natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Streaming test for bacterial ooze from vascular stem tissue is described in Section VI.A.1.
Varre juhtkoe bakterilima voolavuse testi kirjeldatakse VI jao punktis A.1.
Test for poly-ß-hydroxybutyrate granules in bacterial cells is described in Section VI.A.2.
Bakterirakkude polü-β-hüdroksübutüraadi graanulite analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.2.
Serological agglutination tests on bacterial ooze or extracts from symptomatic tissue are described in Section VI.A.3.
Bakterilima või sümptomaatilise koe seroloogilisi aglutinatsioonianalüüse kirjeldatakse VI jao punktis A.3.
IF test on bacterial ooze suspended in water or symptomatic tissue extracts is described in Section VI.A.5.
Vees suspendeeritud bakterilima või sümptomaatilise koe IF-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.5.
FISH test on bacterial ooze suspended in water or symptomatic tissue extracts is described in Section VI.A.7.
Vees suspendeeritud bakterilima või sümptomaatilise koe FISH-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.7.
ELISA test on bacterial ooze suspended in water or symptomatic tissue extracts is described in Section VI.A.8.
Vees suspendeeritud bakterilima või sümptomaatilise koe ELISA-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.8.
PCR test on bacterial ooze suspended in water or symptomatic tissue extracts is described in Section VI.A.6.
Vees suspendeeritud bakterilima või sümptomaatilise koe PCR-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.6.
The pathogen is usually easily isolated from symptomatic plant material by dilution plating (Section II.3).
Patogeen on tavaliselt kergesti isoleeritav sümptomitega taimematerjalist lahjenduse laialikülvamise abil söötmeplaatidele (II jao punkt 3).
Typical colony morphology is described in Section II.3.d.
Tüüpilise koloonia morfoloogia kirjeldus esitatakse II jao punkti 3 alapunktis d.
Culturing may fail from advanced stages of infection due to competition or overgrowth by saprophytic bacteria.
Infektsiooni edasiarenenud faaside kultiveerimine võib ebaõnnestuda saprofüütbakterite konkurentsi või liigkasvu tõttu.
If disease symptoms are typical, but the isolation test is negative, then the isolation must be repeated, preferably using a selective plate test.
Kui haiguse sümptomid on tüüpilised, kuid bakteri isoleerimine annab negatiivse tulemuse, tuleb isoleerimist korrata, eelistatult selektiivsöötmel.
Reliable identification of pure cultures of presumptive R. solanacearum isolates is achieved using the tests described in Section VI.B.
Haigusetekitaja R. solanacearum eeldatava puhaskultuuri saab usaldusväärselt kindlaks määrata, kasutades VI jao punktis B kirjeldatud analüüse.
Sub-specific characterisation is optional but recommended for each new case.
Alamliigi iseloomustamine ei ole kohustuslik, kuid on soovituslik iga uue juhtumi korral.
The pathogenicity test is described in Section VI.C.
Patogeensusanalüüsi kirjeldatakse VI jao punktis C.
Scheme for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato tubers
Haigusetekitaja Ralstonia solanacearum avastamis- ja kindlaksmääramismetoodika asümptomaatiliste kartulimugulate proovides
Principle:
Põhimõte
A positive result from at least two screening tests (3), based on different biological principles, must be complemented by the isolation of the pathogen; followed by, in case of isolation of typical colonies, confirmation of a pure culture as R. solanacearum A positive result from only one of the screening tests is not sufficient to consider the sample suspect.
Erinevatel bioloogilistel põhimõtetel põhineva vähemalt kahe sõelkatse positiivse tulemuse korral3 tuleb patogeen isoleerida; kui isoleeritakse tüüpilised kolooniad, peab järgnema bakteri R. solanacearum puhaskultuuri identifitseerimine. Ainult ühe määramismeetodi positiivsest tulemusest ei piisa selleks, et lugeda proov kahtlaseks.
Screening tests and isolation tests must permit detection of 103 to 104 cells/ml of resuspended pellet, included as positive controls in each series of tests.
Sõelkatsed ja isolatsioonianalüüsid peavad võimaldama avastada 103 kuni 104 rakku resuspenseeritud bakterisademe milliliitri kohta, mis kuuluvad positiivse kontrollina igasse analüüsiseeriasse.
