natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Pepsin, strength: 1:10000 NF (US National Formulary) corresponding to 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), or stabilised liquid pepsin with minimum 660 European Pharmacopoeia units/ml.
Kasutada võib spetsiaalseid keeritsussitange, kui on võimalik tagada täpsus 1,00–1,15 grammi.
Tap water heated to 46 to 48 °C.
Aretusemiste ja -kultide puhul tuleb diafragmasäärest lihase ja kõõluse ühinemiskohast võtta suurem, vähemalt 2 grammi raskune proov.
A balance accurate to at least 0,1 g.
Kui diafragmasääred ei ole säilinud, tuleb võtta kaks korda 2 grammi raskune proov (või 4 grammi aretusemiste ja -kultide puhul) vahelihase roide- või rinnakuosast või keele- või mälumislihastest või kõhulihastest.
Metal trays, capacity 10 to 15 litres, to collect the remaining digestive juice.
Lõigatud tükiliha korral tuleb võtta vähemalt 5 grammi raskune väherasvane proov vöötlihastest, võimaluse korral luude või kõõluste juurest.
Pipettes of different sizes (1, 10 and 25 ml) and pipette holders.
Sama suur proov võetakse lihalt, mida ei kavatseta põhjalikult kuumtöödelda ega muul viisil tapajärgselt töödelda.
A thermometer accurate to 0,5 °C within the range 1 to 100 °C.
Külmutatud proovide puhul võetakse analüüsimiseks vöötlihastest vähemalt 5 grammi raskune proov.
Siphon for tap water.
Liha proovide kaal viitab lihaproovile, millelt on eemaldatud kogu rasv ja sidekirme.
Collecting of specimens and quantity to be digested
Keelelt lihasproovide võtmisel tuleb olla eriti tähelepanelik, et vältida proovi saastumist keele pealiskihiga, mis ei ole seeditav ja võib takistadasette hindamist.
In the case of whole carcasses of domestic swine, a specimen weighing at least 1 g is to be taken from a pillar of the diaphragm at the transition to the sinewy part.
Menetlus
Special trichinae forceps can be used provided an accuracy of between 1,00 and 1,15 g can be guaranteed.
I. Täiskoondproovid (100 g proovi korraga)
In the case of breeding sows and boars, a larger sample weighing at least 2 g is to be taken from a pillar of the diaphragm at the transition to the sinewy part.
16 ± 0,5 ml soolhapet lisatakse 3-liitrisesse keeduklaasi, mis sisaldab 2,0 liitrit temperatuurini 46–48 °C eelsoojendatud kraanivett;
In the absence of diaphragm pillars, a specimen of twice the size 2 g (or 4 g in the case of breeding sows and boars) is to be taken from the rib part or the breastbone part of the diaphragm, or from the jaw muscle, tongue or abdominal muscles.
segamispulk asetatakse keeduklaasi, keeduklaas asetatakse soojendatud plaadile ja alustatakse segamisega.
For cuts of meat, a sample weighing at least 5 g of striated muscle, containing little fat is to be taken, where possible from close to bones or tendons.
lisatakse 10 ± 0,2 g pepsiini või 30 ± 0,5 ml pepsiinilahust.
A sample of the same size is to be collected from meat that is not intended to be cooked thoroughly or other types of post-slaughter processing.
rammised proovid, mis on kogutud kooskõlas punktiga 2, peenestatakse lõikuris.
For frozen samples, a sample weighing at least 5 g of striated muscle tissue is to be taken for analysis.
Peenestatud liha tõstetakse ümber 3-liitrisesse keeduklaasi, milles on vesi, pepsiin ja soolhape.
The weight of meat specimens relates to a sample of meat that is free of all fat and fascia.
Lõikuri lõikelabasid leotatakse korduvalt keeduklaasis olevas seedevedelikus ning lõikurikaussi loputatakse väikese seedevedeliku kogusega, et eemaldada sellelt kogu allesjäänud liha.
Special attention must be paid when collecting muscle samples from the tongue in order to avoid contamination with the superficial layer of the tongue, which is indigestible and can prevent reading of the sediment.
Keeduklaas kaetakse alumiiniumfooliumiga.
Procedure
Magnetsegaja peab olema seadistatud selliselt, et see säilitaks kogu tööprotsessi vältel püsiva temperatuuri 44–46 °C.
