jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
of them has acquired a résistance to a phage may be classified as two différent phage types ». Contre cette manière de voir, Rountree, 1949, affirme que les phages de lysogénéité sont sérologiquement différents des phages employés pour la lysotypie des staphylocoques, et elle conclut que les différences de sensibilité des staphylocoques aux phages spécifiques des types ne doivent pas être rapportées en premier lieu à la lysogénéité, mais à des facteurs encore inexpliqués. Dans l'espèce S. paratyphi B, Nicolle, Grabar et Gibert, 1946, ont trouvé 22 souches lysogènes sur 31 souches examinées. Vingt souches portaient un phage sérologiquement identique,
31 souches examinées. Vingt souches portaient un phage sérologiquement identique, le phage 1 et les deux autres un phage différent, le phage 2. Les souches considérées à ce moment-là comme non lysogènes étaient sensibles à ces deux phages. Les souches porteuses du phage 1 étaient sensibles au second, mais résistantes au premier et inversement. La lysogénéité et la lysosensibilité ne sont donc deux états incompatibles dans les conditions habituelles que lorsqu'on les envisage, par rapport à un même bactériophage. D'autre part, la majorité des bactériophages utilisés pour la lysotypie de S. paratyphi B ont été obtenus à partir de cultures
S. paratyphi B ont été obtenus à partir de cultures lysogènes de cette espèce (Félix et Callow, 1943). Il était logique de penser que certains de ces phages de lysogénéité, contrairement à ce que Rountree a constaté dans les cas des staphylocoques, devaient être sérologiquement identiques ou plus ou moins apparentés aux autres phages portés par les cultures lysogènes. Il nous a paru alors évident que la lysogénéité des cultures de S. paratyphi B, plus variée et plus fréquente que nous n'avions été en mesure de le montrer dans l'étude limitée que nous avions faite en 1946, devait jouer un
limitée que nous avions faite en 1946, devait jouer un rôle de premier plan dans l'appartenance de cette espèce aux différents types de Félix et Callow. Nos expériences de reconstitution artificielle des types lysogènes par l'action des phages de lysogénéité sur les types considérés comme non lysogènes constituent la contre-épreuve de l'étude analytique des souches naturelles que nous avons rapportée dans notre premier mémoire. La lysogénéité explique donc dans une certaine mesure les différences observées, chez les divers types lysogènes, dans leur gamme de sensibilité aux phages de la lysotypie. Elle n'explique pas cependant pourquoi chaque type lysogène ne peut
Elle n'explique pas cependant pourquoi chaque type lysogène ne peut être artificiellement obtenu qu'à partir de l'un des trois types de base à l'exclusion des deux autres. Elle n'apporte aucun éclaircissement au problème des lysosensibilités distinctes constatées chez ces 3 types. Quels sont donc les facteurs qui impriment leur individualité à ces 3 types de base ? Ne seraient-ils pas, du moins l'un ou l'autre d'entre eux, porteurs d'un phage inactif sur l'espèce paratyphique B, mais actif sur d'autres Salmonella ? A ce sujet, il faut rappeler que Scholtens a trouvé chez le type 1 un phage actif sur S.
trouvé chez le type 1 un phage actif sur S. dublin n° 65. Ou bien, n'aurait-on pas affaire ici à un cas de « cryptolysogénéité » semblable à ceux qui ont été signalés par Lominski, 1938 ou encore à des facteurs purement bactériens, physiologiques, antigènes ou biochimiques, ou purement bactériophagiques, d'ordre mutationnel ? RÉSUMÉ. Les 7 types lysogènes de S. paratyphi B ont pu être préparés artificiellement, à partir de l'un ou l'autre des 3 types admis provisoirement comme non lysogènes, à l'exclusion des 2 autres, par contamination avec les phages extraits des types lysogènes. Chacun de ces 3 types
phages extraits des types lysogènes. Chacun de ces 3 types apparaît donc comme le chef de file d'une famille de types. La lysogénéité, dans ses divers états, explique partiellement les différences de la lysosensibilité présentée par les divers types vis-à-vis des phages utilisés pour la lysotypie. Cependant, elle n'explique pas l'existence des 3 types de base, ni le groupement des types lysogènes en 3 familles ayant chacune un type de base différent. Il faut bien admettre, indépendamment de la présence possible d'un phage actif hors de l'espèce, ou d'un phage de cryptolysogénéité, l'existence d'un ou de plusieurs facteurs purement bactériens.