Sample of potato tubers (1)
Kartulimugulate proov (1)
Extraction and concentration of the pathogen (2)
Patogeeni ekstraheerimine ja kontsentreerimine (2)
CORE SCREENING TESTS (3)
PEAMINE SÕELKATSE (3)
IF test (4) / selective isolation (5) / PCR test (6) / FISH test (7)
IF-analüüs (4) / selektiivne eraldamine (5) / PCR-analüüs (6) / FISH-analüüs (7)
Optional auxiliary test : ELISA (8)
Valikuline täiendav analüüs: ELISA (8)
First screening test (3)
Esimene sõelkatse (3)
sample not infected by R. solanacearum
Proov ei ole nakatunud haigusetekitajaga R.solanaceum
Second screening test (3)
Teine sõelkatse (3)
Selective isolation (5) and/or bioassay (9)
Selektiivne isoleerimine (5) ja/või biotest (9)
Colonies with typical morphology (10)
Tüüpilise morfoloogiaga kolooniad (10)
Purify by subculture
Puhastatakse söötmele taaskülvamisega
IDENTIFICATION TESTS (12)
IDENTIFITSEERIMISANALÜÜSID (12)
PATHOGENICITY TEST (13)
PATOGEENSUSANALÜÜS (13)
The standard sample size is 200 tubers, although the procedure can be used with smaller samples if 200 tubers are not available.
Standardproovi suurus on 200 mugulat, kuid meetodit saab kasutada väiksema prooviga, kui 200 mugulat ei ole.
Pathogen extraction and concentration methods are described in Section III.1.1.
Patogeeni eraldamis- ja kontsentreerimismeetodeid kirjeldatakse III jao punktis 1.1.
If at least two tests based on different biological principles are positive, isolation and confirmation have to be done Perform at least one screening test.
Kui vähemalt kaks erinevatel bioloogilistel põhimõtetel põhinevat analüüsi annavad positiivse tulemuse, tuleb bakter isoleerida ja kinnitada. Kasutatakse vähemalt üht sõelkatset.
When this test is negative the sample is considered to be negative In case this test is positive a second or more screening tests based on different biological principles are required to verify the first positive result.
Kui see sõelkatse annab negatiivse tulemuse, loetakse proov negatiivseks. Kui meetod annab positiivse tulemuse, tuleb teha veel üks või mitu erinevatel bioloogilistel põhimõtetel põhinevat sõelkatset esimese positiivse tulemuse tõendamiseks.
If the second or other tests are negative the sample is considered negative.
Kui teise või järgmiste sõelkatsete tulemused on negatiivsed, loetakse proovi negatiivseks.
Further tests are not necessary.
Täiendavaid analüüse ei ole vaja teha.
The selective isolation test is described in Section VI.A.4.
Selektiivse isoleerimise analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.4.
PCR tests are described in Section VI.A.6.
PCR-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.6.
The FISH test is described in Section VI.A.7.
FISH-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.7.
ELISA tests are described in Section VI.A.8.
ELISA-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.8.
The bioassay is described in Section VI.A.9.
Biotesti kirjeldatakse VI jao punktis A.9.
If clear positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests from the same pellet or by taking additional vascular tissue near the heel end from cut tubers of the same sample and, if necessary, test additional samples.
Kui sõelkatsed on andnud positiivseid tulemusi, kuid bakteri isoleerimine annab negatiivse tulemuse, korratakse isoleerimisanalüüse sama bakterisademega või võetakse lisaks sama proovi lõigatud mugulate basaalse tipu juurest juhtkude ning vajaduse korral analüüsitakse lisaproove.
Scheme for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Haigusetekitaja Ralstonia solanacearum avastamis- ja kindlaksmääramismetoodika asümptomaatiliste kartuli, tomati ja teiste peremeestaimede proovides
Sample of stem segments (1)
Varreosade proov (1)
selective isolation (4) / IF test (5) / PCR test (6) / FISH test (7)
Selektiivne isoleerimine (4) / IF-analüüs (5) / PCR-analüüs (6) / FISH-analüüs (7)
optional auxiliary test: ELISA (8), bioassay (9)
Valikuline täiendav analüüs: ELISA (8), biotest (9)
Colonies with typical morphology (10) after isolation
Tüüpilise morfoloogiaga kolooniad (10) pärast isoleerimist
All tests done negative
Kõik tehtud analüüsid
Sample infected by
Proov on nakatunud haigusetekitajaga
See Section III.2.1. for recommended sample sizes.
