natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Je běžnou akvarijní rybou z čeledi kaprovitých a informace o péči o něj a o jeho chovu jsou uvedeny v standardních příručkách o tropických rybách.
It is a common aquarium fish of the carp family, and information about procedures for its care and culture can be found in standard reference books on tropical fish.
Přehled jeho biologie a použití ve výzkumu ryb podává Laale (1).
Its biology and use in fishery research have been reviewed by Laale (1).
Ryba zřídka dorůstá délky více než 45 mm.
The fish rarely exceeds 45 mm in length.
Má válcové tělo se 7–9 horizontálními tmavě modrými stříbřitými pruhy.
The body is cylindrical with 7-9 dark-blue horizontal silvery stripes.
Pruhy pokračují přes ocasní a řitní ploutve.
These stripes run into the caudal and anal fins.
Hřbet má olivově zelený.
The back is olive-green.
Samečci jsou štíhlejší než samičky.
Males are slimmer than females.
Samičky jsou stříbrnější a mají rozšířené břicho, zejména před třením.
Females are more silvery and the abdomen is distended, particularly prior to spawning.
Dospělé ryby dokážou snášet velké kolísání teploty, pH a tvrdosti vody.
Adult fishes are able to tolerate large fluctuations in temperature, pH and hardness.
Mají-li se však získat zdravé ryby poskytující jikry dobré kvality, měly by být zajištěny optimální podmínky.
However, in order to get healthy fish which produce eggs of good quality, optimal conditions should be provided.
Při tření sameček sleduje samičku a doráží na ni a při vypuzení jiker je oplodní.
During spawning the male pursues and butts the female, and as the eggs are expelled they are fertilised.
Jikry, které jsou průsvitné a nejsou přilnavé, dopadají na dno, kde mohou být pozřeny rodiči.
The eggs, which are transparent and non-adhesive, fall to the bottom where they may be eaten by the parents.
Na tření má vliv světlo.
Spawning is influenced by light.
Při odpovídajícím ranním světle se ryby třou v prvních hodinách po rozednění.
If the morning light is adequate, the fish usually spawns in the early hours following daybreak.
Samička může klást v odstupu jednoho týdne dávky o několika stech jiker.
A female can produce batches of several hundreds of eggs at weekly intervals.
PODMÍNKY PRO MATEČNÉ RYBY, REPRODUKCE A RANÁ ŽIVOTNÍ STADIA
CONDITIONS OF PARENTAL FISH, REPRODUCTION AND EARLY-LIFE STAGES
Vybere se vhodný počet zdravých ryb, které se alespoň dva týdny před předpokládaným třením udržují ve vhodné vodě (např. dodatek 4).
Select a suitable number of healthy fish and keep these in suitable water (e.g. Annex 4) for at least two weeks prior to the intended spawning.
Skupina ryb by měla mít možnost se před kladením jiker pro zkoušku alespoň jednou vytřít.
The group of fish should be allowed to breed at least once before producing the batch of eggs used in the test.
Hustota obsádky ryb by v tomto období neměla přesáhnout 1 gram ryb na litr.
The density of fish during this period should not exceed 1 gram of fish per litre.
Pravidelná výměna vody nebo použití přečišťovacího systému umožní hustotu zvýšit.
Regular changes of water or the use of purification systems will enable the density to be higher.
Teplota v chovných nádržích se má udržovat na 25 ± 2 οC.
The temperature in the holding tanks should be maintained at 25 ± 2 oC.
Ryby by měly dostávat rozmanitou potravu, která může obsahovat například komerční suché krmivo, čerstvě vylíhnuté žábronožky (Arthemia), chironomidy, dafnie, bílé červy roupice (Enchytraeids).
The fish should be provided with a varied diet, which may consist of, for example, appropriate commercial dry food, live newly hatched Arthemia, chironomids, Daphnia, white worms (Enchytraeids). Two procedures are outlined below, which in practice have led to a sufficient batch of healthy, fertilised eggs for a test to be run:
Dále jsou uvedeny dvě metody, které v praxi vedly k dostatečnému množství zdravých oplodněných jiker pro provedení zkoušky:
Eight females and 16 males are placed in a tank containing 50 litres of dilution water, shielded from direct light and left as undisturbed as possible for at least 48 hours.
