natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Jsou-li ve screeningových testech získány pozitivní výsledky, ale izolační testy jsou negativní, opakujte izolační testy.
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests.
Spolehlivá identifikace podezřelých čistých kultur R. solanacearum se dosáhne pomocí testů popsaných v oddíle VI.B.
Reliable identification of pure presumptive R. solanacearum cultures is achieved using the tests described in Section VI.B.
PODROBNÉ METODY PRO ZJIŠTĚNÍ RALSTONIA SOLANACEARUM V HLÍZÁCH BRAMBORU A V ROSTLINÁCH BRAMBORU, RAJČETE NEBO JINÝCH HOSTITELSKÝCH ROSTLINÁCH S PŘÍZNAKY HNĚDÉ HNILOBY NEBO BAKTERIÁLNÍHO VADNUTÍ
DETAILED METHODS FOR DETECTION OF RALSTONIA SOLANACEARUM IN POTATO TUBERS AND POTATO, TOMATO OR OTHER HOST PLANTS WITH SYMPTOMS OF BROWN ROT OR BACTERIAL WILT
Příznaky (viz internetová stránka http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Symptoms (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Příznaky u bramboru
Symptoms on potato
Rostlina bramboru.
The potato plant.
Raná fáze infekce v polních podmínkách se rozpozná vadnutím listů směrem k vrcholu rostliny při vysokých teplotách během dne, přičemž v noci dochází k zotavení.
The early stage of infection in the field is recognised by wilting of the leaves towards the top of the plant at high temperatures during the day with recovery at night.
V raných fázích vadnutí zůstávají listy zelené, ale později žloutnou a objevují se hnědé nekrózy.
In early stages of wilting leaves remain green, but later yellowing and brown necrosis develops.
Dochází také k ohýbání listů dolů.
Epinasty also occurs.
Vadnutí jednoho výhonku nebo celé rostliny se rychle stává nevratným a končí kolapsem a uhynutím rostliny.
Wilting of one shoot or whole plants becomes rapidly irreversible and results in the collapse and death of the plant.
Z cévních svazků napříč uříznutých stonků zvadlých rostlin obvykle vytéká hnědý a mléčný bakteriální sliz nebo je možné sliz vymáčknout.
The vascular tissue of transversely cut stems from wilted plants usually appears brown and a milky bacterial ooze exudes from the cut surface or can be expressed by squeezing.
Při ponoření uříznutého stonku svisle do vody se z cévních svazků táhnou vlákna slizu.
When a cut stem is placed vertically in water, threads of slime will stream from the vascular bundles.
Hlíza bramboru.
The potato tuber.
Hlízy bramboru je třeba překrojit napříč u pupkového konce a podélně přes pupkový konec.
Potato tubers must be cut transversely close to the heel (stolon end) or longitudinally over the stolon end.
V rané fázi se infekce pozná podle lahvově žlutého až světle hnědého zabarvení cévního prstence, ze kterého po několika minutách začne prýštit bledý krémový bakteriální sliz.
The early stage of infection is recognised by a glassy yellow to light brown discolouration of the vascular ring from which a pale cream bacterial ooze emerges spontaneously after some minutes.
Později se cévní zbarvení stává výrazněji hnědým a odumření se může rozšířit do parenchymatického pletiva.
Later, the vascular discolouration becomes a more distinct brown and necrosis can extend into the parenchymatous tissue.
V pokročilejších fázích se infekce rozšíří vně od pupkového konce hlízy a z oček může vytékat bakteriální sliz a způsobuje přilepení částic půdy.
In advanced stages, infection breaks outwards from the heel end and the eyes from which bacterial slime may ooze causing soil particles to adhere.
Na slupce se mohou objevit červenohnědá, lehce propadlá postižená místa, způsobená vnitřním kolapsem cévního pletiva.
Reddish-brown slightly sunken lesions may appear on the skin due to collapse of vascular tissues internally.
V pokročilejších fázích infekce je obvyklý sekundární rozvoj měkkých hnilob bakteriálního a houbového původu.
Secondary development of fungal and bacterial soft rots is common in the advanced stages of the disease.
Příznaky u rajčete
Symptoms on tomato
Rostlina rajčete.
The tomato plant.
Prvním viditelným příznakem je povadlý vzhled nejmladších listů.
The first visible symptom is the flaccid appearance of the youngest leaves.
Za příznivých podmínek pro patogena (teplota půdy kolem 25 °C, při nasycené vzdušné vlhkosti) se během několika málo dní rozvine kroucení listů směrem dolů a vadnutí na jedné straně rostliny nebo celé rostliny, které končí jejím úplným odumřením.
Under favourable environmental conditions for the pathogen (soil temperatures of approximately 25 °C; saturated humidity), epinasty and wilting of one side or of the whole plant follows within a few days leading to total plant collapse.
Za méně příznivých podmínek pro patogena (teplota půdy méně než 21 °C) rostlina tolik nevadne, ale na stonku se může tvořit větší počet postranních výhonů.
Under less favourable conditions (soil temperature below 21 °C), less wilting occurs, but large numbers of adventitious roots may develop on the stem.
Je možné pozorovat vodou nasáklé pruhy od spodu stonku, které jsou dokladem odumírání cévního systému.
It is possible to observe watersoaked streaks from the base of the stem which is evidence of necrosis in the vascular system.
Při příčném řezu stonkem vylučují hnědě zbarvená vodivá pletiva bílý nebo nažloutlý bakteriální sliz.
When the stem is cut crosswise, discoloured brown vascular tissues exude white or yellowish bacterial ooze.
Příznaky u jiných hostitelů
Symptoms on other hosts
Rostliny Solanum dulcamara a S. nigrum.
Solanum dulcamara and S. nigrum plants.
Za normálních podmínek jsou u těchto plevelných hostitelských rostlin zřídkakdy pozorovány příznaky vadnutí, pokud teploty půdy nepřevyšují 25 °C nebo není extrémně vysoká koncentrace inokula (např. u rostliny S. nigrum rostoucí u nemocné rostliny bramboru nebo rajčete).
Under natural conditions, wilting symptoms are rarely observed in these weed hosts unless soil temperatures exceed 25 °C or inoculum levels are extremely high (e.g. as for S. nigrum growing adjacent to diseased potato or tomato plants).
Při vadnutí jsou příznaky stejné jako u rostliny rajčete.
When wilting does occur, the symptoms are as described for tomato.
Nevadnoucí rostliny S. dulcamara, která má stonky a kořeny ve vodě, mohou vykazovat vnitřní světle hnědé zbarvení vodivých pletiv na příčném řezu spodní části stonku nebo částí stonku pod vodou.
Non-wilting S. dulcamara plants growing with stems and roots in water may show internal light brown discolouration of vascular tissues on transverse section of the stem base or underwater stem parts.
Z řezu cévních svazků mohou vytékat bakterie nebo mohou tvořit vlákna slizu, jestliže je řez stonku ponořen svisle do vody, a to i při absenci příznaků vadnutí.
Bacteria may ooze from cut vascular tissues or form threads of slime if the cut stem is placed vertically in water, even in the absence of wilting symptoms.
Rychlé screeningové testy mohou napomoci předběžné diagnóze, ale nejsou dostačující.
Rapid screening tests may facilitate presumptive diagnosis but are not essential.
Použijte jeden nebo více následujících platných testů:
Use one or more of the following validated tests:
(Viz oddíl VI.A.1)
(See Section VI.A.1.)
Test na přítomnost granulí poly-β-hydroxybutyrátu (PHB)
Detection of poly-ß-hydroxybutyrate (PHB) granules
Charakteristické granule PHB v buňkách R. solanacearum jsou zviditelněny obarvením tepelně fixovaných skvrn bakteriálního slizu z infikovaného pletiva na mikroskopickém sklíčku nilskou modří A nebo súdánskou černí (Viz oddíl VI.A.2).
Characteristic PHB granules in the cells of R. solanacearum are visualised by staining heat-fixed smears of bacterial ooze from infected tissue on a microscope slide with Nile Blue A or Sudan Black (See Section VI.A.2.).
(Viz oddíl VI.A.3)
(See Section VI.A.3.)
Jiné testy
Other tests
Dalšími vhodnými rychlými screeningovými testy jsou test IF (viz oddíl VI.A.5), test FISH (viz oddíl VI.A.7), testy ELISA (viz oddíl VI.A.8) a testy PCR (viz oddíl VI.A.6).
Further appropriate rapid screening tests include the IF test (see Section VI.A.5.), FISH test (see Section VI.A.7.), ELISA tests (see Section VI.A.8.) and PCR tests (see Section VI.A.6).
Odeberte sliz nebo vrstvu zbarveného pletiva z cévního prstence hlízy bramboru nebo z cévních vláken stonku rostliny bramboru, rajčete nebo jiné vadnoucí hostitelské rostliny.
Remove ooze or sections of discoloured tissue from the vascular ring in the potato tuber or from the vascular strands in stems of potato, tomato or other wilting host plants.
Suspendujte je v malém množství sterilní destilované vody nebo 50mM fosfátového pufru (dodatek 4) a nechte 5–10 minut stát.
Suspend in a small volume of sterile distilled water or 50mM phosphate buffer (Appendix 4) and leave for 5 to 10 minutes.
Připravte řadu desetinásobných ředění suspenze.
Prepare a series of decimal dilutions of the suspension.
Přeneste 50–100 µl suspenze a roztoku na universální živnou půdu (NA, YPGA nebo SPA; viz dodatek 2) a/nebo Kelmanovo tetrazolové médium (dodatek 2) a/nebo validované selektivní médium (např. SMSA, viz dodatek 2).
Transfer 50-100 µl of the suspension and dilutions to a general nutrient medium (NA, YPGA or SPA; see Appendix 2) and/or to Kelman’s tetrazolium medium (Appendix 2) and/or a validated selective medium (e.g. SMSA; see Appendix 2).
Rozetřete metodou zřeďovacích roztěrů.
Spread or streak with an appropriate dilution plating technique.
Připravte případně samostatné misky s rozředěnou buněčnou suspenzí R. solanacearum biovar 2 k pozitivní kontrole.
If useful, prepare separate plates with a diluted cell suspension of R. solanacearum biovar 2 as a positive control.
Nechte inkubovat 2–6 dní při teplotě 28 °C.
Incubate the plates for two to six days at 28 °C.
Na universální živné půdě vytvářejí virulentní izoláty R. solanacearum perlově krémově bílé, ploché, nepravidelné a fluidní kolonie, často s charakteristickými spirálkami ve středu.
On the general nutrient media, virulent isolates of R. solanacearum develop pearly cream-white, flat, irregular and fluidal colonies often with characteristic whorls in the centre.
Avirulentní formy R. solanacearum tvoří malé kruhové nefluidní máslovité kolonie, které jsou zcela krémově bílé.
Avirulent forms of R. solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely cream-white.
U Kelmanova tetrazolového média a média SMSA jsou spirálky krvavě červeně zbarvené.
On Kelman’s tetrazolium and SMSA media, the whorls are blood red in colour.
Avirulentní formy R. solanacearum tvoří malé kruhové nefluidní máslovité kolonie, které jsou zcela temně červené.
Avirulent forms of Ralstonia solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely deep red.
Testy potvrzující výskyt R. solanacearum v podezřelých izolátech jsou popsány v bodu VI.B.
Tests to confirm identity of presumptive isolates of R. solanacearum are shown in Section VI.B.
Podrobné metody pro zjištění a identifikaci Ralstonia solanacearum ve vzorcích bezpříznakových hlíz bramboru
Detailed methods for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato tubers
Standardní velikost vzorku je 200 hlíz na jeden test.
The standard sample size is 200 tubers per test.
Větší množství hlíz ve vzorku vedou k zpomalení nebo složitějšímu výkladu výsledků.
Larger numbers of tubers in the sample will lead to inhibition or difficult interpretation of the results.
Postup lze vhodně použít i pro vzorky s méně než 200 hlízami, pokud je k dispozici menší množství hlíz
However, the procedure can be conveniently applied for samples with less than 200 tubers where fewer tubers are available.
Extrakt bramboru popsaný níže může být rovněž použit pro zjištění původce bakteriální kroužkovitosti bramboru, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
The potato extract described below can also be used for detection of the potato ring rot bacterium, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Inkubace vzorků při teplotě 2–30 °C po dobu až 2 týdnů před testováním na podporu množení všech populací R. solanacearum.
Incubation of samples at 25 to 30 °C, for up to two weeks before testing, to encourage multiplication of any R. solanacearum populations.
Použijte vhodné desinfekční prostředky (s obsahem chlóru, jestliže má být proveden PCR test, pro odstranění patogenní DNA) a mycí prostředky mezi každým vzorkem.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove pathogen DNA) and detergents between each sample.
Tento postup mytí je vhodný (není však vyžadován) zvláště v případě, když je ve vzorcích příliš zeminy nebo jestliže má být proveden test PCR nebo přímá izolace.
This washing procedure is particularly useful (but not required) for samples with excess soil and if a PCR-test or direct isolation procedure is to be performed.
Pomocí čistého a dezinfikovaného skalpelu nebo nože na zeleninu odstraňte slupku na pupkovém konci každé hlízy, tak aby bylo viditelné vodivé pletivo.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel (stolon) end of each tuber so that the vascular tissues become visible.
Opatrně vyřízněte malé výkrojky vodivých pletiv na pupkovém konci a množství pletiva nezahrnující cévní svazky omezte na minimum (viz internetová stránka http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Carefully cut out a small core of vascular tissue at the heel end and keep the amount of non-vascular tissue to a minimum. (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Pozn.: Dejte stranou všechny (hnijící) hlízy s podezřelými příznaky hnědé hniloby a testujte je odděleně.
Note: Set aside any (rotting) tubers with suspected brown rot symptoms and test separately.
Pokud jsou při vyříznutí výkrojku zjištěny příznaky podezření na hnědou hnilobu, mělo by být provedeno vizuální vyšetření takové hlízy na řezu hlízy na pupkovém konci Všechny naříznuté hlízy s podezřelými příznaky by se měly uchovávat po dobu nejméně 2 dnů při pokojové teplotě, aby mohlo dojít ke zkorkovatění (suberizaci) a potom by měly být hlízy uchovány v chladu (4–10 °C) za řádných karanténních podmínek.
If during removal of the heel end core suspect symptoms of brown rot are observed, a visual inspection of this tuber should be done and the tuber cut near the heel end. Any cut tuber with suspected symptoms should be kept for at least two days at room temperature in order to allow suberisation and stored refrigerated (at 4 to 10 °C) under proper quarantine conditions.
Všechny hlízy včetně hlíz s podezřelými příznaky by měly být uchovány podle přílohy III.
All tubers including those with suspicioussymptoms should be kept according to Annex III.
Uložte výkrojky z pupkové části do nepoužitých nádob na jedno použití, které jsou uzavíratelné a/nebo utěsnitelné (v případě, že nádoby jsou znovu používány, musí být důkladně vyčištěny a dezinfikovány prostředky s obsahem chlóru).
Collect the heel end cores in unused disposable containers which can be closed and/or sealed (in case containers are reused they should be thoroughly cleaned and disinfected using chlorine compounds).
Nejlépe je zpracovat výkrojky z pupkového konce okamžitě.
Preferably, the heel end cores should be processed immediately.
Není-li to možné, uchovávejte je v nádobě bez přidání pufru; v chladu nejdéle 72 hodin nebo při pokojové teplotě nejdéle 24 hodin.
If this is not possible, store them in the container, without addition of buffer, refrigerated for not longer than 72 hours or for not longer than 24 hours at room temperature.
Výkrojky z pupkových konců zpracujte jedním z následujících postupů:
Process the heel end cores by one of the following procedures: either,
Buďto zalijte výkrojky dostatečným množstvím (přibližně 40 ml) extrakčního pufru (dodatek 4) a třepejte v rotační třepačce (50–100 ot./min) 4 hodiny při teplotě nižší než 24 °C nebo 16–24 hodin chlazené,
Cover the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4) and agitate on a rotary shaker (50-100 rpm) for 4 hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
homogenizujte výkrojky dostatečným množstvím (přibližně 40 ml) extrakčního pufru (dodatek 4) buď v mixéru (např. Waring nebo Ultra Thurax) nebo drcením v utěsněném maceračním sáčku na jedno použití (např. silný polyethylenový sáček Stomacher nebo Bioreba, 150 mm × 250 mm, sterilovaný zářením) pomocí gumového tloučku nebo vhodného mlecího zařízení (např. Homex).
Homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
Pozn.: Při homogenizaci vzorků pomocí mixéru existuje vysoké nebezpečí křížové kontaminace vzorků.
Note: The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Učiňte bezpečnostní opatření pro zamezení vzniku aerosolu nebo rozlití během extrakčního procesu.
Take precautions to avoid aerosol generation or spillage during the extraction process.
Zajistěte, abyste pro každý vzorek použili čerstvě sterilované nože (ostří) a nádoby.
Ensure that freshly sterilised blender blades and vessels are used for each sample.
Při testu PCR zabraňte přenosu DNA na nádobách nebo v mlecím přístroji.
If the PCR test is to be used, avoid carry-over of DNA on containers or grinding apparatus.
U testu PCR se doporučuje použít drcení v sáčcích na jedno použití a použití zkumavek na jedno použití.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Je-li příliš zakalený, pročistěte buď pomalým odstřeďováním (nejvýš 180 g po dobu 10 minut při teplotě 4–10 °C) nebo vakuovou filtrací (40–100 µm), filtr omyjte přídavkem (10 ml) extrakčního pufru.
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (approximately 10 ml) extraction buffer.
Zahustěte bakteriální frakci odstřeďováním, 7000 g po dobu 15 minut (nebo 10000 g po dobu 10 minut) při teplotě 4–10 °C a odstraňte supernatant, aniž by se rozvířila peleta.
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Resuspendujte peletu v 1,5 ml peletového pufru (dodatek 4).
Resuspend the pellet in 1.5 ml pellet buffer (Appendix 4).
Použijte 500 µl pro R. solanacearum, 500 µl pro Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus a 500 µl pro referenční účely.
Use 500 µl to test for R. solanacearum, 500 µl for Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus and 500 µl for reference purposes.
Přidejte sterilní glycerol na konečnou koncentraci 10–25 % (v/v) k 500 µl referenční poměrné části a ke zbývající ke zbývající části vzorku, promíchejte vířením a uložte při teplotě –16 až –24 °C (týdny) nebo –68 až –86 °C (měsíce).
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (months).
Extrakty uchovejte během testování při teplotě 4–10 °C.
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Je-li nutná přeprava extraktu, zajistěte přepravu v chladícím boxu s doručením do 24 až 48 hodin.
If transport of the extract is required, ensure delivery in a cool box within 24 to 48 hours.
Je nezbytně nutné, aby všechny pozitivní kontroly a vzorky R. solanacearum byly uchovány a zpracovány odděleně, aby se zabránilo vzájemné kontaminaci.
It is imperative that all R. solanacearum positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
To platí pro sklíčka IF a všechny testy.
This applies to IF slides and to all tests.
Postupové diagramy a popisy testů a optimalizovaných protokolů najdete v příslušných dodatcích:
See Flow chart and description of the tests and optimised protocols in the relevant appendices:
Selektivní izolace (viz oddíl VI.A.4)
Selective isolation (see Section VI.A.4.)
Test IF (viz oddíl VI.A.5)
IF test (see Section VI.A.5.)
Testy PCR (viz oddíl VI.A.6)
PCR tests (see Section VI.A.6.)
Test FISH (viz oddíl VI.A.7)
FISH test (see Section VI.A.7.)
Testy ELISA (viz oddíl VI.A.8)
ELISA tests (see Section VI.A.8.)
Biotest (viz oddíl VI.A.9)
Bioassay (see Section VI.A.9.)
Podrobné metody pro zjištění a identifikaci R. solanacearum ve vzorcích bezpříznakových rostlin bramboru, rajčete nebo jiných hostitelských rostlin
Detailed methods for detection and identification of R. solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Pozn.: Pro účely detekce latentních populací R. solanacearum se doporučuje testovat smíšené vzorky.
Note: For detection of latent R. solanacearum populations it is advised to test composite samples.
Postup lze vhodně použít na smíšené vzorky o počtu až 200 stonkových částí.
The procedure can be conveniently applied for composite samples of up to 200 stem parts.
Provádí-li se průzkum, měl by být založen na statisticky reprezentativním vzorku zkoumané rostlinné populace.
Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.
Do uzavřené sterilní nádoby uložte 1–2 cm dlouhé kousky stonků podle následujícího postupu vzorkování: Rajčatová sazenice z předpěstírny: čistým dezinfikovaným nožem odeberte kousek dlouhý 1 cm z paty každého stonku hned nad úrovní země. Rostliny z pole nebo skleníku: čistým dezinfikovaným nožem odeberte nejspodnější postranní výhonek z každé rostliny uříznutým hned nad spojením s hlavním stonkem.
Collect 1 to 2 cm stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Odeberte nejspodnější, 1 cm dlouhý díl z každého výhonku.
Nursery tomato seedlings: With a clean disinfected knife, remove a 1 cm segment from the base of each stem, just above the soil level. Field or glasshouse grown tomato plants: With a clean disinfected knife, remove the lowermost side shoot from each plant by cutting just above the joint with the main stem. Remove the lowermost 1cm segment from each side shoot.
Jiné hostitelské rostliny: Čistým dezinfikovaným nožem nebo zahradnickými nůžkami odeberte 1 cm dlouhý díl z paty každého stonku hned nad úrovní země. U lilku potměchuti (S. dulcamara) nebo jiných hostitelských rostlin rostoucích ve vodě odeberte 1–2 cm díly ze stonku pod vodou nebo oddenků s vodními kořeny.
Other hosts: With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Při vzorkování určité oblasti se doporučuje testovat statisticky representativní vzorek o počtu nejméně 10 rostlin na 1 vzorkovací místo pro každou potenciální plevelnou hostitelskou rostlinu.
In the case of S. dulcamara or other host plants growing in water, remove 1-2 cm sections from underwater stems or stolons with aquatic roots. When sampling a particular location it is recommended to test a statistically representative sample of at least 10 plants per sampling point of each potential weed host.
Detekce patogenu bude nejspolehlivější v období pozdního jara, léta a podzimu, ačkoli přirozenou infekci je možné zjistit po celý rok u víceleté Solanum dulcamara rostoucí ve vodních tocích.
Pathogen detection will be most reliable during late spring, summer and autumn seasons, although natural infections can be detected all year round in the perennial Solanum dulcamara growing in watercourses.
Mezi známé hostitelské rostliny patří plevelné rostliny bramboru, Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium a další zástupci čeledi Solanaceae.
Known hosts include volunteer potato plants (groundkeepers), Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium and other members of the family Solanaceae.
Dalšími hostitelskými rostlinami jsou rostliny rodu Pelargonium spp. a Portulaca oleracea.
Further hosts are Pelargonium spp. and Portulaca oleracea.