natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Stock 3
Kui steroidogeneesi pärssimine toimub peaaegu 20-protsendilise tsütotoksilisuse juures, tuleb tulemust hoolikalt hinnata ja tõendada, et pärssimise põhjuseks ei ole tsütotoksilisus.
Stock 7
Hormoonide analüüs
After 48 hours the exposure plates are removed from the incubator and every well is checked under the microscope for cell condition (attachment, morphology, degree of confluence) and signs of cytotoxicity.
Iga labor võib kasutada vabalt valitud süsteemi hormoonide T ja E2 mõõtmiseks.
The medium from each well is split into two equal amounts (approximately 490 μl each) and transferred to two separate vials appropriately labelled (i.e. one aliquot to provide a spare sample for each well).
Iga doosirühma vabasid keskkonna alikvoote võib kasutada lahjenduste tegemiseks, et viia kontsentratsioon standardkõvera lineaarsesse osasse.
To prevent cells from drying out, medium is removed a row or column at a time and replaced with the medium for the cell viability/cytotoxicity assay.
Nagu märgitud punktis 29, peaks iga labor tõendama, et tema hormoonide määramise süsteem (nt ELISA, RIA, LC-MS, LC-MS/MS) vastab kvaliteedikontrolli kriteeriumidele.
If cell viability/cytotoxicity is not to be measured immediately, 200 μl PBS with Ca2+ and Mg2+ is added to each well.
Selle jaoks tuleb enne kvaliteedikontrolli katseid või kemikaalide katsetamist täiendatud keskkonda tempida hormooni sisestandardiga.
The media are frozen at – 80 °C until further processing to analyse hormone concentrations (see paragraphs 44-46).
Selleks et tagada, et katsesüsteemi komponendid ei segaks hormoonide määramist, võib olla vajalik need enne määramist keskkonnast ekstraheerida (vt punkt 30, millistel tingimustel ekstraheerimine on või ei ole vajalik).
While T and E2 in medium kept at – 80 °C are generally stable for at least 3 months, hormone stability during storage should be documented within each laboratory.
On soovitatav teha ekstraheerimine nii, nagu on kirjeldatud valideerimisaruande (4) III liites.
Immediately after removing the medium, cell viability/cytotoxicity is determined for each exposure plate.
Kui hormoonide sünteesi mõõdetakse kaubandusliku katsekomplektiga, tuleb hormoonide analüüs teha vastavalt katsekomplekti tootja juhenditele.
Cell Viability Determination
Enamikul tootjatest on oma individuaalne meetod hormoonide analüüsi tegemiseks.
A cell viability/cytotoxicity assay of choice can be used to determine the potential impact of the test chemical on cell viability.
Uuritavaid proove on vaja lahjendada nii, et eeldatavad hormoonide kontsentratsioonid lahusti kontrolli katsetes langevad üksikkatse standardkõveral lineaarse osa keskele (valideerimisaruande (4) III liide).
The assay should be able to provide a true measure of the percentage of viable cells present in a well, or it should be demonstrated that it is directly comparable to (a linear function of) the Live/Dead® Assay (see Appendix III to the validation report (4)).
Väärtused väljaspool standardkõvera lineaarset osa tuleb jätta arvestamata.
An alternative assay that has been shown to work equally well is the MTT [3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide] test (18).
Lõplik hormoonide kontsentratsioon arvutatakse järgmiselt.
The assessment of cell viability using the above methods is a relative measurement that does not necessarily exhibit linear relationships with the absolute number of cells in a well.
Näide:
Therefore, a subjective parallel visual assessment of each well by the analyst should be conducted, and digital pictures of the SCs and the two greatest non-cytotoxic concentrations are to be taken and archived to enable later assessment of true cell density if this should be required.
Ekstraheeriti:
If by visual inspection or as demonstrated by the viability/cytotoxicity assay there appears to be an increase in cell number, the apparent increase needs to be verified.
450 μl keskkonda
If an increase in cell numbers is verified, this should be stated in the test report.
Lahustati:
Cell viability will be expressed relative to the average response in the SCs, which is considered 100 % viable cells, and is calculated as appropriate for the cell viability/cytotoxicity assay that is used.
