natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Zvadlé pletivo může zprvu být tmavozelené nebo strakaté, ale než znekrotizuje, zesvětlí.
Wilted tissue may initially appear dark green or mottled but turns paler before becoming necrotic.
Povadlá místa mezi žilnatinou mívají často mastně vodnatý vzhled.
Interveinal wilts often have a greasy water-soaked appearance.
Nekrotická pletiva mívají často jasně žlutý okraj.
Necrotic tissue often has a bright yellow margin.
Rostliny vždy neodumírají; čím déle trvá období do vyvinutí příznaků, tím větší je naděje na přežití.
Plants are not necessarily killed; the longer the period before symptoms develop, the greater the chance of survival.
Rostliny mohou infekci odrůst.
Plants may outgrow the infection.
Mladé rostliny lilku vejcoplodého jsou vnímavější k nízkým koncentracím C. m. subsp. sepedonicus než starší rostliny, proto je nezbytné používat rostliny ve fázi tří listů a nebo krátce před ní.
Young eggplants are much more susceptible to low populations of C. m. subsp. sepedonicus than are older plants, hence the necessity to use plants at or just before leaf stage 3.
Vadnutí mohou také způsobovat populace jiných bakterií nebo hub přítomných v peletě z pletiv hlízy.
Wilts may also be induced by populations of other bacteria or fungi present in the tuber tissue pellet.
Patří k nim Ralstonia solanacearum, Erwinia carotovora subsp. carotovora a E. carotovora subsp. atroseptica, Erwinia chrysanthemi, Phoma exigua var. foveata, jakož i populace saprofytických bakterií.
These include Ralstonia solanacearum, Erwinia carotovora subsp. carotovora and E. carotovora subsp. atroseptica, Erwinia chrysanthemi, Phoma exigua var. foveata, as well as large populations of saprophytic bacteria.
Zejména Erwinia chrysanthemi může způsobit příznaky na listech a vadnutí velmi podobné příznakům C. m. subsp. sepedonicus.
In particular Erwinia chrysanthemi can cause leaf symptoms and wilt that is very similar to symptoms of C. m. sepedonicus.
Jediným rozdílem je zčernání stonků v případě infekcí Erwinia chrysanthemi.
The only difference is blackening of the stems in case in Erwinia chrysanthemi infections.
Jiné případy vadnutí lze odlišit od případů způsobených C. m. subsp. sepedonicus, jelikož rychle vadnou celé listy nebo celé rostliny.
Other wilts can be distinguished from those caused by C. m. subsp. sepedonicus since whole leaves or whole plants wilt rapidly.
Můžete také připravit Gramovo barvení: tento test rozliší C. m. subsp. sepedonicus od Erwinia spp.
Also a Gram stain can be prepared: this test will differentiate C. m. subsp. sepedonicus from Erwinia spp.
Jakmile se na lilku vejcoplodém objeví příznaky, mělo by dojít k izolaci za použití částí pletiva zvadlých listů nebo stonků rostlin (macerace pletiv viz 3.1.3).
As soon as symptoms in eggplants are observed reisolation should be performed, using sections of wilted leaf tissue or stem tissue from plants (see 3.1. 3 for tissue maceration).
Povrch listů a stonků lilku vejcoplodého dezinfikujte otřením 70 % etanolem.
Surface disinfect the eggplant leaves and stems by wiping with 70 % ethanol.
Proveďte test IF nebo PCR na šťávě z lilku a izolujte na vhodná (selektivní) média (viz oddíl 8).
Perform an IF test or PCR on the eggplant sap and isolate on to suitable (selective) media (see section 8).
Můžete také připravit Gramovo barvení (dodatek 9).
A Gram stain (Appendix 9) may also be prepared.
Identifikujte čisté kultury podezřelé z přítomnosti C. m. subsp. sepedonicus a potvrďte patogenitu (viz oddíl 9 a 10).
Identify purified cultures of presumptive C. m. subsp. sepedonicus and confirm pathogenicity (see section 9 and 10).
Za určitých okolností, zejména pokud nejsou růstové podmínky optimální, se může stát, že C. m. subsp. sepedonicus zůstává v rostlinách lilku vejcoplodého jako latentní infekce dokonce i po uplynutí inkubační doby až 4 týdnů.
Under certain circumstances, in particular where growing conditions are not optimal, it may be possible for C. m. subsp. sepedonicus to exist as a latent infection within eggplants even after incubation periods up to 4 weeks.
