jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
zone des noyaux intracérébelleux qui reçoivent également des afférences du tronc cérébral. Nos résultats ne concernent pas les fibres grimpantes, issues de l'olive inférieure et qui se projettent vers l'aire vermienne étudiée suivant une topographie bien précise récemment étudiée par la même méthode. Nous ne nous sommes intéressés qu'aux projections moussues originaires des noyaux réticulaires bulbaires et des noyaux du raphé. 1. Noyau réticulaire latéral. — Situé dans le bulbe très latéralement et ventralement au niveau de l'olive inférieure, ce noyau est formé de 3 parties, une partie dite gigantocellulaire, dorso-médiale, une partie parvocellulaire, ventro-latérale, et une partie subtrigéminale, antérieure.
dorso-médiale, une partie parvocellulaire, ventro-latérale, et une partie subtrigéminale, antérieure. Dans aucune de ces trois subdivisions du noyau il n'a été possible de mettre en évidence un marquage clair pour les injections localisées au lobule VII. En revanche un nombre relativement important de neurones marqués a été observé dans les deux cas où l'injection de l'enzyme intéressait le lobule VI. Ce nombre est fonction de l'étendue du cortex cérébelleux imprégné par la peroxydase. Les cellules marquées appartiennent en quasi-totalité aux subdivisions magnocellulaires et subtrigéminales, la partie parvocellulaire ne présentant qu'un marquage faible ou nul. 2° Noyau réticulaire paramédian. — Également
marquage faible ou nul. 2° Noyau réticulaire paramédian. — Également situé dans le bulbe, ce noyau se trouve en position médiale, au-dessus de l'olive inférieure. Brodal le divise en 3 parties, ventrale dorsale et accessoire. Dans nos expériences, des neurones marqués ont été observés dans chacune des 3 parties de ce noyau réticulaire, en nombre variable suivant l'étendue du site d'injection; Comme pour le noyau réticulaire latéral, un tel marquage n'est nettement présent que dans le cas d'injection du lobule VI. 3° Noyaux du raphé. — Il s'agit de structures situées le long de la ligne médiane dans le tronc
situées le long de la ligne médiane dans le tronc cérébral. Nous avons adopté les subdivisions de Taber et coll. Parmi celles-ci sont nettement marquées, lors des injections dans le lobule VII, le raphe magnus et le raphe pallidus puis, dans une moindre mesure, le centralis superior, le raphe pontis et le raphe obscurus. En revanche, pour des injections dans le lobule VI, le marquage est nul ou faiblement présent dans le raphe magnus, le raphe pallidus et le centralis superior. Récemment, Shinnar et coll. ont identifié ces mêmes structures d'origine, mais injectant simultanément les lobules VI et VII, ils
d'origine, mais injectant simultanément les lobules VI et VII, ils ne pouvaient préciser la répartition des projections. Nos résultats montrent que les noyaux réticulaires bulbaires latéral et paramédian se projettent préférentiellement dans le lobule VI et les noyaux du raphé dans le lobule VII. Ainsi, au moins en ce qui concerne ces afférences, le cortex vermien dit « visuo-acoustique » ne peut pas être considéré comme homogène. Dans ce sens, nos données différent de celles obtenues par les méthodes de dégénérescence. (4) Ce travail a bénéficié d'une aide financière du C.N.R.S. (contrat RCP n° 433) et de l'I.N.S.E.R.M. (contrat C.R.L.
C.N.R.S. (contrat RCP n° 433) et de l'I.N.S.E.R.M. (contrat C.R.L. n° 76-1.138.6). Collaboration technique de Françoise Lanery et Christiane Pagès. Le penthotal a été gracieusement fourni par les laboratoires Abbott et la terramycine utilisée pour les sinistres antimicrobiens par les laboratoires Pfizer-Clin. (2) C. BATINI, C. BUISSERET-DELMAS et J. CORVISIER, J. Physiol., Paris, 72. 1976, p, 301-309. (3) C. BATINI, J. CORVISIER, J. DESTOMBES, H. GIOANNI et J. EVERETT, Exp. Brain Res., 26. 1976, n. 407-422. (4) A. BRODAL, E. TABER et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 239-254. (5) J. C. ECCLES, M. ITO et J. SZENTÁGOHTAI,
239-254. (5) J. C. ECCLES, M. ITO et J. SZENTÁGOHTAI, The Cerebellum as a Neuronal Machine, Springer, New York, 1967, p. 335. 6) G. H. HODDEVIK, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 169, 1976, p. 155-170. (7) J. JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL.
1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 161-182. Laboratoire de Psychophysiologie sensorielle. Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu. 75005 Paris. HISTOLOGIE. — Mise en évidence simultanée des neurones ocellaires et des cellules neurosécrétrices de la pars sur montage in toto chez la Blatte. Note (*) de Anne Bernard, transmise par M. Pierre Joly. Notre méthode résulte de la combinaison des techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules
de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules neurosécrétrices médianes et des neurones ocellaires de la pars sur un même montage in toto, apporte des preuves en faveur d'une absence de connexion directe entre ces deux systèmes chez la Blatte Periplaneta americana. Our bulk-staining method results from the combination of techniques using both cobalt chloride iontophoresis and paraldehyde fuchsin. The observation of medial neuro-secretory cells and ocellar neurons in the pars on the same whole mount would show no direct connexion between these two systems in the Cockroach Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel
Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre les cellules neurosécrétrices médianes de la pars intercerebralis et les ocelles chez la Blatte et pour l'interpréter les différents auteurs font appel à un support anatomique mais jusqu'à présent nul n'a pu le mettre en évidence chez Periplaneta. À côté des 70 ou 80 petites fibres que compte le nerf ocellaire de la Blatte Periplaneta, Cooter (3) dénombre 5 fibres de gros diamètre, 4 d'un diamètre moyen et 1 d'un diamètre légèrement inférieur. Ces fibres géantes ocellaires bipolaires sont connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une
connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection iontophorétique de chlorure de cobalt effectuée au départ d'un ocelle sous l'action d'un courant électrique, nous a permis (3) de les visualiser sur montage in toto. Les techniques de coloration de masse utilisant l'acide performique et le bleu Victoria (6) ou la fuchsine paraldéhyde (8) sont de pratique courante pour la mise en évidence des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Notre propos ici est de combiner les techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration par la fuchsine après oxydation pour tenter de mettre en évidence les
fuchsine après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens anatomiques éventuels qui existeraient entre les systèmes ocellaires et neuro-sécrétaires de la pars. MÉTÉRIEL ET MÉTHODE. — Dans ce travail nous utilisons des Blattes (Periplaneta americana) mâles, adultes âgés (que nous reconnaissons à leur couleur foncée et aux ailes endommagées) provenant d'un élevage soumis à la photopériode naturelle. Après un jeûne préalable de 3 jours, la Blatte est anesthésiée au froid en la plaçant pendant 7 mn dans le « freezer » du réfrigérateur. La cornée de l'ocelle est perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure
perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de cobalt à la concentration de 250 mmoles/l est introduite dans la cupule ocellaire. La Blatte est remise à l'étuve (27°C) sans nourriture pendant 1 h pour permettre au chlorure de cobalt de diffuser dans le système ocellaire. Après une nouvelle anesthésie au froid, la cuticule cervicale est enlevée, une incision sépare le thorax de l'abdomen. La tête et le thorax sont plongés pendant 5 mn dans du liquide physiologique (« Ringer » tamponné au pH 7,6 avec du tris C) contenant quelques gouttes de sulfure d'ammonium. Un lavage rapide
C) contenant quelques gouttes de sulfure d'ammonium. Un lavage rapide au liquide physiologique précède le prélèvement du cerveau qui doit se faire très rapidement (durée de l'opération : 5 mn maximum). La fixation se fait au picroformol trichloracétique (solution aqueuse saturée d'acide picrique : 150 ml; formol : 50 ml; acide trichloracétique à 2 % : 10 ml) pendant 24 h au cours desquelles 1 ou 2 passages à la trompe à vide sont conseillés pour vider l'air des trachées. Après une dissection fine, un lavage à l'eau courante de 2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due
2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à l'acide picrique. L'oxydation classique à l'acide performique est ici remplacée par une oxydation permanganique en milieu sulfurique (8). Pour qu'un maximum de cellules neuro-sécrétrices soient mises en évidence, cette oxydation doit se poursuivre pendant 1 h dans le mélanger : solution de permanganate de potassium à 2,5 % : 1 volume, acide sulfurique à 5 % : 1 volume, eau distillée : 6-8 volumes. La solution doit être renouvelée à chaque usage. Après un rinçage sommaire à l'eau de ville, la préparation est blanchie par une solution à 4
ville, la préparation est blanchie par une solution à 4 % de métabisulfite de sodium pendant 10 mn environ. Un lavage à l'eau courante pendant 5 mn précède une coloration de 10 mn à la fuchsine paraldéhyde acétifiée selon la méthode originale de Gomori (8). Un rinçage à l'eau de ville enlève l'excès de colorant, puis la préparation est traitée pendant 10 à 20 s par de l'alcool à 96° additionné de 0,5 % d'acide chlorhydrique concentré. La dissection finale se fait dans l'alcool absolu et la déshydratation peut se poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation
poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne pendant une demi-journée dans des mélanges d'alcool 100 et d'essence de cèdre blanche dont la concentration augmente progressivement pour finalement aboutir à un bain d'essence de cèdre pure. Le montage peut se faire au baume du Canada entre lame et lamelle. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Après coloration à la fuchsine paraldéhyde les cellules neurosécrétrices médianes de la pars antérieure apparaissent sous la forme d'un groupe dense d'une centaine de cellules situées de part et d'autre du plan sagittal (fig. 1). Il s'agit de neurones en Y qui courent sur
1). Il s'agit de neurones en Y qui courent sur la face frontale du cerveau en restant très superficiels. CORRECTION ### 6) G. H. HODDEVIK, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 169, 1976, p. 155-170. (7) J. JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J.
p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 114. 1960, p. 161-182. Laboratoire de Psychophysiologie sensorielle. Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu. 75005 Paris. HISTOLOGIE. — Mise en évidence simultanée des neurones ocellaires et des cellules neurosécrétrices de la pars sur montage in toto chez la Blatte. Note (*) de Anne Bernard, transmise par M. Pierre Joly. Notre méthode résulte de la combinaison des techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules neurosécrétrices
coloration de masse par la fuchsine. L'observation des cellules neurosécrétrices médianes et des neurones ocellaires de la pars sur un même montage in toto, apporte des preuves en faveur d'une absence de connexion directe entre ces deux systèmes chez la Blatte Periplaneta americana. Our bulk-staining method results from the combination of techniques using both cobalt chloride iontophoresis and paraldehyde fuchsin. The observation of medial neuro-secretory cells and ocellar neurons in the pars on the same whole mount would show no direct connexion between these two systems in the Cockroach Periplaneta americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre
americana. INTRODUCTION. — Il semble exister un lien fonctionnel entre les cellules neurosécrétrices médianes de la pars intercerebralis et les ocelles chez la Blatte et pour l'interpréter les différents auteurs font appel à un support anatomique mais jusqu'à présent nul n'a pu le mettre en évidence chez Periplaneta. À côté des 70 ou 80 petites fibres que compte le nerf ocellaire de la Blatte Periplaneta, Cooter (3) dénombre 5 fibres de gros diamètre, 4 d'un diamètre moyen et 1 d'un diamètre légèrement inférieur. Ces fibres géantes ocellaires bipolaires sont connectées à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection
à des corps cellulaires par de fins neurites. Une injection iontophorétique de chlorure de cobalt effectuée au départ d'un ocelle sous l'action d'un courant électrique, nous a permis (3) de les visualiser sur montage in toto. Les techniques de coloration de masse utilisant l'acide performique et le bleu Victoria (6) ou la fuchsine paraldéhyde (8) sont de pratique courante pour la mise en évidence des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Notre propos ici est de combiner les techniques d'injection iontophorétique de chlorure de cobalt et de coloration par la fuchsine après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens
après oxydation pour tenter de mettre en évidence les liens anatomiques éventuels qui existeraient entre les systèmes ocellaires et neuro-sécrétaires de la pars. MÉTÉRIEL ET MÉTHODE. — Dans ce travail nous utilisons des Blattes (Periplaneta americana) mâles, adultes âgés (que nous reconnaissons à leur couleur foncée et aux ailes endommagées) provenant d'un élevage soumis à la photopériode naturelle. Après un jeûne préalable de 3 jours, la Blatte est anesthésiée au froid en la plaçant pendant 7 mn dans le « freezer » du réfrigérateur. La cornée de l'ocelle est perforée sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de
sous la loupe binoculaire et une goutte de chlorure de cobalt à la concentration de 250 mmoles/l est introduite dans la cupule ocellaire. La Blatte est remise à l'étuve (27°C) sans nourriture pendant 1 h pour permettre au chlorure de cobalt de diffuser dans le système ocellaire. Après une nouvelle anesthésie au froid, la cuticule cervicale est enlevée, une incision sépare le thorax de l'abdomen. La tête et le thorax sont plongés pendant 5 mn dans du liquide physiologique (« Ringer » tamponné au pH 7,6 avec du tris C) contenant quelques gouttes de sulfure d'ammonium. Un lavage rapide au
contenant quelques gouttes de sulfure d'ammonium. Un lavage rapide au liquide physiologique précède le prélèvement du cerveau qui doit se faire très rapidement (durée de l'opération : 5 mn maximum). La fixation se fait au picroformol trichloracétique (solution aqueuse saturée d'acide picrique : 150 ml; formol : 50 ml; acide trichloracétique à 2 % : 10 ml) pendant 24 h au cours desquelles 1 ou 2 passages à la trompe à vide sont conseillés pour vider l'air des trachées. Après une dissection fine, un lavage à l'eau courante de 2 à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à
à 3 h fait disparaître la teinte jaune due à l'acide picrique. L'oxydation classique à l'acide performique est ici remplacée par une oxydation permanganique en milieu sulfurique (8). Pour qu'un maximum de cellules neuro-sécrétrices soient mises en évidence, cette oxydation doit se poursuivre pendant 1 h dans le mélanger : solution de permanganate de potassium à 2,5 % : 1 volume, acide sulfurique à 5 % : 1 volume, eau distillée : 6-8 volumes. La solution doit être renouvelée à chaque usage. Après un rinçage sommaire à l'eau de ville, la préparation est blanchie par une solution à 4 %
la préparation est blanchie par une solution à 4 % de métabisulfite de sodium pendant 10 mn environ. Un lavage à l'eau courante pendant 5 mn précède une coloration de 10 mn à la fuchsine paraldéhyde acétifiée selon la méthode originale de Gomori (8). Un rinçage à l'eau de ville enlève l'excès de colorant, puis la préparation est traitée pendant 10 à 20 s par de l'alcool à 96° additionné de 0,5 % d'acide chlorhydrique concentré. La dissection finale se fait dans l'alcool absolu et la déshydratation peut se poursuivre pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne
pendant 1 nuit dans cet alcool. Ensuite la préparation séjourne pendant une demi-journée dans des mélanges d'alcool 100 et d'essence de cèdre blanche dont la concentration augmente progressivement pour finalement aboutir à un bain d'essence de cèdre pure. Le montage peut se faire au baume du Canada entre lame et lamelle. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — Après coloration à la fuchsine paraldéhyde les cellules neurosécrétrices médianes de la pars antérieure apparaissent sous la forme d'un groupe dense d'une centaine de cellules situées de part et d'autre du plan sagittal (fig. 1). Il s'agit de neurones en Y qui courent sur la
Il s'agit de neurones en Y qui courent sur la face frontale du cerveau en restant très superficiels. CORRECTION ### 6) G. H. HODDEVIK, A. BRODAL et F. WALBERG, J. Comp. Neurol., 169, 1976, p. 155-170. (7) J. JANSEN et A. BRODAL, Aspects of Cerebellar Anatomy. Johan Grundt Tanum Forlag, 1954. p. 423. (8) K. KRISTENSSON et Y. OLSSON. Brain Res., 29, 1971. p. 363-365. (9) O. LARSELL, J. Comp. Neurol., 99. 1953, p. 135-200. (10) S. SHINNAR, R. J. MACIEWICZ et R. J. SHOFER. Brain Res., 97, 1975. p. 139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol.,
139-143. (11) R. S. SNIDER et A. STOWELL. J. Neurophysiol., 7, 1944. p. 331-357. (12) E. TABER, A. BRODAL et F. WALBERG Les corps cellulaires ronds d'un diamètre de 10 μm environ occupent une aire de 100 x 150 μm, ils possèdent de fins neurites qui tous convergent vers des fibres neuro-sécrétrices bipolaires. Les parties axoniques de ces fibres restent groupées en un tractus qui, après un chiasma dans le plan sagittal avec son homologue, prend une direction dorso-ventrale parallèle au plan sagittal; ce tractus est à l'origine du nerf cardiaque I. La partie dendritique de ces fibres neuro-sécrétrices forme
cardiaque I. La partie dendritique de ces fibres neuro-sécrétrices forme un tractus nettement plus court (longueur : 120 μm) qui s'écarte du plan sagittal puis s'arborise en fines ramifications. EXPLICATION DE LA PLANCHE Montage in toto de ganglions cérébroïdes de Blattes mâles (Periplaneta americana). Fig. 1. — Vue frontale après coloration à la fuchsine paraldéhyde. Les cellules neuro-sécrétrices de la pars et leurs prolongements dendritiques et axoniques occupent une position très superficielle. Fig. 2. — Vue horizontale (ou transversale) après double coloration (fuchsine-sulfure de cobalt). La trajectoire des neurones ocellaires de second ordre s'inscrit dans un plan perpendiculaire par rapport
de second ordre s'inscrit dans un plan perpendiculaire par rapport à celui des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Fig. 3. — Vue oblique après double coloration (fuchsine-sulfure de cobalt). À cause de la transparence du cerveau, les systèmes ocellaires et neuro-sécréteurs de la pars donnent une impression de chevauchement. a, axones; ad, neurone ocellaire antéro-dorsal; c, chiasma; ca, calices; cns, cellules neuro-sécrétrices; co, cavité œsophagienne; d, dendrites; gi, globuli; m, neurone ocellaire médian; mn, membrane neurale; n, neurites; ps, plan sagittal; pv, groupe de neurones ocellaires postéro-ventraux; te, tractus cardiaques; to, tractus ocellaire. PLANCHE 1 ANNE BERNARD Après une iontophorèse
to, tractus ocellaire. PLANCHE 1 ANNE BERNARD Après une iontophorèse au chlorure de cobalt, 4 gros corps cellulaires ocellaires en forme de poire, d'un diamètre de 25 à 35 μm peuvent être mis en évidence de chaque côté du plan sagittal (fig. 2). Ils s'échelonnent à différents niveaux de la pars antérieure d'où leur dénomination : corps cellulaire antéro-dorsal : ad, corps cellulaire médian : m, groupe postéro-ventral pv. Ce sont des neurones en T dont la partie dendritique constitue les fibres du nerf ocellaire et dont la partie axonique s'enfonce dans le cerveau vers la pars postérieure en se
s'enfonce dans le cerveau vers la pars postérieure en se rapprochant du plan sagittal. La trajectoire de ces gros neurones ocellaires de 2e ordre se situe donc dans un plan horizontal (ou transversal) c'est-à-dire perpendiculairement par rapport au plan des cellules neuro-sécrétrices de la pars. Étant donné cette distribution spatiale, seul le corps cellulaire (ad) à long neurite se trouve dans la même zone corticale que les cellules neuro-sécrétrices (fig. 2). Comme la dendrite et l'axone de ce neurone constituent une fibre du tractus ocellaire, il ne semble pas que le neurone (ad) puisse entrer en contact synaptique avec les
le neurone (ad) puisse entrer en contact synaptique avec les cellules neuro-sécrétrices. Nous n'avons pas pu suivre les fines ramifications dendritiques des cellules neuro-sécrétrices donc toute relation somato-dendritique entre les corps cellulaires ocellaires et ces ramifications, ne peut être écartée. Cependant, la direction prise par le tractus dendritique des cellules neurosécrétrices, par rapport aux corps cellulaires ocellaires, ne semble pas confirmer l'existence de tels contacts. Si l'on incline la préparation selon un axe horizontal et si on l'observe dans un plan intermédiaire (mi-horizontal mi-frontal) les 2 types cellulaires mis en évidence (ocellaires et neuro-sécréteurs) peuvent donner une impression de chevauchement
évidence (ocellaires et neuro-sécréteurs) peuvent donner une impression de chevauchement (fig. 3); cette possibilité est due à la transparence des ganglions cérébroïdes. La distinction entre cellules neuro-sécrétrices médianes et neurones ocellaires de second ordre de la pars, se fait alors selon des critères numériques ou de taille. Comme le remplissage de l'ocelle au chlorure de cobalt se fait sans l'intervention d'un courant électrique, seuls les neurones ocellaires de second ordre ont été colorés en noir au sulfure de cobalt. Le corps cellulaire du neurone ocellaire de 3e ordre ou d'ordre supérieur que nous mettrions en évidence sous l'action d'un courant
supérieur que nous mettrions en évidence sous l'action d'un courant électrique est encore plus éloigné que les autres neurones ocellaires, du groupe des cellules neuro-sécrétrices médianes. Son axone se prolonge jusque dans le ganglion mésothoracique et nous avons suivi sa dendrite jusqu'à la sortie du nerf ocellaire du protocerebron. Cette situation rend improbable pour ce neurone tout contact direct avec le groupe de cellules neurosécrétrices médianes de la pars. Nos résultats confirment que les processus décrits par Adiyodi et Bern sont bien les prolongements dendritiques des cellules neuro-sécrétrices médianes de la pars; d'après nos observations ils seraient non seulement distincts
la pars; d'après nos observations ils seraient non seulement distincts des tractus ocellaires mais situés dans des plans perpendiculaires et sans lien anatomique direct avec eux. Cependant, si comme le pense Goodman, les neurones ocellaires de 2e ordre sont en relation avec les lobes optiques, les centres antennaires et probablement l'interneurone visuel détecteur de mouvements, il est vraisemblable que des relations indirectes existent également avec les cellules neuro-sécrétrices médianes. Ceci expliquerait la difficulté de reconnaître dans les modifications de la pars, la spécificité de traduction d'un effet sensoriel. Ce travail a bénéficié de l'aide technique de Jean-Pierre Richard pour la