jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
fournie dès le départ, le stimulus lumineux produirait au terme de la phase obscure initiale de 5 jours et en aérobiose, l'accumulation d'une substance photo-induite qui assure la régulation du système oscillant et une bonne synthèse des caroténoïdes pendant quelques jours. Ces faits sont en accord avec des essais antérieurs et la réversibilité de la réaction photosensible. Le manque en asparagine ne peut être compensé, uniquement en anaérobiose, par l'action due à la lumière. Avec 6,6.10-3 M d'asparagine, il peut être fait l'économie de la substance photo-induite et d'une tension normale en O2. Ces données sont à rapprocher des cas où les conditions anaérobies permettent cependant la photostimulation de la sporulation comme chez Trichoderma ou bien stoppent le fonctionnement du rythme circadien chez Bryophyllum. — une première localisation de la condition photo-induite contrôlant à la fois le rythme de sporulation et la caroténogenèse montre la nécessité de l'intervention de 3 facteurs (O2, asparagine, lumière); elle souligne aussi le rôle de la phase initiale des 5 premiers jours de culture. Or, l'étape primaire de la caroténogenèse comprendrait un processus de synthèse d'un produit photo-oxydé qui précède la formation d'une protéine caroténogène. L'emploi d'inhibiteurs sur la synthèse des enzymes caroténogènes est en cours chez L. michotii. De plus, comme ce champignon synthétise des caroténoïdes à l'obscurité qui, en présence d'assez d'asparagine règlent le phénomène oscillant, il semblerait que l'essentiel des réactions photo-induites soit un transfert possible d'énergie comme cela se produit dans d'autres cas pour la caroténogenèse. Séance du 3 janvier 1977. S. JEREBZOFF, Circadian Clocks, J. ASCHOFF (éd.), North Holland Publ. Co., Amsterdam, 1965, p. 183. S. JEREBZOFF-QUINTIN et coll., Physiol. vég., 13, (1), 1975, p. 55; Comptes rendus, 278, série D, 1974, p. 1239. S. JEREBZOFF et coll., Comptes rendus, 268, série D, 1969, p. 302. S. JEREBZOFF-QUINTIN, Comptes rendus, 272, série D, 1971, p. 2688. J. GRESSEL et coll., Plant. and Cell Physiol., 16, 1975, p. 367. M. B. WILKINS, Planta, Berlin, 72, 1967, p. 66. W. RAU, Planta, Berlin, 101, n° 3, 1971, p. 251. F. LANG-FEULNER et W. RAU, Photochem. and Photobiol., 21, 1975, p. 179. P.
cours chez L. michotii. De plus, comme ce champignon synthétise des caroténoïdes à l'obscurité qui, en présence d'assez d'asparagine règlent le phénomène oscillant, il semblerait que l'essentiel des réactions photo-induites soit un transfert possible d'énergie comme cela se produit dans d'autres cas pour la caroténogenèse. Séance du 3 janvier 1977. S. JEREBZOFF, Circadian Clocks, J. ASCHOFF (éd.), North Holland Publ. Co., Amsterdam, 1965, p. 183. S. JEREBZOFF-QUINTIN et coll., Physiol. vég., 13, (1), 1975, p. 55; Comptes rendus, 278, série D, 1974, p. 1239. S. JEREBZOFF et coll., Comptes rendus, 268, série D, 1969, p. 302. S. JEREBZOFF-QUINTIN, Comptes rendus, 272, série D, 1971, p. 2688. J. GRESSEL et coll., Plant. and Cell Physiol., 16, 1975, p. 367. M. B. WILKINS, Planta, Berlin, 72, 1967, p. 66. W. RAU, Planta, Berlin, 101, n° 3, 1971, p. 251. F. LANG-FEULNER et W. RAU, Photochem. and Photobiol., 21, 1975, p. 179. P. P. BATRA et coll., J. Biol. Chem., 246, n° 23, 1971, p. 7125. E. C. DE FABO, R. W. HARDING et coll., Plant. Physiol., 57, 1976, p. 440. Laboratoire de Phytohormones, Université Paul-Sabatier, 118, route de Narbonne, 31077 Toulouse Cedex. PHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Les acides gras du pollen et du style chez Oenothera missouriensis Sims, espèce auto-incompatible. Note de Denise Coustaut et Robert Linder, transmise par M. Paul Jaeger. Deux esters méthyliques