jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
par M. Alfred Fessard. Les actions synaptiques excitatrices qui sous-tendent les mouvements oculaires saccadiques provoqués par stimulation du colliculus supérieur ont été étudiées chez le Chat, encéphale isolé, non anesthésié. L'enregistrement intracellulaire des motoneurones du muscle extra-oculaire droit médian révèle une projection au moins disynaptique, excitatrice du colliculus supérieur sur les motoneurones du droit médian ipsilatéral (latence 1,3 à 2,6 ms). The synaptic actions which might underlie the saccadic eye movements induced by stimulation of the superior colliculus have been studied in the unanesthetized cat "encephale isolé", Intracellular recordings of extraocular muscle medial rectus motoneurons have revealed a minimally disynaptic excitatory projection from the superior colliculus to the ipsilateral medial rectus motoneurons (latency 1.3 to 2.6 msec). C. R. Note. La stimulation unilatérale du colliculus supérieur (CS) provoque des mouvements saccadiques des yeux contraversifs, en général conjugués CC), el), (13). La composante horizontale de ces mouvements est produite par la contraction des muscles droit latéral contralatéral (DL) et droit médian ipsilatéral (DM). L'organisation neuronique des effets excitants sur les motoneurones du DL a été récemment analysée [CS), (u)]; des preuves ont été présentées de l'existence d'une liaison disynaptique efficace empruntant la voie croisée tectobulbaire [e), (9)] et des neurones de relais concentrés à des niveaux postérieurs du tegmentum paramédian pontique au voisinage du noyau de la sixième paire de nerfs crâniens. Le présent travail concerne l'étude de voies analogues concernant les motoneurones du DM. MÉTHODES. — Le dispositif expérimental d'enregistrement et de stimulation est indiqué sur la figure 1 A. Des chats encéphalés isolés, curarisés sous anesthésie locale (xylocaïne 4 %) et traités par injections de morphine (3-5 mg/kg s. c.) ont été utilisés. Des détails concernant les méthodes d'enregistrement et de stimulation ont été décrits dans des publications antérieures. Les micro-électrodes pour enregistrement intra ou extra-cellulaire de l’activité des motoneurones étaient remplies de citrate de potassium 2 M. L’identification des motoneurones du DM était réalisée grâce à trois critères : 1° la stimulation antidromique de la branche du nerf du DM dans l’orbite par des électrodes d’argent bipolaires; 2° l’existence d’un potentiel postsynaptique excitateur (PPSE) disynaptique après stimulation orthodromique
relais concentrés à des niveaux postérieurs du tegmentum paramédian pontique au voisinage du noyau de la sixième paire de nerfs crâniens. Le présent travail concerne l'étude de voies analogues concernant les motoneurones du DM. MÉTHODES. — Le dispositif expérimental d'enregistrement et de stimulation est indiqué sur la figure 1 A. Des chats encéphalés isolés, curarisés sous anesthésie locale (xylocaïne 4 %) et traités par injections de morphine (3-5 mg/kg s. c.) ont été utilisés. Des détails concernant les méthodes d'enregistrement et de stimulation ont été décrits dans des publications antérieures. Les micro-électrodes pour enregistrement intra ou extra-cellulaire de l’activité des motoneurones étaient remplies de citrate de potassium 2 M. L’identification des motoneurones du DM était réalisée grâce à trois critères : 1° la stimulation antidromique de la branche du nerf du DM dans l’orbite par des électrodes d’argent bipolaires; 2° l’existence d’un potentiel postsynaptique excitateur (PPSE) disynaptique après stimulation orthodromique du nerf vestibulaire ipsilatéral (Vi) qui différencie les motoneurones du DM de ceux du droit inférieur et du petit oblique ; 3° l’existence d’une bonne corrélation entre les fluctuations du potentiel de membrane des motoneurones du DM et l’activité du nerf du DM enregistrée dans l’orbite par les mêmes électrodes que celles utilisées pour la stimulation antidromique. La stimulation mono ou bipolaire du CS ipsilatéral du côté de l’enregistrement des motoneurones était accomplie grâce à des aiguilles d’acier affinées placées de façon stéréotaxique. La localisation des points de stimulation était faite par une lésion électrolytique et repérage histologique. Les courants de stimulation variaient de 50 μA à 0,8 mA. L’efficacité de la stimulation du CS était vérifiée avant curarisation par observation du mouvement des yeux et après curarisation par enregistrement de la décharge dans le nerf du DM. RÉSULTATS. — Les potentiels de champ produits par la stimulation du CS dans la partie rostrale du noyau oculomoteur ipsilatéral, où sont localisés les motoneurones du DM, pouvaient être enregistrés dans les limites du champ antidromique du DM. Ils consistaient en général en une onde lente positive, avec des inflexions négatives superposées (fig. 1 C). Ces inflexions négatives coïncidaient avec les bouffées
