natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Restrikční enzymová analýza amplikonu.
Restriction enzyme analysis of amplicon.
Produkty PCR vzniklé amplifikací z R. solanacearum DNA vytvářejí polymorfismus délky restrikčních fragmentů s enzymem Ava II po inkubaci při teplotě 37 °C.
PCR products amplified from R. solanacearum DNA produce a distinctive restriction fragment length polymorphism with enzyme Ava II after incubation at 37 °C.
Protokol PCR Pastrika a Maisse (2000)
PCR protocol of Pastrik and Maiss (2000)
Přímý primer Ps-1
Forward primer Ps-1
5′-agt cga acg gca gcg ggg g -3′
5′- agt cga acg gca gcg ggg g -3′
Reverzní primer Ps-2
Reverse primer Ps-2
5′-ggg gat ttc aca tcg gtc ttg ca -3′
5′- ggg gat ttc aca tcg gtc ttg ca -3′
Očekávaná velikost amplikonu templátové DNA R. solanacearum DNA = 553 bp.
Expected amplicon size from R. solanacearum template DNA = 553 bp.
Pozn.: Původně optimalizovaná pro termocykler MJ Research PTC 200 s polymerasou Gibco Taq Polymerace.
Originally optimised for MJ Research PTC 200 thermocycler with Gibco Taq Polymerase.
Perkin Elmer AmpliTaq a pufr mohou být rovněž použity ve stejných koncentracích.
Perkin Elmer AmpliTaq and buffer can also be used at the same concentrations.
pufr PCR [702]
PCR buffer [702]
BSA (frakce V) (10 %)
BSA (fraction V) (10 %)
Směs dNTP (20mM)
d-nTP mix (20 mM)
Taq polymerasa (5U/µl) [702]
Taq polymerase (5U/µl) [702]
Celkové množství:
Total volume:
5 minut při 95 °C (denaturace templátové DNA)
5 minutes at 95 °C (denaturation of template DNA)
30 sekund při 95 °C (denaturace templátové DNA)
30 seconds at 95 °C (denaturation of template DNA)
30 sekund při 68 °C (hybridizace primerů s templátovou DNA)
30 seconds at 68 °C (annealing of primers)
45 sekund při 72 °C (syntéza kopie)
45 seconds at 72 °C (extension of copy)
5 minut při 72 °C (konečná syntéza)
5 minutes at 72 °C (final extension)
Pozn.: Tento program byl optimalizován pro použití termocykleru MJ Research PTC 200.
This programme is optimised for use with an MJ Research PTC 200 thermal cycler.
Produkty PCR vzniklé amplifikací z R. solanacearum DNA vytvářejí zřetelný polymorfismus délky restrikčních fragmentů s enzymem Taq I po inkubační době 30 minut při teplotě 65 °C.
PCR products amplified from R. solanacearum DNA produce a distinctive restriction fragment length polymorphism with enzyme Taq I after incubation at 65 °C for 30 minutes.
Restrikční fragmenty specifické pro R. solanacearum mají velikost 457 bp a 96 bp.
The restriction fragments obtained from R. solanacearum-specific fragment are 457 bp and 96 bp in size.
Protokol pro multiplexní PCR s interní kontrolou (Pastrik et al., 2002)
Multiplex PCR protocol with internal PCR control (Pastrik et al., 2002)
Přímý primer RS-1-F
Forward primer RS-1-F
5′-ACT AAC GAA GCA GAG ATG CAT TA-3′
5′- ACT AAC GAA GCA GAG ATG CAT TA -3′
Reverzní primer RS-1-R
Reverse primer RS-1-R
5′-CCC AGT CAC GGC AGA GAC T-3′
5′- CCC AGT CAC GGC AGA GAC T -3′
Přímý primer NS-5-F
Forward primer NS-5-F
5′-AAC TTA AAG GAA TTG ACG GAA G-3′
5′- AAC TTA AAG GAA TTG ACG GAA G -3′
Reverzní primerNS-6-R
Reverse primer NS-6-R
5′-GCA TCA CAG ACC TGT TAT TGC CTC-3′
5′- GCA TCA CAG ACC TGT TAT TGC CTC -3′
Očekávaná velikost amplikonu templátové DNA R. solanacearum = 718 bp (sada primerů RS).
