natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Number of primary samples
Üksikproovide arv
Less than 7500
alla 7500
From 7500 to less than 25000
7500 kuni vähem kui 25000
From 25000 to less than 75000
25000 kuni vähem kui 75000
From 75000 to less than 125000
75000 kuni vähem kui 125000
Equal to and more than 125000
Alates 125000st
6 + 1 each 50000 litres more
6 + 1 iga täiendava 50000 liitri kohta
Each increment constituting a primary sample must be taken from a continuous place in the batch; it is necessary to take note of the location of each primary sample and to identify it unambiguously.
Iga osaproov, millest koosneb üksikproov, tuleb võtta partii jätkuvast kohast; on vaja märkida iga üksikproovi koht ja tähistada see üheselt mõistetavalt.
The formation of each primary sample must be carried out according to the procedures referred to in points 1.1 and 1.2.
Iga üksikproovi moodustamine toimub punktides 1.1 ja 1.2 osutatud korras.
Each primary sample is then subjected to the analyses referred to in Article 2(1).
Iga üksikprooviga tehakse seejärel artikli 2 lõikes 1 osutatud analüüsid.
When one of the results of the analyses referred to in Article 2(1) of at least one primary sample does not comply with the characteristics of the declared category of oil, the whole sampling batch shall be declared non compliant.’
Kui artikli 2 lõikes 1 osutatud analüüside tulemuste poolest vähemalt üks üksikproov ei vasta õli deklareeritud kategooria omadustele, tunnistatakse kogu proovivõtupartii nõuetele mittevastavaks.”
Directive 2011/91/EU of the European Parliament and of the Council of 13 December 2011 on indications or marks identifying the lot to which a foodstuff belongs (OJ L 334, 16.12.2011, p. 1).
Euroopa Parlamendi ja nõukogu direktiiv 2011/91/EL, 13. detsember 2011, toidupartiide tähistamise ja märgistamise kohta (ELT L 334, 16.12.2011, lk 1).
DECISION TREE FOR VERIFYING WHETHER AN OLIVE OIL SAMPLE IS CONSISTENT WITH THE CATEGORY DECLARED
OTSUSTAMISSKEEM, MILLE JÄRGI KONTROLLITAKSE, KAS OLIIVIÕLI PROOV ON KOOSKÕLAS DEKLAREERITUD KATEGOORIAGA
EXTRA VIRGIN OLIVE OIL
EKSTRA-NEITSIOLIIVIÕLI
(quality criteria)
(kvaliteedikriteeriumid)
Acidity %
Happesus %
Peroxide value mEq O2/kg
Peroksiidiarv mekv O2/kg
UV spectrometry
UV-spektromeetria
Organoleptic assessment
Organoleptiline hindamine
med. fruity > 0
> 0 ja
med. defects = 0
= 0 Puuvilj. med.
med. fruity = 0
= 0 Puuvilj. med.
and
puuduste med.
Ethyl esters*
Etüülestrid*
Oil type as declared regarding quality criteria.
Kvaliteedikriteeriumide poolest vastab õli tüüp deklareeritud kategooriale
Go to Table 3. (purity criteria)
Jätka tabeliga 3 (puhtusekriteeriumid)
Oil not consistent with the declared category.
Õli ei vasta deklareeritud kategooriale
* ≤ 40 mg/kg in 2013/2014
* ≤ 40 mg/kg viljelusaastal 2013/2014
≤ 35 mg/kg in 2014/2015
≤ 35 mg/kg viljelusaastal 2014/2015
≤ 30 mg/kg from the 2015/2016 crop year
≤ 30 mg/kg alates aastast 2015/2016
Virgin olive oils
Neitsioliiviõlid
(Quality criteria)
(kvaliteedikriteeriumid)
Median of fruity > 0
Puuvilj. mediaan > 0 ja
Median of fruity = 0
Puuvilj. mediaan = 0
median of defects > 0
puuvilj. mediaan > 0
median of defects > 3,5
puuduste mediaan > 3,5
Do the values of the above parameters fulfill the quality criteria of extra virgin olive oil?
Kas eespool nimetatud näitajate väärtused vastavad ekstra-neitsioliiviõli kvaliteedi kriteeriumidele?
