natgillin/translations-raw huggingface dataset:
duration: 96 hours,
kestus: 96 tundi;
number of animals: at least seven per concentration,
isendite arv: iga kontsentratsiooni kohta vähemalt seitse;
tanks: of suitable capacity in relation to the recommended loading,
mahutid: küllaldase mahuga soovitatava koguse jaoks;
loading: maximum loading of 1 g per litre for static and semi-static tests is recommended; for flow-through systems, higher loading is acceptable,
katseaine sisaldus: seisva veega ja poolseisva veega katsesüsteemis on suurim soovitatav sisaldus 1 g/l, läbivooluga süsteemides võib see olla suurem;
test concentration: At least five concentrations differing by a constant factor not exceeding 2,2 and as far as possible spanning the range of 0 to 100 % mortality,
katsekontsentratsioon: kasutatakse vähemalt viit kontsentratsiooni, mis erinevad üksteisest konstantse teguri (kuni 2,2) võrra ja mis võimaluse korral hõlmavad kogu suremusvahemikku 0–100 %;
water: see 1.6.1.2,
vesi: vt 1.6.1.2;
light: 12 to 16 hours illumination daily,
valgus: 12–16 tundi päevas;
temperature: appropriate to the species (Appendix 2) but within ± 1 oC within any particular test,
temperatuur: vastavalt liigile (2. liide), kuid ei tohi ühegi katse kestel kõikuda rohkem kui ± 1 oC;
dissolved oxygen concentration: not less than 60 % of the air-saturation value at the selected temperature,
lahustunud hapniku kontsentratsioon: vähemalt 60 % küllastusväärtusest antud temperatuuril;
feeding: none.
söötmine: ei söödeta.
The fish are inspected after the first two to four hours and at least at 24-hour intervals.
Kalu vaadeldakse esimese 2–4 tunni pärast ja seejärel vähemalt iga 24 tunni järel.
Fish are considered dead if touching of the caudal peduncle produces no reaction, and no breathing movements are visible.
Kalad loetakse surnuks, kui sabavarre puudutamine ei kutsu esile reaktsiooni ja puuduvad nähtavad hingamisliigutused.
Dead fish are removed when observed and mortalities are recorded.
Surnud kalade avastamisel need kõrvaldatakse ja suremus registreeritakse.
Records are kept of visible abnormalities (e.g. loss of equilibrium, changes in swimming behaviour, respiratory function, pigmentation, etc.).
Registreeritakse ka nähtavad kõrvalekalded (nt tasakaalu puudumine, muutused ujumiskäitumises, hingamisfunktsioonis või pigmentatsioonis jne).
Measurements of pH, dissolved oxygen and temperature must be carried out daily.
Iga päev tuleb mõõta pH-d, lahustunud hapniku kontsentratsiooni ja temperatuuri.
Using the procedures described in this test method, a limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the LC50 is greater than this concentration.
Käesoleva katsemeetodi protseduuri järgides võib kontsentratsioonil 100 mg/l teha piirsisalduskatse näitamaks, et LC50 on sellest kontsentratsioonist kõrgem.
If the nature of the substance is such that a concentration of 100 mg per litre in the test water cannot be attained, the limit test should be performed at a concentration equal to the solubility of the substance (or the maximum concentration forming a stable dispersion) in the medium used (see also point 1.6.1.1).
Kui aine iseloom välistab kontsentratsiooni 100 mg/l saavutamise katses kasutatavas vees, tuleks piirsisalduskatse teha kontsentratsioonil, mis on võrdne aine lahustuvusega kasutatavas keskkonnas (või kõrgeimal kontsentratsioonil, kus moodustub stabiilne dispersioon) (vt ka punkti 1.6.1.1).
The limit test should be performed using seven to 10 fish, with the same number in the control(s).
Piirsisalduskatses tuleks kasutada 7–10 kala ja samapalju kontrollkalu.
(Binomial theory dictates that when 10 fish are used with zero mortality, there is a 99,9 % confidence that the LC50 is greater than the concentration used in the limit test.
