jeanflop/post_ocr_correction2 huggingface dataset:
Microscopie électronique. — Pour l'observation au microscope électronique, les fragments sont fixés par le glutaraldéhyde à 2 % en tampon phosphate 0,2 M pH 7,2 ou tampon cacodylate 0,02 M pH 7,2 pendant 1 h 30 mn puis postfixés 1 h par 0s04 à 2 % dans le même tampon. Après déshydratation par l'alcool, les fragments sont inclus dans l'« araldite », coupés puis colorés par l'acétate d'Uranyle et le plomb (14), avant d'être observés au microscope « Hitachi HU 11 A ». RÉSULTATS. — Comme nous l'avons déjà décrit pour la souche M3c VI (5), l'éclairement après passage en milieu épuisé est suivi dans toutes les souches étudiées d'un bourgeonnement, puis d'une formation de sporanges. Dans les sporanges, les noyaux se divisent pour la première fois de 11 à 16 h après la fin de l'éclairement, ce temps variant selon les souches et les expériences. Dans chaque cas, cette division nucléaire est synchrone et semblable à celle que l'on observe dans les plasmodes. Elle est suivie d'une division du cytoplasme amenant l'individualisation de spores dont la plupart sont uninucléées, mais dont certaines contiennent 2, 3 ou même un nombre plus élevé de noyaux, la quantité de spores multinucléées étant plus forte dans les souches C50 et CL que dans les souches M3c VI et M3c VII, IIe où elle reste assez faible. Dans les souches M3c VII, IIe et M3c VI, les premiers complexes synaptonématiques apparaissent dans quelques noyaux vers 25 h (planche I, fig. 2 et 3). Leur nombre augmente peu à peu et vers 35 h, pratiquement tous les noyaux sont à ce stade, simulant une synchronie du phénomène démentie par l'étude des prélèvements antérieurs qui montrent nettement une progression dans le nombre des noyaux en prophase méiotique. Dans les souches C50 et CL nous avons retrouvé les mêmes images de complexes synaptonématiques dans les noyaux des spores de 35-40 h (planche I, fig. 4), ces complexes apparaissant aussi dans les noyaux des spores multinucléées (planche II, fig. 4). Tous les complexes présentent une bande claire de 1 000 Å bordée de 2 éléments très denses aux
plus forte dans les souches C50 et CL que dans les souches M3c VI et M3c VII, IIe où elle reste assez faible. Dans les souches M3c VII, IIe et M3c VI, les premiers complexes synaptonématiques apparaissent dans quelques noyaux vers 25 h (planche I, fig. 2 et 3). Leur nombre augmente peu à peu et vers 35 h, pratiquement tous les noyaux sont à ce stade, simulant une synchronie du phénomène démentie par l'étude des prélèvements antérieurs qui montrent nettement une progression dans le nombre des noyaux en prophase méiotique. Dans les souches C50 et CL nous avons retrouvé les mêmes images de complexes synaptonématiques dans les noyaux des spores de 35-40 h (planche I, fig. 4), ces complexes apparaissant aussi dans les noyaux des spores multinucléées (planche II, fig. 4). Tous les complexes présentent une bande claire de 1 000 Å bordée de 2 éléments très denses aux électrons et correspondant aux chromosomes homologues appariés. Ces complexes sont souvent en relation étroite avec l'enveloppe nucléaire comme cela a souvent été rapporté pour d'autres espèces (12). EXPLICATION DES PLANCHES Planche I C, chromatine; Ch, chromosome; Cs, complexe synaptonématique; En, enveloppe nucléaire; M, mitochondrie; N, noyau; Nu, nucléole; P, paroi de la spore; V, vacuole. Fig. 1. — Spore de CL, 16 h 30 mn après la fin de l'éclairement. La chromatine est dispersée dans le noyau. Fig. 2. — Spore de M3c VII, IIe, 27 h après la fin de l'éclairement. On observe de nombreux complexes synaptonématiques dans le noyau. Fig. 3. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de spore de M3c VI, 40 h après la fin de l'éclairement. Fig. 4. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de spore de CL, 41 h après la fin de l'éclairement. PLANCHE 1 ISABELLE LACORRE-ARESCALDINO PLANCHE II Planche II Fig. 1. — Métaphase dans une spore de CL, observée 45 h après la fin de l'éclairement. Fig. 2. — Métaphase dans une spore de M3c VI, observée 40 h après la fin de l'éclairement. Fig. 3. — 4 noyaux en division dans une spore de CL, observée 47 h après la
