细菌外膜囊泡

细菌外膜囊泡（英语：OMV）是由革兰氏阴性细菌的外膜释放的脂质囊泡。这些囊泡是第一个被发现的细菌膜囊泡（MV），而革兰氏阳性细菌也会释放囊泡。1966至1967年，印度科学家Smriti Narayan Chatterjee教授和J. Das教授使用透射电子显微镜首次发现了OMV，并对其进行了表征。OMV被认为具有在细菌之间、与其环境中的其他微生物以及宿主之间进行交流的功能。这些囊泡参与运输细菌细胞信号生物化学物质，其中包括DNA、RNA、蛋白质、内毒素和相关毒力分子。这种交流发生在海洋、动物、植物甚至人体内的微生物培养物中。 革兰氏阴性菌利用其周质分泌OMV，将细菌生化物质运输到其环境中的靶细胞。OMV还携带内毒素脂多糖，可在其宿主中引发疾病过程。这种机制带来了多种益处，例如细菌分泌物的远距离递送，同时最大限度地减少水解降解和细胞外稀释，还补充了其他支持性分子（例如毒力因子）以完成特定工作，同时与目标细胞的防御武器保持安全距离。OMV传递的生化信号在“战争和和平”情况下可能大不相同。在自给自足的细菌菌落中，OMV可以用于将DNA传递给“同源”的微生物进行基因转化，并传递细胞信号分子进行群体感应和生物膜形成。在来自周围其他细胞类型的“挑战”期间，OMV可能更倾向于携带降解和破坏酶。同样，OMV可能在宿主病原体界面处含有更多的入侵蛋白（图1）。预计，周围的环境因素是引发这些细菌合成和分泌特异性富集的OMV，在生理上适应当前的任务。因此，作为强免疫调节剂的细菌OMV可以针对其免疫原性成分进行操作，并用作有效的无病原体疫苗，用于使人类和动物免疫以抵抗威胁性感染。 革兰氏阴性菌有双层磷脂膜。内层磷脂膜（内层细胞膜）包裹着细胞质或胞质溶胶；外层（磷脂膜）细菌外膜包裹着内层磷脂膜。这两个膜之间的空间称为周质或周质空间。此外，还有一层由肽聚糖层组成的坚固细胞壁，包围着细胞膜并占据周质空间。肽聚糖层除了保护微生物免受恶劣环境的影响，还为维持细菌形状提供了一定的刚性。 革兰氏阴性细菌OMV的生物发生的第一步是在肽聚糖层上方形成外膜。磷脂在外膜外侧的积累被认为是外膜向外凸出的基础。这种磷脂的积累可以通过VacJ/Yrb ABC转运系统进行调节，该系统将磷脂从OM的外部转移到内部。此外，硫耗尽等环境条件会引发磷脂过度生产状态，从而导致OMV释放增加。 囊泡从外膜释放的实际过程仍不清楚。囊泡结构很可能可以自发释放。另外，有人提出少数蛋白质将外膜和细胞膜固定在一起，使得周质隆起像一个充气的口袋从外膜表面凸出。“铆钉复合物”的侧向扩散可能有助于挤压周质的大凸起形成OMV。 在活的大肠杆菌（人类肠道中常见的共生细菌）中测量了细菌膜囊泡沿细胞表面的分散情况。抗生素治疗改变了囊泡的动力学、囊泡与膜的亲和力和细胞膜的表面特性，一般会增强囊泡沿细菌膜表面的运输，这表明它们的运动特性可能是抗生素应激的标志。尽管首次对细菌OMV进行了高分辨率、定量跟踪，但仍有待进行详细的实验工作以了解OMV生物发生和运输的生物力学。OMV也是当前通过外膜囊泡运输进行种内、种间和界间细胞信号转导的原核生物胞吐作用研究的重点，这将改变我们对微生物毒力、宿主病原体相互作用以及地球生态系统中各种物种之间相互关系的认知。 胞吐作用 宿主病原体相互作用 细菌二硫化物氧化还原酶列表 毒力 Toyofuku, Masanori; Nomura, Nobuhiko; Eberl, Leo. Types and origins of bacterial membrane vesicles. Nature Reviews Microbiology. January 2019, 17 (1): 13–24. ISSN 1740-1534. PMID 30397270. S2CID 53224716. doi:10.1038/s41579-018-0112-2.  Chatterjee, S. N.; Das, J. Electron microscopic observations on the excretion of cell-wall material by Vibrio cholerae. Journal of General Microbiology. 1967, 49 (1): 1–11. ISSN 0022-1287. PMID 4168882. doi:10.1099/00221287-49-1-1  （英语）. [失效連結] INSA :: Indian Fellow Detail. www.insaindia.res.in. [2019-12-13]. （原始内容存档于2020-02-27）.  Anand, Deepak; Chaudhuri, Arunima. Bacterial outer membrane vesicles: New insights and applications. Molecular Membrane Biology. 2016-11-16, 33 (6–8): 125–137. ISSN 0968-7688. PMID 29189113. doi:10.1080/09687688.2017.1400602 .  Biller JJ, Schubotz F, Thompson AW, Summons RE and Chisholm SW (2014) Bacterial vesicles in marine ecosystems. Science, vol. 343(no. 6167), pp. 183-186.https://www.science.org/doi/abs/10.1126/science.1243457 Tulkens, Joeri; Vergauwen, Glenn; Van Deun, Jan; Geeurickx, Edward; Dhondt, Bert; Lippens, Lien; De Scheerder, Marie-Angélique; Miinalainen, Ilkka; Rappu, Pekka; De Geest, Bruno G; Vandecasteele, Katrien; Laukens, Debby; Vandekerckhove, Linos; Denys, Hannelore; Vandesompele, Jo; De Wever, Olivier; Hendrix, An. Increased levels of systemic LPS-positive bacterial extracellular vesicles in patients with intestinal barrier dysfunction. Gut. 5 December 2018, 69 (1): gutjnl–2018–317726. PMC 6943244 . PMID 30518529. doi:10.1136/gutjnl-2018-317726 .  YashRoy R C (1993) Electron microscope studies of surface pili and vesicles of Salmonella 3,10:r:- organisms. Indian Journal of Animal Sciences, vol. 63 (No.2), pp. 99-102. https://www.academia.edu/7327498/YashRoy_R_C_1993_Electron_microscope_studies_of_suraface_pili_and_vesicles_of_Salmonella_3_10_r_-_organisms.i_and_vesicles._Indian_Journal_of_Animal_Sciences._Vol_63_No.2_pp._99-102 （页面存档备份，存于互联网档案馆） Ellis TN and Kuehn MJ (2010) Virulence and immuno-modulatory roles of bacterial outer membrane vesicles. Microbiology and Molecular Biology Reviews, vol. 74 (no. 1), pp. 81-94.http://mmbr.asm.org/content/74/1/81.short Acevedo, R; Fernandez, S; Zayas, C; Acosta, D; Sarmiento, ME; Ferro, VA; Rosenquvist, E; Campa, C; Cardoso, D; Garcia, L; Perez, JL. Bacterial outer membrane vesicles and vaccine applications. Frontiers in Immunology. 2014, 5: 121. PMC 3970029 . PMID 24715891. doi:10.3389/fimmu.2014.00121 .  Kulp, A; Kuehn, MJ. Biological functions and biogenesis of secreted bacterial outer membrane vesicles. Annual Review of Microbiology. 2010, 64: 163–184. PMC 3525469 . PMID 20825345. doi:10.1146/annurev.micro.091208.073413.  Roier, Sandro; Zingl, Franz G.; Cakar, Fatih; Durakovic, Sanel; Kohl, Paul; Eichmann, Thomas O.; Klug, Lisa; Gadermaier, Bernhard; Weinzerl, Katharina; Prassl, Ruth; Lass, Achim. A novel mechanism for the biogenesis of outer membrane vesicles in Gram-negative bacteria. Nature Communications. 2016-01-25, 7 (1): 10515. Bibcode:2016NatCo...710515R. ISSN 2041-1723. PMC 4737802 . PMID 26806181. doi:10.1038/ncomms10515 （英语）.  Gerritzen, Matthias J. H.; Martens, Dirk E.; Uittenbogaard, Joost P.; Wijffels, René H.; Stork, Michiel. Sulfate depletion triggers overproduction of phospholipids and the release of outer membrane vesicles by Neisseria meningitidis. Scientific Reports. 2019-03-18, 9 (1): 4716. Bibcode:2019NatSR...9.4716G. ISSN 2045-2322. PMC 6423031 . PMID 30886228. doi:10.1038/s41598-019-41233-x （英语）.  YashRoy R C (2003) Eucaryotic cell intoxication by Gram-negative organisms: A novel bacterial outermembrane-bound nanovesicular model for Type-III secretion system. Toxicology International, vol. 10 (No. 1), 1-9.https://www.academia.edu/7695646/YashRoy_R_C_2003_Eukaryotic_cell_intoxication_by_Gram-negative_pathogens_A_novel_bacterial_outer_membrane-bound_nanovesicular_exocytosis_model_for_Type-III_secretion_system._Toxicology_International._Vol._10_No._1_pp._1-9 Bos J, Cisneros LH, Mazel D. Real-time tracking of bacterial membrane vesicles reveals enhanced membrane traffic upon antibiotic exposure. Science Advances. January 2021, 7 (4): eabd1033. PMC 7817102 . PMID 33523924. doi:10.1126/sciadv.abd1033.