natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Při testování by měly být použity protilátky v pracovním ředění, které je blízké nebo stejné jako u titru komerční formulace.
During testing, the antibodies should be used at a working dilution close to or at the titre of the commercial formulation.
Určete titr protilátek pro suspenzi 105 až 106 buněk na 1 ml homologického kmene R. solanacearum.
Determine the titre of the antibodies on a suspension of 105 to 106 cells per ml of the homologous strain of R. solanacearum.
Vzorek, který jste předtím otestovali jako R. solanacearum negativní a suspenzi bakterií bez vzájemného působení v solném roztoku fosfátového pufru (PBS) použijte jako vzorky negativní kontroly.
Include a sample extract that previously tested negative for R. solanacearum and a suspension of a non-cross reacting bacterium in phosphate buffered saline (PBS) as negative controls.
Jako pozitivní kontrolní vzorky použijte alikvótní podíly vzorkových extraktů, které byly předtím otestovány jako negativní, s příměsí 103 až 104 buněk na 1 ml biovaru 2 R. solanacearum (např. kmen NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857, viz dodatek 2 A a B).
As positive control use aliquots of sample extract, that previously tested negative, mixed with 103 to 104 cells per ml of R. solanacearum biovar 2 (e.g. strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857, see Appendix 2 A and B).
Pro srovnání výsledků na každé destičce použijte standardní suspenzi 105 až 106 buněk na 1 ml v PBS R. solanacearum.
For comparison of results on each plate use a standard suspension of 105 to 106 cells per ml in PBS of R. solanacearum.
Zajistěte, aby byly pozitivní kontrolní vzorky dobře odděleny na mikrotitrové destičce od vzorků k testování.
Ensure positive controls are well separated on the microtitre plate from the sample(s) under test.
Standardizované pozitivní a negativní materiály, které se používají pro tento test, jsou uvedeny v dodatku 3 bodu A.
Standardised positive and negative control materials available for use with this test are listed in Appendix 3 A.
Validované jsou dva protokoly ELISA.
Two ELISA protocols have been validated.
Nepřímý test ELISA (Robinson Smith et al., 1995)
Indirect ELISA (Robinson Smith et al., 1995)
Použijte 100–200 µl vzorkového extraktu.
Use 100 to 200 µl aliquots of sample extract.
(Zahřátí na 100 °C na 4 minuty ve vodní lázni nebo topném boxu může v některých případech redukovat vznik nespecifických výsledků).
(Heating at 100 °C for four minutes in a waterbath or heating block may reduce non-specific results in some cases).
Přidejte stejné množství dvojnásobně silného uhličitanového krycího pufru (dodatek 4) a promíchejte.
Add an equal volume of double strength coating buffer (Appendix 4) and vortex.
Nakapejte 100 µl do každé jamky mikrotitrační destičky (např. Nunc-Polysorp nebo rovnocenné) a nechte inkubovat 1 hodinu při teplotě 37 °C nebo přes noc při teplotě 4 °C.
Apply 100 µl aliquots to each of at least two wells of a microtitre plate (e.g. Nunc-Polysorp or equivalent) and incubate for one hour at 37 °C or overnight at 4 °C.
Vylijte extrakty z jamek.
Flick out the extracts from the wells.
Vymyjte jamky třikrát pomocí PBS-Tween (dodatek 4) a nechte poslední vymývací roztok v jamce nejméně 5 minut.
Wash the wells three times with PBS-Tween (Appendix 4), leaving the last washing solution in the wells for at least five minutes.
Připravte vhodné ředění protilátek proti R. solanacearum v blokačním pufru (dodatek 4).
Prepare the appropriate dilution of antibodies against-R. solanacearum in blocking buffer (Appendix 4).
U validovaných komerčních protilátek použijte doporučená ředění (obvykle dvojnásobné koncentrace, než je titr).
For validated commercial antibodies, use the recommended dilutions (usually twice as concentrated as the titre).
Přidejte 100 µl do každé jamky a nechte inkubovat 1 hodinu při teplotě 37 °C.
Add 100 µl to each well and incubate for one hour at 37 °C.
Vylijte roztok protilátek z jamek a vymyjte je jako předtím (bod 4.).
Flick out the antibody solution from the wells and wash as before (4).