Soovitatavad proovide suurused on III jao punktis 2.1.
Pathogen extraction and concentration methods are described in Section III.2.1.
Patogeeni ekstraheerimis- ja kontsentreerimismeetodeid kirjeldatakse III jao punktis 2.1.
If at least two tests based on different biological priciples are positive, isolation and confirmation have to be done Perform at least one screening test.
Kui vähemalt kaks erinevatel bioloogilistel põhimõtetel põhinevat analüüsi annavad positiivse tulemuse, tuleb bakter isoleerida ja kinnitada. Kasutatakse vähemalt üht sõelkatset.
The IF test is described in Section VI.A.5.
IF-analüüsi kirjeldatakse VI jao punktis A.5.
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests.
Kui määramismeetodiga saadakse positiivseid tulemusi, kuid isoleerimiskatsed on negatiivsed, korratakse isoleerimiskatseid.
Reliable identification of pure presumptive R. solanacearum cultures is achieved using the tests described in Section VI.B.
Haigusetekitaja R. solanacearum eeldatava puhaskultuuri saab usaldusväärselt kindlaks määrata, kasutades VI jao punktis B. kirjeldatud analüüse.
DETAILED METHODS FOR DETECTION OF RALSTONIA SOLANACEARUM IN POTATO TUBERS AND POTATO, TOMATO OR OTHER HOST PLANTS WITH SYMPTOMS OF BROWN ROT OR BACTERIAL WILT
HAIGUSETEKITAJA RALSTONIA SOLANACEARUM ÜKSIKASJALIKUD AVASTAMISMEETODID KARTULIMUGULATES JA KARTULIS, TOMATIS JA TEISTES PEREMEESTAIMEDES, MILLEL ON PRUUN-BAKTERMÄDANIKU VÕI BAKTERIAALSE NÄRBUMISTÕVE SÜMPTOMID
Symptoms (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Sümptomid (vt veebileht http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Symptoms on potato
Sümptomid kartulil
The potato plant.
Kartulitaim.
The early stage of infection in the field is recognised by wilting of the leaves towards the top of the plant at high temperatures during the day with recovery at night.
Infektsiooni varajast staadiumit põllul iseloomustab päevaste kõrgete temperatuuride juures närbumine alates alumistest lehtedest taime tipu suunas, kusjuures öösel taim taastub.
In early stages of wilting leaves remain green, but later yellowing and brown necrosis develops.
Närbumise varajastes staadiumides jäävad lehed roheliseks, kuid hiljem muutuvad need kollaseks ja pruuniks ning kärbuvad.
Epinasty also occurs.
Esineb ka lehtede allapoole keerdumist.
Wilting of one shoot or whole plants becomes rapidly irreversible and results in the collapse and death of the plant.
Ühe võrse või kogu taime närbumine muutub kiiresti pöördumatuks ning lõpeb taime kokkuvarisemise ja hukuga.
The vascular tissue of transversely cut stems from wilted plants usually appears brown and a milky bacterial ooze exudes from the cut surface or can be expressed by squeezing.
Närbunud taime varre ristlõike juhtkude on tavaliselt pruuniks muutunud ning piimjas bakterilima immitseb lõikepinnalt või eritub pigistamisel.
When a cut stem is placed vertically in water, threads of slime will stream from the vascular bundles.
Kui läbilõigatud taimevars on asetatud vertikaalselt vette, on näha limaniitide väljavoolamist juhtkimpudest.
The potato tuber.
Kartulimugul.
Potato tubers must be cut transversely close to the heel (stolon end) or longitudinally over the stolon end.
Kartulimugulast tuleb teha ristläbilõige basaalse (stoolonipoolse) tipu lähedalt või lõigata pikisuunaliselt üle stooloni tipu.
The early stage of infection is recognised by a glassy yellow to light brown discolouration of the vascular ring from which a pale cream bacterial ooze emerges spontaneously after some minutes.