de cryptolysogénéité, l'existence d'un ou de plusieurs facteurs purement bactériens. BIBLIOGRAPHIE [1] P. NICOLLE, Y. HAMON et E. EDLINGER. Ces Annales, 1951, 80, 000. [2] P. NICOLLE, A. JUDE et R. BUTTIAUX. Ces Annales, 1950, 79, 246. [3] P. NICOLLE. Ces Annales, 1947, 73, 705. [4] J. CRAIGIE. Canad. Publ. Health. J., 1942, 33, 41. [5] J. CRAIGIE. Bact. Rev., 1946, 10, 73. [6] H. WILLIAMS SMITH. J. Hyg., 1948, 46, 82. [7] G. S. WILSON et J. D. ATKINSON. Lancet, 1945, 1, 647. [8] P. M. ROUNTREE J. Gen. Microbiol., 1949, 3, 153. [9] P. NICOLLE, J. GRABAR et
Microbiol., 1949, 3, 153. [9] P. NICOLLE, J. GRABAR et P. GIBERT. Ces Annales, 1946, 72, 81. [10] A. FELIX et B. R. CALLOW. Brit. Med. J., 1943, 2, 127. [11] R. Th. SCHOLTENS. Antonie van Leeuwenhoek, 1950, 16, 256. [12] I. LOMINSKI. C. R. Soc. Biol., 1938, 129, 151 et 264. Nous remercions M. Paul Ducrest et Mme Diverneau de l'aide précieuse qu'ils nous ont apportée dans l'exécution technique de ce travail et du précédent. INFLUENCE DU STOCKAGE SUR LA VITALITÉ DU VACCIN BCG par KONRAD BIRKHAUG. (Laboratoire du BCG au Service de Santé de l'Etat de New-York, à
BCG au Service de Santé de l'Etat de New-York, à Albany.) On admet généralement que le pouvoir antigène du BCG dépend du nombre de germes viables que contient le vaccin, de leur multiplication et de leur dissémination dans l'organisme du sujet vacciné. Nous avons déjà eu l'occasion de constater que pour trouver le plus grand nombre de germes vivants (ou d'agglomérats de germes vivants), il faut s'adresser à des cultures de BCG sur milieu de Sauton âgées de 7 à 11 jours ; les cultures de cet âge contiennent, en effet, au moins deux fois plus de bacilles vivants que
effet, au moins deux fois plus de bacilles vivants que les cultures sur le même milieu âgées de 20 à 30 jours, employées pour la préparation du vaccin d'après la technique de Calmette. Les recherches concernant le nombre de germes vivants dans le vaccin BCG sont rares et leurs résultats sont contradictoires. Ainsi Aronson constate que « la vitalité des germes contenus dans le vaccin BCG diminue rapidement après cinq à sept jours et continue de diminuer ensuite, comme on peut s'en rendre compte par des ensemencements, par le pouvoir tuberculogène du vaccin et par la consommation d'oxygène de ce
tuberculogène du vaccin et par la consommation d'oxygène de ce même vaccin ». Dubos et Fenner ont cultivé du BCG en profondeur dans un liquide contenant du Tween 80 et une fraction soluble de sérum humain chauffé. Des cultures de ce genre produisent, entre leurs mains, quand elles sont âgées de 8 jours et ont été maintenues ensuite pendant six semaines à la glacière, 36 x 106 colonies par centimètre cube de culture. Nous avons, depuis septembre 1946, dans notre service, employé une méthode de culture standardisée pour la production hebdomadaire de lots de vaccin BCG en utilisant des cultures
hebdomadaire de lots de vaccin BCG en utilisant des cultures sur milieu de Sauton âgées de 10 à 11 jours. Jusqu’à présent 204 lots consécutifs de vaccin fraîchement préparé ont été ensemencés pour contrôler le nombre de germes vivants et, en outre, le même contrôle a été effectué avec des vaccins gardés à la glacière (-2° à -4°) jusqu'à 3 ans 1/2. Nous voudrions, aujourd’hui, décrire l’influence de ce stockage du vaccin sur la vitalité des germes qu’il contient. MATÉRIAUX ET MÉTHODES. — Les 60 premiers lots hebdomadaires consécutifs de vaccin ont été préparés chacun en partant d’environ 6 à
vaccin ont été préparés chacun en partant d’environ 6 à 10 g de culture BCG (poids après essorage). Les masses de culture furent homogénéisées par rotation dans des flacons contenant 1 kg de billes en acier inoxydable de 4 mm de diamètre et 0,500 kg de billes de 3 mm de diamètre ; la rotation était faite à la main à environ 30 rotations par minute. Après trois minutes de rotation, la masse de culture était transformée en une pâte huileuse adhérente aux parois du cylindre et aux billes métalliques. Après avoir ajouté 10 cm3 de liquide de suspension (une
