natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Suitable solvents for spiking wet sediment are ethanol, methanol, ethylene glycol monomethyl ether, ethylene glycol dimethyl ether, dimethylformamide and triethylene glycol (5)(34).
piisava arvu usside alaproovide võtmine analüüsi taustnäitajate määramiseks.
Toxicity and volatility of the solvent and the solubility of the test substance in the chosen solvent should be the main criteria for the selection of a suitable solubilising agent.
Õhuga varustatuse kontrollimine, kui kasutatakse suletud katsesüsteemi.
Additional guidance on spiking procedures is given in Environment Canada (1995)(41).
Kõrvaldatakse paralleelkatsed proovide võtmiseks;
Care should be taken to ensure that the test substance added to sediment is thoroughly and evenly distributed within the sediment.
kontrollitakse õhuga varustatust, usside käitumist ja vee kvaliteeti (vt punkt 56);
Replicated sub-samples of the spiked sediment should be analysed to check the concentrations of the test substance in the sediment, and to determine the degree of homogeneity of test substance distribution.
võetakse vee-, sette- ja usside proovid uuritava kemikaali kontsentratsiooni määramiseks.
Once the spiked sediment with overlying water has been prepared, it is desirable to allow partitioning of the test substance between the sediment and the aqueous phase.
Õhuga varustatuse, usside käitumise ja temperatuuri kontrollimine.
Appropriate equilibration time is sediment and substance specific, and can be in the order of hours to days and in rare cases up to several weeks (4-5 weeks) (28)(42).
Sama kui päeval 1;
Depending on the purpose of the study, e.g., when environmental conditions are to be mimicked, the spiked sediment may be equilibrated or aged for a longer period (11).
4–6
It may be useful to conduct a preliminary experiment in order to optimise the test conditions of the definitive test, e.g. selection of test substance concentration(s) and duration of the uptake and elimination phases.
Sama kui päeval 2.
The behaviour of worms, for example sediment avoidance, i.e. the worms escape from the sediment which may be caused by the test substance and/or by the sediment itself, should be observed and recorded during a preliminary test.
vajaduse korral lisatakse vett aurustumise kompenseerimiseks.
Sediment avoidance may also be used as a sub-lethal parameter in a preliminary test for estimating the test substance concentration(s) to be used in a bioaccumulation test.
8–13
Duration of the uptake phase
15–20
The test organisms are exposed to the test substance during the uptake phase.
22–27
The first sample should be taken between 4 and 24 h after start of uptake phase.
vee kvaliteedi mõõtmine (vt punkt 52);
The uptake phase should be run for up to 28 days (1)(6)(11) unless it can be demonstrated that equilibrium has been reached earlier.
omastamisfaasi lõpp;
The steady state occurs when:
usside piisavate alaproovide säilitamine analüüsi taustnäitajate, märg- ja kuivmassi ning lipiidisisalduse määramiseks;
a plot of the bioaccumulation factors at each sampling period against time is parallel to the time axis;
usside ülekandmine allesolevatest kemikaaliga kokkupuute paralleelkatsetest eraldumisfaasi jaoks puhast setet sisaldavatesse nõudesse (ilma soolestiku tühjendamiseta);
three successive analyses of BAF made on samples taken at intervals of at least two days vary no more than ± 20 % of each other;
Kokkupuute-eelsete tegevuste (tasakaalustamisfaasi) ajakava tuleks määrata aine omaduste põhjal.
and (iii) there are no significant differences between the three sampling periods (based on statistical comparisons e.g. analysis of variance and regression analysis).
Vajaduse korral tuleb ettevalmistatud setet konditsioneerida katva veekihi all temperatuuril 20 ± 2 °C juures 7 päeva;
If the steady state has not been reached by 28 days, the uptake phase may be ended by starting the elimination phase, and the BAFK can be calculated from the uptake and elimination rate constants (see also paragraphs 16 to 18).
sellisel juhul tuleb sette tegemist alustada varem.
Duration of the elimination phase
Päeva 2 jaoks kirjeldatud tegevusi tuleks korrata igal päeval (vähemalt tööpäeviti).
