natgillin/translations-raw huggingface dataset:
test procedure used (e.g. semi-static/renewal, flow-through, loading, stocking density, etc.),
kasutatav katsemenetlus (nt poolstaatiline/uuendav, läbivool, laadimine, loomkoormus jne);
test design (e.g. number of test vessels, test concentrations and replicates, number of fish per vessel),
uuringu kava (nt katseanumate arv, uuritavad kontsentratsioonid ja dubleerivad anumad, kalade arv anuma kohta);
method of preparation of stock solutions and frequency of renewal (the solubilising agent and its concentration must be given, when used),
põhilahuse valmistamise meetod ja uuendamise sagedus (kui kasutatakse solubiliseerivat ainet, tuleb esitada ka selle kontsentratsioon);
the nominal test concentrations, the means of the measured values and their standard deviations in the test vessels and the method by which these were attained and evidence that the measurements refer to the concentrations of the test substance in true solution,
uuritavate kontsentratsioonide nimiväärtused, uuritavas anumas mõõdetud keskväärtused ja nende standardhälbed ja nende saamismeetod ning tõendid selle kohta, et need mõõtmised vastavad uuritava aine kontsentratsioonidele tegelikus lahuses;
dilution water characteristics: pH, hardness, alkalinity, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), total organic carbon, suspended solids, salinity of the test medium (if measured) and any other measurements made,
lahjendamiseks kasutatava vee omadused: pH, karedus, leelisus, temperatuur, lahustunud hapniku kontsentratsioon, kloori jääktasemed (kui mõõdetakse), kogu orgaaniline süsinik, suspendeeritud tahked ained, katsekeskkonna soolsus (kui mõõdetakse) ja mis tahes muud tehtud mõõtmised;
water quality within test vessels: pH, hardness, temperature and dissolved oxygen concentration,
vee kvaliteet katseanumas: pH, karedus, temperatuur ja lahustunud hapniku kontsentratsioon;
detailed information on feeding, (e.g. type of food(s), source, amount given and frequency).
üksikasjalik teave söötmise kohta (nt toidu (toitude) liik, päritolu, antav kogus ja sagedus).
evidence that controls met the validity criterion for survival, and data on mortalities occurring in any of the test concentrations,
tõendid selle kohta, et kontrollkatsete korral kehtis valiidsuskriteerium, ning andmed mis tahes kontsentratsiooni korral esineva suremuse kohta;
statistical analytical techniques used, statistics based on replicates or fish, treatment of data and justification of techniques used,
kasutatud statistilise analüüsi meetodid, dubleerimisel või kaladel põhinev statistika, andmete töötlemine ja kasutatud meetodite õigustus;
tabulated data on individual and mean fish weights on days 0, 14 (if measured) and 28 values of tank-average or pseudo specific growth rates (as appropriate) for the periods 0-28 days or possibly 0-14 and 14-28,
andmetabelid üksikute ja keskmiste kalakaalude kohta 0-, 14. (kui mõõdeti) ja 28. päeval, keskmise kasvu erikiiruse kohta mahutis või kasvu pseudoerikiiruse väärtused (vastavalt olukorrale) perioodide 0–28 päeva või võimaluse korral 0–14 ja 14–28 kohta;
results of the statistical analysis (i.e. regression analysis or ANOVA) preferably in tabular and graphical form and the LOEC (p = 0,05) and the NOEC or ECx with, when possible, standard errors, as appropriate,
statistilise analüüsi tulemused (st regressioonanalüüs või ANOVA) eelistatavalt tabelite ja graafikute kujul ning LOEC (p = 0,05) ja NOEC või ECx võimaluse korral koos vastavate standardvigadega;
incidence of any unusual reactions by the fish and any visible effects produced by the test substance.
kalade ebatavalised reaktsioonid ja nähtavad mõjud, mida on põhjustanud uuritav aine.
Solbe J.F. de LG (1987) Environmental Effects of Chemicals (CFM 9350 SLD).
Solbe J. F. de LG (1987). Environmental Effects of Chemicals (CFM 9350 SLD).
Report on a UK Ring Test of a Method for Studying the Effects of Chemicals on the Growth rate of Fish.
