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présentent tous sauf un une migration anodique et peuvent se répartir en 3 groupes de mobilité différente (fig. 1). Certains sont toujours présents [(6), (1), (8)] et nettement marqués (arcs 6, 7, 8 et 1 lorsqu'il est observé), d'autres sont plus discrets [e), (9X (1°)]; les arcs 2, 4, 5, faibles ne sont pas toujours observés. Il ne semble pas y avoir de différence significative entre les images immunoélectrophorètiques de Sacculines provenant de Crabes mâles ou de Crabes femelles. (b) fractions isolées. Elles sont analysées en les faisant réagir en même temps que de l'hémolymphe totale avec le sérum antisacculine. La fraction 1' donne 2 zones de précipitation nettes. Leurs distances relatives de migration comparées à celles des protéines d'une hémolymphe totale, conduit à les assimiler aux arcs 6 et 7; il apparaît une troisième zone plus faible correspondant à l'arc 3 (fig. 2). En réaction de double diffusion, on observe pour l'extrait 1' 3 arcs de précipitation se raccordant à ceux de 3 constituants du sérum. ## CORRECTION ## L'association entre Carcinus mediterraneus et Sacculina carcini a été envisagée par de nombreux auteurs en raison des modifications de la croissance et de la sexualité du Crabe sous l'effet du parasite. D'autres travaux ont établi des comparaisons entre Crabes sains et parasités [voir revue dans (1)]. Cependant, les mécanismes d'action de la Sacculine sont encore mal connus; on ignore également s'il existe chez le Crabe une réaction de défense à la présence de la Sacculine. C'est pourquoi il nous a paru intéressant d'analyser les protéines sériques du Crabe et celles de la Sacculine. MÉTODES. — 1° Récolte des animaux, préparation des hémolymphes. — Les Crabes sacculinés des 2 sexes proviennent des étangs de Thau et de Vic (Hérault). Ils ont une largeur céphalothoracique de 21 à 62 mm. Les stades d'intermue sont déterminés par la méthode de Drach et Techernigovtzeff (1); tous les animaux examinés étaient au stade C4 du cycle d'intermue. Les hémolymphes sont prélevées selon la technique déjà indiquée (1). Pour la Sacculine, elles sont rassemblées en « pool », réparties en aliquots de 50 ml et congelées
parasite. D'autres travaux ont établi des comparaisons entre Crabes sains et parasités [voir revue dans (1)]. Cependant, les mécanismes d'action de la Sacculine sont encore mal connus; on ignore également s'il existe chez le Crabe une réaction de défense à la présence de la Sacculine. C'est pourquoi il nous a paru intéressant d'analyser les protéines sériques du Crabe et celles de la Sacculine. MÉTODES. — 1° Récolte des animaux, préparation des hémolymphes. — Les Crabes sacculinés des 2 sexes proviennent des étangs de Thau et de Vic (Hérault). Ils ont une largeur céphalothoracique de 21 à 62 mm. Les stades d'intermue sont déterminés par la méthode de Drach et Techernigovtzeff (1); tous les animaux examinés étaient au stade C4 du cycle d'intermue. Les hémolymphes sont prélevées selon la technique déjà indiquée (1). Pour la Sacculine, elles sont rassemblées en « pool », réparties en aliquots de 50 ml et congelées à −29°C jusqu'au moment de leur utilisation. Une étude comparative a été réalisée à partir d'hémolymphes fraîches avec les mêmes résultats. 2° Dosage des protéines. — Les concentrations en protéines des hémolymphes sont déterminées par la méthode de Lowry et coll. (4). La concentration d'un « pool » de Sacculine est de 37 mg/ml; celle d'un « pool » de Crabes parasités mâles atteint 69 mg/ml. 3° Électrophorèses. — La séparation des protéines s'effectue par électrophorèse en gel d'acrylamide à 6 % en tampon tris-glycine pH 8,5 et en gel de gradient de concentration continu (4-24 %) avec un tampon tris-borate, pH 8,2 selon la technique déjà indiquée (1) mais sans EDTA. La migration est réalisée à 4° et les protéines sont révélées par l'amidoschwartz. Les fractions cupriques sont mises en évidence par l'acide rubéanique (1), les colorations à l'APS et au noir Soudan ont permis de caractériser les glyco-lipoprotéines. 4° Isolement et concentration des fractions. — Selon leur type de migration les fractions sont recueillies par élution dans le tampon ou par broyage du gel. Le broyat est centrifugé à 6 000 tr/min pendant 10 min; puis le surnageant est concentré par dialyse sous vide à 4°. Les fractions
