natgillin/translations-raw huggingface dataset:
PS and PE content in the test sample shall be calculated as follows: C = 55,36 × ((A2)/(A1)) × ((T1)/(T2))
PS ja PE sisaldus uuritavas proovis arvutatakse järgmiselt: C = 55,36 × ((A2)/(A1)) × ((T1)/(T2)),
C PS or PE content (mg/100 g powder) in the test sample
C PS või PE sisaldus uuritavas proovis (mg/100 g pulbri kohta);
PEDP peak area of the standard sample solution (7.3)
standardproovi lahuse (7.3) PEDP piigi pindala;
PS or PE peak area of the test sample solution (7.2)
uuritava proovi lahuse (7.2) PS või PE piigi pindala;
Tryptamine peak area of the standard sample solution (7.3)
standardproovi lahuse (7.3) trüptamiini piigi pindala;
Tryptamine peak area of the test sample solution (7.2).
uuritava proovi lahuse (7.2) trüptamiini piigi pindala.
Note: The values for repeatability were calculated according to the IDF International Standard [1].
Korratavuse väärtused on arvutatud IDFi rahvusvahelise standardi kohaselt [1].
The provisional reproducibility limit was calculated according to the procedure defined in Annex III(b) hereto.
Korratavuse esialgne piir on arvutatud käesoleva määruse III lisa punktis b määratletud meetodi kohaselt.
The relative standard derivation of the repeatability, which expresses the variability of independent analytical results obtained by the same operator using the same apparatus under the same conditions on the same test sample and in a short interval of time, should not exceed 2 % relative.
Korratavuse suhteline standardhälve, mis väljendab sõltumatute analüüsitulemuste varieeruvust ning mis on lühikese aja jooksul saadud ühe ja sama analüüsija poolt samades tingimustes sama seadme ja prooviga, ei tohi ületada 2 %.
If two determinations are obtained under these conditions, the relative difference between the two results should not be greater than 6 % of the arithmetic mean of the results.
Kui nendes tingimustes on saadud kaks tulemust, ei tohi kahe tulemuse suhteline erinevus olla suurem kui 6 % tulemuste aritmeetilisest keskmisest.
If two determinations are obtained by operators in different laboratories using different apparatus under different conditions for the analysis on the same test sample, the relative difference between the two results should not be greater than 11 % of the arithmetic mean of the results.
Kui eri laborite analüüsijad on ühe ja sama proovi analüüsimisel saanud kaks erinevat tulemust, kasutades eri seadmeid eri tingimustes, ei tohi kahe tulemuse suhteline erinevus olla suurem kui 11 % nende tulemuste aritmeetilisest keskmisest.
Resmini P., Pellegrino L., Hogenboom J.A., Sadini V., Rampilli M., ‘Detection of buttermilk solids in skimmilk powder by HPLC quantification of aminophospholipids’.
Resmini P., Pellegrino L., Hogenboom J. A., Sadini V., Rampilli M., „Detection of buttermilk solids in skimmilk powder by HPLC quantification of aminophospholipids.”
HPLC pattern of OPA-derivatives of phosphatidylserine (PS) and phosphatidylethanolamine (PE) in methanol extract of reconstituted skim-milk powder.
Fosfatidüülseriini (PS) ja fosfatidüületanoolamiini (PE) OPA-derivaatide piigid pulbrist taastatud lõssi metanooliekstrakti HPLC-kromatogrammil.
Integration mode for the peaks of PS, PE and tryptamine (internal standard) is reported
Näidatud on PS, PE ja trüptamiini (sisestandard) piikide integreerimine.
Fluorescence (arbitrary units)
Fluorestsents vabalt valitud ühikutes.
TRIPTAMINE
Trüptamiin
International IDF Standard 135B/1991.
Rahvusvaheline IDFi standard 135B/1991.
Milk and milk products.
Piim ja piimatooted.
Precision characteristics of analytical methods.
Analüütiliste meetodite täpsusnäitajad.
Outline of collaborative study procedure.
Ühisuuringu läbiviimise meetod.
