natgillin/translations-raw huggingface dataset:
With cod-liver oil and other pure fats the saponification time shall be extended to 45-60 minutes.
Kalamaksaõli ja muude puhaste rasvade puhul tuleb seebistamise aega pikendada 45–60 minutini.
Hydroquinone can be used instead of BHT.
BHT asemel võib kasutada hüdrokinooni.
Using a normal phase-column the separation of retinol isomers is possible.
Normaalfaasikolonni kasutamisel on võimalik retinooli isomeeride eraldumine.
But in that case, the heights (areas) of all cis and trans isomers peaks have to be summed for calculations.
Kuid sel juhul tuleb arvutustes kõigi cis- ja trans-isomeeride piigi kõrgused (pindalad) summeerida.
Approximately 150 mg ascorbic acid can be used instead of sodium ascorbate solution.
Naatriumaskorbaadi lahuse asemel võib kasutada umbes 150 mg askorbiinhapet.
Approximately 50 mg EDTA can be used instead of sodium sulphide solution.
Naatriumsulfiidi lahuse asemel võib kasutada umbes 50 mg etüleendiamiintetraatsetaati.
In cases of analysis of vitamin A in milk replacers, specific attention has to be paid
A-vitamiini analüüsimisel piimaasendajates tuleb erilist tähelepanu pöörata
at saponification (5.2): due to the amount of fat present in the sample, increasing of potassium hydroxide solution amount (3.4) may be necessary,
seebistamisele (5.2): tulenevalt proovi rasvasisaldusest võib olla vaja suurendada kaaliumhüdroksiidi lahuse kogust (3.4);
at extraction (5.3): due to the presence of emulsions, adaptation of the water/ethanol 2:1 ratio may be necessary.
ekstraheerimisele (5.3): tulenevalt emulsioonide sisaldusele võib olla vajalik muuta vee ja etanooli vahekorda 2:1.
To check if the applied method of analysis generates reliable results on this specific matrix (milk replacer), a recovery test shall be applied on an additional test portion.
Et kontrollida rakendatud analüüsimeetodi tulemuste usaldusväärsust kõnealuse spetsiifilise põhiaine (piimaasendaja) puhul, tuleb täiendava kaalutisega teha saagisekatse.
If the recovery rate is lower than 80 %, the analytical result has to be corrected for recovery.
Kui saagise määr on alla 80 %, esitatakse analüüsi tulemus saagisekorrektsiooniga.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 15 % relative to the higher result.
Sama proovi kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ei tohi ületada 15 % suuremast tulemusest.
Premix
Eelsegu
Premix feed
Sööda eelsegu
Mineral concentrate
Mineraal-kontsentraat
Protein feed
Valgurikas sööt
Piglet
Põrsasööt
mean [IU/kg]
keskmine [RÜ/kg]
CVr[%]
CVr [ %]
L number of laboratories
L laboratooriumide arv
n number of single values
n üksikmääramiste arv S r
coefficient of variation of repeatability
korratavuse variatsioonikordaja
coefficient of variation of reproducibility.
reprodutseeritavuse variatsioonikordaja
Figure 1: Extraction apparatus (4.8)
Joonis 1: Ekstraktsiooniseade (4.8)
Glass cylinder (4.8.1)
Klaassilinder (4.8.1)
(height approximately 48 cm)
(kõrgus umbes 48 cm)
Ground glass insert (4.8.2)
Lihviga klaasotsak (4.8.2)
(length approximately 45 cm)
(pikkus umbes 45 cm)
saponified feed
Veekiht + seebistatud sööt
DETERMINATION OF VITAMIN E
E-VITAMIINI MÄÄRAMINE
This method makes it possible to determine the level of vitamin E in feed and premixtures.
Selle meetodiga on võimalik määrata E-vitamiini kogust söödas ja eelsegudes.
The content of vitamin E is expressed as mg DL-α-tocopherol acetate per kg.
E-vitamiini sisaldust väljendatakse DL-α-tokoferoolatsetaadi milligrammides kilogrammi kohta.
1 mg DL-α-tocopherol acetate corresponds to 0,91 mg DL-α-tocopherol (vitamin E).
1 mg DL-α-tokoferoolatsetaati vastab 0,91 mg DL-α-tokoferoolile (E-vitamiin).
The limit of quantification is 2 mg vitamin E/kg.