Expected amplicon size from R. solanacearum template DNA = 718 bp (RS-primer set)
Očekávaná velikost amplikonu interní kontroly PCR 18S rRNA = 310 bp (sada primerů NS).
Expected amplicon size from the 18S rRNA internal PCR control = 310 bp (NS-primer set).
pufr PCR [703] (15 mM MgCl2)
PCR buffer [703] (15 mM MgCl2)
Primer RS-1-F (10µM)
Primer RS-1-F (10 µM)
Primer RS-1-R (10µM)
Primer RS-1-R (10 µM)
Primer NS-5-F (10µM) [704]
Primer NS-5-F (10 µM) [704]
Primer NS-6-R (10µM) [704]
Primer NS-6-R (10 µM) [704]
Taq polymeráza (5U/µl) [703]
Taq polymerase (5 U/µl) [703]
30 sekund při 58 °C (hybridizace primerů s templátovou DNA)
30 seconds at 58 °C (annealing of primers)
Produkty PCR vzniklé amplifikací z DNA R. solanacearum vytvářejí zřetelný polymorfizsmus délky restrikčních fragmentů s enzymem Bsm I nebo Isoschizomere (např. Mva 1269 I) po inkubační době 30 minut při teplotě 65 °C.
PCR products amplified from R. solanacearum DNA produce a distinctive restriction fragment length polymorphism with enzyme Bsm I or an Isoschizomere (e.g. Mva 1269 I) after incubation at 65 °C for 30 minutes.
Protokol PCR specifický pro biovar R. solanacearum (Pastrik et al, 2001)
solanacearum biovar-specific PCR protocol (Pastrik et al., 2001)
Přímý primer Rs-1-F
Forward primer Rs-1-F
Reverzní primer Rs-1-R
Reverse primer Rs-1-R
Reverzní primer Rs-3-R
Reverse primer Rs-3-R
5′-TTC ACG GCA AGA TCG CTC-3′
5′- TTC ACG GCA AGA TCG CTC -3′
Očekávaná velikost amplikonu templátové DNA R. solanacearum:
Expected amplicon size from R. solanacearum template DNA:
s Rs-1-F/Rs-1-R = 718 bp
with Rs-1-F/Rs-1-R = 718 bp
s Rs-1-F/Rs-3-R = 716 bp
with Rs-1-F/Rs-3-R = 716 bp.
Protokol PCR specifický pro biovar 1/2
Biovar 1/2-specific PCR
pufr PCR [705]
PCR Buffer [705]
Směs d-NTP (20mM)
d-NTP mix (20mM)
Taq polymeráza (5U/µl) [705]
Taq polymerase (5U/µl) [705]
Protokol PCR specifický pro Biovar 3/4/5
Biovar 3/4/5-specific PCR
pufru PCR [706]
PCR Buffer [706]
Taq polymeráza (5U/µl) [706]
Taq polymerase (5 U/µl) [706]
Proveďte následující cyklický proces pro obě reakce specifické pro biovary 1/2- a biovary 3/4/5:
Run the following programme for both biovar 1/2- and biovar 3/4/5-specific reactions:
Pozn.: Tento program byl optimalizován pro použití termocykleru MJ Research PTC 200.
This programme was optimised for use with an MJ Research PTC 200 thermal cycler.
Produkty PCR vzniklé amplifikací DNA R. solanacearum pomocí primerů Rs-1-F a Rs-1-R vytvářejí zřetelný polymorfizmus délky restrikčních fragmentů s enzymem Bsm I nebo Isoschizomere (např. Mva 1269 I) po inkubační době 30 minut při teplotě 65 °C.
