natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Kolben/flasken anbringes i isbad og nedkøles til 0 oC, hvorefter der tilsættes 5 ml oxideringsblanding (3.23) og omrøres ved hjælp af en glasspatel med bøjet spids. Kolben/flasken, der indeholder spatelen, lukkes med lufttæt film.
Seal the flask/bottle containing the spatula with an air-tight film, place the ice-water bath containing the sealed container in a refrigerator at 0 oC and leave for 16 hours.
Isbadet med den lukkede beholder anbringes i et køleskab ved 0 oC og henstår i 16 timer. Efter 16 timer tages det ud af køleskabet, og det overskydende oxideringsreagens destrueres ved tilsætning af 0,84 g natriumdisulfit (3.4).
After 16 hours remove from the refrigerator and decompose the excess oxidation reagent by the addition of 0,84 g of sodium disulphite (3.4).
Der fortsættes som beskrevet i punkt 5.3.2.1.
Proceed to 5.3.2.1.
Hydrolyse
Hydrolysis
Hydrolyse af oxiderede prøver
Hydrolysis of oxidised samples
Den oxiderede prøve (5.3.1) tilsættes 25 ml hydrolyseblanding (3.20). Alle prøverester, der måtte sidde fast på beholderen og spatelen, skal omhyggeligt vaskes ned.
To the oxidised sample prepared according to 5.3.1 add 25 ml of hydrolysis mixture (3.20) taking care to wash down any sample residue adhering to the sides of the vessel and the spatula.
Alt efter den benyttede hydrolysemetode fortsættes som beskrevet i punkt 5.3.2.3 eller 5.3.2.4.
Depending on the hydrolysis procedure being used, proceed according to 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Hydrolyse af uoxiderede prøver
Hydrolysis of unoxidised samples
0,1–1 g af den klargjorte prøve (5.1) afvejes med en nøjagtighed på 0,2 mg i en 100 ml eller 250 ml rundbundet kolbe (4.1) eller en 100 ml flaske med skruelåg (4.2).
Weigh into either a 100 ml or a 250 ml round-bottom flask (4.1) or a 100 ml bottle fitted with a screw cap (4.2), to the nearest 0,2 mg, from 0,1 to 1 g of the prepared sample (5.1).
Den afvejede prøveportion skal have et kvælstofindhold på ca. 10 mg.
The weighed sample portion must have a nitrogen content of about 10 mg.
Der tilsættes forsigtigt 25 ml hydrolyseblanding (3.20), som blandes med prøven.
Add carefully 25 ml of hydrolysis mixture (3.20) and mix with the sample.
Der fortsættes som beskrevet i punkt 5.3.2.3 eller 5.3.2.4.
Proceed according to either 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Åben hydrolyse
Open hydrolysis
Der tilsættes tre glasperler til blandingen i kolben (klargjort som beskrevet i punkt 5.3.2.1 eller 5.3.2.2). Den opvarmes til kogning og holdes under konstant kogning med tilbagesvaler i 23 timer.
Add 3 glass beads to the mixture in the flask (prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2) and boil with continuous bubbling under reflux for 23 hours.
Efter afslutning af hydrolysen skylles tilbagesvaleren med 5 ml citratbuffer (3.24).
On completion of hydrolysis, wash the condenser down with 5 ml of citrate buffer (3.24).
Kolben aftages og afkøles i isbad.
Disconnect the flask and cool it in an ice bath.
Der fortsættes som beskrevet i punkt 5.3.3.
Proceed according to 5.3.3.
Lukket hydrolyse
Closed Hydrolysis
Flasken med blandingen klargjort som beskrevet i punkt 5.3.2.1 eller 5.3.2.2 anbringes i et tørreskab (4.3) ved 110 oC.
Place the bottle containing the mixture prepared in accordance with 5.3.2.1 or 5.3.2.2 in an oven (4.3) at 110 oC.
For at forhindre trykopbygning (på grund af udvikling af gasser) og undgå eksplosion lægges skruelåget i den første time løst på flasken.
During the first hour in order to prevent a build up of pressure (due to the evolution of gaseous substances) and to avoid explosion, place the screw cap over the top of the vessel.
Flasken må ikke lukkes med skruelåget.
Do not close the vessel with the cap.
Efter en times forløb lukkes flasken med skruelåget og henstår i tørreskabet (4.3) i 23 timer.
After one hour close the vessel with the cap and leave in the oven (4.3) for 23 hours.
Opløsningen henstilles til afkøling.
Leave to cool.
Alt efter metoden for justering af pH-værdien (5.3.3) overføres kolbens indhold kvantitativt med citratbuffer (3.24) til et 250 ml bægerglas eller til en 250 ml rundbundet kolbe.
Depending on the procedure for pH adjustment (5.3.3), quantitatively transfer the contents of the bottle to a 250 ml beaker or a 250 ml round-bottom flask, using citrate buffer (3.24).
Justering af pH-værdien
Adjustment of pH
Alt efter aminosyreanalysatorens (4.9) natriumtolerance foretages justeringen af pH-værdien som beskrevet i punkt 5.3.3.1 eller 5.3.3.2.
Depending on the sodium tolerance of the amino acid analyser (4.9) proceed according to 5.3.3.1 or 5.3.3.2 for the pH adjustment.
For kromatografisystemer (4.9), der kræver en lav natrium-koncentration:
For Chromatographic Systems (4.9) requiring a low sodium concentration
Det er tilrådeligt at bruge en intern standardstamopløsning (3.27.3), hvis der benyttes aminosyreanalysatorer, der kræver en lav natriumkoncentration (hvor syreindholdet skal reduceres).
It is advisable to use an internal stock standard solution (3.27.3) when amino acid analysers requiring a low sodium concentration are employed (when the acid volume has to be reduced).
I så fald tilsættes 2,00 ml af den interne standardstamopløsning (3.27.3) til hydrolysatet før inddampningen.
In this case add 2,00 ml of the internal stock standard solution (3.27.3) to the hydrolysate before the evaporation.
Der tilsættes 2 dråber 1-octanol (3.15) til det efter punkt 5.3.2.3 eller 5.3.2.4 frembragte hydrolysat.
Add 2 drops of 1-octanol (3.15) to the hydrolysate obtained in accordance with paragraph 5.3.2.3 or 5.3.2.4.
Volumen reduceres ved hjælp af rotationsfordamperen (4.7) til 5–10 ml under vakuum ved 40 oC.
Using a rotary evaporator (4.7) reduce the volume to 5-10 ml under vacuum at 40 oC.
Hvis volumen ved et uheld reduceres til under 5 ml, kasseres hydrolysatet, og analysen gentages.
If the volume is accidentally reduced to less than 5 ml the hydrolysate must be discarded and the analysis recommenced.
pH justeres til 2,20 med natriumhydroxidopløsning (3.18), og der fortsættes som beskrevet i punkt 5.3.4.
Adjust the pH to 2,20 with sodium hydroxide solution (3.18) and proceed to paragraph 5.3.4.
For andre aminosyreanalysatorer (4.9):
For all other Amino Acid Analysers (4.9)
Det efter 5.3.2.3 eller 5.3.2.4 frembragte hydrolysat neutraliseres delvis ved under omrøring at tilsætte 17 ml natriumhydroxidopløsning (3.17), samtidig med at temperaturen holdes under 40 oC.
Take the hydrolysates obtained in accordance with 5.3.2.3 or 5.3.2.4 and partly neutralise them by carefully adding with stirring, 17 ml of sodium hydroxide solution (3.17), ensuring that the temperature is kept below 40 oC.
pH justeres til 2,20 med natriumhydroxidopløsning (3.17 og 3.18) ved rumtemperatur.
Adjust the pH to 2,20 at room temperature using sodium hydroxide solution (3.17) and finally sodium hydroxide solution (3.18).
Der fortsættes som beskrevet i punkt 5.3.4.
Proceed to 5.3.4.
Prøveopløsning til kromatografi
Sample solution for chromatography
Hydrolysatet (5.3.3.1 eller 5.3.3.2) justeret til en pH-værdi på 2,20 overføres med citratbuffer (3.24) kvantitativt til en 200 ml målekolbe, og der fyldes op til mærket med buffer (3.24).
Quantitatively transfer the pH adjusted hydrolysate (5.3.3.1 or 5.3.3.2) with citrate buffer (3.24) to a 200 ml graduated flask, and make up to the mark with buffer (3.24).
Hvis en intern standard anvendes, og denne ikke allerede er tilsat, tilsættes der 2,00 ml intern standard (3.27.3) og fyldes op til mærket med citratbuffer (3.24).
If an internal standard has not already been used, add 2,00 ml of internal standard (3.27.3) and make up to the mark with citrate buffer (3.24).
Der blandes omhyggeligt.
Mix thoroughly.
Derefter foretages kromatografi som beskrevet i punkt 5.4.
Proceed to the chromatography step (5.4).
Hvis prøveopløsningen ikke kromatograferes samme dag, skal den opbevares ved < 5 oC.
If the sample solutions are not being examined the same day they must be stored below 5 oC.
Inden kromatografi opvarmes ekstraktet (5.2) eller hydrolysatet (5.3.4) til rumtemperatur.
Before chromatography bring the extract (5.2) or hydrolysate (5.3.4) to room temperature.
Blandingen rystes, og en passende mængde filtreres gennem et 0,22 μm membranfilter (4.5).
Shake the mixture and filter a suitable amount through a 0,22 μm membrane filter (4.5).
Der foretages ionbytningskromatografi af den fremstillede klarede opløsning ved brug af en aminosyreanalysator (4.9).
The resulting clear solution is subjected to ion exchange chromatography, using an amino acid analyser (4.9).
Indsprøjtningen kan foretages manuelt eller automatisk.
The injection may be performed manually or automatically.
Hovedsagen er, at der altid tilsættes samme mængde opløsning ±0,5 % til kolonnen til analyse af standardopløsninger og prøveopløsninger, undtagen i tilfælde, hvor der bruges en intern standard. Forholdet mellem natrium og aminosyre i standard- og prøveopløsningerne skal være så ens som muligt.
It is important that the same quantity of solution ±0,5 % is added to the column for the analysis of standards and samples except when an internal standard is used, and that the sodium:amino acid ratios in the standard and sample solutions are as similar as is practicable.
Kalibreringshyppigheden afhænger normalt af stabiliteten af ninhydrinreagenset og det anvendte analysatorsystem.
In general the frequency of calibration runs depends on the stability of the ninhydrin reagent and the analytical system.
Standard- eller prøveopløsningen fortyndes med citratbuffer (3.24), således at der for standarden fremkommer et topareal på 30–200 % af arealet af toppene for aminosyrerne i prøveopløsningen.
The standard or sample is diluted with citrate buffer (3.24) to give a peak area of the standard of 30 %-200 % of the sample amino acid peak area.
Kromatografien af aminosyrerne vil variere lidt afhængigt af den anvendte type analysator og kolonnematerialet.
The chromatography of amino acids will vary slightly according to the type of analyser employed and resin used.
Systemet skal kunne adskille aminosyrerne fuldstændigt fra hinanden og fra øvrige ninhydrinpositive stoffer.
The chosen system must be capable of separating the amino acids from each other and from the ninhydrin-positive materials.
Kromatografisystemet skal i sit arbejdsområde give lineært respons på ændringer i mængderne af aminosyrer, der tilsættes kolonnen.
In the range of operation the chromatographic system must give a linear response to changes in the amounts of amino acids added to the column.
Hvis der analyseres en ækvimolær opløsning (af de aminosyrer, der skal bestemmes), skal der ved kromatografien opnås nedenstående forhold mellem dal og tophøjde.
During the chromatography step the valley:peak height ratios mentioned below apply, when an equimolar solution (of the amino acids being determined) is analysed.
Den ækvimolære opløsning skal indeholde mindst 30 % af den største mængde af hver aminosyre, der kan måles præcist med aminosyreanalysatoren (4.9).
This equimolar solution must contain at least 30 % of the maximum load of each amino acid which can be accurately measured with the amino acid analyser system (4.9).
Ved adskillelsen af threonin og serin må forholdet mellem dal og tophøjde for den laveste af de to sammenhængende aminosyretoppe ikke være større end 2:10.
For separation of threonine-serine the valley:peak height ratio of the lower of the two overlapping amino acids on the chromatogram must not exceed 2:10.
(Hvis der kun bestemmes cyst(e)in, methionin, threonin og lysin, vil utilstrækkelig adskillelse fra nabotoppe indvirke uheldigt på bestemmelsen.)
(if only cyst(e)ine, methionine, threonine and lysine are determined, insufficient separation from adjoining peaks will adversely influence the determination).
For alle øvrige aminosyrer skal adskillelsen være bedre end 1:10.
For all other amino acids the separation must be better than 1:10.
Systemet skal sikre, at lysin adskilles fra artefakter fra andre lysinlignende stoffer og ornithin.
The system must ensure that lysine is separated from ‘lysine artifacts’ and ornithine.
Arealet af toppene i prøve- og standardopløsningerne måles for hver enkelt aminosyre, og mængden (X) beregnes i gram aminosyre pr. kg prøve:
The area of the sample and standard peaks is measured for each individual amino acid and the amount (X), in g amino acid per kg sample, is calculated as follows:
Ved anvendelse af en intern standard multipliceres med: D
If an internal standard is used multiply by: D
A topareal for hydrolysat eller ekstrakt
A peak area, hydrolysate or extract
B topareal for standardkalibreringsopløsning
B peak area, calibration standard solution
C topareal for intern standard i hydrolysat eller ekstrakt
C peak area, internal standard in hydrolysate or extract
D topareal for intern standard, standardkalibreringsopløsning
D peak area, internal standard, calibration standard solution
M molarvægt af den aminosyre, der skal bestemmes
M molar weight of the amino acid being determined
c standardopløsningens koncentration i μmol/ml
c concentration of standard in μmol/ml
m prøvens vægt i gram (korrigeret til oprindelig vægt hvis tørret eller affedtet)
m sample weight (g) (corrected to original weight if dried or defatted)
V ml totalhydrolysat (5.3.4) eller ml beregnet total fortyndingsvolumen af ekstraktet (6.1).
V ml total hydrolysate (5.3.4) or ml calculated total dilution volume of extract (6.1)
Såvel cystin som cystein bestemmes som cysteinsyre i hydrolysater af den oxiderede prøve, men beregnes som cystin (C6H12N2O4S2, M 240,30 g/mol) ved anvendelse af M 120,15 g/mol (= 0,5 × 240,30 g/mol).
Cystine and cysteine are both determined as cysteic acid in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as cystine (C6H12N2O4S2, M 240,30 g/mol) by using M 120,15 g/mol (= 0,5 x 240,30 g/mol).
Methionin bestemmes som methioninsulfon i hydrolysater af den oxiderede prøve, men beregnes som methionin ved anvendelse af M af methionin (149,21 g/mol).
Methionine is determined as methionine sulphone in hydrolysates of oxidised sample, but calculated as methionine by using M of methionine: 149,21 g/mol.
Tilsat fri methionin bestemmes efter ekstraktion som methionin, hvorved der benyttes samme M til beregningen.
Added free methionine is determined after extraction as methionine, for the calculation the same M is used.
Totale fortyndingsvolumen af ekstrakter (F) til bestemmelse af frie aminosyrer (5.2) beregnes som følger:
The total dilution volume of extracts (F) for determination of free amino acids (5.2) is calculated as follows:
V slutekstraktets volumen.
V Volume of final extract
Evaluering af metoden
Evaluation of the method
Metoden er blevet afprøvet ved en international ringanalyse i 1990 med anvendelse af fire forskellige typer foder (svinefoderblanding, slagtefjerkræblanding, proteinkoncentrat og en forblanding).
The method has been tested in an intercomparison made at international level in 1990 using four different feed (mixed pig feed, broiler compound, protein concentrate, premixture).
Resultaterne af middel- og standardafvigelse efter fjernelse af outliers er vist i tabellerne under dette punkt:
The results, after elimination of outliers, of mean and standard deviation are given in the tables in this point:
Middelværdi i g/kg
Means in g/kg
n antal deltagende laboratorier.
n Number of participating laboratories.
Referencemateriale
Reference material
Aminosyre
Amino Acid
Svinefoderblanding
Mixed Pig Feed
Slagtefjerkræblanding
Broiler Compound
Proteinkoncentrat
Protein Concentrate
Forblanding
Premixture
Repeterbarheden for de undersøgte aminosyrer udtrykt som »standardafvigelse inden for laboratorier« for de ovennævnte prøver er gengivet i nedenstående tabel.
The repeatability expressed as ‘within laboratory standard deviation’ of the abovementioned intercomparison is given in the tables below:
Standardafvigelse inden for laboratorier (Sr) i g/kg
Within Laboratory Standard Deviation (Sr) in g/kg
Variationskoefficient ( %) for standardafvigelsen inden for laboratorier (Sr)
Coefficient of Variation (%) for Within Laboratory Standard Deviation (Sr)
Resultaterne af standardafvigelse mellem laboratorier for ovennævnte undersøgelser er vist i nedenstående skema.
The results for between laboratory standard deviation by the abovementioned intercomparison are given in the table below:
Standardafvigelse mellem laboratorier (SR) i g/kg
Between Laboratory Standard Deviation (SR) in g/kg
Variationskoefficient ( %) for standardafvigelsen mellem laboratorier (SR)
Coefficient of Variation (%) for Between Laboratory Standard Deviation (SR)
Anvendelse af referencematerialer
Use of reference materials
Det undersøges, om metoden er brugt korrekt, ved at foretage gentagne målinger af certificerede referencematerialer, når sådanne forefindes.