(Table 1)
( tabel 1 )
Oil type as declared regarding quality criteria
Õli tüüp vastab kvaliteedikriteeriumide poolest deklareeritud kategooriale
Go to Table 3 (Purity criteria)
Jätka tabeliga 3 (puhtusekriteeriumid)
Oil not consistent with the declared category
Õli ei vasta deklareeritud kategooriale
(Purity criteria)
(puhtusekriteeriumid)
Quality criteria (Tables 1 and 2)
Kvaliteedikriteeriumid (tabelid 1 ja 2)
3,5-Stigmastadienes mg/kg
3,5-stigmastadieenid mg/kg
Trans isomers % of fatty acids
Rasvhapete trans -isomeerid, %
Fatty acids content
Rasvhapete sisaldus
Sterols composition and total sterols
Steroolide koostis ja üldsisaldus
Erythrodiol + uvaol %
Erütrodiool + uvaool %
Waxes1 mg/kg
Vahad1 mg/kg
Oil type consistent with the declared category
Oliiviõli vastab deklareeritud kategooria nõuetele
Table of equivalence between the Annexes to this Regulation and the analyses specified in the decision tree
Käesoleva määruse lisade ja otsustamisskeemis osutatud analüüside vastavuse tabel
Determination of free fatty acids, cold method
Vabade rasvhapete määramine külmmeetodil
Peroxide value
Peroksiidiarv
Determination of peroxide value
Peroksiidiarvu määramine
Spectrophotometric analysis
Spektrofotomeetriline analüüs
Organoleptic assessment of virgin olive oil
Neitsioliiviõli organoleptiline hindamine
Ethyl esters
Etüülestrid
3,5-Stigmastadienes
3,5-stigmastadieenid
Method of determining stigmastadienes in vegetable oils
Taimeõlides stigmastadieenide määramise meetod
Trans isomers of fatty acids
Rasvhapete trans-isomeerid
Annex X A
X A lisa
Analysis by gas chromatography of methyl esters of fatty acids
Rasvhapete metüülestrite gaasikromatograafiline analüüs
Annex X B
X B lisa
Preparation of methyl esters of fatty acids
Rasvhapete metüülestrite valmistamine
Determination of the composition of triglycerides with ECN42 (difference between the HPLC data and theoretical content)
HPLC-meetodiga triglütseriidide koostise määramine ECN42 abil (erinevus HPLC-meetodiga määratud sisalduse ja teoreetilise sisalduse vahel)
Erythrodiol and Uvaol
Erütrodiool ja uvaool
Determination of the composition and content of sterols and triterpene dialcohols by capillary-column gas chromatography
Steroolide ja triterpeendialkoholide koostise ja sisalduse gaasikromatograafiline määramine kapillaarkolonniga
Determination of wax content by capillary-column gas chromatography
Vahade sisalduse gaasikromatograafiline määramine kapillaarkolonniga
Aliphatic alcohols
Alifaatsed alkoholid
Determination of aliphatic alcohols content by capillary-column gas chromatography
Alifaatsete alkoholide sisalduse gaasikromatograafiline määramine kapillaarkolonniga
Determination of the percentage of 2-glyceryl monopalmitate
lütserüülmonopalmitaadi protsendilise sisalduse määramine
DETERMINATION OF THE COMPOSITION AND CONTENT OF STEROLS AND TRITERPENES DIALCOHOLS BY CAPILLARY-COLUMN GAS CHROMATOGRAPHY
STEROOLIDE JA TRITERPEENDIALKOHOLIDE KOOSTISE JA SISALDUSE GAASIKROMATOGRAAFILINE MÄÄRAMINE KAPILLAARKOLONNIGA
SCOPE
KASUTAMISALA
The method describes a procedure for determining the individual and total sterols and triterpene dialcohols content of olive oils and olive-pomace oils.
Meetodis kirjeldatakse üksiksteroolide ja -triterpeendialkoholide ning steroolide ja triterpeendialkoholide üldsisalduse määramist oliiviõlides ja oliivijääkõlides.
