natgillin/translations-raw huggingface dataset:
ISO/CD 14592–1 (1999).
ISO/CD 14592-1 (1999).
ZKOUŠKA INHIBICE RŮSTU LEMNA SPP.
LEMNA SP. GROWTH INHIBITION TEST
Tato metoda je rovnocenná Pokynu OECD pro zkoušení 221 (2006) (1).
This method is equivalent to OECD TG 221 (2006) (1).
Mezi orgány EU panuje široká shoda v tom, že zkouška na Lemna spp. je u intenzivně zbarvených látek vhodnou alternativou ke zkoušce na řasách (2, 3).
There has been broad agreement by EU authorities that the Lemna test is a suitable alternative to an algal test for strongly coloured substances (2)(3).
Tato zkušební metoda je určena k hodnocení toxicity látek pro sladkovodní rostliny rodu Lemna (okřehek).
This Testing Method is designed to assess the toxicity of substances to freshwater aquatic plants of the genus Lemna (duckweed).
Je založena na existujících pokynech (4, 5, 6, 7, 8, 9), ale obsahuje úpravy těchto metod, aby odrážela nejnovější výsledky výzkumu a konzultace v řadě klíčových záležitostí.
It is based on existing guidelines (4)(5)(6)(7)(8)(9) but includes modifications of those methods to reflect recent research and consultation on a number of key issues.
Navrhovaná metoda byla validována mezinárodní kroužkovou zkouškou (10).
The proposed method has been validated by an international ring-test (10).
Tato zkušební metoda popisuje zkoušení toxicity pomocí Lemna gibba a Lemna minor, které byly obě rozsáhle studovány a jsou předmětem shora uvedených norem.
This Testing Method describes toxicity testing using Lemnagibba and Lemna minor, both of which have been extensively studied and are the subject of the standards referred to above.
Taxonomie Lemna spp. je obtížná a je komplikována existencí široké škály fenotypů.
The taxonomy of Lemna spp. is difficult, being complicated by the existence of a wide range of phenotypes.
Ačkoliv se u Lemna může vyskytnout genetická variabilita v odezvě na toxické látky, není v současnosti dostatek údajů o tomto zdroji variability, aby mohl být pro použití v rámci této metody doporučen specifický klon.
Although genetic variability in the response to toxicants can occur with Lemna, there are currently insufficient data on this source of variability to recommend a specific clone for use with this Testing Method.
Je třeba uvést, že zkouška se neprovádí axenicky, ale v jednotlivých stupních během zkušebního procesu se provádí opatření pro udržení kontaminace jinými organismy na minimu.
It should be noted that the test is not conducted axenically, but steps are taken at stages during the test procedure to keep contamination by other organisms to a minimum.
Podrobně se popisuje zkoušení s obnovením (semistatické a průtokové) a bez obnovení (statické) zkušebního roztoku.
Details on testing with renewal (semi-static and flow-through) and without renewal (static) of the test solution are described.
V závislosti na cílech zkoušky a právních požadavcích se doporučuje zvážit použití semistatických a průtokových metod, například pro látky, které se z roztoku rychle ztrácí v důsledku odpaření, fotodegradace, srážení nebo biologického rozkladu.
Depending on the objectives of the test and on the regulatory requirements, it is recommended to consider the application of semi-static and flow through methods, e.g. for substances that are rapidly lost from solution as a result of volatilisation, photodegradation, precipitation or biodegradation.
Další pokyny jsou uvedeny v (11).
Further guidance is given in (11).
Biomasa: je suchá hmotnost živé hmoty přítomné v populaci.
Biomass: is the dry weight of living matter present in a population.
V této zkoušce se obvykle měří náhrady biomasy, například počet lístků nebo plocha lístků a používání termínu „biomasa“ rovněž odkazuje na tyto náhradní míry.
In this test, surrogates for biomass, such as frond counts or frond area, are typically measured and the use of the term ‘biomass’ thus refers to these surrogate measures as well.
Chloróza: je žloutnutí tkáně lístků.
Chlorosis: is the yellowing of frond tissue.
Klon: je organismus nebo buňka vzniklá z jediného jedince asexuální reprodukcí.
Clone: is an organism or cell arisen from a single individual by asexual reproduction.
Jedinci ze stejného klonu jsou proto geneticky identičtí.
Individuals from the same clone are, therefore, genetically identical.
Kolonie: znamená soubor mateřských a dceřiných lístků (obvykle 2 až 4) navzájem spolu spojených.
Colony: means an aggregate of mother and daughter fronds (usually 2 to 4) attached to each other.
Někdy se označuje jako rostlina.
Sometimes referred to as a plant.
