natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Other parameters that may be considered are those indicative of lysosomal injury, phospholipidosis, fibrosis, and irritant or allergic inflammation which may include the determination of pro-inflammatory cytokines/chemokines.
Veel võib kaaluda lüsosoomide kahjustust, fosfolipidoosi, fibroosi ning ärritus- või allergilist põletikku tõendavate näitajate määramist, selleks võib määrata ka põletikuaineid tsütokiine/kemokiine.
BAL measurements generally complement the results from histopathology examinations but cannot replace them.
Bronhoalveolaarse lavaaži mõõtmised üldiselt täiendavad histopatoloogiliste uuringute tulemusi, kuid ei saa neid asendada.
Guidance on how to perform lung lavage can be found in GD 39 (2).
Kopsude lavaaži tegemise juhendid on esitatud juhenddokumendis nr 39 (2).
GROSS PATHOLOGY AND ORGAN WEIGHTS
MAKROPATOLOOGIA JA ORGANITE MASS
All test animals, including those which die during the test or are removed from the study for animal welfare reasons, should be subjected to complete exsanguination (if feasible) and gross necropsy.
Kõik katseloomad (kaasa arvatud katse käigus surnud, humaansel viisil surmatud või uuringust looma heaolu tagamiseks kõrvaldatud loomad) tuleks (võimaluse korral) täielikult veretustada ja täielikult lahata.
The time between the end of each animal’s last exposure and their sacrifice should be recorded.
Iga looma viimase kokkupuute lõpu ja surmamise vaheline ajavahemik tuleks registreerida.
If a necropsy cannot be performed immediately after a dead animal is discovered, the animal should be refrigerated (not frozen) at a temperature low enough to minimise autolysis.
Kui lahkamine vahetult pärast surnud looma leidmist ei ole võimalik, tuleks loom jahutada (mitte külmutada) autolüüsi minimeerimiseks piisavalt madala temperatuurini.
Table 2 lists the organs and tissues that should be preserved in a suitable medium during gross necropsy for histopathological examination.
Tabelis 2 on loetletud organid ja koed, mis täieliku lahkamise ajal tuleks sobivas keskkonnas säilitada histopatoloogia uuringu jaoks.
The preservation of the [bracketed] organs and tissues and any other organs and tissues is at the discretion of the study director.
[Nurksulgudes esitatud] organite ja kudede ning muude organite ja kudede säilitamise otsustab uuringu juht.
The bolded organs should be trimmed and weighed wet as soon as possible after dissection to avoid drying.
Paksus kirjas esitatud organid tuleb välja puhastada ja kaaluda nii kiiresti kui võimalik, et vältida kuivamist.
The thyroid and epididymides should only be weighed if needed because trimming artefacts may hinder histopathological evaluation.
Kilpnääret ja munandimanuseid tuleks kaaluda ainult vajaduse korral, kuna nende väljapuhastamisel tekkivad moonutused võivad takistada histopatoloogilist hindamist.
Tissues and organs should be fixed in 10 % buffered formalin or another suitable fixative as soon as necropsy is performed, and no less than 24-48 hours prior to trimming depending on the fixative to be used.
Koed ja organid tuleks paigutada 10 % puhverdatud formaliini või muusse sobivasse fikseerivasse ainesse vahetult pärast lahkamist ja mitte vähem kui 24–48 tundi enne väljapuhastamist, olenevalt kasutatavast fikseerivast ainest.
Organs and Tissues Preserved During Gross Necropsy
Täieliku lahkamise juures säilitatavad organid ja koed
Bone marrow (and/or fresh aspirate)
Luuüdi (ja/või värske aspiraat)
Brain (including sections of cerebrum, cerebellum, and medulla/pons)
Aju (sh suuraju osad, väikeaju ning piklikaju/ajusild)
[Eyes (retina, optic nerve) and eyelids]
[Silmad (võrkkest, nägemisnärv) ja silmalaud]
Larynx (3 levels, 1 level to include the base of the epiglottis)
Kõri (3 taset, üks tase hõlmab kõripealise põhja)
Lung (all lobes at one level, including main bronchi)
Kopsud (kõik ühe tasandi sagarad, sh peamised bronhid)
Lymph nodes from the hilar region of the lung, especially for poorly soluble particulate test chemicals, For more in depth examinations and/or studies with immunological focus, additional lymph nodes may be considered, e.g. those from the mediastinal, cervical/submandibular and/or auricular regions.