The first sample should be taken between 4 and 24 h after start of elimination phase, since during the initial period, rapid changes in tissue residue may occur.
Eraldumisfaas
It is recommended to terminate the elimination phase either when the concentration of test substance is less than 10 % of steady-state concentration, or after a maximum duration of 10 days.
Sette kõigi koostisosade segamine;
The residue level in the worms at the end of the elimination phase is reported as a secondary endpoint.
inkubeerimine katse tingimustes.
The period may, however, be governed by the period over which the concentration of the test substance in the worms remains above the analytical detection limit.
0 (omastamisfaasi 28. päev)
Numbers of test worms
Vee kvaliteedi mõõtmise (vt punkt 52);
The number of worms per sample must provide a mass of worm tissue such that the mass of test substance per sample at the beginning of the uptake phase and at the end of the elimination phase, respectively, is significantly higher than the detection limit for the test substance in biological material.
usside ülekandmine allesolevatest ainega kokkupuute paralleelkatsetest puhast setet sisaldavatesse nõudesse;
In the mentioned stages of uptake and elimination phases the concentration in the test animals is usually relatively low (6)(8)(18).
4–6 tundi hiljem kõrvaldatakse paralleelkatsed, mis on ette nähtud vee-, sette- ja usside proovide võtmiseks, et määrata uuritava aine kontsentratsioon;
Since the individual weight in many species of aquatic oligochaetes is very low (5-10 mg wet weight per individual for Lumbriculus variegatus and Tubifex tubifex), the worms of a given replicate test chamber may be pooled for weighing and test chemical analysis.
kontrollitakse õhuga varustatust, usside käitumist ja vee kvaliteeti (vt punkt 52);
For test species with higher individual weight (e.g. Branchiura sowerbyi) replicates containing one individual may be used, but in such cases the number of replicates should be increased to five per sampling point (11).
8–9
It should however be noted that B. sowerbyi was not included in the ring test (12), and is therefore not recommended as a preferable species in the method.
eraldumisfaasi lõpp;
Worms of similar size should be used (for L. variegatus see Appendix 6).
vee-, sette- ja usside proovide võtmine lahusti kontrollkatse rühmades;
They should come from the same source, and should be adult or large animals of the same age class (see Appendix 6).
proovide võtmine püüdurlahustest, kui neid kasutatakse.
The weight and age of an animal may have a significant effect on the BAF-values (e.g. due to different lipid content and/or presence of eggs);
Sette ettevalmistamine enne eraldumisfaasi tuleks teha samal viisil kui enne omastamisfaasi.
these parameters should be recorded accurately.
Mõned lahjendamiseks sobiva vee füüsikalis-keemilised omadused
To measure the mean wet and dry weight a sub-sample of worms should be weighed before starting the test.
< 2 μg/l
With Tubifex tubifex and Lumbriculus variegatus, reproduction is expected during the test period.
TAASTATUD VEE SOOVITATAV KOOSTIS
A lack of reproduction in a bioaccumulation test should be recorded, and considered when interpreting the test results.
Selles lahuses on kaltsium- ja magneesiumioonide kontsentratsioonide summa 2,5 mmol/l.
High sediment-to-worm and water-to-worm ratios should be used in order to minimise the reduction of test substance concentration in the sediment during the uptake phase, and to avoid decreases in dissolved oxygen concentration.
Sobiva lahjendusvee pH peaks olema vahemikus 6–9.
The chosen loading rate should also correspond to naturally occurring population densities of the chosen species (43).
Tehissete – soovitused valmistamise ja säilitamise kohta
For example, for Tubifex tubifex, a loading rate of 1-4 mg of worm tissue (wet weight) per gram of wet sediment is recommended (8)(11).
Erinevalt katsemeetodist C.8 (40), milles soovitatakse tehissettes kasutada turbasisaldust 10 % kuivmassist, kasutatakse käesolevas meetodis tehissettes turbasisaldust 2 %, et see vastaks looduslike setete väiksele kuni keskmisele orgaanilise aine sisaldusele (58).
References (1) and (6) recommend a loading rate of ≤ 1 g dry weight of worm tissue per 50 g sediment organic carbon for L. variegatus.
