natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Hvis de tilgængelige regressionsmodeller eller -metoder er uegnede til dataene, kan estimater og konfidensgrænser for EC50 desuden fås ved lineær interpolation med bootstrapping (20).
estimates and confidence limits may also be obtained using linear interpolation with bootstrapping (20), if available regression models/methods are unsuitable for the data.
Til beregning af et estimat for LOEC og dermed NOEC må middelværdierne for behandlingerne sammenholdes ved hjælp af variansanalyse.
For estimation of the LOEC and hence the NOEC, it is necessary to compare treatment means using analysis of variance (ANOVA) techniques.
Dunnetts eller Williams’ test kan være nyttig (21)(22)(23)(24).
Dunnett’s or Williams’ test may be useful (21)(22)(23)(24).
Denne vurdering kan foretages grafisk eller ved en formel test (25).
This assessment may be performed graphically or by a formal test (25).
Supplerende vejledning for bestemmelse af NOEC er givet i (19).
Additional guidance on determining the NOEC can be found in (19).
Der er ikke fastlagt en passende værdi af x til denne Lemna-test.
An appropriate value for x has not been established for this Lemna test.
Et område på 10 til 20 % synes imidlertid at være passende (afhængigt af den valgte responsvariabel), og det må foretrækkes at rapportere både EC10 og EC20.
However, a range of 10 to 20 % appears to be appropriate (depending on the response variable chosen), and preferably both the EC10 and EC20 should be reported.
fysisk tilstand og fysisk-kemiske egenskaber, herunder vandopløselighed
physical nature and physicochemical properties, including water solubility limit,
kemiske identifikationsdata (f.eks. CAS-nr.), herunder renhed.
chemical identification data (e.g. CAS Number), including purity.
videnskabeligt navn, klon (hvis den kendes) og kilde.
scientific name, clone (if known) and source.
den anvendte testmetode (statisk, semistatisk eller gennemstrømningstest)
test procedure used (static, semi-static or flow-through),
testsubstrat
test medium,
beskrivelse af testens design: testbeholdere og låg, opløsningsvolumener, antal kolonier og blade pr. testbeholder ved testens start
description of the experimental design: test vessels and covers, solution volumes, number of colonies and fronds per test vessel at the beginning of the test,
testkoncentrationer (nominelle eller målte) og antal replikater for hver koncentration
test concentrations (nominal and measured as appropriate) and number of replicates per concentration,
metoder til fremstilling af stam- og testopløsninger, herunder eventuelle opløsnings- og dispergeringsmidler
methods of preparation of stock and test solutions including the use of any solvents or dispersants,
testtemperaturen
temperature during the test,
lyskilde, lysintensitet og -homogenitet
light source, light intensity and homogeneity,
pH-værdierne af test- og kontrolsubstraterne
pH values of the test and control media,
teststofkoncentrationer og analysemetoder med fyldestgørende oplysninger om kvalitetsvurdering (valideringsundersøgelser, standardafvigelser eller konfidensgrænser for analyserne)
test substance concentrations and the method of analysis with appropriate quality assessment data (validation studies, standard deviations or confidence limits of analyses),
metoder til bestemmelse af bladantal og andre målevariabler, f.eks. tør vægt, frisk vægt og bladareal
methods for determination of frond number and other measurement variables, e.g. dry weight, fresh weight or frond area,
alle fravigelser af nærværende testmetode.
all deviations from this Testing Method.
