Resolución   598 / 2012
SERVICIO NAC. DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA
Fecha de publicación: 2012-12-12

MINISTERIO DE AGRICULTURA, GANADERIA Y PESCA  SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA  Resolución Nº 598/2012  Bs. As., 4/12/2012  VISTO el Expediente Nº S01:0080568/2011 del Registro del MINISTERIO DE AGRICULTURA, GANADERIA Y PESCA, y  CONSIDERANDO:  Que es imperiosa la necesidad de establecer reglamentación que permita la regulación de la elaboración, importación, exportación, tenencia, distribución y expendio de las vacunas virales inactivadas no vesiculares para bovinos de uso veterinario.  Que la vacunación es un instrumento básico en la prevención de las enfermedades virales de los bovinos.  Que la administración de vacunas puras, seguras y eficaces es imprescindible para el mantenimiento de la salud animal y el funcionamiento satisfactorio de los programas de producción bovina.  Que se debe actualizar la legislación, atendiendo los avances científicos y técnicos acumulados.  Que se debe dar a los productores pecuarios seguridad en cuanto a los productos biológicos a aplicar.  Que a fojas 319 y 312, respectivamente, la Dirección de Aprobación de Productos Alimenticios y Farmacológicos y la Dirección de Laboratorios informan que están en condiciones de cumplimentar las distintas etapas de control que se establecen.  Que a fojas 11/12 la Dirección de Laboratorio Animal de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnica expone que se han tenido en cuenta las sugerencias del Consejo Asesor de Virología del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA y de las empresas involucradas en la elaboración y comercialización de vacunas.  Que a fojas 11/12 la Dirección de Laboratorio Animal de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnica expone que para introducir las modificaciones normativas que se pretenden se han tenido en cuenta las recomendaciones efectuadas por la ORGANIZACION MUNDIAL DE SANIDAD ANIMAL (Oficina internacional de epizootias; OIE) en el Manual de las Pruebas de Diagnóstico y de las Vacunas para los Animales Terrestres (Capítulo 1.1.7).  Que el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA realizó un proceso de consulta pública.  Que la Dirección de Asuntos Jurídicos del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, ha emitido el correspondiente dictamen jurídico.  Que el suscripto es competente para dictar la presente resolución en función de la Ley Nº 13.636, el Decreto Reglamentario Nº 583 del 31 de enero de 1967, modificado por el Decreto Nº 3.899 del 2 de junio de 1972 y sus modificatorias; y de lo normado por los incisos f) y l) del Artículo 8° del Decreto Nº 1.585 del 19 de diciembre de 1996, sustituido por su similar Nº 825 del 10 de junio de 2010.  Por ello,  EL PRESIDENTE DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA  RESUELVE:  ARTICULO 1° — Objeto. La elaboración, importación, exportación, tenencia, distribución y expendio de las vacunas virales no vesiculares para bovinos será autorizada por el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA (SENASA), a través de la Dirección Nacional de Agroquímicos, Productos Veterinarios y Alimentos (DNAPV y A) y de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGL y CT), de conformidad con la Ley Nº 13.636, el Decreto Reglamentario Nº 583 del 31 de enero de 1967, modificado por el Decreto Nº 3.899 del 2 de junio de 1972 y sus modificatorias; y de lo normado por los incisos f) y l) del Artículo 8° del Decreto Nº 1.585 del 19 de diciembre de 1996, sustituido por su similar Nº 825 del 10 de junio de 2010 y con lo dispuesto en la presente resolución.  ARTICULO 2° — Antígenos virales. Se incluyen como vacunas virales no vesiculares para bovinos aquellos inmunógenos que contengan algunos de los siguientes antígenos virales:  Inciso a) Agente causal de la Rinotraqueitis Infecciosa Bovina (IBR) Herpes virus bovino tipo I (BoHV-1).  Inciso b) La variante neurológica Herpes virus bovino tipo V (BoHV-5).  Inciso c) Virus de la Diarrea Viral Bovina (VDVB).  Inciso d) Rotavirus bovino (RVB).  Inciso e) Virus Parainfluenza Bovina tipo 3 (PI3).  Inciso f) Virus respiratorio sincicial bovino (VRSB).  Inciso g) Coronavirus bovino (CoVB).  ARTICULO 3° — Categorización. A los efectos de la fabricación, importación, tenencia, distribución y expendio de vacunas, de acuerdo a lo establecido en la Ley Nº 13.636, el Decreto Reglamentario Nº 583 del 31 de enero de 1967, modificado por el Decreto Nº 3.899 del 2 de junio de 1972 y sus modificatorias; y en la Resolución Nº 345 del 6 de abril de 1994 del ex-SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL, las personas físicas o jurídicas serán categorizadas, según corresponda, de la siguiente manera:  Inciso a) Firmas productoras de vacunas con establecimiento en el país o en el exterior, con registro, elaboración de antígenos y formulación propios.  Inciso b) Firmas productoras de vacunas que formulen con antígenos elaborados por terceros y con registro propio.  Inciso c) Firmas que no poseen establecimientos de elaboración y que acrediten fehacientemente, además del derecho de comercialización, que el producto se elabora en establecimientos habilitados, estando todo el proceso bajo la responsabilidad directa del titular del registro.  Inciso d) Firmas que detenten extensiones de certificados de productos elaborados por firmas incluidas en el inciso “a” del presente artículo.  ARTICULO 4° — Auditorías e Inspecciones. En todas las categorías citadas en el Artículo 3° de la presente resolución, la totalidad de las auditorías e inspecciones que se establecen en esta norma, serán realizadas en las instalaciones del laboratorio elaborador.  ARTICULO 5° — Exigencias. Las firmas incluidas en las categorías establecidas en los incisos a, b, c y d del Artículo 3° de la presente resolución, están sujetas a las exigencias que se reglamentan en el presente artículo:  Inciso a) A la habilitación del establecimiento elaborador y depósitos.  Inciso b) A auditorías e inspecciones del proceso de producción.  Inciso c) A las pruebas de registro o autorización del producto.  Inciso d) Al control de series, previa a la venta y uso de las vacunas.  Inciso e) Al pago de aranceles por las vacunas presentadas a registro, control de series y auditorías.  ARTICULO 6° — Responsabilidad. Los titulares o responsables jurídicos de los establecimientos de las categorías citadas por el Artículo 3° de la presente resolución, serán responsables de la inocuidad, pureza, calidad y legitimidad de los productos elaborados, fraccionados, depositados y distribuidos.  ARTICULO 7° — Producción. En todos los casos la producción se realizará en establecimientos autorizados y habilitados por el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA.  ARTICULO 8° — DE LA HABILITACION Y REGISTRO DE LOS LABORATORIOS. Inscripción y Habilitación. La inscripción y habilitación de los laboratorios que elaboran antígenos y vacunas destinados a prevenir las enfermedades virales no vesiculares de los bovinos, debe ser gestionada ante el SENASA llenando con carácter de Declaración Jurada, una solicitud, que además de adecuarse a los alcances de las Resoluciones Nros. 345 del 6 de abril de 1994 y 765 del 3 de diciembre de 1996, ambas del ex-SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL hace constar lo siguiente:  Inciso a) Nombre de la firma comercial.  Inciso b) Nombre del Director y/o Responsable Técnico con Título de Profesional de las Ciencias Veterinarias.  Inciso c) Organigrama donde consten como mínimo los profesionales responsables de Producción, Control de Producción, Aseguramiento de Calidad.  Inciso d) Ubicación del laboratorio, domicilio y teléfono.  Inciso e) Habilitación municipal.  Inciso f) Planos de los locales y memoria descriptiva de las instalaciones y equipos destinados a la producción, cuarentena, control de calidad, bioterio, envase, conservación, depósito y expendio de conformidad al tipo de producto elaborado.  Inciso g) Capacidad de elaboración y depósito mensual y anual de los productos terminados.  Inciso h) Si posee campo experimental, deberá presentar ubicación y planos de las instalaciones, detallando pruebas y actividades que se desarrollarán en el mismo.  ARTICULO 9° — DE LA HABILITACION Y REGISTRO DE LOS LABORATORIOS. Revocación o suspensión de la habilitación. La habilitación de los laboratorios, así como las autorizaciones de elaboración, importación, y venta de vacunas que se otorguen al amparo de la presente resolución, pueden ser revocadas o suspendidas, sin derecho a indemnización alguna, si se demuestra con hechos fundados y protocolizados el incumplimiento a las disposiciones contenidas en la presente norma.  ARTICULO 10. — INSPECCION Y RETIRO DE MUESTRAS. Los depósitos para vacunas terminadas deberán cumplir con los siguientes requisitos:  Inciso a) Las cámaras frías utilizadas para conservar vacunas, productos biológicos y fármaco-veterinarios que requieran cadena de frío, debidamente segregados, deben ser independientes de las utilizadas para depositar otro tipo de productos.  Inciso b) Se prohíbe el uso compartido de las cámaras frías utilizadas para conservar vacunas y fármaco-veterinarios, ambos en su producto final envasado, con vacunas y fármacos de uso humano, productos alimenticios, materias primas y productos semielaborados.  Inciso c) Debe contar con la habilitación municipal correspondiente.  Inciso d) El predio donde se encuentre el depósito, debe contar con medidas de seguridad y con registros de ingreso y egreso de vehículos y de personas.  Inciso e) Los inspectores del SENASA tendrán acceso a las instalaciones del predio donde se encuentre el depósito sin restricciones de ningún tipo.  Inciso f) Es obligatoria la designación de un Responsable Técnico, el cual debe ser profesional de las Ciencias Veterinarias, quien será responsable de las vacunas depositadas.  Inciso g) Las cámaras frías deberán mantener una temperatura entre DOS GRADOS CENTIGRADOS (2°C) y OCHO GRADOS CENTIGRADOS (8°C), con registro continuo de la misma. Deben estar conectadas a un grupo electrógeno para emergencias con tablero de transferencia automática.  Inciso h) Los frascos de vacunas deben estar etiquetados e inequívocamente identificados.  Inciso i) Las vacunas que requieren otra temperatura de conservación, cumplirán con las indicaciones de conservación del fabricante.  Inciso j) Las vacunas deben estar depositadas en contenedores o canastos que permitan conseguir una temperatura uniforme sobre todos los frascos de vacunas.  Inciso k) En los canastos con las vacunas de uso local deberá constar:  I- Nombre del producto.  II- Número de serie.  III- Fecha de vencimiento.  IV- Numeración del estampillado oficial.  V- Los canastos deberán estar ordenados de forma correlativa a fin de permitir a los inspectores del SENASA contar los frascos que componen cada serie y seleccionar los frascos sorteados.  Inciso l) El predio donde se encuentre el depósito, debe contar con áreas segregadas para vacunas en control oficial y vacunas aprobadas. De ambas áreas debe llevarse un registro donde conste nombre del producto, número de certificado, serie, numeración de las estampillas y fecha de vencimiento.  Inciso m) El predio donde se encuentre el depósito debe contar con un espacio independiente, cerrado con llave y con restricciones de acceso donde se depositarán las contramuestras oficiales.  Inciso n) El predio donde se encuentre el depósito, debe contar con una oficina para los inspectores del SENASA con los elementos necesarios para controlar la documentación, preparar los paquetes con las muestras y completar las actas correspondientes.  Inciso o) La presentación para los retiros de series deberá hacerse de acuerdo a las fechas estipuladas en el calendario anual de Control de Vacunas Virales No Vesiculares.  Inciso p) Una vez presentada la Solicitud de Retiro de Muestras en la Coordinación de Biológicos de la Dirección del Laboratorio Animal por parte del laboratorio elaborador, se inicia el control de la serie de vacunas de acuerdo al Manual de Procedimientos de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLyCT).  Inciso q) En la cámara refrigerada del laboratorio elaborador se realiza el conteo total de dosis presentadas.  Inciso r) En el laboratorio elaborador, sobre las dosis presentadas, se realiza un sorteo al azar basándose en la numeración de las estampillas de los frascos.  Inciso s) Se toma como retiro para la Coordinación de Virología, Departamento de Control de Vacunas, un mínimo de CUATROCIENTAS (400) dosis de vacuna oleosa u acuosa, para cada uno de los TRES (3) paquetes que serán armados [haciendo un total de UN MIL DOSCIENTAS (1200) dosis como mínimo].  Inciso t) Una vez separados los frascos estampillados de acuerdo al sorteo, se procede a distribuirlos en TRES (3) paquetes que luego se firman, quedando UN (1) paquete como contramuestra en el laboratorio elaborador (Paquete Nº 3).  Inciso u) Se completa el Acta de Retiro de Muestras con la cantidad de dosis, el número de estampillas de los frascos seleccionados por sorteo, firmando los responsables por el laboratorio productor y por el SENASA.  Inciso v) Si hubiera devolución de estampillas se adjunta al trámite el detalle.  Inciso w) Las actas se realizan por duplicado quedando una copia en el laboratorio elaborador.  Inciso x) Las muestras deben trasladarse refrigeradas entre los CUATRO GRADOS CENTIGRADOS (4°C) y los OCHO GRADOS CENTIGRADOS (8°C).  