natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Add 30 ml of water, make up to the mark with methanol-acetonitrile (3.5) and mix.
Lisatakse 30 ml vett, täidetakse kolvid metanooli ja atsetonitriili seguga (3.5) kuni märgini ja segatakse.
These solutions correspond to 2,0, 5,0, 10,0 and 20,0 μg/ml of carbadox respectively.
Need lahused sisaldavad karbadoksi vastavalt 2,0, 5,0, 10,0 ja 20,0 μg/ml.
Calibration solutions must be freshly prepared before use.
Kalibreerimislahused tuleb valmistada vahetult enne kasutamist.
For the determination of carbadox in feed containing less than 10 mg/kg, calibration solutions with a concentration below 2,0 μg/ml must be prepared.
karbadoksi määramiseks söödas, mille karbadoksisisaldus on alla 10 mg/kg, tuleb valmistada kalibreerimislahused, mille kontsentratsioon on alla 2,0 μg/ml.
Water-[methanol-acetonitrile] (3.5) mixture, 300 + 700 (v + v).
Vee ja (metanooli + atsetonitriili) (3.5) segu, 300 + 700 (v + v)
Mix 300 ml of water with 700 ml of the mixture of methanol-acetonitrile (3.5).
300 ml vett segatakse 700 ml metanooli ja atsetonitriili seguga (3.5).
Laboratory shaker or magnetic stirrer.
Laboratooriumiloksuti või magnetsegur
Glass column (length 300 to 400 mm, internal diameter approximately 10 mm) with sintered glass frit and draw-off valve.
Klaaskolonn (pikkus 300–400 mm, sisediameeter ligikaudu 10 mm) paagutatud klaasfiltri ja äravooluklapiga.
a glass column fitted with a stopcock or a glass column with a tapered end may also be used; in this case, a small glass-wool plug is inserted into the lower end and it is tamped down using a glass rod.
kasutada võib ka sulgemiskraaniga või koonuseks töödeldud otsaga klaaskolonni; sel juhul pannakse kolonni alumisse otsa väike klaasvillatropp, mis tambitakse klaaspulgaga tihedaks.
HPLC equipment with injection system, suitable for injection volumes of 20 μl.
HPLC seade koos sissepritsesüsteemiga, mis võimaldab süstida 20 μl.
Liquid chromatographic column: 300 mm x 4 mm, C18, 10 μm packing or equivalent.
Vedelikkromatograafia kolonn: 300 mm × 4 mm, C18, täidise terasuurus 10 μm või samaväärne
UV detector with variable wavelength adjustment or diode array detector operating in the range of 225 to 400 nm.
Muudetava lainepikkusega UV-detektor või dioodireadetektor, mis töötab vahemikus 225–400 nm.
Carbadox is light-sensitive.
karbadoks on valgustundlik.
Carry out all procedures under subdued light or use amber glassware or glassware wrapped in aluminium foil.
Kõik protseduurid tehakse nõrgas valguses või kasutatakse tumedat või alumiiniumfooliumi mähitud anumat.
For the performance of the recovery test (5.1.2) a blank feed shall be analysed to check that neither carbadox nor interfering substances are present.
Selleks, et teha saagisekatset (5.1.2), tuleb eelnevalt teha võrdlussööda analüüs, veendumaks, et selles ei ole ei karbadoksi ega segavaid aineid.
The blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis carbadox or interfering substances must not be detected.
Võrdlussööt peab olema prooviga samalaadne ja selles tohi leiduda karbadoksi ega segavaid aineid.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed (5.1.1) which has been fortified by the addition of a quantity of carbadox, similar to that present in the sample.
Saagisekatses analüüsitakse võrdlussööta (5.1.1), millele on lisatud proovis oleva kogusega ligilähedane kogus karbadoksi.
To fortify at a level of 50 mg/kg, transfer 5,0 ml of the stock standard solution (3.11.1) to a 200 ml conical flask.
Et saada kontsentratsiooni 50 mg/kg, kantakse 5,0 ml põhistandardlahust (3.11.1) 200 ml koonilisse kolbi.