est de 37 mg/ml; celle d'un « pool » de Crabes parasités mâles atteint 69 mg/ml. 3° Électrophorèses. — La séparation des protéines s'effectue par électrophorèse en gel d'acrylamide à 6 % en tampon tris-glycine pH 8,5 et en gel de gradient de concentration continu (4-24 %) avec un tampon tris-borate, pH 8,2 selon la technique déjà indiquée (1) mais sans EDTA. La migration est réalisée à 4° et les protéines sont révélées par l'amidoschwartz. Les fractions cupriques sont mises en évidence par l'acide rubéanique (1), les colorations à l'APS et au noir Soudan ont permis de caractériser les glyco-lipoprotéines. 4° Isolement et concentration des fractions. — Selon leur type de migration les fractions sont recueillies par élution dans le tampon ou par broyage du gel. Le broyat est centrifugé à 6 000 tr/min pendant 10 min; puis le surnageant est concentré par dialyse sous vide à 4°. Les fractions les plus rapides sont éluées dans le tampon de migration après avoir traversé le gel. Elles sont ensuite dialysées et concentrées comme précédemment. 5° Préparation des immunsérums. — Elle a été réalisée dans le service du professeur A. Capron à l'Institut Pasteur de Lille, selon la méthode de Vaitukaitis (6). Les sérums sont répartis en aliquots de 0,9 ml et lyophilisés. Ils sont ensuite employés purs ou concentrés. Analyses immunochimiques. — Les échantillons sont éprouvés par la technique en double diffusion d'Ouchterlony (2) et par immunoélectrophorèses en gel d'agarose indubiose A 37 à 1 %, tampon tris-barbital sodium barbital pH 8,8 uni et bidimensionnelles (8)(9). Les arcs de précipitation sont observés à l'état frais et après coloration à l'amidoschwartz ou au bleu de Coomassie. Fig. 1. — Schéma immunoélectrophorétique d'une hémolymphe totale de Sacculine. Fig. 2. — Immunoélectrophorèse d'une hémolymphe totale (en haut) et de la fraction 1' (en bas). Dans la goutte, sérum antihémolymphe de sacculine. Fig. 3. — Immunoélectrophorèse d'une hémolymphe totale (haut) et de la fraction intermédiaire (bas) de la Sacculine. Fig. 4. — Réaction de double diffusion; puits périphériques St. Sacculine, hémolymphe totale, fractions 1' et 1'. Au centre sérum antihémolymphe de Sacculine. RÉSULTATS. — 1°
Les sérums sont répartis en aliquots de 0,9 ml et lyophilisés. Ils sont ensuite employés purs ou concentrés. Analyses immunochimiques. — Les échantillons sont éprouvés par la technique en double diffusion d'Ouchterlony (2) et par immunoélectrophorèses en gel d'agarose indubiose A 37 à 1 %, tampon tris-barbital sodium barbital pH 8,8 uni et bidimensionnelles (8)(9). Les arcs de précipitation sont observés à l'état frais et après coloration à l'amidoschwartz ou au bleu de Coomassie. Fig. 1. — Schéma immunoélectrophorétique d'une hémolymphe totale de Sacculine. Fig. 2. — Immunoélectrophorèse d'une hémolymphe totale (en haut) et de la fraction 1' (en bas). Dans la goutte, sérum antihémolymphe de sacculine. Fig. 3. — Immunoélectrophorèse d'une hémolymphe totale (haut) et de la fraction intermédiaire (bas) de la Sacculine. Fig. 4. — Réaction de double diffusion; puits périphériques St. Sacculine, hémolymphe totale, fractions 1' et 1'. Au centre sérum antihémolymphe de Sacculine. RÉSULTATS. — 1° Analyse électrophorétique. — Chez la Sacculine 3 groupes de fractions protéiques différant par leur mobilité électrophorétique ont été mis en évidence. Le premier groupe 1' est le plus important. À l'analyse en gel à gradient de concentration il apparaît formé de une à trois bandes de nature glycoprotéique situées au niveau de la lipoprotéine d'un sérum humain de référence. Les fractions intermédiaires sont beaucoup moins marquées. Ces