natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Bestemmelse af det totale bladareal har den fordel, at det kan bestemmes for hver testbeholder og kontrolbeholder både ved testens start, under testen og ved dens slutning.
Total frond area has an advantage that it can be determined for each test and control vessel at the start, during, and at the end of the test.
Den tørre og friske vægt bestemmes ved testens start på en prøve af podekulturen, der er repræsentativ for den, der anvendes til at begynde testen, samt ved testens slutning med plantemateriale fra hver test- og kontrolbeholder.
Dry or fresh weight should be determined at the start of the test from a sample of the inoculum culture representative of what is used to begin the test, and at the end of the test with the plant material from each test and control vessel.
Hvis der ikke måles bladareal, er tør vægt at foretrække frem for frisk vægt.
If frond area is not measured, dry weight is preferred over fresh weight.
Bestemmelse af totalt bladareal, tør vægt og frisk vægt kan foretages således:
Total frond area, dry weight and fresh weight may be determined as follows:
Derefter kan det totale bladareal i testbeholderen bestemmes ved kalibrering med flade former med kendt areal.
By calibration with flat shapes of known area, the total frond area in a test vessel may then be determined.
Der skal sørges for at udelukke interferens fra testbeholderens rand.
Care should be taken to exclude interference caused by the rim of the test vessel.
En alternativ, men mere omstændelig metode er at fotokopiere testbeholdere og planter, klippe den resulterende silhuet af kolonierne ud og bestemme arealet med en bladareal-analysator eller ved hjælp af millimeterpapir.
An alternative but more laborious approach is to photocopy test vessels and plants, cut out the resulting silhouette of colonies and determine their area using a leaf area analyser or graph paper.
Også andre teknikker kan anvendes (f.eks. vejning af papiret svarende til silhuetten og sammenholdelse med et enhedsareal).
Other techniques (e.g. paper weight ratio between silhouette area of colonies and unit area) may also be appropriate.
Tør vægt: Alle kolonier indsamles fra hver testbeholder og skylles med destilleret eller deioniseret vand.
Dry weight: All colonies are collected from each of the test vessels and rinsed with distilled or deionised water.
De duppes fri for overskydende vand og tørres derefter ved 60 °C, til vægten er konstant.
They are blotted to remove excess water and then dried at 60 °C to a constant weight.
Eventuelle rodstumper skal medtages.
Any root fragments should be included.
Den tørre vægt skal angives med en nøjagtighed mindst svarende til 0,1 mg.
The dry weight should be expressed to an accuracy of at least 0,1 mg.
Frisk vægt: Alle kolonier overføres til på forhånd vejede rør af polystyren (eller andet inert materiale), hvis afrundede bund er forsynet med et lille hul (1 mm).
Fresh weight: All colonies are transferred to pre-weighed polystyrene (or other inert material) tubes with small (1 mm) holes in the rounded bottoms.
Rørene centrifugeres derefter ved 3000 o./min. i 10 minutter ved rumtemperatur.
The tubes are then centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes at room temperature.
Rørene, der indeholder de nu tørrede kolonier, vejes igen, og den friske vægt beregnes ved fratrækning af vægten af de tomme rør.
Tubes, containing the now dried colonies, are re-weighed and the fresh weight is calculated by subtracting the weight of the empty tube.
Hyppighed af målinger og analytiske bestemmelser
Frequency of measurements and analytical determinations
Hvis testen udføres statisk, skal pH for hver behandling måles ved testens start og slutning.
If a static test design is used, the pH of each treatment should be measured at the beginning and end of the test.
Udføres testen semistatisk, foretages pH-måling på hver portion »frisk« testopløsning før hver udskiftning foruden på de tilsvarende »brugte« opløsninger.
If a semi-static test design is used, the pH should be measured in each batch of ‘fresh’ test solution prior to each renewal and also in the corresponding ‘spent’ solutions.
Lysintensiteten skal måles i vækstkammeret, inkubatoren eller lokalet i punkter med samme afstand til lyskilden som bladene af Lemna.
Light intensity should be measured in the growth chamber, incubator or room at points the same distance from the light source as the Lemna fronds.
Målingerne foretages mindst én gang i løbet af testen.
Measurements should be made at least once during the test.
Mindst én gang dagligt måles temperaturen af substratet i en surrogatbeholder, der opbevares ved samme betingelser i klimakammeret, inkubatoren eller lokalet.