Evaporate the solution to approximately 0,5 ml in a stream of nitrogen.
Lahus aurustatakse lämmastikuvoolus ligikaudu 0,5 milliliitrini.
Add 10 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2).
Lisatakse 10 g võrdlussööta, segatakse ja jäetakse enne ekstraheerima (5.2) asumist 10 minutiks seisma.
In this case, the sample is fortified with a quantity of carbadox, similar to that already present in the sample.
Sel juhul lisatakse proovile ligikaudu sama suur karbadoksikogus, mis on proovis juba olemas.
Weigh to the nearest 0,01 g, 10 g of the sample and transfer to a 200 ml conical flask.
10 g proovi kaalutakse täpsusega 0,01 g ja pannakse 200 ml koonilisse kolbi.
Add 15,0 ml of water, mix, and equilibrate for 5 min. Add 35,0 ml of methanol-acetonitrile (3.5), stopper and shake for 30 min. on the shaker or stir on the magnetic stirrer (4.1).
Lisatakse 15,0 ml vett, segatakse ja lastakse seista 5 minutit. Lisatakse 35,0 ml metanooli ja atsetonitriili segu (3.5), korgitakse kinni ja loksutatakse 30 minutit loksutil või segatakse magnetseguril (4.1).
Filter the solution through a glass fibre filter paper (4.2).
Lahus filtreeritakse läbi klaaskiust filterpaberi (4.2).
Premixtures (0,1 %-2,0 %)
Eelsegud (0,1–2,0 %)
Weigh to the nearest 0,001 g, 1 g of the unground sample and transfer to a 200 ml conical flask.
1 g jahvatamata proovi kaalutakse täpsusega 0,001 g ja pannakse 200 ml koonilisse kolbi.
Pipet an aliquot of filtrate into a 50 ml calibrated flask.
Filtraadi alikvoot pipetitakse 50 ml mõõtekolbi.
Add 15,0 ml of water, make up to the mark with methanol-acetonitrile (3.5) and mix.
Lisatakse 15,0 ml vett, täidetakse kolvid metanooli ja atsetonitriili seguga (3.5) kuni märgini ja segatakse.
The carbadox concentration of the final solution shall be approximately 10 μg/ml.
Lõpplahuse karbadoksikontsentratsioon on ligikaudu 10 μg/ml.
An aliquot is filtered through a 0,45 μm filter (4.6).
Alikvoot filtreeritakse läbi 0,45 μm filtri (4.6).
Proceed to the HPLC determination (5.4).
Seejärel alustatakse HPLC määramist (5.4).
Preparations (> 2 %)
Preparaadid (> 2 %)
Weigh to the nearest 0,001 g, 0,2 g of the unground sample and transfer to a 250 ml conical flask.
0,2 g jahvatamata proovi kaalutakse täpsusega 0,001 g ja pannakse 250 ml koonilisse kolbi.
Add 45,0 ml of water, mix, and equilibrate for 5 min. Add 105,0 ml of methanol-acetonitrile (3.5), stopper and homogenise.
Lisatakse 45,0 ml vett, segatakse ja lastakse seista 5 minutit. Lisatakse 105,0 ml metanooli ja atsetonitriili segu (3.5), korgitakse kinni ja homogeenitakse.
Sonicate (4.7) the sample for 15 min. followed by shaking or stirring for 15 min. (4.1).
Proovi mõjutatakse ultraheliga (4.7) 15 minutit, seejärel loksutatakse või segatakse 15 minuti jooksul (4.1).
Dilute an aliquot of filtrate with the mixture of water-methanol-acetonitrile (3.12) to a final carbadox concentration of 10-15 μg/ml (for a 10 % preparation, the dilution factor is 10).
Filtraadi alikvoot lahjendatakse vee ning metanooli ja atsetonitriili seguga (3.12), kuni karbadoksi lõppkontsentratsioon on 10–15 μg/ml (10 % preparaadi puhul on lahjendusaste 10).