Pokud nejsou po 4 týdnech pozorovány žádné příznaky, proveďte test IF/PCR na složeném vzorku částí stonků o délce 1 cm z každé testované rostliny odebraných nad místem inokulace.
If no symptoms are observed after 4 weeks perform IF/PCR on a composite sample of 1 cm stem sections of each test plant taken above the inoculation site.
Pokud je test pozitivní, měla by být provedena izolace na vhodná (selektivní) média postupem podle oddílu 8.
If the test is positive reisolation on suitable (selective) media should be performed following the procedure under section 8.
Identifikujte čisté kultury podezřelé z přítomnosti C. m. subsp. sepedonicus a potvrďte patogenitu (viz oddíl 9 a 10).
Identify purified cultures of presumptive C. m. subsp. sepedonicus and confirm pathogenicity (section 9 and 10).
Interpretace výsledku biotestu:
Interpretation of the bioassay test result.
Platných výsledků biotestu je dosaženo, jestliže rostliny pozitivní kontroly vykazují typické příznaky, z těchto rostlin lze izolovat bakterie a u negativních kontrol nejsou příznaky zjištěny.
Valid Bioassay test results are obtained when plants of the positive control show typical symptoms, the bacteria can be reisolated from these plants and no symptoms are found on the negative controls.
Biotest je negativní, jestliže testované rostliny nejsou infikovány C. m. subsp. sepedonicus, a za předpokladu, že C. m. subsp. sepedonicus je zjištěn u pozitivních kontrol.
The bioassay test is negative if test plants are not infected by C. m. subsp. sepedonicus, and provided that C. m. subsp. sepedonicus is detected in positive controls.
Biotest je pozitivní, jestliže jsou testované rostliny infikovány C. m. subsp. sepedonicus.
The bioassay test is positive if the test plants are infected by C. m. subsp. sepedonicus.
IZOLACE C. M. SUBSP.
ISOLATION OF C. M. SUBSP.
Diagnóza je ukončena pouze v případě, že je C. m. subsp. sepedonicus izolována, následně identifikována (viz oddíl 9) a potvrzena zkouškou patogenity (oddíl 10).
Diagnosis is only completed if C. m. subsp. sepedonicus is isolated, subsequently identified (see section 9). and confirmed by a pathogenicity test (section 10).
Ačkoliv je C. m.. subsp. sepedonicus náročný organizmus, je možno ji izolovat z pletiv vykazujících příznaky napadení.
Although C. m. subsp. sepedonicus is a fastidious organism, it can be isolated from symptomatic tissue.
Mohou ji však přerůst rychle rostoucí saprofytické bakterie, a proto je izolace přímo z pelety pletiva hlízy nebo stonku (oddíl 3.1.6 nebo 3.2.5) náročná.
However, it may be outgrown by rapidly growing saprophytic bacteria and, therefore, isolations directly from the tuber or stem tissue pellet (section 3.1.6 or 3.2.5) is difficult.
Přímá izolace C. m. subsp. sepedonicus může být možná za použití selektivního média a vhodného ředění resuspendované pelety z pupkové části hlízy nebo ze stonků rostliny.
With selective medium and appropriate dilution of the resuspended pellet from the heel end cores or stems of potatoes direct isolation of C. m. subsp. sepedonicus may be possible.
Izolace se provádí ze všech hlíz bramboru nebo částí stonků a z rostlin lilku vejcoplodého, které nevykazují příznaky napadení, ale u nichž byl pozitivní výsledek v testu IF/PCR složených vzorků (viz oddíl 7.10).
Isolations shall be made from all symptomatic potato tubers or stem segments and from eggplants were no symptoms are observed but IF/PCR test from the composite sample was positive (see section 7.10).
Pokud je třeba provést maceraci stonků lilku, měla by být provedena podle oddílu 3.1.3.
Maceration of eggplants stems when necessary should be carried out as described in section 3.1.3.
Jako pozitivní kontroly připravte desetinná ředění suspenze 106 cfu na ml C. m. subsp. sepedonicus (např. NCPPB 4053 nebo PD 406).
As positive controls, prepare decimal dilutions from a suspension of 106 cfu per ml of C. m. subsp. sepedonicus (e.g. NCPPB 4053 or PD 406).
Abyste vyloučili nebezpečí kontaminace, připravujte pozitivní kontroly naprosto odděleně od vzorků, které mají být testovány.
