natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Where the distillation unit is fully automated to include titration of the ammonia content of the distillate, follow the manufacturer's instructions for operation of the distillation unit.
Kui destilleerimisseade on täisautomaatne ning hõlmab ka destillaadi ammoniaagisisalduse tiitrimist, siis järgitakse tootja koostatud destilleerimisseadme kasutusjuhendit.
Place a collecting flask containing 25 ml to 30 ml of the boric acid solution (3.18) under the outlet of the condenser in such a way that the delivery tube is below the surface of the excess boric acid solution.
Kogumiskolb, mis sisaldab 25–30 ml boorhappe lahust (3.18), pannakse jahuti väljalaskeava alla selliselt, et sissevoolutoru jääb allapoole boorhappe lahuse ülejäägi pinda.
Adjust the distillation unit to dispense 50 ml of sodium hydroxide solution (3.9).
Destilleerimisseade korrigeeritakse 50 ml naatriumhüdroksiidi lahuse (3.9) väljastamiseks.
Operate the distillation unit in accordance with the manufacturer's instructions and distil off the ammonia liberated by the addition of the sodium hydroxide solution.
Destilleerimisseadet kasutatakse vastavalt tootja kasutusjuhendile ja destilleeritakse naatriumhüdroksiidi lahuse lisamisel vabanenud ammoniaak välja.
Collect distillate in the boric acid receiving solution.
Destillaat kogutakse boorhappe vastuvõtulahusesse.
The amount of distillate (time of steam distillation) depends on the amount of nitrogen in the sample.
Destillaadi kogus (veeaurdestillatsiooni aeg) sõltub proovis sisalduva lämmastiku hulgast.
Follow the instructions of the manufacturer.
Järgitakse tootja kasutusjuhendit.
In a semi-automatic distillation unit, the addition of excess sodium hydroxide and the steam distillation are performed automatically.
poolautomaatses destilleerimisseadmes toimuvad naatriumhüdroksiidi ülejäägi lisamine ja veeaurdestillatsioon automaatselt.
Proceed according to 5.3.1 or 5.3.2.
Toimida vastavalt punktile 5.3.1 või 5.3.2.
Titrate the excess sulphuric acid in the collecting flask with sodium hydroxide solution (3.10 or 3.11) depending on the concentration of the sulphuric acid used, until the end-point is reached.
Väävelhappe ülejääk tiitritakse kogumiskolvis naatriumhüdroksiidi lahusega (3.10 või 3.11), sõltuvalt kasutatud väävelhappe kontsentratsioonist, kuni on saavutatud tiitrimise lõpp-punkt.
Titrate the contents of the collecting flask with the hydrochloric acid standard volumetric solution (3.19) or with the sulphuric acid standard volumetric solution (3.6) using a burette and read the amount of titrant used.
Kogumiskolvi sisu tiitritakse soolhappe standardse tiitrimislahusega (3.19) või väävelhappe standardse tiitrimislahusega (3.6), kasutades büretti, ning loetakse kokku kasutatud titrandi kogus.
When colorimetric end-point detection is applied, the end-point is reached at the first trace of pink colour in the contents.
Kui rakendatakse kolorimeetrilist lõpp-punkti leidmist, on lõpp-punkt saavutatud, kui ainesse ilmuvad esimesed roosa värvi jäljed.
Estimate the burette reading to the nearest 0,05 ml.
Büreti näitu hinnatakse 0,05 ml täpsusega.
An illuminated magnetic stirrer plate or a photometric detector may aid visualisation of the end-point.
Lõpp-punkti nähtavust võib parandada valgustatud magnetseguri plaadi või valgusmõõturi abil.
This can be done automatically using a steam distiller with automatic titration.
Seda võib teha automaatselt, kasutades automaatselt tiitrivat veeaurdestillaatorit.
Follow the manufacturers' instructions for operation of the specific distiller or distiller/titrator.
Eri destillaatori või destillaatori/titraatori kasutamisel järgitakse tootja kasutusjuhendeid.
