natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Transfer 10,0 ml of the filtrate into a 20 ml graduated flask, make up to the mark with water and mix.
10,0 ml filtraati kallatakse 20 ml mõõtekolbi, täidetakse veega kuni märgini ja segatakse.
An aliquot is filtered through a membrane filter (4.4).
Alikvootne osa filtreeritakse läbi membraanfiltri (4.4).
Parameters:
Parameetrid
Analytical column (4.3.1)
Analüütiline kolonn (4.3.1)
Mobile Phase (3.4):
Liikuv faas (3.4):
water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 + 100 (V + V)
vee (3.3) ja metanooli (3.2.) segu, 900 + 100 (V + V)
20 μl –100 μl
20–100 μl
Check the stability of the chromatographic system, injecting several times the calibration solution (3.5.3) containing 2,5 μg/ml, until constant peak heights and retention times are achieved.
Kromatograafiaseadme tasakaalustatust kontrollitakse, süstides kolonni mitu korda kalibreerimislahust (3.5.3) kontsentratsiooniga 2,5 g/ml, kuni saavutatakse konstantsed piigikõrgused ja retentsiooniajad.
Inject each calibration solution (3.5.3) several times and determine the mean peak heights (areas) for each concentration.
Iga kalibreerimislahust (3.5.3) süstitakse mitu korda ja mõõdetakse igale kontsentratsioonile vastavad piigi kõrgused (pindalad).
Plot a calibration graph using the mean peak heights (areas) of the calibration solutions as the ordinates and the corresponding concentrations in μg/ml as the abscissae.
Koostatakse kalibreerimisgraafik, kandes ordinaatteljele kalibreerimislahuste keskmised piigi kõrgused (pindalad) ja abstsissteljele vastavad kontsentratsioonid (μg/ml).
Inject the sample extract (5.2) several times using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the olaquindox peaks.
Prooviekstrakti (5.2) süstitakse mitu korda, kasutades sama mahtu nagu kalibreerimislahuste puhul, ning määratakse olakvindoksi piigi keskmine kõrgus (pindala).
From the mean height (area) of the olaquindox peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.3.2).
Proovilahuse olakvindoksipiikide keskmise kõrguse (pindala) alusel leitakse kalibreerimisgraafiku (5.3.2) abil proovilahuse kontsentratsioon (μg/ml).
The olaquindox content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
Proovi olakvindoksisisaldus w (mg/kg) arvutatakse järgmise valemi alusel:
c olaquindox concentration of the sample extract (5.2) in μg/ml
c olakvindoksi kontsentratsioon (μg/ml) prooviekstraktis (5.2);
m weight of the test portion in g (5.2).
m kaalutise mass grammides (5.2).
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract (5.2) and the calibration solution (3.5.3) containing 5,0 μg/ml are compared.
Uuritava aine identsust saab kinnitada täiendava kromatograafiakatse abil või kasutades dioodireadetektorit, mille puhul võrreldakse prooviekstrakti (5.2) ja 5,0 μg/ml sisaldusega kalibreerimislahuse (3.5.3) spektreid.
A sample extract (5.2) is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.5.3).
Prooviekstraktile (5.2) lisatakse vajalik kogus kalibreerimislahust (3.5.3).
The amount of added olaquindox must be similar to the amount of olaquindox found in the sample extract.
Lisatud olakvindoksikogus peab olema ligikaudu sama suur nagu prooviekstraktist leitud olakvindoksikogus.
Only the height of the olaquindox peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Võttes arvesse nii lisatud kogust kui ka ekstrakti lahjendust, peab tõusma üksnes olakvindoksipiigi kõrgus.
The peak width, at half of its height, must be within ± 10 % of the original width of the olaquindox peak of the unfortified sample extract.
Piigi laius selle poolel kõrgusel ei tohi erineda rohkem kui 10 % kontsentreerimata prooviekstrakti olakvindoksipiigi laiusest.
Diode array detection
Kontrollimine dioodireadetektori abil
For diode-array detection this is typically within ± 2 nm.
Dioodireadetektori lahutusvõime on tavaliselt ± 2 nm;
Between 220 and 400 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex of the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
lainepikkustel 220–400 nm ning suhtelise neeldumise vahemikus 10–100 % peavad proovi ja standardi piigi tipu spektrid kromatogrammil ühte langema.
Between 220 and 400 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
lainepikkustel 220–400 nm ning suhtelise neeldumise vahemikus 10–100 % peavad prooviekstrakti piigi tõusva osa, tipu ja alaneva osa spektrid ühte langema.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 15 % relative to the higher result for olaquindox contents between 10 and 200 mg/kg.
