natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Ačkoli většina experimentů poskytne jasně pozitivní nebo negativní výsledky, v ojedinělých případech neumožní soubor údajů vyslovit konečný výrok o aktivitě zkoušené látky.
Although most experiments will give clearly positive or negative results, in rare cases the data set will preclude making a definite judgement about the activity of the test substance.
Výsledky mohou zůstat dvojznačné nebo sporné bez ohledu na to, kolikrát je experiment opakován.
Results may remain equivocal or questionable regardless of the number of times the experiment is repeated.
Pozitivní výsledky ze zkoušky na chromozomové aberace in vitro znamenají, že zkoušená látka indukuje v kultivovaných somatických buňkách savců strukturní chromozomové aberace.
Positive results from the in vitro chromosome aberration test indicate that the test substance induces structural chromosome aberrations in cultured mammalian somatic cells.
Negativní výsledky znamenají, že zkoušená látka za podmínek zkoušky neindukuje v kultivovaných somatických buňkách savců strukturní chromozomové aberace.
Negative results indicate that, under the test conditions, the test substance does not induce chromosome aberrations in cultured mammalian somatic cells.
Rozpouštědlo/vehikulum:
Solvent/Vehicle:
rozpustnost a stálost zkoušené látky v rozpouštědle/vehikulu, je-li známa.
solubility and stability of the test substance in solvent/vehicle, if known.
Buňky:
Cells:
typ a zdroj buněk,
type and source of cells,
vlastnosti karyotypu a vhodnost použitého typu buněk,
karyotype features and suitability of the cell type used,
popřípadě nepřítomnost mykoplasmat,
absence of mycoplasma, if applicable,
informace o délce buněčného cyklu,
information on cell cycle length,
pohlaví dárce krve, zda byla použita plná krev nebo separované lymfocyty, použitý mitogen,
sex of blood donors, whole blood or separated lymphocytes, mitogen used,
případně počet pasáží,
number of passages, if applicable,
případně metody udržování buněčné kultury,
methods for maintenance of cell culture, if applicable,
modální hodnota počtu chromozomů.
modal number of chromosomes.
identifikace látky zastavující metafázi, její koncentrace a délka expozice buněk,
identity of metaphase arresting substance, its concentration and duration of cell exposure,
odůvodnění výběru koncentrací a počtu kultur, včetně např. údajů o cytotoxicitě a mezích rozpustnosti, jsou-li k dispozici,
rationale for selection of concentrations and number of cultures including, e.g. cytotoxicity data and solubility limitations, if available,
složení média, případně koncentrace CO2,
composition of media, CO2 concentration if applicable,
koncentraci zkoušené látky,
concentration of test substance,
objem vehikula a přidané zkoušené látky,
volume of vehicle and test substance added,
inkubační teplota,
incubation temperature,
inkubační doba,
incubation time,
délka expozice,
duration of treatment,
případně hustota buněk při nasazení,
cell density at seeding, if appropriate,
typ a složení použitého metabolického aktivačního systému, včetně kritérií přijatelnosti,
type and composition of metabolic activation system, including acceptability criteria,
pozitivní a negativní kontroly,
positive and negative controls,
metody přípravy preparátů,
methods of slide preparation,
kritéria hodnocení aberací,
criteria for scoring aberrations,
počet analyzovaných metafází,
number of metaphases analysed,
metody stanovení toxicity,
methods for the measurements of toxicity,
kritéria klasifikace studie na pozitivní, negativní nebo dvojznačnou.
criteria for considering studies as positive, negative or equivocal.
známky toxicity, např. stupeň konfluence, údaje o buněčném cyklu, počty buněk, mitotický index,
signs of toxicity, e.g. degree of confluency, cell cycle data, cell counts, mitotic index,
známky srážení,
signs of precipitation,
údaje o pH a osmolalitě expozičního média, pokud byly stanoveny,
data on pH and osmolality of the treatment medium, if determined,
definice aberací, včetně gapů,
definition for aberrations, including gaps,
počet buněk s chromozomovými aberacemi a typy aberací zvlášť pro každou exponovanou a kontrolní kulturu,
number of cells with chromosome aberrations and type of chromosome aberrations given separately for each treated and control culture,
změny ploidie, pokud byly pozorovány,
changes in ploidy if seen,
podle možnosti závislost odpovědi na dávce,
dose-response relationship, where possible,
případné statistické analýzy,
statistical analyses, if any,
údaje o souběžné negativní (rozpouštědlo/vehikulum) a pozitivní kontrole,
concurrent negative (solvent/vehicle) and positive control data,
dosavadní údaje o negativní (rozpouštědlo/vehikulum) a pozitivní kontrole s rozpětími, středními hodnotami a směrodatnými odchylkami.
historical negative (solvent/vehicle) and positive control data, with ranges, means and standard deviations.