rådata: antal blade og andre målevariabler i hver test- og kontrolbeholder ved hver observation og hver analyse
raw data: number of fronds and other measurement variables in each test and control vessel at each observation and occasion of analysis,
gennemsnit og standardafvigelse for hver målevariabel
means and standard deviations for each measurement variable,
vækstkurver for hver koncentration (brug af logaritmisk transformerede målevariabler anbefales, se andet afsnit i punkt 2.2.1)
growth curves for each concentration (recommended with log transformed measurement variable, see second paragraph in section 2.2.1),
fordoblingstid/væksthastighed i kontrolprøven, baseret på bladantal
doubling time/growth rate in the control based on the frond number,
grafisk fremstilling af sammenhængen mellem koncentration og virkning
graphical representation of the concentration/effect relationship,
ethvert visuelt tegn på fytotoksicitet samt observationer af testopløsningerne
any visual signs of phytotoxicity as well as observations of test solutions,
Der redegøres nærmere for brugen af Lemna-undersøgelser for farvede stoffer i afsnit 13.5.3 i EU's Manual of Decisions fra juli 2006, se: http://ecb.jrc.ec.europa.eu/new-chemicals
The use of Lemna studies for coloured substances is detailed in Section 13.5.3 of the EU Manual of Decisions dated July 2006, at http://ecb.jrc.ec.europa.eu/new-chemicals
OPPTS 850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using Lemna spp., »Public draft«.
OPPTS 850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using Lemna spp., ‘Public draft’.
B: Vakuum-stødpudevolumen
B: Vacuum buffer volume C: Pressure gauge
E: Målepunkt
Heating element c.a.
Justerbar ventil
Adjustable valve
Prøveholderpladen er ophængt i en mikrovægt i et kammer med kontrolleret temperatur, hvor der strømmer tør nitrogengas forbi den, som fjerner de fordampede molekyler af teststof.
The sample carrier plate, hanging on a microbalance in a temperature controlled chamber, is swept by a stream of dry nitrogen gas which carries the vaporised molecules of the test substance away.
Materialet blandes med spatel og presses igen ved 10 MPa.
The material is mixed with spatula and re-pressed at 10 MPa.
Endelig fjernes materialet fra pressen og opbevares i en lukket glasflaske.
The material is then removed from the dye and stored in a sealed glass bottle.
komplet dokumentation for den anvendte hudmodel, herunder om dens ydeevne.
complete supporting information for the specific skin model used including its performance.
Der skal bl.a. gives oplysning om
This should include, but is not limited to:
reference til historiske data for modellen.
reference to historical data of the model.
Se følgende websted: http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html.
Available at: http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html.
Adopted July 19, 2006.
Adopted July 19, 2006.
Se følgende websted: http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_1_1,00.html.
Available at: http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_1_1,00.html.
Kandárová, H., Liebsch, M., Gerner, I., Schmidt, E., Genschow, E., Traue, D. & Spielmann H. (2005) The EpiDerm Test Protocol fort the Upcoming ECVAM Validation Study on In Vitro Skin Irritation Tests — An Assessment of the Performance of the Optimised Test.
Kandárová, H., Liebsch, M., Gerner, I., Schmidt, E., Genschow, E., Traue, D. & Spielmann H. (2005) The EpiDerm Test Protocol fort the Upcoming ECVAM Validation Study on In Vitro Skin Irritation Tests — An Assessment of the Performance of the Optimised Test.
Erklæring fra ESAC om ajourførte EpiDerm-forsøg og tilsvarende SkinEthic-forsøg.
ESAC statement on updated EpiDerm and similar SkinEthic assays.
5. november 2008.
5 November 2008.
Den Europæiske Unions Tidende L 396 af 30.12.2006, s. 1.
Official Journal of the European Union L 396 of 30 December 2006, p. 1.
Ispra, 13. november 2008.
Ispra, November 13, 2008.
For at systemets respons på toksiske virkninger kan komme fuldt til udtryk (optimal følsomhed), lader man kulturerne vokse uhæmmet eksponentielt med tilstrækkelige næringsstoffer og kontinuerlig belysning tilstrækkelig længe til, at hæmningen af den specifikke væksthastighed kan måles.
For full expression of the system response to toxic effects (optimal sensitivity), the cultures are allowed unrestricted exponential growth under sufficient nutrient conditions and continuous light for a sufficient period of time to measure reduction of the specific growth rate.
Vækst og væksthæmning bestemmes kvantitativt ved måling af algebiomassen som funktion af tiden.
