natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Resterne vaskes på filtret med to særskilte portioner acetone på hver 25 ml og henstår til tørring i luft eller en kvælstofstrøm, hvorefter de finknuses i en morter.
Wash the residue on the filter with two separate 25 ml portions of acetone each time and allow to dry in the air or a stream of nitrogen, then pulverize finely in a mortar.
Bemærkning: Tørre kaseinisolater bør opbevares ved –20 °C.
Note: Dry casein isolates should be kept at –20 °C.
Plasminspaltning af β-kaseiner for at intensivere γ-kaseiner
Plasmin cleavage of β-caseins to intensify γ-caseins
25 mg isoleret kasein (6.1.1) opslæmmes i 0,5 ml ammoniumcarbonatbuffer (4.7.1) og homogeniseres i 20 minutter, f.eks. ved ultralydsbehandling.
Disperse 25 mg of isolated caseins (6.1.1) in 0,5 ml ammonium carbonate buffer (4.7.1) and homogenize for 20 minutes by e.g. using ultrasonic treatment.
Der opvarmes til 40 °C og tilsættes 10 μl plasmin (4.7.2), blandes og inkuberes i en time ved 40 °C under stadig omrystning.
Heat to 40 °C and add 10 μl plasmin (4.7.2), mix and incubate for one hour at 40 °C with continuous shaking.
Til hæmning af enzymer tilsættes 20 μl ε-aminocapronsyre (4.7.3) og derefter yderligere 200 mg fast urea og 2 mg dithiothreitol.
To inhibit the enzyme add 20 μl ε-aminoproic acid solution (4.7.3), then add 200 mg of solid urea and 2 mg of dithiothreitol.
Bemærkning: For at få større symmetri i de fokuserede kaseinbånd kan det tilrådes at frysetørre opløsningen efter tilsætningen af ε-aminocapronsyre og derefter opløse resterne i 0,5 ml ureabuffer (4.6).
Note: To obtain more symmetry in the focused casein bands it is advisable to freeze-dry the solution after adding the ε-aminocaproic acid and then dissolving the residues in 0,5 ml protein dissolving buffer (4.6).
Fremstilling af polyacrylamidgeler, der indeholder urea
Preparation of the urea containing polyacrylamide gels
Gelbærefolien (5.2) rulles med et par dråber vand ud på en glasplade (5.1), og eventuelt overskydende vand fjernes med papirhåndklæde- eller serviet.
With the aid of a few drops of water roll the gel carrier sheet (5.2) onto a glass plate (5.1), removing any extraneous water with paper towel or tissue.
Dækfolien (5.3) udrulles med afstandsstykker (0,25 mm) på en anden glasplade på samme måde.
Roll the cover sheet (5.3) with spacers (0,25 mm) onto another glass plate in the same way.
Pladen anbringes plant på en vandret flade.
Lay the plate horizontally on a levelling table.
10 μl TEMED (4.1.3.1) tilsættes til den tilberedte, afgassede gelopløsning (4.1.2), og efter omrystning 10 μl PER-opløsning (4.1.3.2). Opløsningen blandes grundigt og hældes straks derefter jævnt ud på midten af dækfolien.
Add 10 μl Temed (4.1.3.1) to the prepared and de-aerated gel solution (4.1.2), stir and add 10 μl PER-solution (4.1.3.2), mix thoroughly and immediately pour out evenly onto the centre of the cover sheet.
Den ene side af gelbærefolien (med bæresiden nedad) anbringes på dækfoliepladen og sænkes langsomt, således at der danner sig en gelfilm mellem folierne, som spreder sig regelmæssigt uden bobledannelse (jf. figur 3).
Place one edge of the gel carrier plate (sheet side down) on the cover sheet plate and lower it slowly so that a gel film forms between the sheets and spreads out regularly and free of bubbles (Figure 3).
Gelbærepladen sænkes forsigtigt helt ned ved hjælp af en tynd spatel, og der lægges endnu tre plader oven på den, der skal tjene som vægte.
