natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Column temperature: initial temperature of 60 °C, maintained for 2 min, raised at a rate of 35 °C/min up to 340 °C, maintained at this temperature for 5 min
kolonni temperatuur: algtemperatuur 60 °C, mida hoitakse 2 minutit, seejärel tõstetakse temperatuur kiirusega 35 °C minutis 340 °C juurde ja hoitakse 5 minutit
Detector temperature: 350 °C
detektori temperatuur: 350 °C
Amount of sample injected: 1 μl
sisestatava proovi suurus: 1 µl.
Injection syringe, of capacity 5 μl.
Süstal mahutavusega 5 μl.
SAMPLING
PROOVI VÕTMINE
It is important that the laboratory receives a sample which is truly representative and has not been damaged or changed during transport or storage.
On oluline, et labor saaks proovi, mis on tõeliselt esindav ja mida transportimine ega laos hoidmine ei ole kahjustanud ega muutnud.
Sampling is not part of the method specified in this International Standard.
Proovi võtmine ei ole käesolevas rahvusvahelises standardis määratletud meetodi osa.
A recommended sampling method is given in IDF: standard 50C:1995 or ISO 707-1997 — Milk and milk products — Methods of sampling.
Soovitatav proovi võtmise meetod on esitatud standardis IDF 50C:1995 ISO 707–1997 — Piim ja piimatooted — Proovivõtumeetodid.
PROCEDURE
MÄÄRAMISE KÄIK
Preparation of the test sample and test portion
Uuritava proovi ja katsekoguse ettevalmistamine.
Proceed according to ISO 14156
Järgitakse standardit ISO 14156
IDF 172:2001
IDF 172:2001.
Butter-oil, Butter
Võiõli, või
Melt 50 g to 100 g of test sample in the oven (5.5)
Sulatada 50–100 g uuritavat proovi kuivatuskapis (5.5).
Place 0,5 g to 1,0 g of anhydrous sodium sulfate (5.4) in a folded filter paper
Panna 0,5–1,0 g veevaba naatriumsulfaati (5.4) kurdfilterpaberile.
Filter the fat through the filter paper containing anhydrous sodium sulfate collecting the filtrate in a beaker maintained in the oven (5.5).
Filtrida rasv läbi veevaba naatriumsulfaadiga filterpaberi ning koguda filtraat kuivatuskapis (5.5) hoitavasse keeduklaasi.
When decanting the melted butter onto the filter paper, take care that no serum is transferred
Sulatatud või dekanteerimisel filterpaberile tuleb hoolitseda selle eest, et sinna ei satuks vadakut.
Bring the test sample to a temperature of 20 °C ± 2 °C
Proov soojendada temperatuurini 20 ± 2 °C.
Mix or stir the sample thoroughly
Segada või loksutada proovi hoolikalt.
Dilute a suitable amount of test sample so as to obtain 100 ml of test portion with a mass fraction of fat of approximately 4 %
Lahjendada sobiv kogus uuritavat proovi, et saada katsekogus 100 ml, milles rasva massiosa on umbes 4 %.
Proceed as with raw milk and homogenized milk (see ISO 14156
Jätkata nagu toor- ja homogeniseeritud piima puhul (vt standardi ISO 14156
IDF 172:2001, §8.3) to extract the fat from the cream
IDF 172:2001 lõike 8 punkt 3), et eraldada rasv koorest.
Weigh in a 10 ml volumetric flask (5.2), to the nearest 1 mg, 1 g of the extracted fat.
Kaaluda 10 ml mõõtekolbi (5.2) 1 g eraldatud rasva 1 mg täpsusega.
Add 1 ml of the solution 7.2.2.
Lisada 1 ml punktis 7.2.2 määratletud lahust.
Complete to 10 ml with n-hexane (4.1) and homogenise
Täiendada n-heksaaniga (4.1) 10 ml-ni ja homogeniseerida.
Introduce 1 ml of the solution 7.1.1.2 in a 10 ml volumetric flask (5.2) and dilute to 10 ml with n-hexane (4.1)
Panna 10milliliitrisesse mõõtekolbi (5.2) 1 ml punktis 7.1.1.2 määratletud lahust ja lahjendada see n-heksaaniga (4.1) 10 milliliitrini.
