jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
Alfred Fessard. Par des injections de peroxydase localisées au lobule VI ou au lobule VII du cervelet, on montre, chez le Chat, une hétérogénéité des projections sur le cortex vermien dit « visuo-acoustique ». Les afférences originaires des noyaux réticulaires bulbaires latéral et paramédian se projettent essentiellement sur le lobule VI et les afférences issues des noyaux du raphé sur le lobule VII. Injections of horseradish peroxidase were made in lobules VI and VII of the cerebellar vermis (in the Cat). Serial frontal sections of the brain stem reveal that the lateral reticular and paramedian nuclei were essentially projected onto lobule VI, and the projections from the raphe nuclei onto lobule VII. Le cortex vermien postérieur, classiquement considéré comme l'aire cérébelleuse de projection des influx visuels et acoustiques, est une région relativement grande comprenant, suivant la classification morphologique de Larsell, le lobule VI et le lobule VII. Ses fibres afférentes sont de 2 sortes, comme pour l'ensemble du cortex cérébelleux, les fibres grimpantes et les fibres moussues. Les connexions que ces fibres forment entre le tronc cérébral et le vermis postérieur ont été étudiées depuis longtemps par les méthodes de dégénérescence orthograde et rétrograde. Mais l'utilisation des traceurs de type peroxydase du Raifort à transport rétrograde permet, à condition de limiter le site d'injection, une identification plus précise des corps cellulaires à l'origine des systèmes afférents. Dans cette étude, la peroxydase a été utilisée en vue de déterminer si les structures du tronc cérébral à l'origine des projections vers le lobule VI et le lobule VII sont ou non les mêmes. 4 chats adultes ont été utilisés chez lesquels on a pratiqué, sous profonde anesthésie au pentobarbital, des injections multiples bilatérales (3 à 10 points) de peroxydase dans les folia superficiels du lobule VI (2 cas) et du lobule VII (2 cas). En chaque point, un maximum de 0,1 fil de solution (diluée à 30 ou 50 % dans du liquide de Ringer ou dans de l'eau distillée) était déposé à l'aide d'une microseringue de 1 fil ou d'une micropipette de 50 fim de diamètre. Après un délai de 24
peroxydase du Raifort à transport rétrograde permet, à condition de limiter le site d'injection, une identification plus précise des corps cellulaires à l'origine des systèmes afférents. Dans cette étude, la peroxydase a été utilisée en vue de déterminer si les structures du tronc cérébral à l'origine des projections vers le lobule VI et le lobule VII sont ou non les mêmes. 4 chats adultes ont été utilisés chez lesquels on a pratiqué, sous profonde anesthésie au pentobarbital, des injections multiples bilatérales (3 à 10 points) de peroxydase dans les folia superficiels du lobule VI (2 cas) et du lobule VII (2 cas). En chaque point, un maximum de 0,1 fil de solution (diluée à 30 ou 50 % dans du liquide de Ringer ou dans de l'eau distillée) était déposé à l'aide d'une microseringue de 1 fil ou d'une micropipette de 50 fim de diamètre. Après un délai de 24 h permettant le transport rétrograde de l'enzyme vers le corps cellulaire, l'animal était perfusé, le liquide de fixation, la préparation de l'encéphale et la réaction histochimique se faisant suivant la technique déjà décrite. Les cellules marquées du tronc cérébral sont recherchées sur des coupes frontales et l'extension des sites d'injection est contrôlée sur des coupes sagittales du cervelet. Il s'agit de s'assurer que l'enzyme n'a pas atteint par diffusion la zone des noyaux intracérébelleux qui reçoivent également des afférences du tronc cérébral. Nos résultats ne concernent pas les fibres grimpantes, issues de l'olive inférieure et qui se projettent vers l'aire vermienne étudiée suivant une topographie bien précise récemment étudiée par la même méthode. Nous ne nous sommes intéressés qu'aux projections moussues originaires des noyaux réticulaires bulbaires et des noyaux du raphé. 1. Noyau réticulaire latéral. — Situé dans le bulbe très latéralement et ventralement au niveau de l'olive inférieure, ce noyau est formé de 3 parties, une partie dite gigantocellulaire, dorso-médiale, une partie parvocellulaire, ventro-latérale, et une partie subtrigéminale, antérieure. Dans aucune de ces trois subdivisions du noyau il n'a été possible de mettre en évidence un marquage clair pour les injections localisées au lobule VII. En revanche un nombre