Osm samiček a 16 samečků se umístí do nádrže obsahující 50 litrů ředicí vody a chráněné před přímým světlem a ponechá se alespoň 48 hodin co nejvíce v klidu.
A spawning tray is placed at the bottom of the aquarium in the afternoon the day before start of the test. The spawning tray consists of a frame (plexi-glass or other suitable material), 5-7 cm high with a 2-5 mm coarse net attached at the top and a 10-30 μm fine net at the bottom.
Na dno nádrže se odpoledne v den před započetím zkoušky umístí vytírací rošt.
A number of ‘spawning-trees’, consisting of untwisted nylon rope, are attached to the coarse net of the frame.
Vytírací rošt se skládá z 5–7 cm vysokého rámu (z plexiskla nebo jiného vhodného materiálu) s 2–5 cm hrubým roštem nahoře a s 10–30 μm jemným roštem vespod.
After the fish have been left in dark for 12 hours, a faint light is turned on which will initiate the spawning. Two to four hours after spawning, the spawning tray is removed and the eggs collected.
Na hrubém roštu je připevněna řada vytíracích střapců pro kladení jiker z nekrouceného silonového vlákna.
The spawning tray will prevent the fish from eating the eggs and at the same time permit an easy collection of the eggs.
Poté, co byly ryby drženy 12 hodin v temnu, se slabě nasvítí, čímž se vyvolá tření.
The group of fish should have spawned at least once before the spawning from which eggs are used for testing.
Dvě až čtyři hodiny po vytření se vytírací rošt vyjme a jikry se seberou.
Five to 10 male and female fish are housed individually at least two weeks prior to the intended spawning.
Vytírací rošt zabrání rybám v požírání jiker a zároveň umožní snadný sběr jiker.
After 5-10 days, the abdomens of the females will be distended and their genital papillae visible.
Skupina ryb by se měla před třením určeným k produkci jiker pro zkoušku vytřít alespoň jednou.
Male fish lack papillae. Spawning is performed in spawning tanks equipped with a false mesh bottom (as above).
Pět až deset samečků a samiček se alespoň dva týdny před zamýšleným třením chová odděleně.
The tank is filled with dilution water, so that the depth of water above the mesh is 5-10 cm. One female and two males are placed in the tank the day before the intended spawning.
Po 5 až 10 dnech se břicha samiček rozšíří a zviditelní se jejich genitální papily.
The water temperature is gradually increased one degree higher than the acclimatisation temperature.
Samečci papily nemají.
The light is turned off and the tank is left as undisturbed as possible.
Tření se provede v nádržích pro tření opatřených falešným dnem z pletiva (jako výše).
In the morning a faint light is turned on which will initiate spawning. After two to four hours, the fish are removed and the eggs collected.
Nádrž se naplní ředicí vodou tak, aby voda sahala 5–10 cm nad dno.
If larger batches of eggs are needed than can be obtained from one female, a sufficient number of spawning tanks may be set-up in parallel.
Jedna samička a dva samečci se umístí do nádrže den před zamýšleným třením.
By recording the reproduction success of the individual females prior to the test (size of batch and quality), those females with highest reproduction success may be selected for breeding.
Teplota vody se postupně zvýší jeden stupeň nad aklimatizační teplotu.
The eggs should be transferred to the test vessels by means of glass tubes (inner diameter not less than 4 mm) provided with a flexible suction bulb.
Vypne se osvětlení a nádrž se ponechá co nejvíce v klidu.
The amount of water accompanying the eggs on their transfer should be as small as possible.
Ráno se slabě nasvítí, čímž se vyvolá tření.
The eggs are heavier than water and sink out of the tube.
Po 2–4 hodinách se ryby vyjmou a jikry se seberou.
Care should be taken to prevent eggs (and larvae) coming into contact with the air.
Je-li potřeba více dávek jiker, než lze získat od jedné samičky, nasadí se paralelně dostatečný počet nádrží pro tření.