Kvantifitseerimispiir on 2 mg E-vitamiini kilogrammi kohta.
This limit of quantification is only achievable with fluorescence detector.
See kvantifitseerimispiir on saavutatav vaid fluorestsentsdetektoriga.
With an UV detector the limit of quantification is 10 mg/kg.
UV-detektoriga on kvantifitseerimispiir 10 mg/kg.
The sample is hydrolysed with ethanolic potassium hydroxide solution and the vitamin E is extracted into light petroleum.
Proov hüdrolüüsitakse kaaliumhüdroksiidi etanoolilahusega ja E-vitamiin ekstraheeritakse petrooleetrisse.
The content of vitamin E is determined by reversed phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC) using a fluorescence or a UV detector.
E-vitamiini sisaldus määratakse pöördfaasilise kõrgefektiivse vedelikkromatograafia (RP-HPLC) meetodiga, kasutades UV- või fluorestsentsdetektorit.
Ethanol, σ = 96 %.
Etanool, σ = 96 %
Light petroleum, boiling range 40 oC-60 oC.
Petrooleeter, keemisvahemik 40–60 oC
Methanol.
Metanool
Potassium hydroxide solution, c = 50 g/100 ml.
Kaaliumhüdroksiidi lahus, c = 50 g/100 ml
Sodium ascorbate solution, c = 10 g/100 ml (see 7.7 observations).
Naatriumaskorbaadi lahus, c = 10 g/100 ml (vt tähelepanek 7.7)
Sodium sulphide, Na2S· x H2O (x = 7-9).
Naatriumsulfiid, Na2S· x H2O (x = 7 – 9)
Sodium sulphide solution, c = 0,5 mol/l in glycerol, β = 120 g/l. (for x = 9) (see 7.8 observations)
Naatriumsulfiidi lahus, c = 0,5 mol/l glütseroolis, β = 120 g/l (kui x = 9) (vt tähelepanek 7.8)
Phenolphthalein solution, c = 2 g/100 ml in ethanol (3.1).
Fenoolftaleiini lahus, c = 2 g/100 ml etanoolis (3.1)
Nitrogen, oxygen free.
Hapnikuvaba lämmastik
DL-α-tocopherol acetate, extra pure, of certified activity.
DL-α-tokoferoolatsetaat, eriti puhas, kontrollitud aktiivsusega
Stock solution of DL-α-tocopherol acetate: Weigh to the nearest 0,1 mg, 100 mg of DL-α-tocopherol acetate (3.10) into a 100 ml graduated flask.
DL-α-tokoferoolatsetaadi põhilahus: 100 ml mõõtekolbi kaalutakse 0,1 mg täpsusega 100 mg DL-α-tokoferoolatsetaati (3.10).
Dissolve in ethanol (3.1) and make up to the mark with the same solvent.
Lahustatakse etanoolis (3.1) ja täidetakse sama lahustiga märgini.
1 ml of this solution contains 1 mg DL-α-tocopherol acetate.
1 ml seda lahust sisaldab 1 mg DL-α-tokoferoolatsetaati.
(UV control see 5.6.1.3; stabilisation see 7.4 observations).
(UV-kontrolli kohta vt 5.6.1.3; stabiliseerimise kohta vt tähelepanek 7.4).
DL-α-tocopherol, extra pure, of certified activity.
DL-α-tokoferool, eriti puhas, kontrollitud aktiivsusega
Stock solution of DL-α-tocopherol: Weigh to the nearest 0,1 mg, 100 mg of DL-α-tocopherol (3.10) into a 100 ml graduated flask.
DL-α-tokoferooli põhilahus: 100 ml mõõtekolbi kaalutakse 0,1 mg täpsusega 100 mg DL-α-tokoferooli (3.11).
1 ml of this solution contains 1 mg DL-α-tocopherol.
1 ml seda lahust sisaldab 1 mg DL-α-tokoferooli.
(UV control see 5.6.2.3; stabilisation see 7.4 observations).
(UV-kontrolli kohta vt 5.6.2.3; stabiliseerimise kohta vt tähelepanek 7.4).
2,6-Di-tert-butyl-4-methylphenol (BHT) (see 7.5 observations).
2,6-di-tert-butüül-4-metüülfenool (BHT) (vt tähelepanek 7.5).
Rotary film evaporator.
Filter-pöördaurusti
Amber glassware.
