natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Der kan anvendes primærkulturer (humane lymfocytter) eller etablerede cellelinjer (f.eks. Chinese Hamster Ovary celler).
Primary cultures, (human lymphocytes) or established cell lines (e.g. Chinese hamster ovary cells) may be used in the assay.
Ved anvendelse af cellelinjer bør det undersøges, om kulturen er kontamineret med mycoplasma.
Cell lines should be checked for Mycoplasma contamination,
Der anvendes egnede kulturmedier og inkubationsbetingelser (temperatur, dyrkningsskåle, CO2-koncentration og fugtighed).
appropriate culture media and incubation conditions (e.g. temperature, culture vessels, CO2 concentration and humidity) should be used,
Teststoffet tilsættes kulturmediet eller opløses eller suspenderes i et egnet vehikel, inden cellerne eksponeres.
test substances may be prepared in culture media or dissolved or suspended in appropriate vehicles prior to treatment of the cells.
Den derved opnåede koncentration af vehikel i testkulturen bør ikke påvirke cellernes levedygtighed eller vækstrate og en mulig påvirkning af SCE-frekvensen kontrolleres ved dyrkning af en kontrolkultur i opløsningsmidlet.
The final concentration of a vehicle in the culture system should not significantly affect, cell viability or growth rate and effects on SCE frequency should be monitored by a solvent control,
Cellerne eksponeres for teststoffet både med og uden et eksogent metabolisk aktiveringssystem fra pattedyr.
cells should be exposed to the test substance both in the presence and absence of an exogenous mammalian metabolic activation system.
Når der benyttes celletyper med endogen metabolisk aktivering, bør aktiveringsform og -hastighed være egnet til den kemiske stofklasse, der testes.
Alternatively, where cell types with intrinsic metabolic activity are used, the rate and nature of the activity should be appropriate to the chemical class being tested.
Der anvendes mindst to parallelle kulturer for hvert eksperimentelt punkt.
At least duplicate cultures should be used for each experimental point.
Som positiv kontrol anvendes i hvert enkelt forsøg både en direkte virkende kemisk forbindelse og en forbindelse, som kræver metabolisk aktivering. Desuden foretages vehikelkontrol.
Positive controls, using both a direct acting compound and a compound requiring metabolic activation should be included in each experiment; a vehicle control should also be used.
Følgende kemiske forbindelser kan f.eks. anvendes til positiv kontrol:
The following are examples of substances which might be used as positive controls:
direkte virkende forbindelse:
direct acting compound:
ætylmetansulfonat
ethylmethanesulphonate,
indirekte virkende forbindelse:
indirect acting compound:
cyclofosfamid.
cyclophosphamide.
Når det skønnes relevant, bør der foretages supplerende positiv kontrol med anvendelse af en kemisk forbindelse af samme kemiske stofklasse som teststoffet.
When appropriate, an additional positive control of the same chemical class as the chemical under test may be included.
Der anvendes mindst tre koncentrationer af teststoffet med passende intervaller mellem koncentrationerne.
At least three adequately spaced concentrations of the test substance should be used.
Den højeste koncentration bør have en tydelig toksisk virkning, men den må ikke forhindre den nødvendige celledeling.
The highest concentration should give rise to a significant toxic effect but must still allow adequate cell replication to occur.
Stoffer, som er relativt uopløselige i vand, testes under anvendelse af passende fremgangsmåder op til opløselighedsgrænsen.
Relatively water-insoluble substances should be tested up to the limit of solubility using appropriate procedures.
Den højeste koncentration af ikke-toksiske teststoffer, som er frit opløselige i vand, fastlægges fra test til test.
For freely water-soluble non-toxic substances the upper test substance concentration should be determined on a case-by-case basis.
Cellelinjer etableres på basis af stamkulturer (f.eks. ved trypsinering eller afrystning) og udsås med passende tæthed i dyrkningsskåle, hvorefter de inkuberes ved 37 oC.
