natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Целта на изпитването е да се определят количествено свързаните с химикала въздействия върху вегетативния растеж през този период, на базата на оценки на избрани измервани променливи.
Frond number is the primary measurement variable.
Броят на листовидните тела е главната измервана променлива.
At least one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) is also measured, since some chemicals may affect other measurement variables much more than frond numbers.
Най-малко още една измервана променлива (обща площ на листовидните тела, сухо тегло или свежо тегло) също се измерва, тъй като някои химикали могат да окажат много по-голямо въздействие върху други измервани променливи, отколкото върху броя на листовидните тела.
To quantify chemical-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ECx (e.g. EC50)
За количествено определяне на свързани с химикалите въздействия, растежът в изпитваните разтвори се сравнява с този на контролните проби и концентрацията, при която се осъществява потискане на растежа до определените x % (например 50 %) се определя и се изразява като ECx (например EC50).
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as logarithmic increase in measurement variable (average specific growth rate) during the exposure period.
Крайната точка на изпитването е потискането на растежа, изразено като логаритмично нарастване на измерваната променлива (средна специфична скорост на растеж) през периода на експозицията.
An additional response variable used in this Test Method is yield, which may be needed to fulfil specific regulatory requirements in some countries.
Допълнителна зависима променлива, използвана в настоящия метод на изпитване, е добивът, който може да е необходим, за да бъдат изпълнени специфични регулаторни изисквания в някои държави.
It is defined as measurement variables at the end of the exposure period minus the measurement variables at the start of the exposure period.
Той се определя като измерваните променливи в края на периода на експозиция минус измерваните променливи в началото на периода на експозиция.
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the chemical in the test medium, should be available.
Следва да е възможно използването на аналитичен метод с достатъчна чувствителност за количествено определяне на химикала в средата на изпитване.
Information on the test chemical which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity, water solubility, stability in water and light, pKa, Kow, vapour pressure and biodegradability.
Информацията относно изпитвания химикал, която може да бъде полезна при установяване на условията на изпитване, включва структурната формула, чистотата, водоразтворимостта, стабилността във вода и на светлина, pKa, Kow, парното налягане и биоразградимостта.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry's Law constant, which will indicate if significant losses of the test chemical during the test period are likely.
Разтворимостта във вода и парното налягане може да се използват за изчисляване на константата по закона на Хенри, която ще покаже дали се очакват значителни загуби на изпитвания химикал през периода на изпитването.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
Това ще помогне да се разбере дали следва да се предприемат определени стъпки за контролиране на тези загуби.
Where information on the solubility and stability of the test chemical is uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Когато информацията за разтворимостта и стабилността на изпитвания химикал е несигурна, се препоръчва те да бъдат оценени в условията на изпитване, т.е., среда на растеж, температура, режим на осветеност, които ще бъдат използвани при изпитването.
When pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or chemicals which are hydrolytically unstable, the addition of a buffer to the growth medium is recommended (see paragraph 21).
Когато контролът върху pH на средата на изпитването е особено важен, например при изпитване на метали или химикали, които са неустойчиви на хидролиза, се препоръчва добавянето на буфер към средата на растеж (вж. точка 21).
Further guidance for testing chemicals with physical-chemical properties that make them difficult to test is provided in (8).
Допълнителни насоки за изпитване на химикали, чиито физични и химични свойства затрудняват тяхното изпитване, са дадени в (8).
For the test to be valid, the doubling time of frond number in the control must be less than 2,5 days (60 h), corresponding to approximately a seven-fold increase in seven days and an average specific growth rate of 0,275 d– 1.
За да е валидно изпитването, времето за удвояване на броя листовидни тела в контролната проба трябва да бъде по-малко от 2,5 дни (60 часа), съответстващо на седемкратно увеличение за седем дни и средна специфична скорост на растеж от 0,275 d– 1.
Using the media and test conditions described in this Test Method, this criterion can be attained using a static test regime (5).
Използването на средата и на условията на изпитване, описани в настоящия метод за изпитване, позволяват постигането на този критерий с помощта на статичен режим на изпитване (5).
