natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If the same batch of sludge is required to be used on subsequent days (maximum four days), a further 50 ml of synthetic sewage feed is added per litre of sludge at the end of each working day.
Kui järjestikustel päevadel (maksimaalselt neli päeva) on vaja kasutada sama muda partiid, lisatakse iga tööpäeva lõpus veel 50 ml kunstlikku reovett ühe liitri muda kohta.
Duration/contact time:
Kestus/kokkupuuteaeg:
Air flow 0,5 to 1 litre/minute
Õhuvool 0,5–1 l/minutis
Measuring apparatus:
Mõõteaparatuur:
Flat bottom flask such as a BOD-flask
lamedapõhjaline konteiner, näiteks BOD-konteiner
Oxygen meter:
Hapnikumõõtur:
Suitable oxygen electrode, with a recorder
sobiv hapnikuelektrood koos registreerijaga
Nutrient solution:
Toitelahus:
Synthetic sewage (see above)
sünteetiline reovesi (vt eestpoolt)
The test solution is freshly prepared at the start of the test
uuritav lahus valmistatakse värskena, vahetult enne testi alustamist
Reference substance:
Võrdlusaine:
e.g. 3,5-dichlorophenol (at least three concentrations)
näiteks 3,5-dikloorfenool (vähemalt kolme erinevat kontsentratsiooni)
Controls:
Kontrollid:
Inoculated sample without test substance
inokuleeritud proov, mis ei sisalda uuritavat ainet
Temperature:
Temperatuur:
A suggested experimental procedure which may be followed for both the test and reference substance for the three-hour contact period is given below:
Järgnevalt on kirjeldatud soovitatavaid katseprotseduure, mida võib järgida nii uuritava kui ka võrdlusaine puhul kolmetunnise kokkupuuteperioodi vältel.
Several vessels (e.g. one-litre beakers) are used.
Kasutatakse mitmeid anumaid (näiteks üheliitriseid mõõteanumaid).
At least five concentrations, spaced by a constant factor preferably not exceeding 3,2, should be used.
Kasutada tuleks vähemalt viit kontsentratsiooni, mis erineksid mitte rohkem kui 3,2 korda.
At time ‘0’, 16 ml of the synthetic sewage feed are made up to 300 ml with water.
Ajahetkel 0 lahustatakse 16 ml kunstliku reovee toitelahust veega kuni 300 ml-ni.
200 ml of microbial inoculum are added and the total mixture (500 ml) poured into a first vessel (first control C1).
Lisatakse 200 ml mikrobiaalset inokulaati ja saadud segu (500 ml) valatakse esimesse anumasse (esimene kontroll C1).
The test vessels should be aerated continuously such as to ensure that the dissolved O2 does not fall below 2,5 mg/litre and that, immediately before the measurement of the respiration rate, the O2 concentration is about 6,5 mg/litre.
Katsenõusid tuleb pidevalt aereerida, et lahustunud O2 väärtus ei langeks alla 2,5 mg/l ja et vahetult enne hingamissageduse mõõtmist oleks O2 kontsentratsioon ligikaudu 6,5 mg/l.
At time ‘15 minutes’ (15 minutes is an arbitrary, but convenient, interval) the above is repeated, except that 100 ml of the test substance stock solution are added to the 16 ml of synthetic sewage before adding water to 300 ml and microbial inoculum to make a volume of 500 ml.
Ajahetkel „15 minutit” (15 minutit on suvaline, kuid usaldusväärne ajavahemik) korratakse eespool kirjeldatut. Erinevuseks on 100 ml uuritavat ainet sisaldava põhilahuse lisamine 16 ml kunstlikku reovette enne vee lisamist (lahjendamiseks 300 ml-ni) ja mikrobiaalsesse inokulaati, et saada lõppkoguseks 500 ml.
This mixture is then poured into a second vessel and aerated as above.
Saadud segu valatakse teise anumasse ja aereeritakse, nagu eespool kirjeldatud.
This process is repeated at 15-minute intervals with different volumes of the test substance stock solution to give a series of vessels containing different concentrations of the test substance.
Seda protsessi korratakse 15minutiliste intervallide järel erinevate uuritavat ainet sisaldava põhilahuse kogustega, et saada anumad uuritava aine erinevate kontsentratsioonidega.
