natgillin/translations-raw huggingface dataset:
c concentration in μmol/ml (= 2,50) of concentrated tryptophan solution (3.15) added to calibration solution (3.17)
c kalibreerimislahusele (3.17) lisatud kontsentreeritud trüptofaani lahuse (3.15) kontsentratsioon, μmol/ml (= 2,50)
volume in ml of concentrated internal standard solution (3.16) added at the extraction (5.2) (= 5,00 ml) or to the hydrolysate (5.3) (= 2,00 ml)
kontsentreeritud sisestandardlahuse (3.16) kogus milliliitrites, mis on lisatud ekstraheerimisel (5.2) (= 5,00 ml) või hüdrolüsaadile (5.3) (= 2,00 ml)
C peak area of internal standard, extract (5.2) or hydrolysate (5.3)
C sisestandardi piigipindala, ekstrakt (5.2) või hüdrolüsaat (5.3)
D peak area of tryptophan, calibration standard solution (3.17)
D trüptofaani piigipindala, kalibreerimisstandardlahus (3.17)
volume in ml (= 2,00 ml) of concentrated internal standard solution (3.16) added to calibration standard solution (3.17)
kalibreerimisstandardlahusele (3.17) lisatud kontsentreeritud sisestandardlahuse (3.16) kogus milliliitrites (= 2,00 ml)
m sample weight in g (corrected to original weight if dried and/or defatted)
m proovi mass grammides (korrigeeritud esialgsele massile, kui proovi on kuivatatud ja/või rasvatustatud)
M molar weight of tryptophan (= 204,23 g/mol)
M trüptofaani molaarmass (= 204,23 g/mol)
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 10 % relative to the highest result.
Sama proovi kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi ületada 10 % suuremast tulemusest.
Results of a collaborative study
Ühisuuringu tulemused
An EC collaborative study (4th intercomparison) was arranged in which three samples were analysed by up to 12 laboratories to certify the method for hydrolysis.
Korraldati ühendusesisene ühisuurimine (neljas võrdlusuuring), mille käigus kuni 12 laborit analüüsisid hüdrolüüsimeetodi sertifitseerimiseks kolme proovi.
Replicate (5) analyses were performed on each sample.
Kõigile proovidele tehti kordusanalüüsid (5).
The results are given in the following table:
Tulemused on esitatud järgmises tabelis:
Pig feed
Seasööt
Pig feed supplemented with L-tryptophan
L-trüptofaaniga rikastatud seasööt
Sample 3
Proov 3
Feed concentrate for pigs
Seasöödakontsentraat
Mean [g/kg]
Keskväärtus g/kg
CVr [%]
CVr [ %]
CVR [%]
CVR [ %]
L number of laboratories submitting results
L tulemused esitanud laborite arv
n number of single results retained eliminating outliers (identified by Cochran, Dixon outlier test)
n üksiktulemuste arv pärast võõrväärtuste väljajätmist (Cochrani-Dixoni võõrväärtuste testi alusel)
standard deviation of repeatability
korratavust iseloomustav standardhälve
standard deviation of reproducibility
reprodutseeritavust iseloomustav standardhälve
r repeatability
r korratavus
R reproducibility
R reprodutseeritavus
coefficient of variation of repeatability, %
korratavuse variatsioonikordaja, %
coefficient of variation of reproducibility, %
reprodutseeritavuse variatsioonikordaja, %
Another EC collaborative study (3rd intercomparison) was arranged in which two samples were analysed by up to 13 laboratories to certify the method for extraction of free tryptophan.
Teise ühendusesisese ühisuurimise (kolmanda võrdlusuuringu) käigus analüüsisid kuni 13 laborit vaba trüptofaani ekstraheerimise meetodi sertifitseerimiseks kahte proovi.
