natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The area between the growth curves and the horizontal line N = N0 may be calculated according to the formula:
Pindala kasvukõvera ja horisontaaljoone N = N0 vahel võib arvutada järgmise valemi järgi:
A area
A pindala,
number of cells/ml at time t0 (beginning of the test),o,
rakkude arv/ml ajahetkel t0 (katse algul),
measured number of cells/ml at t1
mõõdetud rakkude arv/ml ajahetkel t1
measured number of cells/ml at time
mõõdetud rakkude arv/ml ajahetkel tn,
time of first measurement after beginning of test
esimese mõõtmise aeg katse algusest,
time of nth measurement after beginning of test.
n-nda mõõtmise aeg katse algusest,
n number of measurements taken after the beginning of the test.
n mõõtmiste arv katse algusest alates.
The percentage inhibition of the cell growth at each test substance concentration (IA) is calculated according to the formula:
Rakkude kasvu protsentuaalne pidurdumine testaine igal kontsentratsioonil (IA) arvutatakse järgmise valemi järgi:
area between the control growth curve and the horizontal line N = No.
pindala kasvukõvera ja horisontaaljoone N = N0 vahel kontrollkultuuris,
area between the growth curve at the concentration t and the horizontal line N = No.
pindala kasvukõvera ja horisontaaljoone N = N0 vahel kontsentratsioonil t,
values are plotted on semilogarithmic paper or on semilogarithmic probit paper against the corresponding concentrations. If plotted on probit paper, the points are fitted by a straight line, either by eye or by a computed regression.
väärtuste sõltuvus vastavatest kontsentratsioonidest esitatakse graafiliselt poollogaritmilisel diagrammil või poollogaritmilisel probitdiagrammil.
The EC50 is estimated from the regression line by reading off the concentration that is equivalent to a 50 % inhibition (IA = 50 %). To denote this value unambiguously in relation to this method of calculation, it is proposed to use the symbol EbC50.
Probitdiagrammi kasutamisel tõmmatakse läbi punktide sirge kas silma järgi või arvutatud regressiooni põhjal.
It is essential that the EbC50 is quoted with the appropriate exposure period, e.g. EbC50 (0-72h).
leitakse hinnanguliselt regressioonisirgelt, määrates 50 % pidurdumisele (I = 50 %) vastava kontsentratsiooni. Väärtuse üheseks esitamiseks seostatuna kasutatud arvutusmeetodiga on soovitatav kasutada sümbolit EbC50. On oluline, et EbC50 esitatakse koos vastava kokkupuuteperioodi kestusega, nt EbC50 (0–72 h).
COMPARISON OF GROWTH RATES
KASVUKIIRUSTE VÕRDLEMINE
The average specific growth rate (μ) for exponentially growing cultures can be calculated as
Kasvu keskmise erikiiruse (μ) võib eksponentsiaalselt kasvava kultuuri puhul arvutada järgmiselt
where to is the time at the beginning of the test.
kus t0 on aeg katse alguses.
Alternatively, the average specific growth rate may be derived from the slope of the regression line in a plot of ln N versus time.
Kasvu keskmise erikiiruse (μ) võib leida ka graafiku ln N versus aeg regressioonisirge tõusust.
The percentage inhibition of specific growth rate at each test substance concentration (Iμt) is calculated according to the formula:
Kasvu erikiiruse protsentuaalne pidurdumine testaine igal kontsentratsioonil (Iμt) arvutatakse järgmise valemi järgi:
mean control specific growth rate
kontrollkultuuri kasvu keskmine erikiirus
mean specific growth rate for the test concentration t
kasvu keskmine erikiirus katsekontsentratsioonil t
The percentage reduction in average specific growth rate at each test substance concentration compared to the control value is plotted against the logarithm of the concentration.
Kasvu keskmise erikiiruse protsentuaalne vähenemine testaine igal kontsentratsioonil võrreldes kontrollkultuuri vastava väärtusega esitatakse graafiliselt kontsentratsiooni logaritmi funktsioonina.
The EC5o may be read from the resulting graph.
saab määrata saadud graafikult.
To denote unambiguously the EC50 derived by this method it is proposed to use the symbol ErC50.
