natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Add 50 μl of the negative control serum at a dilution of 1 in 5 (10 μl serum + 40 μl blocking buffer) to wells A and B of column 2.
Lisatakse 50 μl negatiivset kontrollseerumit lahjendusastmel 1:5 (10 μl seerumit + 40 μl blokeerivat puhverlahust) veeru 2 aukudesse A ja B.
Add 100 μl/well of blocking buffer to wells C and D of column 2 (blank).
Lisatakse blokeerivat puhverlahust 100 μl augu kohta veeru 2 aukudesse C ja D (tühikatse).
Add 50 μl of blocking buffer to wells E, F, G and H of column 2 (guinea pig control).
Lisatakse 50 μl blokeerivat puhverlahust veeru 2 aukudesse E, F, G ja H (meriseakontroll).
Spot test method
Tilktestmeetod
Add a 1 in 5 dilution of each test serum in blocking buffer to duplicate wells of columns 3 to 12 (10 μl sera + 40 μl blocking buffer).
Blokeerivasse puhverlahusesse lisatakse iga uuritava seerumi lahust lahjendusastmel 1:5, selleks et dubleerida auke veergudes 3–12 (10 μl seerumit + 40 μl blokeerivat puhverlahust).
Serum titration method
Seerumi tiitrimise meetod
Prepare a twofold dilution series of each test sample (1 in 5 to 1 in 640) in blocking buffer across eight wells of single columns (3 to 12).
Blokeerivas puhverlahuses valmistatakse iga uuritava proovi kahekordsete lahjenduste rida, (lahjendusastmelt 1:5 astmeni 1:640), iga veeru (3–12) kaheksas augus.
then
seejärel
Add 50 μl of guinea pig antisera, pre-diluted in blocking buffer, to all wells except the blank wells of the ELISA plate (all wells now contain a final volume of 100 μl).
Lisatakse 50 μl eelnevalt blokeerivas puhverlahuses lahjendatud merisea antiseerumit kõikidesse aukudesse, välja arvatud ELISA plaadi tühikatse aukudesse (kõik augud sisaldavad nüüd 100 μl).
Incubate for 1 hour at 37 °C on an orbital shaker.
Inkubeeritakse orbitaalsegistil 37 °C juures 1 tund.
Wash plates three times and blot dry as before.
Plaate pestakse kolm korda ja kuivatatakse nagu enne.
Add 50 μl of rabbit anti-guinea-pig horseradish peroxidase (HRP) conjugate pre-diluted in blocking buffer to each well.
Igasse auku lisatakse 50 μl eelnevalt blokeerivas puhverlahuses lahjendatud, mädarõika peroksidaasiga (MRP) konjugeeritud küüliku-antimerisea seerumit.
Chromogen
Kromogeen
Prepare the chromogen OPD (OPD = ortho-phenyldiamine) solution according to the manufacturers’ instructions (0,4 mg/ml in sterile distilled water) just before use.
Valmistatakse kromogeeni OFD (OFD = ortofenüüldiamiin) lahus vastavalt tootja juhtnööridele (0,4 mg/ml steriilses destilleeritud vees) vahetult enne kasutamist.
Add substrate (hydrogen peroxide = H2O2) to give a final concentration of 0,05 % (v/v) (1 in 2000 of a 30 % solution of H2O2).
Lisatakse substraat (vesinikperoksiid = H2O2), nii et lõplik kontsentratsioon oleks 0,05-(massi/mahu)protsendiline (1:2000 30-protsendilisest H2O2 lahusest).
Add 50 μl of the OPD solution to each well and leave plates on the bench for 10 minutes at ambient temperature.
Igasse auku lisatakse 50 μl OFD lahust ja plaadid jäetakse 10 minutiks laborilauale ümbritseva õhu temperatuuril seisma.
Stop the reaction by the addition of 50 μl/well of 1M sulphuric acid (H2SO4).
Peatatakse reaktsioon, lisades 50 μl 1M väävelhapet (H2SO4) augu kohta.
Reading
Näit
Read spectrophotometrically at 492 nm.
Leitakse spektrofotomeetriliselt 492 nm juures.
Using a software package print out the optical density (OD) values, and the percentage inhibition (PI) for test and control sera based on the mean value recorded in the four guinea pig control wells.
