natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Poněvadž mnoho krmiv pochází z rybí moučky, mělo by být krmivo analyzováno na přítomnost zkoušené látky.
Since many feeds are derived from fishmeal, the feed should be analysed for the test substance.
Je rovněž žádoucí, aby bylo krmivo analyzováno na přítomnost pesticidů a těžkých kovů.
It is also desirable to analyse the feed for pesticides and heavy metals.
Světlo a teplota
Light and temperature
Fotoperioda je obvykle 12 až 16 hodin a teplota (± 2 oC)) by měla odpovídat testovacímu druhu (viz dodatek 2).
The photoperiod is usually 12 to 16 hours and the temperature (± 2 °C) should be appropriate for the test species (see Appendix 2).
Druh a charakteristiky osvětlení by měly být známy.
The type and characteristics of illumination should be known.
Měla by být věnována pozornost možné fototransformaci zkoušené látky za světelných podmínek studie.
Caution should be given to the possible phototransformation of the test substance under the irradiation conditions of the study.
Mělo by být použito vhodné osvětlení, aby ryby nebyly vystaveny fotoproduktům nevyskytujícím se v přírodě.
Appropriate illumination should be used avoiding exposure of the fish to unnatural photoproducts.
V některých případech může být vhodné použít filtr pro odfiltrování UV záření s vlnovou délkou kratší než 290 nm.
In some cases it may be appropriate to use a filter to screen out UV irradiation below 290 nm.
Ryby jsou vystaveny za průtokových podmínek alespoň dvěma koncentracím zkoušené látky ve vodě.
Fish are exposed under flow-through conditions to at least two concentrations of the test substance in water.
Vyšší (nejvyšší) koncentrace zkoušené látky se obvykle volí tak, aby byla na úrovni 1 % její asymptotické hodnoty akutní LC50 a aby byla desetkrát vyšší než je mez detekce této látky ve vodě při použité analytické metodě.
Normally, the higher (or highest) concentration of the test substance are selected to be about 1 % of its acute asymptotic LC50, and to be at least ten-fold higher than its detection limit in water by the analytical method used.
Nejvyšší zkušební koncentraci lze také stanovit dělením akutní 96hodinové LC50 příslušným poměrem akutní/chronická letální dávka (u některých chemikálií může koeficient ležet mezi 3 a 100).
The highest test concentration can also be determined by dividing the acute 96 h LC50 by an appropriate acute/chronic ratio (appropriate ratios for some chemicals can be about 3 up to 100).
Je-li to možné, volí se další koncentrace tak, aby se lišila od výše uvedené faktorem 10.
If possible, choose the other concentration(s) such that it differs from the one above by a factor of ten.
Není-li to možné z důvodu kritéria 1 % z LC50 nebo z důvodu kritéria meze detekce, může být použit nižší faktor než 10 nebo by mělo být zváženo použití zkoušené látky značené 14C.
If this is not possible because of the 1 % of LC50 criterion and the analytical limit, a lower factor than ten can be used or the use of 14C labelled test substance should be considered.
Žádná koncentrace by neměla překročit rozpustnost látky.
No concentration used should be above the solubility of the test substance.
Je-li použito solubilizační činidlo, neměla by jeho koncentrace být vyšší než 0,1 ml/l a mělo by být stejné ve všech zkušebních nádržích.
Where a solubilising agent is used its concentration should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Jeho příspěvek, společně s příspěvkem zkoušené látky, k celkovému obsahu organického uhlíku ve zkušební vodě by měl být znám.
Its contribution, together with the test substance, to the overall content of organic carbon in the test water should be known.
Měla by však být vynaložena maximální snaha takové látky nepoužívat.
However, every effort should be made to avoid the use of such materials.
Vedle zkušební série by měl být proveden kontrolní experiment s ředicí vodou, která popřípadě obsahuje solubilizační činidlo, pokud bylo zjištěno, že toto činidlo nemá na ryby žádné účinky.
