natgillin/translations-raw huggingface dataset:
There has been broad agreement by EU authorities that the Lemna test is a suitable alternative to an algal test for strongly coloured substances (2)(3).
ELi asutuste hulgas on jõutud laialdasele kokkuleppele, et intensiivse värvusega ühendite puhul on lemle kasvu pidurdamise katse sobiv asendusmeetod vetikal põhinevale katsele (2, 3).
This Testing Method is designed to assess the toxicity of substances to freshwater aquatic plants of the genus Lemna (duckweed).
Käesolev metoodika on ette nähtud ainete mürgise mõju hindamiseks lemmeldel, perekonda Lemna kuuluvatel mageveetaimedel.
It is based on existing guidelines (4)(5)(6)(7)(8)(9) but includes modifications of those methods to reflect recent research and consultation on a number of key issues.
See põhineb senistel juhenditel (4, 5, 6, 7, 8, 9), kuid neisse on tehtud muudatusi, mis kajastavad viimaste uuringute ja rea põhiküsimuste üle peetud nõupidamiste tulemusi.
The proposed method has been validated by an international ring-test (10).
Soovitatav meetod on valideeritud rahvusvahelise laboratooriumidevahelise võrdluskatse abil (10).
This Testing Method describes toxicity testing using Lemnagibba and Lemna minor, both of which have been extensively studied and are the subject of the standards referred to above.
Käesolevas metoodikas kirjeldatakse mürgisuse kontrollimist küürlemlel (Lemna gibba) ja väiksel lemlel (Lemna minor), mida on ulatuslikult uuritud ja mis on eespool viidatud standardite kohased katseobjektid.
The taxonomy of Lemna spp. is difficult, being complicated by the existence of a wide range of phenotypes.
Suure fenotüübilise varieeruvuse tõttu on lemle liikide (Lemna spp.) taksonoomia keeruline.
Although genetic variability in the response to toxicants can occur with Lemna, there are currently insufficient data on this source of variability to recommend a specific clone for use with this Testing Method.
Kuigi lemle tundlikkuses mürgiste ainete suhtes võib esineda geneetilist varieeruvust, on andmeid selle varieeruvusallika kohta praegu liiga vähe selleks, et soovitada käesolevas metoodikas kasutamiseks mõnda konkreetset klooni.
It should be noted that the test is not conducted axenically, but steps are taken at stages during the test procedure to keep contamination by other organisms to a minimum.
Tuleb märkida, et katset ei tehta puhaskultuuriga, kuid teatavatel katseetappidel rakendatakse meetmeid, et saastumine muude organismidega oleks minimaalne.
Details on testing with renewal (semi-static and flow-through) and without renewal (static) of the test solution are described.
Kirjeldatakse katse üksikasju uuendatava katselahuse (poolstaatilise ja läbivoolukatse) ning mitteuuendatava katselahuse (staatilise katse) korral.
Depending on the objectives of the test and on the regulatory requirements, it is recommended to consider the application of semi-static and flow through methods, e.g. for substances that are rapidly lost from solution as a result of volatilisation, photodegradation, precipitation or biodegradation.
Olenevalt katsete eesmärgist ja eeskirjadest soovitatakse kaaluda poolstaatilise või läbivoolumeetodi kasutamist neil juhtudel, kui tegemist on näiteks ainetega, mis kaovad lahusest kiiresti lendumise, fotolagunemise, sadestumise või biolagunemise tõttu.
Further guidance is given in (11).
Edasised juhendid on esitatud publikatsioonis (11).
Biomass: is the dry weight of living matter present in a population.
Biomass on populatsiooni elusaine kuivmass.
In this test, surrogates for biomass, such as frond counts or frond area, are typically measured and the use of the term ‘biomass’ thus refers to these surrogate measures as well.
Käesoleva meetodi puhul mõõdetakse tavaliselt biomassi asendavaid näitajaid, nagu tallusjate võsude arv või pindala, seega osutatakse mõiste „biomass” kasutamisel ka nendele asendusnäitajatele.
