natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Close the outlet tap and pour 150 ml boiling potassium hydroxide solution (3.7) to the assembled cylinder and crucible and add a few drops of anti-foaming agent (3.2).
Äravooluklapp suletakse ning ühendatud silindrisse ja tiiglisse valatakse 150 ml keevat kaaliumhüdroksiidi lahust (3.7) ning lisatakse mõned tilgad vahutamisvastast ainet (3.2).
After the final washing and drying, disconnect the crucible and its contents and reconnect it to the cold extraction unit (4.6).
Pärast lõplikku pesemist ja kuivatamist ühendatakse tiigel ja selle sisu lahti ning ühendatakse see külmekstraheerimisseadmega (4.6).
Apply the vacuum and wash the residue in the crucible with three consecutive 25 ml portions of acetone (3.4) ensuring that the residue is filtered dry after each washing.
Jääki pestakse tiiglis vaakumitingimustel kolm korda järjest 25 ml atsetooniga (3.4), tagades, et pärast iga pesemist filtreeritakse jääk kuivaks.
Dry the crucible to constant weight in the oven at 130 oC.
Tiigel kuivatakse püsikaaluni kuivatuskapis temperatuuril 130 oC.
After each drying cool in the desiccator and weigh rapidly.
Pärast iga kuivatamist jahutatakse tiiglit eksikaatoris ja kaalutakse kiiresti.
Place the crucible in a muffle furnace and ash to constant weight (loss in weight between two successive weightings must be less than or equal to 2 mg) at 475 oC to 500 oC for at least 30 minutes.
Tiigel asetatakse muhvelahju ja tuhastatakse püsikaaluni (massikadu peab kahe järjestikuse kaalumise vahel olema 2 mg või alla selle) temperatuuril 475 oC kuni 500 oC vähemalt 30 minutit.
After each heating cool first in the furnace and then in the desiccator before weighing.
Pärast iga kuumutamist jahutatakse tiiglit enne kaalumist kõigepealt ahjus ja seejärel eksikaatoris.
Carry out a blank test without the sample.
Teostatakse ilma proovita pimekatse.
Loss of weight resulting from ashing must not exceed 4 mg.
Tuhastamisest tingitud massikadu ei tohi olla üle 4 mg.
The crude fibre content as a percentage of the sample is given by the expression:
Kogu kiu sisaldus arvutatakse protsendimäärana proovist järgmise valemi abil:
m weight of sample in g,
m proovi mass grammides;
loss of weight after ashing during the determination, in g,
massikadu pärast tuhastamist määramise ajal, grammides;
loss of weight after ashing during the blank test, in g.
massikadu pärast tuhastamist pimekatse ajal, grammides.
The difference between two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed:
Sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi ületada:
0,6 % in absolute value for crude fibre contents lower than 10 %,
absoluutväärtuses väljendatult 0,6 %, kui kogukiu sisaldus on alla 10 %;
6 % relative to the higher result, for crude fibre contents equal to or greater than 10 %.
6 % suuremast tulemusest, kui kogukiu sisaldus on 10 % või suurem.
Feed containing more than 10 % crude fat must be defatted prior to analysis with light petroleum (3.5).
Sööt, mis sisaldab üle 10 % rasva, tuleb enne analüüsimist petrooleetriga (3.5) rasvatustada.
Connect the filter crucible (4.2) and its contents to the cold extraction unit (4.6) and apply vacuum and wash the residue with three consecutive 30 ml portions of light petroleum, ensuring that the residue is dry.
Filtertiigel (4.2) ja selle sisu ühendatakse külmekstraheerimisseadmega (4.6) ja pestakse jääki vaakumitingimustel kolm korda järjest 30 ml petrooleetriga, tagades, et jääk oleks kuiv.
Connect the crucible and its contents to the heating unit (4.1) and continue as described under 5.
Tiigel ja selle sisu ühendatakse kuumutusseadmega (4.1) ja jätkatakse vastavalt punktile 5.
Feed containing fats which cannot be extracted directly with light petroleum (3.5) must be defatted as shown in 8.1 and defatted once more after boiling with acid.