que celles utilisées pour la stimulation antidromique. La stimulation mono ou bipolaire du CS ipsilatéral du côté de l’enregistrement des motoneurones était accomplie grâce à des aiguilles d’acier affinées placées de façon stéréotaxique. La localisation des points de stimulation était faite par une lésion électrolytique et repérage histologique. Les courants de stimulation variaient de 50 μA à 0,8 mA. L’efficacité de la stimulation du CS était vérifiée avant curarisation par observation du mouvement des yeux et après curarisation par enregistrement de la décharge dans le nerf du DM. RÉSULTATS. — Les potentiels de champ produits par la stimulation du CS dans la partie rostrale du noyau oculomoteur ipsilatéral, où sont localisés les motoneurones du DM, pouvaient être enregistrés dans les limites du champ antidromique du DM. Ils consistaient en général en une onde lente positive, avec des inflexions négatives superposées (fig. 1 C). Ces inflexions négatives coïncidaient avec les bouffées de décharge dans le nerf du DM. L’origine de la positivité lente n’a pas été éclaircie mais les composantes négatives du potentiel de champ complexe peuvent être interprétées comme reflétant les courants synaptiques et d’action produits par l’excitation des motoneurones du DM après stimulation tectale. Ceci est démontré sur la figure 2 B, où l’on a indiqué simultanément les enregistrements intracellulaires (B 1 et B 2), le potentiel de champ lent (B 3) et la décharge des fibres motrices dans le nerf (B 4). Fig. 1. — Potentiels de champs extra-cellulaires produits par stimulation du colliculus supérieur. A, représentation schématique de la stimulation (stim) des couches superficielles du colliculus supérieur (CS) et de la localisation de l’électrode d’enregistrement (Rec), qui est placée dans le noyau oculomoteur; B, potentiels de champs obtenus après stimulation antidromique du nerf du muscle droit médian dans l’orbite (Ant), et après stimulation du nerf vestibulaire ipsilatéral (Vi); C, potentiels de champs obtenus après stimulation répétitive du CS (3 chocs). L’enregistrement inférieur est l’activité du nerf droit médian. Les flèches indiquent les fortes négativités sur le tracé du potentiel de champ qui correspondent à des décharges dans le nerf. Seuls les PPSE de latence courte produits par
figure 2 B, où l’on a indiqué simultanément les enregistrements intracellulaires (B 1 et B 2), le potentiel de champ lent (B 3) et la décharge des fibres motrices dans le nerf (B 4). Fig. 1. — Potentiels de champs extra-cellulaires produits par stimulation du colliculus supérieur. A, représentation schématique de la stimulation (stim) des couches superficielles du colliculus supérieur (CS) et de la localisation de l’électrode d’enregistrement (Rec), qui est placée dans le noyau oculomoteur; B, potentiels de champs obtenus après stimulation antidromique du nerf du muscle droit médian dans l’orbite (Ant), et après stimulation du nerf vestibulaire ipsilatéral (Vi); C, potentiels de champs obtenus après stimulation répétitive du CS (3 chocs). L’enregistrement inférieur est l’activité du nerf droit médian. Les flèches indiquent les fortes négativités sur le tracé du potentiel de champ qui correspondent à des décharges dans le nerf. Seuls les PPSE de latence courte produits par stimulation du CS ont été analysés en détails. Ils sont souvent d’un caractère composite et présentent plusieurs traits communs avec les PPSE analogues induits dans les motoneurones du DL. Le premier choc d’un train de stimulation tectale produit parfois une réponse (fig. 2 C) si l’intensité est maintenue au voisinage du seuil de déclenchement de la saccade oculaire telle qu’elle est notée avant curarisation. La stimulation répétitive avec des intervalles entre chocs de 4 à 6 ms, conduit à un accroissement de l’amplitude des PPSE qui était souvent accompli par addition de composantes excitatrices de plus longue latence (fig. 2 D). La latence des PPSE les plus précoces s'étend de 1,3 à 2,6 ms. Cette latence est de 0,4 à 0,5 ms plus longue que pour les motoneurones du DL. La possibilité que les potentiels synaptiques observés soient dus à une diffusion du courant de stimulation à la Formation réticulée mésencéphalique (FRM) voisine du CS a été écartée par des expériences au cours desquelles une comparaison a été faite entre la stimulation du CS et de la FRM. Les résultats permettent de conclure que les effets excitateurs observés dans cette étude sont dus à une action tecto-oculomotrice et non à
