natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Dělicí nálevka na 500 ml.
500 ml separating funnel.
Baňky na 250 ml.
250 ml flasks.
Kompletní zařízení pro tenkovrstvou chromatografii se skleněnými deskami o rozměrech 20 × 20 cm.
Complete apparatus for analysis by thin-layer chromatography using 20 x 20 cm glass plates.
Ultrafialová lampa s vlnovou délkou 254 nebo 366 nm.
Ultraviolet lamp with a wavelength of 254 or 366 nm.
Mikrostříkačky na 100 μl a 500 μl.
100 μl and 500 μl microsyringes.
Filtrační nálevka ze sintrovaného skla s pórovitou fritou G3 (pórovitost 15 až 40 μm) o průměru přibližně 2 cm a výšce 5 cm, vybavená uzávěrem pro vakuovou filtraci a s vnějším zábrusem.
Cylindrical filter funnel with a G3 porous septum (porosity 15-40 μm) of diameter approximately 2 cm and a depth of 5 cm, suitable for filtration under vacuum with male ground-glass joint.
Odsávací baňka na 50 ml s vnitřním zábrusem pro použití s filtrační nálevkou (3.7).
50 ml vacuum conical flask with ground-glass female joint, which can be fitted to the filter funnel (point 3.7).
Zkumavka na 10 ml s kónickým dnem a skleněnou zátkou.
10 ml test tube with a tapering bottom and a sealing glass stopper.
Plynový chromatograf vhodný pro použití s kapilární kolonou, opatřený systémem děleného nástřikového zařízení složený z:
Gas chromatograph suitable for use with a capillary column with split injection system, consisting of:
termostatické kolonové komory nastavitelné na požadovanou teplotu s přesností ± 1 °C;
A thermostatic chamber for columns capable of maintaining the desired temperature with an accuracy of ± 1°C;
vstřikovací jednotky s termostatem (vstřikové komory) s povlakem ze silanizovaného skla a s dělicím systémem;
A temperature-adjustable injection unit with a persilanised glass vaporising element and split system;
plamenoionizačního detektoru (FID);
A flame ionisation detector (FID);
systému pro sběr dat vhodného pro provoz s detektorem FID (bod 3.10.3) s možností manuální integrace.
Data acquisition system suitable for use with the FID detector (point 3.10.3.), capable of manual integration.
Kapilární kolona z taveného křemene dlouhá 20 až 30 m, s vnitřním průměrem 0,25 až 0,32 mm, potažená 5% difenyl – 95% dimethylpolysiloxanem (stacionární fáze SE-52 nebo SE-54 nebo ekvivalentní), o jednotné tloušťce 0,10 až 0,30 μm.
Fused-silica capillary column of length 20 to 30 m, internal diameter 0,25 to 0,32 mm, coated with 5 % diphenyl - 95 % dimethylpolysiloxane (SE-52 or SE-54 stationary phase or equivalent), to a uniform thickness between 0,10 and 0,30 μm.
Mikrostříkačka na 10 μl pro plynovou chromatografii opatřená tvrzenou jehlou pro nástřik pomocí děliče.
Microsyringe, of 10 ml capacity, for gas chromatography, with cemented needle suitable for split injection.
Exsikátor s chloridem vápenatým.
Calcium dichloride desiccator
Hydroxid draselný, minimální titr 85 %.
Potassium hydroxide minimum titre 85 %.
Hydroxid draselný ve formě ethanolického roztoku o koncentraci přibližně 2 mol/l.
Potassium hydroxide ethanolic solution, approximately 2 N.
130 g hydroxidu draselného (bod 4.1) se za současného chlazení rozpustí ve 200 ml destilované vody a doplní se do jednoho litru ethanolem (bod 4.10).
Dissolve 130 g of potassium hydroxide (point 4.1) with cooling in 200 ml of distilled water and then make up to one litre with ethanol (point 4.10).
Tento roztok je nutno uchovávat v dobře uzavřené skleněné láhvi z tmavého skla a skladovat po dobu maximálně dvou dnů.
Keep the solution in well-stoppered dark glass bottles and stored maximum two days.
Diethylether čistoty p.a.
Ethyl ether, for analysis quality.
Hydroxid draselný ve formě ethanolického roztoku o koncentraci přibližně 0,2 mol/l.
Potassium hydroxide ethanolic solution, approximately 0,2 N.
13 g hydroxidu draselného (bod 4.1) se rozpustí ve 20 ml destilované vody a doplní se do jednoho litru ethanolem (bod 4.10).