Finally, a second control is prepared (C2).
Lõpuks valmistatakse teine kontroll (C2).
After three hours the pH is recorded, and a well-mixed sample of the contents of the first vessel is poured into the measuring apparatus and the respiration rate is measured over a period of up to 10 minutes.
Kolme tunni pärast registreeritakse pH, esimese anuma sisust võetud korralikult segatud proov valatakse mõõteaparaati ja respiratsiooni intensiivsust mõõdetakse kuni 10 minuti vältel.
This determination is repeated on the contents of each vessel at 15-minute intervals, in such a way that the contact time in each vessel is three hours.
Sama mõõtmist korratakse iga nõu sisuga 15minutiliste intervallide järel, sellisel juhul on iga anuma puhul kokkupuuteaeg kolm tundi.
The reference substance is tested on each batch of microbial inoculum in the same way.
Võrdlusainet analüüsitakse iga partii bakteriaalse inokulaadiga samal viisil.
A different regime (e.g. more than one oxygen meter) will be necessary when measurements are to be made after 30 minutes of contact.
Kui mõõtmisi tuleb teha 30 minutit pärast kokkupuudet, vajalik võib olla teistsugune režiim.
If measurement of the chemical oxygen consumption is required, further vessels are prepared containing test substance, synthetic sewage feed and water, but no activated sludge.
Kui on vaja mõõta hapnikutarvet, valmistatakse ette uued anumad, mis sisaldavad uuritavat ainet, kunstlikku reovett ja vett, kuid mitte aktiivmuda.
Oxygen consumption is measured and recorded after an aeration time of 30 minutes and/or three hours (contact time).
Hapniku tarbimist mõõdetakse ja registreeritakse pärast 30minutilist ja/või kolmetunnilist aereerimist (kokkupuuteaeg).
The respiration rate is calculated from the recorder trace between approximately 6,5 mg O2/litre and 2,5 mg O2/litre, or over a 10-minute period when the respiration rate is low.
Respiratsiooni intensiivsust arvutatakse registreerija näidu vahemikus ligikaudu 6,5 mg O2/l kuni 2,5 mg O2/l või 10minutilises perioodis, kui respiratsiooni intensiivsus on väike.
The portion of the respiration curve over which the respiration rate is measured should be linear.
Respiratsiooni kõvera osa, mille ajal respiratsiooni intensiivsust mõõdetakse, peab olema lineaarne.
If the respiration rates of the two controls are not within 15 % of each other, or the EC50 (30 minutes and/or three hours) of the reference substance is not in the accepted range (5 to 30 mg/litre for 3,5-dichlorophenol), the test is invalid and must be repeated.
Kui kahe kontrolli respiratsiooni intensiivsuse näitajate omavahelised erinevused ei ole 15 % sees või ei ole võrdlusaine EC50 (30 minutit ja/või kolm tundi) aktsepteeritud vahemikus (5–30 mg/l 3,5-dikloorfenooli), on katse kehtetu ja seda tuleb korrata.
The per - cent inhibition is calculated at each test concentration (see 1.2).
Iga uuringulahuse kontsentratsiooni kohta arvutatakse protsentuaalne inhibeerumine (vt 1.2).
The per - cent inhibition is plotted against concentration on log-normal (or log-probability) paper, and an EC50 value derived.
Graafiku teljestikule kantakse protsentuaalne inhibeerumine suhtes kontsentratsiooniga ning saadud EC50 väärtus.
95 % confidence limits for the EC50 values can be determined using standard procedures.
Standardprotseduuride kasutamisel saab EC50 väärtuste kohta määrata 95 % usalduspiirid.
test system: source, concentration and any pre-treatment of the activated sludge,
uuringu süsteem: päritolu, kontsentratsioon ja võimalikud aktiivmuda eeltöötlused;
pH of the reaction mixture before the respiration measurement,
reaktsioonisegu pH enne hingamise mõõtmist;
test duration,
katse kestus;
reference substance and its measured EC50,
võrdlusaine ja selle mõõdetud EC50;
abiotic oxygen uptake (if any).
abiootiline hapniku omastamine (kui esineb);
all measured data,
kõik mõõdetud andmed;
inhibition curve and method for calculation of EC50,
inhibeerumise kõver ja EC50 arvutusmeetod;
and, if possible, 95 % confidence limits, EC20 and EC80,
ja võimaluse korral 95 % usalduspiirid, EC20 ja EC80;
all observations and any deviations from this test method which could have influenced the result.
kõik jälgimised ja võimalikud hälbed, mis võiksid tulemusi mõjutada.
The EC50 value should be regarded merely as a guide to the likely toxicity of the test substance either to activated sludge sewage treatment or to waste-water microorganisms, since the complex interactions occurring in the environment cannot be accurately simulated in a laboratory test.
väärtust tuleks pidada vaid viiteks võimalikule uuritava aine toksilisusele kas reoveepuhastist saadud aktiivmudas või reovees sisalduvatesse mikroorganismidesse, kuna keskkonnas asetleidvaid keerukaid koosmõjusid ei saa laboritingimustes täpselt jäljendada.
In addition, test substances which may have an inhibitory effect on ammonia oxidation may also produce atypical inhibition curves.
Lisaks võivad ka uuritavad ained põhjustada ebatüüpilisi inhibeerumise kõveraid, kuna võivad pärssivalt mõjuda ammoniaagi oksüdatsioonile.
Accordingly, such curves should be interpreted with caution.
Eeltoodust lähtuvalt tuleks selliseid kõveraid tõlgendada ettevaatusega.
International Standard ISO 8192-1986.
International Standard ISO 8192-1986.
Broecker, B., Zahn, R., Water Research 11,1977, p. 165.
Broecker, B., Zahn, R., Water Research 11, 1977, p. 165.
Brown, D., Hitz, H. R., Schaefer, L., Chemosphere 10, 1981, p. 245.
Brown, D., Hitz, H. R, Schaefer, L., Chemosphere 10, 1981, p. 245.
ETAD (Ecological and Tox.icological Association of Dyestuffs Manufacturing Industries), Recommended Method No 103, also described by:
ETAD (Ecological and Toxicological Association of Dyestuffs Manufacturing Industries), Recommendec Method No 103, also described by:
Robra, B., Wasserl Abwasser 117, 1976, p. 80.
Robra, B., Wasser/Abwasser 117, 1976, p. 80.
Schefer, W., Textilveredlung 6,1977, p. 247.
Schefer, W., Textilveredlung 6, 1977, p. 247.
OECD, Paris, 1981, Test Guideline 209, Decision of the Council C(84) 30 final.
OECD, Paris, 1981, Test Guideline 209, Decision of the Council C(81) 30 final.
MODIFIED SCAS TEST
MODIFITSEERITUD SCAS TEST
The purpose of the method is the evaluation of the potential ultimate biodegradability of water-soluble, non-volatile organic substances when exposed to relatively high concentrations of micro-organisms over a long time period.
Meetodi eesmärk on hinnata veeslahustuvate, mittelenduvate orgaaniliste ainete võimalikku lõpp-biodegra-deerumist kokkupuutel suhteliselt suurte mikroorganismide kontsentratsioonidega pika aja jooksul.
The viability of the microorganisms is maintained over this period by daily addition of a settled sewage feed.
Mikroorganismide elusolek säilitatakse selles perioodis, toites aktiivmuda iga päev setitatud reovee lisamisega.
(For weekend requirements, the sewage may be stored at 4 oC.
(Nädalavahetuse vajaduste katmiseks võib reovett säilitada temperatuuril 4 oC.
Alternatively, the synthetic sewage of the OECD confirmatory test may be used.)
Teise võimalusena võib kasutada OECD kunstlikku reovett.)
Because of the long detention period of the liquid phase (36 hours), and the intermittent addition of nutrients, the test does not simulate those conditions experienced in a sewage treatment plant.
Seoses vedela faasi pika viibeaja perioodiga (36 tundi) ja vahepealse toitainete lisamisega ei jäljenda test neid tingimusi, mis tekivad reoveepuhastis.
The results obtained with various test substances indicate that the test has a high biodegradation potential.
Erinevate uuritavate ainetega saadud tulemused viitavad sellele, et testi biodegradatsioonivõime on suur.
The conditions provided by the test are highly favourable to the selection and/or adaptation of micro-organisms capable of degrading the test compound.
Testis tekitatud tingimused on äärmiselt soodsad uuritavat ühendit degradeerivate mikroorganismide valikuks ja/või adaptatsiooniks.
