tegemine
In many fish there are groups of tubercles below the lower jaw;
Homogeniseerimispuhvri lisamine
those closest to the mouth generally occur as a single pair, while the more ventral set can be comprised of up to four tubercles.
Vaadake homogeniseerimispuhvri mahtude loetelust, milline kogus puhvrit tuleb lisada konkreetsele maksaproovile, ja seadke mikropipett (mahuvahemikuga 100–1000 μl) vajalikule mahule.
The actual numbers of tubercles is seldom more than 30 (range, 18-28; Jensen et al.
Pange mikropipeti otsa puhas otsik.
2001).
Võtke vajalik homogeniseerimispuhvri kogus reaktiivipudelist ja lisage 1,5 ml mikrokatsutisse, milles on maks.
The predominant tubercles (in terms of numbers) are present as a single, relatively round structure, with the height approximately equivalent to the radius.
Lisage samal viisil homogeniseerimispuhver kõikidesse 1,5 ml mikrokatsutitesse, milles on maks.
Most reproductively-active males also have, at least some, tubercles which are enlarged and pronounced such that they are indistinguishable as individual structures.
Mikropipeti otsikut ei ole seejuures vaja vahetada uue vastu.
Some types of endocrine-disrupting chemicals can cause the abnormal occurrence of certain secondary sex characteristics in the opposite sex;
Kui aga otsik saastub või tekib saastumise kahtlus, tuleks otsik välja vahetada.
for example, androgen receptor agonists, such as 17β-methyltestosterone or 17β-trenbolone, can cause female fathead minnows to develop nuptial tubercles (Smith 1974; Ankley et al.
Maksa homogeniseerimine
2001; 2003), while oestrogen receptor agonists may decrease number or size of nuptial tubercles in males (Miles-Richardson et al.
Pange mikrokatsutis homogeniseerimise seadmele uus nui.
1999; Harries et al.
Viige nui 1,5 ml mikrokatsutisse.
2000).
Hoidke mikrokatsutis homogeniseerimise seadet nii, et maks oleks pressitud nuia ja 1,5 ml mikrokatsuti seina vahele.
Below is a description of the characterization of nuptial tubercles in fathead minnows based on procedures used at the U.S. Environmental Protection Agency lab in Duluth, MN.
Laske homogenisaatoril mikrokatsutis töötada 10–20 sekundit.
Specific products and/or equipment can be substituted with comparable materials available.
Jahutage homogeniseerimise ajal 1,5 ml mikrokatsutit purustatud jääga.
Viewing is best accomplished using an illuminated magnifying glass or 3X illuminated dissection scope.
Tõstke nui 1,5 ml mikrokatsutist välja ja jätke segu seisma umbes 10 sekundiks.
View fish dorsally and anterior forward (head toward viewer).
Seejärel vaadelge suspensiooni.
Place fish in small Petri dish (e.g., 100 mm in diameter), anterior forward, and ventral down.
Kui suspensioonis on näha maksatükikesi, korrake toiminguid (3) ja (4), et saada rahuldav maksahomogenaat.
Focus viewfinder to allow identification of tubercles.
Jahutage maksasuspensiooni jääga katsutihoidjas kuni tsentrifuugimiseni.
Gently and slowly roll fish from side to side to identify tubercle areas.
Vahetage homogenisaatori nui uue vastu enne iga homogeniseerimist.
Count and score tubercles.
Homogeniseerige kõik maksad homogeniseerimispuhvriga vastavalt eespool kirjeldatud korrale.
Repeat the observation on the ventral head surface by placing the fish dorsal anterior forward in the Petri dish.
Homogeniseeritud maksasuspensiooni tsentrifuugimine
Observations should be completed within 2 min for each fish.
Kontrollige, et jahutatud tsentrifuugikambri temperatuur oleks ≤ 5 °C.
Tubercle Counting and Rating
Pange 1,5 ml mikrokatsutid homogeniseeritud maksa suspensiooniga jahutatud tsentrifuugi (vajaduse korral tasakaalustage tsentrifuug).
Six specific areas have been identified for assessment of tubercle presence and development in adult fathead minnows.
Tsentrifuugige homogeniseeritud maksa suspensiooni 13000 g juures 10 minutit temperatuuril ≤ 5 °C.
A template was developed to map the location and quantity of tubercles present (see end of this Appendix).