Lümfisõlmed kopsu kopsuvärati piirkonnast eelkõige vähe lahustuvatest osakestest koosneva uuritava kemikaali korral. Põhjalikuma immunoloogiavaatluse või -uuringu jaoks võib kaaluda täiendavate lümfisõlmede, näiteks keskseinandi, kaela/submandibulaarse ja/või kõrva piirkonna lümfisõlmede säilitamist.
Nasopharyngeal tissues (at least 4 levels; 1 level to include the nasopharyngeal duct and the Nasal Associated Lymphoid Tissue(NALT)
Nasofarüngeaalsed koed (vähemalt neljal tasandil; üks tasand peab hõlmama nasofarüngeaalset kanalit ja ninaga seotud lümfikude (NALT)).
[Olfactory bulb]
[Haistmissibul]
Seminal vesicles
Seemnepõiekesed
Spinal cord (cervical, mid-thoracic, and lumbar)
Seljaaju (kaela-, rinna- ja nimmepiirkond)
Spleen
Põrn
Thymus
Harknääre
Trachea (at least 2 levels including 1 longitudinal section through the carina and 1 transverse section)
Hingetoru (vähemalt kaks tasandit, sh üks pikisuunaline lõige läbi hingetoruharja ja üks ristlõige)
[Urinary bladder]
[Kusepõis]
Uterus
Emakas
All gross lesions
Kõik silmaga nähtavad kahjustused
The lungs should be removed intact, weighed, and instilled with a suitable fixative at a pressure of 20-30 cm of water to ensure that lung structure is maintained (5).
Kopsud tuleks tervena eemaldada, kaaluda ja paigutada sobivasse fikseerivasse ainesse rõhul 20–30 cm veesammast, et tagada kopsude struktuuri säilimine (5).
Sections should be collected for all lobes at one level, including main bronchi, but if lung lavage is performed, the unlavaged lobe should be sectioned at three levels (not serial sections).
Tuleks koguda ühel tasandil tehtud lõiked kõikidest sagaratest, sh peamistest bronhidest, kuid kui tehakse kopsude lavaaž, tuleks sellest sagarast, millele lavaaži ei tehtud, teha lõiked kolmel tasandil (mitte seeriaviisilised lõiked).
At least 4 levels of the nasopharyngeal tissues should be examined, one of which should include the nasopharyngeal duct, (5, 6, 7, 8, 9) to allow adequate examination of the squamous, transitional (non-ciliated respiratory), respiratory (ciliated respiratory) and olfactory epithelium, and the draining lymphatic tissue (NALT; 10, 11).
Tuleks uurida vähemalt nelja nasofarüngeaalsete kudede tasandit, millest üks peaks hõlmama nasofarüngeaalset kanalit (5, 6, 7, 8, 9), et võimaldada asjakohaselt uurida skvamoosrakulist, ülemineku- (hingamisteede clara-rakud), hingamisteede (ripsepiteel) ja olfaktoorset epiteeli ning neid dreenivat lümfikude (NALT; 10, 11).
Three levels of the larynx should be examined, and one of these levels should include the base of the epiglottis (12).
Tuleks uurida kõri kolme tasandit ja üks neist tasanditest peaks hõlmama kõripealise põhja (12).
At least two levels of the trachea should be examined including one longitudinal section through the carina of the bifurcation of the extrapulmonary bronchi and one transverse section.
Tuleks uurida vähemalt kahte hingetoru tasandit, sh ühte pikisuunalist lõiget läbi peabronhide bifurkatsiooni harja ja ühte ristlõiget.
HISTOPATHOLOGY
HISTOPATOLOOGIA
A histopathological evaluation of all the organs and tissues listed in Table 2 should be performed for the control and high concentration groups, and for all animals which die or are sacrificed during the study.
Kontrollrühma ja suure kontsentratsiooni rühma ning kõigi loomade puhul, kes uuringu jooksul surevad või surmatakse, tuleks teha kõigi tabelis 2 loetletud organite ja kudede histopatoloogiline hindamine.
Particular attention should be paid to the respiratory tract, target organs, and gross lesions.
Eritähelepanu tuleks pöörata hingamisteedele, sihtorganitele ja nähtavatele kahjustustele.
