natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Flask 5: Procedure control
Kolb 5: protseduuri kontrollproov.
See also I.6.7.
Vt ka punkti I.6.7.
Throughout the test, determine the concentrations of DOC in each flask in duplicate at known time intervals, sufficiently frequently to be able to determine the start of the 10-day window and the percentage removal at the end of the 10-day window.
Kogu katse kestel määratakse igas kolvis kindlate ajavahemike järel DOC kontsentratsioon piisava sagedusega kümnepäevase akna alguse määramiseks ja protsentuaalse kõrvaldamise määramiseks kümnepäevase akna lõpus.
Take only the minimal volume of test suspension necessary for each determination.
Igaks määramiseks võetakse ainult minimaalne vajalik kogus katsesuspensiooni.
Before sampling make good evaporation losses from the flasks by adding dilution water (I.6.1) in the required amount if necessary.
Enne proovide võtmist korvatakse vajaduse korral aurustumiskaod kolbides vajaliku koguse lahjendusvee lisamisega (I.6.1).
Mix the culture medium thoroughly before withdrawing a sample and ensure that material adhering to the walls of the vessels is dissolved or suspended before sampling.
Segu segatakse enne proovi võtmist hoolikalt ja veendutakse, et nõu seintele sadestunud materjal enne proovi võtmist lahustub või suspendeerub.
Membrane-filter or centrifuge (see Appendix 2..4) immediately after the sample has been taken.
Kohe pärast võtmist proovid membraan-filtreeritakse või tsentrifuugitakse (vt II.4 liidet).
Analyse the filtered or centrifuged samples on the same day, otherwise store at 2-4 oC for a maximum of 48 h, or below - 18 oC for a longer period.
Filtritud või tsentrifuugitud proovid analüüsitakse samal päeval või säilitatakse 2–4 oC juures kuni 48 tundi või pikaajalisemal säilitamisel alla –18 oC juures.
Treatment of results
Tulemuste käsitlemine
Calculate the percentage degradation at time t as given under I.7.1 (DOC determination) and, optionally, under I.7.2 (specific analysis).
Protsentuaalne lagunemine ajahetkel t arvutatakse punktis I.7.1 (DOC määramine) ja vajaduse korral ka punktis I.7.2 (spetsiifiline analüüs) kirjeldatud moel.
Record all results on the data sheets provided.
Kõik tulemused esitatakse etteantud andmetabelis.
Validity of results
Tulemuste kehtivus
See I.5.2.
Vt punkti I.5.2.
See I.8.
Vt punkti I.8.
DATA SHEET
ANDMETABEL
An example of a data sheet is given hereafter.
Järgneb andmetabeli näide.
DOC DIE-AWAY TEST
DOC KÕRVALDAMISE KATSE
LABORATORY
LABOR
DATE AT START OF TEST
KATSE ALGUSKUUPÄEV
TEST SUBSTANCE
TESTAINE
Stock solution concentration: … mg/1 as chemical
Põhilahuse kontsentratsioon: … (kemikaali sisaldus, mg/l)
Initial concentration in medium, to: … mg/1 as chemical
Algkontsentratsioon toitelahuses, t0: … (kemikaali sisaldus, mg/l)
INOCULUM
INOKULAAT
Source:
Allikas:
Treatment given:
Töötlus:
Pre-conditioning, if any:
Kohandamine, kui seda tehti:
Concentration of suspended solids in reaction mixture: mg/1
Hõljumi kontsentratsioon segus: … mg/l
CARBON DETERMINATIONS
SÜSINIKU MÄÄRAMINE
Carbon analyser:
Süsinikuanalüsaator:
Flask nr
Kolvi nr
DOC after n-days (mg/l)
DOC n päeva möödumisel (mg/l)
Test chemical plus inoculum
Testaine koos inokulaadiga
a, mean
a, keskmine
b, men
b, keskmine
Blank inoculum without test chemical
Inokulaadi nullproovid testaineta
C, mean Cc(t)
c, keskmine Cc(t)
d, mean
d, keskmine
EVALUATION OF RAW DATA
TÖÖTLEMATA ANDMETE HINDAMINE
% degradation afer n days
Laguremisprotsent n päeva pärast
0Note: similar formats may be used for the reference chemical and toxicity controls.
