natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Na konci této další doby do ustavení rovnováhy by měla být změřena koncentrace zkoušené chemické látky ve vodě nad sedimentem, v kapilární vodě a v sedimentu, a to nejméně při nejvyšší koncentraci a při jedné nižší koncentraci (viz odstavec 38).
At the end of this further equilibration period, the concentration of the test substance should be measured in the overlying water, the pore water and the sediment, at least at the highest concentration and a lower one (see paragraph 38).
Za normálních okolností se larvy začínají líhnout několik dní po nakladení vajíček (2 až 3 dny u Chironomus riparius při 20 °C a 1 až 4 dny u Chironomus tentans při 23 °C a Chironomus yoshimatui při 25 °C) a během larválního vývoje se vystřídají čtyři instary, z nichž každý trvá 4–8 dnů.
Normally, the larvae begin to hatch a couple of days after the eggs are laid (2 to 3 days for Chironomus riparius at 20 °C and 1 to 4 days for Chironomus tentans at 23 °C and Chironomus yoshimatui at 25 °C) and larval growth occurs in four instars, each of 4-8 days duration.
Při zkoušce se použijí larvy prvního instaru (2–3 nebo 1–4 dnů po vylíhnutí).
First instar larvae (2-3 or 1-4 days post hatching) should be used in the test.
Instar pakomárů lze případně zkontrolovat pomocí šířky hlavové kapsuly (6).
The instar of midges can possibly be checked using head capsule width (6).
Pokud dojde v kontrolních skupinách k růstu plísní nebo je u nich zjištěna mortalita, je nutné přísun potravy u všech expozic snížit a kontrolovat.
The food ration should be reduced in all treatments and control if fungal growth is seen or if mortality is observed in controls.
Pokud není možné růst plísní zastavit, je nutné zkoušku opakovat.
If fungal development cannot be stopped the test is to be repeated.
Voda nad sedimentem ve zkušebních nádobách se mírně provzdušňuje v optimálním případě 24 hodin po přidání larev a je sledována po celou dobu zkoušky (je třeba dbát, aby koncentrace rozpuštěného kyslíku neklesla pod 60 procent ASV).
Gentle aeration of the overlying water in test vessels is supplied preferably 24 hours after addition of the larvae and is pursued throughout the test (care should be taken that dissolved oxygen concentration does not fall below 60 per cent of ASV).
Doporučeným postupem izolace intersticiální vody je odstřeďování např. při odstředivé síle 10000 g a 4 °C po dobu 30 minut.
Centrifugation at e.g. 10000 g and 4 °C for 30 min. is the recommended procedure to isolate interstitial water.
Neadsorbuje-li se však zkoušená látka prokazatelně na filtry, je přijatelná i filtrace.
However, if the test substance is demonstrated not to adsorb to filters, filtration may also be acceptable.
ER procento vylíhlých jedinců,
ER emergence ratio
Průměrná doba vývoje představuje průměrné časové rozpětí mezi nasazením larev (den 0 zkoušky) a vylíhnutím experimentální kohorty pakomárů.
The mean development time represents the mean time span between the introduction of larvae (day 0 of the test) and the emergence of the experimental cohort of midges. (For the calculation of the true development time, the age of larvae at the time of introduction should be considered).
(Pro výpočet skutečné doby vývoje by mělo být zohledněno stáří larev v okamžiku nasazení. Rychlost vývoje je převrácenou hodnotou doby vývoje (jednotka: 1/den) a představuje tu část larválního vývoje, která se odehraje za den. Rychlost vývoje je z hlediska hodnocení těchto studií toxicity sedimentů preferována před dobou vývoje vzhledem k její nižší variabilitě, vyšší homogenitě a vyšší blízkosti normálnímu rozdělení. Z tohoto důvodu mohou být použity silné parametrické zkušební postupy pro rychlost vývoje spíše než pro dobu vývoje. Pro rychlost vývoje jako kontinuální odezvu lze hodnoty ECx stanovit odhadem pomocí regresní analýzy (např. (23), (24)).