When an automatic titration system is used, titration begins immediately after distillation starts and the 1 % boric acid solution (3.18) is used.
kui kasutatakse automaatset tiitrimissüsteemi, algab tiitrimine vahetult pärast destilleerimise algust ja kasutatakse 1 % boorhappe lahust (3.18).
The pH-meter shall be calibrated properly in the range of pH 4 to pH 7 following normal laboratory pH-calibration procedures.
PH-meeter tuleb korralikult kalibreerida vahemikus pH 4 kuni pH 7, järgides tavapärast laboratoorset pH kalibreerimise menetlust.
The pH end-point of the titration is reached at pH 4,6, being the steepest point in the titration curve (inflection point).
Tiitrimise pH lõpp-punkt saavutatakse pH 4,6 juures, mis on titreerimiskõvera kõige järsem punkt (murdepunkt).
Blank test
Pimekatse
To confirm that the reagents are free from nitrogen, carry out a blank test (digestion, distillation and titration) using 1 g of sucrose (3.14) in place of the sample.
Et kontrollida, kas reaktiivid on lämmastikuvabad, viiakse läbi pimekatse (lagundamine, destilleerimine ja tiitrimine), kasutades proovi asemel 1 g sahharoosi (3.14).
Calculations are performed according to 6.1 or 6.2.
Arvutused tehakse vastavalt punktile 6.1 või 6.2.
Calculation for titration according to 5.3.1
Tiitrimise arvutamine vastavalt punktile 5.3.1
The content of crude protein, expressed as a percentage by weight, is calculated according to the following formula:
Toorvalgu sisaldus, väljendatuna protsendina massist, arvutatakse järgmise valemi järgi:
is the volume (ml) of NaOH (3.10 or 3.11) used in the blank test,
pimekatses kasutatud NaOH (3.10 või 3.11) maht (ml),
is the volume (ml) of NaOH (3.10 or 3.11) used in the sample titration,
proovi tiitrimisel kasutatud NaOH (3.10 või 3.11) maht (ml),
c is the concentration (mol/l) of sodium hydroxide (3.10 or 3.11),
c naatriumhüdroksiidi (3.10 või 3.11) kontsentratsioon (mol/l),
m is the weight (g) of sample.
m proovi mass (g).
Calculation for titration according to 5.3.2
Tiitrimise arvutamine vastavalt punktile 5.3.2
Titration with hydrochloric acid
Tiitrimine soolhappega
m is the weight (g) of the test portion,
m kaalutise mass grammides,
c is the concentration (mol/l) of the standard volumetric solution of the hydrochloric acid (3.19),
c soolhappe (3.19) standardse tiitrimislahuse kontsentratsioon (mol/l),
is the volume (in ml) of hydrochloric acid used for the blank test,
pimekatses kasutatud soolhappe maht (ml),
is the volume (in ml) of hydrochloric acid used for the test portion.
kaalutises kasutatud soolhappe maht (ml).
Titration with sulphuric acid
Tiitrimine väävelhappega
c is the concentration (mol/l) of the standard volumetric solution of sulphuric acid (3.6),
c väävelhappe (3.6) standardse tiitrimislahuse kontsentratsioon (mol/l),
is the volume (in ml) of sulphuric acid (3.6) used for the blank test,
pimekatses kasutatud väävelhappe (3.6) maht (ml),
is the volume (in ml) of sulphuric acid (3.6) used for test portion.
kaalutises kasutatud väävelhappe (3.6) maht (ml).
Verification of the method
Meetodi kontrollimine
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed:
Sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi ületada:
0,2 % in absolute value, for crude protein contents of less than 20 %,
absoluutväärtusena väljendatult 0,2 %, kui toorvalgusisaldus on väiksem kui 20 %;
1,0 % relative to the higher value, for crude protein contents from 20 % to 40 %,
1,0 % suuremast väärtusest, kui toorvalgusisaldus on 20–40 %;
0,4 % in absolute value, for crude protein contents of more than 40 %.
absoluutväärtusena väljendatult 0,4 %, kui toorvalgusisaldus on suurem kui 40 %.
