jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
de levure sèche)... 0,4 1,0 0,3 11 jour cell. viables (106/ml) 0,05 0,5 0,1 sucre fermenté (g/l) 170 199 185 stérols (mg ergostérol pour 100 mg de levure sèche)... 0,3 0,6 0,2 RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Une première expérience conduite à 25°C, sur moût de raisin frais riche en sucre, avec un fort inoculum de levures sauvages développées en aérobiose, montre que, malgré les conditions d'anaérobiose stricte imposées à la fermentation, l'addition d'ergostérol (25 mg/l) et d'acide oléanolique (50 mg/l) n'augmente pas le nombre de cellules totales qui demeure de l'ordre de 4.107 ml dans les trois conditions précitées, du 1er au 20e jour. Également au cours de la première phase (jusqu'au 5e jour), la vitesse fermentaire n'est pas accélérée, elle est même parfois diminuée; les populations viables sont du même ordre. Par contre, dans la 2e phase de la fermentation (du 5e au 30e jour), avec ces mêmes additions, les levures conservent plus longtemps leur viabilité (tableau I); au 30e jour il y a 2 à 10 fois plus de cellules viables que dans le témoin ; la différence est de 1 à 100 dans des fermentations conduites à 35°C. On explique ainsi une plus grande quantité de sucre transformée. On voit donc que les substances essayées ne se comportent pas comme des « facteurs de croissance », mais plutôt comme des « facteurs de survie » en prolongeant le métabolisme fermentaire de cellules non proliférantes. Les mécanismes d'activité de ces deux substances sont manifestement différents. En effet, le dosage des stérols totaux de la levure (tableau I) fait apparaître un enrichissement important dans le cas de fermentation en présence d'ergostérol ; l'acide oléanolique n'apporte pas de modification caractéristique, plutôt une certaine diminution. Une autre expérience a été réalisée sur moût pasteurisé, aéré et ensemencé avec des levures industrielles (Saccharomyces cerevisiae) ; elle montre (tableau II) que d'autres stérols et substance apparentée ont une action de même nature et permettent une transformation plus complète du sucre en alcool. Elle montre également que le phosphate d'ammonium, qui est un activateur de croissance, possède une action synergique avec ces substances; il
transformée. On voit donc que les substances essayées ne se comportent pas comme des « facteurs de croissance », mais plutôt comme des « facteurs de survie » en prolongeant le métabolisme fermentaire de cellules non proliférantes. Les mécanismes d'activité de ces deux substances sont manifestement différents. En effet, le dosage des stérols totaux de la levure (tableau I) fait apparaître un enrichissement important dans le cas de fermentation en présence d'ergostérol ; l'acide oléanolique n'apporte pas de modification caractéristique, plutôt une certaine diminution. Une autre expérience a été réalisée sur moût pasteurisé, aéré et ensemencé avec des levures industrielles (Saccharomyces cerevisiae) ; elle montre (tableau II) que d'autres stérols et substance apparentée ont une action de même nature et permettent une transformation plus complète du sucre en alcool. Elle montre également que le phosphate d'ammonium, qui est un activateur de croissance, possède une action synergique avec ces substances; il permet une meilleure multiplication cellulaire pendant la première