Evans, H.J. (1976). Cytological Methods for Detecting Chemical Mutagens.
Evans, H. J., (1976) Cytological Methods for Detecting Chemical Mutagens.
In: Chemical mutagens, Principles and Methods for their Detection, Vol. 4, Hollaender, A. (ed) Plenum Press, New York and London, s. 1–29.
Chemical mutagens, Principles and Methods for their Detection, Vol. 4, Hollaender, A. (ed) Plenum Press, New York and London, p. 1-29.
Ishidate, M.Jr. and Sofuni, T. (1985).
Ishidate, M. Jr. and Sofuni, T., (1985).
In: Progress in Mutation Research, Vol. 5, Ashby, J. et al., (Eds) Elsevier Science Publishers, Amsterdam-New York-Oxford, 427–432.
Progress in Mutation Research, Vol. 5, Ashby, J. et al., (Eds) Elsevier Science Publishers, Amsterdam-New York-Oxford, p. 427-432.
Galloway, S.M., Armstrong, M.J., Reuben, C., Colman, S., Brown, B., Cannon, C., Bloom, A.D., Nakamura, F., Ahmed, M., Duk, S., Rimpo, J., Margolin, G.H., Resnick, MA, Anderson, G. and Zeiger, E. (1978).
Galloway, S.M., Armstrong, M.J., Reuben, C., Colman, S., Brown, B., Cannon, C., Bloom, A.D., Nakamura, F., Ahmed, M., Duk, S., Rimpo, J., Margolin, G.H., Resnick, MA, Anderson, G. and Zeiger, E., (1978).
Mutagen 10 (suppl.10), 1–175.
Mutagen 10 (suppl. 10), p. 1-175.
Scott, D., Galloway, S.M., Marshall, R.R., Ishidate, M.Jr., Brusick, D., Ashby, J. and Myhr, B.C. (1991). Genotoxicity under Extreme Culture Conditions.
Scott, D., Galloway, S.M., Marshall, R.R., Ishidate, M.Jr., Brusick, D., Ashby, J. and Myhr, B.C., (1991) Genotoxicity under Extreme Culture Conditions.
A report from ICPEMC Task Group 9.
A report from ICPEMC Task Group 9.
Morita, T., Nagaki, T., Fukuda, I. and Okumura, K., (1992).
Morita, T., Nagaki, T., Fukuda, I. and Okumura, K., (1992).
Mutation Res., 268, 297–305.
Mutation Res., 268, p. 297-305.
Ames, B.N., McCann, J. and Yamasaki, E. (1975).
Ames, B.N., McCann, J. and Yamasaki, E., (1975).
Mutation Res., 31, 347–364.
Mutation Res., 31, p. 347-364.
Maron, D.M. and Ames, B.N. (1983). Revised Methods for the Salmonella Mutagenicity Test.
Maron, D.M. and Ames, B.N., (1983) Revised Methods for the Salmonella Mutagenicity Test.
Mutation Res., 113, 173–215.
Mutation Res., 113, p. 173-215.
Natarajan, A.T., Tates, A.D., van Buul, P.P.W., Meijers, M. and de Vogel, N. (1976). Cytogenetic Effects of Mutagen/Carcinogens after Activation in a Microsomal System in Vitro, I. Induction of Chromosome Aberrations and Sister Chromatid Exchange by Diethylnitrosamine (DEN) and Dimethylnitrosamine (DMN) in CHO Cells in the Presence of Rat-Liver Microsomes.
Natarajan, A.T., Tates, A.D., van Buul, P.P.W., Meijers, M. and de Vogel, N., (1976) Cytogenetic Effects of Mutagen/Carcinogens after Activation in a Microsomal System in Vitro, I. Induction of Chromosome Aberrations and Sister Chromatid Exchange by Diethylnitrosamine (DEN) and Dimethylnitrosamine (DMN) in CHO Cells in the Presence of Rat-Liver Microsomes.
Mutation Res., 37, 83–90.
