jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
de remarquer le degré élevé du pouvoir de fixation de l'estomac, pouvoir plus élevé que celui de l'hépatopancréas : ce phénomène peut s'expliquer par la présence de l'organe hématopoiétique étroitement imbriqué sur les parois stomacales. De plus, l'ovaire fixe davantage l'acide clofibrique que le testicule. En ce qui concerne le muscle, étant donné qu'il est pratiquement impossible de déterminer avec précision la masse musculaire du Crabe, uniquement le rapport radioactivité musculaire/radioactivité de l'hémolymphe a pu être apprécié. Ce rapport est inférieur à un durant les premières 8 h. Il n'y a donc pas à ce moment-là fixation de l'acide clofibrique injecté; celle-ci apparaît à partir de la 24e heure mais le pouvoir de fixation est relativement bas contrairement à ce qui se produit chez les Mammifères. L'élimination urinaire de l'acide clofibrique et de ses métabolites est nettement différente dans les 2 sexes. Au-delà de 8 h, elle est sensiblement plus forte chez les individus mâles que chez les individus femelles; cette différence est particulièrement marquée à la 48e heure. CONCLUSION. — L'étude pharmacocinétique de l'acide clofibrique et de ses métabolites chez Pachygrapsus marmoratus met en évidence une fixation lente au cours du temps, très marquée au niveau de l'hépatopancréas et de l'estomac 24 h après l'administration. Outre ces différences selon le sexe en particulier au niveau de l'élimination urinaire beaucoup plus importante chez le mâle, il convient de noter que la masse musculaire contrairement aux homéothermes ne fixe pas d'une façon notable le composé marqué et ses métabolites. Séance du 14 février 1977. H. Z. LEVINSON et A. R. LEVINSON, J. Insect Physiol, 19, 1973, p. 1727-1734. H. T. LANGER et R. I. LÉVY, New Engl. J. Med., 279, 1968, p. 856. Laboratoire de Physiologie des Invertébrés, Université des Sciences et Techniques du Languedoc, Place Eugène-Bataillon, 34060 Montpellier Cedex; J.-L. C. et J. G. Laboratoire de Physique, Faculté de Pharmacie, avenue Charles-Flahault, 34000 Montpellier. VIROLOGIE. — Détection par immunocytotoxicité lymphocytaire directe des antigènes de cellules transformées par le virus de Rous. Note de Ginette Dambrine et Laurent Cauchy, présentée par M. J. André Thomas. Les cellules de Hamster transformées par
de l'estomac 24 h après l'administration. Outre ces différences selon le sexe en particulier au niveau de l'élimination urinaire beaucoup plus importante chez le mâle, il convient de noter que la masse musculaire contrairement aux homéothermes ne fixe pas d'une façon notable le composé marqué et ses métabolites. Séance du 14 février 1977. H. Z. LEVINSON et A. R. LEVINSON, J. Insect Physiol, 19, 1973, p. 1727-1734. H. T. LANGER et R. I. LÉVY, New Engl. J. Med., 279, 1968, p. 856. Laboratoire de Physiologie des Invertébrés, Université des Sciences et Techniques du Languedoc, Place Eugène-Bataillon, 34060 Montpellier Cedex; J.-L. C. et J. G. Laboratoire de Physique, Faculté de Pharmacie, avenue Charles-Flahault, 34000 Montpellier. VIROLOGIE. — Détection par immunocytotoxicité lymphocytaire directe des antigènes de cellules transformées par le virus de Rous. Note de Ginette Dambrine et Laurent Cauchy, présentée par M. J. André Thomas. Les cellules de Hamster transformées par le virus du sarcome de Rous (V.S.R.) présentent à leur surface des modifications antigéniques mises en évidence par une méthode d'immunocytotoxicité à médiation cellulaire. Des cellules cibles préalablement marquées à la proline tritiée sont mises en contact avec des lymphocytes de hamsters immuns; ces lymphocytes ont acquis la capacité de lyser spécifiquement les cellules transformées par le V.S.R. The Hamster cells transformed by the Rous Sarcoma Virus (V.S.R.) evidenced surface antigenic alterations that were detected by a method of cellular mediated immunocytotoxicity. Immune Hamster lymphocytes were added to tritiated proline prelabeled target cells. These lymphocytes