phase de la fermentation qui s'ajoute à l'amélioration de la « survie » ; la quantité de sucre transformée devient encore plus importante. Le même phénomène s'observe avec l'acide oléanolique; par contre l'association de ce dernier avec l'ergostérol est sans action. Action de quelques stérols et substance apparentée sur la fermentation alcoolique d'un moût de raisin pasteurisé, aéré et ensemencé par une préparation industrielle de Saccharomyces cerevisiae. Sucre initial après enrichissement 264 g/l. Population initiale viable 106 cellules/ml. Température 25°C. jour cellules viables (106/ml) 33 70 30 80 28 70 23 20 28 sucre fermenté (g/l) 57 68 52 58 54 65 55 57 55 10, jour cellules viables (106/ml) 9 10 20 25 22 30 32 17 29 sucre fermenté (g/l) 152 166 186 196 195 218 190 176 176 17, jour cellules viables (106/ml) 4,5 4,5 7,0 6,4 9,0 9,0 7,5 8,0 9,2 sucre fermenté (g/l) 186 184 211 225 204 236 219 224 210 Témoin; Phosphate d'ammonium (200 mg/l); Ergostérol (100 mg/l); Ergostérol + phosphate d'ammonium; Cholestérol (100 mg/l); Cholestérol + phosphate d'ammonium; Stigmastérol (100 mg/l); Lanostérol (100 mg/l); Ocytocyne (100 mg/l). CONCLUSIONS. — Les stérols (ergostérol) et l'acide
de quelques stérols et substance apparentée sur la fermentation alcoolique d'un moût de raisin pasteurisé, aéré et ensemencé par une préparation industrielle de Saccharomyces cerevisiae. Sucre initial après enrichissement 264 g/l. Population initiale viable 106 cellules/ml. Température 25°C. jour cellules viables (106/ml) 33 70 30 80 28 70 23 20 28 sucre fermenté (g/l) 57 68 52 58 54 65 55 57 55 10, jour cellules viables (106/ml) 9 10 20 25 22 30 32 17 29 sucre fermenté (g/l) 152 166 186 196 195 218 190 176 176 17, jour cellules viables (106/ml) 4,5 4,5 7,0 6,4 9,0 9,0 7,5 8,0 9,2 sucre fermenté (g/l) 186 184 211 225 204 236 219 224 210 Témoin; Phosphate d'ammonium (200 mg/l); Ergostérol (100 mg/l); Ergostérol + phosphate d'ammonium; Cholestérol (100 mg/l); Cholestérol + phosphate d'ammonium; Stigmastérol (100 mg/l); Lanostérol (100 mg/l); Ocytocyne (100 mg/l). CONCLUSIONS. — Les stérols (ergostérol) et l'acide oléanolique peuvent agir de deux manières différentes sur la levure selon les conditions. En milieu totalement anaérobie, ils sont activateurs de la multiplication et se comportent comme des facteurs de croissance [2], [3]. Mais dans le cas d'une fermentation anaérobie d'un moût riche en sucre, préalablement aéré et ensemencé par un levain précultivé en aérobiose, ils n'agissent plus sur la croissance; par contre ils permettent de conserver plus longtemps aux cellules non proliférantes leur viabilité et améliorent ainsi la transformation du sucre en alcool. Nous proposons de les désigner sous le nom de « facteurs de survie ». L'ergostérol assure une structure cellulaire plus riche en stérols ; il interviendrait donc au niveau des membranes [4], [5]. L'acide oléanolique ne modifie pas la richesse en stérols, mais on sait qu'il inhibe l'activité de la glutamate déshydrogénase ; il interviendrait sans doute au niveau des synthèses protéiques [6]. Séance du 14 mars 1977. F. RADLER, Conn. Vigne Vin, 2, 1968, p. 271-294 et Die Weinwissenschaft, 23, p. 295-308. A. A. ANDREASEN et T. B. J. STIER, J. cell. comp. physiol., 41, 1953, p. 23-26; Ibidem. 43. 1954, p. 271-281. P. BRECHOT, J. CHAUVET, P. DUPUY, M. CROSON et A. RABATU, C.
