jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
tiges, mais aussi des feuilles, car le volume de liquide recueilli était de beaucoup supérieur au volume du liquide pouvant être contenu dans ces canaux. Or, pendant les mois d’été, les feuilles de Tilia Américana contiennent de grandes quantités de sucres. Ceux-ci ont donc été retenus. Si l’on introduit dans le cylindre quelques centimètres cubes de toluène et qu’après une heure et demie on envoie dans le cylindre de l’air comprimé à 20 atmosphères, le liquide qui s’écoule alors contient environ 5 p. 100 de sucre. C’est seulement lorsque la perméabilité des cellules des feuilles a été transformée par le toluène que les sucres ont pu sortir. Dixon et Ball n’ont fait aucune mesure de concentration du jus ainsi obtenu, ils mesuraient seulement sa teneur en sucre. Lapicque (37), en 1921, voulant étudier la pression osmotique intracellulaire des algues marines, ne fournissant pas de jus par pression, a traité ces végétaux par l’eau bouillante, mesuré au cryoscope la concentration de ce bouillon, et par le calcul, connaissant la dilution employée, il en a déduit la concentration du suc cellulaire des algues. Lapicque et Chaussin (39) ont généralisé l’emploi de cette méthode aux plantes terrestres et d’eau douce. Voici en quelques mots la technique employée : on prend deux échantillons de 20 grammes aussi homogènes et représentatifs de l’organe végétal étudié que possible, cela pour éviter les erreurs de composition qui pourraient provenir de la localisation de certains constituants dans des cellules spécialisées. L’un des échantillons sert à déterminer le poids sec de l’organe P.ç, il est placé pour cela dans une étuve à 100° jusqu’à consistance de poids. L’autre sert pour la fabrication du bouillon. Dans un vase conique en verre de Bohême de 150 centimètres cubes et de poids t, on chauffe jusqu’à l’ébullition 60 centimètres cubes d’eau distillée. On y laisse alors tomber rapidement les 20 grammes de tissu végétal fragmenté, on continue une très légère ébullition pendant une demi-heure environ. On laisse refroidir et on pèse alors le vase et son contenu, soit M ce poids. On recueille le liquide en pressant à la main, dans de
mots la technique employée : on prend deux échantillons de 20 grammes aussi homogènes et représentatifs de l’organe végétal étudié que possible, cela pour éviter les erreurs de composition qui pourraient provenir de la localisation de certains constituants dans des cellules spécialisées. L’un des échantillons sert à déterminer le poids sec de l’organe P.ç, il est placé pour cela dans une étuve à 100° jusqu’à consistance de poids. L’autre sert pour la fabrication du bouillon. Dans un vase conique en verre de Bohême de 150 centimètres cubes et de poids t, on chauffe jusqu’à l’ébullition 60 centimètres cubes d’eau distillée. On y laisse alors tomber rapidement les 20 grammes de tissu végétal fragmenté, on continue une très légère ébullition pendant une demi-heure environ. On laisse refroidir et on pèse alors le vase et son contenu, soit M ce poids. On recueille le liquide en pressant à la main, dans de l’étamine, le tissu végétal bouilli. C’est ce liquide filtré qui sert à l’étude du suc cellulaire. Soit Δl’abaissement du point de congélation de ce liquide, A l’abaissement du point de congélation des liquides cellulaires des feuilles est donné par la formule : v e(M—(Δ+Ps)) 20 — Ps M — (Δ+Ps) représente l’eau totale contenue dans le liquide cryoscopé. 20 — Ps, l’eau contenue dans l’organe frais. — —— représente donc le coefficient de dilution. 20 — Ps 1 Pour apprécier la valeur de cette nouvelle technique, il fallait trouver une base de comparaison. La méthode de pression après pulpage, en choisissant des tissus très aqueux et pouvant se réduire en pulpe fine facilement, semblait la meilleure. Avec de tels organes (feuilles et racines de betteraves par exemple) on peut, au moyen d’une râpe circulaire très fine, obtenir une pulpe contenant un très grand nombre de cellules déchirées dont il est facile d’extraire, par simple pression à la main, une quantité abondante de jus. Par ce procédé, étant donnée la faible pression, nous n’extrayons pas de sucs des cellules intactes, ce qui, comme nous l’exposerons par la suite, pourrait amener des perturbations. Comme nous le voyons dans les expériences 2, 9,
