jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
de phase sur le vivant, microphotographiées et observées au microscope électronique à transmission. Les indices mitotiques sont établis et les pourcentages des différentes phases de la mitose sont calculés. Les teneurs en acides désoxyribonucléiques (DNA), en acides ribonucléiques (RNA) et en protéines totales sont déterminées par cytophotométrie d'absorption (microdensitométrie à intégration), respectivement après réaction de Feulgen, coloration à la gallocyanine-alun de chrome après digestion par la désoxyribonucléase neutre ou coloration au jaune naphtol S. L'incorporation d'uridine (2,9 Ci/mM, durée de contact : 30 mn), de thymidine (2 Ci/mM, 60 mn) ou de leucine (0,3 Ci/mM, 60 mn) tritiées est étudiée par histo-autoradiographie (concentration finale des précurseurs tritiés : 10 μCi/ml). Les détails techniques concernant ces méthodes ont été décrits antérieurement (6). RÉSULTATS. — Le JJC 107 s'est révélé être un inhibiteur de la multiplication cellulaire. Voici en résumé quels sont ses effets au niveau cellulaire. À la concentration finale de 50 μg/ml, il provoque de profondes lésions nucléolaires (examens en contraste de phase) : le nucléole se vacuolise progressivement, prend l'aspect d'un « collier de perles », se fragmente et, vers 72 h, est réduit à un petit centre clair entouré de granules qui se dispersent dans le noyau. Au niveau ultra-structural, on constate que le nucléole, après 72 h de traitement, a des contours très irréguliers, semble avoir perdu du matériel et est réduit à de larges centres "fibrillaires" (beaucoup plus apparents que chez les témoins) entourés d'une couronne de fibrilles et d'une faible quantité de matériel granulaire. Cependant, les cellules restent vivantes, bien étalées et leur chondriome ainsi que leur cytoplasme ne présentent en général pas d'altérations notables. Quant à l'activité mitotique, elle diminue et devient très faible en fin d'expérience (16 000/00 après 48 h et 5 700 après 72 h contre 24 et 18 000/00 chez les témoins); on note aussi un net allongement de la durée de la métaphase. Les résultats des dosages de DNA indiquent que les pourcentages de cellules en post-synthèse (tétraploïdes) quant au DNA sont environ trois fois plus élevés que chez les témoins (65 à 75 % contre 25 %), dès
niveau ultra-structural, on constate que le nucléole, après 72 h de traitement, a des contours très irréguliers, semble avoir perdu du matériel et est réduit à de larges centres "fibrillaires" (beaucoup plus apparents que chez les témoins) entourés d'une couronne de fibrilles et d'une faible quantité de matériel granulaire. Cependant, les cellules restent vivantes, bien étalées et leur chondriome ainsi que leur cytoplasme ne présentent en général pas d'altérations notables. Quant à l'activité mitotique, elle diminue et devient très faible en fin d'expérience (16 000/00 après 48 h et 5 700 après 72 h contre 24 et 18 000/00 chez les témoins); on note aussi un net allongement de la durée de la métaphase. Les résultats des dosages de DNA indiquent que les pourcentages de cellules en post-synthèse (tétraploïdes) quant au DNA sont environ trois fois plus élevés que chez les témoins (65 à 75 % contre 25 %), dès la 24e heure et jusqu'à la 72e heure. De plus, des cellules octoploïdes quant au DNA, inexistantes chez les témoins, apparaissent (10% des cellules traitées vers 48 h et plus de 30 % à 72 h). Cependant, les résultats de dosages cytophotométriques effectués après 72 h de traitement indiquent que la teneur en RNA (surtout ribosomiques) est nettement diminuée dans de nombreuses cellules. Par contre, les teneurs en protéines cellulaires totales sont peu modifiées. Quand à l'intensité de l'incorporation de thymidine tritiée, après 72 h de traitement, elle est la même que chez les témoins; l'incorporation de leucine n'est que très faiblement diminuée, mais l'incorporation d'uridine est quasi nulle alors que chez les témoins elle est très active dans 100% des cellules. Les synthèses de RNA sont donc fortement inhibées et des modifications profondes apparaissent dans les nucléoles. C'est pourquoi la plupart des cellules traitées ne peuvent entrer en mitose, mais, les synthèses de DNA étant très actives, elles deviennent polyploïdes quant au DNA. Des synthèses de protéines ont encore lieu, mais la teneur en protéines totales des cellules ne s'accroît pas dans la même mesure que celle du DNA. Par des observations en contraste de phase sur le vivant,