Chlorosis: is the yellowing of frond tissue.
Kloroos on tallusja võsu koe kolletumine.
Clone: is an organism or cell arisen from a single individual by asexual reproduction.
Kloon on organism või rakk, mis on tekkinud individuaalsest organismist mittesugulise paljunemise tulemusena.
Individuals from the same clone are, therefore, genetically identical.
Samast kloonist pärinevad isendid on geneetiliselt identsed.
Colony: means an aggregate of mother and daughter fronds (usually 2 to 4) attached to each other.
Koloonia on üksteisega liitunud tallusjate ema- ja tütarvõsude kogum (tavaliselt 2–4 tallusjat võsu).
Sometimes referred to as a plant.
Mõnikord nimetatakse kolooniat ka taimeks.
ECx: is the concentration of the test substance dissolved in test medium that results in an x % (e.g. 50 %) reduction in growth of Lemna within a stated exposure period (to be mentioned explicitly if deviating from full or normal test duration).
ECx on katsekeskkonnas lahustatud uuritava aine kontsentratsioon, mille puhul lemle kasv pidurdub x % (nt 50 %) võrra, kui see taim puutub ainega kokku teatava ajavahemiku jooksul (kui kokkupuuteaeg erineb täielikust ehk tavaliselt katsetes kasutatavast kokkupuuteajast, tuleb selle pikkus täpselt märkida).
To unambiguously denote an EC value deriving from growth rate or yield, the symbol ‘ErC’ is used for growth rate and ‘EyC’ is used for yield, followed by the measurement variable used, e.g. ErC (frond number).
Kasvukiirusega seotud EC väärtuse ja saagisega seotud EC väärtuse üheseks tähistamiseks kasutatakse vastavalt sümboleid ErC ja EyC, mille järel märgitakse kasutatud mõõtemuutuja, nt ErC (tallusjate võsude arv).
Flow-through: is a test in which the test solutions are replaced continuously.
Läbivoolukatse on katse, mille käigus katselahus pidevalt vahetub.
Frond: is an individual/single ‘leaf-like’ structure of a duckweed plant.
Tallusjas võsu on individuaalne lehetaoline lemlestruktuur.
It is the smallest unit, i.e. individual, capable of reproduction.
See on väikseim paljunemisvõimeline üksus, st isend.
Gibbosity: means fronds exhibiting a humped or swollen appearance.
Puhetumus osutab kõverdunud või puhetunud tallusjale võsule.
Growth: is an increase in the measurement variable, e.g. frond number, dry weight, wet weight or frond area, over the test period.
Kasv on mõõdetava suuruse (nt tallusjate võsude arv, kuivmass, märgmass, tallusjate võsude pindala) suurenemine katse ajal.
Measurement variables: are any type of variables which are measured to express the test endpoint using one ore more different response variables.
Mõõtemuutuja on mis tahes liiki muutuja, mida mõõdetakse, et ühe või mitme eri kostemuutuja kasutamisega väljendada katsetulem.
In this method frond number, frond area, fresh weight and dry weight are measurement variables.
Käesoleva meetodi puhul on mõõtemuutujad tallusjate võsude arv, tallusjate võsude pindala, elusmass ja kuivmass.
Monoculture: is a culture with one plant species.
Monokultuur on ühte liiki taimede kultuur.
Necrosis: is dead (i.e. white or water-soaked) frond tissue.
Nekroos on surnud (nt valge või hügrofaanne) tallusja võsu kude.
Phenotype: is the observable characteristics of an organism determined by the interaction of its genes with its environment.
Fenotüüp on organismi vaadeldavate tunnuste kogum, mille määrab tema geenide ja keskkonna vastastikune mõju.
Response variables: are variables for the estimation of toxicity derived from any measured variables describing biomass by different methods of calculation.
Kostemuutujad on toksilisuse hindamiseks kasutatavad muutujad, mis tuletatakse biomassi kajastavatest mõõtemuutujatest mitmesuguste arvutuste abil.
For this method, growth rates and yield are response variables derived from measurement variables like frond number, frond area, fresh weight or dry weight.
