natgillin/translations-raw huggingface dataset:
This analysis can be performed using a gas chromatograph if a carbon analyser is not available.
Kui süsiniku analüsaatorit ei ole, siis võib selle analüüsi teha gaaskromatograafiga.
It is important that the bottles should be at or close to the test temperature when the headspace gas is analysed.
Vabaruumi gaasi analüüsimise käigus on tähtis, et pudelid oleksid katsetemperatuuril või sellele lähedal.
Method (b) can be easier for laboratories using carbon analysers to measure IC.
Meetod b võib olla lihtsam laborile, kes kasutab anorgaanilise süsiniku mõõtmiseks süsiniku analüsaatorit.
It is important that the sodium hydroxide solution (paragraph 21) used to convert CO2 to carbonate is either freshly prepared or its IC content is known, so that this can be taken into account when calculating the test results (see paragraph 66-b.)
On tähtis, et CO2 karbonaadiks muundamiseks kasutatav naatriumhüdroksiidi lahus (punkt 21) oleks kas värskelt valmistatud või selle anorgaanilise süsiniku sisaldus oleks teada, et seda saaks katsetulemuste arvutamisel arvesse võtta (vt punkti 66 alapunkt b.)
Method (a):
Meetod a:
acidification to pH < 3
hapestamine pH-ni < 3
Before each batch of analyses, the IC analyser is calibrated using an appropriate IC standard (e.g. 1 % w/w CO2 in N2).
Enne iga analüüside partiid kaliibritakse anorgaanilise süsiniku analüsaator asjakohase anorgaanilise süsiniku standardi abil (näiteks 1 massiprotsent CO2 N2-s).
Concentrated orthophosphoric acid (paragraph 20) is injected through the septum of each bottle sampled to lower the pH of the medium to < 3 (e.g. add 1 ml to 107 ml test medium).
Läbi iga proovivõtuks kasutatava pudeli vahekorgi süstitakse kontsentreeritud ortofosforhapet (punkt 20), et viia kasvukeskkonna pH väärtusele < 3 (näiteks 107 ml katse kasvukeskkonnale lisatakse 1 ml).
The bottles are placed back on the shaker.
Pudelid pannakse tagasi loksutile.
After shaking for one hour at the test temperature the bottles are removed from the shaker, aliquots (e.g. 1 ml) of gas are withdrawn from the headspace of each bottle and injected into the IC analyser.
Pärast ühetunnilist loksutamist katsetemperatuuril võetakse pudelid loksutilt, iga pudeli vabaruumist võetakse gaasi alikvoot (näiteks 1 ml) ja süstitakse anorgaanilise süsiniku analüsaatorisse.
The measured IC concentrations are recorded as mg C/l.
Anorgaanilise süsiniku mõõdetud kontsentratsioon väljendatakse ühikutes mg C/l.
The principle of this method is that after acidification to pH < 3 and equilibration at 20 °C, the equilibrium constant for the distribution of CO2 between the liquid and gaseous phases in the test bottles is 1,0 when measured as a concentration (13).
Selle meetodi põhimõte seisneb asjaolus, et pärast hapestamist tasemele pH < 3 ja tasakaalustamist 20 °C juures on katsepudelites CO2 vedela ja gaasifaasi vahel jaotumise tasakaalukonstant 1,0, kui seda mõõdetakse kontsentratsioonina (13).
This should be demonstrated for the test system at least once as follows:
Seda tuleks katsesüsteemi puhul vähemalt üks kord järgmiselt tõendada.
Set up bottles containing 5 and 10 mg/l as IC using a solution of anhydrous sodium carbonate (Na2 CO3) in CO2-free water prepared by acidifying water to pH 6,5 with concentrated ortho-phosphoric acid (paragraph 20), sparging overnight with CO2-free air and raising the pH to neutrality with alkali.
Valmistage ette pudelid, mis sisaldavad 5 ja 10 mg/l anorgaanilist süsinikku, kasutades veevaba naatriumkarbonaadi (Na2CO3) lahust CO2-vabas vees, mis on valmistatud kontsentreeritud ortofosforhappe abil (punkt 20) vee pH viimisega väärtuseni 6,5, lahuse barboteerimisega järgmise päevani CO2-vaba õhuga ja pH viimisega neutraalseks leelise abil.
Ensure that the ratio of the headspace volume to the liquid volume is the same as in the tests (e.g. 1:2).