(The procedure may also be used to produce acclimatised inocula for use in other tests.)
(Protseduuri võib samuti kasutada aklimatiseeritud inokulaadi tekitamiseks, mida kasutada teistes testides.)
In this method, the measure of the concentration of dissolved organic carbon is used to assess the ultimate biodegradability of the test substances.
Selle meetodi puhul kasutatakse uuritava aine lõpliku biodegradatsiooni hindamiseks lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsiooni määramist.
It is preferable to determine DOC after acidification and purging rather than as the difference of Ctotal-Cinorganic.
LOS-määramine pärast hapestamist ja puhastamist on eelistatum meetod kui lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsioonide erinevuse (Cüld – Canorgaaniline) arvutamine.
The simultaneous use of a specific analytical method may allow the assessment of the primary degradation of the substance (disappearance of the parent chemical structure).
Samaaegne spetsiifilise analüüsimeetodi kasutamine võib anda võimaluse aine esmase degradatsiooni hindamiseks (lähteühendi keemilise struktuuri kadumine).
are soluble in water (at least 20 mg dissolved organic carbon/litre),
on veeslahustuvad (vähemalt 20 mg lahustunud orgaanilist süsinikku/l);
have negligible vapour pressure,
omavad tühist küllastatud aururõhu väärtust;
do not significantly adsorb within the test system,
ei adsorbeeru oluliselt testisüsteemi;
The organic carbon content of the test material must be established.
Määrata tuleb orgaanilise süsiniku sisaldus uuritavas materjalis.
Information on the toxicity to microorganisms of the substance may be useful to the interpretation of low results and in the selection of an appropriate test concentration.
Informatsioon aine toksilisuse kohta mikroorganismidesse võib olla kasulik väikeste tulemuste interpreteerimisel ja katseks sobiva kontsentratsiooni valimisel.
concentration of test compound as organic carbon as present in or added to the settled sewage at the start of the aeration period (mg/litre),
uuritava ühendi kontsentratsioon orgaanilise süsiniku juuresolekul või setitatud reoveele lisamisel aeratsiooniperioodi alguses (mg/l),
concentration of dissolved organic carbon found in the supernatant liquor of the test at the end of the aeration period (mg/litre),
lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsioon, mis on sedastatud uuringu supernatantvedelikus aeratsiooniperioodi lõpus (mg/l),
concentration of dissolved organic carbon found in the supernatant liquor of the control at the end of the aeration period (mg/litre).
lahustunud orgaanilise süsiniku kontsentratsioon, mis on sedastatud kontrolli supernatantvedelikus aeratsiooniperioodi lõpus (mg/l).
The biodegradation is defined in this method as the disappearance of the organic carbon.
Selle meetodi puhul defineeritakse biodegradatsiooni orgaanilise süsiniku kadumisena.
The biodegradation can be expressed as:
Biodegradatsiooni saab väljendada järgmiselt.
The percentage removal Dda of the amount of substance added daily:
Iga päev lisatud ainekogusest eemaldatud Dda protsent:
degradation/daily addition.
degradatsioon/päevas lisamine.
The percentage removal Dssd of the amount of substance present at the start of each day:
Tiga päeva alguses olemasolevast ainekogusest eemaldatud Dssd protsent:
degradation/substance start of day;
degradatsioon/aine päeva alguses;
the indices i and (i + 1) refer to the day of measurement.
indeksid i ja (i+1) viitavad mõõtmispäevale.
Equation 2(a) is recommended if effluent DOC varies from day to day, while equation 2(b) may be used when effluent DOC remains relatively constant from day to day.
Valem 2a on soovitatav, kui väljavoolu LOS erineb päevast päeva, mille juures aga valemit 2b võib kasutada, kui väljavoolu LOS püsib päevast päeva suhteliselt konstantsena.
In some cases, when investigating a new substance, reference substances may be useful; however, no specific reference substance is recommended here.
Osadel juhtudel võib uue aine uurimisel olla kasu võrdlusainete kasutamisest. Siinjuures ei tooda aga ära spetsiifilisi võrdlusaineid.
Data on several compounds evaluated in ring tests are provided (see Appendix 1) primarily so that calibration of the method may be performed from time to time and to permit comparison of results when another method is employed.