The oil, with added α-cholestanol as an internal standard, is saponified with potassium hydroxide in ethanolic solution and the unsaponifiable matter is then extracted with ethyl ether.
Õli, millele on sisestandardina lisatud α-kolestanooli, seebistatakse kaaliumhüdroksiidiga etanoolilahuses ja seebistumatud komponendid ekstraheeritakse dietüüleetriga.
The sterols and triterpene dialcohols fraction is separated from the unsaponifiable matter by thin-layer chromatography on a basic silica gel plate.
Steroolide ja triterpeendialkoholide fraktsioon eraldatakse seebistamatust ainest õhukese kihi kromatograafiaga aluselisel silikageelplaadil.
The fractions recovered from the silica gel are transformed into trimethylsilyl ethers and then analysed by capillary column gas chromatography.
Silikageelist saadud fraktsioonid viiakse üle trimetüülsilüüleetriteks ja analüüsitakse gaasikromatograafiliselt kapillaarkolonniga.
The usual laboratory equipment and in particular the following:
Kasutatakse tavalisi laboriseadmeid, eelkõige järgmisi:
250 ml flask fitted with a reflux condenser with ground-glass joints.
Püstjahutiga varustatud lihvühendustega 250 ml kolb.
500 ml separating funnel.
500 ml jaotuslehter.
250 ml flasks.
250 ml kolvid.
Complete apparatus for analysis by thin-layer chromatography using 20 x 20 cm glass plates.
Kõik seadmed õhukese kihi kromatograafia tegemiseks 20 × 20 cm klaasplaatidel.
Ultraviolet lamp with a wavelength of 254 or 366 nm.
Ultraviolettlamp lainepikkusega 254 või 366 nm.
100 μl and 500 μl microsyringes.
100 μl ja 500 μl mikrosüstlad.
Cylindrical filter funnel with a G3 porous septum (porosity 15-40 μm) of diameter approximately 2 cm and a depth of 5 cm, suitable for filtration under vacuum with male ground-glass joint.
Silindriline poorse G3-filtriga (poori läbimõõt 15–40 μm) filterlehter, läbimõõduga ligikaudu 2 cm ja sügavusega 5 cm, mis sobib vaakumfiltrimiseks ja millel on lihvkern.
50 ml vacuum conical flask with ground-glass female joint, which can be fitted to the filter funnel (point 3.7).
50 ml kooniline vaakuumkolb klaaslihvmuhviga, mille saab ühendada filterlehtriga (punkt 3.7).
10 ml test tube with a tapering bottom and a sealing glass stopper.
10 ml katseklaas koonusekujulise põhja ja tihedalt sulguva klaaskorgiga.
Gas chromatograph suitable for use with a capillary column with split injection system, consisting of:
Gaasikromatograaf, millel saab töötada kapillaarkolonniga ja millel on jaotatud vooluga injektorseade, mis koosneb järgmistest seadistest:
A thermostatic chamber for columns capable of maintaining the desired temperature with an accuracy of ± 1°C;
termostateeritav kolonnikamber, mis hoiab nõutavat temperatuuri täpsusega ± 1 °C;
A temperature-adjustable injection unit with a persilanised glass vaporising element and split system;
reguleeritava temperatuuriga injektorseade persilaniseeritud klaasist aurustiga ja jaotatud voolu süsteemiga;
A flame ionisation detector (FID);
leekionisatsioondetektor;
Data acquisition system suitable for use with the FID detector (point 3.10.3.), capable of manual integration.
Andmekogumissüsteem, mis sobib kasutamiseks koos leekionisatsioondetektoriga (punkt 3.10.3) ja mille abil saab käsitsi integreerida.
Fused-silica capillary column of length 20 to 30 m, internal diameter 0,25 to 0,32 mm, coated with 5 % diphenyl - 95 % dimethylpolysiloxane (SE-52 or SE-54 stationary phase or equivalent), to a uniform thickness between 0,10 and 0,30 μm.
Sulatatud ränidioksiidist kapillaarkolonn, mille pikkus on 20–30 m, sisediameeter 0,25–0,32 mm, üleni kaetud ühtlase 0,10–0,30 μm paksuse 5 % difenüül- ja 95 % dimetüülpolüsiloksaani kihiga (statsionaarne faas SE-52 või SE-54 või samaväärne).
