natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Med en nøjagtighed på 0,1 mg afvejes 50 mg standard (3.7), som opløses i methansulfonsyreopløsning (3.4) i en 100 ml målekolbe, hvorefter der fyldes op til mærket og blandes.
Weigh to the nearest 0,1 mg, 50 mg of standard substance (3.7), dissolve in methanesulfonic acid solution (3.4) in a 100 ml graduated flask, make up to the mark and mix.
Methylbenzoquatstandardmellemopløsning, 50 μg/ml
Methyl benzoquate intermediate standard solution, 50 μg/ml
5,0 ml af methylbenzoquatstandardstamopløsningen (3.7.1) overføres til en 50 ml målekolbe, hvorefter der fyldes op til mærket med methanol (3.2) og blandes.
Transfer 5,0 ml of methyl benzoquate stock standard solution (3.7.1) into a 50 ml graduated flask, make up to the mark with methanol (3.2) and mix.
Henholdsvis 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 og 5,0 ml af methylbenzoquatstandardmellemopløsningen (3.7.2) overføres til hver sin 25 ml målekolbe.
Transfer 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 and 5,0 ml of methyl benzoquate intermediate standard solution (3.7.2) into a series of 25 ml graduated flasks.
Der fyldes op til mærket med mobil fase (3.3) og blandes.
Make up to the mark with the mobile phase (3.3) and mix.
Disse opløsninger har en koncentration på henholdsvis 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 og 10,0 μg/ml methylbenzoquat.
These solutions have concentrations of 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 and 10,0 μg/ml methyl benzoquate respectively.
Mekanisk rysteapparat
Laboratory shaker
Glaskolonne (250 mm × 15 mm), forsynet med stophane og med en kapacitet på ca. 200 ml
Glass column (250 mm × 15 mm) fitted with a stopcock and reservoir of approximately 200 ml capacity
HPLC-kolonne: 300 mm × 4 mm, C18, 10 μm pakkemateriale, eller tilsvarende
Liquid chromatographic column: 300 mm × 4 mm, C18, 10 μm packing or equivalent
Der analyseres en blindprøve for at kontrollere, at hverken methylbenzoquat eller interfererende stoffer er til stede.
A blank feed shall be analysed to check that neither methyl benzoquate nor interfering substances are present.
Der udføres en genfindingstest ved at analysere blindprøven, som er blevet spiket ved tilsætning af en mængde methylbenzoquat svarende til den, der er til stede i prøven.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of methyl benzoquate, similar to that present in the sample.
For at nå op på et niveau på 15 mg/kg tilsættes 600 μl af standardstamopløsningen (3.7.1) til 20 g blindprøve. Der blandes og ventes i 10 minutter, inden der fortsættes med ekstraktion (5.2). NB
To fortify at a level of 15 mg/kg, add 600 μl of the stock standard solution (3.7.1) to 20 g of the blank feed, mix and wait for 10 minutes before proceeding with the extraction step (5.2).
Til denne metode anvendes en blindprøve af samme type som analyseprøven, og som ved analyse viser sig ikke at indeholde methylbenzoquat.
Note for the purpose of this method, the blank feed shall be similar in type to that of the sample and on analysis methyl benzoquate must not be detected.
Ca. 20 g af den klargjorte prøve afvejes med en nøjagtighed på 0,01 g og overføres til en 250 ml konisk kolbe.
Weigh to the nearest 0,01 g, approximately 20 g of the prepared sample and transfer to a 250 ml conical flask.
Væske-væskefordeling
Liquid-liquid partition
25,0 ml af det under (5.2) opnåede filtrat overføres til en 500 ml skilletragt indeholdende 100 ml saltsyreopløsning (3.5).
Transfer into a 500 ml separating funnel containing 100 ml of hydrochloric acid solution (3.5), 25,0 ml of the filtrate obtained in (5.2).
Der tilsættes 100 ml dichlormethan (3.1) til tragten og omrystes i 1 minut.
Add 100 ml dichloromethane (3.1) to the funnel and shake for one minute.
Efter at de to lag har fået tid til at skilles, aftappes det nederste lag (dichlormethan) i en 500 ml rundbundet kolbe.