Growth and growth inhibition are quantified by measurements of the algal biomass as a function of time.
Algebiomasse defineres som tør vægt pr. volumenenhed, f.eks. mg alger/liter testopløsning.
Algal biomass is defined as the dry weight per volume, e.g. mg algae/litre test solution.
Tør vægt er imidlertid vanskelig at måle, hvorfor der anvendes surrogatparametre.
However, dry weight is difficult to measure and therefore surrogate parameters are used.
Af sådanne surrogater er celletal det mest anvendte.
Of these surrogates, cell counts are most often used.
Andre surrogatparametre er cellevolumen, fluorescens, optisk tæthed mv. Omregningsfaktoren mellem den målte surrogatparameter og biomassen skal være kendt.
Other surrogate parameters include cell volume, fluorescence, optical density, etc. A conversion factor between the measured surrogate parameter and biomass should be known.
Udbyttet defineres som biomassen ved eksponeringsperiodens slutning minus biomassen ved eksponeringsperiodens start.
It is defined as biomass at the end of the exposure period minus the biomass at the start of the exposure period.
ln Xi– de beregnes som den logaritmiske stigning i biomasse ved hjælp af ligningen for hver enkelt testbeholder med kontrol- og behandlingsprøver:
ln Xi– lated as the logarithmic increase in biomass from the equation for each single vessel of controls and treatments:
μT– er behandlingsreplikat af udtrykket:
μT– atment replicate from the equation:
YT– dlingsreplikat som følger:
YT– or each treatment replicate as follows:
ISO 1998 Water quality — Guidance for algal growth inhibition tests with poorly soluble materials, volatile compounds, metals and waster water.
ISO 1998: Water quality — Guidance for algal growth inhibition tests with poorly soluble materials, volatile compounds, metals and waster water.
Ved ægte første ordens kinetik er den specifikke nedbrydningshastighedskonstant, k, uafhængig af tiden og af koncentrationen.
With true first order kinetics the specific degradation rate constant, k, is independent of time and concentration.
Det vil sige, at k ikke ændrer sig nævneværdigt i samme forsøg og ikke ændrer sig med den tilsatte koncentration mellem forskellige forsøg.
That is, k does not vary appreciably during the course of an experiment and does not change with the added concentration between experiments.
Opbevaring og klargøring af overfladevand
Storage and preparation of surface water
Forsøget bør fortrinsvis igangsættes inden for ét døgn efter prøveindsamlingen.
The test should preferably be started within one day after sample collection.
Anvendes opslæmmet sediment, tilsættes sedimentet til kolberne indeholdende naturligt vand (som er filtreret for at fjerne grove partikler som beskrevet i punkt 1.8.4), så der dannes en opslæmning med en faststofkoncentration mellem 0,01 og 1 g/l.
For the suspended sediment test, surface sediment is added to the flasks containing natural water (filtered to remove coarse particles as described in section 1.8.4) to obtain a suspension; the concentration of suspended solids should be between 0,01 and 1 g/L.
Overfladesedimentet skal være fra samme indsamlingssted som vandprøven.
The surface sediment should come from the same site as that from which the water sample was taken.
Afhængigt af det pågældende akvatiske miljø kan overfladesedimentet enten karakteriseres som sediment med højt organisk kulstofindhold (2,5-7,5 %) og fin tekstur eller med lavt organisk kulstofindhold (0,5-2,5 %) og grov tekstur (3).
Dependent on the particular aquatic environment, the surface sediment may either be characterised by a high organic carbon content (2,5-7,5 %) and a fine texture or by a low organic carbon content (0,5-2,5 %) and a coarse texture (3).
Dette skal efterprøves ved stofspecifik analyse eller om muligt ved analyse for DOC (6).
This should be checked by substance-specific analysis or, if possible, DOC analysis (6).
Det skal tilstræbes at begrænse den overførte mængde opløsningsmiddel til det absolut nødvendige og sikre, at den tilsatte mængde prøvestof er opløselig i det endelige volumen prøvevand.
