natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Note: With these syringes better repeatability of the results is obtained.
Märkus. Sellised süstlad parandavad tulemuste korratavust.
IDF 50 [5].
IDF 50[5].
Preparation of test samples
Uuritavate proovide ettevalmistamine
Use for test sample preparation one of the three following methods of milk fat extraction.
Uuritavate proovide ettevalmistamiseks kasutatakse ühte kolmest järgnevalt käsitletud piimarasvade ekstraheerimise meetodist.
Isolation from butter or butteroil
Piimarasvade eraldamine võist või võiõlist
Melt 50 g to 100 g of test sample at 50 °C using a water bath (5.5) or an oven (5.6).
Sulatada 50–100 g uuritavat proovi temperatuuril 50 °C, kasutades selleks vesivanni (5.5) või kuivatuskappi (5.6).
Place 0,5 to 1,0 g of sodium sulfate (4.7) in a folded filter paper (5.12).
Panna 0,5–1,0 g naatriumsulfaati (4.7) kurdfilterpaberile (5.12).
Preheat a 250 ml Erlenmeyer flask (5.10) and a funnel (5.11) with inserted filter paper in the oven (5.6) set at 50 °C.
Eelsoojendada 250milliliitrine Erlenmeyeri kolb (5.10) ja lehter (5.11) koos sissepandud filterpaberiga kuivatuskapis (5.6) temperatuurini 50 °C.
Filter, while maintaining the preheated flask, funnel and inserted filter device in the oven, the fat layer of the molten sample.
Hoides eelsoojendatud kolbi, lehtrit ja sissepandud filterseadet kuivatuskapis, filtrida sulatatud proovi rasvakiht.
Take care that no serum is transferred.
Tuleb jälgida, et filtraati ei satuks seerumit.
Only in cases where a limited amount of test sample is available, a smaller test sample may be used and the procedure should be adapted accordingly.
Ainult siis, kui proovi kogus on piiratud, võib kasutada väiksemat proovikogust, kohandades sellele vastavalt analüüsimeetodit.
However, the handling of a smaller test portion involves a higher risk of obtaining a non-representative sample.
Väiksema proovikoguse kasutamine suurendab mitteesindava proovi saamise ohtu.
Note 1: Butter can be obtained from cream by churning and thorough washing of the resulting butter grain.
Märkus 1. Koorest saab võid vispeldamise ja saadud võiterade põhjaliku läbipesemise abil.
Note 2: The milk fat obtained using the procedure in 7.1.1 will be almost free of phospholipids.
Märkus 2. Punkti 7.1.1 kohaselt saadud piimarasv on peaaegu fosfolipiidivaba.
Extraction according to the Röse–Gottlieb gravimetric method
Ekstraheerimine Röse–Gottliebi gravimeetrilisel meetodil
Note: If phospholipids are present in the milk fat obtained, a cholesterol peak will be obtained which is increased by approximately 0,1 %.
Kui saadud piimarasvas on fosfolipiide, saadakse umbes 0,1 % võrra suurenenud kolesteroolipiik.
The TG composition standardized to 100 % including cholesterol is thereby influenced only to a negligible extent.
See mõjutab koos kolesterooliga 100 protsendile normitud triglütseriidide spektrit vaid tühisel määral.
Extraction from milk using silica gel columns
Piimast eraldamine silikageelkolonnide abil
Add, using a microlitre pipette (5.7), 0,7 ml of test sample tempered to 20 °C to a 1 ml to 3 ml Extrelut column (5.3).
Lisada 1–3 ml Extrelut-kolonnile (5.3) mikropipetiga (5.7) 0,7 ml uuritavat proovi temperatuuril 20 °C.
Allow to distribute uniformly on the silica gel for approximately 5 min.
Lasta sellel silikageelis ligikaudu 5 minuti jooksul ühtlaselt jaotuda.