Sööt, mis sisaldab rasva ja mida ei saa ekstraheerida petrooleetriga (3.5) otse, tuleb rasvatustada vastavalt punktile 8.1 ja rasvatustada veel üks kord pärast happega keetmist.
After boiling with acid and the subsequent washing connect the crucible and its contents to the cold extraction unit (4.6) and wash three times with 30 ml acetone followed by three further washings with 30 ml portions of light petroleum.
Pärast happega keetmist ja järgnevat pesemist ühendatakse tiigel ja selle sisu külmekstraheerimisseadmega (4.6) ja pestakse jääki kolm korda järjest 30 ml atsetooniga ning seejärel veel kolm korda 30 ml petrooleetriga.
Filter under vacuum until dry and continue the analysis as described under 5, beginning with potassium hydroxide treatment.
Filtreeritakse vaakumitingimustel kuivaks ja jätkatakse analüüsi vastavalt punktile 5, alustades töötlemisest kaaliumhüdroksiidiga.
After each addition let the sample stand for about one minute before filtering.
Pärast iga lisamist lastakse proovil seista umbes üks minut enne filtreerimist.
Wash once with 30 ml water and then continue as described under 5.
Pestakse üks kord 30 ml veega ja jätkatakse seejärel vastavalt punktile 5.
If an apparatus in the form of a stand is used (several crucibles attached to the same heating unit) no two individual determinations on the same sample for analysis may be carried out in the same series.
Kui kasutatakse statiivitaolist seadet (mitu tiiglit on kinnitatud sama kuumutusseadme külge), ei või sama analüüsitava proovi suhtes teostada kahte üksikut määramist samas sarjas.
If after boiling it is difficult to filter the acidic and basic solutions, use compressed air through the discharge pipe of the heating unit and then continue filtering.
Kui pärast keetmist on raske filtreerida happelisi ja aluselisi lahuseid, kasutatakse kuumutusseadme väljalasketoru kaudu lastavat suruõhku ja jätkatakse seejärel filtreerimist.
The temperature for ashing shall not be higher than 500 oC in order to extend the lifetime of the glass filter crucibles.
Tuhastamistemperatuur ei tohi olla üle 500 oC, et pikendada klaasfiltertiiglite eluaega.
Care must be taken to avoid excessive thermal shock during heating and cooling cycles.
Tuleb jälgida, et kuumutus- ja jahutustsüklite ajal ei tekiks liigset termolööki.
DETERMINATION OF SUGAR
SUHKRU MÄÄRAMINE
This method makes it possible to determine the amount of reducing sugars and total sugars after inversion, expressed as glucose or where appropriate as sucrose, converting by the factor 0,95.
Selle meetodiga on võimalik määrata redutseerivate suhkrute hulka ja pärast inversiooni üldsuhkru hulka, väljendatuna glükoosina või sõltuvalt olukorrast sahharoosina, kasutades ümberarvestustegurit 0,95.
It is applicable to compound feed.
Seda meetodit kasutatakse segajõusöötade puhul.
Special methods are provided for other feed.
Muude söötade puhul on sätestatud erimeetodid.
Where necessary, lactose shall be measured separately and taken into account when calculating the results.
Vajaduse korral tuleb laktoosi hulk mõõta eraldi ja tulemuste arvutamisel seda arvesse võtta.
The sugars are extracted in dilute ethanol; the solution is clarified with Carrez solutions I and II.
Suhkrud ekstraheeritakse lahjendatud etanoolis; lahus selitatakse Carrezi lahustega I ja II.
After eliminating the ethanol, the quantities before and after inversion are determined by the Luff-Schoorl method.
Pärast etanooli eemaldamist määratakse kogused enne ja pärast inversiooni Luff-Schoorli meetodi abil.
Ethanol solution 40 % (v/v) density: 0,948 g/ml at 20 oC, neutralised to phenolphthalein.
40 % etanoolilahuse (v/v) tihedus: 0,948 g/ml 20 oC juures, fenoolftaleiini suhtes neutraalne
Carrez solution I: dissolve in water 21,9 g of zinc acetate Zn (CH3COO)2 2H2O and 3 g of glacial acetic acid.
