natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Diagnosis is only completed if C. m. subsp. sepedonicus is isolated, subsequently identified (see section 9). and confirmed by a pathogenicity test (section 10).
Diagnoosi saab lõplikult panna ainult siis, kui bakter C. m. subsp. sepedonicus on isoleeritud, seejärel kindlaks määratud (vt punkti 9) ja kinnitatud patogeensusanalüüsiga (punkt 10).
Although C. m. subsp. sepedonicus is a fastidious organism, it can be isolated from symptomatic tissue.
Kuigi C. m. subsp. sepedonicus on nõudlik organism, saab seda isoleerida sümptomaatilisest koest.
However, it may be outgrown by rapidly growing saprophytic bacteria and, therefore, isolations directly from the tuber or stem tissue pellet (section 3.1.6 or 3.2.5) is difficult.
Siiski võivad bakterist C. m. subsp. sepedonicus üle kasvada kiiresti kasvavad saprofüütbakterid ning seega on raske isoleerida otse mugula koe bakterisademest (punkt 3.1.6 või 3.2.5).
With selective medium and appropriate dilution of the resuspended pellet from the heel end cores or stems of potatoes direct isolation of C. m. subsp. sepedonicus may be possible.
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus otsene isoleerimine võib olla võimalik, kui kasutada selektiivsöödet ja kartuli basaalsetest tipusüdamikest või vartest saadud resuspendeeritud bakterisademe kohast lahjendust.
Isolations shall be made from all symptomatic potato tubers or stem segments and from eggplants were no symptoms are observed but IF/PCR test from the composite sample was positive (see section 7.10).
Isoleerimine tehakse kõigist sümptomitega kartulimugulatest või varreosadest ja baklažaanidest, millel ei ilmne sümptomeid, kuid mille liitproovi IF/PCR-analüüs oli positiivne (vt punkti 7.10).
Maceration of eggplants stems when necessary should be carried out as described in section 3.1.3.
Baklažaanivarte leotamine tuleb vajaduse korral läbi viia vastavalt punktile 3.1.3.
As positive controls, prepare decimal dilutions from a suspension of 106 cfu per ml of C. m. subsp. sepedonicus (e.g. NCPPB 4053 or PD 406).
Positiivsete kontrollidena valmistatakse ette kümnendlahjendused bakteri C. m. subsp. sepedonicus (näiteks NCPPB 4053 või PD 406) suspensioonist, milles on 106 kolooniaid moodustavat osakest milliliitris.
To avoid any possibility of contamination, prepare positive controls totally separated from samples to be tested.
Igasuguse saastumise vältimiseks valmistatakse positiivsed kontrollid analüüsitavatest proovidest täiesti eraldi.
For each newly prepared batch of a selective medium its suitability for growth of the pathogen should be tested before it is used to test routine samples.
Iga uuesti valmistatud selektiivsöötme partii kõlblikkust patogeeni kasvatamiseks tuleks enne tavaproovide analüüsimist kontrollida.
Selective plating
Selektiivsöötmele väljakülvamine
From a 100 µl aliquot from a resuspended potato pellet sample or eggplant sap make 10-fold dilutions in pellet buffer (Appendix 3).
Kartuli resuspendeeritud bakterisademe või baklažaani mahla 100 µl alikvoodist tehakse bakterisademe puhvris kümnekordsed lahjendused (3. liide).
Isolation from undiluted potato pellet usually fails due to the fastidious growth habit of Cms and competition by saprophytes.
Kartuli lahjendamata bakterisademest isoleerimine tavaliselt ebaõnnestub, sest bakter C. m. subsp. sepedonicus on kasvutingimuste suhtes nõudlik ja saprofüüdid võistlevad sellega.
Since the bacterium is usually present in high populations in infected tissues, the saprophytes can usually be diluted out, whilst the pathogen remains.
Kuna bakter on tavaliselt suurte populatsioonidena nakatunud kudedes olemas, saab saprofüüdid tavaliselt välja lahjendada, kuid patogeen jääb alles.
It is therefore recommended to spread 100 µl from each of the samples, 1/100 up to 1/10000 dilutions onto MTNA medium or NCP-88 medium (Appendix 5) (if using 90 mm diameter petri dishes- adjust volume for alternative dish sizes), using spreaders (hockey sticks) and the spread plate technique.
