natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Removal of organic micropollutants in laboratory activated sludge reactors under various operating conditions: Sorption.
Removal of organic micropollutants in laboratory activated sludge reactors under various operating conditions: Sorption. Wat.
Water Quality — Evaluation of the aerobic biodegradability of organic compounds at low concentrations in water.
Water Quality - Evaluation of the aerobic biodegradability of organic compounds at low concentrations in water.
Environmental Project, No 337.
Environmental Project, No. 337.
Biofilms
biokiled
used large, pilot-scale trickling filters which they used in the coupled mode.
Gerike et al. (1) kasutasid suuri pooltööstuslikke nõrgfiltreid ühendatud režiimis.
described smaller filters (6 ft × 6 in. diameter) which were fed surfactant-free natural sewage but still required rather large volumes.
Truesdale et al. (2) kirjeldasid väiksemaid filtreid (läbimõõduga 6 jalga × 6 tolli), millesse lisati pindaktiivseid aineid mitte sisaldavat naturaalset reovett, kuid nende jaoks oli siiski vaja suhteliselt suuri reoveekoguseid.
As many as 14 weeks were required for the development of a “mature” biofilm and an additional 4-8 weeks were needed after first introduction of the test surfactant before acclimatisation took place.
Valmis (küpse) biokile loomiseks kulus 14 nädalat ning pärast pindaktiivse uuritava aine esmakordset lisamist kulus veel 4–8 nädalat, enne kui biokile oli aklimatiseerunud.
The test chemical was used as the sole source of carbon and biodegradability was assessed from measurements of dissolved organic carbon (DOC) in the influent and effluent, and from the amount of CO2 in the exit gas.
Uuritavat kemikaali kasutati ainsa süsinikuallikana ja biolagundatavust hinnati sissevoolus ja väljavoolus lahustunud orgaanilise süsiniku mõõtmise teel ning väljunud gaasis CO2 koguse hindamise alusel.
On the internal surface of the rotating tube a biofilm was grown on the known surface area by passage of influent introduced at the top end of the tube, inclined at a small angle to the horizontal.
Pöörleva toru sisepinnal kasvatati teadaoleval pindalal biokile, lastes läbi horisontaalsuuna suhtes väikese nurga all oleva toru ülemise osa kaudu lisatavat sissevoolu.
The reactor has been used to study the biodegradability of surfactants (5), as well as to investigate the optimal thickness of biofilm and diffusion through the film (6).
Reaktorit on kasutatud pindaktiivsete ainete biolagundatavuse uurimiseks (5) ning samuti biokile optimaalse paksuse ja läbi kile difusiooni uurimiseks (6).
These latter authors further developed the reactor, including modifying it to be able to determine CO2 in the exit gas.
Viimati nimetatud autorid arendasid reaktorit edasi, muu hulgas täiustades seda väljuvas gaasis CO2 määramise võimaldamiseks.
The rotating tubular reactor has been adopted by the Standing Committee of Analysts (UK) as a standard method for assessing both the biodegradability of chemicals (7) and the treatability and toxicity of waste waters (8).
Pöörleva torureaktori kinnitas analüütikute alaline komitee (Ühendkuningriik) kui standardmeetodi, millega hinnatakse kemikaalide biolagundatavust (7) ning reovete puhastatavust ja mürgisust (8).
The method described here has the advantages of simplicity, compactness, reproducibility and the need for relatively small volumes of organic medium.
Siin kirjeldatud meetodi eelised on lihtsus, kompaktsus, korratavus ja orgaanilise kasvukeskkonna suhteliselt väikse koguse kasutamine.
Synthetic or domestic sewage, and the test chemical, in admixture or alone, are applied to the internal surface of a slowly rotating inclined tube.
Kaldu oleva aeglaselt pöörleva toru sisepinnale lisatakse sünteetilist või olmereovett ja uuritavat kemikaali kas seguna või eraldi.
A layer of microorganisms, similar to those present on bio-filter media, is built up on the internal surface.
Sisepinnale tekib mikroorganismide kiht, mis on samalaadne biofiltrites esinevaga.
The conditions of operation of the reactor are chosen to give adequate elimination of organic matter and, if required, oxidation of ammonium.
Reaktori kasutamise tingimused valitakse sellised, et tagada orgaanilise aine piisav kõrvaldamine ja vajaduse korral ammooniumi oksüdeerumine.
