jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
the pars on the same whole mount would show no direct connexion between these two systems in the Cockroach Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre les cellules neurosécrétrices médianes de la pars intercerebralis et les ocelles chez la Blatte et pour l'interpréter les différents auteurs font appel à un support anatomique mais jusqu'à présent nul n'a pu le mettre en évidence chez Periplaneta. À côté des 70 ou 80 petites fibres que compte le nerf ocellaire de la Blatte Periplaneta, Cooter (3) dénombre 5 fibres de gros diamètre, 4 d'un diamètre moyen et 1 d'un diamètre légèrement inférieur. Ces fibres géantes ocellaires bipolaires sont connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection iontophorétique de chlorure de cobalt effectuée au départ d'un ocelle sous l'action d'un courant électrique, nous a permis (3) de les visualiser sur montage in toto. Les techniques de coloration de masse utilisant l'acide performique et le bleu Victoria (6) ou la fuchsine paraldéhyde (8) sont de pratique courante pour la mise en évidence des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Notre propos ici est de combiner les techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration par la fuchsine après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens anatomiques éventuels qui existeraient entre les systèmes ocellaires et neuro-sécrétaires de la pars. MÉTÉRIEL ET MÉTHODE. — Dans ce travail nous utilisons des Blattes (Periplaneta americana) mâles, adultes âgés (que nous reconnaissons à leur couleur foncée et aux ailes endommagées) provenant d'un élevage soumis à la photopériode naturelle. Après un jeûne préalable de 3 jours, la Blatte est anesthésiée au froid en la plaçant pendant 7 mn dans le « freezer » du réfrigérateur. La cornée de l'ocelle est perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de cobalt à la concentration de 250 mmoles/l est introduite dans la cupule ocellaire. La Blatte est remise à l'étuve (27°C) sans nourriture pendant 1 h pour permettre au chlorure de cobalt de diffuser dans le système ocellaire. Après une nouvelle anesthésie au froid, la cuticule cervicale est enlevée, une incision
après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens anatomiques éventuels qui existeraient entre les systèmes ocellaires et neuro-sécrétaires de la pars. MÉTÉRIEL ET MÉTHODE. — Dans ce travail nous utilisons des Blattes (Periplaneta americana) mâles, adultes âgés (que nous reconnaissons à leur couleur foncée et aux ailes endommagées) provenant d'un élevage soumis à la photopériode naturelle. Après un jeûne préalable de 3 jours, la Blatte est anesthésiée au froid en la plaçant pendant 7 mn dans le « freezer » du réfrigérateur. La cornée de l'ocelle est perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de cobalt à la concentration de 250 mmoles/l est introduite dans la cupule ocellaire. La Blatte est remise à l'étuve (27°C) sans nourriture pendant 1 h pour permettre au chlorure de cobalt de diffuser dans le système ocellaire. Après une nouvelle anesthésie au froid, la cuticule cervicale est enlevée, une incision sépare le thorax de l'abdomen. La tête et le thorax sont plongés pendant 5 mn dans du liquide physiologique (« Ringer » tamponné au pH 7,6 avec du tris C) contenant quelques gouttes de sulfure d'ammonium. Un lavage rapide au liquide physiologique précède le prélèvement du cerveau qui doit se faire très rapidement (durée de l'opération : 5 mn maximum). La fixation se fait au picroformol trichloracétique (solution aqueuse saturée d'acide picrique : 150 ml; formol : 50 ml; acide trichloracétique à 2 % : 10 ml) pendant 24 h au cours desquelles 1 ou 2 passages à la trompe à vide sont conseillés pour vider l'air des trachées. Après une dissection fine, un lavage à l'eau courante de 2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à l'acide picrique. L'oxydation classique à l'acide performique est ici remplacée par une oxydation permanganique en milieu sulfurique (8). Pour qu'un maximum de cellules neuro-sécrétrices soient mises en évidence, cette oxydation doit se poursuivre pendant 1 h dans le mélanger : solution de permanganate de potassium à 2,5 % : 1 volume, acide sulfurique à 5 % : 1 volume, eau distillée : 6-8 volumes. La solution doit être renouvelée à
