natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For details, see the Standard Operating Procedures for the three methods (21, 22, 23).
Üksikasjad on esitatud kolme meetodi standardses töökorras (21, 22, 23).
Concurrent NC and positive controls (PC) should be used for each study to demonstrate that viability (NC), barrier function and resulting tissue sensitivity (PC) of the tissues are within a defined historical acceptance range.
Iga uuringu puhul tuleb teha paralleelkatsed negatiivse kontrolli võrdlusaine ja positiivse kontrolli võrdlusainega, millega tõendatakse, et kudede eluvõimelisus (negatiivse kontrolli võrdlusaine), kaitsekihi toime ja sellega määratud kudede tundlikkus (positiivse kontrolli võrdlusaine) on kindlaksmääratud varasemates lubatud piirides.
The suggested PC substance is 5 % aqueous SDS.
Soovitatav positiivse kontrolli võrdlusaine on SDSi 5 % vesilahus.
The suggested NC substances are water or phosphate buffered saline (PBS).
Soovitatavad negatiivse kontrolli võrdlusained on vesi või fosfaatpuhvrit sisaldav keedusoolalahus.
Cell Viability Measurements
Raku eluvõimelisuse mõõtmine
The most important element of the test procedure is that viability measurements are not performed immediately after the exposure to the test substances, but after a sufficiently long post-treatment incubation period of the rinsed tissues in fresh medium.
Kõige olulisem katse läbiviimisel on see, et eluvõimelisuse mõõtmisi ei tehtaks vahetult pärast kokkupuudet uuritava ainega, vaid pärast töötlemisele järgnevat puhtaks loputatud kudede piisavalt pikka inkubeerimist värskes keskkonnas.
This period allows both for recovery from weakly irritant effects and for appearance of clear cytotoxic effects.
Inkubeerimine võimaldab toibuda nõrgalt ärritavast mõjust ja ilmneda selgel tsütotoksilisel mõjul.
During the test optimisation phase (9, 10, 11, 12, 13), a 42 hours post-treatment incubation period proved to be optimal and was therefore used in the validation of the reference test methods.
Katse optimeerimise etapil (9, 10, 11, 12, 13) tehti kindlaks, et 42-tunnine inkubeerimine pärast töötlemist on optimaalne, ja seepärast kasutatigi seda inkubatsiooniaega määramise standardmeetodite valideerimisel.
The MTT conversion assay is a quantitative validated method which should be used to measure cell viability.
MTT muundamise katse on kvantitatiivne valideeritud meetod, mida tuleks kasutada rakkude eluvõimelisuse mõõtmiseks.
It is compatible with use in a three-dimensional tissue construct.
Meetodit saab kasutada kolmemõõtmelises koekonstruktsioonis.
The skin sample is placed in MTT solution of appropriate concentration (e.g. 0,3-1 mg/mL) for 3 hours.
Nahaproov asetatakse kolmeks tunniks sobiva kontsentratsiooniga (nt 0,3–1 mg/ml) MTT lahusesse sobival inkubatsioonitemperatuuril.
The precipitated blue formazan product is then extracted from the tissue using a solvent (e.g. isopropanol, acidic isopropanol), and the concentration of formazan is measured by determining the OD at 570 nm using a bandpass of maximum ±30 nm.
Sadestunud sinine formasaan ekstraheeritakse seejärel lahustiga (näiteks isopropanool, hapestatud isopropanool) ja formasaani kontsentratsioon määratakse optilise tiheduse mõõtmisega lainepikkusel 570 nm, kasutades spektririba laiust kuni ±30 nm.
Optical properties of the test substance or its chemical action on the MTT may interfere with the assay leading to a false estimate of viability (because the test substance may prevent or reverse the colour generation as well as cause it).
Uuritava aine enda optilised omadused või selle keemiline mõju MTT-le võib segada määramist, põhjustades eluvõimelisuse hindamisel vea (kuna uuritav aine võib segada värvuse ilmumist, nõrgendada värvust või põhjustada seda).
This may occur when a specific test substance is not completely removed from the skin by rinsing or when it penetrates the epidermis.
See võib juhtuda, kui uuritavat ainet ei ole nahalt täielikult maha loputatud või kui aine on tunginud epidermisesse.
If the test substance acts directly on the MTT, is naturally coloured, or becomes coloured during tissue treatment, additional controls should be used to detect and correct for test substance interference with the viability measurement technique.
