natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Vævshomogenisering
A positive result shall be the presence of small spherical or ovoid organisms (2 to 5 μm wide) within haemocytes.
Findeling af væv og tilberedning af et homogenat i en passende buffer foretages ved hjælp af Fast Prep-vævshomogenisator og Lysing Matrix A-rør (MP Biomedicals).
However, the parasite might also occur extracellularly.
Vævet vejes, anbringes i Lysing Matrix A-rør, fortyndes 1:10 w/v eller i henhold til fabrikantens anvisninger i en passende buffer (G2 og 10 μl proteinase K til anvendelse med DNA Tissue kit (Qiagen)) og homogeniseres med Fast Prep 24-homogenisator i to minutter.
These organisms show a basophilic cytoplasm and an eosinophilic nucleus (colours may vary with the stain used) and, because they spread on the slide, they can appear wider on imprints than on histological examination.
Homogeniserede prøver skal inkuberes ved 56 °C i mindst fire timer eller natten over.
Multinucleated cells may be observed.
Prøverne vortexes og centrifugeres ved 9000 rpm i to minutter, og 50 μl supernatant eller en mængde svarende til 5 mg væv (den vævsvægt, som er optimal for ekstraktionskittet) tilsættes til et prøverør til DNA-ekstraktion, og der fyldes op med G2 buffer til en volumen på i alt 200 μl.
Sections of tissue that include gills and digestive gland, shall be fixed for a period of at least 24 hours in Davidson's fixative followed by normal processing for paraffin histology and staining, for example with haematoxylin and eosin.
Det totale DNA skal ekstraheres med et DNA-ekstraktionskit til væv og EZ1 Advanced XL Biorobot (Qiagen) i henhold til fabrikantens anvisninger.
A positive result shall be the presence of parasites as very small cells of 2 to 5 μm wide within the haemocytes or free in the connective tissue or sinuses of gill, gut and mantle epithelium, often associated with an intense inflammatory reaction.
For hver batch af prøver medtages en ekstraktionskontrol (kalvethymus-DNA) og en negativ kontrol (G2-buffer).
To avoid any doubt, the parasite shall be observed inside the haemocyte for a positive diagnosis.
DNA elueres i en mængde på 50 μl.
DNA extraction kits, which are available commercially and usually produce high quality DNA suitable for use with the PCR protocols as detailed below, may be used.
For at sikre, at ekstraktionen er lykkedes, skal DNA-koncentrationen for alle prøver og kontroller bestemmes ved hjælp af en Nano Drop-maskine.
Two PCR protocols targeting the small subunit (SSU) rDNA may be used:
Ekstraheret DNA fryses ved – 20 °C, hvis det ikke skal anvendes med det samme.
the first one is a conventional PCR that amplify several members of the Haplosporidia including Bonamia spp.
WSSV-polymerasekædereaktion (PCR)
Primers designated Bo and Boas are 5′-CAT-TTA-ATT-GGT-CGG-GCC-GC-3′ and 5′-CTG-ATC-GTC-TTC-GAT-CCC-CC-3′ respectively, and amplify a 300 bp product.
Den metode, der skal anvendes til påvisning af WSSV, er protokollen for påvisning af WSSV ved hjælp af nested PCR, som beskrives i de følgende afsnit, og som amplificerer 18s rRNA-genets 1447 bp- og 848 bp-amplikon i henholdsvis første og anden PCR-runde.
PCR mixtures contain buffer (500 mM KCl, 100 mM Tris/HCl [pH 9,0 at 25 °C] and 1 % Triton® X-100), 2,5 mM MgCl2, 0,2 mM dNTP mix, 1 μM forward and reverse primers, 0,02 units μl– 1 Taq DNA polymerase, and 0,2 ng μl– 1 of the DNA template in a total volume of 50 μl.
Den første PCR-reaktionsrunde udføres i en volumen på 50 μl, som indeholder endelige koncentrationer af 1 × GoTaq Buffer (Promega), 5 mM MgCl2, 1 pmol/μl WSSV 146 F1 primer, 1 pmol/μl WSSV 146 R1 primer (tabel 1), 0,25 mM dNTPs, 1,25U Taq polymerase og 2,5 μl DNA.