Selle meetodi abil leitud EC50 väärtuse üheseks esitamiseks on soovitatav kasutada sümbolit ErC50.
The times of measurement must be indicated, e.g. if the value relates to times 0 and 72 hours, the symbol becomes ErC50 (0-72h).
Näidata tuleb mõõtmise aeg, nt kui väärtus kehtib ajavahemiku 0–72 tundi kohta, on vastav sümbol ErC50 (0–72 h). Märkus.
Note: specific growth rate is a logarithmic term, and small changes in growth rate may lead to great changes in biomass.
Kasvu erikiirus on logaritmiline suurus ja selle väikesed muutused võivad tähendada suuri muutusi biomassis.
EbC and ErC values are therefore not numerically comparable.
EbC ja ErC arvväärtused ei ole seega võrreldavad.
CALCULATION OF THE NOEC
TÄHELDATAVA TOIMETA KONTSENTRATSIOONI (NOEC) ARVUTAMINE
The No Observed Effect Concentration is determined by a suitable statistical procedure for multisample comparison (e.g. analysis of variance and Dunnett's test), using the individual replicates values of the areas under the growth curves A (see point 2.1) or the specific growth rates μ (see point 2.2).
Täheldatava toimeta kontsentratsioon määratakse statistiliselt sobiva mitmese võrdlemise meetodi (nt dispersioonanalüüsi ja Dunnetti testi) abil, kasutades individuaalsete korduskatsete kasvukõvera aluse pindala A (vt punkti 2.1) väärtusi või kasvu erikiiruse (vt punkti 2.2) väärtusi.
test substance: chemical identification data,
uuritav aine: keemilised omadused;
test organisms: origin, laboratory culture, strain number, method of cultivation,
katseorganisme: päritolu, laborikultuuri, tüve numbrit, kultiveerimismeetodit;
date of the start and the end of the test and its duration,
katse algus- ja lõppkuupäeva ning kestust;
temperature,
temperatuuri;
composition of medium,
toitelahuse koostist;
culturing apparatus,
kultiveerimisseadet;
pH of solutions at the start and end of the test (an explanation should be provided if pH deviations of more than 1,5 unit are observed),
lahuste pH väärtusi katse alguses ja lõpus (pH kõikumisel rohkem kui 1,5 ühiku võrra tuleks sellele anda seletus);
vehicle and method used for solubilising the test substance and concentration of the vehicle in the test solutions,
testaine lahustamisel kasutatud kandjat ja meetodit ning kandja kontsentratsiooni katselahustes;
light intensity and quality,
valguse tugevust ja omadusi;
concentrations tested (measured or nominal).
uuritud kontsentratsioone (mõõdetud või nimiväärtusi);
results:
tulemused:
cell density for each flask at each measuring point and method for measuring cell density,
rakkude kontsentratsiooni igas kolvis igas mõõtepunktis ja rakkude kontsentratsiooni määramise meetodit;
mean values of cell density,
rakkude kontsentratsiooni keskmisi väärtusi;
growth curves,
kasvukõveraid;
graphical presentation of the concentration effect relationship,
kontsentratsiooni/mõju graafilist väljendust; EC väärtusi ja vastavaid arvutusmeetodeid;
other observed effects.
muid täheldatud toimeid.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus’, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag „Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus”, in: Rudolph/Boje: Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum.
ISO 8692 – Water quality – Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum.
and M.Vighi — Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Galassi and M. Vighi – Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Example of a procedure for the culturing of algae
Vetikate kultiveerimise meetodi näide
The purpose of culturing on the basis of the following procedure is to obtain algal cultures for toxicity tests.
Järgmises meetodis kultiveeritakse vetikaid mürgisuskatsete jaoks.
Suitable methods should be used to ensure that the algal cultures are not infected with bacteria (ISO 4833).
Vetikakultuuride bakteritega nakatumise vältimiseks tuleb kasutada kohaseid meetodeid (ISO 4833).
Axenic cultures may be desirable but unialgal cultures are essential.
Eelistatav võib olla puhaskultuuride kasutamine, üheliigiliste kultuuride kasutamine on aga nõutav.
All operations should be carried out under sterile conditions in order to avoid contamination with bacteria and, other algae.
