natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Koncentrace bez pozorovaných účinků (No Observed Effect Concentration, NOEC): je zkušební koncentrace bezprostředně nižší než LOEC.
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
Proměnná odezvy: je proměnná pro odhad toxicity odvozená z jakýchkoliv naměřených parametrů, jež popisují biomasu, různými metodami výpočtu.
Response variable: is a variable for the estimation of toxicity derived from any measured parameters describing biomass by different methods of calculation.
U této metody jsou proměnnými odezvy růstová rychlost a výtěžek, které se odvozují přímo z měření biomasy nebo jakékoliv z uvedených náhrad.
For this method, growth rates and yield are response variables derived from measuring biomass directly or any of the surrogates mentioned.
Specifická růstová rychlost: je proměnná odezvy definovaná jako kvocient rozdílu přirozených logaritmů sledovaného parametru (v této zkušební metodě je jím biomasa) a příslušného časového období.
Specific growth rate: is a response variable defined as the quotient of the difference of the natural logarithms of a parameter of observation (in this Testing Method, biomass) and the respective time period.
Výtěžek: je hodnota proměnné měření na konci expoziční doby minus hodnota proměnné měření na počátku expoziční doby pro vyjádření nárůstu biomasy během zkoušky.
Yield: is the value of a measurement variable at the end of the exposure period minus the measurement variable’s value at the start of the exposure period to express biomass increase during the test.
POUŽITELNOST ZKUŠEBNÍ METODY
APPLICABILITY OF THE TEST
Tato zkušební metoda se nejsnadněji používá pro látky rozpustné ve vodě, které za podmínek zkoušky pravděpodobně ve vodě zůstanou.
This Testing Method is most easily applied to water-soluble substances which, under the conditions of the test, are likely to remain in the water.
Pro zkoušení látek, které jsou těkavé, silně adsorbují, jsou zbarvené, mají nízkou rozpustnost ve vodě, nebo látek, které mohou nepříznivě ovlivňovat dostupnost živin či minerálů ve zkušebním médiu, mohou být potřebné určité úpravy popsaného postupu (např. uzavřený systém, klimatizace zkušebních nádob).
For testing of substances that are volatile, strongly adsorbing, coloured, having a low solubility in water or substances that may affect the availability of nutrients or minerals in the test medium, certain modifications of the described procedure may be required (e.g. closed system, conditioning of the test vessels).
Pokyny k některým vhodným úpravám jsou uvedeny v literatuře (2, 3 a 4).
Guidance on some appropriate modifications is given in (2), (3) and (4).
Účelem této zkoušky je stanovit účinek látky na růst sladkovodních mikrořas a/nebo sinic.
The purpose of this test is to determine the effects of a substance on the growth of freshwater microalgae and/or cyanobacteria.
Exponenciálně rostoucí testovací organismy jsou vystaveny zkoušené látce v dávkových kulturách obvykle po dobu 72 hodin.
Exponentially growing test organisms are exposed to the test substance in batch cultures over a period of normally 72 hours.
Navzdory relativně krátké době trvání zkoušky lze posoudit účinky na několik generací.
In spite of the relatively brief test duration, effects over several generations can be assessed.
Systémovou odezvou je snížení růstu v řadě kultur řas (zkušebních jednotek) vystavených různým koncentracím zkoušené látky.
The system response is the reduction of growth in a series of algal cultures (test units) exposed to various concentrations of a test substance.
Odezva se vyhodnocuje jako funkce expoziční koncentrace v porovnání s průměrným růstem neexponovaných kontrolních kultur použitých k opakování.
The response is evaluated as a function of the exposure concentration in comparison with the average growth of replicate, unexposed control cultures.
Zkoumaným účinkem je inhibice růstu vyjádřená jako logaritmické zvýšení biomasy (průměrná specifická růstová rychlost) během expoziční doby.
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as the logarithmic increase in biomass (average specific growth rate) during the exposure period.
Z průměrných specifických růstových rychlostí zaznamenaných v řadě zkušebních roztoků se stanoví koncentrace způsobující stanovenou x% inhibici růstové rychlosti (např. 50 %) a vyjádří se jako ErCx (např. ErC50).
From the average specific growth rates recorded in a series of test solutions, the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth rate (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ErCx (e.g. ErC50).
Při použití této metody v rámci práva EU by měl být výpočet výsledků založen na průměrné specifické růstové rychlosti, a to z důvodů uvedených v bodě 2.2.
For the application of this method within the EU regulatory framework, calculation of results should be based on an average specific growth rate for the reasons described in section 2.2 below.
Z výtěžku zaznamenaného v řadě zkušebních roztoků se vypočítá koncentrace způsobující stanovenou x% inhibici výtěžku (např. 50 %) a vyjádří se jako EyCx (např. EyC50).
From the yield recorded in a series of test solutions, the concentration bringing about a specified x % inhibition of yield (e.g. 50 %) is calculated and expressed as the EyCx (e.g. EyC50).
Kromě toho se může statisticky určit nejnižší koncentrace s pozorovanými účinky (LOEC) a koncentrace bez pozorovaných účinků (NOEC).
In addition, the lowest observed effect concentration (LOEC) and the no observed effect concentration (NOEC) may be statistically determined.
Užitečnými informacemi o zkoušené látce pro účely stanovení zkušebních podmínek mohou být strukturní vzorec, čistota, stálost na světle, stálost v podmínkách zkoušky, vlastnosti světelné absorpce, pKa a výsledky studií transformace včetně biologické rozložitelnosti ve vodě.
Information on the test substance, which may be useful in establishing the test conditions, includes the structural formula, purity, stability in light, stability under the conditions of the test, light absorption properties, pKa, and results of studies of transformation including biodegradability in water.
Měly by být známy rozpustnost zkoušené látky ve vodě, její rozdělovací koeficient oktanol/voda (Po/v) a tlak jejích par a měla by být k dispozici validovaná metoda kvantitativního stanovení látky ve zkušebních roztocích, a to s doloženou výtěžností a mezí detekce.
The water solubility, octanol water partition coefficient (Pow) and the vapour pressure of the test substance should be known, and a validated method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency and limit of detection should be available.
Jako prostředek kontroly zkušebního postupu lze zkoušet referenční látku (látky), například 3,5-dichlorfenol použitý v mezinárodní kroužkové zkoušce (4).
Reference substance(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (4), may be tested as a means of checking the test procedure.
Dichroman draselný lze rovněž použít jako referenční látku pro zelené řasy.
Potassium dichromate can also be used as a reference substance for green algae.
Je žádoucí zkoušet referenční látku nejméně dvakrát ročně.
It is desirable to test a reference substance at least twice a year.
Má-li být zkouška platná, musí být splněna tato kritéria reprodukční schopnosti:
For the test to be valid, the following performance criteria should be met:
Biomasa by se měla v kontrolních kulturách během 72hodinové zkušební doby zvýšit exponenciálně, a to nejméně šestnáctkrát.
The biomass in the control cultures should have increased exponentially by a factor of at least 16 within the 72-hour test period.
To odpovídá specifické růstové rychlosti 0,92 den–1.
This corresponds to a specific growth rate of 0,92 day–1.
U nejčastěji používaných druhů je obvykle růstová rychlost výrazně vyšší (viz dodatek 1).
For the most frequently used species, the growth rate is usually substantially higher (see Appendix 1).
Může se stát, že se toto kritérium nesplní, pokud se používají druhy, které rostou pomaleji než druhy uvedené na seznamu v dodatku 1.
This criterion may not be met when species that grow slower than those listed in Appendix 1 are used.
V takovém případě je třeba prodloužit zkušební dobu, aby bylo dosaženo nejméně šestnáctinásobného růstu kontrolních kultur, přičemž růst musí být během zkušebního období exponenciální.
In this case, the test period should be extended to obtain at least a 16-fold growth in control cultures, while the growth has to be exponential throughout the test period.
Zkušební dobu lze zkrátit až na minimální dobu 48 hodin, aby se během zkoušky udržel neomezený exponenciální růst, pokud bude dosaženo minimálního násobícího koeficientu 16.
The test period may be shortened to at least 48 h to maintain unlimited exponential growth during the test, as long as the minimum multiplication factor of 16 is reached.
Střední variační koeficient pro specifické růstové rychlosti v jednotlivých obdobích (dny 0–1, 1–2 a 2–3 při 72hodinové zkoušce) v kontrolních kulturách (viz bod 1.2 odstavec „variační koeficient“) nesmí překročit 35 %.
The mean coefficient of variation for section-by-section specific growth rates (days 0-1, 1-2 and 2-3, for 72-hour tests) in the control cultures (see section 1.2 under ‘coefficient of variation’) must not exceed 35 %.
Pro výpočet specifické růstové rychlosti v jednotlivých obdobích viz bod 2.2.1 druhý odstavec.
See the second paragraph in section 2.2.1 for the calculation of section-by-section specific growth rate.
Toto kritérium platí pro střední hodnotu variačních koeficientů vypočítaných pro kontrolní kultury použité k opakování.
This criterion applies to the mean value of coefficients of variation calculated for replicate control cultures.
Variační koeficient průměrných specifických růstových rychlostí během celého zkušebního období u kontrolních kultur použitých k opakování nesmí překročit 7 % u zkoušek s Pseudokirchneriella subcapitata a Desmodesmussubspicatus.
The coefficient of variation of average specific growth rates during the whole test period in replicate control cultures must not exceed 7 % in tests with Pseudokirchneriella subcapitata and Desmodesmussubspicatus.
U jiných méně často zkoušených druhů by hodnota neměla překročit 10 %.
For other less frequently tested species, the value should not exceed 10 %.
Zkušební nádoby a jiné přístroje a pomůcky, které přijdou do styku se zkušebními roztoky, by měly být celoskleněné nebo z jiného chemicky inertního materiálu. Jednotlivé díly je zapotřebí důkladně vymýt, aby bylo zajištěno, že žádné organické ani anorganické nečistoty nebudou moci narušovat růst řas nebo složení zkušebních roztoků.
Test vessels and other apparatus, which will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
Zkušebními nádobami budou za normálních podmínek skleněné baňky takových rozměrů, aby pojaly dostatečný objem kultury pro měření během zkoušky a umožnily dostatečný hmotnostní přenos CO2 z atmosféry (viz bod 1.8.9 druhý odstavec).
The items should be thoroughly washed to ensure that no organic or inorganic contaminants may interfere with the algal growth or composition of the test solutions.
Je třeba mít na paměti, že objem kapaliny musí být dostačující pro analytická stanovení (viz bod 1.8.11 pátý odstavec).
The test vessels will normally be glass flasks of dimensions that allow a sufficient volume of culture for measurements during the test and a sufficient mass transfer of CO2 from the atmosphere (see the second paragraph in section 1.8.9).
Kromě toho bude potřebné veškeré následující vybavení nebo jeho část:
Note that the liquid volume must be sufficient for analytical determinations (see the fifth paragraph in section 1.8.11).
Přístroje na měření světla: je důležité mít na paměti, že metoda měření intenzity světla a zejména typ snímače (kolektoru) ovlivní naměřenou hodnotu.
Light measurement instruments: it is important to note that the method of measurement of light intensity, and in particular the type of receptor (collector), will affect the measured value.
Měření by se mělo nejlépe provádět pomocí kulového (4 π) snímače (reaguje na přímé a odražené světlo ze všech úhlů nad a pod rovinou měření), nebo 2 π snímače (reaguje na světlo ze všech úhlů nad rovinou měření).