I. Complete pools (100 g of samples at a time)
Segamisprotsessi ajal peaks seedevedelik pöörlema piisavalt kiiresti, et tekiks sügav pööris ilma pritsimiseta.
16 ± 0,5 ml of hydrochloric acid is added to a 3 litre beaker containing 2,0 litre of tap water, preheated to 46 to 48 °C;
Seedevedelikku segatakse, kuni lihaosakesed kaovad (ligikaudu 30 minutit).
a stirring rod is placed in the beaker, the beaker is placed on the preheated plate and the stirring is started.
Seejärel lülitatakse segaja välja ning seedevedelik valatakse läbi sõela setituslehtrisse.
10 ± 0,2 g of pepsin or 30 ± 0,5 ml liquid pepsin is added.
Teatavat tüüpi liha (keel, ulukiliha jne) töötlemisel võib olla vajalik pikem seedetegevus (mitte rohkem kui 60 minuti).
100 g of samples collected in accordance with point 2 is chopped in the blender.
Seedeprotsessi loetakse õnnestunuks, kui sõelale jääb mitte rohkem kui 5 % proovi algkaalust.
The chopped meat is transferred to the 3 litre beaker containing the water, pepsin and hydrochloric acid.
Seedevedelikul lastakse lehtris 30 minutit seista.
The mincing insert of the blender is immersed repeatedly in the digestion fluid in the beaker and the blender bowl is rinsed with a small quantity of digestion fluid to remove any meat still adhering.
Pärast 30 minuti möödumist lastakse 40 ml suurune seedevedeliku proov kiiresti mõõtesilindrisse või tsentrifuugiklaasi.
The beaker is covered with aluminium foil.
Seedevedelikku ja muid jääke hoitakse alusel seni, kuni tulemuste uurimine on lõpetatud.
The magnetic stirrer must be adjusted so that it maintains a constant temperature of 44 to 46 °C throughout the operation.
40 ml suurusel proovil lastakse 10 minutit seista.
During stirring, the digestion fluid must rotate at a sufficiently high speed to create a deep whirl without splashing.
Seejärel eemaldatakse imemise teel 30 ml settepealset vedelikku, nii et alles jääb mitte rohkem kui 10 ml.
The digestion fluid is stirred until the meat particles disappear (approximately 30 minutes).
Allesjäänud 10 ml suurune setteproov valatakse vastsete loendamis anumasse või petri tassile.
The stirrer is then switched off and the digestion fluid is poured through the sieve into the sedimentation funnel.
Silindrit või tsentrifuugiklaasi loputatakse mitte rohkem kui 10 ml kraaniveega, mis tuleb lisada proovile vastsete loendamisanumas või petri tassil.
Longer digestion times may be necessary (not exceeding 60 minutes) in the processing of certain types of meat (tongue, game meat, etc.).
Seejärel uuritakse proovi trihhinelloskoobi või stereomikroskoobiga 15–20 kordse suurendusega.
The digestion process is considered satisfactory if not more than 5 % of the starting sample weight remains on the sieve.
Teiste visualiseerimistehnikate kasutamine on lubatud tingimusel, et positiivsete kontrollproovide uurimine on andnud võrdväärseid või paremaid tulemusi kui traditsioonilised visualiseerimismeetodid.
The digestion fluid is allowed to stand in the funnel for 30 minutes.
Kõikidel juhtudel tuleb kahtlustäratavates piirkondades või parasiidisarnaste kujundite puhul kasutada suuremat, 60–100kordset suurendust.
After 30 minutes, a 40 ml sample of digestion fluid is quickly run off into the measuring cylinder or centrifuge tube.
Seedele allutatud materjali tuleb uurida niipea, kui see on valmis.
The digestion fluids and other liquid waste are kept in a tray until reading of the results is completed.
Mitte mingil juhul ei tohi uurimist edasi lükata järgmisele päevale.
The 40 ml sample is allowed to stand for 10 minutes.
Kui seedele allutatud materjali ei uurita 30 minuti jooksul pärast selle valmistamist, siis tuleb seda selitada järgmiselt.
30 ml of supernatant is then carefully withdrawn by suction to remove the upper layers and leave a volume of not more than 10 ml.
Lõplik proov mahuga umbes 40 ml valatakse mõõtesilindrisse ja sellel lastakse 10 minutit seista.
The remaining 10 ml sample of sediment is poured into a larval counting basin or petri dish.