To avoid any possibility of contamination, prepare positive controls totally separated from samples to be tested.
Pro každou nově připravenou dávku selektivního média by se měla před použitím k testování obvyklých vzorků přezkoušet jeho vhodnost pro růst patogenu.
For each newly prepared batch of a selective medium its suitability for growth of the pathogen should be tested before it is used to test routine samples.
Selektivní roztěr na médium
Selective plating
Ze 100 µl alikvotní části ze vzorku resuspendované bramborové pelety nebo šťávy z lilku vejcoplodého připravte desetinásobné ředění v peletovém pufru (dodatek 3).
From a 100 µl aliquot from a resuspended potato pellet sample or eggplant sap make 10-fold dilutions in pellet buffer (Appendix 3).
Izolace z neředěné bramborové pelety se obvykle nepodaří kvůli náročným růstovým podmínkám Cms a konkurenci saprofytů.
Isolation from undiluted potato pellet usually fails due to the fastidious growth habit of Cms and competition by saprophytes.
Vzhledem k tomu, že bakterie je obvykle v infikovaných pletivech přítomná ve vysokých koncentracích, lze saprofyty obvykle vypláchnout ředěním, zatímco patogen zůstává.
Since the bacterium is usually present in high populations in infected tissues, the saprophytes can usually be diluted out, whilst the pathogen remains.
Proto se doporučuje rozetřít 100 µl z každého vzorku, v ředění 1/100 až 1/10000 na MTNA médium nebo NCP-88 médium (dodatek 5) (pokud používáte Petriho misky o průměru 90 mm – pro jiné velikosti misky objem přizpůsobte), za použití pomůcek určených k roztěrům (hokejek) a techniky roztěrů.
It is therefore recommended to spread 100 µl from each of the samples, 1/100 up to 1/10000 dilutions onto MTNA medium or NCP-88 medium (Appendix 5) (if using 90 mm diameter petri dishes- adjust volume for alternative dish sizes), using spreaders (hockey sticks) and the spread plate technique.
Alternativním postupem je rozetření počátečních 100 µl alikvotní části bramborové pelety na první misku s agarem vhodným nástrojem a následné použití téhož nástroje na druhou misku s agarem, tento postup na závěr zopakujte s třetí miskou, a tím dosáhnete efektu zředění.
An alternative strategy is to spread out the initial 100 µl potato pellet aliquot onto a first agar plate with a spreader and then remove the spreader to a second agar plate, streaking out any residue left on the spreader; finally repeat this with a third plate, thus giving a dilution plating effect via the spreader.
Inkubujte desky v temnu při teplotě 21–23 °C.
Incubate plates in the dark at 21 to 23 °C.
Počáteční kontrola misek zahrnuje porovnání s kontrolními miskami a počítání všech kolonií podobných C. m. subsp. sepedonicus se provádějí po třech dnech, s dalším počítáním po 5, 7 a nakonec 10 dnech.
Initial examinations of the plates including, by reference to the control plates, counts of any C. m. subsp. sepedonicus like colonies are made after 3 days, with further counts after 5, 7, eventually 10 days.
Čištění podezřelých kolonií
Purification of suspicious colonies
Subkultury kolonií podobných C. m. subsp. sepedonicus pro inokulaci lilku vejcoplodého a/nebo následnou identifikaci by se měly pěstovat na YGM médiu; inokulace a identifikace by se měly provést dříve, než jsou média příliš přerostlá, tj. nejlépe po 3–5 dnech.
Subculturing of C. m. subsp. sepedonicus-like colonies should be carried out onto YGM media for eggplant inoculation and/or subsequent identification; this should be done before the plates become too overgrown i.e. preferably after three to five days.
Rozetřete kolonie podobné C. m. subsp. sepedonicus na jedno z následujících médií: (složení uvedena v dodatku 5):
Streak C. m. subsp. sepedonicus –like colonies on to one of the following media: (formulae are given in Appendix 5):
živný dextrózový agar (pouze pro subkultury),
nutrient dextrose agar (for use in subculturing only),
agar z kvasničné peptonové glukózy,
yeast peptone glucose agar,
agar z kvasničného extraktu s minerálními solemi.
yeast extract mineral salts agar.
Inkubujte při teplotě 21 °C–24 °C po dobu maximálně 10 dní.
