natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For sodium hydroxide absorbers, calculate the amount of carbon dioxide prodllced, expressed as IC (mg), by multiplying the concentration of IC in the absorbent by the volume of the absorbent.
Naatriumhüdroksiidiga absorbeerimisel arvutatakse tekkinud süsinikdioksiidi kogus, väljendatuna anorgaanilise süsinikuna (IC) milligrammides, korrutades IC kontsentratsiooni absorbendis absorbendi mahuga.
Calculate the percentage degradation from:
Lagunemisprotsent arvutatakse järgmise valemi järgi:
=mg IC flask - mg IC blank
=IC katsekolvi (mg)-IC nullproovi(mg)
MG TOC added as test chemical
Katseainen a lisatud TOC(mg)
Calculate DOC removals (optional) as described under I.7.
DOC kõrvaldamise võib arvutada vastavalt punktile I.7.
Record these and all other results on the data sheets provided.
Need ja kõik ülejäänud tulemused registreeritakse etteantud andmetabelis.
The IC content of the test chemical suspension in the mineral medium at the beginning of the test must be less than 5 % of the TC, and the total CO2 evolution in the inoculum blank at the end of the test should not normally exceed 40 mg/1 medium.
Katseaine – mineraalse toitelahuse suspensiooni anorgaanilise süsiniku sisaldus katse algul peab olema vähem kui 5 % süsiniku üldsisaldusest (TC) ja eraldunud CO2 summaarne kogus inokulaadiga nullproovi puhul ei tohiks katse lõpul üldjuhul ületada 40 mg/l lahuse kohta.
If values greater than 70 mg CO2/litre are obtained, the data and experimental technique should be examined critically.
Kui saadavad väärtused on suuremad kui 70 mg CO2/l, tuleks andmed ja katsetehnika kriitiliselt üle vaadata.
See also I.5.2.
Vt ka punkti I.5.2.
CARBON DIOXIDE EVOLUTION TEST
SÜSINIKDIOKSIIDI ERALDUMISE KATSE
Initial conc. in medium: … mg/litre as chemical
Algkonts. toitelahuses: ... (kemikaali sisaldus, mg/l)
Total C added to flask: … mg C
Kolbi lisatud süsiniku koguhulk: ...mg C
ThCO2: mg CO2
ThCO2:...mg CO2
Pre-conditioning if any:
Kohandamine, kui seda tehti:
Concentration of suspended solids in reaction mixture: mg/litre
SÜSINIKDIOKSIIDI ERALDUMINE JA LAGUNDUVUS Meetod: Ba(OH)2/NaOH/muu
cumulative CO2
kumulatiiv ne CO2
mean
keskmine
Note: similar formats may be used for the reference chemical and toxicity controls.
Märkus.: Võrdlusaine ja mürgisuse kontrollproovide jaoks võib kasutada analoogseid tabeleid.
CARBON ANALYSIS (optional)
SÜSINIKU ANALÜÜS (pole kohustuslik)
Time (day)
Aeg (päevades)
Blank mg/l
Nullproov (mg/l)
Test chemical mg/l
Testaine (mg/l)
% DOC removed = 1 - Ct
DOC Kõrvaldamisprotsent = 1 - Ct
ABIOTIC DEGRADATION (optional)
ABIOOTILISE LAGUNEMISE KATSE (pole kohustuslik)
% abiotic degradation = CO2
abiootilise lagunemise % = CO2 -CO2
A measured volume of inoculated mineral medium, containing a known concentration of test chemical (100 mg/litre of the test substance, to give at least 50-100 mg ThOD/litre) as the nominal sole source of organic carbon, is stirred in a closed flask at a constant temperature (± 1o C or closer) for up to 28 days.
Kindlat kogust inokuleeritud mineraalset toitelahust kindla testaine kontsentratsiooniga (100 mg/l testainet, ThOD-ga vähemalt 50–100 mg/l), mis on ainus nominaalne orgaanilise süsiniku allikas, segatakse kuni 28 päeva kinnises kolvis konstantsel temperatuuril (kõikumisega ± 1 oC või alla selle).