Preparation of the aluminium oxide column
Alumiiniumoksiidikolonni ettevalmistamine
Weigh 4 g of aluminium oxide (3.4) and transfer it to the glass column (4.3).
Kaalutakse 4 g alumiiniumoksiidi (3.4) ja pannakse klaaskolonni (4.3).
Apply 15 ml of the filtered extract (5.2.1) to the aluminium oxide column and discard the first 2 ml of eluate.
Alumiiniumoksiidikolonni lisatakse 15 ml filtreeritud ekstrakti (5.2.1) ja visatakse eluaadi esimesed 2 ml ära.
Collect the next 5 ml and filter an aliquot through a 0,45 μm filter (4.6).
Järgmised 5 ml kogutakse ning filtreeritakse alikvoot läbi 0,45 μm filtri (4.6).
column (4.4.1):
kolonn (4.4.1):
300 mm × 4 mm, C18, 10 μmpacking or equivalent
300 mm × 4 mm, C18, täidise terasuurus 10 μm või samaväärne
Mobile phase (3.10):
Liikuv faas (3.10):
Mixture of acetate buffer solution (3.9) and acetonitrile (3.2), 825 + 175 (v+v)
atsetaatpuhverlahuse (3.9) ja atsetonitriili (3.2) segu, 825 + 175 (v+v)
Check the stability of the chromatographic system, injecting the calibration solution (3.11.2) containing 5,0 μg/ml several times, until constant peak heights (areas) and retention times are achieved.
Kromatograafiaseadme tasakaalustatust kontrollitakse, süstides kolonni mitu korda kalibreerimislahust (3.11.2) kontsentratsiooniga 5,0 μg/ml, kuni saavutatakse konstantsed piigikõrgused ja retentsiooniajad.
Inject each calibration solution (3.11.2) several times and measure the peak heights (areas) for each concentration.
Iga kalibreerimislahust (3.11.2) süstitakse mitu korda ja mõõdetakse igale kontsentratsioonile vastavad piigikõrgused (pindalad).
Plot a calibration curve using the mean peak heights or areas of the calibration solutions as the ordinates and corresponding concentrations in μg/ml as the abscissae.
Koostatakse kalibreerimisgraafik, kandes ordinaatteljele kalibreerimislahuste keskmised piigi kõrgused (pindalad) ja abstsissteljele vastavad kontsentratsioonid (μg/ml).
Inject the sample extract [(5.3.2) for feed, (5.2.2) for premixtures and (5.2.3) for preparations] several times and determine the mean peak height (area) of the carbadox peaks.
Prooviekstrakti [(5.3.2) söötade, (5.2.2) eelsegude ja (5.2.3) preparaatide puhul] süstitakse mitu korda ja määratakse karbadoksipiikide keskmine kõrgus (pindala).
From the mean height (area) of the carbadox peaks of the sample solution determine the carbadox concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.4.2).
Proovilahuse karbadoksi piikide keskmise kõrguse (pindala) järgi määratakse proovilahuse karbadoksikontsentratsioon μg/ml, kasutades kalibreerimisgraafikut (5.4.2).
The content of carbadox w (mg/kg) in the sample is given by the following formula:
Karbadoksisisaldus w (mg/kg) proovis arvutatakse järgmise valemi järgi:
c carbadox concentration of the sample extract (5.3.2) in μg/ml
c karbadoksi kontsentratsioon (μg/ml) prooviekstraktis (5.3.2);
extraction volume in ml (i.e. 50)
ekstrahendi maht, ml (s.o 50);
Premixtures and preparations
Eelsegud ja preparaadid
c carbadox concentration of the sample extract (5.2.2 or 5.2.3) in μg/ml
c karbadoksi kontsentratsioon (g/ml) prooviekstraktis (5.2.2 või 5.2.3);
extraction volume in ml (i.e. 50 for premixtures; 150 for preparations)
ekstrahendi maht, ml (s.o 50 eelsegude, 150 preparaatide puhul);
f dilution factor according to 5.2.2 (premixtures) or 5.2.3 (preparations)
f punkti 5.2.2 (eelsegud) või 5.2.3 (preparaadid) kohane lahjendusfaktor;
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract and the calibration solution (3.11.2) containing 10,0 μg/ml are compared.