The development rate is the reciprocal of the development time (unit: 1/day) and represents that portion of larval development which takes place per day. The development rate is preferred for the evaluation of these sediment toxicity studies as its variance is lower, and it is more homogeneous and closer to normal distribution as compared to development time. Hence, powerful parametric test procedures may be used with development rate rather than with development time. For development rate as a continuous response, ECx-values can be estimated by using regression analysis (e.g. (23), (24)).
i index intervalu mezi pozorováními,
i index of inspection interval m
počet vylíhlých jedinců celkem na konci pokusu
total number of midges emerged at the end of experiment (= i
deni
dayi
den i
day i
BBA (1995).
BBA (1995).
Fleming R et al.
Fleming R et al.
SETAC (1993).
SETAC (1993).
ASTM International/E1706-00 (2002).
ASTM International/E1706-00 (2002).
Test Method for Measuring the Toxicity of Sediment-Associated Contaminants with Freshwater Invertebrates. pp 1125–1241.
Test Method for Measuring the Toxicity of Sediment-Associated Contaminants with Freshwater Invertebrates. pp 1125-1241.
Biological Effects and Environmental Fate; Biotechnology; Pesticides.
Biological Effects and Environmental Fate;Biotechnology; Pesticides.
Environment Canada (1997).
Environment Canada (1997).
Prosinec 1997.
December 1997.
US-EPA (2000).
US-EPA (2000).
US-EPA/OPPTS 850.1735.
US-EPA/OPPTS 850.1735.
US-EPA/OPPTS 850.1790.
US-EPA/OPPTS 850.1790.
Milani D, Day KE, McLeay DJ, and Kirby RS (1996).
Milani D, Day KE, McLeay DJ, and Kirby RS (1996).
Sugaya Y (1997).
Sugaya Y (1997).
Kawai K (1986).
Kawai K (1986).
Environment Canada (1995).
Environment Canada (1995).
Suedel BC and JH Rodgers (1994).
Suedel BC and JH Rodgers (1994).
Naylor C and C Rodrigues (1995).
Naylor C and C Rodrigues (1995).
Chemosphere 31: 3291–3303.
Chemosphere 31: 3291-3303.
Dunnett CW (1964).
Dunnett CW (1964).
Assoc., 50: 1096–1121.
Assoc., 50: 1096-1121.
Biometrics, 20: 482–491.
Biometrics, 20: 482-491.
Williams DA (1971).
Williams DA (1971).
Williams DA (1972).
Williams DA (1972).
Rao JNK and Scott AJ (1992).
Rao JNK and Scott AJ (1992).
Christensen ER (1984).
Christensen ER (1984).
Water Research 18: 213–221.
Water Research 18: 213-221.
Bruce and Versteeg (1992).
Bruce and Versteeg (1992).
Environmental Toxicology and Chemistry 11: 1485–1494.
Environmental Toxicology and Chemistry 11: 1485-1494.
Slob W (2002).
Slob W (2002).
Larvy rodu Chironomus se krmí vločkovým krmivem pro ryby (TetraMin(®, Tetra Phyll® nebo jiná podobná značka patentovaného krmiva pro ryby), v množství přibližně 250 mg na nádobu a den. Potravu lze aplikovat v podobě suchého mletého prášku nebo v podobě suspenze ve vodě: 1,0 g vločkového krmiva se přidá do 20 ml ředicí vody a vytvoří se homogenní směs. Tento přípravek lze dodávat v množství přibližně 5 ml na nádobu na den (před použitím protřepat). Starším larvám lze přidat více krmiva.
Chironomus larvae should be fed with a fish flake food (TetraMin® TetraPhyll® or other similar brand of proprietary fish food), at approximately 250 mg per vessel per day. This can be given as a dry ground powder or as a suspension in water: 1,0 g of flake food is added to 20 ml of dilution water and blended to give a homogenous mix. This preparation may be fed at a rate of about 5 ml per vessel per day (shake before use). Older larvae may receive more.
Pokud se zde shluky vajíček nacházejí, je nutno je opatrně odstranit a přemístit do malé misky obsahující vzorek chovného vodního prostředí.
If present, the egg masses should be carefully removed. They should be transferred to a small dish containing a sample of the breeding water.
(Vitaminový zásobní roztok se uskladňuje zmrazený v malých alikvotních dílech.) Médium se provzdušní a stabilizuje.
(The vitamin stock solution is stored frozen in small aliquots). The medium is aerated and stabilised.
Protoplasma 154: 25–33.
Protoplasma 154: 25-33.
Water Research 24 (9): 1157–1167.
