jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
des Camptotrichaceae n'a aucun représentant en France. D'une manière générale, les Cyanophycées sont beaucoup moins « localisées » que les autres végétaux. La température parait leur être, en partie, indifférente, de même que l'altitude. Ce qui dirige leur répartition, c'est seulement la nature de l'eau — douce ou salée — et son abondance — extrême ou modérée; on comprend que, dans ces conditions, elles peuvent trouver les conditions nécessaires à leur développement aussi bien dans le Nord que dans le Midi, aussi bien dans la montagne que dans la plaine. Un des habitats bien particuliers des Cyanophycées, est de végéter
Un des habitats bien particuliers des Cyanophycées, est de végéter sur la terre plus ou moins humide, qu'elles couvrent d'une couche d'un bleu verdâtre ou qu'elles occupent en masses disséminées çà et là. Certaines espèces se contentent de la terre nue, mais beaucoup d'entre elles demandent des conditions qui favorisent la conservation de l'humidité, comme, par exemple, la présence d'un tapis moussu. Ces espèces terrestres sont, surtout, les suivantes : Chroococcus macrococcus (Kütz.) Rab. Gloeocapsa mellea Kütz. — quadratinala (Bréb.) Kütz. — atrata Kütz. Gloeothecae confluens Nägeli. — rupestris (Lyngby) Born. Oscillatoria sancta (Kütz.) Gom. Phormidium autumnale (Ag.) Gom. Symploca
Born. Oscillatoria sancta (Kütz.) Gom. Phormidium autumnale (Ag.) Gom. Symploca muralis Kütz. — radians (Kütz.) Rab. Hypheothrix arenaria (Berk.) Forti. Schizothrix Muelleri Nägeli. — Lamy Gomont. Microcoleus vaginatus (Vauch.) Gom. Nostoc Passerinianum (de Not.) B. et F. — Muscorum Ag. — humifusum Carmichael. Nostoc foliaceum Mougeot. — commune Vaucher. — minutum Desm. Cylindrospermum stagnale (Kütz.) B. et F. — majus Kütz. — licheniforme (Bory) Kütz. — muscicola (Kütz.) — catenatum Ralfs. Scytonema spumosum (Kütz.) Born. — ocellatum Lyngby. — Hofmanni Ag. — Myochrous (Dillwyn.) Ag. — velutinum (Kütz.) Rab. — crassum Nägeli. Fischerella muscicola (Thur.) Gom. — ambigua (Nägeli.) Gom.
crassum Nägeli. Fischerella muscicola (Thur.) Gom. — ambigua (Nägeli.) Gom. Stigonema tenue (Berk.) Cooke. Ces espèces « grimpent », souvent, de la terre sur la base du tronc des arbres. Deux, particulièrement, sont, même, plus spécialement, lignicoles : Gloeocapsa lignicola (Kütz.) Rab. Tolypothrix byssoidea (Hass.) Kirchner. Il en est qui trouvent l'humidité des vieux toits suffisante : Gloeocapsa stegophila (Kütz.) Rab. Phormidium leptodermum Kütz. Un bon nombre d'espèces demandent une humidité « qui se renouvelle assez souvent » par le ruissellement à la surface de leur substratum ; elles la trouvent sur les murs verticaux ou les rochers. Ce sont,
trouvent sur les murs verticaux ou les rochers. Ce sont, notamment : Chroococcus turgidus (Kütz.) Nägeli. — sabulosus (Menge.) Hansg. Chroothece monococcum (Kütz.) Hansg. Gloeocapsa ciocalacea (Corda) Rab. — mellea Kütz. — montana Kütz. — squamulosa Bréb. Gloeotheca rupestris Lyngby) Born. Aphanocapsa virescens (Hassall) Rab. Hyella fontana Hub. et Jadin. Oscillatoria viulacea (Wallr.) Hass. Phormidium cebennense Gom. — incrustum (Nägeli.) Gom. Hypheothrix calcicola (Ag.) Rab. Hypheothrix lardacea (Ges.) Hansg. Symplocastrum fragile (Kütz.) Forti. — Friesii (Ag.) Kirchn. Inactis rubella (Gom.) Forti. Nostoc margaritaceum (Kütz.) Rab. — calcicola Bréb. Nodularia armorica Thuret. Scytonema intertextum (Kütz) Rab. — crustaceum Ag. Stigonema panniforme