Sample 4
Proov 4
Wheat and soya mixture
Nisu ja soja segu
Sample 5
Proov 5
Wheat and soya mixture (= sample 4) with added tryptophan (0,457g/kg1)
Nisu ja soja segu (= proov 4), millele on lisatud trüptofaani (0,457g/kg)
n number of single results retained after eliminating outliers (identified by Cochran, Dixon outlier test)
n üksiktulemuste arv pärast võõrväärtuste väljajätmist (Cochrani-Dixoni võõrväärtuste testi alusel)
Another EC intercomparison study was arranged in which four samples were analysed by up to 7 laboratories with the aim of a tryptophan certification for hydrolysis.
Veel ühe ühendusesisese võrdlusuuringu käigus analüüsisid kuni seitse laborit trüptofaani hüdrolüüsi sertifitseerimise eesmärgiga nelja proovi.
The results are given below.
Tulemused on esitatud allpool.
Mixed pig feed
Sigade söödasegu
Low fat fish meal
Väikese rasvasisaldusega kalajahu
Soybean meal
Sojajahu
Following special chromatographic conditions may give better separation between tryptophan and α-methyl-tryptophan.
Järgmised kromatograafia eritingimused võivad tagada trüptofaani ja α-metüültrüptofaani parema eraldumise teineteisest.
Isocratic elution followed by gradient column cleaning:
Isokraatiline elueerimine, millele järgneb kolonni gradientpuhastus:
Liquid chromatographic column:
Vedelikkromatograafia kolonn:
125 mm x 4 mm, C18, 5 μm packing or equivalent
125 mm × 4 mm, C18, täidise terasuurus 5 μm või samaväärne
Mobile phase:
Liikuv faas:
0,01 mol/l KH2PO4/méthanol, 95+5 (V+V).
A: 0,01 mol/l KH2PO4/metanool, 95+5 (V+V).
methanol
metanool
Gradient program:
Gradientprogramm:
0 min.
0 min
17 min.
17 min
19 min.
19 min
21 min.
21 min
33 min.
33 min
1,2 ml/min.
1,2 ml/min
approx. 33 min.
umbes 33 min
The chromatography will vary according to the type of HPLC and column packing material used.
Kromatograafiline määramine oleneb HPLC tüübist ja kasutatavast kolonnitäidisest.
The chosen system must be capable of giving baseline separation between the tryptophan and the internal standard.
Valitud süsteem peab tagama trüptofaani ja sisestandardi piikide täieliku eraldumise (kuni alusjooneni).
Moreover it is important that degradation products are well separated from the tryptophan and the internal standard.
Lisaks sellele on oluline, et lagunemisproduktid eralduksid hästi trüptofaanist ja sisestandardist.
Hydrolysates without internal standard shall be run in order to check the base line under the internal standard for impurities.
Kolonni tuleb süstida hüdrolüsaate ilma sisestandardita, kontrollimaks, et sisestandardi piigi kohal ei moonutaks alusjoont lisandite väljumine.
It is important that the run time is sufficiently long for the elution of all the degradation products, otherwise late eluting peaks may interfere with subsequent chromatographic runs.
On oluline, et voolutamisaeg oleks piisavalt pikk kõigi lagunemisproduktide elueerimiseks, vastasel juhul võivad hiljem elueeruvad piigid segada järgnevaid kromatograafilisi määramisi.
In the range of operation, the chromatographic system shall give linear response.
Kasutatavate kontsentratsioonide vahemikus peavad kromatograafilise süsteemiga saadavad tulemused sõltuma kontsentratsioonist lineaarselt.
The linear response shall be measured with a constant (the normal) concentration of the internal standard and varying concentrations of tryptophan.
Tulemuste lineaarsust tuleks kontrollida sisestandardi konstantsel (normaalsel) kontsentratsioonil erinevate trüptofaani kontsentratsioonidega.
It is of importance that the size of both the tryptophan and internal standard peaks are within the linear range of the HPLC/fluorescence system.
On oluline, et nii trüptofaani kui ka sisestandardi piigid oleksid HPLC-/fluorestsentssüsteemi lineaarses alas.