du seuil de déclenchement de la saccade oculaire telle qu’elle est notée avant curarisation. La stimulation répétitive avec des intervalles entre chocs de 4 à 6 ms, conduit à un accroissement de l’amplitude des PPSE qui était souvent accompli par addition de composantes excitatrices de plus longue latence (fig. 2 D). La latence des PPSE les plus précoces s'étend de 1,3 à 2,6 ms. Cette latence est de 0,4 à 0,5 ms plus longue que pour les motoneurones du DL. La possibilité que les potentiels synaptiques observés soient dus à une diffusion du courant de stimulation à la Formation réticulée mésencéphalique (FRM) voisine du CS a été écartée par des expériences au cours desquelles une comparaison a été faite entre la stimulation du CS et de la FRM. Les résultats permettent de conclure que les effets excitateurs observés dans cette étude sont dus à une action tecto-oculomotrice et non à une excitation primaire des structures réticulaires. Les PPSE obtenus par stimulation tectale ont des latences plus longues que ceux produits par stimulation de la MRF. Fig. 2. — Potentiels postsynaptiques enregistrés dans les motoneurones du muscle droit médian après stimulation du colliculus supérieur ipsilatéral. A, réponse antidromique (Ant) et PPSE produit par stimulation du labyrinthe ipsilatéral (Vi). Tracé du bas, enregistrement continu; tracé du haut, enregistrement filtré à haut gain; B, comparaison d’enregistrements simultanés : 1, 2, d’un motoneurone du droit médian (mêmes notations qu’en A); 3, du potentiel de champ extra-cellulaire au voisinage de ce motoneurone; 4, de l’activité des fibres motrices dans l’orbite; C, PPSE induit par stimulation du colliculus supérieur ipsilatéral avec un seul choc; D, E, PPSE successifs induits par stimulation répétitive. CONCLUSION. — Nos résultats démontrent que les effets de la stimulation du CS sur les motoneurones du DM ipsilatéral sont semblables à ceux observés dans le cas du DL contralatéral. Les valeurs des latences des PPSE dans les motoneurones du DM montrent clairement que la projection tectale la plus courte est au moins disynaptique. Aucune indication d’une projection monosynaptique n’a été trouvée, bien qu’une faible projection directe sur les motoneurones du DL ait été
produit par stimulation du labyrinthe ipsilatéral (Vi). Tracé du bas, enregistrement continu; tracé du haut, enregistrement filtré à haut gain; B, comparaison d’enregistrements simultanés : 1, 2, d’un motoneurone du droit médian (mêmes notations qu’en A); 3, du potentiel de champ extra-cellulaire au voisinage de ce motoneurone; 4, de l’activité des fibres motrices dans l’orbite; C, PPSE induit par stimulation du colliculus supérieur ipsilatéral avec un seul choc; D, E, PPSE successifs induits par stimulation répétitive. CONCLUSION. — Nos résultats démontrent que les effets de la stimulation du CS sur les motoneurones du DM ipsilatéral sont semblables à ceux observés dans le cas du DL contralatéral. Les valeurs des latences des PPSE dans les motoneurones du DM montrent clairement que la projection tectale la plus courte est au moins disynaptique. Aucune indication d’une projection monosynaptique n’a été trouvée, bien qu’une faible projection directe sur les motoneurones du DL ait été précédemment démontrée. Séance du 8 décembre 1976. J. ALTMAN et M. B. CARPENTER, J. Comp. Neurol., 116, 1961, p. 157-177. R. BAKER et A. BERTHOZ. Comptes rendus, 275, série D, 1972, p. 425. R. BAKER et A. BERTHOZ, J. Neurophysiol., 37, 1974, p. 195-217. R. BAKER et S. M. HIGHSTEIN, Brain Res., 1976 (sous presse). A. GRANTYN et R. GRANTYN, Brain Res., 105, 1976, p. 269-285. A. GRANTYN, R. GRANTYN et T. HEUER, Acta Biol. Med. Germ., 34, 1975, p. 821-835. 7) S. HESS, S. BURGI et V. BUCHER, Mschr. Psychiat. Neurol., 112, 1946, p. 1-52. (8) J. HYDE et R. G. EASON, J. Neurophysiol., 22, 1959, p. 666-678. (9) K. KAWAMURA, A. BRODAL et G. HODDEVIK, Exp. Brain Res., 19, 1974, p. 1-19. (10) H. NAITO, K. I. TANIMURA, N. TAGA et Y. HOSOYA, Brain Res., 81, 1974, p. 215-231. (11) W. PRECHT, P. C. SCHWINDT et P. C. MAGHERINI, Brain Res., 82, 1974, p. 27-40. (12) A. Roucoux et M. CROMMELINCK, Brain Res., 1976, p. 349-363. (13) J. SYKA, M. STRASCHILL et T. RADIL-WEISS, T. V. ZIKMUND (éd.), Slovak Acad. Sci., Bratislava, 1973, p. 33-43. Laboratoire de Physiologie du Travail du C.N.R.S., 41, rue Gay-Lussac, 75005 Paris. BIOLOGIE.
