natgillin/translations-raw huggingface dataset:
and M7 media are prepared using stock solution II, the macro-nutrients and vitamin as follows:
Keskkondade M4 ja M7 valmistamiseks kasutatakse II põhilahust, makrotoitaineid ja vitamiine järgmiselt:
Amount of stock solution II added to prepare medium (ml/l)
Keskkonnale lisatav II põhilahuse kogus (ml/1)
Stock solution II (combined trace elements)
II põhilahus (kombineeritud mikroelemendid)
Macro nutrient stock solutions (single substance)
Makrotoitainete põhilahused (üks aine)
Combined Vitamin stock
Kombineeritud vitamiinide põhilahus
The combined vitamin stock solution is prepared by adding the 3 vitamin to 1 litre water, as shown below:
Kombineeritud vitamiinide põhilahuse valmistamiseks lisatakse 3 vitamiini 1 liitrile veele järgmistes kogustes:
Thiamine hydrochloride
tiamiinvesinikkloriid
Cyanocobalamine (B12)
tsüanokobalamiin (B12)
Biotine
biotiin
The combined vitamin stock is stored frozen in small aliquots.
Kombineeritud vitamiinide põhilahust säilitatakse külmutatult väikeste alikvootidena.
Vitamins are added to the media shortly before use. N.B
Vitamiinid lisatakse keskkonnale vahetult enne kasutamist.
to avoid precipitation of salts when preparing the complete media, add the aliquots of stock solutions to about 500-800 ml deionised water and then fill up to 1 litre. N.B
NB Soolade sadenemise vältimiseks lisatakse täieliku keskkonna valmistamisel põhilahuste alikvoodid umbes 500–800 ml deioniseeritud veele ja seejärel täiendatakse veega kuni 1 liitrini.
the first publication of the M4 medium can be found in Elendt, B. P. (1990).
NB Keskkonna M4 koostis avaldati esimest korda järgmises artiklis: Elendt, B. P. (1990).
Water of suitable purity, e.g. deionised, distilled or reverse osmosis with conductivity preferably not exceeding 10 μS.cm-1.
Sobiva puhtusastmega vesi, st puhastatud ioonvahetuse, destilleerimise või pöördosmoosiga; vee juhtivus ei ületa eelistatavalt 10 μS/cm–1.
The purpose of this test is to determine the effects of a substance on the growth of a unicellular green algal species.
Katses määratakse aine mõju ainuraksete rohevetikaliikide kasvukiirusele.
Relatively brief (72 hours) tests can assess effects over several generations.
Suhteliselt lühikestes (72tunnistes) katsetes on võimalik hinnata aine mõju mitme põlvkonna kestel.
This method can be adapted for use with several unicellular algal species, in which case a description of the method used must be provided with the test report.
Meetodit võib kohandada mitmele ainuraksele vetikaliigile, sellisel juhul tuleb katsearuandele lisada kasutatud meetodi kirjeldus.
This method is most easily applied to water-soluble substances which, under the conditions of the test, are likely to remain in the water.
Meetod sobib kõige paremini vees lahustuvatele ainetele, mis jäävad katse tingimustes tõenäoliselt veefaasi.
The method can be used for substances that do not interfere directly with the measurement of algal growth.
Meetodit saab kasutada ainete puhul, mis ei takista otseselt vetikate kasvu mõõtmist.
It is desirable to have, as far as possible, information on the water solubility, vapour pressure, chemical stability, dissociation constants and biodegradability of the substance before starting the test.
Katse tegemiseks on kasulik teada aine lahustuvust vees, aururõhku, keemilist stabiilsust, dissotsiatsioonikonstante ja biolagunduvust.
Additional information (for instance structural formula, degree of purity, nature and percentage of significant impurities, presence and amount of additives, and n-octanol/water partition coefficient) should be taken into consideration in both the planning of the test and interpretation of the results.
Katse kavandamisel ja tulemuste tõlgendamisel tuleks arvestada ka muid andmeid (näiteks struktuurivalemit, puhtusastet, peamiste lisandite iseloomu ja protsentuaalset sisaldust, lisaainete olemasolu ja koguseid ning oktanooli/vee jaotustegurit).
Cell density: the number of cells per millilitre.
