natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Bronaugh R.L. and Maibach H.I., (1991) In vitro Percutaneous Absorption: Principles, Fundamentals and Applications.
Bronaugh RL and Maibach HI. (1991).
European Centre for Ecotoxicology and Toxicology of Chemicals, (1993) Monograph No 20, Percutaneous Absorption, ECETOC, Brussels.
European Centre for Ecotoxicology and Toxicology of Chemicals (1993). Monograph No. 20, Percutaneous Absorption, ECETOC, Brussels.
Diembeck W, Beck H, Benech-Kieffer F, Courtellemont P, Dupuis J, Lovell W, Paye M, Spengler J, Steiling W., (1999) Test Guidelines for In Vitro Assessment of Dermal Absorption and Percutaneous Penetration of Cosmetic Ingredients, Fd Chem Tox, 37, p. 191-205.
Diembeck W, Beck H, Benech-Kieffer F, Courtellemont P, Dupuis J, Lovell W, Paye M, Spengler J, Steiling W (1999). Test Guidelines for In Vitro Assessment of Dermal Absorption and Percutaneous Penetration of Cosmetic Ingredients, Fd Chem Tox, 37, 191–205.
US Federal Register, Vol. 61, No 65.
US Federal Register, Vol. 61, No. 65.
Roberts, M.S. and Walters, K.A., (1998).
Roberts MS and Walters KA. (1998).
Jewell, C., Heylings, J.R., Clowes, H.M. and Williams, F.M.
Jewell, C., Heylings, JR., Clowes, HM. And Williams, FM.
Arch Toxicol 74, p. 356-365.
Arch Toxicol 74: 356–365.
An example of a typical design of a static diffusion cell for in vitro percutaneous absorption studies
Tüüpilise staatilise difusiooniraku ehitus nahakaudse imendumise in vitro uuringute puhul
Activated charcoal filter (for volatile test substances)
aktiivsüsifilter (lenduvate uuritavate ainete jaoks)
Cell donor chamber
raku doonorkamber
Skin membrane (2.54 cm2)
nahkmembraan (2,54 cm2)
Support grid
tugivõre
Glass diffusion cell
klaasist difusioonirakk
Magnetic stirrer bar
magnetsegaja pulk
Receptor chamber/ fluid maintained at 32°C ± 1°C in a temperature-controlled water bath
Vastuvõtukamber/vastuvõtuvedelik asub vesivannis, mis on termostateeritud 32 ± 1°C juures.
(Auto) pipette/syringe sampling into scintillation or HPLC vials
automaatpipett või –süstal proovide kandmiseks stsintsillatsioon-või HPLC‐viaalidesse
Volume maintained by replacement of fresh receptor fluid
Ruumala hoitakse konstantne vastuvõtva vedeliku täiendavate koguste lisamisega.
The area of corneal opacity should be noted
Sarvkesta hägususala tuleks mainida.
For a number of measurements in serum and plasma, most notably for glucose, overnight fasting would be preferable.
Mitmete seerumi ja plasma, peamiselt glükoosi mõõtmiste korral ei tohiks loomadele eelneva öö jooksul toitu anda.
The major reason for this preference is that the increased variability which would inevitably result from non-fasting, would tend to mask more subtle effects and make interpretation difficult.
Selle peamiseks põhjuseks on see, et toidu andmise korral oleks tulemuste varieeruvus suurem ning see varjaks raskemini tuvastatava toime ning muudaks tõlgendamise raskeks.
On the other hand, however, overnight fasting may interfere with the general metabolism of the animals and, particularly in feeding studies, may disturb the daily exposure to the test substance.
Teisest küljest võib see aga häirida loomade tavapärast üldist ainevahetust ja eelkõige toitumisuuringute puhul võib see häirida igapäevaseid kokkupuuteid uuritava ainega.
If overnight fasting is adopted, clinical biochemical determinations should be performed after the conduct of functional observations in week 4 of the study.
