natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Safety/precautions
Turvalisus/ettevaatusabinõud
Personal exposure to airborne fibres should be minimised and a fume cupboard or glove box should be used for handling the dry fibres.
Isiklikku kokkupuudet õhus sisalduvate kiududega tuleks minimeerida ja kuivkiudude käsitsemisel tuleks kasutada tõmbekappi või laminaarboksi.
Periodic personal exposure monitoring should be carried out to determine the effectiveness of the control methods.
Kontrollmeetodite tõhususe kindlaksmääramiseks tuleks läbi viia korrapärast isikliku kokkupuute seiret.
When handling MMMF’s disposable gloves should be worn to reduce skin irritation and to prevent cross-contamination.
MMMFide käsitsemisel tuleb nahaärrituse vähendamiseks ja ristsaastumise ärahoidmiseks kanda ühekordselt kasutatavaid kindaid.
Apparatus/equipment
Seadmed/vahendid
Press and dyes (capable of producing 10 MPa).
Press ja pressvormid (võimelised tekitama 10 MPa).
0,2 μm pore size polycarbonate capillary pore filters (25 mm diameter).
0,2 μm poorisuurusega polükarbonaat-kapillaarfiltrid (25 mm diameetriga).
5 μm pore size cellulose ester membrane filter for use as a backing filter.
5 μm poorisuurusega tselluloos-ester membraanifilter tugifiltrina kasutamiseks.
Glass filtration apparatus (or disposable filtration systems) to take 25 mm diameter filters (e.g. Millipore glass microanalysis kit, type No XX10 025 00).
Klaasist filtreermisseadmed (või ühekordselt kasutatavad filtreerimissüsteemid) 25 mm diameetriga filtritele (nt Millipore’i klaasist mikroanalüüsikomplekt, tüüp nr XX10 025 00).
Freshly distilled water that has been filtered through a 0,2 μm pore size filter to remove micro-organisms.
Värskelt destilleeritud vesi, mis on mikroorganismide eemaldamiseks lastud läbi 0,2 μm poorisuurusega filtri.
Sputter coater with a gold or gold/palladium target.
Pihusti kuld- või kuld/pallaadiumotsaga.
Scanning electron microscope capable of resolving down to 10 nm and operating at × 10000 magnification.
Skaneeriv elektronmikroskoop lahutamisvõimega kuni 10 nm ja 10000-kordse suurendusega.
Miscellaneous: spatulas, type 24 scalpel blade, tweezers, SEM tubes, carbon glue or carbon adhesive tape, silver dag.
Muu: spaatlid, tüüp 24, skalpellitera, pintsetid, SEMi torud, süsinikliim või süsinikteip, kolloidhõbe.
Ultrasonic probe or bench top ultrasonic bath.
Ultrahelisond või lauale asetatav ultrahelivann.
Core sampler or cork borer, for taking core samples from MMMF blanket.
Südamiku proovivõtuvahend või korgipuur südamikuproovide võtmiseks MMMFide kihist.
Test Procedure
Katsemenetlus
For blankets and bats a 25 mm core sampler or cork borer is used to take samples of the cross-section.
Mineraalvilla ja villaku puhul kasutatakse ristlõikest proovide võtmisel 25 mm südamikuproovide võtmise vahendit või korgipuuri.
These should be equally spaced across the width of a small length of the blanket or taken from random areas if long lengths of the blanket are available.
Proovid peaksid olema võrdselt jaotatud kihi laiuse ulatuses või võetud suvalistest kohtadest, kui käepärast on pikki kihte.
The same equipment can be used to extract random samples from loose fibre.
Samade vahendite abil on võimalik eraldada juhuslikke proove lahtisest kiust.
Six samples should be taken when possible, to reflect spatial variations in the bulk material.
Võimaluse korral tuleks ruumiliste variatsioonide peegeldamiseks lahtises materjalis võtta kuus proovi.
The six core samples should be crushed in a 50 mm diameter dye at 10 MPa.
Kuus südamikuproovi purustatakse 50 mm läbimõõduga vormis 10 MPa juures.
Sample Preparation
Proovi ettevalmistamine
If necessary, organic binder can be removed by placing the fibre inside a furnace at 450 °C for about one hour.
Orgaanilist sideainet saab vajaduse korral eemaldada, asetades kiu umbes tunniks 450 °C sulatusahju.
