natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Da hverken filtrering eller centrifugering synes at kunne adskille den ikke-biotilgængelige fraktion af teststoffet fra den biotilgængelige (især for ekstremt lipofile stoffer, dvs. stoffer med log Pow > 5) (1) (5) i alle tilfælde, må prøverne ikke behandles på denne måde.
Since neither filtration nor centrifuging appear always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable (especially for super-lipophilic chemicals i.e. those chemicals with a log Pow > 5) (1) (5), samples may not be subjected to those treatments.
I stedet må man sørge for at holde karrene så rene som muligt, og indholdet af organisk kulstof i alt følges under såvel optagelses- som udskillelsesfasen.
Instead, measures should be taken to keep the tanks as clean as possible and the content of total organic carbon should be monitored during both the uptake and depuration phases.
Der udtages et passende antal fisk (normalt mindst fire) fra testkarrene ved hver prøveudtagning.
An appropriate number of fish (normally a minimum of four) is removed from the test chambers at each sampling time.
De udtagne fisk skylles hurtigt med vand, duppes tørre og aflives med det samme på den mest velegnede og humane måde, hvorefter de vejes.
The sampled fish are rinsed quickly with water, blot ‘dry’, killed instantly using the most appropriate and humane method, and then weighed.
Fiske- og vandprøver skal helst analyseres umiddelbart efter udtagningen, så man undgår nedbrydning eller andre former for tab, og så der løbende under testen kan beregnes omtrentlige optagelses- og udskillelseshastigheder.
It is preferable to analyse fish and water immediately after sampling in order to prevent degradation or other losses and to calculate approximate uptake and depuration rates as the test proceeds.
Ved at foretage analyserne med det samme opdager man straks, når et plateau er nået.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
Foretages analyserne ikke med det samme, opbevares prøverne hensigtsmæssigt.
Failing immediate analysis, samples are stored by an appropriate method.
Inden undersøgelsen påbegyndes, indhentes der oplysninger om, hvordan det pågældende teststof bør opbevares, f.eks. dybfrysning, henstand ved 4 oC, opbevaringstid og ekstraktion.
Before the beginning of the study, information on the proper method of storage for the particular test substance — for example, deep-freezing, holding at 4 0C, duration of storage, extraction, etc. are obtained.
Analysemetodens kvalitet
Quality of Analytical method
Da hele proceduren i vid udstrækning afhænger af analysemetodens nøjagtighed, præcision og følsomhed, kontrolleres det eksperimentelt, at den kemiske analyse giver tilfredsstillende præcision, reproducerbarhed og genfinding af teststoffet i både vand og fisk for den valgte metode.
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as recovery of the test substance from both water and fish are satisfactory for the particular method.
Det kontrolleres tillige, at teststoffet ikke kan påvises i det anvendte fortyndingsvand.
Also, check that the test substance is not detectable in the dilution water used.
Om nødvendigt korrigeres de under testen funde Cw- og Cf-værdier for genfinding og baggrundsværdier i kontrolgrupperne.
If necessary, the values of Cw and Cf obtained from the test are corrected for the recoveries and background values of controls.
Fiske- og vandprøver håndteres hele tiden på en sådan måde, at kontaminering og tab (f.eks. ved adsorption i prøveudtagningsudstyret) er mindst mulige.
Fish and water samples are handled throughout in such a manner as to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption by the sampling device).
Analyse af fiskeprøver
Analysis of Fish Sample
Hvis der i testen anvendes radioaktivt mærket materiale, kan man analysere for det samlede indhold af radioaktivitet (dvs. det oprindelige stof og dets metabolitter), eller prøverne kan oprenses, så den oprindelige forbindelse kan analyseres særskilt.
If radiolabelled materials are used in the test, it is possible to analyse for total radio label (i.e. parent and metabolites) or, the samples may be cleaned up so that parent compound can be analysed separately.
Også de vigtigste metabolitter kan karakteriseres ved ligevægtstilstanden eller ved afslutningen af optagelsesfasen, hvis den nås først.
Also, the major metabolites may be characterised at steady-state or at the end of the uptake phase, whichever is the sooner.
Hvis BCF udtrykt som samlet mængde radioaktivt mærket materiale er ≥ 1000 % tilrådes det — for visse stoffers, f.eks. pesticiders, vedkommende henstilles det kraftigt — at nedbrydningsprodukter, der udgør ≥ 10 % af restindholdet i alt i fiskevævet ved ligevægt, identificeres og bestemmes kvantitativt.
If the BCF in terms of total radiolebelled residues is ≥ 1000 %, it may be advisable, and for certain categories of chemicals such as pesticides strongly recommended, to identify and quantify degradates representing ≥ 10 % of total residues in fish tissues at steady state.