Allow the layers to separate and run off the lower (dichloromethane) layer into a 500 ml round-bottomed flask.
Ekstraktionen af den vandige fase gentages med yderligere to portioner dichlormethan på hver 40 ml, og disse ekstrakter kombineres med det første ekstrakt i den rundbundede kolbe.
Repeat the extraction of the aqueous phase with two further 40-ml portions of dichloromethane and combine these with the first extract in the round-bottomed flask.
Dichlormethanekstraktet inddampes til tørhed på rotationsfordamperen (4.2) ved 40 oC under reduceret tryk.
Evaporate the dichloromethane extract down to dryness on the rotary evaporator (4.2) operating under reduced pressure at 40 oC.
Remanensen opløses i 20–25 ml methanol (3.2), hvorefter kolben tilproppes, og hele ekstraktet gemmes til ionbytningskromatografi (5.4).
Dissolve the residue in 20 to 25 ml methanol (3.2), stopper the flask and retain the whole of the extract for ion-exchange chromatography (5.4).
Ionbytningskromatografi
Ion-exchange chromatography
Klargøring af kationbytterkolonnen
Preparation of the cation-exchange column
En prop af glasuld anbringes i den nedre ende af en glaskolonne (4.3).
Insert a plug of glass wool into the lower end of a glass column (4.3).
Der klargøres en opslæmning på 5,0 g af det behandlede kationbytterresin (3.6) med 50 ml saltsyre (3.5), som hældes i glaskolonnen, hvorefter man lader den få tid til at sætte sig.
Prepare a slurry of 5,0 g of the treated cation-exchange resin (3.6) with 50 ml of hydrochloric acid (3.5), pour into the glass column and allow to settle.
Den overskydende syre lades løbe ud, indtil den står lige over resinoverfladen, og kolonnen vaskes med vand, indtil vaskevandet er neutralt over for lakmuspapir.
Run out the excess acid to just above the resin surface and wash the column with water until the effluent is neutral to litmus.
50 ml methanol (3.2) overføres til kolonnen og lades sive ned til resinoverfladen.
Transfer 50 ml methanol (3.2) onto the column and allow to drain down to the resin surface.
Søjlekromatografi
Column chromatography
Det under (5.3) opnåede ekstrakt overføres forsigtigt til kolonnen med pipette.
By means of a pipette, carefully transfer the extract obtained in (5.3) onto the column.
Den rundbundede kolbe skylles med to portioner på 5-10 ml methanol (3.2), og disse skyllevæsker overføres til kolonnen.
Rinse the round-bottomed flask with two portions of 5 to 10 ml methanol (3.2) and transfer these washings to the column.
Ekstraktet lades løbe ned til resinoverfladen, og kolonnen vaskes med 50 ml methanol, idet det sikres, at gennemstrømningshastigheden ikke overstiger 5 ml pr. minut.
Run the extract down to the resin surface and wash the column with 50 ml methanol, ensuring that the flow rate does not exceed 5 ml per minute.
Den udstrømmende væske kasseres.
Discard the effluent.
Methylbenzoquatet elueres fra kolonnen under anvendelse af 150 ml methansulfonsyreopløsning (3.4), og eluatet fra kolonnen opsamles i en 250 ml konisk kolbe.
Elute the methyl benzoquate from the column using 150 ml of methanesulfonic acid solution (3.4) and collect the column eluate in a 250 ml conical flask.
Efter at de to faser har fået tid til at skilles, aftappes det nederste (dichlormethan) lag i en 500 ml rundbundet kolbe.
Run off the lower (dichloromethane) layer into a 500 ml round bottomed flask.
Ekstraktionen af den vandige fase gentages med yderligere to portioner dichlormethan på hver 70 ml, og disse ekstrakter kombineres med det første ekstrakt i den rundbundede kolbe.
Repeat the extraction of the aqueous phase with two further 70 ml portions of dichloromethane and combine these extracts with the first in the round-bottomed flask.
Remanensen opløses i kolben med ca. 5 ml methanol (3.2), og denne opløsning overføres kvantitativt til en 10 ml målekolbe.
Dissolve the residue in the flask with approximately 5 ml of methanol (3.2) and transfer this solution quantitatively to a 10 ml graduated flask.