The organs and tissues that have lesions in the high concentration group should be examined in all groups.
Organeid ja kudesid, milles suure kontsentratsiooni rühma isenditel leiti kahjustusi, tuleks uurida kõigi rühmade isenditel.
The study director may choose to perform histopathological evaluations for additional groups to demonstrate a clear concentration response.
Uuringu juht võib otsustada teha histopatoloogilised hindamised täiendavate rühmade puhul, et tõendada selget sõltuvust kontsentratsioonist.
When a satellite (reversibility) group is used, histopathological evaluation should be performed for all tissues and organs identified as showing effects in the treated groups.
Kui kasutatakse satelliitrühma (pöörduvuse rühma), tuleks teha kõigi selliste kudede ja organite histopatoloogiline hindamine, milles katserühmade indiviididel leiti muutusi.
If there are excessive early deaths or other problems in the high exposure group that compromise the significance of the data, the next lower concentration should be examined histopathologically.
Kui suure kokkupuute rühmas sureb liiga palju loomi varajases etapis või tekib muid probleeme, mis muudavad andmete tähenduse ähmaseks, tuleks histopatoloogiliselt uurida järgmise väiksema kontsentratsiooni rühma.
An attempt should be made to correlate gross observations with microscopic findings.
Tuleks püüda omavahel seostada üldisi tähelepanekuid ja mikroskoopilisi leide.
Individual animal data on body weights, food consumption, clinical pathology, gross pathology, organ weights, and histopathology should be provided.
Iga looma kohta tuleks esitada kehamassi, sööda tarbimise, kliinilise patoloogia, üldpatoloogia, organite massi ja histopatoloogia andmed.
Clinical observation data should be summarised in tabular form showing for each test group the number of animals used, the number of animals displaying specific signs of toxicity, the number of animals found dead during the test or killed for humane reasons, time of death of individual animals, a description and time course of toxic effects and reversibility, and necropsy findings.
Kliiniliste vaatluste andmed tuleks esitada kokkuvõtlikult tabeli kujul, näidates iga katserühma puhul ära osalenud loomade arvu, konkreetsete mürgistusnähtudega loomade arvu, katse käigus surnuna leitud või humaansetel põhjustel surmatud loomade arvu, iga looma surmaaja, toksiliste mõjude ja nende ajalise kulu kirjelduse ja pöörduvuse ning lahanguleiud.
All results, quantitative and incidental, should be evaluated by an appropriate statistical method.
Kõiki tulemusi, nii kvantitatiivseid andmeid kui ka üksiktähelepanekuid, tuleks sobiva statistilise meetodi abil hinnata.
Any generally accepted statistical method may be used and the statistical methods should be selected during the design of the study.
Võib kasutada kõiki üldtunnustatud statistilisi meetodeid; statistilised meetodid tuleks valida juba uuringu kavandamisel.
Description of caging conditions, including: number (or change in number) of animals per cage, bedding material, ambient temperature and relative humidity, photoperiod, and identification of diet.
Puuritingimuste kirjeldus, sh: loomade arv (või arvu muutus) puuri kohta, allapanu, õhu temperatuur ja suhteline õhuniiskus, valgustusperiood ja sööt.
Species/strain used and justification for using a species other than the rat.
Kasutatud liik/liin ja muu liigi kui roti kasutamise põhjendus.
Source and historical data may be provided, if they are from animals exposed under similar exposure, housing, and fasting conditions.
Võib esitada lähteandmed ja varasemad andmed, kui need on saadud loomade kohta, kes viidi kemikaaliga kokkupuutesse samasugustes kokkupuute-, pidamis- ja nälgimistingimustes.
Number, age, and sex of animals.
Loomade arv, vanus ja sugu.
Method of randomisation.
Randomiseerimismeetod.
Description of any pre-test conditioning including diet, quarantine, and treatment for disease.
Kõigi eelnenud ettevalmistamismeetmete kirjeldus, sh söötmine, karantiin ja haiguste ravi.
Physical nature, purity, and, where relevant, physico-chemical properties (including isomerisation).
Füüsikaline olek, puhtus ja vajaduse korral füüsikalis-keemilised omadused (kaasa arvatud isomeerne koostis).
Identification data and Chemical Abstract Services (CAS) Registry Number, if known.