Kui loomadele ei anta öö jooksul toitu, tuleks uuringu neljandal nädalal tehtud funktsionaalsete vaatluste järel läbi viia kliinilis-biokeemilised määramised.
If overnight fasting is adopted, clinical biochemical determinations should be performed after the conduct of functional observations of the study.
Kui loomadele ei anta öö jooksul toitu, tuleks uuringu neljandal nädalal tehtud funktsionaalsete vaatluste järel teha kliinilis-biokeemilised määramised
Now known as serum alanine aminotransferase.
Praegu tuntud kui aspartaadi aminotransferaas.
Now known as serum aspartate aminotransferase.
Praegu tuntud kui alaniini aminotransferaas.
These organs, from 10 animals per sex per group for rodents and all non-rodents, plus thyroid (with parathyroids) for all non-rodents, should be weighed.
Need organid (pluss kilpnääre koos kõrvalkilpnäärmetega) tuleb kaaluda kümnel loomal kummastki soost iga rühma kohta näriliste puhul ja kõigil loomadel mittenäriliste puhul.
These organs, from 10 animals per sex per groups for rodents, should be weighed.
Need organid tuleb näriliste puhul kaaluda kümnel loomal kummastki soost iga rühma kohta.
In this method a reference group is one in which the test substance is administered by another route that ensures complete bioavailability of the dose.
Selles meetodis on referentsgrupiks grupp, kellele uuritav aine manustatakse viisil, mis tagab annuse täieliku biosaadavuse.
Solvent used for measuring absorption.
Neeldumise mõõtmiseks kasutatav lahusti.
† Includes five animals selected for functional testing and detailed clinical observations as part of the neurotoxicity study.
† Siia rühma kuulub viis looma, kes on valitud funktsionaalseks katseks ja üksikasjalilkeks kliinilisteks vaatlusteks neurotoksilisuse uuringu osana.
PART C: METHODS FOR THE DETERMINATION OF ECOTOXICITY
C OSA: KESKKONNAMÜRGISUSE MÄÄRAMISE MEETODID
ACUTE TOXICITY FOR FISH
ÄGE MÜRGISUS KALADELE
ALGAL INHIBITION TEST
VETIKATE KASVU PIDURDAMISE KATSE
DETERMINATION OF ‘READY’ BIODEGRADABILITY
KOHESE BIOLAGUNDUVUSE MÄÄRAMINE
PART I. GENERAL CONSIDERATIONS
I OSA ÜLDPÕHIMÕTTED
PART II.
II OSA.
DOC DIE-AWAY TEST (Method C.4-A)
DOC KÕRVALDAMISE KATSE (meetod C.4-A)
PART III.
III OSA.
MODIFIED OECD SCREENING TEST (Method C.4-B)
MUUDETUD OECD SÕELKATSE (meetod C.4-B)
PART IV.
IV OSA.
EVOLUTION TEST (Method C.4-C)
ERALDUMISE KATSE (meetod C.4-C)
PART V. MANOMETRIC RESPIROMETRY TEST (Method C.4-D)
V. OSA MANOMEETRILISE RESPIROMEETRIA KATSE (meetod C.4-D)
PART VI.
VI OSA.
CLOSED BOTTLE TEST (Method C.4-E)
KINNISE PUDELI KATSE (meetod C.4-E)
PART VII. M.I.T.I.
VII OSA.