naturels, oléate et arachidonate de méthyle, sont identifiés dans les extraits de pollen d'Oenothera missouriensis Sims. Le bilan des acides gras des lipides totaux a été établi dans le pollen, le style vierge et les styles (autopollinisés et xénopollinisés). L'acide caprique, inhibiteur de croissance, n'est identifié que dans les extraits du pollen S,. La pollinisation, compatible ou incompatible, s'accompagne d'une manière uniforme d'une forte diminution des teneurs en acides gras dans les styles pollinisés. Two naturally-occurring methyl esters, methyl oleate and methyl arachidonate were purified from Oenothera missouriensis Sims pollen extracts. The fatty acid composition of the total lipids was established for pollen and unpollinated, self-, and cross-pollinated styles. Capric acid, a growth inhibitor, was only found in the pollen S, extracts. The compatible or incompatible pollination was
style chez Oenothera missouriensis Sims, espèce auto-incompatible. Note de Denise Coustaut et Robert Linder, transmise par M. Paul Jaeger. Deux esters méthyliques naturels, oléate et arachidonate de méthyle, sont identifiés dans les extraits de pollen d'Oenothera missouriensis Sims. Le bilan des acides gras des lipides totaux a été établi dans le pollen, le style vierge et les styles (autopollinisés et xénopollinisés). L'acide caprique, inhibiteur de croissance, n'est identifié que dans les extraits du pollen S,. La pollinisation, compatible ou incompatible, s'accompagne d'une manière uniforme d'une forte diminution des teneurs en acides gras dans les styles pollinisés. Two naturally-occurring methyl esters, methyl oleate and methyl arachidonate were purified from Oenothera missouriensis Sims pollen extracts. The fatty acid composition of the total lipids was established for pollen and unpollinated, self-, and cross-pollinated styles. Capric acid, a growth inhibitor, was only found in the pollen S, extracts. The compatible or incompatible pollination was always accompanied by a prominent decrease of the fatty acid level in the pollinated styles. NOTE. — Nos connaissances sur la composition et la signification biologique des lipides des organes reproducteurs des plantes sont moins avancées que celles des organes végétatifs où l'intervention de certaines classes lipidiques sur la croissance est observée : inhibition par des acides gras à chaîne carbonée courte, stimulation par les acides gras naturellement méthylés ou par les acides gras polyinsaturés. Chez Oenothera missouriensis, l'incompatibilité de fécondation gamétophytique met en jeu une inhibition de croissance des tubes polliniques porteurs d'un allèle S d'incompatibilité dans les tissus du style qui renferment cet allèle. Cette Note se propose d'une part, l'identification des esters méthyliques naturels dans le pollen et dans le style vierge, d'autre part, l'analyse des acides gras des lipides totaux dans le pollen et le style (vierge et pollinisé). Ainsi un bilan des acides gras, avant et après pollinisation compatible et incompatible, peut être établi en relation avec l'incompatibilité de fécondation gamétophytique. MÉTHODES. — Les plantes utilisées sont celles qui ont servi à la détermination du mécanisme de transmission héréditaire de l'incompatibilité gamétophytique de fécondation (10) : Bb (génotype SIS2), Bg (génotype S2S4) et SI (génotype