Carry out the analysis (digestion, distillation and titration) on 1,5 to 2,0 g of acetanilide (3.13) in the presence of 1 g of sucrose (3.14); 1 g acetanilide consumes 14,80 ml of sulphuric acid (3.5).
Analüüs (lagundamine, destilleerimine ja tiitrimine) viiakse läbi 1,5–2,0 g atseetaniliidiga (3.13) 1 g sahharoosi (3.14) manulusel; 1 g atseetaniliidi tarbib 14,80 ml väävelhapet (3.5).
Recovery must be at least 99 %.
Saagis peab olema vähemalt 99 %.
Observations
Tähelepanekud
Apparatus may be of the manual, semi-automatic or automatic type.
Seade võib olla manuaalset, poolautomaatset või automaatset tüüpi.
If the apparatus requires transference between the digestion and distillation steps, this transfer must be carried out without loss.
Kui seade nõuab proovi ülekandmist lagundamise ja destilleerimise vahel, tuleb see ülekandmine teostada ilma kadudeta.
If the flask of the distillation apparatus is not fitted with a dropping funnel, add the sodium hydroxide immediately before connecting the flask to the condenser, pouring the liquid slowly down the side.
Kui destillatsiooniaparaadi kolb ei ole varustatud tilklehtriga, lisatakse naatriumhüdroksiid vahetult enne kolvi ühendamist jahutiga, valades vedelikku aeglaselt mööda kolvi külge.
If the digest solidifies, recommence the determination using a larger amount of sulphuric acid (3.4) than that specified above.
Kui proov lagundamisel tahkestub, alustatakse määramist uuesti, kasutades eespool näidatust suuremat kogust väävelhapet (3.4).
For products with a low nitrogen content, the volume of sulphuric acid (3.7) to be placed in the collecting flask may be reduced, if necessary, to 10 or 15 ml and made up to 25 ml with water.
Väikese lämmastikusisaldusega toodete puhul võib kogumiskolbi viidava väävelhappe (3.7) mahtu vajadusel vähendada 10–15 ml-ni ja täiendada veega 25 ml-ni.
For routine analysis, alternative methods of analysis can be applied for the determination of crude protein but the Kjeldahl method described in this Part C is the reference method.
Tavapäraste analüüside käigus võib toorvalgu määramiseks kasutada alternatiivseid analüüsimeetodeid, kuid standardmeetodiks on käesoleva lisa C osas kirjeldatud Kjeldahli meetod.
The equivalence of the results obtained with the alternative method (e.g. DUMAS) compared to the reference method must be demonstrated for each matrix individually.
Alternatiivmeetodi (nt DUMAS) abil saadud tulemuste samaväärsust standardmeetodiga võrreldes tuleb tõestada iga põhiaine kohta eraldi.
As the results obtained with an alternative method, even after having verified the equivalency, might deviate slightly from the results obtained with the reference method, it is necessary to mention in the analytical report the method of analysis used for the determination of crude protein.
Et alternatiivmeetodiga saadud tulemused võivad isegi pärast samaväärsuse kontrolli veidi erineda standardmeetodiga saadud tulemustest, tuleb analüüsiaruandes märkida, millist analüüsimeetodit on toorvalgu määramiseks kasutatud.
DETERMINATION OF UREA
KARBAMIIDI MÄÄRAMINE
This method makes it possible to determine the level of urea in feed.
Selle meetodiga on võimalik määrata karbamiidi taset söödas.
The sample is suspended in water with a clarifying agent.
Proov suspendeeritakse vees selitava ainega.
The suspension is filtered.
Suspensioon filtreeritakse.
The urea content of the filtrate is determined after the addition of 4-dimethylaminobenzaldehyde (4-DMAB) by measuring the optical density at a wavelength of 420 nm.
Filtraadi karbamiidisisaldus määratakse pärast 4-dimetüülaminobensaldehüüdi (4-DMAB) lisamist optilise tiheduse mõõtmise teel lainepikkusel 420 nm.