Bakterite või teiste vetikaliikidega saastumise vältimiseks tuleb kõik toimingud teha steriilsetes tingimustes.
Contaminated cultures should be rejected.
Saastunud kultuurid tuleks välja praakida.
Procedures for obtaining algal cultures
Vetikakultuuride saamise meetodid
Preparation of nutrient solutions (media):
Toitelahuste (söötmete) valmistamine
the medium can be prepared by diluting concentrated stock solutions of nutrients.
Toitelahused võib valmistada toitainete kontsentreeritud põhilahuste lahjendamisel.
For solid medium, 0,8 % of agar is added.
Tahke söötme saamiseks lisatakse 0,8 % agarit.
The medium used should be sterile.
Kasutatavad toitelahused peavad olema steriilsed.
Sterilisation by autoclaving may lead to a loss of NH3.
Steriliseerimine autoklaavimisel võib põhjustada NH3 kadu.
Stock culture:
Tüvikultuur
the stock cultures are small algal cultures that are regularly transferred to fresh medium to act as initial test material.
Tüvikultuurid on väikesed vetikakultuurid, mida viiakse regulaarselt värskesse söötmesse uue katsematerjali saamiseks.
If the cultures are not used regularly they are streaked out on sloped agar tubes.
Kui kultuure regulaarselt ei kasutata, kantakse need viirgudena längagarile.
These are transferred to fresh medium at least once every two months.
Vähemalt kord kahe kuu jooksul kantakse need üle uuele söötmele.
the stock cultures are grown in conical flasks containing the appropriate medium (volume about 100 ml).
Tüvikultuure kasvatatakse sobiva söötmega koonilistes kolbides (mahuga umbes 100 ml).
When the algae are incubated at 20 oC with continuous illumination, a weekly transfer is required.
Vetikate inkubeerimisel 20 oC ja pideva valgustuse tingimustes tuleb neid iga nädal üle kanda.
During transfer an amount of ‘old’ culture is transferred with sterile pipettes into a flask of fresh medium, so that with the fast-growing species the initial concentration is about 100 times smaller than in the old culture.
Ülekandmise käigus viiakse teatav kogus „vana” kultuuri steriilsete pipettidega värske söötmega kolbi nii, et kiirelt kasvava liigi puhul on algkontsentratsioon umbes 100 korda väiksem kui vanas kultuuris.
the growth rate of a species can be determined from the growth curve.
Liigi kasvukiiruse võib määrata kasvukõveralt.
If this is known, it is possible to estimate the density at which the culture should be transferred to new medium.
Kui see on teada, on võimalik hinnanguliselt määrata kultuuri uude söötmesse viimisel vajalik kontsentratsioon.
This must be done before the culture reaches the death phase.
Seda on vaja teha enne, kui kultuur jõuab suremisfaasi.
Pre-culture:
Eelkultuur
the pre-culture is intended to give an amount of algae suitable for the inoculation of test cultures.
Eelkultuurid on mõeldud katsekultuuride inokuleerimiseks sobiva vetikakoguse saamiseks.
The pre-culture is incubated under the conditions of the test and used when still exponentially growing, normally after an incubation period of about three days.
Eelkultuuri inkubeeritakse katse tingimustes ja kasutatakse siis, kui see veel eksponentsiaalselt kasvab, üldjuhul umbes pärast kolmepäevast inkubatsiooniperioodi.
When the algal cultures contain deformed or abnormal cells, they must be discarded.
Kui vetikakultuur sisaldab moondunud või kõrvalekalletega rakke, tuleb kultuur kõrvaldada.
The ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum reports the following results for an inter-laboratory test among 16 laboratories, testing potassium dichromate:
Dokumendis ISO 8692 – Water quality – Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum esitatakse 16 labori vahel kaaliumdikromaadiga tehtud uuringu kohta järgmised tulemused:
Means (mg/l)
Keskmised (mg/l)
Range (mg/l)
Vahemik (mg/1)
Six test methods are described that permit the screening of chemicals for ready biodegradability in an aerobic aqueous medium:
Kirjeldatakse kuut katsemeetodit, mis sobivad kemikaalide kohese biolagunduvuse sõelkatseteks aeroobses veekeskkonnas:
Dissolved Organic Carbon (DOC) Die-Away (Method C.4-A)
lahustunud orgaanilise süsiniku (DOC) kõrvaldamine (meetod C.4-A);
Modified OECD Screening — DOC Die-Away (Method C.4-B)
muudetud OECD sõelkatse – DOC kõrvaldamine (meetod C.4-B);
Carbon dioxide (CO2) Evolution (Modified Sturm Test) (Method C.4-C)
süsinikdioksiidi (CO2) eraldumine (muudetud Sturmi katse) (meetod C.4-C);
Manometric Respirometry (Method C.4-D)
manomeetriline respiromeetria (meetod C.4-D);
Closed Bottle (Method C.4-E)
kinnise pudeli katse (meetod C.4-E);
MITI (Ministry of International Trade and Industry — Japan) (Method C.4-F)
MITI (Jaapani Väliskaubandus- ja Tööstusministeeriumi) katse (meetod C.4-F).
General and common considerations to all six tests are given in Part I of the method.
Kõigi kuue katse üldpõhimõtted on esitatud meetodi I osas.
Items specific for individual methods are given in Parts II to VII.
Üksikute meetodite spetsiifilised osad on esitatud II–VII osas.
The appendices contain definitions, formulas and guidance material.
Lisades on toodud määratlused, valemid ja suunismaterjalid.
An OECD inter-laboratory comparison exercise, done in 1988, has shown that the methods give consistent results.
a tehtud OECD laboritevaheline võrdluskatse näitas, et nende meetoditega saadakse ühtseid tulemusi.
However, depending on the physical characteristics of the substance to be tested, one or other of the methods may be preferred.
Siiski võib mõni meetod olenevalt aine füüsikalistest omadustest olla eelistatav.
SELECTION OF THE APPROPRIATE METHOD
SOBIVA MEETODI VALIMINE
In order to select the most appropriate method, information on the chemical's solubility, vapour pressure and adsorption characteristics is essential.
Sobivaima meetodi valikul on olulised andmed kemikaali lahustuvuse, aururõhu ja adsorptsiooniomaduste kohta.
The chemical structure or formula should be known in order to calculate theoretical values and/or check measured values of parameters, e.g. ThOD, ThCO2, DOC, TOC, COD (see Appendices 1 and 2).
Teoreetiliste väärtuste arvutamisel ja/või mõõdetud väärtuste, nt ThOD, ThCO2, DOC, TOC, COD (vt 1. ja 2. liide) kontrollimisel on vaja teada aine keemilist struktuuri või valemit.
Test chemicals which are soluble in water to at least 100 mg/l may be assessed by all methods, provided they are non-volatile and non-adsorbing.
Aineid, mille lahustuvus vees on vähemalt 100 mg/ml, võib analüüsida kõigi meetoditega eeldusel, et ained ei ole lenduvad ega adsorbeeruvad.
For those chemicals which are poorly soluble in water, volatile or adsorbing, suitable methods are indicated in Table 1.
Tabelis 1 on märgitud meetodid, mis sobivad vees vähelahustuvate, lenduvate või adsorbeeruvate kemikaalide puhul.
The manner in which poorly water-soluble chemicals and volatile chemicals can be dealt with is described in Appendix 3.
Vees vähelahustuvate ja lenduvate kemikaalide käsitlemisviise on kirjeldatud 3. liites.
Moderately volatile chemicals may be tested by the DOC Die-Away method if there is sufficient gas space in the test vessels (which should be suitably stoppered).
Mõõdukalt lenduvaid kemikaale võib uurida DOC kõrvaldamise katses eeldusel, et katseanumates (mis peaksid olema sobival moel suletud) on küllaldaselt vaba ruumi gaasifaasile.
In this case, an abiotic control must be set up to allow for any physical loss.
Sellisel juhul tuleb füüsikaliste kadude arvessevõtmiseks teha ka abiootiline kontrollkatse.