Připravte vhodné ředění konjugátu alkalické fosfatázy v blokačním pufru.
Prepare the appropriate dilution of secondary antibody-alkaline phosphatase conjugate in blocking buffer.
Vylijte konjugát z jamek a vymyjte jako předtím (bod 4).
Flick out conjugated antibody from wells and wash as before (4).
Přidejte 100 µl substrátového alkalického roztoku fosfatázy (dodatek 4) do každé jamky.
Add 100 µl alkaline phosphatase substrate solution (Appendix 4) to each well.
Nechte inkubovat v temnu při pokojové teplotě a odečítejte absorbanci při 405 nm v pravidelných 90minutových intervalech.
Incubate in the dark at ambient temperature and read absorbance at 405 nm at regular intervals within 90 minutes.
DAS-ELISA
DASI ELISA
Připravte vhodné ředění polyklonálního imunoglobulinu v uhličitanovém pufru pH 9.6 (dodatek 4).
Prepare the appropriate dilution of anti-R. solanacearum polyclonal immunoglobulins in coating buffer pH 9.6 (Appendix 4).
Přidejte 200 µl do každé jamky.
Add 200 µl to each well.
Nechte inkubovat při teplotě 37 °C 4 až 5 hodin nebo 4 ° C po dobu 16 hodin.
Incubate at 37 °C for four to five hours or at 4 °C for 16 hours.
Jamky třikrát dobře vypláchnete použitím PBS-Tween (dodatek 4).
Wash the wells three times with PBS-Tween (Appendix 4).
Přidejte 190 µl extraktu ze vzorku do nejméně dvou jamek.
Add 190 µl of sample extract to at least two wells.
Přidejte rovněž pozitivní a negativní kontrolní vzorky do dvou jamek na každé destičce.
Also add positive and negative controls in two wells each per plate.
Nechte inkubovat 16 hodin při teplotě 4 °C.
Incubate for 16 hr at 4 °C.
Připravte vhodné ředění specifických monoklonálních protilátek R. solanacearum v PBS (dodatek 4) s obsahem 0,5 % hovězího sérového albuminu (BSA) a přidejte 190 µl do každé jamky.
Prepare an appropriate dilution of R. solanacearum-specific monoclonal antibodies in PBS (Appendix 4) also containing 0,5 % bovine serum albumin (BSA) and add 190 µl to each well.
Nechte stát 2 hodiny při teplotě 37 °C.
Incubate at 37 °C for two hours.
Připravte ředění protimyšího imunoglobulinu konjugovaného alkalickou fosfatázou v PBS.
Prepare an appropriate dilution of anti-mouse immunoglobulins conjugated with alkaline phosphatase in PBS.
Přidejte 190 µl do každé jamky a nechte inkubovat 2 hodiny při teplotě 37 °C.
Add 190 µl to each well. Incubate at 37 °C for two hours.
Připravte roztok 1 mg p-NPP/ml alkalické fosfatázy v substrátovém pufru (dodatek 4).
Prepare an alkaline phosphatase substrate solution containing 1 mg p-nitrophenyl phosphate per ml of substrate buffer (Appendix 4).
Inkubujte v temnu při pokojové teplotě a čtení probíhá při absorbanci při 405 v pravidelných intervalech 90 minut.
Incubate in the dark at ambient temperature and read absorbance at 40 nm at regular intervals within 90 minutes.
Interpretace výsledků testu ELISA
Interpretation of ELISA test results:
Test ELISA je negativní, jestliže průměrná hodnota optické hustoty (OH) z jamek se stejnými vzorky je menší než dvojnásobek OH u negativního kontrolního vzorku, pokud všechny hodnoty OH pozitivních kontrolních vzorků jsou větší než 1,0 (po 90 minutách inkubace se substrátem) a jsou větší než dvojnásobek OH získané z negativních vzorkových extraktů.
The ELISA test is negative if the average optical density (OD) reading from duplicate sample wells is < 2x OD of that in the negative sample extract control well, providing the OD for the positive controls are all above 1,0 (after 90 minutes incubation with the substrate) and are greater than twice the OD obtained for negative sample extracts.
Test ELISA je pozitivní, jestliže průměrné hodnoty OH z jamek se stejným vzorkem jsou větší než dvojnásobek OH v negativním extraktu testovaného vzorku, pokud hodnoty OH ve všech negativních kontrolních vzorcích jsou menší než dvojnásobek hodnot v pozitivních kontrolních vzorcích.
The ELISA test is positive if the average OD readings from duplicate sample wells is > 2x OD in the negative sample extract well provided that OD readings in all negative control wells are < 2x those in the positive control wells.
Negativní hodnoty ELISA v pozitivních kontrolních vzorcích ukazují, že test nebyl proveden správně nebo že byl i inhibován.
Negative ELISA readings in positive control wells indicate that the test has not been performed correctly or that it has been inhibited.
Pozitivní hodnoty ELISA v negativních kontrolních vzorcích ukazují, že došlo k vzájemné kontaminaci nebo nespecifickému vázání protilátek.
Positive ELISA readings in negative control wells indicate that cross-contamination or non-specific antibody binding has occurred.
Pozn.: Předběžné testování touto metodou by mělo umožnit reprodukovatelnou detekci 103 až 104 jednotek tvořících kolonie R. solanacearum na 1 ml přidaný do extraktu ze vzorku, který byl předtím testován s negativním výsledkem (přípravu viz v dodatku 3).
Note: Preliminary testing with this method should permit reproducible detection of 103 to 104 colony-forming units of R. solanacearum per ml added to sample extracts that previously tested negative (preparation see Appendix 3).
Nejvyšší citlivost zjištění lze očekávat při použití čerstvě připraveného extraktu ze vzorku a v optimálních růstových podmínkách.
Highest sensitivity of detection can be expected when using freshly prepared sample extract and optimal growth conditions.
Metodu lze však také úspěšně použít na extrakty, které byly uchovány v glycerolu v teplotě –68 až –86 °C.
However, the method can be successfully applied to extracts that have been stored under glycerol at –68 to –86 °C.
Následující protokol vychází z Janseho (1988):
The following protocol is based upon Janse (1988):
Použijte 10 testovacích rostlin citlivé odrůdy rajčete (např. kultivaru Moneymaker nebo kultivaru s rovnocennou citlivostí podle testovací laboratoře) ve fázi třech pravých listů u každého vzorku.
Use 10 test plants of a susceptible tomato cultivar (e.g. Moneymaker or cultivar with equivalent susceptibility as determined by the testing laboratory) at the third true leaf stage for each sample.
Podrobnosti pěstování viz v dodatku 8 nebo použijte lilek (např. kultivar Black Beauty nebo kultivary s rovnocennou citlivostí), ale jen rostliny ve fázi 2. až 3. listů až do plného rozvinu třetího pravého listu.
For cultural details, see Appendix 8. Alternatively, use eggplants (e.g. cultivar Black Beauty or cultivars with equivalent susceptibility), use only plants at leaf stage two to three up to full expansion of the third true leaf.
Příznaky u lilku jsou méně výrazné a vyvíjejí se pomaleji.
Symptoms have been show to be less severe and to develop more slowly in eggplant.
Pokud možno, doporučujeme proto použít sazenice rajčat.
Where possible, it is therefore recommended to use tomato seedlings.
Rozdělte 100 µl extraktu ze vzorku mezi testovací rostliny.
Distribute 100 µl of sample extract between the test plants.
Inokulujte stonky rostlin hned nad děložními listy pomocí stříkačky s podkožní jehlou (ne méně než 23G).
Inoculate the plant stems just above the cotyledons using a syringe fitted with a hypodermic needle (not less than 23G).
Rozdělte vzorek mezi testovací rostliny.
Distribute the sample between the test plants.
Přidržte rostlinu mezi dvěma prsty a pipetou kápněte (přibližně 5–10 µl) suspendované pelety na stonek mezi děložní listy a první list.
Holding the plant between two fingers, pipette a drop (approximately 5 - 10 µl) of the suspended pellet on the stem between the cotyledons and the first leaf.
Sterilním skalpelem udělejte příčný řez asi 1 cm dlouhý a hluboký přibližně 2/3 tloušťky stonku, přičemž řez začnete v místě kapky resuspendované pelety.
Using a sterile scalpel, make a diagonal slit, about 1.0 cm long and approximately 2/3 of the stem thickness deep, starting the cut from the pellet drop.
Utěsněte řez sterilní vazelínou z injekční stříkačky.