Solution of 4-dimethylaminobenzaldehyde: dissolve 1,6 g of 4-DMAB in 100 ml of 96 % ethanol and add 10 ml of hydrochloric acid (ρ201,19 g/ml).
4-dimetüülaminobensaldehüüdi lahus: 1,6 g 4-dimetüülaminobensaldehüüdi lahustatakse 100 ml 96 % etanoolis ja lisatakse 10 ml soolhapet (ρ20 = 1,19 g/ml).
This reagent keeps for a maximum period of two weeks.
See reaktiiv säilib maksimaalselt kaks nädalat.
Carrez solution I: dissolve in water 21,9 g of zinc acetate, Zn(CH3COO)2 2H2O and 3 g of glacial acetic acid.
Carrezi lahus I: vees lahustatakse 21,9 g tsinkatsetaati Zn(CH3COO)2 2H2O ja 3 g jää-äädikat.
Make up to 100 ml with water.
Täidetakse veega 100 milliliitrini.
Carrez solution II: dissolve in water 10,6 g of potassium ferrocyanide, K4 Fe (CN)6 3H2O.
Carrezi lahus II: vees lahustatakse 10,6 g kaaliumferrotsüaniidi K4 Fe (CN)6 3H2O.
Active carbon which does not absorb urea (to be checked).
Karbamiidi mitte absorbeeriv aktiivsüsi (kontrollida).
Urea, 0,1 % solution (w/v).
Karbamiidi 0,1 % lahus (w/v).
Mixer (tumbler): approximately 35 to 40 r.p.m.
Segisti (trummel): umbes 35 kuni 40 p/min.
Test tubes: 160 × 16 mm with ground-glass stoppers.
Lihvkorgiga katseklaasid: 160 × 16 mm.
Spectrophotometer.
Spektrofotomeeter
Analysis of sample
Proovi analüüs
Weigh out 2 g of the sample to the nearest mg and place with 1 g of active carbon (3.4) in a 500 ml volumetric flask.
1 mg täpsusega kaalutud 2 g proovi pannakse 1 g aktiivsöega (3.4) 500 ml mõõtekolbi.
Add 400 ml of water and 5 ml of Carrez solution I (3.2), mix for approximately 30 seconds and add 5 ml of Carrez solution II (3.3).
Lisatakse 400 ml vett ja 5 ml Carrezi lahust I (3.2), segatakse umbes 30 sekundit ja lisatakse 5 ml Carrezi lahust II (3.3).
Mix for 30 minutes in the tumbler.
Segatakse trumlis 30 minutit.
Make up to volume with water, shake and filter.
Täidetakse veega kuni märgini, loksutatakse ja filtreeritakse.
Remove 5 ml of the transparent colourless filtrates, place in test tubes with ground-glass stoppers, add 5 ml of 4-DMAB solution (3.1) and mix.
Eemaldatakse 5 ml läbipaistvat värvitut filtraati, pannakse see lihvkorgiga katseklaasidesse, lisatakse 5 ml 4-DMAB lahust (3.1) ja segatakse.
Place the tubes in a water bath at 20 oC (+/- 4 oC).
Katseklaasid asetatakse 20 oC (+/- 4 oC) veetemperatuuriga veevanni.
After 15 minutes measure the optical density of the sample solution with the spectrophotometer at 420 nm.
Viieteistkümne minuti pärast mõõdetakse proovilahuse optiline tihedus spektrofotomeetriga lainepikkusel 420 nm.
Compare with the blank test solution of the reagents.
Võrreldakse reaktiivide kontroll-lahustega.
Calibration curve
Kalibreerimiskõver
Remove volumes of 1, 2, 4, 5 and 10 ml of the urea solution (3.5), place in 100 ml volumetric flasks and make up the volume with water.
Võetakse 1, 2, 4, 5 ja 10 ml kogused karbamiidilahust (3.5), pannakse 100 ml mõõtekolbidesse ja täidetakse veega kuni märgini.
Remove 5 ml from each solution, add 5 ml of 4-DMAB solution (3.1) to each of them, homogenise and measure the optical density as shown above in comparison with a control solution containing 5 ml of 4-DMAB and 5 ml of water free from urea.
