jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
d’épaisseur porte, vers l’intérieur de l’oosphère, des digitations intracytoplasmiques (5 à 8 µm) (planche I, fig. 1, 2, 7). Épaississements et digitations résultent d’une sécrétion polysaccharidique provenant du progamète femelle (planche I, fig. 6); elle débute un mois avant la fécondation pour les épaississements, et seulement dix jours avant cette dernière pour les digitations. Réseau et digitations réagissent positivement à l’acide périodique-Schiff ainsi qu’aux colorants signalétiques de la cellulose (ClZn + H2SO4), dont la présence est confirmée par la coloration au chloroiodure de zinc (planche I, fig. 4) après hydrolyse chimique des composés pectiques et des hémicelluloses et par la biréfringence au microscope polarisant. La coloration spécifique des pectines, de même que celle des polysaccharides acides, s’observe sur l’ensemble des épaississements pariétaux sans localisation linéaire correspondant à une lamelle moyenne. Réseau et digitations sont uniformément denses aux électrons sur les coupes contrastées par le KMnO4, l’Acétate d’Uranyl-citrate de Plomb ainsi qu’après coloration par la méthode de Thiéry (planche I, fig. 6, 7). La technique aux hydroxamates ferriques révèle les groupements estérifiés de pectines dans l’ensemble de la paroi épaissie et des digitations (planche II, fig. 11, 14, 15). Après digestion par la pectinase puis coloration par la technique de Thiéry, des ensembles de fibrilles polysaccharidiques occupent le 1/3 ou le 1/4 de l’épaisseur totale de la paroi (planche II, fig. 13). Dans les champs de ponctuations primaires, la paroi très fine (0,10 à 0,35 µm) (planche I, fig. 1, 2, 5), riche en plasmodesmes, comporte une fine bande polysaccharidique (0,05 à 0,15 µm) bordée par deux espaces périplasmiques importants (0,05 à 0,15 µm) (planche I, fig. 5). La bande polysaccharidique représente essentiellement la lamelle moyenne pectique (0,05 à 0,10 µm) (planche II, fig. 12) totalement éliminée après action de la pectinase (planche II, fig. 13). Les coupes traitées au bleu d’aniline et observées en microscopie à fluorescence montrent la présence de granules callosiques contigus (planche I, fig. 8, 10) dans les champs de ponctuations. Cette localisation est établie en photographiant une même coupe tangentielle à la paroi après fluorescence de la callose, puis après coloration des épaississements membranaires par le
des ensembles de fibrilles polysaccharidiques occupent le 1/3 ou le 1/4 de l’épaisseur totale de la paroi (planche II, fig. 13). Dans les champs de ponctuations primaires, la paroi très fine (0,10 à 0,35 µm) (planche I, fig. 1, 2, 5), riche en plasmodesmes, comporte une fine bande polysaccharidique (0,05 à 0,15 µm) bordée par deux espaces périplasmiques importants (0,05 à 0,15 µm) (planche I, fig. 5). La bande polysaccharidique représente essentiellement la lamelle moyenne pectique (0,05 à 0,10 µm) (planche II, fig. 12) totalement éliminée après action de la pectinase (planche II, fig. 13). Les coupes traitées au bleu d’aniline et observées en microscopie à fluorescence montrent la présence de granules callosiques contigus (planche I, fig. 8, 10) dans les champs de ponctuations. Cette localisation est établie en photographiant une même coupe tangentielle à la paroi après fluorescence de la callose, puis après coloration des épaississements membranaires par le chloroiodure de zinc. Le tirage positif des clichés sur support transparent permet leur superposition et montre la localisation de granules callosiques dans les champs de ponctuations primaires (planche I, fig. 9, 10). CONCLUSION ET DISCUSSIONS. — 1. La mise en place du réseau pariétal et des digitations lors de la croissance cellulaire, ainsi que la répartition homogène des composés pectiques dans ces structures empêchent de les assimiler à une paroi secondaire à rôle de soutien. Par contre, l’existence des digitations met 80 % de la surface du plasmalemme du zygote au contact des zones riches en composés pectiques. Ce fait peut être mis en rapport avec les capacités d’hydratation élevées des pectines et leurs propriétés physico-chimiques favorables vis-à-vis des échanges d’ions, qui les rendent particulièrement aptes au transport passif des solutés. 