Microscopic examination of sample(s) of the batch(es) should be carried out to ensure that there are no irregularities in the first developmental stages. Disinfection of the eggs is not allowed.
Zaznamenáním úspěšnosti (množství a kvality) reprodukce jednotlivých samiček před zkouškou lze vybrat pro chov samičky s nejvyšší úspěšností.
The mortality rate of the eggs is highest within the first 24 hours after fertilisation. A mortality of 5-40 % is often seen during this period.
Jikry se přenesou do zkušební nádrže skleněnou trubičkou (o vnitřním průměru ne menším než 4 mm) opatřenou pružným nasávacím balónkem.
Eggs degenerate as a result of unsuccessful fertilisation or development failures. The quality of the batch of eggs seems to depend on the female fish, as some females consistently produce good quality eggs, others never will.
Množství vody, které se přenáší s jikrami, by mělo být co nejmenší.
Also the development rate and the rate of hatching vary from one batch to another.
Jikry jsou těžší než voda a z trubičky vypadnou.
The successfully fertilised eggs and the yolk sac larvae survive well, normally above 90 %.
Je třeba zabránit tomu, aby jikry (a plůdky) přišly do kontaktu se vzduchem.
At 25 oC the eggs will hatch three-five days after fertilisation and the yolk sac will be absorbed approximately 13 days after fertilization.
Provede se mikroskopické vyšetření vzorku (vzorků) jiker, aby se ověřilo, že v prvních stadiích vývoje nedošlo k nepravidelnostem.
The embryonic development has been well defined by Hisaoka and Battle (2).
Dezinfekce jiker není přípustná.
Due to the transparency of the eggs and post-hatch larvae, the development of the fish may be followed and the presence of malformations may be observed.
Mortalita jiker je nejvyšší během prvních 24 hodin po oplodnění.
Approximately four hours after spawning, the non-fertilized eggs may be distinguished from the fertilized (3).
V této době je často pozorována mortalita 5–40 %.
For this examination, eggs and larvae are placed in test vessels of small volume and studied under a microscope.
Jikry degenerují v důsledku neúspěšného oplodnění nebo vývojových vad.
The test conditions, which apply to the early life stages, are listed in Appendix 2.
Zdá se, že kvalita jiker závisí na samičce, neboť některé samičky soustavně kladou jikry dobré kvality, jakou jiné samičky neposkytují.
Optimal values for pH values and hardness of the dilution water are 7,8 and 250 mg CaCO3/l respectively. CALCULATIONS AND STATISTICS
Rovněž rychlost vývoje a líhnutí se mezi jednotlivými soubory liší.
A two-stage approach is proposed. First, the data on mortality, abnormal development and hatching-time are analysed statistically.
Úspěšně oplodněné jikry a plůdky se žloutkovým váčkem přežívají dobře, obvykle jich přežívá více než 90 %.
Then, for those concentrations at which no adverse effects on any of these parameters have been detected, the body length is statistically evaluated.
Při 25 oC se z jiker líhnou jedinci po 3–5 dnech po oplodnění a žloutkový váček je absorbován přibližně po 13 dnech po oplodnění.
This approach is advisable since the toxicant may selectively kill smaller fish, delay hatching-time and induce gross malformations, thus leading to biased length measurements.
Embryonální vývoj byl dobře definován Hisaokou a Battlem (2).
Furthermore, there will be roughly the same number of fish to be measured per treatment, ensuring the validity of the test statistics.
Díky průsvitnosti jiker a plůdků čerstvě po vylíhnutí lze vývoj ryb dobře sledovat a lze pozorovat malformace.
AND EC50 DETERMINATIONS The percentage of surviving eggs and larvae is calculated and corrected for mortality in the controls in accordance with Abbott’s formula (4): P=100-C-P' C ×100 where: P corrected % survival
Přibližně čtyři hodiny po vytření lze rozlišit neoplodněné jikry od oplodněných (3).
P ' % survival observed in the test concentration C % survival in the control
K tomuto vyšetření se jikry a plůdky umístí do nádobky o malém objemu a prohlížejí se pod mikroskopem.
