natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The length of the tube must be such that 15 ml remains in the measuring cylinder when the flanges of the syringe rest on the cylinder's rim.
Kui tulemus on positiivne või kahtlane, kohaldatakse I peatüki punkti 3 III jaotist.
The remaining 15 ml is poured into a larval counting basin or two petri dishes and examined using a trichinoscope or stereo-microscope.
B. Mehhaanilise abiga koondproovide tehisseede meetod/filtereristusmenetlus
The measuring cylinder is washed with 5 to 10 ml of tap water and the washings are added to the sample.
Samad, mis on näidatud A jaotise punktis 1.
Under no circumstances is examination to be postponed until the following day.
Lisaks:
Where the digests are unclear or they are not examined within 30 minutes of their preparation, they must be clarified as follows:
iitrine Gelmani lehter koos filtrihoidjaga (mille läbimõõt on 45 mm);
the final sample of 60 ml is poured into a measuring cylinder and allowed to stand for 10 minutes;
filterkettad, mis koosnevad ümmargustest roostevabast terasest võrkudest, mille võrguava suurus on 35 mikronit (ketta läbimõõt 45 mm), kahest rõngast, mis on valmistatud 1 mm paksusest kummist (ning mille välisläbimõõt on 45 mm ja siseläbimõõt 38 mm), ümmargune võrk asetatakse kahe kummirõnga vahele ning kinnitatakse nende külge mõlema materjali jaoks sobiva kahekomponendilise liimiga;
45 ml of supernatant fluid is then removed by suction and the remaining 15 ml is made up to 45 ml with tap water,
iitrine Erlenmeyeri kolb, mis on varustatud kõrvaltoruga imemise tarbeks;
after a further settling period of 10 minutes, 30 ml of supernatant fluid is removed by suction and the remaining 15 ml is poured into a petri dish or larval counting basin for examination,
filterpump;
the measuring cylinder is washed with 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
plastkotid, mille mahutavus on vähemalt 80 ml;
Where the result is positive or uncertain, the provisions laid down in Chapter I(3)(III) shall apply.
vahendid plastikkottide sulgemiseks;
B. Mechanically assisted pooled sample digestion method/'on filter isolation' technique
rennilaasensüüm tugevusega 1:150000 Soxhleti ühikut grammi kohta.
As stipulated in Section A(1).
Proovide võtmine
Additional equipment:
Täiskoondproovid (100 proovi korraga)
1 litre Gelman funnel, complete with filter holder (diameter 45 mm);
Vt A jaotise punkti 3 II alapunkti alapunkt a.
filter discs, consisting of a circular stainless steel mesh with an aperture of 35 microns (disc diameter: 45 mm), two rubber rings 1 mm thick (external diameter: 45 mm; internal diameter: 38 mm), the circular mesh being placed between the two rubber rings and bonded to them using a two-component glue suitable for the two materials;
Vähem kui 100 proovist koosnevad koondproovid.
an Erlenmeyer flask, capacity 3 litres, fitted with a side tube for suction;
Vt A jaotise punkti 3 II alapunkti alapunkt b.
a filter pump;
Vastsete eraldamine filtreerimise teel
plastic bags, capacity at least 80 ml;
Väiksemate koondproovide korral peaks jääkogus olema vastavalt väiksem.
equipment for sealing the plastic bags;
Seejärel segatakse seedevedelikku, kuni jää on sulanud.
rennilase, strength 1:150000 Soxhlet units per gram.
Siis jäetakse jahutatud seedevedelik vähemalt kolmeks minutiks seisma, et vastsed saaksid keerduda.
Collecting of specimens
Filtrihoidjaga ja filterkettaga varustatud Gelmani lehter kinnitatakse Erlenmeyeri kolbi külge, mis on ühendatud filterpumbaga.
Complete pools (100 samples at a time)
Seedevedelik valatakse Gelmani lehtrisse ja filtreeritakse.
See Section A(3)(II)(a).
Filtreerimise lõpupoole võib seedevedeliku läbi filtri voolamisele kaasa aidata filterpumbaga imedes.
Smaller pools (less than 100 samples)
Imemine peab lõppema enne filtri kuivamist, st kui lehtris on järel 2–5 ml vedelikku.
See Section A(3)(II)(b).