un levain précultivé en aérobiose, ils n'agissent plus sur la croissance; par contre ils permettent de conserver plus longtemps aux cellules non proliférantes leur viabilité et améliorent ainsi la transformation du sucre en alcool. Nous proposons de les désigner sous le nom de « facteurs de survie ». L'ergostérol assure une structure cellulaire plus riche en stérols ; il interviendrait donc au niveau des membranes [4], [5]. L'acide oléanolique ne modifie pas la richesse en stérols, mais on sait qu'il inhibe l'activité de la glutamate déshydrogénase ; il interviendrait sans doute au niveau des synthèses protéiques [6]. Séance du 14 mars 1977. F. RADLER, Conn. Vigne Vin, 2, 1968, p. 271-294 et Die Weinwissenschaft, 23, p. 295-308. A. A. ANDREASEN et T. B. J. STIER, J. cell. comp. physiol., 41, 1953, p. 23-26; Ibidem. 43. 1954, p. 271-281. P. BRECHOT, J. CHAUVET, P. DUPUY, M. CROSON et A. RABATU, C. R. Acad. Sc. Paris, 272, 1971, p. 890-893. J. RIBEREAU-GAYON, E. PEYNAUD, P. RIBEREAU-GAYON et P. SUDRAUD, 1975, Sciences et Techniques du vin, tome 2, Dunod, Paris. S. LAFON-LAFOURCADE et P. RIBEREAU-GAYON, Conn. Vigne Vin, 3, 1976, p. 277-296. C. NAPIAS, Thèse de 3e cycle, 1970, Bordeaux. J. MAUGENET et P. Dupuy, Ann. Technol. Agric., 13, 1964, p. 329-354. P. BRECHOT, Colloque International d'Œnologie, Arc et Senans, 1973; Vignes et Vins, mars 1974, p. 26-30. P. BRECHOT, P. DUPUY et Mme M. CROSON, Third International Specialized Symposium on Yeasts, Otaniemi, Finland 1973, Part 1, p. 130-131. Institut d'Œnologie, Université de Bordeaux II et Institut National de la Recherche Agronomique, 351. cours de la Libération, 33405 Talence. VIROLOGIE. Étude de l'efficacité, chez la Souris, de la neuraminidase de Myxovirus influenzae, inoculée par voie intranasale. Note de Chantal Bottex, Daniel Robert et Robert Fontanges, présentée par M. Jacques Tréfouël. L'immunisation, par voie intranasale, de Souris par la neuraminidase isolée de Myxovirus influenzae A/PR8/34, les protège aussi efficacement que le virus homologue ou que le virus A/Hong Kong/1/68, contre une infection par une souche de M. influenzae A/PR8/34 adaptée à la Souris. .-III intranasal immunization with A PR8 34-isolated NA, protected mice as
P. Dupuy, Ann. Technol. Agric., 13, 1964, p. 329-354. P. BRECHOT, Colloque International d'Œnologie, Arc et Senans, 1973; Vignes et Vins, mars 1974, p. 26-30. P. BRECHOT, P. DUPUY et Mme M. CROSON, Third International Specialized Symposium on Yeasts, Otaniemi, Finland 1973, Part 1, p. 130-131. Institut d'Œnologie, Université de Bordeaux II et Institut National de la Recherche Agronomique, 351. cours de la Libération, 33405 Talence. VIROLOGIE. Étude de l'efficacité, chez la Souris, de la neuraminidase de Myxovirus influenzae, inoculée par voie intranasale. Note de Chantal Bottex, Daniel Robert et Robert Fontanges, présentée par M. Jacques Tréfouël. L'immunisation, par voie intranasale, de Souris par la neuraminidase isolée de Myxovirus influenzae A/PR8/34, les protège aussi efficacement que le virus homologue ou que le virus A/Hong Kong/1/68, contre une infection par une souche de M. influenzae A/PR8/34 adaptée à la Souris. .-III intranasal immunization with A PR8 34-isolated NA, protected mice as well as the whole virus and A Hong Kong/1 68 against a subsequent infection with mice-adapted A/PR8/34 strain. Les vaccins antigrippaux contenant des viruses entiers peuvent provoquer des réactions secondaires, à la fois locales et systémiques [(3), (4), (5)]. La simple rupture de la structure virale réduit déjà l'importance des réactions secondaires [(6), (7)]. Cependant seuls les anticorps dirigés contre les antigènes de surface, l'hémagglutinine (HA) et la neuraminidase (NA) sont associés à la protection [&lt;8), (9), (10)]. Les recherches se sont donc rapidement orientées vers la fabrication d'un vaccin formé de ces sous-unités virales [(11) à (15)]. Des études récentes ont montré que l'administration intranasale de virus vivant atténué ou de recombinant, apportait une protection plus efficace que l'injection parentérale de ce même virus [(16), (17), (18)]. Nous pouvions donc envisager, ainsi que l'avait démontré Waldman [(19), en], dans le cadre d'un programme d'immunisation de masse, l'utilisation des voies respiratoires, dans la prévention de la grippe. Des Souris ont été vaccinées par voie intranasale soit avec A/PR8/34 (H1N1) soit avec A/Hong Kong/1/68 (H3N2) (souches provenant de l'Institut Pasteur de Paris), soit enfin avec NA isolée de A/PR8/34. La protection éventuelle de ces animaux a été recherchée en les infectant