250 μl katsepuhvris
For the MTT assay, the following formula may be used:
Lahjendus analüüsiks:
% viable cells = (response in well – average response in MeOH treated [= 100 % dead] wells) ÷ (average response in SC wells – average response in MeOH treated [= 100 % dead] wells)
1: 10 (proovi tulemuse toomiseks standardkõvera lineaarsesse osasse)
Wells with viability lower than 80 %, relative to the average viability in the SCs (= 100 % viability), should not be included in the final data analysis.
Hormooni kontsentratsioon mõõdetud proovis:
Inhibition of steroidogenesis occurring in the presence of almost 20 % cytotoxicity should be carefully evaluated to ensure that cytotoxicity is not the cause for the inhibition.
150 pg/ml (pärast kohandamist kontsentratsiooniks mõõdetud proovi milliliitris)
Hormone Analysis
Taas leitud:
Each laboratory can use a hormone measurement system of its choice for the analysis of T and E2.
Lõplik hormooni kontsentratsioon =
Spare aliquots of medium from each treatment group may be used to prepare dilutions to bring the concentration within the linear part of the standard curve.
(hormooni kontsentratsioon (milliliitri kohta) ÷ taas leitud) (lahjendustegur)
As noted in paragraph 29, each laboratory should demonstrate the conformance of their hormone measurement system (e.g. ELISA, RIA, LC-MS, LC-MS/MS) with the QC criteria by analysing supplemented medium spiked with an internal hormone control prior to conducting QC runs or testing of chemicals.
(150 pg/ml) ÷ (0,89) × (250 μl/450 μl) × 10 = 936,3 pg/ml
In order to ensure that the components of the test system do not interfere with measurement of hormones, the hormones may need to be extracted from the media prior to their measurement (see paragraph 30 for the conditions under which an extraction is or is not required).
Uuritavate kontsentratsioonide valimine
It is recommended to conduct extraction following the procedures in Appendix III to the validation report (4).
Tuleks teha vähemalt kaks sõltumatut analüüsikatset.
If a commercial test kit is being used to measure the hormone production, the hormone analysis should be conducted as specified in the manuals provided by the test kit manufacturer.
Kui esimese katse tulemused on ebaselged (st suuruse suhteline muutus (kordades) on lahusti kontrolliga võrreldes statistiliselt oluline ainult ühel kontsentratsioonil) või positiivsed (st suuruse suhteline muutus lahusti kontrolliga võrreldes on statistiliselt oluline kahe või enama kõrvuti oleva kontsentratsiooni puhul), tuleb katset korrata, nagu on näidatud tabelis 7, täpsustades katseks kontsentratsioonide valimist.
Most manufacturers have a unique procedure by which the hormone analyses are conducted.
Uuritavaid kontsentratsioone teises ja kolmandas katses (kui see tehakse) tuleks kohandada, arvestades esimeses katses mõju põhjustanud kontsentratsioonivahemikku, kasutades poole logaritmilise ühiku suurusi kontsentratsioonivahemikke (nt kui esimeses katses kontsentratsioonidega 0,001, 0,01, 0,1, 1, 10, 100, 1000 μM leiti aktivatsioon kontsentratsioonidel 1 ja 10 μM, tuleks teises katses valida kontsentratsioonideks 0,1, 0,3, 1, 3, 10, 30, 100 μM), kui ei ole vaja kasutada väiksemaid kontsentratsioone LOEC saavutamiseks.
Dilutions of samples need to be adjusted such that expected hormone concentrations for the solvent controls fall within the centre of the linear range of the standard curve of the individual assay (Appendix III to the validation report (4)).
Viimasel juhul kasutatakse vähemalt viit kontsentratsiooni allpool madalaimat esimeses katses uuritud kontsentratsiooni poole logaritmilise ühiku suuruse vahega.
Values outside of the linear portion of the standard curve should be rejected.
Kui teine katse ei kinnita esimest katset (st statistiliselt olulist erinevust ei leita varem positiivse kontsentratsiooni ümbruses ±1 kontsentratsiooniinkrement), tuleb teha kolmas katse, kasutades esialgseid katsetingimusi.
Example:
Ebaselged tulemused loetakse positiivseks toimeks, kui reaktsiooni õnnestub kinnitada vähemalt ühes järgmises katses kontsentratsioonil ±1 kontsentratsiooniinkrement (vt punkt 55, andmete tõlgendamise meetod).
