natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Вода с температура приблизително 41 °C се изсипва във външната торба, за да се допълни общ обем на двете торби от един литър и половина.
The digestion fluid is then stirred until the ice has melted.
Пластмасовата торба се измива с приблизително 100 ml вода (от 25 до 30 °C), която след това се използва за изплакване на ситото и последно се прибавя към филтрата в стъкленицата.
In the case of smaller pools (see Section II(b)), the amount of ice must be reduced correspondingly.
Възстановяване на ларвите чрез седиментация
The chilled digestion fluid is transferred to a 2 litre separation funnel, equipped with a vibrator in an extra clamp.
Към течността за смилане се прибавя лед (от 300 до 400 g ледени парченца, или натрошен лед), за да допълни нейния обем до около 2 литра.
Sedimentation is allowed to proceed for 30 minutes, during which time the sedimentation funnel is vibrated intermittently, i.e. one minute vibration followed by a one-minute pause.
Изкуственият стомашен сок след това се бърка, докато ледът се разтопи.
After 30 minutes, a 60 ml sample of the sediment is quickly run off into a 100 ml measuring cylinder (the funnel is rinsed with detergent solution after use).
В случай на по-малки групи (вж. раздел II, буква б), количеството лед трябва да бъде съответно редуцирано.
The 60 ml sample is allowed to stand for at least 10 minutes, after which time the supernatant is withdrawn by suction to leave a volume of 15 ml, to be examined for presence of larvae.
Охладеният изкуствен стомашен сок се прехвърля в 2-литрова фуния за сепариране, съоръжена с вибратор.
For suction, a disposable syringe, equipped with a plastic tube, can be used.
Процесът на утаяване протича за 30 минути, по време на които фунията за утаяване вибрира с прекъсване, т.е. една минута вибрация последвана от едноминутна пауза.
The length of the tube must be such that 15 ml remains in the measuring cylinder when the flanges of the syringe rest on the cylinder's rim.
След 30 минути 60 ml проба от утайката се пресипват в 100 ml мерителен цилиндър (фунията се изплаква с разтвор от миещ препарат след употреба).
The remaining 15 ml is poured into a larval counting basin or two petri dishes and examined using a trichinoscope or stereo-microscope.
Оставя се 60 ml проба да престои най-малко 10 минути, след което повърхностният слой се изтегля чрез засмукване, докато остане обем от 15 ml, който да бъде изследван за наличие на ларви.
The measuring cylinder is washed with 5 to 10 ml of tap water and the washings are added to the sample.
За засмукване може да бъде използвана спринцовка за еднократна употреба, оборудвана с пластмасова тръба.
Under no circumstances is examination to be postponed until the following day.
Дължината на тръбата трябва да бъде такава, че 15 ml от нея остават в мерителния цилиндър, когато фланците на спринцовката опрат на ръба на цилиндъра.
Where the digests are unclear or they are not examined within 30 minutes of their preparation, they must be clarified as follows:
Оставащите 15 ml се изливат във ваничка за броене на ларви или две петриеви панички и се изследват, като се използва трихинелоскоп или стереомикроскоп.
the final sample of 60 ml is poured into a measuring cylinder and allowed to stand for 10 minutes;
Мерителният цилиндър се измива с 5 до 10 ml чешмяна вода и смивките се добавят към пробата.
45 ml of supernatant fluid is then removed by suction and the remaining 15 ml is made up to 45 ml with tap water,
При никакви обстоятелства изследването не бива да се отлага до следващия ден.
after a further settling period of 10 minutes, 30 ml of supernatant fluid is removed by suction and the remaining 15 ml is poured into a petri dish or larval counting basin for examination,
Когато смлените проби дават неясен резултат или не са изследвани в рамките на 30 минути от тяхното приготвяне, те трябва да бъдат пречистени, както следва:
the measuring cylinder is washed with 10 ml of tap water and these washings are added to the sample in the petri dish or the larval counting basin for examination.
