natgillin/translations-raw huggingface dataset:
When selecting those animals, all parts of the consignment must be proportionally represented in the sample.
Loomade valikul peavad kõik saadetise osad olema proovis esindatud proportsionaalselt.
If weak, gaping or freshly dead (not decomposed) animals are present, primarily such animals shall be selected.
kui leitakse nõrku, avanenud poolmetega või äsja surnud (mitte veel lagunenud) loomi, võetakse valimisse eelkõige neid.
Sampling for the purposes of Article 5(2) shall consist of at least 150 individuals of Crassostrea gigas per sampling points.
Artikli 5 lõike 2 kohaselt võetud proovid peavad sisaldama vähemalt 150 suurt hiidaustrit iga proovivõtu koha kohta.
All farms or mollusc farming areas in the Member State or compartment covered by the programme shall be sampled.
Proovid tuleb võtta kõikidest liikmesriigis või piirkonnas asuvatest kasvandustest või asjaomase kavaga hõlmatud kasvatuspiirkondadest.
Sampling for the purposes of Article 5(1)(b) shall consist of at least 150 individuals of Crassostrea gigas oysters per compartment.
Artikli 5 lõike 1 punkti b kohaselt võetud proovid peavad sisaldama vähemalt 150 suurt hiidaustrit iga piirkonna kohta.
When selecting those animals, the following criteria shall be taken into account:
Loomade valikul tuleb arvesse võtta järgmist:
If such animals are not present, the animals selected shall include healthy molluscs less than 12 months old.
Kui selliseid loomi ei esine, peab valim sisaldama alla aasta vanuseid terviklikke molluskeid;
When sampling in farms in which more than one water source is utilised for production, animals representing all water sources must be included for sampling in such a way that all parts of the farm are proportionally represented in the sample.
kui proove võetakse kasvandustest, kus tootmisprotsessis kasutatakse mitut veeallikat, peavad proovid sisaldama kõikidest veeallikatest pärit loomi, nii et kasvanduse kõik osad oleksid proovides esindatud proportsionaalselt;
When sampling in mollusc farming areas, animals from a sufficient number of sampling points, at least three sampling points, shall be included in the sample in such a way that all parts of the mollusc farming area are proportionally represented in the sample, including natural beds present in the mollusc farming area.
kui proove võetakse molluskikasvatuspiirkonnast, peavad need sisaldama loomi piisavast arvust (vähemalt kolm) proovivõtukohtadest, nii et molluskikasvatuspiirkonna kõik osad, sealhulgas molluskikasvatuspiirkonna looduslikud jõesängid, oleksid proovides esindatud proportsionaalselt.
The main factors to be considered for the selection of these sampling points are: previous detection of OsHV-1 μvar in the area, stocking density, water flows, bathymetry and management practices.
Proovivõtukohtade valikul tuleb arvesse võtta järgmisi olulisi tegureid: viiruse OsHV-1 μvar varasem esinemine piirkonnas, austrite tihedus, veevool, põhjareljeef ja tootmistavad.
The sampling provided for in Article 5(2) shall be carried out in the period of the year when prevalence of OsHV-1 μvar in the Member State or compartment is known to be maximal.
Artikli 5 lõike 2 kohased proovid tuleb võtta sellel aastaajal, millal viiruse OsHV-1 μvar esinemissagedus liikmesriikides või piirkondades on teadaolevalt kõige suurem.
When such data is not available, sampling shall be carried out just after the period when the water temperature exceeds 16 °C or at the time of the year when the temperature normally reaches its yearly maximum.
Juhul kui sellised andmed puuduvad, tuleb proovid võtta kohe pärast seda, kui veetemperatuur tõuseb üle 16 °C, või aastaajal, millal veetemperatuur saavutab tavaliselt iga-aastase maksimumi.
The sampling provided for in Article 5(1)(b) shall preferably be carried out in the period of the year described in point c. If samples are collected outside that period of the year, the sampled oysters must be maintained under conditions equivalent to those described in point c for a period suitable for the detection of OsHV-1 μvar, before being tested.
Artikli 5 lõike 1 punkti b kohased proovid tuleb soovitavalt võtta punktis c kirjeldatud aastaajal. Kui proove ei võeta nimetatud aastaajal, tuleb austreid enne testimist hoida tingimustes, mis on sarnased punktis c kirjeldatud aastaaja tingimustega ning sobilikud viiruse OsHV-1 μvar diagnoosimiseks.