Den rundbundede kolbe skylles med yderligere to portioner methanol på hver 1–2 ml, som overføres til målekolben.
Rinse the round-bottomed flask with a further two portions of 1 to 2 ml of methanol and transfer these to the graduated flask.
Der fyldes op til mærket med methanol og blandes.
Make up to the mark with methanol and mix.
En alikvot mængde filtreres gennem et membranfilter (4.6).
An aliquot portion is filtered through a membrane filter (4.6).
Denne opløsning gemmes til HPLC-bestemmelsen (5.6).
Reserve this solution for HPLC-determination (5.6).
Følgende betingelser er vejledende; andre betingelser kan benyttes, forudsat at de giver tilsvarende resultater.
The following conditions are offered for guidance, other conditions may be used provided that they give equivalent results:
HPLC-kolonne (4.4.1)
liquid chromatographic column (4.4.1),
Mobil fase til HPLC: blanding af methanol og vand (3.3)
HPLC mobile phase: methanol-water mixture (3.3),
Flow: 1–1,5 ml/minuttet
flow rate: 1 to 1,5 ml/minute,
Detektionsbølgelængde: 265 nm
detection wavelength: 265 nm,
Kromatografisystemets stabilitet kontrolleres, ved at der flere gange indsprøjtes kalibreringsopløsning (3.7.3) med 4 μg/ml, indtil der opnås konstante tophøjder eller -arealer og retentionstider.
Check the stability of the chromatographic system, injecting the calibration solution (3.7.3) containing 4 μg/ml several times, until constant peak heights or areas and retention times are achieved.
Hver kalibreringsopløsning (3.7.3) indsprøjtes flere gange, og højden af toppene (arealerne) bestemmes for hver koncentration.
Inject each calibration solution (3.7.3) several times and measure the peak heights (areas) for each concentration.
Prøveekstraktet (5.5) indsprøjtes flere gange, idet der benyttes samme mængde som til kalibreringsopløsningerne, og middeltophøjden (-arealet) af methylbenzoquattoppene bestemmes.
Inject the sample extract (5.5) several times, using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the methyl benzoquate peaks.
Ud fra middelhøjden (-arealet) af prøveopløsningens methylbenzoquattoppe bestemmes koncentrationen i prøveopløsningen i μg/ml ved benyttelse af kalibreringskurven (5.6.2).
Determine the concentration of the sample solution in μg/ml from the mean height (area) of the methyl benzoquate peaks of the sample solution by reference to the calibration graph (5.6.2).
Prøvens indhold af methylbenzoquat w (mg/kg) beregnes efter følgende formel:
The content of methyl benzoquate w (mg/kg) of the sample is given by the following formula:
c prøveopløsningens methylbenzoquatkoncentration i g/ml
c methyl benzoquate concentration of the sample solution in μg/ml,
Analyttens identitet kan bekræftes ved ko-kromatografi eller ved at benytte en diodearraydetektor, hvormed spektrene for prøveekstraktet og kalibreringsopløsningen (3.7.3) indeholdende 10 μg/ml sammenlignes.
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract and the calibration solution (3.7.3) containing 10 μg/ml are compared.
Et prøveekstrakt spikes ved tilsætning af en passende mængde standardmellemopløsning (3.7.2).
A sample extract is fortified by addition of an appropriate amount of the intermediate standard solution (3.7.2).
Den tilsatte mængde methylbenzoquat skal svare til den skønnede mængde methylbenzoquat i prøveekstraktet.
The amount of added methyl benzoquate must be similar to the estimated amount of methyl benzoquate in the sample extract.
Kun højden af methylbenzoquattoppen må være blevet øget, efter at der er taget hensyn til både den tilsatte mængde og fortyndingen af ekstraktet.
Only the height of the methyl-benzoquate peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Den maksimale absorptionsbølgelængde for prøvens og standardens spektre, målt ved toppens spids på kromatogrammet, skal være den samme inden for en margin, der afhænger af detektionssystemets opløsningsevne.
the wavelength of maximum absorption of the sample and of the standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram must be the same within a margin determined by the resolving power of the detection system.