Cone and quarter to subdivide the sample (this should be done inside a dust cupboard).
Proovi jaotamiseks vormitakse see koonuseks ja lõigatakse see neljaks (seda tuleks teha tolmukapis).
Using a spatula, add a small amount (< 0,5 g) of sample to 100 ml of freshly distilled water that has been filtered through a 0,2 μm membrane filter (alternative sources of ultra pure water may be used if they are shown to be satisfactory).
Spaatli abil lisatakse väike hulk (< 0,5 g) proovist 100 ml värskelt destilleeritud veele, mis on lastud läbi 0,2 μm membraaniga filtri (alternatiivina võib kasutada ultrapuhast vett muudest allikatest, kui need vastavad nõuetele).
Disperse thoroughly by the use of an ultrasonic probe operated at 100 W power and tuned so that cavitation occurs.
Proov hajutatakse põhjalikult ultrahelisondi abil 100 W võimsuse juures ja seda pööratakse nii, et tekiks kavitatsioon.
(If a probe is not available use the following method: repeatedly shake and invert for 30 seconds; ultrasonic in a bench top ultrasonic bath for five minutes; then repeatedly shake and invert for a further 30 seconds.)
(Kui sondi pole käepärast, kasutada järgmist meetodit: proovi raputatakse ja pööratakse korduvalt ümber 30 sekundi jooksul; hoitakse viis minutit lauale asetatavas ultrahelivannis; seejärel raputatakse ja pööratakse korduvalt veel 30 sekundi jooksul).
Immediately after dispersion of the fibre, remove a number of aliquots (e.g. three aliquots of 3, 6 and 10 ml) using a wide-mouthed pipette (2-5 ml capacity).
Kohe pärast kiu hajutamist eemaldatakse teatud arv alikvoote (näit kolm 3, 6 ja 10 ml alikvooti), kasutades laiasuulist pipetti (2–5 ml mahutavusega).
Vacuum filter each aliquot through a 0,2 μm polycarbonate filter supported by a 5 µm pore MEC backing filter, using a 25 mm glass filter funnel with a cylindrical reservoir.
Iga alikvoot vaakumfiltreeritakse läbi 0,2 μm polükarbonaatfiltri, mida toetab 5 µm poorisuurusega MEC-tugifilter, kasutades 25 mm klaasist filterlehtrit silindrilise mahutiga.
Approximately 5 ml of filtered distilled water should be placed into the funnel and the aliquot slowly pipetted into the water holding the pipette tip below the meniscus.
Umbkaudu 5 ml filtreeritud destilleeritud veest tuleks asetada lehtrisse ja alikvoot aeglaselt vette pipettida, hoides pipetiotsa allpool meniskit.
The pipette and the reservoir must be flushed thoroughly after pipetting, as thin fibres have a tendency to be located more on the surface.
Peale pipettimist tuleb pipett ja veemahuti põhjalikult läbi loputada, kuna peenikesed kiud kipuvad jääma pinnale.
Carefully remove the filter and separate it from the backing filter before placing it in a container to dry.
Filter eemaldatakse hoolikalt ja eraldatakse see tugifiltrist enne mahutisse kuivama asetamist.
Cut a quarter or half filter section of the filtered deposit with a type 24 scalpel blade using a rocking action.
Filtreeritud osast lõigatakse veerand või pool tüüp 24 skalpelliga edasi-tagasi liigutuste abil.
Carefully attach the cut section to a SEM stub using a sticky carbon tab or carbon glue.
Lõigatud osa kinnitatakse ettevaatlikult SEMi esemelaua külge süsinikteibi või süsinikliimi abil.
Silver dag should be applied in at least three positions to improve the electrical contact at the edges of the filter and the stub.
Kolloidhõbedat tuleks lisada vähemalt kolme kohta, et parandada elektrilist kontakti filtri ja esemelaua äärtel.
When the glue/silver dag is dry, sputter coat approximately 50 nm of gold or gold/palladium onto the surface of the deposit.
Kui liim/kolloidhõbe on kuiv, pihustada proovi pinnale umbes 50 nm kulla või kulla/pallaadiumi kiht.
SEM calibration and operation
SEMi kalibreerimine ja kasutamine
The SEM calibration should be checked at least once a week (ideally once a day) using a certified calibration grid.