0Märkus. Võrdlusaine ja mürgisuse kontrollproovide jaoks võib kasutada analoogseid tabeleid.
ABIOTIC CONTROL (optional)
ABIOOTILINE KONTROLLPROOV (pole kohustuslik)
Time (days)
Aeg (päevad)
DOC conc. (mg/l) in sterile control
DOC konts. steriilses kontrollproovis (mg/l)
SPECIFIC CHEMICAL ANALYSIS (optional)
SPETSIIFILINE KEEMILINE ANALÜÜS (pole kohustuslik)
residual amount of test chemical at end of test (mg/l)
Testaine jääk katse lõpus
% primary degradation
Esmase lagunemise %
Sterile control
Steriilne kontrollproov
Inoculated test medium
Inokuleeritud toitelahus
A measured volume of mineral medium containing a known concentration of the test substance (10-40 mg DOC/litre) as the nominal sole source of organic carbon is inoculated with 0,5 ml effluent per litre of medium.
Kindlat kogust inokuleeritud mineraalset toitelahust kindla testaine kontsentratsiooniga (10–40 mg DOC/l), mis on ainus nominaalne orgaanilise süsiniku allikas, inokuleeritakse 0,5 ml reoveega liitri lahuse kohta.
The mixture is aerated in the dark or diffused light at 22 ± 2 oC.
Seejärel aereeritakse segu pimedas või hajutatud valguse käes 22 ± 2 oC juures.
Conical flasks, e.g. 250 ml to 2 litres, depending on the volume needed for DOC analysis;
koonilised kolvid, mahuga nt 250 ml kuni 2 l, olenevalt DOC analüüsiks vajalikust mahust;
shaking machine — to accommodate the conical flasks, either with automatic temperature control or used in a constant temperature room, and of sufficient power to maintain aerobic conditions in all flasks;
kooniliste kolbide loksutusseade, mis on termostateeritud või asub püsiva temperatuuriga ruumis ja on piisava võimsusega aeroobsete tingimuste tagamiseks kõigis kolbides;
Mix 10 ml of solution (a) with 80 ml dilution water, add 1 ml of solutions (b) to (d) and make up to 1 litre with dilution water.
10 ml lahust a segatakse 80 ml lahjendusveega, lisatakse 1 ml lahuseid b–d ja täiendatakse veega 1 liitrini.
This method uses only 0,5 ml effluent/litre as inoculum and therefore the medium may need to be fortified with trace elements and growth factors.
Selles meetodis kasutatakse ainult 0,5 ml inokulaati liitri kohta, mistõttu võib olla vaja lisada toitelahusele mikroelemente ja kasvutegureid.
This is done by adding 1 ml each of the following solutions per litre of final medium:
Selleks lisatakse liitri lõpliku toitelahuse kohta 1 ml igast järgmisest lahusest:
Trace element solution:
Mikroelementide lahus:
Manganese sulfate tetrahydrate, MnSO4.
Mangaansulfaattetrahüdraat, MnSO4.
Boric acid, H3BO3
Boorhape, H3BO3
Zinc sulfate heptahydrate, ZnSO4.
Tsinksulfaatheptahüdraat, ZnSO4.
Ammonium heptamolybdate (NH4)6 Mo7O24
Ammooniumheptamolübdaat, (NH4)6Mo7O24
Fe-chelate (FeCl3 ethylenediamine-tetra-acetic acid)
Fe-kelaat (FeCl3-etüleendiamiintetraäädikhape)
Dissolve in, and make up to 1000 ml with dilution water
Lahustatakse vees ja täiendatakse lahjendusveega 1000 ml-ni.
Vitamin solution:
Vitamiinilahus:
Yeast extract
pärmiekstrakt
Dissolve the yeast extract in 100 ml water.
Pärmiekstrakt lahustatakse 100 ml vees.
Sterilise by passage through a 0,2 micron membrane, or make up freshly.
Lahus steriliseeritakse filtrimisel läbi 0,2 μm membraani või valmistatakse vahetult enne kasutamist.
The inoculum is derived from the secondary effluent of a treatment plant or laboratory scale unit receiving predominantly domestic sewage.
Inokulaadi võib valmistada valdavalt olmereovett töötlevast puhastusjaamast või laborimõõdus seadmest väljuvast töödeldud reoveest.
See I.6.4.2. and I.6.5.
Vt punkte I.6.4.2 ja I.6.5.
0,5 ml per litre of mineral medium is used.
Kasutatav kogus on 0,5 ml ühe liitri mineraalse toitelahuse kohta.
As an example, introduce 800 ml portions of mineral medium into 2-litre conical flasks and add sufficient volumes of stock solutions of the test and reference substances to separate flasks to give a concentration of chemical equivalent to 10-40 mg DOC/litre.
Näiteks viiakse 800 ml kogused mineraalset toitelahust 2 l koonilistesse kolbidesse ning lisatakse eri kolbidesse küllaldased kogused test- ja võrdlusainete põhilahuseid, nii et saadakse kemikaalikontsentratsioon, mis vastab 10–40 mg DOC-ile liitris.
Check the pH value and adjust, if necessary, to 7,4.
Kontrollitakse pH väärtust ja viiakse see vajaduse korral 7,4ni.
Inoculate the flasks with sewage effluent at 0,5 ml/litre (see I.6.4.2).
Kolvid inokuleeritakse 0,5 ml reovee lisamisega liitri kohta (vt I.6.4.2).
Make up the volumes in all flasks to 1 litre with mineral medium and, after mixing, take a sample from each flask to determine the initial concentration of DOC (see Appendix 2.4).
Lahused kõigis kolbides täiendatakse mineraalse toitelahusega 1 liitrini ja võetakse pärast segamist igast kolvist DOC algkontsentratsiooni määramiseks proov (vt II.4 liidet).
Flasks 1 and 2: test suspension
Kolvid 1 ja 2: katsesuspensioon.
Flasks 3 and 4: inoculum blank
Kolvid 3 ja 4: inokulaadi nullproov.
Flask 5: procedure control
Kolb 5: protseduuri kontrollproov.
and preferably and when necessary:
Eelistatavalt ja vajaduse korral
Flask 6: abiotic sterile control
kolb 6: abiootiline steriilne kontrollproov,
Flask 7: adsorption control
kolb 7: adsorptsiooni kontrollproov,
Flask 8: toxicity control
kolb 8: mürgisuse kontrollproov.
See also 1.6.7.
Vt ka punkti I.6.7.
Membrane-filter or centrifuge (see Appendix 2.4) immediately after the sample has been taken.
Kohe pärast võtmist proovid membraan-filtreeritakse või tsentrifuugitakse (vt II.4 liidet).
Analyse the filtered or centrifuged samples on the same day, otherwise store at 2-4 oC for a maximum of 48 h, or below 18 oC for a longer period.
Filtritud või tsentrifuugitud proovid analüüsitakse samal päeval või säilitatakse 2–4 oC juures kuni 48 tundi või pikaajalisemal säilitamisel alla –18 oC juures.
An example of a data sheet is given hereafter
Järgneb andmetabeli näide.
MODIFIED OECD SCREENING TEST
MUUDETUD OECD SÕELKATSE
Stock solution concentration: … mg/litre as chemical
Põhilahuse kontsentratsioon: ... (kemikaali sisaldus, mg/l)
Initial concentration in medium, to: … mg/litre as chemical
Algkontsentratsioon toitelahuses, t0: … (kemikaali sisaldus, mg/l)
A measured volume of inoculated mineral medium containing a known concentration of the test chemical (10-20 mg DOC or TOC/l) as the nominal sole source of organic carbon is aerated by the passage of carbon, dioxide-free air at a controlled rate in the dark or in diffuse light.
Kindlat kogust inokuleeritud mineraalset toitelahust kindla testaine kontsentratsiooniga (10–20 mg DOC/l), mis on ainus nominaalne orgaanilise süsiniku allikas, aereeritakse süsinikdioksiidivaba õhu läbipuhumisega kindlal kiirusel pimedas või hajutatud valguse käes.
Degradation is followed over 28 days by determining the carbon dioxide produced, which is trapped in barium or sodium hydroxide and which is measured by titration of the residual hydroxide or as inorganic carbon.
Lagunemisprotsessi jälgitakse 28 päeva jooksul eralduva CO2 määramise abil, viimane püütakse baarium- või naatriumhüdroksiidi ja mõõdetakse hüdroksiidi jäägi tiitrimise või anorgaanilise süsiniku määramise teel.
The amount of carbon dioxide produced from the test chemical (corrected for that derived from the blank inoculum) is expressed as a percentage of ThCO2.
Testainest tekkiv süsinikdioksiidi kogus (mida on parandatud inokulaadiga nullproovi vastava väärtuse võrra) väljendatakse protsendina ThCO2-st.
The degree of biodegradation may also be calculated from supplemental DOC analysis made at the beginning and end of incubation.
Biolagundumise määra võib arvutada ka inkubeerimise algul tehtud täiendava DOC analüüsi põhjal.
Flasks, 2-5 litres, each fitted with an aeration tube reaching nearly the bottom of the vessel and an outlet;
2–5liitrised kolvid peaaegu põhjani ulatuva aeratsioonitoru ja väljaviiguga;
magnetic stirrers, when assessing poorly soluble chemicals;
vähelahustuvate ainete uurimisel magnetsegajad;
gas-absorption bottles;
gaasipüüdurpudelid;
device for controlling and measuring airflow;
õhuvoolu reguleerimise ja mõõtmise seade;
apparatus for carbon dioxide scrubbing, for preparation of air which is free from carbon dioxide; alternatively, a mixture of CO2-free oxygen and CO2-free nitrogen, from gas cylinders, in the correct proportions (20 % O2: 80 % N2) may be used;
seade süsinikdioksiidi väljapesemiseks süsinikdioksiidivaba õhu valmistamiseks; teise võimalusena võib kasutada õiges vahekorras segu (20 % O2: 80 % N2) CO2-vabast balloonihapnikust ja CO2-vabast balloonilämmastikust;
device for determination of carbon dioxide, either titrimetrically or by some form of inorganic carbon analyser;
seade süsinikdioksiidi määramiseks kas tiitrimeetriliselt või mis tahes põhimõttel töötava anorgaanilise süsiniku analüsaatori abil;
membrane filtration device (optional);
membraanfiltratsiooniseade (ei ole kohustuslik);
DOC analyser (optional).
DOC analüsaator (ei ole kohustuslik).
As an example the following volumes and weights indicate the values for 5-litre flasks containing 3 l of suspension.
Järgmises näites on esitatud mahulised kogused ja kaalutised viieliitriste kolbide jaoks 3 1 suspensiooniga.
If smaller volumes are used modify the values accordingly, but ensure that the carbon dioxide formed can be measured accurately.
Väiksemate koguste kasutamisel võib koguseid vastavalt muuta, kuid tagada tuleb täpseks mõõtmiseks piisav süsinikdioksiidi eraldumine.
To each 5-litre flask add 2400 ml mineral medium.
Igasse viieliitrisesse kolbi lisatakse 2400 ml mineraalset toitelahust.
Add an appropriate volume of the prepared activated sludge (see I.6.4.1 and I.6.5) to give a concentration of suspended solids of not more than 30 mg/l in the final 3 l of inoculated mixture.
Seejärel lisatakse sobiv kogus ettevalmistatud aktiivmuda (vt I.6.4.1 ja I.6.5) nii, et hõljumi kontsentratsioon lõplikus 3 liitris inokuleeritud segus ei ületa 30 mg/l.
Alternatively first dilute the prepared sludge to give a suspension of 500-1000 mg/l in the mineral medium before adding an aliquot to the contents of the 5 litre flask to attain a concentration of 30 mg/l; this ensures greater precision.
Teise võimalusena võib ettevalmistatud muda kõigepealt lahjendada mineraalse toitelahusega nii, et saadakse suspensioon kontsentratsiooniga 500 – 1000 mg/l, misjärel lisatakse sellest kindel kogus viieliitrisesse kolbi nii, et saadakse lõppkontsentratsioon 30 mg/l; nõnda tagatakse suurem täpsus.
Other sources of inoculum may be used (see I.6.4.2.).
Kasutada võib muid inokulaadiallikaid (vt I.6.4.2).
Aerate these inoculated mixtures with CO2-free air overnight to purge the system of carbon dioxide.
Inokuleeritud segusid aereeritakse üleöö CO2-vaba õhuga, et puhastada süsteem süsinikdioksiidist.
Add the test material and reference substance, separately, as known volume of stock solutions, to replicate flasks to yield concentrations, contributed by the added chemicals, of 10 to 20 mg DOC or TOC/l; leave some flasks without addition of chemicals as inoculum controls.
Eraldi paralleelkolbidele lisatakse kindla koguse põhilahuse näol test- ja võrdlusaine nii, et neist tulenev DOC või TOC kontsentratsioon on 10–20 mg/l; mõned kolvid jäetakse kemikaalita inokulaadi kontrollproovideks.
Add poorly soluble test substances directly to the flasks on a weight or volume basis or handle as described in Appendix 3.
Vähelahustuvad testained lisatakse massi või mahu järgi otse kolbi või neid käsitletakse 3. liites kirjeldatud moel.
If required, use one flask to check the possible inhibitory effect of the test chemical by adding both the test and reference chemicals at the same concentrations as present in the other flasks.
Vajaduse korral kontrollitakse ühes kolvis testaine võimalikku inhibeerivat mõju, lisades kolbi ülejäänud kolbidega võrdses kontsentratsioonis nii test- kui ka võrdlusainet.
Also, if required, use a sterile flask to check whether the test chemical is degraded abiotically by using an uninoculated solution of the chemical (see I.6.6).
Vajaduse korral kontrollitakse veel ühes steriilses kolvis testaine abiootilist lagunemist, kasutades aine inokuleerimata lahust (vt I.6.6).
Sterilise by the addition of a toxic substance at an appropriate concentration.
Proov steriliseeritakse sobivas kontsentratsioonis mürkaine lisamisega.
Make up the volumes of suspensions in all flasks to 3 l by the addition of mineral medium previously aerated with CO2-free air.
Enne seda täiendatakse suspensioonid kõigis kolmes kolvis CO2-vaba õhuga aereeritud mineraalse toitelahusega 3 liitrini.
Optionally, samples may be withdrawn for analysis of DOC (see Appendix 2.4.) and/or specific analysis.
Lisaks võib võtta proove DOC analüüsiks (vt II.4 liidet) ja/või spetsiifiliseks analüüsiks.
Connect the absorption bottles to the air outlets of the flasks.
Pesupudelid ühendatakse kolbide väljaviiguga.
If barium hydroxide is used, connect three absorption bottles, each containing 100 ml of 0,0125 M barium hydroxide solution, in series to each 5-litre flask.
Baariumhüdroksiidi kasutamisel ühendatakse iga viieliitrise kolviga järjestikku kolm pesupudelit, millest igaühes on 100 ml 0,0125 M baariumhüdroksiidlahust.
The solution must be free of precipitated sulphate and carbonate and its strength must be determined immediately before use.
Lahus ei tohi sisaldada sulfaadi ja karbonaadi sadet ja selle kontsentratsioon tuleb määrata vahetult enne kasutamist.
If sodium hydroxide is used, connect two traps, the second acting as a control to demonstrate that all the carbon dioxide was absorbed in the first.
Naatriumhüdroksiidi kasutamisel ühendatakse järjestikku kaks püüdurit, kusjuures teine on kontrollpüüdur, mis peab näitama, kas esimene absorbeeris kogu süsinikdioksiidi.
Absorption bottles fitted with serum bottle closures are suitable.
Sobivad ka seerumipudeli sulguriga pesupudelid.
Add 200 ml 0,05 M sodium hydroxide to each bottle, which is sufficient to absorb the total quantity of carbon dioxide evolved when the test chemical is completely degraded.
Igasse pudelisse lisatakse 200 ml 0,05 M naatriumhüdroksiidi, mis on küllaldane kogu testaine täielikul lagunemisel tekkiva süsinikdioksiidi absorbeerimiseks.
The sodium hydroxide solution, even when freshly prepared, will contain traces of carbonates; this is corrected by deduction of the carbonate in the blank.
Isegi vahetult enne kasutamist valmistatud naatriumhüdroksiidi lahus sisaldab väikestes kogustes karbonaate, vastav viga korrigeeritakse nullproovi karbonaadikoguse lahutamisega.
Number of flasks in a typical run
Kolbide arv tüüpilises katses
and, preferably and when necessary:
Eelistatavalt ja vajaduse korral:
Flask 6: Abiotic sterile control
kolb 6: abiootiline steriilne kontrollproov,
Flask 7: Toxicity control
kolb 7: mürgisuse kontrollproov, kolb 8: mürgisuse kontrollproov.
Start the test by bubbling CO2-free air through the suspensions at a rate of 30-100 ml/min.
Katset alustatakse CO2-vaba õhu juhtimisega läbi suspensioonide kiirusega 30–100 ml/min.
Take samples of the carbon dioxide absorbent periodically for analysis of the CO2-content.
Süsinikdioksiidi absorbendist võetakse CO2 sisalduse määramiseks regulaarselt proove.
During the first ten days it is recommended that analyses should be made every second or third day and then every fifth day until the 28th day so that the 10-day window period can be identified.
Esimese kümne päeva jooksul on soovitatav teha analüüse iga kahe või kolme päeva tagant, seejärel iga viie päeva tagant kuni 28. päevani, nii et saab määrata kümnepäevase aknaperioodi.
On the 28th day, withdraw samples (optionally) for DOC and/or specific analysis, measure the pH of the suspensions and add 1 ml of concentrated hydrochloric acid to each flask; aerate the flasks overnight to drive off the carbon dioxide present in the test suspensions.
päeval võetakse proovid DOC ja spetsiifilise analüüsi jaoks (kui neid tehakse), mõõdetakse suspensioonide pH ja lisatakse igasse kolbi 1 ml kontsentreeritud vesinikkloriidhapet; kolbe aereeritakse üleöö, et kõrvaldada suspensioonides olev süsinikdioksiid.
On day 29 make the last analysis of evolved carbon dioxide.
päeval tehakse viimane eralduva süsinikdioksiidi analüüs.
On the days of measurement of CO2, disconnect the barium hydroxide absorber closest to the flask and titrate the hydroxide solution with HCl 0,05 M using phenolphthalein as the indicator.
mõõtmise päevadel eemaldatakse kõige kolvipoolsem baariumhüdroksiidiga pesupudel ja tiitritakse hüdroksiidilahust 0,05 M HCl-ga, kasutades indikaatorina fenoolftaleiini.
Move the remaining absorbers one place closer to the flask and place a new absorber containing 100 ml fresh 0,0125 M barium hydroxide at the far end of the series.
Ülejäänud pesupudelid nihutatakse ühe koha võrra kolvile lähemale ja paigutatakse kaugemasse otsa uus pesupudel 100 ml värske 0,0125 M baariumhüdroksiidiga.
Make titrations as needed, for example, when substantial precipitation is seen in the first trap and before any is evident in the second, or at least weekly.
Tiitrimisi tehakse kas vastavalt vajadusele, näiteks siis, kui esimeses püüduris täheldatakse märgatavat sadet ja enne sademe teket teises pudelis või vähemalt kord nädalas.
Alternatively, with NaOH as absorbent, withdraw with a syringe a small sample (depending on the characteristics of the carbon analyser used) of the sodium hydroxide solution in the absorber nearer to the flask.
NaOH kasutamisel absorbendina võetakse süstlaga väike proov (mille suurus sõltub kasutatavast süsinikuanalüsaatorist) kolvipoolses pesupudelis olevast naatriumhüdroksiidilahusest.
Inject the sample into the IC part of the carbon analyser for analysis of evolved carbon dioxide directly.
Proov süstitakse eraldunud süsinikdioksiidi otseseks määramiseks süsinikuanalüsaatori anorgaanilise süsiniku määrajasse.
Analyse the contents of the second trap only at the end of the test to correct for any carryover of carbon dioxide.
Teise püüduri sisu analüüsitakse alles katse lõpus, et vajaduse korral lisada arvutustesse läbikandunud süsinikdioksiidi arvestav parandus.
The amount of CO2 trapped in an absorber when titrated is given by:
Püüdurisse kogutud CO2 kogus leitakse tiitrimisel järgmise valemi järgi:
= (100 × CB - 0,5 × V × CA) × 44
= (100 × CB – 0,5 × v × CA) × 44
V volume of HCl used for titration of the 100 ml in the absorber (ml)
V 100 ml absorbeerimislahuse tiirimiseks kulunud HCl maht (ml),
concentration of the barium hydroxide solution (M)
baariumhüdroksiidilahuse kontsentratsioon (M),
concentration of the hydrochloric acid solution (M)
vesinikkloriidhappelahuse kontsentratsioon (M),
if CB is 0,0125 M and CA is 0,05 M, the titration for 100 ml barium hydroxide is 50 ml and the weight of CO2 is given by:
kui CB on 0,0125 M ja CA on 0,05 M, kulub 100 ml baariumhüdroksiidi tiitrimiseks 50 ml lahust ja CO2 mass leitakse järgmisest valemist:
× 44 × ml HCI titrated = 1,1 × ml HCI
× 44 × tiitrimiseks kulunud HCl (ml) = 1,1 × ml HCI
Thus, in this case, to convert volume of HCl titrated to mg CO2 produced the factor is 1,1.
Seega on teisendustegur tekkinud CO2 massi (mg) arvutamisel tiitrimisel kulunud HCl mahust (ml) 1,1.
Calculate the weights of CO2 produced from the inoculum alone and from the inoculum plus test chemical using the respective titration values and the difference is the weight of CO2 produced from the test chemical alone.
Vastavate tiitrimisandmete põhjal arvutatakse ainult inokulaadist tekkiva CO2 ning inokulaadi ja testaine segust tekkiva CO2 massid, nende vahe ongi ainult testainest tekkiva CO2 mass.
For example, if the inoculum alone gives a titration of 48 ml and inoculum plus test chemical gives 45 ml,
Näiteks kui inokulaadiga kulub tiitrimisele 48 ml ning inokulaadi ja testaine seguga 45 ml,
from inoculum = 1,1 × (50-48) = 2,2 mg
inokulaadist = 1,1 × (50–48) = 2,2 mg
from inoculum plus test chemical = 1,1 × (50-45) = 5,5 mg
inokulaadi ja testaine segust = 1,1 × (50–45) = 5,5 mg
and thus the weight of CO2 produced from the test chemical is 3,3 mg.
on testainest tekkiva CO2 mass 3,3 mg.
The percentage biodegradation is calculated from:
Biolagundumise protsent arvutatakse järgmise valemi järgi:
% degradation=mg CO2
lagunemisprotsent=eralduva CO2
produced × 100
mass (mg) × 100
× mg test chemical added ,
× lisatud testainemass (mg)
mg TO added in test × 3,67
katses lisatud TOC(mg) × 3,67
3,67 being the conversion factor (44/12) for carbon to carbon dioxide.
kus 3,67 on teisendustegur (44/12) üleminekul süsiniku massilt süsinikdioksiidi massile.
Obtain the percentage degradation after any time interval by adding the percentage of ThCO2 values calculated for each of the days, up to that time, on which it was measured.
Lagunemisprotsent mis tahes ajavahemiku järel leitakse kõigi mõõtmispäevale eelnevate päevade kohta arvutatud protsentuaalsete ThCO2 väärtuste liitmisel.