natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The ranges of concentrations of a chemical tested in the presence (+Irr) and in the absence (-Irr) of light should be adequately determined in dose range-finding experiments.
Annuse vahemiku määramise eelkatsetes määratakse uuritava aine kontsentratsiooni vahemik, mida kasutatakse kõnealuse aine toime uurimiseks valgustatud (+Irr) ja pimedas hoitud (–Irr) katsetes.
The highest concentration of the test substance should be within physiological test conditions, e.g. osmotic and pH stress should be avoided.
Uuritava aine suurim kontsentratsioon peaks jääma füsioloogiliste katsetingimuste piiridesse, tuleks vältida rakkude osmootset või pH-stressi.
Depending on the test chemical, it may be necessary to consider other physico-chemical properties as factors limiting the highest test concentration.
Konkreetse uuritava kemikaali puhul võib osutuda vajalikuks võtta arvesse muid füüsikalisi ja keemilisi omadusi, mis võivat piirata uuritava aine kontsentratsiooni suurendamist katses.
For relatively insoluble substances that are not toxic at concentrations up to the saturation point the highest achievable concentration should be tested.
Raskesti lahustuvate ainete puhul, mis ei ole kuni lahustuvuse piirini toksilised, tuleks uurida kõige kõrgemat kontsentratsiooni, mida on võimalik saavutada.
In general, precipitation of the test chemical at any of the test concentrations should be avoided.
Üldiselt ei tohiks uuritav kemikaal sadeneda ühelgi uuritaval kontsentratsioonil.
The maximum concentration of a test substance should not exceed 1000 μg/mL; osmolarity should not exceed 10 mmolar.
Uuritava aine maksimaalne kontsentratsioon ei tohiks ületada 1000 μg/ml; osmolaarsus ei tohiks olla suurem kui 10 mmol/l.
A geometric dilution series of eight test substance concentrations with a constant dilution factor should be used (See Section 2.1, second paragraph).
Tuleks kasutada kaheksat lahust uuritava aine kontsentratsioonidega, mis moodustavad konstantse lahjendusteguriga geomeetrilise jada (vt punkti 2.1 teist lõiku).
If there is information (from a range finding experiment) that the test chemical is not cytotoxic up to the limit concentration in the dark experiment (-Irr), but is highly cytotoxic when irradiated (+Irr), the concentration ranges to be selected for the (+Irr) experiment may differ from those selected for the (-Irr) experiment to fulfill the requirement of adequate data quality.
Kui annuse vahemiku kindlakstegemise katse näitas, et uuritav kemikaal ei ole kuni kõrgeima kontsentratsioonini tsütotoksiline pimedas (–Irr), kuid on väga tsütotoksiline kiiritatuna (+Irr), võivad (+Irr) katseteks valitavad kontsentratsioonid erineda nendest, mis valitakse (–Irr) katseteks, et saadavad andmed oleksid nõutava kvaliteediga.
Radiation sensitivity of the cells, establishing of historical data:
Rakkude kiirgustundlikkus: varasema arengu andmete kindlakstegemine:
Cells should be checked regularly (about every fifth passage) for sensitivity to the light source by assessing their viability following exposure to increasing doses of irradiation.
Rakkudel tuleb regulaarselt (umbes iga viienda passaaži järel) kontrollida tundlikkust valgusallika suhtes, hinnates nende elujõulisust pärast nende kokkupuudet suurenevate kiirgusdoosidega.
Several doses of irradiation, including levels substantially greater than those used for the 3T3 NRU Phototoxicity test should be used in this assessment.
Kõnealuse hindamise puhul tuleks kasutada mitut kiiritusannust, sealhulgas annuseid, mis on palju suuremad 3T3 NRU fototoksilisuse katses kasutatavatest.
These doses are easiest quantitated by measurements of UV parts of the light source.
Nende dooside suurust on kõige kergem määrata valgusallika spektri UV-osade mõõtmistega.
