jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
somatiche dell'ovario dei mammiferi. Arch. f. Zellforsch, 1913. Mlle Loyez. — Les premiers stades de la vitellogénèse chez quelques Tuniciers. R. de l'Ass. des Anatomistes. Réunion de Nancy, 1907. Löwschin. — Myelinformen und Chondriosomen Ber. d. Deutsch. Bot. Gesell, 1913 et 1914. Le Touzé. — Contribution à l'étude histologique des Fucacées, Revue générale de Botanique, 1911. R. Maire. 1. Recherches cytologiques sur les Basidiomycètes. Thèse de Doctorat ès-Sciences de la Sorbonne, 1902. 2. Recherches cytologiques sur quelques Ascomycètes. Annales mycologici, 1905. Matruchot. — Sur une structure particulière du protoplasma chez une Mucorinée et sur une propriété générale des pigments bactériens et fongiques. Revue générale de Botanique, 1900. Matruchot et Molliard. — Variations de structure dans une Algue inférieure, Revue générale de Botanique, 1902. McAllister. — The pyrenoïd of Anthoceros, American Journal of Botany, 1914. Arthur Meyer. — Orientierende Untersuchungen über Verbreitung Morphologie und Chemie des Volutins. Botanische Zeitung, 1904. Madame F. Moreau. 1. Les corpuscules métachromatiques des Algues, Bull. Soc. Bot. de France, 1913. 2. Le chondriome des Urédinées. C. R. Soc. Biol de Paris, T. LXXVII, 1914. Fernand Moreau. 1. Recherches sur la reproduction des Mucorinées et de quelques autres Tallophytes. Thèse de Doctorat ès-Sciences de la Sorbonne, 1913. Le chondriome et la division des mitochondries chez les Vaucheria. Bull. Soc. Bot. de France, T. LXI, 1914. Sur la formation des corpuscules métachromatiques dans les mitochondries granuleuses. C. R. Soc. de Biol. de Paris, T. LXXVII, 1914. Nicolosi-Roncati. — Genesi dei cromatofori nelle Fucoïdee. Bull. Soc, Bot. It. 1912. H. Pénau. — Recherches cytologiques sur quelques microorganismes. Révue générale de Botanique, 1912. Pensa. — Cellules cartilagineuses (formations endocellulaires). Assoc. des Anat. Lausanne 1913. Poirault. — Sur quelques champignons hypogés récoltés dans les Alpes maritimes. C. R. du Congrès de l'Avancement des Sciences de Nîmes, 1912. Regaud. — Études sur la structure des tubes séminifères et sur la spermatogène chez les Mammifères. Arch. d'Anat. micr. T. XI, 1910. Retzius. -Was ind die Plastosomen ? Arch f. mikr. Anat. T. 84 1914. Rudolph. — Chondriosomen und Chromatophoren, Ber. d. Deutsch Bot Ges. 1912. Sapehin. — Untersuchungen über die Individualität der Plastide.