Applicability of test methods
Katsemeetodite kohaldatavus
Analytical Method
Analüüsimeetod
Suitability for substances which are:
Sobivus ainetele, mis on:
poorly soluble
vähelahustuvad
volatile
lenduvad
adsorbing
adsorbeeruvad
DOC Die-Away
DOC kõrvaldamine
Dissolved organic carbon
Lahustunud orgaaniline süsinik
Mod. OECD Die-Away
Muudetud OECD sõelkatse
Evolution
eraldumine
Respirometry: CO2 evolution
Respiromeetria: CO2 eraldumine
Manometric Respirometry
Manomeetriline respiromeetria
Manometric respirometry: oxygen consumption
Manomeetriline respiromeetria: hapniku tarbimine
Closed Bottle
Kinnise pudeli katse
Respirometry: dissolved oxygen
Respiromeetria: lahustunud hapnik
Respirometry: oxygen consumption
Respiromeetria: hapniku tarbimine
Information on the purity or the relative proportions of major components of the test material is required to interpret the results obtained, especially when the results are low or marginal.
Saadud tulemuste tõlgendamisel on vaja andmeid katsematerjali puhtusastme või põhikomponentide osakaalu kohta, eriti kui tulemused on väikesed või piiripealsed.
Information on the toxicity of the test chemical to bacteria (Appendix 4) may be very useful for selecting appropriate test concentrations and may be essential for the correct interpretation of low biodegradation values.
Andmed uuritava kemikaali mürgisuse kohta bakteritele (IV liide) võivad olla sobivate katsekontsentratsioonide valikul väga kasulikud ja madalate biolagunduvuse väärtuste õigel tõlgendamisel hädavajalikud.
In order to check the procedure, reference chemicals which meet the criteria for ready biodegradability are tested by setting up an appropriate flask in parallel to the normal test runs.
Töövõtete kontrollimiseks tehakse koos tavaliste katsetega sobivas kolvis paralleelkatse kohese biolagunduvuse kriteeriumidele vastavate võrdlusainetega.
Suitable chemicals are aniline (freshly distilled), sodium acetate and sodium benzoate.
Sobivad võrdlusained on aniliin (värskelt destilleeritud), naatriumatsetaat ja naatriumbensoaat.
These reference chemicals all degrade in these methods even when no inoculum is deliberately added.
Võrdlusained lagunevad nende meetodite puhul isegi ilma otseselt inokulaati lisamata.
It was suggested that a reference chemical should be sought which was readily biodegradable but required the addition of an inoculum.
On tehtud ettepanekuid bioloogiliselt kergesti laguneva, kuid inokulaadi lisamist nõudva võrdlusaine otsimiseks.
Potassium hydrogen phthalate has been proposed but more evidence needs to be obtained with this substance before it can be accepted as a reference substance.
Välja on pakutud kaaliumvesinikftalaati, kuid enne selle aine võrdlusainena tunnustamist tuleb selle kohta rohkem andmeid koguda.
In the respirometric tests, nitrogen-containing compounds may affect the oxygen uptake because of nitrification (see Appendices 2 and 5).
Respiromeetrilistes katsetes võivad lämmastikku sisaldavad ühendid nitrifikatsiooni kaudu mõjutada hapniku tarbimist (vt II ja V liidet).
A solution, or suspension, of the test substance in a mineral medium is inoculated and incubated under aerobic conditions in the dark or in diffuse light.
Testaine lahus või suspensioon mineraalses toitelahuses inokuleeritakse ja seda inkubeeritakse aeroobsetes tingimustes pimedas või hajutatud valguse käes.
The amount of DOC in the test solution due to the inoculum should be kept as low as possible compared to the amount of DOC due to the test substance.
Inokulaadist pärit DOC kogus katselahuses tuleks testainest pärit DOC kogusega võrreldes hoida võimalikult madal.
Allowance is made for the endogenous activity of the inoculum by running parallel blank tests with inoculum but without test substance, although the endogenous activity of cells in the presence of the substance will not exactly match that in the endogenous control.
Et arvestada endogeenset aktiivsust inokulaadis, tehakse paralleelne pimekatse inokulaadiga ja ilma testaineta, ehkki endogeenne aktiivsus rakkudes testaine juuresolekul ei ole täpselt identne endogeense kontrollproovi omaga.
A reference substance is run in parallel to check the operation of the procedures.