Report on a UK Ring Test of a Method for Studying the Effects of Chemicals on the Growth Rate of Fish.
Ashley S., Mallett M.J. and Grandy N.J., (1990) EEC Ring Test of a Method for Determining the Effects of Chemicals on the Growth Rate of Fish.
Ashley S., Mallett M. J. and Grandy N. J. (1990). EEC Ring Test of a Method for Determining the Effects of Chemicals on the Growth Rate of Fish.
Crossland N.O.
Crossland N. O. (1985).
Chemosphere, 14, p. 1855-1870.
Chemosphere, 14, pp. 1855–1870.
Nagel R., Bresh H., Caspers N., Hansen P.D., Market M., Munk R., Scholz N. and Höfte B.B., (1991) Effect of 3,4-dichloroaniline on the early life stages of the Zebrafish (Brachydanio rerio): results of a comparative laboratory study.
Nagel R., Bresh H., Caspers N., Hansen P. D., Market M., Munk R., Scholz N. and Höfte B. B. (1991). Effect of 3,4-dichloroaniline on the early life stages of the Zebrafish (Brachydanio rerio): results of a comparative laboratory study.
Safety, 21, p. 157-164.
Safety, 21, pp. 157–164.
Yamamoto, Tokio., (1975) Series of stock cultures in biological field.
Yamamoto, Tokio. (1975).
Holcombe, G.W., Benoit D.A., Hammermeister, D.E., Leonard, E.N. and Johnson, R.D., (1995) Acute and long-term effects of nine chemicals on the Japanese medaka (Oryzias latipes).Arch.
Holcombe, G. W., Benoit D. A., Hammermeister, D. E., Leonard, E. N. and Johnson, R. D. (1995). Acute and long-term effects of nine chemicals on the Japanese medaka (Oryzias latipes). Arch.
Benoit, D.A., Holcombe, G.W. and Spehar, R.L., (1991) Guidelines for conducting early life toxicity tests with Japanese medaka (Oryzias latipes).
Benoit, D. A., Holcombe, G. W. and Spehar, R. L. (1991). Guidelines for conducting early life toxicity tests with Japanese medaka (Oryzias latipes).
Environmental Protection Agency, Duluth, Minesota.
US Environmental Protection Agency, Duluth, Minnesota.
Stephan C.E. and Rogers J.W., (1985) Advantages of using regression analysis to calculate results of chronic toxicity tests.
Stephan C. E. and Rogers J. W. (1985). Advantages of using regression analysis to calculate results of chronic toxicity tests.
Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Eighth Symposium, ASTM STP 891, R C Bahner and D J Hansen, Eds., American Society for Testing and Materials, Philadelphia, p. 328-338.
Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Eighth Symposium, ASTM STP 891, R. C. Bahner and D. J. Hansen, eds., American Society for Testing and Materials, Philadelphia, pp. 328–338.
Environment Canada, (1992) Biological test method: toxicity tests using early life stages of salmonid fish (rainbow trout, coho salmon, or Atlantic salmon).
Environment Canada (1992). Biological test method: toxicity tests using early life stages of salmonid fish (rainbow trout, coho salmon, or atlantic salmon).
Conservation and Protection, Ontario, Report EPS 1/RM/28, p. 81.
Conservation and Protection, Ontario, Report EPS 1/RM/28, 81 pp.
Cox D.R., (1958) Planning of experiments.
Cox D. R. (1958). Planning of experiments.
Pack S., (1991) Statistical issues concerning the design of tests for determining the effects of chemicals on the growth rate of fish.
Pack S. (1991). Statistical issues concerning the design of tests for determining the effects of chemicals on the growth rate of fish.
Dunnett C.W., (1955) A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with a Control, J. Amer.
Dunnett C. W.
Assoc., 50, p. 1096-1121.
Assoc, 50, pp. 1096–1121.
Dunnett C.W., (1964) New tables for multiple comparisons with a control.
Dunnett C. W. (1964). New tables for multiple comparisons with a control.
Biometrics, 20, p. 482-491.
Biometrics, 20, pp. 482–491.
Johnston, W.L., Atkinson, J.L., Glanville N.T., (1994) A technique using sequential feedings of different coloured food to determine food intake by individual rainbow trout, Oncorhynchus mykiss: effect of feeding level.