One dilution water control or if relevant, one control containing the solubilising agent should be run in addition to the test series, provided that it has been established that the agent has no effects on the fish.
Není-li tomu tak, měly by být provedeny oba kontrolní experimenty.
If not, both controls should be set up.
Četnost měření kvality vody
Frequency of water quality measurements
V průběhu zkoušky by mělo být v každé nádrži měřeno množství rozpuštěného kyslíku, TOC, pH a teplota.
During the test, dissolved oxygen, TOC, pH and temperature should be measured in all vessels.
Celková tvrdost a popřípadě salinita by měly být měřeny v kontrolních experimentech a v jedné nádrži s vyšší (nejvyšší) koncentrací.
Total hardness and salinity, if relevant, should be measured in the controls and one vessel at the higher (or highest) concentration.
Množství rozpuštěného kyslíku a popřípadě salinita by měly být měřeny alespoň třikrát – na začátku, přibližně uprostřed a na konci fáze příjmu – a jednou týdně ve fázi vylučování.
As a minimum, dissolved oxygen and salinity, if relevant, should be measured three times — at the beginning, around the middle and end of the uptake period — and once a week in the depuration period.
Hodnota TOC by měla být měřena na začátku zkoušky (24 hodin a 48 hodin před započetím fáze příjmu) před nasazením ryb a alespoň jednou týdně jak v průběhu fáze příjmu, tak v průběhu fáze vylučování.
TOC should be measured at the beginning of the test (24 h and 48 h prior to test initiation of uptake phase) before addition of the fish and at least once a week, during both uptake and depuration phases.
Teplota by měla být měřena denně, pH na začátku a na konci každé fáze a tvrdost vody jednou v průběhu zkoušky.
Temperature should be measured daily, pH at the beginning and end of each period and hardness once each test.
Teplota by měla být měřena nejlépe nepřetržitě alespoň v jedné nádrži.
Temperature should preferably be monitored continuously in at least one vessel.
Odběr vzorků a analýza ryb a vody
Sampling and analysis of fish and water
Časový rozvrh odebírání vzorků ryb a vody
Fish and water sampling schedule
Voda ze zkušebních nádrží se pro stanovení koncentrace zkoušené látky odebírá před nasazením ryb a během fáze příjmu i během fáze vylučování.
Water from the test chambers for the determination of test substance concentration is sampled before addition of the fish and during both uptake and depuration phases.
Voda se odebírá alespoň ve stejnou dobu jako ryby a před krmením.
As a minimum, the water is sampled at the same time as the fish and before feeding.
Během fáze příjmu se stanovují koncentrace zkoušené látky, aby se ověřilo, že jsou v souladu s kritérii validity.
During the uptake phase, the concentrations of test substance are determined in order to check compliance with the validity criteria.
Ryby se odebírají alespoň pětkrát během fáze příjmu a alespoň čtyřikrát během fáze vylučování.
Fish is sampled on at least five occasions during the uptake phase and at least on four occasions during the depuration phase.
Vzhledem k tomu, že v mnoha případech bude obtížné s tímto počtem vzorků vypočítat rozumně přesný odhad hodnoty BCF, zejména jde-li o jinou než jednoduchou kinetiku prvního řádu, může být účelné odebírat vzorky v obou fázích častěji (viz dodatek 4).
Since on some occasions it will be difficult to calculate a reasonably precise estimate of the BCF value based on this number of samples, especially when other than simple first-order depuration kinetics are indicated, it may be advisable to take samples at a higher frequency in both periods (see Appendix 4).
Dodatečné vzorky se uloží a analyzují až poté, co se výsledky prvního kola analýz ukáží jako nedostatečné pro výpočet hodnoty BCF o požadované přesnosti.
The extra samples are stored and analysed only if the results of the first round of analyses prove inadequate for the calculation of the BCF with the desired precision.
Příklad přijatelného časového rozvrhu odběru vzorků je uveden v příloze 4.
