jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
11 vitamines + mannitol; Régime 3 : céréales germées (Vanderzant Adkisson). Séance du 21 février 1977. M. V. BRIAN, Ann. Rev. Ent., 2, 1957, p. 107-120. M. V. BRIAN, J. Ins. Physiol., 20, 1974, p. 1351-1365. A. LEDOUX, Ins. SOC., 14, 1967, p. 131-156. A. LEDOUX et D. DARGAGNON, Comptes rendus, 276, série D, 1973, p. 551. N. WEAVEN, Ann. Rev. Ent. 11, 1966, p. 79-99. Laboratoire d'Entomologie, Faculté des Sciences, 118, route de Narbonne. 31077 Toulouse Cedex. PHYSIOLOGIE DES INSECTES. Étude de l'influence de la diapause sur l'acquisition du pouvoir d'envol chez le Doryphore : Leptinotarsa decemlineata (Say). Note
pouvoir d'envol chez le Doryphore : Leptinotarsa decemlineata (Say). Note de Michel Termier, présentée par M. Pierre-Paul Grassé. La méthode consiste à observer l'envol de Doryphores attachés, d'âge croissant et qui ont été élevés en courte ou en longue photopériode. Les Doryphores, élevés en jours longs échappent à la diapause et acquièrent très vite une capacité d'envol importante, alors que ceux qui sont élevés en jours courts, orientés vers la diapause, acquièrent moins vite la capacité d'envol, qui le plus est moins brillante. The method consists to observe flight initiation on glued beetle. Those animals were of various ages and
on glued beetle. Those animals were of various ages and have been raised in short or long day, The Leptinotarsa of long day condition avoid diapause and they become quickly able of good flight performances. Those of short day condition are obliged to enter in diapause and perform, much later, not as good flight performances as those of the other category. La brutale invasion du Doryphore en Europe reflète le pouvoir de dispersion autant que le taux de multiplication élevé de cet animal. Depuis 1922, cet Insecte a progressé, surtout par la voie des airs, de 60 km par an.
par la voie des airs, de 60 km par an. Les lignes d'invasions de ce ravageur, superposables à la carte des vents dominants, indiquent une dispersion anémophile. Tout se passe comme si la vitesse du Doryphore était négligeable par rapport à la distance parcourue. Un envol par vent nul est peu dispersif; par forte brise, au contraire, l'envol et les facteurs qui le déterminent sont fondamentaux si l'on veut expliquer le mécanisme de la dispersion. Le Berre a particulièrement étudié ce problème. Sur le terrain, il a montré le rôle de l'ensoleillement combiné à une température ambiante suffisante. Au laboratoire,
de l'ensoleillement combiné à une température ambiante suffisante. Au laboratoire, les Doryphores s'envolent massivement dès leur maturité, sous irradiation infrarouge. Les comportements qui précèdent l'envol sont : 1, excitation; 2, agrippement aux aspérités; 3, ouverture des ailes; 4, vibration à faible amplitude; 5, envol. L'auteur montre que les insectes élevés en courte photopériode et de ce fait, orientés vers la diapause, volent moins que les autres. J'ai tenté de préciser la chronologie de l'acquisition du pouvoir d'envol du Doryphore en fonction des conditions d'élevage précitées. MATÉRIEL ET MÉTHODES. — La génération mère était constituée d'Insectes Parfaits de Printemps (IPP). Ceux-ci,
génération mère était constituée d'Insectes Parfaits de Printemps (IPP). Ceux-ci, ayant hiverné à Caen dans des pots placés en extérieur, ont été élevés au laboratoire à 26°, en lumière continue et sur feuillage frais de pomme de terre « Ackersegen ». La génération fille est élevée de la même façon jusqu'à l'émergence des Insectes Parfaits d'Été (IPE) qui sont divisés en deux lots. Le premier est éclairé 16 h par jour à 26° pour éviter l'entrée en diapause, le second est éclairé 12 h par jour à 18° pour que l'entrée en diapause soit générale. J'ai repris la méthode de
l'entrée en diapause soit générale. J'ai repris la méthode de Le Berre d'irradiation infrarouge pour provoquer l'envol des Doryphores. Mais, pour affiner l'analyse individuelle je les ai fait voler au point fixe, attachés par le pronotum. Chaque observation dure environ 10 mn, tous les points de comportement sont notés, les vols chronométrés, puis les Doryphores marqués individuellement en vue de suivre leur évolution. RÉSULTATS : (a) Pour connaître les différents comportements d'envol d'une population d'Insectes capables de voler et indifférents à la diapause, j'ai observé les IPP, définissant ainsi 10 catégories de comportements d'envol. Pendant les 10 mn d'une observation
catégories de comportements d'envol. Pendant les 10 mn d'une observation individuelle, je retiens la catégorie ayant le numéro d'ordre le plus élevé. Voici la distribution obtenue avec 122 observations d'IPP : 0. Élytres fermées 12,4 % 1. Brève ouverture 4,9 2. Tétanos prolongé 1,7 3. Battements lents 1,7 4. Vibration 1,7 TOTAL non vol 22,4 % 5. Vol de moins de 10 s 10,7 % 6. » 10 s 23,9 7. » 60 s 25,5 8. » 5 mn 11,6 9. Vol de plus de 5 mn 5,8 TOTAL vol 77,5 % (b) Par cette méthode, j'ai analysé le comportement
77,5 % (b) Par cette méthode, j'ai analysé le comportement des IPE, dont l'évolution est montrée dans les tableaux 1 et II. On constate que les deux lots diffèrent tant par la vitesse d'acquisition du pouvoir d'envol que par le niveau de l'activité atteint. Hors diapause, 78 % des imago volent à partir du 5e jour, nombre rappelant celui des IPP. Avec diapause et à partir du 12e jour seulement 25 % des Insectes peuvent voler : les proportions sont inversées. A titre indicatif, les masses individuelles varient, pendant ce temps de la façon suivante : Longue photopériode Courte photopériode
temps de la façon suivante : Longue photopériode Courte photopériode (mg) (mg) Mâles + 13 + 36 Femelles + 11,5 + 27 pour une masse à l'émergence de 91 mg pour les mâles et de 105 mg pour les femelles. Une analyse statistique a été effectuée pour définir le degré de confiance que l'on peut attribuer aux différences observées après regroupement des catégories et des intervalles de temps. Ces regroupements sont indiqués par les barres qui sortent des limites des tableaux 1 et II. Mais, pour pouvoir procéder à une analyse plus serrée du X2 en degré de liberté individuel,
analyse plus serrée du X2 en degré de liberté individuel, il a fallu encore une fois condenser les données par rapport aux tracés A-B, A'-B'. définissant ainsi 3 zones a, b et c : pour 12 h de jour : a = 42, b = 13, c = 7 ; pour 16 h de jour: a = 9 = b = 54. Le X2 général du tableau ainsi obtenu est de 57,87, très hautement significatif pour 2 degrés de liberté. Le X2 à un seul degré de liberté obtenu en faisant la somme a + b dans chaque tableau est
faisant la somme a + b dans chaque tableau est de 54,53, très hautement significatif évidemment, alors que le X2 correspondant au contraste existant dans le reste du tableau, obtenu par différence entre les deux précédents, n'atteint que 3,34 ce qui est inférieur à la limite de significativité pour 1 degré de liberté. DISCUSSION. 1. Ces résultats confirment et précisent les travaux de Le Berre. Les observations effectuées sur des Insectes attachés par le pronotum sont donc étroitement comparables à celles faites sur animaux libres. Cette méthode ne lèse en aucune façon l'intégrité physique de l'animal; peu contraignante elle ne
aucune façon l'intégrité physique de l'animal; peu contraignante elle ne limite pas ses mouvements. En outre, ne pouvant pas fuir à la marche, le Doryphore subit la totalité du flux excitateur émis par la lampe à infrarouge : l'envol serait alors un reflexe ayant pour résultat l'abandon d'un endroit inconfortable. 2. L'évolution du comportement d'envol sert à évaluer l'état physiologique de l'animal à chaque étape de sa maturation : (a) les doryphores ouvrent leurs élytres dès que les téguments sont durcis et, ceci, indépendamment des conditions d'élevage; leurs ailes ne vibrent pas, étant donné que la maturation des muscles du
vibrent pas, étant donné que la maturation des muscles du vol n'est pas synchrone de celle des muscles des ailes, comme chez Ips sexdentatus C); (b) l'évolution des muscles du vol dépend ensuite de la photopériode. Il peut s'agir de maturation des myofibrilles comme chez Calliphora (8) et Ips (9) comme de l'établissement de réserves énergétiques; (c) le dernier stade de cette chronologie du développement se traduit par des durées de vol croissantes qui semblent refléter le niveau des réserves énergétiques immédiatement disponibles. La proximité de l'entrée en diapause joue aussi un rôle. L'ensemble de ces données pourrait être attribué
aussi un rôle. L'ensemble de ces données pourrait être attribué à une différence de rythme alimentaire si les pesées ne suggéraient le contraire: la prise de poids est beaucoup plus forte chez les Insectes élevés en courte photopériode que chez les autres. Il semble possible de considérer que les métabolites suivent deux types de destinées: chez les animaux orientés vers la diapause, ils sont stockés comme réserve, chez les autres, ils servent au vol. CONCLUSION. — Cette expérience permet de conclure que la capacité de dispersion des Doryphores est en relation étroite avec un destin orienté vers la diapause ou
relation étroite avec un destin orienté vers la diapause ou vers son absence. En outre, la méthode utilisée, très reproductible, permet une évaluation assez satisfaisante de l'état physiologique des Insectes sans recourir à des techniques difficiles à mettre en œuvre. Séance du 21 février 1977. M. J. R. Le Berre et A. Louveaux, O.E.P.P. (sous presse). G. Grison, in traité d'Entomologie appliquée à l'agriculture, A. S. Balachowsky, Masson, Paris, n° 2, 1964, p. 640-738. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 231, 1950, p. 1096. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 234, 1952, p. 1092. J. R. Le Berre, Comptes rendus,
234, 1952, p. 1092. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 263, série D, 1966, p. 913. M. Arnaux, directeur du laboratoire de Biométrie du C.N.R.A. (I.N.R.A., Versailles) a bien voulu se charger de l'analyse statistique. M. Termier, Ann. Soc. Ent. Fr., Nlle série, 6, (3), 1970, p. 721-732. J. Aubert, J. Microscopie, 8, n° 2, 1969, p. 197-232. M. Termier et G. Lauge, Arch. Zool. Exp., 117, (1), p. 15-28. Université Paris-Sud. Faculté d'Orsay. Laboratoires d'Entomologie et de Zoologie. Bât. 446 et 442, 91405 Orsay. PHYSIOLOGIE DES INSECTES. Incorporation d'uridine tritiée dans les cellules de l'ovaire d'un insecte Homoptère Auchenorrhynche
tritiée dans les cellules de l'ovaire d'un insecte Homoptère Auchenorrhynche Ulopa reticulata Fab. (Ulopidae). Note de Claude Hamon, présentée par M. Pierre-Paul Grassé. L'incorporation d'uridine tritiée par l'ovaire télotrophique de Ulopa reticulata montre que l'ARN contenu dans l'ooplasme provient de deux sources différentes: les cellules nourricières par la voie des cordons trophiques et le noyau de l'ovocyte. The tritiated Uridine incorporation in the acrotrophic ovary of Ulopa reticulata shows that there are two different organs for the RNA of the ovocyte cytoplasm: the ovocyte nucleus, and the trophic cells (by way of the trophic cords), INTRODUCTION. — Lors d'études précédentes,
way of the trophic cords), INTRODUCTION. — Lors d'études précédentes, nous avions noté chez des insectes Homoptères la très forte teneur en ARN des ovocytes en prévitellogenèse et de la chambre et des cordons trophiques: nous avons cherché à préciser l'origine de l'ARN de l'ovocyte en appliquant la technique de l'autoradiographie à l'ovaire télotrophique de U. reticulata. MATÉRIEL ET MÉTHODES. — Les insectes sont prélevés dans la nature et reçoivent une injection (temps t0) de 5 µl d'uridine tritiée soit 5 à 10 µCi pour des activités spécifiques de 5, 10, 18 Ci/mM selon l'uridine utilisée. Les lots d'animaux sont
10, 18 Ci/mM selon l'uridine utilisée. Les lots d'animaux sont disséqués, 15 mn, 30 mn, 1 h, 4 h, 6 h, 21 h, 45 h, 80 h, 7 jours après l'injection. Après fixation et inclusion pour l'histologie classique la radioactivité des cellules est mise en évidence par la technique du « Stripping film ». OBSERVATIONS. — 1. Le germarium: quelques trophocytes sont légèrement marqués à t0 + 15 mn. Le marquage gagne ensuite progressivement la totalité des cellules nourricières (t0 + 4 h) tout en devenant plus intense. Les noyaux géants semblent relativement plus actifs que les petits noyaux. Les
géants semblent relativement plus actifs que les petits noyaux. Les noyaux pycnotiques ne sont concernés que plus ou moins tardivement et d'une manière très variable. 4 et 6 h après l'injection quelques-uns seulement montrent un marquage léger mais plus net pour les moins pycnotiques. Par exception, un noyau fortement pycnotique peut être intensément radioactif. À t0 + 21 h l'incorporation est importante dans certains d'entre eux, nulle dans les autres; plus tard elle intéresse tous les noyaux à chromatine condensée et semble plus dense à leur périphérie. La chambre trophique se marque lentement et progressivement. Faible à t0 + 6
se marque lentement et progressivement. Faible à t0 + 6 h la radioactivité y est devenue très importante à t0 + 45 h sauf au niveau de la nappe « Feulgen-positive » [3, e], qui en est presque exempte. Les cordons trophiques sont d'abord marqués à leur extrémité antérieure pour des temps de contact court. Beaucoup plus tard le marquage est très intense sur toute leur longueur. Les ovocytes en prévitellogenèse de la base du germarium ne sont marqués d'une manière significative qu'à partir de t0 + 4 h. Ce marquage limité au noyau ne s'intensifie ensuite que très lentement.
marquage limité au noyau ne s'intensifie ensuite que très lentement. 2. Le chapelet des ovocytes: le noyau des ovocytes en prévitellogenèse montre à t0 + 1 h un marquage léger qui croît ensuite lentement et modérément en s'accentuant au niveau du nucléole et du pourtour du noyau. Le marquage intéresse ensuite tout le cytoplasme mais avec une nette préférence pour la périphérie de l'ovocyte. À t0 + 45 h tout l'ooplasme est fortement radioactif tandis que le noyau ne l'est toujours que faiblement. Le noyau des ovocytes en vitellogenèse est plus nettement marqué que celui des ovocytes sans vitellus. Une
plus nettement marqué que celui des ovocytes sans vitellus. Une couronne de grains l'entoure également à t0 + 21 h. Par ailleurs le marquage du cytoplasme périphérique est très net car il intéresse les espaces demeurés libres entre les globules de vitellus. Plus ceux-ci sont nombreux et gros et la taille de l'ovocyte importante, plus le marquage vers le centre de l'ovocyte est important. Les globules eux-mêmes commencent à devenir radioactifs vers t0 + 21 h. D'autre part, on note dès + 1 h, une concentration de grains entre les cellules folliculaires et l'ooplasme des gros ovocytes non chorionnés. Lorsque
cellules folliculaires et l'ooplasme des gros ovocytes non chorionnés. Lorsque le chorion est présent cette concentration existe entre celui-ci et le vitellus mais seulement à t0 + 45 h. 3. Les cellules folliculaires. — Le marquage apparaît à leur niveau plus tôt (t0 + 15 mn) si les ovocytes sont de grande taille. CORRECTION ### L'ensemble de ces données pourrait être attribué à une différence de rythme alimentaire si les pesées ne suggéraient le contraire: la prise de poids est beaucoup plus forte chez les Insectes élevés en courte photopériode que chez les autres. Il semble possible de considérer que
que chez les autres. Il semble possible de considérer que les métabolites suivent deux types de destinées: chez les animaux orientés vers la diapause, ils sont stockés comme réserve, chez les autres, ils servent au vol. CONCLUSION. — Cette expérience permet de conclure que la capacité de dispersion des Doryphores est en relation étroite avec un destin orienté vers la diapause ou vers son absence. En outre, la méthode utilisée, très reproductible, permet une évaluation assez satisfaisante de l'état physiologique des Insectes sans recourir à des techniques difficiles à mettre en œuvre. Séance du 21 février 1977. M. J. R.
en œuvre. Séance du 21 février 1977. M. J. R. Le Berre et A. Louveaux, O.E.P.P. (sous presse). G. Grison, in traité d'Entomologie appliquée à l'agriculture, A. S. Balachowsky, Masson, Paris, n° 2, 1964, p. 640-738. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 231, 1950, p. 1096. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 234, 1952, p. 1092. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 263, série D, 1966, p. 913. M. Arnaux, directeur du laboratoire de Biométrie du C.N.R.A. (I.N.R.A., Versailles) a bien voulu se charger de l'analyse statistique. M. Termier, Ann. Soc. Ent. Fr., Nlle série, 6, (3), 1970, p. 721-732.
Soc. Ent. Fr., Nlle série, 6, (3), 1970, p. 721-732. J. Aubert, J. Microscopie, 8, n° 2, 1969, p. 197-232. M. Termier et G. Lauge, Arch. Zool. Exp., 117, (1), p. 15-28. Université Paris-Sud. Faculté d'Orsay. Laboratoires d'Entomologie et de Zoologie. Bât. 446 et 442, 91405 Orsay. PHYSIOLOGIE DES INSECTES. Incorporation d'uridine tritiée dans les cellules de l'ovaire d'un insecte Homoptère Auchenorrhynche Ulopa reticulata Fab. (Ulopidae). Note de Claude Hamon, présentée par M. Pierre-Paul Grassé. L'incorporation d'uridine tritiée par l'ovaire télotrophique de Ulopa reticulata montre que l'ARN contenu dans l'ooplasme provient de deux sources différentes: les cellules nourricières par la
provient de deux sources différentes: les cellules nourricières par la voie des cordons trophiques et le noyau de l'ovocyte. The tritiated Uridine incorporation in the acrotrophic ovary of Ulopa reticulata shows that there are two different organs for the RNA of the ovocyte cytoplasm: the ovocyte nucleus, and the trophic cells (by way of the trophic cords), INTRODUCTION. — Lors d'études précédentes, nous avions noté chez des insectes Homoptères la très forte teneur en ARN des ovocytes en prévitellogenèse et de la chambre et des cordons trophiques: nous avons cherché à préciser l'origine de l'ARN de l'ovocyte en appliquant la
à préciser l'origine de l'ARN de l'ovocyte en appliquant la technique de l'autoradiographie à l'ovaire télotrophique de U. reticulata. MATÉRIEL ET MÉTHODES. — Les insectes sont prélevés dans la nature et reçoivent une injection (temps t0) de 5 µl d'uridine tritiée soit 5 à 10 µCi pour des activités spécifiques de 5, 10, 18 Ci/mM selon l'uridine utilisée. Les lots d'animaux sont disséqués, 15 mn, 30 mn, 1 h, 4 h, 6 h, 21 h, 45 h, 80 h, 7 jours après l'injection. Après fixation et inclusion pour l'histologie classique la radioactivité des cellules est mise en évidence par la
la radioactivité des cellules est mise en évidence par la technique du « Stripping film ». OBSERVATIONS. — 1. Le germarium: quelques trophocytes sont légèrement marqués à t0 + 15 mn. Le marquage gagne ensuite progressivement la totalité des cellules nourricières (t0 + 4 h) tout en devenant plus intense. Les noyaux géants semblent relativement plus actifs que les petits noyaux. Les noyaux pycnotiques ne sont concernés que plus ou moins tardivement et d'une manière très variable. 4 et 6 h après l'injection quelques-uns seulement montrent un marquage léger mais plus net pour les moins pycnotiques. Par exception, un noyau
plus net pour les moins pycnotiques. Par exception, un noyau fortement pycnotique peut être intensément radioactif. À t0 + 21 h l'incorporation est importante dans certains d'entre eux, nulle dans les autres; plus tard elle intéresse tous les noyaux à chromatine condensée et semble plus dense à leur périphérie. La chambre trophique se marque lentement et progressivement. Faible à t0 + 6 h la radioactivité y est devenue très importante à t0 + 45 h sauf au niveau de la nappe « Feulgen-positive » [3, e], qui en est presque exempte. Les cordons trophiques sont d'abord marqués à leur extrémité
exempte. Les cordons trophiques sont d'abord marqués à leur extrémité antérieure pour des temps de contact court. Beaucoup plus tard le marquage est très intense sur toute leur longueur. Les ovocytes en prévitellogenèse de la base du germarium ne sont marqués d'une manière significative qu'à partir de t0 + 4 h. Ce marquage limité au noyau ne s'intensifie ensuite que très lentement. 2. Le chapelet des ovocytes: le noyau des ovocytes en prévitellogenèse montre à t0 + 1 h un marquage léger qui croît ensuite lentement et modérément en s'accentuant au niveau du nucléole et du pourtour du noyau. Le
au niveau du nucléole et du pourtour du noyau. Le marquage intéresse ensuite tout le cytoplasme mais avec une nette préférence pour la périphérie de l'ovocyte. À t0 + 45 h tout l'ooplasme est fortement radioactif tandis que le noyau ne l'est toujours que faiblement. Le noyau des ovocytes en vitellogenèse est plus nettement marqué que celui des ovocytes sans vitellus. Une couronne de grains l'entoure également à t0 + 21 h. Par ailleurs le marquage du cytoplasme périphérique est très net car il intéresse les espaces demeurés libres entre les globules de vitellus. Plus ceux-ci sont nombreux et gros
les globules de vitellus. Plus ceux-ci sont nombreux et gros et la taille de l'ovocyte importante, plus le marquage vers le centre de l'ovocyte est important. Les globules eux-mêmes commencent à devenir radioactifs vers t0 + 21 h. D'autre part, on note dès + 1 h, une concentration de grains entre les cellules folliculaires et l'ooplasme des gros ovocytes non chorionnés. Lorsque le chorion est présent cette concentration existe entre celui-ci et le vitellus mais seulement à t0 + 45 h. 3. Les cellules folliculaires. — Le marquage apparaît à leur niveau plus tôt (t0 + 15 mn) si les
leur niveau plus tôt (t0 + 15 mn) si les ovocytes sont de grande taille. CORRECTION ### L'ensemble de ces données pourrait être attribué à une différence de rythme alimentaire si les pesées ne suggéraient le contraire: la prise de poids est beaucoup plus forte chez les Insectes élevés en courte photopériode que chez les autres. Il semble possible de considérer que les métabolites suivent deux types de destinées: chez les animaux orientés vers la diapause, ils sont stockés comme réserve, chez les autres, ils servent au vol. CONCLUSION. — Cette expérience permet de conclure que la capacité de dispersion
Cette expérience permet de conclure que la capacité de dispersion des Doryphores est en relation étroite avec un destin orienté vers la diapause ou vers son absence. En outre, la méthode utilisée, très reproductible, permet une évaluation assez satisfaisante de l'état physiologique des Insectes sans recourir à des techniques difficiles à mettre en œuvre. Séance du 21 février 1977. M. J. R. Le Berre et A. Louveaux, O.E.P.P. (sous presse). G. Grison, in traité d'Entomologie appliquée à l'agriculture, A. S. Balachowsky, Masson, Paris, n° 2, 1964, p. 640-738. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 231, 1950, p. 1096. J. R.
Le Berre, Comptes rendus, 231, 1950, p. 1096. J. R. Le Berre, Comptes rendus, 234, 1952, p. 1092. J. R. Le Berre, Comptes Il intéresse toutes les cellules folliculeuses de ceux-ci à to + 1 h et toutes les cellules folliculeuses à to + 4 h. Il est plus intense si l'ovocyte contient du vitellus. Il est plus important sur le ou les nucléoles surtout à to + 45 h quand l'ovocyte est en début de prévitellogenèse. EXPLICATION DE LA PLANCHE Fig. 1. — Le germarium 1 heure après l'injection : toutes les cellules autres que celles à noyau pycnorique
: toutes les cellules autres que celles à noyau pycnorique sont légèrement marquées ; la chambre trophique et sa masse Feulgen-positive ne le sont pas. Fig. 2. — La chambre trophique 21 h après l'injection elle est très nettement radioactive; le matériel Feulgen-positif l'est peu et irrégulièrement. Fig. 3. 7 jours après l'injection deux ovocytes en phase de prévitellogenèse, l'un d'eux avec son cordon trophique ooplasme et cordon sont très fortement marqués. Fig. 4. — Ovocyte en début de phase de prévitellogenèse 1 heure après l'injection le noyau est légèrement radioactif, mais non le cytoplasme. Fig. 5. — Ovocyte en
radioactif, mais non le cytoplasme. Fig. 5. — Ovocyte en phase de prévitellogenèse 21 heures après l'injection : noyau et cytoplasme sont nettement marqués, le premier relativement plus que le second. Fig. 6. — Ovocyte en phase de prévitellogenèse 7 jours après l'injection : le cytoplasme est très fortement radioactif tandis que, en comparaison, le noyau l'est relativement peu. Fig. 7. — Cellules folliculeuses d'un ovocyte à vitellus 1 heure après l'injection la radioactivité y est intense alors qu'elle est nulle dans l'ovocyte. Fig. 8. — Cellules folliculeuses d'un ovocyte en phase de vitellogenèse 21 heures après l'injection la radioactivité