jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
(4-6) Thecia sp. Dévonien inférieur; (4) aspect général (G x 8), sections transversales et longitudinales; (5-6) sections transverses (G x 90); (5) montre la limite (ligne sombre) des calices, prolongée dans les septes assurant la scissiparité (en bas, un calice divisé n'a qu'un septe); (6) 2 calices communiquant par un canal. (7) Permosoma permotessellata Par. Permien; calices ouverts, inégaux; en bas à gauche l'un deux possède une « columelle »; à droite, calices operculés. (8) Cystothalamia insolita T. et T. Permien; en bas, calice ouvert avec columelle; en haut, coupole poreuse couvrant un calice. PLANCHE II Planche II (9-10) Favosites dubia (de Bl.). Dévonien inférieur, section subaxiale; (9) ensemble (G x 7); (10) détail de la zone externe montrant la texture des parois et l'espace, en blanc, délimité entre les deux derniers planchers (G x 40). (11) Paronaespongia adrianensis (Par.) Permien. Calices à parois poreuses composés de sclérodermites. (12-13) Stellispongia ? sp. Permien. Section transversale composée de piliers et de planchers montrant une zone de cavités sous-corticales (bien visible à gauche de la figure 12); (13) détail de ces cavités (G x 90). (14) Amphipora ramosa (Phil.) (G x 5). Dévonien moyen. Section transversale montrant la zone des cavités sous-corticales. (15) Striatopora sp. (G x 7). Dévonien inférieur. Les calices sont entourés d'épines externes et leur « lumière » est obstruée par de longues épines internes. (16-17) Caliapora sp. Dévonien inférieur; la lumière du tube est occupée par des extensions nidiformes; (16) (G x 90) dessinant les contours subsphériques de produits reproducteurs; (17) détail (G x 230) de deux « épines en crochet » formant l'armature de ces expansions. (18) Merlia normanni K., section montrant les parois des tubes et les planchers (perforés) délimitant les cryptes ou cavités dites « à calcocytes » (G x 90). Comparer les figures 10 et 18. Favositides et d'Amphipora, des sillons rayonnent autour de l'ouverture externe des tubes, laquelle peut d'ailleurs être ourlée comme les oscules latéraux des Permosphincta [ex. Taouzia T. et T. en. Il s'agit ici de structures éjectrices verticillées, mais limitées à un seul tube et différentes des pores. II. TEXTURE.
(15) Striatopora sp. (G x 7). Dévonien inférieur. Les calices sont entourés d'épines externes et leur « lumière » est obstruée par de longues épines internes. (16-17) Caliapora sp. Dévonien inférieur; la lumière du tube est occupée par des extensions nidiformes; (16) (G x 90) dessinant les contours subsphériques de produits reproducteurs; (17) détail (G x 230) de deux « épines en crochet » formant l'armature de ces expansions. (18) Merlia normanni K., section montrant les parois des tubes et les planchers (perforés) délimitant les cryptes ou cavités dites « à calcocytes » (G x 90). Comparer les figures 10 et 18. Favositides et d'Amphipora, des sillons rayonnent autour de l'ouverture externe des tubes, laquelle peut d'ailleurs être ourlée comme les oscules latéraux des Permosphincta [ex. Taouzia T. et T. en. Il s'agit ici de structures éjectrices verticillées, mais limitées à un seul tube et différentes des pores. II. TEXTURE. Les fibres radiaires de la plupart des Favositides (fig. 10) sont comparables à celles de Merlia (fig. 18). Chez les Chaetetides du Permien et du Trias, la confluence des sclérodermites vers l'extérieur aboutit à de longues épines fibreuses (Ceratoporella) identiques