Established cell lines are generated from stock cultures (e.g. by trypsinisation or by shaking off), seeded in culture vessels at appropriate density and incubated at 37 oC.
Når der er tale om monolagskulturer, justeres antallet af celler pr. kulturskål, således at kulturerne på høsttidspunktet højst dækker 50 % af vækstarealet.
For monolayer cultures, the number of cells per culture vessel should be adjusted so that the cultures are not much more than 50 % confluent at the time of harvest.
Cellerne kan også dyrkes i suspension.
Alternatively, cells may be used in suspension culture.
Humane lymfocytkulturer dyrkes under anvendelse af dertil egnede teknikker på basis af hepariniseret blod og inkuberes ved 37 oC.
Human lymphocyte cultures are set up from heparinized blood, using appropriate techniques, and incubated at 37 oC.
Eksponering
Treatment
Celler i eksponentiel vækstfase eksponeres for teststoffet i et passende tidsrum. Som oftest vil en eller to timer være tilstrækkeligt, men i nogle tilfælde kan eksponeringsperioden udvides til at dække to fulde cellecykler.
Cells in an exponential stage of growth are exposed to the test substance for a suitable period of time; in most cases one to two hours may be effective, but the treatment time may be extended up to two complete cell cycles in certain cases.
Celler, hvis endogene metaboliske aktivering er utilstrækkelig, eksponeres både med og uden tilsætning af et passende metabolisk aktiveringssystem.
Cells without sufficient instrinsic metabolic activity should be exposed to the test chemical in the presence and absence of an appropriate metabolic activation system.
Efter eksponeringen vaskes cellerne frie for teststof og dyrkes gennem to cellecykler i et medium, som indeholder BrdU.
At the end of the exposure period, cells are washed free of test substance and cultured for two rounds of replication in the presence of BrdU.
Alternativt kan cellerne eksponeres for teststoffet og BrdU samtidigt gennem en periode svarende til to cellecykler.
As an alternative procedure cells may be exposed simultaneously to the test chemical and BrdU for the complete culture time of two cell cycles.
Humane lymfocytter eksponeres, mens de befinder sig i semisynkron tilstand.
Human lymphocyte cultures are treated while they are in a semisynchronous condition.
Cellerne analyseres under deres anden deling efter eksponeringen, hvilket sikrer, at eksponeringsperioden dækker størstedelen af de følsomme faser i cellecyclus.
Cells are analysed in their second post-treatment division, ensuring that the most sensitive cell cycle stages have been exposed to the chemical.
Alle kulturer, som er tilsat BrdU, opbevares og manipuleres i mørke eller svagt lys fra glødelamper frem til cellerne høstes for at minimere fotolysen af dna, som indeholder BrdU.
All cultures to which BrdU is added should be handled in darkness or in dim light from incandescent lamps up to the harvesting of cells in order to minimise photolysis of BrdU-containing DNA.
Høst af celler
Harvesting of cells
Cellekulturerne behandles med en tentrådsinhibitor (f.eks. colchicin) en til fire timer, før de høstes.
Cell cultures are treated with a spindle inhibitor (e.g. colchicine) one to four hours prior to harvesting.
Høst og kromosompræparering foregår særskilt for hver enkelt kultur.
Each culture is harvested and processed separately for the preparation of chromosomes.
Kromosompræparering og farvning
Chromosome preparation and staining
Ved kromosompræpareringen anvendes cytogenetiske standardteknikker.
Chromosome preparations are made by standard cytogenetic techniques.
Farvning på objektglas med henblik på at påvise SCE kan foretages på en række forskellige måder (f.eks. fluorescens plus Giemsafarvning).
Staining of slides to show SCEs can be performed by several techniques, (e.g. the fluorescence plus Giemsa method).
Antallet af celler, som underkastes analyse, baseres på den spontane SCE-frekvens i kontrolforsøg.
