natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In addition some or all of the following equipment will be used: oxygen-meter (with microelectrode or other suitable equipment for measuring dissolved oxygen in low volumes samples); pH-meter; adequate apparatus for temperature control; equipment for the determination of total organic carbon concentration (TOC); equipment for the determination of chemical oxygen demand (COD); equipment for the determination of hardness, etc.
Lisaks kasutatakse veel järgmisi vahendeid: hapnikumõõtja (mikroelektroodi või muu sobiva anduriga, mis võimaldaks mõõta lahustunud hapnikku väikese ruumalaga proovis), pH-meeter, temperatuuri reguleerimiseks vajalik seade, seade orgaanilise süsiniku kogusisalduse (TOC) määramiseks, seade keemilise hapnikutarbe (COD) määramiseks, seade vee kareduse määramiseks jne.
Test organism
Katsealune organism
Daphnia magna Straus is the preferred test species although other suitable Daphnia species can be used in this test (e.g. Daphnia pulex).
Daphnia magna Straus on eelistatud katseliik, kuigi kõnealuses katses võib kasutada ka muid sobivaid Daphnia liike (nt Daphnia pulex).
At the start of the test, the animals should be less than 24 hours old and to reduce variability, it is strongly recommended they are not first brood progeny.
Katse alguses peavad loomad olema alla 24 tunni vanad ja varieeruvuse vähendamiseks soovitatakse tungivalt, et nad ei oleks esimese haudme järglased.
They should be derived from a healthy stock (i.e. showing no signs of stress such as high mortality, presence of males and ephippia, delay in the production of the first brood, discoloured animals, etc.).
Nad peavad olema terved (st neil ei tohi esineda selliseid stressi tunnuseid nagu suur suremus, isaste ja puhkeolekus munade esinemine, esimese haudme saamise viibimine, loomade värvuse muutus jne).
All organisms used for a particular test should have originated from cultures established from the same stock of daphnids.
Kõik konkreetses katses kasutatavad organismid peavad pärinema vesikirpude sama populatsiooni kultuuridest.
The stock animals must be maintained in culture conditions (light, temperature, medium) similar to those to be used in the test.
Populatsiooni loomi tuleb säilitada katsetingimustega sarnanevates kasvutingimustes (valgus, temperatuur, keskkond).
If the daphnids culture medium to be used in the test is different from that used for routine daphnids culture, it is good practice to include a pre-test acclimation period.
Kui katses kasutatav vesikirpude kasvukeskkond erineb sellest, mida kasutatakse tavalise vesikirpude kultuuri jaoks, on heaks tavaks näha ette katse-eelne aklimatiseerumisperiood.
For that, brood daphnids should be maintained in dilution water at the test temperature for at least 48 hours prior to the start of the test.
Selleks tuleb haudmevesikirpe hoida lahjendamiseks kasutatavas vees katsetemperatuuril vähemalt 48 tundi enne katse alustamist.
Natural water (surface or ground water), reconstituted water or dechlorinated tap water are acceptable as holding and dilution water if daphnids will survive in it for the duration of the culturing, acclimation and testing without showing signs of stress.
Hoidmisveena ja lahjendamiseks kasutatava veena lubatakse kasutada looduslikku vett (pinna- või põhjavesi), taastatud vett või deklooritud kraanivett, kui vesikirbud jäävad selles ellu kasvatamise, aklimatiseerimise ja katsetamise ajal ega ilmuta stressi tunnuseid.
Any water which conforms to the chemical characteristics of an acceptable dilution water as listed in Appendix 1 is suitable as a test water.
Katseveeks sobib vesi, mis vastab 1. liites esitatud nõuetekohase lahjendamiseks kasutatava vee keemilistele omadustele.
It should be of constant quality during the period of the test.
Vesi peab olema katseperioodi jooksul püsiva kvaliteediga.
Reconstituted water can be made up by adding specific amounts of reagents of recognised analytical grade to deionised or distilled water.
Taastatud vee valmistamiseks lisatakse deioniseeritud või destilleeritud veele täpsed kogused tunnustatud analüütilise puhtusega reaktiive.
Examples of reconstituted water are given in (1) (6) and in Appendix 2.
Viidetes 1 ja 6 ning 2. liites on esitatud taastatud vee näited.
Hardness between 140 and 250 mg/l (as CaCO3) is recommended for Daphnia magna, while lower hardness may be also appropriate for other Daphnia species.
Karedus peaks Daphnia Magna puhul olema vahemikus 140–250 mg/l (CaCO3-na); teiste Daphnia liikide puhul võib sobida väiksem karedus.
The dilution water may be aerated prior to use for the test so that the dissolved oxygen concentration has reached saturation.
Lahjendamiseks kasutatavat vett võib enne katses kasutamist aereerida, et lahustunud hapniku kontsentratsioon jõuaks küllastuseni.
If natural water is used, the quality parameters should be measured at least twice a year or whenever it is suspected that these characteristics may have changed significantly (see previous paragraph and Appendix 1).
Kui kasutatakse looduslikku vett, tuleb selle kvaliteedi parameetreid mõõta vähemalt kaks korda aastas või kui kahtlustatakse, et need omadused võivad olla oluliselt muutunud (vt eelmist lõiku ja 1. liidet).
Measurements of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni) should also be made.
Samuti tuleb mõõta raskmetallide (st Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni) sisaldus.
If dechlorinated tap water is used, daily chlorine analysis is desirable.
Kui kasutatakse deklooritud kraanivett, on soovitatav iga päev mõõta kloori sisaldust.
If the dilution water is from a surface or ground water source, conductivity and total organic carbon (TOC) or chemical oxygen demand (COD) should be measured.
Kui lahjendamiseks kasutatakse pinna- või põhjavett, tuleb mõõta juhtivus ja orgaanilise süsiniku kogusisaldus (TOC) või keemiline hapnikutarve (COD).
Test solutions
Uuritavad lahused
Test solutions of the chosen concentrations are usually prepared by dilution of a stock solution.
Valitud kontsentratsiooniga uuritavad lahused valmistatakse tavaliselt põhilahuse lahjendamise teel.
Stock solutions should preferably be prepared by dissolving the test substance in the dilution water.
Põhilahuse valmistamiseks on soovitatav lahustada aine lahjendamiseks kasutatavas vees.
As far as possible, the use of solvents, emulsifiers or dispersants should be avoided.
Võimaluse korral tuleb vältida lahustite, emulgaatorite ja dispersantide kasutamist.
However, such compounds may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Siiski võivad nimetatud ühendid olla teatud juhtudel vajalikud piisava kontsentratsiooniga põhilahuse valmistamiseks.
Guidance for suitable solvents, emulsifiers and dispersants is given in (4).
Suunised sobivate lahustite, emulgaatorite ja dispersantide kohta on esitatud viites 4.
In any case, the test substance in the test solutions should not exceed the limit of solubility in the dilution water.
Igal juhul ei tohi uuritava aine sisaldus katselahustes olla kõrgem kui lahustuvuse piir lahjendamiseks kasutatavas vees.
The test should be carried out without the adjustment of pH.
Katse tuleb teha ilma pH-d muutmata.
HCl and NaOH are preferred.
Eelistatakse HCl ja NaOH lahuseid.
Conditions of exposure
Kokkupuutetingimused
Test groups and controls
Katserühmad ja kontrollkatsed
Test vessels are filled with appropriate volumes of dilution water and solutions of test substance.
Katseanumasse viiakse vajalik kogus lahjendamiseks kasutatavat vett ja uuritava aine lahust.
Ratio of air/water volume in the vessel should be identical for test and control group.
Õhu ja vee mahu suhe anumates peab olema katse- ja kontrollrühma puhul ühesugune.
Daphnids are then placed into test vessels.
Seejärel lisatakse anumatesse vesikirbud.
At least 20 animals, preferably divided into four groups of five animals each, should be used at each test concentration and for the controls.
Iga uuritava kontsentratsiooni juures ja ka kontrollkatses tuleb kasutada vähemalt 20 looma, eelistatavalt jaotatuna neljaks viieloomaliseks rühmaks.
At least 2 ml of test solution should be provided for each animal (i.e. a volume of 10 ml for five daphnids per test vessel).
Iga looma kohta peab olema vähemalt 2 ml uuritavat lahust (st viie vesikirbu kohta peab katseanumas olema 10 ml lahust).
The test may be carried out using semi-static renewal or flow-through system when the concentration of the test substance is not stable.