Arvutiprogrammi abil prinditakse välja uuritava ja kontrollseerumi optilise tiheduse (OT) väärtused ja inhibitsiooni protsent (IP) lähtuvalt neljas augus registreeritud merisea kontrollseerumi keskmisest väärtusest.
The data expressed as OD and PI values are used to determine whether the test has performed within acceptable limits.
OT ja IP väärtusi kasutatakse testi usaldatavuse üle otsustamiseks.
The upper control limits (UCL) and lower control limits (LCL) for the guinea pig control are between OD values 1,4 and 0,4 respectively.
Merisea kontrollseerumi ülemised (ÜPV) ja alumised piirväärtused (APV) jäävad vastavalt OT väärtuste 1,4 ja 0,4 vahele.
The end-point titre for the positive control based on 50 % PI should be 1 in 240 (within a range from 1 in 120 to 1 in 480).
Positiivse kontrolli lõpp-punkti tiiter, mille aluseks on 50 % IP, peaks olema 1:240 (1:120 ja 1:480 vahel).
Any plate that fails to conform to the above criteria must be rejected.
Plaadid, mis ei vasta nimetatud kriteeriumidele, tunnistatakse mitterahuldavaks.
However, if the positive control serum titre is greater than 1 in 480 and the test samples are still negative then the negative test samples can be accepted.
Kui positiivse kontrollseerumi tiiter on suurem kui 1:480 ja uuritavad proovid on endiselt negatiivsed, võib uuritavaid negatiivseid proove aktsepteerida.
The duplicate negative control serum wells and the duplicate blank wells should record PI values between + 25 % and – 25 %, and between + 95 % and + 105 %, respectively.
Dubleeritud negatiivse kontrollseerumi augud ja dubleeritud tühikatse augud peaksid andma IP väärtuse vahemikus vastavalt + 25 % ja – 25 % ning + 95 % ja + 105 %.
Failure to be within these limits does not invalidate the plate but does suggest that background colour is developing.
Kui tulemus jääb väljapoole nimetatud väärtusi, ei tähenda see, et plaat tunnistataks kehtetuks, vaid seda, et taustavärvus veel muutub.
The diagnostic threshold (cut-off value) for test sera is 50 % (PI 50 %).
Uuritava seerumi diagnostika lävi (künnisväärtus) on 50 % (IP 50 %).
Samples recording PI values greater than 50 % are recorded as positive.
Proovid, mille IP väärtused on üle 50 %, registreeritakse positiivsetena.
Samples recording PI values lower than 50 % are recorded as negative.
Proovid, mille IP väärtused on alla 50 %, registreeritakse negatiivsetena.
Samples that record PI values above and below the threshold for the duplicate wells are considered doubtful.
Proove, mille IP väärtused on dubleeritud aukude künnisväärtusest ülal- või allpool, tuleb lugeda kahtlasteks.
Such samples may be re-tested in the spot test and by titration.
Selliseid proove võib uuesti testida tilktestmeetodil või tiitrimise teel.
Positive samples may also be titrated to provide an indication of the degree of positivity.
Positiivseid proove võib samuti tiitrida positiivsuse astme kindlaksmääramiseks.
Spot test layout
Tilktesti skeem
–ve cont negative control.
K– negatiivne kontroll.
+ ve cont positive control.
K+ positiivne kontroll.
GP cont guinea pig control.
MS kontr merisea kontroll.
Test sera
Tilktesti skeem
Blank
Tühikatse
INDIRECT ELISA FOR THE DETECTION OF ANTIBODIES TO AFRICAN HORSE SICKNESS VIRUS (AHSV) (PRESCRIBED TEST)
KAUDNE ELISA TEST ANTIKEHADE AVASTAMISEKS HOBUSTE AAFRIKA KATKU VIIRUSE (HAKV) VASTU (ETTENÄHTUD TEST)
The test described hereinafter is in accordance with the test description in Chapter 2.1.11 of the OIE Manual of Standards for Diagnostic Tests and Vaccines, fourth edition, 2000.
Järgnevalt kirjeldatud test on kooskõlas testikirjeldusega OIE diagnostiliste testide ja vaktsiinide standardite käsiraamatu 2. peatüki lõike 1 punktis 11, neljas väljaanne, 2000.
The recombinant VP7 protein has been used as antigen for AHS virus antibody determination with a high index of sensitivity and specificity.
Rekombinantset VP7 proteiini on kasutatud antigeenina HAK viiruse antikehade avastamiseks; meetod on väga tundlik ja spetsiifiline.
Other advantages are that it is stable and not infective.
Selle proteiini muudeks eelisteks on stabiilsus ja nakkusohutus.
Solid phase
Tugev faas
ELISA plates are coated with recombinant AHSV-4 VP7 diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
ELISA plaadid kaetakse karbonaadi/vesinikkarbonaadi puhverlahuses, pH 9,6, lahjendatud rekombinantse HAKV-4 VP7-ga.
Incubate plates overnight at 4 °C.
Inkubeerida plaate üleöö 4 °C juures.
Wash the plates five times with distilled water containing 0,01 % (v/v) Tween 20 (washing solution).
Pesta plaate viis korda destilleeritud veega, mis sisaldab 0,01 (massi/mahu)protsenti Tween 20 (pesemislahus).
Gently tap the plates onto absorbent material to remove any residual wash.
Pesemisjääkide eemaldamiseks suruda plaate õrnalt vastu kuivatuspaberit.
Block the plates with phosphate buffered saline (PBS) + 5 % (w/v) skimmed milk (Nestlé Dry Skim MilkTM), 200 μl/well, for 1 hour at 37 °C.
Plaadid blokeeritakse fosfaadiga puhverdatud keedusoolalahusega (FPK) + 5 (massi/mahu)protsendilise lõssipulbriga (Nestlé Dry Skim MilkTM), 200 μl augu kohta, ühe tunni jooksul 37 °C juures.
Remove the blocking solution and gently tap the plates onto absorbent material.
Eemaldatakse blokeeriv lahus ja plaadid surutakse ettevaatlikult vastu absorbeerivat materjali.
Serum samples to be tested, and positive and negative control sera, are diluted 1 in 25 in PBS + 5 % (w/v) skimmed milk + 0,05 % (v/v) Tween 20, 100 μl per well.
Uuritavad seerumiproovid ning positiivsed ja negatiivsed kontrollseerumid lahjendatakse vahekorras 1:25 FPK-s + 5 (massi/mahu)protsenti lõssi + 0,05 (massi/mahu)protsenti Tween 20, 100 μl augu kohta.
Incubate for 1 hour at 37 °C.
Inkubeerida 1 tund 37 °C juures.
For titration, make a twofold dilution series from 1 in 25 (100 μl/well), one serum per plate column, and do the same with positive and negative controls.
Tiitrimiseks teha kahekordsete lahjenduste rida alates lahjendusastmest 1:25 (100 μl augu kohta), üks seerum plaadi veeru kohta, ja teha sama positiivse ja negatiivse kontrollseerumiga.
Wash the plates as described in step 2.1.1.2.
Plaadid pestakse nii nagu kirjeldatud etapis 2.1.1.2.
Conjugate
Konjugaat
Dispense 100 μl/well of horseradish-peroxidase (HRP) -conjugated anti-horse gamma-globulin diluted in PBS + 5 % milk + 0,05 % Tween 20, pH 7,2.
Jagatakse välja – 100 μl augu kohta – mädarõika peroksidaasiga (MRP) konjugeeritud antihobuse gammaglobuliini, mis on lahjendatud FPK lahuses + 5 % piima + 0,05 % Tween 20-ga, pH 7,2.
Cromogen/Substrate
Kromogeen/Substraat
Add 200 μl/well of chromogen/substrate solution (10 ml of 80,6 mM DMAB (dimethyl aminobenzaldehyde) + 10 ml of 1,56 mM MBTH (3-methyl-2-benzo-thiazoline hydrazone hydrochlorid) + 5 μl H2O2)
Lisada kromogeeni/substraadi lahust 200 μl augu kohta (10 ml 80,6 mM DMAB (dimetüül aminobensaldehüüd) + 10 ml 1,56 mM MBTH (3-metüül-2-benso-tiasoliin hüdrasoon hüdrokloriid) + 5 μl H2O2).
Colour development is stopped by adding 50 μl of 3N H2SO4 after approximately 5 to 10 minutes (before the negative control begins to be coloured).
Värvaine areng peatatakse umbes 5 kuni 10 minuti pärast (enne kui negatiivne kontrollproov hakkab värvuma), lisades 50 μl 3N H2SO4.