Dissolve 13 g of potassium hydroxide (point 4.1) in 20 ml of distilled water and make up to one litre with ethanol (point 4.10).
Bezvodý síran sodný čistoty p.a.
Anhydrous sodium sulphate, for analysis quality.
Silikagelem potažené skleněné desky (20 x 20 cm) bez fluorescenčního indikátoru o tloušťce 0,25 mm (obchodně dostupné).
Glass plates (20x20 cm) coated with silica gel, without fluorescence indicator, thickness 0,25 mm (commercially available ready for use).
Toluen čistoty pro chromatografii.
Toluene, for chromatography quality.
Aceton čistoty pro chromatografii.
Acetone, for chromatography quality.
N-hexan čistoty pro chromatografii.
n-Hexane, for chromatography quality.
Diethylether čistoty pro chromatografii.
Ethyl ether, for chromatography quality.
Ethanol čistoty p.a.
Ethanol of analytical quality.
Ethylacetát čistoty p.a.
Ethyl acetate of analytical quality.
Referenční roztok pro tenkovrstvou chromatografii: 5% roztok cholesterolu nebo fytosterolu a erythrodiolu v ethylacetátu (bod 4.11).
Reference solution for thin-layer chromatography: cholesterol or phytosterols, and erythrodiol 5 % solution in ethyl acetate (point 4.11).
Bezvodý pyridin čistoty pro chromatografii (viz poznámka 5).
Anhydrous pyridine, for chromatography quality (see Note 5).
Hexamethyl disilazan čistoty p.a.
Hexamethyl disilazane of analytical quality.
Trimethyl-chlorsilan čistoty p.a.
Trimethylchlorosilane of analytical quality.
Zkušební roztoky sterol(trimethylsilyl)etherů.
Sample solutions of sterol trimethylsilyl ethers.
Připraví se ze sterolů nebo z erythrodiolu získaných z olejů, které je obsahují, těsně před použitím.
To be prepared at the time of use from sterols and erythrodiol obtained from oils containing them.
α-cholestanol o čistotě vyšší než! 99% (čistota musí být kontrolována pomocí analýzy plynovou chromatografií).
α-cholestanol, purity more than 99 % (purity must be checked by GC analysis).
0,2% vnitřní standardní roztok α-cholestanolu, roztok (m/V) v ethylacetátu (bod 4.11).
α-cholestanol internal standard solution, 0,2 % solution (m/V) in ethyl acetate (point 4.11).
Roztok fenolftaleinu 10 g/L v ethanolu (bod 4.10).
Phenolphthalein solution, 10 g/L in ethanol (point 4.10).
Nosné plyny: vodík nebo helium, čisté pro plynovou chromatografii.
Carrier gas: hydrogen or helium, gas-chromatographic purity.
Pomocné plyny: vodík, helium, dusík a vzduch, čisté pro plynovou chromatografii.
Auxiliary gases: hydrogen, helium, nitrogen and air, of gas-chromatographic purity.
N-hexan (bod 4.9)/diethylether (bod 4.10) směs 65:35 (V/V).
n-Hexane (point 4.9)/ethyl ether (point 4.10) mixture 65:35 (V/V).
Činidlo pro silylaci tvořené směsí pyridinu, hexamethyl-disilazanu a trimethyl-chlorsilanu v poměru 9:3:1 (V/V/V).
Silylation reagent, consisting of a 9:3:1 (V/V/V) mixture of pyridine/hexamethyl disilazane/trimethylchlorosilane.
Příprava nezmýdelnitelných látek
Preparation of the unsaponifiable matter.
Pomocí mikrostříkačky na 500 μl (bod 3.6) se do baňky na 250 ml dá (bod 3.1) vnitřní standardní roztok α-cholestanolu (bod 4.20) obsahující množství cholestanolu rovnající se přibližně 10 % obsahu sterolu ve vzorku.
Using a 500 μl microsyringe (point 3.6) introduce into the 250 ml flask (point 3.1) a volume of the α-cholestanol internal standard solution (point 4.20) containing an amount of cholestanol corresponding to approximately 10 % of the sterol content of the sample.
Například při analýze olivového oleje se na 5 g vzorku olivového oleje přidá 500 μl roztoku α-cholestanolu (bod 4.20) a 1500 μl při analýze olivového oleje z pokrutin.
For example, for 5 g of olive oil sample add 500 μl of the α-cholestanol solution (point 4.20) and 1500 μl for olive-pomace oil.
