natgillin/translations-raw huggingface dataset:
One method that has proved workable is the use of a vaccine containing a virus of the same haemagglutinin (H) subtype but a different neuraminidase (N) from the prevailing field virus.
Üks meetod, mis on tõestanud oma toimivust, on vaktsiini kasutamine, mis sisaldab valdava väliviirusega sama hemaglutiniini (H) alatüüpi, kuid sellest erinevat neuraminidaasi (N).
Antibodies to the N of the field virus act as natural markers of infection.
Väliviiruse N-i antikehad toimivad nakkuse loomulike markeritena.
That system was used in Italy following the re-emergence of a LPAI H7N1 virus in 2000.
Seda süsteemi kasutati Itaalias pärast MPLG H7N1 viiruse taasilmnemist 2000. aastal.
In order to supplement direct control measures, a DIVA strategy was implemented using a vaccine containing H7N3 to combat an H7N1 field infection.
Otseste tõrjemeetmete täiendamiseks rakendati DIVA-strateegiat, kasutades H7N1 välinakkuse vastu võitlemiseks vaktsiini, milles sisaldus H7N3.
Vaccinated and field exposed birds were differentiated using a serological test to detect specific anti-N1 antibodies.
Vaktsineeritud ja viirusega nakatunud lindude eristamiseks kasutati seroloogilist kontrolli, et avastada spetsiifilisi antiN1-antikehasid.
The same strategy was used to control LPAI caused by H7N3 in Italy in 2002 to 2003, in this case with an H7N1 vaccine and a serological test detecting antibodies against N3 specifically.
Sama strateegiat kasutati H7N3 poolt põhjustatud MPLG tõrjeks Itaalias aastatel 2002–2003, sel korral H7N1 vaktsiini ning seroloogilise kontrolli abil, mis oli ette nähtud konkreetselt N3 antikehade avastamiseks.
In both cases vaccination with stamping out using this DIVA strategy resulted in eradication of the field virus.
Kummalgi juhul kasutati vaktsineerimist koos hukkamisega, millega saavutati väliviiruse hävitamine selle DIVA-strateegia kasutamisel.
Problems with that system arise if a field virus emerges that has the same N antigen as the existing field virus but are of another H subtype than H5 or H7 or if subtypes with the same N antigens are already circulating in the field.
Selle süsteemiga tekivad probleemid juhul, kui ilmnenud viirusel on sama N-antigeen mis olemasoleval väliviirusel, kuid mille H-alatüüp ei ole ei H5 ega H7, või kui alatüübid samade N-antigeenidega on juba ringluses.
Particularly ducks are known to be carriers of more than one subtype.
Eriti pardid on teatavasti enam kui ühe alatüübi kandjateks.
There was also a need to develop a suitable test that would allow the routine monitoring of flocks for anti-neuraminidase antibodies.
Lisaks oli olemas vajadus sobiva testi väljaarendamiseks, mis võimaldaks anti-neuraminidaasi antikehade esinemise rutiinset jälgimist linnukarjadel.
In Italy an ‘ad hoc’ serological test based on an indirect fluorescent antibody assay, using as an antigen N proteins expressed by baculovirus recombinants was developed and used.
Itaalias arendati välja ning kasutati selleks seroloogilist testi, mis põhines immunofluorestsentskatsel viiruse antikehade määramiseks, ning milles kasutati antigeenina baculovirus'e rekombinantseid N-valke.
That may have wider and easier application when an ELISA test is developed.
E LISA testi väljaarendamisel võib selle rakendamine muutuda laiemaks ning lihtsamaks.
The use of vaccines containing only HA, such as recombinant vector vaccines, allows classical AGID tests or ELISA tests based on nucleoprotein, non-structural protein or matrix proteins to be used to detect infection in vaccinated birds.
Ainult HAd sisaldavate vaktsiinide, nagu rekombinantse vektori vaktsiinide kasutamine võimaldab nakkuse avastamiseks vaktsineeritud lindudel nukleoproteiinil, mittestruktuurvalgul või maatriksproteiinidel põhinevate klassikaliste AGID testide või E LISA testide kasutamist.
For inactivated vaccines, a test that detects antibodies to the non-structural virus protein that are only produced during natural infection has been described.