The temperature of the medium in a surrogate vessel held under the same conditions in the growth chamber, incubator or room should be recorded at least daily.
Under testen bestemmes teststofkoncentrationerne med passende intervaller.
During the test, the concentrations of the test substance are determined at appropriate intervals.
Mindstekravet i statiske test er bestemmelse af koncentrationerne ved testens start og slutning.
In static tests, the minimum requirement is to determine the concentrations at the beginning and the end of the test.
I semistatiske test, hvor teststofkoncentrationen ikke forventes at forblive inden for ± 20 % af den nominelle koncentration, er det nødvendigt at analysere alle frisk fremstillede testopløsninger, og de samme opløsninger analyseres ved hver udskiftning (se tredje afsnit i punkt 1.7.7).
In semi-static tests where the concentration of the test substance is not expected to remain within ± 20 % of the nominal concentration, it is necessary to analyse all freshly prepared test solutions and the same solutions at each renewal (see third paragraph in section 1.7.7).
For de test, hvor den målte startkoncentration af teststoffet ikke er inden for ± 20 % af den nominelle værdi, men hvor der kan fremlægges tilstrækkelig dokumentation for, at startkoncentrationerne er repeterbare og stabile (dvs. inden for området 80-120 % af startkoncentrationen), kan det godtages, at der kun foretages kemisk bestemmelse af den højeste og laveste testkoncentration.
However, for those tests where the measured initial concentration of the test substance is not within ± 20 % of nominal, but where sufficient evidence can be provided to show that the initial concentrations are repeatable and stable (i.e. within the range 80-120 % of the initial concentration), chemical determinations may be carried out on only the highest and lowest test concentrations.
I alle tilfælde behøver teststofkoncentrationen før udskiftning kun bestemmes på én replikat testbeholder ved hver testkoncentration (eller på indholdet af de poolede beholdere for hver replikat).
In all cases, determination of test substance concentrations prior to renewal need only be performed on one replicate vessel at each test concentration (or the contents of the vessels pooled by replicate).
For gennemstrømningstest vil det være hensigtsmæssigt med en prøvetagningsplan svarende til den, der er beskrevet for semistatiske test, herunder analyse ved testens start, midtpunkt og slutning, men måling af »brugt« testopløsning er ikke hensigtsmæssig i dette tilfælde.
If a flow-through test is used, a similar sampling regime to that described for semi-static tests, including analysis at the start, mid-way through and at the end of the test, is appropriate, but measurement of ‘spent’ solutions is not appropriate in this case.
I sådanne test skal flowhastigheden af fortyndingsmiddel og teststofopløsning eller teststof-stamopløsning kontrolleres dagligt.
In this type of test, the flow-rate of diluent and test substance or test substance stock solution should be checked daily.
Hvis det kan konstateres, at prøvestofkoncentrationen har været holdt tilfredsstillende inden for ± 20 % af den nominelle eller målte startkoncentration under hele testen, kan analysen af resultaterne baseres på nominelle eller målte startværdier.
If there is evidence that the concentration of the substance being tested has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, analysis of the results can be based on nominal or measured initial values.
Er afvigelsen fra den nominelle eller målte startkoncentration større end ± 20 %, skal analysen af resultaterne baseres på den geometriske middelkoncentration under eksponeringen eller på modeller, der beskriver faldet i teststofkoncentrationen (11).
If the deviation from the nominal or measured initial concentration is greater than ± 20 %, analysis of the results should be based on the geometric mean concentration during exposure or models describing the decline of the concentration of the test substance (11).
Under visse omstændigheder, f.eks. når en indledende test viser, at teststoffet er uden toksiske virkninger i koncentrationer på op til 100 mg·l–1, dog ikke over stoffets opløselighed i testsubstratet, kan der udføres en grænsetest, hvor reaktionen i en kontrolgruppe sammenholdes med reaktionen i én behandlingsgruppe (100 mg·l–1 eller en koncentration lig med opløselighedsgrænsen).
Under some circumstances, e.g. when a preliminary test indicates that the test substance has no toxic effects at concentrations up to 100 mg·l–1, or up to its limit of solubility in the test medium (whichever is the lower), a limit test involving a comparison of responses in a control group and one treatment group (100 mg·l–1 or a concentration equal to the limit of solubility), may be undertaken.
