jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
contiennent ce nucléoside. Lorsqu’il est présent il occupe une position unique dans la séquence des t-RNAs : la huitième à partir de l’extrémité 5'. Ses propriétés spectroscopiques sont exceptionnelles car il est le seul constituant des acides nucléiques qui absorbe fortement dans le proche ultraviolet (300-380 nm). Si l’on irradie à ces longueurs d’onde un t-RNA, contenant une 4-thiouridine en position 8 et une cytidine en position 13 on établit au sein de cette macromolécule un lien covalent entre ces nucléosides. In vitro les t-RNAs, ainsi « pontés » restent fonctionnels à toutes les étapes de la biosynthèse des protéines. Cependant l’acylation de certaines espèces d’ARN, en particulier l’ARNri, est considérablement affectée. Les mêmes processus photochimiques et biochimiques ont lieu in vivo. Très vraisemblablement ils sont responsables du blocage temporaire de la croissance des bactéries E. coli illuminées à 365 nm. L’illumination de la souche E. coli B/r entraîne un arrêt brutal de la synthèse des t-RNAs stables, comme on l’attend si certains t-RNAs ne sont plus acylés (réponse stringente). Si la 4-thiouridine est réellement le chromophore responsable du blocage de la croissance, les mutants ne présentant plus ce phénomène devraient ne contenir qu’une quantité réduite de ce nucléoside. La recherche de tels mutants fait l’objet de la présente Note. Comparaison des t-RNAs extraits de la souche parentale AB 1157 et du mutant Nop Souche AB 1157 Mutant Nop A 100 % Moins de 0,5 % B 25 %, 102% A) Activité acceptrice résiduelle pour l'acylation par la phénylalanine des ARN, irradiés. Des populations de E. coli K 12, préalablement traitées par un agent mutagène, la 2-amino-purine à la concentration de 500 ng/ml, ont été soumises à des cycles de sélection favorisant les mutants insensibles à l'illumination. Chaque cycle comprend une période d'illumination à 365 nm (10 kJ/m2) des bactéries en phase stationnaire, suivie d'une période d'incubation (12 h) à l'ombre dans un milieu contenant le glycérol comme source de carbone. Fig. 1. — Croissance de la souche AB 1157 (a) et du mutant Nop (b) après irradiation à 365 nm. La méthode utilisée est décrite dans (4). Les temps
recherche de tels mutants fait l’objet de la présente Note. Comparaison des t-RNAs extraits de la souche parentale AB 1157 et du mutant Nop Souche AB 1157 Mutant Nop A 100 % Moins de 0,5 % B 25 %, 102% A) Activité acceptrice résiduelle pour l'acylation par la phénylalanine des ARN, irradiés. Des populations de E. coli K 12, préalablement traitées par un agent mutagène, la 2-amino-purine à la concentration de 500 ng/ml, ont été soumises à des cycles de sélection favorisant les mutants insensibles à l'illumination. Chaque cycle comprend une période d'illumination à 365 nm (10 kJ/m2) des bactéries en phase stationnaire, suivie d'une période d'incubation (12 h) à l'ombre dans un milieu contenant le glycérol comme source de carbone. Fig. 1. — Croissance de la souche AB 1157 (a) et du mutant Nop (b) après irradiation à 365 nm. La méthode utilisée est décrite dans (4). Les temps d'irradiation en minutes sont respectivement 0., 15 +, 30 O. 60 tL et 120 A Les cultures sont effectuées en milieu 63 B,, glucose 0,2 %, casamino-acides 0,4 % à 37°C. Fig. 2. — Spectres d'absorption des ARN, extraits de la souche AB 1157 (courbe supérieure) et du mutant Nop (courbe inférieure). Les 2 solutions ont la même densité optique — 45 unités — à 260 nm. Dans 2 expériences indépendantes effectuées avec 2 souches distinctes de E. coli K 12, C 600 et AB 1157, nous avons pu à partir du 8e cycle de sélection, isoler des mutants (8 dans la première expérience, 5 dans la seconde) dont la phase de latence était réduite et qui, tous, ont présenté une déficience (moins de 50 %) dans le contenu en 4-thiouridine de leurs ARN, (6). L'un de ces mutants dénommé Nop s'est révélé particulièrement intéressant : son temps de génération est égal à celui du type parental AB 1157, mais sa croissance devient pratiquement insensible à l'illumination (fig. 1 ). Les ARN, extraits de cette souche ne contiennent plus de 4-thiouridine détectable par spectroscopie d'absorption (fig. 2). Leur illumination à 365 nm n'entraîne aucune formation du lien covalent 8-13. Enfin
