natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In the absence of diaphragm pillars, a specimen of twice the size 2 g (or 4 g in the case of breeding sows and boars) is to be taken from the rib part or the breastbone part of the diaphragm, or from the jaw muscle, tongue or abdominal muscles.
Kui diafragmasääred ei ole säilinud, tuleb võtta kaks korda 2 grammi raskune proov (või 4 grammi aretusemiste ja kultide puhul) vahelihase roide- või rinnakuosast või keele- või mälurlihastest või kõhulihastest.
For cuts of meat, a sample weighing at least 5 g of striated muscle, containing little fat is to be taken, where possible from close to bones or tendons.
Lõigatud tükiliha korral tuleb võtta vähemalt 5 grammi raskune väherasvane proov vöötlihastest, võimaluse korral luude või kõõluste juurest.
A sample of the same size is to be collected from meat that is not intended to be cooked thoroughly or other types of post-slaughter processing.
Sama suur proov võetakse lihalt, mida ei kavatseta põhjalikult kuumtöödelda ega muul viisil tapajärgselt töödelda.
For frozen samples, a sample weighing at least 5 g of striated muscle tissue is to be taken for analysis.
Külmutatud proovide puhul võetakse analüüsimiseks vöötlihastest vähemalt 5 grammi raskune proov.
The weight of meat specimens relates to a sample of meat that is free of all fat and fascia.
Liha proovide kaal viitab lihaproovile, millelt on eemaldatud kogu rasv ja sidekirme.
Special attention must be paid when collecting muscle samples from the tongue in order to avoid contamination with the superficial layer of the tongue, which is indigestible and can prevent reading of the sediment.
Keelelt lihasproovide võtmisel tuleb olla eriti tähelepanelik, et vältida proovi saastumist keele pealiskihiga, mis ei ole seeditav ja võib takistada sademe lugemist.
I. Complete pools (100 g of samples at a time)
I. Proovide täiskogum (100 g proovi korraga)
16 ± 0,5 ml of hydrochloric acid is added to a 3 litre beaker containing 2,0 litre of tap water, preheated to 46 to 48 oC; a stirring rod is placed in the beaker, the beaker is placed on the preheated plate and the stirring is started.
16 ± 0,5 ml soolhapet lisatakse 3-liitrisesse keeduklaasi, mis sisaldab 2,0 liitrit temperatuurini 46–48 oC eelsoojendatud kraanivett; segamispulk asetatakse keeduklaasi, keeduklaas asetatakse soojendatud plaadile ja alustatakse segamisega.
10 ± 0,2 g of pepsin is added.
Lisatakse 10 ± 0,2 g pepsiini.
100 g of samples collected in accordance with point 2 is chopped in the blender.
100-grammised proovid, mis on kogutud kooskõlas punktiga 2, peenestatakse segistis.
The chopped meat is transferred to the 3 litre beaker containing the water, pepsin and hydrochloric acid.
Peenestatud liha tõstetakse ümber 3-liitrisesse keeduklaasi, milles on vesi, pepsiin ja soolhape.
The mincing insert of the blender is immersed repeatedly in the digestion fluid in the beaker and the blender bowl is rinsed with a small quantity of digestion fluid to remove any meat still adhering.
Segisti peenestatud sisu leotatakse korduvalt keeduklaasis olevas tehisseedevedelikus ning segistikaussi loputatakse väikese tehisseedevedeliku kogusega, et eemaldada sellelt kogu allesjäänud liha.
The beaker is covered with aluminium foil.
Keeduklaas kaetakse alumiiniumfooliumiga.
The magnetic stirrer must be adjusted so that it maintains a constant temperature of 44 to 46 oC throughout the operation.
Magnetsegisti peab olema seadistatud selliselt, et see säilitaks kogu tööprotsessi vältel püsiva temperatuuri 44–46 oC.
During stirring, the digestion fluid must rotate at a sufficiently high speed to create a deep whirl without splashing.
Segamisprotsessi ajal peaks tehisseedevedelik pöörlema piisavalt kiiresti, et tekiks sügav pööris ilma pritsimiseta.
The digestion fluid is stirred until the meat particles disappear (approximately 30 minutes).
Tehisseedevedelikku segatakse, kuni lihaosakesed kaovad (ligikaudu 30 minutit).
The stirrer is then switched off and the digestion fluid is poured through the sieve into the sedimentation funnel.