Microsyringe, of 10 ml capacity, for gas chromatography, with cemented needle suitable for split injection.
Mikrosüstal, maht 10 μml, gaasikromatograafia jaoks, liimitud nõelaga, mis sobib jaotatud voolu süstideks.
Calcium dichloride desiccator
Kaltsiumdikloriidiga eksikaator
Potassium hydroxide minimum titre 85 %.
Kaaliumhüdroksiid, miinimumtiiter 85 %.
Potassium hydroxide ethanolic solution, approximately 2 N.
Kaaliumhüdroksiidi umbes 2 N etanoollahus.
Dissolve 130 g of potassium hydroxide (point 4.1) with cooling in 200 ml of distilled water and then make up to one litre with ethanol (point 4.10).
130 g kaaliumhüdroksiidi (punkt 4.1) lahustatakse samaaegsel jahutamisel 200 ml destilleeritud vees ning täiendatakse etanooliga (punkt 4.10) kuni 1 liitri märgini.
Keep the solution in well-stoppered dark glass bottles and stored maximum two days.
Lahust hoitakse õhukindlalt suletud tumedast klaasist pudelites ja säilitatakse kuni kaks päeva.
Ethyl ether, for analysis quality.
Etüüleeter, analüütiliselt puhas.
Potassium hydroxide ethanolic solution, approximately 0,2 N.
Kaaliumhüdroksiidi umbes 0,2 N etanoollahus.
Dissolve 13 g of potassium hydroxide (point 4.1) in 20 ml of distilled water and make up to one litre with ethanol (point 4.10).
13 g kaaliumhüdroksiidi (punkt 4.1) lahustatakse samaaegsel jahutamisel 20 ml destilleeritud vees ning täiendatakse etanooliga (punkt 4.10) kuni 1 liitri märgini.
Anhydrous sodium sulphate, for analysis quality.
Veevaba naatriumsulfaat, analüütiliselt puhas.
Glass plates (20x20 cm) coated with silica gel, without fluorescence indicator, thickness 0,25 mm (commercially available ready for use).
Silikageeliga kaetud klaasplaadid (20 × 20 cm), fluorestsentsindikaatorita, paksus 0,25 mm (müügil kasutusvalmina).
Toluene, for chromatography quality.
Tolueen, kromatograafia jaoks.
Acetone, for chromatography quality.
Atsetoon, kromatograafia jaoks.
n-Hexane, for chromatography quality.
n-heksaan, kromatograafia jaoks.
Ethyl ether, for chromatography quality.
Etüüleeter, kromatograafia jaoks.
Ethanol of analytical quality.
Etanool, analüütiliselt puhas.
Ethyl acetate of analytical quality.
Etüülatsetaat, analüütiliselt puhas.
Reference solution for thin-layer chromatography: cholesterol or phytosterols, and erythrodiol 5 % solution in ethyl acetate (point 4.11).
Võrdluslahus õhukese kihi kromatograafia jaoks: kolesterooli või fütosteroolide ja erütrodiooli 5 % lahus etüülatsetaadis (punkt 4.11).
2,7-dichlorofluorescein, 0,2 % in ethanolic solution.
2,7-diklorofluorestseiin, 0,2 % etanoolilahus.
Make slightly basic by adding a few drops of 2 N alcoholic potassium hydroxide solution (point 4.2).
Lahus muudetakse kergelt aluseliseks mõne tilga 2 N alkohoolse kaaliumhüdroksiidilahuse (punkt 4.2) lisamisega.
Anhydrous pyridine, for chromatography quality (see Note 5).
Veevaba püridiin, kromatograafia jaoks (vt märkus 5).
Hexamethyl disilazane of analytical quality.
Heksametüüldisilasaan, analüütiliselt puhas.
Trimethylchlorosilane of analytical quality.
Trimetüülklorosilaan, analüütiliselt puhas.
Sample solutions of sterol trimethylsilyl ethers.
Sterooltrimetüülsilüüleetrite võrdluslahused.
To be prepared at the time of use from sterols and erythrodiol obtained from oils containing them.