(courbe inférieure). Les 2 solutions ont la même densité optique — 45 unités — à 260 nm. Dans 2 expériences indépendantes effectuées avec 2 souches distinctes de E. coli K 12, C 600 et AB 1157, nous avons pu à partir du 8e cycle de sélection, isoler des mutants (8 dans la première expérience, 5 dans la seconde) dont la phase de latence était réduite et qui, tous, ont présenté une déficience (moins de 50 %) dans le contenu en 4-thiouridine de leurs ARN, (6). L'un de ces mutants dénommé Nop s'est révélé particulièrement intéressant : son temps de génération est égal à celui du type parental AB 1157, mais sa croissance devient pratiquement insensible à l'illumination (fig. 1 ). Les ARN, extraits de cette souche ne contiennent plus de 4-thiouridine détectable par spectroscopie d'absorption (fig. 2). Leur illumination à 365 nm n'entraîne aucune formation du lien covalent 8-13. Enfin l'acylation par la phénylalanine de ces ARN, devient insensible à l'illumination (tableau). Un mutant récemment isolé à partir de la souche E. coli B/r (1) paraît avoir des caractères analogues au mutant Nop. Notons que dans nos conditions de culture le mutant Nop se développe normalement, ce qui indique que le 8-thiouracile ne joue pas de rôle essentiel dans ces conditions. Notre méthode a permis d'isoler 13 mutants déficients en 4-thiouridine, qui, tous, présentent une phase de latence réduite après illumination. Cette dernière est pratiquement abolie dans le mutant Nop qui ne contient plus de 4-thiouridine. Ces résultats, ainsi que les données biochimiques précédemment accumulées [(4), (5)] établissent définitivement que la 4-thiouridine est le chromophore responsable de cette latence. (*) Séance du 17 janvier 1977. (1) A. FAVRE, M. YANIV et A. M. MICHELSON, Biochem. Biophys. Res. Commun., 37, 1969, p. 266. (2) A. FAVRE, R. BUCKINGHAM et G. THOMAS, Nucl. Ac. Res., 2, 1975, p. 1421. (3) D. S. CARRE, G. THOMAS et A. FAVRE, Biochimie, 56, 1974, p. 1089. (4) G. THOMAS et A. FAVRE, Biochem. Biophys. Res. Commun., 66, 1975, p. 1454. (5) T. V. RAMABHADRAN et J. JAGGER. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.. 73. 1976. D.
le 8-thiouracile ne joue pas de rôle essentiel dans ces conditions. Notre méthode a permis d'isoler 13 mutants déficients en 4-thiouridine, qui, tous, présentent une phase de latence réduite après illumination. Cette dernière est pratiquement abolie dans le mutant Nop qui ne contient plus de 4-thiouridine. Ces résultats, ainsi que les données biochimiques précédemment accumulées [(4), (5)] établissent définitivement que la 4-thiouridine est le chromophore responsable de cette latence. (*) Séance du 17 janvier 1977. (1) A. FAVRE, M. YANIV et A. M. MICHELSON, Biochem. Biophys. Res. Commun., 37, 1969, p. 266. (2) A. FAVRE, R. BUCKINGHAM et G. THOMAS, Nucl. Ac. Res., 2, 1975, p. 1421. (3) D. S. CARRE, G. THOMAS et A. FAVRE, Biochimie, 56, 1974, p. 1089. (4) G. THOMAS et A. FAVRE, Biochem. Biophys. Res. Commun., 66, 1975, p. 1454. (5) T. V. RAMABHADRAN et J. JAGGER. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.. 73. 1976. D. 59. (6) G. THOMAS et A. FAVRE, VIIth International Congress on Photobiology, 1976, p. 140 (abstracts). (7) T. V. RAMABHADRAN, T. FOSSUM et J. JAGGER, J. Bac., 128, 1976, p. 671. Service de Biochimie du Développement, Institut de Recherche en Biologie moléculaire, du C.N.R.S. et de l'Université Paris VII, 2, place Jussieu, 75221 Paris Cedex 05. BIOCHIMIE. — Effets de quatre détergents sur la respiration de mitochondries isolées du foie de Rat. Note (*) de Jean-Paul Carreau et Paul Mazliak, présentée par M. Jean Roche. Aux faibles concentrations et en absence d'ADP exogène, les détergents ioniques et non-ioniques provoquent une augmentation de 3 à 400 % de l'intensité respiratoire. En présence d'ADP exogène, les détergents ioniques diminuent les intensités respiratoires; les détergents non-ioniques les augmentent. Aux plus fortes concentrations, les quatre détergents inhibent les oxydations dans l'ordre « Triton X 100 » &gt; DOC &gt; cholate &gt; « Tween 80 ». The effects of these four detergents (two non-ionic: Triton X 100 and Tween 80, two ionic: sodium cholate and sodium deoxycholate) upon the respiratory intensities of mitochondria and upon the ADP/O and respiratory control ratios were observed. At low concentrations and in the absence of exogenous ADP, non ionic