bandes trouvent leur correspondance chez l'hôte. C'est pourquoi elles sont analysées en même temps que les fractions du Crabe (10). En acrylamide à 6 %, la fraction glycoprotéique 11' caractéristique de la Sacculine migre comme le front des ions. Elle n'est pas retenue dans le gel à gradient de concentration qu'elle traverse après 3 h de migration. Il doit s'agir d'une protéine de faible poids moléculaire, inférieur à 60 000. Ces différentes fractions isolées ont été analysées à nouveau par électrophorèse. La fraction 1' se divise alors en 2 bandes dont l'une migre comme la bande 11, la seconde restant au même niveau que la fraction initiale. Celle-ci semble donc formée d'éléments de plus petit poids moléculaire qui se dépolymérisent lors de leur isolement. Les autres fractions donnent des bandes situées aux mêmes
niveau de la lipoprotéine d'un sérum humain de référence. Les fractions intermédiaires sont beaucoup moins marquées. Ces bandes trouvent leur correspondance chez l'hôte. C'est pourquoi elles sont analysées en même temps que les fractions du Crabe (10). En acrylamide à 6 %, la fraction glycoprotéique 11' caractéristique de la Sacculine migre comme le front des ions. Elle n'est pas retenue dans le gel à gradient de concentration qu'elle traverse après 3 h de migration. Il doit s'agir d'une protéine de faible poids moléculaire, inférieur à 60 000. Ces différentes fractions isolées ont été analysées à nouveau par électrophorèse. La fraction 1' se divise alors en 2 bandes dont l'une migre comme la bande 11, la seconde restant au même niveau que la fraction initiale. Celle-ci semble donc formée d'éléments de plus petit poids moléculaire qui se dépolymérisent lors de leur isolement. Les autres fractions donnent des bandes situées aux mêmes emplacements que lors de la première séparation. 2° Étude immunochimique. — (a) hémolymphe totale. Confronté à de l'hémolymphe de Sacculine, le sérum antisacculine révèle 7 à 10 arcs de précipitation. Dans les conditions de nos expériences ils présentent tous sauf un une migration anodique et peuvent se répartir en 3 groupes de mobilité différente (fig. 1). Certains sont toujours présents [(6), (1), (8)] et nettement marqués (arcs 6, 7, 8 et 1 lorsqu'il est observé), d'autres sont plus discrets [e), (9X (1°)]; les arcs 2, 4, 5, faibles ne sont pas toujours observés. Il ne semble pas y avoir de différence significative entre les images immunoélectrophorètiques de Sacculines provenant de Crabes mâles ou de Crabes femelles. (b) fractions isolées. Elles sont analysées en les faisant réagir en même temps que de l'hémolymphe totale avec le sérum antisacculine. La fraction 1' donne 2 zones de précipitation nettes. Leurs distances relatives de migration comparées à celles des protéines d'une hémolymphe totale, conduit à les assimiler aux arcs 6 et 7; il apparaît une troisième zone plus faible correspondant à l'arc 3 (fig. 2). En réaction de double diffusion, on observe pour l'extrait 1' 3 arcs de précipitation se raccordant à ceux de
groupes de mobilité différente (fig. 1). Certains sont toujours présents [(6), (1), (8)] et nettement marqués (arcs 6, 7, 8 et 1 lorsqu'il est observé), d'autres sont plus discrets [e), (9X (1°)]; les arcs 2, 4, 5, faibles ne sont pas toujours observés. Il ne semble pas y avoir de différence significative entre les images immunoélectrophorètiques de Sacculines provenant de Crabes mâles ou de Crabes femelles. (b) fractions isolées. Elles sont analysées en les faisant réagir en même temps que de l'hémolymphe totale avec le sérum antisacculine. La fraction 1' donne 2 zones de précipitation nettes. Leurs distances relatives de migration comparées à celles des protéines d'une hémolymphe totale, conduit à les assimiler aux arcs 6 et 7; il apparaît une troisième zone plus faible correspondant à l'arc 3 (fig. 2). En réaction de double diffusion, on observe pour l'extrait 1' 3 arcs de précipitation se raccordant à ceux de 3 constituants du sérum. Ceci démontre l'identité de nature existant entre les protéines isolées et les protéines de l'hémolymphe (fig. 4). Les fractions intermédiaires se révèlent en donnant 4 arcs de précipitation : 4, 9 et 10, ce dernier dédoublé (fig. 3). Par contre, aucune réaction de précipitation n'a pu être décelée jusqu'à présent avec la bande 11 (fig. 4). DISCUSSION ET CONCLUSION. — L'étude immunochimique a permis de caractériser les fractions protéiques propres à la Sacculine observées en électrophorèse. Dans l'hémolymphe totale l'antisérum met en évidence 10 déterminants antigéniques. 