SEMi kalibreerimist tuleks kontrollida vähemalt kord nädalas (ideaaljuhul kord päevas), kasutades sertifitseeritud kalibreerimisvõret.
The calibration should be checked against a certified standard and if the measured value (SEM) is not within ±2 % of the certified value, then the SEM calibration must be adjusted and re-checked.
Kalibreerimist tuleks kontrollida sertifitseeritud standardi alusel ja kui mõõdetud väärtus (SEM) ei jää ±2 % sisse sertifitseeritud väärtusest, siis tuleb SEM-kalibreerimist kohandada ja uuesti kontrollida.
The SEM should be capable of resolving at least a minimum visible diameter of 0,2 µm, using a real sample matrix, at a magnification of × 2000.
SEM peaks olema võimeline lahendama vähemalt minimaalselt nähtava diameetri 0,2 µm, kasutades tegelikku proovimaatriksit, 2000-kordse suurendusega.
Operation
Kasutamine
The SEM should be operated at 10000 magnification [2] using conditions that give good resolution with an acceptable image at slow scan rates of, for example, 5 seconds per frame.
SEM peaks töötama 10000-kordse suurenduse [2] juures tingimustel, mis annavad hea lahutusvõime lubatava kujutise aeglasel skaneerimiskiirusel, näiteks 5 sekundit kaadri kohta.
Although the operational requirements of different SEMs may vary, generally to obtain the best visibility and resolution, with relatively low atomic weight materials, accelerating voltages of 5-10 keV should be used with a small spot size setting and short working distance.
Kuigi erinevate SEMide kasutamisnõuded võivad varieeruda, tuleks suhteliselt väikese aatommassiga materjalide korral üldiselt parima nähtavuse ja resolutsiooni saavutamiseks kasutada kiirendavat pinget 5–10 keV, väikest laotuspunkti seadistust ja lühikest töökaugust.
As a linear traverse is being conducted, then a 0° tilt should be used to minimise re-focussing or, if the SEM has a eucentric stage, the eucentric working distance should be used.
Lineaarse skaneerimise puhul tuleb kasutada 0o kallet, et minimeerida refokuseerimine, või kui SEMil on võimalik kohaldada kõrgust, tuleks kasutada kohaldatud kõrgusega töökaugust.
Lower magnification may be used if the material does not contain small (diameter) fibres and the fibre diameters are large (> 5 μm).
Võib kasutada väiksemat suurendust, kui materjal ei sisalda väikseid (väikese diameetriga) kiude ja kiudude diameeter on suur (> 5 μm).
Sizing
Suuruse järgi sorteerimine
Low magnification examination to assess the sample
Väikese suurendusega uurimine proovi hindamiseks
Initially the sample should be examined at low magnification to look for evidence of clumping of large fibres and to assess the fibre density.
Algselt tuleks proovi uurida väikese suurendusega, et otsida tõendust suurte kiudude pundarde kohta ning hinnata kiutihedust.
In the event of excessive clumping it is recommended that a new sample is prepared.
Juhul kui moodustub liiga palju puntraid, on soovitatav ette valmistada uus proov.
For statistical accuracy it is necessary to measure a minimum number of fibres and high fibre density may seem desirable as examining empty fields is time consuming and does not contribute to the analysis.
Statistilise täpsuse jaoks on vaja mõõta miinimumarv kiude ja suur kiutihedus võib tunduda soovitav, kuna tühjade väljade uurimine on aeganõudev ega oma analüüsi jaoks väärtust.
However, if the filter is overloaded, it becomes difficult to measure all the measurable fibres and, because small fibres may be obscured by larger ones, they may be missed.
Kui aga filter on üle koormatud, muutub kõigi mõõdetavate kiudude mõõtmine siiski raskeks, ja kuna väikesed kiud võivad jääda suuremate varju, võivad need jääda kahe silma vahele.
Bias towards over estimating the LWGMD may result from fibre densities in excess of 150 fibres per millimetre of linear traverse.
Kalduvus LWGMD ülehindamisele võib tuleneda kiutihedustest enam kui 150 kiudu millimeetri kohta lineaarse sammu puhul.
On the other hand, low fibre concentrations will increase the time of analysis and it is often cost effective to prepare a sample with a fibre density closer to the optimum than to persist with counts on low concentration filters.