Seetõttu soovitatakse laiali külvata igast proovist 100 µl, 1/100 kuni 1/10000 lahjendused MTNA-söötmele või NCP-88-söötmele (5. liide) (kui kasutatakse 90 mm diameetriga Petri tasse; muude tassisuuruste puhul kohandatakse kogust), kasutades spaatlit (hokikepikujulist) ja söötmeplaadile laialikülvamise meetodit.
An alternative strategy is to spread out the initial 100 µl potato pellet aliquot onto a first agar plate with a spreader and then remove the spreader to a second agar plate, streaking out any residue left on the spreader; finally repeat this with a third plate, thus giving a dilution plating effect via the spreader.
Alternatiivseks võimaluseks on laiali külvata 100 µl esialgset kartuli bakterisademe alikvooti esimesele agariplaadile spaatliga ning seejärel viia spaatel teisele agariplaadile, tõmmates sellele spaatlile jäänud jäägid; lõpuks korratakse seda kolmandal plaadil ning lahjenduse laialikülvamine saavutatakse spaatliga.
Incubate plates in the dark at 21 to 23 °C.
Tasse inkubeeritakse pimedas temperatuuril 21–23 °C.
Initial examinations of the plates including, by reference to the control plates, counts of any C. m. subsp. sepedonicus like colonies are made after 3 days, with further counts after 5, 7, eventually 10 days.
Tasside esmane uuring, võrreldes kontrolltassidega, tehakse kolme päeva möödumisel ja loetakse üle kõik bakteri C. m. subsp. sepedonicus sarnased kolooniad, seejärel loetakse kolooniad viie, seitsme ja lõpuks kümne päeva möödumisel.
Purification of suspicious colonies
Kahtlaste kolooniate puhastamine
Subculturing of C. m. subsp. sepedonicus-like colonies should be carried out onto YGM media for eggplant inoculation and/or subsequent identification; this should be done before the plates become too overgrown i.e. preferably after three to five days.
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus sarnased kolooniad tuleks ümber külvata YGM-söötmele baklažaanide inokuleerimiseks ja/või järgnevaks kindlaksmääramiseks; külvata tuleks enne seda, kui tassid kasvavad liiga täis, s.o eelistatavalt 3–5 päeva möödumisel.
Streak C. m. subsp. sepedonicus –like colonies on to one of the following media: (formulae are given in Appendix 5):
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus sarnased kolooniad kantakse ühele järgnevaist söötmeist (valemid on esitatud 5. liites):
nutrient dextrose agar (for use in subculturing only),
glükoostoiteagar (üksnes subkultuuri jaoks),
yeast peptone glucose agar,
pärmiekstraktiga glükoospeptoonagar,
yeast extract mineral salts agar.
pärmiekstrakti ja mineraalsooladega agar.
Incubate at 21 °C to 24 °C for up to 10 days.
Inkubeeritakse 21–24 °C juures kuni kümme päeva.
subsp. sepedonicus is slow-growing, usually producing pin-point, cream, domed colonies within 10 days.
subsp. sepedonicus kasvab aeglaselt, tekitades tavaliselt kümne päeva jooksul nööpnõelapeasuuruseid kreemjaid kuplikujulisi kolooniaid.
Photos of typical colonies of C. m. subsp. sepedonicus (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus tüüpiliste kolooniate fotosid vt veebileheküljelt http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main.
Re-streak to establish purity.
Puhtuse saavutamiseks kanda uuesti.
Growth rates are improved with subculture.
Kasvumäärad paranevad subkultuuriga.
Typical colonies are creamy-white or ivory, occasionally yellow, rounded, smooth, raised, convex-domed, mucoid-fluidal, with entire edges and usually 1 to 3 mm in diameter.
Tüüpilised kolooniad on kreemjad või elevandiluuvärvi, mõnikord kollased, ümmargused, siledad, kõrgemad, kumera kupli kujuga, limased-vedelad, tervete servadega ning tavaliselt läbimõõduga 1–3 mm.
A simple Gram stain (Appendix 9) may help to select colonies for further testing.
Lihtne värvimine Grami meetodil (9. liide) võib aidata pesade valimisel edasiste analüüside tegemiseks.
Identify presumptive cultures (see section 9) and perform a pathogenicity test (see section 10).
Määratakse kindlaks eeldatavad kultuurid (vt punkti 9) ja tehakse patogeensusanalüüs (vt punkti 10).