ECx: je koncentrace zkoušené látky rozpuštěné ve zkušebním médiu, která pro danou expoziční dobu vede k x% (např. 50%) snížení růstu Lemna (musí se výslovně uvést, pokud se odchyluje od plné či normální doby trvání zkoušky).
ECx: is the concentration of the test substance dissolved in test medium that results in an x % (e.g. 50 %) reduction in growth of Lemna within a stated exposure period (to be mentioned explicitly if deviating from full or normal test duration).
Pro jednoznačný popis hodnoty EC odvozené z růstové rychlosti nebo z výtěžku se pro růstovou rychlost používá symbol „ErC“ a pro výtěžek „EyC“ následovaný proměnnou měření, např. ErC (počet lístků).
To unambiguously denote an EC value deriving from growth rate or yield, the symbol ‘ErC’ is used for growth rate and ‘EyC’ is used for yield, followed by the measurement variable used, e.g. ErC (frond number).
Průtoková zkouška: je zkouškou, při níž jsou zkušební roztoky průběžně vyměňovány.
Flow-through: is a test in which the test solutions are replaced continuously.
Lístek: je individuální/samostatnou listovitou strukturou rostliny okřehku.
Frond: is an individual/single ‘leaf-like’ structure of a duckweed plant.
Je to nejmenší jednotka, tj. jedinec, schopná reprodukce.
It is the smallest unit, i.e. individual, capable of reproduction.
Hrbatost: znamená lístky mající hrbolatý či napuchlý vzhled.
Gibbosity: means fronds exhibiting a humped or swollen appearance.
Růst: je zvýšením proměnné měření, např. počtu lístků, suché hmotnosti, hmotnosti za mokra nebo plochy lístků, během doby zkoušky.
Growth: is an increase in the measurement variable, e.g. frond number, dry weight, wet weight or frond area, over the test period.
Proměnné měření: jsou jakýmkoliv druhem proměnných, které se měří pro vyjádření zkoumaného účinku pomocí jedné či více různých proměnných odezvy.
Measurement variables: are any type of variables which are measured to express the test endpoint using one ore more different response variables.
V této metodě jsou proměnnými měření počet lístků, plocha lístků, čerstvá hmotnost a suchá hmotnost.
In this method frond number, frond area, fresh weight and dry weight are measurement variables.
Monokultura: je kultura s jedním druhem rostliny.
Monoculture: is a culture with one plant species.
Nekróza: je mrtvá (tj. bílá či vodou nasáklá) tkáň lístku.
Necrosis: is dead (i.e. white or water-soaked) frond tissue.
Fenotyp: je pozorovatelnou charakteristikou organismu určenou interakcí jeho genů s prostředím.
Phenotype: is the observable characteristics of an organism determined by the interaction of its genes with its environment.
Proměnné odezvy: jsou proměnné pro odhad toxicity odvozené z jakýchkoliv naměřených proměnných, jež popisují biomasu, různými metodami výpočtu.
Response variables: are variables for the estimation of toxicity derived from any measured variables describing biomass by different methods of calculation.
U této metody jsou proměnnými odezvy růstová rychlost a výtěžek, které se odvozují z proměnných měření jako např. počtu lístků, plochy lístků, čerstvé hmotnosti nebo suché hmotnosti.
For this method, growth rates and yield are response variables derived from measurement variables like frond number, frond area, fresh weight or dry weight.
Semistatická (obnovovací) zkouška: je zkouškou, při níž je zkušební roztok během zkoušky ve stanovených intervalech pravidelně nahrazován.
Semi-static (renewal) test: is a test in which the test solution is periodically replaced at specific intervals during the test.
Statická zkouška: je zkušební metoda bez obnovování zkušebního roztoku během zkoušky.
Static test: is a test method without renewal of the test solution during the test.
Zkoumaný účinek: popisuje obecný faktor, který bude jakožto cíl zkoušky změněn zkoušenou chemickou látkou vzhledem ke kontrole.
Test endpoint: describes the general factor that will be changed by the test chemical relative to the control as aim of the test.
Při této metodě je zkoumaným účinkem inhibice růstu, kterou lze vyjádřit různými proměnnými odezvy, jež jsou založeny na jedné či více proměnných měření.
In this method the test endpoint is inhibition of growth, which may be expressed by different response variables which are based on one or more measurement variables.
Zkušební médium: je úplné syntetické růstové médium, v němž rostou zkušební rostliny při expozici zkoušené látce.
Test medium: is the complete synthetic growth medium on which test plants grow when exposed to the test substance.
Výtěžek: je hodnota proměnné měření pro vyjádření biomasy na konci expoziční doby minus proměnná měření na počátku expoziční doby.