Katse tegemisel võib kasutada poolstaatilist uuendamist või läbivoolusüsteemi, kui uuritava aine kontsentratsioon ei ole püsiv.
One dilution-water control series and also, if relevant, one control series containing the solubilising agent must be run in addition to the treatment series.
Lisaks uuritavate lahuste seeriatele tuleb kasutada ühte lahjendamiseks kasutatava vee kontrollseeriat ja vajaduse korral ühte kontrollseeriat, mis sisaldab lahuse valmistamisel kasutatud abiainet.
Test concentrations
Uuritavad kontsentratsioonid
A range-finding test may be conducted to determine the range of concentrations for the definitive test unless information on toxicity of the test substance is available.
Kui uuritava aine toksilisuse kohta ei ole andmeid, võib lõpliku katse kontsentratsioonivahemiku kindlaksmääramiseks teha eelkatse.
For this purpose, the daphnids are exposed to a series of widely spaced concentrations of the test substance.
Selleks viiakse vesikirbud kokkupuutesse lahustega, mis sisaldavad uuritavat ainet suuresti erinevas kontsentratsioonis.
Five daphnids should be exposed to each test concentration for 48 hours or less, and no replicates are necessary.
Viit vesikirpu hoitakse uuritava aine teatava kontsentratsiooniga lahuses kuni 48 tundi; korduskatseid ei ole vaja.
The exposure period may be shortened (e.g. 24 hours or less) if data suitable for the purpose of the range-finding test can be obtained in less time.
Kokkupuuteaeg võib olla lühem (nt 24 tundi või vähem), kui vahemiku kindlaksmääramiseks vajalikud andmed saadakse kiiremini.
At least five test concentrations should be used.
Tuleb kasutada vähemalt viit uuritavat kontsentratsiooni.
They should be arranged in a geometric series with a separation factor preferably not exceeding 2,2.
Need peavad olema geomeetrilises jadas, mille kordaja on eelistatavalt mitte üle 2.2.
Justification should be provided if fewer than five concentrations are used.
Vähema kui viie kontsentratsiooni kasutamine tuleb põhjendada.
The highest concentration tested should preferably result in 100 % immobilisation, and the lowest concentration tested should preferably give no observable effect.
Kõige kõrgema uuritava kontsentratsiooni tulemuseks peaks eelistatavalt olema 100 %line liikumisvõime kaotus ja kõige madalamal uuritaval kontsentratsioonil ei peaks eelistatavalt olema jälgitavat toimet.
The temperature should be within the range of 18 oC and 22 oC, and for each single test it should be constant within ± 1 oC.
Temperatuur peab olema vahemikus 18–22 oC ja iga üksiku katse puhul peaks see olema konstantne piirides ± 1 oC.
A 16-hour light and eight-hour dark cycle is recommended.
Soovitatav on 16tunnise valguse ja kaheksatunnise pimeduse tsükkel.
Complete darkness is also acceptable, especially for the test substances unstable in light.
Lubatud on ka täielik pimedus, eriti testitavate ainete puhul, mis on valguse käes ebastabiilsed.
The test vessels must not be aerated during the test.
Katseanumaid ei tohi katse käigus õhustada.
The test is carried out without adjustment of pH.
Katse tehakse ilma pH-d muutmata.
The daphnids should not be fed during the test.
Vesikirpe ei tohi katse ajal toita.
The test duration is 48 hours.
Katse kestus on 48 tundi.
Each test vessel should be checked for immobilised daphnids at 24 and 48 hours after the beginning of the test (see Section 1.2 for definitions).
Igas katseanumas tuleb 24 ja 48 tundi pärast katse algust määrata liikumisvõime kaotanud vesikirpude arv (vt punkt 1.2 „Mõisted”).
In addition to immobility, any abnormal behaviour or appearance should be reported.
Lisaks liikumisvõime kaotusele tuleb registreerida kõik normist kõrvalekaldumised käitumises või välimuses.
Analytical measurements
Analüütilised mõõtmised
The dissolved oxygen and pH are measured at the beginning and end of the test in the control(s) and in the highest test substance concentration.
Katse alguses ja lõpus mõõdetakse kontrollkatse(te)s ja kõige kõrgema uuritava aine kontsentratsiooniga lahuses lahustunud hapniku sisaldus ja pH.