Kuivkomponentide protsendiline sisaldus tehissettes:
The worms to be used in a test are removed from the culture by sieving the culture sediment.
% kuivas settes
The animals (adult or large worms without signs of recent fragmentation) are transferred to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water.
Folia urticae, Urtica sp.
If the test conditions differ from the culture conditions, an acclimation phase of 24 h should be sufficient.
(kõrvenõgese) peeneks jahvatatud lehed (osakese suurus ≤ 0,5 mm), või Urtica sp. jahvatatud lehed segus α-tselluloosiga (1: 1);
Prior to weighing, excess water should be removed from the worms.
vastavalt farmaatsia nõuetele ja inimtervishoius ettenähtud kvaliteediga;
This can be done by gently placing the worms on a pre-moistened paper tissue.
lisaks kuivale settele
It is not recommended to use absorbing paper to dry the worms as this may cause stress or damage to the worms.
Kui võib eeldada suurenevat ammoniaagisisaldust, näiteks kui uuritav aine on teadaolevalt nitrifikatsiooni inhibiitor, võib olla otstarbekas asendada 50 % lämmastikurikast nõgesepulbrit tselluloosiga (nt α-tselluloosi pulber, keemiliselt puhas, osakese suurus ≤ 0,5 mm).
recommend using non-blotted worms of approximately 1,33 times the target biomass.
Turvas kuivatatakse õhu käes ja jahvatatakse peeneks pulbriks (tera suurus on ≤ 0,5 mm, nähtavad taimeosad puuduvad).
At the start of the uptake phase (day 0 of the test), the test organisms are removed from the acclimatisation chamber and distributed randomly to vessels (e.g. petri dishes) containing reconstituted water by adding groups of two worms to each vessel, until each vessel contains ten worms.
Selle suspensiooni pH reguleeritakse CaCO3 abil vahemikku 5,5 ± 0,5.
Each of these groups of worms are then randomly transferred to separate test vessels, e.g. using soft steel forceps.
Suspensiooni konditsioneeritakse vähemalt kaks ööpäeva temperatuuril 20 ± 2 °C kerge segamisega, et stabiliseerida pH ja luua stabiilne mikroobikomponent.
The test vessels are subsequently incubated under test conditions.
Segu pH mõõdetakse uuesti ja reguleeritakse vajaduse korral CaCO3 abil vahemikku 6,0 ± 0,5.
In order not to underestimate the exposure of the test organisms, e.g. by selectively feeding uncontaminated food, the food necessary for reproduction and growth of the test organisms should be added to the sediment once before or during application of the test substance (see Appendix 5).
Kui eeldatakse ammoniaagi moodustumist, võib tehissetet konditsioneerida seitse päeva samades tingimustes, mis valdavalt esinevad edasise katse käigus (nt sette-vee suhe 1:4, settekihi paksus samasugune kui katsenõudes) enne, kui setet hakatakse rikastama uuritava ainega, st see peab olema kaetud veega, mida tuleb aereerida.
Sediment-water ratio
Võetakse sette proovid (nt kolm proovi), et määrata kuivmass ja orgaanilise süsiniku üldsisaldus.
The recommended sediment-water ratio is 1:4 (45).
Seejärel segatakse iga kontsentratsioonitaseme settesse rikastatud kvartsliiv, sete jaotatakse paralleelkatsenõudesse ja lisatakse kattev veekiht (nt sette-vee suhe 1:4 settekihi paksus samasugune kui katsenõudes).
This ratio is considered suitable to maintain oxygen concentrations at appropriate levels, and to avoid the build-up of ammonia in the overlying water.
Valitud söödaallikas tuleks lisada enne sette rikastamist uuritava ainega või rikastamise ajal.
The oxygen content in the overlying water should be maintained at ≥ 40 % saturation.
Selleks et tagada sööda piisav kokkupuude uuritava ainega, tuleks söödaallikas segada settega hiljemalt sel päeval, kui sete rikastatakse uuritava ainega.