Effluent from the tube is collected and either settled and/or filtered before analysis for dissolved organic carbon (DOC) and/or the test chemical by a specific method.
Väljavool torust kogutakse ja kas setitatakse ja/või filtritakse enne lahustunud orgaanilise süsiniku ja/või uuritava kemikaali analüüsimist spetsiifilise meetodi abil.
Control units receiving no test chemical are operated in parallel under the same conditions for comparative purposes.
Samal ajal ja samadel tingimustel käitatakse võrdluseks kontrollkatse seadmeid, kuhu uuritavat kemikaali ei lisata.
The difference between the concentrations of DOC in the effluent from the test and control units is assumed to be due to the test chemical and its organic metabolites.
Katse- ja kontrollseadmete väljavoolus ilmnev lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsiooni erinevus on eeldatavasti põhjustatud uuritavast kemikaalist ja selle orgaanilistest metaboliitidest.
This difference is compared with the concentration of the added test chemical (as DOC) to calculate the elimination of the test chemical.
Seda erinevust võrreldakse lisatud uuritava kemikaali kontsentratsiooniga (väljendatud lahustunud orgaanilise süsinikuna), et arvutada uuritava kemikaali kõrvaldamine.
Biodegradation may normally be distinguished from bio-adsorption by careful examination of the elimination-time curve.
Biolagunemist on bioadsorptsioonist üldiselt võimalik eristada nii, et uuritakse hoolikalt kõrvaldamismäära ajast sõltuvuse graafikut.
Confirmation may usually be obtained by applying a test for ready biodegradation (oxygen uptake or carbon dioxide production) using an acclimated inoculum taken at the end of the test from the reactors receiving the test chemical.
Tavaliselt saab seda kinnitada kiire biolagundatavuse katsega (hapniku sidumine või süsinikdioksiidi tekkimine), kasutades aklimatiseeritud inokulumi, mis on võetud katse lõpus nendest reaktoritest, kuhu on lisatud uuritavat kemikaali.
The purity, water solubility, volatile and adsorption characteristics of the test chemical should be known to enable correct interpretation of results to be made.
Tulemuste õigeks tõlgendamiseks peaksid olema teada uuritava kemikaali puhtus, vees lahustuvus ning lenduvuse ja adsorptsiooniga seotud omadused.
Normally, volatile and poorly soluble chemicals cannot be tested unless special precautions are taken (see Appendix 5 to chapter C.10 A).
Lenduvaid ja halvasti lahustuvaid kemikaale ei ole tavaliselt võimalik katsetada ilma erimeetmeid võtmata (vt peatüki C.10-A 5. liide).
The chemical structure, or at least the empirical formula, should also be known in order to calculate theoretical values and/or to check measured values of parameters, e.g. theoretical oxygen demand (ThOD), DOC.
Samuti peaks olema teada keemiline struktuur või vähemalt empiiriline valem, et arvutada teoreetilised väärtused ja/või kontrollida parameetrite mõõdetud väärtusi, nagu teoreetiline hapnikutarve, lahustunud orgaaniline süsinik.
Information on the toxicity of the test chemical to micro-organisms (see Appendix 4 to chapter C.10 A) may be useful for selecting appropriate test concentrations and may be essential for the correct interpretation of low biodegradation values.
Sobiva katsekontsentratsiooni valimisel võivad abiks olla andmed uuritava kemikaali mürgisuse kohta mikroorganismidele (vt peatüki C.10-A 4. liide); väikeste biolagundamise väärtuste õigeks tõlgendamiseks on need hädavajalikud.
Originally, the primary biodegradation of surfactants was required to reach 80 % or more before the chemical could be marketed.
Algul nõuti pindaktiivse kemikaali turule lubamiseks vähemalt 80 % esmast biolagundatavust.
With chemicals in general there is no question of a pass/fail level and the value of percentage removed can be used in proximate calculations of the probable environmental concentration to be used in hazard assessments posed by chemicals.
Kemikaalide puhul üldiselt ei teki vastuvõetavuse/vastuvõetamatuse taseme küsimust ja saavutatud kõrvaldamise protsentväärtust võib kasutada tõenäolise keskkonnakontsentratsiooni ligikaudsetes arvutustes, mida kasutatakse kemikaalist põhjustatud ohu hindamiseks.
In a number of studies of pure chemicals the percentage removal of DOC was found to be > 90 % in more than three-quarters, and > 80 % in over 90 %, of chemicals which showed any significant degree of biodegradability.
Puhaste kemikaalide mitmes uuringus leiti, et olulises ulatuses biolagunevatest kemikaalidest rohkem kui kolme neljandiku puhul on lahustunud orgaanilise süsiniku kõrvaldamise määr > 90 % ning sellistest kemikaalidest rohkem kui 90 % puhul on see > 80 %.
To ensure that the experimental procedure is being carried out correctly, it is useful occasionally to test reference chemicals whose behaviour is known.
Katse nõuetekohaseks tegemiseks on kasulik teha aeg-ajalt katseid võrdluskemikaalidega, mille käitumine on teada.
Such chemicals include adipic acid, 2-phenyl phenol, 1-naphthol, diphenic acid and 1-naphthoic acid.
Kõnealused kemikaalid on näiteks adipiinhape, 2-fenüülfenool, 1-naftool, difeenhape ja 1-naftoehape.
The relative standard deviation within tests was found by a laboratory in the UK to be 3,5 % and between tests to be 5 % (7).
Ühendkuningriigi labor leidis, et katsete suhteline standardhälve ühes laboris oli 3,5 % ja katsete vahel 5 % (7).
Rotating tubular reactors
Pöörlevad torureaktorid
The apparatus (see figures 1 and 2 in the Appendix 8 consists of a bank of acrylic tubes each 30,5 cm long and 5 cm internal diameter, supported on rubber-rimmed wheels contained within a metal supporting frame. Each tube has an outside lip, approximately 0,5 cm deep, to retain it on the wheels, the internal surface is roughened with coarse wire wool and there is a 0,5 cm deep internal lip at the upper (feed) end to retain the liquid. The tubes are inclined at an angle of approximately one degree to the horizontal to achieve the required contact time when the test medium is applied to a clean tube. The rubber-tyred wheels are rotated using a slow, variable-speed motor. The temperature of the tubes is controlled by installation in a constant temperature room.
Seade (vt 8. liite joonised 1 ja 2) koosneb akrüültorude komplektist, milles iga toru pikkus on 30,5 cm ja siseläbimõõt 5 cm; torud asuvad kummiümbrisega ratastel, mis paiknevad metallist tugiraamis. Igal torul on ligikaudu 0,5 cm võrra välja ulatuv äärik, et toru püsiks ratastel. Sisepind on muudetud jämeda traatvillaga karedamaks ning ülemises (sissevoolu) otsas 0,5 cm võrra välja ulatuv sisemine äärik, mis hoiab vedelikku torus. Torud on rõhtasendi suhtes ligikaudu ühekraadise nurga all, et saavutada uuritava keskkonna läbi puhta toru suunamisel vajalik kokkupuuteaeg. Kummiümbrisega rattaid pööratakse aeglase reguleeritava kiirusega mootori abil. Torude temperatuuri reguleeritakse sellega, et seade asub püsiva temperatuuriga ruumis.
By enclosing each tube reactor inside a slightly larger, capped tube and ensuring that connections were gas-tight, exit CO2 gas could be collected in an alkaline solution for subsequent measurement (6).
Kui iga torureaktor pannakse mõnevõrra suuremasse korgiga torusse ja tagatakse ühenduste õhutihedus, on võimalik koguda väljuv gaasiline CO2 hilisemaks määramiseks leeliselahusesse (6).
A 24h supply, for each tube, of organic medium with added test chemical if applicable, is contained in a 20 l storage vessel (A)(see Figure 2).
Iga toru jaoks hoitakse 20 l nõus (A) (vt joonis 2) 24-tunnist orgaanilise kasvukeskkonna varu, vajaduse korral koos lisatud uuritava kemikaaliga.
If required, the test chemical solution may be dosed separately.
Vajaduse korral võib eraldi doseerida uuritava kemikaali lahust.
The effluent is settled or filtered before analysis.
Väljavool setitatakse või filtritakse enne analüüsi tegemist.
Filtration apparatus-centrifuge
Filtrimisseade-tsentrifuug
Device for filtration of samples with membranes filter of suitable porosity (nominal aperture diameter 0,45 μm) which adsorb organic chemicals or release organic carbon to a minimum degree.
Proovide filtrimiseks mõeldud seade, milles on sobiva poorisuurusega (ava nominaalläbimõõt 0,45 μm) membraanfiltrid, mis adsorbeerivad orgaanilised kemikaalid ja millest vabaneb võimalikult vähe orgaanilist süsinikku.