(Binomiaalteooria kohaselt võib 99,9 % tõenäosusega väita, et kui 10 kalaga katses on suremus null, siis on LC50 piirsisalduskatses kasutatud kontsentratsioonist kõrgem.
With 7, 8 or 9 fish, the absence of mortality provides at least 99 % confidence that the LC50 is greater than the concentration used.)
7, 8 või 9 kala puhul näitab suremuse puudumine vähemalt 99 % tõenäosusega seda, et LC50 on kasutatud kontsentratsioonist kõrgem.)
If mortalities occur, a full study must be carried out.
Suremuse esinemisel tuleb teha täiemahuline uuring.
If sublethal effects are observed, these should be recorded.
Subletaalse toime avaldumisel tuleks see registreerida.
DATA AND EVALUATION
ANDMED JA HINDAMINE
For each period where observations were recorded (24, 48, 72 and 96 hours), plot percentage mortality for each recommended exposure period against concentration on logarithmic-probability paper.
Iga vaatlustulemuste registreerimise ajavahemiku puhul (24, 48, 72 ja 96 tundi) tuleb näidata iga soovitatava kokkupuuteperioodi kohta logaritmilisel diagrammil graafiliselt suremusprotsendi sõltuvus kontsentratsioonist.
When possible and for each observation time, the LC50 and the confidence limits (p = 0,05) should be estimated using standard procedures; these values should be rounded off to one, or at most two significant figures (examples of rounding off to two figures: 170 for 173,5; 0,13 for 0,127; 1,2 for 1,21).
Võimaluse korral tuleks iga vaatlushetke kohta leida standardmeetodeid kasutades hinnanguline LC50 väärtus ja usalduspiirid (p = 0,05); need väärtused tuleks ümardada ühe või maksimaalselt kahe tüvenumbrini (kahe tüvenumbrini ümardamise näited: 173,5 → 170; 0,127 → 0,13; 1,21 → 1,2).
In those cases where the slope of the concentration/percentage response curve is too steep to permit calculation of the LC50, a graphical estimate of this value is sufficient.
Juhtudel, kus kontsentratsiooni/protsentuaalse reaktsiooni kõvera tõus on LC50 arvutamiseks liiga suur, piisab selle väärtuse graafilisest hindamisest.
When two consecutive concentrations, at a ratio of 2,2 give only 0 and 100 % mortality, these two values are sufficient to indicate the range within which the LC50 falls.
Kui kahe järjestikuse, 2,2kordse vahega kontsentratsiooni suremus on vastavalt 0 ja 100 %, piisab LC50 vahemiku näitamiseks neist kahest väärtusest.
If it is observed that the stability or homogeneity of the test substance cannot be maintained, this should be reported and care should be taken in the interpretation of the results.
Kui täheldatakse, et testaine stabiilsust või homogeensust ei ole võimalik säilitada, tuleks see ära märkida ja olla tulemuste tõlgendamisel ettevaatlik.