Kontrollige, et vabaruumi mahu ja vedelikukoguse suhe oleks sama kui katsete puhul (näiteks 1 : 2).
Acidify and equilibrate as described in paragraph 52, and measure the IC concentrations of both the headspace and liquid phases.
Hapestage ja tasakaalustage punktis 52 kirjeldatud viisil ning mõõtke anorgaanilise süsiniku kontsentratsioon nii vabaruumis kui ka vedelfaasis.
Check that the two concentrations are the same within experimental error.
Kontrollige, et need kaks kontsentratsiooni langeksid katsevea piires kokku.
If they are not, the operator should review the procedures.
Kui need kokku ei lange, peaks katse tegija meetodid üle vaatama.
This check on the distribution of IC between liquid and gaseous phases need not be made every time the test is performed; it could presumably be made while performing the calibration.
Seda anorgaanilise süsiniku vedela ja gaasifaasi vahel jaotumise kontrolli ei ole vaja teha iga katse puhul; seda võib eeldatavasti teha kalibreerimise ajal.
Method (b):
Meetod b:
conversion of CO2 to carbonate
muundamine karbonaadiks
Before each batch of analyses, the IC analyser is calibrated using an appropriate standard — for example, a solution of sodium bicarbonate (NaHCO3) in CO2 free water (see paragraph 53) in the range 0 to 20 mg/l as IC.
Enne iga analüüside partiid kaliibritakse anorgaanilise süsiniku analüsaator asjakohase standardi abil, näiteks naatriumvesinikkarbonaadi (NaHCO3) lahusega CO2-vabas vees (vt punkt 53) anorgaanilise süsiniku vahemikus 0–20 mg/l.
Sodium hydroxide solution (7M, paragraph 21) (e.g. 1 ml to 107 ml medium) is injected through the septum of each bottle sampled and the bottles are shaken for 1 h at the test temperature.
Läbi iga proovivõtuks kasutatava pudeli vahekorgi süstitakse naatriumhüdroksiidi lahust (7M, punkt 21) (näiteks 107 ml kasvukeskkonna kohta lisatakse 1 ml) ja pudeleid loksutatakse tund aega katsetemperatuuril.
Use the same NaOH solution on all bottles sacrificed on a particular day, but not necessarily on all sampling occasions throughout a test.
Kõigisse konkreetsel päeval kasutatavatesse pudelitesse süstitakse sama NaOH lahust; katse eri proovivõtukordadel aga ei ole vaja kasutada sama lahust.
If absolute blank IC values are required at all sampling occasions, IC determinations of the NaOH solution will be required each time it is used.
Kui kõigil proovivõtukordadel on vaja mõõta anorgaanilise süsiniku absoluutsed väärtused kontrollkatsetes, tuleb iga kasutamise ajal määrata NaOH lahuses anorgaaniline süsinik.
The bottles are removed from the shaker and allowed to settle.
Pudelid võetakse loksutilt ja neil lastakse settida.
Suitable volumes (e.g. 50 to 1000 μl) of the liquid phase in each vessel are withdrawn by syringe.
Iga nõu vedelfaasist võetakse süstlaga vajalik kogus (näiteks 50 – 1000 μl).
The samples are injected into the IC analyser and the concentrations of IC are recorded.
Proov süstitakse anorgaanilise süsiniku analüsaatorisse ja registreeritakse anorgaanilise süsiniku kontsentratsioon.
It should be ensured that the analyser used is equipped properly to deal with the alkaline samples produced in this method.
Kasutatav analüsaator peab olema kohandatud selle meetodiga saadavate leeliseliste proovide mõõtmiseks.
The principle of this method is that after the addition of alkali and shaking, the concentration of IC in the headspace is negligible.
Selle meetodi põhimõte seisneb selles, et pärast leelise lisamist ja loksutamist on anorgaanilise süsiniku kontsentratsioon vabaruumis ebaoluline.
This should be checked for the test system at least once by using IC standards, adding alkali and equilibrating, and measuring the concentration of IC in both the headspace and liquid phases (see paragraph 53).
Katsesüsteemis tuleks seda vähemalt üks kord kontrollida anorgaanilise süsiniku standardiga, leelise lisamise, tasakaalustamise ja anorgaanilise süsiniku kontsentratsiooni mõõtmisega nii vabaruumis kui ka vedelfaasis (vt punkt 53).
The concentration in the headspace should approach zero.
Kontsentratsioon vabaruumis peaks olema nullilähedane.