Après avoir ajouté 10 cm3 de liquide de suspension (une partie de Sauton et trois parties d’eau physiologique), on continuait la rotation pendant trois minutes environ ; on ajoutait enfin la quantité de liquide nécessaire pour obtenir une suspension de BCG dosée à 20 mg par centimètre cube et on continuait encore la rotation pendant cinq minutes. La suspension contenant 20 mg de BCG par centimètre cube est utilisée pour la vaccination transcutanée de l’homme. Des frottis préparés avec cette suspension révèlent des bacilles acido-résistants minces et granuleux répandus parmi des agglomérats plus ou moins grands, dont certains contiennent plusieurs
des agglomérats plus ou moins grands, dont certains contiennent plusieurs centaines de germes. Sur ces frottis nous avons trouvé très peu de bacilles fragmentés ou non acidorésistants. Les 144 derniers lots hebdomadaires consécutifs de vaccin proviennent chacun d’environ 20 mg de culture de BCG et furent broyés avec 1,500 kg de billes métalliques de 4 mm de diamètre et 1,500 kg de billes de 3 mm de diamètre. Le broyage eut lieu cette fois non plus à la main, mais à l’aide d’un moteur électrique permettant 60 rotations par minute. Ayant remarqué que la glycérine possède une légère activité bactéricide
Ayant remarqué que la glycérine possède une légère activité bactéricide sur le BCG, nous avons modifié la composition du milieu liquide de suspension en choisissant une part de Sauton sans glycérine et trois parts de solution tampon phosphatée à pH 7,2 qui a donné, au cours de nombreux tests, des résultats satisfaisants. Le temps de broyage lui-même a été légèrement prolongé en ce sens que nous avons commencé par cinq minutes de rotation de la masse de culture, cinq minutes après avoir ajouté du liquide, juste de quoi couvrir les billes métalliques et finalement dix minutes après avoir ajouté la
billes métalliques et finalement dix minutes après avoir ajouté la quantité de liquide suffisante pour obtenir la concentration de 20 mg de BCG par centimètre cube. Les frottis de cette suspension nous ont montré la même distribution irrégulière de bacilles acido-résistants et granulaires individuels répartis entre des amas plus ou moins volumineux, dont certains contiennent plusieurs centaines de bacilles. La prolongation du broyage n’a pas produit un plus grand nombre de bacilles fragmentés ou non acido-résistants que les broyages précédents moins prolongés. Il est évident que le nombre de colonies, produit par l’ensemencement de ces suspensions de BCG contenant des
produit par l’ensemencement de ces suspensions de BCG contenant des amas, ne correspond pas au nombre exact de germes viables, présents dans chaque lot de vaccin, mais représente plutôt la dispersion moyenne d’amas de BCG qui se trouvent dans le vaccin frais ou stocké à la glacière. VITALITÉ DU VACCIN FRAÎCHEMENT PRÉPARÉ. Pour déterminer le nombre d’amas de BCG vivants présents dans chaque lot hebdomadaire de vaccin fraîchement préparé, le vaccin fut d’abord dilué dans de l’eau physiologique de façon à contenir 1 mg de BCG par centimètre cube, et ensuite dilué chaque fois dix fois pour obtenir finalement des
ensuite dilué chaque fois dix fois pour obtenir finalement des dilutions au 1/100 000, 1/1 000 000 et 1/10 000 000, puis 1 cm3 de chacune de ces dilutions fut ensemencé sur 5 grands tubes de milieu à l’œuf de Löwenstein (0,2 cm3 par tube). Les tubes furent placés en position horizontale à l’étuve à 37°5 pendant environ cinq heures pour permettre à l’excès de liquide de s’évaporer presque complètement ; les tubes étaient alors bouchés au caoutchouc et placés la face en bas. Les colonies furent dénombrées après quatre à huit semaines d’incubation à 37°5. Le tableau 1 représente