faire très rapidement (durée de l'opération : 5 mn maximum). La fixation se fait au picroformol trichloracétique (solution aqueuse saturée d'acide picrique : 150 ml; formol : 50 ml; acide trichloracétique à 2 % : 10 ml) pendant 24 h au cours desquelles 1 ou 2 passages à la trompe à vide sont conseillés pour vider l'air des trachées. Après une dissection fine, un lavage à l'eau courante de 2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à l'acide picrique. L'oxydation classique à l'acide performique est ici remplacée par une oxydation permanganique en milieu sulfurique (8). Pour qu'un maximum de cellules neuro-sécrétrices soient mises en évidence, cette oxydation doit se poursuivre pendant 1 h dans le mélanger : solution de permanganate de potassium à 2,5 % : 1 volume, acide sulfurique à 5 % : 1 volume, eau distillée : 6-8 volumes. La solution doit être renouvelée à chaque usage. Après un rinçage sommaire à l'eau de ville, la préparation est blanchie par une solution à 4 % de métabisulfite de sodium pendant 10 mn environ. Un lavage à l'eau courante pendant 5 mn précède une coloration de 10 mn à la fuchsine paraldéhyde acétifiée selon la méthode originale de Gomori (8). Un rinçage à l'eau de ville enlève l'excès de colorant, puis la préparation est traitée pendant 10 à 20 s par de l'alcool à 96° additionné de 0,5 % d'acide chlorhydrique concentré. La dissection finale se fait dans l'alcool absolu et la déshydratation peut se poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne pendant une demi-journée dans des mélanges d'alcool 100 et d'essence de cèdre blanche dont la concentration augmente progressivement pour finalement aboutir à un bain d'essence de cèdre pure. Le montage peut se faire au baume du Canada entre lame et lamelle. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Après coloration à la fuchsine paraldéhyde les cellules neurosécrétrices médianes de la pars antérieure apparaissent sous la forme d'un groupe dense d'une centaine de cellules situées de part et d'autre du plan sagittal (fig. 1). Il s'agit de neurones en Y qui courent sur la
originale de Gomori (8). Un rinçage à l'eau de ville enlève l'excès de colorant, puis la préparation est traitée pendant 10 à 20 s par de l'alcool à 96° additionné de 0,5 % d'acide chlorhydrique concentré. La dissection finale se fait dans l'alcool absolu et la déshydratation peut se poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne pendant une demi-journée dans des mélanges d'alcool 100 et d'essence de cèdre blanche dont la concentration augmente progressivement pour finalement aboutir à un bain d'essence de cèdre pure. Le montage peut se faire au baume du Canada entre lame et lamelle. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Après coloration à la fuchsine paraldéhyde les cellules neurosécrétrices médianes de la pars antérieure apparaissent sous la forme d'un groupe dense d'une centaine de cellules situées de part et d'autre du plan sagittal (fig. 1). Il s'agit de neurones en Y qui courent sur la face frontale du cerveau en restant très superficiels. CORRECTION ### 6) G. H. HODDEVIK, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 169, 1976, p. 155-170. (7) J. JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG Les corps cellulaires ronds d'un diamètre de 10 μm environ occupent une aire de 100 x 150 μm, ils possèdent de fins neurites qui tous convergent vers des fibres neuro-sécrétrices bipolaires. Les parties axoniques de ces fibres restent groupées en un tractus qui, après un chiasma dans le plan sagittal avec son homologue, prend une direction dorso-ventrale parallèle au plan sagittal; ce tractus est à l'origine du nerf cardiaque I. La partie dendritique de ces fibres neuro-sécrétrices forme un tractus nettement plus court (longueur : 120 μm) qui s'écarte du plan sagittal puis s'arborise en fines ramifications. EXPLICATION
Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG Les corps cellulaires ronds d'un diamètre de 10 μm environ occupent une aire de 100 x 150 μm, ils possèdent de fins neurites qui tous convergent vers des fibres neuro-sécrétrices bipolaires. Les parties axoniques de ces fibres restent groupées en un tractus qui, après un chiasma dans le plan sagittal avec son homologue, prend une direction dorso-ventrale parallèle au plan sagittal; ce tractus est à l'origine du nerf cardiaque I. La partie dendritique de ces fibres neuro-sécrétrices forme un tractus nettement plus court (longueur : 120 μm) qui s'écarte du plan sagittal puis s'arborise en fines ramifications. EXPLICATION DE LA PLANCHE Montage in toto de ganglions cérébroïdes de Blattes mâles (Periplaneta americana). Fig. 1. — Vue frontale après coloration à la fuchsine paraldéhyde. Les cellules neuro-sécrétrices de la pars et leurs prolongements dendritiques et axoniques occupent une position très superficielle. Fig. 2. — Vue horizontale (ou transversale) après double coloration (fuchsine-sulfure de cobalt). La trajectoire des neurones ocellaires de second ordre s'inscrit dans un plan perpendiculaire par rapport à celui des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Fig. 3. — Vue oblique après double coloration (fuchsine-sulfure de cobalt). À cause de la transparence du cerveau, les systèmes ocellaires et neuro-sécréteurs de la pars donnent une impression de chevauchement. a, axones; ad, neurone ocellaire antéro-dorsal; c, chiasma; ca, calices; cns, cellules neuro-sécrétrices; co, cavité œsophagienne; d, dendrites; gi, globuli; m, neurone ocellaire médian; mn, membrane neurale; n, neurites; ps, plan sagittal; pv, groupe de neurones ocellaires postéro-ventraux; te, tractus cardiaques; to, tractus ocellaire. PLANCHE 1 ANNE BERNARD Après une iontophorèse au chlorure de cobalt, 4 gros corps cellulaires ocellaires en forme de poire, d'un diamètre de 25 à 35 μm peuvent être mis en évidence de chaque côté du plan sagittal (fig. 2). Ils s'échelonnent à différents niveaux de la
double coloration (fuchsine-sulfure de cobalt). La trajectoire des neurones ocellaires de second ordre s'inscrit dans un plan perpendiculaire par rapport à celui des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Fig. 3. — Vue oblique après double coloration (fuchsine-sulfure de cobalt). À cause de la transparence du cerveau, les systèmes ocellaires et neuro-sécréteurs de la pars donnent une impression de chevauchement. a, axones; ad, neurone ocellaire antéro-dorsal; c, chiasma; ca, calices; cns, cellules neuro-sécrétrices; co, cavité œsophagienne; d, dendrites; gi, globuli; m, neurone ocellaire médian; mn, membrane neurale; n, neurites; ps, plan sagittal; pv, groupe de neurones ocellaires postéro-ventraux; te, tractus cardiaques; to, tractus ocellaire. PLANCHE 1 ANNE BERNARD Après une iontophorèse au chlorure de cobalt, 4 gros corps cellulaires ocellaires en forme de poire, d'un diamètre de 25 à 35 μm peuvent être mis en évidence de chaque côté du plan sagittal (fig. 2). Ils s'échelonnent à différents niveaux de la pars antérieure d'où leur dénomination : corps cellulaire antéro-dorsal : ad, corps cellulaire médian : m, groupe postéro-ventral pv. Ce sont des neurones en T dont la partie dendritique constitue les fibres du nerf ocellaire et dont la partie axonique s'enfonce dans le cerveau vers la pars postérieure en se rapprochant du plan sagittal. La trajectoire de ces gros neurones ocellaires de 2e ordre se situe donc dans un plan horizontal (ou transversal) c'est-à-dire perpendiculairement par rapport au plan des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Étant donné cette distribution spatiale, seul le corps cellulaire (ad) à long neurite se trouve dans la même zone corticale que les cellules neuro-sécrétrices (fig. 2). Comme la dendrite et l'axone de ce neurone constituent une fibre du tractus ocellaire, il ne semble pas que le neurone (ad) puisse entrer en contact synaptique avec les cellules neuro-sécrétrices. Nous n'avons pas pu suivre les fines ramifications dendritiques des cellules neuro-sécrétrices donc toute relation somato-dendritique entre les corps cellulaires ocellaires et ces ramifications, ne peut être écartée. Cependant, la direction prise par le tractus dendritique des cellules neurosécrétrices, par rapport aux corps cellulaires ocellaires, ne semble pas confirmer l'existence de tels contacts. Si l'on incline la préparation
rapprochant du plan sagittal. La trajectoire de ces gros neurones ocellaires de 2e ordre se situe donc dans un plan horizontal (ou transversal) c'est-à-dire perpendiculairement par rapport au plan des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Étant donné cette distribution spatiale, seul le corps cellulaire (ad) à long neurite se trouve dans la même zone corticale que les cellules neuro-sécrétrices (fig. 2). Comme la dendrite et l'axone de ce neurone constituent une fibre du tractus ocellaire, il ne semble pas que le neurone (ad) puisse entrer en contact synaptique avec les cellules neuro-sécrétrices. Nous n'avons pas pu suivre les fines ramifications dendritiques des cellules neuro-sécrétrices donc toute relation somato-dendritique entre les corps cellulaires ocellaires et ces ramifications, ne peut être écartée. Cependant, la direction prise par le tractus dendritique des cellules neurosécrétrices, par rapport aux corps cellulaires ocellaires, ne semble pas confirmer l'existence de tels contacts. Si l'on incline la préparation selon un axe horizontal et si on l'observe dans un plan intermédiaire (mi-horizontal mi-frontal) les 2 types cellulaires mis en évidence (ocellaires et neuro-sécréteurs) peuvent donner une impression de chevauchement (fig. 3); cette possibilité est due à la transparence des ganglions cérébroïdes. La distinction entre cellules neuro-sécrétrices médianes et neurones ocellaires de second ordre de la pars, se fait alors selon des critères numériques ou de taille. Comme le remplissage de l'ocelle au chlorure de cobalt se fait sans l'intervention d'un courant électrique, seuls les neurones ocellaires de second ordre ont été colorés en noir au sulfure de cobalt. Le corps cellulaire du neurone ocellaire de 3e ordre ou d'ordre supérieur que nous mettrions en évidence sous l'action d'un courant électrique est encore plus éloigné que les autres neurones ocellaires, du groupe des cellules neuro-sécrétrices médianes. Son axone se prolonge jusque dans le ganglion mésothoracique et nous avons suivi sa dendrite jusqu'à la sortie du nerf ocellaire du protocerebron. Cette situation rend improbable pour ce neurone tout contact direct avec le groupe de cellules neurosécrétrices médianes de la pars. Nos résultats confirment que les processus décrits par Adiyodi et Bern sont bien les prolongements dendritiques des cellules neuro-sécrétrices médianes de
ocellaires de second ordre de la pars, se fait alors selon des critères numériques ou de taille. Comme le remplissage de l'ocelle au chlorure de cobalt se fait sans l'intervention d'un courant électrique, seuls les neurones ocellaires de second ordre ont été colorés en noir au sulfure de cobalt. Le corps cellulaire du neurone ocellaire de 3e ordre ou d'ordre supérieur que nous mettrions en évidence sous l'action d'un courant électrique est encore plus éloigné que les autres neurones ocellaires, du groupe des cellules neuro-sécrétrices médianes. Son axone se prolonge jusque dans le ganglion mésothoracique et nous avons suivi sa dendrite jusqu'à la sortie du nerf ocellaire du protocerebron. Cette situation rend improbable pour ce neurone tout contact direct avec le groupe de cellules neurosécrétrices médianes de la pars. Nos résultats confirment que les processus décrits par Adiyodi et Bern sont bien les prolongements dendritiques des cellules neuro-sécrétrices médianes de la pars; d'après nos observations ils seraient non seulement distincts des tractus ocellaires mais situés dans des plans perpendiculaires et sans lien anatomique direct avec eux. Cependant, si comme le pense Goodman, les neurones ocellaires de 2e ordre sont en relation avec les lobes optiques, les centres antennaires et probablement l'interneurone visuel détecteur de mouvements, il est vraisemblable que des relations indirectes existent également avec les cellules neuro-sécrétrices médianes. Ceci expliquerait la difficulté de reconnaître dans les modifications de la pars, la spécificité de traduction d'un effet sensoriel. Ce travail a bénéficié de l'aide technique de Jean-Pierre Richard pour la photographie. Note de Henri Dalens, transmise par M. Albert Vandel. Les chromosomes courts des Bilobella aurantiaca étudiés, présentent un "modèle" structural caractéristique. Des variations existent entre populations, portant sur la structuration en bandes, sur la surcharge en hétérochromatine a et sur le degré de clivage longitudinal. Des différences non liées au degré de polyténie existent également entre individus d'une même population. Dans une population, les chromosomes courts appartiennent à 2 modèles structuraux différents. Short polytene chromosomes of Bilobella aurantiaca show a characteristic structural pattern. Differences between populations are associated with band structuration, quantity of a heterochromatin and longitudinal cleavage. Variations