This check on the virtually complete absorption of CO2 need not be made every time the test is performed.
Kõnealust CO2 peaaegu täieliku neeldumise kontrolli ei ole vaja teha iga katse puhul.
Calculating of results
Tulemuste arvutamine
Assuming 100 % mineralisation of the test chemical to CO2, the ThIC in excess of that produced in the blank controls equals the TOC added to each test bottle at the start of the test, that is:
Kui eeldada uuritava kemikaali 100 % mineraliseerumist CO2-ni, on kontrollnõus tekkivale CO2-le lisandunud maksimaalne teoreetiliselt võimalik anorgaanilise süsiniku sisaldus (ThIC) võrdne igasse katsepudelisse katse alguses lisatud orgaanilise süsiniku kogusisaldusega (TOC), s.o:
The total mass (mg) of inorganic carbon (TIC) in each bottle is:
Anorgaanilise süsiniku kogumass TIC (mg) igas pudelis on:
mg C in the liquid
mg C vedelikus
mg C in the headspace
mg C vabaruumis
Equation [1]
võrrand 1,
volume of liquid in the bottle (litre);
vedeliku kogus pudelis (liitrites); C L
CL concentration of IC in the liquid (mg/l as carbon);
anorgaanilise süsiniku kontsentratsioon vedelikus (mg/l süsinikuna);
VH volume of the headspace (litre);
V H kogus vabaruumis (liitrites); C H
CH concentration of IC in the headspace (mg/l as carbon).
anorgaanilise süsiniku kontsentratsioon vabaruumis (mg/l süsinikuna).
The calculations of TIC for the two analytical methods used for measuring IC in this test are described below in paragraphs 60 and 61.
Anorgaanilise süsiniku kogumassi (TIC) arvutamist käesolevas katses anorgaanilise süsiniku mõõtmiseks kasutatud kahe analüüsimeetodi korral on kirjeldatud allpool punktides 60 ja 61.
Percentage biodegradation (% D) in each case is given by:
Biolagunemise protsent (% D) leitakse kummalgi juhul järgmiselt:
Equation [2]
võrrand 2,
mg TIC in test bottle at time t;
anorgaanilise süsiniku kogumass (mg) katsepudelis ajal t;
mean mg TIC in blank bottles at time t;
keskmine anorgaanilise süsiniku kogumass (mg) kontrollpudelis ajal t;
TOC mg TOC added initially to the test vessel.
TOC katsenõusse algselt lisatud anorgaanilise süsiniku kogumass (mg).
The percentage biodegradation % D is calculated for the test (FT), reference (FC) and, if included inhibition monitoring control (FI) bottles from the respective amounts of TIC produced up to each sampling time.
Biolagunemise protsent % D arvutatakse katse (FT), võrdluskatse (FC) ja (kui seda kasutatakse) inhibeerimise seire kontrollkatse (FI) pudelites kuni iga proovivõtuajani tekkinud anorgaanilise süsiniku kogumassi alusel.
If there has been a significant increase in the TIC content of the sterile controls (FS) over the test period, then it may be concluded that abiotic degradation of the test chemical has occurred and this must be taken into account in the calculation of D in Equation [2].
Kui katse vältel suureneb oluliselt anorgaanilise süsiniku kogumass steriilsetes kontrollnõudes (FS), siis võib järeldada, et uuritav kemikaal laguneb abiootiliselt, ja seda tuleb võrrandis 2 D arvutamisel arvesse võtta.
Acidification to pH < 3
Hapestamine pH väärtusele < 3
Since acidification to pH < 3 and equilibration results in the equalisation of the concentration of TIC in the liquid and gaseous phases, only the concentration of IC in the gas phase needs to be measured.
Kuna hapestamisel pH väärtusele < 3 ja tasakaalustamisel muutuvad anorgaanilise süsiniku kogumassi kontsentratsioonid vedelfaasis ja gaasifaasis võrdseks, siis on vaja mõõta ainult gaasifaasi anorgaanilise süsiniku kontsentratsioon.
Thus, from Equation [1] TIC
Seega saab võrrandi 1 alusel tuletada TIC
, where VB = volume of the serum bottle.
, kus VB on seerumipudeli maht.