Carrezi lahus I: vees lahustatakse 21,9 g tsinkatsetaati Zn (CH3COO)2 2H2O ja 3 g jää-äädikat.
Carrez solution II: dissolve in water 10,6 g of potassium ferrocyanide K4Fe (CN)6 3H2O.
Carrezi lahus II: vees lahustatakse 10,6 g kaaliumferrotsüaniidi K4Fe (CN)6 3H2O.
Methyl orange, solution 0,1 % (w/v).
Metüüloranž, 0,1 % lahus (w/v)
Hydrochloric acid 4 mol/litre.
Soolhape, 4 mol/l
Hydrochloric acid 0,1 mol/litre.
Soolhape, 0,1 mol/l.
Luff-Schoorl reagent:
Luff-Schoorli reaktiiv
Stirring carefully, pour the citric acid solution (3.8.2) into the sodium carbonate solution (3.8.3).
Ettevaatlikult segades valatakse sidrunhappe lahus (3.8.2) naatriumkarbonaadi lahusesse (3.8.3).
Add the copper sulphate solution (3.8.1) and make up to 1 litre with water.
Lisatakse vasksulfaadi lahus (3.8.1) ja ja täidetakse veega 1 liitrini.
Leave to settle overnight and filter.
Lastakse öö läbi settida ja filtreeritakse.
Check the concentration of the reagent thus obtained (Cu 0,05 mol/litre; Na2 CO3 1 mol/litre), see (5.4) last paragraph.
Selliselt saadud reaktiivi kontsentratsioooni (Cu 0,05 mol/l; Na2 CO3 1 mol/l) kontrollitakse, vt punkti 5.4 viimast lõiku.
The solution's pH shall be approximately 9,4.
Lahuse pH on umbes 9,4.
Copper sulphate solution: dissolve 25 g of copper sulphate, Cu SO4 5H2O, free from iron, in 100 ml of water.
Vasksulfaadi lahus: 25 g rauavaba vasksulfaati (Cu SO4 5H2O) lahustatakse 100 ml vees.
Citric acid solution: dissolve 50 g of citric acid, C6H8O7·H2O in 50 ml of water.
Sidrunhappe lahus: 50 g sidrunhapet (C6H8O7 · H2O) lahustatakse 50 ml vees.
Sodium carbonate solution: dissolve 143,8 g of anhydrous sodium carbonate in approximately 300 ml of warm water.
Naatriumkarbonaadi lahus: 143,8 g veevaba naatriumkarbonaati lahustatakse umbes 300 ml soojas vees.
Sodium thiosulphate solution 0,1 mol/litre.
Naatriumtiosulfaadilahus, 0,1 mol/l
Starch solution: add a mixture of 5 g of soluble starch in 30 ml of water to 1 litre of boiling water.
Tärkliselahus: 1 liitrile keevale veele lisatakse 5 g lahustuva tärklise ja 30 ml vee segu.
Boil for three minutes, leave to cool and if necessary add 10 mg of mercuric iodide as a preservative.
Keedetakse kolm minutit, lastakse jahtuda ja vajaduse korral lisatakse säilitusainena 10 mg elavhõbejodiidi.
Sulphuric acid 3 mol/litre.
Väävelhape, 3 mol/l.
Potassium iodide, solution 30 % (w/v).
Kaaliumjodiidi lahus, 30 % (w/v)
Granulated pumice stone boiled in hydrochloric acid, washed in water and dried.
Pimsskivigraanulid, mis on keedetud soolhappes, pestud vees ning kuivatatud.
3-methylbutan-l-ol.
3-metüülbutaan-1-ool
Extraction of sample
Proovi ekstraheerimine
Weigh 2,5 g of the sample to the nearest mg and place in a 250 ml volumetric flask.
2,5 g proovi kaalutakse täpsusega 1 mg ja pannakse 250 ml mõõtekolbi.
Add 200 ml of ethanol (3.1) and mix in the tumbler for one hour.
Lisatakse 200 ml etanooli (3.1) ning segatakse trumlis tund aega.