représente l’eau totale contenue dans le liquide cryoscopé. 20 — Ps, l’eau contenue dans l’organe frais. — —— représente donc le coefficient de dilution. 20 — Ps 1 Pour apprécier la valeur de cette nouvelle technique, il fallait trouver une base de comparaison. La méthode de pression après pulpage, en choisissant des tissus très aqueux et pouvant se réduire en pulpe fine facilement, semblait la meilleure. Avec de tels organes (feuilles et racines de betteraves par exemple) on peut, au moyen d’une râpe circulaire très fine, obtenir une pulpe contenant un très grand nombre de cellules déchirées dont il est facile d’extraire, par simple pression à la main, une quantité abondante de jus. Par ce procédé, étant donnée la faible pression, nous n’extrayons pas de sucs des cellules intactes, ce qui, comme nous l’exposerons par la suite, pourrait amener des perturbations. Comme nous le voyons dans les expériences 2, 9, 11 et 16 de notre tableau I, les résultats, quant à la concentration des liquides cellulaires calculée par les deux méthodes, sont très semblables. Parmi les causes d’erreur que pouvait entraîner cette nouvelle technique se trouvent : la coagulation de certains constituants cellulaires par la chaleur et les changements de concentration dus à la dilution. Pour la coagulation, Lapicque et Chaussin ont comparé le A du jus obtenu par le procédé d’André avec le A de ce même jus après avoir été soumis pendant quelques minutes, en vase clos, à la température de 100°. Cette température a pour effet de coaguler la matière chlorophyllienne dans le cas des feuilles et de faciliter la filtration. Comme le montre l’exemple suivant, la coagulation a peu d’effet sur le A des liquides cellulaires. Feuilles de jeunes betteraves, 3 juin 1922 : A calculé par la méthode Jus vert A Jus coagulé et filtré A du bouillon (dilution 1,54) 1°24 1°22 1°22 Or, pour la composition des liquides cellulaires, les résultats fournis par le jus coagulé et filtré et par le bouillon sont sensiblement les mêmes : Jus coagulé et filtré Bouillon Extrait sec 4,93 5,15 Sulfates en SO4 0,0679 0,0824 Cl 0,330 0,310
concentration dus à la dilution. Pour la coagulation, Lapicque et Chaussin ont comparé le A du jus obtenu par le procédé d’André avec le A de ce même jus après avoir été soumis pendant quelques minutes, en vase clos, à la température de 100°. Cette température a pour effet de coaguler la matière chlorophyllienne dans le cas des feuilles et de faciliter la filtration. Comme le montre l’exemple suivant, la coagulation a peu d’effet sur le A des liquides cellulaires. Feuilles de jeunes betteraves, 3 juin 1922 : A calculé par la méthode Jus vert A Jus coagulé et filtré A du bouillon (dilution 1,54) 1°24 1°22 1°22 Or, pour la composition des liquides cellulaires, les résultats fournis par le jus coagulé et filtré et par le bouillon sont sensiblement les mêmes : Jus coagulé et filtré Bouillon Extrait sec 4,93 5,15 Sulfates en SO4 0,0679 0,0824 Cl 0,330 0,310 PO4 total 0,106 0,102 Pour apprécier l’effet de la dilution, ils ont fait des déterminations sur les jus directs et sur les jus dilués (en prenant le même coefficient de dilution que pour le bouillon) sur des feuilles et racines de betteraves. Organe Espèce A jus A bouillon A Jus dilué Coefficient de dilution Feuilles sucrée 1,24 1,32 1,35 3,16 — distillerie 1,02 1,10 1,14 2,38 — fourragère 0,92 1,06 1,11 2,50 Racines sucrée 1,48 1,51 1,50 3,24 Ces résultats montrent que pour un coefficient de dilution