Measurements should preferably be made using a spherical (4 π) receptor (which responds to direct and reflected light from all angles above and below the plane of measurement), or a 2 π receptor (which responds to light from all angles above the measurement plane).
Zařízení pro stanovení biomasy řas.
Apparatus to determine algal biomass.
Počet buněk, který je nejčastěji používaným náhradním parametrem pro biomasu řas, lze určit pomocí elektronického počítače částic, mikroskopu s počítací komůrkou nebo průtokovým cytometrem.
Cell count, which is the most frequently used surrogate parameter for algal biomass, may be made using an electronic particle counter, a microscope with counting chamber, or a flow cytometer.
Další náhrady biomasy lze měřit průtokovým cytometrem, fluorimetrem, spektrofotometrem nebo kolorimetrem.
Other biomass surrogates can be measured using a flow cytometer, fluorimeter, spectrophotometer or colorimeter.
Je užitečné vypočítat faktor pro konverzi počtu buněk na suchou hmotnost.
A conversion factor relating cell count to dry weight is useful to calculate.
Aby bylo možné zajistit užitečná měření při nízkých koncentracích biomasy při použití spektrofotometru, může vzniknout nutnost používat kyvety s dráhou světla nejméně 4 cm.
In order to provide useful measurements at low biomass concentrations when using a spectrophotometer, it may be necessary to use cuvettes with a light path of at least 4 cm.
Testovací organismy
Test organisms
Lze použít několik druhů nevázaných mikrořas a sinic.
Several species of non-attached microalgae and cyanobacteria may be used.
Kmeny uvedené v dodatku 1 se ukázaly jako vhodné na základě zkušebního postupu uvedeného v této zkušební metodě.
The strains listed in Appendix 1 have been shown to be suitable using the test procedure specified in this Testing Method.
Jestliže se použijí jiné druhy, je třeba uvést ve zprávě kmen a/nebo původ.
If other species are used, the strain and/or origin should be reported.
Musí se potvrdit, že lze udržovat exponenciální růst vybraných zkušebních řas po zkušební dobu za převažujících podmínek.
It has to be confirmed that exponential growth of the selected test alga can be maintained throughout the test period under the prevailing conditions.
Růstové médium
Growth medium
Doporučují se dvě alternativní růstová média, médium OECD a AAP.
Two alternative growth media, the OECD and the AAP medium, are recommended.
Složení těchto médií je uvedeno v dodatku 2.
The compositions of these media are shown in Appendix 2.
Je třeba mít na paměti, že počáteční hodnota pH a kapacita pufru (regulující zvýšení pH) těchto dvou médií jsou odlišné.
Note that the initial pH value and the buffering capacity (regulating pH increase) of the two media are different.
Proto mohou být výsledky zkoušek odlišné v závislosti na použitém médiu, zejména při zkoušení ionizujících látek.
Therefore the results of the tests may be different depending on the medium used, particularly when testing ionising substances.
Pro určité účely může být nezbytná úprava růstových médií, např. když se zkouší kovy a chelátotvorná činidla nebo se provádí zkoušky při různých hodnotách pH.
Modification of the growth media may be necessary for certain purposes, e.g. when testing metals and chelating agents or testing at different pH values.
Použití upraveného média musí být podrobně popsáno a zdůvodněno (3, 4).
Use of a modified medium must be described in detail and justified (3)(4).
Počáteční koncentrace biomasy
Initial biomass concentration
Počáteční biomasa musí být stejná ve všech zkušebních kulturách a dostatečně nízká, aby umožňovala exponenciální růst po celou inkubační dobu bez rizika vyčerpání živin.
The initial biomass in the test cultures must be the same in all test cultures and sufficiently low to allow exponential growth throughout the incubation period without risk of nutrient depletion.
Počáteční biomasa by neměla překročit 0,5 mg/l suché hmotnosti.
The initial biomass should not exceed 0,5 mg/l as dry weight.