The consumption of oxygen is determined either by measuring the quantity of oxygen (produced electrolytically) required to maintain constant gas volume in the respirometer flask, or from the change in volume or pressure (or a combination of the two) in the apparatus.
Hapniku tarbimine määratakse kas konstantse gaasiruumala hoidmiseks vajaliku (elektrolüüsil saadud) hapniku koguse mõõtmisel või ruumala või rõhu (või mõlema) muutuse järgi seadmes.
Evolved carbon dioxide is absorbed in a solution of potassium hydroxide or another suitable absorbent.
Tekkiv süsinikdioksiid absorbeeritakse kaaliumhüdroksiidi või muu sobiva absorbendi lahuses.
The amount of oxygen taken up by the test chemical (corrected for uptake by blank inoculum, run in parallel) is expressed as a percentage of ThOD or COD.
Testaine hapnikutarve (mida on parandatud paralleelse inokulaadiga nullproovi vastava väärtuse võrra) väljendatakse protsendina ThOD-st või KHT-st.
Optionally, primary biodegradation may also be calculated from supplemental specific analysis made at the beginning and end of incubation, and ultimate biodegradation by DOC analysis.
Lisaks võib inkubeerimise algul ja lõpul tehtud täiendava keemilise analüüsi põhjal arvutada ka esmase biolagundumise määra ja DOC analüüsi põhjal lõpliku biolagundumise määra.
suitable respirometer;
sobiv respiromeeter;
temperature control, maintaining ± 1 oC or better;
termostaat täpsusega ± 1 oC või täpsem;
membrane-filtration assembly (optional);
Membraanfiltratsiooni seade (pole kohustuslik).
carbon analyser (optional).
Süsinikuanalüsaator (pole kohustuslik).
Mix 10 ml of solution (a) with 800 ml dilution water, add 1 ml of solutions (b) to (d) and make up to 1 litre with dilution water.
10 ml lahust a segatakse 800 ml lahjendusveega, lisatakse 1 ml lahuseid b kuni d ja täiendatakse veega 1 liitrini.
The inoculum may be derived from a variety of sources: activated sludge; sewage effluents; surface waters and soils or from a mixture of these.
Inokulaadi saamisel võib kasutada mitmeid lähtematerjale: aktiivmuda, reovett, pinnavett ja mulda või nende segu.
Prepare solutions of the test and reference chemicals, in separate batches, in mineral medium equivalent to a concentration, normally, of 100 mg chemical/litre (giving at least 50-100 mg ThOD/litre), using stock solutions.
Põhilahustest valmistatakse eraldi test- ja võrdlusainete lahused mineraalses toitelahuses, üldjuhul kontsentratsiooniga 100 mg kemikaali/liitris (ThOD-ga vähemalt 50–100 mg/l).
Calculate the ThOD on the basis of formation of ammonium salts unless nitrification is anticipated, when the calculation should be based on nitrate formation (see Appendix 2.2)
ThOD arvutatakse ammooniumisoolade moodustumise põhjal, välja arvatud juhul, kui eeldatakse nitrifikatsiooni toimumist, sel juhul eeldatakse arvutustes nitraadi moodustumist (vt II liidet punkti 2).
Determine the pH values and if necessary adjust to 7,4±0,2.
Kontrollitakse pH väärtusi ja viiakse need vajaduse korral 7,4±0,2ni.
Poorly soluble substances should be added at a later stage (see below).
Vähelahustuvad ained tuleks lisada hilisemas faasis (vt allpool).
If the toxicity of the test chemical is to be determined, prepare a further solution in mineral medium containing both test and reference chemicals at the same concentrations as in the individual solutions.
Testaine mürgisuse kontrollimisel valmistatakse ette veel üks lahus, mis sisaldab üksikute lahustega võrdses kontsentratsioonis nii test- kui ka võrdlusainet.