Mellem 220 og 350 nm må prøvens og standardens spektre registreret ved toppens spids på kromatogrammet ikke være forskellige fra hinanden i de dele af spektret, der ligger inden for 10–100 % relativ absorbans.
between 220 and 350 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex on the chromatogram must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
Mellem 220 og 350 nm må spektrene ved toppens forside, spids og bagside frembragt med prøveekstraktet ikke være forskellige fra hinanden i de dele af spektret, der ligger inden for 10–100 % relativ absorbans.
between 220 and 350 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 % to 100 % of relative absorbance.
Dette kriterium er opfyldt, når de samme maksima er til stede, og afvigelsen mellem spektrene i intet observeret punkt overstiger 15 % af spektrets absorbans i spidsen.
This criterion is met when the same maxima are present and when at no observed points the deviation between the spectra does not exceed 15 % of the absorbance of the spectrum of the apex.
Forskellen mellem resultaterne af to parallelle bestemmelser udført på samme prøve må ikke overstige: 10 % i relativ værdi (af det højeste resultat) for methylbenzoquatindhold på 4–20 mg/kg.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed: 10 % relative to the higher result for methyl benzoquate contents between 4 and 20 mg/kg.
For den spikede blindprøve skal genfindingen være mindst 90 %.
For a fortified blank sample the recovery shall be at least 90 %.
5 prøver blev analyseret af 10 laboratorier.
Five samples were analysed by 10 laboratories.
Blind
Blank
Mel 1
Meal 1
Piller 1
Pellet 1
Mel 2
Meal 2
Piller 2
Pellet2
IP Ikke påvist
ND Not detected
BESTEMMELSE AF OLAQUINDOX
DETERMINATION OF OLAQUINDOX
2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxalin-N1,N4-dioxid
2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxaline-N1,N4-dioxide
Denne metode gør det muligt at bestemme indholdet af olaquindox i foder.
This method makes it possible to determine the level olaquindox in feed.
Prøven ekstraheres med en blanding af vand og methanol.
The sample is extracted by a water-methanol mixture.
Indholdet af olaquindox bestemmes ved omvendt fase-HPLC med anvendelse af UV detektor.
The content of olaquindox is determined by reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC) using an UV detector.
Mobil fase til HPLC
Mobile phase for HPLC.
Blanding af vand (3.3) og methanol (3.2), 900 + 100 (V + Vv).
Water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 +100 (V + V).
Standardstof: rent olaquindox 2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxalin-N1,N4-dioxid, E 851.
Standard substance: pure olaquindox 2-[N-2'-(hydroxyethyl)carbamoyl]-3-methylquinoxaline-N1,N4-dioxide, E 851.
Olaquindoxstandardstamopløsning, 250 μg/ml
Olaquindox stock standard solution, 250 μg/ml
Med en nøjagtighed på 0,1 mg afvejes 50 mg olaquindox (3.5) i en 200 ml målekolbe, og der tilsættes ca. 190 ml vand.
Weigh to the nearest 0,1 mg 50 mg of olaquindox (3.5) in a 200 ml graduated flask and add ca. 190 ml water.
Derefter anbringes kolben i 20 minutter i et ultralydsbad (4.1).
Then place the flask for 20 min. into an ultrasonic bath (4.1).
Efter ultralydsbehandlingen bringes opløsningen til rumtemperatur, hvorefter der fyldes op til mærket med vand og blandes.
After ultrasonic treatment bring the solution to room temperature, make up to the mark with water and mix.
Kolben omvikles med aluminiumfolie og opbevares i køleskab.
Wrap the flask with aluminium foil and store in a refrigerator.
Fremstilles hver måned.
This solution must be prepared fresh each month.
Olaquindoxstandardmellemopløsning, 25 μg/ml
Olaquindox intermediate standard solution, 25 μg/ml
10,0 ml af standardstamopløsningen (3.5.1) overføres til en 100 ml målekolbe, hvorefter der fyldes op til mærket med den mobile fase (3.4) og blandes.
Transfer 10,0 ml of the stock standard solution (3.5.1) into a 100 ml graduated flask, make up to the mark with the mobile phase (3.4) and mix.
Fremstilles dagligt.
This solution must be prepared fresh each day.