Uuritava aine identsust saab kinnitada täiendava kromatograafiakatse abil või kasutades dioodireadetektorit, mille puhul võrreldakse prooviekstrakti ja 10,0 μg/ml sisaldusega kalibreerimislahuse (3.11.2) spektreid.
A sample extract is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.11.2).
Prooviekstraktile lisatakse vajalik kogus kalibreerimislahust (3.11.2).
The amount of added carbadox must be similar to the estimated amount of carbadox found in the sample extract.
Lisatud karbadoksikogus peab olema ligikaudu sama suur nagu prooviekstraktist hinnanguline karbadoksikogus.
Only the height of the carbadox peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Võttes arvesse nii lisatud kogust kui ka ekstrakti lahjendust, peab tõusma üksnes karbadoksipiigi kõrgus.
For diode-array detection, this is typically within + 2 nm;
Dioodireadetektori puhul on see tavaliselt vahemikus ± 2 nm;
between 225 and 400 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
lainepikkustel 225–400 nm ei tohi kromatogrammi piigi tipus registreeritud proovi ja standardi spektrid teineteisest erineda nende spektriosade puhul, mis jäävad 10–100 % suhtelise neeldumise piirkonda.
between 225 and 400 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
lainepikkustel 225–400 nm ning suhtelise neeldumise vahemikus 10–100 % peavad prooviekstrakti piigi tõusva osa, tipu ja alaneva osa spektrid ühte langema.
For contents of 10 mg/kg and higher, the difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 15 % relative to the higher result.
Sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi 10 mg/kg ja suuremate sisalduste puhul ületada 15 % suuremast tulemusest.
A collaborative study was arranged in which 6 feed, 4 premixtures and 3 preparations were analysed by 8 laboratories.
Korraldati ühisuuring, mille käigus analüüsiti 8 laboratooriumis kuut sööta, nelja eelsegu ja kolme preparaati.
(More detailed information on this collaborative study can be found in the Journal of the AOAC, Volume 71, 1988, p. 484-490).
(Üksikasjalikumat teavet selle ühisuuringu kohta võib leida ajakirjas Journal of AOAC, köide 71, 1988, lk 484–490.)
The results (excluding outliers) are shown below:
Tulemused (välja arvatud kõrvalekalded) on esitatud järgmises tabelis:
Results of the collaborative study for feed
Ühisuuringu tulemused sööda kohta
Mean (mg/kg)
Keskmine (mg/kg)
CVr (%)
CVr ( %)
CVR (%)
CVR ( %)
Results of the collaborative study for premixtures and preparations
Ühisuuringu tulemused eelsegude ja preparaatide kohta
Preparations
Preparaadid
Mean (g/kg)
Keskmine (g/kg)
Nominal content (g/kg)
Nominaalsisaldus (g/kg)
Sr standard deviation of repeatability
korratavust iseloomustav standardhälve
CVr coefficient of variation of repeatability
CV r korratavuse variatsioonikordaja S R
SR standard deviation of reproducibility
reprodutseeritavust iseloomustav standardhälve
CVR coefficient of variation of reproducibility.
