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maximum qu’ils ne dépassent plus. Ce maximum est spécifique : en CO2, 10 cc. 7 pour la Fève, 5,12 pour le Maïs, 5,11 pour l’Arachide. Une imbibition plus forte par l’eau amène alors une diminution des échanges. Le maximum se produit pour une teneur en eau caractéristique de la graine considérée. (Fèves 60 p. 100, Maïs 36 p. 100, Arachide 29 p. 100) On serait donc fondé à penser que « la graine » augmente ses échanges suivant son imbibition jusqu’à une certaine imbibition au-delà de laquelle elle les diminue. En fait, on est là le jouet d’une espèce d’illusion.
En fait, on est là le jouet d’une espèce d’illusion. La graine, qu’on a vue sèche et qu’on examine humide, est bien toujours la même graine ; mais ce n’est plus le même organisme : la proportion des constituants y a changé. TENEUR EN EAU IMBIBITION NATURE DES GRAINES des graines (Eau pour 100 grammes secs) 13 14.9 17 21 22 27.9 24 31.5 1 27 37 32 47.1 48 Fèves 33 49.2 34 51.5 1 37 58.7 1 41 69.5 54 117.5 60 150 64 177 13 14.9 17 21 1 25 33.3 Maïs 30 42.8 34 51.5 1
21 1 25 33.3 Maïs 30 42.8 34 51.5 1 36 56.2 38 61.2 5 5.25 10 11.1 1 16 19 Arachides 19 29 23.4 40.8 37 58.7 HYDRATATION ET RESPIRATION DES GRAINES 417 b) Oxydations rapportées à la masse de matière sèche contenue dans la graine. — Si l’on se borne à considérer la partie sèche de la graine que l’on avait en main au début de l’expérience comme la seule masse réagissante, masse que l’eau vient simplement diluer, alors on constate — c’est ce qu’expriment les échanges rapportés à « 100 grammes secs » — que l’activité respiratoire
à « 100 grammes secs » — que l’activité respiratoire de cette masse sèche croît constamment avec la dilution. Tableau IV INTENSITÉ DES OXYDATIONS, PAR HEURE, EN FONCTION DES TENEURS EN EAU, RAPPORTÉE À 100 GRAMMES SEC. NATURE DE LA GRANE TENEUR EN EAU POUR 100 GR. SEC. CO2 DÉGAGÉ PAR HEURE 100 GR. SEC. (EN CM3) CO2 CONSOMMÉ PAR HEURE 100 GR. SEC. (EN CM-3) CO2 14.9 0 21 Traces — — 27.9 0.14 0.076 1.75 31.5 0.15 0.0907 1.58 37 0.952 1.055 0.91 47.1 1.8 2.2 0.86 Fèves 49.2 2.2 2.6 0.87 51.5 2.6 3. 0.87 1 58.7
49.2 2.2 2.6 0.87 51.5 2.6 3. 0.87 1 58.7 3.5 3.7 0.95 1 69.5 8.9 7.5 1.1 117.5 19 17 1.09 150 27 — — 177 33 2.6 1.23 15 0 1 20.5 0.2 0.076 1.3 33.3 1 0.95 1.05 Maïs 42.8 5.10 5.64 0.90 51.5 7.10 8 0.89 56.2 8 8.9 0.89 61.3 9.20 10.3 0.89 5.25 0 11.1 0.075 0.061 1.25 11.3 0.093 0.076 1.19 Arachides... . 19 1.26 1.44 0.87 23.4 3.17 3.52 0.90 40.8 5.11 5.64 0.90 58.7 1 7.73 6.40 1.2 418 RAYMOND JACQUOT ET ANDRÉ MAYER Cet accroissement est très inégal, suivant l’espèce
ET ANDRÉ MAYER Cet accroissement est très inégal, suivant l’espèce de graines considérée et caractéristique de celle-ci. Non seulement, nous l’avons vu, il ne débute pas pour une même teneur en eau, mais l’augmentation n’est pas, pour toutes les graines, égale pour une égale imbibition ; et comme l’hydratation maximale pour les diverses graines n’est pas la même, l’accroissement des oxydations se poursuit plus ou moins, suivant les cas. En tous cas, si on considère la partie sèche de la graine comme la seule partie active, on ne constate pas de limite à son activité quand on l’hydrate. c) Oxydations