To denature the protein–lipid complexes, add, using the graduated pipette (5.8), 1,5 ml of methanol (4.3) to the Extrelut column.
Valkude ja lipiidide komplekside denatureerimiseks kanda Extrelut-kolonni gradueeritud pipetiga (5.8) 1,5 ml metanooli (4.3).
Subsequently, extract the fat fraction from the test sample with 20 ml of n-hexane (4.4).
Seejärel ekstraheerida rasvafraktsioon uuritavast proovist 20 ml n-heksaani abil (4.4).
Add the n-hexane slowly in small amounts.
Lisada n-heksaan aeglaselt väikeste portsjonite haaval.
Collect the solvent draining off in a 50 ml round-bottomed flask (5.9) previously dried to a constant, known mass weighed to the nearest 1 mg, recording the mass to 0,1 mg.
Väljavoolav lahusti koguda eelnevalt konstantse, teadaoleva kaaluni kuivatatud 50 ml ümarkolbi (5.9), mis on kaalutud 1 mg täpsusega, märkides massi üles 0,1 mg täpsusega.
Allow the column to drain until empty after the extraction.
Pärast ekstraheerimist lasta kolonn tühjaks nõrguda.
Distil off the solvents from the eluate on a rotary evaporator (5.13) with its water bath set at between 40 °C and 50 °C.
Destilleerida lahustid eluaadist välja pöördkuivati abil (5.13) vesivannis temperatuuriga 40–50 °C.
After the solvents have been distilled off, dry and subsequently weigh the round-bottomed flask and its contents to the nearest 1 mg, recording the mass to 0,1 mg.
Pärast lahustite väljadestilleerimist kuivatada ümarkolb ja kaaluda selle sisu 1 mg täpsusega, märkides näidu üles 0,1 mg täpsusega.
Determine the fat mass yield by subtracting the mass of the dried empty round-bottomed flask from the mass obtained.
Määrata kindlaks rasvamassi saagis, lahutades saadud massist tühja ümarkolvi mass. Märkus.
Note: Fat extractions by the Gerber, Weibull–Berntrop or Schmid–Bondzynski–Ratzlaff methods or isolation of milk fat using detergents (BDI method) are not suitable for TG analysis, because substantial quantities of partial glycerides or phosholipids can pass into the fat phase.
Rasva eraldamine Gerberi, Weibull-Berntropi või Schmid-Bondzynski-Ratzlaffi meetodil või detergentide abil (BDI-meetod) ei sobi triglütseriidide analüüsimiseks, sest nende meetodite kasutamisel võivad rasvafaasi sattuda suuremad kogused mittetäielikult esterdunud glütseriide ja fosfolipiide.
Consequently, the application of this International Standard is limited regarding certain products, particularly cheese.
Järelikult on käesoleva rahvusvahelise standardi kohaldamine teatud toodete, eeskätt juustu suhtes piiratud.
Preparation of sample solution
Proovilahuse valmistamine
For gas chromatography with a packed column, prepare a 5 % (volume fraction) solution of the fat (obtained according to 7.1) in n-hexane (4.4) or n-heptane (4.5).
Gaasikromatograafilise analüüsi läbiviimiseks täidisega kolonnis valmistada ette viiemahuprotsendiline rasvalahus (saadud punkti 7.1 kohaselt) n-heksaanis (4.4) või n-heptaanis (4.5).
Depending on the column dimensions, use a concentration of 1 % (0,53 mm, ID wide-bore) or lower for on-column injection with a capillary column.
Olenevalt kolonni mõõtmetest kasutada 1 % (suurem valendik, siseläbimõõt 0,53 mm) või madalamat kontsentratsiooni, kui kasutatakse kolonnile paigaldatud injektorit koos kapillaarkolonniga.
Based on the column used and the mass of fat obtained in 7.1.3, determine the amount of solvent (4.4 or 4.5) to be added to the test sample material in the flask on the basis of weighing to the nearest 1 mg, and recording the mass to 0,1 mg.