Le chondriome et la division des mitochondries chez les Vaucheria. Bull. Soc. Bot. de France, T. LXI, 1914. Sur la formation des corpuscules métachromatiques dans les mitochondries granuleuses. C. R. Soc. de Biol. de Paris, T. LXXVII, 1914. Nicolosi-Roncati. — Genesi dei cromatofori nelle Fucoïdee. Bull. Soc, Bot. It. 1912. H. Pénau. — Recherches cytologiques sur quelques microorganismes. Révue générale de Botanique, 1912. Pensa. — Cellules cartilagineuses (formations endocellulaires). Assoc. des Anat. Lausanne 1913. Poirault. — Sur quelques champignons hypogés récoltés dans les Alpes maritimes. C. R. du Congrès de l'Avancement des Sciences de Nîmes, 1912. Regaud. — Études sur la structure des tubes séminifères et sur la spermatogène chez les Mammifères. Arch. d'Anat. micr. T. XI, 1910. Retzius. -Was ind die Plastosomen ? Arch f. mikr. Anat. T. 84 1914. Rudolph. — Chondriosomen und Chromatophoren, Ber. d. Deutsch Bot Ges. 1912. Sapehin. — Untersuchungen über die Individualität der Plastide. Ber. der Deutsch. Bot. Gesell, 1913, et Odessa 1913. Arth. Scherrer. — Die chromatophoren und Chondriosomen von Anthoceros. Ber. der. Deutsch. Bot. Gesell, 1913, et Flora 1914. CHONDRIOME DES CHAMPIGNONS ET DES ALGUES F. Schwartz. — Beitr. zur Biologie des Pflanzen, 1887. Fr. Schmitz. — Die chromatophoren den Algen. Bonn, 1882. 2 Jahrb. f. viss. Bot., T. XV, 1884. W. Schimper. — Unters. über dei Chlorophyllkörner und die ihnen homologen. Gebilde. Jahrb. f. viss. Bot. 1885. Swellengrebel. — La volutine des Trypnamosomes. C. R. Soc. de Biologie, 1908. Wager et Peniston. — Cytological observations on the Yeast-plant. Ann. of Botany, T. XXIV, 1910. Zimmermann. — Die Botanische Mikrotechnik. Tübingen, 1892. EXPLICATION DES PLANCHES PLANCHES 12 et 13 Pustularia vesiculosa. Fig. 1 à 4. — Premiers stades de la formation de l'asque. Délimitation de l'asque et fusion nucléaire. Le chondriome est réuni en une masse confuse sur un des côtés du noyau (Méthode de Regaud). Fig. 5 et 6. — Jeunes asques. Le chondriome se dissémine dans tout le cytoplasme. (Méthode de Regaud). Fig. 7 à 12. — Asques à un stade plus avancé. Les chondriocontes produisent sur leurs trajets de petits vésicules dont la plupart résultent de la formation au
1882. 2 Jahrb. f. viss. Bot., T. XV, 1884. W. Schimper. — Unters. über dei Chlorophyllkörner und die ihnen homologen. Gebilde. Jahrb. f. viss. Bot. 1885. Swellengrebel. — La volutine des Trypnamosomes. C. R. Soc. de Biologie, 1908. Wager et Peniston. — Cytological observations on the Yeast-plant. Ann. of Botany, T. XXIV, 1910. Zimmermann. — Die Botanische Mikrotechnik. Tübingen, 1892. EXPLICATION DES PLANCHES PLANCHES 12 et 13 Pustularia vesiculosa. Fig. 1 à 4. — Premiers stades de la formation de l'asque. Délimitation de l'asque et fusion nucléaire. Le chondriome est réuni en une masse confuse sur un des côtés du noyau (Méthode de Regaud). Fig. 5 et 6. — Jeunes asques. Le chondriome se dissémine dans tout le cytoplasme. (Méthode de Regaud). Fig. 7 à 12. — Asques à un stade plus avancé. Les chondriocontes produisent sur leurs trajets de petits vésicules dont la plupart résultent de la formation au sein du chondrioconte d'un corpuscule métachromatique non coloré par la méthode de Regaud (Méthode de Regaud). Fig. 13. — Asque un peu avant la première mitose. L'élaboration des corpuscules métachromatiques est achevée et les chondriocontes n'offrent plus de vésicules (Méthode de Meves). Fig. 14 et 15. — Première mitose. (Méthode de Meves). Fig. 16. — Troisième mitose. Les quatre noyaux en voie de mitose sont vus transversalement dans la coupe (Méthode de Meves). Fig. 17 et 18. — Id. Fig. 19. — Partie inférieure d'un asque au moment de la mitose. Les chondriocontes offrent sur leur trajet de grosses vésicules peut-être occupées par du glycogène, car le glycogène se forme abondamment dans cette région (Méthode de Meves). Fig. 20 à 21. — Formation des ascospores. Celles-ci se délimitent par recourbement des fibrilles de l'aster qui persiste avec le centrosome à l'un des pôles de chacun des noyaux. Les fibrilles ne sont pas différenciées par les méthodes mitochondriales et le centrosome seul s'aperçoit. Comparez ces figures avec la figure 1 du texte. Le chondriome de l'asque se répartit presque tout entier entre les huit ascospores et se place dans la portion de l'ascospore opposée au centrosome, c'est-à-dire à l'endroit où il
de Meves). Fig. 16. — Troisième mitose. Les quatre noyaux en voie de mitose sont vus transversalement dans la coupe (Méthode de Meves). Fig. 17 et 18. — Id. Fig. 19. — Partie inférieure d'un asque au moment de la mitose. Les chondriocontes offrent sur leur trajet de grosses vésicules peut-être occupées par du glycogène, car le glycogène se forme abondamment dans cette région (Méthode de Meves). Fig. 20 à 21. — Formation des ascospores. Celles-ci se délimitent par recourbement des fibrilles de l'aster qui persiste avec le centrosome à l'un des pôles de chacun des noyaux. Les fibrilles ne sont pas différenciées par les méthodes mitochondriales et le centrosome seul s'aperçoit. Comparez ces figures avec la figure 1 du texte. Le chondriome de l'asque se répartit presque tout entier entre les huit ascospores et se place dans la portion de l'ascospore opposée au centrosome, c'est-à-dire à l'endroit où il n'y a pas de fibrilles de l'aster. (Méthode de Meves). Fig. 22. — Ascospores à divers stades de leur développement. Le chondriome d'abord localisé sur un côté du noyau se dissémine dans tout le cytoplasme. (Méthode de Meves). Fig. 23. — Asque avec ascospores ayant achevé leur croissance (Méthode de Meves). Fig. 24. — Asque mûr (Méthode de Meves). Fig. 25. — Portion inférieure d'un asque mûr. Les chondriocontes persistent : quelques-uns se désarticulent en mitochondries granuleuses (Méthode de Meves). Fig. 26 à 28. — Extrémités de paraphyses (Méthode de Regaud). Fig. 29. — Cellules du stroma d'un jeune périthèce avec plusieurs noyaux et un chondriome constitué surtout par des chondriocontes allongés. PLANCHES 14 et 15 Pustularia vesiculosa (1 à 11). Fig. 1 à 11. — Cellules du stroma d'un périthèce. Les chondriocontes forment sur leur trajet de petits renflements. Ceux-ci sont tantôt homogènes, tantôt sous forme d'une vésicule, selon que le corpuscule formé à leur intérieur est coloré ou incolore. Les renflements s'isolent ensuite par résorption des parties effilées des chondriocontes, émigrent dans les vacuoles et prennent tous l'aspect de vésicules dont la partie incolore représente un corpuscule métachromatique. L'écorce mitochondriale se réduit ensuite en une calotte coiffant le
Meves). Fig. 24. — Asque mûr (Méthode de Meves). Fig. 25. — Portion inférieure d'un asque mûr. Les chondriocontes persistent : quelques-uns se désarticulent en mitochondries granuleuses (Méthode de Meves). Fig. 26 à 28. — Extrémités de paraphyses (Méthode de Regaud). Fig. 29. — Cellules du stroma d'un jeune périthèce avec plusieurs noyaux et un chondriome constitué surtout par des chondriocontes allongés. PLANCHES 14 et 15 Pustularia vesiculosa (1 à 11). Fig. 1 à 11. — Cellules du stroma d'un périthèce. Les chondriocontes forment sur leur trajet de petits renflements. Ceux-ci sont tantôt homogènes, tantôt sous forme d'une vésicule, selon que le corpuscule formé à leur intérieur est coloré ou incolore. Les