Inciso y) Las muestras (Paquetes Nros. 1 y 2) y el trámite interno con su respectiva Acta de Retiro, deberán ingresar en la DGLyCT, la que otorgará un número de trámite interno y será su personal el responsable de abrir el Paquete Nº 1, verificar la temperatura y distribuir la muestra a las Coordinaciones de Bacteriología y de Virología. El restante del Paquete Nº 1 (abierto) y el Paquete Nº 2 (cerrado) firmados serán entregados a la Coordinación de Virología a fin de ser conservados entre los CUATRO GRADOS CENTIGRADOS (4°C) y los OCHO GRADOS CENTIGRADOS (8°C).  Inciso z) El Paquete Nº 1 se utilizará para todas las pruebas. El Paquete Nº 2 se mantiene cerrado como contramuestra hasta su vencimiento.  ARTICULO 11. — Habilitación. Registro del Laboratorio. Efectuadas las inspecciones y verificado el cumplimiento de los requisitos establecidos, el SENASA concede la habilitación, expidiendo oportunamente el Certificado de habilitación respectivo y procediendo a registrar al laboratorio en el Registro Nacional correspondiente, previo informe favorable de la Dirección Nacional de Agroquímicos, Productos Veterinarios y Alimentos (DNAPVyA) y de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLyCT).  ARTICULO 12. — NORMAS GENERALES. Solicitud de Registro de Productos Biológicos. Las Firmas debidamente inscriptas según lo establecido en los artículos precedentes, deben presentar para la aprobación de sus vacunas, una Solicitud de Registro de Productos Biológicos, que debe adecuarse a la normativa vigente para el registro y aprobación de productos destinados al diagnóstico, prevención o tratamiento de las enfermedades de los animales. Asimismo, deberán responder a los informes técnicos emitidos por la DGLyCT.  ARTICULO 13. — Controles de la DGLyCT. La DGLyCT tiene acceso a todas las etapas del proceso de elaboración de las vacunas y tiene la potestad de efectuar auditorías o inspecciones periódicas con el fin de controlar la producción, el buen estado de los locales, instalaciones y equipos de los laboratorios elaboradores.  ARTICULO 14. — Retiro de Muestras. Se autoriza al personal de la DGLyCT, para retirar muestras de los distintos componentes que integran las vacunas en las etapas de elaboración, a fin de someterlos a los controles correspondientes y al retiro de muestras del producto semielaborado y terminado.  ARTICULO 15. — Estampilla Oficial. No puede presentarse a control ni expenderse en el mercado local ningún envase de vacuna sin su correspondiente estampilla oficial numerada correlativamente. La estampilla debe certificar la serie que corresponda, así como su fecha de vencimiento y la cantidad de dosis que contiene.  ARTICULO 16. — Exigencias. Control Oficial. Las vacunas destinadas a prevenir las enfermedades virales no vesiculares de los bovinos ya sean monovalentes o polivalentes, virales exclusivamente, o combinadas con antígenos bacterianos, deben cumplir las exigencias para el registro que se encuentran incluidas en esta reglamentación, las series sucesivas al registro serán muestreadas y se aprobarán con el análisis por parte de la DGLyCT de inocuidad, esterilidad, físico-químico y potencia. El control oficial se realizará luego de recibidos los controles internos con resultado satisfactorio.  ARTICULO 17. — DE LOS PRODUCTOS A IMPORTAR. Autorización. Sólo se autoriza la importación de antígenos o vacunas en cuyo proceso de producción se utilicen materias primas de origen animal, que resulten autorizadas por la Resolución Nº 117 del 22 de enero de 2002 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, la que establece la evaluación de la situación de riesgo de Encefalopatía Espongiforme Bovina (EEB) para cada país exportador, y su modificatoria Resolución SENASA Nº 1052 del 30 de diciembre de 2002.  ARTICULO 18. — Materias Primas. Las materias primas importadas para ser utilizadas en vacunas producidas localmente, deben estar autorizadas por la citada Resolución Nº 117/02, la que establece la evaluación de la situación de riesgo de Encefalopatía Espongiforme Bovina (EEB) para cada país exportador, y su modificatoria Nº 1052/02.  ARTICULO 19. — Exigencias y condiciones. Las firmas interesadas en la importación de vacunas o antígenos deben cumplimentar la totalidad de las exigencias y condiciones que se establecen en la presente resolución. Asimismo, deben poseer en el país instalaciones habilitadas para la formulación, conservación, depósito y expendio, según el caso, de estos productos, acorde a lo establecido en la presente reglamentación.  ARTICULO 20. — Aprobación del Registro de Firmas para Importar. La aprobación pertinente se debe gestionar ante el SENASA. La misma se va a conceder, si correspondiere, previa inspección y habilitación del establecimiento elaborador y depósitos por la DGLyCT.  ARTICULO 21. — Previo al Registro de la Firma. Previo al inicio de los trámites de registro, los interesados deben presentar lo siguiente:  I- La habilitación del laboratorio por parte del Ente Sanitario Oficial del país de origen para la elaboración de vacunas.  II- El registro del producto en su país de origen.  III- Acreditación en Buenas Prácticas de Manufactura.  ARTICULO 22. — Auditorías y Controles. Las vacunas o antígenos importados serán sometidos a la totalidad de las auditorías y controles establecidos en la presente reglamentación, al igual que los aplicados a las vacunas elaboradas en el país.  ARTICULO 23. — DE LA ADMISION Y REGISTRO DE LAS VACUNAS. Control de autorización o registro. Todas las vacunas cuyos certificados de uso y comercialización se soliciten, serán sometidas por la DGLyCT a los controles que determina esta reglamentación bajo la denominación de “Control de autorización o registro”.  ARTICULO 24. — Registro de Laboratorios. Las firmas deben registrar sus laboratorios habilitados en el Registro Nacional respectivo, que a tal efecto lleva la Dirección Nacional de Agroquímicos, Productos Veterinarios y Alimentos (DNAPVyA) de este Servicio Nacional.  ARTICULO 25. — Solicitud de Inscripción de Vacunas. Se debe gestionar ante el Registro Nacional enunciado en el Artículo 24 de la presente resolución, la solicitud de inscripción de las vacunas que deseen elaborar, adecuando el contenido de cada una de las presentaciones a lo establecido en la normativa vigente.  ARTICULO 26. — Exclusividad. Se aceptarán únicamente vacunas virales no vesiculares para bovinos inactivadas.  ARTICULO 27. — Presentación de antecedentes de la Prueba del Producto. Previo a la presentación de la primera serie de registro a control, las firmas deben presentar los antecedentes del producto probado en la especie de destino o en especies de laboratorio con concordancia aceptada que demuestre lo siguiente:  Inciso a) La potencia del producto.  Inciso b) La eficacia del producto.  Inciso c) La duración de inmunidad del producto.  Inciso d) La estabilidad del producto.  Estos deberán ir acompañados de:  Inciso e) Sus resultados de inocuidad o control de inactivación.  Inciso f) Sus resultados de seguridad.  Inciso g) Sus resultados de esterilidad.  Inciso h) Antecedentes del desarrollo.  Inciso i) Antecedentes científicos.  Inciso j) Antecedentes bibliográficos.  ARTICULO 28. — Presentación de rótulos y folletos. Previo a la presentación de la primera serie de registro a control, las firmas deben acompañar los proyectos de rótulos y folletos a utilizar de acuerdo a las Resoluciones Nros. 345 del 6 de abril de 1994 y 765 del 3 de diciembre de 1996, ambas del ex-SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL, y 897 del 23 de diciembre de 2002 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA.  ARTICULO 29. — Pruebas de Registro de Vacunas. Se consideran pruebas de registro de vacunas aquellas a las que se somete a dichos inmunógenos con el fin que las personas físicas o jurídicas recurrentes puedan obtener el Certificado de Uso y Comercialización pertinente. ARTICULO 30. — Aceptación de la serie de registro. A los fines de aceptación de la serie de registro, así como las series posteriores, los laboratorios habilitados deben presentar lo detallado a continuación:  Inciso a) Documentación. Los registros de los procesos de elaboración y de los controles internos presentados por el laboratorio elaborador deben ser rubricados por el Responsable de Producción y de Aseguramiento de Calidad.  Los mismos tienen carácter de Declaración Jurada y deben seguir normas de aseguramiento de la calidad y buenas prácticas de manufactura de conformidad a lo establecido en la Resolución SENASA Nº 482 del 24 de mayo 2002.  La documentación necesaria se completa con:  I- El sistema de protocolización adoptado para registrar los procesos de producción y los controles internos que permitan una eficaz auditoría.  II- Diagrama de flujo de producción y los Procedimientos Operativos Estándares (POE) que describan el protocolo para la producción y el control de cada producto.  III- Información relativa a la constitución, proceso de elaboración y control, debiendo consignar como mínimo lo siguiente: número del protocolo, tipo de la vacuna, número de la serie, cantidad de dosis, fechas de elaboración, protocolos de producción y protocolos de control.  IV- Registros que permitan la trazabilidad de todos los procesos de producción y control, así como del origen de las materias primas. Los registros deberán guardarse al menos durante UN (1) año después de cumplida la fecha de vencimiento de la vacuna.  Inciso b) Semilla Maestra. Cada semilla o inóculo maestro de cada antígeno viral que sirva de fuente de siembra para la inoculación de todos los cultivos de trabajo y de producción, debe tener documentado su origen y debe estar analizado de manera que se garanticen su identidad, pureza y que esté libre de agentes adventicios: bacterias, hongos, micoplasmas y virus.  Inciso c) Banco de Células Maestro. Se establece un banco de células maestro para cada tipo de célula que se emplee. Asimismo se debe:  I- Documentar su identidad y origen.  II- Especificar en los POE la cantidad de pasajes admitidos en la producción y control.  III- Caracterizarse para garantizar su identidad y su estabilidad genética.  IV- Analizarse su pureza para garantizar que esté libre de bacterias, hongos, micoplasmas y virus.  Inciso d) Inactivantes. Se recomienda el empleo de inactivantes químicos de primer orden. En caso de utilizarse el formol, se deben presentar controles de formol residual.  Inciso e) Otros componentes. El uso de antibióticos y conservantes debe declararse y registrarse, indicando si deberán aplicarse restricciones al uso de los alimentos derivados de los animales vacunados.  Inciso f) Controles internos. Clasificación. Los controles internos deben incluir como mínimo y según el caso en que corresponda, los siguientes que a continuación se detallan:  I- Los controles de identidad.  II- Los controles de esterilidad.  III- Los controles de inocuidad o seguridad.  IV- Los controles de inactivación.  V- Los controles de pureza.  VI Los controles físico-químicos.  VII- Los controles de potencia o eficacia.  Los procedimientos operativos para estos controles deberán estar de acuerdo con las normativas internacionales (9 CFR o Farmacopea Europea o Manual de OIE) o nacionales aceptados por la DGLyCT.  Inciso g) La primera serie de registro a control deberá estar producida en las mismas condiciones que las series posteriores según las buenas prácticas de manufactura. La primera serie de registro a control, deberá contener un mínimo número de dosis que representen la producción del laboratorio para esa vacuna.  ARTICULO 31. — Controles Internos. La totalidad de los controles internos de la serie de registro, deberán estar finalizados al momento del retiro de las muestras del producto final debidamente envasado, rotulado y estampillado según se establece en la presente resolución. En el rótulo deberá constar el número de expediente y la leyenda PRIMERA SERIE A CONTROL. Los controles internos podrán ser realizados por el elaborador o por un tercero habilitado por SENASA para tal fin.  ARTICULO 32. — Retiro de muestras. Una vez presentados los controles internos con resultados satisfactorios y la Solicitud de Retiro de Muestras, la DGLyCT tomará muestras del producto final, envasado, rotulado y estampillado. La DGLyCT podrá retirar muestras de la fase acuosa viral, previo a su inactivación o fase acuosa viral inactivada. En caso de tratarse de vacunas polivalentes se pueden solicitar muestras de cada uno de los antígenos virales utilizados para la formulación del producto previo a la inactivación y/o inactivados.  ARTICULO 33. — Tratamiento de Muestras. Las muestras serán empaquetadas, cerradas y firmadas por el inspector del SENASA y el representante del laboratorio elaborador conforme los requisitos estipulados en el Artículo 10 de la presente resolución, para la inspección, retiro y codificación de muestras.  ARTICULO 34. — CONTROLES OFICIALES. Procedimientos. La DGLyCT realizará en la Serie de Registro los controles de esterilidad, de inocuidad, físicos-químicos y de potencia en cobayos con procedimientos de acuerdo al tipo de producto.  ARTICULO 35. — Control de Esterilidad. A continuación se detallan las instrucciones y los lineamientos que se deben utilizar para llevar adelante un correcto Control de Esterilidad.  Inciso a) Para cultivo de Anaerobios facultativos y Aerobios. Se sembrará UN MILILITRO (1 ml) de vacuna en medio Tioglicolato fluido USP con el agregado de Tween 80 al UNO POR CIENTO (1%) en tubos con DIEZ MILILITROS (10 ml) de medio.  Inciso b) Para hongos saprofitos y patógenos. Se sembrará CERO COMA CINCO MILILITROS (0,5 ml) de vacuna en Agar glucosa CUATRO POR CIENTO (4%) según Sabouraud en tubos con CINCO MILILITROS (5 ml) de medio.  Inciso c) Para determinación de contenido microbiano. Se sembrará CERO COMA CINCO MILILITROS (0,5 ml) de vacuna en Agar caso - Peptona de Caseína - Peptona de harina de soja USP en tubos con CINCO MILILITROS (5 ml) de medio.  Inciso d) Se siembran DOS (2) juegos de tubos con los TRES (3) medios de cultivo y se incuban a VEINTICINCO GRADOS CENTIGRADOS (25°C) y a TREINTA Y CINCO GRADOS CENTIGRADOS (35°C) durante CATORCE (14) días.  Inciso e) Interpretación de los resultados. La muestra debe ser estéril para pasar a las siguientes etapas de control. Se considera el control aprobado cuando no se observa desarrollo bacteriano o fúngico en los cultivos efectuados.  ARTICULO 36. — Control de Inactivación. A continuación se detallan las instrucciones y los lineamientos que se deben utilizar para llevar adelante un correcto Control de Inocuidad o Inactivación.  Inciso a) Las pruebas oficiales de inactivación viral evaluada por su inocuidad sobre cultivos celulares, se realizan exclusivamente sobre muestras de antígenos o vacunas que tengan controles de inactivación viral previos con resultados satisfactorios realizados por el elaborador.  Inciso b) Cada elaborador debe presentar el método de elusión de antígeno o ruptura de emulsión para su producto.  Inciso c) Se controlan vacunas terminadas, fase acuosa inactivadas y lotes de antígenos inactivados sin adyuvantes.  Inciso d) Para verificar la correcta inactivación de las cepas virales contenidas en la formulación de las vacunas, se utilizan células sensibles a estos virus.  Inciso e) Células utilizadas. Las células utilizadas crecidas en monocapa durante VEINTICUATRO y CUARENTA Y OCHO HORAS (24 y 48 hs), en frascos de células de VEINTICINCO CON SETENTA Y CINCO CENTIMETROS CUADRADOS (25,75 cm2) o CIENTO SETENTA Y CINCO CENTIMETROS CUADRADOS (175 cm2), son las siguientes o cualquier otra que en un futuro demuestre ser sensible a estos virus:  I- MDBK (Madin Darby Bovine Kidney): para los virus DVB, IBR, BRSV, PI3 y Coronavirus.  II- MA (Monkey, African green, kidney, embriónica): para Rotavirus.  III- HRT-18 (Human rectal tumor): para Coronavirus.  Inciso f) Preparación de la muestra.  I- El control de inactivación se puede realizar con muestra de fase acuosa, muestra de lotes de antígenos virales inactivados y/o muestra de vacuna terminada.  II- Las muestras de fase acuosa inactivada y de lotes de antígenos virales inactivados utilizados para la formulación de la vacuna se inoculan en forma directa.  III- En el caso de vacuna terminada, de acuerdo a su formulación oleosa u acuosa, debe procederse según la metodología adecuada para la obtención del antígeno viral (fase acuosa recuperada).  IV- Los laboratorios deberán proveer el método de ruptura de emulsión o elusión de antígeno adecuado para cada vacuna presentada a control. Una vez realizado el procedimiento adecuado, la fase acuosa recuperada se inocula directamente.  Inciso g) Inoculación de células.  I- Se inocula UN MILIMETRO (1 ml) de muestra en frascos de células de VEINTICINCO CENTIMETROS CUADRADOS (25 cm2), SETENTA Y CINCO CENTIMETROS CUADRADOS (75 cm2) o CIENTO SETENTA Y CINCO CENTIMETROS CUADRADOS (175 cm2). En todos los casos, dejar adsorber UNA HORA (1 h) a TREINTA Y SIETE GRADOS CENTIGRADOS (37°C) antes de colocar el medio de mantenimiento DIEZ, TREINTA Y SETENTA Y CINCO MILILITROS (10, 30 y 75 ml), respectivamente. Dejar en incubación a TREINTA Y SIETE GRADOS CENTIGRADOS (37°C) durante VEINTICUATRO HORAS (24 hs).  II- Observar si presenta efecto citopático. Si no presenta, congelar, descongelar y efectuar un segundo pasaje con: UN MILILITRO (1 ml) del primer pasaje de frasco de VEINTICINCO CENTIMETROS CUADRADOS (25 cm2) a otro frasco de células de VEINTICINCO CENTIMETROS CUADRADOS (25 cm2); DIEZ MILILITROS (10 ml) del primer pasaje de frasco de SETENTA Y CINCO (75) o CIENTO SETENTA Y CINCO (175) a otro de SETENTA Y CINCO (75) o CIENTO SETENTA Y CINCO CENTIMETROS CUADRADOS (175 cm2). Dejar adsorber UNA HORA (1 h) a TREINTA Y SIETE GRADOS CENTIGRADOS (37°C) antes de colocar el medio de mantenimiento. Dejar en incubación a TREINTA Y SIETE GRADOS CENTIGRADOS (37°C) durante CUARENTA Y OCHO HORAS (48 hs).  III- Observar si se presenta efecto citopático, si no presenta efecto el resultado es NEGATIVO.  Inciso h) Interpretación de los resultados. La vacuna se considerará inocua cuando no existan signos de replicación viral.  ARTICULO 37. — Control físico-químico para vacunas oleosas. A continuación se detallan las instrucciones y los lineamientos que se deben utilizar para llevar adelante un correcto control físico-químico para vacunas oleosas.  Inciso a) Control de tipo de emulsión.  I- Prueba de la Gota: Con una pipeta de UN MILILITRO (1 ml) se deposita una gota de la vacuna en un envase con agua destilada.  II- Emulsión simple “agua en aceite”: La gota deberá permanecer compacta o formará una película siempre en la superficie.  III- Emulsión doble “agua en aceite en agua”: La gota deberá diluirse parcialmente, otorgando al agua una apariencia lechosa.  Inciso b) Control de estabilidad de la emulsión simple.  I- Por centrifugación de CUARENTA MILILITROS (40 ml) de vacuna durante UNA HORA (1 h), a TRES MIL GRAMOS (3000 gr), separándose la fase aceitosa no emulsionada en la parte superior, y la emulsión sin romper en la parte inferior. Se permitirá una pequeña separación de líquido oleoso en la superficie siendo todo el resto una emulsión uniforme.  II- Control de estabilidad de emulsión simple y doble a diferente temperatura. Manteniendo la vacuna a diferentes temperaturas: Temperatura ambiente y a TREINTA Y SIETE GRADOS CENTIGRADOS (37°C) durante TREINTA (30) días.  III- Sólo se permite una separación inferior de fase acuosa de hasta un CINCO POR CIENTO (5%) del volumen total.  IV- También pueden llegar a formarse DOS (2) capas de emulsión blancas con un borde más blancuzco en la superficie.  V- No se aceptarán vacunas con ruptura que formen una capa clara de agua en el fondo del frasco.  Inciso c) Control de Conductividad:  I- Se medirá con celda de conductividad del tipo de inmersión cuya constante sea no menos de SETENTA Y CINCO CENTESIMOS (0,75 cm-1).  II- La medición se realizará a VEINTE GRADOS CENTIGRADOS MAS MENOS DOS GRADOS CENTIGRADOS (20°C ± 2°C).  III- La exactitud del equipo para realizar la determinación debe ser no menor al UNO POR CIENTO (1%).  IV- Interpretación de resultados. Emulsión simple “agua en aceite”: deberá ser menor a DIEZ MICROSIEMENS POR CENTIMETRO (10 uS/cm). Emulsión doble “agua en aceite en agua”: deberá ser mayor a UN MICROSIMEN POR CENTIMETRO (1 mS/cm).  Inciso d) Control de viscosidad.  I- Se realizará utilizando un viscosímetro de Brookfield con rotor, y expresada en centipoise. Se utilizará el rotor Nº 2, y la determinación se efectuará a una velocidad de TREINTA REVOLUCIONES POR MINUTO (30 rpm).  II- Se aceptarán como valores mínimos y máximos QUINCE (15) y QUINIENTOS (500) centipoise respectivamente, medidos a temperatura ambiente.  ARTICULO 38. — CONTROL DE POTENCIA EN COBAYOS. Los controles de potencia se realizan en cobayos.  Inciso a) Este ensayo de prueba de vacunas virales en cobayos se basa en la inmunización de cobayos con DOS (2) dosis de vacuna, por vía intramuscular o subcutánea, de un volumen correspondiente a UNO SOBRE CINCO (1/5) de la dosis bovina y un intervalo de VEINTIUN (21) días. Los animales se mantienen bajo estudio durante un mínimo de TREINTA (30) días y se toman muestras de suero. En caso de requerirse muestreos adicionales, éstos se especificarán en el formulario de ensayo correspondiente.  Inciso b) A los TREINTA (30) días de iniciado el control se sangran los animales vacunados, realizándoles el Control Indirecto de acuerdo a la valencia viral a analizar por ELISA (BoHV-1, RVB y CoVB), Seroneutralización (BoHV-1, VDVB) o inhibición de la hemoaglutinación (PI3) (ver Anexos I al IV).  Inciso c) La prueba de potencia en cobayos se considera válida cuando los sueros de CERO (0) días posvacunación (DPV) y/o los sueros de los testigos utilizados en la prueba resultan negativos para la prueba indirecta.  ARTICULO 39. — Vacunas en prueba. Codificación. Las vacunas en prueba perderán su identidad mediante una codificación en la cual se utilizan frascos metálicos numerados, donde se introduce el frasco original de vacuna y se precinta la tapa. Al momento de la codificación se confeccionan las siguientes planillas:  Inciso a) Planilla 1. En la cual consta el nombre del laboratorio elaborador, nombre del producto, número de serie y número de estampilla del frasco a utilizar. Es firmada por los representantes de cada laboratorio que posee muestras a control de potencia y del SENASA presentes en la codificación de la prueba y permanece en un sobre cerrado, sellado y firmado, hasta su finalización.  Inciso b) Planilla 2. En la que figura la fecha de vacunación, el número de frasco con su número de precinto.  ARTICULO 40. — Controles de Potencia. Técnicas. Los controles de potencia se realizarán en cobayos conforme los requisitos estipulados en los Artículos 38 al 52 de la presente resolución. Para la Herpes-virus bovino 1 agente etiológico de la Rinotraqueitis Infecciosa Bovina, para Rotavirus Bovino (RVB) agente causal de diarrea neonatal, para parainfluenza bovina tipo 3 agente asociado a enfermedad respiratoria, y para el virus de diarrea viral bovina responsable de enfermedad generalizada que lleva el mismo nombre, se especifican a continuación las técnicas que se llevan a cabo para cada una de ellas en particular:  Inciso a) Para Rinotraqueitis Infecciosa Bovina (IBR) los sueros serán analizados por las técnicas de seroneutralización y/o ELISA, conforme el procedimiento y las instrucciones tipificadas en el Anexo I de la presente resolución.  Inciso b) Para RVB por la técnica de ELISA se lleva a cabo conforme el procedimiento y las instrucciones tipificadas en el Anexo II de la presente resolución.  Inciso c) Para PI3 por la técnica de inhibición de la Hemoaglutinación se lleva a cabo conforme el procedimiento y las instrucciones tipificadas en el Anexo III de la presente resolución.  Inciso d) Para VDVB por seroneutralización se lleva a cabo conforme el procedimiento y las instrucciones tipificadas en el Anexo IV de la presente resolución.  ARTICULO 41. — Vacunas para prevenir la Rinotraqueitis Infecciosa Bovina. En las vacunas para prevenir la Rinotraqueitis Infecciosa Bovina se considerarán aprobadas las que obtengan un título de anticuerpos seroneutralizantes promedio en los cobayos vacunados, igual o mayor a 1.31 o un título de ELISA igual o mayor a 1.93.  ARTICULO 42. — Vacunas para prevenir la diarrea neonatal por Rotavirus Bovino. En las vacunas destinadas a prevenir la diarrea neonatal por Rotavirus Bovino se considerarán aprobadas las que obtengan un título de anticuerpos promedio determinado por ELISA en los cobayos inmunizados igual o mayor a 1.96.  ARTICULO 43. — Recontrol. Las vacunas que no aprueben el control de potencia podrán ser presentadas a recontrol por única vez a solicitud del laboratorio elaborador. Los resultados del nuevo control definen si la serie de vacuna es aprobada o rechazada.  ARTICULO 44. — Controles Positivos. Los controles positivos serán incluidos en cada prueba de potencia. En todas las pruebas serán incluidas vacunas de referencia, según corresponda de Herpesvirus Bovino tipo 1 (BoHV-1) y Rotavirus Bovino, oleosa o acuosa como control.  ARTICULO 45. — Controles Negativos. Los controles negativos serán incluidos en cada prueba de potencia. Todas las pruebas incluirán un grupo de TRES (3) a CINCO (5) cobayos testigos no vacunados que serán muestreados y sus sueros analizados paralelamente a los grupos de vacuna en control y las vacunas de referencia.  ARTICULO 46. — Nuevas Técnicas. Una vez validados los métodos de control adecuados para establecer la potencia en los virus restantes contenidos en las vacunas virales no vesiculares, se podrán agregar las nuevas técnicas.  ARTICULO 47. — Condiciones de los cobayos. Por cada serie en control se vacunarán como mínimo SEIS (6) cobayos que reúnan las siguientes condiciones:  Inciso a) Edad: Mayor a TREINTA (30) días  Inciso b) Sexo: macho o hembra  Inciso c) Peso: CUATROCIENTOS GRAMOS (400 gr) ± CINCUENTA GRAMOS (50 gr).  ARTICULO 48. — Materiales a utilizar. Para efectuar el control de potencia en cobayos es indispensable contar con los materiales que a continuación se detallan:  Inciso a) Cajón con tapa o recipiente plástico con tapa que contendrá los elementos.  Inciso b) Cinta adhesiva, de papel o celofán para rotular.  Inciso c) Fibra indeleble o lápiz negro de grafito (en este caso se escribirá sobre la cinta de papel).  Inciso d) Algodón.  Inciso e) Guantes descartables.  Inciso f) Cofia y barbijo.  Inciso g) Servilletas de papel.  Inciso h) Jeringas descartables de 1,5 y 10 ml para la inoculación.  Inciso i) Jeringas descartables de 5, 10 y 20 ml para toma de muestra de sangre.  Inciso j) Agujas descartables, cono rosa (40x12) y cono verde (21x8).  Inciso k) Recipiente con bolsa para descarte de materiales sucios.  Inciso l) Bolsas de autoclave, pequeñas y grandes.  Inciso m) Descarte de cortopunzantes.  Inciso n) Tubos de hemólisis largos para recolección de sangre.  Inciso o) Tijera.  Inciso p) Precintos.  Inciso q) Acido pícrico para marcar los animales.  Inciso r) Etanol SETENTA POR CIENTO (70%) y Cloroxilenol DOS COMA CINCO POR CIENTO (2,5%)  Inciso s) Vacunas en control.  Inciso t) Vacuna de referencia para los antígenos vírales correspondientes.  ARTICULO 49. — PROCEDIMIENTO DE INOCULACION DE VACUNAS. Cuarentena de animales. Los animales tendrán un plazo de adaptación después del ingreso a la sala de inoculación en el bioterio de SIETE (7) días como mínimo.  ARTICULO 50. — Procedimiento. Se procede de la siguiente manera:  Inciso a) Se le da inicio a la experiencia sólo si se cuenta con animales sanos. En caso de utilizar hembras, éstas no deberán estar preñadas, ni tener crías al pie.  Inciso b) Antes de comenzar la inoculación se deben rotular las jaulas para identificar los lotes asignados a las diferentes vacunas.  Inciso c) Retirar los animales de la jaula. La sujeción del animal dentro de la jaula será en forma cautelosa, silenciosa y firme para evitar el distrés. Los animales se colocarán luego en un contenedor.  Inciso d) La sala deberá tener una temperatura confortable, bien iluminada y contar con una mesada de trabajo y una pileta.  Inciso e) La mesada debe ser desinfectada.  Inciso f) Un operario debe tomar el cobayo con ambas manos y colocarlo boca abajo, en posición horizontal, paralelo y apoyado sobre la mesa.  Inciso g) El segundo operario procederá a la inoculación subcutánea sobre la parrilla costal, tomará la jeringa con la dosis medida de inóculo y con el bisel de la aguja “hacia arriba”.  Inciso h) En el caso de aplicarla vía intramuscular el lugar de aplicación es la cara interna del muslo.  Inciso i) Antes de descargar el contenido de la jeringa, se debe retraer el émbolo para verificar que la inoculación no se realice en ninguna vía sanguínea. Una vez realizado esto, se descargará el contenido de la jeringa.  Inciso j) Una vez finalizado el procedimiento, colocar cada animal en el contenedor. Una vez finalizada la inoculación de todo el grupo, devolver los animales a su jaula.  Inciso k) Se considera conforme un procedimiento de inmunización de cobayos cuando el animal no sufre alteraciones fisiológicas durante la inoculación, y no presenta reacciones adversas graves (shock anafiláctico, abscesos, infecciones y necrosis en el punto de inoculación).  ARTICULO 51. — Extracción de sangre para obtención de muestras de suero. El procedimiento es el siguiente:  Inciso a) La vía recomendada para el sangrado de cobayos es la punción cardíaca, aunque son una alternativa, la vena yugular y la vena de la oreja.  Inciso b) Una vez terminado el procedimiento, el operario que sangró debe retirar la aguja de la jeringa, y colocar la sangre en un tubo haciéndola deslizar por la pared de éste para evitar la hemólisis.  Inciso e) Los tubos de sangre se llevan al laboratorio, se colocan a temperatura ambiente durante UNA hora (1 h) para permitir el exudado del suero o durante UNA HORA (1 h) a TREINTA Y SIETE GRADOS CENTIGRADOS (37°C) y luego se colocan a CUARENTA Y OCHO GRADOS CENTIGRADOS (48°C) durante UNA HORA (1 h). Los tubos se centrifugan a MIL QUINIENTOS REVOLUCIONES POR MINUTO (1500 rpm) durante DIEZ MINUTOS (10 m) y el suero se trasvasa a tubos plásticos de UNO PUNTO CINCO MILILITROS (1.5 ml). Si la muestra se ve turbia se vuelve a centrifugar en microcentrífuga a CATORCE MIL REVOLUCIONES POR MINUTO (14.000 rpm) DIEZ MINUTOS (10 m) y se trasvasa el sobrenadante a un nuevo tubo limpio.  Inciso f) Una vez obtenido el suero, rotular cada muestra y almacenarlas en tubos de UNO PUNTO CINCO MILILITROS (1.5 ml) plásticos tipo eppendorf.  Inciso g) Todos los sueros de las sangrías serán fraccionados en CUATRO (4) alícuotas y serán envueltas, selladas y firmadas. Una de ellas es utilizada por la DGLyCT para su procesamiento, DOS (2) permanecerán en dependencias de la DGLyCT como contramuestras. Una cuarta muestra permanecerá sellada en la DGLyCT y será entregada a los representantes del laboratorio una vez concluidos la totalidad de los controles, si son solicitados.  Inciso h) En los casos en que se produjeran problemas técnicos en la realización de los controles que impidieran arribar a conclusiones precisas, la DGLyCT decidirá al respecto.  ARTICULO 52. — DECODIFICACION. Finalización de los controles. Una vez finalizados la totalidad de los controles se procederá a la apertura de los sobres firmados y recipientes oportunamente precintados a los efectos de identificar las marcas y series de las vacunas en control y confeccionar un acta.  ARTICULO 53. — Rechazo y decomisación. Las series de vacunas que no aprobaran los controles de esterilidad, inocuidad o inactivación y/o fisico-químicos, citados en los Artículos 35, 36 y 37 de la presente resolución no podrán continuar con las siguientes etapas de control y serán rechazadas y decomisadas.  ARTICULO 54. — Aprobación de controles oficiales. Información. Obtenidos los resultados aprobados de esterilidad, inocuidad o inactivación, físico-químicos y potencia en cobayos, se informa a la DGLyCT.  ARTICULO 55. — Facultad de la DGLyCT. Queda facultada la DGLyCT para realizar cualquier otro control adicional que considere necesario a fin de asegurar la correcta elaboración según lo declarado en el expediente de registro, conservación de las vacunas, así como el correcto desempeño del producto una vez aplicado.  ARTICULO 56. — Prueba de estabilidad inmunogénica. La DGLyCT podrá optar por su realización, previa comunicación al laboratorio productor. Se procederá de acuerdo al método establecido para el control de potencia de series y podrá ser realizada hasta la fecha de vencimiento de la vacuna.  ARTICULO 57 — Otorgamiento del Certificado de Uso y Comercialización. Finalizada la totalidad de los controles de autorización con resultados satisfactorios, la DGLyCT elevará los mismos a la Dirección Nacional de Agroquímicos, Productos Veterinarios y Alimentos (DNAPVyA) y se otorgará el Certificado de Uso y Comercialización.  ARTICULO 58. — Series aprobadas. Comercialización. Las series de registro aprobadas podrán ser comercializadas una vez obtenido el certificado correspondiente, cuyo número deberá ser impreso en cada uno de los envases.  ARTICULO 59. — Plazo de decomisación. Las series rechazadas o retiradas de control serán decomisadas en un plazo máximo de SESENTA (60) días, no admitiéndose cambios de destino.  ARTICULO 60. — Cuarentena. Las series presentadas quedarán en cuarentena hasta la finalización de los controles oficiales y no podrán ser modificadas o alteradas.  ARTICULO 61. — Controles posteriores a la obtención del Certificado. Una vez obtenido el Certificado de Uso y Comercialización, todas las series elaboradas con posterioridad deben ser sometidas a los controles de serie según lo descripto en la presente reglamentación.  ARTICULO 62. — SOBRE EL CONTROL DE SERIES. Obtención del Certificado. Las personas físicas o jurídicas deben obtener el Certificado de Uso, previo a la presentación a control de cada una de las series posteriores.  ARTICULO 63. — Solicitud de Retiro de Muestras. Las series de vacuna presentadas a control, iniciarán su trámite con la presentación de la Solicitud de Retiro de Muestras en la DGLyCT, ésta deberá estar acompañada con los resultados de los controles de producción y de los controles de producto terminado firmados por los responsables técnicos respectivos.  ARTICULO 64. — Toma de Muestras. Las muestras serán tomadas por personal del DGLyCT según el procedimiento determinado en el Artículo 10 de la presente resolución.  ARTICULO 65. — Fórmula cuali-cuantitativa y el Proceso de Producción. La fórmula cuali-cuantitativa y el proceso de producción de las series deberá ser igual a la serie de registro aprobada y presentada en el expediente correspondiente.  ARTICULO 66. — Controles Oficiales. Las series son controladas por la DGLyCT en esterilidad, inocuidad o inactivación, físico-químico y potencia en cobayos conforme los requisitos estipulados en los Artículos 34 al 61 de la presente resolución para los Controles Oficiales.  ARTICULO 67. — Imposibilidad de realizar controles. En caso que la DGLyCT no pueda realizar alguno de los controles mencionados anteriormente, esa serie de vacuna puede ser liberada con los controles internos aprobados del elaborador con resultado satisfactorio.  ARTICULO 68. — Series no aprobadas. Las series no aprobadas en el control de potencia pueden ser presentadas a un nuevo control oficial por única vez a solicitud del laboratorio elaborador. Los resultados del nuevo control definen si la serie de vacuna es aprobada o rechazada.  ARTICULO 69. — Certificado de Uso y Comercialización. Finalizados la totalidad de los controles, con resultados satisfactorios, la DGLyCT otorgará el correspondiente Certificado de Uso y Comercialización de la serie en control.  ARTICULO 70. — DISPOSICIONES GENERALES. Control de autorización y de serie. Los controles de autorización y los de series deben ser analizados por personal del servicio oficial en las dependencias de la DGLyCT o en aquellas que el SENASA determine.  ARTICULO 71. — Interdicción en el depósito. Las series de vacunas presentadas a control de autorización o de serie quedan interdictas en el depósito establecido y autorizado por la DGLyCT, desde la extracción de la muestra hasta que la DGLyCT lo determine. A solicitud del elaborador, la DGLyCT puede autorizar el traslado de las series en control.  ARTICULO 72. — Garantía de la inviolabilidad del producto. Las firmas elaboradoras deben asegurar bajo Declaración Jurada y con utilización de precintos o cerramientos que garanticen la inviolabilidad del producto, la permanencia de la totalidad de las dosis presentadas a control en las cámaras autorizadas durante todo el proceso.  ARTICULO 73. — Temperatura de Conservación. La temperatura de conservación de la vacuna debe estar comprendida entre DOS GRADOS CENTIGRADOS (2°C) y OCHO GRADOS CENTIGRADOS (8°C) o según lo indicado por el elaborador. Las cámaras frías deben contar con registro de temperatura.  ARTICULO 74. — Período de Validez. El período de validez de las vacunas virales no vesiculares es de UN (1) año a partir de su formulación cuando no se presenten pruebas de estabilidad.  ARTICULO 75. — Solicitud de Períodos de Validez Mayor. Para obtener períodos de validez mayores a los detallados en el artículo anterior, se deben presentar pruebas de estabilidad que acrediten un plazo mayor de validez del producto. No se aceptan solicitudes de extensión de vencimiento de series en particular. La prueba de estabilidad se realizará en la DGLyCT y deberá cumplir con los requisitos de aprobación de Potencia en Cobayos, descriptos en los Artículos 38 al 46 de la presente resolución, al tiempo solicitado por el laboratorio elaborador.  ARTICULO 76. — Medidas de transporte. El laboratorio elaborador debe arbitrar las medidas necesarias para que los productos sean remitidos y conservados hasta que lleguen a poder del destinatario, en las condiciones especificadas en la solicitud de inscripción.  ARTICULO 77. — Cantidad mínima de dosis. Se aceptan únicamente series con una cantidad mínima de CINCUENTA MIL (50.000) dosis.  ARTICULO 78. — Se aprueba el procedimiento y las instrucciones tipificadas para llevar a cabo las técnicas de Seroneutralización o ELISA, para la Rinotraqueitis Infecciosa Bovina (IBR) que, como Anexo I, forma parte integrante de la presente resolución.  ARTICULO 79. — Se aprueba el procedimiento y las instrucciones tipificadas para llevar a cabo las técnicas de ELISA, para RVB que, como Anexo II, forma parte integrante de la presente resolución.  ARTICULO 80. — Se aprueba el procedimiento y las instrucciones tipificadas para llevar a cabo las técnicas de inhibición de la Hemoaglutinación para PI3 que, como Anexo III, forma parte integrante de la presente resolución.  ARTICULO 81. — Se aprueba el procedimiento y las instrucciones tipificadas para llevar a cabo las técnicas de Seroneutralización, para VDVB que, como Anexo IV, forma parte integrante de la presente resolución.  ARTICULO 82. — Infracciones. Los infractores a la presente resolución son pasibles de las sanciones que pudieran corresponder de conformidad con lo establecido por el Capítulo VI del Decreto Nº 1.585 del 19 de diciembre de 1996, sin perjuicio de las medidas preventivas inmediatas que pudieran adoptarse.  ARTICULO 83. — Carácter de las Pruebas Oficiales de Control. Declárense públicas las pruebas oficiales de control de vacunas en todas sus etapas.  ARTICULO 84. — Plazos de Actualización. Los laboratorios que poseen vacunas con registro y número de certificado vigente a la fecha de emisión de la presente resolución deben actualizar el expediente del producto de acuerdo con las exigencias de la presente resolución en un plazo máximo de TRES (3) años.  ARTICULO 85. — Organo Rector. La Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLyCT) del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA es el órgano rector para la interpretación y decisión en aquellas cuestiones no contempladas en la presente norma.  ARTICULO 86. — Vigencia. La presente resolución entra en vigencia a partir de su publicación en el Boletín Oficial.  ARTICULO 87. — De Forma. Comuníquese, publíquese, dése a la Dirección Nacional del Registro Oficial y archívese. — Méd. Vet. MARCELO S. MIGUEZ, Presidente, Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria.  ANEXO I   A- ELISA para BoHV  Este ensayo es un ELISA directo para la detección de anticuerpos anti-BoHV-1. Kit del INSTITUTO NACIONAL DE TECNOLOGIA AGROPECUARIA (INTA).  Se sensibilizan placas con virus BoHV-1 (obtenido a partir de células MDBK infectadas) (pocillo positivo) o células MDBK control negativo de infección (pocillo negativo), especialmente preparado para tal fin. La concentración óptima de virus y mock para sensibilizar las placas se determina por titulación cruzada para cada lote producido y es constante para toda la placa. Los sueros se ensayan en ambos posillos (+ y -) en diluciones seriadas base 4 comenzando desde una dilución mínima de 1/40 en SEIS (6) diluciones para evaluar la respuesta a la vacunación de cobayos (Parreño, Romera y col, 2010).  El ensayo se revela utilizando como anticuerpo detector un Ac anti IgG (H+L) de cobayo marcado con peroxidasa. Como sistema sustrato cromógeno se utiliza H202/ABTS.  MATERIALES  • Placas para ELISA Immulon 1 B (Dynatech Lab, USA, cat. # 014-01-3455).  • Tips amarillos (hasta 200 µl).  • Tips azules (hasta 1000 µl).  • Tips blancos Multistep Multicanal (1000 µl).  • Cubetas descartables o reciclables autoclavables.  • Descarte.  • Bolsas de autoclave verdes.  • Papel absorbente.  • Guantes descartables.  EQUIPOS  • Micropipeta hasta 200 µl  (tolerancia máxima admitida: 5 µl).  • Micropipeta hasta 20 µl (tolerancia máxima admitida: 0.2 µl).  • Micropipeta hasta 1000 µl (tolerancia máxima admitida: 10 µl).  • Micropipeta multicanal OCHO (8) o DOCE (12) canales, hasta 300 µl. Sin restricciones respecto a la tolerancia.  • Estufa de 37°C con atmósfera controlada a CERO COMO CINCO POR CIENTO (0,5%) de CO2. Se admite para esta técnica una variabilidad en el rango de:  1. Temperatura de la estufa: 0.5°C.  2. Porcentaje de CO2: 0.1%.  • En ausencia de estufa con CO2, se pueden realizar las incubaciones en una estufa de 37°C dentro de una cámara húmeda.  • Lector de ELISA con filtro para lectura a 405 nm (rango: 400-410 nm).  • Heladera 4-8°C.  REACTIVOS  • Buffer Coating (carbonato/bicarbonato) pH 9,6. (Tolerancia en pH: 0.03)  Na2CO3                                    0,159 grs.  NaHCO3                                    0,293 grs.  Agua destilada c.s.p.                100 ml  Ajustar pH con NaOH/HCl 1 N      Almacenar a 4°C (1-8°C).      • Buffer Acido cítrico pH 5.0 (Tolerancia en pH: 0.03)  Acido Cítrico Monohidrato            0,960 grs.  NaOH 1 N aproximadamente       10 ml para llevar a pH 5,0  Ajustar a pH: 5,0 ± 0.5 con Na(OH) o HCI1N.  Agua destilada c.s.p.    100 ml  Medir pH luego de agregarle el agua destilada. Ajustar nuevamente en caso de ser necesario.  Almacenar a 4°C (1-8°C).  • ABTS Solución Madre  ABTS                            0,22 grs.  Buffer Acido Cítrico      10 ml.  Fraccionar en alícuotas de 1 ml en tubos plásticos tipo “eppendorf” de 1.5 ml.  Almacenar a: -20 ± 5°C.  • Solución de uso ABTS  (Preparar en el momento de uso sólo la cantidad necesaria y descartar el remanente).  Solución madre ABTS            300 µL  Buffer Acido cítrico                10 ml  Agua oxigenada (H2O2)       10 µL  Se puede reemplazar por soluciones de ABTS comerciales listas para usar  • SDS (dodecil/laurel sulfato de sodio) al CINCO POR CIENTO (5%) en agua.  • Agua Oxigenada de 30 volúmenes.  • Buffer de Lavado (PBS 1X Tween 0,05%)  PBS                        1000 ml Tween20                500 µL  • Buffer de bloqueo y diluyente. PBS/Tween 20 0.05%/OVA 1% PH 7.4  Tween20                500 ul.  PBS 1X                   1000 ml.  Ovoalbúmina          10 grs.  ANTIGENO  Antígeno viral positivo: Preparado a partir de cultivos de MDBK infectados con cepas de BHV-1 de referencia.  Antígeno control, negativo o mock: Preparado a partir de cultivos de MDBK mock infectados.  CONJUGADO  Conjugado Anti IgG de Cobayo marcado con peroxidasa.  Affinity purified goat anti- Guinea Pig Ig G (H+L) peroxidase labeled, KPL, cat. # 14-17-06.  Peroxidase- conjugated affiniPure Goat anti-guinea pig IgG (H+L), Jackson, cat. # 106-035-003  Conjugados de otras marcas o conjugados producidos internamente previamente verificados/validados en INTA como óptimos para ser utilizados en el ensayo de ELISA.  CONTROLES  Se utiliza un Control Positivo (suero de cobayo inmunizado con vacuna de referencia, de título conocido), un Control Negativo, (suero negativo para cualquier concentración de siembra) y Blanco de Reactivos (PBS). Para cada uno de los controles se utilizan CUATRO (4) pocillos (DOS (2) capturas positivas y sus DOS (2) capturas negativas correspondientes).  Se recomienda además, incluir en cada ensayo una muestra positiva de título conocido y otra muestra negativa (sueros estándares internos). Estas muestras se siembran aleatoriamente en distintos lugares en al menos dos de las placas del ensayo y se corren en todos los ensayos.  Control positivo cobayo: Pool de sueros de CINCO (5) cobayos vacunados con DOS (2) dosis de 0.600 ml de vacuna conteniendo 107 DICT50/ml de HoVB-1 en adyuvante oleoso o acuoso según corresponda (Vacuna de Referencia INTA-SENASA).  Se considerarán conformes aquellos ensayos donde el control positivo se encuentre dentro del valor promedio ± 1 desvío Standard (SD). _____________________________________________________________________________________________________________________ valor promedio ± 1 SD = 0.520 ≤ 0.740 ≤ 0.960 _____________________________________________________________________________________________________________________  Dicho suero, analizado por seroneutralización debe arrojar un título de anticuerpos neutralizantes contra BoHV-1 entre DOS PUNTO CUATRO (2.4) y TRES PUNTO CERO (3.0).  Control negativo cobayo: Suero de cobayo cuya absorbancia corregida en la dilución de uso resulte menor al cut off de la técnica CUARENTA POR CIENTO (40%) de la absorbancia corregida del control positivo.  STD +: Suero positivo de cobayo de título conocido  STD  Preparación: Estos controles y estándares se seleccionan a partir de sueros de cobayos vacunados con vacunas de concentración de Ag conocida y asignada como vacuna de referencia.  PROCEDIMIENTO DEL ELISA  Sensibilización de la placa.  Realizar la dilución de trabajo del Antígeno Positivo (Producción de virus BoHV-1) en Buffer Coating pH 9,6.  Diluir el Ag Negativo (MDBK Mock) en la misma dilución que el Ag + en Buffer Coating pH 9,6.  Colocar 50 µl de Captura Positiva en las filas B-D-F-H.  Colocar 50 µl de Captura Negativa en las filas A-C-E-G. _____________________________________________________________________________________________________________________ Se necesitan 3 ml de Ag+ y Ag- por placa de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos _____________________________________________________________________________________________________________________  • Incubar la placa tapada ON (17 horas ±2 hs), entre 4° C y 8° C.  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa TRES (3) veces con PBS/Tween20 0,05%.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  1. Bloqueo  Sobre la placa sensibilizada con Virus y Mock, lavada y secada según el punto 3.1, se deben colocar 100 µL/pocillo de Buffer de bloqueo (PBS/Tween20 0.05%, Ova 1%, pH 7.4).  • Incubar la placa 1 hora ± 15 minutos, a 37°C en 5% CO2.  • Descartar el contenido de la placa.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  2. Muestras  Descongelar las muestras a ensayar, así como también controles y estándares positivos y negativos.  En un ensayo estándar entran SIETE (7) muestras por placa, con SEIS (6) diluciones para cada una, aunque según las necesidades especiales se pueden diseñar las placas con más muestras, y menos diluciones por muestra.  Las diluciones de las muestras se realizan en placas sustitutas (placas limpias de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos aptas para cultivos celulares).  Los pocillos donde se sembrarán los controles (Positivo, Negativo y PBS), no deben ser completados con PBS en la placa sustituta, sino que se cargarán directamente sobre la placa original (ver diseño de placa).  Para el sembrado de muestras y diluciones correspondientes se procederá sobre la placa sustituta.  Se colocarán 195 µL, de buffer diluyente en las columnas 1 (A-B-C-D-E-F-G-H) y 7 (A-B-C-D-E-F-G-H).  Se colocarán 150 µl de buffer diluyente en el resto de las columnas 2-3-4-5-6 (A-B-C-D-E-F-G-H) y 8-9-10-11-12 (C-D-E-F-G-H).  En los pocillos 1H y 1G se colocarán 5 µl respectivamente de la muestra “1”.  En los pocillos 1F y 1E se colocarán 5 µl respectivamente de la muestra “2”. Así sucesivamente con el resto de las muestras (ver ilustración de diseño de placa).    Diseño de placa:  • Diluciones de muestras:  Con una pipeta multicanal de 50 µl se homogenizarán las muestras de la primer columna de pocillos (195 µl PBS+ 5 µl muestra) y se traspasarán 50µl a la segunda columna, donde se homogenizará tomando 50 µl para traspasarlos a la siguiente. Así sucesivamente hasta la columna SEIS (6) inclusive. El mismo procedimiento se seguirá desde la columna UNA (1) a SEIS (6) y con nuevos tips de SIETE (7) a la DOCE (12) inclusive.  De esta manera quedarán las muestras diluidas, desde una dilución inicial de 1/40 y luego diluciones en base 4 (Rango de diluciones analizadas expresadas en logaritmos: 1.6-4.61).  Tomar 50 µL de las diluciones hechas en la placa sustituta, y traspasarlos a la placa de reacción, utilizando el mismo set de tips comenzando de la dilución más diluida a la más concentrada.  Sembrado de controles: Preparar la dilución correspondiente de los controles y sembrar 50 µl  de éstos en los pocillos correspondientes 7-8 y 9-10, A-B de la placa de reacción según se indica en la figura.  • Luego de sembradas todas las muestras en la placa:  • Incubar la placa 1 hora ± 15 minutos, a 37°C en 5% CO2.  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa 4 veces con PBS/Tween 0.05%.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  3. Conjugado.  Realizar la dilución de conjugado en PBS Tween OVA, según su título específico para este ensayo. Agregar la dilución de uso (según su titulación en este ELISA) de conjugado Anti IgG de Cobayo marcado con Peroxidasa.  - Colocar 50 µl en todos los pocillos.  • Incubar la placa UNA (1) hora a 37°C en 5% CO2.  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa CINCO (5) veces con PBS/Tween 0.05%.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  4. Revelado  Preparar: Solución de uso ABTS  Sol. Madre    300 µl  Buffer ácido cítrico    10 ml  Agua oxigenada    10 µL _____________________________________________________________________________________________________________________ Se necesitan 5 ml de solución de Revelado por placa de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos _____________________________________________________________________________________________________________________  - Colocar 50 µl, en cada pocillo  - Dejar reaccionar 10 minutos o hasta que los controles entren en el rango esperado de lectura.  Los SD+ deben llegar a su título correspondiente.  - Cortar la reacción con 50 µl de SDS al 5%  5. Lectura y cálculos  LECTURA  • Leer las placas a 405 nm o 410 nm en un Lector de ELISA.  CALCULOS  Calcular la Densidad óptica (DO) corregida de cada muestra (DO cap positiva - DO de cap negativa).  Calcular el promedio de las réplicas del control positivo.  Calcular el CUARENTA POR CIENTO (40%) del promedio del control positivo.  Calcular el promedio de las réplicas del control negativo.  Calcular el SD del control negativo.  Calcular el PP% de cada muestra en cada dilución  PP=DOcorr. muestra/DOcorr. C+ * 100  6. Aceptación del ensayo (CONFORMIDAD)  Los criterios que a continuación se describen se aplicarán individualmente a cada placa.  Los resultados pueden interpretarse e informarse siempre que se haya dado conformidad al ensayo.  El ensayo se considera conforme cuando: el valor de la DOc del control positivo se encuentra dentro del rango establecido (0.520 a 0.960), el control negativo y el blanco de reactivos presentan porcentaje de positividad menores al punto de corte de la técnica CUARENTA POR CIENTO (40%), el título del suero standard positivo da el valor esperado +/- una dilución base 4 (error del método).  Para validar el ensayo los sueros de los cobayos inmunizados con la vacuna de referencia deben dar un título promedio dentro del rango establecido como el valor promedio obtenido (luego de realizar 5 pruebas) ± dos desvíos estándar.  7. Informe de resultados  Se informa el título de Ac anti-BoHV-1 detectado como el log en base 10 de la inversa de la máxima dilución cuyo porcentaje de positividad es mayor o igual al punto de corte del ensayo, establecido como mayor o igual al CUARENTA POR CIENTO (40%) del control positivo (100%PP). Las muestras negativas en la mínima dilución de suero ensayada (1/40) se expresan con un título arbitrario de CERO PUNTO TRES (0.3) para los cálculos.  8. APROBACION DE LA PRUEBA DE POTENCIA EN COBAYO SEGUN ESTA TECNICA  Se evaluarán todos los sueros de los animales inmunizados con la vacuna en control. Se seleccionarán CINCO (5) de los sueros con mayor título obtenido y sobre ellos se realizará el promedio. Para la APROBACION de la vacuna sometida a control, el promedio de los títulos deberá ser mayor o igual a 1.93 por la técnica de ELISA para BoHV-1.  B- SERONEUTRALIZACION PARA BoHV-1  La prueba de seroneutralización para la detección de Ac contra BoHV-1 emplea el método Suero variable-virus fijo: donde diluciones variables de sueros problema (seriadas base 2 o base 4) se enfrentan a una cantidad establecida y fija de virus (100 DICT50/ml). La mezcla suero-virus se coloca en un sistema susceptible a la infección por BoHV-1, en este caso células de línea MDBK.  La inversa de la mayor dilución que protege a las células de la infección se denomina título seroneutralizante del suero (expresión del título por punto final).  El título neutralizante del suero también se puede establecer por el método de Reed y Muench (virus fijo-suero variable).  MATERIALES  • Placas de Cultivo de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos, estériles.  • Tips amarillos (hasta 200µl).  • Tips azules (hasta 1000 µ).  • Tubos plásticos cónicos de 1500 µl.  • Tubos cónicos de 50ml.  • Frascos de vidrio con tapa a rosca (GIBCO o similar).  • Pipetas de vidrio estériles de 5-10ml.  • Cubetas descartables.  • Descarte.  • Bolsas de autoclave verdes.  • Papel absorbente.  EQUIPOS  • Micropipeta monocanal, hasta 200 µl (tolerancia admitida 5).  • Micropipeta monocanal, hasta 20 µl (tolerancia admitida 5).  • Micropipeta monocanal, hasta 1000 µl (tolerancia admitida 10).  • Micropipeta multicanal 8 hasta 1000 µl. Sin restricciones respecto a la tolerancia.  • Micropipeta multicanal 12. Sin restricciones respecto a la tolerancia.  • Propipeta (pipetaid, Drummond Scietific Co. O equivalente).  • Incubadora de 37°C y 5% CO2.  • Cabina de seguridad biológica.  • Baño termostático (temperatura a 56 ± 3°C).  • Heladera 4-8°C.  • Microscopio óptico invertido.  REACTIVOS  • Suspensión de células MDBK: con una concentración de 250.000 cel./ml, (rango 200.000-280.000).  • MEM-E  • Suero Fetal Bovino (SFB): controlado (libre de micoplasmas y endotoxinas y probado en cultivos celulares), fraccionado en alícuotas de 10 ± 2ml y 20 ± 2ml y conservado a -20 ± 3°C.  • Antibiótico 100X  Penicilina sódica G                    10,025 gr  Sulfato de Streptomicina           33,35 gr  Gentamicina SO4                       25 gr  PBS(10X)                                    50 ml  Agua destilada c.s.p.                  5 litros  Una vez disuelto se esteriliza por filtración (0.22 um) y se almacena a -20 ± 3°C.  La fracción en uso se conserva a 4-8°C.  Se adiciona 10 ml de ATB por cada litro de medio de trabajo.  • Virus de trabajo: BoHV-1 Cepa de referencia Los Angeles (LA) o cepa de virus BoHV-1 autóctonos. Diluida de tal manera de contener 100DICT 50%.  CONTROLES  * Control positivo cobayo: Suero de cobayo vacunado con vacuna anti-BoHV-1.  * Control negativo cobayo: Pool de sueros normales de cobayo (sueros de cobayos pre-inmunización).  * Estándar positivo: Suero de título conocido.  * Estándar negativo: Suero normal de cobayo.  Preparación: Estos controles se seleccionan a partir de sueros de cobayos vacunados con vacunas de referencia para BoHV-1.  Se corren en un mínimo de CINCO (5) ensayos de SN y se seleccionan si su título cumple con los requisitos antes mencionados. Diluir ½ en glicerol para evitar su congelamiento, fraccionar en alícuotas de 100 µl y almacenar a -20°C.  PROCEDIMIENTO  1. Suspensión celular  Se necesitan 10ml de suspensión celular con 250.000 cel./ml por placa.  Una vez que se recibe la suspensión se realiza el recuento celular, si la suspensión contiene menor cantidad de células, ésta se concentra por centrifugación a 1000 rpm, 5 minutos y se elimina el sobrenadante excedente. Si la suspensión contiene más células se diluye con medio de trabajo. Una vez realizado el ajuste se repite el recuento, el rango admitido va desde 200.000-280.000 cel/ml. Una vez ajustada la suspensión se mantiene a temperatura ambiente bajo agitación suave en agitador magnético.  Fórmula a utilizar para el ajuste:  vol final = conc inicial * vol inicial / 250.000 cel/ml  2. Inactivación de las muestras  Previo a su utilización en el ensayo de SN, las muestras de suero deben ser inactivadas en baño a 56 ± 3°C, durante 30 ± 5 minutos. Este paso se realiza fundamentalmente para inactivar el complemento de los sueros a analizar.  3. Preparación del medio de trabajo  El medio de dilución de las muestras y del virus, se prepara a partir del MEM-E + 1% de ATB + 2% de SFB.  4. Ensayo de SERONEUTRALIZACION SUERO VARIABLE-VIRUS FIJO  • Colocar 75 µl/pocillo de medio en todas las placas a utilizar.  • Diseño de la placa de los sueros problema: Agregar 25 µl de la muestra problema, por cuadruplicado, (Fila A o Fila E pocillos 1-4; 5-8; 9-12, respectivamente) (ver figura 1).  • Se comienza desde una dilución mínima de 1/4 que sumado al volumen de virus y células queda en una dilución inicial de 1/8.  • Incluir en forma aleatoria entre las muestras a analizar estándares de título conocido.  • Diseño de la placa control: Se colocan los sueros control positivo y negativo del mismo modo que las muestras. Para realizar el control de células se colocan 150 µl de medio de trabajo por cuadruplicado en cuatro filas (16 pocillos totales). Para el control de las 100 DICT de virus, se realizan 3 diluciones en base 10 a partir de la dilución de trabajo. Se siembran 75 µl por cuadruplicado de las 4 diluciones preparadas a las cuales se les agrega 75 µl de medio (ver figura 2).  • Realizar diluciones en base 4, pasando 25 µl, descartando los últimos 25 µl para todas las muestras y sueros controles.  • Se realiza un control de toxicidad de cada muestra colocando 75 µl de medio en otra placa.  • Preparar la dilución de trabajo de virus (100 DICT) en el medio de trabajo. Preparar el volumen necesario para todas las placas del ensayo considerando que se necesitan 8 ml de virus por placa.  • Colocar 75 µl de la dilución de trabajo del virus en todas las placas, excepto en la placa de controles de toxicidad, en el control de células y en el control de 100 DICT.  • Incubar las placas (mezcla suero-virus) durante 1 hora a 37 ± 1°C en atmósfera de CO2 al 5 ± 1%.  • Agregar sobre la mezcla suero-virus 100 µl por pocillo, de la suspensión celular conteniendo 250.000 cel./ml en todas las placas.  • Incubar las placas a 37 ± 1°C en atmósfera de CO2 al 5 ± 1%, durante 48-72 hs.  5. Lectura  • Al cabo de las 48-72 horas la lectura se realiza por inspección de las monocapas al microscopio óptico.  • La lectura es por observación de efecto citopático. Se considera positivo aquel pocillo que presente un foco de CPE característico de BoHV-1. En los controles de toxicidad se debe observar la monocapa igual que los controles de células, libre de efecto citopático viral y libre de efecto tóxico.  • Si un suero determinado presenta toxicidad en las diluciones analizadas, el título de  anticuerpos neutralizantes no podrá determinarse por esta técnica.  6. Aceptación del ensayo (CONFORMIDAD) El ensayo se considera conforme cuando:  6.1. Las monocapas de los controles de células se encuentran en buen estado (MC confluentes, células refringentes, sin alteraciones morfológicas, sin rastros de contaminación y sin CPE de BoHV-1).  6.2. El título de la suspensión viral debe contener 100 DICT 50%, con un rango admitido entre 50-200 DICT (ver tabla 1).  6.3. El control positivo debe dar el título esperado ± 1 pocillo. Ejemplo: 2.30< 2.4 < 2.50  6.4. El control negativo debe dar negativo. Se le coloca un valor arbitrario de 0.3 para los cálculos.    7. Interpretación  El título neutralizante del suero analizado se obtiene según la cantidad de replicadas protegidas en las diluciones seriadas en base al método de interpolación de Reed y Muench.  Tabla 2. Titulación de Ac en microplacas (log 10)  Pocillos Protegidos1/81/321/1281/5121/20481/81921/327681/13107210.701.301.902.503.103.704.304.9020.901.502.102.703.303.904.505.1031.101.702.302.903.904.104.705.3041.201.802.403.004.104.204.805.40 Para validar el ensayo los sueros de los cobayos inmunizados con la vacuna de referencia deben dar un título promedio dentro del rango establecido como el valor promedio obtenido (luego de realizar 5 pruebas) ± dos desvíos estándar.  8. Informe de resultados  Se informa el título de Ac anti-BoHV-1 neutralizantes obtenido según el método de Reed y Muench.  Las muestras negativas en la mínima dilución de suero ensayada (1/8) se expresan con un título arbitrario de 0.3 para los cálculos.  9. APROBACION DE LA PRUEBA DE POTENCIA EN COBAYO PARA IBR SEGUN SN  Se evaluarán todos los sueros de los animales inmunizados con la vacuna sometida a control. Se seleccionarán CINCO (5) de los sueros con mayor título obtenido y sobre ellos se realizará el promedio. Para la APROBACION de la vacuna sometida a control, el promedio de los títulos deberá ser mayor o igual a 1.31 por la técnica de SN para BoHV-1.  ANEXO II   ELISA PARA RVB  Este ELISA utilizado consiste en un ensayo doble sándwich, desarrollado a partir de la técnica descripta para bovinos (Fernández y col. 1996; 1998; Parreño y col, 2004). La técnica fue adaptada para detectar Ac IgG en suero de cobayos vacunados con vacunas utilizadas para la prevención de las diarreas neonatales que contengan RV. Se utiliza para detectar anticuerpos IgG anti rotavirus en suero de cobayos inmunizados con vacunas destinadas a prevenir las diarreas neonatales del ternero.  Brevemente, se sensibilizan placas de ELISA de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos con un suero hiperinmune anti-RVB obtenido en terneros descalostrados desafiados e hiperinmunizado con rotavirus bovino en buffer carbonato-bicarbonato pH: 9,6. Las placas se incuban durante 18 horas a 48°C y luego se bloquean con leche descremada. Posteriormente se agrega sobrenadante clarificado de cultivos de MA-104 infectados con RVB cepa IND (P[5]G6) con título viral no menor a 10^7 UFF/ml (pocillos positivos) o sobrenandante de células MA-104 sin infectar (pocillos negativos). A continuación se colocan las muestras a analizar en diluciones seriadas en base 4 a partir de una dilución de 1/16. Finalmente, se agregan un anticuerpo comercial anti-IgG de cobayo, marcado con peroxidada. La reacción se revela utilizando H2O2/0,05% ABTS como sistema sustrato/cromógeno y detenida con el agregado de 50 de SDS al 10%. La lectura de las placas se realiza a 405 nm.  Los resultados pueden interpretarse e informarse siempre que se haya dado conformidad al ensayo. Una muestra puede ser negativa, positiva o inespecífica. Pero en general el ensayo se utiliza para obtener el título de Ac IgG anti-RV el que se expresa como la inversa de la máxima dilución con lectura superior al punto de corte o “cut off” del ensayo.  ALCANCE Y OBJETIVOS  Este ELISA se ha diseñado para detectar Ac IgG (H+L) en sueros de cobayos vacunados con vacunas para la prevención de las diarreas neonatales, que contengan RV.  MATERIALES  • Placas para ELISA NUNC-inmuno plate-Maxisorp, cat.# 442404 o similar  • Tips amarillos (hasta 200 µl)  • Tips azules (hasta 1000 µl)  • Tips blancos Multistepper Multicanal (1000 µl).  • Cubetas descartables o reciclables autoclavables  • Cubeta descartable para ABTS (según lo indicado en el I 22-02-05 - Clasificación y Disposición de Residuos Especiales)  • Tubos cónicos de 15 y 50 ml  • Descarte  • Bolsas de autoclave verdes  • Papel absorbente  • Guantes descartables  EQUIPOS  • Micropipeta hasta 200µl (tolerancia máxima admitida: 5µl)  • Micropipeta hasta 20µl (tolerancia máxima admitida: 0.2µl)  • Micropipeta hasta 1000µl (tolerancia máxima admitida: 10 µl)  • Micropipeta multicanal 8-12 hasta 300µl. Sin restricciones respecto a la tolerancia.  • Micropipeta multistepper multicanal 8 hasta 300 µl. Sin restricciones respecto a la tolerancia.  • Estufa de 37°C con atmósfera controlada a 0,5% de CO2.  Se admite para esta técnica una variabilidad en el rango de:  3. temperatura de la estufa: 0.5° C.  4. Porcentaje de CO2: 0.1%.  • Lector de ELISA con filtro para lectura a 405 nm (rango: 400-410 nm)  • Microcentrífuga (hasta 14.000 rpm)  • Heladera 4-8°C  • Balanza digital hasta 200 g  REACTIVOS  • Buffer Coating (carbonato/bicarbonato) pH 9,6. (Tolerancia en pH: 0.03)  Na2CO3                         0,159 grs.  NaHCO3                         0,293 grs.  Agua destilada c.s.p.     100 ml  Ajustar pH con NaOH/HCl I N  Almacenar a 4°C (1-8°C)  • Buffer Acido cítrico pH 5.0 (Tolerancia en pH: 0.03)  Acido Cítrico Monohidrato       0,960 grs.  NaOH IN aprox.                      10 ml para llevar a pH 5,0  Ajustar a pH: 5,0 ± 0.5 con Na(OH) o HCIIN.  Agua destilada c.s.p.    100 ml  Medir pH luego de agregarle el agua destilada. Ajustar nuevamente en caso de ser necesario. Almacenar a 4°C (1-8°C)  • ABTS Solución Madre  ABTS                                0,22 grs.  Buffer Acido Cítrico          10 ml.  Fraccionar en alícuotas de 1 ml en tubos plásticos tipo “eppendorf” de 1.5 ml.  Almacenar a -20°C ± 5°C.  • Solución de uso ABTS  (Preparar en el momento de uso sólo la cantidad necesaria y descartar el remanente).  Solución madre ABTS            300µl  Buffer Acido cítrico                10ml  Agua oxigenada H2O2          10µL  • SDS (dodecil/laurel sulfato de sodio) al 5% en agua.  • Agua Oxigenada de TREINTA (30) volúmenes.  • Buffer de Lavado (PBS 1X Tween 0,05%)  PBS                                    1000ml  Tween 20                           500 µL  • Buffer de bloqueo  Leche descremada en polvo    10 grs.  PBS / Tween 20 c.s.p.              100ml  • Captura suero hiperinmune de ternero descalostrado desafiado e hiperinmunizado con rotavirus (INTA).  ANTIGENOS  • Antígeno Positivo: suspensión de Rotavirus Bovino grupo A producido en células MA104 (INTA).  • Antígeno negativo: Células MA-104 MOCK (NO INFECTADAS O CONTROL NEGATIVO DE INFECCION)  CONJUGADO  • Ac conjugados con peroxidasa: Conjugado Anti IgG de Cobayo marcado con peroxidasa. Affinity purified goat anti- Guinea Pig Ig G (H+L) peroxidase labeled, KPL, cat # 14-17-06 o de otras marcas o productos internamente verificados/validados en INTA como óptimos para utilizarse en esta técnica.  CONTROLES  • Controles positivos: muestra de suero de cobayo ya titulados en ensayos previos y que presentan un título conocido probado al menos en CINCO (5) ensayos. Estos sueros se obtiene a partir de animales vacunados con vacuna de RVB de referencia.  • Controles negativos: suero normal de cobayo diluido 1 en 4.  Se corren los controles que correspondan en TODAS las placas de un ensayo, según el tipo de muestras a ensayar.  Sueros Estándares positivos y negativos: sueros de título conocido que se corren intercalados entre las muestras.  • PBS (Blanco de reactivos). Se corre en TODAS las placas de un ensayo.  PREPARACION DE MUESTRAS  Sueros:  No necesitan preparación previa, sólo que estén totalmente descongelados y homogeneizados.  PROCEDIMIENTO DEL ELISA  1. Sensibilización de la placa  Preparar el volumen necesario de Captura positiva: según la cantidad de placas a utilizar y el la dilución de trabajo del lote de suero en uso. Se necesitan 10ml de del dilución de trabajo de la captura positiva por placa de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos.  Colocar 100 µL/ pocillo, en todas las placas de reacción  Incubación: ON 18 ± 2 hs a 4-8°C  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa 1 vez con PBS/Tween20 0.05%  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  2. Bloqueo  Leche Descremada 10% en PBS/ Tween 20 0.05%  Colocar 100 µL/pocillo  Incubación: 1 hs 37°C _____________________________________________________________________________________________________________________ A partir de este paso, si no se cuenta con estufa con atmósfera de CO2 las incubaciones se pueden realizar a 37°C en una cámara húmeda (recipiente plástico con tapa donde se coloca una servilleta de papel humedecido con agua destilada). _____________________________________________________________________________________________________________________  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa 2 veces con PBS/Tween 20 0.05%  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  3. Antígenos  • Realizar la dilución de trabajo del Antígeno Positivo (Lote de Rotavirus bovino para ELISA) en PBS/Tween20 0.05%  • Diluir el Ag Negativo (MA-104 Mock) en la misma dilución que el Ag positivo, en PBS/Tween20 0.05%. _____________________________________________________________________________________________________________________ Se necesitan 5ml de Ag+ y 5 ml de Ag por placa de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos _____________________________________________________________________________________________________________________  • Colocar 100µl de Ag positivo en las columnas impares  • Colocar 100µl de Ag negativo en las columnas pares  • Incubación: 1 hs 37°C  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa 4 veces con PBS/Tween20 0,05%.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente _____________________________________________________________________________________________________________________ NOTA: Si las placas no se usan en el momento, después de los lavados, se almacenan a -20°C (± 2°C) hasta su momento de uso. _____________________________________________________________________________________________________________________  4. Muestras _____________________________________________________________________________________________________________________ NOTA: En cada placa del ensayo incluir: Blanco de reactivos: PBS/Tween20 0.05%, 4 diluciones de un control positivo y dos pocillos con la dilución 1/4 de un control negativo. Incluir en el ensayo en forma aleatoria en alguna de las placas estándares positivos de título conocido y estándares negativos. _____________________________________________________________________________________________________________________    Realizar las diluciones en placas sustitutas (placas de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos de cultivo, limpias, no estériles)  • Cargar 150µl de PBS/Tween en todos los pocillos y cargar en la primera fila el volumen de muestra o su dilución previa  Ejemplos: 50µl de muestra pura (dil inicial 1/4); o 50µL de una dilución previa 1/16 (dil inicial 1/64) 10µl de muestra pura (dil. inicial 1/16); o 10µL de una dilución previa 1/16 (dil inicial 1/256)  • Traspasar 50µl de fila en fila (así se obtienen diluciones base 4)  • Una vez finalizadas las diluciones, traspasar 100µl/pocillo a la placa de reacción, comenzando desde la dilución más diluida a la más concentrada.  • Descartar las placas sustitutas y colocar las placas de reacción en la estufa  • Incubar la placa de 1 h a 37°C, en 5% CO2.  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa 4 veces con PBS/Tween 0.05%.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  5. Conjugado  Realizar la dilución de trabajo del conjugado - anti-lgG (H+L) cobayo. Colocar 100µl del conjugado en todos los pocillos. _____________________________________________________________________________________________________________________ Se necesitan 10ml de dilución de trabajo de conjugado por placa de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos _____________________________________________________________________________________________________________________  • Incubar la placa una hora a 37°C, en 5% CO2.  • Descartar el contenido de la placa.  • Lavar la placa 4 veces con PBS/Tween 0.05%.  • Secar golpeando la placa contra un papel absorbente.  6. Revelado  Preparar: Solución de uso ABTS  Sol. Madre    300µl  Buffer ácido cítrico    10ml  Agua oxigenada    10µL. _____________________________________________________________________________________________________________________ Se necesitan 10ml de Solución de Revelado por placa de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos _____________________________________________________________________________________________________________________  Se puede reemplazar por reactivos comerciales listo para usar  • Colocar 100µL en cada pocillo  • Dejar reaccionar en oscuridad, revisar las placas cada 2-3 minutos, realizar lecturas previas y cortar cuando el control positivo y los estándares positivos hayan alcanzado el título esperado.  • Cortar la reacción con 50 µL de SDS al 5%  7. Lectura y cálculos  LECTURA  • Leer las placas a 405 nm en un Lector de ELISA.  CALCULOS  o Calcular la Densidad óptica (DO) corregida de cada muestra (DO cap positiva - DO de cap negativa).  o Calcular el promedio y el desvío de la ODc los controles negativos  o Calcular el Cut off de la placa: promedio de los controles negativos + 2 STD, en general este valor no debe superar un valor de 0.100. Se toma como positivas a las muestras que cuya ODc superan un valor de corte del ensayo establecido en una DOc = 0.100 ± 0.050.  8. Aceptación del ensayo (conformidad)  El ensayo se considera conforme cuando el título del control positivo, alcanza su título esperado, el negativo se mantiene negativo DO y la DOc del blanco de reactivo no supera el valor 0.100.  Una muestra se considera:  Positiva: Si su DOc es mayor al cut off de la placa.  Negativa: Si su DOc es menor al cut off de la placa.  Inespecífica: Si su DO en virus y mock es elevada. Es decir la muestra presenta un color intenso en ambas capturas. En este caso se recomienda volver a ensayar la muestra previa adsorción con suspensión de células MA-104. Si el problema persiste el título de Ac no pude definirse por esta técnica.  9. Informe de resultados  El título de Ac de una muestra se establece como la inversa de la máxima dilución cuya DOc sea mayor al cut off de la placa, (cut off=0.100).  Se informa el título de Ac anti-RVB detectado como el log en base 10 de la inversa de la máxima dilución cuyo DOc resulte mayor al punto de corte del ensayo (cut off=0.100)  Las muestras negativas en la mínima dilución de suero ensayada (1/16) se expresan con un título arbitrario de 0.3 para los cálculos.  10. APROBACION DE LA PRUEBA DE POTENCIA EN COBAYO SEGUN ESTA TECNICA:  Se evaluarán todos los sueros de los animales inmunizados con la vacuna en control. Se seleccionarán CINCO (5) de los sueros con mayor título obtenido y sobre ellos se realizará el promedio. Para la APROBACION de la vacuna sometida a control, el promedio de los títulos deberá ser mayor o igual a 1.96 por la técnica de ELISA para RVB.  ANEXO III   IHA PARA PI3  Este ensayo determina la presencia de anticuerpos dirigidos contra las hemoaglutininas virales, también llamados “inhibidores de la hemoaglutinación” en sueros de animales vacunados. Antes del ensayo, los sueros sufren un tratamiento con kaolín para adsorber inhibidores inespecíficos de la hemoaglutinación que pudieran estar presentes, luego, diluciones seriadas de los sueros se enfrentan a una concentración fija de virus, establecida en 8 UHA/25 ul. La reacción se revela agregando glóbulos rojos de cobayo. Cuando en un suero existen anticuerpos específicos dirigidos a la HA viral, se formarán complejos Ag-Ac que bloquearán la hemoaglutinación e inhibirán su capacidad de aglutinar glóbulos rojos, es decir, se impide la unión del virus a los glóbulos en suspensión y consecuentemente se observa la formación de un botón rojo característico en el fondo del pocillo.  Los resultados pueden interpretarse e informarse siempre que se haya dado conformidad al ensayo. Las muestras se ensayan diluciones seriadas base 2 comenzando a partir de 5 (ver Tabla I). Se tomará como punto final de la actividad del suero (título de Ac IHA anti PI-3) a la inversa de la máxima dilución en la que el fenómeno de hemoaglutinación ha sido inhibido. El resultado final se expresa en Unidades Inhibidoras de la Hemoaglutinación (UIHA). La recíproca de la dilución de punto final de la actividad del suero, multiplicada por las unidades hemoaglutinantes del virus utilizado (8 UHA) nos resultará en el número de unidades inhibidoras de la hemoaglutinación del suero por unidad de volumen.  La presencia de reacciones IHA de diluciones inferiores a 1/10 (40-80 UIHA) se consideran NEGATIVAS.  Valores superiores a 1/80 (640 UIHA o más) representan respuesta a la vacunación.  Para cobayos vacunados (DOS (2) dosis con un intervalo de VEINTIUN (21) días): se considera como respuesta óptima a la vacuna cuando se detecta seroconversión (incremento de al menos de 1 logaritmo) entre el título de UIHA de la muestra de suero pre-vacunación y la muestra correspondiente a los 30 dpv (NUEVE (9) días post 2° dosis).  MATERIALES  • Placa de 96 wells fondo en U limpias no estériles.  • Cubetas descartables o autoclavables, limpias, no estériles.  • Tips amarillos (hasta 200 µl)  • Tips azules (hasta 1000 µl)  • Tubos plásticos de 1.8 ml tipo “eppendorf”  • Tubos cónicos de 15 ml  • Tubos cónicos de 50 ml  • Pipeta pasteur plástica  • Descarte  • Bolsas de autoclave verdes  • Papel absorbente  • Guantes de látex descartables  • Agujas 25/8  • Jeringa de 5 ml  • Algodón y alcohol  EQUIPOS  • Micropipeta hasta 200µl (tolerancia máxima admitida: 5ul)  • Micropipeta hasta 40µl (tolerancia máxima admitida: 0.4ul)  • Micropipeta hasta 1000 µl (tolerancia máxima admitida: 10ul)  • Micropipeta multicanal 8-12 hasta 5-50µl. Sin restricciones respecto a la tolerancia.  • Microcentrífuga (hasta 14.000 rpm)  • Centrífuga refrigerada (hasta 5.000 rpm)  REACTIVOS  • Virus de Trabajo:  Suspensión de PI-3, ajustado a la concentración de 8 UHA/25 ul o 16 UHA/50 ul  • Diluyente:  PBS 1 X, pH: 7.2-7.4  • Solución de Kaolín:  Kaolín                            0,04g  PBS 1X                           5ml  • Glóbulos rojos de cobayos (ver obtención en punto 4)  • Alsever 1X  • Sueros control: positivo y negativo  • Sueros Estándar: positivo y negativo  Preparación: Los sueros controles corresponden a pooles de sueros de cobayos vacunados con vacunas de concentración de Ag conocida. Para confeccionar los pooles se seleccionan sueros con títulos medios (320-640 UIHA) (control positivo) y o sueros de animales negativos (control negativo).  Como estándares se utilizar sueros de cobayos de título conocido, preferentemente altos (1260 UIHA) y negativos.  TRATAMIENTO PREVIO DE LAS MUESTRAS  • Inactivar los sueros durante 30 minutos a 56°C.  • Colocar 50ul de suero en un tubo de 1.8 ml, agregar 50ul de la solución de Kaolín, homogenizar por vortex. Incubar durante 10 ± 2 minutos a temperatura ambiente (24-27°C).  • Centrifugar durante 15 ± 2 minutos a 1500 rpm.  • Tomar 50ul del sobrenadante y transferir a otro tubo con 75ul de PBS 1X y homogenizar con vortex.  (La dilución final del suero es de 1/2 * 2/5=1/5)  • Los sueros controles y estándares positivos y negativos deben tratarse de igual manera que las muestras. _____________________________________________________________________________________________________________________ En el caso que los sueros no sean utilizados en ese momento, pueden guardarse a -20°C y analizarse dentro de la semana de tratados. _____________________________________________________________________________________________________________________  PREPARACION DE LA DILUCION DE GLOBULOS ROJOS  • Preparar, en esterilidad, una jeringa con 1 ml de anticoagulante Citrato (o Alsever 1X al medio del volumen que se necesita de glóbulos).  • Tomar muestra de sangre de un cobayo por punción cardíaca (4 ml + 1 ml anticoagulante = 5ml totales).  • Una vez finalizada la extracción, sacar la aguja de la jeringa (descartar en descarte de material corto-punzante). Este procedimiento se realiza para evitar la hemólisis de los GR.  • Colocar la sangre en un tubo cónico de 15 ml, estéril. Centrifugar a 1500 ± 200 rpm, a 4-8°C durante 5 ± 1 min.  • Eliminar la fase líquida utilizando una pipeta pasteur plástica o pipeta automática/tip de 1000ul.  • Lavado: Resuspender el paquete de glóbulos en PBS 1X y llevar a un volumen de aprox. 15 ml. Centrifugar durante 10 minutos a 1800 ± 200 rpm a 4-8°C. Realizar 2 lavados. Descartar el sobrenadante. _____________________________________________________________________________________________________________________ IMPORTANTE: En cada lavado el sobrenadante debe mantenerse límpido, la presencia de un tinte rojizo es indicador de hemólisis y en ese caso los GR NO son aptos para su utilización en el ensayo. _____________________________________________________________________________________________________________________ La suspensión de GR debe preparase fresca en el momento de realización del ensayo.  • Preparar la dilución de trabajo de glóbulos: Primero se realiza una dilución ¼ (1 ml de paquete de glóbulos más 3 ml de PBS 1X) y luego partiendo de esta dilución se hace una dilución 1/40 (1 ml de la dil ¼ más 29 ml de PBS 1X). De este modo se obtiene la dilución final de trabajo de 1/120 ó 0.8%.  • Una vez hecha la dilución de GR se procede a titular y a ajustar el Virus PI-3 a la dilución de trabajo mediante la técnica de hemoaglutinación.  TITULACION Y AJUSTE DE LA DILUCION DE TRABAJO DEL VIRUS PI-3  1. Descongelar el virus en uso, una placa fondo en U cargar 50ul de PBS 1X en 2 filas y cargar otra fila para el control de GR.  2. Agregar 50ul del virus de trabajo.  3. Realizar diluciones al medio, transfiriendo 50ul desde los pocillos 1 hasta 12.  4. Agregar 50ul de la dilución 1/120 glóbulos rojos en todos los pocillos.  5. Incubar a Temperatura ambiente (20-27°C) durante 1 hora.  6. Una vez que se visualiza la formación del botón de glóbulos en la hilera de control de GR, se puede proceder a la lectura.  7. El virus debe tener un título de 16 UHA/50ul. Si el título obtenido es menor, dicha suspensión NO ES APTA PARA EL ENSAYO. Si el título viral es mayor, diluir con PBS 1X y volver a titular.  PROCEDIMIENTO DEL ENSAYO DE IHA  • Colocar 25ul de PBS 1X en toda la placa excepto en fila G.  • Agregar 25ul del suero tratado en los pocillos F, G y H.  (Se pueden analizar DOCE (12) muestras por placa de la fila UNO (1) a DOCE (12) con SIETE (7) diluciones por muestra, o se pueden usar la placa apaisada, en cuyo caso se analizan OCHO (8) muestras de A a H con ONCE (11) diluciones por muestra)  • Realizar diluciones seriadas base 2, pasando 25ul, desde la fila F hasta la fila A, descartando los últimos 25ul.  Los sueros estándares se colocan en forma aleatoria entre las muestras. Los sueros controles positivos y negativos se colocan al final de todos los sueros problemas ya tratados y del mismo modo que éstos. Se deja una columna libre para realizar el control de glóbulos rojos y otra para realizar nuevamente la titulación de virus.  • Agregar 25ul de virus en la dilución establecida de uso (16 UHA/25 ul) en todas las filas, excepto en H que quedará como control de suero sin virus. Este último control cumple la función de detectar la presencia de actividad hemoaglutinante inespecífica en los sueros problema.  • Incubar las placas con la mezcla suero-virus durante una hora a temperatura ambiente (24-27°C).  • Agregar 50ul de la suspensión de glóbulos rojos (81/120) en todas las placas.  • Incubar a temperatura ambiente hasta la formación del botón de glóbulos en la columna de control de glóbulos.  LECTURA E INTERPRETACION  La lectura se realiza por visualización directa.  ACEPTACION DEL ENSAYO (CONFORMIDAD)  Para que un ensayo se considere conforme se deben cumplir los siguientes requisitos:  o La suspensión de virus de trabajo debe dar un título de 16 UHA/50ul (8 UIHA/25ul)  o El botón de GR en los pocillos control debe ser sólido  o Los sueros controles y estándares positivos deben dar el título esperado (se admite una variación de 1 dilución).  o Los sueros controles y estándares negativos deben ser negativos.  o Para determinar el título de una muestra, no debe observarse hemoaglutinación en el pocillo control de suero sin virus.  INTERPRETACION  Se tomará como punto final de la actividad del suero (título de Ac IHA anti PI-3) a la máxima dilución en la que el fenómeno de hemoaglutinación ha sido inhibido. El resultado final se expresa en unidades inhibidoras de la hemoaglutinación (UIHA). La recíproca de la dilución de punto final de la actividad del suero, multiplicada por las unidades hemoaglutinantes del virus utilizado (8 UHA/25ul) resultará en el número de unidades inhibidoras de la hemoaglutinación del suero por unidad de volumen.  Para evaluación de la inmunogenicidad de vacunas en cobayos (dos dosis de un volumen correspondiente a 1/5 de la dosis bovina, administrada con un intervalo de VEINTIUN (21) días): Se considera como respuesta óptima a la vacuna cuando se detecta seroconversión (incremento de al menos de UN (1) logaritmo) entre el título de UIHA de la muestra de suero pre-vacunación (o testigo) y la muestra correspondiente a los 30 dpv (NUEVE (9) días post segunda dosis). El promedio del título de Ac IHA anti PI-3 en el sueros de los cobayos (n=5) analizados deberá ser mayor o igual a 1.50 para considerar la vacuna como APROBADA.  Tabla 1. Título de Ac IHA anti PI-3  POCILLOUltima Dilución que presenta IHATítulo de la muestra (UIHA/25 ul) = dil * 8Título de la muestra (log10)H1101G5401,60F10801,90E201602,20D403202,50C806402,80B16012803,10A32025603,40 ANEXO IV   SERONEUTRALIZACION PARA VDVB  La prueba de seroneutralización para la detección de Ac contra VDVB emplea el método Suero variable-virus fijo: donde diluciones variables de sueros problema (seriadas base 2 o base 4) se enfrentan a una cantidad establecida y fija de virus (100 DICT50). La mezcla suero-virus se coloca en un sistema susceptible a la infección por BDV, en este caso células de línea MDBK.  El título neutralizante del suero se establece por el método de Reed y Muench (virus fijo - suero variable), siempre que se haya dado conformidad al ensayo.  MATERIALES  • Placas de Cultivo de NOVENTA Y SEIS (96) pocillos, estériles  • Tips amarillos (hasta 200µl)  • Tips azules (hasta 1000 µl)  • Tubos plásticos cónicos de 1500 µl  • Tubos cónicos de 50 ml  • Frascos de vidrio con tapa a rosca (GIBCO o similar)  • Pipetas de vidrio estériles de 5-10 ml  • Cubetas descartables  • Descarte  • Bolsas de autoclave verdes  • Papel absorbente.  EQUIPOS  • Micropipeta monocanal, hasta 200µl (tolerancia admitida 5)  • Micropipeta monocanal, hasta 20µl (tolerancia admitida 5)  • Micropipeta monocanal, hasta 1000 µl (tolerancia admitida 10)  • Micropipeta multicanal 8 hasta 1000 µl. Sin restricciones respecto a la tolerancia  • Micropipeta multicanal 12. Sin restricciones respecto a la tolerancia  • Propipeta (Pipetaid, Drummond Scietific Co. O equivalente)  • Incubadora de 37°C y 5% CO2  • Cabina de seguridad biológica  • Baño termostático (temperatura a 56 ± 3°C)  • Heladera 4-8°C  • Microscopio óptico invertido  REACTIVOS  • Suspensión de células MDBK: con una concentración de 250.000 cel./ml, (rango 200.000-280.000).  • MEM-E  • Suero Fetal Bovino (SFB): controlado (libre de micoplasmas y endotoxinas y probado en cultivos celulares), fraccionado en alícuotas de 10 ± 2 ml y 20 ± 2 ml y conservado a -20 ± 3°C. Su fraccionamiento debe registrarse con un Nº de PR (lote interno).  • Antibiótico 100X  Penicilina sódica G                    10,025gr Sulfato de Streptomicina           33,35gr Gentamicina SO4                       25g PBS (10X)                                  50ml Agua destilada c.s.p.                 5 litros  Una vez disuelto se esteriliza por filtración (0.22 um) y se almacena a -20° ± 3°C.  La fracción en uso se conserva a 4-8°C. Se adiciona 10 ml de ATB por cada litro de medio de trabajo.  • Virus de trabajo: BDV citopático tipo 1 A - Cepa de Referencia Singer, NADL o cepas autóctonas antigénicamente similares.  CONTROLES  Control Positivo Cobayo: Suero de cobayo vacunado con vacuna conteniendo VDVB de título 10^7 DICT50/dosis o mayor.  Control Negativo Cobayo: Pool de sueros normales de cobayo (sueros de cobayos preinmunización).  Estándar Positivo: Suero de título conocido.  Estándar negativo: Suero normal de cobayo.  PROCEDIMIENTO  SUSPENSION CELULAR  Se necesitan 10 ml de suspensión celular con 250.000 cel./ml por placa.  Una vez que se recibe la suspensión se realiza el recuento celular, si la suspensión contiene menor cantidad de células, ésta se concentra por centrifugación a 1000 rpm, 5 minutos y se elimina el sobrenadante excedente. Si la suspensión contiene más células se diluye con medio de trabajo. Una vez realizado el ajuste se repite el recuento, el rango admitido va desde 200.000-280.000 cel/ml. Una vez ajustada la suspensión se mantiene a temperatura ambiente bajo agitación suave en agitador magnético.  Fórmula a utilizar para el ajuste:  vol final = conc inicial * vol inicial /250.000 cel/ml   INACTIVACION DE LAS MUESTRAS  Las muestras de suero, deben ser inactivadas, previo a su siembra, en baño a 56 ± 3°C, durante 30 ± 5 minutos.  PREPARACION DEL MEDIO DE TRABAJO  El medio de dilución de las muestras y del virus, se prepara a partir del MEM-E + 1% de ATB + 2% de SFB.  ENSAYO DE SERONEUTRALIZACION SUERO VARIABLE-VIRUS FIJO  • Colocar 75 µI/pocillo de medio en todas las placas a utilizar.  • Diseño de la placa de los sueros problema: Agregar 25µl de la muestra problema, por cuadruplicado, (Fila A o Fila E pocillos 1-4; 5-8; 9-12, respectivamente), ver Figura 1.  • Se comienza desde una dilución mínima de 1/4 que sumado al volumen de virus y células queda en una dilución inicial de 1/8.  • Incluir en forma aleatoria entre las muestras a analizar estándares de título conocido.  • Diseño de la placa control: Se colocan los sueros control positivo y negativo del mismo modo que las muestras. Para realizar el control de células se colocan 150µl de medio de trabajo por cuadruplicado en cuatro filas (DIECISEIS (16) pocillos totales). Para el control de las 100 DICT de virus, se realizan TRES (3) diluciones en base 10 a partir de la dilución de trabajo. Se siembran 100µl por cuadruplicado de las 4 diluciones preparadas (ver Figura 2).  • Realizar diluciones en base 4, pasando 25µl, descartando los últimos 25µl para todas las muestras y sueros controles.  • Se realiza un control de toxicidad de cada muestra colocando 75µl de medio en otra placa.  • Preparar la dilución de trabajo de virus (100 DICT) en el medio de trabajo. Preparar el volumen necesario para todas las placas del ensayo considerando que se necesitan 8 ml de virus por placa.  • Una vez preparada la dilución de trabajo del virus, se deben realizar tres diluciones en base 10 (-1, -2 y -3) de la misma. Para ello colocar 900µl de medio en tres tubos de 1.8 ml (1-2-3). Agregar 100µl de la suspensión de virus de trabajo en el tubo 1: (dil -1 ó 1/10), sin tocar el medio con el tip, homogeneizar por vortex, cambiar el tip, tomar 100µl de esta dilución y transferir al tubo 2, nuevamente sin que el tip toque el medio, (dil -2) homogeneizar, descartar el tip y transferir 100µl al tubo 3 (dil -3).  • Colocar 75µl de la dilución de trabajo del virus en todas las placas, excepto en la placa de controles de toxicidad, en el control de células y en el control de 100 DICT.  • En la última placa colocar donde se colocaron los controles de suero positivo y negativo, incluir la titulación del virus de trabajo para verificar que contenga las 100 UFF. Para ello colocar 4 réplicas de 75µl de cada dilución (tubos 1, 2 y 3), comenzando de la más diluida a la más concentrada -3, -2, -1, puro (ver diseño de placa control).  • Incubar las placas (mezcla suero-virus) durante 1 hora a 37 ± 1°C en atmósfera de CO2 al 5 ± 1 %.  • Agregar sobre la mezcla suero-virus 100µl por pocillo, de la suspensión celular conteniendo 250.000 cel./ml en todas las placas.  • Incubar las placas a 37 ± 1°C en atmósfera de CO2 al 5 ± 1 %, durante 48-72 hs.  LECTURA E INTERPRETACION  LECTURA  - Al cabo de las 48-72 hs. la lectura se realiza por inspección de las monocapas al microscopio óptico.  - La lectura es por observación de efecto citopático. Se considera positivo aquel pocillo que presente un foco de CPE característico de VDVB. En los controles de toxicidad se debe observar la monocapa igual que los controles de células.  ACEPTACION DEL ENSAYO (CONFORMIDAD)  El ensayo se considera conforme cuando:  1. Las monocapas de los controles de células se encuentran en buen estado (MC confluentes, células refriengentes, sin alteraciones morfológicas, sin rastros de contaminación y sin CPE de VDVB).  2. El título de la suspensión viral debe contener 100 DICT 50, con un rango admitido entre 50-150 DICT, ver Tabla 1.  3. El control positivo debe dar el título esperado ± 1 pocillo. Ejemplo: 2.30< 2.4 <2.50  4. El control negativo debe dar negativo. Se le coloca un valor arbitrario de 0.6 para los cálculos.      INTERPRETACION  El título neutralizante del suero analizado se obtiene según la cantidad de replicadas protegidas en las diluciones seriadas en base al método de interpolación de Reed y Muench.  Tabla 2. Titulación de Ac en microplacas (log 10)  Pocillos Protegidos1/81/321/1281/5121/20481/81921/327681/13107210.701.301.902.503.103.704.304.9020.901.502.102.703.303.904.505.1031.101.702.302.903.904.104.705.3041.201.802.403.004.104.204.805.40 e. 12/12/2012 N° 122009/12 v. 12/12/2012