The correct application of the method shall be verified by making replicate measurements of certified reference materials when available.
Det anbefales at kalibrere med certificeret aminosyrekalibreringsopløsning.
Calibration with certified amino acid calibration solution is recommended.
På grund af forskelle mellem aminosyreanalysatorer skal slutkoncentrationerne af kalibreringsopløsningerne af standardaminosyrerne (se punkt 3.27.4 og 3.27.5) og hydrolysatet (se punkt 5.3.4) betragtes som en retningslinje.
Because of differences between amino acid analysers the final concentrations of the calibration solutions of standard amino acids (see 3.27.4 and 3.27.5) and of the hydrolysate (see 5.3.4) shall be taken as a guideline.
Apparatets lineære responsskala skal kontrolleres for alle aminosyrer.
The range of linear response of the apparatus has to be checked for all amino acids.
Standardopløsningen fortyndes med citratbuffer for at opnå toparealer midt på skalaen.
The standard solution is diluted with citrate buffer to give peak areas in the middle of the range.
Hvis der anvendes HPLC-udstyr til at analysere hydrolysaterne, skal kørselsbetingelserne optimeres i henhold til fabrikantens anbefaling.
Where high performance liquid chromatographic equipment is used to analyse the hydrolysates, the experimental conditions must be optimised in accordance with the manufacturer's recommendations.
Hvis metoden anvendes på foder, der indeholder mere end 1 % chlorid (koncentrat, mineralfoder, fodertilskud), vil der kunne ske en undervurdering af methionin, og der skal foretages en særlig behandling.
By applying the method to feed containing more than 1 % chloride (concentrate, mineral feeds, supplementary feeds) underestimation of methionine could occur and special treatment has to be done.
BESTEMMELSE AF TRYPTOPHAN
DETERMINATION OF TRYPTOPHAN
Denne metode gør det muligt at bestemme det samlede indhold af tryptophan (totaltryptophan) og frit tryptophan i foder.
The method makes the determination possible of the total and free tryptophan in feed.
Der differentieres ikke mellem D- og L-former.
It does not distinguish between D- and L- forms.
Til bestemmelse af totaltryptophan hydrolyseres prøven i basisk miljø i en mættet bariumhydroxidopløsning og holdes opvarmet til 110 oC i 20 timer.
For the determination of the total tryptophan, the sample is hydrolysed under alkaline conditions with saturated barium hydroxide solution and heated to 110 oC for 20 hours.
Efter hydrolysen tilsættes der intern standard.
After hydrolysis internal standard is added.
Til bestemmelse af frit tryptophan ekstraheres prøven i svagt sur væske under tilstedeværelse af intern standard.
For the determination of free tryptophan, the sample is extracted under mild acidic conditions in the presence of internal standard.
Tryptophanet og den interne standard i hydrolysatet eller i ekstraktet bestemmes ved HPLC med fluorescensdetektor.
The tryptophan and the internal standard in the hydrolysate or in the extract are determined by HPLC with fluorescence detection.
Der benyttes dobbeltdestilleret vand eller vand af tilsvarende kvalitet (ledningsevne: < 10 μS/cm).
Double distilled water or water of equivalent quality must be used (conductivity < 10 μS/cm).
Standardstof: tryptophan (renhedsgrad/indhold ≥ 99 %), tørret i vakuum over phosphorpentoxid.
Standard substance: tryptophan (purity/content ≥ 99 %) dried under vacuum over phosphorous pentoxide.
Internt standardstof: α-methyltryptophan (renhedsgrad/indhold ≥ 99 %), tørret i vakuum over phosphorpentoxid.
Internal standard substance: α-methyl-tryptophan (purity/content ≥ 99 %), dried under vacuum over phosphorous pentoxide.
Bariumhydroxidoctahydrat (man skal passe på ikke at udsætte Ba(OH)2.8H2O for meget for luft, da der ellers dannes BaCO3, som kan interferere med bestemmelsen) (se bemærkning 9.3).
Barium hydroxide octa-hydrate (care shall be taken not to expose the Ba(OH)2 .8 H2O excessively to air in order to avoid formation of BaCO3, which could disturb the determination) (see observation 9.3).
Orthophosphorsyre, w (w/w) = 85 %.
Ortho-phosphoric acid, w (w/w) = 85 %.
Saltsyre, ρ20 = 1,19 g/ml.
Hydrochloric acid, ρ201,19 g/ml.
Methanol, svarende til HPLC-kvalitet.
Methanol, equivalent to HPLC grade.
Saltsyre, c = 6 mol/liter:
Hydrochloric acid, c = 6 mol/l:
492 ml saltsyre (3.7) fortyndes til 1 liter med vand.
Take 492 ml HCl (3.7) and make up to 1 litre with water.
Saltsyre, c = 1 mol/liter:
Hydrochloric acid, c = 1 mol/l:
82 ml saltsyre (3.7) fortyndes til 1 liter med vand.
Take 82 ml HCl (3.7) and make up to 1 litre with water.
Saltsyre, c = 0,1 mol/liter:
Hydrochloric acid, c = 0,1 mol/l:
8,2 ml saltsyre (3.7) fortyndes til 1 liter med vand.
Take 8,2 ml HCl (3.7) and make up to 1 litre with water.
Orthophosphorsyre, c = 0,5 mol/liter:
Ortho-phosphoric acid, c = 0,5 mol/l:
34 ml orthophosphorsyre (3.6) fortyndes til 1 liter med vand (3.1).
Take 34 ml ortho-phosphoric acid (3.6) and make up to 1 litre with water (3.1).
Koncentreret opløsning af tryptophan (3.2), c = 2,50 μmol/ml:
Concentrated solution of tryptophan (3.2), c = 2,50 μmol/ml:
I en 500 ml målekolbe opløses 0,2553 g tryptophan (3.2) i saltsyre (3.13), og der fyldes op til mærket med saltsyre (3.13).
In a 500 ml volumetric flask dissolve 0,2553 g tryptophan (3.2) in hydrochloric acid (3.13) and make up to the mark with hydrochloric acid (3.13).
Opløsningen opbevares ved - 18 oC i højst 4 uger.
Store at - 18 oC for a maximum of 4 weeks.
Koncentreret opløsning af intern standard, c = 2,5 μmol/ml:
Concentrated internal standard solution, c = 2,50 μmol/ml:
I en 500 ml målekolbe opløses 0,2728 g α-methyltryptophan (3.3) i saltsyre (3.13), og der fyldes op til mærket med saltsyre (3.13).
In a 500 ml volumetric flask dissolve 0,2728 g α-methyl-tryptophan (3.3) in hydrochloric acid (3.13) and make up to the mark with hydrochloric acid (3.13).
Standardkalibreringsopløsning af tryptophan og intern standard:
Calibration standard solution of tryptophan and internal standard:
Opløsningen skal fremstilles umiddelbart før brugen.
This solution must be prepared freshly before use.
Der sørges for beskyttelse mod direkte sollys under fremstillingen.
Protect from direct sunlight during preparation.
Eddikesyre.
Acetic acid
1,1,1-Trichlor-2-methyl-2-propanol.
1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol.
Ethanolamin, w (w/w) > 98 %.
Ethanolamine w (w/w) > 98 %.
Opløsning af 1 g 1,1,1-trichlor-2-methyl-2-propanol (3.19) i 100 ml methanol (3.8).
Solution of 1 g 1,1,1-trichloro-2-methyl-2-propanol (3.19) in 100 ml methanol (3.8).
Der fyldes op med vand (3.1) til 1000 ml.
Make up to 1000 ml with water (3.1).
HPLC-udstyr med spektrofluorometrisk detektor
HPLC equipment with a spectrofluorometric detector.
HPLC-kolonne, 125 mm × 4 mm, C18, 3 μm pakkemateriale, eller tilsvarende
Liquid chromatographic column, 125 mm x 4 mm, C18, 3 μm packing, or equivalent.
Polypropylenflaske, 125 ml, med vid hals og skruelåg
Polypropylene flask, capacity 125 ml, with wide neck and screw cap.
Membranfilter, 0,45 μm.
Membrane filter, 0,45 μm.
Autoklav, 110 (± 2) oC, 1,4 (±0,1) bar
Autoclave, 110 (± 2) oC, 1,4 (±0,1) bar.
Vortex-blander.
Vortex mixer.
Klargøring af prøver
Preparation of samples
Prøver med et højt fedtindhold ekstraheres med petroleumsether (3.9) inden formaling.
Samples with high fat content shall be extracted with light petroleum (3.9) prior to grinding.
Bestemmelse af frit tryptophan (ekstrakt)
Determination of free tryptophan (extract)