Care must be taken to limit the amount of solvent transferred to what is absolutely necessary, and to ensure that the amount of test substance can dissolve in the final volume of test water.
Tilsætning af prøvestoffet til prøvebeholderne kan ske ved hjælp af andre teknikker som beskrevet i (7) og (8).
Other techniques to introduce the test substance into the test vessels may be used as described in (7) and (8).
Når der bruges et organisk opløsningsmiddel til tilsætning af prøvestoffet, skal der køres opløsningsmiddelkontrolprøver, som indeholder prøvevandet (uden tilsætning) samt prøvevand tilsat referencestof, og som behandles på samme måde som aktive prøvebeholdere modificeret med prøvestof i stabiliserende opløsningsmiddel.
When an organic solvent is used for application of the test substance, solvent controls containing the test water (with no additions) and test water with added reference substance should be treated similarly to active test vessels amended with test substance in solvent carrier.
Er nedbrydningen af prøvestoffet begyndt i løbet af de første 60 dage, kan batchforsøget dog forlænges til maksimalt 90 dage.
However, the test period for the batch test may be extended to a maximum of 90 days, if the degradation of the test substance has started within the first 60 days.
Nedbrydningen overvåges med passende tidsintervaller ved bestemmelse af 14C-residualaktivitet eller den udviklede 14CO2 (jf. punkt 1.8.9.4) og/eller ved kemisk analyse (punkt 1.8.9.5).
Degradation is monitored, at appropriate time intervals, by the determination of the residual 14C activity or the evolved 14CO2 (see section 1.8.9.4) and/or by chemical analysis (section 1.8.9.5).
Inkubationstiden skal være tilstrækkeligt lang til, at nedbrydningsprocessen kan bedømmes.
The incubation time must be sufficiently long to evaluate the degradation process.
Nedbrydningsgraden skal helst være over 50 %. For langsomt nedbrydelige stoffer skal nedbrydningsgraden være tilstrækkelig (normalt mere end 20 % nedbrydning) til, at nedbrydningshastighedskonstanten kan bestemmes.
The extent of degradation should preferably exceed 50 %; for slowly degradable substances, the extent of degradation must be sufficient (normally greater than 20 % degradation) to ensure the estimation of a kinetic degradation rate constant.
Testsystemets pH og oxygenkoncentration skal måles periodisk, medmindre erfaringer fra tilsvarende tidligere forsøg med vand- og sedimentprøver indsamlet på samme sted gør sådanne målinger unødvendige.
Periodic measurements of pH and oxygen concentration in the test system must be conducted unless previous experience from similar tests with water and sediment samples collected from the same site make such measurements unnecessary.
Under visse betingelser kan metaboliseringen af det primære substrat ved langt større koncentration i vand eller sediment muligvis medføre CO2-udvikling og oxygenforbrug i et omfang, der ændrer forsøgsbetingelserne væsentligt.
Under some conditions, the metabolism of primary substrates at much higher concentrations within the water or sediment could possibly result in enough CO2 evolution and oxygen depletion to significantly alter the experimental conditions during the test.
Klargøring af kolber til pelagisk forsøg
Preparation of flasks for pelagic test
Prøvestoffet tilsættes fra en stamopløsning som beskrevet i punkt 1.8.2 og 1.8.7.
The test substance is added from a stock solution as described in sections 1.8.2 and 1.8.7.
Der skal anvendes mindst to forskellige prøvestofkoncentrationer, der afviger indbyrdes med en faktor 5 til 10, for at nedbrydningskinetikken kan fastlægges og nedbrydningshastighedskonstanten beregnes.
At least two different concentrations of test substance differing by a factor of 5 to 10 should be used in order to determine degradation kinetics and calculate the kinetic degradation rate constant.
Begge de valgte koncentrationer skal være under 100 µg/l og helst i området < 1-10 µg/l.
Both of the selected concentrations should be less than 100 µg/L and preferably in the range of < 1-10 µg/L.