Yield: is the value of a measurement variable to express biomass at the end of the exposure period minus the measurement variable at the start of the exposure period.
Exponenciálně rostoucí kultury rostlin rodu Lemna se po dobu sedmi dnů nechají růst jako monokultury v různých koncentracích zkoušené látky.
Exponentially growing plant cultures of the genus Lemna are allowed to grow as monocultures in different concentrations of the test substance over a period of seven days.
Cílem zkoušky je kvantifikovat účinky související s látkou na vegetativní růst během tohoto období, a to na základě hodnocení zvolených proměnných měření.
The objective of the test is to quantify substance-related effects on vegetative growth over this period, based on assessments of selected measurement variables.
Primární proměnnou měření je počet lístků.
Frond number is the primary measurement variable.
Rovněž se měří nejméně jedna další proměnná měření (celková plocha lístků, suchá hmotnost nebo čerstvá hmotnost), protože některé látky mohou ovlivňovat jiné proměnné měření mnohem více než počet lístků.
At least one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) is also measured, since some substances may affect other measurement variables much more than frond numbers.
Pro kvantifikaci účinků souvisejících s látkou se růst ve zkušebních roztocích porovnává s růstem kontrol a stanoví se koncentrace způsobující stanovenou x% inhibici růstu (např. 50%) a vyjádří jako ECx (např. EC50).
To quantify substance-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ECx (e.g. EC50).
Zkoumaným účinkem je inhibice růstu vyjádřená jako logaritmické zvýšení proměnné měření (průměrná specifická růstová rychlost) během expoziční doby.
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as logarithmic increase in the measurement variable (average specific growth rate) during the exposure period.
Další proměnnou odezvy použitou v této zkušební metodě je výtěžek, který může být nutný ke splnění specifických právních požadavků v některých zemích.
An additional response variable used in this Testing Method is yield, which may be needed to fulfil specific regulatory requirements in some countries.
Je definován jako proměnné měření na konci expoziční doby minus proměnné měření na počátku expoziční doby.
It is defined as the measurement variables at the end of the exposure period minus the measurement variables at the start of the exposure period.
Měla by být k dispozici analytická metoda s odpovídající citlivostí pro kvantifikaci látky ve zkušebním médiu.
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the substance in the test medium, should be available.
Užitečnými informacemi o zkoušené látce pro účely stanovení zkušebních podmínek mohou být strukturní vzorec, čistota, rozpustnost ve vodě, stálost ve vodě na světle, pKa, Ko/v, tlak par a biologická rozložitelnost.
Information on the test substance which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity, water solubility, stability in water and light, pKa, Kow, vapour pressure and biodegradability.
Pro výpočet Henryho konstanty, která bude ukazovat, zda-li jsou pravděpodobné významné ztráty zkoušené látky během doby zkoušky, lze použít rozpustnost ve vodě a tlak par.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry’s Law constant, which will indicate if significant losses of the test substance during the test period are likely.
To pomáhá zjistit, zda-li by se měly podniknout konkrétní opatření ke kontrole takových ztrát.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
Jestliže nejsou informace o rozpustnosti a stálosti zkoušené látky jisté, doporučuje se, aby byly hodnoceny za podmínek zkoušky, tj. v růstovém médiu, při teplotě a režimu osvětlení, které mají být při zkoušce použity.
Where information on the solubility and stability of the test substance is uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Pokud je zvláště důležitá kontrola pH zkušebního média, např. zkouší-li se kovy nebo látky, které jsou hydrolyticky nestálé, doporučuje se přídavek pufru do růstového média (viz bod 1.7.4 první odstavec).
When pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or substances which are hydrolytically unstable, the addition of a buffer to the growth medium is recommended (see first paragraph in section 1.7.4).
Další pokyny pro zkoušení látek s fyzikálně-chemickými vlastnostmi, které způsobují jejich obtížnou testovatelnost, je uveden v (11).
Further guidance for testing substances with physicochemical properties that make them difficult to test is provided in (11).
Jako prostředek kontroly zkušebního postupu lze zkoušet referenční látku (látky), například 3,5-dichlorfenol použitý v mezinárodní kruhové zkoušce (10).
Reference substance(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (10), may be tested as a means of checking the test procedure.
Doporučuje se zkoušet referenční látku nejméně dvakrát ročně nebo – pokud se zkoušení provádí s menší četností – souběžně se stanovováním toxicity zkoušené látky.
It is advisable to test a reference substance at least twice a year or, where testing is carried out at a lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test substance.