Kasutatava kolonni tüübile ja punktile 7.1.3 vastava rasva massi põhjal määratakse uuritavale proovimaterjalile kolbi lisatava lahusti kogus (4.4 või 4.5), mis kaalutakse 1 mg täpsusega, märkides massi üles 0,1 mg täpsusega.
Completely dissolve the remainder.
Jääk lahustatakse täielikult.
Transfer approximately 1 ml of the sample solution into an ampoule (5.14).
Ligikaudu 1 ml proovilahust suletakse ampulli (5.14).
Chromatographic triglyceride determination
Triglütseriidide kromatograafiline määramine
Baseline drift
Nulljoone triiv
To minimize baseline rising, the column shall be conditioned as specified in 5.2.2 (capillary column) or in Annex A.4 (packed column).
Nulljoone tõusu vältimiseks tuleb kolonn punkti 5.2.2 (kapillaarkolonn) või A.4 lisa (täidisega kolonn) kohaselt tasakaalustada.
Note: Because of the high column temperature, the analysis of TGs is particularly susceptible to a rise of the baseline in the high carbon-number range.
Märkus. Kolonni kõrge temperatuuri tõttu tõuseb triglütseriidi analüüsil nulljoon eriti kiiresti kõrge süsinikuaatomite üldarvuga vahemikus.
Injection technique
Sisestustehnika
To avoid discrimination effects, apply the hot-needle technique for improving the quantification of the high-boiling TG components.
Et ära hoida diskriminatsiooniefekte ja saavutada kõrge keemistemperatuuriga triglütseriidkomponentide lahutamisel paremaid kvantitatiivseid tulemusi, tuleb kasutada kuumsisestuse meetodit.
Heat the needle up prior to injection for about 3 s. Then, rapidly inject the syringe content.
Soojendada nõela seal enne süstimist umbes 3 sek. Siis süstitakse kiiresti süstla sisu.
When using cold on-column injection (7.3.4.2), insert the needle of the syringe and inject immediately.
Kui kasutatakse kolonnile paigaldatud injektorit külmsisestuse (7.3.4.2) meetodil, sisestada süstla nõel ja süstida kohe.
The dwell time of the needle in the injection port should be such that broad tailing of the solvent peak is avoided.
Nõela aurustis olemise aeg peaks olema selline, et see ei mõjuta oluliselt lahustipiiki. Märkus.
Note: The optimum dwell time typically is about 3 s.
Tavaliselt on optimaalne aurustis olemise aeg umbes 3 sekundit.
For the calibration of test samples, perform two to three analyses of standardized milk fat at the beginning of every day.
Uuritavate proovide kalibreerimiseks teha iga päeva alguses kaks kuni kolm standarditud piimarasva analüüsi.
Use the last analysis of the standardized milk fat to determine the response factors, RFsi (mass fraction/area fraction) of the TGs and of cholesterol and apply these to the subsequent test samples (see 9.1):
Standarditud piimarasva viimaseid analüüse kasutada kalibreerimistegurite, triglütseriidide ja kolesterooli Rfsi (massiosa/pindalaosa) määramiseks ning kohaldada neid seejärel uuritavate proovide suhtes (vt 9.1):
is the mass fraction, expressed as a percentage, of each TG or cholesterol in the standardized milk fat;
iga triglütseriidi või kolesterooli massiosa standarditud piimarasvas, väljendatud protsentides;
is the numerical value of the peak area of each TG or cholesterol in the standardized milk fat.
iga triglütseriidi või kolesterooli piigipindala arvväärtus standarditud piimarasvas.
Use either 7.3.3.2 or 7.3.3.3 to obtain a standardized milk fat with a known TG composition.
Teadaoleva triglütseriidide sisaldusega standarditud piimarasva saamisel järgida kas punkti 7.3.3.2 või 7.3.3.3.