Alle de beskrevne testbetingelser og validitetskriterier finder anvendelse på en grænsetest bortset fra, at antallet af behandlingsreplikater skal fordobles.
All previously described test conditions and validity criteria apply to a limit test, with the exception that the number of treatment replicates should be doubled.
Væksten i kontrol- og behandlingsgruppen kan analyseres med en statistisk test til sammenligning af middelværdier, f.eks. Students t-test.
Growth in the control and treatment group may be analysed using a statistical test to compare means, e.g. a Student's t-test.
FORDOBLINGSTID
DOUBLING TIME
Til bestemmelse af fordoblingstiden (Td) for bladantallet og forsøgets overensstemmelse med dette validitetskriterium (punkt 1.6) anvendes følgende formel på de data, der er indsamlet for kontrolbeholderne:
To determine the doubling time (Td) of frond number and adherence to this validity criterion by the study (section 1.6), the following formula is used with data obtained from the control vessels:
hvor μ er den gennemsnitlige specifikke væksthastighed, der bestemmes som beskrevet i første og andet afsnit i punkt 2.2.1.
where μ is the average specific growth rate determined as described in first and second paragraph in section 2.2.1.
Testens formål er at bestemme teststoffets virkninger på den vegetative vækst af Lemna.
The purpose of the test is to determine the effects of the test substance on the vegetative growth of Lemna.
Gennemsnitlig specifik væksthastighed: Denne responsvariabel beregnes på grundlag af den logaritmiske ændring i bladantallet samt den logaritmiske ændring i en anden måleparameter (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt) med tiden (udtrykt pr. dag) i kontrollerne og i hver behandlingsgruppe.
Average specific growth rate: this response variable is calculated on the basis of changes in the logarithms of frond numbers, and in addition, on the basis of changes in the logarithms of another measurement parameter (total frond area, dry weight or fresh weight) over time (expressed per day) in the controls and each treatment group.
Den kaldes undertiden relativ væksthastighed (15).
It is sometimes referred to as relative growth rate (15).
Udbytte: Denne responsvariabel beregnes på grundlag af ændringen i bladantallet og desuden ændringen i en anden måleparameter (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt) i kontrollerne og i hver behandlingsgruppe indtil testens slutning.
Yield: this response variable is calculated on the basis of changes in frond number, and in addition, on the basis of changes in another measurement parameter (total frond area, dry weight or fresh weight) in the controls and in each treatment group until the end of the test.
Begrebet gennemsnitlig specifik væksthastighed bygger på det generelle eksponentielle vækstmønster for andemad i ikke-begrænsede kulturer, idet toksiciteten vurderes på grundlag af virkningerne på væksthastigheden og ikke afhænger af den absolutte størrelse af den specifikke væksthastighed af kontrollen, koncentrations-responskurvens hældning eller testens varighed.
The concept of average specific growth rate is based on the general exponential growth pattern of duckweed in non-limited cultures, where toxicity is estimated on the basis of the effects on the growth rate, without being dependent on the absolute level of the specific growth rate of the control, slope of the concentration-response curve or on test duration.
EyCx afhænger af den specifikke væksthastighed af de arter af andemad, der anvendes i hver test, og af den maksimale specifikke væksthastighed, som kan variere mellem de forskellige arter og endda kloner.
EyCx is dependent on the specific growth rate of the duckweed species used in each test and on the maximum specific growth rate that can vary between species and even different clones.
Denne responsvariabel bør ikke anvendes til at sammenligne følsomheden over for giftstoffer mellem forskellige arter af andemad, endsige forskellige kloner.
This response variable should not be used for comparing the sensitivity to toxicants among duckweed species or even different clones.
Skønt det videnskabeligt foretrukne grundlag til vurdering af toksicitet er den gennemsnitlige specifikke væksthastighed, indeholder nærværende testmetode også toksicitetsvurderinger baseret på udbytte for at imødekomme de aktuelle myndighedskrav i visse stater.
While the use of average specific growth rate for estimating toxicity is scientifically preferred, toxicity estimates based on yield are also included in this Testing Method to satisfy current regulatory requirements in some countries.
Beregningen af toksicitet skal baseres på bladantal og på mindst én anden målevariabel (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt), da visse stoffer kan påvirke andre målevariabler langt mere end bladantallet.
Toxicity estimates should be based on frond number and on one additional measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight), because some substances may affect other measurement variables much more than the frond number.