Water Research 24 (9): 1157-1167.
Rašelina se usuší na vzduchu a rozemele se na jemný prášek.
The peat is air dried and ground to a fine powder. A suspension of the required amount of peat powder in deionised water is prepared using a high-performance homogenising device.
Kapitola C.8 této přílohy.
Chapter C.8 of this Annex.
Toxicita pro žížaly.
Toxicity for Earthworms.
Safety 39: 10–20.
Safety 39: 10-20.
Měla by být k dispozici spolehlivá analytická metoda pro kvantitativní stanovení zkoušené chemické látky ve vodě nad sedimentem, kapilární vodě a v sedimentu, a to se známou a doloženou přesností a mezí stanovitelnosti.
A reliable analytical method for the quantification of the test substance in overlying water, pore water and sediment with known and reported accuracy and limit of detection should be available. Useful information includes the structural formula and purity of the test substance.
Procento vylíhlých jedinců jsou kvantové údaje a lze je analyzovat s použitím postupně klesajícího Cochranova-Armitageova testu, který předpokládá monotónní odezvu na dávku, a tato data jsou konzistentní s tímto očekáváním.
Emergence ratios are quantal data, and can be analyzed by the Cochran-Armitage test applied in step-down manner where a monotonic dose-response is expected and these data are consistent with this expectation. If not, a Fisher’s exact or Mantel-Haenszal test with Bonferroni-Holm adjusted p-values can be used.
(Pro výpočet skutečné doby vývoje by mělo být zohledněno stáří larev v okamžiku nasazení. Rychlost vývoje je převrácenou hodnotou doby vývoje (jednotka: 1/den) a představuje část larválního vývoje, která se odehraje za den. Rychlost vývoje je z hlediska hodnocení těchto studií toxicity sedimentů preferována před dobou vývoje vzhledem k její nižší variabilitě, vyšší homogenitě a větší blízkosti normálnímu rozdělení. Z tohoto důvodu mohou být použity silné parametrické zkušební postupy pro rychlost vývoje, a ne pro dobu vývoje. Pro rychlost vývoje jako kontinuální odezvu lze hodnoty ECx stanovit odhadem pomocí regresní analýzy (např. (23), (24).)
The development rate is the reciprocal of the development time (unit: 1/day) and represents that portion of larval development which takes place per day. The development rate is preferred for the evaluation of these sediment toxicity studies as its variance is lower, and it is more homogeneous and closer to normal distribution as compared to development time. Hence, powerful parametric test procedures may be used with development rate rather than with development time. For development rate as a continuous response, ECx-values can be estimated by using regression analysis (e.g. (23)(24)).
U následujících statistických testů se má za to, že počet pakomárů pozorovaných v inspekčním dni x se vylíhl v průměru časového intervalu mezi dnem x a dnem x – l (l = délka intervalu mezi pozorováními, obvykle 1 den).
For the following statistical tests, the number of midges observed on inspection day x are assumed to be emerged at the mean of the time interval between day x and day x – l (l = length of the inspection interval, usually 1 day).
Milani D, Day KE, McLeay DJ, Kirby RS (1996).
Milani D, Day KE, McLeay DJ, Kirby RS (1996).
Suedel BC and Rodgers JH (1994).
Suedel BC and Rodgers JH (1994).
Naylor C and Rodrigues C (1995).
Naylor C and Rodrigues C (1995).
Environmental Toxicology and Chemistry 11:1485–1494.
Environmental Toxicology and Chemistry 11:1485-1494.
Larvy rodu Chironomus by se měly krmit vločkovým krmivem pro ryby (TetraMin(®, Tetra Phyll® nebo jiná podobná značka patentovaného krmiva pro ryby), v množství přibližně 250 mg na nádobu a den. Potravu lze aplikovat v podobě suchého mletého prášku nebo v podobě suspenze ve vodě: 1,0 g vločkového krmiva se přidá do 20 ml ředicí vody a vytvoří se homogenní směs. Tento přípravek lze dodávat rychlostí přibližně 5 ml na nádobu na den (před použitím protřepat). Starším larvám lze přidat více krmiva.