Kui kogu seedevedelik on filtreeritud, eemaldatakse filterketas ja asetatakse see 80 ml mahutavusega plastikkotti, kuhu lisatakse 15–20 ml rennilaasilahust.
Recovery of larvae by filtration
Rennilaasilahuse valmistamiseks lisatakse 100 ml kraaniveele 2 grammi rennilaasi.
In the case of smaller pools, the amount of ice must be reduced correspondingly.
Plastkott suletakse kahekordselt ning asetatakse Stomacheri aparaati sisemise ja välimise koti vahele.
The digestion fluid is stirred until the ice has melted.
Stomacheri aparaadil lastakse kolm minutit töötada, näiteks kui sellega töödeldakse täiskoondproove või proovide mittetäielikku kogumit.
The chilled digestion fluid is then left for at least three minutes to let the larvae coil.
Kolme minuti möödudes eemaldatakse plastkott koos filterketta ja rennilaasilahusega Stomacheri aparaadist ja avatakse kääridega.
The Gelman funnel, fitted with a filter holder and filter disc, is mounted on an Erlenmeyer flask connected to a filter pump.
Sees olnud vedelik valatakse vastsete loendamisanumasse või petri tassile.
The digestion fluid is poured into the Gelman funnel and filtered.
Kotti loputatakse 5–10 ml veega, mis seejärel lisatakse vastsete loendamisanumasse uurimiseks trihhinelloskoobi abil või petri tassile uurimiseks stereomikroskoobi abil.
Towards the end of filtration, the digestion fluid can be helped to pass through the filter by applying suction with the filter pump.
Seedele allutatud materjali tuleb uurida niipea, kui see on valmis.
Suction must cease before the filter becomes dry, i.e. when 2 to 5 ml of fluid is left in the funnel.
Märkus:
Once all the digestion fluid has been filtered, the filter disc is removed and placed in an 80 ml capacity plastic bag, together with 15 to 20 ml of rennilase solution.
Kasutada tohib ainult täiesti puhtaid filterkettaid.
The rennilase solution is made by adding 2 g of rennilase to 100 ml of tap water.
Määrdunud kettaid ei tohiks kunagi lasta kuivada.
The plastic bag is sealed twice and placed between the inner and outer bags in the Stomacher.
Filterkettaid saab puhastada, jättes need ööseks rennilaasilahusesse.
The Stomacher is allowed to pound for three minutes, e.g. while it is working on a complete or incomplete pool.
Enne kasutamist tuleks neid pesta värskes rennilaasilahuses, kasutades Stomacheri aparaati.
After three minutes, the plastic bag, complete with filter disc and rennilase solution, is removed from the Stomacher and opened with scissors.
C. Kuni 35 grammi raskuste koondproovide automaatne tehisseede meetod
The liquid contents are poured into a larval counting basin or petri dish.
Trichomatic 35® segur, millel on filtreerimistarvik.
The bag is washed out with 5 to 10 ml of water, which is then added to the larval counting basin for examination by trichinoscope or to the petri dish for examination by stereo-microscope.
Soolhappe 8,5 (± 0,5) massiprotsendiline lahus.
Digests must be examined as soon as they are ready.
Läbipaistvad polükarbonaatmembraaniga filtrid, mille läbimõõt on 50 mm ja pooride suurus on 14 mikronit.
Note:
Pepsiin tugevusega 1:10000 NF (US National Formulary) ehk 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) ja 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie) või stabiliseeritud pepsiinilahus pepsiinisisaldusega vähemalt 660 Euroopa farmakopöa ühikut/ml.
Filter discs must never be used when not completely clean.
Lamedaotsalised pinsetid.
Unclean discs must never be allowed to dry out.
Mitu mikroskoobi alusklaasi küljepikkusega vähemalt 5 cm või mitu petri tassi läbimõõduga vähemalt 6 cm (stereomikroskoobiga kasutamiseks), mille põhja alapinnale on terava instrumendi abil märgitud 10 × 10 mm suurused ruudukujulised kontrollpiirkonnad.
Filter discs can be cleaned by leaving them in rennilase solution overnight.
Altvalgustusega stereomikroskoop (suurendusega 15–60 korda) või horisontaallauaga trihhinelloskoop.
Before use, they must be washed in fresh rennilase solution using the Stomacher.
Konteiner jäätmevedeliku kogumiseks.
