jeanflop/post-ocr-correction huggingface dataset:
important, car il met en évidence la relation proline-photorespiration. Il est, en effet, bien établi que l'acide glycolique est le substrat principal de la photorespiration (11). Et il est connu que la sécheresse agit sur la photorespiration (4), phénomène que nous avons également personnellement constaté. Enfin, d'après Lawlor et Fock (8), chez les plantes sous contrainte hydrique, le gaz carbonique peut être dévié vers la voie du glycolate, en plus de la voie normale du cycle des acides tricarboxyliques. De ces études est née l'hypothèse d'une action de la proline dans la photorespiration des plantes sous contrainte hydrique, hypothèse qui
dans la photorespiration des plantes sous contrainte hydrique, hypothèse qui a également été émise dans le cas de la floraison (13). Chez le Gossypium hirsutum soumis à une contrainte hydrique, les profondes modifications de la photorespiration, l'accumulation de proline et les premiers résultats relatifs à son catabolisme viennent étayer l'hypothèse d'une action de la proline dans la photorespiration. Laboratoire du Phytotron, C.N.R.S., 91190 Gif-sur-Yvette. PHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Étude des parois des feuilles de Aster tripolium L. : action du sel sur la composition glucidique des fractions pectiques. Note de Alain Perrelle, présentée par M. Lucien Plantefol. Dans les parois des
Perrelle, présentée par M. Lucien Plantefol. Dans les parois des feuilles d’Aster tripolium le sel crée un enrichissement en arabinanes et un appauvrissement en acide polygalacturonique. Le degré de méthylation élevé de ce dernier reste inchangé. Aster tripolium leaf cell wall composition is modified by NaCl: the percentage of arabinose is enhanced; the amount of uronic acid is lowered but its degree of esterification remains high. Jusqu’à ce jour, les parois des halophytes n’ont fait l’objet d’aucun travail de recherche, si on excepte le cas très particulier des Phanérogames marines chez lesquelles de faibles teneurs en composés pectiques et la
chez lesquelles de faibles teneurs en composés pectiques et la présence d’esters sulfates ont été mis en évidence [(2), C)]. Pourtant la connaissance des caractéristiques de ces parois devrait apporter des précisions susceptibles d’aider à l’interprétation des faits suivants : — un halophyte tel que le Cochlearia anglica (4) a une capacité d’échange cationique racinaire élevée, privilégiant la fixation des cations divalents par rapport aux alcalins; — chez l’Aster tripolium, le grandissement des cellules est augmenté par le sel. Les organes deviennent succulents. On peut penser que le sel modifie les parois, en particulier leur plasticité, puisqu’il a été montré
les parois, en particulier leur plasticité, puisqu’il a été montré par ailleurs que l’activité pectinesterase est augmentée (Afin de recueillir quelques faits préliminaires concernant l’action du sel sur la composition chimique des parois, des Aster tripolium ont été cultivés à partir de morceaux de rhizomes, sur une solution nutritive type semi-estivale de la Purdue University (1) ou sur cette même solution additionnée de 15 g/1 de NaCl, salinité à laquelle il a été reconnu que la croissance est possible tout en étant fortement diminuée, alors que la succulence est importante. Les plantes développent une rosette de feuilles que l’on récolte
Les plantes développent une rosette de feuilles que l’on récolte à un même stade morphologique soit, pour des individus cultivés en présence de 0 et 15 g/1 de NaCl, après respectivement 45 et 63 jours de culture. Les feuilles sont pesées et fixées à l’éthanol absolu bouillant. Après broyage, elles sont épuisées à l’éthanol 80 % afin d’éliminer les oses et osides de faible poids moléculaire, et délipidées avec un appareil de Soxhlet dans le mélange éthanol-benzène (1 : 2 v/v). Après rinçage et séchage, les parois brutes ainsi obtenues sont pesées. Sur une partie aliquotée de ces parois les