CV R reprodutseeritavuse variatsioonikordaja
CORRELATION TABLES REFERRED TO IN ARTICLE 6
ARTIKLIS 6 OSUTATUD VASTAVUSTABELID
Directive 71/250/EEC
Direktiiv 71/250/EMÜ
Annex, part 1
Lisa 1. osa
Annex, part 2
Lisa 2. osa
Annex, part 3
Lisa 3. osa
Annex, part 4
Lisa 4. osa
Annex III, part O
III lisa O osa
Annex, part 5
Lisa 5. osa
Annex III, part M
III lisa M osa
Annex, part 6
Lisa 6. osa
Annex III, part N
III lisa N osa
Annex, part 7
Lisa 7. osa
Annex III, part Q
III lisa Q osa
Annex, part 9
Lisa 9. osa
Annex III, part K
III lisa K osa
Annex, part 10
Lisa 10. osa
Annex, part 11
Lisa 11. osa
Annex, part 12
Lisa 12. osa
Annex III, part J
III lisa J osa
Annex, part 14
Lisa 14. osa
Annex III, part D
III lisa D osa
Annex, part 16
Lisa 16. osa
Directive 71/393/EEC
Direktiiv 71/393/EMÜ
Annex, part I
Lisa I osa
Annex III, part A
III lisa A osa
Annex, part II
Lisa II osa
Annex III, part E
III lisa E osa
Annex, part III
Lisa III osa
Annex III, part P
III lisa P osa
Annex, part IV
Lisa IV osa
Annex III, part H
III lisa H osa
Directive 72/199/EEC
Direktiiv 72/199/EMÜ
Annex I, part 1
I lisa 1. osa
Annex III, part L
III lisa L osa
Annex I, part 2
I lisa 2. osa
Annex III, part C
III lisa C osa
Annex I, part 3
I lisa 3. osa
Annex I, part 4
I lisa 4. osa
Annex I, part 5
I lisa 5. osa
Annex V, part A
V lisa A osa
Directive 73/46/EEC
Direktiiv 73/46/EMÜ
Annex III, part B
III lisa B osa
Annex III, part I
III lisa I osa
Directive 76/371/EEC
Direktiiv 76/371/EMÜ
Directive 76/372/EEC
Direktiiv 76/372/EMÜ
Directive 78/633/EEC
Direktiiv 78/633/EMÜ
Annex IV, part C
IV lisa C osa
Directive 81/715/EEC
Direktiiv 81/715/EMÜ
Directive 84/425/EEC
Direktiiv 84/425/EMÜ
Directive 86/174/EEC
Direktiiv 86/174/EMÜ
Directive 93/70/EEC
Direktiiv 93/70/EMÜ
Annex IV, part D
IV lisa D osa
Directive 93/117/EC
Direktiiv 93/117/EÜ
Articles 3 and 5
Artiklid 3 ja 5
Annex IV, part E
IV lisa E osa
Annex VIII, part A
VIII lisa A osa
Directive 98/64/EC
Direktiiv 98/64/EÜ
Annex, part A
Lisa A osa
Annex III, part F
III lisa F osa
Annex, part C
Lisa C osa
Annex VIII, part B
VIII lisa B osa
Directive 1999/27/EC
Direktiiv 1999/27/EÜ
Annex VIII, part C
VIII lisa C osa
Annex, part B
Lisa B osa
Annex IV, part F
IV lisa F osa
Annex VIII, part D
VIII lisa D osa
Directive 1999/76/EC
Direktiiv 1999/76/EÜ
Annex IV, part G
IV lisa G osa
Directive 2000/45/EC
Direktiiv 2000/45/EÜ
Annex IV, part A
IV lisa A osa
Annex IV, part B
IV lisa B osa
Annex III, part G
III lisa G osa
Directive 2002/70/EC
Direktiiv 2002/70/EÜ
Annex I and Annex V part B(I)
I lisa ja V lisa B osa (I)
Annex II and Annex V part B(II)
II lisa ja V lisa B osa (II)
Directive 2003/126/EC
Direktiiv 2003/126/EÜ
Each aggregate sample gives the final samples on reduction.
Lõpp-proovid saadakse koondproovi vähendamise teel.
Analysis of at least one final sample per aggregate sample is required.
Nõutav on vähemalt ühe lõpp-proovi analüüs koondproovi kohta.
Where a fully automatic distillation unit is employed, the automatic titration of the ammonia can also be carried out with end-point detection using a potentiometric pH system.
Kui kasutatakse täisautomaatset destilleerimisseadet, võib ammoniaagi automaatset tiitrimist läbi viia ka lõpp-punkti määramisega, kasutades potentsiomeetrilist pH-süsteemi.
Add 50 ml of trichloroacetic acid solution (3.1), make up to volume with water, shake vigorously and filter through a pleated filter.