Other chromogens such as ABTS (2,2'-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]), TMB (tetramethyl benzidine), or OPD (ortho-phenyldiamine) can also be used.
Võib kasutada ka teisi kromogeene nagu ABTS (2,2’-Asino-bis-[3-etüülbensotiasoliin-6-sulfoonhape]), TMB (tetrametüül bensidiin) või OFD (ortofenüüldiamiin).
Read the plates at 600 nm (or 620 nm).
Plaatide näitusid loetakse 600 nm juures (või 620 nm).
Interpretation of the results
Tulemuste tõlgendamine
Calculate the cut-off value by adding 0,6 to the value of the negative control (0,6 is the standard deviation derived with a group of 30 negative sera).
Arvestatakse välja künnisväärtus, liites negatiivsele kontrollväärtusele 0,6 (0,6 on standardne kõrvalekalle, mis arvestatakse 30 negatiivse seerumiga grupist).
Test samples giving absorbance values lower than the cut-off are regarded as negative.
Uuritavaid proove, mille absorptsiooniväärtused on allpool künnisväärtust, loetakse negatiivseteks.
Test samples giving absorbance values greater than the cut-off + 0,15 are regarded as positive.
Uuritavaid proove, mille absorptsiooniväärtused on suuremad kui künnisväärtus + 0,15, loetakse positiivseteks.
Test samples giving intermediate absorbance values are doubtful and a second technique must be employed to confirm the result.
Uuritavad proovid, mille absorptsiooniväärtused on negatiivse ja positiivse vahepeal, on kahtlased ja tulemuse kinnitamiseks tuleb rakendada teist meetodit.
BLOCKING ELISA FOR THE DETECTION OF ANTIBODIES TO AFRICAN HORSE SICKNESS VIRUS (AHSV) (PRESCRIBED TEST)
BLOKEERIV ELISA TEST ANTIKEHADE AVASTAMISEKS HOBUSTE AAFRIKA KATKU VIIRUSE (HAKV) VASTU (ETTENÄHTUD TEST)
The blocking ELISA is designed to detect specific AHSV antibodies in sera from any susceptible species.
Blokeeriv ELISA test on ette nähtud spetsiifiliste HAKV antikehade avastamiseks kõikide haigusele vastuvõtlike loomaliikide seerumites.
is the major, antigenic, viral protein of AHSV, and is conserved within the nine serotypes.
on HAKV peamine antigeeniline, viiruseline proteiin, mida leidub üheksas serotüübis.
Because the monoclonal antibody (Mab) is also directed against the VP7, the assay will give a high level of sensitivity and specificity.
Kuna monoklonaalne antikeha (Mak) suunatakse ka VP7 vastu, on analüüs väga tundlik ja spetsiifiline.
Further, the recombinant VP7 antigen is completely innocuous and therefore guarantees a high degree of safety.
Pealegi on rekombinantne VP7 antigeen täiesti kahjutu ning tagab seetõttu kõrge ohutusastme.
The principal of the test is the interruption of the reaction between the recombinant VP7, as the antigen bound to the ELISA plate and the conjugated Mab specific for the VP7.
Testi põhimõtteks on reaktsiooni katkestamine rekombinantse VP7 kui ELISA plaadiga seotud antigeeni ja konjugeeritud Mak’i vahel, mis on spetsiifiline VP7 vastu.
Antibody in the test sera will block the reaction between the antigen and the Mab resulting in a reduction in colour.
Uuritavas seerumis sisalduvad antikehad peatavad reaktsiooni antigeeni ja Mak’i vahel, mille tulemuseks on värvaine vähenemine.
The test described hereinafter is carried out in the European Community Reference Laboratory for African horse sickness in Algete, Spain.
Allpool kirjeldatud testi tehakse Euroopa Ühenduse hobuste aafrika katku referentlaboris Hispaanias Algetes.
ELISA plates
ELISA plaadid
Wash the plates five times with phosphate buffered saline (PBS) containing 0,05 % (v/v) Tween 20 (PBST).
Plaate pestakse viis korda fosfaadiga puhverdatud keedusoolalahusega (FPK), mis sisaldab 0,05 (massi/mahu)protsenti Tween 20 (FPKT).
Stabilise the plate by treatment with a stabilising solution (in order to allow long term storage at 4 °C without loss of activity) and blot dry onto absorbent material.