Preparation of the calibration standards
Kalibreerimislahuste valmistamine
Dissolve 100 mg of the triglyceride of enanthic acid (4.3) in 10 ml of n-hexane (4.1)
Lahustada 100 mg enanthappe triglütseriidi (4.3) 10 ml n-heksaanis (4.1).
Dissolve 100 mg of the triglyceride of caproic acid (4.2) in 10 ml of n-hexane (4.1)
Lahustada 100 mg kapronhappe triglütseriidi (4.2) 10 ml n-heksaanis (4.1).
Introduce 1 ml of the solution 7.2.2 in a 10 ml volumetric flask (5.2).
Panna 10 ml mõõtekolbi (5.2) 1 ml punktis 7.2.2 määratletud lahust.
Complete to 10ml with n-hexane (4.1)
Täiendada n-heksaaniga (4.1) 10 ml-ni.
Introduce 1 ml of the solution 7.2.1 and 1 ml of the solution 7.2.2 in a 10 ml volumetric flask (5.2).
Panna 10 ml mõõtekolbi (5.2) 1 ml punktis 7.2.1 määratletud lahust ja 1 ml punktis 7.2.2 määratletud lahust.
Complete to 10 ml with n-hexane (4.1)
Täiendada n-heksaaniga (4.1) 10 ml-ni.
Introduce 1 ml of the solution 7.2.4 in a 10 ml volumetric flask (5.2) and complete to 10 ml with n-hexane (4.1)
Panna 10 ml mõõtekolbi (5.2) 1 ml punktis 7.2.4 määratletud lahust ja täiendada n-heksaaniga (4.1) 10 ml-ni.
Chromatographic determination
Kromatograafiline määramine
Inject 1 μl of the standard solution 7.2.5 twice
Süstida kolonni kaks korda 1 μl punktis 7.2.5 määratletud standardlahust.
Inject 1 μl of each sample solution
Süstida kolonni 1 µl iga proovi lahust.
Note: If the on column injector system is adopted an increased dilution should be applied both to the standard and sample solutions.
Märkus: Kui kasutatakse kolonnile paigaldatud injektorit, tuleb nii standard- kui ka proovilahuseid täiendavalt lahjendada.
Repeat the operation 7.3.1 every 3 samples in order to bracket samples between duplicate standard injections.
Korrata punktis 7.3.1 kirjeldatud tegevust iga kolme proovi süstimise eel ja järel, nii et nimetatud proovid jäävad standardlahuse kahekordsete süstide vahele.
Results are based upon the mean average response factors from the standard chromatograms.
Tulemused saadakse standardkromatogrammide kalibreerimistegurite aritmeetiliste keskmiste põhjal.
CALCULATION OF RESULTS
TULEMUSTE ARVUTAMINE
For each chromatogram, integrate the area of the peaks associated with the triglycerides of enanthic acid and caproic acid.
Iga kromatogrammi puhul integreeritakse enanthappe ja kapronhappe triglütseriididele vastavate piikide pindala.
Follow those instructions for each bracketed sequence i.e. for a set of bracketed samples, the standard injected twice immediately before them is STD1 and the standard injected twice immediately after them is STD2.
Neid juhtnööre tuleb järgida iga järjestatud rühmituse (s.t rühmaks ühendatud proovide kogumi) puhul, millele on vahetult eelnenud kaks standardlahuse süsti (STD1) ja vahetult järgnenud samuti kaks standardsüsti (STD2).
Calculate the response factor for each duplicate of STD1, Rf1(a) and Rf1(b)
Arvutada STD1 standardlahuse süstide kalibreerimistegurid Rf1(a) ja Rf1(b).
or (b) = (Peak area for caproic acid triglyceride/Peak area for enanthic acid triglyceride) × 100
või (b) = (kapronhappe triglütseriidi piigi pindala/enanthappe triglütseriidi piigi pindala) × 100
Calculate the mean average response factor, Rf1
Arvutada välja nende kalibreerimistegurite aritmeetiline keskmine Rf1:
Similarly, calculate the mean average response factor STD2, Rf2
Samal viisil arvutada välja STD2 kalibreerimistegurite aritmeetiline keskmine Rf2.