Teisest küljest pikendab väike kiukontsentratsioon analüüsi aega ja sageli on mõistlikum valmistada ette proov, mille kiutihendus on lähedasem optimaalsele, kui jätkata madala kontsentratsiooniga filtrite loendamist.
The optimum fibre density should give an average of about one or two countable fibre per fields of view at 5000 magnification.
Optimaalne kiutihedus peaks andma keskmiselt üks või kaks loendatavat kiudu vaatevälja kohta 5000-kordse suurendusega.
Nevertheless the optimum density will depend on the size (diameter) of the fibres, so it is necessary that the operator uses some expert judgement in order to decide whether the fibre density is close to optimal or not.
Siiski sõltub optimaalne tihedus kiudude suurusest (diameetrist), nii et on vajalik, et operaator kasutaks teatavat eksperdihinnangut otsustamaks, kas kiu tihedus on optimaalse lähedane või mitte.
Length weighting of the fibre diameters
Kiu diameetri kaalumine pikkuse järgi
Only those fibres that touch (or cross) an (infinitely) thin line drawn on the screen of the SEM are counted.
Loendatakse vaid kiude, mis puudutavad (lõpmatult) peenikest SEMi ekraanile tõmmatud joont (või lõikuvad sellega).
For this reason a horizontal (or vertical) line is drawn across the centre of the screen.
Selleks on ekraani keskele tõmmatud horisontaalne (või vertikaalne) joon.
Alternatively a single point is placed at the centre of the screen and a continuous scan in one direction across the filter is initiated.
Alternatiivina võib ekraani keskele asetada üksiku punkti ja alustada pidevat skaneeringut ühes suunas üle filtri.
Each fibre of aspect ratio grater than 3:1 touching or crossing this point has its diameter measured and recorded.
Mõõdetakse ja salvestatakse iga sellise kiu diameeter, mille formaadisuhe on suurem kui 3:1 ja mis puudutab või ületab seda punkti.
Fibre sizing
Kiudude sorteerimine suuruse järgi
It is recommended that a minimum of 300 fibres are measured.
Soovitav on mõõta minimaalselt 300 kiudu.
Each fibre is measured only once at the point of intersection with the line or point drawn on the image (or close to the point of intersection if the fibre edges are obscured).
Iga kiudu mõõdetakse ainult korra ja selles punktis, kus ta lõikub kujutisele paigutatud joone või punktiga (või lõikumiskoha lähedal, kui kiu servad on hägused).
If fibres with non-uniform cross sections are encountered, a measurement representing the average diameter of the fibre should be used.
Kui leidub ebaühtlase põiklõikega kiude, tuleks kasutada mõõtmist, mis vastab kiu keskmisele diameetrile.
Care should be taken in defining the edge and measuring the shortest distance between the fibre edges.
Hoolikas tuleb olla kiuservade määratlemisel ja nendevahelise lühima kauguse mõõtmisel.
Sizing may be done on line, or off-line on stored images or photographs.
Sorteerimist võib läbi viia on-line või off-line salvestatud kujutistel või fotodel.
Semi-automated image measurement systems that download data directly into a spreadsheet are recommended, as they save time, eliminate transcription errors and calculations can be automated.
Soovitatav on kasutada poolautomatiseeritud kujutise mõõtmise süsteeme, mis laadivad andmed otse arvutustabelisse, kuna need säästavad aega ja välistavad ümberkirjutusvead ning arvutusi on võimalik automatiseerida.
The ends of long fibres should be checked at low magnification to ensure that they do not curl back into the measurement field of view and are only measured once.
Pikkade kiudude otsi tuleks kontrollida väikese suurendusega, et välistada nende tagasikeerdumine mõõtmise vaatevälja ja tagada, et neid mõõdetakse ainult üks kord.
TREATMENT OF RESULTS
ANDMETE TÖÖTLEMINE
Fibre diameters do not usually have a normal distribution.
Kiudiameetritel ei esine tavaliselt normaaljaotust.
However, by performing a log transformation it is possible to obtain a distribution that approximates to normal.
Siiski on logaritmteisenduse abil võimalik saavutada normaaljaotusele lähenev jaotus.
Calculate the arithmetic mean (mean lnD) and the standard deviation (SDlnD) of the log to base e values (lnD) of the n fibre diameters (D).