voisin de 3 dans le cas des feuilles, le A physiologique calculé d’après le bouillon ou le jus dilué est systématiquement fort avec un excès de l’ordre du dixième de degré. Dans les mêmes conditions, la racine donne des différences bien moindres, ce qui permet de supposer que les erreurs sont dues aux effets de la dissociation des électrolytes, moins abondants dans la racine que dans la feuille. Pour l’étude des variations de concentration des sucs cellulaires de l’épi de blé, Chaussin (16) a conservé la méthode du bouillon, malgré la formation d’empois, qui rend la filtration difficile. Aussi donne-t-il ses résultats sous réserve. ÉTUDE DE LA MESURE DE LA CONCENTRATION mm On
dilué Coefficient de dilution Feuilles sucrée 1,24 1,32 1,35 3,16 — distillerie 1,02 1,10 1,14 2,38 — fourragère 0,92 1,06 1,11 2,50 Racines sucrée 1,48 1,51 1,50 3,24 Ces résultats montrent que pour un coefficient de dilution voisin de 3 dans le cas des feuilles, le A physiologique calculé d’après le bouillon ou le jus dilué est systématiquement fort avec un excès de l’ordre du dixième de degré. Dans les mêmes conditions, la racine donne des différences bien moindres, ce qui permet de supposer que les erreurs sont dues aux effets de la dissociation des électrolytes, moins abondants dans la racine que dans la feuille. Pour l’étude des variations de concentration des sucs cellulaires de l’épi de blé, Chaussin (16) a conservé la méthode du bouillon, malgré la formation d’empois, qui rend la filtration difficile. Aussi donne-t-il ses résultats sous réserve. ÉTUDE DE LA MESURE DE LA CONCENTRATION mm On pouvait supposer, d’autre part, que le bouillon amenait des perturbations dans le Ph des liquides cellulaires. Nous avons comparé le Ph de jus extrait directement et le Ph du bouillon. Nous prenions pour cela un organe très aqueux et donnant un liquide peu coloré qui nous permettait d’apprécier facilement les changements de couleur du réactif employé. Les poils charnus de l’orange se prêtaient facilement à ces expériences. L’orange était pressée à la main, le jus était filtré et on mesurait sur le tiers du jus obtenu son A et son Ph, on trouvait les résultats suivants : A = 1,43, Ph =2,9. L’autre tiers du jus était dilué de façon à tripler son volume (employant sensiblement le même coefficient de dilution que dans les bouillons). Le Ph de ce jus dilué était resté 2,9, le A du jus, en tenant compte de la dilution, était de 1,49. Le dernier tiers était dilué comme précédemment et bouilli pendant une demi-heure, son Ph était resté 2,9 et le A du jus, en tenant compte de la dilution et de l’évaporation, était 1,50. Nous avons répété plusieurs fois l’expérience et nous avons toujours trouvé des résultats analogues. Si, au lieu de faire bouillir
changements de couleur du réactif employé. Les poils charnus de l’orange se prêtaient facilement à ces expériences. L’orange était pressée à la main, le jus était filtré et on mesurait sur le tiers du jus obtenu son A et son Ph, on trouvait les résultats suivants : A = 1,43, Ph =2,9. L’autre tiers du jus était dilué de façon à tripler son volume (employant sensiblement le même coefficient de dilution que dans les bouillons). Le Ph de ce jus dilué était resté 2,9, le A du jus, en tenant compte de la dilution, était de 1,49. Le dernier tiers était dilué comme précédemment et bouilli pendant une demi-heure, son Ph était resté 2,9 et le A du jus, en tenant compte de la dilution et de l’évaporation, était 1,50. Nous avons répété plusieurs fois l’expérience et nous avons toujours trouvé des résultats analogues. Si, au lieu de faire bouillir le jus extrait, nous faisions un bouillon avec des quartiers d’orange bien débarrassés des différentes peaux et que nous comparions le Ph du bouillon et le Ph du jus pressé, nous trouvions également les mêmes résultats. Pour approfondir cette question de perméabilité cellulaire et pour vérifier la supériorité