крайната проба от 60 ml се изсипва в мерителен цилиндър и се оставя да престои 10 минути;
Where the result is positive or uncertain, the provisions laid down in Chapter I(3)(III) shall apply.
45 ml от повърхностния слой се отстраняват чрез засмукване и останалите 15 ml се допълват с чешмяна вода до 45 ml;
B. Mechanically assisted pooled sample digestion method/'on filter isolation' technique
след последващ период на престой от 10 минути, 30 ml от повърхностния слой се отстраняват чрез засмукване и останалите 15 ml се изсипват в петриева паничка или във ваничка за броене на ларви за изследване.
As stipulated in Section A(1).
мерителният цилиндър се измива с 10 ml чешмяна вода и смивките се добавят към пробата в петриевата паничка или ваничката за изследване на ларви.
Additional equipment:
Когато резултатът от изследването е положителен или неясен, се прилагат разпоредбите, определени в глава I, точка 3, подточка III.
1 litre Gelman funnel, complete with filter holder (diameter 45 mm);
Б.
filter discs, consisting of a circular stainless steel mesh with an aperture of 35 microns (disc diameter: 45 mm), two rubber rings 1 mm thick (external diameter: 45 mm; internal diameter: 38 mm), the circular mesh being placed between the two rubber rings and bonded to them using a two-component glue suitable for the two materials;
Метод на изследване чрез механично смилане на обща проба/филтърна техника на изолиране
an Erlenmeyer flask, capacity 3 litres, fitted with a side tube for suction;
Както е предвидено в раздел A, точка 1.
a filter pump;
Допълнително оборудване:
plastic bags, capacity at least 80 ml;
итрова гелманова фуния, оборудвана с държач на филтъра (диаметър 45 mm);
equipment for sealing the plastic bags;
филтрови дискове, състоящи се от кръгла мрежа от неръждаема стомана с отвори от 35 микрона (диаметър на диска: 45 mm), два гумени обръча с дебелина 1 mm (с външен диаметър 45 mm, вътрешен диаметър 38 mm), кръглата мрежа се поставя между двата гумени пръстена и се залепва към тях, като се използва двукомпонентно лепило, подходящо за двата материала;
rennilase, strength 1:150000 Soxhlet units per gram.
ерленмайерова колба с капацитет от 3 литра, снабдена със странична тръба за засмукване;
Collecting of specimens
филтърна помпа;
Complete pools (100 samples at a time)
пластмасови торби с капацитет най-малко 80 ml;
See Section A(3)(II)(a).
оборудване за запечатване на пластмасовите торби;
Smaller pools (less than 100 samples)
ренилаза с активност 1:150000 единици на грам.
See Section A(3)(II)(b).
Събиране на проби за изследвания
Recovery of larvae by filtration
Пълни групи (100 проби наведнъж)
In the case of smaller pools, the amount of ice must be reduced correspondingly.
Вж. раздел A, точка 3, подточка II, буква а).
The digestion fluid is stirred until the ice has melted.
По-малки групи (по-малко от 100 проби)
The chilled digestion fluid is then left for at least three minutes to let the larvae coil.
Вж. раздел A, точка 3, подточка II, буква б).
The Gelman funnel, fitted with a filter holder and filter disc, is mounted on an Erlenmeyer flask connected to a filter pump.
Изолиране на ларви чрез филтрация
The digestion fluid is poured into the Gelman funnel and filtered.
В случай на по-малки групи количеството лед трябва да бъде съответно редуцирано.
Towards the end of filtration, the digestion fluid can be helped to pass through the filter by applying suction with the filter pump.
Храносмилателната течност се бърка, докато ледът се разтопи.
Suction must cease before the filter becomes dry, i.e. when 2 to 5 ml of fluid is left in the funnel.
Охладената храносмилателна течност се оставя да престои най-малко три минути, за да може навитата ларва да се освободи.
Once all the digestion fluid has been filtered, the filter disc is removed and placed in an 80 ml capacity plastic bag, together with 15 to 20 ml of rennilase solution.