(Article 11)
(Artikkel 11)
DETECTION OF ANTIMICROBIAL RESIDUES IN SKIMMED MILK POWDER
MIKROOBIVASTASTE AINETE TUVASTAMINE LÕSSIPULBRIS
A microbial inhibitor screening test using Geobacillus stearothermophilus var. calidolactis ATCC 10149 (identical to strain C953) as test micro-organism and being sufficiently sensitive to detect 4 μg benzylpenicillin per kg milk and 100 μg sulfadimidine per kg milk shall be used.
Kasutatakse mikroobiinhibiitorite sõelkatset mikroorganismil Geobacillus stearothermophilus var. calidolactis ATCC 10149 (on identne tüvega C953), mis on piisavalt tundlik selleks, et määrata 4 μg bensüülpenitsilliini ja 100 μg sulfadimidiini ühes liitris lõssis.
Commercial tests kits are available and can be used if they have the required sensitivity for benzylpencillin and sulfadimidine.
Müügil olevaid katsekomplekte võib kasutada, kui nende tundlikkus bensüülpenitsilliini ja sulfadimidiini suhtes vastab nõuetele.
For the test, reconstituted skimmed milk powder (1 g powder +9 ml aqua dest) is used.
Testimisel kasutatakse pulbrilõssi (1 g pulbrit +9 ml destilleeritud vett).
The test is carried out as described in ISO/TS 26844:2006 Milk and milk products — Determination of antimicrobial residues — Tube diffusion test IDF — Bulletin No 258/1991, section 1, Chapter 2, or according to the instructions of the test kit manufacturer [1].
Katse viiakse läbi standardi ISO/TS 26844:2006 (Piim ja piimatooted — Mikroobivastaste ainete jääkide määramine — Torudifusiooni katse) 1. jao 2. peatüki (IDFi bülletään nr 258/1991) kohaselt või vastavalt teimimiskomplekti valmistaja juhistele [1].
Positive results are to be interpreted as follows:
Positiivseid tulemusi tõlgendatakse järgmiselt:
The presence of β-lactams can be confirmed by repeating the test adding penicillinase to the test system [2]:
β-laktaamide manulust saab kinnitada katse kordamisega, lisades katsesüsteemile penitsillinaasi [2]:
Negative result: Inhibiting substance is a β-lactam antibiotic.
negatiivne tulemus: inhibeeriv aine on β-laktaam-antibiootikum;
Positive result remains: Inhibiting substance cannot be identified by this procedure, continue with 2.
positiivne tulemus jääb kehtima: inhibeerivat ainet ei ole võimalik selle meetodiga tuvastada, jätkata punktiga 2;
The presence of sulfonamides can be confirmed by repeating the test adding p-amino benzoic acid to the test system:
sulfoonamiidide manulust saab kinnitada, korrates katset katsesüsteemile p-aminobensoehappe lisamisega:
Negative result: Inhibiting substance is a sulfonamide.
negatiivne tulemus: inhibeeriv aine on sulfoonamiid;
Positive result remains: Inhibiting substance cannot be identified by this procedure, continue with 3.
positiivne tulemus jääb kehtima: inhibeerivat ainet ei ole võimalik selle meetodiga tuvastada, jätkata punktiga 3;
The presence of a combination of a β-lactam and sulfonamide can be confirmed by repeating the test adding pencillinase + p-amino benzoic acid to the test system:
β-laktaami ja sulfoonamiidi kombinatsiooni manulust saab kinnitada katse kordamisega, lisades katsesüsteemile penitsilliini ja p-aminobensoehapet:
Negative result: Inhibiting substances are a β-lactam antibiotic and a sulfonamide.
negatiivne tulemus: inhibeerivad ained on β-laktaam-antibiootikum ja sulfoonamiid;
Positive result: Inhibiting substance cannot be identified by this procedure.
positiivne tulemus: inhibeerivat ainet ei ole võimalik selle meetodiga tuvastada.
Important notice: False-positive results may be obtained, when skimmed-milk powder is analysed.
Oluline teave: lõssipulbri analüüsimisel võib saada valepositiivseid tulemusi.
