natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Je-li povaha zkoušené látky taková, že ve vodě nelze dosáhnout koncentrace 100 mg/l, provede se limitní zkouška při koncentraci odpovídající rozpustnosti této látky v použitém médiu (nebo při maximální koncentraci, kdy látka vytváří stálou disperzi) (viz také bod 1.6.1.1).
If the nature of the substance is such that a concentration of 100 mg per litre in the test water cannot be attained, the limit test should be performed at a concentration equal to the solubility of the substance (or the maximum concentration forming a stable dispersion) in the medium used (see also point 1.6.1.1).
Limitní zkouška se provede se 7 až 10 rybami a se stejným počtem ryb v kontrole (kontrolách).
The limit test should be performed using seven to 10 fish, with the same number in the control(s).
(Podle teorie binomického rozdělení je při použití 10 ryb a při nulové mortalitě 99,9 % pravděpodobnost, že je LC50 větší než 100 mg/l.
(Binomial theory dictates that when 10 fish are used with zero mortality, there is a 99,9 % confidence that the LC50 is greater than the concentration used in the limit test.
Při 7, 8 nebo 9 rybách znamená nulová mortalita nejméně 99 % pravděpodobnost, že je LC50 větší než koncentrace použitá v limitní zkoušce.)
With 7, 8 or 9 fish, the absence of mortality provides at least 99 % confidence that the LC50 is greater than the concentration used.)
Dojde-li k úhynům, musí se provést celá studie.
If mortalities occur, a full study must be carried out.
Jsou-li pozorovány subletální účinky, zaznamenají se.
If sublethal effects are observed, these should be recorded.
ÚDAJE A VYHODNOCENÍ
DATA AND EVALUATION
Na pravděpodobnostní logaritmický papír se pro každé období, kdy byla prováděna pozorování (24, 48, 72 a 96 hodin), vynese pro každou dobu expozice mortalita v procentech proti koncentraci.
For each period where observations were recorded (24, 48, 72 and 96 hours), plot percentage mortality for each recommended exposure period against concentration on logarithmic-probability paper.
Pokud je to možné, odhadnou se standardními postupy pro každou délku expozice hodnoty LC50 a meze spolehlivost (p = 0,05); tyto hodnoty se zaokrouhlí na jednu, nebo nejvýše na dvě platné číslice (příklad zaokrouhlení na dvě platné číslice: 173,5 se zaokrouhlí na 170, 0,127 na 0,13, 1,21 na 1,2).
When possible and for each observation time, the LC50 and the confidence limits (p = 0,05) should be estimated using standard procedures; these values should be rounded off to one, or at most two significant figures (examples of rounding off to two figures: 170 for 173,5; 0,13 for 0,127; 1,2 for 1,21).
V případech, kdy je sklon křivky závislosti mortality v procentech na koncentraci látky příliš strmý, aby umožnil výpočet hodnoty LC50, postačuje grafický odhad této hodnoty.
In those cases where the slope of the concentration/percentage response curve is too steep to permit calculation of the LC50, a graphical estimate of this value is sufficient.
Jestliže dvě po sobě jdoucí koncentrace lišící se faktorem 2,2 vyvolají mortalitu 0 a 100 %, jsou dostatečnou informací o tom, že se LC50 nachází mezi těmito hodnotami.
When two consecutive concentrations, at a ratio of 2,2 give only 0 and 100 % mortality, these two values are sufficient to indicate the range within which the LC50 falls.
Zjistí-li se, že není možné udržet stálost nebo homogenitu zkoušené látky, uvede se to ve zprávě a výsledky se interpretují s opatrností.
If it is observed that the stability or homogeneity of the test substance cannot be maintained, this should be reported and care should be taken in the interpretation of the results.