de la spore; V, vacuole. Fig. 1. — Spore de CL, 16 h 30 mn après la fin de l'éclairement. La chromatine est dispersée dans le noyau. Fig. 2. — Spore de M3c VII, IIe, 27 h après la fin de l'éclairement. On observe de nombreux complexes synaptonématiques dans le noyau. Fig. 3. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de spore de M3c VI, 40 h après la fin de l'éclairement. Fig. 4. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de spore de CL, 41 h après la fin de l'éclairement. PLANCHE 1 ISABELLE LACORRE-ARESCALDINO PLANCHE II Planche II Fig. 1. — Métaphase dans une spore de CL, observée 45 h après la fin de l'éclairement. Fig. 2. — Métaphase dans une spore de M3c VI, observée 40 h après la fin de l'éclairement. Fig. 3. — 4 noyaux en division dans une spore de CL, observée 47 h après la fin de l'éclairement. Fig. 4. — 4 noyaux présentant des complexes synaptonématiques, dans une spore de C50, observée 46 h après la fin de l'éclairement. Les premières figures de métaphase apparaissent vers 40 h et permettent d'estimer à environ 15 h la durée moyenne de la prophase méiotique. Nous avons pu observer des figures de métaphase dans les spores des 4 souches étudiées (planche II, fig. 1, 2 et 3). Il n'est toutefois pas possible de dire si 2 divisions successives ont lieu dans les spores. En effet, d'une part le manque de synchronie dans les divisions ne permet pas de dire s'il s'agit d'une première ou deuxième division, et, d'autre part, le nombre de noyaux ne peut pas donner de renseignements sur ce sujet, puisque certaines spores contiennent déjà plusieurs noyaux pendant la prophase méiotique (planche II, fig. 4). Ce que nous pouvons par contre affirmer, c'est que dans les spores multinucléées tous les noyaux sont en même temps en prophase méiotique et que les divisions y sont synchrones. La figure 3 de la planche II montre par exemple 4 noyaux en division dans une spore. DISCUSSION. — Ces observations tendent donc à montrer qu'une méiose se déroule normalement
pu observer des figures de métaphase dans les spores des 4 souches étudiées (planche II, fig. 1, 2 et 3). Il n'est toutefois pas possible de dire si 2 divisions successives ont lieu dans les spores. En effet, d'une part le manque de synchronie dans les divisions ne permet pas de dire s'il s'agit d'une première ou deuxième division, et, d'autre part, le nombre de noyaux ne peut pas donner de renseignements sur ce sujet, puisque certaines spores contiennent déjà plusieurs noyaux pendant la prophase méiotique (planche II, fig. 4). Ce que nous pouvons par contre affirmer, c'est que dans les spores multinucléées tous les noyaux sont en même temps en prophase méiotique et que les divisions y sont synchrones. La figure 3 de la planche II montre par exemple 4 noyaux en division dans une spore. DISCUSSION. — Ces observations tendent donc à montrer qu'une méiose se déroule normalement dans les souches CL et C50, puisque nous n'avons pas trouvé de différence entre ces souches et les souches M3c VII, IIe et M3c VI au point de vue nucléaire pendant la sporulation, si ce n'est une plus grande quantité de spores multinucléées. La présence de complexes synaptonématiques bien individualisés a déjà été utilisée comme critère pour déterminer la position de la méiose chez les Myxomycètes [CZ), (6)]. Mais, d'après Moses, qui a fait une revue complète du sujet, ces complexes ne sont pas toujours suivis de méiose et ne peuvent suffire à prouver l'existence d'une méiose. Toutefois, Aldrich et Mims pensent que l'on peut conclure à une méiose chez les Myxomycètes lorsque 4 conditions sont réunies : 1. Existence d'une seule division nucléaire précédant l'individualisation des spores, avec pour cette division une prophase libre de complexe synaptonématique. 