Samples shall be denatured in a thermocycler for five minutes at 94 °C before being submitted to 30 cycles (94 °C for one minute, 55 °C for one minute, 72 °C for one minute) followed by a final extension of 10 minutes at 72 °C.
Hver prøve køres i duplikat sammen med en negativ ekstraktionskontrol, en negativ PCR-kontrol (tilsat 2,5 μl H2O i stedet for DNA) og en positiv kontrol.
A positive result shall be positive PCR amplification at the expected size (namely, 300 bp), with all negative controls being negative and all positive controls being positive;
Den positive kontrol skal være fortyndet WSSV-plasmid, der er fremstillet og valideret til brug i laboratoriet (fås hos EU-referencelaboratoriet).
the second PCR protocol is a SYBR® Green Real time PCR assay.
Anden WSSV-PCR-reaktionsrunde udføres på samme måde som første runde, men med WSSV 146 F2/R2-primersættet og med yderligere en positiv kontrol for at tjekke, om dette trin i PCR har virket.
It allows the specific detection of B. ostreae (described below) and may be combined with a SYBR® Green Real time PCR assay allowing the specific detection of B. exitiosa (Ramilo et al.
Både første og anden PCR-runde udføres under følgende cyklusbetingelser på en DNA Engine Tetrad 2 Peltier-thermocykler (eller tilsvarende).
2013).
En første denaturering ved 94 °C i to minutter efterfulgt af 94 °C i 30 sekunder, 62 °C i 30 sekunder, 72 °C i 30 sekunder gentaget 30 gange, en elongering ved 72 °C i to minutter og fastholdes ved 4 °C.
Primers BOSTRE-F (5′- TTACGTCCCTGCCCTTTGTA-3′) and BOSTRE-R (5′- TCGCGGTTGAATTTTATCGT-3′) amplify a 208 bp product.
Gelelektroforese
PCR mixtures contain SYBR® Green Master Mix (1X), 0,3 μM forward and reverse primers, and 200 ng of extracted DNA.
Amplificerede PCR-produkter fra både første og anden PCR-runde skal visualiseres på 2 % agarosegel med TAE-buffer.
Samples shall be denatured in a Real Time Detection System for 10 minutes at 95 °C before being submitted to 35 cycles (95 °C for 30 seconds, 55 °C for 45 seconds and 72 °C for one minute).
15 μl af hver prøve køres ved 120 volt i ca. 20 minutter og undersøges under UV-lys.
Melting temperature curve analysis shall be carried out with temperature increments of 0,5 °C/s starting at 55 °C and ending at 95 °C and recording fluorescence at each change of temperature.
Positive prøver vil give et bånd på 1447 bp i første PCR-runde og 848 bp i anden PCR-runde.
Positive controls shall consist in genomic DNA from a highly infected host or plasmidic DNA including the target region.
Prøver af denne størrelse skal udskæres og anbringes i et 1,5 ml mikrocentrifugeglas.
Negative controls shall consist in genomic DNA from non-infected hosts and PCR reactives without target DNA.
Det DNA, som findes i gelstykkerne, renses med Promega Wizard® SV Gel og PCR Clean-Up System i henhold til fabrikantens anvisninger.
A positive result shall be positive PCR amplification with a unique melting temperature peak (78,25 ± 0,25 °C in the conditions published by Ramilo et al.
DNA-koncentrationen bestemmes ved hjælp af en NanoDrop-maskine.
2013), with all negative controls being negative and all positive controls being positive.
Det rensede DNA skal fryses ved 20 °C, hvis det ikke skal anvendes med det samme.
A probe that targets the SSU of the rDNA gene complex shall be used although it was shown to cross react with some other members of the family Haplosporidia.
Sekventering af PCR-produkter
Sections of tissue that include gills and digestive gland shall be fixed for a period of at least 24 hours in Davidson's fixative followed by normal processing for paraffin histology.
DNA sekventeres med BigDye Terminator Kit v3,1 (Applied Biosystems).
Sections shall be incubated with 100 μl of hybridisation buffer (4 × SSC [standard saline citrate], 50 % formamide, 1 × Denhardt's solution, 250 μg ml– 1 yeast tRNA, 10 % dextran sulphate) containing 20 ng (2 μl of the PCR reaction prepared as described in point I.3.2 using primers Bo and Boas) of the digoxigenin-labelled probe.
