jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
abondance dans la baie de Bourgneuf, présente un thalle de filaments ténus, néanmoins comparable à celui décrit ci-dessus (fig. 12). Dans l'état actuel de nos investigations, il est possible d'affirmer que les formations mucilagineuses décrites par D. Gouleau à la surface des vasières ont bien pour origine les Diatomées et correspondent aux « filaments muqueux » qu'elles laissent sur leur passage lors de leurs déplacements horizontaux ou verticaux. Le caractère axénique de la culture éprouvée par ensemencement sur milieu gélosé additionné de Yeast Extract (500 mg/l), ainsi que l'observation en microscopie électronique à balayage ne nous permettent pas d'attribuer ces
microscopie électronique à balayage ne nous permettent pas d'attribuer ces formations à des bactéries. L'expérience effectuée in vitro permet de décrire les filaments secrétés par N. ramosissima, espèce intertidale très fréquente en baie de Bourgneuf et de confirmer les observations précédentes réalisées in situ sur des populations naturelles de Diatomées benthiques. Les différents types de thalles formés par d'autres espèces communes dans ces faciès littoraux ainsi que leurs interactions restent encore à étudier. (*) Séance du 28 février 1977. (1) Collaboration technique de M. A. Barreau. (2) A. F. HOLLAND, R. G. ZINGMARK et J. M. DEAN, Marine Biology, 27,
R. G. ZINGMARK et J. M. DEAN, Marine Biology, 27, 1974, p. 191-196. (3) D. GOULEAU, Comptes rendus, 283, série D, 1976, p. 21. (4) J. M. ROBERT, Biométrie cytologique appliquée à l'étude des stades de développement du Navicula ostrearia Bory en rapport avec le verdissement des claires de la baie de Bourgneuf, Thèse de 3e cycle (vol. 1), Nantes, 1974, 52 p. e) J. M. ROBERT, Rev. Trav. Inst. Pêches marit., 37, (3), 1973, p. 363-368. (6) Isolement par J. M. Robert; détermination par M. H. Germain. (7) A. WATANABE, J. Gen. appl. Microbiol., 6, p. 283-292. (8) D.
WATANABE, J. Gen. appl. Microbiol., 6, p. 283-292. (8) D. GOULEAU, les premiers stades de la sédimentation fine sur les vasières littorales découvrantes. Rôle de l'émersion, Thèse d'État (2 vol), Nantes, 1975, 241 + 123 pages. (9) J. A. HELLEBUST, Extracellular Products, in Algal physiology and biochemistry, W. D. P. Stewart, Blackwell, Oxford, 1974, p. 838-863. (11) K. IWASA et A. SHIMIZU, Experimental Cell Research, 74, 1972, p. Laboratoire de Biologie marine et d’Écologie animale, Laboratoire de Géologie marine et appliquée, U.E.R. Sciences de la Nature, 38, boulevard Michelet, B. P. n° 1044, 44037 Nantes Cedex. BIOLOGIE DU DÉVELOPPEMENT. —
P. n° 1044, 44037 Nantes Cedex. BIOLOGIE DU DÉVELOPPEMENT. — Les fragments monovalents d’immunoglobulines de Lapin anti-F 9 empêchent la formation de blastocystes chez la Souris. Note de Charles Babinet, Rolf Kemler, Philippe Dubois et François Jacob, Membre de l’Académie. Les fragments Fab de sérum de Lapin anti-F 9 ne perturbent pas la segmentation d’embryons de Souris en culture mais empêchent la formation de blastocystes. Cet effet est réversible pendant quelques heures. On ne l’observe ni avec des fragments Fab dirigés contre un autre antigène de surface des blastomères, ni avec la concanavaline A monovalente. Fab fragments of a Rabbit
avec la concanavaline A monovalente. Fab fragments of a Rabbit anti-F 9 serum do not disturb cleavage of Mouse embryos in culture but prevent blastocyst formation. This effect is reversible for a few hours. It is observed neither with Fab fragments directed against another surface antigen of blastomers nor with monovalent concanavalin A. L’immunisation de souris syngéniques par des cellules de carcinome embryonnaire isolées d’un tératocarcinome testiculaire a permis de montrer, sur ces cellules, la présence d’un antigène de surface appelé F 9. Chez l’adulte cet antigène est présent sur les cellules de la lignée germinale mâle mais non sur
les cellules de la lignée germinale mâle mais non sur les cellules somatiques examinées. Chez l’embryon, où il peut être décelé quelques heures après fécondation, on le trouve en abondance sur les cellules en segmentation. Dans le blastocyste, il est présent sur les cellules du trophectoderme et de la masse interne. Pour préciser le rôle éventuel de l’antigène F 9 dans la différenciation, on a recherché si, en culture, l’addition de sérum anti-F 9 à des embryons précoces empêchait la transition morule-blastocyste. MATÉRIEL ET MÉTHODES. — Les embryons provenaient de croisements entre hybrides C57BL/6 x CBA. Ils étaient récoltés par
croisements entre hybrides C57BL/6 x CBA. Ils étaient récoltés par lavage des oviductes à des temps variables du développement, le plus souvent au stade 2. Ils étaient cultivés en milieu de Whitten selon la technique en microgoutte sous huile de paraffine à 37°. Selon les cas, les embryons avaient ou non été débarrassés de leur zone pellucide. Deux lignées de cellules dérivées d’un tératocarcinome, F 9 et PYS-2, celle-ci dépourvue d’antigène F 9, ont été utilisées. Un lapin a été immunisé avec des cellules F 9 (5 injections de 5. 10^2 cellules en 2 mois). Après inactivation par la chaleur
10^2 cellules en 2 mois). Après inactivation par la chaleur (30 mn à 56°), le sérum a été absorbé sur cellules PYS-2 et sur lymphocytes de Souris C57BL/6 x CBA. En présence de complément, ce sérum absorbé reste cytotoxique pour les cellules F 9 (titre : 1/160 à 1 /320) et sera désigné « Lapin anti-F 9 ». En fluorescence indirecte, il marque les cellules de morule (titre : 1/80). Cette fixation est inhibée par un traitement préalable des morules avec du sérum de Souris syngénique anti-F 9. Ce sérum de Lapin contient une autre activité dirigée contre un antigène
de Lapin contient une autre activité dirigée contre un antigène de surface commun aux cellules F 9 et aux lymphocytes. Cette activité, qui peut être séparée de l’activité anti-F 9 par absorption sur lymphocytes suivie d’élution, sera appelée « Lapin anti-lymphocyte ». En présence de complément, elle est cytotoxique pour les cellules F 9 et les lymphocytes (titre : 1/600). La fraction immunoglobuline (Ig)G du sérum de Lapin non absorbé a été purifiée et des fragments monovalents (Fab) préparés. La fraction Fab anti-F 9 a été obtenue par absorption de cette préparation sur cellules PYS-2 et lymphocytes; la fraction Fab
cette préparation sur cellules PYS-2 et lymphocytes; la fraction Fab anti-lymphocytes par absorption sur lymphocytes et élution comme précédemment. L’activité de ces préparations sur les cellules ou les embryons a été déterminée par immunofluorescence indirecte selon la technique décrite. La préparation Fab anti-F 9 marque les morules jusqu’au 1/80; la préparation Fab anti-lymphocyte jusqu’au 1/160. RÉSULTATS. — Dans les conditions de culture utilisées, les embryons prélevés au stade 2 poursuivent leur développement : sur 167 embryons, 149 se sont bien développés (122 blastocystes et 27 morules après 66 h), 18 seulement s’arrêtant à des stades précoces. On a recherché si
seulement s’arrêtant à des stades précoces. On a recherché si la fixation d’anticorps sur l’antigène F 9 perturbait ce développement. On a donc ajouté au milieu du sérum de Souris ou de Lapin anti-F 9 en concentrations variables et renouvelé toutes les 24 heures le milieu contenant le sérum. Aucun effet n’a été observé ni avec le sérum de Souris au 1/20 (31 blastocystes formés en 68 h sur 40 embryons) ni avec le sérum de Lapin au 1/20 (19 blastocystes sur 23 embryons). Certains effets biologiques dus à des anticorps dirigés contre des antigènes de surface ne se produisent
anticorps dirigés contre des antigènes de surface ne se produisent que si l’on utilise non des anticorps divalents mais des fragments monovalents Fab. En effet l’addition de fragments Fab de Lapins anti-F 9 — solution à 3,4 mg de protéines par millilitre (correspondant à la concentration du sérum initial en IgG) diluée à 1/20 ou 1/40 — aux cultures d’embryons exerce un effet prononcé : la segmentation à partir du stade 2 se poursuit normalement ; après 48 h, quand les embryons des cultures témoins forment des morules compactes aux limites cellulaires mal visibles, les embryons cultivés en présence de
limites cellulaires mal visibles, les embryons cultivés en présence de Fab présentent une structure en grappe de raisin aux cellules bien individualisées (fig.). Dans les 2 cultures, une petite fraction (10 à 15 %) des embryons ne s’est pas développée. Après 66 h, la majorité des embryons témoins ont atteint le stade blastocyste; les embryons cultivés en Fab n’ont pas formé de blastocyste et conservent leur structure en grappe. Si ces cultures sont maintenues en présence de Fab, des vacuoles apparaissent dans les cellules qui se lysent après 5 ou 6 jours. On a obtenu des résultats semblables sans enlever
6 jours. On a obtenu des résultats semblables sans enlever la zone pellucide et sans renouveler régulièrement le milieu et les FAB. Pour préciser la spécificité de cet effet, plusieurs expériences ont été effectuées. 1° Après absorption de la suspension de FAB anti-F9 par des cellules F9, l'effet sur les embryons disparaît. 2° L’addition de fragments FAB anti-lymphocytes (1/20) aux cultures d’embryons ne perturbe pas leur développement (sur 58 embryons, 48 forment des blastocystes en 66 h et 3 des morules avancées). 3° À la concentration de 50 μg/ml, la concanavaline (Con) A monovalente se fixe sur les blastomères :
concanavaline (Con) A monovalente se fixe sur les blastomères : les anticorps anti-Con A conjugués à la rhodamine les marquent fortement; à la même concentration, la Con A monovalente ne perturbe pas le développement des embryons. La première de ces expériences montre que l’effet des FAB anti-F9 est bien dû au blocage d’un site de surface commun aux cellules F9 et aux blastomères; les 2 autres que cet effet n’est pas obtenu en bloquant n’importe quel site à la surface des blastomères. Les FAB anti-F9 ne modifient pas la segmentation. Ils semblent agir en perturbant les interactions cellulaires, empêchant ainsi
Ils semblent agir en perturbant les interactions cellulaires, empêchant ainsi la formation du blastocyste. L’effet devrait donc être réversible pendant quelque temps. Des embryons ont été cultivés en présence de FAB anti-F9 pendant 50 h, puis lavés et maintenus en culture sans FAB ou transplantés dans des femelles en pseudogestation (par accouplement avec des mâles stériles). Dans une première expérience, 41 embryons au stade 2 ont été cultivés en présence de FAB à 1/20. Après 53 h, 27 embryons avaient 30 cellules ou plus, 5 de 10 à 12 et 9 de 4 à 8. Les 27 premiers ont été
9 de 4 à 8. Les 27 premiers ont été lavés et remis en culture sans FAB. Après 2 h, 10 embryons ont été implantés dans 2 femelles au 3e jour de pseudogestation. Les 17 autres ont été laissés en culture pendant 12 h supplémentaires : 12 avaient alors formé des blastocystes et les 5 autres présentaient un aspect normal de morules compactes. 10 des 12 blastocystes ont été réimplantés dans une femelle en pseudogestation. De ces 3 femelles, seule la dernière a donné naissance à 2 souris. Dans une autre expérience, 57 embryons ont été cultivés en présence de
autre expérience, 57 embryons ont été cultivés en présence de FAB anti-F9 à 1/20. Après 50 h, 41 embryons comprenant 30 cellules ou plus ont été lavés et remis en culture sans FAB. Après 3 h ils ont été réimplantés dans 4 femelles en pseudogestation. Seules 3 d’entre elles (33 embryons implantés) ont mis bas : 16 souris soit 48 % des embryons réimplantés. Il est donc clair que des embryons tout d’abord perturbés dans leur développement par des FAB anti-F9 peuvent, après lavage, produire non seulement 1 blastocyste, mais même 1 souris. DISCUSSION. — La présence de fragments monovalents
même 1 souris. DISCUSSION. — La présence de fragments monovalents d’IgG de Lapin anti-F9 dans les cultures d’embryons, 1° ne perturbe pas la segmentation, 2° empêche la formation du blastocyste en modifiant, semble-t-il, les interactions des blastomères, 3° n’altère pas, pendant quelques heures, les potentialités de ceux-ci qui, débarrassés des FAB, peuvent produire un animal viable. Tout se passe donc comme si le blocage d’un site de surface cellulaire par le fragment monovalent d’IgG empêchait une interaction des blastomères nécessaire à la différenciation du blastocyste. Ce site paraît être spécifique puisque ni les FAB dirigés contre un autre site, ni
puisque ni les FAB dirigés contre un autre site, ni la Con A monovalente n’exercent cet effet. Des expériences préliminaires indiquent que les FAB de Lapin anti-F9 inhibent aussi la différenciation in vitro des cellules de carcinome embryonnaire isolées de tératocarcinome. Il est donc tentant d’attribuer à l’antigène F9 un rôle primordial dans ces phénomènes de différenciation, notamment celle du blastocyste. Il faut cependant souligner que ces expériences ont été réalisées avec des FAB de Lapin, les FAB de Souris syngéniques n’ayant pas encore été purifiées pour des raisons techniques. Il se peut que les FAB de Lapin contiennent des
Il se peut que les FAB de Lapin contiennent des molécules dirigées non seulement contre l’antigène F9 mais aussi contre d’autres antigènes de surface. Des expériences en cours permettront de préciser ce point. Quoi qu’il en soit, il est clair que certains antigènes de surface cellulaire jouent un rôle important dans la différenciation et le développement de l’embryon. Service de Génétique cellulaire du Collège de France et de l’Institut Pasteur, 25, rue du Docteur-Roux, 75015 Paris. RADIOBIOLOGIE. — Interaction de cellules thymiques et de cellules souches hémopoïétiques. Action favorisante sur la repopulation du thymus irradié. Note de Richard Daculsi, Elisabeth
la repopulation du thymus irradié. Note de Richard Daculsi, Elisabeth Legrand et Jean-François Duplan, présentée par M. Raymond Latarjet. Chez la Souris irradiée, restaurée par des cellules hémopoïétiques, le thymus est repeuplé plus rapidement par les cellules issues de la moelle osseuse que par celles issues de la rate. L'adjonction de cellules thymiques à l'inoculum restaurateur favorise la repopulation du thymus par les cellules issues de la rate, mais n'a pas d'action sur la repopulation d'origine médullaire. Irradiated mice engrafted with hemopoietic cells, the thymus is repopulated more rapidly by bone marrow-derived than by spleen-derived cells. Admixing thymic cells with
bone marrow-derived than by spleen-derived cells. Admixing thymic cells with the restorative suspension stimulates the thymic repopulation by spleen-derived cells whereas it has no effect on the repopulation by bone marrow-derived cells. Suivant qu'elles proviennent de la moelle osseuse (MO), de la rate ou du sang, les cellules souches hématopoïétiques (CS) pluripotentielles, diffèrent tant par leur aptitude à la prolifération que par l'orientation préférentielle de leur différenciation [(1), (2)]. En étudiant la cinétique de repopulation du thymus chez des Souris irradiées greffées avec des CS soit médullaires, soit spléniques, on a montré sans équivoque que le thymus était repeuplé plus
a montré sans équivoque que le thymus était repeuplé plus rapidement après la greffe des premières qu'après celle des secondes [e), (4)]. Par ailleurs, en comparant l'efficacité restauratrice des CS médullaires et spléniques, on a constaté que les cellules thymiques (CT) ajoutées aux suspensions de rate, influençaient défavorablement la survie des Souris e), alors qu'elles n'avaient pas d'effet sur l'efficacité des suspensions de MO. Ce résultat pouvait indiquer que les CT orientaient préférentiellement la différenciation des cellules spléniques vers la lignée lymphoïde aux dépens des lignées érythro-myéloïdes directement impliquées dans la survie à court terme. Le but des présentes expériences
la survie à court terme. Le but des présentes expériences est de rechercher quelle action ont les suspensions de CT sur la repopulation du thymus chez des Souris irradiées, restaurées par des CS provenant soit de la MO, soit de la rate. Ceci suppose, d'une part de faire la discrimination entre la prolifération des cellules thymiques survivantes et la repopulation par des cellules issues des CS greffées, d'autre part de reconnaître par la présence de l'antigène thêta, l'appartement des cellules à la lignée T. MÉTODES. — On a utilisé des Souris mâles et femelles des lignées AKR (AK), C3H (C3)
Souris mâles et femelles des lignées AKR (AK), C3H (C3) ainsi que leurs hybrides (C3H x AKR)F1 (C3AKF1). Les lignées AK et C3 sont partiellement histocompatibles comme porteuses du même allèle H2k. En revanche les cellules thymiques AK possèdent l'allotype Thy 1-1 alors que celles de C3 portent l'allotype Thy 1-2; l'allotype hybride étant Thy 1-1/1-2. Des Souris mâles C3 âgées de 70 à 80 jours sont irradiées en totalité avec une dose de rayons X de 837 rads (225 kV, 1 mA, CDA 1,2 mmCu) à raison de 85 rad/min. Les animaux sont subdivisés en 4 groupes de 16
rad/min. Les animaux sont subdivisés en 4 groupes de 16 souris chacun. Dans les 3 h qui suivent leur irradiation les divers groupes reçoivent par voie intraveineuse une injection restauratrice composée de MO seule (1,5 à 1,6.106 cellules) ou additionnée de CT (107), soit de rate seule (1,5 à 1,6.107 cellules) ou additionnée de CT (10'). Les cellules restauratrices spléniques ou médullaires ainsi que les CT proviennent de Souris mâles ou femelles C3AKF1 âgées de 40 à 50 jours. Les suspensions sont préparées dans du liquide de Tyrode; les éléments nucléés sont dénombrés dans un hémocytomètre de Burker et leur
nucléés sont dénombrés dans un hémocytomètre de Burker et leur viabilité contrôlée par le test au bleu trypan. Pour déterminer l'origine des cellules qui repeuplent le thymus on a utilisé deux antisérums : un sérum de Lapin anticerveau de Souris (LACS) préparé suivant Golub (1), et un sérum C3 anti-AK (1), cytotoxique pour Thy 1-1. Le sérum LACS permet le dénombrement de toutes les cellules porteuses de l'antigène thêta, alors que le sérum anti-Thy 1-1 n'est cytotoxique que pour les cellules T issues du donneur C3AKF1. Les tests cytotoxiques sont conduits suivant la technique de Gorer et O'Gorman (9). Des
conduits suivant la technique de Gorer et O'Gorman (9). Des études préliminaires ont permis de fixer à 1/32 la dilution optimale des deux antisérums. Le complément de Cobaye est utilisé après dilution au 1/10 dans du liquide de Tyrode. Repopulation du thymus après irradiation. L'indice de stimulation correspond au rapport entre le nombre absolu de cellules T (Thy 1-1) après restauration par des cellules spléniques ou médullaires additionnées de cellules thymiques (rate ou MO + CT) et le nombre absolu de cellules T après restauration par MO ou rate seules. Dans chacun des groupes, les Souris sont sacrifiées 14, 20,
Dans chacun des groupes, les Souris sont sacrifiées 14, 20, 24 et 30 jours après l'irradiation. Les thymus sont prélevés, pesés et mis en suspension dans du liquide de Tyrode; leurs cellules sont dénombrées et soumises aux tests de cytotoxicité. Les résultats peuvent ainsi être exprimés en nombre absolu de cellules thymiques d'origine exogène (Thy 1-1/1-2) décelées par l'action du sérum anti-Thy 1-1. L'action des CT ajoutées aux cellules restauratrices est évaluée par le rapport entre la moyenne du nombre absolu de cellules T exogènes présentes dans les groupes où la MO ou la rate étaient additionnées de CT et
la MO ou la rate étaient additionnées de CT et celle des groupes qui reçoivaient MO ou rate seules. L'indice de stimulation correspond donc à la valeur des rapports (MO + CT)/MO et (R + CT)/R. RÉSULTATS ET DISCUSSION. — L'utilisation de donneurs hybrides (MO, rate et CT) élimine l'intervention possible d'une réaction de greffe contre l'hôte. Pour évaluer l'ensemble des cellules T, on a préféré un sérum LACS au lot de sérum de Souris anti-Thy 1-2 qui était en notre possession et dont la toxicité vis-à-vis des cellules C3AKF1 avait plusieurs fois parue sujette à caution. Les résultats représentent
avait plusieurs fois parue sujette à caution. Les résultats représentent les valeurs moyennes de deux séries expérimentales (8 souris par point). A partir du 24e jour le nombre total de cellules présentes dans les thymus est sensiblement égal dans les quatre groupes expérimentaux, mais les fluctuations sont plus importantes aux 14e et 20e jours, et les valeurs les plus élevées ne proviennent pas nécessairement des souris qui ont reçu des CT. CHEMIN Toutefois, à ces deux dates (14e et 20e jour), chez les animaux injectés avec un mélange de rate et de CT, le nombre absolu des cellules Thy 1.2
et de CT, le nombre absolu des cellules Thy 1.2 est toujours nettement supérieur à celui trouvé chez les Souris restaurées avec de la rate seule. Les indices de stimulation (fig.) atteignent respectivement 3,9 et 2,2 aux 14e et 20e jours, ils deviennent voisins de l'unité (1,1 et 1,6) aux 24e et 30e jours. L'exo-régénération thymique n'est pas modifiée chez les animaux restaurés avec de la MO additionnée de CT ; l'indice de stimulation varie entre 0,6 et 1,2 et n'est jamais significativement différent de 1. L'action favorisante des CT sur l'exo-répulation du thymus à partir des cellules dérivées des
sur l'exo-répulation du thymus à partir des cellules dérivées des CS spléniques, paraît devoir être rattachée au fait que la rate produit moins de précurseurs thymiques, ou les produit moins vite [C), (4)]. Les données cinétiques manquent pour choisir entre ces deux possibilités. Il semble toutefois exclu que la cinétique de réplication des CFU spléniques, qui est connue pour être plus lente que celle de la MO, soit seule en cause [d'autant plus que l'adjonction de CT ne la corrige pas. On a en outre montré (10) que les CT ne participent pas directement à la repopulation du thymus; elles
ne participent pas directement à la repopulation du thymus; elles agiraient soit en accélérant le recrutement des précurseurs thymiques à partir des CS spléniques, soit en stimulant leur multiplication et leur maturation. Dans l'un et l'autre cas, on est conduit à faire l'hypothèse que la population des CS spléniques est marquée par un défaut de différenciation vers la lignée des cellules T. On peut ainsi concevoir que si cette différenciation s'effectue normalement à partir du compartiment des CS médullaires, l'intervention avec les CT peut se produire sans modification apparente de la cinétique de repopulation du thymus. En effet, la corticale
la cinétique de repopulation du thymus. En effet, la corticale de cet organe se repeuple à partir d'un très faible nombre de précurseurs []; son exo-régénération devrait donc être plus sensible à un défaut de différenciation et de maturation qu'à un déficit relatif de type quantitatif. On savait déjà que les CT pouvaient stimuler la production des lymphocytes B [11] par interactions cellulaires, et favoriser l'hématopoïèse dans certaines combinaisons hybrides [13]. Les résultats précédents s'inscrivent dans cette même ligne d'effets stimulants. Il est toutefois impossible de savoir s'il s'agit d'un aspect particulier d'une des précédentes interactions ou d'un phénomène différent.
aspect particulier d'une des précédentes interactions ou d'un phénomène différent. Séance du 28 mars 1977. J. F. DUPLAN, E. LEGRAND et B. GUILLEMAIN, Nouv. Rev. Franc. Hémat. Il. 1971. p. 821. N. S. WOLF et J. J. TRENTIN, J. Exp. Med., 127. 1968. p. 205. J. F. KADISH et R. S. BACH, J. Exp. Med., 143, 1976, p. 1082. S. MURAMATSU, P. MONNOT et J. F. DUPLAN, Exp. Hemat., 4, 1976, p. 188. M. C. DEBONS et J. F. DUPLAN, C. R. Soc. Biol. 168, 1974, p. 489. J. E. TILL et E. A. MCCULLOCH, Radiat. Res., 14, 1961, p.
TILL et E. A. MCCULLOCH, Radiat. Res., 14, 1961, p. 213. E. S. GOLUB, Cell. Immunol., 2. 1971. p. 353. A. E. REIF et J. M. V. ALLEN, J. Exp. Med., 120, 1964, p. 413. P. A. UORER et P. O'GORAN, Transplant. Bull., 3, 1956, p. 142. E. LEGRAND, M. C. KRESSMANN et J. F. DUPLAN, Int. J. Cancer, 15, 1975, p. 572. V. J. WALLIS, E. LEUCHARS, S. CHWALINSKI et A. J. S. DAVIES, Transplantation, 19, 1975, p. 2. H. N. CLAMAN, E. A. CHAPERON et R. F. TRIPLETT, Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 122, 1966, p. 1167. L.