natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If the ECX for effects on reproduction is estimated, it is advisable that sufficient concentrations are used to define the ECX with an appropriate level of confidence.
kui hinnatakse ECX mõju sigivusele, on soovitatav kasutada kontsentratsioone, mis oleksid piisavad, et määratleda ECX vajalikul usaldusväärsuse tasemel.
If the EC50 for effects on reproduction is estimated, it is advisable that the highest test concentration is greater than this EC50.
Kui hinnatakse EC50 mõju sigivusele, on soovitatav, et kõrgeim uuritav kontsentratsioon oleks suurem kui kõnealune EC50.
Otherwise, although it will still be possible to estimate the EC50, the confidence interval for the EC50 will be very wide and it may not be possible to satisfactorily assess the adequacy of the fitted model.
Kuigi vastupidisel juhul on võimalik hinnata EC50, on EC50 usaldusvahemik väga suur ning kasutatud mudeli adekvaatsuse hindamine rahuldaval moel ei pruugi olla võimalik;
The range of test concentration should preferably not include any concentrations that have a statistically significant effect on adult survival since this would change the nature of the test from simply a reproduction test to a combined reproduction and mortality test requiring much more complex statistical analysis.
uuritavate kontsentratsioonide vahemik ei tohiks hõlmata kontsentratsioone, millel on statistiliselt märkimisväärne mõju täiskasvanud isendite eluspüsimisele, kuna sellisel juhul ei uurita selle katsega enam mitte ainult sigivust, vaid sigivuse ja suremuse kombinatsiooni, ning see eeldaks palju keerukama statistilise analüüsi kasutamist.
Where a solvent or dispersant is used to aid preparation of test solutions (see Section 1.6.4), its final concentration in the test vessels should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Kui uuritava lahuse valmistamiseks kasutatakse lahustit või dispergaatorit (vt punkti 1.6.4), ei tohiks selle lõplik kontsentratsioon katseanumas olla suurem kui 0,1 ml/l ning see kontsentratsioon peaks kõigis katseanumates olema sama.
One test-medium control series and also, if relevant, one control series containing the solvent or dispersant should be run in addition to the test series.
Lisaks katseseeriale tuleks teha üks katsekeskkonna kontrollkatsete seeria ja vajaduse korral ka üks lahustit või dispergaatorit sisaldav kontrollkatsete seeria.
When used, the solvent or dispersant concentration should be the same as that used in the vessels containing the test substance.
Lahusti või dispergaatori korral peaks nende kontsentratsioon olema sama mis uuritavat ainet sisaldavates anumates.
The appropriate number of replicates should be used (see Section 1.8.1.3).
Kasutada tuleks sobivat hulka dubleerivaid proove (vt punkti 1.8.1.3).
Generally, in a well-run test, the coefficient of variation around the mean number of living offspring produced per parent animal in the control(s) should be ≤ 25 %, and this should be reported for test designs using individually held animals.
Tavaliselt peaks korralikult läbiviidud katse puhul olema kontrollrühmas (kontrollrühmades) vanema kohta saadud elus järglaste keskmise arvu variatsioonikordaja ≤ 25 % ning see tuleks ära märkida, kui katses kasutatakse eraldi peetavaid loomi.
Test medium renewal
Katsekeskkonna uuendamine
The frequency of medium renewal will depend on the stability of the test substance, but should be at least three times per week.
Katsekeskkonna uuendamise sagedus sõltub uuritava aine püsivusest, kuid see sagedus peaks olema vähemalt kolm korda nädalas.
If, from preliminary stability tests (see Section 1.4) the test substance concentration is not stable (i.e. outside the range 80-120 % of nominal or falling below 80 % of the measured initial concentration) over the maximum renewal period (i.e. 3 days), consideration should be given to more frequent medium renewal, or to the use of a flow-through test.
Kui esialgse püsivuse katse (vt punkti 1.4) käigus ilmneb, et maksimaalse uuendamisperioodi (st kolme päeva) jooksul ei ole uuritava aine kontsentratsioon püsiv (st väljaspool 80–120 % vahemikku või madalam kui 80 % esialgsest mõõdetud kontsentratsioonist), tuleks kaaluda katsekeskkonna sagedasemat uuendamist või kasutada läbivoolukatset.