est contrôlée sur des coupes sagittales du cervelet. Il s'agit de s'assurer que l'enzyme n'a pas atteint par diffusion la zone des noyaux intracérébelleux qui reçoivent également des afférences du tronc cérébral. Nos résultats ne concernent pas les fibres grimpantes, issues de l'olive inférieure et qui se projettent vers l'aire vermienne étudiée suivant une topographie bien précise récemment étudiée par la même méthode. Nous ne nous sommes intéressés qu'aux projections moussues originaires des noyaux réticulaires bulbaires et des noyaux du raphé. 1. Noyau réticulaire latéral. — Situé dans le bulbe très latéralement et ventralement au niveau de l'olive inférieure, ce noyau est formé de 3 parties, une partie dite gigantocellulaire, dorso-médiale, une partie parvocellulaire, ventro-latérale, et une partie subtrigéminale, antérieure. Dans aucune de ces trois subdivisions du noyau il n'a été possible de mettre en évidence un marquage clair pour les injections localisées au lobule VII. En revanche un nombre relativement important de neurones marqués a été observé dans les deux cas où l'injection de l'enzyme intéressait le lobule VI. Ce nombre est fonction de l'étendue du cortex cérébelleux imprégné par la peroxydase. Les cellules marquées appartiennent en quasi-totalité aux subdivisions magnocellulaires et subtrigéminales, la partie parvocellulaire ne présentant qu'un marquage faible ou nul. 2° Noyau réticulaire paramédian. — Également situé dans le bulbe, ce noyau se trouve en position médiale, au-dessus de l'olive inférieure. Brodal le divise en 3 parties, ventrale dorsale et accessoire. Dans nos expériences, des neurones marqués ont été observés dans chacune des 3 parties de ce noyau réticulaire, en nombre variable suivant l'étendue du site d'injection; Comme pour le noyau réticulaire latéral, un tel marquage n'est nettement présent que dans le cas d'injection du lobule VI. 3° Noyaux du raphé. — Il s'agit de structures situées le long de la ligne médiane dans le tronc cérébral. Nous avons adopté les subdivisions de Taber et coll. Parmi celles-ci sont nettement marquées, lors des injections dans le lobule VII, le raphe magnus et le raphe pallidus puis, dans une moindre mesure, le centralis superior, le raphe pontis et le raphe obscurus. En revanche, pour des injections dans
marquage faible ou nul. 2° Noyau réticulaire paramédian. — Également situé dans le bulbe, ce noyau se trouve en position médiale, au-dessus de l'olive inférieure. Brodal le divise en 3 parties, ventrale dorsale et accessoire. Dans nos expériences, des neurones marqués ont été observés dans chacune des 3 parties de ce noyau réticulaire, en nombre variable suivant l'étendue du site d'injection; Comme pour le noyau réticulaire latéral, un tel marquage n'est nettement présent que dans le cas d'injection du lobule VI. 3° Noyaux du raphé. — Il s'agit de structures situées le long de la ligne médiane dans le tronc cérébral. Nous avons adopté les subdivisions de Taber et coll. Parmi celles-ci sont nettement marquées, lors des injections dans le lobule VII, le raphe magnus et le raphe pallidus puis, dans une moindre mesure, le centralis superior, le raphe pontis et le raphe obscurus. En revanche, pour des injections dans le lobule VI, le marquage est nul ou faiblement présent dans le raphe magnus, le raphe pallidus et le centralis superior. Récemment, Shinnar et coll. ont identifié ces mêmes structures d'origine, mais injectant simultanément les lobules VI et VII, ils ne pouvaient préciser la répartition des projections. Nos résultats montrent que les noyaux réticulaires bulbaires latéral et paramédian se projettent préférentiellement dans le lobule VI et les noyaux du raphé dans le lobule VII. Ainsi, au moins en ce qui concerne ces afférences, le cortex vermien dit « visuo-acoustique » ne peut pas être considéré comme homogène. Dans ce sens, nos données différent de celles obtenues par les méthodes de dégénérescence. (4) Ce travail a bénéficié d'une aide financière du C.N.R.S. (contrat RCP n° 433) et de l'I.N.S.E.R.M. (contrat C.R.L. n° 76-1.138.6). Collaboration technique de Françoise Lanery et Christiane Pagès. Le penthotal a été gracieusement fourni par les laboratoires Abbott et la terramycine utilisée pour les sinistres antimicrobiens par les laboratoires Pfizer-Clin. (2) C. BATINI, C. BUISSERET-DELMAS et J. CORVISIER, J. Physiol., Paris, 72. 1976, p, 301-309. (3) C. BATINI, J. CORVISIER, J. DESTOMBES, H. GIOANNI et J. EVERETT, Exp. Brain Res., 26. 1976, n. 407-422. (4) A. BRODAL, E.
que les noyaux réticulaires bulbaires latéral et paramédian se projettent préférentiellement dans le lobule VI et les noyaux du raphé dans le lobule VII. Ainsi, au moins en ce qui concerne ces afférences, le cortex vermien dit « visuo-acoustique » ne peut pas être considéré comme homogène. Dans ce sens, nos données différent de celles obtenues par les méthodes de dégénérescence. (4) Ce travail a bénéficié d'une aide financière du C.N.R.S. (contrat RCP n° 433) et de l'I.N.S.E.R.M. (contrat C.R.L. n° 76-1.138.6). Collaboration technique de Françoise Lanery et Christiane Pagès. Le penthotal a été gracieusement fourni par les laboratoires Abbott et la terramycine utilisée pour les sinistres antimicrobiens par les laboratoires Pfizer-Clin. (2) C. BATINI, C. BUISSERET-DELMAS et J. CORVISIER, J. Physiol., Paris, 72. 1976, p, 301-309. (3) C. BATINI, J. CORVISIER, J. DESTOMBES, H. GIOANNI et J. EVERETT, Exp. Brain Res., 26. 1976, n. 407-422. (4) A. BRODAL, E. TABER et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 239-254. (5) J. C. ECCLES, M. ITO et J. SZENTÁGOHTAI, The Cerebellum as a Neuronal Machine, Springer, New York, 1967, p. 335. 6) G. H. HODDEVIK, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 169, 1976, p. 155-170. (7) J. JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 161-182. Laboratoire de Psychophysiologie sensorielle. Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu. 75005 Paris. HISTOLOGIE. — Mise en évidence simultanée des neurones ocellaires et des cellules neurosécrétrices de la pars sur montage in toto chez la Blatte. Note (*) de Anne Bernard, transmise par M. Pierre Joly. Notre méthode résulte de la combinaison des techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules
JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 161-182. Laboratoire de Psychophysiologie sensorielle. Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu. 75005 Paris. HISTOLOGIE. — Mise en évidence simultanée des neurones ocellaires et des cellules neurosécrétrices de la pars sur montage in toto chez la Blatte. Note (*) de Anne Bernard, transmise par M. Pierre Joly. Notre méthode résulte de la combinaison des techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules neurosécrétrices médianes et des neurones ocellaires de la pars sur un même montage in toto, apporte des preuves en faveur d'une absence de connexion directe entre ces deux systèmes chez la Blatte Periplaneta americana. Our bulk-staining method results from the combination of techniques using both cobalt chloride iontophoresis and paraldehyde fuchsin. The observation of medial neuro-secretory cells and ocellar neurons in the pars on the same whole mount would show no direct connexion between these two systems in the Cockroach Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre les cellules neurosécrétrices médianes de la pars intercerebralis et les ocelles chez la Blatte et pour l'interpréter les différents auteurs font appel à un support anatomique mais jusqu'à présent nul n'a pu le mettre en évidence chez Periplaneta. À côté des 70 ou 80 petites fibres que compte le nerf ocellaire de la Blatte Periplaneta, Cooter (3) dénombre 5 fibres de gros diamètre, 4 d'un diamètre moyen et 1 d'un diamètre légèrement inférieur. Ces fibres géantes ocellaires bipolaires sont connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection iontophorétique de chlorure de cobalt effectuée au départ d'un ocelle sous l'action d'un courant électrique, nous a permis (3)
fuchsin. The observation of medial neuro-secretory cells and ocellar neurons in the pars on the same whole mount would show no direct connexion between these two systems in the Cockroach Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre les cellules neurosécrétrices médianes de la pars intercerebralis et les ocelles chez la Blatte et pour l'interpréter les différents auteurs font appel à un support anatomique mais jusqu'à présent nul n'a pu le mettre en évidence chez Periplaneta. À côté des 70 ou 80 petites fibres que compte le nerf ocellaire de la Blatte Periplaneta, Cooter (3) dénombre 5 fibres de gros diamètre, 4 d'un diamètre moyen et 1 d'un diamètre légèrement inférieur. Ces fibres géantes ocellaires bipolaires sont connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection iontophorétique de chlorure de cobalt effectuée au départ d'un ocelle sous l'action d'un courant électrique, nous a permis (3) de les visualiser sur montage in toto. Les techniques de coloration de masse utilisant l'acide performique et le bleu Victoria (6) ou la fuchsine paraldéhyde (8) sont de pratique courante pour la mise en évidence des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Notre propos ici est de combiner les techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration par la fuchsine après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens anatomiques éventuels qui existeraient entre les systèmes ocellaires et neuro-sécrétaires de la pars. MÉTÉRIEL ET MÉTHODE. — Dans ce travail nous utilisons des Blattes (Periplaneta americana) mâles, adultes âgés (que nous reconnaissons à leur couleur foncée et aux ailes endommagées) provenant d'un élevage soumis à la photopériode naturelle. Après un jeûne préalable de 3 jours, la Blatte est anesthésiée au froid en la plaçant pendant 7 mn dans le « freezer » du réfrigérateur. La cornée de l'ocelle est perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de cobalt à la concentration de 250 mmoles/l est introduite dans la cupule ocellaire. La Blatte est remise à l'étuve (27°C) sans nourriture pendant 1 h pour permettre au chlorure de cobalt de diffuser dans le système ocellaire. Après une
iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration par la fuchsine après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens anatomiques éventuels qui existeraient entre les systèmes ocellaires et neuro-sécrétaires de la pars. MÉTÉRIEL ET MÉTHODE. — Dans ce travail nous utilisons des Blattes (Periplaneta americana) mâles, adultes âgés (que nous reconnaissons à leur couleur foncée et aux ailes endommagées) provenant d'un élevage soumis à la photopériode naturelle. Après un jeûne préalable de 3 jours, la Blatte est anesthésiée au froid en la plaçant pendant 7 mn dans le « freezer » du réfrigérateur. La cornée de l'ocelle est perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de cobalt à la concentration de 250 mmoles/l est introduite dans la cupule ocellaire. La Blatte est remise à l'étuve (27°C) sans nourriture pendant 1 h pour permettre au chlorure de cobalt de diffuser dans le système ocellaire. Après une nouvelle anesthésie au froid, la cuticule cervicale est enlevée, une incision sépare le thorax de l'abdomen. La tête et le thorax sont plongés pendant 5 mn dans du liquide physiologique (« Ringer » tamponné au pH 7,6 avec du tris C) contenant quelques gouttes de sulfure d'ammonium. Un lavage rapide au liquide physiologique précède le prélèvement du cerveau qui doit se faire très rapidement (durée de l'opération : 5 mn maximum). La fixation se fait au picroformol trichloracétique (solution aqueuse saturée d'acide picrique : 150 ml; formol : 50 ml; acide trichloracétique à 2 % : 10 ml) pendant 24 h au cours desquelles 1 ou 2 passages à la trompe à vide sont conseillés pour vider l'air des trachées. Après une dissection fine, un lavage à l'eau courante de 2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à l'acide picrique. L'oxydation classique à l'acide performique est ici remplacée par une oxydation permanganique en milieu sulfurique (8). Pour qu'un maximum de cellules neuro-sécrétrices soient mises en évidence, cette oxydation doit se poursuivre pendant 1 h dans le mélanger : solution de permanganate de potassium à 2,5 % : 1 volume, acide sulfurique à 5 % : 1 volume,
au liquide physiologique précède le prélèvement du cerveau qui doit se faire très rapidement (durée de l'opération : 5 mn maximum). La fixation se fait au picroformol trichloracétique (solution aqueuse saturée d'acide picrique : 150 ml; formol : 50 ml; acide trichloracétique à 2 % : 10 ml) pendant 24 h au cours desquelles 1 ou 2 passages à la trompe à vide sont conseillés pour vider l'air des trachées. Après une dissection fine, un lavage à l'eau courante de 2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à l'acide picrique. L'oxydation classique à l'acide performique est ici remplacée par une oxydation permanganique en milieu sulfurique (8). Pour qu'un maximum de cellules neuro-sécrétrices soient mises en évidence, cette oxydation doit se poursuivre pendant 1 h dans le mélanger : solution de permanganate de potassium à 2,5 % : 1 volume, acide sulfurique à 5 % : 1 volume, eau distillée : 6-8 volumes. La solution doit être renouvelée à chaque usage. Après un rinçage sommaire à l'eau de ville, la préparation est blanchie par une solution à 4 % de métabisulfite de sodium pendant 10 mn environ. Un lavage à l'eau courante pendant 5 mn précède une coloration de 10 mn à la fuchsine paraldéhyde acétifiée selon la méthode originale de Gomori (8). Un rinçage à l'eau de ville enlève l'excès de colorant, puis la préparation est traitée pendant 10 à 20 s par de l'alcool à 96° additionné de 0,5 % d'acide chlorhydrique concentré. La dissection finale se fait dans l'alcool absolu et la déshydratation peut se poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne pendant une demi-journée dans des mélanges d'alcool 100 et d'essence de cèdre blanche dont la concentration augmente progressivement pour finalement aboutir à un bain d'essence de cèdre pure. Le montage peut se faire au baume du Canada entre lame et lamelle. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Après coloration à la fuchsine paraldéhyde les cellules neurosécrétrices médianes de la pars antérieure apparaissent sous la forme d'un groupe dense d'une centaine de cellules situées de part et d'autre du plan sagittal (fig.