à huit semaines d’incubation à 37°5. Le tableau 1 représente le nombre de colonies de BCG produit dans 5 tubes pour chaque dilution au 1/1 000 000 en série double. Pour l’analyse statistique, 12 dénombrements de colonies hebdomadaires sont réunis en un groupe comprenant au total 120 cultures individuelles de la dilution au 1/1 000 000. On voit que la variation moyenne s'étend entre 37 ± 6,33 à 68 ± 21,03 colonies, avec une moyenne de 48 ± 10,55 colonies pour le groupe entier des 204 lots hebdomadaires de vaccin. Il s'ensuit que des vaccins fraîchement préparés d'après les méthodes
Il s'ensuit que des vaccins fraîchement préparés d'après les méthodes de culture et de récolte standard, et en utilisant des cultures âgées de 10 à 12 jours, contiennent une population de germes BCG vivants ou d'amas de germes plus ou moins stable. VITALITÉ DU VACCIN BCG STOCKÉ À 2 À 4°. — Aronson a examiné les effets du stockage sur la viabilité des suspensions de BCG dosées à 1 mg par centimètre cube dans du Sauton dilué, au 1/3 ou dans une solution tampon phosphatée à pH 7,2, en recherchant le taux minimal du vaccin produisant encore un développement dans
le taux minimal du vaccin produisant encore un développement dans le milieu de Dubos contenant du Tween 80 et une fraction soluble de sérum humain chauffé. Les résultats obtenus par Aronson furent à peu près les mêmes pour les deux liquides de suspension : développement d'une dilution au 1/1 000 000 quand il s'agissait de vaccin âgé de 3 jours, d'une dilution au 1/100 dans le cas de vaccin âgé de 6 à 12 jours, de la dilution au 1/10 pour du vaccin âgé de 22 jours et plus de développement du tout quand le vaccin était âgé de 25
développement du tout quand le vaccin était âgé de 25 jours et était suspendu dans du Sauton dilué, et, au même âge, développement de la dilution au 1/10 quand le vaccin avait été suspendu dans la solution tampon phosphatée et avait été stocké soit à 40 soit à 200. Nous suivons dans notre service une règle, qui veut qu'une ampoule de 12 cm3 de chaque lot de vaccin BCG dosé à 20 mg par centimètre cube, et une de vaccin dosé à 1 mg par centimètre cube, soient gardées indéfiniment à la glacière à 2 à 4°. Des ampoules de
à la glacière à 2 à 4°. Des ampoules de vaccin, ainsi stockées pour une durée allant jusqu'à trois ans et demi, furent vigoureusement secouées à la main pendant dix minutes et des ensemencements de dilutions progressives, préparées comme nous l'avons exposé plus haut, furent effectués dans le milieu de Dubos et sur milieu de Löwenstein (1 cm3 et 0,2 cm3 respectivement de la solution au 1/1 000 000). Les cultures furent examinées simultanément après quatre à huit semaines d'incubation, les cultures dans le Dubos par examen microscopique et par repiquage, les cultures sur Löwenstein par le dénombrement des colonies.
repiquage, les cultures sur Löwenstein par le dénombrement des colonies. Le tableau II montre les résultats de ces examens. On voit que le milieu de Löwenstein donne un nombre de résultats positifs plus élevé que le milieu de Dubos. Celui-ci nécessite probablement un nombre de germes vivants plus élevé pour permettre le développement de la culture en profondeur, que le milieu de Löwenstein pour la culture en surface. Il est également évident, quand on se place dans les conditions expérimentales adoptées par nous, que la perte en germes viables ou en amas viables, dans du vaccin stocké à 2 à
en amas viables, dans du vaccin stocké à 2 à 4°, est très inférieure à celle constatée par Aronson. En effet, à peu près 50 p. 100 de bacilles BCG vivants se trouvent encore dans du vaccin âgé de 3 semaines, 2 p. 100 dans du vaccin âgé d'un an. Nous sommes actuellement occupé à déterminer le pouvoir tuberculogène du vaccin stocké, contenant des germes BCG vivants et morts. TABLEAU II. — Vitalité du vaccin BCG stocké à 2 à 4° jusqu'à 3 ans. NOMBREMENT DÉVELOPÉMENT des colonies en NOURRITURE : DURÉE "ÂGE du vaccin BCG de dilution du taux