Calculate the mean average response factor, Rf
Seejärel arvutada välja kalibreerimistegurite aritmeetiline keskmine Rf.
Test samples
Uuritavad proovid
For each sample chromatogram obtained between STD1 and STD2, calculate the enanthic acid content, C (kg/t):
Iga proovi kromatogrammi puhul, mis on saadud STD1 ja STD2 vahel, arvutatakse välja enanthappesisaldus C (kilogrammides ühe tonni kohta):
C = (Peak area for enanthic acid triglyceride × Rf × 100)/(Peak area for caproic acid triglyceride × Wt × 1000)
C = (enanthappe triglütseriidi piigi pindala × Rf × 100)/(kapronhappe triglütseriidi piigi pindala × Wt × 1000)
Wt = weight of fat taken (g),
Wt = võetud rasva kaal (g),
100 = dilution volume for sample,
100 = proovi lahuse maht,
1000 = conversion factor (for μg/g to kg/t)
1000 = ümberarvutuskoefitsient (μg/g — kg/t).
For butter samples, take the fat content of butter into account and calculate a corrected concentration value, Cbutter (kg/t of butter)
Võiproovide puhul võtta arvesse või rasvasisaldust ja arvutada korrigeeritud kontsentratsiooni väärtus Cvõi (kilogrammides ühe tonni või kohta)
Cbutter = Cfat × F
Cvõi = Crasv × F,
where F is the fat content of butter.
kus F on või rasvasisaldus.
PRECISION
TÄPSUS
Details of an interlaboratory test on butter in accordance with ISO 5725-1 and ISO 5725-2 on the precision method are shown in (12.).
Või ISO standarditele 5725–1 ja 5725–2 vastava laboritevahelise määramise üksikasjad on esitatud punktis 12.
The values for repeatability and reproducibility limit are expressed for the 95 % probability level and may not be applicable to concentration ranges and matrices other than those given.
Korratavuse ja reprodutseeritavuse piirnormide väärtused on väljendatud 95 % usaldusnivoo jaoks ega pruugi olla kohaldatavad muude kontsentratsioonivahemike ja toodete suhtes.
The absolute differences between two individual single test results, obtained with the same method on identical test material in the same laboratory by the same operator using the same equipment within a short interval of time, will in not more than 5 % of cases be greater than 0,35 kg/t.
Absoluutne erinevus kahe sõltumatu üksikkatse (mis on tehtud lühikese ajavahemiku jooksul sama meetodiga, identse katsematerjaliga, samas laboris, sama katse läbiviija poolt, samu katseseadmeid kasutades) tulemuste vahel ei tohi olla rohkem kui 5 %-l juhtudel suurem kui 0,35 kg/t.
The absolute differences between two individual single test results, obtained with the same method on identical test material in different laboratories with different operators using different equipment will in not more than 5 % of cases be greater than 0,66 kg/t.
Absoluutne erinevus kahe sõltumatu üksikkatse (mis on tehtud sama meetodiga, identse katsematerjaliga, erinevates laborites, erinevate katse läbiviijate poolt, erinevaid katseseadmeid kasutades) tulemuste vahel ei tohi olla rohkem kui 5 %-l juhtudel suurem kui 0,66 kg/t.
TOLERANCE LIMITS: LOWER LIMITS (CASE OF INSUFFICIENT QUANTITIES)
LUBATUD HÄLBED: ALAMMÄÄRAD (MITTEPIISAVA KOGUSE PUHUL)
Three samples must be taken from the traced product in order to check on the correct tracing of the product
Toote nõuetekohase märgistamise kontrollimiseks võetakse märgistatud tootest kolm proovi.
Butter and concentrated butter
Või ja kontsentreeritud või
The incorporation rate is 11 kg of at least 95 % pure enanthic acid triglyceride per tonne of butter, i.e. 10,45 kg/t
Lisatakse 11 kg vähemalt 95 % puhtusastmega enanthappe triglütseriidi ühe tonni või kohta (s.t 10,45 kg/t).
