natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Afhængig af instrumenttype og stoffets renhed.
Dependent on type of instrument and on degree of purity of the substance.
Afhængig af instrumenttype og stoffets renhed.
Dependent on type of instrument and on degree of purity of the substance
Denne nøjagtighed gælder kun for det simple apparat, som er beskrevet i f.eks. ASTM D 1120-72, den kan forbedres med mere raffinerede ebulliometre.
This accuracy is only valid for the simple device as for example described in ASTM D 1120-72; it can be improved with more sophisticated ebulliometer devices.
Gælder kun for rene stoffer.
Only valid for pure substances.
Anvendelse under andre betingelser skal begrundes.
The use in other circumstances should be justified.
Afhængigt af renhedsgraden.
Dependent of the degree of purity.
Med den fornødne omhu kan disse metoder også anvendes i området fra 1 til 10 Pa.
These methods can also be used in the range 1 to 10 Pa providing care is taken.
Som f.eks. i rammerne af FN's transportregulativer.
As, for example, in the framework of UN transport regulations.
Syren skal inden prøven titreres for at bekræfte dens styrke.
The acid should be titrated before testing to confirm its concentration.
F.eks. anvendes i reference (1) 50 % (w/w) perchlorsyre og 40 % (w/w) natriumchlorat.
E.g.: 50 % (w/w) perchloric acid and 40 % (w/w) sodium chlorate are used in reference 1.
F.eks. Whatman cellulosepulver til søjlekromatografi CF 11, katalog nr. 4021 050.
E.g. Whatman Column Chromatographic Cellulose Powder CF 11, catalogue No 4021 050.
Bekræftet ved (f.eks.) Karl-Fisher titrering.
Confirmed by, e.g. Karl-Fisher titration.
Alternativt kan dette vandindhold også opnås (f.eks.) ved opvarmning til 105 oC under vakuum i 24 timer.
Alternatively, this water content can also be achieved by, e.g. heating at 105 oC under vacuum for 24 h.
Blandingen af oxiderende stoffer og cellulose skal behandles som eksplosionsfarlig og håndteres med tilbørlig forsigtighed.
Mixtures of oxidisers with cellulose must be treated as potentially explosive and handled with due care.
I praksis kan dette gøres ved at man fremstiller en 1:1 blanding af prøvevæske og cellulose i større mængde end nødvendigt til prøven og overfører 5 ±0,1 g til trykbeholderen.
In practice this can be achieved by preparing a 1:1 mixture of the liquid to be tested and cellulose in a greater amount than needed for the trial and transferring 5 ±0,1 g to the pressure vessel.
Blandingen skal være frisk fremstillet til hver prøvning.
The mixture is to be freshly prepared for each trial.
Navnlig må spolens naboviklinger ikke røre hinanden.
In particular, contact between the adjacent turns of the coil must be avoided.
Vedrørende FN-transportklassifikation henvises til ref. (1).
See reference (1) for classification under the UN transport scheme.
Mættede opløsninger skal fremstilles ved 20 oC.
Saturated solutions should be prepared at 20 oC.
Gennemsnitsværdi af sammenlignende laboratorieprøvninger.
Mean value from interlaboratory comparative trials.
Det maksimale tryk 2070 kPa ikke nået.
Maximum pressure of 2070 kPa not reached.
Vedrørende fortolkning af resultater med brug af flere referencestoffer i henhold til FN's transportregulativer henvises til reference (1).
See reference 1 for interpretation of the results under the UN transport regulations using several reference substances.