Rakkude kontsentratsioon – rakkude arv milliliitris:
Growth: the increase in cell density over the test period.
Kasv – rakkude kontsentratsiooni kasv katse kestel:
Growth rate: the increase in cell density per unit time.
Kasvukiirus – rakkude kontsentratsiooni kasv ajaühikus:
in this method, that concentration of test substance which results in a 50 % reduction in either growth (EbC50) or growth rate (ErC50) relative to the control.
käesolevas meetodis on see testaine kontsentratsioon, mis vähendab kasvu (EbC50) või kasvukiirust (ErC50) kontrollkatsega võrreldes 50 % võrra.
NOEC (no observed effect concentration): in this method, the highest tested concentration at which no significant inhibition of growth is observed relative to the control.
NOEC (täheldatava toimeta kontsentratsioon) – käesolevas meetodis on see kõrgeim uuritud kontsentratsioon, mille puhul ei täheldata kontrollkatsega võrreldes kasvu pidurdumist.
They may also be expressed as weight by weight (mg./kg-1).
Neid võib väljendada ka massiühikutes massiühiku kohta (mg/kg–1).
A reference substance may be tested as a means of demonstrating that under the laboratory test conditions the sensitivity of the test species has not changed significantly.
Katses võib kasutada võrdlusainet näitamaks, et katseliigi tundlikkus ei ole laboratoorsetes katsetingimustes oluliselt muutunud.
If a reference substance is used, the results should be given in the test report.
Võrdlusaine kasutamisel tuleks sellega saadud tulemused esitada katsearuandes.
Potassium dichromate can be used as a reference substance, but its colour may affect the light quality and intensity avai1able to the cells and also the spectrophotometric determinations if used.
Võrdlusainena võib kasutada kaaliumdikromaati, kuid selle värv võib mõjutada nii rakkudeni jõudva valguse omadusi ja tugevust kui ka spektrofotomeetrilisi mõõtmisi, kui neid kasutatakse.
Potassium dichromate has been used in an international inter-laboratory test (see ref. (3) and Appendix 2).
Kaaliumdikromaati on kasutatud rahvusvahelises laboritevahelises katses (vt viidet 3 ja 2. liidet).
A limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Kontsentratsioonil 100 mg/l võib teha piirsisalduskatse näitamaks, et EC50 on sellest kontsentratsioonist kõrgem.
Exponentially-growing cultures of selected green algae are exposed to various concentrations of the test substance over several generations under defined conditions.
Valitud rohevetika eksponentsiaalselt kasvavad kultuurid viiakse kindlatel tingimustel mitme põlvkonna kestel kokkupuutesse testaine erinevate kontsentratsioonidega.
The test solutions are incubated for a period of 72 hours, during which the cell density in each solution is measured at least every 24 hours.
Katselahuseid inkubeeritakse 72 tundi, mõõtes rakkude kontsentratsiooni lahuses vähemalt iga 24 tunni tagant.
The inhibition of growth in relation to a control culture is determined.
Määratakse kasvu pidurdumine võrreldes kontrollkultuuriga.
The cell density in the control cultures should have increased by a factor of at least 16 within three days.
Rakkude kontsentratsioon kontrollkultuurides peaks olema kolme päeva jooksul kasvanud vähemalt 16 korda.
The concentrations of the test substance shall be maintained to within 80 % of the initial concentrations/throughout a time corresponding to the duration of the test.
Testaine kontsentratsioon peab katse kestusele vastava aja jooksul säilitama vähemalt 80 % algkontsentratsioonist.
the initial concentration shall be taken as the concentration measured at the start of the test.
loetakse algkontsentratsiooniks katse algul mõõdetud kontsentratsioon.
The concentration shall be determined after a period of equilibration.
Kontsentratsioon mõõdetakse pärast mõningast tasakaalustumist.
It is recognised that significant amounts of the test substance may be incorporated into the algal biomass during the period of the test.
On teada, et oluline osa testainest võidakse katse kestel vetikate biomassi haarata.
Therefore, for the purpose of demonstrating compliance with the above quality criteria, both the amount of the substance incorporated into the algal biomass and the substance in solution (or, if not technically possible measured in the water column) should be taken into account.
