natgillin/translations-raw huggingface dataset:
for så vidt angår østers over 6 mm, 150 dyr pr. sending.
in the case of oysters bigger than 6 mm, 150 individuals per consignment.
Ved udvælgelsen af disse dyr skal alle dele af sendingen være forholdsmæssigt repræsenteret i prøven.
When selecting those animals, all parts of the consignment must be proportionally represented in the sample.
Hvis der forekommer svage dyr, dyr med åbne skaller eller nyligt døde dyr, udvælges først og fremmest disse dyr.
If weak, gaping or freshly dead (not decomposed) animals are present, primarily such animals shall be selected.
Prøveudtagning med henblik på anvendelsen af artikel 5, stk. 2, omfatter mindst 150 individer af Crassostrea gigas pr. prøveudtagningssted.
Sampling for the purposes of Article 5(2) shall consist of at least 150 individuals of Crassostrea gigas per sampling points.
Der udtages prøver fra alle akvakulturbrug eller områder med opdræt af bløddyr i medlemsstater eller segmenter, der er omfattet af programmet.
All farms or mollusc farming areas in the Member State or compartment covered by the programme shall be sampled.
Prøveudtagning med henblik på anvendelsen af artikel 5, stk. 1, litra b, omfatter mindst 150 individer af Crassostrea gigas pr. segment.
Sampling for the purposes of Article 5(1)(b) shall consist of at least 150 individuals of Crassostrea gigas oysters per compartment.
Der tages ved udvælgelsen af disse dyr hensyn til følgende kriterier:
When selecting those animals, the following criteria shall be taken into account:
Forekommer der ikke sådanne dyr, udvælges sunde bløddyr under 12 måneder.
If such animals are not present, the animals selected shall include healthy molluscs less than 12 months old.
Ved udtagning af prøver i akvakulturbrug, hvor der anvendes mere end én vandkilde til produktion, skal der indgå dyr fra alle vandkilder i prøven, således at alle dele af bruget er forholdsmæssigt repræsenteret i prøven.
When sampling in farms in which more than one water source is utilised for production, animals representing all water sources must be included for sampling in such a way that all parts of the farm are proportionally represented in the sample.
Ved udtagning af prøver fra områder med opdræt af bløddyr skal prøven omfatte dyr fra et tilstrækkeligt antal prøveudtagningssteder, mindst tre prøveudtagningssteder, således at alle dele af området med opdræt af bløddyr er repræsenteret i prøven, herunder naturlige voksesteder i området med opdræt af bløddyr.
When sampling in mollusc farming areas, animals from a sufficient number of sampling points, at least three sampling points, shall be included in the sample in such a way that all parts of the mollusc farming area are proportionally represented in the sample, including natural beds present in the mollusc farming area.
De vigtigste faktorer, der skal tages i betragtning ved udvælgelsen af disse prøveudtagningssteder, er: tidligere påvisning af OsHV-1 μvar i området, populationstæthed, vandstrømme, vanddybde og driftspraksis.
The main factors to be considered for the selection of these sampling points are: previous detection of OsHV-1 μvar in the area, stocking density, water flows, bathymetry and management practices.
Den i artikel 5, stk. 2, omhandlede prøveudtagning skal foretages i den periode af året, hvor forekomsten af OsHV-1 μvar i medlemsstaterne eller segmenterne vides at være størst.
The sampling provided for in Article 5(2) shall be carried out in the period of the year when prevalence of OsHV-1 μvar in the Member State or compartment is known to be maximal.
Foreligger der ingen sådanne data, skal prøveudtagningen foretages lige efter den periode, hvor vandtemperaturen overstiger 16 °C, eller på det tidspunkt af året, hvor temperaturen normalt når det årlige maksimum.
When such data is not available, sampling shall be carried out just after the period when the water temperature exceeds 16 °C or at the time of the year when the temperature normally reaches its yearly maximum.
Den i artikel 5, stk. 1, litra b), omhandlede prøveudtagning skal helst foretages på den tid af året, der er beskrevet i litra c). Hvis prøver samles uden for denne periode af året, skal de indsamlede østers opbevares på betingelser, der svarer til dem, der er beskrevet i litra c), i en for påvisning af OsHV-1 μvar hensigtsmæssig periode, før de undersøges.