If measurement of the physico-chemical uptake of oxygen is required, prepare a solution of the test chemical at, normally, 100 mg ThOD/litre which has been sterilised by the addition of a suitable toxic substance (see I.6.6).
Kui on vaja määrata füüsikalis-keemiline hapnikutarve, valmistatakse testaine lahus ThOD-ga üldjuhul 100 mg/l, mis steriliseeritakse sobiva mürkaine lisamisega (vt I.6.6).
Introduce the requisite volume of solutions of test and reference chemicals, respectively, into at least duplicate flasks.
Vähemalt kahtedesse paralleelkolbidesse lisatakse vajalikud kogused test- ja võrdlusainete lahuseid.
Add to further flasks mineral medium only (for inoculum controls) and, if required, the mixed test/reference chemical solution and the sterile solution.
Täiendavad kolvid valmistatakse ette ainult mineraalse toitelahusega (inokulaadi kontrollproovid) ning vajaduse korral test- ja võrdlusaine seguga ja steriilse lahusega.
If the test chemical is poorly soluble, add it directly at this stage on a weight or volume basis or handle it as described in Appendix 3.
Vähelahustuvad testained lisatakse selles faasis massi või mahu järgi otse kolbi või neid käsitsetakse 3. liites kirjeldatud moel.
Add potassium hydroxide, soda lime pellets or other absorbent to the CO2-absorber compartments.
CO2-püüduri kambritesse lisatakse kaaliumhüdroksiidi, naatronlubja graanuleid või muud absorbenti.
preferably, and when necessary:
Eelistatavalt ja vajaduse korral:
Flask 6: sterile control
kolb 6: steriilne kontrollproov,
Flask 7: toxicity control
kolb 7: mürgisuse kontrollproov.
Allow the vessels to reach the desired temperature and inoculate appropriate vessels with prepared activated sludge or other source of inoculum to give a concentration of suspended solids not greater than 30 mg/litre.
Kolbidel lastakse jõuda soovitud temperatuurini ning asjaomased kolvid inokuleeritakse ettevalmistatud aktiivmuda või muud päritolu inokulaadiga lõpliku hõljumi kontsentratsiooniga kuni 30 mg/l.
Assemble the equipment, start the stirrer and check for air-tightness, and start the measurement of oxygen uptake.
Katseaparatuur pannakse kokku, käivitatakse segaja ning kontrollitakse seadme hermeetilisust ja alustatakse hapnikutarbe mõõtmist.
Usually no further attention is required other than taking the necessary readings and making daily checks to see that the correct temperature and adequate stirring are maintained.
Üldjuhul ei ole vaja katseaparatuuri rohkem jälgida, välja arvatud vajalike tulemuste registreerimine ja igapäevase temperatuuri- ja segamisrežiimi kontrollimine.
Calculate the oxygen uptake from the readings taken at regular and frequent intervals, using the methods given by the manufacturer of the equipment.
Hapnikutarve arvutatakse regulaarselt ja sageli loetavate näitude põhjal, seadme tootja ette nähtud meetodite abil.
At the end of incubation, normally 28 days, measure the pH of the contents of the flasks, especially if oxygen uptakes are low or greater than ThODNH4 (for nitrogen-containing compounds).
Inkubatsiooniperioodi lõpus, tavaliselt 28 päeva pärast, mõõdetakse kolbide pH, eriti kui hapnikutarve on madal või kõrgem kui ThODNH4 (lämmastikku sisaldavate ühendite puhul).
If required, withdraw samples from the respirometer flasks, initially and finally, for analysis of DOC or specific chemical (see Appendix 2.4).
Vajaduse korral võetakse respiromeetri kolbidest katse alguses ja lõpus proove DOC analüüsiks või spetsiifilise aine analüüsiks (vt II.4 liidet).
At the initial withdrawal, ensure that the volume of test suspension remaining in the flask is known.
Pärast proovi võtmist katse alguses peab teada olema kolbi jääva katsesuspensiooni maht.