Seetõttu tuleb eespool esitatud kvaliteedinõuete täitmise kinnitamiseks arvesse võtta nii vetikate biomassi haaratav kui ka lahuses mõõdetud ainekogus (või veesambas mõõdetud ainekogus, kui lahuses mõõtmine ei ole tehniliselt võimalik).
However, as determination of the substance concentration in the algal biomass may pose significant technical problems, compliance with the quality criteria may be demonstrated by running a test vessel at the highest substance concentration but without algae and measuring concentrations in solution (or, if not technically possible in the water column) at the beginning and at the end of the test period.
Kuna aine kontsentratsiooni mõõtmine vetikate biomassis võib aga tehniliselt üsnagi keerukas olla, võib kvaliteedinõuete täitmist kinnitada katse tegemisel aine kõrgeima kontsentratsiooniga, kuid ilma vetikateta ja mõõtes kontsentratsioonid lahuses (või veesambas, kui lahuses mõõtmine ei ole tehniliselt võimalik) nii katse alguses kui ka lõpus.
DESCRIPTION OF THE TEST PROCEDURE
KATSEPROTSEDUURI KIRJELDUS
The chosen test concentrations are prepared by adding suitable aliquots to algal pre-cultures (see Appendix 1).
Vajaliku kontsentratsiooniga katselahused valmistatakse sobivate koguste lisamisel vetikate eelkultuuridele (vt 1. liidet).
Substances should normally only be tested up to the limit of solubility.
Aineid kontrollitakse üldjuhul lahustuvuse piirini.
For some substances (e.g. substances having low solubility in water, or high Pow or those forming stable dispersion rather than true solution in water), it is acceptable to run a test concentration above the solubility limit of the substance to ensure that the maximum soluble stable concentration has been obtained.
Mõnede ainete puhul (nt vees madala lahustuvusega, kõrge POW-ga või vees pigem stabiilse dispersiooni kui tõelise lahuse moodustavate ainete puhul) võib katse teha aine lahustuvuspiirist kõrgemal kontsentratsioonil, et tagada kõrgeima lahustuva/stabiilse kontsentratsiooni saavutamine.
When such auxiliary substances are used, all test concentrations should contain the same amount of auxiliary substances, and additional controls should be exposed to the same concentration of the auxiliary substance as that used in the test series.
Selliste abiainete kasutamisel peavad kõik katsekontsentratsioonid sisaldama sama koguse abiainet ja täiendavad kontrollkultuurid tuleks viia kokkupuutesse katseseeriaga võrdväärse abiaine kontsentratsiooniga.
In that case, the pH value of the stock solution should be adjusted to the pH value of the solution water unless there are specific reasons not to do so.
Eriliste vastunäidustuste puudumisel tuleks sellisel juhul põhilahuse pH reguleerida võrdseks lahjendusvee omaga.
Test medium
Katsekeskkond
The water should be good-quality distilled water, or deionised water with a conductivity less than 5 μS.cm-1.
Vesi peaks olema kvaliteetne destilleeritud vesi või deioniseeritud vesi juhtivusega alla 5 μS/cm–1.
The apparatus for distillation of water must not contain any part made of copper.
Vee destilleerimise seade ei tohi sisaldada vaskosi.
The following medium is recommended.
Soovitatav on kasutada järgmist toitelahust.
Four stock solutions are prepared, according to the following table.
Järgmise tabeli põhjal valmistatakse neli põhilahust.
The stock solutions are sterilised by membrane filtration or by autoclaving, and stored in the dark at 4 oC.
Põhilahused steriliseeritakse membraanfiltratsioonil või autoklaavimisel ja säilitatakse seejärel pimedas 4 oC juures.
Stock solution No 4 should be sterilised only by membrane filtration.
Põhilahust nr 4 tuleks steriliseerida ainult membraanfiltratsioonil.
These stock solutions are diluted to achieve the final nutrient concentrations in the test solutions.
Need põhilahused lahjendatakse nii, et saadakse lõplikud toitainete kontsentratsioonid katselahuses.