Commercial milk fat standard
Kaubanduslikult kättesaadav piimarasvastandard
The best way to determine the response factor of each constituent of the test sample is to use a standardized milk fat with a certified TG composition.
Uuritava proovi iga koostisosa kalibreerimisteguri määramiseks on kõige parem kasutada sertifitseeritud triglütseriidide sisaldusega standarditud piimarasva. Märkus.
Note: A suitable standard is CRM 519 (anhydrous milk fat) obtainable from the Institute for Reference Materials and Measurements (IRMM), Geel, Belgium [3]).
Sobiv etalon on CRM 519 (veevaba piimarasv), mida saab Komisjoni Etalonainete ja Mõõtmiste Instituudist (IRMM) Geelist, Belgiast [3].
Laboratory milk fat standard
Laboratoorne piimarasvastandard
Prepare about 1 g of a mixture of the fat standards (see 4.2, containing at least the saturated TGs, C24, C30, C36, C42, C48 and C54, as well as cholesterol; plus, preferably, C50 and C52) by weighing to the nearest 1 mg, recording the mass to 0,1 mg, to obtain a relative TG composition similar to milk fat.
Suhteliselt piimarasvaga sarnaneva triglütseriidide sisalduse saamiseks valmistada umbes 1 g rasvastandardite segu (vt 4.2, kohustuslik on C24, C30, C36, C42, C48 ja C54 küllastatud triglütseriidide ning kolesterooli kasutamine; soovitav on kasutada ka C50 ja C52), mis kaalutakse 1 mg täpsusega, märkides näidu üles 0,1 mg täpsusega.
Analyse repeatedly a solution of the fat standards mixture in n-hexane (4.4) or n-heptane (4.5) according to 7.3.4.
Rasvastandardite segu lahust n-heksaanis (4.4) või n-heptaanis (4.5) analüüsida korduvalt vastavalt punktile 7.3.4.
In the same sequence, analyse repeatedly averagely composed milk fat.
Samas järjekorras analüüsida korduvalt tavapärase koostisega piimarasva.
Determine the TG response factors from the fat standards mixture.
Määrata rasvastandardite segu põhjal triglütseriidide kalibreerimistegurid.
Intermediate response factors of TGs not present in the mixture can be calculated by mathematical interpolation.
Segus mitteesindatud triglütseriidide vahepealsed kalibreerimistegurid on leitavad matemaatilise interpoleerimise teel.
Apply the response factors obtained to the milk fat, in order to obtain a standardized composition.
Standardkoostise määramiseks kohaldada saadud kalibreerimistegureid piimarasva suhtes.
The standardized milk fat thus obtained has a stock life of several years, if stored under nitrogen at a maximum temperature of –18 °C.
Sel viisil saadud standarditud piimarasv säilib lämmastiku atmosfääris maksimaalselt -18 °C juures mitu aastat.
Chromatographic conditions
Kromatograafiatingimused Märkus.
Note: Use of either packed or capillary columns generally results in a resolution similar to Figure 1.
Joonisel 1 näidatud lahutuse saamiseks kasutada kas täidisega või kapillaarkolonne.
Splitting of the even-numbered TGs is not normally observed and shall be avoided.
Paarisarvuliste triglütseriidide lõhustumist tavaliselt ei esine ning seda tuleb vältida.
Temperature programme: Set the initial oven temperature at 210 °C.
Temperatuurirežiim: reguleerida alguses ahi temperatuurile 210 °C.
Maintain it at that temperature for 1 min. Then increase the temperature at a rate of 6 °C/min to 350 °C.
Hoida sel temperatuuril 1 minut. Siis tõsta temperatuuri 6 °C minutis, kuni saavutatakse temperatuur 350 °C.
Maintain it at that (final) temperature for 5 min.
Hoida nimetatud (lõpp)temperatuuril 5 minutit.
Detector and injector temperatures: Set both at 370 °C.