DEL B: METODER TIL BESTEMMELSE AF TOKSICITET OG ANDRE SUNDHEDSVIRKNINGER
PART B: METHODS FOR THE DETERMINATION OF TOXICITY AND OTHER HEALTH EFFECTS
GENEREL INDLEDNING
GENERAL INTRODUCTION
AKUT ORAL TOKSICITET — FASTDOSISMETODEN
bis. ACUTE ORAL TOXICITY — FIXED DOSE PROCEDURE
AKUT ORAL TOKSICITET — AKUT TOKSICITETSKLASSEMETODEN
tris. ACUTE ORAL TOXICITY — ACUTE TOXIC CLASS METHOD
AKUT TOKSICITET (INHALATION)
ACUTE TOXICITY (INHALATION)
AKUT TOKSICITET (DERMAL)
ACUTE TOXICITY (DERMAL)
AKUT TOKSICITET: HUDIRRITATION/ÆTSNING
ACUTE TOXICITY: DERMAL IRRITATION/CORROSION
AKUT TOKSICITET, ØJENIRRITATION
ACUTE TOXICITY: EYE IRRITATION/CORROSION
HUDSENSIBILISERING
SKIN SENSITISATION
TOKSICITET VED GENTAGEN DOSERING (28 DAGE, ORAL)
REPEATED DOSE (28 DAYS) TOXICITY (ORAL)
TOKSICITET VED GENTAGEN DOSERING (28 DAGE, INHALATION)
REPEATED DOSE (28 DAYS) TOXICITY (INHALATION)
TOKSICITET VED GENTAGEN DOSERING (28 DAGE, DERMAL)
REPEATED DOSE (28 DAYS) TOXICITY (DERMAL)
MUTAGENICITET — IN VITRO-TEST FOR KROMOSOMABERRATIONER I CELLER FRA PATTEDYR
MUTAGENICITY — IN VITRO MAMMALIAN CHROMOSOME ABERRATION TEST
MUTAGENICITET — IN VIVO-TEST FOR KROMOSOMABERRATIONER I KNOGLEMARV HOS PATTEDYR
MUTAGENICITY — IN VIVO MAMMALIAN BONE MARROW CHROMOSOME ABERRATION TEST
MUTAGENICITET — IN VIVO-TEST FOR MIKROKERNER I ERYTHROCYTTER HOS PATTEDYR
MUTAGENICITY — IN VIVO MAMMALIAN ERYTHROCYTE MICRONUCLEUS TEST
MUTAGENICITETSTESTNING OG SCREENING FOR KARCINOGENICITET GENMUTATION — SACCHAROMYCES CEREVlSIAE
MUTAGENICITY TESTING AND SCREENING FOR CARCINOGENICITY GENE MUTATION — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MITOTISK REKOMBINATION — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MITOTIC RECOMBINATION — SACCHAROMYCES CEREVISIAE
MUTAGENICITET — IN VITRO-TEST FOR GENMUTATION I PATTEDYRCELLER
MUTAGENICITY — IN VITRO MAMMALIAN CELL GENE MUTATION TEST
DNA-SKADE OG DNA-REPARATION — UNSCHEDULED DNA SYNTHESIS — PATTEDYRCELLER IN VITRO
DNA DAMAGE AND REPAIR — UNSCHEDULED DNA SYNTHESIS — MAMMALIAN CELLS IN VITRO
SØSTERKROMATID OMBYTNING (SCE) IN VITRO
SISTER CHROMATID EXCHANGE ASSAY IN VITRO
KØNSBUNDET RECESSIV LETAL TEST — DROSOPHILA MELANOGASTER
SEX-LINKED RECESSIVE LETHAL TEST IN DROSOPHILA MELANOGASTER
CELLETRANSFORMATIONSTEST — PATTEDYRCELLER IN VITRO
IN VITRO MAMMALIAN CELL TRANSFORMATION TESTS
DOMINANT LETAL TEST — GNAVER
RODENT DOMINANT LETHAL TEST
TEST FOR KROMOSOMABERRATIONER I SPERMATOGONIER HOS PATTEDYR
MAMMALIAN SPERMATOGONIAL CHROMOSOME ABERRATION TEST
SPOTTEST — MUS
MOUSE SPOT TEST
ARVELIG TRANSLOKATION HOS MUS
MOUSE HERITABLE TRANSLOCATION
SUBKRONISK ORAL TOKSICITETSTEST — ET 90-DAGES FORSØG OVER GENTAGNE ORALE DOSERS TOKSICITET PÅ GNAVERE
SUB-CHRONIC ORAL TOXICITY TEST REPEATED DOSE 90 — DAY ORAL TOXICITY STUDY IN RODENTS
SUBKRONISK ORAL TOKSICITETSTEST — ET 90-DAGES FORSØG OVER GENTAGNE ORALE DOSERS TOKSICITET PÅ IKKE-GNAVERE
SUB-CHRONIC ORAL TOXICITY TEST REPEATED DOSE 90 — DAY ORAL TOXICITY STUDY IN NON-RODENTS
SUBKRONISK TOKSICITET, OPTAGELSE GENNEM HUDEN — 90 DAGES GENTAGEN DOSERING PÅ HUD UNDER ANVENDELSE AF GNAVERE
SUB-CHRONIC DERMAL TOXICITY STUDY 90-DAY REPEATED DERMAL DOSE STUDY USING RODENT SPECIES