Identifitseerimisandmed, Chemical Abstract Services Registry ehk CASi nr, kui see on teada.
Justification for use of vehicle and justification for choice of vehicle (if other than water).
Kandeaine kasutamise põhjendus ja kandeaine valiku põhjendus (kui kandeainena ei kasutata vett).
Historical or concurrent data demonstrating that the vehicle does not interfere with the outcome of the study.
Varasemad või rööpandmed, millega tõendatakse, et kandeaine ei mõjuta uuringu tulemusi.
Detailed description of the inhalation chamber including volume and a diagram.
Inhalatsioonikambri üksikasjalik kirjeldus, sh selle mahu andmed ja joonis.
Source and description of equipment used for the exposure of animals as well as generation of the atmosphere.
Loomade kokkupuute jaoks kasutatavate seadmete päritolu ja kirjeldus ning samuti keskkonna tekitamise kirjeldus.
Equipment for measuring temperature, humidity, particle-size, and actual concentration.
Temperatuuri, niiskuse, osakeste suuruse ja tegeliku kontsentratsiooni mõõtmise seadmed.
Source of air and system used for conditioning.
Õhuallikas ja õhu konditsioneerimiseks kasutatav süsteem.
Methods used for calibration of equipment to ensure a homogeneous test atmosphere.
Homogeense katsekeskkonna tagamise seadmete kaliibrimisel kasutatud meetodid.
Pressure difference (positive or negative).
Rõhuvahe (positiivne või negatiivne).
Exposure ports per chamber (nose-only); location of animals in the chamber (whole-body).
Kokkupuuteportide arv kambri kohta (ainult nina kaudu toimuv kokkupuude); loomade paiknemine kambris (kogu keha kaudu toimuv kokkupuude).
Stability of the test atmosphere.
Katsekeskkonna (atmosfääri) stabiilsus.
Location of temperature and humidity sensors and sampling of test atmosphere in the chamber.
Temperatuuri- ja niiskusandurite paigutus ning katsekeskkonnast proovide võtmine kambris.
Treatment of air supplied/extracted.
Sissejuhitud ja väljatõmmatud õhu töötlemine.
Air flow rates, air flow rate/exposure port (nose-only), or animal load/chamber (whole-body).
Õhuvoolu kiirused, õhuvoolu kiirus kokkupuutepordi kohta (ainult nina kaudu toimuv kokkupuude) või loomade hulk kambri kohta (kogu keha kaudu toimuv kokkupuude).
Time to inhalation chamber equilibrium (t95).
Inhalatsioonikambri tasakaaluseisundini jõudmiseks vajalik aeg (t95).
Number of volume changes per hour.
Kogu kambris oleva õhu vahetuste arv tunnis.
Metering devices (if applicable).
Mõõteseadmed (vajaduse korral).
Rationale for target concentration selection in the main study.
Põhiuuringu sihtkontsentratsiooni valimise põhjendus.
Nominal concentrations (total mass of test chemical generated into the inhalation chamber divided by the volume of air passed through the chamber).
Nimikontsentratsioonid (inhalatsioonikambrisse suunatud uuritava kemikaali kogumass, mis on jagatud läbi kambri juhitud õhu kogusega).
Actual test chemical concentrations collected from the animals’ breathing zone; for mixtures that produce heterogeneous physical forms (gases, vapours, aerosols), each may be analysed separately.
Uuritava kemikaali tegelikud kontsentratsioonid loomade hingamistsoonist kogutud proovides; heterogeensel füüsilisel kujul esineva segu (gaas, aur, aerosool) puhul võidakse iga faasi eraldi analüüsida.
All air concentrations should be reported in units of mass (mg/l mg/m3, etc.) rather than in units of volume (ppm, ppb, etc.).
Kõik õhukontsentratsioonid tuleks teatada massiühikutena (mg/l, mg/m3 jne), mitte mahuühikutena (ppm, ppb jne).
Individual particle size analyses should be reported.
Tuleks teatada üksikosakeste suuruse analüüsid.
Details of test chemical preparation, including details of any procedures used to reduce the particle size of solids or to prepare solutions of the test chemical.
Üksikasjalikud andmed uuritava kemikaali ettevalmistamise kohta, sh andmed meetmete kohta, mida kasutati tahke aine osakeste suuruse vähendamiseks või uuritava kemikaali lahuste valmistamiseks.