'When oxygen is taken up by N-containing test substance, determine the increase in concentration of nitrite and nitrate over 28 days and calculate the correction for the oxygen consumed by nitrification (Appendix 5).
Kui hapniku tarbimine on tingitud lämmastikku sisaldavast testainest, mõõdetakse nitriti ja nitraadi kontsentratsiooni tõus 28 päeva jooksul ja arvutatakse välja nitrifikatsiooni hapnikutarvet arvestav parandus (V liide).
Divide the oxygen uptake (mg) of the test chemical after a given time (corrected for that by the blank inoculum control after the same time) by the weight of the test chemical used.
Testaine hapnikutarve (mg) kindlaksmääratud aja möödumisel (millest on lahutatud inokulaadiga nullproovi vastav näitaja sama aja kohta) jagatakse kasutatud testaine massiga.
mg test chemical in flask
Testaine kogus kolvis (mg)
= mg O2 per mg test chemical
= hapnikutarve (mg)/testaine (mg).
calculate the percentage biodegradation either from:
Biolagundumise protsent arvutatakse kas valemist:
% biodegradation = % ThOD =BODmg O2
biolagundumise protsent = % ThOD=BHTO2
/mg chemical
(mg)/testain e (mg)
chemical
(mg)/testain e (mg)
or form
või valemist
CODmg O2
KHTO2
It should be noted that these two methods do not necessarily give the same value; it is preferable to use the former method.
Tuleb märkida, et kui need kaks meetodit ei anna alati samasugust tulemust, on eelistatav kasutada esimest meetodit.
For test substances containing nitrogen, use the appropriate ThOD (NH4 or NO3) according to what is known or expected about the occurrence of nitrification (Appendix 2.2).
Lämmastikku sisaldavate testainete puhul tuleb kasutada asjakohast ThOD-d (NH4 või NO3) vastavalt nitrifikatsiooni teadaolevale või eeldatavale toimumisele (II liite punkt 2).
If nitrification occurs but is not complete, calculate a correction for the oxygen consumed by nitrification from the changes in concentration of nitrite and nitrate (Appendix 5).
Kui nitrifikatsioon toimub, kuid ei ole täielik, arvutatakse nitrifikatsiooni hapnikutarvet arvestav parandus välja nitriti ja nitraadi kontsentratsiooni muutustest (V liide).
When optional determinations of organic carbon and/or specific chemical are made, calculate the percentage degradation, as described under I.7.
Valikulistel orgaanilise süsiniku ja/või spetsiifilise aine määramistel arvutatakse lagunemisprotsent punktis I.7 kirjeldatud moel.
Record all results on the data sheets attached.
Kõik tulemused registreeritakse etteantud andmetabelis.
The oxygen uptake of the inoculum blank is normally 20-30 mg O2/litre and should not be greater than 60 mg/litre in 28 days.
Inokulaadiga nullproovi hapnikutarve 28 päeva jooksul on üldjuhul 20–30 mg O2/l ega tohiks ületada 60 mg/l.
Values higher than 60 mg/litre require critical examination of the data and experimental techniques.
Kui saadavad väärtused on suuremad kui 60 mg/l, tuleks andmed ja katsetehnika kriitiliselt üle vaadata.
If the pH value is outside the range 6-8,5 and the oxygen consumption by the test chemical is less than 60% , the test should be repeated with a lower concentration of test chemical.
Kui pH jääb väljapoole vahemikku 6–8,5 ja testaine hapnikutarve on alla 60 %, tuleks katset testaine madalama kontsentratsiooniga korrata.
