jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
3,58 8,61 23,30 Kummer 2 3,33 2,31 2,27 4,55 1 0,33 0,26 0,29 0,07 lignyosum Lange 1 0,09 0,06 0,11 0,01 2 wittleri (Fr.) Quél. 12 2,20 2,70 4,60 6,50 1 1,13 0,47 1,76 1,65 dispersum (Fr.) Quél. 0,05 0,14 0,03 0,03 elongatum (Pers. ex Fr.) Ricken 0,40 0,19 0,76 1,85 capnoides (Fr. ex Fr.) Kummer 0,005 Flammeula (Fr.) Kummer alnicola (Fr.) Kummer 1 0,30 0,11 0,84 0,86 0,26 2 0,07 0,07 0,87 0,72 0,37 conissans (Fr.) Gillet sensu Ricken 0,24 0,11 0,89 0,50 0,19 0,08 apicrea (Fr.) Moser 1 0,04 0,12 0,31 0,42 0,30 0,14 sensu Lange 2 0,28 0,04 0,35 0,11 0,22 0,02 1 (*) (*) 16,13 37,78 astragalina (Fr.) Kummer 2 (*) (*) 17,50 35,16 henningsii Bres 0,06 0,03 0,14 0,36 1 (*) ? gummosa (Lasch) Kummer 2 lenta (Pers. ex Fr.) Kummer (*) (*) 0,23 0,37 decussata (Fr.) Quél. 1 (*) (*) 0,26 0,24 sensu Moser 2 (*) (*) 0,20 0,27 carbonaria (Fr. ex Fr.) Kummer 3 scabarella (Fr. ex Fr.) Quél. 4 (*) (*) 0,02 0,05 Pholiota (Fr.) Kummer flammans (Fr.) Kummer 68,20 36,90 79,70 29,45 squarrosa (Pers. ex Fr.) 1 0,28 0,22 1,46 0,54 Kummer 2 0,13 0,07 0,49 0,12 3 0,66 0,20 4 0,27 0,19 annuum (Fr.) Kummer 3 0,23 0,16 4 0,15 0,07 lucifera (Lasch) Quél. 1 1,68 0,61 2 1,78 0,46 3 1,69 0,42 tuberculosa (Schaeffer ex Fr.) 1 58,20 12,50 Kummer 2 6,28 5,87 -Gymnopilus Karsten spectabilis (Fr.) Sing 3,06 2,42 -penetrans (Fr. ex Fr.) Murr. (sensu Lange) 2,61 1,81 bellulus (Peck) Murr 2,37 1,08 -chrysospermus (Berk et Curt.) Murr... 0,44 1,01 (*) Teneur non dosable. ? Présence incertaine. Il est indiscutable que nombre de Strophariaceae à spores ferrugineuses sont très proches des Hypholoma par leur stock de styryl-pyrones. Dans les Flammula du groupe alnicola (F. alnicola, conissans, apicrea) on retrouve les six molécules identifiées chez plusieurs Hypholoma; si ces Flammules diffèrent des Hypholomes par l'absence de chrysocystides, elles leur ressemblent beaucoup par l'allure générale. D'autres Strophariaceae à spores ferrugineuses se rapprochent de certains Hypholoma par la seule présence d'hypholomines et fasciculines; sont dans ce cas plusieurs espèces dont les
0,27 0,19 annuum (Fr.) Kummer 3 0,23 0,16 4 0,15 0,07 lucifera (Lasch) Quél. 1 1,68 0,61 2 1,78 0,46 3 1,69 0,42 tuberculosa (Schaeffer ex Fr.) 1 58,20 12,50 Kummer 2 6,28 5,87 -Gymnopilus Karsten spectabilis (Fr.) Sing 3,06 2,42 -penetrans (Fr. ex Fr.) Murr. (sensu Lange) 2,61 1,81 bellulus (Peck) Murr 2,37 1,08 -chrysospermus (Berk et Curt.) Murr... 0,44 1,01 (*) Teneur non dosable. ? Présence incertaine. Il est indiscutable que nombre de Strophariaceae à spores ferrugineuses sont très proches des Hypholoma par leur stock de styryl-pyrones. Dans les Flammula du groupe alnicola (F. alnicola, conissans, apicrea) on retrouve les six molécules identifiées chez plusieurs Hypholoma; si ces Flammules diffèrent des Hypholomes par l'absence de chrysocystides, elles leur ressemblent beaucoup par l'allure générale. D'autres Strophariaceae à spores ferrugineuses se rapprochent de certains Hypholoma par la seule présence d'hypholomines et fasciculines; sont dans ce cas plusieurs espèces dont les pleurocystides sont, comme celles des Hypholoma, des chrysocystides (P. flammans et squarrosa, F. astragalina, henningsii et gummosa) et des Flammules de la section Lubricae Fries (F. lenta, decussata, scabra) plus éloignées des Hypholoma par leurs pleurocystides d'un type différent, et en outre, pour les plus typiques de cette section, par la viscosité prononcée du chapeau; dans plusieurs Lubricae, ces molécules, surtout représentées par les fasciculines, ne sont qu'à dose faible; de la même section, F. carbonaria, où hypholomines et fasciculines n'ont pu être détectées de façon sûre, ne constitue certainement qu'un cas extrême dans ce sens. Quelques Strophariaceae à spores ferrugineuses diffèrent davantage