Seejärel lülitatakse segisti välja ning tehisseedevedelik valatakse läbi sõela setituslehtrisse.
Longer digestion times may be necessary (not exceeding 60 minutes) in the processing of certain types of meat (tongue, game meat, etc.).
Teatavat tüüpi liha (keel, ulukiliha jne) töötlemisel võib olla vajalik pikem seedetegevus (mitte rohkem kui 60 minuti).
The digestion process is considered satisfactory if not more than 5 % of the starting sample weight remains on the sieve.
Seedeprotsessi loetakse õnnestunuks, kui sõelale jääb mitte rohkem kui 5 % proovi algkaalust.
The digestion fluid is allowed to stand in the funnel for 30 minutes.
Tehisseedevedelikul lastakse lehtris 30 minutit seista.
After 30 minutes, a 40 ml sample of digestion fluid is quickly run off into the measuring cylinder or centrifuge tube.
Pärast 30 minuti möödumist lastakse 40 ml suurune tehisseedevedeliku proov kiiresti mõõtesilindrisse või tsentrifuugiklaasi.
The digestion fluids and other liquid waste are kept in a tray until reading of the results is completed.
Tehisseedevedelikku ja muid jääke hoitakse alusel seni, kuni tulemuste uurimine on lõpetatud.
The remaining 10 ml sample of sediment is poured into a larval counting basin or petri dish.
Allesjäänud 10 ml suurune setteproov valatakse vastsete loendamis anum või Petri tassi.
The cylinder or centrifuge tube is rinsed with not more than 10 ml of tap water, which has to be added to the sample in the larval counting basin or petri dish.
Silindrit või tsentrifuugiklaasi loputatakse mitte rohkem kui 10 ml kraaniveega, mis tuleb lisada proovile vastsete loendamis anum või Petri tassis.
Subsequently, the sample is examined by trichinoscope or stereo-microscope at a 15 to 20 times magnification.
Seejärel uuritakse proovi trihhinelloskoobi või stereomikroskoobiga 15–20kordse suurendusega.
Visualisation using other techniques is allowed, provided examination of positive control samples has been shown to give an equal or better result than traditional visualisation methods.
Teiste tehnikate visualiseerimiseks kasutamine on lubatud tingimusel, et positiivsete kontrollproovide uurimine on andnud võrdväärseid või paremaid tulemusi kui traditsioonilised visualiseerimismeetodid.
In all cases of suspect areas or parasite-like shapes, higher magnifications of 60 to 100 times must be used.
Kõikidel juhtudel tuleb kahtlustäratavates piirkondades või parasiidisarnaste kujundite puhul kasutada suuremat, 60–100kordset suurendust.
Digests are to be examined as soon as they are ready.
Tehisseedele allutatud materjali tuleb uurida niipea, kui see on valmis.
Under no circumstances should examination be postponed until the following day.
Mitte mingil juhul ei tohi uurimist edasi lükata järgmisele päevale.
30 ml of the supernatant fluid is then removed, leaving a volume of 10 ml.
Seejärel eemaldatakse 30 ml settepealset vedelikku, nii et alles jääb 10 ml.
This volume is made up to 40 ml with tap water.
Seda kogust suurendatakse 40 milliliitrini, lisades kraanivett.
After a further settling period of 10 minutes, 30 ml of the supernatant fluid is withdrawn by suction, leaving a volume of no more than 10 ml for examination in a petri dish or larval counting basin.
Uue, 10 minuti pikkuse settimisaja möödudes imetakse välja 30 ml settepealset vedelikku, nii et alles jääb kuni 10 ml uurimiseks Petri tassis või vastsete loendamis anum.
The measuring cylinder is washed with no more than 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
Mõõtesilindrit loputatakse mitte rohkem kui 10 ml kraaniveega ning see loputusvesi lisatakse uurimiseks Petri tassis või vastsete loendamis anum olevale proovile.
If the sediment is found to be unclear on examination, the sample is poured into a measuring cylinder and made up to 40 ml with tap water and then the above procedure is followed.
Kui uurimisel ilmneb, et sete ei ole selginud, valatakse proov mõõtesilindrisse ja suurendatakse selle kogust kraanivett lisades 40 milliliitrini ning seejärel järgitakse eespool kirjeldatud meetodit.
The procedure can be repeated 2 to 4 times until the fluid is clear enough for a reliable reading.
