natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Některé látky mohou růst při nízkých koncentracích stimulovat.
Some substances can stimulate the growth at low concentrations.
V úvahu by měla být vzata pouze data udávající potlačení růstu mezi 0 a 100 %.
Only data points indicating inhibition between 0 and 100 % should be considered.
POROVNÁNÍ PLOCH POD RŮSTOVÝMI KŘIVKAMI
COMPARISON OF AREAS UNDER THE GROWTH CURVES
Plocha mezi růstovou křivkou a vodorovnou linií N = N0 se vypočte podle tohoto vzorce:
The area between the growth curves and the horizontal line N = N0 may be calculated according to the formula:
A plocha,
A area
počet buněk v ml v čase t0 (na počátku zkoušky),
number of cells/ml at time t0 (beginning of the test),o,
naměřený počet buněk v 1 ml v čase t1,
measured number of cells/ml at t1
naměřený počet buněk v 1 ml v čase,
measured number of cells/ml at time
doba prvního měření od počátku zkoušky,
time of first measurement after beginning of test
doba n-tého měření od počátku zkoušky,
time of nth measurement after beginning of test.
n počet měření od počátku zkoušky.
n number of measurements taken after the beginning of the test.
Potlačení růstu vyjádřené v % (IA) se pro každou koncentraci zkoušené látky vypočte podle vzorce:
The percentage inhibition of the cell growth at each test substance concentration (IA) is calculated according to the formula:
plocha mezi růstovou křivkou kontrolní zkoušky a horizontální linií N = N0,
area between the control growth curve and the horizontal line N = No.
plocha mezi růstovou křivkou při koncentraci t a horizontální linií N = N0.
area between the growth curve at the concentration t and the horizontal line N = No.
Hodnoty I A
I A
se nanesou na semilogaritmický nebo na pravděpodobnostní semilogaritmický papír proti odpovídajícím koncentracím.
values are plotted on semilogarithmic paper or on semilogarithmic probit paper against the corresponding concentrations. If plotted on probit paper, the points are fitted by a straight line, either by eye or by a computed regression.
Vynesou-li se body na pravděpodobnostní papír, proloží se body přímka, a to ručně nebo regresním výpočtem.
The EC50 is estimated from the regression line by reading off the concentration that is equivalent to a 50 % inhibition (IA = 50 %). To denote this value unambiguously in relation to this method of calculation, it is proposed to use the symbol EbC50.
Hodnota EC50 se odhadne odečtením z regresní přímky jako koncentrace odpovídající 50 % snížení růstu (IA = 50 %). Pro jednoznačné označení této hodnoty v rámci této metody výpočtu se doporučuje použít symbol EbC50. Je důležité, aby byla s hodnotou EbC50 uvedena příslušná expoziční doba, např. EbC50 (0–72 hodin).
It is essential that the EbC50 is quoted with the appropriate exposure period, e.g. EbC50 (0-72h).
POROVNÁNÍ RŮSTOVÝCH RYCHLOSTÍ
COMPARISON OF GROWTH RATES
Průměrnou specifickou růstovou rychlost (μ) pro exponenciálně rostoucí kultury lze vypočítat jako:
The average specific growth rate (μ) for exponentially growing cultures can be calculated as
kde t0 je čas začátku zkoušky.
where to is the time at the beginning of the test.
Průměrnou specifickou růstovou rychlost lze také odvodit ze sklonu regresní přímky v závislosti ln N na čase.
Alternatively, the average specific growth rate may be derived from the slope of the regression line in a plot of ln N versus time.
Snížení specifické růstové rychlosti vyjádřené v procentech pro každou koncentraci zkoušené látky (Iμt) se vypočte podle vzorce:
The percentage inhibition of specific growth rate at each test substance concentration (Iμt) is calculated according to the formula:
střední specifická růstová rychlost v kontrole,
mean control specific growth rate
střední specifická růstová rychlost pro zkušební koncentraci t.
mean specific growth rate for the test concentration t
Snížení střední specifické růstové rychlosti v procentech při všech koncentracích zkoušené látky ve srovnání s kontrolní hodnotou se vynese proti logaritmu koncentrace.