Kui uuritav aine reageerib otse MTTga, on ise värviline või muutub värviliseks koega kokkupuutumisel, tuleb kasutada täiendavaid kontrollkatseid, et teha kindlaks, kuivõrd segab uuritav aine eluvõimelisuse määramist, ning viia sisse asjakohane parandus.
For detailed description of how to test direct MTT reduction, please consult the test method protocol for the validated reference methods (21, 22, 23).
Üksikasjalik kirjeldus, kuidas kontrollida MTT otsest taandamist, on esitatud valideeritud standardmeetodite eeskirjades (21, 22, 23).
Non-specific colour (NSC) due to these interferences should not exceed 30 % of NC (for corrections).
Nendest segavatest mõjudest tingitud mittespetsiifiline värvus ei tohiks ületada 30 % negatiivse kontrolli värvusest (paranduste tegemiseks).
If NSC > 30 %, the test substance is considered as incompatible with the test.
Kui mittespetsiifilist värvust on üle 30 %, tehakse järeldus, et uuritavat ainet ei saa käesoleva meetodiga mõõta.
Assay Acceptability Criteria
Katse kehtivuse kriteeriumid
For each assay using valid batches (see paragraph 1.6.1.2.5), tissues treated with the NC should exhibit OD reflecting the quality of the tissues that followed all shipment and receipt steps and all the irritation protocol process.
Igas katses, milles kasutatakse kõlblikku partiid (vt punkt 1.6.1.2.5), peaks negatiivse kontrolli võrdlusainega töödeldud kudede korral leitama optilise tiheduse väärtused, mis näitavad, et koed on pärast transpordi ja vastuvõtmise etappe ja ärritava toime määramist säilitanud oma kvaliteedi.
The OD values of controls should not be below historical established lower boundaries.
Kontrollkatsete optilise tiheduse väärtused ei peaks olema allpool varem määratud alampiire.
Similarly, tissues treated with the PC, i.e. 5 % aqueous SDS, should reflect the sensitivity retained by tissues and their ability to respond to an irritant substance in the conditions of each individual assay (e.g. viability ≤ 40 % for the validated reference method 1, and ≤ 20 % for the validated reference method 2).
Ka positiivse kontrolli võrdlusainega, s.t 5 % SDSi lahusega töödeldud kudedel peaks olema säilinud tundlikkus ja võime reageerida ärritavale ainele iga individuaalse määramise tingimustes (näiteks peaks eluvõimelisus olema valideeritud standardmeetodi 1 puhul ≤ 40 % ja valideeritud standardmeetodi 2 puhul ≤ 20 %).
Associated and appropriate measures of variability between tissue replicates should be defined (e.g. if standard deviations are used they should be ≤ 18 %).
Peavad olema määratletud koeproovide varieeruvusega seotud sobivad näitajad (kui kasutatakse näiteks standardhälbeid, peaksid need olema < 18 %).
For each treatment, data from individual replicate test samples (e.g. OD values and calculated percentage cell viability data for each test substance, including classification) should be reported in tabular form, including data from repeat experiments as appropriate.
Iga töötlemise kohta tuleks tabelina esitada üksikute paralleelproovide tulemused (näiteks optilise tiheduse väärtused ja rakkude eluvõimelisuse arvutatud protsendimäära andmed iga uuritud aine kohta, kaasa arvatud klassifikatsioon); samuti tuleb vajaduse korral esitada kordusmääramiste andmed.
In addition means ± standard deviation for each trial should be reported.
Lisaks keskväärtusele esitatakse iga katse jaoks ka ± standardhälbe väärtused.
Observed interactions with MTT reagent and coloured test substances should be reported for each tested substance.
Iga uuritava aine puhul registreeritakse tähelepanekud selle mõjude kohta MTT-reagendile, samuti märgitakse ära värvilised uuritavad ained.
The OD values obtained with each test sample can be used to calculate the percentage of viability compared to NC, which is set at 100 %.
Iga uuritava proovi kohta saadud optilise tiheduse väärtusi saab kasutada selleks, et arvutada rakkude eluvõimelisuse protsent võrreldes negatiivse kontrollprooviga, mille eluvõimelisuseks määratakse 100 %.
The cut-off value of percentage cell viability distinguishing irritant from non-classified test substances and the statistical procedure(s) used to evaluate the results and identify irritant substances, should be clearly defined and documented, and proven to be appropriate.