The overlying water of the test vessels should be gently aerated (e.g. 2 - 4 bubbles per second) via a pasteur pipette positioned approximately 2 cm above the sediment surface so as to minimise perturbation of the sediment.
Erandeid võib teha juhul, kui tasakaalustumisperioodi pikkuse tõttu jõuaks liiga suur osa söödast mikroobselt laguneda enne katseorganismide lisamist.
The photoperiod in the culture and the test is 16 hours (1)(6).
Võetakse sette proovid (nt kolm proovi rikastatud settest või kontrollkatsest), et määrata kuivmass ja orgaanilise süsiniku üldsisaldus.
Light intensity in the test area should be kept at about 500-1000 lx.
Muude koostisainete (turvas, liiv, kaoliin) kuivmass tuleks esitada grammides ja massiprotsendina kogu kuivainest.
The temperature should be 20 ± 2 °C throughout the test.
Kuivkomponentidele sette valmistamise ajal lisatava vee ruumala tuleks samuti esitada protsendina kuivaine üldmassist (nt 100 % kuivmassi + 46 % vett tähendab, et 1000 g kuivmassile lisatakse kokku 460 ml vett, mille tulemusena saadakse 1460 g märga setet).
One test concentration (as low as possible) is used for determination of the uptake kinetics, but a second (higher) concentration may be used (e.g. (46)).
Tehisliku sette kuivi koostisosi võib säilitada kuivas ja jahedas kohas toatemperatuuril.
In that case, samples are taken and analysed at steady state or after 28 d to confirm the BAF measured at the lower concentration (11).
Valmistatud märga setet võib säilitada (üksnes edasiseks kasutamiseks katseloomade kasvukultuuris) 4 ± 2 °C juures pimedas 2–4 nädalat alates valmistamise päevast (8).
The higher concentration should be selected so that adverse effects can be excluded (e.g. by choosing approximately 1 % of the lowest known chronic effect concentration ECx as derived from relevant chronic toxicity studies).
Uuritava ainega rikastatud setet tuleks kasutada viivitamata, v.a juhul, kui on andmeid selle kohta, et konkreetset setet saab säilitada ilma uuritava aine mürgisust ja biosaadavust mõjutamata.
The lower test concentration should be significantly higher than the detection limit in sediment and biological samples by the analytical method used.
Rikastatud sette proove võib säilitada kuni analüüsini konkreetse uuritava aine jaoks soovitatavates tingimustes.
If the effect concentration of the test substance is close to the analytical detection limit, the use of radiolabelled test substance with high specific radioactivity is recommended.
Bioakumulatsiooni uurimiseks soovitatavad väheharjasusside liigid
Treated and Control Replicates
Harilik mudatupp (Tubifex tubifex (MÜLLER)), mudatuplaste sugukond (Tubificidae), alamklass väheharjasussid (Oligochaeta)
The minimum number of treated replicates for kinetic measurements should be three per sampling point (11) throughout uptake and elimination phase.
Väheharjasusside (Oligochaeta) hulka kuuluva mudatuplaste perekonna (Tubificidae) esindaja harilik mudatupp Tubifex tubifex (Müller) elab mageveesetetes torudes, mis on vooderdatud limaga.
Additional replicates should be employed e.g. for optional additional sampling dates.
Mudatupp elab nendes torudes pea alaspidi, neelates setteosakesi ja kasutades nende küljes olevaid mikroorganisme ja orgaanikapudemeid.
For the elimination phase, a matching number of replicates is prepared with non-spiked sediment and overlying water, so that the treated worms can be transferred from designated treated vessels to non-treated vessels at the end of the uptake phase.
Mudatupe keha tagumine osa tavaliselt lookleb katvas veekihis, et hõlbustada hingamist.
The total number of treated replicates should be sufficient for both uptake and elimination phase.
Kuigi see liik elutseb paljudes settetüüpides üle kogu põhjapoolkera, eelistab mudatupp suhteliselt peeneteralist muda (59).
Alternatively, the worms designated for sampling during the elimination phase may be exposed in one large container containing spiked sediment of the same batch as used for uptake kinetics.
Selle liigi sobivust ökotoksikoloogilisteks katseteks on kirjeldatud näiteks järgmistes publikatsioonides (8, 29, 31, 39, 60, 62, 63).