Extracted:
Tabel 7
450 μl medium
Otsuste maatriks võimalike tulemusestsenaariumide korral
Reconstituted in:
katse
250 μl assay buffer
katse
Dilution in Assay:
katse
1:10 (to bring the sample within the linear range of the standard curve)
Otsus
Hormone Concentration in Assay:
Stsenaarium
150 pg/ml (already adjusted to concentration per ml sample assayed)
Positiivne
Recovery:
Kinnita [26]
Final hormone concentration =
Stopp
(Hormone concentration (per ml) ÷ recovery) (dilution factor)
Täpsusta [27]
(150 pg/ml) ÷ (0,89) × (250 μl/450 μl) × 10 = 936,3 pg/ml
Ebaselge [28]
Selection of test concentrations
Katseplaadi kvaliteedikontroll
A minimum of two independent runs of the assay should be conducted.
Lisaks kvaliteedikontrolli plaadi kriteeriumide täitmisele tuleks täita ka muid kvaliteedikriteeriume, mis on seotud paralleelsüvendite tulemuste lubatavate erinevustega, korduskatsetega, hormooni määramise süsteemide lineaarsuse ja tundlikkusega, ühest ja samast proovist hormooni paralleelsete määramiste erinevustega ja tembitud hormoonipiikide taasleidmise protsendimääraga pärast keskkonna ekstraheerimist (kui seda tehakse; vt nõuded ekstraheerimisele, punkt 30); sellised kvaliteedikriteeriumid on esitatud tabelis 8.
Unless prior information such as information on solubility limits or cytotoxicity provides a basis for selecting test concentrations, it is recommended that the test concentrations for the initial run be spaced at log10 intervals with 10–3 M being the maximum concentration.
Andmed peaksid langema iga näitaja lubatavasse väärtuste vahemikku, ainult siis saab neid arvestada edasisel hindamisel.
If the chemical is soluble, and not cytotoxic at any of the tested concentrations, and the first run was negative for all concentrations, then it is to be confirmed in one more run using the same conditions as the first run was conducted (Table 7).
Kui need kriteeriumid ei ole täidetud, tuleks tabelis märkida, et kvaliteedikontrolli kriteeriumid ei olnud kõnealuses proovis täidetud; proov tuleks uuesti analüüsida või andmed välja visata.
If the results of the first run are equivocal (i.e. the fold-change is statistically significant from the SC at only one concentration) or positive (i.e. the fold change at two or more adjacent concentrations is statistically significant), the test should be repeated as indicated in Table 7 by refining the selected test concentrations.
Tabel 8
Test concentrations in runs two and three (if applicable) should be adjusted on the basis of the results of the initial run bracketing concentrations that elicited an effect using 1/2-log concentration spacing (e.g. if the original run of 0,001, 0,01, 0,1, 1, 10, 100, 1000 μM resulted in inductions at 1 and 10 μM, the concentrations tested in the second run should be 0,1, 0,3, 1, 3, 10, 30, 100 μM), unless lower concentrations need to be employed to achieve a LOEC.
H295R-katse plaadi näitajate lubatavad väärtused ja varieerumisvahemik (%)
In the latter case, at least five concentrations below the lowest concentration tested in the first run should be used in the second run using a 1/2-log scale.
(LOQ — hormooni määramise süsteemi mõõtmispiir (Limit of Quantification); CV — variatsioonikordaja; SC — lahusti kontrollkatse; DPM — lagunemist minutis)
If the second run does not confirm the first run (i.e. statistical significance does not occur at the previously positively tested Live/Deadconcentration ± 1 concentration-increment), a third experiment is to be conducted using the original testing conditions.
Võrreldavad suurused
Equivocal results in the first run are considered negative if the observed effect could not be confirmed in any of the two subsequent runs.
Hormoonide baassüntees lahusti kontrolli katsetes
Equivocal results are considered as positive responses (effect) when the response can be confirmed in at least one more run within a ± 1 concentration increment (see section 55 for the Data Interpretation Procedure).