Carefully lower the gel carrier plate completely using a thin spatula and place three more glass plates on top of it to act as weights.
Når polymiseringen er fuldstændig (ca. 60 minutter), overføres den polymeriserede gel på gelbærefolien sammen med dækfolien, ved at glaspladerne vippes.
After polymerization is complete (about 60 minutes) remove the gel polymerized onto the gel carrier sheet along with the cover sheet by tipping the glass plates.
Bærefoliens bagside rengøres omhyggeligt for at fjerne gelrester og urea.
Clean the reverse of the carrier sheet carefully to remove gel residues and urea.
Gelsandwichen svejses til et filmglas og opbevares i køleskab (højst 6 uger).
Weld the gel sandwich into a film tube and store in a refrigerator (maximum six weeks).
Bemærkning: Dækfolien med afstandsstykkerne kan genbruges.
Note: The cover sheet with the spacers can be re-used.
Polyacrylamiden kan skæres i mindre størrelser, hvad der kan anbefales, når der kun er få prøver, eller hvis der anvendes et automatisk elektroforeseapparat (2 geler — størrelse 4,5 × 5 cm).
The polyacrylamide gel can be cut to smaller sizes, recommended when there are few samples or if an automatic electrophoresis device is used (two gels, size 4,5 × 5 cm).
Isoelektrisk fokusering
lsoelectric focusing
Køletermostaten indstilles til 12 °C.
Set the cooling thermostat to 12 °C.
Gelbærefoliens bagside aftørres med petroleum, hvorefter et par dråber petroleum (4.2) dryppes på midten af køleblokken.
Wipe off the reverse of the gel carrier sheet with kerosene, then drip a few drops of kerosene (4.2) onto the centre of the cooling block.
Derpå rulles gelsandwichen (med bæresiden nedad) ud på den, men det skal undgås, at der danner sig bobler.
Then roll the gel sandwich, carrier side down, onto it, taking care to avoid bubbles.
Eventuel overskydende petroleum tørres af, og dækfolien fjernes.
Wipe off any excess kerosene and remove the cover sheet.
Elektrodestrimlerne gennemvædes med elektrodeopløsningerne (4.3 og 4.4), tilskæres i gelens længde og anbringes de givne steder (elektrodeafstand 9,5 cm).
Soak the electrode strips with the electrode solutions (4.3, 4.4), cut to gel length and place in the positions provided (distance of electrodes 9,5 cm).
Fokuseringen foretages på nedenstående betingelser:
Conditions for isoelectric focusing:
Gelstørrelse 265 × 125 × 0,25 mm
Gel size 265 × 125 × 0,25 mm
Spænding
Voltage
Strøm
Current
Volttimer
Volt-hours
Præfokusering
Pre-focusing
maksimum 2500
maximum 2500
maksimum 15
maximum 15
konstant 4
constant 4
Prøvefokusering [2]
Sample focusing [2]
Slutfokusering
Final focusing
maksimum 5
maximum 5
maksimum 20
maximum 20
maksimum 6
maximum 6
maksimum 7
maximum 7
maksimum 25
maximum 25
Bemærkning: Hvis gelens tykkelse eller bredde ændres, skal strøm og effekt justeres herefter (f.eks. fordobles elstrøm og effekt, hvis der benyttes en 265 × 125 × 0,5 mm gel).
Note: If thickness or width of the gels are changed, the values for current and power have to be suitably adjusted (e.g. double the values for electric current and power if a 265 × 125 × 0,5 mm gel is used).
Eksempel på et spændingsprogram for et automatisk elektroforeseapparat (2 geler på 5,0 × 4,5 cm); elektroder anbringes uden strimler direkte på gelen:
Example of a voltage programme for an automatic electrophoresis device (2 gels of 5,0 × 4,5 cm), electrodes without strips applied directly to the gel
Prøvefokusering
Sample focusing
Fokusering
Focusing
Prøveapplikatoren anbringes på andet trin ved 0 Vh.
Place sample applicator in step 2 at 0 Vh.