The percentage reduction in average specific growth rate at each test substance concentration compared to the control value is plotted against the logarithm of the concentration.
Hodnotu EC5o lze odečíst z výsledného grafu.
The EC5o may be read from the resulting graph.
Pro jednoznačné označení EC50 odvozené touto metodou se doporučuje použít symbol ErC50.
To denote unambiguously the EC50 derived by this method it is proposed to use the symbol ErC50.
Musí být uvedeny okamžiky měření, např. vztahuje-li se hodnota k času 0 a k 72 hodin, označí se symbolem ErC50 (0–72 hodin).
The times of measurement must be indicated, e.g. if the value relates to times 0 and 72 hours, the symbol becomes ErC50 (0-72h).
Poznámka: Ve výrazu pro specifickou růstovou rychlost vystupují logaritmy, tzn. malé změny růstové rychlosti mohou odpovídat velkým změnám biomasy.
Note: specific growth rate is a logarithmic term, and small changes in growth rate may lead to great changes in biomass.
Hodnoty EbC a ErC tedy nejsou číselně srovnatelné.
EbC and ErC values are therefore not numerically comparable.
VÝPOČET NOEC
CALCULATION OF THE NOEC
Hodnota koncentrace nezpůsobující žádné pozorovatelné účinky (NOEC) se stanoví vhodnou statistickou metodou pro srovnávání více vzorků (např. analýza rozptylu a Dunnettův test) s využitím jednotlivých hodnot ploch pod růstovými křivkami A (viz bod 2.1) nebo specifických růstových rychlostí μ (viz bod 2.2).
The No Observed Effect Concentration is determined by a suitable statistical procedure for multisample comparison (e.g. analysis of variance and Dunnett's test), using the individual replicates values of the areas under the growth curves A (see point 2.1) or the specific growth rates μ (see point 2.2).
zkoušená látka chemické identifikační údaje,
test substance: chemical identification data,
testovací organismus: původ, laboratorní kultura, číslo kmene, metoda kultivace,
test organisms: origin, laboratory culture, strain number, method of cultivation,
datum zahájení a ukončení zkoušky a délka zkoušení,
date of the start and the end of the test and its duration,
teplota,
temperature,
složení média,
composition of medium,
kultivační zařízení,
culturing apparatus,
hodnoty pH roztoku na počátku a na konci zkoušky (je-li pozorováno kolísání pH o více než 1,5, uvede se vysvětlení),
pH of solutions at the start and end of the test (an explanation should be provided if pH deviations of more than 1,5 unit are observed),
nosič a metoda použitá pro rozpouštění zkoušené látky, koncentrace nosiče ve zkušebních roztocích,
vehicle and method used for solubilising the test substance and concentration of the vehicle in the test solutions,
intenzita a kvalita světla,
light intensity and quality,
zkušební koncentrace (naměřené nebo nominální),
concentrations tested (measured or nominal).
výsledky:
results:
koncentrace buněk v jednotlivých baňkách v každé době měření a metoda měření koncentrace buněk,
cell density for each flask at each measuring point and method for measuring cell density,
průměrné hodnoty koncentrace buněk,
mean values of cell density,
růstové křivky,
growth curves,
grafické znázornění vztahu koncentrace – účinek,
graphical presentation of the concentration effect relationship,
hodnoty EC a metoda výpočtu,
EC values and method of calculation,
další pozorované účinky.
other observed effects.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag „Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus“, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus’, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
ISO 8692- Water quality -Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum.
ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum.
and M.Vighi -Chemosphere, 1981, vol. 10, 1123–1126.
and M.Vighi — Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Příklad postupu kultivace řas
Example of a procedure for the culturing of algae
Účelem kultivace následujícím postupem je získání kultur řas pro zkoušky toxicity.