Andmed ringtestides hinnatud ühendite kohta on äratoodud (vt liide 1) peamiselt nii, et meetodi kalibreerimist võib teha pidevalt ja teistsuguse meetodi kasutamisel on võimalik tulemusi omavahel võrrelda.
Activated sludge from a sewage treatment plant is placed in a semi-continuous activated sludge (SCAS) unit.
Reoveepuhastist pärit aktiivmuda asetatakse (SCAS) seadmeosasse.
The test compound and settled domestic sewage are added, and the mixture is aerated for 23 hours.
Lisatakse uuritav ühend ja setitatud olmereovesi ning segu aereeritakse 23 tundi.
The aeration is then stopped, the sludge allowed to settle and the supernatant liquor is removed.
Seejärel aereerimine peatatakse, lastakse mudal settida ja vedelik valatakse ära.
The sludge remaining in the aeration chamber is then mixed with a further aliquot of test compound and sewage and the cycle is repeated.
Aeratsioonikambrisse jäänud muda segatakse järgmise uuritava ühendi alikvoodi ja reoveega ning tsüklit korratakse.
Biodegradation is established by determination of the dissolved organic carbon content of the supernatant liquor.
Biodegradatsioon tehakse kindlaks lahustunud orgaanilise süsiniku sisalduse põhjal supernatantvedelikus.
This value is compared with that found for the liquor obtained from a control tube dosed with settled sewage only.
Saadud tulemust võrreldakse näitajaga, mis on saadud ainult setitatud reoveest võetud kontrollist.
The reproducibility of this method based on removal of dissolved organic carbon has not yet been established.
Selle lahustunud orgaanilise süsiniku eemaldamisel põhineva meetodi korduvteostatavust ei ole veel kinnitatud.
(When primary biodegradation is considered, very precise data are obtained for materials that are extensively degraded).
(Kui kaalutakse primaarset biodegradatsiooni, saadakse väga täpsed andmed materjalide kohta, mida ulatuslikult degradeeritakse.)
The sensitivity of the method is largely determined by the variability of the blank and to a lesser extent by the precision of the determination of dissolved organic carbon and the level of test compound in the liquor at the start of each cycle.
Käesoleva meetodi tundlikkuse määrab suures osas põhilahuse varieeruvus ning vähesemal määral lahustunud orgaanilise süsiniku määramise täpsus ja uuritava ühendi sisaldus vedelikus iga tsükli alguses.
A sufficient number of clean aeration units, alternatively, the original 1,5 litre SCAS test unit may be used, and air inlet tubes (Figure 1) for each test substance and controls are assembled.
Iga uuritava aine ja kontrolli jaoks ühendatakse piisav arv puhtaid aeratsiooniseadmeid (alternatiivina võib kasutada originaalset 1,5 l SCAS testi seadmeosa) ja õhu sisselaske torusid (joonis 1).
Compressed air supplied to the test units, cleaned by a cotton wool strainer, should be free of organic carbon and pre-saturated with water to reduce evaporation losses.
Katseseadmetesse suunatud suruõhk (puhastatud läbi puuvillase filtri) ei tohiks sisaldada orgaanilist süsinikku ja peaks olema eelnevalt küllastatud veega, et vähendada kadusid auramise tõttu.
A sample of mixed liquor, containing 1 to 4 g suspended solids/litre, is obtained from an activated sludge plant treating predominantly domestic sewage.
Vedelikusegu proov, mis sisaldab 1–4 g suspendeeritud tahkeid osakesi/l saadakse peamiselt olmereovee puhastist pärit aktiivmudast.
Approximately 150 ml of the mixed liquor are required for each aeration unit.
Iga aeratsiooniseadme kohta vajatakse ligikaudu 150 ml vedelikusegu.
Stock solutions of the test substance are prepared in distilled water; the concentration normally required is 400 mg/litre as organic carbon which gives a test compound concentration of 20 mg/litre carbon at the start of each aeration cycle if no biodegradation is occurring.
Uuritava aine põhilahused valmistatakse destilleeritud vees; tavalisel juhul vajalik kontsentratsioon on 400 mg/l, kuna iga aeratsioonitsükli alguses annab orgaaniline süsinik uuritava ühendi kontsentratsiooniks 20 mg/l süsinikku, kui biodegradatsiooni ei teki.