Plaat stabiliseeritakse, töödeldes seda stabiliseeriva lahusega (et võimaldada plaadi pikaajalist hoidmist 4 °C juures aktiivsust kaotamata) ja kuivatatakse absorbeeriva materjaliga.
Test samples and controls
Uuritavad proovid ja kontroll
For screening dilute test sera and controls 1 in 10 directly on the plate in PBST to give a final volume 100 μl/well.
Varjestuseks uuritav seerum lahjendatakse FPKT lahuses 1:10 otse plaadil, nii et lõplik maht oleks 100 μl augu kohta.
For titration prepare a twofold dilution series of test sera and positive controls (100 μl/well) from 1 in 10 to 1 in 1280 across eight wells.
Tiitrimiseks uuritavast seerumist ja positiivsetest kontrollidest valmistatakse kahekordsete lahjenduste rida (100 μl augu kohta) lahjendusastmelt 1:10 astmeni 1:1280 kaheksas augus.
Negative control is tested at 1 in 10 dilution.
Negatiivset kontrolli testitakse lahjendusastmel 1:10.
Add 50 μl/well of pre-diluted horseradish-peroxidase (HRP) -conjugated Mab (monoclonal antibodies specific for VP7) to each well and mix gently to ensure homogeneity.
Lisatakse eellahjendatud, mädarõika peroksidaasiga (MRP) konjugeeritud Mak’i (monoklonaalsed antikehad VP7 vastu) igasse auku 50 μl augu kohta ja segatakse ettevaatlikult homogeensuse tagamiseks.
Incubate for 30 minutes at 37 °C.
Inkubeeritakse 30 minutit 37 °C juures.
Wash the plates five times with PBST and blot dry as above.
Plaate pestakse viis korda FPKT lahusega ja kuivatatakse nagu eespool kirjeldatud.
Chromogen/Substrate
Kromogeen/Substraat
Add 100 μl/well of chromogen/substrate solution (1 ml of ABTS (2,2′-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]) 5 mg/ml + 9 ml of substrate buffer (0,1 M Phosphate-Citrate buffer of pH 4 containing 0,03 % H2O2] and incubate for 10 minutes at room temperature.
Lisada – 100 μl augu kohta – kromogeen/substraadi lahust [1 ml ABTS (2,2’-Asino-bis-[3-etüülbensotiasoliin-6-sulfoonhape]) 5 mg/ml + 9 ml substraadi puhverlahust (0,1 M fosfaat-tsitraadi puhverlahus, pH 4, mis sisaldab 0,03 % H2O2)] ja inkubeerida 10 minutit toatemperatuuril.
Colour development is stopped by adding 100 μl/well of 2 % (w/v) SDS (sodium dodecyl sulphate).
Värvuse muutumine peatatakse, lisades – 100 μl augu kohta – 2 (massi/mahu)protsenti SDS (naatriumdodetsüülsulfaati).
Read at 405 nm in an ELISA reader.
Näitusid loetakse 405 nm juures ELISA lugeja abil.
Assay validation
Proovide kehtivus
The test is valid when the optical density (OD) of negative control (NC) is higher than 1,0 and the OD of positive control (PC) is lower than 0,2.
Test on kehtiv, kui negatiivse kontrollproovi (NK) optiline tihedus (OT) on üle 1,0 ja positiivse kontrollproovi (PK) OT on alla 0,2.
Cut-off calculation
Künnisväärtuse arvestamine
Positive cut off NC – ((NC – PC) × 0,3)
Positiivne künnisväärtus NK -((NK - PK)× 0,3)
Negative cut off NC – ((NC – PC) × 0,2)
Negatiivne künnisväärtus NK -((NK - PK)× 0,2)
Where, NC is the OD of the negative control and PC the OD of positive control.
kus NK on negatiivse kontrollproovi OT ja PK on positiivse kontrollproovi OT.
Samples with OD lower than positive cut-off should be considered as positives to AHSV antibodies.
Proove, mille OT on positiivsest künnisväärtusest väiksem, loetakse HAKV antikehade suhtes positiivseteks.
Samples with OD higher than negative cut-off should be considered negatives for AHSV antibodies.
Proove, mille OT on negatiivsest künnisväärtusest suurem, loetakse HAKV antikehade suhtes negatiivseteks.