The results of three samples obtained from the analysis of the product are used to check the rate and the homogeneity of tracer incorporation and the lowest of these results is compared with the following limits:
Toote analüüsil kasutatakse kolmest proovist saadud tulemusi lisatud märgistusaine määra ja ühtlase jaotumise kontrollimiseks ning madalaimat saadud tulemust võrreldakse järgmiste piirmääradega:
9,51 kg/t (95 % of the minimum incorporation rate of 95 % pure enanthic acid triglyceride, single determination),
9,51 kg/t (95 % lisandi alammäärast 95 % puhtusastmega enanthappe triglütseriidi puhul, ühekordne määramine);
6,89 kg/t (70 % of the minimum incorporation rate of 95 % pure enanthic acid triglyceride, single determination),
6,89 kg/t (70 % lisandi alammäärast 95 % puhtusastmega enanthappe triglütseriidide puhul, ühekordne määramine);
The tracer concentration of the sample giving the lowest result is used in conjunction with interpolation respectively between 9,51 kg/t and 6,89 kg/t.
kasutatakse märgistusaine kontsentratsiooni kõige madalama tulemuse andnud proovis ning interpoleerimist 9,51 kg/t ja 6,89 kg/t vahel.
The incorporation is 10 kg of at least 95 % pure enanthic acid triglyceride per tonne of milk fat, i.e. 9,50 kg/t traced milk fat
Lisatakse 10 kg vähemalt 95 % puhtusastmega enanthappe triglütseriidi ühe tonni piimarasva kohta (s.t 9,50 kg ühe tonni märgistatava piimarasva kohta).
The results of the three samples obtained from the analysis of the product are used to check the rate of the homogeneity of tracer incorporation and the lowest of these results is compared with the following limits:
Toote analüüsil kasutatakse kolmest proovist saadud tulemusi lisatud märgistusaine määra ja ühtlase jaotumise kontrollimiseks ning madalaimat saadud tulemust võrreldakse järgmiste piirmääradega:
8,60 kg/t (95 % of the minimum incorporation rate of 95 % pure enanthic acid triglyceride, single determination),
8,60 kg/t (95 % lisamise alammäärast 95 % puhtusastmega enanthappe triglütseriidi puhul, ühekordne määramine);
6,23 kg/t (70 % of the minimum incorporation rate of 95 % pure enanthic acid triglyceride, single determination),
6,23 kg/t (70 % lisamise alammäärast 95 % puhtusastmega enanthappe triglütseriidide puhul, ühekordne määramine);
The tracer concentration of the sample giving the lowest result is used in conjunction with interpolation respectively between 8,60 kg/t and 6,23 kg/t.
kasutatakse märgistusaine kontsentratsiooni kõige madalama tulemuse andnud proovis ning interpoleerimist 8,60 kg/t ja 6,23 kg/t vahel.
TOLERANCE LIMITS: UPPER LIMITS (CASE OF EXCEEDING QUANTITY BY MORE THAN 20 %)
LUBATUD HÄLBED: ÜLEMMÄÄRAD (KOGUSE ÜLETAMISEL ROHKEM KUI 20 %)
The results of three samples obtained from the analysis of the product are used to check the rate and the homogeneity of tracer incorporation and the mean of these results is compared with the following limits:
Toote analüüsimisel saadud kolme proovi tulemusi kasutatakse lisatud märgistusaine määra ja ühtlase jaotumise kontrollimiseks ning nimetatud tulemuste keskmist võrreldakse järgmiste piirmääradega:
Upper limit is 12,96 kg/t
ülemmäär on 12,96 kg/t.
Upper limit is 11,82 kg/t.
ülemmäär on 11,82 kg/t.
ADDITIONAL INFORMATION: STATISTICAL ANALYSIS OF RESULTS ON THE DETERMINATION OF TRIENANTOATE IN BUTTERFAT BY TRIGLYCERIDE ANALYSIS
TÄIENDAV TEAVE: TRIGLÜTSERIIDIDE ANALÜÜSI ABIL VÕIRASVAS TRIENANTOAADI MÄÄRAMISE TULEMUSTE STATISTILINE ANALÜÜS
Four collaborative trials have been carried out to determine the trienantoate content in traced butter.