Tumedast klaasist nõud
Flat bottom or conical flasks, 500 ml, with ground-glass socket.
Lihvavaga lamedapõhjalised või koonilised kolvid, 500 ml
Graduated flasks with ground-glass stoppers, narrow-necked, 10, 25, 100 and 500 ml.
Lihvkorgiga kitsakaelalised mõõtkolvid 10, 25, 100 ja 500 ml
Separating funnels, conical, 1000 ml, with ground-glass stoppers.
Lihvkorgiga koonilised jaotuslehtrid, 1000 ml
Pear shaped flasks, 250 ml, with ground-glass sockets.
Lihvavaga pirnkolvid, 250 ml
Allihn condenser, jacket length 300 mm, with ground-glass joint, with adapter for gas feed pipe.
Lihvühendusega Allihni tagasivoolujahuti, ümbrise pikkus 300 mm, gaasitoru adapteriga
Pleated filter paper for phase separation, diameter 185 mm (e.g. Schleicher & Schuell 597 HY 1/2).
Kurdfilterpaber faaside eraldamiseks, diameeter 185 mm (nt Schleicher & Schuell 597 HY 1/2)
HPLC equipment with injection system.
HPLC-seadmed sissepritsesüsteemiga
Liquid chromatographic column, 250 mm × 4 mm, C18, 5 or 10 μm packing, or equivalent.
Vedelikkromatograafia kolonn, 250 mm × 4 mm, C18, täidise terasuurus 5 või 10 μm või samaväärne
Fluorescence or UV detector, with variable wavelength adjustment.
Muudetava lainepikkusega UV- või fluorestsentsdetektor
Spectrophotometer with 10 mm quartz cells.
Spektrofotomeeter 10 mm kvartsküvettidega
Water-bath with magnetic stirrer.
Magnetseguriga veevann
Glass cylinder of 1 l capacity fitted with a ground glass neck and stopper.
1-liitrisest lihvava ja lihvkorgiga klaassilindrist;
Vitamin E is sensitive to (UV-) light and to oxidation.
E-vitamiin on tundlik (UV-) valguse ja oksüdeerumise suhtes.
Grinding must be carried out immediately before weighing and saponification otherwise there may be losses of vitamin E.
Jahvatamine peab toimuma vahetult enne kaalumist ja seebistamist, vastasel juhul võib esineda E-vitamiini kadusid.
Depending on the vitamin E content weigh, to the nearest 0,01 g, 2 g to 25 g of the sample into a 500 ml flat bottom or conical flask (4.2.1).
500 ml lamedapõhjalisse või koonilisse kolbi (4.2.1) kaalutakse 0,01 g täpsusega 2–25 g proovi, sõltuvalt E-vitamiini sisaldusest.
Add successively with swirling 130 ml ethanol (3.1), approximately 100 mg BHT (3.12), 2 ml sodium ascorbate solution (3.5) and 2 ml sodium sulphide solution (3.6).
Seejärel lisatakse ringliigutustega segades 130 ml etanooli (3.1), umbes 100 mg BHT (3.12), 2 ml naatriumaskorbaadi lahust (3.5) ja 2 ml naatriumsulfiidi lahust (3.6).
Fit the condenser (4.3) to the flask and immerse the flask in a water-bath with magnetic stirrer (4.7).
Kolvi otsa ühendatakse jahuti (4.3) ja kolb pannakse magnetseguriga veevanni (4.7).
Then add 25 ml potassium hydroxide solution (3.4) through the condenser (4.3) and allow to reflux for a further 25 min. with stirring under a slow stream of nitrogen.
Seejärel lisatakse läbi jahuti (4.3) 25 ml kaaliumhüdroksiidi lahust (3.4) ja lastakse segamisel keeda tagasivoolujahuti all veel 25 minutit, voolutades nõrgalt lämmastikuga.
Restore atmospheric pressure by admitting nitrogen (3.9) and remove the flask from the rotary evaporator.
Kolbi lastakse lämmastik (3.9) kuni atmosfäärirõhuni ja kolb eemaldatakse vaakumpöördaurustist.
Remove the remaining solvent with a stream of nitrogen (3.9) and dissolve the residue immediately in a known volume (10-100 ml) of methanol (3.3) (the concentration of DL-α-tocopherol must be in the range 5 μg/ml to 30 μg/ml).