Samples with OD between these two values should be considered doubtful and the animals re-sampled after two to three weeks.
Proove, mille OT jääb nende kahe väärtuse vahele, tuleb lugeda kahtlasteks ja loomadelt tuleb võtta uued proovid kahe või kolme nädala pärast.
(referred to in Article 22)
(artikkel 22)
Council Directive 90/426/EEC
Nõukogu direktiiv 90/426/EMÜ
(OJ L 224, 18.8.1990, p. 42).
(EÜT L 224, 18.8.1990, lk 42).
Council Directive 90/425/EEC
Nõukogu direktiiv 90/425/EMÜ
(OJ L 224, 18.8.1990, p. 29).
(EÜT L 224, 18.8.1990, lk 29).
only Article 15(3)
ainult artikli 15 lõige 3
Council Directive 91/496/EEC
Nõukogu direktiiv 91/496/EMÜ
(OJ L 268, 24.9.1991, p. 56).
(EÜT L 268, 24.9.1991, lk 56).
only as regards the reference to Directive 90/426/EEC in Article 26(2)
ainult viited direktiivile 90/426/EMÜ artikli 26 lõikes 2
Commission Decision 92/130/EEC
Komisjoni otsus 92/130/EMÜ
(OJ L 47, 22.2.1992, p. 26).
(EÜT L 47, 22.2.1992, lk 26).
Council Directive 92/36/EEC
Nõukogu direktiiv 92/36/EMÜ
(OJ L 157, 10.6.1992, p. 28).
(EÜT L 157, 10.6.1992, lk 28).
1994 Act of Accession, Annex I, Point V.E.I.A.3
aasta ühinemisakti I lisa punkt V.E.I.A.3
(OJ C 241, 29.8.1994, p. 132).
(EÜT C 241, 29.8.1994, lk 132).
Commission Decision 2001/298/EC
Komisjoni otsus 2001/298/EÜ
(OJ L 102, 12.4.2001, p. 63).
(EÜT L 102, 12.4.2001, lk 63).
only as regards the reference to Directive 90/426/EEC in Article 1(1), and Annex I, pt. 2
ainult viited direktiivile 90/426/EEC artikli 1 lõikes 1 ja I lisa punktis 2
Commission Decision 2002/160/EC
Komisjoni otsus 2002/160/EÜ
(OJ L 53, 23.2.2002, p. 37).
(EÜT L 53, 23.2.2002, lk 37).
Council Regulation (EC) No 806/2003
Nõukogu määrus (EÜ) No 806/2003
only Annex III, point 10
ainult III lisa punkt 10
2003 Act of Accession, Annex II, Point 6.B.I.16
aasta ühinemisakti II lisa punkt 6.B.I.16
(OJ L 236, 23.9.2003, p. 381).
(ELT L 236, 23.9.2003, lk 381).
Council Directive 2004/68/EC
Nõukogu direktiiv 2004/68/EÜ
(OJ L 139, 30.4.2004, p. 321).
(ELT L 139, 30.4.2004, lk 321).
only Article 15
Ainult artikkel 15
Council Directive 2006/104/EC
Nõukogu direktiiv 2006/104/EÜ
(OJ L 363, 20.12.2006, p. 352).
(ELT L 363, 20.12.2006, lk 352).
only Annex, point I.2.
Ainult lisa punkt I.2.
Council Directive 2008/73/EC
Nõukogu direktiiv 2008/73/EÜ
(OJ L 219, 14.8.2008, p. 40).
(ELT L 219, 14.8.2008, lk 40).