If either the tryptophan and/or the internal standard peak(s) is (are) too small or too high the analysis shall be repeated with another sample size and/or a changed final volume.
Kui trüptofaani või sisestandardi piigid on liiga väikesed või liiga suured, siis tuleks analüüsi korrata teistsuguse proovi suurusega ja/või teistsuguse lõppruumalaga.
Barium hydroxide
Baariumhüdroksiid
With age barium hydroxide becomes more difficult to dissolve.
Baariumhüdroksiidi lahustamine raskeneb baariumhüdroksiidi vananemisel.
This results in an unclear solution for the HPLC determination, which may produce low results for tryptophan.
Selle tulemusel saadakse HPLC-ga määramiseks hägune lahus, mis võib vähendada trüptofaani määramisel saadavaid tulemusi.
DETERMINATION OF CRUDE OILS AND FATS
TOORÕLI JA -RASVA MÄÄRAMINE
This method is for the determination of crude oils and fats in feed.
See meetod võimaldab määrata toorõli ja -rasva sisaldust söödas.
It does not cover the analysis of oil seeds and oleaginous fruit.
See ei hõlma õliseemnete ja õliviljade analüüsi.
The use of the two procedures described below depends on the nature and composition of the feed and the reason for carrying out the analysis.
Allpool kirjeldatud kahe meetodi kasutamine sõltub sööda laadist ja koostisest ning analüüsi tegemise põhjusest.
Procedure A — Directly extractable crude oils and fats
Meetod A – otse ekstraheeritav toorõli ja -rasv
This method is applicable to feed materials of plant origin, except those included within the scope of Procedure B.
Seda meetodit kohaldatakse taimsete söödatoorainete puhul, välja arvatud meetodiga B hõlmatud ainete puhul.
Procedure B — Total crude oils and fats
Meetod B – kogu toorõli ja -rasv
This method is applicable to feed materials of animal origin and to all compound feeds.
Seda meetodit kohaldatakse loomsete söödatoorainete ja kõigi segajõusöötade puhul.
It is to be used for all materials from which the oils and fats cannot be completely extracted without prior hydrolysis (e.g. glutens, yeast, potato proteins and products subjected to processes such as extrusion, flaking and heating).
Seda kasutatakse kõigi ainete puhul, millest ei ole ilma eelneva hüdrolüüsita võimalik õli ja rasva ekstraheerida (nt gluteenid, pärm, kartulivalgud ning tooted, mille puhul kasutatakse muu hulgas pressimist, helvestamist või kuumutamist).
In all cases where a higher result is obtained by using Procedure B than by Procedure A, the result obtained by Procedure B shall be accepted as the true value.
Kõigil juhtudel, kui meetodiga B saadakse suurem tulemus kui meetodiga A, loetakse meetodiga B saadud tulemus õigeks väärtuseks.
Procedure A
Meetod A
The sample is extracted with light petroleum.
Proov ekstraheeritakse petrooleetriga.
The solvent is distilled off and the residue dried and weighed.
Solvent destilleeritakse välja ning jääk kuivatatakse ja kaalutakse.
Procedure B
Meetod B
The sample is treated under heating with hydrochloric acid.
Proovi töödeldakse kuumalt soolhappega.
The mixture is cooled and filtered.
Segu jahutatakse ja filtreeritakse.
The residue is washed and dried and submitted to the determination according to Procedure A.
Jääk pestakse, kuivatatakse ja määratakse vastavalt meetodile A.
Light petroleum, boiling range: 40 to 60 oC.
Petrooleeter, keemisvahemik 40–60 oC.
The bromine value must be less than 1 and the residue on evaporation less than 2 mg/100 ml.
Broomiarv peab olema väiksem kui 1 ja aurustamise jääk alla 2 mg/100 ml.
Sodium sulfate, anhydrous.
Veevaba naatriumsulfaat.
Hydrochloric acid, c = 3 mol/l
Soolhape, c = 3 mol/l
Filtration aid, e.g. Kieselguhr, Hyflo-supercel.