Den samlede volumen i hver reaktion er 20 μl, idet de endelige koncentrationer er 1 × BigDye Terminator, 1 × sekventeringsbuffer, 10 pmol/μl forward eller reverse primer og 10 μl renset DNA (fortyndet til ca. 10 ng/μl); følgende cyklusbetingelser anvendes på en DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cycler (eller tilsvarende): 94 °C i 30 sekunder efterfulgt af 96 °C i 10 sekunder, 50 °C i 10 sekunder og 60 °C i fire minutter, idet de sidste tre trin gentages 30 gange.
Sections shall be washed twice for five minutes in 2 × SSC at room temperature, and once for 10 minutes in 0,4 × SSC at 42 °C.
PCR-produkterne udfældes ved hjælp af en natriumacetatmetode, hvor 20 μl DNA tilsættes til 10 μl NaAc, 70 μl H2O og 250 μl ethanol, vortexes og centrifugeres ved 13000 rpm i 20 minutter, supernatanten fjernes, og pelleten vaskes med 200 μl absolut ethanol efterfulgt af centrifugering ved 13000 rpm i fem minutter.
A positive result shall correspond to labelled parasites inside the haemocytes, with all negative controls negative and all positive controls positive.
Pelleten tørres i 5 minutter ved 37 °C.
Targeted regions shall be the SSU rDNA and ITS1.
Pelleterne tilsættes 25 μl Hi-Di-formamid, opvarmes til 95 °C i to minutter og vortexes grundigt.
Procedures for surveillance and confirmation of infection with Bonamia ostreae
Prøverne sekventeres ved hjælp af ABI 3130xl Avant Genetic Analyzer i henhold til fabrikantens anvisninger.
For the purpose of surveillance and confirmation of the presence of or to rule out a suspicion of infection with Bonamia ostreae in accordance with the requirements laid down in Section II of Part 5 to Annex I, the diagnostic methods and corresponding procedures to be used shall be in accordance with the guidelines laid down in the following Table 5.1.
Sekventeringsresultaterne skal analyseres med Sequencher-software, og sekvenserne skal ved hjælp af BLAST-funktionen matches med sekvenser i NCBI-databasen.
Table 5.1
DEL 1
Guidelines for the use of diagnostic methods for the surveillance programmes and to rule out or confirm infection with Bonamia ostreae
OVERVÅGNING AF OG BEKÆMPELSESMETODER FOR VIRAL HÆMORAGISK SEPTIKÆMI (VHS) OG INFEKTIØS HÆMATOPOIETISK NEKROSE (IHN)
Heart or gill imprints
På det akvakulturbrug, der er under mistanke, skal der foretages mindst én sundhedsinspektion og én prøveudtagning af 10 fisk, hvis der konstateres kliniske tegn eller obduktionsfund, der tyder på infektion med enten VHS eller IHN eller begge, eller mindst 30 fisk, hvis der ikke konstateres kliniske tegn eller obduktionsfund.
DETAILED DIAGNOSTIC METHODS AND PROCEDURES FOR SURVEILLANCE AND CONFIRMATION OF WHITE SPOT DISEASE (WSD)
Prøverne undersøges ved hjælp af en eller flere af diagnosemetoderne i nr. i) og ii) i overensstemmelse med de detaljerede diagnosemetoder og -procedurer i bilag II, del 1, afsnit II:
Diagnostic procedures for detection of WSSV
Hvis Ostrea spp. og Mytilus spp. forekommer i produktionsenhederne eller produktionsområdet, skal de to slægter være ligeligt repræsenteret i prøverne.
When sampling and laboratory examination for the purpose of the surveillance and eradication programmes set out in Section I of Part 6 of Annex I and for the confirmation of the presence of or to rule out a suspicion of infection with WSSV are carried out in accordance with Article 57(b) of Directive 2006/88/EC, using the diagnostic methods set out in Section II of Part 6 of Annex I, the detailed diagnostic methods and procedures set out in points 2 to 7 of this Part shall apply.
Hvis der kun forekommer en af disse slægter, udtages der prøver af denne slægt.