Brain Res., 1976 (sous presse). A. GRANTYN et R. GRANTYN, Brain Res., 105, 1976, p. 269-285. A. GRANTYN, R. GRANTYN et T. HEUER, Acta Biol. Med. Germ., 34, 1975, p. 821-835. 7) S. HESS, S. BURGI et V. BUCHER, Mschr. Psychiat. Neurol., 112, 1946, p. 1-52. (8) J. HYDE et R. G. EASON, J. Neurophysiol., 22, 1959, p. 666-678. (9) K. KAWAMURA, A. BRODAL et G. HODDEVIK, Exp. Brain Res., 19, 1974, p. 1-19. (10) H. NAITO, K. I. TANIMURA, N. TAGA et Y. HOSOYA, Brain Res., 81, 1974, p. 215-231. (11) W. PRECHT, P. C. SCHWINDT et P. C. MAGHERINI, Brain Res., 82, 1974, p. 27-40. (12) A. Roucoux et M. CROMMELINCK, Brain Res., 1976, p. 349-363. (13) J. SYKA, M. STRASCHILL et T. RADIL-WEISS, T. V. ZIKMUND (éd.), Slovak Acad. Sci., Bratislava, 1973, p. 33-43. Laboratoire de Physiologie du Travail du C.N.R.S., 41, rue Gay-Lussac, 75005 Paris. BIOLOGIE. — Effets de divers agents (ionophores du Ca++ et du K +, organomercuriels, dithiols, colchicine et cytochalasine B) sur la maturation et la différenciation sans clivage chez l’œuf de Chétoptère. Note de Jean Brachet, Correspondant de l’Académie et Suzanne Denis-Donini. L’induction de la maturation dans les oocytes de Chétoptère exige la présence d’ions Ca++ dans le milieu; ces ions ne sont pas nécessaires à la différenciation sans clivage. L’ionophore du Ca++ A 23187 induit la maturation et la réaction corticale si le milieu contient des ions Ca++. La différenciation sans clivage peut suivre. La valinomycine provoque une lente rupture de la vésicule germinative, suivie d’une ségrégation marquée de l’hyaloplasme et du vitellus. Le PHMPS, mais pas le DTT, induit la maturation. La différenciation sans clivage est plus sensible à la colchicine qu’à la cytochalasine B. Induction of maturation in Chaetopterus oocytes requires the presence of Ca++ ions in the medium, but differentiation without cleavage can proceed in the absence of this cation. The Ca++ ionophore A 23187 induces both maturation and the cortical reaction provided that Ca++ ions are present in the medium; differentiation without cleavage may follow. Valinomycin slowly induces germinal vesicle breakdown, which is followed by a sharp
la présence d’ions Ca++ dans le milieu; ces ions ne sont pas nécessaires à la différenciation sans clivage. L’ionophore du Ca++ A 23187 induit la maturation et la réaction corticale si le milieu contient des ions Ca++. La différenciation sans clivage peut suivre. La valinomycine provoque une lente rupture de la vésicule germinative, suivie d’une ségrégation marquée de l’hyaloplasme et du vitellus. Le PHMPS, mais pas le DTT, induit la maturation. La différenciation sans clivage est plus sensible à la colchicine qu’à la cytochalasine B. Induction of maturation in Chaetopterus oocytes requires the presence of Ca++ ions in the medium, but differentiation without cleavage can proceed in the absence of this cation. The Ca++ ionophore A 23187 induces both maturation and the cortical reaction provided that Ca++ ions are present in the medium; differentiation without cleavage may follow. Valinomycin slowly induces germinal vesicle breakdown, which is followed by a sharp segregation between hyaloplasm and yolk, PHMPS, but not DTT, induces maturation. Differentiation without cleavage is more sensitive to colchicine than to cytochalasin B. On sait, depuis F. Lillie [(1), (2)], que l’addition d’un excès de KCl à l’eau de mer induit la maturation et la « différenciation sans clivage » de l’œuf de Chétoptère : il se forme finalement des larves unicellulaires, mais