It is also anticipated that this criterion will be achievable under semi-static and flow-through test conditions.
Очаква се също, че този критерий е достижим и в условия на полустатично и проточно изпитване.
Calculation of the doubling time is shown in paragraph 49.
Изчисляването на времето за удвояване е показано в точка 49.
Reference chemical(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (7), may be tested as a means of checking the test procedure.
Референтният химикал (референтните химикали), като например 3,5-дихлорофенол, използван в международното кръгово изпитване (7), може да бъде изпитван като средство за проверка на процедурата за изпитване.
It is advisable to test a reference chemical at least twice a year or, where testing is carried out at a lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test chemical.
Желателно е референтният химикал да се изпитва най-малко два пъти годишно или, когато изпитването се извършва по-рядко, да се извършва едновременно с определянето на токсичността на изпитвания химикал.
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
Цялото оборудване в контакт със средата на изпитване следва да е направено от стъкло или друг химически инертен материал.
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
Стъклените съдове, използвани за отглеждане на култури и за изпитване, трябва да бъдат почистени от химични замърсители, които биха могли да проникнат в средата на изпитване, както и да бъдат стерилни.
The test vessels should be wide enough for the fronds of different colonies in the control vessels to grow without overlapping at the end of the test.
Съдовете за изпитването трябва да са достатъчно широки, така че листовидното тяло от различни колонии в контролните съдове да расте без припокриване в края на изпитването.
It does not matter if the roots touch the bottoms of the test vessels, but a minimum depth of 20 mm and minimum volume of 100 ml in each test vessel is advised.
Няма значение дали корените докосват дъното на съдовете за изпитване, но се препоръчва минимална дълбочина от 20 mm и минимален обем от 100 ml за всеки съд за изпитване.
The choice of test vessels is not critical as long as these requirements are met.
Изборът на съдовете за изпитването не е от решаващо значение, при условие че тези изисквания са изпълнени.
Glass beakers, crystallising dishes or glass petri dishes of appropriate dimensions have all proved suitable.
Доказано е, че подходящи за целта са стъклени бехерови чаши, блюда кристализатори или стъкла на Петри с нужните размери.
Test vessels must be covered to minimise evaporation and accidental contamination, while allowing necessary air exchange.
Съдовете за изпитването трябва да бъдат покрити с оглед минимизиране на изпарението и на случайното замърсяване, като същевременно се даде възможност за циркулиране на въздуха.
Suitable test vessels, and particularly covers, must avoid shadowing or changes in the spectral characteristics of light.
Подходящите съдове за провеждане на изпитването и особено капаците трябва да предотвратяват засенчването или промените в спектралните характеристики на светлината.
The cultures and test vessels should not be kept together.
Културите и съдовете за изпитването не трябва да се съхраняват заедно.
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
Това се постига най-добре с използването на осигуряващи необходимите за растежа параметри на околната среда отделни климатични камери, инкубатори или помещения.
Illumination and temperature must be controllable and maintained at a constant level (see paragraphs 35-36).
Необходимо е осветлението и температурата да могат да се контролират и да се поддържат на постоянно ниво (вж. точки 35—36).
Test organism
Изпитван организъм
The organism used for this test is either Lemna gibba or Lemna minor.
Организмът, използван за настоящото изпитване, е Lemna gibba или Lemna minor.
Short descriptions of duckweed species that have been used for toxicity testing are given in Appendix 2.
Кратки описания на видовете водна леща, използвани за изпитване за токсичност, са дадени в допълнение 2.
Plant material may be obtained from a culture collection, another laboratory or from the field.
Растителният материал може да бъде получен от колекция от култури, от друга лаборатория или на място.
If collected from the field, plants should be maintained in culture in the same medium as used for testing for a minimum of eight weeks prior to use.
Ако са събрани на място, растенията следва да се съхраняват в култура в същата среда, която се използва за изпитването, в течение на минимум осем седмици преди да се използват.
Field sites used for collecting starting cultures must be free of obvious sources of contamination.
Полевите обекти за събиране на място на началните култури трябва да са без явни източници на замърсяване.