údaje o zkušebních rybách (vědecký název, kmen, dodavatel, veškerá předchozí ošetření, velikost a počet ryb použitých při každé zkušební koncentraci),
information about test fish (scientific name, strain, supplier, any pretreatment, size and number used in each test concentration),
zdroj ředicí vody a hlavní chemické charakteristiky (pH, tvrdost, teplota),
dilution-water source and major chemical characteristics (pH, hardness, temperature),
u látek s malou rozpustností ve vodě údaj o metodě přípravy zásobních a zkušebních roztoků,
in the case of a substance of low aqueous solubility, the method of preparation of stock and test solutions,
koncentrace všech pomocných látek,
concentration of any auxiliary substances,
přehled použitých koncentrací a veškeré dostupné informace o stálosti zkoušené látky ve zkušebním roztoku při použitých koncentracích,
list of the concentrations used and any available information on the stability at the concentrations of the tested chemical in the test solution,
jestliže byly provedeny chemické analýzy, údaje o použitých metodách a získané výsledky,
if chemical analyses are performed, methods used and results obtained,
výsledek limitní zkoušky, pokud byla provedena,
results of the limit test if conducted,
důvody pro volbu použitého zkušebního postupu a podrobnosti o něm (např. statický, semistatický, dávkování, průtoková rychlost, zda byla voda provzdušňována obsádka ryb atd.),
reasons for the choice and details of the test procedure used (e.g. static, semi-static, dosing rate, flow-through rate, whether aerated, fish loading, etc.),
popis zkušebního zařízení,
description of test equipment,
světelný režim,
lighting regime,
koncentrace rozpuštěného kyslíku, hodnoty pH, teplota zkušebních roztoků každých 24 hodin,
dissolved oxygen concentrations, pH values and temperatures of the test solutions every 24 hours,
důkaz, že byla splněna kritéria jakosti,
evidence that the quality criteria have been fulfilled,
tabulka kumulativních hodnot mortality při každé koncentraci a při kontrolní zkoušce (a popřípadě při kontrolní zkoušce s pomocnou látkou) při každé z doporučených dob pozorování,
a table showing the cumulative mortality at each concentration and the control (and control with the auxiliary substance if required) at each of the recommended observation times,
graf křivky závislosti účinku, vyjádřeného v procentech, na koncentraci na konci zkoušky,
graph of the concentration/percentage response curve at the end of the test,
podle možnosti hodnoty LC50 při každé z doporučených dob pozorování (při 95 % intervalu spolehlivosti),
if possible, the LC50 values at each of the recommended observation times (with 95 % confidence limits),
použité statistické metody stanovení hodnot LC50,
statistical procedures used for determining the LC50 values,
při použití referenční látky údaj o získaných výsledcích,
if a reference substance is used, the results obtained,
nejvyšší zkušební koncentrace, která nevyvolala za dobu zkoušky úhyn ryb,
highest test concentration causing no mortality within the period of the test,
nejnižší zkušební koncentrace, která vyvolala za dobu zkoušky 100 % mortalitu.
lowest test concentration causing 100 % mortality within the period of the test.
OECD, Paris, 1981, Test Guideline 203, Decision of the Council C(81) 30 final and updates.
OECD, Paris, 1981, Test Guideline 203, Decision of the Council C(81) 30 final and updates.
AFNOR -Determination of the acute toxicity of a substance to Brachydanio rerio -Static and Flow Through methods – NFT 90-303 June 1985.
AFNOR — Determination of the acute toxicity of a substance to Brachydanio rerio — Static and Flow Through methods — NFT 90-303 June 1985.
AFNOR- Determination of the acute toxicity of a substance to Salmo gairdneri -Static and Flow – Through methods – NFT 90-305 June 1985.
AFNOR- Determination of the acute toxicity of a substance to Salmo gairdneri — Static and Flow — Through methods — NFT 90-305 June 1985.
ISO 7346/1,/2 and/3 -Water Quality -Determination of the acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish (Brachydanio rerio Hamilton-Buchanan -Teleostei, Cyprinidae).
ISO 7346/1,/2 and/3 — Water Quality — Determination of the acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish (Brachydanio rerio Hamilton-Buchanan-Teleostei, Cyprinidae).
Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien fur Probenahme und Normung von Wasseruntersuchungsmethoden – Part II 1974.
Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien fur Probenahme und Normung von Wasseruntersuchungsmethoden -Part II 1974.