The purpose of culturing on the basis of the following procedure is to obtain algal cultures for toxicity tests.
Měly by být použity vhodné metody k tomu, aby bylo zajištěno, že kultury řas nebudou infikovány bakteriemi (ISO 4833).
Suitable methods should be used to ensure that the algal cultures are not infected with bacteria (ISO 4833).
Vhodné mohou být axenické kultury, avšak základem jsou jednodruhové kultury.
Axenic cultures may be desirable but unialgal cultures are essential.
Všechny operace se provádějí za sterilních podmínek, aby nedošlo ke kontaminaci bakteriemi a jinými řasami.
All operations should be carried out under sterile conditions in order to avoid contamination with bacteria and, other algae.
Kontaminované kultury se vyřadí.
Contaminated cultures should be rejected.
Postupy při získání kultur řas
Procedures for obtaining algal cultures
Příprava živných roztoků (média):
Preparation of nutrient solutions (media):
Médium lze připravit zředěním koncentrovaných základních roztoků živin.
the medium can be prepared by diluting concentrated stock solutions of nutrients.
K získání pevného média se přidává 0,8 % agaru.
For solid medium, 0,8 % of agar is added.
Použité médium by mělo být sterilní.
The medium used should be sterile.
Sterilizace v autoklávu může vést ke ztrátě NH3.
Sterilisation by autoclaving may lead to a loss of NH3.
Kmenová kultura:
Stock culture:
Kmenové kultury jsou malé kultury řas, které se pravidelně přenášejí do čerstvého média, kde slouží jako výchozí zkušební materiál.
the stock cultures are small algal cultures that are regularly transferred to fresh medium to act as initial test material.
Nejsou-li kultury pravidelně používány, vyočkovávají se na šikmý agar.
If the cultures are not used regularly they are streaked out on sloped agar tubes.
Poté se nejméně jednou za dva měsíce přenášejí do čerstvého média.
These are transferred to fresh medium at least once every two months.
Kmenové kultury se pěstují v Erlenmeyerových baňkách obsahujících vhodné médium (objem přibližně 100 ml).
the stock cultures are grown in conical flasks containing the appropriate medium (volume about 100 ml).
Jsou-li řasy kultivovány při teplotě 20 oC a stálém osvětlení, musí se přenášet každý týden.
When the algae are incubated at 20 oC with continuous illumination, a weekly transfer is required.
Při přeočkování se přenese sterilní pipetou do baňky s čerstvým médiem takové množství „staré“ kultury, aby byla výchozí koncentrace u rychle rostoucího druhu řas asi stokrát menší než koncentrace kultury staré.
During transfer an amount of ‘old’ culture is transferred with sterile pipettes into a flask of fresh medium, so that with the fast-growing species the initial concentration is about 100 times smaller than in the old culture.
Růstovou rychlost druhu řas lze odečíst z růstové křivky.
the growth rate of a species can be determined from the growth curve.
Je-li známa, lze z ní odhadnout hustotu, při níž musí být kultura přenesena do čerstvého média.
If this is known, it is possible to estimate the density at which the culture should be transferred to new medium.
K tomu musí dojít před fází odumírání kultury.
This must be done before the culture reaches the death phase.
Předkultura:
Pre-culture:
Účelem předkultur je poskytnout dostatečné množství řas potřebných pro naočkování zkušebních kultur.
the pre-culture is intended to give an amount of algae suitable for the inoculation of test cultures.
Předkultura se kultivuje za zkušebních podmínek a použije se ještě během exponenciálního růstu, to znamená obvykle po třídenní inkubační lhůtě.
The pre-culture is incubated under the conditions of the test and used when still exponentially growing, normally after an incubation period of about three days.
Obsahují-li kultury řas deformované nebo abnormální buňky, musí se odstranit.
When the algal cultures contain deformed or abnormal cells, they must be discarded.