Käesoleva meetodi puhul on kasvukiirus ja saagis kostemuutujad, mis tuletatakse sellistest mõõtemuutujatest nagu tallusjate võsude arv, nende pindala, elusmass või kuivmass.
Semi-static (renewal) test: is a test in which the test solution is periodically replaced at specific intervals during the test.
Poolstaatiline (uuendatava lahusega) katse on katse, mille käigus lahust perioodiliselt, kindla ajavahemiku järel vahetatakse.
Static test: is a test method without renewal of the test solution during the test.
Staatiline katse on katse, mille käigus lahust ei uuendata.
Test endpoint: describes the general factor that will be changed by the test chemical relative to the control as aim of the test.
Katsetulem on katse eesmärgile vastav üldise teguri muutus uuritava kemikaali mõjul võrreldes kontrollkultuuriga.
In this method the test endpoint is inhibition of growth, which may be expressed by different response variables which are based on one or more measurement variables.
Käesoleva meetodi puhul on katsetulem kasvu pidurdumine, mida võib väljendada erinevate ühel või mitmel mõõtemuutujal põhinevate kostemuutujate abil.
Test medium: is the complete synthetic growth medium on which test plants grow when exposed to the test substance.
Katsekeskkond on täissünteetiline toitelahus, millel kasvatatakse katsetaimi uuritava ainega kokkupuutumise ajal.
Yield: is the value of a measurement variable to express biomass at the end of the exposure period minus the measurement variable at the start of the exposure period.
Saagis on kokkupuuteaja lõpus ja alguses leitud mõõtemuutuja väärtuste vahe, mis väljendab katse kestel toimunud biomassi suurenemist.
Exponentially growing plant cultures of the genus Lemna are allowed to grow as monocultures in different concentrations of the test substance over a period of seven days.
Eksponentsiaalselt kasvavatel lemmelde perekonda (Lemna) kuuluvate taimede monokultuuridel lastakse kokku puutuda uuritava ainega erinevates kontsentratsioonides seitsme ööpäeva jooksul.
The objective of the test is to quantify substance-related effects on vegetative growth over this period, based on assessments of selected measurement variables.
Katse eesmärk on kvantitatiivselt kirjeldada uuritava aine mõju vegetatiivsele kasvule katseaja jooksul, võttes aluseks valitud mõõtemuutuja hinnangud.
Frond number is the primary measurement variable.
Peamine mõõtemuutuja on tallusjate võsude arv.
At least one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) is also measured, since some substances may affect other measurement variables much more than frond numbers.
Kuna mõni aine võib mõjutada muid mõõtemuutujaid rohkem kui tallusjate võsude arvu, mõõdetakse ka vähemalt ühte täiendavat mõõtemuutujat (tallusjate võsude üldpindala, kuivmass või elusmass).
To quantify substance-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ECx (e.g. EC50).
Uuritava aine mõju kvantitatiivseks iseloomustamiseks võrreldakse kasvu uuritavas lahuses kasvuga kontroll-lahuses ja määratakse kontsentratsioon, mis põhjustab kasvukiiruse pidurdumise teatava x % (nt 50 %) võrra; selle kontsentratsiooni tähis on ECx (nt EC50).
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as logarithmic increase in the measurement variable (average specific growth rate) during the exposure period.
Katsetulem on kasvu pidurdumine, kusjuures kasvu väljendatakse mõõtemuutuja väärtuse logaritmi suurenemisena kokkupuuteaja jooksul (keskmine kasvu erikiirus).
An additional response variable used in this Testing Method is yield, which may be needed to fulfil specific regulatory requirements in some countries.
Lisaks kasutatakse käesoleva meetodi korral kostemuutujana veel saagist, mida võib vaja olla teatavates riikides kehtestatud erieeskirjade täitmiseks.
It is defined as the measurement variables at the end of the exposure period minus the measurement variables at the start of the exposure period.
Saagis on kokkupuuteaja lõpus ja alguses määratud mõõtemuutujate väärtuste vahe.