de limite à son activité quand on l’hydrate. c) Oxydations rapportées à la masse d'eau contenue dans la graine. — Nous avons vu cependant que l’activité des graines qu’on hydrate passe par un maximum, pour une hydratation caractéristique. C’est donc que si on rapporte les oxydations 100 grammes d’eau contenue dans la graine, on ne trouvera pas un résultat superposable à celui qu’on trouvait en les rapportant à 100 grammes secs. Si on calcule ainsi, on obtient, en effet, les valeurs suivantes : Tableau V INTENSITÉ DES OXYDATIONS, PAR HEURE, DES GRAINES PRISÉS À VARIÉES TENEURS EN EAU, RAPPORTÉE À
DES GRAINES PRISÉS À VARIÉES TENEURS EN EAU, RAPPORTÉE À 100 GRAMMES D’EAU DONT LES GRAINES SONT COMPOSÉES. CO2 DÉGAGÉ CO2 CONSOMMÉ NATURE DE LA GRANE TENEUR EN EAU POUR 100 GR. SEC. EN UNE HEURE EN UNE HEURE 14.9 0 0 21 0 0 27.9 0.51 0.28 31.5 0.46 0.23 37 2.57 2.82 47.1 3.98 4.62 Fèves 49.2 51.5 4.40 5 5.05 5.74 58.7 6.34 6.67 69.5 11.87 10.79 117.5 16.38 14.80 150 17.88 177 15.89 12.92 5.25 0 0 1 11.1 0.89 0.68 1 19 6.81 6.58 Arachides 23.4 13.72 15.24 40.8 17.70 19.88 58.7 13.41 15.07 15
23.4 13.72 15.24 40.8 17.70 19.88 58.7 13.41 15.07 15 0 20.5 0.60 0.47 1 33.3 1.53 1.29 Maïs 42.8 7.27 8.35 14.82 51.5 13.34 56.2 16.95 18.82 61.3 15.20 12.66 On voit que les oxydations rapportées à 100 grammes d’eau contenue dans la graine augmentent progressivement avec la teneur en eau, mais inégalement vite, suivant les graines ; pour une teneur en eau caractéristique de l’espèce, elles atteignent un certain maximum et diminuent pour une teneur en eau plus grande. Ce maximum atteint est du même ordre de grandeur pour les trois espèces de graines considérées. En fait, tous
pour les trois espèces de graines considérées. En fait, tous ces modes de calculs sont arbitraires. On n'a pas le droit de rapporter les oxydations « au poids des graines », puisque la composition des graines a varié par l’hydratation même. On n'a pas le droit de les rapporter au poids d’eau contenue dans les graines, considérant le reste comme négligeable : ce serait absurde. On n'a pas plus le droit de les rapporter au poids sec, considérant l’eau comme un solvant inerte. Mais ces calculs peuvent servir à mettre en évidence les facteurs actifs et les facteurs limitants des
en évidence les facteurs actifs et les facteurs limitants des oxydations. III. — Hydratation et nature des oxydations des graines. — L’hydratation n’influe pas seulement sur l’intensité des oxydations cellulaires. Mayer et Plantefol ont vu que chez la Mousse elle influe aussi sur leur nature. En ce qui concerne les graines, nous avons l’indication d’un phénomène du même genre. En effet, si l’on examine le quotient respiratoire des graines étudiées, on voit, pour les trois espèces, qu’aux faibles imbibitions il est nettement supérieur à 1 ; que lorsque les oxydations augmentent, il se rapproche de l’unité et peut descendre au-dessous.
augmentent, il se rapproche de l’unité et peut descendre au-dessous. Aux fortes imbibitions, pour l’Arachide et la Fève, il devient égal ou supérieur à l’unité. On retrouve donc chez les graines des phénomènes analogues à ceux que présente la Mousse. En particulier, chez les graines comme chez les Mousses, les oxydations aux faibles imbibitions se font avec des quotients supérieurs à l’unité ; ce qui indiquerait que dans ce nouveau cas l’anhydrobiose s’accompagne d’anaerobiose. Comme il s’agit ici de graines susceptibles de germer et par conséquent d’être le siège de synthèses actives, on pourrait se demander si le cas est
synthèses actives, on pourrait se demander si le cas est comparable à celui des Mousses. En fait, les expériences sont d’une durée assez courte pour qu’aucune germination ne soit macroscopiquement observable. On peut d’ailleurs lever l’objection en enlevant les plantules et en observant les graines ainsi mutilées. Voici les résultats d’une expérience de ce genre faite sur la fève. TENEUR en eau en p. 100 IMBIBITION CO2 DÉGAGÉ par 100 gr. secs en une heure O2 CONSOMMÉ par 100 gr. secs en une heure CO2 OT 25 33.3 0.91 0.81 1.12 52 18.3 — — 54 117.5 17.9 19.2 0.95
1.12 52 18.3 — — 54 117.5 17.9 19.2 0.95 59 21.10 17.1 1.23 On voit que les valeurs trouvées sont tout à fait du même ordre que celles qu’on a observées sur les graines entières. IV. — Rendement hydrobiotique dans le cas des graines. — Mayer et Plantefol ont proposé de porter l’attention non sur l’« activité » des constituants cellulaires dans l’oxydation, mais sur leur « rendement » et d’examiner ce que tout accroissement de teneur de l’un d’eux apporte de surcroît d’activité à la cellule. Dans le cas de l’eau, ils ont défini un « rendement hydrobiotique
cas de l’eau, ils ont défini un « rendement hydrobiotique » qui mesure la variation des oxydations cellulaires quand, à une masse très grande de l’eau, constituant cellulaire, on ajoute 1 gramme d’eau. Nous avons établi la courbe du rendement hydrobiotique des graines que nous avons étudiées (tableau VI, graphique 4). Tableau VI Variations du rendement hydrobiotique en fonction des teneurs en eau pour les graines de Fève, Arachide et Maïs. Température : 23-24°. NATURE DE LA GRAINE TENEUR EN EAU EN PERCENT RENDEMENT pour 100 grammes sec CO2 dégagé en cc. par heure 14.9 21 — 27.9 x —
en cc. par heure 14.9 21 — 27.9 x — 1 31.5 0.04 i 37 0.13 47.1 0.08 Fèves 49.2 0.20 1 51.5 0.20 58.7 0.13 69.5 0.49 117.5 0.21 150 0.23 177 0.22 5.25 — 11.1 0.014 Arachides 19 23.4 0.15 0.48 40.8 0.11 1 58.7 0.14 15 — 20.5 0.035 33.3 0.063 Maïs 42.8 0.44 51.5 0.22 56.2 0.20 61.5 0.22 Les courbes sont établies en prenant pour test des oxydations le CO2 dégagé par heure. On voit que pour les trois espèces de graines elles ont même allure. On constate dans les trois cas que le rendement
allure. On constate dans les trois cas que le rendement s’accroît progressivement jusqu’à atteindre un maximum, puis diminue en gardant toujours une valeur positive. Le maximum, pour les trois espèces, correspond à l’imbibition qui provoque la plus forte augmentation des oxydations. Cette imbibition n’est pas la même pour les trois espèces : 69,5 pour la Fève, 42,8 pour le Maïs, 23,4 pour l’arachide. Par contre, pour les trois graines, à 23-24°, les valeurs du rendement hydrobiotique maximum sont du même ordre de grandeur : elles sont même très voisines l’une de l’autre. En effet, en cc de CO2 : Fève
de l’autre. En effet, en cc de CO2 : Fève : 0,49 ; Maïs, 0,44 ; Arachide, 0,48. CONCLUSIONS 1. La graine sèche, qu’on hydrate, passe de l’état de vie latente à l’état de vie manifestée, de l’« anhydrobiose » à l’« hydrobiose ». L’anhydrobiose des graines n’est pas absolue. Les oxydations ne deviennent mesurables que quand une certaine teneur en eau caractéristique de l’espèce est atteinte. L’hydrobiose ne débute pas brusquement : les oxydations augmentent progressivement quand augmente la teneur en eau. 2. En observant les oxydations des graines de Fève, Maïs, Arachide, quand varie leur teneur en eau,
de Fève, Maïs, Arachide, quand varie leur teneur en eau, on constate : 1° En rapportant les oxydations à 100 grammes de graines, que celles-ci augmentent progressivement avec une vitesse et jusqu’à un certain maximum caractéristiques de l’espèce, puis diminuent quand augmente encore la teneur en eau. 2° En rapportant les oxydations à 100 grammes de matière sèche à laquelle on ajoute des quantités croissantes d’eau, que celles-ci augmentent progressivement pour les trois espèces de graines, l’accroissement n’étant limité que par l’hydratation. 3° Si l’on considère l’eau d’hydratation comme constituant cellulaire et qu’on rapporte les oxydations à la masse d’eau
cellulaire et qu’on rapporte les oxydations à la masse d’eau contenue dans la graine, on voit que celles-ci augmentent progressivement puis atteignent un maximum qui se trouve être du même ordre de grandeur pour les trois espèces de graines. 4° Le rendement hydrobiotique pour les trois graines augmente jusqu’à atteindre un certain maximum, puis diminue en restant toujours positif. Ce maximum est presque le même pour les trois espèces de graines et se rapproche tout à fait de celui qui a été observé pour les Mousses. 5° Les cas des graines étudiées montrent que chez elles l’intensité des oxydations ne
graines étudiées montrent que chez elles l’intensité des oxydations ne dépend pas seulement de la composition, mais des proportions relatives des constituants cellulaires : par exemple, l’eau qui est un facteur d’accroissement des oxydations peut être aussi un facteur qui les limite. RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES Voir, sur la perméabilité des graines à l’eau : Becquerel (Paul). — Annales des Sci. nat. bot., t. V, p. 193, 1907. Brown (A. J.). — On the existence of a Semi permeable Membrane enclosing the seeds of some of the Graminæ. Ann. of Bot. 21, 79-87, 1907. — The selective permeability of the Governing of
79-87, 1907. — The selective permeability of the Governing of the Seeds of Hordeum vulgare. Proc. Roy. Soc. London B 81, 82-93, 1909. Collins (E. T.). — The structure of the integumentary System of the Barley Grain in relation to localized water absorption and semi permeability. Ann. of Bot. 32, 381-414, 1918. Denny (F. E.). — Permeability of certain plant membranes to Water, Bot. Gaz. 63, 373-397, 1917. Gassner (G.). — Beiträge zur Frage der Lichtkeimung. Zeitschr. f. Bot. 7, 609-661, 1915. Gola (G.). — Ricerche sulla biologia e sulla fisiologia dei semi a tegumento impermeabile. Mem. Acad. R. Sci
fisiologia dei semi a tegumento impermeabile. Mem. Acad. R. Sci Torino, II, 55, 237-270, 1908. Rippel (A.). — Semi permeable Zellmembranen bei Pflanzen. Ber. deut. bot. Ges. 36, 202-218, 1918. Schröder (H.). — Über die selektiv-permeable Hülle des Weizenklees. Flora N. F. 2, 186-208, 1911. Shull (C. A.). — Semipermeability of seed coats. Bot. Gaz. 56. 169-199, 1913. — Temperature and Rate of Moisture Intake in seeds. Bot. Gaz. 69, 361-390, 1920. Tjères (K.). — Keimproven met suikerbietenzaad. Diss Amsterdam, 1912. Contribution à l’étude de la respiration en fonction de l’hydratation Echanges respiratoires dans les racines tubérisées de Brassica Napus