V normě ISO 8692 – Jakost vody – Růstová inhibiční zkouška na sladkovodních řasách Scenedesmus subspicatus a Selenastrum capricornutum jsou uvedeny výsledky mezilaboratorních zkoušek dichromanu draselného provedených 16 laboratořemi.
The ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum reports the following results for an inter-laboratory test among 16 laboratories, testing potassium dichromate:
Střední hodnota (mg/l)
Means (mg/l)
Rozpětí (mg/l)
Range (mg/l)
Je popsáno šest metod, které umožňují screeningové posouzení snadné biologické rozložitelnosti chemických látek v aerobním vodním prostředí:
Six test methods are described that permit the screening of chemicals for ready biodegradability in an aerobic aqueous medium:
zkouška na úbytek rozpuštěného organického uhlíku (DOC) (metoda C.4-A);
Dissolved Organic Carbon (DOC) Die-Away (Method C.4-A)
modifikovaná screeningová zkouška OECD – na úbytek DOC (metoda C.4-B);
Modified OECD Screening — DOC Die-Away (Method C.4-B)
zkouška na uvolňování oxidu uhličitého (CO2) (modifikovaná Sturmova zkouška) (metoda C.4-C);
Carbon dioxide (CO2) Evolution (Modified Sturm Test) (Method C.4-C)
zkouška manometrickou respirometrií (metoda C.4-D);
Manometric Respirometry (Method C.4-D)
zkouška v uzavřených lahvičkách (metoda C.4-E);
Closed Bottle (Method C.4-E)
zkouška MITI (Ministerstvo zahraničního obchodu a průmyslu – Japonsko) (metoda C.4-F).
MITI (Ministry of International Trade and Industry — Japan) (Method C.4-F)
Obecné a společné úvahy pro všech šest zkoušek jsou uvedeny v části I metody.
General and common considerations to all six tests are given in Part I of the method.
Specifické body jednotlivých metod jsou uvedeny v částech II až VII.
Items specific for individual methods are given in Parts II to VII.
Dodatky obsahují definice, vzorce a návody.
The appendices contain definitions, formulas and guidance material.
Mezilaboratorní srovnávací test OECD provedený v roce 1988 ukázal, že metody poskytují shodné výsledky.
An OECD inter-laboratory comparison exercise, done in 1988, has shown that the methods give consistent results.
V závislosti na fyzikálním charakteru látky, která má být zkoušena, se však může dávat přednost určité metodě.
However, depending on the physical characteristics of the substance to be tested, one or other of the methods may be preferred.
VÝBĚR VHODNÉ METODY
SELECTION OF THE APPROPRIATE METHOD
Pro volbu nejvhodnější metody jsou nezbytné informace o rozpustnosti, tenzi par a o adsorpčních vlastnostech chemické látky.
In order to select the most appropriate method, information on the chemical's solubility, vapour pressure and adsorption characteristics is essential.
Pro výpočet teoretických hodnot a/nebo ověření naměřených hodnot parametrů, např. TSK, TCO2, DOC, TOC, CHSK (viz dodatky 1 a 2) je nutné znát chemickou strukturu nebo vzorec.
The chemical structure or formula should be known in order to calculate theoretical values and/or check measured values of parameters, e.g. ThOD, ThCO2, DOC, TOC, COD (see Appendices 1 and 2).
Zkoušené chemické látky, jejichž rozpustnost ve vodě je alespoň 100 mg/l, lze zkoušet všemi metodami za předpokladu, že netěkají a neadsorbují se.
Test chemicals which are soluble in water to at least 100 mg/l may be assessed by all methods, provided they are non-volatile and non-adsorbing.
Pro látky špatně rozpustné ve vodě, které těkají nebo se adsorbují, jsou vhodné metody uvedené v tabulce 1.
For those chemicals which are poorly soluble in water, volatile or adsorbing, suitable methods are indicated in Table 1.