Järelejäänud lahusti eemaldatakse lämmastikuga (3.9) voolutades ja jääk lahustatakse kohe teadaoleva koguse (10–100 ml) metanooliga (3.3) (DL-α-tokoferooli kontsentratsioon peab jääma vahemikku 5–30 μg/ml).
Vitamin E is separated on a C18 reversed phase column (4.5.1) and the concentration is measured using a fluorescence detector (excitation: 295 nm, emission: 330 nm) or a UV detector (292 nm) (4.5.2).
E-vitamiin eraldatakse C18 pöördfaasikolonnil (4.5.1) ja mõõdetakse selle kontsentratsioon fluorestsentsdetektori (ergastamine: 295 nm, emissioon: 330 nm) (4.5.2) abil või UV-detektoriga (292 nm) (4.5.2).
Inject an aliquot portion (e.g. 20 μl) of the methanolic solution obtained in 5.4 and elute with the mobile phase (3.8).
Punktis 5.4 saadud metanoolilahuse alikvoot (nt 20 μl) süstitakse kolonni ja elueeritakse liikuva faasiga (3.8).
Calculate the mean peak heights (areas) of several injections of the same sample solution and the mean peak heights (areas) of several injections of the calibration solutions (5.6.2).
Arvutatakse sama proovilahuse erinevate süstide keskmine piigi kõrgus (pindala) ja kalibreerimislahuste (5.6.2) mitme süsti keskmised piigi kõrgused (pindalad).
Mobile phase (3.8):
Liikuv faas (3.8):
Detector (4.5.2)
Detektor (4.5.2):
Fluorescence detector
Fluorestsentsdetektor
(excitation: 295 nm/emission: 330 nm) or UV detector (292 nm)
(ergastamine: 295 nm/emissioon: 330 nm) või UV-detektor (292 nm)
Calibration (DL-α-tocopherol acetate or DL-α-tocopherol)
Kalibreerimine (DL-α-tokoferoolatsetaat või DL-α-tokoferool)
DL-α-tocopherol acetate standard
DL-α-tokoferoolatsetaadi standard
Preparation of the working standard solution
Standardtöölahuse valmistamine
Transfer by pipette 25 ml of the DL-α-tocopherol acetate stock solution (3.10.1) into a 500 ml flat bottom or conical flask (4.2.1) and hydrolyse as described under 5.2.
25 ml DL-α-tokoferoolatsetaadi põhilahust (3.10.1) viiakse pipetiga 500-milliliitrisesse lamedapõhjalisse või koonilisse kolbi (4.2.1) ja hüdrolüüsitakse vastavalt punktis 5.2 kirjeldatule.
Subsequently extract with light petroleum (3.2) according to 5.3 and make up to 500 ml with light petroleum.
Seejärel ekstraheeritakse petrooleetriga (3.2) vastavalt punktis 5.3 kirjeldatule ja täidetakse petrooleetriga 500 milliliitrini.
Evaporate 25 ml of this extract on the rotary evaporator (see 5.4) nearly to dryness, remove the remaining solvent with a stream of nitrogen (3.9) and redissolve the residue in 25,0 ml of methanol (3.3).
25 ml seda ekstrakti aurustatakse vaakumpöördaurustil (vt 5.4) peaaegu kuivaks, järelejäänud lahusti eemaldatakse lämmastikuga (3.9) voolutades ja jääk lahustatakse uuesti 25,0 ml metanooliga (3.3).
The nominal concentration of this solution is 45,5 μg DL-α-tocopherol per ml, equivalent to 50 μg DL-α-tocopherol acetate per ml.
Selle lahuse nominaalne kontsentratsioon on 45,5 μg DL-α-tokoferooli ml kohta, mis on ekvivalentne 50 μg DL-α-tokoferoolatsetaadiga ml kohta.
Transfer 1,0, 2,0, 4,0 and 10,0 ml of the working standard solution into a series of 20 ml graduated flasks, make up to the mark with methanol (3.3) and mix.
1,0, 2,0, 4,0 ja 10,0 ml standardtöölahust viiakse üle 20-milliliitristesse mõõtkolbidesse, täidetakse metanooliga (3.3) märgini ja segatakse.
The nominal concentrations of these solutions are 2,5, 5,0, 10,0 and 25,0 μg/ml DL-α-tocopherol acetate, i.e. 2,28, 4,55, 9,10 μg/ml and 22,8 μg/ml DL-α-tocopherol.
Nende lahuste nominaalsed kontsentratsioonid on 2,5, 5,0, 10,0 ja 25,0 μg/ml DL-α-tokoferoolatsetaati, s.o 2,28, 4,55, 9,10 ja 22,8 μg/ml DL-α-tokoferooli.
Using the mean peak heights (areas) plot a calibration graph.
Kasutades keskmisi piigi kõrgusi (pindalasid), koostatakse kalibreerimisgraafik.
UV standardisation of the DL-α-tocopherol acetate stock solution (3.10.1)
DL-α-tokoferoolatsetaadi põhilahuse (3.10.1) UV-standardiseerimine
Dilute 5,0 ml of the DL-α-tocopherol acetate stock solution (3.10.1) to 25,0 ml with ethanol and measure the UV spectrum of this solution against ethanol (3.1) in the spectrophotometer (4.6) between 250 nm and 320 nm.
5,0 ml DL-α-tokoferoolatsetaadi põhilahust (3.10.1) lahjendatakse etanooliga 25,0 milliliitrini ja mõõdetakse spektrofotomeetriga (4.6) selle lahuse UV-spekter vahemikus 250–320 nm etanooli (3.1) suhtes.
The absorption maximum shall be at 284 nm:
Neeldumismaksimum peaks olema 284 nm:
= 43,6 at 284 nm in ethanol
= 43,6 etanoolis 284 nm juures
At this dilution an extinction value of 0,84 to 0,88 must be obtained.
Sellisel lahjendusel peaks ekstinktsiooni väärtus olema vahemikus 0,84–0,88.
DL-α-tocopherol standard
DL-α-tokoferooli standard
Transfer by pipette 2 ml of the DL-α-tocopherol stock solution (3.11.1) into a 50 ml graduated flask, dissolve in methanol (3.3) and make up to the mark with methanol.
2 ml DL-α-tokoferooli põhilahust (3.11.1) viiakse pipetiga 50 ml mõõtekolbi, lahustatakse metanoolis (3.3) ja täidetakse metanooliga märgini.
The nominal concentration of this solution is 40 μg DL-α-tocopherol per ml, equivalent to 44,0 μg DL-α-tocopherol acetate per ml.
Selle lahuse nominaalne kontsentratsioon on 40 μg DL-α-tokoferooli ml kohta, mis on ekvivalentne 44,0 μg DL-α-tokoferoolatsetaadiga ml kohta.
The nominal concentrations of these solutions are 2,0, 4,0, 8,0 and 20,0 μg/ml DL-α-tocopherol, i.e. 2,20, 4,40, 8,79 μg/ml and 22,0 μg/ml DL-α-tocopherol acetate.
Nende lahuste nominaalsed kontsentratsioonid on 2,0, 4,0, 8,0 ja 20,0 μg/ml DL-α-tokoferooli, s.o 2,20, 4,40, 8,79 ja 22,0 μg/ml DL-α-tokoferoolatsetaati.
UV standardisation of the DL-α-tocopherol stock solution (3.11.1)
DL-α-tokoferooli põhilahuse (3.11.1) UV-standardiseerimine
Dilute 2,0 ml of the DL-α-tocopherol stock solution (3.11.1) to 25,0 ml with ethanol and measure the UV spectrum of this solution against ethanol (3.1) in the spectrophotometer (4.6) between 250 nm and 320 nm.
2,0 ml DL-α-tokoferoolatsetaadi põhilahust (3.11.1) lahjendatakse etanooliga 25,0 milliliitrini ja mõõdetakse spektrofotomeetriga (4.6) selle lahuse UV-spekter vahemikus 250–320 nm etanooli (3.1) suhtes.
The absorption maximum shall be at 292 nm:
Neeldumismaksimum peaks olema 292 nm:
= 75,8 at 292 nm in ethanol
= 75,8 etanoolis 292 nm juures
At this dilution an extinction value of 0,6 must be obtained.
Sellisel lahjendusel peab ekstinktsiooni väärtus olema 0,6.
From the mean height (area) of the vitamin E peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml (calculated as α-tocopherol acetate) by reference to the calibration graph (5.6.1.2 or 5.6.2.2).
Proovilahuse E-vitamiini piikide keskmisest kõrgusest (pindalast) määratakse kalibreerimisgraafiku (5.6.1.2 või 5.6.2.2) järgi proovilahuse kontsentratsioon μg-des milliliitri kohta (arvutatuna α-tokoferoolatsetaadina).
The vitamin E content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
Proovi E-vitamiini sisaldus w mg-des kilogrammi kohta arvutatakse järgmise valemi järgi:
c vitamin E concentration (as α-tocopherol acetate) of the sample solution (5.4) in μg/ml
c E-vitamiini kontsentratsioon (α-tokoferoolatsetaadina) μg-des milliliitri kohta proovilahuses (5.4);
volume of sample solution (5.4), in ml
proovilahuse (5.4) kogus milliliitrites;
volume of aliquot taken in (5.4), in ml
punktis 5.4 võetud alikvoodi ruumala milliliitrites;
For samples with low vitamin E concentration it may be useful to combine the light petroleum-extracts of two saponification-charges (amount weighed: 25 g) to one sample solution for HPLC-determination.
Madala E-vitamiini kontsentratsiooniga proovides võib olla kasulik ühendada kahe seebistamiseks võetud koguse (kaalutud kogus: 25 g) petrooleetri ekstraktid üheks proovilahuseks, mida määratakse HPLC-ga.
After the spectrophotometric measurement of the DL-α-tocopherol acetate or DL-α-tocopherol solution according to 5.6.1.3 or 5.6.2.3 respectively add approximately 10 mg BHT (3.12) to the solution (3.10.1 or 3.10.2) and keep the solution in a refrigerator (storage life max. 4 weeks).
Pärast DL-α-tokoferoolatsetaadi või DL-α-tokoferooli lahuste spektrofotomeetrilist mõõtmist vastavalt punktile 5.6.1.3 või 5.6.2.3 lisatakse lahusele (3.10.1 või 3.10.2) umbes 10 mg BHT-d (3.12) ja hoitakse lahust külmkapis (kõlblikkusaeg maksimaalselt neli nädalat).
Using a normal phase-column the separation of α-, β-, γ- and δ-tocopherol is possible.
Normaalfaasikolonni kasutamisel on võimalik α-, β-, γ- ja δ-tokoferooli eraldumine.
Vitamin E acetate hydrolyses very fast under alkaline conditions and is therefore very sensitive to oxidation, especially in the presence of trace elements like iron or copper.
E-vitamiini atsetaat hüdrolüüsub aluselises keskkonnas väga kiiresti ning on seepärast väga tundlik oksüdeerumise suhtes, eriti selliste mikrolementide nagu raua ja vase olemasolul.
Repeatability·
Korratavus
mean [mg/kg]
Keskmine [mg/kg]
SR [mg/kg]
SR mg/kg]
coefficient of variation of reproducibility
reprodutseeritavuse variatsioonikordaja
DETERMINATION OF THE TRACE ELEMENTS IRON, COPPER, MANGANESE AND ZINC
MIKROELEMENTIDE RAUA, VASE, MANGAANI JA TSINGI MÄÄRAMINE
The method makes it possible to determine the trace elements iron, copper, manganese and zinc in feed.
Selle meetodiga on võimalik määrata söödas mikroelemente: rauda, vaske, mangaani ja tsinki.
The limits of quantification are:
Kvantifikatsioonipiirid on:
iron (Fe): 20 mg/kg
raud (Fe): 20 mg/kg;
copper (Cu): 10 mg/kg
vask (Cu): 10 mg/kg;
manganese (Mn): 20 mg/kg
mangaan (Mn): 20 mg/kg;
zinc (Zn): 20 mg/kg.
tsink (Zn): 20 mg/kg.
The sample is brought into solution in hydrochloric acid after destruction of organic matter, if any.
Proov lahustatakse soolhappes pärast võimaliku orgaanilise aine hävitamist.
The elements iron, copper, manganese and zinc are determined, after appropriate dilution, by atomic absorption spectrometry.
Elemendid raud, vask, mangaan ja tsink määratakse aatomabsorptsioonspektromeetriaga pärast asjakohast lahjendamist.
Introductory comments
Sissejuhatavad märkused
For preparation of the reagents and analytical solutions use water free from the cations to be determined, obtained either by double distilling water in a borosilicate glass or quartz still or by double treatment on ion exchange resin.
Reaktiivide ja analüütiliste lahuste ettevalmistamiseks kasutatakse katioonivaba vett, mis on saadud kas vee bidestilleerimisel borosilikaat- või kvartsklaasist destillaatoris või kahekordsel töötlemisel ioonvahetusvaikudega.
The reagents must be of at least analytical grade.
Reaktiivid peavad olema vähemalt analüütiliselt puhtad.
Freedom from the element to be determined must be checked in a blank experiment.
Määratava elemendi puudumist tuleb kontrollida pimekatse abil.
If necessary, the reagents must be further purified.
Vajaduse korral tuleb reaktiive täiendavalt puhastada.
In place of the standard solutions described below, commercial standard solutions may be used provided that they are guaranteed and have been checked before use.
Allpool kirjeldatud standardlahuste asemel võib kasutada müügil olevaid standardlahuseid, tingimusel, et neil on garantii ning neid on enne kasutamist kontrollitud.
Hydrochloric acid (d:1,19 g/ml).
Soolhape (d: 1,19 g/ml).
Hydrochloric acid (6 mol/litre).
Soolhape (6 mol/l).
Hydrochloric acid (0,5 mol/litre).
Soolhape (0,5 mol/l).
Hydrofluoric acid 38 % to 40 % (v/v) having an iron (Fe) content of less than 1 mg/litre and a residue after evaporation of less than 10 mg (as sulphate)/litre.
38–40 % vesinikfluoriidhape (v/v), mille raua (Fe) sisaldus on alla 1 mg/l ning jääk pärast aurustamist alla 10 mg/l (sulfaadina).
Sulphuric acid (d: 1,84 g/ml).
Väävelhape (d: 1,84 g/ml).
Hydrogen peroxide (approximately 100 volumes of oxygen (30 % by weight)).
Vesinikperoksiid (ligikaudu 100 mahuosa hapnikku (30 massiprotsenti)).
Standard iron solution (1000 μg Fe/ml) prepared as follows or equivalent commercially available solution: dissolve 1 g of iron wire in 200 ml of 6 mol/litre hydrochloric acid (3.2), add 16 ml of hydrogen peroxide (3.6) and make up to one litre with water.
Raua standardlahus (1000 μg Fe/ml), mis on valmistatud järgmiselt (või kasutatakse samaväärset müügil olevat lahust): 1 g raudtraati lahustatakse 200 ml 6 mol/l soolhappes (3.2), lisatakse 16 ml vesinikperoksiidi (3.6) ning täidetakse veega ühe liitrini.
Working standard iron solution (100 μg Fe/ml) prepared by diluting one part of the standard solution (3.7) with 9 parts of water.
Raua standardtöölahus (100 μg Fe/ml), mis on valmistatud, lahjendades standardlahust (3.7) veega vahekorras 1:9.
Standard copper solution (1000 μg Cu/ml) prepared as follows or equivalent commercially available solution:
Vase standardlahus (1000 μg Cu/ml), mis on valmistatud järgmiselt (või kasutatakse samaväärset müügil olevat lahust):
dissolve 1 g of copper in powder form in 25 ml of 6 mol/litre hydrochloric acid (3.2), add 5 ml of hydrogen peroxide (3.6) and make up to one litre with water.
1 g vasepulbrit lahustatakse 25 ml 6 mol/l soolhappes (3.2), lisatakse 5 ml vesinikperoksiidi (3.6) ning täidetakse veega ühe liitrini.
Working standard copper solution (10 μg Cu/ml) prepared by diluting 1 part of the standard solution (3.8) with 9 parts of water and then diluting 1 part of the resulting solution with 9 parts of water.
Vase standardtöölahus (10 μg Cu/ml), mis on valmistatud, lahjendades standardlahust (3.8) veega vahekorras 1:9 ning seejärel lahjendades saadud lahust veega vahekorras 1:9.
Standard manganese solution (1000 μg Mn/ml) prepared as follows or equivalent commercially available solution:
Mangaani standardlahus (1000 μg Mn/ml), mis on valmistatud järgmiselt (või kasutatakse samaväärset müügil olevat lahust):
dissolve 1 g of manganese in powder form in 25 ml of 6 mol/litre hydrochloric acid (3.2) and make up to one litre with water.
1 g mangaanipulbrit lahustatakse 25 ml 6 mol/l soolhappes (3.2) ning täidetakse veega ühe liitrini.