An example of an acceptable sampling schedule is given in Appendix 4.
Jiné plány lze snadno odvodit pomocí jiné předpokládané hodnoty Pow, s níž se vypočítá expoziční doba pro 95 % příjem.
Other schedules can readily be calculated using other assumed values of Pow to calculate the exposure time for 95 % uptake.
V odběru vzorků se pokračuje během fáze příjmu do dosažení ustáleného stavu nebo po dobu 28 dnů, podle toho, co nastane dříve.
Sampling is continued during the uptake phase until a steady-state has been established or for 28 days, whichever is the shorter.
Není-li ustáleného stavu dosaženo do 28 dnů, v odběru vzorků se pokračuje do ustavení ustáleného stavu nebo do 60 dnů, podle toho, co nastane dříve.
If the steady-state has not been reached within 28 days sampling continues until a steady-state has been attained or for 60 days, whichever is shorter.
Před zahájením fáze vylučování se ryby přemístí do čistých nádrží.
Before beginning the depuration phase the fish are transfered to clean tanks.
Odběr vzorků a příprava vzorků
Sampling and Sample Preparation
Vzorky vody pro analýzy se odebírají například odsáváním potrubím z inertního materiálu ze středu zkušební nádrže.
Water samples for analysis are obtained e.g. by siphoning through inert tubing from a central point in the test chamber.
Vzhledem k tomu, že se biologicky nedostupná frakce zkoušené látky nedá často oddělit od biologicky dostupné frakce ani filtrací, ani odstředěním (zejména v případě superlipofilních chemikálií, tj. chemikálií s log Pow > 5) (1, 5), nemohou být vzorky takto zpracovány.
Since neither filtration nor centrifuging appear always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable (especially for super-lipophilic chemicals i.e. those chemicals with a log Pow > 5) (1) (5), samples may not be subjected to those treatments.
Namísto toho je třeba učinit opatření pro to, aby byly nádrže udržovány co nejčistší, a obsah organického uhlíku by měl být pravidelně monitorován jak během fáze příjmu, tak během fáze vylučování.
Instead, measures should be taken to keep the tanks as clean as possible and the content of total organic carbon should be monitored during both the uptake and depuration phases.
Při každém odběru se z nádrží odebere vhodný počet ryb (obvykle alespoň čtyři).
An appropriate number of fish (normally a minimum of four) is removed from the test chambers at each sampling time.
Odebrané ryby se rychle omyjí pod tekoucí vodu, důkladně se osuší, ihned se usmrtí nejvhodnější humánní metodou a zváží se.
The sampled fish are rinsed quickly with water, blot ‘dry’, killed instantly using the most appropriate and humane method, and then weighed.
Ryby a voda se pokud možno analyzují ihned po odběru s cílem předejít degradaci nebo ztrátám a vypočítat přibližné rychlosti příjmu a vylučování ještě v průběhu zkoušky.
It is preferable to analyse fish and water immediately after sampling in order to prevent degradation or other losses and to calculate approximate uptake and depuration rates as the test proceeds.
Okamžitá analýza rovněž zabrání opožděnému stanovení plató při jeho dosažení.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
Neprovádí-li se analýza okamžitě, vzorky se vhodným způsobem uchovají.
Failing immediate analysis, samples are stored by an appropriate method.
Před zahájením studie je třeba zjistit informace o řádné metodě uchovávání vzorků s ohledem na dotyčnou zkoušenou látku – například hluboké zmrazení, udržování při 4 oC, délka uchovávání, vyluhování atd.
Before the beginning of the study, information on the proper method of storage for the particular test substance — for example, deep-freezing, holding at 4 0C, duration of storage, extraction, etc. are obtained.
Kvalita analytické metody
Quality of Analytical method
Vzhledem k tomu, že celý postup je určen hlavně správností, přesností a citlivostí analytické metody použité pro analýzu zkoušené látky, je třeba experimentálně kontrolovat, že přesnost a reprodukovatelnost chemické analýzy a rovněž výtěžek zkoušené látky jak z vody, tak ze vzorků ryb jsou pro danou analytickou metodu dostatečné.
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as recovery of the test substance from both water and fish are satisfactory for the particular method.
Kontroluje se také, zda se zkoušená látka nevyskytuje v použité ředicí vodě.
Also, check that the test substance is not detectable in the dilution water used.
Hodnoty Cw and Cr se podle potřeby korigují na výtěžky a hodnoty pozadí v kontrolních experimentech.
If necessary, the values of Cw and Cf obtained from the test are corrected for the recoveries and background values of controls.
Vzorky ryb a vody se zpracovávají tak, aby se minimalizovala kontaminace a ztráty (např. v důsledku adsorpce odběrným zařízením).
Fish and water samples are handled throughout in such a manner as to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption by the sampling device).
Analýza vzorků ryb
Analysis of Fish Sample
Je-li ve zkoušce použit materiál značený radioizotopy, je možné provést analýzu na celkovou aktivitu (tj. pro výchozí látku i s metabolity) nebo lze provést separaci, tak aby mohla být výchozí látka analyzována samostatně.
If radiolabelled materials are used in the test, it is possible to analyse for total radio label (i.e. parent and metabolites) or, the samples may be cleaned up so that parent compound can be analysed separately.
Také hlavní metabolity mohou být charakterizovány v rovnovážném stavu nebo na konci fáze příjmu, podle toho, k čemu dojde dříve.
Also, the major metabolites may be characterised at steady-state or at the end of the uptake phase, whichever is the sooner.
Je-li hodnota BCF vyjádřená celkovou aktivitou reziduí ≥ 1000 %, může být účelné, a pro určité kategorie chemikálií, např. pesticidy, se to důrazně doporučuje, identifikovat a kvantifikovat produkty rozkladu představující ≥ 10 % celkového množství reziduí v tkáních ryb v ustáleném stavu.
If the BCF in terms of total radiolebelled residues is ≥ 1000 %, it may be advisable, and for certain categories of chemicals such as pesticides strongly recommended, to identify and quantify degradates representing ≥ 10 % of total residues in fish tissues at steady state.
Jsou-li produkty rozkladu představující ≥ 10 % celkových značených reziduí identifikovány a kvantifikovány, doporučuje se také identifikovat a kvantifikovat produkty rozkladu ve zkušební vodě.
If degradates representing ≥ 10 % of total radiolabelled residues in the fish tissue are identified and quantified, then it is also recommended to identify and quantify degradates in the test water.
Koncentrace zkoušené látky by měla být obvykle stanovena pro každou jednotlivou zváženou rybu.
The concentration of the test substance should usually be determined for each weighed individual fish.
Není-li to možné, mohou být vzorky při každém odběru sdružovány, avšak sdružování omezuje statistické postupy, které lze na údaje aplikovat.
If this is not possible, pooling of the samples on each sampling occasion may be done but pooling does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Pokud je důležitý určitý statistický postup a statistická váha, měl by být ve zkoušce nasazen přiměřený počet ryb vyhovující požadovanému sdružování a statistické váze (6, 7).
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of fish to accommodate the desired pooling procedure and power should be included in the test (6) (7).
Hodnota BCF by měla být vyjádřena jako funkce celkové hmotnosti a v případě lipofilních látek také jako funkce obsahu lipidů.
BCF should be expressed both as a function of total wet weight and, for high lipophilic substances, as a function of the lipid content.
Obsah lipidů v rybách se stanoví pokud možno při každém odběru.
Lipid content of the fish is determined on each sampling occasion if possible.
Pro stanovení obsahu lipidů by měla být použita vhodná metoda (odkazy 8 a 2 v příloze 3).
Suitable methods should be used for determination of lipid content (ref. 8 and 2 of Appendix 3).
Jako standardní metoda může být doporučena technika extrakce směsí chloroform a methanol (9).
Chloroform/methanol extraction technique may be recommended as standard method (9).
Různé metody neposkytují stejné hodnoty (10), a proto je důležité uvést podrobnosti o použité metodě.
The various methods do not give identical values (10), so it is important to give details of the method used.
Je-li to možné, měla by být analýza lipidů provedena na extraktu připraveném pro analýzu zkoušené látky, neboť lipidy musí být často před chromatografickou analýzou odstraněny.
When possible, the analysis for lipid should be made on the same extract as that produced for analysis for the test substance, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically.
Obsah lipidů v rybách (v mg/kg živé hmotnosti) na konci experimentu by se neměl lišit od jejich obsahu na počátku o více než ± 25 %.
The lipid content of the fish (as mg/kg wet weight) at the end of the experiment should not differ from that at the start by more ± 25 %.
Měl by být uveden také podíl pevných látek v tkáních, aby bylo možné provést přepočet koncentrace tuků z živé hmotnosti na sušinu.
The tissue percent solids should also be reported to allow conversion of lipid concentration from a wet to a dry basis.
Křivka příjmu zkoušené látky se sestrojí vynesením její koncentrace v rybách nebo na nich (nebo ve specifikovaných tkáních) v průběhu fáze příjmu proti času v lineárním měřítku.
The uptake curve of the test substance is obtained by plotting its concentration in/on fish (or specified tissues) in the uptake phase against time on arithmetic scales.
Dosáhla-li křivka plató, tj. pokud začíná být rovnoběžná s časovou osou, vypočítá se hodnota BCFus v rovnovážném stavu z poměru:
If the curve has reached a plateau, that is, become approximately asymptotic to the time axis, the steady-state BCFss is calculated from:
v ustáleném stavu (střední hodnota)
as steady-state (mean)
Není-li dosaženo ustáleného stavu, je možné vypočítat hodnotu BCFus s dostatečnou přesností pro posouzení rizika z ustáleného stavu při 80 % (1,6/k2) nebo 95 % (3,0/k2) rovnováze.
When no steady-state is reached, it may be possible to calculate a BCFss of sufficient precision for hazard assessment from a ‘steady-state’ at 80 % (1,6/k2) or 95 % (3,0/k2) of equilibrium.
Také akumulační faktor (BCFK se stanoví jako poměr dvou rychlostních konstant prvního řádu k1/k2.
Also the concentration factor (BCFK) is determined, as the ratio k1/k2, the two first-order kinetic constants.
Rychlostní konstanta vylučování (k2) se obvykle stanoví z křivky vylučování (tj. grafu poklesu koncentrace zkoušené látky v rybách v čase).
The depuration rate constant (k2) is usually determined from the depuration curve (i.e. a plot of the decrease in test substance concentration in the fish with time).
Rychlostní konstanta příjmu se poté vypočte pomocí hodnoty (k1) k2 a hodnoty Cr, odvozené z křivky příjmu (viz také dodatek 5).
The uptake rate constant (k1) is then calculated given k2 and a value of Cf which is derived from the uptake curve (see also Appendix 5).
Upřednostňovanou metodou pro získání hodnoty BCFK a rychlostních konstant k1 a k2 je metoda nelineárního odhadu parametrů s využitím počítače (11).
The preferred method for obtaining BCFK and the rate constants, k1 and k2, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer (11).
K výpočtu hodnot k1 a k2 lze jinak použít grafické metody.
Otherwise, graphical methods may be used to calculate k1 and k2.
Není-li zjevně křivka vylučování křivkou prvního řádu, měly by být použity složitější modely (viz odkazy v příloze 3) a měl by být konzultován biostatistik.
If the depuration curve is obviously not first-order, then more complex models should be employed (see references in Appendix 3) and advice from a biostatistician sought.