V mírném proudu dusíku v teplé vodní lázni se vzorek odpaří do sucha a po vychladnutí baňky se do stejné baňky naváží 5±0,01 g vysušeného přefiltrovaného vzorku.
Evaporate until dryness with a gentle current of nitrogen in a warm water bath, after cooling the flask, weigh 5 ± 0,01 g of the dry filtered sample into the same flask.
Živočišné nebo rostlinné oleje obsahující větší množství cholesterolu mohou vykazovat pík s retenčním časem blízkým cholestanolu.
Animal or vegetable oils and fats containing appreciable quantities of cholesterol may show a peak having a retention time close to cholestanol.
Pokud k tomu dojde, musí být sterolová frakce analyzována jednou s vnitřním standardem a jednou bez něj.
If this occurs, the sterol fraction will have to be analysed in duplicate with and without internal standard.
Přidá se 50 ml ethanolického roztoku hydroxidu draselného o koncentraci 2 mol/l (bod 4.2) a malé množství pemzy, připojí se zpětný chladič a zahřeje se do mírného varu, dokud nedojde ke zmýdelnění (roztok se vyčeří).
Add 50 ml of 2 N ethanolic potassium hydroxide solution (point 4.2) and some pumice, fit the reflux condenser and heat to gentle boiling until saponification takes place (the solution becomes clear).
V zahřívání se pokračuje dalších 20 minut a poté se přes chladič přidá 50 ml destilované vody, chladič se následně odpojí a baňka se vychladí na teplotu přibližně 30 °C.
Continue heating for a further 20 minutes, then add 50 ml of distilled water from the top of the condenser, detach the condenser and cool the flask to approximately 30 °C.
Obsah baňky se kvantitativně převede do dělicí nálevky na 500 ml (bod 3.2) a propláchne se několika dávkami destilované vody (50 ml).
Transfer the contents of the flask quantitatively into a 500 ml separating funnel (point 3.2) using several portions of distilled water (50 ml).
Přidá se přibližně 80 ml diethyletheru (bod 4.10), vše se protřepe po dobu přibližně 60 sekund a pravidelně se uvolňuje tlak obracením dělicí nálevky a otevíráním kohoutku.
Add approximately 80 ml of ethyl ether (point 4.10), shake vigorously for approximately 60 seconds, periodically releasing the pressure by inverting the separating funnel and opening the stopcock.
Nechá se odstát až do úplného oddělení obou fází (viz poznámka 2).
Allow standing until there is complete separation of the two phases (Note 2).
Poté se co nejvíce mýdlového roztoku odčerpá do druhé dělicí nálevky.
Then draw off the soap solution as completely as possible into a second separating funnel.
Stejným způsobem se provedou další dvě extrakce vodně-alkoholové fáze, vždy s použitím 60 až 70 ml diethyletheru (bod 4.10).
Perform two further extractions on the water-alcohol phase in the same way using 60 to 70 ml of ethyl ether (point 4.10).
Poznámka 2: Emulze je možné odstranit přidáním malých množství ethanolu (bod 4.11).
Note 2: Any emulsion can be destroyed by adding small quantities of ethanol (point 4.11).
Všechny tři etherové extrakty se smíchají v jedné dělicí nálevce obsahující 50 ml vody.
Combine the three ether extracts in one separating funnel containing 50 ml of water.
Dále se promývá vodou (50 ml), dokud se promývací voda při přidání kapky roztoku fenolftaleinu nepřestane zbarvovat růžově (bod 4.21).
Continue to wash with water (50 ml) until the wash water no longer gives a pink colour on the addition of a drop of phenolphthalein solution (point 4.21).
Odstraní se vodná fáze, etherová fáze se přefiltruje na bezvodém síranu sodném (bod 4.5) do předem zvážené baňky na 250 ml, přičemž nálevka a filtr se promyjí malými množstvími diethyletheru (bod 4.10).
When the wash water has been removed, filter on anhydrous sodium sulphate (point 4.5) into a previously weighed 250 ml flask, washing the funnel and filter with small quantities of ethyl ether (point 4.10).
Rozpouštědlo se nechá odpařit destilací ve vakuu v rotačním odpařovači při 30 °C.
Evaporate the solvent by distillation on a rotary evaporator at 30 °C under vacuum.
Přidá se 5 ml acetonu a těkavé rozpouštědlo se zcela odstraní mírným proudem vzduchu.