Seejärel eemaldatakse 30 ml settepealset vedelikku, nii et alles jääb 10 ml.
The cylinder or centrifuge tube is rinsed with not more than 10 ml of tap water, which has to be added to the sample in the larval counting basin or petri dish.
Seda kogust suurendatakse 40 milliliitrini, lisades kraanivett.
Subsequently, the sample is examined by trichinoscope or stereo-microscope at a 15 to 20 times magnification.
Kui uurimisel ilmneb, et sete ei ole selginud, valatakse proov mõõtesilindrisse ja suurendatakse selle kogust kraanivett lisades 40 milliliitrini ning seejärel järgitakse käesolevas jaotises kirjeldatud meetodit.
Visualisation using other techniques is allowed, provided examination of positive control samples has been shown to give an equal or better result than traditional visualisation methods.
Menetlust võib korrata 2–4 korda, kuni vedelik on usaldusväärsete tulemuste saamiseks piisavalt selge.
In all cases of suspect areas or parasite-like shapes, higher magnifications of 60 to 100 times must be used.
Vähem kui 100 proovist koosnevad koondproovid
Digests are to be examined as soon as they are ready.
Vajadusel võib 100 grammi raskusele koondproovile lisada kuni 15 grammi ning uurida seda koos nende proovidega vastavalt I jaotisele.
Under no circumstances should examination be postponed until the following day.
Kui proov ületab 15 grammi, peab seda uurima kui täiskoondproovi.
Where the digests are not examined within 30 minutes of preparation, they must be clarified as follows.
Kuni 50 grammi raskuste koondproovide korral võidakse seedevedeliku mahtu vähendada kuni 1 liitri vee, 8 milliliitri soolhappe ja 5 grammi pepsiinini.
The final sample of about 40 ml is poured into a measuring cylinder and allowed to stand for 10 minutes.
Positiivsed või kahtlased tulemused
30 ml of the supernatant fluid is then removed, leaving a volume of 10 ml.
Kui koondproovide uurimine annab positiivse või küsitava tulemuse, võetakse vastavalt artikli 2 punktis a sätestatule igalt sealt 20 grammi raskune lisaproov.
After a further settling period of 10 minutes, 30 ml of the supernatant fluid is withdrawn by suction, leaving a volume of no more than 10 ml for examination in a petri dish or larval counting basin.
Sel teel uuritakse läbi proovid 20 viiesealiselt rühmalt.
The measuring cylinder is washed with no more than 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
Kui viie sea koondproovist avastatakse keeritsuss, võetakse 20 grammi raskune lisaproov igalt gruppi kuuluvalt sealt ning igat proovi uuritakse eraldi, kasutades selleks käesolevas peatükis kirjeldatud meetodit.
If the sediment is found to be unclear on examination, the sample is poured into a measuring cylinder and made up to 40 ml with tap water and then the procedure described in this Section is followed.
Parasiitide näidiseid hoitakse säilitamise ja liikide tasemel identifitseerimise tarbeks siseriiklikus või ELi referentlaboratooriumis etanooli 90 % lahuses.
The procedure can be repeated 2 to 4 times until the fluid is clear enough for a reliable reading.
Pärast parasiitide kogumist hävitatakse positiivsete tulemustega vedelikud (seedevedelik, seedepealne vedelik, pesuvesi jne), kuumutades neid vähemalt temperatuurini 60 °C.
Pools of less than 100 g
Puhastamine ja saastatusest puhastamine pärast positiivset või kahtlast tulemust.
Where needed, up to 15 g can be added to a total pool of 100 g and examined together with these samples in accordance with Section I. More than 15 g must be examined as a complete pool.
Kui koondproovide või üksiku proovi uurimine annab positiivse või kahtlase tulemuse, tuleb kõik lihaga kokkupuutuvad vahendid (lõikurikauss ja lõikelaba, keeduklaas, segamispulk, temperatuuriandur, kooniline filtreerimislehter, sõel ja pintsetid) enne uuesti kasutamist hoolikalt saastest puhastada pesemisega kuumas vees (65–90 °C).
For pools of up to 50 g, the digestion fluid and the ingredients may be reduced to 1 litre of water, 8 ml of hydrochloric acid and 5 g of pepsin.
Kui pesemise ajal kasutati puhastusainet, on soovitav igat töövahendit põhjalikult loputada, et kõnealune aine eemaldada.