Kui olakvindoksisisaldus on 10–200 mg/kg, ei tohi sama prooviga tehtud kahe paralleelse määramise tulemuste erinevus ületada 15 % suuremast tulemusest.
An EC collaborative study was arranged in which four piglet feed samples including one blank feed were analysed by up to 13 laboratories.
Korraldati EÜ ühisuuring, mille käigus kuni 13 laborit analüüsisid nelja põrsasööda proovi, millest üks oli võrdlussööt.
The results are given below:
Tulemused olid järgmised:
Nominal content
Nominaalsisaldus
recovery %
saagis: %
Although the method has not been validated for feeds containing more than 100 mg/kg of olaquindox, it may be possible to obtain satisfactory results by taking a smaller sample weight and/or diluting the extract (5.2) to reach a concentration within the range of the calibration graph (5.3.2).
Kuigi meetodit ei ole kontrollitud söötade suhtes, mille olakvindoksisisaldus on üle 100 mg/kg, võib saavutada rahuldavaid tulemusi, kasutades väiksema massiga proove ja/või lahjendades ekstrakti (5.2) kalibreerimisgraafiku (5.3.2) vahemikku jääva kontsentratsiooni saamiseks.
DETERMINATION OF AMPROLIUM
AMPROOLIUMI MÄÄRAMINE
1-[(4-amino-2-propylpyrimidin-5-yl)methyl]-2-methyl-pyridinium chloride hydrochloride
1-[(4-amino-2-propüülpürimidiin-5-üül)metüül]-2-metüülpüridiiniumkloriidhüdrokloriid
This method makes it possible to determine the level of amprolium in feed and premixtures.
Selle meetodiga on võimalik määrata amprooliumi kogust söödas ja eelsegudes.
The detection limit is 1 mg/kg, the limit of quantification is 5 mg/kg.
Avastamiskünnis on 1 mg/kg, määramispiir 5 mg/kg.
The sample is extracted with a methanol-water mixture.
Proov ekstraheeritakse metanooli vesilahuses.
After dilution with the mobile phase and membrane filtration the content of amprolium is determined by cation exchange high performance liquid chromatography (HPLC) using a UV detector.
Pärast liikuva faasiga lahjendamist ja membraanfiltreerimist määratakse amprooliumisisaldus kõrgefektiivse katioonvahetus-vedelikkromatograafia (HPLC) abil, kasutades UV-detektorit.
Sodium dihydrogen phosphate solution, c = 0,1 mol/l.
Naatriumdivesinikfosfaadi lahus, c = 0,1 mol/1
Dissolve 13,80 g of sodium dihydrogen phosphate monohydrate in water (3.3) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.3) and mix.
1000 ml mõõtekolvis lahustatakse vees (3.3) 13,80 g naatriumdivesinikfosfaadi monohüdraati, täidetakse kolb veega (3.3) kuni märgini ja segatakse.
Sodium perchlorate solution, c = 1,6 mol/l.
Naatriumperkloraadi lahus, c = 1,6 mol/l
Dissolve 224,74 g of sodium perchlorate monohydrate in water (3.3) in a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.3) and mix.
1000 ml mõõtekolvis lahustatakse vees (3.3) 224,74 g naatriumperkloraadi monohüdraati, täidetakse kolb veega (3.3) kuni märgini ja segatakse.
Mobile phase for HPLC (see observation 9.1).
HPLC liikuv faas (vt tähelepanek 9.1).
Mixture of acetonitrile (3.2), sodium dihydrogen phosphate solution (3.4) and sodium perchlorate solution (3.5), 450+450+100 (v+v+v).
atsetonitriili (3.2), naatriumi, divesiniksulfaadi lahuse (3.4) ja naatriumperkloraadi (3.5) segu, 450+450+100 (v+v+v)
Prior to use filter through a 0,22 μm membrane filter (4.3) and degas the solution (e.g. in the ultrasonic bath (4.4) for at least 15 minutes).
Enne kasutamist filtreeritakse lahus läbi 0,22 μm membraanfiltri (4.3) ja degaseeritakse (nt ultrahelivannis (4.4) vähemalt 15 minutit).
Standard substance: pure amprolium, 1-[(4-amino-2-propylpyrimidin-5-yl)methyl]-2-methyl-pyridinium chloride hydrochloride, E 750 (see 9.2).
Standardaine: puhas amproolium, 1-[(4-amino-2-propüülpürimidiin-5-üül)metüül]-2-metüülpüridiiniumkloriidhüdrokloriid, E 750 (vt 9.2).
Amprolium stock standard solution, 500 μg/ml
Amprooliumi põhistandardlahus, 500 μg/ml
Weigh to the nearest 0,1 mg, 50 mg of amprolium (3.7) in a 100 ml graduated flask, dissolve in 80 ml methanol (3.1) and place the flask for 10 min. in an ultrasonic bath (4.4).
50 mg amprooliumi (3.7) kaalutakse täpsusega 0,1 mg, pannakse see 100 ml mõõtekolbi, lahustatakse 80 ml metanoolis (3.1) ja asetatakse kolb 10 minutiks ultrahelivanni (4.4).
Amprolium intermediate standard solution, 50 μg/ml
Amprooliumi vahestandardlahus, 50 μg/ml
Pipette 5,0 ml of the stock standard solution (3.7.1) into a 50 ml graduated flask, make up to the mark with the extraction solvent (3.8) and mix.
5,0 ml põhistandardlahust (3.7.1) pipetitakse 50 ml mõõtekolbi, täidetakse see ekstrahendiga (3.8) kuni märgini ja segatakse.
Transfer 0,5, 1,0 and 2,0 ml of the intermediate standard solution (3.7.2) into a series of 50 ml graduated flasks.
0,5, 1,0 ja 2,0 ml vahestandardlahust (3.7.2) pannakse 50 ml mõõtekolbidesse.
Make up to the mark with the mobile phase (3.6) and mix.
Kolvid täidetakse liikuva faasiga (3.6) märgini ja segatakse.
These solutions correspond to 0,5, 1,0 and 2,0 μg of amprolium per ml respectively.
Nende lahuste amprooliumisisaldus on 0,5, 1,0 ja 2 μg/ml.
Extraction solvent.
Ekstrahent
Methanol (3.1)-water mixture 2+1 (v+v).
Metanooli (3.1) ja vee segu 2+1 (v+v)
HPLC equipment with injection system, suitable for injection volumes of 100 μl.
HPLC seade koos sissepritsesüsteemiga, mis võimaldab süstida 100 μl.
Liquid chromatographic column 125 mm × 4 mm, cation exchange Nucleosil 10 SA, 5 or 10 μm packing, or equivalent.
Vedelikkromatograafia kolonn 125 × 4 mm, katioonvahetaja Nucleosil 10 SA, täidise terasuurus 5 või 10 μm või samaväärne
UV detector with variable wavelength adjustment or diode array detector.
Muudetava lainepikkusega UV-detektor või dioodireadetektor
Membrane filter, PTFE material, 0,45 μm.
Membraanfilter, polütetrafluoroetüleenist, 0,45 μm.
Membrane filter, 0,22 μm.
Membraanfilter 0,22 μm.
Ultrasonic bath.
Ultrahelivann
For the performance of the recovery test (5.1.2) a blank feed shall be analysed to check that neither amprolium nor interfering substances are present.
Selleks, et teha saagisekatset (5.1.2), tuleb eelnevalt teha võrdlussööda analüüs, veendumaks, et selles ei ole ei amprooliumi ega segavaid aineid.
The blank feed shall be similar in type to that of the sample and amprolium or interfering substances must not be detected.
Võrdlussööt peab olema prooviga samalaadne ja selles ei tohi leiduda amprooliumi või segavaid aineid.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of amprolium, similar to that present in the sample.
Saagisekatses analüüsitakse võrdlussööta, millele on lisatud proovis oleva kogusega ligilähedane kogus amprooliumi.
To fortify at a level of 100 mg/kg, transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.7.1) to a 250 ml conical flask and evaporate the solution to approximately 0,5 ml.
Et saada kontsentratsiooni 100 mg/kg, viiakse 10,0 ml põhistandardlahust (3.7.1) 250 ml koonilisse kolbi ja aurustatakse lahus ligikaudu 0,5 milliliitrini.
In this case, the sample to be analysed is fortified with a quantity of amprolium similar to that already present in the sample.
Sel juhul lisatakse analüüsitavale proovile ligikaudu sama suur amprooliumikogus, mis on proovis juba olemas.
This sample is analysed together with the unfortified sample and the recovery can be calculated by subtraction.
Seda proovi analüüsitakse koos kontsentreerimata prooviga ja saagis leitakse lahutamise teel.
Premixtures (content < 1 % amprolium) and feed
Eelsegud (amprooliumisisaldus < 1 %) ja söödad
Weigh to the nearest 0,01 g, 5-40 g of the sample depending on the amprolium content into a 500 ml conical flask and add 200 ml extraction solvent (3.8).
Olenevalt amprooliumisisaldusest kaalutakse 5–40 g proovi täpsusega 0,01 g, kantakse see 500 ml koonilisse kolbi ja lisatakse 200 ml ekstrahenti (3.8).
Dilute an aliquot of the extract with the mobile phase (3.6) to an amprolium content of 0,5-2 μg/ml and mix (see observation 9.3).
Ekstrakti alikvoot lahjendatakse liikuva faasiga (3.6) amprooliumisisalduseni 0,5–2 μg/ml ja segatakse (vt tähelepanek 9.3).
Filter 5-10 ml of this diluted solution on a membrane filter (4.2).
5–10 ml lahjendatud lahust filtreeritakse läbi membraanfiltri (4.2).
Premixtures (content ≥ 1 % amprolium)
Eelsegud (amprooliumisisaldus ≥ 1 %)
Weigh to the nearest 0,001 g, 1-4 g of the premixture depending on the amprolium content into a 500 ml conical flask and add 200 ml extraction solvent (3.8).
Olenevalt amprooliumisisaldusest kaalutakse 1–4 g proovi täpsusega 0,001 g, kantakse see 500 ml koonilisse kolbi ja lisatakse 200 ml ekstrahenti (3.8).
Dilute an aliquot of the extract with the mobile phase (3.6) to an amprolium content of 0,5-2 μg/ml and mix.
Ekstrakti alikvoot lahjendatakse liikuva faasiga (3.6) amprooliumisisalduseni 0,5–2 μg/ml ja segatakse.
Liquid chromatographic
Vedelikkromatograafia
column (4.1.1):
kolonn (4.1.1):
125 mm × 4 mm, cation exchange Nucleosil 10 SA, 5 or 10 μm packing, or equivalent
125 mm × 4 mm, katioonvahetaja Nucleosil 10 SA, täidise terasuurus 10 μm või samaväärne
Mobile phase (3.6):
Liikuv faas (3.6):
0,7-1 ml/min
0,7–1 ml/min
Check the stability of the chromatographic system, injecting several times the calibration solution (3.7.3) containing 1,0 μg/ml, until constant peak heights and retention times are achieved.
Kromatograafiaseadme tasakaalustatust kontrollitakse, süstides kolonni mitu korda kalibreerimislahust (3.5.3) kontsentratsiooniga 1,0 μg/ml, kuni saavutatakse konstantsed piigikõrgused ja retentsiooniajad.
Inject each calibration solution (3.7.3) several times and determine the mean peak heights (areas) for each concentration.
Iga kalibreerimislahust (3.7.3) süstitakse mitu korda ja mõõdetakse igale kontsentratsioonile vastavad keskmised piigikõrgused (pindalad).
Inject the sample extract (5.2) several times using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the amprolium peaks.
Prooviekstrakti (5.2) süstitakse mitu korda, kasutades sama mahtu, mis kalibreerimislahuste puhul, ja määratakse amprooliumipiikide keskmine kõrgus (pindala).
From the mean height (area) of the amprolium peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.3.2).
Proovilahuse amprooliumipiikide keskmise kõrguse (pindala) alusel leitakse kalibreerimisgraafiku (5.3.2) abil proovilahuse kontsentratsioon (μg/ml).
The amprolium content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
Proovi amprooliumisisaldus w (mg/kg) arvutatakse järgmise valemi järgi:
V volume of the extraction solvent (3.8) in ml according to 5.2 (i.e. 200 ml)
V punkti 5.2 kohane ekstrahendi (3.8) maht milliliitrites (s.o 200 ml);
c amprolium concentration of the sample extract (5.2) in μg/ml
c amprooliumi kontsentratsioon (μg/ml) prooviekstraktis (5.2);
f dilution factor according to 5.2
f punkti 5.2 kohane lahjendusfaktor;
m weight of the test portion in g.
m kaalutise mass grammides.
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract (5.2) and the calibration solution (3.7.3) containing 2,0 μg/ml are compared.
Uuritava aine identsust saab kinnitada täiendava kromatograafiakatse abil või kasutades dioodireadetektorit, mille puhul võrreldakse prooviekstrakti (5.2) ja 2,0 μg/ml sisaldusega kalibreerimislahuse (3.7.3) spektreid.
A sample extract (5.2) is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.7.3).
Prooviekstraktile (5.2) lisatakse vajalik kogus kalibreerimislahust (3.7.3).
The amount of added amprolium must be similar to the amount of amprolium found in the sample extract.
Lisatud amprooliumikogus peab olema ligikaudu sama suur nagu prooviekstraktist leitud amprooliumikogus.
Only the height of the amprolium peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Võttes arvesse nii lisatud kogust kui ka ekstrakti lahjendust, peab tõusma üksnes amprooliumipiigi kõrgus.
The peak width, at half of its height, must be within ± 10 % of the original width of the amprolium peak of the unfortified sample extract.
Piigi laius selle poolel kõrgusel ei tohi erineda rohkem kui 10 % kontsentreerimata prooviekstrakti amprooliumipiigi laiusest.
Between 210 and 320 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex of the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
lainepikkustel 210–320 nm ning suhtelise neeldumise vahemikus 10–100 % peavad proovi ja standardi piigi tipu spektrid kromatogrammil ühte langema.
Between 210 and 320 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
lainepikkustel 210–320 nm ning suhtelise neeldumise vahemikus 10–100 % peavad prooviekstrakti piigi tõusva osa, tipu ja alaneva osa spektrid ühte langema.
If one of these criteria is not met, the presence of the analyte has not been confirmed.
Kui mõni nendest nõuetest ei ole täidetud, ei peeta otsitava aine olemasolu tõestatuks.
15 % relative to the higher value for amprolium contents from 25 mg/kg to 500 mg/kg,
15 % suuremast tulemusest, kui amprooliumisisaldus on vahemikus 25–500 mg/kg;
75 mg/kg for amprolium contents between 500 mg/kg and 1000 mg/kg,
75 mg/kg, kui amprooliumisisaldus on vahemikus 500–1000 mg/kg;
7,5 % relative to the higher value for amprolium contents of more than 1000 mg/kg.
7,5 % suuremast tulemusest, kui amprooliumisisaldus on suurem kui 1000 mg/kg.
For a fortified (blank) sample the recovery shall be at least 90 %.
Suurendatud kontsentratsiooniga (fooni)proovi puhul peab saagis olema vähemalt 90 %.
A collaborative study was arranged in which three poultry feeds (sample 1-3), one mineral feed (sample 4) and one premix (sample 5) were analysed.
Korraldati ühisuuring, mille käigus analüüsiti kolme kodulindude sööta (proovid 1–3), ühte mineraalsööta (proov 4) ja ühte eelsegu (proov 5).
Sample 1 (blank feed)
Proov 1 (võrdlussööt)
nominal content [mg/kg]
Nominaalsisaldus [mg/kg]
If the sample contains thiamine, the thiamine peak in the chromatogram appears shortly before the amprolium peak.
Kui proov sisaldab tiamiini, ilmub kromatogrammil tiamiinipiik veidi enne amprooliumipiiki.
Following this method amprolium and thiamine must be separated.
Selle meetodi kohaselt peavad amproolium ja tiamiin teineteisest eralduma.
If the amprolium and thiamine are not separated by the column (4.1.1) used in this method, replace up to 50 % of the acetonitrile portion of the mobile phase (3.6) by methanol.
Kui amproolium ja tiamiin selle meetodi puhul kasutatavas kolonnis (4.1.1) teineteisest siiski ei eraldu, tuleb kuni 50 % liikuva faasi (3.6) atsetonitriilist asendada metanooliga.
According to the British Pharmacopoeia, the spectrum of an amprolium solution (c = 0,02 mol/l) in hydrochloric acid (c = 0,1 mol/l) shows maxima at 246 nm and 262 nm.
Briti farmakopöa andmetel on soolhappelahuses (c = 0,1 mol/l) amprooliumi lahuse (c = 0,02 mol/l) neeldumismaksimumid 246 ja 262 nm juures.
The absorbance shall amount to 0,84 at 246 nm and 0,80 at 262 nm.
Neelduvus on 246 nm juures 0,84 ja 262 nm juures 0,80.
The extract must always be diluted with the mobile phase, because otherwise the retention time of the amprolium peak may shift significantly, due to changes in the ionic strength.
Ekstrakt tuleb iga kord liikuva faasiga lahjendada, sest vastasel korral võib amprooliumipiigi retentsiooniaeg ioontugevuse muutuste tõttu oluliselt nihkuda.