TEST (Method C.4-F)
MITI KATSE (meetod C.4-F)
DEGRADATION — BIOCHEMICAL OXYGEN DEMAND
LAGUNEMINE – BIOKEEMILINE HAPNIKUTARVE
DEGRADATION — CHEMICAL OXYGEN DEMAND
LAGUNEMINE – KEEMILINE HAPNIKUTARVE
DEGRADATION — ABIOTIC DEGRADATION: HYDROLYSIS AS A FUNCTION OF PH
LAGUNEMINE – ABIOOTILINE LAGUNEMINE: HÜDROLÜÜSI SÕLTUVUS pHst
TOXICITY FOR EARTHWORMS
TOKSILISUS VIHMAUSSIDELE
BIODEGRADATION — ZAHN-WELLENS TEST
BIODEGRADATSIOON – ZAHNI-WELLENSI TEST
BIODEGRADATION — ACTIVATED SLUDGE SIMULATION TESTS
BIODEGRADATSIOON – AKTIIVMUDA SIMULATSIOONITESTID
BIODEGRADATION — ACTIVATED SLUDGE RESPIRATION INHIBITION
BIODEGRADATSIOON – AKTIIVMUDA RESPIRATSIOONI PÄRSSIMISE TEST
BIODEGRADATION — MODIFIED SCAS TEST
BIODEGRADATSIOON – MODIFITSEERITUD SCAS TEST
BIOCONCENTRATION: FLOW-THROUGH FISH TEST
BIOKONTSENTRATSIOON: KALADEGA LÄBIVOOLUKATSE
FISH JUVENILE GROWTH TEST
NOORKALADE KASVUKATSE
FISH, SHORT-TERM TOXICITY TEST ON EMBRYO AND SAC-FRY STAGES
KALA EMBRÜO JA REBUKOTIGA VASTSETEGA TEHTAV LÜHIAJALINE TOKSILISUSE KATSE
HONEYBEES — ACUTE ORAL TOXICITY TEST
MESILASED – AKUUTSE SUUKAUDSE TOKSILISUSE KATSE
HONEYBEES — ACUTE CONTACT TOXICITY TEST
MESILASED – AKUUTSE KONTAKTTOKSILISUSE KATSE
ADSORPTION/DESORPTION USING A BATCH EQUILIBRIUM METHOD
ADSORPTSIOON/DESORPTSIOON, KASUTADES PARTII TASAKAALUSTAMISE MEETODIT
ESTIMATION OF THE ADSORPTION COEFFICIENT (KOC) ON SOIL AND ON SEWAGE SLUDGE USING HIGH PERFORMANCE LIQUID CHROMATOGRAPHY (HPLC)
ADSORPTSIOONITEGURI (KOC) KINDLAKSMÄÄRAMINEMULLAS JA REOVEESETTES KÕRGSURVEVEDELIKKROMATOGRAAFIA (HPLC) ABIL
DAPHNIA MAGNA REPRODUCTION TEST
HIIDKIIVRIKU (DAPHNIA MAGNA) SIGIVUSE KATSE
SOIL MICROORGANISMS: NITROGEN TRANSFORMATION TEST
MULLAMIKROOBID: LÄMMASTIKU TRAMSFORMATSIOONI KATSE
SOIL MICROORGANISMS: CARBON TRANSFORMATION TEST
MULLAMIKROOBID: SÜSINIKU TRANSFORMATSIOONI KATSE
AEROBIC AND ANAEROBIC TRANSFORMATION IN SOIL
AEROOBNE JA ANAEROOBNE TRANSFORMATSIOON MULLAS
AEROBIC AND ANAEROBIC TRANSFORMATION IN AQUATIC SEDIMENT SYSTEMS
AEROOBNE JA ANAEROOBNE TRANSFORMATSIOON PÕHJASETTES
The purpose of this test is to determine the acute lethal toxicity of a substance to fish in fresh water.
Katses määratakse aine äge surmav mürgisus mageveekaladele.
It is desirable to have, as far as possible, information on the water solubility, vapour pressure, chemical stability, dissociation constants and biodegradability of the substance to help in the selection of the most appropriate test method (static, semi-static or flow-through) for ensuring satisfactorily constant concentrations of the test substance over the period of the test.
Katse kestel testaine piisavalt püsiva kontsentratsiooni tagamiseks parima katsemeetodi (seisva, poolseisva veega või läbivooluga katsesüsteem) valimisel on kasulik teada võimaluse korral aine lahustuvust vees, aururõhku, keemilist stabiilsust, dissotsiatsioonikonstante ja biolagunduvust.
Additional information (for instance structural formula, degree of purity, nature and percentage of significant impurities, presence and amounts of additives, and n-octanol/water partition coefficient) should be taken into consideration in both the planning of the test and interpretation of the results.
Katse kavandamisel ja tulemuste tõlgendamisel tuleks arvestada ka muid andmeid (näiteks struktuurivalemit, puhtusastet, peamiste lisandite iseloomu ja protsentuaalset sisaldust, lisaainete olemasolu ja koguseid ning oktanooli/vee jaotustegurit).
Acute toxicity is the discernible adverse effect induced in an organism within a short time (days) of exposure to a substance.
Äge mürgisus on märgatav kahjulik mõju, mis avaldub organismis lühikese aja (päevade) jooksul pärast ainega kokkupuudet.
In the present test, acute toxicity is expressed as the median lethal concentration (LC50) that is the concentration in water which kills 50 % of a test batch of fish within a continuous period of exposure which must be stated.
Käesolevas katses väljendatakse ägedat mürgisust keskmise surmava kontsentratsioonina (LC50), see tähendab kontsentratsioonina vees, mis surmab kindla katkematu kokkupuuteaja (mis peab olema märgitud) jooksul 50 % katses kasutatud kaladest.
All concentrations of the test substance are given in weight by volume (milligrams per litre).
Kõiki testaine kontsentratsioone väljendatakse massiühikutes mahuühiku kohta (milligrammides liitri kohta).
They may also be expressed as weight by weight (mg/kg-1).
Neid võib väljendada ka massiühikutes massiühiku kohta (mg/kg–1).
A reference substance may be tested as a means of demonstrating that under the laboratory test conditions the response of tested species have not changed significantly.
Katses võib kasutada võrdlusainet näitamaks, et katseliigi reaktsioon ei ole laboratoorsetes katsetingimustes oluliselt muutunud.
No reference substances are specified for this test.
Käesoleva katse jaoks ei ole võrdlusaineid nimetatud.
A limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the LC50 is greater than this concentration.
Kontsentratsioonil 100 mg/l võib teha piirsisalduskatse näitamaks, et LC50 on sellest kontsentratsioonist kõrgem.
The fish are exposed to the test substance added to water at a range of concentrations for a period of 96 hours.
Kalad viiakse 96 tunniks kokkupuutesse veele kindlaksmääratud kontsentratsioonides lisatud testainega.
Mortalities are recorded at least at 24-hour intervals, and the concentrations killing 50 % of the fish (LCso) at each observation time are calculated where possible.
Suremus registreeritakse vähemalt iga 24 tunni tagant ja igas vaatluspunktis arvutatakse võimaluse korral kontsentratsioon, mis surmab 50 % kaladest (LC50).
The quality criteria shall apply to the limit test as well as the full test method.
Kvaliteedinõuded kehtivad nii piirsisalduskatse kui ka täiskatseprogrammi suhtes.
The mortality in the controls must not exceed 10 % (or one fish if less than ten are used) by the end of the test.
Kontrollkatsete suremus ei tohi katse lõpuks ületada 10 % (alla kümne kala kasutamisel võib surra vaid üks kala).
The dissolved oxygen concentration must have been more than 60 % of the air-saturation value throughout.
Lahustunud hapniku kontsentratsioon peab kogu katse kestel olema kõrgem kui 60 % küllastusväärtusest.
The concentrations of the test substance shall be maintained to within 80 % of the initial concentrations throughout the duration of the test.
Testaine kontsentratsioon peab kogu katse kestel olema vähemalt 80 % algkontsentratsioonist.
For substances which dissolve easily in the test medium, yielding stable solutions i.e. those which will not to any significant extent volatilise, degrade, hydrolyze or adsorb, the initial concentration can be taken as being equivalent to the nominal concentration.
Katsekeskkonnas hästi lahustuvaid ja püsivaid lahuseid, st arvestataval määral mitte lenduvaid, lagunevaid, hüdrolüüsuvaid ega adsorbeeruvaid lahuseid andvate ainete puhul võib algkontsentratsiooni lugeda võrdseks nimikontsentratsiooniga.
Evidence shall be presented that the concentrations have been maintained throughout the test and that the quality criteria have been satisfied.
Kontsentratsiooni püsimist kogu katse kestel ja kvaliteedinõuete täitmist tuleb tõendada.
For substances that are:
Ainete puhul, mis
poorly soluble in the test medium, or
on katsekeskkonnas vähelahustuvad või
capable of forming stable emulsions or dispersions, or
moodustavad stabiilseid emulsioone või dispersioone või
not stable in aqueous solutions,
ei ole vesilahuses stabiilsed,
the initial concentration shall be taken as the concentration measured in solution (or, if technically not possible, measured in the water column) at the start of the test.
loetakse algkontsentratsiooniks lahuses mõõdetud kontsentratsioon (või veesambas mõõdetud kontsentratsioon, kui lahuses mõõtmine ei ole tehniliselt võimalik).
The concentration shall be determined after a period of equilibration but before the introduction of the test fish.
Kontsentratsioon mõõdetakse pärast mõningast tasakaalustumist, kuid enne kalade lahusesse viimist.
In any of these cases, further measurements must be made during the test to confirm the actual exposure concentrations or that the quality criteria have been met.
Kõigil neil juhtudel tuleb katse kestel teha täiendavaid mõõtmisi, mis kinnitaksid tegelikku kokkupuutekontsentratsiooni ja kvaliteedinõuete täitmist.
The pH should not vary by more than 1 unit.
pH ei tohiks kõikuda rohkem kui ühe ühiku võrra.
Toxicity test in which no flow of test solution occurs.
Seisva veega katsesüsteem:
(Solutions remain unchanged throughout the duration of the test.)
mürgisuse katse ilma katselahuse läbivooluta (lahus ei vahetu katse kestel).
Semi-static test:
Poolseisva veega katse:
Test without flow of test solution, but with regular batchwise renewal of test solutions after prolonged periods (e.g. 24 hours).
katse ilma katselahuse läbivooluta, kuid regulaarse katselahuse osakaupa vahetamisega pikemate perioodide (nt 24 tunni) järel.
Flow-through test:
Läbivooluga katse:
Toxicity test in which the water is renewed constantly in the test chambers, the chemical under test being transported with the water used to renew the test medium.
mürgisuse katse, mille puhul vesi katsekambrites pidevalt vahetub, kusjuures koos vahetusveega viiakse katsekambritesse ka uuritav kemikaal.
Reagents
Reagendid
Solutions of test substances
Testainete lahused
Stock solutions of the required strength are prepared by dissolving the substance in deionised water or water according to 1.6.1.2.
Vajaliku kontsentratsiooniga põhilahused valmistatakse aine lahustamisel deioniseeritud vees või punktile 1.6.1.2 vastavas vees.
The chosen test concentrations are prepared by dilution of the stock solution.
Vajaliku kontsentratsiooniga katselahused valmistatakse põhilahuse lahjendamisel.
If high concentrations are tested, the substance may be dissolved in the dilution water directly.
Kõrgete kontsentratsioonide uurimisel võib aine lahustada otse lahjendusvees.
The substances should normally only be tested up to the limit of solubility.
Aineid kontrollitakse üldjuhul lahustuvuse piirini.
For some substances (e.g. substances having low solubility in water, or high Pow, or those forming stable dispersion rather than true solution in water), it is acceptable to run a test concentration above the solubility limit of the substance to ensure that the maximum soluble/stable concentration has been obtained.
Mõnede ainete puhul (nt vees vähelahustuvate, kõrge POW-ga või vees pigem stabiilse dispersiooni kui tõelise lahuse moodustavate ainete puhul) võib katse teha aine lahustuvuspiirist kõrgemal kontsentratsioonil, et tagada kõrgeima lahustuva/stabiilse kontsentratsiooni saavutamine.