plurinucléées ; elles sont ciliées et nagent activement. La différenciation sans clivage est le résultat d’une succession de cycles monastériens [(3), (4)] qui conduisent à une forte synthèse d’ADN (5). En raison du rôle important joué par les ions Ca++ dans l’activation des œufs de très nombreuses espèces (6), on pouvait se demander si ce cation intervient aussi chez une espèce où l’inducteur classique de l’entrée en maturation est le potassium. D’autre part, divers travaux [C), (8)] ont montré que les groupes sulfhydriles (—SH) jouent un rôle lors de l’entrée en maturation des oocytes d’Étoiles de mer : elle est induite par un dithiol, le dithiothreitol (DTT) et inhibée par un organomercuriel, le p-hydroxymercuriphénylsulfonate (PHMPS). Mais c’est l’inverse qui se produit chez le Xénope : le PHMPS induit la maturation (9) et le DTT l’inhibe lorsqu’on l’a
de l’œuf de Chétoptère : il se forme finalement des larves unicellulaires, mais plurinucléées ; elles sont ciliées et nagent activement. La différenciation sans clivage est le résultat d’une succession de cycles monastériens [(3), (4)] qui conduisent à une forte synthèse d’ADN (5). En raison du rôle important joué par les ions Ca++ dans l’activation des œufs de très nombreuses espèces (6), on pouvait se demander si ce cation intervient aussi chez une espèce où l’inducteur classique de l’entrée en maturation est le potassium. D’autre part, divers travaux [C), (8)] ont montré que les groupes sulfhydriles (—SH) jouent un rôle lors de l’entrée en maturation des oocytes d’Étoiles de mer : elle est induite par un dithiol, le dithiothreitol (DTT) et inhibée par un organomercuriel, le p-hydroxymercuriphénylsulfonate (PHMPS). Mais c’est l’inverse qui se produit chez le Xénope : le PHMPS induit la maturation (9) et le DTT l’inhibe lorsqu’on l’a stimulée par la progestérone (travail en préparation). Il nous a paru intéressant de rechercher si l’œuf de Chétoptère se comporte comme celui de l’Étoile de mer, ou celui du Xénope à cet égard. Nous avons donc étudié les effets de la balance ionique (Na +, K +, Ca++), du PHMPS et du DTT sur les oocytes de Chétoptère et ceux des ionophores du Ca++ (A 23187) et du K+ (valinomycine). Dans quelques expériences, les effets de la colchicine et de la cytochalasine B, qui empêchent l’assemblage des microtubules et des microfilaments respectivement, ont été étudiés aussi. MÉTÉOLES ET MÉTHODES. — Les oocytes ont été obtenus en sectionnant les parapodes de femelles mûres de Chaetopterus variopedatus dans de l’eau de mer artificielle (Tyler) dépourvue de Ca++ et de K+ à pH 7,5. Après 2 lavages dans ce milieu, mais à pH 5,5 (afin de dissoudre la gangue muqueuse) et 2 lavages dans l’eau de mer artificielle sans K+, ni Ca++ à pH 7,5, les oocytes étaient prêts à l’emploi. Ces divers traitements avaient pour but d’empêcher la maturation spontanée des oocytes. Une partie des oocytes traités ont été fixés à l’alcool-formol-acétique (6 : 3 : 1) enrobés, coupés et colorés soit