Johnston, W. L., Atkinson, J. L., Glanville N. T. (1994). A technique using sequential feedings of different coloured food to determine food intake by individual rainbow trout, Oncorhynchus mykiss: effect of feeding level.
Aquaculture 120, p. 123-133.
Aquaculture 120, pp. 123-133.
Quinton, J. C. and Blake, R.W., (1990) The effect of feed cycling and ration level on the compensatory growth response in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss.
Quinton, J. C. and Blake, R. W. (1990). The effect of feed cycling and ration level on the compensatory growth response in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss.
Journal of Fish Biology, 37, p. 33-41.
Journal of Fish Biology, 37, pp. 33–41.
Post, G., (1987) Nutrition and Nutritional Diseases of Fish.
Post, G. (1987). Nutrition and Nutritional Diseases of Fish.
Chapter IX in Testbook of Fish Health.
Chapter IX in Testbook of Fish Health. T.F.H.
T.F.H.
Publications, Inc. Neptune City, New Jersey, USA.
Bruce, R.D. and Versteeg D.J., (1992) A statistical procedure for modelling continuous toxicity data.
Bruce, R. D. and Versteeg D. J. (1992). A statistical procedure for modelling continuous toxicity data.
DeGraeve, G.M., Cooney, J.M., Pollock, T.L., Reichenbach, J.H., Dean, Marcus, M.D. and McIntyre, D.O., (1989) Precision of EPA seven-day fathead minnow larval survival and growth test; intra and interlaboratory study. report EA-6189 (American Petroleum Institute Publication, No 4468).
DeGraeve, G. M., Cooney, J. M., Pollock, T. L., Reichenbach, J. H., Dean, Marcus, M. D. and McIntyre, D. O. (1989). Precision of EPA seven-day fathead minnow larval survival and growth test; intra and interlaboratory study.
Electric Power Research Institute, Palo alto, CA.
Report EA-6189 (American Petroleum Institute Publication, No 4468). Electric Power Research Institute, Palo Alto, CA.
Norbert-King T.J., (1988) An interpolation estimate for chronic toxicity: the ICp approach.
Norbert-King T. J. (1988). An interpolation estimate for chronic toxicity: the ICp approach.
Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center.
Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center.
Sept. 1988. p. 12.
Sept. 1988. 12 pp.
Williams D.A., (1972) The comparison of several dose levels with a zero dose control.
Williams D. A. (1972). The comparison of several dose levels with a zero dose control.
Biometrics 28, p. 510-531.
Biometrics 28, pp. 510–531.
FISH SPECIES RECOMMENDED FOR TESTING AND SUITABLE TEST CONDITIONS
KATSETEKS SOOVITATAVAD KALALIIGID JA SOBIVAD KATSETINGIMUSED
Recommended test temperature range
Soovitatav katsetemperatuuri vahemik
Photoperiod
Fotoperiood
Recommended range for initial fish weight
Soovitatav vahemik kala algkaalu jaoks
to nearest 100 mg
lähima 100 mg-ni
Dry propietary salmonid fry food
Kaubanduslik lõhelaste kalamaimude kuivtoit
Other well documented species:
Teised hästi dokumenteeritud liigid:
zebrafish
Sebrakala
to nearest 1 mg
lähima 1 mg-ni
Live food (Brachionus Artemia)
Elustoit (Brachionus Artemia)
ricefish (Medaka)
Jaapani riisikala
Concentrations
Kontsentratsioonid
Logarithmic series of concentrations suitable for toxicity test (9)
Toksilisuse uuringuks sobivate kontsentratsioonide logaritmilised jadad (9)
Column (Number of concentrations between 100 and 10, or between 10 and 1) [1]
Veerg (kontsentratsioonide arv 100 ja 10 või 10 ja 1 vahel) [1]
A series of five (or more) successive concentrations may be chosen from a column.
Veerust võib valida viiest (või enamast) järjestikusest kontsentratsioonist koosneva jada.
Mid-points between concentrations in column (x) are found in column (2x + 1).
Kontsentratsioonidevahelised keskpunktid veerus (x) leitakse veerus (2x + 1).
The values listed can represent concentrations expressed as percentage per volume or weight (mg/l or μg/l).