Inaktiveeritud vaktsiinide jaoks on kirjeldatud testi, mis avastab mittestruktuurilise viirusvalgu antikehi, mida toodetakse ainult loomuliku nakatumise korral.
Such a system is yet to be validated in the field, but has the limitation that natural infection of a flock with any influenza virus, irrespective of subtype results in the production of antibodies directed against the non-structural protein.
Seda süsteemi tuleb veel välitöödel valideerida, ent sellel on see piirang, et linnukarja loomulikul nakatumisel ükskõik millisesse gripiviirusesse, sõltumata selle alatüübist, hakatakse tootma mittestruktuurvalgu-vastaseid antikehi.
The development of rapid and sensitive virus-detection methods, especially those that can be automated, such as real time RT-PCR, means that these could be used for simple widespread and regular testing of vaccinated birds for the presence of field virus.
Kiirete ja tundlike viiruse avastamise meetodite, eriti selliste, mida on võimalik automatiseerida, nagu näiteks reaalajas toimiv RT-PCR, arendamine tähendab, et neid võiks kasutada väliviiruse esinemise laialdaseks ja regulaarseks kindlakstegemiseks vaktsineeritud lindudel.
Agent detection, however, will be limited to a short window in the acute phase of the infection and cannot be used to conclude that a flock was not exposed to the virus in the past.
Nakkusetekitaja avastamine oleks aga siiski piiratud lühikese ajavahemikuga nakkuse akuutses faasis, ning seda ei saa kasutada, et teha kindlaks, kas linnukari on viirusega varem kokku puutunud.
This approach is most appropriate to the testing of vaccinated birds prior to movement to demonstrate freedom from active infection.
See lähenemine sobib kõige paremini vaktsineeritud lindude kontrollimiseks enne nende vedu, et tõestada neil aktiivse nakkuse puudumist.
The number of samples to be tested by the systems of choice must enable the exclusion of a prevalence of AI virus infection in a flock of more than 15 % with confidence level of 95 %.
Valitud süsteemide abil kontrollitavate proovide arv peab võimaldama AI-viirusnakkuse esinemise välistamist enam kui 15 protsendil linnukarjast usaldusnivool 95 %.
Strategies in the diagnosis of AI
AI diagnoosimise strateegiad
As set out in Annex IV to Directive 2005/94/EC, decisions to apply measures in specific areas or contact holdings and the severity of those measures may vary greatly with the magnitude of the risk.
Nagu on sätestatud direktiivi 2005/94/EÜ IV lisas, võivad ohu suurusest sõltuvalt oluliselt varieeruda otsused meetmete kohaldamise kohta spetsiifilistes piirkondades või kontaktettevõttes ning nende meetmete ranguse kohta.
Similarly, the required diagnostic confirmation of disease is likely to be balanced against the prevailing situation, the magnitude of the hazard and the degree of risk.
Taudi nõutavat diagnostilist kinnitamist võib mõjutada ka valitsev olukord, ohu suurus ning riskiaste.
Veterinary authorities need to make decisions on diagnostic evidence that balance the rapid control and eradication of disease against the potential impact of misdiagnosis.
Veterinaarasutused peavad tegema otsuseid diagnostilise tõendusmaterjali põhjal, mis hoiab tasakaalus taudi kiire tõrjumise ja hävitamise ning vale diagnoosi võimaliku mõju.
Such judgements have to be made against the background of many factors at the time, but certain situations can be predicted.
Sellised otsused tuleb teha mitmeid tegureid arvestades, kuid teatud olukorrad on ennustatavad.
Disease situation
Haiguse olukord
Potential problem
Võimalik probleem
Diagnostic criteria
Diagnostilised kriteeriumid
Non specific signs, no official suspicion
Spetsiifilised tunnused ning ametlik kahtlus puudub
Isolated holding
Isoleeritud ettevõte
Carry out rapid detection based on M gene RT-PCR.
Teha kiire M-geeni RT-PCRil põhinev kontroll.
Differential diagnosis as required
Vastavalt sätestatule eristusdiagnoos.