Prøveapplikatoren fjernes på andet trin ved 30 Vh.
Remove sample applicator in step 2 at 30 Vh.
Proteinfarvning
Protein staining
Proteinfiksering
Protein fixation
Elektrodestrimlerne aftages, så snart der er slukket for strømmen, og gelen kommes straks i en farvnings- eller affarvningsskål fyldt med 200 ml fikservæske (4.9). Den henstår i 15 minutter under stadig omrystning.
Remove the electrode strips immediately after turning off the power and put the gel immediately into a staining/destaining dish filled with 200 ml fixative (4.9); leave for 15 minutes, shaking continuously.
Vask og farvning af gelpladen
Washing and staining the gel plate
Fikservæsken drænes grundigt, og gelpladen vaskes i 30 sekunder to gange med 100 ml affarvningsopløsning (4.10).
Thoroughly drain off the fixative and wash the gel plate twice for 30 seconds each time with 100 ml destaining solution (4.10).
Affarvningsopløsningen afhældes, og skålen fyldes med 250 ml farvningsopløsning (4.11.3). Man lader farven udvikle sig i 45 minutter under forsigtig omrystning.
Pour off the destaining solution and fill the dish with 250 ml staining solution (4.11.3); allow to stain for 45 minutes with gentle shaking.
Affarvning af gelpladen
Destaining the gel plate
Farvningsopløsningen afhældes, og gelpladen vaskes med 100 ml affarvningsopløsning (4.10) to gange, hvorefter der omrystes med 200 ml affarvningsopløsning i 15 minutter.
Pour off the staining solution, wash the gel plate twice using a 100 ml destaining solution (4.10) each time, then shake with 200 ml destaining solution for 15 minutes and repeat the destaining step at least two or three times until the background is clear and uncoloured.
Affarvningstrinnet gentages mindst 2-3 gange, indtil baggrunden er klar og ufarvet. Derefter skylles gelpladen med destilleret vand (to gange 2 minutter) og tørres i luft (2-3 timer) eller med en hårtørrer (10-15 minutter).
Then rinse the gel plate with distilled water (2 × 2 minutes) and dry in the air (2 to 3 hours) or with a hairdryer (10 to 15 minutes).
Bemærkning 1: Fiksering, vask, farvning og affarvning foretages ved 20 °C.
Note 1: Carry out fixing, washing, staining and destaining at 20 °C.
Der må ikke benyttes højere temperaturer.
Do not use elevated temperatures.
Bemærkning 2: Hvis man foretrækker mere følsom sølvfarvning (f.eks. Silver Staining Kit, Protein, Pharmacia Biotech, Code No. 17-1150-01), skal plasminbehandlede kaseinprøver fortyndes til 5 mg/ml.
Note 2: If more sensitive silver staining (e.g. Silver Staining Kit, Protein, Pharmacia Biotech, Code No 17-1150-01) is preferred, plasmin-treated casein samples have to be diluted to 5 mg/ml.
Vurderingen foretages ved sammenligning af proteinmønstrene i den ukendte prøve med referenceprøver på samme gel.
Evaluation is performed by comparing the protein patterns of the unknown sample with reference standards on the same gel.
Påvisning af komælk i ost fremstillet af fåre-, gede- eller bøffelmælk eller af blandinger af fåre-, gede- og bøffelmælk sker via de γ3- og γ2-kaseiner, hvis isoelektriske punkter ligger mellem pH 6,5 og pH 7,5 (jf. figur 4a, 4b og 5).
Detection of cows’ milk in cheeses from ewes’ milk, goats’ milk and buffalos’ milk and mixtures of ewes’, goats’ and buffalos’ milk is done via the γ3- and γ2-caseins, whose isoelectric points range between pH 6,5 and pH 7,5 (Figures 4 a, b, Figure 5).
Påvisningsgrænsen er under 0,5.
The detection limit is less than 0,5 %.