Loetletud väärtused võivad esindada kontsentratsioone, mida väljendatakse protsendina mahu või massi kohta (mg/l või μg/l).
Values can be multiplied or divided by any power of 10 as appropriate.
Väärtusi võib vajaduse korral korrutada või jagada 10 mis tahes astmega.
Column 1 might be used if there was considerable uncertainty on the toxicity level.
veergu võiks kasutada juhul, kui määramatus toksilisuse taseme kohta on suur.
This short-term toxicity test method is a replicate of the OECD TG 212 (1998).
Käesolev lühiajaline toksilisuse katsemeetod lähtub juhendist OECD TG 212 (1998).
This short-term toxicity test on Fish Embryo and Sac-Fry stages is a short-term test in which the life stages from the newly fertilised egg to the end of the sac-fry stage are exposed.
Käesolev lühiajaline toksilisuse katse kalaembrüote ja rebukotiga vastsetega on lühiajaline uuring, milles uuritava ainega kokkupuudet uuritakse alates värskelt viljastatud marjaterade arenguetapist kuni rebukotist väljatulekuetapi lõpuni.
No feeding is provided in the embryo and sac-fry test, and the test should thus be terminated while the sac-fry are still nourished from the yolk-sac.
Embrüote ja rebukotiga vastsete katses ei toimu söötmist ja seega tuleks katse lõpetada ajal, kui rebukotiga vastsed toituvad veel rebukotist.
The test is intended to define lethal, and to a limited extent, sub-lethal effects of chemicals on the specific stages and species tested.
Katse eesmärk on kindlaks määrata kemikaalide letaalsed ja teatud ulatuses ka subletaalsed mõjud katses kasutatavate liikide konkreetsetes arenguetappides.
This test would provide useful information in that is could (a) form a bridge between lethal and sub-lethal tests, (b) be used as a screening test for either a Full Early Life Stage test or for chronic toxicity tests and (c) be used for testing species where husbandry techniques are not sufficiently advanced to cover the period of change from endogenous to exogenous feeding.
Käesolevast katsest saadav teave oleks kasulik, kuna a) selle katse abil oleks võimalik ühendada letaalsed ja subletaalsed uuringud, b) seda võiks kasutada sõelkatsena kas täieliku varajaste eluetappide või kroonilise toksilisuse katsete jaoks ja c) sellega võiks uurida liike, mille kasvatamismeetodid ei ole piisavalt arenenud endogeensest toitumisest eksogeensele toitumisele ülemineku perioodi jaoks.
It should be borne in mind that only tests incorporating all stages of the life-cycle of fish are generally liable to give an accurate estimate of the chronic toxicity of chemicals to fish, and that any reduced exposure with respect to life stages may reduce the sensitivity and thus underestimate the chronic toxicity.
Tuleks pidada meeles, et kemikaalide kroonilist pikaajalist toksilist toimet kaladele saab tavaliselt täpselt hinnata ainult katsete alusel, mis hõlmavad kala kõiki elutsükleid, ja et mis tahes vähendatud ulatuses kokkupuude ainult teatud eluetappidel võib vähendada tundlikkust ja seega võib tuua kaasa kroonilise toksilisuse alahindamise.
Prior to the publication of this test, most experience with this embryo and sac-fry test has been with the freshwater fish Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae — common name zebrafish).
Enne käesoleva katse avalikustamist saadi enamik embrüote ja rebukotiga vastsete katse kogemusi magevees elava kalaga Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae – üldnimetus sebrakala).
More detailed guidance on test performance for this species is therefore given in Appendix 1.
Üksikasjalikumad juhised katse tegemiseks kõnealuse liigiga on seetõttu esitatud 1. liites.
This does not preclude the use of other species for which experience is also available (Table 1).
Siiski ei välista see ka teiste liikide kasutamist, mille kohta on olemas kogemusi (tabelid 1A ja 1B).
Lowest Observed Effect Concentration (LOEC): is the lowest tested concentration of a test substance at which the substance is observed to have a significant effect (at p < 0,05) when compared with the control.
LOEC (Lowest Observed Effect Concentration – vähim toimet avaldav kontsentratsioon) – kõige madalam testitud uuritava aine kontsentratsioon, mille puhul täheldatakse aine märgatavat mõju (p < 0,05) võrreldes kontrolliga.
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
NOEC (No Observed Effect Concentration – täheldatavat toimet mitteavaldav kontsentratsioon) – uuritav kontsentratsioon, mis on vahetult alla LOEC väärtust.
The embryo and sac-fry stages of fish are exposed to a range of concentrations of the test substance dissolved in water.
Embrüod ja rebukotiga vastsed viiakse kokku vees lahustatud uuritava aine erinevate kontsentratsioonidega.
Within the protocol a choice is possible between a semi-static and a flow-through procedure.
Uuringu võib vastavalt protokollile viia läbi kas poolstaatilisena või läbivoolu-uuringuna.
The choice depends on the nature of the test substance.
Selle valik sõltub uuritava aine iseloomust.
The test is begun by placing fertilised eggs in the test chambers and is terminated just before the yolk-sac of any larvae in any of the test chambers has been completely absorbed or before mortalities by starvation start in controls.
Katse algab viljastatud marjaterade asetamisega katsekambritesse ja lõpetatakse vahetult enne seda, kui mis tahes vastsete rebukott ükskõik millises katsekambris on täielikult imendunud või enne nälga suremise algust kontrollkatsetes.
Lethal and sub-lethal effects are assessed and compared with control values to determine the lowest observed effect concentration and hence the no observed effect concentration.
Letaalset ja subletaalset mõju hinnatakse ja võrreldakse kontrollväärtustega, et kindlaks määrata vähim toimet avaldav kontsentratsioon ja seega ka kontsentratsioon, mille puhul toimet ei täheldata.
Alternatively, they may be analysed using a regression model in order to estimate the concentration that would cause a given percentage effect (i.e. LC/ECx, where x is a defined % effect).
Alternatiivina võib neid analüüsida regressioonimudeli abil, et kindlaks määrata kontsentratsioon, mis põhjustaks teatud protsentuaalse toime (nt LC/ECx, kus x on määratletud protsentuaalne toime).
Results of an acute toxicity test (see Method C. 1) preferably performed with the species chosen for this test, should be available.
Akuutse toksilisuse katse tulemused (vt meetodit C.1), eelistatavalt samade liikide kohta, kes on valitud kõnealuse katse jaoks, peaksid olema kättesaadavad.
The results may be useful in selecting an appropriate range of test concentrations in the early life stages test.
Tulemustest võib olla kasu uuritavate kontsentratsioonide sobiva vahemiku valimisel varajaste eluetappide katse jaoks.
Water solubility (including solubility in the test water) and the vapour pressure of the test substance should be known.
Teada peaksid olema uuritava aine lahustuvus vees (sealhulgas lahustuvus katses kasutatavas vees) ning aururõhk.
A reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with known and reported accuracy and limit of detection should be available.
Kättesaadavad peaksid olema usaldusväärne teadaoleva ja dokumenteeritud täpsusega analüütiline meetod uuritava aine kvantifitseerimiseks uuritavates lahustes ning avastamispiir.
Information on the test substance which is useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity of the substance, stability in light, stability under the conditions of the test, pKa, Pow and results of a test for ready biodegradability (see Method C. 4).
Uuritavat ainet puudutav teave, mis on kasulik katsetingimuste loomiseks, on muu hulgas struktuurivalem, aine puhtus, püsivus valguse käes, püsivus katsetingimustes, pKa, Pow ja kiire biolagunduvuse katse tulemused (vt meetodit C.4).
For a test to be valid, the following conditions apply:
Katse valiidsuse kohta kehtivad järgmised tingimused:
overall survival of fertilised eggs in the controls and where relevant, in the solvent-only vessels must be greater than or equal to the limits defined in Appendices 2 and 3
viljastatud marjaterade üldine ellujäämine kontrollkatsetes ja, kus see on oluline, ka ainult lahustit sisaldavates anumates, peab olema suurem kui 2. ja 3. liites määratletud piirid või nende piiridega võrdne;
the dissolved oxygen concentration must be between 60 and 100 % of the air saturation value (ASV) throughout the test
lahustunud hapniku kontsentratsioon peab olema vahemikus 60–100 % õhuga küllastumisel saadud väärtusest (ASV) kogu katse jooksul;
the water temperature must not differ by more than ±1,5 oC between test chambers or between successive days at any time during the test and should be within the temperature ranges specified for the test species (Appendices 2 and 3).
vee temperatuur ei tohi katsekambrites erineda rohkem kui ±1,5 oC või järjestikuste päevade lõikes mis tahes ajal katse jooksul ja see tuleks hoida katsealusele liigile ettenähtud temperatuurivahemikus (2. ja 3. liidet).