IDENTIFICATION
IDENTIFITSEERIMINE
Identify pure cultures of presumptive C. m. subsp. sepedonicus isolates using at least two of the following tests based on different biological principles.
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus eeldatavad puhaskultuurid määratakse kindlaks, kasutades vähemalt kahte järgmistest analüüsidest, mis põhinevad erinevatel bioloogilistel põhimõtetel.
Include known reference strains where appropriate for each test performed.
Igasse tehtavasse analüüsi kaasatakse tuntud referenttüved, kui see on asjakohane.
Nutritional and enzymatic identification tests
Toitumuslikud ja ensümaatilised identifitseerimisanalüüsid
All media should be incubated at 21 °C and examined after six days.
Kõiki söötmeid tuleks inkubeerida 21 °C juures ja kontrollida kuue päeva pärast.
If no growth has occurred, incubate for up to 20 days.
Kui kasvu ei ole, inkubeeritakse kuni 20 päeva.
All tests must include a known C. m. subsp.sepedonicus control.
Kõigis analüüsides peab olema tuntud bakteri C. sepedonicum kontroll.
Nutritional and physiological tests must be made using inocula from nutrient agar subcultures.
Toite- ja füsioloogilised analüüsid tuleb teha, kasutades agarsöötme subkultuuride inokulaate.
Morphological comparisons must be made from nutrient dextrose agar cultures.
Glükoostoiteagari kultuuridelt tuleb teha morfoloogilisi võrdlusi.
Expected result
Oodatav tulemus
Oxidation/Fermentation (O/F) test
Oksüdatsiooni/fermentatsiooni katse
Inert or weakly oxidative
Inertne või nõrgalt oksüdatiivne
Oxidase activity
Oksüdaasi aktiivsus
Growth at 37 °C
Kasv 37 °C juures
Urease activity
Ureaasi aktiivsus
Aesculin hydrolysis
Eskuliini hüdrolüüs
Starch hydrolysis
Tärklise hüdrolüüs
or weak
puudub või nõrk
Tolerance of 7 % NaCl
7 % NaCl taluvus
Indole production
Indooli tekkimine
Catalase activity
Katalaasi aktiivsus
production
tekkimine
Citrate utilization
Tsitraadi kasutamine
Gelatin liquefaction
Želatiini vedeldamine
Acid glycerol
Happe glütserool
Acid from lactose
Happe moodustumine laktoosist
Acid from rhamnose
Happe moodustumine ramnoosist
Acid from salicin
Happe moodustumine salitsiinist
Gram stain (Appendix 9)
Värvimine Grami järgi (9. liide)
IF-test
IF-analüüs
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in IF buffer (Appendix 3).
Valmistatakse suspensioon, milles on umbes 106 rakku milliliitris IF-puhvris (3. liide).
Prepare a 2-fold dilution series of an appropriate antiserum.
Valmistatakse kohase antiseerumi kahekordsete lahjenduste rida.
Apply the IF procedure (section 4).
Tehakse IF-analüüs (punkt 4).
A positive IF test is achieved if the IF titre of the culture is equivalent to that of the positive control.
IF-analüüsi tulemus on positiivne siis, kui kultuuri IF-tiiter võrdub positiivse kontrolli tiitriga.
PCR test
PCR-analüüs
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in ultra pure water (UPW).
Valmistatakse suspensioon, milles on umbes 106 rakku milliliitris ultrapuhtas vees.
Heat 100 µl of the cell suspension in closed tubes in a heating block or boiling waterbath at 100 °C for four minutes.
100 µl suletud katseklaasides olevat rakususpensiooni kuumutatakse kuumutusplokil või keevas veevannis 100 °C juures 4 minutit.
Apply appropriate PCR procedures to amplify C. m. subsp. sepedonicus specific amplicons (e. g. Pastrik, 2000; see Appendix 4; Li and de Boer, 1995; Mills et al., 1997; Pastrik and Rainey, 1999; Schaad et al., 1999.
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus spetsiifiliste amplikonide amplifitseerimiseks tehakse kohane PCR-analüüs (näiteks Pastrik, 2000; vt 4. liidet; Li ja de Boer, 1995; Mills et al., 1997; Pastrik ja Rainey, 1999; Schaad et al., 1999).
A positive identification of C. m. subsp.sepedonicus is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
Bakterit C. m. subsp. sepedonicus saab positiivselt kindlaks määrata siis, kui PCR-amplikonidel on positiivse kontrolli tüvega sama suurus ja neil esineb sama pikkusega restriktsioonifragmentide polümorfism.