If filters are used which release organic carbon, wash them carefully with hot water to remove leachable organic carbon.
Kui kasutatakse filtreid, millest vabaneb orgaanilist süsinikku, tuleb filtreid hoolikalt pesta kuuma veega, et eemaldada väljauhutav orgaaniline süsinik.
Alternatively a centrifuge capable of achieving 40000 m/sec2 may be used.
Selle asemel võib kasutada tsentrifuugi, mis tagab 40000 m/s2.
Analytical equipment for determining:
Seadmed, mis on vajalikud järgmise kindlaksmääramiseks:
DOC/total organic carbon (TOC), or chemical oxygen demand (COD);
lahustunud orgaaniline süsinik, orgaanilise süsiniku kogusisaldus või keemiline hapnikutarve;
specific chemical (HPLC, GC etc.) if required;
konkreetne kemikaal, kui nõutakse selle määramist (kõrgefektiivne vedelikkromatograafia, gaaskromatograafia jne);
pH, temperature, acidity, alkalinity;
pH, temperatuur, happelisus ja leeliselisus;
ammonium, nitrite, nitrate, if the tests are performed under nitrifying conditions.
ammoonium, nitrit ja nitraat, kui katse tehakse nitrifikatsiooni tingimustes.
Tap water, containing less than 3 mg/l DOC.
Kraanivesi, mis sisaldab vähem kui 3 mg/l lahustunud orgaanilist süsinikku.
Distilled or deionised water, containing less than 2 mg/l DOC.
Destilleeritud või deioniseeritud vesi, mis sisaldab vähem kui 2 mg/l lahustunud orgaanilist süsinikku.
Synthetic sewage, domestic sewage or a mixture of both may be used as the organic medium.
Orgaanilise kasvukeskkonnana võib kasutada sünteetilist reovett, olmereovett või nende segu.
It has been shown that the use of domestic sewage alone often gives increased percentage removed of DOC (in activated sludge units) and even allows the biodegradation of some chemicals, which are not biodegraded when OECD synthetic sewage is used.
On tõendatud, et ainult olmereovee kasutamisel saadakse sageli suurem lahustunud orgaanilise süsiniku kõrvaldamise protsent (aktiivmuda seadmetes) ning sellest saab biolagundada isegi mõnd sellist kemikaali, mis ei ole OECD sünteetilise reovee kasutamisel biolagundatav.
Measure the DOC (or COD) concentration in each new batch of organic medium.
Lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsiooni (või keemilist hapnikutarvet) tuleb mõõta igas uues orgaanilise kasvukeskkonna partiis.
The medium may require the addition of a suitable buffer (sodium hydrogen carbonate or potassium hydrogen phosphate), if it is of low acidity or alkalinity, to maintain a pH of about 7,5 ± 0,5 in the reactor during the test.
Kui kasvukeskkonna happelisus või leeliselisus on väike, võib see vajada sobiva puhvri lisamist (naatriumvesinikkarbonaat või kaaliumvesinikfosfaat), et hoida katse ajal reaktoris pH väärtus ligikaudu 7,5 ± 0,5.
The amount of buffer, and when to add it, has to be decided in each individual case.
Lisatava puhvri kogus ja lisamise aeg tuleb otsustada igal juhul eraldi.
Dissolve in each 1 litre of tap water: peptone, 160 mg; meat extract, 110 mg; urea, 30 mg; anhydrous dipotassium hydrogen phosphate, (K2HPO4), 28 mg; sodium chloride, (NaCl), 7 mg; calcium chloride dihydrate, (CaCl2.2H2O), 4 mg; magnesium sulphate heptahydrate, (MgSO4.7H2O), 2 mg.
Ühes liitris kraanivees lahustatakse 160 mg peptooni, 110 mg lihaekstrakti; 30 mg karbamiidi, 28 mg veevaba dikaaliumvesinikfosfaati (K2HPO4), 7 mg naatriumkloriidi (NaCl), 4 mg kaltsiumkloriiddihüdraati (CaCl2·2H2O), 2 mg magneesiumsulfaatheptahüdraati (Mg2SO4·7H2O).
Alternatively, use other compositions, with about the same DOC concentrations, which are closer to real sewage.
Alternatiivselt võib kasutada muid koostisi, millel on ligikaudu sama lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsioon ja mis on pärisreoveega sarnasemad.