Detektori ja injektori temperatuur: mõlemad on reguleeritud temperatuurile 370 °C.
Carrier gas: Use nitrogen at a constant flow rate of about 40 ml/min.
Kandegaas: kasutada lämmastikku püsiva voolukiirusega umbes 40 ml/min.
Adjust the exact carrier gas flow in such a manner that C54 is eluted at 341 °C.
Kandegaasi tegelik voolukiirus reguleerida selliselt, et C54 elueerub 341 °C juures.
Duration of analysis: 29,3 min.
Analüüsi kestus: 29,3 min.
Injection volume: Inject 0,5 µl of a 5 % (volume fraction) sample solution.
Sisestatav maht: süstida 0,5 µl viiemahuprotsendilist proovilahust.
If no TG analyses are carried out, maintain the initial oven temperature as given in a), the detector and injector temperatures as in b) and the carrier gas flow rate as in c) at constant level, also overnight and during weekends and holidays.
Kui triglütseriide ei analüüsita, hoida kuivatuskapi algtemperatuur nagu punktis a, detektori ja injektori temperatuur vastavalt punktile b ja kandegaasi voolukiirus vastavalt punktile c püsivana ka öösel, nädalalõppudel ja pühade ajal.
This ensures best performance of the column.
See tagab kolonni parima töö.
Temperature programme: Set the initial oven temperature at 80 °C.
Temperatuuri reguleerimine: reguleerida ahi alguses temperatuurile 80 °C.
Maintain it at that temperature for 0,5 min. Then increase the temperature at a rate of 50 °C/min to 190 °C and subsequently at a rate of 6 °C/min to 350 °C.
Seda temperatuuri hoida 0,5 minutit. Siis tõsta temperatuur kiirusega 50 °C minutis 190 °C juurde ja seejärel kiirusega 6 °C minutis 350 °C juurde.
Detector temperature: Set at 370 °C.
Detektori temperatuur: hoida temperatuuril 370 °C.
Carrier gas: Use nitrogen at a constant flow rate of about 3 ml/min.
Kandegaas: kasutada lämmastikku püsiva voolukiirusega umbes 3 ml/min.
Duration of analysis: 34,4 min.
Analüüsi kestus: 34,4 min.
Injection volume: Inject 0,5 µl of a 1 % (volume fraction) sample solution.
Sisestatav maht: süstida 0,5 µl ühemahuprotsendilist proovilahust.
Maintain these settings during standby to ensure best performance (see 7.3.4.1).
Parima tulemuse saavutamiseks hoida neid seadeid ka siis, kui kolonniga ei töötata (vt 7.3.4.1).
The analytical settings given in 7.3.4.2 are suitable for use with a wide-bore column (0,53 mm ID) as specified in 5.2.2.
Punktis 7.3.4.2 kirjeldatud seadeid saab kasutada siis, kui analüüsimisel kasutatakse punktis 5.2.2 määratletud suurema valendikuga kolonni (siseläbimõõt 0,53 mm).
Different conditions may be applied if another column dimension or phase is used.
Muude kolonni mõõtmete ja faaside puhul võib kasutada teisi analüüsitingimusi.
INTEGRATION, EVALUATION AND CONTROL OF THE ANALYTICAL PERFORMANCE
INTEGREERIMINE, MÄÄRAMINE JA MÄÄRAMISTINGIMUSTE KONTROLLIMINE
Evaluate the chromatogram peaks with an integration system capable of baseline drawing and reintegration.
Kromatogrammi piike hinnatakse integreerimissüsteemiga, millega saab nulljoont tõmmata ja integreerimist korrata.
Figure 1 shows a correctly integrated chromatogram, whereas Figure 2 demonstrates a sporadic error in the baseline ending after C54 that influences the percentages of all TGs.
Joonisel 1 on näidatud nõuetekohaselt integreeritud kromatogramm, joonisel 2 on aga näidatud juhuslik viga nulljoone lõpus pärast C54, mis mõjutab kõikide triglütseriidide protsenti.