de la méthode du bouillon, nous avons repris l’étude de différents procédés d’extraction des liquides cellulaires. I. PRESSION SANS TRAITEMENT PRÉALABLE Nous avons refait d’abord une série d’expériences pour obtenir du jus par pression d’un organe végétal non préalablement traité. Les feuilles étaient mises à plat dans un cylindre d’acier à fond mobile et dans lequel on introduisait ensuite un cylindre d’acier plein. Cet appareil était placé entre les deux plateaux d’une presse hydraulique. Nous avons recueilli séparément les jus qui s’écoulaient aux différentes pressions (5, 20 et 60 kilos dans la plupart de nos expériences). Dans toutes nos expériences nous avons trouvé des variations de même sens que celles trouvées par Dixon et Atkins, mais d’intensité beaucoup plus forte. La concentration des jus mesurée au cryoscope croissait avec la pression ; et la concentration du premier jus était toujours inférieure à celle du suc cellulaire calculée par la méthode du bouillon
méthode du bouillon, nous avons repris l’étude de différents procédés d’extraction des liquides cellulaires. I. PRESSION SANS TRAITEMENT PRÉALABLE Nous avons refait d’abord une série d’expériences pour obtenir du jus par pression d’un organe végétal non préalablement traité. Les feuilles étaient mises à plat dans un cylindre d’acier à fond mobile et dans lequel on introduisait ensuite un cylindre d’acier plein. Cet appareil était placé entre les deux plateaux d’une presse hydraulique. Nous avons recueilli séparément les jus qui s’écoulaient aux différentes pressions (5, 20 et 60 kilos dans la plupart de nos expériences). Dans toutes nos expériences nous avons trouvé des variations de même sens que celles trouvées par Dixon et Atkins, mais d’intensité beaucoup plus forte. La concentration des jus mesurée au cryoscope croissait avec la pression ; et la concentration du premier jus était toujours inférieure à celle du suc cellulaire calculée par la méthode du bouillon ou par la méthode d’André, du pulpage avant la pression (voir tableau I de nos résultats). Les différences trouvées par Dixon et Atkins entre le A des feuilles pressées sans traitement et le A des feuilles plongées dans l’air liquide étaient d’environ 50 p. 100 ou moins du A des feuilles traitées. Une seule plante, le Chamaerops humilis, leur a donné un écart plus considérable, 75 p. 100 environ. Dans notre étude critique nous avons essayé de systématiser les valeurs de cette différence, Nous avons trouvé ainsi des écarts beaucoup plus considérables, jusqu’à 93 p. 100 du A calculé d’après le bouillon. Ainsi, pour des feuilles de ronces, nous avons trouvé : 1er jus A = 0,14 Bouillon A = 1,96 Comme le montre ce tableau, la pression des organes végétaux donne pour la concentration des jus des résultats tout à fait variables. Le premier jus a toujours un A inférieur à celui du bouillon, les deuxième et troisième jus, au contraire, ont des A tantôt inférieurs, tantôt supérieurs. Le grand nombre de nos déterminations nous ont permis d’étudier les variations de la perméabilité cellulaire et nous avons pu relever un certain nombre de facteurs naturels qui influent sur cette
feuilles traitées. Une seule plante, le Chamaerops humilis, leur a donné un écart plus considérable, 75 p. 100 environ. Dans notre étude critique nous avons essayé de systématiser les valeurs de cette différence, Nous avons trouvé ainsi des écarts beaucoup plus considérables, jusqu’à 93 p. 100 du A calculé d’après le bouillon. Ainsi, pour des feuilles de ronces, nous avons trouvé : 1er jus A = 0,14 Bouillon A = 1,96 Comme le montre ce tableau, la pression des organes végétaux donne pour la concentration des jus des résultats tout à fait variables. Le premier jus a toujours un A inférieur à celui du bouillon, les deuxième et troisième jus, au contraire, ont des A tantôt inférieurs, tantôt supérieurs. Le grand nombre de nos déterminations nous ont permis d’étudier les variations de la perméabilité cellulaire et nous avons pu relever un certain nombre de facteurs naturels qui influent sur cette perméabilité. (Nous entendons ici par perméabilité la facilité avec laquelle les substances dissoutes sortent de la cellule en même temps que le solvant sous l’action d’une pression.) 