Suhteline suurenemine võrreldes LOQga
Table 7
≥ 5 korda
Decision matrix for possible outcome scenarios
≥ 2,5 korda
Run 1
Kokkupuutekatsed — plaadisisene CV lahusti kontrolli katsetes (paralleelsüvendid)
Run 2
Absoluutsed kontsentratsioonid
Run 3
Kokkupuutekatsed — plaatidevaheline CV lahusti kontrolli katsetes (paralleelkatsed)
Decision
Muutus kordades
Scenario
Hormoonide mõõtmise süsteem — tundlikkus
Positive
Tuvastatav suhteline vähenemine, võrreldes lahusti kontrolliga
Confirm [26]
Hormoonide mõõtmise süsteem — kordusmõõtmised lahusti kontrollide CV [29]
Stop
Keskkonna ekstraheerimine — 3H-sisestandardi taasleidmine (vajaduse korral)
Refine [27]
≥ 65 % nominaalsest
Equivocal [28]
KATSEANDMETE ANALÜÜS JA PROTOKOLLI KOOSTAMINE
Quality Control of the Test Plate
Andmete analüüs
In addition to meeting the criteria for the QC plate, other quality criteria that pertain to acceptable variation between replicate wells, replicate experiments, linearity and sensitivity of hormone measurement systems, variability between replicate hormone measures of the same sample, and percentage recovery of hormone spikes after extraction of medium (if applicable; see Paragraph 30 regarding extraction requirements) should be met and are provided in Table 8.
Selleks, et hinnata hormoonide sünteesi suhtelist suurenemist või vähenemist kemikaali juuresolekul, tuleb tulemused normeerida lahusti kontrolli tulemuste keskväärtusega igal plaadil, ja tulemused esitatakse suhteliste muutustena, võrreldes lahusti kontrolliga igal katseplaadil.
Data should fall within the acceptable ranges defined for each parameter to be considered for further evaluation.
Kõik andmed esitatakse kujul keskväärtus ±1 standardhälve (SD).
Table 8
Suhtelised muutused tuleks arvutada järgmiselt:
Acceptable ranges and/or variation (%) for H295R assay test plate parameters.
suhteline muutus = (hormooni kontsentratsioon igas süvendis) ÷ (kõikide lahusti kontrollide hormooni kontsentratsiooni keskväärtus).
(LOQ: Limit of Quantification of the hormone measurement system.
Kui süvendi visuaalse kontrollimise või punktis 42 kirjeldatud eluvõimelisuse/tsütotoksilisuse katsega näidati rakkude arvu suurenemist, tuleb seda näilist suurenemist kontrollida.
CV: Coefficient of variation; SC: Solvent Control; DPM: Disintegrations per minute)
Enne statistilise analüüsi tegemist tuleks hinnata normaaljaotuse ja dispersiooni homogeensuse eelduste kehtivust.
Comparison Between
Normaaljaotust tuleks hinnata standardsete tõenäosusgraafikute või muu sobiva statistilise meetodiga (nt Shapiro-Wilki katse).
Basal hormone production in SCs
Kui andmed (suhtelised muutused kordades) ei ole normaaljaotusega, tuleks püüda andmeid teisendada, et lähendada neid normaaljaotusele.
Fold-greater than LOQ
Kui andmed on normaaljaotusega või ligikaudu normaaljaotusega, tuleks analüüsida erinevusi kemikaali kontsentratsioonirühmade ja lahusti kontrollide vahel, kasutades parameetrilist testi (nt Dunnetti test), milles kontsentratsioon on sõltumatu muutuja, ja toime (suhteline muutus kordades) on sõltuv muutuja.
≥ 5-fold
Kui andmed ei ole normaaljaotusega, tuleb kasutada sobivat mitteparameetrilist testi (nt Kruskal Wallis, Steeli mitmese võrdluse astaktest).
≥ 2,5-fold
Erinevused loetakse oluliseks p ≤ 0,05 puhul.
Exposure Experiments — Within Plate CV for SCs (Replicate Wells)
Statistiline hindamine tehakse iga süvendi keskväärtuste alusel, mis esindavad sõltumatuid paralleelidega andmepunkte.
Absolute Concentrations
Eeldatakse, et kuna esimeses katses on dooside vahel suured vahed (log10 skaala), ei ole paljudel juhtudel võimalik täpselt kirjeldada kontsentratsiooni-toime sõltuvust, kui kaks kõrgeimat kontsentratsiooni on sigmoidse kõvera lineaarses osas.
Exposure Experiments — Between Plate CV for SCs (Replicate Experiments)
Seepärast kasutatakse esimese katse või muude andmete puhul, kus see olukord esineb (nt kui ei hinnata maksimaalset tõhusust), I tüüpi fikseeritud muutuja statistikat, nagu on kirjeldatud eespool.