Infektsiooni varajane staadium on äratuntav juhtkoeringi klaasistumisena ja värvusemuutusena klaasjaskollakast helepruunini ning ringist võib lõikekohal pärast mõne minuti möödumist iseeneslikult erituda kahvatu kreemjas bakteriaalne eritis.
Later, the vascular discolouration becomes a more distinct brown and necrosis can extend into the parenchymatous tissue.
Hiljem muutub juhtkoering selgelt eristatavalt pruuniks ning kärbumine võib ulatuda põhikoeni.
In advanced stages, infection breaks outwards from the heel end and the eyes from which bacterial slime may ooze causing soil particles to adhere.
Edasiarenenud infektsioonifaasis võib bakterilima erituda ka basaalsest tipust või kartulisilmadest, põhjustades mullaosakeste kleepumist mugulale.
Reddish-brown slightly sunken lesions may appear on the skin due to collapse of vascular tissues internally.
Juhtkoe sisemise kokkuvajumise tõttu võivad koorel tekkida punakaspruunid sissevajunud kahjustused.
Secondary development of fungal and bacterial soft rots is common in the advanced stages of the disease.
Haiguse edasiarenenud faasides on tavapärane sekundaarsete seente ja bakterite põhjustatud pehmete mädanike areng.
Symptoms on tomato
Sümptomid tomatil
The tomato plant.
Tomatitaim.
The first visible symptom is the flaccid appearance of the youngest leaves.
Esimeseks nähtavaks sümptomiks on noorimate lehtede longuvajumine.
Under favourable environmental conditions for the pathogen (soil temperatures of approximately 25 °C; saturated humidity), epinasty and wilting of one side or of the whole plant follows within a few days leading to total plant collapse.
Haigusetekitaja jaoks soodsate keskkonnatingimuste juures (mulla temperatuur umbes 25 °C: küllastunud niiskus) esineb lehtede allapoole keerdumine ja taime osaline või täielik närbumine, millele järgneb kogu taime kokkuvarisemine mõne päeva jooksul.
Under less favourable conditions (soil temperature below 21 °C), less wilting occurs, but large numbers of adventitious roots may develop on the stem.
Vähem soodsate tingimuste korral (mulla temperatuur alla 21 °C) esineb närbumist vähem, kuid varrel võib areneda suurel hulgal lisajuuri.
It is possible to observe watersoaked streaks from the base of the stem which is evidence of necrosis in the vascular system.
Varre alaosal võib märgata vesiseid triipe, mis on juhtkoes esineva nekroosi tunnuseks.
When the stem is cut crosswise, discoloured brown vascular tissues exude white or yellowish bacterial ooze.
Kui varrest teha ristlõige, eritub pruuniks muutunud juhtkoest valget või kollakat bakterilima.
Symptoms on other hosts
Sümptomid teistel peremeestaimedel
Solanum dulcamara and S. nigrum plants.
Hariliku maavitsa Solanum dulcamara ja musta maavitsa S. nigrum taimed.
Under natural conditions, wilting symptoms are rarely observed in these weed hosts unless soil temperatures exceed 25 °C or inoculum levels are extremely high (e.g. as for S. nigrum growing adjacent to diseased potato or tomato plants).
Kui mulla temperatuur ei ületa 25 °C ja inokulaadi tase ei ole äärmiselt kõrge (st S. nigrum ei kasva haige kartuli- või tomatitaime kõrval), täheldatakse looduslikes tingimustes nendel umbrohtudest peremeestaimedel närbumissümptomeid harva.
When wilting does occur, the symptoms are as described for tomato.
Kui närbumine ilmneb, on sümptomid samad mis tomatil.
Non-wilting S. dulcamara plants growing with stems and roots in water may show internal light brown discolouration of vascular tissues on transverse section of the stem base or underwater stem parts.
Mittenärbunud S. dulcamara taimedel, mille varred ja juured kasvavad vees, võib ilmneda varre ala- või veealuste osade seesmine ristlõikel nähtav juhtkudede helepruuniks muutumine.
Bacteria may ooze from cut vascular tissues or form threads of slime if the cut stem is placed vertically in water, even in the absence of wilting symptoms.