place Jussieu, 75221 Paris Cedex 05. BIOCHIMIE. — Effets de quatre détergents sur la respiration de mitochondries isolées du foie de Rat. Note (*) de Jean-Paul Carreau et Paul Mazliak, présentée par M. Jean Roche. Aux faibles concentrations et en absence d'ADP exogène, les détergents ioniques et non-ioniques provoquent une augmentation de 3 à 400 % de l'intensité respiratoire. En présence d'ADP exogène, les détergents ioniques diminuent les intensités respiratoires; les détergents non-ioniques les augmentent. Aux plus fortes concentrations, les quatre détergents inhibent les oxydations dans l'ordre « Triton X 100 » &gt; DOC &gt; cholate &gt; « Tween 80 ». The effects of these four detergents (two non-ionic: Triton X 100 and Tween 80, two ionic: sodium cholate and sodium deoxycholate) upon the respiratory intensities of mitochondria and upon the ADP/O and respiratory control ratios were observed. At low concentrations and in the absence of exogenous ADP, non ionic as well as ionic detergents provoked a threefold (or fourfold) increase of the respiratory intensities of mitochondria. At higher concentrations, the four detergents were inhibitory for mitochondrial oxidations in the order: Triton X 100 &gt; DOC &gt; cholate &gt; Tween 80. At increasing doses, the four detergents progressively decreased the phosphorylating capacities of mitochondria. Les détergents sont des substances qui modifient ou désagrègent les membranes biologiques en se substituant aux lipides des structures [e]. On pouvait donc prévoir, a priori, des modifications des capacités oxydatives et phosphorylantes de mitochondries isolées, placées en présence de diverses concentrations et de divers types de détergents, ioniques et non-ioniques. Ce sont ces modifications que nous étudions dans ce travail. Fig. 1. — Effets des détergents non ioniques sur l'intensité respiratoire des mitochondries de foie de Rat. En abscisse concentration de détergent (mg/ml). En ordonnée intensités respiratoires (en milimoles O2.mn '.mg -'). (a) Effets du « Tween 80 » sur la respiration ■■ en absence d'ADP exogène; ▲▲ en présence d'ADP exogène. (b) Effets du « Triton X 100 » sur la respiration ■■ en absence d'ADP exogène; ▲▲ en présence d'ADP exogène. TECHNIQUES EXPÉRIMENTALES. — Nous avons utilisé des Rats mâles adultes de la
phosphorylating capacities of mitochondria. Les détergents sont des substances qui modifient ou désagrègent les membranes biologiques en se substituant aux lipides des structures [e]. On pouvait donc prévoir, a priori, des modifications des capacités oxydatives et phosphorylantes de mitochondries isolées, placées en présence de diverses concentrations et de divers types de détergents, ioniques et non-ioniques. Ce sont ces modifications que nous étudions dans ce travail. Fig. 1. — Effets des détergents non ioniques sur l'intensité respiratoire des mitochondries de foie de Rat. En abscisse concentration de détergent (mg/ml). En ordonnée intensités respiratoires (en milimoles O2.mn '.mg -'). (a) Effets du « Tween 80 » sur la respiration ■■ en absence d'ADP exogène; ▲▲ en présence d'ADP exogène. (b) Effets du « Triton X 100 » sur la respiration ■■ en absence d'ADP exogène; ▲▲ en présence d'ADP exogène. TECHNIQUES EXPÉRIMENTALES. — Nous avons utilisé des Rats mâles adultes de la souche Sherman (ét. Janvier), nourris aux galettes UAR. Après décapitation, le foie est homogénéisé dans 4 volumes d'une solution de saccharose 