Filteraine, nt Kieselguhr, Hyflo-supercel.
Extraction apparatus.
Ekstraheerimisaparaat.
If fitted with a siphon (Soxhlet apparatus), the reflux rate shall be such as to produce about 10 cycles per hour; if of the non-siphoning type, the reflux rate shall be about 10 ml per minute.
Kui see on varustatud sifooniga (Soxhleti aparaat), siis peab tagasivoolu kiirus olema selline, et tekiks umbes 10 tsüklit tunnis; kui aparaat on ilma sifoonita, siis peab tagasivoolu kiirus olema ligikaudu 10 ml minutis.
Extraction thimbles, free of matter soluble in light petroleum and having a porosity consistent with the requirements of point 4.1.
Ekstraheerimishülsid, milles ei ole petrooleetris lahustuvaid aineid ning mille poorsus vastab punkti 4.1 nõuetele.
Drying oven, either a vacuum oven set at 75 ± 3 oC or an air-oven set at 100 ± 3 oC.
Kuivatuskapp: kas vaakumkuivatuskapp, mis on seatud temperatuurile 75 ± 3 oC, või õhkkuivatuskapp, mis on seatud temperatuurile 100 ± 3 oC.
Procedure A (see point 8.1)
Meetod A (vt punkt 8.1)
Weigh 5 g of the sample to the nearest 1 mg, transfer it to an extraction thimble (4.2) and cover with a fat-free wad of cotton wool.
5 g proovi kaalutakse 1 mg täpsusega, pannakse ekstraheerimishülssi (4.2) ja kaetakse rasvavaba vatiga.
Place the thimble in an extractor (4.1) and extract for six hours with light petroleum (3.1).
Hülss asetatakse ekstraheerimisaparaati (4.1) ja ekstraheeritakse petrooleetriga (3.1) kuus tundi.
Collect the light petroleum extract in a dry, weighed flask containing fragments of pumice stone.
Petrooleetri ekstrakt kogutakse kuiva kaalutud kolbi, milles on pimsskivitükid.
Distil off the solvent.
Solvent destilleeritakse välja.
Dry the residue maintaining the flask for one and a half hours in the drying oven (4.3).
Jääk koos kolviga asetatakse poolteiseks tunniks kuivatuskappi (4.3) kuivama.
Leave to cool in a desiccator and weigh.
Lastakse eksikaatoris jahtuda ning kaalutakse.
Dry again for 30 minutes to ensure that the weight of the oils and fats remains constant (loss in weight between two successive weighings must be less than or equal to 1 mg).
Kuivatatakse veel 30 minutit, et veenduda, et õli ja rasva mass jääb samaks (massikadu kahe järjestikuse kaalumise vahel peab olema 1 mg või alla selle).
Weigh 2,5 g of the sample to the nearest 1 mg (see point 8.2), place in a 400 ml beaker or a 300 ml conical flask and add 100 ml of hydrochloric acid (3.3) and fragments of pumice stone.
2,5 g proovi kaalutakse 1 mg täpsusega (vt punkt 8.2), pannakse 400 ml keeduklaasi või 300 ml Erlenmeyeri kolbi ning lisatakse 100 ml soolhapet (3.3) ja pimsskivitükke.
Cover the beaker with a watch glass or fit the conical flask with a reflux condenser.
Keeduklaas kaetakse kellaklaasiga või pannakse Erlenmeyeri kolbi külge püstjahuti.
Bring the mixture to a gentle boil over a low flame or a hot-plate and keep it there for one hour.
Segu kuumutatakse madala leegi või kuumutusplaadi kohal keemiseni ja keedetakse nõrgalt tund aega.
Do not allow the product to stick to the sides of the container.
Tuleb vältida toote sadestumist nõu seinte külge.
Cool and add a quantity of filtration aid (3.4) sufficient to prevent any loss of oil and fat during filtration.