et du DTT sur les oocytes de Chétoptère et ceux des ionophores du Ca++ (A 23187) et du K+ (valinomycine). Dans quelques expériences, les effets de la colchicine et de la cytochalasine B, qui empêchent l’assemblage des microtubules et des microfilaments respectivement, ont été étudiés aussi. MÉTÉOLES ET MÉTHODES. — Les oocytes ont été obtenus en sectionnant les parapodes de femelles mûres de Chaetopterus variopedatus dans de l’eau de mer artificielle (Tyler) dépourvue de Ca++ et de K+ à pH 7,5. Après 2 lavages dans ce milieu, mais à pH 5,5 (afin de dissoudre la gangue muqueuse) et 2 lavages dans l’eau de mer artificielle sans K+, ni Ca++ à pH 7,5, les oocytes étaient prêts à l’emploi. Ces divers traitements avaient pour but d’empêcher la maturation spontanée des oocytes. Une partie des oocytes traités ont été fixés à l’alcool-formol-acétique (6 : 3 : 1) enrobés, coupés et colorés soit à l’Unna (vert de méthyle-pyronine), soit par la réaction de Feulgen. Fig. 1. — (a) Différenciation sans clivage après traitement pendant 30 mn par l’ionophore A 23187 et report dans l’eau de mer pendant 18 h 30 mn (Unna, G x 1 200). (b) Réplication de l’ADN dans un œuf du même lot (Feulgen, G x 1 200). RÉSULTATS. — Conformément aux résultats de Ikegami et coll. (10), qui ont été publiés pendant que nos recherches étaient en cours et qui ont été effectuées sur une autre espèce de Chétoptère, l’entrée en maturation n’est plus provoquée par l’addition d’un excès de KCl (0,5 M, 10 %) si l’eau de mer est privée de Ca++. Si, au contraire, on active les œufs par KCl suivant le procédé classique et si on les transfère ensuite dans de l’eau de mer acalcique, la différenciation sans clivage se déroule normalement. L’ionophore A 23187 (0,5 μg/ml) provoque, en quelques minutes, l’entrée en maturation et le soulèvement de la membrane de fécondation : il n’est actif que si des ions Ca++ sont présents dans le milieu; les ions K+ ne jouent aucun rôle visible. Si on reporte des œufs traités par l’ionophore dans de l’eau de
du même lot (Feulgen, G x 1 200). RÉSULTATS. — Conformément aux résultats de Ikegami et coll. (10), qui ont été publiés pendant que nos recherches étaient en cours et qui ont été effectuées sur une autre espèce de Chétoptère, l’entrée en maturation n’est plus provoquée par l’addition d’un excès de KCl (0,5 M, 10 %) si l’eau de mer est privée de Ca++. Si, au contraire, on active les œufs par KCl suivant le procédé classique et si on les transfère ensuite dans de l’eau de mer acalcique, la différenciation sans clivage se déroule normalement. L’ionophore A 23187 (0,5 μg/ml) provoque, en quelques minutes, l’entrée en maturation et le soulèvement de la membrane de fécondation : il n’est actif que si des ions Ca++ sont présents dans le milieu; les ions K+ ne jouent aucun rôle visible. Si on reporte des œufs traités par l’ionophore dans de l’eau de mer artificielle (même privée de K+ ou de Ca++), on obtient, outre des clivages anarchiques et précytolytiques, une différenciation sans clivage plus ou moins parfaite (fig. 1 a, b). 2 ng/ml) induit, en quelques heures, la rupture de la vésicule germinative; mais la maturation avorte rapidement, probablement parce que le fuseau de maturation ne se forme pas. Un traitement de 30 mn suffit pour induire, après report dans de l'eau de mer artificielle, l'entrée en maturation de 70 à 100 % des œufs, même si elle est privée de Ca++ et de Mg++ pendant 15-20 h dans la valinomycine (que l'eau de mer contienne ou non des ions K+ et Ca++), il se forme, dans 50-60 % des cas, un volumineux lobopode hyalin, qui peut parfois se séparer complètement de la masse vitelline (fig. 2). Ce lobopode est extrêmement basophile à l'Unna; le noyau, qui est souvent petit et pycnotique, se trouve toujours dans la masse vitelline. Le PHMPS 3.10-4 induit, après un traitement de 1 h environ, une maturation complète et le soulèvement de la membrane de fécondation. Il est toxique en traitement continu (fragmentation de l'œuf, pycnoses). En cas de report dans de l'eau de mer artificielle après