SUBKRONISK TOKSICITET, INHALATION — 90 DAGES GENTAGEN INHALATION UNDER ANVENDELSE AF GNAVERE
SUB-CHRONIC INHALATION TOXICITY STUDY 90-DAY REPEATED INHALATION DOSE STUDY USING RODENT SPECIES
UNDERSØGELSE AF KRONISK TOKSICITET
CHRONIC TOXICITY TEST
PRÆNATAL UDVIKLINGSTOKSICITETSUNDERSØGELSE
PRENATAL DEVELOPMENTAL TOXICITY STUDY
KARCINOGENICITETSUNDERSØGELSE
CARCINOGENICITY TEST
KOMBINERET UNDERSØGELSE AF KARCINOGENICITET/KRONISK TOKSICITET
COMBINED CHRONIC TOXICITY/CARCINOGENICITY TEST
REPRODUKTIONSTOKSICITETSUNDERSØGELSE I EN GENERATION
ONE-GENERATION REPRODUCTION TOXICITY TEST
REPRODUKTIONSTOKSICITETSUNDERSØGELSE I TO GENERATIONER
TWO-GENERATION REPRODUCTION TOXICITY STUDY
TOKSIKOKINETIK
TOXICOKINETICS
FORSINKET NEUROTOKSICITET VED ORGANISKE PHOSPHORFORBINDELSER EFTER AKUT EKSPONERING
DELAYED NEUROTOXICITY OF ORGANOPHOSPHORUS SUBSTANCES FOLLOWING ACUTE EXPOSURE
FORSINKET NEUROTOKSICITET VED ORGANISKE PHOSPHORFORBINDELSER GENTAGEN DOSIS — 28 DAGE
DELAYED NEUROTOXICITY OF ORGANOPHOSPHORUS SUBSTANCES 28 DAY REPEATED DOSE STUDY
TEST FOR UNSCHEDULED DNA-SYNTESE (UDS) MED PATTEDYRLEVERCELLER IN VIVO
UNSCHEDULED DNA SYNTHESIS (UDS) TEST WITH MAMMALIAN LIVER CELLS IN VIVO
IN VITRO-HUDÆTSNING: MÅLING AF TRANSKUTAN ELEKTRISK MODSTAND (TER)
IN VITRO SKIN CORROSION: TRANSCUTANEOUS ELECTRICAL RESISTANCE TEST (TER)
IN VITRO-HUDÆTSNING: TEST MED HUMAN HUDMODEL
BIS. IN VITRO SKIN CORROSION: HUMAN SKIN MODEL TEST
IN VITRO 3T3 NRU-FOTOTOKSICITETSTEST
IN VITRO 3T3 NRU PHOTOTOXICITY TEST
HUDSENSIBILISERING: ASSAY PÅ LOKALE LYMFEKNUDER
SKIN SENSITISATION: LOCAL LYMPH NODE ASSAY
NEUROTOKSICITETSUNDERSØGELSE I GNAVERE
NEUROTOXICITY STUDY IN RODENTS
HUDABSORPTION: IN VIVO-METODE
SKIN ABSORPTION: IN VIVO METHOD
HUDABSORPTION: IN VITRO-METODE
SKIN ABSORPTION: IN VITRO METHOD
BESKRIVELSE AF TESTSTOFFET
CHARACTERISATION OF THE TEST SUBSTANCE
Teststoffets sammensætning, herunder de vigtigste urenheder, og dets relevante fysisk-kemiske egenskaber, herunder dets stabilitet, skal være kendt forud for enhver undersøgelse af toksicitet.
The composition of the test substance, including major impurities, and its relevant physico-chemical properties including stability, should be known prior to the initiation of any toxicity study.
Teststoffets fysisk-kemiske egenskaber giver en række vigtige oplysninger for valget af administrationsmåde, udformningen af hver enkelt undersøgelse samt håndtering og opbevaring af teststoffet.
The physico-chemical properties of the test substance provide important information for the selection of the route of administration, the design of each particular study and the handling and storage of the test substance.
Forud for undersøgelsen bør der udvikles en analysemetode til kvalitativ og kvantitativ bestemmelse af stoffet (herunder vigtige urenheder, såfremt dette er muligt) i doseringsmediet og i det biologiske materiale.
The development of an analytical method for qualitative and quantitative determination of the test substance (including major impurities when possible) in the dosing medium and the biological material should precede the initiation of the study.
Alle oplysninger om teststoffets identitet, fysisk-kemiske egenskaber, renhed og adfærd medtages i testrapporten.