Kui läbilõigatud taimevars on asetatud vertikaalselt vette, võib läbilõigatud juhtkudedest erituda bakterilima või moodustuda limaniite, seda isegi närbumissümptomite puudumisel.
Rapid screening tests may facilitate presumptive diagnosis but are not essential.
Kiirmääramismmeetodid võivad hõlbustada oletatava diagnoosi määramist, ent ei ole otsustava tähtsusega.
Use one or more of the following validated tests:
Kasutatakse üht või mitut järgmistest valideeritud analüüsidest:
(See Section VI.A.1.)
(Vt VI jao punkt A.1.)
Detection of poly-ß-hydroxybutyrate (PHB) granules
Polü-β-hüdroksübutüraadi (PHB) graanulite tuvastamine
Characteristic PHB granules in the cells of R. solanacearum are visualised by staining heat-fixed smears of bacterial ooze from infected tissue on a microscope slide with Nile Blue A or Sudan Black (See Section VI.A.2.).
Haigusetekitaja R. solanacearum rakkudes esinevaid iseloomulikke polü-β-hüdroksübutüraadi (PHB) graanuleid saab nähtavaks muuta nakatunud koe bakterilima läbi leegi fikseeritud äiete värvimisel mikroskoobi alusklaasil värvainetega Niiluse sinine A ja Sudaani must B (vt V jao punkt A.2.).
(See Section VI.A.3.)
(Vt VI jao punkt A.3.)
Other tests
Muud analüüsid
Further appropriate rapid screening tests include the IF test (see Section VI.A.5.), FISH test (see Section VI.A.7.), ELISA tests (see Section VI.A.8.) and PCR tests (see Section VI.A.6).
Teised sobilikud kiirmääramismeetodid on IF-analüüs (vt VI jao punkt A.5.), FISH-analüüs (vt VI jao punkt A.7.), ELISA-analüüs (vt VI jao punkt A.8.) ja PCR-analüüs (vt VI jao punkt A.6).
Remove ooze or sections of discoloured tissue from the vascular ring in the potato tuber or from the vascular strands in stems of potato, tomato or other wilting host plants.
Kartulimugula juhtkoeringi muutunud värvusega osast või kartuli- või tomati- või muu närbunud peremeestaime varre juhtkimpudest eemaldatakse eritist või mõned lõiked.
Suspend in a small volume of sterile distilled water or 50mM phosphate buffer (Appendix 4) and leave for 5 to 10 minutes.
Lahustatakse väikeses koguses steriilses destilleeritud vees või 50 mM fosfaatpuhvris (4. liide) ja jäetakse 5–10 minutiks seisma.
Prepare a series of decimal dilutions of the suspension.
Suspensioonist valmistatakse rida kümnekordseid lahjendusi.
Transfer 50-100 µl of the suspension and dilutions to a general nutrient medium (NA, YPGA or SPA; see Appendix 2) and/or to Kelman’s tetrazolium medium (Appendix 2) and/or a validated selective medium (e.g. SMSA; see Appendix 2).
Suspensioonist ja selle lahjendustest mõõdetakse 50–100 µl üldsöötmele (NA, YPGA või SPA; vt 2. liide) ja/või Kelmani tetrasooliumsöötmele (2. liide) ja/või valideeritud selektiivsöötmele (nt SMSA; vt 2. liide).
Spread or streak with an appropriate dilution plating technique.
Kasutatakse söötmeplaadil joonkülvi tehnikat või vastava lahjenduse laiali külvamist söötmeplaadile.
If useful, prepare separate plates with a diluted cell suspension of R. solanacearum biovar 2 as a positive control.
Vajaduse korral valmistatakse eraldi söötmeplaadid positiivse haigusetekitaja kontrolli jaoks, kasutades R. solanacearum’i biotüübi 2 tüve.
Incubate the plates for two to six days at 28 °C.
Plaate inkubeeritakse 28 °C juures 2–6 päeva.
On the general nutrient media, virulent isolates of R. solanacearum develop pearly cream-white, flat, irregular and fluidal colonies often with characteristic whorls in the centre.
Üldsöötmel on virulentse R. solanacearum’i kolooniad kreemikasvalged, lamedad, ebaühtlase kujuga, fluidaalsed ning sageli iseloomulike spiraalsete keeretega keskel.
