700MHz帯の基地局用周波数の773-803MHzは710-770MHz（旧テレビ53-62ch）に隣接している。すでにテレビ放送は470-710MHz（13-52ch）に限定されているが、テレビ受信に旧式ブースター（増幅器）を使用していると、旧式ブースターは13-62chの電波を増幅するので、基地局の電波により飽和して受信障害を起こすおそれがある。携帯電話事業者は基地局を開設しようとする際には周辺のテレビ受信設備に受信障害対策の必要性を確認し、その実施を要することとなる。この対策を行うのは携帯電話事業者が共同で設立した700MHz利用推進協会で、対策費用は全て同協会が負担するので視聴者に対する費用請求は無い。基地局用周波数はまた、2019年3月までFPUや特定ラジオマイクと共用する。700MHz利用推進協会は共用調整の窓口を開設し、既存事業者との運用調整の仲立ちをする。運用調整とは、既存事業者の使用中は携帯電話基地局の出力低減または停止をすることである。700MHz利用推進協会はまた既存事業者に新周波数帯への移行促進措置も実施する。これは電波法令に基づき、移行に要する費用を携帯電話事業者が負担するものである。
長らく、移動機の送信周波数が受信周波数よりも高く配置されていた。これは世界の標準とは逆である。自動車電話を導入する際、移動機の送信波が、テレビ受像機に対してイメージ混信を生じさせる可能性があったためである。電電公社と郵政省が伊勢でおこなったフィールド実験では、ほとんど差異はなかったが、安全側に振る判断がされた。決定当初から、この配置は国際的な流れに反する物であったが、当時の関係者の判断で決まった。なお、他国においてもイメージ混信の可能性はあったが、日本に倣うことは無かった。
アンテナの長さは、λ/2アンテナで17cm程度、λ/4アンテナで8cm程度であるので、携帯用の機器への搭載が容易である。もちろん、周波数がさらに高くなればより短くなるので、さらに搭載が容易になるが、電波の飛びが直線的となり送受信が悪くなってくるため、携帯性と電波の飛びの点で（移動体通信事業者において）、最も実用上のバランスが取れているのが、この周波数帯である。
以前は、非常に高価なマイクロ波用の部品を使う必要があり、安価に提供することが出来なかった。また、部品形状が大きかったのはもちろん、集中定数回路と分布定数回路を組み合わせて構成されるのが普通であったため大型だった。しかし、近年はIC化や部品の小型化が急速に進み安価で小型になった。
ワイヤレスマイク（ラジオマイク）、携帯電話・自動車電話（方式はUMTS800/850、GSM850/900、CDMA850など、事業者はNTTドコモ、KDDI／沖縄セルラー電話（以下、「OCT」と略す。）連合（au）、SoftBank）、MCA無線、FPU、STL、パーソナル無線、テレメータ、テレコントロール（遠隔操作）、移動体識別（RFID、電子タグ）等に使われている。米国では、FCCが1974年、セルラー電話用に割り当てて1983年の商用サービス以来、今日でも携帯電話に使われている帯域である。
ChIA-PET法は、クロマチン免疫沈降法(Kuo & Allis, 1999)および3C法を組み合わせた手法である(The ChIA-PET method combines ChIP-based methods (Kuo & Allis, 1999), and Chromosome_conformation_capture (3C), to extend the capabilities of both approaches.)。ChIP-Seq法が転写因子結合領域(TFBS)を決定するのに広く用いられる手法である一方、染色体間の大域的相互作用の測定には3C法が用いられていた(Dekker et al., 2002)(ChIP-Sequencing (ChIP-Seq) is a popular method used to identify TFBS while 3C has been used to identify long-range chromatin interactions (Dekker et al., 2002).)。 However, both suffer from limitations when used independently to identify de-novo long-range interactions genome wide. While ChIP-Seq is typically used for genome-wide identification of TFBS (Barski et al., 2007; Wei et al., 2006), it provides only linear information of protein binding sites along the chromosomes (but not interactions between them), and suffers from high genomic background noise (false positives). Additionally, only a small amount of sequences generated by ChIP-Seq uniquely map to the genome, and an even smaller amount are functional TFBS (Johnson et al., 2007).While 3C is capable of analyzing long-range chromatin interactions, it cannot be used genome wide and, like ChIP-Seq, also suffers from high levels of background noise. Since the noise increases in relation to the distance between interacting regions (max 100kb), laborious and tedious controls are required for accurate characterization of chromatin interactions (Dekker et al., 2006).The ChIA-PET method successfully resolves the issues of non-specific interaction noise found in ChIP-Seq by sonicating the chip fragments in order to separate random attachments from specific interaction complexes. The next step, which is referred to as enrichment, reduces complexity for genome-wide analysis and adds specificity to chromatin interactions bound by pre-determined TFs (transcription factors). The ability of 3C approaches to identify long-range interactions is based on the theory of proximity ligation. In regards to DNA inter-ligation, fragments that are tethered by common protein complexes have greater kinetic advantages under dilute conditions, than those freely diffusing in solution or anchored in different complexes. ChIA-PET takes advantage of this concept by incorporating linker sequences onto the free ends of the DNA fragments tethered to the protein complexes. In order to build connectivity of the fragments tethered by regulatory complexes, the linker sequences are ligated during nuclear proximity ligation. Therefore, the products of linker-connected ligation can be analyzed by ultra-high-throughput PET sequencing and mapped to the reference genome. Since ChIA-PET is not dependent on specific sites for detection as 3C and 4C are, it allows unbiased, genome-wide de-novo detection of chromatin interactions (Fullwood et al., 2009).