JIS k 0102, Acute toxicity test for fish.
JIS K 0102, Acute toxicity test for fish.
NEN 6506- Water -Bepaling van de akute toxiciteit met behulp van Poecilia reticulata, 1980.
NEN 6506- Water -Bepaling van de akute toxiciteit met behulp van Poecilia reticulata, 1980.
Environmental Protection Agency, Environmental monitoring and support laboratory, Office of Research and Development, EPA-600/4-78-012, January 1978.
Environmental Protection Agency, Environmental monitoring and support laboratory, Office of Research and Development, EPA-600/4-78-012, January 1978.
Environmental Protection Agency, Toxic Substance Control, Part IV, 16 March 1979.
Environmental Protection Agency, Toxic Substance Control, Part IV, 16 March 1979.
Standard methods for the examination of water and wastewater, fourteen edition, APHA-AWWA-WPCF, 1975.
Standard methods for the examination of water and wastewater, fourteen edition, APHA-AWWA-WPCF,1975.
Commission of the European Communities, Inter-laboratory test programme concerning the study of the ecotoxicityof a chemical substance with respect to the fish.
Commission of the European Communities, Inter-laboratory test programme concerning the study of the ecotoxicityof a chemical substance with respect to the fish.
EEC Study D.8368, 22 March 1979.
EEC Study D.8368, 22 March 1979.
Verfahrensvorschlag des Umweltbundesamtes zum akuten Fisch-Test.
Verfahrensvorschlag des Umweltbundesamtes zum akuten Fisch-Test.
Rudolph, P. und Boje, R. Okotoxikologie, Grundlagen fur die okotoxikologische Bewertung von Umweltchemikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.
Rudolph, P. und Boje, R. Okotoxikologie, Grundlagen fur die okotoxikologische Bewertung von Umweltchemikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.
Litchfield, J. T .and Wilcoxon, F., A simplified method for evaluating dose effects experiments, J. Pharm, tExp.
Litchfield, J. T.and Wilcoxon, F., A simplified method for evaluating dose effects experiments, J. Pharm, tExp.
Therap., 1949, vol. 96, 99.
Therap., 1949, vol. 96,99.
Finney, D.J.
Finney, D.J.
Statistical Methods in Biological Assay.
Statistical Methods in Biological Assay.
Sprague, J .B. Measurement of pollutant toxicity to fish.
Sprague, J.B. Measurement of pollutant toxicity to fish.
Water Res., 1969, vol. 3, 793–821.
Water Res., 1969, vol. 3,793-821.
Sprague, J.B.
Sprague, J.B.
Measurement of pollutant toxicity to fish.
Measurement of pollutant toxicity to fish.
II Utilising and applying bioassay results. Water Res.
II Utilising and applying bioassay results.
1970, vol. 4, 3–32.
Water Res. 1970, vol. 4, 3-32.
Stephan, C.E.
Stephan, C.E.
Methods for calculating an LC50.
Methods for calculating an LC50.
Mayer and J.L.
Mayer and J.L.
Hamelink).
Hamelink).
American Society for Testing and Materials, ASTM STP 634, 1977, 65–84.
American Society for Testing and Materials, ASTM STP 634,1977, 65-84.
Stephan, C.E., Busch, K.A., Smith, R., Burke, J. and Andrews, R.W.
Stephan, C.E., Busch, K.A., Smith, R., Burke, J. and Andrews, R.W.
A computer program for calculating an LC50.
A computer program for calculating an LC50.
Upravená voda
Reconstituted water
Příklad vhodné ředicí vody
Example of a suitable dilution water
Všechny chemikálie musí být čistoty p.a.
All chemicals must be of analytical grade.
Voda musí být kvalitní destilovaná nebo deionizovaná s vodivostí menší než 5 μS/cm.
The water should be good-quality distilled water, or deionised water with a conductivity of less than 5 μScm-1.
Destilační přístroj nesmí obsahovat žádné měděné části.
Apparatus for distillation of water must not contain any parts made of copper.
CaCl2.
CaCI2.
2H2O (chlorid vápenatý dihydrát)
2H2O (calcium chloride dihydrate):
se rozpustí ve vodě a doplní vodou na 1 litr.
Dissolve in, and make up to 1 litre with water.
7H2O (síran hořečnatý heptahydrát)
7H2O (magnesium sulphate heptahydrate):
se rozpustí ve vodě a doplní vodou na 1 litr.
Dissolve in, and make up to 1litre with water.
(hydrogenuhličitan sodný)
(sodium hydrogen carbonate):
KCl (chlorid draselný)
KCI (potassium chloride):
se rozpustí ve vodě a doplní vodou na 1 litr.
Dissolve in, and make up to 11itre with water.
Upravená ředicí voda
Reconstituted dilution water
Smísí se po 25 ml všech čtyř zásobních roztoků a doplní vodou na 1 litr.
Mix 25 ml of each of the four stock solutions and make up to 1 litre with water.
Provzdušňuje se, dokud koncentrace rozpuštěného kyslíku neodpovídá koncentraci nasycení vzdušným kyslíkem.
Aerate until the dissolved oxygen concentration equals the air-saturation value.
pH musí být 7,8 ± 0,2.
The pH should be 7,8 ± 0,2.
Podle potřeby se pH upraví pomocí NaOH (hydroxid sodný) nebo HCl (kyselina chlorovodíková).
If necessary adjust the pH with NaOH (sodium hydroxide) or HCI (hydrochloric acid).
Tato ředicí voda se nechá 12 hodin stát a nemusí být dále provzdušňována.
The dilution water so prepared is set aside for about 12 hours and must not be further aerated.
Koncentrace úhrnu iontů Ca a Mg v tomto roztoku je 2,5 mmol/l.
The sum of the Ca and Mg ions in this solution is 2,5 mmol per litre.
Poměr množství iontů Ca: Mg je 4:1 a poměr množství iontů Na:k je 10:1.
The ratio of Ca:Mg ions is 4:1 and of Na:K ions is 10:1.
Celková koncentrace alkalických kovů v tomto roztoku je 0,8 mmol/l.
The total alkalinity of this solution is 0,8 mmol per litre.
Jakákoli odchylka v přípravě vody k ředění nesmí změnit složení ani vlastnosti vody.
Any deviation in the preparation of the dilution water must not change the composition or properties of the water.
Druhy ryb doporučené pro zkoušku
Fish species recommended for testing
Doporučený druh
Recommended species
Doporučené rozpětí teploty při zkoušce ( oC)
Recommended range of test temperature (oC)
Doporučená celková délka těla testovacích jedinců (cm)
Recommended total length of test animal (cm)
Brachydanio rerio (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan), danio pruhované
Brachydanio rerio (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton-Buchanan) Zebrab-fish
Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque), střevle
Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafinesque) Fathead minnow
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758), kapr obecný
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Common carp
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) Cyprinodontidae (Tomminck and Schlege 1850), halančík japonský
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) Cyprinodontidae (Tomminck and Schlege 1850) Red killifish
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters 1859), živorodka duhová
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters 1859) Guppy
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque Linneaus 1758), slunečnice modrá
Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) (Rafinesque Linneaus 1758) Bluegill
Onchorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum 1988), pstruh duhový
Onchorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) (Walbaum 1988) Rainbow trout
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758), jelec jesen
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae) (Linneaus 1758) Golden Orfe
Sběr
Collection
Ryby uvedené v seznamu se snadno chovají nebo jsou dobře dostupné po celý rok.
The fish listed above are easy to rear and/or are widely available throughout the year.
Lze je množit a chovat buď v rybích farmách, nebo v laboratoři za kontrolovaných zdravotních a parazitologických podmínek tak, aby ryby byly zdravé a byly známého původu.
They are capable of being bred and cultivated either in fish farms or in the laboratory, under disease — and parasite — controlled conditions, so that the test animal will be healthy and of known parentage.
Tyto ryby jsou dostupné v mnoha částech světa.
These fish are available in many parts of the world.
Příklad křivky závislosti mortality, vyjádřené v procentech, na koncentraci
Example of concentration: percentage mortality
Příklad stanovení LC50 na pravděpodobnostním logaritmickém papíru
Example of determination of LC50 using log-probit paper
Mortalita v % (pravděpodobnostní stupnice)
Mortality in % (probit scale)
koncentrace (logaritmická stupnice)
Concentrations (log scale)
Tato zkušební metoda akutní imobilizace je ekvivalentní testu OECD TG 202 (2004).
This acute immobilisation testing method is equivalent to the OECD TG 202 (2004).
Tato metoda popisuje zkoušku akutní toxicity ke stanovení účinku chemických látek na dafnie.
This method describes an acute toxicity test to assess effects of chemicals towards daphnids.
Stávající zkušební metody byly užity v největším možném rozsahu (1, 2, 3).
Existing test methods were used to the extent possible (1)(2)(3).
V kontextu této metody jsou použity tyto definice:
In the context of this method, the following definitions are used:
EC50: je koncentrace odhadnutá pro imobilizaci 50 % dafnií během stanovené expoziční doby.
is the concentration estimated to immobilise 50 % of the daphnids within a stated exposure period.
Je-li použita jiná definice, musí to být uvedeno spolu s příslušným odkazem.
If another definition is used, this must be reported, together with its reference.
Imobilizace: Dafnie neschopné plavat do 15 sekund po mírném zamíchání zkušební nádoby jsou pokládány za imobilizované (a to i když stále ještě mohou hýbat tykadly).
Immobilisation: those animals that are not able to swim within 15 seconds, after gentle agitation of the test vessel are considered to be immobilised (even if they can still move their antennae).
Mladé dafnie, staré méně než 24 hodin při zahájení zkoušky, jsou vystaveny zkoušené látce v určitém rozsahu koncentrací po dobu 48 hodin.
Young daphnids, aged less than 24 hours at the start of the test, are exposed to the test substance at a range of concentrations for a period of 48 hours.
Imobilizace je zaznamenána po 24 hodinách a po 48 hodinách a porovnána s kontrolními hodnotami.
Immobilisation is recorded at 24 hours and 48 hours and compared with control values.
Výsledky jsou analyzovány s cílem vypočíst hodnotu EC50 po 48 hodinách (viz definici v oddílu 1.2).
The results are analysed in order to calculate the EC50 at 48h (see Section 1.2 for definitions).
Stanovení hodnoty EC50 pro 24 hodin je volitelné.
Determination of the EC50 at 24h is optional.
INFORMACE O ZKOUŠENÉ LÁTCE
INFORMATION ON THE TEST SUBSTANCE
Pro zkoušenou látku by měla být známa rozpustnost ve vodě a tenze par a spolehlivá analytická metoda ke stanovení koncentrace dotyčné látky v zkoušeném roztoku s udanou účinností znovuzáchytu a měly by být dostupné meze stanovení.
The water solubility and the vapour pressure of the test substance should be known and a reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency, and limit of determination should be available.
Užitečné údaje zahrnují strukturní vzorec, čistotu látky, stabilitu ve vodě nebo vůči světlu, rozdělovací koeficient Pow a výsledky zkoušek snadné biologické rozložitelnosti (viz metoda C.4).
Useful information includes the structural formula, purity of the substance, stability in water or light, Pow and results of a test for ready biodegradability (see method C.4).
Poznámka: Návod pro zkoušení látek s fyzikálně-chemickými vlastnostmi, které činí jejich zkoušení obtížné, je uveden v položce seznamu literatury (4).
Note: guidance for testing substances with physical chemical properties that made them difficult to test is provided in (4).
Hodnoty EC50 pro referenční látky mohou být změřeny pro ověření, že zkušební podmínky jsou spolehlivé.
A reference substance may be tested for EC50 as a means of assuring that the test conditions are reliable.
K tomuto účelu jsou doporučeny toxické látky použité v mezinárodních mezilaboratorních zkouškách (1, 5).
Toxicants used in international ring-tests (1)(5) are recommended for this purpose.
Zkoušky s referenčními látkami by měly být prováděny přednostně každý měsíc a nejméně dvakrát ročně.1.6.
Test(s) with a reference substance should be done preferably every month and at least twice a year.1.6.
Platnost zkoušky je podmíněna splněním následujících kritérií:
For a test to be valid, the following performance criteria apply:
při kontrolách, včetně kontroly zahrnující solubilizační činidlo, nesmí být imobilizováno více než 10 % dafnií,
in the controls, including the control containing the solubilising agent, not more that 10 % of the daphnids should have been immobilised;
koncentrace rozpuštěného kyslíku na konci zkoušky musí být ≥ 3 mg/l v kontrolní i ve zkušební nádobě.
the dissolved oxygen concentration at the end of the test should be ≥ 3 mg/l in control and test vessels.
Poznámka: Pro první kritérium smí být imobilizováno nebo vykazovat jiné známky choroby nebo stresu, např. odbarvení, neobvyklé chování jako např. zdržování se na povrchu vody, ne více než 10 % kontrolních dafnií.
Note: For the first criterion, not more than 10 % of the control daphnids should show immobilisation or other signs of disease or stress, for example, discoloration, unusual behaviour such as trapping at surface of water.
Zkušební nádoby a další aparatura, která přichází do styku se zkoušenými roztoky, by měla být zhotovena ze skla nebo z jiného chemicky inertního materiálu.
Test vessels and other apparatus that will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
Zkušebními nádobami běžně budou skleněné zkumavky či kádinky; před každým použitím by měly být umyty standardními laboratorními postupy.
Test vessels will normally be glass test tubes or beakers; they should be cleaned before each use using standard laboratory procedures.
Zkušební nádoby by měly být volně překryty ke snížení ztrát vody odparem a k předcházení vnikání prachu do roztoků.
Test vessels should be loosely covered to reduce the loss of water due to evaporation and to avoid the entry of dust into the solutions.
Těkavé látky by měly být zkoušeny v plně zaplněných a uzavřených nádobách dostatečně velkých k předcházení příliš nízkým nebo limitním koncentracím kyslíku (viz oddíl 1.6 nebo první odstavec oddílu 1.8.3).
Volatile substances should be tested in completely filled closed vessels, large enough to prevent oxygen becoming limiting or too low (see Section 1.6 and first paragraph of Section 1.8.3).
Navíc budou použity některé nebo všechna následující zařízení: kyslíková sonda (s mikroelektrodou nebo jiným vhodným čidlem pro měření koncentrace rozpuštěného kyslíku v nízkoobjemových vzorcích); pH-metr; dostatečný termostat; vybavení pro stanovení koncentrace celkového organického uhlíku (TOC), vybavení pro stanovení chemické spotřeby kyslíku (ChSK); vybavení pro stanovení tvrdosti atd.
In addition some or all of the following equipment will be used: oxygen-meter (with microelectrode or other suitable equipment for measuring dissolved oxygen in low volumes samples); pH-meter; adequate apparatus for temperature control; equipment for the determination of total organic carbon concentration (TOC); equipment for the determination of chemical oxygen demand (COD); equipment for the determination of hardness, etc.
Testovací organismy
Test organism
Preferovaným zkušebním druhem je Daphnia magna Straus, ačkoli v této zkoušce lze využívat i další druhy dafnií (např. Daphnia pulex).
Daphnia magna Straus is the preferred test species although other suitable Daphnia species can be used in this test (e.g. Daphnia pulex).
Na začátku zkoušky by dafnie měly být méně než 24 hodin staré a ke snížení rozptylu je silně doporučeno nepoužívat první generaci potomků.
At the start of the test, the animals should be less than 24 hours old and to reduce variability, it is strongly recommended they are not first brood progeny.
Dafnie by měly pocházet ze zdravého matečného rodu (tj. bez příznaků stresu, jako jsou vysoká úmrtnost, přítomnost samců nebo efipií (vajíček dafnií), zpoždění líhnutí prvních potomků, změna barvy organismů atd.).
They should be derived from a healthy stock (i.e. showing no signs of stress such as high mortality, presence of males and ephippia, delay in the production of the first brood, discoloured animals, etc.).