Cells are seeded at the density used in the in vitro 3T3 NRU phototoxicity test and irradiated the next day.
Rakud külvatakse tihedusel, mida kasutatakse in vitro 3T3 NRU fototoksilisuse katses, ja neid kiiritatakse järgmisel päeval.
Cell viability is then determined one day later using Neutral Red uptake.
Rakkude elujõulisus määratakse veel üks päev hiljem neutraalpunase sidumise järgi.
It should be demonstrated that the resulting highest non-cytotoxic dose (e.g. in the validation study: 5 J/cm2 [UVA]) was sufficient to classify the reference chemicals (Table 1) correctly.
Tuleb tõendada, et tulemuseks saadud suurim mittetsütotoksiline annus (näiteks valideerimisel: 5 J/cm2 [UVA]) oli piisav võrdluskemikaalide (tabel 1) õigeks klassifitseerimiseks.
Radiation sensitivity, check of current test:
Kiirgustundlikkus: jooksva katse kontroll
The test meets the quality criteria if the irradiated negative/solvent controls show a viability of more than 80 % when compared with non-irradiated negative/solvent.
Katse vastab kvaliteedikriteeriumidele, kui kiiritatud negatiivsetes või lahusti kontrollproovides on rakkudel alles üle 80 % elujõulisusest, võrrelduna mittekiiritatud negatiivsete või lahusti kontrollproovidega.
Viability of solvent controls:
Lahusti kontrollproovide elujõulisus
The absolute optical density (OD540 NRU) of the Neutral Red extracted from the solvent controls indicates whether the 1×104 cells seeded per well have grown with a normal doubling time during the two days of the assay.
Lahusti kontrollproovidest eraldatud neutraalpunase absoluutne optiline tihedus (OD540 Nru) näitab, kas igasse süvendisse külvatud 1 × 104 rakku on kasvanud normaalse kahekordistumisajaga analüüsi kahe päeva jooksul.
A test meets the acceptance criteria if the mean OD540 NRU of the untreated controls is ≥ 0,4 (i.e. approximately 20 times the background solvent absorbance).
Katse vastab nõuetekohasuse tingimustele, kui töötlemata kontrollide keskmine OD540 Nru on > 0,4 (st umbes 20 korda suurem lahusti taustneeldumisest).
Positive control:
Positiivne kontrollproov
A known phototoxic chemical shall be tested concurrently with each in vitro 3T3 NRU phototoxicity test.
Teadaolevat fototoksilist kemikaali katsetatakse samaaegselt iga in vitro 3T3 NRU fototoksilisuse katsega.
Chlorpromazine (CPZ) is recommended.
Selleks soovitatakse kloorpromasiini (CPZ).
For CPZ tested with the standard protocol in the in vitro 3T3 NRU phototoxicity test, the following test acceptance criteria were defined: CPZ irradiated (+Irr): IC50 = 0,1 to 2,0 μg/ml, CPZ non-irradiated (-Irr): IC50 = 7,0 to 90,0 μg/mL.
Standardeeskirja järgi in vitro 3T3 NRU fototoksilisuse katses uuritud CPZ puhul määrati järgmised katse nõuetekohasuse tingimused: kiiritatud (+Irr) CPZ: IC50 = 0,1–2,0 μg/ml, mittekiiritatud (–Irr) CPZ: IC50 = 7,0–90,0 μg/ml.
The Photo Irritation Factor (PIF), should be > 6.
Fotoärrituvustegur (PIF) peaks olema > 6.
The historical performance of the positive control should be monitored.
Jälgida tuleks positiivse kontrolli varasemat tegemist.
Other phototoxic chemicals, suitable for the chemical class or solubility characteristics of the chemical being evaluated, may be used as the concurrent positive controls in place of chlorpromazine.