Kui supernatant eraldub korralikult, võite tsentrifugaaljõudu ja aega vastavalt vajadusele muuta.
The number of tubercles is recorded and their size can be quantitatively ranked as:
Pärast tsentrifuugimist kontrollige, et supernatant on piisaval määral eraldunud (pinnal – lipiidid, keskel – supernatant, alumine kiht – maksakude).
0- absence, 1-present, 2-enlarged and 3-pronounced for each organism (Fig.
Kui eraldumine ei ole piisav, tsentrifuugitakse suspensiooni uuesti samades tingimustes.
1).
Võtke kõik proovid jahutatud tsentrifuugist ja pange need proovi numbri järgi jääga katsutihoidjasse.
Rate 0- absence of any tubercle.
Olge ettevaatlik, et tsentrifuugimisega eraldatud kihte mitte uuesti suspendeerida.
Rating 1-present, is identified as any tubercle having a single point whose height is nearly equivalent to its radius (diameter).
Supernatandi kogumine
Rating 2- enlarged, is identified by tissue resembling an asterisk in appearance, usually having a large radial base with grooves or furrows emerging from the centre.
Pange neli supernatandi säilitamiseks ette nähtud 0,5 ml mikrokatsutit katsutihoidjasse.
Tubercle height is often more jagged but can be somewhat rounded at times.
Võtke mikropipetiga 30 μl supernatanti (keskmine kiht) ja viige see ühte 0,5 ml mikrokatsutitest.
Rating 3- pronounced, is usually quite large and rounded with less definition in structure.
Olge ettevaatlik, et mitte võtta pinnalt lipiide ega alumisest kihist maksakudet.
At times these tubercles will run together forming a single mass along an individual or combination of areas (B, C and D, described below).
Võtke veel supernatanti ja pange see eespool kirjeldatud viisil veel kahte 0,5 ml mikrokatsutisse.
Coloration and design are similar to rating 2 but at times are fairly indiscriminate.
Võtke mikropipetiga ülejäänud supernatant (võimaluse korral ≥ 100 μl).
Using this rating system generally will result in overall tubercle scores of < 50 in a normal control male possessing a tubercle count of 18 to 20 (Jensen et al.
Seejärel pange see supernatant viimasesse 0,5 ml mikrokatsutisse.
2001).
Sulgege 0,5 ml mikrokatsuti kork ja kirjutage supernatandi maht etiketile.
The actual number of tubercles in some fish may be greater than the template boxes (Appendix A) for a particular rating area.
Seejärel jahutage mikrokatsutid jääga katsutihoidjas viivitamata maha.
If this happens, additional rating numbers may be marked within, to the right or to the left of the box.
Vahetage mikropipeti otsik uue vastu iga kord enne uue supernatandi võtmist.
The template therefore does not need to display symmetry.
Kui otsiku külge kleepub suur kogus lipiide, vahetage otsik kohe, et hoida ära maksaekstrakti saastumist rasvaga.
An additional technique for mapping tubercles which are paired or joined vertically along the horizontal plane of the mouth could be done by double-marking two tubercle rating points in a single box.
Pange kogu tsentrifuugitud supernatant nelja 0,5 ml mikrokatsutisse vastavalt eespool kirjeldatud korrale.
Mapping regions:
Pärast supernatandi viimist 0,5 ml mikrokatsutitesse pange need kõik identifitseerimisetiketiga katsutihoidjasse ja seejärel külmutage need kohe sügavkülmikus.
A Tubercles located around eye.
Kui vitellogeniini kontsentratsioonid mõõdetakse kohe pärast eeltöötlemist, hoidke üks 30 μl supernatanti sisaldav 0,5 ml mikrokatsuti jahutatult katsutihoidjas ja viige see töölauale, kus tehakse ELISA.
Mapped dorsal to ventral around anterior rim of eye.
Sellisel juhul pange ülejäänud mikrokatsutid katsutihoidjatesse ja külmutage need sügavkülmikus.
Commonly multiple in mature control males, not present in control females, generally paired (one near each eye) or single in females exposed to androgens.
Pärast supernatandi võtmist visake ülejäänud materjal ära.
B Tubercles located between nares, (sensory canal pores).
Proovi säilitamine
Normally in pairs for control males at more elevated levels (2- enlarged or 3- pronounced) of development.
Säilitage maksahomogenaadi supernatandiga 0,5 ml mikrokatsuteid temperatuuril ≤ – 70 °C, kuni neid kasutatakse ELISA tegemiseks.