Rakkude eluvõimelisuse protsendimäära piirväärtus, mis eraldab ärritavaid aineid klassifitseerimata uuritavatest ainetest, ning statistiline meetod (statistilised meetodid), mida kasutati tulemuste hindamiseks ja ärritavate ainete kindlakstegemiseks, peavad olema selgelt määratletud ja dokumenteeritud ning nende sobivus peab olema tõendatud.
The cut-off values for the prediction of irritation associated with the validated reference methods is given below:
Valideeritud standardmeetoditega seotud piirväärtused, mida kasutatakse ärritava toime kindlakstegemiseks, on järgmised.
The test substance is considered to be irritant to skin in accordance with UN GHS category 2:
Uuritav aine loetakse ÜRO GHS-süsteemi 2. kategooriale vastavaks nahka ärritavaks aineks:
if the tissue viability after exposure and post-treatment incubation is less than or equal (≤) to 50 %.
kui koe eluvõimelisus pärast kokkupuudet ainega ja kokkupuutele järgnenud inkubeerimist on väiksem kui 50 % või sellega võrdne (≤).
The test substance is considered to have no category:
Uuritav aine loetakse aineks, millele ei ole omistatud kategooriat:
if the tissue viability after exposure and post-treatment incubation is more than (>) 50 %.
kui koe eluvõimelisus pärast kokkupuudet ainega ja kokkupuutele järgnenud inkubeerimist on suurem kui 50 % (>).
Test and Control Substances:
Uuritavad ained ja kontrollained:
chemical name(s) such as IUPAC or CAS name and CAS number, if known,
keemiline nimetus või nimetused, nagu IUPACi või CASi nimetus ja CASi number, kui see on teada;
purity and composition of the substance (in percentage(s) by weight),
aine puhtus või koostis (massiprotsendina);
physical-chemical properties relevant to the conduct of the study (e.g. physical state, stability and volatility, pH, water solubility if known),
määramise läbiviimise seisukohast olulised füüsikalis-keemilised omadused (näiteks füüsiline olek, stabiilsus ja lenduvus, pH, lahustuvus vees, kui see on teada);
treatment of the test/control substances prior to testing, if applicable (e.g. warming, grinding),
uuritava aine / kontrollaine töötlemine enne katset, kui see on asjakohane (nt soojendamine, peenestamine);
storage conditions.
hoiutingimused.
Test Conditions:
Katsetingimused:
calibration information for measuring device, and bandpass used for measuring cell viability (e.g. spectrophotometer),
rakkude eluvõimelisuse mõõtmiseks kasutatud mõõteriista (nt spektrofotomeetri) kaliibrimist käsitlev teave ja spektririba laius;
viability;
eluvõimelisus;
barrier function;
toimimine kaitsekihina;
morphology;
morfoloogia;
reproducibility and predictivity;
reprodutseeritavus ja ennustamisväärtus;
quality controls (QC) of the model;
mudeli kvaliteedi kontroll;
test doses used, duration of exposure and post treatment incubation period,
määramisel kasutatud annused, kokkupuute kestus ja kokkupuutele järgnenud inkubatsiooniaeg;
description of any modifications of the test procedure,
kõikide katsemetoodikas tehtud muudatuste kirjeldus;
acceptability of the QC data with reference to historical batch data;
kvaliteedikontrolli andmete kehtivus, arvestades varasemaid partii andmeid;
acceptability of the positive and negative control values with reference to positive and negative control means and ranges,
positiivse ja negatiivse kontrolli väärtuste kehtivus, arvestades positiivse ja negatiivse kontrolli keskväärtusi ja vahemikke;
description of evaluation criteria used including the justification for the selection of the cut-off point(s) for the prediction model.
kasutatud hindamiskriteeriumide kirjeldus, sealhulgas ennustamismudelis kasutamiseks valitud piirväärtus(t)e valiku põhjendus.
Results:
Katsetulemused:
tabulation of data from individual test samples,
andmetabelid individuaalsete uuritud proovide kohta;
description of other effects observed.
muude täheldatud toimete kirjeldus.
Available at: http://guidance.echa.europa.eu/docs/guidance_document/information_requirements_en.htm?time=1232447649.
Vaata: http://guidance.echa.europa.eu/docs/guidance_document/information_requirements_en.htm?time=1232447649.
Test Method B.4.
Katsemeetod B.4.
ACUTE TOXICITY; DERMAL IRRITATION/CORROSION.
ÄGE MÜRGISUS; NAHAÄRRITUS/-SÖÖVITUS.
Test Method B.40.
Katsemeetod B.40.
IN VITRO SKIN CORROSION: TRANSCUTANEOUS ELECTRICAL RESISTANCE TEST TER.
NAHASÖÖVITUS IN VITRO: TRANSKUTAANSE ELEKTRITAKISTUSE (TER) MÕÕTMINE.
Test Method B.40 BIS.
Katsemeetod B.40 BIS.
IN VITRO SKIN CORROSION: HUMAN SKIN MODEL TEST.
NAHASÖÖVITUS IN VITRO: KATSE INIMNAHA MUDELIGA.
Available under Download Study Documents, at: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Allalaaditav dokument, vaata: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Toxicology in Vitro 15, 57-93.
Toxicology in Vitro 15, 57–93.
Toxicology in Vitro 16, 765-770.
Toxicology in Vitro 16, 765–770.
ALTEX 21, 107-114.
ALTEX 21, 107–114.
ATLA 33, 351-367.
ATLA 33, 351–367.
Cotovio, J., Grandidier, M.-H., Portes, P., Roguet, R. & G. Rubinsteen.
Cotovio, J., Grandidier, M.–H., Portes, P., Roguet, R. & G. Rubinsteen.
ATLA 33, 329-249.
ATLA 33, 329–249.
ATLA 30,109-129.
ATLA 30, 109–129.
ATLA 35, 559-601.
ATLA 35, 559–601.
ATLA 35, 603-619.
ATLA 35, 603–619.
Cotovio, M.-H.
Cotovio, M.–H.
Vol.14, 351-358.
Vol.14, 351–358.
Regulation (EC) No 1907/2006 of the European Parliament and of the Council of 18 December 2006 concerning the Registration, Evaluation, Authorisation and Restriction of Chemicals (REACH), establishing a European Chemicals Agency, amending Directive 1999/45/EC and repealing Council Regulation (EEC) No 793/93 and Commission Regulation (EC) No 1488/94 as well as Council Directive 76/769/EEC and Commission Directives 91/155/EEC, 93/67/EEC, 93/105/EC and 2000/21/EC.
Euroopa Parlamendi ja nõukogu määrus (EÜ) nr 1907/2006, 18. detsember 2006, mis käsitleb kemikaalide registreerimist, hindamist, autoriseerimist ja piiramist (REACH) ja millega asutatakse Euroopa Kemikaaliamet ning muudetakse direktiivi 1999/45/EÜ ja tunnistatakse kehtetuks nõukogu määrus (EMÜ) nr 793/93, komisjoni määrus (EÜ) nr 1488/94 ning samuti nõukogu direktiiv 76/769/EMÜ ja komisjoni direktiivid 91/155/EMÜ, 93/67/EMÜ, 93/105/EÜ ja 2000/21/EÜ.
Journal of Immunological Methods 65, 55-63.
Journal of Immunological Methods 65, 55–63.
Validation of the EpiSkin Skin Irritation Test — 42 Hours Assay For The Prediction of Acute Skin Irritation of Chemicals.
Validation of the EpiSkin Skin Irritation Test – 42 Hours Assay For The Prediction of Acute Skin Irritation of Chemicals.
Will be available under Download Study Documents, at: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Avaldatakse allalaaditava dokumendina, vaata: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Harvell, J.D., Lammintausta, K., Maibach H.I.
Harvell, J.D., Lammintausta, K. Maibach H.I.
Practical Contact Dermatitis Mc Graw-Hill New York, pp 7-18
Practical Contact Dermatitis Mc Graw-Hill New York, pp 7–18.
FRESHWATER ALGAE AND CYANOBACTERIA, GROWTH INHIBITION TEST
MAGEVEEVETIKATE JA TSÜANOBAKTERITE KASVU PIDURDAMISE KATSE
This method is equivalent to OECD TG 201 (2006) (1).
Käesolev metoodika on samaväärne standardiga OECD TG 201 (2006) (1).
Testing Methods are periodically reviewed and updated in the light of scientific progress.
Metoodikaid on vaja teaduse arengut arvestades korrapäraselt läbi vaadata ja ajakohastada.