2. Présence d'une interphase libre de complexe. 3. Apparition de complexes synaptonématiques dans la plupart des spores. 4. Figures de division dans certaines spores. Or, ces 4 conditions ont été vérifiées dans les souches C50 et CL puisque la première division nucléaire suivant la fin de l'éclairement est en tous points semblable aux divisions du plasmode. Il existe bien une interphase libre
a déjà été utilisée comme critère pour déterminer la position de la méiose chez les Myxomycètes [CZ), (6)]. Mais, d'après Moses, qui a fait une revue complète du sujet, ces complexes ne sont pas toujours suivis de méiose et ne peuvent suffire à prouver l'existence d'une méiose. Toutefois, Aldrich et Mims pensent que l'on peut conclure à une méiose chez les Myxomycètes lorsque 4 conditions sont réunies : 1. Existence d'une seule division nucléaire précédant l'individualisation des spores, avec pour cette division une prophase libre de complexe synaptonématique. 2. Présence d'une interphase libre de complexe. 3. Apparition de complexes synaptonématiques dans la plupart des spores. 4. Figures de division dans certaines spores. Or, ces 4 conditions ont été vérifiées dans les souches C50 et CL puisque la première division nucléaire suivant la fin de l'éclairement est en tous points semblable aux divisions du plasmode. Il existe bien une interphase libre de complexe (planche I, fig. 1) puisque ces complexes n'apparaissent au plus tôt que 10 h après l'individualisation des spores (spores de 25 h). De plus, vers 35 h pratiquement tous les noyaux des spores contiennent des complexes synaptonématiques, et enfin des figures de métaphase ont été observées dans quelques spores. Nous pensons donc pouvoir conclure au déroulement d'une méiose dans ces souches. Dans ce cas, comment expliquer la même ploïdie observée entre amibes et plasmodes ? Des études sont actuellement en cours pour préciser ce qui se passe lors de la germination, phénomène encore peu étudié et au cours duquel seule une très petite quantité des spores formées peut donner naissance à des amibes. Des observations préliminaires semblent indiquer que les spores multinucléées sont capables de libérer des amibes contenant plusieurs noyaux. Une mesure précise du contenu en ADN de ces noyaux pourrait peut-être nous permettre d'interpréter ces faits. (*) Séance du 17 janvier 1977. (1) Ce travail a été effectué dans le cadre de l'E.R.A. n° 407, C.N.R.S. (2) H. C. ALDRICH, Mycologia, 59, 1967, p. 127-148. (3) H. C. ALDRICH et C. W. MIMS, Amer. J. Bot., 57, 1970, p. 935-941. (4) I. ARESCALDINO, Comptes rendus, 266,
spores. Nous pensons donc pouvoir conclure au déroulement d'une méiose dans ces souches. Dans ce cas, comment expliquer la même ploïdie observée entre amibes et plasmodes ? Des études sont actuellement en cours pour préciser ce qui se passe lors de la germination, phénomène encore peu étudié et au cours duquel seule une très petite quantité des spores formées peut donner naissance à des amibes. Des observations préliminaires semblent indiquer que les spores multinucléées sont capables de libérer des amibes contenant plusieurs noyaux. Une mesure précise du contenu en ADN de ces noyaux pourrait peut-être nous permettre d'interpréter ces faits. (*) Séance du 17 janvier 1977. (1) Ce travail a été effectué dans le cadre de l'E.R.A. n° 407, C.N.R.S. (2) H. C. ALDRICH, Mycologia, 59, 1967, p. 127-148. (3) H. C. ALDRICH et C. W. MIMS, Amer. J. Bot., 57, 1970, p. 