des Hypholoma car elles ne synthétisent qu'hispidine et bis-noryangonine; il s'agit des Pholiota aurivella, squarrosoadiposa Lange (10), lucifera et tuberculosa. Si les deux premières de ces espèces ont des chrysocystides, comme les Hypholoma, les deux autres, unies par Kühner et Romagnesi dans une section spéciale Luciferae, en sont dépourvues. Si les deux genres s'écartent des Pholiota lucifera et tuberculosa par leur paroi sporique verruqueuse, ils s'en rapprochent de façon remarquable par leur stock pigmentaire. Dans les onze espèces étudiées [(6) à (9)] ont été identifiées bis-noryangonine et hispidine; l'analyse de quatre d'entre elles nous a de plus
la viscosité prononcée du chapeau; dans plusieurs Lubricae, ces molécules, surtout représentées par les fasciculines, ne sont qu'à dose faible; de la même section, F. carbonaria, où hypholomines et fasciculines n'ont pu être détectées de façon sûre, ne constitue certainement qu'un cas extrême dans ce sens. Quelques Strophariaceae à spores ferrugineuses diffèrent davantage des Hypholoma car elles ne synthétisent qu'hispidine et bis-noryangonine; il s'agit des Pholiota aurivella, squarrosoadiposa Lange (10), lucifera et tuberculosa. Si les deux premières de ces espèces ont des chrysocystides, comme les Hypholoma, les deux autres, unies par Kühner et Romagnesi dans une section spéciale Luciferae, en sont dépourvues. Si les deux genres s'écartent des Pholiota lucifera et tuberculosa par leur paroi sporique verruqueuse, ils s'en rapprochent de façon remarquable par leur stock pigmentaire. Dans les onze espèces étudiées [(6) à (9)] ont été identifiées bis-noryangonine et hispidine; l'analyse de quatre d'entre elles nous a de plus révélé l'absence de dimères du type hypholomines-fasciculines (11). L'ensemble des pigments dont il vient d'être question ne représente que rarement la totalité du stock pigmentaire du carpophore; en effet, dans une foule de Strophariaceae et de Gymnopilus, on observe, au niveau du revêtement piléique, une pigmentation de la paroi des hyphes, pigmentation souvent incrustante, et qui, comme celle de la paroi des spores, résiste plus ou moins aux tentatives d'extraction. Les pigments facilement extractibles ne sont pas liés à la paroi cellulaire; ils sont, soit intracellulaires, soit extracellulaires. L'accumulation de pigments à l'intérieur de certaines cellules semble ici souvent liée à leur mort, que ces cellules soient des chrysocystides, comme chez H. fasciculare, dont les cystides jeunes sont incolores, ou des hyphes des revêtements, comme chez P. aurivella et lucifera. Dans l'ensemble Strophariaceae-Gymnopilus des pigments sont fréquemment rejetés à l'extérieur des cellules, s'accumulant parfois (F. Sp1l11l0Sa (Fr.) Kummer) à la surface extérieure des cystides, ou bien plus souvent entre les hyphes de la chair ou de la trame des lames, où on les remarque au niveau de masses individualisées, fort variables en ce qui concerne les dimensions et l'intensité de la coloration. Il est possible sinon probable que ces amas
hyphes, pigmentation souvent incrustante, et qui, comme celle de la paroi des spores, résiste plus ou moins aux tentatives d'extraction. Les pigments facilement extractibles ne sont pas liés à la paroi cellulaire; ils sont, soit intracellulaires, soit extracellulaires. L'accumulation de pigments à l'intérieur de certaines cellules semble ici souvent liée à leur mort, que ces cellules soient des chrysocystides, comme chez H. fasciculare, dont les cystides jeunes sont incolores, ou des hyphes des revêtements, comme chez P. aurivella et lucifera. Dans l'ensemble Strophariaceae-Gymnopilus des pigments sont fréquemment rejetés à l'extérieur des cellules, s'accumulant parfois (F. Sp1l11l0Sa (Fr.) Kummer) à la surface extérieure des cystides, ou bien plus souvent entre les hyphes de la chair ou de la trame des lames, où on les remarque au niveau de masses individualisées, fort variables en ce qui concerne les dimensions et l'intensité de la coloration. Il est possible sinon probable que ces amas colorés ne sont pas uniquement constitués par les pigments excrétés puisque, chez plusieurs espèces dont la chair est blanche, comme P. destruens (Brond.) Gillet et albocrenulata (Peck) Sacc., existent néanmoins d'abondants corps interhyphiques incolores. Les Dermocybe (Fr.) Wünsche sont les Cortinaires qui ressemblent le plus aux Gymnopilus, notamment ceux qui présentent dans la chair ou la trame des excrétions figurées et vivement colorées; ils diffèrent profondément des Gymnopilus par la nature anthraquinonique (sensu lato) de leurs pigments extractibles. En outre, alors que les Cortinaires sont des Champignons humicoles généralement susceptibles de former des ectomycorhizes avec divers végétaux ligneux, les Gymnopiles sont, pour la plupart, des Champignons plus ou moins lignicoles et lignivores, comme le sont de très nombreuses Strophariaceae authentiques, Hypholoma, Pholiota, Flammula. Parmi les Champignons à spores ferrugineuses, les Galerina Earle constituent un genre habituellement rangé dans la même famille ou tribu que les Cortinaires et qu'il est nécessaire de comparer aux Gymnopilus car il ne comprend que des espèces saprophytiques dont beaucoup ont les spores verruqueuses, comme celles des Gymnopilus. L'un de nous (11) a reconnu que les ressemblances entre la paroi sporique des Galerina et des Gymnopilus peuvent être extrêmement précises; comme une foule d'Agaricales chromosporées, bien
présentent dans la chair ou la trame des excrétions figurées et vivement colorées; ils diffèrent profondément des Gymnopilus par la nature anthraquinonique (sensu lato) de leurs pigments extractibles. En outre, alors que les Cortinaires sont des Champignons humicoles généralement susceptibles de former des ectomycorhizes avec divers végétaux ligneux, les Gymnopiles sont, pour la plupart, des Champignons plus ou moins lignicoles et lignivores, comme le sont de très nombreuses Strophariaceae authentiques, Hypholoma, Pholiota, Flammula. Parmi les Champignons à spores ferrugineuses, les Galerina Earle constituent un genre habituellement rangé dans la même famille ou tribu que les Cortinaires et qu'il est nécessaire de comparer aux Gymnopilus car il ne comprend que des espèces saprophytiques dont beaucoup ont les spores verruqueuses, comme celles des Gymnopilus. L'un de nous (11) a reconnu que les ressemblances entre la paroi sporique des Galerina et des Gymnopilus peuvent être extrêmement précises; comme une foule d'Agaricales chromosporées, bien des espèces de ces deux genres possèdent une endospore qui apparaît comme une enveloppe remarquablement réfringente sur des spores plus ou moins décolorées à la suite d'un traitement convenable par une lessive de potasse (lessive à 3 % dans l'eau, agissant à 60°C durant quelques heures); ce qui est commun à certaines espèces des genres Galerina et Gymnopilus et ne se rencontre pas dans d'autres genres est le fait que la partie interne de la paroi sporique gonfle de façon remarquable avec effacement de l'enveloppe endosporique réfringente, lorsqu'à un traitement alcalin succède un traitement par une solution diluée d'acide acétique (10% dans l'eau); dans les espèces en question, toute la partie interne de la paroi est en outre puissamment dextrinoïde. En dépit de ces ressemblances fort précises, nous n'avons pu déceler de styryl-pyrones et dérivés dans trois espèces de Galerina analysées : G. camerina (Fr.) Kühn., G. sphagnorum (Fr.) Kühn., G. graminea (Vel.) Kühn. Il est probable que c'est par l'absence de styryl-pyrones que le genre Galerina se distingue le mieux du genre Gymnopilus. Dans le genre Phaeocollybia Heim, que Singer place à côté de Galerina, nous n'avons pas non plus trouvé de styryl-pyrones chez les deux espèces étudiées :
à certaines espèces des genres Galerina et Gymnopilus et ne se rencontre pas dans d'autres genres est le fait que la partie interne de la paroi sporique gonfle de façon remarquable avec effacement de l'enveloppe endosporique réfringente, lorsqu'à un traitement alcalin succède un traitement par une solution diluée d'acide acétique (10% dans l'eau); dans les espèces en question, toute la partie interne de la paroi est en outre puissamment dextrinoïde. En dépit de ces ressemblances fort précises, nous n'avons pu déceler de styryl-pyrones et dérivés dans trois espèces de Galerina analysées : G. camerina (Fr.) Kühn., G. sphagnorum (Fr.) Kühn., G. graminea (Vel.) Kühn. Il est probable que c'est par l'absence de styryl-pyrones que le genre Galerina se distingue le mieux du genre Gymnopilus. Dans le genre Phaeocollybia Heim, que Singer place à côté de Galerina, nous n'avons pas non plus trouvé de styryl-pyrones chez les deux espèces étudiées : P. christinae (Fr.) Heim sensu Fr., non Heim, et P. lugubris (Fr.) Heim. Nous n'en avons pas trouvé davantage chez Naucoria (Tubaria) furfuracea (Pers. ex Fr.) Kummer, qui, pour nous, n'est pas très éloigné systématiquement des Galerina. Il est possible que l'absence de tels pigments, constatée chez Kuehneromyces mutabilis (Schaeff. ex Fr.) Sing. et Smith, s'explique par une affinité avec les Galerina. Mais il faut être fort prudent dans l'interprétation de ces résultats négatifs, car l'absence de styrylpyrones et dérivés chez Pholiota destruens, prévisible étant donné l'absence de couleurs jaunes vives, n'indique évidemment pas une affinité étroite avec Galerina. Même la présence de styryl-pyrones doit être considérée avec prudence par le Systématicien; il est en effet possible qu'elle soit plus ou moins liée à l'habitat lignicole car des molécules du même type sont produites par des Hymenochetaceae Donk [)(1, (2)]. Cependant, la communauté des caractères soulignés plus haut permet d'envisager que Gymnopilus, Hypholoma, Flammula et Pholiota dérivent d'un ancêtre commun, synthétisant les styryl-pyrones mais non les hypholomines ni les fasciculines, ces dimères particuliers étant apparus dans le phylum conduisant aux Strophariaceae; parmi ces dernières, certaines auraient perdu secondairement cette faculté de dimérisation, d'autres même toute capacité à synthétiser des styryl-pyrones
ex Fr.) Sing. et Smith, s'explique par une affinité avec les Galerina. Mais il faut être fort prudent dans l'interprétation de ces résultats négatifs, car l'absence de styrylpyrones et dérivés chez Pholiota destruens, prévisible étant donné l'absence de couleurs jaunes vives, n'indique évidemment pas une affinité étroite avec Galerina. Même la présence de styryl-pyrones doit être considérée avec prudence par le Systématicien; il est en effet possible qu'elle soit plus ou moins liée à l'habitat lignicole car des molécules du même type sont produites par des Hymenochetaceae Donk [)(1, (2)]. Cependant, la communauté des caractères soulignés plus haut permet d'envisager que Gymnopilus, Hypholoma, Flammula et Pholiota dérivent d'un ancêtre commun, synthétisant les styryl-pyrones mais non les hypholomines ni les fasciculines, ces dimères particuliers étant apparus dans le phylum conduisant aux Strophariaceae; parmi ces dernières, certaines auraient perdu secondairement cette faculté de dimérisation, d'autres même toute capacité à synthétiser des styryl-pyrones [)(1, (2)]. Séance du 28 mars 1977. Recherches chimiotaxinomiques sur les Champignons, XXXIX; précédente communication J. FAVRE-BONVIN, N. ARPIN et J. GRIPENBERG, Phytochem. (à paraître). R. SINGER, The Agaricales in Modern Taxonomy, J. CRAMER, 3 éd., 1975. R. KÜHNER et H. ROMAGNESI, Flore analytique des Champignons Supérieurs, Masson, Paris, 1953. V. FAYOD, Ann. Sc. Nat. Bot., 7, n° 9, 1889, p. 181-411. A. H. SMITH, in The Fungi, G. C. AINSWORTH et coll., éd., IV B, 1973, p. 421-450. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 31, 1968, p. 225-228. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, J. Pharm. Sci., 58, 1969, p. 1298. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 34, 1971, p. 260-263. M. P. DANGY-CAYE et N. ARPIN, Bull. Soc. Lin. Lyon, n° spécial, 15 février 1974, p. 109-118. L. R. BRADY et R. G. BENEDICT, J. Pharm. Sci., 61, 1972, p. 318. J. L. FIASSON, K. GLUCHOFF-FIASSON et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1047-1057. K. GLUCHOFF-FIASSON et J. BERNILLON, Comptes rendus, 284, série D, 1977, p. 385. Cependant, si, faute d'échantillons de référence, l'on n'a pu encore identifier d'arylpyrone, certaines espèces à fasciculines majeures (P. squarrosa, F. astragalina, F. decussata) présentent des
V. FAYOD, Ann. Sc. Nat. Bot., 7, n° 9, 1889, p. 181-411. A. H. SMITH, in The Fungi, G. C. AINSWORTH et coll., éd., IV B, 1973, p. 421-450. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 31, 1968, p. 225-228. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, J. Pharm. Sci., 58, 1969, p. 1298. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 34, 1971, p. 260-263. M. P. DANGY-CAYE et N. ARPIN, Bull. Soc. Lin. Lyon, n° spécial, 15 février 1974, p. 109-118. L. R. BRADY et R. G. BENEDICT, J. Pharm. Sci., 61, 1972, p. 318. J. L. FIASSON, K. GLUCHOFF-FIASSON et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1047-1057. K. GLUCHOFF-FIASSON et J. BERNILLON, Comptes rendus, 284, série D, 1977, p. 385. Cependant, si, faute d'échantillons de référence, l'on n'a pu encore identifier d'arylpyrone, certaines espèces à fasciculines majeures (P. squarrosa, F. astragalina, F. decussata) présentent des composés fluorescants bleus en cours d'étude. Certains Gymnopiles paraissent synthétiser d'autres dimères de l'hispidine : G. chrysopellus en particulier accumule un composé de fluorescence verte cochromatographiquement inséparable de l'« inonotine » isolée par Steglich d'Inonotus hispidus (Bull. ex Fr.) Karst. (résultats inédits). R. KÜHNER, Volume jubilaire du Pr R. W. G. DENNIS (sous presse). R. L. EDWARDS, D. G. LEWIS et D. V. WILSON, J. Chem. Soc., 1961, p. 4995-5002. A. UENO, S. FUKUSHIMA, Y. SAIKI et T. HARADA, Chem. Pharm. Bull., 12, 1964, p. 376-378. M. KLAAR et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1058-1062. M. KLAAR et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1063-1068. J. L. FIASSON (résultats inédits). Un certain nombre d'échantillons nous ont été transmis par Mlle le professeur D. Lamoure (Lyon I) ainsi que MM. J. Bussy et M. Josserand (Lyon), H. Romagnesi (Paris), P. Bordes et A. Gorgues (Le Puy). J.-P. Fiard (Martinique) : qu'ils trouvent ici l'expression de notre reconnaissance. Les analyses chimiques qui ont servi de base de discussion dans la présente Note sont dues à Mme K. Gluchoff-Fiasson et ont été réalisées, dans le cadre d'une Thèse de Doctorat d'État sur la chimiotaxinomie des Agaricales. Département de Biologie végétale,
G. DENNIS (sous presse). R. L. EDWARDS, D. G. LEWIS et D. V. WILSON, J. Chem. Soc., 1961, p. 4995-5002. A. UENO, S. FUKUSHIMA, Y. SAIKI et T. HARADA, Chem. Pharm. Bull., 12, 1964, p. 376-378. M. KLAAR et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1058-1062. M. KLAAR et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1063-1068. J. L. FIASSON (résultats inédits). Un certain nombre d'échantillons nous ont été transmis par Mlle le professeur D. Lamoure (Lyon I) ainsi que MM. J. Bussy et M. Josserand (Lyon), H. Romagnesi (Paris), P. Bordes et A. Gorgues (Le Puy). J.-P. Fiard (Martinique) : qu'ils trouvent ici l'expression de notre reconnaissance. Les analyses chimiques qui ont servi de base de discussion dans la présente Note sont dues à Mme K. Gluchoff-Fiasson et ont été réalisées, dans le cadre d'une Thèse de Doctorat d'État sur la chimiotaxinomie des Agaricales. Département de Biologie végétale, Laboratoire de Mycologie, associé au C.N.R.S. n° 44, Université Claude-Bernard Lyon I, 43, boulevard du 11-Novembre-1918, 69621 Villeurbanne. CYTOPHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Étude autoradiographique de la reprise des synthèses de protéines dans l'embryon de Zea mays au début de la germination. Note de Roger Deltour, présentée par M. Roger Gautheret. Au moment de la germination, dans la racine principale de l'embryon de Zea mays, la reprise des synthèses de protéines a lieu dans les deux premières heures qui suivent la mise en imbibition. Cependant, les modalités de cette reprise sont différentes selon que le précurseur fourni est de la leucine-3H ou de la lysine-3H. Recovery or protein synthesis was studied in primary root of germinating Zea mays embryos. [H3]leucine or [H3]lysine was provided for two hours at 16°C to embryos excised from kernels at various times after the beginning of germination. Protein synthesis (probably dependent on long-lived mRNA stocked in dormant embryo root cells) resumed during the first two hours of seed imbibition. Plusieurs travaux réalisés sur l'embryon de Zea mays lors de la germination ont visé à décrire les événements cellulaires et moléculaires qui s'observent dans la racine principale [(2) à (6)]. Nous présentons maintenant des observations concernant la synthèse
moment de la germination, dans la racine principale de l'embryon de Zea mays, la reprise des synthèses de protéines a lieu dans les deux premières heures qui suivent la mise en imbibition. Cependant, les modalités de cette reprise sont différentes selon que le précurseur fourni est de la leucine-3H ou de la lysine-3H. Recovery or protein synthesis was studied in primary root of germinating Zea mays embryos. [H3]leucine or [H3]lysine was provided for two hours at 16°C to embryos excised from kernels at various times after the beginning of germination. Protein synthesis (probably dependent on long-lived mRNA stocked in dormant embryo root cells) resumed during the first two hours of seed imbibition. Plusieurs travaux réalisés sur l'embryon de Zea mays lors de la germination ont visé à décrire les événements cellulaires et moléculaires qui s'observent dans la racine principale [(2) à (6)]. Nous présentons maintenant des observations concernant la synthèse des protéines au cours des premières heures de la germination. Les techniques de mise en incubation des embryons dans les précurseurs radioactifs et d'autoradiographie sont celles décrites antérieurement (4). Les caryopses de la variété INRA 258 sont mises à germer à 16°C et les embryons isolés sont incubés dans une solution de L-leucine-4,5-3H (concentration radioactive : 165 IlCi/ml) ou dans une solution de L-lysine-4,5-3H (concentration radioactive : 250 IlCi/ml). Afin d'empêcher l'apparition de bactéries, les solutions de précurseurs contiennent 50 μg/ml de streptomycine. Les embryons sont fixés au mélange formol-acide acétique-éthanol ; lavés 12 h à l'eau courante; inclus dans la paraffine et sectionnés longitudinalement à 5 μm. Les sections sont lavées 12 h à l'eau courante et recouvertes par une émulsion photographique (Stripping-film Kodak AR 10). Après des durées variables d'exposition, les films sont révélés et les sections colorées par le bleu de toluidine. Avant la pose de l'émulsion, des sections contrôles ont été digestées par la pepsine (solution aqueuse 0,1 % de pepsine « Merck » dans HCl 0,1 N pendant 4 h à 37°C) ou par la pronase (solution aqueuse à 0,5 %, pH 7,4, de pronase « Merck » E 70 000 PU/kg, pendant 1 h