jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
ont été répétés avec du mycélium à des âges différents provenant du milieu A ou B. Le mycélium provenant de 50 ml du milieu d'origine est transféré dans 50 ml du milieu de substitution contenus dans des flacons d'Erlenmeyer de 250 ml qui sont ensuite placés sur un agitateur à 100 oscillations par minute. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Croissance et sporulation. Après une phase de latence de 8 h ± 1, la croissance est exponentielle pendant 14 h ± 1 avec un taux de croissance spécifique de 0,14 ± 0,01 h-1 (temps de doublement de 5 h) pendant que le pH et la consommation d'oxygène du milieu augmentent régulièrement (fig. 1); la fin de la phase exponentielle coïncide avec le premier maximum de pH (6,5 ± 0,1) et une diminution de l'absorption d'oxygène. Après 24 h de culture, le poids sec mycélien est de 5,5 ± 1,1 mg/ml de milieu (moyenne et écart type sur 5 fermentations différentes). Le mycélium entre ensuite dans une phase de croissance linéaire alors que le pH diminue et la consommation en oxygène augmente à nouveau. Durant cette période, la vitesse de croissance (10 mg h-1 11-1) est beaucoup plus faible que lors de la phase exponentielle (200 mg h-1 11-1). Le pH minimum de 5,4 ± 0,2 est atteint après 48 h de croissance; le milieu se basifie ensuite, en même temps que l'autolyse mycélienne s'accélère. Après 48 h et 72 h, le poids sec de mycélium atteint respectivement 11,2 ± 1,0 et 13,5 ± 0,9 mg/ml de milieu. L'optimum de croissance est observé entre le 3e et le 4e jour de culture; le rendement obtenu est de 0,54 ± 0,02 g de mycélium sec par g de glucose. Dans nos conditions expérimentales, la phase de croissance exponentielle est courte par rapport à la phase de croissance linéaire; ce type de croissance s'explique classiquement chez les bactéries et les levures par l'épuisement d'un facteur nutritif devenant limitant pour la croissance. Les premières préspores (jeunes spores à paroi fine et à contenu granuleux) apparaissent 50 à 65 h après l'ensemencement ; les conjugaisons augmentent en
phase exponentielle (200 mg h-1 11-1). Le pH minimum de 5,4 ± 0,2 est atteint après 48 h de croissance; le milieu se basifie ensuite, en même temps que l'autolyse mycélienne s'accélère. Après 48 h et 72 h, le poids sec de mycélium atteint respectivement 11,2 ± 1,0 et 13,5 ± 0,9 mg/ml de milieu. L'optimum de croissance est observé entre le 3e et le 4e jour de culture; le rendement obtenu est de 0,54 ± 0,02 g de mycélium sec par g de glucose. Dans nos conditions expérimentales, la phase de croissance exponentielle est courte par rapport à la phase de croissance linéaire; ce type de croissance s'explique classiquement chez les bactéries et les levures par l'épuisement d'un facteur nutritif devenant limitant pour la croissance. Les premières préspores (jeunes spores à paroi fine et à contenu granuleux) apparaissent 50 à 65 h après l'ensemencement ; les conjugaisons augmentent en nombre pendant une dizaine d'heures, puis cessent définitivement. Cette phase est la période critique pour la sporulation et détermine la quantité de spores produites; en effet toutes les préspores formées évoluent en spores. Les concentrations finales en zygospores varient de 7. 105 à 2. 106 sp./ml. Le début de la sporulation a lieu une vingtaine d'heures après la métabolisation complète de l'azote du milieu (fig. 2). La quantité relativement importante de glucose subsistent à ce moment dans le milieu (environ 5 g) ne gêne pas la sporulation. Ce sucre résiduel est ensuite presque totalement utilisé par le champignon. Entre 10 et 25 °C les rendements en poids sec mycélien et le nombre de zygospores ne sont pas significativement affectés par la température; cependant, un abaissement de la température retarde la date du maximum de croissance et celle d'apparition des préspores ainsi, les préspores apparaissent après 2 jours de culture à 25°C et seulement vers le 7e jour à 10°C ; le poids sec mycélien maximum est atteint après 2 jours pour une température de 25°C, et seulement au bout de 4 jours à 17°C. L'évolution du pH du milieu diffère en fonction du pH initial de la culture (fig. 3).