Testing Method C.3 needed to be revised to include additional species and to meet the requirements for hazard assessment and classification of chemicals.
Metoodika C.3 vajas läbivaatamist, et lisada täiendavaid liike ja viia see vastavusse ohu hindamise nõuetega ning kemikaalide klassifikatsiooniga.
The revision has been completed on the basis of extensive practical experience, scientific progress in the field of algal toxicity studies, and extensive regulatory use, which has occurred since the original adoption.
Läbivaatamisel võeti aluseks laialdased praktilised kogemused, teaduse edusammud vetikatele toksiliste ainete uurimisel ja asjaomaste õigusaktide laialdane rakendamine pärast esialgse metoodika kasutuselevõttu.
The following definitions and abbreviations are used for the purposes of this Testing Method:
Käesolevas metoodikas kasutatakse järgmisi mõisteid ja lühendeid.
Biomass: is the dry weight of living matter present in a population expressed in terms of a given volume; e.g. mg algae/litre test solution.
Biomass on populatsiooni elusaine kuivmass teatava mahuühiku kohta, nt vetikate kuivmass milligrammides ühe liitri katselahuse kohta.
Usually ‘biomass’ is defined as a mass, but in this test this word is used to refer to mass per volume.
Tavaliselt tähendab „biomass” lihtsalt massi, kuid käesoleva metoodika tähenduses on see mass mahuühiku kohta.
Also in this test, surrogates for biomass, such as cell counts, fluorescence, etc. are typically measured and the use of the term ‘biomass’ thus refers to these surrogate measures as well.
Käesoleva meetodi kasutamisel mõõdetakse harilikult biomassi asendavaid näitajaid, nagu rakkude arv, fluorestsents jne; sellisel juhul mõistetakse termini „biomass” all ka kõnesolevaid asendusnäitajaid.
Coefficient of variation: is a dimensionless measure of the variability of a parameter, defined as the ratio of the standard deviation to the mean.
Variatsioonikordaja on suhteline (mõõtühikuta) näitaja, mis iseloomustab parameetri varieeruvust ja võrdub standardhälbe ja keskväärtuse suhtega.
This can also be expressed as a percentage value.
Seda võib väljendada ka protsentides.
The mean coefficient of variation of average specific growth rate in replicate control cultures should be calculated as follows:
Paralleelsete kontrollkultuuride kasvu keskmise erikiiruse keskmine variatsioonikordaja arvutatakse järgmiselt:
Calculate % CV of average specific growth rate out of the daily/section-by-section growth rates for the respective replicate.
ööpäevade ja/või lõikude kaupa leitud kasvukiiruste põhjal arvutatakse asjaomase paralleelkultuuri kasvu keskmise erikiiruse variatsioonikordaja protsentides;
Calculate the mean value of all the values calculated in point 1 to get the mean coefficient of variation of the daily/section-by-section specific growth rate in replicate control cultures.
paralleelsete kontrollkultuuride ööpäevade/lõikude kaupa mõõdetud kasvu keskmise erikiiruse keskmise variatsioonikordaja leidmiseks arvutatakse 1. punkti kohaselt leitud väärtuste keskmine.
ECx: is the concentration of the test substance dissolved in the test medium that results in an x % (e.g. 50 %) reduction in growth of the test organism within a stated exposure period (to be mentioned explicitly if deviating from full or normal test duration).
ECx on katsekeskkonnas lahustatud uuritava aine kontsentratsioon, mille puhul katseorganismi kasv pidurdub x % (nt 50 %) võrra, kui see organism puutub ainega kokku kindlaksmääratud ajavahemiku jooksul (kui kokkupuuteaeg erineb täielikust ehk tavaliselt katsetes kasutatavast kokkupuuteajast, tuleb selle pikkus täpselt märkida).
To unambiguously denote an EC value deriving from the growth rate or from the yield, the symbols ‘ErC’ and ‘EyC’ are used respectively.
Kasvukiiruse järgi ja saagise järgi leitavate EC väärtuste eristamiseks kasutatakse vastavalt tähiseid ErC ja EyC.
Growth medium: is the complete synthetic culture medium in which test algae grow when exposed to the test substance.
Sööde on täielik sünteetiline keskkond, milles katsevetikaid kasvatatakse uuritava ainega kokkupuutumise ajal.
The test substance will normally be dissolved in the test medium.
