jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
peut éviter des égarements diagnostiques voire thérapeutiques, non seulement au sein des populations autochtones lors des flambées épidémiques mais aussi chez des sujets ayant récemment voyagé dans ces régions. Le diagnostic est donc essentiel mais il repose sur des examens de laboratoire délicats, nécessitant une interprétation en fonction des antigènes utilisés, variables selon le lieu de séjour. Seule une collaboration étroite entre le clinicien et le biologiste peut permettre l'établissement du diagnostic le plus probable. Ainsi ces alphaviroses, fréquentes en terrain tropical, viennent par leurs manifestations rhumatologiques, enrichir les multiples étiologies spécifiques des arthrites et polyarthrites observées sous ces climats. RÉFÉRENCES 1. HYER FH, GOTTLIEB NL. Rheumatic disorders associated with viral infection. Semin Arthritis Rheum 1978 : 8 17-31. 2. MUKAMEL M, MIMOUNI M, VARSANO S. Les arthrites virales de l'enfant. Ann Pediatr 1984 ; 31 661-664. 3. JOHNSTON RE, PETERS CJ. Alphaviruses. In «FIELDS BN, KNIPE DM, HOWLEY PM Fields virology, 3rd ed.». Lippincott-Raven Publishers ed, Philadelphia, 1996, pp 843-898. 4. TESH RB. Arthritides caused by mosquito-borne viruses. Annu Rev Med 1982 33: 31-40. 5. McGILL PE. Viral infections : alpha-viral arthropathy. Baillières Clin Rheum 1995 ; 9: 145-150. 6. HARLEY D, SLEIGH A, RITCHIE S. Ross River virus transmission, infection and disease : a cross-disciplinary review. Clin Microbiol Rev 2001 ; 14 909-932. 7. JOUAN A. Arboviruses. Des virus, des moustiques, des animaux et des hommes. Med Trop 1997 ; 57 Suppl 3 : 28S-36S. 8. CASALS J. Viruses, the versatile parasites; the arthropod-borne group of animal viruses. Trans NY Acad Sci 1957: 19 : 219-235. 9. ABGUEGUEN P, PICHARD E. Arboviruses : notions générales et particularités des principales infections. Rev Fr Lab 2000 ; 321 31-35. 10. MACKENZIE JS, SMITH DW. Mosquito-borne viruses and epidemic polyarthritis. Med J Aust 1996: 164 : 90-93. 11. SCRIMGEOUR EM, AASKOV JG, MATZ LR. Ross River virus arthritis in Papua New Guinea. Trans R Soc Trop Med Hyg 1987 : 81 833-834. 12. AASKOV JG, MATIKA JU, LAWRENCE GW et Coll. An epidemic of Ross River infection in Fiji, 1979. Am J Trop Med Hyg 1981 ; 30 1053-1059. 13. ROSEN
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: 155-161. 23. THONNON J, SPIEGEL A, DIALLO M et Coll. Epidémies à virus Chikungunya en 1996 et 1997 au Sénégal. Bull Soc Pathol Exot 1999, 92 : 79-82. 24. LAM SK, CHUA KB, HOOI PS et Coll. Chikungunya infection : an emerging disease in Malaysia. Southeast Asian J Trop Med Public Health 2001 : 32 : 447-451. 25. DELLER JJ, RUSSELL PK. Chikungunya disease. Am J Trop Med Hyg 1968 : 17 : 107-111. 26. HADDOW AJ, DAVIES CW, WALKER AJ. O'Nyong Nyong fever : an epidemic virus disease in East Africa introduction. Trans R Soc Trop Med Hyg 1960 ; 54 : 517-522. 27. WILLIAMS MC, WOODALL JP, GILLET JD. O'Nyong Nyong fever, an epidemic virus disease in East Africa virus isolations from man and serological studies up to July 1961. Trans R Soc Trop Med Hyg 1965; 59 : 186-197. 28. LANCIOTTI RS, LUDWIG ML, RWAGUMA EB et Coll. Emergence of epidemic O'Nyong-Nyong fever in Uganda after 35-year absence genetic characterization of the virus. Virology 1998 ; 252 : 258-268. 29. POWERS AM, BRAULT AC, TESH RB, WEAVER SC. Re-emergence of Chikungunya and O'Nyong Nyong viruses evidence for distinct geographical lineages and distant evolutionary relationships. J Gen Virol 2000 ; 81 : 471-479. 30. BLACKBURN NK, BESSELAAR TG, GIBSON G. Antigenic relationship between Chikungunya virus strains and O'Nyong Nyong virus using monoclonal antibodies. Res Virol 1995 ; 146 : 69-73. 31. MALHERBE H, STRICKLAND-CHOLMELEY M, JACKSON AL. Sindbis virus infection in man. S Afr Med J 1963; 37 : 547-552. 32. SHIRAKO Y, NIKLASSON B, DALRYMPLE JM et Coll. Structure of the Ockelbo virus genome and its relationship to other Sindbis viruses. Virology 1991 182 : 753-764. 33. SKOGH M, ESPMARK A. Ockelbo disease : epidemic arthritis-exanthema syndrome in Sweden caused by Sindbis-virus like agent. Lancet 1982 ; i : 795-796. 34. ANDERSON CR, DOWNS WG, WATLLEY GH et Coll. Mayaro virus : a new human disease agent. II. Isolation from blood of patients in Trinidad, BWI. Am J Trop Med Hyg 1957:6 : 1012-1016. 35. CAUSEY OR, MAROJA OM. Mayaro virus : a new human disease
Virol 2000 ; 81 : 471-479. 30. BLACKBURN NK, BESSELAAR TG, GIBSON G. Antigenic relationship between Chikungunya virus strains and O'Nyong Nyong virus using monoclonal antibodies. Res Virol 1995 ; 146 : 69-73. 31. MALHERBE H, STRICKLAND-CHOLMELEY M, JACKSON AL. Sindbis virus infection in man. S Afr Med J 1963; 37 : 547-552. 32. SHIRAKO Y, NIKLASSON B, DALRYMPLE JM et Coll. Structure of the Ockelbo virus genome and its relationship to other Sindbis viruses. Virology 1991 182 : 753-764. 33. SKOGH M, ESPMARK A. Ockelbo disease : epidemic arthritis-exanthema syndrome in Sweden caused by Sindbis-virus like agent. Lancet 1982 ; i : 795-796. 34. ANDERSON CR, DOWNS WG, WATLLEY GH et Coll. Mayaro virus : a new human disease agent. II. Isolation from blood of patients in Trinidad, BWI. Am J Trop Med Hyg 1957:6 : 1012-1016. 35. CAUSEY OR, MAROJA OM. Mayaro virus : a new human disease agent. III. Investigation of an epidemic of acute febrile illness on the river Guama in Para, Brazil, and isolation of Mayaro virus as causative agent. Am J Trop Med Hyg 1957 ; 6 : 1017-1023. 36. TESH RB, WATTS DM, RUSSELL KL et Coll. Mayaro virus disease : an emerging mosquito-borne zoonosis in tropical South America. Clin Infect Dis 1999; 28 : 67-73. 37 TALARMIN A, CHANDLER LJ, KAZANJI M et Coll Mayaro virus fever in French Guiana: isolation, identification and seroprevalence. Am J Trop Med Hyg 1998; 59: 452-456. 38 PINHEIRO FP, FREITAS RB, TRAVASSOS DA ROSA JF et Coll An outbreak of Mayaro virus disease in Belterra, Brazil. I. Clinical and virological findings. Am J Trop Med Hyg 1981; 30: 674-681. 39 DOWLING PG Epidemic polyarthritis. Med J Aust 1946; 2: 245-246. 40 FRASER JR Epidémie polyarthritis and Ross River virus disease. Clin Rheum Dis 1986; 12: 369-388. P. Jeandel et Collaborateurs 41 BENNETT PH Ross River virus infection: an acute polyarthritis caused by arbovirus. J Rheumatol 1983; 10: 34-36. 42 FRASER JRE, CUNNINGHAM AL, CLARKE BJ et Coll Cytology of synovial effusions in epidemic polyarthritis. Aust NZ J Med 1981; 11: 168-173. 43 HAZELTON RA, HUGHES C,
mosquito-borne zoonosis in tropical South America. Clin Infect Dis 1999; 28 : 67-73. 37 TALARMIN A, CHANDLER LJ, KAZANJI M et Coll Mayaro virus fever in French Guiana: isolation, identification and seroprevalence. Am J Trop Med Hyg 1998; 59: 452-456. 38 PINHEIRO FP, FREITAS RB, TRAVASSOS DA ROSA JF et Coll An outbreak of Mayaro virus disease in Belterra, Brazil. I. Clinical and virological findings. Am J Trop Med Hyg 1981; 30: 674-681. 39 DOWLING PG Epidemic polyarthritis. Med J Aust 1946; 2: 245-246. 40 FRASER JR Epidémie polyarthritis and Ross River virus disease. Clin Rheum Dis 1986; 12: 369-388. P. Jeandel et Collaborateurs 41 BENNETT PH Ross River virus infection: an acute polyarthritis caused by arbovirus. J Rheumatol 1983; 10: 34-36. 42 FRASER JRE, CUNNINGHAM AL, CLARKE BJ et Coll Cytology of synovial effusions in epidemic polyarthritis. Aust NZ J Med 1981; 11: 168-173. 43 HAZELTON RA, HUGHES C, AASKOV JG The inflammatory response in the synovium of a patient with Ross River arbovirus infection. Aust NZ Med 1985; 15: 336-339. 44 WESTLEY-WISE VJ, BEARD JR, SLADDEN TJ et Coll Ross River virus infection on the north coast of New South Wales. Aust NZ J Public Health 1996; 20: 87-92. 45 CONDON RJ, ROUSE IL Acute symptoms and sequelae of Ross River virus infection in South Western Australia: a follow-up study. Clin Diagn Virol 1995; 3: 273-284. 46 SELDEN SM, CAMERON AS Changing epidemiology of Ross River virus disease in South Australia. Med J Aust 1996; 165: 313-317. 47 FRASER JR, CUNNINGHAM AL, MATTHEWS JD, RIGLAR A Immune complexes and Ross River virus disease (epidemic polyarthritis). Rheumatol Int 1988; 8: 113-117. 48 SODEN M, VASUDEVAN H, ROBERTS B et Coll Detection of viral ribonucleic acid and histological analysis of inflamed synovium in Ross River virus infection. Arthritis Rheum 2000; 43: 365-369. 49 LINN ML, AASKOV JG, SUHRBIER A Antibody-dependent enhancement and persistence in macrophages of an arbovirus associated with arthritis. J Gen Virol 1996; 77: 407-411. 50 LINN ML, MATEO L, GARDNER J, SUHRBIER A Alphavirus-specific cytotoxic T lymphocytes recognize a cross-reactive epitope from the capsid protein and can
87-92. 45 CONDON RJ, ROUSE IL Acute symptoms and sequelae of Ross River virus infection in South Western Australia: a follow-up study. Clin Diagn Virol 1995; 3: 273-284. 46 SELDEN SM, CAMERON AS Changing epidemiology of Ross River virus disease in South Australia. Med J Aust 1996; 165: 313-317. 47 FRASER JR, CUNNINGHAM AL, MATTHEWS JD, RIGLAR A Immune complexes and Ross River virus disease (epidemic polyarthritis). Rheumatol Int 1988; 8: 113-117. 48 SODEN M, VASUDEVAN H, ROBERTS B et Coll Detection of viral ribonucleic acid and histological analysis of inflamed synovium in Ross River virus infection. Arthritis Rheum 2000; 43: 365-369. 49 LINN ML, AASKOV JG, SUHRBIER A Antibody-dependent enhancement and persistence in macrophages of an arbovirus associated with arthritis. J Gen Virol 1996; 77: 407-411. 50 LINN ML, MATEO L, GARDNER J, SUHRBIER A Alphavirus-specific cytotoxic T lymphocytes recognize a cross-reactive epitope from the capsid protein and can eliminate virus from persistently infected macrophages. J Virol 1998; 72: 5146-5153. 51 MATEO L, LA LINN M, Mc COLL SR et Coll An arthrogenic alphavirus induces monocyte chemoattractant protein-1 and interleukin-8. Intervirology 2000; 43: 55-60. 52 NASH P, HARRINGTON T Acute Barmah Forest polyarthritis. Aust NZ J Med 1991; 21: 737-738. 53 FLEXMAN JP, SMITH DW, MACKENZIE JS et Coll A comparison of diseases caused by Ross River virus and Barmah Forest virus. Med J Aust 1998; 169: 159-163. 54 FOURIE FD, MORRISON JGL Rheumatoid arthritic syndrome after Chikungunya fever. S Afr Med J 1979; 56: 130-132. 55 KENNEDY AC, FLEMING J, SOLOMON L Chikungunya viral arthropathy: a clinical description. J Rheumatol 1980; 7: 231-236. 56 BRIGHTON SW, PROZESKY OW, DE LA HARPE AL Chikungunya virus infection: a retrospective study of 107 cases. S Afr Med J 1983; 63: 313-315. 57 BRIGHTON S.W., SIMSON I.W. A destructive arthropathy following Chikungunya virus arthritis: a possible association. Clin Rheum 1984; 3: 253-258. 58 MUYEMBE-TANFUM JJ, PEYREFITTE CN, YOGOLELO R et Coll Épidémies à virus Chikungunya en 1999 et 2000 en République Démocratique du Congo. Med Trop 2003; 63: 637. 59 LAINE M, LUUKKAINEN R, JALAVA J et Coll Prolonged arthritis associated with
737-738. 53 FLEXMAN JP, SMITH DW, MACKENZIE JS et Coll A comparison of diseases caused by Ross River virus and Barmah Forest virus. Med J Aust 1998; 169: 159-163. 54 FOURIE FD, MORRISON JGL Rheumatoid arthritic syndrome after Chikungunya fever. S Afr Med J 1979; 56: 130-132. 55 KENNEDY AC, FLEMING J, SOLOMON L Chikungunya viral arthropathy: a clinical description. J Rheumatol 1980; 7: 231-236. 56 BRIGHTON SW, PROZESKY OW, DE LA HARPE AL Chikungunya virus infection: a retrospective study of 107 cases. S Afr Med J 1983; 63: 313-315. 57 BRIGHTON S.W., SIMSON I.W. A destructive arthropathy following Chikungunya virus arthritis: a possible association. Clin Rheum 1984; 3: 253-258. 58 MUYEMBE-TANFUM JJ, PEYREFITTE CN, YOGOLELO R et Coll Épidémies à virus Chikungunya en 1999 et 2000 en République Démocratique du Congo. Med Trop 2003; 63: 637. 59 LAINE M, LUUKKAINEN R, JALAVA J et Coll Prolonged arthritis associated with Sindbis-related (Pogosta) virus infection. Rheumatology 2002; 41: 829-830. 60 NIKLASSON B, ESPMARK A Ockelbo disease: arthralgia 3-4 years after infection with Sindbis virus-related agent. Lancet 1986; i: 1039-1040. 61 VERSHINSKII BV, L'VOV DK, SKVORTSOVA TM et Coll Karelian fever: a new nosological form of arbovirus etiology (togaviridae, alphavirus, Sindbis complex). Tr Inst Im Pastera 1983; 60: 3135. 62 HEISE MT, SIMPSON DA, JOHNSTON RE Sindbis-group alphavirus replication in periosteum and endosteum of long bones in adult mice. J Virol 2000; 74: 9294-9299. 63 SELLNER L A single-tube nested RT-PCR for the detection of Ross River virus. Methods Mol Biol 1998; 92: 145-152. 64 HASEBE F, PARQUET MC, PANDEY BD et Coll Combined detection and genotyping of Chikungunya virus by a specific reverse transcription-polymerase chain reaction. J Med Virol 2002; 67: 370-374. 65 JEANDEL P, ROUX H Épidémiologie des affections rhumatologiques en Afrique subsaharienne. Rev Rhum 2002; 69: 1-13. wilm Cié8éa8Ie MODÉLISATION DU PALUDISME C. ROGIER, G. SALLET Med Trop 2004; 64: 89-97 RÉSUMÉ. Cet article décrit les différents modèles qui ont été utilisés dans l'étude du paludisme. Il existe plusieurs modèles, que nous passons en revue, suivant le problème que l'on veut considérer. Les modèles qui jusqu'à présent ont été
Tr Inst Im Pastera 1983; 60: 3135. 62 HEISE MT, SIMPSON DA, JOHNSTON RE Sindbis-group alphavirus replication in periosteum and endosteum of long bones in adult mice. J Virol 2000; 74: 9294-9299. 63 SELLNER L A single-tube nested RT-PCR for the detection of Ross River virus. Methods Mol Biol 1998; 92: 145-152. 64 HASEBE F, PARQUET MC, PANDEY BD et Coll Combined detection and genotyping of Chikungunya virus by a specific reverse transcription-polymerase chain reaction. J Med Virol 2002; 67: 370-374. 65 JEANDEL P, ROUX H Épidémiologie des affections rhumatologiques en Afrique subsaharienne. Rev Rhum 2002; 69: 1-13. wilm Cié8éa8Ie MODÉLISATION DU PALUDISME C. ROGIER, G. SALLET Med Trop 2004; 64: 89-97 RÉSUMÉ. Cet article décrit les différents modèles qui ont été utilisés dans l'étude du paludisme. Il existe plusieurs modèles, que nous passons en revue, suivant le problème que l'on veut considérer. Les modèles qui jusqu'à présent ont été les plus étudiés sont les modèles de transmission du paludisme. Nous donnons une description élémentaire de quelques modèles classiques. Nous montrons quel peut être leur intérêt en dépit des simplifications inhérentes au modèle. En conclusion nous pensons qu'il est urgent que des modèles soient développés pour leur utilisation en santé publique, en utilisant les outils récents de l'informatique, de l'automatique et des mathématiques. MOTS-CÉS Paludisme Modèles Simulation P. Falciparum. SIMULATION MODELS FOR MALARIA ABSTRACT. The purpose of this article is to describe various models used for the study of malaria. The type of models depends on the focus of study. Until now the most models have been designed to study malaria transmission. In addition to giving a basic description of a few classic models, we show how simulation can be useful despite the inherent simplicity of models. In our opinion it is urgent to develop models for use in public health based on recent advances in computer, automation, and mathematical techniques. KEY WORDS Malaria Models Simulation P. falciparum. Le paludisme et les mathématiques de la modélisation ont toujours eu une longue histoire commune. Cet article va explorer les différents modèles appliqués au paludisme et montrer quel peut être leur intérêt.