Menetlust võib korrata 2–4 korda, kuni vedelik on usaldusväärsete tulemuste saamiseks piisavalt selge.
Pools of less than 100 g
Vähem kui 100 proovist koosnevad koondproovid
Positive or doubtful results
Positiivsed või kahtlased tulemused
Where examination of a collective sample produces a positive or uncertain result, a further 20 g sample is taken from each pig in accordance with 2(a).
Kui koondproovide uurimine annab positiivse või küsitava tulemuse, võetakse vastavalt artikli 2 punktis a sätestatule igalt sealt 20 grammi raskune lisaproov.
The 20 g samples from five pigs are pooled and examined using the method described above.
Eespool kirjeldatud meetodit kasutades koondatakse viie sea 20 grammi raskune proov.
In this way samples from 20 groups of five pigs will be examined.
Sel teel uuritakse läbi proovid 20 viiesealiselt rühmalt.
When Trichinella is detected in a pooled sample from five pigs, further 20 g samples are collected from the individual pigs in the group and each is examined separately using the method described above.
Kui viie sea koondproovist avastatakse keeritsuss, võetakse 20 grammi raskune lisaproov igalt gruppi kuuluvalt sealt ning igat proovi uuritakse eraldi, kasutades selleks eespool kirjeldatud meetodit.
Parasite samples are to be kept in 90 % ethyl alcohol for conservation and identification at species level at the Community or national reference laboratory.
Parasiitide näidiseid hoitakse säilitamise ja liikide tasemel identifitseerimise tarbeks siseriiklikus või ühenduse referentlaboratooriumis etanooli 90 % lahuses.
After parasite collection, positive fluids (digestive juice, supernatant fluid, washings, etc.) are to be decontaminated by heating to at least 60 oC.
Pärast parasiitide kogumist hävitatakse positiivsete tulemustega vedelikud (seedevedelik, seedepealne vedelik, pesuvesi jne), kuumutades neid vähemalt temperatuurini 60 oC.
EQUIVALENT METHODS
SAMAVÄÄRSED MEETODID
Mechanically assisted pooled sample digestion method/sedimentation technique
Mehhaanilise abiga koondproovide tehisseede meetod / setitusmenetlus
Knife or scissors for cutting specimens
Nuga või käärid proovide lõikamiseks,
Trays marked off with 50 squares, each of which can hold samples of approximately 2 g of meat, or other tools giving equivalent guarantees as regards the traceability of the samples
alused, mis on jagatud 50 ruuduks, millest igaühele mahub ligikaudu 2 g liha, või muud töövahendid, mis tagavad samaväärse proovide jälgitavuse,
Meat mincer or electrical blender
hakkmasin või elektriline segisti,
A stomacher lab-blender 3500 thermo model
Stomacheri aparaat (Stomacher Lab-blender 3500 mudel Thermo),
Plastic bags suitable for the stomacher lab-blender
Stomacheri aparaadile sobivad plastkotid,
Conical separation funnels, capacity 2 litres, preferably fitted with teflon safety plugs
koonilised 2-liitrised jaotuslehtrid, eelistatavalt sellised, mis on varustatud teflonist turvakorkidega,
Sieves, mesh size 180 microns, external diameter 11 cm, with stainless steel or brash mesh
roostevabast terasest või võrguga sõelad, mille võrgutihedus on 180 mikronit ja mille välisläbimõõt on 11 cm,
100 ml glass measuring cylinders
100-milliliitrised klaasist mõõtesilindrid,
A vibrator, e.g. an electric shaver with the head removed
vibraator, nt elektripardel, mille otsik on eemaldatud,
A relay which will switch on and off at one-minute intervals
ajarelee, mis lülitub sisse ja välja üheminutiliste intervallidega,
A trichinoscope with a horizontal table or a stereo-microscope, with a sub-stage transmitted light source of adjustable intensity
sobiva valgusallikaga varustatud trihhinelloskoop horisontaallauaga või reguleeritava tugevusega altvalgustusega stereomikroskoop,
A larval counting basin and a number of 9 cm diameter petri dishes as in Chapter I(1)(l) and (m)
vastsete loendusanum ja mitu 9 cm läbimõõduga Petri tassi vastavalt I peatüki punkti 1 alapunktidele 1 ja m,
17,5 % hydrochloric acid
soolhappe 17,5 % lahus,
Pepsin, strength 1: 10000 NF (US national formulary) corresponding to 1: 12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie),
pepsiin tugevusega 1: 10000 NF (US National Formulary) ehk 1: 12500 BP (British Pharmacopoea) ja 2000 FIP (Fédération Internationale de Pharmacie),
A number of 10 litre bins to be used for decontamination of apparatus, e.g. with formol, and for digestive juice remaining where specimens test positive
10-liitrised konteinerid, mida kasutatakse positiivsete tulemuste korral seadmete ja vahendite saastatusest puhastamiseks näiteks formaliiniga töötlemise teel ning ülejäänud tehisseedevedeliku jaoks,
A balance accurate to 0,1 g.
kaal täpsusega 0,1 g.