Jahutatakse ja lisatakse selline kogus filterainet (3.4), mis on piisav õli- ja rasvakao vältimiseks filtreerimisel.
Filter through a moistened, fat-free, double filter paper.
Lahus filtreeritakse läbi niisutatud rasvavaba kahekordse filterpaberi.
Wash the residue in cold water until a neutral filtrate is obtained.
Jääki pestakse külmas vees kuni filtraadi neutraalse reaktsioonini.
Check that the filtrate does not contain any oil or fats.
Kontrollitakse, et filtraat ei sisalda õli ega rasva.
Their presence indicates that the sample must be extracted with light petroleum, using Procedure A, before hydrolysis.
Kui filtraat sisaldab õli või rasva, tuleb proov enne hüdrolüüsi petrooleetriga ekstraheerida, kasutades meetodit A.
Place the double filter paper containing the residue on a watch glass and dry for one and a half hours in the air oven (4.3) at 100 ± 3 oC.
Kahekordne filterpaber koos jäägiga asetatakse kellaklaasile ja kuivatatakse poolteist tundi ventileeritavas kuivatuskapis (4.3) 100 ± 3 oC juures.
Place the double filter paper containing the dry residue in an extraction thimble (4.2) and cover with a fat-free wad of cotton wool.
Kahekordne filterpaber koos kuivjäägiga asetatakse ekstraheerimishülssi (4.2) ja kaetakse rasvavaba vatiga.
Place the thimble in an extractor (4.1) and proceed as indicated in the second and third paragraphs of point 5.1.
Hülss asetatakse ekstraheerimisaparaati (4.1) ja jätkatakse vastavalt punkti 5.1 teisele ja kolmandale lõigule.
Expression of result
Tulemuste väljendamine
Express the weight of the residue as a percentage of the sample.
Jäägi mass väljendatakse protsendimäärana proovist.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample by the same analyst shall not exceed:
Sama analüüsija poolt sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi ületada:
0,2 %, in absolute value, for contents of crude oils and fats lower than 5 %,
absoluutväärtusena väljendatult 0,2 %, kui õli ja rasva üldsisaldus on alla 5 %;
4,0 % relative to the highest result for contents of 5 % to 10 %,
4,0 % suuremast tulemusest, kui toorõli ja -rasva sisaldus on 5–10 %;
0,4 %, in absolute value, for contents above 10 %.
absoluutväärtusena väljendatult 0,4 %, kui toorõli ja -rasva sisaldus on üle 10 %.
For products with a high content of oils and fats, which are difficult to crush or unsuitable for drawing a homogeneous reduced test sample, proceed as follows.
Suure õli- ja rasvasisaldusega toodete puhul, mida on keeruline peenestada või millest ei saa võtta homogeenset vähendatud proovi, toimitakse järgmiselt.
Weigh 20 g of the sample to the nearest 1 mg and mix with 10 g or more of anhydrous sodium sulfate (3.2).
20 g proovi kaalutakse 1 mg täpsusega ja segatakse vähemalt 10 g veevaba naatriumsulfaadiga (3.2).
Extract with light petroleum (3.1) as indicated in point 5.1.
Segu ekstraheeritakse petrooleetriga (3.1) vastavalt punktile 5.1.
Make up the extract obtained to 500 ml with light petroleum (3.1) and mix.
Saadud ekstrakti täidetakse petrooleetriga (3.1) 500 ml-ni ja segatakse.
Take 50 ml of the solution and place in a small, dry, weighed flask containing fragments of pumice stone.
50 ml lahust pannakse väiksesse kuiva kaalutud kolbi, milles on pimsskivitükid (1).
Distil off the solvent, dry and proceed as indicated in the last paragraph of point 5.1.
Solvent destilleeritakse välja, segu kuivatatakse ja jätkatakse vastavalt punkti 5.1 viimasele lõigule.
Eliminate the solvent from the extraction residue left in the thimble, crush the residue to a fineness of 1 mm, return it to the extraction thimble (do not add sodium sulfate) and proceed as indicated in the second and third paragraphs of point 5.1.