de 10 mn à la fuchsine paraldéhyde acétifiée selon la méthode originale de Gomori (8). Un rinçage à l'eau de ville enlève l'excès de colorant, puis la préparation est traitée pendant 10 à 20 s par de l'alcool à 96° additionné de 0,5 % d'acide chlorhydrique concentré. La dissection finale se fait dans l'alcool absolu et la déshydratation peut se poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne pendant une demi-journée dans des mélanges d'alcool 100 et d'essence de cèdre blanche dont la concentration augmente progressivement pour finalement aboutir à un bain d'essence de cèdre pure. Le montage peut se faire au baume du Canada entre lame et lamelle. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Après coloration à la fuchsine paraldéhyde les cellules neurosécrétrices médianes de la pars antérieure apparaissent sous la forme d'un groupe dense d'une centaine de cellules situées de part et d'autre du plan sagittal (fig. 1). Il s'agit de neurones en Y qui courent sur la face frontale du cerveau en restant très superficiels. CORRECTION ### 6) G. H. HODDEVIK, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 169, 1976, p. 155-170. (7) J. JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 161-182. Laboratoire de Psychophysiologie sensorielle. Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu. 75005 Paris. HISTOLOGIE. — Mise en évidence simultanée des neurones ocellaires et des cellules neurosécrétrices de la pars sur montage in toto chez la Blatte. Note (*) de Anne Bernard, transmise par M. Pierre Joly. Notre méthode résulte de la combinaison des techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules neurosécrétrices médianes et des neurones ocellaires de la pars sur un
Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 161-182. Laboratoire de Psychophysiologie sensorielle. Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu. 75005 Paris. HISTOLOGIE. — Mise en évidence simultanée des neurones ocellaires et des cellules neurosécrétrices de la pars sur montage in toto chez la Blatte. Note (*) de Anne Bernard, transmise par M. Pierre Joly. Notre méthode résulte de la combinaison des techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules neurosécrétrices médianes et des neurones ocellaires de la pars sur un même montage in toto, apporte des preuves en faveur d'une absence de connexion directe entre ces deux systèmes chez la Blatte Periplaneta americana. Our bulk-staining method results from the combination of techniques using both cobalt chloride iontophoresis and paraldehyde fuchsin. The observation of medial neuro-secretory cells and ocellar neurons in the pars on the same whole mount would show no direct connexion between these two systems in the Cockroach Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre les cellules neurosécrétrices médianes de la pars intercerebralis et les ocelles chez la Blatte et pour l'interpréter les différents auteurs font appel à un support anatomique mais jusqu'à présent nul n'a pu le mettre en évidence chez Periplaneta. À côté des 70 ou 80 petites fibres que compte le nerf ocellaire de la Blatte Periplaneta, Cooter (3) dénombre 5 fibres de gros diamètre, 4 d'un diamètre moyen et 1 d'un diamètre légèrement inférieur. Ces fibres géantes ocellaires bipolaires sont connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection iontophorétique de chlorure de cobalt effectuée au départ d'un ocelle sous l'action d'un courant électrique, nous a permis (3) de les visualiser sur montage in toto. Les techniques de coloration