Lisatakse 50 ml trikloroäädikhappe lahust (3.1), täidetakse kuni märgini veega, loksutatakse tugevalt ja filtreeritakse läbi kurdfiltri.
Dissolve 19,61 g sodium citrate (3.8), 5 ml thiodiglycol (3.9), 1 g phenol (3.3) and 16,50 ml HCl (3.7) in approximately 800 ml water. Adjust pH to 2,20.
19,61 g naatriumtsitraati (3.8), 5 ml tiodiglükooli (3.9), 1 g fenooli (3.3) ja 16,50 ml HCl (3.7) lahustatakse umbes 800 ml vees. pH korrigeeritakse 2,20-le.
Dissolve 2,2 g sodium chloride (3.10) in 100 ml beaker with 30 ml citrate buffer (3.24).
2,2 g naatriumkloriidi (3.10) lahustatakse 100 ml keeduklaasis 30 ml tsitraatpuhvriga (3.24).
Transfer to an autoclave (4.6) with boiling water and steam for 30-60 minutes.
Kolb pannakse autoklaavi (4.6) ja kuumutatakse keevas vees ja aurus 30–60 minutit.
Close the autoclave and autoclave at 110 (± 2) oC for 20 hours.
Autoklaav suletakse ja kuumutatakse 20 tundi 110 (±2) oC juures.
r [g/kg]
r [g/kg]
R [g/kg]
R [g/kg]
Pre-extraction by Procedure A prior to hydrolysis and re-extraction by Procedure B is recommended if the crude oil/fat content is greater than 15 %.
Kui toorõli ja -rasva sisaldus on üle 15 %, on soovitatav proov enne hüdrolüüsi ekstraheerida meetodi A järgi ning uuesti ekstraheerida meetodi B järgi.
To some extent this depends on the nature of the feed and the nature of the oil/fat in the feed.
Mingil määral sõltub see sööda ja selles leiduva õli ning rasva laadist.
Bring the liquid to boiling point within 5 ± 2 minutes and boil vigorously for exactly 30 minutes.
Vedelik aetakse keema 5 ± 2 minutiga ja keedetakse tugevalt täpselt 30 minutit.
Filter and repeat the washing procedure used for the sulphuric acid step.
Filtreeritakse ja korratakse pesemisprotseduuri, mida kasutati väävelhappe juures.
If the feed contains over 5 % of carbonates, expressed as calcium carbonate, connect the crucible (4.2) with the weighed sample to the heating unit (4.1).
Kui sööt sisaldab üle 5 % karbonaati, mis on väljendatud kaltsiumkarbonaadina, ühendatakse tiigel (4.2) kaalutud prooviga kuumutusseadme (4.1) külge.
Wash the sample three times with 30 ml hydrochloric acid (3.6).
Proovi pestakse kolm korda 30 ml soolhappega (3.6).
For an accurate calculation of reducing sugars, excluding lactose, the same sample must be used for the two final determinations.
Redutseerivate suhkrute (v.a laktoosi) täpseks arvutamiseks tuleb sama prooviga teha kaks lõplikku määramist.
One of the analyses is carried out on part of the solution obtained under 5.1, the other on part of the solution obtained during the determination of lactose by the method laid down for that purpose (after fermenting the other types of sugar and clarifying).
Üks analüüs tehakse punkti 5.1 kohaselt saadud lahuse ühe osaga, teine analüüs sellise lahuse ühe osaga, mis on saadud laktoosi määramise käigus selleks ettenähtud meetodiga (pärast muude suhkruliikide fermenteerimist ja selitamist).
Carbonise by setting light to the substance with a strip of ash-free filter paper.
Aine süüdatakse tuhavaba filterpaberi ribaga ja söestatakse.
After combustion, moisten with as little water as possible.
Pärast põlemist niisutatakse võimalikult vähese veega.
Place the test sample in a Kjeldahl flask, add 20 ml of sulphuric acid (3.5), shake to impregnate the substance completely with acid and to prevent it from sticking to the sides of the flask, heat and keep at boiling point for 10 minutes.