Mutation Res., 37, p. 83-90.
Matsuoka, A., Hayashi, M. and Ishidate, M. Jr. (1979). Chromosomal Aberration Tests on 29 Chemicals Combined with S9 Mix In Vitro.
Matsuoka, A., Hayashi, M. and Ishidate, M. Jr., (1979) Chromosomal Aberration Tests on 29 Chemicals Combined with S9 Mix In Vitro.
Mutation Res., 66, 277–290.
Mutation Res., 66, p. 277-290.
Elliot, B.M., Combes, R.D., Elcombe, C.R., Gatehouse, D.G., Gibson, G.G., Mackay, J.M. and Wolf, R.C. (1992).
Elliot, B.M., Combes, R.D., Elcombe, C.R., Gatehouse, D.G., Gibson, G.G., Mackay, J.M. and Wolf, R.C., (1992).
Mutagenesis, 7, 175–177.
Mutagenesis, 7, p. 175-177.
Matsushima, T., Sawamura, M., Hara, K. and Sugimura, T. (1976). A Safe Substitute for Polychlorinated Biphenyls as an Inducer of Metabolic Activation Systems.
Matsushima, T., Sawamura, M., Hara, K. and Sugimura, T., (1976) A Safe Substitute for Polychlorinated Biphenyls as an Inducer of Metabolic Activation Systems.
In: de Serres, F.J., Fouts, J.R., Bend, J.R. and Philpot, R.M.
de Serres, F.J., Fouts, J.R., Bend, J.R. and Philpot, R.M.
(eds) In Vitro Metabolic Activation in Mutagenesis Testing, Elsevier, North-Holland, s. 85–88.
(eds) In Vitro Metabolic Activation in Mutagenesis Testing, Elsevier, North-Holland, p. 85-88.
Galloway, S.M., Aardema, M.J., Ishidate, M.Jr., Ivett, J.L., Kirkland, D.J., Morita, T., Mosesso, P., Sofuni, T. (1994). Report from Working Group on in In Vitro Tests for Chromosomal Aberrations.
Galloway, S.M., Aardema, M.J., Ishidate, M.Jr., Ivett, J.L., Kirkland, D.J., Morita, T., Mosesso, P., Sofuni, T., (1994) Report from Working Group on in In Vitro Tests for Chromosomal Aberrations.
Mutation Res., 312, 241–261.
Mutation Res., 312, p. 241-261.
Richardson, C., Williams, D.A., Allen, J.A., Amphlett, G., Chanter, D.O. and Phillips, B. (1989). Analysis of Data from In Vitro Cytogenetic Assays.
Richardson, C., Williams, D.A., Allen, J.A., Amphlett, G., Chanter, D.O. and Phillips, B., (1989) Analysis of Data from In Vitro Cytogenetic Assays.
Kirkland, D.J., (ed) Cambridge University Press, Cambridge, s. 141–154.
Kirkland, D.J., (ed) Cambridge University Press, Cambridge, p. 141-154.
Soper, K.A. and Galloway, S.M. (1994). replicate Flasks are not Necessary for In Vitro Chromosome Aberration Assays in CHO Cells.
Soper, K.A. and Galloway, S.M., (1994) Replicate Flasks are not Necessary for In Vitro Chromosome Aberration Assays in CHO Cells.
Mutation Res., 312, 139–149.
Mutation Res., 312, p. 139-149.
Krahn, D.F., Barsky, F.C. and McCooey, K.T. (1982).
Krahn, D.F., Barsky, F.C. and McCooey, K.T., (1982) CHO/HGPRT Mutation Assay: Evaluation of Gases and Volatile Liquids.
CHO/HGPRT Mutation Assay: Evaluation of Gases and Volatile Liquids. In: Tice, R.R., Costa, D.L., Schaich, K.M.
Tice, R.R., Costa, D.L., Schaich, K.M.
(eds).
(eds).
New York, Plenum, s. 91–103.
New York, Plenum, p. 91-103.
Zamora, P.O., Benson, J.M., Li, A.P. and Brooks, A.L. (1983). Evaluation of an Exposure System Using Cells Grown on Collagen Gels for Detecting Highly Volatile Mutagens in the CHO/HGPRT Mutation Assay.
Zamora, P.O., Benson, J.M., Li, A.P. and Brooks, A.L., (1983) Evaluation of an Exposure System Using Cells Grown on Collagen Gels for Detecting Highly Volatile Mutagens in the CHO/HGPRT Mutation Assay.