Positive or doubtful results
SAMAVÄÄRSED MEETODID
Where examination of a collective sample produces a positive or uncertain result, a further 20 g sample is taken from each pig in accordance with point 2(a).
A. Mehhaanilise abiga koondproovide tehisseede meetod/setitusmenetlus
The 20 g samples from five pigs are pooled and examined using the method described in this Chapter.
Nuga või käärid proovide lõikamiseks.
In this way samples from 20 groups of five pigs will be examined.
Alused, mis on jagatud 50 ruuduks, millest igaühele mahub ligikaudu 2 g liha, või muud töövahendid, mis tagavad samaväärse proovide jälgitavuse.
When Trichinella is detected in a pooled sample from five pigs, further 20 g samples are collected from the individual pigs in the group and each is examined separately using the method described in this Chapter.
Hakkmasin või elektriline lõikur.
Parasite samples are to be kept in 90 % ethyl alcohol for conservation and identification at species level at the EU or national reference laboratory.
Stomacheri aparaat (Stomacher Lab-blender 3 500 mudel Thermo).
After parasite collection, positive fluids (digestive juice, supernatant fluid, washings, etc.) are to be decontaminated by heating to at least 60 °C.
Stomacheri aparaadile sobivad plastkotid.
Cleaning and decontamination procedure after a positive or doubtful result
Koonilised 2-liitrised jaotuslehtrid, eelistatavalt sellised, mis on varustatud Teflonist turvakorkidega.
When the examination of a collective or individual sample produces a positive or doubtful result, all material in contact with meat (blender bowl and blade, beaker, stirring rod, temperature sensor, conical filtration funnel, sieve and forceps) must be carefully decontaminated by washing in warm water (65 to 90 °C).
Roostevabast terasest või võrguga sõelad, mille võrgutihedus on 180 mikronit ja mille välisläbimõõt on 11 cm.
It is recommended to rinse each piece thoroughly to remove the detergent if a detergent is used during washing.
illiliitrised klaasist mõõtesilindrid.
EQUIVALENT METHODS
Vibraator, nt elektripardel, mille otsik on eemaldatud.
A. Mechanically assisted pooled sample digestion method/sedimentation technique
Ajarelee, mis lülitub sisse ja välja üheminutiliste intervallidega.
Knife or scissors for cutting specimens.
Sobiva valgusallikaga varustatud trihhinelloskoop horisontaallauaga või reguleeritava tugevusega altvalgustusega stereomikroskoop.
Trays marked off with 50 squares, each of which can hold samples of approximately 2 g of meat, or other tools giving equivalent guarantees as regards the traceability of the samples.
Vastsete loendamisanum ja mitu 9 cm läbimõõduga petri tassi vastavalt I peatüki punkti 1 alapunktidele 1 ja m.
Meat mincer or electrical blender.
Soolhappe 17,5 % lahus.
A Stomacher lab-blender 3 500 thermo model.
Pepsiin tugevusega:
Plastic bags suitable for the Stomacher lab-blender.
1:10000 NF (US National Formulary) ehk 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) ja 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie) või stabiliseeritud pepsiinilahus pepsiinisisaldusega vähemalt 660 Euroopa farmakopöa ühikut/ml.
Conical separation funnels, capacity 2 litres, preferably fitted with Teflon safety plugs.
iitrised konteinerid, mida kasutatakse positiivsete tulemuste korral seadmete ja vahendite saastatusest puhastamiseks näiteks formaliiniga töötlemise teel ning ülejäänud seedevedeliku jaoks.
Sieves, mesh size 180 microns, external diameter 11 cm, with stainless steel or brash mesh.
Kaal täpsusega 0,1 g.
100 ml glass measuring cylinders.
Sama, mis on näidatud I peatüki punktis 2.
A vibrator, e.g. an electric shaver with the head removed.
I. Peenestamine
A relay which will switch on and off at one-minute intervals.
Proovide eelnev peenestamine hakkmasinas parandab seede kvaliteeti.
A trichinoscope with a horizontal table or a stereo-microscope, with a sub-stage transmitted light source of adjustable intensity.
Kui kasutatakse elektrilist lõikurit, tuleb segu lõikuriga töödelda kolm kuni neli korda igal korral ligikaudu ühe sekundi vältel.
A larval counting basin and a number of 9 cm diameter petri dishes as in Chapter I(1), points (l) and (m).
Tehisseedemenetlus
17,5 % hydrochloric acid.
See menetlus võib hõlmata täiskoondproove (100 g raskune proov korraga) või vähem kui 100 proovist koosnevaid koondproove.
Pepsin, strength:
Täiskoondproovid (100 proovi korraga):
1:10000 NF (US National Formulary) corresponding to 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), or stabilised liquid pepsin with minimum 660 European Pharmacopoeia units/ml.
Stomacher Lab-blender 3500 tuleks varustada kahekordse plastkotiga ning valida temperatuur 40–41 °C.
A number of 10 litre bins to be used for decontamination of apparatus, e.g. with formol, and for digestive juice remaining where specimens test positive.
Sisemisse plastkotti valatakse 1,5 liitrit temperatuurini 40–41 °C soojendatud vett.
A balance accurate to 0,1 g.
Stomacheris olevale veele lisatakse 25 ml soolhappe 17,5 % lahust.
As stipulated in Chapter I(2).
Seejärel lisatakse 100 ligikaudu 1 grammi raskust proovi (temperatuuriga 25–30 °C), mis on võetud igast üksikproovist vastavalt punktile 2.
I. Grinding
Lõpuks lisatakse 6 grammi pepsiini või 18 ml pepsiinilahust.
Grinding the meat samples in a meat mincer beforehand will improve the digestion quality.
Sellest lisamisjärjestusest tuleb rangelt kinni pidada, et vältida pepsiini lagunemist.
If an electrical blender is used, the blender must be operated three to four times for approximately one second each time.
Seejärel töödeldakse plastkoti sisu 25 minutit Stomacheri aparaadiga.
Digestion procedure
Pärast seda eemaldatakse plastkott Stomacheri aparaadist ning seedevedelik kurnatakse läbi sõela 3-liitrisesse keeduklaasi.
This procedure may involve complete pools (100 g of samples at a time) or pools of less than 100 g.
Plastkott loputatakse ligikaudu 100 ml veega, mida seejärel kasutatakse sõela loputamiseks ning mis lõpuks lisatakse keeduklaasis olevale filtraadile.
Complete pools (100 samples at a time):
Täiskogumis 100 proovi suurusse koondproovi võidakse lisada kuni 15 üksikproovi ning neid võidakse uurida koos nende proovidega.
The Stomacher lab-blender 3 500 is fitted with a double plastic bag and the temperature control set at 40 to 41 °C.
Vähem kui 100 proovist koosnevad koondproovid:
One and a half litres of water preheated to 40 to 41 °C is poured into the inner plastic bag.
Seedevedeliku valmistamiseks segatakse umbes poolteist liitrit vett 25 ml soolhappe 17,5 % lahusega.
25 ml of 17,5 % hydrochloric acid is added to the water in the Stomacher.
Lisatakse 6 grammi pepsiini ja kogu vedelik segatakse temperatuuril 40–41 °C.
100 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 °C) taken from each individual sample in accordance with point 2 are added.
Seedevedelikust mõõdetakse välja maht, mis vastab 15 milliliitrile ühe grammi lihaproovi kohta (näiteks 30 proovi jaoks vajalik maht on 30 × 15 ml ehk 450 ml), ning valatakse see kahekordse plastkoti sisemisse kotti koos ligikaudu 1-grammiste lihaproovidega (temperatuuriga 25–30 °C), mis on võetud igast üksikproovist vastavalt punktile 2.
Lastly, 6 g pepsin or 18 ml liquid pepsin is added.
Välimisse kotti valatakse vett, mille temperatuur on ligikaudu 41 °C, nii et vedeliku maht kahes kotis kokku on poolteist liitrit.
This order must be followed strictly to avoid decomposition of the pepsin.
Plastkott loputatakse ligikaudu 100 ml veega (temperatuuril 25–30 °C), mida seejärel kasutatakse sõela loputamiseks ning mis lõpuks lisatakse keeduklaasis olevale filtraadile.
The Stomacher is then allowed to pound the content of the bag for 25 minutes.
Vastsete eraldamine setitamise teel
The plastic bag is removed from the Stomacher and the digestion fluid is filtered through the sieve into a 3 litre beaker.
Seedevedelikule lisatakse jääd (300–400 g jäähelbeid, -laaste või purustatud jääd) nii, et vedeliku kogumaht suureneb umbes 2 liitrini.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water, which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
Seejärel segatakse seedevedelikku, kuni jää on sulanud.
Up to 15 individual samples can be added to a total pool of 100 samples and examined together with these samples.
Väiksemate koondproovide korral (vt II jaotise punkt b) peaks jääkogus olema vastavalt väiksem.
Smaller pools (less than 100 samples):
Jahutatud seedevedelik valatakse 2-liitrisesse jaotuslehtrisse, mis on varustatud lisaklambri abil kinnitatud vibraatoriga.
A digestion fluid is prepared by mixing about one and a half litres of water and 25 ml of 17,5 % hydrochloric acid.
Setitamiseks allutatakse jaotuslehter 30 minuti jooksul vaheaegadega vibratsioonile, st üheminutilisele vibratsioonile järgneb üheminutiline paus.
6 g of pepsin is added and the whole mixed at a temperature of 40 to 41 °C.
30 minuti möödudes lastakse 60-milliliitrine setteproov kiiresti 100 ml mahutavusega mõõtesilindrisse.
Of the digestion fluid, a volume corresponding to 15 ml per gram of sample is measured (e.g. for 30 samples the volume required is 30 × 15 ml = 450 ml) and transferred to the inner of the two plastic bags, together with the meat samples weighing approximately 1 g (at 25 to 30 °C) taken from each individual sample in accordance with point 2.
(Pärast kasutamist loputatakse lehtrit puhastuslahusega.)
Water at a temperature of approximately 41 °C is poured into the outer bag to make up a total volume in the two bags of one and a half litres.
60 ml proovil lastakse vähemalt 10 minutit seista, seejärel tuleks settepealne vedelik eemaldada imemise teel, jättes alles 15 ml suuruse proovi, mida uuritakse vastsete suhtes.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water (at 25 to 30 °C), which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
Imemiseks võib kasutada plasttoruga varustatud ühekordseks kasutamiseks mõeldud süstalt.
Recovery of larvae by sedimentation
Toru pikkus peaks olema selline, et kui süstla pea toetub mõõtesilindri servale, jääb mõõtesilindrisse 15 ml.
Ice (300 to 400 g of ice flakes, scaly ice or crushed ice) is added to the digestion fluid to bring its volume up to about 2 litres.
Allesjäänud 15 ml valatakse vastsete loendamisanumasse või kahele petri tassile ning seda uuritakse vastavalt trihhinelloskoobi või stereomikroskoobi abil.
The digestion fluid is then stirred until the ice has melted.
Mõõtesilinder loputatakse 5 kuni 10 ml kraaniveega, mis seejärel lisatakse proovidele.
In the case of smaller pools (see Section II(b)), the amount of ice must be reduced correspondingly.
Mitte mingil juhul ei tohi uurimist edasi lükata järgmisele päevale.
The chilled digestion fluid is transferred to a 2 litre separation funnel, equipped with a vibrator in an extra clamp.
Kui seedele allutatud materjal ei ole selginud või seda ei uurita 30 minuti jooksul pärast selle valmistamist, siis tuleb seda selitada järgmiselt:
Sedimentation is allowed to proceed for 30 minutes, during which time the sedimentation funnel is vibrated intermittently, i.e. one minute vibration followed by a one-minute pause.
lõplik proov mahuga 60 ml valatakse mõõtesilindrisse ja sellel lastakse 10 minutit seista.
After 30 minutes, a 60 ml sample of the sediment is quickly run off into a 100 ml measuring cylinder (the funnel is rinsed with detergent solution after use).
Selle aja möödudes imetakse välja 45 ml settepealset vedelikku ning allesjäänud 15 milliliitrile lisatakse nii palju kraanivett, et kokku tuleks 45 ml;
The 60 ml sample is allowed to stand for at least 10 minutes, after which time the supernatant is withdrawn by suction to leave a volume of 15 ml, to be examined for presence of larvae.
uue, 10 minuti pikkuse settimisaja möödudes imetakse välja 30 ml settepealset vedelikku ning allesjäänud 15 ml valatakse uurimiseks petri tassi või vastsete loendamisanumasse;
For suction, a disposable syringe, equipped with a plastic tube, can be used.
mõõtesilindrit loputatakse 10 ml kraaniveega ning see loputusvesi lisatakse uurimiseks petri tassil või vastsete loendamisanumas olevale proovile.