information about test fish (scientific name, strain, supplier, any pretreatment, size and number used in each test concentration),
andmeid katses kasutatavate kalade kohta (teaduslikku nimetust, liini, päritolu, mis tahes eelnevat mõjutamist ning igal katsekontsentratsioonil kasutatud kalade suurust ja arvu);
dilution-water source and major chemical characteristics (pH, hardness, temperature),
lahjendusvee päritolu ja peamisi keemilisi näitajaid (pH, karedus, temperatuur);
in the case of a substance of low aqueous solubility, the method of preparation of stock and test solutions,
vees vähelahustuva aine puhul põhi- ja katselahuste valmistamise meetodit;
concentration of any auxiliary substances,
kõigi abiainete kontsentratsiooni;
list of the concentrations used and any available information on the stability at the concentrations of the tested chemical in the test solution,
kasutatud kontsentratsioone ja kõiki olemasolevaid andmeid uuritava kemikaali kontsentratsioonide stabiilsuse kohta katselahuses;
if chemical analyses are performed, methods used and results obtained,
keemiliste analüüside tegemisel kasutatud meetodeid ja saadud tulemusi;
results of the limit test if conducted,
piirsisalduskatse tulemusi, kui see tehti;
reasons for the choice and details of the test procedure used (e.g. static, semi-static, dosing rate, flow-through rate, whether aerated, fish loading, etc.),
kasutatud katsemeetodi valiku põhjusi ja meetodi üksikasju (nt seisva veega, poolseisva veega katsesüsteem, annustamiskiirus, läbivoolu kiirus, aeratsioon, kalade hulk jne);
description of test equipment,
katseseadmete kirjeldust;
lighting regime,
valgusrežiimi;
dissolved oxygen concentrations, pH values and temperatures of the test solutions every 24 hours,
katselahuste hapnikusisaldust, pH väärtusi ja temperatuuri iga 24 tunni järel;
evidence that the quality criteria have been fulfilled,
tõendeid kvaliteedinõuete täitmise kohta;
a table showing the cumulative mortality at each concentration and the control (and control with the auxiliary substance if required) at each of the recommended observation times,
tabelit kumulatiivse suremuse kohta igal kontsentratsioonil ja kontrollkatses (ja vajaduse korral abiainega kontrollkatses) kõigil soovitatud vaatlushetkedel;
graph of the concentration/percentage response curve at the end of the test,
kontsentratsiooni/protsentuaalse reaktsioonikõvera graafikut katse lõpus;
if possible, the LC50 values at each of the recommended observation times (with 95 % confidence limits),
võimaluse korral LC50 väärtusi kõigil soovitatud vaatlushetkedel (95 % usalduspiiridega);
statistical procedures used for determining the LC50 values,
määramisel kasutatud statistilisi meetodeid;
if a reference substance is used, the results obtained,
võrdlusainete kasutamisel nendega saadud tulemusi;
highest test concentration causing no mortality within the period of the test,
kõrgeimat katsekontsentratsiooni, mille puhul katse kestel suremust ei esinenud;
lowest test concentration causing 100 % mortality within the period of the test.
madalaimat katsekontsentratsiooni, mille puhul suremus katse kestel oli 100 %.
AFNOR — Determination of the acute toxicity of a substance to Brachydanio rerio — Static and Flow Through methods — NFT 90-303 June 1985.
AFNOR – Determination of the acute toxicity of a substance to Brachydanio rerio - Static and Flow Through methods – NFT 90-303 June 1985.
AFNOR- Determination of the acute toxicity of a substance to Salmo gairdneri — Static and Flow — Through methods — NFT 90-305 June 1985.
AFNOR – Determination of the acute toxicity of a substance to Salmo gairdneri - Static and Flow Through methods – NFT 90-305 June 1985.
ISO 7346/1,/2 and/3 — Water Quality — Determination of the acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish (Brachydanio rerio Hamilton-Buchanan-Teleostei, Cyprinidae).
ISO 7346/l,/2 and/3 – Water Quality – Determination of the acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish (Brachydanio rerio Hamilton-Buchanan – Teleostei, Cyprinidae).
Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien fur Probenahme und Normung von Wasseruntersuchungsmethoden -Part II 1974.
Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien fur Probenahme und Normung von Wasseruntersuchungsmethoden – Part II 1974.
JIS K 0102, Acute toxicity test for fish.
JIS K 0102, Acute toxicity test for fish.
NEN 6506- Water -Bepaling van de akute toxiciteit met behulp van Poecilia reticulata, 1980.
NEN 6506 – Water – Bepaling van de akute toxiciteit met behulp van Poecilia reticulata, 1980.
Standard methods for the examination of water and wastewater, fourteen edition, APHA-AWWA-WPCF,1975.
Standard methods for the examination of water and wastewater, fourteen edition, APHA-AWWA-WPCF, 1975.
Commission of the European Communities, Inter-laboratory test programme concerning the study of the ecotoxicityof a chemical substance with respect to the fish.
Commission of the European Communities, Inter-laboratory test programme concerning the study of the ecotoxicity of a chemical substance with respect to the fish.
Rudolph, P. und Boje, R. Okotoxikologie, Grundlagen fur die okotoxikologische Bewertung von Umweltchemikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.