Märgistatud või trienantoaadisisalduse määramiseks on läbi viidud neli ühisuuringut.
Nine laboratories participated to the 1st ring test and no specifications were provided about the analytical methods to use:
Esimeses ringtestis osales üheksa laborit ning kasutatavate analüütiliste meetodite spetsifikatsioone ei määratletud.
10 laboratories participated to the 2nd ring test and 4 different methods were applied:
Teises ringtestis osales kümme laborit ja kohaldati nelja eri meetodit:
Quantification of methylheptanoate by using n-nonane or methylnonanoate as internal standard
metüülheptanoaadi kvantitatiivne määramine, kasutades sisestandardina n-nonaani või metüülnonanoaati;
Quantification of trienantoate by using tricaproate as internal standard
trienantoaadi kvantitatiivne määramine, kasutades sisestandardina trikaproaati;
Quantification of methylheptanoate by using a calibration sample/mixture
metüülheptanoaadi kvantitatiivne määramine, kasutades kalibreerimisproovi/segu;
Quantification of methylheptanoate by using a calibration mixture.
metüülheptanoaadi kvantitatiivne määramine, kasutades kalibreerimissegu.
Moreover, if FAME were analysed, two different methylation procedures were used (De Francesco and Christopherson & Glass).
Lisaks kasutati FAME analüüsimisel kahte erinevat metüülimismeetodit (De Francesco ning Christopherson ja Glass).
Due to the results obtained, two methods were chosen to perform the 3rd ring test:
Saadud tulemuste põhjal valiti kolmanda ringtesti jaoks välja kaks meetodit:
Quantification of trienantoate by using tricaproate as internal standard.
trienantoaadi kvantitatiivne määramine, kasutades sisestandardina trikaproaati.
The results of 7 labs showed that the FAME method produced a higher variability and consequently it was decided to use only the determination of trienantoate as triglyceride following the procedure of the q Quantification of trienantoate by using tricaproate as internal standard.
Seitsme labori tulemused näitasid, et FAME meetodi puhul oli varieeruvus suurem, ja seepärast otsustati triglütseriidi analüüsil kasutada üksnes trienantoaadi määramist meetodi q kohaselt (trienantoaadi kvantitatiivne määramine, kasutades sisestandardina trikaproaati).
Moreover the triglyceride analysis has to be carried out by capillary column.
Lisaks tuleb läbi viia triglütseriidide analüüs kapillaarkolonni abil.
In the 4th ring test four samples (A, B, C, D) were circulated and nine laboratories provided results (Tables 1-2).
Neljandas ringtestis pandi ringlema neli proovi (A, B, C, D), mille kohta esitasid tulemused üheksa laborit (tabelid 1–2).
Two laboratories (DE and UE) analysed the samples by using FAME method.
Kaks laborit (DE ja UE) analüüsisid proove FAME meetodiga.
Due to the reduced number of laboratories, the Statistical calculation has been performed both on the complete set (Figures 1-2) of data including FAME results and on the data obtained from TG analysis.
Laborite väiksema arvu tõttu tehti statistiline analüüs nii andmete koguhulga (joonised 1–2) (sealhulgas FAME tulemused) kui ka triglütseriidide analüüsi andmete põhjal.
Tests for outliers:
Võõrväärtuste testid
sample A. Dixon, Cochran and Grubbs tests at levels 1 and 5 %, showed one laboratory outlier.
Proov A: Dixoni, Cochrani ja Grubbsi testidega tunnistati 1 % ja 5 % tasemel võõrväärtuseks ühe labori tulemus.
sample B. Grubbs test at level 5 % showed one laboratory outlier.
Proov B: Grubbsi testiga tunnistati 5 % tasemel võõrväärtuseks ühe labori tulemus.
sample C. Dixon and Grubbs tests at levels 1 and 5 %, showed one laboratory outlier.