Hvis nedbrydningsprodukter, der udgør ≥ 10 % af radioaktivt mærket restindhold i alt i fiskevævet, identificeres og bestemmes kvantitativt, anbefales det at gøre det samme for nedbrydningsprodukter i testvandet.
If degradates representing ≥ 10 % of total radiolabelled residues in the fish tissue are identified and quantified, then it is also recommended to identify and quantify degradates in the test water.
Normalt skal koncentrationen af teststoffet bestemmes i hver enkelt fisk efter vejning.
The concentration of the test substance should usually be determined for each weighed individual fish.
Er det ikke muligt, kan prøverne fra hver prøveudtagning pooles, men pooling indskrænker mulighederne for statistisk behandling af dataene.
If this is not possible, pooling of the samples on each sampling occasion may be done but pooling does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Hvis en bestemt statistisk metode og styrke er vigtige hensyn, bør testen omfatte tilstrækkeligt mange fisk til, at den ønskede pooling og styrke tilgodeses (6) (7).
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of fish to accommodate the desired pooling procedure and power should be included in the test (6) (7).
BCF udtrykkes både som funktion af samlet våd vægt og — for stærkt lipofile stoffer — som funktion af fedtindholdet.
BCF should be expressed both as a function of total wet weight and, for high lipophilic substances, as a function of the lipid content.
Fiskenes fedtindhold bestemmes om muligt ved hver prøveudtagning.
Lipid content of the fish is determined on each sampling occasion if possible.
Bestemmelsen af fedtindholdet skal bestemmes ved hjælp af egnede metoder (henvisning (8) og (2) i bilag 3).
Suitable methods should be used for determination of lipid content (ref. 8 and 2 of Appendix 3).
Som standardmetode kan ekstraktion med chloroform/methanol anbefales (9).
Chloroform/methanol extraction technique may be recommended as standard method (9).
Da de forskellige metoder ikke giver identiske værdier (10), er det vigtigt at give nærmere oplysninger om, hvilken metode der er benyttet.
The various methods do not give identical values (10), so it is important to give details of the method used.
Når det er muligt, skal lipidanalysen foretages på samme ekstrakt, som er benyttet til analyse for teststoffet, eftersom lipiderne ofte må fjernes fra ekstraktet, inden det kan analyseres ved gaskromatografi.
When possible, the analysis for lipid should be made on the same extract as that produced for analysis for the test substance, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically.
Forskellen mellem fiskenes fedtindhold (i mg pr. kg våd vægt) ved begyndelsen af eksperimentet og ved slutningen må ikke være større end ± 25 %.
The lipid content of the fish (as mg/kg wet weight) at the end of the experiment should not differ from that at the start by more ± 25 %.
Også vævets tørstofindhold skal oplyses, så lipidkoncentrationen kan omregnes fra våd basis til tørstofbasis.
The tissue percent solids should also be reported to allow conversion of lipid concentration from a wet to a dry basis.
Teststoffets optagelseskurve fås ved at afsætte koncentrationen i/på fiskene (eller bestemt væv) under optagelsesfasen mod tiden (lineære akser).
The uptake curve of the test substance is obtained by plotting its concentration in/on fish (or specified tissues) in the uptake phase against time on arithmetic scales.
Hvis kurven viser et plateau, dvs. at den er omtrent parallel med tidsaksen, beregnes ligevægtsværdien BCFSS ved hjælp af udtrykket
If the curve has reached a plateau, that is, become approximately asymptotic to the time axis, the steady-state BCFss is calculated from:
ligevægt (gennemsnit)
as steady-state (mean)
Hvis der ikke opnås ligevægt, kan der beregnes en BCFSS-værdi, der er tilstrækkelig nøjagtig til risikovurderingsformål, ud fra en »stationær tilstand« ved 80 % (1,6/k2) eller 95 % (3,0/k2) af ligevægt.
When no steady-state is reached, it may be possible to calculate a BCFss of sufficient precision for hazard assessment from a ‘steady-state’ at 80 % (1,6/k2) or 95 % (3,0/k2) of equilibrium.
Også biokoncentreringsfaktoren BCFk beregnes som forholdet k1/k2, de to førsteordens hastighedskonstanter.
Also the concentration factor (BCFK) is determined, as the ratio k1/k2, the two first-order kinetic constants.
Hastighedskonstanten for udskillelse (k2) bestemmes normalt ud fra udskillelseskurven (dvs. en afbildning af faldet i teststoffets koncentration i fiskene mod tiden).
The depuration rate constant (k2) is usually determined from the depuration curve (i.e. a plot of the decrease in test substance concentration in the fish with time).
Dernæst beregnes hastighedskonstanten for optagelse (k1) på grundlag af k2 og en værdi af Cf, som udledes af optagelseskurven (se også bilag 5).
The uptake rate constant (k1) is then calculated given k2 and a value of Cf which is derived from the uptake curve (see also Appendix 5).
Til at finde BCFk og hastighedskonstanterne k1 og k2 foretrækkes ikke-lineære parameterestimeringsmetoder på computer (11).
The preferred method for obtaining BCFK and the rate constants, k1 and k2, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer (11).
Ellers kan der benyttes grafiske metoder til beregning af k1 og k2.
Otherwise, graphical methods may be used to calculate k1 and k2.
Hvis udskillelseskurven tydeligvis ikke er af første orden, må der tages mere komplekse modeller i brug (se henvisningerne i bilag 3) og søges biostatistisk bistand.
If the depuration curve is obviously not first-order, then more complex models should be employed (see references in Appendix 3) and advice from a biostatistician sought.
Hvis der i prøveopløsninger måles koncentrationer nær analysemetodens påvisningsgrænse, skal resultaterne fortolkes med forsigtighed.
The results should be interpreted with caution where measured concentrations of test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method.
Skarpe optagelses- og udskillelseskurver er tegn på biokoncentreringsdata af høj kvalitet.
Clearly defined uptake and loss curves are an indication of good quality bioconcentration data.
Normalt ligger konfidensgrænserne for BCF-værdier i vel tilrettelagte undersøgelser omkring ± 20 %.
Generally the confidence limit of BCFs from well-designed studies approach ± 20 %.
TESTSTOF
TEST SUBSTANCE:
data til kemisk identifikation (herunder et eventuelt indhold af organisk kulstof)
chemical identification data (including the organic carbon content, if appropriate),
hvis stoffet er radioaktivt mærket, de mærkede atomers nøjagtige position og den procentdel af radioaktiviteten, der skyldes urenheder.
if radio labelled, the precise position of the labelled atom(s) and the percentage of radioactivity associated with impurities.
TESTART
TEST SPECIES
dens videnskabelige navn, stamme, kilde, eventuel forbehandling, akklimatisering, alder, størrelse mv.
scientific name, strain, source, any pre-treatment, acclimation, age, size-range, etc.
TESTBETINGELSER
TEST CONDITIONS:
testprocedure (f.eks. gennemstrømning eller semistatisk)
test procedure used (e.g. flow-through or semi-static),
belysningskildens art og karakteristika og belysningsperiodernes varighed
type and characteristics of illumination used and photoperiod(s),
testens tilrettelægning (f.eks. testkamrenes antal og størrelse, vandudskiftningsrate, antal gentagelser, antal fisk pr. gentagelse, antal testkoncentrationer, optagelses- og udskillelsesfasens længde samt udtagningshyppighed for fiske- og vandprøver)
test design (e.g. number and size of test chambers, water volume replacement rate, number of replicates, number of fish per replicate, number of test concentrations, length of uptake and depuration phases, sampling frequency for fish and water samples,
metode til fremstilling af stamopløsninger og fornyelseshyppighed (hvis der er benyttet et opløsende stof, oplyses dets koncentration og dets bidrag til testvandets indhold af organisk kulstof)
method of preparation of stock solutions and frequency of renewal (the solubilizing agent, its concentration and its contribution to the organic carbon content of test water must be given, when used),
de nominelle testkoncentrationer, gennemsnittet af de målte værdier og deres standardafvigelser i testkarrene samt hvilken metode der er benyttet til bestemmelsen
the nominal test concentrations, the means of the measured values and their standard deviations in the test vessels and the method by which these were attained,
kilde til fortyndingsvand, beskrivelse af en eventuel forbehandling, resultater af forsøg til bekræftelse af, at fisk kan leve i vandet, samt vandets parametre: pH, hårdhed, temperatur, koncentration af opløst oxygen, restchlorindhold (hvis bestemt), organisk kulstof i alt, opslæmmet tørstof, testmediets saltholdighed (hvis relevant) samt alle andre foretagne målinger
source of the dilution water, description of any pre-treatment, results of any demonstration of the ability of test fish to live in the water, and water characteristics: pH, hardness, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), total organic carbon, suspended solids, salinity of the test medium (if appropriate) and any other measurements made,
kvaliteten af vandet i testkarrene, pH, hårdhed, TOC, temperatur og koncentration af opløst oxygen
water quality within test vessels, pH, hardness, TOC, temperature and dissolved oxygen concentration,
detaljerede oplysninger om fodring (f.eks. foderets type, kilde og sammensætning (i hvert fald fedtog proteinindhold) samt fodermængde og fodringshyppighed)
detailed information on feeding (e.g. type of food, source, composition — at least lipid and protein content if possible, amount given and frequency),
oplysninger om, hvordan fiske- og vandprøver er behandlet, herunder forberedelse, opbevaring, ekstraktion og analysemetoder (og præcision) for teststof og fedtindhold (hvis bestemt).
information on the treatment of fish and water samples, including details of preparation, storage, extraction and analytical procedures (and precision) for the test substance and lipid content (if measured).