Гелмановата фуния, оборудвана с държач на филтъра и филтърен диск, се монтира на една ерленмайерова колба, свързана с филтърна помпа.
The rennilase solution is made by adding 2 g of rennilase to 100 ml of tap water.
Смилателната течност се изсипва в гелманова фуния и се филтрира.
The plastic bag is sealed twice and placed between the inner and outer bags in the Stomacher.
Към края на филтрацията на смилателната течност се помага да премине през филтъра чрез засмукване с филтърна помпа.
The Stomacher is allowed to pound for three minutes, e.g. while it is working on a complete or incomplete pool.
Засмукването трябва да се преустанови преди филтърът да изсъхне, т.е. когато от 2 до 5 ml от течността са останали във фунията.
After three minutes, the plastic bag, complete with filter disc and rennilase solution, is removed from the Stomacher and opened with scissors.
След като веднъж цялата храносмилателна течност е била филтрирана, филтърният диск се отстранява и се поставя в една пластмасова торба с капацитет 80 ml, заедно с 15 до 20 ml разтвор на ренилаза.
The liquid contents are poured into a larval counting basin or petri dish.
Разтворът от ренилаза се приготвя чрез прибавяне на 2 g ренилаза към 100 ml чешмяна вода.
The bag is washed out with 5 to 10 ml of water, which is then added to the larval counting basin for examination by trichinoscope or to the petri dish for examination by stereo-microscope.
Пластмасовата торба се запечатва двойно и се поставя между вътрешната и външната торба в хомогенизатора.
Digests must be examined as soon as they are ready.
Хомогенизаторът се оставя да работи в продължение на три минути, т.е. докато работи пълна или непълна група проби.
Note:
След три минути пластмасовата торба, снабдена с филтърен диск и разтвор на ренилаза, се отстранява от хомогенизатора и се отваря с ножица.
Filter discs must never be used when not completely clean.
Течното съдържание се изсипва във ваничката за броене на ларви или в петриевата паничка.
Unclean discs must never be allowed to dry out.
Торбата се измива с 5 — 10 ml вода, която след това се прибавя към ваничката за броене на ларви за изследване чрез трихинелоскоп или в петриевата паничка за изследване чрез стереомикроскоп.
Filter discs can be cleaned by leaving them in rennilase solution overnight.
Смлените проби трябва да бъдат изследвани веднага след приготвянето им.
Before use, they must be washed in fresh rennilase solution using the Stomacher.
Забележка:
C. Automatic digestion method for pooled samples of up to 35 g
филтриращите дискове не трябва никога да бъдат използвани, ако не са напълно чисти.
A Trichomatic 35® blender with filtration insert.
Нечисти дискове не бива да се оставят да изсъхват.
Hydrochloric acid 8,5 ± 0,5 % weight.
Филтриращите дискове могат да бъдат почиствани чрез оставянето им в разтвор на ренилаза за една нощ.
Transparent polycarbonate membrane filters with a diameter of 50 mm and a pore size of 14 microns.
Преди употреба те се измиват в пресен разтвор от ренилаза, като се използва хомогенизаторът.
Pepsin, strength 1:10000 NF (US National Formulary) corresponding to 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), or stabilised liquid pepsin with minimum 660 European Pharmacopoeia units/ml.
В.
Tweezers with a flat tip.
Изследване чрез автоматично смилане на сборни проби до 35 g
A number of microscope slides with a side-length of at least 5 cm or a number of petri dishes at least 6 cm in diameter, marked on their undersides into 10 × 10 mm square areas using a pointed instrument.
Миксер Трихоматик 35® с филтърна втулка.
A (stereo-)microscope with transmitted light (magnification 15 to 60 times) or a trichinoscope with a horizontal table.
Солна киселина с тегло 8,5 ± 0,5 %.
A bin for collection of waste liquids.
Прозрачни поликарбонатни мембранни филтри с диаметър 50 mm и размер на отворите 14 микрона.