The number of cells analysed should be based on the spontaneous control frequency of SCE.
Normalt undersøges mindst 25 velpræparerede metafaser pr. kultur for SCE.
Usually, at least 25 well-spread metaphases per culture are analysed for SCEs.
Objektglassene kodes før analysen.
Slides are coded before analysis.
Ved analyse af humane lymfocytter medtages kun metafaser med 46 centromerer.
In human lymphocytes only metaphases containing 46 centromeres are analysed.
Ved analyse af etablerede cellelinjer medtages kun metafaser med det modale antal centromerer ± 2.
In established cell lines only metaphases containing ± 2 centromeres of the modal number are analysed.
Det anføres, hvorvidt ombytning i mærkningen omkring centromeret betragtes som SCE.
It should be stated whether or not centromeric switch of label is, scored as an SCE.
Resultaterne efterprøves i et uafhængigt forsøg.
The results should be confirmed in an independent experiment.
Antal SCE pr. metafase og antal SCE pr. kromosom anføres separat for alle eksponerede kulturer og kontrolkulturer.
The number of SCEs for each metaphase and the number of SCEs per chromosome for each metaphase should be listed separately for all treated and control cultures.
de anvendte celler, metoder til opretholdelse af cellekulturer
cells used, methods of maintenance of cell culture,
forsøgsbetingelser: mediernes sammensætning, CO2-koncentration, teststofkoncentration, det anvendte vehikel, inkubationstemperatur, eksponeringsperiode, den anvendte tentrådsinhibitor plus oplysninger om koncentration og behandlingens varighed, det anvendte metaboliske aktiveringssystem, positiv og negativ kontrol
test conditions: composition of media, CO2 concentration, concentration of test substance, vehicle used, incubation temperature, treatment time, spindle inhibitor used, its concentration and the duration of treatment with it, type of mammalian activation system used, positive and negative controls,
antal cellekulturer pr. eksperimentelt punkt
number of cell cultures per experimental point,
detaljerede oplysninger om objektpræpareringsteknikken
details of the technique used for slide preparation,
antal analyserede metafaser (separate oplysninger for hver enkelt kultur)
number of metaphases analysed (data given separately for each culture),
gennemsnitligt antal SCE pr. celle og pr. kromosom (data angives separat for hver kultur)
mean number of SCE per cell and per chromosome (data given separately for each culture),
SCE-registreringskriterier
criteria for scoring SCE,
begrundelse for valg af dosis
rationale for dose selection,
om muligt dosis-responsforhold
dose-response relationship, if applicable,
PRINCIP FOR TESTMETODEN
PRINCIPLES OF THE TEST METHOD
Ved kønsbundet recessiv letal test (SLRL) under anvendelse af Drosophila melanogaster undersøges forekomsten af både punktmutationer og mindre tabsmutationer hos insektets afkom.
The sex-linked recessive lethal (SLRL) test using Drosophila melanogaster detects the occurrence of mutations, both point mutations and small deletions, in the germ line of the insect.
Der er tale om en fremadmutationstest, hvorved det er muligt at screene ca. 800 loci på X-kromosomet med henblik på registrering af mutationer. Dette antal udgør ca. 80 % af alle X-kromosomets loci.
This test is a forward mutation assay capable of screening for mutations at about 800 loci on the X-chromosome; this represents about 80 % of all X-chromosal loci.
X-kromosomet udgør omkring en femtedel af den samlede haploide kromosommængde.
The X-chromosome represents approximately one-fifth of the entire haploid genome.
Mutationer i Drosophila melanogasters X-kromosom kommer fænotypisk til udtryk hos hanner, som er bærere af det muterede gen.
Mutations in the X-chromosome of Drosophila melanogaster are phenotypically expressed in males carrying the mutant gene.
Når mutationen under hemizygote betingelser er letal, konstateres dette som fravær af en af de to typer hanner, der normalt findes i en heterozygot huns afkom.