renflements s'isolent ensuite par résorption des parties effilées des chondriocontes, émigrent dans les vacuoles et prennent tous l'aspect de vésicules dont la partie incolore représente un corpuscule métachromatique. L'écorce mitochondriale se réduit ensuite en une calotte coiffant le corpuscule sur l'un de ses côtés, puis s'épuise lorsque ce dernier a achevé son développement. Les gros corpuscules (fig. 3), ayant terminé leur croissance, apparaissent incolores au sein des vacuoles et sont visibles grâce à leur réfringence spéciale. Dans les figures 4 et 8, on aperçoit des cristalloïdes de protéine (Méthode de Regaud). Cheilymenia theleboloides (12 à 16). Fig. 12 à 13. — Fragments de paraphyses avec granulations pigmentaires colorées par l'hématoxyline (méthode de Regaud). Fig. 14. — Jeune asque (Méthode de Regaud). Fig. 15. — Asque mûr (Méthode de Regaud). Peziza leucomelas (17 à 20). Fig. 17 à 20. — Jeunes asques. Les grains basophiles sont en voie de se former, autour du noyau, aux dépens des chondriocontes. Fig. 21. — Portion inférieure d'un asque avec chondriocontes pourvus de vésicules. PLANCHES 16 et 17 Coprinus species (1 à 16). (Méthode de Regaud). Fig. 1 à 13. — Basides à divers stades de leur développement. Le chondriome est constitué par des chondriocontes. Ceux-ci se renflent sur certains points de leur trajet produisant des corpuscules métachromatiques qui émigrent ensuite dans les vacuoles où ils restent entourés de leur écorce mitochondriale jusqu'à la fin de leur croissance. Fig. 14 et 16. —
(Méthode de Regaud). Cheilymenia theleboloides (12 à 16). Fig. 12 à 13. — Fragments de paraphyses avec granulations pigmentaires colorées par l'hématoxyline (méthode de Regaud). Fig. 14. — Jeune asque (Méthode de Regaud). Fig. 15. — Asque mûr (Méthode de Regaud). Peziza leucomelas (17 à 20). Fig. 17 à 20. — Jeunes asques. Les grains basophiles sont en voie de se former, autour du noyau, aux dépens des chondriocontes. Fig. 21. — Portion inférieure d'un asque avec chondriocontes pourvus de vésicules. PLANCHES 16 et 17 Coprinus species (1 à 16). (Méthode de Regaud). Fig. 1 à 13. — Basides à divers stades de leur développement. Le chondriome est constitué par des chondriocontes. Ceux-ci se renflent sur certains points de leur trajet produisant des corpuscules métachromatiques qui émigrent ensuite dans les vacuoles où ils restent entourés de leur écorce mitochondriale jusqu'à la fin de leur croissance. Fig. 14 et 16. — Fragments du stroma de l'hyménium. Les chondriocontes qui constituent le chondriome forment sur leur trajet des vésicules parfois assez grosses ; les plus petites renferment un corpuscule métachromatique à leur intérieur, les autres contiennent peut-être du glycogène. On aperçoit quelques cristalloïdes de protéine. Psalliota campestris. (Méthode de Regaud). Fig. 17 à 22. — Basides à divers stades de leur développement. Mêmes particularités que dans l'espèce précédente. Fig. 23. — Basidiospores. Fig. 24. — Fragment du stroma du pied, avec chondriocontes formant des vésicules et cristalloïdes de protéine. Fig. 25 à 27. — Fragment du stroma de l'hyménium. Psathyrella disseminata. (Méthode de Regaud). Fig. 28 à 32. — Basides à divers stades de leur développement. Fig. 34 et 35. — Basidiospores. Fig. 33. — Fragment du stroma de l'hyménium. Coprinus radiatus (Méthode de Regaud). Fig. 38 et 39. — Basides. Fig. 40. — Basidiospores. Fig. 41. — Fragment du stroma de l'hyménium. PLANCHES 18 et 19. Penicillium glaucum (1 à 13). Méthode de Regaud. Fig. 1 à 8. — Fragments de mycélium avec chondriome constitué par de longs chondriocontes plus ou moins parallèles les uns aux autres et orientés dans le sens longitudinal du filament. Fig. 9 à 13. — Fragments