C. Automatic digestion method for pooled samples of up to 35 g
I. Tehisseedemenetlus
A Trichomatic 35® blender with filtration insert.
Filtreerimistarvikuga lõikur asetatakse paigale, ühendatakse tühjendustoru ning juhitakse tühjendustoru jäätmekonteinerisse.
Hydrochloric acid 8,5 ± 0,5 % weight.
Kui lõikur on sisse lülitatud, algab soojenemine.
Transparent polycarbonate membrane filters with a diameter of 50 mm and a pore size of 14 microns.
Enne alustamist tuleks avada ja sulgeda reaktsioonikambri all olev põhjaventiil.
Pepsin, strength 1:10000 NF (US National Formulary) corresponding to 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), or stabilised liquid pepsin with minimum 660 European Pharmacopoeia units/ml.
Seejärel lisatakse kuni 35 ligikaudu 1 grammi raskust proovi (temperatuuril 25–30 °C), mis on võetud igast üksikproovist vastavalt punktile 2.
Tweezers with a flat tip.
Veenduge, et suuremad kõõlusetükid on eemaldatud, sest need võivad ummistada membraanfiltri.
A number of microscope slides with a side-length of at least 5 cm or a number of petri dishes at least 6 cm in diameter, marked on their undersides into 10 × 10 mm square areas using a pointed instrument.
Lõikuriga ühendatud vedelikukambri servale valatakse (umbes 400 ml) vett.
A (stereo-)microscope with transmitted light (magnification 15 to 60 times) or a trichinoscope with a horizontal table.
Väiksema, ühendatud vedelikukambri servale valatakse umbes 30 ml soolhappe (8,5 %) lahust.
A bin for collection of waste liquids.
Membraanfilter asetatakse filtrihoidjasse jämeda filtri alla.
I. Digestion procedure
Lõpuks lisatakse 7 grammi pepsiini või 21 ml pepsiinilahust.
Place the blender with the filtration insert, connect the waste tube and place the tube so it drains into the waste bin.
Reaktsiooni- ja vedelikukambri kaaned suletakse.
When the blender is switched on, heating will start.
Valitakse seedeaeg:
Before this is done, the bottom valve located below the reaction chamber must be opened and closed.
lühike seedeaeg (5 minutit) tavalises tapaeas sigade puhul ning pikem seedeaeg (8 minutit) muude proovide puhul.
Up to 35 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 °C) taken from each individual sample in accordance with point 2 are then added.
Automaatne eraldumine algab siis, kui vajutada lõikuri käivitusnuppu, ning seede sellele järgneva filtreerimisega on automaatne.
Ensure that larger pieces of tendons are removed as they may clot the membrane filter.
Pärast 10–13 minuti möödumist protsess lõpeb ja seade seiskub automaatselt.
Pour water up to the edge of a liquid chamber connected to the blender (approximately 400 ml).
Reaktsioonikambri kaas avatakse pärast seda, kui on kontrollitud, et reaktsioonikamber on tühi.
Pour about 30 ml hydrochloric acid (8,5 %) to the edge of the smaller, connected liquid chamber.
Kui reaktsioonikambris on vahtu või seedevedeliku jääke, korratakse menetlust vastavalt V jaotisele.
Place a membrane filter under the coarse filter in the filter holder in the filter insert.
Vastsete eraldamine
Lastly, add 7 g of pepsin or 21 ml liquid pepsin.
Filtrihoidja eemaldatakse ning membraanfilter paigutatakse esemeklaasile või petri tassile.
Close the lids of the reaction and liquid chambers.
Membraanfiltrit uuritakse (stereo-)mikroskoobi või trihhinelloskoobi abil.
Select the period of digestion.
Seadmete puhastamine
A short digestion period (5 minutes) must be set for pigs at the normal slaughter age and a longer time (8 minutes) for other samples.
Positiivse tulemuse korral täidetakse kaks kolmandikku lõikuri reaktsioonikambrist keeva veega.
When the start button on the blender is turned on, the process of dispensing and digestion starts automatically, followed by filtration.
Ühendavasse vedelikukambrisse valatakse tavalist kraanivett, kuni alumise taseme andur on kaetud.
After 10 to 13 minutes the process is completed and stops automatically.
Seejärel käivitatakse automaatne puhastusprogramm.