The sampling provided for in Article 5(1)(b) shall preferably be carried out in the period of the year described in point c. If samples are collected outside that period of the year, the sampled oysters must be maintained under conditions equivalent to those described in point c for a period suitable for the detection of OsHV-1 μvar, before being tested.
Diagnosemetoder til påvisning af OsHV-1 μvar
Diagnostic methods of detecting OsHV-1 μvar
Denne procedure er en diagnostisk standardmetode, der anvendes til påvisning og identifikation af OsHV-1 μvar ved polymerasekædereaktion (i det følgende benævnt »PCR«).
This procedure explains a standard diagnostic method to be used for OsHV-1 μvar detection and identification by Polymerase Chain Reaction (hereinafter PCR).
Den gør det muligt at skelne mellem OsHV-1 og OsHV-1 μvar.
It allows distinguishing between OsHV-1 and OsHV-1 μvar.
Laboratorierne kan for at optimere reaktionsbetingelserne og tage hensyn til laboratoriets udstyr og de vilkår, der gør sig gældende dér, eventuelt tilpasse de metoder, der er beskrevet i dette bilag, forudsat at samme sensitivitet og specificitet kan påvises.
When appropriate, in order to optimise the reaction conditions and to suit the equipment and conditions in their own laboratory, the laboratories may apply modifications to the methods described in this Annex, provided that an equal sensitivity and specificity can be demonstrated.
OsHV-1 μvar er defineret i artikel 1 i denne forordning.
OsHV-1 μvar is defined in Article 1 of this Regulation.
Udstyr og miljøbetingelser
Equipment and environmental conditions
Den diagnostiske test, der anvendes til påvisning og identifikation af OsHV-1 ved PCR, kræver samme udstyr og miljøbetingelser, som normalt anvendes til PCR-analyser, dvs.:
The diagnostic test used for OsHV-1 μvar detection and identification by PCR requires the equipment and environmental conditions classically used for PCR assays as follows:
et lukket aftræksskab, der er udstyret med et system til udsending af uv-stråler for at eliminere eventuel kontamination ved tilberedning af PCR-blanding
A closed hood equipped with an UV producing system to eliminate potential contaminations when preparing PCR mix.
to komplette pipettesæt (2 μl, 20 μl, 200 μl og 1000 μl), det første sæt er til dna-ekstraktion og det andet til tilberedning af PCR-blanding
Two complete sets of pipettes (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl), the first one for DNA extraction, and the second one for PCR mix preparation.
tre forskellige pipetter: en pipette (2 μl) til overførsel af prøver til PCR-blandingen, en pipette (20 μl) til EB-prøveudtagning og en pipette (20 μl) til loading af PCR-produkter på agarosegel
Three different pipettes: one pipette (2 μl) to dispense samples in PCR mix, one pipette (20 μl) for EB sampling and another pipette (20 μl) to load PCR products in agarose gels.
pipettespidser med filter (2 μl, 20 μl, 200 μl og 1000 μl) til dna-ekstraktion, tilberedning af PCR-blanding og overførsel af prøver
Filter pipette tips (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl) for DNA extraction, PCR mix preparation and sample dispensing.
pipettespidser (20 μl) til indsamling af EB og loading af amplifikationsprodukterne på agarosegel
Pipette tips (20 μl) to collect EB and to load amplification products in agarose gel.
en termocykler til amplifikation
A thermal cycler to perform amplifications.
et horisontalt elektroforesesystem til elektroforese af PCR-produkter
A horizontal electrophoresis system for PCR products electrophoresis.
et uv-bord til observation af PCR-produkter efter agarosegelelektroforese
An UV table to observe PCR products after agarose gel electrophoresis.
et system til billedtagning af gelen.
A system to acquire pictures of the gels.
Personen, der udfører testen, skal bære en laboratoriekittel og handsker under alle de nedenfor beskrevne trin.
The manipulator must wear a lab coat and some gloves during all the different steps described bellow.