Primary suspected outbreak
Esmane puhangukahtlus
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation
Teha täielik diagnostiline testimine, viiruse isoleerimine ja iseloomustamine
Holding in densely populated poultry area
Ettevõte tihedalt asustatud kodulinnukasvatuspiirkonnas
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation, but concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
Teha täielik diagnostiline testimine, viiruse isoleerimine ja iseloomustamine, kuid keskenduda kiire avastamise ja iseloomustamise meetoditele, eriti nendele, mille aluseks on RT-PCR ja sekveneerimine [1]
Second and subsequent suspected outbreaks
Teisene ja järgnevad puhangukahtlused
Isolated holdings, epidemiologically linked to primary suspected outbreak
Isoleeritud ettevõtted, epidemioloogiliselt seotud esmase puhangukahtlusega
Concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
Keskenduda kiire avastamise ja iseloomustamise meetoditele, eriti nendele, mille aluseks on RT-PCR ja sekveneerimine [1]
Holdings in densely populated poultry area or with many epidemiological links
Ettevõtted tihedalt asustatud kodulinnukasvatuspiirkonnas või ettevõtted, millel on mitmeid epidemioloogilisi sidemeid
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus [1].
Tugineda kiire avastamise meetoditele, mis annavad AI-viiruse esinemisest kõige kiiremini märku [1]
Multiple suspected outbreaks or disease spreading rapidly including surveillance
Mitmed puhangukahtlused või haiguse kiire levik, sealhulgas järelevalve
Spread will become uncontrollable without rapid intervention
Kiire sekkumiseta väljub levik kontrolli alt
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus or rely on clinical signs [1].
Tugineda kiire avastamise meetoditele, mis annavad AI-viiruse esinemisest kõige kiiremini märku, või kliinilistele tunnustele [1]
Diagnosis of infection with AI viruses in pigs and other mammals
AI-viirustega nakatumise diagnoosimine sigadel ja muudel imetajatel
AI in pigs
AI sigadel
AI viruses readily infect pigs and although replication is in most cases relatively restricted, there is a potential that infected pigs could transmit the disease to poultry and other susceptible animals.
AI-viirused nakatavad sigu kergesti, ning ehkki paljunemine on enamikul juhtudest suhteliselt piiratud, eksisteerib võimalus, et nakatunud sead võivad haigust edasi anda kodulindudele ning muudele vastuvõtlikele loomadele.
To date, there is no evidence from the field that infected pigs transmit AI viruses of H5 and H7 subtypes.
Tänaseks ei ole tegelikkusest ühtegi tõendit selle kohta, et nakatunud sead kannavad edasi H5- ja H7- alatüüpi AI-viiruseid.
Experience gained during the outbreak in the Netherlands in 2003 indicated that H7N7 infected pigs did not show clinical signs that could be attributed to the H7N7-infection.
Madalmaades 2003. aastal aset leidnud taudipuhangust saadud kogemus näitas, et H7N7-ga nakatunud sigadel H7N7-nakkusele omistatavaid kliinilisi tunnuseid ei avaldunud.
Moreover, apparently no diseased pigs have been reported to date during the H5N1 outbreak in Asia and elsewhere.
Lisaks ei ole ilmselgelt H5N1 puhanguga seoses Aasias ja mujal tänaseni teatatud ühestki haigestunud seast.
Therefore, clinical signs may not be relied upon to indicate whether pigs are infected although clinical presentation due to infection of pigs with other influenza viruses of avian origin, can occur once a virus has become adapted to the host.
Seetõttu ei saa kliinilistele tunnustele tuginedes näidata, kas sead on nakatunud, ehkki kliinilised tunnused sigade nakatumisest teistesse lindudelt pärit gripiviirustesse võivad ilmneda niipea, kui viirus on peremeesorganismiga kohanenud.
The diagnosis of AI virus infections of pigs is essentially similar to diagnosis for avian species, relying on virus isolation, molecular techniques and detection of specific antibodies using haemagglutination inhibition tests.
AI-viirusnakkuste diagnoosimine sigadel on põhijoontes sama, mis linnuliikidel, tuginedes viiruse isoleerimisele, molekulaarsetele tehnikatele ning spetsiifiliste antikehade avastamisele, kasutades hemaglutinatsiooni inhibitsiooni teste.
There are, however, certain differences and none of the tests are fully validated for the use in pigs to confirm infection with AI viruses.
Siiski on teatud erinevusi, ning ükski nendest testidest ei ole täielikult valideeritud, et kasutada neid AI-viirusnakkuse olemasolu kindlakstegemiseks sigadel.
Samples for virus isolation
Proovid viiruse isoleerimiseks
AI virus infections in pigs are usually restricted to the respiratory tract and samples must be respiratory tract tissues and, if appropriate, oropharyngeal or nasal swabs, preferably taken from pigs showing signs of that disease.
AI-viirusnakkused sigadel piirduvad tavaliselt hingamisteedega ning võtta tuleb hingamisteede kudede proovid ja vajaduse korral suuneelu või nina tampooniproovid, eelistatult sigadelt, kellel avalduvad selle haiguse tunnused.
These samples and swabs may be processed for virus isolation or molecular detection of virus, using the same techniques described above for samples from birds.
Neid proove ja tampooniproove võib töödelda viiruse isoleerimiseks või molekulaarseks avastamiseks, kasutades samu tehnikaid, mida on ülalpool kirjeldatud lindudelt võetud proovide jaoks.
However, when using PCR techniques, proper controls must be used to ensure that the amplification is not inhibited by substances in the samples from pigs.
Siiski tuleb PCR-tehnikate kohaldamisel kasutada nõuetekohaseid kontrollimeetmeid tagamaks, et võimendamist ei takistaks sigadelt võetud proovides esinevad ained.
Inoculation and incubation of eggs
Munade nakatamine ja inkubeerimine
To isolate mammalian influenza viruses in 9- to 11-day-old embryonated fowls' eggs it is usual practice to inoculate each egg via the allantoic cavity and into the amniotic cavity.
Imetajate gripiviiruste isoleerimisel 9–11 päeva vanustesse embrüonaalses staadiumis kanamunadesse on tavaliseks praktikaks iga muna nakatamine allantoisi kaudu ning amnioniõõnde.
However, when testing pigs in contact with AI viruses, when virus has had little opportunity to adapt, allantoic cavity inoculation is probably sufficient.
Siiski, kui sigu kontrollitakse seoses AI-viirustega, kui viirusel on olnud vähe võimalusi kohanemiseks, piisab tõenäoliselt allantoisi nakatamisest.
Similarly, 35 oC is usually recommended for the incubation temperature for isolation of mammalian influenza A viruses, but again for viruses poorly adapted to pigs, 37 oC is not be detrimental to virus isolation.
Sarnaselt on 35 oC soovitatav inkubeerimistemperatuur imetajate A-tüüpi gripiviiruste isoleerimiseks, kuid samas viiruste puhul, mis ei ole sigadega hästi kohanenud, ei tohiks 37 oC olla viiruse isoleerimist takistav.
Test for specific antibodies in HI tests
Spetsiifiliste antikehade kontroll HI-testides
Virus isolation or molecular detection are likely to be the most sensitive for determining AI virus infections of pigs.
Viiruse isoleerimine ja molekulaarne avastamine on AI-viirusnakkuste kindlakstegemisel sigadel tõenäoliselt kõige tundlikum moodus.
However, serological responses in pigs have been detected in the absence of virus isolation or detection.
Siiski on sigadel seroloogilisi vastuseid avastatud viiruse isoleerimise ja avastamiseta.
HI tests, using pig sera, require some modifications to the test used for avian sera referred to in Chapter VIII.
HI-testid nõuavad seaseerumite kasutamiseks mõningaid muudatusi võrreldes VIII peatükis osutatud linnuseerumi puhul kasutatava testiga.
Pig sera are notorious for their property of non-specific inhibition in HI tests and therefore each serum sample must be treated with a receptor destroying enzyme (RDE) to prevent this from occurring.
Seaseerumid on tuntud oma mittespetsiifilise inhibitsiooni tõttu HI-testides, mistõttu igat seerumiproovi tuleb selle vältimiseks töödelda retseptoreid lõhustava ensüümiga (RDE).
The following method must be used:
Kasutada tuleb järgmist meetodit.
To 100 μl of pig antiserum add 400 μl RDE (predetermined working dilution) and mix thoroughly.