Rudolph, P. und Boje, R. Okotoxikologie, Grundlagen fur die okotoxikologische Bewertung von Umweltchemikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.986.
Litchfield, J. T.and Wilcoxon, F., A simplified method for evaluating dose effects experiments, J. Pharm, tExp.
Litchfield, J.T. and Wilcoxon, F., A simplified method for evaluating dose effects experiments, J. Pharm, Exp.
Therap., 1949, vol. 96,99.
Therap., 1949, vol. 96, 99.
Water Res., 1969, vol. 3,793-821.
Water Res., 1969, vol. 3, 793-821.
II Utilising and applying bioassay results.
II Utilising and applying bioassay results. Water Res.
Water Res. 1970, vol. 4, 3-32.
1970, vol. 4, 3-32.
Methods for calculating an LC50.
Methods for calculating an LC50.C50.
American Society for Testing and Materials, ASTM STP 634,1977, 65-84.
American Society for Testing and Materials, ASTM STP 634, 1977, 65-84.
Reconstituted water
Taastatud vesi
Example of a suitable dilution water
Sobiva lahjendusvee näited
All chemicals must be of analytical grade.
Kõik kemikaalid peavad olema analüüsipuhtad.
The water should be good-quality distilled water, or deionised water with a conductivity of less than 5 μScm-1.
Vesi peaks olema kvaliteetne destilleeritud vesi või deioniseeritud vesi juhtivusega alla 5 μS/cm–1.
Apparatus for distillation of water must not contain any parts made of copper.
Vee destilleerimise seade ei tohi sisaldada vaskosi.
CaCI2.
CaCl2.
2H2O (calcium chloride dihydrate):
2H2O (kaltsiumkloriiddihüdraat):
Dissolve in, and make up to 1 litre with water.
Lahustatakse vees ja täiendatakse veega 1 liitrini.
7H2O (magnesium sulphate heptahydrate):
7H2O (magneesiumsulfaatheptahüdraat):
Dissolve in, and make up to 1litre with water.
Lahustatakse vees ja täiendatakse veega 1 liitrini.
(sodium hydrogen carbonate):
(naatriumvesinikkarbonaat):
KCI (potassium chloride):
KCl (kaaliumkloriid):
Dissolve in, and make up to 11itre with water.
Lahustatakse vees ja täiendatakse veega 1 liitrini.
Reconstituted dilution water
Taastatud lahjendusvesi
Mix 25 ml of each of the four stock solutions and make up to 1 litre with water.
25 ml kõigist neljast põhilahusest segatakse kokku ja täiendatakse veega 1 liitrini.
Aerate until the dissolved oxygen concentration equals the air-saturation value.
Aereeritakse, kuni hapnikusisaldus jõuab küllastuskontsentratsioonini.
The pH should be 7,8 ± 0,2.
pH peaks olema 7,8 ± 0,2.
If necessary adjust the pH with NaOH (sodium hydroxide) or HCI (hydrochloric acid).
Vajaduse korral reguleeritakse pH-d NaOH (naatriumhüdroksiidi) või HCl-ga (vesinikkloriidhappega).
The dilution water so prepared is set aside for about 12 hours and must not be further aerated.
Sel viisil valmistatud lahjendusvett lastakse 12 tundi seista ja seda ei tohi enam aereerida.
The sum of the Ca and Mg ions in this solution is 2,5 mmol per litre.
Ca ja Mg ioonide summaarne kogus selles lahuses on 2,5 mmol/l.
The ratio of Ca:Mg ions is 4:1 and of Na:K ions is 10:1.
Ca:Mg ioonide suhe on 4:1 ja Na:K ioonide suhe 10:1.
The total alkalinity of this solution is 0,8 mmol per litre.
Lahuse üldleelisus on 0,8 mmol/1.
Any deviation in the preparation of the dilution water must not change the composition or properties of the water.
Ükski kõrvalekalle lahjendusvee valmistamisprotseduurist ei tohi muuta vee koostist või omadusi.