All information relating to the identification, the physico-chemical properties, the purity, and behaviour of the test substance should be included in the test report.
PASNING AF DYR
ANIMAL CARE
Ved toksicitetstest er det afgørende, at der føres nøje kontrol med testmiljøet, og at dyrene passes korrekt.
Stringent control of environmental conditions and proper animal care techniques are essential in toxicity testing.
Miljø
Housing conditions
Miljøet i forsøgsstalde og -bure skal afpasses efter dyrearten.
The environmental conditions in the experimental animal rooms or enclosures should be appropriate to the test species.
For rotter, mus og marsvin er en rumtemperatur på 22 ± 3 oC og en relativ luftfugtighed på 30-70 % passende; for kaniner bør temperaturen være på 20 ± 3 oC og den relative luftfugtighed på 30-70 %.
For rats, mice and guinea pigs, suitable conditions are a room temperature of 22 oC ± 3 oC with a relative humidity of 30 to 70 %; for rabbits the temperature should be 20 ± 3 oC with a relative humidity of 30 to 70 %.
Nogle forsøgsteknikker er særlig følsomme over for temperaturafvigelser, og i sådanne tilfælde indeholder beskrivelsen af testmetoden nærmere oplysninger om passende forsøgsbetingelser.
Some experimental techniques are particularly sensitive to temperature effects and, in these cases, details of appropriate conditions are included in the description of the test method.
Ved alle undersøgelser af toksiske virkninger skal temperaturen og luftfugtigheden kontrolleres, registreres og anføres i den afsluttende forsøgsrapport.
In all investigations of toxic effects, the temperature and humidity should be monitored, recorded, and included in the final report of the study.
Belysningen skal være kunstig og bestå af 12 timers lys og 12 timers mørke.
Lighting should be artificial, the sequence being 12 hours light, 12 hours dark.
Oplysninger om belysningsrytmen registreres og anføres i den afsluttende forsøgsrapport.
Details of the lighting pattern should be recorded and included in the final report of the study.
Medmindre andet er angivet i metoden, kan dyrene opbevares i bure hver for sig eller i små grupper af samme køn, dog højst fem dyr pr. bur.
Unless otherwise specified in the method, animals may be housed individually, or be caged in small groups of the same sex; for group caging, no more than five animals should be housed per cage.
I rapporter over dyreforsøg er det vigtigt at anføre, hvilken type bure der er anvendt, og hvor mange dyr der har været i hvert bur, såvel under eksponering for det kemiske stof som i en efterfølgende observationsperiode.
In reports of animal experiments, it is important to indicate the type of caging used and the number of animals housed in each cage both during exposure to the chemical and any subsequent observation period.
Fodring
Feeding conditions
Foderet skal opfylde alle de ernæringskrav, som den pågældende art af forsøgsdyr stiller.
Diets should meet all the nutritional requirements of the species under test.
Hvis teststofferne indgives med foder, kan reaktioner mellem teststoffet og foderbestanddele medføre, at næringsværdien nedsættes.
Where test substances are administered to animals in their diet the nutritional value may be reduced by interaction between the substance and a dietary constituent.
Muligheden af en sådan reaktion skal tages i betragtning, når forsøgsresultaterne fortolkes.
The possibility of such a reaction should be considered when interpreting the results of tests.
Der kan anvendes normalt laboratoriefoder med ubegrænset forsyning af drikkevand.
Conventional laboratory diets may be used with an unlimited supply of drinking water.
Valget af foder kan afhænge af, at teststoffet skal kunne iblandes foderet på passende måde, hvis teststoffet indgives med foderet.
The choice of the diet may be influenced by the need to ensure a suitable admixture of a test substance when administered by this method.
Forureninger i foderet, som vides at influere på toksiciteten, må ikke forefindes i interfererende koncentrationer.
Dietary contaminants which are known to influence the toxicity should not be present in interfering concentrations.
ALTERNATIV TESTNING
ALTERNATIVE TESTING
Den Europæiske Union har sat sig som mål at udvikle og validere alternative metoder, som kan give oplysninger på samme niveau som de nuværende dyreforsøg, men som anvender færre dyr, forårsager mindre smerte, eller hvor brugen af dyr fuldstændig kan undgås.
The European Union is committed to promoting the development and validation of alternative techniques which can provide the same level of information as current animal tests, but which use fewer animals, cause less suffering or avoid the use of animals completely.
Efterhånden som sådanne metoder udvikles, skal de så vidt muligt tages i anvendelse i forbindelse med risikobeskrivelse og efterfølgende klassifikation og etikettering baseret på den potentielle fare ved de pågældende stoffer.