Seal the cut with sterile vaseline from a syringe.
Stejnou technikou nainokulujte 5 sazenic vodnou suspenzí 105 až 106 buněk na 1 ml připravenou ze 48 hodinové kultury virulentního kmene biovaru 2 R. solanacearum jako pozitivní kontrolní vzorek a peletovým pufrem (dodatek 4) jako negativní kontrolní vzorek.
Inoculate by the same technique, five seedlings with an aqueous suspension of 105 to 106 cells per ml prepared from a 48 hr culture of a virulent biovar 2 strain of R. solanacearum as a positive control and with pellet buffer (Appendix 4) as negative control.
Oddělte pozitivní a negativní kontrolní rostliny od ostatních rostlin, abyste zabránili vzájemné kontaminaci.
Separate positive and negative control plants from the other plants to avoid cross-contamination.
Nechte růst testovací rostliny v karanténním zařízení 4 týdny při teplotě 25–30 °C a vysoké relativní vlhkosti s přiměřeným zavlažováním, abyste zabránili jak přemokření, tak vadnutí z důvodu nedostatku vody.
Grow the test plants in quarantine facilities for up to four weeks at 25 to 30 °C and high relative humidity with appropriate watering to prevent waterlogging or wilting through water deficiency.
Abyste zabránili kontaminaci, držte pozitivní a negativní kontrolní rostliny ve zcela oddělených místech skleníku nebo vegetační komory nebo, v případě omezeného prostoru, zajistěte přísnou izolaci.
To avoid contamination incubate positive control and negative control plants on clearly separated benches in a glasshouse or growth chamber or, in case space is limited, ensure strict separation between treatments.
Musejí-li být rostliny z různých vzorků po dobu inkubace drženy blízko sebe, oddělte je vhodnými zástěnami.
If plants for different samples must be incubated close together, separate them with appropriate screens.
Při hnojení, zalévání, prohlížení a všech ostatních činnostech věnujte zvláštní pozornost tomu, aby nedošlo k vzájemné kontaminaci.
When fertilising, watering, inspecting and any other manipulations take great care to avoid cross-contamination.
Nutné je udržovat skleník nebo vegetační prostor bez hmyzích škůdců, protože by mohli přenést bakterie mezi vzorky.
It is essential to keep glasshouses and growth chambers free of all insect pests since they may transmit the bacterium from sample to sample.
Hledejte příznaky vadnutí, epinastie, chlorózu a/nebo krnění.
Observe for symptoms of wilting, epinasty, chlorosis and/or stunting.
Z infikovaných rostlin proveďte izolaci (odst. II.3) a identifikujte podezřelé čisté kultury (bod VI.B).
Isolate from infected plants (Section II.3.) and identify purified cultures of presumptive R. solanacearum (Section VI.B.).
Jestliže během 3 týdnů nejsou pozorovány žádné příznaky, proveďte test IF/PCR/izolace na složeném vzorku ze segmentů stonků dlouhých 1 cm z každé testovací rostliny, který odeberete nad místem inokulace.
If no symptoms are observed after three weeks perform IF/PCR/Isolation on a composite sample of 1 cm stem sections of each test plant taken above the inoculation site.
Je-li test pozitivní, proveďte zřeďovací roztěry (bod 4.1).
If the test is positive perform dilution plating (section 4.1).
Identifikujte všechny čisté kultury s podezřením na R. solanacearum (bod VI.B).
Identify any purified cultures of presumptive R. solanacearum (Section VI.B.).
Interpretace výsledků biotestu
Interpretation of the bioassay test results
Platné výsledky biotestu jsou získány, jestliže pozitivní kontrolní testovací rostliny vykazují typické příznaky, bakterie mohou být z těchto rostlin znovu izolovány a negativní kontrolní rostliny nevykazují žádné příznaky.
Valid Bioassay test results are obtained when plants of the positive control show typical symptoms, the bacteria can be reisolated from these plants and no symptoms are found on the negative controls.
Biotest je negativní, jestliže rostliny nejsou infikovány bakteriemi R. solanacearum, pokud byl organismus zjištěn u pozitivních kontrolních testovacích rostlin.
The bioassay test is negative if test plants are not infected by R. solanacearum, and provided that R. solanacearum is detected in positive controls.