MANOMETRIC RESPIROMETRY TEST
MANOMEETRILISE RESPIROMEETRIA KATSE
Stock solution concentration: … mg/litre
Põhilahuse kontsentratsioon: ... mg/l
Initial concentration in medium, Co: … mg/litre
Algkontsentratsioon toitelahuses, CO: ... mg/l
Volume in test flask (V): … ml
Lahuse maht katsekolvis (V): ... ml
ThOD or COD: … mg O2/mg test substance (NH4 or NO3)
ThOD või KHT: ... O2 (mg)/testaine (mg) (NH4 või NO3)
Concentration of suspended solids in reaction mixture: … mg/1
Hõljumi kontsentratsioon segus: ... mg/l
OXYGEN UPTAKE: BIODEGRADABILITY
HAPNIKUTARVE: BIOLAGUNDUVUS
V = volume of medium in test flask
V = lahuse maht katsekolvis
Time (Days)
Aeg (päevades)
upt. (mg) test chemical
Hapnikutarve (mg), testaine
upt. (mg) blank
Hapnikutarve (mg), nullproov
b, mean
b, keskmine
Corrected BOD (mg)
Parandatud hapnikutarve (mg)
BOD per mg test chemical
BHT mg testaine kohta
% degradation
Lagunemisprotsent
Mean [5]
Keskmine [5]
N.B.: Similar formats may be used for the reference chemical and the toxicity controls.
NB: Võrdlusaine ja mürgisuse kontrollproovide jaoks võib kasutada analoogseid tabeleid.
CORRECTION FOR NITRIFICATION (see Annex V)
NITRIFIKATSIOONI ARVESTAV PARANDUS (vt V liidet)
Concentration of nitrate (mg N/litre)
Nitraadi kontsentratsioon (mg N/liitris)
Oxygen equivalent (4,57 × N × V) (mg)
Hapnikuekvivalent (4,57 × N × V) (mg)
Concentration of nitrite (mg N/litre)
Nitriti kontsentratsioon (mg N/liitris)
Oxygen equivalent (3,43 × N × V) (mg)
Hapnikuekvivalent (3,43 × N × V) (mg)
(ii + iv) Total oxygen equivalent
ii + iv) Summaarne hapnikuekvivalent
Blank mg/litre
Nullproov (mg/l)
Test chemical mg/litre
Testaine mg/l
% DOC removed =1-Ct
% DOC kõrvaldamisprotsent =1-Ct
SPECIFIC CHEMICAL (optional)
SPETSIIFILINE AINE (pole kohustuslik)
concentration in physico-chemical (sterile) control at 28 days
kontsentratsioon füüsikalis-keemilises (steriilses) kontrollproovis 28 päeva möödumisel.
concentration in inoculated flask at 28 days,
kontsentratsioon inokuleeritud kolvis 28 päeva möödumisel.
% biodegradation = Sb
% biolagundumise protesent = Sb
a oxygen consumption in sterile flasks after 28 days, (mg)
a hapnikutarve steriilsetes kolbides 28 päeva möödumisel (mg)
oxygen consumption per mg test chemical = a×100
hapnikutarve testaine mg kohta = a
(see Sections 1 and 3)
(vt jaotiseid 1 ja 3)
% abiotic degradation = a×100
abiootilise lagunemise protsent = a×100
The solution of the test chemical in mineral medium, usually at 2-5 mg/litre, is inoculated with a relatively small number of micro-organisms from a mixed population and kept in completely full, closed bottles in the dark at constant temperature.
Testaine lahus mineraalses toitelahuses, üldjuhul kontsentratsiooniga 2–5 mg/l, inokuleeritakse suhteliselt väikese arvu segapopulatsiooni mikroorganismidega ja seda hoitakse täiesti täis suletud pudelites konstantsel temperatuuril.
Degradation is followed by analysis of dissolved oxygen over a 28-day period.
Lagunemisprotsessi jälgitakse 28 päeva jooksul lahustunud hapniku analüüsimisega.
The amount of oxygen taken up by the test chemical, corrected for uptake by the blank inoculum run in parallel, is expressed as a percentage of ThOD or COD.
Testaine hapnikutarve (mida on parandatud paralleelse inokulaadiga nullproovi vastava väärtuse võrra) väljendatakse protsendina ThOD-st või KHT-st.