Kloorpromasiini asemel võib samaaegsete positiivsete kontrollproovidena kasutada muid fototoksilisi kemikaale, mis kuuluvad uuritava kemikaaliga ühte kemikaalide klassi või on sarnase lahustuvusega.
Test procedure (6)(7)(8)(16)(17):
Katse käik (6–8, 16 ja 17):
day:
Kolmas päev
Dispense 100 μL culture medium into the peripheral wells of a 96-well tissue culture microtiter plate (= blanks).
96 süvendiga koekultuuri mikrotiiterplaadi välimistesse süvenditesse kantakse 100 μl kasvukeskkonda (pimekatse).
In the remaining wells, dispense 100 μL of a cell suspension of 1×105 cells/mL in culture medium (= 1×104 cells/well).
Ülejäänud süvenditesse kantakse 100 μl rakususpensiooni kontsentratsiooniga 1 × 105 rakku kasvukeskkonna milliliitris (see tähendab 1 × 104 rakku süvendi kohta).
Two plates should be prepared for each series of individual test substance concentrations, and for the solvent and positive controls.
Uuritava aine iga kontsentratsiooniseeria jaoks ning lahusti- ja positiivse kontrolli jaoks tuleks ette valmistada kaks plaati.
Incubate cells for 24 h (See Section 1.4.1.2) until they form a half confluent monolayer.
Rakke inkubeeritakse 24 tunni jooksul (vt punkti 1.4.1.2), kuni need moodustavad pooleldi laatunud monokihi.
This incubation period allows for cell recovery, adherence, and exponential growth.
Kõnealune inkubeerimisperiood võimaldab rakkudel taastuda, kinnituda põhjale ja eksponentsiaalselt kasvada.
After incubation, decant culture medium from the cells and wash carefully with 150 μL of the buffered solution used for incubation.
Pärast inkubeerimist dekanteeritakse kasvukeskkond rakkudelt ja rakke pestakse hoolikalt 150 μl inkubeerimiseks kasutatud puhverlahusega.
Add 100 μL of the buffer containing the appropriate concentration of test chemical or solvent (solvent control).
Lisatakse 100 μl puhverlahust, mis sisaldab vajalikus kontsentratsioonis uuritavat kemikaali või lahustit (lahustiga kontrollproov).
Apply eight different concentrations of the test chemical.
Kasutatakse uuritava kemikaali 8 kontsentratsiooni.
Incubate cells with the test substance in the dark for 60 minutes (See Section 1.4.1.2 and 1.4.1.4 second paragraph).
Rakke inkubeeritakse uuritava ainega pimedas 60 minutit (vt punkti 1.4.1.2 ja punkti 1.4.1.4 teist lõiku).
From the two plates prepared for each series of test substance concentrations and the controls, one is selected, generally at random, for the determination of cytotoxicity (-Irr) (i.e., the control plate), and one (the treatment plate) for the determination of photocytotoxicity (+Irr).
Kahest plaadist, mis on ette valmistatud uuritava aine iga kontsentratsiooni ja kontrollproovide seeria jaoks, valitakse üks, tavaliselt juhuslikkuse alusel, tsütotoksilisuse (–Irr) määramiseks (see on kontrollplaat) ja teine fototsütotoksilisuse (+Irr) määramiseks (uuritav plaat).
To perform the +Irr exposure, irradiate the cells at room temperature for 50 minutes through the lid of the 96-well plate with the highest dose of radiation that is non-cytotoxic (see also Appendix 2).
Katse +Irr-osa läbiviimiseks kiiritatakse rakke toatemperatuuril 50 minutit läbi 96 süvendiga plaadi kaane suurima kiiritusdoosiga, millel ei ole veel tsütotoksilist mõju (vt ka lisa 2).
Keep non-irradiated plates (-Irr) at room temperature in a dark box for 50 min (= light exposure time).
Kiiritamata plaate (–Irr) hoitakse toatemperatuuril 50 minutit (s.o kogu kiiritamise aja) pimedas kastis.