Fold-Change
Kui rohkem kui kaks andmepunkti asuvad kõvera lineaarsel osal ja on võimalik arvutada maksimaalseid tõhususi — nagu eeldatakse mõne teise katse juures, mille tegemisel kasutatakse poole logaritmilise ühiku suurusi kokkupuutekontsentratsioonide erinevusi — tuleks kasutada probit-, logit- või muud sobivat regressioonimudelit, et arvutada tõhususega seotud kontsentratsioone (nt EC50 ja EC20).
Hormone Measurement System — Sensitivity
Tulemused tuleks esitada nii graafiliselt (tulpdiagrammid, mis näitavad keskväärtust ±1 SD) kui ka tabelina (LOEC/NOEC, mõju suund, ja maksimaalse toime tugevus, mis on osa andmete doosi-toime aspektist) (vt näide joonisel 3).
Detectable fold-decrease relative to SC
Andmete hindamine on ainult siis kehtiv, kui see põhineb vähemalt kahel sõltumatul katsel.
Hormone Measurement System — Replicate Measure CV for SCs [29]
Katset loetakse sõltumatuks, kui see on läbi viidud muul kuupäeval, uute lahuste ja kontrollidega.
Medium Extraction — Recovery of Internal 3H Standard (If Applicable)
Teises ja (vajaduse korral) kolmandas katses kasutatava kontsentratsioonivahemiku võib valida esimese katse tulemuste põhjal, et paremini määratleda doosi-toime vahemik, milles asub LOEC (vt punkt 47).
DPM
Joonis 3
≥ 65 % Nominal
H295R-katsega saadud andmete graafikuna ja tabelina esitamise ja hindamise näide
DATA ANALYSIS AND REPORTING
OH-pregnenoloon
Data Analysis
Progesteroon
To evaluate the relative increase/decrease in chemically altered hormone production, the results should be normalised to the mean SC value of each test plate, and results expressed as changes relative to the SC in each test plate.
OH-progesteroon
All data are to be expressed as mean ± 1 standard deviation (SD).
Androsteendioon
Only hormone data from wells where cytotoxicity was less than 20 % should be included in the data analysis.
Testosteroon Östroon
Relative changes should be calculated as follows:
östradiool
If data are not normally distributed, an appropriate non-parametric test should be used (e.g. Kruskal Wallis, Steel's Many-one rank test).
29 korda
Differences are considered significant at p ≤ 0,05.
Andmete tõlgendamise kord
Statistical evaluations are done based on average values for each well that represent independent replicate data points.
Uuritav kemikaal tunnistatakse positiivseks, kui suhteline aktivatsioon (kordades) on statistiliselt erinev (p ≤ 0,05) lahusti kontrollist kahel kõrvuti oleval kontsentratsioonil vähemalt kahes sõltumatus katses (tabel 7).
It is anticipated that due to the large spacing of doses in the first run (log10 scale) in many cases it will not be possible to describe clear concentration-response relationships where the two greatest doses will be on the linear portion of the sigmoid curve.
Uuritav kemikaal tunnistatakse negatiivseks pärast kahte sõltumatut negatiivset katset või pärast kolme katset, millest kaks olid negatiivsed ja üks ebaselge või positiivne.
Therefore, for the first run or any other data sets where this condition occurs (e.g. where no maximum efficacy can be estimated) type I fixed variable statistics as described above will be applied.
Kui andmed, mis on saadud kolme iseseisva katsega, ei vasta tabelis 7 loetletud otsustamise kriteeriumidele, ei ole uurimistulemused tõlgendatavad.
If more than two data points lie on the linear portion of the curve and where maximum efficacies can be calculated — as is anticipated for some of the 2nd runs that are conducted using a semi-log spacing of exposure concentrations — a probit, logit or other appropriate regression model should be utilised to calculate effective concentrations (e.g. EC50 and EC20).
Tulemusi, mis on saadud lahustuvuspiirist kõrgema või tsütotoksilise kontsentratsiooni juures, ei tohiks kasutada tulemuste tõlgendamiseks.
Results should be provided both in graphical (bar graphs representing mean ± 1 SD) and tabular (LOEC/NOEC, direction of effect, and strength of maximum response that is part of the dose-response portion of the data) formats (see Figure 3 for an example).