Valmistatakse kasutamise ajal steroolidest ja erütrodioolist, mis on saadud neid sisaldavatest õlidest.
α-cholestanol, purity more than 99 % (purity must be checked by GC analysis).
α-kolestanool, puhtus üle 99 % (puhtust tuleb kontrollida gaasikromatograafilise analüüsiga).
α-cholestanol internal standard solution, 0,2 % solution (m/V) in ethyl acetate (point 4.11).
α-kolestanooli sisestandardi lahus, 0,2 % lahus (mass/ruumala) etüülatsetaadis (punkt 4.11).
Phenolphthalein solution, 10 g/L in ethanol (point 4.10).
Fenoolftaleiini lahus etanoolis (punkt 4.10), 10 g/l.
Carrier gas: hydrogen or helium, gas-chromatographic purity.
Kandegaas: lämmastik või heelium, gaasikromatograafiliselt puhas.
Auxiliary gases: hydrogen, helium, nitrogen and air, of gas-chromatographic purity.
Abigaasid: vesinik, heelium, lämmastik ja õhk, gaasikromatograafiliselt puhtad.
n-Hexane (point 4.9)/ethyl ether (point 4.10) mixture 65:35 (V/V).
n-heksaani (4.9) / dietüüleetri (punkt 4.10) segu 65:35 (maht/maht).
Silylation reagent, consisting of a 9:3:1 (V/V/V) mixture of pyridine/hexamethyl disilazane/trimethylchlorosilane.
Silüülimisreaktiiv, mis kujutab endast püridiini-heksametüüldisilasaani-trimetüülklorosilaani segu vahekorras 9:3:1 (maht/maht/maht).
Preparation of the unsaponifiable matter.
Seebistumatu aine valmistamine.
Using a 500 μl microsyringe (point 3.6) introduce into the 250 ml flask (point 3.1) a volume of the α-cholestanol internal standard solution (point 4.20) containing an amount of cholestanol corresponding to approximately 10 % of the sterol content of the sample.
500 μl mikrosüstlaga (punkt 3.6) viiakse 250 ml kolbi (punkt 3.1) selline kogus α-kolestanooli sisestandardi lahust (punkt 4.20), mis sisaldab sellise koguse kolestanooli, mis vastab umbes 10 %-le proovis olevast steroolide kogusest.
For example, for 5 g of olive oil sample add 500 μl of the α-cholestanol solution (point 4.20) and 1500 μl for olive-pomace oil.
Näiteks 5 g oliiviõli proovi puhul lisatakse 500 μl α-kolestanooli lahust (punkt 4.20) ja oliivijääkõli puhul 1500 μl.
Evaporate until dryness with a gentle current of nitrogen in a warm water bath, after cooling the flask, weigh 5 ± 0,01 g of the dry filtered sample into the same flask.
Aurutatakse nõrga lämmastikuvoolu juures soojal vesivannil kuivaks, pärast kolvi jahutamist kaalutakse samasse kolbi 5 ± 0,01 g kuiva filtritud proovi.
Animal or vegetable oils and fats containing appreciable quantities of cholesterol may show a peak having a retention time close to cholestanol.
Rohkesti kolesterooli sisaldavate loomsete või taimsete õlide puhul võib ilmuda piik, mille retentsiooniaeg on samasugune kui kolestanooli retentsiooniaeg.
If this occurs, the sterol fraction will have to be analysed in duplicate with and without internal standard.
Sellisel juhul tuleb steroolifraktsiooni analüüsida kaks korda, sisestandardiga ja ilma.
Add 50 ml of 2 N ethanolic potassium hydroxide solution (point 4.2) and some pumice, fit the reflux condenser and heat to gentle boiling until saponification takes place (the solution becomes clear).
Lisatakse 50 ml 2 N kaaliumhüdroksiidi etanoolilahust (punkt 4.2) ja veidi pimsitükikesi, paigaldatakse püstjahuti ja kuumutatakse tasasel keemisel kuni seebistumiseni (lahus muutub selgeks).
Continue heating for a further 20 minutes, then add 50 ml of distilled water from the top of the condenser, detach the condenser and cool the flask to approximately 30 °C.