1° La résistance mécanique des feuilles : Nous avions remarqué, dès le début de nos expériences, que, pour une même pression, les feuilles tendres laissent échapper plus facilement et plus abondamment leur suc, et l’écart entre le A de ce jus et le A calculé par la méthode du bouillon était relativement peu considérable : Premier jus Bouillon Chou A = 0,64 1,09 Laitue A = 0,82 0,90 Pour les feuilles présentant une grande résistance mécanique, les quantités de jus recueillies étaient très petites (malgré les pressions supérieures que nous étions obligés d’employer : 60 kg.) et l’écart était considérable : Premier jus Bouillon Fusain A = 0,23 1,48 0,25 1,09 Buis A = 0,22 2,1 0,16 1,7 Le houx, qui a une feuille très coriace, donnait cependant un écart moins considérable : Premier jus Deuxième jus Bouillon Houx A = 0,83 3,8 2,05 mais la présence des épines qui déchirent les cellules lorsque les feuilles sont pressées, peut expliquer la concentration relativement élevée du premier jus. Dixon et Atkins (25) (exp. 538)
tendres laissent échapper plus facilement et plus abondamment leur suc, et l’écart entre le A de ce jus et le A calculé par la méthode du bouillon était relativement peu considérable : Premier jus Bouillon Chou A = 0,64 1,09 Laitue A = 0,82 0,90 Pour les feuilles présentant une grande résistance mécanique, les quantités de jus recueillies étaient très petites (malgré les pressions supérieures que nous étions obligés d’employer : 60 kg.) et l’écart était considérable : Premier jus Bouillon Fusain A = 0,23 1,48 0,25 1,09 Buis A = 0,22 2,1 0,16 1,7 Le houx, qui a une feuille très coriace, donnait cependant un écart moins considérable : Premier jus Deuxième jus Bouillon Houx A = 0,83 3,8 2,05 mais la présence des épines qui déchirent les cellules lorsque les feuilles sont pressées, peut expliquer la concentration relativement élevée du premier jus. Dixon et Atkins (25) (exp. 538) avaient également trouvé pour une plante de désert le chamaerops humilis, de résistance mécanique très grande, un jus de presse de très faible concentration. Chamaerops humilis non traité A = 0,365 après immersion dans l’air liquide A = 1,529 L’âge des feuilles, en faisant varier leur résistance mécanique, semble également intervenir dans les différences de concentration entre le jus obtenu par pression directe et celui obtenu par la méthode des bouillons. Les jeunes feuilles, étant plus tendres, donnent des écarts moins considérables que les feuilles âgées : Premier jus Bouillon Pomme de terre : très jeunes feuilles, 12-6-24 0,57 0,61 Sycomore : très jeunes feuilles, 14-5-24 0,31 0,71 Ronce : feuilles âgées du 13-1-24 0,14 1,96 De même Dixon (20), en 1924, trouvait que la résistance électrique des feuilles augmentait avec l’âge, ce résultat lui semblait contradictoire avec l’accroissement de l’épaisseur des feuilles avec l’âge. Il l’expliquait par le fait que cet accroissement est dû surtout au développement du système intercellulaire qui n’implique pas d’augmentation pour les sections des cellules conductrices et pour leurs surfaces de contact. Or, Osterhout (48) a supposé que la perméabilité variait en sens inverse de la résistance électrique. La perméabilité des feuilles diminuerait donc avec
