natgillin/translations-raw huggingface dataset:
With the emergence ratio, the Fisher exact test is appropriate.
Valmikute väljaarenemise suhte puhul on asjakohane kasutada Fisheri täpset testi.
Preparation of spiked sediment — water system
Rikastatud sette-vee süsteemi valmistamine
The spiking procedure described in Test Method C.8: Toxicity for Earthworms is recommended for application of the test substance (14).
Uuritavate ainete lisamiseks soovitatakse kasutada rikastamismeetodit, mida on kirjeldatud katsemeetodis C.8 „Toksilisus vihmaussidele” (14).
The spiked sediments are placed in the vessels and overlying water is added to produce a sediment-water volume ratio of 1:4 (see paragraphs 11 and 15).
Rikastatud setted asetatakse nõudesse ja neile lisatakse kattev veekiht, et saada sette-vee ruumala suhe 1 : 4 (vt punktid 11 ja 15).
The depth of the sediment layer should be in the range of 1,5-3 cm.
Settekihi paksus peaks olema 1,5–3 cm.
To avoid separation of sediment ingredients and re-suspension of fine material during addition of test water in the water column, the sediment can be covered with a plastic disc while water is poured onto it, and the disc removed immediately afterwards.
Sette osade eraldumise ja veesambas katsevee lisamisel peene materjali uue suspensiooni tekkimise vältimiseks võib sette katta vee valamise ajal plastikkettaga, mis pärast vee valamist kohe eemaldatakse.
Other devices may also be appropriate.
Võib kasutada ka muid võtteid.
The test vessels should be covered (e.g. by glass plates).
Katsenõud peaksid olema kaetud (näiteks klaasplaadiga).
If necessary, during the study the water levels will be topped to the original volume in order to compensate for water evaporation.
Vajaduse korral lisatakse vee aurumise kompenseerimiseks ja uuringu algse veetaseme saavutamiseks vett.
This should be performed using distilled or deionised water to prevent build-up of salts.
Soolade kogunemise vältimiseks tuleks lisada destilleeritud või deioniseeritud vett.
Stabilisation
Püsikindluse tagamine
Once the spiked sediment with overlying water has been prepared, it is desirable to allow partitioning of the test substance from the aqueous phase to the sediment (3)(4)(6)(13).
Kui rikastatud sete koos katva veekihiga on valmistatud, on soovitatav lasta uuritaval kemikaalil jaotuda vee ja sette vahel (3, 4, 6, 13).
This should preferably be done under the conditions of temperature and aeration used in the test.
Seda tuleks eelistatavalt teha katses kasutatavates temperatuuri- ja õhustustingimustes.
Appropriate equilibration time is sediment and chemical specific, and can be in the order of hours to days and in rare cases up to several weeks (4-5 weeks).
Vajalik tasakaalustumisaeg sõltub settest ja kemikaalist ning võib kesta tunde, päevi ja harvadel juhtudel isegi kuni mitu nädalat (4–5 nädalat).
These analytical determinations of the test substance allow for calculation of mass balance and expression of results based on measured concentrations.
Need uuritava aine analüütilised määramised võimaldavad arvutada massitasakaalu ja väljendada tulemusi mõõdetud kontsentratsioonide alusel.
Addition of test organisms
Katseorganismide lisamine
Four to five days before adding the test organisms to the test vessels, egg masses should be taken from the cultures and placed in small vessels in culture medium.
Neli kuni viis päeva enne katseorganismide lisamist katsenõudesse tuleks võtta kultuuridest munamassid ja asetada need väikestesse nõudesse kultuuri kasvukeskkonnas.
Aged medium from the stock culture or freshly prepared medium may be used.
Võib kasutada varukultuuri vana kasvukeskkonda või värskelt valmistatud kasvukeskkonda.
If the latter is used, a small amount of food e.g. green algae and/or a few droplets of filtrate from a finely ground suspension of flaked fish food should be added to the culture medium (see Appendix 2).
Viimati nimetatu kasutamisel tuleks lisada kultuuri kasvukeskkonnale väikses koguses sööta, näiteks rohevetikaid ja/või paar tilka peeneks jahvatatud helbelise kalasööda suspensiooni filtraadist (vt 2. liide).