Má-li být zkouška platná, musí být doba do zdvojnásobení počtu lístků v kontrole menší než 2,5 dnů (60 hodin), což odpovídá přibližně sedminásobnému zvýšení za sedm dnů a průměrné specifické růstové rychlosti 0,275 d–1.
For the test to be valid, the doubling time of frond number in the control must be less than 2,5 days (60 h), corresponding to approximately a seven-fold increase in seven days and an average specific growth rate of 0,275 d–1.
Při využití médií a zkušebních podmínek popsaných v této zkušební metodě lze tohoto kritéria dosáhnout použitím statické zkoušky (8).
Using the media and test conditions described in this Testing Method, this criterion can be attained using a static test regime (8).
Rovněž se předpokládá, že toto kritérium bude splnitelné za podmínek semistatické a průtokové zkoušky.
It is also anticipated that this criterion will be achievable under semi-static and flow-through test conditions.
Výpočet doby zdvojnásobení je uveden v bodě 2.1.
Calculation of the doubling time is shown in section 2.1.
Veškeré vybavení přicházející od styku se zkušebními médii by mělo být vyrobeno ze skla nebo jiného chemicky inertního materiálu.
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
Skleněné pomůcky použité pro kultivační a zkušební účely je zapotřebí vyčistit od chemických kontaminantů, které by mohly unikat do zkušebního média, a musí být sterilní.
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
Zkušební nádoby by měly být dostatečně široké, aby mohly lístky jednotlivých kolonií v kontrolních nádobách růst, aniž by se na konci zkoušky překrývaly.
The test vessels should be wide enough for the fronds of different colonies in the control vessels to grow without overlapping at the end of the test.
Není důležité, zda se kořeny dotýkají dna zkušebních nádob, ale doporučuje se, aby v každé zkušební nádobě byla minimální hloubka 20 mm a minimální objem 100 ml.
It does not matter if the roots touch the bottoms of the test vessels, but a minimum depth of 20 mm and minimum volume of 100 ml in each test vessel is advised.
Volba zkušebních nádob není zásadně důležitá, pokud budou splněny tyto požadavky.
The choice of test vessels is not critical as long as these requirements are met.
Jako vhodné se potvrdily skleněné kádinky, krystalizační misky nebo skleněné Petriho misky vhodných rozměrů.
Glass beakers, crystallising dishes or glass petri dishes of appropriate dimensions have all proved suitable.
Zkušební nádoby musí být zakryty, aby se minimalizovalo odpařování a náhodná kontaminace, přičemž však musí být umožněna nezbytná výměna vzduchu.
Test vessels must be covered to minimise evaporation and accidental contamination, while allowing necessary air exchange.
Vhodné zkušební nádoby a zejména kryty musí zabránit stínění nebo změnám spektrálních charakteristik světla.
Suitable test vessels, and particularly covers, must avoid shadowing or changes in the spectral characteristics of light.
Kultury a zkušební nádoby by se neměly přechovávat společně.
The cultures and test vessels should not be kept together.
Toho se nejlépe dosáhne pomocí samostatných komor, inkubátorů či místností pro růst za podmínek prostředí.
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
Osvětlení a teplota musí být regulovatelné a musí se udržovat na stálé úrovni (viz bod 1.7.8).
Illumination and temperature must be controllable and maintained at a constant level (see section 1.7.8).
Testovací organismus
Test organism
Organismem použitým pro tuto zkoušku je Lemna gibba nebo Lemna minor.
The organism used for this test is either Lemna gibba or Lemna minor.
Krátké popisy druhů okřehků, které byly použity pro zkoušky toxicity, jsou uvedeny v dodatku 1.
Short descriptions of duckweed species that have been used for toxicity testing are given in Appendix 1.
Rostlinný materiál lze získat ze sbírek kultur, z jiné laboratoře nebo z terénu.
Plant material may be obtained from a culture collection, another laboratory or from the field.
Jestliže se sběr provádí z terénu, rostliny by se měly kultivovat ve stejném médiu, jaké se používá ke zkoušení, minimálně po dobu osmi týdnů před použitím.
If collected from the field, plants should be maintained in culture in the same medium as used for testing for a minimum of eight weeks prior to use.
Terénní místa použitá pro sběr výchozích kultur musí být prostá zřejmých zdrojů kontaminace.
Field sites used for collecting starting cultures must be free of obvious sources of contamination.
Pokud se získávají z jiné laboratoře nebo ze sbírek kultur, měly by se podobně uchovávat minimálně po tři týdny.
If obtained from another laboratory or from a culture collection they should be similarly maintained for a minimum of three weeks.