The temperature is usually measured in control vessels or in ambient air and it should be recorded preferably continuously during the test or, as a minimum, at the beginning and end of the test.
Temperatuuri mõõdetakse tavaliselt kontrollkatse anumates või ümbritsevas õhus ja see tuleb kirja panna eelistatavalt pidevalt katse käigus või äärmisel juhul vähemalt katse alguses ja lõpus.
The concentration of the test substance should be measured, as a minimum, at the highest and lowest test concentration, at the beginning and end of the test (4).
Uuritava aine kontsentratsioon tuleb mõõta vähemalt kõige kõrgemal ja madalamal kontsentratsioonil katse alguses ja lõpus (viide 4).
It is recommended that results be based on measured concentrations.
On soovitatav, et tulemused põhineksid mõõdetud kontsentratsioonidel.
However, if evidence is available to demonstrate that the concentration of the test substance has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, then the results can be based on nominal or measured initial values.
Ent kui saab tõendada, et uuritava aine kontsentratsioon on katse jooksul rahuldavalt säilinud ± 20 % juures nominaalsest või mõõdetud algkontsentratsioonist, võivad katse tulemused põhineda nominaalsetel või mõõdetud algväärtustel.
LIMIT TEST
PIIRSISALDUSKATSE
Using the procedures described in this Method, a limit test may be performed at 100 mg/l of test substance or up to its limit of solubility in the test medium (whichever is the lower) in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Käesolevat meetodit kasutades võib teha piirsisalduskatse uuritava aine kontsentratsioonil 100 mg/l või katsekeskkonnas lahustuvuse piiril (olenevalt sellest, kumb neist on madalam) ja tõendada nii, et EC50 on kõrgem kui see kontsentratsioon.
The limit test should be performed using 20 daphnids (preferably divided into four groups of five), with the same number in the control(s).
Piirsisalduskatse tegemisel tuleb kasutada 20 vesikirpu (eelistatavalt jaotatuna neljaks viieloomaliseks rühmaks) ja panna sama arv loomi ka kontrollkatse(te)sse.
If any immobilisation occurs, a full study should be conducted.
Kui kas või osagi vesikirpudest kaotab liikumisvõime, tuleb sooritada täielik uuring.
Any observed abnormal behaviour should be recorded.
Iga kõrvalekalle normaalsest käitumisest tuleb registreerida.
Data should be summarised in tabular form, showing for each treatment group and control, the number of daphnids used, immobilisation at each observation.
Andmed tuleb esitada kokkuvõtvas tabelis, näidates iga katse- ja kontrollrühma jaoks kasutatud vesikirpude arvu ja liikumisvõime kaotuse igal vaatlemisel.
The percentages immobilised at 24 hours and 48 hours are plotted against test concentrations.
Koostatakse graafik 24 ja 48 tundi pärast liikumisvõime kaotanud vesikirpude protsendi sõltuvuse kohta uuritava aine kontsentratsiooni.
Data are analysed by appropriate statistical methods (e.g. probit analysis, etc.) to calculate the slopes of the curves and the EC50 with 95 % confidence limits (p = 0,05) (7) (8).
Andmeid analüüsitakse sobivate statistiliste meetoditega (nt probit-analüüs jne), et arvutada kõverate tõusud ja EC50 95 %lised usalduspiirid (p = 0,05) (7, 8).
Where the standard methods of calculating the EC50, are not applicable to the data obtained, the highest concentration causing no immobility and the lowest concentration producing 100 % immobility should be used as an approximation for the EC50 (this being considered the geometric mean of these two concentrations).
Kui saadud andmete puhul ei saa EC50 arvutamise standardmeetodeid rakendada, tuleb EC50 umbkaudseks määramiseks kasutada kõige kõrgemat kontsentratsiooni, mis ei põhjusta liikumisvõime kaotust, ja kõige madalamat kontsentratsiooni, mis põhjustab liikumisvõime kaotuse 100 % (selleks peetakse nende kahe kontsentratsiooni geomeetrilist keskmist).
