花椰菜嵌紋病毒

花椰菜嵌紋病毒（Cauliflower mosaic virus，簡稱CaMV）是花椰菜病毒科花椰菜病毒屬的一種病毒，屬DNA逆轉錄病毒，此病毒可感染十字花科的植物，有些毒株（D4與W260）還可感染茄科曼陀羅屬或菸草屬的物種，以桃蚜等近30種蚜蟲傳播，因此避免蚜蟲與幼苗接觸為防治此病毒感染的有效措施。 花椰菜嵌紋病毒感染的植株症狀包括植株葉片出現嵌紋、葉片組織壞死、植株矮化變形等，因病毒株、植株生態型與環境因子而異。此病毒為溫帶地區普遍的植物病毒，對十字花科作物造成相當的經濟損失，有報導指有10%市售的白菜與花椰菜均被此病毒感染。 花椰菜嵌紋病毒的顆粒為正二十面體，直徑約52奈米；基因組為環狀雙股DNA，長約8kb，可轉錄產生35S與19S兩種mRNA，前者包含6至8個開放閱讀框，後者則只有1個開放閱讀框（ORF VI），編碼TAV蛋白。35S RNA轉譯起始時會發生核糖體分流，即核糖體跳過前方二級結構，直接跳至開放閱讀框的起始密碼子開始轉譯；另外TAV蛋白可與轉譯中的核糖體和eIF3結合，核糖體轉譯完35S RNA上的一個開放閱讀框後，再度開始轉譯下一個開放閱讀框。 許多易感植物可以miRNA和siRNA等小RNA與AGO等蛋白結合，抑制此病毒的感染，病毒基因組前端的非編碼區的RNA則可被Dicer切割產生大量小RNA，可與植物體抗病毒的miRNA和siRNA競爭結合AGO蛋白，而前端非編碼區衍生的小RNA雖也可引導AGO蛋白至病毒35S RNA的對應區域，卻因該區二級結構複雜而難以結合，進而達成抑制宿主抗病毒反應的效果。 許多轉基因作物皆是使用花椰菜嵌紋病毒35S RNA的啟動子來表現外加的基因，有人擔憂其與人類DNA重組後可能影響人體基因表現，又因此啟動子序列與ORF VI重疊，也有人質疑其可能在作物中表現病毒蛋白，但實驗結果顯示病毒啟動子與人類DNA重組在正常條件下發生的機率極低，且此啟動子無法在哺乳動物細胞中表現蛋白。 病毒主题 Pringle, CR. Virus taxonomy--1999. The universal system of virus taxonomy, updated to include the new proposals ratified by the International Committee on Taxonomy of Viruses during 1998. Arch Virol. 1999, 144 (2): 421–9. PMC 7086988 . PMID 10470265. doi:10.1007/s007050050515.  Brault, V.; Uzest, M.; Monsion, B.; Jacquot, E.; Blanc, S. Aphids as transport devices for plant viruses. Comptes Rendus Biologies. 2010, 333 (6–7): 524–38. PMID 20541164. doi:10.1016/j.crvi.2010.04.001.  Aurélie Bak, Joanne B. Emerson. Cauliflower mosaic virus (CaMV) Biology, Management, and Relevance to GM Plant Detection for Sustainable Organic Agriculture. Front. Sustain. Food Syst. 2020 [2021-12-06]. doi:10.3389/fsufs.2020.00021. （原始内容存档于2022-06-15）.  Khelifa, M.; Massé, D.; Blanc, S.; Drucker, M. Evaluation of the minimal replication time of Cauliflower mosaic virus in different hosts. Virology. 2010, 396 (2): 238–45. PMID 19913268. doi:10.1016/j.virol.2009.09.032 .  Cheng, RH.; Olson, NH.; Baker, TS. Cauliflower mosaic virus: a 420 subunit (T = 7), multilayer structure. Virology. Feb 1992, 186 (2): 655–68. PMC 4167691 . PMID 1733107. doi:10.1016/0042-6822(92)90032-k.  Haas, M.; Bureau, M.; Geldreich, A.; Yot, P.; Keller, M. Cauliflower mosaic virus: still in the news. Mol Plant Pathol. Nov 2002, 3 (6): 419–29. PMID 20569349. doi:10.1046/j.1364-3703.2002.00136.x.  Fütterer, J.; Gordon, K.; Bonneville, JM.; Sanfaçon, H.; Pisan, B.; Penswick, J.; Hohn, T. The leading sequence of caulimovirus large RNA can be folded into a large stem-loop structure. Nucleic Acids Res. Sep 1988, 16 (17): 8377–90. PMC 338565 . PMID 3419922. doi:10.1093/nar/16.17.8377.  Pooggin, MM.; Hohn, T.; Fütterer, J. Forced evolution reveals the importance of short open reading frame A and secondary structure in the cauliflower mosaic virus 35S RNA leader. J Virol. May 1998, 72 (5): 4157–69. PMC 109645 . PMID 9557705. doi:10.1128/JVI.72.5.4157-4169.1998.  Hemmings-Mieszczak, M.; Steger, G.; Hohn, T. Alternative structures of the cauliflower mosaic virus 35 S RNA leader: implications for viral expression and replication. J Mol Biol. Apr 1997, 267 (5): 1075–88. PMID 9150397. doi:10.1006/jmbi.1997.0929.  Pooggin MM, Futterer J, Skryabin KG, Hohn T. Ribosome shunt is essential for infectivity of cauliflower mosaic virus.. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001, 98 (3): 886–91. PMC 14679 . PMID 11158565. doi:10.1073/pnas.98.3.886.  Park, HS.; Himmelbach, A.; Browning, KS.; Hohn, T.; Ryabova, LA. A plant viral reinitiation factor interacts with the host translational machinery. Cell. 2001, 106 (6): 723–33. PMID 11572778. S2CID 14384952. doi:10.1016/S0092-8674(01)00487-1 .  Blevins T, Rajeswaran R, Aregger M, Borah BK, Schepetilnikov M, Baerlocher L; et al. Massive production of small RNAs from a non-coding region of Cauliflower mosaic virus in plant defense and viral counter-defense.. Nucleic Acids Res. 2011, 39 (12): 5003–14. PMC 3130284 . PMID 21378120. doi:10.1093/nar/gkr119.  Podevin, N.; du Jardin, P. Possible consequences of the overlap between the CaMV 35S promoter regions in plant transformation vectors used and the viral gene VI in transgenic plants. GM Crops Food. 2012, 3 (4): 296–300. PMID 22892689. doi:10.4161/gmcr.21406 .