Open the lid of the reaction chamber after checking that the chamber is empty.
Filtrihoidja ja ülejäänud varustus desinfitseeritakse näiteks formaliini abil.
If there is foam or any digestion liquid remaining in the chamber, repeat the procedure in accordance with Section V.
Tööpäeva lõppedes täidetakse lõikuri vedelikukamber veega ning käivitatakse normaalprogramm.
Recovery of larvae
Membraanfiltrite kasutamine
Remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish.
Ühtegi polükarbonaatmembraaniga filtrit ei tohi kasutada rohkem kui viis korda.
Examine the membrane filter using a (stereo-)microscope or a trichinoscope.
Iga kasutuskorra vahel pööratakse filtrit.
Cleaning equipment
Lisaks kontrollitakse filtrit pärast igat kasutuskorda kahjustuste suhtes, mis võib selle edasiseks kasutamise sobimatuks muuta.
Where the result is positive, fill the blender reaction chamber with boiling water until it is two-thirds full.
V. Menetlus, mida kasutatakse siis, kui seede on ebatäielik ja filtreerimine ei ole seetõttu võimalik.
Ordinary tap water is poured into the connecting liquid chamber until it covers the lower sensor.
Kui lõikur on läbinud automaatprogrammi vastavalt I jaotisele, avatakse reaktsioonikambri kaas ja kontrollitakse, kas reaktsioonikambrisse on jäänud vahtu või vedelikku.
Automatic cleaning then takes place.
Kui seda on sinna jäänud, siis toimitakse järgmiselt:
Decontaminate the filter-holder and any other equipment, e.g. using formol.
Suletakse reaktsioonikambri all olev põhjaventiil;
After work is completed for the day, fill the blender liquid chamber with water and put it through a standard cycle.
Filtrihoidja eemaldatakse ning membraanfilter paigutatakse esemeklaasile või petri tassile;
Use of membrane filters
Asetatakse filtrihoidjasse uus membraanfilter ning paigaldatakse filtrihoidja;
Each polycarbonate membrane filter may be used no more than five times.
Vedelikukambrisse valatakse vett, kuni alumise taseme andur on kaetud;
The filter is to be turned between each use.
Käivitatakse automaatne puhastusprogramm;
In addition, the filter must be checked after each use for any damage which would make it unsuitable for further use.
Pärast puhastusprogrammi lõppu avatakse reaktsioonikambri kaas ja kontrollitakse, kas reaktsioonikambrisse on jäänud vedelikku;
V. Method to be applied when digestion is incomplete and filtration cannot be carried out
Kui reaktsioonikamber on tühi, eemaldatakse filtrihoidja ning paigutatakse membraanfilter pintsettide abil esemeklaasile või petri tassile;
Once the blender has been put through an automatic cycle in accordance with Section I, open the lid of the reaction chamber and check whether there is foam or any liquid remaining in the chamber.
Saadud kahte membraanfiltrit uuritakse vastavalt II jaotisele.
If this is the case, proceed as follows:
Kui filtreid ei saa uurida, korratakse kogu seedeprotsessi pikendatud seedeajaga vastavalt I jaotisele.
close the bottom valve below the reaction chamber;
D. Koondproovide uurimine tehisseede meetodil magnetsegaja kasutamisega/filtreerimise teel eraldamisega ning vastsete määramine lateks-aglutinatsiooni reaktsiooni meetodil
remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish;
Meetodit loetakse samaväärseks ainult kodusea liha kontrollimiseks.
put a new membrane filter in the filter holder and attach the filter holder;
Terasest filtreerimisseade terasest lehtri ja 20-mikronise võrguga filtritega.
fill the blender liquid chamber with water until the lower sensor is covered;
Vaakumpump.
carry out the automatic cleaning cycle;
10–15 liitrised metall- või plastikmahutid seedevedeliku kogumiseks.
after the cleaning cycle has ended, open the lid of the reaction chamber and check whether any liquid remains;
Kolme telje sihis liikuv güroloksuti.
if the chamber is empty, remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish with tweezers;
Mitmesuguse suurusega pipetid (1, 10 ja 25 ml), mikropipetid vastavalt lateks-aglutinatsiooni diagnoosikomplekti tootja juhistele ning pipetihoidjad.
examine the two membrane filters in accordance with Section II.
ikronise nailonvõrguga filtrid filtreerimissüsteemiga sobiva läbimõõduga.