DETERMINATION OF CARBADOX
KARBADOKSI MÄÄRAMINE
Methyl 3-(2-quinoxalinylmethylene)carbazate N1,N4-dioxide
Metüül-3-(2-kinoksalinüülmetüleen)karbasaat-N1,N4-dioksiid
This method makes it possible to determine the level of carbadox in feed, premixtures and preparations.
Selle meetodiga on võimalik määrata karbadoksi kogust söödas, eelsegudes ja preparaatides.
The sample is equilibrated with water and extracted with methanol-acetonitrile.
Proovil lastakse vees seista ja ekstraheeritakse metanooli ja atsetonitriili seguga.
For feed, an aliquot portion of the filtered extract is subjected to clean-up on an aluminium oxide column.
Sööda puhul lastakse filtreeritud ekstrakti alikvoodil selgida alumiiniumoksiidkolonnil.
For premixtures and preparations an aliquot portion of the filtered extract is diluted to an appropriate concentration with water, methanol and acetonitrile.
Eelsegude ja preparaatide puhul lahjendatakse filtreeritud ekstrakti alikvoot vee, metanooli ja atsetonitriiliga sobiva kontsentratsioonini.
The content of carbadox is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) using a UV detector.
Karbadoksisisaldus määratakse pöördfaasilise kõrgefektiivse vedelikkromatograafia (HPLC) abil, kasutades ultraviolettdetektorit.
Acetic acid, w = 100 %.
Äädikhape, w = 100 %
Aluminium oxide: neutral, activity grade I.
Alumiiniumoksiid: neutraalne, aktiivsuse aste I
Methanol-acetonitrile 1 + 1 (v + v).
Metanool + atsetonitriil 1:1 (v + v)
Mix 500 ml of methanol (3.1) with 500 ml of acetonitrile (3.2).
500 ml metanooli (3.1) segatakse 500 ml atsetonitriiliga (3.2).
Acetic acid, σ = 10 %.
Äädikhape, σ = 10 %
Dilute 10 ml acetic acid (3.3) to 100 ml with water.
10 ml äädikhapet (3.3) lahjendatakse veega 100 milliliitrini.
Sodium acetate.
Naatriumatsetaat
Acetate buffer solution, c = 0,01 mol/l, pH = 6,0.
Atsetaatpuhverlahus, c = 0,01 mol/l, pH = 6,0
Dissolve 0,82 g of sodium acetate (3.7) in 700 ml of water (3.8) and adjust the pH to 6,0 with acetic acid (3.6).
0,82 g naatriumatsetaati (3.7) lahustatakse 700 ml vees (3.8) ja pH korrigeeritakse äädikhappega (3.6) 6,0-ni.
Transfer to a 1000 ml graduated flask, make up to the mark with water (3.8) and mix.
Lahus kallatakse 1000 ml mõõtekolbi, kolb täidetakse veega (3.8) kuni märgini ja segatakse.
Mix 825 ml of acetate buffer solution (3.9) with 175 ml of acetonitrile (3.2).
825 ml atsetaatpuhverlahust (3.9) segatakse 175 ml atsetonitriiliga (3.2).
Pure carbadox: Methyl 3-(2-quinoxalinylmethylene)carbazate N1,N4-dioxide, E 850.
Puhas karbadoks: metüül-3-(2-kinoksalinüülmetüleen)karbasaat-N1,N4-dioksiid, E 850
Weigh to the nearest 0,1 mg, 25 mg of carbadox standard substance (3.11) into a 250 ml graduated flask.
25 mg karbadoksi standardainet (3.11) kaalutakse täpsusega 0,1 mg ja asetatakse see 250 ml mõõtekolbi.
Dissolve in methanol-acetonitrile (3.5) by ultrasonification (4.7).
Lahustatakse ultraheliga mõjutades (4.7) metanooli ja atsetonitriili segus (3.5).
After ultrasonic treatment bring the solution to room temperature, make up to the mark with methanol-acetonitrile (3.5) and mix.
Pärast ultraheliga mõjutamist viiakse lahuse temperatuur toatemperatuurini, täidetakse kolb metanooli ja atsetonitriili seguga (3.5) kuni märgini ja segatakse.
Wrap the flask with aluminium foil or use amber glassware and store in a refrigerator.
Kolb mähitakse alumiiniumfooliumi või kasutatakse tumedat anumat ja säilitatakse külmikus.
Transfer 2,0, 5,0, 10,0, and 20,0 ml of the stock standard solution (3.11.1) into a series of 100 ml calibrated flasks.
2,0, 5,010,0 ja 20,0 ml põhistandardlahust (3.11.1) pannakse 100 ml mõõtekolbidesse.