Conversion of CO2 to carbonate
muundamine karbonaadiks
In this method calculations are performed as in Equation [1], but the negligible amount of IC in the gaseous phase is ignored, that is VH
Selle meetodi puhul tehakse arvutused võrrandi 1 järgi, aga ebaolulist anorgaanilise süsiniku kogust gaasifaasis ei võeta arvesse, s.o VH
0, and TIC
0, ja TIC
Expression of Results
Tulemuste väljendamine
A biodegradation curve is obtained by plotting percentage biodegradation, D, against time of incubation and if possible, the lag phase, biodegradation phase, 10-d window and plateau phase, that is the phase in which the maximal degradation has been reached and the biodegradation curve has levelled out, are indicated.
Biolagunemise kõvera saamiseks kantakse graafikule biolagunemise protsent D sõltuvalt inkubatsiooniajast ning võimaluse korral näidatakse ootefaas, biolagunemise faas, kümnepäevane ajavahemik ja platoofaas (s.o faas, kus on jõutud maksimaalse lagunemiseni ja biolagunemise kõver muutub horisontaalseks).
If comparable results are obtained for parallel test vessels FT (< 20 % difference), a mean curve is plotted (see Appendix 2, Fig.1); if not, curves are plotted for each vessel.
Kui FT paralleelkatsetes saadakse võrreldavad väärtused (erinevus < 20 %), koostatakse keskmistatud kõver (vt 2. liite joonis 1); kui tulemused ei ole võrreldavad, koostatakse kõver iga nõu kohta.
The mean value of the percentage biodegradation in the plateau phase is determined or the highest value is assessed (e.g. when the curve decreases in the plateau phase), but it is important to assess that in the latter case the value is not an outlier.
Määratakse platoofaasi biolagunemise protsendi keskväärtus või hinnatakse suurim väärtus (näiteks kui kõver hakkab platoofaasis langema); viimati nimetatud juhul on tähtis kontrollida, et väärtus ei oleks võõrväärtus.
Indicate this maximum level of biodegradation as “degree of biodegradation of the test chemical” in the test report.
Katseprotokollis tuleb see biolagunemise maksimaalne tase märkida kui „uuritava kemikaali biolagunemise määr”.
If the number of test vessels was insufficient to indicate a plateau phase, the measured data of the last day of the test are used to calculate a mean value.
Kui katsenõude arv ei ole piisav platoofaasi kindlakstegemiseks, kasutatakse keskväärtuse arvutamiseks katse viimasel päeval mõõdetud andmeid.
This last value, the mean of five replicates, serves to indicate the precision with which the percentage biodegradation was determined.
Viimane nimetatud väärtus, viie paralleelkatse keskmine, näitab biolagunemise protsendi määramise täpsust.
Also report the value obtained at the end of the 10-d window.
Samuti tuleb registreerida kümnepäevase ajavahemiku lõpus saadud näitaja.
In the same way, a curve for the reference chemical, FC, is plotted and, if included, for the abiotic elimination check, FS and the inhibition control, FI.
Samal viisil koostatakse võrdluskemikaali FC biolagunemise kõver ning (kui seda kasutatakse) abiootilise kõrvaldamise kontrolli FS ja inhibeerimise kontrolli FI kõver.
The amounts of TIC present in the blank controls (FB) are recorded as are those in flasks FS (abiotic check), if these vessels were included in the test.
Uuritava kemikaalita kontrollkatsetes (FB) oleva anorgaanilise süsiniku kogumass registreeritakse; samuti toimitakse FS (abiootiline kontroll) nõude puhul, kui katses kasutati kõnealuseid kontrollnõusid.
Calculate D for the FI vessels, based on the theoretical IC yield anticipated from only the reference component of the mixture.
FI nõude puhul arvutatakse D teoreetiliselt võimaliku anorgaanilise süsiniku tekkimise alusel, lähtudes ainult segus oleva võrdluskemikaali sisaldusest.
If, at day 28, [(DFC [8] – DFI [9]/DFC] × 100 > 25 %, it may be assumed that the test chemical inhibited the activity of the inoculum, and this may account for low values of DFT obtained under the conditions of the test.
Kui 28. päeval [(DFC [8] – DFI) [9] / DFC] × 100 > 25 %, siis võib eeldada, et uuritav kemikaal inhibeeris inokulumi tegevust, ja see võib seletada katse tingimustes saadud DFT madalat väärtust.
In this case the test could be repeated using a lower test concentration and preferably reducing the DIC in the inoculum and TIC formed in the blank controls, since the lower concentration will otherwise reduce the precision of the method.
Sel juhul võib katset korrata, kasutades väiksemat uuritava kemikaali kontsentratsiooni ning eelistatavalt vähendades lahustunud anorgaanilise süsiniku sisaldust inokulumis ja uuritava kemikaalita kontrollnõudes tekkinud anorgaanilise süsiniku kogumassi, kuna vastasel juhul vähendab väiksem kontsentratsioon meetodi täpsust.
Alternatively, another inoculum may be used.
Alternatiivselt võib kasutada muud inokulumi.
If in flask FS (abiotic) a significant increase (> 10 %) in the amount of TIC is observed, abiotic degradation processes may have occurred.
Kui kolvis FS (abiootiline) täheldatakse anorgaanilise süsiniku kogumassi olulist suurenemist (> 10 %), siis võis esineda abiootilist lagunemist.
A test is considered valid if:
Katset peetakse kehtivaks, kui
the mean percentage degradation in vessels FC containing the reference chemical is > 60 % by the 14th day of incubation; and
võrdluskemikaali sisaldavates nõudes FC on keskmine lagunemise protsent > 60 % inkubatsiooni 14. päevaks ja
the mean amount of TIC present in the blank controls FB at the end of the test is > 3 mg C/l.
kontrollnõudes FB on anorgaanilise süsiniku kogumassi keskmine kogus katse lõpus > 3 mg C/l.
If these limits are not met, the test should be repeated with an inoculum from another source and/or the procedures used should be reviewed.
Kui need piirmäärad ei ole täidetud, tuleks katset korrata muust allikast pärit inokulumiga ja/või kasutatud meetodid tuleks läbi vaadata.
For example, if high blank IC production is a problem the procedure given in paragraphs 27 to 32 should be followed.
Näiteks kui probleem on rohke anorgaanilise süsiniku tekkimine kontrollnõudes, tuleks kasutada punktides 27–32 kirjeldatud meetodit.
If the test chemical does not reach 60 % ThIC and was shown not to be inhibitory (paragraph 65), the test could be repeated with increased concentration of inoculum (up to 30 mg/l activated sludge and 100 ml effluent/l) or inocula from other sources, especially if degradation had been in the range 20 to 60 %.
Kui uuritava kemikaali lagundamisel ei saavuta 60 % teoreetiliselt maksimaalsest anorgaanilise süsiniku sisaldusest ja inhibeerivat mõju ei täheldatud (punkt 65), võib katset korrata inokulumi suurema kontsentratsiooniga (kuni 30 mg/l aktiivmuda ja 100 ml väljavoolu / l) või muudest allikatest saadud inokulumiga, eelkõige siis, kui lagunemine jäi vahemikku 20–60 %.
Biodegradation > 60 % ThIC within the 10-d window in this test demonstrates that the test chemical is readily biodegradable under aerobic conditions.
Selles katses näitab biolagunemine > 60 % teoreetiliselt maksimaalsest anorgaanilise süsiniku tasemest kümnepäevase ajavahemiku jooksul, et uuritav kemikaal on aeroobsetes tingimustes kiirelt biolagundatav.
If the pass value of 60 % ThIC is not attained, determine the pH value in media in bottles which have not been made acid or alkaline; a value of less than 6,5 could indicate that nitrification had occurred.
Kui nõutud kriteerium – 60 % teoreetiliselt maksimaalsest anorgaanilise süsiniku kogusest – ei ole täidetud, määratakse pudelites oleva kasvukeskkonna pH (ilma hapestamata või leelistamata); väärtus alla 6,5 võib viidata nitrifikatsiooni toimumisele.
In such a case repeat the test with a buffer solution of higher concentration.
Sel juhul tuleb katset korrata puhverlahuse suurema kontsentratsiooniga.
Compile a table of % D for each test (FT), reference (FC) and, if included, inhibition control bottle (FI) for each day sampled.
Koostatakse tabel, milles on % D väärtused iga katse (FT), võrdluse (FC) ja (kui seda kasutati) inhibeerimise kontrollnõu (FI) iga proovivõtu päeva kohta.
If comparable results are obtained for replicate bottles, plot a curve of mean % D against time.
Kui paralleelproovide pudelite kohta saadakse võrreldavad tulemused, siis koostatakse keskmise % D ajast sõltuvuse graafik.
Record the amount of TIC in the blanks (FB) and in the sterile controls (FS) DOC and/or other determinands, and their percentage removal.
Registreeritakse anorgaanilise süsiniku kogumass kontrollnõudes (FB) ja lahustunud orgaaniline süsinik ja/või muud näitajad steriilsetes kontrollnõudes (FS) ning nende kõrvaldamise protsent.
Determine the mean value of % D in the plateau phase, or use the highest value if the biodegradation curve decreases in the plateau phase, and report this as the “degree of biodegradation of the test chemical”.
Määratakse % D keskväärtus platoofaasis või suurim väärtus, kui biolagunemise kõver platoofaasis langeb, ning esitatakse see uuritava kemikaali lagunemise määrana.
It is important to ensure that in the latter case the highest value is not an outlier.
Tähtis on tagada, et viimati nimetatud juhul ei oleks suurim näitaja võõrväärtus.
common name, chemical name, CAS number, structural formula and relevant physical-chemical properties;
tavanimetus, keemiline nimetus, CASi number, struktuurivalem ja asjakohased füüsikalis-keemilised omadused;
purity (impurities) of test chemical.
uuritava kemikaali puhtus (lisandid).
reference to this Test Method;
viide käesolevale katsemeetodile;
description of the test system used (e.g. volume of the vessel, head space to liquid ratio, method of stirring, etc.);
kasutatud katsesüsteemi kirjeldus (näiteks nõu maht, vabaruumi ja vedeliku suhe, segamise meetod jne);
application of test chemical and reference chemical to test system: test concentration used and amount of carbon dosed into each test bottle, any use of solvents;
uuritava kemikaali ja võrdluskemikaali lisamine katsesüsteemi: kasutatud kontsentratsioonid ja igasse katsepudelisse lisatud süsiniku kogus ning lahustite kasutamine;
details of the inoculum used, any pre-treatment and pre-conditioning;
andmed kasutatud inokulumi kohta, iga eeltöötlemine ja kohandamine;
incubation temperature;
inkubatsioonitemperatuur;
validation of the principle of IC analysis;
anorgaanilise süsiniku analüüsi põhimõtte valideerimine;
main characteristics of the IC analyser employed (and any other analytical methods used);
kasutatud anorgaanilise süsiniku analüsaatori (ja muude kasutatud analüüsimeetodite) peamised omadused;
raw data and calculated values of biodegradability in tabular form;
mõõdetud biolagundatavuse andmed ja arvutatud väärtused tabeli kujul;
the graph of percentage degradation against time for the test and reference chemicals, the lag phase, degradation phase, 10-d window and slope;
katse- ja võrdluskemikaali lagunemise protsendi sõltuvus ajast graafikuna, ootefaas, lagunemisfaas, kümnepäevane ajavahemik ja tõus;
percentage removal at plateau, at end of test, and after 10-d window;
kõrvaldamise protsent platoofaasis, katse lõpus ja pärast kümnepäevast ajavahemikku;
reasons for any rejection of the test results;
iga katsetulemuste arvestamata jätmise põhjendus;
any other facts that are relevant to the procedure followed;
kõik muud andmed, mis on kasutatud katsemeetodi puhul asjakohased;
Chapter C.4 of this Annex Determination of “Ready” Biodegradability — CO2 Evolution Test (Method C.4-C).
Käesoleva lisa peatükk C.4 „Kohese biolagunduvuse määramine – CO2 eraldumise katse (meetod C.4-C)”.
Water Quality — Evaluation of ultimate aerobic biodegradability of organic compounds in aqueous medium — Carbon dioxide evolution Test (Sturm).
Water Quality - Evaluation of ultimate aerobic biodegradability of organic compounds in aqueous medium - Carbon dioxide evolution Test (Sturm).
Carbon dioxide evolution test.
3110 Carbon dioxide evolution test.
ISO 14593, (1999) Water Quality — Evaluation of ultimate aerobic biodegradability of organic compounds in an aerobic medium-method by analysis of inorganic carbon in sealed vessels (CO2 headspace test).
ISO 14593, (1999) Water Quality - Evaluation of ultimate aerobic biodegradability of organic compounds in an aerobic medium-method by analysis of inorganic carbon in sealed vessels (CO2 headspace test).
The ISO headspace CO2 biodegradation test, Chemosphere 34: 1813-1822.
The ISO headspace C02 biodegradation test, Chemosphere 34: 1813–1822.
An “inherent” biodegradability test for oil products: description and results of an international ring test.
An „inherent” biodegradability test for oil products: description and results of an international ring test.
Chapter C.11 of this Annex, Activated sludge respiration inhibition test.
Käesoleva lisa peatükk C.11 „Aktiivmuda respiratsiooni pärssimise katse”.