: DURÉE "ÂGE du vaccin BCG de dilution du taux dilué en milieu de suspensions ou en milieu de Löwenstein dosées à 1 mg de survie de Dubos de BCG (frottis) par cm3 (frottis) A-90 Frais. 49 X 10-7 A-90. 1 jour. 45 X 10-6 92 10-7 A-90. 2 jours. 41 X 10-6 84 10-7 A-90. 3 jours. 46X10-6 92 10-7 A-90. 4 jours. 31 X 10-6 76 10-6 A-90 5 jours. 41X10-6 84 10-7 A-90. 6 jours. 40 X 10-6 82 10-6 A-90. 7 jours. 38X10-6 18 10-6 A-90. 2 semaines. 26X10-6 53 10-8 A-90 3 semaines. 24 X
2 semaines. 26X10-6 53 10-8 A-90 3 semaines. 24 X 10-6 49 10-1 A-90 4 semaines. 19 X 10-6 39 10-7 B-90 6 semaines. 15 X 10-6 31 10-5 A-87. 3 mois. 9 X 10-6 18 10-8 A-81. 6 mois. 6 X 10-6 12 10-5 A-15 9 mois. 12 X 10-6 2,5 10-8 A-68 1 an. 9 X 10-6 1,8 10-4 A-41. 2 ans. 4 X 102 0,0008 10-1 A-15 3 ans. 0 0 A-23 3 ans 1/2. 0 0 RÉSUMÉ. — Du vaccin BCG, produit d'après les méthodes de culture et de récolte standardisées en utilisant des cultures sur
culture et de récolte standardisées en utilisant des cultures sur Sauton âgées de 10 à 11 jours, contient approximativement 50 000 000 de germes vivants ou d'amas de germes vivants par milligramme de culture essorée. La perte en germes vivants ou en amas vivants, dans du vaccin suspendu dans un liquide sans glycerine et stocké à la température de 2 à 4°, n'est pas rapide mais augmente graduellement avec l'âge, comme le montrent les ensemencements. BIBLIOGRAPHIE J. D. ARONSON. Am. J. Publ. Health, 1950, 40, 533. K. BØKHAUG. Am. Rev. Tub., 1949, 59, 567. A. CALMETTE. L'infection bacillaire et la
Tub., 1949, 59, 567. A. CALMETTE. L'infection bacillaire et la Tuberculose. Masson et Cie. Paris, 1936, p. 912. R. J. DUBOS et F. FENNER. J. Exp. Med., 1950, 91, 261. R. A. FISHER et F. YATES. Statistical tables for Biological, Agricultural and Medical Research, Londres, Oliver and Boyd, 1938, p. 26. ÉTUDE CYTOLOGIQUE DE ENDOSPORUS FILAMENTOSUS (POCHON ET CHALVIGNAC 1950) par J. POCHON et Mme M.-A. CHALVIGNAC. (Institut Pasteur. Laboratoire de Bactériologie technique.) Nous avons isolé et décrit une espèce bactérienne aérobie nouvelle, isolée du sol : Endosporus filamentosus (1). Cette bactérie présente un polymorphisme accentué avec formes bacillaires courtes
Cette bactérie présente un polymorphisme accentué avec formes bacillaires courtes et formes longues, filamenteuses, les unes et les autres pouvant évoluer vers l'autolyse. Les germes sporulés sont rares et apparaissent tardivement dans les cultures. Ces caractères particuliers nous ont incités à faire son étude cytologique détaillée. Dans ce but, les cultures ont été réalisées sur plaques de gélose-amidon et des prélèvements faits par apposition sur lame aux intervalles suivants : 10, 20, 30, 40 et 50 minutes, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 10, 13, 16, 20, 24, 36, 40, 60 heures, 5, 7 jours. Les lames ont été
40, 60 heures, 5, 7 jours. Les lames ont été fixées aux vapeurs osmiques ; les préparations, après hydrolyse chlorhydrique, ont été colorées au Giemsa (technique de Robinow). Jusqu'à la quarantième heure l'interprétation des examens est relativement facile : la multiplication se fait selon le schéma classique. Stades à 2, 4, 8 noyaux. Le retard de la division cellulaire sur la division nucléaire peut être considérable puisque l'on trouve des formes à 14 noyaux, toujours groupés par paire (fig. 1). A tous ces stades l'évolution peut se faire vers l'autolyse : le germe devient peu colorable, les granules chromatiques sont
: le germe devient peu colorable, les granules chromatiques sont irrégulièrement répartis, deviennent très petits, véritable poussière dans une ombre de microbe. Cet aspect est surtout manifeste au centre des colonies, où les germes, tassés les uns contre les autres, sont très grêles, ont un cytoplasme à peine visible, si bien que l'on ne voit guère qu'un amas de granules d'abord colorés en bleu intense, puis de plus en plus pâles pour ne plus réaliser qu'un nuage bleuâtre (fig. 2). Vers la quarante-cinquième heure apparaissent les formes filamenteuses (fig. 3), extrêmement longues, traversant un champ microscopique entier. Les unes ont
extrêmement longues, traversant un champ microscopique entier. Les unes ont une structure nucléaire absolument normale et à grains nettement individualisés et groupés par paire ; les autres, évoluant vers l'autolyse, sont mal colorées ; les granules sont irrégulièrement répartis ; lorsque l'autolyse est complète, on ne note plus qu'un filament rose pâle, avec une poussière chromatique ou même sans chromatine (fig. 4 a et 4 b). C'est également vers la quarante-cinquième heure que l'on peut noter des proliférations secondaires, à la périphérie des colonies, caractérisées par des germes plus volumineux, à protoplasme intensément coloré en rose, à noyau peu visible,
à protoplasme intensément coloré en rose, à noyau peu visible, souvent en bâtonnet. On suit très bien cette transformation en déplaçant la préparation depuis le centre jusqu'à la périphérie de la colonie (fig. 5 a et 5 b). Enfin, peuvent apparaître assez précocement, vers la troisième heure, des formes assez longues, à un seul noyau central qui nous semble devoir être interprété comme un stade de condensation, de réorganisation, plutôt que comme un stade banal à un noyau au cours des phénomènes normaux de division (stade que nous avons observé dans des cellules courtes). Ce noyau central se divise en
dans des cellules courtes). Ce noyau central se divise en deux, avec pont chromatique, chacun des deux noyaux migrant progressivement aux extrémités de la cellule. Des formes assez longues à 3 noyaux (un central et deux polaires) ont été observées sans que nous en puissions donner d'interprétation satisfaisante. Il ne nous a malheureusement pas été possible de mettre en évidence, sur ce milieu et dans ces conditions, d'images de sporulation. Cependant, deux ou trois cellules, insuffisantes pour pouvoir donner une description précise, laissent supposer que la spore se forme autour d'un grain chromatique avec élimination des autres grains de la
d'un grain chromatique avec élimination des autres grains de la cellule végétative. Par contre, en prélevant des colonies anciennes (deux mois) sur silico-gel, après fixation à l'alcool-formol, inclusion à la paraffine et coupe au microtome, nous avons trouvé, noyées dans le mucus, de très nombreuses spores ovales, mais toute image de formes végétatives avait disparu aussi bien à la périphérie, qu'au centre de la colonie (fig. 6). BIBLIOGRAPHIE (1) J. POCHON et Mlle M. A. CHALVIGNAC. C. R. Acad. Sci., 1951, 232, 123. REMARQUES SUR LES RECHERCHES RELATIVES A L’ACTION DE CERTAINES SUBSTANCES ANTIPARASITAIRES SUR LA MICROFLORE DU SOL par
DE CERTAINES SUBSTANCES ANTIPARASITAIRES SUR LA MICROFLORE DU SOL par J. POCHON, M-e J. LAJUDIE et Mlle O. COPPIER. (Institut Pasteur. Laboratoire de Microbiologie technique.) Depuis l'utilisation, en agriculture, de substances nématicides, insecticides et fungicides, des recherches ont été consacrées à l'action de ces corps sur la microflore du sol ; une action antiseptique sur les bactéries ne pouvait être éliminée a priori, qui eut été préjudiciable à l'équilibre biologique des sols traités. Nous avons, en 1948 [1], étudié l'action de l’hexachlorocyclohexane (mélange des isomères), du dichloropropane-dichloropropylène et du bromure d'éthylène et avons conclu, après des expériences en pots sur
d'éthylène et avons conclu, après des expériences en pots sur deux lots de terre, à l'innocuité de ces corps sur la microflore et même à leur action stimulante sur certains groupements physiologiques (Azotobacter, ferments nitreux). Les quelques travaux publiés depuis aboutissent sensiblement aux mêmes conclusions. Nous avons repris cette étude, sur une plus grande échelle, sur deux types de terres betteravières provenant de Belgique et ayant reçu, en différentes parcelles, les traitements suivants : D. D., 800 kg à l'ha-D. D., 400 kg à l'ha-D. D., 800 kg à l'ha, associé à H. C. H., 0,700 kg à l'ha-H. C.