l'interneurone visuel détecteur de mouvements, il est vraisemblable que des relations indirectes existent également avec les cellules neuro-sécrétrices médianes. Ceci expliquerait la difficulté de reconnaître dans les modifications de la pars, la spécificité de traduction d'un effet sensoriel. Ce travail a bénéficié de l'aide technique de Jean-Pierre Richard pour la photographie. Note de Henri Dalens, transmise par M. Albert Vandel. Les chromosomes courts des Bilobella aurantiaca étudiés, présentent un "modèle" structural caractéristique. Des variations existent entre populations, portant sur la structuration en bandes, sur la surcharge en hétérochromatine a et sur le degré de clivage longitudinal. Des différences non liées au degré de polyténie existent également entre individus d'une même population. Dans une population, les chromosomes courts appartiennent à 2 modèles structuraux différents. Short polytene chromosomes of Bilobella aurantiaca show a characteristic structural pattern. Differences between populations are associated with band structuration, quantity of a heterochromatin and longitudinal cleavage. Variations within populations are also present and these do not correlate with the degree of polyteny. One of the populations shows short polytene chromosomes belonging to two different structural patterns. Nous avons récemment montré que des variations de structure des chromosomes polytènes courts existaient entre 2 populations géographiquement très distinctes. La présente Note analyse des populations appartenant toutes à une zone géographiquement bien délimitée et correspondant au bassin versant français du Sègre. Les individus examinés proviennent : — de la région du Puymorens (fig. A) : 37 individus examinés provenant de 2 stations situées, l’une sur la rive droite du Carol en flanc Nord-Nord-Est, face au village de Porta, l’autre sur la rive gauche, en flanc Nord près du village de Porté, à l’extrémité occidentale de la chaîne du Carlit; — de la chaîne du Puigmale (fig. B) : 67 individus analysés qui proviennent de 6 stations différentes réparties dans les forêts d’Osseja, d’Err et dans les gorges du Sègre; — de la région de Font-Romeu (fig. C) : 21 individus récoltés en flanc Sud à hauteur du village d’Egat. CHROMOSOME VI. — Les populations du Puymorens (fig. AI, Al, A3, A4), celles du Puigmale (fig. B1, B2, B3) et pour
présente Note analyse des populations appartenant toutes à une zone géographiquement bien délimitée et correspondant au bassin versant français du Sègre. Les individus examinés proviennent : — de la région du Puymorens (fig. A) : 37 individus examinés provenant de 2 stations situées, l’une sur la rive droite du Carol en flanc Nord-Nord-Est, face au village de Porta, l’autre sur la rive gauche, en flanc Nord près du village de Porté, à l’extrémité occidentale de la chaîne du Carlit; — de la chaîne du Puigmale (fig. B) : 67 individus analysés qui proviennent de 6 stations différentes réparties dans les forêts d’Osseja, d’Err et dans les gorges du Sègre; — de la région de Font-Romeu (fig. C) : 21 individus récoltés en flanc Sud à hauteur du village d’Egat. CHROMOSOME VI. — Les populations du Puymorens (fig. AI, Al, A3, A4), celles du Puigmale (fig. B1, B2, B3) et pour la grande majorité des individus celles d’Egat (fig. C1, C2, C3), présentent un chromosome VI caractérisé par une succession d’écharpes plus ou moins structurées, parfois reliées par de courtes zones euchromatiques avec structuration en bandes. Une constante de cette structure réside dans l’existence d’une écharpe télomérique en forme de houpette granulo-floconneuse. Bien que s’inscrivant dans ce schéma général, les structures des différentes populations présentent néanmoins des variations d’une population à une autre, et au sein d’une même population, d’un individu à un autre. Entre les populations, les différences portent sur la structuration en bandes, sur le développement plus ou moins important des écharpes, sur leur surcharge en hétérochromatine a et enfin sur les processus de clivages longitudinaux. Entre les individus d’une même population existent également des différences qui portent essentiellement sur le nombre de bandes fines et sur les clivages longitudinaux plus ou moins prononcés. Le plus souvent chez un même animal, ces variations n’affectent pas tous les chromosomes de façon identique et dans un certain nombre de cas, elles paraissent liées au degré de polyténie des chromosomes. Une variation plus curieuse aboutit à la formation de chromosomes à « jupettes » (fig. A3, B3). Elle semble résulter de la