est observée : inhibition par des acides gras à chaîne carbonée courte, stimulation par les acides gras naturellement méthylés ou par les acides gras polyinsaturés. Chez Oenothera missouriensis, l'incompatibilité de fécondation gamétophytique met en jeu une inhibition de croissance des tubes polliniques porteurs d'un allèle S d'incompatibilité dans les tissus du style qui renferment cet allèle. Cette Note se propose d'une part, l'identification des esters méthyliques naturels dans le pollen et dans le style vierge, d'autre part, l'analyse des acides gras des lipides totaux dans le pollen et le style (vierge et pollinisé). Ainsi un bilan des acides gras, avant et après pollinisation compatible et incompatible, peut être établi en relation avec l'incompatibilité de fécondation gamétophytique. MÉTHODES. — Les plantes utilisées sont celles qui ont servi à la détermination du mécanisme de transmission héréditaire de l'incompatibilité gamétophytique de fécondation (10) : Bb (génotype SIS2), Bg (génotype S2S4) et SI (génotype homozygote S,S, obtenu expérimentalement). La recherche des esters méthyliques naturels est effectuée sur les boutons floraux frais et non congelés (pollen tamisé et styles vierges). Les bilans d'acides gras sont établis sur du matériel congelé comprenant : pollen et styles vierges (témoins) de chaque génotype; styles pollinisés, en combinaison incompatible ou en combinaison compatible (xénopollinisation des styles S,S, par le pollen S2S4 ou S2S4 par le pollen S,S,). EXTRACTION ET ANALYSE. — Esters méthyliques naturels d'acides gras. — Les lipides sont extraits (6) par le mélange chloroforme-isopropanol (2 : 1 v/v). Après filtration sur papier dégraissé et évaporation à sec, le résidu de lipides totaux est repris par l'éther de pétrole 60-70°, fractionné par chromatographie sur colonne d'acide silicique (1), selon (9) : 300 mg d'extrait total dissous dans l'éther de pétrole sont chromatographiés sur des colonnes d'acide silicique préparées dans l'éther de pétrole (20 g d'acide silicique « Mallinckrodt » 100 mesh). Le fractionnement de l'extrait total lipidique et la récupération des esters méthyliques naturels s'effectuent par élution des hydrocarbures saturés (cires et carotènes) par 150 ml d'un mélange éther éthylique-éther de pétrole (1 % v/v). Les esters méthyliques naturels sont ensuite élués par 50 ml du même mélange
ou en combinaison compatible (xénopollinisation des styles S,S, par le pollen S2S4 ou S2S4 par le pollen S,S,). EXTRACTION ET ANALYSE. — Esters méthyliques naturels d'acides gras. — Les lipides sont extraits (6) par le mélange chloroforme-isopropanol (2 : 1 v/v). Après filtration sur papier dégraissé et évaporation à sec, le résidu de lipides totaux est repris par l'éther de pétrole 60-70°, fractionné par chromatographie sur colonne d'acide silicique (1), selon (9) : 300 mg d'extrait total dissous dans l'éther de pétrole sont chromatographiés sur des colonnes d'acide silicique préparées dans l'éther de pétrole (20 g d'acide silicique « Mallinckrodt » 100 mesh). Le fractionnement de l'extrait total lipidique et la récupération des esters méthyliques naturels s'effectuent par élution des hydrocarbures saturés (cires et carotènes) par 150 ml d'un mélange éther éthylique-éther de pétrole (1 % v/v). Les esters méthyliques naturels sont ensuite élués par 50 ml du même mélange et après contrôle de pureté sur couches minces, ils sont chromatographiés en phase gazeuse dans un appareil « Aérograph Varian série 1800 », à détecteur à ionisation de flamme selon les conditions suivantes : phase stationnaire = diéthylène-glycol-succinate (DEGS) à 10% sur « chromosorb W » (60-80 mesh); colonne = 10 pieds de longueur et 1/8 d'« inch » de diamètre; températures des injecteurs et détecteurs respectivement de 198 et 225°C; phase mobile = azote de qualité R avec un débit constant (20 ml/mn). Les esters méthyliques naturels séparés sont identifiés par comparaison de leurs distances de rétention avec celles d'étalons purs. Extraction des acides gras des lipides totaux. — Le pollen et les styles préalablement pesés sont broyés en présence d'azote liquide qui inactive les enzymes et favorise l'éclatement de l'exine. Après disparition de l'azote liquide, les lipides sont extraits par le mélange chloroforme-méthanol (2 : 1 v/v); le volume de solvant utilisé est égal à 20 fois le nombre de grammes de départ; extraction et purification sont effectuées à + 4°C dans des appareils préalablement refroidis et dégraissés par le solvant. L'absence de phospholipides est contrôlée selon par dosage colorimétrique à 650 nm du complexe phosphomolybdate-molybdique formé. Les