2. L’observation d’une fluorescence un peu plus faible dans les échantillons fixés à 0° au glutaraldéhyde post-osmié incite à penser qu’une partie de la callose observée résulte d’une néoformation d’origine traumatique mais, même dans ce cas, la spécificité des dépôts traduit la richesse des champs de ponctuations en précurseurs phosphorylés de la callose (uridine-phosphate-glucose) contrôlés par une callose synthétase. La paroi polysaccharidique des champs de ponctuations, d'épaisseur inférieure à
croissance cellulaire, ainsi que la répartition homogène des composés pectiques dans ces structures empêchent de les assimiler à une paroi secondaire à rôle de soutien. Par contre, l’existence des digitations met 80 % de la surface du plasmalemme du zygote au contact des zones riches en composés pectiques. Ce fait peut être mis en rapport avec les capacités d’hydratation élevées des pectines et leurs propriétés physico-chimiques favorables vis-à-vis des échanges d’ions, qui les rendent particulièrement aptes au transport passif des solutés. 2. L’observation d’une fluorescence un peu plus faible dans les échantillons fixés à 0° au glutaraldéhyde post-osmié incite à penser qu’une partie de la callose observée résulte d’une néoformation d’origine traumatique mais, même dans ce cas, la spécificité des dépôts traduit la richesse des champs de ponctuations en précurseurs phosphorylés de la callose (uridine-phosphate-glucose) contrôlés par une callose synthétase. La paroi polysaccharidique des champs de ponctuations, d'épaisseur inférieure à 0,2 fl, ne peut être visualisée en microscopie photonique ; cependant, sur coupes semi-fines, le bleu de toluidine (pH 9) colore une paroi continue dans ces zones ce qui ne s'explique que par la coloration des espaces périplasmiques. L'affinité du bleu de toluidine pour les protéines et les observations cytochimiques d'autres auteurs [(9), (CO)] nous incitent à penser que la callose sous forme d'un complexe glycoprotéique est présente par plages dans les espaces périplasmiques, ce qui expliquerait que nous n'ayons pu la localiser précisément en microscopie électronique (planche I, fig. 5). La callose présente dans la paroi des cellules de la lignée sexuelle des Archégoniates est interprétée comme jouant le rôle de barrière [("), (3)] ou de filtre qui n'est franchi que par des molécules de petite taille [(4), (5)]. Il en serait de même pour les dépôts callosiques ou leurs précurseurs phosphorylés [C 1), (6)] associés aux communications intercellulaires, dans les tissus somatiques (pit-callose). 3. Une paroi aussi spécialisée se rencontre-t-elle chez tous les gamètes femelles de Gymnospermes ? L'étude exhaustive reste à faire, mais ce fait est probable, car nous avons retrouvé dans la paroi de l'ovule de Cephalotaxus drupacea la présence de callose et une richesse uniforme