935-941. (4) I. ARESCALDINO, Comptes rendus, 266, série D, 1968, p. 1722. (5) I. ARESCALDINO, Comptes rendus, 273, série D, 1971, p. 398. (6) G. C. CARROLL et R. DYKSTRA, Mycologia, 58, 1966, p. 166-169. (7) D. J. COOKE et J. DEE, Genet Res. Camb., 23, 1974, p. 307-317. (8) J. DEE, SC. Prog. Oxf., 62, 1975, p. 523-542. (9) I. LACORRE-ARESCALDINO, 2nd European Physarum Meeting, Leicester, 1974, p. 16. (10) J. MOHBERG et M. P. RUSCH, Exp. Cell. Res., 66, 1971, p. 305-316. (11) J. MOHBERG, K. L. BABCOCK, F. B. HAUGLI et H. P. RUSCH, Develop. Biol., 34, 1973, p. 228-247. (12) M. J. MOSES, Ann. Rev. Genet., 2, 1968, p. 363-412. (13) M. J. MOSES, Genet. Suppl., 61, 1969, p. 40-52. (14) E. S. REYNOLDS, J. Cell. Biol., 17, 1963, p. 208-211. (15) A. E. WHEALS, Genetics, 66, 1970, p. 623-633. Laboratoire de Biologie cellulaire, Faculté des Sciences, B.P. n° 347, 51062 Reims Cedex. DYNAMIQUE DES POPULATIONS. — Courbe de survie du Diptère Brachycère Musca domestica L. analysée par la loi de la sénescence de Teissier (1934). Note (*) de Hagime Inagaki, présentée par M. Jean Dorst. La loi de Teissier s'ajuste assez rigoureusement aux deux parties de la courbe de survie de la
p. 523-542. (9) I. LACORRE-ARESCALDINO, 2nd European Physarum Meeting, Leicester, 1974, p. 16. (10) J. MOHBERG et M. P. RUSCH, Exp. Cell. Res., 66, 1971, p. 305-316. (11) J. MOHBERG, K. L. BABCOCK, F. B. HAUGLI et H. P. RUSCH, Develop. Biol., 34, 1973, p. 228-247. (12) M. J. MOSES, Ann. Rev. Genet., 2, 1968, p. 363-412. (13) M. J. MOSES, Genet. Suppl., 61, 1969, p. 40-52. (14) E. S. REYNOLDS, J. Cell. Biol., 17, 1963, p. 208-211. (15) A. E. WHEALS, Genetics, 66, 1970, p. 623-633. Laboratoire de Biologie cellulaire, Faculté des Sciences, B.P. n° 347, 51062 Reims Cedex. DYNAMIQUE DES POPULATIONS. — Courbe de survie du Diptère Brachycère Musca domestica L. analysée par la loi de la sénescence de Teissier (1934). Note (*) de Hagime Inagaki, présentée par M. Jean Dorst. La loi de Teissier s'ajuste assez rigoureusement aux deux parties de la courbe de survie de la femelle. Ces parties correspondent à deux étapes de sénescence ou régimes physiologiques postpubéraux. The fitness of Teissier's law to the female survival curve has been shown to be fairly strict and the curve is split into two senescent stages. These stages tally with two periods of variation in percentage of wing retention and in mitochondrial Mg-activated ATPase activity. L'évolution du taux de survie, en fonction du temps écoulé après la puberté, a fait l'objet de nombreux travaux chez divers Métazoaires. Peu d'entre eux se fondent cependant sur une théorie de la sénescence qui pourrait expliquer convenablement la courbe de survie. Le bon ajustement parfois constaté d'une certaine loi aux résultats expérimentaux n'a généralement été réalisé que par le recours à la formule empirique comme la loi de Gompertz-Pearl, qui comporte plusieurs paramètres d'interprétation biologique difficile. Par contre, la loi de Teissier (1934) e), déduite de la diminution de l'espérance de vie en fonction exponentielle du temps, ne renferme pas de tel paramètre et semble bien s'appliquer à la courbe de survie de différents groupes d'animaux. Utilisant la table de mortalité de l'imago femelle du Diptère Brachycère Musca domestica L. dressée par Rockstein et Lieberman e), j'ai tenté d'y appliquer la
wing retention and in mitochondrial Mg-activated ATPase activity. L'évolution du taux de survie, en fonction du temps écoulé après la puberté, a fait l'objet de nombreux travaux chez divers Métazoaires. Peu d'entre eux se fondent cependant sur une théorie de la sénescence qui pourrait expliquer convenablement la courbe de survie. Le bon ajustement parfois constaté d'une certaine loi aux résultats expérimentaux n'a généralement été réalisé que par le recours à la formule empirique comme la loi de Gompertz-Pearl, qui comporte plusieurs paramètres d'interprétation biologique difficile. Par contre, la loi de Teissier (1934) e), déduite de la diminution de l'espérance de vie en fonction exponentielle du temps, ne renferme pas de tel paramètre et semble bien s'appliquer à la courbe de survie de différents groupes d'animaux. Utilisant la table de mortalité de l'imago femelle du Diptère Brachycère Musca domestica L. dressée par Rockstein et Lieberman e), j'ai tenté d'y appliquer la loi de Teissier. Celle-ci traduit la fonction de survie / (t ) comme suit : / (f) = exp(l + t-et). La variable t représente le temps biologique du vieillissement dont la relation avec le temps d'observation x est telle que t = b + ax (a, b, paramètres de l'unité du temps), et, naturellement, à déterminer pour chaque courbe de survie. On définit d'autre part : t>0, 1(0) = 1. Il faut donc multiplier / (t ) par un coefficient T afin d'obtenir l'estimation 1 (x) du nombre lx des survivants au temps x. MÉTHODE DU CALCUL. — Pour la détermination des paramètres a, b et T, aucune méthode générale n'a été établie jusqu'à présent. J'ai alors effectué l'ajustement progressif de la loi de Teissier à la table de Rockstein et Lieberman, en essayant diverses combinaisons de valeurs de a, de b et de t. L'ajustement a été réalisé en minimisant la moyenne CYIC des carrés des écarts entre lx. et x / (ti), et tt étant respectivement la valeur de x exprimée en jour et celle de t correspondant à Xi' Le terme (lx, lx q) 1 XO1, représentant la proportion des individus qui ont péri, traduit l'amplitude
l'unité du temps), et, naturellement, à déterminer pour chaque courbe de survie. On définit d'autre part : t>0, 1(0) = 1. Il faut donc multiplier / (t ) par un coefficient T afin d'obtenir l'estimation 1 (x) du nombre lx des survivants au temps x. MÉTHODE DU CALCUL. — Pour la détermination des paramètres a, b et T, aucune méthode générale n'a été établie jusqu'à présent. J'ai alors effectué l'ajustement progressif de la loi de Teissier à la table de Rockstein et Lieberman, en essayant diverses combinaisons de valeurs de a, de b et de t. L'ajustement a été réalisé en minimisant la moyenne CYIC des carrés des écarts entre lx. et x / (ti), et tt étant respectivement la valeur de x exprimée en jour et celle de t correspondant à Xi' Le terme (lx, lx q) 1 XO1, représentant la proportion des individus qui ont péri, traduit l'amplitude du déroulement de la sénescence pendant la durée de xp à Xq. Le terme (1/2) (lxp + lx), médiane de lxi, indique le nombre moyen potentiel des individus soumis à l'élimination par sénescence. Nombre de survivants lx en fonction du nombre de jours x écoulés après l'émergence imaginaire chez la Mouche domestique femelle. La courbe continue traduit l'évolution de la valeur théorique de lx calculée suivant la fonction de survie de Teissier. Celle-ci a été déterminée, pour chaque étape, à partir des valeurs observées dans la même étape. La courbe en tirets montre l'extrapolation de la fonction de survie d'une étape en dehors de cette étape. Comme seuils de D pour apprécier l'ajustement, je propose la convention suivante : au-dessous de D = 0,01, la loi est rigoureusement vérifiée et, au-dessous de D = 0,02, elle l'est assez rigoureusement. Au-dessus de D = 0,02, elle n'est pas acceptée. A titre de comparaison, j'ai essayé d'appliquer la loi de Gompertz par la méthode suivante : Dans la fonction de Gompertz : étant donné que l'ensemble {Xi} représente une progression arithmétique de nombres entiers avec la raison 1, les estimations y et z des paramètres y et b sont obtenues par les
Mouche domestique femelle. La courbe continue traduit l'évolution de la valeur théorique de lx calculée suivant la fonction de survie de Teissier. Celle-ci a été déterminée, pour chaque étape, à partir des valeurs observées dans la même étape. La courbe en tirets montre l'extrapolation de la fonction de survie d'une étape en dehors de cette étape. Comme seuils de D pour apprécier l'ajustement, je propose la convention suivante : au-dessous de D = 0,01, la loi est rigoureusement vérifiée et, au-dessous de D = 0,02, elle l'est assez rigoureusement. Au-dessus de D = 0,02, elle n'est pas acceptée. A titre de comparaison, j'ai essayé d'appliquer la loi de Gompertz par la méthode suivante : Dans la fonction de Gompertz : étant donné que l'ensemble {Xi} représente une progression arithmétique de nombres entiers avec la raison 1, les estimations y et z des paramètres y et b sont obtenues par les formules : Les valeurs de (1 + eÎ) et de bz-l varient évidemment selon log lXi±l et log lXi. Nous adoptons ici la moyenne harmonique pondérée par (lXi , — 1,,,) de (1 + e?), 1 +eY. Après la détermination de y, nous cherchons une valeur optimale b de b, en essayant diverses valeurs possibles de b (dans ce cas, x, n'est pas forcément un nombre entier), cela avec l'estimation K de K par la formule Le même indice D sert à apprécier l'ajustement de la loi de Gompertz. TABLEAU Paramètres et indice d'ajustement dans l'application des lois de Teissier et de Gompertz Loi de Teissier Loi de Gompertz a b x D y b K D 1° étape 0,033 23 0,034 74 999,6 0,013 096 0,176 72 0,003 027 1 045,8 0,022 34 2e étape ...... 0,046 39 0,499 8 838,4 0,014 339 0,076 05 0,009 921 1 086,6 0,027 33 APPLICATION DES LOIS DE TEISSIER ET DE GOMPERTZ. — L'observation de la courbe de survie dessinée d'après la table de Rockstein et Lieberman nous conduit à nous demander si la courbe ne pourrait pas se décomposer en deux parties, l'une allant de x = 0 à x =
en essayant diverses valeurs possibles de b (dans ce cas, x, n'est pas forcément un nombre entier), cela avec l'estimation K de K par la formule Le même indice D sert à apprécier l'ajustement de la loi de Gompertz. TABLEAU Paramètres et indice d'ajustement dans l'application des lois de Teissier et de Gompertz Loi de Teissier Loi de Gompertz a b x D y b K D 1° étape 0,033 23 0,034 74 999,6 0,013 096 0,176 72 0,003 027 1 045,8 0,022 34 2e étape ...... 0,046 39 0,499 8 838,4 0,014 339 0,076 05 0,009 921 1 086,6 0,027 33 APPLICATION DES LOIS DE TEISSIER ET DE GOMPERTZ. — L'observation de la courbe de survie dessinée d'après la table de Rockstein et Lieberman nous conduit à nous demander si la courbe ne pourrait pas se décomposer en deux parties, l'une allant de x = 0 à x = 18 et l'autre, de x= 18 à x = 66. D'autre part, selon Clark et Rockstein, le pourcentage de la conservation des ailes demeure à 100 jusqu'à x= 18, puis diminue graduellement; l'activité de l'ATPase mitochondriale, dépendante du magnésium, montre une évolution presque parallèle. On peut alors supposer que les parties de la courbe ci-dessus envisagées correspondent à deux régimes physiologiques différents. En tenant compte de ce phénomène, j'ai appliqué les lois de Teissier et de Gompertz à chacune des deux parties. Les résultats de l'application de la loi de Teissier sont figurés dans le graphique et les paramètres et l'indice D calculés par cette loi, ainsi que ceux qui concernent la loi de Gompertz, sont consignés dans le tableau. Les deux parties de la courbe se distinguent, dans l'application de la loi de Teissier, par une importante différence de b, ce qui signifie un net décalage du début du temps biologique t. La différence de a, relativement faible, ne traduit pas moins une certaine inégalité de la vitesse d'écoulement de ce temps biologique. Pour les deux parties ainsi distinguées, la loi de Teissier est vérifiée assez rigoureusement (D < 0,02), tandis que la loi de Gompertz n'est pas valable