Add 5 ml of acetone and remove the volatile solvent completely in a gentle current of air.
Zbytek se suší v sušárně při 103±2 °C po dobu 15 min. Po vychlazení v exsikátorech se zváží s přesností na 0,1 mg.
Dry the residue in the oven at 103±2 °C for 15 min. Cool in desiccators and weigh to the nearest 0,1 mg.
Separace sterolové frakce a frakce triterpenických dialkoholů (erythrodiol + uvaol)
Separation of the sterol and triterpene dialcohols fraction (erythrodiol + uvaol)
Příprava bazických desek pro tenkovrstvou chromatografii.
Preparation of the basic thin layer chromatography plates.
Silikagelové desky (bod 4.6) (cca 4 cm) se na 10 sekund zcela ponoří do ethanolického roztoku hydroxidu draselného o koncentraci 0,2 mol/l (bod 4.5), poté se nechají dvě hodiny sušit v digestoři a nakonec na jednu hodinu umístí do sušárny vyhřáté na 100 °C.
Immerse the silica gel plates (point 4.6) about 4 cm in the 0,2 N ethanolic potassium hydroxide solution (point 4.5) for 10 seconds, then allow to dry in a fume cupboard for two hours and finally place in an oven at 100 °C for one hour.
Desky se vyjmou ze sušárny a až do okamžiku použití uloží do exsikátoru s chloridem vápenatým (bod 3.13). Takto upravené desky musí být použity během 15 dnů.
Remove from the oven and keep in a calcium chloride desiccator (point 3.13) until required for use (plates treated in this way must be used within 15 days).
Jsou-li pro separaci sterolové frakce použity bazické silikagelové desky, není nutné upravovat nezmýdelnitelnou frakci pomocí Al2O3 (oxidu hlinitého).
When basic silica gel plates are used to separate the sterol fraction there is no need to treat the unsaponifiable fraction with alumina.
Dojde tak k zadržení všech kyselých sloučenin (mastných kyselin apod.) na počátku, a tím se zřetelně oddělí pásmo sterolů od pásma alifatických a triterpenických alkoholů.
In this way all compounds of an acid nature (fatty acids and others) are retained on the spotting line and the sterols band is clearly separated from the aliphatic and triterpene alcohols band.
Vyvíjecí komora se naplní směsí hexanu a diethyletheru (bod 4.24) (viz poznámka 4) do výšky přibližně 1 cm.
Place hexane/ethyl ether mixture (point 4.24) (Note 4) into the development chamber, to a depth of approximately 1 cm.
Vyvíjecí komora se uzavře a nejméně půl hodiny ponechá v klidu a chladnu, aby se mohla vytvořit rovnováha mezi parami a kapalinou.
Close the chamber with the appropriate cover and leave thus for at least half an hour, in a cool place, so that liquid-vapour equilibrium is established strips of filter paper dipping into the eluent may be placed on the internal surfaces of the chamber.
Na vnitřní povrch vyvíjecí komory je možné připojit proužky filtračního papíru namočené v eluční směsi za účelem zkrácení doby vyvolávání přibližně o jednu třetinu a docílení stejnoměrnější, pravidelné eluce složek.
This reduces developing time by approximately one-third and brings about more uniform and regular elution of the components.
Vyvíjecí roztok musí být pro každou analýzu vyměněn, aby bylo dosaženo reprodukovatelných podmínek vyvíjení; lze použít alternativní rozpouštědlo 50:50 (V/V) n-hexanu a diethyletheru.
The developing mixture needs to be replaced for every test, in order to achieve perfectly reproducible elution conditions, alternative solvent 50:50 (V/V) n-hexane/ethyl ether may be used.
Připraví se přibližně 5% roztok nezmýdelnitelné látky (bod 5.1.5) v ethylacetátu (bod 4.12) a 0,3 ml tohoto roztoku se pomocí mikrostříkačky na 100 μl nastříkne jako úzký a rovnoměrný pruh k dolnímu okraji (2 cm) chromatografické desky (bod 5.2.1).
Prepare an approximately 5 % solution of the unsaponifiable (point 5.1.5) in ethyl acetate (point 4.12) and, using the 100 μl microsyringe, depose 0,3 ml of the solution on a narrow and uniform streak on the lower end (2 cm) of the chromatographic plate (point 5.2.1).
Ve stejné úrovni se nanese 2 až 3 μl referenčního roztoku materiálu (bod 4.13) za účelem stanovení sterolového pásma a pásma triterpenických dialkoholů po dokončení vyvíjení.
In line with the streak, place 2 to 3 μl of the material reference solution (point 4.13), so that the sterol and triterpene dialcohols band can be identified after developing.
Deska se umístí do vyvíjecí komory uvedené v bodě 5.2.2.
Place the plate in the developing chamber prepared as specified in point 5.2.2.
Teplota se udržuje mezi 15 a 20 °C (viz poznámka 5).
The ambient temperature should be maintained between 15 and 20 °C (Note 5).
Vyvíjecí komora se okamžitě uzavře a vzorek se nechá eluovat, dokud čelo rozpouštědla nedosáhne přibližně 1 cm od horního okraje desky.
Immediately close the chamber with the cover and allow eluting until the solvent front reaches approximately 1 cm from the upper edge of the plate.
Deska se poté vyjme z vyvíjecí komory a rozpouštědlo se nechá odpařit pod proudem horkého vzduchu nebo se deska na chvíli nechá v digestoři.
Remove the plate from the developing chamber and evaporate the solvent in a flow of hot air or by leaving the plate for a short while, under a hood.
Poznámka 5: Vyšší teplota může zhoršit oddělování.
Note 5: Higher temperature could worsen the separation.
Deska se lehce a rovnoměrně postříká roztokem 2,7-dichlor-fluoresceinu (bod 4.14), nechá se uschnout a pozoruje se pod ultrafialovým zářením.
Spray the plate lightly and uniformly with the 2,7-dichlorofluorescein solution (point 4.14) and then leave to dry.
Sterolové pásmo a pásmo triterpenických dialkoholů se stanoví porovnáním skvrn vytvořených referenčním roztokem (bod 4.13).
When the plate is observed under ultraviolet light, the sterols and triterpene dialcohols bands can be identified through being aligned with the spots obtained from the reference solution (point 4.13).
Obrysy pásem podél okrajů fluorescence se vyznačí černým značkovačem (viz obrázek tenkovrstvé desky č. 3).
Mark the limits of the bands along the edges of the fluorescence with a black pencil (see TLC plate figure 3).
Silikagel se z označené oblasti seškrábe pomocí kovové špachtle.
By using a metal spatula, scrape off the silica gel of the marked area.
Odebraná hmota se rozmělní na malé části a převede do filtrační nálevky (bod 3.7).
Place the finely comminuted material removed into the filter funnel (point 3.7).
Přidá se 10 ml horkého ethylacetátu (bod 4.12). Obsah se důkladně promíchá kovovou stěrkou a vakuově přefiltruje. Filtrát se shromáždí v baňce připojené na filtrační nálevku (bod 3.8.).
Add 10 ml of hot ethyl acetate (point 4.12), mix carefully with the metal spatula and filter under vacuum, collecting the filtrate in the conical flask (point 3.8.) attached to the filter funnel.
Zbytek v baňce se propláchne 3 x 10 ml diethyletheru (bod 4.3).
Wash the residue in the flask three times with ethyl ether (point 4.3) (approximately 10 ml each time), collecting the filtrate in the same flask attached to the funnel, evaporate the filtrate to a volume of 4 to 5 ml, transfer the residual solution to the previously weighed 10 ml test tube (point 3.9), evaporate to dryness by mild heating, in a gentle flow of nitrogen, make up again using a few drops of acetone (point 4.8), evaporate again to dryness,
Filtrát se přitom sbírá do stejné baňky připojené k nálevce. Filtrát se odpaří na objem přibližně 4 až 5 ml a zbytkový roztok se převede do předem zvážené zkumavky na 10 ml (bod 3.9). Zkumavka se vysuší lampou pod mírným proudem dusíku. Zbytek se znovu rozpustí několika kapkami acetonu (bod 4.8) a opět vysuší. Zbytek ve zkumavce musí být tvořen sterolovou frakcí a frakcí triterpenických dialkoholů.
The residue contained in the test tube must consist of the sterol and triterpene dialchols fractions.
Příprava trimethylsilyletherů
Preparation of the trimethylsilyl ethers.
Do zkumavky obsahující sterolovou a triterpenickou frakci se přidá činidlo pro silylaci (bod 4.25) (viz poznámka 6), v množství 50 μl na každý mg sterolů a triterpenických dialkoholů Přitom je nutné zabránit jakékoli absorpci vlhkosti (viz poznámka 7).
Add the silylation reagent (point 4.25) (Note 6), in the ratio of 50 μl for every milligram of sterols and triterpene dialcohols, in the test tube containing the sterol and triterpene fraction, avoiding any uptake of moisture (Note 7).
Roztoky připravené k použití jsou obchodně dostupné.
Ready for use solutions are available commercially.
Dostupná jsou rovněž další silylační činidla, jako například N,O-bis-(trimethylsilyl)trifluoracetamid + 1 % trimethyl-chlor-silan pro smíchání se stejným objemem bezvodého pyridinu.
Other silylation reagents, such as, for example, bistrimethylsilyl trifluor acetamide + 1 % trimethylchlorosilane, which has to be diluted with an equal volume of anhydrous pyridine, are also available.
Pyridin lze nahradit stejným množstvím acetonitrilu.
Pyridine can be replaced by the same amount of acetonitrile.
Zkumavka se uzavře a pečlivě protřepe bez převracení, dokud se sloučeniny nerozpustí.
Stopper the test tube, shake carefully (without overturning) until the compounds are completely dissolved.
Poté se nechá v klidu nejméně 15 minut při laboratorní teplotě a následně několik minut odstřeďuje.
Leave to stand for at least 15 minutes at ambient temperature and then centrifuge for a few minutes.
Čirý roztok je připraven pro plynovou chromatografickou analýzu.
The clear solution is ready for gas chromatographic analysis.
Vznik slabé opalescence je normální a nezpůsobuje žádnou anomálii.
The slight opalescence, which may form, is normal and does not cause any anomaly.
Tvorba bílých vloček nebo existence růžového zabarvení jsou známkami přítomné vlhkosti nebo degradace činidla.
The formation of a white flock or the appearance of a pink colour is indicative of the presence of moisture or deterioration of the reagent.
V tomto případě je třeba zkoušku opakovat (pouze v případě, že byl použit hexamethyl-disilazan/trimethyl-chlorsilan).
If this occurs, the test must be repeated (only if hexamethyldisilazane/trimethylchlorosilane is used).
Analýza plynovou chromatografií
Gas chromatographic analysis.
Přípravné operace a kondicionace kapilární kolony.
Preliminary operations, capillary column conditioning.
Kapilární kolona se připojí (bod 3.11) k plynovému chromatografu tak, že začátek kolony se připojí k dělenému nástřikovému zařízení a konec kolony se připojí k detektoru.
Fit the column (point 3.11) in the gas chromatograph, by attaching the inlet end to the split injector and the outlet end to the detector.
Provede se kompletní kontrola plynového chromatografu (těsnost plynových spojovacích prvků, účinnost detektoru, účinnost oddělovacího a zapisovacího systému atd.).
Carry out general checks on the gas chromatograph unit (leaks from the gas circuits, detector efficiency, efficiency of the splitting system and recording system, etc.).
Kapilární kolony, které mají být použity poprvé, je nutno nejprve kondicionovat; samotnou kolonou se nechá protékat malé množství nosného plynu, poté se zapne plynový chromatograf a nechá se postupně zahřívat, dokud není dosaženo teploty nejméně o 20 °C vyšší, než je laboratorní teplota (viz poznámka 8).
If the column is being used for the first time, it is recommended that it be subjected to conditioning: passing a gentle flow of gas through the column itself, then switch on the gas chromatography unit and begin a gradual heating, up to a temperature of at least 20 °C above the operating temperature (Note 8).
Tato teplota se udržuje nejméně dvě hodiny a poté se systém převede do pracovních podmínek (regulace průtoku plynu, oddělování, zapálení plamene, připojení výpočetního systému, nastavení teploty kolony, detektoru, injektoru atd.) a signál se nastaví na citlivost, která činí nejméně dvojnásobek nejvyšší úrovně uvažované pro provedení analýzy.
Hold this temperature for at least two hours, then place the entire unit in operating mode (adjustment of gas flows and splitting, ignition of the flame, connection with the computing system, adjustment of the column, detector and injector temperature, etc.) and then record the signal with a sensitivity at least two times greater than that one intended for the analysis.
Základní linie záznamu musí být rovná, bez jakýchkoli píků nebo driftů.
The course of the base line must be linear, without peaks of any kind, and must not show drift.
Záporné drifty jsou známkou nedokonalé těsnosti spojů kolony, zatímco kladné svědčí o nedostatečné kondicionaci kolony.
A negative straight-line drift indicates leakage from the column connections; a positive drift indicates inadequate conditioning of the column.
Poznámka 8:
Note 8: