jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
24,2 183 181 I 35 35,1 178 140 III. — ACTION DE LA SOUSTRACTION D’EAU SUR LES ÉCHANGES RESPIRATOIRES Nous nous sommes demandé si les pertes d’eau considérables que l’organisme de la grenouille peut subir retombent sur l’intensité et la nature des échanges respiratoires de cet animal. Nous avons fait deux séries d’expériences. Dans une première série, les animaux sont laissés constamment à une température basse (6 à 8°), soit l’hiver, soit l’été. On observe leurs échanges pendant une période témoin, puis on leur soustrait une grande quantité d’eau et on observe à nouveau leurs échanges. Dans une seconde série,
on observe à nouveau leurs échanges. Dans une seconde série, les animaux sont examinés à une température plus élevée. Première série. — Expériences faites à basse température. Tableau VI Expériences faites en novembre-décembre (à 6° environ). Date N° de la grenouille Poids Eau perdue p. 100 des l’heure Conditions de l’extraction CO2 dégagé par gr. sec O2 consommé par gr. sec grenouille de l’eau heure heure 24 XI 1. 26 33,31 0,0427 0,0846 0,51 25 XI 33,00 57 24 heures sur 50°II 0,0435 0,0845 0,52 27 XI 29,10 0,0634 0,0396 1,59 28 XI 28,94 0,0936 0,1290 0,73 29 XI 1.
1,59 28 XI 28,94 0,0936 0,1290 0,73 29 XI 1. 27 34,86 0,0414 0,0838 0,50 30 XI 35,50 21 24 heures sur 50°II 0,0400 0,0800 0,50 27 XI 34,06 0,0500 0,0675 0,75 28 XI 33,67 0,0623 0,0797 0,78 29 XI 33,40 0,0625 0,1005 0,63 1 XII 1. 28 32,21 0,0438 0,0821 0,52 2 XII 32,99 49 24 heures sur 50°II 0,0473 0,0852 0,54 4 XII 29,84 0,0622 0,0516 1,20 5 XII 29,36 0,0710 0,0777 0,92 De ces tableaux se dégagent les faits suivants : Consommation d'oxygène. — Le plus souvent, immédiatement après le dessèchement, la consommation d’oxygène diminue notablement pour
immédiatement après le dessèchement, la consommation d’oxygène diminue notablement pour remonter ensuite. Élimination d'acide carbonique. — Dans le plus grand nombre des cas, le dessèchement est suivi d’une élimination plus abondante de CO2. Quotient respiratoire. — Le phénomène qui n’a jamais manqué dans ces expériences est une augmentation du quotient respiratoire dans les heures qui suivent la perte d’eau. Cette augmentation du quotient n’est pas due simplement à l’élimination de l’acide carbonique. En effet, elle se produit même quand cette élimination n’est pas exagérée, et d’autre part, elle peut coïncider avec une forte diminution de la consommation d’oxygène. Expériences faites
avec une forte diminution de la consommation d’oxygène. Expériences faites en Septembre (température 8° glacière). Date N° de la grenouille Poids Eau perdue p. 100 secs Conditions de l’extraction CO2 dégagé par gr. sec O2 consommé par gr. sec grenouille de l’eau heure heure 14 IX 1. 7 17,80 0,0420 0,0585 0,72 18 IX 17,98 86 24 heures 50°II 0,0444 0,0620 0,72 19 IX 15,36 0,0312 0,0370 0,84 20 IX 1. 8 17,10 0,0475 0,0913 0,52 22 IX 17,33 130 24 heures 50°II 0,0450 0,0835 0,53 24 IX 13,78 0,0433 0,0280 1,54 26 IX 11,48 0,0351 0,0492 0,72 28 IX
0,0280 1,54 26 IX 11,48 0,0351 0,0492 0,72 28 IX 1. 9 16,22 0,0345 0,0467 0,72 30 IX 15,60 78 24 heures 50°II 0,0326 0,0425 0,73 2 X 13,40 0,0341 0,0190 1,75 4 X 10,93 0,0386 0,0396 0,97 2 X 1. 10 16,37 0,0400 0,0427 0,91 4 X 16,08 119 24 heures 50°II 0,0339 0,0437 0,90 6 X 12,86 0,0377 0,0240 1,56 8 X 10,76 0,0434 0,0520 0,83 8 X 1. 11 15,70 0,0333 0,0433 0,75 10 X 15,91 111 24 heures 50°II 0,0340 0,0427 0,78 12 X 12,77 0,0637 0,0688 0,92 14 X 10,62 0,0310 0,0364 0,84 On peut
0,0688 0,92 14 X 10,62 0,0310 0,0364 0,84 On peut donc dire que la perte brutale d’une grande quantité d’eau chez la grenouille fait temporairement changer la nature des échanges respiratoires. Deuxième série. — Expériences faites à chaud. — Nous avons essayé de voir quel était l’effet du dessèchement sur des grenouilles non plus maintenues à basse température, mais, au contraire, à une température de 25 à 30°. Il faut remarquer que, dans ces conditions, les résultats obtenus sont d’une interprétation délicate. En effet, dans des expériences de ce genre, on superpose à l’effet possible du dessèchement l’effet certain de
on superpose à l’effet possible du dessèchement l’effet certain de la température. De plus, le passage à haute température si la grenouille n’est pas maintenue dans l’eau, amène une perte d’eau notable de l’animal. Voici des exemples de ce fait: Tableau VII Date Numéro de la grenouille Poids Conditions Température CO2 en gramme par seconde heure O2 consommé par gramme par seconde heure Quotient respiratoire 15X1 1. 23 32,4 dans l'eau 4° 0,110 0,178 0,62 16X1 31,5 à sec 30° 1,165 1,449 0,80 (perte d'eau : 6,5 pour 100 sec s). 18X1 I. 24 28,2 dans l'eau 4° 0,077 0,129
s). 18X1 I. 24 28,2 dans l'eau 4° 0,077 0,129 0,60 19 XI 25,8 à sec 30° 1,23 1,68 0,70 (perte d'eau : 41 pour 100 sec fl 22X1 I. 25 26,7 dans l'eau 2° 0,054 0,109 0,50 23 XI 24,0 à sec 30° 1,26 1,66 0,76 (P erte cl eau : 46 pour 100 secs )• Pour éliminer l’influence de la température, nous avons fait des expériences de deux types. 1° On prend deux grenouilles dont l’une sert de témoin, On détermine leurs échanges à la température extérieure. Puis on les place toutes deux à 30°, l’une ayant à
on les place toutes deux à 30°, l’une ayant à sa disposition de l’eau, l’autre à sec et par conséquent perdant progressivement son eau dans l’étuve. 2° Des grenouilles sont placées dans l’eau à 25° pendant un certain temps, jusqu’à ce que leurs échanges respiratoires paraissent réguliers. A ce moment, l’une est gardée comme témoin, les autres sont partiellement desséchées sur SO ; H 2 ou dans l’air. 324 NAOHIKO IIZUKA Tableau VIII Grenouilles portées de la température extérieure à 30° — l’une étant desséchée. — Les échanges sont examinés près de 24 heures après mise à l’étuve. N° de
près de 24 heures après mise à l’étuve. N° de la grenouille Poids frais Conditions Température CO 2 en cm3 par gr. sec heure O 2 en cm3 par gr. sec heure QR. I. 13 15,2 témoin 12° 0,105 0,127 0,85 15,4 dans l’eau 29°5 0,497 0,571 0,87 I. 14 16,7 avec eau (perte : 62 d’eau p. 100 secs) 12° 0,109 0,136 0,78 14,9 sans eau 29°5 0,598 0,660 0,91 I. 15 13,0 témoin 12° 0,246 0,271 0,75 12,9 dans l’eau 30° 0,550 0,595 0,91 I. 16 13,8 avec eau (perte : 86 pour 100 secs) 12° 0,095 0,129
eau (perte : 86 pour 100 secs) 12° 0,095 0,129 0,74 11,7 sans eau CO O O 0,442 0,249 1,75 I. 17 14,4 témoin 12° 0,236 0,308 0,70 14,2 avec eau 30° 0,624 0,675 0,93 I. 18 15 avec eau (perte : 66 d’eau p. 100 secs) 12° 0,099 0,140 0,72 13,3 sans eau 30° 0,515 0,315 1,65 I. 19 15,4 avec eau (perte : 60 d’eau p. 100 secs) 12° 0,126 0,166 0,77 13,8 sans eau 30° 0,443 0,347 1,28 On voit que : 1° Le dessèchement a pour effet d’augmenter l’intensité respiratoire. Car l’intensité des respirations augmente chez
