natgillin/translations-raw huggingface dataset:
specific oxygen consumption of the controls (mg O2/(g sludge × h);
Võrdluskemikaaliga kontrollimist soovitatakse teha vähemalt kaks korda aastas või kui katseid tehakse harvem, siis uuritava kemikaali mürgisuse määramisega samaaegselt.
all measured data, inhibition curve(s) and method for calculation of EC50;
Kõik katsesöötmega kokku puutuvad seadmed peaksid olema klaasist või muust keemiliselt inertsest materjalist.
and, if possible, 95 per cent confidence limits, possibly EC20, EC80;
Kultuuride kasvatamiseks ja katseteks kasutatavad klaasnõud peaksid olema steriilsed ja katsesöötmesse leostuda võivatest keemilistest saasteainetest puhastatud.
possibly NOEC and the used statistical methods, if the EC50 cannot be determined;
Katsenõud peaksid olema piisavalt laiad, et kontrollnõudes kasvavad eri kolooniate tallusjad võsud ei ulatuks katse lõpus üksteise peale.
results for total, and if appropriate, heterotrophic and nitrification inhibition;
Ei ole tähtis, kas juured puudutavad katsenõu põhja, kuid on soovitatav, et lahuse sügavus igas nõus oleks vähemalt 20 mm ja lahuse maht vähemalt 100 ml.
abiotic oxygen uptake in the physico-chemical control (if used);
Kui need nõuded on täidetud, ei ole valitud katsenõu tüüp eriti oluline.
name of the reference chemical and results with this chemical;
Sobivaks on osutunud nii nõuetekohaste mõõtmetega keeduklaasid, kristalliseerimisnõud kui ka klaasist Petri tassid.
all observations and deviations from the standard procedure, which could have influenced the result.
Katsenõud peavad olema kaetud, et vähendada aurumist ja juhuslikku saastumist, kuid samal ajal peab olema tagatud vajalik õhuvahetus.
Current approaches in the statistical analysis of ecotoxicity data:
Sobivad katsenõud ja eriti nende katted ei tohi varjata valgust ega muuta selle spektrit.
a guidance to application, Series on testing and assessment No. 54, ENV/JM/MONO(2006)18, OECD, Paris.
Kultuure ja katsenõusid ei tohiks hoida samas kohas.
The following definitions are applicable to this test method.
Seepärast on kõige parem kasutada eraldi kasvukambreid, inkubaatoreid või ruume.
Chemical means a substance or a mixture.
Valgustustihedus ja temperatuur peavad olema reguleeritavad ja neid hoitakse konstantsena (vt punktid 35–36).
ECx (Effect concentration for x % effect) is the concentration that causes an x % of an effect on test organisms within a given exposure period when compared with a control.
Katseorganism
For example, an EC50 is a concentration estimated to cause an effect on a test end point in 50 % of an exposed population over a defined exposure period.
Käesoleva meetodi kohases katses kasutatakse katseorganismina lemmelt Lemna gibba või Lemna minor.
NOEC (no observed effect concentration) is the test chemical concentration at which no effect is observed.
Mürgisuse hindamise katsetes kasutatud lemleliikide lühikirjeldus on esitatud 2. liites.
In this test, the concentration corresponding to the NOEC, has no statistically significant effect (p < 0,05) within a given exposure period when compared with the control.
Taimne materjal võib pärineda kultuuride kollektsioonist, teisest laborist või loodusest.
Fig.
Loodusest kogutud taimi tuleks enne kasutamist kultiveerida vähemalt kaheksa nädalat katses kasutatavas söötmes.
1:
Loodusliku lähtekultuuri kogumiskohas ei tohi esineda ilmseid saasteallikaid.
Examples for measuring unit
Teisest laborist või kultuuride kollektsioonist saadud taimi tuleks enne kasutamist kultiveerida samal viisil vähemalt kolm nädalat.
Key:
Taimse materjali päritolu ning katses kasutatud liik ja kloon (kui see on teada) tuleks alati märkida katseprotokolli.
1 activated sludge
Tuleks kasutada monokultuure, mis ei ole nähtavalt saastunud muude organismide, näiteks vetikate või algloomadega.