à 22. — Basides à divers stades de leur développement. Mêmes particularités que dans l'espèce précédente. Fig. 23. — Basidiospores. Fig. 24. — Fragment du stroma du pied, avec chondriocontes formant des vésicules et cristalloïdes de protéine. Fig. 25 à 27. — Fragment du stroma de l'hyménium. Psathyrella disseminata. (Méthode de Regaud). Fig. 28 à 32. — Basides à divers stades de leur développement. Fig. 34 et 35. — Basidiospores. Fig. 33. — Fragment du stroma de l'hyménium. Coprinus radiatus (Méthode de Regaud). Fig. 38 et 39. — Basides. Fig. 40. — Basidiospores. Fig. 41. — Fragment du stroma de l'hyménium. PLANCHES 18 et 19. Penicillium glaucum (1 à 13). Méthode de Regaud. Fig. 1 à 8. — Fragments de mycélium avec chondriome constitué par de longs chondriocontes plus ou moins parallèles les uns aux autres et orientés dans le sens longitudinal du filament. Fig. 9 à 13. — Fragments de conidiophores montrant le passage d'une partie du chondriome dans les conidies. Botrytis cinerea (14 à 17). Méthode de Regaud. Fig. 14 à 17. — Fragments de mycélium. Endomyces Magnusii (18 à 25). Méthode de Regaud. Fig. 18 à 19. — Fragments de mycélium. Fig. 20 à 25. — Oïdies. Endomyces fibuliger (26 à 30). Méthode de Regaud. Fig. 28 à 29. — Fragments de mycélium. Fig. 30. — Conidie. Oidium species (31 à 35). Méthode de Regaud. Fig. 31 à 34. — Fragments de mycélium. Fig. 35. — Oïdie. Rhizopus nigricans (36 à 42). Méthode de Regaud. Fig. 36 à 41. — Fragments de mycélium avec chondriome constitué en général par des chondriocontes et parfois par des mitochondries granuleuses. Les chondriocontes forment sur leur trajet des vésicules sans doute occupées par des corpuscules métachromatiques. Fig. 42. — Fragment d'un jeune sporange. Saccharomycodes Ludwigii (43). Méthode de Regaud. Fig. 43. — Cellule végétative. Saccharomyces Chevalier (44 à 51). Méthode de Regaud. Fig. 45 à 51. — Cellules végétatives. Saccharomyces cerevisiae (52 à 64). Méthode de Regaud. Fig. 52 à 64. — Cellules végétatives. Endomyces albicans (65 à 71). Méthode de Regaud. Fig. 64 à 70. — Cellules levures et formes
Endomyces fibuliger (26 à 30). Méthode de Regaud. Fig. 28 à 29. — Fragments de mycélium. Fig. 30. — Conidie. Oidium species (31 à 35). Méthode de Regaud. Fig. 31 à 34. — Fragments de mycélium. Fig. 35. — Oïdie. Rhizopus nigricans (36 à 42). Méthode de Regaud. Fig. 36 à 41. — Fragments de mycélium avec chondriome constitué en général par des chondriocontes et parfois par des mitochondries granuleuses. Les chondriocontes forment sur leur trajet des vésicules sans doute occupées par des corpuscules métachromatiques. Fig. 42. — Fragment d'un jeune sporange. Saccharomycodes Ludwigii (43). Méthode de Regaud. Fig. 43. — Cellule végétative. Saccharomyces Chevalier (44 à 51). Méthode de Regaud. Fig. 45 à 51. — Cellules végétatives. Saccharomyces cerevisiae (52 à 64). Méthode de Regaud. Fig. 52 à 64. — Cellules végétatives. Endomyces albicans (65 à 71). Méthode de Regaud. Fig. 64 à 70. — Cellules levures et formes mycéliennes. PLANCHE 20. Cosmarium parvulum (1 à 8). Fig. 1 à 5. — Cellules de Cosmarium coupées longitudinalement ou transversalement. (Méthode de Regaud). Fig. 6 à 8. — Id. On aperçoit sur le trajet du reticulum du chromatophore des globules de graisse teints en brun foncé par l'acide osmique. (Méthode de Meves). Spirogyra maxima (9 à 11). Fig. 9 à 11. — Coupes longitudinales et transversales de cellules. Le chromatophore renferme des globules de graisse teints en brun foncé par l'acide osmique et des corpuscules métachromatiques sous forme de vésicules incolores. (Méthode de