If possible, the LC50 is determined by a suitable method at the end of the test. If the inclusion of morphological abnormalities in the EC50 statistic is desired, guidance can be found in Stephan (5).
Zkušební podmínky požadované pro raná životní stadia jsou uvedeny v dodatku 2.
ESTIMATION OF LOEC AND NOEC An objective of the egg and sac-fry test is to compare the non-zero concentrations with the control, i.e. to determine the LOEC.
Optimální hodnoty pH a tvrdosti vody jsou 7,8 a 250 mg/l, vyjádřeno jako CaCO3. VÝPOČTY A STATISTIKA Navrhuje se dvoufázový postup.
Therefore multiple comparison procedures should be utilised (6)(7)(8)(9)(10).
Fish Biol.
Fish Biol.
Hisaoka K.K. and Battle H.I. (1958).
Hisaoka K.K. and Battle H.I., (1958).
The Normal Development Stages of the Zebrafish Brachydanio rerio (Hamilton-Buchanan) J. Morph., 102, str. 311.
The Normal Development Stages of the Zebrafish Brachydanio rerio (Hamilton-Buchanan) J. Morph., 102, p. 311.
Nagel R. (1986).
Nagel R., (1986).
Journal of Applied Ichthyology, 2, str. 173–181.
Journal of Applied Ichthyology, 2, p. 173-181.
Finney D.J. (1971).
Finney D.J., (1971).
Probit Analysis, 3rd ed., Cambridge University Press, Great Britain, str. 1–333.
Probit Analysis, 3rd ed., Cambridge University Press, Great Britain, p. 1-333.
Stephan C.E. (1982).
Stephan C.E., (1982).
Pearson, R.B.
Pearson, R.B.
Foster and W.E.
Foster and W.E.
Bishop, Eds., American Society for Testing and Materials, str. 69–81.
Bishop, Eds., American Society for Testing and Materials, p. 69-81.
A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with a Control.
A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with a Control.
Dunnett C.W. (1964) New Tables for Multiple Comparisons with a Control.
Dunnett C.W., (1964) New Tables for Multiple Comparisons with a Control.
Williams D.A. (1971).
Williams D.A., (1971).
A Test for Differences Between Treatment Means when Several Dose Levels are Compared with a Zero Dose Control.
A Test for Differences Between Treatment Means when Several Dose Levels are Compared with a Zero Dose Control.
Biometrics, 27, str. 103–117.
Biometrics, 27, p. 103-117.
Williams D.A. (1972).
Williams D.A., (1972).
The Comparison of Several Dose Levels with a Zero Dose Control.
The Comparison of Several Dose Levels with a Zero Dose Control.
Biometrics 28, str. 519–531.
Biometrics 28, p. 519-531.
Sokal R.R. and Rohlf F.J. (1981).
Sokal R.R. and Rohlf F.J., (1981).
Freeman and Co., San Francisco.
Freeman and Co., San Francisco.
ZKUŠEBNÍ PODMÍNKY, DÉLKA ZKOUŠKY A KRITÉRIA PŘEŽITÍ PRO DOPORUČENÉ DRUHY
TEST CONDITIONS, DURATION AND SURVIVAL CRITERIA FOR RECOMMENDED SPECIES
Teplota
Temp
Salinita
Salinity
Fotoperioda
Photo-period
Délka stadií
Duration of stages
Typická délka zkoušky
Typical duration of test
Přežití v kontrolních skupinách
Survival of control,
(minimální hodnota v %)
(minimum %)
Váčkový plůdek
Sac-fry
Úspěšnost líhnutí
Hatching success
Po vylíhnutí
Post-hatch
Danio pruhovaný
Zebrafish
Pokud možno ihned od oplodnění (od raného stadia gastruly) do 5 dnů po vylíhnutí (8–10 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 5 days post-hatch (8-10 days)
pstruh duhový
Rainbow trout
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 20 dnů po vylíhnutí (50–55 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 20 days post-hatch (50-55 days)
kapr obecný
Common carp
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 4 dnů po vylíhnutí (8–9 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 4 days post-hatch (8-9 days)
halančík japonský
Japanese ricefish/Medaka
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 5 dnů po vylíhnutí (13–16 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 5 days post-hatch (13-16 days)
střevle
Fathead minnow
Pro embrya.
For embryos.
Pro plůdky.
For larvae.
Temno pro embrya a plůdky do jednoho týdne po vylíhnutí, s výjimkou doby prohlídky.
Darkness for embryo and larvae until one week after hatching except when they are being inspected.
Poté po dobu zkoušky tlumené světlo.
Then subdued lighting throughout the test.
Zkušební podmínky, délka zkoušky a kritéria přežití pro jiné dobře popsané druhy
Test conditions, duration and survival criteria for other well documented species
Teplota ( oC)
Temp ( oC)
Salinita ( ‰)
Salinity (0/00)
Fotoperioda (H)
Photo-period (hrs)
Délka stadií (D)
Duration of stages (days)
Typická délka zkoušky
Typical duration of embryo and sac-fry test
Přežití v kontrolních skupinách (minimální hodnota v %
Survival of control (minimum %)
Váčkový plůdek
Sac-fry test
karas zlatý
Goldfish
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 4 dnů po vylíhnutí (7 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 4 days post-hatch (7 days)
slunečnice modrá
Blugill sunfish
Menidia peninsulae
Tidewater silverside
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 5 dnů po vylíhnutí (6–7 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 5 days post-hatch (6-7 days)
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 3 dnů po vylíhnutí (23–27 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 3 days post-hatch (23-27 days)
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 3 dnů po vylíhnutí (18 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 3 days post-hatch (18 days)
Pokud možno ihned po oplodnění (od raného stadia gastruly) do 4/7 dnů po vylíhnutí (28 dnů)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 4/7 days post-hatch (28 days)
Tato metoda zkoušky akutní toxicity je replikou metody OECD TG 213 (1998).
This acute toxicity test method is a replicate of the OECD TG 213 (1998).
Tato zkouška toxicity je laboratorní metodou určenou k posouzení orální akutní toxicity přípravků na ochranu rostlin a jiných chemických látek pro dělnice včely medonosné (dospělce).
This toxicity test is a laboratory method, designed to assess the oral acute toxicity of plant protection products and other chemicals, to adult worker honeybees.
Při posuzování a hodnocení toxických charakteristik látek může být nezbytné stanovení akutní orální toxicity pro včelu medonosnou, např. je-li expozice včel dané chemické látce pravděpodobná.
In the assessment and evaluation of toxic characteristics of substances, determination of acute oral toxicity in honeybees may be required, e.g. when exposure of bees to a given chemical is likely.
Zkouška akutní orální toxicity se provádí s cílem stanovit vlastní toxicitu pesticidů a jiných chemických látek pro včely. Výsledky této zkoušky by měly být použity pro definování potřeby dalšího hodnocení.
The acute oral toxicity test is carried out to determine the inherent toxicity of pesticides and other chemicals to bees.
Tato metoda může být použita zejména ve stupňovaných programech hodnocení nebezpečnosti pesticidů pro včely založených na postupném přechodu od laboratorních zkoušek k semi-polním a polním experimentům (1).
In particular, this method can be used in step-wise programmes for evaluating the hazards of pesticides to bees, based on sequential progression from laboratory toxicity tests to semi-field and field experiments (1).
Pesticidy mohou být zkoušeny ve formě účinné látky (ú. l.) nebo ve formě finálně upravených přípravků.
Pesticides can be tested as active substances (a.s.) or as formulated products.
K ověření citlivosti včel a přesnosti zkušebního postupu se použije standard toxicity.
A toxic standard should be used to verify the sensitivity of the bees and the precision of the test procedure.
Akutní orální toxicita: jsou nepříznivé účinky, ke kterým dojde nejpozději do 96 hodin od orálního podání jediné dávky zkoušené látky.
Acute oral toxicity: is the adverse effects occurring within a maximum period of 96h of an oral administration of a single dose of test substance.
Dávka: je množství požité zkoušené látky.
Dose: is the amount of test substance consumed.