If obtained from another laboratory or a culture collection they should be similarly maintained for a minimum of three weeks.
Ако са получени от друга лаборатория или от колекция от култури, те следва да се съхраняват по същия начин в течение на минимум три седмици.
The source of plant material and the species and clone (if known) used for testing should always be reported.
За източника на растителен материал, вида и клона (ако е известен), използвани в изпитването, трябва винаги да се протоколира.
Monocultures, that are visibly free from contamination by other organisms such as algae and protozoa, should be used.
Трябва да бъдат използвани монокултури, които нямат видимо замърсяване с други организми като водорасли и протозоа.
Healthy plants of L. minor will consist of colonies comprising between two and five fronds whilst healthy colonies of L. gibba may contain up to seven fronds.
Здравите растения от L. minor трябва да се състоят от колонии, включващи между две и пет листовидни тела, докато здравите колонии от L. gibba могат да съдържат до седем листовидни тела.
The quality and uniformity of the plants used for the test will have a significant influence on the outcome of the test and should therefore be selected with care.
Качеството и еднородността на използваните за изпитването растения оказват значително влияние върху резултата от изпитването и поради това растенията трябва да бъдат грижливо подбрани.
Young, rapidly growing plants without visible lesions or discoloration (chlorosis) should be used.
Трябва да се използват млади, бързорастящи растения без видими повреди или обезцветяване (хлороза).
Good quality cultures are indicated by a high incidence of colonies comprising at least two fronds.
Признак за култури с добро качество е големият брой колонии, съставени от поне две листовидни тела.
A large number of single fronds are indicative of environmental stress, e.g. nutrient limitation, and plant material from such cultures should not be used for testing.
Голям брой отделни листовидни тела е показателен за екологичен стрес, например ограничаване на хранителните вещества, и растителен материал от такива култури не трябва да се използва за изпитване.
Cultivation
Култивиране
To reduce the frequency of culture maintenance (e.g. when no Lemna tests are planned for a period), cultures can be held under reduced illumination and temperature (4 — 10 °C).
За намаляване на честотата за поддръжка на културата (например когато не са планирани изпитвания с Lemna за известен период), културите могат да се съхраняват при намалено осветление и температура (4—10 °C).
Details of culturing are given in Appenxix 3.
Подробности за култивирането са дадени в допълнение 3.
Obvious signs of contamination by algae or other organisms may require surface sterilisation of a sub-sample of Lemna fronds, followed by transfer to fresh medium (see Appendix 3).
Очевидни признаци за замърсяване с водорасли или други организми могат да изискват стерилизация на повърхността на подпроба от листообразните тела на Lemna, последвана от прехвърляне в прясна среда (вж. допълнение 3).
In this eventuality the remaining contaminated culture should be discarded.
В такъв случай останалата замърсена култура трябва да се изхвърли.
At least seven days before testing, sufficient colonies are transferred aseptically into fresh sterile medium and cultured for 7 - 10 days under the conditions of the test.
Най-малко седем дни преди изпитването достатъчно колонии се прехвърлят по стерилен начин в прясна стерилна среда и се култивират в течение на 7—10 дни при условията на изпитването.
Test medium
Среда за изпитване
Different media are recommended for Lemna minor and Lemna gibba, as described below.
Препоръчват се различни среди за Lemna minor и за Lemna gibba, както е описано по-долу.
Careful consideration should be given to the inclusion of a pH buffer in the test medium (MOPS (4-morpholinepropane sulphonic acid, CAS No: 1132-61-2) in L. minor medium and NaHCO3 in L. gibba medium) when it is suspected that it might react with the test chemical and influence the expression of its toxicity.
Трябва внимателно да се прецени включването на pH буфер в средата на изпитване (MOPS — 4-морфолинпропансулфонова киселина, CAS №: 1132-61-2) в средата за L. minor и NaHCO3 в средата за L. gibba), когато има предположения, че буферът може да реагира с изпитвания химикал и да повлияе на изразяването на неговата токсичност.
Steinberg Medium (9) is also acceptable as long as the validity criteria are met.