FISH test
FISH-analüüs
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in UPW.
Valmistatakse suspensioon, milles on umbes 106 rakku milliliitris ultrapuhtas vees.
Apply the FISH procedure (section 5).
Tehakse FISH-analüüs (punkt 5).
A positive FISH test is achieved if the same reactions are achieved from the culture and the positive control.
FISH-analüüsi tulemus on positiivne siis, kui kultuur ja positiivne kontroll annavad samad reaktsioonid.
Fatty acid profiling (FAP)
Rasvhapete profileerimine (Fatty acid profiling – FAP)
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 72 hours at 21 °C (+/– 1°).
Kultuuri kasvatatakse trüptikaas-sojaagaril (Oxoid) 72 tundi temperatuuril 21 °C (+/– 1°).
Apply an appropriate FAP procedure (Janse, 1991; Stead, 1992).
Tehakse kohane FAP-analüüs (Janse, 1991; Stead, 1992).
A positive FAP test is achieved if the profile of the presumptive culture is identical to that of the positive control.
FAP-analüüsi tulemus on positiivne siis, kui eeldatava kultuuri profiil on identne positiivse kontrolli profiiliga.
The presence of characteristic fatty acids are 15:1 Anteiso A, 15:0 Iso, 15:0 Anteiso, 16:0 Iso, 16:0 and 17:0 Anteiso is highly indicative of C. m. sepedonicus.
Tüüpiline rasvhapete esinemine on järgmine: 15:1 Anteiso A, 15:0 Iso, 15:0 Anteiso, 16:0 Iso, 16:0 ja 17:0 Anteiso. Selline profiil osutab suure tõenäosusega bakterile C. m. sepedonicus.
Other genera such as Curtobacterium, Arthrobacter and Micrococcus also have some of these acids but 15:1 Anteiso A is a rare acid in these bacteria but occurs in all Clavibacter spp. at between 1 to 5 %.
Muudel perekondadel, nagu Curtobacterium, Arthrobacter ja Micrococcus, esineb ka selliseid happeid, kuid 15:1 Anteiso A on neis bakterites harva esinev hape, mida on kõigis bakterites Clavibacter spp. umbes 1–5 %.
In C. m. sepedonicus the value is usually around 5 %.
Bakteris C. m. sepedonicus on seda tavaliselt umbes 5 %.
BOX-PCR
BOX-PCR-analüüs
Apply the test according the procedure (Smith et al., 2001).
Tehakse analüüs vastavalt menetlusele (Smith et al., 2001).
CONFIRMATION TEST
KINNITUSANALÜÜS
The pathogenicity test must be performed as final confirmation of a diagnosis of C. m. subsp. sepedonicus and for assessment of virulence of cultures identified as C. m. subsp. sepedonicus:
Bakteri C. m. subsp. sepedonicus diagnoosi lõplikuks kinnitamiseks ja bakteri C. m. subsp. sepedonicus kindlaksmääratud kultuuride virulentsuse hindamiseks tuleb teha patogeensusanalüüs.
Prepare an inoculum of approximately 106 cells per ml from three day cultures of the isolate to be tested and an appropriate positive control strain of C. m. subsp. sepedonicus.
Analüüsitava isolaadi kolme päeva vanusest isolaadist ja bakteri C. m. subsp. sepedonicus kohasest positiivse kontrolli tüvest tehakse inokulaat, milles on umbes 106 rakku milliliitris.
Inoculate 5 to 10 eggplant stems of young seedlings at leaf stage 3 (section 7.3 or 7.4).
Inokuleeritakse 5–10 kolmandas leheetapis noore baklažaaniseemiku vart (punkt 7.3 või 7.4).
Incubate at 18 to 24 °C with sufficient light and high relative humidity with appropriate watering to avoid waterlogging or drought stress (section 7.7).
Inkubeeritakse temperatuuril 18–24 °C piisava valguse ja suure suhtelise niiskuse juures ning kastetakse parajal määral, et vältida ülekastmist ja kuivamist (punkt 7.7).
With pure cultures, typical wilting should be obtained within two weeks but plants not showing symptoms (see section 7.8) after this time should be incubated up to three weeks at temperatures conducive to eggplant growth but not exceeding 25 °C (Appendix 8).