Tavaliselt lahustatakse uuritav aine katsekeskkonnas.
Growth rate (average specific growth rate): is the logarithmic increase in biomass during the exposure period.
Kasvukiirus (keskmine kasvu erikiirus) on biomassi logaritmiline suurenemine uuritava ainega kokkupuute ajal.
Lowest Observed Effect Concentration (LOEC): is the lowest tested concentration at which the substance is observed to have a statistically significant reducing effect on growth (at p < 0,05) when compared with the control, within a given exposure time.
Madalaim avastatava mõjuga kontsentratsioon on madalaim uuritud kontsentratsioon, mille puhul on näidatud, et teatava kokkupuuteaja jooksul pidurdab uuritav aine kontrolliga võrreldes statistiliselt oluliselt (p < 0,05) katseorganismi kasvu.
However, all test concentrations above the LOEC must have a harmful effect equal to or greater than those observed at the LOEC.
Kõik madalaimast avastatava mõjuga kontsentratsioonist kõrgemad kontsentratsioonid peavad avaldama sama tugevat või tugevamat kahjulikku mõju kui madalaim avastatava mõjuga kontsentratsioon.
When these two conditions cannot be satisfied, a full explanation must be given for how the LOEC (and hence the NOEC) has been selected.
Kui neid kahte tingimust ei ole võimalik täita, tuleb anda täielik selgitus, kuidas valiti madalaim avastatava mõjuga kontsentratsioon (ja ka avastatava mõjuta kontsentratsioon).
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
Avastatava mõjuta kontsentratsioon on madalaimast avastatava mõjuga kontsentratsioonist allapoole järgmine uuritud kontsentratsioon.
Response variable: is a variable for the estimation of toxicity derived from any measured parameters describing biomass by different methods of calculation.
Kostemuutuja on toksilisuse hindamiseks kasutatav muutuja, mis tuletatakse biomassi kajastavast mõõtemuutujast mitmesuguste arvutuste abil.
For this method, growth rates and yield are response variables derived from measuring biomass directly or any of the surrogates mentioned.
Käesoleva metoodika tähenduses on kostemuutujateks kasvukiirus ja saagis, mis tuletatakse biomassi otsese mõõtmise andmetest või eespool mainitud asendusnäitajate mõõtmisest.
Specific growth rate: is a response variable defined as the quotient of the difference of the natural logarithms of a parameter of observation (in this Testing Method, biomass) and the respective time period.
Kasvu erikiirus on kostemuutuja, mis määratletakse jagatisena, mille lugejaks on uuritava parameetri (käesoleva metoodika puhul biomassi) väärtuste naturaallogaritmide vahe ja nimetajaks asjaomane ajavahemik.
Yield: is the value of a measurement variable at the end of the exposure period minus the measurement variable’s value at the start of the exposure period to express biomass increase during the test.
Saagis on kokkupuuteaja lõpus ja alguses leitud mõõdetava muutuja väärtuste vahe, mis väljendab katse jooksul toimunud biomassi kasvu.
APPLICABILITY OF THE TEST
KATSE RAKENDATAVUS
This Testing Method is most easily applied to water-soluble substances which, under the conditions of the test, are likely to remain in the water.
Käesolevat meetodit on kõige lihtsam rakendada vees lahustuvate ainete puhul, mis katsetingimustes tõenäoliselt püsivad vesilahuses.
For testing of substances that are volatile, strongly adsorbing, coloured, having a low solubility in water or substances that may affect the availability of nutrients or minerals in the test medium, certain modifications of the described procedure may be required (e.g. closed system, conditioning of the test vessels).
Kui uuritav aine on lenduv, seostub tugevasti pindadega, on värviline või vees vähelahustuv või võib mõjutada söötme toit- või mineraalainete kättesaadavust, siis võib kirjeldatud määramismeetodis olla vaja teha teatavaid muudatusi (nt kasutada suletud süsteemi, valmistada katsenõusid eelnevalt spetsiaalselt ette).
Guidance on some appropriate modifications is given in (2), (3) and (4).
Juhendid teatavate vajalike muudatuste tegemiseks on esitatud standardites (2, 3, 4).
The purpose of this test is to determine the effects of a substance on the growth of freshwater microalgae and/or cyanobacteria.
Katse eesmärk on määrata uuritava aine mõju magevee-mikrovetikate ja/või tsüanobakterite kasvule.