Visuel vurdering
Visual estimation
Med henblik på visuel vurdering af indholdet af komælk kan det tilrådes at justere koncentrationerne af prøve- og standardkoncentrationerne, så der fremkommer samme intensitet af fåre-, gede- og/eller bøffel-γ2- og γ3-kaseiner (jf. »γ2 E, G, B« og »γ3 E, G, B« i figur 4a, 4b og 5).
For visual evaluation of the amount of bovine milk it is advisable to adjust the concentrations of samples and standards to obtain the same level of intensity of the ovine, caprine and/or buffalo γ2- and γ3-caseins (see ‘γ2 E,G,B’ and ‘γ3 E,G,B’ in Figures 4 a, b and Figure 5).
Derefter kan indholdet af komælk (mindre end, lig med eller højere end 1 %) i den ukendte prøve bedømmes direkte ved at sammenligne med intensiteten af de bovine γ3- og γ2-kaseiner (jf. »γ3 C« og »γ2 C« i figur 4a, 4b og 5) med 0 %- og 1 %-standardopløsningen (får, ged) eller midlertidige laboratoriestandardopløsninger (bøffel) analyseret på samme gel.
After which the amount of bovine milk (less than, equal to or greater than 1 %) in the unknown sample can be judged directly by comparing the intensity of the bovine γ3- and γ2-caseins (see ‘γ3 C’ and ‘γ2 C’ in Figures 4a, b and Figure 5) to those of the 0 % and 1 % reference standards (ewe, goat) or, laboratory interim-standards (buffalo).
Densitometrisk vurdering
Densitometric estimation
Om muligt benyttes densitometri (5.19) til bestemmelse af forholdet mellem toparealerne for ko-, fåre-, gede- og/eller bøffel- γ2- og γ3-kaseiner i figur 5.
If available, apply densitometry (5.19) for the determination of the peak area ratio of bovine to ovine, caprine and/or buffalo γ2- and γ3-caseins (see Figure 5).
Denne værdi sammenlignes med forholdet mellem toparealerne for γ2- og γ3-kaseiner i 1 %-standardopløsningen (får, ged) eller midlertidige laboratoriestandardopløsninger (bøffel) analyseret på samme gel.
Compare this value to γ2- and γ3-casein peak area ratio of the 1 % reference standard (ewe, goat) or laboratory interim-standard (buffalo) analysed on the same gel.
Bemærkning: Metoden fungerer tilfredsstillende, hvis der er et klart, positivt tegn på ko-γ2- og γ3-kaseiner i 1 %-standardopløsningen, men ikke i 0 %-standardopløsningen.
Note: The method is operating satisfactorily, if there is a clear positive signal for both bovine γ2- and γ3-caseins in the 1 % reference standard but not in the 0 % reference standard.
Hvis det ikke er tilfældet, forbedres metoden ved, at den følges ganske nøje i alle detaljer.
If not, optimize the procedure following the details of the method precisely.
En prøve betragtes som positiv, hvis ko-γ2- og γ3-kaseinerne eller de tilsvarende toparealforhold er lig med eller højere end niveauet for 1 %-standardopløsningen.
A sample is judged as being positive, if both bovine γ2- and γ3-caseins or the corresponding peak area ratios are equal to or greater than the level of the 1 % reference standard.
Radola B.J.: Ultrathin-layer isoelectric focusing in 50-100 μm polyacrylamide gels on silanised glass plates or polyester films.
Radola B.J.: Ultrathin-layer isoelectric focusing in 50-100 μm polyacrylamide gels on silanised glass plates or polyester films.
Skematisk tegning af dækfolie
Schematic drawing of the covering sheet
Afstandsbånd
Spacer tape
Polyester plade
Polyester sheet
Kaseinlaget, der flyder mellem den vandige og den organiske fase efter centrifugering
Casein layer floating between aqueous and organic phases after centrifugation
H2O-fase
H2O-Phase
CH2Cl2-fase
CH2Cl2-Phase
Viftemetode til støbning af ultratynde polyacrylamidgeler
Flapping technique for casting of ultrathin polyacrylamide gels
a = afstandsbånd (0,25 mm); b = dækfolie (5.3); c og e = glasplader (5.1); d = gelopløsning (4.1.2); f = gelbærefolie (5.2)
a = spacer tape (0,25 mm); b = covering sheet (5.3); c, e = glass plates (5.1); d = gel solution (4.1.2); f = gel carrier sheet (5.2)
Figur 4a
Figure 4a
Isoelektrisk fokusering af plasminbehandlede kaseinater fra ost fremstillet af fåre- eller gedemælk med forskellige mængder komælk.