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the substance in the test medium, should be available.
Uuritava aine sisalduse määramiseks katsekeskkonnas peab olema piisavalt tundlik analüüsimeetod.
Information on the test substance which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity, water solubility, stability in water and light, pKa, Kow, vapour pressure and biodegradability.
Katsetingimuste valimisel võib olla kasulik teada järgmisi uuritavat ainet iseloomustavaid näitajaid: struktuurivalem, puhtusaste, lahustuvus vees, püsivus vees, valguskindlus, pKa, Kow, aururõhk ja biolagundatavus.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry’s Law constant, which will indicate if significant losses of the test substance during the test period are likely.
Lahustuvust vees ja aururõhku võib kasutada Henry konstandi arvutamiseks, mis näitab, kas katse ajal on tõenäoline märkimisväärne uuritava aine kadu.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
See aitab selgitada, kas aine kao ärahoidmiseks on vaja erimeetmeid.
Where information on the solubility and stability of the test substance is uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Kui andmeid aine lahustuvuse ja püsivuse kohta on vähe, soovitatakse hinnata neid omadusi katsetingimustes, s.o sama toitelahuse, temperatuuri ja valgusrežiimi puhul nagu katseski.
When pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or substances which are hydrolytically unstable, the addition of a buffer to the growth medium is recommended (see first paragraph in section 1.7.4).
Kui katsekeskkonna pH reguleerimine on eriti tähtis, nt hüdrolüütiliselt ebapüsivate metallide või muude ainete mõju uurimisel, soovitatakse katselahusele lisada puhvrit (vt punkt 1.7.4, esimene lõik).
Further guidance for testing substances with physicochemical properties that make them difficult to test is provided in (11).
Täiendavad juhised selliste ainete mõju uurimiseks, mille füüsikalis-keemilised omadused raskendavad seda uurimist, on esitatud publikatsioonis (11).
Reference substance(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (10), may be tested as a means of checking the test procedure.
Katse korrektse läbiviimise kontrollimiseks võib kasutada rahvusvahelistes võrdluskatsetes (10) kasutatavaid standardaineid, näiteks 3,5-diklorofenooli.
It is advisable to test a reference substance at least twice a year or, where testing is carried out at a lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test substance.
Kontrolli standardainega soovitatakse teha vähemalt kaks korda aastas või, kui katseid tehakse harvemini, siis paralleelselt uuritava aine toksilisuse määramisega.
For the test to be valid, the doubling time of frond number in the control must be less than 2,5 days (60 h), corresponding to approximately a seven-fold increase in seven days and an average specific growth rate of 0,275 d–1.
Et katse vastaks nõuetele, peab tallusjate võsude arvu kahekordistumise aeg kontrollkultuuride puhul olema alla 2,5 ööpäeva (alla 60 tunni), mis vastab ligikaudu seitsmekordsele kasvule seitsme ööpäeva jooksul ja keskmisele kasvu erikiirusele 0,275 ööpäev–1.
Using the media and test conditions described in this Testing Method, this criterion can be attained using a static test regime (8).
Käesolevas metoodikas kirjeldatud toitelahuste ja katsetingimuste puhul võib seda kriteeriumi täita staatilise katse tingimustes (8).
It is also anticipated that this criterion will be achievable under semi-static and flow-through test conditions.
Oletatavalt saab seda kriteeriumi täita ka poolstaatilise ja läbivoolukatse tingimustes.
Calculation of the doubling time is shown in section 2.1.
Kahekordistumisaja arvutamist on selgitatud punktis 2.1.
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
Kõik katsekeskkonnaga kokku puutuvad seadmed peavad olema valmistatud klaasist või muust keemiliselt inertsest materjalist.
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
Kultuuride kasvatamiseks ja katseteks kasutatavad klaasnõud peavad olema steriilsed ja puhastatud keemilistest saasteainetest, mis võiksid leostuda katsekeskkonda.
The test vessels should be wide enough for the fronds of different colonies in the control vessels to grow without overlapping at the end of the test.