réactions secondaires [(6), (7)]. Cependant seuls les anticorps dirigés contre les antigènes de surface, l'hémagglutinine (HA) et la neuraminidase (NA) sont associés à la protection [&lt;8), (9), (10)]. Les recherches se sont donc rapidement orientées vers la fabrication d'un vaccin formé de ces sous-unités virales [(11) à (15)]. Des études récentes ont montré que l'administration intranasale de virus vivant atténué ou de recombinant, apportait une protection plus efficace que l'injection parentérale de ce même virus [(16), (17), (18)]. Nous pouvions donc envisager, ainsi que l'avait démontré Waldman [(19), en], dans le cadre d'un programme d'immunisation de masse, l'utilisation des voies respiratoires, dans la prévention de la grippe. Des Souris ont été vaccinées par voie intranasale soit avec A/PR8/34 (H1N1) soit avec A/Hong Kong/1/68 (H3N2) (souches provenant de l'Institut Pasteur de Paris), soit enfin avec NA isolée de A/PR8/34. La protection éventuelle de ces animaux a été recherchée en les infectant à l'aide d'un virus pathogène A/PR8/34 adapté à la Souris. MÉTHODES. — Virus. — Les virus A/PR8/34 et A/Hong Kong/1/68 sont cultivés et purifiés selon une technique décrite précédemment [1]. L'adaptation du virus A/PR8/34 à la Souris est effectuée selon la technique classique [2], [3]. Purification de NA. — Lors de nos précédents travaux la neuraminidase virale était isolée sur gradient de densité [(24) à 7)]. Dans cette expérience nous avons utilisé de la neuraminidase virale purifiée par chromatographie d'affinité. Protocole d'immunisation. — L'expérience porte sur 740 souris Balb/c âgées de 6 à 8 semaines et réparties en 4 groupes. Le premier groupe est vacciné avec A/PR8/34, le second avec A/Hong Kong/1/68, le troisième avec NA isolée de A/PR8/34; le quatrième groupe sert de témoin. Les Souris du 1er et du 2e groupe reçoivent chaque semaine, par voie intranasale, et pendant 6 semaines, respectivement 0,05 ml de A/PR8/34 (D1so' 1011.5) et 0,05 ml de A/Hong Kong/1 /68 (D1so' 1010.5). 5). Après un délai de 15 jours, les Souris reçoivent une 7e instillation dans les mêmes conditions. Les Souris du 3e groupe reçoivent de la même manière, 0,05 ml de NA contenant l'équivalent de 25 unités Behring. Lors de la 7e
de nos précédents travaux la neuraminidase virale était isolée sur gradient de densité [(24) à 7)]. Dans cette expérience nous avons utilisé de la neuraminidase virale purifiée par chromatographie d'affinité. Protocole d'immunisation. — L'expérience porte sur 740 souris Balb/c âgées de 6 à 8 semaines et réparties en 4 groupes. Le premier groupe est vacciné avec A/PR8/34, le second avec A/Hong Kong/1/68, le troisième avec NA isolée de A/PR8/34; le quatrième groupe sert de témoin. Les Souris du 1er et du 2e groupe reçoivent chaque semaine, par voie intranasale, et pendant 6 semaines, respectivement 0,05 ml de A/PR8/34 (D1so' 1011.5) et 0,05 ml de A/Hong Kong/1 /68 (D1so' 1010.5). 5). Après un délai de 15 jours, les Souris reçoivent une 7e instillation dans les mêmes conditions. Les Souris du 3e groupe reçoivent de la même manière, 0,05 ml de NA contenant l'équivalent de 25 unités Behring. Lors de la 7e instillation les Souris reçoivent 0,05 ml de NA contenant l'équivalent de 50 unités Behring. Épreuve par aérosol. — Elle a lieu 8 jours après la dernière instillation sous forme d'aérosol liquide de virus A PR8 34 adapté à la Souris. TABLEAU 1 Résistance des Souris immunisées soit par Myxovirus influenzae A/PR 8/34, soit par sa neuraminidase (NA), soit enfin par M. influenzae A/Hong Kong/1/68, à une infection de virus A/PR 8/34 adapté à la Souris administré sous forme d'aérosol liquide. Concentration Jours de M. influenzae ^ —^ . Survie pathogène 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 20 (en %) Pur Témoins 30 30 30 22 8 1 0 0 0 0 0 0 NA (PR 8) 30 30 30 30 (*) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) A/PR 8/34 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) A/Hong Kong/1/68 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) 10-1 Témoins 30 30 30 30 28 14 1 1 1 1 0 0 NA