It is important, therefore, to verify that the test system used does not yield false-positive results.
Seetõttu on vaja kontrollida, ega kasutatud katsesüsteem ei anna valepositiivseid tulemusi.
Some β-lactams are less sensitive to β-lactamase.
Teatavad β-laktaamid on vähem tundlikud β-laktamaasi suhtes.
In such cases an additional pre-treatment of the sample, (1 ml of test sample with 0,3 ml of penase concentrate at 37 °C for 2 h) is recommended.
Sellise juhtumi puhul soovitatakse proovi täiendavat eeltöötlemist (1 ml uuritavat proovi koos 0,3 ml penitsillinaasi kontsentraadiga temperatuuril 37 °C kaks tundi).
(Article 12)
(Artikkel 12)
QUANTITATIVE DETERMINATION OF SKIMMED-MILK POWDER IN COMPOUND FEEDINGSTUFFS BY ENZYMATIC COAGULATION OF PARA-CASEIN
SEGASÖÖDA LÕSSIPULBRISISALDUSE KVANTITATIIVNE MÄÄRAMINE PARAKASEIINI ENSÜMAATILISE KOAGULATSIOONI ABIL
Quantitative determination of skimmed-milk powder in compound feedingstuffs by enzymatic coagulation of para-casein.
Segasööda lõssipulbrisisalduse kvantitatiivne määramine parakaseiini ensümaatilise koagulatsiooni abil.
This method applies to compound feedingstuffs containing at least 10 % skimmed-milk powder; large quantities of buttermilk and/or of certain non-milk proteins may lead to interferences.
Kõnealust meetodit kohaldatakse segasööda suhtes, mis sisaldab vähemalt 10 % lõssipulbrit; petipiima ja/või teatavate mittepiimavalkude suured kogused võivad määramist segada.
Dissolving of casein contained in the compound feedingstuff by extraction with sodium citrate solution
Segasöödas sisalduva kaseiini ekstraheerimine naatriumtsitraadilahuse abil.
Adjustment of the calcium ion concentration to the required level to precipitate para-casein by addition of rennet
Kaltsiumioonide sisalduse reguleerimine parakaseiini sadestamiseks nõutavale tasemele laabi lisamisega.
The nitrogen content of the para-casein precipitate is determined by the Kjeldahl method as described by standard ISO 8968-2:2001/IDF 20-2:2001; the quantity of skimmed-milk powder is calculated on the basis of a minimum casein content of 27,5 % (see 8.1).
Parakaseiini sademe lämmastikusisaldus määratakse standardis ISO 8968–2:2001 IDF 20–2:2001 kirjeldatud Kjeldahli meetodiga; lõssipulbri kogus arvutatakse kaseiini minimaalselt 27,5protsendilise sisalduse põhjal (vaata punkt 8.1).
The reagents used must be of analytical grade.
Kõik reaktiivid peavad olema analüütiliselt puhtad.
The water used must be distilled water or water of equivalent purity.
Kasutada tuleb destilleeritud või vähemalt samaväärse puhtusastmega vett.
With the exception of the rennet (4.5), all the reagents and solutions must be free of nitrogenous substances.
Reaktiivid ja lahused, välja arvatud laap(4,5), ei tohi sisaldada lämmastikuühendeid.
Trisodium citrate, dihydrate (1 % w/v solution)
Trinaatriumtsitraatdihüdraat (ühemassi-/mahuprotsendiline lahus)
Calcium chloride (about 5 M solution)
Kaltsiumkloriid (umbes 5 M lahus)
Dissolve 75g of CaCl2 · 2 H2O in 100 ml of distilled water by shaking (draw attention to exothermic reaction).
Lahustada 100 ml destilleeritud vees loksutamisega 75 g CaCl2 · 2 H2O (ettevaatust, reaktsioon on eksotermiline).
Leave overnight and then filter the solution.
Lahus jätta järgmise päevani seisma ning seejärel filtrida.
Store the solution in a refrigerator.
Lahust säilitatakse külmikus.