Výsledky by měly být interpretovány opatrně v případě, že se naměřené koncentrace zkoušených roztoků pohybují na úrovních blízkých mezi detekce analytické metody.
The results should be interpreted with caution where measured concentrations of test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method.
Jasně vymezené křivky příjmu a úbytku jsou ukazatelem dobré kvality údajů o bioakumulaci.
Clearly defined uptake and loss curves are an indication of good quality bioconcentration data.
Rozdíl konstant příjmu a vylučování pro dvě zkušební koncentrace by měl být nižší než 20 %.
The variation in uptake/depuration constants between the two test concentrations should be less than 20 %.
Pozorované významné rozdíly v rychlostech příjmu a vylučování mezi dvěma použitými zkušebními koncentracemi by měly být zaznamenány a mělo by být uvedeno jejich možné vysvětlení.
Observed significant differences in uptake/depuration rates between the two applied test concentrations should be recorded and possible explanations given.
Interval spolehlivosti hodnot BCF u dobře navržených studií se obecně blíží ± 20 %.
Generally the confidence limit of BCFs from well-designed studies approach ± 20 %.
ZKOUŠENÁ LÁTKA
TEST SUBSTANCE:
chemické identifikační údaje (včetně obsahu organického uhlíku, je-li to třeba),
chemical identification data (including the organic carbon content, if appropriate),
v případě značení radioaktivními izotopy jejich přesná poloha a aktivita nečistot, vyjádřená v procentech.
if radio labelled, the precise position of the labelled atom(s) and the percentage of radioactivity associated with impurities.
TESTOVACÍ DRUH
TEST SPECIES
vědecký název, kmen, zdroj, případné předběžné ošetření, aklimatizace, stáří, rozmezí velikostí atd.
scientific name, strain, source, any pre-treatment, acclimation, age, size-range, etc.
ZKUŠEBNÍ PODMÍNKY:
TEST CONDITIONS:
použitý zkušební postup (např. průtokový nebo semistatický),
test procedure used (e.g. flow-through or semi-static),
typ a charakteristiky použitého osvětlení a fotoperioda (fotoperiody),
type and characteristics of illumination used and photoperiod(s),
uspořádání zkoušky (např. počet a velikost zkušebních nádrží, rychlost výměny objemu vody, počet opakování, počet ryb v jednom opakování, počet zkušebních koncentrací, délka fází příjmu a vylučování, četnost odběru vzorků ryb a vzorků vody),
test design (e.g. number and size of test chambers, water volume replacement rate, number of replicates, number of fish per replicate, number of test concentrations, length of uptake and depuration phases, sampling frequency for fish and water samples,
metoda přípravy zásobních roztoků a častost jejich obnovování (je-li použito solubilizační činidlo, musí být uvedena jeho koncentrace a jeho příspěvek k obsahu organického uhlíku ve vodě),
method of preparation of stock solutions and frequency of renewal (the solubilizing agent, its concentration and its contribution to the organic carbon content of test water must be given, when used),
nominální zkušební koncentrace, střední hodnoty naměřených koncentrací ve zkušebních nádržích, jejich směrodatné odchylky a metody jejich stanovení,
the nominal test concentrations, the means of the measured values and their standard deviations in the test vessels and the method by which these were attained,
zdroj ředicí vody, popis jakékoli předchozí úpravy, výsledky jakéhokoli prokazování schopnosti zkušebních ryb žít v této vodě a charakteristiky vody: hodnota pH, tvrdost, teplota, koncentrace rozpuštěného kyslíku, koncentrace zbytkového chloru (je-li měřena), obsah celkového organického uhlíku, obsah suspendovaných látek, popřípadě salinita zkušebního média a výsledky jakýchkoli jiných provedených měření,
source of the dilution water, description of any pre-treatment, results of any demonstration of the ability of test fish to live in the water, and water characteristics: pH, hardness, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), total organic carbon, suspended solids, salinity of the test medium (if appropriate) and any other measurements made,