When the mutation is lethal in the hemizygous condition, its presence is inferred from the absence of one class of male offspring out of the two that are normally produced by a heterozygous female.
I SLRL-testen udnyttes dette forhold ved hjælp af specielt arrangerede kromosomer med særlige markører.
The SLRL test takes advantage of these facts by means of specially marked and arranged chromosomes.
Stammer
Stocks
Der kan anvendes hanner af veldefinerede vildtypestammer og hunner fra Muller-5-stammen.
Males of a well-defined wild-type stock and females of the Muller-5 stock may be used.
Hunner fra andre stammer med passende mærkning og multipelt inverterede X-kromosomer kan også anvendes.
Other appropriately marked female stocks with multiple inverted X-chromosomes may also be used.
Teststoffet opløses i vand.
Test substances should be dissolved in water.
Stoffer, som er uopløselige i vand, kan opløses eller suspenderes i egnede bærestoffer (f.eks, en blanding af ætanol og Tween-60 eller -80) og derefter fortyndes i vand eller saltvand inden indgift.
Substances, which are insoluble in water may be dissolved or suspended in appropriate vehicles (e.g. a mixture of ethanol and Tween-60 or 80), then diluted in water or saline prior to administration.
Dimetylsulfoxid bør ikke benyttes som bærestof.
Dimethylsulphoxide (Dmso) should be avoided as a vehicle.
Testen udformes således, at testfølsomhed og -specificitet er fastlagt på forhånd.
The test should be designed with a predetermined sensitivity and power.
Den spontane mutationsfrekvens, som registreres i kontrolforsøg, vil være af stor betydning for antallet af eksponerede kromosomer, der skal analyseres.
The spontaneous mutant frequency observed in the appropriate control will influence strongly the number of treated chromosomes that must be analysed.
Eksponeringen kan foregå ved oral indgivelse, injektion eller ved udsættelse for gasser eller dampe.
Exposure may be oral, by injection or by exposure to gases or vapours.
Teststoffet kan eventuelt indgives i en sukkeropløsning.
Feeding of the test substance may be done in sugar solution.
Om nødvendigt kan det opløses i en 0,7 % NaCl-opløsning og injiceres i thorax eller abdomen.
When necessary, substances may be dissolved in a 0,7 % NaCl solution and injected into the thorax or abdomen.
Der foretages negativ (vehikel) og positiv kontrol.
Negative (vehicle) and positive controls should be included.
Hvis der foreligger egnede historiske kontroldata fra laboratorieforsøg, er det imidlertid ikke nødvendigt at foretage sideløbende kontrol.
However, if appropriate laboratory historical control data are available, no concurrent controls are needed.
Eksponeringskoncentrationer
Exposure levels
Der anvendes tre eksponeringskoncentrationer.
Three exposure levels should be used.
Til en foreløbig vurdering kan anvendes en enkelt koncentration, som enten kan være den højeste koncentration, insekterne kan tåle, eller en koncentration, som forårsager nogen grad af toksisk virkning.
For a preliminary assessment one exposure level of the test substance may be used, that exposure level being either the maximum tolerated concentration or that producing some indication of toxicity.
Ved ikke-toksiske stoffer eksponeres for de størst mulige koncentrationer.
For non-toxic substances exposure to the maximum practicable concentration should be used.
Vildtypehanner (tre til fem dage gamle) eksponeres for teststoffet og parres enkeltvis med flere jomfruelige hunner fra Muller-5-stammen eller fra andre stammer med passende markører (multipelt inverterede X-kromosomer).
Wild-type males (three to five days old) are treated with the test substance and mated individually to an excess of virgin females from the Muller-5 stock or from another appropriately marked (with multiple inverted X-chromosomes) stock.
Hunnerne udskiftes med nye jomfruelige hunner hver anden eller hver tredje dag, indtil hele kønscellecyklus er dækket.
The females are replaced with fresh virgins every two to three days to cover the entire germ cell cycle.
Hunnernes afkom registreres med henblik på konstatering af letale effekter, som svarer til eksponeringens virkning på henholdsvis modne sædceller, spermatider i sene stadier eller middelstadier, spermatider i tidlige stadier, spermatocytter og spermatogonier.
The offspring of these females are scored for lethal effects corresponding to the effects on mature sperm, mid or late-stage spermatids, early spermatids, spermatocytes and spermatogonia at the time of treatment.
Heterozygote F1-hunner fra de ovennævnte krydsninger parres individuelt (dvs. en hun pr. glas) med deres brødre.
Heterozygous F1 females from the above crosses are allowed to mate individually (i.e. one female per vial) with their brothers.
I F2-generationen registreres hver bestand med henblik på konstatering af fravær af vildtypehanner.
In the F2 generation, each culture is scored for the absence of wild-type males.
Hvis en bestand er afkom af en F1-hun, som synes at bære et letalt gen i det parentale X-kromosom (dvs. der optræder ingen hanner med det eksponerede kromosom), testes døtre af denne hun med samme genotype med henblik på konstatering af, om den letale effekt gentages i næste generation.
If a culture appears to have arisen from an F1 female carrying a lethal in the parental X-chromosome (i.e. no males with the treated chromosome are observed) daughters of that female with the same genotype should be tested to ascertain whether the lethality is repeated in the next generation.
Antal testede X-kromosomer, antal ufrugtbare hanner og antal letale kromosomer anføres for hver eksponeringskoncentration og for hver enkelt af de eksponerede hanners parringsperioder.
Data should be tabulated to show the number of X-chromosomes tested, the number of non-fertile males and the number of lethal chromosomes at each exposure concentration and for each mating period for each male treated.
Ligeledes anføres antal klynger af forskellig størrelse pr. han.
Numbers of clusters of different sizes per male should be reported.
Alle resultater efterprøves i et uafhængigt forsøg.
These results should be confirmed in a separate experiment.
Evalueringen af kønsbunden recessiv letal test baseres på passende statistiske metoder.
Appropriate statistical methods should be used in evaluation sex-linked recessive lethal tests.
I tilfælde af ophobning af generationer med recessive letale gener, som stammer fra en enkelt han, registreres disse og evalueres på et passende statistisk grundlag.
Clustering of recessive lethals originating from one male should be considered and evaluated in an appropriate statistical manner.
stammer: de anvendte Drosophila-stammer, insekternes alder, antal eksponerede hanner, antal sterile hanner, antal etablerede F2-bestande, antal F2-bestande uden afkom, antal kromosomer med letale gener på hvert kønscellestadium
stock: Drosophila stocks or strains used, age of insects, number of males treated, number of sterile males, number of F2 cultures established, number of F2 cultures without progeny, number of chromosomes carrying a lethal detected at each germ cell stage,
kriterier for fastlæggelse af størrelsen af de eksponerede grupper
criteria for establishing the size of treated groups,
forsøgsbetingelser: detaljeret beskrivelse af eksponerings- og stikprøvetagningsplan, eksponeringskoncentrationer, toksicitetsdata, negativ (opløsningsmiddel) og positiv kontrol, såfremt der foretages kontrol
test conditions. detailed description of treatment and sampling schedule, exposure levels, toxicity data, negative (solvent) and positive controls, if appropriate,
kriterier for registrering af letale mutationer
criteria for scoring lethal mutations,
om muligt dosis-responsforhold
exposure/effect relationship where possible,
statistisk evaluering
evaluation of data,
Kulturer af pattedyrceller kan anvendes til påvisning in vitro af fænotypiske forandringer, som induceres af kemiske forbindelser, der forbindes med maligne transformationer in vivo.
Mammalian cell culture systems may be used to detect phenotypic changes in vitro induced by chemical substances associated with malignant transformation in vivo.
Hyppigt anvendte celletyper er C3H10T1/2, 3T3, SHE, Fischer-rotte, og testene bygger på forandringer i cellemorfologien, vækstevnen eller forankringsevnen i blød agar.
Widely used cells include C3H10T1/2, 3T3, SHE, Fischer rat and the tests rely on changes in cell morphology, focus formation or changes in anchorage dependence in semi-solid agar.
Der findes også mindre hyppigt anvendte systemer, som bruges til undersøgelse af andre fysiologiske eller morfologiske forandringer i celler som følge af eksponering for karcinogene kemiske forbindelser.
Less widely used systems exist which detect other physiological or morphological changes in cells following exposure to carcinogenic chemicals.
Der er ikke beskrevet nogen direkte virkningsmekanistisk forbindelse mellem cancer og de genetiske endpoints, der anvendes i disse in vitro test.
None of the in vitro test endpoints has an established mechanistic link with cancer.
Nogle af testsystemerne kan anvendes til påvisning af tumorpromotorer.
Some of the test systems are capable of detecting tumour promotors.
Den cytotoksiske effekt kan bestemmes ved måling af teststoffets påvirkning af evnen til at danne kolonier (kloningsstyrken) eller af kulturernes vækstrater.
Cytotoxicity may be determined by measuring the effect of the test material on colony-forming abilities (cloning efficiency) or growth rates of the cultures.
Formålet med at måle den cytotoksiske effekt er at konstatere, om eksponeringen for teststoffet er toksikologisk relevant, men kan ikke benyttes til beregning af transformationsfrekvensen i alle test, eftersom nogle kræver lang inkubationstid og/eller overførsel til nye plader.
The measurement of cytotoxicity is to establish that exposure to the test chemical has been toxicologically relevant but cannot be used to calculate transformation: frequency in all assays since some may involve prolonged incubation and/or replating.
Der kan anvendes en række forskellige cellelinjer eller primærceller, afhængigt af hvilken transformationstest der foretages.
A variety of cell lines or primary cells are available depending on the transformation test being used.
Forsøgslederen må sikre, at de anvendte celler undergår relevante fænotypiske forandringer efter eksponering for kendte karcinogener, og forsøgslederens eget laboratorium må have påvist og dokumenteret den anvendte tests validitet og pålidelighed.
The investigator must ensure that the cells in the test being performed exhibit the appropriate phenotypic change after exposure to known carcinogens and that the test, in the investigator's laboratory, is of proven and documented validity and reliability.
Der anvendes medier og forsøgsbetingelser i overensstemmelse med den anvendte transformationstest.
Media and experimental conditions should be used that are appropriate to the transformation assay in use.
Teststoffet tilsættes kulturmediet eller opløses eller suspenderes i et egnet vehikel, inden cellerne eksponeres.
Test substances may be prepared in culture media or dissolved or suspended in appropriate vehicles prior to treatment of the cells.
Den derved opnåede vehikelkoncentration bør ikke påvirke cellernes levedygtighed, vækstrate eller transformationsfrekvens.
The final concentration of the vehicle in the culture system should not affect cell viability, growth rate or transformation incidence.
Når der benyttes celler med endogen metabolisk aktivering, bør det være påvist, at aktiveringsformen egner sig til den form for kemisk forbindelse, der testes.
Alternatively, when cell types are used that possess intrinsic metabolic activity, the nature of the activity should be known to be appropriate to the chemical class being tested.
Som positiv kontrol anvendes i hvert enkelt forsøg både en direkte virkende kemisk forbindelse og en forbindelse, som kræver metabolisk aktivering. Desuden foretages negativ (vehikel) kontrol.
Positive controls, using both a direct-acting compound and a compound requiring metabolic activation should be included in each experiment; a negative (vehicle) control should also be used.