Katsenõud peavad olema piisavalt laiad, et kontrollnõudes kasvavad eri kolooniate tallusjad võsud katse lõpus ei hakkaks üksteist katma.
It does not matter if the roots touch the bottoms of the test vessels, but a minimum depth of 20 mm and minimum volume of 100 ml in each test vessel is advised.
Ei ole tähtis, kas juured puudutavad katsenõu põhja, kuid on soovitatav, et nõu sügavus oleks vähemalt 20 mm ja maht vähemalt 100 ml.
The choice of test vessels is not critical as long as these requirements are met.
Kui need tingimused on täidetud, ei ole nõu tüübi valik tähtis.
Glass beakers, crystallising dishes or glass petri dishes of appropriate dimensions have all proved suitable.
Sobivad nii nõuetekohaste mõõtmetega keeduklaasid, kristallisaatorid kui ka klaasist Petri tassid.
Test vessels must be covered to minimise evaporation and accidental contamination, while allowing necessary air exchange.
Katsenõud peavad olema kaetud, et vähendada keskkonna aurumist ja juhuslikku saastumist, kuid samal ajal peab olema tagatud vajalik õhuvahetus.
Suitable test vessels, and particularly covers, must avoid shadowing or changes in the spectral characteristics of light.
Nõuetekohased katsenõud ja eriti nende kaaned ei tohi varjata valgust või muuta selle spektrit.
The cultures and test vessels should not be kept together.
Kultuure ja katsenõusid ei hoita koos.
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
Sellepärast on kõige parem kasutada eraldi fütotrone, inkubaatoreid või kasvukambreid.
Illumination and temperature must be controllable and maintained at a constant level (see section 1.7.8).
Valguse intensiivsus ja temperatuur peavad olema reguleeritavad ja need hoitakse konstantsed (vt punkt 1.7.8).
Test organism
Katseorganismid
The organism used for this test is either Lemna gibba or Lemna minor.
Käesolevas katses kasutatakse katseorganismina küürlemmelt (Lemna gibba) või väikest lemmelt (Lemnaminor).
Short descriptions of duckweed species that have been used for toxicity testing are given in Appendix 1.
Mürgisuse katsetes kasutatavate lemleliikide lühikirjeldus on esitatud 1. liites.
Plant material may be obtained from a culture collection, another laboratory or from the field.
Taimmaterjali võib saada kultuuride kollektsioonist, teisest laborist või loodusest.
If collected from the field, plants should be maintained in culture in the same medium as used for testing for a minimum of eight weeks prior to use.
Loodusest kogutud materjali kasvatatakse enne kasutamist vähemalt kaheksa nädalat kultuuris samas toitelahuses, mida kasutatakse katsetes.
Field sites used for collecting starting cultures must be free of obvious sources of contamination.
Loodusliku lähtekultuuri kogumiskohta ei tohi mõjutada ilmsed saasteallikad.
If obtained from another laboratory or from a culture collection they should be similarly maintained for a minimum of three weeks.
Teisest laborist või kultuuride kollektsioonist saadud taimmaterjali kasvatatakse enne kasutamist samal viisil vähemalt kolm nädalat.
The source of plant material and the species and clone (if known) used for testing should always be reported.
Taimmaterjali allikas ning kasutatud liik ja kloon (kui see on teada) märgitakse katseprotokolli.
Monocultures, that are visibly free from contamination by other organisms such as algae and protozoa, should be used.
Tuleb kasutada monokultuure, mis ei ole nähtavalt saastatud muude organismidega, nagu vetikad või algloomad.
Healthy plants of L. minor will consist of colonies comprising between two and five fronds, whilst healthy colonies of L. gibba may contain up to seven fronds.
Väikese lemle, L. minor’i terve taim moodustab 2–5 tallusjast võsust koosneva koloonia; küürlemle, L. gibba terve koloonia võib koosneda kuni seitsmest tallusjast võsust.
The quality and uniformity of the plants used for the test will have a significant influence on the outcome of the test and should therefore be selected with care.