When the medium is renewed in semi-static tests, a second series of test vessels are prepared and the parent animals transferred to them by, for example, a glass pipette of suitable diameter.
Kui katsekeskkonda uuendatakse poolstaatiliste katsete puhul, valmistatakse ette teine seeria katseanumaid ning vanemad teisaldatakse nendesse näiteks sobiva läbimõõduga klaaspipeti abil.
The volume of medium transferred with the Daphnia should be minimised.
Koos kiivrikutega teisaldatava katsevedeliku kogus peaks olema minimaalne.
The results of the observations made during the test should be recorded on data sheets (see examples in Appendices 3 and 4).
Katse jooksul tehtud vaatluste tulemused tuleks panna kirja andmelehtedele (vt näidiseid 3. ja 4. liites).
If other measurements are required (see 1.3 and 1.8.8) additional observations may be required.
Kui on vaja teha muid määramisi (vt 1.3 ja 1.8.8), võib vajalikuks osutuda täiendavate vaatluste tegemine.
The offspring produced by each parent animal should preferably be removed and counted daily from the appearance of the first brood, to prevent them consuming food intended for the adult.
Iga vanema järglased tuleks eelistatavalt pärast esimese haudme ilmumist iga päev eemaldada ja üle lugeda, et nad ei saaks ära süüa täiskasvanud isendile mõeldud sööta.
For the purpose of this method it is only the number of living offspring that needs to be counted, but the presence of aborted eggs or dead offspring should be recorded.
Käesoleva meetodi puhul tuleb üle lugeda ainult elusad järglased, kuid kirja tuleks panna ka aborteerunud munad ja surnud järglased.
Mortality among the parent animals should be recorded preferably daily, at least at the same times as offspring are counted.
Vanemate suremus tuleks registreerida soovitatavalt kord päevas vähemalt järglaste loendamisega samal ajal.
Other parameters
Muud parameetrid
Although this method is designed principally to assess effects on reproduction, it is possible that other effects may also be sufficiently quantified to allow statistical analysis.
Kuigi selle meetodi põhieesmärk on hinnata mõjusid sigivusele, on võimalik ka muude mõjude esinemine piisavates kogustes selleks, et neid statistiliselt analüüsida.
Growth measurements are highly desirable since they provide information on possible sublethal effects, which may be more useful than reproduction measurement alone; the measurement of the length of the parent animals (i.e. body length excluding the anal spine) at the end of the test is recommended.
Väga soovitatav on kasvuandmete kogumine, sest see annaks teavet võimalike subletaalsete mõjude kohta, mis võivad olla kasulikumad kui ainult sigivust käsitlevate mõõtmiste tulemused; katse lõpus on soovitatav mõõta vanemate pikkus (st kehapikkus, v.a koja tagaotsas olev oga).
Other parameters that can be measured or calculated include time to production of first brood (and subsequent broods), number and size of broods per animal, number of aborted broods, presence of males or ephippia and the intrinsic rate of population increase.
Lisaks sellele võib mõõta või arvutada veel järgmised parameetrid: aeg esimese haudme (ja sellele järgnevate haudmete) saamiseni, haudmete arv ja suurus looma kohta, aborteerunud haudmete arv, isasloomade ja rüpjade esinemine ja populatsiooni kasvu sisemine määr.
Oxygen concentration, temperature, hardness and pH values should be measured at least once a week, in fresh and old media, in the control(s) and in the highest test substance concentration.
Hapnikusisaldust, temperatuuri, vee karedust ja pH taset tuleks mõõta vähemalt kord nädalas värskes ja vanas katsekeskkonnas, kontrollrühmas (-rühmades) ja kõrgeima uuritava aine kontsentratsiooniga katseanumas.
During the test, the concentrations of test substance are determined at regular intervals.
Katse käigus määratakse uuritava aine kontsentratsioon kindlaks korrapäraste ajavahemike järel.
In semi-static tests where the concentration of the test substance is expected to remain within ± 20 % of the nominal (i.e. within the range 80-120 % — see 1.4 and 1.8.4), it is recommended that, as a minimum, the highest and lowest test concentrations be analysed when freshly prepared and at the time of renewal on one occasion during the first week of the test (i.e. analyses should be made on a sample from the same solution — when freshly prepared and at renewal).
Poolstaatiliste katsete puhul, kui võib eeldada, et uuritava aine kontsentratsioon jääb vahemikku ± 20 % nimiväärtusest (st vahemikku 80–120 %; vt 1.4 ja 1.8.4), on soovitatav analüüsida vähemalt madalaimat ja kõrgeimat uuritavat kontsentratsiooni vahetult pärast valmistamist ja uuendamise ajal üks kord esimese nädala jooksul (st analüüsida tuleks proovi, mis on võetud samast lahusest – kohe pärast valmistamist ja uuendamise ajal).
These determinations should be repeated at least at weekly intervals thereafter.
Hiljem tuleks nimetatud määramisi korrata vähemalt iga nädala järel.
For tests where the concentration of the test substance is not expected to remain within ± 20 % of the nominal, it is necessary to analyse all test concentrations, when freshly prepared and at renewal.
Kui katsete puhul ei eeldata, et uuritava aine kontsentratsioon jääb vahemikku ± 20 % nimiväärtusest, tuleb analüüsida kõiki uuritavaid kontsentratsioone vahetult pärast valmistamist ja uuendamise ajal.
However, for those tests where the measured initial concentration of the test substance is not within ± 20 % of nominal but where sufficient evidence can be provided to show that the initial concentrations are repeatable and stable (i.e. within the range 80-120 % of initial concentrations), chemical determinations could be reduced in weeks 2 and 3 of the test to the highest and lowest test concentrations.
Kui aga tegemist on katsega, mille puhul esialgne mõõdetud uuritava aine kontsentratsioon ei jää vahemikku ± 20 % nimiväärtusest, kuid esitatakse piisavalt tõendeid selle kohta, et esialgsed kontsentratsioonid on korratavad ja püsivad (st jäävad vahemikku 80–120 % esialgsest kontsentratsioonist), võib katse teisel ja kolmandal nädalal keemilisi määramisi vähendada ja piirduda vaid kõrgeima ja madalaima uuritava kontsentratsiooni analüüsimisega.
In all cases, determination of test substance concentrations prior to renewal need only be performed on one replicate vessel at each test concentration.
Igal juhul tuleb enne uuendamist määrata uuritava aine kontsentratsioon ainult ühel dubleerivat proovi sisaldaval anumal iga uuritava kontsentratsiooni kohta.
If a flow-through test is used, a similar sampling regime to that described for semi-static tests is appropriate (but measurement of ‘old’ solutions is not applicable in this case).
Kui kasutatakse läbivoolukatset, on otstarbekas kasutada samasugust korda nagu poolstaatiliste katsete puhul kirjeldatud (kuid sellisel juhul ei ole võimalik mõõta „vanu” lahuseid).
If there is evidence that the concentration of the substance being tested has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, then results can be based on nominal or measured initial values.
Kui on tõendeid selle kohta, et uuritava aine kontsentratsioon on kogu katse vältel püsinud rahuldaval moel vahemikus ± 20 % nimiväärtusest või esialgselt mõõdetud kontsentratsioonist, võivad tulemused põhineda nimiväärtusel või esialgselt mõõdetud väärtusel.
If the deviation from the nominal or measured initial concentration is greater than ± 20 %, results should be expressed in terms of the time-weighed mean (see Appendix 5).
Kui kõrvalekaldumine nimiväärtusest või esialgselt mõõdetud kontsentratsioonist on suurem kui ± 20 %, tuleks tulemused esitada aja-kaalu keskmistena (vt 5. liidet).
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the total number of living offspring produced per parent animal alive at the end of the test.
Käesoleva katse eesmärk on määrata kindlaks uuritava aine mõju katse lõpus elus olevate vanemate kohta saadud elus järglaste koguarvule.
The total number of offspring per parent animal should be calculated for each test vessel (i.e. replicate).
Vanema kohta saadud järglaste koguarv tuleks arvutada iga katseanuma (st iga dubleeriva proovi) kohta.
If, in any replicate the parent animal dies during the test or turns out to be male, then the replicate is excluded from the analysis.
Kui mõnes dubleerivas proovis kasutatav vanem sureb katse ajal või osutub isasloomaks, jäetakse see dubleeriv proov analüüsist välja.