Biotest je pozitivní, jestliže testovací rostliny jsou infikovány bakteriemi R. solanacearum.
The bioassay test is positive if the test plants are infected by R. solanacearum.
IDENTIFIKAČNÍ TESTY
IDENTIFICATION TESTS
Identifikujte čisté kultury izolovaného podezřelého organismu R. solanacearum použitím nejméně dvou následujících testů založených na různých biologických principech.
Identify pure cultures of presumptive R. solanacearum isolates using at least two of the following tests based on different biological principles.
Zahrňte případně známé referenční kmeny pro každý provedený test (viz dodatek 3).
Include known reference strains where appropriate for each test performed (see Appendix 3).
Určete následující fenotypové vlastnosti, které jsou vesměs přítomny nebo naopak chybí u R. solanacearum, metodami Lelliott a Stead (1987), Klement et al.
Determine the following phenotypic properties, which are universally present or absent in R. solanacearum, according to the methods of Lelliott and Stead (1987), Klement et al.
Produkce fluorescenčního pigmentu
Fluorescent pigment production
Poly-β-hydroxybutyrátové inkluze
Poly-ß-hydroxybutyrate inclusions
Test oxidace/fermentace (O/F)
Oxidation/fermentation (O/F) test
Katalázová aktivita
Catalase activity
Oxidázový test podle Kovacse
Kovac’s oxidase test
Redukce dusičnanů
Reduction of nitrate
Využití citrátu
Utilisation of citrate
Růst při 40 °C
Growth at 40 °C
Růst v 1 % NaCl
Growth in 1 % NaCl
Růst v 2 % NaCl
Growth in 2 % NaCl
Arginin-dihydrolázová aktivita
Arginine dihydrolase activity
Zkapalnění želatiny
Gelatine liquefaction
Hydrolýza škrobů
Starch hydrolysis
Produkce levanu
Levan production
Připravte suspenzi přibližně 106 buněk na 1 ml v pufru IF (dodatek 4).
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in IF buffer (Appendix 4).
Připravte řadu dvojnásobných zředění vhodného antiséra (viz internetová stránka http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Prepare a twofold dilution series of an appropriate antiserum (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Použijte IF metodu (oddíl VI.A.5).
Apply the IF procedure (Section VI.A.5.).
Test IF je pozitivní, jestliže titr IF kultury odpovídá titru pozitivní kontroly.
A positive IF test is achieved if the IF titre of the culture is equivalent to that of the positive control.
Pozn.: Při provádění pouze 2 identifikačních testů nepoužívejte kromě této metody jiný sérologický test.
Note: If performing only 2 identification tests, do not use another serological test in addition to this method.
Připravte suspenzi přibližně 108 buněk na 1 ml v 1X PBS (dodatek 4).
Prepare a suspension of approximately 108 cells per ml in 1X PBS (Appendix 4).
Proveďte metodu ELISA se specifickou monoklonální protilátkou k R. solanacearum.
Perform an appropriate ELISA procedure with a specific monoclonal antibody to R. solanacearum.
Test ELISA je pozitivní, jestliže hodnota výsledku testu ELISA získaná z této kultury je nejméně poloviční v porovnání s hodnotou z pozitivní kontroly.
A positive ELISA test is achieved if the ELISA reading obtained from the culture is at least half that obtained for the positive control.
Připravte suspenzi přibližně 106 buněk na 1 ml sterilní vody (UPW = ultra pure water).
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in molecular grade sterile water.
Ohřívejte 100 µl buněčné suspense v uzavřených zkumavkách v ohřívacím bloku nebo vařící vodní lázni při 100 °C 4 minuty.
Heat 100 µl of the cell suspension in closed tubes in a heating block or boiling waterbath at 100 °C for four minutes.
Vzorky mohou být uchovány při teplotě –16 až –24 °C do dalšího použití.
The samples may then be stored at –16 to –24 °C until required.
Použijte příslušné postupy PCR k amplifikaci amplikonů specifických pro R. solanacearum (např. Seal et al.
Apply appropriate PCR procedures to amplify R. solanacearum-specific amplicons (e.g. Seal et al.
(1993); Pastrik a Maiss (2000); Pastrik et al.
(1993); Pastrik and Maiss (2000); Pastrik et al.