sporulation a lieu une vingtaine d'heures après la métabolisation complète de l'azote du milieu (fig. 2). La quantité relativement importante de glucose subsistent à ce moment dans le milieu (environ 5 g) ne gêne pas la sporulation. Ce sucre résiduel est ensuite presque totalement utilisé par le champignon. Entre 10 et 25 °C les rendements en poids sec mycélien et le nombre de zygospores ne sont pas significativement affectés par la température; cependant, un abaissement de la température retarde la date du maximum de croissance et celle d'apparition des préspores ainsi, les préspores apparaissent après 2 jours de culture à 25°C et seulement vers le 7e jour à 10°C ; le poids sec mycélien maximum est atteint après 2 jours pour une température de 25°C, et seulement au bout de 4 jours à 17°C. L'évolution du pH du milieu diffère en fonction du pH initial de la culture (fig. 3). Le pH initial n'affecte pas le rendement en poids sec mycélien, mais influence la sporulation. Le pH initial de 6,6 assure la meilleure sporulation : 2 106 sp/ml; les pH voisins de 6 permettent aussi une sporulation appréciable proche de 106 sp/ml alors que le pH de 5 induit seulement 105 sp/ml. Induction de la sporulation. — Le transfert du mycélium d'un milieu complet dans de l'eau distillée ou dans un milieu contenant seulement une source carbonée ou seulement une source azotée induit toujours la formation de spores. Le transfert dans l'eau, induit la sporulation du mycélium depuis le début de la phase exponentielle (1,4 mg/ml par exemple) jusqu'à la fin de la phase de croissance linéaire. L'effet du déséquilibre nutritif qui induit la sporulation est donc immédiat sans phase préalable de mâturation du mycélium. Lorsque le mycélium est transféré dans un milieu neuf, la croissance reprend quel que soit l'âge du mycélium. En particulier, l'addition d'un milieu nutritif au mycélium au stade préspore entraîne un arrêt de l'évolution des préspores et une reprise du développement hyphal; après la métabolisation des nutriments de ce nouveau milieu, les préspores préexistantes finissent leur évolution en spores. La sporulation reste donc jusqu'à la
105 sp/ml. Induction de la sporulation. — Le transfert du mycélium d'un milieu complet dans de l'eau distillée ou dans un milieu contenant seulement une source carbonée ou seulement une source azotée induit toujours la formation de spores. Le transfert dans l'eau, induit la sporulation du mycélium depuis le début de la phase exponentielle (1,4 mg/ml par exemple) jusqu'à la fin de la phase de croissance linéaire. L'effet du déséquilibre nutritif qui induit la sporulation est donc immédiat sans phase préalable de mâturation du mycélium. Lorsque le mycélium est transféré dans un milieu neuf, la croissance reprend quel que soit l'âge du mycélium. En particulier, l'addition d'un milieu nutritif au mycélium au stade préspore entraîne un arrêt de l'évolution des préspores et une reprise du développement hyphal; après la métabolisation des nutriments de ce nouveau milieu, les préspores préexistantes finissent leur évolution en spores. La sporulation reste donc jusqu'à la fin sous la dépendance de facteurs nutritifs du milieu. La sporulation la plus importante est obtenue dans le milieu contenant seulement une source d'azote. L'eau distillée seule ou glucosée entraîne la formation d'une quantité de spores plus faible que dans le témoin (tableau 1). La sporulation dans un vieux filtrat de culture n'apparaît pas supérieure à celle observée dans le témoin. TABLEAU 1 Sporulation (x 105 spores/ml) dans divers milieux de remplacement. Milieu d'origine glucose 2,5 glucose 8 "o Milieu de remplacement , + , hydrolysats de protéine , , 1 " „ + extrait de levure 2 % Témoin 5,8 5,5 (2) b Eau 4,2 b 3,9 b Glucose 2,5 % 3,0 b Peptone 1 % 6,6 a Glucose 8 % 4,2 b Extrait de levure 2 % ......... 10,3 a (2) Sporulation moyenne obtenue au cours de 6 essais avec un mycélium d'âge variable (3 répétitions par essai (2) Sporulation moyenne obtenue à partir d'un mycélium âgé de 24 h (4 essais avec 4 répétitions par essai. e) Toutes les moyennes suivies par la même lettre ne sont pas significativement différentes (analyse de variance suivie d'un test Duncan à 5 %). La différence de sporulation constatée sur les
de culture n'apparaît pas supérieure à celle observée dans le témoin. TABLEAU 1 Sporulation (x 105 spores/ml) dans divers milieux de remplacement. Milieu d'origine glucose 2,5 glucose 8 "o Milieu de remplacement , + , hydrolysats de protéine , , 1 " „ + extrait de levure 2 % Témoin 5,8 5,5 (2) b Eau 4,2 b 3,9 b Glucose 2,5 % 3,0 b Peptone 1 % 6,6 a Glucose 8 % 4,2 b Extrait de levure 2 % ......... 10,3 a (2) Sporulation moyenne obtenue au cours de 6 essais avec un mycélium d'âge variable (3 répétitions par essai (2) Sporulation moyenne obtenue à partir d'un mycélium âgé de 24 h (4 essais avec 4 répétitions par essai. e) Toutes les moyennes suivies par la même lettre ne sont pas significativement différentes (analyse de variance suivie d'un test Duncan à 5 %). La différence de sporulation constatée sur les divers milieux de remplacement peut être liée à l'évolution inverse du pH dans certains milieux : au moment de la sporulation, le pH tombe à 5 dans la solution de glucose alors qu'il monte à 7,5 ou 8 dans la solution d'hydrolysats de protéine. En outre, la croissance du mycélium transféré dans l'eau pure est bloquée alors que le développement reprend lorsque le champignon est placé dans une solution d'hydrolysats de protéine. Séance du 21 février. A. GRÖNER, Z. Pflanzenkrankh. Pflanzensch., 82, 1975, p. 22-29. TPI ITR.C PT r. RFMAnn)FRF Rpv. Mw'oL 39. 1976. D. 239-250. ... J. E. SMITH et D. R. BERRY, Academic Press, New York et Londres, 1974, 326 pp. G. TURIAN, Masson, Paris, 1969, 144 pp. Service de Lutte biologique contre les Insectes, Institut Pasteur, Paris, 25, Rue du D' Roux, 75015 Paris. HISTOPHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Effets d'auxines et d'antiauxines sur la néoformation de bourgeons in vitro chez le Chou-fleur (Brassica oleracea L., var botrytis). Note de Jacques Margara présentée par M. Roger Gautheret. Plusieurs composés auxiniques provoquent la néoformation de bourgeons sur des fragments de tige florifère du Chou-fleur. L'acide traumatique accroît le pourcentage des néoformations. Selon sa concentration, la gibbérelline A3 stimule ou inhibe
transféré dans l'eau pure est bloquée alors que le développement reprend lorsque le champignon est placé dans une solution d'hydrolysats de protéine. Séance du 21 février. A. GRÖNER, Z. Pflanzenkrankh. Pflanzensch., 82, 1975, p. 22-29. TPI ITR.C PT r. RFMAnn)FRF Rpv. Mw'oL 39. 1976. D. 239-250. ... J. E. SMITH et D. R. BERRY, Academic Press, New York et Londres, 1974, 326 pp. G. TURIAN, Masson, Paris, 1969, 144 pp. Service de Lutte biologique contre les Insectes, Institut Pasteur, Paris, 25, Rue du D' Roux, 75015 Paris. HISTOPHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Effets d'auxines et d'antiauxines sur la néoformation de bourgeons in vitro chez le Chou-fleur (Brassica oleracea L., var botrytis). Note de Jacques Margara présentée par M. Roger Gautheret. Plusieurs composés auxiniques provoquent la néoformation de bourgeons sur des fragments de tige florifère du Chou-fleur. L'acide traumatique accroît le pourcentage des néoformations. Selon sa concentration, la gibbérelline A3 stimule ou inhibe le bourgeonnement en présence d'auxine. Plusieurs antiauxines peuvent sporadiquement provoquer la néoformation de fleurs. Several auxins and antiauxins induce bud neoformation on explants of cauliflower heads. The percentage of neoformations is increased by traumatic acid. According to its concentration, gibberellin A3 stimulates or inhibits bud neoformation induced by auxin. Several antiauxins can sporadically elicit flower neoformation without previous head formation. Le Chou-fleur, Brassica oleracea L., var