Not present in control females with some occurrence and development in females exposed to androgens.
Meetod 3A.
C Tubercles located immediately anterior to nares, parallel to mouth.
Vöötdaanio vere võtmine sabaveenist/-arterist
Generally enlarged or pronounced in mature control males.
Kohe pärast tuimestamist lõigatakse sabavars risti läbi ja veri kogutakse sabaveenist/-arterist hematokriti määramiseks ette nähtud hepariniseeritud mikrokapillaartorusse.
Present or enlarged in less developed males or androgen-treated females.
Vere kogus on vahemikus 5–15 μl, sõltuvalt kala suurusest.
D Tubercles located parallel along mouth line.
Mikrokapillaartorusse lisatakse võrdne kogus aprotiniiniga puhvrit (6 μg/ml fosfaatpuhvrilisandiga soolalahuses (PBS)) ja plasma eraldatakse verest tsentrifuugimise teel (5 minutit, 600 g).
Generally rated developed in control males.
Plasma kogutakse katseklaasidesse ja säilitatakse temperatuuril – 20 °C kuni vitellogeniini või muude huvipakkuvate valkude määramiseni.
Absent in control females but present in androgen-exposed females.
Meetod 3B.
E Tubercles located on lower jaw, close to mouth, usually small and commonly in pairs.
Vöötdaanio vere võtmine südamepunktsiooniga
Varying in control or treated males, and treated females.
Vere hüübimise ja valkude lagunemise takistamiseks võetakse proovid fosfaatpuhvrilisandiga soolalahusesse (PBS), mis sisaldab hepariini (1000 ühikut/ml) ja proteaaside inhibiitorit aprotiniini (2 trüpsiiniinhibiitori ühikut (TIU) / ml).
F Tubercles located ventral to E. Commonly small and paired.
Puhvrikomponentidena soovitatakse kasutada hepariini ammooniumsoola ja lüofiliseeritud aprotiniini.
Present in control males and androgen-exposed females.
Vereproovi võtmiseks soovitatakse kasutada 1 ml süstalt, millel on fikseeritud peen nõel (nt Braun Omnikan-F).
Tubercle Template
Süstlasse tuleks eelnevalt võtta puhverlahust (ligikaudu 100 μl), et iga kala väike verekogus süstlast puhverlahusega täielikult kätte saada.
Numerical Rating
Vereproovid võetakse südamepunktsiooniga.
resent
Kõigepealt tuleks kala tuimestada MS-222-ga (100 mg/l).
Date
Nõuetekohane tuimestus võimaldab kasutajal eristada vöötdaanio südamelööke.
nlarged
Südame punkteerimisel hoidke süstla kolbi nõrga tõmbe all.
Total Score
Kogutava vere maht on vahemikus 20–40 mikroliitrit.
ronounced
Pärast südamepunktsiooni tuleks vere ja puhvri segu panna katsutisse.
Appendix 5B
Plasma eraldatakse verest tsentrifuugimise teel (20 minutit, 5000 g) ja seda tuleks säilitada – 80 °C juures kuni analüüsi tegemiseni.
Assessment of secondary sex characteristics in medaka for the detection of certain endocrine active chemicals
Meetod 3C.
Below is a description of the measurement of papillary processes, which are the secondary sex characteristics in medaka (Oryzias latipes).
Kalad tuimastatakse ja surmatakse humaansel viisil kooskõlas katse kirjeldusega.
After the excision of the liver (Appendix 6), the carcass is placed into a conical tube containing about 10 ml of 10 % neutral buffered formalin (upside: head, downside: tail).
Kala pea ja saba lõigatakse ära nii, nagu on näidatud joonisel 1.
If the gonad is fixed in a solution other than 10 % neutral buffered formalin, make a transverse cut across the carcass between anterior region of anal fin and anus using razor, taking care not to harm the gonopore and gonad itself (Fig.
Oluline märkus:
3).
kõik lõikeriistad ja lõikelaud tuleks enne iga kala lõikamist loputada ja korralikult puhastada (näiteks 96 % etanooliga), et hoida ära kemikaaliga mitte kokku puutunud isaskalade saastumist emaskalade ja kemikaaliga kokku puutunud isaskalade vitellogeniiniga.
Place the cranial side of the fish body into the fixative solution to preserve the gonad, and the tail side of the fish body into the 10 % neutral buffered formalin as described above.