Incubate at 21 °C to 24 °C for up to 10 days.
subsp. sepedonicus roste pomalu, obvykle tvoří krémově zabarvené klenuté kolonie velikosti špendlíkové hlavičky během 10 dní.
subsp. sepedonicus is slow-growing, usually producing pin-point, cream, domed colonies within 10 days.
(Fotografie typických kolonií C. m. subsp. sepedonicus viz internetová stránka http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Photos of typical colonies of C. m. subsp. sepedonicus (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Znovu rozetřete pro zaručení čistoty.
Re-streak to establish purity.
U subkultur se rychlost růstu zlepšuje.
Growth rates are improved with subculture.
Typické kolonie jsou smetanově bílé nebo barvy slonoviny, někdy žluté, okrouhlé, hladké, vyvýšené, konvexně vyklenuté, slizovitě tekuté, s rovnými okraji a obvykle mají v průměru 1–3 mm.
Typical colonies are creamy-white or ivory, occasionally yellow, rounded, smooth, raised, convex-domed, mucoid-fluidal, with entire edges and usually 1 to 3 mm in diameter.
Jednoduché Gramovo barvení (dodatek 9) může pomoci vybrat kolonie pro další testování.
A simple Gram stain (Appendix 9) may help to select colonies for further testing.
Identifikujte podezřelé kultury (viz oddíl 9) a proveďte zkoušku patogenity (viz oddíl 10).
Identify presumptive cultures (see section 9) and perform a pathogenicity test (see section 10).
IDENTIFIKACE
IDENTIFICATION
Identifikujte čisté kultury pravděpodobné izolované kultury C. m. subsp. sepedonicus za použití nejméně dvou následujících testů založených na různých biologických principech.
Identify pure cultures of presumptive C. m. subsp. sepedonicus isolates using at least two of the following tests based on different biological principles.
V případě potřeby zahrňte pro každý provedený test známý referenční kmen.
Include known reference strains where appropriate for each test performed.
Nutriční a enzymatické identifikační testy
Nutritional and enzymatic identification tests
Zjistěte následující fenotypické vlastnosti, které jsou obecně přítomné nebo nepřítomné v C. m. subsp. sepedonicus podle metod Lelliotta a Steada (1987), Klementa a kol.
Determine the following phenotypic properties which are universally present or absent in C. m. subsp. sepedonicus, according to the methods of Lelliott and Stead (1987), Klement et al.
(1990), Schaada (2001), Anonym (1987).
(1990), Schaad (2001), Anonymous (1987).
Veškerá média by se měla inkubovat při 21 °C a po šesti dnech by měla být vyhodnocena.
All media should be incubated at 21 °C and examined after six days.
Pokud nedošlo k žádnému růstu, inkubujte po dobu nejvýše 20 dní.
If no growth has occurred, incubate for up to 20 days.
Všechny testy musí zahrnovat kontrolu se známým kmenem C. m. subsp. sepedonicus.
All tests must include a known C. m. subsp.sepedonicus control.
Nutriční a fyziologické testy se musí provádět za použití inokula ze subkultur živného agaru.
Nutritional and physiological tests must be made using inocula from nutrient agar subcultures.
Morfologická srovnání se musí provádět z kultur z živného dextrózového agaru.
Morphological comparisons must be made from nutrient dextrose agar cultures.
Očekávaný výsledek
Expected result
Oxidačně-fermentační (O/F) testy
Oxidation/Fermentation (O/F) test
Inertní nebo slabě oxidační
Inert or weakly oxidative
Aktivita oxidázy
Oxidase activity
Růst při 37 °C
Growth at 37 °C
Aktivita ureázy
Urease activity
Hydrolýza eskulinu
Aesculin hydrolysis
Hydrolýza škrobu
Starch hydrolysis
nebo slabá
or weak
Tolerance 7 % NaCl
Tolerance of 7 % NaCl
Tvorba indolu
Indole production
Aktivita katalázy
Catalase activity
Tvorba H2S
production
Využití citrátu
Citrate utilization
Zkapalnění želatiny
Gelatin liquefaction
Kyselý glycerol
Acid glycerol
Kyselina z laktózy
Acid from lactose
Kyselina z rhamnózy
Acid from rhamnose
Kyselina ze salicínu
Acid from salicin
Gramovo barvení (dodatek 9)
Gram stain (Appendix 9)
IF test
IF-test
Připravte suspenzi přibližně 106 buněk/ml v pufru na IF (dodatek 3).
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in IF buffer (Appendix 3).
Připravte série dvojnásobného ředění vhodného antiséra.
Prepare a 2-fold dilution series of an appropriate antiserum.
Proveďte IF postup (oddíl 4).
Apply the IF procedure (section 4).
Pozitivního výsledku IF testu je dosaženo, jestliže IF titr kultury odpovídá titru pozitivní kontroly.
A positive IF test is achieved if the IF titre of the culture is equivalent to that of the positive control.
PCR test
PCR test
Připravte suspenzi přibližně 106 buněk na ml ve sterilní vodě (Ultra pure water = UPW).
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in ultra pure water (UPW).
Zahřívejte 100 µl suspenze buněk v uzavřených mikrozkumavkách v ohřívacím bloku nebo vřící vodní lázni při teplotě 100 °C po dobu 4 minut.
Heat 100 µl of the cell suspension in closed tubes in a heating block or boiling waterbath at 100 °C for four minutes.
V případě potřeby můžete lýzu buněk podpořit přidáním čerstvě připraveného NaOH do konečné koncentrace 0,05 M. Vzorky lze potom uložit při teplotě –16 až –24 °C až do použití.
If required, addition of freshly-prepared NaOH to a final concentration of 0,05M may assist cell lysis. The samples may then be stored at –16 to –24 °C until required.
Pro amplifikaci C. m. subsp. sepedonicus specific amplicons použijte vhodné postupy PCR (např. Pastrik, 2000; viz dodatek 4; Li a de Boer, 1995; Mills a kol., 1997; Pastrik a Rainey, 1999; Schaad a kol., 1999).
Apply appropriate PCR procedures to amplify C. m. subsp. sepedonicus specific amplicons (e. g. Pastrik, 2000; see Appendix 4; Li and de Boer, 1995; Mills et al., 1997; Pastrik and Rainey, 1999; Schaad et al., 1999.
Identifikace C. m. subsp. sepedonicus je pozitivní, pokud jsou amplikony PCR stejné velikosti a mají stejnou mnohotvárnost délky fragmentu jako pozitivní kontrolní kmen.
A positive identification of C. m. subsp.sepedonicus is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
FISH test
FISH test
Připravte suspenzi přibližně 106 buněk na ml v UPW.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in UPW.
Proveďte postup FISH (oddíl 5).
Apply the FISH procedure (section 5).
Test FISH je pozitivní, jsou-li dosaženy stejné reakce kultury a pozitivní kontroly.
A positive FISH test is achieved if the same reactions are achieved from the culture and the positive control.
Analýza mastných kyselin (FAP)
Fatty acid profiling (FAP)
Pěstujte kulturu na tryptikázo-sójovém agaru (Oxoid) po dobu 72 hodin při teplotě 21 °C (+/– 1°).
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 72 hours at 21 °C (+/– 1°).
Použijte vhodný postup FAP (Janse, 1991; Stead, 1992).
Apply an appropriate FAP procedure (Janse, 1991; Stead, 1992).
Test FAP je pozitivní, pokud je profil podezřelé kultury identický s profilem pozitivní kontroly.
A positive FAP test is achieved if the profile of the presumptive culture is identical to that of the positive control.
Přítomnost charakteristických mastných kyselin 15:1 Anteiso A, 15:0 Iso, 15:0 Anteiso, 16:0 Iso, 16:0 a 17:0 Anteiso jasně svědčí o přítomnosti C. m. subsp. sepedonicus.
The presence of characteristic fatty acids are 15:1 Anteiso A, 15:0 Iso, 15:0 Anteiso, 16:0 Iso, 16:0 and 17:0 Anteiso is highly indicative of C. m. sepedonicus.
Jiné rody jako Curtobacterium, Arthrobacter a Micrococcus také obsahují některé z těchto kyselin, ale 15:1 Anteiso A je pro tyto bakterie neobvyklá kyselina, která se však vyskytuje ve všech Clavibacter spp. v rozmezí 1–5 %.
Other genera such as Curtobacterium, Arthrobacter and Micrococcus also have some of these acids but 15:1 Anteiso A is a rare acid in these bacteria but occurs in all Clavibacter spp. at between 1 to 5 %.
U C. m.subsp. sepedonicus se hodnota obvykle pohybuje kolem 5 %.
In C. m. sepedonicus the value is usually around 5 %.
BOX-PCR
BOX-PCR
Proveďte test postupem podle (Smith a kol., 2001).
Apply the test according the procedure (Smith et al., 2001).