Uuritav proov pannakse Kjeldahli kolbi, lisatakse 20 ml väävelhapet (3.5), raputatakse, et aine seguneks täielikult happega ja et see ei sadestuks kolvi seinte külge, kuumutatakse ja hoitakse 10 minutit keemistemperatuuril.
Leave to cool slightly, add 2 ml of nitric acid (3.4), heat gently, leave to cool slightly, add a little more nitric acid (3.4) and bring back to boiling point.
Lastakse veidi jahtuda, lisatakse 2 ml lämmastikhapet (3.4), kuumutatakse kergelt, lastakse veidi jahtuda, lisatakse veel veidi lämmastikhapet (3.4) ja viiakse tagasi keemistemperatuurile.
Take 10 ml of each of these solutions and add thereto 10 ml of molybdovanadate reagent (3.6).
Igast lahusest võetakse 10 ml ja lisatakse sellele 10 ml molübdovanadaatreaktiivi (3.6).
r [IU/kg]
r [IU/kg]
R [IU/kg]
R [IU/kg]
Aqueous layer +
Petrooleetri kiht
r [mg/kg]
r [mg/kg]
R [mg/kg]
R [mg/kg]
A collaborative study was arranged in which three samples were analysed by eight laboratories.
Korraldati ühisuuring, mille käigus kaheksas laboratooriumis analüüsiti kolme proovi.Tulemused
Results
Proov A
Stopper and shake for approximately 20 minutes.
Suletakse ja loksutatakse ligikaudu 20 minutit.
Store in a well stoppered container.
Hoitakse korralikult suletud anumas.
Add 7,5 g molecular sieve (3.4), stopper and shake for five minutes.
Lisatakse 7,5 g molekulaarsõela (3.4), suletakse ja loksutatakse viis minutit.
Filter immediately through a glass-fibre filter paper.
Filtreeritakse kohe läbi klaaskiudfilterpaberi.
In the first flask place 10 ml of solvent B (3.3), and in the others 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 and 10,0 ml of standard gossypol solution B (3.6) respectively.
Esimesse kolbi viiakse 10 ml lahustit B (3.3) ja teistesse vastavalt 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 ja 10,0 ml gossüpoli standardlahust B (3.6).
Make the contents of each flask up to 10 ml with solvent B (3.3).
Lahuse maht igas kolvis viiakse lahusti B (3.3) lisamisega 10 milliliitrini.
Basic requirements for acceptance of analytical procedures:
Analüüsimenetluste põhinõuded:
High sensitivity and low limits of detection.
suur tundlikkus ja madalad avastamispiirid.
A TCDD reference concentration (about 3 x limit of quantification) on a quality control sheet shall be used for the outcome of the bioassay over a constant time period.
Biotesti tulemuste kontrolliks konstantsel ajavahemikul tuleb kvaliteedikontrolli kaardil kasutada TCDD standardkontsentratsiooni (ligikaudu kolmekordne kvantifikatsioonipiir).
An alternative could be the relative response of a reference sample in comparison to the TCDD calibration line since the response of the cells may depend on many factors.
Alternatiiviks võib olla standardprooviga TCDD kalibreerimisjoone suhtes saadud tulemus, sest rakkude reaktsioon võib sõltuda paljudest teguritest.
Quality control (QC) charts for each type of reference material shall be recorded and checked to make sure the outcome is in accordance with the stated guidelines.
Tuleb koostada iga tüüpi etalonainete kvaliteedikontrolli kaardid ja neid kontrollida, et teha kindlaks, kas tulemused vastavad antud suunistele.
In particular for quantitative calculations, the induction of the sample dilution used must be within the linear portion of the response curve.
Eelkõige kvantitatiivsete arvutuste puhul tuleb kasutada proovilahjendusi reageerimiskõvera lineaarse osa piires.
Samples above the linear portion of the response curve must be diluted and re-tested.
Reageerimiskõvera lineaarset osa ületavad proovid tuleb lahjendada ja uuesti testida.
Therefore, at least 3 or more dilutions at one time are recommended to be tested.
Seetõttu ongi soovitav testida samal ajal vähemalt kolme või enamat lahjendust.