0,1 N sodium hydroxide
0,1 N naatriumhüdroksiid.
0,1 N hydrochloric acid
0,1 N soolhape.
Liquid calf rennet (strength about 100 IMCU/ml according to standard ISO 11815/IDF 157).
Vedel vasikalaap (sisaldab umbes 100 IMCU/ml vastavalt ISO standardile 11815 IDF 157).
Store in a refrigerator at 4 to 6 °C
Säilitada külmikus temperatuuril 4–6 °C.
Reagents for the quantitative determination of nitrogen according to the Kjeldahl method as described by ISO 8968-2:2001/IDF 20-2:2001.
Reaktiivid lämmastikusisalduse kvantitatiivseks määramiseks Kjeldahli meetodil vastavalt standardile ISO 8968–2:2001 IDF 20–2:2001.
Common laboratory apparatus, including:
Tavalised laboriseadmed, sealhulgas:
Mortar or homogeniser
uhmer või homogenisaator;
Analytical balance capable of weighing to the nearest 1 mg, with a readability of 0,1 mg.
analüütilised kaalud, mõõtetäpsus 1 mg, jaotise väärtus 0,1 mg;
Bench-top centrifuge (500 g or 2000 to 3000 rpm) with 50 ml tubes and 2000 g
50 ml topsidega ja 2000 g lauatsentrifuug (500 g või 2000–3000 pööret minutis);
Magnetic stirrer with (10 to 15 mm) followers
10–15 mm pikkuste magnetpulkadega magnetsegaja;
150 to 200 ml beakers
150–200 ml keeduklaasid;
250 and 500 ml flasks
250 ja 500 ml kolvid;
Glass funnels of 60 to 80 mm diameter
60–80 mm läbimõõduga klaaslehtrid;
Fast-filtering ashless filters of diameter 150 mm (Whatman No 41 or equivalent)
150 mm läbimõõduga tuhavabad kiirfiltrid (Whatman nr 41 või samaväärsed);
Pipettes of various nominal volume
mitmesuguse nimimahuga pipetid;
Thermostatically controlled water bath at 37 °C ± 1 °C
termostateeritud vesivann, mis on reguleeritud temperatuurile 37 ±1 °C;
pH meter, accurate to 0,1 units
pH-meeter, täpsusega kuni 0,1 pH ühikut;
Thermometers, accurate to 1 °C.
termomeetrid, täpsusega kuni 1 °C.
Preparation of the sample
Uuritava proovi ettevalmistamine.
Grind in the mortar or homogenise in the mill 10 to 20 g of the sample to obtain a homogeneous mixture.
Homogeense segu saamiseks jahvatada uhmris või homogeniseerida veskis 10–20 g proovi.
Dissolving of milk powder and separation of the insoluble residue
Lõssipulbri lahustamine ja lahustumatu jäägi eraldamine
Weigh 1,000 ± 0,002 g of well-homogenised compound feedingstuff (6.1) directly into a 50 ml centrifuge tube.
Kaaluda 1,000 ± 0,002 g hästi homogeniseeritud segasööta(6,1) otse 50 ml tsentrifuugitopsi.
Add 30 ml of trisodium citrate solution (4.1) previously heated to 45 °C ± 2 °C.
Lisada 30 ml eelnevalt temperatuurini 45 ±2 °C soojendatud trinaatriumtsitraadi lahust(4,1).
Mix with the aid of the magnetic stirrer for at least five minutes or by vigorous manual shaking.
Segada magnetsegajaga või tugevasti käes raputades vähemalt 5 minutit.
Centrifuge at 500 g (2000 to 3000 rpm) for 10 minutes and decant the clear aqueous supernatant into a 150 to 200 ml beaker, taking care that no loose material on the bottom goes over.
Tsentrifuugida 500 g juures (2000–3000 pööret minutis) 10 minutit ja kallata läbipaistev supernatant 150–200 ml keeduklaasi, jälgides, et põhjast ei tuleks kaasa sadet.
Carry out two further extractions on the residue, according to the same procedure, adding the extracts to the first one.