Higher concentrations are allowed if the toxicity to microorganisms permits it.
Suuremad kontsentratsioonid on lubatud, kui toksilisus mikroorganismidele seda võimaldab.
The organic carbon content of the stock solutions is measured.
Määratakse põhilahuste orgaanilise süsiniku sisaldus.
The test should be performed at 20 to 25 oC.
Katse tuleks teha temperatuuril 20–25 oC.
A high concentration of aerobic microorganisms is used (from 1 to 4 g/litre suspended solids), and the effective detention period is 36 hours.
Kasutatakse suuri aeroobsete mikroorganismide kontsentratsioone (1–4 g/l suspendeeritud kuivainet) ja efektiivne viibeaja periood on 36 tundi.
The carbonaceous material in the sewage feed is oxidised extensively, normally within eight hours after the start of each aeration cycle.
Süsinikku sisaldavat materjali reovee söötmes oksüdeeritakse ulatuslikult, tavaliselt kaheksa tundi alates iga aeratsioonitsükli algusest.
Thereafter, the sludge respires endogenously for the remainder of the aeration period, during which time the only available substrate is the test compound unless this is also readily metabolised.
Seejärel muda respireerib endogeenselt ülejäänud aeratsiooniperioodi, mille käigus ainuke olemasolev substraat on uuritav ühend, kui see ei ole juba täielikult metaboliseeritud.
These features, combined with daily re-inoculation of the test when domestic sewage is used as the medium, provide highly favourable conditions for both acclimatisation and high degress of biodegradation.
Need omadused kombineerituna igapäevase testi reinokuleerimisega (kui keskkonnana kasutatakse olmereovett), tagavad äärmiselt soodsad tingimused nii aklimatsiooniks kui ka ulatuslikuks biodegradatsiooniks.
A sample of mixed liquor from a suitable predominantly domestic activated sludge plant or laboratory unit is obtained and kept aerobic until used in the laboratory.
Peamiselt olmereoveest pärit aktiivmudaga puhastist või laboriseadmest võetakse vedelikusegu proov ja seda hoitakse aeroobsetes tingimustes kuni laboris kasutamiseni.
Each aeration unit as well as the control unit are filled with 150 ml of mixed liquor (if the original SCAS test unit is used, multiply the given volumes by 10) and the aeration is started.
Iga aeratsiooniseade ja samuti kontrollseade täidetakse 150 ml vedelikuseguga (kui kasutatakse SCAS originaaltesti ühikut, tuleb kogus kümnekordistada) ja alustatakse aereerimist.
After 23 hours, aeration is stopped and the sludge is allowed to settle for 45 minutes.
23 tunni pärast aeratsioon peatatakse ja mudal lastakse settida 45 minutit.
The tap of each vessel is opened in turn, and 100 ml portions of the supernatant liquor are withdrawn.
Järjekorras avatakse kõik torude kraanid ja 100 ml supernatantvedeliku osad eemaldatakse.
A sample of settled domestic sewage is obtained immediately before use, and 100 ml are added to the sludge remaining in each aeration unit.
Setitatud olmereovee proov võetakse vahetult enne kasutamist ja 100 ml lisatakse igasse aeratsiooniühikusse jäänud muda kogusele.
Aeration is started anew.
Alustatakse uuesti aereerimist.
At this stage no test materials are added, and the units are fed daily with domestic sewage only until a clear supernatant liquor is obtained on settling.
Selles staadiumis enam uuritavat materjali juurde ei lisata ja seadmeosadesse lisatakse toitelahusena üks kord päevas olemreovett kuni saadakse seismisel läbipaistev supernatandi vedelik.
This usually takes up to two weeks, by which time the dissolved organic carbon in the supernatant liquor at the end of each aeration cycle approaches a constant value.
Tavaliselt läheb kuni kaks nädalat, et lahustunud orgaanilise süsiniku sisaldus supernatantvedelikus läheneks iga aeratsioonitsükli lõpus püsiväärtusele.
At the end of this period, the individual settled sludges are mixed, and 50 ml of the resulting composite sludge are added to each unit.
Selle perioodi lõpuks üksikud setitatud mudakogused segatakse kokku ja igasse seadmeossa lisatakse 50 ml saadud mudasegu.