la teneur en RNA (surtout ribosomiques) est nettement diminuée dans de nombreuses cellules. Par contre, les teneurs en protéines cellulaires totales sont peu modifiées. Quand à l'intensité de l'incorporation de thymidine tritiée, après 72 h de traitement, elle est la même que chez les témoins; l'incorporation de leucine n'est que très faiblement diminuée, mais l'incorporation d'uridine est quasi nulle alors que chez les témoins elle est très active dans 100% des cellules. Les synthèses de RNA sont donc fortement inhibées et des modifications profondes apparaissent dans les nucléoles. C'est pourquoi la plupart des cellules traitées ne peuvent entrer en mitose, mais, les synthèses de DNA étant très actives, elles deviennent polyploïdes quant au DNA. Des synthèses de protéines ont encore lieu, mais la teneur en protéines totales des cellules ne s'accroît pas dans la même mesure que celle du DNA. Par des observations en contraste de phase sur le vivant, l'établissement des indices mitotiques et la réalisation de dosages de DNA, nous avons comparé les effets de quatre autres substances de structure assez voisine à ceux du JJC 107 dont il a été question ci-dessus. Il s'agit du JJC 198 [nitro-5 (pyrimidyl-2) thio-2 pyridine], du JJC 133 [(pyrimidyl-2) amino-3 pyridinethiol-2], du JJC 199 [amino-5 (pyrimidyl-2) thio-2 pyridine] et du JJC 55 [nitro-3 dipyridylsulfure-2.2'] (4) éprouvés à la concentration finale de 50 ng/ml, pendant 72 h. En fait, les effets sont très semblables, mais à des degrés divers. Le n° 198 est quasi aussi toxique que le n° 107. Les effets du n° 133, bien que relativement sévères, ne sont manifestes qu'après 48 h de traitement; ceux du n° 199 n'apparaissent qu'après 72 h. Quant au n° 55, le moins toxique, il n'exerce qu'un léger effet au niveau des nucléoles, et seulement après 48 h. D'une manière générale, ces diarylsulfures exercent une action caractéristique sur les nucléoles, au niveau desquels les synthèses sont inhibées; ils ne diminuent pas les synthèses de DNA mais empêchent l'entrée en mitose et peuvent être ainsi responsables de la polyploïdisation des cellules du point de vue du DNA. Il est intéressant de constater que le fait
du JJC 199 [amino-5 (pyrimidyl-2) thio-2 pyridine] et du JJC 55 [nitro-3 dipyridylsulfure-2.2'] (4) éprouvés à la concentration finale de 50 ng/ml, pendant 72 h. En fait, les effets sont très semblables, mais à des degrés divers. Le n° 198 est quasi aussi toxique que le n° 107. Les effets du n° 133, bien que relativement sévères, ne sont manifestes qu'après 48 h de traitement; ceux du n° 199 n'apparaissent qu'après 72 h. Quant au n° 55, le moins toxique, il n'exerce qu'un léger effet au niveau des nucléoles, et seulement après 48 h. D'une manière générale, ces diarylsulfures exercent une action caractéristique sur les nucléoles, au niveau desquels les synthèses sont inhibées; ils ne diminuent pas les synthèses de DNA mais empêchent l'entrée en mitose et peuvent être ainsi responsables de la polyploïdisation des cellules du point de vue du DNA. Il est intéressant de constater que le fait de remplacer la pyrimidine dans la formule du JJC 107 par une pyridine (JJC 55) supprime quasi totalement l'effet antimitotique de la substance. (*) Séance du 8 décembre 1976. (1) Travail réalisé grâce à l'aide financière du Fonds de la Recherche scientifique médicale, du Centre anticancéreux près de l'Université de Liège et du Fonds cancérologique de la Caisse générale d'Épargne et de Retraite de Belgique. (2) G. T. KIMURA, P. Q. YOUNG, P. W. DODGE et L. R. SWETT, Arch. int. Pharmacodyn. Ther., 196, 1972, p. 213. (3) A. A. LEVY, H. C. RAINS et S. SMILES, J. Chem. Soc., 1931, p. 3264. (4) O. R. RODIG, R. COLLIER et R. K. SCHLATZER, J. Org. Chem., 29, 1964, p. 2652. (5) J. C. JAMOUILLE, Thèse de doctorat en Sciences pharmaceutiques, Université de Liège, 1977 (en préparation). (6) F. DE PAERMENTIER, R. BASSLEER, A. LEPOINT, C. L. DESAIVE, G. GOESSENS et M. P. LHOEST-GAUHIER, J. Cell Sci., 18, 1975, p. 441. R. B. et F. De P. Institut d'Histologie, rue de Pitteurs, 20, 4020 Liège, Belgique : J.-C. J. et C.-L. L. Institut de Pharmacie, Service de Chimie analytique et de Chimie pharmaceutique, rue Faucigny n° 3. 4000 Liège, Belgique. IMMUNOCHIMIE.