Add 5 ml of Carrez solution I (3.2) and stir for approximately 30 seconds.
Lisatakse 5 ml Carrezi lahust I (3.2) ja segatakse umbes 30 sekundit.
Add 5 ml of Carrez solution II (3.3) and again stir for one minute.
Lisatakse 5 ml Carrezi lahust II (3.3) ja segatakse veel üks minut.
Make up to volume with ethanol (3.1), homogenise and filter.
Täidetakse etanooliga (3.1) märgini, homogeenitakse ja filtreeritakse.
Remove 200 ml of the filtrate and evaporate to approximately half volume in order to eliminate most of the ethanol.
Eemaldatakse 200 ml filtraati ja aurustatakse ligikaudu poole mahuni, et vabaneda enamikust etanoolist.
Transfer the evaporation residue quantitatively to a 200 ml volumetric flask using warm water, cool, bring up to volume with water, homogenise and filter if necessary.
Aurustamise jääk kantakse sooja vett kasutades kvantitatiivselt 200 ml mõõtekolbi, jahutatakse, täidetakse veega kuni märgini, homogeenitakse ja vajaduse korral filtreeritakse.
This solution will be used to determine the amount of reducing sugars and, after inversion, of total sugars.
Seda lahust kasutatakse redutseerivate suhkrute hulga ja pärast inversiooni üldsuhkru hulga määramiseks.
Determination of reducing sugars
Redutseerivate suhkrute määramine
Using a pipette, remove not more than 25 ml of the solution containing less than 60 mg of reducing sugars expressed as glucose.
Pipetiga eemaldatakse kuni 25 ml lahust, mis sisaldab alla 60 mg redutseerivaid suhkruid, mis on väljendatud glükoosina.
If necessary, make up to 25 ml with distilled water and determine the content of reducing sugars by the Luff-Schoorl method.
Vajaduse korral täidetakse destilleeritud veega 25 ml-ni ja määratakse redutseerivate suhkrute hulk Luff-Schoorli meetodi abil.
The result is expressed as the percentage content of glucose in the sample.
Tulemus väljendatakse glükoosisisalduse protsendimäärana proovist.
Determination of total sugars after inversion
Üldsuhkru määramine pärast inversiooni
Using a pipette take 50 ml of the solution and transfer to a 100 ml volumetric flask.
Pipetiga võetakse 50 ml lahust ja kantakse see 100 ml mõõtekolbi.
Add a few drops of methyl orange solution (3.4) then, carefully and stirring continuously, add hydrochloric acid (3.5) until the liquid turns a definite red.
Lisatakse mõni tilk metüüloranži lahust (3.4) ning seejärel lisatakse hoolikalt ja samal ajal pidevalt segades soolhapet (3.5), kuni vedelik värvub selgelt punaseks.
Add 15 ml of hydrochloric acid (3.6), immerse the flask in a fast boiling water bath and keep there for 30 minutes.
Lisatakse 15 ml soolhapet (3.6), asetatakse kolb tugevalt keeva veega vanni ning hoitakse seal 30 minutit.
Cool rapidly to approximately 20 oC and add 15 ml of sodium hydroxide solution (3.7).
Jahutatakse kiiresti umbes 20 oC-ni ja lisatakse 15 ml naatriumhüdroksiidi lahust (3.7).
Make up to 100 ml with water and homogenise.
Täidetakse veega 100 ml-ni ja homogeenitakse.
Remove not more than 25 ml containing less than 60 mg of reducing sugars expressed as glucose.
Eemaldatakse kuni 25 ml lahust, mis sisaldab alla 60 mg redutseerivaid suhkruid, mis on väljendatud glükoosina.
The result is expressed as the percentage of glucose or, where appropriate, sucrose, by multiplying by the factor 0,95.
Tulemus väljendatakse glükoosi protsendimäärana või sõltuvalt olukorrast sahharoosi protsendimäärana, korrutades tulemuse teguriga 0,95.
Titration by the Luff-Schoorl method
Tiitrimine Luff-Schoorli meetodi järgi
Using a pipette, take 25 ml of Luff-Schoorl reagent (3.8) and transfer to a 300 ml Erlenmeyer flask; add exactly 25 ml of the clarified sugar solution.