Vitellogeniini analüüsi jaoks
After placing the fish body into 10 % neutral buffered formalin, grasp the anterior region of the anal fin with tweezers and fold it for about 30 seconds to keep the anal fin open.
Sugunäärmete histoloogia jaoks
When grasping the anal fin with tweezers, grasp a few fin rays in the anterior region with care not to scratch the papillary processes.
Lõige rinnauime tagant
After keeping the anal fin open for about 30 seconds, store the fish body in 10 % neutral buffered formalin at room temperature until the measurement of the papillary processes (measurement should be conducted after fixing for at least 24 hours).
Lõige seljauime tagant
Measurement
Iga kala pea ja saba summaarne mass mõõdetakse milligrammi täpsusega.
After fixing the fish body in the 10 % neutral buffered formalin for at least 24 hours, pick up the fish carcass from the conical tube and wipe the formalin on the filter paper (or paper towel).
Pärast kaalumist pannakse need kehaosad sobivasse nõusse (nt 1,5 ml Eppendorfi katsuti) ja külmutatakse – 80 °C juures kuni homogeenimiseni või homogeenitakse kohe jää peal kahe plastikvarda abil.
Place the fish abdomen side up.
Viaalid peavad olema korralikult nummerdatud, nii et kala pea ja saba on kokkuviidavad vastava kehatükiga, mida kasutatakse sugunäärmete histoloogia uurimiseks.
Then cut the anal fin using small dissection scissors carefully (it is preferable to cut the anal fin with small amount of pterygiophore).
Pärast ühtlase massi saavutamist lisatakse koemassiga võrreldes neljakordne kogus jääkülma homogeniseerimispuhvrit.
Grasp the anterior region of the severed anal fin with tweezers and put it on a glass slide with a several drops of water.
Töötage varrastega edasi, kuni segu on homogeenne.
Then cover the anal fin with a cover glass.
Oluline märkus:
Be careful not to scratch the papillary processes when grasping the anal fin with tweezers.
Iga kala puhul kasutatakse uusi vardaid.
Count the number of the joint plate with papillary processes using the counter under a biological microscope (upright microscope or inverted microscope).
Proovid pannakse jääle kuni tsentrifuugimiseni 4 °C ja 50000 g juures 30 minuti jooksul.
The papillary processes are recognized when a small formation of processes is visible on the posterior margin of joint plate.
Pipetiga pannakse vähemalt kahte katsutisse 20 μl supernatanti; pipeti ots viiakse allapoole pindmist rasvakihti ja supernatant eemaldatakse nii, et rasva- ja sademefraktsioon kaasa ei tuleks.
Write the number of joint plate with papillary processes in each fin ray to the worksheet (e.g. first fin ray: 0, second fin ray: 10, third fin ray: 12, etc.) and enter the sum of this number on the Excel spreadsheet by individual fish.
Viaale säilitatakse temperatuuril – 80 °C kuni kasutamiseni.
If necessary, take a photograph of the anal fin and count the number of joint plate with papillary processes on the photograph.
Homogeniseerimispuhver:50 mM Tris-HCl pH 7,4, 1 % proteaasiinhibiitorite segu (Sigma):
After the measurement, put the anal fin into the conical tube described in (1) and store it.
12 ml Tris-HCl pH 7,4 + 120 μl proteaasiinhibiitorite segu;TRIS:
Fig.1.
TRIS-ULTRA PURE (ICN), näiteks Taani firmalt Bie & Berntsen;proteaasiinhibiitorite segu:
Diagram showing sexual difference in shape and size of the anal fin.
Sigma (imetajate kudede jaoks), tootenumber P 8340.Märkus:
A, male;
Homogeenimispuhver peaks olema valmistatud kasutamise päeval.
B, female.
Pange kasutamise ajaks jää peale.
Fig.2.A.
Vitellogeniiniga rikastatud proovid ja eri analüüsides kasutatav vitellogeniini võrdlusstandard
Processes on joint plates of anal fin-ray.
Igal vitellogeniinianalüüsi tegemise päeval mõõdetakse ka rikastatud proovi, mis on valmistatud eri katsetes kasutatava võrdlusstandardiga.
J.P., joint plate;
Vitellogeniin, millest valmistatakse eri katsetes kasutatav võrdlusstandard, peab olema muust partiist kui see, mida kasutatakse katse kaliibrimisstandardite tegemiseks.