Denne virkning ville ikke blive opdaget ved beregning af bladantallet alene.
This effect would not be detected by calculating frond number only.
Bladantallet og eventuelle andre registrerede målevariabler, dvs. totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt, samles i en tabel sammen med teststofkoncentrationerne for hvert målepunkt.
The number of fronds as well as any other recorded measurement variable, i.e. total frond area, dry weight or fresh weight, are tabulated together with the concentrations of the test substance for each measurement occasion.
Den efterfølgende dataanalyse, f.eks. beregning af estimater for LOEC, NOEC eller ECx, skal baseres på værdierne for de enkelte replikater og ikke beregnede gennemsnit for hver behandlingsgruppe.
Subsequent data analysis e.g. to estimate a LOEC, NOEC or ECx should be based on the values for the individual replicates and not calculated means for each treatment group.
Gennemsnitlig specifik væksthastighed
Average specific growth rate
Den gennemsnitlige specifikke væksthastighed for en given periode beregnes som den logaritmiske stigning i vækstvariablerne — bladantal og en anden målevariabel (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt) — ved hjælp af nedenstående udtryk for hver replikat af kontrol og behandlingsprøve:
The average specific growth rate for a specific period is calculated as the logarithmic increase in the growth variables — rond numbers and one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) — using the formula below for each replicate of control and treatments:
μ i-j
μ i-j:
er den gennemsnitlige specifikke væksthastighed i tidsrummet fra i til j
average specific growth rate from time i to j
er værdien af målevariablen i test- eller kontrolbeholderen til tiden i
measurement variable in the test or control vessel at time i
er værdien af målevariablen i test- eller kontrolbeholderen til tiden j
measurement variable in the test or control vessel at time j
t er tidsrummet fra i til j
time period from i to j
For hver behandlings- og kontrolgruppe beregnes en gennemsnitlig væksthastighed samt estimater for variansen.
For each treatment group and control group, calculate a mean value for the growth rate along with variance estimates.
Den gennemsnitlige specifikke væksthastighed skal beregnes for hele testperioden (tiden »i« i ovenstående formel er testens starttid, og tiden »j« er testens sluttid).
The average specific growth rate should be calculated for the entire test period (time ‘i’ in the above formula is the beginning of the test and time ‘j’ is the end of the test).
For hver testkoncentration og kontrol beregnes en gennemsnitsværdi af den specifikke væksthastighed samt estimater for variansen.
For each test concentration and control, calculate a mean value for average specific growth rate along with the variance estimates.
Derudover foretages en trinvis beregning af væksthastigheden for at vurdere teststoffets virkninger i eksponeringsperioden (f.eks. ved betragtning af logaritmisk transformerede vækstkurver).
In addition, the section-by-section growth rate should be assessed in order to evaluate effects of the test substance occurring during the exposure period (e.g. by inspecting log-transformed growth curves).
I så fald kan et forsigtigt skøn opstilles ved at sammenholde de specifikke væksthastigheder fra behandlede kulturer i det tidsrum, hvor hæmningen er maksimal, med de tilsvarende værdier for kontrolprøver i samme tidsrum.
In this case, a conservative approach would be to compare specific growth rates from treated cultures during the time period of maximum inhibition to those for controls during the same time period.
Hæmningen i procent af væksthastigheden (Ir) kan derefter beregnes for hver testkoncentration (behandlingsgruppe) af følgende udtryk:
Percentage inhibition of growth rate (Ir) may then be calculated for each test concentration (treatment group) according to the following formula:
μT– regnes for hver testkoncentration (behandlingsgruppe) af følgende udtryk:
μT– ated for each test concentration (treatment group) according to the following formula:
% I r
% I r:
er hæmningen i procent af den gennemsnitlige specifikke væksthastighed
percentage inhibition in average specific growth rate
er gennemsnitsværdien af μ i kontrolgruppen
mean value for μ in the control
er gennemsnitsværdien af μ i behandlingsgruppen
mean value for μ in the treatment group
Virkningerne på udbyttet bestemmes på grundlag af to målevariabler, bladantallet og en anden målevariabel (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt) i hver testbeholder ved testens start og slutning.
Effects on yield are determined on the basis of two measurement variables, frond number and one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) present in each test vessel at the start and end of the test.
For tør vægt og frisk vægt bestemmes start-biomassen på grundlag af en prøve af blade, der tages fra samme batch som den, der er anvendt til at pode testbeholderne (se andet afsnit i punkt 1.7.3).
For dry weight or fresh weight, the starting biomass is determined on the basis of a sample of fronds taken from the same batch used to inoculate the test vessels (see second paragraph in section 1.7.3).
For hver testkoncentration og kontrol beregnes en gennemsnitsværdi af udbyttet samt estimater for variansen.
For each test concentration and control, calculate a mean value for yield along with variance estimates.
Udbyttehæmningen i procent (% Iy) kan beregnes for hver behandlingsgruppe som følger:
The mean percentage inhibition in yield (% Iy) may be calculated for each treatment group as follows:
bT– ndlingsgruppe som følger:
bT– ated for each treatment group as follows:
er udbyttereduktionen i procent
percentage reduction in yield
er slut-biomasse minus start-biomasse for kontrolgruppen
final biomass minus starting biomass for the control group
er slut-biomasse minus start-biomasse for behandlingsgruppen
final biomass minus starting biomass in the treatment group
Optegning af koncentrations-responskurver
Plotting concentration-response curves
Der afsættes koncentrations-responskurver over sammenhængen mellem den gennemsnitlige hæmningsprocent for responsvariablerne (Ir eller Iy, beregnet som vist i sidste afsnit i punkt 2.2.1 eller i punkt 2.2.2) og logaritmen til teststofkoncentrationen.
Concentration-response curves relating mean percentage inhibition of the response variable (Ir, or Iy calculated as shown in the last paragraph of section 2.2.1 or in section 2.2.2) and the log concentration of the test substance should be plotted.
Beregning af ECx
ECx estimation
Estimaterne for ECx (f.eks. EC50) baseres på gennemsnitsværdien dels af specifik væksthastighed (ErCx), dels af udbytte (EyCx), der hver især er baseret på bladantal og endnu en målevariabel (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt).
Estimates of the ECx (e.g. EC50) should be based upon both average specific growth rate (ErCx) and yield (EyCx), each of which should in turn be based upon frond number and one additional measurement variable (total frond area, dry weight, or fresh weight).
Dette skyldes, at der findes teststoffer med forskellig virkning på bladantallet og på de øvrige målevariabler.
This is because there are test substances that impact frond number and other measurement variables differently.
Som parametre for toksicitet er der derfor fire ECx-værdier for hvert beregnet hæmningsniveau x: ErCx (bladantal), ErCx (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt), EyCx (bladantal) og EyCx (totalt bladareal, tør vægt eller frisk vægt).
The desired toxicity parameters are therefore four ECx values for each inhibition level x calculated: ErCx (frond number); ErCx (total frond area, dry weight, or fresh weight); EyCx (frond number); and EyCx (total frond area, dry weight, or fresh weight).
Der kan anvendes vægtet lineær regression efter forudgående lineariserende transformation af responsdataene — til f.eks. probit-, logit- eller Weibull-enheder (16), men det må foretrækkes at benytte ikke-lineære regressionsmetoder, da de bedre håndterer de uundgåelige uregelmæssigheder i data og afvigelser fra jævne fordelinger.
It is possible to use a weighted linear regression after having performed a linearising transformation of the response data — for instance into probit or logit or Weibull units (16), but non-linear regression procedures are preferred techniques that better handle unavoidable data irregularities and deviations from smooth distributions.
I området tæt på enten ingen hæmning eller total hæmning kan sådanne uregelmæssigheder blive forstørret ved transformation og derved gribe forstyrrende ind i analysen (16).
Approaching either zero or total inhibition, such irregularities may be magnified by the transformation, interfering with the analysis (16).
Det må bemærkes, at standardanalysemetoder, hvor der bruges probit-, logit- eller Weibull-transformerede variabler, er bestemt til brug på binære data (f.eks. død eller overlevelse) og må modificeres for at kunne benyttes til data for væksthastighed eller udbytte.
It should be noted that standard methods of analysis using probit, logit, or Weibull transforms are intended for use on quantal (e.g. mortality or survival) data, and must be modified to accommodate growth rate or yield data.
Særlige metoder til bestemmelse af ECx-værdier ud fra kontinuerte data findes i henvisning (17)(18) og (19).
Specific procedures for determination of ECx values from continuous data can be found in (17), (18), and (19).