Katseprotokoll
The concentration range used in runs 2 and 3 (if necessary) may be tailored on the basis of the results of run 1 to better define the dose response range containing the LOEC (see paragraph 47).
uuringu alguse ja lõpetamise kuupäevad.
Figure 3
Uuritav kemikaal, reaktiivid ja kontrollid:
Example of the presentation and evaluation of data obtained during the conduct of the H295R Assay in graphical and tabular format.
identifitseerimisandmed (nimetus ja CASi number, kui on olemas), päritolu, partii number, puhtus, tarnija, ning uuritava kemikaali, reaktiivide ja kontrollide iseloomustus;
Lowest observed effective concentration;
uuritavate kemikaalide, reaktiivide ja kontrollide säilitustingimused ning katseks ettevalmistamise meetod ja sagedus;
Max Change:
uuritava kemikaali stabiilsus.
Maximum strength of the response observed at any concentration relative to the average SC response (= 1).
Rakud:
Cholesterol
allikas ja rakutüüp;
Pregnenolone
katses kasutatud rakkude passaažide arv (rakupassaaži tunnus);
OH Pregnenolone
rakukultuuride säilitusmeetodite korra kirjeldus.
Progesterone
Enne katset täidetavad nõuded (vajaduse korral):
OH Progesterone
uuritava kemikaali võimalik segav mõju hormoonide määramise süsteemile — kontrollkatse kirjeldus ja tulemused;
Androstenedione
hormoonide ekstraheerimise tõhususe mõõtmised — kirjeldus ja tulemused;
Testosterone
kõigi tehtavate analüüside standard- ja kaliibrimiskõverad;
estradiol
valitud analüüsimeetodite avastamispiir.
eoxycorticosterone
Katsetingimused:
Cortisol
keskkonna koostis;
Aldosterone
uuritava kemikaali kontsentratsioon;
Estrone
rakkude tihedus (hinnatud või mõõdetud rakkude kontsentratsioon 24 ja 48 tunni järel);
Deoxycortisol
uuritava kemikaali lahustuvus (lahustumispiir, kui see on määratud);
Corticosterone
inkubatsiooniaeg ja tingimused.
LOEC Max Change
Katsetulemused:
0,15 fold
iga kontrollisüvendi ja kemikaaliga süvendi töötlemata andmed — iga üksiku mõõtmise tulemus otse sellisel kujul, mille annab hormoonide mõõtmiseks kasutatav vahend (nt optilise tiheduse ühikutes, fluorestsentsi ühikutes, lagunemiste arv minutis jne);
Letrozole
normaaljaotuse eelduse kontrollimine või andmete teisendamise selgitus;
29 fold
keskmine toime ±1 standardhälve igas mõõdetud süvendis;
Data Interpretation Procedure
tsütotoksilisuse andmed (uuritavad kontsentratsioonid, mis olid tsütotoksilised);
A test chemical is judged to be positive if the fold induction is statistically different (p ≤ 0,05) from the solvent control at two adjacent concentrations in at least two independent runs (Table 7).
kinnitus selle kohta, et kvaliteedikontrolli nõuded olid täidetud;
A test chemical is judged to be negative following two independent negative runs, or in three runs, comprising two negative runs and one equivocal or positive run.
suhteline muutus võrreldes lahusti kontrolli proovidega, tsütotoksilisuse parandiga;
If the data generated in three independent experiments does not meet the decision criteria listed in Table 7, the experimental results are not interpretable.
tulpdiagramm, mis näitab suhtelist muutust (kordades) igal kontsentratsioonil, koos standardhälbe ja statistilise olulisusega, vt punktid 49–54.
Results at concentrations exceeding the limits of solubility or at cytotoxic concentrations should not be included in the interpretation of results.
Andmete tõlgendamine:
Test Report
andmete tõlgendamise korra kohaldamine tulemustele ja tähelepanekute arutelu.
Name of facility and location;
Arutelu:
Study director and other personnel and their study responsibilities;
kas tulemustest järeldub midagi võimaluse kohta, et T ja E2 andmeid võisid mõjutada kaudsed mõjud glüko- ja mineraalkortikoidide radadele?
Dates the study began and ended;
Järeldused
Test chemical, reagents and controls
OECD (2002), Sisesekretsioonisüsteemi kahjustavate kemikaalide kontrollimise ja hindamise OECD kontseptuaalne raamistik, käesoleva lisa peatüki B.54 2. liide.