Environmental Mutagenesis, 5, 795–801.
Environmental Mutagenesis, 5, p. 795-801.
Locke-Huhle, C. (1983). Endoreduplication in Chinese hamster cells during alpha-radiation induced G2 arrest. Mutation Res.
Locke-Huhle, C., (1983) Endoreduplication in Chinese hamster cells during alpha-radiation induced G2 arrest.
Mutation Res., 119, 403–413.
Mutation Res., 119, p. 403-413.
Huang, Y., Change, C. and Trosko, J.E. (1983). Aphidicolin – induced endoreduplication in Chinese hamster cells.
Huang, Y., Change, C. and Trosko, J.E., (1983) Aphidicolin-induced endoreduplication in Chinese hamster cells.
Cancer Res., 43, 1362–1364.
Cancer Res., 43, p. 1362-1364.
Tato metoda je replikou metody OECD TG 475 – Zkouška na chromozomové aberace v buňkách kostní dřeně savců (1997).
This method is a replicate of the OECD TG 475, Mammalian Bone Marrow Chromosome Aberration Test (1997).
Zkouška na chromozomové aberace u savců in vivo je používána pro detekci strukturních chromozomových aberací indukovaných zkoušenou látkou v buňkách kostní dřeně savců, obvykle hlodavců (1, 2, 3, 4).
The mammalian in vivo chromosome aberration test is used for the detection of structural chromosome aberrations induced by the test substance to the bone marrow cells of animals, usually rodents (1)(2)(3)(4).
Rozlišují se dva typy strukturních aberací – chromozomové a chromatidové.
Structural chromosome aberrations may be of two types, chromosome or chromatid.
Nárůst polyploidie může znamenat, že chemická látka má schopnost indukovat numerické aberace. v případě většiny chemických mutagenů jsou indukované aberace chromatidového typu, avšak chromozomové aberace se rovněž vyskytují.
An increase in polyploidy may indicate that a chemical has the potential to induce numerical aberrations. With the majority of chemical mutagens, induced aberrations are of the chromatid-type, but chromosome-type aberrations also occur.
Chromozomové mutace a související jevy jsou příčinou mnoha geneticky podmíněných chorob u člověka a existuje mnoho důkazů o tom, že chromozomové mutace a související jevy způsobující změny v onkogenech a v genech somatických buněk tlumících nádory, mají podíl na indukci rakoviny u člověka a v experimentálních systémech.
Chromosome mutations and related events are the cause of many human genetic diseases and there is substantial evidence that chromosome mutations and related events causing alterations in oncogenes and tumour-suppressor genes are involved in cancer in humans and experimental systems.
Při této zkoušce jsou rutinně používáni hlodavci.
Rodents are routinely used in this test.
Cílovou tkání je v této zkoušce kostní dřeň, poněvadž je vysoce vaskularizovanou tkání a obsahuje populaci buněk s rychlým cyklem, které se snadno izolují a zpracovávají.
Bone marrow is the target tissue in this test, since it is a highly vascularised tissue, and it contains a population of rapidly cycling cells that can be readily isolated and processed.
Jiné druhy a cílové tkáně nejsou předmětem této metody.
Other species and target tissues are not the subject of this method.
Tato zkouška na chromozomové aberace je zvláště určená k posouzení nebezpečí mutagenese, neboť umožňuje zohlednit faktory metabolismu in vivo, farmakokinetiku a procesy reparace DNA, třebaže se mohou u různých druhů a tkání měnit.
This chromosome aberration test is especially relevant to assessing mutagenic hazard in that it allows consideration of factors of in vivo metabolism, pharmacokinetics and DNA-repair processes although these may vary among species and among tissues.
Zkouška in vivo je rovněž užitečná pro další výzkum mutagenních účinků zjištěných zkouškou in vitro.
An in vivo test is also useful for further investigation of a mutagenic effect detected by in vitro test.
Jestliže existuje důkaz o tom, že se zkoušená látka nebo reaktivní metabolity nedostanou do cílové tkáně, není vhodné tuto zkoušku použít.
If there is evidence that the test substance, or a reactive metabolite, will not reach the target tissue, it is not appropriate to use this test.
Výsledkem jsou chromozomy se 4, 8, 16… chromatidami.
The result is chromosomes with four, eight, 16, ...chromatids.
Gap: achromatická léze menší než šířka jednoho chromatidu a s minimální odchylkou chromatid.
Gap: an achromatic lesion smaller than the width of one chromatid, and with minimum misalignment of the chromatid(s).
Zvířata jsou vhodným způsobem exponována zkoušené látce a po vhodné době po expozici usmrcena.
Animals are exposed to the test substance by an appropriate route of exposure and are sacrificed at appropriate times after treatment.
Před usmrcením se zvířatům podá látka zastavující metafázi (např. kolchicin nebo Colcemide®).
Prior to sacrifice, animals are treated with a metaphase arresting agent (e.g. Colcemid® or colchicine).
Z buněk kostní dřeně se poté připraví preparáty chromozomů, obarví se a analyzují se chromozomové aberace buněk v metafázi.
Chromosome preparations are then made from the bone marrow cells and stained, and metaphase cells are analysed for chromosome aberrations.
Běžně je používán potkan, myš a křeček čínský, ačkoli lze použít jakýkoli vhodný savčí druh.
Rats, mice and Chinese hamsters are commonly used, although any appropriate mammalian species may be used.
V okamžiku zahájení studie by měla být odchylka v hmotnosti zvířat minimální a neměla by u obou pohlaví překročit ± 20 % střední hodnoty hmotnosti.
At the commencement of the study, the weight variation of animals should be minimal and not exceed ± 20 % of the mean weight of each sex.
Platí obecné podmínky podle obecného úvodu k části B, přičemž by mělo být dosaženo vlhkosti vzduchu 50–60 %.
General conditions referred in the General introduction to Part B are applied although the aim for humidity should be 50-60 %.
Zvířata se jednoznačně identifikují.
The animals are identified uniquely.
Nechají se v laboratorních podmínkách alespoň pět dní aklimatizovat.
The animals are acclimated to the laboratory conditions for at least five days.
Pevné zkoušené látky by měly být před aplikací zvířatům rozpuštěny nebo suspendovány ve vhodných rozpouštědlech nebo vehikulech a popřípadě zředěny.
Solid test substances should be dissolved or suspended in appropriate solvents or vehicles and diluted, if appropriate, prior to dosing of the animals.
Kapalné zkoušené látky mohou být podávány přímo nebo mohou být před podáním zředěny.
Liquid test substances may be dosed directly or diluted prior to dosing.
Rozpouštědlo/vehikulum
Solvent/Vehicle
Rozpouštědlo/vehikulum by nemělo mít při použitých úrovních dávek toxické účinky a mělo by být vyloučeno podezření, že reaguje se zkoušenou látkou.
The solvent/vehicle should not produce toxic effects at the dose levels used, and should not be suspected of chemical reaction with the test substance.
Jsou-li použita jiná než známá rozpouštědla/vehikula, mělo by být jejich zařazení podloženo údaji o jejich kompatibilitě.
If other than well-known solvents/vehicles are used, their inclusion should be supported with data indicating their compatibility.
Doporučuje se pokud možno nejdříve zvážit použití vodných rozpouštědel/vehikul.
It is recommended that wherever possible, the use of an aqueous solvent/vehicle should be considered first.
Kontrolní skupiny
Controls
Součástí každého experimentu by měly být pozitivní a negativní (rozpouštědlo/vehikulum) kontroly pro obě pohlaví.
Concurrent positive and negative (solvent/vehicle) controls should be included for each sex in each test.
S výjimkou aplikace zkoušené látky by měla zvířata kontrolní skupiny podstoupit identický proces jako zvířata ve skupinách, v nichž dojde k expozici.
Except for treatment with the test substance, animals in the control groups should be handled in an identical manner to the animals in the treated groups.
Pozitivní kontroly by měly poskytovat strukturní aberace in vivo při expozičních úrovních, u nichž se očekává, že poskytnou detekovatelný nárůst nad pozadí.
Positive controls should produce structural aberrations in vivo at exposure levels expected to give a detectable increase over background.
Dávky pozitivní kontroly by měly být zvoleny tak, aby byl účinek zřetelný, ale aby při odečtu nevyšla ihned najevo kódovaná identifikace preparátu.
Positive control doses should be chosen so that the effects are clear but do not immediately reveal the identity of the coded slides to the reader.
Je přijatelné, aby byla pozitivní kontrola podávána jiným způsobem než zkoušená látka a aby byl odběr v jejím případě prováděn jen jednou.
It is acceptable that the positive control be administered by a route different from the test substance and sampled at only a single time.
Pro pozitivní kontrolu mohou být použity chemické látky ze stejné chemické třídy, jsou-li k dispozici.
The use of chemical class related positive control chemicals may be considered, when available.
2,4,6-tris(aziridin-1-yl)- 1,3,5-triazin
Triethylenemelamine
V okamžiku každého odběru by měl být proveden odběr u negativních kontrol, jimž je aplikováno pouze rozpouštědlo nebo vehikulum a jež jinak podstupují stejný proces jako exponované skupiny, pokud nejsou z dosavadních kontrolních údajů k dispozici přijatelné údaje o variabilitě zvířat a četnosti buněk s chromozomovými aberacemi.
Negative controls, treated with solvent or vehicle alone, and otherwise treated in the same way as the treatment groups, should be included for every sampling time, unless acceptable inter-animal variability and frequencies of cells with chromosome aberrations are available from historical control data.
Provádí-li se pro negativní kontrolu jeden odběr, je nejvhodnějším okamžikem doba prvního odběru.
If single sampling is applied for negative controls, the most appropriate time is the first sampling time.
Kromě toho by měly být neexponované kontroly použity také tehdy, neexistují-li dosud kontrolní údaje prokazující, že zvolené rozpouštědlo/vehikulum nevyvolává žádné zhoubné nebo mutagenní účinky.
In addition, untreated controls should also be used unless there are historical or published control data demonstrating that no deleterious or mutagenic effects are induced by the chosen solvent/vehicle.
Počet a pohlaví zvířat
Number and sex of animals
Každá exponovaná a kontrolní skupina se skládá z alespoň pěti analyzovatelných zvířat pro každé pohlaví.
Each treated and control group must include at least five analysable animals per sex.
Jestliže jsou v době studie k dispozici údaje ze studií se stejným druhem a za použití stejného způsobu expozice, jež prokazují, že neexistuje mezi pohlavími rozdíl v toxicitě, bude postačující zkoušení jednoho pohlaví.
If at the time of the study there are data available from studies in the same species and using the same route of exposure that demonstrate that there are no substantial differences in toxicity between sexes, then testing in a single sex will be sufficient.
Je-li expozice člověka specifická pro určité pohlaví, jako je tomu například u některých farmaceutických látek, měla by být zkouška provedena se zvířaty odpovídajícího pohlaví.
Where human exposure to chemicals may be sex-specific, as for example with some pharmaceutical agents, the test should be performed with animals of the appropriate sex.
Plán expozice
Treatment schedule
Zkoušené látky by měly být pokud možno podávány jednorázově.
Test substances are preferably administered as a single treatment.
Zkoušené látky mohou být podávány také ve dvou dávkách, tzn. dvě dávky v týž den v rozmezí ne více než několika hodin, aby bylo usnadněno podávání velkých objemů materiálu.
Test substances may also be administered as a split dose, i.e. two treatments on the same day separated by no more than a few hours, to facilitate administering a large volume of material.
Jiné režimy podávání by měly být vědecky zdůvodněny.
Other dose regimens should be scientifically justified.
Vzorky by měly být odebrány ve dvou různých intervalech od aplikace podané v jednom dni.
Samples should be taken at two separate times following treatment on one day.
U hlodavců se odběr provádí po takové době od aplikace, která odpovídá 1,5násobku normální délky buněčného cyklu (jenž trvá obvykle 12–18 hodin).
For rodents, the first sampling interval is 1,5 normal cell cycle length (the latter being normally 12-18 hr) following treatment.
Poněvadž doba nezbytná pro příjem a metabolismus zkoušené látky a rovněž pro účinky na kinetiku buněčného cyklu může mít vliv na optimální okamžik pro stanovení chromozomových aberací, doporučuje se provést další odběr po 24 hodinách od prvního odběru.
Since the time required for uptake and metabolism of the test substance as well as its effect on cell cycle kinetics can affect the optimum time for chromosome aberration detection, a later sample collection 24 hr after the first sample time is recommended.
Je-li aplikace rozložena do více než jednoho dne, měl by být odběr proveden po takové době od poslední aplikace, která odpovídá 1,5násobku normální délky buněčného cyklu.
If dose regimens of more than one day are used, one sampling time at 1,5 normal cell cycle lengths after the final treatment should be used.