natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Pro všechny exponované kultury a kontroly se samostatně zaznamená počet SCE pro každou metafázi a počet SCE/chromosom pro každou metafázi.
The number of SCEs for each metaphase and the number of SCEs per chromosome for each metaphase should be listed separately for all treated and control cultures.
použité buňky, metody udržování buněčné kultury,
cells used, methods of maintenance of cell culture,
zkušební podmínky: složení média, koncentrace CO2, koncentrace zkoušené látky, použité vehikulum, inkubační teplota, inkubační doba, délka expozice, použitý inhibitor mitózy, jeho koncentrace a délka jeho působení, typ použitého savčího metabolického aktivačního systému, pozitivní a negativní kontroly,
test conditions: composition of media, CO2 concentration, concentration of test substance, vehicle used, incubation temperature, treatment time, spindle inhibitor used, its concentration and the duration of treatment with it, type of mammalian activation system used, positive and negative controls,
počet kultur na každý experimentální bod,
number of cell cultures per experimental point,
podrobné údaje o způsobu přípravy preparátů,
details of the technique used for slide preparation,
počet analyzovaných metafází (odděleně pro každou kulturu),
number of metaphases analysed (data given separately for each culture),
střední hodnota počtu SCE/buňku a SCE/chromosom (odděleně pro každou kulturu),
mean number of SCE per cell and per chromosome (data given separately for each culture),
kritéria hodnocení SCE,
criteria for scoring SCE,
zdůvodnění výběru úrovní dávek,
rationale for dose selection,
vztah dávka/odezva, jeli to možné,
dose-response relationship, if applicable,
PODSTATA ZKUŠEBNÍ METODY
PRINCIPLES OF THE TEST METHOD
Zkouška na recesivní letální mutace vázané na pohlaví (SLRL) u Drosophila melanogaster umožňuje detekci mutací, a to jak bodových mutací, tak i malých delecí v zárodečných buňkách hmyzu.
The sex-linked recessive lethal (SLRL) test using Drosophila melanogaster detects the occurrence of mutations, both point mutations and small deletions, in the germ line of the insect.
Tato zkouška je zkouškou na přímé mutace vhodnou pro screening v přibližně 800 lokusech chromosomu X; to představuje asi 80 % všech lokusů chromosomu X.
This test is a forward mutation assay capable of screening for mutations at about 800 loci on the X-chromosome; this represents about 80 % of all X-chromosal loci.
Chromosom X představuje přibližně jednu pětinu celého haploidního genomu.
The X-chromosome represents approximately one-fifth of the entire haploid genome.
Mutace v chromosomu X Drosophila melanogaster se fenotypicky projeví u samců nesoucích mutovaný gen.
Mutations in the X-chromosome of Drosophila melanogaster are phenotypically expressed in males carrying the mutant gene.
Když je mutace letální v hemizygotním stavu, lze na její přítomnost usuzovat z absence jednoho ze dvou typů samčích potomků, kteří se obvykle rodí heterozygotní samici.
When the mutation is lethal in the hemizygous condition, its presence is inferred from the absence of one class of male offspring out of the two that are normally produced by a heterozygous female.
Ve zkoušce na SLRL se tyto skutečnosti využívají prostřednictvím speciálně označených a uspořádaných chromosomů.
The SLRL test takes advantage of these facts by means of specially marked and arranged chromosomes.
Zdroje
Stocks
Mohou být použiti samci dobře definované divoké linie a samice linie Muller-5.
Males of a well-defined wild-type stock and females of the Muller-5 stock may be used.
Mohou být použity i jiné vhodně značené linie samic s vícenásobnou inversí chromosomu X.
Other appropriately marked female stocks with multiple inverted X-chromosomes may also be used.
Zkoušené látky se rozpustí ve vodě.
Test substances should be dissolved in water.
Látky, které jsou nerozpustné ve vodě, se mohou rozpustit nebo suspendovat ve vhodných vehikulech (např. ve směsi ethanolu a Tween-60 nebo 80) a před aplikací se dále ředí vodou nebo fyziologickým roztokem.
Substances, which are insoluble in water may be dissolved or suspended in appropriate vehicles (e.g. a mixture of ethanol and Tween-60 or 80), then diluted in water or saline prior to administration.
Použití dimethylsulfoxidu (DMSO) jako vehikula je třeba se vyhnout.
Dimethylsulphoxide (Dmso) should be avoided as a vehicle.
Počet organismů
Number of animals
Citlivost a síla zkoušky se stanoví předem.
The test should be designed with a predetermined sensitivity and power.