KONFIRMAČNÍ TEST (TEST PATOGENITY)
CONFIRMATION TEST
Pro konečné potvrzení diagnózy C. m. subsp. sepedonicus a pro stanovení virulence kultur identifikovaných jako C. m. subsp. sepedonicus musí být provedena zkouška patogenity.
The pathogenicity test must be performed as final confirmation of a diagnosis of C. m. subsp. sepedonicus and for assessment of virulence of cultures identified as C. m. subsp. sepedonicus:
Připravte inokulum přibližně 106 buněk na ml z 3-denních kultur testované izolované látky a vhodného pozitivního kontrolního kmene C. m. subsp. sepedonicus.
Prepare an inoculum of approximately 106 cells per ml from three day cultures of the isolate to be tested and an appropriate positive control strain of C. m. subsp. sepedonicus.
Naočkujte 5–10 stonků mladých semenáčků lilku vejcoplodého ve fázi 3 pravých listů (oddíl 7.3 nebo 7.4).
Inoculate 5 to 10 eggplant stems of young seedlings at leaf stage 3 (section 7.3 or 7.4).
Inkubujte při teplotě 18–24 °C při dostatečném světle a vysoké relativní vlhkosti s přiměřeným zaléváním, aby nedošlo k přemokření nebo vyschnutí (oddíl 7.7).
Incubate at 18 to 24 °C with sufficient light and high relative humidity with appropriate watering to avoid waterlogging or drought stress (section 7.7).
U čistých kultur by mělo během 2 týdnů nastat typické vadnutí, avšak rostliny, které po uplynutí této doby nevykazují žádné příznaky infekce (viz oddíl 7.8), by se měly inkubovat až 3 týdny při teplotách příznivých pro růst lilku vejcoplodého, ale nepřesahujících 25 °C (dodatek 8).
With pure cultures, typical wilting should be obtained within two weeks but plants not showing symptoms (see section 7.8) after this time should be incubated up to three weeks at temperatures conducive to eggplant growth but not exceeding 25 °C (Appendix 8).
Jestliže se po 3 týdnech příznaky infekce nevyskytují, nemůže být kultura považována za patogenní formu C. m. subsp. sepedonicus.
If after three weeks symptoms are not present, the culture cannot be confirmed as being a pathogenic form of C. m. subsp. sepedonicus.
Izolujte z rostlin s příznaky infekce odstraněním části stonku 2 cm nad místem inokulace.
Isolate from symptomatic plants by removing a section of stem 2 cm above the inoculation point.
Rozdrťte a suspendujte v malém množství sterilní destilované vody nebo 50 mM fostátového pufru (dodatek 3).
Comminute and suspend in a small volume of sterile distilled water or 50 mM phosphate buffer (Appendix 3).
Izolujte ze suspenze rozetřením nebo nanesením na MTNA a YPGA (dodatek 5), inkubujte po dobu 3–5 dní při teplotě 21–23 °C a sledujte vznik kolonií typických pro C. m. subsp. sepedonicus.
Isolate from the suspension by dilution spreading or streaking onto MTNA and YPGA (Appendix 5), incubate for three to five days at 21 to 23 °C and observe the formation of colonies typical of C. m. subsp. sepedonicus.
Při každém podezření z výskytu, pro který byl ve vyšetřovacím testu (vyšetřovacích testech) podle metod uvedených v příloze I zjištěn pozitivní výsledek, a dokončením těchto metod by mělo být podezření potvrzeno nebo vyvráceno, je třeba zadržet a vhodným způsobem konzervovat:
For each suspected occurrence for which a positive result in the screening test (s) has been identified according to the methods set out in Annex I, and confirmation or refutation by completion of the said methods is awaited, there should be the retention and appropriate conservation of:
všechny hlízy, které jsou součástí vzorku, a pokud možno rostliny, které jsou součástí vzorku,
all tubers sampled and, wherever possible, all plants sampled,
jakýkoli zbývající výluh a dodatečně připravený materiál pro vyšetřovací test/y, např. imunofluorescenční sklíčka,
any remaining extract and additional prepared material for the screening test(s), e.g. immunofluorescence slides,
všechny příslušné podklady,
all relevant documentation,
dokud není výše uvedený postup zcela ukončen.
until the completion of the said methods.
Zadržení hlíz umožní případné testování odrůd.
Retention of the tubers will enable variety testing to be undertaken where appropriate.