(This medium is unsatisfactory e.g. nitrogen concentration is very high, relatively low carbon content, but nothing better has been suggested, except to add more phosphate, as buffer, and extra peptone).
(See kasvukeskkond ei ole rahuldav, näiteks lämmastiku kontsentratsioon on väga suur ja süsinikusisaldus on suhteliselt väike, kuid midagi paremat pole soovitatud, kuid kasvukeskkonna parandamiseks on soovitatud üksnes lisada puhvrina suuremas koguses fosfaati ja rohkem peptooni).
It should be collected from the overflow channel of the primary sedimentation tank, or from the feed to activated sludge plant, and be largely free from coarse particles.
Seda tuleks koguda esmase settimise paagi ülevoolu kanalist või aktiivmudapuhasti sissevoolust ja see peaks üldiselt olema ilma suurte osakesteta.
The sewage can be used after storage for several days at about 4 °C, if it is proved that the DOC (or COD) has not significantly decreased (i.e. by less than 20 %) during storage.
Seda reovett saab enne kasutamist hoida mitu päeva temperatuuril ligikaudu 4 °C, kui tõendatakse, et lahustunud orgaanilise süsiniku sisaldus (või keemiline hapnikutarve) ei ole hoidmise ajal olulisel vähenenud (s.o vähem kui 20 %).
Glycerol or olive oil may be used for lubricating the peristaltic pump rollers: both are suitable for use on silicone-rubber tubing.
Peristaltilise pumba rullikute määrimiseks võib kasutada glütserooli või oliiviõli: mõlemad on sobivad silikoonkummist torudega kasutamiseks.
Stocks solutions of test chemical
Uuritava kemikaali põhilahused
For chemicals of adequate solubility prepare stock solutions at appropriate concentrations (e.g. 1 to 5 g/l) in deionised water or in the mineral portion of the synthetic sewage.
Kui kemikaal on piisavalt lahustuv, valmistage sobiva kontsentratsiooniga põhilahus (näiteks 1–5 g/l) deioniseeritud vees või sünteetilise reovee mineraalses osas.
For insoluble chemicals, see Appendix 5 in chapter C.10-A.
Lahustumatu kemikaali kohta vt peatüki C.10-A 5. liide.
This method is not suitable for volatile chemicals without modifications to the tubular reactors (paragraph 16).
Seda meetodit ei saa torureaktoreid muutmata (punkt 16) kasutada lenduva kemikaali puhul.
Determine the DOC and TOC of the stock solution and repeat the measurements for each new batch.
Määrake põhilahuses lahustunud orgaaniline süsinik ja orgaanilise süsiniku kogusisaldus ning korrake mõõtmisi iga uue partii korral.
Compare the DOC or the concentration of the test chemical measured by specific analysis of the stock solution with the nominal value to ascertain whether recovery is good enough (normally > 90 % can be expected).
Võrrelge lahustunud orgaanilist süsinikku või uuritava kemikaali kontsentratsiooni, mis on mõõdetud põhilahuses spetsiifilise analüüsimeetodi abil, nimiväärtusega, et näha, kas määramise saagis on piisavalt hea (tavaliselt võib eeldada > 90 %).
Preparation of organic medium for dosing
Orgaanilise kasvukeskkonna doseerimine
Ensure that all influent and effluent containers and tubing from influent vessels and to effluent vessels are thoroughly cleaned to remove microbial growths, initially and throughout the test.
Hoolitsege, et kõik sissevoolu- ja väljavoolunõud ning sissevoolunõust väljuv ja väljavoolunõusse sisenev toru on korralikult puhastatud, et seal katse alguses ja kogu katse vältel ei kasvaks mikroobe.
Prepare the synthetic sewage (paragraph 23) freshly each day either from the solids or from the concentrated stock solution by appropriate dilution with tap water.
Valmistage värske sünteetiline reovesi (punkt 23) iga päev kas tahketest lähteainetest või kontsentreeritud põhilahusest, lahjendades seda vajaliku koguse kraaniveega.
Measure the required amount in a cylinder and add to a clean influent vessel.
Mõõtke nõutav kogus silindriga välja ja viige see puhtasse sissevoolunõusse.
Also, where necessary, add the required amount of the stock solution of the test chemical or reference chemical to the synthetic sewage before dilution.
Vajaduse korral lisage sünteetilisse reovette enne lahjendamist ka vajalik kogus uuritava kemikaali või võrdluskemikaali põhilahust.