If the filters cannot be examined, repeat the entire digestion process with a longer digestion time in accordance with Section I.
Plastik- või teraspintsetid suurusega 10 kuni 15 cm.
D. Magnetic stirrer method for pooled sample digestion/'on filter isolation' and larva detection by a latex agglutination test
15 ml koonilised katseklaasid.
This method is only considered equivalent for the testing of meat of domestic swine.
Teflonist või terasest otsakattega nui, mille kuju sobib kooniliste katseklaasidega.
Steel filtration apparatus for 20 μm mesh filters with a steel funnel.
Trichin-L'i antigeenikomplekti (valideerimiskoodiga nr EURLP_D_001/2011) lateks-aglutinatsiooni plaadid.
Vacuum pump.
Trichin-L'i antigeenikomplekti (valideerimiskoodiga nr EURLP_D_001/2011) puhverlahus koos säilitusainega (proovi lahjendusvedelik)
Metal or plastic tanks, capacity 10 to 15 litres, to collect the digestive juice.
Trichin-L'i antigeenikomplekti (valideerimiskoodiga nr EURLP_D_001/2011) puhverlahus koos säilitusainega (negatiivne kontrollproov).
A 3D gyratory rocker.
Trichin-L'i antigeenikomplekti (valideerimiskoodiga nr EURLP_D_001/2011) puhverlahus koos Trichinella spiralis'e antigeenidega ja säilitusainega (positiivne kontrollproov).
Pipettes of different sizes (1, 10 and 25 ml), micropipettes according to the latex agglutination manufacturer's instructions and pipette holders.
Trichin-L'i antigeenikomplekti (valideerimiskoodiga nr EURLP_D_001/2011) antikehadega kaetud polüstüreeni osakesed säilitusainega puhverlahuses (latekspärlid).
20 microns nylon mesh filters of a diameter that fits with the filtration system.
aa) Ühekordselt kasutatavad pulgad.
Plastic or steel forceps of 10 to 15 cm.
I. Täiskoondproovide puhul (100 g proovi korraga)
Conical vials of 15 ml.
16 ± 0,5 ml 25 % soolhapet (0,2 % lõplik) lisatakse 3-liitrisesse keeduklaasi, mis sisaldab 2,0 liitrit ± 200 ml temperatuurini 46–48 °C soojendatud kraanivett;
A pestle with a Teflon or steel conical tip to fit in the conical vials.
Lisatakse 10 ± 1 g pepsiini (või 30 ± 3 ml pepsiinilahust).
Latex agglutination cards of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
100–115-grammised proovid, mis on kogutud kooskõlas punktiga 2, peenestatakse lõikuris koos 150 ml ± 15 ml soojendatud puhverseedevedelikuga.
Buffer solution with preservative (sample diluent) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Filtrialusele pannakse 20-mikronise nailonvõrguga filter.
Buffer supplemented with preservative (negative control) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Kooniline terasest filtreerimislehter kinnitatakse plokisüsteemiga toe külge ja lehtrisse pannakse 180-mikronine terassõel.
Buffer supplemented with Trichinella spiralis antigens and preservative (positive control) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Vaakumpump ühendatakse filtrialuse ja metallist või plastist mahutiga, kuhu kogutakse seedevedelik.
Buffer with polystyrene particles coated with antibodies supplemented with preservative (latex beads) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Segamine lõpetatakse ja seedevedelik kallatakse filtreerimislehtrisse sõelast läbi.
(aa) Disposable sticks.
Seejärel pestakse keeduklaasi ligikaudu 250 ml kuuma veega.
I. For complete pools (100 g of samples at a time)
Pärast seedevedeliku filtreerimist kallatakse loputusvedelik filtreerimisseadmesse.
16 ± 0,5 ml of 25 % hydrochloric acid (0,2 % final) is added to a 3 litre beaker containing 2,0 litres ± 200 ml of tap water, preheated to 46 to 48 °C;
Filtreerimismembraan võetakse servast pintsettide vahele.
10 ± 1 g of powder pepsin (or 30 ± 3 ml of liquid pepsin) is added.
Filtreerimismembraan volditakse vähemalt neljaks kokku ja pannakse 15 ml koonilisse katseklaasi.