Only freshly laid egg masses should be used.
Tuleks kasutada ainult värskelt munetud munamasse.
Twenty first instar larvae are allocated randomly to each test vessel containing the spiked sediment and water, using a blunt pipette.
Tömbi pipeti abil jaotatakse 20 esimese kasvujärgu vastset juhuslikult igasse katsenõusse, mis sisaldavad rikastatud setet ja vett.
Aeration of the water has to be stopped while adding the larvae to test vessels and remain so for another 24 hours after addition of larvae (see paragraphs 25 and 32).
Vee aereerimine tuleb vastsete katsenõudesse lisamise ajal peatada ja seda ei jätkata 24 tunni vältel pärast vastsete lisamist (vt punktid 25 ja 32).
According to the test design used (see paragraphs 19 and 20), the number of larvae used per concentration is at least 60 for the EC point estimation and 80 for determination of NOEC.
Kasutatava katsekava kohaselt (vt punktid 19 ja 20) on kasutatud vastsete arv kontsentratsiooni kohta toimet avaldava kontsentratsiooni (EC-punkti) hindamise korral vähemalt 60 ja täheldatava toimeta kontsentratsiooni määramise korral 80.
Test concentrations
Katsekontsentratsioonid
A range-finding test may be helpful to determine the range of concentrations for the definitive test.
Annusevahemiku leidmise katse võib aidata kindlaks teha lõpliku katse kontsentratsioonivahemikke.
For this purpose a series of widely spaced concentrations of the test substance are used.
Selleks kasutatakse uuritava aine laiade vahedega kontsentratsioonide seeriat.
In order to provide the same density of surface per chironomids, which is to be used for the definitive test, chironomids are exposed to each concentration of the test substance for a period which allows estimation of appropriate test concentrations, and no replicates are required.
Lõplikus katses kasutatavaga sama pindtiheduse tagamiseks iga surusääsklase kohta puutuvad surusääsklased kokku uuritava aine iga kontsentratsiooniga sellise ajavahemiku vältel, mis võimaldab hinnata asjakohaseid katsekontsentratsioone; paralleelproovid ei ole vajalikud.
The test concentrations for the definitive test are decided based on the result of the range-finding test.
Lõpliku katse kontsentratsioonid määratakse kindlaks annusevahemiku leidmise katse tulemuse alusel.
At least five concentrations should be used and selected as described in paragraphs 18 to 20.
Tuleks kasutada vähemalt viit kontsentratsiooni ja need tuleks valida nii, nagu on kirjeldatud punktides 18–20.
Control vessels without any test substance but including sediment should be included in the test with the appropriate number of replicates (see paragraphs 19-20).
Katse peaks hõlmama vajalikku arvu paralleelseid settega kontrollkatsenõusid, milles ei ole uuritavat ainet (vt punktid 19-20).
If a solvent has been used for application of test substance (see paragraph 16), a sediment solvent control should be added.
Kui uuritava aine lisamiseks on kasutatud lahustit (vt punkt 16), tuleks teha settele lahusti lisamise kontrollkatse.
Static systems are used.
Kasutatakse staatilisi süsteeme.
Semi-static or flow-through systems with intermittent or continuous renewal of overlying water might be used in exceptional cases as for instance if water quality specifications become inappropriate for the test organism or affect chemical equilibrium (e.g. dissolved oxygen levels fall too low, the concentration of excretory products rises too high or minerals leach from sediment and affect pH and/or water hardness).
Erandjuhul võib kasutada poolstaatilisi või läbivooluga süsteeme koos katva veekihi vahelduva või pideva uuendamisega, näiteks kui vee kvaliteet ei ole katseorganismile enam sobiv või mõjutab kemikaali tasakaaluolekut (näiteks lahustunud hapniku tase langeb liiga madalale, väljutatud saaduste kontsentratsioon muutub liiga suureks või settest leostuvad mineraalained, mis mõjutavad pH-d ja/või vee karedust).
However, other methods for ameliorating the quality of overlying water, such as aeration, will normally suffice and be preferable.
Tavaliselt on siiski piisavad ja eelistatavad muud katva veekihi kvaliteedi parandamise meetodid, näiteks aereerimine.
It is necessary to feed the larvae, preferably daily or at least three times per week.