Liège et du Fonds cancérologique de la Caisse générale d'Épargne et de Retraite de Belgique. (2) G. T. KIMURA, P. Q. YOUNG, P. W. DODGE et L. R. SWETT, Arch. int. Pharmacodyn. Ther., 196, 1972, p. 213. (3) A. A. LEVY, H. C. RAINS et S. SMILES, J. Chem. Soc., 1931, p. 3264. (4) O. R. RODIG, R. COLLIER et R. K. SCHLATZER, J. Org. Chem., 29, 1964, p. 2652. (5) J. C. JAMOUILLE, Thèse de doctorat en Sciences pharmaceutiques, Université de Liège, 1977 (en préparation). (6) F. DE PAERMENTIER, R. BASSLEER, A. LEPOINT, C. L. DESAIVE, G. GOESSENS et M. P. LHOEST-GAUHIER, J. Cell Sci., 18, 1975, p. 441. R. B. et F. De P. Institut d'Histologie, rue de Pitteurs, 20, 4020 Liège, Belgique : J.-C. J. et C.-L. L. Institut de Pharmacie, Service de Chimie analytique et de Chimie pharmaceutique, rue Faucigny n° 3. 4000 Liège, Belgique. IMMUNOCHIMIE. — Cellules lymphoïdes de la muqueuse intestinale à double spécificité kappa et lambda chez l'Homme normal. Note de Lucien Hartmann et Panayotis Liacopoulos. présentée par M. Jean Hamburger. La présence de cellules lymphoides à double spécificité kappa et lambda a été observée dans la muqueuse intestinale de sujets normaux. La variabilité de la fréquence de telles cellules dans un même prélèvement et chez des sujets différents paraît être une caractéristique de cette population. Cette variabilité pourrait témoigner de l'importante activité du système immunitaire de l'intestin grêle. The presence of lymphoid cells possessing both kappa and lambda specificities has been observed in the intestinal mucosa of normal subjects. The variability in the number of such cells in different sections of the same sample and in different subjects seems to be a characteristic of this cell population and may reflect the high activity of the immune system in the small intestine. Les travaux conduits depuis plusieurs années à l'aide de la technique de Coons aux anticorps fluorescents, sur la numération des cellules lymphoïdes de la muqueuse intestinale chez l'Homme normal et atteint de diverses affections nous ont révélé un fait précis : l'absence de concordance entre les sommes des cellules dénombrées par
variabilité de la fréquence de telles cellules dans un même prélèvement et chez des sujets différents paraît être une caractéristique de cette population. Cette variabilité pourrait témoigner de l'importante activité du système immunitaire de l'intestin grêle. The presence of lymphoid cells possessing both kappa and lambda specificities has been observed in the intestinal mucosa of normal subjects. The variability in the number of such cells in different sections of the same sample and in different subjects seems to be a characteristic of this cell population and may reflect the high activity of the immune system in the small intestine. Les travaux conduits depuis plusieurs années à l'aide de la technique de Coons aux anticorps fluorescents, sur la numération des cellules lymphoïdes de la muqueuse intestinale chez l'Homme normal et atteint de diverses affections nous ont révélé un fait précis : l'absence de concordance entre les sommes des cellules dénombrées par les chaînes lourdes et celles comptées par les chaînes légères. Les recherches entreprises par l'un de nous chez l'animal et chez l'Homme [e) à (6)] mettant en évidence une bipotentialité de certaines cellules immunocompétentes nous ont incités à envisager qu'une telle discordance pourrait être liée à l'existence d'un certain nombre de cellules comptées à deux reprises. La présente Note rend compte des résultats obtenus relativement à l'existence d'une bispécificité kappa et lambda pour un certain pourcentage de cellules lymphoïdes de la muqueuse intestinale. MÉTÉRIEL ET MÉTHODES. — Matériau. — Échantillon de muqueuse intestinale prélevé à l'aide de la sonde de Ch. Debray chez trois sujets indemnes de toute affection intestinale; fixation à l'éthanol absolu à +4°C avant mise en œuvre de la technique de Sainte-Marie e); coupes au microtome de l'ordre de 3 μm. Microscope « Zeiss » à fluorescence équipé d'un épicondenseur « IV F 1 » muni d'un coulisseau à deux positions permettant l'emploi de deux combinaisons complètes de filtres sélectifs. Immunsérums fluorescents. — Immunsérums spécifiques anti-kappa et anti-lambda d'origine commerciale (C.N.T.S., 76, Bois-Guillaume, France) ou préparés par nos soins. Marquage par l'isothiocyanate de fluorescéine (FITC) (8) et la sulforhodamine (SR) nécessitant une chloruration préalable suivant Uehlecke (9).