2 synthetic medium
Lemle L. minor terved taimed moodustavad 2–5 tallusjast võsust koosneva koloonia; L. gibba tervete taimede koloonia võib koosneda kuni seitsmest tallusjast võsust.
3 test chemical
Katses kasutatavate taimede kvaliteet ja ühetaolisus mõjutavad märkimisväärselt katsetulemust ning seepärast tuleks taimi hoolikalt valida.
4 air
Tuleks kasutada kiirelt kasvavaid noori taimi, millel pole nähtavaid kahjustusi ega värvimuutusi (kloroos).
5 mixing vessel
Kvaliteetses kultuuris on palju vähemalt kahest tallusjast võsust koosnevaid kolooniaid.
6 magnetic stirrer
Ühekaupa esinevate tallusjate võsude rohkus osutab keskkonnastressile, nt toitainevaegusele; sellisest kultuurist saadud taimset materjali ei tohiks katses kasutada.
7 oxygen measuring cell
Kultiveerimine
8 oxygen electrode
Kultuuride hooldamissageduse vähendamiseks (nt kui teatava aja jooksul ei kavandata katseid lemlega) võib kultuure hoida vähendatud valgustustiheduse ja madalama temperatuuri (4–10 °C) juures.
9 oxygen measuring instrument
Kultiveerimist kirjeldatakse üksikasjalikult 3. liites.
10 recorder
Vetikate või muude organismidega saastumise tunnuste ilmnemisel võib olla vaja lemle tallusjate võsude osaproov pindsteriliseerida ja seejärel värskesse söötmesse üle viia (vt 3. liide).
Fig.
Ülejäänud saastunud kultuur tuleks sellisel juhul kõrvaldada.
2:
Vähemalt seitse päeva enne katset viiakse piisav arv kolooniaid aseptiliselt värskesse steriilsesse söötmesse ja kolooniaid kasvatatakse katsetingimustes 7–10 ööpäeva.
Example of measuring unit, using a BOD bottle
Katsekeskkond
1 Test vessel
Liikide Lemna minor ja Lemna gibba puhul soovitatakse kasutada allpool kirjeldatud eri söötmeid.
2 oxygen electrode
Tuleks hoolikalt kaaluda, kas lisada katsesöötmesse pH puhvrit (liigi L. minor puhul MOPS (4-morfoliinpropaansulfoonhape, CASi nr 1132-61-2) ja L. gibba puhul NaHCO3), kui on kahtlus, et see võib reageerida uuritava kemikaaliga ja mõjutada kemikaali mürgisuse avaldumist.
3 oxygen measuring instrument
Võib kasutada ka Steinbergi söödet (9), kui järgitakse nõuetele vastavuse kriteeriume.
Fig.
Liigi L. minor taimede kultiveerimiseks ja nendega katsete tegemiseks soovitatakse kasutada Rootsi Standardiinstituudi (SIS) lemlesöödet modifitseeritud kujul.
3:
Selle söötme koostis on esitatud 4. liites.
Example of inhibition curves
L. gibba kultiveerimiseks ja sellega katsete tegemiseks soovitatakse kasutada 4. liites kirjeldatud söödet 20X-AAP.
X concentration of 3,5-dichlorophenol (mg/l)
Liigi L. minor puhul ja ka L. gibba puhul võib nõuetele vastavuse kriteeriumide järgimise korral kasutada ka 4. liites kirjeldatud Steinbergi söödet.
Y inhibition (%)
Katselahused
inhibition heterotrophic respiration using a nitrifying sludge
Katselahused valmistatakse tavaliselt põhilahuse lahjendamise teel.
inhibition nitrification using a nitrifying sludge
Uuritava kemikaali põhilahuse valmistamiseks lahustatakse kemikaal tavaliselt söötmes.
Chapter C.26 is replaced by the following:
Üldjuhul ei tohiks uuritava kemikaali suurim kasutatav kontsentratsioon ületada kemikaali vees lahustuvust katsetingimustes.
26 LEMNA SPECIES GROWTH INHIBITION TEST
Sama ajal tuleks silmas pidada, et lemleliikide taimed ujuvad pinnal ja võivad kokku puutuda ka vee ja õhu piirpinnale koguneva kemikaaliga (nt vees raskesti lahustuv, hüdrofoobne või pindaktiivne kemikaal).