RESULTATER
RESULTS:
resultater af eventuelle indledende undersøgelser
results from any preliminary study performed,
dødelighed for kontrolfiskene og fiskene i de enkelte testkamre samt eventuelt iagttaget unormal adfærd
mortality of the control fish and the fish in each exposure chamber and any observed abnormal behaviour,
fiskenes fedtindhold (hvis bestemt i forbindelse med testen)
the lipid content of the fish (if determination on testing occasion),
kurver (og alle måledata), der viser optagelse og udskillelse af teststoffet i fiskene, samt tiden til ligevægt
curves (including all measured data) showing the uptake and depuration of the test chemical in the fish, the time to steady-state,
Cf og Cw (med standardafvigelse og interval, hvis det er relevant) for alle udtagne prøver (Cf anføres i μg pr. g våd vægt (ppm), enten legemsvægt eller vægt af et bestemt væv, f.eks. fedtvæv, og Cw μg/ml (ppm)); Cw-værdier for kontrolgruppen (også baggrundsværdier oplyses)
Cf and Cw (with standard deviation and range, if appropriate) for all sampling times (Cf expressed in μg/g wet weight (ppm) of whole body or specified tissues thereof e.g. lipid, and Cw in μg/ml (ppm). Cw values for the control series (background should also be reported),
ligevægtsbiokoncentreringsfaktoren (BCFSS) og/eller den kinetiske koncentreringsfaktor (BCFk) og i relevante tilfælde 95 % konfidensgrænser for hastighedskonstanter for optagelse og udskillelse (alle udtrykt i forhold til fiskenes legemsvægt eller fiskenes eller de specificerede vævs fedtindhold), konfidensgrænser og standardafvigelse (hvis de foreligger samt beregnings- og dataanalysemetoder for hver koncentration af teststof
the steady-state bioconcentration factor (BCFss) and/or kinetic concentration factor (BCFK) and if applicable, 95 % confidence limits for the uptake and depuration (loss) rate constants (all expressed in relation to the whole body and the total lipid content, if measured, of the animal or specified tissues thereof), confidence limits and standard deviation (as available) and methods of computation/data analysis for each concentration of test substance used,
hvis der er benyttet radioaktivt mærkede stoffer, kan en eventuel akkumulering af påviste metabolitter anføres, hvis det er påkrævet
where radio-labelled substances are used, and if it is required, the accumulation of any detected metabolites may be presented,
alle usædvanlige omstændigheder ved testen, eventuelle afvigelser fra proceduren samt alle andre relevante oplysninger.
anything unusual about the test, any deviation from these procedures, and any other relevant information,
Resultater som »ikke påvist ved påvisningsgrænsen« bør ved forudgående metodeudvikling og god tilrettelæggelse af forsøget være indskrænket til et minimum, da sådanne resultater ikke kan benyttes til beregning af hastighedskonstanter.
minimise results as ‘not detected at the limit of detection’ by pre-test method development and experimental design, since such results cannot be used for rate constant calculations.
SAR and QSAR in Environmental Research, 1, 29-390.
SAR and QSAR in Environmental Research, 1, p. 29-390.
OECD, Paris (1996).
OECD, Paris (1996) Direct Phototransformation of chemicals in water.
Direct Phototransformation of chemicals in water.
Environmental Health and Safety Guidance Document Series on Testing and Assessment of Chemicals.
US EPA 822-R-94-002 (1994) Great Lake Water Quality Initiative Technical Support Doc. for the Procedure to Determine Bioaccumulation Factors.
US EPA 822-R-94-002 (1994) Great Lake Water Quality Initiative Technical Support Document for the Procedure to Determine Bioaccumulation Factors.
US FDA (Food and Drug Administration) Revision.
US FDA, (Food and Drug Administration) Revision.
Section 5, A(l) Analysis of Human Adipose Tissue, in Analysis of Pesticide Residues in Human and Environmental Samples, Thompson J.F.
Section 5, A(1) Analysis of Human or Animal Adipose Tissue, in Analysis of Pesticide Residues in Human and Environmental Samples, Thompson J.F.
Compaan H. (1980) in »The determination of the possible effects of chemicals and wastes on the aquatic environment: degradation, toxicity, bioaccumulation«, Ch.
Compaan H. (1980) in ‘The determination of the possible effects of chemicals and wastes on the aquatic environment: degradation, toxicity, bioaccumulation’ Ch.
Randall R.C, Lee H., Ozretich R.J., Lake J.L. and Pruell R.J.
Randall R.C., Lee H., Ozretich R.J., Lake J.L. and Pruell R.J.
CEC, Bioconcentration of chemical substances in fish: the flow-through method-Ring Test Programme, 1984-1985.
CEC, Bioconcentration of chemical substances in fish: the flow-through method-Ring Test Programme, 1984 to 1985.
ASTME E-1022-84 (Reapproved 1988) Standard Practice for conducting Bioconcentration Tests with Fishes and Saltwater Bivalve Molluscs.
ASTM E-1022-84 (Reapproved 1988) Standard Practice for conducting Bioconcentration Tests with Fishes and Saltwater Bivalve Molluscs.
Kemiske egenskaber af acceptabelt vand til fortynding
Chemical characteristics of an acceptable dilution water
Koncentrationsgrænse
Limit concentration
Partikler
Particulate Matter
Organisk kulstof i alt
Total Organic Carbon
Ikke-ioniseret ammoniak
Un-ionised ammonia
Organophosphorpesticider i alt
Total organophosphorous pesticides
Total organochlorino-pcsticider + polychlor-biphenyler
Total organochlorine pesticides plus polychlorinated biphenyls
Danio rerio [1] (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan) zebrafisk
Danio rerio [1] (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan) Zebra — fish
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linnaeus) Karpe
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linnaeus) Common Carp
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) (Temminck and Schlegel) japansk risfisk
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) (Temminck and Schlegel) Ricefish
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque)
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque) Bluegill
Oncorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum) regnbueørred
Oncorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum) Rainbow trout
Gasterosteus aculeatus (Teleostei, Gasterosteidae) (Linnaeus) trepigget hundestejle
Gasterosteus aculeatus (Teleostei, Gasterosteidae) (Linnaeus) Three-spined stickleback
I forskellige lande benyttes der en række brakvands- og saltvandsarter, f.eks.
Various estuarine and marine species have been used in different countries, for example:
Staghjorn sculpin
Staghorn sculpin
Trepigget hundestejle
Three-spined stikleback
Havaborre
Sea bass
Løje
Bleak
De i ovenstående tabel opregnede ferskvandsfisk er lette at opdrætte og/eller fremskaffe hele året, mens saltvands- og brakvandsarterne til dels kun findes i bestemte lande.
The fresh water fish listed in the table above are easy to rear and/or are widely available throughout the year, whereas the availability of marine and estuarine species is partially confined to the respective countries.
De kan opdrættes enten i fiskefarme eller i laboratoriet under kontrollerede forhold med hensyn til sygdomme og parasitter, så testdyrene er sunde og af kendt afstamning.
They are capable of being bred and cultivated either in fish farms or in the laboratory, under disease-and parasite-controlled conditions, so that the test animal will be healthy and of known parentage.
Meyer, A., Orti G. (1993) Proc, Royal Society of London.
Meyer A., Orti G. (1993) Proc.
Series B., Vol. 252, p. 231.
Royal Society of London, Series B., Vol. 252, p. 231.
Forudsigelse af længden af optagelsesfasen og udskillelsesfasen
Prediction of the duration of the uptake and depuration phases
Forudsigelse af optagelsesfasens længde
Prediction of the duration of the uptake phase
Før testen udføres, kan man ud fra en empirisk sammenhæng mellem k2 og n-octanol/vand fordelingskoefficienten (Pow) eller k2 og opløseligheden i vand (s) foretage et skøn over k2 og dermed en procentdel af den tid, der vil være påkrævet til at nå ligevægt.
Before performing the test, an estimate of k2 and hence some percentage of the time needed to reach steady-state may be obtained from empirical relationships between k2 and the n-octanol/water partition coefficient (Pow) or k2 and the aqueous solubility (s).
Eksempelvis kan k2 (dag -1) skønnes ved hjælp af følgende empiriske udtryk (1):
An estimate of k2 (day-1) may be obtained, for example from the following empirical relationship (1):
= – 0,414 log10(Pow) + 1,47 (r2 = 0,95)
= 0,414 log10(Pow) + 1,47 (r2 = 0,95)
(ligning 1)
[equation 1]
Andre udtryk, se henvisning (2).
For other relationships see Ref. (2).