Igast lahusest võetakse ära 5 ml, lisatakse 5 ml 4-DMAB lahust (3.1), homogeenitakse ja mõõdetakse eespool kirjeldatud viisil optiline tihedus võrrelduna kontroll-lahusega, mis sisaldab 5 ml 4-DMAB lahust ja 5 ml karbamiidivaba vett.
Plot the calibration curve.
Koostatakse kalibreerimiskõver.
Determine the amount of urea in the sample using the calibration curve.
Proovis sisalduv karbamiidikogus määratakse kalibreerimiskõvera abil.
Express the result as a percentage of the sample.
Tulemus väljendatakse protsendimäärana proovist.
In the case of contents of urea exceeding 3 %, reduce the sample to 1 g or dilute the original solution so that there are not more than 50 mg of urea in 500 ml.
Üle 3 % karbamiidisisalduse puhul vähendatakse proovi 1 grammini või lahjendatakse esialgset lahust, nii et 500 ml-s ei oleks karbamiidi üle 50 mg.
In the case of low contents of urea, increase the sample as long as the filtrate remains transparent and colourless.
Väikese karbamiidisisalduse puhul võetakse suurem proov, tingimusel et filtraat jääb läbipaistvaks ja värvituks.
If the sample contains simple nitrogenous compounds such as amino acids, the optical density shall be measured at 435 nm.
Kui proov sisaldab lihtsaid lämmastikuühendeid, nagu näiteks aminohappeid, tuleb optilist tihedust mõõta lainepikkusel 435 nm.
DETERMINATION OF VOLATILE NITROGENOUS BASES
LENDUVATE LÄMMASTIKALUSTE MÄÄRAMINE
I. BY MICRODIFFUSION
I. MIKRODIFUSIOON
This method makes it possible to determine the content of volatile nitrogenous bases, expressed as ammonia, in feed.
Selle meetodiga on võimalik määrata ammoniaagina väljendatud lenduvate lämmastikaluste sisaldust söödas.
The sample is extracted with water and the solution clarified and filtered.
Proov ekstraheeritakse veega ning lahus selitatakse ja filtreeritakse.
The volatile nitrogenous bases are displaced by microdiffusion using a solution of potassium carbonate, collected in a solution of boric acid and titrated with sulphuric acid.
Lenduvad lämmastikalused vabastatakse kaaliumkarbonaadi lahust kasutades mikrodifusiooni abil, kogutakse boorhappe lahusesse ja tiitritakse väävelhappega.
Trichloroacetic acid, solution 20 % (w/v).
Trikloroäädikhappe 20 % lahus (w/v)
Indicator: dissolve 33 mg of bromocresol green and 65 mg of methyl red in 100 ml of 95 %-96 % (v/v) of ethanol.
Indikaator: 33 mg bromokresoolrohelist ja 65 mg metüülpunast lahustatakse 100 ml 95–96 % etanoolis (v/v).
Boric acid solution: in a 1 litre graduated flask dissolve 10 g of boric acid in 200 ml of 95 %-96 % (v/v) ethanol and 700 ml of water.
Boorhappe lahus: üheliitrises mõõtekolvis lahustatakse 200 ml 95–96 % etanoolis (v/v) ja 700 ml vees 10 g boorhapet.
Add 10 ml of indicator (3.2).
Lisatakse 10 ml indikaatorit (3.2).
Mix and, if necessary, adjust the colour of the solution to light red by adding a solution of sodium hydroxide.
Segatakse ja vajaduse korral muudetakse lahuse värv helepunaseks, lisades naatriumhüdroksiidi lahust.
1 ml of this solution will fix a maximum of 300 μg of NH3.
1 ml lahust seob kuni 300 μg NH3.
Saturated potassium carbonate solution: dissolve 100 g of potassium carbonate in 100 ml of boiling water.
Kaaliumkarbonaadi küllastunud lahus: 100 g kaaliumkarbonaati lahustatakse 100 ml keevas vees.
Leave to cool, filter.
Lastakse jahtuda, filtreeritakse.
Sulphuric acid 0,01 mol/litre.
Väävelhape, 0,01 mol/l
Glass or plastic Conway cells (see diagram).
Klaasist või plastist Conway anumad (vt joonis).
Microburettes graduated in 1/100 ml.
1/100 ml gradeeritud mikrobüretid.
Weigh 10 g of sample to the nearest 1 mg and place with 100 ml of water in a 200 ml graduated flask.
10 g proovi kaalutakse 1 mg täpsusega ja pannakse koos 100 ml veega 200 ml mõõtekolbi.
Using a pipette, introduce 1 ml of boric acid solution (3.3) into the central part of the Conway cell and 1 ml of the sample filtrate into the crown of the cell.
Pipetti kasutades viiakse 1 ml boorhappe lahust (3.3) Conway anuma keskmisse ossa ja 1 ml filtraati anuma välimisse ossa.
Cover partially with the greased lid.
Kaetakse osaliselt rasvatatud kaanega.
Drop 1 ml of saturated potassium carbonate solution (3.4) quickly into the crown and close the lid so that the cell is airtight.
Välimisse osasse tilgutatakse kiiresti 1 ml kaaliumkarbonaadi küllastunud lahust (3.4) ja kaas suletakse õhukindlalt.
Turn the cell carefully rotating it in a horizontal plane so that the two reagents are mixed.
Anumat pööratakse hoolikalt horisontaaltasandis nii, et kaks reaktiivi segunevad.
Leave to incubate either for at least four hours at room temperature or for one hour at 40 oC.
Lastakse haududa kas vähemalt neli tundi toatemperatuuril või üks tund temperatuuril 40 oC.
Using a microburette (4.3), titrate the volatile bases in the boric acid solution with sulphuric acid (3.5).
Mikrobüretti (4.3) kasutades tiitritakse lenduvad lämmastikalused boorhappe lahuses väävelhappe (3.5) abil.
Carry out a blank test using the same procedure but without a sample to be analysed.
Sama menetluse abil tehakse pimekatse, kuid ilma analüüsitava proovita.
1 ml of H2SO40,01 mol/litre corresponds to 0,34 mg of ammonia.
1 ml H2SO40,01 mol/l vastab 0,34 mg ammoniaagile.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample shall not exceed:
Sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi ületada:
10 %, in relative value, for ammonia contents of less than 1,0 %,
suhtelise väärtusena väljendatult 10 % ammoniaagisisalduse puhul, mis on väiksem kui 1,0 %;
0,1 %, in absolute value, for ammonia contents of 1,0 % or more.
absoluutväärtusena väljendatult 0,1 % ammoniaagisisalduse puhul, mis on vähemalt 1,0 %.
If the ammonia content of the sample exceeds 0,6 %, dilute the initial filtrate.
Kui proovi ammoniaagisisaldus on suurem kui 0,6 %, lahjendatakse esialgset lahust.
Cross-section of the lid S2 S3
Korgi S± S3 ristlõige
Cross-section of the cell S S1
Anuma S S1 ristlõige
Plan view of the cell
Anuma pealtvaade
Plan view of the ground-glass lid
Lihvkorgi pealtvaade
BY DISTILLATION
DESTILLEERIMINE
This method makes it possible to determine the content of volatile nitrogenous bases, expressed as ammonia, in fish-meal containing practically no urea.
Selle meetodiga on võimalik määrata ammoniaagina väljendatud lenduvate lämmastikaluste sisaldust peaaegu karbamiidivabas kalajahus.
It is applicable only to ammonia contents of less than 0,25 %.
Meetodit kohaldatakse üksnes juhul, kui ammoniaagisisaldus on väiksem kui 0,25 %.
The volatile nitrogenous bases are displaced at boiling point by adding magnesium oxide and collected in a specific quantity of sulphuric acid, the excess of which is back-titrated with a solution of sodium hydroxide.
Lenduvad lämmastikalused vabastatakse keemistemperatuuril magneesiumoksiidi lisamise teel ja kogutakse teatava koguse väävelhappega, mille ülejääk tiitritakse naatriumhüdroksiidi lahuse abil tagasi.
Magnesium oxide.
Magneesiumoksiid
Anti-foaming emulsion (e.g. silicone).
Vahutamisvastane emulsioon (nt silikoon)
Sulphuric acid 0,05 mol/litre.
Väävelhape, 0,05 mol/l
Sodium hydroxide solution 0,1 mol/litre.
Naatriumhüdroksiidi lahus, 0,1 mol/l
Methyl red solution 0,3 % in 95 %-96 % (v/v) ethanol.
Metüülpunase 0,3 % lahus 95–96 % etanoolis (v/v)
Distilling apparatus of the Kjeldahl type.
Kjeldahli destilleerimisaparaat
Weigh 10 g of the sample to the nearest 1 mg and place with 100 ml of water in a 200 ml graduated flask.
10 g proovi kaalutakse 1 mg täpsusega ja pannakse koos 100 ml veega 200 ml mõõtekolbi.
Take a quantity of clear filtrate appropriate for the presumed content of volatile nitrogenous bases (100 ml is usually suitable).
Vastavalt lenduvate lämmastikaluste eeldatavale sisaldusele võetakse vajalik kogus selget filtraati (tavaliselt 100 ml).
Dilute to 200 ml and add 2 g of magnesium oxide (3.2) and a few drops of anti-foaming emulsion (3.3).
Lahjendatakse 200 milliliitrini ning lisatakse 2 g magneesiumoksiidi (3.2) ja mõned tilgad vahutamisvastast emulsiooni (3.3).
The solution must be alkaline to litmus paper; otherwise add some magnesium oxide (3.2).
Lahus peaks olema lakmuspaberi abil määratuna aluseline, vastasel korral lisatakse veidi magneesiumoksiidi (3.2).
Proceed according to 5.2 and 5.3 of the method of analysis for the determination of the crude protein content (Part C of this Annex).
Edasi toimitakse vastavalt toorvalgu sisalduse määramise analüüsi meetodi punktidele 5.2 ja 5.3 (käesoleva lisa C osa).
1 ml of H2SO40,05 mol/litre corresponds to 1,7 mg of ammonia.
1 ml H2SO40,05 mol/l vastab 1,7 mg ammoniaagile.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample shall not exceed, in relative value, 10 % of ammonia.
Sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi olla suurem kui 10 % ammoniaagi massist suhtelise väärtusena väljendatult.
DETERMINATION OF AMINO ACIDS (EXCEPT TRYPTOPHANE)
AMINOHAPETE (VÄLJA ARVATUD TRIPTOFAANI) MÄÄRAMINE
This method makes the determination possible of free (synthetic and natural) and total (peptide bound and free) amino acids in feed, using an amino acid analyser.
See meetod võimaldab aminohappeanalüsaatoriga määrata söödas vabu aminohappeid (sünteetilisi ja looduslikke) ning üldaminohappeid (peptiidsidemetega ja vabu).
It is applicable to the following amino acids: cyst(e)ine, methionine, lysine, threonine, alanine, arginine, aspartic acid, glutamic acid, glycine, histidine, isoleucine, leucine, phenylalanine, proline, serine, tyrosine and valine.
Meetodit saab kasutada järgmiste aminohapete puhul: tsüst(e)iin, metioniin, lüsiin, treoniin, alaniin, arginiin, asparagiinhape, glutamiinhape, glütsiin, histidiin, isoleutsiin, leutsiin, fenüülalaniin, proliin, seriin, türosiin ja valiin.
The method does not distinguish between the salts of amino acids and it cannot differentiate between D and L forms of amino acids.
Meetod ei erista aminohapete sooli ega aminohapete D- ja L-vorme.
It is not valid for the determination of tryptophan or hydroxy analogues of amino acids.
See ei sobi trüptofaani ega aminohapete hüdroksüanaloogide määramiseks.
Free amino acids
Vabad aminohapped