Chironomus larvae should be fed with a fish flake food (TetraMin®, TetraPhyll® or other similar brand of proprietary fish food), at approximately 250 mg per vessel per day. This can be given as a dry ground powder or as a suspension in water: 1,0 g of flake food is added to 20 ml of dilution water and blended to give a homogenous mix. This preparation may be fed at a rate of about 5 ml per vessel per day (shake before use.) Older larvae may receive more.
Dobře vyzkoušená metoda uvolňování oxidu uhličitého (CO2) (1), která je založena na původní Sturmově zkoušce (2) hodnocení biologické rozložitelnosti organických chemických látek měřením emisí oxidu uhličitého produkovaného mikrobiální činností, je zpravidla první možností testování špatně rozpustných a silně absorbujících chemických látek.
The well established carbon dioxide (CO2) method (1), based on Sturm’s original test (2) for assessing biodegradability of organic chemicals, by the measurement of the carbon dioxide produced by microbial action, has normally been the first choice for testing poorly soluble chemicals and those which strongly adsorb.
Je užívána rovněž v případě rozpustných (avšak nikoli těkavých) látek, protože uvolňování oxidu uhličitého řada odborníků považuje za jediný nepochybný důkaz mikrobiální aktivity.
It is also chosen for soluble (but not volatile) chemicals, since the evolution of carbon dioxide is considered by many to be the only unequivocal proof of microbial activity.
Odstranění rozpuštěného organického uhlíku se může uskutečnit fyzikálně-chemickými procesy – adsorpcí, vypařováním, srážením, hydrolýzou, ale je spotřebováván i mikrobiální činností a při řadě nebiologických reakcí; jen vzácně vzniká CO2 z organických sloučenin abioticky.
Removal of dissolved organic carbon can be effected by physico-chemical processes — adsorption, volatilisation, precipitation, hydrolysis — as well as by microbial action and many non-biological reactions consume oxygen; rarely is CO2 produced from organic chemicals abiotically.
Zkoušená látka se zpravidla v koncentraci 20 mg C/l jako jediný zdroj uhlíku a energie inkubuje v pufru – médiu vytvořeném z minerálních solí, které je inokulováno směsnou kulturou mikroorganismů.
The test chemical, normally at 20 mg C/l, as the sole source of carbon and energy, is incubated in a buffer-mineral salts medium which has been inoculated with a mixed population of micro-organisms.
Zkouška se provádí v těsně uzavřených nádobách s určitým volným objemem vzduchu pod víčkem, který představuje rezervoár kyslíku pro aerobní biologický rozklad.
The test is performed in sealed bottles with a headspace of air, which provides a reservoir of oxygen for aerobic biodegradation.
Rozpustí se ve vodě a doplní na 1 litr. pH tohoto roztoku musí být 7,4 (± 0,2).
Dissolve in water and make up to 1 litre. The pH of this solution should be 7,4 (± 0,2).
Koncentrovaný kal se suspenduje v minerálním médiu na koncentraci 3–5 g suspendovaných tuhých látek na litr.
Suspend the concentrated sludge in mineral medium to yield a concentration of 3-5 g suspended solids/l.
Následně se kal před použitím provzdušňuje.
Thereafter aerate until required.
Jestliže má být stanoven úbytek DOC (platí pouze pro vodou rozpustné zkoušené chemické látky), odeberou se vzorky kapalné fáze ze samostatných (neokyselených) nádob, filtrují se membránovým filtrem a vstříknou do DOC analyzátoru.
If DOC removal is to be measured (water-soluble test chemicals only), samples should be taken of the liquid phase from separate (non-acidified) bottles, membrane-filtered and injected into the DOC analyser.
Tyto nádoby lze podle potřeby užít pro další analýzy s cílem stanovit primární biologický rozklad.
These bottles can be used for other analyses as necessary, to measure primary biodegradation.
Septem se do každé zkušební lahvičky vstříkne 1 ml roztoku hydroxidu sodného (7M, odstavec 21) (např. 1 ml do 107 ml média) a nádobami se třepe při zkušební teplotě po dobu 1 h. Tentýž roztok NaOH se použije pro všechny lahvičky užité v daném dni, avšak není nutno jej užívat při každém odběru vzorků v průběhu zkoušky.
Sodium hydroxide solution (7M, paragraph 21) (e.g. 1 ml to 107 ml medium) is injected through the septum of each bottle sampled and the bottles are shaken for 1 h at the test temperature. Use the same NaOH solution on all bottles sacrificed on a particular day, but not necessarily on all sampling occasions throughout a test.