Töövõtete toimimise kontrolliks tehakse paralleelkatse võrdlusainega.
In general, degradation is followed by the determination of parameters, such as DOC, CO2 production and oxygen uptake, and measurements are taken at sufficiently frequent intervals to allow the identification of the beginning and end of biodegradation.
Üldjuhul jälgitakse lagundamisprotsessi mitmesuguste parameetrite, nagu DOC, CO2 eraldumise ja hapniku tarbimise põhjal ja mõõtmisi tehakse nii sageli, et see võimaldab määrata biolagundamise algust ja lõppu.
With automatic respirometers the measurement is continuous.
Automaatsete respiromeetrite kasutamisel toimub mõõtmine pidevalt.
DOC is sometimes measured in addition to another parameter but this is usually done only at the beginning and the end of the test.
Lisaks mingile muule parameetrile mõõdetakse vahel DOC-d, kuid tavaliselt tehakse seda ainult katse alguses ja lõpus.
Specific chemical analysis can also be used to assess primary degradation of the test substance, and to determine the concentration of any intermediate substances formed (obligatory in the MITI test).
Kasutada võib ka spetsiifilist keemilist analüüsi testaine esmase lagunemise ja mis tahes tekkinud vaheühendite kontsentratsiooni määramiseks (nõutav MITI katses).
Normally, the test lasts for 28 days.
Üldjuhul on katse pikkus 28 päeva.
Tests however may be ended before 28 days, i.e. as soon as the biodegradation curve has reached a plateau for at least three determinations.
Katsed võib siiski lõpetada enne 28 päeva möödumist, st kohe, kui biolagundamise graafik on jõudnud platooni ja jäänud sinna vähemalt kolmeks mõõtmiseks.
Tests may also be prolonged beyond 28 days when the curve shows that biodegradation has started but that the plateau has not been reached day 28.
Katseid võib pikendada ka pikemaks kui 28 päeva, kui graafik näitab, et biolagundumine on alanud, kuid platooni ei ole 28 päeva jooksul jõutud.
Because of the nature of biodegradation and of the mixed bacterial populations used as inocula, determinations should be carried out at least in duplicate.
Biodegradatsiooni ja inokulaadina kasutatud bakteripopulatsioonide iseloomu tõttu tuleks kõiki määramisi teha vähemalt kahe paralleelina.
It is common experience that the larger the concentration of micro-organisms initially added to the test medium, the smaller will be the variation between replicates.
Kogemus näitab, et mida suurem on katsekeskkonda lisatud mikroorganismide kontsentratsioon, seda väiksemad on korduskatsete vahelised erinevused.
Ring tests have also shown that there can be large variations between results obtained by different laboratories, but good agreement is normally obtained with easily biodegradable compounds.
Laboritevahelised võrdlused on näidanud ka seda, et eri laborites saadud tulemused võivad erineda üsna palju, kuid tavaliselt saadakse hea biolagunduvusega ühendite puhul üsna sarnased tulemused.
Validity of the test
Katse kehtivus
A test is considered valid if the difference of extremes of replicate values of the removal of test chemical at the plateau, at the end of the test or at the end of the 10-day window, as appropriate, is less than 20 % and if the percentage degradation of the reference substance has reached the level for ready biodegradability by 14 days.
Katse loetakse kehtivaks, kui uuritava kemikaali kõrvaldamisparameetri kordusväärtuste suurim erinevus platool ja katse lõpus või kümnepäevase akna lõpus on väiksem kui 20 % ja kui võrdlusaine protsentuaalne lagunemine on 14 päeva jooksul jõudnud kohese biolagunduvuse määrani.
If either of these conditions is not met, the test should be repeated.
Kui kas või üks neist tingimustest ei ole täidetud, tuleb katset korrata.
Because of the stringency of the methods, low values do not necessarily mean that the test substance is not biodegradable under environmental conditions, but indicates that more work will be necessary to establish biodegradability.
Meetodite piiratuse tõttu ei tähenda madalad väärtused tingimata seda, et testaine keskkonnas bioloogiliselt ei lagune, küll aga seda, et biolagunduvuse määramine nõuab rohkem tööd.