à la texture d'Amphipora et de Cladocoropsis (fig. 1 et 2). CONCLUSIONS. — Issus du complexe d'Ischyrosponges Chaetetida-Stromatoporida, les Tabulés offrent une convergence avec les Permosphincta. Leur présence dans les récifs paléozoïques montre que la place des Spongiaires y fut beaucoup plus importante qu'on ne l'a cru jusqu'ici. Les corps sphériques observés dans Caliapora sont nettement plus gros (220 µm) que ceux des Chaetetides et des Trépostomes (30 à 100 µm). Les tubes sont également plus gros. On peut donc envisager que les passages des types primitifs de Spongiaires aux Tabulés ont impliqué un gigantisme cellulaire, voire une polyploïdie. Le tableau 1 résume la parentèle possible des Tabulés. Séance du 31 janvier 1977. (*) H. TERMIER et G. TERMIER, Comptes rendus, 284, série D, 1977, p. 21. (2) H. TERMIER, G. TERMIER et D. VACHARD, Palaeontographica, A. 156, 1977, p. 1-109, 18 pl., 50 fig. (3) H. TERMIER et G. TERMIER, Comptes rendus, 282, série D, 1976, p. 1269. (4)
2). CONCLUSIONS. — Issus du complexe d'Ischyrosponges Chaetetida-Stromatoporida, les Tabulés offrent une convergence avec les Permosphincta. Leur présence dans les récifs paléozoïques montre que la place des Spongiaires y fut beaucoup plus importante qu'on ne l'a cru jusqu'ici. Les corps sphériques observés dans Caliapora sont nettement plus gros (220 µm) que ceux des Chaetetides et des Trépostomes (30 à 100 µm). Les tubes sont également plus gros. On peut donc envisager que les passages des types primitifs de Spongiaires aux Tabulés ont impliqué un gigantisme cellulaire, voire une polyploïdie. Le tableau 1 résume la parentèle possible des Tabulés. Séance du 31 janvier 1977. (*) H. TERMIER et G. TERMIER, Comptes rendus, 284, série D, 1977, p. 21. (2) H. TERMIER, G. TERMIER et D. VACHARD, Palaeontographica, A. 156, 1977, p. 1-109, 18 pl., 50 fig. (3) H. TERMIER et G. TERMIER, Comptes rendus, 282, série D, 1976, p. 1269. (4) H. W. FLÜGEL, Lethaia, 9, 1976, p. 405-419, 3 fig. (5) H. TERMIER et G. TERMIER, Bull. soc. Sc. nat. Maroc, XXIII, 1948, p. 136-137. (6) H. TERMIER et G. TERMIER, Comptes rendus, 280, série D. 1975, p. 271. Laboratoire de Géologie structurale, Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu, 75230 Paris Cedex 05. ALGOLOGIE. — Étude biologique et chimique d'Asparagopsis armata et de Falkenbergia rufolanosa (Rhodophycées bonnemaisoniales). Note (*) de Louis Codomier, Yves Bruneau, Georges Combaut et Jean Teste, présentée par M. Maurice Fontaine. Asparagopsis armata Harv. et son tétrasporophyte Falkenbergia rufolanosa (Harv.) Schmitz présentent à l'état broyé en milieu aqueux des propriétés d'auto-conservation exceptionnelles. La présence chez ces 2 algues, à côté du bromoforme, de 7 dérivés chlorés et bromés de l'acétone, a été mise en évidence. Asparagopsis armata se multiplie végétativement à partir de harpons isolés et mis en culture. Les conditions physico-chimiques et de développement de l'espèce ont été étudiées in situ et en culture. Asparagopsis armata Harv. et son tétrasporophyte Falkenbergia rufolanosa (Harv.) Schmitz présentent des propriétés d'auto-conservation exceptionnelles lorsqu'elles sont broyées et mises en milieu aqueux. La présence, dans ces deux algues, en outre au bromoforme, de 7 chloroformés et bromés, a été clairement établie. Asparagopsis