100 μl sea antiseerumile lisatakse 400 μl retseptoreid lõhustavat ensüümi (kindlaksmääratud töölahjendus), ning segatakse korralikult.
Incubate at 37 oC for one hour.
Inkubeeritakse 37 oC juures üks tund.
Then incubate for 30 minutes at 56 oC.
Seejärel inkubeeritakse 56 oC juures 30 minutit.
Cool samples at 4 oC for a minimum of 15 minutes.
Proove jahutatakse 4 oC juures vähemalt 15 minutit.
Add 10 μl of 30 % (v/v packed cells) chick red blood cells and mix vigorously.
Lisatakse 10 μl 30 % (hematokritarv) kana punaseid vererakke ning segatakse jõuliselt.
The treated serum is then used in HI tests as described for avian sera in paragraph [..], the initial dilution is 1:10.
Seejärel kasutatakse töödeldud seerumit HI-testis peatükis [..] linnuseerumite puhul kirjeldatud viisil, esialgseks lahjendusvahekorraks on 1:10.
A set of sera of pigs with a known sero-negative status regarding AI must be used to assess the specificity of the HI test for the virus strain to be used (see use of virus strain for serology derived from the outbreak; Chapter VIII).
Seaseerumite komplekti, mille puhul on teada nende AIsse puutuv seronegatiivne staatus, tuleb kasutada HI-testide spetsiifilisuse hindamiseks kasutatava viirusetüve suhtes (vt puhangust saadud viirusetüve kasutamine seroloogilises testis; VIII peatükk).
During the outbreak in the Netherlands in 2003 up to 2,6 % non-specific reactors were detected in the HI test using pig sera that were collected independently of the outbreak
Madalmaades 2003. aastal aset leidnud puhangu vältel avastati HI-testides, kasutades puhangust sõltumatult kogutud seaseerumeid, mittespetsiifilisi reaktsioone kuni 2,6 %.
Sampling of pigs
Proovide võtmine sigadelt
Particularly on farms that keep both pigs and poultry, either mixed or in separate houses, pigs are at risk of becoming infected with AI directly or indirectly via contact with poultry or poultry products.
Eelkõige farmides, kus peetakse korraga nii sigu kui kodulinde, kas ühes hoones või eraldi, on sigadel oht AIsse nakatumiseks kas otseselt või kaudselt kokkupuute kaudu kodulindude või linnukasvatussaadustega.
To exclude such infection, oropharyngeal or nasal swabs and blood samples must be collected according to the procedures described in point 8.21 of Chapter IV.
Sellise nakatumise välistamiseks tuleb vastavalt IV peatüki punktis 8.21 kirjeldatud menetlusele koguda suuneelu või nina tampooniproove ja vereproove.
Samples must be obtained from pigs that show clinical signs of the disease.
Proovid tuleb võtta sigadelt, kellel avalduvad haiguse kliinilised tunnused.
However, when they do not show any clinical signs, samples may be collected at random over all sections of the house.
Kui neil aga kliinilisi tunnuseid ei avaldu, võib proovid võtta pisteliselt hoone igast osast.
If available in the laboratory, swabs must be tested in rapid molecular tests and/or virus isolation.
Kui need on laboris saadaval, tuleb neid kontrollida kiirete molekulaarsete testidega ja/või viiruse isoleerimisega.
The RT-PCR must have been appropriately validated and have a sensitivity at least equivalent to virus isolation in eggs for influenza A viruses.
RT-PCR peab olema nõuetekohaselt valideeritud ning omama tundlikkust, mis on vähemalt võrdne viiruse isoleerimisega munas A-tüüpi gripiviiruste puhul.
Two to four weeks after culling of the AI infected poultry, at least 60 blood samples must be collected from pigs in such a way that at least some samples are obtained from groups of pigs that are in direct contact with each other.
Kaks kuni neli nädalat pärast AIsse nakatunud kodulindude hukkamist tuleb sigadelt koguda vähemalt 60 vereproovi selliselt, et vähemalt osa proovidest oleksid saadud sigade rühmadelt, kellel on olnud omavaheline otsene kokkupuude.
Samples must be tested in the HI test using virus derived from the poultry outbreak.
Proove tuleb kontrollida HI-testis, kasutades kodulindude seas esinenud puhangust saadud viirust.