Dávka se vyjadřuje v hmotnosti (μg) zkoušené látky na jednoho testovacího živočicha (v μg na včelu).
Dose is expressed as mass (μg) of test substance per test animal (μg/bee).
Skutečnou dávku u každé včely nelze vypočítat, neboť se včely krmí vzájemně, lze však odhadnout průměrnou dávku (celkově odebrané množství zkoušené látky dělené počtem včel v jedné klícce).
The real dose for each bee can not be calculated as the bees are fed collectively, but an average dose can be estimated (totally consumed test substance/number of test bees in one cage).
LD50(střední letální dávka) orálně je statisticky vypočtená jednotlivá dávka látky, která může po orálním podání způsobit úhyn 50 % jedinců.
LD50(Median Lethal Dose) oral: is a statistically derived single dose of a substance that can cause death in 50 % of animals when administered by the oral route.
Hodnota LD50 se vyjadřuje v μg zkoušené látky na jednu včelu.
The LD50 value is expressed in μg of test substance per bee.
U pesticidů muže být zkoušenou látkou buď účinná látka (ú. l.), nebo finálně upravený přípravek obsahující jednu nebo více účinných látek.
For pesticides, the test substance may be either an active substance (a.s.) or a formulated product containing one or more than one active substance.
Mortalita: jedinec se považuje za uhynulého, je-li zcela nepohyblivý.
Mortality: an animal is recorded as dead when it is completely immobile.
Dělnice včely medonosné (Apis mellifera) (dospělci) se exponují řadě dávek zkoušené látky rozptýlené v cukerném roztoku.
Adult worker honeybees (Apis mellifera) are exposed to a range of doses of the test substance dispersed in sucrose solution.
Včely jsou poté krmeny stejným roztokem neobsahujícím zkoušenou látku.
The bees are then fed the same diet, free of the test substance.
Mortalita se zaznamenává denně během alespoň 48 hodin a porovnává se s kontrolními hodnotami.
Mortality is recorded daily during at least 48 h and compared with control values.
Jestliže se mortalita mezi 24 a 48 hodinami zvyšuje, zatímco mortalita v kontrolních skupinách zůstává na přijatelné úrovni, tj. ≤ 10 %, je vhodné zkoušku prodloužit maximálně na 96 hodin. Výsledky zkoušky se analyzují s cílem vypočítat LD50 pro 24 hodin a 48 hodin a v případě prodloužené studie pro 72 hodin a 96 hodin.
If the mortality rate is increasing between 24 h and 48 h whilst control mortality remains at an accepted level, i.e. ≤ 10 %, it is appropriate to extend the duration of the test to a maximum of 96 h. The results are analysed in order to calculate the LD50 at 24 h and 48 h and, in case the study is prolonged, at 72 h and 96 h.
průměrná mortalita ve všech kontrolních skupinách nesmí na konci zkoušky překročit 10 %,
the average mortality for the total number of controls must not exceed 10 % at the end of the test,
pro standard toxicity odpovídá specifikovanému rozsahu.
the LD50 of the toxic standard meets the specified range.
Sběr včel
Collection of bees
Použijí se mladušky téhož plemena, tj. včely stejného stáří, téže funkce vzhledem ke krmení plodu atd. Včely by měly být získány z dobře potravou zásobených zdravých, pokud možno chorob prostých včelstev, s kladoucí matkou, se známým původem, chovem a fyziologickým stavem.
Young adult worker bees of the same race should be used, i.e. bees of the same age, feeding status, etc. Bees should be obtained from adequately fed, healthy, as far as possible disease-free and queen-right colonies with known history and physiological status.
Měly by být sesbírány ráno v den zkoušky nebo by měly být sesbírány večer před zkouškou a drženy v podmínkách zkoušky do příštího dne.
They could be collected in the morning of use or in the evening before test and kept under test conditions to the next day.
Vhodné jsou včely sesbírané z rámků bez plodů.
Bees collected from frames without brood are suitable.
Včely by neměly být sbírány brzy na jaře nebo pozdě na podzim, neboť během těchto období mají změněnou fyziologii.
Collection in early spring or late autumn should be avoided as the bees have a changed physiology during this time.