Jääki ekstraheerida veel kaks korda samal viisil ja ühendada saadud ekstraktid esimesega.
If a layer of oil forms at the surface, cool in the refrigerator until the fat solidifies and remove the solid layer with a spatula.
Kui pinnale moodustub õlikiht, jahutada külmikus, kuni rasv on tahkunud, ning eemaldada see spaatliga.
Coagulation of casein with the enzymes of rennet
Kaseiini koaguleerimine laabiensüümide abil
While stirring continuously, add dropwise 2 ml of calcium chloride (4.2) to the total aqueous extract (about 100 ml).
Saadud vesilahusele (umbes 100 ml) lisada pidevalt segades tilkhaaval 2 ml kaltsiumkloriidi(4,2).
Adjust the pH to 6,4-6,5 with solutions of NaOH (4.3) or HCl (4.4).
Reguleerida NaOH(4,3) ja HCl(4,4) lahustega pH vahemikku 6,4–6,5.
Place in the thermostatically-controlled water bath at 37 °C ± 1 °C for 15 to 20 minutes to obtain saline balance.
Lahus asetada 15–20 minutiks 37 ± 1 °C juures termostateeritud vesivanni soolade tasakaalu saabumiseni.
It becomes more evident by the formation of a light turbidity.
Sellest annab märku lahuse kerge hägustumine.
Transfer the liquid into one centrifuge tubes and centrifuge at 2000 g for 10 minutes in order to remove the precipitated material.
Vedelik kanda ühte tsentrifuugitopsi ja tsentrifuugida 2000 g juures 10 minutit, et eemaldada sadestunud materjal.
Transfer the supernatant, without washing the sediment, into one another centrifuge tubes.
Supernatant viia teise tsentrifuugitopsi ilma sadet pesemata.
Bring the temperature of the supernatant back to 37 °C ± 1 °C.
Supernatandi temperatuur reguleerida temperatuurile 37 ±1 °C.
While stirring the extract, add, dropwise, 0,5 ml of the liquid rennet (4.5).
Ekstrakti segades lisada tilkhaaval 0,5 ml vedelat laapi(4,5).
Coagulation occurs in two minutes.
Koagulatsioon toimub 2 minuti jooksul.
Return the sample to the water bath and leave at a temperature of 37 °C ± 1 °C for 15 minutes.
Asetada proov uuesti vesivanni ja jätta 15 minutiks seisma temperatuuril 37 ± 1 °C.
Remove the sample from the bath and break the coagulum by stirring.
Võtta proov vannist välja ning lõhkuda kalgend segamise teel.
Wash the precipitate in the centrifuge tube with 50 ml of water at approximately 35 °C by stirring the precipitate.
Pesta sadet, segades seda tsentrifuugitopsis 50 ml veega temperatuuril umbes 35 °C.
Determination of casein nitrogen
Kaseiinis sisalduva lämmastiku määramine
After washing, transfer quantitatively the precipitate to the filter paper retained from 6.3.4 using distilled water.
Kanda sade pärast pesemist kvantitatiivselt destilleeritud veega varem kasutatud (punkt 6.3.4) paberfiltrile.
Transfer the dried filter paper to the Kjeldahl flask.
Kuivatatud paberfilter paigutada Kjeldahli kolbi.
Determine the nitrogen by the Kjeldahl method as described by standard ISO 8968-2:2001/IDF 20-2:2001.
Määrata lämmastik Kjeldahli meetodil standardi ISO 8968–2:2001 IDF 20–2:2001 kohaselt.
BLANK TEST
PIMEKATSE
A blank test shall be made regularly by submitting to mineralisation by the Kjeldahl method as described at standard ISO 8968-2:2001/IDF 20-2:2001.
Korrapäraselt on vaja teha mineraliseerimise pimekatset vastavalt standardis ISO 8968–2:2001 IDF 20–2:2001 kirjeldatud Kjeldahli meetodile.