Arvutatakse n kiudiameetri (D) naturaallogaritmide (lnD) aritmeetiline keskmine (keskmine lnD) ja standardhälve (SDlnD).
mean lnD = ΣlnD
keskmine lnD = ΣlnD
The standard deviation is divided by the square root of the number of measurements (n) to obtain the standard error (SElnD).
Standardhälve jagatakse mõõtmiste arvu (n) ruutjuurega, et saada standardviga (SElnD).
Subtract two times the standard error from the mean and calculate the exponential of this value (mean minus two standard errors) to give the geometric mean minus two geometric standard errors.
Keskmisest lahutatakse kahekordne standardviga ja arvutatakse selle väärtuse eksponent (keskmine miinus kaks standardviga), et saada geomeetriline keskmine miinus kaks geomeetrilist standardviga.
The test report should include at least the following information:
Katsearuanne peaks sisaldama vähemalt järgmist teavet:
The value of LWGMD-2SE.
avaldise LWGMD – 2SE väärtus;
Any deviations and particularly those which may have an effect on the precision or accuracy of the results with appropriate justifications.
mis tahes hälbed ja eriti need, mis võivad avaldada mõju tulemuste täpsusele, koos piisavate põhjendustega.
REFERENCES
KIRJANDUSVIITED
Tylee SOP MF 240.
Tylee SOP MF 240. Health and Safety Executive.
Health and Safety Executive, February 1999.
Veebruar 1999.
Project R42.75 HPD.
Project R42.75 HPD. Health and Safety Executive. Research and Laboratory Services Division.
This magnification value is indicated for 3 µm fibres, for 6 µm fibres a magnification of × 5000 may be more suitable.
See suurendusväärtus kehtib 3 µm kiu puhul, 6 µm kiu puhul võib 5000-kordne suurendus olla sobivam.
For 3 μm fibres, see previous note.
3 μm kiudude korral vt eelmist märkust.
IN VITRO SKIN IRRITATION: RECONSTRUCTED HUMAN EPIDERMIS MODEL TEST
IN VITRO NAHAÄRRITUSKATSE: KATSE REKONSTRUEERITUD INIMEPIDERMISE MUDELIGA
Skin irritation refers to the production of reversible damage to the skin following the application of a test substance for up to 4 hours [as defined by the United Nations (UN) Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS)](1).
Nahaärritus / nahka ärritav toime tähendab pöörduva nahakahjustuse tekitamist kuni neljatunnisel kokkupuutel uuritava ainega (nagu on määratletud ÜRO ühtses ülemaailmses kemikaalide klassifitseerimise ja märgistamise süsteemis (GHS)) (1).
This Test Method provides an in vitro procedure that, depending on information requirements, may allow determining the skin irritancy of substances as a stand-alone replacement test within a testing strategy, in a weight of evidence approach (2).
Käesolevas katsemeetodis on esitatud in vitro meetod, millega saab, olenevalt vajatavast teabest, määrata ainete põhjustatavat nahaärritust katsestrateegiale vastava iseseisva asendustestina, kasutades tõendusmaterjali kaalukuse hindamise lähenemisviisi (2).
The assessment of skin irritation has typically involved the use of laboratory animals (See Method B.4)(3).
Nahka ärritava toime hindamisel on tavaliselt kasutatud laboriloomi (vt meetod B.4) (3). Loomade heaolu tagamise vajadust arvestades saab meetodiga B.4 määrata nahka söövitavat või ärritavat toimet, kohaldades järjestikuste katsete strateegiat, milleks kasutatakse valideeritud in vitro ja ex vivo meetodeid, et vältida loomadele valu ja kannatuste põhjustamist.
In relation to animal welfare concerns, method B.4 allows for the determination of skin corrosion/irritation by applying a sequential testing strategy, using validated in vitro and ex vivo methods, thus avoiding pain and suffering of animals.
Meetodi B.4 järjestikuste katsete strateegia rakendamisel saab söövitamise uurimiseks kasutada kolme valideeritud in vitro katsemeetodit või -eeskirja: B.40, B.40bis ja TG 435 (4, 5, 6).
The procedure described under this Test Method allows the hazard identification of irritant substances in accordance with UN GHS category 2.
Käesolevas katsemeetodis kirjeldatud menetlusega on võimalik kindlaks määrata ÜRO GHS-süsteemi 2. kategooriale vastavate ärritavate ainetega seotud ohud.
This Test Method also includes a set of performance standards for the assessment of similar and modified reconstructed human epidermis based test methods (7).