Pipetiga võetakse 25 ml Luff-Schoorli reaktiivi (3.8) ja kantakse see 300 ml Erlenmeyeri kolbi; lisatakse täpselt 25 ml selitatud suhkrulahust.
Add 2 granules of pumice stone (3.13), heat, stirring by hand, over a free flame of medium height and bring the liquid to the boil in approximately two minutes.
Lisatakse 2 pimsskivigraanulit (3.13), kuumutatakse käsitsi segades keskmise kõrgusega lahtise leegi kohal ja segu kuumutatakse keemiseni umbes kahe minuti jooksul.
Place the Erlenmeyer immediately on an asbestos-coated wire gauze with a hole approximately 6 cm in diameter under which a flame has been lit.
Erlenmeyeri kolb asetatakse viivitamatult asbestkattega traatvõrgule, milles on umbes 6 cm läbimõõduga auk ning mille all on eelnevalt süüdatud leek.
The flame shall be regulated in such a way that only the base of the Erlenmeyer is heated.
Leeki reguleeritakse nii, et kuumutataks üksnes Erlenmeyeri kolvi põhja.
Fit a reflux condenser to the Erlenmeyer flask.
Erlenmeyeri kolvi külge pannakse püstjahuti.
Boil for exactly 10 minutes.
Keedetakse täpselt kümme minutit.
Cool immediately in cold water and after approximately five minutes titrate as follows:
Jahutatakse kohe külmas vees ja umbes viie minuti möödudes tiitritakse järgmiselt.
Add 10 ml of potassium iodide solution (3.12) and immediately afterwards (carefully, because of the risk of abundant foaming), add 25 ml of sulphuric acid (3.11).
Lisatakse 10 ml kaaliumjodiidi lahust (3.12) ja kohe seejärel lisatakse (intensiivse vahutamise ohu tõttu ettevaatlikult) 25 ml väävelhapet (3.11).
Titrate with sodium thiosulphate solution (3.9) until a dull yellow colour appears, add the starch indicator (3.10) and complete titration.
Tiitritakse naatriumtiosulfaadi lahusega (3.9) kuni kahvatukollase värvuse tekkimiseni, lisatakse tärkliseindikaator (3.10) ja viiakse tiitrimine lõpule.
Carry out the same titration on an accurately measured mixture of 25 ml of Luff-Schoorl reagent (3.8) and 25 ml of water, after adding 10 ml of potassium iodide solution (3.12) and 25 ml of sulphuric acid (3.11) without boiling.
Sama tiitrimine ilma keetmata tehakse seguga, milles on täpselt mõõdetud 25 ml Luff-Schoorli reaktiivi (3.8) ja 25 ml vett ning millele on eelnevalt lisatud 10 ml kaaliumjodiidi lahust (3.12) ja 25 ml väävelhapet (3.11).
Using the table establish the amount of glucose in mg which corresponds to the difference between the values of the two titrations, expressed in mg of sodium thiosulphate 0,1 mol/litre.
Tabeli abil määratakse glükoosi hulk milligrammides, mis vastab erinevusele kahe tiitrimise tulemuste vahel väljendatuna naatriumtiosulfaadi milligrammides (0,1 mol/l).
In the case of feed which are rich in molasses and other feed which are not particularly homogeneous, weigh out 20 g and place with 500 ml of water in a 1 litre volumetric flask.
Melassirikaste söötade ja muude mitte eriti homogeensete söötade puhul kaalutakse 20 g proovi ja pannakse see 500 ml veega üheliitrisse mõõtekolbi.
Mix for one hour in the tumbler.
Segatakse trumlis tund aega.
Clarify using Carrez 1 (3.2) and II (3.3) reagents as described under 5.1, this time however using four times the quantities of each reagent.
Selitatakse Carrezi lahustega I (3.2) ja II (3.3) punkti 5.1 kohaselt, kasutades sealjuures iga reaktiivi neljakordset kogust.
Bring up to volume with 80 % ethanol (v/v).
Täidetakse kuni märgini 80 % etanooliga (v/v).
Homogenise and filter.
Homogeenitakse ja filtreeritakse.
Eliminate the ethanol as described under 5.1.
Etanool eemaldatakse punkti 5.1 kohaselt.
If there is no dextrinised starch, bring up to volume with distilled water.
Kui dekstriinitud tärklist ei ole, täidetakse destilleeritud veega kuni märgini.
In the case of molasses and feed materials which are rich in sugar and almost starch-free (carobs, dried beetroot cossettes etc.), weigh out 5 g, place in a 250 ml volumetric flask, add 200 ml of distilled water and mix in the tumbler for one hour, or more if necessary.
Suhkrurikaste, kuid praktiliselt tärklisevabade melasside ja söödatoorainete puhul (jaanikaunad, kuivatatud peedipealsed jne) kaalutakse 5 g proovi, pannakse see 250 ml mõõtekolbi, lisatakse 200 ml destilleeritud vett ja segatakse trumlis tund aega või vajaduse korral kauem.
Clarify using Carrez I (3.2) and II (3.3) reagents as described under 5.1.
Selitatakse Carrezi lahustega I (3.2) ja II (3.3) punkti 5.1 kohaselt.
Bring up to volume with cold water, homogenise and filter.
Täidetakse külma veega kuni märgini, homogeenitakse ja filtreeritakse.
In order to determine the amount of total sugars, continue as described under 5.3.
Üldsuhkru hulga määramiseks jätkatakse vastavalt punktile 5.3.
In order to prevent foaming it is advisable to add (irrespective of the volume) approximately 1 ml of 3-methylbutan-l-ol (3.14) before boiling with Luff-Schoorl reagent.
Vahutamise vältimiseks on soovitatav lisada (proovi kogusest sõltumatult) umbes 1 ml 3-metüülbutaan-1-ooli (3.14) enne keetmist Luff-Schoorli reaktiiviga.
The difference between the content of total sugars after inversion, expressed as glucose, and the content of reducing sugars, expressed as glucose, multiplied by 0,95, gives the percentage content of sucrose.
Sahharoosisisalduse protsendimäär on glükoosina väljendatud inversioonijärgse üldsuhkrute sisalduse ja glükoosina väljendatud redutseerivate suhkrute sisalduse vahe, mis on korrutatud 0,95-ga.
In order to determine the content of reducing sugars, excluding lactose, two methods may be adopted:
Redutseerivate suhkrute (v.a laktoosi) sisalduse määramiseks võib kasutada kahte meetodit:
For an approximate calculation, multiply by 0,675 the lactose content established by a different method of analysis and subtract the result obtained from the content of reducing sugars.
Ligikaudseks arvutamiseks korrutatakse muu meetodi abil saadud laktoosisisaldus 0,675ga ja lahutatakse saadud tulemus redutseerivate suhkrute sisaldusest.
In both cases the amount of sugar present is determined by the Luff-Schoorl method and calculated in mg of glucose.
Mõlemal juhul määratakse proovis sisalduv suhkur Luff-Schoorli meetodi abil ja arvutatakse glükoosi milligrammideks.
One of the values is subtracted from the other and the difference is expressed as a percentage of the sample.
Üks väärtus lahutatakse teisest ja vahe väljendatakse protsendimäärana proovist.
The two volumes taken correspond, for each determination, to a sample of 250 mg.
Võetud kogused vastavad mõlema määramise puhul 250 mg massiga proovile.
In the first case 17 ml of sodium thiosulphate solution 0,1 mol/litre corresponding to 44,2 mg of glucose is consumed; in the second, 11 ml, corresponding to 27,6 mg of glucose.
Esimesel juhul tarbitakse 17 ml naatriumtiosulfaadi lahust (0,1 mol/l), mis vastab 44,2 mg glükoosile; teisel juhul tarbitakse 11 ml, mis vastab 27,6 mg glükoosile.
The difference is 16,6 mg of glucose.
Vahe on 16,6 mg glükoosi.
The content of reducing sugars (excluding lactose), calculated as glucose, is therefore:
Redutseerivate suhkrute (v.a laktoosi) sisaldus glükoosiks arvutatuna on seega:
Table of values for 25 ml of Luff-Schoorl reagent
Väärtuste tabel 25 ml Luff-Schoorli reaktiivi jaoks
ml of Na2 S2 O30,1 mol/litre, two minutes' heating, 10 minutes' boiling
ml Na2 S2 O3 (0,1 mol/l) pärast kahte minutit kuumutamist ja 10 minutit keetmist
0,1 mol/litre
0,1 mol/l
Glucose, fructose invert sugars
Glükoos, fruktoos invertsuhkrud
Maltose
Maltoos
difference
vahe
DETERMINATION OF LACTOSE
LAKTOOSI MÄÄRAMINE
This method makes it possible to determine the level of lactose in feed containing more than 0,5 % of lactose.
Selle meetodiga on võimalik määrata laktoosi taset söödas, mis sisaldab laktoosi üle 0,5 %.
The sugars are dissolved in water.
Suhkrud lahustatakse vees.
The solution is subjected to fermentation by the yeast Saccharomyces cerevisiae which leaves the lactose intact.
Lahus kääritatakse Saccharomyces cerevisiae pärmiga, mis jätab laktoosi esialgsele kujule.
After clarification and filtration the lactose content of the filtrate is determined by the Luff-Schoorl method.
Pärast selitamist ja filtreerimist määratakse filtraadi laktoosisisaldus Luff-Schoorli meetodi abil.
Suspension of Saccharomyces cerevisiae: suspend 25 g of fresh yeast in 100 ml of water.
Saccharomyces cerevisiae suspensioon: 25 g värsket pärmi suspendeeritakse 100 ml vees.
The suspension will keep for a maximum period of one week in a refrigerator.
Suspensioon säilib külmikus kõige rohkem ühe nädala.
Carrez solution I: dissolve in water 21,9 g of zinc acetate, Zn (CH3 COO)2 2H2O and 3 g of glacial acetic acid.
Carrezi lahus I: vees lahustatakse 21,9 g tsinkatsetaati Zn(CH3 COO)2 2H2O ja 3 g jää-äädikat.
Stirring carefully, pour the citric acid solution (3.4.2) into the sodium carbonate solution (3.4.3).
Ettevaatlikult segades valatakse sidrunhappe lahus (3.4.2) naatriumkarbonaadi lahusesse (3.4.3).
Add the copper sulphate solution (3.4.1) and make up to 1 litre with water.
Lisatakse vasksulfaadi lahus (3.4.1) ja täidetakse veega 1 liitrini.
Check the concentration of the reagent thus obtained (Cu 0,05 mol/litre; Na2 CO3 1 mol/litre).
Selliselt saadud reaktiivi kontsentratsioooni (Cu 0,05 mol/l; Na2 CO3 2 mol/l).
Copper sulphate solution: dissolve 25 g of copper sulphate Cu SO4 5H2O, free from iron, in 100 ml of water.
Vasksulfaadi lahus: 25 g rauavaba vasksulfaati (Cu SO4 5H2O) lahustatakse 100 ml vees.
Citric acid solution: dissolve 50 g of citric acid C6H8O7·H2O in 50 ml of water.
Sidrunhappe lahus: 50 g sidrunhapet (C6H8O7 · H2O) lahustatakse 50 ml vees.
Solution of sodium thiosulphate 0,1 mol/litre.
Naatriumtiosulfaadi lahus, 0,1 mol/l.
Boil for three minutes, leave to cool, and if necessary add 10 mg of mercuric iodide as a preservative.
Keedetakse kolm minutit, lastakse jahtuda ja vajaduse korral lisatakse säilitusainena 10 mg elavhõbejodiidi.
Water bath with thermostat set at 38-40 oC.
Temperatuurile 38–40 oC seatud termostaadiga veevann.
Weigh 1 g of the sample to the nearest mg and place this portion of the sample in a 100 ml volumetric flask.
1 g proovi kaalutakse täpsusega 1 mg ja pannakse selline kogus proovi 100 ml mõõtekolbi.
Add 25 to 30 ml of water.
Lisatakse 25–30 ml vett.