As stipulated in Chapter I(2).
Samad, mis on näidatud I peatüki punktis 2.
I. Grinding
I. Peenestamine
Grinding the meat samples in a meat mincer beforehand will improve the digestion quality.
Proovide eelnev peenestamine hakkmasinas parandab seede kvaliteeti.
If an electrical blender is used, the blender must be operated three to four times for approximately one second each time.
Kui kasutatakse elektrilist segistit, tuleb segu segistiga töödelda kolm kuni neli korda igal korral ligikaudu ühe sekundi vältel.
Digestion procedure
Tehisseedemenetlus
This procedure may involve complete pools (100 g of samples at a time) or pools of less than 100 g.
See menetlus võib hõlmata täiskogumeid (100 proovi korraga) või vähem kui 100 proovist koosnevaid koondproove.
Complete pools (100 samples at a time)
Proovide täiskogum (100 proovi korraga)
The stomacher lab-blender 3500 is fitted with a double plastic bag and the temperature control set at 40 to 41 oC.
Stomacher Lab-blender 3500 tuleks varustada kahekordse plastkotiga ning valida temperatuur 40–41 oC.
One and a half litres of water preheated to 40 to 41 oC is poured into the inner plastic bag.
Sisemisse plastkotti valatakse 1,5 liitrit temperatuurini 40–41 oC soojendatud vett.
25 ml of 17,5 % hydrochloric acid is added to the water in the stomacher.
Stomacheris olevale veele lisatakse 25 ml soolhappe 17,5 % lahust.
100 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 oC) taken from each individual sample in accordance with 2 are added.
Seejärel lisatakse 100 ligikaudu 1 grammi raskust proovi (temperatuuriga 25–30 oC), mis on võetud igast üksikproovist vastavalt punktile 2.
Lastly, 6 g pepsin is added.
Lõpuks lisatakse 6 grammi pepsiini.
This order must be followed strictly to avoid decomposition of the pepsin.
Sellest lisamisjärjestusest tuleb rangelt kinni pidada, et vältida pepsiini lagunemist.
The stomacher is then allowed to pound the content of the bag for 25 minutes.
Seejärel töödeldakse plastkoti sisu 25 minutit Stomacheri aparaadiga.
The plastic bag is removed from the stomacher and the digestion fluid is filtered through the sieve into a 3 litre beaker.
Pärast seda eemaldatakse plastkott Stomacheri aparaadist ning tehisseedevedelik kurnatakse läbi sõela 3-liitrisesse keeduklaasi.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water, which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
Plastkott loputatakse ligikaudu 100 ml veega, mida seejärel kasutatakse sõela loputamiseks ning mis lõpuks lisatakse keeduklaasis olevale filtraadile.
Up to 15 individual samples can be added to a total pool of 100 samples and examined together with these samples.
Täiskogumis 100 proovi suurusse koondproovi võidakse lisada kuni 15 üksikproovi ning neid võidakse uurida koos nende proovidega.
Smaller pools (less than 100 samples)
Vähem kui 100 proovist koosnevad koondproovid
A digestion fluid is prepared by mixing about one and a half litres of water and 25 ml of 17,5 % hydrochloric acid.
Tehisseedevedeliku valmistamiseks segatakse umbes poolteist liitrit vett 25 ml soolhappe 17,5 % lahusega.
6 g of pepsin is added and the whole mixed at a temperature of 40 to 41 oC.
Lisatakse 6 grammi pepsiini ja kogu vedelik segatakse temperatuuril 40–41 oC.
Of the digestion fluid, a volume corresponding to 15 ml per gram of sample is measured (e.g. for 30 samples the volume required is 30 × 15 ml = 450 ml) and transferred to the inner of the two plastic bags, together with the meat samples weighing approximately 1 g (at 25 to 30 oC) taken from each individual sample in accordance with 2.
