jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
autotomisées inférieur à 0,5 au moment des injections d'hormone. Les blastèmes de régénération examinés 2 jours après la dernière injection ont montré un décollement entre l'épithélium sécréteur et la cuticule molle qui forme sans discontinuité la cuticule cicatricielle et l'enveloppe du bourgeon. Sous ce décollement, l'épithélium a élaboré des couches épicuticulaires peu épaisses et plus ou moins bien différenciées. La coupe sagittale d'un blastème a montré que l'épicuticulle la mieux différenciée se trouve au niveau de la zone d'invagination du blastème (fig. 7 et 8). L'épicuticule présente parfois l'aspect d'une épicuticule normale (fig. 9). Sous l'épicuticule, on peut observer quelques
épicuticule normale (fig. 9). Sous l'épicuticule, on peut observer quelques fibrilles ou quelques couches de fibrilles plus ou moins régulièrement disposées en strates figurant une exocuticule en cours d'élaboration (fig. 9). L'ensemble de ces formations cuticulaires peut être considéré comme le commencement d'un cycle de sécrétion cuticulaire par le jeune blastème de régénération. Les cellules épithéliales présentent quelques figures de lyse, mais c'est au niveau des cellules sous-jacentes qu'elles sont particulièrement développées avec la formation de vacuoles lytiques géantes et de corps résiduels. Des cellules à « Op-art-bodies » ou cellules de réserve de second type se rencontrent sous l'épithélium
cellules de réserve de second type se rencontrent sous l'épithélium sécréteur. Ces cellules déjà observées chez Carcinus maenas apparaissent dans des régénérats normaux en fin de croissance, avant la sécrétion de la cuticule de l'appendice. DISCUSSION ET CONCLUSION. — L'effet inhibiteur de l'ecdystérone sur la régénération est constant chez des animaux dont la mue est accélérée par les doses d'hormone utilisées. L'ecdystérone agit sur l'épithélium des blastèmes en provoquant une sécrétion précoce de la cuticule de l'appendice. Les plus grands régénérats obtenus montrent que les cellules situées à l'apex ont sécrété une cuticule avec des ornementations cuticulaires et des soies,
sécrété une cuticule avec des ornementations cuticulaires et des soies, tandis que les cellules des régions basales n'ont pu réaliser qu'une cuticule molle. Ce gradient de différenciation apico-basal résulte vraisemblablement d'une hétérogénéité des cellules épithéliales dans leur capacité de former la cuticule de l'appendice, donc dans leur état de différenciation. Cette hétérogénéité pourrait provenir d'une différence dans le nombre de mitoses effectuées selon les régions du blastème avant les injections d'ecdystérone. Cette hormone injectée, bloquant les synthèses d'ADN de l'épithélium ainsi qu'il a été démontré chez Procambarus, contraindrait alors des cellules à effectuer immédiatement la sécrétion de cuticule. L'étude des
cellules à effectuer immédiatement la sécrétion de cuticule. L'étude des multiplications cellulaires au cours des diverses étapes de la régénération fera l'objet de travaux ultérieurs. L'ecdystérone entraîne l'accentuation des phénomènes de lyse qui accompagnent les différenciations. Ces résultats sont en accord avec les observations réalisées chez les Insectes. Nos résultats confirment l'hypothèse de l'intervention du taux d'ecdysone dans l'apparition de régénérats anormaux chez des Crabes non soumis à l'action d'ecdystérone exogène. Laboratoire de Biologie animale, U.E.R. des Sciences, Université de Caen, 14032 Caen Cedex. BIOLOGIE CELLULAIRE. — Étude ultrastructurale de la meïose dans les souches C50, CL et M3C de
la meïose dans les souches C50, CL et M3C de Physarum polycephalum (Myxomycètes). Note de Isabelle Lacorre-Arescaldino, présentée par M. Pierre-Paul Grassé. Chez le Myxomycète Physarum polycephalum, l'étude comparative en microscopie électronique des spores des souches C50 et CL dans lesquelles amibes et plasmodes ont la même ploïdie et des spores des souches polyploïdes M3C VI et M3C VII, où les amibes ont deux fois moins de chromosomes que les plasmodes, a montré qu'une légère différence existe entre ces dernières. En effet, nombreuses spores multinucléées se forment dans les souches C50 et CL. Entre autres critères, l'observation de complexes synaptonématiques
C50 et CL. Entre autres critères, l'observation de complexes synaptonématiques a permis de conclure au déroulement d'une meïose dans les spores des souches C50 et CL. In Physarum polycephalum (Myxomycetes), a comparative ultrastructural study of sporulation showed only a slight difference between strains C50 and CL where plasmodia and amoebae have the same ploidy level, and polyploid strains M3C VI and M3C VII, where plasmodia have twice the ploidy level of amoebae: numerous multinucleate spores were found in strains C50 and CL. Among other conditions, the observation of synaptonemal complexes provides some evidence that meiosis occurs in strains C50 and
provides some evidence that meiosis occurs in strains C50 and CL during sporulation. Des différences de ploïdie importantes ont été décelées parmi les souches de Physarum polycephalum cultivées stérilement et utilisées massivement pour les études biochimiques [(9), ©]. Les souches provenant de l'isolement Wis, (Rs, M3C IV, M3C VI, M3C VII, etc.) étant polyploïdes par rapport à la souche C50 isolée par Wheals en 1970 et CL dérivée de la souche C50 originelle, les plasmodes issus d'un clone d'amibes peuvent achever le cycle vital complet, c'est-à-dire sporuler et libérer des spores capables de germer et de donner des amibes (8).
spores capables de germer et de donner des amibes (8). Or, par des mesures cytophotométriques, Cooke et Dee (1) ont montré que dans la souche CL, les noyaux des plasmodes en phase G2 contenaient la même quantité d'ADN que les noyaux des amibes en même phase, ce qui exclut une fusion nucléaire à la base de la formation des plasmodes, comme c'est le cas dans les souches polyploïdes. Mais si, dans cette souche CL, amibes et plasmodes ont la même ploïdie, que se passe-t-il lors de la sporulation ? En effet, ces plasmodes de la souche CL, après une période
effet, ces plasmodes de la souche CL, après une période de carence suivie d'une illumination, forment des sporanges contenant des spores, ces sporanges ne semblent pas différer de ceux formés par les souches polyploïdes (8). Or, dans ces dernières, les spores subissent la méiose et libèrent, lors de la germination, des amibes dont les noyaux ont un nombre de chromosomes deux fois moins élevé que les noyaux des plasmodes. Il nous a paru intéressant d'étudier pendant la sporulation le comportement des noyaux des souches C50 et CL, qui ne semblent pas présenter de mitose réductionnelle dans les spores, amibes et
pas présenter de mitose réductionnelle dans les spores, amibes et plasmodes ayant la même ploïdie, et de le comparer avec celui des noyaux des souches M3cVII, IIe et M3cVI dans lesquelles on a déjà pu observer des complexes synaptonématiques caractéristiques de la prophase méiotique (5). MATÉRIEL ET MÉTHODES. — Souches. — Les souches M3c VI et M3c VII, IIe proviennent du laboratoire McArdle de Madison, Wisconsin, la souche M3c VI nous ayant été envoyée par le Dr H. P. Rusch en 1966 et la souche M3c VII par le Dr J. Mohberg en 1972. Les souches C50 et CL (CL,)
J. Mohberg en 1972. Les souches C50 et CL (CL,) proviennent du laboratoire du Dr J. Dee à Leicester et nous ont été gracieusement envoyées par le Dr J. Mohberg en 1974. Cultures. — Les souches sont cultivées selon les techniques déjà décrites (4). La sporulation est induite selon la méthode simplifiée décrite par Mohberg et coll. (13); l'âge des spores est exprimé en heures après la fin de l'éclairement. Microscopie électronique. — Pour l'observation au microscope électronique, les fragments sont fixés par le glutaraldéhyde à 2 % en tampon phosphate 0,2 M pH 7,2 ou tampon cacodylate 0,02 M
phosphate 0,2 M pH 7,2 ou tampon cacodylate 0,02 M pH 7,2 pendant 1 h 30 mn puis postfixés 1 h par 0s04 à 2 % dans le même tampon. Après déshydratation par l'alcool, les fragments sont inclus dans l'« araldite », coupés puis colorés par l'acétate d'Uranyle et le plomb (14), avant d'être observés au microscope « Hitachi HU 11 A ». RÉSULTATS. — Comme nous l'avons déjà décrit pour la souche M3c VI (5), l'éclairement après passage en milieu épuisé est suivi dans toutes les souches étudiées d'un bourgeonnement, puis d'une formation de sporanges. Dans les sporanges, les
bourgeonnement, puis d'une formation de sporanges. Dans les sporanges, les noyaux se divisent pour la première fois de 11 à 16 h après la fin de l'éclairement, ce temps variant selon les souches et les expériences. Dans chaque cas, cette division nucléaire est synchrone et semblable à celle que l'on observe dans les plasmodes. Elle est suivie d'une division du cytoplasme amenant l'individualisation de spores dont la plupart sont uninucléées, mais dont certaines contiennent 2, 3 ou même un nombre plus élevé de noyaux, la quantité de spores multinucléées étant plus forte dans les souches C50 et CL que dans
plus forte dans les souches C50 et CL que dans les souches M3c VI et M3c VII, IIe où elle reste assez faible. Dans les souches M3c VII, IIe et M3c VI, les premiers complexes synaptonématiques apparaissent dans quelques noyaux vers 25 h (planche I, fig. 2 et 3). Leur nombre augmente peu à peu et vers 35 h, pratiquement tous les noyaux sont à ce stade, simulant une synchronie du phénomène démentie par l'étude des prélèvements antérieurs qui montrent nettement une progression dans le nombre des noyaux en prophase méiotique. Dans les souches C50 et CL nous avons retrouvé
méiotique. Dans les souches C50 et CL nous avons retrouvé les mêmes images de complexes synaptonématiques dans les noyaux des spores de 35-40 h (planche I, fig. 4), ces complexes apparaissant aussi dans les noyaux des spores multinucléées (planche II, fig. 4). Tous les complexes présentent une bande claire de 1 000 Å bordée de 2 éléments très denses aux électrons et correspondant aux chromosomes homologues appariés. Ces complexes sont souvent en relation étroite avec l'enveloppe nucléaire comme cela a souvent été rapporté pour d'autres espèces (12). EXPLICATION DES PLANCHES Planche I C, chromatine; Ch, chromosome; Cs, complexe synaptonématique; En,
Planche I C, chromatine; Ch, chromosome; Cs, complexe synaptonématique; En, enveloppe nucléaire; M, mitochondrie; N, noyau; Nu, nucléole; P, paroi de la spore; V, vacuole. Fig. 1. — Spore de CL, 16 h 30 mn après la fin de l'éclairement. La chromatine est dispersée dans le noyau. Fig. 2. — Spore de M3c VII, IIe, 27 h après la fin de l'éclairement. On observe de nombreux complexes synaptonématiques dans le noyau. Fig. 3. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de spore de M3c VI, 40 h après la fin de l'éclairement. Fig. 4. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de
l'éclairement. Fig. 4. — Complexes synaptonématiques dans un noyau de spore de CL, 41 h après la fin de l'éclairement. PLANCHE 1 ISABELLE LACORRE-ARESCALDINO PLANCHE II Planche II Fig. 1. — Métaphase dans une spore de CL, observée 45 h après la fin de l'éclairement. Fig. 2. — Métaphase dans une spore de M3c VI, observée 40 h après la fin de l'éclairement. Fig. 3. — 4 noyaux en division dans une spore de CL, observée 47 h après la fin de l'éclairement. Fig. 4. — 4 noyaux présentant des complexes synaptonématiques, dans une spore de C50, observée 46 h
complexes synaptonématiques, dans une spore de C50, observée 46 h après la fin de l'éclairement. Les premières figures de métaphase apparaissent vers 40 h et permettent d'estimer à environ 15 h la durée moyenne de la prophase méiotique. Nous avons pu observer des figures de métaphase dans les spores des 4 souches étudiées (planche II, fig. 1, 2 et 3). Il n'est toutefois pas possible de dire si 2 divisions successives ont lieu dans les spores. En effet, d'une part le manque de synchronie dans les divisions ne permet pas de dire s'il s'agit d'une première ou deuxième division, et,
de dire s'il s'agit d'une première ou deuxième division, et, d'autre part, le nombre de noyaux ne peut pas donner de renseignements sur ce sujet, puisque certaines spores contiennent déjà plusieurs noyaux pendant la prophase méiotique (planche II, fig. 4). Ce que nous pouvons par contre affirmer, c'est que dans les spores multinucléées tous les noyaux sont en même temps en prophase méiotique et que les divisions y sont synchrones. La figure 3 de la planche II montre par exemple 4 noyaux en division dans une spore. DISCUSSION. — Ces observations tendent donc à montrer qu'une méiose se déroule normalement
observations tendent donc à montrer qu'une méiose se déroule normalement dans les souches CL et C50, puisque nous n'avons pas trouvé de différence entre ces souches et les souches M3c VII, IIe et M3c VI au point de vue nucléaire pendant la sporulation, si ce n'est une plus grande quantité de spores multinucléées. La présence de complexes synaptonématiques bien individualisés a déjà été utilisée comme critère pour déterminer la position de la méiose chez les Myxomycètes [CZ), (6)]. Mais, d'après Moses, qui a fait une revue complète du sujet, ces complexes ne sont pas toujours suivis de méiose et ne
complexes ne sont pas toujours suivis de méiose et ne peuvent suffire à prouver l'existence d'une méiose. Toutefois, Aldrich et Mims pensent que l'on peut conclure à une méiose chez les Myxomycètes lorsque 4 conditions sont réunies : 1. Existence d'une seule division nucléaire précédant l'individualisation des spores, avec pour cette division une prophase libre de complexe synaptonématique. 2. Présence d'une interphase libre de complexe. 3. Apparition de complexes synaptonématiques dans la plupart des spores. 4. Figures de division dans certaines spores. Or, ces 4 conditions ont été vérifiées dans les souches C50 et CL puisque la première division nucléaire
les souches C50 et CL puisque la première division nucléaire suivant la fin de l'éclairement est en tous points semblable aux divisions du plasmode. Il existe bien une interphase libre de complexe (planche I, fig. 1) puisque ces complexes n'apparaissent au plus tôt que 10 h après l'individualisation des spores (spores de 25 h). De plus, vers 35 h pratiquement tous les noyaux des spores contiennent des complexes synaptonématiques, et enfin des figures de métaphase ont été observées dans quelques spores. Nous pensons donc pouvoir conclure au déroulement d'une méiose dans ces souches. Dans ce cas, comment expliquer la même
dans ces souches. Dans ce cas, comment expliquer la même ploïdie observée entre amibes et plasmodes ? Des études sont actuellement en cours pour préciser ce qui se passe lors de la germination, phénomène encore peu étudié et au cours duquel seule une très petite quantité des spores formées peut donner naissance à des amibes. Des observations préliminaires semblent indiquer que les spores multinucléées sont capables de libérer des amibes contenant plusieurs noyaux. Une mesure précise du contenu en ADN de ces noyaux pourrait peut-être nous permettre d'interpréter ces faits. (*) Séance du 17 janvier 1977. (1) Ce travail a
(*) Séance du 17 janvier 1977. (1) Ce travail a été effectué dans le cadre de l'E.R.A. n° 407, C.N.R.S. (2) H. C. ALDRICH, Mycologia, 59, 1967, p. 127-148. (3) H. C. ALDRICH et C. W. MIMS, Amer. J. Bot., 57, 1970, p. 935-941. (4) I. ARESCALDINO, Comptes rendus, 266, série D, 1968, p. 1722. (5) I. ARESCALDINO, Comptes rendus, 273, série D, 1971, p. 398. (6) G. C. CARROLL et R. DYKSTRA, Mycologia, 58, 1966, p. 166-169. (7) D. J. COOKE et J. DEE, Genet Res. Camb., 23, 1974, p. 307-317. (8) J. DEE, SC. Prog. Oxf., 62, 1975,
p. 307-317. (8) J. DEE, SC. Prog. Oxf., 62, 1975, p. 523-542. (9) I. LACORRE-ARESCALDINO, 2nd European Physarum Meeting, Leicester, 1974, p. 16. (10) J. MOHBERG et M. P. RUSCH, Exp. Cell. Res., 66, 1971, p. 305-316. (11) J. MOHBERG, K. L. BABCOCK, F. B. HAUGLI et H. P. RUSCH, Develop. Biol., 34, 1973, p. 228-247. (12) M. J. MOSES, Ann. Rev. Genet., 2, 1968, p. 363-412. (13) M. J. MOSES, Genet. Suppl., 61, 1969, p. 40-52. (14) E. S. REYNOLDS, J. Cell. Biol., 17, 1963, p. 208-211. (15) A. E. WHEALS, Genetics, 66, 1970, p. 623-633. Laboratoire de Biologie
E. WHEALS, Genetics, 66, 1970, p. 623-633. Laboratoire de Biologie cellulaire, Faculté des Sciences, B.P. n° 347, 51062 Reims Cedex. DYNAMIQUE DES POPULATIONS. — Courbe de survie du Diptère Brachycère Musca domestica L. analysée par la loi de la sénescence de Teissier (1934). Note (*) de Hagime Inagaki, présentée par M. Jean Dorst. La loi de Teissier s'ajuste assez rigoureusement aux deux parties de la courbe de survie de la femelle. Ces parties correspondent à deux étapes de sénescence ou régimes physiologiques postpubéraux. The fitness of Teissier's law to the female survival curve has been shown to be fairly strict
female survival curve has been shown to be fairly strict and the curve is split into two senescent stages. These stages tally with two periods of variation in percentage of wing retention and in mitochondrial Mg-activated ATPase activity. L'évolution du taux de survie, en fonction du temps écoulé après la puberté, a fait l'objet de nombreux travaux chez divers Métazoaires. Peu d'entre eux se fondent cependant sur une théorie de la sénescence qui pourrait expliquer convenablement la courbe de survie. Le bon ajustement parfois constaté d'une certaine loi aux résultats expérimentaux n'a généralement été réalisé que par le recours à
expérimentaux n'a généralement été réalisé que par le recours à la formule empirique comme la loi de Gompertz-Pearl, qui comporte plusieurs paramètres d'interprétation biologique difficile. Par contre, la loi de Teissier (1934) e), déduite de la diminution de l'espérance de vie en fonction exponentielle du temps, ne renferme pas de tel paramètre et semble bien s'appliquer à la courbe de survie de différents groupes d'animaux. Utilisant la table de mortalité de l'imago femelle du Diptère Brachycère Musca domestica L. dressée par Rockstein et Lieberman e), j'ai tenté d'y appliquer la loi de Teissier. Celle-ci traduit la fonction de survie /
loi de Teissier. Celle-ci traduit la fonction de survie / (t ) comme suit : / (f) = exp(l + t-et). La variable t représente le temps biologique du vieillissement dont la relation avec le temps d'observation x est telle que t = b + ax (a, b, paramètres de l'unité du temps), et, naturellement, à déterminer pour chaque courbe de survie. On définit d'autre part : t>0, 1(0) = 1. Il faut donc multiplier / (t ) par un coefficient T afin d'obtenir l'estimation 1 (x) du nombre lx des survivants au temps x. MÉTHODE DU CALCUL. — Pour
des survivants au temps x. MÉTHODE DU CALCUL. — Pour la détermination des paramètres a, b et T, aucune méthode générale n'a été établie jusqu'à présent. J'ai alors effectué l'ajustement progressif de la loi de Teissier à la table de Rockstein et Lieberman, en essayant diverses combinaisons de valeurs de a, de b et de t. L'ajustement a été réalisé en minimisant la moyenne CYIC des carrés des écarts entre lx. et x / (ti), et tt étant respectivement la valeur de x exprimée en jour et celle de t correspondant à Xi' Le terme (lx, lx q) 1 XO1,
correspondant à Xi' Le terme (lx, lx q) 1 XO1, représentant la proportion des individus qui ont péri, traduit l'amplitude du déroulement de la sénescence pendant la durée de xp à Xq. Le terme (1/2) (lxp + lx), médiane de lxi, indique le nombre moyen potentiel des individus soumis à l'élimination par sénescence. Nombre de survivants lx en fonction du nombre de jours x écoulés après l'émergence imaginaire chez la Mouche domestique femelle. La courbe continue traduit l'évolution de la valeur théorique de lx calculée suivant la fonction de survie de Teissier. Celle-ci a été déterminée, pour chaque étape, à
de Teissier. Celle-ci a été déterminée, pour chaque étape, à partir des valeurs observées dans la même étape. La courbe en tirets montre l'extrapolation de la fonction de survie d'une étape en dehors de cette étape. Comme seuils de D pour apprécier l'ajustement, je propose la convention suivante : au-dessous de D = 0,01, la loi est rigoureusement vérifiée et, au-dessous de D = 0,02, elle l'est assez rigoureusement. Au-dessus de D = 0,02, elle n'est pas acceptée. A titre de comparaison, j'ai essayé d'appliquer la loi de Gompertz par la méthode suivante : Dans la fonction de Gompertz :
la méthode suivante : Dans la fonction de Gompertz : étant donné que l'ensemble {Xi} représente une progression arithmétique de nombres entiers avec la raison 1, les estimations y et z des paramètres y et b sont obtenues par les formules : Les valeurs de (1 + eÎ) et de bz-l varient évidemment selon log lXi±l et log lXi. Nous adoptons ici la moyenne harmonique pondérée par (lXi , — 1,,,) de (1 + e?), 1 +eY. Après la détermination de y, nous cherchons une valeur optimale b de b, en essayant diverses valeurs possibles de b (dans ce cas,
en essayant diverses valeurs possibles de b (dans ce cas, x, n'est pas forcément un nombre entier), cela avec l'estimation K de K par la formule Le même indice D sert à apprécier l'ajustement de la loi de Gompertz. TABLEAU Paramètres et indice d'ajustement dans l'application des lois de Teissier et de Gompertz Loi de Teissier Loi de Gompertz a b x D y b K D 1° étape 0,033 23 0,034 74 999,6 0,013 096 0,176 72 0,003 027 1 045,8 0,022 34 2e étape ...... 0,046 39 0,499 8 838,4 0,014 339 0,076 05 0,009 921 1 086,6
8 838,4 0,014 339 0,076 05 0,009 921 1 086,6 0,027 33 APPLICATION DES LOIS DE TEISSIER ET DE GOMPERTZ. — L'observation de la courbe de survie dessinée d'après la table de Rockstein et Lieberman nous conduit à nous demander si la courbe ne pourrait pas se décomposer en deux parties, l'une allant de x = 0 à x = 18 et l'autre, de x= 18 à x = 66. D'autre part, selon Clark et Rockstein, le pourcentage de la conservation des ailes demeure à 100 jusqu'à x= 18, puis diminue graduellement; l'activité de l'ATPase mitochondriale, dépendante du magnésium, montre
diminue graduellement; l'activité de l'ATPase mitochondriale, dépendante du magnésium, montre une évolution presque parallèle. On peut alors supposer que les parties de la courbe ci-dessus envisagées correspondent à deux régimes physiologiques différents. En tenant compte de ce phénomène, j'ai appliqué les lois de Teissier et de Gompertz à chacune des deux parties. Les résultats de l'application de la loi de Teissier sont figurés dans le graphique et les paramètres et l'indice D calculés par cette loi, ainsi que ceux qui concernent la loi de Gompertz, sont consignés dans le tableau. Les deux parties de la courbe se distinguent, dans l'application
Les deux parties de la courbe se distinguent, dans l'application de la loi de Teissier, par une importante différence de b, ce qui signifie un net décalage du début du temps biologique t. La différence de a, relativement faible, ne traduit pas moins une certaine inégalité de la vitesse d'écoulement de ce temps biologique. Pour les deux parties ainsi distinguées, la loi de Teissier est vérifiée assez rigoureusement (D < 0,02), tandis que la loi de Gompertz n'est pas valable (D>0,02). DISCUSSION ET CONCLUSION. — Chaque partie de la courbe, obéissant à la loi de Teissier, peut être qualifiée d'étape
obéissant à la loi de Teissier, peut être qualifiée d'étape de sénescence. Le terme étape désigne ici un état d'équilibre dynamique ou régime physiologique dominé par une loi qualitative ou quantitative. Les deux étapes de sénescence de la femelle de Musca domestica, entre lesquelles l'unité du temps biologique t est différente, correspondent effectivement à deux régimes physiologiques. La pluralité des régimes distincts et successifs de la sénescence n'a cependant pas été reconnue jusqu'à présent au niveau de la population, contrairement au cas de la période antépubérale. La sénescence ne se déroule pas en général, paraît-il, suivant un programme assez précis