Thuret. Scytonema intertextum (Kütz) Rab. — crustaceum Ag. Stigonema panniforme (Ag.) Kirchner. — lomentosum (Kütz.) Thuret. — minutum (Ag.) Hass. Dichothrix gypsophila (Kütz.) B. et F. Ces espèces croissent à la surface supérieure des rochers. Certaines recherchent plutôt leur surface inférieure, qu'elles rencontrent surtout dans les cavernes : Chroococcus glomeratus (Menge.) Forti. Gloeotheca violacea Rab. 54 REVUE GÉNÉRALE DE BOTANIQUE Mais le plus grand nombre de nos espèces vivent dans les eaux tranquilles, comme, par exemple, le bord des marais, des lacs, des étangs, des flaques d'eau, des rivières au cours lent; elles s'y trouvent à la surface de la
cours lent; elles s'y trouvent à la surface de la vase, entre les herbes du bord, tantôt plus ou moins libres, tantôt fixées à ces dernières, aux piliers des ponts, aux pierres submergées. C'est là que le phycologue peut faire une riche récolte : Chroococcus turinensis (Naeg.) Hansg. — fuligineus (Lenorm.) Rab. — hilumnosus (Bory) Hansg. Gloeocapsa Magma (Breb.) Ktz. — Shuttleworthiana Ktz. — Peniocystis Breb. — janthina Naeg. — Paroliniana Breb. — rupestris Ktz. — polidern.alica Ktz. — quaternata (Bréb.) Ktz. — granosa (Berk.) Ktz. gloeothecinae membranacea (Rab.) Born. — linearis Naeg. — fuscolutea Naeg. Aphanocapsa flava (Ktz.) Rab.
— linearis Naeg. — fuscolutea Naeg. Aphanocapsa flava (Ktz.) Rab. Aphanothece stagnina (Spr.) A. Braun — Castagnei (Bréb.) Rab. Microcystis ochracea (Brand.) Forti. — firma (Bréb. et Len.) Schmidle. — marginata Ktz. Chlathrocystis aeruginosa (Ktz.) Henfrey. Merismopedium glaucoma (Ehr.) Naeg. Merismopedium aeruginosum Breb. — convolutum Breb. Oscillotoria Lemaniae (Ag.) Gom. — sparsa (Bréb.) Rab. Radaisia Cornuana Sauv. Oscillatoria rubescens D. C. — Agardhii Gom. — princeps Vauch. — limosa (Roth.) Ag. — curviceps Ag. — major Vauch. — ornata (Ktz.) Gom. — anguina (Bory.) Gom. — Bonnemaisonii (Grouan) Gom. — irrigua (Ktz.) Gom. — nigra Vauch. — tennis Ag. —
irrigua (Ktz.) Gom. — nigra Vauch. — tennis Ag. — amphibia Ag. — chlorina (Ktz.) Gom. — splendida Grev. — animalis Agardh. — brevis Ktz. (Gom. — formosa Bory. — Parellana Menegh. Arthrospira Jenneri (Ktz.) Stiz. Spirulina major Ktz. — molle (Ktz.) Gom. — fragile (Menegh.) Gom. ALGUES BLEUES DE FRANCE 55 Phormidium tinctorium Ktz. — molle (Ktz.) Gom. — fragile (Menegh.) Gom. Lyngbya nigra G. Ag. — aerugineo-caerulea (Ktz.) Gom. — versicolor (Wartm). Gom. — ochracea (Roth.) Tur. — spirulinoides Gom. — Muscorum (Ag.) Gom. — Brebissonii Ktz. Hydrocoleus homoeotrichus Ktz. Hypheothrix Regeliana Naeg. — lateritia Ktz. — coriacea