de cellules comptées à deux reprises. La présente Note rend compte des résultats obtenus relativement à l'existence d'une bispécificité kappa et lambda pour un certain pourcentage de cellules lymphoïdes de la muqueuse intestinale. MÉTÉRIEL ET MÉTHODES. — Matériau. — Échantillon de muqueuse intestinale prélevé à l'aide de la sonde de Ch. Debray chez trois sujets indemnes de toute affection intestinale; fixation à l'éthanol absolu à +4°C avant mise en œuvre de la technique de Sainte-Marie e); coupes au microtome de l'ordre de 3 μm. Microscope « Zeiss » à fluorescence équipé d'un épicondenseur « IV F 1 » muni d'un coulisseau à deux positions permettant l'emploi de deux combinaisons complètes de filtres sélectifs. Immunsérums fluorescents. — Immunsérums spécifiques anti-kappa et anti-lambda d'origine commerciale (C.N.T.S., 76, Bois-Guillaume, France) ou préparés par nos soins. Marquage par l'isothiocyanate de fluorescéine (FITC) (8) et la sulforhodamine (SR) nécessitant une chloruration préalable suivant Uehlecke (9). Purification par chromatographie sur colonne de « Sephadex G 50 » (medium). Emploi des immunsérums. — Sur une coupe de 3 μm dépôt d'une goutte d'immunsérum marqué, pendant 1 h et 45 mn à la température du laboratoire. Lavages à l'eau distillée puis avec le tampon Soerensen modifié (tampon phosphates + NaCl, pH 7,3) durant 30 mn. Séchage de la lame autour de la coupe. Emploi du second immunsérum comme précédemment. Examen microscopique aux grossissements 63, 160, 400 et 1 000. Photographie des champs choisis ou de la totalité de ceux couvrant la coupe avec les deux combinaisons de filtres sélectifs correspondant à la fluorescence FITC et SR. Analyse des diapositives. — Projection des diapositives sur papier blanc calibré en raison de la nécessité des pesées ultérieures. Délimitation de l’épithélium intestinal, du tissu interstitiel et des cellules fluorescentes qu’il contient. Opération identique pour les deux diapositives correspondant à l’analyse d’un même champ par les deux fluorochromes. Reproduction sur une feuille de papier calque des deux projections obtenues pour détermination des cellules révélées par un seul immunsérum fluorescent lambda ou kappa, des cellules révélées à la fois par ces deux immunsérums. Expression des résultats. — Détermination du nombre des trois populations
+ NaCl, pH 7,3) durant 30 mn. Séchage de la lame autour de la coupe. Emploi du second immunsérum comme précédemment. Examen microscopique aux grossissements 63, 160, 400 et 1 000. Photographie des champs choisis ou de la totalité de ceux couvrant la coupe avec les deux combinaisons de filtres sélectifs correspondant à la fluorescence FITC et SR. Analyse des diapositives. — Projection des diapositives sur papier blanc calibré en raison de la nécessité des pesées ultérieures. Délimitation de l’épithélium intestinal, du tissu interstitiel et des cellules fluorescentes qu’il contient. Opération identique pour les deux diapositives correspondant à l’analyse d’un même champ par les deux fluorochromes. Reproduction sur une feuille de papier calque des deux projections obtenues pour détermination des cellules révélées par un seul immunsérum fluorescent lambda ou kappa, des cellules révélées à la fois par ces deux immunsérums. Expression des résultats. — Détermination du nombre des trois populations cellulaires (lambda; kappa; lambda + kappa) par champ ou suivant le calcul de P. Crabbe (10). RÉSULTATS ET COMMENTAIRES. — L’observation d’une centaine de champs microscopiques, l’analyse de deux cents diapositives correspondant à quatre ou cinq lames pour chacune des trois biopsies intestinales ont révélé la présence constante de cellules lymphoïdes à bipotentialité lambda et kappa (fig. 1 A, 1 B et schéma). La fluorescence observée avec les deux immunsérums marqués à la FITC et à la SR donne généralement une image uniforme du cytoplasme cellulaire et plus rarement fragmentée. Les aspects de ces cellules colorées par le mélange de May Grunwald Giemsa sont ceux de lymphocytes et de plasmocytes. Pour une biopsie (SIR) comprenant l’analyse de douze champs microscopiques d’une même lame, la valeur moyenne de la population cellulaire mixte (lambda et kappa) est de 7 000 cellules/litre avec des extrêmes de 1 500 et 20 300 démontrant la répartition inégale de ces cellules (fig. 2). Dans ce cas le pourcentage moyen de la population mixte est de 21 p. cent et ceux des populations monospécifiques kappa ou lambda respectivement de 73 et 6 p. cent. Pour les trois biopsies étudiées il faut noter que la densité moyenne des
lymphoïdes à bipotentialité lambda et kappa (fig. 1 A, 1 B et schéma). La fluorescence observée avec les deux immunsérums marqués à la FITC et à la SR donne généralement une image uniforme du cytoplasme cellulaire et plus rarement fragmentée. Les aspects de ces cellules colorées par le mélange de May Grunwald Giemsa sont ceux de lymphocytes et de plasmocytes. Pour une biopsie (SIR) comprenant l’analyse de douze champs microscopiques d’une même lame, la valeur moyenne de la population cellulaire mixte (lambda et kappa) est de 7 000 cellules/litre avec des extrêmes de 1 500 et 20 300 démontrant la répartition inégale de ces cellules (fig. 2). Dans ce cas le pourcentage moyen de la population mixte est de 21 p. cent et ceux des populations monospécifiques kappa ou lambda respectivement de 73 et 6 p. cent. Pour les trois biopsies étudiées il faut noter que la densité moyenne des cellules bispécifiques diffère dans des proportions importantes (tableau). À des densités cellulaires moyennes de 7 000, 30 500 et 3 100/litre correspondent des pourcentages de 21, 46 et 8 p. cent. La variabilité dans la répartition paraît être une caractéristique de ce type de cellules lymphoïdes bispécifiques. À notre connaissance la mise en évidence de cellules portant à la fois des chaînes lambda et kappa dans la muqueuse intestinale chez l’Homme normal est apportée pour la première fois. Ce fait doit être rapproché de l’existence d’un faible pourcentage de cellules identiques signalé antérieurement dans la moelle osseuse [(II), (12)]. Plus récemment Oriol et coll. (1) et Bouvet et coll. (6) étudiant le cas d’un myélome humain produisant deux paraprotéines IgG ont pu faire la preuve que des chaînes lourdes IgG1 identiques couplées à des chaînes légères différentes lambda et kappa étaient synthétisées dans une même cellule. Le problème crucial que ces observations posent est celui de l’origine de ces chaînes kappa et lambda présentes sur les mêmes cellules : sont-elles produites par ces cellules ou sont-elles massivement fixées ou phagocytées par ces cellules ? Un autre problème consiste à définir à quelles chaînes lourdes ces chaînes légères sont associées :
la mise en évidence de cellules portant à la fois des chaînes lambda et kappa dans la muqueuse intestinale chez l’Homme normal est apportée pour la première fois. Ce fait doit être rapproché de l’existence d’un faible pourcentage de cellules identiques signalé antérieurement dans la moelle osseuse [(II), (12)]. Plus récemment Oriol et coll. (1) et Bouvet et coll. (6) étudiant le cas d’un myélome humain produisant deux paraprotéines IgG ont pu faire la preuve que des chaînes lourdes IgG1 identiques couplées à des chaînes légères différentes lambda et kappa étaient synthétisées dans une même cellule. Le