I. Digestion procedure
Пепсин с активност 1:10000 NF (US national formulary), съответстваща на 1:12500 BP (British Pharmacopoeia) и на 2000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), или стабилизиран течен пепсин с минимум 660 единици на Европейската фармакопея/ml.
Place the blender with the filtration insert, connect the waste tube and place the tube so it drains into the waste bin.
Пинсети с плосък край.
When the blender is switched on, heating will start.
Определен брой микроскопски предметни стъкла със странична дължина от най-малко 5 cm или петриеви панички с размер най-малко 6 cm в диаметър, разграфени с остър инструмент от вътрешната страна на квадрати с размер 10 × 10 mm.
Before this is done, the bottom valve located below the reaction chamber must be opened and closed.
Един (стерео)микроскоп с предавана светлина (увеличение от 15 до 60 пъти) или един трихинелоскоп с хоризонтална масичка.
Up to 35 samples weighing approximately 1 g each (at 25 to 30 °C) taken from each individual sample in accordance with point 2 are then added.
Съд за събиране на отпадъчни течности.
Ensure that larger pieces of tendons are removed as they may clot the membrane filter.
I. Процедура на смилане
Pour water up to the edge of a liquid chamber connected to the blender (approximately 400 ml).
Поставя се миксерът с филтърната втулка, свързва се с тръбата за отпадъци и тръбата се поставя така, че да се отцежда в кофата за отпадъци.
Pour about 30 ml hydrochloric acid (8,5 %) to the edge of the smaller, connected liquid chamber.
Когато миксерът бъде включен, загряването ще започне.
Place a membrane filter under the coarse filter in the filter holder in the filter insert.
Преди да се направи това, дънната клапа, разположена под камерата за реакция, трябва да бъде отворена и след това затворена.
Lastly, add 7 g of pepsin or 21 ml liquid pepsin.
Прибавят се до 35 проби, тежащи приблизително 1 g всяка (при 25 до 30 °C), взети от всяка една индивидуална проба в съответствие с точка 2.
Close the lids of the reaction and liquid chambers.
По-големите парчета сухожилия трябва да се отстранят, тъй като те могат да запушат мембранния филтър.
Select the period of digestion.
Сипва се вода до ръба на камерата за вода, свързана с миксера (приблизително 400 ml).
A short digestion period (5 minutes) must be set for pigs at the normal slaughter age and a longer time (8 minutes) for other samples.
Изсипва се около 30 ml солна киселина (8,5 %) до ръба на по-малката свързана камера за течност.
When the start button on the blender is turned on, the process of dispensing and digestion starts automatically, followed by filtration.
Поставя се мембранният филтър под грубия филтър в държача за филтър във филтърната втулка.
After 10 to 13 minutes the process is completed and stops automatically.
Накрая се добавят 7 g пепсин или 21 ml течен пепсин.
Open the lid of the reaction chamber after checking that the chamber is empty.
Затварят се капаците на камерите за реакция и течности.
If there is foam or any digestion liquid remaining in the chamber, repeat the procedure in accordance with Section V.
Избира се периодът за смилане.
Recovery of larvae
За прасетата на нормална кланична възраст трябва да се установи кратък период на смилане (5 минути), а за другите видове проби — по-дълго време (8 минути).
Remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish.
Когато стартовият бутон върху миксера е включен, процесът на смилане започва автоматично, следван от филтриране.
Examine the membrane filter using a (stereo-)microscope or a trichinoscope.
След 10 до 13 минути процесът завършва и миксерът спира автоматично.
Cleaning equipment
Отваря се капакът на камерата за реакция, след като проверите, че камерата е празна.
Where the result is positive, fill the blender reaction chamber with boiling water until it is two-thirds full.
Ако в камерата има пяна или изкуствен стомашен сок, процедурата се повтаря в съответствие с раздел V.
Ordinary tap water is poured into the connecting liquid chamber until it covers the lower sensor.
Възстановяване на ларвите
Automatic cleaning then takes place.
Отстранява се държачът на филтъра и мембранният филтър се премества върху предметно стъкло или петриева паничка.