Tehisseedevedelikust mõõdetakse välja maht, mis vastab 15 milliliitrile ühe grammi lihaproovi kohta (näiteks 30 proovi jaoks vajalik maht on 30 × 15 ml ehk 450 ml), ning valatakse see kahekordse plastkoti sisemisse kotti koos ligikaudu 1-grammiste lihaproovidega (temperatuuriga 25–30 oC), mis on võetud igast üksikproovist vastavalt punktile 2.
Water at a temperature of approximately 41 oC is poured into the outer bag to make up a total volume in the two bags of one and a half litres.
Välimisse kotti valatakse vett, mille temperatuur on ligikaudu 41 oC, nii et vedeliku maht kahes kotis kokku on poolteist liitrit.
The plastic bag is washed with approximately 100 ml of water (at 25 to 30 oC), which is then used to rinse the sieve and lastly added to the filtrate in the beaker.
Plastkott loputatakse ligikaudu 100 ml veega (temperatuuril 25–30 oC), mida seejärel kasutatakse sõela loputamiseks ning mis lõpuks lisatakse keeduklaasis olevale filtraadile.
Recovery of larvae by sedimentation
Vastsete eraldamine setitamise teel
Ice (300 to 400 g of ice flakes, scaly ice or crushed ice) is added to the digestion fluid to bring its volume up to about 2 litres.
Tehisseedevedelikule lisatakse jääd (300–400 g jäähelbeid, -laaste või purustatud jääd) nii, et vedeliku kogumaht suureneb umbes 2 liitrini.
The digestion fluid is then stirred until the ice has melted.
Seejärel segatakse tehisseedevedelikku, kuni jää on sulanud.
In the case of smaller pools (see II(b)), the amount of ice must be reduced correspondingly.
Väiksemate koondproovide korral (vt II jaotise punkt b) peaks jääkogus olema vastavalt väiksem.
The chilled digestion fluid is transferred to a 2 litre separation funnel, equipped with a vibrator in an extra clamp.
Jahutatud tehisseedevedelik valatakse 2-liitrisesse jaotuslehtrisse, mis on varustatud lisaklambri abil kinnitatud vibraatoriga.
Sedimentation is allowed to proceed for 30 minutes, during which time the sedimentation funnel is vibrated intermittently, i.e. one minute vibration followed by a one-minute pause.
Setitamiseks allutatakse jaotuslehter 30 minuti jooksul vaheaegadega vibratsioonile, st üheminutilisele vibratsioonile järgneb üheminutiline paus.
After 30 minutes, a 60 ml sample of the sediment is quickly run off into a 100 ml measuring cylinder (the funnel is rinsed with detergent solution after use).
30 minuti möödudes lastakse 60-milliliitrine setteproov kiiresti 100 ml mahutavusega mõõtesilindrisse. (Pärast kasutamist loputatakse lehtrit puhastuslahusega.)
The 60 ml sample is allowed to stand for at least 10 minutes, after which time the supernatant is withdrawn by suction to leave a volume of 15 ml, to be examined for presence of larvae.
60 ml proovil lastakse vähemalt 10 minutit seista, seejärel tuleks settepealne vedelik eemaldada imemise teel, jättes alles 15 ml suuruse proovi, mida uuritakse vastsete suhtes.
For suction, a disposable syringe, equipped with a plastic tube, can be used.
Imemiseks võib kasutada plasttoruga varustatud ühekordseks kasutamiseks mõeldud süstalt.
The length of the tube must be such that 15 ml remains in the measuring cylinder when the flanges of the syringe rest on the cylinder's rim.
Toru pikkus peaks olema selline, et kui süstla pea toetub mõõtesilindri servale, jääb mõõtesilindrisse 15 ml.
The remaining 15 ml is poured into a larval counting basin or two petri dishes and examined using a trichinoscope or stereo-microscope.
Allesjäänud 15 ml valatakse vastsete loendamisse anumasse või kahte Petri tassi ning seda uuritakse vastavalt trihhinelloskoobi või stereomikroskoobi abil.
The measuring cylinder is washed with 5 to 10 ml of tap water and the washings are added to the sample.
Mõõtesilinder loputatakse 5–10 ml kraaniveega, mis seejärel lisatakse proovidele.
Under no circumstances is examination to be postponed until the following day.
Mitte mingil juhul ei tohi uurimist edasi lükata järgmisele päevale.
Where the digests are unclear or they are not examined within 30 minutes of their preparation, they must be clarified as follows:
Kui tehisseedele allutatud materjal ei ole selginud või seda ei uurita 30 minuti jooksul pärast selle valmistamist, siis tuleb seda selitada järgmiselt:
the final sample of 60 ml is poured into a measuring cylinder and allowed to stand for 10 minutes; 45 ml of supernatant fluid is then removed by suction and the remaining 15 ml is made up to 45 ml with tap water,
lõplik proov mahuga 60 ml valatakse mõõtesilindrisse ja sellel lastakse 10 minutit seista. Selle aja möödudes imetakse välja 45 ml settepealset vedelikku ning allesjäänud 15 milliliitrile lisatakse nii palju kraanivett, et kokku tuleks 45 ml;
after a further settling period of 10 minutes, 30 ml of supernatant fluid is removed by suction and the remaining 15 ml is poured into a petri dish or larval counting basin for examination,
uue, 10 minuti pikkuse settimisaja möödudes imetakse välja 30 ml settepealset vedelikku ning allesjäänud 15 ml valatakse uurimiseks Petri tassi või vastsete loendamisse anumasse;
the measuring cylinder is washed with 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
mõõtesilindrit loputatakse 10 ml kraaniveega ning see loputusvesi lisatakse uurimiseks Petri tassis või vastsete loendamisse anumas olevale proovile.
Where the result is positive or uncertain, the provisions laid down in Chapter I(3)(III) shall apply.
Kui tulemus on positiivne või kahtlane, kohaldatakse I peatüki punkti 3 III jaotist.
Mechanically assisted pooled sample digestion method/‘on filter isolation’ technique
Mehhaanilise abiga koondproovide tehisseede meetod / filtereristusmenetlus
As stipulated in Chapter II(A)(1).
Samad, mis on näidatud II peatüki A osa punktis 1.
Additional equipment:
Lisaks:
1 litre Gelman funnel, complete with filter holder (diameter 45 mm);
1-liitrine Gelmani lehter koos filtrihoidjaga (mille läbimõõt on 45 mm),
filter discs, consisting of a circular stainless steel mesh with an aperture of 35 microns (disc diameter: 45 mm), two rubber rings 1 mm thick (external diameter: 45 mm; internal diameter: 38 mm), the circular mesh being placed between the two rubber rings and bonded to them using a two-component glue suitable for the two materials;
filterkettad, mis koosnevad ümmargustest roostevabast terasest võrkudest, mille võrguava suurus on 35 mikronit (ketta läbimõõt 45 mm), kahest rõngast, mis on valmistatud 1 mm paksusest kummist (ning mille välisläbimõõt on 45 mm ja siseläbimõõt 38 mm), ümmargune võrk asetatakse kahe kummirõnga vahele ning kinnitatakse nende külge mõlema materjali jaoks sobiva kahekomponendilise liimiga,
an Erlenmeyer flask, capacity 3 litres, fitted with a side tube for suction;
3-liitrine Erlenmeyeri kolb, mis on varustatud kõrvaltoruga imemise tarbeks,
a filter pump;
filterpump,
plastic bags, capacity at least 80 ml;
plastkotid, mille mahutavus on vähemalt 80 ml,
equipment for sealing the plastic bags;
vahendid plastikkottide sulgemiseks,
rennilase, strength 1: 150000 soxhlet units per gram.
rennilaasensüüm tugevusega 1 : 150000 Soxhleti ühikut grammi kohta.
Collecting of specimens
Proovide võtmine
See Chapter II(A)(3)(II)(a).
Vt II peatüki A osa punkti 3 II jaotise alapunkt a.
See Chapter II(A)(3)(II)(b).
Vt II peatüki A osa punkti 3 II jaotise alapunkt b.
Recovery of larvae by filtration
Vastsete eraldamine filtreerimise teel
In the case of smaller pools, the amount of ice must be reduced correspondingly.
Väiksemate koondproovide korral peaks jääkogus olema vastavalt väiksem.
The digestion fluid is stirred until the ice has melted.
Seejärel segatakse tehisseedevedelikku, kuni jää on sulanud.
The chilled digestion fluid is then left for at least three minutes to let the larvae coil.
Siis jäetakse jahutatud tehisseedevedelik vähemalt kolmeks minutiks seisma, et vastsed saaksid keerduda.