Doporučují se následující počáteční koncentrace buněk:
The following initial cell concentrations are recommended:
buněk/ml
cells/ml
Koncentrační rozmezí, ve kterém lze očekávat účinky, lze určit na základě výsledků orientačních zkoušek.
The concentration range in which effects are likely to occur may be determined on the basis of results from range-finding tests.
Pro závěrečnou definitivní zkoušku je zapotřebí vybrat alespoň pět koncentrací tvořících geometrickou řadu s faktorem nepřekračujícím 3,2.
For the final definitive test, at least five concentrations arranged in a geometric series with a factor not exceeding 3,2 should be selected.
U zkušebních látek vykazujících plochou křivku závislosti odezvy na koncentraci může být opodstatněný vyšší faktor.
For test substances showing a flat concentration response curve, a higher factor may be justified.
Řady koncentrací by nejlépe měly pokrývat rozmezí způsobující 5–75 % inhibici růstové rychlosti řas.
The concentration series should preferably cover the range causing 5-75 % inhibition of algal growth rate.
Jestliže se stanovení NOEC nepožaduje, plán zkoušky lze pozměnit tak, že se zvýší počet koncentrací a sníží počet opakování na příslušnou koncentraci.
If determination of the NOEC is not required, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Počet kontrolních opakování musí být nejméně tři a v ideálním případě by měl být dvojnásobkem počtu opakování používaných pro každou zkušební koncentraci.
The number of control replicates must be at least three, and ideally should be twice the number of replicates used for each test concentration.
Pro analytická stanovení koncentrací zkušební látky lze připravit samostatnou sadu zkušebních roztoků (viz bod 1.8.11 čtvrtý a šestý odstavec).
A separate set of test solutions may be prepared for analytical determinations of test substance concentrations (see the fourth and sixth paragraphs in section 1.8.11).
Pokud se k rozpouštění zkoušené látky používá rozpouštědlo, musí být do plánu zkoušky zahrnuty dodatečné kontroly obsahující rozpouštědlo o stejné koncentraci, jaká se používá ve zkušebních kulturách.
When a solvent is used to solubilise the test substance, additional controls containing the solvent at the same concentration as used in the test cultures must be included in the test design.
Příprava očkovací kultury
Preparation of inoculum culture
K přizpůsobení zkušebních řas na podmínky zkoušky a zajištění toho, aby řasy byly v exponenciální růstové fázi, když se použijí pro naočkování zkušebních roztoků, se očkovací kultura připravuje ve zkušebním médiu 2 až 4 dny před zahájením zkoušky.
In order to adapt the test alga to the test conditions and ensure that the algae are in the exponential growth phase when used to inoculate the test solutions, an inoculum culture in the test medium is prepared 2-4 days before start of the test.
Biomasu řas je třeba upravit, aby mohl v očkovací kultuře převážit do zahájení zkoušky exponenciální růst.
The algal biomass should be adjusted in order to allow exponential growth to prevail in the inoculum culture until the test starts.
Očkovací kultura se musí inkubovat za stejných podmínek jako zkušební kultury.
The inoculum culture shall be incubated under the same conditions as the test cultures.
Měřte nárůst biomasy v očkovací kultuře, aby bylo zajištěno, že je růst v rámci normálního rozmezí pro zkušební kmen za podmínek kultivace.
Measure the increase in biomass in the inoculum culture to ensure that growth is within the normal range for the test strain under the culturing conditions.
Příklad postupu pro kultivaci řas je popsán v dodatku 3.
An example of the procedure for algal culturing is described in Appendix 3.
Aby se zabránilo synchronnímu dělení buněk během zkoušky, může být potřebné provést druhý krok propagace očkovací kultury.
To avoid synchronous cell divisions during the test, a second propagation step of the inoculum culture may be required.
Příprava zkušebních roztoků
Preparation of test solutions
Všechny zkušební roztoky musí obsahovat stejné koncentrace růstového média a počáteční biomasy zkušebních řas.
All test solutions must contain the same concentrations of growth medium and initial biomass of test algae.
Zkušební roztoky zvolených koncentrací se obvykle připravují smísením zásobního roztoku zkoušené látky s růstovým médiem a očkovací kulturou.
Test solutions of the chosen concentrations are usually prepared by mixing a stock solution of the test substance with growth medium and inoculum culture.
Zásobní roztoky se obyčejně připravují rozpuštěním látky ve zkušebním médiu.
Stock solutions are normally prepared by dissolving the substance in test medium.
Jako nosiče pro přidávání látek o nízké rozpustnosti ve vodě do zkušebního média mohou být použita rozpouštědla, např. aceton, terc-butylalkohol a dimethylformamid (2, 3).
Solvents, e.g. acetone, t-butyl alcohol and dimethyl formamide, may be used as carriers to add substances of low water solubility to the test medium (2)(3).
Koncentrace rozpouštědla by neměla překročit 100 µl/l a do všech kultur (včetně kontrol) ve zkušební řadě by měla být přidána stejná koncentrace rozpouštědla.
The solvent concentration should not exceed 100 µl/l, and the same concentration of solvent should be added to all cultures (including controls) in the test series.
Zakryjte zkušební nádoby zátkami, které propouští vzduch.
Cap the test vessels with air-permeable stoppers.
Nádoby se protřepou a umístí se do kultivačního zařízení.
The vessels are shaken and placed in the culturing apparatus.
Během zkoušky je nezbytné udržovat řasy v suspensi a umožnit přenos CO2.
During the test it is necessary to keep the algae in suspension and to facilitate transfer of CO2.
Za tímto účelem je třeba provádět nepřetržité třepání nebo míchání.
To this end, constant shaking or stirring should be used.
Kultury se udržují při teplotě 21–24 °C udržované s přesností na ±2 °C.
The cultures should be maintained at a temperature in the range of 21 to 24 °C, controlled at ±2 °C.
U jiných druhů, než jsou druhy uvedené v seznamu v dodatku 1, např. u tropických druhů, mohou být vhodné vyšší teploty, pokud lze ovšem splnit kritéria validity.
For species other than those listed in Appendix 1, e.g. tropical species, higher temperatures may be appropriate, providing that the validity criteria can be fulfilled.
Doporučuje se umísťovat baňky náhodně a denně je v inkubátoru přemísťovat.
It is recommended to place the flasks randomly and to reposition them daily in the incubator.
Hodnota pH kontrolního média by neměla během zkoušky vzrůst o více než 1,5.
The pH of the control medium should not increase by more than 1,5 units during the test.
U kovů a sloučenin, které částečně ionizují při pH okolo pH zkoušky může být nezbytné omezit posun pH pro získání reprodukovatelných a dobře definovaných výsledků.
For metals and compounds that partly ionise at a pH around the test pH, it may be necessary to limit the pH drift to obtain reproducible and well defined results.
Posun o < 0,5 pH je technicky proveditelný a lze jej dosáhnout zajištěním adekvátní rychlosti přesunu hmoty CO2 z okolního vzduchu do zkušebního roztoku, např. zvýšením rychlosti třepání.
A drift of < 0,5 pH units is technically feasible and can be achieved by ensuring an adequate CO2 mass transfer rate from the surrounding air to the test solution, e.g. by increasing the shaking rate.
Další možností je snížit potřebu CO2 snížením počáteční biomasy nebo doby trvání zkoušky.
Another possibility is to reduce the demand for CO2 by reducing the initial biomass or the test duration.
Povrch, kde jsou kultury inkubovány, by měl být trvale osvětlen jednotným fluorescenčním světlem, např. „chladným bílým“ nebo „denním“ světlem.
The surface where the cultures are incubated should receive continuous, uniform fluorescent illumination e.g. of ‘cool-white’ or ‘daylight’ type.