publique, en utilisant les outils récents de l'informatique, de l'automatique et des mathématiques. MOTS-CÉS Paludisme Modèles Simulation P. Falciparum. SIMULATION MODELS FOR MALARIA ABSTRACT. The purpose of this article is to describe various models used for the study of malaria. The type of models depends on the focus of study. Until now the most models have been designed to study malaria transmission. In addition to giving a basic description of a few classic models, we show how simulation can be useful despite the inherent simplicity of models. In our opinion it is urgent to develop models for use in public health based on recent advances in computer, automation, and mathematical techniques. KEY WORDS Malaria Models Simulation P. falciparum. Le paludisme et les mathématiques de la modélisation ont toujours eu une longue histoire commune. Cet article va explorer les différents modèles appliqués au paludisme et montrer quel peut être leur intérêt. Le paludisme est à l'image d'un jeu d'échecs. Le nombre de pièces est limité, mais le nombre de leurs combinaisons sur l'échiquier semble infinie. Une parfaite compréhension de ce qui est à l'origine de la grande diversité des facettes épidémiologiques du paludisme à travers le monde et de son impact sur la santé des populations nécessite d'intégrer les facteurs déterminant sa distribution et ses manifestations dans un système articulé et cohérent. C'est l'objectif des diverses modélisations mathématiques du paludisme. Idéalement, les modèles trouveraient leur utilité dans la lutte contre le paludisme (prédire et comparer, à moindre coût, l'impact de différentes stratégies de lutte), dans l'enseignement et dans la recherche (comprendre quel est le rôle respectif des facteurs déterminants). En pratique, les modèles ne sont utilisés que dans ces deux derniers domaines, pratiquement jamais pour l'action en santé publique. On peut classer les modèles en deux catégories : les modèles prédictifs et les modèles de compréhension. Tout modèle se situe quelque part entre ces deux extrêmes. Cette distinction est schématique, mais elle met en évidence deux exigences différentes demandées au modèle. Un modèle prédictif idéal est construit sur la base des données uniquement, sans hypothèses, et ce modèle prédit correctement le
sur la santé des populations nécessite d'intégrer les facteurs déterminant sa distribution et ses manifestations dans un système articulé et cohérent. C'est l'objectif des diverses modélisations mathématiques du paludisme. Idéalement, les modèles trouveraient leur utilité dans la lutte contre le paludisme (prédire et comparer, à moindre coût, l'impact de différentes stratégies de lutte), dans l'enseignement et dans la recherche (comprendre quel est le rôle respectif des facteurs déterminants). En pratique, les modèles ne sont utilisés que dans ces deux derniers domaines, pratiquement jamais pour l'action en santé publique. On peut classer les modèles en deux catégories : les modèles prédictifs et les modèles de compréhension. Tout modèle se situe quelque part entre ces deux extrêmes. Cette distinction est schématique, mais elle met en évidence deux exigences différentes demandées au modèle. Un modèle prédictif idéal est construit sur la base des données uniquement, sans hypothèses, et ce modèle prédit correctement le comportement entrée-sortie du système. Il s'agit d'une modélisation « boite noire » les quantités utilisées n'ont pas forcément une signification physique ou biologique. Par exemple, la connaissance des données pluviométriques (entrées) permet de prédire les hauteurs d'eau en certains points d'un fleuve (sorties). On entre les données dans le modèle et le calculateur fournit les bonnes sorties : les hauteurs d'eau. Ce modèle n'a pas de pouvoir explicatif, il a simplement un pouvoir prédictif. On parle de modèle comportemental. Les paramètres n'ont pas de sens concret, mais la simulation est aisée. Les modèles dits de connaissance sont construits à l'aide de grands principes de la physique, de la chimie, de la biologie ou de l'épidémiologie. Les paramètres ont tous une signification physique ou biologique. Le modèle peut être très complexe et le principe de parcimonie est difficile à appliquer. Dans la réalité, tout modèle est un compromis entre ces deux exigences. La modélisation commence normalement par l'énoncé des hypothèses sur le fonctionnement du processus modélisé. Ces hypothèses proviennent soit de connaissances biologiques et épidémiologiques, soit ce sont des hypothèses à tester et vérifier. L'énoncé des hypothèses permet de construire des modèles mathématiques ou informatiques. Ces modèles permettent ensuite de définir