3 d'entre eux se rapportent à une seule fraction isolée en acrylamide, composée en partie, d'éléments de faible poids moléculaire et qui se révèle aussi immunochimiquement hétérogène. L'absence de réaction de précipitation notée dans le cas de la fraction 11 peut s'expliquer de plusieurs manières. La protéine n'existerait pas sous cette forme dans l'hémolymphe et n'aurait pas donné lieu à la formation d'anticorps. Elle pourrait aussi ne pas être immunogène. On peut également envisager que cette fraction, issue de la dépolymérisation de l' ne comporte plus de déterminants antigéniques. Enfin, la concentration de cette protéine peut être trop faible pour la rendre décelable par les méthodes immunochimiques employées. Si certaines
être décelée jusqu'à présent avec la bande 11 (fig. 4). DISCUSSION ET CONCLUSION. — L'étude immunochimique a permis de caractériser les fractions protéiques propres à la Sacculine observées en électrophorèse. Dans l'hémolymphe totale l'antisérum met en évidence 10 déterminants antigéniques. 3 d'entre eux se rapportent à une seule fraction isolée en acrylamide, composée en partie, d'éléments de faible poids moléculaire et qui se révèle aussi immunochimiquement hétérogène. L'absence de réaction de précipitation notée dans le cas de la fraction 11 peut s'expliquer de plusieurs manières. La protéine n'existerait pas sous cette forme dans l'hémolymphe et n'aurait pas donné lieu à la formation d'anticorps. Elle pourrait aussi ne pas être immunogène. On peut également envisager que cette fraction, issue de la dépolymérisation de l' ne comporte plus de déterminants antigéniques. Enfin, la concentration de cette protéine peut être trop faible pour la rendre décelable par les méthodes immunochimiques employées. Si certaines protéines de la Sacculine sont ainsi caractérisées, la nature d'autres constituants reste encore à déterminer. Les recherches sont poursuivies afin d'analyser les fractions qui ont la même mobilité électrophorétique chez la Sacculine et chez son hôte, et de vérifier si quelque protéine du parasite peut être immunogène pour le Crabe. Séance du 14 février 1977. N. ANDRIEUX, J. BERREUR-BONNENFANT et C. HERBERTS, Comptes rendus, 282, série D, 1976, p. 2091. C. HERBERTS, Comptes rendus, 279, série D, 1974, p. 1625. P. DRACH et C. TCHERNIGOVTZEFF, Vie et Milieu, 3 A, 18, 1967, p. 595-610. O. H. LOWRY, N. J. ROSEBOUGH, A. L. FARR et R. J. RANDALL, J. biol. chem., 193, 1951, p. 265-275. W. DECLEIR, Naturwiss., 48, 1961, p. 102-103. J. VAITUKAITIS, J. B. ROBBINS, E. et G. T. NIELSCHLAG, J. Clin. Endocr., 33, 1971, p. 988-991. O. OUCHTERLONY, in Handbook of Experimental Immunology. 1967. D. 655-706. P. GRABAR et C. WILLIAMS, Biochem. biophys. Acta, (Amst.), 10, 193, 1953. C. B. LAURELL, Anal. Biochem., 10, 358, 1965. C. HERBERTS (en préparation). Laboratoire de Zoologie, Université Pierre-et-Marie-Curie, Bât. A, 4, place Jussieu, 75230 Paris Cedex 05. IMMUNOBIOLOGIE. — Radioprotection conférée par le Corynebacterium parvum contre la létalité déterminée par l'irradiation
