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A. WENNMALM, Acta Physiol. Scand., 86, 1972, p. 589. PHAM-HUU-CHANH et M. C. NICOT-CARTHERY, Die Naturwissenschaften, 60, 1973, p. 482. A. WENNMALM, PHAM-HUU-LHANH et M. JUNSTAD, Acta Physiol. Scand., VI, 1V/4, p. LU. PHAM-Huu-CHANH, Colloque de la D.G.R.S.T., Bordeaux, 7-8 décembre 1976. NIGEON-DUBREUIL, RABINOWICZ, T. RAHANDRANHA et A. R. RATSIMAMANGA, Thérapie, 9, 1954, p. 481. C. BOMSKOV et BAHNSEN, Arch. fur exper. path. Pharmak., 178, 1, 1935. J. B. LEE, in The Prostaglandins, L P. W. RAMWELL éd., Plenum Press, New York, London, 1973, p. 133. N. A. TERRAGNO, K. U. MALIK, A. NASJLETTI, D. A. TERRAGNO et J. C.
U. MALIK, A. NASJLETTI, D. A. TERRAGNO et J. C. MacGIFF, in Advances In Prostaglandin and Thromboxane Research, II, B. SAMUELSSON et R. PAOLETTI éd., Raven Press, New York, 1976, p. 561. J. B. LEE, in Advances in Prostaglandin and Thromboxane Research, II, B. SAMUELSSON et R. PAOLETTI éd., Raven Press, New York, 1976, p. 573. B. Du GRES, D. SAMUEL et F. TENERIELLO, La Vie médicale, 1972, p. 2. J. CHROKRONN et S. FRIEDMAN, Gazette médicale de France, 81, 1974, n° 21, p. 2821. A. R. RATSIMAMANGA, C. LEFOURNIER, H. RABINOWITZ, M. NIGEON-DUBREUIL et P. HALLER, Comptes rendus, 27
H. RABINOWITZ, M. NIGEON-DUBREUIL et P. HALLER, Comptes rendus, 27 4 série D, 1972, p. 1522. M. MOUTON, H. CHALOPIN et M. RABINOWICZ, Bull. Soc. Chim. Biol., 38, 1956, p. 205. Institut de Physiologie, Laboratoire du C.N.R.S., 2, rue Magendie, 31400 Toulouse. MICROBIOLOGIE APPLIQUÉE. — Isolement et identification de souches microbiennes biodégradant le « mancozèbe ». Note de Bernard Doneche, présentée par M. André-Romain Prévot. Il existe dans la microflore des sols de vignobles, des germes capables de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme seul nutriment organique. Cette micropopulation est constituée essentiellement de bactéries appartenant au genre
Cette micropopulation est constituée essentiellement de bactéries appartenant au genre Bacillus. Microbes able to grow only with "mancozebe" as organic nutriment exist in microflora of horticultural soils. This micropopulation is composed of bacteria belonging to Bacillus genus. L'étude de la dégradation du « mancozèbe » dans les sols de vignobles a montré que les microorganismes telluriques participent à l'élimination du fongicide; mais cette biodégradation peut résulter de l'activité biologique globale et ne pas être due à l'existence de souches microbiennes déterminées, capables de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme seul nutriment organique. Nous nous sommes attachés à
» comme seul nutriment organique. Nous nous sommes attachés à isoler et à identifier de tels germes à partir d'un sol du Bourgogne présentant une forte activité biologique et dont la microflore joue un rôle important dans la dégradation du fongicide (1). EFFETS DE DEUX TRAITEMENTS SUCCESSIFS. — Un premier échantillon de sol (4 kg) est placé dans une cuve d'incubation. Au cours de cette opération, la teneur en eau est portée aux 3/4 de la capacité de rétention avec une suspension aqueuse de « mancozèbe », de manière à apporter 10 mg de produit par kilogramme de terre. Au
apporter 10 mg de produit par kilogramme de terre. Au 40e jour, cet échantillon 1, qui contient encore 0,6 mg de substance active par kilogramme de terre, reçoit un nouvel apport de « mancozèbe » (10 mg/kg). Un deuxième échantillon de sol, incubant depuis 40 jours, est traité par une quantité de fongicide équivalente à la teneur en substance active de l'échantillon 1 aussitôt après le deuxième traitement (10,6 mg/kg). Nous constatons sur la figure 1 que la disparition du fongicide est plus rapide lors de la seconde application (échantillon 1), Ce phénomène est indépendant de l'incubation préalable dans des
1), Ce phénomène est indépendant de l'incubation préalable dans des conditions d'humidité et de température convenables puisque, dans l'échantillon 2, l'allure de la dégradation reste normale. A partir de prélèvements effectués régulièrement dans ces échantillons de sols, nous avons réalisé des numérations de germes en utilisant le milieu de culture suivant : K,HPO4, 5 g NaCl 2,5 g MgCl2, 2,5 g FeCl3, Traces Solution d'oligo-éléments 2 ml Mancozèbe 50 mg Eau distillée ............................. q.s.p. 1 000 ml Le « mancozèbe » constitue la seule source d'azote, de carbone et de soufre. Ces numérations montrent qu'il existe une micropopulation capable de
soufre. Ces numérations montrent qu'il existe une micropopulation capable de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme élément nutritif. La densité de cette population est très faible en sol non traité (3 500 germes par gramme de terre) mais elle croît dès l'addition du fongicide (fig. 2). L'augmentation de population qui suit le deuxième traitement est très forte (450 000 germes par gramme de terre) avec pour conséquence une accélération de la dégradation. Dès la disparition du fongicide le nombre de ces germes chute très rapidement. Effets de deux applications successives de « mancozèbe » au sol. Fig.
deux applications successives de « mancozèbe » au sol. Fig. 1. — Dégradation du « mancozèbe ». Abscisses temps en jours. Ordonnées milligramme de principe actif par kilogramme de terre. Fig. 2. — Densité de la population « biodégradante ». Abscisses temps en jours. Ordonnées nombre de germes par gramme de terre. SÉLECTION DES GERMES UTILISANT LE « MANCOZÈBE » COMME SEUL NUTRIMENT ORGANIQUE. — Les germes qui se développent peuvent être seulement ceux qui résistent à un traitement de 50 mg/1 et utilisent comme substances nutritives les produits de la dégradation non biologique du fongicide. Une série d'expériences complémentaires
la dégradation non biologique du fongicide. Une série d'expériences complémentaires est nécessaire pour vérifier l'existence d'une microflore spécifique et permettre l'isolement des souches microbiennes qui la composent. Ces essais sont conduits sur le milieu minéral précédemment décrit, en présence de « mancozèbe » à des doses de 50 et 1 000 mg/1. L'ensemencement est effectué au moyen d'une suspension-dilution du sol étudié, dont la densité microbienne est déterminée par une numération annexe. Les échantillons sont mis à incuber à 28°C soit en aérobiose, soit en semi-anaérobiose (obtenue en recouvrant le milieu de culture d'une couche de 8 à 10 mm
milieu de culture d'une couche de 8 à 10 mm d'huile de vaseline). Deux témoins stériles non ensemencés sont mis à incuber dans les mêmes conditions. CORRECTION ### des Laboratoires Laroche-Navarron, Paris, France. Séance du 14 février 1977. B. POMME, R. PLANCHE et J. GIRARD, Thérapie, 16, 1971, p. 798. R. DUNET et M. HANUS, Le Progrès médical, 95, 1967, p. 589. J. GAMACHE, Médecine Praticienne, 1974, p. 546. PHAM-HUU-CHANH, M. JUNSTAD et A. WENNMALM, Acta Physiol. Scand., 86, 1972, p. 589. PHAM-HUU-CHANH et M. C. NICOT-CARTHERY, Die Naturwissenschaften, 60, 1973, p. 482. A. WENNMALM, PHAM-HUU-LHANH et M. JUNSTAD, Acta
1973, p. 482. A. WENNMALM, PHAM-HUU-LHANH et M. JUNSTAD, Acta Physiol. Scand., VI, 1V/4, p. LU. PHAM-Huu-CHANH, Colloque de la D.G.R.S.T., Bordeaux, 7-8 décembre 1976. NIGEON-DUBREUIL, RABINOWICZ, T. RAHANDRANHA et A. R. RATSIMAMANGA, Thérapie, 9, 1954, p. 481. C. BOMSKOV et BAHNSEN, Arch. fur exper. path. Pharmak., 178, 1, 1935. J. B. LEE, in The Prostaglandins, L P. W. RAMWELL éd., Plenum Press, New York, London, 1973, p. 133. N. A. TERRAGNO, K. U. MALIK, A. NASJLETTI, D. A. TERRAGNO et J. C. MacGIFF, in Advances In Prostaglandin and Thromboxane Research, II, B. SAMUELSSON et R. PAOLETTI éd., Raven Press,
Research, II, B. SAMUELSSON et R. PAOLETTI éd., Raven Press, New York, 1976, p. 561. J. B. LEE, in Advances in Prostaglandin and Thromboxane Research, II, B. SAMUELSSON et R. PAOLETTI éd., Raven Press, New York, 1976, p. 573. B. Du GRES, D. SAMUEL et F. TENERIELLO, La Vie médicale, 1972, p. 2. J. CHROKRONN et S. FRIEDMAN, Gazette médicale de France, 81, 1974, n° 21, p. 2821. A. R. RATSIMAMANGA, C. LEFOURNIER, H. RABINOWITZ, M. NIGEON-DUBREUIL et P. HALLER, Comptes rendus, 27 4 série D, 1972, p. 1522. M. MOUTON, H. CHALOPIN et M. RABINOWICZ, Bull. Soc. Chim. Biol.,
MOUTON, H. CHALOPIN et M. RABINOWICZ, Bull. Soc. Chim. Biol., 38, 1956, p. 205. Institut de Physiologie, Laboratoire du C.N.R.S., 2, rue Magendie, 31400 Toulouse. MICROBIOLOGIE APPLIQUÉE. — Isolement et identification de souches microbiennes biodégradant le « mancozèbe ». Note de Bernard Doneche, présentée par M. André-Romain Prévot. Il existe dans la microflore des sols de vignobles, des germes capables de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme seul nutriment organique. Cette micropopulation est constituée essentiellement de bactéries appartenant au genre Bacillus. Microbes able to grow only with "mancozebe" as organic nutriment exist in microflora of horticultural soils.
"mancozebe" as organic nutriment exist in microflora of horticultural soils. This micropopulation is composed of bacteria belonging to Bacillus genus. L'étude de la dégradation du « mancozèbe » dans les sols de vignobles a montré que les microorganismes telluriques participent à l'élimination du fongicide; mais cette biodégradation peut résulter de l'activité biologique globale et ne pas être due à l'existence de souches microbiennes déterminées, capables de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme seul nutriment organique. Nous nous sommes attachés à isoler et à identifier de tels germes à partir d'un sol du Bourgogne présentant une forte activité
à partir d'un sol du Bourgogne présentant une forte activité biologique et dont la microflore joue un rôle important dans la dégradation du fongicide (1). EFFETS DE DEUX TRAITEMENTS SUCCESSIFS. — Un premier échantillon de sol (4 kg) est placé dans une cuve d'incubation. Au cours de cette opération, la teneur en eau est portée aux 3/4 de la capacité de rétention avec une suspension aqueuse de « mancozèbe », de manière à apporter 10 mg de produit par kilogramme de terre. Au 40e jour, cet échantillon 1, qui contient encore 0,6 mg de substance active par kilogramme de terre,
encore 0,6 mg de substance active par kilogramme de terre, reçoit un nouvel apport de « mancozèbe » (10 mg/kg). Un deuxième échantillon de sol, incubant depuis 40 jours, est traité par une quantité de fongicide équivalente à la teneur en substance active de l'échantillon 1 aussitôt après le deuxième traitement (10,6 mg/kg). Nous constatons sur la figure 1 que la disparition du fongicide est plus rapide lors de la seconde application (échantillon 1), Ce phénomène est indépendant de l'incubation préalable dans des conditions d'humidité et de température convenables puisque, dans l'échantillon 2, l'allure de la dégradation reste normale. A
dans l'échantillon 2, l'allure de la dégradation reste normale. A partir de prélèvements effectués régulièrement dans ces échantillons de sols, nous avons réalisé des numérations de germes en utilisant le milieu de culture suivant : K,HPO4, 5 g NaCl 2,5 g MgCl2, 2,5 g FeCl3, Traces Solution d'oligo-éléments 2 ml Mancozèbe 50 mg Eau distillée ............................. q.s.p. 1 000 ml Le « mancozèbe » constitue la seule source d'azote, de carbone et de soufre. Ces numérations montrent qu'il existe une micropopulation capable de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme élément nutritif. La densité de cette population est
» comme élément nutritif. La densité de cette population est très faible en sol non traité (3 500 germes par gramme de terre) mais elle croît dès l'addition du fongicide (fig. 2). L'augmentation de population qui suit le deuxième traitement est très forte (450 000 germes par gramme de terre) avec pour conséquence une accélération de la dégradation. Dès la disparition du fongicide le nombre de ces germes chute très rapidement. Effets de deux applications successives de « mancozèbe » au sol. Fig. 1. — Dégradation du « mancozèbe ». Abscisses temps en jours. Ordonnées milligramme de principe actif par
Abscisses temps en jours. Ordonnées milligramme de principe actif par kilogramme de terre. Fig. 2. — Densité de la population « biodégradante ». Abscisses temps en jours. Ordonnées nombre de germes par gramme de terre. SÉLECTION DES GERMES UTILISANT LE « MANCOZÈBE » COMME SEUL NUTRIMENT ORGANIQUE. — Les germes qui se développent peuvent être seulement ceux qui résistent à un traitement de 50 mg/1 et utilisent comme substances nutritives les produits de la dégradation non biologique du fongicide. Une série d'expériences complémentaires est nécessaire pour vérifier l'existence d'une microflore spécifique et permettre l'isolement des souches microbiennes qui la composent.
spécifique et permettre l'isolement des souches microbiennes qui la composent. Ces essais sont conduits sur le milieu minéral précédemment décrit, en présence de « mancozèbe » à des doses de 50 et 1 000 mg/1. L'ensemencement est effectué au moyen d'une suspension-dilution du On constate que, quelle que soit la quantité initiale de « mancozèbe », il existe dans la microflore tellurique du sol étudié des microorganismes capables de dégrader le fongicide. À 50 mg/l comme à 1 000 mg/l, la disparition du fongicide est plus rapide dans des conditions proches de l'anaérobiose qu'en milieu aéré; mais à 1 000
proches de l'anaérobiose qu'en milieu aéré; mais à 1 000 mg/l cette dégradation est proportionnellement plus importante. ISOLEMENT ET IDENTIFICATION DES SOUCHES ACTIVES. — Cette expérience a permis d'isoler 10 souches bactériennes dont 4 à partir du milieu minéral contenant 1 000 mg de « mancozèbe » par litre. Nous avons éprouvé séparément la capacité des différentes souches isolées à utiliser le « mancozèbe » comme élément nutritif (tableau). TABLEAU Capacité des différentes souches à utiliser le « mancozèbe » comme élément nutritif (déterminations après 15 jours d'incubation) Nombre Produit dégradé x 100 germes par millilitre Souches Produit restant (témoin
dégradé x 100 germes par millilitre Souches Produit restant (témoin stérile) de milieu 1 68,6 450 000 I I 9,6 1 500 II I 8,7 450 I V 7,6 5 V à X ......... 5,1 à 0,7 0 Les souches ont été classées en fonction de leur aptitude à dégrader le « mancozèbe ». La seule souche bactérienne capable de dégrader efficacement le « mancozèbe » à son profit appartient au genre Bacillus (souche I) ainsi que les deux autres souches (souches II et III) ayant, à plus petite échelle, la même capacité. La présence de Beggiatoa (souche IV) parmi
la même capacité. La présence de Beggiatoa (souche IV) parmi les souches isolées est, elle aussi, logique. Ces bactéries ont en effet la propriété d'oxyder le sulfure d'hydrogène et d'accumuler le soufre sous forme de granulations intracellulaires. Il est vraisemblable que, quel que soit le processus de dégradation, le milieu s'enrichit en sulfure d'hydrogène. Les souches V à X sont uniquement résistantes au « mancozèbe » et n'ont pas été identifiées. CONCLUSION. — Il existe donc dans la microflore du sol de vignoble choisi, une micro-population spécifique capable de se développer en utilisant le « mancozèbe » comme seul nutriment
développer en utilisant le « mancozèbe » comme seul nutriment organique. Elle est essentiellement composée de bactéries du genre Bacillus, ce qui n'est pas étonnant puisque les Bacillus, dont la résistance est grande, sont très répandus dans les sols. Mais la même expérimentation réalisée sur un sol acide, plus favorable à la croissance des Champignons, aurait peut-être conduit à des résultats différents. (*) Séance du 14 février 1977. (1) Produit de coordination de l'ion zinc avec l'éthylène-bis dithiocarbamate de manganèse; Fongicide très actif sur la plupart des maladies des plantes (à l'exception des oïdium) et en particulier sur le mildiou
(à l'exception des oïdium) et en particulier sur le mildiou de la Vigne, Plasmopara viticola. (2) B. DONECHE et G. SEGUIN, Comptes rendus, 280, série D, 1975, p. 2265. (3) B. DONECHE, Effects du « mancozèbe » sur les microorganismes des sols de vignobles et participation des microorganismes à sa dégradation (Thèse doct. 3e cycle. Bordeaux, 1976). (4) Cette action de dégradation modifie peu l'équilibre de la microflore tellurique. Institut d'Œnologie, 351, cours de la Libération, 33405 Talence. IMMUNOLOGIE. — Différenciation préférentielle des cellules souches hématopoïétiques transférées chez des Souris irradiées préalablement infectées par du BCG. Note (*) de Gilles
irradiées préalablement infectées par du BCG. Note (*) de Gilles Marchai et Geneviève Milon, présentée par M. Jean Bernard. L'injection de cellules médullaires à des Souris irradiées et infectées au préalable par le BCG montre que la différenciation vers la lignée érythroblastique est très diminuée, même si les animaux infectés subissent une hémorragie importante avant irradiation. Ces résultats apportent une confirmation à l'hypothèse d'une différenciation préférentielle de cellules souches vers les lignées leucocytaires au détriment de la lignée érythrocytaire. Following injection of bone marrow cells in lethally irradiated mice, previously infected with BCG regenerating hemopoietic cell populations differentiate along the
infected with BCG regenerating hemopoietic cell populations differentiate along the leucocyte pathway to the detriment of erythroid lineage. Such a phenomenon persisting even if anemia of infected mice is increased by bleeding just before irradiation and reconstitution supports the hypothesis of preferential differentiation of stem cells. L'injection intraveineuse de 1 mg de BCG (soit 107 particules viables) entraîne, chez la Souris, l'apparition d'une anémie progressivement croissante durant les 4 premières semaines suivant l'infection. Au niveau de la moelle, une érythroblastopénie maximale durant la deuxième semaine est observée. La production d'érythropoïétine est à ce moment très élevée. Cette observation nous avait
est à ce moment très élevée. Cette observation nous avait fait émettre l'hypothèse de l'existence d'une différenciation préférentielle des cellules souches hématopoïétiques vers les lignées blanches, au détriment de la lignée rouge, lors de la réponse de l'animal à l'infection. Après irradiation létale des Souries, seules les cellules souches hématopoïétiques pluripotentes présentes dans un inoculum de cellules médullaires injecté par voie intraveineuse forment des clones de cellules différenciées au niveau de la rate [(2), (3)]. Les colonies mixtes, comme les colonies formées d'un seul type cellulaire, sont issues d'une même cellule multipotente (4). L'hypothèse d'une différenciation préférentielle des cellules souches
cellule multipotente (4). L'hypothèse d'une différenciation préférentielle des cellules souches hématopoïétiques pluripotentes lors d'une infection par le BCG peut être confirmée par l'utilisation de ces conditions expérimentales. (1) Des Souris NCS des deux sexes, âgées de 5 semaines lors de l'infection, sont irradiées à 880 rd (20 mn sous un irradiateur au césium-137 de débit 44 rd/min) 0, 1, 2, 3 et 4 semaines après injection intraveineuse de 1 mg de BCG vivant. 2 h après l'irradiation, 5.105 cellules nuclées de moelle osseuse sont injectées. 6 jours plus tard, les animaux reçoivent une injection intraveineuse de 0,5 IlCi d'iododéoxyuridine marqué
animaux reçoivent une injection intraveineuse de 0,5 IlCi d'iododéoxyuridine marqué à l'iode 125 et 0,2 jaCi de citrate de fer 59. 24 h plus tard, la rate est prélevée ainsi que 0,2 ml de sang. Au niveau de la rate, la mesure de l'incorporation de l'iode 125 traduit la multiplication cellulaire et celle du fer-59 l'importance de la différenciation vers la lignée érythrocytaire. Le rapport (Fe/I) animal infecté)/(Fe/I) animal témoin exprime la modification du nombre des cellules engagées vers la différenciation érythrocytaire chez l'animal infecté par rapport à l'animal non infecté. Au niveau du sang, l'incorporation du fer-59 est proportionnelle
infecté. Au niveau du sang, l'incorporation du fer-59 est proportionnelle à la libération des réticulocytes et des hématies nouvellement formées par les clones hématopoïétiques. La figure 1 rapporte les résultats observés au niveau de la rate chez des animaux irradiés à des temps variables après l'infection par le BCG et recevant le même inoculum de cellules souches hématopoïétiques. Nous voyons que pour des incorporations équivalentes en iode 125, l'incorporation du fer-59 est très diminuée chez les animaux infectés depuis 2 semaines par le BCG. Le rapport de différenciation passe de 1 à 0,51 à la deuxième semaine de l'infection puis
1 à 0,51 à la deuxième semaine de l'infection puis augmente ensuite. Fig. 1. — Incorporation de déoxyiodeuridine marqué à l'iode 125 et de fer-59 dans les rates de Souris irradiées à 880 rd et infectées depuis des durées variables avec 1 mg de BCG, au 6e jour après reconstitution avec 5. 101 cellules médullaires. 0 O incorporation d'IUdR (lm); D -D incorporation du fer-59; À&A rapports de différenciation correspondant (fer/iode) animal infecté)/(fer/iode) animal témoin. Moyenne pour 6 souris par point ± erreur standard (1) significatif p < 0,001; (2) significatif p < 0,01. La figure 2 rapporte les observations
significatif p < 0,01. La figure 2 rapporte les observations effectuées au niveau du sang. La production des hématies est très réduite, sinon absente chez les animaux infectés depuis 2 semaines par le BCG. Ainsi, les clones hématopoïétiques formés au niveau de la rate des animaux irradiés infectés par le BCG contiennent des populations cellulaires dont la différenciation vers la lignée rouge est très diminuée, sinon abolie. (2) Nous avons essayé de préciser si la proportion de cellules souches pluripotentes capables d'acquérir un état de sensibilité à l'érythropoïétine pouvait être accrue lors d'anémie plus intense que celle créée par l'infection.
accrue lors d'anémie plus intense que celle créée par l'infection. Fig. 2. — Incorporation du fer-59 dans 0,2 ml de sang 6 jours après reconstitution avec 5.105 cellules médullaires de souris irradiées à 880 rd, infectées depuis des durées variables par 1 mg de BCG. Moyenne pour 6 souris par point: (1) significatif p < 0,05; (2) significatif p < 0,001; (3) significatif p < 0,01. Fig. 3. — Incorporation du fer-59 dans 0,2 ml de sang au 6e jour après reconstitution avec 5.105 cellules médullaires de Souris irradiées à 880 rd, infectées ou non 2 semaines auparavant avec 1
880 rd, infectées ou non 2 semaines auparavant avec 1 mg de BCG et auxquelles a été soustrait, ou non, 0,5 ml de sang 24 h avant irradiation. N.S., Souris non saignées; S., Souris saignées; non infectées, souris non traitées par le BCG; infectées, souris ayant reçu 1 mg de BCG en intraveineuse. La soustraction de 0,5 ml de sang, soit environ 1/3 de la masse sanguine à des Souris non infectées avant l'irradiation létale et reconstitution entraîne une stimulation de l'érythropoïèse identifiable par une augmentation de l'incorporation du fer-59 au niveau de la rate et du sang. Par contre,
au niveau de la rate et du sang. Par contre, chez les animaux infectés par le BCG, 2 semaines auparavant cette anémie plus intense, n'entraîne aucune modification de l'incorporation du fer-59 au niveau de la rate, comme au niveau périphérique (fig. 3). La différenciation de cellules souches hématopoïétiques provenant d'animaux normaux dans la rate de Souris irradiées est influencée par l'existence ou non d'une infection préalable à l'irradiation. La différenciation vers la lignée rouge peut dans ces conditions être totalement absente, même si un stimulus tel qu'une anémie intense avec taux élevé d'érythropoïétine est présent. Un des schémas de la
taux élevé d'érythropoïétine est présent. Un des schémas de la différenciation des cellules souches pluripotentes propose qu'après l'engagement vers les cellules souches de lignée, des mécanismes spécifiques contrôlent secondairement la prolifération et la différenciation terminale. L'exemple le mieux étudié cité à l'appui de ce schéma est celui de l'érythron où après un stade où les cellules acquièrent un état de sensibilité à l'érythropoïétine, cette hormone contrôle secondairement les différenciations terminales. L'hypothèse que nous avions formulée de l'existence d'une différenciation préférentielle des cellules souches hématopoïétiques au cours de l'infection par le BCG se trouve confirmée par les résultats que nous venons