A description (preferably including a diagram) of the equipment used to generate the test atmosphere and to expose the animals to the test atmosphere.
Katsekeskkonna tekitamiseks ja loomade kokkupuuteks katsekeskkonnaga kasutatud seadmete kirjeldus (eelistatult koos joonisega).
Details of the equipment used to monitor chamber temperature, humidity, and chamber airflow (i.e. development of a calibration curve).
Kambri temperatuuri, niiskuse ja õhuvoo jälgimiseks kasutatud seadmete üksikasjad (st kalibreerimiskõvera koostamine).
Details of the equipment used to collect samples for determination of chamber concentration and particle size distribution.
Kambrikontsentratsiooni ja osakeste suurusjaotuse määramise proovide kogumise seadmete andmed.
Details of the chemical analytical method used and method validation (including efficiency of recovery of test chemical from the sampling medium).
Kasutatud keemilise analüüsi meetodi ja selle valideerimise üksikasjad (sh uuritava kemikaali analüütiline saagis proovivõtukeskkonna analüüsimisel).
Method of randomisation in assigning animals to test and control groups.
Loomade katse- ja kontrollrühma määramiseks kasutatud randomiseerimismeetod.
Details of food and water quality (including diet type/source, water source).
Üksikandmed sööda ja vee kvaliteedi kohta (sh sööda tüüp/allikas, vee allikas).
The rationale for the selection of test concentrations.
Katsekontsentratsioonide valiku põhjendus.
Tabulation of chamber temperature, humidity, and airflow.
Tabelid katsekambri temperatuuri, niiskuse ja õhuvoolu kohta.
Tabulation of chamber nominal and actual concentration data.
Tabelid kambri nimi- ja tegeliku kontsentratsiooni andmete kohta.
Tabulation of particle size data including analytical sample collection data, particle size distribution, and calculations of the MMAD and σg.
Tabelid osakeste suurusjaotuse andmete kohta, sh analüüsiproovide võtmise andmed, osakeste suurusjaotus ning MMAD ja σg arvutamine.
Tabulation of response data and concentration level for each animal (i.e. animals showing signs of toxicity including mortality, nature, severity, time of onset, and duration of effects).
Tabelid iga looma reageerimise ja kontsentratsioonide andmete kohta (st mürgistusnähtudega loomad, kaasa arvatud surnud loomad, mõjude laad, raskus, ilmumise aeg ja kestus).
Tabulation of individual animal weights.
Tabel iga katselooma kehamassi kohta.
Tabulation of food consumption
Tabelid sööda tarbimise kohta.
Tabulation of clinical pathology data
Tabelid kliinilise patoloogia andmete kohta.
Necropsy findings and histopathological findings for each animal, if available.
Iga looma lahanguleiud ja histopatoloogilised leiud, kui need on olemas.
Tabulation of any other parameters measured
Tabelid kõigi muude mõõdetud näitajate kohta.
Particular emphasis should be made to the description of methods used to meet the criteria of this Test Method, e.g. the limit concentration or the particle size.
Eritähelepanu tuleks pöörata selliste meetodite kirjeldamisele, mida kasutati käesoleva katsemeetodi kriteeriumide täitmiseks, näiteks piirkontsentratsioon või osakeste suurus.
The respirability of particles in light of the overall findings should be addressed, especially if the particle-size criteria could not be met.
Üldtulemuste alusel tuleks käsitleda küsimust, kas osakeste suurus oli sobiv sissehingamiseks, eelkõige siis, kui osakeste suuruse kriteeriume ei olnud võimalik täita.
The consistency of methods used to determine nominal and actual concentrations, and the relation of actual concentration to nominal concentration should be included in the overall assessment of the study.
Uuringu üldhinnangus tuleks käsitleda nimi- ja tegelike kontsentratsioonide kindlaksmääramiseks kasutatud meetodite kooskõlalisust ning tegeliku ja nimikontsentratsiooni vahelist seost.
An explanation should be provided if there was a need to humanely sacrifice animals in pain or showing signs of severe and enduring distress, based on the criteria in the OECD Guidance Document on Humane Endpoints (3).
Kui OECD humaansete lõpetamiskriteeriumide juhenddokumendis (3) sätestatud kriteeriumide alusel tekkis vajadus humaansel viisil surmata valu kannatavaid või tõsiste ja püsivate kannatuste tunnustega loomi, siis tuleks esitada selgitus. Tuleks kindlaks teha sihtorgan(id).