Henholdsvis 1,0, 2,0, 5,0, 10,0, 15,0 og 20,0 ml af standardmellemopløsningen (3.5.2) overføres til hver sin 50 ml målekolbe.
Into a series of 50 ml graduated flasks transfer 1,0, 2,0, 5,0, 10,0, 15,0 and 20,0 ml of the intermediate standard solution (3.5.2).
Der fyldes op til mærket med mobil fase (3.4) og blandes.
Make up to the mark with the mobile phase (3.4) and mix.
Kolberne omvikles med aluminiumfolie.
Wrap the flasks with aluminium foil.
Disse opløsninger svarer til henholdsvis 0,5, 1,0, 2,5, 5,0, 7,5 og 10,0 μg olaquindox pr. ml.
These solutions correspond to 0,5, 1,0, 2,5, 5,0, 7,5 and 10,0 μg of olaquindox per ml respectively.
Fremstilles dagligt.
These solutions must be prepared fresh each day.
HPLC-udstyr med ultraviolet detektor med variabel bølgelængde eller med diodearraydetektor
HPLC equipment with variable wavelength ultraviolet detector or diode array detector
HPLC-kolonne, 250 mm × 4 mm, C18, 10 μm pakkemateriale, eller tilsvarende
Liquid chromatographic column, 250 mm × 4 mm, C18, 10 μm packing, or equivalent
Olaquindox er lysfølsomt.
Olaquindox is light sensitive.
Alle procedurer udføres i dæmpet belysning eller under anvendelse af udstyr af brunt glas.
Carry out all procedures under subdued light or use amber glassware.
Der analyseres en blindprøve for at kontrollere, at hverken olaquindox eller interfererende stoffer er til stede.
A blank feed shall be analysed to check that neither olaquindox nor interfering substances are present.
Der udføres en genfindingstest ved at analysere blindprøven, som er blevet spiket ved tilsætning af en mængde olaquindox svarende til den, der er til stede i prøven.
A recovery test shall be carried out by analysing the blank feed which has been fortified by addition of a quantity of olaquindox, similar to that present in the sample.
Til denne metode anvendes en blindprøve af samme type som analyseprøven, og som ved analyse viser sig ikke at indeholde olaquindox.
For the purpose of this method the blank feed shall be similar in type to that of the sample and olaquindox must not be detected.
Der tilsættes 410 ml vand, og kolben anbringes i ultralydsbad i yderligere 15 minutter. Derefter fjernes kolben fra ultralydsbadet og rystes i 30 minutter på rysteapparatet (4.2), og indholdet filtreres gennem et foldet filter.
Add 410 ml water and leave in the ultrasonic bath for further 15 min. Remove the flask from the ultrasonic bath, shake it for 30 min. on the shaker (4.2) and filter through a folded filter.
10,0 ml af filtratet overføres til en 20 ml målekolbe, hvorefter der fyldes op til mærket med vand og blandes.
Transfer 10,0 ml of the filtrate into a 20 ml graduated flask, make up to the mark with water and mix.
Parametre
Parameters:
Analysekolonne (4.3.1)
Analytical column (4.3.1)
Mobil fase (3.4):
Mobile Phase (3.4):
Blanding af vand (3.3) og methanol (3.2), 900 + 100 (V + V)
water (3.3)-methanol (3.2) mixture, 900 + 100 (V + V)
20–100 μl.
20 μl –100 μl
Kromatografisystemets stabilitet kontrolleres, ved at der flere gange indsprøjtes kalibreringsopløsning (3.5.3) med 2,5 μg/ml, indtil der opnås konstante tophøjder og retentionstider.
Check the stability of the chromatographic system, injecting several times the calibration solution (3.5.3) containing 2,5 μg/ml, until constant peak heights and retention times are achieved.
Hver kalibreringsopløsning (3.5.3) indsprøjtes flere gange, og middeltophøjderne (-arealerne) bestemmes for hver koncentration.
Inject each calibration solution (3.5.3) several times and determine the mean peak heights (areas) for each concentration.
Der tegnes en kalibreringskurve med kalibreringsopløsningernes middeltophøjder (-arealer) som ordinat og de tilsvarende koncentrationer i μg/ml som abscisse.