90/426/EEC
90/426/EMÜ
90/425/EEC
90/425/EMÜ
91/496/EEC
91/496/EMÜ
92/36/EEC
92/36/EMÜ
19 November 2005
november 2005
Directive 90/426/EEC
Direktiiv 90/426/EMÜ
Article 2(c)(i) and (ii)
Artikli 2 punkti c alapunktid i ja ii
Article 2(d) to (i)
Artikli 2 punktid d kuni i
Article 4(1), (2) and (3)
Artikli 4 lõiked 1 kuni 3
Article 4(4)(i) and (ii)
Artikli 4 lõike 4 punktid i ja ii
Article 4(4)(a) and (b)
Artikli 4 lõike 4 punktid a ja b
Article 4(5)(a), first to sixth indents
Artikli 4 lõike 5 punkti a esimene kuni kuues taane
Article 4(5)(a)(i) to (vi)
Artikli 4 lõike 5 punkti a alapunktid i kuni vi
Article 4(5)(b)
Artikli 4 lõike 5 punkt b
Article 4(6), first subparagraph, first to eighth indents
Artikli 4 lõike 6 esimese lõigu esimene kuni kaheksas taane
Article 4(6), first subparagraph, (a) to (h)
Artikli 4 lõike 6 esimese lõigu punktid a kuni h
Article 4(6), second and third subparagraphs
Artikli 4 lõike 6 teine ja kolmas lõik
Article 5(2), first subparagraph, (a) and (b)
Artikli 5 lõike 2 esimese lõigu punktid a ja b
Article 5(2), second subparagraph, (a) and (b)
Artikli 5 lõike 2 teise lõigu punktid a ja b
Article 5(3)(a) and (b)
Artikli 5 lõike 3 punktid a ja b
Article 5(5)(a) and (b)
Artikli 5 lõike 5 punktid a ja b
Article 5(3)(c), first and second indents
Artikli 5 lõike 3 punkti c esimene ja teine taane
Article 5(5)(c), first subparagraph, (i) and (ii)
Artikli 5 lõike 5 punkti c esimese lõigu alapunktid i ja ii
Article 5(3)(c), second indent, last sentence
Artikli 5 lõike 3 punkti c teise taande viimane lause
Article 5(5)(c), second subparagraph
Artikli 5 lõike 5 punkti c teine lõik
Article 5(3)(d) and (e)
Artikli 5 lõike 3 punktid d ja e
Article 5(5)(d) and (e)
Artikli 5 lõike 5 punktid d ja e
Article 8(1), first subparagraph, first and second indents
Artikli 8 lõike 1 esimese lõigu esimene ja teine taane
Article 8(1)(a) and (b)
Artikli 8 lõike 1 punktid a ja b
Article 16(1)(a) to (f)
Artikli 16 lõike 1 punktid a kuni f
Article 16(1), final sentence
Artikli 16 lõike 1 lõpulause
Article 19(i) to (iv)
Artikli 19 punktid i kuni iv
Article 19(a) to (d)
Artikli 19 punktid a kuni d
Article 21(1) and (3)
Artikli 21 lõiked 1 ja 3
GP cont.
MS kontr
Coat ELISA plates with recombinant AHSV-4 VP7 diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
ELISA plaadid kaetakse karbonaadi/vesinikkarbonaadi puhverlahuses, lahjendatud rekombinantse HAKV-4 VP7-ga, pH 9,6.
Incubate overnight at 4 °C.
Inkubeerida üleöö 4 °C juures.
‘registered equidae’ means any equidae registered as defined in Council Directive 90/427/EEC of 26 June 1990 on the zootechnical and genealogical conditions governing intra-Community trade in equidae [7], identified by means of an identification document issued by: (i) the breeding authority or any other competent authority of the country where the animal originated which manages the studbook or register for that breed of animal; or
nõukogu 26. juuni 1990. aasta direktiivis 90/427/EMÜ (zootehniliste ja genealoogiliste tingimuste kohta ühendusesisesel kauplemisel hobuslastega) [7] määratletud tähenduses registreeritud hobuslane, kes tehakse kindlaks identifitseerimisdokumendi alusel, mille on välja andnud:i) hobusekasvandus või looma päritoluriigi muu pädev asutus, kes peab tõuraamatut või asjaomase loomatõu registrit;
Council Directive 2009/157/EC
Nõukogu direktiiv 2009/157/EÜ,
on pure-bred breeding animals of the bovine species
tõupuhaste aretusveiste kohta
Council Directive 77/504/EEC of 25 July 1977 on pure-bred breeding animals of the bovine species [3] has been substantially amended several times [4].
Nõukogu 25. juuli 1977. aasta direktiivi 77/504/EMÜ tõupuhaste aretusveiste kohta [3] on korduvalt [4] oluliselt muudetud.
Cattle production occupies a very important place in Community agriculture, and satisfactory results depend to a large extent on the use of pure-bred breeding animals.
Veisekasvatusel on ühenduse põllumajanduses väga tähtis osa ja rahuldavate tulemuste saamine selles valdkonnas sõltub suurel määral tõuloomade kasutamisest.