Concentration in the stock solution
Kontsentratsioon põhilahuses
Final concentration in the test solution
Lõplik kontsentratsioon katselahuses
Stock solution 1: macro-nutrients
Põhilahus nr 1: makrotoitained
12mg/l
12 mg/l
Stock solution 2: Fe-EDTA
Põhilahus nr 2: Fe-EDTA
Stock solution 3: trace elements
Põhilahus nr 3: mikroelemendid
3 × 10-3 mg/l
3 × 103 mg/l
1,5 × 10-3 mg/l
1,5 × 10–3 mg/l
10-5 mg/l
10–5 mg/l
7 × 10-3mg/l
7 × 10–3 mg/l
Stock solution 4: NaHCO3
Põhilahus nr 4: NaHCO3
The pH of the medium after equilibration with air is approximately 8.
Toitelahuse pH on pärast õhuga tasakaalustamist ligikaudu 8.
Normal laboratory equipment.
Harilikud laboriseadmed.
test flasks of suitable volume (e.g. 250 ml conical flasks are suitable when the volume of the test solution is 100 ml).
Sobiva mahuga kolvid (näiteks 100 ml katselahuse mahu puhul sobivad 250 ml koonilised kolvid).
All test flasks should be identical as regards to material and dimensions,
Kõik katses kasutatavad kolvid peaksid olema ühesugusest materjalist ja ühesuguste mõõtmetega.
culturing apparatus: cabinet or chamber in which a temperature in the range 21 oC to 25 oC can be maintained at ± 2 oC, and continuous uniform illumination provided in the spectral range 400 to 700 nm.
Kultiveerimisseade: kapp või kamber, mida saab hoida temperatuuril 21–25 oC täpsusega ± 2 oC ja ühtlaselt valgustada spektrivahemikus 400–700 nm.
If algae in control cultures have achieved the recommended growth rates, it can be assumed that the conditions for growth, including light intensity, have been adequate.
Kui kontrollkultuuride vetikad on saavutanud soovitatava kasvukiiruse, võib selle põhjal järeldada, et kasvutingimused, sh valgustugevus, on olnud sobivad.
It is recommended to use, at the average level of the test solutions, a light intensity in the range 60 to 120 μE.m- 2.s-1 (35 to 70 × 1018 photons.m- 2.s-1) when measured in the range 400 to 700 nm using an appropriate receptor.
Keskmiste katselahusekontsentratsioonide puhul on soovitatavaks valgustugevuseks 60–120 μE m–2.s–1 (35–70 × 1018 footonit.m–2.s–1) mõõdetuna sobiva detektori abil vahemikus 400–700 nm.
For light measuring instruments calibrated in lux, an equivalent range of 6000 to 10000 lx is acceptable.
Luksides kaliibritud fotomeetrite puhul on sobivaks vahemikuks 6000-10000 l×.
The light intensity could be obtained using four to seven 30 W fluorescent lamps of the universal white type (colour temperature of approximately 4300 K), at a distance of 0,35 m from the algal culture,
Vajalik valgustugevus on saavutatav nelja kuni seitsme 30 W universaalvalge luminofoorlambi abil (värvustemperatuuriga ligikaudu 4300 K), mis on paigutatud 0,35 m kaugusele vetikakultuurist.
Cell density measurements should be made using a direct counting method of living cells, e.g. a microscope with counting chambers.
Rakkude kontsentratsiooni tuleks mõõta elusrakkude otsese loendamise teel, nt loenduskambritega mikroskoobi abil.
However, other procedures (photometry, turbidimetry, ...) may be used if sufficiently sensitive and if shown to be sufficiently well correlated with cell density.
Kasutada võib aga ka muid meetodeid (fotomeetria, turbidimeetria, ...), kui need on küllalt tundlikud ja näidatakse, et tulemused vastavad piisavalt hästi rakkude kontsentratsioonile.
Test organisms
Katseorganismid
It is suggested that the species of green algae used be a fast-growing species that is convenient for culturing and testing.
Soovitatav on kasutada kiire kasvuga rohevetika liiki, mis sobib hästi kultiveerimiseks ja katseteks.
The following species are preferred:
Eelistatavad on järgmised liigid:
Selenastrum capricornutum, e.g. ATCC 22662 or CCAP 278/4,
Selenastrum capricornutum, nt ATCC 22662 või CCAP 278/4;
Scenedesmus subspicatus, e.g. 86.81 SAG,
Scenedesmus subspicatus, nt 86.81 SAG.
ATCC American Type Culture Collection (U.S.A.)
ATCC American Type Culture Collection (USA)
CCAP Culture Centre of Algae and Protozoa (U.K.)
CCAP Culture Centre of Algae and Protozoa (Ühendkuningriik)
SAG Collection of algal culture (Gottingen, F.R.G.)
SAG Sammlung Algenkulturen (Göttingen, Saksamaa)
If other species are used, the strain should be reported.
Muu liigi kasutamisel tuleks vastav tüvi ära märkida.
The concentration range in which effects are likely to occur is determined on the basis of results from range-finding tests.
Eeldatav mõjupiirkond leitakse annusevahemiku leidmise katsete põhjal.
The two measures of growth (biomass and growth rate) may result in widely disparate measures of growth inhibition; both should be used in the range finding test to ensure that the geometric progression of concentrations will allow estimation of both the EbC50 and the ErC50.
Kahe eri kasvukriteeriumi (biomassi ja kasvukiiruse) põhjal võib saada väga erinevaid kasvu pidurdumise tulemusi; annusevahemiku leidmise katses tuleks kasutada mõlemat, tagamaks, et kontsentratsioonide geomeetriline kasv võimaldab määrata nii EbC50 kui ka ErC50.
Initial cell density
Rakkude algkontsentratsioon
It is recommended that the initial cell density in the test cultures be approximately 104 cells/ml for Selenastrum capricornutum and Scenedesmus subspicatus.
Selenastrum capricornutum’i ja Scenedesmus subspicatus’e puhul on rakkude soovitatavaks algkontsentratsiooniks kultuuris 104 rakku/ml.
When other species are used the biomass should be comparable.
Muude liikide kasutamisel peaks kasutatav biomass olema võrreldavas suurusjärgus.
Concentrations of test substance
Testainete kontsentratsioonid
For the test, at least five concentrations are made up in a geometric series at a concentration ratio not exceeding 2,2.
Katseks valmistatakse geomeetrilise jadana ette vähemalt viis kontsentratsiooni kontsentratsioonide suhtega mitte üle 2,2.
The lowest concentration tested should have no observed effect on the growth of the algae.
Madalaimal uuritaval kontsentratsioonil ei tohiks ilmneda täheldatavat mõju vetikate kasvule.
The highest concentration tested should inhibit growth by at least 50 % relative to the control and, preferably, stop growth completely.
Kõrgeim uuritav kontsentratsioon peaks pidurdama vetikate kasvu kontrollkultuuriga võrreldes vähemalt 50 % ja eelistatavalt peatama kasvu täielikult.
Replicates and controls
Kordus- ja kontrollkatsed
The test design should include three replicates at each test concentration.
Igal uuritaval kontsentratsioonil tuleb teha vähemalt kolm korduskatset.
Three controls without test substance are run and, if relevant, three controls containing the auxiliary substance are also run.
Ilma testaineta tehakse kolm kontrollkatset, vajaduse korral tehakse ka kolm kontrollkatset abiainet sisaldava lahusega.
If justified, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Kui see on õigustatud, võib katseskeemi muuta, suurendades kontsentratsioonide arvu ja vähendades korduskatsete arvu kontsentratsiooni kohta.
Test cultures containing the desired concentrations of test substance and the desired quantity of algal inoculum are prepared by adding aliquots of stock solutions of the test substance to suitable amounts of algal pre-cultures (see Appendix 1).
Vajaliku testaine ja vetikainokulaadi sisaldusega katsekultuurid valmistatakse nõutavate põhilahusekoguste lisamisel sobivatele vetikate eelkultuuride kogustele (vt 1. liidet).
The culture flasks are shaken and placed in the culturing apparatus.
Kultiveerimiskolbe loksutatakse ja need asetatakse kultiveerimisseadmesse.
The algal cells are kept in suspension by shaking, stirring or bubbling with air, in order to improve gas exchange and reduce pH variation in the test solutions.
Vetikarakke hoitakse loksutamise, segamise või õhuga läbipuhumise teel suspendeerituna, parandades nii gaasivahetust ja vähendades pH kõikumisi katselahustes.
The cultures should be maintained at a temperature in the range of 21 to 25 oC, controlled at ± 2 oC.
Kultuure tuleks hoida temperatuurivahemikus 21–25 oC täpsusega ± 2 oC.
The cell density in each flask is determined at least at 24, 48 and 72 hours after the start of the test.
Igas kolvis määratakse rakkude kontsentratsioon vähemalt 24, 48 ja 72 tunni möödumisel katse algusest.
Filtered algal medium containing the appropriate concentration of the test chemical is used to determine the background when using cell density measurements other than direct counting methods.
Kui rakkude kontsentratsiooni mõõdetakse muude meetodite abil, mitte otsese loendamise teel, kasutatakse võrdlusproovina filtritud vetikate toitelahust, mis sisaldab vastavas kontsentratsioonis uuritavat kemikaali.
The pH is measured at the beginning of the test and at 72 hours.
pH-d mõõdetakse katse algul ja 72 tunni pärast.
The pH of the controls should not normally deviate by more than 1,5 units during the test.
Kontrollkultuuride pH ei tohiks katse kestel üldjuhul erineda rohkem kui 1,5 ühiku võrra.
Testing volatile substances
Lenduvate ainete uurimine
There is to date no generally accepted way to test volatile substances.
Kuni praeguseni puudub üldtunnustatud meetod lenduvate ainete uurimiseks.
When a substance is known to have a tendency to vaporise, closed test flasks with increased head-space may be used.
Kui on teada, et aine kaldub aurustuma, võib kasutada suurema tühja ülaosaga suletud kolbi.
The possibility of shortage of CO2 should be considered when calculating the head-space of the closed flasks.
Kolvi vajaliku tühja ülaosa mahu arvutamisel tuleb arvestada CO2 puudujäägi võimalust.
Variations to this method have been proposed (see reference (4)).
Välja on pakutud meetodi mõningaid eri variante (vt viidet 4).
Attempts should be made to determine the amount of the substance which remains in solution, and extreme caution is advised when interpreting results of tests with volatile chemicals using closed systems.
Tuleks püüda määrata lahusesse jäävat ainekogust ning lenduvate kemikaalidega suletud süsteemides saadud tulemusi tuleks tõlgendada väga ettevaatlikult.
Using the procedures described in this method, a limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Käesoleva katsemeetodi protseduuri järgides võib kontsentratsioonil 100 mg/l teha piirsisalduskatse näitamaks, et EC50 on sellest kontsentratsioonist kõrgem.
The limit test should be performed at least in triplicate, with the same number of controls.
Piirsisalduskatse tuleks teha vähemalt kolme paralleelkatsena, sama arvu kontrollkatsetega.
The two measures of growth (biomass and growth rate) should be used for the limit test.
Piirsisalduskatses tuleks rakendada kaht eri kasvukriteeriumi (biomassi ja kasvukiirust).
If, in a limit test, a mean decrease of 25 % or more is found in either biomass or growth rate between the limit test and the control, a full test should be carried out.
Kui biomassi või kasvukiiruse järgi tehtud katses on keskmine pidurdumine 25 % või suurem, tuleb teha täiemahuline uuring.
The measured cell density in the test cultures and controls are tabulated together with the concentrations of the test substance and the times of measurements.
Mõõdetud rakukontsentratsioonid katse- ja kontrollkultuurides esitatakse tabelis koos testaine kontsentratsioonide ja mõõtmisaegadega.
The mean value of the cell density for each test substance concentration and for the controls is plotted against time (0-72 h) to produce growth curves.
Kasvukõverate saamiseks esitatakse graafiliselt rakkude keskmise kontsentratsiooni muutus ajas (0–72 h) iga testaine kontsentratsiooni puhul.
To determine the concentration/effect relationship, the two following approaches should be used.
Kontsentratsiooni/mõju sõltuvuse määramisel võib kasutada järgmisi meetodeid.
Some substances can stimulate the growth at low concentrations.
Madalatel kontsentratsioonidel mõned ained stimuleerivad kasvu.
Only data points indicating inhibition between 0 and 100 % should be considered.
Arvestada tuleks ainult kasvu 0–100 % pidurdumisele viitavaid andmepunkte.
COMPARISON OF AREAS UNDER THE GROWTH CURVES
KASVUKÕVERATE ALUSE PINDALA VÕRDLEMINE