Kolberne lukkes med propper eller låg, der er uigennemtrængelige for luft og CO2.
Close the flasks with stoppers or lids impermeable to air and CO2.
Prøver til kemisk analyse eller 14C-måling udtages ved forsøgets begyndelse (dvs. før bionedbrydningen begynder, se punkt 1.7.1) og derefter med passende tidsintervaller i løbet af forsøget.
Withdraw samples for chemical analysis or 14C measurements at the beginning of the test (i.e. before biodegradation starts; see section 1.7.1) and then at suitable time intervals during the course of the test.
Prøverne kan udtages som delprøver (f.eks. 5 ml aliquoter) fra hver replikat, eller ved at høste en hel kolbe på hvert prøvetagningstidspunkt.
Sampling may be performed by withdrawal of sub-samples (e.g. 5 ml aliquots) from each replicate or by harvest of whole flasks at each sampling time.
Mineraliseringen af prøvestoffet kan bestemmes enten indirekte eller direkte (se tillæg 3).
The mineralisation of the test substance may either be determined indirectly or directly (see Appendix 3).
Til pålidelig bestemmelse af hastighedskonstanten kræves sædvanligvis mindst fem prøvetagningspunkter i nedbrydningsfasen (dvs. efter at lag-fasen er slut), medmindre det for hurtigt nedbrydelige stoffer kan godtgøres, at tre prøvetagningspunkter er tilstrækkeligt.
Usually, a minimum of five sampling points are required during the degradation phase (i.e. after ended lag phase) in order to estimate a reliable rate constant, unless it can be justified that three sampling points are sufficient for rapidly degradable substances.
For ikke hurtigt nedbrydelige stoffer kan der let foretages flere målinger i nedbrydningsfasen, og der skal i så fald anvendes flere datapunkter til bestemmelse af k. En fast tidsplan for prøvetagningen kan ikke angives, da bionedbrydningshastigheden varierer. Ved langsom nedbrydning anbefales dog ugentlig prøveudtagning.
For substances that are not rapidly degraded more measurements during the degradation phase can easily be made and, therefore, more data points should be used for the estimation of k. No fixed time schedule for sampling can be stated, as the rate of biodegradation varies; however the recommendation is to sample once a week if degradation is slow.
Er prøvestoffet hurtigt nedbrydeligt, udtages prøver dagligt de første tre dage, derefter hver anden eller hver tredje dag.
If the test substance is rapidly degradable, sampling should take place once a day during the first three days and then every second or third day.
Under visse omstændigheder, således ved stoffer, der hydrolyseres meget hurtigt, kan det være nødvendigt at tage prøver en gang i timen.
Under certain circumstances, such as with very rapidly hydrolysing substances, it may be necessary to sample at hourly intervals.
Inden forsøget gennemføres, anbefales det at udføre et indledende forsøg til bestemmelse af passende prøvetagningsintervaller.
It is recommended that a preliminary study is conducted prior to the test in order to determine the appropriate sampling intervals.
Hvis der skal være prøver til rådighed til nærmere specifik analyse, tilrådes det at tage ekstra prøver og derefter vælge dem, der skal analyseres, ved forsøgets slutning i henhold til en bagudrettet strategi, dvs. de sidste prøver analyseres først (se vejledningen i andet afsnit i punkt 1.8.9.5 vedrørende prøvernes stabilitet ved opbevaring).
If samples have to be available for further specific analysis, it is advisable to take more samples and then select those to be analysed at the end of the experiment following a backwards strategy, i.e. the last samples are analysed first (see second paragraph in section 1.8.9.5 for guidance on stability of samples during storage).