The methods and procedures described in this Part of Annex II are adapted from the ISO 17025 accredited test applied at the European Union Reference Laboratory for Crustacean Diseases.
Hvis hverken Ostrea- eller Mytilus-slægten forekommer, skal prøven være repræsentativ for alle andre modtagelige arter på stedet.
Alternative approaches, using equivalent conditions or kits produced by different manufacturers, but which offer equivalent sensitivity and specificity to those described in this Part may be applied.
Hvis der forekommer svage bløddyr, bløddyr med åbne skaller eller nyligt døde bløddyr (som ikke er gået i opløsning) i produktionsenhederne, udvælges først og fremmest disse bløddyr.
In all instances, PCR amplified product shall be sequenced to confirm identity as White spot syndrome virus (WSSV).
Forekommer der ikke sådanne bløddyr, udvælges de ældste sunde bløddyr.
Tissue (pleopods and gills) containing WSSV from crustaceans may be stored in ethanol, RNAlater or snap frozen at – 80 °C.
Ved udtagning af prøver i akvakulturbrug med opdræt af bløddyr, hvor der anvendes mere end én vandkilde til produktion af bløddyr, skal der indgå bløddyr fra alle vandkilder i prøven, således at alle dele af bruget er proportionalt repræsenteret i prøven.
The stages required for the identification of WSSV from tissue samples shall be as follows: Homogenisation of the tissue, extraction of the DNA, specific amplification of WSSV DNA using PCR, visualisation of the amplified product on a gel, purification of the DNA and sequencing to confirm the identity of the pathogen.
Ved udtagning af prøver fra områder med opdræt af bløddyr skal prøven omfatte bløddyr fra et tilstrækkeligt antal prøveudtagningssteder, således at alle dele af området med opdræt af bløddyr er proportionalt repræsenteret i prøven.
Tissue homogenisation
Naturlige voksesteder skal indgå i prøveudtagningen.
The tissue shall be weighed, placed in Lysing Matrix A tubes, diluted 1 in 10 w/v or according to manufacturer's instructions, in an appropriate buffer (G2 and 10 μl Proteinase K for use with DNA Tissue kit (Qiagen)) and homogenised using the Fast Prep 24 homogeniser for two minutes.
Hvis der forekommer svage bløddyr, bløddyr med åbne skaller eller nyligt døde bløddyr (som ikke er gået i opløsning), udvælges først og fremmest disse bløddyr.
Homogenised samples shall be incubated at 56 °C for a minimum period of four hours or overnight.
Ved udtagning af prøver i akvakulturbrug, hvor der anvendes mere end én vandkilde til produktion af bløddyr, skal der indgå bløddyr fra alle vandkilder i prøven, således at alle dele af bruget er proportionalt repræsenteret i prøven.
Samples shall be vortexed, centrifuged at 9000 rpm for two minutes and 50 μl of supernatant or a volume equivalent to 5 mg of tissue (weight of tissue optimal for extraction kit) shall be added to a sample tube for DNA extraction and volume made up to 200 μl using G2 buffer.
Ved udtagning af prøver fra områder med opdræt af bløddyr skal prøven omfatte bløddyr fra et tilstrækkeligt antal prøveudtagningssteder.
Total DNA shall be extracted using a DNA tissue extraction kit and the EZ1 Advanced XL Biorobot (Qiagen) following the manufacturers' instructions.
De vigtigste faktorer, der skal tages i betragtning ved udvælgelsen af disse prøveudtagningssteder, er steder, hvor der tidligere er blevet påvist Bonamia ostreae, populationstæthed, vandstrømme, forekomst af modtagelige arter, forekomst af vektorarter, vanddybde og driftspraksis.
An extraction control (Calf Thymus DNA) and a negative control (G2 buffer) shall run with each batch of samples.
Naturlige voksesteder i eller i umiddelbar nærhed af områder med opdræt af bløddyr skal indgå i prøveudtagningen.
DNA shall be eluted into 50 μl volume.
Den første er en konventionel PCR, der amplificerer adskillige medlemmer af Haplosporidia, herunder Bonamia spp.
To ensure that the extraction has completed successfully, the DNA concentration for all samples and controls shall be determined using a Nano Drop machine.
Primerne, som betegnes Bo og Boas, er henholdsvis 5′-CAT-TTA-ATT-GGT-CGG-GCC-GC-3′ og 5′-CTG-ATC-GTC-TTC-GAT-CCC-CC-3′ og amplificerer et produkt på 300 bp.
Extracted DNA shall be frozen at – 20 °C if not required immediately.
Aliquoter af medium (supernatant) fra alle kulturer eller brønde, som udgør primærkulturen, samles pr. cellelinje 7-10 dage efter podning, og podes derefter på homologe cellekulturer, der er ufortyndet og fortyndet 1:10 (som giver slutfortyndinger af supernatanten på henholdsvis 1:10 og 1:100), som beskrevet i punkt I.5.2.
WSSV Polymerase Chain Reaction (PCR)
Data og optegnelser skal opbevares i mindst 10 år.
The method to be used for the detection of WSSV shall be the protocol for the detection of WSSV by nested PCR set out in the following paragraphs which amplifies a 1447 bp and an 848 bp amplicon of the 18s rRNA gene in the first and second round PCRs respectively.
DEL 2
The 1st round PCR reaction shall be set up in a 50 μl volume which contains final concentrations of 1 × GoTaq Buffer (Promega), 5 mM MgCl2, 1 pmol/μl WSSV 146 F1 primer, 1 pmol/μl WSSV 146 R1 primer (Table 1), 0,25 mM dNTPs, 1,25U Taq polymerase and 2,5 μl of DNA.
DETALJEREDE DIAGNOSEMETODER OG -PROCEDURER FOR OVERVÅGNING OG BEKRÆFTELSE AF KOI-HERPESVIRUS-SYGDOM (KHV)
Each sample shall be run in duplicate alongside a negative extraction control, a negative PCR control, (2,5 μl H2O added instead of DNA) and a positive control.
I. Detaljerede diagnosemetoder og -procedurer for at bekræfte forekomst af eller udelukke mistanke om KHV
The positive control shall be diluted WSSV plasmid made and validated for use in-house (available from the EURL).
For at mindske risikoen for krydskontaminering skal der anvendes separate plader med 12 eller 24 brønde til prøver fra forskellige akvakulturbrug.
The 2nd round WSSV PCR reaction shall be set up in the same way as the first round but using the WSSV 146 F2/R2 primer set and using a second positive control to check that this stage of the PCR has worked.
Rådets afgørelse (EU) 2015/1565
Council Decision (EU) 2015/1565
under henvisning til traktaten om Den Europæiske Unions funktionsmåde, særlig artikel 43, stk. 2, sammenholdt med artikel 218, stk. 6, litra a), nr. v),
Having regard to the Treaty on the Functioning of the European Union, and in particular Article 43(2), in conjunction with Article 218(6)(a)(v) thereof,
Fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, har i mange årtier kunnet fiske i EU-farvande i den eksklusive økonomiske zone ud for Fransk Guyanas kyst på betingelse af, at de overholder gældende juridisk bindende EU-retsakter om bevarelse og forvaltning af fiskeressourcerne.
Subject to their compliance with the applicable legally binding Union acts on the conservation and management of fishery resources, fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela have operated in Union waters in the exclusive economic zone off the coast of French Guiana for many decades.
Forarbejdningsindustrien i Fransk Guyana er afhængig af landingerne fra disse fiskerfartøjer, og kontinuiteten i dette fiskeri bør derfor sikres.
The processing industry based in the French Guiana depends on the landings from those fishing vessels and therefore the continuity of those operations should be ensured.
Nærværende afgørelse bør erstatte Rådets afgørelse 2012/19/EU [1], som blev annulleret ved Domstolens dom af 26. november 2014 [2], og hvis virkninger opretholdes, indtil en ny afgørelse træder i kraft inden for en rimelig frist.
This Decision should replace Council Decision 2012/19/EU [1] which was annulled by the judgement of the Court of Justice of 26 November 2014 [2] and the effects of which are being maintained until the entry into force of a new decision within a reasonable period of time.