Isoelectric focusing of plasmin-treated caseins from ewes’ and goats’ milk cheese containing different amounts of cows’ milk.
% CM = procent komælk; C = ko; E = får; G = ged
% CM = percentage of cows’ milk, C = cow, E = ewe, G = goat
Den øverste halvdel af IEF-gelen ses.
Upper half of the IEF gel is shown.
Figur 4b
Figure 4b
Isoelektrisk fokusering af plasminbehandlede kaseinater fra ost fremstillet af blandinger af fåre-, gede- og bøffelmælk med forskellige mængder komælk.
Isoelectric focusing of plasmin treated caseins from cheese made from mixtures of ewes’, goats’ and buffalos’ milk containing different amounts of cows’ milk.
% CM = procent komælk; 1 + = prøve indeholdende 1 % komælk og tilsat rent komælkskasein midt på sporet.
% CM = percentage of cows’ milk; 1 + = sample containing 1 % of cows’ milk and spiked with pure bovine casein at the middle of the track.
C = ko; E = får; G = ged; B = bøffel
C = cow, E = ewe, G = goat, B = buffalo.
IEF-gelens totale separationsafstand ses.
Total separation distance of the IEF gel is shown.
Overlejring af densitogrammer af standardopløsninger (STD) og osteprøver fra en blanding af fåre- og gedemælk efter isoelektrisk fokusering.
Superposition of densitograms of standards (STD) and cheese samples made from a mixture of ewes’ and goats’ milk after isoelectric focusing
Den øverste halvdel af IEF-gelen er scannet ved λ = 634 nm.
Upper half of the IEF gel was scanned at λ = 634 nm.
Produkterne Ampholine® pH 3,5-9,5 (Pharmacia) og Resolyte® pH 5-7 og pH 6-8 (BDH, Merck) har vist sig særligt velegnede til at opnå den ønskede separation af γ-kaseiner.
The produce Ampholine® pH 3,5-9,5 (Pharmacia) and Resolyte® pH 5-7 and pH 6-8 (BDH, Merck) have proved particularly suitable for obtaining the required separation of γ-caseins.
Prøveapplikation: Efter præfokusering (første trin), afpipetteres 18 μl af prøven og standardopløsningerne over på prøveapplikatorerne (10 × 5 mm), der anbringes med en indbyrdes afstand på 1 mm og 5 mm fra anoden og trykkes let ned.
Sample application: After pre-focusing (step 1), pipette 18 μl of the sample and standard solutions onto the sample applicators (10 × 5 mm), place them on the gel at 1 mm intervals from each other and 5 mm longitudinally from the anode and press lightly.
Fokuseringen foretages på ovenstående betingelser, og prøveapplikatorerne borttages forsigtigt efter de 60 minutters prøvefokusering.
Carry out focusing using the above conditions, carefully removing the sample applicators after the 60 minutes of sample focusing.
REFERENCEMETODE TIL PÅVISNING AF COLIFORME BAKTERIER I SMØR, SKUMMETMÆLKSPULVER OG KASEIN/KASEINAT
REFERENCE METHOD FOR DETECTING COLIFORMS IN BUTTER, SKIMMED-MILK POWDER, CASEIN AND CASEINATES
FORBEREDELSE AF PRØVER
PREPARATION OF SAMPLES
ISO-standard 8261
ISO standard 8261
ISO-standard 4831
ISO standard 4831
Prøver svarende til 1 g smør eller 0,1 g skummetmælkspulver eller kasein/kaseinat podes på dyrkningssubstratet.