homoeotrichus Ktz. Hypheothrix Regeliana Naeg. — lateritia Ktz. — coriacea Ktz. — rufescens Ktz. — subcontinua (Naeg.) Ktz. Inaetis pulvinata Ktz. — lacustris (A. Br.) Forti. vaginata Naeg. g.' tinctoria (Ag.) Thur. Schizothrix purpurascens (Ktz.) Gom. Microcoleus paludosus (Ktz.) Gom. Nostoc cuticulare (Bréb.) Born. et Flah. — entophytum Born. et Flah. — paludosum Ktz. — Linckia (Both) Born. et Flah.. — piscinale Ktz. — rivulare Ktz. — carneum Ag. — spongiaeformis Ag. — sphaericum Vaucher. — macrosporum Menegh. — microscopicum Garm. — caerulans Lyngbye. — pruniformis (L.) Ag. — parmelioides Ktz. Nodularia sphaerocarpa B. et F. Anabaena sphaerica B. et
Ktz. Nodularia sphaerocarpa B. et F. Anabaena sphaerica B. et F. — Flos-aquae (Lyngbye) Bréb. — circinalis Rab. — inaequalis Ktz. ) B. et F. — Cutenula (Ktz.) B. et F. — oscillarioides Bory. Microchaete tenera Thur. — striatula Ly. — diplosiphon Gomont. Platotrichum Tumasinianum (Ktz.) Bornet. — tenue Thur — purpureum Gom. — Nostocarum Boni. Scytonema crispum. — totypotrichoides Ktz. — mirabile (Dillw.) Bornet. Bornet. 56 REVUE GÉNÉRALE DE BOTANIQUE Scytonema alatum (Carm.) Borzi. Tolypothrix distorta (H.-B.) Ktz. — lanata (Desv.) Wartm. — tennis Ktz. — penicillata (Ag.) Thur. — limbata Thuret. — fasciculata Gom. — Boutevillei Breb. et
— limbata Thuret. — fasciculata Gom. — Boutevillei Breb. et Desm. Desmonema Wrangelii (Ag.) B. et F. Hapalosiphon fontinalis (Ag.) Born. Stigonema hormoides (Ktz.) B. et F. — ocellatum (Dillw.) Th. — informe Ktz. Capsosira Brebissonii Ktz. Amphithrix janthina (Mont.) B. et F. Calothrix balearica Born. et Fl. — juliana (Meneg.) B. et Fl. Rivularia natans (Hedw.) Welw. — Pisum Ag. — minutula (Ktz.) B. et Fl. — dura Roth. Ces espèces des eaux douces se répandent souvent à la surface des marais et des étangs, constituant une partie de ce que l'on a appelé "des fleurs d'eau". Les plus
ce que l'on a appelé "des fleurs d'eau". Les plus "pélagiques" sont : Chroococcus limneticus Lemm. Gomphosphaeria lacustris Chodat. Dans les eaux thermales, on peut rencontrer une bonne partie des espèces que j'ai citées ci-dessus, c'est-à-dire que la température de l'eau est relativement indifférente. Mais, à côté d'elles, on en trouve d'autres qui ne se trouvent guère que dans les eaux chaudes : Chroococcus aurantiacus (Lib.) de Toni. Gloeocapsa fulva Ktz, — gelatinosa Ktz. — oernaria (Hassal.) Rab. Merismopedium thermale Ktz. Oscillatoria simplirissima Gom. — geminata (Men.) Gom. — amaena (Ktz.) Gom. Oscillatoria Okeni (Ag.) Gom. — chalybea (Mertens) Gom.
(Ktz.) Gom. Oscillatoria Okeni (Ag.) Gom. — chalybea (Mertens) Gom. — terebri formis (Ag.) Gom. Spirulina subtilissima Ktz. Symplocaceae thermalis (Ktz.) Rab. Hapalosiphon laminosus Hansg. Fischerella thermalis (Schwabe) Gom. D'autres espèces d'eau douce, au lieu de tranquillité et de chaleur exigent de l'eau passant sur elles avec une grande vitesse. Aussi ne ALGUES BLEUES DE FRANCE 57 les trouve-t-on que dans les fleuves au cours rapide, sur les rochers des torrents et des cascades : Gloeocapsa microphthalma Ktz. Phormidium corium (Ag.) Gom. — subfuscum Ktz. — crassiusculum Ktz. Symploca dubia (Naeg.) Gom. Inactis fasciculata (Naeg.) Grun. — penicillata (Ktz.) Forti.
(Naeg.) Gom. Inactis fasciculata (Naeg.) Grun. — penicillata (Ktz.) Forti. Nostoc verrucosum (L.) Vauch. Rivularia haematites (D. C.) Ag. Bon nombre des espèces d'eaux douces peuvent vivre indifféremment dans celles-ci et dans les eaux salées. Les plus caractéristiques à cet égard sont : Phormidium papyraceum (Ag.) Gom. Chroococcus turgidus (Ktz.) Naeg. Lyngbya raricapsulifera Ktz. Aphanizomenon Flos-aquae (L.) Ralfs. Calothrix fusca (Ktz.) B. et F. — stagnalis Gom. — adscendens (Naeg.) B. et F. Rivularia punctulata (Thur.) Forti. Mais la même faculté s'applique à quelques autres et, non loin du bord de la mer, on peut les trouver côte à côte
de la mer, on peut les trouver côte à côte avec les espèces marines et même mélangées avec elles. Les eaux saumâtres ont, cependant, leur flore particulière, que, d'ailleurs, on peut rencontrer aussi dans les marais salants : Oscillatoria margaritifera (Ktz.) Gom. — Lloydiana Gom. Spirulina Nordstedtii Gom. Lyngbya flexuosa (Meneg.) Rab. Anabaena torulosa (Carm.) Lag. Quant à la mer elle-même, elle a une flore beaucoup plus riche qu'on ne se l'imagine généralement, le nombre des individus de chaque espèce étant sensiblement moins grand que celui des espèces d'eau douce ou terrestre. Ces espèces marines ont, d'autre part, une aire
ou terrestre. Ces espèces marines ont, d'autre part, une aire de répartition très étendue. Beaucoup par exemple se rencontrent presque aussi bien dans la Manche et l'Atlantique que dans la Méditerranée : Oncobrysa marina G run.) Rab. Hyella caespitosa. Born. et Flah. Dermocarpa prasina (Reinsch.) T. et B | — biscayensis Sauv. — strangulata Sauv. — colaca Crouan. Oscillatoria nigro-viridis Thwait. REVUE GÉNÉRALE DE BOTANIQUE Certaines, cependant, sont particulières à la Manche et à l'Atlantique. En voici l'énumération, avec marquées d'une *, celles qui sont plus particulièrement localisées dans le Golfe de Gascogne : Spirulina subsalsa Oersted. Lyngbya sordida (Zan.)
Golfe de Gascogne : Spirulina subsalsa Oersted. Lyngbya sordida (Zan.) Gomont. — majuscula Harv. — confervoides C. Ag. — semiplena (C. Ag.) J. Ag. Symploca hydnoides Ktz. Hydrocoleus lyngbyaceus Ktz. Microcoleus Chthnoplastes Thuret. Thuret. ellipsosporum (Desm.) Rab. Nodularia spumigena Mertens. Microchaeta grisea Thur. Mastigocoleus Teslarum Lagerheim. Amphithrix violacea (Ktz.) B. et P. Calothrix confervicola (Roth.) Ag. — fusco-violacea Grouan — scopulorum (W. et M.) Ag. — Contarenii (Zan.) B. et F. — parasitica (Chauv.) Thur. — aeruginea (Ktz.) Thuret. Thuret. — crustacea Thuret. Isaetis plana (Harv.) Thuret. Rivularia polyolis (Ag.) B. et F. — atra Roth. — coadunata (Somm.) Fortlie.
B. et F. — atra Roth. — coadunata (Somm.) Fortlie. Brachytrichia Balani (Lloyd) B. et F. Glaeocapsa crepidinum Thur. Glaeocapsa chrysophthalma Mont. Placoma vesiculosa Schousb. Radaisia Gomontiana Sauv. Oscillatoria Corallinae (Ktz.) Gom. — rosea (Gr.) Batters. — subviolacea Cro. — zostericola Crouan. — subuliformis (Thw. Gom. — laetevirens (Crouan) Gom. Arthrospira miniata (Hanck.) Gom. Spirulina Meneghiniana Zanard. — rosea Crouan. — labyrinthiformis (Men.) Gom. Phormidium persicinum (Rhe.) Gom. — submembranaceum (A. et S.) Gom. Lyngbya Baculum Gom. — Agardhii (Crouan) Gom. — Meneghiniana (Ktz.) Gom. — Estuarii (Mert.) Liebm. — ambigua Ktz. — cinerescens Ktz. — lutea (Ag.) Gom. —
ambigua Ktz. — cinerescens Ktz. — lutea (Ag.) Gom. — strangulum Ktz. Symploca atlantica Gom. Hydrocoleus glutinosus (Ag.) Hypheothrix Lenormandiana (Gom.) Forti. ALGUES BLEUES DE FRANCE Contrairement aux espèces d'eau douce, la plupart des espèces marines ne sont pas libres, mais, pour ne pas être emportées par le flux, fixées aux rochers ou aux autres Algues, parfois incrustées dans les coquilles. Beaucoup d'entre elles ne se trouvent qu'à la limite la plus supérieure du flux, c'est-à-dire qu'elles ne reçoivent des paquets de mer que pendant peu de temps dans les vingt-quatre heures, voire même pas du tout quand la marée
vingt-quatre heures, voire même pas du tout quand la marée est faible. Les autres espèces se trouvent dans la zone supérieure et, en moins grand nombre, dans la zone moyenne de la mer; celles de la zone inférieure sont très rares : Sirocoleus Kurzii (Zeller.) Gom. Microcoleus acutirostris Gom. — tenerrimus Gom. Plectonema terebrans B. et F. Calothrix rubra. — pulvinata (Mert.) Ag. — parielina (Naeg) Thur. Dichothrix Baueriana (Grunow) B.et F. Forskaliana (Ktz.) B. et F. Chloruria australis Harvey. — bullata (Poir.) Berkeley. Berkeley. — minor Ag. D'autres, au contraire, sont spéciales au littoral méditerranéen Entophysalis granulosa Ktz. Lyngbya
contraire, sont spéciales au littoral méditerranéen Entophysalis granulosa Ktz. Lyngbya salina Ktz. — margaritacea Ktz. Hydrocoleus flocrosus (Hauck.) Gom. Calothrix consorinta (Ktz.) B. et F. — prolifera Flahault. Rivularia mesenterica Thur. Et, pour terminer cette étude de la répartition géographique des Cyanophycées, il faudrait encore énumérer celles qui vivent en symbiose avec les champignons dans certains Lichens, comme par exemple, les Scytonema des Stereocaulon, les Glaeocapsa des Synalissa, les Nostoc des Collemas, les Rivularia des Lichina, mais leur systématique est, malheureusement, encore trop incomplète. EFFET DE L'ÉLECTROLYSE SUR LE POUVOIR AMYLOLYTIQUE D'UNE INFUSION DE MALT par Mlle G. PROMSY et
AMYLOLYTIQUE D'UNE INFUSION DE MALT par Mlle G. PROMSY et M. P. PEBE Au cours de recherches antérieures destinées à mettre en lumière l'action ionique des acides sur les végétaux, nous avons reconnu incidemment que le passage du courant provoquait l'abaissement du quotient respiratoire et un retard dans la germination des graines de Faba vulgaris (1). Pour expliquer le premier de ces phénomènes, nous avons émis les hypothèses suivantes : L'électrolyse augmente, à l'intérieur de la graine, les oxydations de corps dont la décomposition donne un CO2 rapport CO2/O assez faible, ou bien elle diminue l'émission d'acide carbonique provenant de
faible, ou bien elle diminue l'émission d'acide carbonique provenant de décompositions où n'intervient pas l'oxygène (l'acide carbonique provenant du dédoublement des matières albuminoïdes par la carbonase de Palladium) ou encore elle entrave le rôle de réserve oxygénée joué dans la respiration normale des fèves par le tégument (2). On remarque que ces diverses hypothèses étaient basées sur la possibilité d'une modification des activités diastasiques à l'intérieur de la graine sous l'influence de la traversée du courant. C'est cette action perturbatrice de l'électrolyse sur le pouvoir des enzymes qu'il restait à établir et qui fait l'objet des présentes recherches. La diastase
établir et qui fait l'objet des présentes recherches. La diastase choisie a été l'amylase de l'orge germée. Afin d'opérer dans les conditions les plus voisines des conditions biologiques, nous n'avons pas isolé le ferment qui n'aurait d'ailleurs vraisemblablement pas conduit l'électricité, mais nous avons employé comme liquide saccharifiant l'infusion de malt naturelle. Voici la technique suivie dans nos expériences : On fait macérer pendant 10 heures un poids donné de malt de brasserie, préalablement moulu, dans un volume d'eau distillée. Le liquide amylolytique ainsi obtenu est filtré, puis divisé en un certain nombre de volumes égaux qui seront soumis à
un certain nombre de volumes égaux qui seront soumis à une électrolyse plus ou moins intense, un dernier volume non traité devant servir de témoin. La cuve à électrolyse est une petite boîte de verre dans laquelle plongent les deux pôles en platine d'un courant fourni par une source galvanique de 220 volts débitant, suivant les expériences, de 0 mA à 50 mA pendant des temps variables. CORRECTION ### Beaucoup par exemple se rencontrent presque aussi bien dans la Manche et l'Atlantique que dans la Méditerranée : Oncobrysa marina G run.) Rab. Hyella caespitosa. Born. et Flah. Dermocarpa prasina (Reinsch.)
run.) Rab. Hyella caespitosa. Born. et Flah. Dermocarpa prasina (Reinsch.) T. et B | — biscayensis Sauv. — strangulata Sauv. — colaca Crouan. Oscillatoria nigro-viridis Thwait. REVUE GÉNÉRALE DE BOTANIQUE Certaines, cependant, sont particulières à la Manche et à l'Atlantique. En voici l'énumération, avec marquées d'une *, celles qui sont plus particulièrement localisées dans le Golfe de Gascogne : Spirulina subsalsa Oersted. Lyngbya sordida (Zan.) Gomont. — majuscula Harv. — confervoides C. Ag. — semiplena (C. Ag.) J. Ag. Symploca hydnoides Ktz. Hydrocoleus lyngbyaceus Ktz. Microcoleus Chthnoplastes Thuret. Thuret. ellipsosporum (Desm.) Rab. Nodularia spumigena Mertens. Microchaeta grisea Thur. Mastigocoleus Teslarum
(Desm.) Rab. Nodularia spumigena Mertens. Microchaeta grisea Thur. Mastigocoleus Teslarum Lagerheim. Amphithrix violacea (Ktz.) B. et P. Calothrix confervicola (Roth.) Ag. — fusco-violacea Grouan — scopulorum (W. et M.) Ag. — Contarenii (Zan.) B. et F. — parasitica (Chauv.) Thur. — aeruginea (Ktz.) Thuret. Thuret. — crustacea Thuret. Isaetis plana (Harv.) Thuret. Rivularia polyolis (Ag.) B. et F. — atra Roth. — coadunata (Somm.) Fortlie. Brachytrichia Balani (Lloyd) B. et F. Glaeocapsa crepidinum Thur. Glaeocapsa chrysophthalma Mont. Placoma vesiculosa Schousb. Radaisia Gomontiana Sauv. Oscillatoria Corallinae (Ktz.) Gom. — rosea (Gr.) Batters. — subviolacea Cro. — zostericola Crouan. — subuliformis (Thw.
Batters. — subviolacea Cro. — zostericola Crouan. — subuliformis (Thw. Gom. — laetevirens (Crouan) Gom. Arthrospira miniata (Hanck.) Gom. Spirulina Meneghiniana Zanard. — rosea Crouan. — labyrinthiformis (Men.) Gom. Phormidium persicinum (Rhe.) Gom. — submembranaceum (A. et S.) Gom. Lyngbya Baculum Gom. — Agardhii (Crouan) Gom. — Meneghiniana (Ktz.) Gom. — Estuarii (Mert.) Liebm. — ambigua Ktz. — cinerescens Ktz. — lutea (Ag.) Gom. — strangulum Ktz. Symploca atlantica Gom. Hydrocoleus glutinosus (Ag.) Hypheothrix Lenormandiana (Gom.) Forti. ALGUES BLEUES DE FRANCE Contrairement aux espèces d'eau douce, la plupart des espèces marines ne sont pas libres, mais, pour ne pas être
marines ne sont pas libres, mais, pour ne pas être emportées par le flux, fixées aux rochers ou aux autres Algues, parfois incrustées dans les coquilles. Beaucoup d'entre elles ne se trouvent qu'à la limite la plus supérieure du flux, c'est-à-dire qu'elles ne reçoivent des paquets de mer que pendant peu de temps dans les vingt-quatre heures, voire même pas du tout quand la marée est faible. Les autres espèces se trouvent dans la zone supérieure et, en moins grand nombre, dans la zone moyenne de la mer; celles de la zone inférieure sont très rares : Sirocoleus Kurzii (Zeller.)
la zone inférieure sont très rares : Sirocoleus Kurzii (Zeller.) Gom. Microcoleus acutirostris Gom. — tenerrimus Gom. Plectonema terebrans B. et F. Calothrix rubra. — pulvinata (Mert.) Ag. — parielina (Naeg) Thur. Dichothrix Baueriana (Grunow) B.et F. Forskaliana (Ktz.) B. et F. Chloruria australis Harvey. — bullata (Poir.) Berkeley. Berkeley. — minor Ag. D'autres, au contraire, sont spéciales au littoral méditerranéen Entophysalis granulosa Ktz. Lyngbya salina Ktz. — margaritacea Ktz. Hydrocoleus flocrosus (Hauck.) Gom. Calothrix consorinta (Ktz.) B. et F. — prolifera Flahault. Rivularia mesenterica Thur. Et, pour terminer cette étude de la répartition géographique des Cyanophycées, il faudrait encore
étude de la répartition géographique des Cyanophycées, il faudrait encore énumérer celles qui vivent en symbiose avec les champignons dans certains Lichens, comme par exemple, les Scytonema des Stereocaulon, les Glaeocapsa des Synalissa, les Nostoc des Collemas, les Rivularia des Lichina, mais leur systématique est, malheureusement, encore trop incomplète. EFFET DE L'ÉLECTROLYSE SUR LE POUVOIR AMYLOLYTIQUE D'UNE INFUSION DE MALT par Mlle G. PROMSY et M. P. PEBE Au cours de recherches antérieures destinées à mettre en lumière l'action ionique des acides sur les végétaux, nous avons reconnu incidemment que le passage du courant provoquait l'abaissement du quotient respiratoire et
le passage du courant provoquait l'abaissement du quotient respiratoire et un retard dans la germination des graines de Faba vulgaris (1). Pour expliquer le premier de ces phénomènes, nous avons émis les hypothèses suivantes : L'électrolyse augmente, à l'intérieur de la graine, les oxydations de corps dont la décomposition donne un CO2 rapport CO2/O assez faible, ou bien elle diminue l'émission d'acide carbonique provenant de décompositions où n'intervient pas l'oxygène (l'acide carbonique provenant du dédoublement des matières albuminoïdes par la carbonase de Palladium) ou encore elle entrave le rôle de réserve oxygénée joué dans la respiration normale des fèves par
réserve oxygénée joué dans la respiration normale des fèves par le tégument (2). On remarque que ces diverses hypothèses étaient basées sur la possibilité d'une modification des activités diastasiques à l'intérieur de la graine sous l'influence de la traversée du courant. C'est cette action perturbatrice de l'électrolyse sur le pouvoir des enzymes qu'il restait à établir et qui fait l'objet des présentes recherches. La diastase choisie a été l'amylase de l'orge germée. Afin d'opérer dans les conditions les plus voisines des conditions biologiques, nous n'avons pas isolé le ferment qui n'aurait d'ailleurs vraisemblablement pas conduit l'électricité, mais nous avons employé
n'aurait d'ailleurs vraisemblablement pas conduit l'électricité, mais nous avons employé comme liquide saccharifiant l'infusion de malt naturelle. Voici la technique suivie dans nos expériences : On fait macérer pendant 10 heures un poids donné de malt de brasserie, préalablement moulu, dans un volume d'eau distillée. Le liquide amylolytique ainsi obtenu est filtré, puis divisé en un certain nombre de volumes égaux qui seront soumis à une électrolyse plus ou moins intense, un dernier volume non traité devant servir de témoin. La cuve à électrolyse est une petite boîte de verre dans laquelle plongent les deux pôles en platine d'un courant
dans laquelle plongent les deux pôles en platine d'un courant fourni par une source galvanique de 220 volts débitant, suivant les expériences, de 0 mA à 50 mA pendant des temps variables. CORRECTION ### Beaucoup par exemple se rencontrent presque aussi bien dans la Manche et l'Atlantique que dans la Méditerranée : Oncobrysa marina G run.) Rab. Hyella caespitosa. Born. et Flah. Dermocarpa prasina (Reinsch.) T. et B | — biscayensis Sauv. — strangulata Sauv. — colaca Crouan. Oscillatoria nigro-viridis Thwait. REVUE GÉNÉRALE DE BOTANIQUE Certaines, cependant, sont particulières à la Manche et à l'Atlantique. En voici l'énumération, avec marquées