Nevertheless, exclude peaks eluting after C54 from the evaluation.
Pärast C54 elueeruvad piigid jäetakse hindamisest igal juhul välja.
Combine TGs with an odd acyl-C number (2n + 1) with the preceding even-numbered TG (2n).
Paarituarvulise atsüül-C arvuga (2n + 1) triglütseriidid liidetakse eelneva paarisarvulise atsüül-C arvuga (2n) triglütseriididega.
Do not take into account the low C56 content.
Väikest C56 sisaldust ei võeta arvesse.
Multiply the area percentages of the remaining TGs including cholesterol by the corresponding response factors of the standardized milk fat (latest calibration) and normalize altogether to 100 % according to 9.1.
Kromatogrammi muude triglütseriidide (sealhulgas kolesterooli) piigipindalade protsendid korrutatakse standarditud piimarasva vastavate kalibreerimisteguritega (viimasest kalibreerimisest) ja kõik koos normitakse 100 %le vastavalt punktile 9.1.
Example of a triglyceride chromatogram of milk fat with baseline set correctly
Näide piimarasva triglütseriidide kromatogrammi kohta, mille nulljoon on tõmmatud õigesti
Example of a triglyceride chromatogram of milk fat with baseline set incorrectly
Näide piimarasva triglütseriidide kromatogrammi kohta, mille nulljoon on tõmmatud valesti
To control measuring conditions, compare with the coefficients of variation, CVs, expressed as percentages, of the various TGs given in Table 1 which are based on 19 consecutive analyses of the same milk fat sample.
Mõõtmistingimuste kontrollimiseks võrrelda variatsioonikordajaid (CV), mida väljendatakse tabelis 1 esitatud eri triglütseriidide protsendina, mis on välja arvutatud sama piimarasvaproovi 19 järjestikuse analüüsi põhjal.
If the CVs are considerably higher than the values given in Table 1, the chromatographic conditions are not appropriate.
Kui variatsioonikordajad on tabelis 1 esitatud väärtustest oluliselt suuremad, ei ole kromatograafilised tingimused sobivad. Märkus.
Note: The values given in Table 1 are not mandatory, but are indicative for quality control purposes.
Tabelis 1 esitatud väärtused ei ole kohustuslikud, kuid on kvaliteedikontrolli otstarbel soovitatavad.
In case, however, that higher CV-values are accepted, the repeatability and reproducibility limits given in Clause 10 shall nonetheless be complied with.
Juhul kui suuremad variatsioonikordaja väärtused on vastuvõetavad, tuleb siiski järgida punktis 10 esitatud korratavuse ja reprodutseeritavuse piirnorme.
Coefficients of variation of triglyceride contents (19 consecutive analyses)
Triglütseriidide sisalduse variatsioonikordajad (19 järjestikust analüüsi)
Triglyceride
Triglütseriid
Triglyceride composition
Triglütseriidide sisaldus
Calculate the mass fraction of each TG (for i = C24, C26, C28, C30, C32, C34, C36, C38, C40, C42, C44, C46, C48, C50, C52, and C54) plus cholesterol, wi, expressed as a percentage, of the total TG content of the test sample by using the following equation:
Arvutada iga triglütseriidi (kus i = C24, C26, C28, C30, C32, C34, C36, C38, C40, C42, C44, C46, C48, C50, C52 ja C54) ning kolesterooli massiosa wi protsentides uuritava proovi triglütseriidide kogusisaldusest, kasutades järgmist võrrandit:
is the numerical value of the peak area of each TG in the test sample;
iga triglütseriidi piigipindala arvväärtus uuritavas proovis;
is the response factor of each TG determined by calibration (7.3.3).
iga triglütseriidi kalibreerimisel määratud kalibreerimistegur (7.3.3).