10 pieds de longueur et 1/8 d'« inch » de diamètre; températures des injecteurs et détecteurs respectivement de 198 et 225°C; phase mobile = azote de qualité R avec un débit constant (20 ml/mn). Les esters méthyliques naturels séparés sont identifiés par comparaison de leurs distances de rétention avec celles d'étalons purs. Extraction des acides gras des lipides totaux. — Le pollen et les styles préalablement pesés sont broyés en présence d'azote liquide qui inactive les enzymes et favorise l'éclatement de l'exine. Après disparition de l'azote liquide, les lipides sont extraits par le mélange chloroforme-méthanol (2 : 1 v/v); le volume de solvant utilisé est égal à 20 fois le nombre de grammes de départ; extraction et purification sont effectuées à + 4°C dans des appareils préalablement refroidis et dégraissés par le solvant. L'absence de phospholipides est contrôlée selon par dosage colorimétrique à 650 nm du complexe phosphomolybdate-molybdique formé. Les valeurs du phosphore obtenties sont toujours inférieures à 1 % pour le pollen et sensiblement nulles pour les styles. L'extrait total obtenu est conservé à −20°C sous atmosphère d'azote. Après saponification des lipides totaux par KOH 10 N et méthylation au BF3-méthanol, les acides gras libérés sont chromatographiés en phase gazeuse dans un appareil « Aérograph Varian type 1800 » sans programmation de température selon les conditions décrites ci-dessus. TABLEAU Acides gras des lipides totaux du pollen et du style (Résultats moyens exprimés en pourcentages molaires) Pollen Styles Autochéno-S, S, SIS2 S2S4 Vierges pollinisés pollinisés Esters méthyliques naturels d'acides gras : — oléate de méthyle + + + 0 0 0 — arachidonate de méthyle. + + + 0 0 0 Phosphore lipidique total (% P/poids frais) 1,07 1,05 1,45 0,45 0,15 0,20 Acides gras des lipides totaux (% molaire) — acide caprique (C4 0). 9 4 0 0 0 0 — acide laurique (C12 0).. 5 3 traces 2,4 2 2,1 — acide tridécanoique (C15 0) 1,2 1,8 traces traces traces traces — acide myristique (C14 0) 1,5 1,3 traces traces traces traces — acide palmitique (C16 0) 40 48 43 32 28 29 — acide stéarique (C18 0)
gazeuse dans un appareil « Aérograph Varian type 1800 » sans programmation de température selon les conditions décrites ci-dessus. TABLEAU Acides gras des lipides totaux du pollen et du style (Résultats moyens exprimés en pourcentages molaires) Pollen Styles Autochéno-S, S, SIS2 S2S4 Vierges pollinisés pollinisés Esters méthyliques naturels d'acides gras : — oléate de méthyle + + + 0 0 0 — arachidonate de méthyle. + + + 0 0 0 Phosphore lipidique total (% P/poids frais) 1,07 1,05 1,45 0,45 0,15 0,20 Acides gras des lipides totaux (% molaire) — acide caprique (C4 0). 9 4 0 0 0 0 — acide laurique (C12 0).. 