Eftersom erklæringen allerede er meddelt Den Bolivariske Republik Venezuela, er der ikke behov for en fornyet meddelelse heraf —
As the Declaration has already been notified to the Bolivarian Republic of Venezuela, there is no need for a new notification thereof,
Erklæringen til Den Bolivariske Republik Venezuela om tildeling af fiskerimuligheder i EU-farvande til fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, i den eksklusive økonomiske zone ud for Fransk Guyanas kyst (herefter »erklæringen«) godkendes herved på Den Europæiske Unions vegne.
The Declaration addressed to the Bolivarian Republic of Venezuela on the granting of fishing opportunities in EU waters to fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela in the exclusive economic zone off the coast of the French Guiana (hereinafter ‘the Declaration’) is hereby approved on behalf of the European Union.
Rådets afgørelse 2012/19/EU af 16. december 2011 om godkendelse på Den Europæiske Unions vegne af erklæringen om tildeling af fiskerimuligheder i EU-farvande til fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, i den eksklusive økonomiske zone ud for Fransk Guyanas kyst (EUT L 6 af 10.1.2012, s. 8).
Council Decision 2012/19/EU of 16 December 2011 on the approval, on behalf of the European Union, of the Declaration on the granting of fishing opportunities in EU waters to fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela in the exclusive economic zone off the coast of French Guiana (OJ L 6, 10.1.2012, p.
EUT L 286 af 29.10.2008, s. 33.
8).
Erklæring til Den Bolivariske Republik Venezuela om tildeling af fiskerimuligheder i EU-farvande til fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, i den eksklusive økonomiske zone ud for Fransk Guyanas kyst
Joined Cases C-103/12 and 165/12, European Parliament and Commission v Council.
Den Europæiske Union udsteder tilladelser til et begrænset antal fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, til at fiske i den del af den eksklusive økonomiske zone ud for Fransk Guyanas kyst, som ligger uden for 12 sømil fra basislinjerne, på de i denne erklæring fastsatte betingelser.
Declaration addressed to the Bolivarian Republic of Venezuela on the granting of fishing opportunities in EU waters to fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela in the exclusive economic zone off the coast of French Guiana
I overensstemmelse med artikel 22 i Rådets forordning (EF) nr. 1006/2008 af 29. september 2008 om tilladelser til EF-fiskerfartøjers fiskeri uden for EF-farvande og tredjelandsfartøjers adgang til EF-farvande [1] skal de godkendte fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, i forbindelse med fiskeri i det i stk. 1 omhandlede område overholde bestemmelserne i Den Europæiske Unions fælles fiskeripolitik om bevarelses- og kontrolforanstaltninger og andre EU-bestemmelser vedrørende fiskeri i dette område.
The European Union shall issue fishing authorisations to a limited number of fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela to fish in the part of the exclusive economic zone off the coast of French Guiana that lies more than 12 nautical miles from the base lines, subject to the conditions set out in this Declaration.
Godkendte fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, skal nærmere bestemt overholde Den Europæiske Unions relevante regler eller forordninger, om, bl.a., hvilke fiskebestande der må fiskes efter, det højeste antal tilladte fiskerfartøjer, og den andel af fangsterne, som skal landes i Fransk Guyanas havne.
In accordance with Article 22 of Council Regulation (EC) No 1006/2008 of 29 September 2008 concerning authorisations for fishing activities of Community fishing vessels outside Community waters and the access of third country vessels to Community waters [1], the authorised fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela shall, when fishing in the zone referred to in paragraph 1, comply with the provisions of the European Union common fisheries policy concerning the conservation and control measures and other European Union provisions governing fishing activities in that zone.
Den Europæiske Union kan når som helst trække dette særlige tilsagn udtrykt i erklæringen om tildeling af fiskerimuligheder tilbage ved en ensidig erklæring, uden at dette berører muligheden for at inddrage tilladelser, som er udstedt til individuelle fiskerfartøjer, der fører Den Bolivariske Republik Venezuelas flag, på grund af deres manglende overholdelse af de relevante EU-regler eller -forordninger.
More particularly, authorised fishing vessels flying the flag of the Bolivarian Republic of Venezuela shall comply with any relevant European Union rules or regulations specifying, inter alia, the fish stocks that may be targeted, the maximum number of authorised fishing vessels and the proportion of catches to be landed into ports in French Guiana.