Such methods, as they become available, must be considered wherever possible for hazard characterisation and consequent classification and labelling for intrinsic hazards and chemical safety assessment.
VURDERING OG FORTOLKNING
EVALUATION AND INTERPRETATION
Ved vurdering og fortolkning af resultaterne af dyreforsøg og in vitro-undersøgelser skal der tages hensyn til, at der er grænser for, i hvilket omfang de kan ekstrapoleres direkte til mennesker, dokumentation for skadelige virkninger på mennesker, hvor sådan foreligger, skal derfor anvendes til at bekræfte testresultaterne.
When tests are evaluated and interpreted, limitations in the extent to which the results of animal and in vitro studies can be extrapolated directly to man must be considered and therefore, evidence of adverse effects in humans, where available, may be used for confirmation of testing results.
HENVISNINGER
LITERATURE REFERENCES
De fleste af disse metoder er udviklet inden for rammerne af OECD's program for retningslinjer for forsøgsvirksomhed (OECD-Test Guidelines) og bør udføres i overensstemmelse med principperne for god laboratoriepraksis, så der kan opnås størst mulig »gensidig accept af data«.
Most of these methods are developed within the framework of the OECD programme for Testing Guidelines, and should be performed in conformity with the principles of Good Laboratory Practice, in order to ensure as wide as possible ‘mutual acceptance of data’.
Yderligere oplysninger kan findes i henvisningerne i OECD-retningslinjerne og relevant litteratur, der er offentliggjort andetsteds.
Additional information may be found in the references listed in the OECD guidelines and the relevant literature published elsewhere.
Denne forsøgsmetode svarer til OECD TG 420 (2001)
This test method is equivalent to OECD TG 420 (2001)
I traditionelle metoder til bestemmelse af akut giftighed anvendes dyrenes død som effektparameter.
Traditional methods for assessing acute toxicity use death of animals as an endpoint.
I 1984 foreslog British Toxicology Society en ny metode til bestemmelse af akut giftighed, baseret på administration af stoffet i en række faste dosisniveauer (1).
In 1984, a new approach to acute toxicity testing was suggested by the British Toxicology Society based on the administration at a series of fixed dose levels (1).
Med denne metode undgik man at anvende dyrenes død som effektparameter, men støttede sig i stedet til observation for tydelige tegn på toksicitet ved et af en række faste dosisniveauer.
The approach avoided using death of animals as an endpoint, and relied instead on the observation of clear signs of toxicity at one of a series of fixed dose levels.
Efter in vivo-validering, dels i Det Forenede Kongerige (2), dels internationalt (3), blev metoden indført som forsøgsmetode i 1992.
Following UK (2) and international (3) in vivo validation studies the procedure was adopted as a testing method in 1992.
Efterfølgende er de statistiske egenskaber af fastdosismetoden evalueret ved hjælp af matematiske modeller i en række undersøgelser (4(5)(6).
Subsequently, the statistical properties of the Fixed Dose Procedure have been evaluated using mathematical models in a series of studies (4)(5)(6).
Tilsammen har in vivo-undersøgelser og modelforsøg vist, at metoden er reproducerbar, kræver færre dyr og medfører færre lidelser end traditionelle metoder, og at den gør det muligt at rangordne stofferne på tilsvarende måde som andre metoder til bestemmelse af akut giftighed.
Together, the in vivo and modelling studies have demonstrated that the procedure is reproducible, uses fewer animals and causes less suffering than the traditional methods and is able to rank substances in a similar manner to the other acute toxicity testing methods.
Vejledning i valg af den mest hensigtsmæssige forsøgsmetode til et givet formål kan findes i Guidance Document on Acute Oral Toxicity Testing (7).
Guidance on the selection of the most appropriate test method for a given purpose can be found in the Guidance Document on Acute Oral Toxicity Testing (7).
Samme dokument indeholder desuden supplerende oplysninger om udførelse og fortolkning af forsøg efter metode B.1.A.
This guidance document also contains additional information on the conduct and interpretation of Testing Method B.1bis.
Dyr, som er moribunde, har tydelige smerter eller viser tegn på svære og vedvarende lidelser, skal aflives humant og betragtes ved fortolkningen af forsøgsresultaterne på samme måde som dyr, der er døde under forsøget.
Moribund animals, or animals obviously in pain or showing signs of severe and enduring distress shall be humanely killed, and are considered in the interpretation of the test results in the same way as animals that died on test.