The test report must include the following:
Katsearuandes esitatakse järgmine teave.
physical nature and relevant physical-chemical properties,
füüsikaline laad ja olulised füüsikalis-keemilised omadused;
chemical identification data, including purity.
andmed keemiliseks identifitseerimiseks, sealhulgas puhtus.
source and species of Daphnia, supplier of source (if known) and the culture conditions used (including source, kind and amount of food, feeding frequency).
Daphnia päritolu ja liik, algne tarnija (kui on teada) ja kasutatud kultuuri tingimused (kaasa arvatud toidu päritolu, tüüp ja kogus, toitmise sagedus).
description of test vessels: type of vessels, volume of solution, number of daphnids per test vessel, number of test vessels (replicates) per concentration,
katseanumate kirjeldus: anumate tüüp, lahuse kogus, vesikirpude arv katseanuma kohta, katseanumate (korduskatsete) arv kontsentratsiooni kohta;
methods of preparation of stock and test solutions including the use of any solvent or dispersants, concentrations used,
põhi- ja katselahuste valmistamise meetodid, kaasa arvatud mis tahes lahustite või dispersantide kasutamine, kasutatud kontsentratsioonid;
details of dilution water: source and water quality characteristics (pH, hardness, Ca/Mg ratio, Na/K ratio, alkalinity, conductivity, etc.); composition of reconstituted water if used,
üksikasjad lahjendamiseks kasutatava vee kohta: vee päritolu ja kvaliteediomadused (pH, karedus, Ca/Mg suhe, Na/K suhe, aluselisus, juhtivus jne); taastatud vee koostis, kui seda kasutati;
incubation conditions: temperature, light intensity and periodicity, dissolved oxygen, pH, etc.
inkubatsioonitingimused: temperatuur, valguse intensiivsus ja valgustamise perioodid, lahustunud hapnik, pH jne.
the number and percentage of daphnids that were immobilised or showed any adverse effects (including abnormal behaviour) in the controls and in each treatment group, at each observation time and a description of the nature of the effects observed,
kontrollkatsetes ja igas katserühmas mis tahes vaatlusajal liikumisvõime kaotanud või kõrvalekaldeid (kaasa arvatud ebanormaalne käitumine) ilmutanud vesikirpude arv ja protsent ning ilmnenud nähtuste kirjeldus;
results and date of test performed with reference substance, if available,
võimaluse korral võrdlusainega tehtud katse tulemused ja kuupäev;
the nominal test concentrations and the result of all analyses to determine the concentration of the test substance in the test vessels; the recovery efficiency of the method and the limit of determination should also be reported,
nominaalsed uuritavad kontsentratsioonid ja kõik tulemused, mis saadi uuritava aine kontsentratsiooni määramisel katseanumas; samuti tuleb teatada määramismeetodi saagis ja määramispiir;
all physical-chemical measurements of temperature, pH and dissolved oxygen made during the test,
kõigi katse ajal tehtud füüsikalis-keemiliste mõõtmiste tulemused: temperatuuri, pH ja lahustunud hapniku väärtused;
the EC50 at 48 h for immobilisation with confidence intervals and graphs of the fitted model used for their calculation, the slopes of the dose-response curves and their standard error; statistical procedures used for determination of EC50; (these data items for immobilisation at 24 h should also be reported when they were measured),
48 tunni pärast koos usaldusintervallidega ja graafik sobitatud mudeli kohta, millest need arvutati, annuse ja toime kõverate tõusud ja nende standardviga; EC50 kindlaksmääramiseks kasutatud statistiline meetod (kui määrati ka liikumisvõime kadu 24 tunni pärast, tuleb esitada ka need andmed);
explanation for any deviation from the Testig Method and whether the deviation affected the test results.
selgitused iga kõrvalekalde kohta katse tegemise eeskirjast ja arutelu, kuivõrd see võis mõjutada katse tulemusi.
Water quality — Determination of the inhibition of the mobility of Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) — Acute toxicity test.
Water quality – Determination of the inhibition of the mobility of Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) – Acute toxicity test.
Ecological Effects Test Guidelines — Aquatic Invertebrate Acute Toxicity Test, Freshwater Daphnids.
Ecological Effects Test Guidelines – Aquatic Invertebrate Acute Toxicity Test, Freshwater Daphnids.
Series on Testing and Assessment.
Series on Testing and Assessment. No.