Antal kolber og prøver
Number of flasks and samples
Kør et tilstrækkeligt antal prøvekolber til, at der er:
Set up a sufficient number of test flasks to have:
prøvekolber: mindst to kolber for hver prøvestofkoncentration (helst mindst tre), dog flere kolber for hver koncentration hvis der høstes hele prøvekolber (betegnet FT) ved hvert prøvetagningstidspunkt
test flasks; at least duplicate flasks for each concentration of test substance (preferably a minimum of 3) or multiple test flasks for each concentration, if whole flasks are harvested at each sampling time (symbolised FT),
prøvekolber til beregning af massebalance: mindst to kolber (betegnet FM) for hver prøvekoncentration
test flasks for mass balance calculation; at least duplicate flasks for each test concentration (symbolised FM),
blindkontrol, intet prøvestof: mindst én blindprøvekolbe (betegnet FB), kun indeholdende prøvevand
blank control, no test substance; at least one blank test flask containing only the test water (symbolised FB),
referencekontrol: to kolber (betegnet FC) med referencestof (f.eks. anilin eller natriumbenzoat i en koncentration af 10 µg/l).
reference control; duplicate flasks with reference substance (e.g. aniline or sodium benzoate, at 10 µg/l) (symbolised FC).
Formålet med referencekontrollen er at bekræfte et minimum af mikrobiel aktivitet.
The purpose of the reference control is to confirm a minimum of microbial activity.
Hvis det er hensigtsmæssigt, kan der anvendes et radioaktivt mærket referencestof, også når nedbrydningen af prøvestoffet overvåges ved kemiske analyser
If convenient, a radiolabelled reference substance may be used, also when the degradation of the test substance is monitored by chemical analyses,
steril kontrol: en eller to kolber (betegnet FS) indeholdende steriliseret prøvevand, til undersøgelse af eventuel abiotisk nedbrydning eller anden ikke-biologisk bortfjernelse af prøvestoffet.
sterile control; one or two flasks containing sterilised test water for examining possible abiotic degradation or other non-biological removal of the test substance (symbolised FS).
Den biologiske aktivitet kan enten standses ved autoklavering (121 °C; 20 min.) af prøvevandet, ved tilsætning af et giftstof (f.eks. natriumazid (NaN3) i en koncentration af 10-20 g/l, kviksølvchlorid (HgCl2) i en koncentration af 100 mg/l eller formalin i en koncentration af 100 mg/l) eller ved gammabestråling.
The biological activity can be stopped by autoclaving (121 °C; 20 min.) the test water or by adding a toxicant (e.g. sodium azide (NaN3) at 10-20 g/l, mercuric chloride (HgCl2) at 100 mg/l or formalin at 100 mg/l) or by gamma irradiation.
Anvendes HgCl2, skal dette bortskaffes som giftigt affald.
If HgCl2 is used, it should be disposed of as toxic waste.
For vand med sediment tilsat i store mængder er det ikke let at opnå sterile forhold; i så fald anbefales gentagne autoklaveringer (f.eks. tre gange).
For water with sediment added in large amount, sterile conditions are not easy to obtain; in this case repeated autoclaving (e.g. three times) is recommended.
Der må tages højde for, at autoklaveringen kan ændre sedimentets sorptionsegenskaber
It should be considered that the sorption characteristics of the sediment may be altered by autoclaving,
opløsningsmiddelkontroller indeholdende prøvevand og prøvevand med referencestof: dobbelt sæt kolber behandlet med samme mængde opløsningsmiddel og efter samme fremgangsmåde som ved tilsætning af prøvestoffet.
solvent controls, containing test water and test water with reference substance; duplicate flasks treated with the same amount of solvent and by use of the same procedure as that used for application of the test substance.
Formålet hermed er at afsløre eventuelle skadelige virkninger af opløsningsmidlet ved bestemmelse af nedbrydningen af referencestoffet.
The purpose is to examine possible adverse effects of the solvent by determining the degradation of the reference substance.
Ved forsøgets tilrettelæggelse må forsøgslederen veje betydningen af et øget antal forsøg op mod et øget antal prøvetagningstidspunkter.
In the design of the test, the investigator should consider the relative importance of increased experimental replication versus increased number of sampling times.
Specifik kemisk analyse
Specific chemical analysis