100-115 g of samples collected in accordance with point 2 are chopped in the blender, with 150 ± 15 ml of preheated digestion buffer.
Uhmrinuia suurus peab vastama koonilise katseklaasi suurusele.
The 20 microns nylon mesh filter is placed on the filtration support.
Filtreerimismembraan surutakse nuiaga 15 ml koonilise katseklaasi põhja ja vajutatakse seda ligikaudu 20 tugeva edasi-tagasi liigutusega, kusjuures nui peab olema tootja juhiste kohaselt filtreerimismembraani voldi vahel.
The conical filtration steel funnel is fixed to the support with the block system and the steel sieve of 180 microns mesh size is placed on the funnel.
0,5 ml ± 0,01 ml proovi lahjendusvedelikku pipeteeritakse 15 ml koonilisse katseklaasi ja filtreerimismembraan homogeniseeritakse nuiaga vastavalt tootja juhistele, tehes nuiaga väiksema ulatusega edasi-tagasi liigutusi ligikaudu 30 sekundit, vältides äkilisi liigutusi, mis võiks tekitada pritsmeid.
The vacuum pump is connected with the filtration support and with the metal or plastic tank, to collect the digestive fluid.
Kõik proovid, negatiivne kontrollaine ja positiivne kontrollaine pipeteeritakse aglutinatsiooniplaadi pesadesse vastavalt tootja juhistele.
Stirring is stopped and the digestion fluid is poured into the filtration funnel through the sieve.
Igasse pesasse pannakse pipetiga latekskuule vastavalt tootja juhistele, hoides neid kokku puutumast proovi(de) ja kontrollainetega.
The beaker is rinsed with approximately 250 ml of warm water.
Igas pesas tuleb latekskuule segada ühekordselt kasutatava pulgaga, et vedelik kataks ühtlaselt kogu pesa.
The rinsing liquid is poured into the filtration ramp after the digested fluid has been successfully filtrated.
Seejärel pannakse aglutinatsiooniplaat vastavalt tootja juhistele kolme telje sihis liikuvale loksutile ja seda loksutatakse 10 ± 1 minutit.
The filtration membrane is taken with the forceps, holding it by an edge.
Pärast tootja osutatud ajavahemiku möödumist lülitatakse loksuti välja ja plaat pannakse tasasele pinnale ning reaktsiooni tulemusi uuritakse kohe, vastavalt tootja juhistele.
The filtration membrane is folded (minimal) in four and put in the 15 ml conical tube.
Positiivse proovi korral peavad tekkima kuulide kogumid.
The choice of conical tube must be adapted to the pestle.
Negatiivse proovi korral peab suspensioon jääma homogeenseks, ilma kuulide kogumiteta.
The filtration membrane is pushed at the bottom of the 15 ml conical tube with the help of the pestle and strongly pressed by doing approximately 20 successive back and forth movements with the pestle which should be positioned inside the filtration membrane folding according to the manufacturer's instructions.
Alla 100 g koondproovid, nagu on sätestatud I peatüki punkti 3 II alapunktis
0,5 ± 0,01 ml of sample diluents is added into the 15 ml conical tube by pipette and the filtration membrane is homogenised with the pestle by doing successive low amplitude back and forth movements for approximately 30 seconds, avoiding abrupt movements to limit liquid splashes according to the manufacturer's instructions.
Alla 100 g koondproovide puhul tuleb järgida menetluse kirjeldust, mis on esitatud I peatüki punkti 3 II alapunktis.
Each sample, the negative control, and the positive control, are dispensed into different fields of the agglutination card by pipettes, according to the manufacturer's instructions.
Kui koondproovide uurimine lateks-aglutinatsiooni reaktsiooniga annab positiivse või kahtlase tulemuse, võetakse vastavalt I peatüki punkti 2 alapunktile a igalt sealt 20 g lisaproov.
The latex beads are added into each field of the agglutination card by a pipette, according to the manufacturer's instructions, without making them come into contact with the sample/s and controls.
Viie sea 20 g proovid pannakse kokku ja koondproovi uuritakse I jaotises kirjeldatud viisil.
In each field, the latex beads are then gently mixed with a disposable stick until the homogeneous liquid covers the entire field.
Selliselt uuritakse 20 viiesealise rühma proove.