A/PR 8/34, soit par sa neuraminidase (NA), soit enfin par M. influenzae A/Hong Kong/1/68, à une infection de virus A/PR 8/34 adapté à la Souris administré sous forme d'aérosol liquide. Concentration Jours de M. influenzae ^ —^ . Survie pathogène 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 20 (en %) Pur Témoins 30 30 30 22 8 1 0 0 0 0 0 0 NA (PR 8) 30 30 30 30 (*) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) A/PR 8/34 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) A/Hong Kong/1/68 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) 10-1 Témoins 30 30 30 30 28 14 1 1 1 1 0 0 NA (PR 8) 30 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) A/PR 8/34 30 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) A/Hong Kong/1/68 ......... 30 30 30 30 30 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) 10 -2 Témoins 30 30 30 30 30 30 30 29 27 24 23 86 NA (PR 8) 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 29 97 A/PR 8/34 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 100 A/Hong Kong/1/68 ......... 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 100 (*) Limite de confiance pour p = 5 %. (**) Limite de confiance pour p = 1 %. 3 dilutions de virus sont utilisées pour ce test d'efficacité : virus purifié, concentration initiale 40 000 U. HA/ml; dilution 10 dilution 10 2. Test de spécificité. — Il est effectué à l'aide d'une souche de Klebsiella pneumoniae, en injectant par voie intrapéritonéale, 103, 104 et 105 germes par Souris. RÉSULTATS. — Réponse des Souris à l'infection par le
30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 30 (**) 100 (**) 10 -2 Témoins 30 30 30 30 30 30 30 29 27 24 23 86 NA (PR 8) 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 29 97 A/PR 8/34 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 100 A/Hong Kong/1/68 ......... 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 30 100 (*) Limite de confiance pour p = 5 %. (**) Limite de confiance pour p = 1 %. 3 dilutions de virus sont utilisées pour ce test d'efficacité : virus purifié, concentration initiale 40 000 U. HA/ml; dilution 10 dilution 10 2. Test de spécificité. — Il est effectué à l'aide d'une souche de Klebsiella pneumoniae, en injectant par voie intrapéritonéale, 103, 104 et 105 germes par Souris. RÉSULTATS. — Réponse des Souris à l'infection par le virus A/PR8/34. — La résistance des animaux est totale lorsqu'ils sont infectés par le virus A /PR8/34. aussi bien pour les Souris immunisées par la neuraminidase isolée de A/PR8/34 que pour celles recevant le virus entier. Les Souris vaccinées avec A/Hong Kong/1 /68 survivent également. Par contre la mortalité est de 100 % pour les animaux témoins infectés par du virus pur ou à la dilution 10 1. A la dilution 10 2 les témoins montrent une survie de près de 90 % (tableau 1 ). Réponse des Souris à l'infection par Klebsiella pneumoniae. — On n'observe aucune survie significative après avoir infecté les Souris vaccinées par Klebsiella pneumoniae aux 3 dilutions employées (tableau II). TABLEAU II Résistance des Souris immunisées soit par Myxovirus influenzae A/PR 8/34 ou sa neuraminidase (NA) purifiée, soit par M. influenzae A/Hong Kong/1/68, à une infection de Klebsiella pneumoniae obtenue par voie intrapéritonéale. Concentration Jours de K. pneumoniae ^Survie pathogène 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 20 (en %) 101 germes souris Témoins 20 0 0 NA (PR 8) 20 0 0 A/PR 8/34 17 0 0 A/Hong Kong/1/68 20 0 0 104 germes/souris Témoins 20 0 ---0 NA (PR 8)