It should be demonstrated that the test conditions (e.g. sediment depth, sediment water ratio, loading, temperature, water quality) are comparable to the replicates designated for the uptake phase.
Bioakumulatsiooni katsete tegemiseks piisava arvu mudatuppede (Tubifex tubifex) saamiseks võib usse pidada laboris püsikultuuris.
At the end of the uptake phase, water, sediment and worm samples should be taken from this container for analysis, and a sufficient number of large worms that show no sign of recent fragmentation, should be removed carefully and transferred to the replicates prepared for the elimination phase (e.g. ten organisms per replicate vessel).
Mudatupe kultuuris pidamiseks soovitatakse (8) katsemeetodis C.8 (40) kirjeldatud tehismullal ja katsemeetodis C.1 kirjeldatud taastatud veel põhinevat süsteemi.
If no solvent other than water is used, at least 9 replicates of a negative control (at least 3 sampled at start, 3 at end of uptake and 3 at end of elimination) should be provided for biological and background analysis.
Igasse kultuurinõusse pannakse kiht märga tehissetet, mille valmistamist on kirjeldatud 5. liites.
If any solubilising agent is used for application of the test substance, a solvent control should be run (at least 3 replicates should be sampled at start, 3 at the end of the uptake phase, and 3 at the end of the elimination phase).
Settekihi paksus peaks võimaldama ussidel järgida oma tavalist kaevamiskäitumist (mudatupel vähemalt 2 cm).
In this case, at least 4 replicates of a negative control (no solvent) should be provided for sampling at the end of the uptake phase.
Süsteemi lisatakse taastatud vett.
These replicates can be compared biologically with the solvent control in order to gain information on possible influence of the solvent on the test organisms.
Tuleks olla ettevaatlik, et vältida sette häirimist.
Details are given in Appendix 3.
Veefaasi aereeritakse kergelt (nt 2 mulli sekundis läbi 0,45 μm filtri lastud õhku) Pasteuri pipeti abil, mis on paigutatud 2 cm kõrgemale sette pinnast.
Frequency of water quality measurements
Kultuuri soovitatav temperatuur on 20 ± 2 °C.
As a minimum, the following water quality parameters should be measured in the overlying water during uptake and elimination phase:
Ussid lisatakse kultuurisüsteemi maksimumkoormusega 20000 isendit sette pinna ruutmeetri kohta.
Temperature
Suurem koormus võib põhjustada kasvu- ja paljunemiskiiruse vähenemist (43).
in one vessel of each treatment level per sampling date, and in one control vessel once per week and at the start and the end of the uptake and elimination period;
Tehissette kultuuris tuleb usse sööta.
temperature in the surrounding medium (ambient air or water bath) or in one representative test vessel may also be recorded e.g. in continuous or hourly intervals;
Täiendavaks söödaallikaks sobib peeneksjahvatatud kalasööt TetraMin® (8);
Dissolved oxygen content
Klerks 1994, erakirjavahetus.
in one vessel of each treatment level, and in one control vessel per sampling date;
Söötmine peaks olema piisav kasvu ja paljunemise tagamiseks ning hoidma ammoniaagi kuhjumise ja seente kasvu minimaalse.
expressed as mg/L and % ASV (air saturation value);
Sööta võib lisada kaks korda nädalas (nt 0,6–0,8 mg sette pinna ruutsentimeetri kohta).
Air supply
Praktilised kogemused on näidanud, et ühtlast sööda jaotumist kultuurinõus üle kogu sette pinna aitab tagada deioniseeritud vees valmistatud ja homogeenitud söödasuspensiooni kasutamine.
controlled at least once per day (workdays) and adjusted if needed;
Ammoniaagi kuhjumise vältimiseks tuleks katvat veekihti vahetada läbivoolusüsteemi kasutamisega või vähemalt üks kord nädalas käsitsi.
in one treated vessel of each treatment level per sampling date, and in one control vessel once per week and at the start and the end of the uptake and elimination period;
Setet tuleks tüvikultuuris vahetada iga kolme kuu tagant.