An ashless filter paper (5.8) moistened with a mixture of 90 ml (4.1) sodium citrate solution, 2 ml solution of calcium chloride (4.2), 0,5 ml of liquid rennet (4.5), and washed with 3 × 15 ml of distilled water
Tuhavaba filterpaber(5,8) niisutatakse 90 ml(4,1) naatriumtsitraadi lahusega, 2 ml kaltsiumkloriidi lahusega(4,2), 0,5 ml vedela laabi(4,5) seguga ja pestakse 3 × 15 ml destilleeritud veega.
The volume of acid used for the blank test must be subtracted from the volume of acid (4.4) used for titration of the sample.
Pimekatsel kulunud happe maht tuleb lahutada proovi tiitrimisel kulunud happe(4,4) mahust.
The percentage of skimmed-milk powder in the compound feedingstuff is calculated by the following formula:
Segasöödas sisalduva lõssipulbri (SMP) protsent arvutatakse järgmise valemi abil:
N is the percentage of para-casein nitrogen;
N on parakaseiini lämmastiku protsendiline sisaldus;
27,5 is the factor for converting determined casein into the percentage of skimmed-milk powder;
27,5 on konstant, mille abil arvutatakse kindlaks määratud kaseiinisisaldus ümber lõssipulbri protsendiks;
2,81 and 0,908 are correction factors obtained from regression analysis.
2,81 ja 0,908 on regressioonanalüüsiga saadud parandustegurid.
In at least 95 % of the cases studied, duplicate analysis of the same sample by the same operator in the same laboratory must give differences in the results equivalent to no greater than 2,3 g of skimmed-milk powder in 100 g of compound feedingstuff.
Vähemalt 95 % uuritud juhtudest ei tohi ühe ja sama töötaja poolt ühes ja samas laboris ühe ja sama proovi analüüsitulemuste erinevus olla suurem kui 2,3 grammi lõssipulbrit 100 grammi segasööda kohta.
In at least 95 % of the cases studied, the same sample analysed by two laboratories, must give differences in the results no greater than 6,5 g of skimmed-milk powder in 100 g of compound feedingstuff.
Vähemalt 95 % uuritud juhtudest ei tohi kahes laboris ühe ja sama proovi analüüsi tulemuste erinevus olla suurem kui 6,5 grammi lõssipulbrit 100 grammi segasööda kohta.
The addition of large percentages of certain non-milk proteins and especially of soya proteins, when heated together with skimmed-milk powder, may lead to too high results due to co-precipitation with the para-casein of milk.
Teatavate mittepiimavalkude, eriti sojavalkude suure koguse lisamine lõssipulbrile, kui neid kuumutatakse koos lõssipulbriga, võib anda liiga kõrge protsendi, mis on tingitud nende sadestumisest koos piimas sisalduva parakaseiiniga.
Addition of buttermilk may lead to somewhat low figures, due to the fact that only the non-fat portion is determined.
Petipiima lisamine võib anda mõnevõrra madalama protsendi, mis on tingitud sellest, et määratakse ainult rasvavaba osa.
Addition of certain acid buttermilk may give considerably low figures, due to incomplete dissolving in the citrate solution.
Teatava hapukoorepeti lisamine võib anda oluliselt madalama protsendi, sest lahustumine tsitraadilahuses ei ole täielik.
Lecithin additions of 0,5 % or more may also lead to low results.
0,5 % või suurema koguse letsitiini lisamine võib samuti protsenti vähendada.
Incorporation of high-heat skimmed-milk powder may lead to too high figures due to the co-precipitation of certain whey proteins with the para-casein of milk.
Kõrgkuumutatud lõssipulbri lisamine võib anda liiga kõrge protsendi, mis on tingitud teatavate vadakuvalkude sadestumisest koos piimas sisalduva parakaseiiniga.
(Article 13)
(Artikkel 13)
DETECTION OF STARCH IN SKIMMED-MILK POWDER, DENATURED MILK POWDER AND COMPOUND FEEDINGSTUFFS
TÄRKLISE TUVASTAMINE LÕSSIPULBRIS, DENATUREERITUD PIIMAPULBRIS JA SEGASÖÖTADES
This method is for the detection of starch which is issued as a tracer in denatured milk powders.
