natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For vegetabilsk foder og animalsk foder, der indeholder under 10 % fedt, er det obligatorisk at tilsætte interne standarder inden ekstraktionen.
For feed of plant origin and feed of animal origin containing less than 10 % fat, the addition of the internal standards is mandatory prior to extraction.
For animalsk foder, der indeholder over 10 % fedt, kan de interne standarder tilsættes enten før ekstraktionen eller efter fedtekstraktionen.
For feed of animal origin containing more than 10 % fat, the internal standards can be added either before extraction or after fat extraction.
Der foretages en hensigtsmæssig validering af ekstraktionseffektiviteten, afhængigt af den fase, hvor de interne standarder indføres, og af, om resultaterne er produktbaserede eller fedtbaserede.
An appropriate validation of the extraction efficiency shall be carried out, depending on the stage at which internal standards are introduced and on whether results are reported on a product or fat basis.
Inden GC/MS-analyse skal der tilsættes en eller to genfindingsstandarder (surrogat).
Prior to GC/MS analysis, 1 or 2 recovery (surrogate) standard(s) must be added.
Det er nødvendigt med genfindingskontrol.
Control of recovery is necessary.
Niveauet for genfinding for de enkelte interne standarder i verifikationsmetoder skal ligge mellem 60 og 120 %.
For confirmatory methods, the recoveries of the individual internal standards must be in the range of 60 % to 120 %.
Lavere eller højere genfinding for enkeltkongenere, navnlig for visse hepta- og octa-chlorerede dibenzodioxiner og dibenzofuraner, kan accepteres, på betingelse af at deres bidrag til TEQ-værdien ikke udgør mere end 10 % af den samlede TEQ-værdi (baseret på summen af PCDD/F og dioxinlignende PCB'er).
Lower or higher recoveries for individual congeners, in particular for some hepta- and octa- chlorinated dibenzodioxins and dibenzofurans, are acceptable on the condition that their contribution to the TEQ value does not exceed 10 % of the total TEQ value (based on sum of PCDD/F and dioxin-like PCBs).
Niveauet for genfinding ved screeningsmetoder skal ligge mellem 30 og 140 %.
For screening methods, the recoveries must be in the range of 30 % to 140 %.
Der gennemføres separation af dioxiner fra interfererende chlorerede forbindelser som f.eks. ikke-dioxinlignende PCB'er og chlorerede diphenylethere ved hjælp af egnede kromatografiske metoder (helst med florisil-, alumina- og/eller carbonkolonne).
Separation of dioxins from interfering chlorinated compounds such as non-dioxin-like PCBs and chlorinated diphenyl ethers shall be carried out by suitable chromatographic techniques (preferably with a florisil, alumina and/or carbon column).
Det er tilstrækkeligt med gaskromatografisk separation af isomerer (< 25 % topafstand mellem 1,2,3,4,7,8-HxCDF og 1,2,3,6,7,8-HxCDF).
Gaschromatographic separation of isomers shall be sufficient (< 25 % peak to peak between 1,2,3,4,7,8-HxCDF and 1,2,3,6,7,8-HxCDF).
Bestemmelse foretages ved hjælp af EPA-metode 1613, revision B: »Tetra-through octa-chlorinated dioxins and furans by isotope dilution HRGC/HRMS«, eller en anden metode, der opfylder tilsvarende krav.
Determination shall be performed according to EPA Method 1613 revision B: Tetra- through octa-chlorinated dioxins and furans by isotope dilution HRGC/HRMS or another with equivalent performance criteria.
Forskellen mellem øvre og nedre niveau må ikke overstige 20 % for foder med en dioxinforurening, der ligger på eller over grænseværdien.
The difference between upperbound level and lower bound level must not exceed 20 % for feed with a dioxin contamination in the range or above the maximum level.
For foder med en forurening, der ligger et godt stykke under grænseværdien, kan der være en difference på 25–40 %.
For feed with contamination levels well below the maximum level, the difference may be in the range of 25 %-40 %.
Screeningsanalysemetoder
Screening methods of analysis
I forbindelse med screeningsmetoden kan der anvendes forskellige analysefremgangsmåder: ren screening eller en kvantitativ indfaldsvinkel.
Different analytical approaches can be performed using a screening method: a pure screening approach and a quantitative approach.