Způsob, jakým je třeba zacházet s látkami špatně rozpustnými ve vodě a s látkami těkavými, je popsán v dodatku 3.
The manner in which poorly water-soluble chemicals and volatile chemicals can be dealt with is described in Appendix 3.
Mírně těkavé látky je možno zkoušet metodou úbytku DOC, pokud je ve zkušebních nádobách (které musí být vhodně uzavřeny) dostatečně velký prostor pro plyn.
Moderately volatile chemicals may be tested by the DOC Die-Away method if there is sufficient gas space in the test vessels (which should be suitably stoppered).
V tomto případě musí být provedena abiotická kontrola pro zohlednění případné fyzikální ztráty.
In this case, an abiotic control must be set up to allow for any physical loss.
Použitelnost zkušebních metod
Applicability of test methods
Analytická metoda
Analytical Method
Vhodnost pro látky
Suitability for substances which are:
špatně rozpustné
poorly soluble
těkavé
volatile
adsorbující se
adsorbing
Zkouška na úbytek DOC
DOC Die-Away
rozpuštěný organický uhlík
Dissolved organic carbon
modif. zkouška OECD – na úbytek DOC
Mod. OECD Die-Away
Zkouška na uvolňování CO2
Evolution
respirometrie: uvolňování CO2
Respirometry: CO2 evolution
Manometrická respirometrie
Manometric Respirometry
manometrická respirome-trie: spotřeba kyslíku
Manometric respirometry: oxygen consumption
Zkouška v uzavřených lahvičkách
Closed Bottle
respirometrie: rozpuštěný kyslík
Respirometry: dissolved oxygen
respirometrie: spotřeba kyslíku
Respirometry: oxygen consumption
Pro interpretaci získaných výsledků, zejména pokud jsou výsledky nízké nebo marginální, se vyžadují informace o čistotě nebo relativních podílech hlavních složek zkoušeného materiálu.
Information on the purity or the relative proportions of major components of the test material is required to interpret the results obtained, especially when the results are low or marginal.
Pro volbu vhodných zkušebních koncentrací mohou být velmi užitečné informace o toxicitě zkoušené chemické látky pro bakterie (dodatek 4); tyto informace mohou být důležité pro správnou interpretaci nízkých hodnot biologického rozkladu.
Information on the toxicity of the test chemical to bacteria (Appendix 4) may be very useful for selecting appropriate test concentrations and may be essential for the correct interpretation of low biodegradation values.
Pro ověření postupu se souběžně se zkouškou a ve vlastní baňce zkoušejí referenční chemické látky, které splňují kritéria snadné biologické rozložitelnosti.
In order to check the procedure, reference chemicals which meet the criteria for ready biodegradability are tested by setting up an appropriate flask in parallel to the normal test runs.
Vhodnými chemickými látkami jsou anilin (čerstvě předestilovaný), natriumacetát, natriumbenzoát.
Suitable chemicals are aniline (freshly distilled), sodium acetate and sodium benzoate.
Všechny tyto referenční chemické látky se za podmínek v uvedených metodách rozkládají, i když se záměrně nepřidá žádné inokulum.
These reference chemicals all degrade in these methods even when no inoculum is deliberately added.
Byl podán návrh hledat referenční chemickou látku, která by byla snadno rozložitelná, avšak vyžadovala by přidání inokula.
It was suggested that a reference chemical should be sought which was readily biodegradable but required the addition of an inoculum.
Navržen byl kaliumhydrogenftalát. O této látce je třeba ještě získat více údajů, než ji bude možné přijmout jako referenční látku.
Potassium hydrogen phthalate has been proposed but more evidence needs to be obtained with this substance before it can be accepted as a reference substance.
V respirometrických zkouškách mohou v důsledku nitrifikace ovlivnit spotřebu kyslíku látky obsahující dusík (viz dodatky 2 a 5).
In the respirometric tests, nitrogen-containing compounds may affect the oxygen uptake because of nitrification (see Appendices 2 and 5).