Decontaminate the filter-holder and any other equipment, e.g. using formol.
Мембранният филтър се изследва, като се използва (стерео)микроскоп или трихинелоскоп.
After work is completed for the day, fill the blender liquid chamber with water and put it through a standard cycle.
Почистващо оборудване
Use of membrane filters
Когато резултатът от изследването е положителен, камерата за реакция на миксера се напълва с кипяща вода до две трети от обема ѝ.
Each polycarbonate membrane filter may be used no more than five times.
В свързващата камера за течност се изсипва обикновена чешмяна вода, докато тя покрие по-ниския сензор.
The filter is to be turned between each use.
Извършва се автоматично почистване.
In addition, the filter must be checked after each use for any damage which would make it unsuitable for further use.
Обеззаразява се държачът на филтъра и останалото използвано оборудване, например като се използва формол.
V. Method to be applied when digestion is incomplete and filtration cannot be carried out
След като работата за деня е завършена, камерата за течност на миксера се напълва с вода и се прекарва през един стандартен цикъл.
Once the blender has been put through an automatic cycle in accordance with Section I, open the lid of the reaction chamber and check whether there is foam or any liquid remaining in the chamber.
Използване на мембранни филтри
If this is the case, proceed as follows:
Всеки поликарбонатен мембранен филтър може да бъде използван не повече от пет пъти.
close the bottom valve below the reaction chamber;
Филтърът се обръща след всяко използване.
remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish;
В допълнение филтърът трябва да се проверява след всяка употреба за наличие на повреди, които биха го направили неподходящ за по-нататъшно използване.
put a new membrane filter in the filter holder and attach the filter holder;
V. Метод, приложим, когато смилането е непълно и филтрирането не може да се извърши
fill the blender liquid chamber with water until the lower sensor is covered;
След като веднъж миксерът е преминал през един автоматичен цикъл в съответствие с раздел I, се отваря капакът на камерата за реакция и се проверява дали там има пяна или някаква остатъчна течност.
carry out the automatic cleaning cycle;
Ако случаят е такъв, се процедира, както следва:
after the cleaning cycle has ended, open the lid of the reaction chamber and check whether any liquid remains;
затваря се дънната клапа под камерата за реакция;
if the chamber is empty, remove the filter holder and transfer the membrane filter to a slide or petri dish with tweezers;
отстранява се държачът на филтъра и се премества мембранният филтър на предметното стъкло или петриевата паничка;
examine the two membrane filters in accordance with Section II.
поставя се един нов мембранен филтър в държача на филтъра и се прикрепва държачът на филтъра;
If the filters cannot be examined, repeat the entire digestion process with a longer digestion time in accordance with Section I.
камерата за течност на миксера се напълва с вода, докато покрие долния сензор;
D. Magnetic stirrer method for pooled sample digestion/'on filter isolation' and larva detection by a latex agglutination test
изпълнява се автоматичният процес на почистване;
This method is only considered equivalent for the testing of meat of domestic swine.
след като цикълът за почистване е завършен, капакът на камерата за реакция се отваря и се проверява дали има остатъци от течност;
Steel filtration apparatus for 20 μm mesh filters with a steel funnel.
ако камерата е празна, държачът на филтъра се отстранява и мембранният филтър на предметно стъкло или петриева паничка се премества с пинсети;
Vacuum pump.
двата мембранни филтъра се изследват в съответствие с раздел II.
Metal or plastic tanks, capacity 10 to 15 litres, to collect the digestive juice.
Ако не могат да се изследват филтрите, целият процес на смилане се повтаря с по-продължително време на смилане в съответствие с раздел I.
A 3D gyratory rocker.
Г.
Pipettes of different sizes (1, 10 and 25 ml), micropipettes according to the latex agglutination manufacturer's instructions and pipette holders.
Метод на смилане на сборна проба с магнитна бъркалка/„филтърна техника на изолиране“ и откриване на ларви посредством тест за латекс-аглутинация.
20 microns nylon mesh filters of a diameter that fits with the filtration system.
Този метод се счита за еквивалентен единствено за изследването на месо от домашни свине.
Plastic or steel forceps of 10 to 15 cm.
Стоманена апаратура за филтриране за мрежа с отвори 20 μm със стоманена фуния.
Conical vials of 15 ml.
Вакуумна помпа.
A pestle with a Teflon or steel conical tip to fit in the conical vials.
Метални или пластмасови съдове с капацитет от 10 до 15 литра за събиране на храносмилателния сок.
Latex agglutination cards of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Уред за разклащане с триизмерно действие.
Buffer solution with preservative (sample diluent) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Пипети с различен размер (1, 10 и 25 ml), микропипети, съответстващи на инструкциите на производителя на латекс-аглутинацията, и държатели на пипети.
Buffer supplemented with preservative (negative control) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Филтри с найлонова мрежа с размер на отворите 20 микрона, чийто диаметър съответства на системата за филтриране.
Buffer supplemented with Trichinella spiralis antigens and preservative (positive control) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Пластмасови или стоманени пинсети с размер от 10 до 15 cm.
Buffer with polystyrene particles coated with antibodies supplemented with preservative (latex beads) of the Trichin-L antigen test kit validated under the code No EURLP_D_001/2011.
Конусовидни флакони с вместимост 15 ml.
(aa) Disposable sticks.
Чукало с тефлонов или стоманен конусовиден връх, който да пасва на конусовидните флакони.
I. For complete pools (100 g of samples at a time)
Карти за латекс-аглутинация от комплекта антигенни тестове Trichin-L с код на одобрение EURLP_D_001/2011.
16 ± 0,5 ml of 25 % hydrochloric acid (0,2 % final) is added to a 3 litre beaker containing 2,0 litres ± 200 ml of tap water, preheated to 46 to 48 °C;
Буферен разтвор с консервант (разредител на пробата) от комплекта антигенни тестове Trichin-L с код на одобрение EURLP_D_001/2011.
10 ± 1 g of powder pepsin (or 30 ± 3 ml of liquid pepsin) is added.
Буферен разтвор с консервант (отрицателна контрола) от комплекта антигенни тестове Trichin-L с код на одобрение EURLP_D_001/2011.
100-115 g of samples collected in accordance with point 2 are chopped in the blender, with 150 ± 15 ml of preheated digestion buffer.
Буферен разтвор с антигени Trichinella spiralis и консервант (положителна контрола) от комплекта антигенни тестове Trichin-L с код на одобрение EURLP_D_001/2011.
The 20 microns nylon mesh filter is placed on the filtration support.
Буферен разтвор с полистиролови частици с покритие от антитела и с консервант (латексни зърна) от комплекта антигенни тестове Trichin-L с код на одобрение EURLP_D_001/2011.
The conical filtration steel funnel is fixed to the support with the block system and the steel sieve of 180 microns mesh size is placed on the funnel.
аа) Пръчки за еднократна употреба.
The vacuum pump is connected with the filtration support and with the metal or plastic tank, to collect the digestive fluid.
I. За пълни групи (100 g проби наведнъж)
Stirring is stopped and the digestion fluid is poured into the filtration funnel through the sieve.
16 ± 0,5 ml 25-процентна солна киселина (0,2 % от окончателния обем) се добавя към 3-литрова стъклена колба съдържаща 2,0 литра ± 200 ml чешмяна вода, предварително загрята до 46 — 48 °C;
The beaker is rinsed with approximately 250 ml of warm water.
Добавят се 10 ± 1 g пепсин на прах (или 30 ± 3 ml течен пепсин).
The rinsing liquid is poured into the filtration ramp after the digested fluid has been successfully filtrated.
100 — 115 g проби, събрани в съответствие с точка 2, се смилат в смесителя заедно със 150 ± 15 ml предварително затоплен храносмилателен буферен разтвор.
The filtration membrane is taken with the forceps, holding it by an edge.