Käesolevas katsemeetodis on esitatud ka rida tulemuslikkuse nõudeid rekonstrueeritud inimepidermisel põhinevate sarnaste ja modifitseeritud katsemeetodite hindamiseks (7).
Prevalidation, optimisation and validation studies have been completed for two in vitro test methods (8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17), commercially available as EpiSkin™ and EpiDerm™, using reconstructed human epidermis models.
Rekonstrueeritud inimepidermise mudelite kasutamisel põhinevatest in vitro katsemeetoditest (8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17) on kahe meetodi eelvalideerimise, optimeerimise ja valideerimise uuringud lõpetatud ning need kaks meetodit, EpiSkin™ ja EpiDerm™, on müügil.
These references were based on R 38.
Nimetatud standardmeetodid põhinesid R 38-l.
Certain aspects of recalculation for the purposes of GHS are addressed in reference 25.
GHS-süsteemi kasutamiseks vajalike ümberarvutuste teatavaid aspekte on käsitletud viites 25.
Methods with a performance equivalent to EpiSkin™ (validated reference method 1) are recommended as a stand alone replacement test method for the rabbit in vivo test for classifying GHS category 2 irritant substances.
Meetodeid, mille tulemused on samaväärsed meetodi EpiSkin™ tulemustega (valideeritud standardmeetod 1), soovitatakse iseseisva asendusmeetodina küüliku in vivo katsele, mille alusel klassifitseeritakse GHS-süsteemi 2. kategooria ärritavaid aineid.
Methods with a performance equivalent to EpiDerm™ (validated reference method 2) are only recommended as a screen test method, or as part of a sequential testing strategy in a weight of evidence approach, for classifying GHS category 2 irritant substances.
Meetodeid, mille tulemused on samaväärsed EpiDerm™ (valideeritud standardmeetod 2) tulemustega, soovitatakse GHS-süsteemi 2. kategooria ärritavate ainete klassifitseerimisel ainult sõeluuringumeetodina või tõendusmaterjali kaalukuse hindamise lähenemisviisi järjestikuste katsete strateegia osana.
Before a proposed in vitro reconstructed human epidermis model test for skin irritation can be used for regulatory purposes, its reliability, relevance (accuracy), and limitations for its proposed use should be determined to ensure that it is comparable to that of the validated reference method 1, in accordance with the performance standards set out in this Test Method (Appendix).
Enne kui nahaärrituse mudelkatseks kavandatud in vitro katset rekonstrueeritud inimepidermise mudeliga võib kasutada seadusega ette nähtud katsena, tuleb kindlaks määrata selle usaldusväärsus, asjakohasus (tulemuste täpsus) ja piirangud selle tagamiseks, et meetod on vastavalt käesolevas katsemeetodis esitatud tulemuslikkuse nõuetele (vt liide) võrreldav valideeritud standardmeetodiga 1.
Two other in vitro reconstructed human epidermis test methods, have been validated in accordance with the requirements under this Test Method, and show similar results as the validated reference method 1 (18).
Käesolevas katsemeetodis esitatud nõuete kohaselt on valideeritud veel kaks katsemeetodit, milles kasutatakse in vitro rekonstrueeritud inimepidermise mudelit; osutatud meetodid annavad valideeritud standardmeetodiga 1 sarnaseid tulemusi (18).
These are the modified EpiDerm™ test method (modified reference method 2) and the SkinEthic RHE™ test method (me-too method 1).
Need on modifitseeritud katsemeetod EpiDerm™ (modifitseeritud standardmeetod 2) ja katsemeetod SkinEthic RHE™ (sarnane meetod 1).
The following definitions are applied within this Test Method:
Käesolevas katsemeetodis on kasutatud järgmisi mõisteid.
Accuracy: The closeness of agreement between test method results and accepted reference values.
Täpsus – katsemeetodi tulemuste ja kinnitatud võrdlusväärtuste kooskõla määr.
It is a measure of test method performance and one aspect of relevance.
Täpsus näitab katsemeetodi tulemuslikkust ja on üks asjakohastest aspektidest.
The term is often used interchangeably with ‘concordance’ to mean the proportion of correct outcomes of a test method.
Seda terminit kasutatakse ka vastavuse tähenduses ja see näitab, kui sageli annab katsemeetod õige tulemuse.