It is important, however, that this concentration will not otherwise disturb the test system (e.g. film of the substance on the water surface preventing the oxygenation of the water, etc.).
Samas on oluline, et see kontsentratsioon ei häiriks katsesüsteemi muul moel (nt nii, et aine kile vee pinnal takistab hapniku lahustumist vees jne).
Ultrasonic dispersion, organic solvents, emulsifiers or dispersants may be used as an aid to prepare stock solutions of substances with low aqueous solubility or to help to disperse these substances in the test medium.
Vees vähelahustuvate ainete põhilahuste valmistamisel või nende dispergeerimisel katsekeskkonnas võib abivahendina kasutada ultrahelidispergeerimist, orgaanilisi lahusteid, emulgaatoreid või dispergaatoreid.
When such auxiliary substances are used, all test concentrations should contain the same amount of auxiliary substance, and additional control fish should be exposed to the same concentration of the auxiliary substance as that used in the test series.
Selliste abiainete kasutamisel peavad kõik katsekontsentratsioonid sisaldama sama koguse abiainet ja täiendavad kontrollkalad tuleks viia kokkupuutesse katseseeriaga võrdväärse abiaine kontsentratsiooniga.
The concentration of such auxiliaries should be minimised, but in no case should exceed 100 mg per litre in the test medium.
Seesuguste abiainete kontsentratsioon katsekeskkonnas peaks olema minimaalne ega tohiks mingil juhul ületada 100 mg/l.
The test should be carried out without adjustment of the pH.
Katse tuleks teha ilma pH-d reguleerimata.
If there is evidence of marked change in the pH, it is advised that the test should be repeated with pH adjustment and the results reported.
Märgatavate pH muutuste ilmnemisel on soovitatav katset reguleeritava pH-ga korrata ja esitada korduskatse tulemused.
In that case, the pH value of the stock solution should be adjusted to the pH value of the dilution water unless there are specific reasons not to do so.
Eriliste vastunäidustuste puudumisel tuleks sellisel juhul põhilahuse pH reguleerida võrdseks lahjendusvee omaga.
Should any chemical reaction or physical precipitation of the test compound be caused by the adjustment, this should be reported.
Ära tuleks märkida pH reguleerimisest tingitud võimalikud keemilised reaktsioonid või sademe teke.
Holding and dilution water
Hoidmisvesi ja lahjendamiseks kasutatav vesi
Orinking-water supply (uncontaminated by potentially harmful concentrations of chlorine, heavy metals or other substances), good-quality natural water or reconstituted water (See Appendix 1) may be used.
Kasutada võib kraanivett (milles ei leidu ohtlikus kontsentratsioonis kloori, raskmetalle ega muid aineid), kvaliteetset looduslikku vett või taastatud vett.
Waters with a total hardness of between 10 and 250 mg per litre (as CaCO3) and with a pH from 6,0 to 8,5 are preferred.
Eelistada tuleks vett üldkaredusega 10–250 mg/l (arvestatud CaCO3-na) ja pH-ga 6,0–8,5.
All apparatus must be made of chemically inert material:
Kõik seadme osad peavad olema valmistatud keemiliselt inertsest materjalist:
automatic dilution system (for flow-through test),
automaatne lahjendussüsteem (läbivooluga katses);
oxygen meter,
hapnikumõõtur;
equipment for determination of hardness of water,
vee kareduse määramise seade;
adequate apparatus for temperature control,
temperatuuri reguleerimiseks vajalikud seadmed;
pH meter.
pH-meeter.
Test fish
Katses kasutatavad kalad
The fish should be in good health and free from any apparent malformation.
Kalad peaksid olema terved ja nähtavate väärarenguteta.
The species used should be selected on the basis of practical criteria, such as their ready availability throughout the year, ease of maintenance, convenience for testing, relative sensitivity to chemicals, and any economic, biological or ecological factors which have any bearing.