BOD bottles, with glass stoppers, e.g. 250-300 ml;
Klaaskorkidega BHT pudelid mahuga näiteks 250–300 ml.
water bath or incubator, for keeping bottles at constant temperature (± 1 oC or better) with the exclusion of light;
Vesivann või inkubaator pudelite termostateerimiseks konstantsel temperatuuril (± 1 oC või täpsem) pimedas.
large glass bottles (2-5 litres) for the preparation of media and for filling the BOD bottles;
Suured klaaspudelid (2–5 l) lahuste valmistamiseks ja BHT pudelite täitmiseks.
oxygen electrode and meter, or equipment and reagents for Winkler titration.
Hapnikuelektrood ja -mõõtur või seadmed ja reaktiivid Winkleri tiitrimiseks.
Mix 1 (one) ml of solution (a) to (d) and make up to 1 litre with dilution water.
1 (üks) ml lahuseid a kuni d segatakse kokku ja täiendatakse lahjendusveega 1 liitrini.
Preparation of the inoculum
Inokulaadi valmistamine
The inoculum is normally derived from the secondary effluent of a treatment plant or laboratory-scale unit receiving predominantly domestic sewage.
Inokulaat valmistatakse üldjuhul valdavalt olmereovett töötlevast puhastusjaamast või laborimõõdus seadmest väljuvast töödeldud reoveest.
An alternative source for the inoculum is surface water.
Veel üks võimalik inokulaadi allikas on pinnavesi.
Normally use from one drop (0,05 ml) to 5 ml of filtrate per litre of medium; trials may be needed to discover the optimum volume for a given effluent (See I.6.4.2 and I.6.5).
Üldjuhul lisatakse liitri lahuse kohta üks tilk (0,05 ml) kuni 5 ml filtraati; antud reoveele vastava optimaalse koguse määramiseks võib vaja olla eelkatseid (vt I.6.4.2 ja I.6.5).
Strongly aerate mineral medium for at least 20 min. Carry out each test series with mineral medium derived from the same batch.
Mineraalset toitelahust aereeritakse tugevalt vähemalt 20 minutit. Igas katseseerias tuleb kasutada ainult samast partiist pärinevat mineraalset toitelahust. Üldjuhul on lahus kasutusvalmis pärast 20tunnist katsetemperatuuril seismist.
Conduct all transfer and filling operations of the air-saturated medium bubble-free, for example, by the use of siphons.
Kõik ülekande- ja täitmisoperatsioonid õhuga küllastatud toitelahusega tuleb teha mullivabalt, näiteks sifooni abil.
Prepare parallel groups of BOD bottles for the determination of the test and reference chemicals in simultaneous experimental series.
Test- ja võrdlusainete uurimiseks üheaegsetes katseseeriates valmistatakse ette paralleelsed BHT pudelite rühmad.
Assemble a sufficient number of BOD bottles, including inoculum blanks, to allow at least duplicate measurements of oxygen consumption to be made at the desired test intervals, for example, after 0, 7, 14, 21 and 28 days.
Katses kasutatakse küllaldast arvu BHT pudeleid, sealhulgas inokulaadiga nullproove, nii et soovitatavate ajavahemike, näiteks 0, 7, 14, 21 ja 28 päeva järel, saab hapnikutarvet mõõta vähemalt kahes paralleelis.
To ensure being able to identify the 10-day window, more bottles may be required.
Kümnepäevase akna määramiseks võib vaja olla täiendavaid pudeleid.
Add fully aerated mineral medium to large bottles so that they are about one-third full.
Suured pudelid täidetakse põhjalikult aereeritud mineraalse toitelahusega umbes ühe kolmandiku ulatuses.
Then add sufficient of the stock solutions of the test chemical and reference chemical to separate large bottles so that the final concentration of the chemicals is normally not greater than 10 mg/litre.
Seejärel lisatakse eraldi suurtesse pudelitesse küllaldased kogused test- ja võrdlusainete põhilahuseid nii, et kemikaalide lõplik kontsentratsioon ei ületa üldjuhul 10 mg/l.