If it is more convenient or necessary to avoid loss of the test chemical, prepare a separate diluted solution of the test chemical in a separate reservoir and deliver this to the inclined tubes via a different dosing pump.
Kui nii on mugavam või saab sellega vältida uuritava kemikaali kadusid, siis valmistage eraldi mahutis uuritava kemikaali lahjendatud lahus ja sisestage see eraldi teise doseerimispumba abil kaldega torusse.
Alternatively (and preferably), use settled domestic sewage (paragraph 24) collected freshly each day if possible.
Teise võimalusena (ja eelistatavalt) kasutage settinud olmereovett (punkt 24), mis kogutakse võimaluse korral iga päev uuesti.
Operation of rotating tubular reactors
Pöörlevate torureaktorite käitamine
Two identical tubular reactors are required for the assessment of one test chemical, and they are assembled in a constant temperature room normally at 22 ± 2 °C.
Ühe uuritava kemikaali hindamiseks vajatakse kahte identset torureaktorit ja need seatakse üles püsiva temperatuuriga ruumis, tavaliselt 22 ± 2 °C.
Adjust the peristaltic pumps to deliver 250 ± 25 ml/h of the organic medium (without test chemical) into the inclined tubes, which are rotated at 18 ± 2 rpm.
Reguleerige peristaltilisi pumpasid, et need pumpaksid orgaanilist kasvukeskkonda (ilma uuritava kemikaalita; 250 ± 25 ml/h) kaldega torudesse, mida pööratakse kiirusel 18 ± 2 pööret minutis.
Apply the lubricant (paragraph 25) to the pump tubes initially and periodically through the test to ensure proper functioning and to prolong the life of the tubing.
Lisage pumba torudele katse alguses ja katse vältel regulaarselt määrdeainet (punkt 25), et tagada korralik toimimine ja pikendada torude kasutusiga.
Adjust the angle of inclination of the tubes to the horizontal to produce a residence time of 125 ± 12,5 sec. for the feed in a clean tube. Estimate the retention time by adding a non-biological marker (e.g. NaCl, inert dye) to the feed: the time taken to reach peak concentration in the effluent is taken to be the mean retention time (when maximum film is present, the retention time can increase up to about 30 min.).
Reguleerige torude kalle rõhtasendi suhtes nii, et sissevoolulahus viibiks puhtas torus 125 ± 12,5 s. Hinnake viibimisaeg sissevoolu mittebioloogilise markeri (näiteks NaCl, inertse värvaine) lisamise teel: keskmiseks viibimisajaks arvestatakse väljavoolus tippkontsentratsioonini jõudmiseks vajalikku aega (kui on tekkinud maksimaalne kile, võib viibeaeg suureneda kuni ligikaudu 30 minutini).
These rates, speeds and times have been found to give adequate removals (> 80 %) of DOC (or COD) and to produce nitrified effluents.
Selliste määrade, kiiruste ja aegade juures on täheldatud piisavat lahustunud orgaanilise süsiniku (või keemilise hapnikutarbe) kõrvaldamist (> 80 %) ning nitrifitseeritud väljavoolu tekkimist.
The rate of flow should be changed if removal is insufficient or if the performance of a particular treatment plant is to be simulated.
Kui kõrvaldamine ei ole piisav või kui tuleb simuleerida konkreetse puhasti tulemusi, tuleks voolukiirust muuta.
In the latter case, adjust the rate of dosing the organic medium until the performance of the reactor matches that of the treatment plant.
Viimati nimetatud juhul reguleerige orgaanilise kasvukeskkonna doseerimise kiirust, kuni reaktori töö tulemuslikkus vastab puhasti töö tulemuslikkusele.
Inoculation
Inokulatsioon
Airborne inoculation may be sufficient to start the growth of micro-organisms when synthetic sewage is used, but otherwise add 1 ml/l of settled sewage to the feed for 3 days.
Kui kasutatakse sünteetilist reovett, võib mikroorganismide kasvu algatamiseks piisata õhukaudsest inokulatsioonist, vastasel juhul aga lisage sisestusse kolme päeva jooksul 1 ml/l settinud reovett.
At regular intervals check that the dose-rates and rotating speeds are within the required limits.
Kontrollige korrapäraste ajavahemike järel, et doosimäärad ja pöörlemiskiirused oleksid vajalikes piirides.