Kittel og handsker skal helst skiftes efter hvert hovedtrin: dna-ekstraktion, tilberedning af PCR-blanding, overførsel af prøver, amplifikation og loading på gelen.
Lab coat and gloves must be changed preferably after each main step: DNA extraction, preparation of PCR mix, sample dispensing, amplification and gel loading.
Det anbefales at gennemføre disse forskellige trin i forskellige rum.
It is recommended to perform these different steps in different rooms.
Navnlig bør gel-loading/elektroforese finde sted i et andet rum end dna-ekstraktion, tilberedning af PCR-blanding og overførsel af dna.
More particularly, amplification and gel loading/electrophoresis should take place in a room separate from DNA extraction, PCR mix preparation and DNA dispensing.
Levende eller nyligt døde østers (som ikke er gået i opløsning), som eventuelt tidligere har været nedfrosset, klargøres med henblik på dna-ekstraktion.
Live or freshly dead (not decomposed) oysters, which can be previously frozen, are processed for DNA extraction.
Prøver behandles forskelligt afhængigt af størrelsen:
Samples are processed differently according to their size:
for larver knuses samleprøver på 50 mg hele dyr (inklusive skal) med 200 μl destilleret vand og centrifugeres ved 1000 g i 1 minut
For larvae, pools of 50 mg of the whole animals (including the shell) completed with 200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
for yngel på højst 6 mm knuses samleprøver på 300 mg hele dyr (inklusive skal) med 1200 μl destilleret vand og centrifugeres ved 1000 g i 1 minut
For spat smaller than or of 6 mm, pools of 300 mg of the whole animals (including the shell) completed with 1200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
for yngel mellem 6 og 15 mm knuses alt blødt væv fra hvert enkelt dyr individuelt
For spat between 6 and 15 mm in size, all the soft tissues of each animal are crushed individually.
for dyr over 15 mm isoleres dele af gæller og kappe
For animals bigger than 15 mm, pieces of gills and mantle are isolated.
Dna-ekstraktion foretages ved hjælp af QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) og ifølge instruktionerne for Tissue Test Protocol.
DNA extraction is performed using the QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) and following the instructions for Tissue Test Protocol.
Den videre klargøring af prøverne foretages i følgende rækkefølge:
The further sample preparation is performed in the following order:
100 μl supernatant for prøver som omhandlet i litra a) og b) eller 10 til 50 mg væv for prøver som omhandlet i litra c) og d) kommes i et 1,5 ml mikrocentrifugerør, og 180 μl buffer ATL tilsættes.
Place 100 μl of supernatant for samples referred to in (a) and (b) or 10 to 50 mg of tissues for samples referred to point (c) and (d) in a 1,5 ml microcentrifuge tube and add 180 μl of Buffer ATL.
Der tilsættes 20 μl proteinase K, der vortexes og inkuberes ved 56 °C, indtil vævet er fuldstændigt lyseret (natten over).
Add 20 μl Proteinase K, mix by vortexing and incubate at 56 °C until the tissue is completely lysed (overnight).
Der vortexes af og til under inkuberingen for at dispergere prøven.
Vortex occasionally during incubation to disperse sample.
1,5 ml mikrocentrifugerøret centrifugeres kort for at fjerne dråber fra låget.
Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
200 μl buffer AL tilsættes prøven, som pulsvortexes i 15 s. og inkuberes ved 70 °C i 10 minutter. 1,5 ml mikrocentrifugerøret centrifugeres kort for at fjerne dråber fra låget.
Add 200 μl Buffer AL to the sample, mix by pulse-vortexing for 15 s and incubate at 70 °C for 10 minutes.
Blandingen fra trin 4 overføres til QIAamp-spinkolonnen (i et 2 ml opsamlingsrør) uden at gøre kanten våd.
Carefully apply the mixture from step 4 to the QIAamp Spin Column (in a 2 ml collection tube) without wetting the rim.
Låget lukkes, og der centrifugeres ved 10000 rpm i 1 min. QIAamp-spinkolonnen placeres i et rent 2 ml opsamlingsrør (følger med kittet), og røret med filtratet kasseres.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the tube containing the filtrate.
QIAamp-spinkolonnen åbnes forsigtigt, og 500 μl buffer AW1 tilsættes uden at gøre kanten våd.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW1 without wetting the rim.
Låget lukkes, og der centrifugeres ved 10000 rpm i 1 min. QIAamp-spinkolonnen placeres i et rent 2 ml opsamlingsrør (følger med kittet), og opsamlingsrøret med filtratet kasseres.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
QIAamp-spinkolonnen åbnes forsigtigt, og 500 μl buffer AW2 tilsættes uden at gøre kanten våd.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW2 without wetting the rim.
Låget lukkes, og der centrifugeres ved maksimal hastighed (14000 rpm) i 3 min.
Close the cap and centrifuge at full speed (14000 rpm) for 3 min.
(Valgfrit) QIAamp-spinkolonnen placeres i et nyt 2 ml opsamlingsrør (følger ikke med kittet), og opsamlingsrøret med filtratet kasseres.
(Optional) Place the QIAamp Spin Column in a new 2ml collection tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Der centrifugeres ved maksimal hastighed (14000 rpm) i 1 min.
Centrifuge at full speed (14000 rpm) for 1 min.
QIAamp-spinkolonnen placeres i et rent 1,5 ml mikrocentrifugerør (følger ikke med kittet), og opsamlingsrøret med filtratet kasseres.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 1,5 ml microcentrifuge tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
QIAamp-spinkolonnen åbnes forsigtigt, og 100 μl destilleret vand tilsættes.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 100 μl of distilled water.
Der inkuberes i 5 minutter ved rumtemperatur, og der centrifugeres ved 10000 rpm i 1 min.
Incubate 5 minutes at room temperature and centrifuge at 10000 rpm for 1 min.
Ekstraktionens kvalitet og effektivitet kontrolleres (f.eks. ved at måle OD (260 nm) med spektrofotometer eller efter elektroforese i agarosegel).
Control the quality and efficacy of the extraction (for example by measuring OD (260 nm) under spectrophotometer or after electrophoresis in agarose gel).
Prøverne fortyndes for at få en endelig dna-koncentration på 50-100 ng/μl.
Prepare dilution of your samples in order to have a final DNA concentration of 50-100 ng/μl.
Dna-opløsninger opbevares ved 4 °C, indtil PCR-analyserne gennemføres.
DNA solutions are kept at 4 °C until PCR analyses are performed.
Der kan anvendes andre kommercielle kit til dna-ekstraktion, forudsat at det er godtgjort, at de giver tilsvarende resultater.
Other commercial kits may be used for the DNA extractions provided they have been demonstrated to give similar results.
Polymerasekædereaktion (PCR)
Polymerase Chain Reaction (PCR)
Reagenser
Reactives
10 X buffer (leveres med Taq dna-polymerasen)
10 X Buffer (furnished with the Taq DNA polymerase)
MgCl2 (leveres med dna-polymerasen) (25 mM)
MgCl2 (furnished with the DNA polymerase) (25 mM)
Taq dna-polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
Taq DNA Polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20 mM) skal fortyndes 10 gange (til 2 mM) før brug
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20mM) must be diluted 10 fold (at 2 mM) before use
d H2O (destilleret H2O frit for dna og rna)
d H2O (distilled H2O free of DNA and RNA)
Primere
Primers
Følgende primere [1] skal anvendes:
The following primers [1] must be used:
PCR-blanding
PCR mix
PCR-blandingen til hvert rør indeholder:
PCR mix for each tube is:
Volumen pr. rør
Volume per tube
MgCl2 (25 mM) 5 μl
MgCl2 (25 mM)
Taq-polymerase (5 U/μl)
Taq polymérase (5U/μl)
49 μl af denne PCR-blanding fordeles i hvert PCR-rør
49 μl of this PCR mix is dispensed in each PCR tube
1 μl af ekstraheret dna (50-100 ng/μl) tilsættes hvert rør.
1 μl of extracted DNA (50-100 ng/μl) is added to each tube
Der anvendes to typer kontroller:
Two types of control are used:
Negative kontroller består af dH2O (1 μl til 49 μl PCR-blanding).
Negative controls consist of dH2O (1 μl for 49 μl of PCR mix).
De har til formål at påvise potentiel reaktiv forurening i arbejdsmiljøet.
They aim at detecting potential reactive contamination or working environment.
Efter hver 10. prøve eller efter hvert batch af prøver medtages én negativ kontrol.
One negative control should be included every 10 samples or after each batch of samples.
Positive kontroller består af plasmid-dna, som indeholder OsHV-1-målgenomområdet CF-CR.
Positive controls consist of plasmidic DNA containing the OsHV-1 target genome region CF-CR.
De har til formål at kontrollere, hvor effektiv PCR-reaktionen er.
They aim at checking the efficacy of the PCR reaction.
For hver PCR-analyse medtages en positiv kontrol.
One positive control should be included for each PCR analysis.
Positive kontroller fås hos EF-referencelaboratoriet.
Positive controls are available from the Community Reference Laboratory.
Amplifikation
Amplification
Amplifikationscykler gennemføres i en termocykler
Amplification cycles are performed in a thermal cycle apparatus.
initial denaturering: 2 min. ved 94 °C
Initial denaturation: 2 min at 94 °C
amplifikation: 35 cykler (1 min. ved 94 °C, 1 min. ved 50 °C og 1 min. ved 72 °C)
Amplification: 35 cycles (1 min at 94 °C, 1 min at 50 °C and 1 min at 72 °C)
final elongering: 5 min. ved 72 °C
Final elongation: 5 min at 72 °C
Elektroforese
Electrophoresis
50 X TAE (kan købes brugsklart):
50 X TAE (can be bought directly ready for use):
Tris-base (40 mM) 242 g
Tris base (40 mM) 242 g
Iseddike (40 mM) 57,1 ml
Acetic glacial acid (40 mM) 57,1 ml
Na2EDTA.2H2O (1 mM) 18,61 g
Na2EDTA.2H2O (1 mM) 18,61 g
dH2O til 1 liter
dH2O for 1 liter
Ph justeres til 8
Ajust at pH 8
Agarosegel 2,5 % i 1X TAE
Agarose gel 2,5 % in 1 X TAE
Ethidiumbromid (EB) (0,5 μg/ml) tilsættes efter afkøling af gelen.
Ethidium bromide (0,5 μg/ml) added after cooling the gel.
Blå loadingbuffer:
Loading blue dye:
Bromphenolblåt 0,25 %
Bromophenol blue 0,25 %
Xylen cyanol FF 0,25 %
Cyanol xylene FF 0,25 %
Saccharose 40 %
Sucrose 40 %
Opbevares ved 4 °C.
Keep at 4 °C.
Fortyndes 6 gange før anvendelse (2 μl blå loadingbuffer til 10 μl PCR-produkter).
Use diluted 6 times (2 μl of loading blue buffer for 10μl of PCR products).
Molekylevægtmarkør:
Molecular weight marker:
SmartLadder SF (Eurogentec): en brugsklar molekylevægtmarkør med 9 jævnt fordelte bånd fra 100 til 1000 bp.
SmartLadder SF (Eurogentec): a ready-to-use molecular weight marker including 9 regularly spaced bands from 100 to 1000 bp.
Fremstilling af agarosegel
Agarose gel preparation
2,5 g agarose afvejes, 100 ml 1X TAE tilsættes, og der opvarmes, indtil blandingen er smeltet.
Weight 2,5 g of agarose, add 100 ml of 1 X TAE and heat until the mix is melted.
Efter afkøling tilsættes ethidiumbromid (5 μl til 100 ml agarosegel), og opløsningen hældes i en særlig form, der er udstyret med kamme (for at danne brønde).
After cooling the solution, ethidium bromide is added (5 μl for 100 ml of agarose gel) and the solution is disposed in a specific mould equipped with combs (to form slots).
Når gelen er polymeriseret, fjernes kammene, og gelen anbringes i et vandret elektroforesekar, der indeholder tilstrækkeligt 1X TAE til at dække agarosegelen.
When gel is polymerised, combs are removed and gel is placed in a horizontal electrophoresis system containing enough 1 X TAE to the cover agarose gel.
10 μl PCR-produkter blandes med 2 μl blå loadingbuffer (6X) og fyldes i brøndene.
10 μl of PCR products are mixed with 2 μl of blue dye (6 X) and disposed in the slots.
En brønd er bestemt til molekylevægtmarkøren (5 μl).
One whole is dedicated to the molecular weight marker (5 μl).
Der køres ved 50 til 150 volt i 30 til 60 min. afhængigt af gelstørrelse og -tykkelse.
A voltage of 50 to 150 volts is applied during 30 min to 1 hour depending on the gel size and thickness.
Gelen betragtes under uv.
Gel is observed under UV.
Forekomst af OsHV-1 μvar i en prøve påvises ved tilstedeværelse af et bånd i den rigtige størrelse (for OsHV-157 bp i stedet for 173 bp) på 2,5 % agarosegel, hvor alle negative kontroller er negative, og alle positive kontroller er positive.
The presence of OsHV-1 μvar in a sample is indicated by the presence of a band of the appropriate size (157 bp instead of 173 bp for OsHV-1) on a 2,5 % agarose gel with all negative controls negative and all positive controls positive.
Fastlæggelse af afspærringszonen
Definition of the containment area
Der skal tages hensyn til følgende faktorer, der påvirker risikoen for spredning af sygdommen, ved fastlæggelsen af afspærringszonen i overensstemmelse med artikel 2, stk. 2:
The following factors influencing the risks for the spread of the disease shall be taken into account when defining the containment area in accordance with Article 2(2):
antal, procentdel og fordeling af bløddyr på det brug eller område med opdræt af bløddyr, der er inficeret
the number, rate and distribution of molluscs on the farm or mollusc farming area infected;
afstand til og tæthed af de nærmest liggende brug eller områder med opdræt af bløddyr
distance and density of neighbouring farms or mollusc farming areas;
nærhed til forarbejdningsvirksomheder, kontaktbrug eller kontaktområder med opdræt af bløddyr
proximity to processing establishments, contact farms or contact mollusc farming areas;
arter på brugene eller områderne med opdræt af bløddyr
species present at the farms or mollusc farming areas;
opdrætspraksis i de berørte og i de nærmest liggende brug eller områder med opdræt af bløddyr
farming practices applied in the affected and the neighbouring farms or mollusc farming areas; and
hydrodynamiske betingelser og andre faktorer af epizootiologisk signifikans.
hydrodynamic conditions and other factors of epizootiological significance identified.
Disse primere eller beskrivelserne heraf fås hos EF-referencelaboratoriet for sygdomme hos bløddyr (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, Frankrig).
These primers or descriptions thereof may be obtained from the Community Reference Laboratory for Mollusc Diseases (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, France).
Standarddyresundhedscertifikat for markedsføring af Crassostrea gigas bestemt til opdræt og genudlægningsområder
Model animal health certificate for the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Til markedsføring af Crassostrea gigas bestemt til opdræt og genudlægningsområder
For the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
(1)(2)[II.1 Bestemmelser for Crassostrea gigas, som har oprindelse i en afspærringszone, der er oprettet i overensstemmelse med artikel 2 i forordning (EU) nr. 175/2010
(1)(2)[II.1 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2 of Regulation (EU) No 175/2010
Undertegnede officielle inspektør bekræfter, at de Crassostrea gigas, der er nævnt i del I i dette certifikat:
I, the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate:
har oprindelse i et område, der er omfattet af sygdomsbekæmpelsesforanstaltninger vedrørende øget dødelighed hos Crassostrea gigass i forbindelse med OsHV-1 μvar
originate from an area subject to disease control measures regarding increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar;.
(1)[II.1.2 kan markedsføres i henhold til artikel 3, stk. 2, litra a), i forordning (EU) nr. 175/2010
(1)[II.1.2 are allowed to be placed on the market according to Article 3(2)(a) of Regulation (EU) No 175/2010;]