This test method is equivalent to OECD Test Guideline (TG) 221 (2006).
Sellisel juhul puutuvad taimed kokku ka muu kui lahuses oleva materjaliga ning olenevalt uuritava kemikaali omadustest võib kemikaali kokkupuutekontsentratsioon olla suurem kui selle vees lahustuvus.
It is designed to assess the toxicity of chemicals to freshwater aquatic plants of the genus Lemna (duckweed).
Vees raskesti lahustuva kemikaali puhul võib olla vaja kasutada selle kemikaali kontsentreeritud põhilahuse või dispersiooni valmistamiseks orgaanilist lahustit või dispergeerivat ainet, et hõlbustada uuritava kemikaali täpse koguse lisamist katsesöötmesse ja soodustada kemikaali lahustumist või dispergeerumist.
It is based on existing methods (1)(2)(3)(4)(5)(6) but includes modifications of those methods to reflect recent research and consultation on a number of key issues.
Tuleks teha kõik selleks, et selliseid aineid ei oleks vaja kasutada.
This Test Method has been validated by an international ring-test (7).
Lisatav lahusti või dispergeeriv aine ei tohiks olla fütotoksiline.
This test method describes toxicity testing using Lemna gibba and Lemna minor, both of which have been extensively studied and are the subject of the standards referred to above.
Tavaliselt kasutatavad lahustid, mis kuni kontsentratsioonini 100 μl/l ei ole fütotoksilised, on näiteks atsetoon ja dimetüülformamiid.
The taxonomy of Lemna spp. is difficult, being complicated by the existence of a wide range of phenotypes.
Lahusti või dispergeeriva aine kasutamisel peaks selle lõppsisaldus olema võimalikult väike (≤ 100 μl/l) ja tuleks märkida katseprotokolli ning kõigi katse- ja kontrollkultuuride puhul tuleks kasutada lahusti või dispergeeriva aine ühesugust kontsentratsiooni.
Although genetic variability in the response to toxicants can occur with Lemna, there are currently insufficient data on this source of variability to recommend a specific clone for use with this test method.
Täiendavad juhised dispergeeriva aine kasutamise kohta on esitatud allikas 8.
It should be noted that the test is not conducted axenically but steps are taken at stages during the test procedure to keep contamination by other organisms to a minimum.
Katse- ja kontrollrühmad
Details of testing with renewal (semi-static and flow-through) and without renewal (static) of the test solution are described.
Uuritava kemikaali sobivate kontsentratsioonide valimine on hõlpsam, kui kemikaali mürgisus lemlele on eelnevalt näiteks kontsentratsioonivahemiku leidmise katsega kindlaks tehtud.
Depending on the objectives of the test and the regulatory requirements, it is recommended to consider the application of semi-static and flow through methods, e.g. for chemicals that are rapidly lost from solution as a result of volatilisation, photodegradation, precipitation or biodegradation.
Mürgisuse hindamise lõplikus katses tuleks üldjuhul kasutada vähemalt viit uuritava kemikaali kontsentratsiooni geomeetrilises jadas.
Further guidance is given in (8).
Kasutatavate kontsentratsioonide jada tegur ei tohiks üldjuhul olla suurem kui 3,2, kuid kontsentratsiooni ja mõju vahelise nõrga sõltuvuse puhul võib siiski kasutada suuremat tegurit.
Exponentially growing plant cultures of the genus Lemna are allowed to grow as monocultures in different concentrations of the test chemical over a period of seven days.
Kui kasutatakse vähem kui viit kontsentratsiooni, tuleks seda põhjendada.
The objective of the test is to quantify chemical-related effects on vegetative growth over this period based on assessments of selected measurement variables.
Uuritava kemikaali iga kontsentratsiooni puhul tuleks kasutada vähemalt kolme paralleelkultuuri.
Frond number is the primary measurement variable.
Kasutatavate kontsentratsioonide valimisel kontsentratsioonivahemiku leidmise katse ja/või mürgisuse hindamise lõpliku katse jaoks tuleks arvestada järgmist.
At least one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) is also measured, since some chemicals may affect other measurement variables much more than frond numbers.
ECx määramisel peaks ECx väärtus jääma kasutatavasse kontsentratsioonivahemikku, et tagada tulemuste piisav usaldusväärsus.
To quantify chemical-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ECx (e.g. EC50)
Näiteks peaks EC50 määramisel suurim kasutatav kontsentratsioon olema suurem kui EC50 väärtus.
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as logarithmic increase in measurement variable (average specific growth rate) during the exposure period.
Kui EC50 väärtus jääb kasutatavast kontsentratsioonivahemikust väljapoole, on asjaomane usaldusvahemik lai ja lähendatud mudeli sobivust katseandmetega ei pruugi olla võimalik statistiliselt hinnata.
An additional response variable used in this Test Method is yield, which may be needed to fulfil specific regulatory requirements in some countries.
Kui eesmärk on leida LOEC või NOEC, peaks väikseim kasutatav kontsentratsioon olema piisavalt väike, et kasv ei oleks selle kontsentratsiooni juures oluliselt aeglasem kui kontrollrühmas.
It is defined as measurement variables at the end of the exposure period minus the measurement variables at the start of the exposure period.
Peale selle peaks suurim kasutatav kontsentratsioon olema piisavalt suur, et kasv oleks selle kontsentratsiooni juures oluliselt aeglasem kui kontrollrühmas.
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the chemical in the test medium, should be available.
Vastasel juhul tuleb katset korrata, kasutades teistsugust kontsentratsioonivahemikku (kui suurim kasutatav kontsentratsioon ei ole juba võrdne lahustuvuse piirkontsentratsiooniga või suurima nõutava kontsentratsiooniga, näiteks 100 mgl/1).
Information on the test chemical which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity, water solubility, stability in water and light, pKa, Kow, vapour pressure and biodegradability.
Igas katses kasutatakse ka kontrollkultuure, mille puhul sööde, tallusjate võsude ja kolooniate arv, keskkonnatingimused ja katsemeetodid on samad kui uuritava kemikaaliga kultuuride puhul, kuid mis ei sisalda uuritavat kemikaali.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry's Law constant, which will indicate if significant losses of the test chemical during the test period are likely.
Lahusti või dispergeeriva aine kasutamise korral tuleks lisaks valmistada kontrollkultuur, milles lahusti või dispergeeriva aine kontsentratsioon on sama kui uuritavat kemikaali sisaldavates nõudes.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
Paralleelsete kontrollnõude ja vajaduse korral lahustiga kontrollnõude arv peab olema vähemalt võrdne uuritava kemikaali iga kontsentratsiooni puhul kasutatavate nõude arvuga ning soovitatavalt sellest kaks korda suurem.
Where information on the solubility and stability of the test chemical is uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Kui ei ole vaja määrata NOEC väärtust, võib katseplaani muuta nii, et suurendatakse uuritava kemikaali kontsentratsioonide arvu ja vähendatakse paralleelkultuuride arvu iga kontsentratsiooni kohta.
When pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or chemicals which are hydrolytically unstable, the addition of a buffer to the growth medium is recommended (see paragraph 21).
Paralleelseid kontrollkultuure peab siiski olema vähemalt kolm.
Further guidance for testing chemicals with physical-chemical properties that make them difficult to test is provided in (8).
Kokkupuude
For the test to be valid, the doubling time of frond number in the control must be less than 2,5 days (60 h), corresponding to approximately a seven-fold increase in seven days and an average specific growth rate of 0,275 d– 1.
Inokulum-kultuurist viiakse 2–4 nähtavast tallusjast võsust koosnevad kolooniad aseptilistes tingimustes juhuvaliku alusel üle katsenõudesse.
Using the media and test conditions described in this Test Method, this criterion can be attained using a static test regime (5).
Igas katsenõus peaks olema kokku 9–12 tallusjat võsu.
It is also anticipated that this criterion will be achievable under semi-static and flow-through test conditions.
Tallusjate võsude ja kolooniate arv peaks kõikides katsenõudes olema võrdne.
Calculation of the doubling time is shown in paragraph 49.
Käesoleva meetodi rakendamisel saadud kogemustest ja võrdlusuuringu andmetest nähtub, et kui kasutada iga kontsentratsiooni kohta kolme paralleelkultuuri, millest igaühes on algselt 9–12 tallusjat võsu, on see piisav, et teha kindlaks eri kontsentratsioonidel täheldatav kasvukiiruse muutumine umbes 4–7 % võrra (saagise vähenemine 10–15 % võrra) (7).
Reference chemical(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (7), may be tested as a means of checking the test procedure.
Katsenõude paigutus inkubaatoris peab olema juhuslik, et vähendada asukohast tingitud temperatuuri ja valgustustiheduse erinevuste mõju.
It is advisable to test a reference chemical at least twice a year or, where testing is carried out at a lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test chemical.
Samuti on vaja katsenõud mõõtmiste tegemise ajal või suurema sagedusega kas kindla skeemi alusel või juhuslikult ümber paigutada.
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
Kui püsivuse määramise eelkatsest nähtub, et uuritava kemikaali kontsentratsiooni ei ole võimalik katse vältel (7 ööpäeva jooksul) püsivana hoida, st kemikaali mõõdetud sisaldus langeb alla 80 % mõõdetud algsisaldusest, soovitatakse kasutada poolstaatilist katserežiimi.
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
Sel juhul tuleks kolooniad katse jooksul vähemalt kahel korral (nt kolmandal ja viiendal katsepäeval) üle viia värskelt valmistatud katse- ja kontroll-lahustesse.
The test vessels should be wide enough for the fronds of different colonies in the control vessels to grow without overlapping at the end of the test.
Värskesse söötmesse üleviimise sagedus sõltub uuritavast kemikaalist;
It does not matter if the roots touch the bottoms of the test vessels, but a minimum depth of 20 mm and minimum volume of 100 ml in each test vessel is advised.
väga ebapüsiva või lenduva kemikaali puhul võib selle sisalduse peaaegu püsivana hoidmiseks olla vaja tagada sagedasem üleviimine värskesse söötmesse.
The choice of test vessels is not critical as long as these requirements are met.
Mõnel juhul võib olla vaja kasutada läbivoolumeetodit (8, 10).
Glass beakers, crystallising dishes or glass petri dishes of appropriate dimensions have all proved suitable.
Käesolevas katsemeetodis ei käsitleta kokkupuudet taimelehtedele pritsimise teel;
Test vessels must be covered to minimise evaporation and accidental contamination, while allowing necessary air exchange.
selle meetodi puhul vt allikas 11.
Suitable test vessels, and particularly covers, must avoid shadowing or changes in the spectral characteristics of light.
Inkubeerimistingimused
The cultures and test vessels should not be kept together.
Tuleks kasutada päevavalguse spektriga või külmvalget pidevat fluorestsentsvalgust, mille intensiivsus jääb vahemikku 85–135 μE m– 2s– 1 (vastab 6500–10000 luksile), mõõdetuna fotosünteesiks sobivas lainepikkuste vahemikus 400–700 nm punktides, mis on valgusallikast sama kaugel kui Lemna tallusjad võsud.
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
Valgustustihedus ei tohiks katsepinna üheski punktis erineda valitud väärtusest üle 15 %.
Illumination and temperature must be controllable and maintained at a constant level (see paragraphs 35-36).
Valgustustiheduse mõõdetav väärtus sõltub mõõtmismeetodist ja eelkõige anduri tüübist.
Test organism
Ühest suunast saabuvale valgusele reageeriva anduri asemel soovitatakse kasutada kerakujulist andurit, mis reageerib nii ülalt- kui ka altpoolt mõõtetasapinda mis tahes nurga all saabuvale valgusele, või koosinusandurit, mis reageerib ülaltpoolt mõõtetasapinda mis tahes nurga all saabuvale valgusele; sellise anduriga saadakse käesolevas meetodis kirjeldatud mitmepunktilise valgusallika puhul suuremad väärtused.
The organism used for this test is either Lemna gibba or Lemna minor.
Temperatuur katsenõudes peaks olema 24 ± 2 °C.
Short descriptions of duckweed species that have been used for toxicity testing are given in Appendix 2.
Kui pH tõuseb üle 1,5 ühiku, ei loeta katset siiski nõuetele mittevastavaks, kui on võimalik tõendada, et nõuetekohasuse kriteeriumid on täidetud.
Plant material may be obtained from a culture collection, another laboratory or from the field.
Erijuhul, nt ebapüsiva kemikaali või metalli mõju uurimisel tuleb pH muutumisele pöörata erilist tähelepanu.
If collected from the field, plants should be maintained in culture in the same medium as used for testing for a minimum of eight weeks prior to use.
Täiendavad juhised on esitatud allikas 8.
Field sites used for collecting starting cultures must be free of obvious sources of contamination.
Kestus
If obtained from another laboratory or a culture collection they should be similarly maintained for a minimum of three weeks.
Katse lõpetatakse, kui taimede viimisest katsenõudesse on möödunud seitse ööpäeva.
The source of plant material and the species and clone (if known) used for testing should always be reported.
Katse alguses loendatakse ja registreeritakse tallusjate võsude arv katsenõudes, jälgides, et arvesse võetakse kõik väljaulatuvad selgesti nähtavad tallusjad võsud.
Monocultures, that are visibly free from contamination by other organisms such as algae and protozoa, should be used.
Normaalse või ebanormaalse välimusega tallusjate võsude arv määratakse katse alguses, vähemalt iga kolme ööpäeva järel (st vähemalt kaks korda 7-päevase katse jooksul) ja katse lõpus.
Healthy plants of L. minor will consist of colonies comprising between two and five fronds whilst healthy colonies of L. gibba may contain up to seven fronds.
Tuleks registreerida muutused taimede arengus, nt tallusjate võsude suuruses ja välimuses, nekroosi, kloroosi või puhetumise ilmingud, kolooniate lagunemine või ujuvuse vähenemine ning muutused juurte pikkuses ja välimuses.
The quality and uniformity of the plants used for the test will have a significant influence on the outcome of the test and should therefore be selected with care.
Samuti tuleks registreerida olulised muutused katsesöötmes (nt lahustumatu aine esinemine, vetikate kasv katsenõus).
Young, rapidly growing plants without visible lesions or discoloration (chlorosis) should be used.
Lisaks tallusjate võsude arvu määramisele katse jooksul hinnatakse ka uuritava kemikaali mõju ühele või mitmele järgmistest mõõdetavatest muutujatest:
Good quality cultures are indicated by a high incidence of colonies comprising at least two fronds.
tallusjate võsude üldpindala,
A large number of single fronds are indicative of environmental stress, e.g. nutrient limitation, and plant material from such cultures should not be used for testing.
kuivmass,
Cultivation
märgmass.
To reduce the frequency of culture maintenance (e.g. when no Lemna tests are planned for a period), cultures can be held under reduced illumination and temperature (4 — 10 °C).
Tallusjate võsude üldpindala määramise eelis on asjaolu, et seda saab teha igas katse- ja kontrollnõus katse alguses, kestel ja lõpus.
Details of culturing are given in Appenxix 3.
Kuiv- või märgmass tuleks määrata katse alguses inokulum-kultuuri representatiivse proovi alusel ning katse lõpus igast katse- ja kontrollnõust saadud taimse materjali alusel.
Obvious signs of contamination by algae or other organisms may require surface sterilisation of a sub-sample of Lemna fronds, followed by transfer to fresh medium (see Appendix 3).
Kui tallusjate võsude üldpindala ei mõõdeta, eelistatakse märgmassi määramisele kuivmassi määramist.
In this eventuality the remaining contaminated culture should be discarded.
Tallusjate võsude üldpindala, kuivmassi ja märgmassi võib määrata järgmiselt.
At least seven days before testing, sufficient colonies are transferred aseptically into fresh sterile medium and cultured for 7 - 10 days under the conditions of the test.
Tallusjate võsude üldpindala:
Test medium
kõigi kolooniate tallusjate võsude üldpindala võib määrata pildianalüüsi abil.
Different media are recommended for Lemna minor and Lemna gibba, as described below.
Katsenõu ja taimede silueti võib jäädvustada videokaameraga (nt asetades nõu valguskastile) ja saadud kujutise digiteerida.