Hülssi jäänud ekstraheerimisjäägist eemaldatakse solvent, peenestatakse jääk 1 mm osakesteks, pannakse see tagasi ekstraheerimishülssi (ilma naatriumsulfaati lisamata) ning jätkatakse vastavalt punkti 5.1 teisele ja kolmandale lõigule.
Calculate the content of oils and fats as a percentage of the sample by using the following formula:
Õli- ja rasvasisaldus arvutatakse protsendimäärana proovist järgmise valemi abil:
weight in grams of the residue after the first extraction (aliquot part of the extract),
jäägi mass grammides pärast esimest ekstraheerimist (alikvootne osa ekstraktist),
weight in grams of the residue after the second extraction.
jäägi mass grammides pärast teist ekstraheerimist.
For products low in oils and fats the test sample may be increased to 5 g.
Väikese õli- ja rasvasisaldusega toodete puhul võib uuritava proovi massi suurendada 5 grammini.
Pet foods containing a high content of water may need to be mixed with anhydrous sodium sulfate prior to hydrolysis and extraction as per Procedure B.
Suure veesisaldusega lemmikloomatoite võib olla vaja segada veevaba naatriumsulfaadiga enne hüdrolüüsi ja ekstraheerimist vastavalt meetodile B.
In paragraph 5.2 it may be more effective to use hot water in place of cold water to wash the residue after filtration.
Punktis 5.2 võib olla tõhusam kasutada jäägi pesemiseks pärast filtreerimist külma vee asemel sooja vett.
The drying time of 1,5 h may need to be extended for some feed.
Mõne sööda puhul võib olla vaja pikendada 1,5tunnist kuivamisaega.
Excessive drying shall be avoided as this can lead to low results.
Tuleb vältida liigset kuivatamist, kuna see võib põhjustada madalaid tulemusi.
A microwave oven can also be used.
Kasutada võib ka mikrolaineahju.
I. DETERMINATION OF CRUDE FIBRE
I. KOGUKIU MÄÄRAMINE
This method makes it possible to determine fat-free organic substances in feed which are insoluble in acid and alkaline media and are conventionally described as crude fibre.
Selle meetodiga on võimalik määrata söödas happelises ja leeliselises keskkonnas lahustumatuid rasvavabu orgaanilisi aineid, mida harilikult nimetatakse kogukiuks.
The sample, defatted where necessary, is treated successively with boiling solutions of sulphuric acid and potassium hydroxide of specified concentrations.
Proovi, mis on vajaduse korral rasvatustatud, töödeldakse mitu korda järjest teatava kontsentratsiooniga väävelhappe ja kaaliumhüdroksiidi keevate lahustega.
The residue is separated by filtration on a sintered-glass filter washed, dried, weighed and ashed within a range of 475 to 500 oC.
Jääk eraldatakse filtreerimise abil paagutatud klaasfiltril ning pestakse, kuivatatakse, kaalutakse ja tuhastatakse temperatuuril vahemikus 475–500 oC.
The loss of weight resulting from ashing corresponds to the crude fibre present in the test sample.
Tuhastamisest tulenev massikadu vastab uuritavas proovis sisalduvale kogukiule.
Sulphuric acid, c = 0,13 mol/l.
Väävelhape, c = 0,13 mol/l
Anti-foaming agent (e.g. n-octanol).
Vahutamisvastane aine (nt n-oktanool)
Filter aid (Celite 545 or equivalent), heated at 500 oC for four hours (8.6).
Filteraine (Celite 545 või samaväärne toode), mida soojendatakse temperatuuril 500 oC neli tundi (8.6)
Acetone.
Atsetoon.
Light petroleum boiling-range 40 to 60 oC.
Petrooleeter, keemistemperatuur 40–60 oC
Hydrochloric acid, c = 0,5 mol/l.
Soolhape, c = 0,5 mol/l
Potassium hydroxide solution, c = 0,23 mol/l.