PCR products amplified from R. solanacearum DNA using primers Rs-1-F and Rs-1-R produce a distinctive restriction fragment length polymorphism with enzyme Bsm I or an Isoschizomere (e.g. Mva 1269 I) after incubation at 65 °C for 30 minutes.
Produkty PCR vzniklé amplifikací z DNA R. solanacearum pomocí primerů Rs-1-F a Rs-3-R nemají žádná restrikční místa.
PCR products amplified from R. solanacearum DNA using primers Rs-1-F and Rs-3-R have no restriction sites.
Příprava nanášecího pufru
Preparation of the loading buffer
Bromfenolová modř (10 % zásobní roztok)
Bromphenol blue (10 %-stock solution)
Bromfenolová modř
Bromphenol blue
Destilovaná voda (redestilovaná)
Distilled water (bidest)
Nanášecí pufr
Loading buffer
Bromfenolová modř (5.1)
Bromphenol blue (5,1)
Destilovaná voda (redestilovaná)
Distilled Water (bidest)
Pufr 10X Tris -Acetát -EDTA (TAE), pH 8,0
Tris Acetate EDTA (TAE) buffer, pH 8.0
Tris
Tris buffer
Před použitím řeďte na 1X.
Dilute to 1X before use.
Rovněž dostupný na trhu (např. Invitrogen nebo rovnocenný).
Also commercially available (e.g. Invitrogen or equivalent).
Metoda byla validována použitím Taq polymerázy Perkin Elmer (AmpliTaq) a Gibco BRL.
Method was validated using Taq polymerase from Perkin Elmer (AmpliTaq) and Gibco BRL.
Metoda byla validována použitím Taq polymerázy Perkin Elmer (AmpliTaq) a Gibco BRL.
Methods were validated using Taq polymerase from Perkin Elmer (AmpliTaq) and Gibco BRL.
Koncentrace primerů NS-5-F a NS-6-R byly optimalizovány pro výkrojky pletiva pupkových částí hlíz bramboru pomocí homogenizační metody a purifikace DNA podle Pastrika (2000) (viz oddíl VI.A.6.1.a)).
Concentration of primers NS-5-F and NS-6-R were optimised for potato heel end core extraction using the homogenisation method and DNA purification according to Pastrik (2000) (see Section VI.A.6.1.a.).
Použití extrakční metody třepáním nebo jiných metod izolace DNA může vyžadovat nové provedení optimalizace koncentrací reagencií.
Re-optimisation of reagent concentrations will be required if extraction by shaking or other DNA isolation methods are used.
Metoda byla validována použitím Taq polymerázy Perkin Elmer (AmpliTaq) a Gibco BRL.
Methods have been validated using Taq polymerase from Perkin Elmer (AmpliTaq) and Gibco BRL.
Oligosondy
Oligo-probes
Sonda specifická pro R. solanacearum OLI-1-CY3 5′-ggc agg tag caa gct acc ccc-3′
solanacearum-specific probe OLI-1-CY3: 5′-ggc agg tag caa gct acc ccc-3′
Nespecifická eubakteriální sonda EUB-338-FITC 5′-gct gcc tcc cgt agg agt-3′
Non-specific eubacterial probe EUB-338-FITC: 5′-gct gcc tcc cgt agg agt-3′
Fixační roztok
Fixative solution
[UPOZORNĚNÍ: USTALOVAČ JE PARAFORMALDEHYD, KTERÝ JE JEDOVATÝ.
(WARNING! THE FIXATIVE CONTAINS PARAFORMALDEHYDE WHICH IS TOXIC.
POUŽIJTE RUKAVICE A NEVDECHNĚTE.
WEAR GLOVES AND DO NOT INHALE.
DOPORUČUJE SE PRACOVAT V DIGESTOŘI.]
IT IS ADVISABLE TO WORK IN A FUME CUPBOARD.)
Zahřejte 9 ml ultračisté vody (UPW) na zhruba 60 °C a přidejte 0,4 g paraformaldehydu.
Heat 9 ml molecular grade water (e.g. Ultra pure water (UPW)) to about 60 °C and add 0,4 g paraformaldehyde.
Paraformaldehyd se rozpouští po přidání 5 kapek 1N NaOH a míchání na magnetické míchačce.
Paraformaldehyde dissolves after adding 5 drops of 1N NaOH and stirring with a magnetic stirrer.
Upravte pH na 7,0 přidáním 1 ml 0,1 M fosfátového pufru (PB; pH 7,0) a 5 kapek 1N HCl.
Adjust pH to 7.0 by addition of 1ml of 0,1M phosphate buffer (PB; pH 7,0) and 5 drops of 1N HCl.
Zkontrolujte pH indikátorovými papírky a případně upravte HCl nebo NaOH.
Check pH with indicator strips and adjust if necessary with HCl or NaOH.
[UPOZORNĚNÍ: V ROZTOKU S PARAFORMAL-DEHYDEM NEPOUŽÍVEJTE MĚŘIČ PH.]
(WARNING! DO NOT USE A PH METER IN SOLUTIONS WITH PARAFORMALEDHYDE.)
Zfiltrujte roztok přes membránový filtr 0,22 µm a uchovejte chráněný před prachem při teplotě 4 °C do dalšího použití.
Filter the solution through a 0,22 µm membrane filter and keep dust-free at 4 °C until further use.
Tri-HCl
Tris-HCl
EDTA (sterilizovaný filtrací a autoklávováním)
EDTA (filter sterilised and autoclaved)
Zřeďte na 1X, podle potřeby.
Dilute to 1X as required.
Hybridizační roztok
Hybridisation solution
Dodecylsíran sodný (SDS)
Sodium dodecyl sulphate (SDS)
Formamid
Formamide
Sonda EUB 338
probe EUB 338
Sonda OLI-1 nebo OLI-2
probe OLI-1 or OLI-2
Připravte množství hybridizačního roztoku podle výpočtů v tabulce 1.
Prepare quantities of hybridisation solution according to the calculations in Table 1.
Na každé podložní sklíčko (obsahující dva různé vzorky dvakrát) se požaduje 90 μl hybridizačního roztoku.
For each slide (containing 2 different samples in duplicate) 90 μl hybridisation solution is required.
UPOZORNĚNÍ: FORMAMID JE VELMI JEDOVATÝ, A PROTO POUŽIJTE RUKAVICE A UČIŇTE POTŘEBNÁ BEZPEČNOSTNÍ OPATŘENÍ!
IMPORTANT: FORMAMIDE IS VERY TOXIC SO WEAR GLOVES AND TAKE NECESSARY SAFETY PRECAUTIONS!
Tabulka 1. Doporučená množství pro přípravu hybridizační směsi.
Table 1 Suggested quantities for preparation of hybridisation mix
Pozn.: Uchovávejte všechny roztoky se světlocitlivými oligosondami v temnu při teplotě –20 °C.
Store all solutions containing light sensitive oligo-probes in the dark at –20 °C.
Při použití chraňte před přímým slunečním nebo elektrickým světlem.
Protect from direct sunlight or electric light during use.
Počet sklíček:
Number of slides:
Sonda EUB 338 (100 ng/μl)
Probe EUB 338 (100 ng/μl)
Sonda OLI-1 nebo OLI-2 (100 ng/μl)
Probe OLI-1 or OLI-2 (100 ng/μl)
Celkové množství (μl)
Total volume (μl)
0,1M fosfátový pufr, pH 7,0
0,1M Phosphate buffer, pH 7,0
Pěstování lilku a rajčete
Eggplant and tomato culture
Zasejte semena rajčete (Lycopersicon esculentum) nebo lilku (Solanum melongena) do pasterizovaného výsevního substrátu.
Sow seeds of tomato (Lycopersicon esculentum) or eggplant (Solanum melongena) in pasteurised seed compost.
Přesaďte sazeničky s plně rozvinutými děložními listy (10 až 14 dní) do pasterizovaného pěstebního substrátu.
Transplant seedlings with fully expanded cotyledons (10 to 14 days) into pasteurised potting compost.
Rostliny lilku a rajčete by měly být před naočkováním pěstovány ve skleníku s následujícími podmínkami:
Eggplants or tomatoes should be grown in a glasshouse with the following environmental conditions prior to inoculation:
Délka dne
Day length
14 hodin nebo přirozená délka dne nebo delší
14 hours or natural day length if greater;
Teplota
Temperature
denní: 21 až 24 °C
day 21 to 24 °C,
noční: 14 až 18 °C
to 18 °C.
Vhodná odrůda rajčete
Susceptible variety of tomato
‚Moneymaker‘
“‘Moneymaker’”
Vhodná odrůda lilku
Susceptible variety of eggplant
‚Black Beauty‘
“‘Black Beauty’”
Dodavatelé:
Suppliers
viz internetová stránka http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
Selective enrichment improves selective isolation, serological and molecular detection of plant pathogenic bacteria. In: H.W.
Selective enrichment improves selective isolation, serological and molecular detection of plant pathogenic bacteria.
Dehne et al., (eds).
H.W.
Klewer Academic Publishers. pp.
Dehne et al., (eds).
Bacterial wilt disease: Molecular and Ecological Aspects. Springer (Berlin) pp.
Bacterial wilt disease: Molecular and Ecological Aspects.
Ve všech případech podezření z výskytu organismu, kdy screeningový(é) test(y) provedený(é) na uvedeném rostlinném materiálu podle vhodných metod popsaných v příloze II dopadl(y) pozitivně a na potvrzení nebo vyvrácení výsledku(ů) uvedenou metodou se ještě čeká, je třeba zadržet a vhodným způsobem konzervovat:
For each suspected occurrence for which a positive result in the screening test(s) has been identified according to, for the listed plant material and for all other cases, the relevant methods set out in Annex II, and confirmation or refutation by completion of the said methods is awaited, there should be retention and appropriate conservation of:
všechny vzorkované hlízy, a pokud možno, všechny vzorkované rostliny,
all tubers sampled and, wherever possible, all plants sampled,
jakýkoli zbývající výluh a dodatečně připravený materiál pro screeningový(é) test(y), např. imunofluorescenční sklíčka
any remaining extract and additional prepared material for the screening test(s) e.g. immunofluorescence slides,
všechny příslušné podklady dokud není výše uvedený postup zcela ukončen.
all relevant documentation, until the completion of the said methods.
Uschování hlíz umožní v případě potřeby použít jinou metodu testování/Zadržení hlíz umožní případné testování odrůd.
Retention of the tubers will enable variety testing to be undertaken where appropriate.
V případě potvrzení výskytu škodlivého organismu je třeba zadržet a vhodným způsobem konzervovat nejméně do jednoho měsíce od oznámení podle čl. 5 odst. 2:
In the case of positive confirmation of the organism, there should be retention and appropriate conservation of:
vzorek napadeného materiálu rajčete nebo lilku vejcoplodého naočkovaného výluhem z hlíz nebo rostlin, kde je to vhodné,
a sample of the infected tomato or eggplant material inoculated with the tuber or plant extract, where appropriate,
izolované kultury organismu.
the isolated culture of the organism,
PŘÍLOHA IV
until at least one month after the notification procedure under Article 5(2).
místa produkce,
ANNEX IV
na nichž se pěstují rostoucí nebo vzrostlé rostliny bramboru, které jsou klonově příbuzné rostlinám bramboru, u kterých byla zjištěna infekce organismem,
The elements in the investigation referred to in Article 5(1)(a)(i) shall include where relevant: (i) places of production,
na nichž se pěstují rostoucí nebo vzrostlé rostliny rajčat, které pocházejí ze stejného zdroje jako rostliny rajčat, u kterých byla zjištěna infekce organismem,
growing or having grown, potatoes which are clonally related to potatoes found to be infected with the organism, growing or having grown, tomatoes which are from the same source as tomatoes found to be infected with the organism,
na nichž se pěstují rostoucí nebo vzrostlé rostliny bramboru nebo rajčete, na které byla uvalena úřední kontrola z důvodu podezření na výskyt organismu,
growing or having grown, potatoes or tomatoes which have been placed under official control because of the suspected occurrence of the organism,
na nichž se pěstují rostoucí nebo vzrostlé rostliny bramboru, které jsou klonově příbuzné rostlinám bramboru, které byly vypěstovány v místech produkce, na kterých bylo zjištěno zamoření organismem,
growing or having grown, potatoes which are clonally related to potatoes that have been grown on places of production found to be infested with the organism,
na nichž se pěstují rostliny bramboru nebo rajčete v sousedství zamořených míst produkce, včetně takových míst produkce, kde dochází ke sdílení zařízení a vybavení přímo nebo prostřednictvím společného dodavatele,
growing potatoes or tomatoes and located in the neighbourhood of infested places of production, including such places of production sharing production equipment and facilities directly or through a common contractor,
na nichž se k zavlažování nebo postřiku používá povrchová voda z jakéhokoli zdroje, u kterého se potvrdilo zamoření organismem nebo je podezření na zamoření organismem,
using surface water for irrigation or spraying from any source confirmed or suspected to be contaminated with the organism,
na nichž se k zavlažování nebo postřiku používá povrchová voda ze zdroje, který se používá společně s místy produkce, která se ukázala jako zamořená organismem nebo u nichž existuje podezření na zamoření organismem,
using surface water for irrigation or spraying from a source used in common with places of production confirmed or suspected to be infested with the organism, flooded or have been flooded with surface water confirmed or suspected to be contaminated with the organism; and
která jsou nebo byla zaplavena povrchovou vodou, u které se potvrdilo zamoření organismem nebo je podezření na zamoření organismem,
surface water used for irrigation or spraying of, or which has flooded field(s) or place(s) of production confirmed to be infested with the organism. --------------------------------------------------
povrchová voda použitá pro zavlažování nebo postřik polí nebo místa (míst) produkce nebo která zaplavila pole nebo místo (místa) produkce, u kterých se potvrdilo zamoření organismem.
ANNEX V 1. The elements to be considered in the determination of the extent of probable contamination under Article 5(1)(a)(iii) and 5(1)(c)(iii), shall include:
PŘÍLOHA V
the listed plant material grown at a place of production designated as contaminated under Article 5(1)(a)(ii),
Prvky, jež mají být zohledněny při stanovení rozsahu pravděpodobného zamoření podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bod iii) a čl. 5 odst. 1 písm. c) bod iii), zahrnují:
place(s) of production with some production link to the listed plant material designated as contaminated under Article 5(1)(a)(ii), including those sharing production equipment and facilities directly or through a common contractor,
uvedený rostlinný materiál, který byl pěstován v místě produkce, které bylo podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bodu ii) prohlášeno za zamořené,
the listed plant material produced in the place(s) of production referred to in the previous indent, or present in such place(s) of production during the period when the listed plant material designated as contaminated under Article 5(1)(a)(ii), was present on the place of production referred to in the first indent, premises handling the listed plant material from the places of production referred to in the above indents,
místo (místa) produkce s jakoukoli produkční vazbou na uvedený rostlinný materiál označený za zamořený podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bod ii), včetně takových míst, na kterých se pracovní nářadí a zařízení používají společně buď přímo nebo přes společného dodavatele,
any machinery, vehicle, vessel, store, or units thereof, and any other objects including packaging material, that may have come into contact with the listed plant material designated as contaminated under Article 5(1)(a)(ii), any of the listed plant material stored in, or in contact with, any of the structures or objects listed in the previous indent, prior to the cleansing and disinfection of such structures and objects,
uvedený rostlinný materiál pěstovaný v místě (místech) produkce podle předchozí odrážky nebo přítomný v takovém místě (místech) produkce během období, kdy uvedený rostlinný materiál označený za zamořený podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bodu ii) byl přítomný na tomto místě produkce podle první odrážky,
as a result of the investigation and testing under Article 5(1)(a)(i), in the case of potato, those tubers or plants with a sister or parental clonal relationship to, and in the case of tomato, those plants with the same source as, the listed plant material designated to be contaminated under Article 5(1)(a)(ii) and for which, although they may have tested negative for the organism, it appears that contamination is probable through a clonal link.
prostory, ve kterých se manipuluje s uvedeným rostlinným materiálem z míst produkce uvedených v odrážkách výše,
Variety testing may be undertaken to verify the identity of the contaminated and clonally related tubers or plants, place(s) of production of the listed plant material referred to in the previous indent,
veškeré strojní zařízení, dopravní prostředky, přepravní kontejnery, skladovací prostory nebo jejich části a všechny ostatní předměty, včetně obalového materiálu, které mohly přijít do styku s uvedeným materiálem označeným za zamořený podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bod ii),
place(s) of production of the listed plant material using water for irrigation or spraying which has been designated as contaminated under Article 5(1)(c)(ii), listed plant material produced on fields flooded with surface water confirmed to be contaminated.
veškerý uvedený rostlinný materiál, který byl skladován v zařízeních nebo přišel do styku s předměty uvedenými v předchozí odrážce před jejich očistou nebo dezinfekcí,
The elements to be considered in the determination of the possible spread under Article 5(1)(a)(iv) and 5(1)(c)(iii) shall include: (i) in cases under Article 5(1)(a)(iv), the proximity of other places of production growing the listed plant material, the common production and use of seed potato stocks,
jako výsledek šetření a testování podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bodu i), v případě brambor ty hlízy nebo rostliny se sesterským nebo rodičovským klonovým vztahem k uvedenému rostlinnému materiálu, resp. v případě rajčat ty rostliny, které vyrostly ze stejného osiva jako uvedený rostlinný materiál, který byl podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bodu ii) prohlášen za zamořený, a u nichž, třebaže byly vyšetřeny na organismus s negativním výsledkem, se zamoření na základě klonové vazby jeví pravděpodobným. Může být provedena obměna testování pro ověření shodnosti zamořených a klonálně příbuzných hlíz nebo rostlin, místo (místa) produkce rostlinného materiálu uvedeného v předchozí odrážce,
places of production using surface water for irrigation or spraying of listed plant material in cases where there is or has been risk of surface water run-off from, or flooding of, place(s) of production designated to be contaminated under Article 5(1)(a)(ii).
místo (místa) produkce uvedeného rostlinného materiálu, kde se používá k zavlažování nebo postřiku voda, která byla označena jako zamořená podle čl. 5 odst. 1 písm. c) bod ii),
in cases where surface water has been designated as contaminated under Article 5(1)(c)(ii):
uvedený rostlinný materiál vypěstovaný na polích zaplavených povrchovou vodou, u které se potvrdilo zamoření.
place(s) of production producing listed plant material adjacent to, or at risk from flooding by, the surface water designated as contaminated,
Prvky, jež mají být zohledněny při určování možného rozšíření podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bodu iv) a čl. 5 odst. 1 písm. c) bodu iii), zahrnují:
any discrete irrigation basin associated with the surface water designated as contaminated,
v případech podle čl. 5 odst. 1 písm. a) bodu iv)
water bodies connected with the surface water designated as contaminated, taking into account:
blízkost k jiným místům produkce, na nichž se pěstuje uvedený rostlinný materiál,
the direction and rate of flow of the water designated as contaminated,
společnou produkci a použití partií sadbových brambor,
the presence of wild solanaceous host plants.