Total water hardness
Usside proovide võtmiseks kultuurist võib kultuuri setet sõeluda läbi 1 mm avadega sõela, kui vaja on üksnes täiskasvanud usse.
at least in one treated vessel and one control test vessel at the start and the end of the uptake and elimination period, expressed as mg/l CaCO3;
Kookonite kinnipidamiseks on vaja kasutada 0,5 mm avaga sõela ja noorjärkude kinnipidamiseks 0,25 mm avaga sõela.
Total ammonia content
Sõelad võib panna taastatud vette pärast seda, kui sete on neist läbi läinud.
at least in one treated vessel and one control test vessel at the start and the end of the uptake and elimination period;
Ussid lahkuvad sõelalt ja neid võib siis noppida veest pehmete teraspintsettide või tulel poleeritud otsaga pipeti abil.
Sampling and analysis of worms, sediment, and water
Katse tegemiseks või uue kultuuri alustamiseks kasutatakse üksnes vigastamata ja kindlalt määratud mudatupe Tubifex tubifex isendeid (vt näiteks (64)).
Sampling Schedule
Haiged või vigastatud ussid, samuti seeneniitidega nakatunud kookonid tuleb ära visata.
Examples of sampling schedules for a 28-day uptake phase and a 10-day elimination phase are given in Appendix 3.
Sünkroniseeritud kultuurist võib saada teatud vanuses usse sobivate ajavahemike järel, kui soovitakse.
Sample the water and sediment from the test chambers for determination of test substance concentration before adding the worms, and during both uptake and elimination phases.
Uued kultuuri kasvunõud seatakse valmis valitud ajavahemike järel (nt iga kahe nädala tagant) ja alustatakse teatavas vanuses loomadest (nt kookonitest).
During the test the concentrations of test substance are determined in the worms, sediment, and water in order to monitor the distribution of the test substance in the compartments of the test system.
Siin kirjeldatud kasvatustingimuste puhul saavad ussid täiskasvanuks 8–10 nädala pärast.
Sample the worms, sediment, and water on at least six occasions during the uptake as well as the elimination phase.
Kultuurist saab hakata usse võtma, kui ussid on munenud uued kookonid, näiteks kümne nädala pärast.
Continue sampling until a plateau (steady state) has been established (see Appendix 1) or for 28 days.
Võetud täiskasvanud usse saab kasutada katsete tegemiseks ja kookoneid võib kasutada uue kultuuri alustamiseks.
If the plateau has not been reached within 28 days, begin the elimination phase.
Rabeliimukas (Lumbriculus variegatus (MÜLLER)), sugukond rabeliimuklased (Lumbriculidae), alamklass väheharjasussid (Oligochaeta)
When beginning the elimination phase, transfer the designated worms to replicate chambers containing untreated sediment and water (see also paragraphs 17 and 18).
Rabeliimukas Lumbriculus variegatus (Lumbriculidae, Oligochaeta), elab samuti mageveesetetes üle kogu maailma ja seda kasutatakse laialdaselt ökotoksikoloogiakatsetes.
Sampling and sample preparation
Teavet tema bioloogia, kasvatustingimuste ja tundlikkuse kohta võib saada publikatsioonidest (1, 6, 9, 36).
Obtain water samples by decanting, siphoning or pipetting a volume sufficient for measuring the quantity of the test substance in the sample.
Rabeliimukat võib samuti kasvatada mudatupe jaoks soovitatud tehissettes (8), kuid on teatavad piirangud.
The remaining overlying water is carefully decanted or siphoned from the test chamber(s).
Kuna looduses eelistab rabeliimukas jämedamat setet kui mudatupp, võib rabeliimuka kultuur mudatupe puhul kasutatud settes 4–6 kuu pärast välja surra.
Sediment samples should be taken carefully, causing minimal disturbance of the worms.
Praktilised kogemused on näidanud, et rabeliimukat võib kasvatada liivasel põhjal/substraadil (nt kvartsliiv, peen kruus) läbivooluga süsteemis, kasutades söödaallikana kalasööta mitu aastat järjest, ilma substraati uuendamata.