Kuumutatakse veel 20 minutit, seejärel lisatakse kondensaatori ülaosa kaudu 50 ml destilleeritud vett, eemaldatakse püstjahuti ning kolb jahutatakse ligikaudu temperatuurini 30 °C.
Transfer the contents of the flask quantitatively into a 500 ml separating funnel (point 3.2) using several portions of distilled water (50 ml).
Kolvi sisu kantakse kvantitatiivselt 500 ml jaotuslehtrisse (punkt 3.2), kasutades mitut portsjonit destilleeritud vett (50 ml).
Add approximately 80 ml of ethyl ether (point 4.10), shake vigorously for approximately 60 seconds, periodically releasing the pressure by inverting the separating funnel and opening the stopcock.
Lisatakse ligikaudu 80 ml dietüüleetrit (punkt 4.10), loksutatakse tugevasti umbes 60 sekundi jooksul, vähendades tekkivat ülerõhku korrapäraselt jaotuslehtri ümberpööramisega (kraan ülespoole) ja kraani avamisega.
Allow standing until there is complete separation of the two phases (Note 2).
Lastakse seista, kuni kaks faasi on täielikult eraldunud (märkus 2).
Then draw off the soap solution as completely as possible into a second separating funnel.
Seejärel lastakse seebilahus võimalikult täielikult teise jaotuslehtrisse.
Perform two further extractions on the water-alcohol phase in the same way using 60 to 70 ml of ethyl ether (point 4.10).
Vee-alkoholi faasi ekstraheeritakse samal viisil veel kaks korda, kasutades selleks mõlemal korral 60–70 ml dietüüleetrit (punkt 4.10).
Note 2: Any emulsion can be destroyed by adding small quantities of ethanol (point 4.11).
Märkus 2: Võimalikku emulsiooni saab lõhkuda väikse koguse etanooli (punkt 4.11) lisamisega.
Combine the three ether extracts in one separating funnel containing 50 ml of water.
Etüüleetri kolm ekstrakti valatakse kokku ühte jaotuslehtrisse, milles on 50 ml vett.
Continue to wash with water (50 ml) until the wash water no longer gives a pink colour on the addition of a drop of phenolphthalein solution (point 4.21).
Jätkatakse pesemist veega (50 ml), kuni pesuvesi ei muutu enam roosaks, kui sellele lisatakse üks tilk fenoolftaleiini lahust (punkt 4.21).
When the wash water has been removed, filter on anhydrous sodium sulphate (point 4.5) into a previously weighed 250 ml flask, washing the funnel and filter with small quantities of ethyl ether (point 4.10).
Kui pesuvesi on eemaldatud, filtritakse läbi veevaba naatriumsulfaadi (punkt 4.5) eelnevalt kaalutud 250 ml kolbi, lehtrit ja filtrit pestakse väikeste dietüüleetri (punkt 4.10) kogustega.
Evaporate the solvent by distillation on a rotary evaporator at 30 °C under vacuum.
Lahusti eemaldatakse vaakumdestillatsiooniga rotaatoril 30 °C juures.
Add 5 ml of acetone and remove the volatile solvent completely in a gentle current of air.
Lisatakse 5 ml atsetooni ja kõrvaldatakse lenduv lahusti täielikult nõrga õhuvooluga.
Dry the residue in the oven at 103±2 °C for 15 min. Cool in desiccators and weigh to the nearest 0,1 mg.
Jääki kuivatatakse kuivatuskapis temperatuuril 103 ± 2 °C juures 15 minutit. Jahutatakse eksikaatoris ja kaalutakse 0,1 mg täpsusega.
Separation of the sterol and triterpene dialcohols fraction (erythrodiol + uvaol)
Steroolide ja triterpeendialkoholide (erütrodiool + uvaool) eraldamine
Remove from the oven and keep in a calcium chloride desiccator (point 3.13) until required for use (plates treated in this way must be used within 15 days).
Silikageeliplaadid võetakse kuivatuskapist välja ja hoitakse kuni kasutamiseni kaltsiumkloriidi kohal eksikaatoris (punkt 3.1.3; selliselt töödeldud plaatide kõlblikkusaeg on 15 päeva).