l’hydratation Echanges respiratoires dans les racines tubérisées de Brassica Napus L. par M. et Ray. BOUILLENNE-WALRAND ( Travail du Laboratoire d’Histoire naturelle des Corps organisés. Collège de France.) INTRODUCTION L’étude des rapports entre la constitution physico-chimique des cellules et les oxydations qu’elles présentent n’en est encore qu’à ses débuts. En particulier, nous ne savons pas comment varient ces oxydations, lorsque varie l’un des constituants permanents de la cellule. Pour un constituant fondamental, l’eau, une étude de ce genre a été tentée par A. Mayer et L. Plantefol. Ces auteurs opéraient sur des mousses reviviscentes. Ils ont ainsi montré comment les
sur des mousses reviviscentes. Ils ont ainsi montré comment les oxydations dépendent de l’imbibition. Le phénomène demande à être confirmé sur des organismes non reviviscents, appartenant à des plantes supérieures. Jacquot et A. Mayer (1925) ont abordé le problème chez les graines de fève, maïs, arachide. Les auteurs, dans ces cas, travaillaient sur des graines sèches progressivement imbibées. (1) Hydratation et Respiration chez les Mousses. A. Mayer et L. Plantefol, Annales de Physiologie, 1925. Paris, Doin, pp. 238-280 et pp. 361-393. ( 2 ) Jacquot et A. Mayer C. R. Acad, des Sciences de Paris, 1925, et ces Annales, ce
Acad, des Sciences de Paris, 1925, et ces Annales, ce numéro, p. 408. Nous avons entrepris une étude parallèle sur des organes de réserve qui, à l’état naturel, ont de très fortes teneurs en eau et dont nous avons suivi les oxydations au cours d’expériences de dessiccation progressive. Nos recherches tentent donc d’établir comment se comportent les échanges respiratoires, — leur intensité, leur nature, — lorsqu’on fait varier expérimentalement, par dessiccation, la teneur en eau d’un organe végétatif de plante supérieure. TECHNIQUE I. — Matériel. Nous avons utilisé les racines tubérisées de Brassica Napus L. Les variétés les plus répandues
tubérisées de Brassica Napus L. Les variétés les plus répandues sur le marché de Paris sont Brassica Napus, variétés demi-long ou long blanc de Meaux, de Freneuse (*), etc. Semées pendant presque toute l’année, ces variétés se récoltent deux mois environ après le semis. Elles nous ont fourni d’une manière continue un matériel frais et abondant. Les navets sont livrés en bottes d’une douzaine d’individus provenant du même terrain et de la même récolte ; on verra plus loin l’utilité de cette remarque. Les racines, très soigneusement nettoyées avant de parvenir sur le marché, peuvent être mises en expérience sans
parvenir sur le marché, peuvent être mises en expérience sans lavage préalable. Pour réaliser des conditions expérimentales comparables, nous avons employé les racines le jour même de l’achat : tiges et feuilles sont enlevées, le tubercule débarrassé des racines adventives, ses deux extrémités tranchées sur une hauteur d’un centimètre environ ; de cette manière, on supprime toute partie verte pouvant subsister du côté de la tige et aussi la pointe de la racine, ordinairement amincie et ligneuse. Fig. 1. P) Vilmorin-Andrieux. Catalogue général, 1926. II — Dessiccation. La déshydratation des racines, en vue d’expériences ultérieures, doit être effectuée dans des
racines, en vue d’expériences ultérieures, doit être effectuée dans des conditions qui n’altèrent pas la vitalité des tissus et ne troublent pas l’allure du phénomène étudié. Quand on opère sur des organes volumineux, comme les navets dont nous avons disposé, qui pèsent de 20 à 90 grammes, on ne peut songer à leur enlever très rapidement des quantités d’eau progressivement croissantes. La dessiccation par le vide ou par la chaleur à plus de 30° C., peut modifier le processus des échanges respiratoires. Dans l’exsiccateur à acide sulfurique, la perte d’eau est lente. Nous avons réussi à pousser plus rapidement la
est lente. Nous avons réussi à pousser plus rapidement la dessiccation en disposant, à l’intérieur d’un grand exsiccateur à acide sulfurique, un ventilateur mû par un petit moteur. Lorsque des lots importants de racines ont dû être mis en expérience en même temps, nous avons remplacé l’exsiccateur par une cage close d’environ un demi-mètre cube de volume, dans laquelle l’air, desséché par passage sur acide sulfurique, est violemment brassé au moyen d’un fort ventilateur. La vitesse de dessiccation est approximativement la même dans les deux appareils. La perte d’eau, rapide au début, devient de plus en plus lente (voir graphiques
au début, devient de plus en plus lente (voir graphiques 1 et 2). Un navet de 50 grammes pèse : Après 10 heures — 20 — 40 28 grammes. — 30 — 24 — 40 — 20 — 50 — 17 — 60 — 13 — 70 — 11 — 80 — 9 — 90 — 8 gr. 8 grammes, gr. 33 — 100 — 9 — 110 — 8 Poids sec (obtenu à l’étuve à 110°) : 2.999 gr. Ces chiffres ne sont valables que pour des racines entières, préparées comme nous l’avons indiqué (p. 427). Lorsque les tissus
préparées comme nous l’avons indiqué (p. 427). Lorsque les tissus sont fortement blessés ou expérimentalement découpés (v. II e partie), la dessiccation devient extrêmement rapide : un navet de 50 grammes, sectionné en disques de 1 centimètre d’épaisseur, après vingt heures de séjour dans la cage ventilée, pèse 10 grammes (v. graphique 1) ; et si l’on découpe à l’emporte-pièce, dans une racine, un cylindre de parenchyme interne, débarrassé des assises subéreuses, le même résultat est atteint en dix heures (v. graphique 1). Nous avons essayé la méthode de d’AnsonVAL et Bordas : aspiration de l’eau des tissus dans une
et Bordas : aspiration de l’eau des tissus dans une enceinte refroidie à l’air liquide, les racines étant placées dans une enceinte maintenue à la température ordinaire ; la dessiccation n’a pas été plus rapide. Nous avons donc utilisé les procédés très commodes de l’exsiccateur ventilé et de la cage à courant d’air sec. Les dessiccations ont été effectuées dans l’obscurité, à une température de 20 à 26° C. La déshydratation, bien que considérablement ralentie vers les faibles teneurs en eau, peut être poussée très loin. Ainsi, nos procédés permettent d’obtenir, après un temps relativement considérable, une perte d’eau presque
d’obtenir, après un temps relativement considérable, une perte d’eau presque complète. Nous donnons les chiffres suivants pour une de nos plus petites racines. 430 M. ET RAY. BOUILLENNE-WALRAND Un navet de 15 gr. 54 pèse : ! Après 8 heures.. 10 gr. 96 l — 13 — 8 gr. 89 — 21 — 6 gr. 43 1 Total 39 — 4gr. 17 Perte d’eau 153 heures — 63 — 2 gr. 54 14 gr. 148 ! 105 — 1 gr. 23 ! — 153 — 1 gr. 092 — 173 — 1 gr. 090 Poids sec : 0 gr. 9075.
— 1 gr. 090 Poids sec : 0 gr. 9075. Eau retenue : 0 gr. 0825. Il existe cependant une certaine quantité d’eau que l’acide sulfurique ne peut enlever aux racines et qui doit faire partie de la constitution même du protoplasme. Cette dernière portion d’eau est éliminée par passage à l’étuve à 100-110° C. et il reste un poids de matière sèche sensiblement constant. Cette eau, en quelque sorte irréductible pour l’acide sulfurique, est d’environ 18 à 20 grammes pour 100 grammes de substance sèche. A la fin de chaque expérience, nous avons déterminé de cette manière le poids
chaque expérience, nous avons déterminé de cette manière le poids sec des racines. Pour choisir, parmi les organes de réserve, un matériel convenable, nous avons réalisé aussi des expériences de dessiccation sur Daucus Carota, Allium cepa, Raphanus sativus. Daucus Carota et Allium se dessèchent très lentement. Raphanus, au contraire, très léger et pourvu de lacunes aérifères, se dessèche trop rapidement pour permettre un jeu de teneurs en eau nombreuses et distinctes. Après 8 heures de dessiccation. POIDS FRAIS POIDS OBTENUS Brassica Napus 22 grs. 16 grs. 8 D. Carota 23 grs. 8 22 grs. 5 Allium 23 grs. 22 grs.
grs. 8 22 grs. 5 Allium 23 grs. 22 grs. 2 Raphanus 6 grs. 2 grs. Nous avons signalé précédemment (pp. 428 et 429) que la dessiccation d’une racine entière, d’abord rapide, se ralentit considérablement (graphique 1). Cette variation de vitesse, traduite en pertes d’eau successives dans le diagramme suivant, montre nettement deux périodes de dessiccation (graphique 2). Ces deux périodes ont une raison anatomique. Quand on fait une coupe transversale dans une racine fraîche, on distingue plusieurs catégories de tissus, de l’extérieur vers l’intérieur : Graphique 2 Diagramme des pertes d’eau successives d’une racine de 50 gr. montrant deux
pertes d’eau successives d’une racine de 50 gr. montrant deux périodes dans la vitesse de dessiccation. 1° Quelques assises de cellules à membrane épaisse, sclérifiées et, par places, un suber typique. 2° Un liber peu considérable à cellules relativement petites; 3° Un cambium annulaire; 4° Les tissus ligneux secondaires occupent la plus grande partie de la racine et constituent le tissu de réserve. Le parenchyme ligneux, très développé, est formé en majeure partie de grandes cellules turgescentes à membrane mince, avec méats intercellulaires. On distingue, parmi ce parenchyme ligneux hypertrophié, les vaisseaux du bois secondaire, disposés en lignes radiales; chaque
les vaisseaux du bois secondaire, disposés en lignes radiales; chaque groupe de vaisseaux est entouré d’un massif de cellules parenchymateuses, petites (v. fig. 3). La racine de Brassica Napus est donc tubérisée par l’hypertrophie d’un parenchyme ligneux d’origine secondaire, participant du fonctionnement du cambium et formé de grandes cellules aquifères. Les vaisseaux du bois y sont peu abondants, disposés en lignes rayonnantes et environnés de plus petites cellules. La première période de dessiccation porte à peu près exclusivement sur les grandes cellules du parenchyme ligneux. Fig. 2. — Dessin d’ensemble d’une coupe transversale dans une racine tubérisée de navet. Le
d’une coupe transversale dans une racine tubérisée de navet. Le trait externe correspond aux assises de cellules à membranes épaisses, la partie grisée, au liber, le cercle interne montre le parenchyme ligneux et les deux catégories de cellules qui le constituent. Les zones de ce parenchyme se marquent alors nettement, même à l’œil nu, entre les lignes de vaisseaux ; sur une coupe transversale elles apparaissent en blanc neige ; au microscope on voit que ces cellules sont plissées, aplaties, chiffonnées; elles ont perdu leur eau. Les petites cellules entourant les vaisseaux ne semblent pas modifiées (v. fig. 3 et
les vaisseaux ne semblent pas modifiées (v. fig. 3 et 4). Dans la deuxième phase, plus lente, de la dessiccation, ces dernières cellules, de même que celles du liber et celles de la zone génératrice cambiale se dessèchent à leur tour. CONTRIBUTION A L’ÉTUDE DE LA RESPIRATION 433 ?er. JÜdes •ès ir. Fig. 3. — Coupe transversale du parenchyme ligneux à l’état frais. On voit les vaisseaux du bois secondaire disposés en lignes radiales, entourés de petites cellules parenchymateuses, auxquelles s’opposent les grandes cellules aquifères. Cette différence dans la facilité de dessiccation des divers tissus se remarque déjà lorsqu’on laisse