Samples from both the acute and convalescent phases must be tested in the same test.
Samas testis tuleb kontrollida nii ägeda kui paranemisfaasi proove.
Positive samples can be confirmed using virus neutralisation and/or Western blot analyses.
Positiivsete proovide kinnitamiseks võib kasutada viiruse neutraliseerimist ja/või immunoblotanalüüsi.
When any of those samples test positive, an epidemiological investigation on all pig farms located within the protection zone must be carried out, irrespective whether they are of mixed type or not.
Kui milline tahes nendest proovidest annab testis positiivse tulemuse, tuleb epidemioloogiline kontroll läbi viia kõigis ohustatud tsoonis asuvates seafarmides, sõltumata sellest, kas nad on segatüüpi või mitte.
AI viruses in other mammals other than pigs
AI-viirused muudel imetajatel peale sigade
Investigations in other mammals other than pigs which are susceptible to AI including cats must be undertaken.
Muudele AI suhtes vastuvõtlikele imetajatele peale sigade, sealhulgas kassidele, tuleb teha läbivaatus.
With specific reference to HPAI H5N1, the following must be carried out for testing cats:
Eriviitega KPLG H5N1-le tuleb kasside kontrollimisel toimida järgmiselt.
Gross pathological lesions, associated with viral replication, concentrate on the lungs and liver, therefore samples for virological investigations must preferably be taken from these organs of dead animals.
Viiruse paljunemisega seostatavad suured patoloogilised kahjustused koonduvad kopsudesse ja maksa, mistõttu proovid viroloogilisteks uuringuteks tuleb eelistatult võtta surnud loomade nendelt elunditelt.
In living animals, preferably tracheal/oropharyngeal swabs must be taken for virus detection.
Elusloomadelt tuleb viiruse avastamiseks eelistatult võtta hingetoru/suuneelu tampooniproovid.
In addition, faecal swabs can be taken separately.
Lisaks võib eraldi võtta fekaalide tampooniproovid.
Blood samples to be examined in HI assays require heat treatment for 56 oC for 30 minutes and RDE treatment can be omitted.
HI-testides uuritavad vereproovid nõuavad kuumtöötlust 56 oC juures 30 minutit, ning RDE töötluse võib ära jätta.
Minimum safety requirements for the transport of samples
Proovide veole esitatavad minimaalsed ohutusnõuded
The transport of samples in which pathogens are known to be present or suspected of being present are the subject of strict national and international regulations that must be adhered to at all times.
Selliste proovide veole, mille puhul on teada patogeenide esinemine või on olemas nende esinemise kahtlus, kehtivad ranged siseriiklikud ning rahvusvahelised määrused, millest tuleb alati kinni pidada.
Virus isolates are not classified as diagnostic samples but must be packaged in accordance with international standards.
Viiruse isolaate ei klassifitseerita diagnostiliste proovidena, vaid need tuleb pakendada vastavalt rahvusvahelistele standarditele.
The instructions set out in this chapter are for air transport, but similar packaging must be used for land or sea transport of samples.
Käesolevas peatükis esitatud juhised kehtivad õhutranspordi puhul, kuid samasugust pakendamist tuleb kasutada ka proovide maismaa- või meretranspordil.
Packing diagnostic specimens for transport
Diagnostiliste näidiste pakendamine veoks
Diagnostic specimens transported under the IATA Regulations are assigned to UN identification number 2814, 2900, or 3373, as relevant.
Rahvusvahelise Lennutranspordi Assotsiatsiooni (IATA) määruste alusel tuleb veetavad diagnostilised näidised tähistada ÜRO identifitseerimisnumbriga vastavalt 2814, 2900 või 3373.
The shipper and not the transport company is responsible for the shipment until the package reaches the consignee.
Kuni saadetise jõudmiseni vastuvõtjani vastutab veo eest saatja, mitte transpordiettevõte.
Primary packaging
Esmane pakend
Primary receptacle(s) must be water tight, for example, screw caps must be sealed with parafilm or adhesive tape or similar protections taken.
Esmane anum (või -anumad) peab olema veekindel, näiteks peavad keeratavad korgid olema tihendatud parafilmi või kleeplindi abil, või tuleb rakendada muud samalaadset kaitset.