Puhaste kultuuridega peaks tüüpiline närbumine toimuma kahe nädala jooksul, kuid taimi, millel ei ole selle aja järel sümptomeid (vt punkti 7.8), tuleks seejärel inkubeerida kuni kolm nädalat temperatuuril, mis soosib baklažaanide kasvu, kuid ei ole üle 25 °C (8. liide).
If after three weeks symptoms are not present, the culture cannot be confirmed as being a pathogenic form of C. m. subsp. sepedonicus.
Kui kolme nädala pärast ei ole sümptomeid, ei saa kultuuri pidada bakteri C. m. subsp. sepedonicus patogeenseks vormiks.
Isolate from symptomatic plants by removing a section of stem 2 cm above the inoculation point.
Isoleeritakse sümptomitega taimedest, eraldades varreosa 2 cm kõrguselt inokulatsioonipunktist.
Comminute and suspend in a small volume of sterile distilled water or 50 mM phosphate buffer (Appendix 3).
Purustatakse ja lahustatakse väheses koguses steriilses destilleeritud vees või 50 mM fosfaatpuhvris (3. liide).
Isolate from the suspension by dilution spreading or streaking onto MTNA and YPGA (Appendix 5), incubate for three to five days at 21 to 23 °C and observe the formation of colonies typical of C. m. subsp. sepedonicus.
Isoleeritakse suspensioonist, hõõrudes spaatliga laiali või tehes joonkülvi MTNA- ja YPGA-söötmele (5. liide), inkubeeritakse 3–5 päeva temperatuuril 21–23 °C ja vaadeldakse bakterile C. m. subsp. sepedonicus tüüpiliste pesade tekkimist.
For each suspected occurrence for which a positive result in the screening test (s) has been identified according to the methods set out in Annex I, and confirmation or refutation by completion of the said methods is awaited, there should be the retention and appropriate conservation of:
Iga haigusetekitaja esinemise kahtluse korral, mille kohta on saadud vastavalt I lisas esitatud meetoditele läbi viidud sõelkatse(te)s positiivne tulemus ning oodatakse kõnealuste meetodite abil kinnitust või ümberlükkamist, tuleks alles hoida ja nõuetekohaselt säilitada
all tubers sampled and, wherever possible, all plants sampled,
kõik mugulad, millest proov on võetud, ning võimaluse korral kõik taimed, millelt proov on võetud,
any remaining extract and additional prepared material for the screening test(s), e.g. immunofluorescence slides,
kõik järelejäänud ekstraktid ja sõelkatse(te)ks valmistatud lisamaterjalid, nt immunofluorestsents-objektiklaasid,
all relevant documentation,
kõik asjakohased dokumendid
until the completion of the said methods.
kuni kõnealuste meetodi(te) lõpuleviimiseni.
Retention of the tubers will enable variety testing to be undertaken where appropriate.
Mugulate säilitamine võimaldab teha sordikatseid, kui see on asjakohane.
In the case of positive confirmation of the organism, there should be retention and appropriate conservation of:
Organismi olemasolu kinnituse puhul tuleks alles hoida ja nõuetekohaselt säilitada
the material specified in paragraph 1,
lõikes 1 määratletud materjal,
a sample of the infected eggplant material inoculated with the tuber or plant extract,
mugula- või taimeekstraktiga nakatatud baklažaani proov
the isolated culture of the organism,
organismi isoleeritud kultuur
until at least one month after the notification procedure under Article 5(2).
vähemalt ühe kuu jooksul pärast teatamist vastavalt artikli 5 lõikele 2.