de 100 % pour les animaux témoins infectés par du virus pur ou à la dilution 10 1. A la dilution 10 2 les témoins montrent une survie de près de 90 % (tableau 1 ). Réponse des Souris à l'infection par Klebsiella pneumoniae. — On n'observe aucune survie significative après avoir infecté les Souris vaccinées par Klebsiella pneumoniae aux 3 dilutions employées (tableau II). TABLEAU II Résistance des Souris immunisées soit par Myxovirus influenzae A/PR 8/34 ou sa neuraminidase (NA) purifiée, soit par M. influenzae A/Hong Kong/1/68, à une infection de Klebsiella pneumoniae obtenue par voie intrapéritonéale. Concentration Jours de K. pneumoniae ^Survie pathogène 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 20 (en %) 101 germes souris Témoins 20 0 0 NA (PR 8) 20 0 0 A/PR 8/34 17 0 0 A/Hong Kong/1/68 20 0 0 104 germes/souris Témoins 20 0 ---0 NA (PR 8) 20 2 1 1 0 0 A/PR 8/34 19 1 1 0 0 A/Hong Kong/1/68 20 0 0 103 germes/souris Témoins 20 12 4 1 1 1 1 1 1 0 0 0 NA (PR 8) 20 9 3 2 2 2 2 2 2 2 2 10 A/PR 8/34 20 9 2 1 1 1 1 1 1 1 1 5 A Hong Kong/1/68 ......... 20 6 2 2 2 1 1 1 1 1 1 5 DISCUSSION. — Les résultats obtenus montrent que la mortalité est de 100 % chez les témoins, pour les fortes concentrations virales employées. Chez les animaux immunisés et quel que soit l'antigène utilisé, la protection est totale. Ces résultats confirment ceux de Jennings et coll. et des Hamsters vaccinés par administration intranasale de sous-unités isolées de virus A/England/72 (H3N2) étaient protégés contre une infection ultérieure par ce même virus. Chez l'Homme, Couch et coll. (29), Potter et coll. (30), Ruben et coll. (31) avaient constaté que la protection apportée par un vaccin constitué par des sous-unités de type H3N2 était similaire à celle apportée par le virus entier ou un recombinant inactivé. Cependant des Souris immunisées à l'aide du virus A/Hong Kong/68 (H3N2)
20 9 2 1 1 1 1 1 1 1 1 5 A Hong Kong/1/68 ......... 20 6 2 2 2 1 1 1 1 1 1 5 DISCUSSION. — Les résultats obtenus montrent que la mortalité est de 100 % chez les témoins, pour les fortes concentrations virales employées. Chez les animaux immunisés et quel que soit l'antigène utilisé, la protection est totale. Ces résultats confirment ceux de Jennings et coll. et des Hamsters vaccinés par administration intranasale de sous-unités isolées de virus A/England/72 (H3N2) étaient protégés contre une infection ultérieure par ce même virus. Chez l'Homme, Couch et coll. (29), Potter et coll. (30), Ruben et coll. (31) avaient constaté que la protection apportée par un vaccin constitué par des sous-unités de type H3N2 était similaire à celle apportée par le virus entier ou un recombinant inactivé. Cependant des Souris immunisées à l'aide du virus A/Hong Kong/68 (H3N2) sont protégées vis-à-vis d'une infection par le virus A/PR8/34 (H1N1). Ruben et coll. (32) avaient noté que de fortes doses de vaccin formé de sous-unités provoquaient l'apparition d'anticorps vis-à-vis des souches hétérologues A, et A2, préexistantes. De même Rubin et coll. (33) avaient montré pour de fortes doses de vaccins qu'il apparaissait une élévation du taux des anticorps, non seulement vis-à-vis des virus homologues mais aussi vis-à-vis de souches voisines. Enfin, l'inoculation intranasale se révèle très valable dans nos conditions d'expériences. On peut admettre avec Scott et coll. (34), Waldman et coll. (35) que le dépôt des particules virales infectieuses ou leurs sous-unités actives, dans le tractus respiratoire, provoque une stimulation locale complexe mais très efficace vis-à-vis d'une infection grippale. L'étude de l'efficacité de l'hémagglutinine est en cours. Séance du 7 février 1977. Travail qui a bénéficié d'une aide de la Direction des Recherches et Moyens d'Essais. Avec la collaboration technique de Mme J. Gamon. J. J. QUILLIGAN, P. F. SALGADO et B. ALENA, Am. J. Dis. Child. 101, 1961, p. 593. F. B. PECK, J. Am. Med. Ass., 206, 1968, p. 2277. P. SCHIFF, Med. J. Aust., 1, 1973, p. 551. A. E. DUXBURY, A. W. HAMPSON et J.