5 3 traces 2,4 2 2,1 — acide tridécanoique (C15 0) 1,2 1,8 traces traces traces traces — acide myristique (C14 0) 1,5 1,3 traces traces traces traces — acide palmitique (C16 0) 40 48 43 32 28 29 — acide stéarique (C18 0) 2,5 2 1,3 1,4 1 1,1 — acide oléique (C18 1) 2,5 2 1,3 1,4 1 1,1 — acide linoléique (C18 2) 2,2 2,3 12 43 39 37 — acide linolénique (C18 3) 38,6 37,6 43,7 21,2 30 30,8 X2 (ac. vernolique) + + + 0 0 0 Après étalonnage par des mélanges témoins d'esters méthyliques d'acides gras et planimétrie des chromatogrammes, les divers constituants sont évalués en pourcentages molaires. RÉSULTATS. — Les résultats des analyses des trois génotypes polliniques et des styles vierges, autopollinisés et xénopollinisés sont reportés dans le tableau : oléate et arachidonate de méthyle sont caractérisés exclusivement dans les extraits polliniques par chromatographie en phase gazeuse. Aucun ester méthylique naturel n'est identifié dans les extraits de styles vierges. Le pollen d'Oenothera missouriensis s'éloigne par sa composition de celle du pollen de Blé où caproate et caprylate de méthyle sont identifiés et se rapproche du pollen de Maïs, bien que ce dernier, riche en linoléate et palmitate de méthyle, ne renferme que de faibles teneurs en oléate et en arachidonate de méthyle. L'homogénéité qualitative et quantitative en esters méthyliques naturels des génotypes étudiés ne met pas en cause leur valeur en tant qu'éléments de croissance. Il appartient
par des mélanges témoins d'esters méthyliques d'acides gras et planimétrie des chromatogrammes, les divers constituants sont évalués en pourcentages molaires. RÉSULTATS. — Les résultats des analyses des trois génotypes polliniques et des styles vierges, autopollinisés et xénopollinisés sont reportés dans le tableau : oléate et arachidonate de méthyle sont caractérisés exclusivement dans les extraits polliniques par chromatographie en phase gazeuse. Aucun ester méthylique naturel n'est identifié dans les extraits de styles vierges. Le pollen d'Oenothera missouriensis s'éloigne par sa composition de celle du pollen de Blé où caproate et caprylate de méthyle sont identifiés et se rapproche du pollen de Maïs, bien que ce dernier, riche en linoléate et palmitate de méthyle, ne renferme que de faibles teneurs en oléate et en arachidonate de méthyle. L'homogénéité qualitative et quantitative en esters méthyliques naturels des génotypes étudiés ne met pas en cause leur valeur en tant qu'éléments de croissance. Il appartient à la physiologie expérimentale de déterminer leur réelle aptitude à stimuler un processus de croissance ainsi que leur devenir dans les styles après pollinisation. Il a été démontré que l'oléate de méthyle stimulait l'action de l'auxine, sa présence exclusive dans le pollen et son rôle seraient intéressants à définir chez Oenothera missouriensis. La seconde hypothèse retenue concerne l'intervention des acides gras à chaîne carbonée courte (type acide caprique, inhibiteur de croissance très actif) ou d'acides gras polyinsaturés (type acide linolénique, dont l'activité en synergie avec les hormones de croissance est connue). Divers bilans d'acides gras sont établis en envisageant la situation avant et après pollinisation compatible ou incompatible : Avant pollinisation, les teneurs relatives en acides gras du pollen et des styles consignées dans le tableau sont équivalentes, exception faite de l'acide linoléique (abondant dans le style vierge) et de l'acide caprique (absent des lipides du style vierge). La pollinisation compatible ou incompatible, ne modifie que très légèrement la répartition quantitative des acides gras dans le style pollinisé où une diminution des valeurs globales en acides gras des lipides totaux est notée. Si nos conclusions demeurent prudentes en ce qui concerne les relations précises entre les acides gras et l'inhibition