Samples corresponding to 1 g of butter or 0,1 g of skimmed-milk powder or casein/caseinates are inoculated in the culture medium.
Der podes tre reagensglas pr. prøve.
Three tubes are inoculated per sample.
Hvis de 3 reagensglas giver 3 negative resultater, er kravet »opfyldt«.
If the 3 tubes produce 3 negative results, the result is ‘compliant’
Hvis de 3 reagensglas giver 2 eller 3 positive resultater, er kravet »ikke opfyldt«.
If the 3 tubes produce 2 or 3 positive results, the result is ‘non-compliant’
Hvis de 3 reagensglas giver 2 negative resultater, gentages analysen to gange (med to reagensglas).
If the 3 tubes produce 2 negative results, the analysis is redone twice (with two tubes)
Hvis begge resultater er negative, er kravet »opfyldt«.
If the 2 results are negative, the result is ‘compliant’
Hvis mindst 1 resultat er positivt, er kravet »ikke opfyldt«.
If at least 1 result is positive, the result is ‘non-compliant’.
(Artikel 8)
(Article 8)
BESTEMMELSE AF LACTOSE I FODERBLANDINGER
DETERMINATION OF LACTOSE IN COMPOUND FEEDINGSTUFFS
Bestemmelse af lactose i foderblandinger.
Determination of lactose in compound feedingstuffs.
Indholdet af lactose defineres som masseprocenten som bestemt ved den beskrevne fremgangsmåde.
The content of lactose is defined as the percentage by mass as determined by the procedure described.
Indholdet af vandfri lactose udtrykkes som g pr. 100 g.
The anhydrous lactose content is expressed as g per 100 g.
Foderblandingen rekonstitueres med vand.
The compound feedingstuff is reconstituted with water.
Der tilsættes en Biggs-opløsning til en fortyndet afvejet delprøve, så foderblandingens fedt- og proteinkomponentfraktioner udfældes.
A ‘Biggs’ solution is added to a dilute weighed aliquot to precipitate out the fat and the protein component fractions of the compound feedingstuff.
Prøven filtreres (eller centrifugeres) og filtratet (eller supernatanten) injiceres på en kationbytnings-HPLC-kolonne på blyform ved anvendelse af vand af HPLC-renhed som mobil fase.
The sample is filtered (or centrifuged) and the filtrate (or supernatant) is injected on a cation exchange HPLC column in the lead form using HPLC grade water as the mobile phase.
Den eluerede lactose påvises med et differentialrefraktometer.
The eluted lactose is detected by a differential refractometer.
Der anvendes udelukkende reagenser af anerkendt analysekvalitet, medmindre andet er foreskrevet, og afgasset vand af HPLC-renhed.
Use only reagents of recognized analytical grade, unless otherwise specified, and degassed HPLC grade water.
D-Lactosemonohydrat ((C12H22)O11. H2O) kan optage ekstra fugtighed.
D-Lactose monohydrate ((C12H22)O11H2O) can take up additional moisture.
Inden anvendelsen måles det reelle vandindhold med Karl Fisher-metoden, eller den ekstra fugtighed fjernes ved at anbringe lactose i en ovn ved 105 °C i 8 timer (lactosen mister ikke sit krystalvand ved denne behandling).
Before use measure the real amount of water by Karl-Fisher or remove the additional moisture by placing lactose in an oven at 105 °C for 8 hours (the lactose does not lose its crystal water by this treatment).
Koncentreret Biggs/Szijarto-opløsning
Concentrated Biggs/Szijarto solution
9,10 g zinkacetatdihydrat (Zn(CH3COO)2.2H2O) og 5,46 g phosphorwolframsyremonohydrat (H3[P(W3O10)4.xH2O]) opløses i ca. 70 ml med vand af HPLC-renhed (6.8) i en 100 ml målekolbe.
Dissolve 9,10 g zinc acetate ehydrate (Zn(CH3COO)2.2H2O) and 5,46 g phosphotungstic acid monohydrate (H3[P(W3O10)4.xH2O]) in about 70 ml with HPLC grade water (6.8) in a 100 ml volumetric flask.
Der tilsættes 5,81 ml iseddike (CH3COOH).
Add 5,81 ml glacial acetic acid (CH3COOH).
Der fortyndes til 100 ml med vand af HPLC-renhed (6.8) og blandes.
Dilute to the 100 ml mark with HPLC grade water (6.8) water and mix.
Opløsningen kan opbevares ved stuetemperatur i 1 år.
The solution can be stored at room temperature for 1 year.
Fortyndet Biggs/Szijarto-opløsning
Diluted Biggs/Szijarto solution
25 ml koncentreret Biggs/Szijarto-opløsning (5.3) fortyndes med vand til 500 ml i en målekolbe.
Dilute 25 ml concentrated Biggs/Szijarto solution (5.3) with water to 500 ml using a volumetric flask.
Opløsningen kan opbevares ved stuetemperatur i 1 måned.
The solution can be stored at room temperature for 1 month.
Fremstilling af vand af HPLC-renhed
Preparation of HPLC grade water
Ultrarent vand (6.8) filtreres ved hjælp af vakuumfiltrering (6.9).
Filter the ultra pure water (6.8) by using the vacuum system filtration (6.9).
For at forbedre pumpeevnen og for at opnå en stabil basislinje afgasses den mobile fase dagligt ved anvendelse af en af de disponible metoder, f.eks. gennemstrømning med helium, sonikering, vakuum eller inline-afgasning.
To improve the pump performance and to obtain a stable baseline, degas the mobile phase daily by selecting one of the available techniques such as sparging by helium, sonication, vacuum or in-line degassing system.
Bemærkning: For at forlænge kolonnens levetid er det afgørende, at elueringsvæskens kuldioxidindhold er så lavt som muligt, og at genoptagelse hindres.
Note: In order to prolong column life it is essential that the carbon dioxide content of the eluent is as low as possible and that re-uptake is prevented.
Sædvanligt laboratorieudstyr, herunder især følgende:
Usual laboratory equipment and, in particular, the following:
HPLC-ionbytterharpikskolonne
HPLC ion exchange resin column
Kolonnepakning: 8 % tværbundet polystyren-divinylbenzen-copolymer forsynet med kationbyttergrupper på blyform.
Column packing: 8 % cross-linked polystyrene-divinylbenzene copolymer functionalised with cation-exchange groups in the lead form.
Kolonnestørrelse: Længde 300 mm, indvendig diameter ca. 8 mm.
Column dimensions: Length 300 mm, internal diameter ca. 8 mm.
Anden diameterstørrelse er mulig, forudsat at gennemstrømningshastigheden tilpasses.
Use of other diameters is possible provided that the flow-rate is adjusted accordingly.
Forkolonne
Guard column
Forkolonnen er en kombination af en separat kationbytter (H+) og en anionbytter (CO3-), der hver især er pakket i kolonner på ca. 30 mm × 4,6 mm (L × ID) (f.eks. mikroforkolonner i en mikroforkolonneholder) og serieforbundne eller forbundet i form af en mixed bed, der består af AG 50W-X4, — 400 mesh (H+) og AG3-X4A, 200-400 mesh (OH-) i forholdet 35:65 (m/m) manuelt pakket i en kolonne på ca. 20 × 9 mm (L x ID).
The guard column is a combination of a separate cation exchanger (H+) and an anion exchanger (CO3-), each packed in columns of ca. 30 mm × 4,6 mm (L × ID) (e.g. micro-guard columns in a micro-guard holder) and connected in series or in the form of a mixed bed consisting of AG 50W-X4, -400 mesh (H+) and AG3-X4A, 200–400 mesh (OH-) in the ratio of 35:65 (m/m) manually packed in a column of ca. 20 × 9 mm (L × ID).
Kolonneovn
Column oven
Ovn, som kan holde en konstant temperatur på 85 °C ± 1 °C.
Oven capable of maintaining a constant temperature of 85 °C ± 1 °C.
HPLC-pumpe
HPLC pump