intervenir dans les différences de concentration entre le jus obtenu par pression directe et celui obtenu par la méthode des bouillons. Les jeunes feuilles, étant plus tendres, donnent des écarts moins considérables que les feuilles âgées : Premier jus Bouillon Pomme de terre : très jeunes feuilles, 12-6-24 0,57 0,61 Sycomore : très jeunes feuilles, 14-5-24 0,31 0,71 Ronce : feuilles âgées du 13-1-24 0,14 1,96 De même Dixon (20), en 1924, trouvait que la résistance électrique des feuilles augmentait avec l’âge, ce résultat lui semblait contradictoire avec l’accroissement de l’épaisseur des feuilles avec l’âge. Il l’expliquait par le fait que cet accroissement est dû surtout au développement du système intercellulaire qui n’implique pas d’augmentation pour les sections des cellules conductrices et pour leurs surfaces de contact. Or, Osterhout (48) a supposé que la perméabilité variait en sens inverse de la résistance électrique. La perméabilité des feuilles diminuerait donc avec l’âge, ce qui concorderait avec nos résultats. Pour d’autres organes végétaux, comme les racines, les tubercules, les fruits charnus dont la résistance mécanique est faible, le jus s’écoule facilement et abondamment. Dans certains cas, une simple pression à la main suffit pour obtenir du jus. Ces jus sont à peu près représentatifs des sucs cellulaires : Premier jus Deuxième jus Bouillon Betterave, pression 5 et 10 kilos 1,55 1,57 1,56 Autre échantillon 1,74 1,73 Carotte 0,94 1,18 Pomme de terre 0,36 0,73 Orange, jus pressé à la main 1,5 1,52 1,21 La différence est également très faible pour des tiges aqueuses comme celles de la Berce spondyle. 0,60 0,76 De même Atkins (9), en 1910, en pressant directement certains organes végétaux, avait obtenu des sucs dont la concentration était très voisine de celle qu’il a obtenu plus tard en plongeant ces mêmes organes, avant de les presser, dans l’air liquide. Pour les fruits suivants : prune, orange, citron, raisin, pour les tiges de rhubarbe, et pour les tubercules d’hélianthème et de pomme de terre, la similitude est frappante. Or, en mesurant le poids sec des organes pressés, nous avions remarqué que la concentration des jus variait sensiblement dans le même
près représentatifs des sucs cellulaires : Premier jus Deuxième jus Bouillon Betterave, pression 5 et 10 kilos 1,55 1,57 1,56 Autre échantillon 1,74 1,73 Carotte 0,94 1,18 Pomme de terre 0,36 0,73 Orange, jus pressé à la main 1,5 1,52 1,21 La différence est également très faible pour des tiges aqueuses comme celles de la Berce spondyle. 0,60 0,76 De même Atkins (9), en 1910, en pressant directement certains organes végétaux, avait obtenu des sucs dont la concentration était très voisine de celle qu’il a obtenu plus tard en plongeant ces mêmes organes, avant de les presser, dans l’air liquide. Pour les fruits suivants : prune, orange, citron, raisin, pour les tiges de rhubarbe, et pour les tubercules d’hélianthème et de pomme de terre, la similitude est frappante. Or, en mesurant le poids sec des organes pressés, nous avions remarqué que la concentration des jus variait sensiblement dans le même sens que la proportion d’eau contenue dans les organes. Les feuilles, contenant généralement 60 à 70 p. 100 d’eau, ont une faible perméabilité, c’est-à-dire que leurs jus obtenus par simple pression, ont un A nettement inférieur au A du suc cellulaire, tandis que les racines, tubercules et fruits contenant 80 à 90 p. 100 d’eau, étaient plus perméables. Cependant certains organes comme les tubercules de pommes de terre contenant 84 p. 100 d’eau (exp. 21), soit à peu près autant que les betteraves, 85 p. 100 (exp. 18 et 19), les carottes, 87 p. 100 (exp. 20), les oranges, 85 p. 100 (exp. 23 et 24), sont beaucoup moins perméables que ces derniers à pression égale. La teneur en eau n’était donc pas le seul facteur à intervenir, c’est alors que nous avons calculé les poids secs insolubles des organes pressés (voir colonne IX du tableau I). La différence entre le poids sec total provenant des organes desséchés à l’étuve et de l’extrait sec du bouillon p. 100 de poids frais nous donne le poids sec des parties insolubles de l’organe. Comme le montre l’examen des chiffres de la colonne IX du tableau I de nos résultats, la perméabilité est