Decant test solution and carefully wash twice with 150 μL of the buffered solution used for incubation, but not containing the test material.
Katselahus dekanteeritakse ja rakke pestakse hoolikalt kaks korda 150 μ1 inkubeerimiseks kasutatud, kuid uuritavat ainet mitte sisaldava puhverlahusega.
Replace the buffer with culture medium and incubate (See Section 1.4.1.2.) overnight (18-22 h).
Puhverlahus asendatakse kasvukeskkonnaga ja inkubeeritakse (vt punkti 1.4.1.2) hommikuni (18–22 tundi).
Microscopic evaluation
Uurimine mikroskoobiga
Cells should be examined for growth, morphology, and integrity of the monolayer using a phase contrast microscope.
Rakke vaadeldakse kasvu, morfoloogia ja monokihi terviklikkuse hindamiseks faasikontrastmikroskoobiga.
Changes in cell morphology and effects on cell growth should be recorded.
Märgitakse üles kõik muutused rakkude morfoloogias ja mõjud rakkude kasvule.
Neutral Red uptake test
Neutraalpunase sidumise katse
Wash the cells with 150 μL of the pre-warmed buffer.
Rakke pestakse 150 μl eelsoojendatud puhvriga.
Remove the washing solution by gentle tapping.
Pesemislahus eemaldatakse ettevaatliku koputamisega.
Add 100 μL of a 50 μg/mL Neutral Red (NR) (3-amino-7-dimethylamino-2-methylphenazine hydrochloride, EINECS number 209-035-8; CAS number 553-24-2; C.I.
Lisatakse 100 μl neutraalpunase (3-amino-7-dimetüülamino-2-metüülfenasiinhüdrokloriid, EINECSi number 209-035-8; CASi number 553-24-2; C.I.
in medium without serum (16) and incubate as described in paragraph 1.4.1.2., for 3 h. After incubation, remove the NR medium, and wash cells with 150 μL of the buffer.
lahust kontsentratsiooniga 50 μg/ml seerumit mittesisaldavas keskkonnas (16) ja inkubeeritakse 3 tundi, nagu on kirjeldatud punktis 1.4.1.2. Pärast inkubeerimist eemaldatakse neutraalpunase keskkond ja rakke pestakse 150 μl puhverlahusega.
Decant and remove excess buffer by blotting or centrifugation.
Liigne puhver dekanteeritakse ja eemaldatakse kuivatamise või tsentrifuugimisega.
Add exactly 150 μL NR desorb solution (freshly prepared 49 parts water + 50 parts ethanol + 1 part acetic acid).
Lisatakse täpselt 150 μl neutraalpunase desorbeerimislahust (mis on värskelt valmistatud 49 osast veest, 50 osast etanoolist ja 1 osast äädikhappest).
Shake the microtiter plate gently on a microtiter plate shaker for 10 min until NR has been extracted from the cells and has formed a homogeneous solution.
Mikrotiiterplaati loksutatakse ettevaatlikult mikrotiiterplaadi loksutil 10 minutit, kuni neutraalpunane on väljunud rakkudest ja moodustanud homogeense lahuse.
Measure the optical density of the NR extract at 540 nm in a spectrophotometer, using blanks as a reference.
Spektrofotomeetriga mõõdetakse neutraalpunase ekstrakti optiline tihedus 540 nm jumes, kasutades võrdlusena pimekatse süvendeid.
Save data in an appropriate electronic file format for subsequent analysis.
Andmed salvestatakse sobivas elektroonilise faili formaadis edaspidiseks analüüsiks.
QUALITY AND QUANTITY OF DATA
ANDMETE KVALITEET JA HULK
The test data should allow a meaningful analysis of the concentration-response obtained in the presence and in the absence of irradiation, and if possible the concentration of test chemical by which cell viability is reduced to 50 % (IC50).