sont pesées. Sur une partie aliquotée de ces parois les composés pectiques sont extraits par la séquence de solvants suivants : eau froide (EF), eau chaude 90°C (EC), solution d’oxalate d’ammonium 0,5 % à 90°C ( Le rhamnose, le fucose et le ribose sont des constituants mineurs. L'importance de l'arabinose et du galactose (tableau I) doit refléter la présence d'arabinanes et d'arabinogalactanes dans les composés pectiques. Si on considère que ces derniers sont constitués par la réunion des 3 fractions solubles (EF + EC + OX), ils représentent environ 30 % du poids sec des parois brutes, ce qui est
% du poids sec des parois brutes, ce qui est en accord avec les résultats obtenus sur d'autres matériels [1, 2]. TABLEAU I Composition en oses des parois brutes de 'Aster tripolium Salinité (g/l NaCl) 0 15 Oses PM (*) PP (**) PM PP Rhamnose 1,9 0,6 3,1 1,2 Fucose 0,5 0,2 0,8 0,3 Ribose 1,4 0,4 1,4 0,4 Arabinose 13,1 3,4 31,7 10,1 Xylose 8,4 2,2 9,0 2,8 Mannose 4,8 1,5 3,2 1,2 Galactose 8,0 2,5 8,8 3,3 Glucose 61,9 19,4 48,0 13,7 (*) Pourcentage molaire. (**) Pourcentage pondéral rapporté au poids sec des parois brutes. TABLEAU II Composition
rapporté au poids sec des parois brutes. TABLEAU II Composition en oses des composés pectiques de 'Aster tripolium Salinité (g/l NaCl) 0 15 Oses PM (*) PP (**) PM PP Rhamnose 7,6 0,8 6,2 0,7 Fucose 0,5 0,1 0,3 0,1 Ribose 2,2 0,2 1,2 0,1 Arabinose 47,8 5,3 69,2 7,7 Mannose 4,4 0,5 1,9 0,2 Galactose 16,9 1,9 14,4 1,6 Glucose 20,8 2,3 6,9 0,8 (*) Pourcentage molaire. (**) Pourcentage pondéral rapporté au poids sec des parois brutes. 2. Lorsque la solution nutritive contient 15 g/l de NaCl, le contenu glucidique total des parois et les teneurs en oses d'origine
glucidique total des parois et les teneurs en oses d'origine pectique sont peu modifiés, mais l'arabinose prend de plus en plus d'importance parmi les sucres présents, tandis que le glucose devient moins abondant, (tableau 1 et II). Ceci est le reflet de l'enrichissement en arabinose et l'appauvrissement en glucose que subissent les composés pectiques quand la salinité croît (tableau II). 3. Parmi les oses mineurs, le rhamnose est le mieux représenté. Ceci peut s'expliquer par le fait que ce sucre est fréquemment associé à l'acide galacturonique pour former des rhamnogalacturonanes. Or, les diverses fractions pectiques d'Aster tripolium sont riches en
Or, les diverses fractions pectiques d'Aster tripolium sont riches en acide galacturonique (30 à 50 % en poids de ces fractions). 4. Quand le sel est présent dans le milieu de culture, on constate une diminution de la quantité d'acide uronique dans les parois, d'environ 25 % par rapport à la teneur à 0 g/l de NaCl. Le degré d'estérification est d'environ 80 % et à la précision de la mesure employée, il n'a pas été décelé de variations significatives en fonction de la salinité. CONCLUSIONS. — L'étude chimique des glucides des parois de feuilles d'Aster a permis de montrer
glucides des parois de feuilles d'Aster a permis de montrer que les composés pectiques sont constitués d'arabinanes, d'arabinogalactanes et de rhamnogalacturonanes. En présence de sel dans le milieu de culture, les arabinanes prennent de plus en plus d'importance dans les parois, tandis que le glucose et les acides polygalacturoniques tendent à se raréfier. Par contre, le degré d'estérification de ces derniers reste toujours élevé. Des recherches ultérieures devraient permettre de constater dans quelle mesure ces actions du sel sur la paroi sont à relier au phénomène de succulence observé dans les feuilles des plantes cultivées en présence de sel [5].
les feuilles des plantes cultivées en présence de sel [5]. (*) Séance du 24 janvier 1977. (1) M. le Professeur Barnoud et M. Joseleau, Maître-assistant, ont fait bénéficier nos recherches de leurs conseils et de leur aide matérielle dans le cadre du Centre de Recherches sur les Macromolécules Végétales de Grenoble. (2) J. LEPETIT, Bull. Inst. Océanogr., Monaco, 66, 1973, p. 8. (3) M. MAEDA, M. KOSHIKAWA, K. NISIZAWA et K. TAKANO, Bot. Mag., 79, 1966, p. 422. (4) J. LE SAOS, Thèse Doct. État, Caen, 1976, 150 p. (5) P. BINET, Physiol. vég., 14, 1976, p. 283. (6) P.
P. BINET, Physiol. vég., 14, 1976, p. 283. (6) P. CHOUARD, Culture sans sol (La Maison Rustique, Paris, 1951, 64 p). (7) J. S. SEAMAN, R. L. MITCHELL et M. A. MILLER, Tappi, 37, 1954, p. 336. (8) J.-P. JOSELEAU, Thèse Doct. État, Grenoble, 1974, 160 p. (9) T. BITTER et H. M. MUIR, Anal. Biochem., 4, 1962, p. 330. (10) C. A. KNUTSON et A. JEANES, Anal. Biochem., 24, 1968, p. 470. (11) P. ALBERSHEIM, W. D. BAUER, K. KEEGSTRA et K. W. TALMADGE, in Biogenesis of Plant Cell Wall, F. LOEWUS, éd., Acad. Press, N. Y., 1973, p.
Wall, F. LOEWUS, éd., Acad. Press, N. Y., 1973, p. 117. (12) F. A. LOEWUS, S. KELLY et E. F. NEUFELD, Proc. Nat. Acad. Sci. U.S., 48, 1962, p. 421. Laboratoire de Physiologie végétale, Département de Biologie-Écologie, U.E.R. de Sciences, Université de Caen, 14032 Caen Cedex. PHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Recherches sur la propagation végétative du Douglas : Pseudotsuga menziesii (Mirb) Franco. Possibilités d'obtention de plants viables à partir de la culture in vitro de bourgeons de pieds-mères juvéniles. Note (*) de Michel Boulay et André Franclet, présentée par M. Roger Gautheret. Des bourgeons de Douglas récoltés sur des pieds-mères d'âges
Gautheret. Des bourgeons de Douglas récoltés sur des pieds-mères d'âges variés ont été cultivés in vitro. Le passage sur 3 milieux de culture différents peut permettre l'obtention d'une plantule viable si l'âge du pied-mère est inférieur à 2 ans. Si le pied-mère est plus âgé, la pousse des bourgeons sur les milieux est très lente. On a réussi à obtenir une croissance vigoureuse en utilisant les pousses axillaires émises par le bourgeon « sénile » une fois éliminé in vitro le méristème apical et les ébauches foliaires. Buds of Douglas fir gathered from ortets of various ages have been cultivated
fir gathered from ortets of various ages have been cultivated in vitro. The successive use of three different media can give a viable plantlet if the ortet is less than two years old. If the ortet is more than two years old, the bud growth on the media is very slow. It has been possible to speed the growth of senile clones by using axillary shoots given by the senile bud after "in vitro pruning" of the apical meristem and not-yet-expanded leaves. La propagation végétative dans un programme d'amélioration génétique chez les arbres forestiers est intéressante dans la mesure où
chez les arbres forestiers est intéressante dans la mesure où elle permet une rapide fixation et utilisation des génotypes supérieurs. Les principaux obstacles pour propager des arbres sélectionnés à l'état adulte résultent la plupart du temps de l'utilisation de parties du végétal trop différenciées ou de la persistance sur la bouture de corrélations importantes quant au devenir de la copie végétative. Parmi les moyens envisagés pour réduire l'importance des effets corrélatifs, diverses techniques peuvent être étudiées dont la culture de cellules isolées ou de protoplastes. Malheureusement jusqu'à présent, chez le Douglas, de telles cultures n'ont pas provoqué des formations d'organes.
Douglas, de telles cultures n'ont pas provoqué des formations d'organes. Certains auteurs ont montré que des cultures d'embryons excisés ou de cotylédons étaient susceptibles de néoformer des bourgeons et d'autres que la culture de bourgeons entiers excisés était possible. À notre connaissance, seules quelques plantules viables ont été produites à partir des tissus de l'embryon. La présente Note démontre qu'il est possible de multiplier des génotypes de 2 ans par culture in vitro de bourgeons débarrassés de leurs écailles ou d'apex caulinaires (méristème apical plus 3 à 4 jeunes primordia foliaires) et de stimuler la croissance de matériel « sénile
foliaires) et de stimuler la croissance de matériel « sénile ». I. MATÉRIEL ET TECHNIQUES. — A. Matériel végétal. — Des rameaux de Douglas sont prélevés de septembre à décembre sur des semis de 6 mois, 2 et 4 ans et sur des arbres de 15 ans, cultivés dans la collection de la Station centrale de l'A.F.O.C.E.L. La récolte est faite indifféremment : rameaux latéraux et axes principaux. Au moment de l'utilisation, ils sont débarrassés des feuilles et trempés 5 mn dans une solution commerciale d'hypochlorite de sodium ou quelques secondes dans l'éthanol à 95° GL. Les écailles des bourgeons
secondes dans l'éthanol à 95° GL. Les écailles des bourgeons sont alors enlevées. Une variante que nous appelons « taille in vitro » consiste à éliminer à ce moment le méristème apical et les ébauches foliaires et à provoquer l'élongation d'axillaires. Les deux types d'explants peuvent alors être plantés sur milieu gelosé. B. Climat d'élevage. — Les tubes sont placés en salle climatisée : 16 h de jour artificiel (tubes « Sylvania » grolux), température 25°C le jour, 18°C la nuit. C. Milieux de culture. — 3 milieux de culture différents sont actuellement utilisés selon les 3 phases de végétation
différents sont actuellement utilisés selon les 3 phases de végétation suivantes : Le milieu A est caractérisé par une forte concentration en sels minéraux : macroéléments de Murashige et Skoog (3) additionnés de ceux de Harvey et Grasham (8) sauf le fer; oligoéléments 100 fois la concentration de Heller (9); vitamines de Jacquiot (10); sucre : saccharose 30 g/1; agar 0,8 %; pH = 5,5-5,6; hormones : acide gibberellique GA3 : 0,1 mg/1 ou acide indolyl butyrique AIB : 1 mg/1 donnent des résultats similaires. Le milieu B est moins riche en sels et vitamines : macroéléments et oligoéléments de
riche en sels et vitamines : macroéléments et oligoéléments de Murashige et Skoog (3); vitamines de Quoirin (7) pour la rhizogenèse des plantules de Pommier (thiamine 0,4 mg/1, inositol 100 mg/1); sucre; agar et pH identiques au milieu A; auxines de 10-2 à 10-1 mg/1. Le milieu C consiste en une dilution du milieu B au 1/3 ou au 1/2. La concentration en saccharose est alors ramenée à 5 g/1. De fortes doses d'auxine AI A 10, 15, 20 mg/1 sont utilisées pour provoquer l'enracinement. II. RÉSULTATS. — On a obtenu à ce jour 15 plantules viables issues de bourgeons
obtenu à ce jour 15 plantules viables issues de bourgeons de pieds-mères de 2 ans, 8 de bourgeons de pieds-mères de 1 an et 4 d'apex caulinaires de pieds-mères de 1 an. On a provoqué l'épaississement du bourgeon et le développement des feuilles puis l'allongement de l'axe quel que soit l'âge des pieds-mères. Il faut noter cependant que plus le pied-mère est jeune, plus le pourcentage d'explants atteignant ces phases est important et qu'en ce qui concerne les apex caulinaires, il y a une très forte mortalité sur le milieu A même pour les jeunes. EXPLICATION DE LA PLANCHE Fig.
A même pour les jeunes. EXPLICATION DE LA PLANCHE Fig. 1. — Explant de départ : bourgeon de Douglas débarrassé de ses écailles et planté sur milieu gelosé. Fig. 2. — Aspect de la jeune pousse à la fin du séjour sur le milieu A. Il y a grossissement de l'expiant et développement des feuilles. Fig. 3. — Allongement de la jeune pousse à la fin du séjour sur le milieu B. La pousse ainsi obtenue est prête à être repiquée sur un milieu de rhizogenèse. Fig. 4. — Plantules à la fin d'un séjour sur le milieu C. Obtention
à la fin d'un séjour sur le milieu C. Obtention de plantules viables à partir de cultures de bourgeons de Douglas issus de sujets de 2 ans. Fig. 5. — Plante obtenue in vitro, repiquée en godet « Fertil » 3 x 5. Fig. 6. — Stimulation de bourgeons adventifs le long du jeune axe du bourgeon, débarrassé de ses écailles, après suppression de l'apex caulinaire et des ébauches foliaires. PLANCHE 1 MICHEL BOULAY Pour l'autre type d'explant (jeune axe du bourgeon débarrassé à la fois du méristème apical et des ébauches foliaires), en 2 mois et demi, 3 à
des ébauches foliaires), en 2 mois et demi, 3 à 10 bourgeons adventifs se développent le long du jeune axe. Ils sont repiqués sur un milieu d'allongement (B). 1 mois plus tard environ, les tiges de 20 à 30 mm sont plantées sur le milieu C. Avec ce type d'explant, nous en sommes à ce stade de l'expérimentation. Outre le fait d'obtenir au minimum 3 bourgeons par explant, on peut noter dès à présent que le temps nécessaire à obtenir du matériel âgé à enraciner (sur le milieu C) avec cette technique est de 4 mois environ. Il est notablement
cette technique est de 4 mois environ. Il est notablement plus court qu'avec une culture de bourgeons classiques : 6 mois dans le meilleur des cas. La phase C d'enracinement n'a pu être obtenue qu'avec des bourgeons ou apex caulinaires prélevés sur des sujets âgés de moins de 2 ans. Avec des pieds-mères plus âgés, il se développe un callus à la base qui peut être volumineux mais aucune formation de racines. III. CONCLUSION. — Il est possible d'obtenir des plantules viables de Douglas à partir de la culture aseptique de bourgeons débarrassés de leurs écailles ou d'apex caulinaires. La
de bourgeons débarrassés de leurs écailles ou d'apex caulinaires. La réussite semble liée à l'âge du pied-mère. Des études en cours nous montreront si la croissance lente et l'inaptitude à l'enracinement actuellement observées pour les bourgeons venant de pieds-mères âgés, peuvent être corrigées par l'amélioration des conditions de culture et par la recherche de tissus plus réactifs préexistants ou produits artificiellement. Séance du 24 janvier 1977. K. H. AL TALIB et J. G. TORREY, Plant physiol., 34, 1959, p. 630-637. V. CHALUPA et J. DURZAN, Can. J. For. Res., 3, 1973, p. 196-208. T. MURASHIGE et F. SKOOG, Physiol. Plant.,
1973, p. 196-208. T. MURASHIGE et F. SKOOG, Physiol. Plant., 15, 1962, p. 473-497. A. E. HARVEY et J. L. GRASHAM. Can. J. Bot., 47, 1969, p. 547-549. M. QUOIRIN, P. BOISSE et T. GASPAR, Physiol. Veg., 12, 1974, p. 165-174. C. JACQUIOT, cité in « la culture des tissus ligneux » de R. Gautheret, 1959, p. 23, Masson éd., 863 p. M. QUOIRIN, Communication personnelle. Laboratoire de Physiologie végétale, A.F.O.C.E.L., Domaine de l’Étançon, 77370 Nangis. PHYSIOLOGIE VÉGÉTALE. — Influence de l'auxine sur les activités P 1 → 3 endoglucanasiques de segments d'hypocotyles de Phaseolus aureus. Note de Renée Goldberg,
de segments d'hypocotyles de Phaseolus aureus. Note de Renée Goldberg, présentée par M. René Wurmser. Les activités P 1 → endoglucanases des fractions particulaires obtenues à partir de segments d'hypocotyles de Phaseolus aureus préalablement traités pendant 3 h par une solution tampon 10-3 M additionnée ou non d'acide (3 indolyl-acétique, représentent plus de 80 % de l'activité glucanasique totale de la cellule. L'auxine provoque l'augmentation des activités des fractions solubles et particulaires. Plusieurs schémas sont proposés pour rendre compte de cet effet de l'auxine. Dans les hypocotyles de Phaseolus aureus, plus de 80 % de l'activité endoglucanase P 1 3
plus de 80 % de l'activité endoglucanase P 1 3 est localisée dans des fractions particulières. L'incubation de segments d'hypocotyles dans une solution d'IAA (5 x 10-6 M) induit un accroissement des activités des fractions solubles et particulières comparées aux activités de segments incubés dans un tampon millimolaire sans IAA. Les dernières hypothèses avancées pour expliquer le mécanisme de l'action de l'auxine sur l'élongation impliquent l'excrétion d'ions H+ hors du cytoplasme; l'acidification de l'espace périplasmique qui s'ensuit permet alors une élévation de l'activité d'hydrolases pariétales entraînant une modification de la structure des polysaccharides constitutifs des parois, qui s'exprime par une
structure des polysaccharides constitutifs des parois, qui s'exprime par une augmentation de la plasticité du cadre cellulaire. Effectivement, nous avons pu constater que l'activité P 1 3 endoglucanase pariétale des hypocotyles de Phaseolus aureus augmentait d'environ 50 % lorsque le pH de la solution d'incubation passe de 6,8 à 5,5. Par ailleurs, il a été montré depuis quelques années déjà que l'acide 3 indolyl-acétique provoque une augmentation des activités cellulaires et glucanasiques intracellulaires. Dans le présent travail, nous avons voulu chercher si une manifestation morphologique déterminée (ici la stimulation de la croissance de segments d'hypocotyles de Phaseolus aureus par l'auxine)
la croissance de segments d'hypocotyles de Phaseolus aureus par l'auxine) ne résultait pas en réalité de plusieurs phénomènes différents. Après avoir constaté d'une part, que des segments d'hypocotyles incubés dans une solution d'auxine rejetaient des protons dans le milieu extérieur et, d'autre part, que les parois isolées à partir de segments d'hypocotyles possédaient une activité P 1 3 endoglucanase dont l'optimum se situait aux alentours de pH 5,6, nous avons comparé les activités P 1 3 endoglucanasiques de parois obtenues à partir de segments d'hypocotyles ayant séjourné dans une solution tampon 10-3 M additionnée ou non d'acide (3 indolyl-acétique. TABLEAU
tampon 10-3 M additionnée ou non d'acide (3 indolyl-acétique. TABLEAU Répartition des activités P 1 3 endoglucanases dans la cellule Activité P 1 3 endoglucanase Exp. 1 Exp. 2 A B A B Fraction p (parois) 1,30 1,60 1,45 1,72 Fraction S, 0,145 0,185 0,14 0,18 Fraction S2 0,11 0,17 0,15 0,26 Les segments d'hypocotyles sont agités 3 h dans du tampon 10-3 M pH 6,3 additionné (B) ou non (A) d'auxine (5.10-6 M). Le mode d'obtention des 3 fractions cellulaires étudiées (p, S, et S2) est décrit dans Matériel et méthodes. Les activités sont exprimées en micromoles d'oligosides réducteurs
et méthodes. Les activités sont exprimées en micromoles d'oligosides réducteurs apparus par heure et par gramme frais d'hypocotyle. MATÉRIEL ET MÉTHODES. — Les conditions de culture et le mode d'obtention des parois ont été décrits précédemment. Dans les expériences ayant pour but de comparer les activités pariétales et cytoplasmiques, les tissus ont été broyés dans du tampon citrate 10-3 M de pH 5,6 (dans ces conditions, aucune solubilisation, même partielle, des activités 3 endoglucanases pariétales ne peut être observée). 2 centrifugations successives de 15 mn à 1 000 g sont alors effectuées et les culots obtenus, lavés sur une toile
alors effectuées et les culots obtenus, lavés sur une toile à l'intérail (vide de mailles : 30 Jl) puis tenus en suspension dans de l'eau distillée (fraction p). Les surnageants des 2 premières centrifugations sont réunis et subissent une nouvelle centrifugation de 30 mn à 40 000 g; le culot ainsi obtenu est remis en suspension dans du tampon citrate 10-3 M pH 5,6 (fraction S,). Du sulfate d'ammonium (662 g/1) est ajouté au nouveau surnageant, le précipité qui se forme alors est récupéré après centrifugation et remis en suspension dans du tampon citrate 10-3 M et dialysé contre ce
dans du tampon citrate 10-3 M et dialysé contre ce même tampon (fraction S2). Fig. 1. — Représentation graphique selon Lineweaver et Burk de la vitesse d'hydrolyse (V) de la laminarine en fonction de la concentration du substrat (S) dans le milieu d'incubation. V, exprimée en micromoles d'oligosides réducteurs formés par heure par milligramme de matière sèche de parois. S en 10-3 M. A, parois provenant de segments traités 3 h par du tampon 10-3 M. B, parois provenant de segments traités 3 h par une solution tampon 10-3 M additionnée d'IAA (5.10-6 M). L'activité P 1 3 endoglucanase est
additionnée d'IAA (5.10-6 M). L'activité P 1 3 endoglucanase est estimée par la vitesse d'hydrolyse de la laminarine dans des conditions décrites par ailleurs. Les glucanases pariétales ont été éluées en incubant des parois dans du tampon citrate 0,5 M à pH 5,6 pendant 1 h; après filtration et lavage des parois, la solution obtenue est dialysée contre de l'eau distillée. RÉSULTATS. — 1. Comportement cinétique des activités pariétales. — Certaines activités pariétales présentent un comportement cinétique atypique. Il était donc important, avant de procéder à des estimations de niveau d'activité, de déterminer si l’activité de la P1-3 endoglucanase pariétale