Oenothera missouriensis. La seconde hypothèse retenue concerne l'intervention des acides gras à chaîne carbonée courte (type acide caprique, inhibiteur de croissance très actif) ou d'acides gras polyinsaturés (type acide linolénique, dont l'activité en synergie avec les hormones de croissance est connue). Divers bilans d'acides gras sont établis en envisageant la situation avant et après pollinisation compatible ou incompatible : Avant pollinisation, les teneurs relatives en acides gras du pollen et des styles consignées dans le tableau sont équivalentes, exception faite de l'acide linoléique (abondant dans le style vierge) et de l'acide caprique (absent des lipides du style vierge). La pollinisation compatible ou incompatible, ne modifie que très légèrement la répartition quantitative des acides gras dans le style pollinisé où une diminution des valeurs globales en acides gras des lipides totaux est notée. Si nos conclusions demeurent prudentes en ce qui concerne les relations précises entre les acides gras et l'inhibition de croissance des tubes polliniques observée dans l'incompatibilité gamétophytique, nos résultats confirment la précision du mécanisme génétique qui y préside. En effet, des relations existent entre certains acides gras et la structure génotypique du matériel : l'acide caprique (inhibiteur de croissance) semble lié à l'allèle S3, Selon la « dose » d'allèle présent dans le génotype analysé, les teneurs de cet acide évoluent parallèlement : 9 % dans le pollen (S,S) et 4 % dans le pollen (S,S4). Il en est de même pour l'acide laurique. Par contre, l'acide linoléique semble dépendre davantage de l'allèle S4 : dans le pollen S3 et S2S4, ses valeurs sont 6 fois plus faibles et équivalentes entre elles quand elles sont rapportées à celle du pollen S2S4 qui en contient 12 %. Séance du 10 janvier 1977. D. D. BRIGGS. J. Biol. Chem., 59, 1924, p. 255. B. CARON. Thèse Doct. État, Pharmacie. Lille. 1972. CHEN. T. Y. TORIBARA et H. WARNER. Anal. Chem., 28, 1956, p. 1756. G. S. CHRISTIANSEN et K. V. THIMAN, Arch. Biochem., 25, 1950, p. 248. D. W. CONNELL, Australian J. Chem., 17, 1964, p. 130. A. FATHIPOUR, K. K. SCHLENDER et H. M. SELL, Bioch. Biophys. Acta, 144,
» d'allèle présent dans le génotype analysé, les teneurs de cet acide évoluent parallèlement : 9 % dans le pollen (S,S) et 4 % dans le pollen (S,S4). Il en est de même pour l'acide laurique. Par contre, l'acide linoléique semble dépendre davantage de l'allèle S4 : dans le pollen S3 et S2S4, ses valeurs sont 6 fois plus faibles et équivalentes entre elles quand elles sont rapportées à celle du pollen S2S4 qui en contient 12 %. Séance du 10 janvier 1977. D. D. BRIGGS. J. Biol. Chem., 59, 1924, p. 255. B. CARON. Thèse Doct. État, Pharmacie. Lille. 1972. CHEN. T. Y. TORIBARA et H. WARNER. Anal. Chem., 28, 1956, p. 1756. G. S. CHRISTIANSEN et K. V. THIMAN, Arch. Biochem., 25, 1950, p. 248. D. W. CONNELL, Australian J. Chem., 17, 1964, p. 130. A. FATHIPOUR, K. K. SCHLENDER et H. M. SELL, Bioch. Biophys. Acta, 144, 1967, p. 476. J. FOLCH, M. LEEs et G. H. SLOANE STANLEY, J. Biol. Chem., 228, 1957, p. 497. H. N. FUKUI, F. G. TEUBNER, S. H. WITTNER et H. M. SELL, Plant Physiol., 33, 1958, p. 144. J. HIRSCH et H. E. AHRENS, J. Biol. Chem., 233, 1958, p. 311. R. LINDER, Thèse Doct. ès-Sc. nat., Strasbourg, 1954. L. D. METCALFE et A. A. SCHMITZ, Anal. Chem., 33, 1961, p. 363. B. B. STOWE, Plant Physiol., 35, 1960, p. 262. T. C. TSO, Nature, 202, 1964, p. 511. VELDSTRA, Ann. Rev. Plant Physiol., 4, 1953, p. 151. I. A. WOLFF, SC. N.Y., 154, 1966, p. 1140. U.E.R. de Pharmacie, rue Laguesse, 59045 Lille Cedex; et U.E.R. de Biologie, B.P. n° 36, 59650 Villeneuve-d'Ascq. PHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Influence de différentes températures sur la mise à fleur du Trifolium pratense L. Note de Pierre Vescovi, présentée par M. Lucien Plantefol. Chez le Trifolium pratense L., les températures s'échelonnant de 12 à 32° jour-27° nuit, en photopériode de 16 h, permettent toutes la mise à fleur, mais si, pour des températures de plus en plus élevées, la mise à fleur est d'autant plus rapide dans le temps, ces mêmes températures n'ont, par