effet d’augmenter l’intensité respiratoire. Car l’intensité des respirations augmente chez tous les animaux placés à chaud, mais elle augmente plus chez les animaux desséchés. Par exemple, si on compare l’augmentation d’élimination d’acide carbonique dans les deux cas, on voit que la variation obtenue par modification simultanée de la température et de l’hydratation est égale à la variation obtenue chez le témoin par élévation de la température seule, multipliée dans les diverses expériences par 1,16, 2,08, 1,96, 1,33. 2° Le quotient respiratoire s’élève dans tous les cas. Il s’élève bien davantage chez les animaux desséchés ; dans trois cas sur quatre
chez les animaux desséchés ; dans trois cas sur quatre il devient très supérieur à l’unité. Tableau IX Grenouilles amenées à une température fixe, à laquelle a lieu la dessiccation après une période d’adaptation. Date N° de la grenouille Poids frais Conditions Température CO 2 en cm3 par gr.sec heure O 2 en cm3 par gr. sec heure Q. R 15 VII 16 VII 17 VII 18 VII I. 4 16.9 16,6 12.9 , — — — — 1er jour dans l’eau 2e jour (perte : 113 d’eau p. 100 secs) sans eau 25 à 26° 0,427 0,440 0,470 0,509
secs) sans eau 25 à 26° 0,427 0,440 0,470 0,509 0,507 0,521 0,82 0,84 0,91 21 VII 22 VII 23 VII 24 VII I. 5 15,8 16,2 16,2 12,2 11er jour dans l’eau 2e jour 3e jour (perte : 129 d’eau p. 100 secs) sans eau 25 à 26° 0,539 0,512 0,422 0,476 0,654 0,620 0,522 0,521 0,89 0,81 0,79 0,90 26 VII 27 VII 28 VII 29 VII I. 3 16,45 16,65 15.5 13.5 , — — — — 1er jour dans l’eau 2e jour (perte : 62 d’eau p. 100 secs) 1er jour sans eau 2e jour 25
p. 100 secs) 1er jour sans eau 2e jour 25 à 26° 0,375 0,391 0,291 0,502 0,463 0,484 0,381 0,553 0,81 0,81 0,77 0,91 Expérience témoin sur une grenouille appartenant au même lot et conservée à l’étuve dans l’eau pendant les trois expériences précédentes. 26 VII I. 6 15,1 25 à 26° 0,571 0,732 0,78 27 VII 15,6 25 à 26° 0,628 0,745 0,84 28 VII 15,3 0,625 0,778 0,80 29 VII 15,5 0,595 0,712 0,83 15 VII 14,6 0,535 0,685 0,78 16 VII 14,4 0,480 0,635 0,76 17 VII 14,4 0,487 0,600 0,81 21 VII 14,1 0,456 0,593 0,77
14,4 0,487 0,600 0,81 21 VII 14,1 0,456 0,593 0,77 22 VII 13,6 0,434 0,543 0,80 23 VII 13,4 0,406 0,508 0,80 24 VII 13,3 0,419 0,492 0,84 Les teneurs en eau de cette grenouille sont calculées d’après son poids frais en supposant l’imbibition au départ semblable à celle des grenouilles du même lot. Dans ces conditions, les phénomènes sont moins marqués que lorsque l’influence de la dessiccation se fait sentir en même temps que celle de la température. On constate toutefois encore une augmentation de l’intensité respiratoire et une légère élévation du quotient respiratoire. La plus grande partie au
légère élévation du quotient respiratoire. La plus grande partie au moins de la réserve d’eau est donc en quelque sorte extrinsèque aux tissus dont le métabolisme général est l’expression. Quand on arrive au voisinage de la teneur en eau compatible avec la vie, l’expérience montre qu’on n’observe pas de phénomènes analogues à ceux de l’anhydrobiose, c’est-à-dire qu’il n’existe pas une zone de teneurs en eau dans laquelle l’intensité respiratoire va décroissant. Par contre, la soustraction d’eau paraît avoir un effet, non sur l’intensité, mais sur la nature des échanges respiratoires. Elle modifie transitoirement le quotient respiratoire qui s’élève et en
Elle modifie transitoirement le quotient respiratoire qui s’élève et en général au-dessus de l’unité. CONCLUSIONS 1° Comme nos prédécesseurs, nous avons constaté que les échanges respiratoires de la grenouille présentent une variation saisonnière, mais nous n’avons pas retrouvé l’augmentation hivernale du quotient respiratoire qui avait été signalée. 2° L’élévation de température a pour effet d’augmenter l’intensité des échanges et de rapprocher le quotient respiratoire de l’unité. 3° On sait qu’on peut faire perdre à la grenouille une notable quantité d’eau. La teneur en eau de la grenouille dans les conditions habituelles de la vie est très variable; quand on soustrait
habituelles de la vie est très variable; quand on soustrait expérimentalement rapidement l’eau de l’organisme, on atteint une limite incompatible avec la vie. Cette teneur en eau est relativement beaucoup plus fixe que la précédente et voisine de 220 d’eau pour 100 secs. 4° La soustraction rapide d’une notable quantité d’eau paraît retentir sur les échanges respiratoires de la grenouille. Si l’on rapporte les échanges au gramme de poids sec de l’animal, on constate que la soustraction d’eau a pour effet d’augmenter en général l’élimination d’acide carbonique, parfois pendant plusieurs jours, d’abaisser la consommation d’oxygène, effet qui n’est pas durable,
jours, d’abaisser la consommation d’oxygène, effet qui n’est pas durable, la consommation remontant ensuite peu à peu. Il en résulte que la dessiccation augmente, et souvent considérablement, la valeur du quotient respiratoire. Cette augmentation n’est pas de longue durée. Ces phénomènes semblent plus marqués lorsque l’animal est maintenu au froid que lorsqu’il est placé à température élevée (25-30°). La soustraction d’eau paraît donc avoir pour effet de modifier transitoirement la nature des processus respiratoires de la grenouille. RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES 1. Athanasiu. Sur les échanges respiratoires des grenouilles pendant les différentes époques de l’année. J. Phys, et Pathg. génér. 1900, II,
époques de l’année. J. Phys, et Pathg. génér. 1900, II, p. 243. 2. E. Couvreur. Contribution à l’étude de la respiration aérienne chez les batraciens anoures à l’âge adulte. J. Phys, et Pathg. génér. 1909, XI. p. 560 et p. 590. 3. Krogii. On the cutaneous and pulmonary respiration of the frog Skand Arch. /. Physiol, 1904. XV, p. 328. Some experiments on the cutaneous respiration of vertebrate animals. 1904. XVI, p. 348. 4. St. J. Przylecki. L’échange d’eau et des sels chez les amphibiens. Arch. internat, de Physiol. 1922, XIX, fasc. 2. Reçu le 1er juillet 1926. Sur l'Oxydabilité
XIX, fasc. 2. Reçu le 1er juillet 1926. Sur l'Oxydabilité des corps organiques à la température ordinaire par André MAYER et René WURMSER (Travail du laboratoire d’Histoire Naturelle des Corps organisés Collège de France) I. — INTRODUCTION Les oxydations réalisées par les organismes sont de deux types. Lesunes se font aux dépens de l’oxygène libre; les autres aux dépens d’oxygène lié à d’autres atomes dans une molécule plus ou moins complexe; ce sont les oxydo-réductions. Presque tout le chimisme cellulaire se ramène à des oxydations de ces deux types. Depuis que Lavoisier a établi ce fait fondamental de l’oxydation des
que Lavoisier a établi ce fait fondamental de l’oxydation des substances organiques dans les êtres vivants, on a cherché à comprendre comment il était compatible avec la stabilité apparente de ces substances à la température ordinaire et dans les conditions de milieu qui permettent la vie. Parmi les actions catalytiques auxquelles on a pensé, une des plus intéressantes est l’action de surface parce que, dans le milieu hétérogène des organismes, des actions de ce genre interviennent certainement. On doit, semble-t-il, à Bredig la notion de l’importance des surfaces au point de vue de la catalyse dans les cellules; mais, dans
de vue de la catalyse dans les cellules; mais, dans ces dernières années seulement, avec O. Warburg (1), on a entrepris l’étude expérimentale de ce mode de catalyse dans les phénomènes d’oxydation grâce au choix d’une surface très active, celle du charbon. O. Warburg a montré que l’acide oxalique, déjà étudié par Freundlich, était oxydé par agitation en présence de charbon (2) et d’air. Avec Negelein (3), il a étendu ce résultat à trois aminoacides: la cystine, la leucine et la tyrosine; et Negelein (4) a montré que les aminoacides qui renferment un groupe aminé lié à un atome de
qui renferment un groupe aminé lié à un atome de carbone tertiaire sont oxydés plus lentement que les acides primaires et secondaires. En 1916, Freundlich et Bjercke (5) étudièrent l’oxydation de la p-phenylthiourée. Ces réactions paraissaient cependant exceptionnelles. C’est ainsi qu’en 1923, Meyering et Weber (6) indiquaient que si l’hexosephosphate s’oxyde notablement, le fructose et l’acide lactique très faiblement en présence du charbon, le glucose est tout à fait stable. Nous avons cette même année, avec Gompel (7), montré qu’en réalité, en présence du charbon de sang, le glucose et de nombreux sels d’acides gras s’oxydent de façon parfaitement mesurable,
de nombreux sels d’acides gras s’oxydent de façon parfaitement mesurable, ainsi que des aminoacides tels que le glycocolle et l’alanine. L’oxydation à la température ordinaire en présence de charbon est donc un phénomène très général qui traduit la tendance thermodynamique de tous les corps organiques à évoluer vers des formes stables comme le gaz carbonique et l’eau. En 1924, Wieland et Bergel (8) ont observé à leur tour l’oxydation du glycocolle, de l’alanine, de la phénylalanine et de l’acide aspartique, et Rideal et Wright (9) celle de l’acide malonique. Notre présent travail a pour objet d’exposer les nouvelles expériences que
présent travail a pour objet d’exposer les nouvelles expériences que nous avons effectuées sur l’oxydation, en présence d’un charbon végétal activé, de divers acides organiques et de glucose, et de rechercher si les différences observées dans l’oxydabilité de ces divers corps en présence du charbon peuvent nous renseigner sur les différences d’oxydabilité de ces mêmes corps dans les conditions biologiques. La partie expérimentale de ce travail comprend : 1° La détermination du rapport CO2 /O2 au cours de l’oxydation ; 2° L’étude de l’influence de la concentration sur la vitesse d’oxydation ; 3° La comparaison des vitesses d’oxydation des divers
d’oxydation ; 3° La comparaison des vitesses d’oxydation des divers corps organiques étudiés, mesurée par le dosage de CO2 dégagé et calculée en oxygène absorbé d’après les rapports CO2 : O2 : 4° Des essais préliminaires effectués avec les catalyseurs Pt O2 et Pt O3. II. — TECHNIQUE Le charbon sont introduits dans 50 centimètres cubes de la solution 0,01 M de la substance organique étudiée. Cette solution est renfermée dans un flacon tel que celui représenté par la figure (fig. 1). Le tout est, alors, en communication avec une canule à vide. On ouvre le robinet du flacon et
canule à vide. On ouvre le robinet du flacon et on fait dans tout l’appareil un vide aussi poussé que la tension de vapeur de l’eau le permet. Le réfrigérant est entouré d’eau tiède (40°). Au bout de vingt minutes, on ferme le robinet du flacon, on enlève ce flacon, et on le pèse à nouveau. On admet que la différence de poids entre cette pesée et la pesée du début correspond à l’eau qui s’est évaporée au cours de l’extraction des gaz renfermés dans le système, et l’on compense cette évaporation en ajoutant dans le flacon une quantité d’eau
cette évaporation en ajoutant dans le flacon une quantité d’eau correspondante. Celle-ci est de l’ordre de 2 à 3 centimètres cubes. On introduit ensuite un certain volume d’air dans le flacon, et l’on ferme le robinet R ; pour plus de sûreté, on introduit dans la partie du tube située au-dessus de R, un peu de mercure. Le flacon est alors placé dans un thermostat chauffé électriquement (t=39°, ±0,1), et secoué à raison de 80 oscillations par minute. Au bout d’une durée voisine de cent heures, les gaz sont extraits du flacon au moyen d’une trompe à mercure et recueillis
du flacon au moyen d’une trompe à mercure et recueillis sur le mercure. Leur analyse est faite suivant les procédés habituels. On obtient ainsi la quantité de CO2 dégagée, la quantité d’oxygène qui reste, et la quantité d’azote résiduelle ; cette quantité d’azote multipliée par 21 /79 donne la quantité d’oxygène initiale et permet, par conséquent, le calcul de l’oxygène consommé. Les chiffres obtenus sont ramenés à ceux qui correspondraient à une durée d’expérience exacte de cent heures. Le charbon employé donnant lieu par lui-même, dans ces conditions, à un notable dégagement de CO2, d’une part, et d’autre part, à
notable dégagement de CO2, d’une part, et d’autre part, à une légère absorption d’oxygène, représentés par les chiffres ci-dessous : ce CO2 et O2 dégagés et absorbés (pour 2 grammes charbon en 100 heures) 1,08 0,36 Il convient de tenir compte de ces chiffres dans le calcul du CO2 dégagé et de l’oxygène absorbé par la substance organique dont on étudie l’oxydation. 3° Détermination de la vitesse d’oxydation. — Quand il s’est agi de mesurer la vitesse des réactions, nous avons opéré de la façon suivante : Les ballons contenant la solution et le catalyseur étaient placés dans une grande
la solution et le catalyseur étaient placés dans une grande étuve à air, elle-même installée dans une cave à température constante, et maintenue à 40° environ. Ils étaient fixés sur un chariot roulant sur rails, monté dans l’étuve et animé d’un mouvement de va et vient au moyen d’une bielle (fig. 2). Les ballons étaient fermés par un bouchon de caoutchouc percé de deux trous, un aspirateur faisait circuler dans le ballon de l’air privé de CO2 par passage dans des absorbants à potasse. Cet air déplace le CO2 dégagé par la réaction, est conduit dans des tubes de Pettenkofer
par la réaction, est conduit dans des tubes de Pettenkofer contenant de l’eau de baryte titrée et maintenue aux environs de 60°, puis dans un flacon laveur témoin contenant de l’eau de baryte. On titrait avec une solution d’acide chlorhydrique environ 0,1 N en présence de phénolphtaléine. Le charbon lui-même est oxydé à la température ordinaire ; c’est pourquoi nous avons adopté la marche suivante pour les expériences : Pendant une période préliminaire de quatre à cinq jours, on fait circuler de l’air privé de CO2 dans le ballon contenant de l’eau et le charbon en suspension, agité à la
de l’eau et le charbon en suspension, agité à la même température et dans les mêmes conditions qu’au cours de l’expérience même. On détermine ainsi la vitesse d’oxydation du charbon seul. A la fin de cette période préliminaire, on introduit le corps à étudier, et la différence entre la vitesse mesurée à partir de ce moment et la vitesse extrapolée pour le charbon seul est considérée comme la vitesse d’oxydation du corps. L’expérience elle-même dure deux à trois jours pour les corps les plus stables que nous avons étudiés. Fig. 2. Nous avons préféré cette méthode de détermination directe à
2. Nous avons préféré cette méthode de détermination directe à la méthode manométrique qui présente de graves inconvénients lorsqu’on veut suivre des réactions très lentes pendant plusieurs jours. Le charbon qui nous a servi dans les expériences est un charbon végétal activé par le procédé Ed. Urbain, c’est-à-dire traité à haute température avec de l’acide phosphorique. Dans le cas des solutions de glucose, des expériences témoins ont été faites avec des liquides stérilisés et un courant d’air filtré. III — RÉSULTATS EXPÉRIMENTAUX CO2 1° Détermination du rapport — Cette détermination a été effectuée au laboratoire par Cl. Fromageot. Les résultats
a été effectuée au laboratoire par Cl. Fromageot. Les résultats figurent dans le tableau ci-dessous : Tableau I 50 cc. solution IV/100 + 2 gr. charbon, 100 heures d’agitation. Température 39°2. Corps étudié CO2 dégagé CO2 absorbé CO2 observé CO2 de combustion totale Formiate de sodium 9,2 4,2 2,2 2,0 Acétate — 9,1 9,2 1,0 1,0 Propionate — 3,1 5,0 0,6 0,85 Oxalate — 30,2 8,7 3,9 4,0 Succinate — 4,6 4,6 1,0 1,1 Citrate — 3,2 3,1 1,0 0,9 Lactate — 8,9 8,7 1,0 1,0 Pyruvate — 8,8 10,8 0,8 1,2 Glycolole 3,0 2,3 1,3 1,0 Alanine 1,9 2,0
0,8 1,2 Glycolole 3,0 2,3 1,3 1,0 Alanine 1,9 2,0 0,95 0,75 Glucose 2,7 2,7 1,0 1,0 Charbon seul 0,9 2,7 0,33 On voit que pour presque tous ces corps le rapport CO2/O est très voisin de celui correspondant à l’oxydation totale. Le charbon seul absorbe trois fois plus d’oxygène qu’il ne dégage de gaz carbonique, ce qui correspond vraisemblablement à une réduction de carbures avec élimination d’eau. 2° Influence de la concentration sur la vitesse d'oxydation du formiate de sodium et de l’acétate de sodium. — Les tableaux suivants indiquent les quantités totales de CO2 dégagées en fonction du
indiquent les quantités totales de CO2 dégagées en fonction du temps. Tableau II Temps (en heures) CO2 (en cc.) Temps (en heures) CO2 (en cc.) Formiate de sodium 0,5 M pH = 7,0. 16 24 40 48 64 88 14,5 23,5, 39, 45, 64, 72, 88, 1,94 on ajoute le formiate de sodium 2,74 96 10,80 5,01 112 12,53 5,82 120 15,41 7,43 135 19,59 9,08 144 21,59 160 23,46 Formiate de sodium 0,1 M pH = 6,8 1,64 2,21 3,77 4,10 5,49 6,15 7,29 95 111 135 on ajoute le formiate de sodium 138 142 158 8,37 9,82 11,53
le formiate de sodium 138 142 158 8,37 9,82 11,53 12,57 13,33 15,82 14.5 23.5 39, 45, 64, 72, 88, 16, 24, 40, 48, 64, 5 Formiate de sodium 0,01 M pH = 6,7 1,72 95 6,85 2,30 111 7,86 3,27 135 9,53 3,65 on ajoute le formiate de sodium 4,79 138 10,46 5,20 142 11,80 6,15 158 14,83 Formiate de sodium 0,001 M pH = 6,7 2,21 on ajoute le formiate de sodium 3,11 96 9,20 4,87 112 11,55 5,97 120 12,61 6,32 135 13,81 8,42 144 14,67 160 15,70 La figure 3 représente les courbes ainsi obtenues. Les