0,25 M, Tris-HCl 2 mM (pH 7,4). Une première centrifugation est réalisée à 1 000 x g pendant 10 mn. Le surnageant est centrifugé à 8 700 x g pendant 10 mn. Le culot mitochondrial remis en suspension dans la solution de saccharose a) Effet du déoxycholate de sodium sur la respiration en absence d'ADP exogène; et en présence d'ADP exogène. b) Effet du cholate de sodium sur la respiration en absence d'ADP exogène; et en présence d'ADP exogène. Fig. 3. — Effets des détergents non ioniques sur les capacités phosphorylantes (ADP/O et contrôles respiratoires) de mitochondries isolées de foie de Rat. Fig. 4. — Effets des détergents ioniques sur les capacités phosphorylantes de mitochondries de foie de Rat. (a) Effet du cholate de sodium. ADP/O; contrôles respiratoires (CR). (b) Effet du déoxycholate de sodium ADP O; contrôles respiratoires (CR). (a) Effets du « Tween 80 » ADP/O; contrôles respiratoires (CR). (b) Effets du « Triton X 100 » ADP/O; contrôles respiratoires (CR). est centrifugé une nouvelle fois à 7 700 x g pendant 10 mn. Les protéines mitochondriales
pendant 10 mn. Le culot mitochondrial remis en suspension dans la solution de saccharose a) Effet du déoxycholate de sodium sur la respiration en absence d'ADP exogène; et en présence d'ADP exogène. b) Effet du cholate de sodium sur la respiration en absence d'ADP exogène; et en présence d'ADP exogène. Fig. 3. — Effets des détergents non ioniques sur les capacités phosphorylantes (ADP/O et contrôles respiratoires) de mitochondries isolées de foie de Rat. Fig. 4. — Effets des détergents ioniques sur les capacités phosphorylantes de mitochondries de foie de Rat. (a) Effet du cholate de sodium. ADP/O; contrôles respiratoires (CR). (b) Effet du déoxycholate de sodium ADP O; contrôles respiratoires (CR). (a) Effets du « Tween 80 » ADP/O; contrôles respiratoires (CR). (b) Effets du « Triton X 100 » ADP/O; contrôles respiratoires (CR). est centrifugé une nouvelle fois à 7 700 x g pendant 10 mn. Les protéines mitochondriales sont dosées par la méthode de Lowry et coll. Les mesures ampérométriques des activités respiratoires sont faites à 30° avec un oxygraphe muni d'une électrode de Clark (appareil « Gilson »). Le milieu de respiration est composé de saccharose 0,25 M, MgCl2 5 mM, EDTA 0,5 mM, phosphate mono-potassique 10 mM, Tampon Tris-HCl 10 mM (pH 7,4) et 0,75 mg de sérum albumine de bœuf (fraction IV) par millilitre de solution. L'alinéa de suspension mitochondriale utilisée au cours de ces mesures contient 1.9 mg de protéines. Le substrat utilisé est le succinate de sodium. Les détergents utilisés au cours de cette expérience sont le cholate et le déoxycholate (DOC) de sodium (détergents ioniques); le « Tween 80 » et le « Triton X 100 » (détergents non ioniques). RÉSULTATS. — Les mitochondries de foie de Rat que nous avons préparées présentent in vitro des caractéristiques comparables à celles trouvées par d'autres auteurs. Les figures 1 et 2 résument l'évolution, en fonction de la concentration des divers détergents, des intensités respiratoires. Les figures 3 et 4 résument l'évolution, en fonction de la concentration des divers détergents, des valeurs des rapports ADP/O et des coefficients de contrôle respiratoire. DISCUSSION. — Les détergents
mM, Tampon Tris-HCl 10 mM (pH 7,4) et 0,75 mg de sérum albumine de bœuf (fraction IV) par millilitre de solution. L'alinéa de suspension mitochondriale utilisée au cours de ces mesures contient 1.9 mg de protéines. Le substrat utilisé est le succinate de sodium. Les détergents utilisés au cours de cette expérience sont le cholate et le déoxycholate (DOC) de sodium (détergents ioniques); le « Tween 80 » et le « Triton X 100 » (détergents non ioniques). RÉSULTATS. — Les mitochondries de foie de Rat que nous avons préparées présentent in vitro des caractéristiques comparables à celles trouvées par d'autres auteurs. Les figures 1 et 2 résument l'évolution, en fonction de la concentration des divers détergents, des intensités respiratoires. Les figures 3 et 4 résument l'évolution, en fonction de la concentration des divers détergents, des valeurs des rapports ADP/O et des coefficients de contrôle respiratoire. DISCUSSION. — Les détergents se révèlent actifs sur la respiration à des doses bien inférieures aux doses nécessaires pour solubiliser totalement les lipides membranaires. Les mitochondries de foie de Rat contiennent en moyenne 0,41 mg de lipides par milligramme de protéines (8). Nous utilisons 1,9 mg de protéines mitochondriales par essai, ce qui correspond à 0,78 mg de lipides. Selon Helenius et Simons (1975), le rapport moyen détergent/lipides nécessaire pour obtenir la solubilisation complète des lipides est de 1,9 + 0,9 pour le « Triton X 100 » ou de 1,6 + 1,3 pour le DOC. Il faut donc en moyenne 1,9 x 0,78 = 1,48 mg (+ 0,7 mg) de « Triton X 100 » ou 1,6 x 0,78 = 1,25 mg (± 1 mg) de DOC dans la cuve respiratoire pour solubiliser totalement les lipides des mitochondries que nous y avons placées. Si les plus fortes quantités de détergents introduites dans la cuve (5 mg pour le « Triton X 100 » et 2 mg pour le DOC) sont suffisantes pour retirer les lipides des membranes mitochondriales, on note que les concentrations plus faibles que nous avons utilisées, de l'ordre de 0,1 mg/ml ou moins (correspondant à des quantités totales de détergent
à 0,78 mg de lipides. Selon Helenius et Simons (1975), le rapport moyen détergent/lipides nécessaire pour obtenir la solubilisation complète des lipides est de 1,9 + 0,9 pour le « Triton X 100 » ou de 1,6 + 1,3 pour le DOC. Il faut donc en moyenne 1,9 x 0,78 = 1,48 mg (+ 0,7 mg) de « Triton X 100 » ou 1,6 x 0,78 = 1,25 mg (± 1 mg) de DOC dans la cuve respiratoire pour solubiliser totalement les lipides des mitochondries que nous y avons placées. Si les plus fortes quantités de détergents introduites dans la cuve (5 mg pour le « Triton X 100 » et 2 mg pour le DOC) sont suffisantes pour retirer les lipides des membranes mitochondriales, on note que les concentrations plus faibles que nous avons utilisées, de l'ordre de 0,1 mg/ml ou moins (correspondant à des quantités totales de détergent de l'ordre de 0,165 mg dans la cuve) sont très inférieures aux doses exigées pour la solubilisation des lipides. Pourtant des phénomènes très intéressants sont observés à ces faibles doses. Les détergents non ioniques (Tween 80 et Triton X 100), à faibles concentrations (< 0,1 mg/ml), exaltent considérablement les intensités respiratoires des mitochondries, aussi bien en présence qu'en absence d'ADP. Les détergents ioniques (DOC et cholate) ont des effets quelque peu différents de ceux observés avec les détergents non ioniques. Les mitochondries ne réagissent pas de la même façon selon qu'il y a (ou qu'il n'y a pas) d'ADP exogène dans le milieu. En absence d'ADP, les détergents ioniques (comme les détergents non ioniques) exaltent considérablement les intensités respiratoires (fig. 2). En revanche, les détergents ioniques (même à faible concentration) provoquent une chute importante des intensités respiratoires lorsque les mitochondries sont placées en présence d'ADP. On peut penser que les détergents ioniques se lient, dans les membranes, préférentiellement à une catégorie particulière de lipides, tandis que les détergents non ioniques se lieraient indifféremment à tous. De la sorte, des effets différents peuvent être attendus lorsque les mitochondries respirent en présence de l'une ou l'autre sorte de détergents. CONCLUSIONS. — On
respiratoires des mitochondries, aussi bien en présence qu'en absence d'ADP. Les détergents ioniques (DOC et cholate) ont des effets quelque peu différents de ceux observés avec les détergents non ioniques. Les mitochondries ne réagissent pas de la même façon selon qu'il y a (ou qu'il n'y a pas) d'ADP exogène dans le milieu. En absence d'ADP, les détergents ioniques (comme les détergents non ioniques) exaltent considérablement les intensités respiratoires (fig. 2). En revanche, les détergents ioniques (même à faible concentration) provoquent une chute importante des intensités respiratoires lorsque les mitochondries sont placées en présence d'ADP. On peut penser que les détergents ioniques se lient, dans les membranes, préférentiellement à une catégorie particulière de lipides, tandis que les détergents non ioniques se lieraient indifféremment à tous. De la sorte, des effets différents peuvent être attendus lorsque les mitochondries respirent en présence de l'une ou l'autre sorte de détergents. CONCLUSIONS. — On peut suggérer une explication globale aux phénomènes que nous avons observés. Les détergents ont la propriété de pénétrer à l'intérieur de la membrane en se glissant entre les molécules lipidiques et de se substituer aux lipides. Pour des concentrations progressivement croissantes, il y aurait d'abord modification de la structure membranaire par perturbation de la phase lipidique puis, dans un deuxième temps, solubilisation des lipides membranaires par formation de micelles. Les faibles doses de détergent démasqueraient dans un premier stade, les sites actifs des enzymes de la chaîne respiratoire et les rendraient plus accessibles aux substrats. Les transporteurs d'électrons pourraient aussi devenir plus mobiles dans les membranes. Ces changements expliqueraient les activations observées. Les plus fortes concentrations de détergents provoqueraient la solubilisation progressive des lipides membranaires d'où des changements de conformation des protéines et la chute des capacités respiratoires. Les quatre détergents étudiés présentent en définitive une toxicité décroissante pour les mitochondries dans l'ordre suivant : « Triton X 100 » > DOC > cholate > « Tween 80 ». Séance du 17 janvier 1977. Y. KAGAWA. Biochim. Biophys. Acta, 265, 1972, p. 297-338. R. COLEMAN. Biochim. Biophys. Acta, 300, 1973, p. 1-30. O. H. LOWRY, N. J. ROSEBROGH, A. L.
par perturbation de la phase lipidique puis, dans un deuxième temps, solubilisation des lipides membranaires par formation de micelles. Les faibles doses de détergent démasqueraient dans un premier stade, les sites actifs des enzymes de la chaîne respiratoire et les rendraient plus accessibles aux substrats. Les transporteurs d'électrons pourraient aussi devenir plus mobiles dans les membranes. Ces changements expliqueraient les activations observées. Les plus fortes concentrations de détergents provoqueraient la solubilisation progressive des lipides membranaires d'où des changements de conformation des protéines et la chute des capacités respiratoires. Les quatre détergents étudiés présentent en définitive une toxicité décroissante pour les mitochondries dans l'ordre suivant : « Triton X 100 » > DOC > cholate > « Tween 80 ». Séance du 17 janvier 1977. Y. KAGAWA. Biochim. Biophys. Acta, 265, 1972, p. 297-338. R. COLEMAN. Biochim. Biophys. Acta, 300, 1973, p. 1-30. O. H. LOWRY, N. J. ROSEBROGH, A. L. FARR, et R. J. RANDALL. J. Biol. Chem., 193, 1951, p. 265-275. A. HELINUS et K. SIMONS. Biochim. Biophys. Acta, 415, 1975, p. 1-27. E. KLUCIS, D., LL. OYED et G. L. ROACH, Biotechnol. and Bioeng., 10, 1968, p. 321-330. F. CARVALHO GUERRA, A. A. ALBUQUERQUE, J. M. SANTOS MOTA et L. M. G. VANGOLDE, Biochim. Biophys. Acta, 234, 1971, p. 222-225. B. CHANCE et G. R. WILLIAMS, J. Biol. Chem., 217, 1955, p. 383-393. G. S. GETZ, W. BARTLEY, F. STIRPE, B. M. NOTTON et A. RENSHAW, Biochem. J., 83, 1962, p. 181-191. Laboratoire de Physiologie cellulaire, 12, rue Cuvier, 75005 Paris. BIOCHIMIE. — Solubilisation et purification de l'ATPase (Na+-K+) de la membrane des erythrocytes humains sous l'action du déoxycholate de sodium. Note de Josette Chuijon, Monique Thuet et Marie-Hélène Authier, présentée par M. Jean Roche. Une préparation ATPasique (Na+-K+) de la membrane du globule rouge humain est purifiée par traitement avec le déoxycholate de sodium à force ionique élevée. Après purification, 60 % de l'activité ATPasique liée aux membranes natives est retrouvée. The (Na+-K+)-dependent ATPase prepared from human erythrocyte ghosts has been purified with sodium deoxycholate in a high ionic medium. After the purification, 60 % of the