Jestliže má být stanoven úbytek DOC (platí pouze pro vodou rozpustné zkoušené chemické látky), odeberou se vzorky kapalné fáze ze samostatných nádob (které neobsahují přidanou zásadu), filtrují se membránovým filtrem a vstříknou do DOC analyzátoru.
If DOC removal is to be measured (water-soluble test chemicals only), samples should be taken of the liquid phase from separate bottles (containing no added alkali), membrane filtered and injected into the DOC analyser.
Tyto nádoby lze podle potřeby užít pro další analýzy s cílem stanovit primární biologickou rozložitelnost.
These bottles can be used for other analyses, as necessary, to measure primary biodegradability.
Sturm RN (1973).
Sturm RN (1973).
Larson RJ (1979).
Larson RJ (1979).
Larson RJ, Hansmann MA and Bookland EA (1996).
Larson RJ, Hansmann MA and Bookland EA (1996).
Carbon dioxide recovery in ready biodegradability tests: mass transfer and kinetic constants, Chemosphere 33: 1195–1210.
Carbon dioxide recovery in ready biodegradability tests: mass transfer and kinetic constants, Chemosphere 33: 1195-1210.
ISO 9439 (1990; přepracována v roce 1999).
ISO 9439 (1990; revised 1999).
US EPA (1996).
US EPA (1996).
Gledhill WE (1975).
Gledhill WE (1975).
Weytjens D, Van Ginneken I and Painter HA (1994).
Weytjens D, Van Ginneken I and Painter HA (1994).
Chemosphere 28: 801–812.
Chemosphere 28: 801-812.
Ennis DM and Kramer A (1975).
Ennis DM and Kramer A (1975).
Ennis DM, Kramer A, Jameson CW, Mazzoccki PH and Bailey PH (1978).
Ennis DM, Kramer A, Jameson CW, Mazzoccki PH and Bailey PH (1978).
Boatman RJ, Cunningham SL and Ziegler DA (1986).
Boatman RJ, Cunningham SL and Ziegler DA (1986).
Struijs J and Stoltenkamp J (1990).
Struijs J and Stoltenkamp J (1990).
Safety 19: 204–211.
Safety 19: 204-211.
Birch RR and Fletcher RJ (1991).
Birch RR and Fletcher RJ (1991).
Chemosphere 23: 507–524.
Chemosphere 23: 507-524.
Birch RR, Biver C, Campagna R, Gledhill WE, Pagga U, Steber J, Reust H, and Bontinck WJ (1989).
Birch RR, Biver C, Campagna R, Gledhill WE, Pagga U, Steber J, Reust H, and Bontinck WJ (1989).
Chemosphere 19: 1527–1550.
Chemosphere 19: 1527-1550.
Battersby NS (1997).
Battersby NS (1997).
Battersby NS, Ciccognani D, Evans MR, King D, Painter HA, Peterson DR and Starkey M (1999).
Battersby NS, Ciccognani D, Evans MR, King D, Painter HA, Peterson DR and Starkey M (1999).
Chemosphere 38: 3219–3235.
Chemosphere 38: 3219-3235.
OECD (1988).
OECD (1988).
Struijs J, Stoltenkamp-Wouterse MJ and Dekkers ALM (1995).
Struijs J, Stoltenkamp-Wouterse MJ and Dekkers ALM (1995).
Biodegradation 6: 319–327.
Biodegradation 6: 319-327.
Ze zkušebních metod týkajících se rozpadu v životním prostředí byly v roce 1996 publikovány Bioakumulace: Průtoková zkouška na rybách (kapitola C.13 této přílohy (49)) a v roce 2008 Bioakumulace u bentických máloštětinatců žijících v sedimentu (53).
Among the Test Methods relating to environmental fate, the Bioconcentration: Flow-through Fish Test (chapter C.13 of this Annex (49)) and the Bioaccumulation in Sediment-dwelling Benthic Oligochaetes (53) were published in 1996 and 2008 respectively.
Extrapolovat údaje o bioakumulaci ve vodním prostředí na suchozemské organismy, jako jsou žížaly, je obtížné až nemožné.
The extrapolation of aquatic bioaccumulation data to terrestrial organisms like earthworms is difficult, if possible at all.