Katseandmete alusel peaks saama analüüsida kiiritatud ja kiiritamata proovides avaldunud mõju sõltuvust kontsentratsioonist ja võimaluse korral määrata uuritava kemikaali kontsentratsioon, millel rakkude elujõulisus väheneb 50 % (IC50).
If cytotoxicity is found, both the concentration range and the intercept of individual concentrations shall be set in a way to allow the fit of a curve to the experimental data.
Tsütotoksilisuse esinemisel valitakse nii kontsentratsioonide vahemik kui ka üksikud kontsentratsioonid selliselt, et sõltuvust saaks sobitada katseandmetega.
For both clearly positive and clearly negative results (See Section 2.3, first paragraph), the primary experiment, supported by one or more preliminary dose range-finding experiment(s), may be sufficient.
Nii selgelt positiivsete kui ka selgelt negatiivsete tulemuste (vt punkti 2.3 esimest lõiku) puhul võib piisata esmasest katsest, millele on toeks üks või mitu annuste vahemiku määramiseks tehtud eelkatset.
Equivocal, borderline, or unclear results should be clarified by further testing (see also section 2.4, second paragraph).
Raskesti tõlgendatavat, piiripealset või ebaselget tulemust tuleks selgitada edasiste katsete abil (vt ka punkt 2.4 teine lõik).
In such cases, modification of experimental conditions should be considered.
Sel juhul tuleks kaaluda katsetingimuste muutmist.
Experimental conditions that might be modified include the concentration range or spacing, the pre-incubation time, and the irradiation-exposure time.
Katsetingimustes võib muuta kontsentratsioone või nende intervalle, inkubeerimiseelset aega ja kiiritamisaega.
A shorter exposure time may be appropriate for water-unstable chemicals.
Vees ebapüsivate kemikaalide puhul võib sobida lühem kokkupuuteaeg.
To enable evaluation of the data, a Photo-Irritation-Factor (PIF) or Mean Photo Effect (MPE) may be calculated.
Andmete hindamise võimaldamiseks võib arvutada fotoärrituvusteguri (Photo-Irritation-Factor, PIF) või keskmise fotoefekti (Mean Photo Effect, MPE).
For the calculation of the measures of photocytotoxicity (see below) the set of discrete concentration-response values has to be approximated by an appropriate continuous concentration-response curve (model).
Fototsütotoksilisuse näitajate arvutamiseks (vt allpool) on vaja lähendamisega panna läbi kontsentratsiooni ja mõju määratud väärtuste mingi sobiv pidev kontsentratsiooni-mõju kõver (mudel).
Fitting of the curve to the data is commonly performed by a non-linear regression method (18).
Kõvera sobitamine andmetega toimub tavaliselt mittelineaarse regressiooni meetodil (18).
To assess the influence of data variability on the fitted curve a bootstrap procedure is recommended.
Selleks et hinnata, kuidas andmete varieerumus mõjutab sobitatud kõvera parameetreid, soovitatakse kasutada bootstrap-meetodit.
A Photo-Irritation-Factor (PIF) is calculated using the following formula:
Fotoärrituvustegur (PIF) arvutatakse järgmise valemi abil:
If an IC50 in the presence or absence of light cannot be calculated, a PIF cannot be determined for the test material.
(+Irr)
The mean photo effect (MPE) is based on comparison of the complete concentration-response curves (19).
Kui kiiritatud või kiiritamata proovides ei saa IC50 arvutada, siis ei saa katsematerjali PIFi määrata.Keskmine fotoefekt (MPE) põhineb täielike kontsentratsiooni-mõju sõltuvuste võrdlemisel (19).
The photo effect PEc at any concentration C is defined as the product of the response effect REc and the dose effect DEc i.e. PEc = REc × DEc. The response effect REc is the difference between the responses observed in the absence and presence of light, i.e. REc = Rc (-Irr) - Rc (+Irr).