problème crucial que ces observations posent est celui de l’origine de ces chaînes kappa et lambda présentes sur les mêmes cellules : sont-elles produites par ces cellules ou sont-elles massivement fixées ou phagocytées par ces cellules ? Un autre problème consiste à définir à quelles chaînes lourdes ces chaînes légères sont associées : s’agit-il d’une même chaîne lourde comme dans le cas du myélome mentionné [CS), (9)] ou sont-elles associées à des chaînes lourdes de classe différentes ? La réponse à de telles questions suppose que soient mises en œuvre à partir des biopsies intestinales traitées par diverses enzymes des sélections et cultures de cellules lymphoïdes suivies d’analyse de leur synthèse de chaînes légères et lourdes. (") Séance du 3 janvier 1977. (") Travail subventionné par l’INSERM (contrat n° 76 1 353 A 4, code 82 001) et l’Association Claude-Bernard. e) Avec la collaboration technique de Mme Arlette Jolivière. (") J. COUDERC, C. BLEUX, J. L. BIRRIEN et P. LIACOPOULOS, J. Immunol., 111, 1973, p. 1155-1163. (4) J. COUDERC, C. BLEUX et P. LIACOPOULOS. Immunology, 29, 1975, p. 665. (1) R. ORIOL, J. HUERTA, J. P. BOUVET et P. LIACOPOULOS, Immunology, 27, 1974, p. 1081. (6) J. P. BOUVET, D. BUFFÉ, R. ORIOL et P. LIACOPOULOS, Immunology, 27, 1974, p. 1095. (") G. SAINTI-MARIE, J. Histochim. Cytochem., 10, 1962, p. 250. (8) R. M. MCKINNEY, J. T. SPILLANE et G. W. PEARCE, J. Immunol., 93, 1964, p. 232. (") H. UEHLECKE, Z. Naturforsch., 136, 1958, p. 722. (10) P. CRABBE, Arscia S. A.,
de cellules lymphoïdes suivies d’analyse de leur synthèse de chaînes légères et lourdes. (") Séance du 3 janvier 1977. (") Travail subventionné par l’INSERM (contrat n° 76 1 353 A 4, code 82 001) et l’Association Claude-Bernard. e) Avec la collaboration technique de Mme Arlette Jolivière. (") J. COUDERC, C. BLEUX, J. L. BIRRIEN et P. LIACOPOULOS, J. Immunol., 111, 1973, p. 1155-1163. (4) J. COUDERC, C. BLEUX et P. LIACOPOULOS. Immunology, 29, 1975, p. 665. (1) R. ORIOL, J. HUERTA, J. P. BOUVET et P. LIACOPOULOS, Immunology, 27, 1974, p. 1081. (6) J. P. BOUVET, D. BUFFÉ, R. ORIOL et P. LIACOPOULOS, Immunology, 27, 1974, p. 1095. (") G. SAINTI-MARIE, J. Histochim. Cytochem., 10, 1962, p. 250. (8) R. M. MCKINNEY, J. T. SPILLANE et G. W. PEARCE, J. Immunol., 93, 1964, p. 232. (") H. UEHLECKE, Z. Naturforsch., 136, 1958, p. 722. (10) P. CRABBE, Arscia S. A., Bruxelles, 1967, p. 37. (") B. PERNIS et G. CHIAPPINO, Immunology, 7, 1964, p. 500. (2) R. C. MELLORS et L. KORNGOLD, J. Exp. Med., 118, 1963, p. 387. Laboratoire de Chimie clinique et Biologie moléculaire. Institut biomédical des Cordeliers, 15, rue de l’École de Médecine, 75270 Paris Cedex 06. CANCÉROLOGIE. — Sensibilité au rayonnement X de cellules lymphoblastiques humaines cultivées en milieux enrichis de sulfate de nickel. Note (*) de Jacques Bensimon et Jean-Noël Rimbert, présentée par M. J. André Thomas. Des cellules humaines leucémiques de la lignée établie REH cultivées en milieux enrichis en sulfate de nickel ont été irradiées par rayonnement X. Le sulfate de nickel et le rayonnement X présentent, dans les conditions de l'expérience, des effets toxiques qui apparaissent comme indépendants, ou dépendants l'un de l'autre selon les doses de rayonnement X, les concentrations de sulfate de nickel et les durées d'action du sulfate de nickel. Human leukemia cells of the established line REH, cultured in media supplemented by nickel sulphate have been irradiated by X-Rays. The nickel sulphate and the X-rays have toxic effects that appear as independent or interdependent effects according to the X-ray doses, the nickel sulphate concentration and the nickel sulphate