Pro stanovení bioakumulace chemických látek v půdě se v současné době užívají modelové výpočty založené na lipofilitě zkoušené chemické látky, např. (14, 37), jako např. v technických pokynech EU (19).
Model calculations based on a test chemical’s lipophilicity, e.g. (14) (37), are currently used for the assessment of bioaccumulation of chemicals in soil, as e.g. in the EU Technical Guidance Document (19).
Potřeba zkušební metody specifické pro určité prostředí již byla vyřešena, např. (55).
The need for a compartment-specific test method has already been addressed, e.g. (55).
Tato metoda je zvláště důležitá pro posouzení druhotné otravy v terestrických potravních řetězcích (4).
Such a method is especially important for the evaluation of secondary poisoning in terrestrial food chains (4).
Několik vnitrostátních zkušebních metod řeší problém bioakumulace u jiných organismů než u ryb, např. (2) a (72).
Several national test methods address the issue of bioaccumulation in organisms other than fish e.g. (2) and (72).
Jednu z metod měření bioakumulace z kontaminovaných půd v žížalách (Eisenia fetida, Savigny) a kroužkovcích vyvinula Americká společnost pro zkoušení a materiály (3).
A method on the measurement of bioaccumulation from contaminated soils in earthworms (Eisenia fetida, Savigny) and potworms has been developed by the American Society for Testing and Materials (3).
Mezinárodně uznávaná metoda pro stanovení bioakumulace v obohacené půdě zlepší posuzování rizik, která představují chemické látky pro terestrické ekosystémy, např. (25, 29).
An internationally accepted method for the determination of bioaccumulation in spiked soil will improve the risk assessment of chemicals in terrestrial ecosystems e.g. (25) (29).
Jelikož tito živočichové víří půdu a slouží jako potrava, mohou mít silný vliv na biologickou dostupnost látek pro jiné organismy, jako jsou bezobratlí (např. draví roztoči a brouci, např. (64)) nebo dravci (např. lišky a racci) z řad obratlovců (18, 62).
By bioturbation of the soil and by serving as prey these animals can have a strong influence on the bioavailability of chemicals to other organisms like invertebrates (e.g. predatory mites and beetles; e.g. (64)) or vertebrate (e.g. foxes and gulls) predators (18) (62).
Některé druhy terestrických máloštětinatců, kteří jsou v současné době využíváni pro ekotoxikologické zkoušky, jsou popsány v dodatku 5.
Some species of terrestrial oligochaetes currently used in ecotoxicological testing are described in Appendix 5.
Zkoušky pro měření bioakumulace chemické látky v pozemních máloštětinatcích byly provedeny s těžkými kovy (viz např. (63)) a persistentními organickými chemickými látkami, jejichž hodnoty log Kow se pohybují mezi 3,0 a 6,0 např. (40).
Tests for measuring the bioaccumulation of a chemical in terrestrial oligochaetes have been performed with heavy metals (see e.g. (63)) and persistent, organic chemicals having log Kow values between 3,0 and 6,0, e.g. (40).
Tyto zkoušky lze použít také pro:
Such tests also apply to:
Měla by být známa toxicita zkoušené látky pro druh použitý při zkoušce, například koncentrace vyvolávající účinek (ECx) nebo letální koncentrace (LCx) po dobu fáze příjmu (např. (19)).
Toxicity of the test chemical to the species used in the test should be known, e.g. an effect concentration (ECx) or lethal concentration (LCx) for the time of the uptake phase (e.g. (19)).
Zvolená koncentrace zkoušené látky by měla v optimálním případě být na úrovni 1 % její asymptotické hodnoty akutní LC50 a měla by být nejméně desetkrát vyšší než je mez detekce této látky v půdě při použité analytické metodě.
The selected concentration of the test chemical should preferably be about 1 % of its acute asymptotic LC50, and at least 10-fold higher than its detection limit in soil by the analytical method used.
Pokud je to možné, měla by být dána přednost hodnotám toxicity odvozeným z dlouhodobých studií o subletálních koncových bodech (51, 52).
If available, preference should be given to toxicity values derived from long-term studies on sublethal endpoints (51) (52).
Pokud tyto údaje nejsou k dispozici, poskytne užitečné informace zkouška akutní toxicity (viz např. (23)).
If such data are not available, an acute toxicity test will provide useful information (see e.g. (23)).