Identifikace organismu R. solanacearum je pozitivní, jestliže amplikony PCR mají stejnou velikost a mají stejnou mnohotvárnost délky fragmentů jako pozitivní kontrolní kmen.
A positive identification of R. solanacearum is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
Připravte suspenzi přibližně 106 buněk na 1 ml v UPW.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in UPW.
Použijte metodu FISH (oddíl VI.A.7) s nejméně 2 oligosondami specifickými pro R. solanacearum (dodatek 7).
Apply the FISH procedure (Section VI.A.7.) with at least 2 R. solanacearum-specific oligo-probes (Appendix 7).
Test FISH je pozitivní, jestliže se u kultury a pozitivní kontroly dosáhne stejných reakcí.
A positive FISH test is achieved if the same reactions are achieved from the culture and the positive control.
Pěstujte kulturu na tryptikázo-sójovém agaru (Oxoid) 48 hodin při teplotě 28 °C.
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 48 hours at 28 °C.
Použijte metodu FAP (Janse, 1991; Stead, 1992).
Apply an appropriate FAP procedure (Janse, 1991; Stead, 1992).
Test FAP je pozitivní, jestliže je profil podezřelé kultury stejný jako profil pozitivní kontroly.
A positive FAP test is achieved if the profile of the presumptive culture is identical to that of the positive control.
Výskyt charakteristických mastných kyselin: 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH a 18:1 2OH a absence 16:0 3OH poukazuje na Ralstonia sp.
The presence of characteristic fatty acids are 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH and 18:1 2OH and absence of 16:0 3OH is highly indicative of a Ralstonia sp.
Pro každý nový případ izolace organismu R. solanacearum se doporučuje charakteristika kmenu použitím jedné z následujících metod.
Strain characterisation using one of the following methods is recommended for each new case of isolation of R. solanacearum.
U každého provedeného testu zahrňte případně známé referenční kmeny (viz dodatek 3).
Include known reference strains where appropriate for each test performed (see Appendix 3).
Organismus R. solanacearum je rozdělen do biovarů na základě schopnosti využití a/nebo oxidace tří disacharidů a tří hexosových alkoholů (Hayward, 1964 a Hayward et al., 1990).
solanacearum is separated into biovars on the basis of the ability to utilise and/or oxidise three disaccharides and three hexose alcohols (Hayward, 1964 and Hayward et al., 1990).
Živná půda pro test biovaru je popsána v dodatku 2.
Growth media for the biovar test is described in Appendix 2.
Test lze úspěšně provést očkováním do živné půdy s čistou kulturou R. solanacearum a inkubací při teplotě 28 °C.
The test can be successfully performed by stab inoculating the media with pure cultures of R. solanacearum isolates and incubating at 28 °C.
Je-li živná půda rozdělena na sterilní destičky s 96 jamkami (200 µl na 1 jamku), zbarvení se mění během 72 hodin od olivově zelené po žlutou a znamená pozitivní výsledek testu.
If the media are dispensed into sterile 96 well cell culture plates (200 µl per well) colour change from olive green to yellow can be observed within 72 hours, indicating a positive test result.
Využití:
Utilisation of:
D (+) Cellobiosa
D (+) Cellobiose
Dodatečné testy pro rozlišení dílčích fenotypů biovaru 2
Additional tests differentiate biovar 2 sub-phenotypes
(světově rozšířen)
(Worldwide distribution)
(Chile a Kolumbie)
(Found in Chile and Colombia)
(tropické oblasti)
(Found in tropical areas)
Využití trehalosy
Utilisation of trehalose
Využití meso-inositolu
Utilisation of meso-inositol
Využití D ribosy
Utilisation of D ribose
Pektolytická aktivita [101]
Pectolytic activity [101]
nízká
low
vysoká
high
Molekulární identifikace kmenů komplexu R. solanacearum lze dosáhnout několikerými technikami, mezi něž patří:
Molecular differentiation of strains in the R. solanacearum complex can be achieved using several techniques, including:
Analýza délkového polymorfismu restrikčních fragmentů RFLP (Cook et al., 1989).
Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis (Cook et al., 1989).
Repetitivní sekvenční PCR s využitím primerů REP, BOX a ERIC (Louws et al., 1995; Smith et al., 1995).
Repetitive sequence PCR using REP, BOX and ERIC primers (Louws et al., 1995; Smith et al., 1995).