Ve zkušebním protokolu je vždy třeba uvést zdroj rostlinného materiálu a druhů a klonu (je-li znám) použitých ke zkoušení.
The source of plant material and the species and clone (if known) used for testing should always be reported.
Měly by se používat monokultury, které jsou očividně prosté kontaminace jinými organismy, například řasami a prvoky.
Monocultures, that are visibly free from contamination by other organisms such as algae and protozoa, should be used.
Zdravé rostliny L. minor obsahují kolonie skládající se ze dvou až pěti lístků, zatímco zdravé kolonie L. gibba mohou obsahovat až sedm lístků.
Healthy plants of L. minor will consist of colonies comprising between two and five fronds, whilst healthy colonies of L. gibba may contain up to seven fronds.
Kvalita a jednotnost rostlin použitých pro zkoušku bude mít významný vliv na výsledek zkoušky, a proto by se měla volit s velkou péčí.
The quality and uniformity of the plants used for the test will have a significant influence on the outcome of the test and should therefore be selected with care.
Měly by se používat mladé, rychle rostoucí rostliny bez viditelných lézí či odbarvení (chlorózy).
Young, rapidly growing plants without visible lesions or discoloration (chlorosis) should be used.
Kultury dobré kvality se vyznačují vysokým výskytem kolonií obsahujících nejméně dva lístky.
Good quality cultures are indicated by a high incidence of colonies comprising at least two fronds.
Velký počet jednotlivých lístků je ukazatelem environmentálního stresu, např. nedostatku živin, a rostlinný materiál z takovýchto kultur by se ke zkoušení neměl používat.
A large number of single fronds is indicative of environmental stress, e.g. nutrient limitation, and plant material from such cultures should not be used for testing.
Kultivace
Cultivation
Pro snížení četnosti udržování kultury (např. pokud se na určité období neplánují žádné zkoušky s Lemna) lze kultury udržovat za sníženého osvětlení a teploty (4–10 °C).
To reduce the frequency of culture maintenance (e.g. when no Lemna tests are planned for a period), cultures can be held under reduced illumination and temperature (4-10 °C).
Podrobnosti o kultivaci jsou uvedeny v dodatku 2.
Details of culturing are given in Appendix 2.
Očividné známky kontaminace řasami nebo jinými organismy vyžadují povrchovou sterilizaci dílčího vzorku lístků Lemna a následný přenos do čerstvého média (viz dodatek 2).
Obvious signs of contamination by algae or other organisms will require surface sterilisation of a sub-sample of Lemna fronds, followed by transfer to fresh medium (see Appendix 2).
V tomto případě je třeba zbývající kontaminovanou kulturu zlikvidovat.
In this eventuality, the remaining contaminated culture should be discarded.
Nejméně sedm dnů před zkoušením se asepticky převede dostatečný počet kolonií do čerstvého sterilního média a kultivuje se 7 až 10 dnů za podmínek zkoušky.
At least seven days before testing, sufficient colonies are transferred aseptically into fresh sterile medium and cultured for 7-10 days under the conditions of the test.
Pro Lemna minor a Lemna gibba se doporučují odlišná média, jak je dále uvedeno.
Different media are recommended for Lemna minor and Lemna gibba, as described below.
Je třeba pečlivě zvážit zahrnutí pufru pH do zkušebního média (MOPS (3-(N-morfolino)propansulfonová kyselina, číslo CAS: 1132–61–2; číslo EINECS: 214–478–5) do média pro L. minor a NaHCO3 do média pro L. gibba), jestliže existuje podezření, že by mohl reagovat se zkoušenou látkou a ovlivňovat expresi její toxicity.
Careful consideration should be given to the inclusion of a pH buffer in the test medium (MOPS (4-morpholinepropane sulphonic acid, CAS No: 1132-61-2; EINECS No: 214-478-5) in L. minor medium and NaHCO3 in L. gibba medium) when it is suspected that it might react with the test substance and influence the expression of its toxicity.
Steinbergovo médium (12) je rovněž přijatelné, pokud jsou splněna kritéria validity.
Steinberg Medium (12) is also acceptable as long as the validity criteria are met.
Pro kultivaci a zkoušení s L. minor se doporučuje úprava švédského standardního (SIS) růstového média pro Lemna.
A modification of the Swedish standard (SIS) Lemna growth medium is recommended for culturing and testing with L. minor.
Složení tohoto média je uvedeno v dodatku 3.
The composition of this medium is given in Appendix 3.
Ke kultivaci a zkoušení s L. gibba se doporučuje růstové médium 20X AAP, popsané v dodatku 3.
The growth medium, 20X — AAP, as described in Appendix 3, is recommended for culturing and testing with L. gibba.