The analysis will then be based on a reduced number of replicates.
Analüüsi aluseks võetakse sel juhul väiksem arv dubleerivaid proove.
For the estimation of the LOEC, and hence the NOEC, for effects of the chemical on reproductive output, it is necessary to calculate the mean reproductive output across replicates for each concentration and the pooled residual standard deviation, and this can be done using analysis of variance (ANOVA).
Kui hinnatakse kemikaali mõju sigivusele ja määratakse LOEC ja seega ka NOEC, tuleb arvutada keskmine sigivus dubleerivate proovide lõikes iga kontsentratsiooni puhul ja summaarse standardhälbe jääk ning seda saab teha dispersioonanalüüsiga (ANOVA).
The mean for each concentration must then be compared with the control mean using an appropriate multiple comparison method.
Seejärel tuleb iga kontsentratsiooni keskmist võrrelda kontrollrühma keskmisega, kasutades selleks sobivat mitmese võrdluse meetodit.
Dunnett's or Williams' tests may be useful (14)(15)(16)(17).
Dunnetti ja Williamsi katsed võivad olla kasulikud (14, 15, 16, 17).
It is necessary to check whether the ANOVA assumption of homogeneity of variance holds.
Tuleb kontrollida, kas ANOVA eeldus dispersiooni homogeensuse kohta peab paika.
It is recommended that this be done graphically rather than via a formal significance test (18); a suitable alternative is to run a Bartlett's test.
Seda oleks soovitatav teha graafiliselt, mitte formaalse statistilise olulisuse katsega (18); alternatiivse võimalusena võib teha Bartletti katse.
If this assumption does not hold, then consideration should be given to transforming the data to homogenise variances prior to performing the ANOVA, or to carrying out a weighted ANOVA.
Kui see eeldus ei pea paika, tuleks kaaluda andmete teisendamist, et homogeniseerida dispersioon enne ANOVA tegemist, või kaalutud ANOVA tegemist.
The size of the effect detectable using ANOVA (i.e. the least significant difference) should be calculated and reported.
ANOVA abil täheldatud mõju suurus (st väikseim tähendust omav erinevus) tuleks välja arvutada ja aruandesse kirja panna.
For the estimation of the concentration which would cause a 50 % reduction in reproductive output (i.e. the EC50), a suitable curve, such as the logistic curve, should be fitted to the data using a statistical method such as least squares.
Sellise kontsentratsiooni hindamiseks, mis põhjustaks paljunemisvõime 50 % vähenemise (st EC50), tuleks andmetega sobitada sobiv kõver, näiteks logistiline kõver, kasutades näiteks sellist statistikameetodit nagu vähimruutude meetod.
The curve could be parameterised so that the EC50 and its standard error can be estimated directly.
Kõvera võiks parametriseerida nii, et EC50 ja selle standardviga saaks vahetult hinnata.
This would greatly ease the calculation of the confidence limits about the EC50.
See hõlbustaks märkimisväärselt EC50 usalduspiiri arvutamist.
Unless there are good reasons to prefer different confidence levels, two-sided 95 % confidence limits should be quoted.
Kui puuduvad põhjused eelistada teistsuguseid usaldusnivoosid, tuleks kasutada kahepoolset 95 % usalduspiiri.
This can be done graphically or by dividing the residual sum of squares into ‘lack of fit’ and ‘pure error components’ and performing a significance test for lack of fit.
Seda saab teha graafiliselt või jagades ruutude jääksumma sobivuse puudumise ja puhta vea komponentideks ning tehes sobivuse puudumise statistilise olulisuse katse.
Since treatments giving high fecundity are likely to have greater variance in the number of juveniles produced than treatments giving low fecundity, consideration to weighting the observed values to reflect the different variances in the different treatment groups should be given (see for background information ref. 18).
Selliste menetluste puhul, millega kaasneb sigivuse kõrge tase, on saadud noorloomade arvu dispersioon tõenäoliselt suurem kui menetluse puhul, millega kaasneb sigivuse madal tase, ja seetõttu tuleks kaaluda täheldatud väärtuste kaalumist selliselt, et neis kajastuks erinev dispersioon eri menetlusrühmades (taustainfo kohta vt viidet 18).