Средата на Steinberg (9) също е приемлива, при условие че критериите за валидност са изпълнени.
A modification of the Swedish standard (SIS) Lemna growth medium is recommended for culturing and testing with L. minor.
За култивиране и изпитване с L. minor се препоръчва модификация на средата на растеж за Lemna по шведския стандарт (SIS).
The composition of this medium is given in Appendix 4.
Съставът на тази среда е даден в допълнение 4.
The growth medium, 20X — AAP, as described in Appendix 4, is recommended for culturing and testing with L. gibba.
Средата на растеж, 20X — AAP, както е описана в допълнение 4, се препоръчва за култивиране и изпитване с L. gibba.
Steinberg medium, as described in Appendix 4, is also suitable for L. minor, but may also be used for L. gibba as long as the validity criteria are met.
Средата на Steinberg, както е описана в допълнение 4, също е подходяща за L. minor, но би могла да се използва и за L. gibba, при условие че са изпълнени критериите за валидност.
Test solutions
Разтвори за изпитване
Test solutions are usually prepared by dilution of a stock solution.
Разтворите за изпитване обикновено се приготвят чрез разреждане на изходен разтвор.
Stock solutions of the test chemical are normally prepared by dissolving the chemical in growth medium.
Изходните разтвори на изпитвания химикал обикновено се приготвят чрез разтваряне на химикала в среда на растеж.
The highest tested concentration of the test chemical should not normally exceed the water solubility of the chemical under the test conditions.
Най-високата изпитвана концентрация на изпитвания химикал обикновено не трябва да надвишава разтворимостта във вода на химикала при условията за провеждане на изпитването.
It should be noted however that Lemna spp. float on the surface and may be exposed to chemicals that collects at the water-air interface (e.g. poorly water-soluble or hydrophobic chemicals or surface-active chemicals).
Следва да се отбележи обаче, че Lemna spp. плава на повърхността и може да бъде изложен на въздействието на химикали, които се събират на границата между водата и въздуха (например, слабо разтворими във вода или хидрофобни химикали или повърхностноактивни химикали).
Under such circumstances exposure will result from material other than in solution and test concentrations may, depending on the characteristics of the test chemical, exceed water solubility.
При такива обстоятелства експозицията ще произтича от материал, различен от този в разтвора, и изпитваните концентрации могат, в зависимост от характеристиките на изпитвания химикал, да надвишат разтворимостта във вода.
For test chemicals of low water solubility it may be necessary to prepare a concentrated stock solution or dispersion of the chemical using an organic solvent or dispersant in order to facilitate the addition of accurate quantities of the test chemical to the test medium and aid in its dispersion and dissolution.
За изпитвани химикали с малка водоразтворимост може да е необходимо да се приготви концентриран изходен разтвор или химикалът да се диспергира, като се използва органичен разтворител или диспергиращо средство, за да се улесни добавянето на точни количества от изпитвания химикал към средата на изпитване и да се подпомогне неговото диспергиране и разтваряне.
Every effort should be made to avoid the use of such materials.
Трябва да се положат всички усилия, за да се избегне използването на такива материали.
There should be no phytotoxicity resulting from the use of auxiliary solvents or dispersants.
Не трябва да има фитотоксичност в резултат на използването на спомагателни разтворители и диспергиращи средства.
For example, commonly used solvents which do not cause phytotoxicity at concentrations up to 100 μl/l include acetone and dimethylformamide.
Например обичайно използваните разтворители, които не предизвикват фитотоксичност при концентрации до 100 μl/l, включват ацетон и диметилформамид.
If a solvent or dispersant is used, its final concentration should be reported and kept to a minimum (≤ 100 μl/l), and all treatments and controls should contain the same concentration of solvent or dispersant.
Ако се използва разтворител или диспергиращо средство, трябва да бъде отчетена неговата крайна концентрация и тя да се поддържа на минимално ниво (≤ 100 μl/l), а всички третирани и контролни проби трябва да съдържат еднаква концентрация на разтворителя или диспергиращото средство.
Further guidance on the use of dispersants is given in (8).
Допълнителни насоки относно използването на диспергиращи средства са дадени в (8).
Test and control groups
Изпитвани и контролни групи
Prior knowledge of the toxicity of the test chemical to Lemna, e.g. from a range-finding test, will help in selecting suitable test concentrations.
Предварителното познаване на токсичността на изпитвания химикал по отношение на Lemna, например от изпитване за определяне на обхват, ще помогне при избирането на подходящи изпитвани концентрации.
In the definitive toxicity test, there should normally be at least five test concentrations arranged in a geometric series.
В окончателното изпитване за токсичност обикновено би следвало да има най-малко пет изпитвани концентрации, подредени в геометрична прогресия.
Preferably the separation factor between test concentrations should not exceed 3.2, but a larger value may be used where the concentration-response curve is flat.
За предпочитане е кратността на разделяне между изпитваните концентрации да не надхвърля 3,2, но могат да се използват и по-големи стойности, при които кривата концентрация-отклик е полегата.
Justification should be provided if fewer than five concentrations are used.
Трябва да се представи обосновка, ако са използвани по-малко от пет концентрации.
At least three replicates should be used at each test concentration.
При всяка от изпитваните концентрации трябва да се използват най-малко три повторения.
In setting the range of test concentrations (for range-finding and/or for the definitive toxicity test), the following should be considered:
При задаването на диапазона на изпитваните концентрации (за изпитване за определяне на обхват и/или за окончателно изпитване за токсичност), трябва да се има предвид следното:
To determine an ECx, test concentrations should bracket the ECx value to ensure an appropriate level of confidence.
за определяне на ECx изпитваните концентрации трябва да обхващат стойността на ECx, за да се гарантира подходяща доверителна вероятност.
For example, if estimating the EC50, the highest test concentration should be greater than the EC50 value.
Например, ако се оценява EC50, най-голямата изпитвана концентрация трябва да е по-голяма от стойността на EC50.
If the EC50 value lies outside of the range of test concentrations, associated confidence intervals will be large and a proper assessment of the statistical fit of the model may not be possible.
Ако стойността на EC50 попада извън диапазона на изпитваните концентрации, свързаните с нея доверителни интервали ще бъдат големи и правилната оценка за статистическата съгласуваност на модела може да не е възможна.
If the aim is to estimate the LOEC/NOEC, the lowest test concentration should be low enough so that growth is not significantly less than that of the control.
Ако целта е да се оцени LOEC/NOEC, най-ниската изпитвана концентрация трябва да е достатъчно ниска, така че растежът да не бъде значително по-малък от този на контролната проба.
In addition, the highest test concentration should be high enough so that growth is significantly lower than that in the control.
В допълнение, най-високата изпитвана концентрация трябва да е достатъчно висока, така че растежът да бъде значително по-нисък от този в контролната проба.
If this is not the case, the test will have to be repeated using a different concentration range (unless the highest concentration is at the limit of solubility or the maximum required limit concentration, e.g. 100 mg/l).
Ако това не е така, изпитването ще трябва да се повтори с използване на различен диапазон за концентрациите (освен ако най-високата концентрация е на границата на разтворимостта или максимално изискваната пределна концентрация, например 100 mg/1).
Every test should include controls consisting of the same nutrient medium, number of fronds and colonies, environmental conditions and procedures as the test vessels but without the test chemical.
Всяко изпитване трябва да включва контролни проби, състоящи се от същата хранителна среда, същия брой листовидни тела и колонии, същите условия на околната среда и процедури както при съдовете за изпитване, но без изпитвания химикал.
If an auxiliary solvent or dispersant is used, an additional control treatment with the solvent/dispersant present at the same concentration as that in the vessels with the test chemical should be included.
Ако се използва спомагателен разтвор или диспергиращо средство, трябва да бъде включена допълнително контролна третирана проба, като разтворителят/диспергиращото средство трябва да присъстват в същата концентрация като тази в съдовете с изпитвания химикал.
The number of replicate control vessels (and solvent vessels, if applicable) should be at least equal to, and ideally twice, the number of vessels used for each test concentration.