d'autres auteurs [(9), (CO)] nous incitent à penser que la callose sous forme d'un complexe glycoprotéique est présente par plages dans les espaces périplasmiques, ce qui expliquerait que nous n'ayons pu la localiser précisément en microscopie électronique (planche I, fig. 5). La callose présente dans la paroi des cellules de la lignée sexuelle des Archégoniates est interprétée comme jouant le rôle de barrière [("), (3)] ou de filtre qui n'est franchi que par des molécules de petite taille [(4), (5)]. Il en serait de même pour les dépôts callosiques ou leurs précurseurs phosphorylés [C 1), (6)] associés aux communications intercellulaires, dans les tissus somatiques (pit-callose). 3. Une paroi aussi spécialisée se rencontre-t-elle chez tous les gamètes femelles de Gymnospermes ? L'étude exhaustive reste à faire, mais ce fait est probable, car nous avons retrouvé dans la paroi de l'ovule de Cephalotaxus drupacea la présence de callose et une richesse uniforme en pectines estérifiées (planche II, fig. 16, 17). La spécialisation structurale et chimique de telles parois expliquerait qu'elles ne soient pas réutilisées par le proembryon qui sécrète précocement sa propre paroi (17). (*) Séance du 28 février 1977. (') M. C. STOPES et K. FUJII, Beih. Bot. Centralbl., 20, 1906, p. 1-24. (1) J. P. THIÉRY, J. Microscopie, 6, 1967, p. 987-1018. (') P. AIBERSHEIM. Protoplasma, 60, 1965, p. 131-135. (4) W. V. DASHLK et W. G. ROSEN, Protoplasma, 61, 1966, p. 192-204. (') W. A. JFNSFN. Botanical Histology and Morphology. 1964. FREEMAN and Co. éd. (") K. BENÈS, Biol. Plant., 10, 1968, p. 334-346. (') W. ESRICH et H. B. CURRIER, Stain Technol., 39, 1964, p. 303-307. (8) H. J. ORGERS et H. R. PERKINS, in Cell Walls and membranes, Spon, London, 1968. (9) L. WATERKEYN et A. BIENFAIT, Rev. Cytol. et Biol. vég., 32, 1969, p. 21-26. (10) J. D. REYNOLDS et W. V. DASHEK, Ann. Bot., 40, 1976, p. 409-416. (") W. ESRICH, Ann. Rev. Pl. Physiol., 21, 1970, p. 193-214. (11) J. HESLOP-HARRISON, in Pollen Physiology and Fertilization, Linskens H. F., Amsterdam, North-Holland, 1964, p. 36-47. (13) A. GORSKA-BRYLASS, Acta, Soc. Bot. Pol., 27, 6, 1969,
p. 1-24. (1) J. P. THIÉRY, J. Microscopie, 6, 1967, p. 987-1018. (') P. AIBERSHEIM. Protoplasma, 60, 1965, p. 131-135. (4) W. V. DASHLK et W. G. ROSEN, Protoplasma, 61, 1966, p. 192-204. (') W. A. JFNSFN. Botanical Histology and Morphology. 1964. FREEMAN and Co. éd. (") K. BENÈS, Biol. Plant., 10, 1968, p. 334-346. (') W. ESRICH et H. B. CURRIER, Stain Technol., 39, 1964, p. 303-307. (8) H. J. ORGERS et H. R. PERKINS, in Cell Walls and membranes, Spon, London, 1968. (9) L. WATERKEYN et A. BIENFAIT, Rev. Cytol. et Biol. vég., 32, 1969, p. 21-26. (10) J. D. REYNOLDS et W. V. DASHEK, Ann. Bot., 40, 1976, p. 409-416. (") W. ESRICH, Ann. Rev. Pl. Physiol., 21, 1970, p. 193-214. (11) J. HESLOP-HARRISON, in Pollen Physiology and Fertilization, Linskens H. F., Amsterdam, North-Holland, 1964, p. 36-47. (13) A. GORSKA-BRYLASS, Acta, Soc. Bot. Pol., 27, 6, 1969, p. 549-554. (14 ) D. SOUTHWORT, in Pollen : Development and Physiology, J. HESLOP-HARRISON éd., Butterworths, London, 1971, p. 115-120. (") J. HESLOP-HARRISON et MACKENZIE, J. Cell. Sc., 2, 1967, p. 387-400. (6) H. G. CURRIER, Am. J. Bot., 3, 1957, p. 478-488. (7) M. J. THOMAS, Rev. Cytol. Biol. vég., 36, 1973, p. 165-252. Laboratoire de Botanique, Faculté des Sciences de Reims, 51062 Reims Cedex. GÉNÉTIQUE.— Analyse préliminaire de la diversité des états dormants des graines dans quelques lignées de Pétronie. Note (*) de Yves Jassey, Jeannine Monin, André Cornu et Paul Dommergues, présentée par M. Lucien Plantefol. Nous avons étudié les possibilités de germination des semences de 25 lignées de Petunia. Cette Note met en évidence le fait qu'il existe chez certaines lignées des états de dormance différents et parfois contrastés. Dans le cas de ces lignées, nous avons également recherché quelles pourraient être les structures des graines responsables de cet état de dormance. We studied the germination abilities of seeds from 25 Petunia lines. The following investigation proves that exist in some lines different and sometimes contrasting dormancy states. In the case of these lines, we investigated also which seed structures might be responsible for this dormancy.
vég., 36, 1973, p. 165-252. Laboratoire de Botanique, Faculté des Sciences de Reims, 51062 Reims Cedex. GÉNÉTIQUE.— Analyse préliminaire de la diversité des états dormants des graines dans quelques lignées de Pétronie. Note (*) de Yves Jassey, Jeannine Monin, André Cornu et Paul Dommergues, présentée par M. Lucien Plantefol. Nous avons étudié les possibilités de germination des semences de 25 lignées de Petunia. Cette Note met en évidence le fait qu'il existe chez certaines lignées des états de dormance différents et parfois contrastés. Dans le cas de ces lignées, nous avons également recherché quelles pourraient être les structures des graines responsables de cet état de dormance. We studied the germination abilities of seeds from 25 Petunia lines. The following investigation proves that exist in some lines different and sometimes contrasting dormancy states. In the case of these lines, we investigated also which seed structures might be responsible for this dormancy. L'étude des mécanismes héréditaires pouvant intervenir dans la transmission du caractère dormant des semences n'a été abordée que sur un nombre limité d'espèces. Ce sont principalement les réactions des semences d'Arabidopsis thaliana Heynh. (1), Avena fatua L. (2), Cucumis sativus L. (3), Nicotiana tabacum L. (4), Triticum sativum Lmk. (5) et Zea mays L. (6) qui ont été analysées. Plus récemment, des recherches ont été entreprises soit sur des lignées et leurs mutants, cas des akènes de 2 variétés de Lactuca sativa L. : Merveille des quatre saisons (1) et grand Rapids (8), soit sur des lots de graines récoltées dans la nature, cas de Capsella bursa-pastoris L. (7) et d'Oldenlandia corymbosa L. (10). Le but de ce présent travail a été d'étudier les possibilités de germination des semences entières et des embryons isolés ou entourés de l'albumen de différentes lignées de Petunia, afin de voir si l'on trouvait d'une part des degrés de dormance différents entre ces diverses lignées et d'autre part des corrélations entre les structures de la graine également différentes de celles existant chez les espèces antérieurement analysées. Le choix de ce matériel fut guidé par le fait que certains d'entre nous l'utilisent pour d'autres études génétiques
et Zea mays L. (6) qui ont été analysées. Plus récemment, des recherches ont été entreprises soit sur des lignées et leurs mutants, cas des akènes de 2 variétés de Lactuca sativa L. : Merveille des quatre saisons (1) et grand Rapids (8), soit sur des lots de graines récoltées dans la nature, cas de Capsella bursa-pastoris L. (7) et d'Oldenlandia corymbosa L. (10). Le but de ce présent travail a été d'étudier les possibilités de germination des semences entières et des embryons isolés ou entourés de l'albumen de différentes lignées de Petunia, afin de voir si l'on trouvait d'une part des degrés de dormance différents entre ces diverses lignées et d'autre part des corrélations entre les structures de la graine également différentes de celles existant chez les espèces antérieurement analysées. Le choix de ce matériel fut guidé par le fait que certains d'entre nous l'utilisent pour d'autres études génétiques (II). MÉTODES ET MÉTÉRIEL. — 1° Matériel. — Cette étude comprend 2 séries d'expériences (a) Lors de la première série, nous avons étudié le comportement de graines obtenues par autofécondation à partir de 21 lignées de Petunia hybrida hort. et de 4 lignées issues respectivement des espèces Petunia parodii Steere, Pétronie inflata R. Fries, Petunia violacea Lindl., Petunia axillaris (Lam) B.S.P.; parmi celles-ci se trouvent les 2 espèces ancestrales de Petunia hybrida hort. Il est fréquemment admis que ce sont Petunia axillaris et Petunia violacea [(12), (l1)]. (b) Lors de la seconde série, effectuée sur un plus petit nombre de lignées, le début des cultures (du semis au stade rosette) a été réalisé en serres; les plantes ont ensuite été placées dans une salle climatisée à 20°C, en jours longs de 16 h, sous un éclairement de 6 000 lx environ fournis par des tubes fluorescents « Philips couleur 34RS ». Les graines ont été récoltées un mois après la floraison, au début de la déhiscence de chaque capsule et conservées en sachets de papier au laboratoire. 2° Méthodes : nous avons analysé les possibilités de germination des graines entières en effectuant des essais 1, 5, 20 et, dans le