Kaaliumhüdroksiidi lahus, c = 0,23 mol/l
Heating unit for digestion with sulphuric acid and potassium hydroxide solution, equipped with a support for the filter crucible (4.2) and provided with an outlet tube with a tap to the liquid outlet and vacuum, possibly with compressed air.
Väävelhappe ja kaaliumhüdroksiidi lahusega lagundamiseks mõeldud kuumutusseade, mis on varustatud filtertiigli (4.2) toe ja äravoolutoruga, millel on klapp vedeliku väljavoolu peatamiseks ja võimaluse korral suruõhuga tekitatud vaakum.
Before use each day preheat the unit with boiling water for five minutes.
Iga päev eelkuumutatakse seadet enne kasutamist keeva veega viis minutit.
Glass filter crucible with fused sintered glass filter plate pore size 40-90 μm.
Paagutatud kvartsklaasist filterplaadiga klaasist filtertiigel, poori suurus 40–90 μm.
Before first use, heat to 500 oC for a few minutes and cool (8.6).
Enne esimest kasutamist kuumutatakse mõni minut kuni temperatuurini 500 oC ja jahutatakse (8.6).
Cylinder of at least 270 ml with a reflux condenser, suitable for boiling.
Püstjahutiga vähemalt 270 ml silinder, mis sobib keetmiseks.
Drying oven with thermostat.
Termostaadiga kuivatuskapp.
Muffle furnace with thermostat.
Termostaadiga muhvelahi.
Extraction unit consisting of a support plate for the filter crucible (4.2) and with a discharge pipe with a tap to the vacuum and liquid outlet.
Ekstraheerimisseade, mis koosneb filtertiigli (4.2) tugiplaadist ja väljalasketorust, millel on klapp vaakumi ja vedeliku väljavoolu peatamiseks.
Connecting rings to assemble the heating unit (4.1), crucible (4.2) and cylinder (4.3) and to connect the cold extraction unit (4.6) and crucible.
Ühendusrõngad kuumutusseadme (4.1), tiigli (4.2) ja silindri (4.3) ühendamiseks ning külmekstraheerimisseadme (4.6) ja tiigli ühendamiseks.
Weigh out 1 g of the prepared sample to the nearest 1 mg and place it in the crucible (4.2), (see observations 8.1, 8.2 and 8.3) and add 1 g of filter aid (3.3).
1 g ettevalmistatud proovi kaalutakse 1 mg täpsusega ja pannakse see tiiglisse (4.2) (vt tähelepanekud 8.1, 8.2 ja 8.3) ning lisatakse 1 g filterainet (3.3).
Assemble the heating unit (4.1) and the filter crucible (4.2), then attach the cylinder (4.3) to the crucible.
Kuumutusseade (4.1) ja filtertiigel (4.2) ühendatakse ning seejärel kinnitatakse silinder (4.3) tiigli külge.
Pour 150 ml of boiling sulphuric acid (3.1) into the assembled cylinder and crucible and if necessary add a few drops of anti-foaming agent (3.2).
150 ml keevat väävelhapet (3.1) valatakse ühendatud silindrisse ja tiiglisse ning vajadusel lisatakse mõned tilgad vahutamisvastast ainet (3.2).
Bring the liquid to the boil within 5 ± 2 minutes and boil vigorously for exactly 30 minutes.
Vedelik aetakse keema 5 ± 2 minutiga ja keedetakse tugevalt täpselt 30 minutit.
Open the tap to the discharge pipe (4.1) and, under vacuum, filter the sulphuric acid through the filter crucible and wash the residue with three consecutive 30 ml portions of boiling water, ensuring that the residue is filtered dry after each washing.
Väljalasketoru (4.1) klapp avatakse, väävelhape filtreeritakse vaakumitingimustel läbi filtertiigli ning jääki pestakse kolm korda järjest 30 ml keeva veega, tagades, et pärast iga pesemist filtreeritakse jääk kuivaks.