Fish species recommended for testing
Tabel 1a Katseks soovitatavad kalaliigid
Recommended species
Soovitatav liik
Recommended range of test temperature (oC)
Soovitatav katsetemperatuuride vahemik ( oC)
Recommended total length of test animal (cm)
Soovitatav katseisendi täispikkus (cm)
Brachydanio rerio (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan) Zebrab-fish
Brachydanio rerio (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan) Sebrakala
Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque) Fathead minnow
Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque), pakspea lepamaim
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Common carp
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Sasaan
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) Cyprinodontidae (Tomminck and Schlege 1850) Red killifish
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) Cyprinodontidae (Tomminck ja Schlegel 1850) Riisikala
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters 1859) Guppy
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters 1859) Gupi
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque Linneaus 1758) Bluegill
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque Linneaus 1758) Suur päikeseahven
Onchorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum 1988) Rainbow trout
Onchorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum 1988) Vikerforell
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Golden Orfe
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Harilik säinas
The fish listed above are easy to rear and/or are widely available throughout the year.
Eespool loetletud kalu on lihtne kasvatada ja/või neid on võimalik aasta läbi hankida.
They are capable of being bred and cultivated either in fish farms or in the laboratory, under disease — and parasite — controlled conditions, so that the test animal will be healthy and of known parentage.
Neid on võimalik aretada ja kasvatada kalakasvandustes või laboris, tingimustes, kus haigused ja parasiidid on kontrolli all, nii et katses kasutatav isend on terve ja tema põlvnemine teada.
These fish are available in many parts of the world.
Need kalad on kättesaadavad paljudes maailma piirkondades.
Example of concentration: percentage mortality
Kontsentratsiooni näide: suremusprotsendi sõltuvus
Example of determination of LC50 using log-probit paper
Näide LC50 määramise kohta logaritmilise probit-diagrammi abil
Mortality in % (probit scale)
Suremus (%) (probit-skaalal)
Concentrations (log scale)
Kontsentratsioonid (logaritmskaalal)
This acute immobilisation testing method is equivalent to the OECD TG 202 (2004).
Käesolev liikumisvõime akuutse pärssimise katsemeetod vastab suunisele OECD TG 202 (2004).
This method describes an acute toxicity test to assess effects of chemicals towards daphnids.
Käesolevas metoodikas kirjeldatakse akuutse toksilisuse katset kemikaalide toime hindamiseks vesikirpudele.
Existing test methods were used to the extent possible (1)(2)(3).
Olemasolevaid katsemeetodeid kasutati võimalikus ulatuses (viited 1, 2, 3).
In the context of this method, the following definitions are used:
Käesoleva metoodika puhul kasutatakse järgmisi mõisteid.
is the concentration estimated to immobilise 50 % of the daphnids within a stated exposure period.
kontsentratsioon, mis hinnanguliselt muudab liikumisvõimetuks 50 % vesikirpudest konkreetse kokkupuuteaja vältel.
If another definition is used, this must be reported, together with its reference.
Muu määratluse kasutamisest tuleb teatada ja anda viide.
Immobilisation: those animals that are not able to swim within 15 seconds, after gentle agitation of the test vessel are considered to be immobilised (even if they can still move their antennae).
Liikumisvõime kaotus – neid loomi, kes ei ole võimelised ujuma 15 sekundi jooksul pärast katseanuma ettevaatlikku raputamist, loetakse liikumisvõime kaotanuks (isegi kui nad suudavad liigutada oma tundlaid).
Young daphnids, aged less than 24 hours at the start of the test, are exposed to the test substance at a range of concentrations for a period of 48 hours.
Noored vesikirbud vanuses kuni 24 tundi (katse alguseks) viiakse kokkupuutesse uuritava aine eri kontsentratsioonidega 48 tunniks.
Immobilisation is recorded at 24 hours and 48 hours and compared with control values.
Liikumisvõime kaotus registreeritakse 24 ja 48 tunni pärast ja seda võrreldakse kontrollkatse väärtustega.
The results are analysed in order to calculate the EC50 at 48h (see Section 1.2 for definitions).
Tulemustest arvutatakse EC50 48 tunni pärast (vt punkt 1.2, määratlus).