Pétronie inflata R. Fries, Petunia violacea Lindl., Petunia axillaris (Lam) B.S.P.; parmi celles-ci se trouvent les 2 espèces ancestrales de Petunia hybrida hort. Il est fréquemment admis que ce sont Petunia axillaris et Petunia violacea [(12), (l1)]. (b) Lors de la seconde série, effectuée sur un plus petit nombre de lignées, le début des cultures (du semis au stade rosette) a été réalisé en serres; les plantes ont ensuite été placées dans une salle climatisée à 20°C, en jours longs de 16 h, sous un éclairement de 6 000 lx environ fournis par des tubes fluorescents « Philips couleur 34RS ». Les graines ont été récoltées un mois après la floraison, au début de la déhiscence de chaque capsule et conservées en sachets de papier au laboratoire. 2° Méthodes : nous avons analysé les possibilités de germination des graines entières en effectuant des essais 1, 5, 20 et, dans le cas de P. parodii, 50 semaines après la récolte. Ils ont été réalisés à l'obscurité dans des boîtes de Petri de 60 mm de diamètre sur du papier filtre imbibé de 3 ml d'eau distillée, à 15°C, 25°C et 30°C, ou d'une solution aqueuse d'acide gibbérellique (GA3) à 1 mg/1 (2,6. 10-6M), à 25°C. L'éventuelle photosensibilité des semences a été mise en évidence en exposant celles-ci soit à un éclairement de rouge clair (RC) pendant 5 mn, soit à un éclairement de RC (5 mn) suivi d'une phase obscure (10 mn) et d'un éclairement de rouge sombre (RS) (10 mn). L'exposition au RC a été effectuée après 16 h d'imbibition préalable des graines sur eau à 25°C et à l'obscurité. Le RC est obtenu à l'aide d'un filtre interférentiel « Balzer filtraflex » (longueur d'onde 0 = 656 nm) et le RS par un filtre de même nature (n = 750 nm). Tous ces essais ont été réalisés avec 4 à 6 lots de 20 graines issus d'une même capsule et les lectures faites après 8 jours, le maximum de germinations possibles étant alors obtenu. La recherche des structures qui pourraient être responsables de l'état dormant s'est effectuée en comparant
(2,6. 10-6M), à 25°C. L'éventuelle photosensibilité des semences a été mise en évidence en exposant celles-ci soit à un éclairement de rouge clair (RC) pendant 5 mn, soit à un éclairement de RC (5 mn) suivi d'une phase obscure (10 mn) et d'un éclairement de rouge sombre (RS) (10 mn). L'exposition au RC a été effectuée après 16 h d'imbibition préalable des graines sur eau à 25°C et à l'obscurité. Le RC est obtenu à l'aide d'un filtre interférentiel « Balzer filtraflex » (longueur d'onde 0 = 656 nm) et le RS par un filtre de même nature (n = 750 nm). Tous ces essais ont été réalisés avec 4 à 6 lots de 20 graines issus d'une même capsule et les lectures faites après 8 jours, le maximum de germinations possibles étant alors obtenu. La recherche des structures qui pourraient être responsables de l'état dormant s'est effectuée en comparant le comportement des graines entières (G), des embryons entourés de l'« albumen » (E.A) et des embryons isolés (E). Les dissections ont été réalisées en lumière verte après 1 h d'imbibition préalable à l'obscurité. Les essais de germination ont eu lieu une semaine après la récolte des graines, à 25°C et à l'obscurité, en conditions aseptiques sur eau (gélosée à 8 % ou non) ou sur milieu nutritif minéral (14) gélosé à 8 % et éventuellement enrichi de l'un, de plusieurs ou de la totalité de ces composés : glucose (30 g/1), aneurine (0,1 mg/1), pyridoxine (0,1 mg/1), acide nicotinique (0,1 mg/1), acide gibbérellique (10 mg/1), hydrolysat de caséine (1 g/1). Les taux de germination sont exprimés en pourcentages d'embryons, isolés ou non, ayant germé après 8 jours de culture. Fig. 1. — Pourcentages de germination obtenus à la récolte avec des embryons entourés de « l'albumen » (E.A) et des graines entières (G) de 3 lignées de Petunia : en blanc, eau, 25°C, obscurité; en pointillé, RC, 16 h. d'imbibition; en noir, RC suivi de RS. 16 h d'imbibition; en hachuré, GA3, 25°C, obscurité. Fig. 2. — Pourcentages de germination obtenus dans différentes conditions avec les graines de 3