Kõnealust meetodit kasutatakse selle tärklise avastamiseks, mida kasutatakse märgistusainena denatureeritud piimapulbris.
Limit of detection of the method is approximately 0,05 g of starch per 100 g of sample.
Meetodi avastamispiir on ligikaudu 0,05 g tärklist 100 grammi proovi kohta.
The reaction is based on the one used in iodometry:
Reaktsioon põhineb jodomeetrias kasutataval reaktsioonil:
fixation by the colloids of the free iodine in aqueous solution,
vesilahuses olevad kolloidid seovad vaba joodi;
absorption by the starch micelles and by colour formation.
tärklise mitsellid seovad joodi ning tekib värvus.
Iodine solution
Joodilahus:
Iodine: 1,0 g,
jood: 1,0 g;
Potassium iodine: 2,0 g,
kaaliumjodiid: 2,0 g;
Distilled water: 100 ml,
destilleeritud vesi: 100 ml.
Dissolve 1,0 g of iodine and 2,0 g of potassium iodine in water in a 100 ml one-mark volumetric flask.
Lahustada 100 ml ühe märgiga mõõtekolvis vees 1,0 g joodi ja 2,0 g kaaliumjodiidi.
Dilute to the 100 ml mark with water and mix.
Lahjendada veega 100 ml märgini ja segada.
Boiling water bath
Keev vesivann.
Test tubes, 25 mm × 200 mm.
Katseklaasid 25 mm × 200 mm.
Weigh 1,0 g of the sample to the nearest 0,1g and transfer it into the test tube (4.3).
Kaaluda 1,0 grammi proovi 0,1 g täpsusega ja viia kaalutis üle katseklaasi (4,3).
Add 20 ml of distilled water and shake in order to disperse the sample.
Lisada 20 ml destilleeritud vett ja loksutada, et proov jaotuks ühtlaselt.
Place in the boiling water bath (4.2) and leave for 5 minutes.
Seejärel asetada 5 minutiks keeva veega vesivanni (4,2).
Remove from the bath and cool to room temperature.
Eemaldada vannist ning jahutada toatemperatuurini.
Add 0,5 ml of the iodine solution (3.1), shake and observe the resulting colour.
Lisada 0,5 ml joodilahust (3,1), loksutada ning jälgida värvuse tekkimist.
A blue colouration indicates the presence of native starch in the sample.
Siniseks värvumine näitab loodusliku tärklise esinemist proovis.
When the sample contains modified starch the colour may not be blue.
Kui proov sisaldab modifitseeritud tärklist, ei pea värvus olema sinine.
REMARKS
MÄRKUSED
The colour, the intensity of the colour and the microscopic appearance of the starch, will vary depending on the origin of native starch (e.g. maize or potato) and the type of modified starch present in the sample.
Värvus, selle intensiivsus ning tärklise mikrostruktuur erinevad olenevalt loodusliku tärklise päritolust (nt mais või kartul) ning proovis esineva modifitseeritud tärklise liigist.
In the presence of modified starches the colour produced turns violet, red or brown, according to the degree of modification of the crystalline structure of native starch.
Modifitseeritud tärklise esinemisel proovis võib lahus värvuda violetseks, punaseks või pruuniks vastavalt loodusliku tärklise kristallistruktuuri modifitseerimise astmele.
(Article 14)
(Artikkel 14)
DETERMINATION OF MOISTURE CONTENT IN DRIED CREAM
KOOREPULBRI NIISKUSESISALDUSE MÄÄRAMINE
This Annex specifies a method for the determination of the moisture content of dried cream.
Käesolevas lisas on kirjeldatud koorepulbri niiskusesisalduse määramise meetodit.
TERMS AND DEFINITIONS
MÕISTED JA MÄÄRATLUSED
For the purpose of this Annex, the following definition applies.
Käesolevas lisas kasutatakse järgmist määratlust:
Moisture content: the loss of mass determined by the procedure specified in this International Standard.
niiskusesisaldus on massi kaotus, mis määratakse kindlaks käesolevas rahvusvahelises standardis kirjeldatud meetodi abil.