were able to lyse specifically the V.S.R. transformed cells. Les virus provoquant les tumeurs du type leucose/sarcome chez les Oiseaux se multiplient dans leurs cellules sensibles et sont parfois capables d'induire des modifications génétiquement stables (transformation) des cellules infectées. La transformation cellulaire est également observée lorsque certaines cellules de mammifères (Hamster, Rat, Souris) sont infectées par ces viruses du groupe leucose/sarcome (virus du sarcome de Rous ou V.S.R.). Les cellules transformées conservent dans leur descendance l'information virale et les propriétés antigéniques spécifiques acquises à la surface des cellules au cours de la transformation. Les antigènes sont de bons marqueurs de la transformation; leur présence peut
lyser spécifiquement les cellules transformées par le V.S.R. The Hamster cells transformed by the Rous Sarcoma Virus (V.S.R.) evidenced surface antigenic alterations that were detected by a method of cellular mediated immunocytotoxicity. Immune Hamster lymphocytes were added to tritiated proline prelabeled target cells. These lymphocytes were able to lyse specifically the V.S.R. transformed cells. Les virus provoquant les tumeurs du type leucose/sarcome chez les Oiseaux se multiplient dans leurs cellules sensibles et sont parfois capables d'induire des modifications génétiquement stables (transformation) des cellules infectées. La transformation cellulaire est également observée lorsque certaines cellules de mammifères (Hamster, Rat, Souris) sont infectées par ces viruses du groupe leucose/sarcome (virus du sarcome de Rous ou V.S.R.). Les cellules transformées conservent dans leur descendance l'information virale et les propriétés antigéniques spécifiques acquises à la surface des cellules au cours de la transformation. Les antigènes sont de bons marqueurs de la transformation; leur présence peut susciter chez l'hôte le développement de la réponse immunitaire humorale capable de les détruire. La réponse immunitaire cellulaire est exprimée par la cytotoxicité de lymphocytes de Poule ou de Souris à l'égard des cellules transformées par le V.S.R. Nous décrivons la mise en évidence de l'activité cytotoxique spécifique des lymphocytes provenant de Hamsters immunisés par des cellules transformées en adaptant une technique de marquage des cellules cibles à la proline tritiée. MÉTÉRIEL ET MÉTHODES [(6), C]. — Les cellules de lignée de Hamster (BHK 21-13) non transformées sont utilisées comme cellules cibles de contrôle. Les cellules RS 2-3 et RS 2-10 dérivent de clones de cellules BHK 21-13 transformées in vitro par une souche Schmidt-Ruppin du V.S.R. (8); elles ont servi de cellules cibles pour la détection des antigènes de surface cellulaire. Les cellules XC obtenues à partir d'une tumeur induite in vivo chez le Rat par la souche Prague du V.S.R. (9) ont permis l'immunisation de Hamsters syriens de 8 semaines au moins, consanguins ou non. Les animaux ont reçu deux injections intrapéritonéales de 1 million de cellules XC tuées par le formaldéhyde à 3 % et mises en suspension dans l'adjuvant complet de Freund, puis une à trois
provenant de Hamsters immunisés par des cellules transformées en adaptant une technique de marquage des cellules cibles à la proline tritiée. MÉTÉRIEL ET MÉTHODES [(6), C]. — Les cellules de lignée de Hamster (BHK 21-13) non transformées sont utilisées comme cellules cibles de contrôle. Les cellules RS 2-3 et RS 2-10 dérivent de clones de cellules BHK 21-13 transformées in vitro par une souche Schmidt-Ruppin du V.S.R. (8); elles ont servi de cellules cibles pour la détection des antigènes de surface cellulaire. Les cellules XC obtenues à partir d'une tumeur induite in vivo chez le Rat par la souche Prague du V.S.R. (9) ont permis l'immunisation de Hamsters syriens de 8 semaines au moins, consanguins ou non. Les animaux ont reçu deux injections intrapéritonéales de 1 million de cellules XC tuées par le formaldéhyde à 3 % et mises en suspension dans l'adjuvant complet de Freund, puis une à trois injections sous-cutanées de 500 000 cellules XC vivantes sans adjuvant, à 15 jours d'intervalle. Après un délai minimum de 2 semaines, le prélèvement de la rate de Hamsters immunisés ou non a été effectué stérilement; les cellules sont extraites à 0°C, et les hématies détruites par un choc osmotique de 30 à 40 s puis éliminées par centrifugation. Les cellules restantes sont surtout des lymphocytes; elles sont mises en suspension dans du milieu Ham (F 10) avec 10 % de sérum de Veau et 10 % de liquide amniotique bovin. La première étape du test de lymphocytotoxicité cellulaire a été le marquage des cellules cibles à la proline tritiée (L. proline activité spécifique 20-30 Ci/mmole, C.E.A.). Les cellules RS 2-3, RS 2-10 et BHK 21-13 ont été ensemencées dans des boîtes de Petri plastiques avec du milieu de Eagle (Minimum Essential Médium, MEM, dépourvu des acides aminés non essentiels dont la proline). Ce milieu a favorisé l'incorporation de proline tritiée (100 µCi pour 1 million de cellules) pendant 18 heures à 37°C en atmosphère contenant 5 % de CO2. Après deux lavages avec du milieu MEM additionné de 2 fois la teneur normale en acides aminés non essentiels, les cellules
30 à 40 s puis éliminées par centrifugation. Les cellules restantes sont surtout des lymphocytes; elles sont mises en suspension dans du milieu Ham (F 10) avec 10 % de sérum de Veau et 10 % de liquide amniotique bovin. La première étape du test de lymphocytotoxicité cellulaire a été le marquage des cellules cibles à la proline tritiée (L. proline activité spécifique 20-30 Ci/mmole, C.E.A.). Les cellules RS 2-3, RS 2-10 et BHK 21-13 ont été ensemencées dans des boîtes de Petri plastiques avec du milieu de Eagle (Minimum Essential Médium, MEM, dépourvu des acides aminés non essentiels dont la proline). Ce milieu a favorisé l'incorporation de proline tritiée (100 µCi pour 1 million de cellules) pendant 18 heures à 37°C en atmosphère contenant 5 % de CO2. Après deux lavages avec du milieu MEM additionné de 2 fois la teneur normale en acides aminés non essentiels, les cellules marquées sont incubées à 37°C dans ce même milieu pendant 20 à 30 min afin d'éliminer la proline tritiée libre, détachées par trypsination et distribuées en microcupules (microtest 3 040, Falcon) à raison de 1 000 à 2 500 cellules cibles par cupule. TABLEAU Cellules cibles non transformées Cellules cibles transformées Lymphocytes Lymphocytes immuns Pourcentage immuns Pourcentage par cellule de cytotoxicité cible cytotoxicité r 300/1 0 r 300/1 33 BHK 21-13... < 150/1 0 RS 2-3... S 150/1 28 i 75/1 0 i 75/1 13 r 300/1 3,5 r 300/1 45 BHK 21-13... 150/1 28,9 RS 2-3... < 150/1 27,5 i 75/1 1,2 L 75/1 11,6 r 300/1 17,2 r 300/1 70,6 BHK 21-13... < 150/1 16,8 RS 2-10... < 150/1 41,7 L 75/1 0 l 75/1 0 (1), (2) (*), Hamsters non consanguins; (3) (**), Hamsters consanguins. La deuxième étape a été l'addition aux cellules cibles de quantités définies de lymphocytes immuns ou témoins pendant 48 h. La dernière étape a été la récupération des cellules cibles restantes : les cupules ont été lavées avec du P.B.S. à 37°C pour éliminer les débris cellulaires; les cellules ont été détachées par l'addition de 50 µl d'une solution de trypsine versène
transformées Lymphocytes Lymphocytes immuns Pourcentage immuns Pourcentage par cellule de cytotoxicité cible cytotoxicité r 300/1 0 r 300/1 33 BHK 21-13... < 150/1 0 RS 2-3... S 150/1 28 i 75/1 0 i 75/1 13 r 300/1 3,5 r 300/1 45 BHK 21-13... 150/1 28,9 RS 2-3... < 150/1 27,5 i 75/1 1,2 L 75/1 11,6 r 300/1 17,2 r 300/1 70,6 BHK 21-13... < 150/1 16,8 RS 2-10... < 150/1 41,7 L 75/1 0 l 75/1 0 (1), (2) (*), Hamsters non consanguins; (3) (**), Hamsters consanguins. La deuxième étape a été l'addition aux cellules cibles de quantités définies de lymphocytes immuns ou témoins pendant 48 h. La dernière étape a été la récupération des cellules cibles restantes : les cupules ont été lavées avec du P.B.S. à 37°C pour éliminer les débris cellulaires; les cellules ont été détachées par l'addition de 50 µl d'une solution de trypsine versène par cupule; après leur décollement, elles ont été mises en suspension dans 10 ml de liquide de scintillation (Scintix) pour le comptage de la radioactivité du tritium (compteur Beckman LS 100 C). Le nombre de coups par minute (c. p. m.) pour chaque échantillon est la moyenne des c. p. m. d'au moins 3 cupules identiques. Les résultats sont exprimés en pourcentage de cytotoxicité par échantillon selon le calcul : (A - B)/A x 100. A, Nombre moyen de c. p. m. des cellules cibles avec lymphocytes témoins. B. Nombre moyen de c. p. m. des cellules cibles avec lymphocytes immuns. RÉSULTATS. — Les pourcentages de cytotoxicité obtenus pour les différentes cellules cibles avec des quantités variables de lymphocytes sont indiqués sur le tableau. L'immunisation des Hamsters, consanguins ou non, est mise en évidence par la cytotoxicité lymphocytaire à l'égard des cellules cibles. La technique décrite semble plus spécifique que celle de Takasugi et Klein dans laquelle la cytotoxicité est déterminée par le comptage direct des cellules cibles restantes (10). Dans les différents essais (1) (*), (2) (*), (3) (**) le pourcentage de cytotoxicité s'accroît généralement avec le nombre de lymphocytes immuns. Les cellules transformées RS 2-3 et RS 2-10
m. d'au moins 3 cupules identiques. Les résultats sont exprimés en pourcentage de cytotoxicité par échantillon selon le calcul : (A - B)/A x 100. A, Nombre moyen de c. p. m. des cellules cibles avec lymphocytes témoins. B. Nombre moyen de c. p. m. des cellules cibles avec lymphocytes immuns. RÉSULTATS. — Les pourcentages de cytotoxicité obtenus pour les différentes cellules cibles avec des quantités variables de lymphocytes sont indiqués sur le tableau. L'immunisation des Hamsters, consanguins ou non, est mise en évidence par la cytotoxicité lymphocytaire à l'égard des cellules cibles. La technique décrite semble plus spécifique que celle de Takasugi et Klein dans laquelle la cytotoxicité est déterminée par le comptage direct des cellules cibles restantes (10). Dans les différents essais (1) (*), (2) (*), (3) (**) le pourcentage de cytotoxicité s'accroît généralement avec le nombre de lymphocytes immuns. Les cellules transformées RS 2-3 et RS 2-10 sont plus facilement tuées que les cellules BHK 21-13. DISCUSSION. — Ces constatations indiquent que les cellules de Rat transformées par le virus du sarcome de Rous ont suscité chez le Hamster une réponse immunitaire capable de reconnaître et de tuer in vitro des cellules de Hamster transformées par le même virus. Les lymphocytes immuns, capables de lyser des cellules de toute origine portant les antigènes de surface spécifiques du V.S.R. permettront d'identifier le caractère leucosique des cellules de tumeurs naturelles chez la Poule. La mise en évidence de ces antigènes constituera un moyen nouveau améliorant le difficile diagnostic différentiel des tumeurs chez les Oiseaux. Par des techniques révélant l'immunité humorale, il a été montré que les cellules RS 2-3 et RS 2-10 possèdent à leur surface, des protéines virales (p85, gs) de même qu'un antigène spécifique de transformation (TSSA); elles supportent aussi l'antigène de Forssman et habituellement des antigènes embryonnaires [(n), (12)]. Toutefois nos expériences n'indiquent pas si plusieurs de ces antigènes ont été révélés par l'immunocytotoxicité cellulaire au niveau des cellules transformées. La cytotoxicité lymphocytaire est un des mécanismes invoqués dans le rejet des tumeurs in vivo. Il sera intéressant de vérifier s'il existe une corrélation entre la
même virus. Les lymphocytes immuns, capables de lyser des cellules de toute origine portant les antigènes de surface spécifiques du V.S.R. permettront d'identifier le caractère leucosique des cellules de tumeurs naturelles chez la Poule. La mise en évidence de ces antigènes constituera un moyen nouveau améliorant le difficile diagnostic différentiel des tumeurs chez les Oiseaux. Par des techniques révélant l'immunité humorale, il a été montré que les cellules RS 2-3 et RS 2-10 possèdent à leur surface, des protéines virales (p85, gs) de même qu'un antigène spécifique de transformation (TSSA); elles supportent aussi l'antigène de Forssman et habituellement des antigènes embryonnaires [(n), (12)]. Toutefois nos expériences n'indiquent pas si plusieurs de ces antigènes ont été révélés par l'immunocytotoxicité cellulaire au niveau des cellules transformées. La cytotoxicité lymphocytaire est un des mécanismes invoqués dans le rejet des tumeurs in vivo. Il sera intéressant de vérifier s'il existe une corrélation entre la résistance d'un animal à la progression des tumeurs et la cytotoxicité directe de ses lymphocytes in vitro. (*) Séance du 14 février 1977. (1) G. BATAILLON, Comptes rendus, 276. série D, 1973, p. 1797. (1) M. AUPOIX, D. SIMKOVIC et L. GAZZOLO, Neoplasma, 20, 1973, p. 597. (3) R. KURTH et H. BAUER, Virology, 47, 1972, p. 426. (4) R. KURTH et H. BAUER, Virology, 49, 1972, p. 145. (5) M. A. BEAN, H. PEES et G. ROSEN, Natl Cancer Inst., Monogr., 37, 1973, p. 41. Avec la précieuse collaboration technique de E. Guillou. C) Avec l'aide de P. Vigier et J.-P. Levy. (8) L. MONTAGNIER et P. VIGIER, Comptes rendus, 264, série D, 1967, p. 193. F) J. SVOBODA, Nature. 186, 1960, p. 980. (10) G. DAMBRINE, Rapport, D.E.A. de Biologie cellulaire, Orsay, 1975. (11) M. AUPOIX. Thèse Doc. Sc. Nat., Lyon, 1976. 95 D. (12) M. AUPOIX, D. SIMKOVIC et L. GAZZOLO, Neoplasma, 20, 1973, p. 481. Institut national de la Recherche agronomique, Station de Pathologie aviaire, Centre de Recherches de Tours, 37380 Monnaie. IMMUNOLOGIE. Étude de la migration, de la localisation et de la lyse de lymphocytes transférés chez la Souris. Note de Josiane Marotel-Schirmann, Gertrude Drach
et H. BAUER, Virology, 47, 1972, p. 426. (4) R. KURTH et H. BAUER, Virology, 49, 1972, p. 145. (5) M. A. BEAN, H. PEES et G. ROSEN, Natl Cancer Inst., Monogr., 37, 1973, p. 41. Avec la précieuse collaboration technique de E. Guillou. C) Avec l'aide de P. Vigier et J.-P. Levy. (8) L. MONTAGNIER et P. VIGIER, Comptes rendus, 264, série D, 1967, p. 193. F) J. SVOBODA, Nature. 186, 1960, p. 980. (10) G. DAMBRINE, Rapport, D.E.A. de Biologie cellulaire, Orsay, 1975. (11) M. AUPOIX. Thèse Doc. Sc. Nat., Lyon, 1976. 95 D. (12) M. AUPOIX, D. SIMKOVIC et L. GAZZOLO, Neoplasma, 20, 1973, p. 481. Institut national de la Recherche agronomique, Station de Pathologie aviaire, Centre de Recherches de Tours, 37380 Monnaie. IMMUNOLOGIE. Étude de la migration, de la localisation et de la lyse de lymphocytes transférés chez la Souris. Note de Josiane Marotel-Schirmann, Gertrude Drach et Emanoil Barbu, présentée par M. Jacques Tréfouël. 10 jours après l'injection de lymphocytes marqués au 51Cr dans le coussinet plantaire de Souris syngéniques, on retrouve sur place 70 p. cent du marquage, alors que le 51Cr libéré des lymphocytes est totalement éliminé en 24 h. La cytolyse des lymphocytes allogéniques peut être ainsi révélée in vivo par l'étude de l'élimination du marquage. 10 days after the injection of lymphocytes labeled with 51Cr, in the footpads of syngenic Mice, 70 p. cent of the label is still present in the footpads. The 51Cr that comes out of the lymphocytes is eliminated from the footpads in less than 24hrs. In this way it is possible to study the cytolysis of allogenic lymphocytes in vivo. Au cours de précédents travaux nous avons étudié le transfert local des réactions d'hypersensibilité retardée (HSR) à l'aide de lymphocytes inoculés dans le coussinet plantaire de la Souris (1). L'intensité des réactions de HSR ainsi transférées diminue plus vite chez les Souris Swiss que chez les Souris Balb/c (2). Il était intéressant de connaître les relations existant entre cette diminution et le départ ou la lyse des cellules inoculées. ISOLEMENT ET MARQUAGE DES LYMPHOCYTES. — Des Souris
allogéniques peut être ainsi révélée in vivo par l'étude de l'élimination du marquage. 10 days after the injection of lymphocytes labeled with 51Cr, in the footpads of syngenic Mice, 70 p. cent of the label is still present in the footpads. The 51Cr that comes out of the lymphocytes is eliminated from the footpads in less than 24hrs. In this way it is possible to study the cytolysis of allogenic lymphocytes in vivo. Au cours de précédents travaux nous avons étudié le transfert local des réactions d'hypersensibilité retardée (HSR) à l'aide de lymphocytes inoculés dans le coussinet plantaire de la Souris (1). L'intensité des réactions de HSR ainsi transférées diminue plus vite chez les Souris Swiss que chez les Souris Balb/c (2). Il était intéressant de connaître les relations existant entre cette diminution et le départ ou la lyse des cellules inoculées. ISOLEMENT ET MARQUAGE DES LYMPHOCYTES. — Des Souris Balb/c reçoivent 100 μg de sérum albumine bovine méthylée (M-BSA) mélangés à l'adjuvant de Freund complet et répartis entre les 4 coussinets plantaires. Les ganglions, prélevés après 12 jours à partir de 4 de ces Souris donnent 9 . 108 cellules. Les lymphocytes (5 . 108) en 10 ml de milieu Eagle contenant 5 p. cent de sérum de Veau fœtal sont incubés pendant 30 mn à 37°C (sous 5 % de CO2) en présence de 50 μCi par millilitre de chromate de sodium (345 MCi par milligramme). Les lymphocytes sont lavés 3 fois puis ils sont repris en 1,25 ml du même milieu. DEVENIR DES LYMPHOCYTES TRANSFÉRÉS DANS LES COUSSINETS PLANTAIRES. — Les lymphocytes ainsi marqués, 2 . 107 cellules en 50 μl, donnant 40 000 c. p. m. sont inoculés dans les coussinets plantaires de Souris Balb/c. En plaçant la Souris dans un gant chirurgical et en attachant avec un élastique la patte à une pince, on peut introduire la patte dans le puits de l'appareil de mesure de la radioactivité et mesurer celle-ci sans sacrifier la Souris. On constate ainsi (courbe A) qu'après une diminution de 20 % de la radioactivité, pendant les 24 premières heures, celle-ci
milieu Eagle contenant 5 p. cent de sérum de Veau fœtal sont incubés pendant 30 mn à 37°C (sous 5 % de CO2) en présence de 50 μCi par millilitre de chromate de sodium (345 MCi par milligramme). Les lymphocytes sont lavés 3 fois puis ils sont repris en 1,25 ml du même milieu. DEVENIR DES LYMPHOCYTES TRANSFÉRÉS DANS LES COUSSINETS PLANTAIRES. — Les lymphocytes ainsi marqués, 2 . 107 cellules en 50 μl, donnant 40 000 c. p. m. sont inoculés dans les coussinets plantaires de Souris Balb/c. En plaçant la Souris dans un gant chirurgical et en attachant avec un élastique la patte à une pince, on peut introduire la patte dans le puits de l'appareil de mesure de la radioactivité et mesurer celle-ci sans sacrifier la Souris. On constate ainsi (courbe A) qu'après une diminution de 20 % de la radioactivité, pendant les 24 premières heures, celle-ci reste ensuite assez stable. Ce résultat est confirmé en fin d'expérience en coupant la patte au niveau de l'articulation tarsienne et en mesurant sa radioactivité. Le 51Cr des surnageants de cellules marquées puis incubées pendant 3 jours in vitro est éliminé en 24 h lorsqu'il est injecté dans les pattes (courbe D). Le contraste entre la persistance du marquage local dû au 51Cr présent dans les lymphocytes et le rapide départ du 51 Cr sorti des cellules suggère la possibilité d'étude in vivo des divers mécanismes immunitaires entraînant une lyse des lymphocytes. INFLUENCE DES RÉACTIONS DE HSR SUR LE DEVENIR DES LYMPHOCYTES TRANSFÉRÉS. — En inoculant comme précédemment 2 . 107 lymphocytes mais additionnés de 20 μg de M-BSA on provoque une réaction de HSR qui se traduit par un gonflement de la patte car ces lymphocytes avaient été sensibilisés contre la M-BSA. Cette réaction de HSR entraîne une accumulation locale de macrophages. Les macrophages ne provoquent pas une augmentation importante de la vitesse d'élimination du 51Cr contenu dans ces lymphocytes qui dans ce cas sont syngéniques (courbe B). Les ganglions poplités de ces Souris, prélevés 6 jours après l'inoculation des cellules ne contiennent pas de radioactivité, celle-ci reste en