Séance du 14 février 1977. N. ANDRIEUX, J. BERREUR-BONNENFANT et C. HERBERTS, Comptes rendus, 282, série D, 1976, p. 2091. C. HERBERTS, Comptes rendus, 279, série D, 1974, p. 1625. P. DRACH et C. TCHERNIGOVTZEFF, Vie et Milieu, 3 A, 18, 1967, p. 595-610. O. H. LOWRY, N. J. ROSEBOUGH, A. L. FARR et R. J. RANDALL, J. biol. chem., 193, 1951, p. 265-275. W. DECLEIR, Naturwiss., 48, 1961, p. 102-103. J. VAITUKAITIS, J. B. ROBBINS, E. et G. T. NIELSCHLAG, J. Clin. Endocr., 33, 1971, p. 988-991. O. OUCHTERLONY, in Handbook of Experimental Immunology. 1967. D. 655-706. P. GRABAR et C. WILLIAMS, Biochem. biophys. Acta, (Amst.), 10, 193, 1953. C. B. LAURELL, Anal. Biochem., 10, 358, 1965. C. HERBERTS (en préparation). Laboratoire de Zoologie, Université Pierre-et-Marie-Curie, Bât. A, 4, place Jussieu, 75230 Paris Cedex 05. IMMUNOBIOLOGIE. — Radioprotection conférée par le Corynebacterium parvum contre la létalité déterminée par l'irradiation X à des doses sublétales et létales chez la Souris. Note de Bernard Halpern. Membre de l'Académie et de Simone André. L'administration de Corynebacterium parvum (C. parvum) par voie intrapéritonéale confère, chez la Souris, une protection contre la toxicité ou la létalité provoquée par des radiations ionisantes (750 R et 950 R). Des survies, atteignant près de 90 jours, ont été enregistrées. Intraperitoneal injection of Corynebacterium parvum (C. parvum) into Balb/c Mice produces a protection against toxicity or lethality provoked by ionizing radiation (750 R and 950 R). Survivals reaching nearly 90 days have been recorded. Parmi les découvertes immunologiques marquantes de ces deux dernières décennies, celle de l'immunomodulation par le C. parvum réalisée par B. Halpern et coll. s'est avérée particulièrement riche de conséquences et a ouvert un nouveau domaine en immunobiologie. Ainsi, l'administration de C. parvum inactivé par la chaleur et/ou le formol détermine un ensemble de changements dans le comportement biologique des organismes dans des domaines aussi divers que : — le niveau d'activité du système réticulo-endothélial ; — la résistance de l'hôte contre sa tumeur; — la résistance aux infections microbiennes; — la résistance aux infections virales; — la stimulation de la réponse immunologique primaire et
950 R). Des survies, atteignant près de 90 jours, ont été enregistrées. Intraperitoneal injection of Corynebacterium parvum (C. parvum) into Balb/c Mice produces a protection against toxicity or lethality provoked by ionizing radiation (750 R and 950 R). Survivals reaching nearly 90 days have been recorded. Parmi les découvertes immunologiques marquantes de ces deux dernières décennies, celle de l'immunomodulation par le C. parvum réalisée par B. Halpern et coll. s'est avérée particulièrement riche de conséquences et a ouvert un nouveau domaine en immunobiologie. Ainsi, l'administration de C. parvum inactivé par la chaleur et/ou le formol détermine un ensemble de changements dans le comportement biologique des organismes dans des domaines aussi divers que : — le niveau d'activité du système réticulo-endothélial ; — la résistance de l'hôte contre sa tumeur; — la résistance aux infections microbiennes; — la résistance aux infections virales; — la stimulation de la réponse immunologique primaire et unamnestique; — l'action sur les C.F.U.; — et, plus récemment, la résistance aux radiations X, qui fait l'objet de la présente Note. Bien que ces manifestations soient polymorphes, elles relèvent de certains mécanismes communs (notamment elles sont induites par le même facteur) qui ne sont pas tous bien établis. Certains faits ayant été l'objet d'analyses antérieures, on se limitera dans cette Note à l'étude de l'action radioprotectrice du C. parvum contre la létalité causée par l'irradiation X à des doses sublétales, voire létales, chez la Souris. MÉTODES. — L'étude a été réalisée sur des Souris mâles Balb/c de 18 à 20 g. Les animaux ont été divisés d'une manière homogène en 4 groupes expérimentaux de 10 souris chacun (expérience 1). Les 4 groupes reçurent chacun une irradiation X par source "Co de 750 R. 3 de ces groupes avaient reçu auparavant une injection intrapéritonéale de 500 µg de C. parvum (poids sec) par animal (Institut Mérieux), ainsi répartie : — groupe 1 : 1 jour avant l'irradiation; — groupe 2 : 5 jours avant l'irradiation; — groupe 3 : 9 jours avant l'irradiation. Le quatrième groupe est un groupe témoin d'animaux qui n'ont pas reçu de C. parvum. Dans tous