Dyr, som er moribunde, har tydelige smerter eller viser tegn på svære og vedvarende lidelser, skal aflives humant og betragtes ved fortolkningen af forsøgsresultaterne på samme måde som dyr, der er døde under forsøget, Kriterierne for aflivning af moribunde eller stærkt lidende dyr samt vejledning i at fastslå forudsigelig eller forestående død er genstand for en særskilt vejledning (8).
Criteria for making the decision to kill moribund or severely suffering animals, and guidance on the recognition of predictable or impending death, are the subject of a separate Guidance Document (8).
Metoden giver oplysninger om de farlige egenskaber og gør det muligt at rangordne og klassificere stofferne efter det globale harmoniserede system (GHS) til klassificering af kemiske stoffer med akut toksisk virkning (9).
The method provides information on the hazardous properties and allows the substance to be ranked and classified according to the Globally Harmonised System (GHS) for the classification of chemicals which cause acute toxicity (9).
Testlaboratoriet bør inden forsøgets udførelse gennemgå alle foreliggende oplysninger om teststoffet.
The testing laboratory should consider all available information on the test substance prior to conducting the study.
Sådanne oplysninger omfatter stoffets identitet og kemiske struktur, dets fysisk-kemiske egenskaber, resultaterne af andre in vitro- eller in vivo-tokstcitetsundersøgelser af stoffet, toksikologiske data for strukturelt beslægtede stoffer, samt stoffets forventede anvendelse(r).
Such information will include the identity and chemical structure of the substance; its physico-chemical properties; the results of any other in vitro or in vivo toxicity tests on the substance; toxicological data on structurally related substances; and the anticipated use(s) of the substance.
Disse oplysninger er nødvendige for til alle parters tilfredshed at godtgøre, at forsøget har betydning for beskyttelsen af menneskers sundhed, og vil desuden være nyttige ved valg af passende startdosis.
This information is necessary to satisfy all concerned that the test is relevant for the protection of human health, and will help in the selection of an appropriate starting dose.
Akut oral toksicitet: de sundhedsmæssigt uønskede virkninger, som optræder efter oral indgift af en enkelt dosis af et stof eller efter flere doser indgivet i løbet af 24 timer.
Acute oral toxicity: refers to those adverse effects occurring following oral administration of a single dose of a substance or multiple doses given within 24 hours.
Forsinket død: det forhold, at dyret ikke inden for 48 timer dør eller fremtræder moribund, men dør senere inden for den 14 dage lange observationsperiode.
Delayed death: means that an animal does not die or appear moribund within 48 hours but dies later during the 14-day observation period.
Dosis: Mængden af indgivet testkemikalium.
Dose: is the amount of test substance administered.
Dosis angives som vægtmængde teststof pr. vægtenhed forsøgsdyr (f.eks. mg/kg).
Dose is expressed as weight of test substance per unit weight of test animal (e.g. mg/kg).
Synlig toksicitet: et generelt udtryk, som angiver klare tegn på toksicitet efter indgift af teststoffet (eksempler herpå findes i (3)), således at der ved den næsthøjeste faste dosis enten kan forventes svære smerter og vedvarende tegn på svære lidelser, moribund status (kriterier herfor er beskrevet i Humane Endpoints Guidance Document (8)), eller størstedelen af dyrene forventes at dø.
Evident toxicity: is a general term describing clear signs of toxicity following the administration of test substance (see (3) for examples) such that at the next highest fixed dose either severe pain and enduring signs of severe distress, moribund status (criteria are presented in the Humane Endpoints Guidance Document (8)), or probable mortality in most animals can be expected.
Forudsigelig død: tilstedeværelse af kliniske tegn, som antyder, at døden vil indtræffe på et kendt tidspunkt før forsøgets planlagte afslutning, f.eks. at dyret er ude af stand til at bevæge sig hen til vand eller føde (se nærmere i Humane Endpoint Guidance Document (8)).
(See the Humane Endpoint Guidance Document (8) for more details).
LD50-værdien angives som vægtmængde teststof pr. vægtenhed kropsvægt af forsøgsdyret (mg/kg).
The LD50 value is expressed in terms of weight of test substance per unit weight of test animal (mg/kg).
Grænsedosis: en dosis, som danner øvre grænse for testen (2000 eller 5000 mg/kg).
Limit dose: refers to a dose at an upper limitation on testing (2000 or 5000 mg/kg). Moribund status: being in a state of dying or inability to survive, even if treated.