Fotoefekt PEC igal kontsentratsioonil C on võrdne mõjuefekti REC ja annuseefekti DEC korrutisega s.t PEc = REc × DEC. Mõjuefekt REC on kiiritatud ja kiiritamata proovides avaldunud mõju vahe, s.t REc = Rc (—Irr) – Rc (+Irr).
The dose-effect is given by
Annuseefekt leitakse järgmiselt:
where C* represents the equivalence concentration, i.e. the concentration at which the +Irr response equals the –Irr response at concentration C. If C* cannot be determined because the response values of the +Irr curve are systematically higher or lower than RC(-Irr) the dose effect is set to 1.
kus C* on ekvivalentsuskontsentratsioon, s.o kontsentratsioon, mille puhul +Irr-mõju võrdub –Irr-mõjuga kontsentratsioonil C. Kui C* ei ole võimalik määrata, kuna mõju väärtused +Irr-kõveral on süstemaatiliselt kõrgemad või madalamad kui Rc(–Irr), loetakse annuseefekt võrdseks ühega.
The weighting factors wi are given by the highest response value, i.e. wi = MAX Ri (+Irr), Ri (-Irr) .
Kaalutegurid Wi on määratud kõrgeima mõju väärtusega, st Wi = MAX Ri (+Irr), Ri (–Irr) .
The concentration grid Ci is chosen such that the same number of points falls into each of the concentration intervals defined by the concentration values used in the experiment.
Kontsentratsioonide võrk Ci valitakse nii, et ühepalju punkte langeks igasse kontsentratsiooniintervalli, mis on määratud katses kasutatud kontsentratsiooni väärtustega.
The calculation of MPE is restricted to the maximum concentration value at which at least one of the two curves still exhibits a response value of at least 10 %.
MPE arvutamine on piiratud maksimaalse kontsentratsiooni väärtusega, mille puhul vähemalt ühel kahest kõverast on veel näha vähemalt 10 %list mõju.
If this maximum concentration is higher than the highest concentration used in the +Irr experiment the residual part of the +Irr curve is set to the response value ‘0’.
Kui see maksimaalne kontsentratsioon on kõrgem kui +Irr-katses kasutatud kõrgeim kontsentratsioon, loetakse +Irr-kõvera ülejäänud osas mõju väärtus võrdseks nulliga.
Depending on whether the MPE value is larger than a properly chosen cut-off value (MPEc = 0,15) or not, the chemical is classified as phototoxic.
Sõltuvalt sellest, kas MPE väärtus on suurem kui nõuetekohaselt valitud piirväärtus (MPEc = 0,15) või mitte, liigitatakse kemikaal fototoksiliseks.
A software package for the calculation of the PIF and MPE is available from (20).
Tarkvarapaketi PIF ja MPE arvutamiseks võib leida viite 20 veebilehel.
Based on the validation study (8), a test substance with a PIF < 2 or an MPE < 0,1 predicts: ‘no phototoxicity’.
Valideerimisuuringu (8) põhjal võib öelda, et uuritava aine PIF < 2 või MPE < 0,1 puhul võib ennustada, et aine ei ole fototoksiline.
A PIF > 2 and < 5 or an MPE > 0,1 and < 0,15 predicts: ‘probable phototoxicity’; and a PIF > 5 or an MPE > 0,15 predicts: ‘phototoxicity’.
Kui PIF > 2 ja < 5 või MPE > 0,1 ja < 0,15, siis on võimalik, et aine on fototoksiline; kui PIF > 5 või MPE > 0,15, siis võib ennustada, et aine on fototoksiline.
For any laboratory initially establishing this assay, the reference materials listed in Table 1 should be tested prior to the testing of test substances for phototoxic assessment.
Igas laboris, kus seda analüüsi esmakordselt läbi viiakse, tuleks enne uuritavate ainete fototoksilisuse hindamisele asumist mõõta tabelis 1 osutatud etalonaineid.
PIF or MPE values should be close to the values mentioned in Table 1.