Cedex 05. ALGOLOGIE. — Étude biologique et chimique d'Asparagopsis armata et de Falkenbergia rufolanosa (Rhodophycées bonnemaisoniales). Note (*) de Louis Codomier, Yves Bruneau, Georges Combaut et Jean Teste, présentée par M. Maurice Fontaine. Asparagopsis armata Harv. et son tétrasporophyte Falkenbergia rufolanosa (Harv.) Schmitz présentent à l'état broyé en milieu aqueux des propriétés d'auto-conservation exceptionnelles. La présence chez ces 2 algues, à côté du bromoforme, de 7 dérivés chlorés et bromés de l'acétone, a été mise en évidence. Asparagopsis armata se multiplie végétativement à partir de harpons isolés et mis en culture. Les conditions physico-chimiques et de développement de l'espèce ont été étudiées in situ et en culture. Asparagopsis armata Harv. et son tétrasporophyte Falkenbergia rufolanosa (Harv.) Schmitz présentent des propriétés d'auto-conservation exceptionnelles lorsqu'elles sont broyées et mises en milieu aqueux. La présence, dans ces deux algues, en outre au bromoforme, de 7 chloroformés et bromés, a été clairement établie. Asparagopsis armata croît végétativement à partir d'individus isolés et cultivés. Les conditions physico-chimiques et de développement de l'espèce ont été étudiées in situ et en culture. Parmi les Rhodophycées, les Bonnemaisoniales constituent un groupe dont la plupart des espèces possèdent des cellules sécrétrices spéciales. Depuis longtemps, l'attention des biologistes s'est portée sur ces espèces : étude des cycles, description des cellules sécrétrices, activité antibactérienne notamment. Ces cellules sécrétrices étant susceptibles de produire des molécules nouvelles, nous avons entrepris sur certaines de ces espèces une étude plus large par les moyens réunis de biologistes, de chimistes et de médecins. Asparagopsis armata et son tétrasporophyte Falkenbergia rufolanosa se sont avérés très intéressants. Ils présentent en effet, à l'état broyé en milieu aqueux, une odeur persistante douce et agréable, des propriétés d'auto-conservation exceptionnelles, une activité antibactérienne vis-à-vis de Staphylococcus aureus et d'Escherichia coli ainsi qu'une activité importante vis-à-vis de certaines affections cutanées, ce qui nous a incité à faire porter nos efforts dans deux directions : inventaire chimique d'une part, maîtrise de la production de l'Algue d'autre part. ÉTUDE CHIMIQUE. — Les Algues, récoltées à l'île Grosse près de Banyuls-sur-Mer sur la côte des Albères, subissent un tri minutieux puis sont aussitôt broyées dans
sur ces espèces : étude des cycles, description des cellules sécrétrices, activité antibactérienne notamment. Ces cellules sécrétrices étant susceptibles de produire des molécules nouvelles, nous avons entrepris sur certaines de ces espèces une étude plus large par les moyens réunis de biologistes, de chimistes et de médecins. Asparagopsis armata et son tétrasporophyte Falkenbergia rufolanosa se sont avérés très intéressants. Ils présentent en effet, à l'état broyé en milieu aqueux, une odeur persistante douce et agréable, des propriétés d'auto-conservation exceptionnelles, une activité antibactérienne vis-à-vis de Staphylococcus aureus et d'Escherichia coli ainsi qu'une activité importante vis-à-vis de certaines affections cutanées, ce qui nous a incité à faire porter nos efforts dans deux directions : inventaire chimique d'une part, maîtrise de la production de l'Algue d'autre part. ÉTUDE CHIMIQUE. — Les Algues, récoltées à l'île Grosse près de Banyuls-sur-Mer sur la côte des Albères, subissent un tri minutieux puis sont aussitôt broyées dans l'eau selon un processus déjà décrit : 118 g d'Algue essorée sont broyés pendant 10 mn, dans un appareil type « mixer » ménager, avec 135 g d'eau de mer filtrée ; puis on dilue le produit obtenu dans 270 g d'eau de mer, et on broie à nouveau pendant 10 mn. On centrifuge le produit obtenu, le filtrat est épuisé à l'éther et le résidu éthéré chromatographié sur colonne de silicagel. Les techniques de résonance magnétique nucléaire, de chromatographie phase vapeur et le couplage de la CPV à la spectrométrie de masse permettent de mettre en évidence pour les 2 algues une forte proportion de bromoforme ainsi qu'un certain nombre de cétones polyhalogènes, essentiellement chlorées et bromées : Ces résultats sont à rapprocher de ceux de W. Fenical [(10), (11)], R. E. Moore et coll. [(12), (13)] concernant Asparagopsis taxiformis et de J. F. Siuda (14) concernant Bonnemaisonia hamifera. Les résultats de l'inventaire des stérols et des composés acides seront publiés ultérieurement. Remarquons que, dans l'état actuel des connaissances, ce type de dérivé halogène apparaît comme caractéristique des Bonnemaisoniales à cellules sécrétrices. TABLEAU Propanones polyhalogènes d'Asparagopsis armata et Falkenbergia rufolanosa Composés R, R2 R3 R4 Tr 2 Br H
10 mn. On centrifuge le produit obtenu, le filtrat est épuisé à l'éther et le résidu éthéré chromatographié sur colonne de silicagel. Les techniques de résonance magnétique nucléaire, de chromatographie phase vapeur et le couplage de la CPV à la spectrométrie de masse permettent de mettre en évidence pour les 2 algues une forte proportion de bromoforme ainsi qu'un certain nombre de cétones polyhalogènes, essentiellement chlorées et bromées : Ces résultats sont à rapprocher de ceux de W. Fenical [(10), (11)], R. E. Moore et coll. [(12), (13)] concernant Asparagopsis taxiformis et de J. F. Siuda (14) concernant Bonnemaisonia hamifera. Les résultats de l'inventaire des stérols et des composés acides seront publiés ultérieurement. Remarquons que, dans l'état actuel des connaissances, ce type de dérivé halogène apparaît comme caractéristique des Bonnemaisoniales à cellules sécrétrices. TABLEAU Propanones polyhalogènes d'Asparagopsis armata et Falkenbergia rufolanosa Composés R, R2 R3 R4 Tr 2 Br H Cl H 1.7 3 Br H Br H 2.4 4 Br Br Cl H 2,7 5 Br Cl Br H 3,5 6 Br Br Br H 5,8 7 Br Br Br Cl 7,3 8 Br Br Br Br 16,3 Tr, temps de rétention (mn) en CPV sur colonne OV. 5 % 4 mm à 140°C N2, 40 ml/min. Les identifications sont faites par comparaison avec des échantillons authentiques obtenus par bromation de l'acétone et de la mono-chloroacétone. ÉTUDE BIOLOGIQUE. — Le cycle de vie de ces 2 algues a été suivi in situ d'octobre 1975 à octobre 1976 en même temps qu'un certain nombre de paramètres physiques et chimiques de l'eau de mer. Nous retiendrons qu'à partir de la mi-février le gamétophyte croît rapidement pour atteindre son maximum de développement à la mi-avril date à laquelle il porte des fructifications. C'est à cette période et particulièrement en février que le taux de phosphates et de nitrates augmente dans l'eau ce qui correspond également à l'augmentation de l'énergie lumineuse reçue par l'algue. De la mi-avril à la fin juillet, le gamétophyte est très abondant et bien développé mais, courant septembre-octobre, il se raréfie, disparaît en novembre-décembre pour ne reprendre sa croissance
% 4 mm à 140°C N2, 40 ml/min. Les identifications sont faites par comparaison avec des échantillons authentiques obtenus par bromation de l'acétone et de la mono-chloroacétone. ÉTUDE BIOLOGIQUE. — Le cycle de vie de ces 2 algues a été suivi in situ d'octobre 1975 à octobre 1976 en même temps qu'un certain nombre de paramètres physiques et chimiques de l'eau de mer. Nous retiendrons qu'à partir de la mi-février le gamétophyte croît rapidement pour atteindre son maximum de développement à la mi-avril date à laquelle il porte des fructifications. C'est à cette période et particulièrement en février que le taux de phosphates et de nitrates augmente dans l'eau ce qui correspond également à l'augmentation de l'énergie lumineuse reçue par l'algue. De la mi-avril à la fin juillet, le gamétophyte est très abondant et bien développé mais, courant septembre-octobre, il se raréfie, disparaît en novembre-décembre pour ne reprendre sa croissance qu'en février. Par contre le tétrasporophyte se développe rapidement pendant la première quinzaine d'octobre pour arriver à maturité fin octobre (formation de tétraspores). Son développement végétatif se poursuit jusqu'en mai-juin pour régresser en juillet-août. Le tétrasporophyte est donc plus développé en automne et en hiver alors que le gamétophyte est plus abondant à la fin de l'hiver et au printemps. Ces 2 algues ont un cycle qui se succède dans le temps en Méditerranée avec des exceptions cependant. La fructification a lieu fin octobre pour le tétrasporophyte et fin avril pour le gamétophyte à une température de 15°C environ dans les deux cas. Cependant le tétrasporophyte fructifie pendant un temps très court (15 jours) alors que le gamétophyte porte des fructifications pendant 2 mois. J. et G. Feldmann [(3), (4)] ont étudié le cycle de vie de ces deux algues en culture à partir de spores. Asparagopsis est plus vivace que Falkenbergia à cause de la présence d'axes et de rameaux à harpons. À partir de ces derniers, nous avons pensé que pouvaient bourgeonner de nouveaux axes lorsque le gamétophyte reprend sa croissance. C'est ce que nous avons constaté aussi bien in situ [Svedelius (15) l'avait déjà signalé] qu'en culture
plus abondant à la fin de l'hiver et au printemps. Ces 2 algues ont un cycle qui se succède dans le temps en Méditerranée avec des exceptions cependant. La fructification a lieu fin octobre pour le tétrasporophyte et fin avril pour le gamétophyte à une température de 15°C environ dans les deux cas. Cependant le tétrasporophyte fructifie pendant un temps très court (15 jours) alors que le gamétophyte porte des fructifications pendant 2 mois. J. et G. Feldmann [(3), (4)] ont étudié le cycle de vie de ces deux algues en culture à partir de spores. Asparagopsis est plus vivace que Falkenbergia à cause de la présence d'axes et de rameaux à harpons. À partir de ces derniers, nous avons pensé que pouvaient bourgeonner de nouveaux axes lorsque le gamétophyte reprend sa croissance. C'est ce que nous avons constaté aussi bien in situ [Svedelius (15) l'avait déjà signalé] qu'en culture expérimentale pour les harpons seulement d'où naissent des bourgeons devenant des axes, les épines demeurant intactes. En prélevant les harpons pour les mettre en culture nous avons pu obtenir des frondes d'Asparagopsis sans être obligés d'ensemencer des tétraspores. Cette multiplication végétative permet d'obtenir plus rapidement en culture des individus de taille appréciable. Nos travaux sur ces cultures expérimentales et les résultats sur le cycle in situ seront publiés par la suite. Notre objectif est de trouver les conditions de culture les mieux adaptées à une production végétative maximale de cette Algule en un minimum de temps. Séance du 17 janvier 1977. C. SAUVAGEAU, Bull. de la Stat. biol. d'Arcachon, 25, 1928, p. 3-24. H. KYLIN, Ark. f. bot., 14, 1915, p. 1-13. J. et G. FELDMANN, Comptes rendus, 208, 1939, p. 1240. J. et G. FELDMANN, Ann. Sc. nat. Bot., sér. 11, n° 3, 1942, p. 75-175. J. KNAPPE et D. WERNER, Z. Pflanzenphysiol., 75, 1975, p. 277-286. P. R. BURKHOLDER, L. M. BURKHOLDER et L. R. ALMODOVAR, Botanica Marina, II, Fasc. 1/2, 1960, p. 149-156. H. BILLARD, L. CODOMIER et J. TESTE, Procédé de préparation d'algues marines autostabilisées en plasma marin, Brevet n° 73 17521, déposé le 15 mai
taille appréciable. Nos travaux sur ces cultures expérimentales et les résultats sur le cycle in situ seront publiés par la suite. Notre objectif est de trouver les conditions de culture les mieux adaptées à une production végétative maximale de cette Algule en un minimum de temps. Séance du 17 janvier 1977. C. SAUVAGEAU, Bull. de la Stat. biol. d'Arcachon, 25, 1928, p. 3-24. H. KYLIN, Ark. f. bot., 14, 1915, p. 1-13. J. et G. FELDMANN, Comptes rendus, 208, 1939, p. 1240. J. et G. FELDMANN, Ann. Sc. nat. Bot., sér. 11, n° 3, 1942, p. 75-175. J. KNAPPE et D. WERNER, Z. Pflanzenphysiol., 75, 1975, p. 277-286. P. R. BURKHOLDER, L. M. BURKHOLDER et L. R. ALMODOVAR, Botanica Marina, II, Fasc. 1/2, 1960, p. 149-156. H. BILLARD, L. CODOMIER et J. TESTE, Procédé de préparation d'algues marines autostabilisées en plasma marin, Brevet n° 73 17521, déposé le 15 mai 1973, publié le 13 décembre 1974 sous le n° 2 229 388. La partie pharmacologique et clinique de cette étude a été effectuée par le docteur H. BILLARD, Médecin-chef du Centre de Thalasso-rééducation de Collioure, ainsi que les professeurs J. Bazex et M. B. Lareng de l'hôpital Purpan de Toulouse. L'ensemble des résultats sera publié par ailleurs. Une récolte d'Asparagopsis armata a également été effectuée, pour étude comparative, à Landéda près Lannilis (Nord-Finistère). M. A. H. Dizerbo, de l'Université de Bretagne occidentale, a organisé cette récolte. W. FENICAL, Tetrahedron Letters, 1974, (51-52), p. 4463. W. FENICAL, J. Phycol., 11, 1975, p. 245. B. J. BURRESON, R. E. MOORE et P. ROLLER, Tetrahedron Letters, 1975, (7), p. 473-476. B. J. BURRESON, R. E. MOORE et P. ROLLER, J. Agric. Food. Chem., 24, 1976, p. 856. J. F. SIUDA, G. R. VAN BLARCOM et P. D. SHAW, J. Amer. chem. Soc., 97, 1975, p. 937. N. SVEDELIUS, Ark. Act. Reg. Soc. Sci. Upsaliensis ser. 4, 9, 1919, p. 1-61. Groupe de recherches en Biologie et Chimie végétales marines, Centre universitaire de Perpignan, avenue de Villeneuve, 66025 Perpignan Cedex. BIOLOGIE. — Sur la présence d'Algues filamenteuses perforantes dans le test des Gryphus vitreus
L'ensemble des résultats sera publié par ailleurs. Une récolte d'Asparagopsis armata a également été effectuée, pour étude comparative, à Landéda près Lannilis (Nord-Finistère). M. A. H. Dizerbo, de l'Université de Bretagne occidentale, a organisé cette récolte. W. FENICAL, Tetrahedron Letters, 1974, (51-52), p. 4463. W. FENICAL, J. Phycol., 11, 1975, p. 245. B. J. BURRESON, R. E. MOORE et P. ROLLER, Tetrahedron Letters, 1975, (7), p. 473-476. B. J. BURRESON, R. E. MOORE et P. ROLLER, J. Agric. Food. Chem., 24, 1976, p. 856. J. F. SIUDA, G. R. VAN BLARCOM et P. D. SHAW, J. Amer. chem. Soc., 97, 1975, p. 937. N. SVEDELIUS, Ark. Act. Reg. Soc. Sci. Upsaliensis ser. 4, 9, 1919, p. 1-61. Groupe de recherches en Biologie et Chimie végétales marines, Centre universitaire de Perpignan, avenue de Villeneuve, 66025 Perpignan Cedex. BIOLOGIE. — Sur la présence d'Algues filamenteuses perforantes dans le test des Gryphus vitreus (Born) (Brachiopodes, Térébratulidés) de la limite inférieure du plateau continental méditerranéen. Note de Gaston Fredj et Claude Falconetti, présentée par M. Jean-Marie Pérès. Le grand Brachiopode Gryphus vitreus occupe de vastes étendues à la limite inférieure du plateau continental en Méditerranée nord-occidentale. Chez plus de 75 p. cent des individus récoltés entre 140 et 220 m, la couche superficielle de la coquille abrite des Algues filamenteuses du genre Ostreobium. La présence de ces Algues n'était pas, jusqu'alors, signalée dans ces organismes et à ces profondeurs. The brachiopod Gryphus vitreus is quite frequently found in abundance on the lower part of the western Mediterranean shelf-edge. More than 75 p. cent. of the specimens collected between 140 and 220 m. are green-coloured. Microscopical observations and spectrophotometric analysis of pigments show that the primary layer of the shell is occupied by boring Algae of the genus Ostreobium. The presence of these green Algae from brachiopods and at these depths is reported for the first time. En Méditerranée occidentale, les fonds caractérisés par l'abondance du grand Brachiopode Gryphus vitreus (Born) couvrent par endroits de vastes étendues à la limite du plateau continental. Sur les côtes du Var, en et la côte occidentale de Corse,
récoltés entre 140 et 220 m, la couche superficielle de la coquille abrite des Algues filamenteuses du genre Ostreobium. La présence de ces Algues n'était pas, jusqu'alors, signalée dans ces organismes et à ces profondeurs. The brachiopod Gryphus vitreus is quite frequently found in abundance on the lower part of the western Mediterranean shelf-edge. More than 75 p. cent. of the specimens collected between 140 and 220 m. are green-coloured. Microscopical observations and spectrophotometric analysis of pigments show that the primary layer of the shell is occupied by boring Algae of the genus Ostreobium. The presence of these green Algae from brachiopods and at these depths is reported for the first time. En Méditerranée occidentale, les fonds caractérisés par l'abondance du grand Brachiopode Gryphus vitreus (Born) couvrent par endroits de vastes étendues à la limite du plateau continental. Sur les côtes du Var, en et la côte occidentale de Corse, des travaux antérieurs destinés à délimiter les biocoenoses benthiques, ont permis de constater que ce type de fond est très répandu. Généralement considérée comme eurybathhe, cette espèce se trouve, d'après nos récoltes, entre 80 et 350 m de profondeur. Mais c'est sur substrat meuble seulement, entre 140 et 220 m, que la densité des Gryphus est la plus grande et peut atteindre, d'après nos estimations, 2 à 6 individus au mètre carré. En outre, la plupart des coquilles de Gryphus y présentent une coloration d'un vert plus ou moins intense dont nous avons recherché la cause. En mai 1976, 12 trajectoire de chalut à perche effectués à la limite du plateau continental au nord-ouest de Calvi (Corse) ont permis de récolter plus de 3 000 Gryphus vitreus (fig. 1). Les Brachiopodes recueillis ont été répartis en trois catégories faciles à distinguer : les « blancs », les « verts » et les « verts » porteurs d'une riche épifaune. Sur 2 419 Gryphus mesurés, dont la longueur s'échelonne entre 10,9 et 42,8 mm, 1 826 sont « verts » soit 75,5 p. cent. De plus, on constate que la taille des individus « verts » (moyenne 33,6 mm, cr =