et à l'obscurité, en conditions aseptiques sur eau (gélosée à 8 % ou non) ou sur milieu nutritif minéral (14) gélosé à 8 % et éventuellement enrichi de l'un, de plusieurs ou de la totalité de ces composés : glucose (30 g/1), aneurine (0,1 mg/1), pyridoxine (0,1 mg/1), acide nicotinique (0,1 mg/1), acide gibbérellique (10 mg/1), hydrolysat de caséine (1 g/1). Les taux de germination sont exprimés en pourcentages d'embryons, isolés ou non, ayant germé après 8 jours de culture. Fig. 1. — Pourcentages de germination obtenus à la récolte avec des embryons entourés de « l'albumen » (E.A) et des graines entières (G) de 3 lignées de Petunia : en blanc, eau, 25°C, obscurité; en pointillé, RC, 16 h. d'imbibition; en noir, RC suivi de RS. 16 h d'imbibition; en hachuré, GA3, 25°C, obscurité. Fig. 2. — Pourcentages de germination obtenus dans différentes conditions avec les graines de 3 lignées de Petunia en fonction du temps de conservation à sec : en blanc, eau, 15°C, obscurité; en pointillé, eau, 25°C, obscurité; en noir, eau, 30°C, obscurité; en hachuré, GA3, 25°C, obscurité. RÉSULTATS. — Les résultats obtenus lors de la première série d'expériences nous ont conduits à retenir 2 lignées de Pétunia hybrida : TLh2 et Tbl-3 ainsi que Pétunia parodii, lignées dont les états de dormance sont bien contrastés : — les graines de TLh2 présentent dans toutes les conditions citées précédemment et tout au long de leur conservation à sec, des taux de germination élevés (85 à 98 %): — les semences de Tbl-3 et P. parodii ont en commun de ne germer à la récolte ni à 25°C, ni à 30°C (fig. 2) et d'avoir leur dormance levée après un apport de GA3 ou de RC (fig. 1). Mais les graines de Tbl-3 germent dès la récolte à 15°C et deviennent progressivement moins dormantes lors de leur conservation à sec (fig. 2), tandis que celles de P. parodii gardent à l'obscurité sur eau, des taux de germination nuls, même après 50 semaines ; ces pourcentages sont alors supérieurs à 90 en présence de GA3 ou à la
de Pétunia hybrida : TLh2 et Tbl-3 ainsi que Pétunia parodii, lignées dont les états de dormance sont bien contrastés : — les graines de TLh2 présentent dans toutes les conditions citées précédemment et tout au long de leur conservation à sec, des taux de germination élevés (85 à 98 %): — les semences de Tbl-3 et P. parodii ont en commun de ne germer à la récolte ni à 25°C, ni à 30°C (fig. 2) et d'avoir leur dormance levée après un apport de GA3 ou de RC (fig. 1). Mais les graines de Tbl-3 germent dès la récolte à 15°C et deviennent progressivement moins dormantes lors de leur conservation à sec (fig. 2), tandis que celles de P. parodii gardent à l'obscurité sur eau, des taux de germination nuls, même après 50 semaines ; ces pourcentages sont alors supérieurs à 90 en présence de GA3 ou à la lumière. Les dissections nous ont apporté les renseignements suivants : — quelles que soient les conditions de culture utilisées, nous n'avons dans aucun cas obtenu de germinations d'embryons isolés; — en ce qui concerne l'embryon entouré de l'« albumen » (fig. 1), pour TLh2 et Tbl-3, sur eau, à 25°C et à l'obscurité, nous obtenons respectivement des taux de germination de 51 et 29 %, tandis que sur GA3, TLh2, Tbl-3 et P. parodii germent avec des pourcentages moyens respectifs de 60, 62 et 49%: — lorsque nous utilisons les graines entières, nous avons les meilleures possibilités germinatives (fig. 1), soit à l'obscurité sur eau (TLh2), soit après un apport de GA3 ou de RC (Tbl-3 et P. parodii). CONCLUSIONS. — La présente étude nous a permis de choisir, à partir de 25 lignées de Petunia, 3 d'entre elles : 1° TLh2, dont les semences sont non dormantes et non sensibles à RS; 2° Tbl-3 et P. parodii qui ne peuvent germer à l'obscurité qu'en présence d'un apport de GA3 ou de RC et sont sensibles à RS. Mais ces 2 lignées présentent au niveau de la graine entière des degrés de dormance différents que l'on peut apprécier de 2