Proov C: Dixoni ja Grubbsi testidega tunnistati 1 % ja 5 % tasemel võõrväärtuseks ühe labori tulemus.
sample D. Dixon and Grubbs tests at levels 1 end 5 %, showed one laboratory outlier.
Proov D: Dixoni ja Grubbsi testidega tunnistati 1 % ja 5 % tasemel võõrväärtuseks ühe labori tulemus.
The outlier has been excluded from the calculation.
Võõrväärtust ei võetud arvutustes arvesse.
It is worth noting that the results obtained by FAME method were never considered as outliers by the tests applied.
Tuleb märkida, et FAME meetodi kasutamisel saadud tulemusi ei tunnistatud kohaldatud testidega ühtegi korda võõrväärtusteks.
Precision parameters
Täpsusparameetrid
Tables 1 and 2 report the results of all the laboratories and the precision parameters calculated on an acceptable number (8) of labs but, unfortunately not deriving from the same analytical method.
Tabelites 1 ja 2 on esitatud kõikide laborite tulemused ja tulemuste täpsuse parameetrid, mis on välja arvutatud piisava laborite arvu põhjal (8), kuid kahjuks ei ole nende saamiseks kasutatud ühte ja sama analüüsimeetodit.
Tables 3 and 4 report the results deriving only from TG method and the corresponding precision parameters.
Tabelites 3 ja 4 on esitatud üksnes triglütseriidi analüüsimise meetodi abil saadud tulemused ning vastavad täpsuse näitajad.
The acceptance of these parameters is subjected to the acceptance of the low number of laboratories (6).
Nende parameetrite vastuvõetavus sõltub sellest, kas pidada laborite väikest arvu (6) piisavaks.
Figures 2 and 3 show the trend of Sr and SR calculated on the 4 samples of the 2 data set described above.
Joonistel 2 ja 3 on näidatud Sr ja SR arengutendents, mis on välja arvutatud kahe eespool kirjeldatud andmekogumi nelja proovi põhjal.
Table 5 reports the Sr and SR values together with the corresponding pooled values and overall r and R parameters.
Tabelis 5 on esitatud Sr ja SR väärtused koos vastavate koondväärtustega ning koondparameetrid r ja R.
Finally the Critical Difference at 95 % of probability level has been calculated.
Lisaks on välja arvutatud kriitiline erinevus usaldusnivool 95 %.
Statistical Results of TG + FAME* methods
Triglütseriidide analüüsi meetodi + FAME* meetodi statistilised tulemused
Sample A
Proov A
of labs retained after eliminating outliers
Laborite arv pärast võõrväärtuste väljajätmist
of outliers
Võõrväärtuste arv
Outliers
Keskmine
Mean value
Keskväärtus
True value
Tegelik väärtus
Repeatability standard deviation (Sr)
Korratavuse standardhälve (Sr)
Repeatability relative sd (RSDr%)
Korratavuse suhteline standardhälve (RSDr %)
Repeatability r (95 %)
Korratavus r (95 %)
Relative Repeatability r %
Suhteline korratavus r %
Reproducibility standard deviation (SR)
Reprodutseeritavuse standardhälve (SR)
Reproducibility relative sd (RSDR%)
Reprodutseeritavuse suhteline standardhälve (RSDR %)
Reproducibility R (95 %)
Reprodutseeritavus R (95 %)
Relative Reproducibility R %
Suhteline reprodutseeritavus R %
Sample B
Poov B
N, of outliers
Võõrväärtuste arv
Relative reproducibility R %
Suhteline reprodutseeritavus R %
Sample C
Proov C
Sample D
Proov D
Statistical Results of TG method
Triglütseriidide analüüsi meetodi + FAME* meetodi statistilised tulemused
N, of labs retained after eliminating outliers
Laborite arv pärast võõrväärtuste väljajätmist
Mean Value
Keskväärtus
Reproducibility relative sd (RSDR%]
Reprodutseeritavuse suhteline standardhälve (RSDR %)
Repeatability and reproducibility (with FAME)
Korratavus ja reprodutseeritavus (kaasa arvatud FAME)
Minimum purity stated for trienantoate = 95 %
Trienantoaadi minimaalne puhtusaste = 95 %
Minimum limit stated for trienantoate in butterfat = 11 kg/t
Trienantoaadi alammäär võirasvas = 11 kg/t
Taking the Critical Difference for a 95 % probability level into consideration, the mean of the two results shall not be less than:
Arvestades kriitilise erinevuse väärtust usaldusnivool 95 %, ei tohi kahe tulemuse keskväärtus olla väiksem kui:
in the case of incorporation of 95 % pure trienantoate 10,05 kg/t
95 %lise puhtusega trienantoaadi lisamisel 10,05 kg/t.
No of labs
Laborite arv
Outlier
Võõrväärtusi
Sample Β
Proov B
Pooled value
Koondväärtus
Pooled value* 2,8
Koondväärtus* 2,8
Repeatability and reproducibility (without FAME)
Korratavus ja reprodutseeritavus (välja arvatud FAME)
in the case of incorporation of 95 % pure trienantoate 10,09 kg/t.
95 %lise puhtusega trienantoaadi lisamisel 10,09 kg/t.
Pooled value * 2,8
Koondväärtus * 2,8
Figure 1 [1]
Joonis 1 [1]
Experimental results: Sample A
Määramise tulemused: proov A
outlier
võõrväärtus
mean true
keskväärtus
labs
laborid
Experimental results: Sample B
Määramise tulemused: proov B
mean
keskväärtus
true
tegelik väärtus
Experimental results: Sample C
Määramise tulemused: proov C
Experimental results: Sample D
Määramise tulemused: proov D
Repeatability and Reproducibility standard deviation at different levels (TG+FAME)
Korratavuse ja reprodutseeritavuse standardhälve mitmesugustel kontsentratsioonidel (triglütseriidide analüüs + FAME)
Mean values (kg/t)
Keskväärtused (kg/t)
Repeatability and Reproducibility standard deviation at different levels (TG)
Korratavuse ja reprodutseeritavuse standardhälve mitmesugustel kontsentratsioonidel (triglütseriidide analüüs)
Example using an on-column injector
Näide kolonnile paigaldatud injektori kasutamise kohta
Caproic acid triglyceride
Kapronhappe triglütseriidid
Enanthic acid triglyceride
Enanthappe triglütseriidid
= FAME method.
= FAME meetod.
DETERMINING THE VANILLIN CONTENT IN CONCENTRATED BUTTER, BUTTER OR CREAM BY HIGH-PERFORMANCE LIQUID CHROMATOGRAPHY
KONTSENTREERITUD VÕI, VÕI JA RÕÕSA KOORE VANILLIINISISALDUSE MÄÄRAMINE KÕRGSURVEVEDELIKKROMATOGRAAFIA ABIL
SCOPE AND FIELD OF APPLICATION
RAKENDATAVUS JA RAKENDUSALA
The method describes a procedure for the quantitative determination of vanillin in concentrated butter, butter or cream.
Käesolevas meetodis kirjeldatakse vanilliini kvantitatiivset määramist kontsentreeritud võis, võis ja rõõsas koores.
Extraction of a known quantity of sample with a mixture of isopropanol/ethanol/acetonitrile (1:1:2).
Teatav kogus proovi ekstraheeritakse isopropanooli/etanooli/atsetonitriili seguga (1:1:2).
Precipitation of the majority of fat by cooling between –15 °C and –20 °C, followed by centrifugation.
Suurem osa rasvast sadestatakse, jahutades proovi temperatuurini –15 °C kuni –20 °C, seejärel proov tsentrifuugitakse.
After dilution with water, determination of the vanillin content by high-performance liquid chromatography (HPLC).
Pärast veega lahjendamist määratakse kõrgsurvevedelikkromatograafia (HPLC) abil vanilliinisisaldus.
Usual laboratory apparatus and, in particular, the following:
Tavalised laboriseadmed, eeskätt järgmised;
Freezer, operating in the temperature range –15 °C to –20 °C
sügavkülmik, töötab temperatuurivahemikus –15 °C kuni –20 °C;