Determination of the EC50 at 24h is optional.
kindlaksmääramine pärast 24tunnist kokkupuudet ei ole kohustuslik.
INFORMATION ON THE TEST SUBSTANCE
TEAVE UURITAVA AINE KOHTA
The water solubility and the vapour pressure of the test substance should be known and a reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency, and limit of determination should be available.
Teada peaksid olema uuritava aine lahustuvus vees ja aururõhk ning peaks olema usaldusväärne analüütiline meetod, mille abil määrata kindlaks aine kogus uuritavas lahuses ja mille kohta on teada määramise saagis ja määramispiir.
Useful information includes the structural formula, purity of the substance, stability in water or light, Pow and results of a test for ready biodegradability (see method C.4).
Kasulik on teada järgmist: struktuurvalem, aine puhtus, püsivus vees või valguse käes, POW ja kiire biolagundatavuse katse tulemused (vt meetod C.4).
Note: guidance for testing substances with physical chemical properties that made them difficult to test is provided in (4).
Märkus: suunised uuritava aine kohta, mille mõju uurimist raskendavad selle füüsikalis-keemilised omadused, on esitatud viites 4.
A reference substance may be tested for EC50 as a means of assuring that the test conditions are reliable.
määramist võrdlusaine jaoks võib pidada vahendiks, millega tõendatakse katsetingimuste usaldusväärsust.
Toxicants used in international ring-tests (1)(5) are recommended for this purpose.
Selleks soovitatakse kasutada rahvusvahelistes laboritevahelistes võrdluskatsetes kasutatavaid mürkaineid (viited 1, 5).
Test(s) with a reference substance should be done preferably every month and at least twice a year.1.6.
Katse(d) võrdlusainega tuleb teha eelistatavalt iga kuu, kuid kindlasti vähemalt kaks korda aastas.1.6.
For a test to be valid, the following performance criteria apply:
Määramise õigsuse tõendamisel kohaldatakse järgmisi kriteeriume:
in the controls, including the control containing the solubilising agent, not more that 10 % of the daphnids should have been immobilised;
kontrollkatsetes, sealhulgas lahuse valmistamisel kasutatud abiainega kontrollkatsetes, ei tohiks liikumisvõimet kaotada üle 10 % vesikirpudest;
the dissolved oxygen concentration at the end of the test should be ≥ 3 mg/l in control and test vessels.
lahustunud hapniku kontsentratsioon katse lõpus peab kontrollkatse- ja katseanumates olema ≥ 3 mg/l.
Note: For the first criterion, not more than 10 % of the control daphnids should show immobilisation or other signs of disease or stress, for example, discoloration, unusual behaviour such as trapping at surface of water.
Märkus: esimese kriteeriumi puhul ei tohi rohkem kui 10 %-1 vesikirpudest esineda liikumisvõime kaotust või muid haiguse või stressi nähte, näiteks värvuse muutust, ebaharilikku käitumist nagu veepinnale lõksu jäämine.
Test vessels and other apparatus that will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
Katseanumad ja muud seadmed, mis puutuvad kokku katselahustega, peavad täielikult olema valmistatud klaasist või keemiliselt inertsest materjalist.
Test vessels will normally be glass test tubes or beakers; they should be cleaned before each use using standard laboratory procedures.
Katseanumateks on tavaliselt klaasist katseklaasid või keeduklaasid, neid tuleb tavaliste laborimeetoditega puhastada enne iga kasutamist.
Test vessels should be loosely covered to reduce the loss of water due to evaporation and to avoid the entry of dust into the solutions.
Katseanumad peavad olema vabalt kaetud, et vähendada veekaotust auramise tõttu ja vältida tolmu sattumist lahustesse.
Volatile substances should be tested in completely filled closed vessels, large enough to prevent oxygen becoming limiting or too low (see Section 1.6 and first paragraph of Section 1.8.3).
Lenduvaid aineid tuleb uurida tihedalt suletud nõudes, mis on piisavalt suured, et hapnikusisaldus ei hakkaks limiteerima ega langeks liiga madalale (vt osa 1.6 ja osa 1.8.3 esimene lõik).