faits ayant été l'objet d'analyses antérieures, on se limitera dans cette Note à l'étude de l'action radioprotectrice du C. parvum contre la létalité causée par l'irradiation X à des doses sublétales, voire létales, chez la Souris. MÉTODES. — L'étude a été réalisée sur des Souris mâles Balb/c de 18 à 20 g. Les animaux ont été divisés d'une manière homogène en 4 groupes expérimentaux de 10 souris chacun (expérience 1). Les 4 groupes reçurent chacun une irradiation X par source "Co de 750 R. 3 de ces groupes avaient reçu auparavant une injection intrapéritonéale de 500 µg de C. parvum (poids sec) par animal (Institut Mérieux), ainsi répartie : — groupe 1 : 1 jour avant l'irradiation; — groupe 2 : 5 jours avant l'irradiation; — groupe 3 : 9 jours avant l'irradiation. Le quatrième groupe est un groupe témoin d'animaux qui n'ont pas reçu de C. parvum. Dans tous les groupes, les animaux ont été ensuite inspectés tous les jours, pesés, les morts ont été relevés, pendant une période avoisinant 3 mois. Dans nombre de cas des examens hématologiques ont été pratiqués, qui seront précisés ultérieurement. Dans une seconde expérience, des Souris de même type ont été divisées en 2 groupes de 6 animaux qui ont reçus une irradiation au 53Co de 950 R. L'un des deux groupes a reçu une injection intrapéritonéale de 500 µg de C. parvum 9 jours avant l'irradiation, l'autre groupe qui n'a pas été traité, a servi de groupe témoin. RÉSULTATS. — (A) Irradiation à 750 R. — Les résultats de cette expérience sont rapportés sur les figures 1,2 et 3. Après l'irradiation à 750 R au 53Co, les animaux témoins, qui n'avaient pas été traités au C. parvum, sont tous morts, à une exception près, au 21e jour suivant l'irradiation. Parmi les animaux du 1er groupe, qui ont reçu 500 µg de C. parvum un jour avant l'irradiation, il reste 4 survivants sur 10 animaux au 60e jour (fig. 1). En ce qui concerne les animaux du 2e groupe, qui ont reçu la même dose de C. parvum 5 jours avant l’irradiation, tous
2 groupes de 6 animaux qui ont reçus une irradiation au 53Co de 950 R. L'un des deux groupes a reçu une injection intrapéritonéale de 500 µg de C. parvum 9 jours avant l'irradiation, l'autre groupe qui n'a pas été traité, a servi de groupe témoin. RÉSULTATS. — (A) Irradiation à 750 R. — Les résultats de cette expérience sont rapportés sur les figures 1,2 et 3. Après l'irradiation à 750 R au 53Co, les animaux témoins, qui n'avaient pas été traités au C. parvum, sont tous morts, à une exception près, au 21e jour suivant l'irradiation. Parmi les animaux du 1er groupe, qui ont reçu 500 µg de C. parvum un jour avant l'irradiation, il reste 4 survivants sur 10 animaux au 60e jour (fig. 1). En ce qui concerne les animaux du 2e groupe, qui ont reçu la même dose de C. parvum 5 jours avant l’irradiation, tous les animaux ont survécu jusqu’au 60e jour suivant l’irradiation (fig. 2). Dans le 3e groupe d’animaux, qui ont reçu 500 mg de C. parvum 9 jours avant l’irradiation, tous les animaux sont vivants 60 jours après l’irradiation (fig. 3). Au-delà de la durée rapportée sur les figures, on constate : — qu’il reste toujours 4 survivants dans le 1er groupe, traité 1 jour avant l’irradiation, les animaux présentant un poids moyen de 18,60 g; — qu’en ce qui concerne le 2e groupe, traité 5 jours avant l’irradiation, 1 animal est mort au 60e jour, les 9 survivants présentant un poids moyen de 19,05 g; — qu’enfin les 10 animaux du 3e groupe, traités 9 jours avant l’irradiation, sont tous vivants avec un poids moyen de 26,60 g qui reflète la santé et la vivacité de ces animaux. (B) Irradiation à 950 R. — Les résultats de cette seconde expérience sont rapportés sur la figure 4. Après l’irradiation à la dose létale de 950 R au 53Co on constate que tous les animaux témoins, sauf un, sont morts au 18e jour suivant l’irradiation. En revanche, tous les animaux traités par 500 mg de C. parvum, 9 jours avant l’irradiation sont vivants