The target organ(s) should be identified. The NOAEL and LOAEL should be determined.
Tuleks määrata kindlaks täheldatava kahjuliku toimeta kontsentratsioon (NOAEL) ja väikseim täheldatavat kahjulikku toimet avaldav kontsentratsioon (LOAEL).
Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing, Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment No 39, ENV/JM/MONO(2009)28, OECD, Paris.
39, ENV/JM/MONO(2009)28, OECD, Paris.
Guidance Document on the Recognition, Assessment and Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation, Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment No 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, Paris.
19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, Paris.
Morphological Methods for Gross and Microscopic Pathology (Chapter 9) in Toxicology of Inhaled Material, Witschi, H.P. and Brain, J.D.
Morphological Methods for Gross and Microscopic Pathology (Chapter 9) in Toxicology of Inhaled Material, Witschi, H.P. and Brain, J.D. (eds), Springer Verlag Heidelberg, pp.
Chapters B.29 and B.30 are replaced by the following:
Peatükid B.29 ja B.30 asendatakse järgmisega:
SUBCHRONIC INHALATION TOXICITY: 90-DAY STUDY
SUBKROONILINE MÜRGISUS SISSEHINGAMISEL: 90-PÄEVANE UURING
This revised Test Method B.29 has been designed to fully characterise test chemical toxicity by the inhalation route for a subchronic duration (90 days), and to provide robust data for quantitative inhalation risk assessments.
Käesolev läbivaadatud katsemeetod B.29 on koostatud uuritava kemikaali mürgisuse täielikuks iseloomustamiseks sissehingamisel subkroonilise ajavahemiku vältel (90 päeva) ning usaldusväärsete andmete saamiseks, et kvantitatiivselt hinnata sissehingamise riski.
Groups of 10 male and 10 female rodents are exposed 6 hours per day during a 90 day (13 week) period to a) the test chemical at three or more concentration levels, b) filtered air (negative control), and/or c) the vehicle (vehicle control).
Kümnest isas- ja kümnest emasloomast koosnevad närilisterühmad viiakse 90 päeva (13 nädala) jooksul kuus tundi päevas kokkupuutesse a) uuritava kemikaaliga kolmel või enamal kontsentratsioonil, b) filtritud õhuga (negatiivne kontrollgrupp) ja/või c) kandeainega (kandeaine kontrollrühm).
This method allows the study director the flexibility to include satellite (reversibility) groups, interim sacrifices, bronchoalveolar lavage (BAL), neurologic tests, and additional clinical pathology and histopathological evaluations in order to better characterise the toxicity of a test chemical.
See meetod võimaldab uuringu juhile paindlikkust kaasata satelliitrühmad (pöörduvuse rühmad), surmata vahepeal loomi, teha bronhoalveolaarset lavaaži (BAL), neuroloogiakatseid ning täiendavaid kliinilise patoloogia ja histopatoloogia alaseid hindamisi, et uuritava kemikaali mürgisust paremini iseloomustada.
This Test Method is equivalent to OECD Test Guideline 413 (2009).
Käesolev katsemeetod on samaväärne OECD katsejuhendiga (Test Guideline, TG) 413 (2009).
The original subchronic inhalation Test Guideline 413 (TG 413) was adopted in 1981 (1).
Algne sissehingamisel avalduvat subkroonilist mürgisust käsitlev katsejuhend (katsejuhend nr 413) võeti vastu 1981. aastal (1).
This Test Method B.29 (as equivalent to the revised TG 413 (2009)) has been updated to reflect the state of the science and to meet current and future regulatory needs.
Käesolev katsemeetod B.29 (mis on samaväärne katsejuhendi nr 413 läbivaadatud versiooniga (2009)) on ajakohastatud, et võtta arvesse teaduse taset ning rahuldada praegusi ja tulevasi regulatiivseid vajadusi.
Subchronic inhalation toxicity studies are primarily used to derive regulatory concentrations for assessing worker risk in occupation settings.
Sissehingamisel subkroonilise mürgisuse uuringuid kasutatakse peamiselt töökeskkonnas töötajate jaoks tekkiva riski hindamiseks, et õigusaktidega kehtestada lubatud kontsentratsioone.