Katses kasutatavate taimede kvaliteet ja ühetaolisus mõjutavad märkimisväärselt katsetulemust, sellepärast tuleb need valida hoolikalt.
Young, rapidly growing plants without visible lesions or discoloration (chlorosis) should be used.
Kasutatakse noori kiirekasvulisi taimi, millel pole nähtavaid kahjustusi või värvidefekte (kloroos).
Good quality cultures are indicated by a high incidence of colonies comprising at least two fronds.
Hea kvaliteediga kultuuris on rohkesti vähemalt kahest tallusjast võsust koosnevaid kolooniaid.
A large number of single fronds is indicative of environmental stress, e.g. nutrient limitation, and plant material from such cultures should not be used for testing.
Üksikute tallusjate võsude rohkus osutab keskkonnastressile (nt toitainete vaegus); sellisest kultuurist saadud taimmaterjali ei tohi katses kasutada.
Cultivation
Kasvatamine
To reduce the frequency of culture maintenance (e.g. when no Lemna tests are planned for a period), cultures can be held under reduced illumination and temperature (4-10 °C).
Kultuuri hooldamissageduse vähendamiseks (nt kui teatava aja jooksul ei kavandata katseid Lemna’ga) võib kultuure hoida vähendatud valgustatuse ja madala temperatuuri (4–10 °C) juures.
Details of culturing are given in Appendix 2.
Kasvatamise üksikasjad on esitatud 2. liites.
Obvious signs of contamination by algae or other organisms will require surface sterilisation of a sub-sample of Lemna fronds, followed by transfer to fresh medium (see Appendix 2).
Vetikate või muude organismidega saastumise tunnuste ilmnemisel tuleb lemle tallusjate võsude osaproov pindmiselt steriliseerida ja seejärel üle kanda värskesse toitelahusesse (vt 2. liide).
In this eventuality, the remaining contaminated culture should be discarded.
Ülejäänud saastunud kultuur visatakse sel juhul ära.
At least seven days before testing, sufficient colonies are transferred aseptically into fresh sterile medium and cultured for 7-10 days under the conditions of the test.
Vähemalt seitse päeva enne katset kantakse piisav arv kolooniaid aseptiliselt värskesse steriilsesse toitelahusesse ja neid kasvatatakse katsetingimustes 7–10 ööpäeva jooksul.
Careful consideration should be given to the inclusion of a pH buffer in the test medium (MOPS (4-morpholinepropane sulphonic acid, CAS No: 1132-61-2; EINECS No: 214-478-5) in L. minor medium and NaHCO3 in L. gibba medium) when it is suspected that it might react with the test substance and influence the expression of its toxicity.
Väikese lemle ja küürlemle puhul soovitatakse kasutada allpool kirjeldatud toitelahuseid. pH-d reguleeriva puhvri lisamist toitelahusesse tuleb hoolikalt kaaluda, kui oletatakse, et puhver võib reageerida uuritava ainega ja mõjutada toksilisuse avaldumist (väikese lemle toitelahusesse lisatakse 4-morfoliinpropaansulfoonhapet, CASi nr 1132–61–2; EINECSi nr 214–478–5, küürlemle toitelahusesse lisatakse NaHCO3).
Steinberg Medium (12) is also acceptable as long as the validity criteria are met.
Võib kasutada ka Steinbergi toitelahust (12), kui nõuetele vastavuse kriteeriumid on täidetud.
A modification of the Swedish standard (SIS) Lemna growth medium is recommended for culturing and testing with L. minor.
Väikese lemle kasvatamiseks ja sellega katsete tegemiseks soovitatakse kasutada Rootsi standardiga (SIS) lemle kasvatamiseks ette nähtud toitelahuse modifikatsiooni.
The composition of this medium is given in Appendix 3.
Selle toitelahuse koostis on esitatud 3. liites.
The growth medium, 20X — AAP, as described in Appendix 3, is recommended for culturing and testing with L. gibba.
Küürlemle kasvatamiseks ja sellega katsete tegemiseks soovitatakse kasutada 3. liites kirjeldatud toitelahust 20X-AAP.