botrytis a fait l'objet d'un certain nombre de travaux concernant la multiplication végétative in vitro à partir d'apex caulinaires principalement [C), C), (8), (9)]. Nous avons montré que les fragments de tige florifère constituaient un matériel expérimental intéressant pour l'étude de la néoformation de bourgeons. Le bourgeonnement peut être en effet provoqué dans nos conditions par l'apport d'une cytokinine ou d'une auxine, l'association des deux régulateurs de croissance n'étant pas indispensable [e), e), (4)]. La présente Note précise les modalités d'action des composés auxiniques. TABLEAU 1 Effets d'auxines et d'antiauxines sur la néoformation de bourgeons (*) (en pour cent de cultures produisant des bourgeons végétatifs) 5.!(T' M 5.Kr" M 5.!0'' M Acide indolyl acétique (A!A) 0 25 42 Acide indolyl butyrique (AIB) 0 82 33 Acide indolyl propionique (A!P) 17 92 82 Acide naphtyl
antiauxins can sporadically elicit flower neoformation without previous head formation. Le Chou-fleur, Brassica oleracea L., var botrytis a fait l'objet d'un certain nombre de travaux concernant la multiplication végétative in vitro à partir d'apex caulinaires principalement [C), C), (8), (9)]. Nous avons montré que les fragments de tige florifère constituaient un matériel expérimental intéressant pour l'étude de la néoformation de bourgeons. Le bourgeonnement peut être en effet provoqué dans nos conditions par l'apport d'une cytokinine ou d'une auxine, l'association des deux régulateurs de croissance n'étant pas indispensable [e), e), (4)]. La présente Note précise les modalités d'action des composés auxiniques. TABLEAU 1 Effets d'auxines et d'antiauxines sur la néoformation de bourgeons (*) (en pour cent de cultures produisant des bourgeons végétatifs) 5.!(T' M 5.Kr" M 5.!0'' M Acide indolyl acétique (A!A) 0 25 42 Acide indolyl butyrique (AIB) 0 82 33 Acide indolyl propionique (A!P) 17 92 82 Acide naphtyl acétique (ANA) 66 100 Il Acide phényl acétique (APA) 0 25 8 Acide 2,4 dichloro-phénoxyacétique (24 D) 25 0 0 5.!0'" M 5.tO'" M Acide trichloro-phénoxyacétique 0 0 Acide 2,4 trichloro-phénoxypropionique 0 0 Acide parachloro-phénoxypropionique 0 0 Acide naphtyl méthyl sulfopropionique 0 0 Acide triiodobenzoïque 0 0 Acide méta tolyl phtalamique 0 0 (*) Le bourgeonnement est nul sur le milieu de base témoin. Le protocole expérimental adopté pour l'ensemble des essais est celui décrit précédemment. La solution minérale est additionnée de gélose (8 g/1) et de saccharose (45 g/1). Les explants mis en culture sont des fragments de tige inflorescentielle prélevés dans la « pomme » du Chou-fleur (longueur 10 mm), l'épiderme et les tissus immédiatement sous-jacents étaient retirés. La température de la chambre à cultures est voisine de 24°C, l'éclairement continu fourni par des tubes fluorescents du type Blanc Soleil de luxe voisin de 4 000 lux. Les observations sont faites 6 semaines après la mise en culture. Chaque lot comprend 12 explants. Les données du tableau I montrent qu'un certain nombre de composés auxiniques provoquent la néoformation de bourgeons sur des fragments de tige inflorescentielle de Chou-fleur. Les composés les plus efficaces sont l'acide naphtyl acétique, l'acide
phtalamique 0 0 (*) Le bourgeonnement est nul sur le milieu de base témoin. Le protocole expérimental adopté pour l'ensemble des essais est celui décrit précédemment. La solution minérale est additionnée de gélose (8 g/1) et de saccharose (45 g/1). Les explants mis en culture sont des fragments de tige inflorescentielle prélevés dans la « pomme » du Chou-fleur (longueur 10 mm), l'épiderme et les tissus immédiatement sous-jacents étaient retirés. La température de la chambre à cultures est voisine de 24°C, l'éclairement continu fourni par des tubes fluorescents du type Blanc Soleil de luxe voisin de 4 000 lux. Les observations sont faites 6 semaines après la mise en culture. Chaque lot comprend 12 explants. Les données du tableau I montrent qu'un certain nombre de composés auxiniques provoquent la néoformation de bourgeons sur des fragments de tige inflorescentielle de Chou-fleur. Les composés les plus efficaces sont l'acide naphtyl acétique, l'acide indolyl propionique et l'acide indolyl butyrique. D'autres composés, parmi lesquels des antiauxines sont sans effet sur l'organogenèse végétative. Mais trois d'entre eux, l'acide triiodobenzoïque, l'acide naphtyl méthyl sulfo-propionique et l'acide N métatolyl phtalamique, ont déclenché la néoformation de bourgeons inflorescentiels sur quelques cultures dans un ensemble de 3 essais (fig. 1). Fig. 1. — Deux types d'inflorescences néoformées in vitro. À gauche : inflorescence tubérisée, normale, sur un milieu contenant de l'AG (10-5 M) et du mésoinositol 10-3 M. À droite : inflorescence anormale non tubérisée sur un milieu contenant de l'acide naphtyl méthyl sulfo-propionique 5. 10-5 M. Les données du tableau II montrent qu'en présence d'une auxine à faible concentration l'acide traumatique paraît exercer une nette action synergique sur la néoformation des bourgeons. L'acide traumatique a été parfois considéré comme une « hormone de blessure ». Mais ses effets éventuels sur l'organogenèse n'ont guère été étudiés. TABLEAU II Effets synergiques de l'acide traumatique et d'une auxine à faible concentration sur la néoformation de bourgeons. % de cultures produisant des bourgeons végétatifs (*). Milieu de base AIB 10-7 M AIP 10-7 M f 0 0 0 8 Acide traumatique -s , „ , ,, M L 10-5 M ......... 20
1). Fig. 1. — Deux types d'inflorescences néoformées in vitro. À gauche : inflorescence tubérisée, normale, sur un milieu contenant de l'AG (10-5 M) et du mésoinositol 10-3 M. À droite : inflorescence anormale non tubérisée sur un milieu contenant de l'acide naphtyl méthyl sulfo-propionique 5. 10-5 M. Les données du tableau II montrent qu'en présence d'une auxine à faible concentration l'acide traumatique paraît exercer une nette action synergique sur la néoformation des bourgeons. L'acide traumatique a été parfois considéré comme une « hormone de blessure ». Mais ses effets éventuels sur l'organogenèse n'ont guère été étudiés. TABLEAU II Effets synergiques de l'acide traumatique et d'une auxine à faible concentration sur la néoformation de bourgeons. % de cultures produisant des bourgeons végétatifs (*). Milieu de base AIB 10-7 M AIP 10-7 M f 0 0 0 8 Acide traumatique -s , „ , ,, M L 10-5 M ......... 20 100 82 (*) Moyenne des résultats de deux essais. Les données du tableau III font apparaître une action de l'acide gibbérellique (AG) stimulatrice ou inhibitrice du bourgeonnement en présence d'une auxine, selon sa concentration. TABLEAU III Action stimulatrice ou inhibitrice de l'acide gibbérellique sur la néoformation de bourgeons, selon sa concentration. % de cultures produisant des bourgeons végétatifs. AIB ANA 10-6 M 10-1 M 10-4 M 10-3 M 10-1 M 10 -6 M 10-1 M 10-4 M R 0 33 64 0 0 58 83 42 0 AG 10-5 M 66 75 0 0 100 82 80 0 L 1 0 3 M 0 28 0 0 27 50 25 0 La conclusion la plus intéressante de cette série expérimentale concerne l'action d'antiauxines sur la néoformation d'inflorescences in vitro chez le Chou-fleur. Cette néoformation, sporadique et peu reproductible, n'a été observée jusqu'à maintenant qu'avec ce type de composés dont l'action sur le bourgeonnement végétatif est nulle ou faible. Il avait été précédemment observé, d'une manière également peu reproductible, la néoformation d'inflorescences tubérisées normales bien que de dimensions nécessairement très réduites [1, 2]. Chez le Chou-fleur, dans les conditions normales du développement, l'initiation florale est associée à la formation d'une «
concentration. % de cultures produisant des bourgeons végétatifs. AIB ANA 10-6 M 10-1 M 10-4 M 10-3 M 10-1 M 10 -6 M 10-1 M 10-4 M R 0 33 64 0 0 58 83 42 0 AG 10-5 M 66 75 0 0 100 82 80 0 L 1 0 3 M 0 28 0 0 27 50 25 0 La conclusion la plus intéressante de cette série expérimentale concerne l'action d'antiauxines sur la néoformation d'inflorescences in vitro chez le Chou-fleur. Cette néoformation, sporadique et peu reproductible, n'a été observée jusqu'à maintenant qu'avec ce type de composés dont l'action sur le bourgeonnement végétatif est nulle ou faible. Il avait été précédemment observé, d'une manière également peu reproductible, la néoformation d'inflorescences tubérisées normales bien que de dimensions nécessairement très réduites [1, 2]. Chez le Chou-fleur, dans les conditions normales du développement, l'initiation florale est associée à la formation d'une « pomme », inflorescence extrêmement ramifiée et tubérisée. L'expérimentation in vitro nous a permis de dissocier les deux phénomènes organogènes. Ce nouvel exemple d'analyse expérimentale de la Morphogenèse est à rapprocher de celui de Cichorium Intybus L. Chez cette espèce l'expérimentation in vitro nous avait déjà permis de dissocier l'initiation florale de l'élongation caulinaire, en montrant que l'on pouvait provoquer la formation de capitules sessiles sans allongement d'une hampe florale [3, 4]. (*) Séance du 21 février 1977. [4] P. CRISP et D. WALKEY, Euphytica, 23. 1974, p. 305. [5] J. MARGARA, Comptes rendus, 268, série D, 1969, p. 686. [3] J. MARGARA, Comptes rendus, 268, série D, 1969, p. 803. [4] J. MARGARA, Ann. Physiol, vég., 11, 169, p. 95. [5] J. MARGARA, Comptes rendus, 277, série D, 1973, p. 497. [6] J. MARGARA. Comptes rendus, 278, série D, 1974, p. 1195. [7] J. Pow. Hort. Res., 9. 1969. p. 151. [8] D. WALKEY et J. WOOLFITT, J. Hort. Sci., 45, 1970, p. 205. [9] D. WALKEY, V. COOPER et P. CRISP. J. Hort. Sci., 49. 1974, p. 273. (*) Composition en mg 1 de la solution minérale NH4NO3, 808. NaNO2,2H2O 125. MgSO4,7H2O 369, KH2PO4,7H2O 272. NH4Cl, 802. FeSO4,7H2O 35.
de l'élongation caulinaire, en montrant que l'on pouvait provoquer la formation de capitules sessiles sans allongement d'une hampe florale [3, 4]. (*) Séance du 21 février 1977. [4] P. CRISP et D. WALKEY, Euphytica, 23. 1974, p. 305. [5] J. MARGARA, Comptes rendus, 268, série D, 1969, p. 686. [3] J. MARGARA, Comptes rendus, 268, série D, 1969, p. 803. [4] J. MARGARA, Ann. Physiol, vég., 11, 169, p. 95. [5] J. MARGARA, Comptes rendus, 277, série D, 1973, p. 497. [6] J. MARGARA. Comptes rendus, 278, série D, 1974, p. 1195. [7] J. Pow. Hort. Res., 9. 1969. p. 151. [8] D. WALKEY et J. WOOLFITT, J. Hort. Sci., 45, 1970, p. 205. [9] D. WALKEY, V. COOPER et P. CRISP. J. Hort. Sci., 49. 1974, p. 273. (*) Composition en mg 1 de la solution minérale NH4NO3, 808. NaNO2,2H2O 125. MgSO4,7H2O 369, KH2PO4,7H2O 272. NH4Cl, 802. FeSO4,7H2O 35. Na2 EDTA 35. Laboratoire de Morphogenèse expérimentale. I.N.R.A., Route de st-Cyr, 78000 Versailles. Depuis quelques années, l'intérêt s'est porté sur la teneur en δ180 de la matière organique fossile comme traceur paléoclimatique, à l'exemple de ce qui est communément utilisé à propos des carbonates. Certains auteurs ont ainsi établi des corrélations entre la composition isotopique de l'oxygène organique des tourbes ou des anneaux de croissance des troncs d'arbre, et la température. Nous avons essayé quant à nous, de rechercher les critères de ces variations en étudiant : 1° Des plantes récoltées sous différents types de climats. 2° Des plantes à cycle photosynthétique différent : plantes à photosynthèse en C3 (cycle de Calvin), plantes à photosynthèse en C4 (cycle de Hatch et Slack) et plantes de type CAM (Crassulacean Acid Metabolism). TABLEAU 1 Valeur de δ180 des feuilles de quelques plantes suivant le climat Climat tempéré δ180 (Région parisienne) : - 0,1000 Climat chaud ±0,1 °/00 Quercus pedunculata 23,33 Cercidium floridum (Arizona) 30,15 Fagus sylvatica 23,34 Larrea divaricata (Arizona) 29,82 Triticum vulgare 25,34 Acacia sp (Liban) 29,35 Hedera helix 26,04 Saccharum officinarum (Sucre commerce) 32,06 Rubus sp 24,37 Ananassa sativa (Martinique) 27,16 Galanthus nivalis 22,78 Salsola foetida (Liban) 27,56 1. VARIATION