Avirulent forms of R. solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely cream-white.
solanacearum’i avirulentsed vormid moodustavad väikesi ümmargusi mittevedelaid võilaadseid kolooniaid, mis on täiesti kreemjasvalged.
On Kelman’s tetrazolium and SMSA media, the whorls are blood red in colour.
Kelmani tetrasoolium- või SMSA-söötmel on keerded veripunased.
Avirulent forms of Ralstonia solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely deep red.
Ralstonia solanacearum’i avirulentsed vormid moodustavad väikesi ümmargusi mittevedelaid võilaadseid kolooniaid, mis on täiesti sügavpunased.
Tests to confirm identity of presumptive isolates of R. solanacearum are shown in Section VI.B.
solanacearum’i eeldatavad isolaadid saab kindlaks määrata VI jao punktis B esitatud analüüsidega.
Detailed methods for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato tubers
Haigusetekitaja Ralstonia solanacearum üksikasjalikud avastamis- ja kindlaksmääramismeetodid asümptomaatiliste kartulimugulate proovides
Note:
MÄRKUS
However, the procedure can be conveniently applied for samples with less than 200 tubers where fewer tubers are available.
Siiski saab meetodit kohaldada ka alla 200 mugulaga proovi puhul, kui rohkem mugulaid ei ole.
The potato extract described below can also be used for detection of the potato ring rot bacterium, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Allpool kirjeldatud kartuliekstrakti saab kasutada ka kartuli-ringmädaniku bakteri Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus avastamiseks.
Optional pre-treatment in advance to sample preparation:
Vabatahtlik eeltöötlemine enne proovi valmistamist
Incubation of samples at 25 to 30 °C, for up to two weeks before testing, to encourage multiplication of any R. solanacearum populations.
Proove inkubeeritakse 25–30 °C juures kuni kaks nädalat enne analüüsimist, et ergutada R. solanacearum’i populatsioonide paljunemist.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove pathogen DNA) and detergents between each sample.
Iga proovi järel kasutatakse kohaseid desinfektsioonivahendeid (klooriühendeid, kui kasutatakse PCR-katset, et eemaldada patogeenne DNA) ja pesuaineid.
This washing procedure is particularly useful (but not required) for samples with excess soil and if a PCR-test or direct isolation procedure is to be performed.
Pesemine on eriti kasulik (kuid mitte nõutav) nende proovide puhul, millel on liiga palju mulda, ning kui tehakse PCR-analüüsi või bakterite otsest isoleerimist.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel (stolon) end of each tuber so that the vascular tissues become visible.
Puhta ja desinfitseeritud skalpelli või juurviljanoa abil eemaldatakse koor mugula basaalse (stoolonipoolse) tipu juurest nii, et juhtkude tuleb nähtavale.
Carefully cut out a small core of vascular tissue at the heel end and keep the amount of non-vascular tissue to a minimum. (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Basaalse tipu juures lõigatakse väike juhtkoe südamik ettevaatlikult välja nii, et muid kudesid tuleks kaasa võimalikult vähe (vt veebileht http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Note: Set aside any (rotting) tubers with suspected brown rot symptoms and test separately.
Märkus: iga pruunmädaniku kahtlase sümptomiga mugul hoitakse alles ja sellega tehakse eraldi analüüsid.
All tubers including those with suspicioussymptoms should be kept according to Annex III.
Kõiki mugulaid, sealhulgas kahtlaste sümptomitega, tuleks säilitada vastavalt III lisale.
Process the heel end cores by one of the following procedures: either,
Basaalseid tipusüdamikke töödeldakse, kasutades üht järgmistest meetoditest.
Homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
Südamikud homogeenitakse piisava koguse (umbes 40 ml) ekstraktsioonipuhvriga (4. liide) kas segistis (näiteks Waring või Ultra Thurax) või purustades need suletud ühekordse kasutusega matseratsioonikotis (näiteks Stomacheri või Bioreba tugev kilekott mõõtudega 150 mm × 250 mm; kiirgussteriilne), kasutades kummivasarat või sobivat peenestusseadet (näiteks Homex).
Note: The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Märkus: kui proovid homogeenitakse segistis, on suur proovide ristsaastumise oht.