Vastseid tuleb sööta eelistatavalt iga päev või vähemalt kolm korda nädalas.
Fish-food (a suspension in water or finely ground food, e.g. TetraMin or TetraPhyll; see details in Appendix 2) in the amount of 0,25-0,5 mg (0,35-0,5 mg for C. yoshimatui) per larvae per day seems adequate for young larvae for the first 10 days.
Kalasööt (suspensioon vees või peeneks jahvatatud sööt, näiteks TetraMin või TetraPhyll; vt andmed, 2. liide) koguses 0,25–0,5 mg (0,35–0,5 mg C. yoshimatui puhul) vastse kohta päevas näib olevat esimese kümne päeva jooksul noorte vastsete jaoks piisav.
Slightly more food may be necessary for older larvae: 0,5-1 mg per larvae per day should be sufficient for the rest of the test.
Vanemad vastsed võivad vajada mõnevõrra rohkem sööta: 0,5–1 mg vastse kohta päevas peaks olema piisav ülejäänud katse vältel.
When testing strongly adsorbing substances (e.g. with log Kow > 5), or substances covalently binding to sediment, the amount of food necessary to ensure survival and natural growth of the organisms may be added to the formulated sediment before the stabilisation period.
Kui katseid tehakse tugevalt adsorbeeruva ainega (näiteks log Kow > 5) või settega kovalentseid sidemeid tekitava ainega, võib enne stabiliseerumise ajavahemikku lisada spetsiaalselt koostatud settele sellise söödakoguse, mis on vajalik organismide elulemuse ja loodusliku kasvu tagamiseks.
For this, plant material must be used instead of fish food, e.g. addition of 0,5 % (dry weight) finely ground leaves of e.g. stinging nettle (Urtica dioica), mulberry (Morus alba), white clover (Trifolium repens), spinach (Spinacia oleracea) or of other plant material (Cerophyl or alpha-cellulose) may be used.
Selleks tuleb kasutada kalasööda asemel taimset materjali, näiteks võib kasutada 0,5 % (kuivmass) kõrvenõgese (Urtica dioica), mooruspuu (Morus alba), valge ristiku (Trifolium repens), spinati (Spinacia oleracea) peeneks jahvatatud lehti või muud taimset materjali (Cerophyl või alfatselluloos).
The test is conducted at a constant temperature of 20 °C (± 2 °C).
Katse tehakse püsival temperatuuril 20 °C (±2 °C).
For C. tentans and C. yoshimatui recommended temperatures are 23 °C and 25 °C (± 2 °C), respectively.
C. tentans’i ja C. yoshimatui puhul on soovitatavad temperatuurid vastavalt 23 °C ja 25 °C (±2 °C).
A 16 hours photoperiod is used and the light intensity should be 500 to 1000 lux.
Kasutatakse 16-tunnist valgustusperioodi ja valguse intensiivsus peaks olema 500 kuni 1000 luksi.
Exposure duration
Kokkupuute kestus
The exposure commences with the addition of larvae to the spiked and control vessels.
Kokkupuude algab vastsete lisamisega rikastatud ja kontrollnõudesse.
The maximum exposure duration is 28 days for C. riparius and C. yoshimatsui, and 65 days for C. tentans.
Maksimaalne kokkupuute kestus on 28 päeva C. riparius’e ja C. yoshimatsui puhul ning 65 päeva C. tentans’i puhul.
If midges emerge earlier, the test can be terminated after a minimum of five days after emergence of the last adult in the control.
Kui sääsed arenevad välja varem, võib katse lõpetada vähemalt viie päeva möödumisel pärast viimase valmiku väljaarenemist kontrollnõus.
Emergence
Väljaarenemine
The development time and the total number of fully emerged male and female midges are determined.
Tehakse kindlaks arengu aeg ja täielikult väljaarenenud isas- ja emassääskede koguarv.
Males are easily identified by their plumose antennae.
Isased on tänu sulgjatele tundlatele kergesti äratuntavad.
The test vessels should be observed at least three times per week to make visual assessment of any abnormal behaviour (e.g. leaving sediment, unusual swimming), compared with the control.
Katsenõusid tuleks vaadelda vähemalt kolm korda nädalas, et hinnata visuaalselt iga ebatavalist käitumist (näiteks settest väljumine, ebatavaline ujumine) kontrollnõuga võrreldes.
During the period of expected emergence a daily count of emerged midges is necessary.
Oodataval valmikute ilmumise ajal loendatakse sääski iga päev.
The sex and number of fully emerged midges are recorded daily.
Registreeritakse täielikult välja arenenud sääskede sugu ja arv.
After identification the midges are removed from the vessels.
Pärast tuvastamist kõrvaldatakse sääsed nõudest.
Any egg masses deposited prior to the termination of the test should be recorded and then removed to prevent re-introduction of larvae into the sediment.
Enne katse lõpetamist munetud munamassid tuleks registreerida ja seejärel eemaldada, et vältida settesse uute vastsete teket.
The number of visible pupae that have failed to emerge is also recorded.
Samuti registreeritakse nende nähtavate nukkude arv, millest sääsk ei koorunud.
Guidance on measurement of emergence is provided in Appendix 5.
Suunised väljaarenemise mõõtmise kohta on esitatud 5. liites.
Growth and survival
Kasvamine ja elulemus
If data on 10-day larval survival and growth are to be provided, additional test vessels should be included at the start, so that they may be used subsequently.
Kui on vaja esitada andmeid vastsete elulemuse ja kasvu kohta kümne päeva jooksul, tuleks katset alustada suurema arvu nõudega, et neid oleks võimalik seejärel kasutada.
The sediment from these additional vessels is sieved using a 250 μm sieve to retain the larvae.
Kõnealuste täiendavate nõude setteid sõelutakse vastsete saamiseks 250 μm sõela abil.
Criteria for death are immobility or lack of reaction to a mechanical stimulus.
Surma tuvastamise kriteeriumid on liikumatus või reageerimatus mehaanilisele stiimulile.
Larvae not recovered should also be counted as dead (larvae which have died at beginning of the test may have been degraded by microbes).
Vastsed, keda ei õnnestunud kätte saada, tuleks samuti surnuks lugeda (vastsed, kes surid katse alguses, võivad olla juba mikroobide poolt lagundatud).
The (ash free) dry weight of the surviving larvae per test vessel is determined and the mean individual dry weight per vessel calculated.
Tehakse kindlaks ellujäänud vastsete (tuhavaba) kuivmass katsenõu kohta ja arvutatakse keskmine individuaalne kuivmass nõu kohta.
It is useful to determine which instar the surviving larvae belong to; for that measurement of the width of the head capsule of each individual can be used.
Kasulik on määrata, millisesse kasvujärku ellujäänud vastsed kuuluvad; selleks võib mõõta iga isendi peakapsli laiust.
Concentration of the test substance
Uuritava aine kontsentratsioon
Prior to test commencement (i.e. addition of larvae), samples of bulk sediment are removed from at least one vessel per treatment for the analytical determination of the test substance concentration in the sediment.
Uuritava aine kontsentratsiooni analüütiliseks määramiseks settes võetakse sette proovid enne katse algust (s.o vastsete lisamist) vähemalt ühest nõust iga kokkupuutetaseme kohta.
It is recommended that, as a minimum, samples of the overlying water, the pore water and the sediment be analysed at the start (see paragraph 24) and at the end of the test, at the highest concentration and a lower one.
Soovitatakse, et katse alguses (vt punkt 24) ja lõpus analüüsitakse suurimal ja väikseimal kontsentratsioonil vähemalt katva veekihi, poorivee ja sette proove.
These determinations of test substance concentration inform about the behaviour/partitioning of the test substance in the water-sediment system.
Kõnealused uuritava aine kontsentratsiooni määramised annavad teavet uuritava aine käitumise/jaotumise kohta vee-sette süsteemis.
When intermediate measurements are made (e.g. at day 7) and if the analysis needs large samples which cannot be taken from test vessels without influencing the test system, analytical determinations should be performed on samples from additional test vessels treated in the same way (including the presence of test organisms) but not used for biological observations.
Kui tehakse vahepealseid mõõtmisi (näiteks seitsmendal päeval) või kui analüüsi jaoks on vaja suurt proovi, mida ei saa katsenõust ilma katsesüsteemi mõjutamata võtta, tuleks analüüs teha samal viisil töödeldud, kuid bioloogilisteks vaatlusteks mitte kasutatavast täiendavast katsenõust (kus on ka katseorganismid) võetud proovist.
In some cases it might not be possible to analyse concentrations in the pore water as the sample size is too small.
Mõnel juhul ei pruugi liiga väikse proovi suuruse tõttu olla võimalik poorivee kontsentratsiooni määramine.
Physical-chemical parameters
Füüsikalis-keemilised parameetrid
pH and temperature of the test vessels should be measured in an appropriate manner (see paragraph 10).
Katsenõude pH-d ja temperatuuri (vt punkt 10) tuleks mõõta asjakohasel viisil.
Hardness and ammonia should be measured in the controls and one test vessel at the highest concentration at the start and the end of the test.
Katse alguses ja lõpus tuleks kontrollnõudes ja ühes suurima kontsentratsiooniga katsenõus mõõta karedust ja ammoniaaki.
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the development rate and the total number of fully emerged male and female midges, or in the case of the 10-day test effects on survival and weight of the larvae.
Kõnealuse katse eesmärk on teha kindlaks uuritava aine mõju isas- ja emassääskede arengu kiirusele ja täielikult välja arenenud sääskede koguarvule või kümnepäevase katse korral mõju vastsete elulemusele ja kehamassile.
If there are no indications of statistically different sensitivities of sexes, male and female results may be pooled for statistical analyses.
Kui puuduvad andmed sugude statistiliselt erineva tundlikkuse kohta, võib statistilistes analüüsides isaste ja emaste tulemused koondada.
The sensitivity differences between sexes can be statistically judged by e.g. a χ2-r × 2 table test.
Sugude erinevat tundlikkust on võimalik statistiliselt hinnata näiteks χ2-r × 2 tabeli testi abil.
Larval survival and mean individual dry weight per vessel must be determined after 10 days where required.
Vajaduse korral tuleb kümne päeva möödumisel teha kindlaks vastsete elulemus ja keskmine individuaalne kuivmass nõu kohta.
Effect concentrations expressed and based on dry weight, are calculated preferably based on measured sediment concentrations at the beginning of the test (see paragraph 38).
Toimet avaldavad kontsentratsioonid, mis põhinevad kuivmassil ja väljendatakse kuivmassina, arvutatakse eelistatavalt katse alguses mõõdetud sette kontsentratsioonide alusel (vt punkt 38).
To compute a point estimate for the EC50 or any other ECx, the per-vessel statistics may be used as true replicates.
või muu ECx-näitaja arvutamiseks võib tegelike paralleelproovidena kasutada nõude statistikat.
In calculating a confidence interval for any ECx the variability among vessels should be taken into account, or it should be shown that this variability is so small that it can be ignored.
Iga ECx usaldusvahemiku arvutamisel tuleks arvesse võtta eri nõude tulemuste hajumist või tuleks näidata, et kõnealune hajumine on nii väike, et seda võib eirata.
When the model is fitted by Least Squares, a transformation should be applied to the per-vessel statistics in order to improve the homogeneity of variance.
Kui andmeid töödeldakse mudeli parameetrite leidmiseks vähimruutude meetodiga, tuleks nõu statistikat teisendada, et dispersioon oleks ühtlasem.
However, ECx values should be calculated after the response is transformed back to the original value.
ECx-väärtused tuleks siiski arvutada pärast tulemuse esialgsele väärtusele tagasiteisendamist.
When the statistical analysis aims at determining the NOEC/LOEC by hypothesis testing, the variability among vessels needs to be taken into account, e.g. by a nested ANOVA.
Kui statistilise analüüsi eesmärk on teha hüpoteesi katsetamise abil kindlaks täheldatava toimeta kontsentratsioon / vähim täheldatava toimega kontsentratsioon, tuleb võtta arvesse nõudevahelist hajuvust, näiteks kasutada hierarhilist dispersioonanalüüsi (nested ANOVA).
Alternatively, more robust tests (21) can be appropriate in situations where there are violations of the usual ANOVA assumptions.
Olukorras, kus tavapärased dispersioonanalüüsi (ANOVA) eeldused ei ole täidetud, võivad paremini sobida töökindlamad testid (21).
Emergence ratio
Väljaarenemise määr
Emergence ratios are quantal data, and can be analyzed by the Cochran-Armitage test applied in step-down manner where a monotonic dose-response is expected and these data are consistent with this expectation.
Väljaarenemise määrad on kõik-või-mitte-midagi-andmed ja neid on võimalik analüüsida astmeliselt kohaldatava Cochrani-Armitage’i testi abil, kus eeldatakse, et mõju sõltuvus doosist on monotoonne, ja need andmed on selle eeldusega kooskõlas.
If not, a Fisher’s exact or Mantel-Haenszel test with Bonferroni-Holm adjusted p-values can be used.
Vastasel juhul võib kasutada Fisheri täpset testi või Manteli-Haenszeli testi Bonferroni-Holmi kohandatud p-väärtustega.
If there is evidence of greater variability between replicates within the same concentration than a binomial distribution would indicate (often referenced as “extra-binomial” variation), then a robust Cochran-Armitage or Fisher exact test such as proposed in (21), should be used.
Kui on tõendeid, et ühe kontsentratsiooniga paralleelproovide hajuvus on suurem kui eeldatakse binoomjaotuse dispersiooni puhul (nn ekstra-binoomjaotuse dispersioon), tuleks kasutada töökindlat Cochrani-Armitage’i või Fisheri täpset testi, nagu on soovitatud (21).
The sum of midges emerged per vessel, ne, is determined and divided by the number of larvae introduced, na:
Määratakse nõu kohta välja arenenud sääskede arv ne, mis jagatakse lisatud vastsete arvuga na:
number of midges emerged per vessel
nõu kohta välja arenenud sääskede arv
number of larvae introduced per vessel
nõu kohta lisatud vastsete arv.
An alternative that is most appropriate for large sample sizes, when there is extra binomial variance, is to treat the emergence ratio as a continuous response and use procedures such as William’s test when a monotonic dose-response is expected and is consistent with these ER data.
Ekstra-binoomjaotuse dispersiooni korral on suurte valimite puhul kõige asjakohasem alternatiiv käsitleda väljaarenemise määra pideva vastusena ning kasutada selliseid meetodeid nagu Williamsi test, kui võib eeldada, et mõju sõltuvus doosist on monotoonne, kui see on kooskõlas kõnealuste väljaarenemise määra andmetega.
Dunnett’s test would be appropriate where monotonicity does not hold.
Kui monotoonsust ei ole, on asjakohane kasutada Dunnetti testi.
A large sample size is defined here as the number emerged and the number not emerging both exceeding five, on a per replicate (vessel) basis.
Suur valim on siinkohal määratletud kui väljaarenenud sääskede arv ja väljaarenemata jäänud sääskede arv, mis mõlemad on suuremad kui viis paralleelproovi (nõu) kohta.
To apply ANOVA methods values of ER should first be transformed by the arcsin-sqrt-transformation or Freeman-Tukey transformation to obtain an approximate normal distribution and to equalise variances.
Dispersioonanalüüsi (ANOVA) meetodite kohaldamiseks tuleks väljaarenemise määra väärtused kõigepealt teisendada arkussiinus-ruutjuure-teisenduse või Freemani-Tukey teisenduse abil, et saada ligikaudne normaaljaotus ja võrdsustada variatsioonid.
The Cochran-Armitage, Fisher’s exact (Bonferroni), or Mantel-Haenszel tests can be applied when using the absolute frequencies.
Cochrani-Armitage’i testi, Fisheri täpse testi (Bonferroni) või Manteli-Haenszeli testi võib kasutada absoluutsete sageduste kasutamisel.
The arcsin-sqrt transformation is applied by taking the inverse sine (sin-1) of the square root of ER.
Arkussiinus-ruutjuure-teisendust kohaldatakse, arvutades väljaarenemise määra ruutjuure siinuse pöördarvu (sin–1).
For emergence ratios, ECx-values are calculated using regression analysis (or e.g. probit (22), logit, Weibull, appropriate commercial software etc.).
Väljaarenemise määrade puhul arvutatakse ECx-väärtused regressioonanalüüsi (või näiteks probit- (22) või logit-teisenduse, Weibulli meetodi, sobiva müügiloleva tarkvara jne) abil.