Leitavad PM või MPE väärtused peaksid olema lähedased tabelis 1 esitatud väärtustele.
Absorption peak
Neeldumismaksimum
Solvent [9]
Lahusti [9]
Amiodarone HCL
amiodaroon HCL
(shoulder)
(õlg)
Choloropromazine HCL
kloorpromasiin HCL
acetonitrile
atsetonitriil
Protoporphyrin IX, Disodium
Dinaatriumprotoporfüriin IX
no PIF
PIFi ei esine
Hexacholorophene
heksaklorofeen
Sodium lauryl sulphate
naatriumlaurüülsulfaat
no absorption
neeldumist ei esine
INTERPRETATION OF DATA
ANDMETE TÕLGENDAMINE
If phototoxic effects are observed only at the highest test concentration, (especially for water soluble test chemicals) additional considerations may be necessary for assessment of hazard.
Kui fototoksiline mõju avaldub ainult kõige kõrgemal uuritud kontsentratsioonil (eriti vees lahustuvate uuritavate ainete puhul), tuleb ohu hindamisel lisaks arvestada veel muid asjaolusid.
These may include data on skin absorption, and accumulation of the chemical in the skin and/or data from other tests, e.g. testing of the chemical in in vitro animal or human skin, or skin models.
Nende hulka võivad kuuluda neeldumine nahas ja kemikaali kogunemine nahas ning muude katsete andmed, näiteks uuringud, kuidas kemikaal mõjub looma või inimese nahale in vitro või naha mudelitele.
If no toxicity is demonstrated (+Irr and -Irr), and if poor solubility limited the concentrations that could be tested, then the compatibility of the test substance with the assay may be questioned and confirmatory testing should be considered using, e.g. another model.
Kui toksilisust ei ilmne (+Irr ja –Irr) ja kui halb lahustuvus ei luba uurida kõrgemaid kontsentratsioone, võib küsida, kas käesolev meetod sobib aine uurimiseks; sel juhul tuleb kaaluda kinnitavate uuringute läbiviimist, näiteks teise mudeliga.
The test report must include at least the following information:
Katsearuandes tuleks esitada vähemalt järgmine teave.
identification data, common generic names and IUPAC and CAS number, if known,
andmed aine määratlemiseks, tavanimetused ning IUPACi ja CASi numbrid, kui need on teada;
physical nature and purity,
füüsikaline olek ja puhtus;
physicochemical properties relevant to conduct of the study,
uuringu tegemisel olulised füüsikalis-keemilised omadused;
UV/vis absorption spectrum,
UV/nähtava valguse neeldumisspekter;
stability and photostability, if known.
stabiilsus ja fotostabiilsus, kui need on teada.
justification for choice of solvent,
lahusti valiku põhjendus;
solubility of the test chemical in solvent,
uuritava kemikaali lahustuvus lahustis;
percentage of solvent present in treatment medium.
lahusti protsendiline sisaldus töötlemiskeskkonnas.
absence of mycoplasma,
mükoplasma puudumine;
cell passage number, if known,
raku passaaži number, kui see on teada;
Radiation sensitivity of cells, determined with the irradiation equipment used in the in vitro 3T3 NRU phototoxicity test.
rakkude kiirgustundlikkus, mis on määratud kiiritusseadmete abil, mida kasutatakse in vitro 3T3 NRU fototoksilisuse katses.
Test conditions (1); incubation before and after treatment:
Katse tingimused (1): inkubeerimine enne ja pärast töötlust:
type and composition of culture medium,
kasvukeskkonna tüüp ja koostis;
incubation conditions (CO2 concentration; temperature; humidity),
inkubeerimistingimused (CO2 kontsentratsioon, temperatuur, niiskus);
duration of incubation (pre-treatment; post-treatment).
inkubeerimise kestus (enne töötlust, pärast töötlust).
Test conditions (2); treatment with the chemical:
Katse tingimused (2): töötlemine kemikaaliga: