natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Bruce, R.D. and Versteeg, D.J. (1992).
Bruce, R.D. and Versteeg D.J., (1992) A statistical procedure for modelling continuous toxicity data.
DeGraeve, G.M., Cooney, J.M., Pollock, T.L., Reichenbach, J.H., Dean, Marcus, M.D. and McIntyre, D.O. (1989).
DeGraeve, G.M., Cooney, J.M., Pollock, T.L., Reichenbach, J.H., Dean, Marcus, M.D. and McIntyre, D.O., (1989) Precision of EPA seven-day fathead minnow larval survival and growth test; intra and interlaboratory study. report EA-6189 (American Petroleum Institute Publication, No 4468).
Precision of EPA seven-day fathead minnow larval survival and growth test; intra and interlaboratory study. report EA-6189 (American Petroleum Institute Publication, n. 4468). Electric Power Research Institute, Palo alto, CA.
Electric Power Research Institute, Palo alto, CA.
Norbert-King, T.J. (1988).
Norbert-King T.J., (1988) An interpolation estimate for chronic toxicity: the ICp approach.
Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center. Sept.
Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center.
Williams, D.A. (1972). The comparison of several dose levels with a zero dose control.
Williams D.A., (1972) The comparison of several dose levels with a zero dose control.
Biometrics 28, pp 510-531.
Biometrics 28, p. 510-531.
FISKEARTER ANBEFALET TIL TESTNING, OG EGNEDE TESTBETINGELSER
FISH SPECIES RECOMMENDED FOR TESTING AND SUITABLE TEST CONDITIONS
Anbefalet område for testtemperatur
Recommended test temperature range
Lysperiode
Photoperiod
Anbefalet område for fiskenes startvægt
Recommended range for initial fish weight
Til nærmeste 100 mg
to nearest 100 mg
Mærkevaretørfoder til laksefiskeyngel
Dry propietary salmonid fry food
Andre veldokumenterede arter:
Other well documented species:
Zebrafisk
zebrafish
Til nærmeste 1 mg
to nearest 1 mg
Levende foder (Brachionus Artemia)
Live food (Brachionus Artemia)
Riskarpe (Medaka)
ricefish (Medaka)
Koncentration
Concentrations
Logaritmiske rækker af koncentrationer, der er egnede til toksicitetstest (9)
Logarithmic series of concentrations suitable for toxicity test (9)
Søjle (antal koncentrationer mellem 100 og 10, eller mellem 10 og 1) [1]
Column (Number of concentrations between 100 and 10, or between 10 and 1) [1]
En række bestående af fem (eller flere) successive koncentrationer kan vælges fra en kolonne.
A series of five (or more) successive concentrations may be chosen from a column.
Værdierne kan multipliceres eller divideres med en hvilken som helst potens af 10, alt efter hvad der er aktuelt.
Values can be multiplied or divided by any power of 10 as appropriate.
Kolonne 1 kan eventuelt anvendes, hvis der har været betydelig tvivl om toksicitetsniveauet.
Column 1 might be used if there was considerable uncertainty on the toxicity level.
Denne korttids toksicitetstestmetode svarer til OECD TG 212 (1998).
This short-term toxicity test method is a replicate of the OECD TG 212 (1998).
Denne korttidstoksicitetstest udført på fiskeembryoner og blommesækyngel er en korttidstest, i hvilken det nybefrugtede æg er udsat for giftstof indtil slutningen af blommesækstadiet.
This short-term toxicity test on Fish Embryo and Sac-Fry stages is a short-term test in which the life stages from the newly fertilised egg to the end of the sac-fry stage are exposed.
Der skal ikke fodres i denne test, og testen skal således afsluttes, medens yngelen stadig får sin næring fra blommesækken.
No feeding is provided in the embryo and sac-fry test, and the test should thus be terminated while the sac-fry are still nourished from the yolk-sac.
Testens formål er at finde letale og til en vis grad subletale virkninger af kemikalier på specielle stadier og arter.
The test is intended to define lethal, and to a limited extent, sub-lethal effects of chemicals on the specific stages and species tested.
Denne test kunne skaffe nyttig viden, idet den kunne a) danne en bro mellem letale og subletale test, b) blive anvendt som en screeningtest enten for en test på alle tidlige livsstadier eller for en test for kronisk toksicitet og c) bruges til at teste arter, hvor dyrkningsteknikkerne ikke er tilstrækkeligt gode til at dække overgangsperioden mellem endogen og eksogen fodring.
This test would provide useful information in that is could (a) form a bridge between lethal and sub-lethal tests, (b) be used as a screening test for either a Full Early Life Stage test or for chronic toxicity tests and (c) be used for testing species where husbandry techniques are not sufficiently advanced to cover the period of change from endogenous to exogenous feeding.
Man bør erindre sig, at kun test, der omfatter alle stadier i fisks livscyklus, kan påregnes at give en præcis vurdering af kemikaliers kroniske toksicitet over for fisk, og at enhver begrænsning i påvirkning inden for livsstadierne kan reducere følsomheden og således undervurdere den kroniske toksicitet.
It should be borne in mind that only tests incorporating all stages of the life-cycle of fish are generally liable to give an accurate estimate of the chronic toxicity of chemicals to fish, and that any reduced exposure with respect to life stages may reduce the sensitivity and thus underestimate the chronic toxicity.
Forud for offentliggørelsen af denne test udført på fiskeembryoner og blommesækyngel havde man størst erfaring med anvendelsen af ferskvandsfisken Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae — almindeligt navn: zebrafisk).
Prior to the publication of this test, most experience with this embryo and sac-fry test has been with the freshwater fish Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae — common name zebrafish).
Mere detaljerede retningslinjer for resultater med denne art er derfor anført i tillæg 1.
More detailed guidance on test performance for this species is therefore given in Appendix 1.
Dette udelukker ikke brugen af andre arter, for hvilke der ligeledes foreligger erfaringer (tabel 1A og 1B).
This does not preclude the use of other species for which experience is also available (Table 1).
Laveste koncentration med statistisk sikkert observeret effekt (LOEC) er den laveste kemikaliekoncentration, der i testen har vist sig at resultere i en statistisk signifikant virkning (p < 0,05), sammenlignet med kontrollen.
Lowest Observed Effect Concentration (LOEC): is the lowest tested concentration of a test substance at which the substance is observed to have a significant effect (at p < 0,05) when compared with the control.
Koncentration uden statistisk sikkert observeret effekt (NOEC) er testkoncentrationen lige under LOEC.
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
Fiskeembryoner og blommesækyngel udsættes for en række koncentrationer af testkemikaliet opløst i vand.
The embryo and sac-fry stages of fish are exposed to a range of concentrations of the test substance dissolved in water.
Protokollen tillader valg mellem en semistatisk og en gennemstrømningsprocedure.
Within the protocol a choice is possible between a semi-static and a flow-through procedure.
Valget afhænger af testkemikaliets natur.
The choice depends on the nature of the test substance.
Testen begynder med, at man anbringer befrugtede æg i forsøgsbeholderne, og den slutter, lige før blommesækken er blevet fuldstændig resorberet af en hvilken som helst af fiskelarverne i en hvilken som helst forsøgsbeholder, eller før dødsfald indtræffer i kontrolbeholderne på grund af sult.
The test is begun by placing fertilised eggs in the test chambers and is terminated just before the yolk-sac of any larvae in any of the test chambers has been completely absorbed or before mortalities by starvation start in controls.
Letale og subletale virkninger måles og sammenlignes med kontrolværdierne for at fastslå den laveste koncentration med statistisk observeret effekt og ud derfra den koncentration, der ikke giver nogen statistisk sikker virkning.
Lethal and sub-lethal effects are assessed and compared with control values to determine the lowest observed effect concentration and hence the no observed effect concentration.
Alternativt kan man analysere resultaterne ved hjælp af en regressionsmodel for at finde frem til den koncentration, der ville give en bestemt procentisk effekt (dvs. LC/ECx, hvor x er en defineret procentisk virkning).
Alternatively, they may be analysed using a regression model in order to estimate the concentration that would cause a given percentage effect (i.e. LC/ECx, where x is a defined % effect).
Resultater fra en akut toksicitetstest (se metode C.1), fortrinsvis udført på arten valgt til denne test. bør foreligge.
Results of an acute toxicity test (see Method C. 1) preferably performed with the species chosen for this test, should be available.
De kan være nyttige med henblik på valg af passende område af testkoncentrationer i testen udført på tidlige livsstadier.
The results may be useful in selecting an appropriate range of test concentrations in the early life stages test.
Vandopløselighed, (inklusive opløseligheden i testvandet) og testkemikaliets damptryk bør kendes.
Water solubility (including solubility in the test water) and the vapour pressure of the test substance should be known.
En pålidelig analyse til kvantificering af kemikaliet i testopløsningerne med kendt og publiceret »accuracy« og nederste målegrænse bør foreligge.
A reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with known and reported accuracy and limit of detection should be available.
Informationer om testkemikaliet, nyttige for testbetingelserne, inkluderer strukturformel, renhedsgrad, lysstabilitet, stabilitet under testens betingelser, pKa, Pow og resultater fra en test for spontan biologisk nedbrydelighed (se metode C.4).
Information on the test substance which is useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity of the substance, stability in light, stability under the conditions of the test, pKa, Pow and results of a test for ready biodegradability (see Method C. 4).
For at testen skal være valid, gælder
For a test to be valid, the following conditions apply:
den generelle overlevelse af befrugtede æg i kontrollerne, og, hvor relevant, i kar med rent opløsningsmiddel skal være større end eller lig med grænserne definerede i tillæg 2 og 3
overall survival of fertilised eggs in the controls and where relevant, in the solvent-only vessels must be greater than or equal to the limits defined in Appendices 2 and 3
koncentrationen af opløst ilt skal være mellem 60 og 100 % af værdien for mætning med luft (ASV) i hele testperioden
the dissolved oxygen concentration must be between 60 and 100 % of the air saturation value (ASV) throughout the test
vandtemperaturen må ikke variere mere end ±1,5 oC imellem forsøgsbeholderne eller fra dag til dag på noget tidspunkt i testen, og den skal ligge i det temperaturområde, som gælder for den anvendte art. (tillæg 2 og 3).
the water temperature must not differ by more than ±1,5 oC between test chambers or between successive days at any time during the test and should be within the temperature ranges specified for the test species (Appendices 2 and 3).
Forsøgsbeholdeme
Test chambers
Enhver type glas eller andet inaktivt materiale kan anvendes.
Any glass or other chemically inert vessels can be used.
Et randomiseret design med grupper af forsøgsbeholdere, hvor samme behandling forefindes i hver gruppe, bør foretrækkes frem for et helt randomiseret system, når der er systematiske virkninger i laboratoriet, som kan kontrolleres ved gruppering.
A randomised block design with each treatment being present in each block is preferable to a completely randomised design when there are systematic effects in the laboratory that can be controlled using blocking.
I den påfølgende dataanalyse bør der tages hensyn til en eventuel gruppering.
Blocking, if used, should be taken account of in the subsequent data analysis.
Forsøgsbeholderne bør skånes for unødvendige forstyrrelser.
The test chambers should be shielded from unwanted disturbance.
Valg af fiskeart
Selection of fish species
Anbefalede fiskearter ses i tabel 1A.
Recommended fish species are given in Table 1A.
Dette udelukker ikke anvendelsen af andre arter (eksempler ses i tabel 1B), men testproceduren må muligvis ændres for at opnå passende testbetingelser.
This does not preclude the use of other species (examples are given in Table 1B), but the test procedure may have to be adapted to provide suitable test conditions.
Opbevaring af fisk til yngel
Holding of the brood fish
Detaljer vedrørende pasning af fisk til yngel under tilfredsstillende omstændigheder kan findes i OECD TG 210 og i henvisning (2)(3)(4)(5)(6).1.6.4.
Details on holding the brood stock under satisfactory conditions may be found in OECD TG 210 and in references (2)(3)(4)(5)(6).1.6.4.
Håndtering af embryoner og fiskelarver
Handling of embryos and larvae
Embryoner og fiskelarver kan, mens de udsættes for testkemikaliet, opholde sig i mindre kar med netvægge eller i rør med net for enderne med disse mindre kar placerede i forsøgskarret, således at testopløsningen kan flyde igennem.
Embryos and larvae may be exposed, within the main vessel, in smaller vessels fitted with mesh sides or ends to permit a flow of test solution through the vessel.
Man kan bevirke et ikke-turbulent flow gennem de mindre kar ved at lade dem hænge ned fra en arm, som bevæger karrene op og ned, dog altid med organismerne under overfladen; man kan også anvende et system med gennemskylning ved hjælp af overtryk.
Non-turbulent flow through these small vessels may be induced by suspending them from an arm arranged to move the vessel up and down but always keeping the organisms submerged; a siphon-flush system can also be used.
Befrugtede lakseæg kan anbringes på stativer eller net med masker tilstrækkeligt store til at lade larverne falde igennem efter udklækning.
Fertilised eggs of salmonid fishes can be supported on racks or meshes with apertures sufficiently large to allow larvae to drop through after hatching.
Pasteurpipetter er anvendelige til at flytte embryoner og larver i de semistatiske test i forbindelse med den daglige totale udskiftning af testopløsningen (se 1.6.6).
The use of pasteur pipettes is appropriate to remove the embryos and larvaes in the semi-static tests with complete daily renewal (see paragraph 1.6.6)
I de tilfælde, hvor man har anvendt beholdere, riste eller netværk til at holde æg inde i forøgskarret, skal disse fjernes, når æggene klækkes [1] Ifølge resultaterne af sådanne ringtest og en teknisk berigtigelse af ISO 6341 ligger EC50 — 24 h for kaliumdichromat (K2Cr2O7) mellem 0,6 mg/l og 1,7 mg/l.
Where egg containers, grids or meshes have been used to hold eggs within the main test vessel, these restraints should be removed after the larvae hatch [13] OECD, Paris, 1992, Test Guideline 210, ‘Fish, Early-life Stage Toxicity Test’.
, idet man dog beholder det netværk, som hindrer fiskene i at forsvinde.
, except that meshes should be retained to prevent the escape of the fish.
Hvis det er nødvendigt at flytte fiskelarver, må de ikke udsættes for luft, og net bør ikke bruges til at fjerne fisk fra beholdere (fra en sådan advarsel kan nok undtages mindre sarte arter, som f.eks. karpen).
If there is a need to transfer the larvae, they should not be exposed to the air and nets should not be used to release fish from egg containers (such a caution may not be necessary for some less fragile species, e.g. the carp).
Tidspunktet for en sådan overførsel varierer med arten og behøves ikke i alle tilfælde.
The timing of this transfer varies with the species and transfer may not always be necessary.
Ved brug af den semistatiske teknik kan man anvende bægerglas eller lave beholdere, eventuelt, hvis nødvendigt, forsynet med et netværk løftet en smule op over bægerglassets bund.
For the semi-static technique, beakers or shallow containers may be used, and, if necessary, equipped with a mesh screen slightly elevated above the bottom of the beaker.
Hvis beholderne er store nok til at opfylde kravene til belastningsraten (se 1.7.1.2) kan overflytning af embryoner eller larver eventuelt undgås.
If the volume of these containers is sufficient to comply with loading requirements, (see 1.7.1.2) no transfer of embryo or larvae may be necessary.
Kvaliteten må ikke ændre sig i løbet af testperioden. pH skal holde sig inden for ±0,5 pH-enheder.
The pH should remain within a range of ±0,5 pH units.
For at sikre, at vand til fortynding ikke får urimelig indflydelse på testresultaterne (f.eks. ved at danne kompleks med testkemikaliet) eller ved at indvirke uheldigt på de præstationer, man forventer af fisk til yngel, bør man regelmæssigt udtage prøver til analyse.
In order to ensure that the dilution water will not unduly influence the test result (for example by complexation of test substance), or adversely affect the performance of the brood stock, samples should be taken at intervals for analysis.
Målinger af tungmetaller (f.eks. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd og Ni), væsentlige kationer og anioner (f.eks. Ca, Mg, Na, K, Cl og So4), pesticider (f.eks. totale organofosfor- og totale organochlorinopesticider), totalt organisk kulstof og opslæmmede faste stoffer bør f.eks. foretages hver tredje måned, hvis man ved, at fortyndingsvandet har en relativt konstant kvalitet.
Measurements of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd and Ni), major anions and cations (e.g. Ca, Mg, Na, K, Cl and SO4), pesticides (e.g. total organophosphorus and total organochlorine pesticides), total organic carbon and suspended solids should be made, for example, every three months, where a dilution water is known to be relatively constant in quality.
Stamopløsningen bør fortrinsvis fremstilles ved opblanding eller oprystning af testkemikaliet i opløsningsvandet ad mekanisk vej (f.eks. omrøring og ultralydbehandling).
The stock solution should preferably be prepared by simply mixing or agitating the test substance in the dilution water by using mechanical means (e.g. stirring and ultrasonication).
Videst muligt bør brugen af opløsningsmidler eller dispergeringsmidler undgås; imidlertid kan den type stoffer være nødvendige til fremstilling af en passende koncentreret stamopløsning.
As far as possible, the use of solvents or dispersants (solubilising agents) should be avoided; however, such compounds may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Som eksempler på anvendelige opløsningsmidler kan nævnes acetone, ethanol, methanol, dimethylformamid og triethyleneglycol.
Examples of suitable solvents are acetone, ethanol, methanol, dimethylformamide and triethyleneglycol.
Som eksempel på en anvendelige dispergenser kan nævnes Cremophor RH40, Tween 80, methylcellulose 0,01 % og HCO-40.
Examples of suitable dispersants are Cremophor RH40, Tween 80, methylcellulose 0,01 % and HCO-40.
I den semistatiske teknik kan man følge to forskellige procedurer ved udskiftning af testopløsningen; enten i) fremstilles nye testopløsninger i rene forsøgsbeholdere og overlevende æg og larver flyttes forsigtigt inde i små volumina af den gamle opløsning til det nye forsøgsbeholdere, idet man undgår at udsætte dem for luft, eller ii) testorganismerne bibeholdes i forsøgsbeholderne, medens mindst tre fjerdedele af testvandet udskiftes.
For the semi-static technique, two different renewal procedures may be followed; either (i) new test solutions are prepared in clean vessels and surviving eggs and larvae gently transferred into the new vessels in a small volume of old solution, avoiding exposure to air, or (ii) the test organisms are retained in the vessels whilst a proportion (at least three-quarters) of the test water is changed.
Hvor hyppigt det skal gøres, afhænger af testkemikaliets stabilitet, men en daglig udskiftning anbefales.
The frequency of medium renewal will depend on the stability of the test substance, but a daily water renewal is recommended.
Under alle omstændigheder skal man være omhyggelig med ikke at stresse larverne, når vandet fornyes.
In any case, care should be taken to avoid stressing the larvae during the water renewal operation.
Med mellemrum, fortrinsvis dagligt, kontrolleres flow-hastigheden fra stamopløsningen og vandfortyndingen, og de bør ikke variere mere end 10 % i testforløbet.
The flow rates of stock solutions and dilution water should be checked at intervals, preferably daily, and should not vary by more than 10 % throughout the test.
En flow-hastighed svarende til volumenet af mindst fem målekamre pr. døgn er fundet passende (2).
A flow rate equivalent to at least five test chamber volumes per 24 hours has been found suitable (2).
Nyttig viden om, hvad testen med fiskeembryoner og blommesækyngel kan præstere, kan findes i litteraturen, og eksempler herpå kan findes i henvisning (7)(8)(9).
Useful information on the performance of fish embryo and sac-fry toxicity tests is available in the literature, some examples of which are included in the literature section of this text (7)(8)(9).
Helst skal testen begynde mindre end 30 minutter efter befrugtningen.
The test should start preferably within 30 minutes after the eggs have been fertilised.
Embryonerne sænkes ned i testopløsningen før eller så snart som muligt efter at blastocysten har delt sig. og i hvert fald for begyndelsen af gastrula-stadiet.
The embryos are immersed in the test solution before, or as soon as possible after, commencement of the blastodisc cleavage stage and in any case before the onset of the gastrula stage.
Med æg, der leveres udefra, kar. man ikke altid begynde testen umiddelbart efter befrugtningen.
For eggs obtained from commercial supplier, it may not be possible to start the test immediately after fertilisation.
Da testens følsomhed kan blive alvorligt påvirket af en forsinket teststart, bør testen påbegyndes senest otte timer efter befrugtningen.
As the sensitivity of the test may be seriously influenced by delaying the start of the test, the test should be initiated within eight hours after fertilisation.
Varigheden afhænger af den anvendte art. Nogle anbefalede tider ses i tillæg 2 og 3.
Some recommended durations are given in Appendices 2 and 3.
Antallet af befrugtede æg ved testens begyndelse skal kunne opfylde de statistiske krav.
The number of fertilised eggs at the start of the test should be sufficient to meet statistical requirements.
Æggene skal fordeles tilfældigt mellem de forskellige behandlinger og mindst 30 befrugtede æg, ligeligt fordelt, til mindst tre replikate testbeholdere pr. koncentration af testkemikalium (så vidt gørligt, det kan være vanskeligt med nogle arter at opnå lige store mængder).
They should be randomly distributed among treatments, and at least 30 fertilised eggs, divided equally (or as equally as possible since it can be difficult to obtain equal batches when using some species) between at least three replicate test chambers, should be used per concentration.
Belastningsraten (biomasse per volumen af testopløsningen) bør være så lav, så den opløste iltkoncentration på mindst 60 % ASV kan vedligeholdes uden beluftning.
The loading rate (biomass per volume of test solution) should be low enough in order that a dissolved oxygen concentration of at least 60 % ASV can be maintained without aeration.
Til gennemstrømningstest anbefales en belastningsrate på ikke over 0,5 g/l per døgn og ikke over 5 g/l opløsning på noget tidspunkt (2).
For flow-through tests, a loading rate not exceeding 0,5 g/l per 24 hours and not exceeding 5 g/l of solution at any time has been recommended (2).
Perioderne med lys og testvandets temperatur skal passe til den valgte art (tillæg 2 og 3).
The photoperiod and test water temperature should be appropriate for the test species (Appendix 2 and 3).
For at holde temperaturen konstant kan det være nødvendigt med endnu et forsøgskar.
For the purpose of temperature monitoring, it may be appropriate to use an additional test vessel.
Normalt kræves fem koncentrationer af testkemikaliet med en afstandsfaktor, som ikke overstiger 3,2.
Normally, five concentrations of the test substance spaced by a constant factor not exceeding 3,2 are required.