ASTM STP 634 — American Society for Testing and Materials. p. 65-84
ASTM STP 634 – American Society for Testing and Materials. Pp 65-84
SOME CHEMICAL CHARACTERISTICS OF AN ACCEPTABLE DILUTION WATER
MÕNED AKTSEPTEERITAVA LAHJENDAMISEKS KASUTATAVA VEE KEEMILISED OMADUSED
Particulate matter
Tahked ained osakestena
Total organic carbon
Kogu orgaaniline süsinik
Unionised ammonia
Ammoniaak (ioniseerimata)
Residual chlorine
Jääkkloor
Total organophosphorus pesticides
Fosfororgaaniliste pestitsiidide kogusisaldus
Total organochorine pesticides plus polychlorinated biphenyls
kloororgaaniliste pestitsiidide ja polüklooritud bifenüülide kogusisaldus
Total organic chlorine
Kloori kogusisaldus orgaanilistes ühendites
EXAMPLES OF SUITABLE RECONSTITUTED TEST WATER
SOBIVA TAASTATUD KATSEVEE NÄITED
ISO Test water (1)
SO katsevesi (1)
Stock solutions (single substance)
Põhilahused (üks aine)
To prepare the reconstituted water, add the following volumes of stock solutions to 1 litre water [1]
Taastatud vee valmistamiseks lisada järgmised põhilahuste kogused 1 liitrile veele [1]
Amount added to 1 litre water [1]
1 liitrile veele lisatav kogus [1]
Magnesium sulfate
magneesiumsulfaat
Sodium bicarbonate
naatriumvesinikkarbonaat
Elendt M7 and M4 medium
Elendti keskkonnad M7 ja M4
Acclimation to Elendt M4 and M7 medium
Aklimatiseerimine Elendti keskkondadega M4 ja M7
Some laboratories have experienced difficulty in directly transferring Daphnia to M4 and M7 media.
Mõnes laboris on olnud raskusi vesikirbu otsesel üleviimisel keskkondadesse M4 ja M7.
However, some success has been achieved with gradual acclimation, i.e. moving from own medium to 30 % Elendt, then to 60 % Elendt and then to 100 % Elendt.
Teatavat edu on siiski saavutatud järkjärgulise aklimatiseerimisega, st viimisega oma keskkonnast 30 %lisse, siis 60 %lisse ja seejärel 100 %lisse Elendti keskkonda.
The acclimation periods may need to be as long as one month.
Aklimatiseerumisperioodid võivad olla kuu aja pikkused.
Trace element
Mikroelemendid
Separate stock solutions (I) of individual trace elements are first prepared in water of suitable purity, e.g. deionised, distilled or reverse osmosis.
Individuaalsete mikroelementide põhilahused (I) valmistatakse esmalt sobiva puhtusega vees, st deioniseeritud, destilleeritud või pöördosmoosiga puhastatud vees.
From these different stock solutions (I) a second single stock solution (II) is prepared, which contains all trace elements (combined solution), i.e.:
Nendest põhilahustest (I) valmistatakse järgmine üks põhilahus (II), mis sisaldab kõiki mikroelemente (kombineeritud lahus), st:
Stock solution(s) I (single substance)
I põhilahus(ed) (üks aine)
Amount added to water (mg/l)
Veele lisatav kogus (mg/l)
Concentration (related to medium M4)
Kontsentratsioon (keskkond M4-ga võrreldes)
To prepare the combined stock solution II, add the following amount of stock solution I to water (ml/l)
Kombineeritud II põhilahuse valmistamiseks lisada veele järgmine kogus I põhilahust (ml/l)
MnCl2.4H2O
MnCl2-4H2O
SrCl2.6H2O
SrCl2-6H2O
MoO4.2H2O
Na2MoO4-2H2O
CuCl2.2H2O
CuCl2-2H2O
CoCl2.6H2O
CoCl2-6H2O
EDTA.2H2O
Na2EDTA-2H2O
FeSO4.7H2O
FeSO4-7H2O
Both Na 2 EDTA and FeSO4 solutions are prepared singly, poured together and autoclaved immediately.
ja FeSO4 lahused valmistatakse eraldi, valatakse kokku autoklaavitakse kohe
This gives:
Nii saadakse:
2 l Fe-EDTA solution
2 l Fe-EDTA lahust
and M7 media
Keskkonnad M4 ja M7