Test chambers
Katsekambrid
Any glass or other chemically inert vessels can be used.
Kasutada võib igasuguseid klaasist või muust keemiliselt inertsest materjalist valmistatud anumaid.
The dimensions of the vessels should be large enough to allow compliance with the loading rate (see Section 1.7.1.2).
Anumate mõõtmed peaksid olema piisavalt suured, et võimaldada vastavust laadimisnormile (vt punkti 1.7.1.2).
It is recommended that test chambers be randomly positioned in the test area.
Katsekambrid soovitatakse paigutada uuringupiirkonnas juhuslikult.
A randomised block design with each treatment being present in each block is preferable to a completely randomised design when there are systematic effects in the laboratory that can be controlled using blocking.
Kui laboratooriumis on süstemaatilisi mõjusid, mida on võimalik kontrollida väljajätmise abil, eelistatakse täielikult randomiseeritud süsteemile randomiseeritud plokksüsteemi, milles iga menetlus on esindatud igas plokis.
Blocking, if used, should be taken account of in the subsequent data analysis.
Kui kasutatakse väljajätmist, tuleb seda võtta arvesse järgnevas andmete analüüsis.
The test chambers should be shielded from unwanted disturbance.
Katsekambrid tuleks varjestada soovimatute häirete eest.
Selection of fish species
Kalaliigi valik
Recommended fish species are given in Table 1A.
Soovitatavad kalaliigid on toodud tabelis 1A.
This does not preclude the use of other species (examples are given in Table 1B), but the test procedure may have to be adapted to provide suitable test conditions.
Siiski ei välista see ka teiste liikide kasutamist (näited on toodud tabelis 1B), kuid katsemenetlust võib olla tarvis kohandada sobivate katsetingimuste tagamiseks.
Holding of the brood fish
Sugukalade pidamine
Details on holding the brood stock under satisfactory conditions may be found in OECD TG 210 and in references (2)(3)(4)(5)(6).1.6.4.
Sugukalade karja rahuldavatel tingimustel pidamise üksikasjad võib leida OECD juhendist TG 210 1 ja viidetes 2, 3, 4, 5, 6).
Handling of embryos and larvae
Embrüote ja vastsete käitlemine
Embryos and larvae may be exposed, within the main vessel, in smaller vessels fitted with mesh sides or ends to permit a flow of test solution through the vessel.
Embrüod ja vastsed võivad uuritava ainega puutuda kokku suures anumas olevates võrgust külgedega või otstega väiksemates anumates, mis võimaldavad uuritaval lahusel läbi anuma voolata.
Non-turbulent flow through these small vessels may be induced by suspending them from an arm arranged to move the vessel up and down but always keeping the organisms submerged; a siphon-flush system can also be used.
Keeristeta voolu läbi nende väikeste anumate võib tekitada nii, et anumad on riputatud kangi külge, mis liigutab neid üles ja alla, kuid hoiab organismid kogu aeg lahuses; kasutada võib ka sifooniga läbivoolutussüsteemi.
Fertilised eggs of salmonid fishes can be supported on racks or meshes with apertures sufficiently large to allow larvae to drop through after hatching.
Lõheliste viljastatud marjaterad võib asetada raamistikule või võrkudele, mille avad on piisavalt suured, et võimaldada vastsetel pärast koorumist sealt läbi kukkuda.
The use of pasteur pipettes is appropriate to remove the embryos and larvaes in the semi-static tests with complete daily renewal (see paragraph 1.6.6)
Poolstaatilistes katsetes, milles kogu vedelik vahetatakse iga päev, võib kasutada Pasteuri pipette embrüote ja vastsete eemaldamiseks (vt punkti 1.6.6).