Plot a calibration graph using the mean peak heights (areas) of the calibration solutions as the ordinates and the corresponding concentrations in μg/ml as the abscissae.
Prøveekstraktet (5.2) indsprøjtes flere gange, idet der benyttes samme mængde som til kalibreringsopløsningerne, og middeltophøjden (-arealet) af olaquindoxtoppene bestemmes.
Inject the sample extract (5.2) several times using the same volume as taken for the calibration solutions and determine the mean peak height (area) of the olaquindox peaks.
Ud fra middelhøjden (-arealet) af olaquindoxtoppene i prøveopløsningen bestemmes koncentrationen i prøveopløsningen i μg/ml ved benyttelse af kalibreringskurven (5.3.2).
From the mean height (area) of the olaquindox peaks of the sample solution determine the concentration of the sample solution in μg/ml by reference to the calibration graph (5.3.2).
Olaquindoxindholdet w i mg/kg for prøven beregnes efter følgende formel:
The olaquindox content w in mg/kg of the sample is given by the following formula:
c olaquindoxkoncentrationen i prøveekstraktet (5.2) i μg/ml
c olaquindox concentration of the sample extract (5.2) in μg/ml
m testportionens vægt i gram (5.2).
m weight of the test portion in g (5.2).
Analyttens identitet kan bekræftes ved ko-kromatografi eller ved at benytte en diodearraydetektor, hvormed spektrene for prøveekstraktet (5.2) og kalibreringsopløsningen (3.5.3) indeholdende 5,0 μg/ml sammenlignes.
The identity of the analyte can be confirmed by co-chromatography, or by using a diode-array detector by which the spectra of the sample extract (5.2) and the calibration solution (3.5.3) containing 5,0 μg/ml are compared.
Et prøveekstrakt (5.2) spikes ved tilsætning af en passende mængde kalibreringsopløsning (3.5.3).
A sample extract (5.2) is fortified by addition of an appropriate amount of calibration solution (3.5.3).
Den tilsatte mængde olaquindox skal svare til den mængde olaquindox, der er fundet i prøveekstraktet.
The amount of added olaquindox must be similar to the amount of olaquindox found in the sample extract.
Kun højden af olaquindoxtoppen må være blevet øget, efter at der er taget hensyn til både den tilsatte mængde og fortyndingen af ekstraktet.
Only the height of the olaquindox peak shall be enhanced after taking into account both the amount added and the dilution of the extract.
Toppens bredde skal i den halve højde ligge inden for ± 10 % af den oprindelige bredde af olaquindoxtoppen for det ikke-spikede prøveekstrakt.
The peak width, at half of its height, must be within ± 10 % of the original width of the olaquindox peak of the unfortified sample extract.
Diodearraydetektion
Diode array detection
Mellem 220 og 400 nm må prøvens og standardens spektre registreret ved toppens spids på kromatogrammet ikke være forskellige fra hinanden i de dele af spektret, der ligger inden for 10–100 % relativ absorbans.
Between 220 and 400 nm, the sample and standard spectra recorded at the peak apex of the chromatogram, must not be different for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
Mellem 220 og 400 nm må spektrene ved toppens forside, spids og bagside frembragt med prøveekstraktet ikke være forskellige fra hinanden i de dele af spektret, der ligger inden for 10–100 % relativ absorbans.
Between 220 and 400 nm, the spectra of the upslope, apex and downslope of the peak produced by the sample extract must not be different from each other for those parts of the spectrum within the range 10 %-100 % of relative absorbance.
Forskellen mellem resultaterne af to parallelle bestemmelser udført på samme prøve må ikke overstige 15 % i relativ værdi (af det højeste resultat) for olaquindoxindhold på 10–200 mg/kg.
The difference between the results of two parallel determinations carried out on the same sample must not exceed 15 % relative to the higher result for olaquindox contents between 10 and 200 mg/kg.
Der er gennemført en EF-ringanalyse, hvor 4 prøver af foder til smågrise, herunder en blindprøve, blev analyseret i op til 13 laboratorier.
An EC collaborative study was arranged in which four piglet feed samples including one blank feed were analysed by up to 13 laboratories.
Resultaterne er vist herunder:
The results are given below:
Nominelt indhold
Nominal content
Genfinding ( %)
recovery %