Expression of test results
Katsetulemuste esitamine
Express the results to two decimal places.
Tulemus esitada kahe kümnendkoha täpsusega.
S-values
S-väärtused
Calculate the S-values, expressed as a percentage, by inserting the calculated wi (9.1.1) of the appropriate TG percentages into Equations (3) to (7).
Arvutada S-väärtused protsentides, sisestades asjakohase triglütseriidi protsendi põhjal välja arvutatud wi (9.1.1) valemitesse 3–7.
Use all equations irrespective of the kind of foreign fat suspected.
Kasutada kõiki valemeid olenemata arvatava võõra rasva liigist.
Soy bean, sunflower, olive, rapeseed, linseed, wheat germ, maize germ, cotton seed and fish oil.
Valem soja-, päevalille-, oliivi-, rapsiseemne-, linaseemne-, nisuidu-, maisiidu- ja puuvillaseemneõli ning kalarasva kindlakstegemiseks.
Coconut and palm kernel fat.
Valem kookosrasva ja palmisäsiõli kindlakstegemiseks.
Palm oil and beef tallow.
Valem palmiõli ja loomarasva kindlakstegemiseks.
Lard.
Valem searasva kindlakstegemiseks.
Total.
Universaalvalem.
Detection of foreign fat
Võõraste rasvade tuvastamine
Compare the five S-values obtained in 9.2.1 with the corresponding S-limits given in Table 2.
Võrrelda punkti 9.1.2 kohaselt saadud S-väärtusi tabeli 2 vastavate S-piirnormidega.
Consider the test sample as a pure milk fat, when all five S-values fall inside the limits mentioned in Table 2.
Kui kõik viis S-väärtust jäävad tabelis 2 esitatud piirnormide piiridesse, võib uuritavat proovi pidada puhtaks piimarasvaks.
However, if any S-value falls outside the corresponding limits, the sample is considered to contain a foreign fat.
Kui mõni S-väärtus jääb piirnormidest väljapoole, loetakse proov võõraid rasvu sisaldavaks.
Though individual Equations (3) to (6) are more sensitive for certain foreign fats than total Equation (7) (see Table B.1), a positive result obtained with only one of Equations (3) to (6) does not allow conclusions to be drawn on the kind of foreign fat.
Kuigi üksikvalemid 3–6 on teatavate võõraste rasvade suhtes tundlikumad kui universaalvalem 7 (vt tabel B.1), ei saa valemite 3–6 ühe positiivse tulemuse põhjal teha järeldusi lisatud võõra rasva liigi suhtes.
Annex B describes a procedure for the calculation of the content of vegetable or animal fat in the adulterated milk fat.
B lisas on kirjeldatud taimse või loomse rasva sisalduse arvutamist võltsitud piimarasvas.
This procedure is not validated and is informative only.
See meetod ei ole valideeritud ja on üksnes informatiivne.
S-limits for pure milk fats
Puhaste piimarasvade S-piirnormid
Foreign fat
Võõras rasv
Equation
Valem
S-limits [4]
S-piirnormid [4]
Soy bean, sunflower, olive, rapeseed, linseed, wheat germ, maize germ, cotton seed, fish oil
Soja-, päevalille-, oliivi-, rapsiseemne-, linaseemne-, nisuidu-, maisiidu- ja puuvillaseemneõli ning kalarasv
Coconut and palm kernel fat
Kookosrasv ja palmisäsiõli
Palm oil and beef tallow
Palmiõli ja veiserasv
Lard
Searasv
Total
Universaalvalem
Interlaboratory test
Laboritevaheline katse
The repeatability and reproducibility values were determined on the basis of Equations (3) to (7) using pure milk fat and may not be applicable to matrices other than those given.
Korratavuse ja reprodutseeritavuse väärtuste määramiseks valemite 3–7 põhjal kasutatakse puhast piimarasva ja need ei pruugi olla kohaldatavad muude põhiainete puhul.