Diagnostic methods of detecting OsHV-1 μvar
Viiruse OsHV-1 μvar avastamise diagnoosimeetodid
This procedure explains a standard diagnostic method to be used for OsHV-1 μvar detection and identification by Polymerase Chain Reaction (hereinafter PCR).
Käesolev menetlus hõlmab standardsete diagnoosimeetodite kirjeldust viiruse OsHV-1 μvar avastamiseks ja kindlaksmääramiseks polümeraasi ahelreaktsiooni (PCR) meetodil.
It allows distinguishing between OsHV-1 and OsHV-1 μvar.
Kõnealune meetod võimaldab eristada viirust OsHV-1 viirusest OsHV-1 μvar.
When appropriate, in order to optimise the reaction conditions and to suit the equipment and conditions in their own laboratory, the laboratories may apply modifications to the methods described in this Annex, provided that an equal sensitivity and specificity can be demonstrated.
Selleks et optimeerida reaktsiooni tingimusi ning sobitada labori seadmeid ja tingimusi, võivad laborid vajaduse korral kohandada käesolevas lisas kirjeldatud meetodeid, tingimusel et saab tõendada samaväärset tundlikkust ja spetsiifilisust.
OsHV-1 μvar is defined in Article 1 of this Regulation.
Viiruse OsHV-1 μvar määratlus on esitatud käesoleva määruse artiklis 1.
Equipment and environmental conditions
Seadmed ja keskkonnatingimused
The diagnostic test used for OsHV-1 μvar detection and identification by PCR requires the equipment and environmental conditions classically used for PCR assays as follows:
Diagnostilisteks uuringuteks viiruse OsHV-1 μvar tuvastamiseks ja kindlaksmääramiseks polümeraasi ahelreaktsiooni (PCR) meetodil on vaja järgmisi keskkonnatingimusi ja vahendeid, mida kasutatakse tavaliselt PCR-katsete puhul:
A closed hood equipped with an UV producing system to eliminate potential contaminations when preparing PCR mix.
suletud kate, mis on varustatud UV-kiirgust tootva süsteemiga, et vältida võimalikku saastumist PCR-segu valmistamisel;
Two complete sets of pipettes (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl), the first one for DNA extraction, and the second one for PCR mix preparation.
kaks täiskomplekti pipette (2 μl; 20 μl; 200 μl ja 1000 μl), esimene DNA ekstraheerimiseks ja teine PCR-segu ettevalmistamiseks; kolm pipetti: esimene (2 μl) PCR-segu doseerimiseks, teine (20 μl) EB-proovide võtmiseks ja kolmas (20 μl) PCR-saaduste ülekandmiseks agaroosgeelile;
Three different pipettes: one pipette (2 μl) to dispense samples in PCR mix, one pipette (20 μl) for EB sampling and another pipette (20 μl) to load PCR products in agarose gels.
filtriga pipetiotsikud (2 μl; 20 μl; 200 μl ja 1000 μl) DNA ekstraheerimiseks, PCR-segu ettevalmistamiseks ja proovide võtmiseks;
A thermal cycler to perform amplifications.
termotsükler amplifitseerimiseks;
A horizontal electrophoresis system for PCR products electrophoresis.
horisontaalne elektroforeesisüsteem PCR-saaduste elektroforeesimiseks;
An UV table to observe PCR products after agarose gel electrophoresis.
UV-lambi alusplaat, et jälgida PCR-saadusi pärast agaroosgeeli elektroforeesimist;
A system to acquire pictures of the gels.
geelil tekkinud kujutiste visualiseerimise süsteem.
The manipulator must wear a lab coat and some gloves during all the different steps described bellow.
Kõikide eespool kirjeldatud toimingute ajal peab laborant kandma kitlit ja kindaid.
Lab coat and gloves must be changed preferably after each main step: DNA extraction, preparation of PCR mix, sample dispensing, amplification and gel loading.
Kitlit ja kindaid on soovitav vahetada pärast iga olulisemat toimingut – DNA ekstraheerimist, PCR-segu valmistamist, proovide võtmist, amplifitseerimist ja saaduste ülekandmist geelile.
It is recommended to perform these different steps in different rooms.
Nimetatud toimingud on soovitav teha eri ruumides.
More particularly, amplification and gel loading/electrophoresis should take place in a room separate from DNA extraction, PCR mix preparation and DNA dispensing.
Eelkõige peaksid eri ruumides toimuma amplifitseerimine ja geelile ülekandmine/elektroforees ning DNA ekstraheerimine, PCR-segu valmistamine ja DNA määramine.
Live or freshly dead (not decomposed) oysters, which can be previously frozen, are processed for DNA extraction.
Elusalt või äsja surnud (mitte veel lagunenud) külmutatud austrilt ekstraheeritakse DNA.
Samples are processed differently according to their size:
Proove käsitletakse vastavalt nende suurusele:
For larvae, pools of 50 mg of the whole animals (including the shell) completed with 200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
vastsete puhul: terviklikke loomi (sh austrikarpi) sisaldavatele 50 mg proovidele lisatakse 200 μl destilleeritud vett, segu purustatakse ja tsentrifuugitakse 1000 g juures 1 minuti jooksul;
For spat smaller than or of 6 mm, pools of 300 mg of the whole animals (including the shell) completed with 1200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
vastsete puhul, mille pikkus on kuni 6 mm: terviklikke loomi (sh austrikarpi) sisaldavatele 300 mg proovidele lisatakse 1200 μl destilleeritud vett, segu purustatakse ja tsentrifuugitakse 1000 g juures 1 minuti jooksul;
For spat between 6 and 15 mm in size, all the soft tissues of each animal are crushed individually.
vastsete puhul, mille pikkus on 6–15 mm, purustatakse eraldi iga isend koos kõikide pehmete kudedega;
For animals bigger than 15 mm, pieces of gills and mantle are isolated.
üle 15 mm pikkuste loomade puhul eraldatakse lõpused ja mantel.
DNA extraction is performed using the QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) and following the instructions for Tissue Test Protocol.
DNA ekstraheerimisel kasutatakse komplekti QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) ja järgitakse kudede testimise eeskirja.
The further sample preparation is performed in the following order:
Seejärel valmistatakse proovid ette järgmises järjekorras.
Place 100 μl of supernatant for samples referred to in (a) and (b) or 10 to 50 mg of tissues for samples referred to point (c) and (d) in a 1,5 ml microcentrifuge tube and add 180 μl of Buffer ATL.
Punktides a ja b kirjeldatud näidiste puhul asetatakse 100 μl supernatanti ning punktides c ja d kirjeldatud näidiste puhul 10–50 mg kudesid mikrotsentrifuugi 1,5 ml katsutisse ning lisatakse 180 μl puhvrit ATL.
Add 20 μl Proteinase K, mix by vortexing and incubate at 56 °C until the tissue is completely lysed (overnight).
Lisatakse 20 μl proteinaasi K, segatakse pöörissegajas ja inkubeeritakse temperatuuril 56 °C, kuni koed on täielikult lüüsunud (üleöö).
Vortex occasionally during incubation to disperse sample.
Vajaduse korral, kui proovi on vaja ühtlustada, segatakse seda inkubeerimise ajal pöörissegajas.
Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Mikrotsentrifuugi 1,5 ml katsutit tsentrifuugitakse lühidalt, et eraldada korgilt tilgad.
Add 200 μl Buffer AL to the sample, mix by pulse-vortexing for 15 s and incubate at 70 °C for 10 minutes.
Proovile lisatakse 200 μl puhvrit AL, segatakse pulseerivas pöörissegajas 15 sekundit ja inkubeeritakse 10 minuti jooksul temperatuuril 70 °C.
Add 200 μl ethanol (96-100 %) to the sample, and mix by pulse-vortexing for 15 s. Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Proovile lisatakse 200 μl etanooli (96–100 %) ja segatakse pulseerivas pöörissegajas 15 sekundit. Mikrotsentrifuugi 1,5 ml katsutit tsentrifuugitakse lühidalt, et eraldada korgilt tilgad.
Carefully apply the mixture from step 4 to the QIAamp Spin Column (in a 2 ml collection tube) without wetting the rim.
Pärast 4. etappi saadud segu asetatakse ettevaatlikult komplekti QIAamp tsentrifuugitavasse kolonni (asub 2 ml katsutis) ilma kolonni servi niisutamata.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the tube containing the filtrate.
Kork suletakse ja proovi tsentrifuugitakse 10000 p/min 1 minuti jooksul. QIAamp tsentrifuugitav kolonn asetatakse puhtasse 2 ml katsutisse (komplektis) ja filtraati sisaldav katsuti visatakse ära.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW1 without wetting the rim.
QIAamp tsentrifuugitav kolonn avatakse ettevaatlikult ja lisatakse 500 μl puhvrit AW1 ilma kolonni servi niisutamata.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Kork suletakse ja proovi tsentrifuugitakse 10000 p/min 1 minuti jooksul. QIAamp tsentrifuugitav kolonn asetatakse puhtasse 2 ml katsutisse (komplektis) ja filtraati sisaldav katsuti visatakse ära.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW2 without wetting the rim.
QIAamp tsentrifuugitav kolonn avatakse ettevaatlikult ja lisatakse 500 μl puhvrit AW2 ilma tsentrifuugikatsuti servi niisutamata.
Close the cap and centrifuge at full speed (14000 rpm) for 3 min.
Kork suletakse ja proovi tsentrifuugitakse täiskiirusel 14000 p/min 3 minuti jooksul.
(Optional) Place the QIAamp Spin Column in a new 2ml collection tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
(Vajaduse korral) QIAamp tsentrifuugitav kolonn asetatakse puhtasse 2 ml katsutisse (ei ole komplektis) ja filtraati sisaldav katsuti visatakse ära.
Centrifuge at full speed (14000 rpm) for 1 min.
Proovi tsentrifuugitakse täiskiirusel 14000 p/min 1 minuti jooksul.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 1,5 ml microcentrifuge tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
QIAamp tsentrifuugitav kolonn asetatakse mikrotsentrifuugi puhtasse 1,5 ml katsutisse (komplektis) ja filtraati sisaldav katsuti visatakse ära.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 100 μl of distilled water.
QIAamp tsentrifuugitav kolonn avatakse ettevaatlikult ja lisatakse 100 μl destilleeritud vett.
Incubate 5 minutes at room temperature and centrifuge at 10000 rpm for 1 min.
Proovi inkubeeritakse 5 minutit toatemperatuuril ja tsentrifuugitakse seejärel 10000 p/min 1 minuti jooksul.
Control the quality and efficacy of the extraction (for example by measuring OD (260 nm) under spectrophotometer or after electrophoresis in agarose gel).
Kontrollitakse ekstraheerimise kvaliteeti ja tõhusust (näiteks mõõdetakse OD [260 nm] spektrofotomeetriga või pärast elektroforeesi agaroosgeelil).
Prepare dilution of your samples in order to have a final DNA concentration of 50-100 ng/μl.
Proovi lahjendatakse, et DNA lõppkontsentratsioon oleks 50–100 ng/μl.
DNA solutions are kept at 4 °C until PCR analyses are performed.
Kuni PCR-analüüsi tulemuste saamiseni hoitakse DNA lahust temperatuuril 4 °C.
Other commercial kits may be used for the DNA extractions provided they have been demonstrated to give similar results.
DNA ekstraheerimiseks võib kasutada ka teisi müügil olevaid komplekte, kui on tõendatud, et need annavad samasuguse tulemuse.
Polymerase Chain Reaction (PCR)
Polümeraasi ahelreaktsioon (PCR)
Reactives
Reaktiivid:
10 X Buffer (furnished with the Taq DNA polymerase)
10 X reaktsioonipuhver (Taq DNA polümeraasi komplektis);
MgCl2 (furnished with the DNA polymerase) (25 mM)
MgCl2 (DNA polümeraasi komplektis) (25 mM);
Taq DNA Polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
Taq DNA polümeraas (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl;
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20mM) must be diluted 10 fold (at 2 mM) before use
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20 mM) tuleb lahjendada 10 korda (2 mM) enne kasutamist;
d H2O (distilled H2O free of DNA and RNA)
d H2O (DNA- ja RNA-vaba destilleeritud vesi).
Primers
Praimerid
The following primers [1] must be used:
Kasutada tuleb järgmisi praimereid [1]: CF (10 μM);
PCR mix
PCR-segu
PCR mix for each tube is:
PCR-segu kõikide katsutite jaoks on järgmine:
Volume per tube
Katsuti maht
Buffer (10 X)
Reaktsioonipuhver (10 X)
Taq polymérase (5U/μl)
Taq-polümeraas (5 U/μl)
49 μl of this PCR mix is dispensed in each PCR tube
Igasse katsutisse lisatakse 49 μl kõnealust PCR-segu.
1 μl of extracted DNA (50-100 ng/μl) is added to each tube
Igasse katsutisse lisatakse 1 μl ekstraheeritud DNAd (50–100 ng/μl).
Two types of control are used:
Kasutatakse kaht tüüpi kontrollimist.
Negative controls consist of dH2O (1 μl for 49 μl of PCR mix).
Negatiivne kontroll sisaldab dH2O (1 μl dH2O; 49 μl PCR-segu).
They aim at detecting potential reactive contamination or working environment.
Negatiivse kontrolli eesmärk on tuvastada töökeskkonna võimalikku saastatust reaktiividega.
One negative control should be included every 10 samples or after each batch of samples.
Negatiivne kontroll tuleb teha iga 10 proovi järel või iga proovide partii järel.
Positive controls consist of plasmidic DNA containing the OsHV-1 target genome region CF-CR.
Positiivne kontroll sisaldab plasmiidset DNAd, mis sisaldab viiruse OsHV-1 teatavat järjestust CF-CR.
They aim at checking the efficacy of the PCR reaction.
Kontrolli eesmärk on kontrollida PCR-reaktsiooni tõhusust.
One positive control should be included for each PCR analysis.
Iga PCR-analüüsi kohta tuleb teha üks positiivne kontroll.
Positive controls are available from the Community Reference Laboratory.
Positiivseid kontrolle saab ühenduse referentlaboritest.
Amplification
Amplifitseerimine
Amplification cycles are performed in a thermal cycle apparatus.
Amplifitseerimiseks kasutatakse termotsüklerit.
Initial denaturation: 2 min at 94 °C
Esialgne denaturatsioon: 2 minutit temperatuuril 94 °C.
Amplification: 35 cycles (1 min at 94 °C, 1 min at 50 °C and 1 min at 72 °C)
Amplifitseerimine: 35 tsüklit (1 minut 94 °C, 1 minut 50 °C ja 1 minut 72 °C).
Final elongation: 5 min at 72 °C
Lõplik elongatsioon: 5 minutit temperatuuril 72 °C.
Electrophoresis
Elektroforees
50 X TAE (can be bought directly ready for use):
50 X TAE (selle võib osta kasutusvalmina):
Tris base (40 mM) 242 g
Tris-alus (40 mM) 242 g;
Acetic glacial acid (40 mM) 57,1 ml
Jää-äädikhape (40 mM) 57,1 ml;
Na2EDTA.2H2O (1 mM) 18,61 g
Na2EDTA·2H2O (1 mM) 18,61 g;
dH2O for 1 liter
d H2O 1 liitri lahuse valmistamiseks;
Ajust at pH 8
Lahuse pH viiakse väärtuseni 8.
Agarose gel 2,5 % in 1 X TAE
Agaroosgeel 2,5 % 1 X TAE:
Ethidium bromide (0,5 μg/ml) added after cooling the gel.
Etiidiumbromiid (0,5 μg/ml), lisatakse pärast geeli jahutamist.
Loading blue dye:
Sinine puhver:
Bromophenol blue 0,25 %
Bromofenoolsinine 0,25 %;
Cyanol xylene FF 0,25 %
Ksüleen-tsüanool FF 0,25 %;
Sucrose 40 %
Sahharoos 40 %.
Keep at 4 °C.
Säilitatakse temperatuuril 4 °C.
Use diluted 6 times (2 μl of loading blue buffer for 10μl of PCR products).
Kasutatakse kuuekordselt lahustatuna (2 μl sinist proovipuhvrit 10 μl PCR-saaduse kohta).
Molecular weight marker:
Molekulmassi marker:
SmartLadder SF (Eurogentec): a ready-to-use molecular weight marker including 9 regularly spaced bands from 100 to 1000 bp.
SmartLadder SF (Eurogentec): kasutusvalmis molekulmassi marker, mis koosneb 9 korrapäraste vahedega rajast pikkusega 100 – 1000 aluspaari.
Agarose gel preparation
Agaroosgeeli valmistamine
Weight 2,5 g of agarose, add 100 ml of 1 X TAE and heat until the mix is melted.
Kaalutakse 2,5 g agaroosi, lisatakse 100 ml 1 X TAE ja kuumutatakse kuni segu sulamiseni.
After cooling the solution, ethidium bromide is added (5 μl for 100 ml of agarose gel) and the solution is disposed in a specific mould equipped with combs (to form slots).
Pärast lahuse jahutamist lisatakse 5 μl etiidiumbromiidi 100 ml agaroosgeeli kohta, seejärel valatakse lahus kammidega varustatud alusplaadile (taskute vormimiseks).
When gel is polymerised, combs are removed and gel is placed in a horizontal electrophoresis system containing enough 1 X TAE to the cover agarose gel.
Kui geel on tardunud, eemaldatakse kammid ja geel asetatakse horisontaalsesse elektroforeesisüsteemi, milles on piisavalt reaktsioonipuhvrit 1 X TAE, et see kataks agaroosgeeli täielikult.
10 μl of PCR products are mixed with 2 μl of blue dye (6 X) and disposed in the slots.
10 μl PCR-saadust segatakse 2 μl sinise puhvriga (6 X), mis on varem taskutesse pipeteeritud.
One whole is dedicated to the molecular weight marker (5 μl).
Üks tasku on ette nähtud molekulmassi markeri jaoks (5 μl).
A voltage of 50 to 150 volts is applied during 30 min to 1 hour depending on the gel size and thickness.
Sõltuvalt geeliplaadi suurusest ja paksusest kasutatakse foreesimisel pinget 50–150 volti ning forees kestab 30 minutit kuni 1 tund.
Gel is observed under UV.
Geeli vaadeldakse UV-lambi all.
The presence of OsHV-1 μvar in a sample is indicated by the presence of a band of the appropriate size (157 bp instead of 173 bp for OsHV-1) on a 2,5 % agarose gel with all negative controls negative and all positive controls positive.
Viiruse OsHV-1 μvar olemasolule proovis osutab vastava pikkusega riba (kui 157 aluspaari asemel on 173 aluspaari, osutab see viiruse OsHV-1 esinemisele) 2,5 % agaroosgeelil, kui kõikide negatiivsete kontrollide vastused on negatiivsed ja kõikide positiivsete kontrollide vastused on positiivsed.
Definition of the containment area
Isoleeritud ala kindlaksmääramine
The following factors influencing the risks for the spread of the disease shall be taken into account when defining the containment area in accordance with Article 2(2):
Artikli 2 lõikes 2 osutatud isoleeritud ala kindlaksmääramisel tuleb arvesse võtta järgmisi tegureid, mis mõjutavad taudi leviku ohtu:
the number, rate and distribution of molluscs on the farm or mollusc farming area infected;
nakatunud molluskite arv, osatähtsus ja jaotus kasvandustes või molluskikasvatuspiirkondades;
distance and density of neighbouring farms or mollusc farming areas;
lähima kasvanduse või kasvatuspiirkonna kaugus ja kasvanduste tihedus;
proximity to processing establishments, contact farms or contact mollusc farming areas;
kaugus töötlevatest ettevõtetest; kokkupuude muude kasvanduste või kasvatuspiirkondadega;
species present at the farms or mollusc farming areas;
kasvandustes või kasvatuspiirkondades kasvatatavad liigid;
farming practices applied in the affected and the neighbouring farms or mollusc farming areas; and
nakatunud ja lähedal asuvates kasvandustes ja kasvatuspiirkondades kohaldatavad tootmisviisid ning
hydrodynamic conditions and other factors of epizootiological significance identified.
hüdrodünaamilised tingimused ja muud identifitseeritud epidemioloogilise tähtsusega faktorid.
These primers or descriptions thereof may be obtained from the Community Reference Laboratory for Mollusc Diseases (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, France).
Kõnealuseid praimereid või nende kirjeldusi saab molluskihaiguste tuvastamise ühenduse referentlaborist (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, Prantsusmaa).
Model animal health certificate for the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Kasvanduste ja ülekandekeskuste jaoks ette nähtud suurte hiidaustrite turuleviimise veterinaarsertifikaadi näidis
Animal species/product
Loomaliik/toode
Identification of container/seal number
Konteineri identifitseermistunnus / plommi number
Animals certified as/products certified for
Loomad on sertifitseeritud kui / kaup sertifitseeritud
For the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Kasvanduste ja ülekandekeskuste jaoks ette nähtud suurte hiidaustrite turuleviimiseks
(1)(2)[II.1 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2 of Regulation (EU) No 175/2010
(1)(2)[II.1 Määruse (EL) nr 175/2010 artikli 2 kohaselt kindlaks määratud isoleeritud alalt pärit suurte hiidaustrite suhtes kohaldatavad nõuded
I, the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate:
Mina, allakirjutanud ametlik inspektor, tõendan, et käesoleva sertifikaadi I osas osutatud suured hiidaustrid: