jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
du sérum au quarantième donna un résultat positif indiquant la présence des facteurs majeurs et mineurs. Il est à remarquer aussi que l'agglutination A, B, C, D et E fut instantanée ou du moins rapide ; celle des autres fut lente. TABLEAU II. — Agglutination sur lame de la souche 8 946 par sérums spécifiques dilués. SÉRUM PUR 1/10 1/20 1/40 1/80 1/160 REMARQUES A + + + + + + Rapide. B -j+ + + + + Rapide. G -f+ + + + + Rapide. D + + + + + + Rapide. E + + + + + + Rapide. F + + + + + + Lente. IK. + -4 + + Lente. HM L. + + + + + + Lente. L'agglutination sur lame doit se faire avec une culture sur gélose âgée de préférence de moins de vingt-quatre heures. Les formules antigéniques ainsi déterminées correspondent exactement aux formules trouvées par la méthode macroscopique. 60 La particularité du facteur C. CORRECTION ### 4° On devra tenir compte de ce fait — que le BAL peut gêner l'action bactériostatique du chloramphénicol ou de l'auréomycine — dans le traitement des malades justiciables à la fois de la thérapeutique antibiotique et de la thérapeutique par le BAL. BIBLIOGRAPHIE [1] G. RENOUX et J. Roux. Ces Annales, 1951, 80, 189. [2] G. RENOUX et J. Roux. Ass. Micr. L. Franç., ces Annales, 1951, 80, 425. [3] C. N. SMITH, C. S. WORRET, et A. L. SWANSON. J. Bact. 1949, 58, 803-809. [4] W. F. LOOMIS. Science, 1950, 111/2887, 474. LES FACTEURS ANTIGÉNIQUES DU VIBRION CHOLÉRIQUE ET LEUR DÉTERMINATION PAR AGGLUTINATION MICROSCOPIQUE par A. WAHBA (2). (Institut des Sérums et Vaccins du Caire.) L'existence de 13 facteurs « 0 » chez le vibrion cholérique ayant été affirmée par Burrows et ses collaborateurs [1], Gallut [2] a poursuivi ces travaux par l'étude détaillée de 82 souches de vibrions. Ce dernier travail fut très important car il démontra que parmi les 35 souches isolées de l'épidémie égyptienne de 1947, il existait une variation assez vaste de la formule antigénique. Comme ces expériences furent
antibiotique et de la thérapeutique par le BAL. BIBLIOGRAPHIE [1] G. RENOUX et J. Roux. Ces Annales, 1951, 80, 189. [2] G. RENOUX et J. Roux. Ass. Micr. L. Franç., ces Annales, 1951, 80, 425. [3] C. N. SMITH, C. S. WORRET, et A. L. SWANSON. J. Bact. 1949, 58, 803-809. [4] W. F. LOOMIS. Science, 1950, 111/2887, 474. LES FACTEURS ANTIGÉNIQUES DU VIBRION CHOLÉRIQUE ET LEUR DÉTERMINATION PAR AGGLUTINATION MICROSCOPIQUE par A. WAHBA (2). (Institut des Sérums et Vaccins du Caire.) L'existence de 13 facteurs « 0 » chez le vibrion cholérique ayant été affirmée par Burrows et ses collaborateurs [1], Gallut [2] a poursuivi ces travaux par l'étude détaillée de 82 souches de vibrions. Ce dernier travail fut très important car il démontra que parmi les 35 souches isolées de l'épidémie égyptienne de 1947, il existait une variation assez vaste de la formule antigénique. Comme ces expériences furent terminées vers la fin 1948, il restait à voir si ces souches, conservées dans la gélose profonde, avaient encore la même formule après une durée de plus de deux ans, Burrows ayant suggéré la possibilité d'une instabilité antigénique. En même temps, l'emploi de l'agglutination sur lame comme technique usuelle de détermination de facteurs antigéniques a été envisagé. Kauffmann [3] ayant attribué à l'emploi de gélose mince ou trop dure une insuffisance de production d'antigène « 0 », une gélose fraîche et épaisse a été utilisée dans toutes les expériences. D'autre part, cet auteur n'accepte pas la présence des facteurs D M et il attribue les agglutinations positives aux facteurs rough non spécifiques R et Q. Gurkipal Singh et Ahuja [4] partagent aussi cette opinion. Pour éviter la présence d'un élément rough, les essais suivants furent adoptés avant de procéder à l'agglutination macroscopique des souches provenant de l'épidémie égyptienne : a) Agglutination microscopique avec un sérum Inaba. (1) Travail effectué à l'Institut Pasteur de Paris, dans les laboratoires du Dr J. Gallut, qu'il m'est agréable de remercier ici pour présentation de souches et excellentes conditions de travail. (2) Société Française de Microbiologie, séance du 1er mars 1951. b) Agglutination microscopique et
détermination de facteurs antigéniques a été envisagé. Kauffmann [3] ayant attribué à l'emploi de gélose mince ou trop dure une insuffisance de production d'antigène « 0 », une gélose fraîche et épaisse a été utilisée dans toutes les expériences. D'autre part, cet auteur n'accepte pas la présence des facteurs D M et il attribue les agglutinations positives aux facteurs rough non spécifiques R et Q. Gurkipal Singh et Ahuja [4] partagent aussi cette opinion. Pour éviter la présence d'un élément rough, les essais suivants furent adoptés avant de procéder à l'agglutination macroscopique des souches provenant de l'épidémie égyptienne : a) Agglutination microscopique avec un sérum Inaba. (1) Travail effectué à l'Institut Pasteur de Paris, dans les laboratoires du Dr J. Gallut, qu'il m'est agréable de remercier ici pour présentation de souches et excellentes conditions de travail. (2) Société Française de Microbiologie, séance du 1er mars 1951. b) Agglutination microscopique et macroscopique, contrôle avec l'eau physiologique. c) Mise en contact des suspensions avec le réactif de Millon et ébullition pendant dix minutes. d) Thermostabilité : suspension en eau physiologique mise en ébullition pendant deux heures. Les souches n'agglutinant pas avec le sérum spécifique, étant auto-agglutinables, donnant une réaction de Millon positive ou n'étant pas thermostables, furent ainsi écartées. 1° Agglutinants. — Quatre agglutinants différents furent employés dont la suspension vivante et celle tuée par ébullition se sont montrées satisfaisantes. L'antigène préparé par la récolte des cultures sur gélose peptonée âgées de dix-huit heures, puis additionné de formol à 5 p. 1 000, n'a été satisfaisant qu'en cas d'utilisation immédiate. Plus tard, l'antigène C disparaissait. Nous reviendrons plus loin sur ce point. L'antigène préparé d'une culture liquide (bouillon) formolée, recommandé par Gardner et Venkatraman [5], a donné des résultats non spécifiques. 2° Antisérums. — Des antisérums de lapin saturés et spécifiques : anti-A, B, C, D, E, F, 1 K, H M et L ont été employés. 30 Epreuve d'agglutination macroscopique. — Un taux du centième au millième est utilisé. Le mélange ne doit pas être trop dense pour éviter une difficulté dans la lecture. Les tubes sont placés au bain-marie à
ou n'étant pas thermostables, furent ainsi écartées. 1° Agglutinants. — Quatre agglutinants différents furent employés dont la suspension vivante et celle tuée par ébullition se sont montrées satisfaisantes. L'antigène préparé par la récolte des cultures sur gélose peptonée âgées de dix-huit heures, puis additionné de formol à 5 p. 1 000, n'a été satisfaisant qu'en cas d'utilisation immédiate. Plus tard, l'antigène C disparaissait. Nous reviendrons plus loin sur ce point. L'antigène préparé d'une culture liquide (bouillon) formolée, recommandé par Gardner et Venkatraman [5], a donné des résultats non spécifiques. 2° Antisérums. — Des antisérums de lapin saturés et spécifiques : anti-A, B, C, D, E, F, 1 K, H M et L ont été employés. 30 Epreuve d'agglutination macroscopique. — Un taux du centième au millième est utilisé. Le mélange ne doit pas être trop dense pour éviter une difficulté dans la lecture. Les tubes sont placés au bain-marie à 52° C et la lecture faite à l'œil nu après quatre heures. Puis les tubes sont gardés jusqu'au lendemain à la température du laboratoire pour la lecture finale. Après les quatre premières heures le résultat des facteurs A B C D E est net, comme il a été rapporté par Gallut. L'agglutination des facteurs mineurs est plus lente et n'est nette que le lendemain. TABLEAU I. — Comparaison des formules antigéniques suivant le temps de conservation des souches. SOUCHE 1948 1951 SOUCHE 1948 1951 8 945 AC ACDE 12 989 ACDL ACDE Suelem AC ACDE 8 991 ACDL ACDE El Kourein AC ACDE V4 Suez. ACDEL ACDE V 2 Farana. AC ACDE P. S. 163 ACDEFL ACDEF il ACL ACD 8 990 ACDEIIML ACDEFIM P S. 296. ACDL ACDE P S. 291 ACL ACDE 8 946 ACDEFGIJKL ABCDEFIKL (1) P. S. 285. ACDL ACDE 35 013 ACDEL ABCDEFIKL (1) L'antisérum GJ manquait. 4° Résultats. — En comparant les résultats obtenus en 1948 et en 1951 on peut conclure, d'une façon générale, à l'apparition des facteurs D et E dans les souches où ils étaient absents et la disparition complète (à part deux exceptions) du facteur L. 5° Agglutination microscopique. —
Gallut. L'agglutination des facteurs mineurs est plus lente et n'est nette que le lendemain. TABLEAU I. — Comparaison des formules antigéniques suivant le temps de conservation des souches. SOUCHE 1948 1951 SOUCHE 1948 1951 8 945 AC ACDE 12 989 ACDL ACDE Suelem AC ACDE 8 991 ACDL ACDE El Kourein AC ACDE V4 Suez. ACDEL ACDE V 2 Farana. AC ACDE P. S. 163 ACDEFL ACDEF il ACL ACD 8 990 ACDEIIML ACDEFIM P S. 296. ACDL ACDE P S. 291 ACL ACDE 8 946 ACDEFGIJKL ABCDEFIKL (1) P. S. 285. ACDL ACDE 35 013 ACDEL ABCDEFIKL (1) L'antisérum GJ manquait. 4° Résultats. — En comparant les résultats obtenus en 1948 et en 1951 on peut conclure, d'une façon générale, à l'apparition des facteurs D et E dans les souches où ils étaient absents et la disparition complète (à part deux exceptions) du facteur L. 5° Agglutination microscopique. — La possibilité d'une agglutination microscopique a été d'abord examinée avec la souche 8 946 qui donna en agglutination macroscopique un taux élevé avec tous les sérums spécifiques. En principe, une dilution du sérum au quarantième donna un résultat positif indiquant la présence des facteurs majeurs et mineurs. Il est à remarquer aussi que l'agglutination A, B, C, D et E fut instantanée ou du moins rapide ; celle des autres fut lente. TABLEAU II. — Agglutination sur lame de la souche 8 946 par sérums spécifiques dilués. SÉRUM PUR 1/10 1/20 1/40 1/80 1/160 REMARQUES A + + + + + + Rapide. B -j+ + + + + Rapide. G -f+ + + + + Rapide. D + + + + + + Rapide. E + + + + + + Rapide. F + + + + + + Lente. IK. + -4 + + Lente. HM L. + + + + + + Lente. L'agglutination sur lame doit se faire avec une culture sur gélose âgée de préférence de moins de vingt-quatre heures. Les formules antigéniques ainsi déterminées correspondent exactement aux formules trouvées par la méthode macroscopique. 60 La particularité du facteur C. La disparition du facteur C
remarquer aussi que l'agglutination A, B, C, D et E fut instantanée ou du moins rapide ; celle des autres fut lente. TABLEAU II. — Agglutination sur lame de la souche 8 946 par sérums spécifiques dilués. SÉRUM PUR 1/10 1/20 1/40 1/80 1/160 REMARQUES A + + + + + + Rapide. B -j+ + + + + Rapide. G -f+ + + + + Rapide. D + + + + + + Rapide. E + + + + + + Rapide. F + + + + + + Lente. IK. + -4 + + Lente. HM L. + + + + + + Lente. L'agglutination sur lame doit se faire avec une culture sur gélose âgée de préférence de moins de vingt-quatre heures. Les formules antigéniques ainsi déterminées correspondent exactement aux formules trouvées par la méthode macroscopique. 60 La particularité du facteur C. La disparition du facteur C dans les cultures sur gélose gardées quelques jours à la glacière a déjà été remarquée par nous en collaboration avec Spaun. Poursuivant les expériences en cette direction, l'examen de cultures âgées de 20 jours gardées à la température du Laboratoire révéla l'absence de l'antigène C par agglutination microscopique et un taux très réduit par agglutination macroscopique. Les autres facteurs ne sont pas affectés (tableau IV). En comparant des cultures bouillies et formolées, l'absence de l'antigène C est aussi remarquée dans la suspension formolée. Ceci démontre l'importance de l'usage d'une culture vivante et fraîche pour toute agglutination macroscopique ou microscopique. TABLEAU III. — Taux d'agglutination de l'antisérum C utilisant des suspensions formolées et bouillies. SOUCHE SUSPENSION FORMOLÉE SUSPENSION BOUILLIE Nil 100 1 000 Suelem. 500 m 1 TABLEAU IV. — Comparaison d'agglutinations microscopiques de souches fraîches âgées de 20 jours et suspensions bouillies. cf] W cf] K M B S cf] W cf] = 0 = B S j s = s < 0 u 0 u 0 ë=~5~So=~o :: <N<;:¡;;¡;;¡¡¡ :::;r:;¡ i2': N j=--=MMr-r-rr.<N <I:I r.<N <I:I a: a: a: i p GPG2Ï5,AS3^-'T0?®!O?SGSSGS :.=:c r. ""-<!,..;t.WWWlf.Jww..¿".<.&lt; ..:.: <N <N:> .:<> ¡::..; 0.; 0.. 0.; 0.; < 0 < 0 W
taux très réduit par agglutination macroscopique. Les autres facteurs ne sont pas affectés (tableau IV). En comparant des cultures bouillies et formolées, l'absence de l'antigène C est aussi remarquée dans la suspension formolée. Ceci démontre l'importance de l'usage d'une culture vivante et fraîche pour toute agglutination macroscopique ou microscopique. TABLEAU III. — Taux d'agglutination de l'antisérum C utilisant des suspensions formolées et bouillies. SOUCHE SUSPENSION FORMOLÉE SUSPENSION BOUILLIE Nil 100 1 000 Suelem. 500 m 1 TABLEAU IV. — Comparaison d'agglutinations microscopiques de souches fraîches âgées de 20 jours et suspensions bouillies. cf] W cf] K M B S cf] W cf] = 0 = B S j s = s < 0 u 0 u 0 ë=~5~So=~o :: <N<;:¡;;¡;;¡¡¡ :::;r:;¡ i2': N j=--=MMr-r-rr.<N <I:I r.<N <I:I a: a: a: i p GPG2Ï5,AS3^-'T0?®!O?SGSSGS :.=:c r. ""-<!,..;t.WWWlf.Jww..¿".<.&lt; ..:.: <N <N:> .:<> ¡::..; 0.; 0.. 0.; 0.; < 0 < 0 W G (A > > > A +-(+ + + + + + + + + 4+ + + + + + + + + B ---------------++++++ C +-++-++-++-++-++-++-+ D + + ++ + + + + + + + + + + + + + + + + + E +++++++++++++++++++++ F ---------+++------+++ IK + + + HM L ------------------+++ 70 Effet de nombreux repiquages. — Comme Sokhey et Habbu [6] ont suggéré que les nombreux repiquages pourraient effectuer un changement de structure antigénique, deux souches furent choisies : l'une d'une courte formule, Nil, et l'autre d'une longue formule, 8 946. Après 10 repiquages dans le courant d'une semaine, il n'y eut aucun changement dans le taux de l'agglutination macroscopique des différents facteurs. Il est plus probable que l'effet produit par le milieu de culture artificiel au premier repiquage après l'isolement ainsi que la façon dont la souche est conservée, sont des facteurs importants dans la détermination de la formule antigénique. RÉSUMÉ ET CONCLUSIONS. 1° Les facteurs antigéniques du vibrion cholérique de Burrows et Gallut sont aussi bien démontrés par agglutination microscopique que par agglutination macroscopique. L'agglutination microscopique peut être adoptée comme routine, étant beaucoup plus simple. 2° La formule
+++++++++++++++++++++ F ---------+++------+++ IK + + + HM L ------------------+++ 70 Effet de nombreux repiquages. — Comme Sokhey et Habbu [6] ont suggéré que les nombreux repiquages pourraient effectuer un changement de structure antigénique, deux souches furent choisies : l'une d'une courte formule, Nil, et l'autre d'une longue formule, 8 946. Après 10 repiquages dans le courant d'une semaine, il n'y eut aucun changement dans le taux de l'agglutination macroscopique des différents facteurs. Il est plus probable que l'effet produit par le milieu de culture artificiel au premier repiquage après l'isolement ainsi que la façon dont la souche est conservée, sont des facteurs importants dans la détermination de la formule antigénique. RÉSUMÉ ET CONCLUSIONS. 1° Les facteurs antigéniques du vibrion cholérique de Burrows et Gallut sont aussi bien démontrés par agglutination microscopique que par agglutination macroscopique. L'agglutination microscopique peut être adoptée comme routine, étant beaucoup plus simple. 2° La formule antigénique n'est pas complètement stable. L'âge de la culture peut affecter surtout les facteurs D, E et L. Le facteur C disparaît rapidement par vieillissement de la culture vivante ou par traitement par le formol. Les cultures bouillies se conservent plus longtemps. 3° Les facteurs majeurs et mineurs sont entièrement différents en ce qui concerne le temps d'agglutination. 4° Une culture vivante, âgée de moins de vingt-quatre heures, doit être employée pour toute agglutination. 5° Les divers points ainsi établis dans ce travail peuvent suffire à expliquer les divergences d'opinion de certains auteurs sur l'existence réelle des facteurs antigéniques thermostables mineurs du vibrion cholérique, en raison des différences des techniques qu'ils ont utilisées. BIBLIOGRAPHIE [1] W. BURROWS, A. N. MATHER, V. G. Mc GANN et S. M. WAGNER. J. infect. Dis., 1946, 79, 168. [2] J. GALLUT. Ces Annales, 1949, 76, 122. [3] F. KAUFFMANN. Acta path., 1950, 27, 283. [4] GURKIPAL SINGH et M. L. AHUJA. Ind. J. Med. Res., 1950, 38, 317. [5] A. D. GARDNER et K. V. VENKATRAMAN. J. Hyg., 1935, 35, 262. [6] S. S. SOKHEY et M. K. HABBU. Bull. O. M. S., 1950, 3, 55. [7] J. SPAUN et A. WAHBA. Travail non
différents en ce qui concerne le temps d'agglutination. 4° Une culture vivante, âgée de moins de vingt-quatre heures, doit être employée pour toute agglutination. 5° Les divers points ainsi établis dans ce travail peuvent suffire à expliquer les divergences d'opinion de certains auteurs sur l'existence réelle des facteurs antigéniques thermostables mineurs du vibrion cholérique, en raison des différences des techniques qu'ils ont utilisées. BIBLIOGRAPHIE [1] W. BURROWS, A. N. MATHER, V. G. Mc GANN et S. M. WAGNER. J. infect. Dis., 1946, 79, 168. [2] J. GALLUT. Ces Annales, 1949, 76, 122. [3] F. KAUFFMANN. Acta path., 1950, 27, 283. [4] GURKIPAL SINGH et M. L. AHUJA. Ind. J. Med. Res., 1950, 38, 317. [5] A. D. GARDNER et K. V. VENKATRAMAN. J. Hyg., 1935, 35, 262. [6] S. S. SOKHEY et M. K. HABBU. Bull. O. M. S., 1950, 3, 55. [7] J. SPAUN et A. WAHBA. Travail non encore publié. ÉTUDE BIOCHIMIQUE DU RENDEMENT MATÉRIEL DE CROISSANCE D'UNE BACTÉRIE AÉROBIE : BACILLUS MEGATHERIUM par J.-P. AUBERT. (Institut Pasteur. Service des Fermentations.) I. — Etude des constituants cellulaires. Par définition, le rendement matériel d'un organisme en croissance exprime le rapport du poids de matière vivante formée au poids de matière organique consommée. Pour cette question qui, jusqu'à ce jour, a fait l'objet de différents travaux, une bibliographie complète se trouve dans le livre de Monod : Recherches sur la croissance des cultures bactériennes [12] à côté des études personnelles de l'auteur. La constance du rendement au cours de la croissance, signalée en premier lieu par Terroine et Wurmser [15], est un fait bien établi dont Monod a précisé la signification en travaillant dans des conditions expérimentales parfaitement définies : le microbe en croissance utilise toujours une égale quantité d'aliment carboné pour produire un individu qui lui est semblable, et le même phénomène se poursuivrait indéfiniment identique à soi sans l'intervention de facteurs limitants. Sans entrer pour l'instant dans le détail de conclusions que nous aurons l'occasion d'examiner par la suite, nous remarquerons que pour les auteurs cités et d'autres, le rendement est un moyen formel de caractériser la croissance,
matière organique consommée. Pour cette question qui, jusqu'à ce jour, a fait l'objet de différents travaux, une bibliographie complète se trouve dans le livre de Monod : Recherches sur la croissance des cultures bactériennes [12] à côté des études personnelles de l'auteur. La constance du rendement au cours de la croissance, signalée en premier lieu par Terroine et Wurmser [15], est un fait bien établi dont Monod a précisé la signification en travaillant dans des conditions expérimentales parfaitement définies : le microbe en croissance utilise toujours une égale quantité d'aliment carboné pour produire un individu qui lui est semblable, et le même phénomène se poursuivrait indéfiniment identique à soi sans l'intervention de facteurs limitants. Sans entrer pour l'instant dans le détail de conclusions que nous aurons l'occasion d'examiner par la suite, nous remarquerons que pour les auteurs cités et d'autres, le rendement est un moyen formel de caractériser la croissance, c'est l'expression mathématique d'un ensemble de phénomènes sur la nature et l'importance desquels le chiffre qui traduit la valeur du rendement ne renseigne pas. Cette notion, bien que complexe, est cependant la seule qui permette d'étudier quantitativement les phénomènes de synthèse. Mais il est nécessaire, pour traiter l'étude du rendement de cette manière, de connaître, au moins dans leur ensemble, les facteurs qui influent sur le rendement. Ces facteurs sont de deux sortes, les uns liés à l'identité de l'organisme, les constituants cellulaires, les autres au métabolisme de formation de ces corps et à la physiologie microbienne dans les conditions expérimentales réalisées. Le problème au départ est donc de travailler avec des bactéries dont la nature et le taux des principaux constituants cellulaires soient connus et contrôlables, et dont le métabolisme n'interdise pas une analyse précise de l'ensemble des échanges matériels au cours de la croissance. Les conclusions, à quoi semblable étude doit conduire, concerneront soit la physiologie générale, soit la synthèse d'un constituant à partir d'un substrat, résultat qui expliquera le. En relation avec la valeur du rendement d'un organisme à cet organisme lui-même. La bactérie choisie, Bacillus megatherium, se trouve à l'état naturel dans le sol ; elle
de cette manière, de connaître, au moins dans leur ensemble, les facteurs qui influent sur le rendement. Ces facteurs sont de deux sortes, les uns liés à l'identité de l'organisme, les constituants cellulaires, les autres au métabolisme de formation de ces corps et à la physiologie microbienne dans les conditions expérimentales réalisées. Le problème au départ est donc de travailler avec des bactéries dont la nature et le taux des principaux constituants cellulaires soient connus et contrôlables, et dont le métabolisme n'interdise pas une analyse précise de l'ensemble des échanges matériels au cours de la croissance. Les conclusions, à quoi semblable étude doit conduire, concerneront soit la physiologie générale, soit la synthèse d'un constituant à partir d'un substrat, résultat qui expliquera le. En relation avec la valeur du rendement d'un organisme à cet organisme lui-même. La bactérie choisie, Bacillus megatherium, se trouve à l'état naturel dans le sol ; elle se développe bien dans le milieu synthétique proposé par Grelet, que nous désignerons dans ce travail sous le terme de milieu S : H2PO4H2K 5 g NO3K. 10 g SO4Mg, 7H2O 0,150 g SO4Mn, 4H2O 0,030 g SO4 7H2O 0,030 g Eau de source. O. S. 11 Aliment carboné, par exemple, glucose. 10 g Nos principales connaissances sur le métabolisme de cet organisme ont été établies par Lemoigne et ses collaborateurs. 1° Métabolisme carboné. — Lemoigne a montré qu'au cours du développement de B. megatherium il s'accumule à l'intérieur des cellules une substance polymère de l'acide β-hydroxybutyrique, de formule brute (C4H9O2)n, désignée sous le terme de lipide (β-hydroxybutyrique et dont le taux atteint couramment 30 p. 100 de la matière sèche microbienne [7]. Par différentes méthodes d'extraction, Lemoigne et coll. [10] ont décrit 4 corps dont les points de fusion s'étendent entre 115° et 157°, possédant tous la même formule brute et se différenciant seulement par leur degré de polymérisation. Une méthode a été donnée pour le dosage de ce lipide β-hydroxybutyrique [11]. 2° Métabolisme azoté. — Quand on cultive B. megatherium sur un milieu synthétique contenant du nitrate de sodium ou de potassium comme aliment azoté, il ne se