Četnost spontánních mutací pozorovaná v příslušné kontrolní skupině významně ovlivní počet exponovaných chromosomů, které je třeba analyzovat.
The spontaneous mutant frequency observed in the appropriate control will influence strongly the number of treated chromosomes that must be analysed.
Expozice zkoušené látce může být orální, injekční nebo může jít o expozici plynům nebo parám.
Exposure may be oral, by injection or by exposure to gases or vapours.
Při orální aplikaci (zkrmování) se zkoušená látka podává v cukerném roztoku.
Feeding of the test substance may be done in sugar solution.
Podle potřeby lze zkoušenou látku rozpustit v 0,7 % roztoku NaCl a injekčně nastříknout do hrudní nebo břišní dutiny.
When necessary, substances may be dissolved in a 0,7 % NaCl solution and injected into the thorax or abdomen.
Nasadí se negativní kontroly (s vehikulem) a pozitivní kontroly.
Negative (vehicle) and positive controls should be included.
Jsou-li k dispozici vhodné laboratorní údaje z dřívějších pokusů s kontrolami, není třeba nasazovat žádné souběžné kontroly.
However, if appropriate laboratory historical control data are available, no concurrent controls are needed.
Úrovně expozice
Exposure levels
Použijí se tři úrovně expozice.
Three exposure levels should be used.
Pro předběžný orientační odhad se použije jedna úroveň expozice rovnající se buď maximální tolerované koncentraci, nebo úrovni vyvolávající známky toxicity.
For a preliminary assessment one exposure level of the test substance may be used, that exposure level being either the maximum tolerated concentration or that producing some indication of toxicity.
U netoxických látek se použije nejvyšší dosažitelná koncentrace.
For non-toxic substances exposure to the maximum practicable concentration should be used.
Samci divokého typu (ve stáří 3–5 dnů) se exponují zkoušené látce a jednotlivě jsou připouštěni k více dosud nepřipuštěným samicím z linie Muller-5 nebo z jiné vhodně značené linie (s vícenásobnou inverzí chromosomu X).
Wild-type males (three to five days old) are treated with the test substance and mated individually to an excess of virgin females from the Muller-5 stock or from another appropriately marked (with multiple inverted X-chromosomes) stock.
Samice se vymění za čerstvé dosud nepřipuštěné samice každé dva až tři dny, aby se pokryl celý buněčný cyklus zárodečných buněk.
The females are replaced with fresh virgins every two to three days to cover the entire germ cell cycle.
U potomků těchto samic se sleduje letální účinek odpovídající účinkům na zralé spermie, na spermatidy ve středním nebo pozdním stadiu, na časné spermatidy, spermatocyty a spermatogonie v době expozice.
The offspring of these females are scored for lethal effects corresponding to the effects on mature sperm, mid or late-stage spermatids, early spermatids, spermatocytes and spermatogonia at the time of treatment.
Heterozygotní samice generace F1 narozené z tohoto křížení se dále kříží jednotlivě (tj. jedna samice/zkumavku) se svými bratry.
Heterozygous F1 females from the above crosses are allowed to mate individually (i.e. one female per vial) with their brothers.
V generaci F2 se v každé kultuře zaznamená absence samců divokého typu.
In the F2 generation, each culture is scored for the absence of wild-type males.
Jestliže se v kultuře F1 rodí samice nesoucí letální mutaci v rodičovském chromosomu X (tj. nejsou nalezeni žádní samci s ovlivněným chromosomem), testují se dcery těchto samic se stejným genotypem, aby se zjistilo, zda se letalita opakuje v příští generaci.
If a culture appears to have arisen from an F1 female carrying a lethal in the parental X-chromosome (i.e. no males with the treated chromosome are observed) daughters of that female with the same genotype should be tested to ascertain whether the lethality is repeated in the next generation.
Údaje se zpracují v tabulkové formě; uvede se počet hodnocených chromosomů X, počet afertilních samců a počet chromosomů s letální mutací pro každou koncentraci, pro každé období křížení a pro každého exponovaného samce.
Data should be tabulated to show the number of X-chromosomes tested, the number of non-fertile males and the number of lethal chromosomes at each exposure concentration and for each mating period for each male treated.
Zaznamenává se počet klastrů různých velikostí na každého samce.
Numbers of clusters of different sizes per male should be reported.
Výsledky se potvrdí nezávislým experimentem.
These results should be confirmed in a separate experiment.
Zkouška na recesivní letální mutace vázané na pohlaví se vyhodnotí vhodnými statistickými metodami.
Appropriate statistical methods should be used in evaluation sex-linked recessive lethal tests.