In the analysis of the data from the final ring test (2), a logistic curve was fitted using the following model, although other suitable models can be used:
Lõpliku laboritevahelise võrdlusuuringu (2) andmete analüüsimiseks sobitati logistiline kõver järgmise valemi abil, kuid kasutada võib ka muid sobivaid valemeid:
Losungsmittel für Anstrichstoffe, Bestimmung des Siedeverlaufes
Lösungsmittel für Anstrichstoffe, Bestimmung des Siedeverlaufes
Low melting
madala Sulamistemperatuuriga
Up to 25 %
kuni 25 %
103 Pa to 2 × 103 Pa
103 Pa – 2 × 103 Pa
Up to 50 %
kuni 50 %
Calculated values of the vapour pressure can be used:
Aururõhu arvutuslikke väärtusi saab kasutada
for deciding which of the experimental methods is appropriate,
sobiva katsemeetodi valikul;
All calculation methods are based on the formal fragmentation of the molecule into suitable substructures for which reliable log Pow-increments are known.
Kõigi arvutusmeetodite kohaselt jagatakse molekul sobivateks alamstruktuurideks, mille kohta on olemas usaldusväärsed log POW osaväärtused.
The log Pow of the whole molecule is then calculated as the sum of its corresponding fragment values plus the sum of correction terms for intramolecular interactions.
Seejärel arvutatakse terve molekuli log POW, liites kokku funktsionaalrühmadele vastavad osaväärtused ja sisemolekulaarseid vastasmõjusid arvestavad parandusliikmed.
-Chill.
Chim.
Length of the mould: 250 mm
Vormi pikkus: 250 mm
Material: aluminium
Materjal: alumiinium
Berthold, D. Conrad, T. Grewer, H. Grosse-Wortmann ‘Entwicklung einer Standard-Apparatur zur Messung von Explosionsgrenzen’.
Berthold, D. Conrad, T. Grewer, H. Grosse-Wortmann, T. Redeker und H. Schacke. Entwicklung einer Standard-Apparatur zur Messung von Explosionsgrenzen.
Chem.-Ing.- Tech.
Chem.-Ing.-Tech.
The auto-flammability of liquids may also need to be tested using method A.15. Auto-ignition temperature (liquids and gases).
Vedelike isesüttivust võib vaja olla kontrollida ka meetodi A.15 „Isesüttimistemperatuur (vedelikud ja gaasid)” kohaselt.
A tared tube is filled with 9 cm3 of substance and the substance tamped with 80 N force applied to the total cross-section of the tube.
Kaalutud hülss täidetakse 9 cm3 ainega ja tambitakse kogu hülsi ristlõike ulatuses avaldatava 80 N jõuga kokku.
For reasons of safety or in cases where the physical form of the sample can be changed by compression other filling procedures may be used; e.g. if the substance is very friction sensitive then tamping is not appropriate.
Ohutuse huvides või juhtudel, kus proovi füüsikaline olek võib surve mõjul muutuda, võib kasutada muid täitmismeetodeid; nt väga hõõrdetundliku aine puhul ei saa tampimist kasutada.
The amount of solid determined in the second dry run is used for each trial; filling being performed in three equal amounts, each compressed to 9 cm3 by whatever force is necessary.
Teisel proovitäitmisel leitud ainekogust kasutatakse edasistes katsetes, täites hülsi kolmes võrdses osas, mis surutakse kokku ruumalani 9 cm3 mis tahes selleks vajaliku jõuga.
(This may be facilitated by the use of spacing rings).
(Selleks võib abivahendina kasutada vaherõngaid).
The porcelain plate has to move 10 mm forwards and backwards under the porcelain peg in a time of 0,44 seconds.
Portselanplaat peab portselanpulga all 0,44 sekundi jooksul 10 mm edasi ja tagasi liikuma.
Each part of the surface of the plate and peg must only be used once; the two ends of each peg will serve for two trials and the two surfaces of a plate will each serve for three trials.
Iga plaadi ja pulga pinna osa võib kasutada ainult ühe korra; pulga mõlemat otsa võib kasutada kaheks katseks ja plaadi kumbagi külge kolmeks katseks.