When basic silica gel plates are used to separate the sterol fraction there is no need to treat the unsaponifiable fraction with alumina.
Kui aluselisi silikageeliplaate kasutatakse steroolifraktsiooni eraldamiseks, ei ole mitteseebistatavat fraktsiooni vaja alumiiniumoksiidiga töödelda.
In this way all compounds of an acid nature (fatty acids and others) are retained on the spotting line and the sterols band is clearly separated from the aliphatic and triterpene alcohols band.
Selliselt jäävad kõik happelised ühendid (rasvhapped ja muud) lähtejoonele ja steroolivöönd eraldub selgelt alifaatsete alkoholide ja triterpeenalkoholide vööndist.
Place hexane/ethyl ether mixture (point 4.24) (Note 4) into the development chamber, to a depth of approximately 1 cm.
Heksaani-dietüüleetri segu (punkt 4.24) (märkus 4) pannakse ilmutusnõusse, nii et kihi sügavus oleks ligikaudu 1 cm.
Close the chamber with the appropriate cover and leave thus for at least half an hour, in a cool place, so that liquid-vapour equilibrium is established strips of filter paper dipping into the eluent may be placed on the internal surfaces of the chamber.
Nõu suletakse sobiva kaanega ning jäetakse umbes pooleks tunniks seisma jahedas kohas, et tekiks vedeliku ja auru tasakaal; ilmutuskambri siseseintele võib riputada filterpaberiribad, mis ulatuvad otsaga eluendi sisse.
This reduces developing time by approximately one-third and brings about more uniform and regular elution of the components.
See vähendab ilmutusaega ligikaudu kolmandiku võrra ning komponentide elueerumine on ühtlasem ja korrapärasem.
The developing mixture needs to be replaced for every test, in order to achieve perfectly reproducible elution conditions, alternative solvent 50:50 (V/V) n-hexane/ethyl ether may be used.
ilmutussegu on iga katse puhul vaja asendada, et saavutada täielikult korratavad elueerimistingimused; alternatiivse lahustina võib kasutada n-heksaani-dietüüleetri segu 50:50 (maht/maht).
Prepare an approximately 5 % solution of the unsaponifiable (point 5.1.5) in ethyl acetate (point 4.12) and, using the 100 μl microsyringe, depose 0,3 ml of the solution on a narrow and uniform streak on the lower end (2 cm) of the chromatographic plate (point 5.2.1).
Valmistatakse seebistumatute ainete (punkt 5.1.5) ligikaudu 5 % lahus etüülatsetaadis (punkt 4.12) ja kantakse 100-mikroliitrise mikrosüstlaga 0,3 ml seda lahust kitsa ja ühtlase ribana kromatograafiaplaadile (punkt 5.2.1) alumisest servast 2 cm kõrgemale.
In line with the streak, place 2 to 3 μl of the material reference solution (point 4.13), so that the sterol and triterpene dialcohols band can be identified after developing.
Selle ribaga samale joonele kantakse 2–3 μl materjali võrdluslahust (4.13), et sterooli ja triterpeendialkoholide vööndit oleks võimalik pärast ilmutamist identifitseerida.
Place the plate in the developing chamber prepared as specified in point 5.2.2.
Plaat pannakse punkti 5.2.2 kohaselt ettevalmistatud ilmutusnõusse.
The ambient temperature should be maintained between 15 and 20 °C (Note 5).
Ruumitemperatuur tuleks hoida 15 ja 20 °C vahel (märkus 5).
Immediately close the chamber with the cover and allow eluting until the solvent front reaches approximately 1 cm from the upper edge of the plate.
Ilmutusnõu suletakse kohe kaanega ning plaadil lastakse elueeruda, kuni lahusti jõuab umbes 1 cm kaugusele plaadi ülemisest servast.
Remove the plate from the developing chamber and evaporate the solvent in a flow of hot air or by leaving the plate for a short while, under a hood.
Plaat võetakse ilmutusnõust välja ning lahusti aurustatakse kuuma õhu voolus või jättes selle lühikeseks ajaks tõmbekapi alla.