Nahromadění recesivních letálních mutací vzniklých v jednom samci se zpracuje a zhodnotí vhodným statistickým způsobem.
Clustering of recessive lethals originating from one male should be considered and evaluated in an appropriate statistical manner.
zdroje: použité linie nebo kmeny druhu Drosophila, věk hmyzu, počet exponovaných samců, počet sterilních samců, počet vzniklých kultur F2, počet kultur F2 bez potomků, počet zjištěných chromosomů nesoucích letální mutaci v každém stadiu zárodečných buněk,
stock: Drosophila stocks or strains used, age of insects, number of males treated, number of sterile males, number of F2 cultures established, number of F2 cultures without progeny, number of chromosomes carrying a lethal detected at each germ cell stage,
kritéria pro velikost exponovaných skupin,
criteria for establishing the size of treated groups,
podmínky zkoušky: podrobný popis plánu expozice a odběru vzorků, úrovně expozice, údaje o toxicitě, podle potřeby negativní kontroly (s rozpouštědlem) a pozitivní kontroly,
test conditions. detailed description of treatment and sampling schedule, exposure levels, toxicity data, negative (solvent) and positive controls, if appropriate,
kritéria hodnocení letálních mutací,
criteria for scoring lethal mutations,
vztah expozice/účinek, jeli to možné,
exposure/effect relationship where possible,
hodnocení údajů,
evaluation of data,
Kultury savčích buněk lze použít pro detekci fenotypických změn in vitro indukovaných chemickými látkami spojovanými s maligní transformací in vivo.
Mammalian cell culture systems may be used to detect phenotypic changes in vitro induced by chemical substances associated with malignant transformation in vivo.
Často používanými buňkami jsou C3H10T1/2, 3T3, SHE, buňky potkanů Fischer a zkouška se opírá o změny buněčné morfologie, tvorbu ložisek nebo změny v uchycení v polotuhém agaru.
Widely used cells include C3H10T1/2, 3T3, SHE, Fischer rat and the tests rely on changes in cell morphology, focus formation or changes in anchorage dependence in semi-solid agar.
Méně často se používají systémy detekující ostatní fyziologické či morfologické změny v buňkách po expozici karcinogenním chemickým látkám.
Less widely used systems exist which detect other physiological or morphological changes in cells following exposure to carcinogenic chemicals.
Žádný výsledek zkoušky in vitro není důkazem karcinogenity.
None of the in vitro test endpoints has an established mechanistic link with cancer.
Některé systémy jsou schopny detekovat promotory tumorů.
Some of the test systems are capable of detecting tumour promotors.
Cytotoxicita se zjistí měřením účinku zkoušeného materiálu na schopnost vytvářet kolonie (účinnosti klonování) nebo rychlosti růstu kultur.
Cytotoxicity may be determined by measuring the effect of the test material on colony-forming abilities (cloning efficiency) or growth rates of the cultures.
Stanovením cytotoxicity lze zjistit, zda byla expozice zkoušené látce toxikologicky relevantní, nelze ji však použít k určení četnosti transformace ve všech experimentech, protože u některých mohlo dojít k prodloužení inkubace nebo k replatingu.
The measurement of cytotoxicity is to establish that exposure to the test chemical has been toxicologically relevant but cannot be used to calculate transformation: frequency in all assays since some may involve prolonged incubation and/or replating.
Pro různé zkoušky transformace existuje řada použitelných buněčných linií a primárních kultur.
A variety of cell lines or primary cells are available depending on the transformation test being used.
Experimentátor musí zajistit, že buňky použité v testu transformace vykazují příslušné fenotypické změny po expozici známým karcinogenům a že zkouška používaná v jeho laboratoři je ověřena a že je dokumentována její validita a spolehlivost.
The investigator must ensure that the cells in the test being performed exhibit the appropriate phenotypic change after exposure to known carcinogens and that the test, in the investigator's laboratory, is of proven and documented validity and reliability.
Použitá média a experimentální podmínky musí být vhodné pro použitou zkoušku na transformace.
Media and experimental conditions should be used that are appropriate to the transformation assay in use.
Před exponováním buněk je možné zkoušené látky rozpustit nebo suspendovat v kultivačním médiu nebo ve vhodných vehikulech.
Test substances may be prepared in culture media or dissolved or suspended in appropriate vehicles prior to treatment of the cells.
Konečná koncentrace vehikula v kultuře nesmí ovlivnit životaschopnost buněk, rychlost růstu nebo výskyt transformace.
The final concentration of the vehicle in the culture system should not affect cell viability, growth rate or transformation incidence.
Pokud se použijí buněčné typy s vnitřní metabolickou aktivitou, mělo by být známo, že úroveň a vlastnosti této aktivity jsou vhodné pro zkoušenou třídu chemických látek.
Alternatively, when cell types are used that possess intrinsic metabolic activity, the nature of the activity should be known to be appropriate to the chemical class being tested.
Do každého experimentu se nasadí pozitivní kontroly využívající jak přímo působící chemickou látku, tak látku vyžadující metabolickou aktivaci; rovněž se použije kontrola s vehikulem.
Positive controls, using both a direct-acting compound and a compound requiring metabolic activation should be included in each experiment; a negative (vehicle) control should also be used.
Příkladem pozitivní kontroly mohou být tyto látky:
The following are examples of substances, which might be used as positive controls:
přímo působící látky:
Direct-acting chemicals:
ethyl-methansulfonát,
Ethylmethanesulphonate,
propano-3-lakton,
β-propiolactone,
látky vyžadující metabolickou aktivaci:
Compounds requiring metabolic activation:
N-(fluoren-2-yl)acetamid,
2-acetylaminofluorene,
4-dimethylaminoazobenzen,
4-dimethylaminoazobenzene,
7,12-dimethylbenzoanthracen.
7,12-dimethylbenzanthracene.
Podle potřeby se zařadí další pozitivní kontrola ze stejné třídy chemických látek, jako je zkoušená látka.
When appropriate, an additional positive control of the same chemical class as the compound under test should be included.
Použije se několik koncentrací zkoušené látky.
Several concentrations of the test substance should be used.
Tyto koncentrace musí vyvolávat toxický účinek závislý na koncentraci, přičemž nejvyšší koncentrace má vést k nízké úrovni přežití buněk a úroveň přežití buněk při nejnižší koncentraci má být přibližně stejná jako u negativní kontroly.
These concentrations should yield a concentration-related toxic effect, the highest concentration producing a low level of survival and the survival in the lowest concentration being approximately the same as that in the negative control.
Buňky se exponují dostatečnou dobu v závislosti na použitém zkušebním systému; při delší expozici může být nezbytná opakovaná expozice spojená s výměnou média (a podle potřeby s výměnou čerstvé metabolické aktivační směsi).
Cells should be exposed for a suitable period of time depending on the test system in use, and this may involve re-dosing accompanied by a change of medium (and if necessary, fresh metabolic activation mixture) if exposure is prolonged.
Buňky, které nemají dostatečnou vnitřní metabolickou aktivitu, musí být exponovány zkoušené chemické látce za přítomnosti i za nepřítomnosti vhodného metabolického aktivačního systému.
Cells without sufficient intrinsic metabolic activity should be exposed to the test substance in the presence and absence of an appropriate metabolic activation system.
Na konci expoziční doby se z buněk vymyje zkoušená látka a buňky se kultivují za vhodných podmínek, aby se mohl projevit sledovaný transformovaný fenotyp; poté se zaznamená výskyt transformace.
At the end of the exposure period, cells are washed free of test substance and cultured under conditions appropriate for the appearance of the transformed phenotype being monitored and the incidence of transformation determined.
Všechny výsledky se potvrdí nezávislým experimentem.
All results are confirmed in an independent experiment.
Údaje se zpracují v tabulkové formě; podle použité zkoušky jimi mohou být např. počet misek, počet misek s transformací nebo počet transformovaných buněk.
Data should be presented in tabular form and may take a variety of forms according to the assay being used e.g. plate counts, positive plates or numbers of transformed cells.
Podle potřeby se přežití buněk vyjádří v procentech přežití v kontrolní kultuře a četnost transformací se vyjádří jako podíl transformovaných buněk a životaschopných buněk.
Where appropriate, survival should be expressed as a percentage of control levels and transformation frequency expressed as the number of transformants per number of survivors.
typ použitých buněk, počet buněčných kultur, metody udržování buněčných kultur,
cell type used, number of cell cultures, methods for maintenance of cell cultures,
zkušební podmínky: koncentrace zkoušené látky, použité vehikulum, doba inkubace, délka a frekvence expozice, hustota buněk během expozice, typ použitého vnějšího metabolického aktivačního systému, pozitivní a negativní kontroly, specifikace sledovaného fenotypu, použitý selekční systém (podle potřeby), zdůvodnění výběru koncentrací,
test conditions: concentration of test substance, vehicle used, incubation time, duration and frequency of treatment, cell density during treatment, type of exogenous metabolic activation system used, positive and negative controls, specification of phenotype being monitored, selective system used (if appropriate), rational for dose selection,
metody počítání životaschopných a transformovaných buněk,
method used to enumerate viable and transformed cells,
Dominantní letální účinky způsobují embryonální nebo fetální smrt.
Dominant lethal effects cause embryonic or foetal death.
Indukce dominantních letálních mutací po expozici chemické látce dokazuje, že tato látka poškozuje zárodečné tkáně zkušebního druhu.
Induction of dominant lethals by exposure to a chemical substance indicates that the substance has affected germinal tissue of the test species.
Obecně se má za to, že dominantní letální mutace jsou způsobeny poškozením chromosomů (strukturní a numerické abnormality).
It is generally accepted that dominant lethals are due to chromosomal damage (structural and numerical anomalies).
Smrt embrya exponované samice může být také výsledkem toxických účinků.
Embryonic death if females are treated may also be the result of toxic effects.
Samci jsou zpravidla exponováni zkoušené látce a pářeni s neexponovanými, dosud nepřipuštěnými samicemi.
Generally, male animals are exposed to the test compound and mated to untreated virgin females.
Různá stadia zárodečných buněk mohou být testována odděleně použitím po sobě jdoucích intervalů páření.
The various germ cell stages can be tested separately by the use of sequential mating intervals.
Nárůst mrtvých implantací na samici v exponované skupině nad počet mrtvých implantací na samici v kontrolní skupině odpovídá postimplantačním ztrátám.
The increase of dead implants per female in the treated group over the dead implants per female in the control group reflects the post-implantational loss.
Preimplantační ztráty se hodnotí na základě počtu žlutých tělísek nebo porovnáním všech implantací na samici v exponované a kontrolní skupině.
Pre-implantational loss can be estimated based on corpora lutea counts or by comparing the total implants per female in treated and control groups.
Celková dominantní letalita je součtem preimplantačních a postimplantačních ztrát.
The total dominant lethal effect is the sum of pre- and post-implantational loss.
Výpočet celkového dominantního letálního účinku je založen na porovnání počtu živých implantací na samici v exponované skupině s počtem živých implantací na samici v kontrolní skupině.
The calculation of the total dominant lethal effect is based on comparison of the live implants per female in the test group to the live implants per female in the control group.
Snížení počtu implantací v některých intervalech může být způsobeno zánikem buněk (tj. spermatocytů a/nebo spermatogonií).
A reduction in the number of implants at certain intervals may be the result of cell killing (i.e. of spermatocytes and/or spermatogonia).
Zkoušená látka se pokud možno rozpustí nebo suspenduje v isotonickém fyziologickém roztoku.
When possible, test substances should be dissolved or suspended in isotonic saline.
Látky, které jsou nerozpustné ve vodě, se mohou rozpustit nebo suspendovat ve vhodných vehikulech.
Chemicals insoluble in water may be dissolved or suspended in appropriate vehicles.
Použité vehikulum nesmí interferovat se zkoušenou látkou ani vyvolávat toxické účinky.
The vehicle used should neither interfere with the test chemical nor produce toxic effects.
Použijí se čerstvě připravené roztoky zkoušené látky.
Fresh preparations of the test chemical should be employed.
Zkoušená látka se obvykle podává pouze jednou.
The test compound should generally be administered only once.
Na základě toxikologických informací lze podávat látku opakovaně.
Based on toxicological information a repeated treatment schedule can be employed.
Obvyklými způsoby podávání jsou orální aplikace sondou nebo intraperitoneální injekce.
The usual routes of administration are oral intubation or intraperitoneal injection.
Mohou být vhodné i jiné způsoby aplikace.
Other routes of administration may be appropriate.
Jako zkušební druh se doporučuje potkan nebo myš.
Rats or mice are recommended as the test species.
Provede se náhodný výběr zdravých, pohlavně dospělých zvířat, která se přiřadí do experimentálních a kontrolních skupin.
Healthy fully sexually mature animals are randomised and assigned to treatment and control groups.
Použije se dostatečný počet exponovaných samců s ohledem na spontánní variabilitu hodnocené biologické charakteristiky.
An adequate number of treated males should be used, taking into account the spontaneous variation of the biological character being evaluated.
Počet se zvolí s ohledem na předem stanovenou citlivost detekce a statistickou významnost.
The number chosen should be based on the pre-determined sensitivity of detection and power of significance.
V typické zkoušce se například volí takový počet samců v každé exponované skupině, aby bylo dosaženo 30–50 březích samic na dobu připouštění.
For example in a typical test, the number of males in each dose group should be sufficient to provide between 30 and 50 pregnant females per mating interval.
Do každého experimentu se nasadí souběžné pozitivní a negativní kontroly (neexponované s vehikulem).
Generally concurrent positive and negative (vehicle) controls should be included in each experiment.