Meves). PLANCHES 21 et 22. Spirogyra maxima (1 et 2). Fig. 1 — Coupe transversale. (Méthode de Meves). Fig. 2. — Fragment de coupe longitudinale d'une cellule. Spirogyra species (3 et 4). Fig. 3 et 4. — Fragments de coupes de cellules. Dans la figure 3, on aperçoit en dehors du chromatophore des granulations de tanin colorées en jaune grisâtre par le bichromate de potasse, ici en gris. (Méthode de Regaud). Oedogonium species (5 à 8). Fig. 5 à 8. — Fragments de coupes de cellules avec chromatophore, globules graisseux et noyaux. (Méthode de Meves). Mougeotia species (9 à 15). Fig. 9 à 15. — Fragments de
de Meves). Spirogyra maxima (9 à 11). Fig. 9 à 11. — Coupes longitudinales et transversales de cellules. Le chromatophore renferme des globules de graisse teints en brun foncé par l'acide osmique et des corpuscules métachromatiques sous forme de vésicules incolores. (Méthode de Meves). PLANCHES 21 et 22. Spirogyra maxima (1 et 2). Fig. 1 — Coupe transversale. (Méthode de Meves). Fig. 2. — Fragment de coupe longitudinale d'une cellule. Spirogyra species (3 et 4). Fig. 3 et 4. — Fragments de coupes de cellules. Dans la figure 3, on aperçoit en dehors du chromatophore des granulations de tanin colorées en jaune grisâtre par le bichromate de potasse, ici en gris. (Méthode de Regaud). Oedogonium species (5 à 8). Fig. 5 à 8. — Fragments de coupes de cellules avec chromatophore, globules graisseux et noyaux. (Méthode de Meves). Mougeotia species (9 à 15). Fig. 9 à 15. — Fragments de cellules avec chromatophores et noyau. (Méthode de Regaud). PLANCHE 23. Pustularia vesiculosa (1 à 9). Fig. 1 à 7. — Cellules du stroma du périthèce fixées et colorées par la méthode de Regaud et traitées ensuite par le bleu de Crésyl. Les corpuscules métachromatiques apparaissent colorés en rouge vineux sur le trajet des chondriocontes teints en gris. Fig. 8. — Corpuscules métachromatiques à divers stades de leur développement fixés et colorés par la même méthode. Fig. 9. — Extrémité supérieure d'un ascule fixée et colorée par la méthode de Benda. Les globules de graisses colorées en brun par l'acide osmique semblent parfois insérés parfois sur le trajet des chondriocontes. CHONDRIOME DES CHAMPIGNONS ET DES ALGUES 315 Spirogyra maxima (10 à 12). Fig. 10. — Portion d'une cellule fixée et colorée par la méthode de Benda. Le chromatophore montre dans son intérieur des globules de graisses colorées en brun par l'acide osmique. Fig. 11. — Id., fixée par la méthode de Regaud et colorée par le bleu de Crésyl. Le chromatophore montre autour des pyrénoïdes des corpuscules métachromatiques colorés en rouge vineux. Fig. 12. — Id., fixée par la méthode de Benda et colorée par la méthode d'Altmann. Le chromatophore renferme
le trajet des chondriocontes teints en gris. Fig. 8. — Corpuscules métachromatiques à divers stades de leur développement fixés et colorés par la même méthode. Fig. 9. — Extrémité supérieure d'un ascule fixée et colorée par la méthode de Benda. Les globules de graisses colorées en brun par l'acide osmique semblent parfois insérés parfois sur le trajet des chondriocontes. CHONDRIOME DES CHAMPIGNONS ET DES ALGUES 315 Spirogyra maxima (10 à 12). Fig. 10. — Portion d'une cellule fixée et colorée par la méthode de Benda. Le chromatophore montre dans son intérieur des globules de graisses colorées en brun par l'acide osmique. Fig. 11. — Id., fixée par la méthode de Regaud et colorée par le bleu de Crésyl. Le chromatophore montre autour des pyrénoïdes des corpuscules métachromatiques colorés en rouge vineux. Fig. 12. — Id., fixée par la méthode de Benda et colorée par la méthode d'Altmann. Le chromatophore renferme des globules de graisse colorées en brun foncé par l'acide osmique. Cosmarium parvulum (11 à 20). Fig. 11 à 20. — Portions de cellules fixées et colorées par la méthode de Benda. Le chromatophore montre des globules de graisses colorées par l'acide osmique. Le noyau apparaît dans la figure 14, coloré en rouge orangé. Fig. 18. — Id., fixée par la méthode de Benda et colorée par la méthode d'Altmann. Cheilymenia thelepholoides (22 et 23). Fig. 21 à 23. — Fragments de paraphyses à l'état vivant montrant les granulations pigmentaires. NOTES BIBLIOGRAPHIQUES PEKLO, Jaroslav. — Neue Beiträge zur Lösung des Mykorrhizaproblems. A. Cytologie der Fichten-und Kiefermykorrhizen. (Nouvelle contribution à la solution du problème des Mycorrhizes. A. Cytologie des Mycorrhizes du Picea et du Pinus). (Zeitschr. f. Garungsphysiologie. Vol. II, Cahier 4. 1913 p. 246). Dans ce Mémoire (de 43 pages) l'auteur résume l'état actuel de la question et donne en même temps le résultat de ses propres observations. Il conclut que les mycorrhizes de Picea excelsa L. et celles de Pinus silvestris L. sont très voisines comme organisation. En cherchant à isoler ces mycorrhizes l'auteur a obtenu deux espèces de Pénicillium, mais il fait quelques réserves sur l'identification de ces
coloré en rouge orangé. Fig. 18. — Id., fixée par la méthode de Benda et colorée par la méthode d'Altmann. Cheilymenia thelepholoides (22 et 23). Fig. 21 à 23. — Fragments de paraphyses à l'état vivant montrant les granulations pigmentaires. NOTES BIBLIOGRAPHIQUES PEKLO, Jaroslav. — Neue Beiträge zur Lösung des Mykorrhizaproblems. A. Cytologie der Fichten-und Kiefermykorrhizen. (Nouvelle contribution à la solution du problème des Mycorrhizes. A. Cytologie des Mycorrhizes du Picea et du Pinus). (Zeitschr. f. Garungsphysiologie. Vol. II, Cahier 4. 1913 p. 246). Dans ce Mémoire (de 43 pages) l'auteur résume l'état actuel de la question et donne en même temps le résultat de ses propres observations. Il conclut que les mycorrhizes de Picea excelsa L. et celles de Pinus silvestris L. sont très voisines comme organisation. En cherchant à isoler ces mycorrhizes l'auteur a obtenu deux espèces de Pénicillium, mais il fait quelques réserves sur l'identification de ces champignons avec les mycorrhizes. L'assimilation de l'azote de l'air par les mycorrhizes étudiées semble bien établie. Jean FRIEDEL PORODKO, Th. M. — Vergleichende Untersuchungen über die Tropismen. VI. Mitteilung. Der relative chemotrope Wirkungswert von Alkalin- und Erdalkali-salzen für Keimwurzeln von Lupinus albus (Études comparées sur les tropismes. VIe communication. — Action chimiotropique relative des sels alcalins et alcalino-terreux de Lupinus albus). (Deutsch. Bot. Gesellsch. 1914. Vol. XXII, p. 25). Cette note fait partie d'un ensemble considérable de recherches dont plusieurs ont été résumées dans la Revue générale de Botanique. Porodko, dans ses premières expériences, étudiait les tropismes à un point de vue purement qualitatif en observant au microscope l'extrémité d'une racine soumise à l'action du corps à étudier. Le présent travail, ayant pour but d'étudier quantitativement le phénomène a été fait au moyen de l'observation macroscopique portant sur un groupe de racines afin d'éviter les erreurs individuelles. On observe trois phases successives lorsqu'on augmente la concentration du sel : 1° chimiotropisme positif; 2° chimiotropisme négatif; 3° chimiotraumatropisme négatif. Les sels alcalino-terreux, excepté les bromures et peut-être les iodures, ne provoquent pas de chimiotropisme positif. Si l'on range les ions (anions et cations) par ordre d'action chimiotropique décroissante, on a les