Add no chemicals to the blank control medium contained in a further large bottle.
Täiendavas suures pudelis olevale kemikaalivabale kontrolltoitelahusele kemikaale ei lisata.
In order to ensure that the inoculum activity is not limited, the concentration of dissolved oxygen must not fall below 0,5 mg/litre in the BOD bottles.
Et mitte piirata inokulaadi aktiivsust, ei tohi lahustunud hapniku kontsentratsioon BHT pudelites langeda alla 0,5 mg/l.
This limits the concentration of test chemical to about 2 mg/litre.
Seega on testaine kontsentratsioon piiratud umbes 2 mg/l.
Normally, calculate the ThOD on the basis of formation of ammonium salts but, if nitrification is expected or known to occur, calculate on the basis of the formation of nitrate (ThODNO3: see Appendix 2.2).
ThOD arvutatakse üldjuhul ammooniumisoolade moodustumise põhjal, kuid kui eeldatakse nitrifikatsiooni toimumist või selle toimumine on teada, arvutatakse see nitraadi moodustumise põhjal (ThODNO3: vt II liite punkti 2).
However, if nitrification is not complete but does occur, correct for the changes in concentration of nitrite and nitrate, determined by analysis, (see Appendix 5).
Kui nitrifikatsioon toimub, kuid ei ole täielik, parandatakse tulemust, arvestades analüütiliselt leitud nitriti ja nitraadi kontsentratsiooni muutusi (vt V liidet).
If the toxicity of the test chemical is to be investigated (in the case, for example, of a previous low biodegradability value having been found), another series of bottles is necessary.
Testaine mürgisuse uurimisel (näiteks madala biolagunduvuse tulemuse puhul) on vaja veel üht pudeliseeriat.
Prepare another large bottle to contain aerated mineral medium (to about one-third of its volume) plus test chemical and reference chemical at final concentrations normally the same as those in the other large bottles.
Valmistatakse ette veel üks suur pudel, mis sisaldab aereeritud mineraalset toitelahust (umbes 1/3 pudeli mahust) ja ülejäänud suurte pudelitega võrdses kontsentratsioonis nii test- kui ka võrdlusainet.
Inoculate the solutions in the large bottles with secondary effluent (one drop or about 0,05 ml, to 5 ml/litre) or with another source such as river water (see I.6.4.2.).
Lahused suurtes pudelites inokuleeritakse töödeldud reoveega (1 tilk ehk umbes 0,05 ml kuni 5 ml/l) või muu inokulaadi, nagu jõeveega (vt I.6.4.2).
Finally, make up the solutions to volume with aerated mineral medium using a hose which reaches down to the bottom of the bottle to achieve adequate mixing.
Seejärel täiendatakse lahused aereeritud mineraalse toitelahusega vajaliku mahuni, kasutades piisava segunemise saavutamiseks pudeli põhjani ulatuvat voolikut.
In a typical run the following bottles are used:
Tüüpilises katses kasutatakse järgmisi pudeleid:
at least 10 containing test chemical and inoculum (test suspension),
vähemalt 10 pudelit testaine ja inokulaadiga (katsesuspensioon);
at least 10 containing only inoculum (inoculum blank),
vähemalt 10 pudelit ainult inokulaadiga (inokulaadiga nullproov);
at least 10 containing reference chemical and inoculum (procedure control),
vähemalt 10 pudelit võrdlusaine ja inokulaadiga (protseduuri kontrollproov),
and, when necessary, six bottles containing test chemical, reference chemical and inoculum (toxicity control).
ning vajaduse korral 6 pudelit nii testaine, võrdlusaine kui ka inokulaadiga (mürgisuse kontrollproov).
However, to ensure being able to identify the 10-day window, about twice as many bottles would be necessary.
Kümnepäevase akna määramiseks võib aga vaja olla umbes kahekordset arvu pudeleid.