jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
des sels : à partir d’une certaine concentration, ils augmentent les oxydations jusqu’à un certain maximum. Les concentrations plus élevées abaissent les échanges. Les concentrations actives des acides sont beaucoup plus faibles que les concentrations actives des sels, et si l’on réfléchit que nous n’avons laissé les acides agir que deux heures tandis que les sels agissaient seize heures sur la cellule, on doit en déduire que, à concentration égale, les acides sont beaucoup plus actifs que leurs sels ; l’ion H jouirait d’une propriété tout à fait particulière. Les acides organiques, dont on sait d’autre part qu’ils sont bien
acides organiques, dont on sait d’autre part qu’ils sont bien plus pénétrants, ont un autre mode d’action que les acides minéraux. L’acide picrique, en particulier, paraît avoir un maximum d’action pour des concentrations comprises dans une zone très étroite. Lorsqu’on fait agir les acides à très faibles concentrations, on constate souvent un phénomène qui se traduit par une petite diminution des échanges. Une concentration plus forte ne produit plus le phénomène. Nous avons constaté le fait un nombre de fois suffisant pour croire qu’il est réel, mais comme nous savons que les différents lots de Mousses présentent des variations de
que les différents lots de Mousses présentent des variations de leurs échanges qui sont de l’ordre de grandeur de la modification dont nous parlons, nous pensons que le phénomène devra être étudié de plus près et sur d’autres objets. Nous devons ajouter que nous avons constaté le même phénomène non seulement par la méthode eudiométrique, mais encore, et très régulièrement, par la méthode manométrique. Le fait mérite d’être confirmé, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours
qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des
les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude
nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. Les résultats que nous venons de rapporter et qui sont basés sur l’étude du CO2 produit au cours des échanges respiratoires méritent d’être confirmés, les modifications d’acidité qui se produisent étant de l’ordre des variations intra-cellulaires possibles. 50 25 20 0,90 0,90 0,72 0,89 0,90 0,70 1 0,76 0,85 0,84 0,70 0,81 1,07 1,04 0,91 1 0,72 0,88 1 0,89 0,92 0,94 0,96 1,06 0,93 0,91
0,72 0,88 1 0,89 0,92 0,94 0,96 1,06 0,93 0,91 0,97 0,78 1,06 0,96 0,91 0,83 0,97 0,89 1,04 0,74 1,15 1,11 0,96 0,89 0,83 1,01 0,77 0,86 1,00 0,86 0,78 0,82 0,83 0,91 0,99 0,90 0,90 0,82 0,94 0,87 0,97 0,85 0,93 0,96 0,84 1,05 0,97 0,79 0,82 0,91 0,97 0,76 0,97 0,88 0,95 0,89 0,80 0,81 0,90 0,72 0,76 0,89 0,84 0,96 0,76 0,86 0,95 0,87 0,97 0,99 0,92 0,90 0,87 0,88 0,79 0,97 0,89 0,79 1 0,93 0,96 0,95 1,01 0,90 0,90 0,97 0,77 0,87 0,82 0,76 0,73 0,96 0,70 0,77 0,87 0,77 0,91 0,96 1,2 0,8
0,73 0,96 0,70 0,77 0,87 0,77 0,91 0,96 1,2 0,8 1,05 1,05 1,7 0,95 0,34 0,37 1 0,91 1 0,97 1 1,03 1 0,99 1 1,05 0,99 0,82 1,04 0,91 1,05 0,96 0,98 1,15 0,92 1,42 1,05 0,38 0,95 0,82 0,98 1,77 0,98 3,08 prolongé l’observation de nos lots pendant une nouvelle période de quarante-huit ou de soixante-douze heures après la première période que nous venons d’étudier. Les résultats figurent dans les tableaux III et IV : Un certain nombre de déterminations ont été faites deux fois de suite après l’expérience témoin et montrent la durée de l’action exercée par
l’expérience témoin et montrent la durée de l’action exercée par l’électrolyte. On voit qu’en ce qui concerne les sels, d’une façon générale, l’action constatée pendant les quarante-huit heures de la première période se prolonge encore pendant les périodes suivantes; lorsque l’intensité des échanges a été augmentée, elle demeure très élevée. En ce qui concerne l’action des acides, on constate le même phénomène ; mais, de plus, l’action des acides se traduit par un phénomène qui n’apparaît pas nettement quand ce sont les sels dont on étudie l’action. Quand on a utilisé une concentration d’un acide inorganique assez forte pour diminuer
utilisé une concentration d’un acide inorganique assez forte pour diminuer pendant quarante-huit heures l’intensité des échanges, dans la période suivante on constate que ceux-ci se relèvent et s’élèvent parfois au-dessus des échanges des lots témoins. De fortes concentrations d’acide diminuent donc bien d’abord les échanges, mais temporairement, et pour les augmenter ensuite. Ces phénomènes ne se retrouvent pas lorsqu’on fait agir à forte dose un acide organique, comme l’acide acétique qui paraît diminuer définitivement les échanges. CONCLUSIONS L’action temporaire des électrolytes sur la Mousse (Hypnum triquetrum L.) produit, pendant les périodes qui suivent, une modification des échanges respiratoires de celle-ci.
périodes qui suivent, une modification des échanges respiratoires de celle-ci. Pour ce qui est des sels, ce n’est qu’à partir d’une certaine concentration, différente suivant la nature du sel, que se marque l’action. Pour une concentration suffisante, les échanges sont augmentés et leur intensité peut être doublée. Pour une concentration plus forte, l’intensité diminue. L’action des acides est du même ordre que celle de leurs sels. Mais ils agissent à des concentrations beaucoup plus faibles, même lorsque le temps pendant lequel on les met en contact avec la Mousse est déjà beaucoup plus court. L’action que nous venons d’indiquer est
déjà beaucoup plus court. L’action que nous venons d’indiquer est l’action générale. Mais il existe des particularités pour la réaction à chaque corps étudié. L’intensité des oxydations n’est pas seule influencée par la présence d’électrolytes. Leur nature, elle aussi, peut être modifiée. Le Q. R. varie, il atteint l’unité lorsque l’intensité des oxydations est maxima. L’action exercée par les électrolytes sur les échanges peut être assez durable et se poursuivre, parfois en s’accentuant, pendant plusieurs jours. Recherches sur la déshydratation de la grenouille et son retentissement sur les échanges respiratoires par Naohiko IIZUKA (Travail du Laboratoire d’Histoire naturelle des Corps
par Naohiko IIZUKA (Travail du Laboratoire d’Histoire naturelle des Corps organisés Collège de France) L’intensité des échanges respiratoires des Poïkilothermes est variable. Elle l’est surtout chez des animaux qui peuvent prendre à certaines périodes de l’année un type de fonctionnement physiologique ralenti. C’est le cas de la grenouille. D’autre part, la composition des tissus de ces animaux est beaucoup moins fixe que celle des Homéothermes, en particulier la teneur en eau de leur organisme entier, de leurs différents tissus, peut présenter des variations très considérables. Les variations de teneur en eau qu’on constate affectent-elles la physiologie profonde des tissus, comme
eau qu’on constate affectent-elles la physiologie profonde des tissus, comme elles le font chez les animaux réviviscents ? Une soustraction d’eau compatible avec la vie modifie-t-elle l’intensité des combustions ou leur nature ? Peut-on par soustraction d’eau amener l’animal soit à vivre d’une vie ralentie, soit à changer son fonctionnement physiologique ? C’est la question que nous avons essayé de résoudre dans ce travail. Technique. — Mesure des échanges respiratoires. — Les animaux sont placés dans des cloches de volume exactement jaugé. Ce sont des cloches d’exsiccateurs avec tubulures à robinet, retournées, fermées par une plaque de verre rodée, percée
robinet, retournées, fermées par une plaque de verre rodée, percée d’un trou portant un bouchon avec robinet. Dans l’enceinte, l’animal est posé sur une plaque de verre reposant sur un trépied de verre. L’appareil est rempli d’air atmosphérique. Le robinet supérieur est fermé quand l’équilibre de température est réalisé avec le milieu (température et pression connues). A la fin de l’expérience, on détermine au moyen d’un manomètre à eau la différence de pression entre l’enceinte et l’atmosphère, température et pression atmosphérique étant connues. Le prélèvement de gaz pour analyse est fait en déplaçant par du mercure arrivant par le fond
fait en déplaçant par du mercure arrivant par le fond de la cloche, une partie de l’atmosphère de celle-ci, qu’on chasse directement après rinçage des espaces nuisibles, dans le mesureur de l’appareil d’analyse. Nous mesurons donc la respiration totale de la grenouille, à la fois pulmonaire et cutanée. L’analyse des gaz est faite au moyen de l’appareil de Laulanié-Plantefol. Calcul des expériences. — Tous les gaz sont supposés saturés de vapeur d’eau. La mesure est ensuite rapportée à 0°760 et gaz secs. A la fin de l’expérience, les grenouilles mortes ou tuées sont desséchées pendant vingt-quatre heures à l’étuve à
ou tuées sont desséchées pendant vingt-quatre heures à l’étuve à 110°. Le calcul des échanges respiratoires est rapporté au gramme de matière sèche. I. — LES ÉCHANGES RESPIRATOIRES CHEZ LA GRENOUILLE NORMALE A. — Variations saisonnières des échanges. — Il est bien connu que la grenouille présente des variations saisonnières de ses fonctions physiologiques. Les variations des échanges ont été étudiées notamment par Krogh, Athanasiu. Récemment, Hill, Meyerhof ont insisté sur la différence de comportement des muscles striés pendant l’été et pendant l’hiver. Il y a lieu de remarquer d’ailleurs que, suivant le climat, le lieu d’origine et le mode
que, suivant le climat, le lieu d’origine et le mode de conservation des grenouilles, les différences entre l’habitus d’été et celui d’hiver peuvent être plus ou moins grandes. Les grenouilles que nous avons utilisées, en majorité individus de Rana esculenta, n’ont jamais présenté, même l’hiver, un engourdissement absolu. Nous avons fait un certain nombre de déterminations sur des grenouilles normales maintenues à température à peu près constante, à diverses époques de l’année. Tableau I Numéro de la grenouille Époque Température Co2 dégagé par gr. sec heure Quotient respiratoire I. 12 Septembre 14 8° 0,040 0,96 — 16 8° 0,035 0,96
Septembre 14 8° 0,040 0,96 — 16 8° 0,035 0,96 — 18 8° 0,043 0,94 — 20 10° 0,037 0,76 — 22 7°5 0,031 0,77 — 24 8° 0,031 0,84 — 26 8° 0,029 0,78 — 28 70 0,029 0,92 — 30 70 0,027 0,93 Octobre 2 70 0,028 1 — 4 8° 0,028 1 — 6 8° 0,030 0,92 I. 7 Septembre 14 8° 0,042 0,72 — 16 8° 0,044 0,72 I. 8 — 20 10° 0,047 0,52 — 22 7°5 0,045 0,55 I. 9 — 28 70 0,034 0,72 30 70 0,032 0,74 I. 10 Octobre 2 70
0,72 30 70 0,032 0,74 I. 10 Octobre 2 70 0,040 0,92 — 4 8° 0,034 0,90 I. 11 Octobre 8 8° 0,033 0,76 — 10 8° 0,034 0,78 I. 26 Novembre 24 6° 0,043 0,51 — 25 6° 0,043 0,52 I. 27 — 24 6° 0,041 0,50 25 6° 0,040 0,50 I. 28 Décembre 1 6° 0,044 0,52 — 2 6° 0,047 0,54 II. 9 Janvier 28 6° 0,036 0,47 — 29 6° 0,052 0,60 30 6° 0,044 0,56 Technique. — Les grenouilles ont été examinées dans les conditions suivantes. Elles étaient à jeun depuis au moins quinze jours
suivantes. Elles étaient à jeun depuis au moins quinze jours et conservées dans une grenouillère constamment irriguée par de l’eau courante. Au moment de l’expérience, on isolait l’individu à étudier qu’on plaçait sous une cloche. On a fait deux types d’expériences. Dans certains cas où la température extérieure était basse, les cloches ont été laissées à côté de la grenouillère, c’est-à-dire éclairées par le jour. Dans d’autres cas (I. 26, 27, 28 ; II. 9) les cloches contenant les grenouilles étaient placées dans une glacière à l’obscurité. Ces résultats ne sont pas en accord avec ceux obtenus par Athanasiu. Cet
sont pas en accord avec ceux obtenus par Athanasiu. Cet auteur a observé sur des lots de grenouilles examinés dans un appareil de Régnault et Reiset des quotients respiratoires plus grands que l’unité l’hiver, et ainsi toujours plus élevés que l’été (0,80 environ). Cela tient sans doute à ce que nos expériences ne sont pas de même type. Athanasiu, examinait l’hiver des grenouilles prises au dehors et placées d’abord dans un aquarium au laboratoire, puis en expérience, à des températures entre 9 et 16°. Nous nous sommes attachés au contraire à modifier le moins possible la température à laquelle se
à modifier le moins possible la température à laquelle se trouvaient naturellement les animaux. De plus, dans un appareil de Régnault et Reiset, les animaux étaient peut-être soumis à un certain degré de dessiccation. D’autre part, nos expériences ne peuvent pas être rapprochées de celles de Krogh qui ont été faites à 25-30°. B. — Influence de la température sur les échanges respiratoires. — 1° Intensité. — On sait que l’élévation de température a pour effet d’augmenter les échanges respiratoires de la grenouille. Nous avons naturellement vérifié ce phénomène classique. Tableau II Numéro de la grenouille CO2 dégagé par gr.
Tableau II Numéro de la grenouille CO2 dégagé par gr. sec heure Quotient respiratoire I. 13 1 Octobre 12° 0,105 9 7 0,85 2 — 2905 0,497 0,87 I. 15 5 16° 0,246 1,6 0,75 6 — 30° 0,550 0,91 I. 17 7 14° 0,236 1,65 0,75 8 — 30° 0,624 0,92 I. 20 19 14° 0,140 0,80 20 — 30° 0,909 0,90 I. 21 21 14° 0,096 3,4 0,68 22 — 30° 0,527 0,74 Les Q10 ainsi obtenus n’ont évidemment pas de valeur physico-chimique. En effet, à chaud, les grenouilles font plus de mouvements qu’à froid. Une étude de
grenouilles font plus de mouvements qu’à froid. Une étude de l’influence de la température sur les oxydations ne pourrait être faite qu’en immobilisant l’animal. L’augmentation qu’on obtient ainsi expérimentalement se trouve réalisée dans la nature. Deux grenouilles laissées libres au laboratoire en octobre à 12-17° émettent du CO2 à la vitesse de 0,108, 0,139 cc. de CO2 par gr. sec heure. Trois grenouilles laissées à 25° en juillet au laboratoire débitent 0,40, 0,42 et 0,53 cc. de CO2 par gr. sec heure. C. — Influence de l'échauffement sur les échanges. — Il est à remarquer que lorsqu’on transporte brusquement une
— Il est à remarquer que lorsqu’on transporte brusquement une grenouille d’un milieu froid à un milieu de température plus élevée, on assiste, en général, au phénomène suivant : Dans les heures qui suivent le passage à température élevée, l’intensité des échanges s’accroît considérablement. Elle s’abaisse ensuite les jours suivants pour prendre un état de régime. L’échauffement a donc pour effet de produire une exagération temporaire des échanges. Voici deux exemples de ce fait. Tableau III Numéro de la grenouille Date Température CO2 dégagé par gr. sec heure Quotient respiratoire I. 20 19 Octobre 14° 0,140 0,80 20 30° 0,909
I. 20 19 Octobre 14° 0,140 0,80 20 30° 0,909 1,4 0,90 21 — 30° 0,575 0,92 22 30° 0,577 0,92 23 30° 0,552 2,0 0,90 24 30° 0,542 1 0,93 25 30° 0,592 0,97 26 30° 0,583 0,77 I. 21 21 — 14° 0,096 0,68 22 30° 0,527 0,73 23 30° 0,438 2,8 0,75 24 30° 0,399 0,76 25 30° 0,480 0,78 26 30° 0,485 0,77 D. — Variations du quotient respiratoire. — 1° Influence saisonnière. — Lorsqu’on examine des grenouilles l’hiver et alors qu’elles sont laissées au jeûne et à froid, qu’elles sont immobiles, on trouve le plus
et à froid, qu’elles sont immobiles, on trouve le plus souvent des quotients respiratoires très bas. Par exemple, les grenouilles I. 26, I. 27, I. 28, II. 9 du tableau I, examinées en novembre, décembre et janvier présentent des quotients variant entre 0,47 et 0,56. Nous avons observé en janvier et en février les quotients suivants : Grenouille Température Quotient respiratoire II. 2 Janvier 5 à 6° 0,35 II. 4 — 5-6° 0,38 II. 8 » 0,43 — 0,48 II. 12 Février 5-6° 0,46 II. 13 — » 0,53 Au contraire, les grenouilles examinées l’été et s’agitant présentent des quotients
contraire, les grenouilles examinées l’été et s’agitant présentent des quotients qui varient entre 0,75 et 1. 2° Influence de la température. — D’une façon générale, le quotient s’élève quand on échauffe la grenouille ou quand on l’oblige à se mouvoir. Le fait est vrai aussi bien pour les grenouilles d’hiver que pour les grenouilles d’été. Tableau IV Date Numéro de la grenouille Température moyenne Imbibition Septembre I. 12 environ 470 — I. 7 8° 489 — I. 8 525 — I. 9 473 — Octobre I. 20 environ 440 — I. 21 6° 399 — I. 23 environ 370 —
I. 21 6° 399 — I. 23 environ 370 — I. 24 6° 411 — I. 25 360 — I. 26 387 — I. 27 377 — I. 28 396 — Décembre I. 29 environ 352 — 30 5° 358 — 31 358 — 32 382 — 33 386 — Janvier II. 4 environ 5° 333 — Février 6 317 — 8 342 — 9 496 — II. 13 320 — Juin II. 25 13 à 14° 412 — II. 26 » 382 — 27 » 406 — 28 » 378 — 29 » 359 — Juillet I. 6 26°
378 — 29 » 359 — Juillet I. 6 26° 416 — II. 30 22° 360 — II. 31 » 352 — RECHERCHES SUR LA DÉSHYDRATATION Grenouille Température Quotient respiratoire II. 17 Mars 9° 0,46 et 0,56 1 heure à 26° 1,04 10 heures après 0,71 36 heures après 0,76 8 à 9° 0,46 et 0,67 II. 18 1 heure à 27° 1,45 trois jours après 0,76 On peut voir dans le tableau n° II un certain nombre d’exemples du même phénomène observé en octobre. II. — TENEUR EN EAU DE L’ORGANISME CHEZ LA GRENOUILLE A. — Variations spontanées de
DE L’ORGANISME CHEZ LA GRENOUILLE A. — Variations spontanées de la teneur en eau. — Nous avons examiné quelle est la teneur en eau de l’organisme entier chez la grenouille à diverses époques de l’année. Voici quelques résultats calculés en imbibition de l’organisme, c’est-à-dire en grammes d’eau pour 100 grammes secs. Les déterminations marquées d’un (*) correspondant à des teneurs en eau recalculées d’après un poids frais déterminé deux ou trois jours avant le poids sec. 1° La teneur en eau de l'organisme de grenouille est assez élevée. 2° Elle est variable. — Cette variation ne paraît pas être saisonnière.
est variable. — Cette variation ne paraît pas être saisonnière. Nous avons voulu voir si cette variation dépend de la température à laquelle est placé l’animal lorsqu’il continue à vivre dans l’eau. Voici trois séries d’examens sur des lots de grenouilles maintenues dans l’eau à 8°, 12° et 27°. (Expériences faites en décembre.) Température Imbibition 352 358 5° 382 386 359 12° 361 364 378 Température Imbibition 352 358 27° 399 435 B. — Variation expérimentale de la teneur en eau de l'organisme de la grenouille. — Nous avons cherché à faire varier expérimentalement la teneur en eau de l'organisme
à faire varier expérimentalement la teneur en eau de l'organisme de la grenouille et à déterminer la teneur en eau minima compatible avec la vie. Technique. — On peut avoir recours à la dessiccation spontanée de la grenouille, l’animal étant placé hors de l’eau. On peut encore augmenter la vitesse de dessiccation en plaçant la grenouille dans une enceinte fermée où l’on a disposé un récipient contenant de l’acide sulfurique ou de l’anhydride phosphorique. On peut avoir une évaporation rapide soit en plaçant la grenouille à l’air libre à haute température, soit mieux encore en la plaçant à la température
température, soit mieux encore en la plaçant à la température du laboratoire dans un courant d’air très vif. Enfin, on peut comparer les résultats obtenus avec ceux que donne un procédé tout différent d’extraction de l’eau de l’organisme : la grenouille est placée, la tête exceptée, dans une solution de sulfate de soude concentrée et abandonne de l’eau au milieu. C’est une méthode analogue à celle qui a été employée par Overton et par St J. Przylecki. Résultats expérimentaux. — Dans tous les cas, on observe que la déshydratation poussée au-delà d’une certaine limite amène la mort de l’animal. Il
au-delà d’une certaine limite amène la mort de l’animal. Il y a donc une teneur en eau minima compatible avec la vie. Nous avons essayé de déterminer cette teneur. Première série. — Grenouilles placées dans des exsiccateurs en présence d’acide sulfurique ou d’anhydride phosphorique. Il est naturellement très difficile de savoir quel est le poids frais de la grenouille peu de temps avant la mort. On a opéré par tâtonnements. Les grenouilles placées dans des exsiccateurs étaient pesées à intervalles réguliers. On a choisi comme poids humide celui qu’elles ont présenté à la dernière pesée, qui s’est nécessairement placée à
présenté à la dernière pesée, qui s’est nécessairement placée à des temps variables avant la mort. I. Dessiccation sur acide sulfurique. — Température : 6° Imbibitions observées : 210, 217, 213, 226. Température : 11 à 12°. Imbibitions observées : 220, 238, 243, 254. II. — Dessiccation sur anhydride phosphorique. — Température : 6°. Imbibitions observées : 220, 218. III. — Dessiccation sur chlorure de calcium. — Température : 14°. Imbibitions observées : 256, 257, 273, 255, 256. Deuxième série. — Dessiccation dans un courant d’air. La grenouille est attachée sur un cadre de bois ; elle est exposée successivement
sur un cadre de bois ; elle est exposée successivement sur les deux faces au courant d’air produit par un ventilateur. On la pèse à intervalles réguliers. La perte de poids est très rapide : par exemple, en une heure et demie d’exposition au courant d’air, une grenouille de 34,55 grammes abaisse son poids à 27,65 grammes. Cette perte correspond à 80 d’eau pour 100 secs, soit 25 p. 100 de son eau. Une autre en une heure quarante-cinq s’abaisse de 43 à 32,7. Cette perte correspond à 105 d’eau pour 100 secs, soit 31 p. 100 de l’eau qu’elle
pour 100 secs, soit 31 p. 100 de l’eau qu’elle contenait. Les imbibitions minima observées ont été pour 12°, 212 et 238 d’eau pour 100 secs. Troisième série. — Dessiccation dans une solution saline concentrée. La grenouille est attachée par les bras et plongée dans une solution de sulfate de sodium à saturation. La perte d’eau est d’abord très rapide, puis de plus en plus lente. Le temps de dessiccation ne doit pas dépasser un quart d’heure, sans quoi la grenouille meurt de suite. Les imbibitions minima observées ont été 266, 264. On voit qu’on n’atteint pas une valeur fixe
266, 264. On voit qu’on n’atteint pas une valeur fixe de la teneur en eau, mais que cependant les différences individuelles deviennent bien moins marquées en ce qui concerne la teneur en eau minima qu’en ce qui concerne la teneur en eau habituelle, observée chez des grenouilles laissées dans leur milieu. La teneur minima compatible avec la vie paraît être aux environs de 210 pour 100 secs. Cette dessiccation globale de la grenouille retentit sur différentes parties de l’organisme. Tableau V N° de la grenouille Observations Poids avant Perte d’eau en p. 100 du poids total Sang Imbibition Foie Patte
en p. 100 du poids total Sang Imbibition Foie Patte À la température du laboratoire Grenouilles témoins. Moyenne de 3 grenouilles 560 234 294 A 5 jours de dessiccation sur 50°II 39,15 17,2 356 192 222 B 7 — 56,20 23,7 185 204 C 8 — 44,50 29,1 206 170 169 D 9 37,90 20,5 304 211 221 E 10 — 52,80 25,4 281 182 206 A la température de 27°. F (Dessiccation sur acide sulfurique) 35 8 209 232 G 42 13,9 340 (?) 247 H — — 28 24,2 183 181 I 35 35,1 178 140 III. —