Typical temperature/time curve
Tüüpiline temperatuuri/aja kõver
sample temperature
proovi temperatuur
oven temperature
ahju temperatuur
The smallest molecules, with a mean hydrodynamic radius smaller than the pores of the gel, can penetrate all of the pores. These are eluted last.
Kõige väiksemad molekulid, mille keskmine hüdrodünaamiline raadius on väiksem kui geeli poorid, tungivad kõikidesse pooridesse ja elueeruvad viimastena.
V e1, Ve2
V e1, Ve2
W 1, W2
W 1, W2
Determination of Molecular Weight, A.R.
In: Determination of Molecular Weight, A. R. Cooper ed., J. Wiley and Sons, pp.
Optionally, if the experimenter foresees that the results of this test may eventually be used for other purposes [9] As, for example, in the framework of UN transport regulations.
Kui katse tegija näeb ette, et katse tulemusi võib lõpuks kasutada muudel eesmärkidel, [9] Näiteks ÜRO transpordieeskirjade raames.
, testing of additional reference substances may also be appropriate.
võib soovi korral samuti osutuda vajalikuks katse tegemine täiendavate võrdlusainetega.
The same batch of cellulose is to be used throughout the test.1.6.1.2.
Tselluloosi sama partiid kasutatakse kogu uuringu vältel.1.6.1.2.
The mixture is heated until the bursting disk ruptures or until at least 60 s have elapsed. If the bursting disk does not rupture, the mixture should be allowed to cool before carefully dismantling the apparatus, taking precautions to allow for any pressurisation which may occur.
Segu kuumutatakse kuni puruneva membraani rebestumiseni või vähemalt 60 s. Kui purunev membraan ei rebestu, tuleks lasta segul jahtuda enne seadme hoolikat lahtimonteerimist, vältides seejuures võimalikku hermeetilisuse kadumist.
Pressure vessel body
Surveanuma korpus
Bursting disk retaining plug
Purunevat membraani paigalhoidev kork
Soft lead washer
Pehme tinatihend
Bursting disc
Purunev membraan
Side arm
Külgharu
Pressure transducer head
Rõhuanduri pea
Washer
Tihend
Insulated electrode
Isoleeritud elektrood
Earthed electrode
Maandatud elektrood
Steel cone
Teraskoonus
Washer distorting groove
Tihendit deformeeriv soon
MUTAGENICITY: REVERSE MUTATION TEST USING BACTERIA
MUTAGEENSUS – BAKTERITE PÖÖRDMUTATSIOONKATSE
A second animal is dosed at 5 mg/kg.
Teisele loomale manustatakse annus 5 mg/kg.
≥ 1 with evident toxicity and / or 1 death No evident toxicity and no death Group size
≥ 2 surma
The 5 animals in each main study group will include any animal tested at that dose level in the sighting study
Kui see annusemäär põhjustas eelkatses surma, siis rohkem loomi ei uurita. Minge otse tulemuse juurde
Classify GHS Category
GHS-kategooria
Group size
Loomade heaolu on esmajärguline
U + unclassified
U = klassifitseerimata
For each starting dose, the respective testing schemes as included in this Appendix outline the procedure to be followed.
Selles lisas toodud vastavad katsekavad selgitavad protseduuri, mida tuleb järgida iga lähteannuse puhul.
Appendix 1 a: starting dose is 5 mg/kg bw,
lisa: lähteannus on 5 mg kg kehamassi kohta
Appendix 1 b: starting dose is 50 mg/kg bw,
lisa: lähteannus on 50 mg kg kehamassi kohta
Appendix 1 c: starting dose is: 300 mg/kg bw,
lisa: lähteannus on 300 mg kg kehamassi kohta
Apendix 1 d: starting dose is: 2000 mg/kg bw.
lisa: lähteannus on 2000 mg kg kehamassi kohta
Depending on the number of humanely killed or dead animals, the test procedure follows the indicated arrows.
Humaanselt surmatud või surnud loomade arvust sõltuvalt toimitakse katseprotseduuris vastavalt nooltega näidatud suunale.
TEST PROCEDURE WITH A STARTING DOSE OF 5 MG/KG BODY WEIGHT
KATSEPROTSEDUUR LÄHTEANNUSE 5 MG/KEHAMASSI KG KORRAL
cut-off mg/kg b.w.
piirväärtus mg / kehamassi kg