Roztok nebo suspense zkoušené látky v minerálním prostředí se inokuluje a kultivuje v aerobních podmínkách v temnu nebo v difuzním světle.
A solution, or suspension, of the test substance in a mineral medium is inoculated and incubated under aerobic conditions in the dark or in diffuse light.
Množství DOC ve zkušebním roztoku pocházející z inokula se musí udržovat ve srovnání s DOC pocházejícího ze zkoušené látky co nejnižší.
The amount of DOC in the test solution due to the inoculum should be kept as low as possible compared to the amount of DOC due to the test substance.
Endogenní aktivita inokula se zohlední na základě souběžné slepé zkoušky s inokulem, avšak bez zkoušené látky, třebaže endogenní aktivita buněk v přítomnosti látky přesně neodpovídá aktivitě v endogenní kontrolní zkoušce.
Allowance is made for the endogenous activity of the inoculum by running parallel blank tests with inoculum but without test substance, although the endogenous activity of cells in the presence of the substance will not exactly match that in the endogenous control.
Za účelem kontroly postupu se souběžně provádí zkouška s referenční látkou.
A reference substance is run in parallel to check the operation of the procedures.
Obecně se rozklad sleduje stanovením parametrů jako DOC, tvorba CO2 nebo spotřeba kyslíku a měření se provádějí v dostatečně krátkých intervalech, aby bylo možné identifikovat začátek a konec biologického rozkladu.
In general, degradation is followed by the determination of parameters, such as DOC, CO2 production and oxygen uptake, and measurements are taken at sufficiently frequent intervals to allow the identification of the beginning and end of biodegradation.
Měření automatickými respirometry je kontinuální.
With automatic respirometers the measurement is continuous.
Někdy se doplňkově k jinému parametru měří DOC, avšak obvykle pouze na začátku a na konci zkoušky.
DOC is sometimes measured in addition to another parameter but this is usually done only at the beginning and the end of the test.
Lze rovněž použít specifickou chemickou analýzu, kterou se vyhodnotí primární rozklad zkoušené látky nebo kterou se stanoví koncentrace kteréhokoli vzniklého meziproduktu (ve zkoušce MITI povinné).
Specific chemical analysis can also be used to assess primary degradation of the test substance, and to determine the concentration of any intermediate substances formed (obligatory in the MITI test).
Zkouška obvykle trvá 28 dnů.
Normally, the test lasts for 28 days.
Je však možné ukončit měření před uplynutím 28 dní, tj. jakmile vykazuje křivka biologického rozkladu plató po tři po sobě následující měření.
Tests however may be ended before 28 days, i.e. as soon as the biodegradation curve has reached a plateau for at least three determinations.
Je také možné měření po 28 dnech prodloužit, jestliže z křivky vyplývá, že biologický rozklad začal, avšak 28. dne ještě nebylo ještě dosaženo plató.
Tests may also be prolonged beyond 28 days when the curve shows that biodegradation has started but that the plateau has not been reached day 28.
Vzhledem k charakteru biologického rozkladu a směsných populací bakterií používaných jako inokula se stanovení provádějí nejméně duplicitně.
Because of the nature of biodegradation and of the mixed bacterial populations used as inocula, determinations should be carried out at least in duplicate.
Je obecně známo, že čím vyšší je koncentrace mikroorganismů přidaných na počátku do zkušebního média, tím menší jsou rozdíly mezi vícenásobnými měřeními.
It is common experience that the larger the concentration of micro-organisms initially added to the test medium, the smaller will be the variation between replicates.
Okružní testy rovněž ukázaly, že mezi výsledky získanými různými laboratořemi mohou být velké rozdíly, avšak u snadno biologicky rozložitelných sloučenin se obvykle dosahuje dobré shody.
Ring tests have also shown that there can be large variations between results obtained by different laboratories, but good agreement is normally obtained with easily biodegradable compounds.
Platnost zkoušky
Validity of the test