Prøver med en reaktion, der ligger under referenceprøvens, erklæres negative, mens dem med en højere reaktion formodes at være positive.
Samples with a response less than the reference are declared negative, those with a higher response are suspected positives.
Der anvendes ekstra referenceprøver på 0,5 og 2 gange det relevante niveau for at vise analysens præstation inden for det interval, der er relevant for kontrollen af det relevante niveau.
Additional reference samples at 0,5x and 2x the level of interest shall be included to demonstrate the proper performance of the test in the range of interest for the control of the level of interest.
Når andre matrixer analyseres, skal referenceprøvens/-prøvernes egnethed godtgøres, helst ved at inddrage prøver, som HRGC/HRMS har vist har et TEQ-niveau, der nogenlunde svarer til referenceprøvens, eller i en blindprøve tilsat standard op til det pågældende niveau.
When testing other matrices, the suitability of the reference sample(s) has to be demonstrated, preferentially by including samples shown by HRGC/HRMS to contain a TEQ level around that of the reference sample or else a blank spiked at this level.
Da interne standarder ikke kan anvendes i bioassays, er repeterbarhedsanalyser meget vigtige for at tilvejebringe oplysninger om standardafvigelsen inden for en og samme analyserække.
Since no internal standards can be used in bioassays, tests on repeatability are very important to obtain information on the standard deviation within one test series.
Variationskoefficienterne skal ligge under 30 %.
The coefficient of variation must be below 30 %.
For bioassays vedkommende fastlægges målforbindelser, mulige interferenser og højeste tolererede værdier for blindprøver.
For bioassays, the target compounds, possible interferences, and maximum tolerable blank levels shall be defined.
Den kvantitative metode forudsætter standardfortyndingsrækker, dobbelt eller tredobbelt oprensning og måling samt blindprøve- og genfindingskontrol.
The quantitative approach requires standard dilution series, duplicate or triplicate clean up and measuring as well as blank and recovery controls.
Derefter foretages korrektion for det TEQ-niveau, der er beregnet for en blindprøve (for at tage urenheder fra de anvendte opløsningsmidler og kemikalier i betragtning), og genfinding (som beregnes ud fra TEQ-niveauet i en kvalitetskontrolprøve, der ca. ligger på det relevante niveau).
This is subsequently corrected for the TEQ level calculated for a blank sample (to account for impurities from solvents and chemicals used), and a recovery (calculated from the TEQ level in a quality control sample around the limit of interest).
Det er vigtigt at bemærke, at en del af det genfindingstab, der tilsyneladende viser sig, kan skyldes matrixvirkninger og/eller forskelle mellem TEF-værdierne i de pågældende bioassays og de officielle TEF-værdier, som WHO har fastsat.
It is essential to note that part of the apparent recovery loss may be due to matrix effects and/or differences between the TEF values in the bioassays and the official TEF values set by WHO.
For GC/MS-metoder anvendes kravene i punkt 6.
For GC/MS methods the requirements as laid down in point 6 are to be used.
Der er fastsat specifikke krav til cellebaserede bioassays i punkt 7.3 og til analysekitbaserede bioassays i punkt 7.4.
For cell based bioassays specific requirements are laid down in point 7.3 and for kit-based bioassays in point 7.4.
Den faktiske andel af falsk negative prøver skal ligge under 1 %.
Actual false negative rates must be under 1 %.
Prøver inden for et stort TEQ-interval bekræftes endvidere ved HRGC/HRMS (ca. 2-10 % af de negative prøver).
In addition, samples from a wide TEQ-range shall be confirmed by HRGC/HRMS (approximately 2 %-10 % of the negative samples).
Der forelægges oplysninger om overensstemmelsesgraden mellem bioassay- og HRGC/HRMS-resultater.
Information on correspondence between bioassay and HRGC/HRMS results shall be made available.
Når der gennemføres et bioassay, kræves der ved hver analyse en referencekoncentrationsrække af TCDD eller en dioxin/furan-blanding (fuld dosis-respons-kurve med R2 > 0,95).
When performing a bioassay, every test run requires a series of reference concentration of TCDD or a dioxin/furan mixture (full dose-response curve with a R2 > 0,95).
Til screeningsformål kan der dog anvendes en udvidet lavniveaukurve til analyse af prøver med lavt indhold.
However, for screening purposes, an expanded low level curve for analysing low-level samples could be used.
Det skal sikres, at de analysekitbaserede bioassays er tilstrækkeligt følsomme og pålidelige til, at de kan anvendes til foder.
It shall be ensured that the kit-based bioassays have sufficient sensitivity and reliability to be applied for feed.
Producentens vejledning om prøveklargøring og analyser skal følges.
Manufacturer's instructions for sample preparation and analyses have to be followed.
Der anvendes ikke analysekit, hvis udløbsdato er overskredet.
Test kits shall not be used after the expiration date.
Der anvendes ikke materialer eller bestanddele, der er beregnet til at blive anvendt sammen med andre kit.
Materials or components designed for use with other kits shall not be used.
Analysekit opbevares inden for det interval, der er angivet for opbevaringstemperatur, og anvendes ved den angivne anvendelsestemperatur.
Test kits shall be kept within the specified range of storage temperature and used at the specified operating temperature.
Detektionsgrænsen for immunassays bestemmes som tre gange standardafvigelsen baseret på tidobbelt analyse af blindprøven divideret med hældningsværdien af den lineære regressionsligning.
The limit of detection for immunoassays is determined as the sum of the mean and 3x the standard deviation, based on 10 replicate analysis of the blank, to be divided by the slope value of the linear regression equation.
Der anvendes referencestandarder til analyser i laboratoriet for at sikre, at reaktionen på standarden ligger inden for et acceptabelt interval.
Reference standards shall be used for tests at the laboratory to make sure that the responsiveness to the standard is within an acceptable range.
Indberetning af resultater
Reporting of results
Så vidt den anvendte analyseprocedure tillader det, skal analyseresultaterne omfatte værdierne for de enkelte PCDD/F- og PCB-kongenere og indberettes som nedre koncentrationer, øvre koncentrationer og middelkoncentrationer, med henblik på at registreringen af resultater omfatter så mange oplysninger som muligt, så resultaterne kan fortolkes i overensstemmelse med specifikke krav.
In so far as the used analytical procedure makes it possible, the analytical results shall contain the levels of the individual PCDD/F and PCB congeners and the analytical results have to be reported as lowerbound, upperbound and medium-bound in order to include a maximum of information in the reporting of the results and thereby enabling the interpretation of the results according to specific requirements.
Tallene for genfinding af de enkelte interne standarder skal stilles til rådighed, hvis genfindingen ligger uden for det interval, der er angivet i punkt 6, hvis grænseværdierne er overskredet, og i øvrige tilfælde efter anmodning.
The recoveries of the individual internal standards must be made available in case the recoveries are outside the range mentioned in point 6, in case the maximum level is exceeded and in the other cases upon request.
Da der skal tages hensyn til måleusikkerheden, når det afgøres, om en prøve opfylder kravene, skal denne parameter ligeledes være tilgængelig.
As the uncertainty of the measurement is to be taken into account when deciding about the compliance of a sample, this parameter shall also be made available.
Analyseresultaterne indberettes som x +/- U, hvor x er analyseresultatet og U er den ekspanderede måleusikkerhed, idet der anvendes en dækningsfaktor på 2, hvilket giver et konfidensniveau på ca. 95 %.
Thus, analytical results shall be reported as x +/- U whereby x is the analytical result and U is the expanded measurement uncertainty using a coverage factor of 2 which gives a level of confidence of approximately 95 %.
Hvis dioxiner og dioxinlignende PCB'er bestemmes separat, anvendes summen af den anslåede ekspanderede usikkerhed for de separate analyseresultater vedrørende dioxiner og dioxinlignende PCB'er som summen af dioxiner og dioxinlignende PCB'er
In case of a separate determination of dioxins and dioxin-like-PCBs the sum of the estimated expanded uncertainty of the separate analytical results of dioxins and dioxin-like PCBs has to be used for the sum of dioxins and dioxin-like PCBs.
Hvis der ville tages hensyn til måleusikkerheden ved at anvende en CCα (se beskrivelsen i afsnit I, punkt 2, i nærværende del B), indberettes denne parameter.
If the uncertainty of measurement would be taken into account by applying a CCα (as described in I.2 of this Part B) this parameter shall be reported.
Skema over TEF (= toksicitetsækvivalensfaktorer) for dioxiner, furaner og dioxinlignende PCB'erAnvendte forkortelser: »T« = tetra; »Pe« = penta; »Hx« = hexa; »Hp« = hepta; »O« = octa; »CDD« = chlordibenzo-p-dioxin; »CDF« = chlordibenzofuran; »CB« = chlorbiphenyl.
Table of TEF (= toxic equivalency factors) for dioxins, furans and dioxin-like PCBs:Abbreviations used: «T» = tetra; «Pe» = penta; «Hx» = hexa; «Hp» = hepta; «O» = octa; «CDD» = chlorodibenzo-p-dioxin; «CDF» = chlorodibenzofuran; «CB» = chlorobiphenyl.
KongenerTEF-værdiKongenerTEF-værdiDibenzo-p-dioxiner (»PCDD«) »Dioxin-lignende« PCB ' er: 2,3,7,8-TCDD11,2,3,7,8-PeCDD1Non-ortho-PCB'er1,2,3,4,7,8-HxCDD0,1PCB 770,00011,2,3,6,7,8-HxCDD0,1PCB 810,00011,2,3,7,8,9-HxCDD0,1PCB 1260,11,2,3,4,6,7,8-HpCDD0,01PCB 1690,01OCDD0,0001Mono-ortho-PCB'erPCB 1050,0001Dibenzofuraner (»PCDF«) PCB 1140,00052,3,7,8-TCDF0,1PCB 1180,00011,2,3,7,8-PeCDF0,05PCB 1230,00012,3,4,7,8-PeCDF0,5PCB 1560,00051,2,3,4,7,8-HxCDF0,1PCB 1570,00051,2,3,6,7,8-HxCDF0,1PCB 1670,000011,2,3,7,8,9-HxCDF0,1PCB 1890,00012,3,4,6,7,8-HxCDF0,11,2,3,4,6,7,8-HpCDF0,011,2,3,4,7,8,9-HpCDF0,01OCDF0,0001
CongenerTEF valueCongenerTEF valueDibenzo-p-dioxins (‘PCDDs’) ‘Dioxin-like’ PCBs: 2,3,7,8-TCDD11,2,3,7,8-PeCDD1Non-ortho PCBs1,2,3,4,7,8-HxCDD0,1PCB 770,00011,2,3,6,7,8-HxCDD0,1PCB 810,00011,2,3,7,8,9-HxCDD0,1PCB 1260,11,2,3,4,6,7,8-HpCDD0,01PCB 1690,01OCDD0,0001Mono-ortho PCBsPCB 1050,0001Dibenzofurans (‘PCDFs’) PCB 1140,00052,3,7,8-TCDF0,1PCB 1180,00011,2,3,7,8-PeCDF0,05PCB 1230,00012,3,4,7,8-PeCDF0,5PCB 1560,00051,2,3,4,7,8-HxCDF0,1PCB 1570,00051,2,3,6,7,8-HxCDF0,1PCB 1670,000011,2,3,7,8,9-HxCDF0,1PCB 1890,00012,3,4,6,7,8-HxCDF0,11,2,3,4,6,7,8-HpCDF0,011,2,3,4,7,8,9-HpCDF0,01OCDF0,0001
»Øvre koncentration« betyder, at hver ikke-bestemt kongeners bidrag til toksicitetsækvivalenten (TEQ) anses for værende lig med bestemmelsesgrænsen.
The concept of ‘upperbound’ requires using the limit of quantification for the contribution of each non-quantified congener to the Toxic Equivalent (TEQ).
Den første analyse, hvor der tages hensyn til måleusikkerheden, anvendes til at verificere, om kravene er opfyldt.Hvis analysen gennemføres i forbindelse med en hændelse med dioxinforurening, kan bekræftelse ved en ekstra analyse undlades, såfremt de prøver, der er udtaget til analyse, ved hjælp af sporbarhed kan relateres til dioxinforureningshændelsen.
The first analysis, taking into account the measurement uncertainty is used for verification of compliance.In case the analysis is performed in the frame of a dioxin contamination incident, confirmation by duplicate analysis might be omitted in the case the samples selected for analysis are through traceability linked to the dioxin contamination incident.
ANALYSEMETODER TIL BESTEMMELSE AF ANIMALSKE BESTANDDELE SOM LED I DEN OFFENTLIGE KONTROL AF FODER
METHODS OF ANALYSIS FOR THE DETERMINATION OF CONSTITUENTS OF ANIMAL ORIGIN FOR THE OFFICIAL CONTROL OF FEED
Betingelser for påvisning af, identificering af eller skøn over indhold af animalske bestanddele i foder ved mikroskopi
Conditions for the microscopic detection, identification or estimation of constituents of animal origin in feed
Disse betingelser anvendes ved påvisning af indhold af animalske bestanddele (defineret som produkter fra forarbejdning af kroppe og kropsdele af pattedyr, fjerkræ og fisk) i foder ved hjælp af mikroskopi inden for rammerne af det samordnede kontrolprogram på foderstofområdet i henhold til Europa-Paræamentets og Rådets forordning (EF) nr. 882/2004.
These conditions shall be used when detection of constituents of animal origin (defined as products from processing bodies and body-parts of mammals, poultry and fish) in feed is carried out by means of microscopic examination in the framework of the coordinated inspection programme in the field of animal nutrition in accordance with Regulation (EC) 882/2004 of the European Parliament and of the Council.
Forudsat at metoderne i dette bilag bruges i forbindelse med alle officielle prøver, kan der foretages endnu en prøve ved at anvende varierende eller alternative metoder for at forbedre påvisningen af visse typer animalske bestanddele eller yderligere specificere de animalske bestanddeles oprindelse.
Provided that the methods in this Annex are used in all official tests, a second test may also be carried out using variant or alternative methods, in order to improve the detection of certain types of animal constituents or to further specify the origin of the animal constituents.
Endvidere kan der anvendes en varierende protokol ved undersøgelse af visse særlige animalske bestanddele, som f.eks. plasma eller knogler i talg (se også punkt 9), hvis disse analyser foretages som supplement til analyserne i det samordnede kontrolprogram.2.
Furthermore, a variant protocol may be used when examining certain specific animal constituents such as plasma or bones in tallow (see also point 9), provided that these analyses are made in addition to the analyses foreseen in the coordinated inspection programme.2.
Afhængigt af arten af de animalske bestanddele kan der påvises meget små mængder (< 0,1 %) i foder.
Dependent on the nature of the constituents of animal origin, very small amounts (< 0,1 %) in feed can be detected.
En repræsentativ prøve, der er udtaget i overensstemmelse med bilag I, og som har gennemgået en passende klargøring, anvendes til identificeringen.
A representative sample, taken in accordance with the provisions laid down in Annex I which has undergone suitable preparation is used for the identification.
Følgende protokol egner sig til håndtering af foder med lavt vandindhold.
The following protocol is fit for handling feed with low moisture content.
Foder med et vandindhold på over 14 % skal tørres (kondenseres) inden håndteringen.
Feed with an amount of moisture higher than 14 % shall be dried (condensed) prior to handling.
Særligt foder eller særlige fodermidler (f.eks. fedtstoffer og olier) skal behandles på en speciel måde (se punkt 9).
Special feed or feed materials (e.g. fats, oils) need dedicated treatment (see point 9).
Animalske bestanddele identificeres ud fra typiske kendetegn, der kan identificeres ved mikroskopi (bl.a. muskelfibre og andre kødpartikler, brusk, knogler, horn, hår, børster, fjer, æggeskaller, fiskeben og skæl).
The constituents of animal origin are identified on the basis of typical, microscopically identifiable characteristics (i.e. muscle fibres and other meat particles, cartilage, bones, horn, hair, bristles, blood, feathers, egg shells, fish bones, scales).
Identificeringen skal foretages både på sigtefraktionen (6.1) og det koncentrerede sediment (6.2) af prøven.
The identification has to be done both on the sieve fraction (6.1) and the concentrated sediment (6.2) of the sample.
Immersionsvæsker
Embedding agent
Chloralhydrat (vandigt, 60 % w/v)
Chloral hydrate (aqueous, 60 % w/v)
Lud (NaOH 2,5 % w/v eller KOH 2,5 % w/v) for sigtefraktioner
Lye (NaOH 2,5 % w/v or KOH 2,5 % w/v) for sieve fractions
Paraffinolie eller glycerol (viskositet: 68-81) for mikroskopiobservationer i sedimentet.
Paraffin oil or glycerol (viscosity: 68-81) for microscopic observations in the sediment
Skyllevæsker
Rinsing agents
Alkohol, 96 %
Alcohol, 96 %
Koncentreringsmiddel
Concentrating agent
Tetrachlorethylen (massefylde: 1,62).
Tetrachloroethylene (density 1,62)
Farvningsreagenser
Staining reagents
Iod/kaliumiodidopløsning (2 g kaliumiodid opløses i 100 ml vand, og der tilsættes 1 g iod under hyppig omrystning)
Iodine/potassium iodide solution (Dissolve 2 g potassium iodide in 100 ml water and add 1 g iodine while frequently shaking)
Alizarinrødtopløsning (2,5 ml 1M saltsyre fortyndes i 100 ml vand, og der tilsættes 200 mg alizarinrødt til opløsningen)
Alizarin Red (Dilute 2,5 ml 1M hydrochloric acid in 100 ml water and add 200 mg alizarine red to this solution)
Cystinreagens (2 g blyacetat og 10 g NaOH i 100 ml H2O)
Cystine reagent (2 g lead acetate, 10 g NaOH/100 ml H2O)
Iod/kaliumiodidopløsning (opløst i 70 % ethanol).
Iodine/potassium iodide solution (dissolved in 70 % ethanol)
Blegemiddel
Bleaching reagent
Natriumhypochloritopløsning, som fås i handelen (9,6 % aktivt chlor).
Commercial sodium hypochlorite solution (9,6 % active chlorine)
Udstyr og hjælpemidler
Equipment and accessories
Analysevægt (nøjagtighed 0,01 g, undtagen for koncentreret sediment: 0,001 g)
Analytical balance (accuracy of 0,01 g except for the concentrated sediment: 0,001 g).
Formalingsudstyr (mølle eller morter, specielt til foder indeholdende > 15 % fedt i analyse)
Material for grinding (grinding mill or a mortar, especially for feed containing > 15 % fat on analysis).
Sigte med kvadratiske masker med en kvadratisk maskevidde på højst 0,50 mm
Sieve fitted with sieve mesh with square meshes of width of 0,50 mm maximum.
Skilletragt eller glasbæger med konisk bund
Separation funnel or conical bottomed settling beaker.
Stereomikroskop (mindst 40' forstørrelse)
Stereomicroscope (minimum 40' magnification).
Sammensat mikroskop (mindst 400' forstørrelse) med lystransmission eller polariseret lys
Compound microscope (minimum 400' magnification), transmitted light or polarised light.
Standardlaboratorieglasudstyr
Standard laboratory glassware.
Alt udstyr rengøres omhyggeligt.
All equipment shall be thoroughly cleaned.
Skilletragte og glasudstyr rengøres i en vaskemaskine.
Separation funnels and glassware need washing in a washing machine.
Sigter rengøres ved brug af en børste med stive børster.
Sieves need cleaning by using a brush with stiff hairs.
Foder i pilleform kan sigtes på forhånd, hvis begge fraktioner analyseres som separate prøver.
Pelleted feeds may be pre-sieved if both fractions are analysed as a separate sample.
En prøve på mindst 50 g skal behandles (om nødvendigt formales forsigtigt ved hjælp af passende formalingsudstyr (5.2) for at opnå en passende struktur).
At least 50 g of the sample shall be treated (ground with care using the suitable grinding equipment (5.2) if necessary in order to achieve an appropriate structure).
Fra det formalede materiale udtages to repræsentative portioner, én på mindst 5 g til sigtefraktionering (6.1) og én på mindst 5 g til sedimentkoncentrering (6.2).
From the grinded material two representative portions shall be taken, one for the sieve fraction (at least 5 g) (6.1) and one for the concentrated sediment (at least 5 g) (6.2).
Det anbefales at benytte farvning med farvningsreagenser (6.3) til identifikation.
Colouring with staining reagents (6.3) can additionally be applied for the identification.
Til angivelse af det animalske proteins art eller partiklernes oprindelse kan anvendes et beslutningsstøttesystem, som f.eks. ARIES, og referenceprøver kan dokumenteres.
In order to indicate the nature of the animal proteins and the origin of the particles, a decision support system such as ARIES can be used and reference samples can be documented.
Identifikation af animalske bestanddele i sigtefraktionerne
Identification of constituents of animal origin in the sieve fractions
Mindst 5 g prøve deles i to fraktioner ved sigtning (5.3).
At least 5 g of the sample is sieved through the sieve (5.3) in two fractions