The elements to be considered in the determination of the extent of probable contamination under Article 5(1)(b) shall include:
Tõenäolise saastumise ulatuse määramisel vastavalt artikli 5 lõike 1 punktile b tuleb kontrollida järgmisi objekte:
tubers or plants grown at a place of production designated as contaminated under Article 5(1)(a),
tootmiskohas kasvatatud mugulad või taimed, mis on tunnistatud saastunuks vastavalt artikli 5 lõike 1 punktile a,
place(s) of production with some production link to the tubers or plants, designated as contaminated under Article 5(1)(a), including those sharing production equipment and facilities directly or through a common contractor,
tootmiskoht või -kohad, kus mingil tootmisetapil on olnud mugulad või taimed, mis on tunnistatud saastunuks vastavalt artikli 5 lõike 1 punktile a, sealhulgas need, kus tootmisseadmeid või -vahendeid jagatakse omavahel otseselt või ühise lepingulise tööettevõtja kaudu,
tubers or plants produced in the place(s) of production referred to in the previous indent, or present in such place(s) of production during the period when the tubers or plants designated as contaminated under Article 5(1)(a) were present on the place of production referred to in the first indent,
mugulad või taimed, mida kasvatati eelmises taandes osutatud tootmiskohas või -kohtades või hoiti sellises tootmiskohas või -kohtades ajavahemikul, kui vastavalt artikli 5 lõike 1 punktile a saastunuks tunnistatud mugulad või taimed olid esimeses taandes osutatud kohas,
premises handling potatoes from the places of production referred to in the above indents,
ettevõtted, mis käitlevad eelmistes taanetes nimetatud tootmiskohtadest pärit kartuleid,
any machinery, vehicle, vessel, store, or units thereof, and any other objects including packaging material, that may have come into contact with the tubers or plants designated as contaminated under Article 5(1)(a),
mis tahes seadmed, veokid, anumad, laod või nende osad ning mis tahes muud objektid, sealhulgas pakkematerjal, mis on võinud olla kontaktis mugulate või taimedega, mis on tunnistatud saastunuks artikli 5 lõike 1 punkti a alusel,
any tubers or plants stored in, or in contact with, any of the structures or objects listed in the previous indent, prior to the cleansing and disinfection of such structures and objects,
kõik mugulad või taimed, mida on hoitud eelmises taandes loetletud ehitiste või objektide sees või nendega kokkupuutes enne nende ehitiste ja objektide puhastamist ja desinfitseerimist,
as a result of the testing under Article 6, those tubers or plants with a sister or parental clonal relationship to the tubers or plants designated to be contaminated under Article 5(1)(a) and for which, although they may have tested negative for the organism, it appears that contamination is probable through a clonal link.
artikli 6 alusel tehtud laboratoorsete analüüside tulemusel artikli 5 lõike 1 punkti a alusel saastunuks tunnistatud mugulate või taimedega samast kloonist pärinevad kartulimugulad või -taimed, mille saastumine võib olla tõenäoline taime kloonide kaudu, kuigi analüüsi tulemused organismi osas on võinud olla negatiivsed.
place(s) of production of the tubers or plants referred to in the previous indent.
eelmises taandes osutatud mugulate või taimede tootmiskoht või -kohad.
The elements to be considered in the determination of the possible spread under Article 5(1)(c) shall include:
Võimaliku leviku määramisel vastavalt artikli 5 lõike 1 punktile c tuleb arvesse võtta järgmisi asjaolusid:
the proximity of other places of production growing potatoes or other host plants,
muude kartuli või muude peremeestaimede tootmiskohtade lähedust,
the common production and use of seed potato stocks.
seemnekartulivarude ühist tootmist ja kasutamist.
The notification referred to in the first subparagraph of Article 5(2) shall be provided as follows:
Artikli 5 lõike 2 esimeses lõigus osutatud teatis esitatakse järgmiselt:
immediately after the presence of the organism has been confirmed by laboratory testing, using the methods set out in Annex I, at least:
kohe pärast organismi olemasolu kinnitamist laborianalüüsidega, kasutades I lisas sätestatud meetodeid, esitades vähemalt:
the variety name of the potato lot,
kartulipartii sordi nimi,
the type (ware, seed, etc.) and where applicable the seed category of potatoes,
kartuli kasutusotstarve (tarbekartul, seemnekartul jne) ja seemnekartuli kategooria, kui see on kohaldatav,
when there is a risk of contamination of potatoes from or into another Member States(s), the Member State in which the occurrence has been confirmed shall immediately notify the Member State(s) concerned of information needed to comply with Article 5(3), such as:
kui on kartuli saasteoht teisest liikmesriigist (teistest liikmesriikidest) või teise liikmesriiki (teistesse liikmesriikidesse), esitab liikmesriik, kus saastumise esinemine on kinnitust leidnud, viivitamata vajaliku teabe, mis võimaldab asjaomasel liikmesriigil (asjaomastel liikmesriikidel) täita artikli 5 lõike 3 nõudeid, näiteks:
the name and address of the consignor and the consignee,
kaubasaatja ja kaubasaaja nimi ja aadress,
the date of delivery of the potato lot,
kartulipartii tarnekuupäev,
the size of the potato lot delivered,
tarnitud kartulipartii suurus,