Kasutatav liik tuleks valida praktiliste kaalutluste põhjal, näiteks aastaringse kättesaadavuse, vähese hooldusvajaduse ja hõlpsa katses kasutatavuse põhjal, tundlikkuse põhjal kemikaalide suhtes ja mis tahes asjaomaste majanduslike, bioloogiliste või ökoloogiliste tegurite põhjal.
The need for comparability of the data obtained and existing international harmonisation (reference 1) should also be borne in mind when selecting the fish species.
Kalaliigi valikul tuleks silmas pidada andmete võrreldavust ja olemasolevaid rahvusvahelisi kooskõlastusi (viide 1).
A list of fish species which are recommended for the performance of this test is given in Appendix 2; Zebra fish and rainbow trout are the preferred species.
Soovitatavate katses kasutatavate liikide nimekiri on esitatud 2. liites; eelistatavad liigid on sebrakala ja vikerforell.
Holding
Pidamine
Test fish should preferably come from a single stock of similar length and age.
Katses kasutatavad kalad peaksid olema pärit ühest allikast ja olema sarnase pikkuse ja vanusega.
The fish must be held for at least 12 days, in the following conditions:
Kalu tuleb vähemalt 12 päeva pidada järgmistel tingimustel:
loading:
katseaine sisaldus:
appropriate to the system (recirculation or flow-through) and the fish species,
vastavalt süsteemile (tsirkulatsiooni või läbivooluga) ja kalaliigile,
water:
vesi:
light:
valgus:
12 to 16 hours illumination daily,
12–16 tundi päevas,
dissolved oxygen concentration:
lahustunud hapniku kontsentratsioon:
at least 80 % of air-saturation value,
vähemalt 80 % küllastusväärtusest,
feeding:
söötmine:
three times per week or daily, ceasing 24 hours before the start of the test.
kolm korda nädalas või iga päev, söötmine lõpetatakse 24 tundi enne katset.
Following a 48-hour settling-in period, mortalities are recorded and the following criteria applied:
Pärast 48tunnist sisseelamisperioodi märgitakse kalade suremus ja rakendatakse järgmisi kriteeriume:
greater than 10 % of population in seven days:
üle 10 % populatsioonist seitsme päeva jooksul:
rejection of entire batch,
kalad loetakse sobimatuks;
between 5 and 10 % of population:
5–10 % populatsioonist:
holding period continued for seven additional days.
kalu jälgitakse veel seitse päeva.
If no further mortalities occur, the batch is acceptable, otherwise it must be rejected,
Kui suremust rohkem ei esine, on kalad sobivad, vastasel juhul loetakse need sobimatuks;
less than 5 % of population:
alla 5 % populatsioonist:
acceptance of the batch.
kalad loetakse sobivaks.
Adaptation
Adaptatsioon
All fish must be exposed to water of the quality and the temperature to be used in the test for at least seven days before they are used.
Kõiki kalu tuleb enne katset pidada vähemalt seitse päeva katsetingimustele vastavas vees katsetingimustele vastaval temperatuuril.
A range-finding test can precede a definitive test, in order to obtain information about the range of concentrations to be used in the main test.
Lõplikule katsele võib eelneda annusevahemiku leidmise katse, kus kogutakse andmeid katses kasutatava kontsentratsioonivahemiku kohta.
One control without the test substance is run and, if relevant, one control containing the auxiliary substance is also run, in addition to the test series.
Lisaks katseseeriale tehakse üks kontrollkatse ilma testaineta ja vajaduse korral ka üks kontrollkatse abiainet sisaldava lahusega.
Depending on the physical and chemical properties of the test compound, a static, semi-static, or a flow-through test should be selected as appropriate, to fulfil the quality criteria.
Vastavalt katseühendi füüsikalis-keemilistele omadustele valitakse kvaliteedinõuete täitmiseks seisva veega, poolseisva veega või läbivooluga katsesüsteem.
Fish are exposed to the substance as described below:
Kalad viiakse testainega kokkupuutesse allpool kirjeldatud moel: