jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
partie des pigments, respecte leurs proportions relatives et n'extrait que relativement peu de contaminants. Les pigments sont identifiés par cochromatographie avec des échantillons témoins [(9), (")] sur couche mince de silice « Merck F-254 » (solvant = benzène/formiate d'éthyle/acide formique dans les proportions 13/5/2 v/v/v pour les monomères et 5/4/2 pour les dimères). Les teneurs relatives en pigments sont déterminées par planimétrie des enregistrements de variation de fluorescence de l'indicateur F-254 mesurée en réflexion au photomètre « Vernon type TRD 5 ». Ces proportions permettent de calculer le coefficient d'absorption spécifique moyen de l'extrait [en utilisant les valeurs E1% =
spécifique moyen de l'extrait [en utilisant les valeurs E1% = 500 et 1 000 pour les dimères et monomères respectivement (12 )] nécessaire au dosage des pigments totaux. La teneur absolue de chaque composé par rapport au poids sec de matériel biologique extrait est alors calculée. Le tableau rassemble ces résultats. DISCUSSION. — Sur les vingt-sept espèces synthétisant des styryl-pyrones, douze ont fait l'objet d'au moins deux analyses indépendantes : l'homogénéité de leurs résultats, généralement satisfaisante, assure la validité de la méthode. Si nous considérons d'abord les plus typiques des Strophariaceae, celles dont la paroi sporique est violacée ou lilacine,
Strophariaceae, celles dont la paroi sporique est violacée ou lilacine, nous constatons la présence dans les huit espèces d'Hypholoma étudiées d'hypholomines et fasciculines accompagnées dans environ la moitié d'entre elles d'hispidine et de bis-noryangonine, ces dernières souvent seulement à l'état de traces. Nous n'avons détecté aucune styryl-pyrone chez trois espèces de cette autre coupure à spore violette qu'est Stropharia (Fr.) Quél. (S. aeruginosa (Curt. ex Fr.) Quél., S. coronilla (Bull. ex Fr.) Quél., S. semiglobata (Batsch ex Fr.) Quél.), mais il faut remarquer qu'il s'agit de Strophaires ne montrant aucune coloration jaune ou olive dans la chair et sur les
coloration jaune ou olive dans la chair et sur les lames et que chez H. capnoides, dont chair et lames sont dans le même cas, nous n'avons décelé hypholomines et fasciculines qu'à l'état de traces. Il est donc évident que les pigments jaunes ou rouges du revêtement piléique de ces espèces sont de nature différente. TABLEAU Teneur (%) Hypholomines Fasciculines par rapport au poids sec hispidine Noryangonine Hispidine A B A B Espèce (%) noryangonine Hispidine A B Hypholoma (Fr.) Kummer subfuscescens (Berk et Curt.) Kreisel dét... 0,14 1,57 0,72 2,94 0,25 4,11 fasciculare (Huds. ex Fr.) Kummer 1 7,39
2,94 0,25 4,11 fasciculare (Huds. ex Fr.) Kummer 1 7,39 3,58 8,61 23,30 Kummer 2 3,33 2,31 2,27 4,55 1 0,33 0,26 0,29 0,07 lignyosum Lange 1 0,09 0,06 0,11 0,01 2 wittleri (Fr.) Quél. 12 2,20 2,70 4,60 6,50 1 1,13 0,47 1,76 1,65 dispersum (Fr.) Quél. 0,05 0,14 0,03 0,03 elongatum (Pers. ex Fr.) Ricken 0,40 0,19 0,76 1,85 capnoides (Fr. ex Fr.) Kummer 0,005 Flammeula (Fr.) Kummer alnicola (Fr.) Kummer 1 0,30 0,11 0,84 0,86 0,26 2 0,07 0,07 0,87 0,72 0,37 conissans (Fr.) Gillet sensu Ricken 0,24 0,11 0,89 0,50 0,19 0,08 apicrea (Fr.) Moser 1
0,24 0,11 0,89 0,50 0,19 0,08 apicrea (Fr.) Moser 1 0,04 0,12 0,31 0,42 0,30 0,14 sensu Lange 2 0,28 0,04 0,35 0,11 0,22 0,02 1 (*) (*) 16,13 37,78 astragalina (Fr.) Kummer 2 (*) (*) 17,50 35,16 henningsii Bres 0,06 0,03 0,14 0,36 1 (*) ? gummosa (Lasch) Kummer 2 lenta (Pers. ex Fr.) Kummer (*) (*) 0,23 0,37 decussata (Fr.) Quél. 1 (*) (*) 0,26 0,24 sensu Moser 2 (*) (*) 0,20 0,27 carbonaria (Fr. ex Fr.) Kummer 3 scabarella (Fr. ex Fr.) Quél. 4 (*) (*) 0,02 0,05 Pholiota (Fr.) Kummer flammans (Fr.) Kummer 68,20 36,90 79,70
0,05 Pholiota (Fr.) Kummer flammans (Fr.) Kummer 68,20 36,90 79,70 29,45 squarrosa (Pers. ex Fr.) 1 0,28 0,22 1,46 0,54 Kummer 2 0,13 0,07 0,49 0,12 3 0,66 0,20 4 0,27 0,19 annuum (Fr.) Kummer 3 0,23 0,16 4 0,15 0,07 lucifera (Lasch) Quél. 1 1,68 0,61 2 1,78 0,46 3 1,69 0,42 tuberculosa (Schaeffer ex Fr.) 1 58,20 12,50 Kummer 2 6,28 5,87 -Gymnopilus Karsten spectabilis (Fr.) Sing 3,06 2,42 -penetrans (Fr. ex Fr.) Murr. (sensu Lange) 2,61 1,81 bellulus (Peck) Murr 2,37 1,08 -chrysospermus (Berk et Curt.) Murr... 0,44 1,01 (*) Teneur non dosable. ? Présence incertaine. Il
0,44 1,01 (*) Teneur non dosable. ? Présence incertaine. Il est indiscutable que nombre de Strophariaceae à spores ferrugineuses sont très proches des Hypholoma par leur stock de styryl-pyrones. Dans les Flammula du groupe alnicola (F. alnicola, conissans, apicrea) on retrouve les six molécules identifiées chez plusieurs Hypholoma; si ces Flammules diffèrent des Hypholomes par l'absence de chrysocystides, elles leur ressemblent beaucoup par l'allure générale. D'autres Strophariaceae à spores ferrugineuses se rapprochent de certains Hypholoma par la seule présence d'hypholomines et fasciculines; sont dans ce cas plusieurs espèces dont les pleurocystides sont, comme celles des Hypholoma, des chrysocystides (P. flammans
pleurocystides sont, comme celles des Hypholoma, des chrysocystides (P. flammans et squarrosa, F. astragalina, henningsii et gummosa) et des Flammules de la section Lubricae Fries (F. lenta, decussata, scabra) plus éloignées des Hypholoma par leurs pleurocystides d'un type différent, et en outre, pour les plus typiques de cette section, par la viscosité prononcée du chapeau; dans plusieurs Lubricae, ces molécules, surtout représentées par les fasciculines, ne sont qu'à dose faible; de la même section, F. carbonaria, où hypholomines et fasciculines n'ont pu être détectées de façon sûre, ne constitue certainement qu'un cas extrême dans ce sens. Quelques Strophariaceae à spores
qu'un cas extrême dans ce sens. Quelques Strophariaceae à spores ferrugineuses diffèrent davantage des Hypholoma car elles ne synthétisent qu'hispidine et bis-noryangonine; il s'agit des Pholiota aurivella, squarrosoadiposa Lange (10), lucifera et tuberculosa. Si les deux premières de ces espèces ont des chrysocystides, comme les Hypholoma, les deux autres, unies par Kühner et Romagnesi dans une section spéciale Luciferae, en sont dépourvues. Si les deux genres s'écartent des Pholiota lucifera et tuberculosa par leur paroi sporique verruqueuse, ils s'en rapprochent de façon remarquable par leur stock pigmentaire. Dans les onze espèces étudiées [(6) à (9)] ont été identifiées bis-noryangonine et
espèces étudiées [(6) à (9)] ont été identifiées bis-noryangonine et hispidine; l'analyse de quatre d'entre elles nous a de plus révélé l'absence de dimères du type hypholomines-fasciculines (11). L'ensemble des pigments dont il vient d'être question ne représente que rarement la totalité du stock pigmentaire du carpophore; en effet, dans une foule de Strophariaceae et de Gymnopilus, on observe, au niveau du revêtement piléique, une pigmentation de la paroi des hyphes, pigmentation souvent incrustante, et qui, comme celle de la paroi des spores, résiste plus ou moins aux tentatives d'extraction. Les pigments facilement extractibles ne sont pas liés à la
Les pigments facilement extractibles ne sont pas liés à la paroi cellulaire; ils sont, soit intracellulaires, soit extracellulaires. L'accumulation de pigments à l'intérieur de certaines cellules semble ici souvent liée à leur mort, que ces cellules soient des chrysocystides, comme chez H. fasciculare, dont les cystides jeunes sont incolores, ou des hyphes des revêtements, comme chez P. aurivella et lucifera. Dans l'ensemble Strophariaceae-Gymnopilus des pigments sont fréquemment rejetés à l'extérieur des cellules, s'accumulant parfois (F. Sp1l11l0Sa (Fr.) Kummer) à la surface extérieure des cystides, ou bien plus souvent entre les hyphes de la chair ou de la trame des lames,
hyphes de la chair ou de la trame des lames, où on les remarque au niveau de masses individualisées, fort variables en ce qui concerne les dimensions et l'intensité de la coloration. Il est possible sinon probable que ces amas colorés ne sont pas uniquement constitués par les pigments excrétés puisque, chez plusieurs espèces dont la chair est blanche, comme P. destruens (Brond.) Gillet et albocrenulata (Peck) Sacc., existent néanmoins d'abondants corps interhyphiques incolores. Les Dermocybe (Fr.) Wünsche sont les Cortinaires qui ressemblent le plus aux Gymnopilus, notamment ceux qui présentent dans la chair ou la trame des excrétions figurées
présentent dans la chair ou la trame des excrétions figurées et vivement colorées; ils diffèrent profondément des Gymnopilus par la nature anthraquinonique (sensu lato) de leurs pigments extractibles. En outre, alors que les Cortinaires sont des Champignons humicoles généralement susceptibles de former des ectomycorhizes avec divers végétaux ligneux, les Gymnopiles sont, pour la plupart, des Champignons plus ou moins lignicoles et lignivores, comme le sont de très nombreuses Strophariaceae authentiques, Hypholoma, Pholiota, Flammula. Parmi les Champignons à spores ferrugineuses, les Galerina Earle constituent un genre habituellement rangé dans la même famille ou tribu que les Cortinaires et qu'il est nécessaire
famille ou tribu que les Cortinaires et qu'il est nécessaire de comparer aux Gymnopilus car il ne comprend que des espèces saprophytiques dont beaucoup ont les spores verruqueuses, comme celles des Gymnopilus. L'un de nous (11) a reconnu que les ressemblances entre la paroi sporique des Galerina et des Gymnopilus peuvent être extrêmement précises; comme une foule d'Agaricales chromosporées, bien des espèces de ces deux genres possèdent une endospore qui apparaît comme une enveloppe remarquablement réfringente sur des spores plus ou moins décolorées à la suite d'un traitement convenable par une lessive de potasse (lessive à 3 % dans l'eau,
une lessive de potasse (lessive à 3 % dans l'eau, agissant à 60°C durant quelques heures); ce qui est commun à certaines espèces des genres Galerina et Gymnopilus et ne se rencontre pas dans d'autres genres est le fait que la partie interne de la paroi sporique gonfle de façon remarquable avec effacement de l'enveloppe endosporique réfringente, lorsqu'à un traitement alcalin succède un traitement par une solution diluée d'acide acétique (10% dans l'eau); dans les espèces en question, toute la partie interne de la paroi est en outre puissamment dextrinoïde. En dépit de ces ressemblances fort précises, nous n'avons pu
En dépit de ces ressemblances fort précises, nous n'avons pu déceler de styryl-pyrones et dérivés dans trois espèces de Galerina analysées : G. camerina (Fr.) Kühn., G. sphagnorum (Fr.) Kühn., G. graminea (Vel.) Kühn. Il est probable que c'est par l'absence de styryl-pyrones que le genre Galerina se distingue le mieux du genre Gymnopilus. Dans le genre Phaeocollybia Heim, que Singer place à côté de Galerina, nous n'avons pas non plus trouvé de styryl-pyrones chez les deux espèces étudiées : P. christinae (Fr.) Heim sensu Fr., non Heim, et P. lugubris (Fr.) Heim. Nous n'en avons pas trouvé davantage chez
lugubris (Fr.) Heim. Nous n'en avons pas trouvé davantage chez Naucoria (Tubaria) furfuracea (Pers. ex Fr.) Kummer, qui, pour nous, n'est pas très éloigné systématiquement des Galerina. Il est possible que l'absence de tels pigments, constatée chez Kuehneromyces mutabilis (Schaeff. ex Fr.) Sing. et Smith, s'explique par une affinité avec les Galerina. Mais il faut être fort prudent dans l'interprétation de ces résultats négatifs, car l'absence de styrylpyrones et dérivés chez Pholiota destruens, prévisible étant donné l'absence de couleurs jaunes vives, n'indique évidemment pas une affinité étroite avec Galerina. Même la présence de styryl-pyrones doit être considérée avec prudence par
la présence de styryl-pyrones doit être considérée avec prudence par le Systématicien; il est en effet possible qu'elle soit plus ou moins liée à l'habitat lignicole car des molécules du même type sont produites par des Hymenochetaceae Donk [)(1, (2)]. Cependant, la communauté des caractères soulignés plus haut permet d'envisager que Gymnopilus, Hypholoma, Flammula et Pholiota dérivent d'un ancêtre commun, synthétisant les styryl-pyrones mais non les hypholomines ni les fasciculines, ces dimères particuliers étant apparus dans le phylum conduisant aux Strophariaceae; parmi ces dernières, certaines auraient perdu secondairement cette faculté de dimérisation, d'autres même toute capacité à synthétiser des styryl-pyrones
de dimérisation, d'autres même toute capacité à synthétiser des styryl-pyrones [)(1, (2)]. Séance du 28 mars 1977. Recherches chimiotaxinomiques sur les Champignons, XXXIX; précédente communication J. FAVRE-BONVIN, N. ARPIN et J. GRIPENBERG, Phytochem. (à paraître). R. SINGER, The Agaricales in Modern Taxonomy, J. CRAMER, 3 éd., 1975. R. KÜHNER et H. ROMAGNESI, Flore analytique des Champignons Supérieurs, Masson, Paris, 1953. V. FAYOD, Ann. Sc. Nat. Bot., 7, n° 9, 1889, p. 181-411. A. H. SMITH, in The Fungi, G. C. AINSWORTH et coll., éd., IV B, 1973, p. 421-450. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 31, 1968, p.
M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 31, 1968, p. 225-228. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, J. Pharm. Sci., 58, 1969, p. 1298. G. M. HATFIELD et L. R. BRADY, Lloydia, 34, 1971, p. 260-263. M. P. DANGY-CAYE et N. ARPIN, Bull. Soc. Lin. Lyon, n° spécial, 15 février 1974, p. 109-118. L. R. BRADY et R. G. BENEDICT, J. Pharm. Sci., 61, 1972, p. 318. J. L. FIASSON, K. GLUCHOFF-FIASSON et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1047-1057. K. GLUCHOFF-FIASSON et J. BERNILLON, Comptes rendus, 284, série D, 1977, p. 385. Cependant, si, faute d'échantillons de
série D, 1977, p. 385. Cependant, si, faute d'échantillons de référence, l'on n'a pu encore identifier d'arylpyrone, certaines espèces à fasciculines majeures (P. squarrosa, F. astragalina, F. decussata) présentent des composés fluorescants bleus en cours d'étude. Certains Gymnopiles paraissent synthétiser d'autres dimères de l'hispidine : G. chrysopellus en particulier accumule un composé de fluorescence verte cochromatographiquement inséparable de l'« inonotine » isolée par Steglich d'Inonotus hispidus (Bull. ex Fr.) Karst. (résultats inédits). R. KÜHNER, Volume jubilaire du Pr R. W. G. DENNIS (sous presse). R. L. EDWARDS, D. G. LEWIS et D. V. WILSON, J. Chem. Soc., 1961, p. 4995-5002.
et D. V. WILSON, J. Chem. Soc., 1961, p. 4995-5002. A. UENO, S. FUKUSHIMA, Y. SAIKI et T. HARADA, Chem. Pharm. Bull., 12, 1964, p. 376-378. M. KLAAR et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1058-1062. M. KLAAR et W. STEGLICH, Chem. Ber., 110, 1977, p. 1063-1068. J. L. FIASSON (résultats inédits). Un certain nombre d'échantillons nous ont été transmis par Mlle le professeur D. Lamoure (Lyon I) ainsi que MM. J. Bussy et M. Josserand (Lyon), H. Romagnesi (Paris), P. Bordes et A. Gorgues (Le Puy). J.-P. Fiard (Martinique) : qu'ils trouvent ici l'expression de notre reconnaissance. Les
(Martinique) : qu'ils trouvent ici l'expression de notre reconnaissance. Les analyses chimiques qui ont servi de base de discussion dans la présente Note sont dues à Mme K. Gluchoff-Fiasson et ont été réalisées, dans le cadre d'une Thèse de Doctorat d'État sur la chimiotaxinomie des Agaricales. Département de Biologie végétale, Laboratoire de Mycologie, associé au C.N.R.S. n° 44, Université Claude-Bernard Lyon I, 43, boulevard du 11-Novembre-1918, 69621 Villeurbanne. CYTOPHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Étude autoradiographique de la reprise des synthèses de protéines dans l'embryon de Zea mays au début de la germination. Note de Roger Deltour, présentée par M. Roger Gautheret. Au
Note de Roger Deltour, présentée par M. Roger Gautheret. Au moment de la germination, dans la racine principale de l'embryon de Zea mays, la reprise des synthèses de protéines a lieu dans les deux premières heures qui suivent la mise en imbibition. Cependant, les modalités de cette reprise sont différentes selon que le précurseur fourni est de la leucine-3H ou de la lysine-3H. Recovery or protein synthesis was studied in primary root of germinating Zea mays embryos. [H3]leucine or [H3]lysine was provided for two hours at 16°C to embryos excised from kernels at various times after the beginning of germination.
from kernels at various times after the beginning of germination. Protein synthesis (probably dependent on long-lived mRNA stocked in dormant embryo root cells) resumed during the first two hours of seed imbibition. Plusieurs travaux réalisés sur l'embryon de Zea mays lors de la germination ont visé à décrire les événements cellulaires et moléculaires qui s'observent dans la racine principale [(2) à (6)]. Nous présentons maintenant des observations concernant la synthèse des protéines au cours des premières heures de la germination. Les techniques de mise en incubation des embryons dans les précurseurs radioactifs et d'autoradiographie sont celles décrites antérieurement (4). Les
précurseurs radioactifs et d'autoradiographie sont celles décrites antérieurement (4). Les caryopses de la variété INRA 258 sont mises à germer à 16°C et les embryons isolés sont incubés dans une solution de L-leucine-4,5-3H (concentration radioactive : 165 IlCi/ml) ou dans une solution de L-lysine-4,5-3H (concentration radioactive : 250 IlCi/ml). Afin d'empêcher l'apparition de bactéries, les solutions de précurseurs contiennent 50 μg/ml de streptomycine. Les embryons sont fixés au mélange formol-acide acétique-éthanol ; lavés 12 h à l'eau courante; inclus dans la paraffine et sectionnés longitudinalement à 5 μm. Les sections sont lavées 12 h à l'eau courante et recouvertes par
sont lavées 12 h à l'eau courante et recouvertes par une émulsion photographique (Stripping-film Kodak AR 10). Après des durées variables d'exposition, les films sont révélés et les sections colorées par le bleu de toluidine. Avant la pose de l'émulsion, des sections contrôles ont été digestées par la pepsine (solution aqueuse 0,1 % de pepsine « Merck » dans HCl 0,1 N pendant 4 h à 37°C) ou par la pronase (solution aqueuse à 0,5 %, pH 7,4, de pronase « Merck » E 70 000 PU/kg, pendant 1 h à 40°C). Ces digestions éliminent toute la radioactivité cellulaire. Les
à 40°C). Ces digestions éliminent toute la radioactivité cellulaire. Les observations concernent les tissus du millimètre terminal de la racine principale. LE PRÉCURSEUR UTILISÉ EST LA LEUCINE-3H. Lorsque les embryons, prélevés secs, ou après 2 h d’imbibition sont mis 2 h au contact du précurseur, la radioactivité des cellules est très faible; les grains d’argent sont répartis uniformément au-dessus des sections des cellules (fig. 1 a). La quantité de leucine-3H incorporée dans des protéines s’accroît avec la durée préalable de mise en germination. Vers la 44e heure de germination, la radioactivité cellulaire s’élève fortement et les images autoradiographiques montrent, à
radioactivité cellulaire s’élève fortement et les images autoradiographiques montrent, à partir de ce moment, une densité en grains d’argent qui va en décroissant du nucléole au cytoplasme (fig. 1 b). L’accélération de l’incorporation de leucine-3H vers la 44e heure ressort également de l’observation suivante : si l’incubation dans le précurseur ne dure que 1 heure, la radioactivité des cellules radiculaires d’embryons ayant germé moins de 40 h est très faible. Par contre, une incubation de 1 h ou même de 30 mn suffit pour obtenir une forte radioactivité des mêmes cellules d’embryons ayant germé pendant plus de 40 h. LE
cellules d’embryons ayant germé pendant plus de 40 h. LE PRÉCURSEUR UTILISÉ EST LA LYSINE-3H. — Lorsqu’on incube les embryons en présence de lysine-3H, on observe, dès la mise en germination et durant les 8 premières heures d’imbibition, une radioactivité cellulaire intense (fig. 1 c et tableau). La densité des grains d’argent apparaît légèrement supérieure au niveau du cytoplasme. Entre la 8e et la 44e heure de germination, la radioactivité cellulaire est moins intense et les grains d’argent sont répartis de manière uniforme dans les cellules. Après la 44e heure de germination, la radioactivité redevient plus intense et très vite
de germination, la radioactivité redevient plus intense et très vite la densité en grains d’argent au niveau des nucléoles devient supérieure à celle de la chromatine et du cytoplasme (fig. 1 d). Après la 48e heure de germination, la densité des grains au niveau du nucléole est si forte que leur comptage est rendu impossible. TABLEAU Résultats d’un comptage du nombre de grains d’argent effectué sur des emulsions de sections de cellules radiculaires mises au contact de la lysine-3H pendant 2 h Nombre moyen (*) de grains d’argent compté par cellule au-dessus de Heures de germination Cytoplasme Chromatine Nucléole Cellule
cellule au-dessus de Heures de germination Cytoplasme Chromatine Nucléole Cellule entière 2 90,1 16,8 3,5 110,4 20 43.6 12,9 2,3 58,8 32 59,3 23,9 5,5 88,7 48 79,9 22,9 9,6 112,4 (*) Moyenne de 75 cellules corticales réparties dans 3 embryons. Le comptage est effectué sur des positifs agrandis de micrographies réalisées au photomicroscope « Zeiss » (objectif 100 x). Le bruit de fond est déduit des chiffres présentés. DISCUSSION. — Nous avons observé pendant les 44 premières heures de la germination une incorporation de lysine-3H dans les protéines plus intense que celle de leucine-3H. Cette très forte différence d’incorporation
intense que celle de leucine-3H. Cette très forte différence d’incorporation entre les deux précurseurs ne peut s’expliquer par la radioactivité légèrement supérieure de la solution de lysine-3H fournie aux embryons. Dès lors, cette observation s’explique soit, par une pénétration plus rapide de la lysine-3H dans les cellules, soit, par une synthèse préférentielle de protéines riches en lysine. On sait que la perméabilité des cellules aux différents acides aminés peut être variable (1). Cependant, si une telle perméabilité différentielle des embryons existe entre la lysine-3H et la leucine-3H, elle est transitoire. En effet, après 44 h de germination, les deux précurseurs
En effet, après 44 h de germination, les deux précurseurs s’incorporent pratiquement à la même vitesse. Ce dernier fait ne permet pas d’éliminer l’hypothèse d’une perméabilité différentielle entre les deux précurseurs; il la rend moins vraisemblable. Des observations cytochimiques ont montré que chez l’embryon de Maïs, les protéines basiques du noyau sont riches en lysine (8). L’incorporation importante de cet acide aminé dès l’imbibition des caryopses pourrait donc refléter, de manière plausible, une synthèse précoce de protéines basiques (histones). Dans l’embryon mis en germination, de profondes modifications de la structure et des propriétés biochimiques de la chromatine ont lieu (9)
et des propriétés biochimiques de la chromatine ont lieu (9) qui pourraient nécessiter la présence de nouvelles protéines basiques réputées jouer un rôle important dans le mécanisme de dispersion et de condensation de la chromatine (10). Chez le Maïs, une variation du contenu de la chromatine en histones a été observée en relation avec l’état de condensation de la chromatine (11). L’accélération de la synthèse des protéines qui a lieu aux environs de la 44e heure, aussi bien avec la lysine-3H qu’avec la leucine-3H, provoque une très forte radioactivité du nucléole qui apparaît comme le site cellulaire où les protéines
nucléole qui apparaît comme le site cellulaire où les protéines nouvellement synthétisées s’accumulent le plus. C’est également à ce moment de la germination que le nucléole acquiert une ultrastructure typique ainsi qu’une capacité de synthèse et de maturation du précurseur de rRNA (12). Des recherches ultérieures montreront s’il existe une corrélation entre ces observations. Étant donné les relations étroites qui existent entre les différents types de RNA et les protéines, il est intéressant de comparer les observations concernant la reprise des synthèses de ces deux catégories de macromolécules au début de la germination. Il a été montré que à 16°C,